JPH09504784A

JPH09504784A - 固型腫瘍、乳頭腫および疣贅の遺伝子治療

Info

Publication number: JPH09504784A
Application number: JP7507792A
Authority: JP
Inventors: ウー，サーヴィヨウ，エル．シー．; チャン，シュー−シァ
Original assignee: Baylor College of Medicine
Current assignee: Baylor College of Medicine
Priority date: 1993-08-26
Filing date: 1994-08-25
Publication date: 1997-05-13
Anticipated expiration: 2024-01-21
Also published as: JP4213201B2; ATE360697T1; DE69434960T2; ES2286538T3; CA2169260A1; US6217860B1; EP0719147B1; US6066624A; US5631236A; WO1995005835A1; AU7677694A; DE69434069D1; EP0719147A1; ATE279525T1; AU677430B2; EP1469075A1; DE69434960D1; DE69434069T2; JP2008106072A; EP1469075B1

Abstract

(57)【要約】本発明は個体における局所化された固型腫瘍および乳頭腫、および転移性悪性腫瘍を措置するための新しい方法を提供するものである。本発明は組換えアデノウィルス性ベクターあるいはその他のＤＮＡ輸送システムを用いて、個体内の自殺遺伝子を腫瘍、乳頭腫または痩贅に伝達するステップを含んでいる。その後、薬品ガンシクロビル^TMなどのプロドラッグをその個体に投与する。さらに、本発明は固型腫瘍、乳頭腫、および転移性悪性腫瘍を治療する方法を提供するものであり、この方法は自殺遺伝子およびひとつまたは複数のサイトカイン遺伝子を個体の腫瘍、乳頭腫、または疣贅に導入し、その後、その個体にプロドラッグを投与するステップを含んでいる。本発明による方法は、結腸悪性腫瘍、前立腺癌、乳癌、肺癌、黒色腫、ヘパトーマ、脳リンフォーマ、および頭部と首の癌を含む種々の異なったタイプの癌および乳頭腫の治療に用いることができる。

Description

【発明の詳細な説明】発明の名称固型腫瘍、乳頭腫および疣贅の遺伝子治療発明の背景発明の分野本発明は一般的には遺伝子治療に関するものである。より具体的には、本発明は固型腫瘍、乳頭腫および疣贅をアデノウィルス性ベクター、複数のアデノウィルス性ベクターの組み合わせ、その他のウィルス性ベクター、そして非ウィルス性ＤＮＡトランスポーターシステムを用いて治療する新しい遺伝子治療方法に関するものである。関連技術の説明インビボでの治療用遺伝子の悪性腫瘍への直接の導入によって、局所化された腫瘍の効果的な治療が可能になる。最近、いくつかの新しい措置法が試みられている。例えば、ひとつの措置法は、正常な腫瘍サプレッサー遺伝子および／または活性化された癌関連遺伝子を腫瘍細胞に直接伝達するステップを含んでいる。第２の措置はサイトカイン遺伝子の導入によって、インビボでの腫瘍細胞の免疫原性を増強するステップを含んでいる。第３の措置は、腫瘍細胞に対して化学治療剤への感受性を伝えることができる酵素をコード表現する遺伝子を導入するステップを含んでいる。ヘルペス単体ウィルス−チミジンキナーゼ（ＨＳＶ−ＴＫ）遺伝子は特にヌクレオチドアナログ（ガンシクロビル）を毒性中間体に転換して分裂性細胞の死をもたらす。最近、Culverらによって（Science 256：1550−1552，1992）、レトロウィルス性形質導入によるＨＳＶ −ＴＫ遺伝子の伝達後、ガンシクロビル措置が効果的に実験動物における脳腫瘍の退縮をもたらしたことが報告されている。局所化された腫瘍に対するこの措置の魅力的な特徴は、いわゆる“局外者”効果である。この“局外者”効果では、ＨＳＶ−ＴＫ表現腫瘍細胞はガンシクロビルの存在下で、隣接した非形質導入腫瘍細胞の成長を妨げる。したがって、効果的な癌治療のためには、すべての腫瘍細胞がＨＳＶ−ＴＫを表現しなければならないわけではない。 Culverらが用いたＨＳＶ−ＴＫレトロウィルスは、低ウイルスタイターによって制限された。したがって、脳腫瘍を効果的に治療するためには、ウィルス単離体自体よりウィルス生産細胞を動物の体内に接種することが必要であった。加えて、レトロウィルスおよびガンシクロビルで措置したシネルゲニッグ（synergen eic）ラットを用いての以前の実験で、それらの腫瘍は壊死性で、マクロファージおよびリンパ球によって侵された。以下に示す例１で、アシミック（athymic ）マウスが用いられ、細胞免疫反応の明白な関与なしに、腫瘍細胞が破壊された。先行技術では、固型腫瘍の治療のための効率的な遺伝子治療技術は十分ではない。発明の要約本発明の目的は、ヒトおよび動物における新しい遺伝子治療方法である。本発明の別の目的は、プロドラッグ、つまり非毒性の化合物を毒性化合物に酵素的に転換することができる蛋白質をコード表現するアデノウィルス性ベクターを導入し、その後、そのプロドラッグを投与することによる癌治療方法である。本発明のさらに別の目的は、インターロイキン−２遺伝子などの“サイトカイン”と共に投与される、プロドラッグを転換することができる蛋白質である“自殺遺伝子”を有するアデノウィルス性ベクターを用い、その後でそのプロドラッグを投与することによる組み合わせ遺伝子治療方法である。したがって、上に述べた目的を達成するために、本発明のひとつの側面にしたがって、動物またはヒトにおける固型腫瘍、乳頭腫、または疣贅の治療方法において、プロモーター、５′mＲＮＡリーダー配列、開始部位、表現されるべき自殺遺伝子配列を含んだ核酸カセット、３′非翻訳領域、そしてポリアデニル化信号の諸要素を機能的な表現のために適切な距離で順列的に結合して構成されたアデノウィルス性ベクターを固型腫瘍に直接導入するステップと、プロドラッグを動物またはヒトに投与し、そのプロドラッグがインビボで毒性化合物に転換されるステップとで構成された治療法が提供される。さらに、上記の目的を達成するために、本発明の１つの側面にしたがって、動物またはヒトにおける固型腫瘍、乳頭腫、または疣贅の治療方法において、プロモーター、５′mＲＮＡリーダー配列、開始部位、表現されるべき自殺遺伝子配列を含んだ核酸カセット、３′非翻訳領域、そしてポリアデニル化信号の諸要素を機能的な表現のために適切な距離で順列的に結合して構成されたアデノウィルス性ベクターを固型腫瘍に直接導入するステップと、同時に、プロモーター、５′ＲＮＡリーダー配列、開始部位、サイトカイン遺伝子を含んだ核酸カセット、３′ 非翻訳領域、そしてポリアデニル化信号を機能的表現のために適切な距離で順列的に結合して構成された第２のアデノウィルス性ベクターを導入するステップと、そして、プロドラッグを動物またはヒトに投与し、プロドラッグがインビボで毒性化合物に投入するステップで構成された、固型腫瘍、乳頭腫そして疣贅を治療するための方法が提供される。他の、そしてさらなる目的、特徴、そして利点は、開示の目的のために示される本発明の現時点での実施例に関する以下の説明と、関連図面を参照することで明らかになるであろう。図面の簡単な説明図１は、ヘルペス単体ウィルスチミジンキナーゼ（ＨＶＳ−ＴＫ）遺伝子を含む組換えアデノウィルス性ベクターの構成を図式的に示すものである。図２は、バクテリア性β−ガラクトシダーゼ遺伝子（β−ガル）を含んだ組換えアデノウィルス性ベクターを用いた、インビトロでのＣ６神経膠腫細胞の効率的な形質導入を示している。パネルＡ：moi＝０；パネルＢ：moi＝125、パネルＣ：moi＝500、およびパネルＤ；moi＝2,0000。図３は、ＨＳＶ−ＴＫ遺伝子を含む組換えアデノウィルス性ベクターによる形質導入後のＣ６神経膠腫細胞におけるＨＳＶ−ＴＫ酵素活性を示している。図４は、Ａｄ/ＲＳＶ−ＴＫ形質導入Ｃ６神経膠腫細胞のインビトロでのガンシクロビル毒性に対する感作性を示している。図５は、ＨＳＶ−ＴＫを含む組換えアデノウィルス性ベクターを用いた脳腫瘍の遺伝子治療の基本的方針を示している。図６は、一般的な固型腫瘍の遺伝子治療に関する基本的方針を示している。図７は、Ｃ６神経膠腫細胞を脳に接種し、定位Ａｄ/ＲＳＶ−ＴＫ投与を行って20日後の実験動物を示している。左側の動物はＰＢＳを措置され、右側の動物はガンシクロビルで措置されたものである。図８は、ＰＢＳ治療（左側）またはガンシクロビル治療（右側）のいずれか後の、図７に示したマウスの脳全体を示している。図９は、ガンシクロビルによる措置とＨＳＶ−ＴＫ⁺乳頭腫（ＭＯＤ）退縮を示している。図10は、ＨＶＳ−ＴＫ⁺乳頭腫（ＭＯＤ）サイズに対するガンシクロビル治療の効果を示している。図11は、親の乳頭腫（ＭＯＤ）細胞およびＨＳＶ−ＴＶ遺伝子を含む腫瘍細胞を混合してマウスに皮下注射した場合の局外者効果を示している。図12は、マウスを100％親腫瘍細胞、腫瘍細胞を含む100％ＨＳＶ−ＴＫ、90％親／10％ＨＳＶ−ＴＫ腫瘍細胞または50％親／50％ＨＳＶ−ＴＫ乳頭腫（ＭＯＤ）細胞のいずれかによって措置された場合の、腫瘍のサイズに対するＰＢＳまたはガンシクロビルの影響を示している。図13は、アデノウィルス媒介遺伝子治療後の脳腫瘍サイズに対するガンシクロビル投与量の効果を示している。80mg/kg以下のガンシクロビルを投与されＡＤＶ/tkで措置したラットのいくつかの脳で、少量の残存腫瘍が観察された。誤差バー＝Ｓ.Ｄ.措置、平均腫瘍面積±Ｓ.Ｄ.およびサンプルサイズは：ＡＡＤＶ −tk＋ＰＢＳ，36.89±6.73mm²（ｎ＝３）；ＢＡＤＶ−βgal＋150mg/kgガンシクロビル、28.75±0.55mm²（ｎ＝４）；ＣＡＤＶ−tk＋150mg/kgガンシクロビル、−０mm²（ｎ＝２）；ＤＡＤＶ−tk＋100mg/kgガンシクロビル、０mm²（ｎ＝４）；ＥＡＤＶ−tk＋80mg/kgガンシクロビル、０mm²（ｎ＝２）；ＦＡＤＶ−tk＋50mg/kgガンシクロビル、0.25±0.29mm²（ｎ＝４）；ＧＡＤＶ−tk ＋20mg/kgガンシクロビル、1.79±3.52mm²（ｎ＝４）；ＨＡＤＶ−tk＋10mg/k gガンシクロビル、0.01±0.004mm²（ｎ＝４）。図14は、ＡＤＶ−βgalまたはＡＤＶ−tkのいずれかで措置し、その後１日２度ずつ50mg/kgを６日間措置した動物の生残調査の結果を示している。Ａ：ＡＤＶ−βgal＋ガンシクロビルで措置したこれらの動物は、22日以内に死亡した；Ｃ：ＡＤＶ−tk＋ガンシタロビルで措置を受けた第２のグループの動物は80日後も生き残っていた（----；ｎ＝５）。図15は、インビトロでＨＬａＣ−79ヒト鱗状癌細胞のＡＤＶ/ＲＳＶ−ＴＫ形質導入を行い、その後ＧＣＶ10ｕg/ml（実線バー）またはＰＢＳ（縞バー）で措置した場合を示している。細胞生残はＧＣＶ措置とＰＳＢの両方での形質導入後 68時間と評価された。ＧＣＶで措置した場合、Ｍ.Ｏ.Ｉ.が非常に低くても85〜9 0ｘの癌細胞致死が見られた。形質導入を受けないコントロール（Ｍ.Ｏ.Ｉ.＝０）およびＰＢＳコントロールではＭ.Ｏ.Ｉ.を25に上げても毒性は認められなかった。図16は、各実験グループに関する、インビボでの鱗状癌腫瘍の壊死平均パーセントを示している。アデノウィルスの形質導入とガンシクロビルによる治療（ＴＫ＋Ｃ＋）後、コントロール（０〜2.2％壊死）と比較して、かなりの細胞毒性効果（41％）が認められた。ｔ−テスト分析での統計的優位度：ｐ＜.001。図17は、実験グループの各動物に対する全体的な臨床応答を示す腫瘍指数値（ドット）を示している。水平線以下のデータ（30以下の腫瘍指数）は、全腫瘍退縮に近い状況を示している。バーは各グループのメディアン値を示している。各コントロールグループ（マン−ホイットニー分析でｐ＜.001〜.02）と比較して、完全な措置を受けた動物（ＴＫ＋Ｇ＋）で劇的な臨床応答が認められた（マン−ホイットニー分析でｐ＜.001〜.02）。図18は組換えアデノウィルス性ベクターの機能的特徴付け：ＡＤＶ/ＲＳＶ−t kを形質導入されたＭＣＡ−26結腸細胞株のＧＣＶ感作性を示している。ＭＣＡ −26′細胞は種々の多重度でＡＤＶ/ＲＳＶ−tkによって形質導入され、その後、12時間後にＰＢＳまたは10ｕg/ml ＧＣＶで措置した。３日後、トリパンブルー染色で成長可能な細胞についての判定が行われた。図19は、ＡＤＶ/ＲＳＶ−mＩＬ２を形質導入したＢ16細胞からの調整培養液のマウスＩＬ２バイオアッセイの結果を示している。調整培養液をマウスＴ−細胞株ＣＴＬＬ−２に加え、20時間培養した。³Ｈ：チミジンをさらに４時間加えて、ＰＨＤ細胞採取器を用いて、細胞を収集した。組み込まれた³Ｈ−チミジンは液体シンチレーションカウンティングで判定され、平均cpmが３倍であることが示されている。図20は、種々の遺伝子治療措置後の、動物に置ける生残腫瘍のサイズを示している。腫瘍の最大断面積をコンピュータ化モルフォメトリック分析によって測定した。２つの別個に行われた実験から得られた５つの措置グループにおける動物の延べ数は14（βgal）；８（mＩＬ２）；７（β−gal＋mＩＬ２）；12（tk）および10（tk＋mＩＬ２）であった。誤差バーは各措置グループにおける標準偏差を示している。図21は、末端分の１での親の腫瘍細胞による刺激に対しての全身性抗腫瘍性免疫を示している。腫瘍細胞を、全部で５つの措置グループに分けた動物に皮下注射で摂取した。１×10⁵ＭＣＡ−26細胞を、ＧＣＶ措置の完了１日後に動物の右のわき腹に注射し、２×10⁶ＭＯＤ乳頭腫細胞をそれら動物の左のわき腹に注射した。投与された量は、投与７日後に正常なＢＡＬＢ/ｃマウスにおいて同様のサイズの目に見える腫瘍をもたらすような、腫瘍を発生させるに十分な量であった。１週間後、刺激を与えた動物において皮下腫瘍の存在が目で確かめられた。ＭＣＡ−26によって刺激を与えられた動物の数は各グループ６匹ずつで、ＭＯＤによって刺激を与えられたものは１グループあたり２〜４匹の範囲であった。図22は、種々の遺伝子治療を行った後の、動物における細胞毒性Ｔリンパ球反応である。ＧＣＶ投与終了後３日目に種々の措置グループの動物から、脾臓細胞を分離した。⁵¹Ｃrリリースアッセイを行う前に、５×10⁵の照射ずみＭＣＡ−26 細胞と５日間共培養することによって、６×10⁶個の脾臓細胞にインビトロで刺激を与えた。⁵¹Ｃr放出前の日毎のＭＣＡ−26標的細胞の割合を種々のエフェクター／標的細胞比率との関連で図示した。データは３倍体培養からの平均比⁵¹Ｃ r放出を示している。図23は、ＣＤ４またはＣＤ８のいずれかに対するモノクローナル抗体を用いてのＣＴＬ応答のインビトロブロッキングを示している。ＡＤＶ/ＲＳＶ−tk＋ＡＤＶ／ＲＳＶ−mＩＬ２によって措置された動物からの脾臓細胞を図５Ａに示すようにインビトロで刺激を与え、次に、これらエフェクター細胞を種々の濃度の精製した、ナトリウムアジドを含まない抗体（ＣＤ４に対するモノクローナル抗体ＧＫ15、またはＣＤ８_aに対する2.43モノクローナル抗体：P harmingen）を用いて、−37℃の温度下で30分間培養した。⁵¹Ｃrリリースアッセイはエフェクター：標的細胞の比率を50/1として行われた。図面は必ずしも実寸代ではない。本発明の一定の特徴は寸法を誇張して示されており、明瞭さと簡潔さのために図式的に示してある。発明の詳細な説明本発明の範囲および精神を逸脱せずに、ここに述べられている発明に対して、種々の置き換えや修正が可能なことは当業者には明らかであろう。ここで用いられている“ベクター”とい用語は標的とされる細胞の形質転換を行わせるようにデザインされた遺伝子的物質で構成された構造物を意味している。ベクターは位置的にも配列的にも方向づけられた、つまり、核酸カセット内の核酸が転写され、そして必要な場合はトランスフェクトされた細胞内に翻訳されるように、他の必要な要素と操作的に結合された複数の遺伝子的要素を含んでいる。本発明においては、好ましいベクターは、機能的表現のために操作的に結合された以下の要素：つまり、プロモーター、５′mＲＮＡリーダー配列、開始部位、表現されるべき配列を含んだ核酸カセット、３′非翻訳領域、およびポリアデニル化信号から成り立っている。ここで使われている“安定した形質転換”とは、導入治療用核酸配列（自殺遺伝子）、導入された治療用核酸配列およびサイトカインが細胞全体のクロモソームに組み込まれる形質変換を意味している。これは、ひとつの細胞の任意の特性の見かけ上安定した変化または形質転換をもたらす。ここで用いられている“形質転換”とは、ＤＮＡまたはＲＮＡが特定の遺伝子生成物を表現したり、表現を変更したり、内発性遺伝子生成物に影響を及ぼしたりする形態で細胞内に導入されるメカニズムによって、細胞の特性（表現フェノタイプ）の安定的な変化を起こさせる、または導入するプロセスを示している。ベクターは、マイクロインジェクション、ＣaＰＯ₄沈降、リポフェクション（リポソーム融解）、遺伝子ガンまたはＤＮＡベクタートランスポーターの使用などを含む、種々の方法で細胞内に導入することができる。ＨＳＶ−ＴＫ遺伝子を含んでいる組換えアデノウィルスは、サイトメガロウィルス、ラウス黒色腫ウィルスＬＴＲ、マウス白血病ウィルスＬＴＲ、初期および晩期の類人猿ウィルス40、および内発性ＨＳＶ−ＴＫ遺伝子などを含む種々のプロモータによって活性化される。ＨＳＶ−ＴＫ遺伝子を効率的に腫瘍に伝達するためには、組換えアデノウィルスが用いられる。アデノウィルス性ベクターは脳腫瘍の体細胞遺伝子治療のためにレトロウィルスより有効ないくつかの生物学的特性を有している。アデノウィルス性ベクターは幅広い宿主および細胞範囲を有しており、宿主細胞の多重感染によって高いレベルの遺伝子表現をつくりだすことができ、感染はエピゾーム性なので、宿主遺伝子の挿入による変異が起きる可能性はほとんどなく、１×10¹¹粒子/mlまでの高いウィルス性タイターをつくりだすことができる。非常に多様な癌、乳頭腫および疣贅を同じ治療方針で治療することができる。その代表的な例としては、結腸悪性腫瘍、前立腺癌、乳癌、肺癌、皮膚癌、肝臓癌、骨癌、子宮癌、膵臓癌、脳癌、頭部および頚部癌、リンパ腫、その他の固型腫瘍などを含んでいる。乳頭腫の代表的な例には鱗状細胞乳頭腫、コロイド叢乳頭腫、および喉頭部乳頭腫などが含まれる。疣贅状態の代表的な例としては、生殖器疣贅、足底疣贅、疣贅状表皮異形成および悪性疣贅などを含んでいる。ここで用いられている“核酸カセット”という用語は、蛋白質、ペプチド、またはＲＮＡを表現できる一般的な物質を示している。核酸カセットは、そのカセット内の核酸が転写され、そして、必要な場合には翻訳されるように、操作的に、つまり、ベクター内で位置および配置的に他の必要な要素と結合させることができる。本発明は、動物またはヒトにおける局所化された固型腫瘍、乳頭腫、または疣贅を措置する方法を提供するものであり、該方法は、機能的な表現のために適切な距離で配列的に結合されたプロモーター、５′mＲＮＡリーダー配列、開始部位、表現されるべき配列を含んだ核酸カセット、３′非翻訳領域、およびポリアデニル化信号などの要素で構成されたアデノウィルス性ベクターを該腫瘍または乳頭腫に直接導入するステップと、そして、プロドラッグを動物またはヒトに投与し、そのプロドラッグが毒性化合物に転換されるステップとで構成されている。本発明の別の側面は、固型腫瘍、乳頭腫、または疣贅を措置する方法を提供するものであり、該方法は、機能的な表現のために適切な距離で結合されたプロモーター、５′mＲＮＡリーダー配列、開始部位、自殺遺伝子を含んだ核酸カセット、３′非翻訳領域、およびポリアデニル化信号によって構成されたベクターを固型腫瘍に直接導入し、同時に、機能的な表現のために適切な距離で結合されたプロモーター、５′mＲＮＡリーダー配列、開始部位、サイトカイン遺伝子を含んだ核酸カセット、３′非翻訳領域、そしてポリアデニル化信号で構成された第２のアデノウィルス性ベクターを導入し、そして、動物またはヒトにプロドラッグを投与し、プロドラッグがインビボで毒性化合物に転換されるステップとで構成されている。アデノウィルス性ベクターに加えて、ウィルス性であれ、非ウィルス性であれ、他の伝達システムを用いてもよい。非ウィルス性形態のＤＮＡまたはＲＮＡのための標的システムは以下の４つの成分で構成されている：１）ＤＮＡまたはＲＮＡなど；２）細胞表面レセプターまたは抗原を認識するか、あるいはそれに結合する分子感染度；３）ＤＮＡ結合分子感染度、および４）その細胞表面から細胞質への複合体の輸送を可能にする溶解性集団。そうした非ウィルス性輸送システムの例は1992年３月20日に出願された SmithおよびWooによる米国特許願07/855,389に見られる。さらに、リポソームおよび陽イオン性脂質を用いて治療用遺伝子を伝達しても、同じ効果を達成することができる。利用が可能なウィルス性ベクターには、ワクチンウィルス、ヘルペスウィルスおよび仔ウシ乳頭腫ウィルスなどのウィルスから取り出された表現を含んでいる。加えて、エピソーム性ベクターを用いてもよい。他のＤＮＡおよびトランスポーターシステムも先行技術では公知である。現在の段階で、好ましい実施例ではアデノウィルスシステムの使用が想定されている。本発明による方法において、治療用核酸配列または“自殺遺伝子”は、それ自体で、または他の化合物の存在下で、細胞の死をもたらす製品をコード表現する核酸である。そうした治療用核酸（自殺遺伝子）はヘルペス単一体ウィルスのシミジンキナーゼをコード表現するものである。別の例は、バリセラゾスターウィルスのチミジンキナーゼと、５−フルオロサイトシンと毒性の高い化合物５−フルオロウラシルに転換できるバクテリア性遺伝子サイトシンである。ここで用いられている“プロドラッグ”という用語は、毒性生成物、つまり、腫瘍細胞に対する毒性物質に転換することができる、本発明による方法において有用な化合物を意味している。このプロドラッグは本発明による方法において有用なベクターにおいて、治療用核酸配列（自殺遺伝子）の遺伝子生成物によって毒性生成物に転換される。そうしたプロドラッグの代表的な例は、ＨＳＶ−チミジンキナーゼによって特性化合物にインビボで転換されるガンシクロビルである。ガンシクロビル誘導体は、腫瘍細胞に対して毒性を示す。プロドラッグの他の代表的な例はアシクロビル、ＦＩＡＵ［１−（２−デオキシ−２−フルオロ−β −Ｄ−アラビノフラノシル）−５−ヨードウラシル］、ＶＺＶ−ＴＫのための６ −メトキシプリンアラビノシドそしてサイトシンデアミビナーゼのための５−フルオロサイトシンなどである。ガンシクロビルは、当業者なら誰でも簡単に投与することができる。通常の技術を持っている人であれば、ガンシクロビルを投与するための最も適切な投与量とルートをすぐに判断できるであろう。好ましくは、ガンシクロビルは１〜20mg /日/kg体重の範囲の投与量で投与できる。好ましくは、アシノクロビルは約１〜 100mg/日/kg体重の投与量で投与され、ＦＩＡＵは約１〜50mg/日/kg体重の投与量で投与される。本発明の別の方法では、サイトカイン遺伝子配列を含んでいるアデノウィスは、ラウスサルコーマウィルス−ロングターミナルリピート、サイトメガロウィルスプロモーター、マウス白血病ＬＴＲ、類人猿ウィルス40初期および晩期プロモーターおよびヘルペス単一体ウィルスチミジンキナーゼなどの種々のプロモータによって活性化される。このサイトカイン遺伝子含有アデノウィルスを自殺遺伝子含有アデノウィルスと一緒に投与して、“結合遺伝子治療”を行うことができる。ここで用いられている“サイトカイン遺伝子”とは、抗原の侵入に対応することができる能力で特徴づけられるリンパ系または非リンパ系細胞によってつくりだされる可溶性の物質のひとつをコード表現する遺伝子を意味する。これには、インフェロンおよびヘルパーと細胞溶解液Ｔ−リンフォサイトを刺激して有効な抗腫瘍反応を引き起こす因子、および、Ｂ−リンパ球の抗体生産細胞への活性化を支援するカウロファージおよびモノサイトなどを含んでいる。サイトカイン遺伝子は、インターロイキン−１、インターロイキン−２、インターロイキン−４、インターロイキン−６、インターロイキン−７、インターロイキン−10、インターロイキン−12、インターフェロン−α、インターフェロン−β、インターフェロン−δ、腫瘍壊死因子αおよびβ、グラニュロサイト−マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、およびグラニュロサイトコロニー刺激因子（Ｇ −ＣＳＦ）を含んでいる。ここで用いられる略語には以下のようなものがある。ＡＤＶ/ＲＳＶ−ＴＫ、ラウスサルモーマウィルスの長末端の反復によって活性化されるチミジンキナーゼ遺伝子；ＡＤＶ／ＲＳＶ−β、上に述べたのと同様のベクターただしβ−ガラクトシダーゼに関する遺伝子を含んでいる；ＴＫ，ヘルペス単一体ウィルスチミジンキナーゼ遺伝子；ＧＣＶ、ガンシクロビル；ＰＢＳ、燐酸緩衝食塩水。以下の例は説明のために開示されるものであって、いかなる意味でも本発明の限定を意図するものではない。実施例１脳腫瘍に関する遺伝子治療：インビボでのアデノウィルスの媒介による遺伝子の伝達による実験的神経膠腫の退縮アデノウィルス性ベクターの構成：ヘルペス組換えアデノウィルス性ベクター単一体ウィルスチミジンキナーゼ（ＨＳＶ−ＴＫ）遺伝子（Summers，W．C．ら、ＰＮＡＳ 78（３），pp.1441−1445（1981））を図１に示す。それぞれ、コード表現配列に異なったプロモーターが挿入され、ポリアデニル化を有している、以下のような３つの異なったベクターが構成された。（１）ラウスサルコーマウィルスの長端末配列（Ａｄ／ＲＳＶ−ＴＫ）；（２）サイトメガロウィルス（Ａd/ＣＭＶ−ＴＫ）の初期遺伝子プロモーター；そして（３）ヘルペス単一体ウィルス（Ａd/ＨＳＶ−ＴＫ）のチミジンキナーゼ遺伝子プロモーター。Ｃ６神経膠腫細胞の形質導入：インビトロでのＣ６神経膠腫細胞の形質導入は、バクテリア性Ｂ−ガラクトシダーゼ遺伝子を用いて達成された。５×10⁵Ｃ６細胞を1.5cm直径のウェルに入れて、種々のウィルス投与量でＡdＶ/ＲＳＶ−Ｂ−galで形質導入し、２日後にＸ−galで染色した。パネルＡは０のmoiを用いた場合の結果を示している。パネルＢは125のmoiを用いた場合の結果を示している。パネルＣは500のmoi を用いた場合の結果を示しており、パネルＤは2,000のmoiを用いた場合の結果を示している。ＨＳＶ−ＴＫ遺伝子を用いたＣ６細胞の形質導入：Ｃ６神経膠腫細胞の形質導入はＨＳＶ−ＴＫ遺伝子（Ａd/ＲＳＶ−ＴＫ）を含む組換えアデノウィルス性ベクターを用いても達成された。５×10⁵Ｃ６細胞を1.5cm直径のウェルに入れて、示されているような異なった投与量によってウィルス性ベクターで形質導入を行った。２日後に細胞を取り出して、蛋白質抽出物を作成した。ＨＳＶ−ＴＫ酵素活性はJamesら、Ｊ．Biol．Chem.，253（24）：8721−8727（1978）に述べられているように³Ｈ−アシクロビルのホスホリル化によって判定した。図３から分かるように、ＨＳＶ−ＴＫ活性は、それぞれ1000および2000のm.o. i.を有するＡＤ/ＲＳＶ−ＴＫによって形質導入した後のＣ６細胞において最も高かった。ＨＳＶ−ＴＫ⁺Ｃ６細胞のガンシクロビル感作性：Ａd/ＲＳＶ−ＴＫ形質導入Ｃ６神経膠腫細胞のガンシクロビル毒性に対する感作性を図４に示す。図３のウィルス形質導入細胞の場合と同じ培養プレートを２ug/mlのガンシクロビルで措置して、72時間後に生き残っている細胞の数をカウントした。図４は、ＡＤ/ＲＳＶ−ＴＫによる形質導入後のＣ６細胞におけるガンシクロビルの影響を示している。図４は250のm.o.i.が62.5％の細胞致死、そして500の m.o.i.が75％の細胞致死をもたらしたことを示している。最も顕著な例として、 1000のm.o.i.はほぼ95％の細胞致死をもたらした。遺伝子治療の基本方針：ＨＳＶ−ＴＫを含む組換えアデノウィルス性ベクターを用いた脳腫瘍の遺伝子治療に関する基本的な方針を図５および図６に示す。図５で、Ｃ６神経膠腫細胞を、注射の場所を示すための少量の木炭と共にヌードマウスの脳に定位的に接種された。約１週間後、Ａd/ＲＳＶ−ＴＫを定位的に腫瘍に注射した。次に、マウスを２つのグループに分けて、１つをガンシクロビルで６日間措置し、他のグループは燐酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）で措置した。これらの動物は、腫瘍が形成されるまで、つまり１〜２週間程度、そのまま放置された。図６は、マウスにおける、腫瘍細胞の器官内接種を示している。４〜８日後、マウスを２つのグループに分けた。１つのグループでは、ＡＤ/β−galを腫瘍に接種し、他のグループではＡＤ/ＨＳＶ−ＴＫを接種した。約１〜２週間後、各グループのマウスの半分をＰＢＳで措置し、他の半分をガンシクロビルで措置した。ガンシクロビルおよびＡＤ/ＨＳＶ−ＴＫで措置されたマウスだけが、腫瘍退縮を示した。Ａd/ＲＳＶ−ＴＫ接種およびガンシクロビルの脳腫瘍への影響：実験動物の脳に低位的に10⁴Ｃ６神経膠腫細胞を接種した。４〜８日後、３×10⁸のＨＳＶ−ＴＫ（Ａd/ＲＳＶ−ＴＫ）遺伝子を含んだ組換えアデノウィルス性ベクターを同じ部位に低位的に接種した。12時間後、これらの動物を緩衝剤（ＰＢＳ）またはガンシクロビル（ＧＣＶ：125mg/kg）のいずれかを毎日腹膜内に投与して措置した。これらの動物は、腫瘍細胞を接種した日から20日間はそのまま放置されたが、個々の動物に脳腫瘍の発生が観察された。図７は脳にＣ６神経膠腫細胞を接種した後、Ａd/ＲＳＶ−ＴＫ投与してから20 日後の実験動物を示している。明らかな脳腫瘍をＰＢＳで措置した代表的な動物が、図７の左側のパネルに示されており、明確な脳腫瘍を持たないＧＣＶ−で措置した代表的なマウスを図７の右側のパネルに示す。腫瘍を持ったマウス、およびそれを持たないマウスの脳のグロスアナトミー：図８は、図６のようなＰＢＳ措置（左側）またはガンシクロビル措置（右側）後のマウスの脳全体を示している。これらの脳は、上に述べたような腫瘍細胞接種 20日後の実験動物から得られたものである。ＰＢＳで措置したマウスの腫瘍性物質を脳から切り出して、器官の上に置いた。Ｃ６神経膠腫細胞は当初少量の木炭と一緒にマウスの脳に接種されたので、ガンシクロビルで措置した脳は腫瘍細胞接種の部位を示す木炭のスペックを有している。実施例２乳癌細胞株に対するガンシクロビルの影響マウスにおける局所化乳癌腫瘍の措置：固型腫瘍に置ける“局外者”効果は、ＢＡＬＢ/ｃマウスから取り出した乳癌細胞株（ＭＯＤ）を用いて調べられた。この細胞株は純系受容体に腫瘍細胞を皮下注射すると、すぐ局所化された腫瘍を形成する。したがって、この細胞株を乳癌に対する遺伝子治療のモデルとして用いることができる。図９は、ガンシクロビル措置の効果およびＨＳＶ−ＴＫ⁺腫瘍退縮を示している。図９は、あるケースで、親の腫瘍細胞がマウスに皮下注射で接種された。マウスは２つのグループに分けられた。１つのグループはＰＢＳで措置され、他のグループはＧＣＶで、それぞれ５日間措置された。２週間後、それらの動物を殺した。図９はまた、他のグループのマウスに、インビトロでＨＳＶ−ＴＫ遺伝子が接種されたことを示している（ＨＳＶ−ＴＫ⁺）。その後、マウスを上に述べたようにＰＢＳまたはＧＣＶで措置した。図10は腫瘍サイズに対するガンシクロビル措置の影響を示している。一番上のパネルはＰＢＳまたはＧＣＶでの措置と親細胞だけを措置した場合との間に有意差はほとんどないことを示している。図10の一番下のパネルは、ガンシクロビルによる措置が、ＨＳＶ−ＴＫ遺伝子がマウスへの接種より前に腫瘍細胞に接種された場合、腫瘍のサイズを大幅に減少させたことを示している。図11は、局外者効果を図式的に示している。図11で、親の腫瘍細胞とＨＳＶ− ＴＫ遺伝子を含んだ腫瘍細胞を混ぜ合わせて、マウスに皮下注射した。そして、そのマウスをＰＢＳかＧＣＶのいずれかで措置した。結果ＨＳＶ−ＴＫ遺伝子で形質導入されたＭＯＤ細胞はインビトロで親腫瘍細胞に対するガンシクロビルの毒性効果が大幅に増大することを示している。インビボでテストした場合、ＨＳＶ−ＴＫ遺伝子で形質導入されたＭＯＤ細胞の成長がガンシクロビルの腹膜内投与によって抑制されたばかりでなく、固型腫瘍もマウスの体内で退縮した。しかしながら、退縮は親の腫瘍細胞から純粋に取り出された腫瘍を用いた場合は観察されなかった。より重要なことは、インビボでの乳房腫瘍細胞においても、強力な“局外者”効果が観察されたことである。ＭＯＤ細胞をコード表現するＨＳＶ−ＴＫと親腫瘍細胞を共に摂取した動物においては、ＨＳＶ−ＴＫ表現細胞の割合が10％以下でも、ガンシクロビル措置後の動物における全体的な腫瘍の成長を抑制するのに十分であった（図12）。しかしながら、これらの動物においては、30〜45日後に腫瘍が再び発生した。一方、90％または50％ＴＫ⁺細胞を接種された動物は、この期間中、腫瘍を形成しなかった。特定の固型腫瘍、乳頭腫、または疣贅内へのアデノウィルス性ベクターの投与後のＨＳＶ−ＴＫ遺伝子表現の細胞タイプ選択性は、ＨＳＶ−ＴＫ遺伝子の転写を指令する組織固有プロモーターの使用でも達成された。種々の組織固有プロモーターのいくつかの例を表IIに示す。実施例３実験的神経膠腫のアデノウィルス媒介遺伝子治療脳腫瘍を措置するための、アデノウィルス媒介遺伝子治療の有効性を遺伝子組成が同一のモデルで示された。腫瘍細胞をインサイツ（in situ）でラウスサルコーマウィルスプロモーターによって制御されるヘルペス単一体ウィルスチミジンキナーゼ遺伝子（ＨＳＶ−tk）を担持する複製欠陥アデノウィルス（ＡＤＶ）で形質導入された。ＨＳＶ−tk遺伝子の表現は形質導入された細胞がドラッグガンシクロビルを分裂している細胞に対して細胞毒性を発揮する形態に転換することを可能にする。腫瘍は９Ｌ神経膠腫細胞を移植することによってフィッシャー 344ラット内で発生した。８日後、腫瘍にＨＳＶ−tk遺伝子（ＡＤＶ−tk）を担持したＡＤＶかβ− ガラクトシダーゼ遺伝子（ＡＤＶ−βgal）を含んでいる制御ＡＤＶベクターを接種し、その後ラットをガンシクロビルまたは食塩水で措置した。９Ｌ細胞の移植または死亡から20日後に測定した。ＡＤＶ−βgalおよびガンシクロビル、またはＡＤＶ−tkおよび食塩水でで措置したラットは大きな腫瘍を形成した。ＡＤＶ−tkおよびガンシクロビルで≧80mg/kgの投与量で措置した動物では腫瘍は検出されなかった。ＡＤＶ−tkおよびガンシクロビルで措置した動物の接種部位でのマクロファージおよびリンパ球の浸透物は活発な局所免疫反応を示した。生き残り調査では、ＡＤＶ−tkおよびガンシクロビルで措置したすべての動物は腫瘍導入後、80日から120日間以上生き残ったが、措置を受けなかったすべての動物は22日目までに死亡した。これらの結果は、インビボで神経膠腫細胞にＨＳＶ− tkをアデノウィルスに媒介されて伝達した場合、ガンシクロビルに対する感作性が発生し、これは脳腫瘍の措置法を示している。アデノウィルス性構造物：ＡＤＶ−tkは、pＡＤＬ．１/ＲＳＶ−tk（Chenら19 94）を発生させるためにラウルサルコーマウィルスの長端末反復プロモーター（ＲＳＶ−ＬＴＲ）を含んだプラスミド内にＨＳＶ−tkを挿入することによって作成した。組換えアデノウィルスは293細胞をpＡＤＬ．１／ＲＳＶ−tkおよびアデノウィルスゲノムを含んだプラスミドpＪＭ17で共トランスフェクトすることによってつくられた。293細胞はアデノウィルスゲノムのＥ１領域で形質転換されたヒト腎臓細胞である。293細胞をpＡＤＬ．１／ＲＳＶ−tkおよびpＪＭ17によって共トランスフェクトされた場合、複製不良アデノウィルスは相同性組換えによるものであった（GrahamおよびPrevec，1991）。ウィルス性タイターは260nm での光吸収によって判定された。ＲＳＶ−ＬＴＲの制御下で、大腸菌β−ガラクタシダーゼ遺伝子を担持している複製不良アデノウィルス性ベクター（ＡＤＶ− βgal）をコントロールベクターとして用いた。実験的な腫瘍発生：インビボで９Ｌ腫瘍細胞は混合神経膠腫および肉腫、またはグリサルコーマ（Barkerら、1973；Weizaeckerら、1981）と呼ばれる組織を示す。この９Ｌ神経膠腫細胞を10％仔ウシ胎児血清、ペニシリン（100Ｕ/ml）、およびストレプトマイシン（100μg/ml）で補完したダルベッコ修正イーグル培養液（ＤＭＥＭ）内で、５％ＣＯ₂下、37℃の温度で保存した。この腫瘍細胞を1.0 mMエチレンジアミンテトラ酢酸内で0.25％トリプシンを用いて37℃の温度下、５分間培養することによって、接種のため取り出した。それらの細胞をＤＭＥＭ内に集め、洗浄し、そして、ハンクスの均衡食塩溶液（ＨＢＳＳ）に2.0×10¹³細胞/μlの濃度で再懸濁した。集中の前と後、そして接種の前に、ヘマサイトメータで細胞の個数をカウントした。移植手順に続いて、細胞調製の実行可能性をトリパンブルーエクスクルージョン分析で評価した。成熟した雌のフィッシャー344ラット（155〜175グラム）を宿主動物として用いた。ケタミン（42.8mg/ml）、キシラジン（8.6mg/ml）、およびアセプロマジン（1.4mg/ml）よりなる麻酔剤を筋肉内注射（0.6ml/kg）によって、ラットに麻酔をかけ、ステレオタキシック（stereotaxic frame）フレームに入れた。頭蓋骨に中線切開を行い、前項から1.8mm右側、2.5mm前方に0.9m mドリルビットでバーホールをつくった。26ゲージ針に固定され、ステレオタキシックフレームの操作アームに接続された10μｌ注射器を用いて、５μｌのＨＢＳＳに懸濁させた１×10⁴９Ｌ神経膠腫細胞を５分間にわたって、硬膜から4.5mm の深さで、右側尾状核に５分間にわたって0.2μｌずつ注射した。針をその場所に３分間入れたままにし、その後、３分間かけてゆっくり引き抜いた。バーホールをボーンワックス（bone wax）で塞ぎ、頭蓋の傷をクリップで塞いだ。腫瘍細胞を注射後９日目の腫瘍の直径は1.65±0.094mm²（ｎ＝４）であり、未措置の場合は、平均移植後20日目に宿主を殺した。実験的腫瘍のアデノウィルスによる形質導入：９Ｌ腫瘍細胞を、注射後８日目に、ＡＤＶ−tkまたはＡＤＶ−βgalを、腫瘍移植に用いられたのと同じ条件を用いて注入した。10mMトリス−ＨＣｌ、pH7.4、10％グリセロール６μｌ、および１mM ＭｇＣｌ₂にウィルス粒子（1.2×10⁹）を入れたものを腫瘍床の６つの場所に注入した。硬膜表面から5.5mmの深さのところから開始して、１μｌのウィルスを注射し、針を0.5mm引き上げてから、その場所で、さらに１μｌを注射した。腫瘍の核を通じて、１μｌ注射が全部で６回行われるまで、この操作が継続された。ウィルスは各位置で５分間かけて注射され、その後、針を５分間かけてゆっくりと引き抜いた。注射の場所を示すために、注射針の軸に炭素粒子（＜30μm ）を置いた。傷はグリップで塞いだ。実験的腫瘍のガンシクロビルによる措置：実験的９Ｌ腫瘍に対するＡＤＶ−tk およびガンシクロビルによる有効性を実証するために、３つの措置グループをつくった。１）ＡＤＶ−tk＋100mg/kgガンシクロビル（ｎ＝６）；２）ＡＤＶ−β gal＋100mg/kgガンシクロビル（ｎ＝４）；３）ＡＤＶ−tk＋食塩水（ｎ＝７）。措置はウィルス注射後12時間後に開始された。動物に対してはガンシクロビル、または通常の食塩水を１日２度ずつ、全部で６日間、腹膜内注射が行われた。腫瘍細胞注射の20日後、あるいは死亡時に、動物に固定液を注ぎ、脳を切開、染色して、腫瘍のサイズを形態的に特定した。ＡＤＶ−tk措置の有効性に対するガンシクロビル投与量の影響は、７実験グループ（各グループでｎ＝４）を用意し、９Ｌ細胞を移植し、1.2×10⁹ＡＤＶ−tk で措置し、さらに０，10，20，50，80，100および150mg/kgの量を１日２回、全部で６日間、ガンシクロビルで措置することによって、判定した。腫瘍誘発から 20日後に、動物に固定剤をかけ、脳を切開、染色して、腫瘍サイズを測定した。長期生残に対するＡＤＫ−tkおよびガンシクロビル措置の影響を示すために、腫瘍をもった17匹の動物をＡＤＶ−tkおよびガンシクロビル（50mg/kg）で措置し、７匹の動物をＡＤＶ−βgalとガンシクロビル（50mg/kg ）によって措置した。これらの動物の観察を毎日行い、それらが病状を示したり、あるいは死亡した場合、その脳を取り出して組織学的な分析を行った。組織分析：動物にヘパリン（10ユニット/ml）を含んだ10mMホスフェート緩衝食塩水、pH7.4（ＰＢＳ）200mlを用い、その後、ＰＢＳ内に４％パラホルムアルデヒドを溶かしたもので心臓にかけて麻酔をかけ、固定した。脳を取り出して、ＰＢＳ内４％パラホルムアルデヒド溶液に24時間入れ、次に、ＰＢＳ内に21％蔗糖を溶かしたもので４℃の温度下、24〜48時間低温保護し、ＯＣＴに載せ、凍結して、低温保持装置上で切開した。切開されたものはヘマトキシリンおよびエロシンで染色するか、あるいは免疫細胞化学分析のために調製された。Bioscan Op timas社製のソフトウエアを用いて、最大の腫瘍断面積を測定した。ＡＮＯＶＡ統計分析を用いて平均腫瘍値を比較した。40μmセクション上で１：500に希釈されたＥＤ１アンチーマクロファージ抗体（Dijkstraら、1985；Polmanら、1986）を用いて免疫細胞化学染色を行った。結果実験的神経膠腫に対するＡＤＶ遺伝子治療の効果：腫瘍をＡＤＶ−βgalおよびガンシクロビル（100mg/kg）またはＡＤＶ−tkおよび食塩水で措置した場合、腫瘍細胞接種20日後に、すべての脳で大きな腫瘍が存在していることが観察された。過細胞充実性（ hypercellularity）、核多形態性、および炎症細胞浸潤なしの核分裂によって特徴付けを行った。これらの腫瘍は一般的には輪郭がはっきりしており、隣接脳組織の圧縮を引き起こした。しかしながら、隣接脳領域への焦点性血管周辺神経膠腫浸潤が認められた。対照的に、ＡＤＶ−tkおよびガンシクロビル（100mg/kg）措置を受けた動物の脳では腫瘍細胞の発生は観察されなかった。その代わりに、マクロファージ、リンパ球、好中球、壊死、および出血が腫瘍接種領域に明らかに認められた。試料では、同側心室内上衣細胞ライニングは破壊されたようだが、腫瘍あるいは接種部位以外では、壊死、ニューロンのロス、非骨髄質後、または炎症反応は観察されなかった。ガンシクロビル措置の投与量−反応効果：異なった量のガンシクロビルで措置された動物における腫瘍サイズの形態分析から、ガンシクロビルの投与量が低くても（10mg/kg）、ＡＤＶ−tk＋ガンシクロビルによる措置は腫瘍サイズに対して十分な（Ｐ＜0.005）効果を示した（図13）。ＡＤＶ−tkおよび食塩水で措置した動物と、ＡＤＶ−βgalによって措置した動物では大きな腫瘍が観察されたが、80〜150mg/kgの投与量でＡＤＶ−tkおよびガンシクロビルで措置した動物は残留腫瘍は認められなかった。80mg/kg以下の投与量で措置した動物の場合、残留腫瘍は小さかった。ＡＤＶ−βgalおよび150mg/kgガンシクロビルで措置した動物においては、ＡＤＶ−tkおよび食塩水で措置した動物に比較して、腫瘍サイズのかなりの縮小（Ｐ＜0.005）が認められた。このことは、ガンシクロビル自体がチミジンキナーゼ活性とは無関係に腫瘍成長に細胞毒性または抑制効果を示す可能性があることを示している。生残調査：ＡＤＶ−βgalまたはＡＤＶ−tkと50mg/kgガンシクロビルによって措置された動物の長期生残を、２つの実験的グループと１つのコントロールグループで測定した（図14）。ＡＤＶ−βgalおよびガンシクロビルで措置したすべてのコントロール動物（ｎ＝５）は腫瘍接種後数日間で死亡し、解剖した結果では、大きな頭蓋骨内腫瘍が認められた。ＡＤＶ−tkおよびガンシクロビル（50mg /kg）で措置された最初の実験グループの４匹の動物のうちの３匹は120日以上生き残った。１匹の動物は98日目に死亡した。この動物の脳には腫瘍はなかった。そして、解剖結果でも、他の死亡原因は認められなかった。第２の実験グループは５匹の動物で構成され、すべてＡＤＶ−tkおよびガンシクロビル（50mg/kg）によって措置された。これらすべての動物は80日間経過した現在でも生きのびている。これらの実験は、ＨＳＶ−tkを含んだ組換えアデノウィルス性ベクターを用いた実験神経膠腫の形質導入が細胞毒性薬ガンシクロビルに対する感作性を伝えることを示している。アデノウィルスは分裂性、および非分裂性細胞の両方に感染し、複数のウィルス粒子が細胞に感染して、細胞１個あたりに表現される組換え遺伝子のコピー数を増大させる。この調査では、80，100および150mg/kgの投与量でＡＤＶ−tkおよびガンシクロビルで措置された動物では、腫瘍接種措置後20日目の段階で、腫瘍は存在していなかったが、ＡＤＶ−tkおよび食塩水、またはＡＤＶ−βgalとガンシクロビルで措置したコントロール動物では大きな腫瘍が認められた。ガンシクロビルの投与量を50mg/kg以下にすると、９Ｌ細胞接種の20日後にいくつかの動物で小さな残留腫瘍が認められた。ＡＤＶ−tkおよび50mg/kgガンシクロビルで措置され、移植後20日目に組織研究のために殺された動物では残留腫瘍が認められたにもかかわらず、生残実験では、同じ手順で措置した実験動物が120日間経過した現在も生きのびている。移植された９Ｌ神経膠腫細胞がインビボで急速に成長するので、長期間生きのびている動物に残留腫瘍が存在するということは疑わしいが、存在しても、その生物学的な挙動は修正されるはずである。実施例４ヌードマウスモデルを用いてのヒトの頭部および頚部細胞癌に対するアデノウィルスを媒介しての遺伝子治療ヌードマウスの口床に移植されたヒト頭部および頚部鱗状細胞癌を措置するために、ヘルペスシミジンキナーゼ遺伝子をアデノウィルスの媒介で伝達し、その後、ガンシクロビルを投与した。６×10⁶の癌細胞を腹膜に注射して、腫瘍を発生させた後、14日後に、ヘルペス単一体ウィルスシミジンキナーゼ遺伝子（ＡＤＶ／ＲＳＶ．ＴＫ）を含んだ複製不良組換えアデノウィルスを10¹⁰程度腫瘍に直接接種した。これらのマウスはその後ＧＣＶで連続６日間措置し、さらに、腫瘍を移植してから21日目に殺した。この措置に対する臨床的反応をコンピュータで処理した。非壊死腫瘍の断面積の画像化形態分析および腫瘍指数の計算による核分裂活性を測定した。完全な措置グループの平均腫瘍指数値は、同じ治療用遺伝子を受けなかったコントロールより280〜2400倍小さく（ｐ＜.001〜.016）、この措置グループの４分の３はほぼ全体的な腫瘍退縮を示す腫瘍指数値を有していた。これらの結果は、ヒトの鱗状細胞癌の臨床的に有効なインビボでの治療が、アデノウィルス媒介遺伝子治療を用いて達成されたことを示している。アデノウィルス性構造物：pＡＤＬ．１／ＲＳＶ−tkを発生させるために、ラウスサルコーマウィルス長端末反復プロモーター（ＲＳＶ−ＬＴＲ）を含んだプラスミドにＨＳＶ−tkを挿入することによって、ＡＤＶ−tkベクターを作成した（Chenら、1994）。293細胞をpＡＤＬ．１／ＲＳＶ−tkおよびアデノウィルス性ゲノムを含んだプラスミドpＪＭ17で共トランスフェクトすることによって組換えアデノウィルスを作成した。293細胞は、アデノウィルス性ゲノムのＥ１領域で形質転換されたヒトの腎臓細胞である。293細胞をpＡＤＬ．１/ＲＳＶ−tkおよびpＪＭ17によって共トランスフェクトした場合、複製不良アデノウィルスは相同組換えによるものであった（GrahamおよびPrevec，1991）によるものであった。ウィルス性タイターは260nmでの光吸収によって判定された。ＲＳＶ−ＬＴＲ（ＡＤＶ−βgal）の制御下で大腸菌β−ガラクトシダーゼ遺伝子を担持した複製不良アデノウィルス性ベクターをコントロールベクターとして用いた。インビトロでの実験：５×10⁵ＨＬＡＣ−79細胞を基本的アミノ酸およびビタミンを有する10％仔ウシ胎児血清イーグルを含んだＭＥＭ培養液内で1.5cm直径組織培養プレート上にプレートした。約50％の細胞流で、バクテリア性β−ガラクトシダーゼ遺伝子（ＡＤＶ/ＲＳＶ−β−gal）（Stratford−Perricaudelら、Ｊ．Clin．Invest．（1992））を含んだ組換えアデノウィルス性ベクターを種々の感染度で加えた。形質導入された細胞は、形質導入から24時間後にＸ−galで染色された。同じ条件の下で、ＡＤＶ／ＲＳＶ−ＴＫベクターを用い、その後、 10ug/mlの濃度でＰＢＳ々又はＣＶ措置を行うことによって、別の細胞培養実験を行った。68時間後、生き残っている細胞を数えて、ＰＢＳコントロールプレートと比較した。インビボでの実験：すべての動物実験は層流フードの下で殺菌技術を用いて、アシミックヌード（nu/nu）マウス（Harlan Sprague Dawley）を用いて行われた。生後６〜10週間のヌードマウスを、0.5mlのアベルチンを20mg/mlの濃度で腹膜内に注射して麻酔をかけた。100ul注射器および26ゲージ針を用いて、ハンクスの緩衝食塩水中に６×10⁶ヒトＨＩＡＣ−79を含んだ50ul溶液をヌードマウスの口床に注射した。この細胞懸濁液は顎舌骨の深い場所にゆっくりと注射し、それから針を漏れがないように注意しながらゆっくりと取り外した。その後、それらの動物を14日間、通常の条件の下で飼育した。アデノウィルス接種を行うために、ヌードマウスを上に述べたように麻酔にかけ、頚部の皮膚をはさみで切開した。慎重な外科手術で腫瘍を露出させ、カピラーを用いて、サイズの縦横高さを測定した。25ゲージ針を固定したマイクロリッター注射器を用いてＡＤＶ／ＲＳＶ−ＴＫまたはＡＤＶ/ＲＳＶ−β−galのいずれかのアデノウィルス粒子１×10¹⁰を含んだ溶液75ulを直接注射した。別のコントロールグループにはホスフェート緩衝食塩水（ＰＢＳ）75ulだけが与えられた。実際のアデノウィルスまたはＰＢＳ伝達は針をそれぞれ別個に４回、その内の２回は腫瘍の長軸へ、そして後の２回はその軸に対して垂直に針を刺し込むことによって行われた。頚部の切開部は４〜０シルク（Ethicon）によって閉じた。ウィルス接種18時間後に、100mg/kgのガンシクロビル、または同じ量のＰＢＳを腹膜注射することによって開始され、６日間続けられた。措置を受けたマウスの食餌行動あるいはその他の挙動習慣には、ガンシクロビルによる措置の全期間を通じて、何の変化も認められなかった。最初の腫瘍移植から21日後にそれらのマウスを殺して、壊死性または残留腫瘍物質だけを含むように患部を慎重に切除した。切除後すぐにカリパーで腫瘍物質を測定し、その後、組織学的評価のために埋め込みを行う前に、第２の独立の検査担当者で反復測定が行われた。Ｘ−ga l調査を行うために、切除した腫瘍をＯ．Ｃ．Ｔ．に埋め込み、乾いた氷上で冷凍した。Ｘ−galで染色された冷凍セクションができるまで、−80℃の温度で保存された（Ponderら、ＰＮＡＳ（1988））。他のすべての組織学的研究のために、組織は10％緩衝ホルマリン内に固定され、パラフィン内に埋め込まれ、３ミクロンの刻み目を入れ、エマトキシリンおよびエオシンで染色した。組織片は各動物に対してどのような措置が行われたかについての情報がまったく与えられていない個人（Ｍ．Ｒ．Ｓ．）によって検査された。腫瘍の進行度、輪郭、壊死、繊維症、炎症反応の評価、および核分裂カウントが、標準的な顕微鏡装置を用いて行われた。最大腫瘍断面積の定量的形態測定、断面積あたりの壊死領域の割合、および10ハイパワーフィールドでの核分裂数のカウントが、コンピュータを用いた画像分析器を用いて行われた。このシステムはNikon Microphot−ＦＸＡ顕微鏡、Ikegami370Ｍ高解像度カラーカメラ、Sony Trinitron高解像度ビデオモニター、およびBioscanオプティマスソフトウエア（Edmonds，WA）を装備したCompud yne486コンピュータが含まれている。結果インビトロでのＨｌａＣ−79細胞のアデノウィルスによる形質導入の有効性：ＡＤＶ/ＲＳＶ β−gal実験を行うために、ヒト前立腺癌細胞の85％をポジティブブル−Ｘ−gal染色によって示されているように８のＭ.Ｏ.Ｉで形質導入し、16のＭ.Ｏ.Ｉで100％の細胞を形質導入した。このアデノウィルス濃度では明確な毒性は観察されず、癌細胞はコントロールと比較して形態的な変化は示さなかった。ＡＤＶ/ＲＳＶ−ＴＫ実験のために、０（コントロール）〜50Ｍ.Ｏ.Ｉの範囲を用いて形質導入を行い、その後、培養液内でＰＢＳまたＧＣＶによる措置を行った。ＧＣＶグループでの有効な癌細胞致死は３という非常に低いＭ.Ｏ.Ｉで達成され、ＰＢＳグループの場合はＭ .Ｏ.Ｉを25まで上げても、致死率の増加や毒性は認められなかった（図15）。50 またはそれ以上のＭ.Ｏ.Ｉのアデノウィルスで形質導入されたが、ＧＣＶ措置は受けなかった前立腺悪性腫瘍細胞の培養体の場合、かなりの細胞の死が認められた。これらの知見は、ＡＤＶ/ＲＳＶ−ＴＫがインビトロでＧＣＶとの組み合わせで、ヒトの前立腺癌細胞を殺すのに有効な効率的ベクター系であることを示している。アデノウィルス性形質導入後のヒトの前立腺癌細胞の退縮。６×10⁶の腫瘍細胞を最初に移植した後、マウスの口床に臨床的な腫瘍の成長が認められ、その後２週間にわたって頚部前面方向に延びるのが観察された。この期間中、悪液質の兆候は認められず、アデノウィルスを接種した時点ではすべての動物が健康そうに見えた。２週間後に、１つのコントロールグループの動物を殺し、組織病態的調査を行ったところ、かなり多くの核分裂を伴った多少差のある前立腺細胞癌が発生していたが、ケラチン形成や壊死は認められなかった。また、周辺の柔らかい組織、筋肉の組織病態的証拠と、骨値の侵入も認められた。第２のグループのコントロール用動物は、最終的には悪液質を発生して、35〜45日間の範囲で死亡した。臨床実験では、以下の４つのコントロールグループと１つの完全な措置グループが用意された。（１）ＰＢＳ腫瘍内接種＋ＧＣＶ措置（ＰＢＳ＋Ｇ＋）；（２）ＡＤＶ/ＲＳＶ−β−gal＋ＰＢＳ（β−gal＋Ｇ−）；（３）ＡＤＶ/ＲＳＶ− β−gal＋ＧＣＶ（β−gal＋Ｇ＋）；（４）ＡＤＶ/ＲＳＶ−ＴＫ＋ＰＢＳ（ＴＫ＋Ｇ−）；および（５）ＡＤＶ/ＲＳＶ−ＴＫ＋ＧＣＶ（ＴＫ＋Ｇ＋）。これらの実験動物は措置期間中、悪液質の兆候や食餌習慣の変化を示さず、すべての動物は剖検時に臨床的には健康に見えた。措置前の腫瘍のサイズは断面積が4.36 mm²以上で、すべてのグループの平均では13.7mm²、そしてＴＫ＋Ｇ＋完全措置グループでは16.4mm²であった。腫瘍サイズが広範囲にわたっていることは、オリジナルの、そして唯一の癌モデル（Dinesmanら、Otolaryngol Head Neck Surg. ，（1990））と矛盾しない。これらの措置の細胞毒性的効果について、コンピュータに基づく画像分析を用いて、腫瘍物質内の壊死の割合を測定することにより、組織的な評価を行った。ＰＢＳ＋Ｇ＋およびβ−gal＋Ｇ−の動物は腫瘍壊死を示さなかったが、ＴＫ＋Ｇ−およびβ−gal＋Ｇ＋グループは平均断面積の0.5〜5.0 ％の範囲で集中的な壊死状態が観察された。しかしながら、ＴＫ＋Ｇ＋グループは、腫瘍物質の17〜72％の範囲でかなりの分散壊死を示し、平均は41％で、これはｔ−テスト分析を用いたコントロールの場合とはかなり違っていた（Ｐ＜.001 ）（図16）。ＡＤＶ/ＲＳＶ−β−galを接種された腫瘍の断片のＸ−gal染色は、腫瘍細胞の１〜10％でポジティブ核染色を示し、この分散状態は針で接種した領域と一致している。残留腫瘍の小さな島は、ほとんどの完全措置（ＴＫ＋Ｇ＋）動物で認められたが、顕微鏡で検査したところ、これらの領域には膨張した死につつある腫瘍あるいは個別的な壊死性細胞が明らかになった。核分裂活動は非常に低いレベルは、あるいは認められなかった。３つの腫瘍標本は著しい繊維消滅を示し、密集した繊維組織内に死にかけた悪性腫瘍細胞の小さな島だけが観察された。ＴＫ＋Ｇ＋グループの２つの最大腫瘍（形質導入時220および324mm³）だけが措置後に、かなりの面積の成長可能性のある腫瘍細胞を示した。これらの知見を客観的に分析するために、全体的な臨床反応を示す腫瘍指数値を、これまでに明らかにされている癌細胞指数計算（Carusoら、ＰＮＡＳ（1990 ））を修正して適用することにより、各グループに対して決めた。腫瘍指数は腫瘍の最大断面積に非壊死性腫瘍物質の核分裂活性、そして巨視的なサイズにおける変化をかけることによって、形態的な測定に基づいて求められた。ＴＫ＋Ｇ＋グループの動物の大多数は30以下の腫瘍指数を持っており、このことはほとんど全体的な腫瘍退縮が起こり、極くまれに、顕微鏡分析で成長可能な細胞が認められることを示している（図17）。ＴＫ＋Ｇ＋グループの４匹の動物では腫瘍指数が“０”であったが、これは核分裂数が認められなかったことだけでなく、組織検査でも特徴的な成長可能性腫瘍細胞が不在であったこととも関連している。完全措置グループ（ＴＫ＋Ｇ＋）の平均腫瘍指数は10〜100倍小さく、そのメジアン値は治療用のＴＫ遺伝子を受けなかったコントロールグループの値と比較して280〜2400倍小さかった。ガンシクロビル（ＴＫ＋Ｇ−）を受けなかっＴＫグループと比較すると、ＴＫ＋Ｇ＋グループの平均腫瘍指数値およびメジアン値はそれぞれ６倍、および 55倍小さかった。マン−ホイットニー分析を用いて、ＴＫ＋Ｇ＋グループをｐ＜ .001からｐ＜.02の範囲の値を有するコントロールグループのそれぞれと比較することによって決定した（図16）。アデノウィルスによる遺伝子伝達およびガンシクロビル措置の局所的、および全身的効果：ＡＤＶ/ＲＳＶ−ＴＫおよびガンシグロビル措置を受けた動物のうちの２匹をランダムに選び、局所組織および遠位器官のサンプルについて、組織的な異常がないかどうかについて評価した。口床および頚部領域での周囲を取り巻く筋肉、軟組織、および唾液腺では、壊死、死亡しつつある細胞、あるいは形態的変化の兆候は認められなかった。解剖検査時に遠位器官も取り出されたが、それには小腸、睾丸、脾臓、心臓、脳、腎臓、肺、および肝臓などが含まれていた。すべてのサンプルは全体的な検査では正常で、組織分析でも転移性腫瘍、壊死、繊維症、あるいはその他の異常な病態は認められなかった。全体として、局所および遠位組織は正常に見え、アデノウィルスまたはガンシクロビルによる措置での明瞭な変化は認められなかった。これらの実験はヌードマウスモデルでのヒトの頭部および頚部鱗状細胞悪性腫瘍の措置に用いられるアデノウィルスを媒介とする遺伝子伝達の成功を示す最初の実施例である。この措置方式の有効性は、インビトロでの致死に必要なＭ.Ｏ. Ｉの非常に低いレベルと、分析された２つの治療指数の結果とによって示されている。このヒトの癌細胞系はアデノウィルス性ベクターシステム経由での形質導入に対して感作性が非常に高く、Ｍ.Ｏ.Ｉが３程度の非常に低いレベルでも劇的な致死効果が認められる。アデノウィルスによる形質導入に対する感作性は、腫瘍に与えられるＡＤＶ/ＲＳＶ−ＴＫの濃度が低くても有効な臨床反応が示されるので、利点がある。第１の治療指数は平均腫瘍壊死で、ＡＤＶ/ＲＳＶ−ＴＫ＋ＧＣＶグループ（ＴＫ＋Ｇ＋）に対して高く、このことは結合治療がかなりの細胞毒性効果を発揮することを示している。ガンシクロビルだけ（ＰＢＳ＋Ｇ＋）の措置、あるいはｇ−galベクター（β−gal＋Ｇ＋）との組み合わせによる措置では腫瘍壊死は認められず、チミジンキナーゼベクターだけ（ＴＫ＋Ｇ−）接種された７つの腫瘍のうちの２つは顕微鏡検査で微小の壊死が認められただけであった。のこりの実験グループつまりβ −galベクターだけ（β−gal＋Ｇ−）で措置したグループは、各腫瘍に顕微鏡的な微小壊死が認められ、その遺伝子治療は針を刺した部位と一致していた。したがって、チミジンキナーゼ遺伝子伝達＋ガンシクロビルの組み合わせは、直接の腫瘍根絶にとって重要な役割を示している。第２の治療指数は腫瘍の形態分析と組織的特性に基づいており、腫瘍指数と呼ばれている。腫瘍指数のためのこの計算方法の重要性は、それが明確な残留腫瘍と全体的な措置の結果を評価するための客観的な手段を提供してくれ、それによって、腫瘍組織の解釈における検査者によるずれの可能性をなくしてくれる。完全措置グループ（ＴＫ＋Ｇ＋）の動物のせいぶん大部分は“30”以下の腫瘍指数を示しており、これは腫瘍がほとんど完全に根絶されたことを示している。また、４匹の動物の腫瘍指数は“０”であった。これらの知見は、チミジンキナーゼ遺伝子伝達およびガンシクロビル措置の明確な治療効果を示している。ＴＫ＋Ｇ＋措置グループでは２つの高い臨床反応値があったが、これは不完全な細胞致死および残留成長可能癌の領域によるものである。措置前の全体的なサイズを検査したところ、これらの動物の腫瘍体積は324および22mm³、これに対してＴＫ＋Ｇ＋グループにおける他の腫瘍の平均体積は95mm³であった。これらの知見は、“一時”遺伝子伝達治療に対する応答を制限する重要な腫瘍体積が存在していることを示唆している。ＴＫ＋Ｇ−コントロールグループには２つの低臨床応答値もあったが、組織検査を行ったところ、壊死の証拠は認められず、腫瘍はかなり大きな核分裂数を示した。これらの低い値は２つの腫瘍の断面積が非常に小さなことの直接的な結果であり、このモデルにおいて公知の成長可能な癌の成長のひとつの容易となり得た（Di nesmanら、Otolaryngol Head Neck Surg.，（1990））。しかしながら、ＴＫ＋Ｇ−グループの腫瘍指数は全体としてＰＢＳおよびβ−galアデノウィルス遺伝子伝達コントロール動物の両方より小さかったので（Ｐ＜.010〜.016）、チミジンキナーゼ遺伝子伝達による腫瘍成長に対する抑制効果の可能性について検討する必要がある。β−gal＋Ｇ＋およびβ−gal＋Ｇ−コントロール動物もＰＢＳ＋Ｇ＋コントロールグループから腫瘍応答において、統計的な差は示さなかった。これらの実験においては、ウィルスによる形質導入後の腫瘍退縮の主要な要因とされてきている細胞免疫反応を除去する目的で、Ｔ細胞（ＣＤ４＋およびＣＤ８＋リンパ球）を持っていないアシミックマウスが選択された（Carusoら、ＰＮＡＳ（1990）；Culveretら、Science（1992））。免疫能力を有する動物におけるラット神経膠腫へのレトロウィルスで媒介されＴＫ遺伝子伝達に関するこれまでの影響は、これらの腫瘍においてマクロファージおよびリンパ球の侵入が起きることを示している（Culverら、Science（1992））。この免疫反応はウィルス性伝達後の一般的な腫瘍致死を増強すると考えられている。我々の実験では、ＴＫ＋Ｇ＋措置グループまたはコントロールグループのいずれにおいても炎症または免疫細胞応答は認められなかった。したがって、腫瘍細胞応答は、ガンシクロビル投与と結合されたチミジンキナーゼ遺伝子伝達によって直接的にもたらされるものである。我々の研究における知見は、“局外者効果”と呼ばれるもの関与という考え方を裏付けるものである。マウスおよびヒトサルコーマ腫モデルの両方において、ウィルスによって形質導入された死にかけている腫瘍細胞からのアプトティック（apoptotic）小胞のギャップジャンクション（gap junction）またはエンドシトシス（endo cytosis）経由での、好ましくはホスホリル化形態のガンシクロビルの毒性代謝物質の伝達はこれら“局外者”細胞の致死をもたらした。インビボでヒト鱗状細胞を用いての我々の実験では、ＡＤＶ/ＲＳＶ−β−gal伝達はＸ− gal染色で検出した場合、１〜10％の形質導入をもたらしたのみであったが、ＡＤＶ/ＲＳＶ−ＴＫによる同じ量のウィルス接種を行った場合、実験グループで分散腫瘍致死およびネクロシスが観察された。さらに、局所化されたβ−gal染色は、アデノウィルスが簡単には固型腫瘍を通じて伝達箇所から遠い位置にある癌細胞には影響を及ぼさないことを示している。さらに、インビトロで、β−ga lおよびＴＫアデノウィルスの両方に対して低い感染度で同様の形質導入の有効性が発揮された。アデノウィルス性形質導入後の口床鱗状癌における腫瘍致死は局外者効果など、他の要因との組み合わせで起きる可能性もある。ＡＤＶ/ＲＳＶ−ＴＫは腫瘍に直接接種されたが、周辺の筋肉、唾液腺、および皮下組織に多少の漏出はあった。顕微鏡的にはこれら周辺の正常な組織に壊死や形態的な変化は認められなかった。アデノウィルス性ＴＫによる形質導入およびＧＣＶ投与の効果は、したがって、活発に分裂している癌細胞に限定されている。小腸、膀胱、子宮、脾臓、心臓、脳、腎臓、肺、および肝臓などの遠位器官の全体的、および顕微鏡的な検査でも障害は認められなかったので、こうした治療による系統的な支障は発生しなかった。これらの実験は、アデノウィルスを媒介とした遺伝子治療を用いて、インビボで臨床的に有効な、ヒトの鱗状細胞癌の措置が達成できることを示している。実施例５インビボでの結腸悪性腫瘍の肝臓転移に対する組み合わせ遺伝子治療結腸悪性腫瘍の肝臓への転移を治療するために自殺遺伝子とサイトカインによる組み合わせ治療の有効性について調査した。遺伝子組成が同一のＢＡＬＢマウスに結腸悪性腫瘍細胞株（ＭＧＡ26）を肝臓内に接種することによって、肝臓に腫瘍を発生させた。種々のコントロールおよび治療用遺伝子を含んでいる組換えアデノウィルス性ベクターを固型腫瘍に直接接種し、その後、ガンシクロビルによる措置を行った。コントロールベクターまたはマウスインターロイキン−２ベクターによって措置されたすべての動物では腫瘍は成長し続けたが、ヘルペスシンブレッグスウィルス／チミジンキナーゼベクターで措置した動物の場合、同時にインターロイキン −２ベクターも投与したかどうかには関係なく、劇的な壊死および退縮を示した。しかしながら、両方のベクターで措置した動物のうちの１匹だけは遠位部位に接種された、腫瘍を発生させるだけの量の親の腫瘍細胞の刺激に対する有効な全身的抗腫瘍性免疫を形成した。この抗腫瘍性免疫はＭＣＡ26腫瘍特異性ＣＤ８＋Ｔ−リンパ球の存在に関連していた。この結果は、インビボでの自殺遺伝子およびサイトカインによる組み合わせ治療が結腸悪性腫瘍の肝臓への転移に対して強力なアプローチであることを示している。組換えアデノウィルス性ベクターの構造：ヘルペスシンプレックスウィルスチミジンキナーゼ遺伝子（ＡＤＶ／ＲＳＶ−ＴＫ）を含む複製不良アデノウィルス性ベクターの構造については、これまでに報告されている（Chenら、ＰＮＡＳ（ 1994））。マウスインターロイキン２cＤＮＡ（ＡＤＶ/ＲＳＶ−mＩＬ２）を含む複製不良アデノウィルス性ベクターを同様の手順で作成した。マウスインターロイキン２（mＩＬ−２）ｃＤＮＡのペプチドコード表現領域をＲＳＶ−ＬＴＲプロモーターおよびＥＩＡ−アデノウィルス性ベクターバックボーン（Fangら、 Cancer Res．（1994））の仔ウシ成長ホルモンのポリアデニル化領域で構成された表現カセットに挿入した。この構造物をその特定区画のアデノウィルス性ゲノムを含んだpＪＭ1 7 ＤＮＡと共に293細胞に共トランスフェクトした。この組換えアデノウィルスを斑点精製によって分離し、２回の塩化セシウム傾斜遠心分離した。ウィルスタイター（pfu/ml）は斑点アッセイで決定した。結腸悪性腫瘍の肝臓転移モデルの作成と措置：転移性結腸悪性腫瘍を、ＢＡＬＢ/ｃマウスから取り出した、化学的に誘発された、十分に特徴づけられていない（dlfferentiated）結腸悪性腫瘍細胞株であるＭＣＡ−26 細胞の肝臓内移植によって、肝臓内に発生させ（Corbettら、Cancer Res.（1975 ））。この肝臓を腹部切開して、３×10⁵のＭＣＡ−26細胞を遺伝子組成が同一のマウスの左側方葉の先端に１つの部位に注射した。７日目に、肝臓を腹部切開し、腫瘍サイズを測定した。組換えベクターの種々のタイターを10mMトリス−塩酸，pH7.4、１mM ＭｇＣｌ₂、10％グリセロール、および20μg/mlのポリブレン 70μlに入れて、肝臓癌に直接注射した。ウィルス接種12時間後に、これらの動物に１日２度ずつ、合計６日間、１回の投与量を35mg/kgとしてガンシクロビル（ＧＣＶ）を腹膜内に接種した。残留腫瘍の組織病理および形態的分析：種々の遺伝子治療を行った後、残留腫瘍の最大断面積のコンピュータによる形態分析を行った。成長が可能な腫瘍細胞は必ずしも隣接していないので、形態分析のためにコンピュータ支援デジタル化システムを用いるポイントカウンティング法が選ばれた。簡単にいうと、腫瘍の領域の予め定めた1,600以上のポイントのカウントを行った。小結節内の成長可能な腫瘍細胞の割合は、成長可能な腫瘍細胞の総計をポイント総数で割って求めた。グループ間の成長可能な腫瘍細胞の機能的面積のグループ間の比較はＡＮＯＶＡによって行った。親腫瘍細胞で措置された動物における遠位部位刺激：肝臓にＭＣＡ−26腫瘍細胞を移植して以後２週間継続するＧＣＶ措置が終了してから１日後、すべての措置グループにおける動物に、腫瘍を発生させる量の親腫瘍細胞（ＭＣＡ−２６）、およびヘテジニアスではあるが遺伝子組成は同一の乳房腫瘍細胞株（ＭＯＤ）によって刺激を与えた。１×10⁵のＭＣＡ−26細胞を動物の右脇腹のひとつの部位に皮下注射し、２×10⁶のＭＯＤ細胞を反対側の脇腹に皮下注射した。１週間後、これらの細胞株を投与された通常の動物にはほぼ同じ程度の大きさの、目で確認できる皮下腫瘍が形成され、種々の遺伝子治療措置後の動物にも皮下腫瘍の存在が４週間にわたって認められた。細胞毒性Ｔ−リンパ球（ＣＴｈ）アッセイ：開示されている手順（Coliganら、Current Protocols in Immunology（1991））に従ってＣＴＬアッセイが行われた。アデノウィルス性ベクターの接種後10日間にわたるＧＣＶ措置の終了後、３日目に種々の措置グループから成長可能な脾臓細胞を分離した。１ウェルあたり６×10⁶の脾臓細胞およびウェル当り５×10⁵の15,000ＲＡＤ−照射ＭＣＡ−26 細胞＋20Ｕ/ml組換えマウスＩＬ−２を含んだ24−ウェルブレートで、インビトロでの刺激が行われた。⁵¹Ｃrリリースアッセイが、いろいろな数の、培養５日後に取り出した刺激を与えた細胞（エフェクター細胞）を5000⁵¹ＣrでラベルしたＭＣＡ−26細胞（標的細胞）を96−ウェルＵ底プレートに混ぜ合わせることによって行われた。４時間37℃後培養液の100μlを各ウェルから取り出して、ガンマーカウンターでカウントした。細胞溶解の割合は［（cpm_exp、−cpm_min）／（cpm_max、−cpm_min）］×100で計算したが、ここでcpm_max、とはＮＰ40溶解標的細胞によって放出された総カウントを示し、cpm_minは標的細胞によって自発的に放出されたバックグランドカウントを示している。データは３組体培養物の平均比cpmを示しており、ＳＥＭはすべてのアッセイで７％以下であった。結果組換えアデノウィルス性ベクターの機能的特徴付け：ＨＳＶ−tk遺伝子の導入がＧＣＶによる致死に対して感作性を有するＭＣＡ26結腸腫瘍細胞を退縮させるかどうかを判定するために、組換え不良組換えアデノウィルス性ベクターＡＤＶ /ＲＳＶ−tkを用いて、インビトロで結腸悪性腫瘍細胞株を形質導入した（図18 ）。組換えベクターによる形質導入およびその後のＰＢＳによる措置を行った後、これらの細胞は、12,000の感染度（Ｍ．Ｏ．Ｉ）でも完全な成長可能性を示した。しかしながら、その後、ＧＣＶ措置後、細胞の10％程度のみが250のＭ.Ｏ. Ｉで成長可能であり、1,000のＭ.Ｏ.Ｉでは生き残った細胞はほとんどなかった。複製不良mＩＬ−２アデノウィルス性ベクター（ＡＤＶ/ＲＳＶ−mＩＬ２）の機能性は、インビトロでのマウスＢ16細胞の形質導入を行った後、Ｔ−細胞増殖アッセイ（Coliganら、Current Protocols in Immunology（1991））を用いて調整した培養液内でmＩＬ２活性が示されたことによって確認された。500および1,000のＭ.Ｏ.ＩでのmＩＬ−２アデノウィルス性ベクターの形質導入後、細胞の調整培養液内で高いレベルのmＩＬ−２活性が認められたが、コントロールアデノウィルス性ベクターで形質導入を行った細胞ではmＩＬ−２活性が検出されなかった（図19）。インビボでの組み合わせ遺伝子治療後の同一遺伝子組成動物での肝臓ＭＣＡ26 腫瘍の退縮：肝臓に転移した結腸悪性腫瘍のための動物モデルが３×10⁵ＭＣＡ −26細胞の肝臓内移植によってつくられた。６日後、60〜70％の動物の肝臓に５ ×７mm²の腫瘍が存在していた。これはその後のすべての遺伝子治療実験のために選ばれた腫瘍サイズである。肝臓結腸悪性腫瘍を有するＢＡＬＢ/ｃマウスを以下の５つの措置グループに分けた。Ａ：ＡＤＶ/ＲＳＶ−βgal；Ｂ：ＡＤＶ/ ＲＳＶ−mＩＬ２；Ｃ：ＡＤＶ/ＲＳＶ−βgal＋ＡＤＶ/ＲＳＶ−mＩＬ２；Ｄ：ＡＤＶ/ＲＳＶ−tk、およびＥ：ＡＤＶ/ＲＳＶ−tk＋ＡＤＶ/ＲＳＶ−mＩＬ２。種々の動物措置グループの残留固型腫瘍の測定を行ない、組織病理学的検査を行なった。β−galベクターで措置した動物は、自発的壊死領域はほとんどなく、あっても小さな、そして核分裂数の大きな、活発に成長する未確認悪性腫瘍の大きな結節を持っていた。隣接肝臓領域の縮小とかなりの炎症が認められた。mＩＬ２ベクターで措置した動物は限定的な肩胛骨下での壊死が認められたが、βgalベクターで措置したマウスに等しい核分裂活性を有する成長可能な腫瘍細胞で構成された大きな結節を有していた。腫瘍の境界に、リンパ球、マクロファージ、およびエオシン好性細胞の一定程度の浸透が認められた。興味深いことに、βgalとmＩＬ２ベクターの組み合わせで措置した動物は、炎症性細胞の侵入を伴った腫瘍壊死領域をもっと持っていたが、成長可能な細胞も残っていた。tkベクターで措置したグループはかなり多数の腫瘍壊死を有していたが、活発に複製している新しい細胞もまだかなり強力に残っていた。tk＋mＩＬ２で措置した動物のすべては、炎症性細胞で取り囲まれたかなりの腫瘍壊死を示した。いくつかの肝臓では、成長可能な悪性腫瘍は残っていなかった。壊死の大きなゾーンは、完全に破壊された腫瘍と、出血、虚血性肝臓障害などの混合を含んでいた。多数のマクロファージ、リンパ球、そして顆粒球が領域全体に存在しているのが認められた。tk＋mＩＬ２の組み合わせで措置したグループの10匹の動物の内の７匹では、残留腫瘍細胞の存在はほとんど認められず、残りの３匹の動物は腫瘍を持っていないようであった。腫瘍退縮を引き起こすtk＋mＩＬ２組み合わせ遺伝子治療の有効性を定量するために、固型腫瘍の最大断面積のコンピュータ支援形態的ポイントカウント分析を行なった。５つの措置グループの動物における腫瘍サイズの測定結果を図20に示す。βgalで措置したすべての動物は、予想通り、大きな腫瘍を発生した。mＩＬ２ベクターだけで措置した動物グループでは、残留腫瘍は、多少の、しかし有意でない退縮が認められた。βgalおよびmＩＬ２ベクターを一緒に用いて措置した動物、およびtkベクターだけで措置した動物では腫瘍壊死が発現し、残留腫瘍のサイズはβgalベクターで措置した動物の場合より５倍程度小さかった。tkおよびmＩＬ２の両方で措置した動物グループにおいては、tkベクターだけで措置した動物グループと比較して、かなり大幅な残留腫瘍の退縮が認められた。 tk＋mＩＬ２ベクターで措置した動物における全身的抗腫瘍性免疫：種々の遺伝子治療措置を受けた動物において抗腫瘍性免疫性があるかどうかをテストするために、ＧＣＶ投与終了時に、腫瘍を発生させるだけの量のＭＣＡ−26細胞の皮下注射による二次的な刺激に対する保護を行った。βgal措置グループとtkベクター措置グループの両方のすべての動物が刺激を与えてから７日目に、刺激を与えた場所に巨大な皮下腫瘍を発生した。mＩＬ２ベクターで措置した６匹のうちの５匹、そしてβgal＋mＩＬ２ベクターで措置した６匹のうちの４匹も刺激を与えた場所に巨大な皮下腫瘍を形成した。しかしながら、tk＋mＩＬ２で措置した６匹のうち、どの動物においても、４週間後にも皮下腫瘍の発生は認められなかった（図21）。これらの動物の抗腫瘍性免疫性もＭＣＡ−26細胞特異性で、腫瘍を発生するだけの量の相同ではあるが遺伝子組成が同一の乳房腫瘍細胞株（ＭＯＤ）によって遠位部に対し刺激を与えた場合は同じ動物において保護が観察されなかった（図21）。腫瘍拒絶がホストエフェクター細胞の感作化と関係しているかどうかを調べるために、インビトロでの細胞毒性Ｔ−リンパ球アッセイが行われた。正常な動物、５つの措置グループすべての動物から、ＧＣＶ措置の完了から３日目の時点で脾臓細胞を取り出して、照射ＭＣＡ−26細胞で５日間培養した。種々の数の刺激を与えたエフェクター細胞群にクロム51でラベルしたＭＣＡ−26細胞を接種し、そしてエフェクター／標的細胞比率を基準として、標的細胞の溶解度を図示した（図22）。措置を受けなかった通常のマウス、および最初の４つの措置グループの動物の脾臓細胞のＭＣＡ−26標的細胞に対する有意なＣＴＬ活性は認められなかった。しかしながら、tkおよびmＩＬ２ベクターの両方で措置された動物の脾臓細胞では、ＭＣＡ26特異ＣＴＬ活性の劇的な増大が認められた。対照的に、tk およびmＩＬ２で措置したマウスではＢＡＬＢ/ｃ誘導ＭＯＤ乳房腫瘍細胞あるいはＹＡＣＩ標的細胞の溶解はできなかった。ＣＴＬ応答がＣＤ４⁺および／またはＣＤ８⁺Ｔ−細胞の活性を反映しているのかどうかを判定するために、ＣＤ４またはＣＤ８に対するモノクローナル抗体をグロム−51放出アッセイにおいてブロッキング剤として組み込んだ。ＣＤ８に対するモノクローナル抗体はＭＣＡ−26細胞に対するＣＴＬは完全に消失させたが、ＣＤ４に対するモノクローナル抗体は効果を示さなかった（図23）。これらの実験は、tk＋mＩＬ２ベクターで措置した動物から取り出したＣＤ８＋Ｔ細胞がＭＣＡ−26特異性細胞毒性に関与していることの強力な証拠を提供している。この研究では、組換えアデノウィルス性ベクター内のＨＳＫ−tkおよびマウスＩＬ２遺伝子を肝臓に転移した結腸悪性腫瘍へ直接伝達した結果、インビボでの悪性腫瘍の退縮をもたらした。β−galベクターとmＩＬ２ベクターのいずれも、単独で用いられると、このモデルでの腫瘍成長を抑止することができた。tkベクターだけでは、有意な壊死を引き起こすことができなかったが、成長可能は細胞が多数残った。tkおよびmＩＬ２ベクターの両方による組み合わせ治療は腫瘍退縮を起こさせる上でより有効で、成長可能な細胞はほとんど残らなかっただけではなく、腫瘍を発生させるだけの量の、遠位部位に接種された親腫瘍細胞に対する全身的抗腫瘍性免疫の発現をもたらした。親腫瘍細胞に対するこの抗腫瘍性免疫の特異性は、さらに、同じ動物に接種された腫瘍を発生させるだけの量の異種乳房悪性腫瘍細胞株に大しては抗腫瘍性免疫が認められなかった事実によっても示されている。最後に、これらの動物の抗腫瘍性免疫はＭＣＡ26特異ＣＤ８＋細胞毒性Ｔ−リンパ球の存在と関連していることも実証された。興味深いことに、mＩＬ２ベクターを３×10⁹のβ−galベクターＰＦＵとの組み合わせで用いた場合、炎症性細胞および腫瘍壊死の存在との関連で、腫瘍サイズのかなりの縮小が認められた。mＩＬ２ベクター＋３×10⁹ＰＦＵのtkベクターで措置して、その後ＧＣＶを投与しなかった動物でも同様の結果が得られたことから、この効果はウィルスの総投与量と関係しているように思われる。ＥＩＡ組換えアデノウィルス性ベクターはインビボでウィルスによる形質導入された細胞に対する細胞免疫反応を引き起こすことができる程度の低いレベルのウィルス抗原を表現することが知られており、この抗ウィルス免疫はインターロイキン２遺伝子の局所的な表現によって増強される可能性がある。しかしながら、この措置グループの親腫瘍細胞に対しては効果的な全身性ＣＬＴ反応が欠如しており、６匹の動物のうちの４匹は、遠位での親腫瘍細胞による刺激に対する保護機能を示すことができなかった。実施例６非ヒト霊長類でのベクターの安全性に対するテストＡＤＶ/ＲＳＶ−tkおよびＧＣＶ措置のヒヒにおける毒性テスト（Papio cynoc ephalus）：光学濃度で判定して1.6×10¹¹粒子/mlのタイターを有するウィルスをつくった。このベクターのインビトロおよびインビボでの毒性、tk機能テスト、複製能力、および汚染度についてテストした。ウィルスを接種する真に、すべてのヒヒでＭＲを実施した。血清、精液、尿、および大便の操作前サンプルを集めて、野生種のアデノウィルス性に関するテストを行った。野生タイプのアデノウィルスに対する抗体を中性化するかどうかについて、血清をテストした。そして３つの措置グループを設定した。グループ１−中度の投与量のＡＤＶ/ＲＳＶ−tk，ＧＣＶ、６週間の生残：ＡＤＶ/ＲＳＶ−tk（10％グリセロールを含む10μｌのＰＢＳに1.5×10⁹粒子）の中程度の投与量を16.3才の、サイクリング（cycling）雌および17.5才の雄のヒヒの椎体セミオバル（semiovale）に接種した。次の日から、１日２回、合計14 日間、10mg/kgのＧＣＶによる措置を開始した。接種後２日および７日目にサンプルを取り出し、ウィルスおよび抗アデノウィルス性抗体の分析を行った。ウィルス接種後３週間で、それら動物はガドリニウム増強によりＭＲ画像化した。ウィルス接種から約６週間で、血漿、血清、尿、便、および精液サンプルを再び集めて、影響を受けたウィルスの存在、およびアデノウィルスに対する抗体の存在について分析し、脳をガドリニウム増強によって画像化し、そしてそれらの動物を解剖検査した。脳の全体的な検査では、異常は認められなかった。特に、壊死性の凹部、マスエフェクト、出血、あるいは蜘蛛膜下出血などは認められなかった。脳については顕微鏡で異常がないかどうか検査したが、両方のサンプルで、小さな領域のマクロファージ浸潤および軽度の毛細血管のリンパ性袖口様白血球集合（cuffing ）が右脳の椎体セミオバルに認められた。しかし、右脳以外には袖口様白血球集合は認められず、白色浮腫も存在しなかった。軟膜炎も認められなかった。壊死あるいはウィルスの取り込みも認められなかった。脈絡膜叢および上皮に異常はなかった。１匹の動物で壊死を伴わない小さな肝臓リンパ球浸潤が認められた他は、全身的な病態は見られなかった。他の動物での全身的な検査も行われたが、結果は正常であった。グループ２−高投与量のＡＤＶ/ＲＳＶ−tk ＧＣＶ、３週間の生残：ＦＤＡの要請に基づいて、２匹の類人猿について、高い投与量のＡＤＶ/ＲＳＶ−tkおよびＧＣＶによって措置を行った。16才のサイクリング雌および11才の雄のヒヒの椎体セミオバルにＡＤＶ/ＲＳＶ−tk（10％グリセロールを含む200μｌのＰＢＳに３×10¹⁰の粒子）を接種した。翌日から、１日２回、合計14日間、テターシステム（tethersystem）経由で10mg/kgのＧＶＣの投与を開始した。接種２日後に、血漿、血清、尿、便および精液のサンプルを採取して、影響を受けたウィルスおよびアデノウィルスに対する抗体の存在について分析した。ウィルスが認められない場合、ウィルス接種から約３週間程度でガドリニウム増強によって画像化し、翌日、解剖検査した。ウィルス接種から５日目に雄のヒヒは死亡した。これらの動物はベクター接種およびＧＣＶ措置の開始から５および10日後に安楽死させた。両方のヒヒで、接種された箇所に1.5〜1.8cm程度の面積の液化した壊死が認められた。これらの壊死性物質はマスエフェクトを示した。組織病理学的な検査では多形変態核細胞および椎体セミオバルのエオシン好性の液化壊死と混じり合ったリンパ球によって特徴づけられる急性炎症を示した。壊死物質からの発散物は脳浮腫で海綿状白物質であった。右脳の接種によって生じた凹部から1.5cm離れた場所に強度のリンパ性毛細血管袖口様白血球集合が見られた。接種箇所に近接した血管に血管壁を通して凝結性の壊死部分が認められた。左脳、脳幹、および大脳での毛細血管浸透物はほとんど認められなかった。右脳全体にいくつもの核を有する蜘蛛膜下リンパ性浸透物が認められたが、左脳、及び脳幹と大脳周辺ではそれ程認められなかった。脈絡膜叢および上皮破壊は存在しなかったが、10日間生きのびた動物の右には微細な脈絡膜叢炎症が認められた。ウィルスの核内浸透は認められなかった。ルグゾールファストブルー（luscol fast blue）で染色した部分は壊死性凹部を除いて、ミエリンのロスは見られなかった。全身的な検査で、５日目に死にかけている動物の肺に鬱血が見られ、顕微鏡検査の結果、エオシン好性物質が歯槽スペースを満たしており、神経組織に由来する肺の浮腫を示していた。肺の炎症は認められなかった。10日目に安楽死させた動物では、全身的な病態は認められなかった。グループ３−高投与量のＡＤＶ/ＲＳＶ−tk，ＧＣＶ措置なし、３および５週間生残：ウィルス接種の効果と、ウィルス接種＋ＧＣＶ投与による２匹の雄のヒヒ（10.5才および 11.5才）に上に述べたのと同じ方法で３×10¹⁰のＡＤＶ/ＲＳＶ−tk粒子を接種した。これら２匹の動物はＧＣＶによる措置は受けなかった。１匹のヒヒは最初の接種後ＭＲの後で解剖検査を行った。他のヒヒは２回目のＭＲ後の６週間後に解剖検査した。組織および液体サンプルは上に述べたように分析した。３週間目に検査された動物は、右の椎体セミオバルの1.5cmの大きさの嚢胞凹部を持っていた。全体としてマスエフェクト、ヘルニアあるいは出血は認められた。組織病理学的には、この凹部は脂質破片を含んでいるマクロファージが満たされていた。この凹部に近接して、軽度の神経膠症、しつこいリンパ性炎症、毛細血管のリンパ性袖口様白血球集合、および最小限度の白物質浮腫が認められた。ウィルスの侵入は見られず、脈絡膜叢、および上皮は正常であった。軽度の微少蜘蛛膜下スペースでのリンパ球の結集が右脳に見られたが、左脳あるいは脳幹の周辺には見られなかった。全身的な病理的変化はなかった。措置後６週間目に検査された動物は、右後部椎体セミオバルに1.6cmの大きさの多少不規則な嚢胞凹部を有していた。この凹部の内側は淡褐色をしており、マスエフェクト、ヘルニア、又は血腫は認められなかった。顕微鏡的な検査では凹部壁面に脂質に覆われたマクロファージ、壁内部および近くの血管にリンパ球浸透物、および微細な浮腫、そして凹部のすぐそばに神経膠症が認められた。脈絡膜叢、上皮および／または残留軟膜炎浸透物は認められなかった。そして、全身的な病変もなかった。要約すると、投与量に依存したベクターの神経毒性効果があるようであり、投与量が高いグループでは接種箇所に凝結性壊死が認められ、マクロファージによって取り除かれ、嚢胞凹部が発生した。このプロセスは６週間続き、その時点までに炎症成分は消失する。高い投与量のベクター＋ＧＣＶを受けた両方の動物とも死亡、あるいは安楽死をさせた方がよい程度の病状になったので、ＧＣＶは高い投与量のベクターを臨床毒性を強化するように思われる。それより少ない投与量のベクター＋ＧＣＶで措置した動物は、接種箇所で、顕微鏡レベルの神経毒性の証拠が認められた。アデノウィルス性ベクターは投与量に依存した、ペントン構造蛋白質経由での細胞病理的効果と、野生タイプアデノウィルスの細胞病理効果を示す。この実験で、高い投与量で措置したグループではＧＣを使うか使わないかに関係なく壊死を形成し、それより少ない投与量のＧＣＶを受けた動物では壊死が形成されなかった事実は、ＢＶＣの毒性化合物への６ｋ転化から発生する毒性ではなく、ベクターの直接の細胞病理効果の可能性を強く示唆している。この実験は、1.5×10⁹という細胞病理に関する投与量閾値を示す。これ以下の投与量のベクターはＢＶＣと共に投与されると、分裂している腫瘍細胞に対しては毒性を示すが、非分裂性ＣＮＳ細胞構成物には毒性を示さない。中程度および高い投与量のＡＤＶ/ＲＳＶ−tkによって措置したヒヒの脳のＭＲＩ分析：全体的な神経病変はＭＲＩ知見に反映されているようである。残念なことに、高い投与量のベクター＋ＧＣＶで措置した動物は、後のＭＲＩを得る前に死亡した。高い投与量のベクターで措置し、しかしＧＣＶは用いなかった動物では、３週間目および６週間目に解剖検査を行った所、嚢胞凹部に対応して、Ｔ２重みづけ画像で高い信号強度のエリアを示した。３週間目に、ＭＲＩでいくつかの微小マスエフェクトが示された。このグループの６週間目に生き残っている動物のＭＲＩでは嚢胞凹部のよりよい非線形化が認められ、消失しつつある輪郭のはっきりした凹部という全体的な病態的知見と対応している。これらの動物では血管周辺の炎症的変化に対応したガドリニウムの漏出が認められた。中程度の投与量のベクター＋ＧＣＶによって措置した動物ではそれ程のＭＲＩ変化は認められず、画像化または措置における低めの毒性効果に対応した全体的な検査では、凹部形成は認められなかった。これらの結果は、この治療の組織に対する効果を測定するためにＭＲＩを用いることができることを示唆している。中程度および高い投与量のＡＤＶ/ＲＳＶ−tkを接種したヒヒから得た組織のＰＣＲ分析：解剖検査で得た組織（２〜３mm直径）を分析に用いた。より大きめな器官（脳、肝臓など）の場合、複数（４〜６）の組織サンプルを集めてプールした。ＳＤＳおよびプロテイナーゼＫ（Ausubelら、1987）を用いて総ＤＮＡを分離した。各サンプルからのＤＮＡの１μｌのアリコットを用いてＰＣＲ反応を行った。用いられたプライマーオリゴヌクレオチドはセンスプライマーＡdv．3205（５′−ＧＴＧＴＴＡＣＴＣＡＴＡＧＣＧＴＡＡ−３′）およびアンチセンスプライマーＲＳＶ 270Ａ（５′−ＧＡＣＴＣＣＴＡＡＣＣＧＣＧＡＣＡ−３'）であり、前者のプライマーはアデノウィルス内に、後者はＲＳＶ−ＬＴＲ配列内に配置され、組換えプラスミドpＡＤＬ−１/ＲＳＶ−tk内のチミジンキナーゼ遺伝子の両方の５′を用いて、組換えウィルスを発生させた。ＰＣＲ反応は30秒＠92℃、30秒＠50℃、および１ｍ＠72℃のサイグルを30サイクル行った。反応混合物は50μMの各プライマーの各dＮＴＰ nd 50pＭおよび４ユニットのＴaqポリメラーゼによって構成され、総体積は100μｌであった（Saiki ，1990）。ＰＣＲの終了時に、生成物の10μｌアリコットを、４％Nuシーブアガロースゲルで電気泳動を行った。このゲルは臭化エチジウムで染色して、紫外線で視覚化した。ゲル上で見て232bp断片を作り出したサンプルこれらのサンプルはポジティブであった。高い投与量のウィルスを接種された４匹の動物のうちの３匹では、接種箇所はポジティブであった。接種箇所にウィルス配列を持っていた１匹の動物はそのスパイラルコードでもウィルスを持っていた。接種箇所においてポジティブであった他の２匹の動物はＣＮＳの他の領域でネガティブであった。生殖腺組織を含む他の組織は、ＡＤＶ/ＲＳＶ−tk配列に関してポジティブであった。この分析結果を表IIIに示す。本明細書で触れられているすべての特許および出版物は本発明が関連している技術に詳しい人を前提としている。それらすべての特許および出版物は、全体として、個々の資料と同じレベルで、本明細書に引例として組み入れられている。本発明が上に述べた、およびそれと本質的に付随した課題を実行し、目的および利点を達成するのによく適合していることは当業者には容易に分かるであろう。ここで述べられている方法、手順、措置、分子、および特定の化合物は現在の段階で好ましい例として述べられている具体例で、本発明の範囲を限定することは意図していない。本発明の範囲および以下の特許請求の範囲で定義されている技術に通じた人であれば、変更や他の使用法も思い付けるであろう。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号庁内整理番号ＦＩＡ６１Ｋ 38/46 9051−4ＣＡ６１Ｋ 37/02 Ｃ０７Ｈ 21/04 9051−4Ｃ 37/66 ＺＣ１２Ｎ 15/09 9162−4ＢＣ１２Ｎ 15/00 Ａ

Claims

【特許請求の範囲】１. 動物またはヒトにおける固型腫瘍、乳頭腫、または疣贅を措置するための方法において：該腫瘍、乳頭腫、または疣贅にアデノウィルス性ベクターを導入し、該ベクターが機能的な表現のために、適切な距離で結合されている、５′mＲＮＡリーダー配列、開始部位、酵素的にプロドラッグを毒性化合物に転換することができる蛋白質をコード表現する表現されるべき自殺遺伝子を含む核酸と、３′非翻訳領域と、そしてポリアデニル化信号によって構成されているステップおよび該プロドラッグを該動物またはヒトに投与するステップによって構成され、該プロドラッグがインビボで該毒性化合物に転換されることを特徴とする方法。２. 該プロモータがラウスサルコーマウィルス−ロングターミナルリピート、サイトメガロウィルス性プロモーター、マウス白血病−ロングターミナルリピート、類人猿ウィルス40初期および後期ブロモーター、およびヘルペス単一体ウィルス−チミジンキナーゼプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。３. 上記遺伝子配列が、ヘルペス単一体ウィルスのチミジンキナーゼ、バリセラズスターウィルスのチミジンキナーゼ、およびバクテリア性サイトシンデアミナーゼで構成される蛋白質に関するコードを表現することを特徴をする請求項１の方法。４. 該プロドラッグがガンシクロビル、アシクロビル、１−５−ヨードウラシルＦＩＡＵ、５−フルオロサイトシン、６−メトキシプリンアラビノシド、およびそれらの誘導物で構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。５. 固型腫瘍が、結腸、前立腺、乳房、肺、皮膚、骨、膵臓、子宮、睾丸、膀胱、腎臓、脳、頭部、および頚部部癌によって構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。６. 乳頭腫が、鱗状細胞乳頭腫、コロイド叢乳頭腫および喉頭乳頭腫で構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。７. 該疣贅が、生殖器疣贅、疣贅状表皮異形成および悪性疣贅で構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。８. 該ガンシクロビルが約１mg/日/kg〜約20mg/日/kg体重の投与量で投与されることを特徴とする請求項５の方法。９. 該アシクロビルが、約１mg/日/kg〜約100mg/日/kg体重の投与量で投与されることを特徴とする請求項５の方法。 10. 該ＦＩＡＵが、約１mg/日/kg〜約50mg/日/kg体重の投与量で投与されていることを特徴とする請求項５の方法。 11. 表現されるべき上記自殺遺伝子配列がヘルペス単一体ウィルスのチミジンキナーゼであり、プロドラッグがガンシクロビル、アシクロビル、ＦＩＡＵまたはその誘導体であることを特徴とする請求項１の方法。 12. 表現されるべき上記自殺遺伝子配列がバクテリア性サイトシンデアミナーゼである、上記プロドラッグが５−フルオロサイトシンまたはその誘導体であることを特徴とする請求項１の方法。 13. 表現されるべき上記自殺遺伝子配列がバリセラゾスターウィルスチミジンキナーゼであり、プロドラッグが６−メトキシプリンアラビノシド、またはその誘導体であることを特徴とする請求項１の方法。 14. 該腫瘍が肝臓癌であり、該プロモーターがアルブミンプロモーター、アルファフェトプロテインブロモーター、α−アンチトリプシンプロモーター、およびホスホエノルピルベートカルボキシナーゼプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。 15. 該腫瘍が結腸癌であり、該プロモーターがカルボニックアンヒドラーゼＩプロモーター、または悪性腫発生抗原プロモーターであることを特徴とする請求項１の方法。 16. 該腫瘍が子宮癌であり、該プロモーターがエストロゲンプロモーター、アロマターゼサイトクロームＰ450プロモーター、コレステロール側鎖切断Ｐ450、および17アルファ−ヒドロキシラーゼＰ450プロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。 17. 該腫瘍が前立腺癌であり、該プロモーターが前立腺特異抗原プロモーター、gp91−ホックス遺伝子プロモーター、および前立腺固有カリクレインプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。 18. 該腫瘍が乳癌であり、上記プロモーターがerb−Ｂ₂プロモーター、erb−Ｂ₃ プロモーター、β−カゼインプロモーター、ＷＡＢ（ウェイ酸性蛋白質）プロモーター、およびβ−ラクト−グロブリンプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。 19. 該腫瘍が肺癌であり、上記プロモーターが、界面活性剤プロモーター、悪性腫瘍発生抗原プロモーター、およびウログロビンプロモーターによって構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。 20. 該腫瘍は皮膚癌であり、上記プロモーターがヒトケラチン１プロモーター、ヒトケラチン６プロモーター、およびロイクリンプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。 21. 該腫瘍が脳癌であり、上記プロモーターがグリアル（glial）繊維酸性蛋白質プロモーター、成熟した星状細胞特異蛋白質ミエリンプロモーター、およびチロシンヒドロキシダーゼプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。 22. 該腫瘍が膵臓癌であり、上記プロモーターがビリンプロモーター、グルカゴンプロモーター、島アミロイドポリペプチド（アミリン）プロモーター、およびインシュリンプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。 23. 該腫瘍が甲状腺癌であり、上記プロモーターがチログロブリンプロモーターおよびカルシトニンプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。 24. 該腫瘍が骨癌であり、上記プロモーターがアルファ１（Ｉ）コラーゲンプロモーター、オステオカルシンプロモーター、およびシアログリコプロテインプロモーターで構成されるグルーブから選択されることを特徴とする請求項１の方法。 25. 該腫瘍が腎臓癌である、上記プロモーターがレニンプロモーター、肝臓／骨／腎臓アルカリ性ホスホターゼプロモーター、およびエリスロポイエチン（エポ）プロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項１の方法。 26. 動物またはヒトの固型腫瘍、乳頭腫、および疣贅を措置する方法において、ＤＮＡ伝達システムによって個体に、自殺遺伝子と１つまたは複数の細胞毒性遺伝子を投与し、該ＤＮＡ伝達システムがウィルス性ベクター、エピゾーム性ベタター、リポゾーム、陽イオン性脂質およびＤＮＡまたはＲＮＡなど細胞表面または抗原を識別し、それに結合する分子構成、ＤＮＡ結合分子構成、およびそれら細胞表面から細胞質へのそれら複合体を輸送することができる溶解性分子構成で構成される非ウィルス性伝達システムで構成されるグループから選択されることを特徴とするステップおよび該動物またはヒトに対してプロドラッグを投与するステップとで構成され、該プロドラッグがインビボで該自殺遺伝子によって毒性化合物に転化されることを特徴とする方法。 27. 自殺遺伝子配列がヘルペス単一体ウィルスのチミジンキナーゼ、バリセラゾスターのチミジンキナーゼ、およびバクテリア性シトシンデアミナーゼで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項26の方法。 28. 該１つ、または複数のサイトカイン遺伝子配列がインターロイキン−１、インターロイキン−２、インターロイキン−４、インターロイキン−６、インターロイキン−７、インターロイキン−10、インターロイキン−12、インターフェロン−α、インターフェロン−β、インターフェロン−δ、腫瘍壊死因子−α、腫瘍壊死因子−β、顆粒マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）および顆粒細胞コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）で構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項 26の方法。 29. 該プロドラッグがガンチクロビル、アシクロビル、１−５−ヨードウラシルＦＩＡＵ、５−フルオロシトシン、６−メトキプリンアラビノシドおよびその誘導体で構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項26の方法。 30. 該腫瘍が結腸、前立腺、乳房、肺、皮膚、肝臓、骨、膵臓、子宮、睾丸、膀胱、腎臓、頭部、または頚部癌で構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項26の方法。 31. 乳頭腫が鱗状細胞乳頭腫、脈絡膜叢乳頭腫、および喉頭乳頭腫で構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項26の方法。 32. 該疣贅が生殖器疣贅、足裏疣贅、疣贅状表皮異形成および悪性疣贅で構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項26の方法。 33. 該ガンシクロビルが約１mg/日/kg〜約20mg/日/kg体重の範囲の投与量で投与されることを特徴とする請求項29の方法。 34. 該アシクロビルが約１mg/日/kg〜約100mg/日/kg体重の範囲の投与量で投与されることを特徴とする請求29の方法。 35. 該ＦＩＡＵが約１mg/日/kg〜約50mg/日/kg体重の範囲の投与量で投与されることを特徴とする請求項29の方法。 36. 上記表現されるべき自殺遺伝子配列がヘルペス単一体ウィルスのチミジンキナーゼであり、上記プロドラッグがガンシクロビル、アシクロビル、ＦＩＡＵ、またはその誘導体であることを特徴とする請求項26の方法。 37. 上記表現されるべき自殺遺伝子がバクテリア性サイトシンデアミナーゼであり、上記プロドラッグが５−フルオロシトシンまたはその誘導体であることを特徴とする、請求項26の方法。 38. 上記表現されるべき自殺遺伝子配列がバリセラゾスターウィルスチミジンキナーゼであり、上記プロドラッグが６−メトキシプリンアラビノシドまたはその誘導体であることを特徴とする請求項26の方法。 39. 動物またはヒトの固型腫瘍、乳頭腫、または疣贅を措置する方法において、第１のアデノウィルス性ベクターと、機能的表現のために適当な距離で順次結合されたプロモーター、５′mＲＮＡリーダー配列、開始部位、表現されるべき自殺遺伝子で、プロドラッグを毒性化合物に転化させることができる蛋白質をコード表現する自殺遺伝子を含んでいる核酸カセット、３′非翻訳領域およびポリアデニル化信号で構成される追加的アデノウィルス性ベクターを直接該腫瘍、乳頭腫、または疣贅に導入するステップで、さらに該追加アデノウィルス性ベクターが機能的な表現のために適切な距離で結合されたプロモーター、５′mＲＮＡリーダー配列、開始部位、表現されるべきサイトカイン遺伝子を含んだ核酸、３′非翻訳領域、およびポリアデニル化信号で構成されているステップとおよび該動物またはヒトにプロドラッグを投与するステップとで構成され、該プロドラッグがインビボで該自殺遺伝子によって毒性物質に転化されることを特徴とする方法。 40. 該プロモーターがラウスサルコーマウィルス−ロングターミナルリピート、サイトメガロウィルス性プロモーター、マウス白血病ウィルス−長末端反復、霊長類ウイルス40初期および後期プロモーター、およびヘルペス単一体ウィルス −チミジンキナーゼプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする、請求項39の方法。 41. 上記自殺遺伝子配列が、ヘルペス単一体ウィルスのチミジンキナーゼ、バリセラゾスターウィルス、およびバクテリア性サイトシンデアミナーゼで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 42. 上記アデノウィルス性ベクターがインターロイキン−１、インターロイキン−２、インターロイキン−４、インターロイキン−６、インターロイキン−７、インターロイキン−10、インターロイキン−12、インターフェロン−α、インターフェロン−β、インターフェロン−δ、腫瘍壊死因子−α、腫瘍壊死因子− β、顆粒細胞−マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）および顆粒細胞コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）で構成されるグループから選択される蛋白質をコード表現する１つ、または複数のサイトカイン遺伝子配列を含んでいることを特徴とする請求項39の方法。 43. 該プロドラッグがガンシクロビル、アシクロビル、１−５−ヨードウラシルＦＩＡＵ、５−フルオロシトシン、６−メトキシプリンアラビノシド、およびそれらの誘導体で構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項 39の方法。 44. 該腫瘍が結腸、前立腺、乳房、肺、皮膚、肝臓、骨、膵臓、子宮、睾丸、膀胱、腎臓、頭部、または頚部癌で構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 45. 乳頭腫が鱗状細胞乳頭腫、脈絡膜叢乳頭腫、および喉頭乳頭腫で構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 46. 該疣贅が生殖器疣贅、足裏疣贅、疣贅状表皮異形成および悪性疣贅で構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 47. 該ガンシクロビルが約１mg/日/kg〜約20mg/日/kg体重の範囲の投与量で投与されることを特徴とする請求項43の方法。 48. 該アシクロビルが約１mg/日/kg〜約100mg/日/kg体重の範囲の投与量で投与されることを特徴とする請求項43 の方法。 49. 該ＦＴＩＵが約１mg/日/kg〜約50mg/日/kg体重の範囲の投与量で投与されることを特徴とする請求項43の方法。 50. 上記表現されるべき自殺遺伝子配列がヘルペス単一体ウィルスのチミジンキナーゼであり、上記プロドラッグがガンシクロビル、アシクロビル、ＦＩＡＵ、またはその誘導体であることを特徴とする請求項39の方法。 51. 上記表現されるべき自殺遺伝子がバクテリア性サイトシンデアミナーゼであり、上記プロドラッグが５−フルオロシトシンまたはその誘導体であることを特徴とする請求項39の方法。 52. 上記表現されるべき自殺遺伝子配列がバリセラゾスターウィルスチミジンキナーセであり、上記プロドラッグが６−メトキシプリンアラビノシドまたはその誘導体であることを特徴とする請求項39の方法。 53. 該腫瘍が肝臓癌であり、該プロモーターがアルブミンプロモーター、アルファフェトプロテインプロモーター、α−アンチトリプシンプロモーターおよびホスホエノルピルベートカルボキシナーゼプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 54. 該腫瘍が結腸癌であり、該プロモーターがカルボニックアンヒドラーゼＩプロモーター、または悪性腫発生抗原プロモーターであることを特徴とする請求項39の方法。 55. 該腫瘍が子宮癌であり、該プロモーターがエストロゲンプロモーター、アロマターゼサイトクロームＰ450プロモーター、コレステロール側鎖切断Ｐ450、および17アルファ−ヒドロキシラーゼＰ450プロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 56. 該腫瘍が前立腺癌であり、該プロモーターが前立腺特異抗原プロモーター、gp91−ホックス遺伝子プロモーター、および前立腺固有カリクレインプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 57. 該腫瘍が乳癌であり、上記プロモーターがerb−Ｂ₂プロモーター、erb−Ｂ₃ プロモーター、β−カゼインプロモーター、ＷＡＢ（ウェイ酸性蛋白質）プロモーター、およびβ−ラクトーグロブリンプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 58. 該腫瘍が肺癌であり、上記プロモーターが、界面活性剤プロモーター、悪性腫瘍発生抗原プロモーター、およびウログロビンプロモーターによって構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 59. 該腫瘍は皮膚癌であり、上記プロモーターがヒトケラチン１プロモーター、ヒトケラチン６プロモーター、およびロイクリンプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 60. 該腫瘍が脳癌であり、上記プロモーターがグリカル（glial）繊維酸性蛋白質プロモーター、成熟した星状細胞特異蛋白質ミエリンプロモーター、およびチロシンヒドロキシダーゼプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 61. 該腫瘍が膵臓癌であり、上記プロモーターがビリンプロモーター、グルカゴンプロモーター、島アミロイドポリペプチド（アミリン）プロモーター、およびインシュリンプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 62. 該腫瘍が甲状腺癌であり、上記プロモーターがチログロブリンプロモーターおよびカルシトニンプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 63. 該腫瘍が骨癌であり、上記プロモーターがアルファ１（Ｉ）コラーゲンプロモーター、オステオカルシンプロモーター、およびシアログリコプロテインプロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。 64. 該腫瘍が腎臓癌である、上記プロモーターがレニンプロモーター、肝臓／骨／腎臓アルカリ性ホスホターゼプロモーター、およびエリスロポイエチン（エポ）プロモーターで構成されるグループから選択されることを特徴とする請求項39の方法。