JPH08231433A - Il−6アンタゴニストを含んでなる抗腫瘍剤の作用増強剤 - Google Patents
Il−6アンタゴニストを含んでなる抗腫瘍剤の作用増強剤Info
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Abstract
タゴニスト、例えばIL−6に対する抗体、IL−6レ
セプターに対する抗体、gp130蛋白質に対する抗体
等を含んで成る、抗腫瘍剤、例えばシスブラスチンやカ
ルボブラスチンのごとき白金化合物、マイトマイシンC
等に対する作用増強剤。
Description
て抗腫瘍剤の作用を補助、増強するインターロイキン6
アンタゴニストを含んでなる抗腫瘍剤の作用増強剤に関
する。
キル化剤、代謝拮抗剤、抗腫瘍抗生剤、白金化合物等が
用いられてきた。これらの抗腫瘍剤を単独で用いても顕
著な治療効果が認められない場合、複数の抗腫瘍剤を併
用する治療法が考えられてきた(Frei, E. III, Cancer
Res., 32, 2593-2607, 1992)。腫瘍細胞は、抗腫瘍剤
に様々な感受性を有し、あるものは抗腫瘍剤に対して治
療抵抗性を示すことが知られている(Magrath, I., New
Directions in Cancer Treatment, 1989, Springer-Ve
rlag)。腫瘍細胞の治療抵抗性獲得には、マルチドラッ
グレジスタンス(multi-drug resistance ;MDR)の
発現(Tsuruo, T.ら、Cancer Res., 42, 4730-4733, 19
82) 、抗腫瘍剤の細胞内取込みの減少 (Sherman, S. E.
ら、Science, 230, 412, 1985)、DNA修復活性の増加
(Borch, R. F., Metabolism and Action of Anticance
r Drugs. Powis, G. & Prough, R. 編、Taylor & Franc
is,London, 1987, 163-193)または細胞内での抗腫瘍剤
の不活化の促進 (Teicher, B. A.ら、Cancer Res., 46,
4379, 1986)等がその原因であるといわれている。この
ような場合、抗腫瘍剤を投与するだけでは予期した治療
効果が認められない場合が多い。
スプラチン、アドリアマイシンおよびビンブラスチンな
どの抗腫瘍剤に治療抵抗性を示す腫瘍である(Kakehi,
Y.ら、J.Urol., 139, 862-864, 1988 ;Kanamaru, H.
ら、J.Natl.Cancer Inst., 81,844-847, 1989;Teiche
r, B.A. ら、Cancer Res., 47, 388-393, 1987)。シス
プラチンなどの抗腫瘍作用を有する白金化合物は、DN
Aに結合し、DNAの合成および細胞の分裂を阻害する
(Pinto, A. L.ら、Biochica et Biophysica Acta, 78
0, 167-180, 1985)。
性には、グルタチオン−S トランスフェレース−π
(GST−π)の発現、スルフィドリル基を含有する物
質の細胞質内レベル上昇によるシスプラチンの作用抑
制、DNA修復能上昇あるいはc−mycなどの発ガン
遺伝子の活性化等が複雑に関与していると考えられてい
る(Sklar, M.D. ら、Cancer Res., 51, 2118-2123, 19
91;Mizutani, Y.ら、Cancer in press, 1994 ;Nakaga
wa, K.ら、Japan.J.Cancer Res., 79, 301-305, 198
8)。
は、細胞内のシスプラチンの取込み減少をもたらし、シ
スプラチンに対する治療抵抗性を増すといわれている
(Richon, V.ら、Cancer Res., 47, 2056-2061, 1987;
Waud, W.R.ら、Cancer Res., 47,6549-6555, 1987)。
スルフィドリル基を含む物質として、哺乳類動物細胞内
に最も豊富に存在するグルタチオンは、細胞内でシスプ
ラチンを不活化することが報告されており、ある種の腫
瘍において細胞内のグルタチオンおよびメタロチオネイ
ンレベルが高くなっていることが示された(Hromas, R.
A.ら、Cancer LETT., 34, 9-13, 1987;Taylor, D.M.
ら、Eur.J.Cancer, 12, 249-254, 1976 )。
り、アルキル化剤やシスプラチンのようなDNA結合物
質の不活化およびこれらによる細胞障害の修復に重要な
役割を担っている。GST−πの有する一つの作用は、
上記のような抗腫瘍剤をグルタチオンに結合させること
により抗腫瘍剤の不活化を促進することである。腎細胞
癌は、インターロイキン6(IL−6)を産生し、IL
−6レセプター(IL−6R)を発現していることか
ら、腎細胞癌の増殖活性化にIL−6が何らかの役割を
担っていることが示唆されている(Miki, S.ら、FEBS L
ett., 250,607-610, 1989;Takenawa, J., ら、J.Natl.
Cancer Inst., 83, 1668-1672, 1991)。さらに、腎細
胞癌患者の治療予後が悪い場合、血清中のIL−6レベ
ルが上昇していることが報告されている(Blay, J.,
ら、Cancer Res., 52, 3317-3322, 1992;Tsukamoto,
T.,ら、J.Urol., 148, 1778-1782, 1992 )。しかしな
がら、IL−6と腎細胞癌の抗腫瘍剤に対する治療抵抗
性とはこれまでに明確な関連づけがなされておらず不明
であった。
ターフェロンβ2と呼称された、多機能サイトカインで
ある。IL−6はBリンパ球系細胞の活性化に関与する
分化因子として発見され(Hirano, T.ら、Nature 324,
73-76, 1986 )、その後、種々の細胞の機能に影響を及
ぼす多機能サイトカインであることが明らかとなった
(Akira, S. ら、Adv.in Immunology 54, 1-78, 199
3)。IL−6は、細胞上で二種のタンパク質を介して
その生物学的活性を伝達する。
KDのリガンド結合性タンパク質、IL−6Rである。I
L−6Rは、細胞膜を貫通して細胞膜上に発現する膜結
合型の他に、主にその細胞外領域からなる可溶性IL−
6R(sIL−6R)としても存在する。もう一つは非
リガンド結合性のシグナル伝達に係わる分子量約130
KDのgp130である。IL−6とIL−6RはIL−
6/IL−6R複合体を形成し、次いでもう一つの膜タ
ンパク質gp130と結合することにより、IL−6の
生物学的活性が細胞に伝達される(Tagaら、J.Exp.Me
d., 196, 967, 1987)。
トマイシンCといった抗腫瘍剤は、腫瘍細胞にアポトー
シスを誘導するが、IL−6は抗腫瘍剤により誘導され
たアポトーシスを抑制することが報告されている(Ker
r, J.ら、Cancer 73, 2013-2026, 1994;Sachs, L.
ら、Blood 82, 15-21, 1993 )。また、シスプラチンや
マイトマイシンCのような抗腫瘍剤は、フリーラジカル
を産生することにより、腫瘍細胞に細胞毒性を及ぼす
(Oyanagi, Y. ら、Biochem.Pharmacol., 26, 473-476,
1997 ;Nakano, H.ら、Biochem.Biophys.Acta., 796,
285-293, 1984 )が、IL−6がフリーラジカル分解作
用を有するマンガネーススーパーオキサイドジスムテー
ス(Manganese superoxide dismutase;MnSOD)の
発現を促進し、IL−6抗体が促進されたMnSOD発
現を抑制することが知られている(Ono,M.,ら、Bioche
m.Biophys.Res.Commun., 182, 1100-1107, 1992 ;Doug
all, W.C. ら、Endocrinology, 129, 2376-2384, 1991
)。
の生物学的活性を遮断することにより抗腫瘍剤の作用を
増強させることについて述べたものはなく、また、実際
に抗腫瘍剤の作用増強剤としてIL−6アンタゴニスト
の使用を試みたものはなかった。
は、抗腫瘍剤が使用されていたが、これらを多量に使用
すると吐き気・嘔吐、腎、肝機能障害や骨髄機能抑制と
いった好ましくない副作用が生ずることから、腫瘍細胞
に対し、抗腫瘍作用を十分に発揮するような必要量を投
与することが危険な場合もあった。また、通常の抗腫瘍
剤を用いる化学療法では効果がみられない治療抵抗性の
腫瘍があり、このような腫瘍の抗腫瘍剤に対する感受性
を上昇させる作用増強剤の登場が待たれていた。
増強し、抗腫瘍剤に治療抵抗性の腫瘍細胞の感受性を上
昇させるような新しい抗腫瘍剤の作用増強剤を提供する
ことである。より詳しくは、本発明はIL−6アンタゴ
ニストを含んでなる、抗腫瘍剤の作用増強剤を提供す
る。より詳しくは、本発明はIL−6アンタゴニストを
含んでなる、抗腫瘍作用を有する化学療法剤の作用増強
剤を提供する。
の抗腫瘍剤に対する感受性の変化にIL−6アンタゴニ
ストが及ぼす影響について鋭意検討を重ねた結果、IL
−6抗体またはIL−6R抗体などのIL−6アンタゴ
ニストが腫瘍細胞の抗腫瘍剤に対する感受性を上昇さ
せ、より低用量の抗腫瘍剤で治療効果が認められるこ
と、さらには、通常の抗腫瘍剤には治療抵抗性を示す腫
瘍に対しIL−6アンタゴニストを含んでなる作用増強
剤を併用することにより治療効果が現れることを見出
し、本発明を完成した。
トを含んでなる、抗腫瘍剤の作用増強剤に関する。より
詳しくは、本発明はIL−6アンタゴニストを含んでな
る、抗腫瘍作用を有する化学療法剤の作用増強剤に関す
る。IL−6アンタゴニストとしては、IL−6に対す
る抗体、IL−6Rに対する抗体等が好ましく、例えば
これらのモノクローナル抗体が好ましい。具体的なモノ
クローナル抗体としてはPM−1抗体、又はヒト型化P
M−1抗体が挙げられる。また、IL−6アンタゴニス
トと組合わせて使用される抗腫瘍剤としては、化学療法
剤、例えば抗腫瘍活性を有する白金化合物、マイトマイ
シンC等が挙げられる。白金化合物としては、シスプラ
チン、カルボプラチン、254−S、DWA−2114
R、NK−121等が挙げられる。
んでなる抗腫瘍剤の作用増強剤とは、腫瘍を治療するに
際し、抗腫瘍剤と併用されることで、抗腫瘍作用を増強
する。また、抗腫瘍剤の必要用量を低減させ、さらには
通常の化学療法では治療効果が認められない治療抵抗性
の腫瘍に対しても、抗腫瘍剤の感受性を上昇させる効果
を有する。
強される抗腫瘍剤は、腫瘍細胞に作用して腫瘍細胞の発
育と増殖を抑制し、腫瘍の治療効果を有する化学療法剤
である。化学療法剤には、アルキル化剤、代謝拮抗剤、
抗腫瘍抗生剤、植物由来アルカロイド、ホルモン療法
剤、白金化合物などがある。このような抗腫瘍剤の中で
も、抗腫瘍抗生剤であるマイトマイシンCや抗腫瘍作用
を有する白金化合物が特に好ましい。白金化合物は白金
原子を有し、他の原子と錯体を形成している。このもの
は、DNAと結合することにより、腫瘍細胞のDNA合
成を阻害し、腫瘍細胞の分裂を阻害して抗腫瘍作用を示
す。これまでに抗腫瘍作用を有する白金化合物として、
シスプラチン(cis-diammine dichloroplatinum(II) 、
下記の構造式を有する)、
obutanedicarboxylato)-platinum(II)、下記の構造式を
有する)、
atinum(II)、下記の構造式を有する)、
hylpyrrolidine(1,1-cyclobutanedicarboxylatoplatinu
m(II) 、下記の構造式を有する)、
anediamine(1,1-cyclobutanedicarboxylato)platinum(I
I)、下記の構造式を有する)、
Oxalato(trans-1,2-cyclohexanediamine)platinum(II)
、下記の構造式を有する)、
thyltetronate)2-(I-1,2-diaminocyclohexane)platinum
(II)、下記の構造式を有する)
うちで特に、上記シスプラチン、カルボプラチン、DW
A−2114Rが好ましく例示される。これらの抗腫瘍
剤は、常法により製剤化される。例えば、白金化合物の
場合、必要ならば補助剤とともに医薬として用いる単体
と混合して、経口的にまた、非経口的に、好ましくは注
射剤として用いられる。注射剤とする場合には、蒸留水
あるいは塩化ナトリウム、塩化カリウム等の塩溶液また
は、ブドウ糖溶液、生理食塩水に混和するのがよい。こ
れらの製剤中の抗腫瘍剤の量は、患者の年齢、症状等に
より、使用に便利な単位量が望まれ、例えば、成人の腫
瘍治療に用いられる場合、一日一回10−2000mg/
m2 (体表面積)を投与し、投与量により5日間の連投
あるいは投与間に1−4週の休薬期間を設けてもよい。
められる腫瘍細胞は、IL−6Rを有し、IL−6を一
つの生理活性物質として増殖および/または治療抵抗性
を示す腫瘍である。このような腫瘍としては、腎細胞癌
(Miki, S.ら、FEBS Letter,250, 607-610, 1989)、骨
髄腫 (Kawano, M.ら、Nature, 332, 83-85, 1988) 、卵
巣ガン (Kobayashi, H. ら、第53回日本がん学会総会講
演要旨集271 頁、874,1994)、EBウイルス感染Bリン
パ腫 (Tosata, G.ら、J. Virol., 64, 3033-3041, 199
0) 、成人T細胞白血病 (Sawada, T. & Takatsuki, K.
Br. J. Cancer,62, 923-924, 1990)、前立腺がん (Sieg
all, C. B.ら、Cancer Res., 50, 7786-7788, 1990) 、
Kaposi肉腫 (Miles, S. A.ら、Proc. Natl. Aca
d. Sci. 87, 4068-4072, 1990) 等が知られている。
トは、IL−6によるシグナル伝達を遮断し、IL−6
の生物学的活性を阻害するものであれば、その由来を問
わない。IL−6アンタゴニストとしては、IL−6抗
体、IL−6R抗体、gp130抗体、IL−6改変
体、IL−6Rのアンチセンスオリゴヌクレオチドある
いはIL−6またはIL−6Rの部分ペプチド等が挙げ
られる。
用される抗体、たとえば、IL−6抗体、IL−6R抗
体、あるいはgp130抗体はその由来および種類(モ
ノクローナル、ポリクローナル)を問わないが、特に哺
乳動物由来のモノクローナル抗体が好ましい。これら抗
体はIL−6,IL−6Rあるいはgp130と結合す
ることにより、IL−6とIL−6RまたはIL−6R
とgp130の結合を阻害してIL−6のシグナル伝達
を遮断し、IL−6の生物学的活性を阻害する抗体であ
る。
哺乳類であれば特に制限されず、ヒト抗体またはヒト以
外の哺乳動物由来であってよい。ヒト以外の哺乳動物由
来のモノクローナル抗体としては、その作成の簡便さか
らウサギあるいはげっ歯類由来のモノクローナル抗体が
好ましい。げっ歯類としては、特に制限されないが、マ
ウス、ラット、ハムスターなどが好ましく例示される。
は、MH166抗体(Matsuda ら、Eur.J.Immunol. 18
:951-956, 1988 )やSK2抗体(Satoら、第21回
日本免疫学会総会、学術記録、21:116,199
1)等が挙げられる。IL−6R抗体としては、PM−
1抗体(Hirataら、J.Immunol. 143:2900-2906, 1989
)、AUK12−20抗体、AUK64−7抗体ある
いはAUK146−15抗体(国際特許出願公開番号W
O92−19759)などが挙げられる。
体が好ましく、その具体例としては上記PM−1抗体が
挙げられる。モノクローナル抗体は、基本的には公知技
術を使用し、以下のようにして作成できる。すなわち、
IL−6,IL−6Rあるいはgp130を感作抗原と
して使用して、これを通常の免疫方法にしたがって免疫
し、得られる免疫細胞を通常の細胞融合法によって公知
の親細胞と融合させ、通常のスクリーニング法により、
モノクローナルな抗体産生細胞をスクリーニングするこ
とによって作成できる。
成するには次のようにすればよい。例えば、前記感作抗
原としてはヒト由来のものが好ましく、ヒトIL−6の
場合、Hiranoら、Nature, 324 :73, 1986に開示された
ヒトIL−6の遺伝子配列を用いることによって得られ
る。ヒトIL−6の遺伝子配列を公知の発現ベクター系
に挿入して適当な宿主細胞を形質転換させた後、その宿
主細胞中または、培養上清中から目的のIL−6タンパ
ク質を精製し、この精製IL−6タンパク質を感作抗原
として用いればよい。
番号EP325474号に開示された遺伝子配列を用い
て上記ヒトIL−6と同様の方法に従えばIL−6Rタ
ンパク質を得ることができる。IL−6Rは細胞膜上に
発現しているものと細胞膜より離脱している可溶性のも
の(sIL−6R)(Yasukawaら、J.Biochem., 108,67
3-676, 1990)との二種類がある。sIL−6Rは細胞
膜に結合しているIL−6Rの主に細胞外領域から構成
されており、細胞膜貫通領域あるいは細胞膜貫通領域と
細胞内領域が欠損している点で膜結合型IL−6Rと異
なっている。
番号EP411946に開示されている遺伝子配列を用
いて上記IL−6と同様の方法に従えば、gp130タ
ンパク質を得ることができる。感作抗原で免疫される哺
乳動物としては、特に限定されるものではないが、細胞
融合に使用する親細胞との適合性を考慮して選択するの
が好ましく、一般的にはマウス、ラット、ハムスター、
ウサギ等が使用される。
法にしたがって行われる。例えば、一般的方法として、
感作抗原を哺乳動物に腹腔内または、皮下に注射するこ
とにより行われる。具体的には、感作抗原をPBS(Ph
osphate-Buffered Saline )や生理食塩水等で適当量に
希釈、懸濁したものを所望により通常のアジュバント、
例えば、フロイント完全アジュバントを適量混合し、乳
化後、哺乳動物に4−21日毎に数回投与するのが好ま
しい。また、感作抗原免疫時に適当な担体を使用するこ
とができる。
ベルが上昇するのを確認した後に、哺乳動物から免疫細
胞が取り出され、細胞融合に付されるが、好ましい免疫
細胞としては、特に脾細胞が挙げられる。前記免疫細胞
と融合される他方の親細胞としての哺乳動物のミエロー
マ細胞は、すでに、公知の種々の細胞株、例えば、P3
(P3x63Ag8. 653)(J.Immunol. 123 :1548, 1978),p
3−U1(Current Topics in Micro-biology and Immu
nology 81 :1-7, 1978 ),NS−1(Eur.J.Immunol.
6:511-519, 1976 ),MPC−11(Cell, 8 :405-
415, 1976 ),SP2/0(Nature, 276 :269-270, 1
978 ),FO(J.Immunol.Meth. 35:1-21, 1980),S
194(J.Exp.Med.148:313-323, 1978 ),R210
(Nature, 277 :131-133, 1979 )等が好適に使用され
る。
合は基本的には公知の方法、たとえば、ミルステインら
の方法(Milsteinら、Methods Enzymol. 73 :3-46, 19
81)等に準じて行うことができる。より具体的には、前
記細胞融合は例えば、細胞融合促進剤の存在下に通常の
栄養培養液中で実施される。融合促進剤としては例え
ば、ポリエチレングリコール(PEG)、センダイウィ
ルス(HVJ)等が使用され、更に所望により融合効率
を高めるためにジメチルスルホキシド等の補助剤を添加
使用することもできる。
は、例えば、ミエローマ細胞に対して免疫細胞を1−1
0倍とするのが好ましい。前記細胞融合に用いる培養液
としては、例えば、前記ミエローマ細胞株の増殖に好適
なRPMI 1640培養液、MEM培養液、その他、
この種の細胞培養に用いられる通常の培養液が使用可能
であり、さらに、牛胎児血清(FCS)等の血清補液を
併用することもできる。
胞との所定量を前記培養液中でよく混合し、予め、37
℃程度に加温したPEG溶液、例えば、平均分子量10
00−6000程度のPEG溶液を通常、30−60%
(w/v)の濃度で添加し、混合することによって目的
とする融合細胞(ハイブリドーマ)が形成される。続い
て、適当な培養液を逐次添加し、遠心して上清を除去す
る操作を繰り返すことによりハイブリドーマの生育に好
ましくない細胞融合剤等を除去できる。
液、例えば、HAT培養液(ヒポキサンチン、アミノプ
テリンおよびチミジンを含む培養液)で培養することに
より選択される。当該HAT培養液での培養は、目的と
するハイブリドーマ以外の細胞(非融合細胞)が死滅す
るのに十分な時間、通常数日〜数週間継続する。つい
で、通常の限界希釈法を実施し、目的とする抗体を産生
するハイブリドーマのスクリーニングおよび単一クロー
ン化が行われる。
抗体を産生するハイブリドーマは、通常の培養液中で継
代培養することが可能であり、また、液体窒素中で長期
保存することが可能である。当該ハイブリドーマからモ
ノクローナル抗体を取得するには、当該ハイブリドーマ
を通常の方法にしたがい培養し、その培養上清として得
る方法、あるいはハイブリドーマをこれと適合性がある
哺乳動物に投与して増殖させ、その腹水として得る方法
などが採用される。前者の方法は、高純度の抗体を得る
のに適しており、一方、後者の方法は、抗体の大量生産
に適している。
して得られる抗体産生細胞を細胞融合させて生ずるハイ
ブリドーマから得られるものだけでなく、抗体遺伝子を
クローニングし、適当なベクターに組み込んで、これを
公知の細胞株、例えば、COS,CHO等に導入し、遺
伝子組換え技術を用いて産生させたモノクローナル抗体
を用いることができる(例えば、Vandamme, A-M.ら、Eu
r. J. Biochem., 192,767-775, 1990参照)。
ローナル抗体は、塩析法ゲル濾過法、アフィニティーク
ロマトグラフィー法等の通常の精製手段を利用して高純
度に精製することができる。このようにして、作成され
るモノクローナル抗体は、放射免疫測定法(RIA)、
酵素免疫測定法(EIA,ELISA)、蛍光抗体法
(ImmunofluorescenceAnalysis )等の通常の免疫学的
手段により抗原を高感度かつ高精度で認識することを確
認することができる。
は、ハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体に限
られるものではなく、ヒトに対する異種抗原性を低下さ
せること等を目的として人為的に改変したものがより好
ましい。例えば、ヒト以外の哺乳動物、例えば、マウス
のモノクローナル抗体の可変領域とヒト抗体の定常領域
とからなるキメラ抗体を使用することができ、このよう
なキメラ抗体は、既知のキメラ抗体の製造方法、特に遺
伝子組換技法を用いて製造することができる。
を本発明に用いることができる。これはヒト以外の哺乳
動物、たとえばマウス抗体の相補性決定領域をヒト抗体
の相補性決定領域へ移植したものであり、その一般的な
遺伝子組換手法も知られている。その既知方法を用い
て、本発明に有用な再構成ヒト型抗体を得ることがで
き、その好ましい具体例として再構成されたPM−1抗
体が挙げられる(例えば、国際特許出願公開番号WO9
2−19759を参照)。
性決定領域が適切な抗原結合部位を形成するように抗体
の可変領域のフレームワーク(FR)領域のアミノ酸を
置換してもよい(Satoら、Cancer Res. 53:1-6, 1993
)。さらには抗原に結合し、IL−6の活性を阻害す
るかぎり、抗体の断片、たとえば、F(ab′)2 ,F
abあるいはFv、H鎖とL鎖のFvを適当なリンカー
で連結させたシングルチェインFv(scFv)をコー
ドする遺伝子を構築し、これを適当な宿主細胞で発現さ
せ、前述の目的に使用することができる。(例えば、Bi
rdら、TIBTECH, 9:132-137, 1991 を参照)。
域を連結してなる。このscFvにおいて、H鎖V領域
とL鎖V領域はリンカー、好ましくは、ペプチドリンカ
ーを介して連結されている(Huston, J.S.ら、Proc.Nat
l.Acad.Sci. U.S.A., 85, 5879-5883, 1988 )。scF
vにおけるH鎖V領域およびL鎖V領域は、上記抗体と
して記載されたもののいずれの由来であってもよい。こ
れらのV領域は、好ましくは、ペプチドリンカーによっ
て連結されている。ペプチドリンカーとしては、例えば
アミノ酸12〜19残基からなる任意の一本鎖ペプチド
が用いられる。
のH鎖または、H鎖V領域をコードするDNA、および
L鎖または、L鎖V領域をコードするDNAを鋳型と
し、それらの配列のうちの所望のアミノ酸配列をコード
するDNA部分を、その両端を規定するプライマー対を
用いて、PCR法により増幅し、次いで、さらにペプチ
ドリンカー部分をコードするDNAおよびその両端を各
々H鎖、L鎖と連結されるように規定するプライマー対
を組み合せて増幅することにより得られる。
作成されれば、それらを含有する発現ベクター、および
該発現ベクターにより形質転換された宿主を常法に従っ
て得ることができ、また、その宿主を用いて常法に従っ
て、scFvを得ることができる。scFvは、抗体分
子に比べ、組織への移行性が優れており、再構成ヒト抗
体と同様の機能を有するものとしての利用が期待され
る。
はBrakenhoffら、J.Biol.Chem. 269:86-93, 1994 ある
いはSavinoら、EMBO J. 13:1357-1367, 1994 に開示さ
れたものが挙げられる。IL−6改変体としては、IL
−6のアミノ酸配列中に置換、欠失、挿入といった変異
を導入することにより、IL−6Rとの結合活性を維持
したまま、IL−6のシグナル伝達作用がないものが使
用される。さらにその由来となるIL−6は上記の性質
を有する限り、その動物種を問わないが、抗原性を考慮
すればヒト由来のものを使用するのが好ましい。具体的
には、IL−6のアミノ酸配列を公知の分子モデリング
プログラム、たとえば、WHATIF(Vriendら、J.Mo
l.Graphics, 8 :52-56, 1990 )を用いてその二次構造
を予測し、さらに変異アミノ酸残基の全体に及ぼす影響
を評価することにより行われる。
トIL−6遺伝子をコードする塩基配列を含むベクター
を鋳型として、通常行われるPCR(ポリメレースチェ
インリアクション)法により変異を導入することによ
り、IL−6改変体をコードする遺伝子が得られる。こ
れを必要に応じて適当な発現ベクターに組み込み、大腸
菌細胞や哺乳類細胞で発現させ、培養上清中に含まれた
まま、あるいは通常の手法により、これを単離精製し、
IL−6Rに対する結合活性およびIL−6のシグナル
伝達の中和活性を評価することができる。
あるいはIL−6R部分ペプチドは、各々IL−6Rあ
るいはIL−6に結合し、IL−6の活性伝達作用がな
いものであれば、その断片の配列を問わない。IL−6
部分ペプチドおよびIL−6R部分ペプチドについて
は、米国特許公報US5210075および欧州特許公
開公報EP617126を参照のこと。IL−6Rアン
チセンスオリゴヌクレオチドについては、特願平5−3
00338を参照のこと。
る、抗腫瘍剤の作用増強剤は、IL−6のシグナル伝達
を遮断し、抗腫瘍剤の作用を補助、増強する限り、IL
−6Rを有し、IL−6を一つの生理活性物質として増
殖および/または治療抵抗性を示すいかなる腫瘍の治療
に有効に用いることができる。本発明のIL−6アンタ
ゴニストからなる、抗腫瘍剤の作用増強剤は、好ましく
は非経口的に、たとえば、静脈内注射、筋肉内注射、腹
腔内注射、皮下注射等により全身あるいは局部的に投与
することができる。さらに、少なくとも一種の医薬用担
体または希釈剤とともに医薬組成物やキットの形態をと
ることができる。
る、抗腫瘍剤の作用増強剤のヒトに対する投与量は患者
の病態、年齢あるいは投与方法により異なるが、適宜適
当な量を選択することが必要である。例えば、IL−6
R抗体の場合、およそ1−1000mg/患者の範囲で4
回以下の分割用量を選択することができる。また、1−
10mg/kg/週の用量で投与することができる。しかし
ながら、本発明のIL−6アンタゴニストからなる、抗
腫瘍剤の作用増強剤はこれらの投与量に制限されるもの
ではない。
る、抗腫瘍剤の作用増強剤は常法にしたがって製剤化す
ることができる (Remington's Pharmaceutical Scienc
e, latest edition, Mark Publishing Company, Easto
n,米国) 。たとえば、注射用製剤は、精製されたIL−
6アンタゴニストを溶剤、たとえば、生理食塩水、緩衝
液、ブドウ糖溶液などに溶解し、それに、吸着防止剤、
たとえば、Tween80、ゼラチン、ヒト血清アルブ
ミン(HSA)などを加えたものであり、または、使用
前に溶解再構成するために凍結乾燥したものであっても
よい。凍結乾燥のための賦形剤としては例えばマンニト
ール、ブドウ糖などの糖アルコールや糖類を使用するこ
とができる。
発明を具体的に説明するが、本発明はこれらに限定され
るものではない。実施例1 抗腫瘍剤に対する腫瘍細胞の感受性に関する
IL−6抗体またはIL−6R抗体の影響 種々の抗腫瘍剤に対する腫瘍細胞の感受性について、I
L−6抗体またはIL−6R抗体の影響を調べた。 (1)ヒト腎細胞癌の調製 ヒト腎細胞癌株Caki−1,Caki−1のサブライ
ンであるシスプラチン耐性株Caki−1/DDP、ヒ
ト腎細胞癌ACHN、ヒト腎細胞癌A704(Giard,
D.J. ら,J. Natl. Cancer Inst. 51, 1417-1423, 197
3)を25mM HEPES、2mM L−グルタミン、1%
non-essentialアミノ酸、100U/mlペニシリン、1
00μg/mlストレプトマイシンおよび10%加熱不活
化ウシ胎児血清(FBS)を含むRPMI 1640培
養液(以上、Gibco製)(以下、完全培養液とい
う)中で、プラスチックディッシュ上で単層になるよう
に培養した。
45, 1992)の方法にしたがい、腎細胞癌患者から新鮮腫
瘍細胞を得た。三人の腎細胞癌患者の外科的処置の際
に、腎細胞癌腫瘍組織を得た。組織学的分類により、腎
細胞癌であることを確認した後、3mg/mlのコラーゲネ
ース(Sigma Chemical Co.製)により、腫瘍組織を細か
く分解し、腫瘍細胞懸濁液を調製した。RPMI 16
40培養液で三回洗浄した後、細胞懸濁液を、15ml容
量のプラスチックチューブ中の各々2mlの100%、8
0%および50%のFicol-Hypaque からなる非連続的な
勾配上に重層し、400xgにて30分間遠心した。上記
100%の層中のリンパ球に富む単球層を取り除き、8
0%の層から腫瘍細胞と中皮細胞を得た。
チックチューブにいれた完全培養液中で腫瘍細胞に富む
細胞懸濁液を、各々3mlの25%、15%、10%のP
ercollからなる非連続的な勾配上に重層して、室
温にて25xgで7分間遠心した。リンパ球と分離された
腫瘍細胞をチューブ底面より得た。得られた腫瘍細胞を
洗浄し、完全培養液で懸濁した後、トリパンブルー染色
法により腫瘍細胞の生存を確認した。このように調製し
たこれらの腫瘍細胞を以下の実験に用いた。 (2)ELISA法による腎細胞癌のIL−6産生確認 腎細胞癌株Caki−1,Caki−1/DDP,AC
HN,A704および腎細胞癌患者(No. 1−3)由来
新鮮腫瘍細胞の培養上清中にIL−6が存在するか否か
を、ELISA(enzyme-linked immunosorbent assay
)法で調べた。
μlのIL−6抗体を添加し、少なくとも一晩おいてE
LISAプレートをIL−6抗体でコートした。これら
のプレートは使用するまで4℃にて最大4週保存した。
IL−6抗体でコートしたプレートを三回洗浄し、1%
BSA(ウシ血清アルブミン)を含むELISA PB
Sで1時間ブロックした。二回の洗浄の後、100μl
の腫瘍細胞培養上清またはコントロールとして大腸菌由
来組換えIL−6(Yasukawaら,Biotechnol.Lett., 1
2, 419, 1990)を各ウェルに加えた。
洗浄して100μlの抗IL−6ポリクローナル抗体
(Matsuda, T. ら、Eur.J.Immunol., 18, 951-956, 198
8 )を各ウェルに添加した。プレートを1時間インキュ
ベートし、アルカリフォスフェイト結合ヤギ抗ウサギI
gGを各ウェルに加え、さらに1時間インキュベートし
た。プレートを洗浄し、アルカリフォスフェイト基質
(Sigma 104, Sigma Chemical Co. 製)とともにインキ
ュベートした。2時間後にELISA READER
(Immunoreader, Japan Intermed Co.ltd.製)により、
405nmの吸光度を測定した。その結果より、これらの
腎細胞癌はIL−6を産生することが明らかとなった
(表1参照)。
6抗体またはIL−6R抗体の影響 各種濃度の抗腫瘍剤、すなわち、シスプラチン(cis-di
amminedichloroplatinum(II)) 、マイトマイシンC(mi
tomycin C ;MMC)、アドリアマイシン(adriamyci
n;ADR)、ビンブラスチン(vinblastine ;VB
L)および5−フルオロウラシル(5-fluorouracil;5
−FU)に対する各腎細胞Caki−1,Caki−1
/DDP,ACHN,A704および患者(No. 1−
3)由来新鮮腫瘍細胞の感受性に関するIL−6抗体ま
たはIL−6R抗体の影響を調べるために、MTT法
(Mizutani, Y.ら、Cancer 73, 730-737, 1994)を実施
した。
液(2×104 細胞)を96ウェル底面マイクロタイタ
ープレート(Corning Glass Works, Corning製)に分注
した。プレートを37℃にて、5%CO2 存在加湿下に
おき、腫瘍細胞を24時間培養した。細胞培養上清を吸
引除去し、腫瘍細胞をRPMI 1640培養液で三回
洗浄した。IL−6抗体(Matsuda, T. ら、Eur.J.Immu
nol., 18, 951-956, 1988 )またはIL−6R抗体(Hi
rata, Y.ら、J.Immunol., 143, 2900-2906, 1989)との
共存下において200μlの各抗腫瘍剤を含む溶液また
はコントロールとして完全培養液を各ウェルに添加し、
37℃にて24時間培養した。20μlのMTT溶液
(5mg/ml、Sigma Chemical Co.製)を各ウェルに加
え、引続き37℃で、5%CO2 存在加湿下にて4時間
培養した。培養液を各ウェルから取り除き、0.05N
HClを含むイソプロパノール(Sigma Chemical Co.
製)と置換した。
をマイクロカルチュアプレートリーダー(Immunoreade
r, Japan Intermed Co.ltd.製)で測定した。細胞毒性
の割合を次の式にて計算した。細胞毒性(%)=〔1−
(実験群の吸光度/コントロール群の吸光度)〕×10
0。その結果、Caki−1細胞では、抗体との共存下
で、シスプラチン(図1A,B参照)またはMMC(図
2A,B参照)による細胞毒性が明らかに上昇した。コ
ントロール抗体MOPC3/C(J. Natl. Cancer Ins
t. (Bethesda), 41,1083, 1968)を加えた実験群では、
シスプラチンまたはMMCに対する感受性に影響はみら
れなかった。抗腫瘍剤単独を添加した場合と比べ、抗腫
瘍剤とIL−6抗体またはIL−6R抗体の共存下では
同程度の細胞毒性の効果を見出すための抗腫瘍剤の必要
量は1/10−1/100であった。一方、IL−6抗
体またはIL−6R抗体とADR,VBLまたは5−F
Uの共存下では、腫瘍細胞の抗腫瘍剤に対する感受性は
変化しなかった。
に対する耐性は、IL−6抗体またはIL−6R抗体と
シスプラチンが共存することで克服された(図3A,B
参照)。このようなIL−6抗体またはIL−6R抗体
とシスプラチンとの共同作用は、他の腎細癌胞株ACH
N(図4A,B参照)、A704(図5A,B参照)お
よび三人の患者から得られた新鮮腫瘍細胞(図6,7,
8の各A,B参照)においても同様に認められた。
癌の感受性に関するIL−6抗体またはIL−6R抗体
の影響 腎細胞癌株Caki−1を用い、各種の濃度に調製した
カルボプラチン(carboplatin)とIL−6抗体またはI
L−6R抗体が共存したときの細胞毒性について上記実
施例1と同様に検討した。その結果、Caki−1細胞
のカルボプラチンに対する感受性が増強された(図9
A,B参照)。
IL−6抗体またはIL−6R抗体の影響 10μg/mlのシスプラチンまたは100μg/mlの5
−FUとコントロールとしての培養液、10μg/mlの
コントロール抗体MOPC3/C、10μg/mlのIL
−6抗体またはIL−6R抗体の組合せの存在下で、C
aki−1細胞を24時間培養した。
I 1640培養液で三回洗浄した。シスプラチンの細
胞内蓄積を、フレームレス原子吸光スペクトロメトリー
法(Daley-Tates, P. T.ら、Biochem. Pharmacol., 34,
2263-2369 ; Riley, C. M.ら、Analytical Biochem.,
124, 167-179, 1982)にしたがい測定した。測定機器
は、ジーマンZ−8000(Zeeman z-8000 Spectropho
tometer, Hitachi Co.ltd.製)を用いた。また、5−F
Uの細胞内蓄積を、ガスクロマトグラフィー/質量分析
法(Marunaka, T., ら、J. Pharm. Sci., 69, 1296-130
0, 1980)で測定した。測定機器は、JGC−20KPガ
スクロマトグラフを備えたJMS−D 300マススペ
クトロメーター(JOEL製)を用いた。その結果を表
2に示す。IL−6抗体またはIL−6R抗体はシスプ
ラチン、5−FUの腫瘍細胞内蓄積に何ら影響を与えな
いことが明らかになった。
(GST−π)発現に関するシスプラチン、IL−6抗
体またはIL−6R抗体の影響 Caki−1細胞を、コントロールとしての培養液、1
0μg/mlのシスプラチン、10μg/mlのIL−6抗
体またはIL−6R抗体とともに4時間培養した。つい
で、細胞の全RNAをMizutani, Y.ら(Cancer 73, 730
-737, 1994)の方法により調製し、10μg RNA/
レーンとなるよう200mMモップス(MOPS;3−
〔N−モルホリノ〕プロパンスルホン酸)、50mM酢酸
ナトリウムおよび10mM EDTAナトリウムを含む1
×MOPS緩衝液中で、1.2%アガロース−2.2M
HCHOゲルで電気泳動した。次いで、RNAを、3
MNaCl、0.3Mクエン酸ナトリウム(pH7.0)
を含む20×SSC溶液中でBiodyne Aメンブ
レン(Poll製)に転写した。50−100ngのGS
T−π cDNAプローブ(Nakagawa, K.ら,J. Biol.
Chem. 265, 4296-4301, 1990)を、α32P−dCTP
(NEN製)によりランダムオリゴプライマー伸長法で
標識した。RNAを転写した上記ナイロン膜を紫外線で
クロスリンクし、上記プローブとハイブリダイズさせ
た。結果を図10に示す。
ST−π mRNAの発現は何ら影響を受けなかった。
しかしながら、IL−6抗体またはIL−6R抗体を添
加するとGST−π mRNAの発現が低下した。これ
らのことから、IL−6抗体またはIL−6R抗体によ
る腎細胞癌のシスプラチンに対する感受性上昇に関し、
GST−π mRNAの発現レベルの低下が関与してい
ることが示唆された。
ったIL−6アンタゴニストを抗腫瘍剤と共存させるこ
とで、より低用量で抗腫瘍剤に対す腫瘍細胞の感受性が
認められ、IL−6アンタゴニストと抗腫瘍剤により、
併用効果が発揮されることが確認される。さらに、抗腫
瘍剤に治療抵抗性を示す腫瘍細胞は、IL−6アンタゴ
ニストにより抗腫瘍剤感受性を増強される結果、治療が
可能となることが証明される。
らなる抗腫瘍剤の作用増強剤は、抗腫瘍剤の投与必要量
を低下させることにより、抗腫瘍剤の組織へ及ぼす毒性
を低減することができ、したがって、抗腫瘍剤の作用増
強剤として期待される。
濃度のシスプラチンとIL−6抗体(図1A)またはI
L−6R抗体(図1B)が共存したときの腎細胞癌株C
aki−1に対する細胞傷害活性を示す。◆は、シスプ
ラチンのみ、■は、シスプラチンと0.1μg/mlのI
L−6抗体またはIL−6R抗体の共存下、▲は、シス
プラチンと1μg/mlのIL−6抗体またはIL−6R
抗体の共存下、●は、シスプラチンと10μg/mlのI
L−6抗体またはIL−6R抗体の共存下における細胞
傷害活性(%)を示す。
濃度のマイトマイシンCとIL−6抗体(図2A)また
はIL−6R抗体(図2B)が共存したときの腎細胞癌
株Caki−1に対する細胞傷害活性を示す。◆は、マ
イトマイシンCのみ、■は、マイトマイシンCと0.1
μg/mlのIL−6抗体またはIL−6R抗体の共存
下、▲は、マイトマイシンCと1μg/mlのIL−6抗
体またはIL−6R抗体の共存下、●は、マイトマイシ
ンCと10μg/mlのIL−6抗体またはIL−6R抗
体の共存下における細胞傷害活性(%)を示す。
濃度のシスプラチンとIL−6抗体(図3A)またはI
L−6R抗体(図3B)が共存したときの腎細胞癌株C
aki−1/DDPに対する細胞傷害活性を示す。◆
は、シスプラチンのみ、■は、シスプラチンと0.1μ
g/mlのIL−6抗体またはIL−6R抗体の共存下、
▲は、シスプラチンと1μg/mlのIL−6抗体または
IL−6R抗体の共存下、●は、シスプラチンと10μ
g/mlのIL−6抗体またはIL−6R抗体の共存下に
おける細胞傷害活性(%)を示す。
濃度のシスプラチンとIL−6抗体(図4A)またはI
L−6R抗体(図4B)が共存したときの腎細胞癌株A
CHNに対する細胞傷害活性を示す。◆は、シスプラチ
ンのみ、■は、シスプラチンと0.1μg/mlのIL−
6抗体またはIL−6R抗体の共存下、▲は、シスプラ
チンと1μg/mlのIL−6抗体またはIL−6R抗体
の共存下、●は、シスプラチンと10μg/mlのIL−
6抗体またはIL−6R抗体の共存下における細胞傷害
活性(%)を示す。
濃度のシスプラチンとIL−6抗体(図5A)またはI
L−6R抗体(図5B)が共存したときの腎細胞癌株A
704に対する細胞傷害活性を示す。◆は、シスプラチ
ンのみ、■は、シスプラチンと0.1μg/mlのIL−
6抗体またはIL−6R抗体の共存下、▲は、シスプラ
チンと1μg/mlのIL−6抗体またはIL−6R抗体
の共存下、●は、シスプラチンと10μg/mlのIL−
6抗体またはIL−6R抗体の共存下における細胞傷害
活性(%)を示す。
濃度のシスプラチンとIL−6抗体(図6A)またはI
L−6R抗体(図6B)が共存したときの患者1から得
られた新鮮腎細胞癌に対する細胞傷害活性を示す。◆
は、シスプラチンのみ、■は、シスプラチンと0.1μ
g/mlのIL−6抗体またはIL−6R抗体の共存下、
▲は、シスプラチンと1μg/mlのIL−6抗体または
IL−6R抗体の共存下、●は、シスプラチンと10μ
g/mlのIL−6抗体またはIL−6R抗体の共存下に
おける細胞傷害活性(%)を示す。
濃度のシスプラチンとIL−6抗体(図7A)またはI
L−6R抗体(図7B)が共存したときの患者2から得
られた新鮮腎細胞癌に対する細胞傷害活性を示す。◆
は、シスプラチンのみ、■は、シスプラチンと0.1μ
g/mlのIL−6抗体またはIL−6R抗体の共存下、
▲は、シスプラチンと1μg/mlのIL−6抗体または
IL−6R抗体の共存下、●は、シスプラチンと10μ
g/mlのIL−6抗体またはIL−6R抗体の共存下に
おける細胞傷害活性(%)を示す。
濃度のシスプラチンとIL−6抗体(図8A)またはI
L−6R抗体(図8B)が共存したときの患者3から得
られた新鮮腎細胞癌に対する細胞傷害活性を示す。◆
は、シスプラチンのみ、■は、シスプラチンと0.1μ
g/mlのIL−6抗体またはIL−6R抗体の共存下、
▲は、シスプラチンと1μg/mlのIL−6抗体または
IL−6R抗体の共存下、●は、シスプラチンと10μ
g/mlのIL−6抗体またはIL−6R抗体の共存下に
おける細胞傷害活性(%)を示す。
濃度のカルボプラチンとIL−6抗体(図9A)または
IL−6R抗体(図9B)が共存したときの腎細胞癌株
Caki−1に対する細胞傷害活性を示す。◆は、カル
ボプラチンのみ、■は、カルボプラチンと0.1μg/
mlのIL−6抗体またはIL−6R抗体の共存下、▲
は、カルボプラチンと1μg/mlのIL−6抗体または
IL−6R抗体の共存下、●は、カルボプラチンと10
μg/mlのIL−6抗体またはIL−6R抗体の共存下
における細胞傷害活性(%)を示す。
μg/mlのシスプラチン、10μg/mlのIL−6抗体
またはIL−6R抗体で処理した腎細胞癌株Caki−
1においてGST−π mRNA発現を調べるためのG
ST−π cDNAプローブを用いたCaki−1の全
RNAのノザンブロットの結果を示す図である。レーン
1は、培養液のみ、レーン2はシスプラチン、レーン3
はIL−6抗体、レーン4はIL−6R抗体で処理して
いる。図10Bは、エチジウムブロマイド染色を施し
た、ノザンブロットに用いたゲルの図である。各レーン
にはRNAが存在することを示す。
Claims (11)
- 【請求項1】 インターロイキン6(IL−6)アンタ
ゴニストを含んでなる、抗腫瘍剤の作用増強剤。 - 【請求項2】 IL−6アンタゴニストがヒトIL−6
のアンタゴニストである請求項1の作用増強剤。 - 【請求項3】 IL−6アンタゴニストがモノクローナ
ル抗体である請求項1または2の作用増強剤。 - 【請求項4】 IL−6アンタゴニストがIL−6抗体
またはIL−6レセプター抗体である請求項3の作用増
強剤。 - 【請求項5】 IL−6アンタゴニストがPM−1抗体
である請求項4の作用増強剤。 - 【請求項6】 IL−6アンタゴニストがヒト型化PM
−1抗体である請求項5の作用増強剤。 - 【請求項7】 抗腫瘍剤が化学療法剤である請求項1な
いし6の作用増強剤。 - 【請求項8】 抗腫瘍剤が抗腫瘍作用を有する白金化合
物である請求項7の作用増強剤。 - 【請求項9】 抗腫瘍剤がマイトマイシンCである請求
項7の作用増強剤。 - 【請求項10】 抗腫瘍剤がシスプラチン、カルボプラ
チン、254−S、DWA−2114RまたはNK−1
21からなる群より選ばれる請求項8の作用増強剤。 - 【請求項11】 抗腫瘍作用が増強される腫瘍が、IL
−6レセプターを有し、IL−6を生理活性物質として
増殖および/または治療抵抗性を示す腫瘍である、請求
項1ないし10の作用増強剤。
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