JP2002530069A - 生物工学的組織構築物およびそれを生成および使用する方法 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 外因性マトリックス成分またはネットワーク支持体またはスカホード構成員の必要性なしに、培養細胞および内在的に産生される細胞外マトリックス成分を包含する培養組織構築物。本発明のある種の組織構築物は、多重細胞層または１つ以上の細胞型から構成される。本発明の組織構築物は、組織に類似する形態学的特性および機能を示し、そしてそれらの強度は、それらを容易に取扱わせる。本発明の好ましい培養組織構築物は、定義の培地で、すなわち、化学的に未定義の成分を添加することなく、製造される。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明の属する技術分野】

（発明の分野） 本発明は、組織工学の分野にある。本発明は、細胞外マトリックスを産生する
細胞を誘導する生体外での方法に向けられる。組織様特性を有するこの生きた細
胞外マトリックスは、試験または臨床目的のために使用できる。

【０００２】

【従来の技術及び発明が解決しようとする課題】

（発明の背景） 組織工学の分野は、生物工学的方法を、正常な、および病理学的哺乳類組織で
の構造的および機能的関係を理解するライフサイエンスの概念と結びつける。組
織工学の目標は、組織機能を保持、維持、または改善する生物学的置換の開発お
よび最終使用である。したがって、組織工学を通して、実験室で生物工学的組織
を設計および製造することが可能である。生物工学的組織としては、通常元来の
哺乳類またはヒト組織と関連する細胞、および合成または外因性マトリックスス
カホードを挙げることができる。新たな生物工学的組織は、宿主に移殖された場
合、機能性があり、そして宿主の体に恒久的に組込まれるか、または受容体宿主
患者から得られる細胞によって進行的に生物再生されるに違いない。支持体構成
員またはスカホードなしに等価の組織の作製で、新たな生物工学的組織を作成す
る上での科学的挑戦に至る。

【０００３】

【課題を解決するための手段】

（発明の要旨） 本発明は、外因性マトリックス成分またはネットワーク支持体またはスカホ
ード構成員の必要なしに、培養細胞および内因的に産生された細胞外マトリック
ス成分の生物工学的組織構築物に向けられる。したがって、本発明は、ヒト細胞
、および例えば、生物工学的組織構築物が、ヒトに使用するために設計される場
合、それらの細胞により産生されるヒト・マトリックス成分から全体的に有利に
作製できる。

【０００４】 本発明は、外因性マトリックス成分、ネットワーク支持体、またはスカホード
構成員のいずれかの添加なしに、細胞外マトリックス成分を産生する、線維芽細
胞のような培養物中の細胞を刺激することによって、組織構築物を産生する方法
にも向けられる。

【０００５】 本発明は、定義された培地システム中の細胞外マトリックス成分を産生する、
線維芽細胞のような培養物中の細胞の刺激によって、および／またはウシ血清ま
たは臓器抽出物のような、未定義または非ヒト由来の生物学的成分を使用するこ
となし、組織構築物を産生する方法にも向けられる。

【０００６】 さらに、この組織構築物は、元来の組織の細胞組成および組織構築物を模倣す
る培養組織構築物を産生する様々な細胞型の一連の種付けによって作成できる。

【０００７】 いっそうさらに、組織構築物は、スカホード支持体の必要、または外因性細胞
外マトリックス成分の添加なしに、培養細胞によって産生および自己組立される
。

【０００８】 組織構築物の強度特徴は、それが、医療または試験用途での任意の支持体また
は担体についての必要なしに形成および直接的に移殖される、培養装置から容易
にそして剥ぎ取り可能に除去されるべき、それについて取扱い可能になる。

【０００９】 本発明の組織構築物は、皮膚腫瘍または創傷のような組織または臓器欠陥を有
する患者に対する移植のような医療目的のために、または安全性試験または医薬
、化粧、および化学製品の確証のような生体外での組織試験または動物移植のた
めに有用である。 （本発明の詳細な説明） これまで、最近工業化された生きた組織構築物は、完全には細胞で組立てられ
ず、そして外因性マトリックス成分または構造または支持のための合成構成員の
添加または組込みのいずれか、または両方に依るに違いない。

【００１０】 ここに記述される生物工学的組織構築物は、それらの細胞が誘導される組織の
元来の特性の多くを示す。それにより生成された組織構築物は、患者に移植する
か、または生体外での試験のために使用しうる。

【００１１】 １つの好ましい具体例は、第一の細胞型が、細胞−マトリックス構築物を産生
する細胞外マトリックスを合成および分泌する能力のある場合に、第一の細胞型
および内因的に産生される細胞外マトリックスを包含する細胞−マトリックス構
築物である。

【００１２】 別の好ましい具体例は、第一の細胞型、および内因的に産生される細胞外マト
リックス、およびその上、または第一の細胞型によって形成される細胞−マトリ
ックス構築物内に沈着した第二の型の細胞の層を包含する二層構築物である。

【００１３】 さらに好ましい具体例は、培養皮膚構築物を形成する、真皮から由来するもの
のような線維芽細胞を含む細胞−マトリックス構築物である。

【００１４】 別のさらに好ましい具体例は、その上に表皮層を形成する、培養されるケラチ
ノサイトの層と共に、培養皮膚構築物を形成する、表皮から由来するもののよう
な線維芽細胞を含んで、培養二層皮膚構築物になる細胞−マトリックス構築物で
ある。本発明の培養皮膚構築物は、元来の皮膚の多くの物理的、形態学的および
生化学的特徴を発現する。

【００１５】 さらにいっそう好ましい具体例では、細胞−マトリックス構築物は、その培養
中に化学的に未定義の成分を利用しないヒト由来細胞を含む定義されたシステム
で形成される、ヒト皮膚構築物である皮膚の表皮層に類似する組織構築物である
。

【００１６】 最も好ましい具体例では、本発明の組織構築物は、化学的に未定義であるか、
または非ヒト生物学的成分または細胞でなく、ヒト由来細胞を含む化学的に定義
されるシステムで作製される。

【００１７】 本発明の１つの好ましい具体例は、少なくとも１つの型の細胞外マトリックス
産生細胞、および、さらに簡単には、マトリックスが、細胞を培養することによ
って、完全に細胞で合成され、そして組立てられる「マトリックス」と称される
、内因的に産生される細胞外マトリックス成分の構造的層を包含する。この層は
、ここで、細胞が、それらのマトリックス内およびそれらを通して、それら自身
を分泌し、含有するので、「細胞−マトリックス構築物」または「細胞−マトリ
ックス層」と称される。培養組織構築物は、外因性マトリックス成分を必要とし
せず、したがって、含まない、すなわち、マトリックス成分は、培養細胞によっ
て産生されずに、他の手段によって導入される。いっその好ましい具体例では、
ヒト皮膚の線維芽細胞によって産生される細胞−マトリックス構築物は、元来の
皮膚に類似するコラーゲンの優勢な濃度を示すことが示される。電子顕微鏡によ
って立証されるとおり、マトリックスは、生来のコラーゲンに類似する原線維お
よび原線維束の組織を包装することと同様に、４分の１差の６７ｎｍ結合パター
ンを示すコラーゲンを含む自然界で多孔性である。遅延還元ＳＤＳ−ＰＡＧＥは
、生来のヒト皮膚に見られる優勢なコラーゲン型であるこれらの構築物中のＩ型
およびＩＩＩ型コラーゲンの両方の存在を検出した。標準免疫組織化学（ＩＨＣ
）技術を用いて、皮膚の細胞−マトリックス構築物は、コラーゲン原線維に結合 されることが知られ、そして生体内で原線維の直径を調節すると思われているデ ルマタン硫酸プロテオグリカンである、デコリンに対して陽性に染色する。デコ リンは、ＴＥＭを用いて構築物中で可視化もされうる。産生した組織は、例えば 、修復中の間葉または組織で見られる細胞外マトリックス糖タンパク質であるテ ナスシンに対して陽性に染色もする。生体内で修復中の組織とより同様に、培養 基中で産生された組織は、マトリックスが形成されるときにＩ型対ＩＩＩ型コラ ーゲンのそれの比を増大することが示された。理論により結合されることを望ま ない一方で、細胞は、それらの間の開放空間に、主にＩＩＩ型コラーゲンおよび フィブロネクチンから構成される顆粒組織に類似のゆるいマトリックスで、すば やく充填し、そしてその後、このゆるいマトリックスを、主にＩ型コラーゲンか ら構成される周密マトリックスで再生すると思われる。産生された細胞−マトリ ックスは、ヒアルロン酸（ＨＡ）のようなグリコサアミノグリカン（ＧＡＧ）； フィブロネクチン；ビグリカンおよびベルシカンのようなデコリンに加えてプロ テオグリカン；およびジヒアルロン酸；ジコンドロイチン−Ｏ−硫酸；ジコンド ロイチン−４−硫酸；ジコンドロイチン−６−硫酸；ジコンドロイチン−４，６ −硫酸；ジコンドロイチン−４−硫酸−ＵＡ−２Ｓ；およびジコンドロイチン− ６−硫酸−ＵＡ−２Ｓのような硫酸グリコサアミノグリカンのプロファイルを含 むことが示された。これらの構造的および生化学的特性は、構築物が培養基中で 発生するとき、それら自身を示し、そして構築物がその最終形態に近づくときに 明らかに明白である。十分に形成された培養皮膚の細胞−マトリックス構築物で のこれらの成分の存在は、その構築物が、正常な真皮のものに近づく構造的およ び生化学的特性を示すことを示す。

【００１８】 前述のリストが、培養細胞−マトリックス構築物の生化学的および構造的特性
のリストであるときに、皮膚の線維芽細胞から形成され、他の型の線維芽細胞か
ら形成される培養細胞−マトリックス構築物が、これらの特性の多く、およびそ
れらが起源する組織型についての他の表現型を生じることが認識されるべきであ
る。ある種の場合には、線維芽細胞は、化学的露出または接触、物理的ストレス
のいずれかにより、またはトランスジェニック手段により非表現型成分を発現す
るように誘導されうる。本発明の別の好ましい具体例は、その上に沈着した細胞
の第二層を有する細胞−マトリックス層である。細胞の第二層を、細胞−マトリ
ックス層で培養して、生物工学的に二層化した組織構築物を形成する。さらに好
ましい具体例では、第二層の細胞は、上皮起源のものである。最も好ましい具体
例では、第二層は、第一の細胞−マトリックス層と一緒に、皮膚層を形成する皮
膚の線維芽細胞および内因性マトリックスから形成された細胞−マトリックス構
築物が、生きた皮膚構築物を包含する培養ヒト・ケラチノサイトを包含する。十
分に形成されたときに、表皮層は、基底層、超基底層、顆粒層および角質層を示
すケラチノ細胞の多層化され、層にされ、そして十分に分化された層である。皮
膚構築物は、透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）によって示されるときに、皮膚−表皮
接合部に存在する十分に発達した基底膜を有する。基底膜は、ＴＥＭによって可
視化されるときにＩＩＩ型コラーゲンから構成される原線維に足場をつけること
により印される、ヘミデスモソームの周囲で最も厚くみえる。足場原線維は、基 底膜から出ること、および皮膚層中のコラーゲン原線維を捕捉することを見るこ とができる。他の基底膜成分と同様に、これらの足場原線維は、ケラチノサイト によって分泌されることも知られている。ケラチノサイトが、それら自身での基 底膜成分を分泌する能力がある場合、認識可能な基底膜は、線維芽細胞の不在下 で形成しないことも知られている。本発明の皮膚構築物の免疫組織化学的染色は 、基底膜タンパク質であるラミニンが存在することも示された。

【００１９】 細胞−マトリックス構築物を形成するための本発明の好ましい方法では、第一
の細胞型である、細胞外マトリックス産生細胞型を、基質に蒔き、培養および誘
導して、それらの周囲に組織化細胞外マトリックスを合成および分泌して、細胞
−マトリックス構築物を形成する。本発明の別の好ましい方法では、細胞−マト
リックス構築物の表面に、第二の細胞型の細胞を蒔き、そして培養して、二層組
織構築物を形成する。より好ましい方法では、元来のヒト皮膚に類似の特性を示
す十分な厚みの皮膚構築物が、ケラチノサイトのようなヒト上皮細胞が、播種さ
れ、そして、十分に分化した層化表皮層を形成するのに十分な条件下で培養され
る皮膚層である、皮膚の細胞およびマトリックスの細胞−マトリックスを形成す
るマトリックス合成を誘導するのに十分な条件下で、ヒト皮膚の線維芽細胞のよ
うな線維芽細胞を培養することによって形成される。

【００２０】 したがって、本発明の組織構築物を得る１つの方法は； （ａ）外因性細胞外マトリックス成分または構造的支持体構成員の不在下で、
少なくとも１つの細胞外マトリックス産生細胞型を培養すること；および （ｂ）段階（ａ）の細胞を刺激して、細胞外マトリックス成分を合成、分泌お
よび組織化させ、それらの細胞により合成される細胞およびマトリックスから構
成される組織構築物を形成し、段階（ａ）および（ｂ）が、同時にまたは連続し
て行われるうることを包含する。

【００２１】 細胞−マトリックス構築物およびその上の第二の層を含む二層組織構築物を形
成するために、さらに、方法は、（ｃ）形成された組織−構築物の表面で第二の
型の細胞を培養して、二層組織構築物を産生する段階を包含する。

【００２２】 本発明に使用するための細胞外マトリックス産生細胞型は、細胞外マトリック
ス成分を産生および分泌し、そして細胞外マトリックス成分を組織化して、細胞
−マトリックス構築物を形成する能力のある任意の細胞型でありうる。１つ以上
の細胞外マトリックス産生細胞型を、培養して、細胞−マトリックス構築物を形
成しうる。異なる細胞型または組織起源の細胞を、混合物として一緒に培養して
、生来の組織で見られるものと類似の相補的成分および構造を生じうる。例えば
、細胞外マトリックス産生細胞型は、それと混合した他の細胞型を有して、第一
の細胞型によって正常に産生されない多量の細胞外マトリックスを産生しうる。
代替的には、細胞外マトリックス産生細胞型は、本発明の特定の皮膚構築物での
ようなマトリックス態様の細胞−マトリックス構築物の全般的形成に実質的に寄
与することなしに、組織中に特殊化された組織構造を形成する他の細胞型と混合
することもできる。

【００２３】 任意の細胞外マトリックス産生細胞型が、本発明によって使用されうる場合、
本発明に使用するための好ましい細胞型は、間葉から由来する。さらに好ましい
細胞型は、線維芽細胞、間質細胞、および他の支持接触性組織細胞であり、最も
好ましくは、ヒトの皮膚構築物の産生のためにヒト真皮で見られるヒト皮膚の線
維芽細胞である。線維芽細胞は、一般に、本質的にコラーゲンである、多量の細
胞外マトリックスタンパク質を産生する。線維芽細胞によって産生される数種の
型のコラーゲンがあるが、しかし、Ｉ型コラーゲンは、生体内で最も有効である
。ヒト線維芽細胞株は、制限されないが、新生男児包皮、真皮、腱、肺、臍帯、
軟骨、尿道、角膜基質、口腔粘膜、および腸を含めた多数の起源から誘導されう
る。ヒト細胞としては、線維芽細胞に限定されず、平滑筋細胞、軟骨細胞、およ
び間葉起源の他の接触性組織細胞が挙げられる。組織構築物の産生に使用される
マトリックス産生細胞の起源が、本発明の培養法を使用した後に類似または模倣
すべきものである組織型から由来することは、要求されないが、好ましい。例え
ば、皮膚構築物が産生される具体例では、好ましいマトリックス産生細胞は、線
維芽細胞、好ましくは皮膚起源のものである。別の好ましい具体例では、毛包の
皮膚乳頭からの顕微解剖によって単離される線維芽細胞は、マトリックス単独、
または他の線維芽細胞に結合して産生するのに使用されうる。角膜構築物が産生
される具体例では、マトリックス産生細胞は、角膜間質から由来する。細胞供与
体は、発達および年齢で変化しうる。細胞は、胚、新生児、または成人を含めた
より年齢の高い個体の供与組織から由来しうる。間葉幹細胞のような胚先祖細胞
は、本発明に使用でき、そして所望の組織に発達するまで分化を誘導しうる。

【００２４】 ヒト細胞が、本発明に使用するのに好ましいが、その方法に使用されるべき細
胞は、ヒト起源から得られる細胞に限定されない。他の哺乳類種から得られる細
胞は、限定されないが、ウマ、イヌ、ブタ、ウシ、およびヒツジ起源が挙げられ
る；またはマウスまたはラットのようなげっ歯類種が使用しうる。さらに、自発
的に、化学的に、またはウイルスで形質移入または組換え細胞または遺伝子操作
した細胞である細胞も、本発明に使用されうる。１つ以上の細胞型を組込む具体
例のものについては、２つまたはそれ以上の起源から得られる正常な細胞のキメ
ラ混合物；正常で遺伝的に修飾した、または形質移入した細胞の混合物；または
２つまたはそれ以上の種または組織起源の細胞の混合物が使用されうる。

【００２５】 組換えまたは遺伝子操作された細胞は、自然の細胞産物または治療薬を用いた
治療法のレベルを増大させる必要のある患者についての薬物送出移殖片として作
用する組織構築物を作製する細胞−マトリックス構築物の産生に使用しうる。細
胞は、連続量の時間、または患者に存在する症状により生物学的、化学的、また
は熱的に信号発生されるときに必要とされる場合、移殖片組換え細胞産物、成長
因子、ホルモン、ペプチドまたはタンパク質を介して患者に生成および送出しう
る。長期または短期のいずれかの遺伝子産物発現は、培養組織構築物の指示によ
って望みうる。長期発現は、培養組織構築物が、延長された期間、患者に治療用
製品を植付けて送出するときに望ましい。対照的に、短期発現は、培養組織構築
物が、培養組織構築物の細胞が正常なまたは正常に近い治癒を促進するか、また
は創傷部位の乱切を減少させることにある創傷を示す患者に移植される例で望ま
しい。いったん創傷が治ったら、培養組織構築物から得られる遺伝子産物は、も
はや必要とされないか、その部位ではもはや望ましくない。細胞は、ホルモン性
でなく、高いレベルで発現または細胞外マトリックス、そして改善された創傷治
癒にとって治療的に有利である生きた細胞を含ませた移殖片デバイスを、新生血
管形成を促進または指示するか、または瘢痕またはケロイド形成を最小限にさせ
るある種の方法で修飾されたタンパク質または異なる型の細胞外マトリックス成
分を発現するように遺伝子操作されうる。これらの手段は、一般に、当業界で知
られ、そしてＳａｍｂｒｏｏｋら、分子クローニング、実験室マニュアル、コー
ルド・スプリング・ハーバー・プレス、コールド・スプリング・ハーバー、ニュ
ーヨーク（１９８９年）に記述され、参照してここに組込まれる。上述型の細胞
の全ては、本発明に使用される場合、「マトリックス産生細胞」の定義の範囲内
に含まれる。

【００２６】 線維芽細胞により産生される優勢な主要な細胞外マトリックス成分は、原線維
コラーゲン、特にコラーゲンＩ型である。原線維コラーゲンは、細胞−マトリッ
クス構造での主要な成分である；しかし、本発明は、このタンパク質またはタン
パク質型のみから構成されるマトリックスに限定されない。例えば、他のコラー
ゲンは、コラーゲン型ＩＩ、ＩＩＩ、ＩＶ、Ｖ、ＶＩ、ＶＩＩ、ＶＩＩＩ、ＩＸ
、Ｘ、ＸＩ、ＸＩＩ、ＸＩＩＩ、ＸＩＶ、ＸＶ、ＸＶＩ、ＸＶＩＩ、ＸＶＩＩＩ 、ＸＩＸのようなコラーゲンファミリーから得られる原線維性および非原線維性 コラーゲンの両方は、適切な細胞型の使用によって産生されうる。同様に、最近 の方法を用いて産生および沈着されうる他のマトリックスタンパク質としては、 それに限定されないが、エラスチン；デコリンまたはビグリカンのようなプロテ オグリカン；またはテナスシンのような糖タンパク質；ビトロネクチン；フィブ ロネクチン；ラミニン、スロボスポリンＩ、およびヒアルロン酸（ＨＡ）のよう なグリコサアミノグリカン（ＧＡＧ）が挙げられる。

【００２７】 マトリックス産生細胞は、三次元組織様構造の形成に対処する培養皿、フラス
コ、または回転ボトルのような動物細胞または組織培養物に適切な容器中で培養
される。細胞が育成されうる適切な細胞成長表面は、細胞が、付着でき、そして
細胞−マトリックス構築物を形成するための足場手段を提供できる、任意の生物
学的に適合性のある材料でありうる。ガラス；ステンレス鋼；ポリカルボネート
、ポリスチレン、塩化ポリビニル、ポリビニリデン、ポリジメチルシロキサン、
フルオロポリマー、およびフッ化エチレンプロピレンを含めた重合体；および融
合シリカ、ポリシリコン、またはシリコン結晶を含めたシリコン基質のような材
料が、細胞成長表面として使用しうる。細胞成長表面材料は、化学的に治療また
は修飾されるか、静電気的に負荷されるか、またはポリリシンまたはペプチドの
ような生物学的製品で被覆されうる。ペプチド被覆の例は、ＲＧＤペプチドであ
る。

【００２８】 本発明の組織構築物が、固形細胞成長表面で育成されうる場合、発達組織構築
物への培地の二層接触を可能にするか、または培養のみからの接触に対処する膜
の頂部および底部表面の両方を連通する孔を有する細胞成長表面が、好ましい。
二層接触は、培地に、培地中に含まれる栄養に露出する最大限の表面領域につい
ての発達中の構築物の頂部および基底の両方を接触させる。培地は、形成培養組
織構築物の底部のみとも接触し、その結果、頂部表面は、培養皮膚構築物の発達
にあるときに、空気にさらされ得る。好ましい培養容器は、担体挿入物、培地を
含む培養容器中で懸濁される多孔性膜のような培養処理透過構成員を利用するも
のである。典型的には、膜は、蓋で覆われ得るペトリ皿または培養皿のような基
底内に挿入され、そして干渉する環状構成員またはフレームワークの一方の末端
に確保される。多孔性膜を有する担体挿入物を組込む培養容器が、当業界で知ら
れ、そして本発明を行うのに好ましく、そしてそのいくつかが、市販で入手可能
になった分野で、第５，７６６，９３７号、第５，４６６，６０２号、第５，３
６６，８９３号、第５，３５８，８７１号、第５，２１５，９２０号、第５，０
２６，６４９号、第４，８７１，６７４号、第４，６０８，３４２号を含めた多
くの米国特許に記述され、それらの開示は、ここに組込まれる。これらの型の培
養容器が使用される場合、組織構築物は、膜の一方の表面で産生され、好ましく
は上方に向かう表面である頂部が好ましく、そして培養物は、頂部および基底表
面の両方で細胞培地によって接触される。成長表面での孔は、膜を通した望まし
くない培養物に栄養を供給するための培養培地の継代に対処し、したがって、細
胞が、二層にまたは、基底側から唯一供給させる。好ましい孔サイズは、膜を通
した細胞の成長に対処しないだけ十分に小さく、さらに、毛管作用によるように
、細胞−マトリックス構築物の基底表面まで培養培地で含有される栄養の自由な
通路に対処するのみ十分大きなものである。好ましい孔サイズは、約３ミクロン
未満であるが、約０．１ミクロンから約３ミクロンの間、さらに好ましくは約０
．２ミクロンから約１ミクロンまでの間、そして最も好ましくは約０．４ミクロ
ンから約０．６ミクロンサイズ孔が使用される。ヒト皮膚の線維芽細胞の場合に
は、最も好ましい材料は、孔サイズが、約０．４から約０．６ミクロンの間であ
ることを示すポリカルボレートである。最大限の孔サイズは、細胞のサイズのみ
ならず、その形状を変化し、そして膜を通過する細胞の能力にも依存する。組織
様構築物が、表面に付着するが、基質を組込んだり、または包んだりせず、それ
により、最小限の力で剥ぎ取ることによるように、それから脱着可能であること
が重要である。形成された組織構築物のサイズおよび形状は、それが成長する容
器表面または膜のサイズによって検出される。基質は、丸であるか、尖っている
か、または丸められたコーナー角を有する形状、または不規則な形状でありうる
。基質は、平坦であるか、または創傷で干渉するか、生来の組織の物理的構造を
模倣する形状構築物を産生する型として輪郭を描くこともできる。成長基質の大
きな表面領域の原因を示すために、割合と多い細胞を、表面に蒔き、そして多量
の培地が、細胞を十分に包みそして栄養分を与えることが必要とされる。組織構
築物が、最終的に形成される場合、単独層細胞−マトリックス構築物または二層
構築物であろうとなかろうと、患者に移植する前に膜基質から剥ぎ取ることによ
って除去される。

【００２９】 本発明の培養組織構築物は、組織構築物の形成のための、網目構成員のような
合成または生体吸収性構成員に依存しない。網目構成員は、織物、編物またはフ
ェルト材料として組織化される。網目構成員が使用されるシステムでは、細胞は
、網目構成員上で培養され、そして網目の間隙の側面および範囲内で成長して、
培養組織構築物内に網目を包み、そして組込む。このような網目を組込む方法に
よって形成される最終構築物は、物理的支持体として、そしてバルクとしてそれ
に依る。合成網目構成員に依る培養組織構築物の例は、Ｎａｕｇｈｔｏｎらに対
する米国特許番号第５，５８０，７８１号、第５，４４３，９５０号、第５，２
６６，４８０号、第５，０３２，５０８号、第４，９６３，４８９号に見られる
。

【００３０】 細胞−マトリックス層の産生のためのシステムは、静電気的であるか、または
培養培地への灌流手段を使用しうる。静電気的システムでは、培養培地は、培地
が運動中である灌流システムと対照的になお、そして比較的運動性がない。培地
の灌流は、細胞の生存性に影響し、そしてマトリックス層の発達を増大する。灌
流手段としては、それに限定されないが、培地を攪拌するために、培養膜を含む
基質担体のすぐ下（下に）に、または隣接する培養皿中に磁性攪拌棒または動力
付き圧縮器を使用すること；培養皿またはチャンバー内に、またはを通して培地
を引き抜くこと；振蘯または回転プラットホーム上で培養皿を温和に曝気するこ
と；またはローラーボトル中で生じた場合、回転させることが挙げられる。他の
灌流手段は、本発明の方法に使用するために当業者によって決定されうる。

【００３１】 本発明に使用するのに適する培養培地形成は、培養されるべき細胞型および産
生されるべき組織構造に基づいて選択される。使用される培養培地、および細胞
成長を促進するのに必要とされる特定培養条件、マトリックス合成、および生存
性は、育成される細胞の型による。

【００３２】 本発明の生物工学的二層皮膚構築物の作製でのようなある種の例では、培地組
成は、様々な補足が様々な目的のための必要である場合、作製の各段階で変化す
る。好ましい方法では、細胞−マトリックス層は、定義された条件下で形成され
る、すなわち、化学的に定義された培地で培養される。別の好ましい方法では、
組織構築物は、両方の細胞型が、定義の培養培地で培養される、そこで沈着し、
培養された細胞の第二の層を具備する細胞−マトリックス層を包含する。代替的
に、組織構築物は、定義された培地条件下で作製された細胞−マトリックス層、
および未定義の培地条件下でそこに形成される第二の層を包含する。逆に、組織
構築物は、未定義の培地条件下で作製されうる細胞−マトリックス層、および定
義された培地条件下でその上に形成される第二の層を包含する。

【００３３】 化学的に定義された培養培地の使用が好ましく、すなわち、未定義の動物臓器
のない培地または、組織抽出物例えば、血清、下垂体抽出物、視床下部抽出物、
胎盤抽出物、または胚抽出物、および供給細胞によって分泌されるタンパク質お
よび因子である。最も好ましい具体例では、培地は、未定義の成分および非ヒト
起源から由来する定義された生物学的成分を含まない。未定義の成分の添加は、
好ましくないが、それらは、組織構築物を首尾よく作製するために、培養基中で
任意の点で開示方法によって使用されうる。本発明は、非ヒト動物源から由来す
る化学的に定義した成分を用いてスクリーニングしたヒト細胞を利用することを
行うときに、結果物である組織構築物は、定義されたヒト組織構築物である。合
成官能当量を添加して、最も好ましい作製方法に使用するために化学的に定義さ
れた定義の全範囲内の化学的に定義された培地を補足しうる。一般に、細胞培養
の当業者は、適切な自然のヒト、ヒト組換え体、または過度の調査または実験な
しに、本発明の培養培地を補足する一般に公知の動物成分に対する合成等価物を
決定できる。診療所でこのような構築物を使用する上での利点は、偶発的動物ま
たは交雑種ウイルス混入および感染の関係が減少されることである。試験のシナ
リオで、化学的に定義された構築物の利点は、試験されるときに、未定義の成分
の存在により、混乱されるべき結果の機会がないことである。

【００３４】 培養培地は、通常さらに、他の成分で補足された栄養塩基から構成される。習
熟者は、本発明の組織構築物を首尾よく産生することについて理にかなった見込
みを動物細胞培養の分野で適切な栄養塩基を決定できる。多くの市販で入手可能
な栄養源は、本発明の実施の上で有用である。これらとしては、ダルベッコの修
飾イーグル培地（ＤＭＥＭ）；最小必須培地（ＭＥＭ）；Ｍ１９９；ＲＰＭＩ１
６４０；イスコフの修飾ダルベッコ培地（ＥＤＭＥＭ）のような無機塩、エネル
ギー源、アミノ酸、およびＢ−ビタミンを供給する市販で入手可能な栄養源が挙
げられる。最小必須培地（ＭＥＭ）およびＭ１９９は、リン脂質前駆体および非
必須アミノ酸での追加の補足を必要とする。追加のアミノ酸、核酸、酵素コファ
クター、リン脂質前駆体、および無機塩を供給する市販で入手可能なビタミン富
化混合物としては、ハムのＦ−１２、ハムのＦ−１０、ＮＣＴＣ１０９、および
ＮＣＴＣ１３５が挙げられる。濃度を変化させる上であろうと、全ての基本培地
は、他の基本培地成分と一緒に、グルコース、アミノ酸、ビタミンおよび無機イ
オンの境内で細胞についての基礎的栄養源を提供する。本発明の最も好ましい基
本培地は、カルシウム不含または低カルシウムのダルベッコの修飾イーグル培地
（ＤＭＥＭ）のいずれかの栄養塩基、または代替的に、それぞれ３対１の比から
１対３の比までの間のＤＭＥＭおよびハムのＦ−１２を包含する。

【００３５】 基本培地は、アミノ酸、成長因子およびホルモンのような成分で補足される。
本発明の細胞の培養のための定義培養培地は、Ｐａｒｅｎｔｅａｕに対する米国
特許番号第５，７１２，１６３号、および国際ＰＣＴ公報番号ＷＯ９５／３１４
７３号に記述され、それらの開示は、参照してここに組込まれる。他の培地は、
ＨａｍおよびＭｃＫｅｅｈａｎ、Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ
、５８巻：４４−９３頁（１９７９年）で開示されるもののように当業界で公知
であるか、または他の適切な化学的に定義された培地については、Ｂｏｔｔｅｎ
ｓｔｅｉｎらで、Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ、５８巻：９４
−１０９頁（１９７９年）に開示される。好ましい具体例では、基本培地は、動
物細胞培養で習熟者に知られている以下の成分で補足される。インシュリン、ト
ランスフェリン、トリヨードチロニン（Ｔ３）、および補足についての濃度およ
び置換が、習熟者によって決定されうる、いずれかまたは両方のエタノールアミ
ンおよびｏ−ホスホリル−エタノールアミン。

【００３６】 インシュリンは、多重継代より長期間利点を供するグルコースおよびアミノ酸
の摂取を促進するポリペプチドホルモンである。インシュリンまたはインシュリ
ン様成長因子（ＩＧＦ）の補足は、グルコースおよびアミノ酸を取込む細胞の能
力の最終的枯渇、および細胞表現型の可能性のある分解がある場合に長期培養に
必要である。インシュリンは、動物、例えばウシ、ヒト源または、ヒト組換えイ
ンシュリンのような組換え手段によって誘導されうる。したがって、ヒト・イン
シュリンは、非ヒト生物学的源から由来しない化学的に定義された成分の資格が
ある。インシュリン補足は、一連の培養に適切であり、そして広範な濃度で培地
に供給される。好ましい濃度範囲は、約０．１μｇ／ｍｌから約５００μｇ／ｍ
ｌまでの間、さらに好ましくは約５μｇ／ｍｌから約４００μｇ／ｍｌ、そして
最も好ましくは約３７５μｇ／ｍｌである。ＩＧＦ−１またはＩＧＦ−２のよう
なインシュリン様成長因子の補足のための濃度は、培養のために選択された細胞
について当業者によって容易に決定されうる。

【００３７】 トランスフェリンは、鉄輸送調節のための培地内にある。鉄は、血清に見られ
る必須の痕跡要素である。鉄は、その遊離形態で細胞に毒性でありうるので、血
清中では、好ましくは約０．０５から約５０μｇ／ｍｌの間、さらに好ましくは
約５μｇ／ｍｌの濃度範囲でトランスフェリンに結合した細胞に供給される。

【００３８】 トリヨードチロニン（Ｔ３）は、基本的成分であり、そして細胞代謝の速度を
維持する培地中に含まれるチロイドホルモンの活性形態である。トリヨードチロ
ニンは、約０から約４００ｐＭの間の、さらに好ましくは約２から約２００ｐＭ
の間の濃度範囲で、そして最も好ましくは約２０ｐＭで培地に補足される。

【００３９】 リン脂質であるエタノールアミンおよびｏ−ホスホリル−エタノールアミンの
いずれかまたは両方を、その機能が、イノシトール経路および脂肪酸代謝での重
要な前駆体であるものに添加する。血清に正常に見られる脂質の補足は、血清不
含培地で必要である。エタノールアミンおよびｏ−ホスホリル−エタノールアミ
ンは、約１０−４から約１０−２Ｍまでの間の濃度範囲で、さらに好ましくは約
１×１０−４Ｍで培地に供される。

【００４０】 培養期間中に、基本培地に、合成または分化を誘導するか、またはヒドロコル
チゾン、セレニウムおよびＬ−グルタミンのような細胞成長を改善する他の成分
をさらに補足される。

【００４１】 ヒドロコルチゾンは、ケラチノサイト表現型を促進する、したがって、被膜お
よびケラチノサイトトランスグルタミナーゼ含有量のような分化した特徴を増強
するケラチノサイト培養で見られた（Ｒｕｂｉｎら、Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｐｈｙｓｉ
ｏｌ．、１３８巻：２０８−２１４頁（１９８６年））。したがって、ヒドロコ
ルチゾンは、ケラチノサイトシート状移殖片または皮膚構築物の形成でのような
これらの特徴が、有益である例で、望ましい添加剤である。ヒドロコルチゾンは
、約０．０１μｇ／ｍｌから約４．０μｇ／ｍｌの濃度範囲で、最も好ましくは
約０．４μｇ／ｍｌから１６μｇ／ｍｌの間で提供されうる。

【００４２】 セレニウムを、血清不含培地に添加して、血清によって正常に供給されるセレ
ニウムの痕跡要素を再補足する。セレニウムは、約１０^-9から約１０^-7Ｍまでの
濃度範囲で、最も好ましくは約５．３×１０^-8Ｍで培地に供されうる。

【００４３】 アミノ酸Ｌ−グルタミンは、ある種の栄養基本に存在し、そして存在しないか
、または不十分な量存在する場合に添加されうる。Ｌ−グルタミンは、グルタＭ
ＡＸ−Ｉ^TM（ジブコ・ビーアールエル、ニューヨーク州グランドアイランド）の
商標の下販売されるもののような安定な形態で供給もされる。グルタＭＡＸ−Ｉ ^TM は、Ｌ−アラニル−Ｌ−グルタミンの安定なジペプチド形態であり、そしてＬ
−グルタミンと相互交換的に使用でき、そしてＬ−グルタミンに対する置換基と
して当モル濃度で供給される。ジペプチドは、保存での時間を超えて、そして培
地中のＬ−グルタミンの有効な濃度での不確かさに至りうるインキュベーション
期間じゅう分解からのＬ−グルタミンに対する安定性を提供する。典型的には、
基本培地に、好ましくは約１ｍＭから約６ｍＭの間、さらに好ましくは約２ｍＭ
から約５ｍＭまでの間、そして最も好ましくは４ｍＭのＬ−グルタミンまたはグ
ルタＭＡＸ−Ｉ^TMを補足する。

【００４４】 表皮成長因子（ＥＧＦ）のような成長因子は、細胞規模拡大および播種を通し
て培養物の確立の助けになる培地にも添加されうる。生来の形態でのＥＧＦまた
は組換え形態が使用されうる。ヒト形態、生来の、または組換え体のＥＧＦは、
非ヒト生物学的成分を含まない皮膚等価物を作成するときに、培地で使用するこ
とが好ましい。ＥＧＦは、任意の成分であり、そして約１から約１５ｎｇ／ｍＬ
の間、さらに好ましくは約５から１０ｎｇ／ｍＬの間の濃度で供される。

【００４５】 上に記述される培地は、一般に、下に規定されるとおり製造される。しかし、
本発明の成分が、それらの物理的特性に匹敵する従来の方法論を用いて作製およ
び組立てられうると解釈されるべきである。入手可能性または経済性の目的で、
特定の成分を、適切な類似体または機能的に等価な作用剤に置換し、そして類似
の結果を達することが当業者によく知られている。自然に発生する成長因子は、
本発明の作業に使用される場合に、類似の質および結果を示す組換えまたは合成
成長因子に置換されうる。

【００４６】 本発明による培地は、無菌である。無菌成分は、無菌のものを購入するか、ま
たは製造後の濾過のような従来の手段によって無菌にさせる。適切な防腐手段は
、以下の実施例を通して使用された。ＤＭＥＭおよびＦ−１２を、最初に合せ、
そしてその後、個々の成分を添加して培地を完成させる。全ての成分の保存溶液
は、４℃で保存されうる栄養源を除いて、−２０℃で保存できる。全ての保存溶
液は、上に列記される５００×最終濃度で作製される。インシュリン、トランス
フェリンおよびトリヨードチロニン（全てシグマから得た）の保存溶液は、以下
のとおり作製される：トリホードチロニンは、２：１の比で１Ｎ塩酸（ＨＣｌ）
中の絶対エタノールに最初に溶解される。インシュリンは、希釈ＨＣｌ（およそ
０．１Ｎ）で溶解され、そしてトランスフェリンは、水に溶解される。その後、
３つは、水で５００×濃度まで混合および希釈される。エタノールアミンおよび
ｏ−ホスホリル−エタノールアミンは、水で５００×濃度まで溶解され、そして
濾過して無菌化する。プロゲステロンを、絶対エタノールに溶解し、そして水で
希釈する。ヒドロコルチゾンを、絶対エタノールに溶解し、そしてリン酸緩衝生
理食塩水（ＰＢＳ）で希釈する。セレニウムを、水で５００×濃度まで溶解し、
そして濾過して無菌化する。ＥＧＦは、無菌を購入し、そしてＰＢＳに溶解させ
る。アデニンは、溶解するのが困難であるが、当業者に知られる任意の数の方法
によって溶解されうる。血清アルブミンは、それらを溶液中で安定化するために
、ある種の成分に添加でき、そして現在、ヒトまたは動物源のいずれから誘導さ
れる。例えば、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）またはウシ血清アルブミン（ＢＳ
Ａ）を、長期保存のために、添加して、プロゲステロンおよびＥＧＦ保存溶液の
活性を維持しうる。培地は、作製直後に使用するか、または４℃で保存されるか
のいずれかでありうる。保存の場合、ＥＧＦは、使用の時まで添加されるべきで
ない。

【００４７】 マトリックス産生細胞の培養により細胞−マトリックス層を形成するために、
培地に、細胞によるマトリックス合成および沈着を促進する追加の剤を補足する
。これらの補足剤は、細胞適合性があり、高度の純度に定義され、そして混入を
含まない。細胞−マトリックス層を生成するのに使用される培地は、「マトリッ
クス産生培地」と称される。

【００４８】 マトリックス産生培地を作製するために、基本培地に、アスコルビン酸ナトリ
ウム、アスコルビン酸のようなアスコルベート誘導体、またはＬ−アスコルビン
酸ホスフェートマグネシウム塩ｎ−ハイドレートのようなそのいっそう化学的に
安定な誘導体の内の１つを補足する。アスコルベートを添加して、沈着コラーゲ
ン分子に対する可溶性前駆体である、プロリンの水酸化およびプロコラーゲンの
分泌を促進する。アスコルベートは、Ｉ型およびＩＩＩ型コラーゲン合成のアッ
プレギュレーターと同様に、他の酵素後期翻訳過程のための重要なコファクター
であることも示された。

【００４９】 理論によって結合されることを望まない一方で、タンパク質合成に関与したア
ミノ酸を有する培地を補足することで、細胞にアミノ酸それら自身を生成させる
必要のないことにより、細胞エネルギーを保存する。プロリンおよびグリシンの
添加は、プロリンの水酸化形態、ヒドロキシプロリンと同様に、それらが、コラ
ーゲンの構造を作る基本的アミノ酸である場合好ましい。

【００５０】 必要とされない場合、マトリックス産生培地に、都合により、中性高分子を補
足する。本発明の細胞−マトリックス構築物は、中性高分子なしに生成され得る
が、しかし、理論に結び付けられることを望まないで、マトリックス産生培地で
のその存在は、コラーゲン過程およびサンプルの間にいっそう一定な沈着であり
うる。１つの好ましい中性高分子は、マトリックス沈着コラーゲンに対して、培
養細胞により産生される可溶性先駆体プロコラーゲンの生体外での過程を促進す
ることが示されたポリエチレングリコール（ＰＥＧ）である。約１０００から約
４０００ＭＷ（分子量）の間、さらに好ましくは約３４００から約３７００ＭＷ
の間の範囲内の組織培養グレードのＰＥＧは、本発明の培地に好ましい。好まし
いＰＥＧ濃度は、約５％ｗ／ｖまたは未満の濃度で、好ましくは約０．０１％ｗ
／ｖから約０．５％ｗ／ｖまで、さらに好ましくは約０．０２５％ｗ／ｖから約
０．２％ｗ／ｖまでの間、最も好ましくは約０．０５％ｗ／ｖでありうる方法で
使用するためのものである。デキストランのような、好ましくはデキストランＴ
−４０、またはポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）、好ましくは３０，０００−４
０，０００ＭＷの範囲内の他の培養グレードの中性高分子も、約５％ｗ／ｖまた
は未満の濃度で、好ましくは約０．０１％ｗ／ｖから約０．５％ｗ／ｖまで、さ
らに好ましくは約０．０２５％ｗ／ｖから約０．２％ｗ／ｖまでの間、最も好ま
しくは約０．０５％ｗ／ｖで使用することもできる。他の細胞培養グレードおよ
びコラーゲン過程および沈着を増強する細胞適合性剤は、哺乳類細胞培養の技術
で習熟した者によって確定されうる。

【００５１】 細胞産生細胞が、融合され、そして培養培地に、マトリックス合成、分泌、ま
たは組織化で支援する成分を補足する場合、細胞は、それらの細胞によって合成
された細胞およびマトリックスから構成される組織構築物を形成するのを刺激す
るようである。

【００５２】 したがって、好ましいマトリックス産生培地処方としては、ダルベッコの修飾
イーグル培地（ＤＭＥＭ）（高グルコース処方、Ｌ−グルタミンなし）および４
ｍＭのＬ−グルタミンまたは等価物、５ｎｇ／ｍｌ上皮成長因子、０．４μｇ／
ｍｌヒドロコルチゾン、１×１０^-4Ｍのｏ−ホスホリル−エタノールアミン、５
μｇ／ｍｌインシュリン、５μｇ／ｍｌトランスレリン、２０ｐＭトリヨードチ
ロニン、６．７８ｎｇ／ｍｌセレニウム、５０ｎｇ／ｍｌのＬ−アスコルビン酸
、０．２μｇ／ｍｌのＬ−プロリン、および０．１μｇ／グリシンで補足された
ハムＦ−１２培地の基本的３：１混合物を包含する。産生培地のために、他の薬
理学的剤を、培養物に添加して、分泌される細胞外マトリックスの特性、量、ま
たは型を変化させうる。これらの剤としては、ポリペプチド成長因子、転写因子
、またはコラーゲン転写を上向きに調節する無機塩が挙げられる。ポリペプチド
成長因子の例としては、形質転換成長因子β１（ＴＧＦ−β１）および組織−プ
ラスミノーゲンアクチベーター（ＴＰＡ）が挙げられ、その両方は、コラーゲン
合成を上向きに調節することが知られている。Ｒａｇｈｏｗら、Ｊｏｕｒｎａｌ
ｏｆ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ、７９巻：１２８５−
１２８８頁（１９８７年）；Ｐａｒｄｅｓら、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｎｖｅ
ｓｔｉｇａｔｉｖｅ Ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｙ、１００巻：５４９頁（１９９３
年）。コラーゲン産生を刺激する無機塩の例は、セリウムである。Ｓｈｉｖａｋ
ｕｍａｒら、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ａｎｄ Ｃｅｌｌｕ
ｌａｒ Ｃａｒｄｉｏｌｏｇｙ、２４巻：７７５−７８０頁（１９９２年）。

【００５３】 培養は、インキュベーターで維持されて、細胞の培養について制御温度、湿度
、および気体混合物の十分な環境条件を確保する。好ましい条件は、約５−１０
±１％ＣＯ２の間の雰囲気および約８０−９０％の間の相対湿度（Ｒｈ）で、約
３４℃から約３８℃までの間、さらに好ましくは３７±１℃である。

【００５４】 好ましい具体例では、細胞−マトリックス構築物は、皮膚線維芽細胞およびそ
れらの分泌マトリックスから形成される皮膚構築物である。好ましくは、ヒト皮
膚線維芽細胞が使用され、真皮から得られるか、またはいっそう好ましくは樹立
細胞保存液またはウイルスおよび細菌混入に対してスクリーニングされ、そして
純度について試験されたバンクから連続して継代されるか、または二次培養され
るものから得られる一次細胞として誘導される。細胞を、育成培地中で十分な条
件下で培養して、それらを、細胞−マトリックス構築物を形成する細胞を培養基
質に播くのに適切な数まで増殖させる。代替的には、凍結細胞保存液から得られ
る細胞を、培養基質に直接播きうる。

【００５５】 いったん十分な細胞数が得られたら、細胞を回収し、適切な培養表面に蒔き、
そして適切な成長条件下で培養して、細胞の融合シートを形成する。好ましい具
体例では、細胞を、孔を通して、そして上に直接培養物の下から培地を接触させ
るために隠されている多孔性膜に蒔く。好ましくは、細胞を、基本または育成培
地のいずれかに懸濁させ、そして細胞培養表面に、約１×１０⁵細胞／ｃｍ²から
約６．６×１０⁵細胞／ｃｍ²までの間、さらに好ましくは約３×１０⁵細胞／ｃ
ｍ²から約６．６×１０⁵細胞／ｃｍ²までの間、そして最も好ましくは約６．６
×１０⁵細胞／ｃｍ²（表面の平方センチメートル当たりの細胞）の密度で蒔く。
培養物を、育成培地で培養して、培養物を樹立し、そしてそれらが、培地を、細
胞外マトリックスの合成および分泌を上昇調節するために、マトリックス産生培
地に交換することによって、化学的に誘導される時に、約８０％から１００％融
合の間に培養する。選択的方法では、細胞を、産生培地に直接蒔いて、基本培地
から産生培地に交換する必要性を排除するが、しかし、それは、高い種付け密度
を必要とする方法である。

【００５６】 培養の間じゅう、線維芽細胞は、分泌されたマトリックス分子を組織化して、
三次元組織様構造を形成するが、形成する細胞−マトリックス構築物に、培養基
質からそれ自身を接触および剥ぎ取りさせる明らかな収縮力を示さない。培地交
換は、新たなマトリックス産生培地で２から３日毎に行われ、やがて、分泌マト
リックスは、厚みおよび組織化において増大する。細胞−マトリックス構築物を
作製するのに必要な時間は、当初の播種濃度の能力、細胞型、セルラインの年齢
、およびマトリックスを合成および分泌するセルラインの能力に依存する。十分
に形成された場合、本発明の構築物は、細胞によって産生および組織化される線
維性マトリックスにより塊状厚みを示す；それらは、細胞が、互いにゆるく粘着
性でありうる場合、通常に融合であったり、または過度に融合する細胞培養であ
ったりしない。線維性品質は、それらが、医療設定での日常の取扱いで亀裂また
はクラッキングのような物理的損傷に抵抗するので、通常の培養と違って、構築
物に粘着性組織様特性を付与する。培養皮膚構築物の作製で、細胞は、細胞培養
表面上でそれら自身の周囲に、膜の表面を越えて、好ましくは少なくとも厚み約
３０ミクロンまたはそれ以上、さらに好ましくは厚み約６０から約１２０ミクロ
ンの間の組織化マトリックスを形成する；しかし、厚みは、１２０ミクロンの過
剰で得られ、そしてこのような厚み増大が必要とされる試験または医療用途に使
用するのに適している。

【００５７】 いっそう好ましい方法で、上皮細胞層を、１つの表面に、好ましくは細胞−マ
トリックス構築物の上向きに面する表面である頂部に塗布される。細胞−マトリ
ックス構築物に、上皮細胞を、その上に蒔き、そして培養して、多層組織構築物
を形成しうる。最も好ましい方法では、皮膚から由来するケラチノサイトは、そ
の細胞構築物上で育成して、皮膚構築物を形成する。他の好ましい具体例では、
角膜ケラチノサイトとも称される角膜上皮細胞を、細胞−マトリックス構築物上
に蒔いて、角膜構築物を形成しうる。口腔粘膜から得られる上皮細胞を、細胞−
マトリックス構築物上で育成して、口腔粘膜の構築物を形成しうる。食道から得
られる上皮細胞を、細胞−マトリックス構築物上に蒔いて、食道組織の構築物を
形成しうる。尿生殖器管から得られる尿管上皮細胞を、細胞−マトリックス構築
物上で育成して、尿管上皮の構築物を形成しうる。上皮由来の他の細胞を選択し
て、それらの細胞が由来する組織の構築物を形成しうる。

【００５８】 表皮細胞を皮膚基質に供給する方法、および分化および角質化の誘導を含めた
それらを培養して、分化したケラチノサイト層を形成する方法は、当業界に知ら
れており、そしてＰａｒｅｎｔｅａｕらに対する米国特許番号第５，７１２，１
６３号に、そしてＫｅｍｐらに対する米国特許番号第５，５３６，６５６号に記
述され、その内容は、参照してここに組込まれる。細胞−マトリックス構築物の
表皮化生を行うために、ケラチノサイトを、細胞−マトリックス構築物に蒔き、
そしてその層が、厚み約１から３個の細胞層であるまで、その上で培養する。そ
の後、ケラチノサイトを、分化に誘導して、多層真皮を形成し、そしてその後、
角質化を誘導して、角質層を形成する。

【００５９】 分化表皮層を形成する方法で、二次培養ケラチノサイトを、細胞保存液から取
り、そしてそれらの細胞数を拡大する。必要数の細胞が得られるときに、それら
は、培養基質から放出され、懸濁され、計数され、希釈され、そしてその後、細
胞−マトリックス構築物の頂部表面に、約４．５×１０³細胞／ｃｍ²から約５．
０×１０⁵細胞／ｃｍ²までの間、さらに好ましくは約１．０×１０⁴細胞／ｃｍ² から約１．０×１０⁵細胞／ｃｍ²までの間、そして最も好ましくは約４．５×１
０⁴細胞／ｃｍ²の密度で、蒔かれる。その後、構築物を、約６０から約９０分の
間、３７±１℃で、１０％ＣＯ２でインキュベートして、ケラチノサイトを付着
させる。インキュベーション後、構築物を、表皮化生培地で浸水させる。培養物
での十分な長さの時間の後、ケラチノサイト増殖し、そして拡大して、細胞−マ
トリックス構築物を越えて融合単層を形成する。いったん融合されると、細胞培
地処方を、分化培地に交換して、細胞分化を誘導する。多層上皮が形成されたと
きに、その後、角質化培地を使用し、そして培養物に空気−液体干渉にかける。
ケラチノサイトの分化および角質化について、細胞を、乾燥または低湿度空気−
液体干渉に曝す。乾燥または低湿度干渉は、皮膚の低湿度レベルを複写する試み
として特徴づけうる。やがて、ケラチノサイトは、これらの条件に曝された場合
に、生来の皮膚で見られるほとんどまたは全ての角質および他の特徴を表す。

【００６０】 上に記述されるとおり、細胞−マトリックス構築物の産生のためのシステムは
、角膜の構築物の形成に使用しうる。角膜の上皮細胞は、様々な哺乳類源から由
来しうる。好ましい上皮細胞は、ウサギまたはヒトの角膜上皮細胞（角膜のケラ
チノサイト）であるが、しかし任意の哺乳類角膜ケラチノサイトが使用されうる
。眼の強膜または上皮から由来するもののような他の上皮ケラリノサイトは、置
換されうるが、しかし角膜のケラチノサイトが好ましい。角膜の構築物を形成す
る方法では、バイオセンサー位置を、培養挿入物（細胞−マトリックス構築物を
含む）およびその周囲から除去した。正常なウサギの角膜の上皮細胞を、継代培
養を介して拡張され、トリプシン分解して、それらを培養基質から除去し、培養
培地に懸濁し、そして約７．２×１０⁴細胞／ｃｍ²から約１．４×１０⁵細胞／
ｃｍ²までの間の密度で、膜の頂部に蒔種する。その後、構築物を、３７±１℃
で、約４時間、１０％ＣＯ２で、培地なしにインキュベートして、上皮細胞を付
着させる。インキュベーション後、構築物を、角膜の維持培地（CMM）（Ｊｏｈ
ｎｓｏｎら、１９９２年）に継代培養する。細胞−マトリックス構築物が、上皮
細胞で覆われるまで、上皮細胞を培養する。上皮被覆の完全性は、硫酸ニルブル
ーの溶液（リン酸緩衝生理食塩水中で１：１０，０００）で培養物を染色するこ
とによる例示として、多様な方法によって確証されうる。およそ７日後、いった
ん細胞−マトリックス構築物が覆われると、構築物を、無菌で、ちょうど構築物
の表面までの液体レベルに達するのに十分な角膜維持培地（ＣＭＭ）を有する新
たな培養トレイに移し、上皮層の浸水なしに湿潤干渉を維持する。構築物を、３
７±１℃、０％ＣＯ２で、６０％湿度より大きくて、ＣＭＭを用いて、必要な場
合、典型的には週当たり３回、培地交換させながら、インキュベートする。

【００６１】 角膜構築物の産生に必要な場合、上皮細胞層の角質化なしに分化については、
上皮細胞表面を、湿潤な空気−液体干渉に曝す。湿潤な空気−液体干渉を提供す
る方法は、Ｐａｒｅｎｔｅａｕに対する米国特許番号第５，３７４，５１５号に
記述されている。ここで使用される場合、語句「湿潤な干渉」は、調節され、そ
の結果構築物の表面が、高湿度であって、乾燥または浸水でない湿潤である培養
環境を意味することが意図される。培養環境での湿気および湿度の正確なレベル
は、重要でないが、角質化細胞の形成を避けるのに十分に湿潤でそして湿度であ
るべきである。湿潤な干渉は、ヒトの眼の類似の湿気レベルを複写する試みとし
て特徴づけることができる。

【００６２】 代替の好ましい具体例では、第二のマトリックス産生細胞の種付けが、第一の
形成細胞−マトリックス構築物で行われて、厚みのある細胞−マトリックス構築
物または二層細胞−マトリックス構築物を得ることができる。第二の種付けは、
望ましい結果によって、同じ細胞型または染色で、または異なる細胞型または染
色で行われる。第一層の産生に使用された手段およびマトリックス産生培地を用
いて、同じ条件下で、第二の種付けを行う。異なる細胞型で第二の種付けを行う
上での１つの結果は、構築物が、患者に移植されるときに、創傷治癒に影響を及
ぼす異なるマトリックス成分プロファイルまたはマトリックスパッケージング密
度で形成されるマトリックスを有することである。第一の細胞種付けは、真皮の
網状層、いっそう周密に包装されたＩ型コラーゲンの層、および構成成分の細胞
外マトリックス成分に類似のマトリックスを生じる。第二の細胞種付けは、ゆる
いコラーゲン原線維および細胞外マトリックスによって特徴づけられる真皮の平
行層に類似のマトリックスを生じる。第二の細胞型での別の結果は、改善された
試験片摂取または試験片介入または瘢痕形成の最小化または防止のような創傷治
癒に影響する治療用物質生じうる。

【００６３】 別の好ましい具体例では、使用される少なくとも１つの細胞型が、細胞外マト
リックスを合成する能力がある場合、２つまたはそれ以上の細胞型の混合細胞集
団は、細胞−マトリックス構築物の形成の間じゅう一緒に培養されうる。第二の
細胞型は、他の組織機能を行うか、または組織構築物の特定の構造的特性を発生
するのに必要とされるものでありうる。例えば、皮膚構築物の産生では、付属器
から得られる皮膚の乳頭細胞または上皮細胞を、マトリックス産生細胞で培養し
て、上皮付属器またはそれらの成分の形成を可能にしうる。汗腺または皮脂腺構
造または成分または毛包構造または成分のような上皮付属器は、マトリックス産
生細胞と一緒に培養したときに、形成しうる。上皮細胞は、腺の付属器構造から
由来でき、そして毛髪は、顕微解剖によるように、深部真皮に配置され、そして
外分泌細胞、筋上皮細胞、腺の分泌細胞、毛包幹細胞が挙げられる。メラノサイ
ト、ランゲルハンス細胞、およびメルケル細胞のような皮膚を構築する皮膚で見
られる他の細胞型も、加えられうる。同様に、血管内皮細胞を、同時培養して、
新たな脈管構造形成についての痕跡成分を生じうる。脂肪細胞を、マトリックス
産生細胞と培養して、再構築手術のために使用される構築物を形成しうる。この
第二の細胞型の送出の代替的態様として、細胞を、これらの構造の局在発生につ
いて、形成または完全に形成された細胞−組織マトリックス上で、または内にス
ポットとして、または細胞の任意の数のスポットの配列として局所に蒔種しうる
。細胞−マトリックス構築物内に細胞を蒔くために、細胞−マトリックス内に、
成長する細胞のために、細胞を、頂部と基底の表面の間に注入して、特定化構造
を形成し、それらの特定機能を作用させうる。

【００６４】 三層組織構築物を生じるために、マトリックス産生細胞型または非マトリック
ス産生細胞型を含む第一の種付けを、細胞−マトリックス構築物または細胞層を
生じるのに十分な時間、培養基質に蒔く。いったん第一の細胞−マトリックス構
築物または細胞層が形成されると、マトリックス産生細胞型を含む細胞の第二の
種付けを、第一の細胞−マトリックス構築物または細胞層の頂部表面に蒔き、そ
して第一の構築物上に第二の細胞−マトリックス構築物を形成するのに十分な条
件下で、一回、培養する。第二の細胞−マトリックス構築物上で、第三の種付け
を、蒔き、そして第三の層を生じるのに十分な条件下で培養する。例として、第
三の層の角膜構築物を生じるために、第一の細胞型の細胞は、角膜内皮細胞のよ
うな内皮起源から構成されうる；第二の細胞型は、角膜のケラチノサイトのよう
な接触性組織起源の細胞から構成されうる；そして第三の細胞型は、角膜の表皮
細胞のような表皮起源の細胞を包含しうる。皮膚の三層構築物の別の例として、
第一の種付けの細胞は、脈管構造についての成分を供する血管起源のものであり
得て、第二の種付けの細胞は、皮膚構築物として役割を果す細胞−マトリックス
構築物を形成する皮膚の線維芽細胞を包含でき、そして第三の種付けの細胞は、
表皮層を形成する表皮のケラチノサイトでありうる。

【００６５】 本発明の組織構築物は、透化または低温保存法が使用される場合、低温で保存
されうる。組織構築物の透化のための方法は、米国特許番号第５，５１８，８７
８号に記述され、そして低温保存の方法は、米国特許番号第５，６８９，９６１
号および第５，８９１，６１７号に、そして国際ＰＣＴ出願ＷＯ９６／２４０１
８号に記述され、それらの開示は、参照してここに組込まれる。

【００６６】 本発明の皮膚構築物は、生体外での毒素学試験のための組織試験システムで使
用できる。試験目的について皮膚構築物を組込む試験システムは、米国特許番号
第４，８３５，１０２号に記述され、その開示は、参照してここに組込まれる。
細胞産生した皮膚構築物が、類似の構造を有し、そしていっそう重要には、皮膚
に対する類似の組織化を有するので、それは、吸収、毒性および多くの場合には
、製品の有効性についての生きたヒトまたは動物試験に対する代替または交換と
して価値ある試験システムでありうる。マトリックスの産生は、生体内でのマト
リックスの修復と同様にマトリックスの産生で示される数種の過程を模倣するこ
とが示された。このため、記述されたシステムは、創傷修復および組織発生の分
析での、そしてさらに、創傷修復の化学的および／または物理的刺激剤の試験お
よび分析のために価値ある道具でありうる。

【００６７】 本発明の皮膚構築物についての最も好ましい使用法は、外傷または疾病による
皮膚を保存または修復する哺乳類宿主での移殖または定着のためのものである。
皮膚構築物の移殖のための指示は、それに限定されないが、プラスチックまたは
再構築手術、皮膚創傷、熱傷、乾癬、静脈および糖尿病腫瘍、および基底細胞癌
腫が挙げられる。本発明の皮膚構築物は、創傷組織を保護し、そしてその後宿主
組織の内部成長のためのスカホードとして役割を果すことの両方に有用である。
本発明で産生される組織の組織化のレベルは、創傷修復の作用まで容易で、そし
て可能な速度まで役割をも果すと思われる。

【００６８】 本発明の細胞マトリックス構築物は、粘着性を示す。ここで使用される場合、
「凝集性」は、物理的単位完全性および組織様作用（ｈａｎｄｉｎｇ）特性を維
持できることを意味する。本発明の構築物に凝集特性を優先的に付与する物理的
特性は、塊状濃さおよび線維マトリックス構造である。線維性細胞外マトリック
スは、合成コラーゲンおよび他のマトリックス成分、主に、原線維および原線維
束で配列される原線維コラーゲン細胞から形成され、そしてその構築物にそれら
の塊状を付与する。本発明の細胞−マトリックス構築物は、取扱い可能であり、
すなわち、それらは、担体支持体または特殊化した道具なしに、それらの培養基
質から手動で剥ぎ取ら、そして患者に、または試験装置に使用されうる。構造ま
たは機能に対する決定因子なしに、診療所での通常の操作から引き裂きまたは伸
縮のような損傷に抵抗できる。患者に使用されるときに、それらは、縫合または
ステープルによってその場所に確保されうる。

【００６９】 本発明の皮膚構築物を患者に移植するために、移殖領域は、標準実施によって
作製される。熱傷適応症については、移殖されるべき熱傷した創傷部位は、移殖
片を供給され、その結果熱傷の皮膚領域が完全に切除される。切除された床は、
透明で、そして移殖の前に臨床的に未感染であるように見える。手術の切除によ
る深部の部分的厚みの創傷について、予備操作性領域を剃り、必要な場合には、
抗微生物剤、無菌の皮膚洗浄剤で洗浄し、そして正常な生理食塩水で洗浄する。
局所無感覚は、通常、リドカインまたはエピネフリンまたはその両方の皮膚内投
与から構成される。いったん無感覚が達成されると、皮膚採取器を使用して、皮
膚を適切な深さまで取り出し、深部の部分的厚みの創傷を作る。リドカインを含
むエピネフリンとの圧縮により、そして電気メスにより止血を達成できる。その
後、皮膚構築物を、創傷床に使用し、そして必要ならば、その場所に縫合または
ステープルによって確保し、その後適切な包帯で支え、そして包帯を当てる。

【００７０】 本発明の皮膚構築物は、患者に移植する前に、篩にもかけうる。網状構造は、
創傷に対する皮膚構築物の形態を改善し、そして移殖片の直ぐ下から創傷滲出物
を排出させる手段を提供する。語句「網状構造」は、それにより組織が、スリッ
トで打ち抜かれて、ネット状配列を形成する機械的方法として定義される。網状
構造は、好ましくは、従来の皮膚網状材（登録商標ザイマー；登録商標バイオプ
ラスティー）の使用によって得られる。手動で記録を取るか、またはメスまたは
針で組織を打ち抜くこともできた。網状構造皮膚は、皮膚を伸縮することによっ
て拡張され、その結果スリットは開かれ、そしてその後、創傷床に使用されうる
。拡張網状構造組織は、最大限の達成範囲で創傷領域を提供する。代替的には、
網状化皮膚は、簡単に、非拡張スリットの配列を有するシートとして拡張なしに
使用されうる。網状化皮膚構築物は、単独で、または体の別の領域から得られる
患者自身の皮膚と共に使用しうる。組織構築物は、打ち抜きまたは開窓をも有し
、そして孔が、他の手段によって供されうる。開窓は、レーザー、パンチ、ステ
ープル、針またはピンを用いて手動で実施しうる。

【００７１】 本発明の皮膚構築物は、手術の創傷または熱傷の領域以外の創傷に使用しうる
。静脈腫瘍、糖尿病腫瘍、臥位腫瘍のような他の創傷は、開示の皮膚構築物の使
用によって、治癒利益を経験しうる。表皮水疱症のような他の先天性皮膚疾病は
、同様に有益でありうる。

【００７２】

【実施例】

実施例 実施例１：ヒト新生児包皮繊維芽細胞によるコラーゲンマトリックスの形成 ヒト新生児包皮繊維芽細胞（Ｏｒｇａｎｏｇｅｎｅｓｉｓ、Ｉｎｃ．Ｃａｎｔ
ｏｎ、ＭＡより入手）は、１６２ｃｍ²組織培養用シャーレ（Ｃｏｓｔａｒ Ｃ
ｏｒｐ．、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＭＡ、カタログ番号３１５０）に５ｘ１０⁵細
胞を接種し培養液で培養した。生育培地の組成は、１０％ 新生子牛血清（ＮＢ
ＣＳ）（ＨｙＣｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｉｎｃ．、Ｌｏｇａｎ、
Ｕｔａｈ）および４ｍＭ Ｌ−グルタミン（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌ
ｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）を含むダルベッコ改良イーグル培地（ＤＭＥＭ）（
高グルコース濃度、Ｌ−グルタミン無添加、ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌ
ｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）である。細胞は１０±１％ ＣＯ２中で３７±１℃
のインキュベーターで培養した。培地は２−３日ごとに新鮮なものと交換した。
培養８日後に、細胞がコンフルエンス状態、即ち組織培養用シャーレの底面いっ
ぱいの単層になった時に、培地をシャーレから吸引した。単層細胞を洗浄するた
めに、無菌濾過したリン酸緩衝液生理食塩水を各シャーレの底に添加してその後
吸引した。トリプシン−ｖｅｒｓｅｎｅグルタミン（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ
、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）を各シャ―レに５ｍＬ添加し、単層細胞に
完全に行き渡るようにゆっくりと回転させることで、シャーレから細胞を遊離さ
せた。培養物はインキュベーターに戻した。細胞が遊離すると同時に、トリプシ
ン−ｖｅｒｓｅｎｅの作用を停止するために、ＳＢＴＩ（大豆トリプシンインヒ
ビター）５ｍｌを各シャーレに添加し細胞懸濁液と混合した。細胞懸濁液をシャ
ーレから取り出し、無菌の円錐遠心管に等分した。細胞を約８００−１０００ｘ
ｇで５分間遠心して集めた。

【００７３】 細胞は、新鮮な培地に３．０ｘ１０⁶細胞／ｍｌの濃度になるように再懸濁し
、６穴トレーの０．４ミクロンポアサイズの２４ｍｍ直径組織培養用挿入体（Ｔ
ＲＡＮＳＷＥＬＬ＠、Ｃｏｒｎｉｎｇ Ｃｏａｓｔａｒ）に３．０ｘ１０⁶細胞
／挿入体（６．６ｘ１０⁵細胞／ｃｍ²）の濃度で接種した。細胞は１０±１％
ＣＯ２中で３７±１℃のインキュベーター内に静置して、培地は２−３日ごとに
新鮮なものと交換し２１日間培養した。産生培地の組成は、ＤＭＥＭおよびＨａ
ｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔｙ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓ
ｂｕｒｇ、ＭＤ）の３：１混合物、４ｍＭ ＧｌｕｔａＭＡＸ−１^TM（Ｇｉｂｃ
ｏ ＢＲＬ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ、ＮＹ）および最終濃度が以下の添加物
を含む；５ｎｇ／ｍｌ ヒトリコンビナント表皮成長因子（Ｕｐｓｔａｔｅ Ｂ
ｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、Ｌａｋｅ Ｐｌａｃｉｄ、ＮＹ）、２％ 新生子牛
血清（ＨｙＣｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｉｎｃ．、Ｌｏｇａｎ、Ｕ
ｔａｈ）、０．４μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕ
ｉｓ、ＭＯ）、１ｘ１０^-4Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋ
ｏｍａ、ＮＹ、ＡＣＳグレード）、１ｘ１０^-4Ｍ Ｏ−フォスフォリルエタノー
ルアミン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ インスリン
（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ トランスフェリン（
Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ トリヨードサイロニン（Ｓ
ｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ｓｉｇｍ
ａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏ．、Ｍｉｌｗａｕｋ
ｅｅ、ＷＩ）、５０ｎｇ／ｍｌ Ｌ−アスコルビン酸（ＷＡＫＯ Ｃｈｅｍｉｃ
ａｌｓ ＵＳＡ、Ｉｎｃ． ＃０１３−１２０６１）、０．２μｇ／ｍｌ Ｌ−
プロリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、０．１μｇ／ｍｌ グリシ
ン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、および０．０５％ ポリエチレン
グリコール（ＰＥＧ）３４００−３７００ ＭＷ（細胞培養グレード）（Ｓｉｇ
ｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）。

【００７４】 組織学的解析のためのサンプルは、培養７，１４および２１日で採集し、ホル
マリンで固定しパラフィンで包埋した。ホルマリン固定したサンプルはパラフィ
ンで包埋して、５μｍ切片をヘマトキシリン−エオジン（Ｈ＆Ｅ）で既知の方法
に従って染色した。Ｈ＆Ｅ染色スライドを用いて、１０ｍｍ／１００μｍ格子の
ついた１０ｘ接眼レンズを用いて任意に選んだ１０カ所の顕微鏡視野での厚さを
測定した。

【００７５】 ヒト皮膚繊維芽細胞の２つの異なる細胞種での結果を表１に示した。この表は
、細胞−マトリックス構造の厚さが発達しているのを示している。

【００７６】 サンプルは、培養７，１４および２１日目でのコラーゲン濃度解析にも呈した
。コラーゲン含量は、既知の方法（Ｗｏｅｓｓｎｅｒ、１９６１）でのヒドロキ
シプロリンを比色定量する方法を用いて算出した。同じ時点において細胞数も測
定した。前述の操作に用いた２つの異なる細胞種（Ｂ１５６およびＢ１１９）で
得られた細胞−マトリックス構造からの、表２はコラーゲン含量を、表３は細胞
データを示している。

【００７７】

【００７８】 培養７，１４および２１日目でのヒト細胞由来皮膚マトリックスのサンプル
を遅延減少ＳＤＳ−ＰＡＧＥで解析して、サンプル中のタイプＩおよびタイプＩ
ＩＩコラーゲンアルファバンドで示されるコラーゲン組成を測定した。

【００７９】 皮膚マトリックスの生化学的特性について組織化学的手法を用いて検討した。
フィブロネクチンの同定はパラフィン固定した切片についてＺｙｍｅｄ Ｈｉｓ
ｔｏｓｔａｉｎ ストレパビジン−ビオチン システム（Ｚｙｍｅｄ Ｌａｂｏ
ｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．、Ｓｏｕｔｈ Ｓａｎ Ｆｒａｎｓｉｓｃｏ、ＣＡ
）を用いて行った。テナシンの存在の有無は、抗−テナシン一次抗体染色（Ｄａ
ｋｏ、Ｃａｒｐｉｎｔｈｅｒｉａ、ＣＡ）および続く二次抗体としてのホースラ
ディッシュパーオキシデイス修飾抗−マウス抗体（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ）を用
いて、確認した。サンプルは、ジアミノベンジン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉ
ｓ、ＭＯ）を適用しＮｕｃｌｅｒ Ｆａｓｔ Ｒｅｄで逆染色することにより可
視化した。

【００８０】 グリコサミノグリカン（ＧＡＧ）定量を、以前に報告された方法（Ｆａｒｎｄ
ａｌｅ、１９８６）を用いて２１日目のサンプルについて行った。結果は、接種
後２１日目でのヒト細胞由来皮膚マトリックスサンプル中にはｃｍ２あたり０．
４４ｇのＧＡＧが存在した。

【００８１】 実施例２：皮膚構造の厚さ 実施例１で示した方法で作成した皮膚構造を用いて、正常ヒト新生児包皮表皮
角質細胞（Ｏｒｇａｎｏｇｅｎｅｓｉｓ、Ｉｎｃ．Ｃａｎｔｏｎ、ＭＡより入手
）を細胞−マトリックス構造上に接種し皮膚構造の表皮層を形成した。

【００８２】 培地を無菌的に培養挿入体およびその周辺から取り除いた。正常ヒト表皮角質
細胞を、凍結細胞ストックからコンフルエント状態までに４経代培養してスケー
ルアップさせた。細胞を、トリプシン−ｖｅｒｓｅｎｅを用いてシャーレ底面か
ら遊離させ、プールし、細胞ペレットにするように遠心し、表皮化培地中に再懸
濁させ、カウントして４．５ｘ１０⁴細胞／ｃｍ²の密度で膜の上に接種した。構
成体は３７±１℃、１０±１％ ＣＯ２中で９０分間インキュベートし、角質実
質細胞が付着するようにした。インキュベーション後、構成体を表皮化培地に浸
した。表皮化培地の組成は、ダルベッコ改良イーグル培地（ＤＭＥＭ）（高グル
コース濃度、Ｌ−グルタミン無添加、ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒ
ｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）およびＨａｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔｙ Ｂｉｏ
ｌｏｇｉｃｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の３：１混合物で、０．４μ
ｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、１ｘ
１０^-4Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋｏｍａ、ＮＹ）、１
ｘ１０^-4Ｍ Ｏ−フォスフォリルエタノールアミン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕ
ｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、Ｍ
Ｏ）、５μｇ／ｍｌ トランスフェリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ
）、２０ｐＭ トリヨードサイロニン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）
、６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ａｌｄｒｉｃｈ）、２４．４μｇ／ｍｌ アデ
ニン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏ．、
Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、４ｍＭ Ｌ−グルタミン（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋ
ｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）、０．３％ キレート化新生子牛血清
（ＨｙＣｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｉｎｃ．、Ｌｏｇａｎ、Ｕｔａ
ｈ）、０．６２８ｎｇ／ｍｌ プロゲステロン（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ａｒｌｉｎ
ｇｔｏｎ Ｈｅｉｇｈｔｓ、ＩＬ）、５０μｇ／ｍｌ Ｌ−アスコルビン酸ナト
リウム塩（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏ
．、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、１０ｎｇ／ｍｌ 表皮成長因子（Ｌｉｆｅ
Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｃ．、ＭＤ）、および５０μｇ／ｍｌ 硫酸ゲンタ
マイシン（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ Ｈｅｉｇｈｔｓ、ＩＬ）で
ある。構成体は表皮化培地中で３７±１℃、１０％ＣＯ２中で２日間培養した。

【００８３】 ２日後、構成体は以下の組成の培地に浸した；ダルベッコ改良イーグル培地（
ＤＭＥＭ）（高グルコース濃度、Ｌ−グルタミン無添加、ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋ
ｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）およびＨａｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕ
ａｌｉｔｙ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の３：１
混合物で、０．４μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕ
ｉｓ、ＭＯ）、１ｘ１０^-4Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋ
ｏｍａ、ＮＹ）、１ｘ１０^-4Ｍ Ｏ−フォスフォリルエタノールアミン（Ｓｉｇ
ｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓ
ｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ トランスフェリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ
．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ トリヨードサイロニン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．
Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ａｌｄｒｉｃｈ）、２４．
４μｇ／ｍｌ アデニン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉ
ｃａｌｓ Ｃｏ．、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、４ｍＭ Ｌ−グルタミン（Ｂ
ｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）、０．３％ キレ
ート化新生子牛血清（ＨｙＣｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｉｎｃ．、
Ｌｏｇａｎ、Ｕｔａｈ）、０．６２８ｎｇ／ｍｌ プロゲステロン（Ａｍｅｒｓ
ｈａｍ Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ Ｈｅｉｇｈｔｓ、ＩＬ）、５０μｇ／ｍｌ Ｌ−
アスコルビン酸ナトリウム塩（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅ
ｍｉｃａｌｓ Ｃｏ．、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、２６５μｇ／ｍｌ 塩化
カルシウム（Ｍａｌｌｉｎｃｋｒｏｄｔ、Ｃｈｅｓｔｅｒｆｉｅｌｄ、ＭＯ）、
および５０μｇ／ｍｌ 硫酸ゲンタマイシン（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ａｒｌｉｎｇ
ｔｏｎ Ｈｅｉｇｈｔｓ、ＩＬ）である。構成体は再度３７±１℃、１０％ＣＯ
２中で２日間培養した。

【００８４】 ２日後、構成体を含むキャリヤーを無菌的に十分な量の角化培地を入れた新し
い培養トレーに移した。その量は９ｍＬで、キャリヤー膜の表面と一致する水面
になり乾燥挿入体が上皮層の層化をさせるのを維持することが出来る。構成体は
３７±１℃、１０％ ＣＯ２中、および低湿度中で、２−３日毎に交換した培地
で７日間培養した。この培地の組成は；ダルベッコ改良イーグル培地（ＤＭＥＭ
）（高グルコース濃度、Ｌ−グルタミン無添加、ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗ
ａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）およびＨａｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔ
ｙ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の１：１混合物で
、０．４μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、Ｍ
Ｏ）、１ｘ１０^-4Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋｏｍａ、
ＮＹ）、１ｘ１０^-4Ｍ Ｏ−フォスフォリルエタノールアミン（Ｓｉｇｍａ、Ｓ
ｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏ
ｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ トランスフェリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕ
ｉｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ トリヨードサイロニン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉ
ｓ、ＭＯ）、６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ａｌｄｒｉｃｈ）、２４．４μｇ／
ｍｌ アデニン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ
Ｃｏ．、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、４ｍＭ Ｌ−グルタミン（ＢｉｏＷｈ
ｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）、２％ 新生子牛血清（Ｂ
ｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）、５０μｇ／ｍｌ
Ｌ−アスコルビン酸ナトリウム塩（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ
Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏ．、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、および５０μｇ／
ｍｌ 硫酸ゲンタマイシン（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ Ｈｅｉｇ
ｈｔｓ、ＩＬ）である。７日後に構成体は、２−３日毎に交換した維持培地で更
に１０日間培養した。この維持培地の組成は；ダルベッコ改良イーグル培地（Ｄ
ＭＥＭ）（高グルコース濃度、Ｌ−グルタミン無添加、ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅ
ｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）およびＨａｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａ
ｌｉｔｙ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の１：１混
合物で、０．４μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉ
ｓ、ＭＯ）、１ｘ１０^-4Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋｏ
ｍａ、ＮＹ）、１ｘ１０^-4Ｍ Ｏ−フォスフォリルエタノールアミン（Ｓｉｇｍ
ａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ
．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ トランスフェリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．
Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ トリヨードサイロニン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌ
ｏｕｉｓ、ＭＯ）、６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ａｌｄｒｉｃｈ）、２４．４
μｇ／ｍｌ アデニン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃ
ａｌｓ Ｃｏ．、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、４ｍＭ Ｌ−グルタミン（Ｂｉ
ｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）、１％ 新生子牛血
清（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）、および５
０μｇ／ｍｌ 硫酸ゲンタマイシン（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ
Ｈｅｉｇｈｔｓ、ＩＬ）である。

【００８５】 最終サンプルを実施例１で述べたように、ヘモトキシリンおよびエオジン染色
にかけ光学顕微鏡下でグロス発現を測定した。得られた構成体は、実施例１で述
べた性質を持つマトリックスで囲まれた繊維芽細胞からなる低（皮膚）層を形成
し、多層化しよく分化した角質実質細胞により完全に覆われた。この角質実質細
胞は、生体内皮膚と同様に、基底層、上基底層、顆粒層、および角質層を示した
。皮膚構造体は、伝導電子顕微鏡（ＴＥＭ）で明らかにされるように皮膚−表皮
接合部によく発達した基底膜が存在した。ＴＥＭで観察すると、基底膜はヘミデ
スモゾーム周辺で最も厚く、タイプＶＩＩコラーゲンからなるアンカーリング繊
維で顕著であった。期待されるようにこれらのアンカーリング繊維は、基底膜か ら容易に興奮させられるようでかつコラーゲン繊維を束ねているように見える。 基底膜糖蛋白であるラミニンの存在が以前に報告されたアビジン−ビオチン免疫 酵素法（Ｇｕｅｓｄｏｎ、１９７９）を用いて確認された。

【００８６】 実施例３：化学的に限定した培地中でのヒト新生児包皮繊維芽細胞によ るコラーゲンマトリックスのＩｎ Ｖｉｔｒｏ形成 実施例１で述べた操作を用いてヒト新生児包皮繊維芽細胞を増殖させた。細胞
を３．０ｘ１０⁶細胞／ｍｌ濃度になるように再懸濁し、６穴トレーの０．４ミ
クロンポアサイズの２４ｍｍ直径組織培養用挿入体に３．０ｘ１０⁶細胞／ＴＷ
（６．６ｘ１０⁵細胞／ｃｍ²）の濃度で接種した。細胞はこの後新生子牛血清を
除いた培地で実施例１と全く同様に培養した。特に、培地の組成は、ＤＭＥＭお
よびＨａｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔｙ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ Ｇａｉｔ
ｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の３：１混合物、４ｍＭ ＧｌｕｔａＭＡＸ−１ＴＭ
（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ、ＮＹ）および以下の添加物
を含む；５ｎｇ／ｍｌ ヒトリコンビナント表皮成長因子（Ｕｐｓｔａｔｅ Ｂ
ｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、Ｌａｋｅ Ｐｌａｃｉｄ、ＮＹ）、０．４μｇ／ｍ
ｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、１ｘ１０^-4 Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋｏｍａ、ＮＹ、カタログN
ｏ.２４００ＡＣＳグレード）、１ｘ１０^-4Ｍ Ｏ−フォスフォリルエタノール
アミン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ インスリン（
Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ トランスフェリン（Ｓ
ｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ トリヨードサイロニン（Ｓｉ
ｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ｓｉｇｍａ
Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏ．、Ｍｉｌｗａｕｋｅ
ｅ、ＷＩ）、５０ｎｇ／ｍｌ Ｌ−アスコルビン酸（ＷＡＫＯ Ｃｈｅｍｉｃａ
ｌｓ ＵＳＡ、Ｉｎｃ． ＃０１３−１２０６１）、０．２μｇ／ｍｌ Ｌ−プ
ロリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、０．１μｇ／ｍｌ グリシン
（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、および０．０５％ ポリエチレング
リコール（ＰＥＧ）（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）。サンプルは、前
述の方法で、培養７，１４および２１日目にコラーゲン濃度および細胞数をチェ
ックした。結果を、表４（細胞数）および表５（コラーゲン）にまとめた。サン
プルはホルマリンで固定し、実施例１で述べたように、ヘマトキシリンおよびエ
オジンで光学顕微鏡用の染色をした。組織学的な評価で、構造体は限定培地で２
％新生子牛血清存在下と同様に生育することが証明された。

【００８７】 サンプル また、実施例１で述べた操作を用いてファイブロネクチンを陽性に染色した。

【００８８】

【００８９】

【００９０】 また、細胞−マトリックス構造体中には内因性に産生される繊維性コラーゲン 、デコリン、およびグリコサミノグリカンが存在した。

【００９１】 実施例４：化学的に限定した培地を用いて形成される皮膚構造の厚さ 実施例３で示した方法に類似した化学的に限定した条件下で、ヒト皮膚繊維芽
細胞により形成された２５日目の皮膚構造を用いて、正常ヒト新生児包皮表皮角
質細胞を細胞−マトリックス構造の表面上に接種し皮膚構造の表皮層を形成した
。

【００９２】 培地を無菌的に培養挿入体およびその周辺から取り除いた。正常ヒト表皮角質
細胞を、凍結細胞ストックからコンフルエント状態までに４経代培養してスケー
ルアップさせた。細胞を、トリプシン−ｖｅｒｓｅｎｅを用いてシャーレ底面か
ら遊離させ、プールし、細胞ペレットにするように遠心し、表皮化培地中に再懸
濁させ、カウントして４．５ｘ１０４細胞／ｃｍ２の密度で膜の上に接種した。
構成体は３７±１℃、１０±１％ ＣＯ２中で９０分間インキュベートし、角質
実質細胞が付着するようにした。インキュベーション後、構成体を表皮化培地に
浸した。表皮化培地の組成は、ダルベッコ改良イーグル培地（ＤＭＥＭ）（グル
コース、カルシウム無添加、ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌ
ｌｅ、ＭＤ）およびＨａｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔｙ Ｂｉｏｌｏｇｉ
ｃｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の３：１混合物で、０．４μｇ／ｍｌ
ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、１ｘ１０^-4Ｍ
エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋｏｍａ、ＮＹ）、１ｘ１０^-4 Ｍ Ｏ−フォスフォリルエタノールアミン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、Ｍ
Ｏ）、５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５
μｇ／ｍｌ トランスフェリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、２０
ｐＭ トリヨードサイロニン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、６．７
８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ａｌｄｒｉｃｈ）、２４．４μｇ／ｍｌ アデニン（Ｓ
ｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏ．、Ｍｉｌｗ
ａｕｋｅｅ、ＷＩ）、４ｍＭ Ｌ−グルタミン（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗ
ａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）、５０μｇ／ｍｌ Ｌ−アスコルビン酸ナトリ
ウム塩（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏ．
、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、１６μＭ リノール酸（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌ
ｏｕｉｓ、ＭＯ）、１μＭ 酢酸トコフェロール（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉ
ｓ、ＭＯ）、および５０μｇ／ｍｌ 硫酸ゲンタマイシン（Ａｍｅｒｓｈａｍ
Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ Ｈｅｉｇｈｔｓ、ＩＬ）である。構成体は表皮化培地中で
３７±１℃、１０±１％ＣＯ２中で２日間培養した。

【００９３】 ２日後、培地を上述の組成の新鮮なものに交換し、３７±１℃、１０±１％
ＣＯ２中のインキュベーターで２日間培養した。２日後、構成体を含むキャリヤ
ーを無菌的に十分な量の培地を入れた新しい培養トレーに移し、キャリヤー膜の
表面と一致する水面になり、空気−液体境界のところで構成体が発達するのを維
持することが出来るようにした。形成される表皮層の表面に接触する空気は上皮
細胞層の層化を促す。構成体は３７±１℃、１０％ＣＯ２中で、低温度で２−３
日毎に交換した培地で７日間培養した。この培地の組成は；ダルベッコ改良イー
グル培地（ＤＭＥＭ）（高グルコース濃度、Ｌ−グルタミン無添加、ＢｉｏＷｈ
ｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）およびＨａｍｓ Ｆ−１２
培地（Ｑｕａｌｉｔｙ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ
）の１：１混合物で、０．４μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓ
ｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５ｘ１０^-4Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏ
ｎｋｏｎｋｏｍａ、ＮＹ）、５ｘ１０^-4Ｍ Ｏ−フォスフォリルエタノールアミ
ン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉ
ｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ トランスフェリン（Ｓｉｇ
ｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ トリヨードサイロニン（Ｓｉｇｍ
ａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ａｌｄｒｉｃｈ
）、２４．４μｇ／ｍｌ アデニン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ
Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏ．、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、４ｍＭ Ｌ−グル
タミン（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）、２．
６５μｇ／ｍｌ 塩化カルシウム（Ｍａｌｌｉｎｃｋｒｏｄｔ、Ｃｈｅｓｔｅｒ
ｆｉｅｌｄ、ＭＯ）、１６μＭ リノール酸（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、
ＭＯ）、１μＭ 酢酸トコフェロール（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）
、１．２５ｍＭ セリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、０．６４ｍ
Ｍ塩化コリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、および５０μｇ／ｍｌ
硫酸ゲンタマイシン（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ Ｈｅｉｇｈｔ
ｓ、ＩＬ）である。２−３日毎に交換した培地で１４日間培養した。

【００９４】 サンプルは、トリプリケートで、構造体を空気−液体境界に引き上げた後、１
０、１２、および１４日目に採取し、実施例１で述べたようにヘモトキシリンお
よびエオジン染色にかけ光学顕微鏡下でグロス発現を測定した。得られた構成体
は、実施例３で述べた性質を持つマトリックスで囲まれた繊維芽細胞からなる低
（皮膚）層を形成し、多層化しよく分化した角質実質細胞の層により覆われた。

【００９５】 実施例５：ヒトアキレス腱繊維芽細胞によるコラーゲンマトリックスの Ｉｎ Ｖｉｔｒｏ形成 実施例１で述べたのと同じ方法を用いて、ヒト新生児包皮繊維芽細胞をヒトア
キレス腱繊維芽細胞（ＨＡＴＦ）に代えて細胞−マトリックスを形成させた。産
生培地で２１日間培養した後に、実施例１で述べた操作を用いてサンプルをＨ＆
Ｅ染色および厚さの測定に呈した。得られた構造体は、厚さ７５．００±２７．
５８ミクロン（ｎ＝２）の細胞−マトリックス組織様構造として観察された。ま
た、この構造体中には内因性に産生される繊維性コラーゲン、デコリン、および
グリコサミノグリカンが存在した。

【００９６】 実施例６：トランスフェクトさせたヒト新生児包皮繊維芽細胞による コラーゲンマトリックスのＩｎ Ｖｉｔｒｏ形成 トランスフェクトさせたヒト皮膚繊維芽細胞を以下の操作で産生させた。ｊＣ
ＲＩＰ−４３血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）ウイルス産生細胞（Ｍｏｒｇａｎ
、Ｊ．ら）の１バイアルを溶解し、細胞を２ｘ１０⁶細胞／１６２ｃｍ²シャーレ
（Ｃｏｒｍｉｎｇ Ｃｏｓｔａｒ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＭＡ）の密度で接種し
た。これらのシャーレには生育培地を入れ、１０±１％ＣＯ２中で３７±１℃で
インキュベーターに静置した。生育培地の組成は、ダルベッコ改良イーグル培地
（ＤＭＥＭ）（高グルコース濃度、Ｌ−グルタミン無添加、ＢｉｏＷｈｉｔｔａ
ｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）で、１０％ 新生子牛血清（ＨｙＣ
ｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｉｎｃ．、Ｌｏｇａｎ、Ｕｔａｈ）、お
よび４ｍＭ Ｌ−グルタミン（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉ
ｌｌｅ、ＭＤ）を含む。同じ日にヒト新生児包皮繊維芽細胞（ＨＤＦＢ１５６）
の１バイアルも溶解し、１．５ｘ１０⁶細胞／１６２ｃｍ²シャーレ（Ｃｏｒｎｉ
ｎｇ Ｃｏｓｔａｒ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＭＡ）の密度で接種した。３日後に
ｊＣＲＩＰ ＰＤＧＦ−４３ウイルス産生細胞に新鮮な生育培地を与えた。ＨＤ
ＦＢ１５６は上述の生育培地プラス８μｇ／ｍｌ ポリブレン（Ｓｉｇｍａ、Ｓ
ｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）で培養した。次の日にＨＤＦＢ１５６細胞を以下のよう
に感染させた。ｊＣＲＩＰ ＰＤＧＦ−４３ウイルス産生細胞からの培養液を集
めて０．４５ミクロン濾紙で濾過した。８μｇ／ｍｌ ポリブレンをこの濾過し
た培養液に添加した。それから培養液をＨＤＦの上に置いた。次の２日間ＨＤＦ
は新鮮な生育培地で培養した。ＨＤＦが５代から６代の経代をした日に２．５ｘ
１０⁶細胞／１６２ｃｍ²シャーレ（Ｃｏｒｎｉｎｇ Ｃｏｓｔａｒ、Ｃａｍｂｒ
ｉｄｇｅ、ＭＡ）の密度で接種した。細胞は以下のように経代培養し培養液は吸
引した。シャーレをリン酸緩衝液生理食塩水で洗浄し残存する新生子牛血清を除
いた。トリプシン−ｖｅｒｓｅｎｅを各シャ―レに５ｍｌ添加し、単層細胞に完
全に行き渡るようにゆっくりと回転させることで、シャーレ底面から細胞を遊離
させた。培養物はインキュベーターに戻した。細胞が遊離すると同時に、トリプ
シン−ｖｅｒｓｅｎｅの作用を停止するために、ＳＢＴＩ（大豆トリプシンイン
ヒビター）５ｍｌを各シャーレに添加し細胞懸濁液と混合した。細胞／トリプシ
ン／ＳＢＴＩ懸濁液をシャーレから取り出し、無菌の円錐遠心管に等分した。細
胞を約８００−１０００ｘｇで５分間遠心して集めた。細胞は、接種用のために
生育培地に上記リストした濃度になるように再懸濁した。２日後に細胞に新鮮な
培地を与えた。翌日上記のように細胞を集め、１０％ 新生子牛血清（ＮＢＣＳ
）と１０％ ジメチルスルフォキサイド（ＤＭＳＯ）（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏ
ｕｉｓ、ＭＯ）を含む生育培地で１．５ｘ１０６細胞／ｍｌに希釈した。細胞は
１ｍｌ／凍結バイアルに入れて−８０℃で保存した。

【００９７】 本実施例のコラーゲンマトリックス形成には、実施例１および３で述べたのと
同じ操作を用いて、ヒト新生児包皮繊維芽細胞の代わりに、上記のように高レベ
ルの血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）を産生するように形質転換したヒト新生児
包皮繊維芽細胞を用いて行った。接種後１８日目に、上記のようにサンプルをＨ
＆Ｅ染色に呈した。また、サンプルは実施例１０にリストしたファイブロネクチ
ンの有無を確認するためにアビジン−ビオチン法を用いて染色した。実施例１で
述べたように、接種後１８日目にサンプルをＨ＆Ｅ染色に呈し、実施例１で得ら
れたものと同様な、厚さ１２３．６ミクロン（Ｎ＝１）の細胞−マトリックスグ
ロスが観察された。トランスフェクトされた細胞から細胞−マトリックス構造中
に排出されるＰＤＧＦ量は、培養中を通じて（１８日間）ＥＬＩＳＡで測定して
１００ ｎｇ／ｍＬであった。一方、対照ではＰＤＧＦの排出は検出できなかっ
た。

【００９８】 実施例７：移植物質としての皮膚構造の使用 実施例１の方法に従って、新生児包皮に由来するヒト真皮繊維芽細胞を用いて
細胞−マトリックス構造を形成し、無胸腺ヌードマウスに作成した全切開創に移
植した。マウスは、Ｐａｒｅｎｔｅａｕら（１９９６）の方法に従って移植した
。その方法の開示をここに示す。移植は、１４、２８、および５６日目に、切開
口の接着、切開創の縮小、移植損失部分、および血管新生（色）で観察した。移
植部分はマウスで完全に残っている間に写真を撮った。各時点で多くのマウスを
殺して、移植部分およびその周辺部を、マウス皮膚の周辺縁に沿って少なくとも
皮下脂肪肉部まで切開した。移植物とマウス皮膚との接合部は各サンプルで保存
した。体外移植組織サンプルはリン酸緩衝液１０％ホルマリンおよびメタノール
で固定した。ホルマリン固定したサンプルを、実施例１で述べた操作に従ってＨ
＆Ｅ染色に呈した。移植物は、顕著な縮小もなくマウスの皮膚に取り込まれた。
移植の１４日以内にマウスの表皮は移植物を覆った。Ｈ＆Ｅ染色サンプルでは、
１４日目の移植物には血管が明らかに認められた。そして実験全体を通じて認め
られた。グロス観察およびＨ＆Ｅ染色により、移植物は実験期間中を通して健全
である（生存している細胞を含みグロスマトリックスの異常が見られない、等）
ように見えた。

【００９９】 実施例８：皮膚移植としての皮膚構造全厚さの使用 実施例２の方法に従って、真皮層の新生児包皮に由来するヒト真皮繊維芽細胞
および別の表皮層の新生児包皮に由来するヒト角質実質細胞を用いて、２層皮膚
構造を形成した。この皮膚構造は、膜から手で剥がし、熟練の技術無しで操作し
、移植部位に置くことができた。本２層皮膚構造体を、Ｐａｒｅｎｔｅａｕら（
１９６６）の方法に従って無胸腺ヌードマウスに作成した全切開創に移植した。
その方法の開示をここに示す。サンプル採取の時点は、移植後７、１４、２８、
５６、および１８４日目に行った。移植部分はマウスで完全に残っている間に写
真を撮った。各時点で多くのマウスを殺して、移植部分およびその周辺部を、マ
ウス皮膚の周辺縁に沿って少なくとも皮下脂肪肉部まで切開した。移植物とマウ
ス皮膚との接合部は各サンプルで保存した。体外移植組織サンプルはリン酸緩衝
液１０％ホルマリンおよびメタノールで固定した。ホルマリン固定したサンプル
を、実施例１で述べた操作に従ってＨ＆Ｅ染色に呈した。

【０１００】 移植物は７日以内にマウスの皮膚に取り込まれたのが組織学的観察と同様にグ
ロスの観察でも確かめられた。Ｈ＆Ｅ染色により、移植後７日目以内に宿主の組
織から移植物へ血管が伸びているのが認められた。移植物は、顕著な縮小もなく
実験期間中を通して健全であった。抗−ヒトインボルクリン染色を用いてヒト表
皮細胞が全移植期間中存在していることが認められた。 実施例９：ヒト角膜の角膜実質細胞によるマトリックスのＩｎ Ｖｉｔｒｏ形成 ヒト角膜の角質実質細胞（Ｏｒｇａｎｏｇｅｎｅｓｉｓ、Ｉｎｃ．Ｃａｎｔｏ
ｎ、ＭＡより入手）を角膜の基質構造の形成に用いた。コンフルエントになった
ヒト角質実質細胞をトリプシン−ｖｅｒｓｅｎｅを用いて培養基質から遊離させ
た。細胞が遊離した時、大豆トリプシンインヒビターを用いてトリプシン−ｖｅ
ｒｓｅｎｅの作用を中和し、細胞懸濁液を遠心し、上清は捨てて細胞は新鮮な培
地に３．０ｘ１０⁶／ｍｌの濃度になるように基礎培地に再懸濁した。細胞は、
６穴トレーの０．４ミクロンポアサイズの２４ｍｍ直径組織培養用ｔｒａｎｓｗ
ｅｌｌに３ｘ１０６細胞／ＴＷ（６．６ｘ１０⁵細胞／ｃｍ²）の濃度で接種した
。これらの培養物は接種培地で一晩放置した。接種培地の組成は；ダルベッコ改
良イーグル培地（ＤＭＥＭ）およびＨａｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔｙ
Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の３：１混合物、４ｍ
Ｍ ＧｌｕｔａＭＡＸ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ、ＮＹ
）および以下の添加物を含む；５ｎｇ／ｍｌ ヒトリコンビナント表皮成長因子
（ＥＦＧ）（Ｕｐｓｔａｔｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、Ｌａｋｅ Ｐｌａ
ｃｉｄ、ＮＹ）、０．４μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．
Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、１ｘ１０^-4Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋ
ｏｎｋｏｍａ、ＮＹ）、１ｘ１０^-4Ｍ Ｏ−フォスフォリルエタノールアミン（
Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍ
ａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ トランスフェリン（Ｓｉｇｍａ
、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ トリヨードサイロニン（Ｓｉｇｍａ、
Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、および６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ｓｉｇｍａ
Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏ．、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ
、ＷＩ）である。続いてこの培養物に新鮮な産生培地を与えた。産生培地の組成
は；ＤＭＥＭ）およびＨａ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔｙ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ
Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の３：１混合物、４ｍＭ ＧｌｕｔａＭＡＸ
（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ、ＮＹ）および以下の添加物
を含む；５ｎｇ／ｍｌ ヒトリコンビナント表皮成長因子（Ｕｐｓｔａｔｅ Ｂ
ｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、Ｌａｋｅ Ｐｌａｃｉｄ、ＮＹ）、２％ 新生子牛
血清（ＨｙＣｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｌｏｇａｎ、Ｕｔａｈ）、
０．４μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ
）、１ｘ１０^-4Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋｏｍａ、Ｎ
Ｙ）、１ｘ１０^-4Ｍ Ｏ−フォスフォリルエタノールアミン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ
．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕ
ｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ トランスフェリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉ
ｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ トリヨードサイロニン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ
、ＭＯ）、６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎ
ｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏ．、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、５０ｎｇ／ｍ
ｌ Ｌ−アスコルビン酸（ＷＡＫＯ Ｐｕｒｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ）、０．２
μｇ／ｍｌ Ｌ−プロリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、０．１μ
ｇ／ｍｌ グリシン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、および０．０５
％ ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）３４００−３７００ ＭＷ（細胞培養グ
レード）（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）である。 細胞は３７±１℃、１０±１％ＣＯ２中で培養し、２−３日毎に新鮮な培地に交
換して２０日間（合計２１日間）培養した。培養２１日後に角質実質細胞は、実
施例１に示した方法で測定して、厚さ約４０ミクロンのマトリックス層を形成し
た。また、細胞−マトリックス構造体中には内因性に産生される繊維性コラーゲ
ン、デコリン、およびグリコサミノグリカンが存在した。

【０１０１】 実施例１０：産生培地中でのヒト新生児包皮繊維芽細胞によるコラーゲ ンマトリックスのＩｎ Ｖｉｔｒｏ形成 ヒト新生児包皮繊維芽細胞（Ｏｒｇａｎｏｇｅｎｅｓｉｓ、Ｉｎｃ．Ｃａｎｔ
ｏｎ、ＭＡより入手）は、６穴トレーの０．４ミクロンポアサイズの２４ｍｍ直
径組織培養用キャリヤー（ＴＲＡＮＳＷＥＬＬ＠、Ｃｏｓｔａｒ Ｃｏｒｐ．、
Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＭＡ）に１ｘ１０６細胞／ＴＷの濃度で接種し生育培地で
培養した。生育培地の組成は、１０％ 新生子牛血清（ＨｙＣｌｏｎｅ Ｌａｂ
ｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｉｎｃ．、Ｌｏｇａｎ、Ｕｔａｈ）および４ｍＭ Ｌ−グ
ルタミン（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）を含
むダルベッコ改良イーグル培地（ＤＭＥＭ）（高グルコース濃度、Ｌ−グルタミ
ン無添加、ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）であ
る。細胞は１０±１％ ＣＯ２中で３７±１℃のインキュベーターで培養した。
培地は２−３日毎に新鮮なものと交換し２１日間培養した。産生培地の組成は、
ＤＭＥＭおよびＨａｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔｙ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ
Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の３：１混合物、４ｍＭ ＧｌｕｔａＭＡ
Ｘ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ、ＮＹ）および以下の添加
物を含む；５ｎｇ／ｍｌ ヒトリコンビナント表皮成長因子（Ｕｐｓｔａｔｅ
Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、Ｌａｋｅ Ｐｌａｃｉｄ、ＮＹ）、２％ 新生子
牛血清（ＨｙＣｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｉｎｃ．、Ｌｏｇａｎ、
Ｕｔａｈ）、０．４μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏ
ｕｉｓ、ＭＯ）、１ｘ１０−４Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏ
ｎｋｏｍａ、ＮＹ、ＡＣＳグレード）、１ｘ１０−４Ｍ Ｏ−フォスフォリルエ
タノールアミン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ イン
スリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ トランスフェ
リン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ トリヨードサイロニ
ン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ｓ
ｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏ．、Ｍｉｌｗ
ａｕｋｅｅ、ＷＩ）、５０ｎｇ／ｍｌ Ｌ−アスコルビン酸（ＷＡＫＯ Ｐｕｒ
ｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ）、０．２μｇ／ｍｌ Ｌ−プロリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓ
ｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、０．１μｇ／ｍｌ グリシン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌ
ｏｕｉｓ、ＭＯ）、および０．０５％ ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）（細
胞培養グレード）（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）。

【０１０２】 サンプルは、培養２１日で採集し、ホルマリンで固定しパラフィンで包埋した
。ホルマリン固定したサンプルはパラフィンで包埋して、５μｍ切片をヘマトキ
シリン−エオジン（Ｈ＆Ｅ）で既知の方法に従って染色した。Ｈ＆Ｅ染色スライ
ドを用いて、１０ｍｍ／１００μｍ格子（Ｏｌｙｍｐｕｓ Ａｍｅｒｉｃａ Ｉ
ｎｃ．、Ｍｅｌｖｉｌｌｅ、ＮＹ）のついた１０ｘ接眼レンズ（Ｏｌｙｍｐｕｓ
Ａｍｅｒｉｃａ Ｉｎｃ．、Ｍｅｌｖｉｌｌｅ、ＮＹ）を用いて任意に選んだ
１０カ所の顕微鏡視野で測定した。

【０１０３】 この方法を用いて作成した構造は実施例１で作成したものと構造や生化学的組
成が類似しており、８２．００±７．６４ミクロンの厚さがあった。

【０１０４】 実施例１１：ブタ真皮繊維芽細胞によるコラーゲンマトリックスのＩｎ Ｖｉｔｒｏ形成 ブタ真皮繊維芽細胞（Ｏｒｇａｎｏｇｅｎｅｓｉｓ、Ｉｎｃ．Ｃａｎｔｏｎ、
ＭＡより入手）を５ｘ１０⁵細胞／１６２ｃｍ²組織培養用シャーレ（Ｃｏｒｍｉ
ｎｇ Ｃｏｓｔａｒ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＭＡ、カタログ番号３１５０）の密
度で接種し、以下のように培養した。生育培地の組成は、１０％ 新生子牛血清
（ＨｙＣｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｉｎｃ．、Ｌｏｇａｎ、Ｕｔａ
ｈ）および４ｍＭ Ｌ−グルタミン（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒ
ｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）を含むダルベッコ改良イーグル培地（ＤＭＥＭ）（高グル
コース濃度、Ｌ−グルタミン無添加、ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒ
ｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）である。細胞は１０±１％ ＣＯ２中で３７±１℃のイン
キュベーターで培養した。培地は２−３日毎に新鮮なものと交換した。コンフル
エンスになったら、細胞を組織培養用シャーレの底部につけたまま培地を吸引し
た。単層細胞を洗浄するために、無菌濾過したリン酸緩衝液生理食塩水を単層細
胞に添加してその後吸引した。トリプシン−ｖｅｒｓｅｎｅグルタミン（Ｂｉｏ
Ｗｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）を各シャ―レに５ｍｌ
添加し、単層細胞に完全に行き渡るようにゆっくりと回転させることで、シャー
レから細胞を遊離させた。培養物はインキュベーターに戻した。細胞が遊離する
と同時に、トリプシン−ｖｅｒｓｅｎｅの作用を停止するために、ＳＢＴＴ（大
豆トリプシンインヒビター）５ｍｌを各シャーレに添加し細胞懸濁液と混合した
。細胞懸濁液をシャーレから取り出し、無菌の円錐遠心管に等分した。細胞を約
８００−１０００ｘｇで５分間遠心して集めた。細胞は再懸濁し３．０ｘ１０⁶
／ｍｌの濃度になるように希釈し、６穴トレーの０．４ミクロンポアサイズの２
４ｍｍ直径ｔｒａｎｓｗｅｌｌに３．０ｘ１０⁶細胞／ＴＷ（６．６ｘ１０⁵細胞
／ｃｍ²）の濃度で接種した。細胞は接種培地の中で一晩放置した。接種培地の
組成は；ＤＭＥＭおよびＨａｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔｙ Ｂｉｏｌｏ
ｇｉｃｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の３：１混合物、４ｍＭ Ｇｌｕ
ｔａＭＡＸ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ、ＮＹ）および以
下の添加物を含む；５ｎｇ／ｍｌ ヒトリコンビナント表皮成長因子（ＥＦＧ）
（Ｕｐｓｔａｔｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、Ｌａｋｅ Ｐｌａｃｉｄ、Ｎ
Ｙ）、０．４μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ
、ＭＯ）、１ｘ１０^-4Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋｏｍ
ａ、ＮＹ）、１ｘ１０^-4Ｍ Ｏ−フォスフォリルエタノールアミン（Ｓｉｇｍａ
、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．
Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ トランスフェリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌ
ｏｕｉｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ トリヨードサイロニン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏ
ｕｉｓ、ＭＯ）、６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ
Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏ．、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、５０ｎ
ｇ／ｍｌ Ｌ−アスコルビン酸（ＷＡＫＯ Ｐｕｒｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ）、
０．２μｇ／ｍｌ Ｌ−プロリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、お
よび０．１μｇ／ｍｌ グリシン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）であ
る。細胞は１０±１％ ＣＯ２中で３７±１℃のインキュベーター内に静置して
、培地は２−３日ごとに新鮮なものと交換し７日間培養した。産生培地の組成は
、ＤＭＥＭおよびＨａｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔｙ Ｂｉｏｌｏｇｉｃ
ｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の３：１混合物、４ｍＭ ＧｌｕｔａＭ
ＡＸ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ、ＮＹ）および以下の添
加物を含む；５ｎｇ／ｍｌ ヒトリコンビナント表皮成長因子（Ｕｐｓｔａｔｅ
Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、Ｌａｋｅ Ｐｌａｃｉｄ、ＮＹ）、２％ 新生
子牛血清（ＨｙＣｌｏｎｅ、Ｌｏｇａｎ、Ｕｔａｈ）、０．４μｇ／ｍｌ ハイ
ドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、１ｘ１０^-4Ｍ エタ
ノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋｏｍａ、ＮＹ）、１ｘ１０^-4Ｍ Ｏ
−フォスフォリルエタノールアミン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、
５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／
ｍｌ トランスフェリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ
トリヨードサイロニン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、６．７８ｎｇ
／ｍｌ セレン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ
Ｃｏ．、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、５０ｎｇ／ｍｌ Ｌ−アスコルビン酸
（ＷＡＫＯ Ｐｕｒｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ）、０．２μｇ／ｍｌ Ｌ−プロリ
ン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、０．１μｇ／ｍｌ グリシン（Ｓ
ｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、および０．０５％ ポリエチレングリコ
ール（ＰＥＧ）（細胞培養グレード）（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）
である。７日後に産生培地を新生子牛血清を含まないものに代えた。この培地は
２−３日毎に新鮮なものと交換し更に２０日間、計２８日間培養した。

【０１０５】 サンプルは、培養２１日で採集し、ホルマリンで固定しパラフィンで包埋した
。ホルマリン固定したサンプルはパラフィンで包埋して、５μｍ切片をヘマトキ
シリン−エオジン（Ｈ＆Ｅ）で既知の通常の方法に従って染色した。Ｈ＆Ｅ染色
スライドを用いて、１０ｍｍ／１００μｍ格子（Ｏｌｙｍｐｕｓ Ａｍｅｒｉｃ
ａ Ｉｎｃ．、Ｍｅｌｖｉｌｌｅ、ＮＹ）のついた１０ｘ接眼レンズ（Ｏｌｙｍ
ｐｕｓ Ａｍｅｒｉｃａ Ｉｎｃ．、Ｍｅｌｖｉｌｌｅ、ＮＹ）を用いて任意に
選んだ１０カ所の顕微鏡視野で測定した。サンプルは細胞とマトリックスから成
る構造を有し、厚さが７１．２０±９．５７ミクロンであった。また、細胞−マ
トリックス構造体中には内因性に産生される繊維性コラーゲン、デコリン、およ
びグリコサミノグリカンが存在した。

【０１０６】 実施例１２：真皮乳頭細胞を含む２層皮膚構造のＩｎ Ｖｉｔｒｏ形成 一次マトリックス産生細胞タイプとして正常ヒト新生児包皮繊維芽細胞を用い
て、実施例１で示した方法に従って細胞−マトリックス構造を作成した。この細
胞−マトリックスを二次産生細胞としての真皮乳頭細胞に局所的に接種した。こ
れを次に三次産生細胞としての角質実質細胞に接種し、細胞−マトリックスおよ
び真皮乳頭細胞の上を覆う持続的な表皮層を形成した。

【０１０７】 最初に新生児包皮に由来するヒト真皮繊維芽細胞（ＨＤＦ）を用いて細胞−マ
トリックス構造を形成した。ＨＤＦは生育培地中に５ｘ１０⁶細胞／１６２ｃｍ² 組織培養用シャーレ（Ｃｏｓｔａｒ Ｃｏｒｐ．、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＭＡ）
の密度で接種した。生育培地の組成は、１０％ 新生子牛血清（ＮＢＣＳ）（Ｈ
ｙＣｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｉｎｃ．、Ｌｏｇａｎ、Ｕｔａｈ）
および４ｍＭ Ｌ−グルタミン（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖ
ｉｌｌｅ、ＭＤ）を含むダルベッコ改良イーグル培地（ＤＭＥＭ）（高グルコー
ス濃度、Ｌ−グルタミン無添加、ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖ
ｉｌｌｅ、ＭＤ）である。コンフルエントになったらＨＤＦをトリプシン−ｖｅ
ｒｓｅｎｅを用いてシャーレから遊離させた。細胞は新鮮な培地に３．０ｘ１０
６／ｍｌの濃度になるように再懸濁し、６穴トレーの０．４ミクロンポアサイズ
の２４ｍｍ直径組織培養用挿入体（ＴＲＡＮＳＷＥＬＬR、Ｃｏｒｎｉｎｇ Ｃ
ｏｒｓｔａｒ）に３ｘ１０⁶細胞／挿入体（６．６ｘ１０⁵細胞／ｃｍ²）の濃度
で接種した。ＨＤＦ培養物は１０±１％ ＣＯ２中で３７±１℃のインキュベー
ターで培養した。実施例１で示した方法に従って、新鮮な産生培地を２−３日毎
に与えて２３日間培養した。

【０１０８】 細胞−マトリックス構造が形成されたら、二次産生細胞として真皮乳頭に接種
した。真皮乳頭は毛髪胞の毛髪根に囲まれている特殊な繊維芽細胞の個別分布を
しており、毛髪育成の支持的な役割を果たしている。真皮乳頭は、以前に報告さ
れたＭｅｓｓｅｎｇｅｒ、Ａ．Ｇ．の方法（ヒト毛髪胞からの真皮乳頭細胞の培
養。Ｂｒ．Ｊ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．１１０：６８５−９（１９８４））を用いて
毛髪法の微小切開により単離できてｉｎ ｖｉｔｒｏで培養できる。この方法は
ここで採り上げられている。真皮乳頭細胞はコンフルエントになったら凝集し、
シャーレ上では代わって新たな凝集を作る。真皮乳頭を４週令のブタでの皮膚バ
イオプシーにより単離した。真皮乳頭からの細胞（ＰＤＰ）は、２０％ＮＢＣＳ
を含むDMEＭで８代まで経代培養した。培養３週間後、ＰＤＰ細胞は真皮乳頭様
構造を呈し、あるいは凝集し、各々の直径は約９０−２１０ミクロンであった。
その後シャーレから激しくピペッティングをすることで凝集物を培養シャーレか
ら採り、ヒトコラーゲンマトリックス上に２００凝集物／ｃｍ²の濃度で接種し
た。凝集物は、２０％ＮＢＣＳを含むDMEＭで更に１５日間、新鮮な培地を２−
３日毎に与えて培養した。

【０１０９】 真皮乳頭細胞を含む細胞−マトリックス構造はそこで直ちに角質実質細胞に接
種し、培養して細胞−マトリックスおよび真皮乳頭細胞の上を覆う持続的な表皮
層を形成させた。２つの異なる構造を形成した：１つはヒト角質実質細胞とのも
のであり、他はブタ角質実質細胞とのものである。初代培養を確立するために正
常な表皮角質実質細胞を体外移植を用いてヒト新生児包皮（ＨＥＰ）およびブタ
角質実質細胞（ＰＥＰ）から単離した。これらの細胞を培養して、ブタ細胞で経
代３まで、ヒト細胞で経代４まで増殖させた。約培養５−６日後に、細胞をトリ
プシン−ｖｅｒｓｅｎｅを用いてシャーレ底面から遊離させ、プールし、細胞ペ
レットにするように遠心し、表皮化培地中に再懸濁させ、カウントして、ＨＥＰ
細胞で４．５ｘ１０⁴細胞／ｃｍ²、ＰＥＰ細胞で１．６ｘ１０⁵細胞／ｃｍ²密度
で膜の上に接種した。表皮化した培養物は実施例２で述べたように１２日間培養
した。

【０１１０】 最終サンプルを光学顕微鏡でのヘマトキシリン−エオジン染色に呈した。得ら
れた皮膚構造は皮膚に類似した基礎形態学的組織を示した。一つは真皮層で内因
性に産生されたマトリックスにより取り囲まれた繊維芽細胞から成っている。こ
のマトリックスは内因性に産生される繊維性コラーゲン、デコリン、およびグリ
コサミノグリカンを含んでいる。真皮層は真皮乳頭細胞の場所に局在している。
他の一つは細胞−マトリックスおよび真皮乳頭を横切る層化し角質実質細胞層で
ある。ヒトあるいはブタ角質実質細胞に覆われた両方の組織構造において、真皮
乳頭は覆っている角質実質細胞の小さな波動を惹起する構造を維持していた。真
皮乳頭細胞の付近に分化した表皮細胞が存在した。

【０１１１】 実施例１３：サンドイッチＥＬＩＳＡ法によるヒアルロン酸の測定 実施例１および３の方法に従って、それぞれ、血清含有培地および化学的に限
定した培地中で、真皮繊維芽細胞により形成された細胞−マトリックス構造中の
ヒアルロン酸（ＨＡ）を測定した。

【０１１２】 細胞−マトリックス構造を多孔性膜（ＴＲＡＮＳＷＥＬＬR、Ｃｏｒｎｉｎｇ Ｃｏｒｓｔａｒ）に取り込んだ７５ ｍｍ直径の円形キャリヤー上に形成した
。細胞−マトリックス構造からの抽出物は、細胞−マトリックス構造を入れた試
験管に１０ｍＬ 酢酸アンモニウム緩衝液および０．５ｍｇ／ｍｌ プロテナー
ゼＫを添加することで調製した。混合物を６０℃で一晩インキュベートした。消
化が完全に終わったら、混合物を遠心し上清をヒアルロン酸アッセイ用の個別の
試験管に入れた。９６穴プレートを０．１Ｍ ＮａＨＣＯ３に溶かした２０μｇ
／ｍｌ ＨＡ結合タンパク質の５０μｌでコートし、４℃で一晩保存した。プレ
ートは０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０を含む０．８５％食塩水で３回洗浄した。そ
の後各ウエルに２５０μｌのブロッキング液（３％ ＢＳＡおよび０．９％塩化
ナトリウムを含む１０ｍＭ リン酸緩衝液、ｐＨ７．４）を添加し、プレートは
室温で２時間インキュベートした。それから、プレートは０．０５％ Ｔｗｅｅ
ｎ２０を含む０．８５％食塩水で３回洗浄した。各ウエルに５０μｌの標準ＨＡ
液および両方の実験条件での抽出サンプルを、種々の希釈を含めて、添加し、プ
レートは室温（約２０℃）で２時間インキュベートした。それから、プレートは
０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０を含む０．８５％食塩水で３回洗浄して、各ウエル
に５０μｌのビオチン化ＨＡ（１：２０００希釈）を添加し、室温で２時間イン
キュベートした。その後、プレートは０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０を含む０．８
５％食塩水で３回洗浄し、各ウエルに５０μｌのＡＲＰ−アビジンＤ（１：３０
００希釈）を添加した。プレートは室温で４５分間インキュベートした。それか
ら、プレートは０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０を含む０．８５％食塩水で３回洗浄
して、各ウエルに１００μｌのオルソ−フェニレンジアミン基質溶液を添加し、
３７℃で１０分間インキュベートした。反応は１Ｍ 塩酸５０μｌを添加するこ
とで停止した。最終的にプレートリーダーを用いて４９２ｎｍの吸光度を読み記
録した。

【０１１３】 吸光度の測定は平均を取り質量測定にに変換した。血清を含む培地で形成され
た円形の細胞−マトリックス構造（直径７５ｍｍ）はそれぞれ約２００μｇのヒ
アルロン酸を含有し、化学的に限定された培地で形成されたものにはそれぞれ約
１．５ｍｇのヒアルロン酸が含有された。 実施例１４：産生された細胞−マトリックス構造の物理的試験および機械的特性 実施例１（細胞−マトリックス構造）、実施例２（角質実質細胞層に覆われた細
胞−マトリックス構造）、および実施例３（化学的に限定した培地で作成した細
胞−マトリックス構造）の各組織構造物の機械的特性を膜膨張法で定量した。こ
れらの試験は臨床的に用いられているアッセイ（例、ＤｅｒｍａｆｌｅｘR、Ｃ
ｙｂｅｒｄｅｒｍ Ｉｎｃ．、Ｍｅｄｉａ、ＰＡおよびＣｕｔａｍｅｔｅｒR、
Ｃｏｕｒａｇｅ Ｋｈａｚａｋａ、Ｃｏｌｏｎｇｅ、Ｇｅｒｍａｎｙ）に類似で
あるが、膜を破裂できる圧を含めてより高い圧を使っている。サンプルの細胞−
マトリックス構造を、等張の生理食塩水を満たした直径１０ｍｍの円柱状ウエル
の中心に置いたポリカーボネートブロックの上に水平に置いた。円柱状ウエルの
直径に対応した円形の穴を持つ金属プレートをサンプルの上に置きブロックに留
めた。そして、シリンジポンプで食塩水を更に注入することによりサンプルを膨
張させた。圧伝導計を用いて得られた圧を測定した。加圧を続け破裂強度、実施
例１の方法で得た細胞−マトリックス構造では４３９．０２ｍｍＨｇ；実施例２
の角質実質細胞層に覆われた細胞−マトリックス構造では９９８．５２ｍｍＨｇ
；および実施例３の化学的に限定した培地で作成した細胞−マトリックス構造で
は１５４２．２６ｍｍＨｇを得た。

【０１１４】 真皮マトリックスの熱溶解温度を求めるために、サンプル（細胞−マトリック
ス構造）を実施例１の操作を用いて２１日目に採取した。サンプル変性温度をＭ
ｅｔｔｌｅｒ Ｔｏｌｅｄｏ（Ｈｉｇｈｓｔｏｎ、ＮＪ）示差走査熱量計（ＤＳ
Ｃ製品 ＃ＤＳＣ１２Ｅ）を用いて解析した。我々の目的には、溶解温度はアン
プルを４５℃から８０℃まで毎分１℃の割合で加温することで求めた。サンプル
の平均変性温度は６０．８±１．２℃（ｎ＝３）であった。

【０１１５】 実施例１（細胞−マトリックス構造）および実施例３（化学的に限定した培地
で作成した細胞−マトリックス構造）の操作を用いて作成した表皮マトリックス
の縫合維持および引っ張り張力を、一定の臨床状況での縫合力を求めるために測
定した。２１日目の真皮マトリックスの縫合維持力を、Ｍｉｎｉ−Ｂｉｏｎｅｘ
８５８試験システム（ＭＴＳ ｓｙｓｔｅｍｓ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、Ｍｉ
ｎｎｅａｐｏｌｉｓ、Ｍｉｎｎ．）を用いて、血管移植人工補綴のためのアメリ
カ国家標準出版（Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ、１９８６）に記載されている方法に
より測定した。

【０１１６】 実施例１のサンプル（細胞−マトリックス構造）では、引っ張り張力は３６５
Ｎ／ｍであり、実施例２に従って調製したサンプル（角質実質細胞層に覆われた
細胞−マトリックス構造）では、引っ張り張力は２７２０Ｎ／ｍであった。

【０１１７】 縫合維持力は、実施例１のサンプルでは、０．１４Ｎであり、実施例２に従っ
て調製したサンプルでは、０．２２Ｎであった。

【０１１８】 実施例１、実施例２、および実施例３に記述した構造物を２４ｍｍおよび７５
ｍｍの直径の両方で作成した。３方法全ての培養操作で作成した構造物は密着性
のある組織用構造であり、最小の力で膜より剥がすことが可能である。従って、
“剥がし可能”であり損傷を与えることなく試験や使用するときに取り扱いやす
い。

【０１１９】 実施例１５：化学的に限定した培地中でのヒト新生児包皮繊維芽細胞による コラーゲンマトリックスのＩｎ Ｖｉｔｒｏ形成 実施例１で述べた操作を用いてヒト新生児包皮繊維芽細胞を増殖させた。細胞
を３．０ｘ１０⁶／ｍｌ濃度になるように再懸濁し、６穴トレーの０．４ミクロ
ンポアサイズの２４ｍｍ直径組織培養用挿入体に３．０ｘ１０⁶細胞／ＴＷ（６
．６ｘ１０⁵細胞／ｃｍ²）の濃度で接種した。この実施例では、細胞は全て化学
的に限定した培地で培養した。

【０１２０】 培地の組成は、ＤＭＥＭおよびＨａｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔｙ Ｂ
ｉｏｌｏｇｉｃｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の３：１混合物、４ｍＭ
ＧｌｕｔａＭＡＸ−１ＴＭ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ
、ＮＹ）および以下の添加物を含む；５ｎｇ／ｍｌ ヒトリコンビナント表皮成
長因子（Ｕｐｓｔａｔｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、Ｌａｋｅ Ｐｌａｃｉ
ｄ、ＮＹ）、１ｘ１０−４Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋ
ｏｍａ、ＮＹ、ＡＣＳグレード）、１ｘ１０−４Ｍ Ｏ−フォスフォリルエタノ
ールアミン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ トランス
フェリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ トリヨードサイ
ロニン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン
（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏｍｐａｎ
ｙ、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、５０ｎｇ／ｍｌ Ｌ−アスコルビン酸（ＷＡ
ＫＯ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ ＵＳＡ、Ｉｎｃ． ＃０１３−１２０６１）、０．
２μｇ／ｍｌ Ｌ−プロリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、および
０．１μｇ／ｍｌ グリシン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）。

【０１２１】 上記基礎培地に加え、以下の条件で下記の添加物を加えた。

【０１２２】 1． ５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、Ｍ Ｏ）、０．４μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌ ｏｕｉｓ、ＭＯ）、および０．０５％ ポリエチレングリコール（ＰＥ Ｇ）（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）。

【０１２３】 2． ５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、Ｍ Ｏ）および０．４μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）。

【０１２４】 3． ３７５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ 、ＭＯ）および６μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）。

【０１２５】 サンプルはホルマリンで固定しヘマトキシリンおよびエオジンで光学顕微鏡用
の染色をした。組織学的な観察評価で、ＰＥＧのない条件２でもＰＥＧが存在す
る条件１とかなり同様なマトリックスを形成することが証明された。構造物のコ
ラーゲン含量を生化学的に測定すると、ＰＥＧが存在する条件１では１６８．７
±７．９８μｇ／ｃｍ²；ＰＥＧのない条件２では１７０．８８±９．０７μｇ
／ｃｍ²、と両方でほとんど同量の値を示した。高濃度のインスリンとハイドロ
コーチゾンを含む条件３では、他の２つの条件よりも早い時点でコラーゲンを含
んでマトリックスの発現が大きいことが示された。また、全ての条件下で細胞−
マトリックス構造体中には内因性に産生される繊維性コラーゲン、デコリン、お
よびグリコサミノグリカンが存在した。本実施例の条件２の方法で作成した培養
真皮構造体を図２に示した。化学的に限定した培地で培養した２１日目の培養ヒ
ト真皮繊維芽細胞から形成した細胞−マトリックス構造体の、固定、パラフィン
包埋、ヘマトキシリンおよびエオジン染色した切片の写真を図２に示した。多孔
性の膜は構造物の下で薄い半透明のバンドのように見える。細胞は膜の表面上で
生育し膜をマトリックスの中に取り込まないことが分かる。

【０１２６】 図３は、本実施例の条件２の方法で作成した２１日目の培養真皮構造体の伝導
電子顕微鏡（ＴＥＭ）の像を示す。図３Ａは、繊維芽細胞間の内因性コラーゲン
繊維の列を示している７６００倍率の像である。図３Ｂは、完全に形成された内
因性コラーゲン繊維の１９０００倍率の像であり、繊維の配列と束を証明してい
る。

【０１２７】 本実施例の全ての条件下で、培養皮膚構造は構成する皮膚繊維芽細胞および内
因性に産生するマトリックスを形成した。全てに完全に形成されたコラーゲン繊
維が細胞間で配列され束ねられた形で存在することが示された。これら繊維の性
質、厚さ、および完全な密着性は構造体に引っ張り聴力を与え、培養膜から剥が
し易くするし、それらを患者へ移植するときに取り扱いし易くする。

【０１２８】 実施例１６：皮膚構造の厚さ 上記、実施例１５で述べた条件２（ＰＥＧなし）の方法でヒト真皮繊維芽細胞
により作成した２１日目の皮膚構造を用いて、正常ヒト新生児包皮表皮角質細胞
を細胞−マトリックス構造上に接種し皮膚構造の表皮層を形成した。

【０１２９】 培地を無菌的に培養挿入体およびその周辺から取り除いた。正常ヒト表皮角質
細胞を、凍結細胞ストックからコンフルエント状態までに４経代培養してスケー
ルアップさせた。細胞を、トリプシン−ｖｅｒｓｅｎｅを用いてシャーレ底面か
ら遊離させ、プールし、細胞ペレットにするように遠心し、表皮化培地中に再懸
濁させ、カウントして４．５ｘ１０４細胞／ｃｍ２の密度で膜の上に接種した。
構成体は３７±１℃、１０±１％ ＣＯ２中で９０分間インキュベートし、角質
細胞が付着するようにした。インキュベーション後、構成体を表皮化培地に浸し
た。表皮化培地の組成は、ダルベッコ改良イーグル培地（ＤＭＥＭ）（高グルコ
ース濃度、Ｌ−グルタミン無添加、ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓ
ｖｉｌｌｃ、ＭＤ）およびＨａｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔｙ Ｂｉｏｌ
ｏｇｉｃｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の３：１混合物で、０．４μｇ
／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、１ｘ１
０^-4Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋｏｍａ、ＮＹ）、１ｘ
１０^-4Ｍ Ｏ−フォスフォリルエタノールアミン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉ
ｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ
）、５μｇ／ｍｌ トランスフェリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）
、２０ｐＭ トリヨードサイロニン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、
６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ａｌｄｒｉｃｈ）、２４．４μｇ／ｍｌ アデニ
ン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏｍｐａ
ｎｙ、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、４ｍＭ Ｌ−グルタミン（ＢｉｏＷｈｉｔ
ｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）、５０μｇ／ｍｌ Ｌ−アスコ
ルビン酸ナトリウム塩（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃ
ａｌｓ Ｃｏｍｐａｎｙ、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、１６μＭ リノール酸
（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、１μＭ 酢酸トコフェロール（Ｓｉ
ｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、および５０μｇ／ｍｌ 硫酸ゲンタマイシ
ン（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ Ｈｅｉｇｈｔｓ、ＩＬ）である。
構成体は表皮化培地中で３７±１℃、１０±１％ＣＯ２中で２日間培養した。

【０１３０】 ２日後、構成体は上記組成の新鮮な培地に交換し、インキュベーターに返し３
７±１℃、１０±１％ＣＯ２中で２日間培養した。２日後、構成体を含むキャリ
ヤーを無菌的に十分な量の培地を入れた新しい培養トレーに移し、キャリヤー膜
の表面と一致する水面になり、空気−液体境界のところで構成体が発達するのを
維持することが出来るようにした。形成される表皮層の表面に接触する空気は上
皮細胞層の層化を促す。構成体は３７±１℃、１０％ ＣＯ２中、および低湿度
中で、２−３日毎に交換した培地で７日間培養した。この培地の組成は；ダルベ
ッコ改良イーグル培地（ＤＭＥＭ）（高グルコース濃度、Ｌ−グルタミン無添加
、ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）およびＨａｍ
ｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔｙ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓｂ
ｕｒｇ、ＭＤ）の１：１混合物で、０．４μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓ
ｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、１ｘ１０^-4Ｍ エタノールアミン（Ｆｕ
ｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋｏｍａ、ＮＹ）、１ｘ１０^-4Ｍ Ｏ−フォスフォリルエ
タノールアミン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ イン
スリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ トランスフェ
リン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ トリヨードサイロニ
ン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、６．７８ｎｇ／ｍｌ セレン（Ｓ
ｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏｍｐａｎｙ）
、２４．４μｇ／ｍｌ アデニン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃ
ｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏｍｐａｎｙ）、４ｍＭ Ｌ−グルタミン（ＢｉｏＷｈｉ
ｔｔａｋｅｒ、Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）、２．６５μｇ／ｍｌ 塩化
カルシウム（Ｍａｌｌｉｎｃｋｒｏｄｔ，Ｃｈｅｓｔｅｒｆｉｅｌｄ、ＭＯ）、
１６μＭ リノール酸（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、１μＭ 酢酸
トコフェロール（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、１．２５ｍＭ セリ
ン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、０．６４ｍＭ 塩化コリン（Ｓｉ
ｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、および５０μｇ／ｍｌ 硫酸ゲンタマイシ
ン（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ Ｈｅｉｇｈｔｓ、ＩＬ）である。
２−３日毎に培地を交換し１４日間培養した。

【０１３１】 サンプルは、トリプリケートで、構造体を空気−液体境界に引き上げた後、１
０、１２、および１４日目に採取し、実施例１で述べたようにヘモトキシリンお
よびエオジン染色にかけ光学顕微鏡下でグロス発現を測定した。得られた構成体
は、実施例３で述べた性質を持つマトリックスで囲まれた繊維芽細胞からなる低
（皮膚）層を形成し、多層化しよく分化した角化細胞により覆われた。

【０１３２】 最終サンプルを実施例１で述べたように、ヘモトキシリンおよびエオジン染色
にかけ光学顕微鏡下でグロス発現を測定した。得られた構成体は、マトリックス
で囲まれた繊維芽細胞からなる低層と、それを覆う多層化しよく分化した角化細
胞の表皮層とからなる２層の皮膚構造であった。本実施例の２層皮膚構造を図４
に示す。図４は、化学的に限定した培地で培養した真皮繊維芽細胞から形成した
細胞−マトリックス構造と化学的に限定した培地で培養したヒト角質実質細胞か
ら形成した多層化した分化した表皮からなる、化学的に限定した培地で培養した
外から添加したマトリックス成分なしで形成した培養皮膚構造の、固定、パラフ
ィン包埋、ヘマトキシリンおよびエオジン染色した切片の写真を示す。

【０１３３】 実施例１７：ヒトほほ繊維芽細胞によるコラーゲンマトリックスの形成 本実験の目的はヒトほほ組織から単離したほほ繊維芽細胞から細胞−マトリッ
クス構造を産生することである。ほほ繊維芽細胞を１０％ＮＢＣＳ含有ＤＭ培地
でＴ−１５０シャーレで培養した。７日後に更に細胞数を増やすために、ほほ繊
維芽細胞を採集して、各４．０ｘ１０６細胞を９個のＴ−１５０シャーレに入れ
１０％ＮＢＣＳ含有ＤＭＥＭ培地中でコンフルエントになるまで培養し、そこで
採取した。

【０１３４】 細胞を採取するために、培地を培養シャーレから吸引した。単層細胞を洗浄す
るために、無菌濾過したリン酸緩衝液生理食塩水を単層細胞に添加してその後吸
引した。トリプシン−ｖｅｒｓｅｎｅグルタミン（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ、
Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）を各シャ―レに５ｍｌ添加し、単層細胞に完
全に行き渡るようにゆっくりと回転させることで、シャーレから細胞を遊離させ
た。培養物はインキュベーターに戻した。細胞が遊離すると同時に、トリプシン
−ｖｅｒｓｅｎｅの作用を停止するために、ＳＢＴＴ（大豆トリプシンインヒビ
ター）５ｍｌを各シャーレに添加し細胞懸濁液と混合した。細胞懸濁液をシャー
レから取り出し、無菌の円錐遠心管に等分した。細胞を約８００−１０００ｘｇ
で５分間遠心して集めた。

【０１３５】 細胞は再懸濁し３．０ｘ１０⁶／ｍｌの濃度になるように希釈し、６穴トレー
の０．４ミクロンポアサイズの２４ｍｍ直径ｔｒａｎｓｗｅｌｌに３．０ｘ１０ ⁶ 細胞／ＴＷ（６．６ｘ１０⁵細胞／ｃｍ²）の濃度で接種した。細胞は３７±１
℃、１０±１％ＣＯ２中でインキュベーターに静置し以下の培地で培養した。培
地の組成は、ＤＭＥＭおよびＨａｍｓ Ｆ−１２培地（Ｑｕａｌｉｔｙ Ｂｉｏ
ｌｏｇｉｃｓ Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の３：１混合物、４ｍＭ Ｇ
ｌｕｔａＭＡＸ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ、ＮＹ）およ
び以下の添加物を含む；５ｎｇ／ｍｌ ヒトリコンビナント表皮成長因子（ＥＦ
Ｇ）（Ｕｐｓｔａｔｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、Ｌａｋｅ Ｐｌａｃｉｄ
、ＮＹ）、０．４μｇ／ｍｌ ハイドロコーチゾン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕ
ｉｓ、ＭＯ）、１ｘ１０^-4Ｍ エタノールアミン（Ｆｕｌｋａ、Ｒｏｎｋｏｎｋ
ｏｍａ、ＮＹカタログNｏ.２４００ＡＣＳグレード）、１ｘ１０^-4Ｍ Ｏ−フォ
スフォリルエタノールアミン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ
／ｍｌ インスリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、５μｇ／ｍｌ
トランスフェリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、２０ｐＭ トリヨ
ードサイロニン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、６．７８ｎｇ／ｍｌ
セレン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ｃｏ
ｍｐａｎｙ、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）、５０ｎｇ／ｍｌ Ｌ−アスコルビン
酸（ＷＡＫＯ ＣｈｅｍｉｃａｌｓＵＳＡ、Ｉｎｃ．）、０．２μｇ／ｍｌ Ｌ
−プロリン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、０．１μｇ／ｍｌ グリ
シン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、および０．０５％ ポリエチレ
ングリコール（ＰＥＧ）（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）である。

【０１３６】 接種後１日目に、培地を血清無添加産生培地に交換し、以後２−３日毎に新鮮
なものと交換し２１日間培養した。２１日目にサンプルを組織学的な検討のため
にホルマリンで固定した。タンパクおよびコラーゲン生成量の解析のために３個
のサンプルを使用した。

【０１３７】 ２４ｍｍ直径の構造物のコラーゲン生成量は、培養２１日目に構造物あたり５
１９μｇであった。２４ｍｍ直径の構造物の総タンパク生成量は、培養２１日目
に構造物あたり２１０μｇであった。形態学的には、ほほ繊維芽細胞の細胞−マ
トリックス構造は、口腔の結合組織の培養した組織構造であるが、マトリックス
により取り囲まれたほほの繊維芽細胞を示した。一方、物理的には、構造体は肉
体的な容量と完全さを有している。

【０１３８】 上述の発明について、明確さと理解を深めるために図および実施例で詳細に説
明してきたが、請求項の範囲内で一定の変化や修飾が実用化される技術の一つで
あることは明かであろう。

【図面の簡単な説明】

【図１】図１は、実施例１に記述されるヒト新生児包皮細胞由来の皮膚構築
物での細胞数に比較するとき、ヒドロキシプロリンアッセイによって測定される
ときに、コラーゲン濃度での増大を描くグラフである。

【図２】図２は、２１日目に化学的に定義された培地中で培養ヒト皮膚の線
維芽細胞から形成される細胞−マトリックス構築物の固定され、パラフィン埋没
されたヘマトシキリンおよびエオシン染色区分の光学顕微鏡写真（対物レンズ２
０×）である。多孔性膜は、構築物より下の薄い半透明バンドとして現れる。

【図３】図３は、２１日目に化学的に定義された培地中の培養ヒト皮膚の線
維芽細胞から形成される細胞−マトリックス構築物の２つの倍率の透過型電子顕
微鏡画像を示す。

【図３Ａ】図３Ａは、線維芽細胞の間のコラーゲン線維の配列を含む内因性
マトリックスを示す７６００×倍率である。

【図３Ｂ】図３Ｂは、原線維の配列および包装を表す１９０００×倍率の十
分に形成された内因性コラーゲン線維である。

【図４】図４は、化学的に定義された培地中で培養ヒト・ケラチノサイトか
ら形成される多層化した分化表皮を用いて、化学的に定義された培地中で培養ヒ
ト皮膚の線維芽細胞から形成される細胞−マトリックス構築物を含む、外因性マ
トリックス成分の不在下で化学的に定義された培地中で形成される培養皮膚構築
物の固定されたパラフィン埋設したマトキシリンおよびエオシン染色区分の光学
顕微鏡写真（対物レンズ２０×）である。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ａ６１Ｋ 35/42 Ａ６１Ｋ 35/44 35/44 Ａ６１Ｌ 27/00 Ｖ Ａ６１Ｌ 27/00 Ａ６１Ｐ 43/00 １０５ Ａ６１Ｐ 43/00 １０５ Ｃ１２Ｎ 5/00 Ｅ // Ｃ１２Ｎ 15/09 15/00 Ａ (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ，ＵＧ，ＺＷ )，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ， ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ， ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，Ｃ Ｚ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ， ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，Ｍ Ｄ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ， ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，Ｕ Ｚ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＷ Ｆターム(参考） 4B024 AA01 AA11 BA80 4B065 AA90X AA93X BC42 CA24 CA44 4C081 AB11 BA12 CD122 CD34 4C087 AA01 BB40 BB48 BB50 BB55 BB56 BB59 CA04 MA01 NA14 ZB21

Claims (30)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 細胞外マトリックスが、 （ｉ）４分の１差の６７ｎｍ結合パターンを示す原線維および原線維束の包装組
   織化を示す原線維性コラーゲン； （ｉｉ）デコリン；および （ｉｉｉ）グリコサミノグリカン を包含し、そして該細胞外マトリックスが、培養条件の間じゅう外因性マトリッ
   クス成分または合成構成員の不在下で、培養線維芽細胞によって産生されること
   を特徴とする、合成細胞外マトリックス層内に含まれる培養線維芽細胞と共に、
   培養線維芽細胞によって合成および組立てられる細胞外マトリックスの層を産生
   する条件下で、線維芽細胞成長を包含する培養組織構築物。
2. 【請求項２】 線維芽細胞が、新生男児包皮、真皮、腱、肺、尿道、臍帯、
   角膜基質、口腔粘膜、および腸から構成される群から選択される組織から由来す
   る請求項１に記載の培養組織構築物。
3. 【請求項３】 前記培養細胞が、皮膚の線維芽細胞である請求項１に記載の
   培養組織構築物。
4. 【請求項４】 前記培養細胞が、毛包の皮膚の乳頭から得られる請求項１に
   記載の培養組織構築物。
5. 【請求項５】 前記層が、毛包の皮膚の乳頭から得られる培養細胞を有し、
   該層に配置される請求項１に記載の培養組織構築物。
6. 【請求項６】 前記培養細胞が、化学的に定義された培地で培養される請求
   項１に記載の培養組織構築物。
7. 【請求項７】 前記培養細胞が、ヒト組織から由来し、そして非ヒト成分を
   含まない培地で培養される請求項１に記載の培養組織構築物。
8. 【請求項８】 細胞外マトリックスが、 （ｉ）４分の１差の６７ｎｍ結合パターンを示す原線維および原線維束の包装組
   織化を示す原線維性I型およびＩＩＩ型コラーゲン； （ｉｉ）デコリン、 （ｉｉｉ）フィブロネクチン （ｉｖ）テナスシン；および （ｉｉｉ）グリコサミノグリカン を包含し、そして該細胞外マトリックスが、培養条件の間じゅう外因性マトリッ
   クス成分または合成構成員の不在下で培養線維芽細胞によって産生されることを
   特徴とする、合成細胞外マトリックス層内に含まれる培養線維芽細胞と共に、培
   養線維芽細胞によって合成および組立てられる細胞外マトリックスの層を産生す
   る条件下で、培養された培養皮膚の線維芽細胞を包含する培養組織構築物。
9. 【請求項９】 （ａ）細胞外マトリックスが、 （ｉ）４分の１差の６７ｎｍ結合パターンを示す原線維および原線維束の包装組
   織化を示す原線維性コラーゲン； （ｉｉ）デコリン；および （ｉｉｉ）グリコサミノグリカン を包含し、そして該細胞外マトリックスが、培養条件の間じゅう外因性マトリッ
   クス成分または合成構成員の不在下で、培養線維芽細胞によって産生されること
   を特徴とする、合成細胞外マトリックス層内に含まれる培養線維芽細胞と共に、
   培養線維芽細胞によって合成および組立てられる細胞外マトリックスの層を産生
   する条件下で培養される培養線維芽細胞の第一の層；そして、 （ｂ）第一の層に沈着した上皮細胞を含む細胞の第二の層 を包含することを特徴とする、少なくとも２つの層を有する培養組織構築物。
10. 【請求項１０】 上皮細胞が、ケラチノサイト、角膜の上皮細胞、口腔粘膜
    から得られる上皮細胞、食道上皮細胞、および尿道上皮細胞から構成される群か
    ら選択される請求項９に記載の二層培養組織構築物。
11. 【請求項１１】 前記第一の層内に含まれる線維芽細胞が、新生男児包皮、
    真皮、腱、肺、軟骨、尿道、角膜基質、口腔粘膜、および腸から構成される群か
    ら選択される組織から由来する請求項９に記載の二層培養組織構築物。
12. 【請求項１２】 前記第一の層内に含まれる線維芽細胞が、皮膚の線維芽細
    胞である請求項９に記載の二層培養組織構築物。
13. 【請求項１３】 前記第一の層内に含まれる線維芽細胞が、毛包の皮膚の乳
    頭から得られる請求項１２に記載の二層培養組織構築物。
14. 【請求項１４】 前記第一の層が、毛包の皮膚の乳頭から得られる培養細胞
    を有し、該第一の層に配置される請求項９に記載の二層培養組織構築物。
15. 【請求項１５】 さらに、上皮細胞の第二の層上に沈着した細胞の第三の層
    を包含する請求項９に記載の二層培養組織構築物。
16. 【請求項１６】 （ａ）細胞外マトリックスが、 （ｉ）４分の１差の６７ｎｍ結合パターンを示す原線維および原線維束の包装組
    織化を示すＩ型およびＩＩＩ型コラーゲン； （ｉｉ）デコリン； （ｉｉｉ）フィブロネクチン、 （ｉｖ）テナスシン；および （ｉｉｉ）グリコサミノグリカン を包含し、そして該細胞外マトリックスが、培養条件の間じゅう外因性マトリッ
    クス成分または合成構成員の不在下で培養皮膚の線維芽細胞によって産生される
    ことを特徴とする、合成細胞外マトリックス層内に含まれる培養線維芽細胞と共
    に、培養線維芽細胞によって合成および組立てられる細胞外マトリックスの層を
    生成する条件下で培養される培養皮膚の線維芽細胞の第一の層；そして、 （ｂ）上皮細胞層を、多層化し、層にし、分化し、そして基底層、超基底層、顆
    粒層および角質層を示し、そして二層培養皮膚構築物が、第一および第二の層の
    接合点に存在する基底膜を有することを特徴とする、第一の層に沈着して、上皮
    細胞層を形成するケラチノサイト細胞の第二の層 を包含することを特徴とする、少なくとも２つの層を有する培養皮膚構築物。
17. 【請求項１７】 培養線維芽細胞を、遺伝的に修飾して、細胞外マトリック
    ス成分を産生する請求項１、８、９および１６のいずれかに記載の構築物。
18. 【請求項１８】 培養線維芽細胞を、遺伝的に修飾して、成長因子、ホルモ
    ン、ペプチド、またはタンパク質を産生する請求項１７に記載の構築物。
19. 【請求項１９】 （ａ）第一の細胞培養培地中の培養容器中の多孔性膜上に
    、細胞外マトリックスを合成する能力のある線維芽細胞を蒔き、 （ｂ）多孔性膜上で約８０％から約１００％までの間の融合まで第一の細胞培養
    培地中の段階（ａ）の線維芽細胞細胞を培養し； （ｃ）線維芽細胞を刺激して、第二の培養培地中の培養条件下で細胞外マトリッ
    クス成分を合成、分泌、および組織化させ、および （ｄ）細胞が、合成細胞外マトリックス層内に含まれる培養線維芽細胞と共に、
    少なくとも厚さ約３０ミクロンの合成細胞外マトリックスの層を形成するまで、
    線維芽細胞の培養を継続することを包含し、 細胞外マトリックスが、 （ｉ）４分の１差の６７ｎｍ結合パターンを示す原線維および原線維束の包装組
    織化を示す原線維性コラーゲン； （ｉｉ）デコリン；および （ｉｉｉ）グリコサミノグリカン を包含し、そして該細胞外マトリックスが、培養条件の間じゅう外因性マトリッ
    クス成分または合成構成員の不在下で、培養線維芽細胞によって産生されること
    を特徴とする、培養組織構築物を産生する方法。
20. 【請求項２０】 第一の培養培地、または第二の培養培地のいずれか、また
    は第一および第二の培養培地の両方が、化学的に定義される請求項１９に記載の
    方法。
21. 【請求項２１】 第一および第二の培養培地が、非ヒト成分を含まない請求
    項１９に記載の方法。
22. 【請求項２２】 段階（ａ）で、線維芽細胞が、約１×１０⁵細胞／ｃｍ²か
    ら約６．６×１０⁵細胞／ｃｍ²までの間の密度で蒔かれる請求項１９に記載の方
    法。
23. 【請求項２３】 線維芽細胞が、新生男児包皮、臍帯、真皮、腱、肺、尿道
    、角膜基質、口腔粘膜、および腸から構成される群から選択される組織から由来
    する請求項１９に記載の方法。
24. 【請求項２４】 （ａ）第一の細胞培養培地中の培養容器中の多孔性膜上に
    、細胞外マトリックスを合成する能力のある線維芽細胞を蒔き、 （ｂ）多孔性膜上で約８０％から約１００％までの間の融合まで第一の細胞培養
    培地中の段階（ａ）の線維芽細胞を培養し； （ｃ）段階（ａ）の線維芽細胞を刺激して、第二の培養培地中の培養条件下で細
    胞外マトリックス成分を合成、分泌、および組織化させ、 （ｄ）細胞が、合成細胞外マトリックス層内に含まれる培養線維芽細胞と共に、
    厚さ約３０から約１１０ミクロンの合成細胞外マトリックスの層を形成するまで
    、線維芽細胞の培養を継続し、 細胞外マトリックスが、 （ｉ）４分の１差の６７ｎｍ結合パターンを示す原線維および原線維束の包装組
    織化を示す原線維性コラーゲン； （ｉｉ）デコリン；および （ｉｉｉ）グリコサミノグリカン を包含し、そして該細胞外マトリックスが、培養条件の間じゅう外因性マトリッ
    クス成分または合成構成員の不在下で、培養線維芽細胞によって産生され； （ｅ）段階（ｄ）の合成細胞外マトリックスの頂部表面に上皮細胞を蒔き、そし
    て、 （ｆ）培養条件下で段階（ｅ）の上皮細胞を刺激して、合成細胞外マトリックス
    層内に含まれる培養線維芽細胞、および上皮細胞の第二の層と共に、細胞外マト
    リックスの二層組織構築物を形成することを特徴とする、二層培養組織構築物を
    産生する方法。
25. 【請求項２５】 前記細胞外マトリックスを合成する能力のある線維芽細胞
    が、新生男児包皮、真皮、腱、肺、軟骨、尿道、角膜基質、口腔粘膜、および腸
    から構成される群から選択される組織から由来する請求項２４に記載の方法。
26. 【請求項２６】 前記上皮細胞が、ケラチノサイト、角膜の上皮細胞、口腔
    粘膜から得られる上皮細胞、食道の上皮細胞、および尿道上皮細胞から構成され
    る群から選択される請求項２４に記載の方法。
27. 【請求項２７】 方法が、段階：（ａ）約１×１０⁵細胞／ｃｍ²から約６．
    ６×１０⁵細胞／ｃｍ²までの間の密度で、第一の化学的に定義された細胞培養培
    地中の培養容器中の多孔性膜上に線維芽細胞を蒔き、 （ｂ）約８０％から約１００％までの間の融合まで第一の化学的に定義された細
    胞培養培地中で段階（ａ）の線維芽細胞を培養し； （ｃ）段階（ａ）の線維芽細胞を刺激して、第二の化学的に定義された培養培地
    中の細胞を培養することによって細胞外マトリックス成分を合成、分泌、および
    組織化させ、 （ｄ）細胞が、合成細胞外マトリックス層内に含まれる培養線維芽細胞と共に、
    少なくとも厚さ約３０ミクロンの合成細胞外マトリックスの層を形成するまで、
    線維芽細胞の培養を継続し、 細胞外マトリックスが、 （ｉ）４分の１差の６７ｎｍ結合パターンを示す原線維および原線維束の包装組
    織化を示すＩ型およびＩＩＩ型コラーゲン； （ｉｉ）デコリン； （ｉｉｉ）テナスシン；および （ｉｖ）グリコサミノグリカン を包含し、 そして該細胞外マトリックスが、培養条件の間じゅう外因性マトリックス成分
    または合成構成員の不在下で、培養した皮膚の線維芽細胞によって産生され； （ｅ）段階（ｄ）の合成細胞外マトリックスの頂部表面にケラチノサイトを蒔き
    、そして、 （ｆ）培養条件下でケラチノサイト細胞を培養して、上皮層を形成することを包
    含し、 上皮細胞層が、基底層、超基底層、顆粒層および角質層を示すケラチノサイト
    の多層化、層化、分化された層であり、 そして、二層培養皮膚構築物が、第一および第二層の接合点に存在する基底膜
    を有することを特徴とする、構造支持体スカホードまたは外因性マトリックス成
    分の不在下で、その上に沈着した皮膚層および表皮層を包含する二層培養皮膚構
    築物を産生する方法。
28. 【請求項２８】 請求項１、８、９または１６のいずれかの培養組織構築物
    を、その治療を必要とする患者に移植または植付けすることを特徴とする、患者
    への培養組織構築物の移殖または植付けの方法。
29. 【請求項２９】 （ａ）約８０％から約１００％までの間の融合で、細胞培
    養培地中で培養容器中の多孔性膜上に細胞外マトリックスを合成する能力のある
    線維芽細胞を蒔き、 （ｂ）線維芽細胞を刺激して、第二の培養培地中の培養条件下で細胞外マトリッ
    クス成分を合成、分泌、および組織化し、そして （ｃ）細胞が、合成細胞外マトリックス層内に含まれる培養線維芽細胞と共に、
    少なくとも厚さ約３０ミクロンの合成細胞外マトリックスの層を形成するまで、
    線維芽細胞の培養を継続し、 細胞外マトリックスが、 （ｉ）４分の１差の６７ｎｍ結合パターンを示す原線維および原線維束の包装組
    織化を示す原線維性コラーゲン； （ｉｉ）テナスシン；および （ｉｉｉ）グリコサミノグリカン を包含し、 そして該細胞外マトリックスが、培養条件の間じゅう外因性マトリックス成分
    または合成構成員の不在下で、培養線維芽細胞によって産生されることを特徴と
    する、培養組織構築物を産生する方法。
30. 【請求項３０】 構築物が、物理的単位完全性および組織様取扱い特性を有
    する上で凝集性である、請求項１−１８のいずれかに記載の構築物。