WO2017222065A1 - 三次元培養皮膚シート、その製造に使用するための細胞培養容器及びその製造方法 - Google Patents

三次元培養皮膚シート、その製造に使用するための細胞培養容器及びその製造方法 Download PDF

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cultured skin
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cell culture
dimensional
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傳田　光洋
澄美子 傳田
淳一 熊本
康明 小林
雅晴 長山
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株式会社資生堂
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    • C12N2535/00—Supports or coatings for cell culture characterised by topography

Definitions

  • the present invention relates to a three-dimensional cultured skin sheet.
  • the present invention also relates to a cell culture container for use in the production of a three-dimensional cultured skin sheet.
  • the present invention also relates to a method for producing a three-dimensional cultured skin sheet.
  • the skin is an organ that covers the body surface that separates the environment inside and outside the body.
  • the skin acts as a physical barrier, protects against dry and harmful substances entering the body, and plays an essential role in maintaining life.
  • the skin of higher vertebrates is roughly divided into the epidermis, dermis, and subcutaneous tissue layers from the outermost layer. It is known that the boundary surface between the epidermis and the dermis has undulations, and the undulations flatten with aging (for example, see Non-Patent Document 1).
  • the epidermis is mainly composed of cells called keratinocytes.
  • the keratinocytes divide in the deepest part (basal layer) of the epidermis, and the surface is differentiated into a spiny layer, a granular layer, and a horny layer toward the upper layer. It will move to and will eventually fall off. This cycle takes approximately 4 weeks for humans.
  • Patent Document 1 Non-Patent Document 2
  • Non-Patent Document 3 Non-Patent Document 3
  • an attempt is made to produce a three-dimensional cultured skin model by pouring a collagen gel into a mold having grooves formed by photolithography and further seeding keratinocytes on a scaffold produced by seeding fibroblasts on the collagen gel.
  • Patent Document 2 an attempt to examine the influence on the arrangement of stem cells contained in primary human keratinocytes using a cell culture device provided with undulations on the culture surface
  • Non-Patent Document 5 The influence on the differentiation of human keratinocytes has been investigated using the surface of cell culture equipment comprising a degradable polymer chitosan, polycaprolactone or a mixture thereof
  • Non-patent Document 6 Attempts have also been made to produce three-dimensional cultured skin by seeding keratinocytes on human acellularized dermal matrix from which epithelial tissue and cellular components have been removed from skin tissue collected from human donations (non-skinned).
  • cultured skin models are used for safety tests of drugs applied to cosmetics and skin, basic research, etc., and are attracting attention as models that replace animals, but they are still equivalent to human skin.
  • a cultured skin model with a level of thickness and barrier function has not been obtained.
  • the conventional model built in vitro has a sufficient thickness compared to the epidermis of a living body. there were. Further, the conventional cultured skin model does not have a sufficient barrier function as compared with skin derived from animals, particularly humans. Furthermore, when a commercially available 3D culture kit is used, it is desired only when a primary cultured epidermal cell that has not been passaged or has a low passage number (for example, passage number 0 or 1) is used. However, there was a problem that a three-dimensional cultured skin having a thickness of 5 mm could not be obtained.
  • the present invention includes the following inventions.
  • a three-dimensional cultured skin sheet that includes at least epidermal cells and has irregularities in at least a part of the base.
  • a porous membrane provided on at least a part of the culture surface, and a convex portion that is disposed on the porous membrane and forms irregularities on the base of the three-dimensional cultured skin sheet.
  • the cell culture container according to [11] comprising a non-biological substance.
  • the cell culture container according to [11] or [12], wherein the height of the convex portion is 1 ⁇ m to 300 ⁇ m on average.
  • the cell culture container according to [11] or [12], wherein the height of the convex portions is 1 ⁇ m to 90 ⁇ m on average.
  • a porous membrane provided on at least a part of the culture surface, and a convex portion disposed on the porous membrane for forming irregularities in the base of the three-dimensional cultured skin sheet A step of seeding a cell containing epidermal cells suspended in a medium in a cell culture container, and (2) a step of bringing the medium into contact with the outside of the porous membrane of the cell culture container and culturing.
  • a method for producing a cultured skin sheet [19] The production method according to [18], further comprising the step of (3) removing the medium in the cell culture container, exposing the skin cells to air, and culturing.
  • the three-dimensional cultured skin sheet of the present invention there are a basal part (epidermal basement membrane-like structure) having irregularities that the conventional three-dimensional cultured skin sheet did not have, and a thickened three-dimensional cultured skin sheet. can get.
  • the cell culture container of this invention is used, the thickened three-dimensional culture skin sheet
  • the culturing method of the present invention is used, a thickened three-dimensional cultured skin sheet that has not been obtained conventionally can be provided stably and inexpensively.
  • FIG. 1 is a cross-sectional view showing a cell culture vessel 1 used in this embodiment and a part of the culture surface cross-section enlarged portion 6 thereof.
  • the cell culture container 1 includes a cell culture insert 2 for seeding cells and a bottom well 4 for filling the medium outside the cell culture insert 2.
  • the cell culture insert 2 includes a porous membrane 3. Nutrients, oxygen, and the like can be supplied to the cells on the porous membrane 3 from the medium 5 that fills the outside of the cell culture insert 2 through the porous membrane 3.
  • the surface of the porous membrane 3 is provided with convex portions 7 for forming irregularities on the three-dimensional cultured skin sheet 10 of the present invention.
  • the epidermal cells are layered, and at least part of the base portion 11 (see FIG. 2, thick line) of the three-dimensional cultured skin sheet 10 is uneven. And / or the three-dimensional culture skin sheet 10 which has an epidermal cell absence area
  • the “basal part” of the three-dimensional cultured skin sheet 10 refers to a surface that contacts the surface of the cell culture container of epidermal cells formed in a sheet shape when the epidermal cells are seeded in the cell culture container 1, for example, 1 refers to the surface of the porous membrane 3 shown in FIG. 1 and / or the surface in contact with the convex portion 7 (see FIG. 2, 11, thick line).
  • the “basal part” is a structure corresponding to the basement membrane formed between the epidermis and the dermis in the skin tissue of the living body, but it does not necessarily have the same membrane structure as the basement membrane of the living body. There is no need to have.
  • the “basal part” in the present invention includes an “epidermal basement membrane-like structure” having an uneven shape at least in part, and the epidermal basement membrane-like structure includes epidermal cells.
  • the epidermis basement membrane-like structure may include a basement membrane formed by epidermis cells in the skin tissue of a living body.
  • FIG. 2 is a cross-sectional view showing the three-dimensional cultured skin sheet 10 excluding the porous membrane 3 and the convex portion 7 from FIG.
  • the three-dimensional cultured skin sheet 10 includes a horny layer 9 having no cell nucleus and epidermal cells 8 other than the horny layer 9. Due to the convex portion 7 provided on the porous membrane 3, the three-dimensional cultured skin sheet 10 has cells around the epidermal cell non-existing region Va and / or the epidermal cell non-existing region Vb inside the three-dimensional cultured skin sheet. Unevenness is formed in a surrounding form.
  • the “unevenness” of the base portion 11 of the three-dimensional cultured skin sheet 10 is configured on at least a part of the surface in contact with the culture surface of the cell culture container in the three-dimensional cultured skin sheet of the present invention.
  • the undulation is larger than the undulation that is obtained accidentally when epidermal cells are cultured on the surface of a flat culture device.
  • the uneven projection of the three-dimensional cultured skin sheet 10 refers to the portion of the base 11 that protrudes toward the air exposure (upper layer) direction of the cell culture container.
  • the three-dimensional cultured skin sheet of FIG. It is a convex part T1, and is a part formed by the convex part 7 on the porous film 3 of FIG.
  • the concave and convex of the three-dimensional cultured skin sheet refers to a portion depressed in the direction of the base of the epidermis contrary to the convex, for example, the three-dimensional cell sheet concave B1 in FIG.
  • the distance between the tip of an arbitrary three-dimensional cultured skin sheet convex portion T1 and the most depressed portion of the adjacent three-dimensional cultured skin sheet concave portion B1 with respect to the culture surface is expressed as the height H of the concave and convex portions of the three-dimensional cultured skin sheet. '1 can be said.
  • the uneven shape and height H ′ 1 formed on the three-dimensional cultured skin sheet 10 depend on the shape and height H of the convex portion 7 provided on the porous membrane 3. Further, the three-dimensional cultured skin sheet convex interval width W ′ 1 formed on the three-dimensional cultured skin sheet 10 depends on the convex interval width W formed by the convex portions 7 on the porous membrane 3. Further, the three-dimensional cultured skin sheet convex portion width Y ′ formed on the three-dimensional cultured skin sheet 10 depends on the convex portion width Y formed by the convex portions 7 on the porous membrane 3.
  • the unevenness height H′1 of the three-dimensional cultured skin sheet, the three-dimensional cultured skin sheet convex interval width W′1, and / or the three-dimensional cultured skin sheet convex width Y ′ was subjected to, for example, HE staining.
  • a tissue section may be prepared and measured using a commercially available optical microscope, stained by immunohistochemistry, and observed and measured using a fluorescence microscope, confocal microscope or two-photon laser microscope, It may be observed and measured using an electron microscope, and is not particularly limited.
  • the unevenness height H′1 of the three-dimensional cultured skin sheet can be measured from an image acquired by an apparatus equipped with a camera in a normal microscope, a fluorescence microscope or the like.
  • Olympus Corporation System Industrial Microscope for both epi-illumination transmission
  • BX51 can be used.
  • the camera for example, Olympus Corporation digital camera “DP71” can be used.
  • the acquired image can be taken in and analyzed by computer analysis software by a conventional image analysis method.
  • a part of an arbitrary cross section of the three-dimensional cultured skin sheet 10 is an epidermal cell non-existing region Vb in which no irregularities are formed on the base portion 11 of the three-dimensional cultured skin sheet 10. May have. Since cells exist below the epidermis cell nonexistent region bottom B2 of the epidermal cell nonexistent region Vb of the cross section, it appears that the concave and convex shape connected to the outside of the three-dimensional cultured skin sheet 10 is not formed in terms of the cross section. .
  • the epidermal cell non-existing region Vb is observed in a cross section where the convex portion 7 is not in contact with the porous membrane 3.
  • the convex portion 7 on the porous membrane 3 has a mesh shape in which fibers are knitted (see, for example, FIG. 7 described later), in a cross section including a portion where the fibers are not bonded to the porous membrane 3 The epidermal cell non-existing region Vb will be observed.
  • the epidermal cell non-existing region Vb may be observed.
  • the unevenness of the three-dimensional cultured skin sheet 10 includes a shape in which the epidermal cells 8 surround the epidermal cell non-existing region Vb including the above example.
  • the height H′2 of the epidermal cell non-existing region Vb basically matches the unevenness height H′1 of the three-dimensional cultured skin sheet.
  • the term “three-dimensional” means that the cells are vertically different from the state of almost one cell layer obtained by culturing conventional adherent cells in a cell culture dish or the like, that is, a two-dimensional cell layer. It is an aspect of stacking in the direction and layering.
  • the three-dimensional cultured skin sheet of the present invention refers to a three-dimensional structure having an unevenness in the epidermis basement membrane-like structure and having a thickness obtained by layering epidermis cells.
  • the “three-dimensional cultured skin sheet” is distinguished from a skin tissue inherently provided in a living body, and is obtained by breaking apart adhesion proteins between cells.
  • Cells derived from skin tissue and / or cells comprising the cells constituting the skin obtained by inducing differentiation from pluripotent stem cells are seeded in a cell culture container, etc., cultured in the cell culture container, and re- It refers to the constructed sheet-like three-dimensional skin-like tissue.
  • the cells constituting the three-dimensional cultured skin sheet include epidermal cells, and can also be referred to as a three-dimensional cultured skin sheet.
  • the three-dimensional cultured skin sheet or the three-dimensional cultured epidermis sheet is a cell other than epidermal cells, for example, cells other than epidermal cells (melanin cells, Langerhans cells, Merkel cells, etc.) and / or dermis constituting the epidermis.
  • Cells contained in the tissue fibroblasts, nerve cells, mast cells, plasma cells, vascular endothelial cells, histiospheres, meissner bodies, etc.
  • the three-dimensional cultured skin sheet of the present invention may further include a porous membrane 3 having a convex portion in contact with the base portion 11.
  • the cells constituting the three-dimensional cultured skin sheet of the present invention may be derived from any animal, but are preferably derived from vertebrates, more preferably derived from mammals, and most preferably derived from humans.
  • the “epidermal cell” refers to a cell including all cells having different differentiation stages constituting the epidermis.
  • Epidermal cells are mainly composed of cells called keratinocytes or keratinocytes.
  • epidermal tissue is formed by layering epidermal cells having different differentiation stages.
  • the deepest part of the epidermis is called a basal layer or basal cell layer (hereinafter referred to as “basal layer”), and it is considered that cylindrical cells form a single layer and contain stem cells.
  • the basal layer is also the interface with the dermis, and there is a spiny layer above it.
  • the spiny layer is also called a spiny cell layer, and is composed of about 2 to 10 layers in living tissue. This layer is called a spiny layer because it appears to be tethered together. Only cells in the basal layer have the ability to proliferate, and epidermal cells move to the outer layer while changing to a flat shape as the differentiation stage proceeds.
  • a granule layer (granular cell layer) having keratohyalin granules and lamellar granules is formed.
  • the granular layer is composed of about 2 to 3 layers in living tissue.
  • the differentiation stage further proceeds from the granular layer, the cell nucleus disappears and a horny layer (horny layer cell layer) is formed.
  • the epidermis is roughly divided into the four types of layers described above.
  • the epidermal tissue contains melanocytes, Langerhans cells, Merkel cells, etc. in addition to the epidermal cells. Prevent, play an important role in the immune function of the skin, or participate in perception.
  • the three-dimensional cultured skin sheet may contain cells other than epidermal cells, and can be appropriately changed according to the intended use.
  • the “barrier function” provided in the skin generally means a function for preventing loss of moisture and biological components in the body and a function for preventing foreign substances (microorganisms, viruses, dust, etc.) from entering the living body from outside the living body.
  • the barrier function of the three-dimensional cultured skin sheet of the present invention can be evaluated by examining the transepidermal water loss (TEWL). It shows that a barrier function is so high that the amount of transepidermal water transpiration
  • a general method used by those skilled in the art can be used as a method for examining the transepidermal water transpiration rate (for example, Kumamoto J., Tsutsumi M., Goto M., Nagayama M., Denda M., etc.).
  • Japanese Cedar (Cryptomeria japonica) pollen allergen induces elevation of intracellular calcium in human keratinocytes and impairs epidermal barrier function of human skin ex vivo.Arch.Dermatol.Res.308: 49-54,2016 see).
  • the average of the lower limit value of the unevenness height H′1 of the three-dimensional cultured skin sheet is, for example, 1 ⁇ m or more, 5 ⁇ m or more, 10 ⁇ m or more, 15 ⁇ m or more, 20 ⁇ m or more, 25 ⁇ m or more, 30 ⁇ m or more.
  • the average of the upper limit value of the uneven height H′1 of the three-dimensional cultured skin sheet may be, for example, 300 ⁇ m or less, 250 ⁇ m or less, 200 ⁇ m or less, 150 ⁇ m or less, 100 ⁇ m or less, 80 ⁇ m or less, 75 ⁇ m or less. Good.
  • the average unevenness height H′1 of the three-dimensional cultured skin sheet may be, for example, 1 ⁇ m to 300 ⁇ m, 1 ⁇ m to 200 ⁇ m, 1 ⁇ m to 100 ⁇ m, It may be 5 ⁇ m to 250 ⁇ m, 10 ⁇ m to 200 ⁇ m, 15 ⁇ m to 150 ⁇ m, 20 ⁇ m to 100 ⁇ m, 25 ⁇ m to 80 ⁇ m, 30 ⁇ m to 75 ⁇ m. May be.
  • the average of the lower limit values of the three-dimensional cultured skin sheet convex interval width W′1 (or W′2) is, for example, 1 ⁇ m or more, 5 ⁇ m or more, 8 ⁇ m or more, 10 ⁇ m or more, 12 ⁇ m or more, 15 ⁇ m or more.
  • the average upper limit value of the three-dimensional cultured skin sheet convex interval width W′1 (or W′2) is, for example, 300 ⁇ m or less, 250 ⁇ m or less, 200 ⁇ m or less, 180 ⁇ m or less, 170 ⁇ m or less, 150 ⁇ m or less, 125 ⁇ m or less, 100 ⁇ m.
  • the average of the three-dimensional cultured skin sheet convex interval width W′1 may be, for example, 1 ⁇ m to 300 ⁇ m, 1 ⁇ m to 200 ⁇ m, or 1 ⁇ m to 100 ⁇ m. 1 ⁇ m to 90 ⁇ m, 5 ⁇ m to 250 ⁇ m, 8 ⁇ m to 200 ⁇ m, 10 ⁇ m to 180 ⁇ m, or 12 ⁇ m to 100 ⁇ m 25 ⁇ m to 80 ⁇ m or 30 ⁇ m to 75 ⁇ m.
  • the average of the lower limit values of the three-dimensional cultured skin sheet convex portion width Y′1 may be, for example, 1 ⁇ m or more, 5 ⁇ m or more, 10 ⁇ m or more, 15 ⁇ m or more, 20 ⁇ m or more, 25 ⁇ m or more.
  • the average of the upper limit values of the three-dimensional cultured skin sheet convex portion width Y′1 may be, for example, 300 ⁇ m or less, 250 ⁇ m or less, 200 ⁇ m or less, 150 ⁇ m or less, 100 ⁇ m or less, 80 ⁇ m or less, or 75 ⁇ m or less.
  • the average of the three-dimensional cultured skin sheet convex width Y′1 may be, for example, 1 ⁇ m to 300 ⁇ m, 5 ⁇ m to 250 ⁇ m, 10 ⁇ m to 200 ⁇ m, 15 ⁇ m to It may be 150 ⁇ m, 20 ⁇ m to 100 ⁇ m, 25 ⁇ m to 80 ⁇ m, or 30 ⁇ m to 75 ⁇ m.
  • the epidermal cell layer for example, spiny layer, granule layer and A three-dimensional cultured skin sheet with a thickened (or stratum corneum) is obtained.
  • the three-dimensional cultured skin sheet obtained by the present invention is physically based on the basal part 11 by the convex part composed of a non-biological substance, not the convex part composed of a biological substance such as a cell or cell adhesion protein. It has an excellent effect of thickening only by forming irregularities on the surface.
  • the base of the three-dimensional cultured skin sheet can be stably obtained without being decomposed even during the culture period and when used thereafter.
  • the uneven structure can be maintained in the portion, and the effect of the present invention can be maintained.
  • the average height, shape, and interval width of the unevenness of the three-dimensional cultured skin sheet of the present invention can be controlled by the height, shape, interval width, etc. of the convex portions provided on the porous membrane surface of the cell culture container. .
  • the three-dimensional cultured skin sheet obtained by the present invention is a three-dimensional cultured skin sheet having a small amount of transdermal moisture transpiration and a high barrier function as compared with conventional three-dimensional cultured skin sheets.
  • the barrier function is improved.
  • the base part 11 of the three-dimensional cultured skin sheet is preferably in close contact with the culture surface (culture surface including the porous membrane and the convex part).
  • the barrier function is further improved. More preferably, the base portion 11 of the three-dimensional cultured skin sheet is in close contact with the entire culture surface.
  • the convex portion provided on the surface of the porous membrane may be composed of a biological material, may be composed of a non-biological material, or is configured by combining a biological material and a non-biological material. It may be a thing.
  • “non-biological substance” means a biological substance, that is, a biological macromolecule (nucleic acid, protein, polysaccharide and their constituent elements (nucleotide, nucleoside, amino acid, sugar)), vitamins, etc. Refers to substances other than It is preferable that the non-biological substance used for constituting the convex part of the present invention is a biocompatible substance that does not affect cell culture.
  • the convex portion provided on the porous membrane surface is further coated with a biological material such as collagen, fibronectin, laminin, gelatin, vitronectin, polylysine (D-form, L-form), thrombospondin, etc. It may be what was done.
  • a biological material such as collagen, fibronectin, laminin, gelatin, vitronectin, polylysine (D-form, L-form), thrombospondin, etc. It may be what was done.
  • the convex portion is provided on the surface of the porous membrane that does not expand and contract and the culture surface is not decomposed even if cultured, a three-dimensional cultured skin sheet that is not contracted can be obtained.
  • the cells used in the present invention may be initial representative skin cells obtained by finely chopping biological tissue, particularly skin tissue, and treating with proteolytic enzymes such as collagenase and trypsin.
  • epidermal cells obtained by inducing differentiation from pluripotent stem cells such as ES cells, iPS cells, or Muse cells, or established epidermal cells. May be.
  • it is a primary cultured epidermal cell collected from a biological tissue and seeded, or a representative skin cell obtained by further subculturing the primary cultured cell.
  • Epidermal cells collected from living tissue are likely to maintain the same properties as living organisms, and are used for testing drug efficacy and side effects and conducting basic research. When convenient.
  • primary cultured epidermal cells are epidermal cells that are collected from a living tissue and then cultured and collected only once in a cell culture container.
  • the epidermal cells have “number of passages 0 (or first generation)”. Also called.
  • Epidermis cells having a subculture number of 0 that have become confluent or subconfluent can be subcultured by a method known to those skilled in the art and further amplified and cultured.
  • Epidermal cells obtained by one passage operation are referred to as “passage number 1 (or second generation)”.
  • it can be expressed as “number of passages 2, 3, 4... N (n (integer) is the number of passages) (n + 1 generation)”.
  • primary culture cells eg, Kurabo's frozen NHEK (NB), catalog number: KK-4209
  • NB Kurabo's frozen NHEK
  • a step of freezing the cells may be included between each passage operation.
  • telomere is shortened or confluent and / or physical stress is applied due to trypsin treatment, etc., every time cell passage is repeated after repeated passages. It is thought that aging is caused. Therefore, usually, when using a tissue model using cultured cells, cells with a small number of passages are used.
  • primary cultured cells are cells that are directly isolated from living tissue and have a limited number of cells that can be supplied because the number of passages is small. Not only is the size and amount of tissue that can be collected for ethical issues limited, but there are also variations in the nature of cells obtained by donors.
  • Some primary cultured cells are commercially available, but they are inevitably expensive in terms of supply. Therefore, when it is necessary to construct a large number of three-dimensional cultured skin sheets, it is necessary to obtain and use a large amount of expensive cells, which is problematic in terms of cost.
  • first representative skin cells and kits for converting the cells into three dimensions are commercially available and can be purchased and prepared (for example, keratinocyte three-dimensional (Culture starter kit, CELLnTEC)
  • CELLnTEC cornea starter kit
  • the basal part 11 of the three-dimensional cultured skin sheet has irregularities, it has a thickness that was conventionally obtained only with primary cultured cells (for example, passage number 0 or 1).
  • the three-dimensional cultured skin sheet is constructed even when epidermal cells having a passage number of 2 or more are used after being isolated and cultured from a living tissue. Even when primary cultured cells (for example, passage times 0 or 1) are used, a three-dimensional cultured skin sheet having a thickness can be obtained by the present invention.
  • the number of times of passage after isolation culture from the living tissue of the epidermal cells used may be, for example, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, or 10 or more.
  • the animal species of the first representative skin cell used is not particularly limited, but is preferably derived from human.
  • the primary representative skin cell used may be any of fetal, newborn, minor, or adult-derived cells, preferably fetal, newborn, or minor-derived cells. It is.
  • cells derived from human minors are used, for example, cells under 20 years old, 1-19 years old, 1-10 years old, 1-5 years old are preferably used.
  • cells derived from human adults it is preferable to use cells of young age, for example, 20-29 years old, 30-39 years old, 40-49 years old.
  • the average thickness of the three-dimensional cultured skin sheet is 20 ⁇ m or more, 21 ⁇ m or more, 22 ⁇ m or more, 23 ⁇ m or more, 24 ⁇ m or more, 25 ⁇ m or more, 26 ⁇ m or more, 27 ⁇ m or more, 28 ⁇ m or more, 29 ⁇ m or more, 30 ⁇ m or more, 35 ⁇ m or more, 40 ⁇ m or more, 45 ⁇ m or more, 50 ⁇ m or more, 55 ⁇ m or more, 60 ⁇ m or more, 65 ⁇ m or more, 70 ⁇ m or more, 75 ⁇ m or more, 80 ⁇ m or more, 85 ⁇ m or more, 90 ⁇ m or more, 95 ⁇ m or more, 100 ⁇ m or more, 105 ⁇ m or more, 110 ⁇ m or more 115 ⁇ m or more, 120 ⁇ m or more, 125 ⁇ m or more, 150 ⁇ m or more, 175 ⁇ m or more, 200 ⁇ m or more,
  • FIG. 1 The conceptual diagram of the cell culture container for producing the three-dimensional cultured skin sheet of the present invention is shown in FIG.
  • Modification examples of the convex portion 7 provided in the cell culture container 1 are shown in FIGS.
  • FIG. 3 shows one embodiment of the cell culture container 1 of the present invention.
  • seat of this invention is arrange
  • the convex portion 71 has a bead shape.
  • the convex portions 71a can be arranged so as to be positioned at square lattice points.
  • the convex portions 71b are arranged so as to be positioned at lattice points of equilateral triangles.
  • the convex portion interval width W1b it is possible to control the convex portion interval width W'1 of the above-described three-dimensional cultured skin sheet of the present invention.
  • seat of this invention it is possible to control the convex part width
  • FIG. 4 shows one embodiment of the cell culture container 1 of the present invention.
  • seat of this invention is arrange
  • the convex portion 72 has a cubic shape which is a kind of prismatic shape.
  • the convex portions 72a can be arranged so as to be positioned at square lattice points.
  • the convex portions 72b can be arranged so that the center of gravity of the convex portions 72b is located at lattice points of regular triangles.
  • the convex interval width W2b it is possible to control the convex interval width W'1 of the above-described three-dimensional cultured skin sheet of the present invention.
  • seat of this invention it is possible to control the recessed part width
  • FIG. 5 is a cross-sectional view showing an embodiment of convex portions (73, 74, 75) provided in the cell culture container 1 of the present invention.
  • FIG. 5A shows a convex portion 73 having a cone shape (triangular pyramid, quadrangular pyramid, or cone).
  • FIG.5 (b) shows the convex part 74 which has a frustum shape.
  • FIG.5 (c) shows the convex part 75 which has a bell shape.
  • the shape of the convex portions (7, 71, 71a, 71b, 72, 72a, 72b, 73, 74, 75) is not limited to the above, but for example, a substantially hemispherical shape, a substantially rectangular parallelepiped shape, etc. Is also included.
  • the material of the convex portions (7, 71, 71a, 71b, 72, 72a, 72b, 73, 74, 75) may be composed of a biological material or may be composed of a non-biological material. It may be configured by combining a substance and a non-biological substance.
  • polyester or polyethylene terephthalate (PET), polycarbonate, polystyrene, zirconia, glass-insoluble collagen, silicone rubber and the like can be mentioned, and other materials may be used as long as cell culture is possible.
  • Plasma treatment or the like may be performed by a known method so that cells can easily adhere to the surface of the convex portions (7, 71, 71a, 71b, 72, 72a, 72b, 73, 74, 75).
  • the convex portions (7, 71, 71a, 71b, 72, 72a, 72b, 73, 74, 75) may be arranged at equal intervals on the porous membrane 3 as in the above-described embodiment, or non-uniform.
  • the average of the lower limit values of the intervals may be, for example, 1 ⁇ m or more, 5 ⁇ m or more, 8 ⁇ m or more, 10 ⁇ m or more, 12 ⁇ m or more, or 15 ⁇ m or more.
  • the average upper limit value of the interval between the convex portions (7, 71, 71a, 71b, 72, 72a, 72b, 73, 74, 75) is, for example, 300 ⁇ m or less, 250 ⁇ m or less, 200 ⁇ m or less, 180 ⁇ m or less, 170 ⁇ m or less, 150 ⁇ m. Hereinafter, it may be 125 ⁇ m or less and 100 ⁇ m or less.
  • the average interval between the convex portions (7, 71, 71a, 71b, 72, 72a, 72b, 73, 74, 75) may be, for example, 1 ⁇ m to 300 ⁇ m, or 5 ⁇ m to 250 ⁇ m. It may be 8 ⁇ m to 200 ⁇ m, 10 ⁇ m to 180 ⁇ m, 12 ⁇ m to 100 ⁇ m, 25 ⁇ m to 80 ⁇ m, or 30 ⁇ m to 75 ⁇ m.
  • the average of the lower limit values of the heights of the protrusions is, for example, 1 ⁇ m or more, 5 ⁇ m or more, 10 ⁇ m or more, 15 ⁇ m or more, 20 ⁇ m or more, 25 ⁇ m or more, 30 ⁇ m or more. Also good.
  • the average of the upper limit values of the heights of the protrusions (H, H2, H3, H4, H5) is, for example, 300 ⁇ m or less, 250 ⁇ m or less, 200 ⁇ m or less, 150 ⁇ m or less, 100 ⁇ m or less, 80 ⁇ m or less, 75 ⁇ m or less. There may be.
  • the average of the heights of the protrusions may be, for example, 1 ⁇ m to 300 ⁇ m, 5 ⁇ m to 250 ⁇ m, or 10 ⁇ m to 200 ⁇ m. Or 15 ⁇ m to 150 ⁇ m, 20 ⁇ m to 100 ⁇ m, 25 ⁇ m to 80 ⁇ m, or 30 ⁇ m to 75 ⁇ m.
  • the average of the lower limit values of the convex part widths is, for example, 1 ⁇ m or more, 5 ⁇ m or more, 10 ⁇ m or more, 15 ⁇ m or more, 20 ⁇ m or more, 25 ⁇ m or more.
  • the average of the upper limit values of the convex portion widths is, for example, 300 ⁇ m or less, 250 ⁇ m or less, 200 ⁇ m or less, 150 ⁇ m or less, 100 ⁇ m or less, 80 ⁇ m or less, 75 ⁇ m or less. is there.
  • the average of the protrusion widths may be, for example, 1 ⁇ m to 300 ⁇ m, 5 ⁇ m to 250 ⁇ m, or 10 ⁇ m to 200 ⁇ m. Or 15 ⁇ m to 150 ⁇ m, 20 ⁇ m to 100 ⁇ m, 25 ⁇ m to 80 ⁇ m, or 30 ⁇ m to 75 ⁇ m.
  • Convex portions (7, 71, 71a, 71b, 72, 72a, 72b, 73, 74, 75) may be aggregated and fixed on the porous membrane 3 by several to several tens.
  • the method of fixing the convex portions (7, 71, 71a, 71b, 72, 72a, 72b, 73, 74, 75) may be fixed on the porous membrane 3 by covalent bonding by a known method. You may fix using an agent.
  • the adhesive is preferably a substance that does not affect the adhesion of cells and does not give toxicity to the cells and is not degraded by the cells.
  • the convex portions (7, 71, 71a, 71b, 72, 72a, 72b, 73, 74, 75) may be directly formed on the porous film 3, for example, 3D printer technology or semiconductor process technology (for example, it may be formed by a method used in a lithography process (including nanoimprint or photo-embossing) and dry etching (eg, reactive ion etching) or a method combining wet etching).
  • the convex portions (7, 71, 71a, 71b, 72, 72a, 72b, 73, 74, 75) may simply be placed on the porous membrane 3.
  • FIG. 1 Another modification of the convex portion 7 provided in the cell culture container 1 is shown in FIGS.
  • FIG. 6 shows one embodiment of the cell culture container 1 of the present invention.
  • seat of this invention is provided on the porous membrane 3.
  • the convex portions 76 are arranged on the porous film 3 in a substantially parallel stripe shape.
  • the convex portions 77 are arranged on the porous film 3 in a lattice shape with equal intervals in the vertical and horizontal directions.
  • the convex portions 78 are arranged in a regular triangular lattice on the porous film 3.
  • the convex portions (76, 77, 78) are made of, for example, fibers.
  • the convex portions (76, 77, 78) may be formed from a single fiber, or may be formed by bundling a plurality of thin fibers.
  • the convex part (76, 77, 78) may be formed by the rectangular parallelepiped structure, and may be comprised by the substantially semi-columnar structure.
  • FIG. 7 shows an embodiment of FIG. 6 (b), which is a cell culture container 1 having convex portions in which convex portions 77 a and convex portions 77 b are alternately knitted.
  • FIG. 7B shows a cross section on the line connecting Z and Z ′ in FIG.
  • the material of the convex portions may be composed of a biological material, may be composed of a non-biological material, or may be composed of a biological material and a non-biological material. It may be configured by combining substances.
  • a biological material may be composed of a non-biological material, or may be composed of a biological material and a non-biological material. It may be configured by combining substances.
  • PET polyethylene terephthalate
  • polycarbonate polycarbonate
  • polystyrene polystyrene
  • glass insoluble collagen
  • silicone rubber and the like insoluble collagen
  • the average of the lower limit values of the heights of the convex portions may be, for example, 1 ⁇ m or more, 5 ⁇ m or more, 10 ⁇ m or more, 15 ⁇ m or more, 20 ⁇ m or more, 25 ⁇ m or more, 30 ⁇ m or more.
  • the average of the upper limit values of the heights of the convex portions may be, for example, 300 ⁇ m or less, 250 ⁇ m or less, 200 ⁇ m or less, 150 ⁇ m or less, 100 ⁇ m or less, 80 ⁇ m or less, or 75 ⁇ m or less.
  • the average height of the convex portions may be, for example, 1 ⁇ m to 300 ⁇ m, 5 ⁇ m to 250 ⁇ m, or 10 ⁇ m to 200 ⁇ m. Or 15 ⁇ m to 150 ⁇ m, 20 ⁇ m to 100 ⁇ m, 25 ⁇ m to 80 ⁇ m, or 30 ⁇ m to 75 ⁇ m.
  • the height H7a of the convex portions (77a, 77b) is determined based on the uppermost portion (C, C ′) of the convex portion intersection where the convex portions 77a and 77b intersect. Can do.
  • the convex portions (76, 77, 77a, 77b, 78) may be fixed on the porous membrane 3 at equal intervals or may be fixed at non-uniform intervals.
  • the value may be 1 ⁇ m or more, 5 ⁇ m or more, 8 ⁇ m or more, 10 ⁇ m or more, 12 ⁇ m or more, 15 ⁇ m or more.
  • the upper limit value of the average interval of the convex portions (76, 77, 77a, 77b, 78) may be, for example, 300 ⁇ m or less, 250 ⁇ m or less, 200 ⁇ m or less, 180 ⁇ m or less, 170 ⁇ m or less, 150 ⁇ m or less, 125 ⁇ m or less, 100 ⁇ m or less. Good.
  • the average interval between the convex portions (76, 77, 77a, 77b, 78) may be, for example, 1 ⁇ m to 300 ⁇ m, 5 ⁇ m to 250 ⁇ m, or 8 ⁇ m to 200 ⁇ m. It may be 10 ⁇ m to 180 ⁇ m, 12 ⁇ m to 100 ⁇ m, 25 ⁇ m to 80 ⁇ m, or 30 ⁇ m to 75 ⁇ m.
  • the protrusion interval width W7a can be determined on the basis of the intersection (C, C ′) of the protrusions where the protrusions 77a and 77b intersect.
  • the convex width (Y6, Y7, Y8) may be uniform or non-uniform.
  • the average of the lower limit values of the protrusion widths (Y6, Y7, Y8) may be, for example, 1 ⁇ m or more, 5 ⁇ m or more, 10 ⁇ m or more, 15 ⁇ m or more, 20 ⁇ m or more, or 25 ⁇ m or more.
  • the average of the upper limit values of the protrusion widths (Y6, Y7, Y8) may be, for example, 300 ⁇ m or less, 250 ⁇ m or less, 200 ⁇ m or less, 150 ⁇ m or less, 100 ⁇ m or less, 80 ⁇ m or less, or 75 ⁇ m or less.
  • the average of the protrusion widths may be, for example, 1 ⁇ m to 300 ⁇ m, 5 ⁇ m to 250 ⁇ m, 10 ⁇ m to 200 ⁇ m, or 15 ⁇ m to 150 ⁇ m. Or 20 ⁇ m to 100 ⁇ m, 25 ⁇ m to 80 ⁇ m, or 30 ⁇ m to 75 ⁇ m.
  • Plasma treatment or the like may be performed by a known method so that cells can easily adhere to the surface of the convex portions (76, 77, 77a, 77b, 78).
  • fibers fragmented to an arbitrary length may be fixed on the porous membrane 3 to form convex portions (76, 77, 77a, 77b, 78).
  • the convex portions (76, 77, 77a, 77b, 78) may be provided, or the convex portions (76, 77, 77a, 77b, 78) may be merely placed on the porous film 3.
  • the method for fixing the convex portions (76, 77, 77a, 77b, 78) on the porous membrane 3 it may be covalently fixed on the porous membrane 3 by a known method, and an adhesive is used. May be fixed.
  • the adhesive is preferably a substance that does not affect the adhesion of cells and does not give toxicity to the cells and is not degraded by the cells.
  • poly-D-lysine, agarose, glucomannan, UV curable resin and the like can be mentioned, but any substance that produces the same effect and can fix the fiber on the porous membrane can be used.
  • the protrusions (76, 77, 77a, 77b, 78) are preferably fixed on the porous membrane 3 so as not to peel off during cell culture.
  • a three-dimensional cultured skin sheet having not only thickening but also a high barrier function is obtained. Is possible.
  • the material of the cell culture vessel 1 used in the embodiment of the present invention is not particularly limited as long as it is a material usually used for a cell culture vessel.
  • a material usually used for a cell culture vessel For example, glass, polystyrene, polypropylene, polycarbonate and the like.
  • the shape of the cell culture vessel used in the present invention is not particularly limited, and examples thereof include a dish type, a multiwell plate type, and a flask type. Since the cell culture container of the present invention has a porous membrane in a part of the cell culture container, it is preferably a cell culture insert type.
  • the cell culture insert used in the present invention refers to a cell culture vessel provided with a membrane having porous pores that cannot permeate cells but can permeate culture medium and the like.
  • a culture solution or the like from the opposite side of the culture surface of the porous membrane, that is, from the back side of the adherent cell attachment surface.
  • a commercially available one may be used, or a cell culture insert having a membrane formed directly on the culture surface of the porous membrane and provided with a convex portion.
  • a convex portion may be provided on the surface of the porous membrane by bonding beads or fibers, and the convex portion is simply placed on the porous membrane 3 without bonding. It may be only.
  • the convex part may be a part of a kit that is provided together with or separately from the cell culture insert 2 as a part of a culture container for producing a three-dimensional cultured skin sheet and assembled during culture.
  • the average pore diameter of the porous membrane is not particularly limited, but is, for example, 0.1 ⁇ m to 5.0 ⁇ m, preferably 0.2 ⁇ m to 4.0 ⁇ m, and more preferably 0.3 to 3.5 ⁇ m.
  • the material of the porous film may be, for example, polyester or polyethylene terephthalate (PET), polycarbonate, polystyrene, or the like, as in the case of a conventionally used porous film.
  • the culture surface may be coated so that cells adhere to the cell culture container having a convex portion on the porous membrane 3 and easily grow.
  • collagen for example, collagen, fibronectin, laminin, gelatin, vitronectin, polylysine (D form, L form), thrombospondin and the like can be mentioned.
  • the number of seeding epidermal cells may be according to a known method.
  • the number of epidermal cells is 0.01 ⁇ 10 6 to 10.0 ⁇ 10 6 cells / cm 2 , preferably 0.05 ⁇ 10 6 to 5.0 ⁇ 10 6 cells / cm 2 , more preferably 0.1 Seeding at an amount of ⁇ 10 6 to 1.0 ⁇ 10 6 pieces / cm 2 .
  • a medium also referred to as a culture solution
  • a commonly used medium such as KG medium, Epilife KG2 (Kurabo), Humedia-KG2 (Kurabo), assay medium (TOYOBO), CnT- Using Prime, Epithelial culture medium (CELLnTEC), etc.
  • KG medium Epilife KG2 (Kurabo), Humedia-KG2 (Kurabo), assay medium (TOYOBO), CnT- Using Prime, Epithelial culture medium (CELLnTEC), etc.
  • a DMEM medium GAA
  • a medium in which KGM and DMEM containing 2-0-aD-glucopyranosyl-L-ascorbic acid are mixed 1 1 can be used.
  • CnT-Prime and 3D barrier medium may be used for three-dimensionalization (stratification) of epidermal cells.
  • epidermal cells are cultured, seeded in a cell culture container 1 containing the cell culture insert 2 described above, and grown and cultured in order to promote three-dimensional (stratification) and keratinization. That's fine.
  • epidermal cells are suspended in a medium and seeded on the cell culture insert 2.
  • the culture medium is also added to the bottom well 4 so that the culture medium is brought into contact with the outside of the porous membrane 3 of the cell culture insert, and the cell culture insert 2 is immersed and cultured. Thereby, the culture medium is supplied from both the upper part and the bottom part of the epidermis cells and cultured.
  • the epidermal cells on the cell culture insert 2 are cultured for several days (about 1 to 6 days, preferably about 2 to 4 days) until they become confluent or sub-confluent. Thereafter, in order to further promote the three-dimensionalization (stratification) of the cells, the medium inside and outside the cell culture insert is preferably replaced with, for example, CnT-Prime, 3D barrier medium (CELLnTEC). This further promotes three-dimensional epidermal cells.
  • CnT-Prime CELLnTEC
  • CELLnTEC CnT-Prime and 3D barrier medium
  • each culture step in the present invention may be around the body temperature of the origin animal, and specifically, it is preferably about 33 to 38 ° C. for human cells.
  • the three-dimensional cultured skin sheet obtained by the present invention as described above can be used as one of animal experiment alternative methods, for example, a skin model.
  • a skin model For example, it can be used in a method for evaluating the reactivity to skin chemicals (for example, cosmetics, industrial products, household products, drugs, external preparations for skin, etc.).
  • the three-dimensional cultured skin sheet of the present invention can be used as a useful skin model in basic research in dermatology because a thicker tissue can be obtained as compared with conventional three-dimensional cultured skin sheets. It is.
  • the three-dimensional cultured skin sheet obtained by the present invention is thickened as compared with the conventional three-dimensional cultured skin sheet, it has a high barrier function from the outside, and heals burns, wounds, etc. It is also useful as a three-dimensional cultured skin sheet.
  • the cell culture container used in the present invention may be a cell culture container in which the convex part and the porous membrane can be separated after the culture is completed.
  • the three-dimensional cultured skin sheet produced in the cell culture container is separated from the porous membrane while the convex portion is in contact with the base portion. Therefore, the base part of the three-dimensional cultured skin sheet can be moved while maintaining the uneven structure.
  • the convex portion is a biological material containing a biological material such as collagen, fibronectin, laminin, gelatin, vitronectin, polylysine (D-form, L-form), thrombospondin, etc. In particular, insoluble collagen is more preferable.
  • the epidermal cells used in the present invention were neonatal-derived keratinocytes (hereinafter “keratinocytes”. Kurabo Industries, product name: frozen NHEK (NB), catalog number: KK-4209). The subculture was performed according to the instructions provided by the sales company.
  • Example 1 A plastic bead (10 ⁇ m: M-310, 30 ⁇ m: M-503) manufactured by Matsumoto Yushi Seiyaku Co., Ltd. in which 10 mg is dispersed in 1 mL of poly-D-lysine (1 mg / mL Millipore), 12-Well Millicell Hanging Cell 10 ⁇ L was dropped on Culture inserts 0.4 ⁇ m PET (Millipore, hereinafter “cell culture insert”) and dried at 70 ° C. for 24 hours.
  • CELLstart CTS (gibco) was diluted 50-fold with DPBS (gibco), and 86 ⁇ L was dropped on one cell culture insert, and maintained at 37 ° C. for 2 hours.
  • CELLstart CTS was removed, and 2 to 250,000 newborn-derived keratinocytes with passage number 4 were dispersed in 500 ⁇ L of CnT-Prime, Epithelial culture medium (CELLnTEC), dropped into the cell culture insert, and the same medium (CnT -Prime, Epithelial culture medium) was dropped on the outside of the 1 mL cell culture insert and cultured for 72 hours at 37 ° C. in a CO 2 incubator.
  • CnT-Prime and Epithelial culture medium inside and outside the cell culture insert were removed, replaced with CnT-Prime and 3D barrier medium (CELLnTEC), and cultured in a 37 ° C. CO 2 incubator for 16 hours.
  • the culture medium inside and outside the cell culture insert was removed, the inside of the cell culture insert was exposed to air, and 500 ⁇ L CnT-Prime and 3D barrier medium were placed outside the cell culture insert.
  • the cells were cultured in a 37 ° C. CO 2 incubator for 7 days while changing 500 ⁇ L CnT-Prime and 3D barrier medium outside the cell culture insert every day.
  • HE hematoxylin-eosin
  • Example 2 (1) 12-Well Millicell Hanging Cell Culture Inserts 0.4 ⁇ m PET (Millipore, “Cell Culture Insert”) was laid with a 12 mm diameter polyester mesh. Subsequent procedures were performed in the same manner as (2) to (7) in Example 1.
  • Example 3 An experiment was conducted to observe how changes in the width, interval width, and height of the convex portions of the cell culture container cause changes in the thickness of the three-dimensional culture skin sheet.
  • FIG. 10 shows an enlarged view of the polyester fiber used in the example in order to form irregularities on the three-dimensional cultured skin sheet of the present invention.
  • FIGS. 11A and 11B show HE-stained images of sections of the produced three-dimensional cultured skin sheet.
  • the three-dimensional cultured skin sheet and the porous membrane of the cell culture insert are separated, or fibers are turned up to form a hollow part. It is artificial by.
  • Example 4 (1) 12-Well Millicell Hanging Cell Culture Inserts 0.4 ⁇ m PET (Millipore, “Cell Culture Insert”) 255 or No. No. 300 fibers that were cut and laid in the shape of a well (referred to as “255 cloth” and “300 cloth”) 255 or No. 300 fibers bonded with an ultraviolet curable resin (Henkel, LOCTITE (registered trademark) AA3554) (referred to as “255 cloth bonding” and “300 cloth bonding”) were prepared. Moreover, the well which did not provide the convex part with the cloth was used as control. Furthermore, human skin (purchased from Biopredic International, Inc. (Rennes, France) via KA Corporation (Kyoto, Japan)) was used as a control. Subsequent procedures were performed in the same procedure as (2) to (6) in Example 1. The experiment was performed in triplicate.
  • the insert that constructed the three-dimensional epidermis model was fitted into a silicon rubber container with the culture solution at the bottom so that water evaporation occurred only from the surface of the epidermis model. Thereafter, the weight of the container in which the insert was fitted every other hour was measured, and the reduced weight was taken as the amount of water transpiration and converted to a numerical value per unit area.
  • Kumamoto of paper Keramoto J., Tsutsumi M., Goto M., Nagayama M., Denda M.Japanese Cedar (Cryptomeria japonica) pollen allergen induces elevation of intracellular calcium in human keratinocytes and impairs epidermal barrier function of human skin ex vivo. Arch. Dermatol. Res. 308: 49-54, 2016).
  • the obtained results are statistically analyzed (multiple test analysis by Scheffe after ANOVA variance analysis), compared with the three-dimensional cultured skin sheet obtained by culturing only with the membrane, the result of multiple test, Those with p ⁇ 0.05 were judged to be significantly different.
  • the three-dimensional cultured skin sheet obtained by the cell culture insert (255 cloth bonded and 300 cloth bonded) in which 255 cloth and 300 cloth are bonded using an ultraviolet curable resin is not a three-dimensional cultured skin sheet. It was revealed that a three-dimensional cultured skin sheet having a significantly low transdermal moisture transpiration amount and a high barrier function was obtained compared to (Fig. 12).

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Abstract

厚さを有する三次元培養皮膚シートの提供。　本発明は、少なくとも表皮細胞を含み、基底部の少なくとも一部に凹凸を有する三次元培養皮膚シートを提供する。また、本発明は、培養表面の少なくとも一部に、三次元培養皮膚シートの基底部に凹凸を形成するための凸部を備えた多孔性膜を有し、三次元培養皮膚シートの製造に使用される細胞培養容器を提供する。さらに、本発明は、該細胞培養容器を用いた、三次元培養皮膚シートの製造方法を提供する。

Description

三次元培養皮膚シート、その製造に使用するための細胞培養容器及びその製造方法
　本発明は、三次元培養皮膚シートに関する。また、本発明は、三次元培養皮膚シートの製造に使用するための細胞培養容器に関する。また、本発明は、三次元培養皮膚シートの製造方法に関する。本出願は、２０１６年６月２４日に提出された日本出願（特願２０１６－１２５８４３号）及び２０１６年１２月２８日に提出された日本出願（特願２０１６－２５６７７８号）を基礎とする優先権主張出願である。
　皮膚は生体内と生体外の環境を分ける体表を覆う器官である。皮膚は、物理的なバリアとして働き、乾燥や有害物質が生体内へ侵入することから守り、生命の維持に不可欠な役割を果たしている。
　高等脊椎動物の皮膚は、最外層から大別すると表皮、真皮、皮下組織の層から形成されている。表皮と真皮の境界面には起伏を有しており、この起伏は、老化に伴い平坦化することが知られている（例えば、非特許文献１参照。）。表皮は、主にケラチノサイトと呼ばれる細胞から構成されており、表皮の最深部（基底層）でケラチノサイトが分裂しながら、上層に向かって有棘層、顆粒層、そして角層へと分化しながら表面へと移動し、やがて垢となって脱落する。このサイクルはヒトの場合概ね４週間で行われる。
　表皮構造、及びその機能を生体外で模倣した様々な培養皮膚モデルの構築が試みられており、既に市販されているものもある（例えば、特許文献１、非特許文献２、及び非特許文献３参照。）。また、フォトリソグラフィーで作成した溝を有するモールドにコラーゲンゲルを流し込み、そのコラーゲンゲルに線維芽細胞を播種して作製したスキャフォールド上にケラチノサイトをさらに播種して３次元培養皮膚モデルを作製する試みや（特許文献２、非特許文献４）、培養表面にうねりが設けられた細胞培養器材を用いて、初代ヒトケラチノサイトに含まれる幹細胞の配置に与える影響を調べる試みや（非特許文献５）、生分解性高分子のキトサン、ポリカプロラクトン又はその混合物からなる細胞培養器材表面を用いて、ヒトケラチノサイトの分化に与える影響が調べられている（非特許文献６）。また、ヒトの献体から採取された皮膚組織から、上皮組織と細胞成分を除去したヒト無細胞化真皮基質上にケラチノサイトを播種して、３次元培養皮膚を作製する試みも行われている（非特許文献７）。
　こうした培養皮膚モデルは、化粧品や皮膚へ塗布する薬剤の安全性試験や、基礎研究等で用いられており、動物を代替するモデルとして注目を集めているところであるが、未だに、ヒトの皮膚と同等レベルの厚さ及びバリア機能を有する培養皮膚モデルは得られていない。
特開２０１２－２３５９２１号公報 米国特許出願公開第２０１１／０１７１１８０号明細書
Ｌａｖｋｅｒ　Ｒ．Ｍ．Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ　ａｌｔｅｒａｔｉｏｎｓ　ｉｎ　ｅｘｐｏｓｅｄ　ａｎｄ　ｕｎｅｘｐｏｓｅｄ　ａｇｅｄ　ｓｋｉｎ．Ｊ　Ｉｎｖｅｓｔ　Ｄｅｒｍａｔｏｌ．１９７９　Ｊｕｌ；７３（１）：５９－６６． Ｂｅｌｌ　Ｅ．，ｅｔ　ａｌ．，Ｔｈｅ　ｒｅｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎ　ｏｆ　ｌｉｖｉｎｇ　ｓｋｉｎ．Ｊ　Ｉｎｖｅｓｔ　Ｄｅｒｍａｔｏｌ．１９８３　Ｊｕｌ；８１（１　Ｓｕｐｐｌ）：２ｓ－１０ｓ． "ケラチノサイト三次元培養スターターキット"、［ｏｎｌｉｎｅ］、２００９年５月１１日、フナコシ株式会社、［２０１６年６月１６日検索］、インターネット＜ＵＲＬ：ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｆｕｎａｋｏｓｈｉ．ｃｏ．ｊｐ／ｃｏｎｔｅｎｔｓ／３５７１＞ Ｃｌｅｍｅｎｔ　ＡＬ，Ｍｏｕｔｉｎｈｏ　ＴＪ　Ｊｒ，Ｐｉｎｓ　ＧＤ．Ｍｉｃｒｏｐａｔｔｅｒｎｅｄ　ｄｅｒｍａｌ－ｅｐｉｄｅｒｍａｌ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｍａｔｒｉｃｅｓ　ｃｒｅａｔｅ　ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ　ｎｉｃｈｅｓ　ｔｈａｔ　ｅｎｈａｎｃｅ　ｅｐｉｄｅｒｍａｌ　ｍｏｒｐｈｏｇｅｎｅｓｉｓ．Ａｃｔａ　Ｂｉｏｍａｔｅｒ．２０１３　Ｄｅｃ；９（１２）：９４７４－８４. Ｖｉｓｗａｎａｔｈａｎ　Ｐ．，ｅｔ　ａｌ．，Ｍｉｍｉｃｋｉｎｇ　ｔｈｅ　ｔｏｐｏｇｒａｐｈｙ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｅｐｉｄｅｒｍａｌ－ｄｅｒｍａｌ　ｉｎｔｅｒｆａｃｅ　ｗｉｔｈ　ｅｌａｓｔｏｍｅｒ　ｓｕｂｓｔｒａｔｅｓ．Ｉｎｔｅｇｒ　Ｂｉｏｌ（Ｃａｍｂ）．２０１６　Ｊａｎ；８（１）：２１－９． Ｓａｌｅｒｎｏ　Ｓ．，Ｐｏｌｙｍｅｒｉｃ　ｍｅｍｂｒａｎｅｓ　ｍｏｄｕｌａｔｅ　ｈｕｍａｎ　ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｉｎ　ｓｐｅｃｉｆｉｃ　ｅｐｉｄｅｒｍａｌ　ｌａｙｅｒｓ．Ｃｏｌｌｏｉｄｓ　Ｓｕｒｆ　Ｂ　Ｂｉｏｉｎｔｅｒｆａｃｅｓ．２０１６　Ｏｃｔ　１；１４６：３５２－６２． Ｋａｔｏ　Ｈ．，ｅｔ　ａｌ．，Ｆａｂｒｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｌａｒｇｅ　Ｓｉｚｅ　Ｅｘ　Ｖｉｖｏ－Ｐｒｏｄｕｃｅｄ　Ｏｒａｌ　Ｍｕｃｏｓａｌ　Ｅｑｕｉｖａｌｅｎｔｓ　ｆｏｒ　Ｃｌｉｎｉｃａｌ　Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ．Ｔｉｓｓｕｅ　Ｅｎｇ　Ｐａｒｔ　Ｃ　Ｍｅｔｈｏｄｓ．２０１５　Ｓｅｐ；２１（９）：８７２－８０．
　動物を代替するモデルとしての培養皮膚モデルが開発されているが、ｉｎ　ｖｉｔｒｏで構築した従来のモデルは、生体の表皮と比較して十分な厚さを有しているとは言いがたいものであった。また、従来の培養皮膚モデルは、動物、特にヒト由来の皮膚と比較して、十分なバリア機能を有するものではなかった。さらにまた、既に市販されている三次元培養キットを使用した場合、継代されていない、又は継代回数が少ない初代培養表皮細胞（例えば、継代回数０又は１）を使用した場合にしか所望の厚さを有する三次元培養皮膚が得られないという問題を抱えていた。そのため、継代回数が少ない初代培養細胞を用いた場合に限らず、皮膚を構成する任意の細胞を用いたとしても、生体と同等又はそれに近い厚さを有する三次元培養皮膚を、安価、安定的かつ簡便に得る技術が求められていた。
　上記要請に鑑み、本発明者らが検討を行った結果、培養表面上に凸部を有する多孔性膜で表皮細胞を培養することにより、従来の培養方法と比較して厚さを有する三次元培養皮膚シートが得られることを見出し、本発明を為すに至った。
　すなわち、本発明は以下の発明を包含する。
［１］　少なくとも表皮細胞を含み、基底部の少なくとも一部に凹凸を有する、三次元培養皮膚シート。
［２］　該表皮細胞が、ケラチノサイトである、［１］に記載の三次元培養皮膚シート。
［３］　該三次元培養皮膚シートの内部の少なくとも一部に、さらに、表皮細胞非存在領域を含む、［１］又は［２］に記載の三次元培養皮膚シート。
［４］　該三次元培養皮膚シートの厚さの平均が、２０μｍ以上である、［１］～［３］のいずれか１に記載の三次元培養皮膚シート。
［５］　該凹凸の高さが平均１μｍ～３００μｍである、［１］～［４］のいずれか１に記載の三次元培養皮膚シート。
［６］　該凹凸の高さが、平均１μｍ～９０μｍである、［１］～［４］のいずれか１に記載の三次元培養皮膚シート。
［７］　該凹凸の隣接する間隔幅が、平均１μｍ～３００μｍである、［１］～［６］のいずれか１に記載の三次元培養皮膚シート。
［８］　該凹凸の間隔幅が、平均１μｍ～１００μｍである、［１］～［６］のいずれか１に記載の三次元培養皮膚シート。
［９］　さらに、該基底部と接触した凸部を有する多孔性膜を備える、［１］～［８］のいずれか１に記載の三次元培養皮膚シート。
［１０］　前記凸部が、非生体物質からなる、［９］に記載の三次元培養皮膚シート。
［１１］　培養表面の少なくとも一部に設けられた多孔性膜と、該多孔性膜上に配置され、三次元培養皮膚シートの基底部に凹凸を形成するための凸部と、を有する、［１］～［１０］のいずれか１に記載の三次元培養皮膚シートの製造に使用される細胞培養容器。
［１２］　非生体物質からなる、［１１］に記載の細胞培養容器。
［１３］　該凸部の高さが、平均１μｍ～３００μｍである、［１１］又は［１２］に記載の細胞培養容器。
［１４］　該凸部の高さが、平均１μｍ～９０μｍである、［１１］又は［１２］に記載の細胞培養容器。
［１５］　該凸部の隣接する間隔幅が、平均１μｍ～３００μｍである、［１１］～［１４］のいずれか１に記載の細胞培養容器。
［１６］　該凸部の隣接する間隔幅が、平均１μｍ～１００μｍである、［１１］～［１４］のいずれか１に記載の細胞培養容器。
［１７］　該凸部が、ビーズ形状、角柱形状、錐体形状、錐台形状、釣鐘型、及び／又は、格子状からなる、［１１］～［１６］のいずれか１に記載の細胞培養容器。
［１８］　（１）培養表面の少なくとも一部に設けられた多孔性膜と、該多孔性膜上に配置され、三次元培養皮膚シートの基底部に凹凸を形成するための凸部と、を有する細胞培養容器内に、培地に懸濁した表皮細胞を含む細胞を播種する工程、（２）該細胞培養容器の多孔性膜の外側に培地を接触させて培養する工程、を含む、三次元培養皮膚シートの製造方法。
［１９］　さらに、（３）前記細胞培養容器内の培地を除去して、前記皮膚細胞を空気に暴露し、培養する工程、を含む、［１８］に記載の製造方法。
［２０］　前記凸部が、非生体物質からなる、［１８］又は［１９］に記載の製造方法。
［２１］　該凸部の高さが、平均１μｍ～３００μｍである、［１８］～［２０］のいずれか１に記載の製造方法。
［２２］　該凸部の高さが、平均１μｍ～９０μｍである、［１８］～［２０］のいずれか１に記載の製造方法。
［２３］　該凸部の隣接する間隔幅が、平均１μｍ～３００μｍである、［１８］～［２２］のいずれか１に記載の製造方法。
［２４］　該凸部の隣接する間隔幅が、平均１μｍ～１００μｍである、［１８］～［２２］のいずれか１に記載の製造方法。
［２５］　該凸部が、ビーズ形状、角柱形状、錐体形状、錐台形状、釣鐘型、及び／又は、格子状からなる、［１８］～［２４］のいずれか１に記載の製造方法。
［２６］　該表皮細胞が、生体組織から単離培養後、継代回数２以上の表皮細胞を含む、［１８］～［２５］のいずれか１に記載の製造方法。
［２７］　前記表皮細胞が、ケラチノサイトである、［１８］～［２６］のいずれか１に記載の製造方法。
　本発明の三次元培養皮膚シートによれば、従来の三次元培養皮膚シートが有していなかった凹凸を有する基底部（表皮基底膜様構造体）、並びに、肥厚化した三次元培養皮膚シートが得られる。これにより、化粧品や皮膚へ塗布する薬剤の安全性試験、基礎研究に有用な三次元皮膚モデルが提供可能となる。また、本発明の細胞培養容器を用いれば、従来得られなかった肥厚化した三次元培養皮膚シートが安定的かつ安価に提供可能となる。さらにまた、本発明の培養方法を用いれば、従来得られなかった肥厚化した三次元培養皮膚シートが安定的かつ安価に提供可能となる。
本発明の概念図である。（ａ）本発明の細胞培養容器の断面図を示す。（ｂ）（ａ）の一部を拡大した図である。 本発明の三次元培養皮膚シートの構造を示す概念図である。 本発明の態様を示す概念図である。 本発明の態様を示す概念図である。 本発明の態様を示す概念図である。 本発明の態様を示す概念図である。 本発明の態様を示す概念図である。 ビーズを用いて基底部に凹凸を形成した三次元培皮膚シートの断面図を示す写真である。（ａ）ビーズを有しない培養表面にて三次元培養皮膚シートを構築した写真である。（ｂ）平均粒径１０μｍのＰＥＴビーズを有する培養表面にて三次元培養皮膚シートを構築した写真である。（ｃ）平均粒径３０μｍのＰＥＴビーズを有する培養表面にて三次元培養皮膚シートを構築した写真である。（ａ）～（ｃ）は、継代回数４のヒトケラチノサイトを用いた。 繊維により基底部に凹凸を形成した三次元培養皮膚シートの断面図を示す写真である。（ａ）ビーズを有しない培養表面にて三次元培養皮膚シートを構築した写真である（コントロール）。（ｂ）ポリエステル製の繊維（縦：平均５０μｍ、横：平均５０μｍ間隔のメッシュ状、厚さ：平均５０μｍ、以下、「Ｎ１」という。）を有する培養表面にて三次元培養皮膚シートを構築した写真である。（ａ）～（ｂ）は、継代回数４のヒトケラチノサイトを用いた。 本発明の三次元培養皮膚シートに凹凸を形成するために実施例で用いたポリエステル繊維の拡大図を示す。 図１０に示す各繊維を有する細胞培養容器を用いて基底部に凹凸を形成した三次元培養皮膚シートの断面図である。それぞれ２０倍の倍率で観察した。 図１０に示す各繊維を有する細胞培養容器を用いて基底部に凹凸を形成した三次元培養皮膚シートの断面図である。それぞれ２０倍の倍率で観察した。 図１０に示す繊維を有する細胞培養容器を用いて作製した三次元培養皮膚シートのバリア機能（水分蒸散量）を評価した図である。ヒト皮膚、凹凸を有しない多孔性膜上で培養した皮膚シート（膜のみ）、多孔性膜上に２２５布を載せた培養容器を用いて作製した皮膚シート（２２５布）、多孔性膜上に２２５布を載せた培養容器を用いて作製した皮膚シート（２２５布接着）、多孔性膜上に３００布を載せた培養容器を用いて作製した皮膚シート（３００布）、多孔性膜上に３００布を載せた培養容器を用いて作製した皮膚シート（３００布接着）のそれぞれについて、水分蒸散量を調べた。
　以下、本発明を実施するための形態について図面を参照しつつ詳細に説明するが、本発明の技術的範囲は下記の形態のみに限定されることはない。
＜三次元培養皮膚シートの構成例＞
　図１は、本実施形態で使用する細胞培養容器１、及び、その一部の培養表面断面拡大部６を示す断面図である。細胞培養容器１は、細胞を播種するセルカルチャーインサート２と、セルカルチャーインサート２の外部に培地を満たすためのボトムウェル４とを含む。セルカルチャーインサート２は多孔性膜３を備えている。多孔性膜３上の細胞へ、多孔性膜３を通してセルカルチャーインサート２の外部を満たす培地５から、栄養分及び酸素等を供給することが可能である。本発明の実施形態において、多孔性膜３の表面には、本発明の三次元培養皮膚シート１０に凹凸を形成するための凸部７を備えている。本発明の細胞培養容器１に表皮細胞を播種して培養することで、表皮細胞が重層化され、三次元培養皮膚シート１０の基底部１１（図２参照、太線）の少なくとも一部に凹凸、及び／又は、三次元培養皮膚シートの内部の少なくとも一部に表皮細胞非存在領域を有する、三次元培養皮膚シート１０が得られる。
　本発明において、三次元培養皮膚シート１０の「基底部」とは、表皮細胞を細胞培養容器１に播種した際、シート状に形成される表皮細胞の細胞培養容器表面に接する面をいい、例えば、図１に示す多孔性膜３の表面、及び／又は、凸部７に接する面をいう（図２参照、１１、太線）。また、本発明において、「基底部」とは、生体の皮膚組織における、表皮と真皮の間に形成された基底膜に相当する構造体であるが、必ずしも生体の基底膜と同様の膜構造を有する必要はない。すなわち、本発明における「基底部」は、少なくとも一部に凹凸形状を有する「表皮基底膜様構造体」を含み、該表皮基底膜様構造体は、表皮細胞を含んでいる。また、該表皮基底膜様構造体は、生体の皮膚組織において表皮細胞が形成する基底膜を含んでもよい。
　図２は、図１（ｂ）から多孔性膜３及び凸部７を除いた三次元培養皮膚シート１０を示す断面図である。三次元培養皮膚シート１０は、細胞核を有しない角層９、及び、角層９以外の表皮細胞８を含んでいる。上述の多孔性膜３上に備えた凸部７によって、三次元培養皮膚シート１０は、表皮細胞非存在領域Ｖａ及び／又は三次元培養皮膚シート内部の表皮細胞非存在領域Ｖｂの周辺を細胞が囲む形で凹凸が形成される。
　本発明において、三次元培養皮膚シート１０の基底部１１が有する「凹凸」とは、本発明の三次元培養皮膚シートにおいて、細胞培養容器の培養面に接する面の少なくとも一部に構成されるものであって、表皮細胞を平坦な培養器材表面で培養したときに偶発的に得られる起伏よりも大きな起伏をいう。本発明において、三次元培養皮膚シート１０の凹凸の凸とは、細胞培養容器の空気暴露(上層)方向に向かって突出した基底部１１の部分をいい、例えば、図２の三次元培養皮膚シート凸部Ｔ１であって、図１の多孔性膜３上の凸部７によって形成される部分である。一方、本発明において、三次元培養皮膚シートの凹凸の凹とは、凸とは逆に表皮の基底部方向に陥没した部分をいい、例えば、図２の三次元細胞シート凹部Ｂ１である。任意の三次元培養皮膚シート凸部Ｔ１の先端部と、その隣接した三次元培養皮膚シート凹部Ｂ１の最陥没部の、培養面に対する垂直方向の距離を三次元培養皮膚シートの凹凸の高さＨ’１ということができる。三次元培養皮膚シート１０に形成された凹凸形状及び高さＨ’１は、多孔性膜３上に備えられた凸部７の形状及び高さＨに依存する。また、三次元培養皮膚シート１０に形成される三次元培養皮膚シート凸部間隔幅Ｗ’１は、多孔性膜３上の凸部７により形成される凸部間隔幅Ｗに依存する。また、三次元培養皮膚シート１０に形成される三次元培養皮膚シート凸部幅Ｙ’は、多孔性膜３上の凸部７により形成される凸部幅Ｙに依存する。
　三次元培養皮膚シートの凹凸の高さＨ’１、三次元培養皮膚シート凸部間隔幅Ｗ’１、及び／又は、三次元培養皮膚シート凸部幅Ｙ’は、例えば、ＨＥ染色を行った組織切片を作製し、市販の光学顕微鏡を用いて測定してもよく、免疫組織化学法によって染色し、蛍光顕微鏡、共焦点顕微鏡若しくは二光子レーザー顕微鏡を用いて観察して測定してもよく、電子顕微鏡を用いて観察して測定してもよく、特に限定されない。三次元培養皮膚シートの凹凸の高さＨ’１は、通常の顕微鏡、蛍光顕微鏡等にカメラを装備した装置により取得される画像から測定することができる。顕微鏡としては、例えば、オリンパス株式会社　システム工業顕微鏡（落射透過兼用）ＢＸ５１を用いることができる。カメラとしては、例えば、オリンパス株式会社顕微鏡用デジタルカメラ「ＤＰ７１」を用いることができる。取得した画像は、画像解析の定法によりコンピュータ解析ソフトに取り込み、解析をすることができる。
　本発明において、図２右側に示すように、三次元培養皮膚シート１０の任意の断面の一部は、三次元培養皮膚シート１０の基底部１１に凹凸を形成していない表皮細胞非存在領域Ｖｂを有する場合がある。当該断面の表皮細胞非存在領域Ｖｂの表皮細胞非存在領域底部Ｂ２の下部には細胞が存在するため、断面の見かけ上、三次元培養皮膚シート１０の外部と繋がる凹凸形状を形成しないように見える。例えば、多孔性膜３上の凸部７がビーズ形状の場合、凸部７が多孔性膜３に接していない断面においては、表皮細胞非存在領域Ｖｂが観察される。あるいは、多孔性膜３上の凸部７が、繊維が編み込まれたメッシュ形状からなる場合（例えば、後述する図７を参照）、繊維が多孔性膜３と接着していない部位を含む断面においては、表皮細胞非存在領域Ｖｂが観察されることとなる。あるいは、細胞培養中に多孔性膜３上から凸部７が遊離して凸部７の下部に細胞が侵入して生着した場合、表皮細胞非存在領域Ｖｂが観察されることがある。本発明において、三次元培養皮膚シート１０が有する凹凸は、上記の例を含む表皮細胞非存在領域Ｖｂを、表皮細胞８が囲む形状を含んでいる。表皮細胞非存在領域Ｖｂの高さＨ’２は、基本的には三次元培養皮膚シートの凹凸の高さＨ’１とほぼ一致する。
　本明細書において、「三次元」とは、従来の付着細胞を細胞培養皿等での培養で得られるほぼ１層の細胞層、つまり、二次元の細胞層の状態とは異なり、細胞が垂直方向へと積み重なり、重層化した態様をいう。例えば、本発明の三次元培養皮膚シートは、表皮基底膜様構造に凹凸を有し、表皮細胞が重層化されて厚みをもった三次元化した構造体をいう。
　本明細書において、「三次元培養皮膚シート」とは、生体に生来的に備わっている皮膚組織とは区別されるものであって、細胞間の接着タンパク質を分解してバラバラにして得られた皮膚組織由来の細胞、及び／又は、多能性幹細胞から分化誘導して得られた皮膚を構成する細胞を含む細胞群を、細胞培養容器等に播種し、細胞培養容器上で培養して再構築したシート状の三次元皮膚様組織をいう。本発明において、三次元培養皮膚シートを構成する細胞は表皮細胞を含んでおり、三次元培養表皮シートということもできる。本発明において、三次元培養皮膚シート又は三次元培養表皮シートは、表皮細胞以外の細胞、例えば、表皮を構成する表皮細胞以外の細胞（メラニン細胞、ランゲルハンス細胞、メルケル細胞等）及び／又は、真皮組織に含まれる細胞（線維芽細胞、神経細胞、肥満細胞、形質細胞、血管内皮細胞、組織球、ｍｅｉｓｓｎｅｒ小体、等）が含まれていてもよい。また、本発明の三次元培養皮膚シートは、さらに基底部１１と接触した凸部を有する多孔性膜３を備えるものであってもよい。
　本発明の三次元培養皮膚シートを構成する細胞は、いずれの動物由来であってもよいが、脊椎動物由来が好ましく、哺乳動物由来がより好ましく、ヒト由来であることが最も好ましい。
　本発明において、「表皮細胞」とは、表皮を構成する分化段階の異なる全ての細胞を含む細胞をいう。表皮細胞は、主に、角化細胞又はケラチノサイトとも呼ばれる細胞から構成されている。生体において、表皮組織は、分化段階の異なる表皮細胞が層状に重なって形成されている。表皮の最深部は基底層又は基底細胞層（以下、「基底層」という。）と呼ばれ、円柱状の細胞が一層を形成し、幹細胞を含むと考えられている。基底層は真皮との境界面でもあり、その上層には有棘層が存在する。また、生体においては、基底層の直下に真皮を構成する乳頭層が存在する。
　有棘層とは、有棘細胞層とも呼ばれ、生体組織においては２～１０層程度から構成されている。この層は、互いに棘で繋がっているように見えるために有棘層と呼ばれる。基底層の細胞のみが増殖能を有しており、表皮細胞は分化段階が進むにつれて扁平な形状に変化しながら外層へと移動する。
　有棘層より分化段階が進むと、ケラトヒアリン顆粒、ラメラ顆粒を有する顆粒層（顆粒細胞層）を形成する。顆粒層は、生体組織においては２～３層程度で構成されている。顆粒層よりさらに分化段階が進むと、細胞核が消失し、角層（角層細胞層）を形成する。表皮は大別して上述の４種類の層を構成するが、表皮組織は、表皮細胞の他にも、メラニン細胞、ランゲルハンス細胞、メルケル細胞等が含まれており、それぞれ紫外線が真皮へ到達することを防いだり、皮膚の免疫機能に重要な役割を果たしたり、知覚に関与したりする。本発明においては、三次元培養皮膚シートは、表皮細胞以外の細胞が含まれても良く、使用する用途に応じて適宜変更することが可能である。
　皮膚が備える「バリア機能」とは、一般に、体内の水分や生体成分の損失を防止する機能や、生体外部から生体内部へ異物（微生物、ウイルス、ホコリ等）が入ることを防止する機能をいう。本明細書において、本発明の三次元培養皮膚シートが有するバリア機能は、経表皮水分蒸散量（Ｔｒａｎｓｅｐｉｄｅｒｍａｌ　ｗａｔｅｒ　ｌｏｓｓ：ＴＥＷＬ）を調べることにより評価することができる。三次元培養皮膚シートからの経表皮水分蒸散量、すなわち、水分透過量が少ないほど、バリア機能が高いことを示す。本発明において、経表皮水分蒸散量を調べる方法は、当業者に用いられる一般的な方法を用いることができる（例えば、Ｋｕｍａｍｏｔｏ　Ｊ．，Ｔｓｕｔｓｕｍｉ　Ｍ．，Ｇｏｔｏ　Ｍ．，Ｎａｇａｙａｍａ　Ｍ．，Ｄｅｎｄａ　Ｍ．Ｊａｐａｎｅｓｅ　Ｃｅｄａｒ（Ｃｒｙｐｔｏｍｅｒｉａ　ｊａｐｏｎｉｃａ）ｐｏｌｌｅｎ　ａｌｌｅｒｇｅｎ　ｉｎｄｕｃｅｓ　ｅｌｅｖａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ　ｃａｌｃｉｕｍ　ｉｎ　ｈｕｍａｎ　ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅｓ　ａｎｄ　ｉｍｐａｉｒｓ　ｅｐｉｄｅｒｍａｌ　ｂａｒｒｉｅｒ　ｆｕｎｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｈｕｍａｎ　ｓｋｉｎ　ｅｘ　ｖｉｖｏ．Ａｒｃｈ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．Ｒｅｓ．３０８：４９－５４，２０１６を参照のこと）。
　本発明において、三次元培養皮膚シートの凹凸の高さＨ’１の下限値の平均が、例えば、１μｍ以上、５μｍ以上、１０μｍ以上、１５μｍ以上、２０μｍ以上、２５μｍ以上、３０μｍ以上であってもよい。本発明において、三次元培養皮膚シートの凹凸の高さＨ’１の上限値の平均が、例えば、３００μｍ以下、２５０μｍ以下、２００μｍ以下、１５０μｍ以下、１００μｍ以下、８０μｍ以下、７５μｍ以下であってもよい。本発明において、三次元培養皮膚シートの凹凸の高さＨ’１の平均は、例えば、１μｍ～３００μｍであってもよく、１μｍ～２００μｍであってもよく、１μｍ～１００μｍであってもよく、５μｍ～２５０μｍであってもよく、１０μｍ～２００μｍであってもよく、１５μｍ～１５０μｍであってもよく、２０μｍ～１００μｍであってもよく、２５μｍ～８０μｍであってもよく、３０μｍ～７５μｍであってもよい。
　本発明において、三次元培養皮膚シート凸部間隔幅Ｗ’１（又は、Ｗ’２）の下限値の平均は、例えば、１μｍ以上、５μｍ以上、８μｍ以上、１０μｍ以上、１２μｍ以上、１５μｍ以上であってもよい。三次元培養皮膚シート凸部間隔幅Ｗ’１（又は、Ｗ’２）の上限値の平均は、例えば、３００μｍ以下、２５０μｍ以下、２００μｍ以下、１８０μｍ以下、１７０μｍ以下、１５０μｍ以下、１２５μｍ以下、１００μｍ以下、９０μ以下であってもよい。本発明において、三次元培養皮膚シート凸部間隔幅Ｗ’１（又は、Ｗ’２）の平均は、例えば、１μｍ～３００μｍであってもよく、１μｍ～２００μｍであってもよく、１μｍ～１００μｍであってもよく、１μｍ～９０μｍであってもよく、５μｍ～２５０μｍであってもよく、８μｍ～２００μｍであってもよく、１０μｍ～１８０μｍであってもよく、１２μｍ～１００μｍであってもよく、２５μｍ～８０μｍであってもよく、３０μｍ～７５μｍであってもよい。
　本発明において、三次元培養皮膚シート凸部幅Ｙ’１の下限値の平均は、例えば、１μｍ以上、５μｍ以上、１０μｍ以上、１５μｍ以上、２０μｍ以上、２５μｍ以上であってもよい。本発明において、三次元培養皮膚シート凸部幅Ｙ’１の上限値の平均は、例えば、３００μｍ以下、２５０μｍ以下、２００μｍ以下、１５０μｍ以下、１００μｍ以下、８０μｍ以下、７５μｍ以下であってもよい。本発明において、三次元培養皮膚シート凸部幅Ｙ’１の平均は、例えば、１μｍ～３００μｍであってもよく、５μｍ～２５０μｍであってもよく、１０μｍ～２００μｍであってもよく、１５μｍ～１５０μｍであってもよく、２０μｍ～１００μｍであってもよく、２５μｍ～８０μｍであってもよく、３０μｍ～７５μｍであってもよい。
　三次元培養皮膚シートの少なくとも一部に、基底部１１に凹凸を有することより、凹凸を有さないものと比較して、基底部１１上の表皮細胞層（例えば、有棘層、顆粒層及び／又は角質層）が、肥厚化した三次元培養皮膚シートが得られる。特に、本発明によって得られる三次元培養皮膚シートは、細胞や細胞接着タンパク質などの生体物質から構成される凸部によらず、非生体物質から構成される凸部によって物理的にその基底部１１に凹凸を形成させるだけで肥厚化するという優れた効果を有する。また、該凸部が、非生体物質から構成される凸部である場合、培養期間中及びその後使用する場合においても、凸部が分解されることなく、安定的に三次元培養皮膚シートの基底部に凹凸構造を維持することができ、本発明の効果を持続させることが可能である。本発明の三次元培養皮膚シートの凹凸の平均の高さ、形状及び間隔幅は、細胞培養容器の多孔性膜表面に設けられた凸部の高さ、形状及び間隔幅等により制御可能である。また、本発明により得られる三次元培養皮膚シートは、従来の三次元培養皮膚シートと比較して経皮水分蒸散量が少なく、バリア機能が高い三次元培養皮膚シートである。三次元培養皮膚シートの基底部１１の少なくとも一部に凹凸を有することにより、バリア機能が向上する。三次元培養皮膚シートの基底部１１は、培養表面（多孔性膜と凸部とを含む培養面）と密着していることが好ましい。三次元培養皮膚シートの基底部１１が培養表面に密着していると、バリア機能がより向上する。より好ましくは、三次元培養皮膚シートの基底部１１が培養表面の全面に密着している状態である。
　本発明において、多孔性膜表面に設けられた凸部は、生体物質により構成されたものでもよく、非生体物質により構成されたものでもよく、生体物質と非生体物質とを組み合わせて構成されたものであってもよい。本明細書において、「非生体物質」とは、生体物質、すなわち、生体を構成する生体高分子（核酸、タンパク質、多糖及びこれらの構成要素（ヌクレオチド、ヌクレシド、アミノ酸、糖））や、ビタミンなどを除く物質をいう。本発明の凸部を構成するために用いられる非生体物質は、細胞の培養に影響を与えない生体適合性物質であることが好ましい。本発明において、多孔性膜表面に設けられた凸部は、さらに、表面に生体物質、例えば、コラーゲン、フィブロネクチン、ラミニン、ゼラチン、ビトロネクチン、ポリリジン（Ｄ体、Ｌ体）、トロンボスポンジン等がコートされたものであってもよい。
　従来の三次元培養皮膚シートは、細胞外マトリックスを構成するタンパク質を含むゲルを、凹凸を有するモールドに流し込んで形成した凹凸面に、表皮細胞を播種することで作製していた（例えば、米国特許出願公開第２０１１／０１７１１８０号明細書）。しかし、当該方法では、培養面全体がタンパク質を含むゲルによって形成されているため、これらが培養中に分解されてしまい、その結果、細胞が接着できず、三次元培養皮膚シートが収縮するという問題があった。一方、本発明では、該凸部が、伸縮しない多孔性膜表面上に設けられており、培養しても培養面は分解されないため、収縮していない三次元培養皮膚シートを得ることができる。
　本発明において用いられる細胞は、生体組織、特に皮膚組織を細かく刻み、コラゲナーゼ、トリプシン等のタンパク質分解酵素で処理されて得られた初代表皮細胞であってもよく、初代表皮細胞を継代操作して増殖させた表皮細胞であってもよく、ＥＳ細胞、ｉＰＳ細胞、又はＭｕｓｅ細胞等の多能性幹細胞から分化誘導して得られる表皮細胞を用いてもよく、株化された表皮細胞であってもよい。好ましくは、生体組織から採取して播種した初代培養表皮細胞、又は該初代培養細胞をさらに継代処理して得られた継代表皮細胞である。生体組織から採取して得られた表皮細胞であれば、生体と同様の性質を維持している可能性が高く、薬剤の効能、副作用を調べる試験を行ったり、基礎研究を行う上で使用する際に都合が良い。
　本発明において、初代培養表皮細胞とは、生体組織から採取した後に細胞培養容器で一度だけ培養されて回収された表皮細胞であり、「継代回数０（又は、第１世代）」の表皮細胞ともいう。コンフルエント又はサブコンフルエントになった継代回数０の表皮細胞を、当業者にとって公知の方法により継代操作して、さらに増幅培養することが可能である。１度の継代操作により得られた表皮細胞は、「継代回数１（又は、第２世代）」の表皮細胞という。継代操作数に対応して「継代回数２、３、４・・・ｎ（ｎ（整数）は継代回数）（第ｎ＋１世代）」と表現することができる。市販の初代培養細胞（例えば、クラボウ社の凍結ＮＨＥＫ（ＮＢ）、カタログ番号：ＫＫ－４００９）には、本発明でいう継代回数０～継代回数２程度のものまでを初代培養細胞として提供されているものもあるが、この場合の継代回数は、市販の細胞に添付の書類等に記載されている継代回数又は世代数を参考にして、本発明の継代回数とする。各継代操作の間に、細胞を凍結処理する工程が含まれていてもよい。
　通常、株化されていない体細胞の多くは、継代操作を繰り返すことによって性質が変化したり、構成される細胞の割合が変化したりするため、継代回数が少ない細胞集団とは異なる細胞集団へと変化する。これは継代を繰り返して細胞分裂を繰り返す度にテロメアが短くなったり、コンフルエントになること及び／又はトリプシン処理等によって、生物学的なストレス及び／又は物理的なストレスが加わったことによって細胞の老化が引き起こされるためと考えられている。そのため、通常は、培養細胞を使用した組織モデルを使用する場合は、継代回数が少ない細胞が用いられる。
　しかしながら、初代培養細胞は、直接生体組織から単離された細胞であり、継代回数が少ないために、供給可能な細胞数に限界がある。倫理的な問題から採取できる組織の大きさや量が限られているだけでなく、ドナーによっても得られる細胞の性質にばらつきも存在する。初代培養細胞は市販されているものもあるが、供給量の点から、必然的に高価格となる。そのため、大量の三次元培養皮膚シートを構築する必要がある場合は、高価な細胞を大量に入手して使用する必要があり、コスト面で問題があった。安価に製造するためには、初代培養細胞を継代して増殖させて使用することも可能であるが、上述のように、得られた細胞は、必ずしも初代培養細胞と同様の性質を示すとは限らない。表皮細胞の三次元培養皮膚モデルを作製する場合、初代表皮細胞やその細胞を三次元化するキットが市販されており、それを購入して作製することが可能であるが（例えば、ケラチノサイト三次元培養スターターキット、ＣＥＬＬｎＴＥＣ社）、２以上の継代回数の表皮細胞を用いた場合、自発的に三次元化する性質が弱まり、厚い三次元培養皮膚モデル（三次元培養皮膚シートともいう。）が得られない等の問題があった（例えば、後述の実施例１～３で示すコントロール）。
　本発明の実施形態において、三次元培養皮膚シートの基底部１１に凹凸を有したものであれば、従来、初代培養細胞（例えば、継代回数０又は１）でしか得られなかった厚みをもった三次元培養皮膚シートが、生体組織から単離培養後２以上の継代回数の表皮細胞を用いた場合であっても構築される。初代培養細胞（例えば、継代回数０又は１）を用いた場合も、本発明によって厚みをもった三次元培養皮膚シートが得られる。使用される表皮細胞の生体組織から単離培養後の継代回数は、例えば、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、又は１０以上であってよく、三次元培養皮膚シートの有棘層、顆粒層、及び／又は角層が肥厚化するものであれば限定されない。本発明の実施形態において、使用される初代表皮細胞の動物種は、特に限定されないが、好ましくはヒト由来である。また、本発明の実施形態において、使用される初代表皮細胞は、胎児、新生児、未成年、又は成人由来等いずれのものであってもよいが、好ましくは胎児、新生児、又は未成年由来の細胞である。ヒトの未成年由来の細胞を用いる場合、例えば、２０歳未満、１～１９歳、１～１０歳、１～５歳の細胞を用いるのが好ましい。ヒトの成人由来の細胞を用いる場合であっても、若年、例えば、２０歳～２９歳、３０歳～３９歳、４０歳～４９歳の細胞を用いることが好ましい。
　本発明の一実施形態において、三次元培養皮膚シートの平均の厚さは、２０μｍ以上、２１μｍ以上、２２μｍ以上、２３μｍ以上、２４μｍ以上、２５μｍ以上、２６μｍ以上、２７μｍ以上、２８μｍ以上、２９μｍ以上、３０μｍ以上、３５μｍ以上、４０μｍ以上、４５μｍ以上、５０μｍ以上、５５μｍ以上、６０μｍ以上、６５μｍ以上、７０μｍ以上、７５μｍ以上、８０μｍ以上、８５μｍ以上、９０μｍ以上、９５μｍ以上、１００μｍ以上、１０５μｍ以上、１１０μｍ以上、１１５μｍ以上、１２０μｍ以上、１２５μ以上、１５０μｍ以上、１７５μｍ以上、２００μｍ以上、２２５μｍ以上、２５０μｍ以上、２７５μｍ以上、３００μｍ以上であってもよい。より好ましい平均の厚さは８０μｍ以上である。三次元培養皮膚シートの平均の厚さの上限値は、表皮細胞の動物種、継代回数、年齢等により変化するため、特に限定されない。
＜三次元培養皮膚シートを製造するための細胞培養容器の構成例（１）＞
　本発明の三次元培養皮膚シートを作製するための細胞培養容器の概念図は前述の図１に示している。細胞培養容器１に設けられた凸部７の改変例を図３～図５に示す。
　図３は、本発明の細胞培養容器１の一実施態様を示す。多孔性膜３上には、本発明の三次元培養皮膚シートに凹凸を形成するための凸部７１が配置されている。凸部７１は、ビーズ形状を有している。凸部の高さＨ１を調節することによって、本発明の三次元培養皮膚シートの凹凸の高さＨ’１を制御することが可能である。例えば、図３（ｂ）に示すように、凸部７１ａは正方形の格子点に位置するように配置可能である。凸部間隔幅Ｗ１ａを調整することによって、前述の本発明の三次元培養皮膚シートの凸部間隔幅Ｗ’１を制御することが可能である。例えば、図３（ｃ）に示すとおり、凸部７１ｂは、正三角形の格子点に位置するように配置されている。凸部間隔幅Ｗ１ｂを調整することによって、前述の本発明の三次元培養皮膚シートの凸部間隔幅Ｗ’１を制御することが可能である。また、凸部幅Ｙ１を調整することによって、本発明の三次元培養皮膚シートの凹部幅Ｙ’を制御することが可能である。
　図４は、本発明の細胞培養容器１の一実施態様を示す。多孔性膜３上には、本発明の三次元培養皮膚シートに凹凸を形成するための凸部７２が配置されている。凸部７２は、角柱形状の一種である立方体形状を有している。凸部の高さＨ２を調節することによって、本発明の三次元培養皮膚シートの凹凸の高さＨ’１を制御することが可能である。例えば、図４（ｂ）に示すように、凸部７２ａは正方形の格子点に位置するように配置可能である。凸部間隔幅Ｗ２ａを調整することによって、前述の本発明の三次元培養皮膚シートの凸部間隔幅Ｗ’１を制御することが可能である。例えば、図４（ｃ）に示すとおり、凸部７２ｂの重心が、正三角形の格子点に位置するように配置可能である。凸部間隔幅Ｗ２ｂを調整することによって、前述の本発明の三次元培養皮膚シートの凸部間隔幅Ｗ’１を制御することが可能である。また、凸部幅Ｙ２を調整することによって、本発明の三次元培養皮膚シートの凹部幅Ｙ’を制御することが可能である。
　図５は、本発明の細胞培養容器１に設けられる凸部（７３、７４、７５）の実施形態を示す断面図である。例えば、図５（ａ）は、錐体形状（三角錐、四角錐、若しくは円錐）を有する凸部７３を示す。例えば、図５（ｂ）は、錐台形状を有する凸部７４を示す。例えば、図５（ｃ）は、釣鐘型を有する凸部７５を示す。それぞれの凸部の高さ（Ｈ３、Ｈ４、Ｈ５）を調整することにより、本発明の三次元培養皮膚シートの凹凸の高さＨ’１を制御することが可能である。凸部間隔幅（Ｗ３、Ｗ４、Ｗ５）を調整することによって、本発明の三次元培養皮膚シートの凸部間隔幅Ｗ’１を制御することが可能である。また、凸部幅（Ｙ３、Ｙ４、Ｙ５）を調整することによって、本発明の三次元培養皮膚シートの凹部幅Ｙ’を制御することが可能である。それぞれの凸部（７３、７４、７５）の平面上の配置は、図３及び図４と同様に配置することが可能であるが、これに限定されない。
　本発明の実施態様において、凸部（７、７１、７１ａ、７１ｂ、７２、７２ａ、７２ｂ、７３、７４、７５）の形状については上記に限定されないが、例えば、略半球形、略直方体形等も含まれる。凸部（７、７１、７１ａ、７１ｂ、７２、７２ａ、７２ｂ、７３、７４、７５）の材質については、生体物質により構成されたものでもよく、非生体物質により構成されたものでもよく、生体物質と非生体物質とを組み合わせて構成されたものであってもよい。例えば、ポリエステル若しくはポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、ポリカーボネート、ポリスチレン、ジルコニア、ガラス不溶性コラーゲン、シリコンゴム等が挙げられ、細胞培養が可能であれば、その他材質であってもよい。凸部（７、７１、７１ａ、７１ｂ、７２、７２ａ、７２ｂ、７３、７４、７５）の表面に、細胞が接着しやすいように公知の方法によってプラズマ処理等が行われていても良い。凸部（７、７１、７１ａ、７１ｂ、７２、７２ａ、７２ｂ、７３、７４、７５）は、上述の実施態様のように多孔性膜３上に等間隔で配置されてもよく、又は不均一な間隔で配置されてもよく、その間隔の下限値の平均は、例えば、１μｍ以上、５μｍ以上、８μｍ以上、１０μｍ以上、１２μｍ以上、１５μｍ以上であってもよい。凸部（７、７１、７１ａ、７１ｂ、７２、７２ａ、７２ｂ、７３、７４、７５）の間隔の上限値の平均は、例えば、３００μｍ以下、２５０μｍ以下、２００μｍ以下、１８０μｍ以下、１７０μｍ以下、１５０μｍ以下、１２５μｍ以下、１００μｍ以下であってもよい。本発明において、凸部（７、７１、７１ａ、７１ｂ、７２、７２ａ、７２ｂ、７３、７４、７５）の間隔の平均は、例えば、１μｍ～３００μｍであってもよく、５μｍ～２５０μｍであってもよく、８μｍ～２００μｍであってもよく、１０μｍ～１８０μｍであってもよく、１２μｍ～１００μｍであってもよく、２５μｍ～８０μｍであってもよく、３０μｍ～７５μｍであってもよい。
　凸部の高さ（Ｈ、Ｈ１、Ｈ２、Ｈ３、Ｈ４、Ｈ５）の下限値の平均は、例えば、１μｍ以上、５μｍ以上、１０μｍ以上、１５μｍ以上、２０μｍ以上、２５μｍ以上、３０μｍ以上であってもよい。本発明において、凸部の高さ（Ｈ、Ｈ２、Ｈ３、Ｈ４、Ｈ５）の上限値の平均は、例えば、３００μｍ以下、２５０μｍ以下、２００μｍ以下、１５０μｍ以下、１００μｍ以下、８０μｍ以下、７５μｍ以下であってもよい。本発明において、凸部の高さ（Ｈ、Ｈ２、Ｈ３、Ｈ４、Ｈ５）の平均は、例えば、１μｍ～３００μｍであってもよく、５μｍ～２５０μｍであってもよく、１０μｍ～２００μｍであってもよく、１５μｍ～１５０μｍであってもよく、２０μｍ～１００μｍであってもよく、２５μｍ～８０μｍであってもよく、３０μｍ～７５μｍであってもよい。
　凸部幅（Ｙ、Ｙ１、Ｙ２、Ｙ３、Ｙ４、Ｙ５）の下限値の平均は、例えば、１μｍ以上、５μｍ以上、１０μｍ以上、１５μｍ以上、２０μｍ以上、２５μｍ以上、である。本発明において、凸部幅（Ｙ、Ｙ１、Ｙ２、Ｙ３、Ｙ４、Ｙ５）の上限値の平均は、例えば、３００μｍ以下、２５０μｍ以下、２００μｍ以下、１５０μｍ以下、１００μｍ以下、８０μｍ以下、７５μｍ以下である。本発明において、凸部幅（Ｙ、Ｙ１、Ｙ２、Ｙ３、Ｙ４、Ｙ５）の平均は、例えば、１μｍ～３００μｍであってもよく、５μｍ～２５０μｍであってもよく、１０μｍ～２００μｍであってもよく、１５μｍ～１５０μｍであってもよく、２０μｍ～１００μｍであってもよく、２５μｍ～８０μｍであってもよく、３０μｍ～７５μｍであってもよい。
　凸部（７、７１、７１ａ、７１ｂ、７２、７２ａ、７２ｂ、７３、７４、７５）は、数個～数十個を凝集させて多孔性膜３上に固着させてもよい。凸部（７、７１、７１ａ、７１ｂ、７２、７２ａ、７２ｂ、７３、７４、７５）を固着させる方法は、公知の方法により共有結合的に多孔性膜３上に固着させてもよく、接着剤を用いて固着させてもよい。接着剤としては、細胞の接着に影響を与えないものであり、細胞に毒性を与えない物質であって、細胞により分解されない物質であることが好ましい。例えば、ポリ－Ｄ－リジン、アガロース等が挙げられるが、同様の効果を生じ、凸部（７、７１、７１ａ、７１ｂ、７２、７２ａ、７２ｂ、７３、７４、７５）を多孔性膜３上に固着することができる物質であれば、上記以外の接着剤も使用可能である。また、凸部（７、７１、７１ａ、７１ｂ、７２、７２ａ、７２ｂ、７３、７４、７５）は、多孔質膜３上に直接形成されてもよく、例えば、３Ｄプリンタ技術又は半導体プロセス技術（例えば、リソグラフィープロセス（ナノインプリント又はホトエンボス等を含む）及びドライエッチング（例えば、反応性イオンエッチング）又はウエットエッチングを組み合わせた方法等）等で使用される方法で形成されてもよい。あるいは、単に多孔性膜３上に凸部（７、７１、７１ａ、７１ｂ、７２、７２ａ、７２ｂ、７３、７４、７５）を載置するのみであってもよい。
＜三次元培養皮膚シートを製造するための細胞培養容器の構成例（２）＞
　本発明の三次元培養皮膚シートを作製するための細胞培養容器の概念図は前述の図１に示している。細胞培養容器１に設けられた凸部７の他の改変例を図６及び７に示す。
　図６は、本発明の細胞培養容器１の一実施態様を示す。多孔性膜３上には、本発明の三次元培養皮膚シートに凹凸を形成するための凸部（７６、７７、７８）を備えている。例えば、図６（ａ）に示すように、凸部７６は、多孔性膜３上に略平行のストライプ状に配置されている。例えば、図６（ｂ）に示すように、凸部７７は、多孔性膜３上に縦横等間隔の格子状に配置されている。例えば、図６（ｃ）に示すように、凸部７８は、多孔性膜３上に正三角形の格子に配置されている。凸部（７６、７７、７８）は、例えば、繊維により形成されている。凸部（７６、７７、７８）は、単一の繊維から形成されていてもよく、細い繊維を複数本束ねられたもので形成されていてもよい。あるいは、凸部（７６、７７、７８）は、直方体状の構造体で形成されていてもよく、略半円柱状の構造体によって構成されていてもよい。
　図７は、図６（ｂ）の一実施形態であって、凸部７７ａと凸部７７ｂとを交互に編み込んだ凸部を備えた細胞培養容器１である。図７（ｂ）は、図７（ａ）のＺとＺ´を結んだ線上の断面を示す。
　本発明の実施態様において、凸部（７６、７７、７７ａ、７７ｂ、７８）の材質は、生体物質により構成されたものでもよく、非生体物質により構成されたものでもよく、生体物質と非生体物質とを組み合わせて構成されたものであってもよい。例えば、ポリエステル若しくはポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、ポリカーボネート、ポリスチレン、ガラス、不溶性コラーゲン、シリコンゴム等が挙げられるが、細胞が接着し、培養可能な材質であれば、その他材質であっても特に限定されない。凸部（７６、７７、７７ａ、７７ｂ、７８）の高さの下限値の平均は、例えば、１μｍ以上、５μｍ以上、１０μｍ以上、１５μｍ以上、２０μｍ以上、２５μｍ以上、３０μｍ以上であってもよい。本発明において、凸部の高さの上限値の平均は、例えば、３００μｍ以下、２５０μｍ以下、２００μｍ以下、１５０μｍ以下、１００μｍ以下、８０μｍ以下、７５μｍ以下であってもよい。本発明において、凸部（７６、７７、７７ａ、７７ｂ、７８）の高さの平均は、例えば、１μｍ～３００μｍであってもよく、５μｍ～２５０μｍであってもよく、１０μｍ～２００μｍであってもよく、１５μｍ～１５０μｍであってもよく、２０μｍ～１００μｍであってもよく、２５μｍ～８０μｍであってもよく、３０μｍ～７５μｍであってもよい。図７に示す実施形態においては、凸部（７７ａ、７７ｂ）の高さＨ７ａは、凸部７７ａ及び凸部７７ｂが交差する凸部交点の最上部（Ｃ、Ｃ’）を基準に決定することができる。
　凸部（７６、７７、７７ａ、７７ｂ、７８）は、多孔性膜３上に等間隔で固着してもよく、又は不均一な間隔で固着させてもよく、その平均間隔は、例えば、下限値は、１μｍ以上、５μｍ以上、８μｍ以上、１０μｍ以上、１２μｍ以上、１５μｍ以上であってもよい。凸部（７６、７７、７７ａ、７７ｂ、７８）の平均間隔の上限値は、例えば、３００μｍ以下、２５０μｍ以下、２００μｍ以下、１８０μｍ以下、１７０μｍ以下、１５０μｍ以下、１２５μｍ以下、１００μｍ以下であってもよい。本発明において、凸部（７６、７７、７７ａ、７７ｂ、７８）の平均間隔は、例えば、１μｍ～３００μｍであってもよく、５μｍ～２５０μｍであってもよく、８μｍ～２００μｍであってもよく、１０μｍ～１８０μｍであってもよく、１２μｍ～１００μｍであってもよく、２５μｍ～８０μｍであってもよく、３０μｍ～７５μｍであってもよい。図７に示す実施形態においては、凸部間隔幅Ｗ７ａは、凸部７７ａ及び凸部７７ｂが交差する凸部の交点（Ｃ、Ｃ’）を基準に決定することができる。
　凸部幅（Ｙ６、Ｙ７、Ｙ８）は、均一であってもよく、不均一であってもよい。凸部幅（Ｙ６、Ｙ７、Ｙ８）の下限値の平均は、例えば、１μｍ以上、５μｍ以上、１０μｍ以上、１５μｍ以上、２０μｍ以上、２５μｍ以上であってもよい。本発明において、凸部幅（Ｙ６、Ｙ７、Ｙ８）の上限値の平均は、例えば、３００μｍ以下、２５０μｍ以下、２００μｍ以下、１５０μｍ以下、１００μｍ以下、８０μｍ以下、７５μｍ以下であってもよい。本発明において、凸部幅（Ｙ６、Ｙ７、Ｙ８）の平均は、例えば、１μｍ～３００μｍであってもよく、５μｍ～２５０μｍであってもよく、１０μｍ～２００μｍであってもよく、１５μｍ～１５０μｍであってもよく、２０μｍ～１００μｍであってもよく、２５μｍ～８０μｍであってもよく、３０μｍ～７５μｍであってもよい。
　凸部（７６、７７、７７ａ、７７ｂ、７８）の表面に、細胞が接着しやすいように公知の方法によってプラズマ処理等が行われていても良い。他の実施態様において、任意の長さに断片化させた繊維を用いて、多孔性膜３上に固着させて凸部（７６、７７、７７ａ、７７ｂ、７８）を形成させてもよく、圧着によって凸部（７６、７７、７７ａ、７７ｂ、７８）を設けても良く、多孔性膜３上に凸部（７６、７７、７７ａ、７７ｂ、７８）を載置するだけであってもよい。凸部（７６、７７、７７ａ、７７ｂ、７８）を多孔性膜３上に固着させる方法については、公知の方法により共有結合的に多孔性膜３上に固着させてもよく、接着剤を用いて固着させてもよい。接着剤としては、細胞の接着に影響を与えないものであり、細胞に毒性を与えない物質であって、細胞により分解されない物質であることが好ましい。例えば、ポリ－Ｄ－リジン、アガロース、グルコマンナン、紫外線硬化樹脂等が挙げられるが、同様の効果を生じ、繊維を多孔性膜上に固着することができる物質であれば使用可能である。凸部（７６、７７、７７ａ、７７ｂ、７８）は、細胞培養中に剥離することがないように、多孔性膜３上に固着されているものが好ましい。凸部（７６、７７、７７ａ、７７ｂ、７８）と多孔性膜３とが固着されている培養容器１を用いると、肥厚化するのみならず、バリア機能が高い三次元培養皮膚シートを得ることが可能となる。
　本発明の実施形態において使用される細胞培養容器１の材質は、通常細胞培養容器に用いられる材質であれば特に限定されない。例えば、ガラス、ポリスチレン、ポリプロピレン、ポリカーボネート等である。本発明に用いられる細胞培養容器の形状は特に限定されないが、ディッシュ型、マルチウエルプレート型、フラスコ型等が挙げられる。本発明の細胞培養容器は、その細胞培養容器の一部に多孔性膜を有するため、セルカルチャーインサート型であることが好ましい。本発明に用いられるセルカルチャーインサートとは、細胞は透過できないが、培養液等は透過できる多孔性の孔を有する膜を備えた細胞培養容器をいう。多孔性膜の培養表面の反対側、つまり、付着細胞の付着面の裏側からも培養液等を供給することが可能である。本発明に用いられるセルカルチャーインサートは、市販のものを使用してもよく、多孔性膜の培養表面上に直接成形して凸部を設けた膜を有するセルカルチャーインサートであってもよい。市販のものを使用する場合は、例えば、ビーズや繊維を接着させて多孔性膜表面上に凸部を設けてもよく、接着することなく、単に凸部を多孔性膜３上に載置するのみであってもよい。凸部を多孔性膜３上に接着しない場合、例えば、セルカルチャーインサート２の内側とほぼ同径のメッシュ状の凸部（例えば、図７（a)など）を接着することなくセルカルチャーインサート２に嵌め込んでもよい。この場合、凸部は、三次元培養皮膚シート作製用の培養容器の一部としてセルカルチャーインサート２と共に又は別々に提供され、培養時に組み立てられるキットの一部であってもよい。多孔性膜の平均孔径は特に限定されないが、例えば、０．１μｍ～５．０μｍ、好ましくは０．２μｍ～４．０μｍ、さらに好ましくは０．３～３．５μｍである。また、多孔性膜の素材も、従来用いられる多孔性膜と同様、例えば、ポリエステル若しくはポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、又は、ポリカーボネート、ポリスチレン等を用いれば良い。
　本発明の実施形態において、多孔性膜３上に凸部を有する細胞培養容器に細胞が付着して増殖しやすいように、培養表面をコーティングしてもよい。例えば、コラーゲン、フィブロネクチン、ラミニン、ゼラチン、ビトロネクチン、ポリリジン（Ｄ体、Ｌ体）、トロンボスポンジン等が挙げられる。
＜三次元培養皮膚シートの製造方法＞
　本発明の実施形態において、表皮細胞の播種数については、公知の方法に従えばよい。例えば、表皮細胞を、０．０１×１０６～１０．０×１０６個／ｃｍ２、好ましくは０．０５×１０６～５．０×１０６個／ｃｍ２、より好ましくは０．１×１０６～１．０×１０６個／ｃｍ２の量で播種する。表皮細胞の培養に用いられる培地（培養液ともいう）としては、通常使用される培地、例えばＫＧ培地、ＥｐｉｌｉｆｅＫＧ２（クラボウ社）、Ｈｕｍｅｄｉａ－ＫＧ２（クラボウ社）、アッセイ培地（ＴＯＹＯＢＯ社）、ＣｎＴ－Ｐｒｉｍｅ，　Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｍｅｄｉｕｍ（ＣＥＬＬｎＴＥＣ社）などを用い、約３７℃で０～１４日間かけて行うことができる。培地としては、その他にＤＭＥＭ培地（ＧＩＢＣＯ社）又は２－０－ａ－Ｄ－グルコピラノシル－Ｌ－アスコルビン酸含有ＫＧＭとＤＭＥＭを１：１混合した培地などが使用できる。表皮細胞の三次元化（重層化）には、ＣｎＴ－Ｐｒｉｍｅ、３Ｄ　ｂａｒｒｉｅｒ　ｍｅｄｉｕｍ（ＣＥＬＬｎＴＥＣ社）を用いても良い。その他、培地を使用することが可能である。
　本発明の実施形態において、表皮細胞を培養し、三次元化（重層化）して角質化を促進するために、上述のセルカルチャーインサート２を含む細胞培養容器１に播種し、増殖培養させればよい。具体的には、表皮細胞を培地に懸濁し、セルカルチャーインサート２上に播種する。セルカルチャーインサートの多孔性膜３の外側に培地を接触させるように、ボトムウェル４にも培地を添加して、セルカルチャーインサート２を浸漬させて培養する。これにより、表皮細胞の上部及び底部の両方から培地が供給されて培養される。
　セルカルチャーインサート２上の表皮細胞が、コンフルエント又はサブコンフルエントになるまで数日間程度（１～６日間程度、好ましくは２～４日間程度）培養させることが好ましい。その後、細胞を三次元化（重層化）をさらに促進するために、セルカルチャーインサート内外の培地を、例えば、ＣｎＴ－Ｐｒｉｍｅ、３Ｄ　ｂａｒｒｉｅｒ　ｍｅｄｉｕｍ（ＣＥＬＬｎＴＥＣ社）へ交換することが好ましい。これにより、さらに表皮細胞の三次元化が促進される。ＣｎＴ－Ｐｒｉｍｅ、３Ｄ　ｂａｒｒｉｅｒ　ｍｅｄｉｕｍ（ＣＥＬＬｎＴＥＣ社）へと培地を交換して培養後、１～３６時間後、好ましくは６時間～２４時間後、さらに好ましくは１２時間～１８時間後、セルカルチャーインサートの内部の培地のみを除去して表皮細胞の上面を気相に暴露して培養することが好ましい。これによって、表皮細胞の三次元化及び角質化が促進され、より厚い三次元培養皮膚シートが得られる。
　なお、本発明における各培養工程の培養温度は由来動物の体温付近であればよく、具体的にはヒト細胞の場合は、３３～３８℃程度とするのが好適である。
　上記のようにして本発明によって得られる三次元培養皮膚シートは、動物実験代替法の一つ、例えば皮膚モデルとして用いることができる。例えば、皮膚の化学物質（例えば、化粧料、工業製品、家庭用品、薬剤、皮膚外用剤等）に対する反応性を評価する方法に用いることができる。また、本発明の三次元培養皮膚シートは、従来の三次元培養皮膚シートと比較してより肥厚化した組織が得られるため、皮膚科学の基礎研究においても有用な皮膚モデルとして使用することが可能である。さらにまた、本発明で得られた三次元培養皮膚シートは、従来の三次元培養皮膚シートと比較して肥厚化していることから、外部からのバリア機能も高く、熱傷、創傷等を治癒するための三次元培養皮膚シートとしても有用である。
　一実施態様において、本発明に用いられる細胞培養容器は、該凸部と該多孔性膜とが培養終了後に分離可能な細胞培養容器であっても良い。この場合、該細胞培養容器で製造した三次元培養皮膚シートは、その基底部に該凸部を接触させたまま該多孔性膜から分離される。そのため、該三次元培養皮膚シートの基底部は、凹凸構造を維持したまま移動させることが可能となる。本発明に用いられる細胞培養容器は、該凸部が、生体物質、例えば、コラーゲン、フィブロネクチン、ラミニン、ゼラチン、ビトロネクチン、ポリリジン（Ｄ体、Ｌ体）、トロンボスポンジン等を含む生体物質であることが好ましく、特に、不溶性コラーゲンであることがより好ましい。
　以下に、本発明を実施例に基づいて更に詳しく説明するが、これらは本発明を何ら限定するものではない。
＜細胞の準備＞
　本発明に用いられる表皮細胞は、新生児由来ケラチノサイト（以下、「ケラチノサイト」。クラボウ社、製品名：凍結ＮＨＥＫ（ＮＢ）、カタログ番号：ＫＫ－４００９）を使用した。継代培養は、販売会社から提供されたインストラクションに従い行った。
＜実施例１＞
（１）松本油脂製薬株式会社製プラスチックビーズ（１０μｍ：Ｍ－３１０，３０μｍ：Ｍ－５０３）１０ｍｇをｐｏｌｙ－Ｄ－リジン（１ｍｇ／ｍＬ　Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）１ｍＬに分散したものを、１２－Ｗｅｌｌ　Ｍｉｌｌｉｃｅｌｌ　Ｈａｎｇｉｎｇ　Ｃｅｌｌ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　ｉｎｓｅｒｔｓ　０．４μｍ　ＰＥＴ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社、以下、「セルカルチャーインサート」）に、１０μＬ滴下し、７０℃で２４時間乾燥させた。
（２）ＣＥＬＬｓｔａｒｔ　ＣＴＳ　（ｇｉｂｃｏ社）をＤＰＢＳ（ｇｉｂｃｏ社）で５０倍希釈し、１つのセルカルチャーインサートに８６μＬ滴下し、２時間３７℃の条件に維持した。
（３）ＣＥＬＬｓｔａｒｔ　ＣＴＳを除去し、継代回数４の新生児由来ケラチノサイト２２～２５万個をＣｎＴ－Ｐｒｉｍｅ，Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｍｅｄｉｕｍ（ＣＥＬＬｎＴＥＣ社）　５００μＬに分散し、セルカルチャーインサート内に滴下、同じ培地（ＣｎＴ－Ｐｒｉｍｅ，　Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｍｅｄｉｕｍ）を１ｍＬセルカルチャーインサート外部に滴下し、７２時間３７℃、ＣＯ２インキュベーターで培養した。
（４）セルカルチャーインサート内外のＣｎＴ－Ｐｒｉｍｅ、Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｍｅｄｉｕｍを除去し、ＣｎＴ－Ｐｒｉｍｅ、３Ｄ　ｂａｒｒｉｅｒ　ｍｅｄｉｕｍ（ＣＥＬＬｎＴＥＣ社）で置き換え、１６時間３７℃ＣＯ２インキュベーターで培養した。
（５）セルカルチャーインサート内外の培地を除去し、セルカルチャーインサート内は空気に曝露し、セルカルチャーインサート外に５００μＬ　ＣｎＴ－Ｐｒｉｍｅ、３Ｄ　ｂａｒｒｉｅｒ　ｍｅｄｉｕｍを入れた。
（６）毎日セルカルチャーインサート外の５００μＬ　ＣｎＴ－Ｐｒｉｍｅ、３Ｄ　ｂａｒｒｉｅｒ　ｍｅｄｉｕｍを交換しながら３７℃ＣＯ２インキュベーターで７日間培養した。
（７）セルカルチャーインサート内膜ごと培養表皮を切り取り、４％パラフォルムアルデヒドＰＢＳ溶液で固定し、組織切片標本を作製して公知の方法従ってヘマトキシリン・エオジン（ＨＥ）染色を行い、顕微鏡にて観察した。
　結果を図８に示す。セルカルチャーインサートの培養表面を無処置のもの（ａ）では、１０μｍ程度の三次元培養表皮しか得られなかったが、１０μｍＰＥＴビーズ（ｂ）及び３０μｍＰＥＴビーズ（ｃ）にてセルカルチャーインサート表面に凸部を設けた場合は、三次元培養細胞の明らかな肥厚化及び角層の形成が認められた。なお、図８（ｂ）はセルカルチャーインサートの多孔性膜から三次元培養皮膚シートが剥離しているように見えるが、これは標本作製時に分離してしまったものである。
＜実施例２＞
　（１）１２－Ｗｅｌｌ　Ｍｉｌｌｉｃｅｌｌ　Ｈａｎｇｉｎｇ　Ｃｅｌｌ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　ｉｎｓｅｒｔｓ　０．４μｍ　ＰＥＴ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社、「セルカルチャーインサート」）に、直径１２ｍｍのポリエステル製のメッシュを敷いた。以降の手順は、実施例１の（２）～（７）と同一の手順にて行った。
　結果を図９に示す。セルカルチャーインサートの培養表面を無処置のもの（ａ）では、１０μｍ程度の三次元培養表皮しか得られなかったが、凸部を設けたセルカルチャーインサート（ｂ）では、三次元培養細胞の明らかな肥厚化及び角層の形成が認められた。特に角層の厚さはコントロール（ａ）と比較して２倍近くになっていた。なお、図９（ｂ）は一部空洞になっている部分があるが、これは標本作製時の作業によるものである。
＜実施例３＞
　細胞培養容器の凸部の幅、間隔幅、高さの変化が、三次元培養皮膚シートの厚さにどのような変化をもたらすかを観察するための実験を行った。
　図１０は、本発明の三次元培養皮膚シートに凹凸を形成するために実施例で用いたポリエステル繊維の拡大図を示している。
　（１）１２－Ｗｅｌｌ　Ｍｉｌｌｉｃｅｌｌ　Ｈａｎｇｉｎｇ　Ｃｅｌｌ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　ｉｎｓｅｒｔｓ　０．４μｍ　ＰＥＴ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社、「セルカルチャーインサート」）に、各繊維を敷いた。以降の手順は、実施例１の（２）～（７）と同一の手順にて行った。
　本実施例で用いた各繊維の特徴を以下の表１に示す。また、それらを使用して形成した凸部が、三次元培養皮膚シート形成に与えた結果を以下の表１に示す。開口率は、培養面積に占めるメッシュ状の繊維が存在しない領域の面積の割合より算出した。作製した三次元培養皮膚シートの切片のＨＥ染色像を図１１Ａ及び図１１Ｂに示す。なお、図１１Ａ及び図１１Ｂで三次元培養皮膚シートとセルカルチャーインサートの多孔性膜が分離したり、線維がまくれたりして空洞となっている部分が見られるが、いずれも標本作製時の作業による人為的なものである。
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　＜実施例４＞
　（１）１２－Ｗｅｌｌ　Ｍｉｌｌｉｃｅｌｌ　Ｈａｎｇｉｎｇ　Ｃｅｌｌ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　ｉｎｓｅｒｔｓ　０．４μｍ　ＰＥＴ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社、「セルカルチャーインサート」）に、上述のＮｏ．２５５又はＮｏ．３００の繊維をウエルの形状にカットして敷いたもの（「２５５布」、「３００布」という）、カットしたＮｏ．２５５又はＮｏ．３００の繊維を紫外線硬化樹脂（Ｈｅｎｋｅｌ社、ＬＯＣＴＩＴＥ（登録商標）ＡＡ３５５４）で接着させたもの（「２５５布接着」、「３００布接着」という）を準備した。また、コントロールとして、布により凸部を設けていないウエルを使用した。さらに、コントロールとして、ヒト皮膚（ケー・エー・シー株式会社（京都、日本）を介してＢｉｏｐｒｅｄｉｃ　Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ社（レンヌ、フランス）より購入）を使用した。以降の手順は、実施例１の（２）～（６）と同一の手順にて行った。実験はトリプリケートで行った。
　＜＜バリア機能の評価＞＞
　バリア機能の評価は以下の手順に従って行った。
　３次元表皮モデルを構築したインサートを底部に培養液を入れたシリコンゴム容器にはめこみ、水分蒸散が表皮モデル表面からのみ起きるようにした。その後、１時間おきにインサートをはめこんだ容器の重量を測定し、減少した重量を水分蒸散量とし、単位面積当たりの数値に換算した。この手法はＫｕｍａｍｏｔｏの論文（Ｋｕｍａｍｏｔｏ　Ｊ．，Ｔｓｕｔｓｕｍｉ　Ｍ．，Ｇｏｔｏ　Ｍ．，Ｎａｇａｙａｍａ　Ｍ．，Ｄｅｎｄａ　Ｍ．Ｊａｐａｎｅｓｅ　Ｃｅｄａｒ（Ｃｒｙｐｔｏｍｅｒｉａ　ｊａｐｏｎｉｃａ）ｐｏｌｌｅｎ　ａｌｌｅｒｇｅｎ　ｉｎｄｕｃｅｓ　ｅｌｅｖａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ　ｃａｌｃｉｕｍ　ｉｎ　ｈｕｍａｎ　ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅｓ　ａｎｄ　ｉｍｐａｉｒｓ　ｅｐｉｄｅｒｍａｌ　ｂａｒｒｉｅｒ　ｆｕｎｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｈｕｍａｎ　ｓｋｉｎ　ｅｘ　ｖｉｖｏ．Ａｒｃｈ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．Ｒｅｓ．３０８：４９－５４，２０１６を参照のこと）に記載された方法と同じ原理である。
　得られた結果は、統計学的に解析を行い、（ＡＮＯＶＡ分散解析後Ｓｃｈｅｆｆｅによる多重検定解析）、膜のみで培養して得られた三次元培養皮膚シートと比較して、多重検定の結果、ｐ＜０．０５であるものを有意差があるものと判断した。
　その結果、紫外線硬化樹脂を用いて２５５布及び３００布を接着させたセルカルチャーインサート（２５５布接着及び３００布接着）で得られた三次元培養皮膚シートは、凹凸を有しない三次元培養皮膚シートと比較して有意に経皮水分蒸散量が少なく、バリア機能が高い三次元培養皮膚シートが得られることが明らかとなった(図１２）。
　上記の結果より、ポリエステルメッシュを用いて凸部を形成した細胞培養表面で三次元培養皮膚シートを作製した結果、従来の方法よりも分厚く、バリア機能が高い三次元培養皮膚シートが形成されることが明らかとなった。
　１　　細胞培養容器
　２　　セルカルチャーインサート
　３　　多孔性膜
　４　　ボトムウェル
　５　　培地
　６　　培養表面断面拡大部
　７　　凸部
　８　　表皮細胞
　９　　角層
　１０　　三次元培養皮膚シート
　１１　　基底部（太線）
　７１、７１ａ、７１ｂ、７２、７２ａ、７２ｂ、７３～７７、７７ａ、７７ｂ、７８　　凸部
　Ｂ１　　三次元培養皮膚シート凹部
　Ｂ２　　表皮細胞非存在領域底部
　Ｃ、Ｃ’　　凸部交点の最上部
　Ｈ、Ｈ１、Ｈ２　　凸部の高さ
　Ｈ’１　　三次元培養皮膚シートの凹凸の高さ
　Ｈ’２　　表皮細胞非存在領域の高さ
　Ｈ３～Ｈ５、Ｈ７ａ　　凸部の高さ
　Ｔ１　　三次元培養皮膚シート凸部
　Ｔ２　　表皮細胞非存在領域頂部
　Ｖａ、Ｖｂ　　表皮細胞非存在領域
　Ｗ、Ｗ１、Ｗ１ａ、Ｗ１ｂ　　凸部間隔幅
　Ｗ’１、Ｗ’２　　三次元培養皮膚シート凸部間隔幅
　Ｗ２、Ｗ２ａ、Ｗ２ｂ、Ｗ３～Ｗ８　　凸部間隔幅
　Ｙ、Ｙ１～Ｙ８　　凸部幅
　Ｙ’　　三次元培養皮膚シート凸部幅

Claims (27)

  1. 　少なくとも表皮細胞を含み、基底部の少なくとも一部に凹凸を有する、三次元培養皮膚シート。
  2. 　前記表皮細胞が、ケラチノサイトである、請求項１に記載の三次元培養皮膚シート。
  3. 　前記三次元培養皮膚シートの内部の少なくとも一部に、さらに、表皮細胞非存在領域を含む、請求項１又は２に記載の三次元培養皮膚シート。
  4. 　前記三次元培養皮膚シートの厚さの平均が、２０μｍ以上である、請求項１～３のいずれか１項に記載の三次元培養皮膚シート。
  5. 　前記凹凸の高さが、平均１μｍ～３００μｍである、請求項１～４のいずれか１項に記載の三次元培養皮膚シート。
  6. 　前記凹凸の高さが、平均１μｍ～９０μｍである、請求項１～４のいずれか１項に記載の三次元培養皮膚シート。
  7. 　前記凹凸の間隔幅が、平均１μｍ～３００μｍである、請求項１～６のいずれか１項に記載の三次元培養皮膚シート。
  8. 　前記凹凸の間隔幅が、平均１μｍ～１００μｍである、請求項１～６のいずれか１項に記載の三次元培養皮膚シート。
  9. 　さらに、前記基底部と接触した凸部を有する多孔性膜を備える、請求項１～８のいずれか１項に記載の三次元培養皮膚シート。
  10. 　前記凸部が、非生体物質からなる、請求項９に記載の三次元培養皮膚シート。
  11. 　培養表面の少なくとも一部に設けられた多孔性膜と、
    　前記多孔性膜上に配置され、三次元培養皮膚シートの基底部に凹凸を形成するための凸部と、
    を有する、請求項１～１０のいずれか１項に記載の三次元培養皮膚シートの製造に使用される細胞培養容器。
  12. 　前記凸部が、非生体物質からなる、請求項１１に記載の細胞培養容器。
  13. 　前記凸部の高さが、平均１μｍ～３００μｍである、請求項１１又は１２に記載の細胞培養容器。
  14. 　前記凸部の高さが、平均１μｍ～９０μｍである、請求項１１又は１２に記載の細胞培養容器。
  15. 　前記凸部の隣接する間隔幅が、平均１μｍ～３００μｍである、請求項１１～１４のいずれか１項に記載の細胞培養容器。
  16. 　前記凸部の隣接する間隔幅が、平均１μｍ～１００μｍである、請求項１１～１４のいずれか１項に記載の細胞培養容器。
  17. 　前記凸部が、ビーズ形状、角柱形状、錐体形状、錐台形状、釣鐘型、及び／又は、格子状からなる、請求項１１～１６のいずれか１項に記載の細胞培養容器。
  18. 　（１）培養表面の少なくとも一部に設けられた多孔性膜と、前記多孔性膜上に配置され、三次元培養皮膚シートの基底部に凹凸を形成するための凸部と、を有する細胞培養容器内に、培地に懸濁した表皮細胞を含む細胞を播種する工程、
    　（２）前記細胞培養容器の多孔性膜の外側に培地を接触させて培養する工程、
    を含む、三次元培養皮膚シートの製造方法。
  19. 　さらに、
    　（３）前記細胞培養容器内の培地を除去して、前記表皮細胞を空気に暴露し、培養する工程、
    を含む、請求項１８に記載の製造方法。
  20. 　前記凸部が、非生体物質からなる、請求項１８又は１９に記載の製造方法。
  21. 　前記凸部の高さが、平均１μｍ～３００μｍである、請求項１８～２０のいずれか１項に記載の製造方法。
  22. 　前記凸部の高さが、平均１μｍ～９０μｍである、請求項１８～２０のいずれか１項に記載の製造方法。
  23. 　前記凸部の隣接する間隔幅が、平均１μｍ～３００μｍである、請求項１８～２２のいずれか１項に記載の製造方法。
  24. 　前記凸部の隣接する間隔幅が、平均１μｍ～１００μｍである、請求項１８～２２のいずれか１項に記載の製造方法。
  25. 　前記凸部が、ビーズ形状、角柱形状、錐体形状、錐台形状、釣鐘型、及び／又は、格子状からなる、請求項１８～２４のいずれか１項に記載の製造方法。
  26. 　前記表皮細胞が、生体組織から単離培養後、継代回数２以上の表皮細胞を含む、請求項１８～２５のいずれか１項に記載の製造方法。
  27. 　前記表皮細胞が、ケラチノサイトである、請求項１８～２６のいずれか１項に記載の製造方法。
PCT/JP2017/023302 2016-06-24 2017-06-23 三次元培養皮膚シート、その製造に使用するための細胞培養容器及びその製造方法 WO2017222065A1 (ja)

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