JP2008131945A - 飲料中の濁りを防止または減少する方法 - Google Patents

Abstract

【課題】プロリル特異的エンドプロテアーゼの添加によって飲料中の濁りを防止または減少する方法を提供する。
【解決手段】遺伝子組み換え技術によって得られたプロリル特異的エンドプロテアーゼを飲料の調製の間の種々の段階で添加する。ビールでは、濁りが形成される前後の発酵されたビールに添加する。ワインでは、ワインの調製の間に、発酵されたワインに添加する。フルーツジュースの調製の工程では、プロリル特異的エンドプロテアーゼは、浸漬または脱ペクチン化（ｄｅｐｅｃｔｉｎｉｚａｔｉｏｎ）の間に添加する。
【選択図】なし

Description

発明の詳細な説明

（発明の属する技術分野）
本願発明は、エンドプロテアーゼの添加によって飲料中の濁りを防止または減少する方法、及び本願発明に従う方法によって得られうる新しい飲料に関する。本願発明はまた、新しいエンドプロテアーゼに関する。

（従来の技術）
濁りは飲料業界で周知の現象である。濁りは、例えばビール、ワイン及びフルーツジュース中に存在しうる。濁り形成は、醸造工程の間に種々の過程で起こりうる。Ｔ． Ｎａｇｏｄａｗｉｔｈａｎａ及びＧ． Ｒｅｅｄによって編集された「Ｅｎｚｙｍｅｓ ｉｎ ｆｏｏｄ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ」、第３版、アカデミック出版、サンディエゴ、第Ｖ章、第４４８〜４４９頁では、ビール中の濁りはビール蛋白質とポリフェノール性プロシアニジンンとの間の相互作用の結果であることが提案されている。ビールでは濁りが、ビールの冷却に応じてしばしば形成されることが説明されている。ビールは発酵されて、そしてその後しばしば冷却された条件下で熟成される。清澄を達成するために、ビールは冷えた間にしばしはろ過される。濾過にもかかわらず、ビールは、それが梱包されて顧客に流通され、そして給仕される前に再び冷やされた後にしばしば濁ったようになる。ビールが冷やされない又はもはや冷やされない場合であっても、やがては濁りがビール中に形成され、そして沈殿物が現れうる。濁り形成は、濁り形成によって生じた曇りが微生物損傷によって生成した曇り（それは特にブライト（ｂｒｉｇｈｔ）ビールにおいて望ましくない）と似ている故に望ましくない。

「Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ」、第２版、第２．６章、第１２４〜１２５頁では、ビール中の濁りは、疎水性アミノ酸の高い比率を含み、プロアントシアニジンとカテキン（フラボノイド）から主として成るポリフェノールと結合する、モルトの高分子量ホルデイン（ｈｏｒｄｅｉｎ）画分の架橋に起因しうることが記載されている。少量の炭水化物及び微量無機物イオンが、濁り形成、並びに酸化（不可逆的な濁りを生成するためにポリフェノールの重合で重要な割合を果たすといわれている）にまた関与していることが記載されている。ポリフェノールは、冷却されたときに蛋白質とゆっくりと結合して冷え濁り（ｃｈｉｌｌ ｈａｚｅ）を形成するが、それは温められたときに再溶解することが提案されている。結局のところは、しかしながらポリフェノールが重合しサイズが増加する場合に、それらは室温で不溶性になって、不可逆的な又は永久的な濁りを形成する。

いくつかの他の刊行物において、例えばビール、ワイン及びフルーツジュース、コーヒー及び紅茶中の濁りの形成は、蛋白質とポリフェノールとの間の相互作用の結果であると提案されている（Ｋ． Ｊ． Ｓｉｅｂｅｒｔら、Ｊ． Ａｇｒｉｃ． Ｆｏｏｄ Ｃｈｅｍ．、第４４巻、１９９６年、第１９９７〜２００５頁、及びＫ． Ｊ． Ｓｉｅｂｅｒｔら、Ｊ． Ａｇｒｉｃ． Ｆｏｏｄ Ｃｈｅｍ．、第４４巻、１９９６年、第８０〜８５頁、Ｋ． Ｊ． Ｓｉｅｂｅｒｔ、Ｊ． Ａｇｒｉｃ． Ｆｏｏｄ Ｃｈｅｍ．、第４７巻、１９９９年、第３５３〜３６２頁）。

１９１１年のＬ． Ｗａｌｌｅｒｓｔｅｉｎによるその発見以来、ビール中の冷え濁り形成を減少する方法は、ビールへのパパインの添加であることが知られている。パパインは、蛋白質分解活性を有するパパイヤの抽出物である。Ｔ． Ｎａｇｏｄａｗｉｔｈａｎａ及びＧ． Ｒｅｅｄによって編集された「Ｅｎｚｙｍｅｓ ｉｎ ｆｏｏｄ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ」、第３版、アカデミック出版、サンディエゴ、第Ｖ章、第４４８〜４４９頁では、ビール中の冷え濁りの防止のために、パパインは他のいかなる酵素よりも特に優れていることが記載されている。しかしながら、パパインが機能するところの正確な機構は、今までに決定されていない（Ｔ． Ｎａｇｏｄａｗｉｔｈａｎａ及びＧ． Ｒｅｅｄによって編集された「Ｅｎｚｙｍｅｓ ｉｎ ｆｏｏｄ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ」、第３版、アカデミック出版、サンディエゴ、第Ｖ章、第４４８〜４４９頁）。

しかしながら、パパインの使用の不利点は、それが泡に対する否定的な効果を有することである。蛋白質は、ビールに安定な泡を形成するために必要である。しかしながら、その蛋白質分解活性によって、パパインは上部泡安定性に不利に影響する。

ワイン中の濁り形成は、例えばＴ． Ｎａｇｏｄａｗｉｔｈａｎａ及びＧ． Ｒｅｅｄによって編集された「Ｅｎｚｙｍｅｓ ｉｎ ｆｏｏｄ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ」、第３版、アカデミック出版、サンディエゴ、第１６章、第４２５頁において議論され、そこではブドウ蛋白質がワインの保管の間の濁り形成に責任があると記載されている。沈殿物が瓶詰め後にワイン中に形成される場合、該ワインは顧客にとって魅力がなくなり、それは販売に影響する。沈殿物を防止するために、例えばベントナイトが使用される。ベントナイト及び他の吸着剤が蛋白質を除去する際に効を奏するが、それは選択的でなく且つワインから他の望ましい化合物を除去し、しばしばワインの感覚器による特性にしばしば影響を与える。加えて、ベントナイトの使用はワインのかなりの損失を結果として生じ、かつそれはベントナイトを含む廃棄物の投棄が困難性を示す。

機構はあまり理解されていないが、パパインの添加は、蛋白質−ポリフェノール濁りが形成されない又はより少ない程度で形成されるところのそのような程度に、ビール中の蛋白質を加水分解することが想定されている。ベントナイトは、ワインにおいて同様の理由（蛋白質を吸収することによって）のために使用され、それは蛋白質−ポリフェノール濁り及び沈殿物の形成を防ぐ。しかしながら、蛋白質を除去する代わりに、ポリフェノールが濁り形成を減少し又は防止するために除去されうる。飲料からポリフェノールを除去するために使用される化合物の典型的な例は、ポリビニルポリピロリドン（ＰＶＰＰ）である。最近、ポリフェノールは重要な抗酸化剤であることが認識されている。抗酸化剤に起因する全ての有益な効果の故に、飲料からポリフェノールを除去する選択は、濁りの形成を防止するための最も魅力的な方法ではない。

（発明が解決しようとする課題）
濁りの防止または減少のための全ての知られた技術は欠点を有する故に、飲料中の濁りの防止または減少をするための新しい方法の必要性がまだある。

飲料中の濁りを防止または減少する方法を提供することが本願発明の目的である。

（課題を解決するための手段）
驚くべきことに、この目的は、プロリル特異的エンドプロテアーゼが飲料中に添加されるところの飲料中の濁りを防止または減少する方法を提供することによって達成されることがわかった。

本願発明の枠組みにおいて、用語「飲料」は、それらの調製の全ての段階の飲料を含む。従って、飲料は消費のために出来上がった飲料だけでなく、飲料を調製するために使用される任意の組成物である。例えば、ビール調製で使用されるオルト（ｗｏｒｔ）は、本明細書中において使用される用語「飲料」によって包含される。また、飲料の調製の間にプロリル特異的エンドプロテアーゼを液体でない又は完全には液体でない組成物へ添加することは、本願発明に従う方法に入るものと意図される。ビール醸造の開始時にマッシュ（ｍａｓｈ）に添加されるプロリル特異的エンドプロテアーゼは、そのような組成物の例である。

プロリル特異的エンドプロテアーゼは、蛋白質又はペプチドがその鎖中にプロリル残基を含む位置で又はその近くで蛋白質又はペプチドを切断するエンドプロテアーゼとして定義される。好ましくは、プロリル特異的エンドプロテアーゼは、蛋白質又はペプチドがプロリル残基を含む位置で蛋白質又はペプチドを切断するエンドプロテアーゼである。本願発明に従う方法では、Ｃ−末端でプロリル残基を切断するプロリル特異的エンドプロテアーゼが好ましくは使用される。そのＮＨ２−末端でプロリル残基を切断するプロリル特異的エンドプロテアーゼは例えば、刊行物（Ｎａｔｕｒｅ、１９８８年１月１５日発行、第３９１巻、第３０１〜３０４頁）に記載されている。

本明細書中では、用語 プロリル特異的エンドプロテアーゼ、プロリン特異的エンドプロテアーゼ、プロリン特異的エンドペプチターゼ、及びプロリル特異的活性又は類似の発現を有するペプチド は、互換的に使用される。

本明細書中では、用語 ペプチド及び蛋白質 は、互換的に使用される。本明細書中では、用語「濁り（ｈａｚｅ）」、「曇り（ｃｌｏｕｄｉｎｅｓｓ）」及び「混濁（ｔｕｒｂｉｄｉｔｙ）」はまた、互換的に使用される。飲料中の濁りの量を決めるために、濁度計がしばしば使用される。濁度計では、入射する光ビームの方向と相対的な所定の角度で散乱される光の量が、測定される。濁度測定は、蛋白質−ポリフェノール相互作用の結果として形成された濁りの測定のために非常に適している。

ポリフェノールは、少なくとも１つの水酸基で置換された少なくとも２つの芳香族環を含む化学構造を有する又は少なくとも２つの水酸基で置換された少なくとも１つの芳香族環を含む化学構造を有する化合物として定義される。

ポリフェノールの例は、タンニン及びフラボノイドであり、それは例えばカテキン、フラボノール及びアントシアニンを含む。

プロリル特異的活性を有するエンドプロテアーゼは、知られている（Ｅ．Ｃ．３．４．２１．２６）。しかしながら、飲料中の濁りを防止または減少するためにプロリル特異的エンドプロテアーゼを使用することは、今までに記載されまたは示唆されていない。

酵素活性に典型なように、プロリル特異的エンドプロテアーゼの活性は、ｐＨに依存する。本願発明に従う方法の好ましい実施態様では、エンドプロテアーゼは、エンドプロテアーゼが添加される飲料のｐＨに対応するｐＨで最大のプロリル特異的活性を有する飲料に添加される。好ましい飲料は、蛋白質を含有する飲料である。他の好ましい実施態様では、飲料は、蛋白質及びポリフェノールを含む。好ましい飲料は、７未満のｐＨ値を有する飲料である。

本願発明に従う方法は、ビール、ワイン及びフルーツジュースに有利に適用される。それは、ビール及びワイン以外のアルコール飲料にも有利に適用されうる。

本明細書で使用される用語「ビール」は、モルトされていない穀物から調製されたマッシュ並びにモルトされた穀物から調製された全てのマッシュ、及びモルトされた及びモルトされていない穀物の混合物から調製された全てのマッシュから調製されたビールを少なくとも包含することが意図される。用語「ビール」は、添加物を用いて調製されたビール、及びあらゆる可能なアルコール含量を有するビールをも包含する。

フルーツジュースは、例えばレッドベリー、イチゴ、リンゴ、梨、トマト、柑橘類の果実、野菜などから得られるジュースでありうる。

本願発明に従う方法において飲料に添加されるプロリン特異的エンドプロテアーゼの量は、広い範囲で変化しうる。本願発明に従う方法の好ましい実施態様では、飲料中の１グラム蛋白質あたり少なくとも１５０ミリ・ユニットのプロリン特異的エンドプロテアーゼ活性が添加され、ここで活性は基質としてＺ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−ｐＮＡを使用し活性測定によって決定された。

より好ましくは、少なくとも５００ミリ・ユニットのプロリン特異的エンドプロテアーゼが飲料に添加され、かつ最も好ましくは少なくとも１ユニットのプロリン特異的エンドプロテアーゼが添加される。

添加されるべきプロリン特異的エンドプロテアーゼ活性の最大量は、特定され得ない。最大量は例えば、濁り減少または防止の望ましい量、飲料の組成、飲料のｐＨ、及びエンドプロテアーゼがその最大活性を有するところのｐＨに依存する。

プロリル特異的エンドプロテアーゼは、飲料の調製の間の種々の段階で添加されうる。

ビールの調製工程の間に、プロリル特異的エンドプロテアーゼはマッシュに有利に添加される。他の実施態様では、プロリル特異的エンドプロテアーゼは、濁りが形成される前の発酵されたビールに添加される。しかしながら、プロリル特異的エンドプロテアーゼが濁りが形成された後の発酵されたビールに添加されることも可能である。プロリル特異的エンドプロテアーゼは、ビールの調製の工程においてすりつぶし（ｍａｓｈｉｎｇ）または成熟工程に有利に添加されうる。

ワインの調製の間に、プロリル特異的エンドプロテアーゼは、発酵されたワインに好ましくは添加される。プロリル特異的エンドプロテアーゼは、ワインの製造の工程において、アルコール発酵後またはマロアクティック（ｍａｌｏａｃｔｉｃ）発酵後に有利に添加されうる。

フルーツジュースの調製の工程では、プロリル特異的エンドプロテアーゼは、浸漬または脱ペクチン化（ｄｅｐｅｃｔｉｎｉｚａｔｉｏｎ）の間に好ましくは添加される。

濁り形成は、例えばビール、ワイン及びフルーツジュースのような酸性飲料中でしばしば生じる故に、７未満のｐＨ値でプロリル特異的活性を有するプロリル特異的エンドプロテアーゼが好ましくは使用される。最も好ましくは、７未満のｐＨ値で最大のプロリル特異的活性を有するプロリル特異的エンドプロテアーゼしくが、本願発明に従う方法で使用される。

本願発明は、
（ａ）配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．７、またはそれらのフラグメントと少なくとも４０％の全長アミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドと、
（ｂ）（ｉ）配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６の核酸配列、または６０、好ましくは１００のヌクレオチドにわたって少なくとも８０％あるいは９０％同一である、より好ましくは２００のヌクレオチドにわたって少なくとも９０％同一であるそれらのフラグメントと、あるいは（ｉｉ）（ｉ）の核酸配列と相補的な核酸配列とハイブリダイズするポリヌクレオチドによってコードされるポリペプチドと
から成る群から選択されるプロリン特異的エンドプロテアーゼを有するところの単離されたポリペプチドをさらに提供する。

本願発明は、プロリル特異的エンドプロテアーゼをコードする核酸分子をまた提供する。

本願発明は、プロリル特異的エンドプロテアーゼ活性を有する精製された又は単離されたポリペプチドにまた関連する。７未満のｐＨ値で最大活性を有する精製されたプロリル特異的エンドプロテアーゼが好ましい。

本願発明は、配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ Ｎｏ．７に従うアミノ酸配列、適切な宿主内で配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６のポリヌクレオチド配列を発現することによって得られうるアミノ酸配列を有する単離されたポリペプチドを提供する。また、上記ポリペプチドの機能的同等物を含むペプチドまたはポリペプチドが、本願発明に含まれる。上記ポリペプチドは、用語「本願発明に従うポリペプチド」にまとめて含まれる。

用語「ペプチド」及び「オリゴペプチド」は同義語と見なされ（通例、認識されているように）、且つ各用語はペプチジル結合によって結合された少なくとも２つのアミノ酸の鎖を示すために、文脈が要求するときに交換的に使用されうる。用語「ポリペプチド」は、７より大きいアミノ酸残基を含む鎖のために本明細書中で使用される。本明細書中における全てのオリゴペプチド及びポリペプチド式または配列は、左から右へ且つアミノ末端からカルボキシ末端への方向で記載される。本明細書で使用されるアミノ酸の１文字コードは、当業者に一般に知られており、且つＳａｍｂｒｏｏｋら（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ編集、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク州、１９８９年）内に見つけられうる。

「単離された」若しくは「精製された」ポリペプチドまたは蛋白質は、その天然環境から除去されたポリペプチドまたは蛋白質を意図される。例えば、宿主細胞で発現された、組み換え的に生成されたポリペプチド及び蛋白質は、例えば、Ｓｍｉｔｈ及びＪｏｈｎｓｏｎ、Ｇｅｎｅ、６７巻、第３１−４０頁（１９９８年）に記載されたシングル・ステップ精製方法のような任意の適切な技術によって実質的に精製されたところの天然の又は組み換えのポリペプチドがそうであるように、本願発明の目的のために単離されたと考えられる。

本願発明に従うポリペプチドは、硫酸アンモニウムまたはエタノール沈殿、酸抽出、アニオンまたはカチオン交換クロマトグラフィー、ホスホセルロースクロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィー、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー及びレクチンクロマトグラフィーを含む周知の方法によって、組み換え細胞培養物から回収され且つ精製されうる。最も好ましくは、高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）が、精製のために用いられる。

本願発明のポリペプチドは、天然に精製された製品、化学合成手法の生産物、及び例えば細菌、酵母菌、高等植物、昆虫及び哺乳類の細胞を含む、原核生物の又は真核生物宿主からの組み換え技術によって生産された生成物を含む。組み換え生産手法で使用される宿主に応じて、本願発明のポリペプチドは、グリコシル化されてもよく又はグリコシル化されなくともよい。さらに、本願発明のポリペプチドは、宿主が介在する工程の結果としていくつかの場合に、初期の修飾されたメチオニン残基をまた含みうる。

本願発明の有利な実施態様は、エンドプロテアーゼ活性を有する、精製された又は単離されたポリペプチドに関係する。そのような精製された又は単離されたポリペプチドは、本願発明に従う生物、例えば本願発明に従うポリヌクレオチドを運ぶＡ． ｎｉｇｅｒ株が培養されたところの発酵培養液から得られうる。当業者は、そのような培養物の上清から少なくとも部分的に精製された酵素をどのようにして得るかを知っている。

精製の特に有利な方法は、以下の通りである。適切な発酵培養液中で細胞を培養した後、該細胞は遠心分離によって培養上清から分離された。該上清は、濁った外観を有した。その後、該上清中内に残るより大きな粒子は、次の工程で適用される濾過の目詰まりを防止するために、０．５％Ｄｉｃａｌｉｔｅで、または好ましくは１．０％Ｄｉｃａｌｉｔｅで濾過することによって引き続き除去された。次に、溶液中の細菌の量を減少するために、細菌減少濾過（Ｇｅｒｍ ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ）が適用された。なお、該濾液は、透明でなかった。１０Ｋダルトンの分子量カットオフ値を有するミリポア（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）・フィルタが、水、該溶液の塩及び糖含量の更なる減少のために引き続き使用された。１バールの圧力が、フィルタ上に適用された。得られた典型的な収率は、発酵培養液中に存在するユニット対該精製された限外濾過液中で得られたユニットに基づいて５０〜９２％の間であった。限外濾過液中の酵素の典型的な濃度は、１ｍｌ当たり４〜１０ユニットの範囲でプロリル特異的エンドプロテアーゼ活性という結果である。

さらに、精製は次の方法のいずれかを適用することによって得られた。
実験室規模精製は、２４ｍｌ Ｑ−セファロースＦＦカラム（ベッド高さ１２ｃｍ／直径１．６ｃｍ）上にＡｋｔａ Ｅｘｐｌｏｒｅｒを使用し行われた。１０ｍｌ ＵＦ濃縮物が、バッファーＡ中に１０倍希釈され、そしてカラムに適用された。蛋白質は、グラジエント（２０ＣＶで０〜５０％Ｂ）で溶出された。バッファーＡは、２０ｍＭ ＮａＡｃ、ｐＨ５．１であった。バッファーＢは、２０ｍＭ ＮａＡｃ＋１Ｍ ＮａＣｌ ｐＨ５．１であった。流速は、５ｍｌ／分であった。
精製は、５００ｍｌ Ｑ−セファロースＦＦカラム（ベッド高さ ２３．５ｃｍ／直径５ｃｍ）上にＡｋｔａ ｐｕｒｉｆｉｅｒを使用し、作業指示書Ｗ−０８９４．Ａに従い行われた。２００ｍｌ ＵＦ濃縮物がバッファーＡ中に１０倍希釈され、そしてカラムに適用された。蛋白質は、グラジエント（２０ＣＶで０〜４０％Ｂ）で溶出された。バッファーＡは、２０ｍＭ ＮａＡｃ、ｐＨ５．１であった。バッファーＢは、２０ｍＭ ＮａＡｃ＋１Ｍ ＮａＣｌ ｐＨ５．１であった。流速は、１０ｍｌ／分であった。フラクションは、手動で集められた。

得られた生成物は、ＨＰＳＥＣ上で単一ピークを示し且つＳＤＳ ＰＡＧＥ及びＩＥＦで単一バンドとして現れた。従って、プロリル特異的エンドプロテアーゼは、Ｑ−セファロースＦＦを使用し同質まで精製されうることが結論付けられうる。推測される純度は９０％を超え、且つＺ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−ｐＮＡに対する特異的活性は、少なくとも０．０９４Ｕ／ｍｇであった。

本願発明のポリペプチドは、単離された形でありうる。該ポリペプチドは、ポリペプチドの意図された目的を妨害せず且つ単離されたとまだ見なされる、担体または希釈剤と混合されてもよいと理解される。本願発明のポリペプチドは、より実質上精製された形でもよく、その場合それは、調製物中に蛋白質の７０％より上、例えば８０％、９０％、９５％、９８％または９９％より上が本願発明のポリペプチドであるところの調製物中に該ポリペプチドを一般に含む。

本願発明のポリペプチドは、それらがそれらの天然の細胞環境外であるような形で提供されうる。従って、それらは、上記で述べられたように実質的に単離され若しくは精製され、またはそれらは天然に生じない細胞内、例えば他のかびの種、動物、植物または細菌の細胞内でありうる。

有利に、単離された又は精製されたプロリル特異的エンドプロテアーゼが、本願発明に従う方法で使用される。

本願発明に従う単離された又は精製されたプロリン特異的エンドプロテアーゼは好ましくは、蛋白質性物質のグラム当たり、少なくとも１０ユニットのプロリン特異的エンドプロテアーゼ活性を有する。これらのユニットは、方法の部で記載されているように、３７℃、ｐＨ５で合成ペプチドＺ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−ｐＮＡを使用し測定されるべきである。

プロリン特異的エンドプロテアーゼは、動物及び植物において広く見つけられるが、微生物内のそれらの存在は制限されているように思われる。現在まで、プロリン特異的エンドプロテアーゼは、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）（ＥＰ ０ ５２２ ４２８）、フラボバクテリウム（Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）（ＥＰ ０ ９６７ ２８５）及びアエロモナス（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ）（Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．、第１１３巻、第７９０−７９６頁）、キサントモナス（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ）及びバクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）の種で同定されている。これらの生物のほとんどからのプロリン特異的酵素は約ｐＨ８で活性であるが、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ酵素は、約ｐＨ５で好ましくは活性である。本願発明のプロリン特異的エンドプロテアーゼは、上記で述べた微生物種の１つ、特にＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓの種から単離されうる。好ましくは、プロリン特異的エンドプロテアーゼは、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒの株から単離される。他の宿主例えばＥ． ｃｏｌｉは適切な発現ベクターであるが、より好ましくは、プロリン特異的エンドプロテアーゼは、プロリン特異的エンドプロテアーゼをコードする遺伝子を過剰発現するために設計されたＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ宿主から単離される。例えば、とりわけＥ． Ｃｏｌｉ内でプロリン特異的エンドプロテアーゼを誘導されるＦｌａｂｏｖａｃｔｅｒｉｕｍのクローニング及び過剰生産は、純粋な形で利用可能なあるプロリン特異的エンドプロテアーゼを作る。そのような過剰生産する構成物の例は、Ｗｏｒｌｄ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ＆ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、第１１巻、第２０９〜２１２頁に与えられている。Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ宿主が、Ａ． ｎｉｇｅｒプロモーターを使用し非組み換え自己構成物利用を生産して、Ａ． ｎｉｇｅｒプロリン特異的エンドプロテアーゼをコードする遺伝子の発現を促進するために、好ましくは使用される。

第１の実施態様では、本願発明は、少なくとも約４０％、好ましくは少なくとも約５０％、好ましくは少なくとも約６０％、好ましくは少なくとも約６５％、好ましくは少なくとも約７０％、より好ましくは少なくとも約８０％、一層より好ましくは少なくとも約９０％、なおより好ましくは少なくとも約９５％、及び最も好ましくは少なくとも約９７％の配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．７（すなわち、ポリペプチド）のアミノ酸にアミノ酸配列同一性の全体程度を有し且つプロリン特異的エンドプロテアーゼ活性を有するアミノ酸配列を有する単離されたポリペプチドを提供する。

本願発明の目的のために、２またはそれ以上のアミノ酸配列間の同一性の程度が、ＢＬＡＳＴ Ｐ蛋白質データベース検索プログラム（Ａｌｔｓｃｈｕｌら、１９９７年、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ、第２５巻、第３３８９〜３４０２頁）によって、基質Ｂｌｏｓｕｍ ６２及び期待される閾値１０と決定された。

本願発明のポリペプチドは、配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５もしくは配列ＩＤ Ｎｏ．７に記載されるアミノ酸配列、または実質的に相同な配列、あるいはプロリン特異的エンドプロテアーゼ活性を有するいずれかの配列のフラグメントを含みうる。一般に、配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５もしくは配列ＩＤ Ｎｏ．７で示される、天然に生じるアミノ酸配列が好ましい。

本願発明のポリペプチドは、配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ Ｎｏ．７のポリペプチドの、天然に生じる変種または種相同物をもまた含みうる。

変種は、例えばかびの、細菌の、酵母又は植物の細胞内に天然に生じるポリペプチドであり、該変種は、プロリン特異的エンドプロテアーゼ活性及び配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ Ｎｏ．７の蛋白質と実質的に類似の配列を有する。用語「変種」は、配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ Ｎｏ．７のプロリン特異的エンドプロテアーゼとして同一の本質的な性質又は基本的な生物学的機能性を有するポリペプチドを言及し、且つ対立遺伝子の変種を含む。好ましくは、変種のポリペプチドは、配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ Ｎｏ．７のポリペプチドとして、少なくと同じレベルのプロリン特異的エンドプロテアーゼ活性を有する。変種は、配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．７のポリペプチドとして同じ株、または同じ属若しくは種の種々の株からのいずれかの対立遺伝子を含む。

同様に、本願発明の蛋白質の種相同物は、プロリン特異的エンドプロテアーゼであり且つＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓの他の種で天然に生じる類似の配列の等価蛋白質である。

変種及び種相同体は、配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ Ｎｏ．７のポリペプチドを単離するために使用された本明細書中で記載された手順を使用し且つ適切な細胞起源例えば細菌の、酵母、カビの又は植物の細胞に対するそのような手順を実行し、単離されうる。配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．７のポリペプチドの変種又は種相同体を発現するクローンを得るために、本願発明のプローブを使用して、酵母、細菌の、カビの又は植物の細胞から作成されたライブラリーをプローブすることもまた可能である。これらのクローンは、それ自体知られている組み換え又は合成技術によってその後生産されうるところの本願発明のポリペプチドを生成するために、慣用の技術によって操作されうる。

配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ Ｎｏ．７のポリペプチド及び変種並びに種相同体の配列は、本願発明のポリペプチドを提供するために修飾されうる。アミノ酸置換体、例えば１、２、または３から１０、２０若しくは３０置換体が作成されうる。同じ数の欠失および挿入がまた作成されうる。これらの変化は、修飾されたポリペプチドがそのプロリン特異的エンドプロテアーゼ活性を保持するが、ポリペプチドの機能に対して不可欠な領域の外に作成されうる。

本願発明のポリペプチドは、配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ Ｎｏ．７で提示された配列のフラグメントを含む、上記に記載された全長ポリペプチド及びそれらの変異体のフラグメントを含む。そのようなフラグメントは、プロリン特異的エンドプロテアーゼとして活性を典型的には保持する。フラグメントは、少なくとも５０、１００又は２００アミノ酸長でありうり、又は配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ Ｎｏ．７で示される全長配列以外のアミノ酸の数でもよい。

本願発明のポリペプチドは、必要であれば、合成方法によって生産されうるが、通常それらは、下記に記載されるように組み換え的に作成される。合成ポリペプチドは、例えばそれらの識別若しくは精製を助けるためにヒスチジン残基又はＴ７タグの添加によって、或いは細胞からのそれらの分泌を促進するためにシグナル配列の添加によって修飾されうる。

従って、変種配列は、配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ Ｎｏ．７のポリペプチドが単離されたところの株以外のＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓの株から得られるそれらを含みうる。変種は、本明細書中で記載されているようにプロリン特異的エンドプロテアーゼ、かつクローニング及び配列を探すことによって、他のＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ株から識別されうる。変種は、ペプチドが配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ Ｎｏ．７のプロリン特異的エンドプロテアーゼの基本的な生物学的機能を維持する限りは、単一アミノ酸又は蛋白質配列内の一群のアミノ酸の欠失、修飾又は追加を含んでもよい。

アミノ酸置換は、例えば１、２、又は３から１０、２０若しくは３０までの置換がなされうる。修飾されたポリペプチドは、プロリン特異的エンドプロテアーゼとして活性を一般に保持する。保守的な置換がなされうり、そのような置換は当業者にとって周知である。好ましくは、置換は、ポリペプチドの折り畳み又は活性に影響を与えない。

より短いポリペプチド配列は、本願発明の範囲内である。例えば少なくとも５０アミノ酸若しくは６０、７０、８０、１００、１５０又は２００アミノ酸長さまでのペプチドは、それが配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ Ｎｏ．７のプロリン特異的エンドプロテアーゼの基本的な生物学的機能を発揮する限りは、本願発明の範囲内であるとみなされる。特に、排他的ではないが、本願発明のこの観点は、蛋白質が完全な蛋白質配列のフラグメントであるところの状況を包含する。

第２の実施態様では、本願発明は、プロリン特異的エンドプロテアーゼ活性を有し、且つ（ｉ）配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６の核酸配列、または配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６のＣ−末端部分を少なくとも含み、しかし配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６の塩基と異なる全てを有しない或いは異なる塩基を有する核酸フラグメントと、あるいは（ｉｉ）配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６と相補的な核酸配列ストランドと、あるいは（ｉｉ）配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６に相補的な核酸ストランドと低いストリンジェンシィー条件下で、より好ましくは中程度のストリンジェンシィー条件下で、及び最も好ましくは高いストリンジェンシィー条件下で、ハイブリダイズする又はハイブリダイズすることが可能なポリヌクレオチドによってコードされる、単離されたポリペプチドを提供する。

用語「ハイブリダイズすることが可能な」は、本願発明の目的ポリヌクレオチドが、バックグランドよりも著しく上のレベルで、プローブ（例えば、配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６に記載された核酸配列又はそれらのフラグメント、或いは配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６の補体）として使用される核酸にハイブリダイズできることを意味する。本願発明は、本願発明のプロリン特異的エンドプロテアーゼをコードするポリヌクレオチド、並びにそれらに相補的であるヌクレオチド配列をまた含む。該ヌクレオチド配列は、ＲＮＡ、又はゲノムＤＮＡ、合成ＤＮＡ若しくはｃＤＮＡを含むＤＮＡでありうる。好ましくは、該ヌクレオチド配列はＤＮＡであり、最も好ましくはゲノムＤＮＡ配列である。典型的に、本願発明のポリヌクレオチドは、配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６のコード配列又はそれらのコード配列の補体に選択的な条件下でハイブリダイズすることが可能であるヌクレオチドの連続した配列を含む。そのようなヌクレオチドは、当業者に周知の方法に従い合成されうる。

本願発明のポリヌクレオチドは、バックグラウンドよりも著しく上のレベルで、配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６のコード配列又はそれらのコード配列の補体にハイブリダイズできる。バックグラウンド・ハイブリダイゼーションは、例えばｃＤＮＡライブラリー中に存在する他のｃＤＮＡの理由で生じうる。本願発明のポリヌクレオチド間の相互作用によって生じるシグナル・レベル及び配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６の、コード配列又はそれらのコード配列の補体は、他のポリヌクレオチドと配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６のコード配列との間の相互作用と同じ強さで、典型的に少なくとも１０倍、好ましくは少なくとも２０倍、より好ましくは少なくとも５０倍、及び一層より好ましくは少なくとも１００倍である。相互作用の強度は、例えばプローブを放射性同位体でラベル付けする（例えば３２Ｐ）ことによって測定されうる。選択的ハイブリダイゼーションは典型的に、低いストリンジェンシィーの条件（約４０℃で、０．３Ｍ塩化ナトリウム及び０．０３Ｍクエン酸ナトリウム）、中程度のストリンジェンシィー（例えば、約５０℃で、０．３Ｍ塩化ナトリウム及び０．０３Ｍクエン酸ナトリウム）又は高いストリンジェンシィー条件（例えば、約６０℃で、０．３Ｍ塩化ナトリウム及び０．０３Ｍクエン酸ナトリウム）を使用して達成されうる。

修飾
本願発明のポリヌクレオチドは、ＤＮＡ又はＲＮＡを含みうる。それらは、一又は二本鎖でありうる。それらは、その中に、ペプチド核酸を含む、合成の又は修飾されたヌクレオチドを含むポリヌクレオチドでまたありうる。ポリヌクレオチドに対する修飾の多くの種々の型が、当業者に知られている。これらは、メチルホスホナート及びホスホロチオエート骨格、及び分子の３及び／又は５末端でアクリジン又はポリリシン鎖の付加を含む。本願発明の目的のために、本明細書中で記載されたポリヌクレオチドは、当業者に利用可能な任意の方法によって修飾されうることが理解されるべきである。

当業者は、ルーチン技術を使用し、本願発明のポリペプチドが発現されるところの任意の特定の宿主生物のコドン使用を反映するために、本願発明のポリヌクレオチドによってコードされたポリペプチド配列に影響しないヌクレオチド置換を作成しうることが理解されるべきである。

配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６のコード配列は、例えば１、２、又は３から１０、２５、５０若しくは１００置換までのヌクレオチド置換によって修飾されうる。配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６のポリヌクレオチドは、１又はそれ以上の挿入及び／又は欠失によって、及び／又はいずれか又は両方の末端での伸長によって、代替的に又は付加的に修飾されうる。該修飾されたポリヌクレオチドは、プロリン特異的エンドプロテアーゼ活性を有するポリペプチドを一般にコードする。該修飾された配列が例えば後にポリペプチドに参照され議論されるように、翻訳されるときに、縮重置換が作成されうり及び／又は保存的なアミノ酸置換を結果として生じる置換が作成されうる。

相同体
配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６のＤＮＡコード配列の補体に選択的にハイブリダイズすることが可能であるヌクレオチド配列は本願発明に含まれ、且つ配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６の少なくとも６０、好ましくは少なくとも１００、より好ましくは少なくとも２００連続ヌクレオチドの領域にわたって又は最も好ましくは全長にわたって、配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６のコード配列に少なくとも５０％又は６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９８％又は少なくとも９９％配列同一性を一般に有する。同様に、活性プロリン特異的エンドプロテアーゼをコードし且つ配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６のＤＮＡコード配列の補体のフラグメントに選択的にハイブリダイズすることが可能であるヌクレオチドは、本願発明によってまた包含される。６０、好ましくは１００のヌクレオチドにわたって少なくとも８０％あるいは９０％同一である、より好ましくは２００のヌクレオチドにわたって少なくとも９０％同一である、配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６の核酸配列のＣ−末端フラグメントは、本願発明によって包含される。

上記に記載された同一の程度及び最小サイズの任意の組み合わせは、本願発明のポリヌクレオチドを定義するために使用されうり、よりストリジェントな組み合わせ（すなわち、より長い長さにわたってより高い同一性）が好ましい。従って例えば、６０、好ましくは１００のヌクレオチドにわたって少なくとも８０％又は９０％同一であるポリヌクレオチドは、２００のヌクレオチドにわたって少なくとも９０％同一であるポリヌクレオチドと同様に、本願発明の一局面を形成する。

ＵＷＧＣＧパッケージは、同一性を計算するために使用されうるＢＥＳＴＦＩＴプログラムを提供する（例えばそのデフォルト・セッティングで使用される）。

ＰＩＬＥＵＰ及びＢＬＡＳＴ Ｎアルゴリズムは、配列同一性を計算するために又は配列を並べるために（例えばそれらのデフォルト・セッティングで、等価又は対応する配列を識別するように）また使用される。

ＢＬＡＳＴ分析を実行するためのソフトウェアは、ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ （ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／）を通じて、公的に利用可能である。このアルゴリズムは、データベース配列内に同じ長さのワードで並べられた場合に、いくつかの肯定的な値である閾値スコアＴとマッチする又は満足するいずれかである問い合わせ配列内に短いワードの長さＷを識別することによって、第１の識別する高い得点配列ペアー（ｈｉｇｈ ｓｃｏｒｉｎｇ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｐａｉｒ）（ＨＳＰｓ）を含む。Ｔは、隣接ワードスコア閾値として言及される。これらの最初の隣接ワード・ヒットは、それらを含むＨＳＰｓを見つけるために調査を開始するための種として振る舞う。ワード・ヒットは、累積の整列スコアが増加する限り、各配列に沿って両方向に伸長される。各方向のワード・ヒットの伸長は、累積のスコアがその最大達成される値から両Ｘによって減少し；１又はそれ以上の否定的スコア残余整列の累積の故に、累積のスコアがゼロ若しくはゼロ未満に落ち；、或いは各配列の末端が達したときに中止される。ＢＬＡＳＴアルゴリズム・パラメータＷ、Ｔ及びＸは、整列の感度及び速度を決定する。ＢＬＡＳＴプログラムは、１１のワード長（Ｗ）、５０のＢＬＯＳＵＭ６２スコア・マトリックス整列、１０の期待値、Ｍ＝５、Ｎ＝４及び両方のストランドの比較をデフォルトとして使用する。

ＢＬＡＳＴアルゴリズムは、２つの配列間の類似度の統計的分析を実行する。ＢＬＡＳＴアルゴリズムによって提供される類似度の１つの測定は、最小の合計可能性（Ｐ（Ｎ））であり、それは、偶然によって２つのヌクレオチド又はアミノ酸配列の間で起こる一致によって可能性の指示を提供する。例えば、第１の配列と第２の配列の比較における最小の合計可能性が約１より少ない、好ましくは約０．１より低い、より好ましくは約０．０１より低い、及び最も好ましくは約０．００１より低い場合に、配列は他の配列に類似していると見なされる。

プライマー及びプローブ
本願発明のポリヌクレオチドは、プライマー又はプローブを含み且つプライマー（例えばポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）プライマーとして、代替の増幅反応のプライマーとして）、又は例えば放射活性若しくは非放射活性ラベルを使用し慣用手段によって露出ラベルでラベルされたプローブとして使用されうり、又は該ポリヌクレオチドは、ベクター内にクローニングされうる。そのようなプライマー、プローブ及び他のフラグメントは、少なくとも１５例えば少なくとも２０、２５、３０又は４０ヌクレオチド長である。それらは、典型的に４０、５０、６０、７０、１００、１５０、２００又は３００ヌクレオチド長まで、又は配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６のコード配列以外はなお少数のヌクレオチド（例えば５若しくは１０ヌクレオチド）まである

一般に、プライマーは、一度に望ましい核酸配列１つヌクレオチドのステップ・ワイズ製造を含む、合成手段によって生産される。自動化されたプロトコルを使用しこれを達成するための技術は、当業者に容易に利用可能である。より長いポリヌクレオチドは、組み換え手段を使用し（例えばＰＣＲクローニング技術を使用し）一般に生成される。これは、クローンされるべきプロリン特異的エンドプロテアーゼの望ましい領域を増幅し、酵母、バクテリアの、植物、原核生物の若しくはかびの細胞、好ましくはアスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）株から得られるｍＲＮＡ、ｃＤＮＡ又はゲノムＤＮＡと接触するプライマーをもたらし、望ましい領域の増幅のために適切な条件下でポリメラーゼ連鎖反応を実行し、該増幅されたフラグメントを単離し（例えば、アガローズ・ゲル上で反応混合物を精製することによって）、及び該増幅されたＤＮＡを回収するために、一対のプライマー（典型的に約１５−３０ヌクレオチド）を作成することを含む。該プライマーは、該増幅されたＤＮＡが適切なクローニング・ベクター中にクローンニングされうるように適切な制限酵素認識部位を含むために設計されうる。

そのような技術は、本明細書で記載されたプロリン特異的エンドプロテアーゼ配列をコードするポリヌクレオチドの全て又は部分を得るために使用されうる。イントロン、プロモーター及び終端部領域は、本願発明の範囲内であり且つかび、酵母、バクテリア、植物又は原核生物からのゲノムＤＮＡで開始する、類似の方法（例えば、組み換え手段、ＰＣＲ又はクローニング技術によって）でまた得られうる。

ポリヌクレオチド又はプライマーは、露出ラベルを運びうる。適切なラベルは、放射線同位体例えば３２Ｐ又は３５Ｓ、酵素ラベル又は他の蛋白質ラベル例えばビオチンを含む。そのようなラベルは、本願発明のポリヌクレオチド又はプライマーに添加されうり、且つ当業者に知られた技術を使用し検出されうる。

ラベル化或いは非ラベル化された、ポリヌクレオチド又はプライマー（すなわちそれらのフラグメント）は、かびのサンプルでプロリン特異的エンドプロテアーゼ又はそれらの変種の検出し又は配列するための核酸ベースの試験に使用されうる。そのような検出試験は、ハイブリダイズ条件下で本願発明のポリヌクレオチド又はプライマーを含むプローブとの接触へ興味のあるＤＮＡを含む疑わしいかびのサンプルをもたらすこと、及びサンプルでのプローブ及び核酸の間で形成される任意の二重を検出することを一般に含む。検出は、ＰＣＲのような技術を使用し、又は固体担体上のプローブを固定化し、該プローブにハイブリダイズ化されない、サンプル中の任意の核酸を除き、そして該プローブにハイブリダイズ化される任意の核酸を検出することによって達成されうる。あるいは、サンプル核酸は固体担体上で固定化され、プローブはハイブリダイズ化され、そして任意の非結合されたプローブの除去後にそのような担体に結合されたプローブの量が検出されうる。

本願発明のプローブは、適切な容器中にテスト・キットの形で慣用的にパッケージ化されうる。そのようなキットでは、プローブは、キットが設計されるところのアッセイ・フォーマットがそのような結合を要求するところの固体担体に結合されうる。該キットは、プローブされるべきサンプルを処理し、プローブをサンプル中の核酸にハイブリダイズするための適切な試薬、コントロール試薬、指示書などをまた含みうる。本願発明のプローブ及びポリヌクレオチドは、マイクロアッセイでまた使用されうる。

好ましくは、本願発明のポリヌクレオチドは、ポリペプチドとして同じ生物体例えばかび、特に属アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）のかびから得られる。

本願発明のポリヌクレオチドは、プロリン特異的エンドプロテアーゼ活性を有するポリペプチドをコードするところの配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６の配列の変種をまた含む。変種は、付加、置換及び／又は欠失によって形成されうる。従って、そのような配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６のコード配列の変種は、プロリンのカルボキシ末端でポリペプチド鎖を消化する能力を有するポリヌクレオチドをコードしうる。

ポリヌクレオチドの生産
配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６と１００％同一性を有しないが本願発明の範囲内であるポリヌクレオチドは、多くの方法で得られうる。従って、本明細書中で記載されたプロリン特異的エンドプロテアーゼ配列の変種は、生物体例えば本願発明のポリペプチドの起源として記載されたそれらの範囲から作成されたゲノムＤＮＡライブラリーをプローブすることによって例えば得られうる。さらに、他のかびの、植物又は原核相同体のプロリン特異的エンドプロテアーゼが得られうり、且つそのようなそれらの相同体及びフラグメントは、配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６に一般にハイブリダイズすることが可能である。そのような配列は、他の種からｃＤＮＡライブラリー又はゲノムライブラリーをプローブし、そして低い、中程度、高いストリジェンシーの条件下（先に記載したように）で配列ＩＤ Ｎｏ．１の全て又は部分を含むプローブでそのようなライブラリーをプローブすることによって得られうる。配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６の全て又は部分を含む核酸プローブは、他の種、例えば本願発明のポリペプチドの起源として記載されたそれらからのｃＤＮＡ又はゲノムライブラリーをプローブするために使用されうる。

種相同体は、縮重ＰＣＲを使用しまた得られうり、それは、保存アミノ酸配列をコードする、変種及び相同体内にターゲット配列に設計されたプライマーを使用する。該プライマーは、１又はそれ以上の縮重位置を含みうり、かつ知られた配列に対してシングル配列プライマーを有する配列をクローニングするために使用されるそれらよりも低いストリジェンシィー条件で使用される。

あるいは、そのようなポリヌクレオチドは、プロリン特異的エンドプロテアーゼ配列又はそれらの変種のサイト・ダイレクティッド突然変異誘発（ｓｉｔｅ ｄｉｒｅｃｔｅｄ ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ）によって得られうる。これは、例えばポリヌクレオチド配列が発現されているところの特定のホスト宿主のためのコドン・プリフェレンスを最適化するために、配列に対するサイレント・コドン変化が要求されるところで有用であり得る。他の配列変化は、制限酵素認識部位を導入するために、又はポリヌクレオチドによってコードされたポリペプチドの特性若しくは機能を変更するために作成されうる。

本願発明は、本願発明のポリヌクレオチド及びその補体を含む二本鎖ポリヌクレオチドを含む。

本願発明は、上記に記載された本願発明のポリヌクレオチドをコードするポリヌクレオチドをまた提供する。そのようなポリヌクレオチドは、本願発明のポリペプチドの組み換え生産のための配列として有用である故に、それらにとって配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６の配列にハイブリダイズすることが可能であることは必要ではなく、このことは一般に望ましい程度である。一方、そのようなポリヌクレオチドは必要であれば上記に記載されたように、標識され、使用され、かつ作成されうる。

組み換えポリヌクレオチド
本願発明は、クローニング及び発現ベクターを含む、本願発明のポリヌクレオチドを含むベクター、及び他の観点において、そのようなベクターを適切な宿主細胞例えば本願発明のポリヌクレオチドの発現又は本願発明の配列によってコードされたポリヌクレオチドの発現が起こるところの条件下で成長し、形質転換し又はトランスフェクションする方法をまた提供する。ポリヌクレオチドが宿主細胞のゲノムに対して異種であるところの本願発明のポリヌクレオチド又はベクターを含む宿主細胞がまた提供される。用語「異種」は、宿主細胞に関して、ポリヌクレオチドが宿主細胞のゲノム内で天然に生じない又はポリヌクレオチドがその細胞によって天然に生産されることを通常意味する。好ましくは、宿主細胞は、例えばクルイベロミセス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）属若しくはサッカロミセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属酵母細胞、又は例えばアスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）属の糸状菌細胞である。

本願発明のポリヌクレオチドは、組み換え複製可能なベクター例えばクローニング又は発現ベクター内に取り込まれうる。ベクターは、互換可能な宿主細胞内に核酸を複製するために使用されうる。従って、さらなる実施態様では、本願発明は、本願発明のポリヌクレオチドを複製ベクター内に導入し、該ベクターを互換可能な宿主細胞を導入し、そして該ベクターの複製をもたらす条件下で該宿主細胞を培養するによって本願発明のポリヌクレオチドを作成する方法を提供する。該ベクターは、宿主細胞から回収されうる。適切な宿主細胞は、発現ベクターに関連して下記に記載される。

ベクター
本願発明の発現カセットが挿入されるところのベクターは、組み換えＤＮＡ手続きに慣用的にさらされうる任意のベクターでありうり、かつ該ベクターの選択は、それが導入されるべきところの宿主細胞にしばしば依存する。従って、該ベクターは自発的に複製ベクターすなわち余分の染色体エンティティとして存在するところのベクターでありうり、それの複製は、染色体複製例えばプラスミドとして独立している。あるいは、宿主細胞内に導入される場合、該ベクターは、宿主細胞ゲノム内に一体化され且つそれが一体化されるところのクロモゾームととともに複製するところの１つでありうる。

好ましくは、本願発明のポリヌクレオチドがベクター内にある場合、それは宿主細胞（すなわち該ベクターは発現ベクターである）によってコード配列の発現を提供することが可能であるところの調節塩基配列に動作可能に結合される。用語「動作可能に結合」は、記載されたコンポーネントがそれらがそれらの意図された方法で機能することを可能にする関係であるところの並列を言及する。コード配列に「動作可能に結合」した調節塩基配列例えばプロモーター、エンハンサー又は他の発現制御シグナルは、コード配列の発現が制御配列に互換可能な条件下で達成されるような方法で配置される。

ベクターは、例えばプラスミド、コスミド、ウィルス又はファージ・ベクターの場合、複製の起源、任意的にポリヌクレオチドの発現のためのプロモーター及び任意的にエンハンサー及び／又はプロモーターの調節因子を提供されうる。末端配列は、ポリアデニレーション配列でありうるように存在されうる。ベクターは１又はそれ以上の選択可能なマーカー遺伝子例えばバクテリアのプラスミドの場合のアンピシリン耐性遺伝子又は哺乳類のベクターのネオマイシン耐性遺伝子を含みうる。ベクターは、例えばＲＮＡの生産のためにインビトロで使用されうり、又は宿主細胞にトランスフェクションするために又は形質転換するために使用されうる。

ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列は、該ＤＮＡ配列が宿主細胞内にＤＮＡ配列の発現を指示することが可能である発現シグナルに動作可能に結合されるところの発現構築物の一部として適切な宿主内に好ましくは導入される。発現構築物で適切な宿主の形質転換のために、当業者に周知である形質転換手法が利用可能である。発現構築物は、選択可能なマーカーを運ぶベクターの一部として宿主の形質転換のために使用されうり、又は該発現構築物は選択可能なマーカーを運ぶベクターとともに個別の分子として同時形質転換される。該ベクターは、１又はそれ以上の選択可能なマーカー遺伝子を含みうる。

好ましい選択可能なマーカーは、宿主細胞内の欠陥を補完する又は薬剤に耐性を与えるところのそれらを含むがそれらに制限されない。それらは、例えばほとんどの糸状菌及び酵母例えばアセトアミダーゼ遺伝子若しくはｃＤＮＡ（ａｍＤｓ、ｎｉａＤ、ｆａｃＡ遺伝子、又はＡ． ｎｉｄｕｌａｎｓ、Ａ． ｏｒｙｚａｅ若しくはＡ． ｎｉｇｅｒからのｃＤＮＡ）、又はＧ４１８、ハイグロマイシン、ブレオマイシン、カナマイシン、フレオマイシン又はベノミル耐性（ｂｅｎＡ）のような抗生物質に対する耐性を提供する遺伝子の形質転換のために使用されうる多用途のマーカー遺伝子を含む。あるいは、対応する突然変異宿主株例えば（Ｓ． ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ又は他の酵母からの相同遺伝子からの）ＵＲＡ３、（Ａ． ｎｉｄｕｌａｎｓ又はＡ． ｎｉｇｅｒからの）ｐｙｒＧ又はｐｙｒＡ、（Ａ． ｎｉｄｕｌａｎｓ又はＡ． ｎｉｇｅｒからの）ａｒｇＢ、又はｔｒｐＣを要求するところの栄養素要求性マーカーのような特定の選択マーカーが使用されうる。好ましい実施態様では、選択マーカーは、選択マーカー遺伝子のないポリペプチドを生産することか可能である形質転換された宿主細胞を得るために発現構築物の導入後に該形質転換された宿主細胞から削除される。

他のマーカーは、ＡＴＰシンセターゼ・サブユニット９（ｏｌｉＣ）、オロチジン−５’−リン酸デカルボキシラーゼ（ｐｖｒＡ）、細菌のＧ４１８耐性遺伝子（酵母において有効、しかし糸状菌に有効でない）、アンピシリン耐性遺伝子（大腸菌）、ネオマイシン耐性遺伝子（バチルス菌）及びグルクロニダーゼ（ＧＵＳ）をコードする大腸菌ｕｉｄＡ遺伝子を含む。ベクターは、例えばＲＮＡの生産のため又は宿主細胞をトランスフェクションする若しくは形質転換するために、インビトロで使用されうる。

ほとんどの糸状菌及び酵母にとって、発現構成物は、安定な形質転換体を得るために宿主細胞のゲノム内に好ましくは組み入れられる。しかしながら、ある酵母にとって、発現構成物が安定で且つ高いレベルの発現のために組み入れられうるところの適切なエピソームのベクターシステムがまた利用可能である。それらの例は、サッカロミセス（Ｓａｃｃａｒｏｍｙｃｅｓ）及びクルイベロミセス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）のそれぞれＣＥＮ及びｐｋＤ１プラスミド、２μｍ由来のベクター、又はＡＭＡ配列（例えば、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）からのＡＭＡ１）を含むベクターを含む。発現構成物が宿主細胞ゲノム内に組み入れられる場合、該構成物は、ゲノム内の座にランダムで又はターゲット座が高く発現された遺伝子を好ましくは含む場合に、相同性組み換えを使用し所定のターゲット座のいずれかに組み入れられる。高く発現された遺伝子は、ｍＲＮＡが例えば誘導された条件下で総細胞のｍＲＮＡの少なくも０．０１％（ｗ／ｗ）を占めうるところの遺伝子、または代替的に遺伝子生産物が総細胞の蛋白質の少なくとも０．２％（ｗ／ｗ）を占めうることができる若しくは分泌された遺伝子生成物の場合少なくとも０．０５ｇ／ｌのレベルまで分泌されうるところの遺伝子である。

所定の宿主細胞の発現構成物は、第１の観点のポリペプチドをコードする配列のコードストランドに比例して５−末端から３−末端へ連続した順序でお互いに動作可能に結合された次のエレメントを通常含む：（１）所定の宿主細胞内のポリペプチドをコードするＤＮＡ配列の転写を指示することが可能なプロモーター配列、（２）好ましくは、５−翻訳されていない領域（リーダー）、（３）任意的に、培養培地内で所定の宿主細胞からポリペプチドの分泌を指示することが可能なシグナル配列、（４）ポリペプチドの成熟した及び好ましくは活性の形をコードするＤＮＡ配列、及び好ましくはまた（５）ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列の転写ダウンストリームを終結することが可能である転写終結領域（ターミネーター）。

ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列のダウンストリームはターミネーターとしてまた言及され、発現構成物は、１又はそれ以上の翻訳終末部位を含む３−翻訳されていない領域を好ましくは含む。ターミネーターの起源は、それほど重要ではない。ターミネーターは、ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列に例えば由来しうる。しかしながら、好ましくは、酵母ターミネーターは酵母宿主細胞内で使用され、且つ糸状菌のターミネーターは、糸状菌宿主細胞内で使用される。より好ましくは、ターミネーターは、ポリヌクレオチドをコードするＤＮＡ配列が発現されるところの宿主細胞に内生的である。

本願発明のポリヌクレオチドをコードするポリヌクレオチドの促進された発現は、異種規制領域例えばプロモーター、シグナル配列及びターミネーター領域の選択によってまた達成されうり、それは発現及び必要ならば、選択された発現宿主からの利害の蛋白質の分泌レベルを増加するために、及び／又は本願発明のポリペプチドの発現の誘導可能な制御を提供するために役立つ。

本願発明のポリペプチドをコードする遺伝子に由来するプロモーターは別として、他のプロモーターは、本願発明のポリペプチドの発現を指示するために使用されうる。該プロモーターは、望ましい発現宿主内で本願発明のポリペプチドの発現を指示する際にその効率性のために選択されうる。

プロモーター／エンハンサー及び他の発現制御シグナルは、発現ベクターが設計されるところの宿主細胞に互換可能であるように選択されうる。例えば、原核細胞のプロモーター、特に大腸菌株内で使用に適切なそれらが使用されうる。本願発明のポリペプチドの発現が哺乳類の細胞で実行される場合、哺乳類のプロモーターが使用されうる、組織特異的プロモーター、例えば肝細胞の細胞特異的プロモーターがまた使用されうる。ウィルスのプロモーター、例えばモロネイ（Ｍｏｌｏｎｅｙ）マウス白血病ウィルの長い末端反復（ＭＭＬＶ ＬＴＲ）、ロウス（ｒｏｕｓ）肉腫ウィルス（ＲＳＶ）ＬＴＲプロモーター、ＳＶ４０プロモーター、ヒト・サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）ＩＥプロモーター、単純ヘルペス・ウイルス・プロモーター又はアデノウィルスプロモーターがまた使用されうる。

適切な酵母プロモーターは、Ｓ． ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ ＧＡＬ４並びにＡＤＨプロモーター及びＳ． ｐｏｍｂｅ ｎｍｔ１並びにａｄｈプロモーターを含む。哺乳類のプロモーターは、重金属例えばカドミウムに応答して誘導されうるところのメタロチオネイン・プロモーターを含む。ウィルスのプロモーター例えばＳＶ４０ラージＴ抗原プロモーター又はアデノウィルスプロモーターがまた使用されうる。全てのこれらのプロモーターは、当業者にすでに利用可能である。

哺乳類のプロモーター例えば竈−アクチンプロモーターが使用されうる。組織特異的プロモーター、特に内皮のまたは神経の細胞特異的プロモーター（例えば、ＤＤＡＨＩ及びＤＤＡＨＩＩプロモーター）が、特に好ましい。ウィルスのプロモーター、例えばモロネイ（Ｍｏｌｏｎｅｙ）マウス白血病ウィルの長い末端反復（ＭＭＬＶ ＬＴＲ）、ロウス（ｒｏｕｓ）肉腫ウィルス（ＲＳＶ）ＬＴＲプロモーター、ＳＶ４０プロモーター、ヒト・サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）ＩＥプロモーター、アデノウィルス、ＨＳＶプロモーター（例えばＨＳＶ ＩＥプロモーター）、又はＨＰＶプロモーター、特にＨＰＶ上流規制領域（ＵＲＲ）がまた使用されうる。ウィルスのプロモーターが、当業者にすでに利用可能である。

本願発明の宿主細胞内で転写を指示することが可能である種々のプロモーターが、使用されうる。好ましくは、プロモーター配列は、前に定義されたように高く発現された遺伝子から得られる。プロモーターが好ましく得られる及び／又は組み入れのために好ましい所定のターゲット座において発現構築物が含まれるところの高く発現された遺伝子の例は、解糖酵素例えばトリオースリン酸イソメラーゼ（ＴＰＩ）、グリセルアルデヒドリン酸脱水素酵素（ＧＡＰＤＨ）、ホスホグリセリン酸キナーゼ（ＰＧＫ）、ピルビン酸キナーゼ（ＰＹＫ）、アルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）、並びにアミラーゼ、グルコアミラーゼ、プロテアーゼ、キシリナーゼ、セロビオヒドロラーゼ、竈−ガラクトシダーゼ、アルコール（メタノール）オキシダーゼ、伸長因子及びリボソーム蛋白質をコードする遺伝子を含むがこれらに制限されない。適切な高く発現された遺伝子の特定の例は、例えばクルイベロミセス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）種からのＬＡＣ４遺伝子、Ｈａｎｓｅｎｕｌａ及びＰｉｃｈｉａそれぞれからのメタノールオキシダーゼ遺伝子（ＡＯＸ及びＭＯＸ）、Ａ． ｎｉｇｅｒ及びＡ． ａｗａｍｏｒｉからのグルコアミラーゼ（ｇｌａＡ）遺伝子、Ａ． ｏｒｙｚａｅ ＴＡＫＡ−アミラーゼ遺伝子、Ａ． ｎｉｄｕｌａｎｓ ｇｐｄＡ遺伝子、及びＴ． ｒｅｅｓｅｉセロビオヒドロラーゼ遺伝子を含む。

かびの発現宿主で使用のために好ましいところの、強い構造の及び／又は誘導可能なプロモーターの例は、キシリナーゼ（ｘｌｎＡ）、フィターゼ、ＡＴＰ−シンセターゼ・サブユニット ９（ｏｌｉＣ）、トリオースリン酸イソメラーゼ（ｔｐｉ）、アルコール脱水素酵素（ＡｄｈＡ）、アミラーゼ（ａｍｙ）、アミログルコシダーゼ（ｇｌａＡ遺伝子からのＡＧ）、アセトアミダーゼ（ａｍｄＳ）及びグリセルアルデヒド−３−リン酸脱水素酵素（ｇｐｄ）プロモーターのかびの遺伝子から得られうるところのそれらである。

使用されうる強い酵母プロモーターの例は、アルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）、ラクターゼ、３−ホスホグリセリン酸キナーゼ及びトリオースリン酸イソメラーゼの遺伝子から得られうるそれらを含む。

使用されうる強い細菌性プロモーターの例は、アミラーゼ及びＳＰｏ２プロモーター、並びに細胞外プロテアーゼ遺伝子からのプロモーターを含む。

使用されうる植物細胞の適切なプロモーターは、ナパリンシンターゼ（ｎｏｓ）、オクトピンシンターゼ（ｏｃｓ）、マンノピンシンターゼ（ｍａｓ）、リブロース小サブユニット（ｒｕｂｉｓｃｏ ｓｓｕ）、ヒストン、米アクチン、ファゼオリン、カリフラワー・モザイク・ウイルス（ＣＭＶ）３５Ｓ並びに１９Ｓ、及びシルコ（ｃｉｒｃｏ）ウィルス・プロモーターを含む。

ベクターは、真核遺伝子配列好ましくは哺乳類の遺伝子配列又はウィルスの遺伝子配列からのそれらに同種の配列を含むところのＲＮＡを生じるポリヌクレオチドの側面にある配列をさらに含む。これは、同種の組み換えによって真核細胞又はウィルスのゲノム内に本願発明のポリヌクレオチドの導入を可能にする。特に、ウィルス配列に挟まれた発現カセットを含むプラスミドベクターは、本願発明のポリヌクレオチドを哺乳類の細胞に運ぶために適切なウィルスのベクターを用意するために使用されうる。適切なウィルスのベクターの他の例は、単純ヘルペスウィルスベクター、及びレンチウイルス、アデノウィルス、アデノ関連ウィルス及びＨＰＶウィルス（例えばＨＰＶ−１６またはＨＰＶ−１８）を含むレトロウィルスを含む。これらのウィルスを使用する遺伝子導入技術は、当業者に知られている。レトロウィルスは例えば、宿主ゲノム内にアンチセンスＲＮＡを生ずるポリヌクレオチドを安定に組み入れるために使用されうる。複製欠陥のアデノウィルスベクターはそれに反して、エピソーム性を維持し、それ故に一時的発現を可能にする。

ベクターは、アンチセンスＲＮＡの生産を提供するためにアンチセンス方向に方向付けられた本願発明のポリヌクレオチドを含みうる。これは、必要に応じて、ポリヌクレオチドの発現のレベルを減少するために使用されうる。

宿主細胞及び発現
さらなる観点において、本願発明は、ポリペプチドをコードするコード配列のベクターによって発現するための適切な条件下で、上記で記載されたように発現ベクターとともに、形質転換された又はトランスフェクションされた宿主細胞を培養し、そして該発現されたポリペプチドを回収することを含む本願発明のポリペプチドを調製するための工程を提供する。本願発明のポリヌクレオチドは、組み換え再生可能なベクター例えば発現ベクター内に組み入れられうる。該ベクターは、互換可能な宿主細胞内に核酸を複製するために使用されうる。従って、さらなる実施態様では、本願発明は、本願発明のポリヌクレオチドを複製可能なベクター内に導入し、該ベクターを互換可能な宿主細胞内に導入し、そして該ベクターの複製を生じるところの条件下で該宿主細胞を培養することによって、本願発明のポリヌクレオチドを作成するための方法を提供する。該ベクターは、宿主細胞から回収されうる。適切な宿主細胞は、細菌例えば大腸菌、酵母、哺乳類の細胞株、及び他の真核細胞株例えばＳｆ９細胞のような昆虫細胞、及び（例えば糸状性）かびの細胞を含む。

好ましくは、ポリペプチドは、発現構成物でポリペプチドの完成した形をコードするＤＮＡ配列がシグナル配列をコードするＤＮＡ配列に動作可能に結合されるところの場合に分泌された蛋白質として生産される。分泌された蛋白質をコードする遺伝子が野生型株内にシグナル配列を有するところの場合、好ましくは使用されるシグナル配列は、ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列に由来（同種）である。あるいは、シグナル配列は、ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列に異質（異種）であり、その場合、シグナル配列は、ＤＮＡ配列が発現されるところの宿主細胞に好ましくは内生的である。酵母宿主細胞の適切なシグナル配列の例は、酵母ＭＦアルファ遺伝子由来のシグナル配列である。同様に、糸状菌の宿主細胞の適切なシグナル配列は、例えば糸状菌のアミログルコシダーゼ（ＡＧ）遺伝子（例えば、Ａ． ｎｉｇｅｒ ｇｌａＡ遺伝子）由来のシグナル配列である。このシグナル配列は、アミログルコシダーゼ（（グルコ）アミラーゼとも呼ばれる）プロモーターそれ自身と組み合わせて、並びに他のプロモーターと組み合わせて使用されうる。ハイブリッドシグナル配列は、本願発明の脈絡の中でまた使用されうる。

好ましい異種の分泌リーダー配列は、かびのアミログルコシダーゼ（ＡＧ）遺伝子（ｇｌａＡ−いずれも１８及び２４アミノ酸バージョン、例えばＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓから）、ＭＦアルファ遺伝子（酵母、例えばサッカロミセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）及びＫｌｕｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）又は痾−アミラーゼ遺伝子（Ｂａｃｃｉｌｕｓ）由来のそれらである。

ベクターは、本願発明のポリペプチドの発現を提供するために、上記に記載されたように適切な宿主細胞内に形質転換された又はトランスフェクションされうる。この工程は、ポリペプチドの発現に適切な条件下で上記に記載されたように、発現ベクターで形質転換された宿主細胞を培養し、そして任意的に該発現されたポリペプチドを回収することを含む。

従って、本願発明のさらなる観点は、本願発明のポリヌクレオチド若しくはベクターで形質転換された又はトランスフェクションされた、或いはそれらを含む宿主細胞を提供する。好ましくは、ポリヌクレオチドは、ポリヌクレオチドの複製及び発現を可能にするところのベクターで運ばれる。該細胞は、前記ベクターに互換可能であるように選択され、かつ例えば原核の（例えば細菌の）又は真核の、かびの、酵母の若しくは植物の細胞でありうる。

本願発明は、ポリヌクレオチドをコードするＤＮＡ配列の組み換え発現の手段によって本願発明のポリペプチドの生産の工程を含む。この目的のために、本願発明のＤＮＡ配列は、適切な同種の又は異種の宿主細胞内にポリペプチドの経済的な生産を可能にするために、遺伝子増幅及び／又は発現シグナル例えば、プロモーター、分泌シグナル配列の交換のために使用されうる。同種の宿主細胞は、同一の種であるところの又はＤＮＡ配列が由来するところの種と同一の種内の変種であるところの宿主細胞として本明細書中に定義される。

適切な宿主細胞は、好ましくは原核微生物例えば細菌の、又はより好ましくは真核の生物、例えば、菌類、例えば酵母又は糸状菌、或いは植物の細胞である。一般に酵母細胞は、糸状菌細胞を超えて好まれ、なぜならばそれらは複製することが容易である。しかしながら、ある蛋白質は、酵母から不十分に分泌され又はある場合に適切に処理されない（酵母でのハイパーグリコシレーション）のいずれかである。これらの例では、糸状菌宿主生物が選択されるべきである。

バチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）属からの細菌は、培養培地内に蛋白質を分泌するためのそれらの能力の故に、異種の宿主として非常に適切である。宿主として適切な他の細菌は、ストレプトミセス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）属及びシュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属からのそれらである。ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列の発現のための好ましい酵母宿主細胞は、サッカロミセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）、クルイベロミセス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）、ハンセヌラ（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ）、ピッチア（Ｐｉｃｈｉａ）、ヤロビィア（Ｙａｒｒｏｗｉａ）、又はシゾサッカロマイセス（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｓｅｓ）属の一つである。より好ましくは、酵母宿主細胞は、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ、Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ ｌａｃｔｉｓ（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ ｍａｒｘｉａｎｕｓ ｖａｒ． ｌａｃｔｉｓとしてまた知られている）、Ｈａｎｓｅｎｕｌａ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈａ、Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ、Ｙａｒｒｏｗｉａ ｌｉｐｏｌｙｔｉｃａ、及びＳｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｓｅｓ ｐｏｍｂｅの種からなる群から選択される。

しかしながら、ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列の発現の最も好ましいものは、糸状菌宿主細胞である。好ましい糸状菌宿主細胞は、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）、トリコデルマ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）、フサリウム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ）、ディスポロトリクム（Ｄｉｓｐｏｒｏｔｒｉｃｈｕｍ）、ペニシリウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）、アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）、ニューロスポラ（Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ）、サーモアスカス（Ｔｈｅｒｍｏａｓｃｕｓ）、ミセリオフトラ（Ｍｙｃｅｌｉｏｐｈｔｏｒａ）、スポロトリクム（Ｓｐｏｒｏｔｒｉｃｈｕｍ）、チエラビア（Ｔｈｉｅｌａｖｉａ）及びタラロミセス（Ｔａｌａｒｏｍｙｃｅｓ）の属から成る群から選択される。より好ましくは、糸状菌宿主細胞は、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｏｊａｅ若しくはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｄｕｌａｎｓの種、またはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ群（Ｒａｐｅｒ及びＦｅｎｎｅｌｌ、Ｔｈｅ Ｇｅｎｕｓ Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ、Ｔｈｅ Ｗｉｌｌｉａｍｓ ＆ Ｗｉｌｋｉｎｓ Ｃｏｍｐａｎｙ、ボルティモア、第２９３−３４４頁、１９６５年によって定義されるような）からの種である。これらは、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ａｗａｍｏｒｉ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｔｕｂｉｇｅｎｓｉｓ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ａｃｕｌｅａｔｕｓ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｆｏｅｔｉｄｕｓ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｄｕｌａｎｓ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｊａｐｏｎｉｃｕｓ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ及びＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｆｉｃｕｕｍ、並びにＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｒｅｅｓｅｉ、Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｇｒａｍｉｎｅａｒｕｍ、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｃｈｒｙｓｏｇｅｎｕｍ、Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ａｌａｂａｍｅｎｓｅ、Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ ｃｒａｓｓａ、Ｍｙｃｅｌｉｏｐｈｔｏｒａ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｍ、Ｓｐｏｒｏｔｒｉｃｈｕｍ ｃｅｌｌｕｌｏｐｈｉｌｕｍ、Ｄｉｓｐｏｒｏｔｒｉｃｈｕｍ ｄｉｍｏｒｐｈｏｓｐｏｒｕｍ及びＴｈｉｅｌａｖｉａ ｔｅｒｒｅｓｔｒｉｓの種のそれらをまた含むがそれらに制限されるものではない。

本願発明の範囲内の好ましい発現宿主の例は、菌類例えばＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ種（特に欧州公開特許公報１８４，４３８号、及び欧州公開特許公報２８４，６０３号に記載されているそれら）及びＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ種；細菌例えばＢａｃｉｌｌｕｓ種（特に欧州公開特許公報１３４，０４８号、及び欧州公開特許公報２５３，４５５号に記載されているそれら）、特にＢａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ種、並びに酵母例えばＫｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ種（特に欧州公開特許公報０９６，４３０号例えばＫｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ ｌａｃｔｉｓ、及び欧州公開特許公報３０１，６７０号に記載されているそれら）及びＳａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ種例えばＳａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅである。

本願発明に従う宿主細胞は植物細胞を含み、そしてそれ故に本願発明はトランスジェニック生物例えば植物及びそれらの部分に及び、それらは本願発明の１つ又はそれ以上の細胞を含む。該細胞は、本願発明のポリペプチドを異種的に発現しうり、又は本願発明のポリヌクレオチドの１つ又はそれ以上を異種的に含みうる。それ故に、トランスジェニック（すなわち遺伝子的に修飾された）植物は、本願発明のポリペプチドをコードする配列をそのゲノム内に挿入（典型的には安定に）しうる。植物細胞の形質転換は、公知の技術を使用し、例えばアグロバクテリウムツメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）からのＴｉ又はＲｉプラスミドを使用し実行されうる。従って、プラスミド（又はベクター）は、植物に感染するために必要な配列を含みうり、かつＴｉ及び／又はＲｉプラスミドの誘導体が使用されうる。

宿主細胞は、ポリペプチドを過剰発現しうり、及び過剰発現をエンジニアリングするための技術は周知であり且つ本願発明に使用されうる。従って、該宿主は、ポリヌクレオチドの２又はそれ以上のコピーを有しうる。

あるいは、植物の一部分の直接感染例えば葉、根又は茎が達成することができる。この技術では、感染されるべき植物は、例えばカミソリで植物を切る、針で植物に穴を開ける又は研磨剤で植物を磨くことによって傷つけられうる。その後、該傷は、アグロバクテリウム（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）で接種される。その後、植物又は植物部分は、適切な培養培地上で培養されうり、そして成長した植物に成長することを可能にされうる。遺伝子的に修飾された植物内に形質転換された細胞の再生は、周知の技術例えば抗生物質を使用し形質転換されたシュートを選択することによって及び適切な栄養素、植物ホルモンなどを含む培地上でシュートを継代培養することによって達成されうる。

宿主細胞の培養及び組み換え生産
本願発明は、プロリン特異的エンドプロテアーゼを発現するために修飾される細胞又はそれらの変種をまた含む。そのような細胞は、一時の又は好ましくは安定に修飾されたより高い真核細胞系列例えば哺乳類の細胞又は昆虫細胞、より低い真核細胞例えば酵母及び糸状菌の細胞、または原核細胞例えば細菌の細胞を含む。

細胞株内では例えばバキュロウイルス（ｂａｃｕｌｏｖｉｒｕｓ）発現システムのような膜上で一時的に発現されることは、本願発明のポリペプチドにとってまた可能である。本願発明に従い蛋白質を発現するために適用されるところのそのようなシステムは、本願発明の範囲内にまた含まれる。

本願発明によると、本願発明のポリペプチドの生産は、微生物の発現宿主を培養することによって達成されうり、それは、慣用の栄養発酵培地で、本願発明の１つ又はそれ以上のポリヌクレオチドで形質転換される。

本願発明に従う組み換え宿主細胞は、当業者に公知の手段を使用し培養されうる。プロモーター及び宿主細胞の各組み合わせにとって、ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列の発現につながる培養条件が利用可能である。所望の細胞密度又はポリペプチドの力価に達した後に、該培養は中止され、そして該ポリペプチドは公知の手段を使用し回収される。

発酵培地は、炭素源（例えば、グルコース、マルトース、モラセスなど）、窒素源（例えば、硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、塩化アンモニウムなど）、有機窒素源（例えば、酵母エキス、麦芽エキス、ペプトンなど）及び無機栄養源（例えば、リン酸、マグネシウム、カリウム、亜鉛、鉄など）を含む公知の培養培地を含みうる。任意的に、（使用される発現構成物に依存する）誘導剤が、含まれ又はその後添加されうる。

適切な培地の選択は、発現宿主の選択に基づき及び／又は発現構成物の調整要求に基づきうる。適切な培地は、当業者に周知である。該培地は、必要に応じて、他の潜在的に汚染する微生物にわたって形質転換された発現宿主を好む追加的な成分を含む。

発酵は、０．５〜３０日の期間にわたって実行されうる。発酵は、０℃〜４５℃の範囲の温度で、及び例えば２から１０までのｐＨで、バッチ、継続的な又はフェッド−バッチ工程でありうる。好ましい発酵条件は、２０℃〜３７℃の範囲内の温度、及び／又は３〜９のｐＨを含む。適切な条件は、発現宿主及び発現されるべき蛋白質の選択に基づいて通常選択される。

発酵後、必要ならば、細胞は、遠心分離又は濾過の手段によって発酵培養液から除去されうる。発酵が中止した後又は細胞の除去後、本願発明のポリペプチドはその後回収されうり、及び必要に応じて慣用手段によって精製されそして単離される。本願発明のプロリン特異的エンドプロテアーゼは、かびの菌糸体から又はプロリン特異的エンドプロテアーゼが、培養されたかびの細胞によって放出されるところの培養液から精製されうる。

好ましい実施態様では、ポリペプチドは、かびから、より好ましくはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓから、最も好ましくはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒから得られる。

修飾
本願発明のポリペプチドは、化学的に修飾、例えばポスト翻訳的に修飾されうる。例えば、それらは、グリコシル化され（１又はそれ以上の回数）又は修飾されたアミノ残基を含みうる。それらは、それらの精製を助けるためにヒスチジン残基の添加によって、又は細胞からの分泌を促進するためにシグナル配列の添加によってまた修飾されうる。ポリペプチドは、アミノ−又はカロボキシル−末端伸長例えばアミノ末端のメチオニン残基、約２０−２５残基までの小さいリンカーペプチド、又は精製を促進する小さい伸長例えばポリ−ヒスチジン・トラクト、抗原性エピトープ若しくは束縛領域を有しうる。

本願発明のポリペプチドは、露出標識で標識されうる。露出標識は、ポリペプチドが検出されることを可能にする任意の適切な標識でありうる。適切な標識は放射性同位体、例えば１２５Ｉ、３５Ｓ、酵素、抗体、ポリヌクレオチド及びリンカー例えばビオチンを含む。

ポリペプチドは、非天然的に生じるアミノ酸を含むために、又はポリペプチドの安定性を増加するために修飾されうる。蛋白質又はペプチドが、合成手段によって生産される場合、そのようなアミノ酸は生産の間に導入されうる。蛋白質又はペプチドは、合成的に又は組み換え生産のいずれかに従いまた修飾されうる。

本願発明のポリペプチドは、Ｄ−アミノ酸を使用しまた生産されうる。そのような場合、該アミノ酸は、Ｎ配向性へのＣで逆配列でリンクされる。これは、そのような蛋白質又はペプチドを生産をするために当業者に慣用的である。

多くの側鎖修飾は当業者に知られ、且つ本願発明の蛋白質又はペプチドの側鎖に作成されうる。そのような修飾は、アルデヒドと反応させ引き続きＮａＢＨ４で還元し、メチルアセトイミデートでアミド化又は無水酢酸でアシル化による還元的アルキル化によってアミノ酸の修飾を例えば含む。

本願発明によって提供される配列は、「第２の世代」酵素の構成物の開始物質としてまた使用されうる。「第２の世代」プロリン特異的プロテアーゼは、突然変異生成技術（例えば、部位特異的突然変異誘発）によって変更された、プロリン特異的プロテアーゼであり、それは、野生型のプロリン特異的プロテアーゼ又は組み換えプロリン特異的プロテアーゼ（例えば、本願発明によって生成されたそれら）のそれらと異なる特性を有する。例えば、それらの温度又はｐＨ最適、特異活性、基質アフィニティ又は温度安定性は、特定の工程で使用するためにより適切であるように変更されうる。

本願発明のプロリン特異的エンドプロテアーゼの活性に必須の且つそれ故に好ましい置換に付されるアミノ酸は、当業者に公知の手段例えば部位特異的突然変異誘発又はアラニン−スキャンニング突然変異誘発に従い識別されうる。後者の技術では、突然変異は、分子の全ての残基で導入され、且つ結果として生じる変異分子が、分子の活性に不可欠であるアミノ酸残基を識別するために、生物活性（例えばプロリン特異的エンドプロテアーゼ活性）のために試験される。酵素基質相互作用の部位は、核磁気共鳴、結晶学又はフォト−アフィニティ標識付けのような技術によって決定されるように結晶の構造の分析によってまた決定されうる。

酵母及び糸状菌宿主細胞の使用は、本願発明の組み換え発現生成物に対する最適の生物活性を比較するために必要とされうるように、そのようなポスト翻訳的修飾（例えば、蛋白質分解の処理、ミリスチレーション（ｍｙｒｉｓｔｉｌａｔｉｏｎ）、グルコシル化、トランケーション（ｔｒｕｎｃａｔｉｏｎ）、及びチロシン、セリン又はスレオニン・リン酸化）を提供することを期待される。

調製
本願発明のポリペプチドは、単離された形でありうる。ポリペプチドは、ポリペプチドの意図される目的に干渉せず且つ単離されたとなお見なされるキャリヤー又は希釈剤と混合されうると理解される。本願発明のポリペプチドは、実質的に精製された形でまたありうり、その場合、本願発明のポリペプチドである調製物内で蛋白質の７０％より上、８０％、９０％、９５％、９８％又は９９％より上での調製品内のポリペプチドを一般に含む。

本願発明のポリペプチドは、それらがそれらの天然の細胞の環境外であるような形で用意されうる。従って、それらは、上記に記載されたように実質的に単離された又は精製されうり、またはそれらが天然に生じないところの細胞例えば他のかびの種、動物、植物又は細菌の細胞内にありうる。

本願発明は、飲料の調製でプロリル特異的エンドプロテアーゼの使用にまた関連する。プロリル特異的エンドプロテアーゼは、ビール、ワイン又はフルーツジュースの調製で好ましくは使用される。本願発明に従う方法に従いプロリル特異的エンドプロテアーゼの添加によって、濁りの減少または防止が達成される。これらのプロリル特異的エンドプロテアーゼを添加することによって、新しい飲料が得られる。従って、本願発明は、本願発明に従う方法によって得られうる飲料にまた関連する、これらの飲料は、本願発明に従う方法によって得られうる例えばビール、ワイン及びフルーツジュースを含む。

本願発明に従う方法によって得られうる飲料の利点は、これら飲料が高含有量の抗酸化剤を有することである。ポリフェノールは抗酸化剤である。ビールは、濁りの形成を防止するためにポリフェノール除去剤で通常処理され、そして結果として、得られるビールは低い抗酸化剤活性を有する。同じことが、ポリフェノール除去剤で処理された他の飲料について同じことがいえる。本願発明に従う方法により得られうるビールは、より高い内生の抗酸化活性を有する。抗酸化は健康増進成分としてみられる故に、本願発明に従う方法により得られうる飲料は、ポリフェノール除去剤例えばＰＶＰＰで調製される飲料の同一の型よりもより健康である飲料としてみなされうる。該方法により得られうるフルーツジュースの色は、ポリフェノールの除去後に得られうるフルーツジュースの色よりも退色されない又はより少なく退色されることが本願発明に従う方法の利点である。本願発明に従う方法により得られうるワイン及びフルーツジュースは、ベントナイト又は類似の化合物が使用されるところの方法によって得られる飲料に比較して改善された香り及び風味を有し、それ故にベントナイトは蛋白質だけでなく香り及び／又は風味成分をも除去する。

実施例及び比較実験
材料
プロリン特異的エンドプロテアーゼ酵素（エンドプロテアーゼ）
Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ Ｇ３０６が、２００１年９月１０日にＣＢＳ（ＣＢＳ１０９７１２）に預託された。Ａ． ｎｉｇｅｒ Ｇ３０６は、本願発明に従うプロリル特異的エンドプロテアーゼをコードする遺伝子を含む。この微生物から得られる遺伝子又はｃＤＮＡは、公知の方法を使用し、任意のＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ宿主細胞内でクローニングされそして発現されうる。

次のサンプルが使用される。
１）「エンドプロテアーゼＡ」、プロリン特異的エンドプロテアーゼが、ビールの実験で使用された。該試料は、プロリン特異的エンドプロテアーゼコードする遺伝子を含むＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ株の発酵後に得られる発酵培養液の限外濾過後に得られる限外濾過濃縮物であった。該エンドプロテアーゼＡサンプルのプロリル特異的活性は、下記方法の項で記載されるように決定され、５．０６Ｕ／ｍｌであった。蛋白質濃縮物は、９０％よりも高い純度でプロリル特異的エンドプロテアーゼのサンプルの特異的活性に基づいて、５０ｇ／ｌであると測定された。
２）「エンドプロテアーゼＢ」、プロリン特異的エンドプロテアーゼが、ワインの実験で使用された。該試料は、カラム上に精製後に得られ且つ６．０Ｕ／ｍｌの活性を有した。

パパイン
コルプリン（ｃｏｌｌｕｐｕｌｉｎ）（ＤＳＭ（フランス）から入手可能な液体パパイン調整品）が、パパインの実験のために使用された。該活性は、５２８０ ＮＦ／ｍｇである。１ユニットＮＦは、ｐＨ６．０で１時間あたり溶性のチロシンの１マイクログラム当量を生産するためにカゼインの加水分解を触媒するパパイン活性の量である。該パパイン試料の該ロテイン濃が測定され、それは、１１９ｇ／ｌ（ローリー法）である。

ポリビニルポリピロリドン（ＰＶＰＰ）
使用されるＰＶＰＰは、「Ｐｏｌｙｃｌａｒ ＡＴ」という名で商業的に入手可能な非水溶性ＰＶＰＰであった。

ビール
「Ｌｅｓ Ｔｒｏｓｉ Ｂｒａｓｓｅｕｓ」（リール、フランス）からのモルトビール（ピルスナー タイプ）が、ビールで行われる全ての実験に使用された。このビールのアルコールパーセントは５．２％（容量／容量）であり、且つｐＨは４．４であった。この特定のビールは、他の商業的に利用可能なビールと比較して、冷やすことでこのビール内に測定できる比較的高い量の濁りの故に選択された。該ビールは、ローリー方法によって測定された場合、０．９ｇ／ｌの蛋白質濃度を有した。

白ワイン
白ソービニョン（Ｓａｕｖｉｇｎｏｎ）葡萄から調製された白ワインは、いかなる蛋白質除去の処理なしに使用された。ワイン調製の間のアルコール発酵は、ラレマンド（Ｌａｌｌｅｍａｎｄ）からの選択された酵母ＶＬ３で行われた。ワインのオエノロジック（ｏｅｎｏｌｏｇｉｃ）は、次の結果を与えた。

方法
プロリル特異的エンドプロテアーゼ活性を決定するための分光学的方法
基質溶液は、４０％ジオキサンを含む０．１Ｍクエン酸／０．２Ｍリン酸二ナトリウムバッファーｐＨ５．０中で作成されたＮ−カルボベンゾイル−グリシン−プロリン−ｐ−ニトロアニリド（Ｚ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−ｐＮＡ；分子量４２６．４３；Ｂａｃｈｅｍ社）の２ｍＭ溶液である。

バッファーｐＨ５．０の１ｍＬまで、基質溶液の２５０μｌが添加され、引き続き酵素溶液の１００μｌが添加された（酵素溶液のより大きい又はより小さい容積量が、バッファー溶液のために補正されるべきである）。該反応混合物は３７℃で培養され、そしてＤＮＡの放出は４１０ｎｍで吸収増加を測定することによって引き続き行われた。

活性定義：１ユニットは、下記に記載された反応条件下で１分間にＺ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−ｐＮＡから１μモルｐＮＡを遊離する酵素活性である。濃度を計算するために、８，８００Ｍ−１のモル吸光係数（Ｅ）が使用される。

冷え濁り測定（Ｌｕｃｉｅｎ Ｃｈａｐｏｎによるアルコール／低温度テスト）
濁りの濁度は、Ｐｆｅｕｆｆｅｒ Ｇｍｂｈ（キッチンゲン、ドイツ）からのタンノメーター（Ｔａｎｎｏｍｅｔｅｒ）と呼ばれる濁度計で、Ｐｆｅｕｆｆｅｒからの操作指示書に沿って測定された。非常に冷やされた下で、ビールは、沈殿したポリフェノール−蛋白質複合体によって生じる可逆の濁度を示す。アルコールの添加は該複合体の溶解性を減少し、従って濁度の形成を加速する。タンノメーターを校正するために、ホルマジン（ｆｏｒｍａｚｉｎｅ）標準溶液が、Ｊｅａｎ ｄｅ Ｃｌｅｒｋ、「Ｃｏｕｒｓ ｄｅ Ｂｒａｓｓｅｒｉｅｓ」、第２版、（第５９５〜５９６頁）、ルーバン大学、ベルギーによって記載されたように調製された。標準は、ユニットＥＢＣでの濁度であった。ビールは、濾紙を介して濾過することによって除炭酸された。冷え濁りテストを実行する直前に、エタノールが、６％（容量／容量）にアルコール含量を増加するために足りる量でサンプルに添加された。冷え濁りテストは、３０分間、８℃以下まで、各サンプルを冷やすことによって行われた。形成された濁り（濁度、ユニットＥＢＣで）は、測定チェンバーが８℃以下でまた維持されたところの濁度計で直ちに測定された。

ビールのために記載された冷え濁り試験は、オルツ（ｗｏｒｔｓ）又はアルコールのないビールでまた行われた。それらの場合、エタノールは、サンプル中で１０％（容量／容量）アルコール含有量に達するために足りる量でサンプルにまた添加される。ビール濁り又は使用される濁度ユニットは、ヨーロッパビール会社協議会（Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｂｒｅｗｅｒｙ Ｃｏｎｖｅｎｔｉｏｎ）によって推奨されるネフェロ濁度であるＥＣＢである。

加熱濁りテスト
Ｋ． Ｊ． Ｓｉｅｂｅｒｔ（Ｋ． Ｊ． Ｓｉｅｂｅｒｔら、Ｊ． Ａｇｒｉｃ． Ｆｏｏｄ Ｃｈｅｍ． 第４４巻、（１９９６年））によって記載されるように、ワイン又はフルーツジュースのような飲料中の濁りが、加熱試験によって誘導されうる。形成される濁りの量は主に、飲料中の濁り活性蛋白質及びポリフェノールのレベルの作用である。加熱試験では、（例えばワイン又はフルーツジュースの）サンプルの濁度は、３０分間、８０℃で加熱前又は後に濁度計で測定される。濁度を測定する前に、加熱されたサンプルは、２２〜２５℃の温度に達するまで冷水かで冷却される。ワイン試験では（実施例３を参照）、濁度計の校正は、ＮＴＵ−ホルマジン（ｆｏｒｍａｚｉｎｅ）標準溶液でおこなわれ、フルーツジュース試験（実施例５を参照）のために、ＮＴＵ濁度標準溶液が、Ｒｅａｇｅｃｏｎ社（アイルランド）から購入された。ＮＴＵ＝ネフェロ濁度ユニット。

対照実験
（ｉ）外因性でない蛋白質が培養の間に添加されたところのブランク試験がおこなわれた。
（ｉｉ）培養前に大量のＰＶＰＰ（１０００ｇ／ｈｌ）で処理されたビールが使用されたところの実験がおこなわれた。ＰＶＰＰがビールからポリフェノールを除去し、従って濁りの形成を妨げる故に、この実験は、ポリフェノール−蛋白質沈殿物によるところの冷え濁り試験によって誘導された濁りの平均量の決定を可能にする。
（ｉｉｉ）外因性蛋白質（プロリル特異的エンドプロテアーゼ又はパパイン、それぞれ）が、４０℃で、１時間で培養後に、０℃まで冷却されたビールに添加されたところの実験がおこなわれた。０℃での培養は、濁り測定の前に１５分間の間行われた。酵素及びパパインは０℃で活性でない又はほとんど活性でない故に、これらの実験は、酵素活性効果と非酵素的蛋白質効果との間で識別を可能にした。

様々な試験の間に濁りの効果を示す、実験及び比較実験
実施例１．ビール中の濁り形成に対するプロリル特異的エンドプロテアーゼの添加の効果
除炭酸されたモルトビール（Ｌｅｓ Ｔｒｏｉｓ Ｂｒａｓｓｅｕｒｓ）に対する、蛋白質含量：０．９ｇ／ｌ、プロリル特異的エンドプロテアーゼ酵素（「エンドプロテアーゼＡ」、物質の項参照）の様々な量が添加された。濁り測定の２組が実行された。第１組では、ビール−エンドプロテアーゼＡ組成物は、冷え濁り試験の前に４０℃で、１時間培養された。４０℃で培養後、冷え濁り試験の直前に、エタノールが６％（容量／容量）にアルコール含量を増加するために足りる量でビール−エンドプロテアーゼＡ組成物に添加された。第２組は、エンドプロテアーゼＡのないビールは、４０℃で、１時間培養され、そしてその後０℃まで冷却された。０℃で、エンドプロテアーゼＡが添加され、そして結果として生じる組成物は０℃で、１５分間培養された。冷え濁り試験の直前に、エタノールが６％（容量／容量）にアルコール含量を増加するために足りる量でビール−エンドプロテアーゼＡ組成物に添加された。

添加されたエンドプロテアーゼＡの量及び非エンドプロテアーゼＡが添加された場合に測定された濁りに比例する濁り減少のパーセントが、表１に示される。添加されたエンドプロテアーゼＡの量は、ビール中に存在する蛋白質の量に比例して、添加された外因性蛋白質の１％より少なくから１０％より多くまでの広い範囲にわたった。

＊「添加された外因性酵素の％」は、酵素の添加前にビール中に損際する蛋白質の総量のパーセントとして表された、添加されたエンドプロテアーゼＡ−酵素の量を示す。

表１は、冷却される前に、プロリル特異的エンドプロテアーゼが活性であるところの温度で、該プロテアーゼがビールに添加される場合、より少ない濁りが冷却することで形成されることを明らかに示している。表２は、該プロテアーゼが活性でない又はほとんど活性でない温度で、プロリル特異的エンドプロテアーゼがビールへ添加される場合に、ある効果があるが、該効果は、該プロテアーゼがそれが活性であるところの温度で添加されたときに観察された効果に比べて非常に小さいことを明らかに示している。

比較試験Ａ．ビール中に濁り形成に対するパパインの添加の効果
除炭酸されたモルトビール（Ｌｅｓ Ｔｒｏｉｓ Ｂｒａｓｓｅｕｒｓ）に対する蛋白質含量：０．９ｇ／ｌ、パパインの様々な量（０〜１００ｇ／ｈｌ）が添加された。冷え濁り測定の２組が実行された。第１組では、ビール−パパイン組成物は、冷え濁り試験の前に４０℃で、１時間培養された。エタノールは、濁り測定の前に６％アルコール（容量／容量）に達するために培養されたサンプルに添加された。第２組では、ビールサンプルが、４０℃で、１時間培養され、引き続き０℃に冷却された。その後、パパインが添加され、そしてサンプルは、０℃で、１５分間培養された。添加されたパパインの量、及びパパインが添加されない場合に測定される濁りに比例する濁り減少のパーセントが、表３に示される。

（１） ３ｇ／ｌは、推奨される最大の用量である。

表３の結果は、冷却に応じてビール中に形成された濁りの量に対するパパインの効果を示す。パパインが３ｇ／ｈｌ及びそれよりも高い量で添加される場合、濁りに対するパパインの効果は横ばい状態になるであることは明らかである。明らかに、プロリル特異的エンドプロテアーゼのように、パパインで濁り減少の同一の量を達成することは不可能である。

比較試験Ｂ．ビール中に濁り形成に対するＰＶＰＰの添加の効果
ビール−プロリル特異的エンドプロテアーゼ実験とビール−パパイン実験の両方において、対照実験は、培養の前にビールに大量のＰＶＰＰ（０〜１０００ｇ／ｈｌ）を添加することによって行われた。混合の１５分後に、該ＰＶＰＰは濾過によって除去された（プロリル特異的エンドプロテアーゼ酵素又はパパインは添加されなかった）。両方の対照において、濁りは、冷え濁り試験の間にほとんど形成されなかった。ＰＶＰＰは飲料からポリフェノールを除去することが知られている故に、これらの対照試験は、ポリフェノールはビール中の濁り形成に参加していることを示す。ビール濁り安定性に対するＰＶＰＰ効果を測定するために、ＰＶＰＰの種々の量が除炭酸されたボールに添加され、そして混合の１５分後に濾過によって除去された。ＰＶＰＰを添加する前に、該ビールは、４０℃で、１時間培養された。

表５は、冷却に応じてビール中に存在する濁りの量に対するＰＶＰＰの種々の量の添加の効果を示す。エンドプロテアーゼＡ又はパパインは添加されなかった。

（１）ビール会社で使用される３０ｇ／ｈｌ最大用量

表３では、４０℃で、１時間培養後に３ｇのパパイン／ｈｌビールの添加（それはビール業界で推奨される最大用量である）は、ほぼ３６％の濁り減少を生じる。プロリル特異的エンドプロテアーゼの添加の場合、４０℃で、１時間培養後に、１％のプロリル特異的エンドプロテアーゼの添加（ビール中の蛋白質の量に比例して）は、３８％のビール冷え濁りの減少を生じる（表１参照）。ビール業界において、ＰＶＰＰは、３０ｇ／ｈｌを超えない量で一般に添加される。ＰＶＰＰは、それがその量で加えられる場合、ほぼ２０％によって濁りを減少し、パパイン及びプロリル特異的エンドプロテアーゼ酵素の両方がＰＶＰＰよりも、より良い濁り阻害剤であることが結論されうる。

実施例２．１００％モルトマッシュ（ｍａｓｈ）に対するエンドプロテアーゼ添加及び１００％モルトオルト（ｗｏｒｔ）中の濁り減少
目的は、１００％モルトマッシュに対するプロリル特異的エンドプロテアーゼの添加が、最終のモルトオルトで濁り減少の結果を生ずるかを決定することであった。

各マッシュィング試験は、１００ｍｌの水に、２５ｇのミルド・モルトの混合で開始する。その後、マッシュは、５０℃まで加熱され、そして「エンドプロテアーゼＡ」の量の添加後に、該マッシュは、４回の連続的により高い温度へステップ・ワイズ加熱手段に従い処理される。表６は、マッシュィング温度プロフィールを示す。全てのマッシュィングの間、該マッシュは２００ｒｐｍで撹拌された。マッシュィングの最後に、該マッシュは室温に維持され、そして水蒸発を補うために水が添加された。その後、該マッシュは、固形からのオルト（液体）を分離するために濾紙上で濾過された。

０、２００及び５００μｌエンドプロテアーゼＡが、マッシュにそれぞれ添加された。１５分間、９０℃までエンドプロテアーゼＡを加熱することによって不活性化された５００μｌのエンドプロテアーゼＡが使用されたところの対照実験が行われた。オルトの濁りの濁度は、室温で且つ冷え濁り試験後に測定された。オルト冷え試験は、アルコールのないビールに対して、Ｃｈａｐｏｎによって推奨されるようにサンプル中に１０％（容量／容量）に達するまでエタノールを加えて、Ｃｈａｐｏｎ（冷え濁り試験−Ｐｆｅｕｆｆｅｒ操作指示書）に従い、アルコール／低温度試験で記載されたようにおこなわれた。

（１）ＥＢＣ：ヨーロッパビール会社協議会によって推奨されるネフェロ濁度ユニット

表７の結果は、プロリル特異的エンドプロテアーゼがモルトマッシュに添加された場合に、結果として生じるオルトが、プロリル特異的エンドプロテアーゼの添加なしに調製されたオルトよりも冷却に応じてより低い濁りであることを明らかに示す。

エンドプロテアーゼＡ効果を試験するために、冷え濁り試験はモルトオルトで実行された。プロリル特異的エンドプロテアーゼの添加は、オルト冷え濁りを減少したことが観察された。冷え濁り試験で形成された減少は、添加されるプロリル特異的エンドプロテアーゼ酵素の低い量でさえ観察された。酵素がマッシュに加えられる前に不活性化される場合、安定化効果は完全に消失する。すなわち、形成される濁りの量は、もはや減少しない。プロリル特異的酵素の添加によって生じた濁り減少は、非常に重要である。実施例では、８２％までの濁り減少が達成された。

モルトオルト中及び大麦オルト中のプロリル特異的エンドプロテアーゼ酵素の添加の影響を比較するために、エンドプロテアーゼＡの種々の量が大麦マッシュに添加されたところの実験がおこなわれた。ｐＨは、それぞれモルトオルトで５．６、大麦オルトで６．１であった。大麦オルト冷え濁り試験で得られた結果は、モルトオルトに対して前に観察されたように、プロリル特異的エンドプロテアーゼによる大麦マッシュの処理は、大麦オルト冷え濁りの重大な減少を生じることを示した。プロリル特異的エンドプロテアーゼで処理されたモルト及び大麦のマッシュの両方が、高く安定化されたオルトであるという結果を生じるが、効果は大麦オルトよりもモルトオルトでより強い。実に、２００μｌのエンドプロテアーゼＡのマッシュへの添加は、大麦オルトで約５９％且つモルトオルトで７０％より上の濁り減少を生じる。５００μｌのエンドプロテアーゼＡで行われた試験は、モルトオルトで８２％まで濁り減少を増加し、２００μｌエンドプロテアーゼＡ実験に比較して大麦オルトに濁り減少を改善しなかった。驚くべきことに、大麦マッシュへのエンドプロテアーゼＡの添加は明らかに濾過されたオルトを結果として生じ、一方、処理された非エンドプロテアーゼは曇った濾過されたオルトを結果として生じた（大麦マッシュ濾過は室温でおこなわれ、且つオルトの濁度はエタノール添加なしに室温で測定された）。その効果は、大麦マッシュに添加されたプロリル特異的エンドプロテアーゼの量でも観察された。

実施例３．ワインでの濁り減少
６．０Ｕ／ｍｌの特異的活性を有するプロリル特異的エンドプロテアーゼ（エンドプロテアーゼＢ）の種々の用量（０、３０、６０，１５０μｌ）が、５００ｍｌの白ワイン（下記「材料」の項で記載されたワイン）を含むフラスコに添加され、そして室温（２２〜２５℃）で、１９日間、窒素環境下で培養された。ワイン濁り安定は、下記「方法」の項で記載された加熱試験を使用し０、６、８、１２及び１９日後に測定された。

実験の結果が、表８に示される。表８では、濁りのワイン濁度は、ネフェロス濁度ユニット（ＮＴＵ）で表される。ΔＮＴＵ＝加熱後にワインサンプルに対して測定されたＮＴＵでの濁度、加熱前にワインサンプルに対して測定されたＮＴＵでの濁度。ワインの蛋白質を安定するために要求されるベントナイトの量は、式：（１．４８×ΔＮＴＵ）＋２に従い計算された。知られているように、ワインが濁り形成にそれほど影響されない場合に、より少ないベントナイトがワイン中で濁り形成を防ぐために必要とされる。

表８の結果は、加熱前に白ワインへのプロリル特異的エンドプロテアーゼの添加が、加熱後にワイン中に形成された濁りを減少することを示す。室温で培養の６日後に、該効果は観察される。実に、濁り減少は、添加された１５０μｌのエンドプロテアーゼＢで３９％、かつ３０μｌ又は６０μｌのエンドプロテアーゼＢでほほ１２％に達した。１２日後にかつ使用されるプロリル特異的エンドプロテアーゼの量が何であれ、濁り減少は４６％に達し、そして１９日後に７０％を超えた。それ故に、プロリル特異的エンドプロテアーゼは、濁り形成に対してワインを安定化するために要求されるベントナイトの量を防止するために又は強く減少するために使用されうることが明らかである。

実施例４．イチゴジュースでの濁り減少
イチゴフルーツジュースは、次のようにして調製された。イチゴは解凍されそして破砕されて、引き続き全ての外因性酵素例えばポリフェノールオキシダーゼを破壊し且つ蛋白質を変成するために、９０℃でブランチされた（加熱された）。その後、破砕されたイチゴは、５０℃に冷却され、Ｒａｐｉｄａｓｅ ＢＥ スーパー（ＤＳＭの商業的酵素製品、フランス）の６００ｇ／ｔで３０分間、５０℃で柔らかくされ、そして空気プレスで圧縮された。変成した蛋白質を除去するために、結果として生じる混合物は、８０００ｒｐｍの速度で遠心分離され、そして濾過された。ストロベリージュースが集められた。酸性化アルコール試験は陰性であり、それはジュースペクチンがないことが確認された。該ジュースのｐＨ値は、３．３であった。

エンドプロテアーゼＡ／イチゴジュース培養：エンドプロテアーゼＡ（５．０６Ｕ／ｍｌ）の種々の容量（０、５、１０、２０μｌ）が１００ｍｌのイチゴジュースに添加され、そして５０℃で、６０分間培養された。２つの対照実験がおこなわれた。（ｉ）２０μｌの不活性化されたエンドプロテアーゼＡ（３０分、８０℃で培養された）を添加することによる１つ目、及び（ｉｉ）１時間、５０℃で事前に培養された２０ｍｌのイチゴジュースに２００ｍｇのＰＶＰＰを添加することによる２つ目。１５分間、室温で混合された後に、該ＰＶＰＰが遠心分離で除去された。

ジュース加熱試験：該ジュース濁度は、８０℃、３０分間でフルーツジュースを加熱する前及び後に測定された。濁度を測定する前に、該加熱されたジュースは冷水下で冷却された。

濁度測定は、Ｒｅａｇｅｃｏｎ（アイルランド）からのＮＴＵ濁度標準で事前に校正された濁度計でおこなわれた。

表９での結果は、１００ｍｌイチゴジュース中に５μｌのエンドプロテアーゼＡの添加は、ジュース加熱試験後に形成された濁りを２５．７％まで減少したことを示す。１００ｍｌイチゴジュースへの１０μｌのエンドプロテアーゼＡの添加は、５μｌ試験に比較して濁り減少効果を改善しなかった。もしかすると、酵素活性は５μｌで最大であり、及びより多い酵素添加で、より多い蛋白質沈殿が得られる。

不活性化された酵素は、形成された濁りの量をなお減少したが、しかしながら、該効果はましてや目立たない。ＰＶＰＰの添加後に、ほとんど少しも濁りが観察されなかったが、サンプルの色がまた除去された。ＰＶＰＰの添加は濁り形成防止を結果として生じるという事実は、イチゴジュースにおいても濁りはおそらくポリフェノール−蛋白質相互作用の結果であることをまた表す。

Claims (18)

1. プロリン特異的エンドプロテアーゼ活性を有する単離されたポリペプチドであって、
   （ａ）配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．７、またはそれらのフラグメントと少なくとも４０％の全長アミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドと、
   （ｂ）（ｉ）配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６の核酸配列、または６０、好ましくは１００のヌクレオチドにわたって少なくとも８０％あるいは９０％同一である、より好ましくは２００のヌクレオチドにわたって少なくとも９０％同一であるそれらのフラグメントと、あるいは（ｉｉ）（ｉ）の核酸配列と相補的な核酸配列と、低いストリンジェンシィー条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドによってコードされるポリペプチドとから成る群から選択される、ポリペプチド。
2. 配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ Ｎｏ．７と少なくとも５０％、好ましくは少なくとも６０％、好ましくは少なくとも６５％、好ましくは少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、一層より好ましくは少なくとも９０％、最も好ましくは少なくとも９５％、及び一層最も好ましくは少なくとも９７％同一性を有するアミノ酸配列を有する、請求項１に記載のポリペプチド。
3. 配列ＩＤ Ｎｏ．４、配列ＩＤ Ｎｏ．５または配列ＩＤ． Ｎｏ．７のアミノ酸配列を含む、請求項１または２のポリペプチド。
4. （ｉ）配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６の核酸配列、またはそれらのフラグメントと、あるいは（ｉｉ）配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６の核酸配列と相補的な核酸配列と、低いストリンジェンシィー条件下で、より好ましくは中程度のストリンジェンシィー条件下で、及び最も好ましくは高いストリンジェンシィー条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドによってコードされる、請求項１または２に記載のポリペプチド。
5. 菌類、好ましくはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓから、より好ましくはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒから得られうる、請求項１〜４のいずれか１項に記載のポリペプチド。
6. 請求項１〜５のいずれか１項に記載のポリペプチドをコードする核酸配列、または低いストリンジェンシィー条件下で、より好ましくは中程度のストリンジェンシィー条件下で、及び最も好ましくは高いストリンジェンシィー条件下で、配列ＩＤ Ｎｏ．１、配列ＩＤ Ｎｏ．２、配列ＩＤ Ｎｏ．３若しくは配列ＩＤ Ｎｏ．６とハイブリダイズする核酸配列を含む単離されたポリヌクレオチド。
7. 適切な発現ホストにおいて上記ポリペプチドの生産を指示する１またはそれ以上の制御配列に動作可能に結合された請求項６に記載のポリヌクレオチドを含む核酸構成物。
8. 請求項７に記載の核酸構成物を含む組み換え発現ベクター。
9. 請求項７に記載の核酸構成物または請求項８に記載のベクターを含む組み換え宿主細胞。
10. 請求項９の記載の菌株／組み替え宿主細胞を培養して、上記ポリペプチドを含む上清及び／又は細胞を生産し、そして該ポリペプチドを回収することを含む請求項１〜５のいずれか１項に記載のポリペプチドを生産する方法。
11. 請求項１０に記載の方法によって生産されたポリペプチド。
12. ポリペプチドの生産に適切な条件下で、該ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む核酸構成物を含む宿主細胞を培養し、そして前記ポリペプチドを回収することを含む請求項１〜５のいずれか１項に記載のポリペプチドを生産する方法。
13. 請求項１２に記載の方法によって生産されたポリペプチド。
14. 請求項１〜５のいずれか１項に記載のエンドプロテアーゼをコードするＤＮＡ分子。
15. 飲料中の濁りの防止または減少において、請求項１２に記載の方法によって得られうる発酵培養液から得られたろ液を添加する方法。
16. 飲料の調製において、請求項１〜５のいずれか１項に記載のプロリル特異的エンドプロテアーゼを添加する方法。
17. ビール、ワインまたはフルーツジュースの調製において、精製されたプロリル特異的エンドプロテアーゼを添加する、請求項１６に記載の方法。
18. 請求項１６または１７に記載の方法によって得られる飲料。