JPH10313861A - 生体高分子を合成するシームレスカプセルおよびその製造方法 - Google Patents
生体高分子を合成するシームレスカプセルおよびその製造方法Info
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- JPH10313861A JPH10313861A JP9123807A JP12380797A JPH10313861A JP H10313861 A JPH10313861 A JP H10313861A JP 9123807 A JP9123807 A JP 9123807A JP 12380797 A JP12380797 A JP 12380797A JP H10313861 A JPH10313861 A JP H10313861A
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- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
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- B01J13/04—Making microcapsules or microballoons by physical processes, e.g. drying, spraying
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Abstract
(57)【要約】
【課題】 内部で生体高分子を合成するシームレスカプ
セルおよびその製造方法の提供。 【解決手段】 生体適合性の高い多糖類またはタンパク
質を皮膜主成分とする直径０.０１〜１０ｍｍのシーム
レスカプセル内に、水とは混和しにくい粘稠液体層を介
して生体高分子合成材料を封入した生体高分子を合成す
るシームレスカプセル。
セルおよびその製造方法の提供。 【解決手段】 生体適合性の高い多糖類またはタンパク
質を皮膜主成分とする直径０.０１〜１０ｍｍのシーム
レスカプセル内に、水とは混和しにくい粘稠液体層を介
して生体高分子合成材料を封入した生体高分子を合成す
るシームレスカプセル。
Description
【０００１】
【用語の定義】本明細書中において、「増幅」とは、ポ
リメラーゼ連鎖反応（polymerase chain reaction、以
下ＰＣＲと略す。）を利用したＤＮＡの増幅またはその
後のＲＮＡへの逆転写を包含し、また「合成」とは、前
記増幅のみならず、それによって生成されたＤＮＡまた
はＲＮＡを利用したタンパク質の合成も包含するものと
する。
リメラーゼ連鎖反応（polymerase chain reaction、以
下ＰＣＲと略す。）を利用したＤＮＡの増幅またはその
後のＲＮＡへの逆転写を包含し、また「合成」とは、前
記増幅のみならず、それによって生成されたＤＮＡまた
はＲＮＡを利用したタンパク質の合成も包含するものと
する。
【０００２】
【発明の属する技術分野】本発明は、生体高分子を内部
で合成し得るシームレスカプセル、およびその製造方法
に関する。
で合成し得るシームレスカプセル、およびその製造方法
に関する。
【０００３】
【従来の技術】従来、ＤＮＡおよびＲＮＡを増幅する技
術並びにタンパク質を合成する技術が公知である。例え
ば、プラスチック製の反応容器内においてＤＮＡポリメ
ラーゼを触媒として反応液量５〜１００μＬとするＤＮ
Ａフラグメントの増幅技術や、上記と同程度の液量で、
生物を用いずにタンパク質を合成する技術が挙げられ
る。ここで、反応液量が数μＬ以下の場合の技術を、特
に、微小空間内での反応と呼ぶ。このような技術では、
用意すべき原料も少量で済み、また反応性も増大する。
さらには、ＤＮＡフラグメントを増幅する場合、合成の
設計図とも言うべき鋳型ＤＮＡを希釈効果で１本ずつカ
プセルに封じ込めることもできる。
術並びにタンパク質を合成する技術が公知である。例え
ば、プラスチック製の反応容器内においてＤＮＡポリメ
ラーゼを触媒として反応液量５〜１００μＬとするＤＮ
Ａフラグメントの増幅技術や、上記と同程度の液量で、
生物を用いずにタンパク質を合成する技術が挙げられ
る。ここで、反応液量が数μＬ以下の場合の技術を、特
に、微小空間内での反応と呼ぶ。このような技術では、
用意すべき原料も少量で済み、また反応性も増大する。
さらには、ＤＮＡフラグメントを増幅する場合、合成の
設計図とも言うべき鋳型ＤＮＡを希釈効果で１本ずつカ
プセルに封じ込めることもできる。
【０００４】近年、上記の人工の微小空間内において酵
素を用いてＤＮＡフラグメントを増幅する方法が、化学
反応や生物を介した方法に比べてより有用であることか
ら注目されている。なぜならば、化学反応による増幅
は、その反応性や、増幅されるＤＮＡフラグメントの長
さに限界がある。一方、生物を用いる場合には、原料と
して天然の核酸しか利用できず、生物由来物質しか生成
されない。また、生物を用いた場合、生成された生成物
の中から有用な物質を見いだすためのスクリーニングに
多大な労力を要すること等の欠点がある。従来のように
反応容器として小試験管等を使用すると、原料の分注に
多大な時間がかかり、さらには容器の大きさの関係上か
ら、大量に生産およびスクリーニング等を行うためには
大きな反応およびスクリーニング用の空間も必要であ
る。
素を用いてＤＮＡフラグメントを増幅する方法が、化学
反応や生物を介した方法に比べてより有用であることか
ら注目されている。なぜならば、化学反応による増幅
は、その反応性や、増幅されるＤＮＡフラグメントの長
さに限界がある。一方、生物を用いる場合には、原料と
して天然の核酸しか利用できず、生物由来物質しか生成
されない。また、生物を用いた場合、生成された生成物
の中から有用な物質を見いだすためのスクリーニングに
多大な労力を要すること等の欠点がある。従来のように
反応容器として小試験管等を使用すると、原料の分注に
多大な時間がかかり、さらには容器の大きさの関係上か
ら、大量に生産およびスクリーニング等を行うためには
大きな反応およびスクリーニング用の空間も必要であ
る。
【０００５】これらに対して、原材料を微小カプセル内
に予め封入して微小空間を作製した後、そのカプセル内
でＤＮＡフラグメント等の生体高分子を合成または増幅
する方法は、上述のような欠点がなく、簡易でかつ非常
に優れたものと考えられる。
に予め封入して微小空間を作製した後、そのカプセル内
でＤＮＡフラグメント等の生体高分子を合成または増幅
する方法は、上述のような欠点がなく、簡易でかつ非常
に優れたものと考えられる。
【０００６】そのようなＤＮＡフラグメントを増幅する
ためのカプセル状物質としては、例えば、ポリピロール
カプセルがある。
ためのカプセル状物質としては、例えば、ポリピロール
カプセルがある。
【０００７】ポリピロールカプセルは、ＤＮＡフラグメ
ント増幅材料を界面重合法によりポリピロール皮膜で包
み込む方法である。しかしながら、ポリピロール自体は
合成高分子であるため、生体への適合性が非常に悪い。
ント増幅材料を界面重合法によりポリピロール皮膜で包
み込む方法である。しかしながら、ポリピロール自体は
合成高分子であるため、生体への適合性が非常に悪い。
【０００８】別法として、リポソームを用いる方法があ
る。リポソームは、人工的に作製した脂質二重膜であ
り、生物の細胞膜と同様の組成であることから、生体適
合性が高い。しかしながら、リポソームを用いてカプセ
ル化する場合、寸法制御が困難である。また非常に柔ら
かく脆いために作業上の物理的衝撃（例えば、ピンセッ
トで摘まむこと等）によって破壊される等の問題点が存
在する。
る。リポソームは、人工的に作製した脂質二重膜であ
り、生物の細胞膜と同様の組成であることから、生体適
合性が高い。しかしながら、リポソームを用いてカプセ
ル化する場合、寸法制御が困難である。また非常に柔ら
かく脆いために作業上の物理的衝撃（例えば、ピンセッ
トで摘まむこと等）によって破壊される等の問題点が存
在する。
【０００９】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、微小空間と
して、ＤＮＡフラグメント、さらにはＲＮＡやペプチ
ド、タンパク質等を合成または増幅するための、新たな
皮膜材料を用いたシームレスカプセルを作製することに
より、上述のポリピロールカプセルやリポソームにおけ
る欠点を解消することを目的とする。
して、ＤＮＡフラグメント、さらにはＲＮＡやペプチ
ド、タンパク質等を合成または増幅するための、新たな
皮膜材料を用いたシームレスカプセルを作製することに
より、上述のポリピロールカプセルやリポソームにおけ
る欠点を解消することを目的とする。
【００１０】
【課題を解決するための手段】本発明は、多糖類または
タンパク質を皮膜主成分とする直径０.０１〜１０.０ｍ
ｍのシームレスカプセル内に、水とは混和しにくい粘稠
液体層を介して生体高分子合成材料を封入した生体高分
子を合成するシームレスカプセルを提供する。
タンパク質を皮膜主成分とする直径０.０１〜１０.０ｍ
ｍのシームレスカプセル内に、水とは混和しにくい粘稠
液体層を介して生体高分子合成材料を封入した生体高分
子を合成するシームレスカプセルを提供する。
【００１１】本発明のシームレスカプセルは、特開平５
−３１３５２号公報に記載の技術を適用することによ
り、水溶性カプセル内容物である生体高分子合成材料と
シームレスカプセル皮膜との間に、水を混和しにくい粘
稠液体層を含んで成る。この粘稠液体層の存在によっ
て、生体高分子合成材料をカプセル内に容易に包含する
ことができる。
−３１３５２号公報に記載の技術を適用することによ
り、水溶性カプセル内容物である生体高分子合成材料と
シームレスカプセル皮膜との間に、水を混和しにくい粘
稠液体層を含んで成る。この粘稠液体層の存在によっ
て、生体高分子合成材料をカプセル内に容易に包含する
ことができる。
【００１２】詳しくは、本発明は、上記のシームレスカ
プセル内に、水とは混和しにくい粘稠液体層を介して、
生体高分子合成材料として、鋳型核酸、プライマーおよ
び基質、並びにＤＮＡポリメラーゼを含んで成るシーム
レスカプセルを提供する。このようなシームレスカプセ
ルは、内部で、ＰＣＲによってＤＮＡまたはＲＮＡを増
幅することができる。
プセル内に、水とは混和しにくい粘稠液体層を介して、
生体高分子合成材料として、鋳型核酸、プライマーおよ
び基質、並びにＤＮＡポリメラーゼを含んで成るシーム
レスカプセルを提供する。このようなシームレスカプセ
ルは、内部で、ＰＣＲによってＤＮＡまたはＲＮＡを増
幅することができる。
【００１３】また、本発明は、上記シームレスカプセル
内に、水とは混和しにくい粘稠液体層を介して、鋳型核
酸、タンパク質合成用低分子量成分、および無細胞タン
パク質合成系を含んで成るシームレスカプセルであっ
て、内部において、タンパク質の合成を行うことができ
るシームレスカプセルを提供する。
内に、水とは混和しにくい粘稠液体層を介して、鋳型核
酸、タンパク質合成用低分子量成分、および無細胞タン
パク質合成系を含んで成るシームレスカプセルであっ
て、内部において、タンパク質の合成を行うことができ
るシームレスカプセルを提供する。
【００１４】さらに、本発明は、鋳型核酸、生体高分子
合成原料としてのプライマーおよび基質、タンパク質合
成用低分子量成分、ＤＮＡポリメラーゼ、並びに無細胞
タンパク質合成系を含有するシームレスカプセルであっ
て、その内部において、ＰＣＲにより核酸の増幅を行っ
た後、引き続き、増幅された鋳型核酸を用いてタンパク
質の合成までを行い得るシームレスカプセルを提供す
る。
合成原料としてのプライマーおよび基質、タンパク質合
成用低分子量成分、ＤＮＡポリメラーゼ、並びに無細胞
タンパク質合成系を含有するシームレスカプセルであっ
て、その内部において、ＰＣＲにより核酸の増幅を行っ
た後、引き続き、増幅された鋳型核酸を用いてタンパク
質の合成までを行い得るシームレスカプセルを提供す
る。
【００１５】本発明は、また、順次増大する半径を有し
て同心円上に配置された第１ノズル、第２ノズル、およ
び第３ノズルからそれぞれ生体高分子合成材料、水とは
混和しにくい粘稠液体および皮膜材料を、同時に冷却液
体中に押し出すことを特徴とする生体高分子を合成する
シームレスカプセルの製造方法も提供する。
て同心円上に配置された第１ノズル、第２ノズル、およ
び第３ノズルからそれぞれ生体高分子合成材料、水とは
混和しにくい粘稠液体および皮膜材料を、同時に冷却液
体中に押し出すことを特徴とする生体高分子を合成する
シームレスカプセルの製造方法も提供する。
【００１６】本発明の生体高分子を合成するシームレス
カプセルの皮膜は、多糖類（具体的にはカードランおよ
び／またはアガロース）またはタンパク質であって、こ
れらは生体への適合性が非常に高く、光透過性もある。
カプセルの皮膜は、多糖類（具体的にはカードランおよ
び／またはアガロース）またはタンパク質であって、こ
れらは生体への適合性が非常に高く、光透過性もある。
【００１７】本発明のシームレスカプセルは、製造時
に、カプセルの寸法や内容量を正確にコントロールする
ことにより、均一なカプセルを提供することができる。
また、本発明のシームレスカプセルは、リポソームに比
べて、耐熱性および物理的強度が高いことを特徴とす
る。
に、カプセルの寸法や内容量を正確にコントロールする
ことにより、均一なカプセルを提供することができる。
また、本発明のシームレスカプセルは、リポソームに比
べて、耐熱性および物理的強度が高いことを特徴とす
る。
【００１８】
【発明の実施の形態】本発明は、多糖類またはタンパク
質を皮膜主成分とする直径０.０１〜１０.０ｍｍのシー
ムレスカプセル内に、水とは混和しにくい粘稠液体層を
介して生体高分子合成材料を封入した生体高分子を合成
するシームレスカプセルを提供する。
質を皮膜主成分とする直径０.０１〜１０.０ｍｍのシー
ムレスカプセル内に、水とは混和しにくい粘稠液体層を
介して生体高分子合成材料を封入した生体高分子を合成
するシームレスカプセルを提供する。
【００１９】本発明のシームレスカプセルの皮膜は、多
糖類またはタンパク質を主成分とする。本発明に使用す
る多糖類としては、カードラン、アガロース、ジェラン
ガム、ペクチン、アルギン酸ナトリウム等が挙げられ、
またタンパク質としては、ゼラチン、アルブミン、カゼ
イン等の加熱もしくは冷却または２価以上の金属塩の添
加によってゲル化する性質を有するものが挙げられる
が、これらに限定されるものではない。
糖類またはタンパク質を主成分とする。本発明に使用す
る多糖類としては、カードラン、アガロース、ジェラン
ガム、ペクチン、アルギン酸ナトリウム等が挙げられ、
またタンパク質としては、ゼラチン、アルブミン、カゼ
イン等の加熱もしくは冷却または２価以上の金属塩の添
加によってゲル化する性質を有するものが挙げられる
が、これらに限定されるものではない。
【００２０】上記の多糖類およびタンパク質は、生体へ
の適合性が非常に高く、また光透過性も高いことが要求
されることから、本発明のシームレスカプセルの皮膜を
形成するのに適している。
の適合性が非常に高く、また光透過性も高いことが要求
されることから、本発明のシームレスカプセルの皮膜を
形成するのに適している。
【００２１】本発明のシームレスカプセルの皮膜を形成
する成分中、上記の多糖類またはタンパク質は、それ自
体１種のみまたは２種以上の混合物として使用しても、
あるいはゲル化剤または水溶性の多価アルコールもしく
はその水溶性誘導体等のその他の添加物と合わせて使用
してもよい。ここでゲル化剤とは、２価以上の金属イオ
ン含有化合物をいい、例えば、塩化カルシウム、乳酸カ
ルシウム、塩化マンガン、塩化アルミニウム等が挙げら
れる。また、水溶性の多価アルコールもしくはその水溶
性誘導体等の他の添加物としては、例えば、グリセリ
ン、ポリグリセリン、ソルビット、エチレングリコー
ル、ポリエチレングリコール、プロピレングリコール、
ポリプロピレングリコール、酸化エチレン−酸化プロピ
レン共重合体、オリゴサッカライド、シュガーエステ
ル、グリセリド、ソルビタンエステル類等が挙げられ
る。
する成分中、上記の多糖類またはタンパク質は、それ自
体１種のみまたは２種以上の混合物として使用しても、
あるいはゲル化剤または水溶性の多価アルコールもしく
はその水溶性誘導体等のその他の添加物と合わせて使用
してもよい。ここでゲル化剤とは、２価以上の金属イオ
ン含有化合物をいい、例えば、塩化カルシウム、乳酸カ
ルシウム、塩化マンガン、塩化アルミニウム等が挙げら
れる。また、水溶性の多価アルコールもしくはその水溶
性誘導体等の他の添加物としては、例えば、グリセリ
ン、ポリグリセリン、ソルビット、エチレングリコー
ル、ポリエチレングリコール、プロピレングリコール、
ポリプロピレングリコール、酸化エチレン−酸化プロピ
レン共重合体、オリゴサッカライド、シュガーエステ
ル、グリセリド、ソルビタンエステル類等が挙げられ
る。
【００２２】本発明のシームレスカプセルの皮膜を形成
する成分として、微生物由来のカードランもしくはアガ
ロースまたはそれらの混合物、特に、カードランとアガ
ロースの重量比１：１の混合物を使用するのが最も好ま
しい。上記の成分を使用した場合、内容物の中に含まれ
る、分子量が約７００以下の低分子量のものは、カプセ
ル皮膜を透過し、その透過性が粘稠液体層に用いる物質
によって制御できることから、より好ましい。
する成分として、微生物由来のカードランもしくはアガ
ロースまたはそれらの混合物、特に、カードランとアガ
ロースの重量比１：１の混合物を使用するのが最も好ま
しい。上記の成分を使用した場合、内容物の中に含まれ
る、分子量が約７００以下の低分子量のものは、カプセ
ル皮膜を透過し、その透過性が粘稠液体層に用いる物質
によって制御できることから、より好ましい。
【００２３】本発明のシームレスカプセルの皮膜を形成
する場合、全固形分に対して多糖類またはタンパク質を
５０〜１００重量％の量で含有することが好ましい。さ
らに、前記皮膜形成材料として、多糖類以外に、ゲル化
剤または水溶性多価アルコールもしくはその水溶性誘導
体を含有する場合、それらを、多糖類に対し、１〜５０
重量％の量で含んでよい。
する場合、全固形分に対して多糖類またはタンパク質を
５０〜１００重量％の量で含有することが好ましい。さ
らに、前記皮膜形成材料として、多糖類以外に、ゲル化
剤または水溶性多価アルコールもしくはその水溶性誘導
体を含有する場合、それらを、多糖類に対し、１〜５０
重量％の量で含んでよい。
【００２４】水と混和しにくい粘稠液体層の粘度は、均
一な薄膜層の形成の点から、１００℃で１０００ｃｐ以
下が好適である。そのような粘稠液体は、一般に、乳化
剤および油脂類または樹脂類が挙げられる。本発明のカ
プセル用粘稠液体に使用するのに適した乳化剤として
は、ＨＬＢ値２〜８の非イオン系乳化剤であり、例え
ば、ショ糖脂肪酸エステル、プロピレングリコール脂肪
酸エステル、グリセリン脂肪酸エステル（長鎖脂肪酸ト
リグリセライド、中鎖脂肪酸トリグリセライド、他）、
ソルビタン脂肪酸エステル、および両性イオン系乳化剤
のレシチン、もしくはこれらの乳化剤の混合物が挙げら
れる。また、適した油脂類としては、植物油脂、動物油
脂および鉱物油であって、例えば、パーム油脂、シリコ
ーン油もしくは流動パラフィン、またはこれらの混合物
が好適である。さらに、本発明のカプセル用粘稠液体と
して適した樹脂類としては、ｄＬ−α−トコフェロール
もしくはポリブチレン、ポリブデン等のイソブチレン重
合物、シリコーン樹脂や酢酸ビニル樹脂等が挙げられ
る。
一な薄膜層の形成の点から、１００℃で１０００ｃｐ以
下が好適である。そのような粘稠液体は、一般に、乳化
剤および油脂類または樹脂類が挙げられる。本発明のカ
プセル用粘稠液体に使用するのに適した乳化剤として
は、ＨＬＢ値２〜８の非イオン系乳化剤であり、例え
ば、ショ糖脂肪酸エステル、プロピレングリコール脂肪
酸エステル、グリセリン脂肪酸エステル（長鎖脂肪酸ト
リグリセライド、中鎖脂肪酸トリグリセライド、他）、
ソルビタン脂肪酸エステル、および両性イオン系乳化剤
のレシチン、もしくはこれらの乳化剤の混合物が挙げら
れる。また、適した油脂類としては、植物油脂、動物油
脂および鉱物油であって、例えば、パーム油脂、シリコ
ーン油もしくは流動パラフィン、またはこれらの混合物
が好適である。さらに、本発明のカプセル用粘稠液体と
して適した樹脂類としては、ｄＬ−α−トコフェロール
もしくはポリブチレン、ポリブデン等のイソブチレン重
合物、シリコーン樹脂や酢酸ビニル樹脂等が挙げられ
る。
【００２５】本発明のシームレスカプセルにおいて好ま
しい粘稠液体層の組成は、乳化剤と油脂類との混合物、
特に好ましくはショ糖脂肪酸エステルとパーム硬化油の
比４：１の混合物である。
しい粘稠液体層の組成は、乳化剤と油脂類との混合物、
特に好ましくはショ糖脂肪酸エステルとパーム硬化油の
比４：１の混合物である。
【００２６】本発明のカプセルにおいて、粘稠液体は、
カプセル製造時には前述のように内容物と皮膜の間に介
在するが、一旦、カプセルが出来上がった後には必ずし
も内容物と皮膜の間に存在する必要はなく、内容物内で
分離した状態であってもよい。
カプセル製造時には前述のように内容物と皮膜の間に介
在するが、一旦、カプセルが出来上がった後には必ずし
も内容物と皮膜の間に存在する必要はなく、内容物内で
分離した状態であってもよい。
【００２７】本発明の第１の態様では、上記シームレス
カプセルの内部に、生体高分子合成材料として、鋳型核
酸、生体高分子合成原料としてのプライマーおよび基
質、並びにＤＮＡポリメラーゼを含んで成るシームレス
カプセルを提供する。このようなシームレスカプセル内
部では、ＰＣＲ法を利用したＤＮＡの増幅、および増幅
されたＤＮＡからのＲＮＡへの転写を行うことができ
る。
カプセルの内部に、生体高分子合成材料として、鋳型核
酸、生体高分子合成原料としてのプライマーおよび基
質、並びにＤＮＡポリメラーゼを含んで成るシームレス
カプセルを提供する。このようなシームレスカプセル内
部では、ＰＣＲ法を利用したＤＮＡの増幅、および増幅
されたＤＮＡからのＲＮＡへの転写を行うことができ
る。
【００２８】上記のシームレスカプセルの皮膜成分およ
び粘稠液体成分は、前記と同様の物質であり得る。
び粘稠液体成分は、前記と同様の物質であり得る。
【００２９】本発明の第１の態様のシームレスカプセル
内に包含する鋳型核酸は、例えば、生物から抽出したＤ
ＮＡ、伝達ＲＮＡ、人工的に合成したＤＮＡまたはＲＮ
Ａ等が挙げられる。生物から抽出したＤＮＡの場合、そ
の塩基成分は、一般にアデニン、シトシン、グアニンお
よびチミンから成り、また生物から抽出したＲＮＡの場
合、アデニン、シトシン、グアニンおよびウラシルから
成るが、人工的に合成した核酸の場合、ポリメラーゼが
認識することができれば、上記以外の塩基を有する核酸
を含んでいてよい。
内に包含する鋳型核酸は、例えば、生物から抽出したＤ
ＮＡ、伝達ＲＮＡ、人工的に合成したＤＮＡまたはＲＮ
Ａ等が挙げられる。生物から抽出したＤＮＡの場合、そ
の塩基成分は、一般にアデニン、シトシン、グアニンお
よびチミンから成り、また生物から抽出したＲＮＡの場
合、アデニン、シトシン、グアニンおよびウラシルから
成るが、人工的に合成した核酸の場合、ポリメラーゼが
認識することができれば、上記以外の塩基を有する核酸
を含んでいてよい。
【００３０】本発明のシームレスカプセル内に包含する
生体高分子合成原料は、プライマーおよび基質から成
る。
生体高分子合成原料は、プライマーおよび基質から成
る。
【００３１】ここで、プライマーとは、十数個〜数十個
の塩基から成る一本鎖ＤＮＡフラグメント（天然または
非天然起源のオリゴヌクレオチド）である。このような
プライマーは、ＰＣＲ法に従ってＤＮＡを増幅する際に
必須の要素であって、かつＤＮＡポリメラーゼによる合
成開始点を規定するために必要である。上記合成開始反
応点は、任意に選択でき、そのようなプライマーは、共
にカプセル内に含まれるＤＮＡポリメラーゼが認識して
反応に供せられる化合物であればよく、鋳型核酸に対し
て、相補的な塩基配列を有する。
の塩基から成る一本鎖ＤＮＡフラグメント（天然または
非天然起源のオリゴヌクレオチド）である。このような
プライマーは、ＰＣＲ法に従ってＤＮＡを増幅する際に
必須の要素であって、かつＤＮＡポリメラーゼによる合
成開始点を規定するために必要である。上記合成開始反
応点は、任意に選択でき、そのようなプライマーは、共
にカプセル内に含まれるＤＮＡポリメラーゼが認識して
反応に供せられる化合物であればよく、鋳型核酸に対し
て、相補的な塩基配列を有する。
【００３２】本発明の第１の態様において使用する基質
は、上記シームレスカプセル内においてＰＣＲ法により
ＤＮＡを合成するために必要な要素である。すなわち、
このような基質は、ＤＮＡを増幅する場合、その塩基成
分（アデニン、シトシン、グアニンおよびチミンの４
種）と糖（２-デオキシ-Ｄ-リボース）から成る４種の
モノヌクレオチド（すなわち、デオキシアデノシン５'
―三リン酸、デオキシシチジン５'―三リン酸、デオキ
シグアノシン５'―三リン酸およびデオキシチミジン５'
―三リン酸）（一般に、これら４種のモノヌクレオチド
を総称して、「ｄＮＴＰｓ」という。）であり、上記の
基質に加えて、デオキシイノシン５'―三リン酸等も含
んでよい。
は、上記シームレスカプセル内においてＰＣＲ法により
ＤＮＡを合成するために必要な要素である。すなわち、
このような基質は、ＤＮＡを増幅する場合、その塩基成
分（アデニン、シトシン、グアニンおよびチミンの４
種）と糖（２-デオキシ-Ｄ-リボース）から成る４種の
モノヌクレオチド（すなわち、デオキシアデノシン５'
―三リン酸、デオキシシチジン５'―三リン酸、デオキ
シグアノシン５'―三リン酸およびデオキシチミジン５'
―三リン酸）（一般に、これら４種のモノヌクレオチド
を総称して、「ｄＮＴＰｓ」という。）であり、上記の
基質に加えて、デオキシイノシン５'―三リン酸等も含
んでよい。
【００３３】本発明の第１の態様のシームレスカプセル
内で、ＲＮＡを合成する場合に必要な基質は、塩基成分
（アデニン、シトシン、グアニンおよびウラシルの４
種）と糖（リボース）から成る４種のモノヌクレオチド
であり得る。
内で、ＲＮＡを合成する場合に必要な基質は、塩基成分
（アデニン、シトシン、グアニンおよびウラシルの４
種）と糖（リボース）から成る４種のモノヌクレオチド
であり得る。
【００３４】上記のシームレスカプセル内において、Ｐ
ＣＲを利用して、鋳型ＤＮＡからＤＮＡフラグメントを
増幅させる場合には、ＤＮＡポリメラーゼが必要であ
る。また、上記カプセル内において鋳型ＲＮＡからｃＤ
ＮＡを合成する場合には、ＤＮＡポリメラーゼ以外に逆
転写酵素も包含しているか、または逆転写酵素の活性も
有するＤＮＡポリメラーゼを包含していなければならな
い。この場合、先ず、逆転写酵素が作用する温度におい
て一定時間加温してｃＤＮＡを合成し、その後、増幅が
必要であればＰＣＲ反応を行う。
ＣＲを利用して、鋳型ＤＮＡからＤＮＡフラグメントを
増幅させる場合には、ＤＮＡポリメラーゼが必要であ
る。また、上記カプセル内において鋳型ＲＮＡからｃＤ
ＮＡを合成する場合には、ＤＮＡポリメラーゼ以外に逆
転写酵素も包含しているか、または逆転写酵素の活性も
有するＤＮＡポリメラーゼを包含していなければならな
い。この場合、先ず、逆転写酵素が作用する温度におい
て一定時間加温してｃＤＮＡを合成し、その後、増幅が
必要であればＰＣＲ反応を行う。
【００３５】本発明の第１の態様のシームレスカプセル
内では、中にＲＮＡポリメラーゼも含有させることによ
り、上記で合成されたＤＮＡまたはｃＤＮＡを転写して
所望のＲＮＡを合成することもできる。
内では、中にＲＮＡポリメラーゼも含有させることによ
り、上記で合成されたＤＮＡまたはｃＤＮＡを転写して
所望のＲＮＡを合成することもできる。
【００３６】すなわち、本発明の第１の態様のシームレ
スカプセルは、所望の核酸を生成するのに必要なポリメ
ラーゼ１種またはそれ以上を含み得る。
スカプセルは、所望の核酸を生成するのに必要なポリメ
ラーゼ１種またはそれ以上を含み得る。
【００３７】本発明の第１の態様において、シームレス
カプセル１個の中に包含される各生体高分子合成材料の
好ましい量は、生体高分子合成材料の合計使用量を１０
０μＬとして、鋳型核酸１〜１０10本、プライマー１０
〜１００ｐモル、基質０.１〜０.４ｍＭ、およびポリメ
ラーゼ０.１〜４Ｕである。ここで、ポリメラーゼにつ
いての単位（Ｕ）は、７５℃活性測定条件において、Ｍ
13mp18ssＤＮＡとそのプライマーを基質として３０分間
に１０ｎモルのｄＮＴＰｓを酸不溶性沈殿物に取り込む
酸素量を１Ｕとする。
カプセル１個の中に包含される各生体高分子合成材料の
好ましい量は、生体高分子合成材料の合計使用量を１０
０μＬとして、鋳型核酸１〜１０10本、プライマー１０
〜１００ｐモル、基質０.１〜０.４ｍＭ、およびポリメ
ラーゼ０.１〜４Ｕである。ここで、ポリメラーゼにつ
いての単位（Ｕ）は、７５℃活性測定条件において、Ｍ
13mp18ssＤＮＡとそのプライマーを基質として３０分間
に１０ｎモルのｄＮＴＰｓを酸不溶性沈殿物に取り込む
酸素量を１Ｕとする。
【００３８】本発明の第１の態様のシームレスカプセル
内で生成されたＤＮＡまたはＲＮＡは、その後、遠心分
離法、毛細管による吸引法などの公知の方法によってカ
プセル内から抽出することができる。
内で生成されたＤＮＡまたはＲＮＡは、その後、遠心分
離法、毛細管による吸引法などの公知の方法によってカ
プセル内から抽出することができる。
【００３９】上記のシームレスカプセルからは、０.１
〜２０ＫＢヌクレオチド程度のＤＮＡまたはＲＮＡを合
成することができる。
〜２０ＫＢヌクレオチド程度のＤＮＡまたはＲＮＡを合
成することができる。
【００４０】本発明の第２の態様では、生体高分子合成
材料として、鋳型核酸、タンパク質合成用低分子量成
分、および無細胞タンパク質合成系を内部に包含したシ
ームレスカプセルを提供する。このようなシームレスカ
プセルは、その内部において、鋳型ＤＮＡまたは鋳型Ｒ
ＮＡから、アミノ酸等を包含するタンパク質合成用低分
子量成分と無細胞タンパク質合成系を用いて、所望のタ
ンパク質の合成を行うことができる。
材料として、鋳型核酸、タンパク質合成用低分子量成
分、および無細胞タンパク質合成系を内部に包含したシ
ームレスカプセルを提供する。このようなシームレスカ
プセルは、その内部において、鋳型ＤＮＡまたは鋳型Ｒ
ＮＡから、アミノ酸等を包含するタンパク質合成用低分
子量成分と無細胞タンパク質合成系を用いて、所望のタ
ンパク質の合成を行うことができる。
【００４１】本発明の第２の態様のシームレスカプセル
の皮膜を構成する成分および粘稠液体層を構成する成分
は、前記第１の態様に記載した物質をいずれも使用する
ことができる。
の皮膜を構成する成分および粘稠液体層を構成する成分
は、前記第１の態様に記載した物質をいずれも使用する
ことができる。
【００４２】本発明の第２の態様のシームレスカプセル
中に包含する鋳型核酸は、前記第１の態様において記載
したものをいずれも使用してよく、さらには、鋳型ＤＮ
ＡまたはＲＮＡとして、前記第１の態様のシームレスカ
プセル内で増幅されたＤＮＡまたはそれから合成された
ＲＮＡを使用することができる。後者の場合、得られた
ＤＮＡまたはＲＮＡは、第１の態様のカプセル内部に包
含したままで、または前記カプセルから上述の方法によ
って抽出した後の形態で、上記第２の態様のシームレス
カプセル内に包含され得る。
中に包含する鋳型核酸は、前記第１の態様において記載
したものをいずれも使用してよく、さらには、鋳型ＤＮ
ＡまたはＲＮＡとして、前記第１の態様のシームレスカ
プセル内で増幅されたＤＮＡまたはそれから合成された
ＲＮＡを使用することができる。後者の場合、得られた
ＤＮＡまたはＲＮＡは、第１の態様のカプセル内部に包
含したままで、または前記カプセルから上述の方法によ
って抽出した後の形態で、上記第２の態様のシームレス
カプセル内に包含され得る。
【００４３】本発明の第２の態様のシームレスカプセル
に使用する無細胞タンパク質合成系とは、生物から抽出
した細胞抽出成分であって、公知の３種のＲＮＡポリメ
ラーゼ（Ｉ、IIおよびIII）またはそれ以外のポリメラ
ーゼを包む、タンパク質の合成に必要なほぼ全ての要素
を包含するものとする。すなわち、このような無細胞タ
ンパク質合成系の代表的な例としては、例えば、「Ｓ−
３０」または「Ｓ−１００」と呼ばれる公知の複合成分
が挙げられる。特に、「Ｓ−３０」は、リボソーム、Ｒ
ＮＡポリメラーゼ、アミノアシルｔＲＮＡシンセターゼ
等が含まれると考えられているが、現在のところ、その
構成成分は完全に解明されてはいない。「Ｓ−３０」に
ついての詳細は、Translation and Transcription、第
７章、Julie M. Pratt著「Coupled Transcription − T
ranslation in Prokaryotic Cell-Free Systems」、IRL
Press Oxford(１９８４年)に記載されている。本発明
では、「Ｓ−３０」の構成成分が解明された段階で、そ
の個々の成分を混合して使用することもできる。
に使用する無細胞タンパク質合成系とは、生物から抽出
した細胞抽出成分であって、公知の３種のＲＮＡポリメ
ラーゼ（Ｉ、IIおよびIII）またはそれ以外のポリメラ
ーゼを包む、タンパク質の合成に必要なほぼ全ての要素
を包含するものとする。すなわち、このような無細胞タ
ンパク質合成系の代表的な例としては、例えば、「Ｓ−
３０」または「Ｓ−１００」と呼ばれる公知の複合成分
が挙げられる。特に、「Ｓ−３０」は、リボソーム、Ｒ
ＮＡポリメラーゼ、アミノアシルｔＲＮＡシンセターゼ
等が含まれると考えられているが、現在のところ、その
構成成分は完全に解明されてはいない。「Ｓ−３０」に
ついての詳細は、Translation and Transcription、第
７章、Julie M. Pratt著「Coupled Transcription − T
ranslation in Prokaryotic Cell-Free Systems」、IRL
Press Oxford(１９８４年)に記載されている。本発明
では、「Ｓ−３０」の構成成分が解明された段階で、そ
の個々の成分を混合して使用することもできる。
【００４４】前記無細胞タンパク質合成系は、１種また
はそれ以上を合わせて使用してよい。合成するタンパク
質に依存して、前記無細胞タンパク質合成系から公知の
遊離反応を介してリボソームを単離し、他の無細胞タン
パク質合成系と合わせて使用してもよい。
はそれ以上を合わせて使用してよい。合成するタンパク
質に依存して、前記無細胞タンパク質合成系から公知の
遊離反応を介してリボソームを単離し、他の無細胞タン
パク質合成系と合わせて使用してもよい。
【００４５】本発明の第２の態様のシームレスカプセル
に包含するタンパク質合成用低分子量成分とは、前記の
無細胞タンパク質合成系に加えてアミノ酸取り込み反応
を起こさせるために必要な要素（例えば、アミノ酸、Ａ
ＴＰ、ＧＴＰ、ｔＲＮＡ、エネルギー再生系、合成ｍＲ
ＮＡ、および適当量のＭｇ2+、Ｋ+またはＮＨ4 +等）を
含む複合成分である。ここで、アミノ酸は、グリシン、
アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、セリン、
トレオニン、アスパラギン酸、グルタミン酸、アルパラ
ギン、グルタミン、リジン、アルギニン、システイン、
メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトフ
ァン、ヒスチジンおよびプロリンの２０種類を包含する
ものとする。
に包含するタンパク質合成用低分子量成分とは、前記の
無細胞タンパク質合成系に加えてアミノ酸取り込み反応
を起こさせるために必要な要素（例えば、アミノ酸、Ａ
ＴＰ、ＧＴＰ、ｔＲＮＡ、エネルギー再生系、合成ｍＲ
ＮＡ、および適当量のＭｇ2+、Ｋ+またはＮＨ4 +等）を
含む複合成分である。ここで、アミノ酸は、グリシン、
アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、セリン、
トレオニン、アスパラギン酸、グルタミン酸、アルパラ
ギン、グルタミン、リジン、アルギニン、システイン、
メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトフ
ァン、ヒスチジンおよびプロリンの２０種類を包含する
ものとする。
【００４６】本発明の第２の態様において、シームレス
カプセル１個の中に包含される各生体高分子合成材料の
好ましい量は、生体高分子合成材料の合計使用量を１０
０μＬとして、鋳型核酸７〜１４μｇ、タンパク質合成
用低分子量成分２５〜５０μＬ、および無細胞タンパク
質合成系３０μＬである。
カプセル１個の中に包含される各生体高分子合成材料の
好ましい量は、生体高分子合成材料の合計使用量を１０
０μＬとして、鋳型核酸７〜１４μｇ、タンパク質合成
用低分子量成分２５〜５０μＬ、および無細胞タンパク
質合成系３０μＬである。
【００４７】上記のようなシームレスカプセル内で生成
されるタンパク質は、その後、遠心分離法、毛細管によ
る吸引法などの公知の方法によってカプセル内から抽出
することができる。
されるタンパク質は、その後、遠心分離法、毛細管によ
る吸引法などの公知の方法によってカプセル内から抽出
することができる。
【００４８】本発明の第２の態様のシームレスカプセル
内では、ルシフェラーゼ、フォスファターゼ、ＤＮＡポ
リメラーゼ等のタンパク質を合成することができる。ま
た、合成されたＤＮＡポリメラーゼを用いて再度ＰＣＲ
を行うことにより、鋳型ＤＮＡをさらに増幅することも
可能である。
内では、ルシフェラーゼ、フォスファターゼ、ＤＮＡポ
リメラーゼ等のタンパク質を合成することができる。ま
た、合成されたＤＮＡポリメラーゼを用いて再度ＰＣＲ
を行うことにより、鋳型ＤＮＡをさらに増幅することも
可能である。
【００４９】本発明の第３の態様のシームレスカプセル
内に包含する生体高分子合成原料としては、鋳型核酸、
生体高分子合成原料としてのプライマーおよび基質、タ
ンパク質合成用低分子量成分、ＤＮＡポリメラーゼ、並
びに無細胞タンパク質合成系を内部に包含したシームレ
スカプセルを提供する。
内に包含する生体高分子合成原料としては、鋳型核酸、
生体高分子合成原料としてのプライマーおよび基質、タ
ンパク質合成用低分子量成分、ＤＮＡポリメラーゼ、並
びに無細胞タンパク質合成系を内部に包含したシームレ
スカプセルを提供する。
【００５０】このようなシームレスカプセルは、その内
部において、鋳型ＤＮＡまたは鋳型ＲＮＡからＰＣＲ法
を利用して適当なＤＮＡを増幅し、さらにはその増幅さ
れたＤＮＡからｍＲＮＡヘの転写を介して、所望のタン
パク質への合成までを行うことができる。
部において、鋳型ＤＮＡまたは鋳型ＲＮＡからＰＣＲ法
を利用して適当なＤＮＡを増幅し、さらにはその増幅さ
れたＤＮＡからｍＲＮＡヘの転写を介して、所望のタン
パク質への合成までを行うことができる。
【００５１】上記第３の態様のシームレスカプセルにお
いて、皮膜成分および粘稠液体成分、並びにカプセル内
に包含する鋳型核酸は、前記第１の態様に記載のものと
同様の物質がいずれも使用できる。
いて、皮膜成分および粘稠液体成分、並びにカプセル内
に包含する鋳型核酸は、前記第１の態様に記載のものと
同様の物質がいずれも使用できる。
【００５２】本発明の第３の態様のシームレスカプセル
内に包含する生体高分子合成原料は、プライマーおよび
基質から成る。
内に包含する生体高分子合成原料は、プライマーおよび
基質から成る。
【００５３】上記プライマーは、前記第１の態様のシー
ムレスカプセル内について記載したものと同様の物質を
いずれも選択できる。さらには、鋳型ＤＮＡとして、前
述の本発明の第１の態様において合成されたＤＮＡを、
合成（増幅）された時点のカプセルのままで、またはカ
プセル内から上記の方法により抽出した後、上記第３の
態様のシームレスカプセル内に包含させてもよい。
ムレスカプセル内について記載したものと同様の物質を
いずれも選択できる。さらには、鋳型ＤＮＡとして、前
述の本発明の第１の態様において合成されたＤＮＡを、
合成（増幅）された時点のカプセルのままで、またはカ
プセル内から上記の方法により抽出した後、上記第３の
態様のシームレスカプセル内に包含させてもよい。
【００５４】もう一つの生体高分子合成原料である基質
としては、前述の本発明の第１の態様について記載した
ＤＮＡ合成用の４種のモノデオキシヌクレオチド（ｄＮ
ＴＰｓ）、ＲＮＡ合成用の４種のモノヌクレオチド、並
びにデオキシイノシン５'―三リン酸等のモノヌクレオ
チドが挙げられる。特に、所望のタンパク質の合成に対
応して、ＲＮＡ合成用モノヌクレオチド混合物は必須要
素である。
としては、前述の本発明の第１の態様について記載した
ＤＮＡ合成用の４種のモノデオキシヌクレオチド（ｄＮ
ＴＰｓ）、ＲＮＡ合成用の４種のモノヌクレオチド、並
びにデオキシイノシン５'―三リン酸等のモノヌクレオ
チドが挙げられる。特に、所望のタンパク質の合成に対
応して、ＲＮＡ合成用モノヌクレオチド混合物は必須要
素である。
【００５５】本発明の第３の態様のシームレスカプセル
に使用する無細胞タンパク質合成系およびタンパク質合
成用低分子量成分、並びに所望の核酸を得るのに必要な
ポリメラーゼは、本発明の第２の態様において記載した
各成分とそれぞれ同義のものを使用してよい。
に使用する無細胞タンパク質合成系およびタンパク質合
成用低分子量成分、並びに所望の核酸を得るのに必要な
ポリメラーゼは、本発明の第２の態様において記載した
各成分とそれぞれ同義のものを使用してよい。
【００５６】また、無細胞タンパク質合成系は、１種ま
たはそれ以上を合わせて使用してよい。合成するタンパ
ク質に依存して、前記無細胞タンパク質合成系から公知
の遊離反応を介してリボソームを単離し、他の無細胞タ
ンパク質合成系と合わせて使用してもよい。
たはそれ以上を合わせて使用してよい。合成するタンパ
ク質に依存して、前記無細胞タンパク質合成系から公知
の遊離反応を介してリボソームを単離し、他の無細胞タ
ンパク質合成系と合わせて使用してもよい。
【００５７】本発明の第３の態様において、シームレス
カプセル１個の中に包含される各生体高分子合成材料の
好ましい量は、生体高分子合成材料の合計使用量を１０
０μＬとして、鋳型核酸１〜１０10本、プライマー１０
〜１００ｐモル、基質０.１〜０.４ｍＭ、タンパク質合
成用低分子量成分２５〜５０μＬ、ポリメラーゼ０.１
〜４Ｕ、並びに無細胞タンパク質合成系３０μＬであ
る。
カプセル１個の中に包含される各生体高分子合成材料の
好ましい量は、生体高分子合成材料の合計使用量を１０
０μＬとして、鋳型核酸１〜１０10本、プライマー１０
〜１００ｐモル、基質０.１〜０.４ｍＭ、タンパク質合
成用低分子量成分２５〜５０μＬ、ポリメラーゼ０.１
〜４Ｕ、並びに無細胞タンパク質合成系３０μＬであ
る。
【００５８】上記のようなシームレスカプセル内で生成
されるタンパク質は、その後、遠心分離法、毛細管によ
る吸引法などの公知の方法によってカプセル内から抽出
することができる。
されるタンパク質は、その後、遠心分離法、毛細管によ
る吸引法などの公知の方法によってカプセル内から抽出
することができる。
【００５９】上記のようなシームレスカプセル内では、
ルシフェラーゼ、フォスファターゼ、ＤＮＡポリメラー
ゼ等のタンパク質の合成を行うことができる。
ルシフェラーゼ、フォスファターゼ、ＤＮＡポリメラー
ゼ等のタンパク質の合成を行うことができる。
【００６０】本発明の別の態様では、上記のシームレス
カプセルの製造方法を提供する。以下、この製造法を添
付図面に基づいて詳しく説明する。
カプセルの製造方法を提供する。以下、この製造法を添
付図面に基づいて詳しく説明する。
【００６１】図１は、本発明によるシームレスカプセル
を製造するのに好適な製造装置のノズル部の一態様を示
す模式的縦断面図である。
を製造するのに好適な製造装置のノズル部の一態様を示
す模式的縦断面図である。
【００６２】本発明の製造法において使用するのに好適
な製造装置のノズル部の材質としては、生体高分子合成
材料に悪影響を及ぼさない樹脂または金属等が挙げられ
るが、例えば、シリコーン樹脂、テフロン樹脂、ステン
レススチール鋼、チタン、セラミックス、またはそれら
の混合物等が好適である。
な製造装置のノズル部の材質としては、生体高分子合成
材料に悪影響を及ぼさない樹脂または金属等が挙げられ
るが、例えば、シリコーン樹脂、テフロン樹脂、ステン
レススチール鋼、チタン、セラミックス、またはそれら
の混合物等が好適である。
【００６３】図１において、ノズル部に送給されたカプ
セル内容物（生体高分子合成材料）４を内ノズル（第１
ノズル）１から、水混和しにくい粘稠液体５を中間ノズ
ル（第２ノズル）２の環状孔先端部からそれぞれ押し出
すと同時に、シームレスカプセル用皮膜液６を外ノズル
（第３ノズル）３の環状孔先端部から押し出し、この三
相複合ジェットを冷却液８中に放出して本発明によるシ
ームレスカプセル７を得る。
セル内容物（生体高分子合成材料）４を内ノズル（第１
ノズル）１から、水混和しにくい粘稠液体５を中間ノズ
ル（第２ノズル）２の環状孔先端部からそれぞれ押し出
すと同時に、シームレスカプセル用皮膜液６を外ノズル
（第３ノズル）３の環状孔先端部から押し出し、この三
相複合ジェットを冷却液８中に放出して本発明によるシ
ームレスカプセル７を得る。
【００６４】本発明のカプセルの製造法では、充填物が
液状であるため、振動手段を用いて複合ジェット流に適
度な振動を与えることによってジェット流の切れを良く
してカプセル化を容易にし、それによって粒径を均一に
することもできる。カプセルの粒径は、用途に依存し
て、０.０１〜１０.０ｍｍの範囲内の所望の大きさに成
形することができる。
液状であるため、振動手段を用いて複合ジェット流に適
度な振動を与えることによってジェット流の切れを良く
してカプセル化を容易にし、それによって粒径を均一に
することもできる。カプセルの粒径は、用途に依存し
て、０.０１〜１０.０ｍｍの範囲内の所望の大きさに成
形することができる。
【００６５】上記のようにして製造される本発明のシー
ムレスカプセルは、皮膜に水分を含む未乾燥状態のま
ま、または乾燥処理された状態のいずれの状態でも使用
できる。
ムレスカプセルは、皮膜に水分を含む未乾燥状態のま
ま、または乾燥処理された状態のいずれの状態でも使用
できる。
【００６６】本発明の生体高分子を合成するシームレス
カプセル内において生体高分子を合成するためには、先
ず、ターゲットに適合した各種成分をカプセル内に封入
し、次に、所望の生体高分子を得るのに必要なポリメラ
ーゼまたは細胞抽出液（すなわち、前記無細胞タンパク
質合成系）の反応温度において、必要な時間加温すれば
よい。必要に応じて、上記反応途中に外部の条件を変化
することにより、皮膜の透過性を利用して、カプセル内
部の低分子成分種やｐＨを変化させることも可能であ
る。
カプセル内において生体高分子を合成するためには、先
ず、ターゲットに適合した各種成分をカプセル内に封入
し、次に、所望の生体高分子を得るのに必要なポリメラ
ーゼまたは細胞抽出液（すなわち、前記無細胞タンパク
質合成系）の反応温度において、必要な時間加温すれば
よい。必要に応じて、上記反応途中に外部の条件を変化
することにより、皮膜の透過性を利用して、カプセル内
部の低分子成分種やｐＨを変化させることも可能であ
る。
【００６７】本発明のシームレスカプセル内で合成され
たＤＮＡもしくはＲＮＡまたはタンパク質等の生体高分
子の確認は、電気泳動、高速液体クロマトグラフィー、
酵素免疫測定法等の公知の方法を用いて容易に行うこと
ができる。
たＤＮＡもしくはＲＮＡまたはタンパク質等の生体高分
子の確認は、電気泳動、高速液体クロマトグラフィー、
酵素免疫測定法等の公知の方法を用いて容易に行うこと
ができる。
【００６８】
【発明の効果】本発明のシームレスカプセルは次のよう
な有用性が期待できる。 （１）本発明のシームレスカプセルは、微小空間を作り
出すことが可能である。すなわち、材料中の鋳型核酸の
濃度を調節することにより、カプセル内の微小空間にお
いて、一本の鋳型核酸を容易に封入することが可能とな
る。また、封入する鋳型核酸として種々の混合物を封入
して合成反応を行うと、多種類の生成物のライブラリー
が得られる。本発明のシームレスカプセルは大きさが均
一であり、物理的強度が高い上に光の透過性もあるの
で、ライブラリー中から有用物質をスクリーニングする
際にオートメーション化、高効率化が図れる点で非常に
有用である。 （２）鋳型核酸の反応は人工的な皮膜の内部で行うた
め、生物由来物質以外の人工的な合成物質（例えば、生
体に有害な物質）を合成することもできる。 （３）カプセルの寸法、およびそれに封入する材料の内
容量を自由に制御できることから、検出感度に合わせて
合成量を設定できる。すなわち、従来の方法では検出で
きなかった物質を見い出せる可能性がある。 （４）生体適合性が高いため、生成物をカプセルから抽
出せずにそのまま生物に投与する事が可能である。
な有用性が期待できる。 （１）本発明のシームレスカプセルは、微小空間を作り
出すことが可能である。すなわち、材料中の鋳型核酸の
濃度を調節することにより、カプセル内の微小空間にお
いて、一本の鋳型核酸を容易に封入することが可能とな
る。また、封入する鋳型核酸として種々の混合物を封入
して合成反応を行うと、多種類の生成物のライブラリー
が得られる。本発明のシームレスカプセルは大きさが均
一であり、物理的強度が高い上に光の透過性もあるの
で、ライブラリー中から有用物質をスクリーニングする
際にオートメーション化、高効率化が図れる点で非常に
有用である。 （２）鋳型核酸の反応は人工的な皮膜の内部で行うた
め、生物由来物質以外の人工的な合成物質（例えば、生
体に有害な物質）を合成することもできる。 （３）カプセルの寸法、およびそれに封入する材料の内
容量を自由に制御できることから、検出感度に合わせて
合成量を設定できる。すなわち、従来の方法では検出で
きなかった物質を見い出せる可能性がある。 （４）生体適合性が高いため、生成物をカプセルから抽
出せずにそのまま生物に投与する事が可能である。
【００６９】以上述べたように、本発明の生体高分子合
成カプセルは、カプセル中で生体高分子を容易かつ迅速
に合成、合成することができるため、前述のようなリポ
ソームやポリピロールを用いたカプセル内での合成に付
随する問題点が全く存在しない。
成カプセルは、カプセル中で生体高分子を容易かつ迅速
に合成、合成することができるため、前述のようなリポ
ソームやポリピロールを用いたカプセル内での合成に付
随する問題点が全く存在しない。
【００７０】
【実施例】本発明は実施例によりさらに詳細に説明する
が、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
が、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
【００７１】実施例１ カプセル内部でのＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応） １）材料 組成成分（鋳型ＤＮＡ、トリシン−ＮａＯＨ、β−メル
カプトエタノール、塩化マグネシウム、ｄＮＴＰｓ、プ
ライマー、およびＴｔｈポリメラーゼ）を混合し、滅菌
水を加えて、所定の濃度の反応液を作製する。反応液内
での各組成成分の含有濃度を以下に示す。
カプトエタノール、塩化マグネシウム、ｄＮＴＰｓ、プ
ライマー、およびＴｔｈポリメラーゼ）を混合し、滅菌
水を加えて、所定の濃度の反応液を作製する。反応液内
での各組成成分の含有濃度を以下に示す。
【００７２】 ＜反応液組成＞ 鋳型ＤＮＡ １０8本／１００μＬ 高熱菌サーマス・サーモフィラスのＤＮＡポリメラーゼIの遺伝子（２.８ ＫＢ）を鋳型ＤＮＡとし、その内側の０.９ＫＢを合成した。 トリシン−ＮａＯＨ(ｐＨ８.３) ３０ｍＭ β−メルカプトエタノール ５ｍＭ 塩化マグネシウム １ｍＭ ｄＮＴＰs 各０.２ｍＭ 以下の塩基配列を有する２種のプライマー 各１００ｐモル／１００μＬ プライマーＣ１０： ＧＣＧＧＧＣＣＡＣＣＣＣＴＴＣＡＡＣＣＴＣ プライマーＤ２： ＣＡＧＧＧＧＣＡＣＧＧＣＧＡＧＧＧＧＡ Ｔｔｈポリメラーゼ ２Ｕ／１００μＬ （東洋紡製、サーモス・サーモフィラス（Thermus thermophilus）HB8由来 のＤＮＡポリメラーゼＩ）
【００７３】シームレスカプセルの皮膜形成用溶液は、
分子量５００〜５０００（好ましくは１０００〜３００
０）のカードランと分子量約１×１０6のアガロースか
ら、またカプセルと上記内容液の間に介在させる中間層
溶液は、パーム硬化油とショ糖脂肪酸エステル（ＳＡＩ
Ｂ）からそれぞれ調製した。
分子量５００〜５０００（好ましくは１０００〜３００
０）のカードランと分子量約１×１０6のアガロースか
ら、またカプセルと上記内容液の間に介在させる中間層
溶液は、パーム硬化油とショ糖脂肪酸エステル（ＳＡＩ
Ｂ）からそれぞれ調製した。
【００７４】２）カプセルの作製 上記内容液（反応液）、中間層溶液および皮膜溶液をそ
れぞれ森下仁丹シームレスカプセル製造用装置に充填し
た。内容液を温度２５℃、流量４.９ｍＬ／分、中間層
溶液を温度６０℃、流量１６.４ｍＬ／分、皮膜溶液を
温度６０℃、流量２９.６ｍＬ／分で、冷却温度８℃で
流量９３８ｍＬ／分の冷却液中に同時に押し出すことに
より、粒径３.０ｍｍのシームレスカプセルを作製し
た。
れぞれ森下仁丹シームレスカプセル製造用装置に充填し
た。内容液を温度２５℃、流量４.９ｍＬ／分、中間層
溶液を温度６０℃、流量１６.４ｍＬ／分、皮膜溶液を
温度６０℃、流量２９.６ｍＬ／分で、冷却温度８℃で
流量９３８ｍＬ／分の冷却液中に同時に押し出すことに
より、粒径３.０ｍｍのシームレスカプセルを作製し
た。
【００７５】
【００７６】２）ＰＣＲ 上記で作製したカプセル１個を容量０.６ｍＬの反応用
チューブ（ポリプロピレン製）に入れ、ミネラルオイル
（シグマ（Sigma）製）を加えてカプセルをオイルに完
全に浸漬させた。その反応用チューブをサーマルサイク
ラーＰＣ７００（アステック製）に設置し、以下のプロ
グラム（〜）を順に付すことによってＰＣＲを行っ
た。
チューブ（ポリプロピレン製）に入れ、ミネラルオイル
（シグマ（Sigma）製）を加えてカプセルをオイルに完
全に浸漬させた。その反応用チューブをサーマルサイク
ラーＰＣ７００（アステック製）に設置し、以下のプロ
グラム（〜）を順に付すことによってＰＣＲを行っ
た。
【００７７】＜ＰＣＲプログラム＞ （９４℃、５分） ：１サイクル （９４℃、１分）＋（５４℃、１分）＋（７２℃、５
分）：４０サイクル （７２℃、１０分）：１サイクル
分）：４０サイクル （７２℃、１０分）：１サイクル
【００７８】３）得られた反応物の抽出 反応後のカプセルを０.２２μｍのフィルターのついた
エッペンドルフチューブに入れて、６０００ｒｐｍで２
０分間遠心して内容液を回収した。回収した反応液を分
子量３００００ｃｕｔ限外濾過膜のついたエッペンドル
フチューブを用いて１０倍以上に濃縮した。
エッペンドルフチューブに入れて、６０００ｒｐｍで２
０分間遠心して内容液を回収した。回収した反応液を分
子量３００００ｃｕｔ限外濾過膜のついたエッペンドル
フチューブを用いて１０倍以上に濃縮した。
【００７９】４）合成（増幅）されたＤＮＡの定量 濃縮液１０μＬに色素液である６xＤｙｅ（ブロムフェ
ノールブルー０.２５重量％、キシレンシアノール０.２
５重量％およびFicoll(Type400 pharmacia)１５重量％
から成る染料組成物）２μＬを加えて、１.０％アガロ
ースゲルのウェルに乗せて電気泳動させた。コントロー
ルとして、長さおよび濃度が既知であるＤＮＡも同時に
電気泳動させた。泳動後のゲルを臭化エチジウムで染色
して下部より紫外線照射し、発色したＤＮＡをコントロ
ールと比較して定量した結果、濃縮した反応液１０μＬ
当たり、０.１〜２.０μｇのＤＮＡが合成されているこ
とを確認した。合成されたＤＮＡは、およそ０.９ｋＢ
であった。
ノールブルー０.２５重量％、キシレンシアノール０.２
５重量％およびFicoll(Type400 pharmacia)１５重量％
から成る染料組成物）２μＬを加えて、１.０％アガロ
ースゲルのウェルに乗せて電気泳動させた。コントロー
ルとして、長さおよび濃度が既知であるＤＮＡも同時に
電気泳動させた。泳動後のゲルを臭化エチジウムで染色
して下部より紫外線照射し、発色したＤＮＡをコントロ
ールと比較して定量した結果、濃縮した反応液１０μＬ
当たり、０.１〜２.０μｇのＤＮＡが合成されているこ
とを確認した。合成されたＤＮＡは、およそ０.９ｋＢ
であった。
【００８０】実施例２ カプセル内でのタンパク質合成 最初に、以下の手順に従って、大腸菌由来の無細胞タン
パク質合成系（以下、大腸菌Ｓ−３０画分と呼ぶ。）を
調製した。
パク質合成系（以下、大腸菌Ｓ−３０画分と呼ぶ。）を
調製した。
【００８１】 使用菌株：E.coli DPB267 使用試薬： ａ）２ｘＴＹ培地（１Ｌ当たり） トリプトン（窒素供給源、Difco製「Bacto-Tryptone」） １６ｇ イースト抽出物（Difco製「Yeast Extract」） １０ｇ
【００８２】 ｂ）Ｓ−３０調製用培地 １液：ＫＨ2ＰＯ4 ５６ｇ、Ｋ2ＨＰＯ4 ２８９ｇおよびイースト抽出物 １０ｇの混合液 ２液：２５％（W/V）グルコース ８００ｍＬ ３液：０.１Ｍ酢酸マグネシウム １００ｍＬ チアミン １５ｍｇ メチオニン ０.５ｇ 上記１液〜３液は、使用前に、別個のオートクレーブに
おいて滅菌し、またチアミンとメチオニンはそれぞれ、
使用前に、０.２２μｍフィルターを用いてフィルター
滅菌した。滅菌後、全部を合わせて混合した。
おいて滅菌し、またチアミンとメチオニンはそれぞれ、
使用前に、０.２２μｍフィルターを用いてフィルター
滅菌した。滅菌後、全部を合わせて混合した。
【００８３】 ｃ）Ｓ−３０用緩衝液１ トリス-酢酸（ｐＨ８.２） １０ｍＭ 酢酸マグネシウム １４ｍＭ 酢酸カリウム ６０ｍＭ ＤＴＴ １ｍＭ ｄ）Ｓ−３０用緩衝液２ トリス-酢酸（ｐＨ８.２） １０ｍＭ 酢酸マグネシウム １４ｍＭ 酢酸カリウム ６０ｍＭ ＤＴＴ １ｍＭ ２-メルカプトエタノール ５０μＬ／Ｌ
【００８４】 ｅ）前混合溶液 ＡＴＰ（ｐＨ７.０） １３.２ｍＭ トリス-酢酸（ｐＨ８.２） ０.３Ｍ ホスホエノールピルベート ８４ｍＭ 酢酸マグネシウム ９.２ｍＭ ＤＤＴ ４.４ｍＭ １９種類のアミノ酸 各０.０４ｍＭ （グリシン、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、セリン、 トレオニン、アスパラギン酸、グルタミン酸、アルパラギン、グルタ ミン、リジン、アルギニン、システイン、フェニルアラニン、チロシ ン、トリプトファン、ヒスチジンおよびプロリン） メチオニン １ｍｇ／ｍＬ ピルビン酸キナーゼ ７Ｕ／ｍＬ １％（V/V）アデカノール（旭電化工業製、アルコール系消泡剤）
【００８５】２ｘＴＹプレート培地に大腸菌を塗布し、
３７℃で１２時間培養する。次に菌体１白金耳を、５ｍ
Ｌの２ｘＴＹ培地ａ）に植菌し、３７℃で１２時間震盪
培養した（前々培養）。前々培養液２ｍＬを２００ｍＬ
のＳ−３０調製用培地ｂ）に植菌し、３７℃で１２時間
震盪培地した（前培養）。前培養液全量を、６ＬのＳ−
３０調製用培地ｂ）に植菌し、３７℃において、酸素供
給量３.５ｖｖｍおよび撹拌速度８００ｒｐｍに設定し
たジャーファーメンターで培養した。この時点におい
て、消泡剤としてアデカノール１.５ｍＬを添加した。
培養中、培養液の４５０ｎｍでの光学密度（ＯＤ450）
を経時的に測定し、ＯＤ450が２.０に達する直前に、培
養液を急冷して集菌した。集菌した菌体を、氷冷したＳ
−３０用緩衝液１ｃ）で洗浄した後、−８０℃で一晩保
存した。
３７℃で１２時間培養する。次に菌体１白金耳を、５ｍ
Ｌの２ｘＴＹ培地ａ）に植菌し、３７℃で１２時間震盪
培養した（前々培養）。前々培養液２ｍＬを２００ｍＬ
のＳ−３０調製用培地ｂ）に植菌し、３７℃で１２時間
震盪培地した（前培養）。前培養液全量を、６ＬのＳ−
３０調製用培地ｂ）に植菌し、３７℃において、酸素供
給量３.５ｖｖｍおよび撹拌速度８００ｒｐｍに設定し
たジャーファーメンターで培養した。この時点におい
て、消泡剤としてアデカノール１.５ｍＬを添加した。
培養中、培養液の４５０ｎｍでの光学密度（ＯＤ450）
を経時的に測定し、ＯＤ450が２.０に達する直前に、培
養液を急冷して集菌した。集菌した菌体を、氷冷したＳ
−３０用緩衝液１ｃ）で洗浄した後、−８０℃で一晩保
存した。
【００８６】保存後の菌体を氷上で解凍し、氷冷したＳ
−３０用緩衝液２ｄ）を加えて懸濁させた後、再度集菌
した。次いで、菌体１０ｇ当たり１２.７ｍＬの氷冷し
たＳ−３０用緩衝液１ｃ）を加えて均一になるまで十分
に懸濁させた。この菌体液を、フレンチプレス（SLM In
struments, Inc.製）を用いて８４００ＰＳＩで破砕し
た。
−３０用緩衝液２ｄ）を加えて懸濁させた後、再度集菌
した。次いで、菌体１０ｇ当たり１２.７ｍＬの氷冷し
たＳ−３０用緩衝液１ｃ）を加えて均一になるまで十分
に懸濁させた。この菌体液を、フレンチプレス（SLM In
struments, Inc.製）を用いて８４００ＰＳＩで破砕し
た。
【００８７】破砕した菌体液１０ｍＬにつきＤＴＴ １
００μＬを添加し、４℃において１５４００ｒｐｍで３
０分間遠心分離した後、上澄み液を分離した。上澄み液
１０ｍＬにつき前混合溶液ｅ）３ｍＬを添加し、３７℃
で８０分間穏やかに震盪した。この液を透析膜に入れ、
５００ｍＬのＳ−３０用緩衝液１ｃ）に対して４℃で２
時間透析した。透析中、透析外液を３０分毎に交換し
た。透析後、４℃において４０００ｒｐｍで５分間遠心
分離した。遠心分離後の上澄み液を「Ｓ−３０」とし
た。調製後の「Ｓ−３０」は、２ｍＬずつ分注して、液
体窒素中で保存した（これを大腸菌Ｓ−３０画分として
以下で使用する。）。
００μＬを添加し、４℃において１５４００ｒｐｍで３
０分間遠心分離した後、上澄み液を分離した。上澄み液
１０ｍＬにつき前混合溶液ｅ）３ｍＬを添加し、３７℃
で８０分間穏やかに震盪した。この液を透析膜に入れ、
５００ｍＬのＳ−３０用緩衝液１ｃ）に対して４℃で２
時間透析した。透析中、透析外液を３０分毎に交換し
た。透析後、４℃において４０００ｒｐｍで５分間遠心
分離した。遠心分離後の上澄み液を「Ｓ−３０」とし
た。調製後の「Ｓ−３０」は、２ｍＬずつ分注して、液
体窒素中で保存した（これを大腸菌Ｓ−３０画分として
以下で使用する。）。
【００８８】１）内容液の組成 鋳型ＤＮＡ ホタル由来のルシフェラーゼ遺伝子の上流に大腸菌で認
識されるプロモーターとＳＤ配列を組み込んだものを作
製し、全長をＰＣＲにて合成して使用したもの。 大腸菌Ｓ−３０画分 タンパク質合成低分子量成分混合液（ＬＭ混合液） 酢酸マグネシウム ７４ｍＭ 酢酸アンモニウム １４４ｍＭ 酢酸カリウム ２８８ｍＭ ジチオスレイトール（ＤＴＴ） ７ｍＭ イソプロピルチオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ） ２ｍＭ ５',３'ｃＡＭＰナトリウム塩 ２.６ｍＭ ＭＲＥ６００からのｔＲＮＡ ０.６８ｍｇ／ｍＬ ホスホエノールピルビン酸モノカリウム塩 １０８ｍＭ 葉酸カルシウム塩 １３４.８ｍｇ／ｍＬ ＰＥＧ８０００ ７.６％ ＡＴＰ ４.９ｍＭ ＧＴＰ ３.４ｍＭ ＣＴＰ ３.４ｍＭ ＵＴＰ ３.４ｍＭ ２０種類のアミノ酸（グリシン、アラニン、 各１.３ｍＭ バリン、ロイシン、イソロイシン、セリン、 トレオニン、アスパラギン酸、グルタミン酸、 アルパラギン、グルタミン、リジン、アルギニン、 システイン、メチオニン、フェニルアラニン、 チロシン、トリプトファン、ヒスチジン、プロリン）
識されるプロモーターとＳＤ配列を組み込んだものを作
製し、全長をＰＣＲにて合成して使用したもの。 大腸菌Ｓ−３０画分 タンパク質合成低分子量成分混合液（ＬＭ混合液） 酢酸マグネシウム ７４ｍＭ 酢酸アンモニウム １４４ｍＭ 酢酸カリウム ２８８ｍＭ ジチオスレイトール（ＤＴＴ） ７ｍＭ イソプロピルチオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ） ２ｍＭ ５',３'ｃＡＭＰナトリウム塩 ２.６ｍＭ ＭＲＥ６００からのｔＲＮＡ ０.６８ｍｇ／ｍＬ ホスホエノールピルビン酸モノカリウム塩 １０８ｍＭ 葉酸カルシウム塩 １３４.８ｍｇ／ｍＬ ＰＥＧ８０００ ７.６％ ＡＴＰ ４.９ｍＭ ＧＴＰ ３.４ｍＭ ＣＴＰ ３.４ｍＭ ＵＴＰ ３.４ｍＭ ２０種類のアミノ酸（グリシン、アラニン、 各１.３ｍＭ バリン、ロイシン、イソロイシン、セリン、 トレオニン、アスパラギン酸、グルタミン酸、 アルパラギン、グルタミン、リジン、アルギニン、 システイン、メチオニン、フェニルアラニン、 チロシン、トリプトファン、ヒスチジン、プロリン）
【００８９】２）カプセルの製造 大腸菌Ｓ−３０画分を液体窒素から取り出し、遮光して
氷上で解凍した。上記の内容液の各組成を、氷上で、以
下に示す配合で混合して内容液を調製した。 ＜内容液組成（１ｍＬあたり）＞ 鋳型ＤＮＡ ７０μｇ 大腸菌Ｓ−３０画分 ０.３ｍＬ ＬＭ混合液 ０.２５ｍＬ 滅菌水 全量を１ｍＬにする量。
氷上で解凍した。上記の内容液の各組成を、氷上で、以
下に示す配合で混合して内容液を調製した。 ＜内容液組成（１ｍＬあたり）＞ 鋳型ＤＮＡ ７０μｇ 大腸菌Ｓ−３０画分 ０.３ｍＬ ＬＭ混合液 ０.２５ｍＬ 滅菌水 全量を１ｍＬにする量。
【００９０】得られた内容液を用いたこと以外は、実施
例１の記載と同様にしてカプセルを製造した。
例１の記載と同様にしてカプセルを製造した。
【００９１】製造したカプセル１個を容量０.６ｍＬの
反応用チューブ（ポリプロピレン製）に入れ、ミネラル
オイル（シグマ(Sigma)製）を加えてカプセルをオイル
に完全に浸漬させた。その反応用チューブをサーマルサ
イクラーＰＣ７００（アステック製）に設置して、３７
℃で２時間反応させた。
反応用チューブ（ポリプロピレン製）に入れ、ミネラル
オイル（シグマ(Sigma)製）を加えてカプセルをオイル
に完全に浸漬させた。その反応用チューブをサーマルサ
イクラーＰＣ７００（アステック製）に設置して、３７
℃で２時間反応させた。
【００９２】３）反応物の抽出 反応後のカプセルを０.２２μｍのメンブレンフィルタ
ーのついた遠心型濾過器に入れ、６０００ｒｐｍで２０
分遠心濾過して内容液を回収した。
ーのついた遠心型濾過器に入れ、６０００ｒｐｍで２０
分遠心濾過して内容液を回収した。
【００９３】４）ルシフェラーゼ活性の検出 ニューレポータジーンルシフェラーゼアッセイシステム
ピッカジーン（東洋インキ製造（株））のプロトコー
ルに従った。キットに含まれている発光基質５０μＬ
に対してカプセルの抽出液１０μＬを加えて撹拌後、す
ぐにルミノメーター（ＥＧ＆Ｇ ＢＥＲＴＨＯＬＤ Ｌ
μｍａｔ ＬＢ９５０１）を用いて３０秒間の発光量を
測定することで、合成されたルシフェラーゼの活性を検
出した。コントロールとして、別途市販のルシフェラー
ゼを希釈したものを使用して標準曲線を作製した。その
結果、カプセル抽出液１０μＬ当たり、１０〜１００ｆ
モルのルシフェラーゼが合成されていることが確認され
た。
ピッカジーン（東洋インキ製造（株））のプロトコー
ルに従った。キットに含まれている発光基質５０μＬ
に対してカプセルの抽出液１０μＬを加えて撹拌後、す
ぐにルミノメーター（ＥＧ＆Ｇ ＢＥＲＴＨＯＬＤ Ｌ
μｍａｔ ＬＢ９５０１）を用いて３０秒間の発光量を
測定することで、合成されたルシフェラーゼの活性を検
出した。コントロールとして、別途市販のルシフェラー
ゼを希釈したものを使用して標準曲線を作製した。その
結果、カプセル抽出液１０μＬ当たり、１０〜１００ｆ
モルのルシフェラーゼが合成されていることが確認され
た。
【００９４】実施例３ カプセル内でのＰＣＲによるタンパク質合成 １）材料 以下の組成を混合し、滅菌水で希釈することによって、
反応液を作製した。 ＜反応液組成＞ 鋳型ＤＮＡ １０９本／１００μＬ 大腸菌のアルカリフォスファターゼ遺伝子約２ＫＢを高熱菌サーマス・ サーモフィラスで認識されるプロモーターとＳＤ配列の下流に連結したＤＮＡ を作製する。このＤＮＡの全長をＰＣＲで合成（増幅）したものを鋳型ＤＮＡ として使用した。 トリシン-ＮａＯＨ（ｐＨ８.３） ３００ｍＭ β−メルカプトエタノール ５０ｍＭ 塩化マグネシウム １０ｍＭ （上記３種の組成成分は、混合して、全体で１０μＬとした。） ｄＮＴＰｓ（４種のＮＴＰ各２ｍＭの混合物） １０μＬ プライマーＣ１０およびＤ２ 各１００ｐモル／１００μＬ Ｔｔｈポリメラーゼ ２ｕ／１００μＬ （東洋紡製、サーモス・サーモフィラスHB8由来のＤＮＡポリメラーゼＩ） 大腸菌Ｓ−３０画分 ３０μＬ （使用菌株をサーモス・サーモフィラスHB8とし、かつ培養温度を６５℃とした こと以外は、実施例２と同じ方法で得たもの） ＬＭ混合液 ２２.５μＬ （実施例２記載のＬＭ混合液から酢酸マグネシウムを除去したもの） 滅菌水 全量を１００μＬとする量
反応液を作製した。 ＜反応液組成＞ 鋳型ＤＮＡ １０９本／１００μＬ 大腸菌のアルカリフォスファターゼ遺伝子約２ＫＢを高熱菌サーマス・ サーモフィラスで認識されるプロモーターとＳＤ配列の下流に連結したＤＮＡ を作製する。このＤＮＡの全長をＰＣＲで合成（増幅）したものを鋳型ＤＮＡ として使用した。 トリシン-ＮａＯＨ（ｐＨ８.３） ３００ｍＭ β−メルカプトエタノール ５０ｍＭ 塩化マグネシウム １０ｍＭ （上記３種の組成成分は、混合して、全体で１０μＬとした。） ｄＮＴＰｓ（４種のＮＴＰ各２ｍＭの混合物） １０μＬ プライマーＣ１０およびＤ２ 各１００ｐモル／１００μＬ Ｔｔｈポリメラーゼ ２ｕ／１００μＬ （東洋紡製、サーモス・サーモフィラスHB8由来のＤＮＡポリメラーゼＩ） 大腸菌Ｓ−３０画分 ３０μＬ （使用菌株をサーモス・サーモフィラスHB8とし、かつ培養温度を６５℃とした こと以外は、実施例２と同じ方法で得たもの） ＬＭ混合液 ２２.５μＬ （実施例２記載のＬＭ混合液から酢酸マグネシウムを除去したもの） 滅菌水 全量を１００μＬとする量
【００９５】上記反応液を用いたこと以外は、実施例１
と同様にしてカプセルを製造した。
と同様にしてカプセルを製造した。
【００９６】２）ＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応） 作製したカプセルをトリシン−ＮａＯＨ緩衝液（ｐＨ
８.３）３０ｍＭに対して４℃で一晩透析した後、サー
マルサイクラーＰＣ７００（アステック製）において、
以下のプログラムでＰＣＲを行った。 ＜ＰＣＲプログラム＞ （９４℃、６０秒）：１サイクル （９４℃、３０秒）＋（６８℃、４分）：３５サイク
ル
８.３）３０ｍＭに対して４℃で一晩透析した後、サー
マルサイクラーＰＣ７００（アステック製）において、
以下のプログラムでＰＣＲを行った。 ＜ＰＣＲプログラム＞ （９４℃、６０秒）：１サイクル （９４℃、３０秒）＋（６８℃、４分）：３５サイク
ル
【００９７】ＰＣＲの終了後、カプセルをＬＭ混合液に
対して４℃で６時間透析した。続いて、６８℃でさらに
２時間反応させて、タンパク質合成を行った。
対して４℃で６時間透析した。続いて、６８℃でさらに
２時間反応させて、タンパク質合成を行った。
【００９８】３）反応物の抽出 反応後のカプセルを０．２２μｍのフィルターのついた
エッペンドルフチューブに入れ、６０００ｒｐｍで２０
分間遠心して内容液を回収した。回収された反応液を分
子量３００００以下ｃｕｔ限外濾過膜のついたエッペン
ドルフチューブを用いて１０倍以上に濃縮した。
エッペンドルフチューブに入れ、６０００ｒｐｍで２０
分間遠心して内容液を回収した。回収された反応液を分
子量３００００以下ｃｕｔ限外濾過膜のついたエッペン
ドルフチューブを用いて１０倍以上に濃縮した。
【００９９】４）アルカリフォスファターゼ活性の検出 ９６穴のマイクロアッセイプレートに濃縮液１０μＬと
１００００倍に希釈したアルカリフォスファターゼの発
光基質であるＣＳＰＤ ５０μＬを入れて混合し、アル
カリフォスファターゼ活性の検出した。コントロールと
して市販のアルカリフォスファターゼを希釈し、同様に
基質と混合してウェルに入れた。３７℃で１５分間加温
した後、プレートの下にＸ線フィルムを敷き、暗所で１
時間感光させた。その結果、濃縮した反応液１０μＬあ
たり、１０〜１００ｆモルのアルカリフォスファターゼ
が合成されていることを確認した。
１００００倍に希釈したアルカリフォスファターゼの発
光基質であるＣＳＰＤ ５０μＬを入れて混合し、アル
カリフォスファターゼ活性の検出した。コントロールと
して市販のアルカリフォスファターゼを希釈し、同様に
基質と混合してウェルに入れた。３７℃で１５分間加温
した後、プレートの下にＸ線フィルムを敷き、暗所で１
時間感光させた。その結果、濃縮した反応液１０μＬあ
たり、１０〜１００ｆモルのアルカリフォスファターゼ
が合成されていることを確認した。
【図１】 本発明によるシームレスカプセルを製造する
のに好適な製造装置のノズル部の一態様を示す模式的縦
断面図。
のに好適な製造装置のノズル部の一態様を示す模式的縦
断面図。
１…内ノズル（第１ノズル）、２…中間ノズル（第２ノ
ズル）、３…外ノズル（第３ノズル）、４…カプセル内
容物、５…水混和しにくい粘稠液体、６…シームレスカ
プセル用皮膜液、７…本発明のシームレスカプセル、８
…冷却液。
ズル）、３…外ノズル（第３ノズル）、４…カプセル内
容物、５…水混和しにくい粘稠液体、６…シームレスカ
プセル用皮膜液、７…本発明のシームレスカプセル、８
…冷却液。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 春原 秀基 大阪府大阪市中央区玉造１−１−30 森下 仁丹株式会社内 (72)発明者 釜口 良誠 大阪府大阪市中央区玉造１−１−30 森下 仁丹株式会社内 (72)発明者 波多野 由美 大阪府大阪市中央区玉造１−１−30 森下 仁丹株式会社内
Claims (6)
- 【請求項１】 多糖類またはタンパク質を皮膜主成分と
する直径０.０１〜１０.０ｍｍのシームレスカプセル内
に、水とは混和しにくい粘稠液体層を介して生体高分子
合成材料を封入した生体高分子を合成するシームレスカ
プセル。 - 【請求項２】 上記多糖類が、カードラン、アガロー
ス、またはそれらの混合物である請求項１記載の生体高
分子を合成するシームレスカプセル。 - 【請求項３】 生体高分子合成材料が、鋳型核酸、生体
高分子合成原料としてのプライマーおよび基質、並びに
ＤＮＡポリメラーゼを含有する請求項１記載の生体高分
子を合成するシームレスカプセル。 - 【請求項４】 生体高分子合成材料が、鋳型核酸、タン
パク質合成用低分子量成分、および無細胞タンパク質合
成系を含有する請求項１記載の生体高分子を合成するシ
ームレスカプセル。 - 【請求項５】 生体高分子合成材料が、鋳型核酸、生体
高分子合成原料としてのプライマーおよび基質、タンパ
ク質合成用低分子量成分、ＤＮＡポリメラーゼ、並びに
無細胞タンパク質合成系を含有する請求項１記載の生体
高分子を合成するシームレスカプセル。 - 【請求項６】 順次増大する半径を有して同心円上に配
置された第１ノズル、第２ノズル、および第３ノズルか
らそれぞれ生体高分子合成材料、水とは混和しにくい粘
稠液体および皮膜材料を、同時に冷却液体中に押し出す
ことを特徴とする請求項１記載の生体高分子を合成する
シームレスカプセルの製造方法。
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