JPH08266299A - 核酸プローブ - Google Patents

核酸プローブ

Info

Publication number
JPH08266299A
JPH08266299A JP8028340A JP2834096A JPH08266299A JP H08266299 A JPH08266299 A JP H08266299A JP 8028340 A JP8028340 A JP 8028340A JP 2834096 A JP2834096 A JP 2834096A JP H08266299 A JPH08266299 A JP H08266299A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
nucleic acid
probe
rrna
organism
hybridization
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP8028340A
Other languages
English (en)
Other versions
JP2976406B2 (ja
Inventor
David E Kohne
イー コーン デビツト
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Gen Probe Inc
Original Assignee
Gen Probe Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=23813907&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=JPH08266299(A) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Gen Probe Inc filed Critical Gen Probe Inc
Publication of JPH08266299A publication Critical patent/JPH08266299A/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP2976406B2 publication Critical patent/JP2976406B2/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • C12Q1/689—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for bacteria
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/18—Testing for antimicrobial activity of a material
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/158—Expression markers
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10T—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
    • Y10T436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10T436/14—Heterocyclic carbon compound [i.e., O, S, N, Se, Te, as only ring hetero atom]
    • Y10T436/142222—Hetero-O [e.g., ascorbic acid, etc.]
    • Y10T436/143333—Saccharide [e.g., DNA, etc.]

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Investigating Or Analyzing Materials By The Use Of Electric Means (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medical Treatment And Welfare Office Work (AREA)
  • Respiratory Apparatuses And Protective Means (AREA)
  • Measuring And Recording Apparatus For Diagnosis (AREA)
  • Processing Of Color Television Signals (AREA)
  • Geophysics And Detection Of Objects (AREA)
  • Accommodation For Nursing Or Treatment Tables (AREA)
  • Control Of Vending Devices And Auxiliary Devices For Vending Devices (AREA)

Abstract

(57)【要約】 【課題】 生物学的試料中の生物を検出、同定又は定量
するための核酸プローブを提供する。 【解決手段】 標的生物（群）に由来するリボソーム核
酸のその生物に固有の部分配列に相補的であるが非標的
生物（群）のリボソーム核酸の部分配列とはハイブリダ
イズせず、当該標的生物のリボソーム核酸分子よりも長
さが短い核酸プローブ。

Description

【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は、生物学的試料およ
びその他の試料中の生物を検出、同定、定量するための
核酸プローブに関するものである。すなわち本発明は、
リボソームＲＮＡ（以後ｒＲＮＡ）、転位ＲＮＡ（以後
ｔＲＮＡ）、或いはその他のＲＮＡを含むあらゆる生
物、そのような生物を含む大小さまざまなカテゴリー又
は分類学的群に属するあらゆる生物、そしてｒＲＮＡ又
はｔＲＮＡを含む未知の生物を特異的且つ鋭敏に検出し
定量するための核酸プローブに関するものである。この
核酸プローブによれば、ｒＲＮＡ又はｔＲＮＡを含む１
個の生物の存在ですら検出することができる。
【０００２】本発明は又、ＲＮＡの１種、ｍＲＮＡ若し
くはｈｎＲＮＡもしくはｓｎＲＮＡの特定の配列、又は
ｍＲＮＡ，ｒＲＮＡ，ｔＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ若しくはｓ
ｎＲＮＡの前駆体分子にのみ存在し、成熟形態のｍＲＮ
Ａ，ｒＲＮＡ，ｔＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ若しくはｓｎＲＮ
Ａ分子には存在しないＲＮＡ配列（以後、前駆体特異的
ＲＮＡ配列又はｐｓＲＮＡと呼ぶ）に相補的になるよう
に作成した特定の生物、生物群、真核細胞群又は細胞内
ウイルスを検出し、同定し、定量するための核酸プロー
ブを含む。
【０００３】本発明並びにその新規性、有用性および進
歩性は、当該分野の背景技術に関する以下の説明によ
り、明確に理解されよう。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】ウイルスを除くあらゆ
る細胞はリボソームを含み、従って、リボソームＲＮＡ
を含む。１個のリボソームは大、中、小３種の１本鎖Ｒ
ＮＡ分子を含む。大きい方の２本のｒＲＮＡ分子は、生
物の種類によって大きさが異なる。
【０００５】ｒＲＮＡは、遺伝子から直接生産される分
子であり、ｒＲＮＡ遺伝子によってコードされる。この
ＤＮＡ配列は、ｒＲＮＡ分子を合成するための鋳型とし
て用いられる。ｒＲＮＡサブユニット１個ずつに、個別
の遺伝子が存在する。大部分の生物において多数のｒＲ
ＮＡ遺伝子が存在し、高等生物の多くは核とミトコンド
リアのｒＲＮＡ遺伝子を含有する。植物およびその他の
ある種の生物は、核、ミトコンドリアおよびクロロプラ
ストのｒＲＮＡ遺伝子をもっている。議論を簡単にする
ために、以後は、これら３種のｒＲＮＡ遺伝子をすべ
て、ｒＲＮＡ遺伝子ということにする。
【０００６】あらゆる細胞には多数のリボソームが存在
する。通常の細胞では全ＲＮＡの約８５〜９０パーセン
トがｒＲＮＡである。大腸菌（E.coli）のような細菌は
細胞１個当り約１０4 個のリボソームを含み、哺乳類の
肝細胞は約５×１０6 個のリボソームを含む。各リボソ
ームは各々のｒＲＮＡサブユニット１個を含むから、細
菌細胞および哺乳類の細胞は、それぞれ１０4 および５
×１０6 個の各ｒＲＮＡサブユニットを含む。
【０００７】当業者には周知の方法である核酸ハイブリ
ダイゼーションが、従来から、関連のない配列が極度に
過剰に存在する場合においてさえ、極端に少量又は大量
の特定の核酸配列を特異的に検出するために用いられて
いる。従来の核酸ハイブリダイゼーションの利用例は、
例えば、細胞およびウイルスの分子遺伝学、細胞および
ウイルスの遺伝子発現、生命形態の遺伝子解析、生物お
よび核酸配列の進化および分類、疾病過程の分子メカニ
ズム、細胞および生物中におけるウイルスおよび細菌の
検出を始めとする特殊な目的のための診断法に関する文
献に認められる。
【０００８】最もよく特徴づけられ最も多く研究された
遺伝子および遺伝子産物はｒＲＮＡ遺伝子およびｒＲＮ
Ａであろう。そして従来、生物およびリボソーム遺伝子
配列の遺伝子解析、進化および分類に、ｒＲＮＡおよび
リボソーム遺伝子のハイブリダイゼーションが利用され
ている。遺伝子解析には、例えば、種々の生物における
ｒＲＮＡ遺伝子の数の決定、細胞内に存在する多数のｒ
ＲＮＡ遺伝子間の類似性の分析、細胞中におけるｒＲＮ
Ａ合成の速度および程度の決定並びにそれらをコントロ
ールする要素・因子の決定が含まれる。進化および分類
学的研究においては、近縁関係の生物および種々異なる
生物のｒＲＮＡ遺伝子塩基配列を比較する。
【０００９】ｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列が、種々様々の
生物において少なくとも部分的には類似しており、大腸
菌ｒＲＮＡ遺伝子のＤＮＡが植物、哺乳類、その他様々
な細菌等に由来するｒＲＮＡとよくハイブリダイズする
ことは公知である。このように他の種にハイブリダイズ
する大腸菌遺伝子の割合は、その生物の近縁性の程度に
よって変わる。ほとんどすべてのｒＲＮＡ遺伝子配列
は、非常に近い関係の細胞に由来するｒＲＮＡとハイブ
リダイズするが、遠い関係の細菌種に由来するｒＲＮＡ
とはそれほどよくハイブリダイズせず、まして哺乳類ｒ
ＲＮＡとはあまりハイブリダイズしない。
【００１０】ｒＲＮＡと同様、ｔＲＮＡはすべての細
胞、並びにある種のウイルスに存在する。ｔＲＮＡ遺伝
子は、原核細胞の染色体およびプラスミドＤＮＡに、そ
して核、ミトコンドリア、葉緑体のＤＮＡを含む真核細
胞のＤＮＡに存在する。単一の細胞において、１種類の
ｔＲＮＡに対して異なるｔＲＮＡ遺伝子が複数種存在す
ることがよくある。ミトコンドリア、核および葉緑体の
ｔＲＮＡ遺伝子は全く異なる。多くのウイルスゲノム
は、そのウイルスに特異的なｔＲＮＡの遺伝子を含む。
【００１１】ｔＲＮＡ分子は、遺伝子から直接生産され
る分子であり、細胞中で鋳型としてｔＲＮＡ遺伝子を用
いて合成される。ｔＲＮＡは、しばしばより大きいＲＮ
Ａ分子の一部分として合成され、その後、そのｔＲＮＡ
部分はこの前駆体分子から切り出される。合成後、ｔＲ
ＮＡ分子の塩基の一部分は細胞によって化学的に修飾さ
れる。典型的ｔＲＮＡ分子は、７５〜８５個の塩基を含
む。
【００１２】生存しているすべての細胞には多数のｔＲ
ＮＡ分子が存在する。普通は、細胞の全ＲＮＡの約１０
％がｔＲＮＡ分子から成り、典型的な細菌細胞はあらゆ
るタイプのｔＲＮＡ分子を約１．５×１０5 個含む。細
菌細胞中で各々異なる種類のｔＲＮＡが等しく発現され
るとすると、各細胞にはそれぞれ異なるｔＲＮＡ分子が
２５００個存在する。典型的な哺乳類肝細胞は約１０8
のｔＲＮＡ分子を含み、或いは、それぞれ異なる種類の
ｔＲＮＡのコピーを細胞１個につき平均して約１０6 個
含む。
【００１３】蛋白合成中、個々のアミノ酸は種々の特異
的ｔＲＮＡによって正しい順序で一列に整列させられ
る。その時、各アミノ酸は異なるｔＲＮＡ種によって導
かれる。いくつかのアミノ酸は２種類以上のｔＲＮＡに
よって導かれる。
【００１４】ある種のウイルスはゲノム中にｔＲＮＡ遺
伝子を含む。これらの遺伝子は、ウイルスゲノムが細胞
中で活性である時、ウイルスに特異的なｔＲＮＡを生産
する。これらのｔＲＮＡは、各感染細胞中で多数コピー
されて存在することもある。
【００１５】ｔＲＮＡ遺伝子およびｔＲＮＡと同様に、
先行技術は、生物およびｔＲＮＡ遺伝子配列の遺伝子解
析、進化および分類学的研究におけるｔＲＮＡおよびｔ
ＲＮＡ遺伝子のハイブリダイゼーションの利用を開示し
ている。遺伝子解析としては例えば、種々の生物におけ
るｔＲＮＡ遺伝子数の決定、細胞中に存在する多数のｔ
ＲＮＡ遺伝子間の類似性の決定、細胞中におけるｔＲＮ
Ａの合成の速度および程度並びにそれらをコントロール
する要素・因子の決定がある。進化および分類学的研究
では、近縁関係の生物および非常に異なる生物に由来す
るｔＲＮＡ遺伝子の塩基配列を比較する。
【００１６】またｔＲＮＡ遺伝子の塩基配列と同様に、
個々のｔＲＮＡ遺伝子の塩基配列は異なる生物において
も少くとも部分的に類似していることが知られている。
全ｔＲＮＡはこれと同じタイプの関係を示し、或る種の
生物に由来する全ｔＲＮＡは、遠い関係の生物のｔＲＮ
Ａ遺伝子とかなりの程度ハイブリダイズする。ラットミ
トコンドリアのロイシル−ｔＲＮＡは、ニワトリおよび
酵母のミトコンドリアＤＮＡと有意にハイブリダイズし
た（Biochemistry(1975)14，＃10，p.2037）。またｔＲ
ＮＡ遺伝子は、Enterobacteriaceae科の生物間で高度に
保存されていることも示されている。大腸菌から得た全
ｔＲＮＡ遺伝子は、異なる遺伝子をもつ種から単離した
ｔＲＮＡとよくハイブリダイズする（J.Bacteriology(1
977)129,＃３，p.1435−1439）。このように他の種にハ
イブリダイズする大腸菌ｔＲＮＡ／遺伝子の割合は、生
物の近縁性の程度によって変わる。大腸菌ｔＲＮＡ遺伝
子配列が近い関係に由来するｔＲＮＡとハイブリダイズ
する割合は大きいが、遠い関係の種に由来するｔＲＮＡ
とはずっと少なくしかハイブリダイズしない。
【００１７】進化の過程におけるｔＲＮＡ遺伝子配列の
保存程度は、ｒＲＮＡ遺伝子配列の保存程度ほど大きく
はない。それにもかかわらず、ｔＲＮＡ遺伝子配列は細
胞中に存在する膨大な数のＤＮＡ配列よりずっと高度に
保存されている。
【００１８】特定の生物群のｒＲＮＡ又はｔＲＮＡに特
異的なプローブを用いてその生物群に属する生物を検出
する際の感度および容易さは、各細胞中に存在するｒＲ
ＮＡ分子およびｔＲＮＡ分子の数が多いことによって著
しく高まっている。その上、細胞中に存在するＲＮＡ分
子は１本鎖であるため、ハイブリダイゼーションテスト
は著しく容易に行われる。したがって、細胞ＤＮＡを検
出するハイブリダイゼーションテストでは使用しなけれ
ばならないような変性段階は、標的分子がＲＮＡである
場合には不必要になる。ｒＲＮＡ又はｔＲＮＡ以外に、
他の種類の細胞核酸に特異的なプローブを用いても、核
酸ハイブリダイゼーションによって特定の群の生物又は
細胞を特異的に検出、同定および定量することができ
る。例えば、原核細胞中の他のＲＮＡ種には、メッセン
ジャーＲＮＡ（以後ｍＲＮＡ）、および種々の前駆体分
子の一部であるＲＮＡ配列が含まれる。例えば、ｒＲＮ
Ａは、大腸菌中で塩基約６０００個の長さの前駆体分子
として合成される。この前駆体分子はその後プロセッシ
ングを受けてｒＲＮＡサブユニット（塩基約４５００
個）となり、このサブユニットはリボソームに組み込ま
れ、余分のＲＮＡ配列（総計１５００塩基）は捨てられ
る。ｔＲＮＡ分子および５ｓｒＲＮＡも同様に合成さ
れ、プロセッシングを受ける。
【００１９】ウイルスに感染した原核細胞には、ウイル
ス特異的ｍＲＮＡも存在する。或る種の原核細胞ウイル
スのｍＲＮＡもまた、後に切り取られすてられる余分な
ＲＮＡ配列を含有する前駆体分子として合成される。
【００２０】原核細胞ｍＲＮＡおよびウイルスｍＲＮＡ
の多くは、１つの細胞につき数百倍まで存在する。一
方、ｒＲＮＡ又はｔＲＮＡ前駆体分子に存在する余分な
ＲＮＡ配列は、各細胞に数千個存在し得る。
【００２１】真核細胞も、前駆体ｍＲＮＡ分子、並びに
最終的なｒＲＮＡまたはｔＲＮＡ分子よりも大きい前駆
体ｒＲＮＡおよびｔＲＮＡ分子を含有する。原核細胞と
は対照的に、多くの合成されたばかりの真核細胞ｍＲＮ
Ａ分子は最終的なｍＲＮＡ分子よりずっと大きく、切り
取られてすてられる余分なＲＮＡ配列を含んでいる。真
核細胞中に存在する他のＲＮＡ種はヘテロ数ＲＮＡ（以
後ｈｎＲＮＡ）であり、これは、ｍＲＮＡ前駆体分子
（これは核から出て、蛋白合成がおこる細胞質へ向か
う）と、核から出ることのない大量のＲＮＡとを含む様
々なＲＮＡの集団である。これには２本鎖ＲＮＡも小量
含まれる。さらに、真核細胞の核は、１００〜２００塩
基の長さの核内低分子ＲＮＡ（以後ｓｎＲＮＡ）と呼ば
れる小さいＲＮＡ分子も含んでいる。
【００２２】異なるｍＲＮＡ分子の量、又は細胞あたり
のコピー数は著しく変る。これは、細胞あたり１〜２倍
だけ存在する複雑なｍＲＮＡ分子種から、細胞毎に数百
倍存在する中位に豊富なＲＮＡ分子種、そして、細胞あ
たり１０4 倍又はそれ以上存在し得るきわめて豊富なＲ
ＮＡ分子種まで変化する。また、ｈｎＲＮＡ中に存在す
るＲＮＡ配列の多くも、各細胞に非常に豊富に存在す
る。ｒＲＮＡ、ｔＲＮＡおよび多くのｍＲＮＡの前駆体
ＲＮＡ分子中に存在するＲＮＡ配列も、各細胞中で非常
に豊富である。個々のｓｎＲＮＡ配列は極めて豊富で、
細胞あたり１０4から１０6 倍存在し得る。
【００２３】真核細胞もウイルスに感染し、ウイルス特
異的ｍＲＮＡ、および多くの場合成熟ｍＲＮＡ分子には
ないＲＮＡ配列を含むウイルス特異的前駆体ｍＲＮＡ分
子を産出する。個々のウイルス特異的ｍＲＮＡおよび前
駆体ＲＮＡ分子の存在量は、複雑なもの（１細胞につき
１〜２コピー）から、極めて豊富なもの（１細胞につき
約１０4 コピー）まで変化する。
【００２４】従って本発明はまた、細胞中に存在する生
物並びにウイルスを特異的かつ鋭敏に検出し、同定し、
定量するための核酸プローブにも関係している。より詳
細に述べると、本発明の核酸プローブは、異なる大きさ
のカテゴリーの生物、真核細胞、ウイルス、そして場合
によっては、ｍＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ又はｒ
ＲＮＡ，ｔＲＮＡ，ｍＲＮＡ若しくはｈｎＲＮＡ分子中
に存在する余分なＲＮＡ分子を含むこれまでに知られて
いない生物を感度良く検出し、同定し、定量するのに有
用である。
【００２５】そこで本発明は、生きている生物または細
胞内ウイルスの存否、生物、細胞、細胞内ウイルス又は
原核生物若しくは真核生物の細胞群の遺伝子発現状態を
決定することが重要な問題となるあらゆる分野に広く応
用しうる。その種の領域は、医学的、獣医学および農業
上の診断並びに工業的および製薬時の品質管理を含む。
【００２６】本発明は、ｒＲＮＡおよびｔＲＮＡに相補
的であるのみならず、ＲＮＡの一種であるｍＲＮＡ若し
くはｈｎＲＮＡ若しくはｓｎＲＮＡの特定の配列、また
は、ｍＲＮＡ，ｔＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ又はｓｎＲＮＡの
前駆体分子にのみ存在していて成熟形態のｍＲＮＡ，ｒ
ＲＮＡ，ｔＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ若しくはｓｎＲＮＡ分子
には存在しないＲＮＡ配列（以後、前駆体特異的ＲＮＡ
配列又はｐｓＲＮＡと記す）の特定の配列にもの相補的
である特別に作製された核酸プローブを用いて、核酸ハ
イブリダイゼーション法によって、特定の生物、生物
群、真核細胞群又は細胞内ウイルスを検出し、同定し、
定量する方法に関するものである。
【００２７】本発明、およびその新規性、有用性および
非自明性は、以下に述べる当該分野に関する背景技術を
参照すれば明確に理解できるであろう。
【００２８】（１）ｍＲＮＡおよびｐｓＲＮＡはすべて
の生物および細胞に存在し、ｈｎＲＮＡおよびｓｎＲＮ
Ａは真核細胞にのみ存在する。ＤＮＡを含有する細胞小
器官（ミトコンドリア、葉緑体を含む）は、ｍＲＮＡ，
ｐｓＲＮＡ，ｒＲＮＡおよびｔＲＮＡも含有している。
【００２９】（２）典型的な細菌細胞は１０００個以上
の遺伝子を含み、その大部分が特異的な蛋白質をコード
している。哺乳類の細胞は１００００個以上の遺伝子を
含み、その各々がＲＮＡを生産する。その遺伝子も細胞
内で多数のＲＮＡコピーを生産する能力を有する。生産
された各々の特異的ＲＮＡ分子は、遺伝子の直接的な産
物である。
【００３０】（３）多数の異なるｍＲＮＡ配列が、各生
物又は細胞中に存在し得る。多細胞生物の個々の細胞
は、個々の細胞毎に又は異なる細胞群毎に異なるｍＲＮ
Ａ配列をもつかも知れない。
【００３１】真核生物の各細胞又は細胞群には、多くの
異なるｈｎＲＮＡ，ｐｓＲＮＡおよびｓｎＲＮＡ配列が
存在し得る。
【００３２】あるウイルスが感染した細胞の中には、種
々の異なるタイプのウイルス特異的ｍＲＮＡおよびｐｓ
ＲＮＡが存在することがある。
【００３３】（４）原核細胞中におけるあるｍＲＮＡの
コピー数（以後は単に存在量と記す）はゼロから数百ま
で変化する。原核生物又は原核細胞中のあるｐｓＲＮＡ
配列の存在量は、１０〜２０倍になり得る。
【００３４】真核細胞中のあるｍＲＮＡ分子の存在量
は、細胞あたり１〜２個から１０4 個以上までの範囲で
ある。
【００３５】真核細胞中のあるｈｎＲＮＡ配列の存在量
は、細胞あたり１〜２個から１０4個以上までの範囲で
ある。
【００３６】真核細胞中のあるｓｎＲＮＡ分子の存在量
は、細胞あたり１０4 から１０6 個まで変化する。
【００３７】真核細胞中のあるｐｓＲＮＡ配列の存在量
は、細胞あたり１〜２個から１０4個以上まで変化す
る。
【００３８】（５）多くの真核細胞では、種々のタイプ
のＲＮＡがＤＮＡの反復配列部分からつくられる。この
結果、配列が互いに似てはいるが同一ではない多くのＲ
ＮＡ分子の集団が生ずる。しかし、これらＲＮＡ分子の
一つに相補的なプローブは、類似した他のＲＮＡ分子す
べてとハイブリダイズすると思われる。
【００３９】（６）ウイルスおよび生物の種々のｍＲＮ
Ａ，ｐｓＲＮＡ，ｈｎＲＮＡおよびｓｎＲＮＡをコード
する遺伝子配列は、進化の過程で種々の程度に保存され
てきた。これら配列の大部分は、ｔＲＮＡ配列に比べれ
ば保存度がずっと少ない。しかし、その配列の若干は高
度に保存されている。例えば、ヒストンｍＲＮＡをコー
ドする遺伝子は進化の間非常に高度に保存され、ヒスト
ン遺伝子配列は非常に異なる生物においても良く類似し
ている。
【００４０】これらのＲＮＡの多くのＤＮＡ配列におけ
る保存性の欠如は、非常に近い関係の生物又はウイルス
同士を容易に見分けることのできるプローブの作成を可
能にする。
【００４１】種々のｍＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ
およびｐｓＲＮＡについて、非常に多数の研究が行われ
ている（B.Lewin, Gene Expression１巻および２巻参
照）。これらの研究は、原核生物および真核生物並びに
ウイルスにおける遺伝子の解析、調節および進化に関す
るものであり、これらＲＮＡのハイブリダイゼーション
を行っている。
【００４２】先行技術におけるハイブリダイゼーション
法 従来、二つの基本的な核酸ハイブリダイゼーション法が
開示されている。その一つ、溶液内ハイブリダイゼーシ
ョン法では、プローブも試料の核酸分子も両方共溶液中
に遊離している。もう一つの方法では試料は個体支持体
に固定され、プローブは溶液中に遊離している。これら
の方法は、両方共広く用いられ、文献にも十分に記載さ
れている。溶液内ハイブリダイゼーション法の一例を、
後述の実施例に示す。Thomas等の論文(Proc. Natl. Aca
d, Sci. USA(1980), 77, p.520)には、固定法の一例が
ある。
【００４３】核酸ハイブリダイゼーションテストの基本
成分は、次の如くである。
【００４４】（１）プローブ 検出するべき核酸配列（即ち標的配列）に相補的な標識
１本鎖核酸配列。ここで用いるように、標的配列はｒＲ
ＮＡ，ｔＲＮＡ又はその他のＲＮＡの全配列又は部分配
列である。
【００４５】プローブの長さは特定のテストに依り５個
〜数万塩基の間で変動し得る。プローブ分子の一部だけ
が、検出すべき核酸配列（以後は標的配列と記す）に相
補的であればよい。その上、プローブと標的配列との間
の相補性は完全である必要はない。ハイブリダイゼーシ
ョンは不完全な相補的分子間でもおこり、その場合、ハ
イブリダイズした領域内にある塩基の一部分は、正確に
相補的な塩基とは対にならない。プローブは、ＲＮＡか
又はＤＮＡから成ることができる。核酸プローブの形態
は、単一の極性をもつ標識１本鎖分子であっても、両方
の極性をもつ標識１本鎖分子であってもよい。プローブ
の形態は、その長さと同様、行うべきハイブリダイゼー
ションテストのタイプによって定まる。
【００４６】（２）試料 試料は、標的分子（即ち、対象とする生物）を含むかも
知れないし、含まないかも知れない。試料の形態は種々
様々であり、水又は血清のような液体でもよいし、埃
塵、土壌又は組織試料のように個体でもよい。試料核酸
は、プローブと標的分子のハイブリダイゼーションがほ
んの少しでもおこる前に、プローブと接触できるように
しておかなければならない。従って、生物のＲＮＡはハ
イブリダイゼーションがおこる前に細胞から遊離され、
正しい条件下に置かなければならない。先行技術の溶液
内ハイブリダイゼーション法では、試料ｒＲＮＡとプロ
ーブとのハイブリダイゼーションが可能となるために
は、ＲＮＡの精製が必要である。この意味するところ
は、試料中の標的配列を検出するべく溶液内法を用いる
ためには、試料の核酸をまず精製して、蛋白質、脂質そ
の他の細胞成分を除去した後ハイブリダイゼーション条
件下でプローブと接触させなければならないということ
である。試料核酸の精製には最低数時間はかかり、試料
の種類および量によっては、１日かかることもある。
【００４７】（３）ハイブリダイゼーション法 プローブと試料とは、核酸ハイブリダイゼーションが可
能になる条件下で混合しなければならない。即ち、正し
い濃度および温度条件下で、無機又は有機の塩の存在下
プローブと試料とを接触させる。プローブおよび試料核
酸は、プローブと試料核酸間の可能なハイブリダイゼー
ションがおこるのに十分長い時間、接触させなければな
らない。
【００４８】混液中のプローブ又は標的の濃度はハイブ
リダイゼーションがおこるのに必要な時間を決定する。
プローブ又は標的濃度が高ければ高い程、ハイブリダイ
ゼーションに必要なインキュベーション時間はみじかく
なる。
【００４９】プローブおよび試料核酸から成る核酸ハイ
ブリダイゼーションインキュベーション混液は、特定の
温度でハイブリダイゼーションがおきるのに十分長い時
間インキュベーションしなければならない。ハイブリダ
イゼーションが完了するのに必要な時間の長さは、ブロ
ーブ核酸の濃度、ブローブに相補的な試料核酸の濃度、
そして用いたハイブリダイゼーション条件によって特徴
づけられるハイブリダイゼーションの基本的速度によっ
て決まる。ハイブリダイゼーションの基本的速度は、イ
ンキュベーション混液中の塩の種類、その濃度そしてイ
ンキュベーション温度によって決まる。塩化ナトリウ
ム、燐酸ナトリウム、クエン酸ナトリウムがハイブリダ
イゼーション用に最もよく使われる塩であり、用いる塩
濃度は１Ｍを越えることはほとんどないが、時には１．
５〜２Ｍにもなることがある。上記の塩類は、同じ濃度
および温度で用いた場合、同等の核酸ハイブリダイゼー
ション速度を与える。カリウム、リチウム、ルビジウム
およびセシウム塩も同様である。Britten 等（1974） M
ethods in Enzymology, XXIX巻、Part E, Grossman &Mo
ldave編、Academic Press、ニューヨーク、 364ページ
および Wetmur およびDavidson（1968）、J.Molecular
Biology 31巻、 349ページには、一般に使用される塩で
達せられるハイブリダイゼーション標準的速度のデータ
が示されている。ＤＮＡとＲＮＡとのハイブリダイゼー
ション速度はＤＮＡとＤＮＡとのハイブリダイゼーショ
ン速度とは若干異なる。その変化の大きさは、１０倍以
上になることはほとんどないが、例えば過剰のＤＮＡ又
はＲＮＡが用いられるかどうか等によって変わる。Gala
u et al.（1977）Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74巻、
６号、2306ページを参照されたい。
【００５０】或る条件は、ＤＮＡ：ＤＮＡハイブリダイ
ゼーションの加速をおこす。フェノールと塩との乳濁液
は、その混合物を振盪した時、ＤＮＡハイブリダイゼー
ションを非常に速くする。その速度は、この系の標準Ｄ
ＮＡハイブリダイゼーション速度の数千倍も速くなる。
Kohne 等、Biochemistry（1977）16巻、532aページ参
照。中性および陰イオン性デキストランポリマーを、溶
液中で１本鎖ＤＮＡと混合した時にも、標準速度を５０
〜１００倍上まわるＤＮＡハイブリダイゼーション速度
促進が認められた。Wetmet, Biopolymers(1975）14巻、
2517ページ参照。これらのＤＮＡ加速条件のどれも、Ｄ
ＮＡ：ＲＮＡハイブリダイゼーションを加速するという
ことは報告されなかった。本発明者は、ＤＮＡ：ＲＮＡ
ハイブリダイゼーションの加速条件を記した公知文献を
知らない。
【００５１】（４）ハイブリダイゼーションアッセイ 標的分子とハイブリダイズしたプローブ分子の存在を検
出する方法が必要である。そのような方法は、標的分子
とハイブリダイズしたプローブが標的分子とハイブリダ
イズしなかったブローブから分離することができるとい
う事実に基づいている。溶液内ハイブリダイゼーション
混合物をアッセイする従来の方法は、まず精製して、次
にハイブリダイゼーションインキュベーション混合液中
でプローブと接触させた試料核酸に対して行われてい
る。
【００５２】溶液内ハイブリダイゼーション混合液中の
ハイブリダイズしたプローブの存在をアッセイする標準
法としてヒドロキシアパタイト（ＨＡ）が使用されてい
る。適当な条件下でＨＡは、ハイブリダイズしたＤＮＡ
プローブと選択的に結合するが、ハイブリダイズしてい
ないプローブとは結合しない。ハイブリダイズしたプロ
ーブをアッセイするには他の方法も利用できる。その中
には、Ｓ1 又クレアーゼ法がある。これは、ある種の特
異的酵素がもっているハイブリダイズしていないプロー
ブを分解して小さいサブユニットにしてしまう能力に依
存しており、その際、ハイブリダイズしているプローブ
はその酵素によって分解されず、大きいままである。分
解したプローブは、その後サイズ−分離法により、ハイ
ブリダイズしているプローブから分離することができ
る。溶液内でハイブリダイズした核酸をアッセイする種
々の方法が、Britten 等（1974）（上掲）によって記さ
れている。
【００５３】固定した試料核酸のハイブリダイゼーショ
ン法では、ハイブリダイゼーションアッセイが、ハイブ
リダイゼーション法に組み込まれている。これらの方法
は、試料核酸を不活性支持体上に固定し、それからこの
固定された核酸を溶液中に遊離している標識プローブ
と、ハイブリダイズさせるというものである。プローブ
と固定化試料核酸をハイブリダイゼーションさせると、
プローブが試料核酸に結合し、従って、プローブが不活
性支持体に結合する。ハイブリダイズしないプローブは
溶液中に遊離して残り、不活性支持体並びにハイブリダ
イズしたプローブから洗浄によって除去することができ
る。このような方法では、核酸ハイブリダイゼーション
用の試料調製のために最低数時間、そして洗浄に１〜２
時間かかり、大量のプローブを必要とする。この方法の
利点は、複数の試料を同じ不活性支持体に固定し、すべ
ての試料を一度にハイブリダイズさせて処理することが
できることである。このような固定化試料法の例は、An
alytical Biochemistry(1983）128 巻、 415ページ、お
よびJ. of Infectious Disease（1982） 145巻、６号、
863ページに出ている。
【００５４】ハイブリダイゼーションに利用できる核酸
の調製 溶液内核酸ハイブリダイゼーション法には、常に他の細
胞成分を除去して精製した核酸を用いる。細胞およびウ
イルス中の核酸は、他の細胞成分、一般には蛋白質とし
っかり結合しているのが普通であり、この形ではハイブ
リダイゼーションにつかえない。細胞又はウイルスを単
純に破壊して成分を放出しても、ハイブリダイゼーショ
ンに使える核酸は得られない。核酸は細胞から放出され
た後でも他の細胞又はウイルス成分と複合したままにな
っており、実際には、同じく放出され得るヌクレアーゼ
によって分解されることもある。その上、そのような混
合物に添加された標識プローブは、「粘着性」の細胞又
はウイルス成分と結合し、ハイブリダイゼーションには
役に立たなくなるかも知れないし、プローブもヌクレア
ーゼの作用によって分解するかも知れない。
【００５５】核酸精製のためには従来種々の方法があ
り、その中のいくつかはManiatis等（上掲）によって記
述されている。これらの方法はすべて時間がかかり（１
時間かかるものは、非常に速いと見なされる）、しか
も、いろいろな操作を必要とする。
【００５６】本発明者の知る限り、従来、核酸をハイブ
リダイゼーションに使えるようにするための何らかの予
備的精製段階を必要としないで溶液内核酸ハイブリダイ
ゼーションを実施する方法はない。
【００５７】固定化核酸ハイブリダイゼーション法は試
料核酸を不活性支持体に固定する段階と、この固定され
た核酸を溶液中に遊離している標識プローブとハイブリ
ダイズさせる段階とを含む。
【００５８】核酸を不活性支持体上に固定するプロセス
は、固定された核酸をハイブリダイゼーションに使える
ようにするのに十分効果的な精製段階となる。核酸以外
の細胞又はウイルス成分の大部分は不活性支持体とは結
合しない。また、結合したとしても、核酸が結合した場
所とは異なる場所に結合する。このような方法は、ハイ
ブリダイゼーション用の試料核酸をつくるのに最低数時
間を必要とする。この方法の利点は、複数の試料を不活
性支持体上に固定化し、ハイブリダイゼーションおよび
ハイブリダイゼーションアッセイ段階を通じてこれらを
全部一緒に処理できることである。ハイブリダイゼーシ
ョンアッセイでは、ハイブリダイゼーション混合物から
不活性支持体を取り出す。固定試料とハイブリダイズし
たプロセスは不活性支持体と共に残り、ハイブリダイズ
していないプローブは溶液中に遊離したまま残る。
【００５９】このように、生物の存在は非常に多くの先
行技術の方法のいずれかによって検出し得るが、これら
の方法には何らかの理由で完全に満足の行くものは一つ
もない。そのような方法には、以下に示すように、例え
ば、増殖法、光学的検出法、血清学的および免疫化学的
方法が含まれる。
【００６０】増殖テスト 多数の異なる増殖テストが存在し、それぞれ特定の生物
又は生物群の増殖に有用である。増殖テストは、１個の
生物を検出する潜在感度を有する。しかし実際には、多
くの生物は増殖させるのが困難であるかまたは不可能で
ある。これらのテストは時間がかかるのが普通であり、
完了するまでに１日から数ケ月もかかる。その上、大き
な生物群（例えば細菌全体）に属するいずれかの生物の
存在を検出するには、その群のすべての生物の増殖条件
がわかっていると仮定して、膨大な数のテストが必要で
ある。
【００６１】光学的検出法 検鏡法と鑑分染色法とを組み合わせると、非常に強力
な、多くの場合非常に迅速な検出法となる。この方法の
主要な問題は、大量の他生物の存在下における特定生物
の検出である。例えば、多くの種々のグラム陰性桿菌の
存在下で特定のグラム陰性桿菌を同定する場合である。
その上、大きな生物群（細菌全体の群のような）に属す
るすべての生物の存在を検出するためには、多数のテス
トを行わなければならない。
【００６２】血清学的および免疫化学的方法並びに生化
学的テスト これらのテストには、多数の異なる種類がある。これら
のテストは通常定性的であり、感度が非常に良いわけで
はなく、しばしば増殖段階を必要とする。大きな生物群
に属するすべての生物を検出するには、これらテストを
多数行う必要がある。
【００６３】Falkow等による米国特許第４３５８５３５
号明細書は、遺伝物質即ち遺伝子又はゲノムの検出法を
開示している。この米国特許の発明では、病原体を含ん
でいるのではないかと疑いをもたれる臨床試料又は単離
物を不活性の多孔性支持体（例えばニトロセルロースフ
ィルター）上に移し、細胞が局在化されるように処理す
る。その後、細胞ＤＮＡが放出されて支持体に結合する
ように細胞を処理する。その後の処理で、ゲノムの個々
のＤＮＡ鎖の分離がおきる。それから、そのＤＮＡ鎖を
ハイブリダイゼーション条件下で特徴的ポリヌクレオチ
ド配列に特異的な標識プローブと接触させる。病原体由
来の１本鎖ポリヌクレオチドとプローブとのハイブリダ
イゼーションは、標識によって検出される。
【００６４】この米国特許発明の遺伝子又はゲノムを検
出する方法は、前述の他の方法と同様、本発明による方
法のような特異性、感度、迅速性又は簡便性をもたな
い。米国特許に開示されたFalkow等の方法と、以下に開
示する本発明の方法との比較をまとめて次に示す。
【００６５】
【表１】
【００６６】特定起源に由来するｒＲＮＡ配列に相補的
な選択された標識核酸分子を用いる核酸ハイブリダイゼ
ーションを利用して、特定の生物群に特徴的なｒＲＮＡ
又はｔＲＮＡの存否を検出する本発明の方法を教示して
いる先行技術を本発明者は知らない。又、特定の起源に
由来するｒＲＮＡ又はｔＲＮＡサブ配列のすべてに相補
的な標識核酸分子を用いる核酸ハイブリダイゼーション
によって、特定起源に由来する一般にはｒＲＮＡ又はｔ
ＲＮＡの存否を検出する本発明の方法を開示する先行技
術も本発明者は知らない。
【００６７】又、特定起源に由来するｍＲＮＡ，ｈｎＲ
ＮＡ，ｓｎＲＮＡ又はｐｓＲＮＡのサブ配列（１ケ又は
複数）、配列（１ケ又は複数）又は配列若しくはサブ配
列の集団に相補的な選択された標識核酸分子を用いる核
酸ハイブリダイゼーションを利用して、ｍＲＮＡ，ｐｓ
ＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ又はｓｎＲＮＡの特定の配列又は種
々の特定配列の集団の存否を検出して特定の生物、生物
群、真核細胞群又は特定の細胞内ウイルス又は特定の細
胞内ウイルス群を検出、同定および定量するという本発
明の方法を教示する先行技術も本発明者は知らない。
【００６８】更に又、特定の生物群又はウイルス群に特
徴的な核酸の存否を検出する本発明の検出法、何らかの
目的で或る特定の生物群又はウイルス群の核酸を標識特
異的プローブとの溶液内核酸ハイブリダイゼーションに
使用できるように迅速に処理する本発明の方法、特定の
生物群の核酸を特異的相補的プローブとのハイブリダイ
ゼーションに使用可能にするための迅速な方法と、或る
生物又はウイルスの核酸とその生物又はウイルスの核酸
に相補的な標識プローブとの溶液内ハイブリダイゼーシ
ョンの速度を著しく加速することによってその生物の核
酸を検出する方法とを組み合わせた溶液内核酸ハイブリ
ダイゼーション法を利用する本発明の方法、特定の生物
群又はウイルス群の抗菌剤に対する感受性又は抗ウイル
ス剤に対する感受性を測定する本発明の方法、血液、尿
その他の体液若しくはその他の試料中における抗菌性或
いは抗ウイルス性物質の存在を検定する本発明の方法、
細胞の増殖状態を調べる方法、微生物又はウイルス感染
を検知する方法、又はハイブリダイゼーション混合物中
に、所定の条件下で前記混合物とヒドロキシアパタイト
とを接触させて生成した溶液を特殊な方法で処理するこ
とにより、ハイブリダイズしたプローブが存在するかど
うかを迅速に検定する本発明の方法を教示する先行技術
を本発明者は知らない。
【００６９】
【課題を解決するための手段】本発明は、生物学的試
料、およびその他の試料中の生物を検出し、同定し、定
量するための核酸プローブを提供する。より詳細に言え
ば、リボソームＲＮＡ（以後ｒＲＮＡ）、トランスファ
ーＲＮＡ（以後ｔＲＮＡ）又はその他のＲＮＡを含むあ
らゆる生物、そのような生物の大、小さまざまなカテゴ
リー又は分類学的群に属するあらゆる生物、そして、ｒ
ＲＮＡ又はｔＲＮＡを含むこれまで未知の生物を特異的
かつ鋭敏に検出し、定量するための核酸プローブに関す
るものである。この核酸プローブは、ｒＲＮＡ又はｔＲ
ＮＡを含む１個の生物でも、その存在を検出することが
できる。
【００７０】本発明は、ＲＮＡの一種であるｍＲＮＡ，
ｈｎＲＮＡ、若しくはｓｎＲＮＡの特異的配列、又はｍ
ＲＮＡ，ｒＲＮＡ，ｔＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ若しくはｓｎ
ＲＮＡの前駆体分子にのみ存在していて成熟したｍＲＮ
Ａ，ｔＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ若しくはｓｎＲＮＡの分子に
は存在しないＲＮＡ配列（以後は前駆体特異的ＲＮＡ配
列又はｐｓＲＮＡと呼ぶ）に相補的である特別に作製さ
れた核酸を用いて、特定の生物、生物群、真核細胞群又
は細胞内ウイルスを検出、同定そして定量する方法をも
提供する。
【００７１】また本発明は、（ａ）或る特定の生物の遺
伝子発現のパターンに関係なく働く１回のアッセイ操作
で多数の異なる生物のいずれかの一つの存在を特異的に
検出でき、（ｂ）対象とする群に属しない生物が存在し
ていても特定種類の生物のみを検出できるように試験法
を修正することができ、（ｃ）極めて高い検出感度を有
していて一個体の生物又は一個の細胞の存在を検出で
き、（ｄ）存在する生物又は細胞の数を定量することが
でき、かつ、（ｅ）増殖段階を必要としない方法および
手段をも提供する。
【００７２】本発明は、特定の生物群又はウイルス群の
抗菌剤又は抗ウイルス剤に対する感受性を検知するため
の手段、血液、尿、その他の体液、又は組織若しくはそ
の他の試料中の抗菌物質又は抗ウイルス性物質の存在を
アッセイするための手段、細胞の増殖状態を調べるため
の手段、微生物またはウイルス感染を検出するための手
段、ハイブリダイゼーション混合物中におけるハイブリ
ダイズしたプローブの存在を迅速にアッセイするための
手段を提供する。
【００７３】既に述べたように、ｒＲＮＡ塩基配列は非
常に広範囲の生物において部分的に類似している。二種
の生物の関係が近ければ近い程、全ｒＲＮＡにおいて二
つの種で類似する部分（割合）は大きくなる。いかなる
生物種のｒＲＮＡ配列も、短いｒＲＮＡサブ配列のひと
つながりと見なされ、その中の一つのサブ配列はほとん
どすべての生体で類似している。従って、ほとんどすべ
ての生体のｒＲＮＡはこのサブ配列を含むに違いない。
別のサブ配列はその生物が属する種のメンバーのｒＲＮ
Ａにおいてのみ類似している。その他のサブ配列は、そ
の種が属する目（もく）の生物に依存する。
【００７４】非常に異なる生物のｒＲＮＡ配列は少くと
も一部が類似しているから、非常に異なる生物で類似し
ているｒＲＮＡ配列を検出するプローブを用いる本発明
の方法は、試料中のこれら生物の１つ又はそれ以上の存
否を検知することができる。遠い関係の生物において類
似するｒＲＮＡ配列に相補的な標識核酸配列（１つ又は
複数）を、核酸ハイブリダイゼーションアッセイにおい
てそのようなプローブとして用いることができる。
【００７５】近い関係の生物のｒＲＮＡ配列は、遠い関
係の生物のそれよりもよく似ているから、特定の狭い生
物群において類似するｒＲＮＡ配列のみを検出するプロ
ーブを用いる本発明の方法は、試料中のこれら特定の生
物の１つ又はそれ以上の存否を多くの（近縁関係のな
い）生物の存在下においてさえ検知することができるこ
れらの群特異的プローブは、種々の異なる大きさのカテ
ゴリーに対して特異的なものとすることができる。或る
プローブは分類学上の特定の属に特異的であり得、又別
の或るプローブは特定の科又は他の属に特異的である。
【００７６】群特異的プローブは或る生物群のｒＲＮＡ
とハイブリダイズする能力をもつが、他のいかなる生物
群のｒＲＮＡともハイブリダイズしない。そのような群
特異的相補配列は、その特定の群に属さない多くの生物
に由来する大量のｒＲＮＡが存在していても、その特定
の群のいずれかの生物に由来するｒＲＮＡの存在を検出
する。
【００７７】試料中のｒＲＮＡ分子の総数は、ｒＲＮＡ
に相補的な標識配列（１つ又は複数）と、過剰プローブ
又は過剰試料ＲＮＡを利用する標準的な核酸ハイブリダ
イゼーション法とを用いて測定される。
【００７８】種々様々な生物の細胞のｒＲＮＡ含有量は
当業者には公知である。類似生物の非常に大きい群、例
えば細菌群では、細胞あたりのｒＲＮＡ量はざっと２〜
５倍に変化する。従って、もし試料中のｒＲＮＡ分子の
数がわかり、そのｒＲＮＡの起源となった生物が属する
広い意味での群が特定されれば、試料中に存在する細胞
数の正しい推定値が計算できる。もし、その群が特定さ
れていないならば、その試料を、各々が特定の広い生物
カテゴリーに特異的であるように選択した一連のｒＲＮ
Ａに相補的なプローブにハイブリダイズすることによっ
てその群（クラス）を決定することができる。
【００７９】現在、１回のアッセイ操作による検出およ
び定量範囲は、１０4 個のｒＲＮＡ分子（１個の細菌又
は１０-2個の哺乳類細胞）から約１０12個のｒＲＮＡ分
子（１０8 個の細菌又は１０6 個の哺乳類細胞）までで
あり、細胞数では１０8 個に及ぶ。一回のテストを、１
０3 個から１０10個の細菌までを定量するような方法で
行うこともできる。このテストは、このように極めてフ
レキシブルである。
【００８０】ｒＲＮＡに対するテストは特異的であり、
非常に少い生物の存在を検出することができるから、増
殖段階によって生物数を増幅する必要はない。
【００８１】ｒＲＮＡを含む生物がそのような生物を含
むかも知れない試料中に存在するかどうかを決める本発
明は、基本的に、次のように実施する。
【００８２】（ａ）試料又はその試料から単離した核酸
を、すべての生物のｒＲＮＡに相補的な標識核酸分子か
ら成るプローブと一緒にする。
【００８３】（ｂ）生成した混合物を、所定のハイブリ
ダイゼーション条件下で所定時間インキュベートする。
【００８４】（ｃ）その後、生成した混合物について、
プローブのハイブリダイゼーションをアッセイする。
【００８５】本発明により、ｒＲＮＡを含む特定のカテ
ゴリーに属する生物がそのような生物を含むかも知れな
い試料中に存在するかどうかを決定する場合には、次の
ように実施する。
【００８６】（ａ）試料又はその中の核酸を、特定のカ
テゴリーの生物のｒＲＮＡにのみ相補的であって関連の
ない生物由来のｒＲＮＡには相補的でない標識核酸分子
からなるプローブと接触させる。
【００８７】（ｂ）そのプローブと試料又はその単離核
酸とをインキュベートする。
【００８８】（ｃ）インキュベートした混合物につい
て、上記プローブのハイブリダイゼーションをアッセイ
する。
【００８９】本発明は又、被検試料中の生物の数を決定
するためにも用いられる。そのためには、上記２番目の
方法において、プローブハイブリダイゼーションがおこ
った場合、試料中のｒＲＮＡ量を特定の群に属する個々
の生物に通常存在するｒＲＮＡ分子の数と比較する。
【００９０】勿論、使用し得る本発明の範囲内の変更と
して、上述の２番目の方法における段階（ａ）の単一プ
ローブの代わりに、複数の異なるプローブを１組含む方
法も含まれる。そのような場合には、各別個のプローブ
は特定の生物群のｒＲＮＡのみに相補的な標識核酸分子
から成り、各プローブは異なる生物群に対して特異的で
ある。段階（ａ）の後、各プローブ試料混合物を所定の
ハイブリダイゼーション条件下で所定の時間インキュベ
ートし、その後、各混合物についてプローブのハイブリ
ダイゼーションのアッセイを行う。
【００９１】既述のように、ｔＲＮＡ塩基配列は、非常
に異なる生物において部分的に類似している。２種の生
物がより近い関係にあるならばある程、ｔＲＮＡ配列に
おける関連づけられる割合はより大きくなる。各々のｔ
ＲＮＡ遺伝子配列は、一連の短いｔＲＮＡサブ配列がつ
ながったものと考えられる。或るサブ配列は関連のある
生物を含む大きい群において類似している。又別のサブ
配列は、関連のある生物が属する中位の大きさの群にお
いて類似しており、第三のサブ配列は、関連のある生物
の小さい群において類似している。
【００９２】非常に異なる生物のｔＲＮＡ配列も少なく
とも一部は類似しているから、非常に異なる生物におい
て類似するｔＲＮＡ配列を検出するプローブを用いる場
合の本発明の方法は、試料中にこれら生物が１種類か又
はそれ以上存在するかどうかを検出することができる。
したがって、遠く離れた生物において類似のｔＲＮＡ配
列に相補的な標識核酸配列（１個又は複数）を、核酸ハ
イブリダイゼーションアッセイにおいてそのようなプロ
ーブとして用いることができる。
【００９３】そして、関係の近い生物のｔＲＮＡ配列
は、関係の遠い生物のそれよりもよく似ているから、特
定の狭い生物群において類似するｔＲＮＡ配列のみを検
出するプローブを使用する場合の本発明の方法では、試
料中のこれら特定生物の１つ又はそれ以上の存否を、関
連性のない多くの生物の存在下においてさえ検出するこ
とができる。そのような群特異的プローブは、種々の大
きさのカテゴリーに特異的である。例えば、あるプロー
ブは分類学上の特定の属に対して特異的であるかもしれ
ないが、別の或るものは特定の科又は別の属に対して特
異的である。
【００９４】群特異的プローブは、或る生物群のｔＲＮ
Ａとはハイブリダイズできるが別の生物群のｔＲＮＡと
はハイブリダイズできないという物質を有する。そのよ
うな群特異的相補配列は、その特異的生物群のいずれか
のメンバーのｔＲＮＡの存在を（その特異的群に属さな
い多くの生物に由来するｔＲＮＡが大量存在する場合で
さえ）検出する。
【００９５】ｔＲＮＡを含む特定のカテゴリーの生物が
そのような生物を含むかも知れない試料中に存在するか
どうかを決定することを目的とする本発明を実施するに
は（ａ）試料又はその中の核酸を、特定のカテゴリーの
生物のｔＲＮＡにのみ相補的であって関連のない生物に
由来するｔＲＮＡには相補的でない標識核酸分子から成
るプローブと接触させる、（ｂ）プローブと試料又はそ
の単離された核酸とをインキュベートし、（ｃ）インキ
ュベートした混合物について、上記プローブのハイブリ
ダイゼーションのアッセイを行う。
【００９６】本発明は又、被検試料中に存在する生物の
数を調べるために用いることもできる。それには、上記
の２番目の方法において、プローブハイブリダイゼーシ
ョンがおこった場合、アッセイの後、試料中のｔＲＮＡ
の量を、上記特定の群に属する個々の生物に通常存在す
るｔＲＮＡ分子の数と比較する。
【００９７】勿論、本発明の範囲内で使用し得る変更と
して、上記の２番目の方法における段階（ａ）の単一プ
ローブの代わりに、複数の異なるプローブを１組用いて
もよい。そのような場合、各別個のプローブは、特定の
生物群のｔＲＮＡのみに相補的である標識核酸分子から
成り、各プローブは異なる生物群に対して特異的であ
る。段階（ａ）の後、各プローブ試料混合物を所定のハ
イブリダイゼーション条件下で所定の時間インキュベー
トし、その後各混合物についてプローブのハイブリダイ
ゼーションアッセイを行う。
【００９８】
【発明の実施の形態】本発明の方法および手段は、本発
明に従うテスト方法を特徴づける次の記述によってより
明確に理解しうる。
【００９９】ＲＮＡの検出および定量のための核酸ハイ
ブリダイゼーションテスト手順 好ましい検出法は、（ａ）迅速で、（ｂ）容易に使用で
き、（ｃ）高度に鋭敏で、（ｄ）１回の実験室アッセイ
で検出および定量できるものでなければならない。
【０１００】Legionella属のメンバー由来のｒＲＮＡに
はハイブリダイズするが他の生物に由来するｒＲＮＡに
はハイブリダイズしない核酸プローブがあれば、核酸を
試料から精製する必要なく、例えばLegionella菌をたっ
た１回の実験室アッセイで検出並びに定量する迅速で使
用し易く鋭敏な溶液内検出テストが可能になる。
【０１０１】この溶液内ハイブリダイゼーションテスト
法の基礎的な面を、次に記述する。ここに記述する方法
はLegionella属のメンバーを検出するようになっている
が、その他の多くの生物群又はウイルスを検出する適当
なプローブを用いてこの同じテスト方法を使用できるこ
とは当然である。
【０１０２】段階１ 試料の調製 試料を、界面活性剤（洗浄剤）と蛋白分解酵素を含む溶
液を混ぜる。界面活性剤は細菌を溶解して細胞成分を可
溶化するのに役立ち、酵素は（その中には、ＲＮＡ及び
ＤＮＡを分解する酵素も含まれる）細胞蛋白質を破壊す
る。界面活性剤−酵素混合物の組成は、使用する界面活
性剤および蛋白分解酵素の種類並びに検査する試料の量
および種類によって定まる。使用される界面活性剤とし
ては、ラウリル硫酸ナトリウム、サルコシル、ツヴィッ
タージェント(Zwittergent) があり、使用される酸素と
してはプロティナーゼＫおよびプロナーゼがある。非常
に種々様々の酵素、カオトロピック・エージェント(Cha
otropic agents) のような溶解補助剤を用いることがで
きる。プローブは、試料に加える界面活性剤−酵素混合
物中に入っていてもよい。
【０１０３】酵素−界面活性剤は、試料中のLegionella
菌に非常に速かに作用する。大抵の場合は、ｒＲＮＡを
プローブとの溶液内ハイブリダイゼーションが可能にな
るようにするために混合物をインキュベートする必要は
ない。特定の場合には、短時間のインキュベーションが
必要である。
【０１０４】場合によっては、蛋白分解酵素を含ませる
必要がなく、界面活性剤のみでもｒＲＮＡとプローブと
の溶液内ハイブリダイゼーションが可能になる。
【０１０５】このアプローチにより、試料ｒＲＮＡを、
溶液内アッセイにおいてプローブとハイブリダイズし得
る状態にするための非常に迅速かつ容易な方法が得られ
る。その上、このアプローチによれば、試料ｒＲＮＡを
精製せずに溶液中でハイブリダイゼーションをおこすこ
とができる。この方法の鍵は、プローブがLegionellaｒ
ＲＮＡを検出するということである。ｒＲＮＡは細胞中
で１本鎖であり、リボソーム蛋白質がｒＲＮＡから除去
されればすぐにプローブとハイブリダイズする。これに
対して、ｒＲＮＡ ＤＮＡ（即ちｒＲＮＡの遺伝子）又
はその他のＤＮＡ配列を直接検出するためには、プロー
ブがＤＮＡとハイブリダイズする前に、２本鎖のｒＲＮ
Ａ遺伝子を分離させて２本の１本鎖にする操作を行わな
ければならない。
【０１０６】本発明者の知る限りでは、一般の生物又は
特定の群の生物の存否を検出して定量する目的でｒＲＮ
Ａ，ｔＲＮＡ、一般のＲＮＡ又はＤＮＡをプローブとの
溶液内ハイブリダイゼーションが可能になるようにする
ために上記のような酵素−界面活性剤−試料法を用いた
先行技術はない。
【０１０７】段階２ ハイブリダイゼーションインキュ
ベーション混合物の調製 試料−酵素−界面活性剤混合物に、プローブとハイブリ
ダイゼーションをおこすのに十分な塩とを加え、生成し
た混合物を適当な温度でインキュベートする。塩濃度と
ハイブリダイゼーションインキュベーション温度の組合
せによって規準(criterion）が決定される。インキュベ
ーション条件の規準は、プローブの選択の際に用いた基
準と等しくなければならない。さもないとプローブの特
異性が変化し得る。
【０１０８】インキュベーション混合物は、ハイブリダ
イゼーションがおこるのに十分な時間インキュベートし
なければならない。塩の種類および濃度により、達し得
るハイブリダイゼーション速度が決まる。例えば、或る
種の塩は適切な濃度で使用すると、非常に速いハイブリ
ダイゼーションをおこす。そのような塩の一例は燐酸ナ
トリウムである。Legionella特異的プローブを、３．０
Ｍ燐酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ＝６．８）（以後ＰＢと
記す）中で精製LegionellaｒＲＮＡと混ぜ７６℃でイン
キュベートすると、０．７２Ｍ ＮａＣｌ、７６℃とい
う標準条件（これら二つの条件は規準としては等しい）
下でインキュベートした同量のLegionellaプローブおよ
びｒＲＮＡの場合より１００倍以上速くハイブリダイズ
する。このハイブリダイゼーション速度を上昇させるた
めにその他の塩を用いることもできる。この中には、大
部分のナトリウム塩、アンモニウム塩、ルビジウム塩、
カリウム塩、セシウム塩、リチウム塩が含まれる。
【０１０９】３ＭのＰＢ中７６℃で、Legionella特異的
プローブと、ＰＢ−酵素−界面活性剤−試料−プローブ
混合物中に存在するLegionellaｒＲＮＡとのハイブリダ
イゼーション速度も、標準インキュベーション条件で見
られるハイブリダイゼーション速度を１００倍以上上ま
わる。標準塩濃度条件下でも、プローブと酵素−界面活
性剤−試料混合物中のｒＲＮＡとの間でハイブリダイゼ
ーションがおこる。
【０１１０】本発明の特徴の一つは、前にも指摘したよ
うに、生物のｒＲＮＡを検出することにより、非常に少
数の生物を検出することができるということである。こ
れは、各細胞中に多数のｒＲＮＡ分子が存在するために
可能なのである。Legionella様生物では、個々の細菌細
胞中に、５０００〜１００００個のｒＲＮＡ分子があ
る。核酸ハイブリダイゼーションで到達し得る検出感度
を決定する主な要因の一つは、達成することができるハ
イブリダイゼーション速度である。ｒＲＮＡの検出と前
述の加速インキュベーション条件の使用とを組み合わせ
ると、非常に少量の試料およびプローブの使用で非常に
短い時間内に細菌およびその他の生物を検出する極端に
高い感度を得ることができる。この実例を後に記す。
【０１１１】本発明者の知る限りでは、或る生物又は生
物群が存在するかどうかを、その生物のｒＲＮＡ，ｔＲ
ＮＡ、その他のＲＮＡ又はＤＮＡを検出することによっ
て決定するための溶液内ハイブリダイゼーションテスト
において上記のような加速系を使用した先行技術はな
い。又本発明者の知る限り、特定の生物又はウイルス又
は生物群又はウイルス群が存在するかどうかを、その特
定の生物又は生物群のｒＲＮＡ，ｔＲＮＡ又はその他の
ＲＮＡ又はＤＮＡを検出することによって決定するため
に、上記のような加速系と酵素−界面活性剤−試料−プ
ローブ混合物とを組み合わせて使用した先行技術もな
い。
【０１１２】段階３ インキュベーション混合物におけ
るプローブと標的ｒＲＮＡとのハイブリダイゼーション
アッセイ 試料が標的ｒＲＮＡ分子（従って標的生物）を含んでい
るというシグナルは、インキュベーション混合物中にハ
イブリダイズしたプローブが存在することである。そこ
で、インキュベーションの終了後に、インキュベーショ
ン混合物中に、ハイブリダイズしたプローブがあるかど
うかアッセイしなければならない。そのようなアッセイ
は、簡単に行えて迅速であるのが好ましい。このアッセ
イのために、インキュベーション混合物をヒドロキシア
パタイト（ＨＡ）を用いて処理する。適切な条件下で、
ＨＡはｒＲＮＡと速かにかつ完全に結合するが、ハイブ
リダイズしてないプローブ分子とは結合しない。プロー
ブ分子が標的ｒＲＮＡとハイブリダイズしているなら
ば、プローブはｒＲＮＡに物理的に結合しているのであ
るから、プローブもＨＡと結合する。
【０１１３】当該生物のｒＲＮＡの検出によって、生物
を検出することが本発明の特徴である。ＨＡが数秒でｒ
ＲＮＡ又は一般のＲＮＡに結合でき、プローブとは全然
結合しないという性質を利用することによって、フレキ
シビリティーが大きく、数分間しかかからず、しかも多
数の試料をうまく処理できるハイブリダイゼーション法
が開発できる。その上、試料−界面活性剤−酵素−プロ
ーブインキュベーション混合物は、適当な緩衝液で希釈
し、直接処理してハイブリダイズしたプローブの存在を
アッセイすることができる。
【０１１４】ＨＡは、プローブのハイブリダイゼーショ
ンをアッセイするために用いる物質として当業者に知ら
れている。ここに記載したアッセイ法は、先行技術によ
るＨＡの使用（Brennet et al., Analytical Biochem
（1969）28、477)に比べて遥かに有利であり、室温で行
うことができ、約１５℃から約９０℃までの温度範囲で
有効に機能する。必要な段階数は少なく、各遠沈段階で
加熱する必要がない。また、Zwittergent(Calbiochem，
サンディエゴ、カリフォルニア）およびラウリル硫酸ナ
トリウムのような界面活性剤の存在下でも不存在下でも
行うことができる。さらに、先行技術の方法より３〜５
倍も速く、１回のアッセイが３〜５分で行える。必要な
ＨＡは約５分の１ですむ。アッセイの種類によって、界
面活性剤の濃度は０〜１０％の範囲で、燐酸塩濃度は
０．１Ｍ〜０．２Ｍの範囲で変え得る。またこの方法
は、多数の試料の処理にも容易に適用できる。
【０１１５】ＨＡ以外の方法も、プローブのハイブリダ
イゼーションアッセイに使用できる。これらには、Ｓ1
酵素法のような酵素アッセイ、サイズ分離法、そして種
々の試料固定化法が含まれる。ここに言うプローブは、
ハイブリダイゼーションおよびハイブリダイゼーション
アッセイを行うこれらの方法およびその他の方法と共に
効果的に用いることができる。
【０１１６】ｒＲＮＡに対する群特異的プローブの調製
方法 群特異的プローブをつくるには、種々のアプローチをと
ることができる。これらのアプローチは、１つを除いて
すべて、群特異的プローブ配列を同定して精製するため
に種々の核酸ハイブリダイゼーション法を使用する。
【０１１７】方法Ａ ｒＲＮＡに対する群特異的プローブをつくる最も有用な
方法は、組換えＤＮＡ技術を用いることである。この方
法に含まれる段階は次の通りである。（標準ＤＮＡ組換
え技術の詳細は、Molecular Cloning, A Laboratory,
T.Maniatis 等、Cold Spring Harbor Publication（198
2）に記されている。） （１）対象とする特定の生物から核酸を単離する。標準
的単離法を用いる。
【０１１８】（２）この単離したＤＮＡを用いて、この
生物のｒＲＮＡ遺伝子をクローン化し、Maniatis等（上
掲）が示した標準的ＤＮＡ組換え技術を用いてリボソー
ム遺伝子ＤＮＡを大量につくる。
【０１１９】（３）制限酵素を用いてｒＲＮＡ遺伝子Ｄ
ＮＡを短い断片にし、ついで、Maniatis等（上掲）が示
した標準的ＤＮＡ組換え法を用いてこれら短いＤＮＡ断
片のライブラリーをつくる。
【０１２０】（４）ライブラリーをスクリーニングし
て、対象とする特定の生物のみならず、その生物と分類
学上の同じ群に属する他の生物（例えば、対象とする特
定の生物が、ある「種」に属するものである場合には、
同じ「種」に属し「株」の異なる他の生物）のｒＲＮＡ
にのみハイブリダイズし、その生物の群には属していな
いいかなる生物のｒＲＮＡにもハイブリダイズしない、
短いｒＲＮＡ遺伝子配列を含むクローンを同定する。こ
のクローンを単離する。このクローンは、対象とする生
物が属する特定の種のｒＲＮＡにのみ相補的な種特異的
ＤＮＡ配列を含むライブラリーを更にスクリーンし、次
のクローンを同定し、単離する。
【０１２１】（ａ）対象とする生物が属する分類学上の
属の生物に由来するｒＲＮＡにのみハイブリダイズする
ｒＲＮＡに相補的なＤＮＡ配列を含むクローン。
【０１２２】（ｂ）対象とする生物が属する分類学上の
目の生物に由来するｒＲＮＡにのみハイブリダイズする
ｒＲＮＡに相補的なＤＮＡ配列を含むクローン。
【０１２３】（ｃ）対象とする生物が属する分類学上の
科の生物に由来するｒＲＮＡにのみハイブリダイズする
ｒＲＮＡに相補的なＤＮＡ配列を含むクローン。
【０１２４】（ｄ）対象とする生物が属する分類学上の
網の生物に由来するｒＲＮＡにのみハイブリダイズする
ｒＲＮＡに相補的なＤＮＡ配列を含むクローン。
【０１２５】（ｅ）できるだけ多くの異なる生体に由来
するｒＲＮＡにハイブリダイズするｒＲＮＡに相補的な
ＤＮＡ配列を含むクローン。
【０１２６】上述のクローン選択の図式は、多数の可能
な図式の一つに過ぎない。
【０１２７】Maniatis等（前出）が論じた標準的クロー
ニングおよびスクリーニング法が用いられる。
【０１２８】（５）（ａ）各クローンのＤＮＡを大量に
生産する。各クローンのＤＮＡから、ｒＲＮＡに相補的
なＤＮＡ配列だけを単離して精製する。このためには、
例えばManiatis等の方法のような多くの既存法の中から
一方法を選んで行う。
【０１２９】（ｂ）場合によっては、クローン中に存在
する全ＤＮＡがプローブとして有用である。このような
場合には、クローニングベクターから単離した全ＤＮＡ
を用いる。
【０１３０】（ｃ）別のある場合には、ｒＲＮＡに相補
的なＤＮＡ配列を含むクローニングベクターの１本鎖Ｄ
ＮＡが、プローブとして用いられる。そのような場合に
は、Maniatis等が記載したような多くの方法の中の一つ
を用いて、この鎖を単離して精製しなければならない。
【０１３１】（６）（５ａ）（５ｂ）（５ｃ）で得られ
たプローブＤＮＡには、アッセイ混合物中で同定できる
ように、何らかの方法で標識をつけなければならない。
多くの種類のマーカーを用いることができるが、最もよ
く使われるマーカーは、放射能である。その他のものと
して、蛍光、酵素、ビオチンがある。ＤＮＡにマーカー
をつけるためには、Maniatis等（前出）が示したような
標準法が用いられる （７）クローニングベクターにある群特異的ｒＲＮＡ遺
伝子配列は、２本鎖の状態で存在する。これらの鎖の１
本はｒＲＮＡに相補的であってそれとハイブリダイスす
る。もう１本の鎖は、ｒＲＮＡにはハイブリダイズしな
いが、ｒＲＮＡに相補的な標識群特異的配列を作成する
のに用いることができる。このためには、ＤＮＡ又はＲ
ＮＡポリメラーゼおよび標識された核酸前駆体分子を利
用する。この酵素はその標識前駆体を利用し、鋳型とし
てそのＤＮＡ鎖を用いてＤＮＡ又はＲＮＡを合成する。
新たに合成された標識分子はｒＲＮＡに相補的であり、
群特異的プローブとして用いることができる。鋳型ＤＮ
Ａは種々の確立された手段によって除去することがで
き、１本鎖の標識核酸のみが残る。これは、Maniatiset
al.(前出）およびTaylor等の論文Biochemica & Biophy
s. Acta（1976） 442，p.324 に記載されている。
【０１３２】方法Ｂ いくつかの酵素は、全ｒＲＮＡ配列に相補的な標識ＤＮ
Ａを合成するための鋳型として任意の起源のｒＲＮＡを
利用することができる。特定種類の生物のｒＲＮＡのみ
に相補的な群特異的配列は、ハイブリダイゼーション選
択プロセスによって単離することができる。合成した標
識ＤＮＡのうち、特定の種類の生物のメンバー由来のｒ
ＲＮＡのみにハイブリダイズするものは、標準的ハイブ
リダイゼーション法によって単離できる。このプロセス
の一例を後に記す。このようなプローブは、方法Ａに記
述したようにクローン化するのに十分な量で作成するこ
とができる。このクローンの塩基配列は標準化によって
決定でき、その配列は、標準法を使用する化学的合成に
よってプローブを調製するために用いることができる。
【０１３３】方法Ｃ 種々異なる生物から得たｒＲＮＡのヌクレオチド配列が
すでに決定されている。特定の生物群に類似している群
特異的配列は、これら既知の配列を比較することによっ
て同定できる。その後、この群特異的ｒＲＮＡ配列に相
補的な配列を、標準法によって化学合成して標識するこ
とができる。
【０１３４】ｔＲＮＡに相補的な特異的プローブの調製 ｔＲＮＡに対する特異的プローブを作るためにはいろい
ろなアプローチをとることができ、ｒＲＮＡに対するプ
ローブ作成のための上記基本的アプローチを、ｔＲＮＡ
に対するプローブ調製のために用いることができる。個
々のｔＲＮＡ種および遺伝子を単離するためには標準法
が利用でき、これは当業者には公知である。プローブの
形態はＤＮＡでもＲＮＡでもよく、プローブの長さは１
２〜数千塩基にできる。プローブは、それが特異的であ
る核酸（即ち標的核酸）に完全に相補的である必要はな
い。また、プローブの全長が標的分子に相補的である必
要はない。
【０１３５】ｍＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ又はｐ
ｓＲＮＡに相補的な特異的プローブの調製 ｒＲＮＡに相補的な特異的プローブを作成するのに用い
た同じ基本的アプローチを用いて特定種類のｍＲＮＡ，
ｈｎＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ又はｐｓＲＮＡに対して特異的
なプローブを調製することができる。それぞれの種類の
ＲＮＡを単離し、それを更に分画する方法は当業者には
公知である。ここでも、プローブの形態はＤＮＡでもＲ
ＮＡでもよく、プローブの長さは、約１２〜数千塩基の
範囲で変えられる。また、プローブの相補的領域は標的
核酸に完全に相補的である必要はなく、プローブの全長
が標的分子に相補的である必要はない。
【０１３６】試料核酸の単離 先行技術の標準法を用いて、アッセイすべき試料から核
酸を単離することができる。核酸の単離および精製の標
準法の一つを後述の実施例で示す。これは、Maniatis e
t al.(前出）も論じられている。
【０１３７】精製段階を行うことなく核酸を溶液内ハイ
ブリダイゼーションに使用可能にする新しい技法を次に
述べる。
【０１３８】核酸ハイブリダイゼーションの実施 標識プローブの適当量を試料核酸と混ぜる。この混合物
を特定の塩濃度に調節する（普通はＮａＣｌが使われ
る）。混合物全体を一定温度で一定時間インキュベート
する。この時間の終わりに、混合物をハイブリダイゼー
ションアッセイにより分析する。核酸ハイブリダイゼー
ションをおこす塩、溶媒、核酸濃度、容量、温度の多数
の異なる組み合わせが存在する。好ましい組み合わせ
は、そのアッセイの実施状況による。しかし重要なこと
は、ハイブリダイゼーション段階の基準（「定義」参
照）が群プローブを同定し選択する時に用いた基準と一
致することである。もし、ハイブリダイゼーション段階
の基準が異なるならば、プローブの特異性は変るかも知
れない。Britten とKohne 「Repeated Sequences in Ｄ
ＮＡ」Science(1968) 161, p.529、WetmurとDavidson
「Kinetics of Renaturationof ＤＮＡ」J. Mol. Biol.
(1968) 31, p.349 、Kohne とBritten 「Hydroxyapatit
e Techniques for Nucleic Acid Reassociation」、Har
perとRow 、「核酸研究法」(1971) Cantoni & Davies
編、２巻、 500ページ参照。
【０１３９】ハイブリダイゼーション混合物中のプロー
ブおよび試料核酸の量に関して、２つの異なるアプロー
チが用いられる。その一つ、過剰プローブ法では、試料
核酸（この場合ＲＮＡ）より多量のプローブが存在す
る。もう一つの方法、過剰ＲＮＡ法では、プローブより
多量のｒＲＮＡが存在する。過剰プローブ法は、未知の
試料中のＲＮＡの存在を検出するすぐれた方法であり、
以下の述べるようないくつかの利点を有する。この二つ
のアプローチの詳細については後記表２および表３を参
照されたい。過剰プローブ法を用いると、もし適切なＲ
ＮＡプローブが使えるならば、検出および定量は一回の
実験室アッセイで行うことができる。ハイブリダイゼー
ションが完了したなら、ハイブリダイズしたプローブの
量が試料中に存在するＲＮＡ量の直接の尺度となる。
【０１４０】プローブが少しでもハイブリダイズすると
いう事実はＲＮＡが存在することを示しており、ハイブ
リダイズしたプローブの量は試料中にあるＲＮＡの量を
示す。
【０１４１】ハイブリダイゼーションが或る既知の時間
内に完了したことを確かめることは、ＲＮＡの定量のた
めに重要である。これは、ハイブリダイゼーションが所
定の時間内に確実に完了するように十分な量のプローブ
を加えることによって、容易に達成される。プローブを
多く加えれは加える程、ハイブリダイゼーションが速く
完了する。このように、過剰プローブ法は、ハイブリダ
イゼーションを確実に完了させ、これがいつおこったか
を知る手段を提供する。
【０１４２】これに対して、過剰ｒＲＮＡ法を用いる
と、一回の実験室アッセイではＲＮＡの検出および定量
が行えない。過剰ＲＮＡ法では、いつテストポイントを
とるべきかを予想することができない。少量のＲＮＡを
含む未知の試料は、多量のＲＮＡを含む試料よりずっと
ゆっくりハイブリダイズする。
【０１４３】ハイブリダイゼーションアッセイ 特定の群のＲＮＡが試料中に存在するというシグナル
は、２本鎖標識プローブの存在である。文献中でよく論
じられている多くの種々の方法がハイブリダイゼーショ
ン混合物中の２本鎖型の標識プローブの存在をアッセイ
するのに用いられる。方法の選択は、ハイブリダイゼー
ション段階のために選ばれた方法、ハイブリダイゼーシ
ョン混合物の組成、プローブ上のマーカーの種類および
その他の要因に依存する。一般に用いられる方法の一つ
を後述する。ここでも又、WetmurとDavidson、Kohne と
Britten 、およびThomas等の文献（前出）も参照された
い。又、Flavell 等の論文「Eur. J.Biochem. 」(1974)
47, p.535)、Maxwell 等の論文「Nucleic Acids Resear
ch」 (1978), 5, 2033ページも参照されたい。
【０１４４】しかし、すべての場合に重要なことは、ハ
イブリダイゼーション反応のために用いたと同じ基準
か、ハイブリダイゼーションがおこり得ない基準のどち
らかでアッセイを行うことである。
【０１４５】核酸ハイブリダイゼーションによる核酸配
列の定量 試料中にある核酸の量は、当業者によく知られている方
法を用いて核酸ハイブリダイゼーションによるいくつか
の方法で測定することができる。２つの方法を、ｒＲＮ
Ａの定量例により後に開示する。
【０１４６】本発明の方法は、ＲＮＡ又はＤＮＡを含む
生物の存否を決定することが必要な場合に広く一般に用
いられ、略痰、血清、その他の動物体液および組織のよ
うな生物学的試料や、工業的または製剤的試料および水
にも適用できるものと理解されたい。このアプローチの
詳細はＲＮＡを定量するのかＤＮＡを定量するのかによ
って変るが、一般的アプローチはＤＮＡ、ＲＮＡ両方共
同じである。
【０１４７】
【表２】
【０１４８】
【表３】
【０１４９】特定の起源から得たｒＲＮＡ配列の特定の
部分のみに相補的な選択プローブを使用してｒＲＮＡを
検出することと、特定の起源から得たｒＲＮＡ配列の全
体に相補的な非選定プローブを使用してｒＲＮＡを検出
することとの対比 ｒＲＮＡを検出し、定量し、同定するためにｒＲＮＡ配
列の特定の部分のみに相補的な特別に選択したプローブ
を使用する場合の本発明は、ｒＲＮＡを検出するために
全ｒＲＮＡ配列に相補的な（特別には）選択されていな
いプローブ又は配列を使用する場合の本発明と比べて、
重要な能力と利点を有する。過剰ｒＲＮＡ及び過剰プロ
ーブを用いるハイブリダイゼーション法で、選択された
プローブを使用することの利点を下記に示す。配列全体
を利用するプローブを使用することの問題も示した。
【０１５０】過剰プローブハイブリダイゼーション及び
過剰ｒＲＮＡハイブリダイゼーションに関して、配列全
体に対応するプローブを用いる場合と比較して、選択し
たプローブを用いることの利点を下記に示す。
【０１５１】Ａ 過剰プローブハイブリダイゼーション
法 １ ｒＲＮＡの全配列に対応するプローブについての問
題点 （１）過剰プローブ法によって試料中のｒＲＮＡを検出
することはできる。しかし、存在するｒＲＮＡの型を決
定する手段はない。従って、このプローブは、過剰プロ
ーブハイブリダイゼーション法によって未知試料中の特
定ｒＲＮＡの存在を特異的に検出し、定量するためには
使えない。
【０１５２】（２）上述のように、このプローブで試料
中の特定のｒＲＮＡの存在を検出し定量するためには、
過剰プローブ法は使えない。この目的のためには、この
プローブは過剰ｒＲＮＡ法で使用しなければならない。
【０１５３】過剰ｒＲＮＡ法は過剰プローブ法よりずっ
と多くの時間と作業を必要とし、複雑である。
【０１５４】２ 選択されたプローブを使用することの
利点 （１）選択されたプローブ過剰ハイブリダイゼーション
法によって未知試料中の特定ｒＲＮＡの存在を敏感かつ
特異的に検出し、定量するために使用することができ
る。これは他の生物のｒＲＮＡが存在していても一回の
実験室アッセイで行いうる。
【０１５５】（２）選択されたプローブを使用すると、
未知試料中の特定のｒＲＮＡの存在を検出して定量する
ために、過剰プローブ法を使用することができる。この
ことは仕事を非常に単純化する。
【０１５６】Ｂ 過剰ｒＲＮＡハイブリダイゼーション
法 １ 全配列に対応するプローブについての問題点 （１）このプローブを用いて未知試料中のｒＲＮＡを検
出することはできる。しかし、多くの場合、存在するｒ
ＲＮＡの型又は量を決定するための手段はない。従っ
て、このプローブは、未知試料中の特定のｒＲＮＡの存
在を特異的に検出し、定量するためには使えない場合が
多い。
【０１５７】（２）特定のｒＲＮＡを検出する感度は他
の生物のｒＲＮＡが存在することにより限定される場合
が多い。
【０１５８】（３）特定のｒＲＮＡの存在を検出し、定
量することが可能な多くの場合、この方法では多くの作
業が必要となる。
【０１５９】２ 選択されたプローブを使用することの
利点 （１）選択されたプローブは、全ての状況で未知試料中
の特定ｒＲＮＡの存在を特異的に検出し、定量するため
に用いることができる。これは他の生物のｒＲＮＡが多
量に存在していても実施できる。
【０１６０】（２）選択されたプローブを用いると、他
の生物のｒＲＮＡが存在していても、特定のｒＲＮＡの
検出感度は下がらない。
【０１６１】（３）選択されたプローブを用いると特定
ｒＲＮＡの検出と定量がずっと容易になる。
【０１６２】
【実施例】実施例による具体的説明 試料が特定の群のメンバーの菌を含むかどうかを決定す
るために、本発明は使用できる。下記に具体的に示す本
発明方法は、特定の群のメンバーでない多数の生物が存
在しても試料中の特定の群の細菌の存在を検出し、定量
化し得る方法である。
【０１６３】実施例に記載されているように、本発明の
方法は、先ず特定の基準においては、関心のある特定群
のどのメンバーからのｒＲＮＡともハイブリダイズ化す
るが他の生物から得られたｒＲＮＡとはハイブリダイズ
化しないｒＲＮＡに対する群特異的プローブを調製する
ことである。核酸ハイブリダイゼーション試験にそのよ
うなプローブを使用すると、他の生物が多量に存在して
も特定群のメンバーを検出できる。
【０１６４】下記に本発明の実施例を示す。各々の例
は、特定群の生物のＲＮＡとのみハイブリダイズする標
識核酸プローブを調製することを含む。
【０１６５】各々のプローブを調製する方法の基礎的な
概略は次の通りである。
【０１６６】１ 関心のある群のｒＲＮＡに相補的な標
識核酸を調製する。
【０１６７】２ このＤＮＡをプローブが特異的な生物
群に進化的に非常に近接した生物群から得たｒＲＮＡと
ハイブリダイズさせ、特異的な基準下では最も近接した
関連群の生物から得たｒＲＮＡとはハイブリダイズしな
い標識核酸フラクションを選択する。このフラクション
は関心ある生物群のｒＲＮＡに特異的であり、多くの近
接した群又は他の生物から得たｒＲＮＡとはハイブリダ
イズしない。
【０１６８】［実施例１］いかなる細菌のｒＲＮＡともハイブリダイズするプロー
ブの調製 代表的な状況では、組織培養用プレート上１回に１０6
〜１０7 個の哺乳動物の細胞が成育する。細菌、特にMo
llicutes網のメンバーは組織培養細胞を汚染する。他の
多くの細菌と異なり、Mollicutes網の細菌は抗生物質に
よっては容易に除去されず、組織培養上の困難な汚染菌
である。組織培養細胞中に多くのMollicutes種も検出さ
れてきた。組織培養用プレートにこれらの生物が１個で
も存在すれば、抗生物質が存在しても、増殖し、細胞あ
たり数百個の生物が作られる可能性がある。そのような
生物は細胞の活性を変化させる能力があり、その際、多
くの試験結果と組織培養の市場性に影響する。
【０１６９】これらの生物を検出するための先行技術
は、増殖試験、鑑別染色試験及び免疫学的アッセイのよ
うな基本的に定性的な試験を含んでいる。
【０１７０】増殖試験の感受性はきわめて高いが、３〜
６週間かかる。増殖試験は、多くの生物の増殖が困難で
あるか又は不可能であるという別の不便さもある。
【０１７１】染色法の実際の検出上の感度は知られてい
ないが、細胞あたり数個以上の生物が存在しているはず
であることが知られている。
【０１７２】免疫学的試験は定性的であり、特定の種に
対する抗体を用いる。免疫学的試験は迅速に行うことが
できるが感度は高くない。さらに、全てのタイプのMoll
icutesを検出するためには、多くの異なる抗体が必要で
ある。
【０１７３】下記に示される本発明方法の実施はMollic
utesを含む全ての細菌群の菌の存在を検出し、定量し、
組織培養中Mollicutesの存在を検出し、通常は細菌を含
まない組織中の細菌の存在を検出し、多数の哺乳動物の
細胞が存在しても細菌を検出するために用いる試験であ
る。
【０１７４】実施例に示すように、本発明方法は先ず第
１に何らかの細胞由来ｒＲＮＡに相補的であるが、哺乳
類細胞のｒＲＮＡには相補的でないｒＲＮＡに対する特
異的プローブを作ることを含む。核酸ハイブリダイゼー
ションテストにおけるそのようなプローブの使用は、多
量の哺乳類細胞の存在下でもあらゆるタイプの細菌の検
出を可能にする。
【０１７５】次に本発明のこの実施例の詳細をあげる。
【０１７６】哺乳類細胞および細菌細胞からのｒＲＮＡ
の分離 哺乳類細胞を、０．３Ｍ ＮａＣｌ、０．０２Ｍトリス
ｐＨ＝７．４に再懸濁する。サルコシルを最終濃度１％
になるように加えて、細胞を溶解する。
【０１７７】溶解後直ちに、フェノール／クロロホルム
１／１混液を同量加え、生成した混液を２分間烈しく振
盪する。その後、混液を遠沈し（８０００×ｇ、１０分
間）水相と有機相とを分離する。水相を回収し、これに
又別のフェノール／クロロホルムの同量を加える。
【０１７８】上のように振盪、遠沈した後、水相を再び
回収する。これに２倍量の９５％エタノールを加え、こ
の混合物を−２０℃で２時間放置して、核酸の沈澱を容
易ならしめる。
【０１７９】それから、混合物で遠沈し（８０００×
ｇ、１０分間）、沈降物をチューブの底に沈澱させる。
液は除去する。ペレットとなった核酸を水に再溶解す
る。この溶液に、その後、０．２Ｍ ＮａＣｌ、５×１
０-3Ｍ ＭｇＣｌ2 、５×１０-3Ｍ ＣａＣｌ2 、０．
０２Ｍトリス（ｐＨ＝７．４）５０マイクログラム／ｍ
ｌのデオキシリボヌクレアーゼＩを加え、３７℃で１時
間インキュベートする。
【０１８０】それから、上のように、等量のフェノール
／クロロホルムを加えて振盪する。上記のように遠沈し
水相を回収する。エタノールは、上記のようにＲＮＡを
沈澱させる。上記のように沈降物を遠沈し、ペレットＲ
ＮＡを水に再溶解する。
【０１８１】この溶液を２Ｍ ＬｉＣｌにする。そして
４℃で１０〜２０時間放置し、高分子量ＲＮＡの沈澱を
容易にする。これからこの溶液に遠沈し、沈澱物を回収
し、水に再溶解する。
【０１８２】このＲＮＡ標本は、９５％以上のｒＲＮＡ
を含む。
【０１８３】細菌のｒＲＮＡは、下記の事項を除けば、
同様にして分離される。界面活性剤のみでは細菌が溶解
されない場合、その他の手段を用いる。これには一般的
には、細菌がサルコシルによる溶解を受けやすくするた
めに細菌を酵素（リゾチーム）で前処理すること等であ
る。細菌溶解後は、分離操作は前述の通りである。
【０１８４】精製ｒＲＮＡを、−７０℃で貯える。
【０１８５】モレキュート網生物のｒＲＮＡに相補的な
放射性ＤＮＡ（ 3Ｈ−ｃＤＮＡ）の調製 Mycoplasma hominis（M.hominis 種）（分類学的には、
モレキュート網のメンバーである）に由来するｒＲＮＡ
を鋳型として用いて、マイコプラズマ・ホミニスｒＲＮ
Ａに相補的な放射性ｃＤＮＡを合成する。
【０１８６】このｃＤＮＡは、鋳型としてｒＲＮＡを利
用し、ｒＲＮＡの相補的な（ｃＤＮＡ）、 2Ｈ−ｃＤＮ
Ａをつくることができる逆転写酵素の性質を利用するこ
とによって生産される。
【０１８７】逆転写酵素反応混合物は、次のものを含
む。
【０１８８】５０ｍＭトリス・ＨＣｌ（ｐＨ＝８．
３）、８ｍＭ ＭｇＣｌ2 、０．４ｍＭジチオトレイト
ール、５０ｍＭ ＫＣｌ、０．１ｍＭ 3Ｈ−デオキシチ
ミジン三燐酸（５０curies／mmole)０．２ｍＭデオキシ
アデノシン三燐酸、０．２ｍＭデオキシシチジン三燐
酸、０．２ｍＭデオキシグアノシン三燐酸、Ｅ．coliＤ
ＮＡからつくられたオリゴデオキシリボヌクレオタイド
プライマ２００ミリグラム／ｍｌ、５０マイクログラム
／ｍｌのマイコプラズマ・ホミニスｒＲＮＡ、５０単位
／ｍｌＡＭＶの逆転写酵素。
【０１８９】この混合物を、４０℃で３０分間インキュ
ベートする。それから、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤ
ＴＡ）（ｐＨ＝７．３）、ドデシル硫酸ナトリウム（Ｓ
ＤＳ）、ＮａＣｌおよびグリコーゲンを最終濃度がそれ
ぞれ１０-2Ｍ、１％、０．３Ｍ、１００μｇ／ｍｌにな
るように加える。
【０１９０】その溶液を、フェノール／クロロホルム
（１：１）の１容量と混合し、２分間烈しく振盪し、そ
れから遠沈して（８０００×ｇ、１０分間）、水相を回
収する。
【０１９１】２．５容量の９５％エタノールを加えて、
核酸を沈澱させる。遠沈により沈澱物を回収し、Ｈ2 Ｏ
に再溶解する。この溶液は、鋳型ｒＲＮＡと新たに合成
された 3Ｈ−ｃＤＮＡとを含む。
【０１９２】この溶液をそれから０．３Ｍ ＮａＯＨに
して、５０℃で４５分間インキュベートする。水冷し、
０．３Ｍ ＨＣｌで中和する。それに２．５容量の９５
％エタノールを加えて、残る核酸を沈澱させ、生成した
沈澱を水に再溶解する。
【０１９３】この溶液を、０．３Ｍ ＮａＣｌ、０．１
％サルコシルで平衡状態にしたSephadexＧ−１００カラ
ムを通過させ、出てきた液を回収した。この液をエタノ
ールで沈澱させ、生成した沈澱物を少量の水に溶解す
る。
【０１９４】ここで述べたプロセスは、鋳型ｒＲＮＡと
3Ｈ−ｃＤＮＡ製造に由来するその他の前駆物質を除去
するためのものである。
【０１９５】それから 3Ｈ−ｃＤＮＡをマイコプラズマ
・ホミニスｒＲＮＡにハイブリダイズする。これは、そ
れが本当にこのｒＲＮＡに相補的であることを確認する
ためである。
【０１９６】このハイブリダイゼーション混合物は、１
ｍｌにつき０．０５マイクログラム１本鎖 3Ｈ−ｃＤＮ
Ａ、２０マイクログラムのマイコプラズマ・ホミニスｒ
ＲＮＡそして、０．４８Ｍ ＰＢ（燐酸緩衝液）から成
る。この混合物を６５℃で０．２時間インキュベート
し、これから０．１４Ｍ ＰＢに希釈して０．１４ＭＰ
Ｂで平衡状態にしたヒドロキシアパタイト（ＨＡ）カラ
ムに６５℃で通過させる。
【０１９７】ｒＲＮＡにハイブリダイズした 3Ｈ−ｃＤ
ＮＡはヒドロキシアパタイト（ＨＡ）カラムに吸着し、
非ハイブリダイズ 3Ｈ−ｃＤＮＡはカラムを通過する。
その後ＨＡカラムを０．３Ｍ ＰＢで溶出して、ハイブ
リダイズ 3Ｈ−ｃＤＮＡを回収する。
【０１９８】このフラクションをその後透析してＰＢを
除去し、エタノールで沈澱させて核酸を濃縮し、遠沈
し、核酸を水に再溶解する。この溶液を上記のようにＮ
ａＯＨで処理し、ｒＲＮＡを取り除く。
【０１９９】中和し、グリコーゲン担体を添加し、エタ
ノール沈澱による濃縮後、 3Ｈ−ｃＤＮＡを少量の水に
再溶解する。この溶解は、マイコプラズマ・ホミニスｒ
ＲＮＡに相補的な 3Ｈ−ｃＤＮＡのみを含む。
【０２００】マイコプラズマ・ホミニスには相補的で、
ヒトｒＲＮＡには相補的でない 3Ｈ−ｃＤＮＡの選択 精製 3Ｈ−ｃＤＮＡを、これを大過剰のヒトｒＲＮＡ
と、ハイブリダイズすることにより更に分画化する。こ
のハイブリダイゼーション混合物は、０．４８ＭＰＢ１
ｍｌあたり、０．０５マイクログラム 3Ｈ−ｃＤＮＡと
４０マイクログラムヒトｒＲＮＡとから成る。
【０２０１】これを、６８℃で１時間インキュベート
し、０．１４Ｍ ＰＢに希釈し５５℃、０．１４Ｍ Ｐ
Ｂで、平衡状態にしたＨＡを通す。ＨＡに吸着しないフ
ラクション（全体の約５０％）（即ちヒトｒＲＮＡにハ
イブリダイズしない 3Ｈ−ｃＤＮＡ）を収集する。
【０２０２】このフラクションを同じ条件で新しいＨＡ
カラムを再び通過させる。ここでも、吸着しないフラク
ションを集める。このフラクションを透析してＰＢを除
き、エタノールで沈澱させて核酸を濃縮し、水に再溶解
する。この溶液を既述のようにＮａＯＨで処理し、ヒト
ｒＲＮＡを除去する。
【０２０３】中和し、グリコーゲン担体を添加し、エタ
ノール沈澱による濃縮後、 3Ｈ−ｃＤＮＡを少量の水に
再溶解する。この 3Ｈ−ｃＤＮＡ標本は、マイコプラズ
マ・ホミニスｒＲＮＡには相補的であるが、ヒトｒＲＮ
Ａには相補的でない。
【０２０４】選択 3Ｈ−ｃＤＮＡと、異なる起源からの
ｒＲＮＡとのハイブリダイゼーション 選択 3Ｈ−ｃＤＮＡプローブの調製は、核酸ハイブリダ
イゼーションにより細菌ｒＲＮＡの存在を検出すること
によって哺乳類組織培養細胞および哺乳類組織にあるモ
リキュート網のメンバーを含む細菌を検出することを可
能にする。
【０２０５】そのようなテストに必要な要件は、選択プ
ローブが細菌を含まない哺乳類細胞からのｒＲＮＡにハ
イブリダイズしてはいけないということである。この要
求が合うことは表４Ｖに示されている。
【０２０６】表４のIIおよびIII は、プローブがモリキ
ュート網のすべてのメンバーを検出し、あらゆるタイプ
の細菌を検出する筈であることを示している。
【０２０７】例えば、LegionellaおよびE.coliおよびBa
cillus subtilis は非常に異なる細胞のタイプの代表で
ある。そしてプローブは、これらタイプの各々からのｒ
ＲＮＡとハイブリダイズする。
【０２０８】進化論的考案は、このプローブがほとんど
全ての既知又は未知の細菌に由来するｒＲＮＡにハイブ
リダイズすることを示す。これは、進化を通じてｒＲＮ
Ａヌクレオチド配列が非常によく保存されているためで
ある。
【０２０９】この選択プローブは、組織培養細胞中に細
菌の特異的な網、モリキュートの存在を検出するために
役に立つ。大部分の組織培養細胞では増殖培地に抗生物
質が存在し、これがモリキュート網のメンバー以外のほ
とんどすべての細菌の増殖を阻止する。
【０２１０】従って、組織培養標本の汚染はモリキュー
ト網のメンバーによることはほとんど確実である。
【０２１１】重要な点は、存在する生物の数を測定する
ことができることである。
【０２１２】先行技術の方法では、大抵の場合、細胞が
汚染されていることがわかると、細胞系およびその産物
は捨てられる。これら微生物を定量できれば、その汚染
による影響のひどさについて、判断を下すことができ
る。
【０２１３】汚染は、非常に軽度で、１０００個につき
たった１個の微生物であるかも知れない。この汚染レベ
ルならば細胞にほとんど影響を与えないであろうし、多
くの場合細胞産物を捨てる必要はない。それらがもっと
ひどく汚染されるまでは、貴重な細胞ラインをとってお
くような決定を下しうるかも知れない。何らかの種類の
細胞汚染の重大性を判断するためには、定量的考察が重
要である。
【０２１４】
【表４】
【０２１５】過剰ｒＲＮＡハイブリダイゼーションは、
６８℃、０．４８Ｍ ＰＢで行われる。
【０２１６】ハイブリダイゼーションアッセイは、６７
℃で、０．１４Ｍ ＰＢ、０．００５％ドデシル硫酸ナ
トリウム中で行われる。ハイブリダイズさせることは、
核ｒＲＮＡ又はミトコンドリアｒＲＮＡと 3Ｈ−ｃＤＮ
Ａの反応を完了させるだけで十分である。哺乳類および
鳥の場合には、非細菌性ｒＲＮＡのＣｏｔ値は最低２×
１０3 に達する。１〜２％の非特異的シグナルは、上記
のハイブリダイゼーション値からさし引いた。
【０２１７】核酸ハイブリダイゼーションによるｒＲＮ
Ａの定量 選択 3Ｈ−ｃＤＮＡプローブと、組織から分離したＲＮ
Ａとのハイブリダイゼーションの動態を既知の標準混合
物のそれと比較することにより、試料中にある細菌ｒＲ
ＮＡの量を測定できる。
【０２１８】これは、哺乳類細胞の大過剰が存在してい
ても可能である。なぜならば、プローブはこのｒＲＮＡ
とはハイブリダイズしないからである（表４Ｖ参照）。
【０２１９】動態を測定するためには、ハイブリダイゼ
ーション混合物は、１０-5〜１０-4マイクログラムのＨ
−ｃＤＮＡと１〜１０3 マイクログラムの精製ＲＮＡ試
料とを、０．０１〜０．１ｍｌの０．４８Ｍ ＰＢ中に
含む。
【０２２０】この混合物を６８℃でインキュベートし、
一部をとり、０．１４Ｍ ＰＢに希釈して反応開始後の
種々の時間にハイブリダイゼーションアッセイを行う。
ハイブリダイゼーションアッセイは、既述のようにヒド
ロキシアパタイトを用いて行う。
【０２２１】得られた結果を既知量の細菌ｒＲＮＡを含
む標準ＲＮＡと反応したプローブのハイブリダイゼーシ
ョンと比較する。
【０２２２】これらの標準は、哺乳類細胞ＲＮＡと既知
量の特異的細菌ｒＲＮＡとの混合物である。
【０２２３】組織培養細胞中のMollicutes網のメンバー
の検出および定量 表５は、選択プローブと３種類の組織培養細胞試料から
分離した（既述のようにして）ＲＮＡとをハイブリダイ
ズすることによって得られたデータである。
【０２２４】細胞系ナンバー３のみが検出可能程度に汚
染され、反応の動態は約５×１０7個の細菌細胞が組織
培養細胞に存在することを示している。
【０２２５】
【表５】
【０２２６】過剰ｒＲＮＡハイブリダイゼーションを、
６８℃で０．４８Ｍ ＰＢ、０．０１〜０．０４ｍｌ容
量で行う。各混合物は、２×１０5 マイクログラムの 3
Ｈ−ｃＤＮＡプローブと５０〜２００マイクログラムの
試料ＲＮＡとを含む。
【０２２７】次の実施例は、多数の血球の存在下で非常
に少数のたった１個のトリパノソーマの検出に用いられ
る、本発明の方法のもう一つの実施例である。
【０２２８】原虫類Trypanosoma の或るメンバーは、人
に対して病原性を有し、東アフリカ睡眠症、西アフリカ
睡眠症、南アメリカトリパノソーマ症を含む病気を発生
させるから、トリパノソーマの検出は重要である。
【０２２９】これらの生物は大きく、生活環の段階によ
って変る特徴的な形を示す。先行技術の方法は、これら
生物をヒトに検出する場合、主として血清学的方法、鑑
別染色法を検鏡検査、動物接種法と組み合わせて利用し
ている。
【０２３０】血清診断法は感度および特異性が変化し、
解釈がむずかしいかも知れない。検鏡法が最も多く用い
られるが、大量の血球の存在下で少数のトリパノソーマ
を見出すのは、しばしば困難である。動物接種は時間と
費用のかかる方法である。
【０２３１】次の例で示す発明の実施例は、多量の血球
と共存する場合でも１個のトリパノソーマを比較的容易
に検出できる方法である。
【０２３２】［実施例２］トリパノソーマｒＲＮＡに相補的な放射性ＤＮＡの調製 Trypanosoma brucei ｒＲＮＡに相補的な放射性ＤＮＡ
（ 3Ｈ−ｃＤＮＡ）を前に詳述したM. hominis 3Ｈ−ｃ
ＤＮＡと同じ方法で調製する。但し、Trypanosoma b.ｒ
ＲＮＡを鋳型として用いる。
【０２３３】トリパノソーマｒＲＮＡに相補的である
が、ヒトｒＲＮＡには相補的でないトリパノソーマ 3Ｈ
−ｃＤＮＡの選択 これはTrypanosoma b. 3Ｈ−ｃＤＮＡをヒトｒＲＮＡに
ハイブリダイズさせることを除けば、M. hominisについ
て既述したものと同じ方法で行われる。
【０２３４】ヒト組織、又は体液中のトリパノソーマの
検出および定量に、選択トリパノソーマ 3Ｈ−ｃＤＮＡ
の使用 選択 3Ｈ−ｃＤＮＡプローブの調製により、トリパノソ
ーマｒＲＮＡの存在の検出によるヒト試料中のトリパノ
ソーマの検出および定量が可能になる。
【０２３５】そのようなテストに必要な要件は選択プロ
ーブは、トリパノソーマを含まないヒト細胞に由来する
ｒＲＮＡにはハイブリダイズしてはいけないということ
である。表６はこの要求が満たされることを示す。
【０２３６】
【表６】
【０２３７】過剰ｒＲＮＡハイブリダイゼーションを６
５℃で０．４８Ｍ ＰＢ中で行う。反応は２４時間続
き、そのハイブリダイゼーション時間はヒトｒＲＮＡ又
はミトコンドリアｒＲＮＡと細菌ｒＲＮＡとの反応が確
実に完了するために十分である。
【０２３８】ハイブリダイゼーションアッセイは、ヒド
ロキシアパタイトで７２℃、０．１４Ｍ ＰＢ、０．０
０５％ドデシル硫酸ナトリウム中で行われる。
【０２３９】本発明者がつくったある例証的プローブ
は、Legionella属のメンバーに対してのみ特異的であ
る。そのプローブは、Legionella属の種々のメンバーか
らの核酸と５０％以上ハイブリダイズし、哺乳類、酵母
および種々の広く異なる細菌株からの核酸とは明白には
ハイブダイズしない（表７）。
【０２４０】プローブはLegionella pnuemophilaおよび
Legionella micdadei のようなほとんど又は全然集団Ｄ
ＮＡ近縁度を示さないLegionella種ともよくハイブリダ
イズする。
【０２４１】その他の既知のLegionella種は表７で用い
られており、表８に列挙したこのプローブで検出するこ
とができる。
【０２４２】既知のLegionella種（２３種類もの種）の
すべてを調べた。すべては、表７で用いられたプローブ
によって特異的に検出することができた。
【０２４３】このプローブの特異性は、関連性のない細
菌又は哺乳類細胞の多量の存在下でさえもLegionella種
の検出および定量を可能にする。例えば、Legionella p
nuemophilaに感染したハムスターの肝細胞について、特
異的プローブと十分に確立された核酸ハイブリダイゼー
ション操作法を用いて、Legionella菌の存在並びに数を
検出した。
【０２４４】その肝は、微生物学的増殖試験により、あ
らかじめ検査した。それは、感染した肝臓１ｇあたり約
１０7 個のLegionellaがあることを示した。
【０２４５】核酸ハイブリダイゼーションアッセイで
は、肝１ｇにつき約１〜２×１０8 個のLegionella菌が
示された。この結果は、増殖試験におけるプレーティン
グ効率は約５〜１０％であることを示唆する。
【０２４６】特異的プローブは、多量の哺乳類細胞の存
在下においてさえLegionella菌の高度に鋭敏かつ迅速な
検出を可能にする。
【０２４７】１日もかからないアッセイで、そのプロー
ブは０．４ｍｇ肝（約２×１０5 個の細胞）と混ぜ合わ
せた約４００個のLegionella菌の存在を容易に検出し
た。
【０２４８】
【表７】
【０２４９】過剰ｒＲＮＡハイブリダイゼーションを７
６℃、０．４７Ｍ ＰＢで行う。ハイブリダイゼーショ
ンアッセイは、７２℃で０．１４Ｍ ＰＢ、０．００５
％ドデシル硫酸ナトリウム中で行う。
【０２５０】ハイブリダイゼーション時間は 3Ｈ−ｃＤ
ＮＡと核ｒＲＮＡ又はミトコンドリアｒＲＮＡとの反応
を確実に完了させるに十分である。哺乳類および鳥の場
合には、非細菌性ｒＲＮＡのＣｏｔ値は最低２×１０3
に達する。
【０２５１】
【表８】
【０２５２】［実施例３］Legionella属のメンバーのｒＲＮＡにのみ、ハイブリダ
イズするプローブの調製 Legionella ｒＲＮＡに相補的な放射性ＤＮＡの調製 Legionella pneumophila種に由来するｒＲＮＡを鋳型と
して用いて、Legionella pneumophila ｒＲＮＡに相補
的な標識（放射性）ｃＤＮＡを合成する。
【０２５３】このｃＤＮＡの調製は逆転写酵素がｒＲＮ
Ａを鋳型として利用でき、ｒＲＮＡに相補的な 3Ｈ−ｃ
ＤＮＡを調製できる能力を利用したものである。
【０２５４】これは、Legionella pneumophila由来のｒ
ＲＮＡを鋳型として用いるということを除けば、Mycopl
asma hominis 3Ｈ−ｃＤＮＡの生産に関して記載したと
同じ方法で行われる。
【０２５５】Legionella属のメンバーからのｒＲＮＡに
のみ、ハイブリダイズする放射性プローブの選択 精製 3Ｈ−ｃＤＮＡをE.coli、Acholeplasma laidlawai
i およびProvidentiastuartiiに由来する大過剰のｒＲ
ＮＡとハイブダイズさせることにより、分画化する。
【０２５６】ハイブリダイゼーション混合物は、０．４
８Ｍ ＰＢ１ｍｌ中に０．０５〜１マイクログラム 3Ｈ
−ｃＤＮＡと２０マイクログラムずつの細菌ｒＲＮＡを
含んで成る。この混合物を、７６℃で１時間インキュベ
ートし、その混合物を０．１４Ｍ ＰＢに希釈して７２
℃、０．１４Ｍ ＰＢで平衡状態にしたＨＡカラムを通
す。
【０２５７】ＨＡに吸着しない 3Ｈ−ｃＤＮＡ（即ち、
そのｒＲＮＡにハイブリダイズしない 3Ｈ−ｃＤＮＡ）
のフラクションを集める。このフラクションを上記と同
じ条件でＨＡを通し、再び吸着されなかったフラクショ
ンを集める。
【０２５８】この 3Ｈ−ｃＤＮＡを濃縮し、再び上述の
ように細菌ｒＲＮＡとハイブリダイズさせる。吸着しな
いフラクションを集めて濃縮し、さらに上記のように、
３回目として細菌ｒＲＮＡとハイブリダイズさせ、上の
ようにＨＡで分画化する。
【０２５９】吸着しないフラクションを集める。塩基で
処理して、存在するｒＲＮＡを取り出し水中に濃縮す
る。この 3Ｈ−ｃＤＮＡ標本は、Legionella属のいかな
るメンバーにもハイブリダイズするが、他の起源のｒＲ
ＮＡにはハイブリダイズしない。
【０２６０】Legionella特異的 3Ｈ−ｃＤＮＡプローブ
と、異なる起源のｒＲＮＡ、およびｒＲＮＡ遺伝子との
ハイブリダイゼーション選択プローブを用いれば、核酸
ハイブリダイゼーションによってLegionellaｒＲＮＡの
存在を検出することにより、試料中のLegionella属のメ
ンバーを検出することができる。
【０２６１】そのようなテストに必要な要件は、Legion
ella特異的プローブが他の起源に由来するｒＲＮＡにハ
イブリダイズしてはいけないということである。
【０２６２】核酸のハイブリダイゼーション過剰ｒＲＮ
Ａ法によるLegionella ｒＲＮＡの定量 試料中にある細菌ｒＲＮＡの量は、選択 3Ｈ−ｃＤＮＡ
プローブと組織試料から分離したＲＮＡとのハイブリダ
イゼーションの動態を測定し、これらの動態を既知の標
準混合物のそれと比較することによって決定することが
できる。
【０２６３】これは、哺乳類細胞のｒＲＮＡの大過剰が
存在していても可能である。なぜならば、そのプローブ
はこのｒＲＮＡはハイブリダイズしないからである。
【０２６４】動態を測定するためには、ハイブリダイゼ
ーション混合物は０．０１〜０．１ｍｌの０．４８Ｍ
ＰＢ中に例えば、１０-5〜１０-4マイクログラム 3Ｈ−
ｃＤＮＡと０．０１〜１０3 マイクログラム精製試料Ｒ
ＮＡを含む。
【０２６５】この混合物を７６℃でインキュベートし、
一部をとり、０．１４Ｍ ＰＢに希釈し、反応開始後の
種々の時間にハイブリダイゼーションアッセイを行う。
ハイブリダイゼーションアッセイは、既述のように、ヒ
ドロキシアパタイトを用いて行う。
【０２６６】得られた結果を、既知量の細菌ｒＲＮＡを
含む標準ＲＮＡと反応させたプローブのハイブリダイゼ
ーション動態と比較する。これらの標準は、哺乳類細胞
ＲＮＡと既知量の特異的細菌ｒＲＮＡとの混合物であ
る。
【０２６７】表９は、水試料中および感染ハムスター肝
試料中にあるLegionella pneumophilaの定量に関するデ
ータを示す。
【０２６８】水試料および肝試料について、ジョージア
州アトランタ市の疾病コントロールセンターで、標準定
量的増殖試験により、Legionella pneumophilaの存在を
調べた。
【０２６９】
【表９】
【０２７０】過剰プローブ法 試料中にある細菌ｒＲＮＡの量は、存在するLegionella
ｒＲＮＡの量に比較して、Legionella特異的 3Ｈ−ｃ
ＤＮＡプローブが過剰にあるという条件下で、ハイブリ
ダイゼーションを行うことにより、測定することができ
る。
【０２７１】この混合物を、最後までハイブリダイズさ
せる。この時点で、試料中にある各Legionella ｒＲＮ
Ａはプローブ分子で飽和させられる。ｒＲＮＡはハイブ
リダイズしたプローブの量を、正確に作成された標準検
量曲線と比較することによって試料中のｒＲＮＡ量を測
定することができる。
【０２７２】それからLegionella pneumophila細菌１個
あたりのｒＲＮＡ分子の平均数を知ることによって、試
料中にある該細菌の総数を計算できる。
【０２７３】表１０は、後章に詳述する過剰プローブハ
イブリダイゼーション加速−酵素−界面活性剤試料法に
より測定した水試料中のLegionella pneumophilaの定量
に関するデータを示す。
【０２７４】水試料について、標準定量増殖法により、
Legionella pneumophilaの存在を調べた。これらの試験
法は完了するまでに数日かかるが、ハイブリダイゼーシ
ョンアッセイは約１時間ですむ。
【０２７５】
【表１０】
【０２７６】
【表１１】
【０２７７】水および肝試料中のLegionella pneumophi
laを検出する核酸ハイブリダイゼーション試験の詳細を
以下に示す。
【０２７８】［実施例４］水性試料中のLegionella菌の迅速、鋭敏な検出法（加速
法） （１）次の諸成分をできるだけ速く次の順序で混合す
る。
【０２７９】（ａ）１ｍｌに対して約１０5 個のレジオ
ネラ・ニューモフィラ（Legionellapneumophila）菌を
含む水性試料４５μｌ。水中の細菌数は米国アトランタ
の疾病コントロールセンターで増殖試験により測定し
た。
【０２８０】（ｂ）Ａに記載の酵素−界面活性剤溶液１
μｌ （ｃ）Legionella特異的プローブ０．５μｌ ７．５×１０-6μｇ相当量のプローブ （ｄ）４．８Ｍ ＰＢ １０μｌ ハイブリダイゼーション混合物を約２分間アセンプリン
グ。
【０２８１】（２）ハイブリダイゼーション混合物を３
６分間、７６℃でインキュベートする。
【０２８２】（３）Ａに記載のようにハイブリダイゼー
ションアッセイを行う。これには約５分かかる。
【０２８３】（４）フラクションについて、プローブの
存在をアッセイする。これには、約１０分間かかる。
【０２８４】ハイブリダイゼーション混合物中にあるLe
gionella菌の数は、約５００個であった。この微生物数
を検出し定量するのに、始めから終りまで約１時間かか
り、１０-5マイクログラム以下のプローブを使用した。
【０２８５】過剰プローブハイブリダイゼーションテス
トとして計画されたこの試験では、プローブの２３％が
Legionella ｒＲＮＡとハイブリダイズした。
【０２８６】同条件で、細菌を加えない一つの試料、ハ
イブリダイゼーション混合物に１０5 個の大腸菌（E.co
li）を存在させた他試料をそれぞれ用いて対照試験を行
った。
【０２８７】どちらの場合も、ハイブリダイズしたよう
に振舞ったプローブは１〜２％に過ぎなかった。
【０２８８】上記試験を変形して、より大きな容量中の
Legionella菌の存在をアッセイすることができる。
【０２８９】例えば、１ｍｌ中に、１０4 個のLegionel
la菌を含む水試料１ｍｌを３０分間遠沈して、細菌をペ
レットにする。少量の酵素−界面活性剤をペレットに加
え、この混合物について加速法を用いてハイブリダイゼ
ーションテストを行ったら、Legionella菌が容易に検出
された。
【０２９０】更に多量の試料を遠沈することもできる
し、細菌を濃縮するその他の方法（膜濾過を含む）を使
うこともできる。これらの変形は、大量の試料中の少量
の細菌の検出を可能にする。
【０２９１】大気試料も膜濾過法を含む種々の方法によ
って濃縮することができ、大量の大気試料中の少数の細
菌を検出することができる。
【０２９２】［実施例５］ハムスター肝試料中のLegionella菌の迅速、鋭敏な検出 （１）次の諸成分をできるだけ早くつぎの順序で混合す
る。
【０２９３】（ａ）Legionella pneumophilaに感染した
ハムスター肝の１０％肝ホモジネート４μｌ。これは、
肝臓４００マイクログラム、又は約６×１０4 個肝細胞
に相当する。この試料には約７５０個のLegionella pne
umophilaが存在した。
【０２９４】（ｂ）次のものから成る酵素−界面活性剤
溶液４μｌ。４５μｇ／ｍｌプロティナーゼＫ、８％Ｓ
ＤＳ、４％サルコシン酸ナトリウム、０．５Ｍトリス
（ｐＨ＝８．２）、０．００８Ｍ ＥＤＴＡ、０．００
８Ｍ ＥＧＴＡ、０．２５ＭＮａＣｌ。
【０２９５】（ｃ）Legionella特異的プローブ４μｌ。
プローブ量は、約１０-5マイクログラムである。
【０２９６】（２）ハイブリダイゼーション混合物を７
６℃で３時間インキュベートする （３）Ａに記載の通り、ハイブリダイゼーションアッセ
イを行う。
【０２９７】（４）生じたフラクションについて、Legi
onella ｒＲＮＡにハイブリダイズしたプローブの存在
をアッセイする。
【０２９８】ハイブリダイゼーション混合物中にあるLe
gionella菌の数は約７５０個である。この数のLegionel
la細胞中にあるｒＲＮＡ量は約１．１×１０-5マイクロ
グラムである。存在する肝細胞の数は約６×１０4 個
で、存在する肝ｒＲＮＡ量は約１マイクログラムであ
る。Legionella特異的プローブの１０％が、ハイブリダ
イズした。
【０２９９】対照試験は感染しない肝臓で同様にして行
われ、プローブの１％以下がハイブリダイズしているよ
うに振舞った。実施例４および５はそのような試験の多
くのあり得る形態の中の２つだけを示しているに過ぎな
い。
【０３００】種々の容量、塩、界面活性剤、プローブ、
試料の型、蛋白分解酵素、ＨＡ量、インキュベーション
時間、生物の種類、プローブ量、インキュベーション温
度、ハイブリダイゼーション速度加速系を用いる試験
が、ここに記した試験の一般的状況において、成功裡に
利用される。
【０３０１】ｒＲＮＡに対するプローブのどれでも、上
述のシステムに匹敵するシステムでは用いることができ
る。ｒＲＮＡを標的としないプローブも、若干の明白な
変形を施したこれらのシステムで、有効に用いることが
できる。
【０３０２】例えば、特定の生物又は生物群の特定のＤ
ＮＡ配列に特異的な試験を、もし２本鎖ＤＮＡを１本鎖
型に変える段階を入れるならば、正に上述のように行う
ことができる。その他の場合には、又異なる変形を施し
た方法を用いなければならない。
【０３０３】MycobacteriaおよびBacilli のような細菌
は破壊されにくい。上記の方法に関連して、これら細菌
を破壊する段階を用いなければならない。例えば、界面
活性剤なしで酵素リゾチームを用いて１回インキュベー
ションすると、大部分のBacillus菌は、界面活性剤によ
り溶解し易くなる。
【０３０４】他方、マイコバクテリアは非常に溶解しに
くく、それらは試験する前に物理的に破壊する必要があ
るかも知れない。
【０３０５】上記方法の変形をｔＲＮＡに対するプロー
ブ又は生物中に存在する他のＲＮＡに特異的なプローブ
に関連しても用いることができる。
【０３０６】大きな容量の試料、例えば大気又は液体か
ら、少数の細菌又はその他の細胞を濃縮するための段階
をその他の細菌生物又はその他の種類の生物の大部分を
見出すハイブリダイゼーションテストに関連して用いる
ことができる。
【０３０７】以上、Legionella属のメンバーに由来する
核酸にのみハイブリダイズする核酸プローブの生産およ
び使用について詳しく述べてきたが、この実施例および
他の実施例から、上に例証せる操作法を基にして、その
他のプローブも生産できるということは当業者には容易
に理解できる。
【０３０８】そのような他のプローブを生産するために
用いる方法は、次のようである。
【０３０９】（１）関心のある群のメンバーのｒＲＮＡ
に相補的な標識核酸をつくる。
【０３１０】（２）このＤＮＡを、プローブが特異的で
ある生物群に進化論的に最も近い生物群のメンバーから
のｒＲＮＡにハイブリダイズさせる。
【０３１１】特異的なクリテリオンにおいて、この一番
近い生物群のメンバーからのｒＲＮＡにハイブリダイズ
しない標識核酸の１部分を選択する。この部分が関心の
ある生物群に特異的である。
【０３１２】これらの例を、次にあげる。
【０３１３】（ａ）Legionella科の菌のメンバーに由来
するｒＲＮＡとのみハイブリダイズし、他の起源のｒＲ
ＮＡとはハイブリダイズしない標識プローブの生産。
【０３１４】（ｂ）Mycoplasma科の菌のメンバーに由来
するｒＲＮＡとのみハイブリダイズし、その他の起源に
由来するｒＲＮＡとは、ハイブリダイズしない標識プロ
ーブの生産。
【０３１５】（ｃ）Enterobacteriaceae科の菌のメンバ
ーに由来するｒＲＮＡとのみハイブリダイズし、その他
の起源に由来するｒＲＮＡとは、ハイブリダイズしない
標識プローブの生産。
【０３１６】（ｄ）嫌気的細菌群のメンバーとのみハイ
ブリダイズし、その他の起源由来のｒＲＮＡとはハイブ
リダイズしない、標識プローブの生産。
【０３１７】（ｅ）菌類(Fungi）のメンバーに由来する
ｒＲＮＡとのみハイブリダイスし、その他の起源に由来
するｒＲＮＡとはハイブリダイズしない標識プローブの
生産。
【０３１８】（ｆ）Chlamydia 群のメンバーに由来する
ｒＲＮＡとのみハイブリダイズし、その他の起源に由来
するｒＲＮＡとはハイブリダイズしない標識プローブの
生産。
【０３１９】（ｇ）Mycobacteriaceae科のメンバーに由
来するｒＲＮＡとのみハイブリダイズし、その他の起源
に由来するｒＲＮＡとはハイブリダイズしない標識プロ
ーブの生産。
【０３２０】（ｈ）生きている生物に由来するｒＲＮＡ
にハイブリダイズする標識プローブの生産。
【０３２１】（ｉ）哺乳類に由来するｒＲＮＡとのみハ
イブリダイズし、その他の起源のｒＲＮＡとはハイブリ
ダイズしない標識プローブの生産。
【０３２２】生物を検出、定量、同定するために、ｔＲ
ＮＡに対するプローブを使用する例証的実施例 ｔＲＮＡに対するプローブをｒＲＮＡに対するプローブ
の場合と同様に用いて、生物、そして或る場合には、ウ
イルスを検出、同定、定量することができる。
【０３２３】例えば、Legionellaに特異的なｔＲＮＡに
対するプローブをLegionellaにのみ特異的なｒＲＮＡに
対するプローブに関して記載した方法と同じやり方で生
産し、用いることができる。
【０３２４】こうして、Legionella特異的ｒＲＮＡのた
めに、記述した例証的実施例は、Legionella特異的ｔＲ
ＮＡに対するプローブの例証としても役立つ。
【０３２５】多くのＤＮＡおよびＲＮＡウイルスに存在
する遺伝子は、そのウイルスに特異的であるｔＲＮＡ遺
伝子を含む。
【０３２６】ｍＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ又はｐ
ｓＲＮＡに特異的なプローブを使用して、生物および細
胞中ウイルスを検出、定量、同定する例証的実施例 ｍＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ又はｐｓＲＮＡに特
異的なプローブ、ｒＲＮＡおよびｔＲＮＡの場合と同様
なやり方で用いて特異性の大きい又は小さい生物群、細
胞又は細胞中のウイルスを検出、同定、定量することが
できる。
【０３２７】これらの種々のＲＮＡｓを生産する個々の
遺伝子の進化的保存は非常に変化するから、非常に大き
い生物クラスのメンバーを検出するプローブと、比較的
小さい生物クラスのメンバー、細胞又は細胞中のウイル
スを検出するプローブを生産することは可能である。
【０３２８】高度に保存されている遺伝子配列の一例
は、ヒストン遺伝子、真核細胞に存在する一族の遺伝子
である。ヒストンは、すべての真核細胞にある核−構造
蛋白質である。ヒストンＤＮＡ配列は、広く異なった生
物においてさえ非常に似ている。
【０３２９】例えば、ウニと人とのヒストン遺伝子はよ
く似ていて、ハイブリダイズし合う。特定のヒストンｍ
ＲＮＡ又はヒストンｍＲＮＡ集団に特異的なプローブ
は、広く異なる生物から成る大きな群のメンバーの存在
又は不存在を検出し、定量することができる。
【０３３０】細胞又は生物の検出感度は、ヒストンｍＲ
ＮＡ量が多いと高まる。増殖するためには、細胞又は生
物はヒストンｍＲＮＡを大量に合成しなければならな
い。
【０３３１】別の実施例はｐｓＲＮＡを規定し、真価の
過程で保存されない或る遺伝子配列を含む。
【０３３２】或るタイプの生物に由来するそのような遺
伝子配列は、遠い関係の種に由来するＤＮＡにはハイブ
リダイズしない。
【０３３３】或る一つの特定のｐｓＲＮＡ配列又は、１
生物タイプ又はウイルスタイプに由来する種々のｐｓＲ
ＮＡ配列の集団に特異的なプローブを用いて近い関係の
生物から成る小さい群又は、細胞中の近い関係のウイル
スの小群のメンバーを検出、定量、同定することができ
る。
【０３３４】別の実施例は、特定の細胞損傷および破壊
を検討するために体液の検査に用い得るｍＲＮＡ，ｈｎ
ＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ又はｐｓＲＮＡの配列（１ケ又は複
数）に特異的なプローブの開発である。
【０３３５】或る種の病気では細胞が破壊され、細胞核
酸を含むその内容物が循環血液中にもれる。肝炎による
肝損傷はそのような状態の一つであり、肝細胞からのＤ
ＮＡもＲＮＡも両方共、細胞損傷の結果として循環血液
中へ入ることが知られている。
【０３３６】肝細胞にのみ特徴的であり、他の正常細胞
タイプには存在しないＲＮＡ配列（１又は複数）に特異
的なプローブを生産することができる。そのようなＲＮ
Ａの存在はよく知られている。
【０３３７】それから、このプローブを用いて本文中に
記載の核酸ハイブリダイゼーション法によって血液試料
中の肝−特異的−ｍＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ又
はｐｓＲＮＡの配列を検出し、同定し、定量することが
できる。
【０３３８】血液中にあるＲＮＡの量は細胞損傷の程度
を反映するから、肝損傷の存在およびその大きさの程度
範囲を決めることができる。
【０３３９】特殊なタイプの肝細胞にのみ存在する特定
のｍＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ又はｐｓＲＮＡの
配列（１又は複数）に特異的なプローブも生産すること
ができる。それを使って特殊な肝細胞タイプの損傷の結
果、血液中に存在するＲＮＡ配列を検出、定量すること
ができる。明らかに、肝細胞中の特異的ＲＮＡ配列が豊
富であればある程ＲＮＡ検出感度は高くなる。
【０３４０】体組織又は器官（心、腎、脳、筋肉、膵、
脾等々を含む）の損傷も、この方法で検出、定量でき
る。脊髄液および尿を含むその他の体液も、これらの特
異的ＲＮＡの存在をアッセイすることができる。
【０３４１】ｒＲＮＡに特異的なプローブを利用し、血
液又はその他の体液について、ｒＲＮＡ又はｔＲＮＡ配
列の存在を試験することによって、いかなる起源の組織
損傷があるかについて有用な初期スクリーニングをする
ことができる。
【０３４２】存在するｒＲＮＡ又はｔＲＮＡの定量は、
起源を確認することなく組織損傷の程度の大きさを示
す。
【０３４３】核酸ハイブリダイゼーションテストおよび
ここに記載されたアプローチを使用する又別の例は大腸
菌（E.coli）腸毒素蛋白質を規定するプラスミド遺伝子
を含む大腸菌細胞の検出および定量である。
【０３４４】そのようなテストは、腸毒素蛋白質ｍＲＮ
Ａを含む大腸菌の存在を検出および定量するために腸毒
素蛋白質ｍＲＮＡに相補的な標識核酸プローブを使用す
ることを含む。
【０３４５】これは、この明細書中に記載の溶液内ハイ
ブリダイゼーション法を利用することによって達せられ
る。
【０３４６】既述したように、核酸ハイブリダイゼーシ
ョン法を用いることにより大腸菌（E.coli）腸毒素を生
産し、従って腸毒素ｍＲＮＡを含む大腸菌の存在を検
出、定量するための手段として、大腸菌腸毒素ｍＲＮＡ
に相補的なプローブを使用することは前に論じたフアル
コウ等の米国特許に記載されているような方法に比べて
著しくすぐれている。
【０３４７】前述のものと同じアプローチを用いて、特
定の抗生物質又はその他の抗菌剤に対する耐性を与え
る、特定の微生物の特異的遺伝産物を検出することがで
きる大部分の抗生物質に対する耐性を与える遺伝子は、
ほとんど常に細胞中のプラスミドに存在する。生物が耐
性を伝える因子に生産するためには、その因子のための
遺伝子およびその因子のためのｍＲＮＡが細胞中に存在
しなければならない。
【０３４８】そこで、核酸ハイブリダイゼーション法に
よって、その因子のｍＲＮＡに特異的なプローブはその
因子を生産する生物を検出、同定、定量することができ
る核酸ハイブリダイゼーション法によって、例えば、ｍ
ＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ又はｐｓＲＮＡ配列を
含む生物、細胞又は細胞中のウイルスの特定群を検出、
同定、定量する目的でｍＲＮＡ，ｈｎＲＮＡ，ｓｎＲＮ
Ａ又はｐｓＲＮＡの特定配列又は配列集団に特異的な核
酸プローブを使用する上記の例は例証的であるに過ぎ
ず、限定するものではない。
【０３４９】抗菌剤に対する微生物の感受性の測定 多数の異なる臨床的情況は、種々の細菌の抗菌剤および
抗生物質に対する感受性の測定を必要とするV.Lorian著
「Antibiotics in Laboratory Medicine」、Williams &
Wilkens社米国バルチモア．1980参照）。
【０３５０】これらの情況は、すべての特異的微生物ク
ラスを検出、定量する方法を利用する。これらの情況の
多くにおいては、既述の核酸ハイブリダイゼーションテ
ストの使用が抗菌剤感受性の測定を著しくスピードアッ
プする。
【０３５１】試料中の生物が成長し、分割するにつれて
培地中のＲＮＡ量は増加する。生物が２倍になると培地
中にある異なるタイプのＲＮＡの量も２倍になる。
【０３５２】こうして、生物の増殖は増殖培養開始後種
々の時間に、培地中のＲＮＡ量を測定することによっ
て、モニターできる。
【０３５３】ＲＡＮ量が時間と共に増加すれば、それは
生物の増殖を示す。その増加の大きさは増殖の程度を示
す。増殖速度は時間あたりの増殖程度である。ｒＲＮ
Ａ，ｔＲＮＡ，ｐｓＲＮＡ，ｐｓｔＲＮＡ、或る種のｍ
ＲＮＡｓ、又はｐｓｍＲＮＡｓ、ある種のｓｎＲＮＡ又
はｐｓｓｎＲＮＡｓ又はｈｎＲＮＡ又はｐｓｈｎＲＮＡ
に対して特異的なプローブを、個々に、又は組み合せて
用いて生物の増殖を測定することができる。なぜならば
微生物が増殖するにつれて、培地中のこれらのＲＮＡの
各々の量が増加するからである。
【０３５４】完全に増殖を阻止する１種類又はそれ以上
の薬剤の存在下で特定のカテゴリーの生物を培養しても
ＲＮＡは時間につれて増加しない。一方、そのような薬
剤で部分的に阻害される培養菌はより遅いＲＮＡ蓄積を
示す。
【０３５５】阻害されない培養菌は、その薬剤を含まな
い対照培養菌と同じ速度のＲＮＡ増加を示す。
【０３５６】この一例は、臨床的喀痰試料中のヒト型結
核菌Mycobacterium tuberculosisの感受性の測定であ
る。
【０３５７】そのような試料を診断する第１段階は、抗
酸菌を検出するための染色用にその喀痰の直接塗沫標本
をつくることである。陽性の直接塗沫標本を得るには、
喀痰１ｍｌにつき、最低１０4 〜１０5 個のヒト型結核
菌が必要であると推定される。しかし、増殖培養法では
たった１０〜１００個のこれら微生物が回収される。
【０３５８】もし、その喀痰標本が塗沫陽性を示すなら
ばその標本を処理して、マイコバクテリア以外のすべて
の細菌を殺し、処理標本の希釈物を抗菌剤を含む寒天培
地と薬剤を含まない対照寒天上で平板培養する。
【０３５９】生活力のある個々の細菌は、対照寒天上で
はコロニーを形成するが、特定の抗菌剤を含む寒天上で
は増殖が阻止される。対照寒天上の数と薬剤処理寒天上
の数に対する比が、その抗菌剤の有効性の尺度である。
【０３６０】小コロニーは最低１０6 個の細菌を含む。
これは、１ケの細菌からコロニーを形成するには最低２
０回分の分割が必要であることを意味し、そして、各分
割には最低１２時間かかるから、全部で２４０時間又は
１０日間が最低必要である。大抵の場合にはコロニー出
現までにこの長さの２〜４倍（３〜６週間）かかるLegi
onellaについて前に記述した方法は、抗菌剤−感受性の
測定のために必要な時間を著しく短縮する。
【０３６１】Mycobacterium 属のメンバーに由来するｒ
ＲＮＡにのみ特異的なプローブをそのようなテストに用
いることができる。そのようなプローブを用いれば、Le
gionellaについて前述したものと等しい定量並びに検出
感度を得ることができる。
【０３６２】加速ハイブリダイゼーション条件と過剰プ
ローブ法を用いる核酸ハイブリダイゼーションテスト
は、約２００個のMycobacteria細胞の容易な検出を可能
にする。
【０３６３】ｒＲＮＡが遊離してハイブリダイズするよ
うにMycobacteria細胞の崩壊を確実にするための段階を
加える。Mycobacteriaは、酵素−界面活性剤溶液の存在
下で容易には崩壊しない。
【０３６４】上述のように、最小の陽性喀痰標本（酸性
染色で測定）は、１ｍｌにつき約１０4 〜１０5 個のMy
cobacteria細胞を含みそしてこれらの１０〜１０2 個の
細胞は、コロニー形成単位として検出される。
【０３６５】寒天上の薬剤感受性試験では、抗菌剤が存
在しない対照寒天上に、４０〜５０個のコロニーが出現
するのを確実にするために十分量のMycobacteriaを対照
および実験寒天表面に加える。
【０３６６】もし、核酸ハイブリダイゼーションアッセ
イを用いてこれを実施すると、これは培養が約５０個の
Mycobacteriaで出発し、検出可能レベルの細胞を得るた
めには約３〜４回の細胞分割又は約２〜３日かかること
を意味する。
【０３６７】もしも、薬剤による顕著な増殖阻害がおき
たならば、対照は陽性で、薬剤を含む培地は陰性にな
る。高感度核酸ハイブリダイゼーション法の使用は、感
受性測定のために要する時間を５〜１０倍短縮すること
ができる。
【０３６８】上記のものは、Legionellaについて記した
ような核酸ハイブリダイゼーションテストを抗菌剤感受
性の測定のために使用する一例である。
【０３６９】どんな微生物の感受性も、標準増殖法と核
酸ハイブリダイゼーションに基づく微生物アッセイとの
組み合わせを用いて測定することができる。
【０３７０】その上、多くの場合では、微生物に対する
核酸ハイブリダイゼーションテストの特異性および感受
性のために、他の微生物および真核細胞が大過剰に存在
している場合でも、特定生物の抗生物質感受性の測定が
可能である。
【０３７１】同じアプローチを用いて、血液、尿その他
の体液および組織およびその他の試料中の抗微生物活性
の存在を測定できることは明らかである。
【０３７２】この場合、本発明核酸ハイブリダイゼーシ
ョン法を用いて、もし抗菌活性がなければ増殖がおこる
という条件下で、血液、尿又はその他の試料と接触して
置かれている特定の微生物群の増殖に、その血液、尿又
はその他の試料が与える影響をモニターし定量すること
ができる。
【０３７３】細胞の増殖状態を測定する方法 細胞内における蛋白合成の全体的速度を細胞あたりのリ
ボソームの数によって測定する。ｔＲＮＡ合成速度もま
た細胞あたりのリボソーム数に関連する。細胞内の蛋白
合成の阻害は、細胞によるｒＲＮＡ合成を停止させる結
果になる。実際に、何らかの手段により細胞増殖が止ま
るとｒＲＮＡ合成の停止がおこり、細胞増殖をスローダ
ウンすると、ｒＲＮＡ合成はスローダウンするという結
果になる。
【０３７４】合成されたばかりのｒＲＮＡ分子は、リボ
ソームにある成熟ｒＲＮＡ分子サブユニットの集合より
も大きい。
【０３７５】例えば大腸菌（E.coli）のｒＲＮＡの長さ
が６０００塩基対という前駆体分子として合成される。
前駆体は、それから処理を受けてｒＲＮＡサブユニット
（合計約４５００塩基）を生じる。それはその後、リボ
ソームおよび「エキストラ（extra)」又は前駆体特異的
ｒＲＮＡ（ｐｓｒＲＮＡ）配列に組み込まれる。これら
は、結局は細胞によって分解される。
【０３７６】ｒＲＮＡは、増殖していない細胞中では合
成されない。従って、前駆体特異的ｒＲＮＡ配列もこれ
ら細胞には存在しない。この場合、多数のｒＲＮＡ分子
は細胞中に存在するが、ｐｓｒＲＮＡ配列は存在しな
い。
【０３７７】ゆっくり増殖する細胞では少量のｒＲＮＡ
前駆体が合成され、少量のｐｓｒＲＮＡが存在する。
【０３７８】速く増殖する細胞では大量のｒＲＮＡ前駆
体が合成され、数千のｐｓｒＲＮＡ配列が存在する。
【０３７９】細胞中にｐｓｒＲＮＡがないのは、細胞が
増殖していないという信号である。細胞内のｐｓｒＲＮ
Ａに対するｒＲＮＡの比は、細胞の増殖速度の指標であ
る抗菌剤は細胞増殖を阻害する。その薬剤によって増殖
を阻害されない細胞は、大量のｐｓｒＲＮＡを含む。部
分的に増殖を阻害される細胞では、ｐｓｒＲＮＡはより
少量存在する。ｒＲＮＡ：ｐｓｒＲＮＡの比は阻害程度
の尺度である。
【０３８０】特定の微生物群のｐｓｒＲＮＡ配列に特異
的な核酸プローブを核酸ハイブリダイゼーションテスト
に用いて、特定の抗微生物剤又はそのような薬剤群の存
在および不存在下で生物が成長する場合のこれら微生物
中のｐｓｒＲＮＡの存在又は不在を決定し定量すること
ができる。
【０３８１】これは、関心のある微生物群に関係のない
大量の生物が存在する場合でも可能である。
【０３８２】又、この核酸ハイブリダイゼーション法を
用いて血液、尿その他の体液および組織およびその他の
試料中に、抗微生物活性をもった物質が存在するかどう
かを決定することも当然である。
【０３８３】この細胞増殖測定方法を用いてｒＲＮＡを
合成するあらゆる細胞の増殖状態を決定することができ
る。上記の例はそのような方法に用いられる多くの例の
１つに過ぎない。
【０３８４】特定の生物群又は細胞群のｐｓｔＲＮＡ配
列に特異的なプローブを用いる方法を利用して、これら
生物又は細胞の増殖状態を決定することもできる。
【０３８５】又、速く増殖する生物には豊富にあり、増
殖しないかゆっくり増殖する細胞には存在しないか少量
しかない或る種のｍＲＮＡ，ｐｓｍＲＮＡ，ｈｎＲＮ
Ａ，ｐｓｈｎＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ、又はｐｓｓｎＲＮＡ
に特異的なプローブの利用に基づく方法を用いてこれら
生物又は細胞の増殖状態を測定することもできる。
【０３８６】例えば、速やかに増殖する細胞には、ＲＮ
Ａポリメラーゼという蛋白質に対するｍＲＮＡが豊富
に、即ち１細胞あたり数百コピー存在する。増殖してい
ない細胞ではほんの少しのＲＮＡが合成され、ｍＲＮＡ
はほとんど存在しない。
【０３８７】上記ウイルスが細胞中で速やかに増殖して
いる時には豊富にあり、ウイルスが細胞にはあるが増殖
していない時にはない或る種のウイルスｍＲＮＡ又はｐ
ｓｍＲＮＡに特異的なプローブの利用に基づく方法を用
いて細胞内のウイルスの増殖状態を測定することもでき
る。
【０３８８】こうして或る特定カテゴリーに属する生物
のメンバーが試料中にあることがわかっている状態で
は、単一のプローブを用いて上記生物の増殖状態を測定
することができる。
【０３８９】例えば、その生物にｐｓｒＲＮＡが検出で
きなければ、それは増殖していない状態にある。もしｐ
ｓｒＲＮＡがその生物に検出されはしたが、そこにある
生物の数に比べて相対的に少量である場合には、その生
物はゆっくり増殖している。もしそこにある生物の数に
比して多量のｐｓＲＮＡが検出されるならば、その生物
は速やかに増殖している。
【０３９０】特定の生物又は生物クラスの増殖状態を測
定する又は別のアプローチは２つのプローブの利用に基
づく。その各々は、特定カテゴリーの生物に由来するＲ
ＮＡにのみハイブリダイズし、１つのプローブは、増殖
しない生物又は細胞でも、速やかに増殖する生物又は細
胞でも大体同量前記生物中に存在する安定ＲＮＡ（ｒＲ
ＮＡ又はｔＲＮＡ）に特異的である。他のプローブは速
やかに増殖する細胞には豊富にあり、増殖しない生物又
は細胞には存在しないかもしくは少量存在する特定のｍ
ＲＮＡ，ｐｓｍＲＮＡ，ｐｓｔＲＮＡ，ｐｓｓｎＲＮ
Ａ，ｈｎＲＮＡ，ｐｓｈｎＲＮＡ又はｐｓｒＲＮＡ又は
ｐｓｒＲＮＡ配列（１又は複数）に特異的である。これ
らのプローブは、それぞれに特異的で試料中に存在する
ＲＮＡ量を検出、同定及び定量するために用いられる。
これらのＲＮＡの量比は、その生物又は細胞の増殖状態
の指標を示す。
【０３９１】本発明の特定の実施例として、試料中に存
在するｒＲＮＡおよびｐｓｒＲＮＡを検出、同定、定量
するために２種のプローブを使用する。一方のプローブ
は特定のカテゴリーの生物又は細胞のｒＲＮＡに特異的
であり、他方のプローブは同一カテゴリーの生物又は細
胞のｐｓｒＲＮＡに特異的である。
【０３９２】試料中にあるｐｓＲＮＡ：ｒＲＮＡの量の
比は、その生物又は細胞の増殖状態の指標である。速や
かに増殖する細胞ではｐｓｒＲＮＡの数千のコピーがあ
りｐｓｒＲＮＡ／ｒＲＮＡの比は最大である。ゆっくり
増殖する細胞では比較的少量のｐｓｒＲＮＡがあり、ｐ
ｓｒＲＮＡ／ｒＲＮＡの比はずっと小さくなる。
【０３９３】増殖していない細胞ではｐｓｒＲＮＡはな
い筈であり、ｐｓｒＲＮＡ／ｒＲＮＡの比は最小であ
る。
【０３９４】この同じ２プローブ法は、上記のプローブ
の異なる種々の組み合わせで用いられる。プローブで検
出される前記の特殊のカテゴリーのメンバーではない生
物又は細胞の存在下で行われ得る。
【０３９５】ここに述べた特殊カテゴリーの生物の増殖
状態を測定するための方法の明白な応用は、血液、尿そ
の他の体液又は組織又はその他の試料中の抗菌剤の存在
を決定するために、又、特定の抗菌剤又はそのような薬
剤群に対する、特定カテゴリーの生物の感受性を決定す
るためにこれらの方法を使用することである。
【０３９６】例えば、特定の薬剤によって増殖を完全に
阻害される細菌は最小のｐｓｒＲＮＡ／ｒＲＮＡ比をも
つ。
【０３９７】ウイルスの検出、同定および定量 特定のウイルス又はウイルス群が試料中にあるかどうか
を速やかに決定できることは、しばしば重要である。こ
れは、ここに記載の核酸ハイブリダイゼーションテスト
により達せられる。
【０３９８】（ａ）溶液内ハイブリダイズに使える核酸
を速くつくる方法、（ｂ）核酸ハイブリダイズの速度を
著しく促進する方法、（ｃ）ハイブリダイズしたプロー
ブの存在をアッセイする迅速な方法を組み合わせた迅速
な核酸ハイブリダイゼーションテストが、関心のウイル
ス群に相補的な核酸プローブの使用によって試料中にあ
るＤＮＡ又はＲＮＡウイルス群の検出、同定および定量
に直接応用できる。
【０３９９】その上、そのようなウイルスアッセイ法を
用いて特定の抗ウイルス剤の効力を測定したり、血液、
尿およびその他の試料中の抗ウイルス活性の存在を測定
することができる。
【０４００】生物の食細胞の検査によって微生物感染を
検出する方法 上述のｒＲＮＡに特異的な核酸ハイブリダイゼーション
テストの特徴である検出の極端に高い感受性および特異
性は、微生物診断用の適切な臨床標本を得ることに関し
ておこる問題に簡単な解決を与える。
【０４０１】多くの場合、白血球（以後ＷＢＣと記す）
フラクションを含む簡単な血液テスト試料で十分であ
る。
【０４０２】このＷＢＣアプローチを用いる一つのやり
方は、まず、ＷＢＣ試料をすべての細菌群のメンバーか
ら分離したｒＲＮＡにハイブリダイズし、その他の起源
に由来するｒＲＮＡには、ハイブリダイズしない標識プ
ローブとハイブリダイズさせることである。そのような
プローブは、どんな細菌にとっても一般的スクリーニン
グ手段として役立つ。
【０４０３】細菌ｒＲＮＡにポジティブである試料は、
それから更にその存在する細菌を同定するために、その
他のプローブで段階的にアッセイを受ける。
【０４０４】例えば、エンテロバクター（Enterobacte
r）科のメンバー由来のｒＲＮＡにはハイブリダイズす
るが、その他のあらゆる起源に由来するｒＲＮＡにはハ
イブリダイズしないプローブを用いてエンテロバクター
（Enterobacter）菌を検出又は除外することができる。
一方、嫌気菌のｒＲＮＡにのみ特異的なプローブは、嫌
気菌を見出すために用いられる。
【０４０５】上記の例証は、核酸ハイブリダイゼーショ
ンによって微生物感染を速やかに診断するための最初の
臨床試験としてＷＢＣを用いる多くの可能な方法の中の
一つに過ぎない。例えば、診断のためには、患者の臨床
症状によってプローブの異なる組み合わせが用いられ
る。
【０４０６】以下に列挙する出版物は、本発明の種々の
面と関係があるので、開示の一部としてかかげる。
【０４０７】１ Repeated Sequences in DNA, R.J.Bri
tten and D.E.Kohne, Science(1968) 161 p529。
【０４０８】２ Kinetics of Renaturation of DNA,
J.G.Wetmur and N.Davidson, J.Mol.Biol.(1968) 31 p3
49 。
【０４０９】３ Hydroxyapatite Techniques for Nucl
eic Acid Reassociation, D.E.Kohne and R.J.Britten,
in Procedures in Nucleic Acid Research(1971), eds
Cantoni and Davies, Harper and Row, Vol, 2, p500
。
【０４１０】４ Hybridization of Denatured RNA and
Small Fragments Transferred toNitrocellulose, P.
S.Thomas, Proc. Natl. Acad Sci. USA(1980) 77 p520
1。
【０４１１】５ DNA-DNA Hybridization on Nitrocell
ulose Filters General Considerations and Non-Ideal
Kineteics, Wur. J.Biochem.(1974) 47 p535 。
【０４１２】６ Assay of DNA-DNA Hybrids by S1 Nu
clease Digestion and Adsorptionto DEAE-Cellulose F
ilters, I.Maxwell et al., Nucleic Acids Research
(1978) 5 p2033。
【０４１３】７ Molecular cloning, A Laboratory Ma
nual, T. Maniatis et al., ColdSpring Harbor Publi
cation, (1982) 。
【０４１４】８ Efficent Transcription of RNA into
DNA by Avian Sarcoma Virus Polymerase, J. Taylor
et al., Biocimica et Biophys. Acta(1976) 442 p32
4 ９ Use of Specific Radioactive Probes to Study Tr
anscription and Replication of the Influenze Virus
Genome, J.Taylor et al., J.Virology (1977) 21 #2
p530。
【０４１５】10 Virus Detection by Nucleic Acid Hy
bridization : Examenation of Normal and ALs Tissue
for the Presence of Poliovirus, D. Kohne et al.,
Journal of General Virology (1981) 56 p223-233 。
【０４１６】11 Leukemogenesis by Bovine Leukemia
Virus, R.Kettmann et al., Proc.Natl. Acad. Sci. US
A (1982) 79 #8 p2465-2469。
【０４１７】12 Prenatal Diagnosis of a Thalassemi
a : Clinical Application of Molecular Hybridizatio
n, Y. Kan et al., New England Journal of Medicine
(1976) 295 #21 p1165-1167 。
【０４１８】13 Gene Deletions in a Thalassemia Pr
ove that the 5' Locus is Functional, L.Pressley et
al., Proc. Natl, Acad, Sci. USA (1980) 77 #6 p358
6-3589。
【０４１９】14 Use of Synthetic Oligonucleotides
as Hybridization Probes, S.V.Suggs et al., Proc.
Natl. Acad. Sci, USA (1981) 78 p6613。
【０４２０】15 Identification of Enterotoxigenic
E.coli by Colony HybridizationUsing 3 Enterotox i
n Gene Probes, S.L.Mosely et al., J. of Infect. D
iseases (1982) 145 #6 p863。
【０４２１】16 DNA Reassociation in the Taxonomy
of Enteric Bacteria, D.Brenner,Int. J. Systematic
Bacteriology (1973) 23 #4 p298-307。
【０４２２】17 Comparative Study of Ribosomal RNA
Cistons Enterobacteria and Myxobacteria, R.Moore
et al., J.Bacteriology (1967) 94 p1066-1074 。
【０４２３】18 Ribosomal RNA Similarities in the
Classification of Rhodococcus and Related Taxa, M.
Mordarski et al., J.General Microbiology (1980) 11
8 p313-319 。
【０４２４】19 Retention of Common Nucleotide Seq
uences in the Ribosomal RNA DNAof Eukaryotes and S
ome of their Physical Characteristics, J.Sinclair
etal., Biochemistry (1971) 10 p2761。
【０４２５】20 Homologies Among Ribosomal RNA and
Messenger RNA Genes in Chloroplasts, Mitochondri
a and E.coli, H.Bohnert et al., Molecular and Gene
ralGenetics (1980) 179 p539-545 。
【０４２６】21 Heterogeneity of the Conserved Rib
osomal RNA Sequences of Bacillussubtilis, R.Doe e
t al., J.Bacteriology (1966) 92 #1 p88 。
【０４２７】22 Isolation and Characterization of
Bacterial Ribosomal RNA Cistrons, D.Kohne, Biophys
ical Journal (1968) 8 #10 p1104-1118 。
【０４２８】23 Taxonomic Relations Between Archae
bacteria Including 6 Novel Genera Examined by Cros
s Hybridization of DNAs and 16S R-RNAs, J.Tu et a
l.,J.Mol.Evol (1982)18 p109 。
【０４２９】24 R-RMA Cistron Homologies Among Hy
pohomicrobium and Various OtherBacteria, R.Moore,
Canadian J.Microbiology (1977) 23 p478 。
【０４３０】25 Conservation of Transfer RNA and 5
S RNA Cistrons in Enterobacteriaceae, D.J.Brenner
et al., J.Bacteriology Vol 129 #3 (Mar1977) p1435
。
【０４３１】26 Sequence Homology of Mitochondrial
Leucul-tRNA Cistron in Different Organisms, S.Jak
abcic et al., Biochemistry Vol.14 #10 (May 20. 197
5) p2037。
【０４３２】27 Synthetic Deoxyoligonucleotides as
General Proves for Chloroplastt-RNA Genes, J.A.Ni
koloff and R.B.Hallick, Nucleic Acids Research, V
ol.10 #24 (1982) p8191-8210。
【０４３３】28 Antibiotics in Laboratry Medicine,
V.Lorianeed, Williams and Wilkens (Baltimire/Lond
on) 1980。
【０４３４】29 Diagnostic Microbiology, Finegold
and Martin, Editors, C.V.MosbyCo.(St.Louis) 198
2。
【０４３５】30 Spotbolt : A Hybridization Assay f
or Specific DNA Sequences in Multiple Samples, M.C
unningham, Analytical Biochemistry Vol.128 (1983)
p415。
【０４３６】31 (29) Analysis of Repeating DNA Seq
uences by Reassociation, R.Britten et al., in : M
ethods in Enzymolozy XXIX, page 363, Eds. Grossman
andMoldave, Academic Press, New York (1974) 。
【０４３７】32 Studies on Nucleic Acid Reassociat
ion Kinetics : Retarded Rate ofHybridization of RN
A with Excess DNA, G.Galau et al., Proc. Natl. Aca
d.Sci. USA Vol.74 #6 (1974) p2306 。
【０４３８】33 Acceleration of DNA Renaturation R
ates, J.Wetmur, Biopolymers Vol.14 (1975) p2517 。
【０４３９】34 Room Temperature Method for Increa
sing the rate of DNA Reassociation by Many Thousan
dfold : The Phenol Emulsion Reassociation Techniqu
e,D.Kohne et al., Biochemistry Vol.16 #24 (1977) p
5349。
【０４４０】35 Molecular Biology, D.Freifelder, S
cience Books International (Baston) Van Nostrand R
einhold Co. (New York) 1983 。
【０４４１】36 Gene Expression 2, B.Lewin, J.Wile
y & Sons, Wiley-Interscience Publication (1980) Ne
w York。
【０４４２】37 Gene Expression 1, B.Lewin, Wiley
& Sons, Wiley-Interscience Publication (1974) New
York。
【０４４３】明細書および請求の範囲中に用いられてい
る用語の定義を、次に記す。
【０４４４】用語の定義 塩基：下記ヌクレオチドの項参照。
【０４４５】不適性塩基対：下記不完全相補的な塩基配
列の項参照。
【０４４６】塩基配列（ヌクレオチド配列又は遺伝子配
列又はポリヌクレオチド配列又は１本鎖核酸配列）：複
数の塩基から成るＤＮＡ又はＲＮＡ分子。
【０４４７】相補的塩基対：或る塩基は、互いに化学的
親和性を有し、対を形成する。この場合、塩基は互いに
相補的であるという。相補的塩基対は、ＤＮＡではＡ：
ＴとＧ：Ｃ、ＲＮＡではＡ：Ｕである。
【０４４８】相補的鎖又は相補的塩基配列：完全に相補
的な核酸分子とは、１分子中の各塩基が他の鎖中の相補
的な塩基と対になって、安定な２重らせん分子を形成す
る核酸分子をいう。その個々の鎖を相補的鎖という。
【０４４９】クリテリオン：最も正確には、２本鎖核酸
の融解温度と、ハイブリダイゼーションが行われる温度
との差と定義される。２本鎖核酸の融解温度は、主とし
て、溶液の塩濃度によって定まる。クリテリオンは、２
本の１本鎖が安定な２本鎖分子を形成するために必要な
相補性の程度を定める。クリテリオンは、ストリンジェ
ントであるとか、ストリンジェントではない、と記載さ
れる。高度ストリンジェントなクリテリオンでは、２本
の相互作用する相補的配列が高度に相補的であって、安
定な２本鎖分子が形成されることが要求される。ストリ
ンジェントでないクリテリオンとは、比較的似ていない
相補的鎖が相互に作用して２本鎖分子を形成することを
可能とするクリテリオンである。高度なストリンジェン
トでは、２本鎖分子中に少量の不適性塩基対の存在しか
許されない。あまりストリンジェントでないクリテリオ
ンでは、ハイブリダイゼーション産物中に多量の不適性
塩基対が許される。
【０４５０】核酸の変性又は解離：２本鎖核酸分子中の
塩基対間の結合が切れ、２本の１本鎖分子を生成し、こ
れらがその後拡散して互いに離れる。
【０４５１】２本鎖核酸：細胞中でみられるように、大
部分のＤＮＡは２本鎖の状態にある。ＤＮＡは、らせん
状に互いに巻きついた２本のＤＮＡ分子又は鎖から成
る。塩基は内側に向き合って、互いに、別の鎖の相補的
塩基に特異的に結合する。例えば１本の鎖のＡは常に他
の鎖のＴと対になり、１本の鎖のＧは他の鎖のＣと対に
なる。細菌細胞では、２本鎖分子は約５×１０6 塩基対
の長さである。この分子の１本の鎖の塩基の各々は、他
の鎖のそれに相補的な塩基と対になる。個々の２鎖分子
の塩基配列は相補的鎖と称される。
【０４５２】ハイブリダイゼーション：下記核酸ハイブ
リダイゼーションの項参照。
【０４５３】不完全相補的な塩基配列（不適性塩基
対）：２本の鎖の間で安定な２本鎖分子が形成される
が、一方の鎖のある塩基部分が、他の鎖の非相補的塩基
と対になっている場合をいう。
【０４５４】標識プローブ又は標識配列：核酸ハイブリ
ダイゼーションによって他の核酸を検出するのに用いる
１本鎖核酸分子。プローブ分子は、特異的に検出され得
るように標識されている。これは、特定の標識分子を核
酸に取り込ませるとか、特定の標識を核酸に結合させる
ことによって達せられる。
【０４５５】最も有効なプローブは、それ自身はハイブ
リダイズしないが、検出すべき核酸が存在する場合のみ
ハイブリダイズすることのできる、標識した１本鎖核酸
配列である。非常に多種類の異なる標識が使える。これ
らの中には、放射性物質、蛍光物質、および化学発光物
質などが含まれる。
【０４５６】核酸ハイブリダイゼーション又はハイブリ
ダイゼーション（再対合又は復元）：２本鎖分子の２本
の鎖間の結合が切れて、２本の１本鎖が互いに完全に分
離することがある。適当な条件下では、これらの相補的
な１本鎖は衝突し、互いを認識し、２重らせん分子を再
形成し得る。このような相補的１本鎖分子から２本鎖分
子が形成されるプロセスを核酸ハイブリダイゼーション
という。核酸ハイブリダイゼーションは、部分的に相補
的なＲＮＡおよびＤＮＡの１本鎖間でもおこり得る。
【０４５７】ヌクレオチド、ヌクレオチド塩基又は塩
基：大部分のＤＮＡは、たった４種類の窒素含有塩基の
配列から成る。即ちアデニンＡ、チミンＴ、グアニン
Ｇ、シトシンＣである。これらの塩基が組み合わさって
遺伝アルファベットを形成し、それらの長い規則正しい
配列は、遺伝暗号の形で遺伝子情報を数多く含む。大部
分のＲＮＡもまた４種類だけの塩基の配列から成る。し
かし、ＲＮＡではチミンの変わりにウリジンＵが入る。
【０４５８】再対合：上記核酸ハイブリダイゼーション
の項参照。
【０４５９】復元：上記核酸ハイブリダイゼーションの
項参照。
【０４６０】リボソームＲＮＡすなわちｒＲＮＡ：リボ
ソーム中にあるＲＮＡ。ほとんどすべてのリボソーム
は、３種類の１本鎖ＲＮＡサブユニットを含む。その１
つは大きく、１つは中位で、１つは小さい リボソーム：蛋白合成に必要な細胞内粒子（ＲＮＡと蛋
白質とを含む）。ウイルス以外のすべての生命体はリボ
ソームを含む ｒＲＮＡ ＤＮＡ又はｒＲＮＡ遺伝子：リボソームＲＮ
ＡをコードするＤＮＡ中の塩基配列。各ｒＲＮＡサブユ
ニットは別個の遺伝子によってコードされる。
【０４６１】ｒＲＮＡプローブ：ｒＲＮＡに相補的で、
ｒＲＮＡにハイブリダイズして安定な２本鎖分子を形成
する標識核酸配列。
【０４６２】ｍＲＮＡ：ｍＲＮＡは、特定の蛋白質を規
定するのに必要な情報を含む直接の遺伝産物である。細
胞の機序によって、ｍＲＮＡの配列が特定の蛋白質に変
換される。各細胞には多くの異なるｍＲＮＡが存在す
る。
【０４６３】ｈｎＲＮＡ：真核細胞の核中に存在するＲ
ＮＡ配列の複雑な一群であって、前駆体ｍＲＮＡ分子を
含む。殆どのｈｎＲＮＡ配列は核からでることはない。
これらの分子の大部分は機能がわかっていない。
【０４６４】ｓｎＲＮＡ：主として真核細胞の核中にて
大量に存在する比較的安定な小さい核ＲＮＡの一群。
【０４６５】前駆体ＲＮＡ：原核生物及び真核生物にお
ける多くのＲＮＡ分子は大きいＲＮＡ分子の一部として
合成され、それから種々のタイプの成熟ＲＮＡ分子とそ
の他のより小さい配列（これは明らかにすてられる）が
形成される。
【０４６６】前駆体特異的ＲＮＡ（ｐｓＲＮＡ）：前駆
体ｍＲＮＡ，ｔＲＮＡ，ｒＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ，ｈｎＲ
ＮＡに存在し、成熟ｒＲＮＡ，ｔＲＮＡ，ｍＲＮＡ，ｓ
ｎＲＮＡ、およびｈｎＲＮＡ分子には存在しないＲＮＡ
配列。
【０４６７】２本鎖核酸分子の熱安定性：熱安定性、す
なわち２本鎖分子集団の半分が１本鎖形に変化する融解
温度。
【０４６８】制限酵素：異種核酸に対する制限−修飾細
胞防御システムの成分。これらの酵素は、非修飾（例え
ばメチル化）２本鎖ＤＮＡをある一点で、二重対称を示
す特定配列のところで切断する。
【０４６９】トランスファーＲＮＡ（ｔＲＮＡ）：蛋白
合成が行われている間、個々のアミノ酸は種々の特異的
アダプター分子すなわちｔＲＮＡ分子によって正しい順
序に並ばされる。各アミノ酸は、異なるｔＲＮＡ種によ
って配列させられる。
【０４７０】以上本発明を詳細に例を挙げて説明した
が、この発明の精神に反することなく、種々の変更、同
等物および別法の使用が可能であり、そのような変更、
同等物および別法のすべては、添附の請求の範囲内に含
まれることは明らかである。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｑ 1/04 Ｇ０１Ｎ 33/566 Ｇ０１Ｎ 33/53 33/569 Ｂ 33/566 33/58 Ａ 33/569 9162−4Ｂ Ｃ１２Ｎ 15/00 Ａ 33/58 9162−4Ｂ Ｂ

Claims (22)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】 １つの群に属する非ウイルス性標的生物
    の存在或いは量を測定するためのハイブリダイゼーショ
    ンアッセイにおいて用いられる核酸プローブであって、
    当該群は少なくとも１つの非ウイルス性生物からなるが
    あらゆる非ウイルス性生物からなるものではなく、当該
    生物はリボゾーム核酸又は転移核酸を含有し、当該群に
    属さない非標的生物のリボゾーム核酸又は転移核酸が当
    該ハイブリダイゼーションアッセイの間存在していても
    よく、 当該核酸プローブは、当該標的生物群由来のリボゾーム
    核酸又は転移核酸中に存在しているが非標的生物由来の
    リボゾーム核酸又は転移核酸中には存在していない１又
    はそれ以上のリボゾームサブユニット配列又は転移核酸
    配列のみとハイブリダイズするのに十分な程度に相補的
    である配列を有する１又はそれ以上の核酸分子を有し、 当該核酸分子は当該リボゾームサブユニット又は転移核
    酸からなる対応する核酸分子よりは長さが短いことを特
    徴とする、核酸プローブ。
  2. 【請求項２】 当該各核酸分子がＤＮＡの１本鎖である
    請求項１に記載のプローブ。
  3. 【請求項３】 当該各核酸分子がＲＮＡの１本鎖である
    請求項１に記載のプローブ。
  4. 【請求項４】 当該各核酸分子が標識されている請求項
    １のプローブ。
  5. 【請求項５】 少なくとも１の放射性原子を含有させる
    ことによって標識した請求項４のプローブ。
  6. 【請求項６】 少なくとも１つの蛍光色素と接合するこ
    とによって標識した請求項４のプローブ。
  7. 【請求項７】 少なくとも１つのビオチンの分子を共有
    結合させることによって標識した請求項４のプローブ。
  8. 【請求項８】 当該標的生物の群が種であり、当該核酸
    分子が当該種の生物のリボゾーム核酸のみとハイブリダ
    イズし、対応する属の他の種に属する生物のリボゾーム
    核酸とはハイブリダイズしないことにより、当該種の生
    物が検出可能である請求項１のプローブ。
  9. 【請求項９】 当該標的生物の群が属であり、当該核酸
    分子が当該属の生物リボゾーム核酸のみとハイブリダイ
    ズし、対応する科の他の属に属する生物のリボゾーム核
    酸とはハイブリダイズしないことにより、当該属の生物
    が検出可能である請求項１のプローブ。
  10. 【請求項１０】 当該標的生物の群が科であり、当該核
    酸分子が当該科の生物のリボゾーム核酸のみとハイブリ
    ダイズし対応する目の他の科に属する生物のリボゾーム
    核酸とはハイブリダイズしないことにより、当該科の生
    物が検出可能である請求項１のプローブ。
  11. 【請求項１１】 当該標的生物の群が目であり、当該核
    酸分子が当該目の生物のリボゾーム核酸のみとハイブリ
    ダイズし対応する綱の他の目に属する生物のリボゾーム
    核酸とはハイブリダイズしないことにより、当該目の生
    物が検出可能である請求項１のプローブ。
  12. 【請求項１２】 当該標的生物の群が綱であり、当該核
    酸分子が当該綱の生物のリボゾーム核酸のみとハイブリ
    ダイズし対応する界の他の綱に属する生物のリボゾーム
    核酸とはハイブリダイズしないことにより、当該綱の生
    物が検出可能である請求項１のプローブ。
  13. 【請求項１３】 当該核酸分子が化学的に合成したもの
    である請求項１のプローブ。
  14. 【請求項１４】 当該核酸分子が、種々の生物に由来す
    る既知のｒＲＮＡ配列を比較することによって同定した
    種特異的なｒＲＮＡ配列に相補的である請求項１３のプ
    ローブ。
  15. 【請求項１５】 ハイブリダイゼーション混合物として
    提供される請求項１のプローブ。
  16. 【請求項１６】 プローブが、当該非ウイルス性生物群
    に特異的な１以上のｒＲＮＡサブユニット配列とハイブ
    リダイズするのに十分な程度に相補的であるように選択
    されたものであって、且つ、当該プローブがハイブリダ
    イズするｒＲＮＡサブユニットよりも長さが短いもので
    ある請求項１のプローブ。
  17. 【請求項１７】 当該プローブが、当該群を構成する生
    物に由来するリボゾームＲＮＡのみとハイブリダイズす
    るｒＲＮＡと相補的なＤＮＡ配列を含むクローンを同定
    することにより選択されたものである請求項１６のプロ
    ーブ。
  18. 【請求項１８】 当該プローブがハイブリダイゼーショ
    ン選択法により選択されたものである請求項１６のプロ
    ーブ。
  19. 【請求項１９】 当該プローブが、群特異的な配列を同
    定しこの群特異的配列を化学的に合成するために種々の
    生物に由来するリボゾーム核酸を比較することによって
    選択されたものである請求項１６のプローブ。
  20. 【請求項２０】 当該リボゾーム核酸がｒＲＮＡであり
    当該群特異的配列が群特異的ｒＲＮＡ配列と相補的であ
    る請求項１９のプローブ。
  21. 【請求項２１】 当該プローブが標識されている請求項
    １９又は２０に記載のプローブ。
  22. 【請求項２２】 当該プローブが、当該プローブに相補
    的な分子を有しないプローブ混合物として提供される、
    請求項１にプローブ。
JP8028340A 1983-01-10 1996-02-15 核酸プローブ Expired - Lifetime JP2976406B2 (ja)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US45672983A 1983-01-10 1983-01-10
US456729 1983-01-10

Related Parent Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP59500696A Division JPS60501339A (ja) 1983-01-10 1984-01-09 生物を検出、同定又は定量する方法およびキット

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPH08266299A true JPH08266299A (ja) 1996-10-15
JP2976406B2 JP2976406B2 (ja) 1999-11-10

Family

ID=23813907

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP59500696A Granted JPS60501339A (ja) 1983-01-10 1984-01-09 生物を検出、同定又は定量する方法およびキット
JP3315062A Expired - Lifetime JPH0771519B2 (ja) 1983-01-10 1991-11-28 微生物の感受性測定法
JP8028340A Expired - Lifetime JP2976406B2 (ja) 1983-01-10 1996-02-15 核酸プローブ

Family Applications Before (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP59500696A Granted JPS60501339A (ja) 1983-01-10 1984-01-09 生物を検出、同定又は定量する方法およびキット
JP3315062A Expired - Lifetime JPH0771519B2 (ja) 1983-01-10 1991-11-28 微生物の感受性測定法

Country Status (11)

Country Link
US (1) US4851330A (ja)
EP (3) EP0131052B1 (ja)
JP (3) JPS60501339A (ja)
AT (3) ATE98300T1 (ja)
AU (3) AU2490284A (ja)
CA (1) CA1215904A (ja)
DE (4) DE3486488T2 (ja)
DK (1) DK430384A (ja)
FI (1) FI843529A0 (ja)
NO (1) NO843574L (ja)
WO (1) WO1984002721A1 (ja)

Families Citing this family (229)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5614361A (en) * 1981-09-25 1997-03-25 Webster, Jr.; John A. Method for identifying and characterizing organisms
US5482834A (en) * 1982-05-17 1996-01-09 Hahnemann University Evaluation of nucleic acids in a biological sample hybridization in a solution of chaotrophic salt solubilized cells
US5641631A (en) * 1983-01-10 1997-06-24 Gen-Probe Incorporated Method for detecting, identifying, and quantitating organisms and viruses
US5723597A (en) * 1983-01-10 1998-03-03 Gen-Probe Incorporated Ribosomal nucleic acid probes for detecting organisms or groups of organisms
US5288611A (en) * 1983-01-10 1994-02-22 Gen-Probe Incorporated Method for detecting, identifying, and quantitating organisms and viruses
WO1985004720A1 (en) * 1984-04-05 1985-10-24 Howard Florey Institute Of Experimental Physiology Hybridization histochemistry
US4766062A (en) * 1984-05-07 1988-08-23 Allied Corporation Displacement polynucleotide assay method and polynucleotide complex reagent therefor
IL75648A0 (en) * 1984-07-05 1985-10-31 Gen Probe Inc Accelerated nucleic acid reassociation method
FR2568588B1 (fr) * 1984-08-02 1987-02-13 Inst Nat Sante Rech Med Sonde et procede pour la detection de micro-organismes determines, notamment des legionella dans les milieux les contenant
US5955261A (en) * 1984-09-04 1999-09-21 Gen-Probe Incorporated Method for detecting the presence of group-specific viral mRNA in a sample
IL76997A0 (en) * 1984-11-14 1986-04-29 Oncogene Science Inc Probes and methods useful for detecting chromosomal translocation
US4820630A (en) * 1984-11-23 1989-04-11 Digene Diagnostics, Incorporated Assay for nucleic acid sequences, particularly genetic lesions, using interactive labels
US4670379A (en) * 1984-12-19 1987-06-02 E. I. Du Pont De Nemours And Company Polynucleotide hydridization assays employing catalyzed luminescence
US4785086A (en) * 1985-01-17 1988-11-15 Integrated Genetics, Inc. Test for Campylobacter
US5851767A (en) * 1985-03-04 1998-12-22 The Regents Of The University Of California Detection of prokaryotic organism by DNA hybridization
US6040166A (en) 1985-03-28 2000-03-21 Roche Molecular Systems, Inc. Kits for amplifying and detecting nucleic acid sequences, including a probe
EP0219842A1 (en) * 1985-10-23 1987-04-29 Allied Corporation Nucleic acid assay employing pair segment inhibition or competition
DE3687645T2 (de) * 1986-01-07 1993-05-27 Gen Probe Inc Verfahren der beschleunigten wiederassoziation der nukleinsaeure.
US5447848A (en) * 1986-01-22 1995-09-05 Amoco Corporation Detection of campylobacter with nucleic acid probes
DE3785590T2 (de) * 1986-01-22 1993-09-16 Amoco Corp Campylobacter-sonde.
AU604684B2 (en) * 1986-03-20 1991-01-03 Gen-Probe Incorporated Method for releasing RNA and DNA from cells
FR2596774B1 (fr) * 1986-04-04 1988-07-22 Pasteur Institut Sondes oligonucleotidiques et procedes pour la detection par hybridation des acides nucleiques de bacteries et autres etres vivants
GB8608629D0 (en) * 1986-04-09 1986-05-14 Biotechnica Ltd Labelling
ATE110418T1 (de) * 1986-06-25 1994-09-15 Univ California Nachweis von mykoplasma durch hybridisierung von dns.
JP2870693B2 (ja) * 1986-06-30 1999-03-17 ザ・リ−ジエンツ・オブ・ザ・ユニバ−シテイ−・オブ・カリフオルニア オリゴヌクレオチドプローブ及びそれを用いて原核生物の存在を決定するための方法
EP0277237A4 (en) * 1986-07-10 1990-02-22 Toray Industries METHOD AND PROBE FOR SCREENING FOR BACTERIA IN SAMPLES.
US5310650A (en) * 1986-09-29 1994-05-10 Abbott Laboratoires Method and device for improved reaction kinetics in nucleic acid hybridizations
DE3752172T3 (de) * 1986-11-24 2008-04-10 Gen-Probe Inc., San Diego Nukleinsäuresonden zum Nachweis und/oder zur Quantifizierung von nicht-viralen Organismen
US6150517A (en) * 1986-11-24 2000-11-21 Gen-Probe Methods for making oligonucleotide probes for the detection and/or quantitation of non-viral organisms
US5541308A (en) * 1986-11-24 1996-07-30 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid probes for detection and/or quantitation of non-viral organisms
US7087742B1 (en) 1986-11-24 2006-08-08 Gen-Probe Incorporated Oligonucleotide probes for the detection and/or quantitation of non-viral organisms
US7138516B1 (en) 1986-11-24 2006-11-21 Gen-Probe Incorporated Oligonucleotide probes for the detection and/or quantitation of non-viral organisms
US5994059A (en) * 1986-11-24 1999-11-30 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid probes and methods for detecting Streptomyces enterococci
US5034314A (en) * 1986-12-22 1991-07-23 Olin Corporation Method and kit for separating double-stranded nucleic acid from a single-stranded/double-stranded mixture of nucleic acids
US5369005A (en) * 1987-01-09 1994-11-29 Board Of Regents, The University Of Texas System Method for mycoplasma detection in a biological sample
US6270961B1 (en) * 1987-04-01 2001-08-07 Hyseq, Inc. Methods and apparatus for DNA sequencing and DNA identification
US5225324A (en) * 1987-04-24 1993-07-06 Bioscience International, Inc. Diagnostics for mycobacteria in public health, medical, and veterinary practice
GB8709803D0 (en) * 1987-04-24 1987-05-28 Mcfadden J J Treatment of crohn's disease &c
JPS6446650A (en) * 1987-08-18 1989-02-21 Tosoh Corp Nucleic acid hybridization assay method
US5089386A (en) * 1987-09-11 1992-02-18 Gene-Trak Systems Test for listeria
AU613989B2 (en) * 1987-11-24 1991-08-15 Gen-Probe Incorporated Means and method for enhancing nucleic acid hybridization
US5030557A (en) * 1987-11-24 1991-07-09 Ml Technology Venture Means and method for enhancing nucleic acid hybridization
WO1989005359A1 (en) * 1987-12-01 1989-06-15 Integrated Genetics, Inc. Detection of salmonella
US5212059A (en) * 1988-01-11 1993-05-18 Microprobe Corporation Oligonucleotide probes for the detection of periodontal pathogens
WO1989006697A1 (en) * 1988-01-19 1989-07-27 The University Of Sydney Detection of cell death
DE68922428T2 (de) * 1988-03-28 1996-01-25 Amoco Corp Nachweis von eukaryotischen Mikroorganismen.
US5294533A (en) * 1988-07-05 1994-03-15 Baylor College Of Medicine Antisense oligonucleotide antibiotics complementary to the macromolecular synthesis operon, methods of treating bacterial infections and methods for identification of bacteria
US7172863B1 (en) 1988-12-09 2007-02-06 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid probes and methods for detecting Neisseria gonorrhoeae
SE8901188D0 (sv) * 1989-04-05 1989-04-05 Astra Ab A novel diagnostic method
EP0418346A1 (en) * 1989-02-06 1991-03-27 Gene-Trak Systems Probes and methods for the detection of listeria
IE81145B1 (en) * 1989-04-20 2000-05-03 Thomas Gerard Barry Generation of specific probes for target nucleotide sequences
JP3105241B2 (ja) * 1989-05-23 2000-10-30 ジーン―トラック・システムス 黄色ブドウ球菌の検出用核酸プローブ
CA2031499A1 (en) * 1989-05-31 1990-12-01 David J. Lane Universal eubacteria nucleic acid probes and methods
US5856088A (en) * 1989-07-11 1999-01-05 Gen-Probe Incorporated Detection of human immunodeficiency virus type 1
US6589734B1 (en) * 1989-07-11 2003-07-08 Gen-Probe Incorporated Detection of HIV
WO1991002092A1 (en) * 1989-08-11 1991-02-21 Gene-Trak Systems NUCLEIC ACID PROBES FOR THE DETECTION OF $i(PNEUMOCYSTIS CARINII)
US5849504A (en) * 1989-08-11 1998-12-15 Amoco Corporation Nucleic acid probes and methods for detecting Pneumocystis carinii
US5571674A (en) * 1989-09-18 1996-11-05 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York DNA oligomers for use in detection of campylobacter pylori and methods of using such DNA oligomers
CA2025181A1 (en) * 1989-10-12 1991-04-13 William G. Weisburg Nucleic acid probes and methods for detecting fungi
US5721097A (en) * 1990-02-02 1998-02-24 N. V. Innogenetics S.A. Hybridization probes for the detection of branhamella catarrhalis strains
US5912117A (en) * 1990-03-07 1999-06-15 Roche Molecular Systems, Inc. Method for diagnosis of lyme disease
AU7429591A (en) * 1990-04-18 1991-10-24 Gene-Trak Systems Nucleic acid probes for the detection of giardia lamblia
DE4014845A1 (de) * 1990-05-09 1991-11-14 Bayer Ag Verfahren zur detektion und quantitativen bestimmung von nitrosomonas-staemmen in abwaessern oder boeden
US5635348A (en) * 1990-10-05 1997-06-03 Hoffmann-La Roche Inc. Method and probes for identifying bacteria found in blood
US5620847A (en) * 1990-10-05 1997-04-15 Hoffman-La Roche Inc. Methods and reagents for detection of bacteria in cerebrospinal fluid
US5491225A (en) * 1991-12-19 1996-02-13 Hoffmann-La Roche Inc. PCR primers for detection of legionella species and methods for controlling visual intensity in hybridization assays
US5472843A (en) * 1991-04-25 1995-12-05 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid probes to Haemophilus influenzae
US6028187A (en) * 1991-08-01 2000-02-22 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid probes to Listeria monocytogenes
WO1993003184A1 (en) * 1991-08-09 1993-02-18 Mccann Associates, Inc. Method for detecting lyme disease and composition
US5422242A (en) * 1991-08-15 1995-06-06 Hoffmann-La Roche Inc. Mycobacterium primers and probes
US5738987A (en) * 1991-09-04 1998-04-14 Gen-Probe Incorporated 16S ribosomal nucleic acid probes to streptococcus pneumoniae
US5292874A (en) * 1991-09-04 1994-03-08 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid probes to Staphylococcus aureus
US5558990A (en) * 1991-12-18 1996-09-24 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid probes to blastomyces dermatitidis and paracoccidioides brasiliensis
US5284747A (en) * 1991-12-18 1994-02-08 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid probes to Coccidioides immitis
US6300058B1 (en) 1992-01-29 2001-10-09 Hitachi Chemical Research Center, Inc. Method for measuring messenger RNA
US6100099A (en) * 1994-09-06 2000-08-08 Abbott Laboratories Test strip having a diagonal array of capture spots
US6232061B1 (en) * 1992-04-01 2001-05-15 Cambridge Neuroscience, Inc. Homology cloning
JP4090498B2 (ja) * 1992-04-28 2008-05-28 ジェン−プローブ・インコーポレイテッド マイコバクテリウム・ツベルクロシスのための核酸プロセスプローブ
US6093538A (en) * 1992-05-06 2000-07-25 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid probes to ureaplasma
EP0581171B1 (en) * 1992-07-20 1998-02-04 Kabushiki Kaisha Yakult Honsha Species-specific oligonucleotides for bifidobacteria and a method of detection using the same
JPH07509361A (ja) * 1992-07-28 1995-10-19 日立化成工業株式会社 遺伝子検出システム
US5580971A (en) * 1992-07-28 1996-12-03 Hitachi Chemical Company, Ltd. Fungal detection system based on rRNA probes
US5374718A (en) * 1992-08-26 1994-12-20 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid probes to chlamydia pneumoniae
JP2558420B2 (ja) * 1992-10-23 1996-11-27 扶桑薬品工業株式会社 感染症診断用プローブ
KR100325554B1 (ko) 1993-03-26 2002-11-02 젠-프로브 인코포레이티드 사람의면역결핍 바이러스타입1의검출
US5767259A (en) * 1994-12-27 1998-06-16 Naxcor Oligonucleotides containing base-free linking groups with photoactivatable side chains
US6277570B1 (en) 1993-04-13 2001-08-21 Naxcor Nucleic acid sequence detection employing probes comprising non-nucleosidic coumarin derivatives as polynucleotide-crosslinking agents
US6495676B1 (en) 1993-04-13 2002-12-17 Naxcor Nucleic acid sequence detection employing probes comprising non-nucleosidic coumarin derivatives as polynucleotide-crosslinking agents
US5616464A (en) * 1994-12-27 1997-04-01 Naxcor Nucleic acid sequence detection employing amplification probes
WO1994028174A1 (en) * 1993-05-24 1994-12-08 Amoco Corporation Nucleic acid probes for bacteria of the genus legionella
US5550040A (en) 1993-06-23 1996-08-27 Hoffman-La Roche Inc. Method, reagents and kits for the detection of Neisseria gonorrhoeae
US5739309A (en) * 1993-07-19 1998-04-14 Gen-Probe Incorporated Enhancement of oligonucleotide inhibition of protein production, cell proliferation and / or multiplication of infectious disease pathogens
WO1995003407A2 (en) * 1993-07-19 1995-02-02 Gen-Probe Incorporated Oligonucleotides with activity against human immunodeficiency virus
CN1143977A (zh) * 1993-07-23 1997-02-26 希斯克有限公司 筛选未知有机体的方法
US6136529A (en) * 1993-09-03 2000-10-24 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid probes to Mycobacterium avium complex
US5484909A (en) * 1993-09-10 1996-01-16 Amoco Corporation Nucleic acid probes for the detection of bacteria of the genera Pediococcus and Lactobacillus and methods for the detection of the bacterial agents causing spoilage of beer
US5582978A (en) * 1994-01-21 1996-12-10 Amoco Corporation Nucleic acid probes for the detection of Haemophilus influenzae
JPH10500310A (ja) 1994-05-19 1998-01-13 ダコ アクティーゼルスカブ 淋菌及びトラコーマ クラミジアの検出のためのｐｎａ プローブ
US5712095A (en) * 1994-06-16 1998-01-27 Becton Dickinson And Company Rapid and sensitive detection of antibiotic-resistant mycobacteria using oligonucleotide probes specific for ribosomal RNA precursors
US5656427A (en) * 1994-08-29 1997-08-12 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid hybridization assay probes, helper probes and amplification oligonucleotides targeted to Mycoplasma pneumoniae nucleic acid
US5514551A (en) * 1994-10-14 1996-05-07 Gen-Probe Incorporated Compositions for the detection of Chlamydia trachomatis
US6180339B1 (en) 1995-01-13 2001-01-30 Bayer Corporation Nucleic acid probes for the detection and identification of fungi
US5707802A (en) * 1995-01-13 1998-01-13 Ciba Corning Diagnostics Corp. Nucleic acid probes for the detection and identification of fungi
US5763169A (en) * 1995-01-13 1998-06-09 Chiron Diagnostics Corporation Nucleic acid probes for the detection and identification of fungi
DK0805876T3 (da) * 1995-01-19 2000-11-06 Gen Probe Inc Nukleinsyreamplifikationsoligonukleotider og prober til Lyme-sygdom-associeret Borrelia
US5622827A (en) * 1995-02-07 1997-04-22 Gen-Probe Incorporated Amplification primers and nucleic acid probes targeted to coccidioides immitis nucleic acid
US5739311A (en) * 1995-06-07 1998-04-14 Gen-Probe Incorporated Enzymatic synthesis of phosphorothioate oligonucleotides using restriction endonucleases
US5652126A (en) * 1995-06-07 1997-07-29 Gen-Probe Incorporated Use of restriction endonuclease sequences for cleaving phosphorothioate oligonucleotides
US5916777A (en) * 1995-06-07 1999-06-29 Gen-Probe Incorporated Enzymatic synthesis of oligonucleotides using 3'-ribonucleotide primers
US5932450A (en) * 1995-06-07 1999-08-03 Gen-Probe Incorporated Enzymatic synthesis of oligonucleotides using digestible templates
US5747252A (en) * 1995-06-07 1998-05-05 Gen-Probe Incorporated Nucleic acid probes and amplification oligonucleotides for Neisseria species
US5731150A (en) * 1995-11-01 1998-03-24 Chiron Diagnostic Corporation IS6110 based molecular detection of mycobacterium tuberculosis
US5888733A (en) * 1995-11-16 1999-03-30 Dako A/S In situ hybridization to detect specific nucleic acid sequences in eucaryotic samples
WO1997044488A2 (en) 1996-05-22 1997-11-27 Gen-Probe Incorporated Compositions and methods for the detection of mycobacterium kansasii
EP0822261B1 (en) * 1996-07-29 2002-07-03 Academia Sinica Methods for rapid antimicrobial susceptibility testing
US6110676A (en) * 1996-12-04 2000-08-29 Boston Probes, Inc. Methods for suppressing the binding of detectable probes to non-target sequences in hybridization assays
CA2286864A1 (en) * 1997-01-10 1998-07-16 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Hybridization-based genetic amplification and analysis
NO974299D0 (no) * 1997-09-18 1997-09-18 Forskningsparken I Aas As Metode for stabil merking av mikroorganismer
US6962778B1 (en) 1997-09-25 2005-11-08 Boston Probes, Inc. Methods, kits and compositions for suppressing the binding of detectable probes to non-target sequences in hybridization assays
BR9814271A (pt) * 1997-12-12 2001-03-20 Digene Corp Determinação de doenças relacionadas com o vìrus do papiloma humano
US7399589B2 (en) * 1998-02-06 2008-07-15 Digene Corporation Immunological detection of RNA:DNA hybrids on microarrays
ATE363339T1 (de) 1998-05-01 2007-06-15 Gen Probe Inc Rührvorrichtung für den fluiden inhalt eines behälters
US6664045B1 (en) 1998-06-18 2003-12-16 Boston Probes, Inc. PNA probes, probe sets, methods and kits pertaining to the detection of microorganisms
CA2330732A1 (en) * 1998-06-19 1999-12-23 Mosaic Technologies Detection of non-viral organisms with srp rna
US6238927B1 (en) 1998-10-05 2001-05-29 Mosaic Technologies, Incorporated Reverse displacement assay for detection of nucleic acid sequences
US6235479B1 (en) 1999-04-13 2001-05-22 Bio Merieux, Inc. Methods and devices for performing analysis of a nucleic acid sample
US6894156B2 (en) * 1999-04-15 2005-05-17 E. I. Du Pont De Nemours And Company Nucleic acid fragments for the identification of dechlorinating bacteria
US6797817B1 (en) 1999-04-15 2004-09-28 E. I. Du Pont De Nemours And Company Nucleic acid fragments for the identification of dechlorinating bacteria
US6469156B1 (en) 1999-04-20 2002-10-22 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Rapid and sensitive method for detecting histoplasma capsulatum
US6376186B1 (en) 1999-05-03 2002-04-23 Gen-Probe Incorporated Polynucleotide probes for detection and quantitation of staphylococcus
WO2000066785A2 (en) 1999-05-03 2000-11-09 Gen-Probe Incorporated Polynucleotide probes for detection and quantitation of bacteria in the family enterobacteriaceae
US6235484B1 (en) 1999-05-03 2001-05-22 Gen-Probe Incorporated Polynucleotide probes for detection and quantitation of actinomycetes
US6821770B1 (en) 1999-05-03 2004-11-23 Gen-Probe Incorporated Polynucleotide matrix-based method of identifying microorganisms
US6738502B1 (en) 1999-06-04 2004-05-18 Kairos Scientific, Inc. Multispectral taxonomic identification
US7439016B1 (en) 2000-06-15 2008-10-21 Digene Corporation Detection of nucleic acids by type-specific hybrid capture method
US7601497B2 (en) 2000-06-15 2009-10-13 Qiagen Gaithersburg, Inc. Detection of nucleic acids by target-specific hybrid capture method
GB0016814D0 (en) 2000-07-07 2000-08-30 Lee Helen Improved dipstick assays (3)
US20020055116A1 (en) 2000-09-12 2002-05-09 Cunningham Melissa M. Compositions, methods and kits for determining the presence of cryptosporidium organisms in a test sample
DE10050135A1 (de) * 2000-10-11 2002-04-18 Biochem Labor Fuer Biolog Und Verfahren zur Sterilitätsprüfung von insbesondere flüssigen Medien
US8214153B1 (en) 2001-01-26 2012-07-03 Technology Licensing Co. Llc Methods for determining the genetic affinity of microorganisms and viruses
CA2478020C (en) * 2001-03-01 2006-12-19 The Johns Hopkins University Quantitative assay for the simultaneous detection and speciation of bacterial infections
US20030027135A1 (en) * 2001-03-02 2003-02-06 Ecker David J. Method for rapid detection and identification of bioagents
KR100436554B1 (ko) * 2001-04-17 2004-06-18 삼성전자주식회사 혼성화된 핵산의 검출감도를 증가시키는 방법
JP2003189869A (ja) * 2001-12-27 2003-07-08 Nisshinbo Ind Inc 被検体中に含まれる生物種を判定する方法およびそれに用いるキット
JP4560285B2 (ja) * 2002-10-02 2010-10-13 栄研化学株式会社 核酸沈澱剤を利用した核酸増幅産物のハイブリダイゼーションアッセイ
US7718361B2 (en) 2002-12-06 2010-05-18 Roche Molecular Systems, Inc. Quantitative test for bacterial pathogens
CA2507240C (en) 2002-12-06 2011-05-24 F. Hoffmann-La Roche Ag Multiplex assay detection of pathogenic organisms
WO2004065565A2 (en) * 2003-01-23 2004-08-05 Science Applications International Corporation Identification and use of informative sequences
CA2525413C (en) 2003-05-19 2010-08-17 Gen-Probe Incorporated Compositions, methods and kits for determining the presence of trichomonas vaginalis in a test sample
WO2006099255A2 (en) 2005-03-10 2006-09-21 Gen-Probe Incorporated Systems and methods to perform assays for detecting or quantifying analytes within samples
EP1909108B1 (en) 2005-03-10 2019-05-29 Gen-Probe Incorporated Systems and methods to perform assays for detecting or quantifiying analytes
BRPI0610794A2 (pt) 2005-05-18 2010-11-09 Decore Genetics Ehf métodos para diagnosticar uma susceptibilidade a um cáncer e para predizer um risco aumentado de cáncer, kit para ensaiar uma amostra de um indivìduo para detectar uma susceptibilidade a um cáncer, e, métodos para diagnosticar um risco aumentado de cáncer e para diagnosticar um cáncer associado com chr8q24.21
US7498137B2 (en) * 2005-06-06 2009-03-03 Gen-Probe Incorporated Compositions and methods for determining the presence of Chlamydophila pneumoniae in a test sample
CN101238222B (zh) * 2005-06-20 2013-04-10 解码遗传学私营有限责任公司 作为2型糖尿病风险诊断标记物的tcf7l2基因的遗传变异体
WO2007075026A1 (en) * 2005-12-27 2007-07-05 Samsung Electronics Co., Ltd Primers, probes, microarray, and method for specific detection of nine respiratory disease-associated bacterial species
JP2009524440A (ja) 2006-01-27 2009-07-02 アテナ ダイアグノスティックス，インコーポレイテッド アタキシア−オキュラー・アプラキシア２（ａｔａｘｉａ−ｏｃｕｌａｒａｐｒａｘｉａ２）（ａｏａ２）に関連した突然変異を検出する方法
WO2007120869A2 (en) * 2006-04-14 2007-10-25 University Of South Florida Molecular detection and quantification of enterococci
KR100923303B1 (ko) * 2006-09-28 2009-10-23 삼성전자주식회사 10 종의 호흡기 질환을 야기시키는 박테리아의 표적 서열을 증폭시킬 수 있는 프라이머 세트, 10 종의 박테리아의 표적 서열에 특이적으로 혼성화하는 프로브 세트, 상기 프로브 세트가 고정화되어 있는 마이크로어레이 및 상기 프로브 세트를 이용하여 10 종의 박테리아의 존재를 검출하는 방법
KR100868765B1 (ko) * 2006-09-29 2008-11-17 삼성전자주식회사 항생제 내성 박테리아의 표적 서열을 증폭시킬 수 있는프라이머 세트, 박테리아의 표적 서열에 특이적으로혼성화하는 프로브 세트, 상기 프로브 세트가 고정화되어있는 마이크로어레이 및 상기 프로브 세트를 이용하여박테리아의 존재를 검출하는 방법
KR20090087486A (ko) * 2006-11-30 2009-08-17 디코드 제네틱스 이에이치에프 타입 ２ 당뇨병의 유전적 감수성 변이
WO2008068780A2 (en) * 2006-12-05 2008-06-12 Decode Genetics Ehf. Genetic markers for risk management of cardiac arrhythmia
WO2008096375A2 (en) 2007-02-07 2008-08-14 Decode Genetics Ehf. Genetic variants contributing to risk of prostate cancer
BRPI0807927A2 (pt) * 2007-02-21 2014-06-24 Decode Genetics Ehf Métodos para determinar uma susceptibilidade a doença cardiovascular em um indivíduo humano, de identificação de um marcador para uso para avaliar susceptibilidade a doença cardiovascular, para genotipar uma amostra de ácido nucleico, para avaliar um indivíduo para probabilidade de resposta a um agente terapêutico, para predizer prognóstico de um indivíduo diagnosticado com doença cardiovascular, e para monitorar progresso de tratamento de um indivíduo passando por tratamento para doença cardiovascular, kit para avaliar susceptibilidade a doença cardiovascular em um indivíduo humano, uso de uma sonda de oligonucleotídeo, meio legível por computador, e, aparelho para determinar um indicador genético para doença cardiovascular em um indivíduo humano
EP2155907B1 (en) * 2007-04-30 2015-05-27 Decode Genetics EHF Genetic variants useful for risk assessment of coronary artery disease and myocardial infarction
AU2008310530A1 (en) * 2007-10-12 2009-04-16 Decode Genetics Ehf Sequence variants for inferring human pigmentation patterns
CN101827945A (zh) * 2007-10-17 2010-09-08 3M创新有限公司 微生物的快速检测
US8697360B2 (en) 2007-11-30 2014-04-15 Decode Genetics Ehf. Genetic variants on CHR 11Q and 6Q as markers for prostate and colorectal cancer predisposition
US8367337B2 (en) 2007-12-21 2013-02-05 Biomerieux S.A. Detection of methicillin-resistant Staphylococcus aureus
US8828657B2 (en) * 2008-02-14 2014-09-09 Decode Genetics Ehf. Susceptibility variants for lung cancer
WO2009122448A2 (en) 2008-04-01 2009-10-08 Decode Genetics Ehf Susceptibility variants for peripheral arterial disease and abdominal aortic aneurysm
CN102203293A (zh) 2008-10-27 2011-09-28 奇亚根盖瑟斯堡股份有限公司 快速结果杂交捕获测定和系统
WO2010067381A1 (en) * 2008-12-12 2010-06-17 Decode Genetics Ehf Genetic variants as markers for use in diagnosis, prognosis and treatment of eosinophilia, asthma, and myocardial infarction
AU2010208311B2 (en) * 2009-01-28 2016-07-07 Qiagen Gaithersburg, Inc. Sequence-specific large volume sample preparation method and assay
CN102414327B (zh) 2009-05-01 2015-04-08 奇亚根盖瑟斯堡股份有限公司 用于在样品中检测rna剪接形式的非靶向扩增方法
JP5575239B2 (ja) 2009-07-21 2014-08-20 ジェン−プローブ・インコーポレーテッド 拡張されたダイナミックレンジにわたる核酸配列の定量的検出のための方法および組成物
US8614062B1 (en) 2009-07-24 2013-12-24 University Of South Florida RNA-based system and method to differentiate seafood
WO2011032124A1 (en) 2009-09-14 2011-03-17 Qiagen Gaithersburg, Inc. Compositions and methods for recovery of nucleic acids or proteins from tissue samples fixed in cytology media
CA2787958A1 (en) 2009-12-21 2011-07-14 Becton, Dickinson And Company Methods for identifying drug resistant mycobacterium
US9404160B2 (en) 2009-12-22 2016-08-02 Becton, Dickinson And Company Methods for the detection of microorganisms
US8790879B2 (en) 2010-01-22 2014-07-29 Gen-Probe Incorporated Probes for detecting the presence of Trichomonas vaginalis in a sample
CA2787924A1 (en) 2010-01-29 2011-08-04 Qiagen Gaithersburg, Inc. Methods and compositions for sequence-specific purification and multiplex analysis of nucleic acids
JP2013517803A (ja) 2010-01-29 2013-05-20 キアジェン ゲイサーズバーグ インコーポレイテッド サンプル中のｈｐｖの存在を決定および確認する方法
US9476812B2 (en) 2010-04-21 2016-10-25 Dna Electronics, Inc. Methods for isolating a target analyte from a heterogeneous sample
US20110262989A1 (en) 2010-04-21 2011-10-27 Nanomr, Inc. Isolating a target analyte from a body fluid
AU2011255638B2 (en) 2010-05-19 2016-08-25 Qiagen Gaithersburg, Inc. Methods and compositions for sequence-specific purification and multiplex analysis of nucleic acids
JP6153866B2 (ja) 2010-05-25 2017-06-28 キアゲン ガイサーズバーグ アイエヌシー． 迅速なハイブリッド捕捉アッセイ、及び関連する戦略的に切断されたプローブ
EP2752671A3 (en) 2010-07-23 2016-08-24 Beckman Coulter, Inc. System or method of including analytical units
CA2819230A1 (en) 2010-10-28 2012-05-03 Yale University Methods and compositions for assessing and treating cancer
EP2643470B1 (en) 2010-11-24 2016-02-03 Yale University Compositions and methods for treating ischemic injury with d-dt
US9522396B2 (en) 2010-12-29 2016-12-20 S.D. Sight Diagnostics Ltd. Apparatus and method for automatic detection of pathogens
AU2012222178B2 (en) 2011-02-24 2014-12-18 Gen-Probe Incorporated Systems and methods for distinguishing optical signals of different modulation frequencies in an optical signal detector
AU2012220575B2 (en) 2011-02-24 2017-01-12 Qiagen Gaithersburg, Inc. Materials and methods for detection of HPV nucleic acid
EP2723901B1 (en) 2011-06-22 2018-08-08 Yale University Compositions and methods of diagnosing diseases and disorders associated with cell death
JP6320926B2 (ja) 2011-11-07 2018-05-09 ベックマン コールター， インコーポレイテッド 遠心分離機システムおよびワークフロー
JP6190380B2 (ja) 2011-11-07 2017-08-30 ベックマン コールター， インコーポレイテッド 等分機システムおよびワークフロー
WO2013070756A2 (en) 2011-11-07 2013-05-16 Beckman Coulter, Inc. System and method for processing samples
JP6062449B2 (ja) 2011-11-07 2017-01-18 ベックマン コールター， インコーポレイテッド 標本コンテナ検出
CN103975245A (zh) 2011-11-07 2014-08-06 贝克曼考尔特公司 用于试样输送系统的磁阻尼
ES2844324T3 (es) 2011-11-07 2021-07-21 Beckman Coulter Inc Brazo robótico
ES2693158T3 (es) 2011-12-23 2018-12-07 bioMérieux Detección de cepas variantes mecA de Staphylococcus aureus resistentes a meticilina
US10640807B2 (en) 2011-12-29 2020-05-05 S.D. Sight Diagnostics Ltd Methods and systems for detecting a pathogen in a biological sample
ES2663955T3 (es) 2012-05-04 2018-04-17 The Regents Of The University Of California Evaluación de la susceptibilidad a antibióticos utilizando sondas para arn prerribosómico
US10472683B2 (en) 2012-06-01 2019-11-12 Akron Biotechnology, LLC. Detection of Mycoplasma in cell cultures and cell culture derived biologicals
AU2013202808B2 (en) 2012-07-31 2014-11-13 Gen-Probe Incorporated System and method for performing multiplex thermal melt analysis
US9434940B2 (en) 2012-12-19 2016-09-06 Dna Electronics, Inc. Methods for universal target capture
US9551704B2 (en) 2012-12-19 2017-01-24 Dna Electronics, Inc. Target detection
US10000557B2 (en) 2012-12-19 2018-06-19 Dnae Group Holdings Limited Methods for raising antibodies
US9599610B2 (en) 2012-12-19 2017-03-21 Dnae Group Holdings Limited Target capture system
US9995742B2 (en) 2012-12-19 2018-06-12 Dnae Group Holdings Limited Sample entry
AU2013202805B2 (en) 2013-03-14 2015-07-16 Gen-Probe Incorporated System and method for extending the capabilities of a diagnostic analyzer
AU2013202788B2 (en) 2013-03-14 2015-10-01 Gen-Probe Incorporated Indexing signal detection module
IL227276A0 (en) 2013-07-01 2014-03-06 Parasight Ltd A method and system for obtaining a monolayer of cells, for use specifically for diagnosis
EP3017067B1 (en) * 2013-07-03 2018-08-29 Qvella Corporation Methods of targeted antibiotic susceptibility testing
US11993816B2 (en) 2014-03-27 2024-05-28 Yale University Circulating microRNA as biomarkers for endometriosis
JP6976167B2 (ja) 2014-06-13 2021-12-08 キュー−リネア エービー 微生物の検出及び特徴付け方法
ES2971094T3 (es) 2015-04-07 2024-06-03 Polyskope Labs Detección de uno o más patógenos
GB201507026D0 (en) 2015-04-24 2015-06-10 Linea Ab Q Medical sample transportation container
CA2998829A1 (en) 2015-09-17 2017-03-23 S.D. Sight Diagnostics Ltd Methods and apparatus for detecting an entity in a bodily sample
EP3436864B1 (en) 2016-03-30 2021-04-28 S.D. Sight Diagnostics Ltd. Image processing device for identifying blood parasites
GB2554767A (en) 2016-04-21 2018-04-11 Q Linea Ab Detecting and characterising a microorganism
US11099175B2 (en) 2016-05-11 2021-08-24 S.D. Sight Diagnostics Ltd. Performing optical measurements on a sample
WO2017195205A1 (en) 2016-05-11 2017-11-16 S.D. Sight Diagnostics Ltd Sample carrier for optical measurements
WO2018098241A1 (en) 2016-11-22 2018-05-31 University Of Rochester Methods of assessing risk of recurrent prostate cancer
US10427162B2 (en) 2016-12-21 2019-10-01 Quandx Inc. Systems and methods for molecular diagnostics
CA3081669A1 (en) 2017-11-14 2019-05-23 S.D. Sight Diagnostics Ltd Sample carrier for optical measurements
WO2019116234A1 (en) 2017-12-12 2019-06-20 Nestec S.A. Methods for determining microbiome ribosomal rna composition changes
US20210310059A1 (en) 2018-08-08 2021-10-07 Gen-Probe Incorporated Compositions, methods and kits for detecting mycoplasma genitalium
EP4018004A1 (en) 2019-08-23 2022-06-29 Gen-Probe Incorporated Compositions, methods and kits for detecting treponema pallidum
WO2021046270A1 (en) 2019-09-05 2021-03-11 Gen-Probe Incorporated Detection of chlamydia trachomatis nucleic acid variants

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US435835A (en) * 1890-09-02 Adolph w

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4302204A (en) * 1979-07-02 1981-11-24 The Board Of Trustees Of Leland Stanford Junior University Transfer and detection of nucleic acids
US4228238A (en) * 1979-08-23 1980-10-14 The Allor Foundation Method of laboratory testing in water-based culture media for zones of inhibition
US4358535A (en) * 1980-12-08 1982-11-09 Board Of Regents Of The University Of Washington Specific DNA probes in diagnostic microbiology
US4416988A (en) * 1980-12-23 1983-11-22 Harvey Rubin Detection and isolation of enkephalin mRNA using a synthetic oligodeoxynucleotide
EP0155360B1 (en) * 1981-09-25 1988-12-14 John A. Webster, Jr. Method for identifying and characterizing organisms
US4717653A (en) * 1981-09-25 1988-01-05 Webster John A Jr Method for identifying and characterizing organisms
EP0155359B1 (en) * 1981-09-25 1988-01-07 John A. Webster, Jr. Method for identifying and characterizing organisms
EP0119209A1 (en) * 1982-09-20 1984-09-26 President And Fellows Of Harvard College Identification of microorganisms
US4699877A (en) * 1982-11-04 1987-10-13 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for detecting human tumors

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US435835A (en) * 1890-09-02 Adolph w

Also Published As

Publication number Publication date
DE3486254D1 (de) 1994-01-20
DE3486467T3 (de) 2004-10-14
ATE202801T1 (de) 2001-07-15
DE3486467T2 (de) 1998-12-03
JPH0771519B2 (ja) 1995-08-02
JPH0578319B2 (ja) 1993-10-28
ATE167524T1 (de) 1998-07-15
AU625739B2 (en) 1992-07-16
JPS60501339A (ja) 1985-08-22
US4851330A (en) 1989-07-25
JP2976406B2 (ja) 1999-11-10
EP0131052A1 (en) 1985-01-16
AU5744786A (en) 1986-09-18
EP0531798B2 (en) 2003-12-17
EP0531798A2 (en) 1993-03-17
EP0131052B1 (en) 1993-12-08
CA1215904A (en) 1986-12-30
DK430384D0 (da) 1984-09-07
FI843529L (fi) 1984-09-10
DK430384A (da) 1984-10-29
DE3486488T2 (de) 2003-04-03
NO843574L (no) 1984-09-07
JPH05211896A (ja) 1993-08-24
DE3486488D1 (de) 2001-08-09
AU605743B2 (en) 1991-01-24
DE3486254T2 (de) 1994-05-05
DE3486467D1 (de) 1998-07-23
EP0531798B1 (en) 1998-06-17
EP0756010A3 (en) 1998-12-23
AU2846089A (en) 1989-05-11
FI843529A0 (fi) 1984-09-10
WO1984002721A1 (en) 1984-07-19
EP0531798A3 (ja) 1994-03-02
EP0756010A2 (en) 1997-01-29
ATE98300T1 (de) 1993-12-15
EP0756010B1 (en) 2001-07-04
AU2490284A (en) 1984-08-02
EP0131052A4 (en) 1987-09-08
DE131052T1 (de) 1987-03-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2976406B2 (ja) 核酸プローブ
US5567587A (en) Method for detecting, the presence and amount of prokaryotic organisms using specific rRNA subsequences as probes
US5738989A (en) Method for determining the sensitivity of microorganisms to anti microbial agents using ribosomal nucleic acid hybridization
US5288611A (en) Method for detecting, identifying, and quantitating organisms and viruses
AU2005200846B2 (en) Probe matrix-based device for identifying microorganisms
US5955261A (en) Method for detecting the presence of group-specific viral mRNA in a sample
JPS60100056A (ja) 核酸ハイブリダイゼ−シヨン法による細菌の検出方法
WO1984003715A1 (en) Method for identifying and characterizing organisms
US20220235404A1 (en) Methods for detection of rare dna sequences in fecal samples
US20050058985A1 (en) Method and kit for identifying vancomycin-resistant enterococcus
US6630302B1 (en) Methods and compositions for determining species of bacteria and fungi
Liu et al. Genotypic identification
CA1278987C (en) Method for detection identification and quantitation of non-viral organisms
CN115427567A (zh) 判断属于脓肿分枝杆菌复合群的抗酸菌的erm(41)基因的单碱基突变的方法、该方法所使用的引物组及探针
Merritt et al. PENG AN, KHUN
Singleton Nucleic Acids (The Essentials); Target Sequences; Choice and Handling of Specimens
Point 16.1 Polymerase chain reaction (PCR)
Singleton et al. Probe-Based (Hybridization) Methods

Legal Events

Date Code Title Description
EXPY Cancellation because of completion of term