JP2006521922A

JP2006521922A - マイクロカプセルを用いたコンビナトリアルライブラリの合成および試験の方法

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Publication number: JP2006521922A
Application number: JP2006506045A
Authority: JP
Inventors: グリフィズ，アンドルー・デイヴィッド; アベル，クリス; ホルフェルダー，フロリアン; マストロバティスタ，エンリコ
Original assignee: Medical Research Council
Current assignee: Medical Research Council
Priority date: 2003-03-31
Filing date: 2004-03-31
Publication date: 2006-09-28
Also published as: CA2520630C; CA2520630A1; US20060154298A1; US7718578B2; US10052605B2; GB0307428D0; WO2004087308A8; US20180361346A1; AU2004226693A1; EP1606049A1; JP6100736B2; EP2540389A1; WO2004087308A1; AU2004226693B2; JP2014221907A; EP3524344A1; JP2012070750A; US20100210479A1

Abstract

本発明は、（ａ）マイクロカプセル内に一次化合物のセット２つ以上をコンパートメント化するステップであって、マイクロカプセルのある割合が化合物２つ以上を含むようにするステップと；（ｂ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル中に二次化合物を形成するステップと；を含む化合物の合成方法を記載する。本発明は更に、生化学的系の標的成分に結合するか、標的の活性をモジュレートし、マイクロカプセル内に共コンパートメント化される化合物の識別を可能にする。

Description

本発明は、生化学的系における標的成分に結合するか、標的の活性をモジュレートする分子の合成および識別に使用される方法に関する。

過去１０年間に渡り、化合物ライブラリのハイスループットスクリーニング（ＨＴＳ）は医薬品研究の基礎となる技術となった。ＨＴＳの研究は盛んである。現在の推定では生物学的スクリーニングおよび前臨床の薬理学的試験のみで医薬品産業の総研究開発（Ｒ＆Ｄ）経費の〜１４％を計上する(Handen,Summer 2002)。運転コストを低減し、スクリーニングできる化合物および標的の数を増大させる必要性からＨＴＳは近年顕著な進歩を示している。従来の９６穴のプレートは現在では３８４ウェル、１５３６ウェル、さらには３４５６ウェルのフォーマットに大部分が置き換えられている。これが市販のプレート操作ロボット工学と組み合わせられて、一日当たり100,000試験以上のスクリーニングを可能とし、試験の小型化により試験当たりのコストを大幅に削減している。

ＨＴＳは他の数種の開発により補完されている。コンビナトリアル化学は、ＨＴＳのための構造的に関連する多数の化合物を生成するための強力な技術である。現在、コンビナトリアル合成は大部分が空間的に分割されたパラレル合成を採用している。合成できる化合物の数は数百または数千に限定されるが、化合物は数ミリグラムまたは数十ミリグラムの規模で合成でき、完全な特性決定、さらには精製まで可能にする。より大型のライブラリは１ビーズ１化合物ライブラリを生成させるビーズ上のスプリット合成を用いて合成できる。この方法が採用されている範囲がはるかに狭小である理由は、一連の制約事項：例えば固相合成の必要性；最終生成物の特性決定の困難（シェア数と小規模のため）；１回または２，３回の試験にしか十分でない程度の少量の、ビーズ上の化合物；ヒット化合物の構造の同定の困難（タグ付けまたはコード方法に依存する場合が多く、合成および分析の両方を複雑化させる）である。これにもかかわらず、スプリット合成およびシングルビーズ分析はなお信頼できるものである。最近、ミニチュア化されたスクリーニングおよびシングルビーズ分析における多大な開発が行われた。例えば、印刷技術によりタンパク質結合試験が、各１ｎｌ容量の10,800化合物スポットを含むスライド上で実施できるようになった(Hergenrother et al.,2000)。しかしながらコンビケムは限定された数量のリード化合物しか与えていない。2000年4月の段階で、コンビナトリアル化学のヒストリを有する化合物僅か１０種のみが臨床研究に付され、これらの３種を除き全てが（オリゴ）ヌクレオチドまたはペプチドである(Adang and Hermkens,2001)。実際、過去１０年間のＨＴＳおよびコンビナトリアル化学における多大なる投資にもかかわらず、年間導入される新規薬剤の数が一定以上となることはない。

ダイナミックコンビナトリアル化学（ＤＣＣ）もまた可逆的に相互交換可能な成分のセットからダイナミックコンビナトリアルライブラリ（ＤＣＬ）を生成するために使用できるが、今日まで生成されスクリーニングされたライブラリのサイズはなおかなり限定されている（≦40,000）(Ramstron and Lehn,2002)。

試験のための候補分子のサブセットを識別するためにコンピューター試行を用いて多数の化合物ベースを検索する仮想スクリーニング（ＶＳ）(Lyne,2002)もまたＨＴＳと統合されれば極めて有用である。しかしながら、ＶＳおよびＨＴＳの性能を直接比較した試験は今日までほとんど無く、更なる検証が必要である。

これら全ての開発にもかかわらず、現在のスクリーニングのスループットはなお十分とは程遠いものである。ヒトゲノムの個体遺伝子の数（〜30,000）および既存の化学を用いて理論的に得られる独特の化学構造の数の現在の推定値によれば、全ての考えられる治療標的に対して構造−活性スペースを完全にマッピングするためには多大な数の試験が必要となることが示唆され得る(Burbaum,1998)。

従って、僅か数フェムトリットルの反応容量を用いながら、極めて低コストで多大な数量（≧１０¹⁰）の化合物を迅速に生成およびスクリーニングする能力を有する方法は、新薬の手がかりを得る際に多大な有用性を有するはずである。

本発明は、第１の態様において、化合物のレパートリーを製造するための方法であって、
（ａ）マイクロカプセル内に一次化合物のセット２つ以上をコンパートメント化するステップであって、マイクロカプセルのある割合が、該セットの各々の代表である化合物１つ以上の複数のコピーを含むようにし、該化合物１つ以上が、一次化合物のセットのサブセットを形成するステップと；
（ｂ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル中に二次化合物を形成するステップと；
を含む方法を提供する。

化合物は該セットのメンバーとなっているセットの「代表」であり；従って、好ましくは、各マイクロカプセルが各セットに由来する化合物を含む。マイクロカプセルは各セットに由来する１つより多い異なる化合物を含んでよいが、それは該セットの一部分のみ（即ちサブセット）を含む。あるセットのサブセットは、好ましくはセットの数の１０％以下を示し、好ましくは、この数値は、９％、８％、７％、６％、５％、４％、３％、２％、１％以下である。

最も好ましくはマイクロカプセルは一次化合物の各セットに由来する単一の化合物のみを含む。

本発明の方法において使用する一次化合物のセットは、任意の数量の異なる化合物からなることができる。少なくとも第１のセットは２つ以上の化合物を含むが、他のセットは単一の化合物であってよい。好ましくは、第１のセットは単一の化合物であって、少なくとも１つの別のセットは化合物のレパートリーを含む。このレパートリーが大きいほど、生成される異なる二次化合物の数が大きくなる。

好ましくは、化合物の少なくとも１セットは異なる化合物のレパートリーを含む。しかしながら少なくとも１つのセットは単一の化合物からなるものであってよく、これにより、二次化合物が全て１つのセットにおいて使用されるその単一の化合物に基づくかこれを含むように構築される。セットの数が大きいほど、各セットの多様性が大きいほど、生成される二次化合物の最終的な多様性が大きくなる。

好ましくは、ステップ（ａ）におけるコンパートメント当たりの異なる化合物の数が、ステップ（ｂ）における二次化合物を形成する一次化合物の数と等しくなる。

第２の態様において、本発明は、共に反応して、標的に結合するか標的の活性をモジュレートすることができる二次化合物を形成する（複数の）一次化合物を識別するための方法であって、
（ａ）マイクロカプセル内に一次化合物のセット２つ以上をコンパートメント化するステップであって、マイクロカプセルのある割合が、化合物２つ以上を含むようにするステップと；
（ｂ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル中に二次化合物を形成するステップと；
（ｃ）反応して標的に結合するか標的の活性をモジュレートする二次化合物を形成する一次化合物のサブセットを識別するステップと；
を含む方法を提供する。

第３の態様において、本発明は、標的に結合するか標的の活性をモジュレートする能力が増強されている化合物を合成するための方法であって、
（ａ）本発明の第２の態様のステップ（ｃ）において識別された一次化合物のサブセットをマイクロカプセル内にコンパートメント化し、任意選択的に一次化合物の別のセットをコンパートメント化するステップと；
（ｂ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル中に二次化合物を形成するステップと；
（ｃ）反応して標的に結合するか標的の活性をモジュレートする二次化合物を形成する一次化合物のサブセットを識別するステップと；
を含む方法を提供する。

好ましくは、ステップ（ａ）〜（ｃ）は繰り返されるが、最初のサイクルの後に、ステップ（ａ）は、ステップ（ｃ）で識別された一次化合物のサブセットをマイクロカプセル内にコンパートメント化し、任意選択的に、化合物の別のセットをコンパートメント化するステップを含む。

第４の態様において、本発明は、標的に結合するか標的の活性をモジュレートする個々の化合物を識別するための方法であって、
（ａ）本発明の第２または第３の態様のステップ（ｃ）において識別された一次化合物および一次化合物の別のセットをマイクロカプセル内にコンパートメント化するステップと；
（ｂ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル中に二次化合物を形成するステップと；
（ｃ）反応して標的に結合するか標的の活性をモジュレートする二次化合物を形成する一次化合物のサブセットを識別するステップと；
を含む方法を提供する。

二次化合物が２以上の一次化合物の間の化学反応により形成される場合、それは、ステップ（ａ）〜（ｃ）を反復的に繰り返すことにより識別できるが、最初のサイクルの後に、ステップ（ｃ）は、本発明の第２または第３の態様のステップ（ｃ）で識別された一次化合物；（本発明の第４の態様における）前のサイクルの各々のステップ（ｃ）において識別された一次化合物；および、一次分子の別のセットをコンパートメント化することを含む。

好ましくは、所望の活性は、結合活性および標的の活性のモジュレーションからなる群から選択される。好ましくは、標的は化合物と共にマイクロカプセル内にコンパートメント化される。

化合物のセットはマイクロカプセル内への化合物２つ以上の複数のコピーのカプセル化を達成するための種々の方法でコンパートメント化してよい。

例えば各化合物の水溶液の少量区分を、機械的エネルギーを与えながら油相（好ましくは界面活性剤および／または他の安定化分子を含有する）内に投入(deposit)することにより、各化合物を複数の水性マイクロカプセル（各々が（大部分において）１種類の化合物であるがその複数のコピーを含む）内に分散させることができる。好ましくは、化合物はインクジェット印刷技術(Calvert,2001;de Gans et al.,2004)を用いながら、より好ましくは圧電気ドロップオンデマンド（ＤＯＤ）インクジェット印刷技術により産生された液滴の形態で油相内に投入できる。インクジェット印刷技術はエマルジョンの形成の直前に、一次化合物および任意選択的に他の試薬（例えば標的活性を試験するための標的および試薬）を混合するために使用できる。好ましくは、複数の化合物をコンビナトリアルな様式において複数の標的と混合できる。

即ち、上記ステップ（ａ）は、化合物２つ以上を含む個別のエマルジョンコンパートメントを形成するステップと、エマルジョンコンパートメントを混合して乳化された化合物のレパートリーを形成するステップであって、任意の１つのマイクロカプセルにおいて、そのレパートリーのサブセットが複数のコピーで示されるようにする、ステップとを含むように改変することができ。

更にまた化合物ライブラリは微小流体手法を用いて作成した高度に単分散のマイクロカプセル内にコンパートメント化することができる。例えば、各化合物の少量分を油の共流動ストリーム内での液滴の破壊により生成された油中水エマルジョン中の水性マイクロカプセル１つ以上（多分散度３％未満）内にコンパートメント化できる(Umbanhowar et al.,2000)。好ましくは、その後、水性マイクロカプセルを微小流体チャンネル内の油のストリーム内の層流により輸送する(Thorsen et al.,2001)。単一の化合物を含有するマイクロカプセルは、任意選択的に微小流体を用いてより小さいマイクロカプセル２つ以上に分割することができる(Link et al.,2004;Song et al.,2003)。一次化合物を含有するマイクロカプセルを他のマイクロカプセルと融合(Song et al.,2003)することにより二次化合物を形成できる。化合物を含有するマイクロカプセルはまた、任意選択的に、標的を含有するマイクロカプセルと融合できる。標的を含有する単一のマイクロカプセルは、任意選択的に、より小型のマイクロカプセル２つ以上に分割し、これをその後異なる化合物、または異なる濃度の化合物を含有するマイクロカプセルと融合することができる。好ましくは、化合物および標的をマイクロカプセル融合により混合した後に、標的の活性を試験するために必要な試薬（例えば標的が酵素である場合は標的のための基質）を送達する第２のマイクロカプセル融合を行う。これにより化合物が標的に結合する時間が与えられる。マイクロカプセルは微小流体装置を用いて分析、および任意選択的に分類することができる(Fu et al.,2002)。

別の態様において、本発明は、
（ａ）マイクロビーズに一次化合物のセット２つ以上を結合させるステップと；
（ｂ）マイクロカプセルのある割合がマイクロビーズ２つ以上を含むようにマイクロカプセル内にマイクロビーズをコンパートメント化するステップと；
（ｃ）マイクロビーズから一次化合物のセットの少なくとも１つを放出させるステップと；
（ｄ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル内に二次化合物を形成するステップと；
を含む化合物のレパートリーの製造方法を提供する。

好ましくは、化合物はビーズから切断可能とする。化合物２セットより多くを使用する場合は、１つを除く全てのセットが切断可能であり；好ましくはそれらは全て切断可能である。化合物は光化学的に切断できるリンカーによりマイクロビーズに結合してよい。

更に別の態様において、本発明は、
（ａ）マイクロビーズに一次化合物のセット２つ以上を結合させるステップと；
（ｂ）多くのコンパートメントがマイクロビーズ２つ以上を含むように標的と共にマイクロカプセル内にマイクロビーズをコンパートメント化するステップと；
（ｃ）マイクロビーズから一次化合物を放出させるステップと；
（ｄ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル内に二次化合物を形成するステップと；
（ｅ）反応して、標的に結合するか標的の活性をモジュレートする二次化合物を形成する一次化合物のサブセットを識別するステップと、
を含む、共に反応して、標的に結合するか標的の活性をモジュレートすることができる二次化合物を形成する一次化合物を識別するための方法を提供する。

好ましくは、ステップ（ｂ）において、コンパートメント当たりのマイクロビーズの最頻数がステップ（ｄ）における二次化合物を形成する一次化合物の数と等しくなる。

別の態様において、本発明は、
（ａ）本発明の第２の態様のステップ（ｅ）において識別された一次化合物のサブセットをマイクロビーズ上に結合させ、任意選択的に、一次化合物の別のセットを結合させるステップと；
（ｂ）多くのコンパートメントがマイクロビーズ２つ以上を含むように標的と共にマイクロカプセル内にマイクロビーズをコンパートメント化するステップと；
（ｃ）マイクロビーズから一次化合物を放出させるステップと；
（ｄ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル内に二次化合物を形成するステップと；
（ｅ）反応して、標的に結合するか標的の活性をモジュレートする二次化合物を形成する一次化合物のサブセットを識別するステップと、
を含む、標的に結合するか標的の活性をモジュレートする能力が増強された化合物の合成方法を提供する。

好ましくは、ステップ（ａ）〜（ｅ）は繰り返されるが、最初のサイクルの後に、ステップ（ａ）は、ステップ（ｅ）で識別された一次化合物のサブセットをマイクロビーズ上に結合し、任意選択的に、化合物の別のセットを結合するステップを含む。

別の態様において、本発明は、
（ａ）本発明の第２または第３の態様のステップ（ｅ）で識別された一次化合物および一次化合物の別のセットをマイクロビーズ上に結合させるステップと；
（ｂ）多くのコンパートメントがマイクロビーズ２つ以上を含むように標的と共にマイクロカプセル内にマイクロビーズをコンパートメント化するステップと；
（ｃ）マイクロビーズから一次化合物を放出させるステップと；
（ｄ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル内に二次化合物を形成するステップと；
（ｅ）反応して、標的に結合するか標的の活性をモジュレートする二次化合物を形成する一次化合物のサブセットを識別するステップと、
を含む、標的に結合するか標的の活性をモジュレートする個々の化合物を識別する方法を提供する。

二次化合物が２つより多くの一次化合物の間の化学反応により形成される場合は、それはステップ（ａ）〜（ｅ）を反復的に繰り返すことにより識別できるが、最初のサイクルの後に、ステップ（ａ）は、本発明の第２または第３の態様のステップ（ｅ）で識別された一次化合物、（本発明の第４の態様の）前のサイクルの各々のステップ（ｅ）で識別された一次化合物、および、一次分子の他のセットをマイクロビーズ上に結合するステップを含む。

好ましくは、所望の活性は結合活性および標的の活性のモジュレートからなる群から選択される。好ましくは、標的はマイクロビーズと共にマイクロカプセル内にコンパートメント化される。

本発明の好ましい実施に従えば、化合物は、全体としてマイクロカプセルを検出可能とする化合物またはその誘導体の活性に従ってスクリーニングすることができる。従って、本発明は、所望の活性を有する化合物が、化合物を含有するマイクロカプセルおよび任意選択的にそれを担持しているマイクロビーズを識別可能とする、マイクロカプセルの変化またはマイクロカプセル内の分子１つ以上の修飾を誘導する方法を提供する。従ってこの実施形態において、マイクロカプセルは、（ａ）そこに含有される化合物の活性に従って相互に物理的に分類され、分類されたマイクロカプセルの内容物を分析することによりそれが含有している化合物の内容(content)を決定するか；または、（ｂ）分類することなく直接分析することによりマイクロカプセルが含有している化合物の内容を決定するかのいずれかである。

本発明の好ましい実施形態によれば、化合物のスクリーニングは例えば下記の通り実施することができる。

（Ｉ）第１の実施形態において、マイクロカプセルは、全体としてマイクロカプセルを検出可能とする化合物またはその誘導体の活性に従ってスクリーニングされる。従って、本発明は所望の活性を有する化合物が、化合物を含有するマイクロカプセルおよびそれを担持しているマイクロビーズを識別可能とする、マイクロカプセルの変化またはマイクロカプセル内の分子１つ以上の修飾をもたらす方法を提供する。従ってこの実施形態において、マイクロカプセルは、（ａ）そこに含有される化合物の活性に従って相互に物理的に分類され、分類されたマイクロカプセルの内容物は任意選択的に１つ以上の共通のコンパートメント内にプールされ、マイクロカプセルの内容物を分析することにより化合物の内容を決定するか；または（ｂ）分類することなく直接分析することによりマイクロカプセルが含有していた化合物の内容を決定するかのいずれかである。マイクロカプセルがマイクロビーズを含有する場合は、マイクロビーズを分析することによりそれらをコーティングしている化合物を決定できる。

（II）第２の実施形態において、マイクロビーズはコンパートメント１つ以上内にマイクロカプセルをプールした後に分析する。この実施形態においては、所望の活性を有する化合物はそれを担持している（そして同じマイクロカプセル内に存在している）マイクロビーズを、後のステップにおいて識別可能とするような方法で修飾する。反応を停止し、後にマイクロカプセルを破壊して個々のマイクロカプセルの内容物全てがプールされるようにする。修飾されたマイクロカプセルは識別され、（ａ）マイクロビーズ上にコーティングされた化合物の活性に従って相互に物理的に分類され、分類されたマイクロビーズを分析することによりそれらをコーティングする／していた化合物の内容を決定するか；または（ｂ）分類することなく直接分析することによりマイクロビーズをコーティングする／していた化合物の内容を決定するかのいずれかである。当然ながら、マイクロビーズの修飾は、それが化合物の直接の作用により誘発されるという点において直接のものであるか、または、所望の活性を有する化合物を１つ以上が使用している一連の反応によりマイクロビーズの修飾がもたらされる間接的なものであってよい。好ましくは、標的をマイクロビーズに結合されており、リガンドであり、マイクロカプセル内の化合物は該リガンドに直接または間接的に結合することによりマイクロビーズの単離を可能とする。別の形態においては、標的に対する基質はマイクロビーズに結合されており、マイクロカプセル内の化合物の活性はマイクロビーズの部分として残存し、その単離を可能とする生成物への該基質の変換を直接または間接的にもたらす。あるいは、化合物の活性は生成物への該基質の変換を防止または抑制してよい。更にまた、マイクロカプセル内での化合物の活性の生成物は、後にマイクロビーズと複合体化してその識別を可能とする生成物の生成を直接または間接的にもたらす。

(III)第３の実施形態においては、共通のコンパートメント１つ以上の中にマイクロカプセルをプールした後にマイクロビーズを分析する。本実施形態においては、所望の活性を有する化合物は、化合物を含有するマイクロカプセルおよびそれを担持するマイクロビーズの変化をもたらす。この変化は、検出されれば、コンパートメント内のマイクロビーズの修飾をトリガーする。反応を停止し、後にマイクロカプセルを破壊することにより個々のマイクロカプセルの内容物を全てプールする。修飾されたマイクロビーズを識別し、（ａ）マイクロビーズ上にコーティングされた化合物の活性に従って相互に物理的に分類し、分類されたマイクロビーズを分析してそれらをコーティングする／していた化合物の内容を決定するか；または（ｂ）分類することなく直接分析することによりマイクロビーズをコーティングする／していた化合物の内容を決定するかのいずれかである。

マイクロカプセルまたはマイクロビーズはその光学特性を変化させるように化合物の作用により修飾してよい。例えば、マイクロビーズの修飾はこれを更にマイクロカプセル外部で修飾可能とし、これによりその光学特性の変化を誘導できる。

別の実施形態においては、マイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の変化は標的への特徴的な光学特性を有する化合物の結合によるものである。

更に、マイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の変化は化合物による特徴的な光学特性を有する標的の結合によるものである。

マイクロカプセルの光学特性の変化は化合物による標的の活性のモジュレートによるものであってよい。化合物は標的の活性を活性化または抑制してよい。例えば標的が酵素である場合は、基質および標的により触媒される反応の生成物は異なる光学特性を有することができる。好ましくは、基質および生成物は異なる蛍光特性を有する。マイクロカプセルがマイクロビーズを含む場合は、基質および生成物の両方が同様の光学特性を有することができるが、ただし反応生成物のみがマイクロビーズと結合または反応するが基質はそれをせず、これにより、マイクロビーズの光学特性が変化する。

マイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の変化はまた標的および選択すべき反応の生成物の異なる光学特性によるものであることができる。標的および生成物の両方が同様の光学特性を有する場合は、選択すべき反応の生成物のみがマイクロビーズと結合または反応するが標的はそれをせず、これにより、マイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性が変化する。

別の態様においては、別の試薬が、マイクロカプセルまたはマイクロビーズに結合するかこれに含まれている生成物（基質ではない）に特異的に結合するか、または特異的に反応することにより、マイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性を改変する。

好ましくは、マイクロカプセルまたはマイクロビーズは化合物の活性により直接または間接的に修飾され、更にチラミドシグナル増幅（ＴＳＡ（商標）；ＮＥＮ）により修飾され、その結果として直接または間接的に該マイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の変化がもたらされ、これによりその分離が可能となる。

コンパートメント内で検出される変化は、化合物の直接の作用、または一連の反応（その１つ以上が所望の活性を有する化合物を使用している）が、検出される変化をもたらす間接的な作用により誘発してよい。

化合物がビーズに結合する場合は、化合物がマイクロビーズ上にコーティングされる密度がマイクロカプセルの大きさと組み合わせられてマイクロカプセル内の化合物の濃度を決定する。高い化合物のコーティング密度および小型のマイクロカプセルは共に、より高い化合物濃度をもたらし、これは標的に対する親和性が低い分子の選択に好ましいかもしれない。逆に、低い化合物コーティング密度および大型のマイクロカプセルは共により低い化合物濃度をもたらし、これは標的に対する親和性が高い分子の選択に好ましいかもしれない。

好ましくは、マイクロカプセル化はエマルジョンの形成により達成される。

マイクロビーズは非磁性、磁性または常磁性であることができる。

好ましくは、マイクロカプセルまたはマイクロビーズはその蛍光の変化の検出により分析する。例えば、マイクロビーズはフローサイトメトリーで分析し、任意選択的に蛍光活性化細胞ソーター（ＦＡＣＳ）を用いて分類できる。標的および生成物の異なる蛍光特性は蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）によるものであることができる。

別の実施形態において、マイクロカプセルの内分環境は、エマルジョンの連続相に試薬１つ以上を添加することにより修飾できる。これにより試薬は必要に応じて反応の最中にマイクロカプセル内に拡散できる。

本発明は更に、前記した態様にかかる方法であって、一次化合物の反応により生成した二次化合物を単離するステップを更に含み、任意選択的に二次化合物１つ以上を製造するステップを更に含む方法に関する。

本発明はまた本発明により識別される物を提供する。この点に関し、「物」とは本発明により選択可能である任意の化合物を指す。

本発明のその他の実施形態は以下の詳細な説明および添付する請求項に記載する通りである。

［定義］
「マイクロカプセル」という用語は本明細書においては、当分野で通常用いられており、さらに後述する意味に従う。しかしながら本質的にはマイクロカプセルは、所望の活性を有する分子の識別を可能にする本明細書に記載の分子機序における成分の交換をその輪郭となる境界が制限している人工のコンパートメントである。輪郭となる境界は好ましくはマイクロカプセルの内容物を完全に封入するものである。好ましくは、本発明の方法において使用するマイクロカプセルは極めて多数量で製造可能であり、これにより化合物のライブラリをコンパートメント化できる。任意選択的に、化合物をマイクロビーズに結合できる。本明細書において使用されるマイクロカプセルはその内部において混合および分類が可能であり、これにより本発明の方法の高スループット能を促進する。固体表面上の液滴およびマルチウェルプレートのアレイは本明細書においてはマイクロカプセルとは定義しない。

マイクロカプセルのある「割合」（化合物２つ以上またはマイクロビーズ２つ以上を含むものとして定義される）とは、該当するマイクロカプセルの任意の部分（該マイクロカプセルの全てを包含する）である。好ましくは、これはその少なくとも２５％、好ましくは５０％、より好ましくは６０％、７０％、８０％、９０％または９５％である。

「マイクロビーズ」という用語は本明細書においては、当分野で通常用いられており、さらに後述する意味に従う。マイクロビーズはまた、マイクロスフェア、ラテックス粒子、ビーズまたはミニビーズとして当業者に知られているものであり、２０ｎｍ〜１ｍｍの直径のものが入手可能であり、種々の材料、例えばシリカおよび種々の重合体、共重合体および３元重合体から製造できる。高度に均一の誘導体化された(derivatized)および誘導体化されていない非磁性および常磁性のマイクロビーズ（ビーズ）は多くの販売元より入手できる(例えばSigma、Bangs Laboratories、LuminexおよびMolecular Probes)(Fornusek and Vetvicka,1986)。

マイクロビーズは、マイクロカプセルへ分配することにより本発明に従って「コンパートメント化」できる。例えば、好ましい態様において、マイクロビーズを水／油混合物中に入れ、乳化して、本発明のマイクロカプセルを含む油中水エマルジョンを形成できる。マイクロビーズの濃度を調節して、各マイクロカプセル内に出現する平均のマイクロビーズ数を制御することができる。

「化合物」という用語は本明細書においては当分野で通常用いられている意味に従う。化合物という用語は、その最も広い意味において、即ち、所定の割合で元素２つ以上を含む物質（分子および超分子複合体(supramolecular complex)を含む）として使用される。この定義には医薬品の大部分を構成する小分子（典型的には＜５００ダルトン）も包含される。しかしながら、定義はまたより大型の分子、例えば重合体、例えばポリペプチド、核酸および炭水化物およびその超分子複合体も包含する。

「一次化合物(primary compound)」という用語は本明細書においてはマイクロカプセルにコンパートメント化された化合物またはビーズにカップリングされた化合物を指す。

「二次化合物(secondary compound)」という用語は本明細書においては、（任意選択的にマイクロビーズからの、少なくとも１つの一次化合物の放出の後に）マイクロカプセル内の一次化合物２つ以上の間の反応により形成された化合物を指す。好ましくは、全ての一次分子がマイクロビーズから放出される。二次化合物は一次化合物間の共有結合または非共有結合の結果として生じることができる。

「スカフォールド」という用語は本明細書においては当分野で通常用いられている意味に従う。即ちコンビナトリアルライブラリの全てのメンバーに共通の分子のコア部分である(Maclean et al.,1999)。任意選択的に、二次化合物はスカフォールドを含んでよい。

化合物の「レパートリー」とは多様な化合物の群であり、これはまた化合物のライブラリとも称することができる。化合物のレパートリーは当分野で知られた任意の手段、例えばコンビナトリアル化学、化合物進化により生成させるか、または、Sigma Aldrich,Discovery Partners International,MaybridgeおよびTriposのような市販元より購入してよい。レパートリーは、好ましくは少なくとも１０²、１０³、１０⁴、１０⁵、１０⁶、１０⁷、１０⁸、１０⁹、１０¹⁰、１０¹¹以上の異なる化合物を含み、これは構造または機能において関係していても無関係でもよい。

化合物の１つの「セット」とは、化合物のレパートリー、またはレパートリーの任意の部分（例えば単一の化合物種）であってよい。本発明は、共に反応する化合物の２つ以上のセットの使用を意図している。セットは単一のレパートリーまたは複数の異なるレパートリーに由来してよい。

マイクロビーズへの化合物の結合を行うリンカーの切断により化合物をマイクロビーズから「放出」させることができる。マイクロビーズからの化合物の放出により化合物はより自由にマイクロカプセルの他の内容物と相互作用ができるようになり、その内部の反応に関与できるようになり、任意選択的に他の試薬と組み合わさって新しい化合物、複合体、分子または超分子複合体を形成できるようになる。リンカーの切断は任意の手段により実施でき、マイクロカプセルを用いることなく実施できる光化学的切断が好ましい。光化学的に切断できるリンカーは当分野で知られており(例えばGordon and Balasubramanian,1999参照)、さらに後述する通りである。

本明細書においては、「標的(target)」とは任意の化合物、分子または超分子複合体である。典型的な標的は医療上の意味を有する標的を包含し、例えば薬剤標的、例えば受容体、例えばＧタンパク質結合受容体およびホルモン受容体；シグナリング経路に関与する転写因子、プロテインキナーゼおよびホスファターゼ；微生物に特異的な遺伝子産物、例えば細胞壁成分、レプリカーゼおよび他の酵素；工業的に関連のある標的、例えば食品産業において使用される酵素、研究または生産目的の試薬等を包含する。

「活性」とは、本明細書においては、標的の活性のモジュレーションに関連して言及する場合は、標的の任意の活性、または、標的により影響される分子の活性であることができ、これは本明細書において試験する化合物により直接または間接的にモジュレートすることができる。標的の活性は、任意の測定可能な生物学的または化学的な活性、例えば結合活性、酵素活性、第３の酵素または他の分子に対する活性化または抑制の活性、疾患を誘発するか代謝または他の機能に影響する能力等であってよい。本明細書において言及する活性化および抑制とは、所望の活性を１．５倍、２倍、３倍、４倍、５倍、１０倍、１００倍以上の増大または低減を指す。モジュレーションが不活性化である場合は、不活性化は実質的に完全な不活性化である。更にまた所望の活性は純粋に結合活性であってよく、これには結合する標的の活性のモジュレーションが関与してもしなくてもよい。

本明細書において「低分子量」または「小分子」と定義される化合物は医薬品分野において「小分子」と一般的に称される分子である。このような化合物はポリペプチドおよび他の大型分子複合体よりも小型であり、患者および他の対象に容易に投与でき、消化(assimilate)されるものである。小分子薬剤は経口投与または筋肉内注射用に好適に製剤できる。例えば小分子は２０００ダルトン以下；好ましくは１０００ダルトン以下；好ましくは２５０〜７５０ダルトン；およびより好ましくは５００ダルトン未満の分子量を有することができる。

「選択可能な変化(selectable change)」とは、測定可能であり、当該変化を引き起こす化合物を識別または単離するために利用可能である任意の変化である。選択は、（任意選択的に他の試薬と複合体化された際に）、マイクロカプセル、マイクロビーズまたは化合物自体のレベルで起こってよい。特に好ましい実施形態は光学的検出であり、その場合、選択可能な変化は光学特性の変化であり、これは例えばＦＡＣＳ装置において検出および利用でき、これにより所望の変化を表すマイクロカプセルまたはマイクロビーズを分離できる。

本明細書においては光学特性の変化は電磁放射の吸収または放射の任意の変化、例えば吸光度、ルミネセンス、燐光または蛍光の変化を指す。このような特性の全てが「光学的」という用語に包含される。マイクロカプセルまたはマイクロビーズは、例えばルミネセンス、蛍光または燐光活性化分類により識別され、任意選択的に分類される。好ましい実施形態においては、フローサイトメトリーを用いてマイクロカプセルまたはマイクロビーズを識別し、任意選択的に分類する。種々の光学特性を分析のためおよび分類をトリガーするために使用でき、例えば光散乱(Kerker,1983)および蛍光分極(Rolland et al.,1985)が挙げられる。高度に好ましい実施形態においては、マイクロカプセルまたはマイクロビーズは、蛍光活性化細胞ソーター（ＦＡＣＳ）を用いて分析され、任意選択的に分類される(Norman,1980;Mackenzie and Pinder,1986)。

マイクロカプセル中またはビーズ上の化合物は当業者がよく知る種々の手法、例えば質量スペクトル分析、化学的タグ付けまたは光学的タグ付けにより識別できる。

［一般的方法］
特段の記載が無い限り、本明細書において使用する全ての技術的および専門的な用語は本分野（例えば細胞培養、分子遺伝学、核酸化学、ハイブリダイゼーション技術および生化学）の当業者が一般的に理解している意味と同様の意味を有する。分子、遺伝および生化学的方法（一般的には、引用により本明細書に組み込まれるSambrook et al.,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,2d ed(1989)Cold Spring Harbor Laboratory Press,Cold Spring Harbor,N.Y.およびAusbel et al.,Short Protocols in Molecular Biology(1999)4th Ed,John Wiley&Sons,Inc.参照）および化学的方法には、標準的な技術が使用される。更にまた、Harlow&Lane,A Laboratory Manual Cold Spring Harbor,N.Y.も標準的な免疫学的技術について参照される。

〔（Ａ）一般的説明〕
本発明のマイクロカプセルは、本発明が機能するために適切な物理学的特性を必要とする。

まず、複数のマイクロカプセル間で化合物および標的が拡散しないようにするためには、各マイクロカプセルの内容物を周囲のマイクロカプセルの内容物から隔離することにより、実験期間中を通じてマイクロカプセル間での化合物および標的の交換を皆無または極僅かとしなければならない。

第２に本発明の方法では、マイクロカプセル当たり限られた数量のみビーズが存在しなければならない。これにより化合物および標的が他のビーズから隔離されることになる。

第３にマイクロカプセルの形成および組成は標的の活性を低減させてはならない。

結果として、使用する任意のマイクロカプセル化系はこれらの３つの条件を満足しなければならない。適切な系は当業者に明らかなとおり、本発明の各用途における条件の厳密な性質により変動する。

広範な種類のマイクロカプセル化の操作法(Benita,1996参照)が使用可能であり、本発明に従って使用するマイクロカプセルを産生するために使用してよい。実際、２００を超えるマイクロカプセル化方法が文献に記載されている(Finch,1993)。

これらには膜エンベロープ水性ベシクル、例えば脂質ベシクル（リポソーム）(New,1990)および非イオン系界面活性剤ベシクル(van Hal et al.,1996)が包含される。これらは非共有結合的に組み立てられた分子の単一または複数の二重層(bilayer)の閉じた膜カプセルであり、各二重層は水性のコンパートメントによりその近隣から分離されている。リポソームの場合は、膜は脂質分子からなり；これらは通常はリン脂質であるが、コレステロールのようなステロールも膜内に取り込んでよい(New,1990)。種々の酵素触媒性化学的反応、例えばＲＮＡおよびＤＮＡ重合をリポソーム内で実施できる(Chakrabarti et al.,1994;Oberholzer et al.,1995a;Oberholzer et al.,1995b;Walde et al.,1994;Wick&Luisi,1996)。

膜エンベロープベシクル系の場合は、水相の大部分がベシクル外部にあり、従って非コンパートメント化されている。反応がマイクロカプセル内に限定されるためには、この連続の水相を除去するか、または、その内部の生物学的な系を抑制または破壊しなければならない(Luisi et al.,1987)。

酵素触媒性化学反応はまた、種々の他の方法により産生されたマイクロカプセル内でも実証されている。多くの酵素はＡＯＴ−イソオクタン−水系(Menger&Yamada,1979)のように逆ミセル溶液中(Bru&Walde,1991;Bru&Walde,1993;Creagh et al.,1993;Haber et al.,1993;Kumar et al.,1989;Luisi&B.,1987;Mao&Walde,1991;Mao et al.,1992;Perez et al.,1992;Walde et al.,1994;Walde et al.,1993;Walde et al.,1998)で活性である。

マイクロカプセルはまた界面重合および界面複合体形成により産生させることができる(Whateley,1996)。この種のマイクロカプセルは剛性で非透過性の膜または半透過性の膜を有することができる。硝酸セルロース膜、ポリアミド膜および脂質−ポリアミド膜を境界とする半透過性のマイクロカプセルは全て、多酵素系を含む生化学的反応を支援できる(Chang,1987;Chang,1992;Lim,1984)。極めて穏やかな条件下で形成できるアルギネート／ポリリジンマイクロカプセル(Lim&Sum,1980)もまた極めて生体適合性が高いことがわかっており、例えば生細胞および組織のカプセル化の有効な方法を与える(Chang,1992;Sun et al.,1992)。

エマルジョンのようなコロイド系における水性の環境の相分配に基づく非膜マイクロカプセル化系も使用してよい。

好ましくは本発明のマイクロカプセルはエマルジョン、即ち、顕微鏡的またはコロイドサイズの液滴として相の一方が他方の内部に分散している２つの不混和性の液相の不均質な系から形成する(Becher,1957;Sherman,1968;Lissant,1974;Lissant,1984)。

エマルジョンは、不混和性の液体の任意の適当な組み合わせから製造することができる。好ましくは本発明のエマルジョンは微細分割液滴の形態で存在する相（分散した内部または不連続の相）としての水（生化学的成分を含有）およびこれらの液滴が懸濁しているマトリックス（非分散の連続または外部の相）としての疎水性の不混和性液体（油）を有する。このようなエマルジョンを油中水（Ｗ／Ｏ）と称する。これは生化学的成分を含有する全水相が個別の液滴（内層）内にコンパートメント化されているという利点を有する。疎水性の油である外層は一般的には生化学的成分は含まず、従って不活性である。

エマルジョンは界面活性剤１つ以上を添加することにより安定化する。これらの界面活性剤は乳化剤と称され、水／油界面に作用して相の分離を防止（または少なくとも遅延）する。多くの油状物および多くの乳化剤を油中水エマルジョンの産生のために使用でき、最近の集計では16,000を超える界面活性剤が存在し、その多くは乳化剤として使用されている(Ash and Ash,1993)。適当な油は軽質白色鉱物油およびデカンを包含する。適当な界面活性剤は、非イオン系界面活性剤(Schick,1966)、例えばソルビタンモノオレエート(Span(商標)80;ICI)、ソルビタンモノステアレート(Span(商標)60;ICI)、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート(Tween(商標)80;ICI)およびオクチルフェノキシエトキシエタノール(Triton X-100)；イオン系界面活性剤、例えばコール酸ナトリウムおよびタウロコール酸ナトリウムおよびデオキシコール酸ナトリウム；化学的に負活性なシリコーン系の界面活性剤、例えばポリシロキサン−ポリセチル−ポリエチレングリコール共重合体（セチルジメチコンコポリオール）(例えばAbil(商標)EM90;Glodschmidt)；およびコレステロールを包含する。

フッ化炭素（または過フッ化炭素）連続相を有するエマルジョン(Krafft et al.,2003;Riess,2002)は特に好ましい。例えば、安定なパーフルオロオクチルブロミド中水およびパーフルオロオクチルエタン中水のエマルジョンは界面活性剤としてＦ−アルキルジモルホリノホスフェートを用いながら形成できる(Sadtler et al.,1996)。非フッ化化合物は本質的にはフッ化炭素および過フッ化炭素中に不溶性であり(Curran,1998;Hildebrand and Cochran,1949;Hudlicky,1992;Scott,1948;Studer et al.,1997)、小型薬剤様分子（典型的には＜５００ＤａおよびＬｏｇＰ＜５）(Lipinski et al.,2001)はフッ化炭素中水および過フッ化炭素中水のエマルジョンの水性マイクロカプセル中極めて効果的にコンパートメント化され、マイクロカプセル間の交換は殆どまたは全くない。

好ましくは、化合物は非水性（有機性）溶媒を含むマイクロカプセル内にコンパートメント化できる。非フッ化有機溶媒は本質的にはフッ化炭素および過フッ化炭素には不溶性および不混和性であり(Curran,1998;Hildebrand and Cochran,1949;Hudlicky,1992;Scott,1948;Studer et al.,1997)、フッ化炭素（または過フッ化炭素）の連続相およびジクロロメタン、クロロホルム、四塩化炭素、トルエン、テトラヒドロフラン、ジエチルエーテルおよびエタノールのような非水性溶媒から形成される不連続の相の形成を可能にする。非水性の溶媒を含むマイクロカプセル中に二次化合物を形成する能力は、実施できる化学反応およびそれにおいて合成できる二次分子のレパートリーを大きく拡張する。合成有機化学の大部分はジクロロメタン、クロロホルム、四塩化炭素、トルエン、テトラヒドロフラン、ジエチルエーテルおよびエタノールを含む有機溶媒中で行われる。有機分子は有機溶媒中の溶解性がより高い。静電的相互作用は有機溶媒中で増強（低誘電率のため）されるのに対し、それらは水性の溶媒中では溶媒和して反応性が低下する。例えば、現代の有機化学の大部分がカルボニル化学に関する反応、例えば金属エノレートの使用を採用している。同様に他の有機金属相互作用の数も増大している。これらの反応は無水溶媒中の不活性雰囲気下で行われる場合が多い（そうしなければ水により試薬がクエンチングされる）。Suzuki反応およびHeck反応を含む、パラジウム触媒を使用する多くの反応がある。

エマルジョンの形成は一般的に相を強制的に共存させるための機械的エネルギーの適用を必要とする。これを行うための種々の機械的装置、例えば攪拌器（磁気攪拌子、プロペラおよびタービン攪拌器、パドル装置およびウイスク）、ホモゲナイザー（例えばローターステーターホモゲナイザー、高圧弁ホモゲナイザーおよびジェットホモゲナイザー）、コロイドミル、超音波および「膜乳化」装置(Becher,1957;Dickinson,1994)を利用した種々の方法がある。

複雑な生化学的過程、特に遺伝子の転写および翻訳もまた油中水エマルジョン中に形成される水性マイクロカプセル内で活性である。これにより、油中水エマルジョン内のコンパートメント化が遺伝子の選択に使用可能となり、遺伝子はエマルジョンマイクロカプセル内で転写および翻訳され、それらがコードするタンパク質の結合または触媒活性により選択される(Doi and Yanagawa,1999;Griffiths and Tawfik,2003;Lee et al.,2002;Sepp et al.,2002;Tawfik and Griffiths,1998)。これはエマルジョン内に形成された水性マイクロカプセルが一般的に安定であり、マイクロカプセル間での核酸、タンパク質または酵素触媒反応の生成物の交換があったとしても極僅かであるために可能となった。

数千リットルの工業的規模までの容量のエマルジョンを形成する技術も存在する(Becher,1957;Sherman,1968;Lissant,1974;Lissant,1984)。

好ましいマイクロカプセルサイズは本発明に従って実施するべき任意の個々のスクリーニング方法の厳密な条件に応じて変動する。全ての場合において、化合物および標的の活性の特性(identity)を測定するためには、化合物ライブラリと試験の感度との間には最適なバランスが存在する。

エマルジョンマイクロカプセルのサイズは、スクリーニング系の条件に応じてエマルジョンを形成するために使用されるエマルジョン条件を単に調節することにより変化させてよい。究極的な制約要因はマイクロカプセルのサイズ、即ち単位容量当たり可能なマイクロカプセル数であることから、マイクロカプセルサイズが大きくなるほど、所与の化合物ライブラリをカプセル化するために必要となる容量は大きくなる。

油中水エマルジョンは外部（連続）水相を有する水中油中水のダブルエマルジョンを形成するために再乳化できる。これらのダブルエマルジョンを分析し、任意選択的にフローサイトメーターを用いて分類することができる(Bernath et al.,2004)。

高度に単分散されたマイクロカプセルは微小流体技術を用いて製造できる。例えば、３％未満の多分散性を有する油中水エマルジョンは油中の共流動ストリームの液滴破壊により形成することができる(Umbanhowar et al.,2000)。微小流体システムはまた、微小流体チャンネル内の油のストリーム中に分散した水性微小液滴の層流のために使用できる(Thorsen et al.,2001)。これによりフロー分析のための微小流体装置の構築、および、任意選択的に微小液滴のフロー分類が可能となる(Fu et al.,2002)。

マイクロカプセルは好ましくは融合するか分割(split)する。例えば微小流体システムを用いて水性微小液滴を融合および分割させることができる(Link et al.,2004;Song et al.,2003)。マイクロカプセルの融合により試薬の混合が可能となる。例えば標的を含有するマイクロカプセルと化合物を含有するマイクロカプセルの融合は標的と化合物の反応を開始させる。マイクロカプセルのスプリッティングにより、単一のマイクロカプセルをより小さいマイクロカプセル２個以上に分割させる。例えば化合物を含有する単一のマイクロカプセルを複数のマイクロカプセルに分割し、これをその後異なる標的を含有する異なるマイクロカプセルに各々融合させる。標的を含有する単一のマイクロカプセルはまた複数のマイクロカプセルに分割し、これをその後異なる化合物または異なる濃度の化合物を含有する異なるマイクロカプセルと各々融合させることができる。

マイクロカプセルは例えば蛍光色素を取り込むことにより光学的にタグ付けできる。好ましい形態においては、マイクロカプセルは量子ドットを取り込むことにより光学的にタグ付けされ、１０濃度の６色の量子ドットは１０⁶マイクロカプセルのコード化を可能とする(Han et al.,2001)。微小流体チャンネル内を秩序のある順序で流動するマイクロカプセルは、マイクロカプセルのストリームにおけるその順序によりコード化（完全または部分的）できる（位置コード化）。

マイクロスフェア、ラテックス粒子、ビーズまたはミニビーズとして当業者に知られているマイクロビーズは２０ｎｍ〜１ｍｍの直径のものが入手可能であり、種々の材料、例えばシリカおよび種々の重合体、共重合体および３元重合体、例えばポリスチレン（ＰＳ）、ポリメチルメタクリレート（ＰＭＭＡ）、ポリビニルトルエン（ＰＶＴ）、スチレン／ブタジエン（Ｓ／Ｂ）共重合体およびスチレン／ビニルトルエン（Ｓ／ＶＴ）共重合体から製造できる(www.bangslabs.com)。これらは広範な種類の機能表面基、即ちアルデヒド、脂肪族アミン、アミド、芳香族アミン、カルボン酸、クロロメチル、エポキシ、ヒドラジド、ヒドロキシル、スルホネートおよびトシルにより付与される疎水性表面（例えばプレーンポリスチレン）から極めて親水性の表面まで、種々の表面化学のものが入手可能である。官能基はマイクロビーズ表面への化合物の安定または過逆的な結合のための広範な共有結合反応を可能とする。

マイクロビーズは例えば蛍光色素を取り込むことにより光学的にタグ付けできる。例えば、厳密な比率の赤色（＞６５０ｎｍ）およびオレンジ色（５８５ｎｍ）の蛍光色素による標識のため、各々が独特のスペクトルアドレスを有する１００種の異なるビーズのセットを形成し(Fulton et al.,1997)(www.luminex.com)、１０⁶ビーズ以下のセットを１０強度６色の量子ドットを取り込むことによりコード化できる(Han et al.,2001)。

化合物を当業者のよく知る種々の手段により共有結合的または非共有結合的にマイクロビーズに連結できる(例えばHarmanson,1996参照)。好ましくは、化合物は切断可能なリンカーを介して結合する。このような種々のリンカーは当業者が知る通りであり(例えばGordon and Balasubramanian,1999参照)、例えば光化学的に切断できるリンカーおよびｐＨの変更により（例えばイミンおよびアシルヒドラゾン）、酸化還元特性を調節することにより（例えばジスルフィド）または外部触媒を用いながら（例えば交差複分解(cross-methathesis)およびアミド転換）制御することができる可逆共有結合が挙げられる。

本発明の方法は化合物のプール（ライブラリまたはレパートリー）中で標的の活性を所望の方法でモジュレートする化合物の識別を可能とする。

高度に好ましい用途においては、本発明の方法は化合物のライブラリのスクリーニングのために有用である。従って本発明は化合物を化合物のライブラリから識別する本発明の前記の態様に従った方法を提供する。

本発明により識別される化合物は好ましくは薬理学的または産業上の利益を有し、例えば診断および治療用途のために適する細胞シグナル伝達機序のような生物学的系の活性化剤または抑制剤を包含する。従って好ましい態様において本発明は臨床上または産業上有用な物の発見を可能にする。本発明の別の態様において、本発明の方法により単離される物が提供される。

適当なカプセル化条件の選択が望ましい。スクリーニングすべき化合物ライブラリの複雑度およびサイズに応じて、マイクロカプセル当たり１つまたは１つ未満の二次化合物が形成されるようにカプセル化の操作法を設定することが有利である。これにより分割力が最大となる。しかしながらライブラリがより大きいおよび／またはより複雑である場合は、これは非現実的であり；数種の二次化合物を共に形成し、本発明の方法の反復適用に依存して所望の化合物を識別することが好ましい。カプセル化の操作法の組み合わせを用いて所望の化合物を識別してよい。

理論的な研究によれば、化合物の数量が多いほど所望の特性を有する化合物が生成されやすいことを示している（このことがどのように抗体のレパートリーに適用されるかの説明(Perelson and Oster,1979)を参照）。また実際には、より大きいファージ−抗体レパートリーは確実により小さいレパートリーよりも良好な結合親和性を有するより多くの抗体をもたらすことが確認されている(Griffiths et al.,1994)。まれな変異体が形成され識別を可能とするには、大型のライブラリのサイズが望ましい。即ち、至適に小型であるマイクロカプセルの使用が有利である。

これまで、１ｎｌ容量のスポットの二次元のマイクロアレイを用いて単一の実験においてスクリーニングできる化合物の最大のレパートリーは〜１０³であった(Hergenrother et al.,2000)。本発明を用いれば、２．６ｍｍのマイクロカプセル直径において(Tawfik and Griffiths,1998)、３次元の分散体を形成することにより、少なくとも１０¹¹のレパートリーサイズを２０ｍｌエマルジョン中１ｍｌ水相を用いてスクリーニングできる。

上記した化合物または化合物でコーティングされたマイクロビーズのほかに、本発明のマイクロカプセルはスクリーニング過程を起こすために必要な別の成分を含む。それらは標的および適当な緩衝液を含む。適当な緩衝液は生物学的系の所望の成分の全てが活性となるようなものであり、従って、各々の特定の反応系の条件により異なる。生物学的および／または化学的反応に適する緩衝液は当分野で知られており、その処方はSambrook and Russell,2001のような種々の実験テキストに記載されている。

系の別の成分は標的の活性を試験するために必要なものを包含する。それらは例えば標的により触媒される反応の基質およびコファクター、および、標的に結合するリガンドを含む。それらはまた標的の活性の検出を可能にする標的の活性にカップリングされた反応の他の触媒（酵素を含む）、基質およびコファクターを含む。

〔（Ｂ）スクリーニング操作法〕
標的に結合するか標的の活性をモジュレートする化合物をスクリーニングするためには、標的を化合物または化合物コーティングマイクロビーズ１つ以上と共にマイクロカプセル内にコンパートメント化する。好ましくは、各マイクロカプセルは単一の種類のみの二次化合物であるがそのコピーの多くを含有する。好ましくは、各マイクロビーズは単一の種類のみの化合物であるがそのコピーの多くによりコーティングされる。好ましくは、化合物は切断可能なリンカーを介してマイクロビーズに連結され、それらはコンパートメント中のマイクロビーズから放出されるようになる。好ましくは、各マイクロカプセルまたはマイクロビーズは光学的にタグ付けされることによりマイクロビーズに結合しているマイクロカプセル内に含有される化合物の識別を可能にする。

（（ｉ）結合に関するスクリーニング）
化合物は標的への結合について直接スクリーニングできる。本実施形態においては、化合物がマイクロビーズに結合し、標的への親和性を有する場合には、それは標的に結合する。反応の終了時に、全マイクロカプセルを合わせ、全てのマイクロビーズを１つの環境内に共にプールする。標的に特異的に結合するか、または特異的に反応する分子を用いながらアフィニティー精製により所望の結合を示す化合物を担持するマイクロビーズを選択できる。

別の実施形態においては、標的を当業者の知る種々の手段によりマイクロビーズに結合できる(例えばHermanson,1996参照)。スクリーニングすべき化合物は共通の特徴、即ちタグを含有する。化合物はマイクロビーズから放出され、化合物が標的に対する親和性を有する場合にそれに結合する。反応終了時に、全マイクロカプセルを合わせ、全マイクロビーズを１つの環境内に共にプールする。「タグ」に特異的に結合するか、または特異的に反応する分子を用いながらアフィニティー精製により所望の結合を示す化合物を担持するマイクロビーズを選択できる。

別の実施形態においては、標的に結合する化合物が例えば別の結合相手からのリガンドを単に隠すだけであることに基づき、マイクロビーズをスクリーニングしてよい。この偶発性において、マイクロビーズはアフィニティー精製工程中に保持されるよりはむしろ選択的に溶出される一方、他のマイクロビーズは結合される。

親和性による分類は結合が起こる条件における結合対の２メンバーの存在に依存している。この目的のために任意の結合対を使用してよい。本明細書において用いられるように、結合対という用語は相互に結合することができる分子の任意の対を指す。本発明において使用してよい結合対の例は抗原と抗原に結合できる抗体またはそのフラグメント、ビオチン−アビジン／ストレプトアビジン対(Savage et al.,1994)、カルシウム依存性結合ポリペプチドおよびそのリガンド（例えばカルモジュリンとカルモジュリン結合ペプチド(Montigiani et al.,1996;Stofko et al.,1992)）；組み立てられてロイシンジッパーを形成するポリペプチドの対(Tripet et al.,1996)、ヒスチジン（典型的にはヘキサヒスチジンペプチド）とキレート化Ｃｕ²⁺、Ｚｎ²⁺およびＮｉ²⁺（例えばＮｉ−ＮＴＡ；(Hochuli et al.,1987)）、ＲＮＡ結合とＤＮＡ結合タンパク質(Klug et al.,1995)、例えば亜鉛フィンガーモチーフを含有するもの(Klug and Schwabe,1995)およびＤＮＡメチルトランスフェラーゼ(Anderson,1993)とそれらの核酸結合部位を包含する。

別の実施形態においては、化合物はマイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の変化を用いて標的への結合についてスクリーニングできる。

標的への化合物の結合の後のマイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の変化は以下に記載するものを含む種々の方法で誘導することができる。
（１）化合物自体が特徴的な光学特性を有してもよい。例えばそれは蛍光である。
（２）化合物の光学特性が標的への結合により修飾されてもよい。例えば、化合物の蛍光が結合によりクエンチングされるか増強される(Voss,1993;Masui and Kuramitsu,1998)。
（３）標的の光学特性が化合物への結合により修飾されてもよい。例えば、標的の蛍光が結合によりクエンチングされるか増強される(Guixe et al.,1998;Qi and Grabowski,1998)。
（４）標的および化合物の両方の光学特性が結合により修飾されてもよい。例えば標的から化合物（またはその逆）の蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）が生じ、「ドナー」の吸収波長における励起があれば「アクセプター」発光波長における発光が生じる(Heim&Tsein,1996;Mahajan et al.,1998;Miyawaki et al.,1997)。

本発明によると、所望の活性を有する化合物がマイクロカプセルの光学特性の変化を誘導し、これにより、当該化合物を含有するマイクロカプセルおよびそこに含有されるマイクロビーズの識別および任意選択的に分類が可能となる方法が提供される。

別の実施形態においては、本発明によると、共通のコンパートメント１つ以上内にマイクロカプセルをプールした後にマイクロビーズを分析する方法が提供される。本実施形態においては所望の活性を有する化合物はそれを担持する（そして同じマイクロカプセル内に存在する）マイクロビーズの光学特性を修飾してその識別および任意選択的に分類を可能にする。

本実施形態においては、標的への化合物の結合は必ずしも光学特性の変化を直接誘導する必要は無い。

本実施形態において、マイクロビーズに結合した化合物が標的に対する親和性を有する場合は、それは標的に結合する。反応終了時、全マイクロカプセルを合わせ、全マイクロビーズを１つの環境内に共にプールする。所望の結合を示す化合物を担持するマイクロビーズは、標的と特異的に結合するか、または特異的に反応する試薬を添加し、これにより、識別を可能にするマイクロビーズの光学特性の変化を誘導することにより識別できる。例えば、蛍光標識抗標的抗体を用いるか、または、抗標的抗体、次いで第１のものに結合する第２の蛍光標識抗体を使用できる。

別の実施形態においては、標的を当業者の知る種々の手段によりマイクロビーズに結合できる(例えばHermanson,1996参照)。スクリーニングすべき化合物は共通の特徴、即ちタグを含有する。化合物はマイクロビーズから放出され、化合物が標的に対する親和性を有する場合にそれに結合する。反応終了時に全マイクロカプセルを合わせ、全マイクロビーズを１つの環境内に共にプールする。所望の結合を示す化合物を担持するマイクロビーズは、「タグ」と特異的に結合するか、または特異的に反応する試薬を添加し、これにより、識別を可能にするマイクロビーズの光学特性の変化を誘導することにより識別できる。例えば、蛍光標識抗「タグ」抗体を用いるか、または、抗「タグ」抗体、次いで第１のものに結合する第２の蛍光標識抗体を使用できる。

別の実施形態においては、リガンドに結合する遺伝子産物が、例えばマイクロビーズの光学特性を修飾する可能性がある別の結合相手からリガンドを単に隠すことに基づいて識別してよい。この場合未修飾の光学特性を有するマイクロビーズが選択されるであろう。

マイクロビーズを蛍光性とするために、蛍光をチラミドシグナル増幅（ＴＳＡ(商標)）の増幅を用いて増強することができる(Sepp et al.,2002)。これは、マイクロビーズに結合し、フルオレセイン−チラミンから遊離のラジカル形態（その後（局所的に）マイクロビーズと反応する）への変換を触媒するパーオキシダーゼ（別の化合物に連結）を使用する。ＴＳＡを実施する方法は当分野で知られており、キットがＮＥＮより販売されている。

ＴＳＡは、マイクロビーズの蛍光の直接の増大をもたらすか、または、第２の蛍光分子または（その１つ以上が蛍光性である）分子の配列が結合するマイクロビーズにリガンドが結合するように設定される。

（（ii）結合の調節のためのスクリーニング）
別の実施形態においては、本発明は生化学的過程を調節する作用を有する化合物をスクリーニングするために使用できる。化合物が標的の結合特性を活性化する場合、活性化される標的に対するリガンドを当業者の知る種々の手段によりマイクロビーズに結合できる(例えばHermanson,1996参照)。反応終了時に全マイクロカプセルを合わせ、全マイクロビーズを１つの環境内に共にプールする。所望の結合を示す化合物を担持するマイクロビーズは、標的と特異的に結合するか、または特異的に反応する分子を用いたアフィニティー精製により選択できる。

別の実施形態においては、化合物が標的の結合活性を抑制することに基づいてマイクロビーズをスクリーニングしてよい。この偶発性において、マイクロビーズはアフィニティー精製工程中に保持されるよりはむしろ選択的に溶出される一方、他のマイクロビーズは結合される。

別の実施形態において、化合物はマイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の変化を用いて標的の結合特性をモジュレートする能力についてスクリーニングできる。

リガンドへの標的の結合の後のマイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の変化は以下に記載するものを含む種々の方法で誘導することができる。
（１）リガンド自体が特徴的な光学特性を有してもよい。例えばそれは蛍光である。
（２）リガンドの光学特性が標的への結合により修飾されてもよい。例えば、リガンドの蛍光が結合によりクエンチングされるか増強される(Voss,1993;Masui and Kuramitsu,1998)。
（３）標的の光学特性がリガンドへの結合により修飾されてもよい。例えば、標的の蛍光が結合によりクエンチングされるか増強される(Guixe et al.,1998;Qi and Grabowski,1998)。
（４）標的およびリガンドの両方の光学特性が結合により修飾されてもよい。例えば標的からリガンド（またはその逆）の蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）が生じ、「ドナー」の吸収波長における励起があれば「アクセプター」発光波長における発光が生じる(Heim&Tsein,1996;Mahajan et al.,1998;Miyawaki et al.,1997)。

本発明によると、所望の活性を有する化合物がマイクロカプセルの光学特性の変化を誘導し、これにより、化合物を含有するマイクロカプセルおよびそこに含有されるマイクロビーズの識別および任意選択的に分類が可能となる方法が提供される。

別の実施形態においては、本発明によると、共通のコンパートメント１つ以上内にマイクロカプセルをプールした後にマイクロビーズを分析する方法が提供される。本実施形態においては所望の活性を有する化合物は、それを担持する（そして同じマイクロカプセル内に存在する）マイクロビーズの光学特性を修飾してその識別および任意選択的に分類を可能にする。

本実施形態においては、リガンドへの標的の結合は必ずしも光学特性の変化を直接誘導する必要は無い。

本実施形態において、マイクロビーズに結合したリガンドが標的に対する親和性を有する場合は、それは標的に結合する。反応終了時、全マイクロカプセルを合わせ、全マイクロビーズを１つの環境内に共にプールする。結合活性をモジュレートする化合物を担持するマイクロビーズは、標的と特異的に結合するか、または特異的に反応する試薬を添加し、これにより、識別を可能にするマイクロビーズの光学特性の変化を誘導することにより識別できる。例えば、蛍光標識抗標的抗体を用いるか、または、抗標的抗体、次いで第１のものに結合する第２の蛍光標識抗体を使用する。

別の実施形態においては、標的を当業者の知る種々の手段によりマイクロビーズに結合できる(例えばHermanson,1996参照)。スクリーニングすべきリガンドは共通の特徴、即ちタグを含有する。反応終了時に全マイクロカプセルを合わせ、全マイクロビーズを１つの環境内に共にプールする。結合をモジュレートする化合物を担持するマイクロビーズは、「タグ」と特異的に結合するか、または特異的に反応する試薬を添加し、これにより、識別を可能にするマイクロビーズの光学特性の変化を誘導することにより識別できる。例えば、蛍光標識抗「タグ」抗体を用いるか、または、抗「タグ」抗体、次いで第１のものに結合する第２の蛍光標識抗体を使用する。

上記した通り、蛍光はチラミドシグナル増幅（ＴＳＡ(商標)）の増幅を用いて増強されることによりマイクロビーズを蛍光性とする(Sepp et al.,2002)。

（（iii）触媒作用の調節のスクリーニング）
別の実施形態において、本発明によると、所望の活性を有する化合物がマイクロカプセルの光学特性の変化を誘導し、これにより、化合物を含有するマイクロカプセルおよび任意選択的にそこに含有されるマイクロビーズの識別および任意選択的に分類が可能となる方法が提供される。マイクロカプセルの光学特性は、
（ａ）異なる光学特性を有する調節された反応の基質および生成物（多くの蛍光発生酵素基質は例えばHaugland,1996およびwww.probes.comより入手可能である）、例えばグリコシダーゼ、ホスファターゼ、ペプチダーゼおよびプロテアーゼの基質、または
（ｂ）マイクロカプセル内の調節された反応の生成物（または基質）と特異的に結合または反応し、これにより、その識別を可能とするように、マイクロカプセルの光学特性の変化を誘導する試薬の存在、
の何れによっても修飾できる。

標的の活性をモジュレートするものを得るために化合物のライブラリをスクリーニングするための広範な試験法は、光学特性の変化を検出することに基づいており、本発明に従って化合物をスクリーニングするために使用できる。このような試験は当業者に周知である（例えばHaugland,1996およびwww.probes.com参照）。

あるいは、選択は同じマイクロカプセル内で起こるその後の反応に第１の反応をカップリングすることにより間接的に実施してよい。これを行うには２通りの一般的な方法がある。第１に第１の反応の生成物を、第１の反応の基質とは反応しない分子と反応させるか結合させる。第２に、カップリングされた反応は第１の反応の生成物の存在下にのみ進行するようにする。その後、調節化合物は、第２の反応の生成物または基質の特性により識別できる。

あるいは、選択すべき反応の生成物は第２の酵素触媒反応の基質またはコファクターであってよい。第２の反応を触媒する酵素はマイクロカプセル化よりも前に反応混合物に取り込ませることができる。第１の反応が進行する場合のみ、カップリングされた酵素は識別可能な生成物を生成することになる。

カップリングのこの概念は前の反応の生成物を基質として各々が使用する複数の酵素を取り込むために調整することができる。これにより固定化された基質とは反応しない酵素の調節物質の選択が可能になる。１つの反応の生成物が選択可能な生成物をもたらす第２の反応または反応のシリーズのための触媒またはコファクターである場合、シグナル増幅により増強された感度を得るように設計することもできる(例えばJohannsson,1991;Johannsson and Bates,1988参照)。更にまた、酵素カスケード系は酵素の活性化物質の生産または酵素阻害剤の破壊に基づくこともできる(Mize et al.,1989参照)。カップリングはまた、同じ生成物を生成する酵素の全体の群に対して共通のスクリーニング系を使用でき、複雑な多工程の化学的変換および経路の調節の選択を可能にするという利点も有する。

別の実施形態においては、標的そのものが酵素である場合、または、標的が酵素的である生化学的過程を調節する場合、各マイクロカプセルにあのマイクロビーズは酵素的反応のための基質でコーティングしてよい。調節化合物は、基質が生成物に変換される程度を決定する。反応終了時、触媒された反応の生成物にマイクロビーズを物理的に連結する。マイクロカプセルを合わせて反応体をプールすると活性化化合物でコーティングされたマイクロビーズは生成物に特異的な任意の性質により識別できる。阻害剤が望まれる場合は、調節された反応の基質に特異的な化学的特性があるものを選択できる。

更にまた、基質はマイクロビーズに結合しないことが望ましい場合もある。この場合、基質は光活性化のような自体の活性化のための別の工程を要する不活性の「タグ」を含有するであろう（例えば「ケージ化」ビオチン類縁体(Pirrung and Huang,1996;Sundberg et al.,1995)。基質から生成物への変換の後、「タグ」は活性化され、「タグ付け」された基質および／または生成物はマイクロビーズに結合したタグ結合分子（例えばアビジンまたはストレプトアビジン）に結合する。従って、「タグ」を介して核酸に結合した生成物に対する基質の比は溶液中の基質および生成物の比を反映するものとなる。ケージ化ビオチンでタグ付けされた基質はマイクロカプセル中のコンパートメント化に基づく操作法を用いたホスホトリエステラーゼ活性を有する酵素をコードする遺伝子の選択のために使用されている(Griffiths and Tawfik,2003)。ホスホトリエステラーゼ基質は活性酵素分子を含有するマイクロカプセル内の溶液中で加水分解され、反応が終了した後、ケージング基を放射線照射により放出させ、酵素をコードする遺伝子が結合したマイクロビーズにビオチン部分を介して生成物が結合できるようにされている。

マイクロビーズおよびマイクロカプセル内の内容物が混合された後、適宜生成物または基質に対して特異的に結合する分子（例えば抗体）を用いたアフィニティー精製により調節物質でコーティングされたマイクロビーズを選択できる。

別の実施形態においては、本発明によると、共通のコンパートメント１つ以上内にマイクロカプセルをプールした後にマイクロビーズを分析する方法が提供される。調節化合物でコーティングしたマイクロビーズはマイクロビーズの光学特性の変化を用いて識別できる。生成物（または基質）が結合したマイクロビーズの光学特性は、
（１）例えば下記の理由により、基質−マイクロビーズ複合体では検出されない特徴的な光学特性を有する生成物−マイクロビーズ複合体；
（ａ）異なる光学特性を有する基質および生成物（多くの蛍光発生酵素基質は例えばHaugland,1996およびwww.probes.comより入手可能である）、例えばグリコシダーゼ、ホスファターゼ、ペプチダーゼおよびプロテアーゼの基質、または、
（ｂ）同じ光学特性を有する基質および生成物、ただし、基質ではなく生成物のみがマイクロビーズと結合または反応するもの；
（２）生成物（または基質）と特異的に結合または反応し、これにより、その識別を可能とするマイクロビーズの光学特性の変化を誘導する試薬の添加（これらの試薬はマイクロカプセルの破壊およびマイクロビーズのプールの前または後に添加できる）。その試薬は、
（ａ）基質および生成物の両方がマイクロビーズに結合する場合は、基質ではなく生成物のみ（またはその逆）に特異的に結合または特異的に反応するか、または、
（ｂ）基質ではなく生成物のみがマイクロビーズに結合または反応する（またはその逆）場合に、任意選択的に基質および生成物の両方に結合する；
の何れによっても修飾できる。

このシナリオにおいて、基質（または基質の１つ）はマイクロビーズには連結されていないが分子「タグ」（例えばビオチン、ＤＩＧまたはＤＮＰまたは蛍光基）を有する各マイクロカプセル内に存在できる。調節された酵素が基質を生成物に変換する場合、生成物は「タグ」を保有し、その後生成物特異的抗体によりマイクロカプセル内で捕獲される。全ての反応が停止しマイクロカプセルが合わせられた時点で、これらのマイクロビーズは「タグ付け」され、例えば「タグ」が蛍光基である場合は、変化した光学特性を既に有してもよい。あるいは、「タグ付け」されたマイクロビーズの光学特性の変化は「タグ」（例えば蛍光標識アビジン／ストレプトアビジン、蛍光性の抗「タグ」抗体または第２の蛍光標識抗体により検出できる非蛍光の抗「タグ」抗体）に結合する蛍光標識されたリガンドを添加することにより誘導できる。

（（iv）化合物の特異性／選択性のスクリーニング）
特定の標的に対する特異性または選択性を有するが他のものに対しては有さない化合物は、１つの基質を用いた反応の調節に関する積極的スクリーンまたは別の基質との反応の調節に関する消極的スクリーンを実施することにより特異的に識別できる。例えば、２種の異なる標的酵素に特異的な２種の基質を各々異なる蛍光発生部分で標識する。各標的酵素は異なる蛍光スペクトルを有する生成物の生成を触媒し、２種の標的に対する化合物の特異性に応じてマイクロカプセルの異なる光学特性をもたらす。

（（ｖ）細胞を使用するスクリーニング）
現在の薬剤発見の状況においては、有効化された組み換え標的がインビトロの高スループットスクリーニング（ＨＴＳ）試験の根拠を形成している。しかしながら単離されたタンパク質は複雑な生物学的系の代表とはみなされず；従って、細胞に基づく系は、インタクトな生物学的系において化合物の活性のより高い信頼性をもたらす。薬剤に関する広範な細胞系試験が当業者に知られている。細胞は、油中水エマルジョンの水性微小液滴のようなマイクロカプセル内にコンパートメント化できる(Ghadessy,2000)。標的に対する化合物の作用は、化合物と共にマイクロカプセル内に細胞をコンパートメント化すること、および、適切な細胞系試験を用いて細胞に対して所望の作用を有する化合物を含有するコンパートメントを識別することにより測定することができる。フッ化炭素中水のエマルジョンの使用は特に好ましく、フッ化炭素の高い気体溶解能が呼吸ガスの交換を支援でき、細胞培養系に有利であることが報告されている(Lowe,2002)。

（（vi）フローサイトメトリー）
本発明の好ましい実施形態においては、マイクロカプセルまたはマイクロビーズをフローサイトメトリーにより分析および任意選択的に分類する。マイクロカプセルの多くのフォーマットをフローサイトメトリーを用いておよび任意選択的に直接分類できる。マイクロカプセルの一部のフォーマットは分析または分類の前にマイクロカプセルを別途処理することを必要とする場合がある。例えば油中水エマルジョンはフローサイトメトリーによる分析を容易にするために水中油中水のダブルエマルジョンに変換できる(Bernath et al.,2004)。多重エマルジョンは単純な一次油中水（または水中油）エマルジョンを再乳化して水中油中水（または油中水中油）エマルジョンとすることにより製造される(Davis and Walker,1987)。

高度に単分散したマイクロカプセルは微小流体技術を用いて製造できる。例えば多分散度３％未満の油中水エマルジョンは、油の共流動ストリーム内の液滴の破壊により産生できる(Umbanhowar,2000)。微小流体システムはまた微小流体チャンネル内の油のストリーム中に分散された水性の微小液滴の層流のためにも使用できる(Thorsen,2001)。これにより微小液滴の流動の分析および任意選択的に流動の分類のための微小流体装置の構築が可能となる(Fu,2002)。

種々の光学特性を分析のため、および、分類をトリガーするために使用でき、例えば光散乱(Kerker,1983)および蛍光分極(Rolland et al.,1985)が挙げられる。高度に好ましい実施形態においては、マイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の差は蛍光の差であり、必要に応じて、マイクロカプセルまたはマイクロビーズは蛍光活性化細胞ソーター(Norman,1980;Mackenzie and Pinder,1986)または同様の装置を用いて分類する。フローサイトメトリーは下記の一連の利点を有する。

（１）信頼できる製造元(例えばBecton-Dickinson,Coulter,Cytomation)の市販の蛍光活性化細胞分類装置により100,000マイクロカプセルまたはマイクロビーズｓ^-1までの分析および分類が可能である。

（２）各マイクロカプセルまたはマイクロビーズから生じる蛍光シグナルは存在する蛍光分子の数に厳格に対応している。マイクロカプセルまたはマイクロビーズ当たり僅か数百の蛍光分子でも定量的に検出できる。

（３）蛍光検出器のダイナミックレンジが広い（典型的には４対数単位）ことにより、分類の操作法の厳密性を容易に設定でき、これにより、原料プールから至適数量のマイクロカプセルまたはマイクロビーズを回収できる（ゲートは蛍光の僅かな差を有するマイクロカプセルまたはマイクロビーズを分離するか、蛍光の大きな差を有するマイクロカプセルまたはマイクロビーズを分離するのみとするか、実施する選択に応じて設定できる）。

（４）市販の蛍光活性化細胞分類装置は複数の波長において同時に励起および検出を実施でき(Shapiro,1995)、これにより、２〜１３（またはそれ以上）の蛍光マーカーによるマイクロカプセルまたはマイクロビーズの標識をモニタリングすることにより積極的および消極的な選択を同時に実施でき、例えば２種の交互の標的に対する基質を異なる蛍光タグで標識する場合、マイクロカプセルまたはマイクロビーズは調節される標的に応じて異なる蛍光団で標識できる。

マイクロカプセルまたはマイクロビーズを光学的にタグ付けする場合は、フローサイトメトリーを用いてマイクロカプセル内に存在するまたはマイクロビーズ上にコーティングされた化合物を識別することもできる（後述を参照）。光学的タグ付けはマイクロカプセル内の化合物の濃度（１段階より多い濃度を単一の実験で使用する場合）またはマイクロビーズ上にコーティングされた化合物の分子の数（１段階より多いコーティング密度を単一の実験で使用する場合）を識別するためにも使用できる。更にまた、光学的タグ付けは、マイクロカプセル内の標的を識別するためにも使用できる（１種より多い標的を単一の実験で使用する場合）。この分析はマイクロビーズを含有するマイクロカプセルの分類の後、または、マイクロビーズの分類の後に、活性の測定と同時に実施できる。

（（vii）マイクロカプセルの識別および分類）
本発明は、使用する分類技術により可能となるインタクトのマイクロカプセルの識別および任意選択的に分類を提供する。マイクロカプセルは、所望の化合物により誘導される変化がマイクロカプセルの表面で発生または顕在化するか、または、マイクロカプセルの外部から検出される場合に、そのまま識別され、任意選択的に分類することができる。変化は、化合物の直接の作用によるか、または、うち１つ以上が所望の活性を有する化合物を使用する一連の反応が変化をもたらすような間接的なものにより、誘導されてよい。例えば、マイクロカプセルが膜マイクロカプセルである場合、標的を含む生化学的系の化合物がその表面にディスプレイされ、これによりマイクロカプセル内のマイクロビーズ上の化合物により調節される生化学的系の変化を検出できる試薬に接触可能となるようにマイクロカプセルを構成させてよい。

しかしながら本発明の好ましい態様においては、マイクロカプセルの識別および任意選択的に分類は、マイクロカプセルの光学特性、例えばその吸収または発光の特性の変化、例えばマイクロカプセルに伴う吸光度、ルミネセンス、燐光または蛍光の変化をもたらす反応から生じるマイクロカプセルの光学特性の改変に依存している。このような特性の全ては「光学的」という用語に包含される。そのような場合、マイクロカプセルは識別され、任意選択的にルミネセンス、蛍光または燐光により活性化された分類により分類できる。高度に好ましい実施形態においては、フローサイトメトリーを用いることにより、マイクロカプセル内の蛍光分子の生成をもたらす所望の活性を有する化合物を含有するマイクロカプセルを分析および任意選択的に分類する。

別の実施形態においては、マイクロカプセルの蛍光の変化は、それが識別されれば、コンパートメント内のマイクロビーズの修飾をトリガーするのに用いられる。本発明の好ましい態様において、マイクロカプセルの識別はマイクロカプセル内部のルミネセンス、燐光または蛍光をもたらす反応から生じるマイクロカプセルの光学特性の変化に依存している。マイクロカプセル内のマイクロビーズの修飾は、ルミネセンス、燐光または蛍光の識別によりトリガーされる。例えば、ルミネセンス、燐光または蛍光の識別はマイクロビーズまたはそれに結合している分子の修飾をもたらす光子（または他の粒子または波動）に対するコンパートメントの衝突をトリガーすることができる。同様の操作法が細胞の急速分類に関して以前に記載されている(Keij et al.,1994)。マイクロビーズの修飾は、例えばマイクロビーズへの光不安定性保護基でケージ化された分子「タグ」のカップリングから生じるものであってよく、適切な波長の光子との衝突はケージの除去をもたらす。その後、全てのマイクロカプセルを合わせ、マイクロビーズを１つの環境内に共にプールする。所望の活性を示す化合物でコーティングされたマイクロビーズは「タグ」に特異的に結合するか特異的に反応する分子を用いてアフィニティー精製により選択できる。

〔（Ｃ）化合物ライブラリ〕
（（ｉ）一次化合物のライブラリ）
ライブラリは種々の市販の原料から得ることができる。ライブラリ内の化合物は当業者の周知の種々の方法により製造できる。任意選択的に、化合物ライブラリは空間的に分割されたパラレル合成を用いた、または、スプリット合成を用いたコンビナトリアル合成により製造でき、任意選択的に１ビーズ１化合物のライブラリを生成させる。任意選択的に、化合物はビーズ上で合成できる。これらのビーズは直接マイクロカプセル内にコンパートメント化するかコンパートメント化の前に化合物を放出させることができる。

好ましくは、化合物の僅か１種のみであるが、その複数のコピーを各マイクロカプセル内に存在させる。

任意選択的に、化合物は当業者の知る種々の手段により共有結合的に、または、非共有結合的にマイクロビーズに連結できる(例えばHermanson,1996参照)。

マイクロビーズは広範な種類の機能表面基、即ちアルデヒド、脂肪族アミン、アミド、芳香族アミン、カルボン酸、クロロメチル、エポキシ、ヒドラジド、ヒドロキシル、スルホネートおよびトシルにより付与される疎水性表面（例えばプレーンポリスチレン）から極めて親水性の表面まで、種々の表面化学のものが入手可能である。官能基はマイクロビーズ表面への化合物の安定または過逆的な結合のための当業者の周知の広範な共有結合反応を可能とする。

好ましくは化合物は切断可能なリンカーを介してマイクロビーズに結合する。このような種々のリンカーは当業者の知る通りであり(例えばGordon and Balasubramanian,1999参照)、例えば光化学的に切断できるリンカー、および、ｐＨの変更により（例えばイミンおよびアシルヒドラゾン）、酸化還元特性を調節することにより（例えばジスルフィド）または外部触媒を用いながら（例えば交差複分解およびアミド転換）制御することができる可逆共有結合が挙げられる。

好ましくは、化合物の僅か１種のみであるが、その複数のコピーを各ビーズ内に結合させる。

（（ii）二次化合物ライブラリ）
二次化合物ライブラリはマイクロカプセル内の一次化合物間の反応により産生される。二次化合物は当業者の周知の種々の２成分および多成分の反応により産生できる(Armstrong et al.,1996;Domling,2002;Domling and Ugi,2000;Ramstrom and Lehn,2002)。

２成分反応により二次化合物ライブラリを形成するためには、多くのコンパートメントが化合物２つ以上を含有するように、マイクロカプセル内に化合物２セットをコンパートメント化する。好ましくは、マイクロカプセル当たりの化合物の最頻数は２である。好ましくは、マイクロカプセルは化合物の各セットに由来する化合物の少なくとも１種を含有する。好ましくは、マイクロカプセルは化合物の各セットに由来する化合物１種を含有する。二次化合物は異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応により形成される。二次化合物は一次化合物の間の共有結合または非共有結合反応の結果であってよい。

当業者の知る種々の化学的方法が２成分反応における二次化合物の形成に適している。例えばｐＨの変更により（例えばイミンおよびアシルヒドラゾン）、酸化還元特性を調節することにより（例えばジスルフィド）または外部触媒を用いながら（例えば交差複分解およびアミド転換）制御することができる可逆共有結合を用いることができる(Ramstrom and Lehn,2002)。

別の実施形態においては、方法は３成分、４成分およびより高次の多成分の反応を用いて二次化合物ライブラリを生成できる。３、４またはそれ以上のセットの化合物（適宜）をマイクロカプセル内にコンパートメント化する。化合物は多くのコンパートメント化が複数の化合物を含有するようにマイクロカプセル内にコンパートメント化する。好ましくは、マイクロカプセル当たりの化合物の最頻数は反応における成分の数と等しい。好ましくは、マイクロカプセルは化合物の各セットに由来する化合物の少なくとも１種を含有する。好ましくは、マイクロカプセルは化合物の各セットに由来する化合物１種を含有する。二次化合物は異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応により形成される。二次化合物は一次化合物の間の共有結合または非共有結合反応の結果であってよい。

適当な多成分反応の例はStrecker、Hantzsch、Biginelli、Mannich、Passerini、Bucherer-BergsおよびPauson-Khandの３成分反応およびＵｇｉの４成分反応である(Armstrong et al.,1996;Domling,2002;Domling and Ugi,2000)。

二次化合物ライブラリは全ての二次化合物に共通であるスカフォールド分子を用いて構築してもよい(Ramstrom and Lehn,2002)。このスカフォールド分子は他の一次化合物と共にマイクロカプセル内にコンパートメント化してよい。

別の実施形態において、２成分反応により二次化合物ライブラリを形成するためには、化合物２セットをマイクロビーズに結合することにより、好ましくは、マイクロビーズ当たり僅か１種の分子のみを得る。多くのコンパートメントが２以上のマイクロビーズを含有するようにマイクロカプセル内にマイクロビーズをコンパートメント化する。好ましくは、、マイクロカプセル当たりのビーズの最頻数は２である。２セットの少なくとも１つを含む化合物をマイクロビーズから放出する。二次化合物は異なるセットの一次化合物間の化学反応により形成される。二次化合物は一次化合物の間の共有結合または非共有結合反応の結果であってよい。

別の実施形態においては、方法は３成分、４成分およびより高次の多成分の反応を用いて二次化合物ライブラリを産生できる。３、４またはそれ以上のセットの化合物（適宜）をマイクロビーズに結合することにより、好ましくはマイクロビーズ当たり単一の種類の分子のみを得る。マイクロビーズは多くのコンパートメント化が複数のマイクロビーズを含有するようにマイクロカプセル内にコンパートメント化する。好ましくは、マイクロカプセル当たりのビーズの最頻数は反応における成分の数と等しい。セットの全てまたは１つの何れかを含む化合物がマイクロビーズから放出される。二次化合物は異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応により形成される。二次化合物は一次化合物の間の共有結合または非共有結合反応の結果であってよい。

好ましくは、二次化合物を形成するために用いられるものと同じ可逆的共有結合を用いてマイクロビーズに一次化合物をカップリングできる。

二次化合物ライブラリは、二次化合物の全てに共通のスカフォールド分子を用いて構築される(Ramstrom and Lehn,2002)。このスカフォールド分子はマイクロビーズと共にマイクロカプセル内にコンパートメント化してよい。

〔（Ｄ）化合物の識別〕
マイクロカプセル内またはマイクロビーズ上の化合物は種々の方法で識別できる。識別されたマイクロカプセルを分類（例えば蛍光活性化細胞ソーター：ＦＡＣＳを使用）する場合、化合物は例えば質量スペクトル分析による直接の分析により識別できる。選択（例えばアフィニティー精製による）または分類（例えばＦＡＣＳを使用）の結果として単離されたビーズに結合したままで化合物が残存する場合、それらはまた例えば質量スペクトル分析による直接の分析により識別できる。マイクロカプセルまたはビーズは当業者の周知の種々の手段によりタグ付けでき、そのタグを用いてビーズに結合した化合物を識別する(Czarnik,1997)。化合物をコード化する化学的、スペクトル分析的、電子的および物理的な方法は全て使用してよい。好ましい実施形態においては、マイクロカプセルまたはビーズは異なる光学特性を有し、これにより光学的にコード化される。好ましい実施形態においては、コード化は異なる蛍光特性を有するマイクロカプセルまたはビーズに基づく。高度に好ましい実施形態においては、マイクロカプセルまたはビーズはマイクロカプセルまたはビーズ内に異なる濃度で存在する蛍光量子ドットを用いてコード化される(Han,2001)。微小流体チャンネル内を順序だった配列として流動しているマイクロカプセルはまたマイクロカプセルのストリーム内のその配列によりコード化（全体的または部分的）できる（位置コード化）。

好ましくは、各化合物は異なる濃度（典型的にはｍＭ〜ｎＭの範囲の濃度）で異なるマイクロカプセル内に存在することにより、用量応答曲線の作成を可能とする。これは、例えば阻害化合物の阻害定数（Ｋ_i）の測定を可能にする。マイクロカプセル内の化合物の濃度は例えば上記したマイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学的コード化または位置コード化により測定できる。

〔（Ｅ）標的の識別〕
好ましくは、各マイクロカプセルが同じ標的の複数のコピーを含有するように複数の異なる標的をマイクロカプセル内にコンパートメント化できる。例えば複数のプロテインキナーゼ、または単一の標的の複数の多形変異体をコンパートメント化することにより化合物の特異性を測定可能にできる。マイクロカプセル内の標的の特性(identity)は、例えば上記したマイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学的コード化または位置コード化により測定できる。

別の様式において表現すれば、
（ａ）多くのコンパートメント化が一次化合物２つ以上を含むように標的と共にマイクロカプセル内に一次化合物のセット２つ以上をコンパートメント化するステップ；
（ｂ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル中に二次化合物を形成するステップ；および、
（ｃ）反応して標的に結合するか標的の活性をモジュレートする二次化合物を形成する一次化合物のサブセットを識別するステップ；
を含む、生化学的系の標的成分に結合するか、または標的の活性をモジュレートする化合物の合成および識別のための方法が提供される。

更にまた、
（１）マイクロビーズ上に一次化合物２セット以上を結合させるステップ；
（２）多くのコンパートメントがマイクロビーズ２つ以上を含有するように標的と共にマイクロカプセル内にマイクロビーズをコンパートメント化するステップ；
（３）マイクロビーズから一次化合物を放出させるステップ；
（４）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル中に二次化合物を形成するステップ；および、
（５）反応して標的に結合するか標的の活性をモジュレートする二次化合物を形成する一次化合物のサブセットを識別するステップ；
を含む、生化学的系の標的成分に結合するか、または標的の活性をモジュレートする化合物の合成および識別のための方法が提供される。

一次化合物が同じコンパートメント内の他の一次化合物のみならずコンパートメント内の他のマイクロビーズとも反応する場合、共に反応して二次化合物を形成する一次化合物は選択または分類の結果として単離されたマイクロビーズ上に存在する化合物の直接の分析により識別できる。例えば、コンパートメント内に放出される場合に一次化合物がジスルフィド結合を介してビーズに連結されている場合、一次化合物は二次化合物を形成するために相互に、そして、ビーズ上のスルフィドリル基と反応することになる。従って、ビーズ２個を共コンパートメント化する場合、各ビーズは最終的には共に一次化合物を担持することになる。これらのビーズを単離した後、反応して二次化合物を形成する一次化合物の両者が識別できる。

本発明の種々の態様および実施形態を以下の実施例において説明する。詳細の変更は本発明の範囲を逸脱することなく行えるものとする。

［実施例１：酵素タンパク質チロシンホスファターゼ１Ｂ（ＰＴＰ１Ｂ）の阻害剤のスクリーニング］
ＰＴＰ１Ｂはインスリンおよびレプチンのシグナル伝達の負の調節物質である。インスリンおよびレプチンに対する耐性はII型真性糖尿病および肥満の指標であり、従ってＰＴＰ１Ｂは糖尿病および肥満の治療のための魅力的な薬剤標的である(Johnson et al.,2002)。２種の油中水エマルジョンを以下の通り作成した。

デカン中の１％（ｗ／ｖ）Ｓｐａｎ６０および１％（ｗ／ｖ）コレステロールの溶液(全てSigma Aldrichから)は、デカン７．８４ｍｌにＳｐａｎ６０を８０ｍｇ、コレステロールを８０ｍｇ溶解することにより製造する。デカンを４５℃に加熱し、界面活性剤およびコレステロールの完全な可溶化を可能とする。界面活性剤／デカンの溶液を２００μｌのバッチに渡り分割し、３７℃のブロックヒーター中に入れる。

手操作押し出し装置(Mini extruder,Abanti Polar Lipids Inc,Alabaster,AL,USA)を製造元の取扱説明書に従って組み立てる。押し出しのためには、平均孔径１４μｍのシングルの１９ｍｍのTrack-Etchポリカーボネートフィルター(Whatman Nucleopore,Whatman,Maidstone,UK)をミニ押出機の内部に装着する。２本の気密性１ｍｌハミルトンシリンジ(Gastight#1001、Hamilton Co,Reno,Nevada,USA)を押し出しに使用する。デカン１ｍｌをにハミルトンシリンジ１本にロードしてシリンジをミニ押出機の一端に置き押出機の他方上の空のハミルトンシリンジ内にフィルターを経由してそれを押し出すことにより、デカン３×１ｍｌで押出機を前洗浄した。

第１のエマルジョンは、ＰＴＰ１Ｂ活性に適合した緩衝液（２５ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭＮａＣｌ、１０％グリセロール、１ｍＭＥＤＴＡ）(Doman et al.,2002)中のビス−ジフルオロメチレンホスホネートを有しており公知のＰＴＰ１Ｂ阻害剤である１００μＭ化合物２（図１）５０μｌ(Johnson et al.,2002)、５ｍＵ／ｍｌの標的酵素（ヒト組み換えＰＴＰ１Ｂ、残基１〜３２２；Biomol Research Laboratories,Inc.）、蛍光発生ＰＴＰ１Ｂ基質６，８−ジフルオロ−４−メチルウンベリフェリルホスホネート（ＤｉＦＭＵＰ）(Molecular Probes)および１００μＭテキサスレッド（Sigma；励起／発光最大５９５／６１５ｎｍ；赤色蛍光）をハミルトンシリンジの１本に、予備加熱したデカン／界面活性剤混合物を他のハミルトンシリンジにロードすることにより作成する。シリンジを押出機のフィルターホルダーの両側の開口部内に装着する。化合物混合物を強制的にフィルターホルダーを通してデカン／界面活性剤混合物の入った別のシリンジ内に入れ、直接強制的に元のシリンジに戻すことにより、押し出しの１往復を完了する。合計で７．５往復の押し出しを完了する。充填されたシリンジを押出機から取り外し、１．７ｍｌ Axygen試験管内にあける(#MCT-175-C、Axygen Scientific,Inc.,Union City,CA,USA)。

第２の油中水エマルジョンは化合物２の代わりにＰＴＰ１Ｂ阻害剤ではない化合物である１００μＭヒドロケイヒ酸(Aldrich)を、テキサスレッドの代わりに１００μＭカルセイン（Sigma；励起／発光最大４７０／５０９ｎｍ；緑色蛍光）を含有する以外は上記エマルジョンと同一に作成する。

１：１０００〜１：１（化合物２エマルジョン：ヒドロケイヒ酸エマルジョン）の範囲の比で２種のエマルジョンを振とうすることにより混合し、３０分間３７℃でインキュベートする。阻害剤は脱ホスホリル化生成物（ＤｉＦＭＵ；励起／発光最大３５８／４５２ｎｍ；青色蛍光）に変換される非蛍光基質（ＤｉＦＭＵＰ）の量を低減する。

次に油中水エマルジョンを以下の通り水中油中水ダブルエマルジョンに変換する。押出機（上記参照）を分解し、石鹸および逆浸透水で十分洗浄し、再度組み立てる。平均孔径８μｍのシングルの１９ｍｍTrack-Etchポリカーボネートフィルターを装着する。押出機をリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）３×１ｍｌで予備洗浄する。０．５％（ｗ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ８０(Sigma Aldrich)を含有するＰＢＳ７５０μｌを１ｍｌの気密性ハミルトンシリンジにロードし、押出機に装着する。油中水エマルジョン２５０μｌを別の１ｍｌハミルトンシリンジにロードし、押出機に装着する。エマルジョンを強制的にフィルターを通してＰＢＳ／０．５％Ｔｗｅｅｎ８０の入った別のシリンジ内に入れ、即座に強制的に元のシリンジに戻すことにより、押し出しの１サイクルを完了する。合計で４．５サイクルの押し出しを完了する。充填されたシリンジを押出機から取り外し、１．７ｍｌAxygen試験管内にあける。形成された水中油中水のダブルエマルジョンを氷上に置く。

次にダブルエマルジョンをMoFlo(Cytomation)フローサイトメトリーを用いた多色フローサイトメトリーにより分析する。主に、緑色蛍光を示す（ヒドロケイヒ酸を含有する）マイクロカプセルがＰＴＰ１ＢによるＤｉＦＭＵＰの脱ホスホリル化により青色蛍光も示す。主に、赤色蛍光を示す（化合物２を含有する）マイクロカプセルがＰＴＰ１Ｂの阻害により青色蛍光は殆どまたは全く示さない。

［実施例２］
２種の水性混合物を氷上（反応を防止するため）において作成する。第１の混合物はＰＴＰ１Ｂ活性に適合した緩衝液（２５ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭＮａＣｌ、１０％グリセロール、１ｍＭＥＤＴＡ）(Doman et al.,2002)中のビス−ジフルオロメチレンホスホネートを有しており知られたＰＴＰ１Ｂ阻害剤である１００μＭ化合物２（図１）(Johnson et al.,2002)、５ｍＵ／ｍｌの標的酵素（ヒト組み換えＰＴＰ１Ｂ、残基１〜３２２；Biomol Research Laboratories,Inc.）、蛍光発生ＰＴＰ１Ｂ基質６，８−ジフルオロ−４−メチルウンベリフェリルホスホネート（ＤｉＦＭＵＰ）(Molecular Probes)および１００μＭテキサスレッド（Sigma；励起／発光最大５９５／６１５ｎｍ；赤色蛍光）を含有する。第２の混合物は化合物２の代わりにＰＴＰ１Ｂ阻害剤ではない化合物である１００μＭヒドロケイヒ酸(Aldrich)を、テキサスレッドの代わりに１００μＭカルセイン（Sigma；励起／発光最大４７０／５０９ｎｍ；緑色蛍光）を含有する以外は上記と同一に作成する。

化合物混合物の各々の５０μｌを順次、実施例１に記載したとおり作成し３７℃に保持したデカン中１％（ｗ／ｖ）Ｓｐａｎ６０および１％（ｗ／ｖ）コレステロールの溶液に添加し、その間５ｍｍの分散ツールでUltra-TurraxT8ホモゲナイザー(IKA)を用いながら25,000r.p.mでホモゲナイズする。ホモゲナイズは第２の小分量を添加した後３分間継続する。次に生成した粗野なエマルジョンを実施例１の通り押し出し、微小な油中水エマルジョンを作成し、３０分間３７℃でインキュベートする。阻害剤は脱ホスホリル化生成物（ＤｉＦＭＵ；励起／発光最大３５８／４５２ｎｍ；青色蛍光）に変換される非蛍光基質（ＤｉＦＭＵＰ）の量を低減する。次に油中水エマルジョンを水中油中水ダブルエマルジョンに変換し、実施例１に記載の通り多色フローサイトメトリーで分析する。主に、緑色蛍光を示す（ヒドロケイヒ酸を含有する）マイクロカプセルがＰＴＰ１ＢによるＤｉＦＭＵＰの脱ホスホリル化により青色蛍光も示す。主に、赤色蛍光を示す（化合物２を含有する）マイクロカプセルがＰＴＰ１Ｂの阻害により青色蛍光は殆どまたは全く示さない。

［実施例３：化合物ライブラリからのＰＴＰ１Ｂ阻害剤のスクリーニング］
実施例１に記載の通り１００種の油中水エマルジョンを氷上（反応を防止するため）において作成する。第１のエマルジョンは、ビス−ジフルオロメチレンホスホネートを有しており知られたＰＴＰ１Ｂ阻害剤である１００μＭ化合物２（図１）(Johnson et al.,2002)、５ｍＵ／ｍｌの標的酵素（ヒト組み換えＰＴＰ１Ｂ、残基１〜３２２；Biomol Research Laboratories,Inc.）、蛍光発生ＰＴＰ１Ｂ基質６，８−ジフルオロ−４−メチルウンベリフェリルホスホネート（ＤｉＦＭＵＰ）(Molecular Probes)および発光最大５８５ｎｍ、６５５ｎｍおよび７０５ｎｍを有する予備設定された比のＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲート(Quantum Dot Corporation,Hayward CA)の混合物をＰＴＰ１Ｂ活性に適合した緩衝液（２５ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭＮａＣｌ、１０％グリセロール、１ｍＭＥＤＴＡ）(Doman et al.,2002)に分散することにより作成する。９９種の他の油中水エマルジョンは、化合物２の代わりにカルボン酸有機ビルディングブロックライブラリ(Aldrich)由来の９９種のカルボン酸のうちの１つ、および、発光最大５８５ｎｍ、６５５ｎｍおよび７０５ｎｍを有する異なる比のＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲートを各々が含有する以外は上記と同一である。全てのエマルジョンにおいて、７０５ｎｍＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲートの濃度は１００ｎＭであり、５８５ｎｍおよび６５５ｎｍＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲートの濃度は０、１１、２２、３３、４４、５５、６６、７７、８８または１００ｎＭの何れかとする。従って、１００（１０×１０）通りのＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲートの濃度があることになり、これにより、７０５ｎｍ、５８５ｎｍおよび６５５ｎｍにおける蛍光の蛍光比を測定することにより読み取られる独特の蛍光シグネチャーを各化合物を含有するマイクロカプセルが保有できるようになる。

１００種のエマルジョンを振とう攪拌により等しい比で混合し、温度を３０分間２５℃まで上昇させる。阻害剤は脱ホスホリル化生成物（DiFMU；励起／発光最大３５８／４５２ｎｍ；青色蛍光）に変換される非蛍光基質(DiFMUP)の量を低減する。次に油中水エマルジョンを水中油中水ダブルエマルジョンに変換し、実施例１に記載の通り多色フローサイトメトリーで分析する。化合物２を含有するマイクロカプセルのＱｄｏｔ蛍光シグネチャーのものを除き、主に、全てのマイクロカプセルはＰＴＰ１ＢによるＤｉＦＭＵＰの脱ホスホリル化により青色蛍光を示す。

［実施例４：化合物ライブラリからのＰＴＰ１Ｂ阻害剤のスクリーニング］
１００種の水性混合物を氷上（反応を防止するため）において作成する。第１の混合物は、ＰＴＰ１Ｂ活性に適合した緩衝液（２５ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭＮａＣｌ、１０％グリセロール、１ｍＭＥＤＴＡ）(Doman et al.,2002)中のビス−ジフルオロメチレンホスホネートを有しており知られたＰＴＰ１Ｂ阻害剤である１００μＭ化合物２（図１）(Johnson et al.,2002)、５ｍＵ／ｍｌの標的酵素（ヒト組み換えＰＴＰ１Ｂ、残基１〜３２２；Biomol Research Laboratories,Inc.）、蛍光発生ＰＴＰ１Ｂ基質６，８−ジフルオロ−４−メチルウンベリフェリルホスホネート（ＤｉＦＭＵＰ）(Molecular Probes)および発光最大５８５ｎｍ、６５５ｎｍおよび７０５ｎｍを有する予備設定された比のＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲート(Quantum Dot Corporation,Hayward CA)を含有する。９９種の他の水性混合物は、化合物２の代わりにカルボン酸有機ビルディングブロックライブラリ(Aldrich)由来の９９種のカルボン酸のうちの１つ、および、発光最大５８５ｎｍ、６５５ｎｍおよび７０５ｎｍを有する異なる比のＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲートを各々が含有する以外は上記と同一である。全ての混合物において、７０５ｎｍＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲートの濃度は１００ｎＭであり、５８５ｎｍおよび６５５ｎｍＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲートの濃度は０、１１、２２、３３、４４、５５、６６、７７、８８または１００ｎＭの何れかとする。従って、１００（１０×１０）通りのＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲートの濃度があることになり、これにより、７０５ｎｍ、５８５ｎｍおよび６５５ｎｍにおける蛍光の蛍光比を測定することにより読み取られる独特の蛍光シグネチャーを各化合物を含有するマイクロカプセルが保有できるようになる。

化合物混合物の各々０．５μｌを順次、実施例１に記載したとおり作成し３７℃に保持したデカン中１％（ｗ／ｖ）Ｓｐａｎ６０および１％（ｗ／ｖ）コレステロールの溶液に添加し、その間５ｍｍの分散ツールでUltra-TurraxT8ホモゲナイザー（ＩＫＡ）を用いながら25,000r.p.mでホモゲナイズする。ホモゲナイズは第２の小分量を添加した後３分間継続する。次に生成した粗野なエマルジョンを実施例１の通り押し出し、微小な油中水エマルジョンを作成し、３０分間３７℃でインキュベートする。阻害剤は脱ホスホリル化生成物（ＤｉＦＭＵ；励起／発光最大３５８／４５２ｎｍ；青色蛍光）に変換される非蛍光基質（ＤｉＦＭＵＰ）の量を低減する。次に油中水エマルジョンを水中油中水ダブルエマルジョンに変換し、実施例１に記載の通り多色フローサイトメトリーで分析する。化合物２を含有するマイクロカプセルのＱｄｏｔ蛍光シグネチャーのものを除き、主に、全てのマイクロカプセルはＰＴＰ１ＢによるＤｉＦＭＵＰの脱ホスホリル化により青色蛍光を示す。

［実施例５：微小流体システムにおけるマイクロカプセルを使用したＰＴＰ１Ｂ阻害剤のスクリーニング］
微小チャンネルはポリ（ジメチルシロキサン）（ＰＤＭＳ）(McDonald and Whitesides,2002)中の急速なフォトタイピングを用いて長方形の断面を有するように加工し、Song and Ismagilov,2003に記載の通り疎水性を付与する。シリンジポンプを用いて流動を起こした（Harvard Apparatus PHD2000 Infusionポンプ）。水溶液については、取り外し可能な２７ゲージ針のついた５０μｌのハミルトンガスタイトシリンジ（１７００シリーズ、ＴＬＬ）を３０ゲージのテフロン（登録商標）チューブ(Weico Wire and Cable)と共に使用した。キャリア流体に対しては、１ｍｌハミルトンガスタイトシリンジ（１７００シリーズ、ＴＬＬ）をハミルトンの１ハブを有する３０ゲージのテフロン（登録商標）針と共に使用した(Song and Ismagilov,2003)。キャリア流体はパーフルオロデカリン（ＰＦＤ）中９％（ｖ／ｖ）のＣ₆Ｆ₁₁Ｃ₂Ｈ₄ＯＨとする(Song et al.,2003)。全ての水溶性試薬はＰＴＰ１Ｂ活性に適合した緩衝液（２５ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭＮａＣｌ、１ｍＭＥＤＴＡ）中に溶解した。

５０ｍＵ／ｍｌの標的酵素（ヒト組み換えＰＴＰ１Ｂ、残基１〜３２２；Biomol Research Laboratories,Inc.）の溶液、および、ａ）ビス−ジフルオロメチレンホスホネートを有しており知られたＰＴＰ１Ｂ阻害剤である１００μＭ化合物２（図１）(Johnson et al.,2002)またはｂ）ＰＴＰ１Ｂ阻害剤ではない化合物である１００μＭヒドロケイヒ酸(Aldrich)を不活性の中心ストリーム（２５ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭＮａＣｌ、１ｍＭＥＤＴＡ）を有する２本の層流ストリームとしてのマイクロチャンネル中を流動させることにより、これらを分離し、酵素と化合物が液滴マイクロカプセル形成よりも前に接触することを防止する(Song et al.,2003)。これらの３ストリームを連続的に水不混和性のフッ化炭素キャリア流体（ＰＦＤ中９％（ｖ／ｖ）Ｃ₆Ｆ₁₁Ｃ₂Ｈ₄ＯＨ）中に注入する。水溶液用の導入チャンネルは５０μｍ²の広さとし、ＰＦＤ用チャンネルは２８μｍ幅とする。０．６：０．３、１．０：０．６、１２．３：３．７、１０：６および２０：６を含む種々のＰＦＤ／水の計量的流量（μ／分）を使用でき、得られる流量はそれぞれ１０、１９、１９０、１９０および３００ｍｍ／秒となる。チャンネルの全幅を占有する水性マイクロカプセルはＰＦＤストリーム中の液滴の破壊により形成する(Song et al.,2003)。化合物２またはヒドロケイヒ酸の何れかを含有するマイクロカプセルは、化合物２およびヒドロケイヒ酸を含有するシリンジを用いた注入を切り替えながら行うことにより形成できる。

液滴形成地点のすぐ下流のチャンネルは１ｍｍの距離に渡りピーク間の距離５０μｍで旋廻している。これにより混乱移流によるマイクロカプセルの内容物の急速な混合が起こる(Song et al.,2003)。この地点の後、マイクロカプセルは長さ６０ｃｍのマイクロチャンネルを経由して１分間まで流動する（これにより阻害剤の結合を可能とする）。次にこのマイクロチャンネルを上記した通り形成したＰＦＤ中９％（ｖ／ｖ）Ｃ₆Ｆ₁₁Ｃ₂Ｈ₄ＯＨ中に水性マイクロカプセルを含有する６０×５０μｍ²マイクロチャンネルと合流させる。これらのより大きいマイクロカプセルは２５ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭＮａＣｌ、１ｍＭＥＤＴＡ中の蛍光発生ＰＴＰ１Ｂ基質６，８−ジフルオロ−４−メチルウンベリフェリルホスホネート（ＤｉＦＭＵＰ）(Molecular Probes)を含有する。マイクロチャンネルの間の注入の後、拡張した主チャンネルは１００×５０μｍ²であり、マイクロカプセルはチャンネルをブロックせず、大型のマイクロカプセル（ＤｉＦＭＵＰを含有）が小型のマイクロカプセル（ＰＴＰ１Ｂおよび化合物を含有）と合体するまで異なる速度で移動する(Song et al.,2003)。大型および小型のマイクロカプセルの生成の頻度は、各大型マイクロカプセルが融合すべき小型マイクロカプセルを有するように、等しくする。融合したマイクロカプセルは長さ６０ｃｍのマイクロチャンネルを経由して２分間まで流動する。ＤｉＦＭＵＰ（励起／発光最大３５８／４５２ｎｍ；青色蛍光）の生成によるマイクロカプセルの蛍光はエピ蛍光顕微鏡を用いて測定する。主に、青色蛍光を示すマイクロカプセルがヒドロケイヒ酸を含有するものであり、化合物２を含有するマイクロカプセルはＰＴＰ１Ｂの阻害により低い蛍光を示す。

［実施例６：マイクロビーズへの化合物ライブラリの結合］
表面上にカルボキシレート官能基を有する直径５．５μｍのポリスチレンマイクロビーズはオレンジ色（５８５ｎｍ）および赤色（＞６５０ｎｍ）の蛍光色素の厳密な比の取り込みの結果として光学的にタグ付けされた形態で市販されている(www.luminexcorp.com)(Fulton et al.,1997)。各々が独特の光学的シグネチャー(www.luminexcorp.com)を有するこのようなビーズ１００個のセットを過剰なエチレンジアミンおよびＥＤＣ（塩酸１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド(Pierce)）でHermanson,1996に記載の通り修飾し、表面に第１アミノ基を形成した。次に上記した通りＥＤＣを用いてアミド結合を形成することにより、光分解性のリンカー４−（４−ヒドロキシメチル−２−メトキシ−５−ニトロフェノキシ）ブタン酸(NovaBiochem)(Holmes and Jones,1995)をビーズに結合させる。次に、リンカーアルコールと反応させることによりカルボン酸有機ビルディングブロックライブラリ(Aldrich)由来の１００種の異なるカルボン酸をビーズにカップリングさせてカルボキシレートエステルを形成し、１００種の異なる光学的にタグ付けされたビーズの各々が異なるカルボン酸にカップリングし、そして各ビーズがカルボン酸〜１０⁶分子で誘導体化されるようにする。Ｂ１００ＡＰ３５４ｎｍＵＶランプ（ＵＶＰ）を用いて〜５ｃｍの距離から氷上４分間照射することによりカルボン酸としてビーズから化合物を放出させる。

［実施例７：マイクロビーズに結合した化合物を用いた酵素タンパク質チロシンホスファターゼ１Ｂ（ＰＴＰ１Ｂ）の阻害剤のスクリーニング］
ＰＴＰ１Ｂはインスリンおよびレプチンのシグナル伝達の負の調節物質である。インスリンおよびレプチンに対する耐性はII型真性糖尿病および肥満の指標であり、従ってＰＴＰ１Ｂは糖尿病および肥満の治療のための魅力的な薬剤標的である(Johnson et al.,2002)。表面上にカルボキシレート官能基を有する直径５．５μｍのポリスチレンマイクロビーズはオレンジ色（５８５ｎｍ）および赤色（＞６５０ｎｍ）の蛍光色素の厳密な比の取り込みの結果として光学的にタグ付けされた形態で市販されている(www.luminexcorp.com)(Fulton et al.,1997)。まず、マイクロビーズ上のカルボキシレート官能基を実施例６の場合と同様にエチレンジアミンおよびＥＤＣを用いて第１アミンに変換する。次にＰＴＰ１Ｂのホスホペプチド基質であるウンデカペプチドＥＧＦＲ_988-998（ＤＡＤＥｐＹＬＩＰＱＱＧ）(Zhang et al.,1993)をＥＤＣを用いて表面アミノ基を介してマイクロビーズの両方のセットにカップリングさせる。このペプチドはカルボキシレート−Ｏ−アリルエステルを用いた側鎖カルボキシレート基上の直角保護を用いてSieber Amide樹脂（９−Ｆｍｏｃ−アミノ−キサンテン−３−イルオキシ−Merrifield樹脂）(Novabiochem)上の固相合成により作成する。テトラデカンジ酸からなるリンカーをＮ末端にカップリングし、１％ＴＦＡを用いてビーズからペプチドを脱離させ、Ｃ末端アミドを有するペプチドを得る。ペプチドをリンカーを介してビーズにカップリングさせ（ＥＤＣ使用）、ビーズ当たり〜１０⁵ペプチドを得る。次に実施例６に記載の通り光化学分解性リンカー４−（４−ヒドロキシメチル−２−メトキシ−５−ニトロフェノキシ）ブタン酸を結合することにより残余の表面アミノ基を修飾する。次にペプチドの側鎖カルボキシレート上の保護基をＰｄ（Ｐｈ₃）₄／ＣＨＣｌ₃／ＨＯＡｃ／Ｎ−メチルモルホリンを用いて脱離させる。第１のセットのマイクロビーズを知られたＰＴＰ１Ｂ阻害剤である化合物である３−（４−ジフルオロホスホノメチルフェニル）プロパン酸（化合物１、図１）で誘導体化する(Johnson et al.,2002)。第１のセットのビーズとは別の光学的タグを有する第２のセットのビーズはＰＴＰ１Ｂ阻害剤ではない化合物であるヒドロケイヒ酸(Aldrich)で誘導体化する。各々の場合において、実施例６に記載の通り、化合物はリンカーアルコールと反応させることによりカップリングしてカルボキシレートエステルを形成する。各マイクロビーズは〜１０⁶分子で誘導体化する(Fulton et al.,1997)。

次にマイクロビーズを図２に示す方法を用いてスクリーンする。２セットのマイクロビーズを１：１００〜１：１（化合物１ビーズ：ヒドロケイヒ酸ビーズ）の範囲の比で混合し、合計１０⁸マイクロビーズをＰＴＰ１Ｂ活性に適合した緩衝液（２５ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭＮａＣｌ、１０％グリセロール、１ｍＭＥＤＴＡ）(Doman et al.,2002)中、氷上（反応を防止するため）で、１０ｎＭの濃度の標的酵素（ヒト組み換えＰＴＰ１Ｂ、残基１〜３２２；Biomol Research Laboratories,Inc.）と混合する。次にシングルのビーズおよび標的酵素（ＰＴＰ１Ｂ）を、油中水エマルジョンを形成（やはり氷上）することによりマイクロカプセル内に共局在化させる。ビーズの濃度は大部分のマイクロカプセルが１個または０個のビーズを含有するようにする。化合物を光化学的（実施例６に記載）に放出させ、温度を２５℃に上昇させる。阻害剤は生成物（脱ホスホリル化ペプチド）に変換される基質の量を低減する。エマルジョンを４℃に冷却し、Griffiths and Tawfik,2003に記載の通り破壊して１００μＭバナジン酸塩中にいれ、反応を停止させる(Harder et al.,1994)。製造元の取扱説明書に従って緑色（５３０ｎｍ）蛍光色素フルオレセインイソチオシアネートで標識した抗基質（抗ホスホチロシン）抗体（マウスモノクローナルＩｇＧ_2bＰＹ２０，(Santa Cruz)）で標識した後、FACScan(Becton-Dickinson)、FACScalibur(Becton-Dickinson)またはMoFlo(Cytomation)フローサイトメトリーを用いて３色フローサイトメトリーによりビーズを分析し、阻害の程度およびビーズ上の化合物を同時に測定する。主に、ＰＴＰ１Ｂ阻害剤でコーティングされたマイクロビーズ上のみペプチドの脱ホスホリル化が観察され、他のマイクロビーズでは観察されなかった。

［実施例８：マイクロビーズに結合した化合物ライブラリからのＰＴＰ１Ｂ阻害剤のスクリーニング］
表面上にカルボキシレート官能基を有し、各々がオレンジ色（５８５ｎｍ）および赤色（＞６５０ｎｍ）の蛍光色素の厳密な比の取り込み(Fulton et al.,1997)の結果として独特の光学的シグネチャーを有する(www.luminexcorp.com)直径５．５μｍのポリスチレンマイクロビーズ１００個のセットをＰＴＰ１Ｂのホスホペプチド基質であるウンデカペプチドＥＧＦＲ_988-998（ＤＡＤＥｐＹＬＩＰＱＱＧ）(Zhang et al.,1993)および光化学的に切断できるリンカーを介して各々結合した１００種の異なるカルボン酸を用いて、実施例７に記載の通り誘導体化する。これらのカルボン酸の１つは知られたＰＴＰ１Ｂ阻害剤である化合物である３−（４−ジフルオロホスホノメチルフェニル）プロパン酸（化合物１、図１）である(Johnson et al.,2002)。他の９９種のカルボン酸は実施例６と同様にカルボン酸有機ビルディングブロックライブラリ(Aldrich)由来である。次に１００ビーズセットの各々の等しい数量を混合し、実施例７に記載の通りスクリーニングする。主に、ＰＴＰ１Ｂ阻害剤の３−（４−ジフルオロホスホノメチルフェニル）プロパン酸（化合物１、図１）でコーティングされたマイクロビーズ上のみペプチドの脱ホスホリル化が観察され、他の化合物でコーティングされたマイクロビーズでは観察されなかった。

［実施例９：エマルジョンマイクロカプセル中の二次化合物の合成および微小流体システム中のＰＴＰ１Ｂの阻害剤に関するスクリーニング］
微小チャンネルはポリ（ジメチルシロキサン）（ＰＤＭＳ）(McDonald and Whitesides,2002)中の急速なフォトタイピングを用いて長方形の断面を有するように加工し、Song and Ismagilov,2003に記載の通り疎水性を付与する。シリンジポンプを用いて流動を起こした（Harvard Apparatus PHD 2000 Infusionポンプ）。水溶液については、取り外し可能な２７ゲージ針のついた５０μｌのハミルトンガスタイトシリンジ（１７００シリーズ、ＴＬＬ）を３０ゲージのテフロン（登録商標）チューブ(Weico Wire and Cable)と共に使用した。キャリア流体に対しては、１ｍｌハミルトンガスタイトシリンジ（１７００シリーズ、ＴＬＬ）をハミルトンの１ハブを有する３０ゲージのテフロン（登録商標）針と共に使用した(Song and Ismagilov,2003)。キャリア流体はパーフルオロデカリン（ＰＦＤ）中９％（ｖ／ｖ）のＣ₆Ｆ₁₁Ｃ₂Ｈ₄ＯＨとする(Song et al.,2003)。全ての水溶性試薬はＰＴＰ１Ｂ活性に適合した緩衝液（２５ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭＮａＣｌ、１ｍＭＥＤＴＡ）中に溶解した。

５０ｍＵ／ｍｌの標的酵素（ヒト組み換えＰＴＰ１Ｂ、残基１〜３２２；Biomol Research Laboratories,Inc.）の溶液、第１アミンである化合物の溶液およびアルデヒドである化合物の溶液を２つの不活性の分離ストリーム（２５ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭＮａＣｌ、１ｍＭＥＤＴＡ）を有する３本の層流ストリームとしてのマイクロチャンネル中を流動させることにより、酵素と化合物が液滴マイクロカプセル形成よりも前に接触することを防止する(Song et al.,2003)。これらの５ストリームを連続的に水不混和性のフッ化炭素キャリア流体（ＰＦＤ中９％（ｖ／ｖ）Ｃ₆Ｆ₁₁Ｃ₂Ｈ₄ＯＨ）中の流れに注入する。アミンおよびアルデヒドはａ）ジフルオロメチレンホスホネート部分（図６、化合物ＡおよびＢ）を含有するか、または、ｂ）ジフルオロメチレンホスホネート部分を含有しないのいずれかであり得る。

水溶液用の導入チャンネルは５０μｍ²の広さとし、ＰＦＤ用チャンネルは２８μｍ幅とする。０．６：０．３、１．０：０．６、１２．３：３．７、１０：６および２０：６を含む種々のＰＦＤ／水の計量的流量（μ／分）を使用でき、得られる流量はそれぞれ１０、１９、１９０、１９０および３００ｍｍ／秒となる。チャンネルの全幅を占有する水性マイクロカプセルはＰＦＤストリーム中の液滴の破壊により形成する(Song et al.,2003)。ジフルオロメチレンホスホネート部分を有するまたは有さない化合物を含有するマイクロカプセルは、ジフルオロメチレンホスホネート部分を有するまたは有さないアミンまたはアルデヒドを含有するシリンジを用いた注入を切り替えながら行うことにより形成できる。

液滴形成地点のすぐ下流のチャンネルは１ｍｍの距離に渡りピーク間の距離５０μｍで旋廻している。これにより混乱移流によるマイクロカプセルの内容物の急速な混合が起こる(Song et al.,2003)。この地点の後、マイクロカプセルは長さ６０ｃｍのマイクロチャンネルを経由して１分間まで流動する。これによりアミンとアルデヒドは、シッフ塩基の形成により共に反応し、二次化合物を生成し、阻害剤がＰＴＰ１Ｂに結合できるようにする。次にこのマイクロチャンネルを上記した通り形成したＰＦＤ中９％（ｖ／ｖ）Ｃ₆Ｆ₁₁Ｃ₂Ｈ₄ＯＨ中に水性マイクロカプセルを含有する６０×５０μｍ²マイクロチャンネルと合流させる。これらのより大きいマイクロカプセルは２５ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭＮａＣｌ、１ｍＭＥＤＴＡ中の蛍光発生ＰＴＰ１Ｂ基質６，８−ジフルオロ−４−メチルウンベリフェリルホスホネート（ＤｉＦＭＵＰ）(Molecular Probes)を含有する。マイクロチャンネルの間の注入の後、拡張した主チャンネルは１００×５０μｍ²であり、マイクロカプセルはチャンネルをブロックせず、大型のマイクロカプセル（ＤｉＦＭＵＰを含有）が小型のマイクロカプセル（ＰＴＰ１Ｂおよび化合物を含有）と合体するまで異なる速度で移動できる(Song et al.,2003)。大型および小型のマイクロカプセルの生成の頻度は、各大型マイクロカプセルが融合すべき小型マイクロカプセルを有するように、等しくする。融合したマイクロカプセルは長さ６０ｃｍのマイクロチャンネルを経由して２分間まで流動する。ＤｉＦＭＵ（励起／発光最大３５８／４５２ｎｍ；青色蛍光）の生成によるマイクロカプセルの蛍光はエピ蛍光顕微鏡を用いて測定する。

主に、アミンおよびアルデヒドの濃度が低い（＜１００μＭ）場合は、ＰＴＰ１Ｂ活性の阻害はジフルオロメチレンホスホネート部分を有するアミン（化合物Ａ、図６）およびジフルオロメチレンホスホネート部分を有するアルデヒド（化合物Ｂ、図６）の両方を含有するマイクロカプセルにおいて観察されるのみである。これはこれらのマイクロカプセル内に形成されたシッフ塩基（化合物Ｃ、図６）がビス−ジフルオロメチレンホスホネートを含有しており、単一のジフルオロメチレンホスホネート部分を有する分子よりもはるかに強力なＰＴＰ１Ｂ阻害剤であるためである（図１参照）。

主に、アミンおよびアルデヒドの濃度が高い（＞１００μＭ）場合は、ＰＴＰ１Ｂ活性の阻害はジフルオロメチレンホスホネート部分を有するアミン（化合物Ａ、図６）またはジフルオロメチレンホスホネート部分を有するアルデヒド（化合物Ｂ、図６）の何れか、または両方を含有するマイクロカプセルにおいて観察されるが、他のマイクロカプセルでは観察されない。これは、単一のジフルオロメチレンホスホネート部分またはビス−ジフルオロメチレンホスホネート（化合物Ｃ、図６）の何れかを有するより高濃度の分子がＰＴＰ１Ｂを阻害できるためである（図１参照）。

［実施例１０：エマルジョンマイクロカプセル中の二次化合物の合成およびマイクロビーズに結合した化合物を用いたＰＴＰ１Ｂの阻害剤に関するスクリーニング］
表面上にカルボキシレート官能基を有する直径５．５μｍのポリスチレンマイクロビーズはオレンジ色（５８５ｎｍ）および赤色（＞６５０ｎｍ）の蛍光色素の厳密な比の取り込みの結果として光学的にタグ付けされた形態で市販されている(www.luminexcorp.com)(Fulton et al.,1997)。まず、マイクロビーズ上のカルボキシレート官能基を実施例６の場合と同様にエチレンジアミンおよびＥＤＣを用いて第１アミンに変換する。次にＰＴＰ１Ｂのホスホペプチド基質であるウンデカペプチドＥＧＦＲ_988-998（ＤＡＤＥｐＹＬＩＰＱＱＧ）(Zhang et al.,1993)をＥＤＣを用いて表面アミノ基を介してマイクロビーズの両方のセットにカップリングさせ、ペプチドの側鎖カルボキシレート上の保護基を実施例７に記載するとおり除去する。第１のセットのマイクロビーズ（セット１）をスクシンイミジルｐ−ホルミルベンゾエートと反応させることにより表面アミノ基をアルデヒドに変換する。第１のセットのマイクロビーズとは別の光学的タグを有する第２のセットのマイクロビーズ（セット２）は未反応のままとする（即ち表面上第１アミンを有する）。

次に第１のセットのマイクロビーズ（セット１）を表面アルデヒド基との反応を介してジフルオロメチレンホスホネート部分をおよび第１アミンを含有する化合物（化合物Ａ、図６）と反応させ、シッフ塩基を形成する。第１のセットのビーズとは別の光学的タグを有する第２のセットのマイクロビーズ（セット２）は表面アミン基とのアルデヒドの反応を介してジフルオロメチレンホスホネート部分およびアルデヒドを含有する化合物（化合物Ｂ、図６）と反応させ、シッフ塩基を形成する。シッフ塩基の形成はアルカリｐＨ（即ちｐＨ９〜１０）における反応により増強される。種々の密度で化合物をコーティングしたマイクロビーズを生成する。

２セットのマイクロビーズをＰＴＰ１Ｂ活性に適合した緩衝液（２５ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭＮａＣｌ、１０％グリセロール、１ｍＭＥＤＴＡ）(Doman et al.,2002)中、氷上（反応を防止するため）で１０ｎＭの濃度の標的酵素（ヒト組み換えＰＴＰ１Ｂ、残基１〜３２２；Biomol Research Laboratories,Inc.）と混合する。ビーズおよび標的酵素（ＰＴＰ１Ｂ）は油中水エマルジョン（やはり氷上）を形成することによりマイクロカプセル内に即座にコンパートメント化される。

マイクロビーズの数は一端において大部分のマイクロカプセルが１個または０個のビーズを含み、もう一端においてはマイクロカプセルの大部分がマイクロビーズ２個以上を含むように変動させる。温度を２５℃に上昇させる。シッフ塩基は比較的不安定な可逆性の相互作用であり、中性ｐＨにおいて容易に加水分解され、ビーズから化合物を放出させる。セット１およびセット２の両方に由来するマイクロビーズを含有するマイクロカプセルにおいては、マイクロビーズから放出された化合物は相互に反応することができ、シッフ塩基を形成し、溶液中に新しい分子を生成する。この新しい分子（図６、化合物Ｃ）はビス−ジフルオロメチレンホスホネート部分を含有し、単一のジフルオロメチレンホスホネート部分を有する化合物よりもＰＴＰ１Ｂ阻害剤として有意に高い力価を有する（図１参照）。阻害剤は生成物（脱ホスホリル化ペプチド）に変換される基質の量を低減する。エマルジョンを４℃に冷却し、Griffiths and Tawfik,2003に記載の通り破壊して１００μＭバナジン酸塩中にいれ、反応を停止させる(Harder et al.,1994)。製造元の取扱説明書に従って緑色（５３０ｎｍ）蛍光色素フルオレセインイソチオシアネートで標識した抗基質（抗ホスホチロシン）抗体（マウスモノクローナルＩｇＧ_2bＰＹ２０，(Santa Cruz)）で標識した後、FACScan(Becton-Dickinson)、FACScalibur(Becton-Dickinson)またはMoFlo(Cytomation)フローサイトメトリーを用いて３色フローサイトメトリーによりビーズを分析し、阻害の程度およびビーズ上の化合物を同時に測定する。少ないマイクロビーズ数では、大部分のマイクロカプセルは僅か単一のマイクロビーズを含むか全く含まず、各マイクロカプセル中の溶液内に放出された阻害剤の濃度が有効な阻害のために十分高値である場合に、ＰＴＰ１Ｂ阻害は高密度の阻害剤でコーティングされたビーズ上でのみ検出される。これとは対照的に、ビーズ数がより多ければ、マイクロビーズが低い密度で阻害剤によりコーティングされている場合であっても、僅かな基質が生成物に変換されていれば、多くのマイクロビーズが検出される。これは、セット１およびセット２の各々に由来するマイクロビーズを含有するマイクロカプセル内にビス−ジフルオロメチレンホスホネート部分を含む高力価のＰＴＰ１Ｂ阻害剤（図６、化合物Ｃ）が形成されるためである。

［実施例１１：エマルジョンマイクロカプセル内のライブラリ２５００二次化合物の合成およびマイクロビーズに結合した化合物を用いたＰＴＰ１Ｂ阻害のスクリーニング］
表面上にカルボキシレート官能基を有し、各々がオレンジ色（５８５ｎｍ）および赤色（＞６５０ｎｍ）の蛍光色素の厳密な比の取り込み(Fulton et al.,1997)の結果として独特の光学的シグネチャーを有する(www.luminexcorp.com)直径５．５μｍのポリスチレンマイクロビーズ１００個のセットを実施例６に記載の通り修飾してカルボキシレート官能基を第１アミンに変換し、次に、ＰＴＰ１Ｂのホスホペプチド基質であるウンデカペプチドＥＧＦＲ_988-998（ＤＡＤＥｐＹＬＩＰＱＱＧ）(Zhang et al.,1993)で実施例１０に記載の通り誘導体化する。最初の５０セットのマイクロビーズを実施例１０に記載の通り反応させて表面カルボキシル基のある割合をアルデヒドに変換する。第２の５０セットのマイクロビーズは未反応のままとする（即ち表面上第１アミンを有する）。

最初の５０セットのマイクロビーズを各々、表面アルデヒド基との反応を介して第１アミンを含有する独特の化合物と反応させることによりビーズに化合物を連結させるシッフ塩基を形成する。これらの化合物の１つ（化合物Ａ、図６）はジフルオロメチレンホスホネート部分を含む。第２のセットのマイクロビーズは各々表面アミン基との反応を介してアルデヒドを含有する独特の化合物と反応させることによりビーズに化合物を連結するシッフ塩基を形成する。これらの化合物の１つ（化合物Ｂ、図６）はジフルオロメチレンホスホネート部分を含む。シッフ塩基の形成はアルカリｐＨ（即ちｐＨ９〜１０）における反応により増強される。

マイクロビーズの数はマイクロカプセル当たりのマイクロカプセルの最頻数が２となるようにする。温度を２５℃に上昇させる。シッフ塩基は比較的不安定な可逆性の相互作用であり、中性ｐＨにおいて容易に加水分解され、ビーズから化合物を放出させる。第１の５０セットの１つに由来するマイクロビーズおよび第２の５０セットの１つに由来するマイクロビーズを含有するマイクロカプセルにおいては、マイクロビーズから放出された化合物は相互に反応することができ、シッフ塩基を形成し、溶液中に新しい分子を生成する。阻害剤は生成物（脱ホスホリル化ペプチド）に変換される基質の量を低減する。エマルジョンを４℃に冷却し、Griffiths and Tawfik,2003に記載の通り破壊して１００μＭバナジン酸塩中にいれ、反応を停止させる(Harder et al.,1994)。製造元の取扱説明書に従って緑色（５３０ｎｍ）蛍光色素フルオレセインイソチオシアネートで標識した抗基質（抗ホスホチロシン）抗体（マウスモノクローナルＩｇＧ_2bＰＹ２０，(Santa Cruz)）で標識した後、FACScan(Becton-Dickinson)、FACScalibur(Becton-Dickinson)またはMoFlo(Cytomation)フローサイトメトリーを用いて３色フローサイトメトリーによりビーズを分析し、阻害の程度およびビーズ上の化合物を同時に測定する。それ自体ＰＴＰ１Ｂ阻害剤であるか、または別の共コンパートメント化されたビーズから放出された別の一次化合物と反応して第２の阻害剤を形成する一次化合物でコーティングされたビーズは僅かな基質が生成物に変換されているため、識別される。僅かな基質が生成物に変換されている識別されたビーズは、ジフルオロメチレンホスホネート部分を含む化合物を担持するものを包含する。マイクロビーズが低い密度で化合物にコーティングされる場合、マイクロカプセル内にジフルオロメチレンホスホネート部分を含有する放出された化合物の濃度はＰＴＰ１Ｂを効率的に阻害するには不十分である（実施例７参照）。しかしながら、１つが第１のセットの５０ビーズに由来し、もう１つが第２のセットの５０ビーズに由来する２つのマイクロビーズを含み、各マイクロビーズがジフルオロメチレンホスホネート部分を有する部分を担持しているマイクロカプセルにおいては、放出された分子は生成物へのＰＴＰ１Ｂ基質の変換を阻害するマイクロカプセル内のビス−ジフルオロメチレンホスホネート部分を含む高力価のＰＴＰ１Ｂ阻害剤（化合物Ｃ、図６）を形成できる。

［実施例１２：フッ化炭素中水エマルジョンにおける小型分子のコンパートメント化］
９５％（ｖ／ｖ）パーフルオロオクチルブロミド、溶液中目的の分子を含有する５％（ｖ／ｖ）リン酸塩緩衝食塩水、および、界面活性剤としての２％（ｗ／ｖ）Ｃ₈Ｆ₁₇Ｃ₁₁Ｈ₂₂ＯＰ（Ｏ）［Ｎ（ＣＨ₂ＣＨ₂）₂Ｏ］₂（Ｆ８Ｈ１１ＤＭＰ）を含有するフッ化炭素中水エマルジョンを１４μフィルター(Osmonics)を通過させる押し出し（１５回）によるか、または、５ｍｍの分散ツールでUltra-TurraxT8ホモゲナイザー（ＩＫＡ）を用いながら25,000r.p.mで５分間ホモゲナイズすることにより、本質的にSadtler et al.,1996に記載の通り形成した。１００μｍ〜２ｍＭの濃度で水相中に溶解した一連の小型蛍光分子を含有するエマルジョンを作成した。カルセイン、テキサスレッド、フルオレセイン、クマリン１０２、７−ヒドロキシクマリン−３−カルボン酸および７−ジエチルアミノ−４−メチルクマリン（クマリン１）を含むこれらの分子は、分子量２０３〜６２５ＤａおよびＳＲＣのLogKow/KowWinプログラム(Meylan and Howard,1995)を用いて計算した場合に０．４９〜４．０９の範囲のＬｏｇＰ値を有していた。異なる色の蛍光色素を含むエマルジョンを振とう攪拌により混合した。混合されたエマルジョンのエピ蛍光顕微鏡観察によればコンパートメント化が観察された。混合後２４時間にはコンパートメント間の交換は観察されなかった（図５参照）。

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上記した本明細書において言及した全ての出版物および該出版物中に引用されている参考文献は参照により本明細書に組み込まれる。本発明の記載した方法および系の種々の変更および変形は本発明の範囲および精神を逸脱することなく当業者には明らかとなる。本発明は特定の好ましい実施形態との関連において説明してきたが、請求項に記載した本発明はそのような特定の実施形態に限定されない。実際、分子生物学または関連の分野の当業者には自明である本発明の実施のための記載した様式の種々の変更は添付する請求項の範囲内であることを意図するものである。

ＰＴＰ１Ｂ阻害剤の例。ビス−ジフルオロメチレンホスホネート部分を有する化合物（例えば２）は単一の部分を有するものよりも有意に大きい力価を有する。ＩＶＣを用いたＰＴＰ１Ｂ阻害剤のスクリーニング。オレンジ色または赤色の蛍光色素で染色した表面カルボキシレート基を有するポリスチレンビーズ(Fulton et al.,1997)をホスホペプチドＰＴＰ１Ｂ基質および切断可能なリンカーを介して結合したＰＴＰ１Ｂ阻害剤または非阻害化合物のいずれかで誘導する（１）。ビーズを混合した後、シングルのビーズおよび標的酵素（ＰＴＰ１Ｂ）を、油中水エマルジョンを形成することによりマイクロコンパートメント内に共局在化させる（２）。化合物を放出する（光化学的）（３）。阻害剤は生成物（脱ホスホリル化ペプチド）に変換される基質の量を低減する（４）。酵素反応を停止し、エマルジョンを破壊する（５）。緑色蛍光抗基質抗体で標識した後、ビーズを３色フローサイトメトリーで分析し、阻害の程度およびビーズ上の化合物を同時に測定する（６）。化合物ライブラリを光学的にタグ付けされたビーズ（後述）にカップリングし、フローサイトメトリーにより急速にデコードすることができる（100,000ビーズｓ^-1以下）。ヒット化合物を再合成して、更に特性決定（７）するか合成進化の過程において産生して再スクリーニングする（８）。エマルジョン中のＰＴＰ１Ｂ阻害剤の合成。２種のビーズを生成し、オレンジ色および赤色の蛍光色素で特徴的に標識し、２種の分子ＡまたはＢ（何れもジフルオロメチレンホスホネート部分を有さないか、一方のみ、または両方が有する）で誘導し、可逆連結部を介して結合させる（シッフ塩基）。ビーズを乳化してコンパートメント当たり平均２ビーズとする。分子ＡおよびＢをコンパートメント内のビーズから放出させ、反応させて新しい分子Ａ−Ｂを形成する（溶液中）。Ａ−ＢがＰＴＰ１Ｂ阻害剤である場合は、やはりビーズ上にあるＰＴＰ１Ｂ基質は脱ホスホリル化されず、これらのビーズは図２に示すとおりフローサイトメトリーで識別される。４成分反応を用いた小分子の進化。２５ビーズ４セットを生成し、各々を分子Ａ、Ｂ、ＣまたはＤの２５変異体の１つで誘導し、乳化して平均でコンパートメント当たり４ビーズとなるようにし、化合物を放出させて大型のコンビナトリアルレパートリー（４×１０⁵）をインサイチュで合成し、図２に示すようにスクリーニングする。低親和性の阻害剤は阻害剤中の識別される部分を担持するビーズの混合物を再スクリーニングすることにより「組み換え」られる。阻害剤中に存在する部分（例えばＡ₁₀）を担持するビーズはまたＢ、ＣおよびＤでコーティングされたビーズの完全なセットと混合してスクリーニングされることもできる。次に部分（例えばＢ₈）を阻害剤の成分として識別されれば、Ａ₁₀およびＢ₈でコーティングされたビーズをビーズＣおよびＤの完全なセットと混合することができ、ステップを反復する。「突然変異」のこの過程はまた逆重畳をもたらす。活性化合物内の４部分の３つを固定した後、逆重畳は上記した複数ビーズの分析を用いて完了することができる。変異体を有するビーズセットを用いて化合物を再度多様化または「突然変異」させ、分子の分解されたセットを元のライブラリで使用する。フッ化炭素中水エマルジョン中の小分子のコンパートメント化。実施例６に記載するとおりホモゲナイズにより水相中にテキサスレッド（１ｍＭ）およびカルセイン（１ｍＭ）を含有するパーフルオロオクチルブロミド中水エマルジョンを作成した。２種のエマルジョンを回転混合し、２４時間後にエピ蛍光顕微鏡により画像化した。微小液滴間のテキサスレッド（赤色蛍光）およびカルセイン（緑色蛍光）の交換は観察されなかった。ＰＴＰ１Ｂ阻害剤の合成のための一次化合物。ジフルオロメチレンホスホネート部分を有するアミン（Ａ）およびアルデヒド（Ｂ）。アミンＡを油中水エマルジョンの水性マイクロカプセル中アルデヒドＢと反応させて強力なＰＴＰ１Ｂ阻害剤であるイミンＣを生成させる。シアノボロハイドライドを用いてインサイチュでＣを反応させて安定なアミンＤを生成させる。

Claims

化合物のレパートリーを製造するための方法であって、
（ａ）マイクロカプセル内に一次化合物のセット２つ以上をコンパートメント化するステップであって、マイクロカプセルのある割合が、前記セットの各々の代表である化合物１つ以上の複数のコピーを含むようにし、前記化合物１つ以上が、一次化合物のセットのサブセットを形成する、ステップと；
（ｂ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル中に二次化合物を形成するステップと；
を含む、方法。
一次化合物のサブセットが、一次化合物のセットの１０％以下を構成する、請求項１に記載の方法。
一次化合物のサブセットが、一次化合物のセットの１％以下を構成する、請求項２に記載の方法。
一次化合物のサブセットが、単一の化合物である、請求項３に記載の方法。
ステップ（ａ）におけるコンパートメント当たりの異なる一次化合物の最頻数が、ステップ（ｂ）において二次化合物を形成する一次化合物の数と等しくなる、請求項１〜４のいずれかに記載の方法。
ステップ（ａ）が、一次化合物を含む個別のエマルジョンコンパートメントを形成するステップと、エマルジョンコンパートメントを混合して、一次化合物のエマルジョン化されたセットを形成するステップであって、任意の１つのマイクロカプセルにおいて、一次化合物のセットのサブセットが複数のコピーで示される、ステップとを含む、請求項１〜５のいずれかに記載の方法。
ステップ（ａ）が、
（ａ）任意の１つのマイクロビーズ上において、一次化合物のセットのサブセット１つのみが示されるように、マイクロビーズに一次化合物のセットを結合させるステップと、
（ｂ）任意の１つのマイクロカプセルにおいて、一次化合物のセットのサブセットが複数のコピーで示されるように、マイクロカプセル内にマイクロビーズをコンパートメント化するステップと；
を含む、請求項１〜６のいずれかに記載の方法。
一次化合物の少なくとも１つのセットが、異なる化合物のレパートリーを含む、請求項１〜７のいずれかに記載の方法。
一次化合物のセットの１つが、単一の化合物からなる、請求項１〜８のいずれかに記載の方法。
化合物が、非共有結合的にビーズに結合している、請求項７に記載の方法。
化合物が、共有結合的にビーズに結合している、請求項７に記載の方法。
化合物が、可逆的な物理的または化学的な機序によりマイクロビーズに結合している、請求項１０または１１に記載の方法。
化合物が、光化学的に切断され得るリンカーによりマイクロビーズに結合している、請求項１１に記載の方法。
共に反応して、標的に結合するか標的の活性をモジュレートすることができる二次化合物を形成する一次化合物を識別するための方法であって、
（ａ）マイクロカプセル内に一次化合物のセット２つ以上をコンパートメント化するステップであって、マイクロカプセルのある割合が、化合物２つ以上を含むようにする、ステップと；
（ｂ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル中に二次化合物を形成するステップと；
（ｃ）反応して、標的に結合するか標的の活性をモジュレートする二次化合物を形成する一次化合物のサブセットを識別するステップと；
を含む、方法。
標的に結合するか標的の活性をモジュレートする能力が増強されている化合物を合成するための方法であって、
（ａ）本発明の第２の態様のステップ（ｃ）において識別された一次化合物のサブセットをマイクロカプセル内にコンパートメント化するステップであって、任意選択的に一次化合物の別のセットをコンパートメント化するステップと；
（ｂ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル中に二次化合物を形成するステップと；
（ｃ）反応して、標的に結合するか標的その活性をモジュレートする二次化合物を形成する一次化合物のサブセットを識別するステップと；
を含む、方法。
最初のサイクルの後に、ステップ（ａ）が、ステップ（ｃ）で識別された一次化合物のサブセットをマイクロカプセル内にコンパートメント化するステップ、および、任意選択的に、化合物の別のセットをコンパートメント化するステップを含むように、ステップ（ａ）〜（ｃ）が反復的に繰り返される、請求項１５に記載の方法。
標的に結合するか標的の活性をモジュレートする個々の化合物を識別するための方法であって、
（ａ）本発明の第２または第３の態様のステップ（ｃ）において識別された一次化合物および一次化合物の別のセットをマイクロカプセル内にコンパートメント化するステップと；
（ｂ）異なるセットに由来する一次化合物の間の化学反応によりマイクロカプセル中に二次化合物を形成するステップと；
（ｃ）反応して、標的に結合するか標的の活性をモジュレートする二次化合物を形成する一次化合物のサブセットを識別するステップと；
を含む、方法。
標的の活性が結合活性である、請求項１４〜１７のいずれかに記載の方法。
標的の活性が触媒活性である、請求項１４〜１７のいずれかに記載の方法。
二次化合物が標的と反応して反応産物を生成する、請求項１４〜１９のいずれかに記載の方法。
標的が化合物と共にマイクロカプセル内にコンパートメント化される、請求項１４〜２０のいずれかに記載の方法。
スカフォールド分子が化合物と共にマイクロカプセルにコンパートメント化される、請求項１４〜２１のいずれかに記載の方法。
化合物がビーズに結合されており、ステップ（ｃ）において、反応して、標的に結合するか標的の活性をモジュレートする二次化合物を形成する一次化合物の識別が容易となるように、ステップ（ａ）において一次分子がビーズから放出され、コンパートメント内の他のビーズと反応する、請求項１４または２２のいずれかに記載の方法。
所望の活性を有する化合物が、マイクロカプセルまたはマイクロビーズの識別、分類または選択を可能にする、マイクロカプセルまたはマイクロビーズの変化をもたらす、請求項１４〜２３のいずれかに記載の方法。
マイクロカプセルまたはマイクロビーズの単離が可能となるように、マイクロカプセル内の化合物の活性が、直接または間接的にマイクロカプセルまたはマイクロビーズの修飾をもたらす、請求項２４に記載の方法。
一次化合物および標的がマイクロビーズに結合しており、標的がリガンドであり、マイクロビーズの単離が可能となるように、マイクロカプセル内の二次化合物が、直接または間接的に前記リガンドに結合する、請求項２１に記載の方法。
マイクロビーズがアフィニティー精製により単離される、請求項２５または２６に記載の方法。
基質がマイクロカプセル内に存在し、マイクロカプセル内の化合物の所望の活性が、直接または間接的に生成物への前記基質の変換の調節をもたらす、請求項１４〜２８のいずれかに記載の方法。
基質が、標的の触媒活性により生成物に変換される、請求項２８に記載の方法。
基質および生成物が、異なる光学特性を有する、請求項２８または２９に記載の方法。
基質および生成物が、異なる蛍光特性を有する、請求項３０に記載の方法。
一次化合物および基質がマイクロビーズに結合しており、マイクロカプセル内の二次化合物の所望の活性が、直接または間接的にマイクロビーズの部分として残存する生成物への前記基質の変換の調節をもたらし、その識別および任意選択的に単離を可能にする、請求項２８〜３１のいずれかに記載の方法。
生成物および任意選択的に未反応の基質が、その後マイクロカプセル内のマイクロビーズと複合体化する、請求項２８〜３２のいずれかに記載の方法。
所望の活性が、生成物への基質の変換を増強する、請求項２８〜３３のいずれかに記載の方法。
所望の活性が、生成物への基質の変換を抑制する、請求項２８〜３４のいずれかに記載の方法。
所望の活性を有する化合物が、マイクロカプセルの識別、分類または選択を可能にするマイクロカプセルの変化をもたらす、請求項１〜３５のいずれかに記載の方法。
マイクロカプセル内の標的の修飾が、マイクロカプセルの光学特性の変化を誘導する、請求項１〜３６のいずれかに記載の方法。
マイクロビーズの修飾が、その光学特性の変化を誘導するように、マイクロカプセルの外部においてそれを更に修飾可能とする、請求項２４に記載の方法。
マイクロビーズの光学特性の変化が、マイクロビーズへの特徴的な光学特性を有する化合物の結合によるものである、請求項２４に記載の方法。
マイクロビーズの光学特性の変化が、化合物への特徴的な光学特性を有する標的の結合によるものである、請求項２４に記載の方法。
マイクロビーズの光学特性の変化が、標的に結合した際の化合物の光学特性の変化によるものである、請求項２４に記載の方法。
マイクロビーズの光学特性の変化が、化合物に結合した際の標的の光学特性の変化によるものである、請求項２４に記載の方法。
マイクロビーズの光学特性の変化が、結合している標的および化合物の両方の光学特性の変化によるものである、請求項２４に記載の方法。
化合物が標的の変化をもたらすように作用し、マイクロビーズの光学特性の変化が、標的および化合物の標的への作用の生成物の異なる光学特性によるものである、請求項２４に記載の方法。
化合物は、光学特性を改変することなく標的の変化をもたらすよう作用するが、標的ではなく作用の生成物のみがマイクロビーズと結合または反応し、これによりマイクロビーズの光学特性を変化させる、請求項２４に記載の方法。
別の試薬が、マイクロビーズに結合した調節された反応の（基質ではなく）生成物に特異的に結合または特異的に反応し、これにより、マイクロビーズの光学特性を改変する、請求項２４に記載の方法。
別の試薬が、マイクロビーズに結合した調節された反応の（生成物ではなく）基質に特異的に結合または特異的に反応し、これにより、マイクロビーズの光学特性を改変する、請求項２４に記載の方法。
マイクロカプセル内の化合物が、マイクロカプセルの光学特性の差により識別される、請求項２４に記載の方法。
マイクロカプセルの光学特性の差が、蛍光の差である、請求項４８に記載の方法。
マイクロカプセルの蛍光の差が、量子ドットの存在によるものである、請求項４９に記載の方法。
化合物が、異なる濃度で異なるマイクロカプセル内に存在する、請求項１〜５０のいずれかに記載の方法。
マイクロカプセル内の化合物の濃度が、マイクロカプセルの光学特性の差により識別される、請求項５１に記載の方法。
マイクロカプセルの光学特性の差が、蛍光の差である、請求項５２に記載の方法。
マイクロカプセルの蛍光の差が、量子ドットの存在によるものである、請求項５３に記載の方法。
マイクロビーズ上の化合物が、マイクロビーズの光学特性の差により識別される、請求項２４に記載の方法。
マイクロビーズの光学特性の差が、蛍光の差である、請求項５５に記載の方法。
マイクロビーズの蛍光の差が、量子ドットの存在によるものである、請求項５６に記載の方法。
化合物の第２の活性が、第１の活性から生じるものとは異なるマイクロビーズまたはマイクロカプセルの変化をもたらす、請求項１〜５７のいずれかに記載の方法。
第２の活性から生じる変化を用いて、マイクロビーズまたはマイクロカプセルを積極的に選択する、請求項５８に記載の方法。
第２の活性から生じる変化を用いて、マイクロビーズまたはマイクロカプセルを消極的に選択する、請求項５８に記載の方法。
反応の特異性を向上させるために、消極的な選択を積極的な選択と組み合わせる、請求項６０に記載の方法。
向上した反応特異性が、結合特異性の向上である、請求項６１に記載の方法。
向上した反応特異性が、標的に対する位置選択性および／または立体選択性の向上である、請求項６１に記載の方法。
化合物の活性により直接または間接的に修飾されたマイクロビーズが、更にチラミドシグナル増幅（ＴＳＡ（商標）；ＮＥＮ）により修飾され、その結果として直接または間接的に前記マイクロビーズの光学特性の変化がもたらされ、これによりその識別および任意選択的に単離が可能となる、請求項２４に記載の方法。
化合物が低分子量化合物である、請求項１〜６４のいずれかに記載の方法。
各マイクロビーズが、それに結合した単一化合物の複数の分子を有する、請求項１〜６５のいずれかに記載の方法。
マイクロカプセル化が、油中水エマルジョンを形成することにより達成される、請求項１〜６６のいずれかに記載の方法。
油中水エマルジョンが、微小流体システムを用いて作成される、請求項６７に記載の方法。
エマルジョンが、不混和性液体の共流動ストリーム内の水性液滴の破壊により形成される、請求項６８に記載の方法。
微小流体チャンネル内の油のストリーム内に分散した水性微小液滴の層流により、マイクロカプセルが分析のために輸送される、請求項６８または６９に記載の方法。
マイクロカプセルが、微小流体チャンネル内の油のストリーム内に分散した水性微小液滴のものである、請求項７０に記載の方法。
マイクロカプセル内の化合物が、微小流体チャンネル内の他の微小液滴に対するマイクロカプセルの相対的位置により識別される、請求項７１に記載の方法。
マイクロカプセル内の化合物の濃度が、微小流体チャンネル内の他の微小液滴に対するマイクロカプセルの相対的位置により識別される、請求項７１に記載の方法。
マイクロカプセル内の標的が、微小流体チャンネル内の他の微小液滴に対するマイクロカプセルの相対的位置により識別される、請求項７１に記載の方法。
識別されたマイクロカプセルが、微小流体装置を用いて分類される、請求項１〜７４のいずれかに記載の方法。
マイクロカプセル化が、フッ化炭素または過フッ化炭素の連続相とのエマルジョンを形成することにより達成される、請求項６７に記載の方法。
マイクロカプセル化が、フッ化炭素または過フッ化炭素の連続相および非水性の非連続相とのエマルジョンを形成することにより達成される、請求項７６に記載の方法。
マイクロカプセル化が、フッ化炭素または過フッ化炭素の連続相および水性の非連続相とのエマルジョンを形成することにより達成される、請求項７６に記載の方法。
フッ化炭素が、パーフルオロオクチルブロミドまたはパーフルオロオクチルエタンである、請求項７６〜７８のいずれかに記載の方法。
エマルジョンが、Ｆ−アルキルジモルホリノホスフェートを用いて形成される、請求項７８に記載の方法。
Ｆ−アルキルジモルホリノホスフェートが、一般式Ｃ_nＦ_2n+1Ｃ_mＨ_2mＯＰ（Ｏ）［Ｎ（ＣＨ₂ＣＨ₂）₂Ｏ］₂を有する、請求項８０に記載の方法。
Ｆ−アルキルジモルホリノホスフェートが、Ｃ₈Ｆ₁₇Ｃ₁₁Ｈ₂₂ＯＰ（Ｏ）［Ｎ（ＣＨ₂ＣＨ₂）₂Ｏ］₂である、請求項８１に記載の方法。
マイクロカプセルが、その蛍光の変化の検出により識別および任意選択的に分類される、請求項２４に記載の方法。
蛍光の変化が、蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）によるものである、請求項８３に記載の方法。
マイクロカプセルの識別が、フローサイトメトリーにより行われる、求項８３に記載の方法。
マイクロカプセルの分類が、蛍光活性化細胞ソーター（ＦＡＣＳ）を用いて実施される、請求項８３に記載の方法。
マイクロカプセルが、油中水エマルジョンの水中油中水エマルジョンへの変換の後に、蛍光活性化細胞ソーター（ＦＡＣＳ）を用いて分類される、請求項８６に記載の方法。
マイクロビーズが、非磁性、磁性または常磁性である、請求項７に記載の方法。
マイクロビーズが、その蛍光の変化の検出により識別および任意選択的に分類される、請求項２４に記載の方法。
マイクロビーズの識別が、フローサイトメトリーにより行われる、請求項８９に記載の方法。
マイクロビーズの分類が、蛍光活性化細胞ソーター（ＦＡＣＳ）を用いて実施される、請求項９０に記載の方法。
蛍光の変化が、蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）によるものである、請求項８９に記載の方法。
マイクロカプセルの内部環境が、油相に試薬１つ以上を添加することにより修飾される、請求項１〜９２のいずれかに記載の方法。
一次化合物が異なる光学特性を有するビーズにカップリングされている、請求項７に記載の方法。
ビーズが異なる蛍光特性を有する、請求項９４に記載の方法。
ビーズの異なる光学特性が、蛍光色素２つ以上の異なる水準でのビーズへの取り込みによるものである、請求項９５に記載の方法。
ビーズの異なる光学特性が、異なる発光スペクトルを有する量子ドットの異なる数量での取り込みによるものである、請求項９４に記載の方法。
ビーズに結合している化合物が、ビーズの異なる光学特性を用いて識別される、請求項９４に記載の方法。
単離されたビーズ上の化合物が、ビーズから化合物を放出させ、直接分析することにより識別される、請求項７に記載の方法。
単離されたビーズ上の化合物が、質量スペクトル分析により識別される、請求項９９記載の方法。
請求項１〜１００のいずれかに記載の方法により単離された物。
一次化合物の反応により生成した二次化合物を単離するステップを更に含む、請求項１〜１００のいずれかに記載の方法。
二次化合物１つ以上を製造するステップを更に含む、請求項１〜１００および１０２のいずれかに記載の方法。
化合物および標的が、後に融合される異なるマイクロカプセル内に当初存在する、請求項１３〜３５のいずれかに記載の方法。
化合物の異なるサブセットを含有するマイクロカプセルが融合される、請求項１〜１００および１０２〜１０４のいずれかに記載の方法。
化合物を含有するマイクロカプセルを分割させて、マイクロカプセル２つ以上を生成させる、請求項１〜１００および１０２〜１０５のいずれかに記載の方法。
標的を含有するマイクロカプセルを分割させて、マイクロカプセル２つ以上を生成させる、請求項１〜１００および１０２〜１０６のいずれかに記載の方法。
細胞がマイクロカプセル内に存在する、請求項１〜１００および１０２〜１０７のいずれかに記載の方法。
化合物が、細胞内で標的の活性をモジュレートする、請求項１〜１００および１０２〜１０８のいずれかに記載の方法。
化合物が、細胞の活性をモジュレートする、請求項１〜１００および１０２〜１０９のいずれかに記載の方法。