JPH08243156A - 培養皮膚およびその製造法 - Google Patents

培養皮膚およびその製造法

Info

Publication number
JPH08243156A
JPH08243156A JP7047587A JP4758795A JPH08243156A JP H08243156 A JPH08243156 A JP H08243156A JP 7047587 A JP7047587 A JP 7047587A JP 4758795 A JP4758795 A JP 4758795A JP H08243156 A JPH08243156 A JP H08243156A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
skin
cells
substrate
collagen
cultured
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP7047587A
Other languages
English (en)
Other versions
JP3543869B2 (ja
Inventor
Akihisa Sugiyama
章寿 杉山
Takeshi Moriyama
剛 森山
Kyoko Hamano
京子 濱野
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Menicon Co Ltd
Original Assignee
Menicon Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Menicon Co Ltd filed Critical Menicon Co Ltd
Priority to JP04758795A priority Critical patent/JP3543869B2/ja
Priority to US08/611,006 priority patent/US5906937A/en
Priority to EP96103395A priority patent/EP0731163A3/en
Publication of JPH08243156A publication Critical patent/JPH08243156A/ja
Priority to US09/020,669 priority patent/US6057148A/en
Priority to US09/075,519 priority patent/US6043089A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP3543869B2 publication Critical patent/JP3543869B2/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M25/00Means for supporting, enclosing or fixing the microorganisms, e.g. immunocoatings
    • C12M25/14Scaffolds; Matrices
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M21/00Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses
    • C12M21/08Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses for producing artificial tissue or for ex-vivo cultivation of tissue
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0068General culture methods using substrates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0697Artificial constructs associating cells of different lineages, e.g. tissue equivalents
    • C12N5/0698Skin equivalents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2502/00Coculture with; Conditioned medium produced by
    • C12N2502/09Coculture with; Conditioned medium produced by epidermal cells, skin cells, oral mucosa cells
    • C12N2502/094Coculture with; Conditioned medium produced by epidermal cells, skin cells, oral mucosa cells keratinocytes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2502/00Coculture with; Conditioned medium produced by
    • C12N2502/13Coculture with; Conditioned medium produced by connective tissue cells; generic mesenchyme cells, e.g. so-called "embryonic fibroblasts"
    • C12N2502/1323Adult fibroblasts
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/50Proteins
    • C12N2533/54Collagen; Gelatin

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Prostheses (AREA)

Abstract

(57)【要約】 【目的】 コラーゲン基材に播種する際に細胞が落下逸
脱することなく培養増殖された表皮細胞および/または
線維芽細胞への充分な栄養分の供給ならびに適用部から
の浸出液の排出を円滑に行いうると同時に収縮をおさえ
た培養皮膚を提供する。 【構成】 コラーゲン基材に貫通孔を設けることによ
り、細胞を播種する際に生ずる細胞の落下逸脱の防止を
目的とした前処理を必要としない手段を用いて、培養皮
膚を創面に適用する前に該培養皮膚に貫通孔を設けるこ
とによって、適用創面からの培養細胞への栄養供給、お
よび適用部に貯留する浸出液の排出が円滑に行われうる
と同時に収縮度を下げた培養皮膚用基材、培養皮膚およ
びそれらの製造法。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は培養皮膚およびその製造
法に関する。さらに詳しくは、熱傷、創傷、褥瘡または
皮膚潰瘍などの皮膚欠損創に用いて、欠損組織を早期に
再建させるまたは治療するための培養皮膚用基材、培養
皮膚およびそれらの製造法に関する。
【0002】
【従来の技術】従来より浅達性II度熱傷など真皮の浅い
部分に達する皮膚欠損創の治療としては創傷被覆材の適
用あるいは軟膏塗布ガーゼなどを適用するのが一般的に
行われてきた治療である。しかしながら、深達性II度熱
傷、III度熱傷あるいはII度以上の褥瘡など真皮の深い
部分に達する皮膚欠損を負ったばあい、自己の表皮細胞
増殖による皮膚組織の再建は期待できない。そこで、ま
ず壊死組織あるいは不良肉芽組織を切除し、同種皮膚ま
たは創傷被覆材などを適用して良好な肉芽組織を再建し
たのち、自家分層植皮を行うことにより皮膚を再建する
という治療が行われてきた。しかし、自家分層植皮を行
うばあいには、自己の健全な部位から採皮するが、採皮
した部位には傷跡が残るという整容についての問題が生
じる。また患部が広範囲であるばあいには、自家分層植
皮が困難である。
【0003】この問題を解決するために、わずかな皮膚
片から表皮細胞あるいは線維芽細胞を採取し、フラスコ
中で大量培養する技術が開発され、これらの培養細胞を
用いた種々の培養皮膚が開発されてきている。
【0004】ハワード・グリーン(H.Green)、
ジェームズ・レインワルド(J.Rheinwald)
らが開発した培養表皮は、切手大の皮膚を採取し、表皮
細胞をフラスコ中で大量培養して表皮シートをうるもの
であるが、該シートをフラスコから剥離する際の酵素処
理によって最も重要な細胞である基底細胞が損傷を受け
るために自家移植において生着率が低いという問題点が
指摘されている(黒柳能光、生体材料9巻、1991年
2月号参照)。
【0005】またユージーン・ベル(E.Bell)ら
(サイエンス(Science)、211巻、1052
〜1054頁、1981年参照)は、皮膚から分離、採
取した表皮細胞および線維芽細胞を各々フラスコ中で大
量に培養し、線維芽細胞を組み込んだコラーゲンゲル上
に表皮細胞を重層化させた培養皮膚を開発した。しかし
コラーゲンゲルは、細胞培養中に極端に収縮するのが欠
点であった。
【0006】さらに、スティーブン・ボイス(S.Bo
yce)ら(サージェリー(SURGERY)、103
巻、421〜431頁、1988年4月号参照)は、皮
膚からえられる表皮細胞をフラスコ中で大量に培養し、
コラーゲンにコンドロイチン−6−硫酸を少量添加して
スポンジ状にした基材上に表皮細胞を重層化させた培養
皮膚を開発した。
【0007】また、アテロコラーゲンを基材として有す
る培養皮膚が、特開昭62−246371号公報および
特開平第4−332561号公報に記載されている。特
開昭62−246371号公報には、アテロコラーゲン
シートを基材とする培養皮膚が記載されているが、シー
トに貫通孔がないので、適用創面からもたらされる細胞
増殖などに欠かすことのできない栄養分がシートを透過
してシート上の表皮細胞にまで供給され難いために自家
移植においては、表皮の生着率が低いという問題があっ
た。
【0008】また、線維芽細胞のみを組み込んだ培養皮
膚を作製したばあいにおいても、やはり適用創面からも
たらされる栄養分が培養皮膚基材全体へ供給され難いた
めに線維芽細胞の増殖と代謝が不活発となること、生理
活性物質の放出が円滑になされなくなることなどのため
に皮膚の再建または良性肉芽の形成に支障をきたすこと
がある。
【0009】さらに貫通孔がないことで、適用部に浸出
液が過度に貯留し、この排出が適度になされず感染の温
床となるという問題もあった。
【0010】特開平第4−332561号公報には、前
記のような問題点を解決するために貫通孔を設けたアテ
ロコラーゲンスポンジが記載されているが、貫通孔を設
けると細胞を播種する際に細胞が落下逸脱してしまうの
で、これを防ぐために細胞播種前にあらかじめアテロコ
ラーゲンゲルなどでスポンジをコーティングすることを
必須としたものであり、こうした方法は、煩雑であるば
かりでなくコストの高い培養皮膚となってしまうという
問題がある。そのため、より安価で簡便な代替品または
手法の開発が望まれていた。
【0011】
【発明が解決しようとする課題】従来からコラーゲンを
基材として用いた培養皮膚において課題とされていた点
は、 1.細胞の培養中における培養皮膚の収縮、 2.皮膚欠損組織に適用後に、培養皮膚基材がバリアー
となり、適用創面から培養皮膚全体への栄養供給が円滑
にいかないこと、 3.皮膚欠損組織への適用後に、培養皮膚適用部に浸出
液が過度に貯留すること、および 4.前記2および3を防ぐために基材に貫通孔を設けた
ばあい、細胞播種時に細胞が落下逸脱してしまうことで
あった。
【0012】本発明はかかる1〜4の課題を解消するた
めになされたものであり、熱傷、創傷、褥瘡または皮膚
潰瘍など皮膚欠損創に用いて、皮膚欠損組織を早期に再
建させるまたは治療するための培養皮膚を提供すること
を目的とする。さらに詳しくは、適用創面から培養皮膚
の細胞への栄養分供給および適用部に過度に貯留する浸
出液の排出が円滑に行われうる機能を有し、しかも同時
に収縮をおさえて安価に作製しうる培養皮膚を提供する
ことを目的とする。
【0013】
【課題を解決するための手段】前記の目的は、培養皮膚
用コラーゲン基材へ細胞を播種する際の細胞の落下逸脱
の防止を目的とした処理を必要としない手段で、培養皮
膚を適用する時点では貫通孔を設けられていることによ
って、培養皮膚に播種された細胞への栄養供給、および
適用部に過度に貯留する浸出液の排出が円滑に行われう
ると同時に収縮をおさえた培養皮膚を提供することであ
る。
【0014】したがって本発明は、 a)コラーゲンスポンジ、コラーゲンシートまたはコラ
ーゲンゲルからなる培養皮膚用基材に貫通孔を生じるた
めの突起物を有する手段内で作製する工程、 b)該基材に皮膚由来の細胞を播種培養する工程および c)培養皮膚が適用される前に突起物を有する手段によ
り貫通孔が設けられる工程からなり、工程a)および
b)は同時に行ってもよい培養皮膚の製造法、突起物を
有する手段により培養皮膚が適用される前に貫通孔が設
けられる、コラーゲンスポンジ、コラーゲンシートまた
はコラーゲンゲルからなる培養皮膚用基材の製造法に関
する。
【0015】前記製造法において好ましくは、工程b)
が該基材の少なくとも片面に皮膚由来の線維芽細胞を播
種する工程、該基材の片面に表皮細胞を播種培養する工
程または該基材の少なくとも片面に皮膚由来の線維芽細
胞を播種培養し、かつ該基材の片面に表皮細胞を播種培
養する工程であり、工程c)が該突起物を取除くことに
より成し遂げられ、突起物を有する手段が突起物を有す
る支持体、突起物を有する容器または剥離シートを伴う
突起物を有する支持体ないし容器であり、コラーゲンは
アテロコラーゲンであり、および/または培養皮膚用基
材がヒアルロン酸を含んでなる。
【0016】さらに本発明は、中空の貫通孔を有するコ
ラーゲンスポンジ、コラーゲンシートまたはコラーゲン
ゲルからなる培養皮膚用基材ならびに中空の貫通孔を有
するコラーゲンスポンジ、コラーゲンシートまたはコラ
ーゲンゲルからなる培養皮膚用基材および線維芽細胞、
表皮細胞またはこれらの組合せである皮膚由来の細胞か
らなる培養皮膚に関する。
【0017】本発明においては、突起物を有する手段と
して、けんざんのようなもので、培養皮膚用基材作製後
に貫通孔を設けることもできるが好ましくは、中空の貫
通孔が突起物を有する手段により設けられ、突起物を有
する手段が配された、該突起物を取除くことにより生じ
る中空の貫通孔を有し、突起物を有する手段が突起物を
有する支持体、突起物を有する容器または剥離シートを
伴う突起物を有する支持体ないし容器であり、コラーゲ
ンがアテロコラーゲンであり、および/または培養皮膚
用基材がヒアルロン酸を含んでなる。
【0018】
【実施例】本明細書において「中空」という語は、ゲル
などを含まない状態、たとえば前記突起物が取除かれた
状態などを意味する。
【0019】本願発明の培養皮膚用基材には、コラーゲ
ン、ゼラチン、キチン、キトサン、ポリグリコール酸、
コンドロイチン硫酸またはヒアルロン酸などのムコ多糖
類などを用いることができ、前記コラーゲンは、たとえ
ばアテロコラーゲンなどのように生体適合性に優れたも
のであることが好ましい。
【0020】本発明に用いられるコラーゲンスポンジ
は、酸性に調製したコラーゲン溶液をホモジナイザーを
用いてホモジナイズすることにより充分に気泡を含ませ
たものを突起物を有する手段、すなわち突起物を有する
支持体を設置したプラスチックなどの容器もしくは突起
物を有する容器または剥離シートを伴う突起物を有する
支持体ないし容器に流し込み、アンモニアガス雰囲気中
に静置してゲル化させたのち凍結乾燥を行い、ついで紫
外線照射または架橋剤によって分子間架橋を導入するこ
とにより作製することができる。
【0021】本発明においてコラーゲン溶液は、ウシ真
皮などからえられたコラーゲンから調製して、pHを好
ましくは2〜4に調整し、濃度が0.2〜3w/v%、
好ましくは0.5〜2w/v%とすることによりえられ
る。ゲル化はアンモニアなどのガス雰囲気下で必要に応
じて数分〜2時間程度行い、こののち、凍結乾燥を行
う。
【0022】架橋に用いる紫外線(UV)の主波長は2
50〜270nmのものが好ましく、紫外線量は500
〜12000mWsec/cm2、好ましくは1000
〜5000mWsec/cm2の線量を照射するとよ
い。本発明に用いられる架橋剤の例としてはたとえば、
グルタルアルデヒド、エチレングリコールジグリシジル
エーテル、ポリグリセロールポリグリシジルエーテル、
グリセロールポリグリシジルエーテル、ヘキサメチレン
ジイソシアネートなどがあげられる。また、コラーゲン
スポンジの大きさは患部の大きさにあわせて適宜選択さ
れる。また、コラーゲンスポンジの厚さおよび形状は適
用される患部の状態によって変化するが、厚さ0.2〜
30mm、形状は、シート状、板状、棒状、球状、紡錘
状あるいは両側凸のレンズ状などに成形するとよい。
【0023】本発明に用いられるコラーゲンシートは、
コラーゲン溶液を前記スポンジ作製と同様の容器に入
れ、乾燥機の中で風乾してシートを形成させたのち、紫
外線照射または架橋剤によって分子間架橋を導入するこ
とにより作製することができる。
【0024】前記コラーゲンシート作製に用いられるコ
ラーゲン溶液は、ウシ真皮などからえられたコラーゲン
から調製して、pHを好ましくは2〜4に調整し、濃度
が0.2〜3w/v%、好ましくは0.5〜2w/v%
とすることによりえられる。
【0025】架橋に用いる紫外線(UV)の主波長は2
50〜270nmのものが好ましく、紫外線量は500
〜12000mWsec/cm2、好ましくは1000
〜5000mWsec/cm2の線量を照射するとよ
い。本発明に用いられる架橋剤の例としてはたとえば、
グルタルアルデヒド、エチレングリコールジグリシジル
エーテル、ポリグリセロールポリグリシジルエーテル、
グリセロールポリグリシジルエーテル、ヘキサメチレン
ジイソシアネートなどがあげられる。また、コラーゲン
シートの大きさおよび厚さは患部の状態にあわせて適宜
選択される。
【0026】本発明に用いられるコラーゲンゲルは、コ
ラーゲン溶液を前記スポンジを作製するのと同様の容器
に流し込み、熱をかけるかあるいはアンモニアガス雰囲
気中に放置してゲル化させることにより作製することが
できる。
【0027】前記コラーゲンゲルを作製するのに用いら
れるコラーゲン溶液は、ウシ真皮などからえられたコラ
ーゲンから調製して、pHを好ましくは2〜4、濃度が
0.2〜3w/v%、好ましくは0.5〜2w/v%と
し、ゲル化はアンモニアなどのアルカリ性ガス雰囲気下
で必要に応じて数分〜2時間行う。ゲル化後、緩衝液な
どでよくすすぐ。または、コラーゲンの中性溶液(pH
6.5〜8)をゲル化させるばあい濃度0.1〜1w/
v%、好ましくは0.2〜0.5w/v%でアルカリ性
ガスなどは用いずに36〜40℃(度)に静置してゲル
をうる。
【0028】架橋に用いる紫外線(UV)の主波長は2
50〜270nmのものが好ましく、紫外線量は500
〜12000mWsec/cm2、好ましくは1000
〜5000mWsec/cm2の線量を照射するとよ
い。本発明に用いられる架橋剤の例としてはたとえば、
グルタルアルデヒド、エチレングリコールジグリシジル
エーテル、ポリグリセロールポリグリシジルエーテル、
グリセロールポリグリシジルエーテル、ヘキサメチレン
ジイソシアネートなどがあげられる。また、コラーゲン
ゲルの大きさは患部の大きさに合わせて適宜選択され
る。また、コラーゲンゲルの厚さおよび形状は適用され
る患部の状態によって適宜選択されればよいが、厚さ
0.2〜30mm、形状は、シート状、板状、棒状、紡
錘状あるいは両側凸のレンズ状などに成形するとよい。
【0029】本発明の培養皮膚は、培養皮膚の収縮を抑
え同時に適用創面から培養皮膚に播種された細胞への栄
養供給、および適用部に過度に貯留する浸出液の排出が
円滑に行われうるよう突起物を配して貫通孔が設けられ
るように作製されるが、該貫通孔を設ける手段は、たと
えばゲルによる被覆のように細胞播種時の細胞の落下逸
脱を目的とした特定の前処理などを必要としないもので
ある。
【0030】このような培養皮膚の収縮を抑え同時に貫
通孔を設ける手段としては、基材を作製する際に用いら
れ、培養皮膚適用前に除去される、突起物を有する支持
体、突起物を有する容器または剥離シートを伴う突起物
を有する支持体ないし容器などがあげられる。
【0031】支持体は、好ましくは網目状の骨格を有
し、その骨格上に突起物が配されるものである。
【0032】前記支持体の骨格となる網目の形状はたと
えば多角形、円形、楕円形などでよいがとくに限定され
ず、また必ずしも全体にわたって同一の形状である必要
はない。また空隙の大きさも適宜変化してよいが、支持
体の面積の少なくとも1/2以上を有して、均斉にある
ことが好ましい。網目が交差する各部位のあいだの距離
は5〜30mm、好ましくは7〜20mmとするとよ
い。支持体の厚さは破損しない程度に薄い方が好まし
い。
【0033】突起物の形状、数、大きさもとくには限定
されないが、作製および取扱い操作において簡便である
ものがよい。突起物の高さは、えられる基材の厚さ以上
であればよく、また搾設される面積が、0.003〜
0.25cm2/cm2、好ましくは0.01〜0.12
cm2/cm2を満たす太さまたは形状を有する。具体的
には、円柱形、円錐形、多角柱形、多角錐形などのもの
が好適に用いられる。なお、これらの形状の先端は丸み
を帯びていてもよい。
【0034】また、培養皮膚基材の片面および/または
内部に細胞が播種、培養増殖されるばあい、支持体の骨
格は網目などの空隙を含まない平板でよく、支持体は該
平板の少なくとも片面に突起物が配されたものである。
【0035】一方、ここで培養皮膚作製に用いる容器
は、その底部に前記支持体上に配したのと同様の突起物
を有する。
【0036】前記支持体および容器およびそれらの突起
物は、たとえばプラスチック、ステンレス、アルミニウ
ム、ガラス、セラミックなどによって作製される。支持
体は、創傷面に培養皮膚を適用する際に培養皮膚が支持
体から容易に剥がれうるように曲げやすい材質が好まし
い。
【0037】前記支持体および容器の骨格は貫通孔が均
斉に設けられる、突起物が均斉に配される構造となるよ
うに設計されることが培養皮膚の収縮を良好に抑え、培
養皮膚全体にわたって栄養分がゆきわたり、適用部より
の浸出液の排出も効率よく行われうるため好ましい。
【0038】さらに、前記突起物を有する支持体ないし
容器は、剥離シートを伴ったものを用いてもよい。剥離
シートは創傷面に培養皮膚を適用する際に培養皮膚が容
器から容易にはがれるように端部が折り曲げられ(図4
の5参照)るような材質が好ましい。たとえばプラスチ
ックシート、ステンレス、アルミシートなどがあげられ
る。
【0039】しかしながら、本発明の培養皮膚用基材に
播種された細胞への栄養供給、および適用部に過度に貯
留する浸出液の排出が円滑に行われうる貫通孔を設けう
ると同時に培養皮膚の収縮を抑え、細胞播種時の細胞の
落下逸脱を目的とした特定の前処理などを必要としない
手段であれば、本発明の製造法に用いることができるで
あろうことは理解される。
【0040】本発明の培養皮膚用基材には、その少なく
とも片面において哺乳動物皮膚由来の表皮細胞および/
または線維芽細胞が播種され培養増殖される。前記表皮
細胞とは、基底細胞を含む角質化細胞および表皮細胞層
に通常存在するその他の細胞を意味するが、このうち培
養増殖させるのは角質化細胞である。前記線維芽細胞と
は、真皮中の主要な細胞であり、コラーゲンをはじめと
する結合組織成分を産生し、これらの成分と結合して結
合組織を形成している細胞をいう。
【0041】本発明の培養皮膚は、播種される細胞に応
じて以下の3種類を作製することが可能である: 本発明のコラーゲン基材の好ましくは両面、少なくと
も片面に線維芽細胞のみを播種培養した培養皮膚(複合
培養真皮)、 本発明のコラーゲン基材の片面に表皮細胞を播種培養
した培養皮膚(複合培養表皮)および 本発明のコラーゲン基材の少なくとも片面で線維芽細
胞を播種培養して、該基材の片面に表皮細胞を播種培養
した培養皮膚(複合培養皮膚)。このばあい、先に線維
芽細胞を播種培養する工程を行う方が、表皮細胞の脱落
を防ぐことができるのでより好ましいが、表皮細胞をま
ず播種培養増殖させたのち、線維芽細胞を播種培養する
工程で行うこともできる。
【0042】前記の3種類の培養皮膚は、患部の面積、
深さおよび患者の症状などによって適宜使い分けること
でより効果が発揮される。また、これらの培養皮膚を自
家、他家で適宜使い分けることもできる。
【0043】前記表皮細胞は以下の手順で調製される。
清潔な環境下で採取された皮膚(表皮および、真皮の一
部または真皮全層)を消毒し、抗生物質を含有する生理
食塩水またはハンクス(Hank′s)液などの緩衝液
に浸漬する。この皮膚をディスパーゼ濃度を1000U
/mlに調製したダルベッコ変法イーグル最小必須培地
(DMEM)(以下、「ディスパーゼ溶液」という)に
浸漬したのち表皮と真皮に分離する。えられた表皮をト
リプシン濃度0.25w/v%、エチレンジアミン4酢
酸ナトリウム(EDTA)濃度0.005mM/mLに
調製したハンクス液(以下、「トリプシン溶液」とい
う)中、37℃で約15分間浸漬したのち10v/v%
ウシ胎児血清(FCS)を含むDMEM(以下、「DM
EM+10%FCS」という)などの培地中に移し、振
とうすることにより細胞を分散させ、約400×g、5
分間、遠心分離して採取させることによってうることが
できる。えられた表皮細胞は、たとえばグリーン(Gr
een)培地、NCTC168培地、MCDB153培
地、とくに好ましくはグリーン培地を加えて表皮細胞懸
濁液とする。 前記グリーン培地とはDMEMとHa
m′s F−12を3:1に混合し、ヒドロコルチゾン
(0.4μg/mL)、インスリン(5μg/mL)、
トランスフェリン(5μg/mL)、トリヨードチロニ
ン(0.0013μg/mL)、コレラ毒素(0.01
μg/mL)、アデニン(24.3μg/mL)、表皮
増殖因子(0.01μg/mL)と抗生物質を添加し、
10%FCSを含んでなる表皮細胞増殖培地である(セ
ル(Cell)、40巻、677〜683頁、1985
年3月参照)。
【0044】前記表皮細胞を高効率で増殖させるには、
たとえばマイトマインシン処理や放射線照射などによっ
て増殖能を停止させたマウス由来の線維芽細胞である3
T3細胞などを支持細胞として定着させたフラスコ中で
培養を行うことが好ましい。
【0045】具体的には、この3T3細胞を培養したの
ち、培地を除去してハンクス液ですすぎ、これを除去す
る。ついでマイトマイシンC 4μg/mL含有DME
M溶液を細胞全体が充分漬かるように(75cm2フラ
スコでは、2〜4mL程度が好ましい)加え37℃にて
2時間程度静置したのち緩衝液で洗浄し、マイトマイシ
ンCを除去する。こうして、3T3細胞は生きたままで
増殖能のみが停止せしめられる。この増殖能を有さない
3T3細胞を採取して、前記グリーン培地に懸濁し、1
×103〜5×104cells/cm2、好ましくは5
×103〜3×104cells/cm2の密度になるよ
うに調製したのちフラスコへ播種する。このフラスコに
前記表皮細胞を3T3細胞を播種したのちに5×103
〜5×105cells/cm2、好ましくは1×104〜2×1
5cells/cm2の細胞密度にて播種する。
【0046】たとえば約2×2cmの分層皮膚からえた
前記皮膚細胞を5%CO2インキュベーター中、37℃
にて培養する。3T3細胞はこの培養継続中に表皮細胞
がコロニーを形成する過程においてフラスコ底面より培
地中に浮き上がり、培地を交換する際に除去されるの
で、最終的にえられる表皮細胞にはほとんど含まれな
い。
【0047】培養増殖した表皮細胞は、ディスパーゼ溶
液を加え37℃にて約2時間静置することにより剥す。
これをトリプシン溶液に加え表皮細胞を分散させたの
ち、採取し、グリーン培地を添加して細胞懸濁液をえ
る。表皮細胞は、必要に応じて継代培養する。具体的に
は、前記支持細胞を必要数量作製し前記したように培養
増殖した表皮細胞を採取して、支持細胞に播種培養す
る。この際、表皮細胞が角質化しないよう注意して継代
培養する。えらえた表皮細胞は、突起物を有する支持体
を設置した容器内で収縮を抑えて作製された、たとえば
約6×9.5cm、厚さ1mmのコラーゲンスポンジ基
材に、5×104〜2×105cells/cm2の細胞
密度にて播種する。
【0048】表皮細胞が基材に接着したのち、グリーン
培地を加えて5%のCO2インキュベーター中37℃に
て3日ごとに培地を交換しながら7〜21日間培養す
る。このようにして複合培養表皮がえられる。
【0049】前記線維芽細胞は、採取された皮膚を前記
と同様に表皮と真皮に分離したのち、えられた真皮をハ
サミ、ホモジナイザーなどを用いて砕き、0.5w/v
%のコラゲナーゼのDMEM溶液(以下、「コラゲナー
ゼ溶液」という)に加えて、約6時間、約37℃にて振
とうして結合組織を溶解させたうえで約400×g〜約
1,000×g、好ましくは約600×g〜約800×
gで遠心分離して採取する。えられた線維芽細胞は、D
MEM+10%FCSなどを培地としてCOインキュ
ベーター中37℃にてサブコンフルエントとなるまで培
養し、必要に応じて多くの線維芽細胞をうるように継代
培養する。
【0050】培養した線維芽細胞をトリプシン溶液を用
いてフラスコからはがし、採取して、DMEM+10%
FCS中で調製する。この線維芽細胞懸濁液を5×10
〜5×105cells/cm2、好ましくは5×10
4〜2×105cells/cm2の細胞密度にてコラー
ゲン基材に播種する。細胞が基材に接着したのち、DM
EM+10%FCSを加え、5%CO2インキュベータ
ー中37℃にて3日ごとに培地を交換しながら1〜14
日間培養を行う。このようにして複合培養真皮をうるこ
とができる。複合培養真皮は基材の少なくとも片面に線
維芽細胞を培養増殖させてえられる。
【0051】表皮細胞および真皮細胞の両方を併せて有
する複合培養皮膚は、以下のように作製される。前記し
た複合培養真皮の作製工程にて線維芽細胞を播種し、細
胞を良好に基材に接着させたのち該基材を支持体ごと裏
返し、複合培養表皮の作製における工程を行い複合培養
皮膚をうる。
【0052】このようにしてえらえた培養皮膚は、創面
に適用される前に、DMEMを用いて洗浄し、FCSを
除いた同様の培地に置き換えておくことが好ましい。
【0053】貫通孔を設けられていない基材を用いた培
養皮膚では、その適用部に浸出液などが過度に貯留し、
感染の温床となることがあるのに対し、本発明の基材を
用いた培養皮膚においては、前記のように患部への適用
前に貫通孔を設けることによって患部における浸出液の
排出が良好に行われ、良好な肉芽組織を形成するうえで
極めて有用である。
【0054】本発明の培養皮膚に用いられるヒアルロン
酸は、創傷などを負ったばあいに初期の段階で細胞から
産出される生理活性物質であり、患部の治癒過程におい
て表皮細胞および線維芽細胞のいずれもがコラーゲン基
材上で良好に移動する上で必要なものであるといわれて
いる。ヒアルロン酸は細胞の足場をゆるやかにすること
により細胞を移動しやすくするという機能を果たしてい
ると考えられている。ヒアルロン酸は、コラーゲン基材
を作製する際にコラーゲンの0.1%〜5%の濃度で用
いられる。
【0055】細胞を基材に良好に接着させるために、細
胞接着因子としてフィブロネクチンやラミニンなどを本
発明の基材に被覆しておくとさらに良好な培養皮膚がえ
られる。
【0056】以下に本発明を実施例をあげてさらに詳細
に説明するが、本発明はもとよりこれら実施例に限定さ
れるものではない。
【0057】実施例1 本発明にしたがい突起物を有する支持体を用いて貫通孔
が設けられたアテロコラーゲンゲルの作製 0.2w/v%アテロコラーゲンDMEM溶液(pH
7.4(株)高研製)20mlを、縦8mm、横8mm
の間隔にて長さ7mm、一辺1mmの正四角柱形の突起
物を配した網目の空隙が7×7mmである網目構造を有
するプラスチック製の支持体(5.5×9cm)を設置
したプラスチックケース(6×9.5cm、高さ2.8
cm)に注加し、37℃、1時間静置してゲル化させ、
UVを2mW/cm2、30分間照射して厚さ0.3c
mのアテロコラーゲンゲルをえた。
【0058】実施例2 本発明にしたがい突起物を有する支持体を用いて貫通孔
を設けた複合培養真皮(ゲル状)の作製 清潔な環境下で採取されたヒトの皮膚片(約2×2c
m、厚さ約0.5mm)をイソジン溶液に浸漬し、ハン
クス液で洗浄後ストレプトマイシン(1000μg/m
L)、ペニシリン(1000U/mL)およびアンホテ
リシンB(2.5μg/mL)を混合したハンクス液に
室温、30分間浸漬した。
【0059】つぎに、ディスパーゼ(合同酒精(株)
製)溶液10mlに4℃にて12時間浸漬し、ピンセッ
トを用いて表皮と真皮に分離し、えられた真皮部分をハ
サミでペースト状に砕いてコラゲナーゼ溶液10mlで
約6時間、37℃にて処理して結合組織を除去したの
ち、約700×g、5分間の遠心分離にて線維芽細胞を
えた。えられた線維芽細胞はDMEM(ギブコ社製)+
10%FCSを用いて5%のCO2インキュベーター中
37℃にてプラスチック製培養フラスコ中で3日ごとに
培地を交換しながら継代培養し、増殖させた。
【0060】こののち、トリプシン溶液を用いて細胞を
フラスコから剥がし、5×104cells/cm2の細
胞密度にて実施例1で作製したアテロコラーゲンゲルに
播種した。そのまま、細胞をゲルに接着させるため播種
後、室温にて12時間静置したのち前記DMEM+10
%FCS15mlを加え、5%のCO2インキュベータ
ー中で37℃にて7日間、3日ごとに培地を交換しなが
ら培養し、支持体が装着された状態にある複合培養真皮
をえた。
【0061】本発明の複合培養真皮は、培養皮膚用コラ
ーゲン基材へ細胞を播種する際の細胞の落下逸脱の防止
を目的とした処理を必要としない手段で作製され、著明
に収縮率が抑えられており、また該培養皮膚は、適用の
際支持体のまま患部に貼設でき、そののち支持体を剥が
すことにより貫通孔が設けられ、細胞への栄養分の供給
および移植部よりの浸出液の排出が良好にできた。
【0062】実施例3 本発明にしたがい突起物を有する支持体を用いて貫通孔
を設けたアテロコラーゲンスポンジの作製 1w/v%となるよう調製したアテロコラーゲン
((株)高研製)の水溶液(塩酸でpH4に調整)10
0mlをホモジナイザー((株)日本精機製作所製)を
用いて1分間撹拌することにより気泡をいれ、縦8m
m、横8mmの間隔にて長さ8mm、直径1mmの円柱
形の突起物を配した網目の空隙が7×7mmである網目
構造を有するプラスチック製の支持体(5.5×9c
m)を設置したプラスチックケース底部(6×9.5c
m、高さ2.3cm)に25ml注加し、これをアンモ
ニアガス雰囲気下に1時間静置したのち、凍結乾燥を行
って厚さ約1mmのアテロコラーゲンスポンジをえた。
ついで、このスポンジの片面にUVを1mW/cm2
30分間照射したのちプラスチックケースに入れたまま
エチレンオキサイドガス滅菌を行った。
【0063】実施例4 本発明にしたがい突起物を有する支持体を用いて貫通孔
を設けた複合培養皮膚(スポンジ状)の作製 表皮細胞は、清潔な環境下にて採取されたヒトの皮膚
(約2×2cm、厚さ約0.5mm)から実施例2に記
載したのと同様に分離した表皮を、トリプシン溶液10
mlに移し、この中で15分間、37℃にて処理したの
ち実施例2で用いたものと同様のDMEM+10%FC
S中に移し、振とうすることにより細胞を分散させ、約
400×g、5分間の遠心分離にて沈殿させることによ
って集め、前記の組成よりなるグリーン培地に懸濁し
た。表皮細胞を高効率で増殖させるために、以下の支持
細胞を用いた。マウス由来線維芽細胞である3T3細胞
は前記DMEM+10%FCS中、サブコンフルエント
となるまで5%CO2インキュベーター中37℃にて培
養した。ついで、培地を除去してハンクス液ですすぎ、
実施例2と同様のDMEMを加えて最終濃度が0.00
04%になるようにマイトマイシンC(和光純薬工業
(株)製)含有生理的食塩水溶液(0.1mg/mL)
を添加した。このフラスコを37℃で2時間静置したの
ち、ハンクス液を用いて洗浄してマイトマイシンCを除
き、増殖能が停止した3T3細胞を採取した。えられた
細胞を、グリーン培地に懸濁し、計数後2×104ce
lls/cm2の密度となるよう調製してフラスコに播
種した。
【0064】このようにして調製した3T3細胞を播種
した翌日、前記表皮細胞をこれに播種し、37℃にて5
%のCO2インキュベーター中で培養増殖させた。
【0065】一方、実施例3でえられたアテロコラーゲ
ンスポンジに実施例2と同様に線維芽細胞を1×104
cells/cm2の密度で播種し、前記DMEM+1
0%FCS中で2日間培養した。つぎに培地を除去し、
アテロコラーゲンスポンジをケース中で支持体ごと反転
させ、前記で培養増殖させた表皮細胞を支持体の裏側か
らスポンジの裏側へ2×105cells/cm2の密度
で播種した。これをクリーンベンチの中で8時間静置し
たのち、グリーン培地を加えて5%のCO2インキュベ
ーター中で37℃にて3日毎に培地を替えながら、14
日間培養し、複合培養皮膚をえた。
【0066】実施例5 ヒアルロン酸を含有する培養皮膚用基材(スポンジ状)
の作製 塩酸でpH3に調整した蒸留水にアテロコラーゲン
((株)高研製)1gを溶解したのち、水酸化ナトリウ
ム水溶液でpH4.5に調整した水溶液をえた。ついで
ヒアルロン酸(分子量約200万)0.01gをこのア
テロコラーゲン水溶液に溶かし、これにpH4.5に調
整した蒸留水を加えて100mLとした(アテロコラー
ゲン1w/v%、ヒアルロン酸0.01w/v%溶
液)。これを1分間ホモジナイズしたのち突起物を有す
る支持体を設置した6×9.5cm、高さ2.3cmの
ケース底部にこのアテロコラーゲン−ヒアルロン酸水溶
液25mLを流し込んだ。突起物を有する支持体におい
て、突起物は支持体からの長さ8mm、一辺2mmの正
四角柱であり、相互に7mm間隔で配置されたものを用
いた。これをアンモニアガス雰囲気下にて2時間静置し
てゲル化させ、水洗したのち、凍結乾燥を行った。
【0067】これに1mW/cm2でUVを30分間照
射した後、エチレンオキサイドガス滅菌を行ってヒアル
ロン酸を含有したアテロコラーゲン基材をえた。
【0068】えられた基材に実施例2と同様、線維芽細
胞を播種し培養増殖させ、支持体より取出すことにより
貫通孔を有する収縮度の小さい複合培養真皮を作製し
た。
【0069】この複合培養真皮を2×2cmの全層皮膚
欠損を作製したヌードマウスの背部に欠損の大きさに合
わせて切り取り移植した。適用後、2週間では、適用部
に浸出液の貯留は認められず、肉芽組織が良好に形成さ
れ、順調な治癒経過を示した。
【0070】実施例6 剥離シートを伴う突起物を有する容器を用いて貫通孔を
設けた複合培養真皮の作製 底面に四角柱(一辺2mmの正四角柱、高さ7mm)の
突起物を配した容器を準備して、この容器(6×9.5
cm)の底部上に突起物部分をくり抜いたポリエステル
シートを設置した。なお、このシートには取っ手が造作
されている。
【0071】0.2%コラーゲンDMEM中性溶液(セ
ルゲン(CELLGEN)、(株)高研製)20mLと
線維芽細胞を混合し、播種密度1×105cells/
cm2となるように調製した。
【0072】この混合液を前記容器に流し込んで、ふた
をして37℃に5時間静置した。こののち、実施例2と
同様のDMEM+10%FCSを加え、1週間培養して
複合培養真皮をえた。適用の際には、ふたをとり、シー
トの取手部を持ち上げることにより複合培養真皮および
シートが容器から容易にはずれた。こうして貫通孔がで
き、複合培養真皮もシートから簡単にはずすことが可能
であった。
【0073】比較例1 実施例6において突起物を設置してない容器を用いて同
様に実施したところ細胞を播種培養開始したのち5日目
までには、コラーゲンゲルは著しく収縮し、実施例6で
作製した複合培養皮膚の面積で25%、体積で約15%
となった。
【0074】
【発明の効果】本発明によれば、コラーゲン基材に細胞
を播種する際に生ずる細胞の落下逸脱の防止を目的とし
た前処理を必要としない手段を用いて、培養皮膚を創面
に適用する前に該培養皮膚に貫通孔を設けることによっ
て、培養増殖された細胞への栄養供給、および適用部に
過度に貯留する浸出液の排出が円滑に行われうると同時
に収縮をおさえた培養皮膚を提供することが可能とな
る。
【図面の簡単な説明】
【図1】本発明の支持体を用いて貫通孔が設けられた複
合培養皮膚の作製手順を示す図である。
【図2】本発明にしたがった突起物を有する容器および
剥離シートの上面(a)ならびに断面(b)を示す図で
ある。
【図3】前記の容器に設置された剥離シートの上面
(a)および断面(b)を示す図である。
【図4】前記の容器に培養皮膚を完成させた横断面(a
−b)および前記の容器からはずされた培養皮膚の付い
た剥離シートの断面(a´−b´)を示す図である。
【符号の説明】
1 突起物 2 孔 3 容器 4 剥離シート 5 取手 6 培養皮膚

Claims (19)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 a)コラーゲンスポンジ、コラーゲンシ
    ートまたはコラーゲンゲルからなる培養皮膚用基材に貫
    通孔を生じるための突起物を有する手段内で作製する工
    程、 b)該基材に皮膚由来の細胞を播種培養する工程および c)培養皮膚が適用される前に突起物を有する手段によ
    り貫通孔が設けられる工程からなり、工程a)および
    b)は同時に行ってもよい培養皮膚の製造法。
  2. 【請求項2】 工程b)が該基材の少なくとも片面に皮
    膚由来の線維芽細胞を播種培養する工程、該基材の片面
    に表皮細胞を播種培養する工程または該基材の少なくと
    も片面に皮膚由来の線維芽細胞を播種培養し、かつ該基
    材の片面に表皮細胞を播種培養する工程である請求項1
    記載の製造法。
  3. 【請求項3】 工程c)が該突起物を取除くことにより
    成し遂げられる請求項1または2記載の製造法。
  4. 【請求項4】 突起物を有する手段により培養皮膚が適
    用される前に貫通孔が設けられる、コラーゲンスポン
    ジ、コラーゲンシートまたはコラーゲンゲルからなる培
    養皮膚用基材の製造法。
  5. 【請求項5】 突起物を有する手段が突起物を有する支
    持体、突起物を有する容器または剥離シートを伴う突起
    物を有する支持体ないし容器である請求項1、2、3ま
    たは4記載の製造法。
  6. 【請求項6】 コラーゲンがアテロコラーゲンである請
    求項1、2、3、4または5記載の製造法。
  7. 【請求項7】 培養皮膚用基材がヒアルロン酸を含んで
    なる請求項1、2、3、4、5または6記載の製造法。
  8. 【請求項8】 中空の貫通孔を有するコラーゲンスポン
    ジ、コラーゲンシートまたはコラーゲンゲルからなる培
    養皮膚用基材。
  9. 【請求項9】 中空の貫通孔が突起物を有する手段によ
    り設けられた請求項8記載の培養皮膚用基材。
  10. 【請求項10】 突起物を有する手段が配された、該突
    起物を取除くことにより生じる中空の貫通孔を有する請
    求項8記載の培養皮膚用基材。
  11. 【請求項11】 突起物を有する手段が突起物を有する
    支持体、突起物を有する容器または剥離シートを伴う突
    起物を有する支持体ないし容器である請求項9または1
    0記載の培養皮膚用基材。
  12. 【請求項12】 コラーゲンがアテロコラーゲンである
    請求項8、9、10または11記載の培養皮膚用基材。
  13. 【請求項13】 培養皮膚用基材がヒアルロン酸を含ん
    でなる請求項8、9、10、11または12記載の培養
    皮膚用基材。
  14. 【請求項14】 中空の貫通孔を有するコラーゲンスポ
    ンジ、コラーゲンシートまたはコラーゲンゲルからなる
    培養皮膚用基材および線維芽細胞、表皮細胞またはこれ
    らの組合わせである皮膚由来の細胞からなる培養皮膚。
  15. 【請求項15】 中空の貫通孔が突起物を有する手段に
    より設けられた請求項14記載の培養皮膚。
  16. 【請求項16】 突起物を有する手段が配された、該突
    起物を取除くことにより生じる中空の貫通孔を有する請
    求項14記載の培養皮膚。
  17. 【請求項17】 突起物を有する手段が突起物を有する
    支持体、突起物を有する容器または剥離シートを伴う突
    起物を有する支持体ないし容器である請求項15または
    16記載の培養皮膚。
  18. 【請求項18】 コラーゲンがアテロコラーゲンである
    請求項14、15、16または17記載の培養皮膚。
  19. 【請求項19】 培養皮膚用基材がヒアルロン酸を含ん
    でなる請求項14、15、16、17または18記載の
    培養皮膚。
JP04758795A 1995-03-07 1995-03-07 培養皮膚およびその製造法 Expired - Fee Related JP3543869B2 (ja)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP04758795A JP3543869B2 (ja) 1995-03-07 1995-03-07 培養皮膚およびその製造法
US08/611,006 US5906937A (en) 1995-03-07 1996-03-05 Culture skin and process for preparing the same
EP96103395A EP0731163A3 (en) 1995-03-07 1996-03-05 Culture skin and process for preparing the same
US09/020,669 US6057148A (en) 1995-03-07 1998-02-09 Apparatus for preparing skin cell culture
US09/075,519 US6043089A (en) 1995-03-07 1998-05-11 Skin culture and process for preparing the same

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP04758795A JP3543869B2 (ja) 1995-03-07 1995-03-07 培養皮膚およびその製造法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPH08243156A true JPH08243156A (ja) 1996-09-24
JP3543869B2 JP3543869B2 (ja) 2004-07-21

Family

ID=12779397

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP04758795A Expired - Fee Related JP3543869B2 (ja) 1995-03-07 1995-03-07 培養皮膚およびその製造法

Country Status (3)

Country Link
US (3) US5906937A (ja)
EP (1) EP0731163A3 (ja)
JP (1) JP3543869B2 (ja)

Cited By (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH10136977A (ja) * 1996-11-11 1998-05-26 Toyobo Co Ltd 組織付属器官様構造体を含む人工組織およびその製造方法
JP2004255110A (ja) * 2003-02-27 2004-09-16 Sangaku Renkei Kiko Kyushu:Kk 人工リンパ節
JP2005305177A (ja) * 2005-05-11 2005-11-04 Toyobo Co Ltd 組織付属器官様構造体を含む人工組織およびその製造方法
JP2006280394A (ja) * 2005-03-31 2006-10-19 Terumo Corp タンパク質多孔マトリックスの製造方法
JP2008307359A (ja) * 2007-05-15 2008-12-25 Hana.Com:Kk 骨再生能を有する骨補填材およびその製造方法
JP2012525176A (ja) * 2009-04-28 2012-10-22 ビオムプ 新規なコラーゲン材料およびそれを得る方法
WO2012176908A1 (ja) 2011-06-24 2012-12-27 Kisco株式会社 細胞培養用基膜、細胞培養用基材、及び細胞培養用基材の製造方法
JP2013516201A (ja) * 2009-12-31 2013-05-13 ビオムプ 複合母材
WO2016159555A1 (ko) * 2015-03-31 2016-10-06 (주)아모레퍼시픽 인공피부 배양용기 및 이를 이용한 인공피부의 제조방법
WO2017183655A1 (ja) * 2016-04-20 2017-10-26 京都府公立大学法人 培養上皮シートの製造方法
WO2017222065A1 (ja) * 2016-06-24 2017-12-28 株式会社資生堂 三次元培養皮膚シート、その製造に使用するための細胞培養容器及びその製造方法
WO2020085018A1 (ja) * 2018-10-26 2020-04-30 国立研究開発法人農業・食品産業技術総合研究機構 ハイドロゲル膜及びその使用

Families Citing this family (52)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20020086485A (ko) * 2000-02-03 2002-11-18 가부시끼가이샤 메니콘 수용성 고분자재료로 이루어지는 스폰지상 성형체 및 그기공제어방법
ATE328067T1 (de) * 2000-04-28 2006-06-15 Childrens Medical Center Isolierung von mesenchymalen stammzellen und deren verwendung
DE10032808A1 (de) * 2000-06-30 2002-01-17 Tom Witascheck Vorrichtung zur multilayerartigen Zusammenführung unterschiedlicher Zelltypen in bestimmten Formen und Mustern zu Geweben oder Organen
US6770721B1 (en) * 2000-11-02 2004-08-03 Surface Logix, Inc. Polymer gel contact masks and methods and molds for making same
FR2828206B1 (fr) * 2001-08-03 2004-09-24 Centre Nat Rech Scient Utilisation d'inhibiteurs des lysyl oxydases pour la culture cellulaire et le genie tissulaire
KR20100087781A (ko) * 2001-11-21 2010-08-05 예다 리서치 앤드 디벨럽먼트 캄파니 리미티드 인간 단핵 식세포성 백혈구의 제조 방법
KR100874543B1 (ko) * 2002-04-22 2008-12-16 동아제약주식회사 인공피부 배양물 및 그 제조방법
EP1635782A1 (de) * 2003-05-24 2006-03-22 JUVENA (International) AG Gewebekulturmedien als bestandteil von kosmetika
DE10326747B4 (de) * 2003-06-13 2006-11-02 Gerlach, Jörg, Dr.med. Perfusionseinheit und Perfusionsstation zur Hautwundbehandlung sowie dessen Verwendung
CN1901795B (zh) 2003-10-22 2014-03-26 弗雷德哈钦森癌症研究中心 用于在细胞,组织,器官,和有机体中诱导停滞的方法,组合物和装置
EP1609462B1 (en) * 2004-04-22 2015-07-29 La Prairie Group AG Cosmetic or dermatological preparation comprising a nutrient medium phase
DE102004024834A1 (de) * 2004-05-19 2006-01-12 Universität Rostock Vorrichtung zur Durchführung einer Liquid-Air-Kultur von Epithel
HUP0401054A2 (en) * 2004-05-26 2006-07-28 Dr Juhasz Zsuzsanna Rethyne Process for growing of living tissue on living organism
AU2006236150A1 (en) * 2005-04-20 2006-10-26 Fred Hutchinson Cancer Research Center Methods, compositions and articles of manufacture for enhancing survivability of cells, tissues, organs, and organisms
US9056151B2 (en) * 2007-02-12 2015-06-16 Warsaw Orthopedic, Inc. Methods for collagen processing and products using processed collagen
US20080260794A1 (en) * 2007-02-12 2008-10-23 Lauritzen Nels J Collagen products and methods for producing collagen products
WO2009003061A1 (en) 2007-06-25 2008-12-31 Fred Hutchinson Cancer Research Center Methods and compositions regarding polychalcogenide compositions
US20090004455A1 (en) * 2007-06-27 2009-01-01 Philippe Gravagna Reinforced composite implant
US9308068B2 (en) 2007-12-03 2016-04-12 Sofradim Production Implant for parastomal hernia
US9382514B2 (en) * 2008-06-20 2016-07-05 Escape Therapeutics, Inc. Compositions comprising mesenchymal stem cell-derived fibroblasts
US9242026B2 (en) 2008-06-27 2016-01-26 Sofradim Production Biosynthetic implant for soft tissue repair
KR100947765B1 (ko) * 2008-08-18 2010-03-18 (주)다림티센 조직수복재료로서의 콜라겐 기반 매트릭스 및 이의 제조방법
US20100158985A1 (en) * 2008-12-19 2010-06-24 Xylos Corporation Porous structures of microbial-derived cellulose for in vivo implantation
US9701937B2 (en) * 2009-01-06 2017-07-11 Koken Co., Ltd. Carrier for cultivation of cells
FR2949688B1 (fr) 2009-09-04 2012-08-24 Sofradim Production Tissu avec picots revetu d'une couche microporeuse bioresorbable
US8790699B2 (en) 2010-04-23 2014-07-29 Warsaw Orthpedic, Inc. Foam-formed collagen strand
US8460691B2 (en) 2010-04-23 2013-06-11 Warsaw Orthopedic, Inc. Fenestrated wound repair scaffold
FR2972626B1 (fr) 2011-03-16 2014-04-11 Sofradim Production Prothese comprenant un tricot tridimensionnel et ajoure
FR2977790B1 (fr) 2011-07-13 2013-07-19 Sofradim Production Prothese pour hernie ombilicale
FR2977789B1 (fr) 2011-07-13 2013-07-19 Sofradim Production Prothese pour hernie ombilicale
US9526603B2 (en) 2011-09-30 2016-12-27 Covidien Lp Reversible stiffening of light weight mesh
FR2985170B1 (fr) 2011-12-29 2014-01-24 Sofradim Production Prothese pour hernie inguinale
FR2985271B1 (fr) 2011-12-29 2014-01-24 Sofradim Production Tricot a picots
FR2994185B1 (fr) 2012-08-02 2015-07-31 Sofradim Production Procede de preparation d’une couche poreuse a base de chitosane
FR2995788B1 (fr) 2012-09-25 2014-09-26 Sofradim Production Patch hemostatique et procede de preparation
FR2995778B1 (fr) 2012-09-25 2015-06-26 Sofradim Production Prothese de renfort de la paroi abdominale et procede de fabrication
FR2995779B1 (fr) 2012-09-25 2015-09-25 Sofradim Production Prothese comprenant un treillis et un moyen de consolidation
US10159555B2 (en) 2012-09-28 2018-12-25 Sofradim Production Packaging for a hernia repair device
FR3006578B1 (fr) 2013-06-07 2015-05-29 Sofradim Production Prothese a base d’un textile pour voie laparoscopique
FR3006581B1 (fr) 2013-06-07 2016-07-22 Sofradim Production Prothese a base d’un textile pour voie laparoscopique
DE102013114855B4 (de) * 2013-12-23 2015-12-17 Ulrich Mohr Vorrichtung zur Kultivierung von Zellen
EP3000433B1 (en) 2014-09-29 2022-09-21 Sofradim Production Device for introducing a prosthesis for hernia treatment into an incision and flexible textile based prosthesis
EP3000432B1 (en) 2014-09-29 2022-05-04 Sofradim Production Textile-based prosthesis for treatment of inguinal hernia
EP3029189B1 (en) 2014-12-05 2021-08-11 Sofradim Production Prosthetic porous knit, method of making same and hernia prosthesis
EP3059255B1 (en) 2015-02-17 2020-05-13 Sofradim Production Method for preparing a chitosan-based matrix comprising a fiber reinforcement member
EP3085337B1 (en) 2015-04-24 2022-09-14 Sofradim Production Prosthesis for supporting a breast structure
EP3106185B1 (en) 2015-06-19 2018-04-25 Sofradim Production Synthetic prosthesis comprising a knit and a non porous film and method for forming same
EP3195830B1 (en) 2016-01-25 2020-11-18 Sofradim Production Prosthesis for hernia repair
EP3312325B1 (en) 2016-10-21 2021-09-22 Sofradim Production Method for forming a mesh having a barbed suture attached thereto and the mesh thus obtained
EP3398554A1 (en) 2017-05-02 2018-11-07 Sofradim Production Prosthesis for inguinal hernia repair
EP3653171B1 (en) 2018-11-16 2024-08-21 Sofradim Production Implants suitable for soft tissue repair
US12064330B2 (en) 2020-04-28 2024-08-20 Covidien Lp Implantable prothesis for minimally invasive hernia repair

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS62246371A (ja) * 1986-04-19 1987-10-27 株式会社 高研 人工皮膚及びその製造方法
US5712137A (en) * 1990-03-05 1998-01-27 Smith & Nephew Plc Laminate of a culture substrate on a carrier for producing an apertured wound dressing
IT1248934B (it) * 1990-06-01 1995-02-11 Fidia Spa Membrane forate biocompatibili,processi per la loro preparazione,loro impiego come supporto per la crescita in vitro di cellule epiteliali, pelli artificiali cosi' ottenute e loro impiego nei trapianti di pelle
JPH04332561A (ja) * 1991-05-09 1992-11-19 Koken Co Ltd 培養皮膚用マトリックス
JPH05192363A (ja) * 1991-11-07 1993-08-03 Terumo Corp 創傷被覆材
JPH0759812A (ja) * 1993-08-27 1995-03-07 Koken Co Ltd 創傷カバ−材及びその製造方法

Cited By (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH10136977A (ja) * 1996-11-11 1998-05-26 Toyobo Co Ltd 組織付属器官様構造体を含む人工組織およびその製造方法
JP2004255110A (ja) * 2003-02-27 2004-09-16 Sangaku Renkei Kiko Kyushu:Kk 人工リンパ節
JP2006280394A (ja) * 2005-03-31 2006-10-19 Terumo Corp タンパク質多孔マトリックスの製造方法
JP4716092B2 (ja) * 2005-03-31 2011-07-06 オリンパステルモバイオマテリアル株式会社 タンパク質多孔マトリックスの製造方法
JP2005305177A (ja) * 2005-05-11 2005-11-04 Toyobo Co Ltd 組織付属器官様構造体を含む人工組織およびその製造方法
JP2008307359A (ja) * 2007-05-15 2008-12-25 Hana.Com:Kk 骨再生能を有する骨補填材およびその製造方法
US10004825B2 (en) 2009-04-28 2018-06-26 Biom'up Collagen materials and methods for obtaining same
JP2012525176A (ja) * 2009-04-28 2012-10-22 ビオムプ 新規なコラーゲン材料およびそれを得る方法
US9168326B2 (en) 2009-04-28 2015-10-27 Biom'up Collagen materials and methods for obtaining same
JP2016116856A (ja) * 2009-04-28 2016-06-30 ビオムプBiom’Up 新規なコラーゲン材料およびそれを得る方法
JP2013516201A (ja) * 2009-12-31 2013-05-13 ビオムプ 複合母材
US9468708B2 (en) 2009-12-31 2016-10-18 Biom'up Composite matrix
US9492842B2 (en) 2011-06-24 2016-11-15 Kisco Ltd. Cell culture membrane, cell culture substrate, and method for manufacturing cell culture substrate
WO2012176908A1 (ja) 2011-06-24 2012-12-27 Kisco株式会社 細胞培養用基膜、細胞培養用基材、及び細胞培養用基材の製造方法
WO2016159555A1 (ko) * 2015-03-31 2016-10-06 (주)아모레퍼시픽 인공피부 배양용기 및 이를 이용한 인공피부의 제조방법
KR20160116982A (ko) 2015-03-31 2016-10-10 (주)아모레퍼시픽 인공피부 배양용기 및 이를 이용한 인공피부의 제조방법
US10669527B2 (en) 2015-03-31 2020-06-02 Amorepacific Corporation Artificial skin culture container and method for producing artificial skin using same
JP2018512848A (ja) * 2015-03-31 2018-05-24 株式会社アモーレパシフィックAmorepacific Corporation 人工皮膚培養容器およびこれを利用した人工皮膚の製造方法
WO2017183655A1 (ja) * 2016-04-20 2017-10-26 京都府公立大学法人 培養上皮シートの製造方法
JPWO2017183655A1 (ja) * 2016-04-20 2019-02-21 京都府公立大学法人 培養上皮シートの製造方法
US11479754B2 (en) 2016-04-20 2022-10-25 Kyoto Prefectural Public University Corporation Method for producing cultivated epithelial cell sheet
JPWO2017222065A1 (ja) * 2016-06-24 2019-04-11 株式会社 資生堂 三次元培養皮膚シート、その製造に使用するための細胞培養容器及びその製造方法
WO2017222065A1 (ja) * 2016-06-24 2017-12-28 株式会社資生堂 三次元培養皮膚シート、その製造に使用するための細胞培養容器及びその製造方法
WO2020085018A1 (ja) * 2018-10-26 2020-04-30 国立研究開発法人農業・食品産業技術総合研究機構 ハイドロゲル膜及びその使用
JP2020065849A (ja) * 2018-10-26 2020-04-30 国立研究開発法人農業・食品産業技術総合研究機構 ハイドロゲル膜及びその使用

Also Published As

Publication number Publication date
JP3543869B2 (ja) 2004-07-21
EP0731163A3 (en) 1998-06-17
EP0731163A2 (en) 1996-09-11
US6043089A (en) 2000-03-28
US6057148A (en) 2000-05-02
US5906937A (en) 1999-05-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP3543869B2 (ja) 培養皮膚およびその製造法
CN108525021B (zh) 基于3d打印的含血管及毛囊结构组织工程皮肤及其制备方法
US5015584A (en) Epidermal graft system
EP0739631B1 (en) Laminar bone support for cartilage growth
US20040101959A1 (en) Treatment of tissue with undifferentiated mesenchymal cells
Fang et al. Clinical application of cultured epithelial autografts on acellular dermal matrices in the treatment of extended burn injuries
CN110975011B (zh) 一种皮肤溃疡修复基质的制备方法
CN106730034B (zh) 基于切片式去细胞支架构建的人工神经移植物及制备方法
JPH11503946A (ja) ヒアルロン酸誘導体を基本とするバイオ適合性物質を支持体として含む人工皮膚
CN105999414B (zh) 制备人造微环境的方法及其应用
EP3326660B1 (en) A ready to use biodegradable and biocompatible artificial skin substitute and a method of preparation thereof
JP3554412B2 (ja) 培養皮膚用基材、培養皮膚およびその製造法
Nilforoushzadeh et al. Tissue engineering in dermatology-from lab to market
KR100760989B1 (ko) 생체적합성 스캐폴드에서 섬유아세포와 피부각질세포를공동 배양하는 방법
JP3377354B2 (ja) 人工皮膚
JPH1147258A (ja) ゼラチンとコラーゲンとを含有する医用基材
JPH06503735A (ja) 創傷用包帯剤およびその製造法
Hata Current issues regarding skin substitutes using living cells as industrial materials
JP2005512642A (ja) 毛根間葉細胞から製造された真皮代替物
Yildirimer et al. Tissue‐Engineered Human Skin Equivalents and Their Applications in Wound Healing
JPH0947502A (ja) 培養皮膚およびその製造法
Tezcaner et al. Fundamentals of tissue engineering: tissues and applications
US20090186408A1 (en) Biocompatible bilayer porous matrix and preparation thereof
JPH1043213A (ja) 培養皮膚の製造法、該製造法に用いる支持体および容器、ならびに該製造法によりえられる培養皮膚用基材および培養皮膚
RU2148970C1 (ru) Способ восстановления кожного покрова

Legal Events

Date Code Title Description
TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20040316

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20040330

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

LAPS Cancellation because of no payment of annual fees