JPH02306992A - 抗生物質rk―1061g及びrk―1061h並びにその製造法 - Google Patents
抗生物質rk―1061g及びrk―1061h並びにその製造法Info
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Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、新規抗生物質及びその製造法に関する。
本発明者は、新規抗生物質の探索を目的として多数の土
壌中から微生物を分離し、その産生ずる抗生物質を分離
探索し、ストレプトミセス属に属する微生物の培養液及
び培養菌体に文献未載の新規抗生物質RK−1061A
、 RK−1061B及びRK−1061Cが産生、蓄
積されることのQ新たな知見を得た(特開昭61−28
2088号公報参照)。本発明者は、上記微生物の産生
物につき更に研究を行った結果、上記RK−1061A
、RK−1061BSRK−106ICとは異なる新規
抗生物質を見出し、本発明を完成するに至った。
壌中から微生物を分離し、その産生ずる抗生物質を分離
探索し、ストレプトミセス属に属する微生物の培養液及
び培養菌体に文献未載の新規抗生物質RK−1061A
、 RK−1061B及びRK−1061Cが産生、蓄
積されることのQ新たな知見を得た(特開昭61−28
2088号公報参照)。本発明者は、上記微生物の産生
物につき更に研究を行った結果、上記RK−1061A
、RK−1061BSRK−106ICとは異なる新規
抗生物質を見出し、本発明を完成するに至った。
本発明の目的は、新規抗生物質及びその製造法を提供す
ることである。
ることである。
本発明の新規抗生物質は、ストレプトミセス属に属する
抗生物質RK−1061G及びRK−1061H生産菌
を培養し、その培養物から分離採取される、以下の構造
式と後述の理化学的性質及び生物学的性質を有する抗生
物質RK−1061GとRK−1061Hを包含する。
抗生物質RK−1061G及びRK−1061H生産菌
を培養し、その培養物から分離採取される、以下の構造
式と後述の理化学的性質及び生物学的性質を有する抗生
物質RK−1061GとRK−1061Hを包含する。
(発明の構成)
く使用する微生物〉
まず、本発明において用いる微生物は、抗生物質RK−
1061G及びRK−1061Hの生産能を有するもの
であり、ストレプトミセス属に属する菌種である。
1061G及びRK−1061Hの生産能を有するもの
であり、ストレプトミセス属に属する菌種である。
その−例として、ストレプトミセス・エスピー・RK
−1061(Streptomyces Sp、 R
K−1061(以下“RK−1061株”という)と呼
称される微生物は上記の特性を有し、本発明の抗生物質
RK−1061G及びRK−1061Hを有利に生産す
るものであり、本発明方法に有効に利用し得るものであ
る。
−1061(Streptomyces Sp、 R
K−1061(以下“RK−1061株”という)と呼
称される微生物は上記の特性を有し、本発明の抗生物質
RK−1061G及びRK−1061Hを有利に生産す
るものであり、本発明方法に有効に利用し得るものであ
る。
また、上記RK−1061株の自然的及び人工的変異株
は勿論、ストレプトミセス属に属する菌種で後述の抗生
物質RK−1061G及びRK−1061Hの生産能を
有する微生物はすべて本発明方法において使用すること
ができる。
は勿論、ストレプトミセス属に属する菌種で後述の抗生
物質RK−1061G及びRK−1061Hの生産能を
有する微生物はすべて本発明方法において使用すること
ができる。
上記RK−1061株は、本発明者により山梨県御坂町
で採取された土壌中より発見された土壌放線菌であり、
工業技術院微生物工業技術研究所に昭和60年5月29
日付寄託され、その微生物受託番号は、微工研菌寄第8
278号(FERM P −8278)である。
で採取された土壌中より発見された土壌放線菌であり、
工業技術院微生物工業技術研究所に昭和60年5月29
日付寄託され、その微生物受託番号は、微工研菌寄第8
278号(FERM P −8278)である。
RK−1061株は、次の菌学的性質を有する。
■、形 態
RK−1061株は山梨県御坂町で採取した土壌より分
離した放線菌で全細胞の塩酸加水分解物のペーパークロ
マトグラフではり、 L−ジアミノピメリン酸だけを
検出し、メソ−ジアミノピメリン酸は検出されない。各
種寒天培地上での生育試験では、試験した10種の全て
の培地上に発育するが、スターチ・イーストエキス寒天
培地上での発育は良好で気中菌糸と胞子の着生は豊富だ
が、これ以外の寒天培地上での気中菌糸と胞子の着生は
良好でない。11種の糖を炭素源とする利用試験に於て
は、本菌は全ての糖を利用し発育する。本菌の気中菌糸
は灰色系であり、裏面は淡褐色系であって特徴はない。
離した放線菌で全細胞の塩酸加水分解物のペーパークロ
マトグラフではり、 L−ジアミノピメリン酸だけを
検出し、メソ−ジアミノピメリン酸は検出されない。各
種寒天培地上での生育試験では、試験した10種の全て
の培地上に発育するが、スターチ・イーストエキス寒天
培地上での発育は良好で気中菌糸と胞子の着生は豊富だ
が、これ以外の寒天培地上での気中菌糸と胞子の着生は
良好でない。11種の糖を炭素源とする利用試験に於て
は、本菌は全ての糖を利用し発育する。本菌の気中菌糸
は灰色系であり、裏面は淡褐色系であって特徴はない。
脱脂牛乳中での発育では始めに凝固を起すが後にペプト
ン化し茶色の透明液を与える。澱粉を加水分解するが、
ゼラチンを液化しない。ペプトン・イーストエキス・鉄
寒天培地およびチロシン寒天培地上でメラニン色素の生
成が認められるが可溶性色素は淡褐色ないし灰色で特徴
ある色素の生成は認められない。電子顕微鏡の観察によ
ると気中菌糸は直状柔性であり、オートミール・硝酸塩
寒天培地およびポテトエキストラクト・イーストエキス
トラクト硝酸塩寒天培地上では3〜5回のらせん状菌糸
がみられ、前者培地では密ならせん状であるが後者では
オーブンスパイラルである。一方イーストエキス、モル
トエキス寒天培地上に発育したものではらせん菌糸は認
め難い。本菌の胞子は菌糸先端より多数連なって形成さ
れらせん菌糸部分は胞子化する。胞子表面は平滑である
がしわ状である。
ン化し茶色の透明液を与える。澱粉を加水分解するが、
ゼラチンを液化しない。ペプトン・イーストエキス・鉄
寒天培地およびチロシン寒天培地上でメラニン色素の生
成が認められるが可溶性色素は淡褐色ないし灰色で特徴
ある色素の生成は認められない。電子顕微鏡の観察によ
ると気中菌糸は直状柔性であり、オートミール・硝酸塩
寒天培地およびポテトエキストラクト・イーストエキス
トラクト硝酸塩寒天培地上では3〜5回のらせん状菌糸
がみられ、前者培地では密ならせん状であるが後者では
オーブンスパイラルである。一方イーストエキス、モル
トエキス寒天培地上に発育したものではらせん菌糸は認
め難い。本菌の胞子は菌糸先端より多数連なって形成さ
れらせん菌糸部分は胞子化する。胞子表面は平滑である
がしわ状である。
胞子の大きさは長さ0.5〜1.0マイクロメーター、
巾0.5〜0.7マイクロメーターである。スボランギ
アおよび運動性胞子は観察されなかった。
巾0.5〜0.7マイクロメーターである。スボランギ
アおよび運動性胞子は観察されなかった。
■、各種培地上における生育状態
(27℃ 3週間培養)
色調の記載はディスクリティブ・カラー・ネイムズ暖デ
ィクショナリー(Descriptive color
names dictionary)第4版の色名記号
による。
ィクショナリー(Descriptive color
names dictionary)第4版の色名記号
による。
■、シュクロース・硝酸塩寒天培地
穴 育:普通
気菌糸:なし
裏 面:2ba(バール)
可溶性色素:な し
2、グルコース・アスパラギン寒天培地穴 育:普
通 気菌糸:なし 裏 面:2ha(バール) 可溶性色素:な し 3、グリセロール・アスパラギン寒天培地穴 育:普
通 気菌糸:なし 裏 面:2ha(バール) 可溶性色素:な し 4、スターチ・無機塩寒天培地 発 育:普通 気菌糸;なし 裏 面:2ba(パール) 可溶性色素:な し 5、チロシン寒天培地 発 育:普通 気 菌 糸:少量b + 3 ni+ 4 ni(オイ
スターホワイト+コバードブラウン+チェストナツトブ
ラウン) 裏 面+3pn(ダークブラウン)可溶性色素=3
ρl(ディープブラウン)6、栄養寒天培地 発 育:不良 気菌糸:なし 裏 面:3ng(イエローメイブル)可溶性色素=
3n呂(イエローメイプル)7、イーストエキス・モル
トエキス寒天培地発 育:普通 気 菌 糸:豊富e(グレー) 裏 面:3pi(ゴールドブラウン)可溶性色S:
3pn(ダークブラウン)8、オートミール寒天培地 発 育:普通 気 菌 糸:普通5ge(ローズウッド)裏 面+
4ge(ローズベイシュ)可溶性色素:な し 9、ペプトン・イーストエキス・鉄寒天培地発 育:
不良 気菌糸:なし 裏 面:2ba(パール) 可溶性色素+5pn(ダークブラウン)10、スターチ
・イーストエキス寒天培地発 育:良好 気 菌 糸:豊富4ge+4j’i (ローズベイシ
ュ+ビーバー) 裏 面:4ge(ローズウッド:L)可溶性色素:
1ih(オリーブグレー)■、炭素源の資化性(ブリド
ハム・ボッ) IJ−ブ寒天培地) (27℃培養) 発育状況 1、 L−アラビノース ++2、 D−キ
シロース ++++3 D−グルコース
++4、 D−フルクトース + 5、 シュクロース + 6゜ イノシトール + 7、 L−ラムノース +8、 ラフィノ
ース + 9、 D−マンニトール + 10、 ラクトース +++ 11、 メリビオース +++:発育する ++:良く発育する +++:非常に良く発育する ■、その他の生理的性質(27℃培養)1、ゼラチンの
液化(グルコース・ペプトン・ゼラチン培地) 液化しない。
通 気菌糸:なし 裏 面:2ha(バール) 可溶性色素:な し 3、グリセロール・アスパラギン寒天培地穴 育:普
通 気菌糸:なし 裏 面:2ha(バール) 可溶性色素:な し 4、スターチ・無機塩寒天培地 発 育:普通 気菌糸;なし 裏 面:2ba(パール) 可溶性色素:な し 5、チロシン寒天培地 発 育:普通 気 菌 糸:少量b + 3 ni+ 4 ni(オイ
スターホワイト+コバードブラウン+チェストナツトブ
ラウン) 裏 面+3pn(ダークブラウン)可溶性色素=3
ρl(ディープブラウン)6、栄養寒天培地 発 育:不良 気菌糸:なし 裏 面:3ng(イエローメイブル)可溶性色素=
3n呂(イエローメイプル)7、イーストエキス・モル
トエキス寒天培地発 育:普通 気 菌 糸:豊富e(グレー) 裏 面:3pi(ゴールドブラウン)可溶性色S:
3pn(ダークブラウン)8、オートミール寒天培地 発 育:普通 気 菌 糸:普通5ge(ローズウッド)裏 面+
4ge(ローズベイシュ)可溶性色素:な し 9、ペプトン・イーストエキス・鉄寒天培地発 育:
不良 気菌糸:なし 裏 面:2ba(パール) 可溶性色素+5pn(ダークブラウン)10、スターチ
・イーストエキス寒天培地発 育:良好 気 菌 糸:豊富4ge+4j’i (ローズベイシ
ュ+ビーバー) 裏 面:4ge(ローズウッド:L)可溶性色素:
1ih(オリーブグレー)■、炭素源の資化性(ブリド
ハム・ボッ) IJ−ブ寒天培地) (27℃培養) 発育状況 1、 L−アラビノース ++2、 D−キ
シロース ++++3 D−グルコース
++4、 D−フルクトース + 5、 シュクロース + 6゜ イノシトール + 7、 L−ラムノース +8、 ラフィノ
ース + 9、 D−マンニトール + 10、 ラクトース +++ 11、 メリビオース +++:発育する ++:良く発育する +++:非常に良く発育する ■、その他の生理的性質(27℃培養)1、ゼラチンの
液化(グルコース・ペプトン・ゼラチン培地) 液化しない。
2、スターチの加水分解くスターチ・無機塩寒天培地)
加水分解する。
3、脱脂牛乳の凝固とペプトン化
凝固しペプトン化する。
4、メラニン様色素の形成
チロシン寒天培地、ペプトン・イースト鉄寒天培地上で
の色素の生成がある。
の色素の生成がある。
5、生育温度
20〜35℃
上記の諸性質を有するストレプトミセス属、すなわち、
灰色系でスパイラル菌糸を有し、メラニン様色素を生成
し、胞子平面が平滑であり、前記記載の糖を利用する種
をパージエイズ・マニュアJいオブ・ディタミネイティ
ブ・バクテリオロジー・第8版(Bergey’s M
annual of DeterminativeBa
cteriology、 8th edition (
1974))により調べた。その結果、本図は、ストレ
プトミセス・グリゼオスボレウス(Streptomy
ces griseosporeus)か、これに極め
て近縁の種と推定される。
灰色系でスパイラル菌糸を有し、メラニン様色素を生成
し、胞子平面が平滑であり、前記記載の糖を利用する種
をパージエイズ・マニュアJいオブ・ディタミネイティ
ブ・バクテリオロジー・第8版(Bergey’s M
annual of DeterminativeBa
cteriology、 8th edition (
1974))により調べた。その結果、本図は、ストレ
プトミセス・グリゼオスボレウス(Streptomy
ces griseosporeus)か、これに極め
て近縁の種と推定される。
(培養法及び精製法)
本発明の抗生物質RK−1061G及びRK−1061
Hを得るに当っては、ストレプトミセス属に属する上記
抗生物質生産菌を、抗生物質を生産する通常の方法で培
養することができる。培養の形態は、液体培養でも固体
培養でもよく、工業的に有利に培養するためには、前記
生産菌の胞子′!I3濁液又は培養液を培地に接種し、
通気撹拌培養を行えばよい。
Hを得るに当っては、ストレプトミセス属に属する上記
抗生物質生産菌を、抗生物質を生産する通常の方法で培
養することができる。培養の形態は、液体培養でも固体
培養でもよく、工業的に有利に培養するためには、前記
生産菌の胞子′!I3濁液又は培養液を培地に接種し、
通気撹拌培養を行えばよい。
培地の栄養源としては特に限定されることはなく、微生
物の培養に通常用いられる炭素源、窒素源その他を培地
中に含有させることができる。炭素源としては、澱粉、
デキストリン、グリセリン、グルコース、シュクロース
、ガラクトース、イノシトール、マンニトールなどが、
また窒素源としては、ペプトン、大豆粉、肉エキス、米
ぬか、麩、尿素、コーンステイープリカー、アンモニウ
ム塩、硝酸塩、その他の有機または無機の窒素化合物が
用いられる。その他、無機塩類、たとえば食塩、燐酸塩
類、カリウム、カルシウム、亜鉛、マンガン、鉄等の金
属塩類等を適宜に添加してもよく、必要に応じて消泡剤
として、動、植、鉱物油等を添加してもよい。培養温度
、培養時間等の培養条件は使用菌の発育に適し、しかも
RK−1061G及びRK−1061Hの生産が最高と
なるような条件が選ばれる。たとえば、培地のpt+は
4〜9、特に6〜7付近がよく、培養の適温は25−3
5℃程度がよい。しかし、これらの培養組成物、培地の
水素イオン濃度、培養温度、撹拌条件などの培養条件は
使用する菌株の種類や、外部の条件などに応じて好まし
い結果が得られるように適宜調節されるべきであること
はいうまでもない。このようにして得られる培養物から
、RK−1061G及びRK−1061Hを得るには、
代謝産物を採取するのに通常用いられる手段を適宜に利
用して採取し得る。たとえば、RK−1061G及びR
K−1061Hと不純物との溶解度差を利用する手段、
イオン結合力の差を利用する手段、吸着親和力の差を利
用する手段、分子量の差を利用する手段のいずれも、そ
れぞれ単独、又は、適宜組合わせて、あるいは反復して
使用される。具体的には、RK−1061G及びRK−
1061Hは、大部分が、その培養濾液に存在するが1
.菌体中に存在する活性区分は、含水アセトン抽出後ア
セトンを留去して得られる。これを、前記培養濾液と合
わせ、吸着クロマトグラフィー、シリカゲルクロマトグ
ラフィー、液体クロマトグラフィー、イオン交換クロマ
トグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー等を組合せ
て精製すると、RK−1061G及びRK−1061H
及びその他の活1$成分を含んだ複合体(RK−106
1m合体)を得る。吸着クロマトグラフィーの担体とし
ては、ダイヤイオンHP−10が、液体クロマトグラフ
ィーの担体としては、MCI GEL CHP−2
0Pが、イオン交換クロマトグラフィーの担体としては
、ダウエックス (Dowex) 50 W X 4が
、またゲル濾過クロマトグラフィーの担体としては、セ
ファデックスLH−20等が好適である。
物の培養に通常用いられる炭素源、窒素源その他を培地
中に含有させることができる。炭素源としては、澱粉、
デキストリン、グリセリン、グルコース、シュクロース
、ガラクトース、イノシトール、マンニトールなどが、
また窒素源としては、ペプトン、大豆粉、肉エキス、米
ぬか、麩、尿素、コーンステイープリカー、アンモニウ
ム塩、硝酸塩、その他の有機または無機の窒素化合物が
用いられる。その他、無機塩類、たとえば食塩、燐酸塩
類、カリウム、カルシウム、亜鉛、マンガン、鉄等の金
属塩類等を適宜に添加してもよく、必要に応じて消泡剤
として、動、植、鉱物油等を添加してもよい。培養温度
、培養時間等の培養条件は使用菌の発育に適し、しかも
RK−1061G及びRK−1061Hの生産が最高と
なるような条件が選ばれる。たとえば、培地のpt+は
4〜9、特に6〜7付近がよく、培養の適温は25−3
5℃程度がよい。しかし、これらの培養組成物、培地の
水素イオン濃度、培養温度、撹拌条件などの培養条件は
使用する菌株の種類や、外部の条件などに応じて好まし
い結果が得られるように適宜調節されるべきであること
はいうまでもない。このようにして得られる培養物から
、RK−1061G及びRK−1061Hを得るには、
代謝産物を採取するのに通常用いられる手段を適宜に利
用して採取し得る。たとえば、RK−1061G及びR
K−1061Hと不純物との溶解度差を利用する手段、
イオン結合力の差を利用する手段、吸着親和力の差を利
用する手段、分子量の差を利用する手段のいずれも、そ
れぞれ単独、又は、適宜組合わせて、あるいは反復して
使用される。具体的には、RK−1061G及びRK−
1061Hは、大部分が、その培養濾液に存在するが1
.菌体中に存在する活性区分は、含水アセトン抽出後ア
セトンを留去して得られる。これを、前記培養濾液と合
わせ、吸着クロマトグラフィー、シリカゲルクロマトグ
ラフィー、液体クロマトグラフィー、イオン交換クロマ
トグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー等を組合せ
て精製すると、RK−1061G及びRK−1061H
及びその他の活1$成分を含んだ複合体(RK−106
1m合体)を得る。吸着クロマトグラフィーの担体とし
ては、ダイヤイオンHP−10が、液体クロマトグラフ
ィーの担体としては、MCI GEL CHP−2
0Pが、イオン交換クロマトグラフィーの担体としては
、ダウエックス (Dowex) 50 W X 4が
、またゲル濾過クロマトグラフィーの担体としては、セ
ファデックスLH−20等が好適である。
得られたRK−1061複合体を、高速液体クロマトグ
ラフィーに付すと、多成分のピークに分れる。使用カラ
ムは、逆相分配型のものが有利である。
ラフィーに付すと、多成分のピークに分れる。使用カラ
ムは、逆相分配型のものが有利である。
得られたピークのうち、RK−1061G及びRK−1
061Hに相当するピークを、それぞれ分取し、濃縮、
凍結乾燥することにより、純粋なRK−1061G及び
RK−1061Hを、それぞれ得る。
061Hに相当するピークを、それぞれ分取し、濃縮、
凍結乾燥することにより、純粋なRK−1061G及び
RK−1061Hを、それぞれ得る。
[RK−1061G及びRK−1061Hの理化学的性
質、生物学的性質〕 (1)形 状:RK−1061G及びRK−1061H
のいずれも白色粉末である。
質、生物学的性質〕 (1)形 状:RK−1061G及びRK−1061H
のいずれも白色粉末である。
(2)融 点:RK−1061G及びRK−1061H
のいずれも190℃以上で分解する。
のいずれも190℃以上で分解する。
(3)分子量: FAB・マススペクトルによる。
RK−1061G:MH” 1036 (分子式C,,
H,、N、02,5)RK−1061)1:Mll”
1024 (分子式C,,H,、N、02.S)(4)
溶解性: (5)核磁気共鳴スペクトル: 400M)Iz、溶媒CD、00、標準TMSRK−1
0616:第1図のとおり。
H,、N、02,5)RK−1061)1:Mll”
1024 (分子式C,,H,、N、02.S)(4)
溶解性: (5)核磁気共鳴スペクトル: 400M)Iz、溶媒CD、00、標準TMSRK−1
0616:第1図のとおり。
RK−106111:第2図のとおり。
(6)Rf値(シリカゲル薄層クロマトグラフィー):
溶 媒 Rr値RK−1061
,6:ブタノールーメタノール 0.36水(4:1
:2) クロロホルム−メタノ−0,68 ル(1:3) 水飽和ブタノール 0.04 RK−10611(’: 同 上
同 上(7)呈色反応: RK−1061G及びRK−1061Hのいずれも過マ
ンガン酸カリウム溶液を脱色し、アニスアルデヒド−硫
酸試薬、アントロン試薬、ニンヒドリン試薬に陽性であ
る。
溶 媒 Rr値RK−1061
,6:ブタノールーメタノール 0.36水(4:1
:2) クロロホルム−メタノ−0,68 ル(1:3) 水飽和ブタノール 0.04 RK−10611(’: 同 上
同 上(7)呈色反応: RK−1061G及びRK−1061Hのいずれも過マ
ンガン酸カリウム溶液を脱色し、アニスアルデヒド−硫
酸試薬、アントロン試薬、ニンヒドリン試薬に陽性であ
る。
(8)塩基性、酸性、中性の区別:
RK−1061G及びRK−1061Hのいずれも濾紙
電気泳動法による区別では、両性物質である。
電気泳動法による区別では、両性物質である。
(9)ペプチドグリカン合成酵素阻害活性:大腸菌より
調製したペプチドグリカン合成酵素の粗酵素を用い基質
であるUDP−[U−14C〕−N−アセチルグリコサ
ミンのペプチドグリカン画分への取りこみを測定したと
ころ、ペプチドグリカン合成酵素阻害活性が認められた
。
調製したペプチドグリカン合成酵素の粗酵素を用い基質
であるUDP−[U−14C〕−N−アセチルグリコサ
ミンのペプチドグリカン画分への取りこみを測定したと
ころ、ペプチドグリカン合成酵素阻害活性が認められた
。
以上、本発明の抗生物質RK−1061G及びRK−1
061Hの理化学的性質及び生物学的性質を、既知の抗
生物質と比較し、新規物質であると結論した。
061Hの理化学的性質及び生物学的性質を、既知の抗
生物質と比較し、新規物質であると結論した。
本発明のRK−1061G及びRK−1061Hは、各
種細菌に対して類縁の既知物質 RK−1061Δ、R
K−10618と同等な抗菌活性を有することが期待で
き、ペプチドグリカン合成酵素阻害活性を有することか
ら、抗菌剤としての利用が期待される。
種細菌に対して類縁の既知物質 RK−1061Δ、R
K−10618と同等な抗菌活性を有することが期待で
き、ペプチドグリカン合成酵素阻害活性を有することか
ら、抗菌剤としての利用が期待される。
以下に、本発明を実施例によって説明する。
〈実施例〉
301容積のジャーファーメンタ−に入れたグルコース
2%、可溶性澱粉1%、肉エキス0.1%、酵母0.4
%、大豆粉2.5%、食塩0.2%、第二燐酸カリ0.
005%の組成よりなる培地18Ilに、あらかじめ同
一培地に、前記RK−1061株(微工研菌寄第827
8号)を接種して48〜72時間28℃で振盪培養した
培養液140dを接種して28℃で65〜70時間、p
Hが8.4を越えるまで通気撹拌培養を行う。このとき
の通気量は毎分1811撹拌回転数は350 rpmで
ある。
2%、可溶性澱粉1%、肉エキス0.1%、酵母0.4
%、大豆粉2.5%、食塩0.2%、第二燐酸カリ0.
005%の組成よりなる培地18Ilに、あらかじめ同
一培地に、前記RK−1061株(微工研菌寄第827
8号)を接種して48〜72時間28℃で振盪培養した
培養液140dを接種して28℃で65〜70時間、p
Hが8.4を越えるまで通気撹拌培養を行う。このとき
の通気量は毎分1811撹拌回転数は350 rpmで
ある。
培養終了後、培養液に濾過助剤セライトを加えて遠心濾
過し菌体と濾液とに分ける。菌体は80%アセトン15
flを用いて抽出し、これを減圧濃縮してアセトンを溜
去し2.51の水溶液を得る。
過し菌体と濾液とに分ける。菌体は80%アセトン15
flを用いて抽出し、これを減圧濃縮してアセトンを溜
去し2.51の水溶液を得る。
濾液75! (ジャーファーメンタ−6基分)を、HC
IでpH1,0に調整した後、先に得られた菌体抽出水
溶液と共にダイヤイオンHP−107Nの樹脂塔に通過
し、吸着させる。20βの水を用いて洗浄後、30%含
水メタノール201を用いて溶出を行なうと、不純物が
溶出される。次いで、50%含水アセトン401を用い
て溶出を行うと、活性部分が溶出される。これを減圧下
に濃縮し、濃縮液61を得る。これに3I!の丁1−ブ
タノールを加えてブタノール抽出を行なう。この換作を
3回繰り返し活性成分を含むブタノール1iopを得る
。ブタノール層を減圧濃縮し、凍結乾燥すると27.9
gのRK−1061複合体の粗粉末を得る。この粗粉
末をクロロホルム−メタノールの溶剤系を用いてシリカ
ゲルのカラム(6,OX 65crn)によりクロマト
グラフィーを行なう。活性はクロロホルム−メタノール
(1:2)より(1: 3)の溶出区分に現われる。活
性画分を減圧a縮し、凍結乾燥すると16.0 gの粗
粉末が得られる。
IでpH1,0に調整した後、先に得られた菌体抽出水
溶液と共にダイヤイオンHP−107Nの樹脂塔に通過
し、吸着させる。20βの水を用いて洗浄後、30%含
水メタノール201を用いて溶出を行なうと、不純物が
溶出される。次いで、50%含水アセトン401を用い
て溶出を行うと、活性部分が溶出される。これを減圧下
に濃縮し、濃縮液61を得る。これに3I!の丁1−ブ
タノールを加えてブタノール抽出を行なう。この換作を
3回繰り返し活性成分を含むブタノール1iopを得る
。ブタノール層を減圧濃縮し、凍結乾燥すると27.9
gのRK−1061複合体の粗粉末を得る。この粗粉
末をクロロホルム−メタノールの溶剤系を用いてシリカ
ゲルのカラム(6,OX 65crn)によりクロマト
グラフィーを行なう。活性はクロロホルム−メタノール
(1:2)より(1: 3)の溶出区分に現われる。活
性画分を減圧a縮し、凍結乾燥すると16.0 gの粗
粉末が得られる。
この粗粉末を少量の10%含水ア七トンに溶解し、予め
同一溶液で調製したMCl−ゲルのカラム(3,Ox
75cm)にチャージして、10%含水アセトンで十分
洗浄の後、50%含水アセトンにて活性成分を溶出する
。活性部分を集めて減圧濃縮し、凍結乾燥すると2.5
gの粗粉末が得られる。
同一溶液で調製したMCl−ゲルのカラム(3,Ox
75cm)にチャージして、10%含水アセトンで十分
洗浄の後、50%含水アセトンにて活性成分を溶出する
。活性部分を集めて減圧濃縮し、凍結乾燥すると2.5
gの粗粉末が得られる。
水に不溶の不純物を除くために、水に溶解後室温で28
00rpmlO分間の遠心を行なう。上清を減圧濃縮し
、凍結乾燥すると1.2 gの粗粉末が得られる。
00rpmlO分間の遠心を行なう。上清を減圧濃縮し
、凍結乾燥すると1.2 gの粗粉末が得られる。
この粗粉末を少量の0.1 Mピリジン−酢酸(pH4
,0)の緩衝液に溶解し、予め同一緩衝液で調製した陽
イオン交換樹脂Dowex50 Wx 4 (100
〜200ITIesh)カラム<3. Ox 80cm
)を通過させる。同一緩衝液にて素通りしてきた活性部
分を減圧濃縮し、凍結乾燥すると620mgの粗粉末が
得られる。
,0)の緩衝液に溶解し、予め同一緩衝液で調製した陽
イオン交換樹脂Dowex50 Wx 4 (100
〜200ITIesh)カラム<3. Ox 80cm
)を通過させる。同一緩衝液にて素通りしてきた活性部
分を減圧濃縮し、凍結乾燥すると620mgの粗粉末が
得られる。
さらに、これをセファデックスLH−20カラム(2,
2×72CI11)にかけ、30%含水メタノールにて
展開し、活性部分を減圧濃縮し、凍結乾燥することによ
りRK−106Bit合体粉末320nagを得る。
2×72CI11)にかけ、30%含水メタノールにて
展開し、活性部分を減圧濃縮し、凍結乾燥することによ
りRK−106Bit合体粉末320nagを得る。
このRK−1061複合体の精製は、逆相カラム(ヌク
レオジル5C18、φ8X250mm)を用いた高速液
体クロマトグラフィーを、アセトニトリル−0,1%ジ
エチルアミン・炭酸(34:66)の溶媒系で流速2d
/分にて行なうと公知のRK−1061Δ及びRK−1
061Bのピークを含む多成分のピークに分かれる(第
3図参照)。この溶媒系で、保持時間15分付近のピー
クを分取し、アセトニトリルを除去後、混在する塩を除
くために謹り返し凍結乾燥することによりRK−106
1Gの白色粉末2 mgが得られる。
レオジル5C18、φ8X250mm)を用いた高速液
体クロマトグラフィーを、アセトニトリル−0,1%ジ
エチルアミン・炭酸(34:66)の溶媒系で流速2d
/分にて行なうと公知のRK−1061Δ及びRK−1
061Bのピークを含む多成分のピークに分かれる(第
3図参照)。この溶媒系で、保持時間15分付近のピー
クを分取し、アセトニトリルを除去後、混在する塩を除
くために謹り返し凍結乾燥することによりRK−106
1Gの白色粉末2 mgが得られる。
同様の方法にて、保持時間16分付近のピークを分取す
ることにより、RK−1061H2ωgが得られる。
ることにより、RK−1061H2ωgが得られる。
第1図、第2図は、それぞれ、RK−10616%RK
−1061Hの核磁気共鳴スペクトルを示す図面であり
、第3図は、高速液体クロマトグラフィーによるRK−
1061G及びRK−1061Hのピークを示すクロマ
トグラムである。 第2図中、AはRK−1061A、BはRK−1061
B、Gl;!RK−1061GSHはRK−1061H
由来のピークを示す。 第3図 特許庁長官 吉 1)文 毅 殿 1.事件の表示 平成1年特許願第127079号
3、補正をする各 ・11件との関係 出願人 名称 (679)理化学研究所 4、代理人 (内容1こ叉史1ふシJ
−1061Hの核磁気共鳴スペクトルを示す図面であり
、第3図は、高速液体クロマトグラフィーによるRK−
1061G及びRK−1061Hのピークを示すクロマ
トグラムである。 第2図中、AはRK−1061A、BはRK−1061
B、Gl;!RK−1061GSHはRK−1061H
由来のピークを示す。 第3図 特許庁長官 吉 1)文 毅 殿 1.事件の表示 平成1年特許願第127079号
3、補正をする各 ・11件との関係 出願人 名称 (679)理化学研究所 4、代理人 (内容1こ叉史1ふシJ
Claims (3)
- (1)下記の式で表される抗生物質RK−1061G及
びRK−1061H。 ▲数式、化学式、表等があります▼ (G;R=C_1_3H_2_5 H;R=C_1_3H_2_5) - (2)ストレプトミセス(Streptomyces)
属に属する抗生物質RK−1061G及びRK−106
1H生産菌を培養し、その培養物から抗生物質RK−1
061G及びRK−1061Hをそれぞれ分離採取する
ことを特徴とする抗生物質RK−1061G及びRK−
1061Hの製造法。 - (3)抗生物質RK−1061G及びRK−1061H
生産菌がストレプトミセス・エスピー・RK−1061
(StreptomycesSp.RK−1061)で
ある請求項2記載の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1127079A JPH02306992A (ja) | 1989-05-20 | 1989-05-20 | 抗生物質rk―1061g及びrk―1061h並びにその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1127079A JPH02306992A (ja) | 1989-05-20 | 1989-05-20 | 抗生物質rk―1061g及びrk―1061h並びにその製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02306992A true JPH02306992A (ja) | 1990-12-20 |
JPH0547560B2 JPH0547560B2 (ja) | 1993-07-19 |
Family
ID=14951056
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1127079A Granted JPH02306992A (ja) | 1989-05-20 | 1989-05-20 | 抗生物質rk―1061g及びrk―1061h並びにその製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH02306992A (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2001012643A1 (fr) * | 1999-08-12 | 2001-02-22 | Zaidan Hojin Biseibutsu Kagaku Kenkyu Kai | Caprazamycines antibiotiques et leur procede de production |
WO2001085750A1 (fr) * | 2000-05-09 | 2001-11-15 | Aventis Pharma S.A. | Derives de l'uridine comme antibiotiques |
EP1001035A4 (en) * | 1996-04-26 | 2002-04-24 | Snow Brand Milk Products Co Ltd | NOVEL RK-1061 ANTIBIOTICS AND PROCESS FOR THEIR PREPARATION |
-
1989
- 1989-05-20 JP JP1127079A patent/JPH02306992A/ja active Granted
Cited By (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1001035A4 (en) * | 1996-04-26 | 2002-04-24 | Snow Brand Milk Products Co Ltd | NOVEL RK-1061 ANTIBIOTICS AND PROCESS FOR THEIR PREPARATION |
US6455694B1 (en) | 1996-04-26 | 2002-09-24 | Daiichi Pharmaceutical Co., Ltd. | Antibiotics RK-1061 and process for preparing the same |
US6844183B2 (en) | 1996-04-26 | 2005-01-18 | Daiichi Pharmaceutical Co., Ltd. | Antibiotics RK-1061 and process for preparing the same |
WO2001012643A1 (fr) * | 1999-08-12 | 2001-02-22 | Zaidan Hojin Biseibutsu Kagaku Kenkyu Kai | Caprazamycines antibiotiques et leur procede de production |
US6780616B1 (en) | 1999-08-12 | 2004-08-24 | Zaidan Hojin Biseibutsu Kagaku Kenkyu Kai Corp. | Antibiotic caprazamycins and process for producing the same |
WO2001085750A1 (fr) * | 2000-05-09 | 2001-11-15 | Aventis Pharma S.A. | Derives de l'uridine comme antibiotiques |
FR2808797A1 (fr) * | 2000-05-09 | 2001-11-16 | Hoechst Marion Roussel Inc | Nouveaux derives de l'uridine, leur procede de preparation et leur application comme medicaments |
JP2003532736A (ja) * | 2000-05-09 | 2003-11-05 | アベンティス ファルマ ソシエテ アノニム | 抗生物質としてのウリジン誘導体 |
US6875752B2 (en) | 2000-05-09 | 2005-04-05 | Aventis Pharma S.A. | Uridine derivatives as antibiotics |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0547560B2 (ja) | 1993-07-19 |
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