JP6901065B2 - Nsclcをはじめとする肺がんおよびその他のがんに対する免疫療法において使用するための新規ペプチドおよびペプチド組み合わせ - Google Patents
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Description
a)がん精巣抗原:T細胞によって認識され得る、これまでに同定された最初のTAAは、このクラスに属し、元々はがん精巣(CT)抗原と称されたが、それは、そのメンバーが組織学的に異なるヒト腫瘍において発現し、正常組織では、精巣の精母細胞/精原細胞のみに存在し、時として胎盤に存在するためであった。精巣の細胞は、クラスIおよびII HLA分子を発現しないので、これらの抗原は正常組織のT細胞によって認識され得ず、したがって免疫学的に腫瘍特異的と見なされる。CT抗原の周知の例は、MAGEファミリーメンバーおよびNY−ESO−1である。
b)分化抗原:これらのTAAは、腫瘍と、それから腫瘍が生じる正常組織との間で共有される。既知の分化抗原のほとんどは、メラノーマおよび正常メラノサイトに見られる。これらのメラノサイト系関連タンパク質の多くは、メラニン生合成に関与し、したがって腫瘍特異的でないが、それでもなおがん免疫療法のために広く利用されている。例としては、メラノーマに対するチロシナーゼとMelan−A/MART−1、または前立腺がんに対するPSAが挙げられるが、これに限定されるものではない。
c)過剰発現TAA:広範に発現されるTAAをエンコードする遺伝子は、組織学的に異なる型の腫瘍において検出され、多数の正常組織においても、概してより低い発現レベルで検出されている。正常組織によってプロセスされて潜在的に提示され得るエピトープの多くは、T細胞認識の閾値レベル未満であり得る一方で、腫瘍細胞におけるそれらの過剰発現は、先に確立された免疫寛容の破壊による抗がん応答を始動し得る。このクラスのTAAの顕著な例は、Her−2/neu、サバイビン、テロメラーゼまたはWT1である。
d)腫瘍特異的抗原:これらのユニークなTAAは、正常な遺伝子(β−カテニン、CDK4など)の変異から生じる。これらの分子変化のいくつかは、腫瘍性形質転換および/または進行と関連する。腫瘍特異的抗原は、通常、正常組織に対する自己免疫反応のリスクなしに、強力な免疫応答を誘導できる。他方、これらのTAAは、ほとんどの場合、その上でそれらが同定されたまさにその腫瘍のみと関係があり、通常は、多くの個々の腫瘍間で共有されない。腫瘍特異的(関連)イソ型があるタンパク質では、ペプチドの腫瘍特異性(または関連性)はまた、ペプチドが腫瘍(関連)エクソンに由来する場合に生じてもよい。
e)異常な翻訳後修飾から生じるTAA:このようなTAAは、腫瘍において特異的でなく過剰発現もされないタンパク質から生じてもよいが、それでもなお、腫瘍において主に活性である翻訳後プロセスによって、腫瘍関連になる。このクラスの例は、腫瘍にMUC1のような新規エピトープをもたらす改変グリコシル化パターン、または腫瘍特異的であってもなくてもよい分解中のタンパク質スプライシングのような事象から生じる。
f)オンコウイルスタンパク質:これらのTAAはウイルスタンパク質であり、それらは発がん過程において重要な役割を果たしてもよく、外来性である(ヒト由来でない)ため、それらはT細胞応答を誘起し得る。このようなタンパク質の例は、子宮頸がんにおいて発現されるヒト乳頭腫16型ウイルスタンパク質E6およびE7である。
したがって、本発明の別の態様は、好ましくは、肺がん(NSCLCをはじめとする)、脳がん、乳がん、結腸直腸がん、食道がん、腎臓がん、肝臓がん、卵巣がん、膵臓がん、立腺がん、胃がん、メラノーマ、メルケル細胞がん、白血病(AML、CLL)の群から選択される増殖性疾患併用療法のための本発明によるペプチドの使用に関する
遺伝子FZD2、FZD1、およびFZD7は、全て「frizzled」遺伝子ファミリーに由来し;この遺伝子ファミリーのメンバーは、Wntシグナル伝達タンパク質の受容体である、7回膜貫通領域タンパク質をコードする。FZD2遺伝子の発現は発生学的に制御されるようであり、胎児の腎臓および肺において、そして成人の結腸および卵巣において、高レベルで発現される(Sagara et al.,1998;Zhao et al.,1995)。FZD1タンパク質は、シグナルペプチド、N末端細胞外領域のシステイン富化ドメイン、7回膜貫通ドメイン、およびC末端PDZドメイン結合モチーフを含有する。FZD1転写物は、肺ならびに心臓、腎臓、膵臓、前立腺、および卵巣をはじめとする、様々な組織において発現される(Sagara et al.,1998)。frizzled 1および2受容体の発現は、乳がんにおいて上方制御されることが判明した(Milovanovic et al.,2004)。FZD7タンパク質は、N末端シグナル配列、Fzファミリーメンバーのシステイン富化細胞外ドメインの典型例である10個のシステイン残基、推定上の7回膜貫通ドメイン、およびPDZドメイン結合モチーフがある細胞内C末端テールを含有する。FZD7遺伝子発現は、低分化型ヒト食道がんにおいて、APC機能を下方制御し、βカテニン媒介シグナルを増強してもよい(Sagara et al.,1998;Tanaka et al.,1998)。
同一性百分率=100[1−(C/R)]
式中、Cは、参照配列と比較される配列との間のアライメント長にわたる、参照配列と比較配列の間の差異の数であり、
(i)比較配列中に対応する整列塩基またはアミノ酸を有しない、参照配列中の各塩基またはアミノ酸、および
(ii)参照配列中の各ギャップ、および
(iii)比較配列中の整列塩基またはアミノ酸と異なる、参照配列中の各整列塩基またはアミノ酸が差異を構成して、
(iiii)アライメントは、整合配列の1位から開始しなくてはならず;
Rは、比較配列とのアライメント長にわたる参照配列中の塩基またはアミノ酸の数であり、参照配列中に生じる任意のギャップもまた、塩基またはアミノ酸として数えられる。
(a)溶液中のまたは凍結乾燥形態の上述の医薬組成物を含有する容器;
(b)任意選択的に、凍結乾燥製剤のための希釈剤または再構成溶液を含有する第2の容器;および
(c)任意選択的に、(i)溶液の使用、または(ii)凍結乾燥製剤の再構成および/または使用のための取扱説明書
を含んでなるキットをさらに目的とする。
1.悪性物質からのHLAリガンドが、質量分析法によって同定された
2.ゲノム規模メッセンジャーリボ核酸(mRNA)発現解析を使用して、一連の正常器官および組織と比較して、悪性組織(肺がん)において過剰発現される遺伝子が同定された
3.同定されたHLAリガンドは、遺伝子発現データと比較された。好ましくは、ステップ2で検出されたような選択的に発現されまたは過剰発現される遺伝子によってコードされる、腫瘍組織上で過剰提示されまたは選択的に提示されるペプチドが、多重ペプチドワクチンのための適切なTUMAP候補と見なされた。
4.同定されたペプチドのTUMAPとしての妥当性を支持する追加的な証拠を同定するために、文献調査が実施された
5.mRNAレベルでの過剰発現の関連性は、ステップ3からの選択されたTUMAPの腫瘍組織上における再検出と、健常組織における検出の欠如(または希な)検出によって確認された。
6.選択されたペプチドによる生体内T細胞応答の誘導が可能かどうかを評価するために、健常ドナーならびに肺がん患者からのヒトT細胞を使用して、生体外免疫原性アッセイが実施された。
細胞表面に提示される腫瘍関連ペプチドの同定および定量化
組織サンプル
患者の腫瘍組織は、University Hospital of Heidelberg;University Hospital of Munichから得られた。正常(健常)組織は、Bio−Options Inc.,CA,USA;BioServe,Beltsville,MD,USA;Capital BioScience Inc.,Rockville,MD,USA;Geneticist Inc.,Glendale,CA,USA;University Hospital of Geneva;University Hospital of Heidelberg;Kyoto Prefectural University of Medicine(KPUM);Osaka City University(OCU);University Hospital Munich;ProteoGenex Inc.,Culver City,CA,USA;University Hospital of Tubingenから入手された。
衝撃凍結組織サンプルからのHLAペプチド貯留は、わずかに修正されたプロトコル(Falk et al.,1991;Seeger et al.,1999)に従って、HLA−A*02−特異的抗体BB7.2、HLA−A、−B、−C特異的抗体W6/32、CNBr活性化セファロース、酸処理、および限外濾過を使用して、免疫沈殿によって固形組織から得られた。
得られたHLAペプチド貯留は、逆相クロマトグラフィー(nanoAcquity UPL C system、Waters)によって、それらの疎水性に従って分離され、ESI源を装着したLTQ−velosおよびfusionハイブリッド質量分光計(ThermoElectron)内で溶出ペプチドが分析された。ペプチド貯留は、毎分400nLの流速を適用して、1.7μm C18逆相材料(Waters)で充填された、分析用融合シリカマイクロキャピラリーカラム(75μm内径×250mm)上に直接挿入された。引き続いて、毎分300nLの流速で10%から33%へのBの二段階180分間二成分勾配を用いて、ペプチドが分離された。勾配は、溶媒A(水中の0.1%ギ酸)および溶媒B(アセトニトリル中の0.1%ギ酸)から構成された。nanoESI源への導入には、金被覆ガラス毛管(PicoTip、New Objective)が使用された。LTQ−Orbitrap質量分光計は、TOP5ストラテジーを使用してデータ依存モードで操作された。手短に述べると、スキャンサイクルは、Orbitrap(R=30000)内の高質量精度の完全スキャンで開始され、これもまたOrbitrap(R=7500)内の5種の最も豊富な前駆イオンのMS/MSスキャンがそれに続き、以前選択されたイオンは動的に除外された。タンデム質量スペクトルは、SEQUESTおよび追加的な手動調節によって解釈された。同定されたペプチド配列は、生成された天然ペプチド断片化パターンと、配列が同一の合成参照ペプチドの断片化パターンとの比較によって確認された。
本発明のペプチドをコードする遺伝子発現プロファイリング
正常細胞と比較した腫瘍細胞上のペプチドの過剰提示または特異的提示は、免疫療法におけるその有用性にとって十分であり、いくつかのペプチドは、それらの起源タンパク質が正常組織にもまた存在するにもかかわらず、腫瘍特異的である。それでもなお、mRNA発現プロファイリングは、免疫療法のためのペプチド標的の選択において、安全性のレベルを高めることができる。特に、アフィニティ成熟TCRなどの高い安全性リスクがある治療の選択肢では、理想的な標的ペプチドは、腫瘍に特有で正常組織上には見られないタンパク質に由来する。
外科的に除去された組織標本は、告知に基づく同意書が各患者から入手された後に、上述の通り提供された(実施例1を参照されたい)。腫瘍組織標本は、手術直後にスナップ凍結され、その後、液体窒素下で乳鉢と乳棒を用いて均質化された。全RNAは、TRI試薬(Ambion,Darmstadt,Germany)を使用してこれらのサンプルから調製され、RNeasy(QIAGEN,Hilden,Germany)による精製がそれに続き;どちらの方法も製造業者のプロトコルに従って実施された。
全ての腫瘍および正常組織RNAサンプルの遺伝子発現解析は、Affymetrix Human Genome(HG)U133AまたはHG−U133 Plus 2.0オリゴヌクレオチドマイクロアレイ(Affymetrix,Santa Clara,CA,USA)によって実施された。全てのステップは、Affymetrixマニュアルに従って実施された。簡単に述べると、二本鎖cDNAは、マニュアルに記載されるようにして、SuperScript RTII(Invitrogen)およびオリゴdT−T7プライマー(MWG Biotech,Ebersberg,Germany)を使用して、5〜8μgの全RNAから合成された。生体外転写は、U133AアレイではBioArray High Yield RNA Transcript LabellingKit(ENZO Diagnostics,Inc.,Farmingdale,NY,USA)、U133 Plus 2.0アレイではGeneChip IVT Labelling Kit(Affymetrix)を用いて実施され、cRNA断片化、ハイブリダイゼーション、そしてストレプトアビジン−フィコエリトリンとビオチン化抗ストレプトアビジン抗体(Molecular Probes,Leiden,Netherlands)とを用いた染色がそれに続いた。画像は、Agilent 2500A GeneArray Scanner(U133A)またはAffymetrix Gene−Chip Scanner 3000(U133 Plus 2.0)でスキャンされ、全てのパラメータについてデフォルト設定を使用して、GCOSソフトウェア(Affymetrix)によってデータが解析された。正規化のために、Affymetrixによって提供される100個のハウスキーピング遺伝子が使用された。相対的発現値は、ソフトウェアによって与えられるシグナルlog比から計算され、正常な腎臓サンプルが自由裁量で1.0に設定された。肺がんにおいて高度に過剰発現されまたは排他的に発現される本発明の起源遺伝子の代表的発現プロファイルは、図2に示される。さらなる例示的遺伝子の発現スコアは、表17および表18に示される。
MHCクラスI提示ペプチドの生体外免疫原性
本発明のTUMAPの免疫原性に関する情報を得るために、本発明者らは、ペプチド/MHC複合体および抗CD28抗体を負荷した人工抗原提示細胞(aAPC)によるCD8+T細胞の反復刺激に基づく、生体外T細胞プライミングアッセイを用いて研究を実施した。このようにして、本発明者らは、これまでに本発明の84個のHLA−A*02拘束性TUMAPの免疫原性を示し得て、これらのペプチドが、それに対するCD8+前駆T細胞がヒトに存在する、T細胞エピトープであることを実証した(表19)。
ペプチドMHC複合体(pMHC)および抗CD28抗体を負荷した、人工抗原提示細胞による生体外刺激を実施するために、本発明者らは、最初に、告知に基づく同意後に、University clinics Mannheim,Germanyから得られた健常ドナーのCD8ミクロビーズ(Miltenyi Biotec,Bergisch−Gladbach,Germany)を使用した正の選択を通じて、新鮮HLA−A*02白血球除去生成物からCD8+T細胞を単離した。
HLAクラスIペプチドを試験するために、ペプチド特異的T細胞株の生成によって生体外免疫原性が実証され得る。本発明の3種のペプチドの、TUMAP特異的多量体染色後の例示的フローサイトメトリー結果は、対応する陰性対照と共に図3に示される。本発明からの84種のペプチドの結果は、表19に要約される。
ペプチドの合成
全てのペプチドは、Fmocストラテジーを使用する、標準的な十分に確立された固相ペプチド合成を使用して合成された。個々のペプチドのアイデンティティーおよび純度は、質量分析および分析用RP−HPLCによって判定された。ペプチドは、純度>85%の白色から灰白色の凍結乾燥物(トリフルオロ酢酸塩)として得られた。全てのTUMAPは、好ましくはトリフルオロ酢酸塩または酢酸塩として投与され、その他の薬学的に許容可能な塩形態もまた可能である。
MHC結合アッセイ
本発明によるT細胞ベースの治療法のための候補ペプチドは、それらのMHC結合能力(親和性)についてさらに試験された。個々のペプチド−MHC複合体は、UVリガンド交換によって生成され、UV感受性ペプチドはUV照射に際して切断されて、分析される目的ペプチドで交換された。ペプチド受容性MHC分子と効果的に結合して安定化し得るペプチド候補のみが、MHC複合体の分離を防止する。交換反応の収率を判定するために、安定化MHC複合体の軽鎖(β2m)の検出に基づくELISAが実施された。アッセイは、Rodenko et al(Rodenko et al.,2006)に一般的に記載されるようにして実施された。
細胞表面に提示される腫瘍関連ペプチドの絶対定量化
抗体および/またはTCRなどのバインダーの生成は、骨の折れる方法であり、いくつかの選択された標的のみに実施されてもよい。腫瘍関連および特異的ペプチドの場合、選択基準としては、提示の排他性および細胞表面に提示されるペプチドの密度が挙げられるが、これに限定されない。実施例1に記載されるペプチドの単離および相対定量化に加えて、本発明者らは、細胞あたりの絶対的ペプチドコピー数も分析された。固形腫瘍サンプルにおける細胞あたりのTUMAPコピーの定量化は、単離されたTUMAPの絶対定量化、TUMAP単離の効率、および分析される組織サンプルの細胞数を必要とする。実験手順が以下に記載される。
質量分析によるペプチドの正確な定量化のために、内標準法を使用して、各ペプチドの検量線が作成された。内標準は、各ペプチドの二重同位体標識変異体であり、すなわち、2つの同位体標識アミノ酸がTUMAP合成に含まれた。それは、腫瘍関連ペプチドとはその質量のみが異なるが、他の物理化学的性質に差異を示さない(Anderson et al.,2012)。内標準が各MSサンプルに添加され、全てのMSシグナルは内標準のMSシグナルに対して正規化されて、MS実験間の可能な技術的変動が平準化された。検量線は、少なくとも3つの異なるマトリックス中で、すなわち、日常的MSサンプルと類似した天然サンプルからのHLAペプチド溶出液中で作成され、各調製物は二連のMS試験で測定された。評価のためには、MSシグナルが内標準のシグナルに対して正規化され、検量線がロジスティック回帰によって算出された。組織サンプルからの腫瘍関連ペプチドの定量化のためには、それぞれのサンプルにも内標準が添加され、MSシグナルが、内標準に対して正規化され、ペプチド検量線を使用して定量化された。
あらゆるタンパク質精製処理と同様に、組織サンプルからのタンパク質の単離には、目的タンパク質のいくらかの損失が伴う。TUMAP単離の効率を判定するために、絶対定量化のために選択された全てのTUMAPについて、ペプチド/MHC複合体が生成された。添加されたものを天然ペプチド/MHC複合体から識別できるように、TUMAPの単一同位体標識バージョンが使用され、すなわち、1つの同位体標識アミノ酸がTUMAP合成に含まれた。これらの複合体は、新鮮に調製された組織溶解産物に、すなわち、TUMAP単離手順の可能な限り早い時点で添加され、次に、以下の親和性精製において、天然ペプチド/MHC複合体のように捕捉された。したがって単一標識TUMAPの回収率を測定することで、個々の天然TUMAPの単離効率に関する結論が可能になる。単離効率は、少数のサンプルで分析され、これらの組織サンプル間で同等であった。対照的に、単離効率は、個々のペプチド間で異なる。これは、単離効率が、限定数の組織サンプルにおいてのみ判定されるが、任意のその他の組織標本に外挿されてもよいことを提案する。しかしながら、単離効率がペプチドからその他のペプチドに外挿されないこともあるので、各TUMAPは個別に分析する必要がある。
絶対ペプチド定量化に供した組織サンプルの細胞数を測定するために、本発明者らは、DNA含量分析を適用した。この方法は、異なる起点の幅広いサンプルに、最も重要なことには、冷凍サンプルに適用できる(Forsey and Chaudhuri,2009;Alcoser et al.,2011;Silva et al.,2013)。ペプチド単離プロトコル中に、組織サンプルは均質溶解産物に処理され、それから小さな溶解産物アリコートが取り出される。アリコートは3つに分割され、それからDNAが単離される(QiaAmp DNA Mini Kit,Qiagen,Hilden,Germany)。各DNA単離からの全DNA含有量は、蛍光ベースのDNA定量化アッセイ(Qubit dsDNA HS Assay Kit,Life Technologies,Darmstadt,Germany)を使用して、少なくとも2つの反復試験で定量化される。細胞数を計算するために、DNA標準曲線が、一連の定義された細胞数がある単一健常血液細胞のアリコートから作成された。標準曲線を利用して、全細胞含有量が、各DNA単離物からの全DNA含有量から計算される。ペプチド単離のために使用された組織サンプルの平均総細胞数は、既知の溶解産物アリコートの容量および全溶解産物容量を考慮して外挿される。
前述の実験のデータを用いて、本発明者らは、サンプルの全ペプチド量を総細胞数で除算して、それに続いて単離効率により除算することで、細胞あたりのTUMAPコピー数を算出した。選択されたペプチドの細胞コピー数は、表22に示される。
HLAクラスII T細胞増殖アッセイ
以下の実験は、選択されたMHCクラスII TUMAPのT細胞増殖アッセイの結果を要約する。試験された10個のペプチド抗原の内、9個が免疫原性について陽性と判定された。21個の評価可能なT細胞サンプルの内、11個が少なくとも1つのペプチドについて陽性応答を示した。個々のペプチド抗原は、最大6人のドナーのCD4+TT細胞増殖を刺激した。これらの数値は、同一アッセイの実行中に試験された5つの参照ペプチドの結果と同等であり、臨床ワクチンの試験設定において、大部分の患者について免疫原性が実証された。したがって、新たに試験されたペプチドは、ワクチン試験においてもまたT細胞応答を誘発する可能性が高いと結論付け得る。
健常ヒトドナーからの末梢血単核細胞(PBMC)サンプルが、HLA−DRB1対立遺伝子発現に基づいて、ProImmune細胞バンクから選択された。偽陽性応答を回避するために、使用前に、ドナー血液サンプルからCD8+T細胞を枯渇させた。残りのCD4+T細胞はCFSEで標識されて、引き続いて5μMの各選択されたペプチドと共に培養された。各ペプチドは、6つの複製ウェルで試験された。背景は、6つの非刺激対照ウェル内の各プレート上で測定された。
ドナーは、HLA−DRB1対立遺伝子発現によって選択された。その他の2つのHLAクラスII遺伝子座(DQおよびDP)は、分析に含まれていなかった。興味深いDRB1対立遺伝子は、SYFPEITHIアルゴリズム(Rammensee et al.,1999)に基づいて予測されたペプチド結合の頻度に従って選択された。HLA−DRでは、結合は、18以上のSYFPEITHI結合予測スコアによって定義された。結合についてのこの閾値スコアは、公知の公表された乱交雑HLA−DRリガンドの結合スコアの分析に基づいて定義された(表24)。
CD4+T細胞の抗原刺激増殖は、生体外免疫原性の指標と考えられ、ProImmuneから市販されるT細胞増殖アッセイで調べられた。抗原刺激されたCD4+T細胞増殖殖の程度が、背景を上回る刺激の百分率として表された。SEM=2(すなわち、背景より2標準誤差高い値)で背景を上回る0.02%刺激を超える応答は、陽性であると考えられた。
T細胞増殖分析は、陽性対照として既知の生体内免疫原がある5つのペプチドを含んだ。これらのペプチドの生体内免疫原性は、CD4T細胞の細胞内サイトカイン染色(ICS)を用いた臨床試験において、これらのペプチドでワクチン接種された患者の血液サンプルにおいて測定された。
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Claims (23)
- 配列番号30(KYLEKYYNL)に示されるアミノ酸配列からなるペプチド。
- MHCクラスIに結合する能力を有し、前記MHCに結合すると、CD8+T細胞によって認識されることができる、請求項1に記載のペプチド。
- 請求項1または2に記載のペプチドが、さらに非ペプチド結合を含む、ペプチド。
- HLA−DR抗原関連不変鎖(Ii)の80個のN末端アミノ酸及び、請求項1〜3のいずれか一項に記載のペプチドを含んでなる融合タンパク質。
- 請求項1〜3のいずれか一項に記載のペプチド、もしくは請求項4に記載の融合タンパク質をエンコードする核酸、または請求項1〜3のいずれか一項に記載のペプチド、もしくは請求項4に記載の融合タンパク質をエンコードする核酸であって、異種プロモーター配列と結合する、核酸。
- 請求項5に記載の核酸を発現する、発現ベクター。
- 請求項1〜3のいずれか一項に記載のペプチド、請求項4に記載の融合タンパク質、請求項5に記載の核酸または請求項6に記載の発現ベクターを含んでなる組換え宿主細胞、または前記組換え宿主細胞が樹状細胞または抗原提示細胞である、組換え宿主細胞。
- 医療において使用するための請求項1〜3のいずれか一項に記載のペプチド、請求項4に記載の融合タンパク質、請求項5に記載の核酸、請求項6に記載の発現ベクター、または請求項7に記載の宿主細胞。
- 請求項1〜3のいずれか一項に記載のペプチド、または請求項4に記載の融合タンパク質を提示する、または請求項5に記載の核酸を発現する、または請求項6に記載の発現ベクターを有する、請求項7に記載の宿主細胞を培養するステップと、前記ペプチドまたは前記融合タンパク質を前記宿主細胞またはその培養液から単離するステップとを含んでなる、請求項1〜3のいずれか一項に記載のペプチド、または請求項4に記載の融合タンパク質を製造する方法。
- T細胞を適切な抗原提示細胞の表面に、または抗原提示細胞を模倣する人工コンストラクトの表面に発現される抗原負荷ヒトクラスI MHC分子に、前記T細胞を抗原特異的様式で活性化するのに十分な時間にわたり、生体外で接触させるステップを含んでなり、前記抗原が、請求項1〜3のいずれか一項に記載のペプチド、または請求項4に記載の融合タンパク質である、活性化Tリンパ球を製造するインビトロ法。
- 請求項1〜3のいずれか一項に記載のペプチド、または請求項4に記載の融合タンパク質を提示する細胞を選択的に認識する、請求項10に記載の方法によって製造される活性化Tリンパ球。
- 請求項11に記載の活性化Tリンパ球を含んでなる薬剤であって、請求項1〜3のいずれか一項に記載のペプチド、または請求項4に記載の融合タンパク質を提示する標的細胞を死滅させるための薬剤。
- 請求項1〜3のいずれか一項に記載のペプチド、請求項4に記載の融合タンパク質、請求項5に記載の核酸、請求項6に記載の発現ベクター、請求項7に記載の細胞、または請求項11に記載の活性化Tリンパ球を含む、がんを治療するための薬剤。
- がんが、配列番号30に示されるアミノ酸配列からなるペプチドに由来するタンパク質の過剰発現を示す、肺がん、脳がん、乳がん、結腸直腸がん、食道がん、腎がん、肝臓がん、卵巣がん、膵臓がん、前立腺がん、胃がん、メラノーマ、メルケル細胞がん、白血病(AML、CLL)、およびその他の腫瘍の群から選択される、請求項13に記載の薬剤。
- (a)請求項1〜3のいずれか一項に記載のペプチド、請求項4に記載の融合タンパク質、請求項5に記載の核酸、請求項6に記載の発現ベクター、請求項7に記載の細胞、または請求項11に記載の活性化Tリンパ球を含有する医薬組成物を溶液、または凍結乾燥形態で含んでなる容器、及び以下(b)〜(d)から選択される1つ以上の要素を含んでなるキット、もしくは、以下(b)〜(d)を含まないキット;
(b)前記凍結乾燥製剤のための希釈剤または再構成溶液を含有する第2の容器;
(c)配列番号1〜配列番号29、配列番号31〜配列番号162に示されるアミノ酸配列からなる群から選択される少なくとももう1つのペプチド;および
(d)(i)前記溶液の使用、または(ii)前記凍結乾燥製剤の再構成および/または使用のための取扱説明書。 - (iii)緩衝液、(iv)希釈剤、(V)フィルター、(vi)針、または(V)シリンジの1つまたは複数をさらに含んでなる、請求項15に記載のキット。
- HLAリガンドと反応性であるT細胞受容体、またはHLAリガンドと反応性である可溶性または膜結合T細胞受容体であって、前記リガンドが配列番号30に示されるアミノ酸配列からなる、T細胞受容体。
- 前記T細胞受容体が可溶性分子として提供される、または前記T細胞受容体が可溶性分子として提供され、免疫刺激ドメインまたは毒素を含むさらなるエフェクター機能を保有する、請求項17に記載のT細胞受容体。
- 請求項17または18に記載のT細胞受容体をエンコードする核酸、または請求項17または18に記載のT細胞受容体をエンコードする核酸であって、異種プロモーター配列と結合する、核酸。
- 請求項19に記載の核酸を発現する能力がある、発現ベクター。
- 請求項19に記載の核酸、または請求項20に記載の発現ベクターを含んでなる宿主細胞、または前記宿主細胞がT細胞またはNK細胞である、宿主細胞。
- 請求項21に記載の宿主細胞を培養するステップと、前記T細胞受容体を前記宿主細胞および/またはその培養液から単離するステップとを含んでなる、請求項17または18に記載のT細胞受容体を製造する方法。
- 請求項1〜3のいずれか一項に記載のペプチド、請求項4に記載の融合タンパク質、請求項17または18に記載のT細胞受容体、請求項7に記載の宿主細胞、または請求項11に記載の活性化Tリンパ球からなる群から選択される、少なくとも1つの活性成分と、薬学的に許容できる担体、薬学的に許容可能な賦形剤および/または安定剤とを含んでなる医薬組成物。
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