JP2014028316A - 生体硬組織接着用キット - Google Patents

Abstract

【課題】硬化した硬化物の強度が十分高く、かつ、骨、歯質、金属、セラミックスに対し高い接着性を示すと同時に、生体親和性及び生体吸収性に優れ、さらには、生物活性を有する薬剤を含有する場合には該薬剤の放出性に優れる、生体硬組織用接着組成物を提供することができる生体硬組織接着用キットを提供すること。
【解決手段】リン酸化多糖、リン酸塩以外の多価金属塩、及び溶媒を含有し、さらに、必要により、リン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩を含有してなる、生体硬組織接着用キット。
【選択図】なし

Description

本発明は、生体硬組織接着用キットに関する。さらに詳しくは、生体親和性が優れると同時に、硬化した硬化物の強度が十分高く、さらに骨、歯質、金属、セラミックスに対し高い接着性を示すことから、例えば、骨セメント、歯科用セメント等として有用な生体硬組織用接着組成物を提供することができるキットに関する。

リン酸カルシウム組成物を焼結して得られるヒドロキシアパタイト〔Ｃａ_１０（ＰＯ_４）_６（ＯＨ）_２〕は、骨や歯等の無機成分に近い組成を有し、骨と直接結合可能な生体活性を有していることから、骨欠損部や骨空隙部の修復用材料として利用されている。しかし、このようなヒドロキシアパタイトからなる材料は、生体親和性は優れているが、複雑な形態を有する部位に応用するには、成形性という点で困難な場合がある。

一方、リン酸カルシウム組成物の中でもセメントタイプ、即ち硬化性を有するリン酸カルシウム組成物は、生体内や口腔内においてヒドロキシアパタイトへ徐々に転化し、さらに形態を保ったまま生体硬組織と一体化し得ることが知られている。このようなリン酸カルシウム組成物は、生体親和性が優れているだけではなく、成形性を有することから複雑な形態を有する部位への応用が容易であるとされている。

例えば、特許文献１には、リン酸四カルシウムと無水リン酸二カルシウムの混合物が、水の存在下で速やかに自己硬化して機械的強度に優れたヒドロキシアパタイトを生成することが記載されている。

特許第３０１７５３６号

しかしながら、従来のリン酸カルシウム組成物は、硬化後の機械的強度が十分ではない、接着性が低いため治療部位の固定（骨と骨、あるいは骨と固定用スクリューの固定）において保持力が十分ではない等、臨床現場でさまざまな問題が発生していた。これらの点を鑑み、生体親和性が優れると同時に、硬化した硬化物の強度が十分高く、さらに骨、歯質、金属、セラミックスに対し高い接着性を示す材料が望まれている。

また、骨欠損部や骨空隙部の修復用材料は、骨と置換して骨形成がなされることから、該修復用材料は生体吸収性を有することが望ましいが、従来の技術により得られるヒドロキシアパタイトは吸収性が低いことから、この点でも改良が望まれている。

本発明の課題は、硬化した硬化物の強度が十分高く、かつ、骨、歯質、金属、セラミックスに対し高い接着性を示すと同時に、生体親和性及び生体吸収性に優れ、さらには、生物活性を有する薬剤を含有する場合には該薬剤の放出性に優れる、生体硬組織用接着組成物を提供することができる生体硬組織接着用キットを提供することにある。

そこで、本発明者らは、前記課題を解決する為に検討を重ねた結果、リン酸化多糖とカルシウム塩を含有する水溶液から得られる組成物が硬化した硬化物の強度が十分高く、かつ、骨、歯質、金属、セラミックスに対し高い接着性を示すと同時に、生体親和性及び生体吸収性に優れ、さらには、生物活性を有する薬剤を含有する場合には該薬剤の放出性に優れることを見出し、本発明を完成するに至った。

即ち、本発明は、リン酸化多糖、リン酸塩以外の多価金属塩、及び溶媒を含有してなる、生体硬組織接着用キットに関する。

本発明の生体硬組織接着用キットは、硬化した硬化物の強度が十分高く、かつ、骨、歯質、金属、セラミックスに対し高い接着性を示すと同時に、生体親和性及び生体吸収性に優れ、さらには、生物活性を有する薬剤を含有する場合には該薬剤の徐放性に優れる生体硬組織用接着組成物を提供することができるという優れた効果を奏する。従って、本発明の生体硬組織接着用キットより提供される生体硬組織用接着組成物は、例えば、骨用セメント、歯科用セメント等の医療用材料に適している。また、生体吸収性に優れることから、整形外科領域における人工関節の固定材、脊椎骨折の固定材、四肢骨折の固定材、骨腫瘍への充填材、歯科領域における齲蝕欠損部位の充填修復材、インレー・クラウン等の補綴修復物の合着材、覆髄・ライニング材、インプラント表面処理材、歯周病治療材、知覚過敏防止材、歯髄被覆材、ＤＤＳ用基材、組織工学用基材、組織接着材としても有用である。

図１は、実施例１、比較例１、及び参考例１〜２の組成物の剪断接着強さの結果を示す図である。 図２は、実施例１の剪断接着強さ測定時における、剪断断面を示す図である。左がヒドロキシアパタイト製プレート、右がヒドロキシアパタイト製円柱棒である。 図３は、実施例１及び参考例１〜２の組成物の剪断接着強さについて、有意差検定を行なった結果を示す図である。 図４は、上顎第一臼歯のＨＥ染色光顕切片を示す図である。左が実施例１の組成物で覆罩した群、右が参考例３の組成物で覆罩した群の代表的な切片であり、各図における矢印は組成物が覆罩された箇所を示す。 図５は、上顎第一臼歯のＨＥ染色光顕切片を示す図である。左が実施例１の組成物で覆罩、充填した群の代表的な切片、右が左図中の枠に囲まれた領域の拡大図を示す。 図６は、上顎第一臼歯の窩洞部充填２ヶ月後の表面写真を示す図である。左が実施例１の組成物で覆罩、充填した群の代表的な写真、右が実施例１の組成物で覆罩後に市販レジンで充填した群の代表的な写真であり、各図における矢印（黒塗）は組成物の残存箇所、矢印（縞模様）は市販レジンの残存箇所を示す。 図７は、実施例１の組成物を注入した大腿骨のＨＥ染色光顕切片を示す図である。左が注入２週後、右が注入８週後の切片であり、左図における矢印は組成物が注入された箇所を示す。 図８は、実施例２の組成物を注入した大腿骨のＨＥ染色光顕切片を示す図である。（Ａ）が注入２週後の切片、（Ｂ）が注入５週後の切片、（Ｃ）が（Ｂ）の拡大図、（Ｄ）が注入８週後の切片を示す。 図９は、実施例３の組成物を注入した大腿骨のＨＥ染色光顕切片を示す図である。左が注入８週後の切片、右が左図中の枠に囲まれた領域の拡大図を示す。 図１０は、実施例１の組成物を用いた抗癌剤による腫瘍組織の増殖抑制を示す図である。 図１１は、リン酸化プルラン含有組成物を注入した骨粗鬆モデルマウスの大腿骨のＨＥ染色光顕切片を示す図である。（Ａ）が無治療群の切片（４週）、（Ｂ）がＤＣＰＤ群の切片（８週）、（Ｃ）が（Ｂ）中の枠に囲まれた領域の拡大図、（Ｄ）がＢＭＰ群の切片（４週）を示す。図中における矢印は骨化が認められる箇所を示す。 図１２は、リン酸化プルラン含有組成物を注入した骨粗鬆モデルマウスの大腿骨のμＣＴ画像を示す図である。（Ａ）が無治療群の画像（４週）、（Ｂ）がＤＣＰＤ群の画像（４週）、（Ｃ）がＢＭＰ群の画像（４週）、（Ｄ）がＢＭＰ群の画像（８週）を示す。 図１３は、リン酸化プルラン含有組成物を注入した骨肉腫モデルマウスの大腿骨のＨＥ染色光顕切片を示す図である。（Ａ）が注入３日後の切片、（Ｂ）が左図中の枠に囲まれた領域の拡大図であり、各図における矢印（白抜き）は組成物の残存箇所、矢印（黒塗）は腫瘍細胞の残存箇所、矢印（縞模様）は腫瘍細胞の壊死箇所を示す。 図１４は、製造例２で合成したリン酸化プルランを用いた硬化物（ＰＰ２）、ポリメチルメタクリレートセメント硬化物（ＰＭＭＡ）からのバンコマイシン（ＶＣＭ）の溶出挙動を示す図である。 図１５は、リン酸化プルラン硬化物（ＰＰ）、ポリメチルメタクリレートセメント硬化物（ＰＭＭＡ）からのメトトレキサート（ＭＴＸ）溶出挙動を示す図である。ＰＰ２は、製造例２で合成したリン酸化プルランを用いた硬化物、ＰＰ３は、製造例３で合成したリン酸化プルランを用いた硬化物である。

本発明の生体硬組織接着用キットは、骨や歯等に多く含有されるアパタイトに近い組成として、リン酸カルシウムそのものを含有するのではなく、リン酸化多糖とリン酸塩以外の多価金属塩とを含有することに大きな特徴を有する。なお、本明細書において、生体硬組織とは、骨、歯、それらを含む組織等の生体組織を意味する。

従来の接着組成物には、ＰＭＭＡ（ポリメチルメタクリレート）やＭＭＡ（メチルメタクリレート）等の重合性単量体を重合させることにより接着性を発揮するものがある。しかしながら、重合物と骨等との結合性が低いためルーズニングが生じたり、重合時の発熱や未反応の単量体等が生体へ悪影響を及ぼしたりする等の問題がある。また、リン酸カルシウムを含有する組成物もあるが、接着強度、生産性の面で未だ十分ではない。そこで、本発明者らが検討した結果、驚くべきことに、リン酸化多糖とリン酸塩以外の多価金属塩とを組み合わせたところ、高い反応性で硬化が進行し、得られた硬化物は骨や金属への接着性に優れ、強度も高いものであることが判明した。また、骨等に適用した場合に、その吸収性が高く、良好に骨に置換されていることも判明した。このような現象についての詳細な理由は不明であるが、リン酸化多糖と多価金属イオンとのイオン架橋により架橋や硬化反応が速やかに進むこと、更に得られた硬化物（ゲル）のマトリックスとなる多糖類にリン酸基が含有されることが高い接着性を発現すると推察される。

本発明の生体硬組織接着用キットは、リン酸化多糖（Ａ）、多価金属塩（Ｂ）、及び溶媒（Ｃ）を含有する。

リン酸化多糖は、生体組織に対して低刺激であり親和性が高く、生体吸収性を示す。また、リン酸化多糖は、リン酸基が生体硬組織の構成無機成分であるアパタイトを溶解して、アパタイトの構成元素であるカルシウムの一部をイオンとして放出させる。そして、その溶解放出されたカルシウムイオンやアパタイト表面に残存するカルシウム原子に対して、リン酸化多糖のリン酸基がキレート結合することで本発明の組成物が骨や歯に吸着し、かつ、リン酸化多糖と多価金属塩との硬化反応が進行して接着が行われる。さらには、生体硬組織の補綴材料である金属、セラミックスに対しても、リン酸化多糖のリン酸基がキレート結合することで吸着性を示す。従って、リン酸化多糖は、生体親和性の高い生体硬組織用接着組成物の接着成分として使用される。

本発明におけるリン酸化多糖としては、例えば、ラクトース、スクロース、スクラロース、セロビオース、トレハロース、マルトース、パラチノース（登録商標）、マルトトリオース、マルトデキストリン、シクロデキストリン、グリコシルスクロース、アミロース、アミロペクチン、シクロアミロース、グリコーゲン、セルロース、アガロース、クラスターデキストリン、マンナン、プルラン等の多糖類の一部もしくは全部の水酸基がリン酸化されたものが挙げられる。

より具体的には、リン酸化ラクトース、リン酸化スクロース、リン酸化スクラロース、リン酸化セロビオース、リン酸化トレハロース、リン酸化マルトース、リン酸化パラチノース（登録商標）、リン酸化マルトトリオース、リン酸化マルトデキストリン、リン酸化シクロデキストリン、リン酸化グリコシルスクロース、リン酸化アミロース、リン酸化アミロペクチン、リン酸化シクロアミロース、リン酸化グリコーゲン、リン酸化セルロース、リン酸化アガロース、リン酸化クラスターデキストリン、リン酸化マンナン、リン酸化プルラン等が挙げられ、これらは、単独で又は２種以上組み合わせて用いることができる。なかでも、生体硬組織との接着性、硬化物強度及び製造コスト等の観点から、リン酸化マルトデキストリン、リン酸化シクロデキストリン、リン酸化グリコシルスクロース、リン酸化アミロース、リン酸化アミロペクチン、リン酸化シクロアミロース、リン酸化グリコーゲン、リン酸化セルロース、リン酸化アガロース、リン酸化クラスターデキストリン、リン酸化マンナン、及びリン酸化プルランからなる群より選択される１種以上が好ましく、多糖自体及びその構成単位であるオリゴ糖、単糖の生体安全性の観点、ならびに、口腔内でのアミラーゼ等による代謝を受けにくく細菌の栄養になり難いという観点から、リン酸化プルランがより好ましい。

リン酸化多糖は、前記多糖類の水酸基をリン酸化する公知の方法により製造することができる。例えば、Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ 第３０２巻（１９９７年）２７〜３４ページに記載のメタリン酸ナトリウムと反応させる方法、特開２００５−３３０２６９号公報、特開２００５−３３０２７０号公報に記載されたリン酸ナトリウムと反応させる方法等が挙げられる。またさらには、ＷＯ８７／０７１４２号公報に記載のように、五酸化リンとプルランを反応させてリン酸化プルランを得る方法も好適に用いられる。得られたリン酸化多糖は、ＩＲ分析やＮＭＲ分析等により、その構造を確認することができる。なお、リン酸化多糖のリン酸化の程度は、公知の方法に従って、原料使用量や反応条件を調整する等して調整することができる。

また、前記リン酸化多糖（Ａ）は、その一部又は全部が塩になっていてもよく、例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、マグネシウム塩、アンモニウム塩等が例示される。前記リン酸化多糖の塩は、公知の方法に従って調製することができる。

リン酸化多糖の数平均分子量（Ｍｎ）は、生体硬組織との接着性、硬化物強度及び製造コスト等の観点から、１０００〜１０００００が好ましく、２０００〜７００００がより好ましく、５０００〜５００００がさらに好ましく、１００００〜５００００がさらに好ましく、１００００〜４００００がさらに好ましく、１００００〜３００００がさらに好ましい。リン酸化多糖の数平均分子量（Ｍｎ）が１０００以上であると十分な硬化物強度と接着強さが得られ、また１０００００以下であると溶媒への溶解性が低下する恐れがなく、粘性が高すぎず操作性が良好であるので好ましい。なお、本明細書において、リン酸化多糖の数平均分子量（Ｍｎ）は、後述の実施例に記載の方法に従って測定することができる。

リン酸化多糖は、１分子に含まれる全水酸基のうち、好ましくは０．５〜１５個数％、より好ましくは２〜１０個数％の水酸基がリン酸化されたものが望ましい。なお、リン酸化多糖におけるリン酸化された水酸基の個数割合は、リン酸化多糖の元素分析を行ってリンの含有量を測定し、測定されたリンが全て、リン酸化された水酸基に由来するものとして算出することができる。

本発明における多価金属塩（Ｂ）は、硬化物強度、溶解性の制御、残留性を高める目的で使用される。即ち、多価金属塩は、リン酸化多糖が、リン酸基を介して、骨や歯のアパタイト表面に残存するカルシウム原子及び溶解放出されたカルシウムイオンとキレート結合して、硬化反応を生じて接着性を発現するにあたり、リン酸化多糖の未反応のリン酸基とキレート結合を形成して、硬化物の強度を高めるための金属源として利用される。

多価金属塩（Ｂ）としては、多価金属元素のリン酸塩以外の塩であることが好ましく、マグネシウム、カルシウム、ストロンチウム、バリウム、亜鉛、アルミニウム等の金属元素の水酸化物、ハロゲン化物、酸化物が好適に使用される。具体的には、水酸化マグネシウム、水酸化カルシウム、塩化アルミニウム、塩化カルシウム、塩化マグネシウム、塩化亜鉛、酢酸アルミニウム、硝酸アルミニウム、硝酸バリウム、硝酸カルシウム、硝酸マグネシウム、硝酸ストロンチウム、フルオロホウ酸カルシウム等が挙げられる。なかでも、ハロゲン化物、酸化物が好ましく、カルシウムの塩（ハロゲン化物、酸化物）や酸化バリウム、酸化マグネシウム、酸化亜鉛がより好ましく、塩化カルシウムがさらに好ましい。これらは単独で又は２種以上組み合わせて用いることができる。なお、本明細書において、リン酸塩以外の多価金属塩を、単に、多価金属塩（Ｂ）と記載することもある。

多価金属塩（Ｂ）は、溶媒に溶解又は分散した形態で使用されることから、その形状は特に限定されない。また、その平均粒子径は、得られる組成物のハンドリング性及び硬化物の機械強度等の観点から、０．００１〜５０μｍが好ましく、０．００１〜１０μｍがより好ましい。

多価金属塩（Ｂ）の含有量は、リン酸化多糖（Ａ）１００質量部に対して、硬化物の機械強度の増強効果の観点から、０．１質量部以上が好ましく、１質量部以上がより好ましい。また、本発明のキットをその好適な実施態様であるペースト状のセメントとして用いたときに、前記ペーストの流動性が不足して生体硬組織の修復部位へ充分な付与を行うことが困難となることがないようにする観点から、１０００質量部以下が好ましく、２００質量部以下がより好ましく、５０質量部以下がさらに好ましい。これらの観点から、多価金属塩（Ｂ）の含有量は、リン酸化多糖（Ａ）１００質量部に対して、０．１〜１０００質量部が好ましく、１〜２００質量部がより好ましく、１〜５０質量部がさらに好ましい。

溶媒（Ｃ）は、リン酸化多糖（Ａ）及び／又は多価金属塩（Ｂ）を溶解、膨潤あるいは分散させる観点から使用される。

溶媒としては、水、有機溶媒、又はそれらの混合物が挙げられる。

水としては、不純物を含有していない観点から、蒸留水又はイオン交換水が好ましい。

水の含有量は、リン酸化多糖（Ａ）１００質量部に対して、リン酸化多糖のリン酸基とヒドロキシアパタイトとの吸着性の観点から、１質量部以上が好ましく、１０質量部以上がより好ましく、２０質量部以上がさらに好ましい。また、硬化物強度及び接着強度を良好に保つためにマトリックス成分の濃度低下を抑制する観点から、２０００質量部以下が好ましく、１０００質量部以下がより好ましく、５００質量部以下がさらに好ましい。従って、水の含有量は、リン酸化多糖（Ａ）１００質量部に対して、１〜２０００質量部が好ましく、１０〜１０００質量部がより好ましく、２０〜５００質量部がさらに好ましい。

有機溶媒としては、メタノール、エタノール、１−プロパノール、２−プロパノール、１−ブタノール、２−メチル−２−プロパノール、アセトン、メチルエチルケトン、テトラヒドロフラン、ジエチルエーテル、ジイソプロピルエーテル、ヘキサン、トルエン、クロロホルム、酢酸エチル、酢酸ブチル等が挙げられる。これらは、単独で又は２種以上組み合わせて使用することができる。これらの中でも、生体に対する安全性と、揮発性に基づく除去の容易さの双方を勘案した場合、水溶性有機溶媒であることが好ましく、具体的には、エタノール、２−プロパノール、２−メチル−２−プロパノール、アセトン、及びテトラヒドロフランが好ましい。有機溶媒の含有量は特に限定されず、実施態様によっては前記有機溶媒の配合を必要としないものもある。有機溶媒を用いる実施態様においては、水と任意の割合で適宜混合して用いてもよく、水の全量１００質量部に対して、有機溶媒を好ましくは１〜２０００質量部含有することができる。

本発明の生体硬組織接着用キットには、前記リン酸化多糖（Ａ）、多価金属塩（Ｂ）及び溶媒（Ｃ）以外に、さらに、リン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩（Ｄ）を含有することができる。

本発明におけるリン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩（Ｄ）は、得られる組成物の硬化物強度を高めると同時に、骨、歯等の生体硬組織、金属、セラミックスへの接着強さを高める作用を示す。具体的なメカニズムとしては、以下のようなものが考えられる。リン酸化多糖（Ａ）は、アパタイト表面に残存するカルシウム原子や溶解放出されたカルシウムイオンに対してキレート結合する。一方、リン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩（Ｄ）はリン酸化多糖（Ａ）より低分子であることから、運動性が高くかつ分子内におけるリン酸基密度が高い。よって、リン酸化多糖（Ａ）と未反応のカルシウム原子やカルシウムイオンに対して、リン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩（Ｄ）がキレート結合を形成して骨や歯への吸着を高め、その後の硬化反応が進行して接着強さが向上すると考えられる。これらの点から、リン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩（Ｄ）は、リン酸化多糖（Ａ）とカルシウム原子、カルシウムイオンのキレート反応を補完して、得られる組成物の機能を高める化合物であると考えられる。

リン酸としては一般的なリン酸が例示され、リン酸の塩としては、リン酸カルシウム、リン酸バリウム、リン酸マグネシウム、リン酸ナトリウム、リン酸カリウム等が例示される。これらのなかでも、以下の理由で、リン酸カルシウムが好ましい。

即ち、前述のように、リン酸カルシウムは、そのリン酸基がリン酸化多糖（Ａ）とカルシウム原子、カルシウムイオンのキレート反応を補完すると同時に、そのカルシウム原子が、リン酸化多糖（Ａ）のリン酸基のうち骨等とキレート結合していないリン酸基とキレート結合を形成してリン酸化多糖（Ａ）とリン酸カルシウムとがネットワーク構造を形成することで、強固な硬化物を形成する。また、リン酸カルシウムの粒子は、硬化物中で補強材としても作用し、強度付与に効果をもたらす。一方、リン酸カルシウムに含有されるリン酸及びカルシウムは、骨、歯を構成する無機成分の構成元素であることから、リン酸化カルシウムは、生体硬組織用接着組成物において、骨や歯等の生体硬組織の再生修復における元素供給源として機能する。

かかるリン酸カルシウムとしては、Ｃａ^２＋とＰＯ_４ ^３−を構成要素とする化合物であればよく、具体的には、ヒドロキシアパタイト、炭酸アパタイト、第一リン酸カルシウム〔Ｃａ（Ｈ_２ＰＯ_４）_２〕、第二リン酸カルシウム（ＣａＨＰＯ_４）、α−ＴＣＰ〔α−第三リン酸カルシウム、Ｃａ_３（ＰＯ_４）_２〕、β−ＴＣＰ〔β−第三リン酸カルシウム、Ｃａ_３（ＰＯ_４）_２〕、ＯＣＰ（オクタリン酸カルシウム）、リン酸四カルシウム及びこれらの水和物等が挙げられる。これらは単独で又は２種以上組み合わせて用いることができる。

また、リン酸カルシウムを骨や歯等の生体硬組織の再生修復における元素供給源として考慮した場合は、より質の高い生体硬組織を再生させるには、リン酸カルシウムは、炭酸イオン等の阻害物質を含まないことが好ましく、具体的には、下記式（Ｉ）：
Ｃａ_ｘＨ_ｙＯ_ｚ（ＰＯ_４）_ｌ（ＯＨ）_ｍ（Ｈ_２Ｏ）_ｎ （Ｉ）
（式中、ｘ及びｌは１以上の整数、ｙ、ｚ、ｍ、ｎは０以上の整数を示す）
で表される化合物が好ましい。これらの中でも、リン酸化多糖（Ａ）のリン酸基との反応性、硬化物の硬化補強、及びより質の高い生体硬組織を再生させる観点から、ヒドロキシアパタイト、第一リン酸カルシウム、第二リン酸カルシウム、α−ＴＣＰ、β―ＴＣＰ及びＯＣＰがより好ましい。

リン酸カルシウムの形状は特に限定されない。また、リン酸カルシウムの平均粒子径は、得られる組成物のハンドリング性及び硬化後の機械強度等の観点から、０．００１〜５０μｍが好ましく、０．００１〜１０μｍがより好ましい。

一方、ポリリン酸としては、オルトリン酸が脱水縮合して得られる直鎖状のポリリン酸、環状ポリリン酸、網目状に無定形に連結したポリリン酸等が挙げられる。直鎖状のポリリン酸としては、ピロリン酸、トリポリリン酸、テトラポリリン酸、ペンタポリリン酸、ヘキサポリリン酸等が例示される。環状ポリリン酸としては、トリメタリン酸、テトラメタリン酸、ヘキサメタリン酸等が例示される。網目状に無定形に連結したポリリン酸としては、ウルトラポリリン酸が例示される。

ポリリン酸の塩としては、ナトリウム塩、カリウム塩等のアルカリ金属塩、アルカリ金属イオンと水素イオンの混合塩、アンモニウム塩等が挙げられる。これらのなかでも、使いやすさの点から、ポリリン酸のアルカリ金属塩が好ましい。

なお、これらリン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩は、単独で又は２種以上組み合わせて用いることができる。また、前記リン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩は、公知の方法に従って調製することができ、塩化合物はその一部又は全部が塩になっていてもよい。

リン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩（Ｄ）における、リン酸カルシウムの含有量は、組成物の接着性と硬化物強度の観点から、１質量％以上が好ましく、１０質量％以上がより好ましく、実質的に１００質量％がさらに好ましい。

リン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩（Ｄ）の含有量は、特に限定されないが、リン酸化多糖（Ａ）１００質量部に対して、組成物の接着性と硬化物強度の観点から、１〜２０００質量部が好ましく、１〜１０００質量部がより好ましく、５〜５００質量部がさらに好ましい。なお、リン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩（Ｄ）の含有量とは、組成物に含有されるリン酸、ポリリン酸、及びそれらの塩の合計含有量のことを意味する。

また、本発明の生体硬組織接着用キットには、前記以外に、さらに、フィラー（Ｅ）を含有することができる。

本発明におけるフィラーは、得られる組成物のハンドリング性及び硬化後の機械強度等の観点から配合する。

このようなフィラーは、現在歯科修復用組成物等に使用されるフィラー等、医療用用途に使用される組成物に添加されるものであれば特に限定はなく、有機フィラー、無機フィラー及び有機−無機複合フィラーが挙げられる。

有機フィラーの素材としては、例えばポリメタクリル酸メチル、ポリメタクリル酸エチル、メタクリル酸メチル−メタクリル酸エチル共重合体、架橋型ポリメタクリル酸メチル、架橋型ポリメタクリル酸エチル、ポリアミド、ポリ塩化ビニル、ポリスチレン、クロロプレンゴム、ニトリルゴム、エチレン−酢酸ビニル共重合体、スチレン−ブタジエン共重合体、アクリロニトリル−スチレン共重合体、アクリロニトリル−スチレン−ブタジエン共重合体等が挙げられ、これらは単独で又は２種以上組み合わせて用いることができる。

無機フィラーの素材としては、石英、シリカ、アルミナ、シリカ−チタニア、シリカ−チタニア−酸化バリウム、シリカ−ジルコニア、シリカ−アルミナ、ランタンガラス、ホウケイ酸ガラス、ソーダガラス、バリウムガラス、ストロンチウムガラス、ガラスセラミック、アルミノシリケートガラス、バリウムボロアルミノシリケートガラス、ストロンチウムボロアルミノシリケートガラス、フルオロアルミノシリケートガラス、カルシウムフルオロアルミノシリケートガラス、ストロンチウムフルオロアルミノシリケートガラス、バリウムフルオロアルミノシリケートガラス、ストロンチウムカルシウムフルオロアルミノシリケートガラス等が挙げられる。これらは単独で又は２種以上組み合わせて用いることができる。

前記無機フィラーは、組成物の流動性を調整するため、必要に応じてシランカップリング剤等の公知の表面処理剤で予め表面処理してから用いてもよい。かかる表面処理剤としては、例えば、メチルトリクロロシラン、ジフェニルジクロロシラン、ビニルトリメトキシシラン、ビニルトリエトキシシラン、ビニルトリクロロシラン、ビニルトリ（β−メトキシエトキシ）シラン、γ−メタクリロイルオキシプロピルトリメトキシシラン、１１−メタクリロイルオキシウンデシルトリメトキシシラン、γ−グリシドキシプロピルトリメトキシシラン、γ−メルカプトプロピルトリメトキシシラン、γ−アミノプロピルトリエトキシシラン、ヘキサメチルジシラザン等が挙げられる。なお、表面処理方法としては、特に限定はなく、公知の方法を用いることができる。

有機−無機複合フィラーとは、前記無機フィラーにモノマー化合物を予め添加し、ペースト状にした後に重合させ、粉砕することにより得られるものである。有機−無機複合フィラーとしては、例えば、ＴＭＰＴフィラー（トリメチロールプロパンメタクリレートとシリカフィラーを混和、重合させた後に粉砕したもの）等を用いることができる。

フィラー（Ｅ）の含有量は、リン酸化多糖（Ａ）１００質量部に対して、組成物の接着性と硬化物強度の観点から、１〜１０００質量部が好ましい。

またさらに、本発明の生体硬組織接着用キットには、前記以外に、さらに、生物活性薬剤（Ｆ）を含有することができる。

本発明のキットより得られる組成物は生体吸収性が良好であることから、生物活性薬剤を含有することにより、含有されるリン酸基などのイオン性基と生物活性薬剤との相互作用または硬化物（ゲル）中での封入効果により、前記組成物が生体に吸収される際に生物活性薬剤も逐次放出されて吸収される。従って、本発明のキットより得られる組成物は、前記生物活性薬剤の徐放用基材として機能することができる。

生物活性薬剤としては、特に限定はなく、骨形成タンパク質、抗生物質、ポリヌクレオチド、抗癌剤、成長因子、ワクチン等が挙げられる。骨形成タンパク質としては、ＢＭＰ−２、ＢＭＰ−３、ＢＭＰ−３ｂ、ＢＭＰ−４、ＢＭＰ−５、ＢＭＰ−６、ＢＭＰ−７、ＢＭＰ−８、ＢＭＰ−９、ＢＭＰ−１０、ＢＭＰ−１１、ＢＭＰ−１２、ＢＭＰ−１３、ＢＭＰ−１４、ＢＭＰ−１５、ＢＭＰ−１６、ＢＭＰ−１７、ＢＭＰ−１８等が例示される。

また、生物活性薬剤としては、アルキル化剤、プラチナ剤、代謝拮抗物質、トポイソメラーゼ阻害剤、抗腫瘍抗生物質、細胞分裂阻止剤、アロマターゼ阻害剤、チミジル酸シンターゼ阻害剤、鉱質除去骨マトリックス、ＤＮＡアンタゴニスト、ファルネシルトランスフェラーゼ阻害剤、ポンプ阻害剤、ヒストンアセチルトランスフェラーゼ阻害剤、メタロプロテイナーゼ阻害剤、リボヌクレオシドレダクターゼ阻害剤、ＴＮＦαアゴニスト、ＴＮＦαアンタゴニスト、エンドセリンＡ受容体アンタゴニスト、レチノイン酸受容体アゴニスト、免疫モジュレーター、ホルモン剤、抗ホルモン剤、光力学剤、チロシンキナーゼ阻害剤等も挙げられる。

生物活性薬剤（Ｆ）の含有量は、本発明のキットが適用される患者によって、一概には決定できず、適宜、調整することができる。

さらに、本発明の生体硬組織接着用キットは、本発明の効果を阻害しない範囲で、ｐＨ調整剤、紫外線吸収剤、増粘剤、着色剤、香料等を含有することができる。

本発明の生体硬組織接着用キットは、リン酸化多糖（Ａ）、多価金属塩（Ｂ）、及び溶媒（Ｃ）を含有するものであれば、特に限定はなく、当業者に公知の方法により容易に調製することができる。

具体的には、本発明の生体硬組織接着用キットは、リン酸化多糖（Ａ）、多価金属塩（Ｂ）、溶媒（Ｃ）、必要によりその他の成分を、予め混和したペースト型の形態で供給することができる。また、臨床現場で前記成分を混和してペースト状とする用時調製型として供給することができる。

また、リン酸化多糖（Ａ）は多価金属塩（Ｂ）の金属イオンと反応するため、保存安定性の観点から、リン酸化多糖（Ａ）と多価金属塩（Ｂ）とは、それぞれ別々の容器に保存することが好ましい。即ち、実施態様では、本発明の生体硬組織接着用キットは、少なくともリン酸化多糖（Ａ）を含有する第１剤と、少なくとも多価金属塩（Ｂ）を含有する第２剤とを含むものとして提供される。なお、溶媒（Ｃ）は第１剤及び／又は第２剤に含有されることができ、溶媒（Ｃ）のみを含有する別の剤として提供されてもよい。

またさらに、リン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩（Ｄ）を含有する場合にも、これらの成分（Ｄ）と多価金属塩（Ｂ）の金属イオンとが反応するので、前記成分（Ｄ）は、多価金属塩（Ｂ）と異なる容器で保存することが好ましい。例えば、リン酸化多糖（Ａ）を含有する第１剤、少なくとも多価金属塩（Ｂ）を含有する第２剤、少なくともリン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩（Ｄ）を含有する第３剤として提供されてもよく、リン酸化多糖（Ａ）を含有する第１剤にリン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩（Ｄ）に配合されて供給されてもよい。

生物活性薬剤（Ｆ）を含有する場合には、その物性に応じて、キットの形態を適宜調整することができる。

具体的な実施態様としては、リン酸化多糖（Ａ）とリン酸カルシウム（Ｄ）を含有する粉末状の第１剤と、多価金属塩（Ｂ）と溶媒（Ｃ）を含有するペースト状の第２剤とのキットが挙げられ、使用直前に第１剤と第２剤を混練して反応させることが好ましい。

かくして、本発明のキットより得られる生体硬組織用接着組成物は、硬化した硬化物の強度が十分高く、さらに高い接着性を示すものであることから、例えば、骨用セメント、歯科用セメント等の医療用材料に好適に用いられる。本発明のキットより得られる生体硬組織用接着組成物が高い接着性を示すものとしては、骨、歯質、チタン、ステンレス等の金属、セラミックスが挙げられる。

本発明はまた、本発明のキットより得られる組成物が生物活性薬剤の徐放用基材として機能することから、本発明の生体硬組織接着用キットに、さらに生物活性薬剤を配合したキット、即ち、リン酸化多糖、リン酸塩以外の多価金属塩、生物活性薬剤、及び溶媒を含有してなる、生体硬組織における生物活性薬剤の徐放用キットを提供する。またさらに、生物活性薬剤を徐放できることから、リン酸化多糖、リン酸塩以外の多価金属塩、生物活性薬剤、及び溶媒を含有してなる、生体硬組織における疾患の治療用キット、即ち、治療剤を提供する。

本発明において、生体硬組織における疾患としては、骨組織や歯組織における疾患であれば特に限定はなく、例えば、骨肉腫、Ｅｗｉｎｇ肉腫、軟骨肉腫、悪性線維性組織球腫、骨線維肉腫、転移性骨肉腫、骨髄腫、急性化膿性骨髄炎、慢性骨髄炎、Ｂｒｏｄｉｅ膿瘍、化膿性脊椎炎、人工関節置換術後感染症などが例示される。また、骨再生促進作用を要する疾患として、例えば、骨粗鬆症、良・悪性骨腫瘍切除後の骨欠損、骨腫瘍類似疾患掻爬後の骨欠損、外傷・骨折後骨欠損、採骨部の骨欠損、人工関節置換術時の骨欠損部等にも本発明の治療剤の適用が期待される。

本発明の治療剤は、前述のリン酸化多糖、リン酸塩以外の多価金属塩、生物活性薬剤、及び溶媒を含有するのであれば、本発明の生体硬組織接着用キットにおいて使用可能な成分を含有することができ、その組成も同様である。また、製造方法も同様である。

本発明の治療剤は、生物活性薬剤を徐放することができるため、徐放性に応じた適当な方法で使用され、前記生物活性薬剤を生体硬組織における疾患部位に送達できるのであれば、例えば、内用、外用、注射、局所充填により使用することができる。具体的には、生体硬組織における疾患部位に直接局所投与や充填するか、又は、静脈、動脈、皮下、筋肉内、腹腔内に投与したりするか、内視鏡等を用いて投与や充填したりすることも可能である。また、坐剤等の外用剤として投与する場合は、その適する投与方法により投与すればよい。なお、本明細書において治療剤の「投与」とは、治療剤を投与、充填、又は留置することを含む。

本発明の治療剤の使用量、使用回数、使用期間は、含有される生物活性薬剤の種類によっても異なり、該生物活性薬剤の有効量に応じて、その製剤形態、使用方法、使用目的及び当該治療剤の投与対象である患者の年齢、体重、症状によって適宜設定され一定ではない。

本発明はまた、生体硬組織における疾患の治療及び／又は予防のための、本発明の生体硬組織接着用キットに、さらに生物活性薬剤を含む組成物を提供する。ならびに、本発明は、生体硬組織における疾患の治療及び／又は予防のための、リン酸化多糖及びリン酸塩以外の多価金属塩を含む組成物を提供する。

本発明はまた、被験体に、リン酸化多糖、リン酸塩以外の多価金属塩、生物活性薬剤、及び溶媒を含有する組成物を生体硬組織における疾患部位に投与する工程を含む、生体硬組織における疾患の治療方法を提供する。前記組成物は生物活性薬剤を徐放するため、本発明の治療方法によれば生体硬組織における疾患を持続的に治療を行う効果が発揮され得る。なお、被験体としては、好ましくは生体硬組織における疾患を有するヒトや生体硬組織における疾患を予防するヒトであるが、ペット動物等であってもよい。

以下、本発明を実施例、及び比較例に基づいて説明するが、本発明はこれらの実施例等によりなんら限定されるものではない。

製造例１（リン酸化プルランの合成）
内容積２Ｌのセパラブルフラスコを用いて、プルラン（林原商事社製）４０．０ｇを蒸留水２００ｍＬに室温で溶解させた。この溶液を攪拌しながら、１Ｍのリン酸水溶液（水酸化ナトリウムでｐＨを５．５に調整したもの）１０００ｇを１０分かけて添加し、添加後さらに１時間攪拌を継続した。その後、１００℃から１０３℃の間で蒸留水約１１００ｍＬを留去し、続いて、１７０℃で３時間攪拌を継続した後、反応物を室温まで冷却した。反応物を取り出し、乳鉢で粉砕することで茶色固体９８．４ｇを得た。

上記で得られた茶色固体９０ｇを蒸留水１５００ｍＬに溶解させた。この溶液を攪拌しながら、そこに９９．５％エタノール１５００ｍＬを１０分かけて添加した。添加と同時に、析出物の生成が確認された。添加終了後、さらに１時間攪拌を継続した。その後、静置して分層し、上澄みを傾斜法により取り除いた。その後、残存した沈殿を再度蒸留水１５００ｍＬに溶解させ、９９．５％エタノール１５００ｍＬを１０分かけて添加、沈殿を回収した。前記の操作をさらに２度行った後、この沈殿を蒸留水（４００ｍＬ）に溶解させ、該溶液を攪拌している９９．５％エタノール（２０００ｍＬ）に少しずつ５分かけて添加した。析出した沈殿を、桐山ロート（３Ｇ）で濾取し、９９．５％エタノール（５００ｍＬ）で洗浄後、減圧下６０℃で１２時間乾燥させ、やや茶色かかった白色固体が２８．５ｇ得られた。さらに、この白色固体２５ｇを蒸留水に溶解させ、この溶液を小型卓上電気透析装置（マイクロアシライザーＳ３、サンアクティス製）にかけることによりリン酸化プルラン１３ｇを透明感のある薄茶色の固体として得た。

得られた固体のＩＲ分析（島津製作所製、ＦＴＩＲ−８２００ＰＣ）（ＫＢｒ錠剤法）を行ったところ、リン酸基部位に由来するピークが１０００〜１２００ｃｍ^−１に観測された。また、^３１Ｐ−ＮＭＲ（日本電子社製、ＪＮＭ−ＬＡ５００）を測定したところ２〜５ｐｐｍにプルランにエステル結合しているリン酸のリン由来のシグナルが得られた。ＩＣＰ発光分析（ジャーレルアッシュ社製、ＩＲＩＳ−ＡＰ）によりリン原子の元素分析を行い、その結果から、プルランの水酸基の約８．８個数％がリン酸化されたと判断された。またさらに、ＧＰＣ分析（カラム：ＴＳＫｇｅｌ α−Ｍ（東ソー社製）、移動相：０．１Ｍ−ＮａＣｌ水）を行った結果、数平均分子量（Ｍｎ）は２２０００であった。

製造例２（リン酸化プルランの合成）
製造例１と同様にしてリン酸化プルランの製造を行ない、プルランの水酸基の約７．２個数％がリン酸化され、数平均分子量（Ｍｎ）が３２０００であるリン酸化プルランが得られた。

製造例３（リン酸化プルランの合成）
製造例１と同様にしてリン酸化プルランの製造を行ない、プルランの水酸基の約６．８個数％がリン酸化され、数平均分子量（Ｍｎ）が２２０００であるリン酸化プルランが得られた。

実施例１（セメント組成物の調製）
製造例１で合成したリン酸化プルラン０．１ｇを乳鉢で粉砕し、得られた粉体を粉剤Ａとした。０．０５ｍＬの蒸留水に０．００５ｇの塩化カルシウムを溶解し、得られた水溶液を液剤ａとした。粉剤Ａと液剤ａとを室温で練和して、均質なペーストあるいはパテ状のセメント組成物を得た。なお、（Ａ）／（Ｂ）＝１００／５であった。

実施例２（セメント組成物の調製）
製造例１で合成したリン酸化プルラン０．１ｇとリン酸カルシウムとしてβ−ＴＣＰ（太平化学産業社製）１ｇを乳鉢で粉砕、混合し、得られた粉体を粉剤Ｂとした。粉剤Ｂと実施例１における液剤ａとを室温で練和して、均質なペーストあるいはパテ状のセメント組成物を得た。なお、（Ａ）／（Ｂ）／（Ｄ）＝１００／５／１０００であった。

実施例３（セメント組成物の調製）
製造例１で合成したリン酸化プルラン０．１ｇ、リン酸カルシウムとしてα−ＴＣＰ（太平化学産業社製）０．２５ｇ、β−ＴＣＰ（太平化学産業社製）０．２５ｇ、ヒドロキシアパタイト（太平化学産業社製）０．２５ｇ、及びＤＣＰＤ（リン酸水素カルシウム二水和物、ＣａＨＰＯ_４・２Ｈ_２Ｏ、太平化学産業社製）０．２５ｇを乳鉢で粉砕、混合し、得られた粉体を粉剤Ｃとした。粉剤Ｃと実施例１における液剤ａとを室温で練和して、均質なペーストあるいはパテ状のセメント組成物を得た。なお、（Ａ）／（Ｂ）／（Ｄ）＝１００／５／１０００であった。

比較例１（セメント組成物の調製）
プルラン（林原商事社製）０．１ｇと、実施例１における液剤ａとを室温で練和して、均質なペーストあるいはパテ状のセメント組成物を得た。

評価１（ヒドロキシアパタイトにおける接着性評価）
［剪断接着評価サンプルの作製］
被着体となるヒドロキシアパタイト製プレート（直径１３ｍｍ×高さ２ｍｍ）（ペンタックス社製ＡＰＰ６０１）を、直径２５．４ｍｍ×深さ１０ｍｍのモールド底面に置いてエポキシ樹脂を流し込んだ。エポキシ樹脂の硬化後モールドより取り出して、接着評価用のエポキシ樹脂に包埋されたヒドロキシアパタイト製プレートを準備した。包埋されたヒドロキシアパタイト製プレートの表面及び別に用意したヒドロキシアパタイト製円柱棒（直径５ｍｍ×高さ１０ｍｍ）の端面を、それぞれ流水下にて＃１０００のシリコン・カーバイド紙（日本研紙社製）で研磨し、研磨終了後、表面の水をエアブローすることで乾燥させ被着面とした。

次に、実施例１又は比較例１のペーストを上記ヒドロキシアパタイト製円柱棒の端面に盛り付けた後、ヒドロキシアパタイト製プレートに対して垂直になるよう、ヒドロキシアパタイト製円柱棒を植立した。植立後、ヒドロキシアパタイト製円柱棒の周囲に出た余剰のセメント組成物をインスツルメントで除去し、当該セメント組成物が硬化するまで室温（２５℃）で静置した。接着試験用サンプルは計５個作製し、硬化したすべてのサンプルを３７℃に保持した恒温器内に２４時間静置した。なお、各ペーストは、使用直前に調製したものを用いた。

また、参考例１として、市販のリン酸カルシウム系セメントであるバイオペックス−Ｒ（ＨＯＹＡ社製）を、参考例２として、ＰＭＭＡ骨セメントであるサージカルシンプレックス骨セメント（ハウメディカオステオニクス社製）を、それぞれの製品に添付された使用法に従って調製したセメント組成物についても、前記と同様にして接着試験用サンプルを調製した。

［剪断接着強さの測定］
得られた５個の接着試験用サンプルの剪断接着強さを万能試験機（インストロン社製）にて、クロスヘッドスピードを０．５ｍｍ／分に設定して測定し、平均値を各組成物のヒドロキシアパタイトに対する剪断接着強さとした。結果を図１に示す。また、実施例１の剪断時の断面を図２に示す。なお、万能試験機で測定の際、全ての試験体において円柱棒が自重により被着プレートから脱離した場合、剪断接着強さは０．００ＭＰａと判定した。

評価２（チタンにおける接着性評価）
［剪断接着強さの測定］
実施例１、比較例１及び参考例１〜２のセメント組成物を用い、被着体をチタン製プレート（１０ｍｍ×１０ｍｍ×３ｍｍ）、植立する円柱棒をチタン製円柱棒（直径５ｍｍ×高さ５ｍｍ）に変更した以外は、評価１と同様にして、チタンに対する剪断接着強さを測定した。結果を図１に示す。

図１の結果より、実施例の組成物は、接着して２４時間後にも高い接着強度を有することが分かる。また、図２の結果からも、剪断時の断面にはヒドロキシアパタイト側の破損が認められることからも、実施例の組成物が高い接着強度を有することが分かる。

また、実施例１及び参考例１〜２のセメント組成物については、評価１及び２と同様にして、さらに接着試験用サンプルを５個ずつ調製して、チタン又はヒドロキシアパタイトに対する剪断接着強さを測定した。その際、Ｔｕｋｅｙ法とＧａｍｅｓ−Ｈｏｗｅｌｌ法を用いて多重比較検定を行なった。結果を図３に示す。なお、図３中、「＊＊」はＴｕｋｅｙ法とＧａｍｅｓ−Ｈｏｗｅｌｌ法のいずれにおいてもｐ＜０．０５で有意差ありと判定された群間、「＊」はＴｕｋｅｙ法のみにおいてｐ＜０．０５で有意差ありと判定された群間を示す。

図３の結果より、実施例１の組成物は、参考例１〜２の市販品に対して有意に接着性に優れることが分かる。

評価３（ヒドロキシアパタイトとステンレス間における接着性評価）
［剪断接着評価サンプルの作製］
被着体となるヒドロキシアパタイト製プレート（サイズ：直径１３ｍｍ×高さ２ｍｍ）（ペンタックス社製ＡＰＰ６０１）の表面を流水下にて＃１０００のシリコン・カーバイド紙（日本研紙社製）で研磨し、研磨終了後、表面の水をエアブローすることで乾燥させ被着面とした。

次に、実施例１又は参考例１〜２のペーストをステンレス製円柱棒（サイズ：直径７ｍｍ×高さ２０ｍｍ）の端面に盛り付けた後、ヒドロキシアパタイト製プレートに対して垂直になるよう、ステンレス製円柱棒を植立した。植立後、ステンレス製円柱棒の周囲に出た余剰のセメント組成物をインスツルメントで除去し、当該セメント組成物が硬化するまで室温（２５℃）で静置した。接着試験用サンプルは計８個作製し、硬化したすべてのサンプルを３７℃に保持した恒温器内に２４時間静置した。なお、実施例のペーストは、使用直前に調製したものを用いた。

［剪断接着強さの測定］
得られた８個の接着試験用サンプルの剪断接着強さを評価１と同様にして測定し、評価を行った。

その結果、実施例１の組成物の剪断接着強さは２．９５ＭＰａであり、その破壊形態は全てセメント組成物とステンレス表面との界面破壊であったことから、本発明のセメント組成物とステンレスとの剪断接着強さが２．９５ＭＰａであるとした。一方、参考例１及び２の組成物は、全ての接着試験用サンプルにおいてステンレス円柱棒が自重により被着プレートから脱離し、その破壊形態は全てセメント組成物とステンレス表面との界面破壊であったことから、参考例１及び２の組成物の剪断接着強さは０．００ＭＰａと判定した。このことから、実施例１の組成物は、ヒドロキシアパタイトやチタンに加えて、ステンレスに対しても優れた接着性を示すことがわかる。

評価４（圧縮強さの評価）
実施例１〜２及び参考例１の組成物を、平滑なガラス板上に乗せた分割可能なテフロン（登録商標）製のモールド（直径４ｍｍ×深さ８ｍｍ）内に気体を含ませないように注意しながら充填後、上部より平滑なガラス板で圧接した。その後、３７℃に保持した恒温器内に１週間保管した後、上下のガラス板を外して、上記モールドよりセメント組成物の円柱状硬化物を取り出した。得られた円柱状硬化物の圧縮強さを、万能試験機（インストロン社製）を使用して、円柱状の硬化物の軸方向に０．５ｍｍ／分の速度で荷重をかけて測定した（ｎ＝４）。

その結果、実施例１〜２及び参考例１のセメント組成物の硬化物の圧縮強さは、それぞれ、３８．３３ＭＰａ、６６．９３ＭＰａ、２１．５０ＭＰａであり、実施例の組成物は硬化物強度に優れることが分かる。

評価５（歯髄の覆罩試験）
８週齡の雄のウイスター系ラットを実験動物とし、上顎第一臼歯の近心咬頭頂部を１／４ダイヤモンドバーと１／２スチールラウンドバーを用いて、滅菌蒸留水注水下で慎重に露髄させた。創面を６％ＮａＯＣｌと３％Ｈ_２Ｏ_２による交互洗浄を行った後、実施例１のセメント組成物で直接歯髄覆罩を行った上から、クリアフィルメガボンド（クラレメディカル社製、窩洞充填用の歯科用接着剤）、クリアフィルプロテクトライナーＦ（クラレメディカル社製、窩洞充填用のコンポジットレジン）を用いて空隙部を充填し、修復を完了した。２週間の観察期間の後、腹腔内麻酔下で４％パラホルムアルデヒド液による灌流固定を行い、第一臼歯を摘出後、摘出試料を１０％ＥＤＴＡ液にて脱灰し、通法にてパラフィン処理、連続切片標本を作製し、ヘマトキシリンエオジン染色（ＨＥ染色）を行い、光学顕微鏡下で観察を行った。代表的な結果を図４に示す。なお、参考例３として、水酸化カルシウムと滅菌水を練和したものについても同様に評価を行い、それぞれの群の被験体個数（ｎ）は５とした。

図４の左図より、実施例１の組成物を使用した場合は、修復象牙質の形成は著しく、ほぼ完全に露髄面を覆う形で形成されていた。但し、形成量の厚さは不均一であった。また、歯髄組織形態は正常で、炎症性細胞浸潤は見られなかった。一方、図４の右図より、参考例３の組成物を使用した場合は、歯髄組織は正常であったものの、修復象牙質の形成はこの場合も不均一であった。このことから、実施例１の組成物は、歯髄に接着して吸収されることにより象牙質へ置換されていることが推察される。

また、実施例１の組成物のみを用いた覆罩試験を行なった。より詳しくは、８週齡の雄のウイスター系ラットを実験動物とし、上顎第一臼歯を前記と同様にして露髄、洗浄後、実施例１のセメント組成物で直接歯髄覆罩し、同組成物で空隙部を充填して修復を完了した。１週間の観察期間の後、前記と同様にして第一臼歯を摘出して切片標本を作製し、ＨＥ染色を行って光学顕微鏡下で観察を行った。代表的な結果を図５に示す。また、別のラットに対して、２ヶ月の観察期間の後、前記と同様にして第一臼歯を摘出して固定液に１２日間浸漬保存した。固定液は、パラホルムアルデヒド２０ｇ、蒸留水２５０ｍＬ、０．１Ｍ リン酸緩衝液２５０ｍＬを混合したものを用いた。固定液に浸漬後の臼歯表面の写真を図６に示す。なお、対比として、実施例１のセメント組成物で直接歯髄覆罩を行った上から、エバダインプラス（ネオ製薬工業社製、窩洞充填用のコンポジットレジン）を用いて空隙部を充填し修復を完了したものについても同様に評価を行い、それぞれの群の被験体個数（ｎ）は３とした。

染色切片の結果からは、実施例１の組成物のみで覆罩と充填を行なった場合、露髄面が修復象牙質で覆われ、窩洞部が完全に封鎖されていることが確認された（図５左）。また、図５の右図に、組成物が充填された箇所と歯質（象牙質）との境界部の拡大図を示すが、１週間経過後においても歯質の異常が認められないことから、実施例１の組成物が生体親和性に優れ、密着性にも優れることが推察される。なお、窩洞部をエバダインプラスで封鎖したものについては、光顕観察用標本作製時にエバダインプラスの脱落が認められたが、実施例１の組成物によって露髄に被覆が形成されていることは確認された（図示せず）。

図６より、実施例１の組成物のみで覆罩と充填を行なった場合、臼歯窩洞部には実施例１の組成物が残存していることが確認された（図６左)。一方、実施例１の組成物で覆罩した後、エバダインプラスで充填を行なった場合、臼歯窩洞部には、実施例１の組成物が残存していることが確認されたものの、エバダインプラスは僅かにしか残存しておらず、窩洞部から容易に脱落したことが推察される（図６右)。

評価６（大腿骨への注入試験）
８週齡の雄のＣ５７／ｂｌ６マウスを実験動物とし、Ｆｅｍｏｒａｌ Ｉｎｔｒａｍｅｄｕｌｌａｒｙ Ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ Ｍｏｄｅｌ（大腿髄内注入モデル、Ｚｉｌｂｅｒ Ｓ ｅｔ．ａｌ、Ｊ．Ｂｉｏｍｅｄ Ｍａｔｅｒ Ｒｅｓ Ｐａｒｔ Ｂ：Ａｐｐｌ Ｂｉｏｍａｔｅｒ．２００８）のモデルに従い、実施例１又は実施例３のセメント組成物の機能評価を行った。即ち、全身麻酔下にてマウス大腿骨遠位から、注射針を用いて大腿骨髄内に骨孔をあけ、実施例１、実施例２（β−ＴＣＰ含有組成物）又は実施例３（ＤＣＰＤ含有組成物）のセメント組成物を注入し、実施例１の組成物は注入後２週、８週に、実施例２の組成物は注入後２週、５週、８週に、実施例３の組成物は注入後８週に、それぞれ組織学的評価を実施した。実施例１の組成物を用いた結果を図７に、実施例２の組成物を用いた結果を図８に、実施例３の組成物を用いた結果を図９に示す。

図７の左図より、注入後２週における大腿骨骨幹部では、組織学的評価に用いる切片の作製時に、注入したセメント組成物が脱落したため空洞（矢印部分）として観察されるが、周囲の骨髄の壊死等は認められず、またセメント組成物と骨髄はよく密着している様子がうかがわれ、セメント組成物の骨髄組織に対する親和性の高さが認められた。

図７の右図より、注入後８週における大腿骨骨幹部では、２週後に見られたセメント組成物注入部の空洞は消失し、かわりに骨髄組織が再生していることが分かる。このことから、本発明のセメント組成物は生体吸収性を有し、セメント組成物が注入された部位には骨再生が生ずることが示唆された。

図８より、注入後２週では、注入した実施例２のセメント組成物が骨髄の中に認められる（図８Ａ）。注入後５週では、注入したセメント組成物が正常骨髄内に残存しているものの、その辺縁から骨化している像が観察される（図８Ｂ）。図８Ｃは、図８Ｂの骨髄とセメント組成物の境界部を拡大したものであるが、新生した骨組織はセメント組成物と接しており、辺縁部から骨新生が起こっていることが明らかである。また、新生した骨組織内には多数の核が見られる。注入後８週では、注入後５週の組織と同様にセメント組成物の辺縁部から骨化している像が見られるが、内部にはまだ注入物が残存し、この時点では内部までは骨化が完成していないことが分かる（図８Ｄ）。

また、実施例３のセメント組成物を用いた場合には、注入後８週では正常骨髄内に残存しているセメント組成物は確認されず（図９左図）、拡大写真より、大腿骨骨幹部ではセメントが完全に吸収されて、正常な骨組織に置換していることが分かる（図９右図）。これらの結果より、組成物に含有させる（Ｄ）成分の種類や量を変更することで、組成物の生体吸収速度を調整することが可能であることが示唆される。

評価７（薬理試験１）
実施例１において製造例１で合成したリン酸化プルラン０．１ｇを用いる代わりに、製造例１のリン酸化プルラン４０ｇに抗癌剤「メソトレキセート」（武田薬品工業社製）を０ｇ、２ｇ、５ｇそれぞれ混入したものを０．１ｇ用いた以外は、実施例１と同様に調製してセメント組成物を得た。得られたセメント組成物を直径６ｍｍ、高さ２ｍｍの円柱状に成形した。ヌードマウス（ＢＡＬＢ／ｃｎｕ／ｎｕ）の背部皮下に腫瘍細胞（ＭＮＮＧ／ＨＯＳ）を１×１０^６個植え、７〜１０日放置し、腫瘍の大きさが５×５ｍｍ大になってから、腫瘍直下に調製した上記成形物を埋入し、２４時間ごとに腫瘍径を計測し、腫瘍の体積（長径×短径×短径×０．５）の変化を観察した。セメント成形物の埋殖日の腫瘍体積を１００％として、腫瘍組織の体積増加を調べた結果を図１０に示す。

図１０より、２ｇ、５ｇの抗癌剤を配合した組成物では腫瘍組織の増殖抑制が観察された。これは本発明の組成物から抗癌剤が溶出していることを示している。なお、２ｇ、５ｇの抗癌剤を含有する成形物の腫瘍増殖抑制効果が同程度であるが、これは、成形物からの抗癌剤の放出量（時間あたりの量）が同程度であるからと考えられる。

評価８（薬理試験２）
４週齢の雌のＣ５７／ｂｌ６マウス（野生型）に対して、ペントバルビタール５０ｍｇ／ｋｇを腹腔内投与して麻酔を行った後、腹部正中を切開して両側卵巣を摘出し、骨粗鬆モデルマウスを作製した。

次に、卵巣摘出１週後に、前記と同様の麻酔下にて右膝部を切開して右大腿骨遠位端を展開した。同部から大腿骨近位に向けて２４ゲージの注射針を用いて髄腔内を掻爬した。続いて、下記組成のセメント組成物を２５ゲージ注射針を用いて髄腔内に２０μＬ投与した。なお、比較対照として、何も投与しない群（３）も設定した。ｎ＝３で実施した。
（１）Ｃａｌｃｉｕｍ Ｈｙｄｒｏｇｅｎｐｈｏｓｈａｔｅ Ｄｉｈｙｄｒａｔｅ 以下ＤＣＰＤ群（製造例１で合成したリン酸化プルラン２００μｇ、ＤＣＰＤ２００μｇ、 ３１％塩化カルシウム水溶液４００μＬ）
（２）ＢＭＰ群（製造例１で合成したリン酸化プルラン４００μｇ、ｒｈＢＭＰ−２ １００ｎｇ、３１％塩化カルシウム水溶液４００μＬ）
（３）無治療群

それぞれの群について、大腿骨へ投与後４週、８週後に屠殺し、病理組織学的評価（ＨＥ染色）、放射線学的評価（μＣＴ ４８μｍ／スライス）を実施した。ＨＥ染色の結果を図１１に、μＣＴの結果を図１２に示す。

図１１Ａより、無治療群では骨髄内には脂肪髄が存在し、μＣＴにおいても骨化は認められなかった（図１２Ａ）。図１１Ｂ、Ｃより、ＤＣＰＤ群では注入されたセメント周囲に新生骨が形成されていることが確認され、リン酸化プルラン含有組成物を投与することで骨粗鬆症でも骨が形成され得ることが分かる。また、ＢＭＰ群では注入後１ヶ月で組織の骨化が認められており（図１１Ｄ）、図１２Ｃ、Ｄからは経時的な骨再生が認められ、セメント内のＢＭＰ活性が保持されていることが分かる。このことから、リン酸化プルラン含有組成物は重合熱を発生しないために、ＢＭＰの優れた担体となり得ることが示唆される。

評価９（薬理試験３）
４週齢の雌のＢＡＬＢ／ｃ ヌードマウスに対して、ペントバルビタール５０ｍｇ／ｋｇを腹腔内投与して麻酔を行った後、右膝部を切開して右大腿骨遠位端を展開した。次に、同部から大腿骨近位に向けて２４ゲージの注射針を用いて髄腔内を掻爬後、ヒト骨肉腫細胞（ＨＯＳ／ＭＮＮＧ）１×１０^６個をマトリゲル２０μＬに混和したものを、前記髄腔内へ２５ゲージ注射針を用いて投与して、骨肉腫モデルマウスを作製した。

次に、骨肉腫細胞の移植１週後に、前記と同様の麻酔下にて右膝部を切開して右大腿骨遠位端を展開した。同部から大腿骨近位に向けて２４ゲージの注射針を用いて髄腔内を掻爬し、続いて、下記組成のセメント組成物を２５ゲージ注射針を用いて髄腔内に２０μＬ投与した。
（１）製造例１で合成したリン酸化プルラン４００μｇ、Ｍｅｔｈｏｔｒｅｘａｔｅ（ＭＴＸ）１０ｍｇ、３１％塩化カルシウム水溶液４００μＬ

セメント投与後３日目で屠殺し、病理組織学的評価（ＨＥ染色）を実施した。結果を図１３に示す。

図１３より、セメント周囲において腫瘍細胞が壊死している様子が分かる。このことから、リン酸化プルラン含有組成物が吸収されるに伴い、抗癌剤が放出されていくことが示唆される。

評価１０（薬剤の徐放性評価１）
製造例２で合成したリン酸化プルラン０．４ｇと抗菌剤「塩酸バンコマイシン」（塩野義製薬社製）０．０１ｇの混和物を、３１％塩化カルシウム水溶液適量（約２００μＬ）と混和し、鋳型を使って円柱状（直径６ｍｍ、厚さ２ｍｍ）に硬化させた（ＰＰ２）。また、ポリメチルメタクリレートセメント（ＰＭＭＡセメント、Ｓｕｒｇｉｃａｌ Ｓｉｍｐｌｅｘ Ｐ Ｒａｄｉｏｐａｑｕｅ Ｂｏｎｅ Ｃｅｍｅｎｔ；Ｈｏｗｍｅｄｉｃａ Ｉｎｃ．，Ｌｉｍｅｒｉｃｋ，Ｉｒｅｌａｎｄ）４０ｇと「塩酸バンコマイシン」１ｇの混和物を、前記と同様にして円柱状（直径６ｍｍ、厚さ２ｍｍ）に硬化させた（ＰＭＭＡ）。得られた各硬化物を０．０１Ｍリン酸緩衝生理食塩水５００μＬに浸漬させ、３７℃で２４時間ごとにリン酸緩衝水溶液を交換した。リン酸化プルランが完全に溶解するまで繰り返し、採取した溶液中のバンコマイシン（ＶＣＭ）濃度を酵素免疫測定法（ＥＩＡ法）を用いて測定した。結果を図１４に示す。

図１４より、ＰＭＭＡ硬化物からのＶＣＭ溶出は、１日目が最も多く（７２．４±１０．８μｇ／ｍＬ）、以後は漸減していった。一方、リン酸化プルラン硬化物からの溶出も１日目が最も多く（２７５７．８±８８．８μｇ／ｍＬ）、その後は漸減したが、溶液中のＶＣＭ濃度は８日目までＰＭＭＡ硬化物よりも有意に高かった。

評価１１（薬剤の徐放性評価２）
製造例２又は製造例３で合成したリン酸化プルラン０．４ｇと抗癌剤「メトトレキサート」（Ｐｆｉｚｅｒ社製）０．０２ｇの混和を、３１％塩化カルシウム水溶液適量（約２００μＬ）と混和し、鋳型を使って円柱状（直径６ｍｍ、厚さ２ｍｍ）に硬化させた（ＰＰ２、ＰＰ３）。また、評価１０で用いたＰＭＭＡセメント０．４ｇと「メトトレキサート」０．０２ｇの混和物を、前記と同様にして円柱状（直径６ｍｍ、厚さ２ｍｍ）に硬化させた（ＰＭＭＡ）。得られた各硬化物を０．０１Ｍリン酸緩衝生理食塩水５００μＬに浸漬させ、３７℃で２４時間ごとにリン酸緩衝水溶液を交換した。リン酸化プルランが完全に溶解するまで繰り返し、採取した溶液中のメトトレキサート（ＭＴＸ）濃度を酵素免疫測定法（ＥＩＡ法）を用いて測定した。結果を図１５に示す。

図１５より、ＰＭＭＡ硬化物からのＭＴＸ溶出は一日目が最も多く、２日目に急激に低下し、以後は低濃度であった。製造例２のリン酸化プルランを用いた硬化物（ＰＰ２）からのＭＴＸ溶出は５日目までは低濃度であったが、６日目から上昇して１０日目までは高濃度の溶出を示した。製造例３のリン酸化プルランを用いた硬化物（ＰＰ３）からのＭＴＸ溶出は４日目までは低濃度であったが、５日目に急激に上昇して、７日目以降に再び低濃度の溶出を示した。

以上より、薬剤の種類によって組成物からの放出挙動が異なることが判明した。これは、薬剤と組成物に含まれるイオン性基、例えば、リン酸基との相互作用によるものと推定される。また、リン酸化率が異なることでも放出挙動が異なることから、リン酸化率を調整することで、放出パターンを制御することも可能になることが示唆される。

なお、本発明の態様として、以下のものが挙げられる。
〔１〕 リン酸化多糖、リン酸塩以外の多価金属塩、及び溶媒を含有してなる、生体硬組織接着用キット。
〔２〕 リン酸化多糖がリン酸化プルランである、前記〔１〕記載の生体硬組織接着用キット。
〔３〕 多価金属塩が多価金属のハロゲン化物及び酸化物からなる群より選ばれる少なくとも１つである、前記〔１〕又は〔２〕記載の生体硬組織接着用キット。
〔４〕 ハロゲン化物が塩化物である、前記〔３〕記載の生体硬組織接着用キット。
〔５〕 さらに、リン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩を含有してなる、前記〔１〕〜〔４〕いずれか記載の生体硬組織接着用キット。
〔６〕 リン酸塩がリン酸カルシウムである、前記〔５〕記載の生体硬組織接着用キット。
〔７〕 リン酸カルシウムが、式（Ｉ）：
Ｃａ_ｘＨ_ｙＯ_ｚ（ＰＯ_４）_ｌ（ＯＨ）_ｍ（Ｈ_２Ｏ）_ｎ （Ｉ）
（式中、ｘ及びｌは１以上の整数、ｙ、ｚ、ｍ、ｎは０以上の整数を示す）
で表されるリン酸カルシウムである、前記〔６〕記載の生体硬組織接着用キット。
〔８〕 リン酸カルシウムが、ヒドロキシアパタイト、第一リン酸カルシウム、第二リン酸カルシウム、α−ＴＣＰ（α−第三リン酸カルシウム）、β−ＴＣＰ（β−第三リン酸カルシウム）、及びＯＣＰ（オクタリン酸カルシウム）からなる群より選択される少なくとも１つの化合物である、前記〔６〕又は〔７〕記載の生体硬組織接着用キット。
〔９〕 さらに、フィラーを含有してなる、前記〔１〕〜〔８〕いずれか記載の生体硬組織接着用キット。
〔１０〕 前記〔１〕〜〔９〕いずれか記載の生体硬組織接着用キット、及び、生物活性薬剤を含有してなる、生体硬組織における疾患の治療剤。
〔１１〕 生体硬組織における疾患の治療及び／又は予防のための、前記〔１〕〜〔９〕いずれか記載の生体硬組織接着用キット、ならびに、生物活性薬剤を含有してなる組成物。
〔１２〕 前記〔１０〕記載の治療剤を治療を必要とする生体硬組織に投与する工程を含む、生体硬組織における疾患の治療方法。

本発明の生体硬組織接着用キットより提供される生体硬組織用接着組成物は、例えば、骨用セメント、歯科用セメント等の医療用材料に好適に用いられる。また、生体吸収性に優れることから、整形外科領域における人工関節の固定材、脊椎骨折の固定材、四肢骨折の固定材、骨腫瘍への充填材、歯科領域における齲蝕欠損部位の充填修復材、インレー・クラウン等の補綴修復物の合着材、覆髄・ライニング材、インプラント表面処理材、歯周病治療材、知覚過敏防止材、歯髄被覆材、ＤＤＳ用基材、組織工学用基材、組織接着材としても有用である。

Claims (13)

1. リン酸化多糖、リン酸塩以外の多価金属塩、及び溶媒を含有してなる、生体硬組織接着用キット。
2. リン酸化多糖がリン酸化プルランである、請求項１記載の生体硬組織接着用キット。
3. 多価金属塩が多価金属のハロゲン化物及び酸化物からなる群より選ばれる少なくとも１つである、請求項１又は２記載の生体硬組織接着用キット。
4. ハロゲン化物が塩化物である、請求項３記載の生体硬組織接着用キット。
5. さらに、リン酸、ポリリン酸、及び／又はそれらの塩を含有してなる、請求項１〜４いずれか記載の生体硬組織接着用キット。
6. リン酸塩がリン酸カルシウムである、請求項５記載の生体硬組織接着用キット。
7. リン酸カルシウムが、式（Ｉ）：
   Ｃａ_ｘＨ_ｙＯ_ｚ（ＰＯ_４）_ｌ（ＯＨ）_ｍ（Ｈ_２Ｏ）_ｎ （Ｉ）
   （式中、ｘ及びｌは１以上の整数、ｙ、ｚ、ｍ、ｎは０以上の整数を示す）
   で表されるリン酸カルシウムである、請求項６記載の生体硬組織接着用キット。
8. リン酸カルシウムが、ヒドロキシアパタイト、第一リン酸カルシウム、第二リン酸カルシウム、α−ＴＣＰ（α−第三リン酸カルシウム）、β−ＴＣＰ（β−第三リン酸カルシウム）、及びＯＣＰ（オクタリン酸カルシウム）からなる群より選択される少なくとも１つの化合物である、請求項６又は７記載の生体硬組織接着用キット。
9. さらに、フィラーを含有してなる、請求項１〜８いずれか記載の生体硬組織接着用キット。
10. リン酸塩以外の多価金属塩の含有量が、リン酸化多糖１００質量部に対して１〜１０００質量部である、請求項１〜９いずれか記載の生体硬組織接着用キット。
11. 請求項１〜１０いずれか記載の生体硬組織接着用キットより得られる、骨又は歯科用セメント組成物。
12. 請求項１〜１０いずれか記載の生体硬組織接着用キット、及び、生物活性薬剤を含有してなる、生体硬組織における疾患の治療剤。
13. 生体硬組織における疾患の治療及び／又は予防のための、請求項１〜１０いずれか記載の生体硬組織接着用キット、ならびに、生物活性薬剤を含有してなる組成物。