JPH04332561A - 培養皮膚用マトリックス - Google Patents
培養皮膚用マトリックスInfo
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- JPH04332561A JPH04332561A JP3132139A JP13213991A JPH04332561A JP H04332561 A JPH04332561 A JP H04332561A JP 3132139 A JP3132139 A JP 3132139A JP 13213991 A JP13213991 A JP 13213991A JP H04332561 A JPH04332561 A JP H04332561A
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Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は培養皮膚用マトリックス
に関するものである。
に関するものである。
【0002】
【従来の技術】近年、広範囲重症熱傷患者の治療におい
て、培養表皮の技術が有効であることが報告されている
。例えば、不溶性コラ−ゲンとコンドロイチン6硫酸の
混合共沈澱物から調製したマトリックス上で表皮細胞を
増殖させて培養皮膚を作製し、患部に移植する方法が報
告されている(J.Biomed.Mater.Res
.,22:939〜957,1988)。本発明者等は
、さきに線維芽細胞を組み込んだコラ−ゲンを骨格とす
るマトリックス上で表皮細胞を増殖させて培養皮膚を作
製し、これを皮膚欠損部に移植して皮膚を再建する方法
について報告した[日本形成外科学会会誌、第10巻、
第3号、165〜180頁(1990年3月発行)]。
て、培養表皮の技術が有効であることが報告されている
。例えば、不溶性コラ−ゲンとコンドロイチン6硫酸の
混合共沈澱物から調製したマトリックス上で表皮細胞を
増殖させて培養皮膚を作製し、患部に移植する方法が報
告されている(J.Biomed.Mater.Res
.,22:939〜957,1988)。本発明者等は
、さきに線維芽細胞を組み込んだコラ−ゲンを骨格とす
るマトリックス上で表皮細胞を増殖させて培養皮膚を作
製し、これを皮膚欠損部に移植して皮膚を再建する方法
について報告した[日本形成外科学会会誌、第10巻、
第3号、165〜180頁(1990年3月発行)]。
【0003】即ち、免疫拒絶反応の少ないアテロコラ−
ゲンのシ−ト状スポンジをマトリックスとして用い、そ
の片面に線維芽細胞を播種して培養し、他の面に表皮細
胞を培養し重層化することにより培養皮膚を作製し、得
られた培養皮膚を皮膚の欠損部に移植し生着させる方法
について報告した。しかし、この方法による培養皮膚の
生着率は必ずしも満足し得るものではなく生着率の一層
の向上が望まれた。
ゲンのシ−ト状スポンジをマトリックスとして用い、そ
の片面に線維芽細胞を播種して培養し、他の面に表皮細
胞を培養し重層化することにより培養皮膚を作製し、得
られた培養皮膚を皮膚の欠損部に移植し生着させる方法
について報告した。しかし、この方法による培養皮膚の
生着率は必ずしも満足し得るものではなく生着率の一層
の向上が望まれた。
【0004】
【発明が解決しようとする課題】本発明は皮膚欠損部に
移植した場合に、優れた生着率で皮膚を再建することの
できる培養皮膚の作製に好適なマトリックスを提供する
ことを目的とする。
移植した場合に、優れた生着率で皮膚を再建することの
できる培養皮膚の作製に好適なマトリックスを提供する
ことを目的とする。
【0005】
【課題を解決するための手段】本発明者等は上記の目的
を達成するために検討した結果、培養皮膚の生着率を向
上させるためには、移植後、生体内から表皮細胞への栄
養分の供給が円滑に行われることが必要であり、このた
めには、栄養分が効率よくマトリックスを通過して細胞
へ供給されること、並びにマトリックスが移植後早期に
分解吸収されることが重要であることを明かにした。本
発明は上記の知見に基づいて更に検討を重ねた結果達成
されたものである。即ち、本発明の要旨は、複数個の貫
通孔を設けたコラ−ゲンスポンジを骨格とするシ−トを
、ゲル状の生体繊維状高分子材料で被覆してなる培養皮
膚用マトリックスに存する。
を達成するために検討した結果、培養皮膚の生着率を向
上させるためには、移植後、生体内から表皮細胞への栄
養分の供給が円滑に行われることが必要であり、このた
めには、栄養分が効率よくマトリックスを通過して細胞
へ供給されること、並びにマトリックスが移植後早期に
分解吸収されることが重要であることを明かにした。本
発明は上記の知見に基づいて更に検討を重ねた結果達成
されたものである。即ち、本発明の要旨は、複数個の貫
通孔を設けたコラ−ゲンスポンジを骨格とするシ−トを
、ゲル状の生体繊維状高分子材料で被覆してなる培養皮
膚用マトリックスに存する。
【0006】以下、本発明を詳細に説明する。なお、以
下の説明では、生体繊維状高分子材料としてコラ−ゲン
又はフイブリンを使用した場合について述べる。図1は
本発明の培養皮膚用マトリックスの一例の垂直断面略図
であり、図2は図1の培養皮膚用マトリックスを構成す
るコラ−ゲンスポンジを骨格とするシ−トの垂直断面略
図である。図中、1は培養皮膚用マトリックスを示し、
2はコラ−ゲンスポンジを骨格とするシ−トを示し、3
はシ−ト2に設けた貫通孔を示し、4は貫通孔3内のゲ
ル状のコラ−ゲン又はフイブリンを示し、5はシ−ト2
の表面を被覆するゲル状のコラ−ゲン又はフイブリンを
示す。
下の説明では、生体繊維状高分子材料としてコラ−ゲン
又はフイブリンを使用した場合について述べる。図1は
本発明の培養皮膚用マトリックスの一例の垂直断面略図
であり、図2は図1の培養皮膚用マトリックスを構成す
るコラ−ゲンスポンジを骨格とするシ−トの垂直断面略
図である。図中、1は培養皮膚用マトリックスを示し、
2はコラ−ゲンスポンジを骨格とするシ−トを示し、3
はシ−ト2に設けた貫通孔を示し、4は貫通孔3内のゲ
ル状のコラ−ゲン又はフイブリンを示し、5はシ−ト2
の表面を被覆するゲル状のコラ−ゲン又はフイブリンを
示す。
【0007】本発明の培養皮膚用マトリックス1は、例
えば、以下に述べる方法により作製することができる。 先ず、コラ−ゲンを周知の方法により酵素処理して抗原
性の少ないアテロコラ−ゲンを調製し、次にアテロコラ
−ゲンの1%水溶液を調製し、その粘度が最大となるp
H4としてホモジナイザ−によりクリ−ム状の溶液とす
る。次いで、予め底面にアテロコラ−ゲン水溶液(pH
4)を塗布して風乾し、薄膜をコ−トした容器に上記ク
リ−ム状溶液を薄層状に流し込み、アルカリ性雰囲気下
で靜置して気泡を含んだ状態でゲル化させた後、急速凍
結させ真空乾燥して厚さ1〜2mm程度のコラ−ゲンス
ポンジを骨格とするシ−トを作製する。
えば、以下に述べる方法により作製することができる。 先ず、コラ−ゲンを周知の方法により酵素処理して抗原
性の少ないアテロコラ−ゲンを調製し、次にアテロコラ
−ゲンの1%水溶液を調製し、その粘度が最大となるp
H4としてホモジナイザ−によりクリ−ム状の溶液とす
る。次いで、予め底面にアテロコラ−ゲン水溶液(pH
4)を塗布して風乾し、薄膜をコ−トした容器に上記ク
リ−ム状溶液を薄層状に流し込み、アルカリ性雰囲気下
で靜置して気泡を含んだ状態でゲル化させた後、急速凍
結させ真空乾燥して厚さ1〜2mm程度のコラ−ゲンス
ポンジを骨格とするシ−トを作製する。
【0008】15ワットの紫外線ランプを用い、上記シ
−トの両面に夫々1時間ずつ紫外線を照射して部分的に
分子間架橋を導入した後、複数の貫通孔3を窄設し、次
いでエチレンオキシドガスにより滅菌する。貫通孔の大
きさ及び数は特に限られるものではないが、通常直径約
0.5〜1mm程度の貫通孔を2〜4個/cm2程度設
けるのが望ましく、例えば、直径0.5mmの貫通孔を
4mm間隔で窄設する。 貫通孔3を窄設したシ−ト
2に、組織培養タイプのアテロコラ−ゲンを含む中性溶
液を含浸させ、インキュベ−タ中に靜置してゲル化(コ
ラ−ゲン分子の集合による繊維形成)させることにより
、貫通孔3内及びシ−ト2の表面がゲル状コラ−ゲン特
にアテロコラ−ゲンにより被覆されて図1に示す本発明
の培養皮膚用マトリックスが作製される。
−トの両面に夫々1時間ずつ紫外線を照射して部分的に
分子間架橋を導入した後、複数の貫通孔3を窄設し、次
いでエチレンオキシドガスにより滅菌する。貫通孔の大
きさ及び数は特に限られるものではないが、通常直径約
0.5〜1mm程度の貫通孔を2〜4個/cm2程度設
けるのが望ましく、例えば、直径0.5mmの貫通孔を
4mm間隔で窄設する。 貫通孔3を窄設したシ−ト
2に、組織培養タイプのアテロコラ−ゲンを含む中性溶
液を含浸させ、インキュベ−タ中に靜置してゲル化(コ
ラ−ゲン分子の集合による繊維形成)させることにより
、貫通孔3内及びシ−ト2の表面がゲル状コラ−ゲン特
にアテロコラ−ゲンにより被覆されて図1に示す本発明
の培養皮膚用マトリックスが作製される。
【0009】上記の方法で作製された本発明のマトリッ
クスの貫通孔3には、図1に示すように、ゲル状のアテ
ロコラ−ゲン4が組み込まれている。このため、後述す
る方法により、このマトリックス上で細胞を培養する際
に細胞が貫通孔から落下して逸脱する恐れはない。また
、マトリックス面に表皮細胞を増殖重層化して得られた
培養皮膚を皮膚の欠損部に移植した後は、体内の栄養分
がこの貫通孔を通って表皮細胞層へ円滑に供給される利
点がある。
クスの貫通孔3には、図1に示すように、ゲル状のアテ
ロコラ−ゲン4が組み込まれている。このため、後述す
る方法により、このマトリックス上で細胞を培養する際
に細胞が貫通孔から落下して逸脱する恐れはない。また
、マトリックス面に表皮細胞を増殖重層化して得られた
培養皮膚を皮膚の欠損部に移植した後は、体内の栄養分
がこの貫通孔を通って表皮細胞層へ円滑に供給される利
点がある。
【0010】更に、マトリックスの表面はゲル状のアテ
ロコラ−ゲン5により被覆されているので、マトリック
ス面への線維芽細胞層及び表皮細胞の接着が極めて良好
であるため、作製された培養皮膚を移植した場合、培養
皮膚の生着率を著しく向上させることができる。なお、
コラ−ゲンスポンジを骨格とするシ−ト2の架橋は紫外
線の照射による部分的分子間架橋のため、培養皮膚移植
後の比較的早い時期にシ−ト2が消失し、分解反応に伴
う炎症反応が早期に終息する利点がある。なお、上記と
同様の方法で、コラ−ゲンスポンジ骨格の貫通孔及び表
面をゲル状フイブリンで被覆したものも培養皮膚のマト
リックスとして有効である。更に、播種した細胞のマト
リックスへの接着を促進するために、ゲル状のコラ−ゲ
ン又はフイブリンで被覆した表面に、細胞接種因子であ
るフイブロネクチン、ビトロネクチン、ラミニン等をコ
−トしたものは、培養皮膚のマトリックスとして極めて
有効である。
ロコラ−ゲン5により被覆されているので、マトリック
ス面への線維芽細胞層及び表皮細胞の接着が極めて良好
であるため、作製された培養皮膚を移植した場合、培養
皮膚の生着率を著しく向上させることができる。なお、
コラ−ゲンスポンジを骨格とするシ−ト2の架橋は紫外
線の照射による部分的分子間架橋のため、培養皮膚移植
後の比較的早い時期にシ−ト2が消失し、分解反応に伴
う炎症反応が早期に終息する利点がある。なお、上記と
同様の方法で、コラ−ゲンスポンジ骨格の貫通孔及び表
面をゲル状フイブリンで被覆したものも培養皮膚のマト
リックスとして有効である。更に、播種した細胞のマト
リックスへの接着を促進するために、ゲル状のコラ−ゲ
ン又はフイブリンで被覆した表面に、細胞接種因子であ
るフイブロネクチン、ビトロネクチン、ラミニン等をコ
−トしたものは、培養皮膚のマトリックスとして極めて
有効である。
【0011】以上のようにして作製された本発明のマト
リックスを用いて培養皮膚を作製するには、先ず皮膚片
を周知の方法により処理して表皮と真皮を剥離し、真皮
の結合組織を分解して線維芽細胞を採取し、一方表皮か
ら表皮細胞を採取して夫々培養する。本発明のマトリッ
クスの片面に線維芽細胞を所定の濃度で播種し、周知の
方法により培養するとマトリックス面に線維芽細胞の単
層が形成される。次いで、マトリックスを裏返し、その
上に予め増殖させた表皮細胞を所定の濃度で播種し、周
知の方法により培養すると重層化した表皮細胞層がマト
リックス上に形成された培養皮膚が作製される。
リックスを用いて培養皮膚を作製するには、先ず皮膚片
を周知の方法により処理して表皮と真皮を剥離し、真皮
の結合組織を分解して線維芽細胞を採取し、一方表皮か
ら表皮細胞を採取して夫々培養する。本発明のマトリッ
クスの片面に線維芽細胞を所定の濃度で播種し、周知の
方法により培養するとマトリックス面に線維芽細胞の単
層が形成される。次いで、マトリックスを裏返し、その
上に予め増殖させた表皮細胞を所定の濃度で播種し、周
知の方法により培養すると重層化した表皮細胞層がマト
リックス上に形成された培養皮膚が作製される。
【0012】上記方法で得られた培養皮膚を、例えばヌ
−ドマウス皮膚の欠損部に移植し、抗菌剤を含有するポ
リウレタン膜で被覆し、更に包帯で被覆し、時間の経過
に伴う生着状態を観察したところ、移植後2週間後には
創面は乾燥し、創面での拘縮は認められず、またマトリ
ックスは完全に消失し、時間の経過と共に表皮細胞層の
重層化が認められた。更に、4週間後の組織の観察結果
によれば、表皮細胞の角化が進みほぼ完全な表皮と真皮
類似層が再建されていた。
−ドマウス皮膚の欠損部に移植し、抗菌剤を含有するポ
リウレタン膜で被覆し、更に包帯で被覆し、時間の経過
に伴う生着状態を観察したところ、移植後2週間後には
創面は乾燥し、創面での拘縮は認められず、またマトリ
ックスは完全に消失し、時間の経過と共に表皮細胞層の
重層化が認められた。更に、4週間後の組織の観察結果
によれば、表皮細胞の角化が進みほぼ完全な表皮と真皮
類似層が再建されていた。
【0013】
【実施例】以下本発明を実施例について更に詳細に説明
するが、本発明はその要旨を超えない限りこれ等の実施
例に限定されるものではない。
するが、本発明はその要旨を超えない限りこれ等の実施
例に限定されるものではない。
【0014】実施例1
培養皮膚用マトリックスの作製:牛皮由来のコラ−ゲン
を酵素処理して調製したアテロコラ−ゲン(高研社製)
の1%水溶液をpH4に調整し、ホモジナイザ−で15
000rpmで3分間攪拌してクリ−ム状とした。予め
0.5%のアテロコラ−ゲン水溶液(pH4)0.5m
lを底面に塗布して風乾させたポリスチレン容器(6c
m×9.5cm)に、上記クリ−ム状の溶液15mlを
流し込みアンモニア雰囲気下に1時間静置してゲル化さ
せた。次いで充分に水洗した後、−70℃で急速凍結さ
せ真空乾燥してシ−ト状のスポンジを作製した。
を酵素処理して調製したアテロコラ−ゲン(高研社製)
の1%水溶液をpH4に調整し、ホモジナイザ−で15
000rpmで3分間攪拌してクリ−ム状とした。予め
0.5%のアテロコラ−ゲン水溶液(pH4)0.5m
lを底面に塗布して風乾させたポリスチレン容器(6c
m×9.5cm)に、上記クリ−ム状の溶液15mlを
流し込みアンモニア雰囲気下に1時間静置してゲル化さ
せた。次いで充分に水洗した後、−70℃で急速凍結さ
せ真空乾燥してシ−ト状のスポンジを作製した。
【0015】15Wの紫外線ランプを用いて上記シ−ト
状スポンジの両面に15cmの距離で紫外線を夫々1時
間ずつ照射して部分的に分子間架橋を導入した後、直径
0.5mmの貫通孔を4mm間隔で窄設した。ついでこ
のシ−トをポリスチレン容器に入れ、エチレンオキシド
ガスにより滅菌し、Hank’s溶液(緩衝液)で洗浄
し気泡を除去した後、0.2%の組織培養用タイプIの
アテロコラ−ゲン中性Hank’s溶液[高研社CEL
LGEN(登録商標)]を2ml添加し、37℃で2時
間インキュベ−タ中に靜置してゲル化させて、貫通孔内
及びシ−ト表面がゲル状アテロコラ−ゲンで被覆された
本発明の培養皮膚用マトリックスを得た。
状スポンジの両面に15cmの距離で紫外線を夫々1時
間ずつ照射して部分的に分子間架橋を導入した後、直径
0.5mmの貫通孔を4mm間隔で窄設した。ついでこ
のシ−トをポリスチレン容器に入れ、エチレンオキシド
ガスにより滅菌し、Hank’s溶液(緩衝液)で洗浄
し気泡を除去した後、0.2%の組織培養用タイプIの
アテロコラ−ゲン中性Hank’s溶液[高研社CEL
LGEN(登録商標)]を2ml添加し、37℃で2時
間インキュベ−タ中に靜置してゲル化させて、貫通孔内
及びシ−ト表面がゲル状アテロコラ−ゲンで被覆された
本発明の培養皮膚用マトリックスを得た。
【0016】実施例2
実施例1において使用した組織培養用タイプIのアテロ
コラ−ゲン中性溶液2mlの代りに、1mMのエチレン
ジアミン4酢酸ナトリウムを含有させた血液を200
rpmで遠沈させて得た血清2mlを使用し、これを実
施例1と同一のシ−ト状スポンジに添加し、0.1mM
の塩化カルシウム水溶液を加えて37℃で2時間インキ
ュベ−タ中に靜置してゲル化させて、貫通孔内及びシ−
ト表面がゲル状のフイブリンで被覆された本発明の培養
皮膚用マトリックスを得た。
コラ−ゲン中性溶液2mlの代りに、1mMのエチレン
ジアミン4酢酸ナトリウムを含有させた血液を200
rpmで遠沈させて得た血清2mlを使用し、これを実
施例1と同一のシ−ト状スポンジに添加し、0.1mM
の塩化カルシウム水溶液を加えて37℃で2時間インキ
ュベ−タ中に靜置してゲル化させて、貫通孔内及びシ−
ト表面がゲル状のフイブリンで被覆された本発明の培養
皮膚用マトリックスを得た。
【0017】参考例1
培養皮膚の作製と移植試験:実施例1の方法により作製
したマトリックスを予めDMEM(Dulbecco’
s modified Eagle’s medium
)+10%FBS(牛胎児血清)培地で置換した。ポリ
スチレン容器に入れた上記マトリックス(6cm×9.
5cm)上にラットの皮膚片から採取した線維芽細胞を
2×105 cells/cm2の濃度で播種し、DM
EM+10%FBS培地を用いインキュベ−タ−内で3
7℃で2日間培養した。このマトリックスを裏返して培
地を除去し、同一の皮膚片から採取した表皮細胞を、2
×105 cells/cm2の濃度で播種し、表皮細
胞増殖培地を用いインキュベ−タ−内で37℃で7日間
培養して培養皮膚を作製した。この培養皮膚はinvi
troでは観察では表皮細胞が3〜4層に重層化してい
た。
したマトリックスを予めDMEM(Dulbecco’
s modified Eagle’s medium
)+10%FBS(牛胎児血清)培地で置換した。ポリ
スチレン容器に入れた上記マトリックス(6cm×9.
5cm)上にラットの皮膚片から採取した線維芽細胞を
2×105 cells/cm2の濃度で播種し、DM
EM+10%FBS培地を用いインキュベ−タ−内で3
7℃で2日間培養した。このマトリックスを裏返して培
地を除去し、同一の皮膚片から採取した表皮細胞を、2
×105 cells/cm2の濃度で播種し、表皮細
胞増殖培地を用いインキュベ−タ−内で37℃で7日間
培養して培養皮膚を作製した。この培養皮膚はinvi
troでは観察では表皮細胞が3〜4層に重層化してい
た。
【0018】上述の方法により作製した培養皮膚をヌ−
ドマウスの背部皮膚全層欠損層(2×3cm)に移植し
、この上をゲンタマイシン(抗菌剤)を含有するポリウ
レタン膜で被覆し、更にガ−ゼをのせ弾性包帯で固定し
、時間の経過に伴う生着状態を観察した。移植2週間後
には、肉眼的には創面は乾燥しており、浸出液の貯留は
認められず、創面での拘縮も認められなかった。またマ
トリックスは完全に消失していた。更に表皮細胞の重層
化が増大し5〜8層の表皮細胞層が観察された。移植4
週間後の組織を観察すると、表皮細胞の角化が進み、ほ
ぼ完全な表皮と真皮類似層が再建されていた。なお、実
施例1の方法により作製したマトリックスの代りに、実
施例2の方法で作製したマトリックスを用いて上記と同
様に培養皮膚を作製し、同様に移植した場合もほぼ同等
の結果が得られた。
ドマウスの背部皮膚全層欠損層(2×3cm)に移植し
、この上をゲンタマイシン(抗菌剤)を含有するポリウ
レタン膜で被覆し、更にガ−ゼをのせ弾性包帯で固定し
、時間の経過に伴う生着状態を観察した。移植2週間後
には、肉眼的には創面は乾燥しており、浸出液の貯留は
認められず、創面での拘縮も認められなかった。またマ
トリックスは完全に消失していた。更に表皮細胞の重層
化が増大し5〜8層の表皮細胞層が観察された。移植4
週間後の組織を観察すると、表皮細胞の角化が進み、ほ
ぼ完全な表皮と真皮類似層が再建されていた。なお、実
施例1の方法により作製したマトリックスの代りに、実
施例2の方法で作製したマトリックスを用いて上記と同
様に培養皮膚を作製し、同様に移植した場合もほぼ同等
の結果が得られた。
【0019】
【発明の効果】本発明の培養皮膚用マトリックスは、マ
トリックス上で細胞を培養する際に、細胞を効率よく接
着することができ、また表皮細胞をマトリックス上に重
層化して得た培養皮膚を、皮膚の欠損部に移植した後は
、体内の栄養分を表皮細胞層へ円滑に供給して培養皮膚
の生着率を著しく向上させることができる。
トリックス上で細胞を培養する際に、細胞を効率よく接
着することができ、また表皮細胞をマトリックス上に重
層化して得た培養皮膚を、皮膚の欠損部に移植した後は
、体内の栄養分を表皮細胞層へ円滑に供給して培養皮膚
の生着率を著しく向上させることができる。
【図1】本発明の培養皮膚用マトリックスの一例の垂直
断面略図である。
断面略図である。
【図2】図1に示す培養皮膚用マトリックスを構成する
コラ−ゲンスポンジを骨格とするシ−トの垂直断面略図
である。
コラ−ゲンスポンジを骨格とするシ−トの垂直断面略図
である。
1 培養皮膚用マトリックス
2 コラ−ゲンスポンジを骨格とするシ−ト3 シ
−ト2に設けた貫通孔 4 貫通孔3内のゲル状コラ−ゲン又はフイブリン5
シ−ト2の表面を被覆するゲル状コラ−ゲン又はフ
イブリン
−ト2に設けた貫通孔 4 貫通孔3内のゲル状コラ−ゲン又はフイブリン5
シ−ト2の表面を被覆するゲル状コラ−ゲン又はフ
イブリン
Claims (5)
- 【請求項1】 複数個の貫通孔を設けたコラ−ゲンス
ポンジを骨格とするシ−トを、ゲル状の生体繊維状高分
子材料で被覆してなる培養皮膚用マトリックス。 - 【請求項2】 ゲル状の生体繊維状高分子材料がコラ
−ゲン及びフイブリンから選ばれる請求項1記載の培養
皮膚用マトリックス。 - 【請求項3】 ゲル状のコラ−ゲンがアテロコラ−ゲ
ンである請求項2記載の培養皮膚用マトリックス。 - 【請求項4】 複数個の貫通孔を設けたコラ−ゲンス
ポンジを骨格とするシ−トを、ゲル状の生体繊維状高分
子材料で被覆し、更にその表面を細胞接着因子で被覆し
てなる培養皮膚用マトリックス。 - 【請求項5】 細胞接着因子がフイブロネクチン、ビ
トロネクチン及びラミニンから選ばれる請求項4記載の
培養皮膚用マトリックス。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP3132139A JPH04332561A (ja) | 1991-05-09 | 1991-05-09 | 培養皮膚用マトリックス |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP3132139A JPH04332561A (ja) | 1991-05-09 | 1991-05-09 | 培養皮膚用マトリックス |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH04332561A true JPH04332561A (ja) | 1992-11-19 |
Family
ID=15074277
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP3132139A Pending JPH04332561A (ja) | 1991-05-09 | 1991-05-09 | 培養皮膚用マトリックス |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH04332561A (ja) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5702945A (en) * | 1995-02-15 | 1997-12-30 | Heraeus Instruments Gmbh | Culture vessel for cell cultures on a carrier |
EP0731163A3 (en) * | 1995-03-07 | 1998-06-17 | Menicon Co., Ltd. | Culture skin and process for preparing the same |
WO2002045767A1 (fr) * | 2000-12-07 | 2002-06-13 | Japan Tissue Engineering Co.,Ltd | Substrat de regeneration de tissus, materiel de transplantation, et procedes de production de ces elements |
US6916655B2 (en) | 2001-11-22 | 2005-07-12 | Nipro Corporation | Cultured skin and method of manufacturing the same |
-
1991
- 1991-05-09 JP JP3132139A patent/JPH04332561A/ja active Pending
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5702945A (en) * | 1995-02-15 | 1997-12-30 | Heraeus Instruments Gmbh | Culture vessel for cell cultures on a carrier |
EP0731163A3 (en) * | 1995-03-07 | 1998-06-17 | Menicon Co., Ltd. | Culture skin and process for preparing the same |
US5906937A (en) * | 1995-03-07 | 1999-05-25 | Menicon Co., Ltd. | Culture skin and process for preparing the same |
US6043089A (en) * | 1995-03-07 | 2000-03-28 | Menicon Co., Ltd. | Skin culture and process for preparing the same |
US6057148A (en) * | 1995-03-07 | 2000-05-02 | Menicon Co., Ltd. | Apparatus for preparing skin cell culture |
WO2002045767A1 (fr) * | 2000-12-07 | 2002-06-13 | Japan Tissue Engineering Co.,Ltd | Substrat de regeneration de tissus, materiel de transplantation, et procedes de production de ces elements |
US6916655B2 (en) | 2001-11-22 | 2005-07-12 | Nipro Corporation | Cultured skin and method of manufacturing the same |
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