HU209878B - Method for producing polipeptids in a new escherichia coli expression - Google Patents

Method for producing polipeptids in a new escherichia coli expression Download PDF

Info

Publication number
HU209878B
HU209878B HU842749A HU274984A HU209878B HU 209878 B HU209878 B HU 209878B HU 842749 A HU842749 A HU 842749A HU 274984 A HU274984 A HU 274984A HU 209878 B HU209878 B HU 209878B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
plasmid
vector
bgh
host cell
sequence
Prior art date
Application number
HU842749A
Other languages
English (en)
Other versions
HUT34543A (en
Inventor
Marian Gorecki
Menachem Zeevi
Tikva Vogel
Haim Aviv
Amos Oppenheim
Elisha Zeelon
Avigdor Levanon
Original Assignee
Bio Technology General Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Bio Technology General Corp filed Critical Bio Technology General Corp
Publication of HUT34543A publication Critical patent/HUT34543A/hu
Publication of HU209878B publication Critical patent/HU209878B/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0089Oxidoreductases (1.) acting on superoxide as acceptor (1.15)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/61Growth hormone [GH], i.e. somatotropin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • C12N15/73Expression systems using phage (lambda) regulatory sequences
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/02Preparation of peptides or proteins having a known sequence of two or more amino acids, e.g. glutathione
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/806Antigenic peptides or proteins
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/808Materials and products related to genetic engineering or hybrid or fused cell technology, e.g. hybridoma, monoclonal products
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/82Proteins from microorganisms
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/82Proteins from microorganisms
    • Y10S530/825Bacteria
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S930/00Peptide or protein sequence
    • Y10S930/01Peptide or protein sequence
    • Y10S930/12Growth hormone, growth factor other than t-cell or b-cell growth factor, and growth hormone releasing factor; related peptides

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Measurement And Recording Of Electrical Phenomena And Electrical Characteristics Of The Living Body (AREA)
  • Magnetic Resonance Imaging Apparatus (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Feed For Specific Animals (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)
  • Fodder In General (AREA)

Description

A találmány tárgya eljárás egy új E. coli kifejező rendszerben polipeptidek előállítására.
A genetikai manipulációs technika (génsebészet) egyik formája eukarióta forrásból származó idegen DNS szekvencia beiktatása Escherichia coli-ba, vagy más mikroorganizmusokba. A genetikai manipulációs technika egy további finomításának tekinthető az így nyert mikroorganizmus indukálása az idegen DNS által kódolt polipeptidek termelésére. A polipeptidek előállítása kétlépéses folyamatnak tekinthető, ahol minden egyes lépésen belül több al-lépés található. A két fő lépés az átírás (transzkripció) és a transzláció. Hogy a polipeptidet hatásosan és kellő mennyiségben termelhessük, a folyamat mindkét lépésének hatékonynak kell lennie. Az átírás az mRNS termelése a génből (DNS). A transzláció a polipeptid termelése az mRNSből.
Az átírási folyamat kritikus al-lépése a beindítás (iniciáció), azaz az RNS polimeráz kötése a promoteroperátor területre. Apromoter-területet alkotó dezoxiribonukleotid bázisok, szekvenciája változhat és ezáltal hatással lehet a promoter viszonylagos hatékonyságára. A hatékonyság függ az RNS polimeráz promoterhez való affinitásától.
A transzláció hatékonyságára az mRNS stabilitása hat. Az mRNS megnövekedett stabilitása javult transzlációt tesz lehetővé. Bár az mRNS stabilitásának pontos meghatározó tényezői tökéletesen nem ismertek, az ezért ismert, hogy az mRNS másodlagos szerkezetének, amint azt a bázisainak szekvenciája meghatározza, szerepe van a stabilitásban.
A transzláció beindító al-lépése magában foglalja a riboszóma kötését az mRNS-en levő egyik bázis-szekvenciához, amely Shine-Dalgamo szekvenciaként vagy riboszóma kötőhelyként (RBS) ismeretes. A polipeptidek szintézise akkor kezdődik el, amikor a riboszóma végigvándorol az mRNS mentén a transzláció AUG start kodonjáig. Általában ezek a kodonok mintegy 10 bázis távolságra befelé találhatók a Shine-Dalgamo helytől. Kimutatták, hogy az mRNS másodlagos szerkezete a Shine-Dalgarno szekvencia és az AUG kodon környezetében, valamint a Shine-Dalgarno szekvencia és az AUG kodon közti távolság egyaránt kritikus szerepet játszik a transzláció hatékonyságának meghatározásában. Más tényezők még, amelyek a transzláció hatékonyságára hatnak, az idő előtti befejezés és a legyengülés. A transzláció hatékonyságát javítani lehet a legyengülést okozó helyek eltávolításával.
Egy olyan nehézség, amellyel szembe kell nézni a nagymennyiségű eukarióta polipeptid baktérium-sejtekben történő termelésére irányuló kísérletekben az, hogy a nagymennyiségű mRNS-t termelő sejtek nem képesek hatékonyan növekedni. Ezt a nehézséget ki lehet küszöbölni a transzkripció megelőzésével egy olyan folyamat segítségével, amely represszióként ismert. A represszió esetében a géneket kikapcsolják egy fehérje-inhibitor (represszor fehérje) segítségével, amely az operátor helyhez kötődve meggátolja a transzkripciót. Miután a sejtek a kívánt sejtsűrűségig nőttek, a represszált géneket vagy a represszor elroncsolásával vagy induktorként olyan ismert molekulák hozzáadásával, amelyek a represszor hatását meghaladják aktiválják.
Számos közlemény található az eukarióta géneknek λ-bakteriofágból származó PL promotort tartalmazó plazmidokban történő klónozásával kapcsolatban [Bernard, Η. V. és munkatársai: Gene (1979) 5, 59; Derom,
C. és munkatársai: Gene (1982) 17, 45; Gheysen, D. és munkatársai: Gene (1982) 17, 55; Hedgpeth, J. és munkatársai: Mól. Gén. Génét. (1978) 163, 197; Remaut, E. és munkatársai: Gene (1981) 75, 81; és Derynck, R. és munkatársai: Natúré (1980) 287, 193.] Ezen kívül a 041 767 számú, 1981. december 16-án publikált európai szabadalmi bejelentés is ír le λ-bakteriofágból származó PL promotert tartalmazó kifejeződést közvetítő (expressziós) vektorokat. Ezeknek az irodalmaknak azonban egyike sem írja le a Cn riboszomális kötőhely alkalmazását.
A λ-bakteriofágból származó PL promotert tartalmazó vektor és a Cn riboszomális kötőhely alkalmazását leírták már [Oppenheim, A. B. és munkatársai: J. Mól. Bioi. (1982) 158, 327; és Shimatake, H. és Rosenberg, M.: Natúré (1981) 292, 128). Ezek a közlemények a Cn fehérje megnövekedett szintű termelését írják le, de nem ismertetik az eukarióta fehérjék termelését.
1982-ben Shatzman és Rosenberg mutattak be egy posztert a 14. Miami Téli Szimpóziumon (kivonat a 98. oldalon 1982). Miami Téli Szimpóziumon (kivonat a 98. oldalon 1982). Ez a kivonat egy λ-bakteriofágból származó PL-t tartalmazó vektor, Nut és a Cn riboszomális kötőhely alkalmazásának nem teljes értékű felfedezését nyújtja egy „eukarióta” polipeptid szintetizálására (az SV40 kis T antigénje valójában nem eukarióta polipeptid, hanem vírus-fehérje) a sejt-fehérjére számítva több, mint 5% mennyiségben, egy meg nem nevezett bakteriális gazdasejtben. Az alkalmazott operátort nem határozták meg. Sem a replikáció eredetét, sem a szelektálható fenotípushoz tartozó gént nem azonosították. Erről a rendszerről, amelyhez a vektort alkalmazták, azt írták le, hogy bizonyos gazda-lizogéneket is foglal magába, amelyekbe a vektort stabilan lehet transzformálni. A jelen találmány egyik kiviteli formája, azaz a pMG 100, bizonyos hasonlósággal rendelkezik ehhez a vektorhoz. Ez azonban nincs egy gazda-lizogénbe transzformálva, inkább olyan megfelelő E. coli gazda-törzsekbe, amelyek a hőlabilis Cj represzszort és az N-gént tartalmazzák, de amelyekből a lizogén maradékát eltávolítottuk. Ezen túl, amikor ezeken bGH és hGH analógok előállítására alkalmazzuk, a nevezett fehérjék a teljes sejt-fehérje több, mint 20%-át alkotják.
A jelen találmány egy másik kiviteli formájában a CD-től eltérő riboszomális kötőhelyeket alkalmazunk. Ezen kívül a jelenleg legelőnyösebb vektorokban, a pND5-ben és származékaiban, nem lényeges szekvenciákat távolítunk el, hogy olyan vektort alkossunk, amely olyan nagy mennyiségben teszi lehetővé a polipeptid termelését, amely több, mint 10%-kal több, mint amelyet pMG 100-zal nyerünk.
HU 209 878 Β
A 4 578 355 számú amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás egy olyan megoldást ismertet, amelyben a szerző jelzi ugyan azt, hogy a gazdaszervezet fontos (8. oldal 17. sor), de nem adja meg az alkalmas gazdaszervezetet. A megoldás továbbá a λ mutáns alkalmazásától függ, amelyet viszont nem határoz meg pontosabban (4. oldal 20. sor). A szerző azt is jelzi, hogy a gazdaszervezet lizogéneket tartalmaz (8. oldal
18. sor), ellentétben a találmánnyal, amelyben a gazdaszervezet nem tartalmaz lizogéneket. A nevezett szabadalmi leírás egy eukarióta gén, a majom metallotionein-gén klónozását és kifejeződését (7. oldal 18. sor) említi, de nem ad részleteket ezzel kapcsolatban. Leírja, hogy a Cn riboszomális kötő területen egyik nukleotidnak sem változtatták meg sem a szekvenciáját, sem a helyét (3. oldal, 27. sor). A találmányban viszont ilyen változások lehetségesek.
Jelenleg a szakterületen nincsen olyan találmány, amely a szarvasmarha vagy ember növekedési hormonok PL-Cirt tartalmazó vektorrendszerének sikeres kifejeződésére, biológiai aktivitással bíró bGH vagy hGH analógok termelésére, ilyen analógokat tartalmazó kompozíciókra, vagy olyan indukciós módszerekre vonatkozna, amelyek a gazdaszervezet által termelt teljes fehérje-mennyiség több, mint 20%-nyi mennyiségét kitevő polipeptid-mennyiség elérését teszi lehetővé.
Az egyetlen felfedezés a szakterületen, amely bGH analógok genetikailag manipulált vektorokkal transzformáit gazdaszervezetek segítségével történő termelésére vonatkozik, magában foglalja a Trp promoter alkalmazását egy olyan bGH analóg termelése érdekében, amely a természetes bGH fenilalamin-formájának N-terminálisánál Met aminosavval rendelkezik [Seeburg, P. H. és munkatársai: DNS (1983) 2, 37].
Az egyetlen felfedezés a szakterületen, amely genetikailag manipulált vektorokkal transzformált gazdaszervezetek segítségével hGH analógok termelésére vonatkozik, magában foglalja a Lac és Trps promoterek alkalmazását egy olyan hGH analóg termelése érdekében, amely a természetes hGH N-terminálisánál Met aminosavval rendelkezik [Goedell, D. V. és munkatársai: Natúré (1979) 281,544].
A találmány lényegét a következőkben foglaljuk össze.
Ez a találmány olyan, javított kifejeződést közvetítő vektorra vonatkozik, amely a Ct hólabilis represszort tartalmazó megfelelő bakteriális gazdasejtbe, nevezetesen Escherichia coli-ba bevezetve a gazdasejtet képessé teszi
- a gazdasejt hőmérsékletének növelésével olyan hőmérsékletre, amelyen a represszor elroncsolódik - a vektorba beiktatott gén kifejeződésének és a gén által kódolt polipeptidek termelésének megvalósítására, amely vektorra jellemző,
- olyan kettős szálú DNS-molekula, amely 5'-»3' irányban a következőket foglalja magában:
- egy DNS-szekvenciát, amely a lambda-bakteriofágból származó PLOL promotert és operátort tartalmazza;
- a gazdaszervezet által termelt N antiterminátor fehérjéhez való kötésre szolgáló N-hasznosító helyet;
- egy olyan DNS-szekvenciát, amely riboszomális kötőhelyet tartalmaz, amely lehetővé teszi, hogy a kívánt gén mRNS-e a gazdaszerveten belül a riboszómához kötődjön;
- egy ATG beindító (iniciációs) kodont vagy egy olyan DNS szekvenciát, amely átalakul ATG beindító kodonná a kívánt génnek a vektorba történő beépítésekor; és
- egy restrikciós enzim-helyet a kívánt génnek a vektorba történő beépítéséhez, amely az ATG beindító kodonnal azonos fázisban van;
- a vektorra jellemző továbbá, hogy ezeken felül magában foglal egy olyan DNS szekvenciát, amely egy replikációs induló („origó”) helyet tartalmaz egy olyan bakteriális plazmidból, amely a gazdasejtben autonóm replikációra képes, valamint egy olyan DNS szekvenciát, amely egy szelektálható vagy azonosítható fenotípusos jellemzővel társult gént tartalmaz, amely érvényre jut, amikor a vektor jelen van a gazdasejtben. Előnyös vektorok a pMG 100 és pND5.
A kívánt polipeptideket, mint pl. növekedési hormonokat, ezen belül marha-, sertés-, csirke- vagy emberi növekedési hormonokat, szuperoxid diszmutázt, apoprotein E-t, a száj- és körömfájás vírus 1. vírus-fehérjéjét, a S. aureus ,A” fehérjéjét, interleukin ΠΙ-at, valamely enzimet, vagy ezek analógjait kódoló géneket, azaz cDNS-eket be lehet iktatni a vektor restrikciós enzim-helyére, ilyen módon plazmidokat hozva létre. A plazmidokat viszont be lehet vezetni megfelelő gazdaszervezetbe, ahol a géneket ki lehet fejezni és a kívánt polipeptideket előállítani. A bGH-hoz előnyös plazmidok a pRec 2/3 és pROll; a hGH-hoz a pTV18(l) és a pTV 104(2). A megfelelő gazdaszervezetek között találjuk az Escherichia coli A 1637, A 1645, A 2602 és A 1563 törzseket, ezek közül jelenleg az A 1637-et tartjuk a legelőnyösebbnek.
Az így nyert gazda-vektor rendszereket alkalmazhatjuk polipeptidek előállítására. A plazmidokat tartalmazó gazdasejteket olyan megfelelő körülmények között növesztjük, amely lehetővé teszi a polipeptidek termelését, és az így nyert polipeptideket kinyerjük. Jelenleg a legelőnyösebb körülményeknek a kb. 42 °C hőmérsékleten 10-30, előnyösen 15 percig tartó növesztést tartjuk, amelyet további növesztés követ 37-39 °C hőmérsékleten annyi ideig, hogy a teljes növesztési időtartam 60-90 perc legyen, előnyösen a 38-39 °C hőmérsékleten történő növesztés 75 percig tart. Jelenleg előnyös tápközegnek a glükózzal kiegészített laktalbumin-hidrolizátumot vagy az agy-szív főzetet tartjuk.
A gazdasejt-vektor rendszert használva a bGH és a hGH analógjait állítottuk elő. Ezek az analógok állatorvosi és orvosi készítmények hatóanyagként alkalmazhatók. A megfelelő analógokat közvetlenül vagy ilyen készítmények formájában alkalmazni lehet szarvasmarháknál tej- vagy hústermelés fokozására, vagy embereknél növekedési hormon-hiány kezelésére.
HU 209 878 Β
Az ábrák leírása
1. ábra pMG 100 kifejeződést közvetítő vektor megalkotása.
Ezt a plazmidot a λ-fág DNS HaeIH (38 150. hely) és Sau31 (38 362. hely) restrikciós helyei közötti fragmensének ΗραΙ-gyel és EamHI-gyel hasított pKC 30 plazmid DNS-be történő beiktatásával építettük fel. A HaeIII-Sau3A fragmenst nutR, tR1, cy fenotípust és Cn fehérje (CírRBS) riboszomális kötőhelyét hordozza. A Cn-RBS-t tartalmazó DNS szubklónozása pKC 30-ba a pMG 100-at hozza létre, amely egy egyedi BamHI restrikciós helyet tartalmaz a Cn-RBS AIG beindulási kodonja után jobbra és egy Ndel restrikciós helyet az ATG tripleten belül (lásd a lap alján a beiktatott részletet). A zárójelben levő számok a λ-fág DNS-en levő restrikciós helyek elhelyezkedését jelzik.
2. ábra A pRec 2/3 plazmid megalkotása
Egy bGH cDNS-t tartalmazó D4 plazmidot emésztettünk Haell-vei. Az így létrejött 1600 bp méretű nagy fragmenst tisztítottuk, és 37 °C hőmérsékleten 5 perces emésztésnek tettük ki 5 egység SÍ exonukleázzal. Egy szintetikus EcoRI kapcsolót (linker) kötöttünk hozzá kapcsolással (ligációval), amely EcoRI kapcsoló szekvenciája:
GGAATTCC
CCTTAAGG
Az így keletkezett terméket EcoRI-gyel elhasítottuk és egy EcoRI-gyel elhasított pBR 322-be iktattuk be. Egy pALRl jelzésű kiónt izoláltunk, amely EcoRIes hasítással egy 1200 bp méretű fragmens keletkezett
AATTCCCA...
GGGT...
szekvenciával az 5' végen. Egy ilyen szekvencia képződése azt demonstrálja, hogy a pALRl egy EcoRI restrikciós helyet tartalmaz, amely magában foglalja az autentikus bGH 1. számú (fenilalanin) gyökének TTC kodonját. A pALRl-et Esti-gyei részleges hasításnak vetettük alá 37 °C-ban, és 2 percenként vettünk mintát. Az emésztett anyagot HindHI kapcsolókkal (linkerekkel) kötöttük össze, és EcoRI-gyel, valamint HindlHmal hasítottunk. A kívánt konstrukciók kiválogatását restrikciós enzimes térképezéssel végeztünk, annak megállapítására, hogy a PstI érintetlen maradt a bGM kódoló területen belül (azaz a PstI emésztés részleges volt). A bGH cDNS-t tartalmazó fragmenst izoláltuk, és pBR 322-be az EcoRI és HindHI restrikciós helyek közé szubklónoztuk, így nyerve a pAL500-at. Azután a szubklónozott bGH cDNS fragmenst a pAL500-ból EcoRI-gyel és HindíH-mal kivágtuk, „feltöltöttük” DNS-polimeráz „Klenow” fragmenssel, és beiktattuk a pMG 100 expressziós vektorba (lásd 1. ábra), amelyet a BamHI helyen kinyitottunk, és szintén „feltöltöttünk” Klenow-fragmenssel. Az így nyert vektor, a pRec 2/2, egy módosított bGH-t fejez ki, amely amino-terminálisánál a következőképpen van megváltoztatva:
Met Asp Gin Phe1 Pro2 ... bGH
A pRec 2/2-t Esíl-gyel emésztettük, és a PL promotert, valamint a bGH gén 5' végét (,A” fragmensnek jelölve) tartalmazó fragmenst izoláltuk. Ezt a fragmenst egy pAL500-ból származó PstI fragmensthez („B” fragmensnek jelölve) kapcsoltuk. Az így keletkezett vektor, a pRec 2/3, egy módosított bGH-t fejez ki, amely aminoterminálisán a következőképpen van megváltoztatva:
Met Asp Gin Phe1 Pro2 ... bGH
3. ábra pND5, pND55 és pROll expressziós vektorok megalkotása pOG7 plazmidot [A. Oppenheim, S. Gottesman és M. Gottesman: J. Mól. Bioi. (1982) 158, 327] hasítottunk AWel-gyel. A PL promotort, nutL-t, tR-t és CnRBS-t hordozó nagy fragmens végeit összekapcsoljuk, így pND5 expressziós vektort nyertünk. Ezt a pND5 vektort DNS-t Ndel-gyel felnyitottuk. A pRec 2/3-ból (2. ábra) származó, a bGH cDNS-t tartalmazó Ndel fragmensnek a beiktatása egy pROll plazmidot eredményez, amely a 2. ábránál leírt módosított bGH jobb kifejeződését eredményezi, mint a pRec 2/3. A
TATGAGCTCA ACTCGAGTAT szekvenciájú szintetikus kapcsoló beiktatása az Ndelgyel hasított pOG7-be a pND55 expressziós vektort eredményezi, amely egy egyedi SacI restrikciós helyet tartalmaz az ATG előtt. Amikor a pND55-öt Sacl-gyel hasítjuk és DNS polimeráz „Klenow” fragmenssel kezeljük, egy ATG beindító kodont nyerünk, amely a PL promotort és a Cn-RE5-t követi. Ez a vektor számos, az ATG beindító kodont nélkülöző eukarióta gének expressziójához alkalmas.
4. ábra pTV 18(1) és pTV 104(2) megalkotása.
pTVHGH plazmidot úgy készítettünk, hogy a hGH-t kódoló cDNS-t a pBR 322 HindHI helyére klónoztuk, standard módszerekkel [Meth. Enzymol. (1979) 68, 75]. Ezt a plazmidot Hínz/M-mal emésztettük. Az így nyert 800 bázispár méretű fragmenst tisztítottuk és tovább emésztettük Em/DII-vel, és feltöltöttük DNS polimeráz „Klenow” fragmenssel. Ez a kezelés eltávolítja a hGH első 16 aminosavjához tartozó kodonokat. Az így nyert DNS-fragmenst egy szintetikus kapcsolóval kapcsoltuk össze, amely a Met14-től helyreállítja a hGH szekvenciához tartozó kodonokat, és regenerál egy Ndel restrikciós helyet a Met14-hez tartozó ATG kodon előtt. AWel-gyel történő kezelés után ezt a félszintetikus DNS-t egy Ndelgyel felnyitott pND5 vektorba iktatjuk be. Az így nyert pTV 18(1) plazmid a hGH-t a PL promoter ellenőrzés alatt fejezi ki. Ez a hGH egy olyan analóg, amelyből hiányzik az első 13 aminosav-gyök, és az N-terminálisán Met14-gyel rendelkezik.
pTV 18(1) plazmidot részlegesen emésztettünk /Vdd-gyel, 37 °C-on, és a 2 percenként vett mintákat összekapcsoltuk egy szintetikus kapcsolóval, amely a hGH 1-13 aminosavainak kodonjait tartalmazta:
TATGTTCCCAACCATTCCATTATCCCGTCTGTTCGACAACGC
ACAAGGGTTGGTAAGGTAATAGGGCAGACAAGCTGTTGCGAT
HU 209 878 Β
A kapcsoló szintén komplementer a pTV 18(l)-en levő Ndel helyre és a komplett hGH génnek azokra a helyeire, amelyek a pND5 expressziós vektor (3. ábra)
ATG beindító kodonjaival fázisban vannak. A kívánt konstrukció kiválogatását restrikciós enzimes térképe- 5 zéssel végeztük annak megállapítására, hogy a linker a hGH szekvencia 5'-végére került, helyes orientációban, így a keletkező pTV 104(2) plazmid olyan natív hGH-t fejez ki, amely az N-terminálisnál egy extra metionint tartalmaz. 10
5. ábra a pAL Trp 46 vektort mutatja be, amely a Trp promotert és a Trp E gén első hét aminosavát tartalmazza, amely Trp E gén a β-gal aktozidáz génnel van átírás szerint fuzionálva.
6., 7. és 8. ábrák a (Tac) expressziós vektorok sorozatát 15 mutatják be, ezek a Trp promoter és a Lac operátor egy részét tartalmazzák, amelyeket egy kívánt gén és a bGH Tac promoter szabályozása alatti kifejeződés beiktatására szolgáló restrikcióshelyek követnek. 20
9. és 10. ábrák expressziós vektorokat mutatnak be,
CCATATGTCCTTGTCCGGCCTGTTTGCCAACGCTGTGCT amelyek bGH cDNS-t tartalmaznak, a hisztidin promoter szabályozása alatt.
11. ábra All. ábra bGH gén beiktatását mutatja be egy expressziós vektorba a Lac promoter szabályozása alatt.
12. ábra a bGH gén kifejeződését mutatja be az
OmpF promoter szabályozása alatt.
13. ábra Met^bGH analóg, pAL40I, pND6 és pNDll kifejeződést közvetítő expressziós vektorok megalkotása megváltozott restrikcióshelyekkel.
A pAL401-et, amely a bGH-nak olyan módosított formáját fejezi ki, amelyben a bGH amino-terminálisánál az első három aminosav hiányzik (Met4 bGH), a következők hármas kapcsolásával hoztuk létre:
a) egy 623 bázispárból álló bGH DNS fragmens, amelyet PvuII-vel és //íuz/III-mal vágtunk ki pAL 500ból;
b) egy kapcsoló, amelyet két DNS szál szintézisével képeztünk, amely szálakat tisztítás után termosztáltunk
-t nyerve, amelyet azután DNS polimeráz „Klenow” fragmenssel feltöltöttünk, majd AWel-gyel és PvuII-vel elhasítottunk, így egy 58 bázispárból álló fragmenshez jutottunk, amelyet kinyertünk és tisztítottunk; és
c) pNDll, amelyet úgy nyertünk, hogy egy pCG7 expressziós vektort [Oppenheim és munkatársai, J. Mól. Bioi. 158, 327 (1982)] a 7/ínríin hely és az Ndel helyek egyikének (az ATG beindító kodontól távol) eltávolításával megváltoztattunk, így pND6-ot kaptunk, majd HindXY. kapcsolókat vezettünk be egy SaR helyre. 37 °C-on Ndel-gyel emésztettünk, és a 2 percenként vett mintákat ligáltuk a kapcsolóval. Ezután restrikciós enzimes térképezéssel ellenőriztük, hogy csak az egyik Ndel távolítódott-e el. Ezután Klenowenzimmel feltöltöttük a végeket, a 13. ábránál ismertetett módon szelektáltuk,és elvégeztük a Hindül-vágást, majd újra Klenow-enzimes feltöltést végeztünk.
14. ábra Az amino-terminálisnál metioninnal módosított autentikus bGH és a bGH különböző analógjainak megalkotása.
a) pAL401 plazmidot kezeltünk Ndel-gyel. Egy ATG beindító szignált és a natív bGH amino terminálisánál levő első három aminosavhoz tartozó kódot tartalmazó szintetikus (foszforamidit módszenei szintetizált) DNS kapcsolót (linkért) kapcsoltunk az Ndel helyhez. Az így nyert pAL601 vektor olyan natív bGH kifejeződését eredményezi, amely egy extra metionin gyököt tartalmaz az amino terminálisnál.
b) Az a) pontban leírt stratégiát alkalmazva, de az oligodezoxi-ribonukleotid kapcsoló szerkezetét módosítva egy sor módosított marha növekedési hormont kódoló vektort hoztunk létre. A módosított növekedési hormonok metioninnal indulnak az N-terminálisnál, ezt követi a 20 természetben előforduló aminosav bármelyike az 1 és 2 helyzetekben, és a természetben előforduló 20 aminosav bármelyike a Glu, Gin, Lys, Met vagy Trp kivételével a 3. helyzetben. A 4. helyzettől a COOH-terminálisig a szekvencia a natív 6GH megfelelő szekvenciájával azonos.
15. ábra Tibia-vizsgálat
Ez az ábra az autentikus bGH és a pRec 2/3 bGH analóg hatásának összehasonlítását mutatja a hipofízisüktől megfosztott patkányok csontlemezének növekedésére.
16. ábra pTV333(31) konstruálása
A pTV333(31) plazmid (deponálási szám: ATCC 39 981) az új, Met-Leu-hGH szekvenciájú hGH analóg expresszióját biztosítja. A pTV333(31) plazmidot úgy állítottuk elő, hogy a pTV18(l) plazmidban (lásd 4. ábra) levő Met14hGH 5' végéhez egy szintetikus oligonukleotid szekvenciát kapcsoltunk. A szintetikus oligonukleotid szekvencia a következő:
5' TATGTTGTTCCCAACCATTCCATTATCCAGACTTTTTGACAACGC
ACAACAAGGGTTGGTAAGGTAATAAGGTCTGAAAAACTGTTGCGAT
17-18. ábra A pTV18(l) és pTV104(2) által termelt hGH analógok aktivitására vonatkozó tesztek eredményét mutatja. A teszteket a 9. példában ismertetjük.
19. ábra A SÓD DNS és aminosavszekvenciája
Az ábra a kettősszálú cDNS molekula kódoló szálá- 60 nak nukleotid szekvenciáját mutatja, amely a humán citoplazma szuperoxid-diszmutázt kódolja. Az ábrán a cDNS által kódolt humán szuperoxid-diszmutáz-polipeptid aminosavszekvenciáját is bemutatjuk.
20. ábra pNd-SODm-12 konstrukciója
A pSODNG-10 plazmidot Ndel-gyel emésztettük,
HU 209 878 Β és öt egység borjúbél alkálikus foszfatázzal kezeltük 37 °C-on 30 percig. A kapott DNS-t a következő szekvenciával rendelkező szintetikus kapcsolóval ligái tűk:
AGCTTCCATATGGA
AGGTATACCTTCGA így a pSODNN-12 plazmidot kaptuk. A szintetikus kapcsolót foszforamidit módszerrel készítettük [Beaucage, S. L., Carnthers, Μ. H., Tetrahedron Letters 22, (20) 1859-1862 (1961): Deoxynucleoside Phosphoranidites - A New Class of Key Intermediates fór Deoxypolynucleoside Synthesis], Ezt a plazmidot Ndelgyel hasítottuk, így 590 bázispár méretű SODcDNS fragmenst kaptunk. Ezt a fragmenst izoláltuk. A pND plazmidot (lásd 3. ábra) Ndel-gyel hasítottuk, majd borjúbél alkálikus foszfatázzal kezeltük, és az 590 bp SODcDNS fragmenshez ligáltuk. A kapott plazmiddal E. coli (1645 törzs) törzset transzformáltunk, így háromféle kiónt kaptunk. Az egyik, amelyet pNdSODnn-12 jellel jelöltünk, növesztésre és indukcióra szuperoxid-diszmutáz aktivitással rendelkező proteint termelt. Ezt a plazmidot ATCC 53 166 sz, alatt deponáltuk.
21. ábra p802 plazmid konstruálása
A p802 plazmid egy olyan cDNS klón, amely az érett sertés növekedési hormon (pGH) teljes kódoló szekvenciáját tartalmazza. Az iniciáló kodon mellett egy Ndel restrikciós hely található. A gén 3' vége szintén egy Ndel restrikciós helyhez kapcsolódik.
Apl07 plazmidot úgy állítottuk elő, hogy egy Pstlgyel hasított pBR322 plazmidba pGH cDNS-t építettünk be. A cDNS-t sertés agyalapi mirigy szövetből készítettük, C-farokkal láttuk el polinukleotid kináz segítségével. A pBR322-t a Pstl-gyel emésztettük és G-farokkal láttuk el polinukleotid kináz segítségével, majd ligáltuk a C-farokkal ellátott cDNS-sel. A pozitív kiónokat a D4 plazmidból (ATCC 31 826) izolált 720bp hosszúságú bGH-ffagmenshez való hibridizációval azonosítottuk. Egy pozitív kiónt, amely a teljes pGH gént tartalmazza, pl07-ként jelöltünk. A pl07 a pGH teljes kódoló szekvenciáját és a vezetőszekvenciát tartalmazza.
Az érett pGH kódoló szekvenciáját úgy kaptuk meg, hogy a DNS szekvenciát Hgi Al restrikciós endonukleázzal emésztettük, majd egy szintetikus DNS kapcsolót kapcsoltunk hozzá, amely a pGH génen belül a HgiAI restrikciós helytől az ATG iniciáló kodonig terjed. A szintetikus kapcsolót úgy készítettük, hogy az ATG iniciáló kodonnál egy Ndel restrikciós helyet tartalmazzon, és az Ndel helytől felfelé egy Eco Rí helyet. A szintetikus kapcsoló szekvenciája:
5' TGAATTCATATGTTCCCAGCTATGCCTCTATCTAGTCTATTCGCTAACGCTGT 3' ACTTAAGTATACAAGGGTCGATACGGAGATAGATCAGATAAGCGATTGCGACA GCTCAAGCTTA 3'
CGAGTTCGAAT 5'
A p802 plazmidot a pGH 22-ből állítottuk elő úgy, hogy a pGH cDNS 3' végénél található Pstl helyet Ndel hellyé formáltuk, szintetikus DNS kapcsolók segítségével.
22. ábra p3007 konstrukciója
A p3007 plazmid a Met-pGH expresszióját a PL promoter és a cll riboszóma kötőhely kontrollja alatt végzi.
A p902 expressziós vektort úgy állítottuk elő, hogy a p802-ből Ndel-gyel végzett hasítás után izolált, pGH cDNS-t pND5 expressziós vektorba építettük be. A p902 plazmid olyan pGH változatot fejez ki, amely 2-3 kilodaltonnal kisebb, mint az autentikus pGH. Ez nyilvánvalóan a cDNS szekvenciában található értelmetlen kodon 45 eredménye. Ennek kiigazítására, és olyan plazmid előállítására, amely a teljes méretű pGH-t fejezi ki, a p902ben található cDNS gén 3' végét a p9 plazmidból származó 3'-cDNS-vel helyettesítettük. (Ap9 plazmidot ugyanúgy állítottuk elő, mint a p 107 plazmidot, amely a 21. áb- 50 rán látható, ez egy másik pozitív klón). A p902 plazmidot Apai-gyei és PvuII-vel emésztettük, majd alkálikus foszfatázzal kezeltük. Az ábrán „A”-vaI jelölt Apai-Apai fragmenst izoláltuk. Ez a pGH gén 5'-vége. A nagy fragmenst, amely a Pvull helytől az első Apai helyig teijedő 55 szegmenst tartalmazta, a p9 plazmid Apal-Pvuü emésztése után izolált, az ábrán „B”-vel jelölt kis Apal-PvuII fragmenssel ligáltuk. A kapott plazmidot p2021-ként jelöltük, ez tartalmazza a pGH gén 3' végét. Ezután a p2021 plazmidot Apai-gyei hasítottuk, és az említett, ,Λ’’-val jelölt kis Apai-Apai fragmenssel ligáltuk. A kapott plazmidot p3007-ként jelöltük. A p3007 plazmid a teljes méretű Met-pGH expresszióját biztosítja.
23. ábra p37 konstrukciója
A p37 plazmidot úgy terveztük meg, hogy olyan pGH analógot fejezzen ki, amelynek első aminosavmaradéka a metionin, amely az érett pGH-ban a negyedik aminosav (Met4 pGH). Ap37-t a p902-ből állítottuk elő úgy, hogy a gén 5' végét eltávolítottuk. A p902 plazmidot Ndel-gyel és Apai-gyei emésztettük, ekkor a következő fragmenseket kaptuk:
- ,Λ’’-val jelölt Ndel-Apai kis fragmens,
- „B”-vel jelölt Apai-Apai fragmens,
- C-D jelű Ndel-Apai nagy fragmens,
- Ndel-Ndel nagy fragmens.
A pNDS plazmidot Ndel-gyel emésztettük, majd ligáltuk a szintetikus E kapcsolóval és a fenti C-D jelű Ndel-Apal nagy fragmenssel. A kapott plazmidot p28ként jelöltük. A p28 plazmidot ezután kezeltük, majd ligáltuk a „B” jelű Apai-Apai fragmenssel. A kapott plazmidot p37-ként jelöltük. A szintetikus E kapcsoló szekvenciája a következő:
5' TATGCCCTTGTCCAGCCTATTTGCCAACGCCGTGCTCCGGGCC 3' 3' ACGGGAACAGGTCGGATAAACGGTTGCGGCACGAGGC 5'
HU 209 878 Β
A kapott p37 plazmid olyan pGH analóg expresszióját biztosítja, amely kisebb, mint a remélt Met4-pGH analóg. Ez nyilvánvalóan a gén 3' vége közelében található értelmetlen kodonnak köszönhető.
24. ábra pRec pig 24 konstruálása
Ez a plazmid a Met-Asp-Gln-pGH szekvenciával rendelkező pGH analóg expresszióját biztosítja. Ezt a plazmidot p515 plazmidból állítottuk elő, amely a Met4-pGH expresszióját biztosítja.
Ap37 plazmid (23. ábra) olyan pGH expresszióját biztosítja, amely Met4 maradékkal indul, de egyértelmetlen kodon következtében korábban fejeződik be. A p37-ben található gén 3' végét a p3007 plazmidban található végével helyettesítettük. Ehhez a p37 plazmid B55HI-PvuII emésztésével kapott nagy fragmenst izoláltunk a p3OO7 plazmid B55HI-PvuII emésztésével kapott kis fragmenssel. A kapott, p515 jelű plazmid tartalmazza a p37-ből a pGH 5'-végét és a p3007-ből a pGH 3'-végét. A kapott p515 plazmid a Meri-pGH analóg expresszióját biztosítja.
A pRec pig 24 plazmidot úgy állítottuk elő, hogy a következő szekvenciával rendelkező szintetikus DNS kapcsolót vezettük be:
5' TATGGATCAATTCCCAGC 3'
3' ACCTAGTTAAGGGTCGAT 5'
A pRec pig 24 plazmidot E. coli A4255 törzsben deponáltuk ATCC 53 433 számon.
A következőkben a találmányt részletesen ismertetjük.
Egy olyan vektort fejlesztettünk ki, amely egy gén kifejeződésének, így egy polipeptid kifejeződésének emelt szintje elérésére képes. A vektor kétszálú DNS molekula. A vektort a hőlabilis C[ represszort tartalmazó megfelelő bakteriális gazdasejtbe bevezetve és a gazdasejt hőmérsékletét olyan hőmérsékletre emelve, amelyen a represszor elroncsolódik, a vektor a gazdasejtet képessé teszi a vektorba beiktatott gén kifejeződésének és a gén által kódolt polipeptidek termelésének megvalósítására.
A vektor az 5'—>3' irányban a következőket foglalja magában:
- egy DNS szekvenciát, amely a lambda-bakteriofágból származó PLOL promotert és operátort tartalmazza;
- a gazdasejt által termelt N antiterminátor fehérjéhez való kötésre szolgáló N-hasznosító helyet;
- egy DNS szekvenciát, amely olyan riboszomális kötőhelyet tartalmaz, amely lehetővé teszi, hogy a kívánt gén mRNS-e a gazdasejten belül a riboszómához kötődjön;
- egy ATG iniciáló kodont vagy egy olyan DNS szekvenciát, amely a kívánt génnek a vektorba történő beépítésekor ATG iniciáló kodonná alakul; és
- a kívánt génnek a vektorba történő beépítéséhez egy restrikciós enzim-helyet, amely az ATG kodonnal fázisban van.
A vektor ezeken felül magában foglal egy olyan DNS szekvenciát, amely egy replikációs induló („origó”) helyet tartalmaz egy olyan bakterális plazmidból, amely a gazdasejtben autonóm replikációra képes, valamint egy olyan DNS szekvenciát, amely egy szelektálható vagy azonosítható fenotípusos jellemzővel társult gént tartalmaz, amely érvényre jut, amikor a vektor jelen van a gazdasejtben.
A vektorhoz alkalmazott gazdasejt Escherichia coli. A jelenleg előnyös törzsek az A 1637, A 1645, A 2602 és A 1563. Az A 1637 a jelenleg legelőnyösebb törzs. Ezt C600-ból nyertük oly módon, hogy egy olyan transzpozont építettünk bele, amely a galaktóz operonon belül egy tetraciklin rezisztencia gént tartalmaz, továbbá a lambda expressziós rendszert, amely közvetlenül a galaktóz operon mellett helyezkedik el. Ezt az Amerikai Típustörzs Gyűjteményben [American Type Culture Collection, (ATCC), Rockville, Maryland, Amerikai Egyesült Államok] helyeztük el, ez a törzs különböző plazmidokat tartalmaz, amelyeket a későbbiekben sokkal részletesebben fogunk leírni. Az összes letétbehelyezés a mikroorganizmusok letétbe helyezésének nemzetközi elismerésére vonatkozó Budapesti Szerződés előírásai szerint történt.
Az A 1645-öt az A 1637-ből nyertük a Gal+-ra (a galaktóz fermentálásának képessége) és a tetraciklin rezisztencia hiányára szelektálva. Ez még tartalmaz lambda expressziós rendszert, de a szelekcióval a transzpozon egy részét eltávolítottuk. A törzs fenotípusa: C 600 r m+ gal thr leu- lac Z~ (Xcl 857 ΔΗ1 ΔΒΑΜ N+).
Az A 2602 és A 1563 az SA 500-ból származik. Ezek fenotípusa: SA500 his ilu- . gal+ Δ8 (λΟ857ΔΗ1ΔΒΑΜΝ+) és SA500 his- ilu gal+ Δ8 lac ZxA21 (ÁCI859 int2 xis2 xisl nutL3 ΔΗ1).
A vektor előnyösen egy kovalensen zárt köralakú kettős-szálú molekula. Nem feltétlenül szükséges azonban, hogy a vektor kovalensen zárt legyen.
A vektor akkor éri el a megnövekedett kifejeződési szintet, miután a gazdasejtet olyan hőmérsékletre melegítettük, amelynél a Cj represszor elroncsolódik. A 42 °C fölötti hőmérséklet hatásos erre a célra, és mivel kívánatos, hogy a fölösleges hőkárosodást a gazdasejtnél elkerüljük olyan nagy mértékben, ahogyan ez csak lehetséges, általában kívánatos, hogy a hőmérséklet a 42 °C-ot sohase haladja meg néhány foknál jobban.
A vektor egyik fontos komponense a riboszóma kötőhely. Megfelelő helyek: a lambda bakteriofág eredetű Cn, amelynek szekvenciája a következő: TAAGGAAATACTTACAT
ATTCCTTTATGAATGTA;
egy szintetikus olegonukleotid a következő szekvenciával:
TAAGGAAGTACTTACAT
ATTCCTTCATGAATGTA; és a lambda bakteriofág fő fej-fehéije génje a következő szekvenciával:
TTTTTTTACGGGATTTTTTTATG
AAAAAAATGCCCTAAAAAAATAC.
A vektor egy másik komponense a kívánt gének vektorba történő beiktatásához szükséges restrikciós enzim-hely az ATG iniciáló kodonnal fázisban. Számos ilyen helyet lehet alkalmazni. A jelenleg előnyös helyek a PöotHI, 5ACI és Ndel helyek.
A vektor magában foglal egy replikációs „origó”
HU 209 878 Β helyet is egy olyan bakteriális plazmidból, amely autonóm replikációra képes a gazdasejtben. Ilyen alkalmas replikációs „origó” helyeket számos forrásból lehet nyerni. Jelenleg azok a replikációs „origó” helyek az előnyösek, amelyek a pHR 322-ből vagy pH 1-ből származnak.
Egy DNS szekvencia, amely egy szelektálható vagy azonosítható fenotípusos jellemzővel társult gént tartalmaz, amely érvényre jut, amikor a vektor jelen van a gazdasejtben, szintén egyik komponense a vektornak. A megfelelő gének azok lehetnek, amelyek hőmérséklet-érzékenységgel, vagy gyógyszer-rezisztenciával, pl. ampicillin, klóramfenikol vagy tetraciklin rezisztenciával társulnak.
A tudományos irodalomban korábban leírt vektorokhoz viszonyítva a találmány szerinti vektorokat a kívánt polipeptid termékeket kódoló gének széles választékának megnövekedett kifejeződésének elérésére lehet alkalmazni. Alkalmas gének a növekedési hormonokat, pl. sertés-, csirke-, vagy emberi növekedési hormonokat, valamint szuperoxid diszmutánst: a poprotein E-t, a száj- és körömfájás vírus 1. sz. vírus-fehérjéjét, a S. aureus „A” fehérjéjét, interleukin ΙΠ-at, enzimeket, vagy a fentiek mindenféle analógját kódolják. Az analóg olyan polipeptidet jelent, amelynek aktivitása azonos, mint a természetben előforduló polipeptidé, de egy vagy több eltérő aminosavval rendelkezik a polipeptid N-terminálisánál.
A vektort a találmány szerinti szakterületen jártas szakemberek számára jól ismert módszerekkel lehet kialakítani. Ilyen módszereket nagy részletességgel írnak le különböző publikációkban, amelyeket itt idézünk is, és amelyet tartalmát referenciaként be is építjük a jelen bejelentésbe abból a célból, hogy teljesebb információt nyújtsunk a technika állásáról.
Egy jelenleg előnyös vektor a pMG 100, amelynek restrikciós térképét az 1. ábra mutatja be. Ez a vektor marha növekedési hormont kódoló cDNS-sel rendelkezik a ΒΑΛΤΗ 1 restrikciós helyre beiktatva. Az ebből készített plazmidot pRec 2/3-ként jelöljük. Ennek restrikciós térképét a 2. ábra mutatja be. A pRec 2/3 plazmidot A 1637 Escherichia coli törzsbe vezetjük be, hagyományos transzformációs módszereket alkalmazva. Az így nyert gazdaszervezet vektor rendszert ATCC 39 385 számon deponáltuk.
Egy másik jelenleg előnyös vektor, a pND5, melynek restrikciós térképét a 3. ábra mutatja be. Marha növekedési hormon cDNS-t iktattunk be ennek Ndel restrikciós helyére. Az így létrejött plazmidot pROllgyel jelöljük. Ennek restrikciós térképe szintén a 3. ábrán látható. A pROll plazmidot az A 1637 E. coli törzsbe vezetjük be transzformáció útján. A gazdasejtvektor rendszert, amely így létrejött, deponáltuk ATCC 39 390 számon.
A pND5-öt szintén használtuk a humán növekedési hormon klónozásához. Egy pTV 18(l)-gyel jelölt plazmidot és egy másik, pTV 104(2)-vel jelölt plazmidot hoztunk létre a hGH cDNS beiktatásával a Ndel restrikciós helyekbe. A pTV 18(l)-et a 4. ábra mutatja be. Ezt vezetjük be az A 1637 E. coli törzsbe transzformációval. Az így létrejött gazdasejt-vektor rendszert ATCC 39 386 számon deponáltuk. ApTV 104(2)-t szintén a 4. ábrában mutatjuk be. Ezt is A 1637 E. coli törzsbe vezetjük be. Az így létrejött gazdasejt-vektor rendszert ATCC 39 384 számon deponáltuk.
Ugyanezt a megközelítést alkalmazva más plazmidokat is előállíthatunk egy kívánt polipeptidet kódoló génnek egy találmány szerinti vektor restrikciós enzim helyére történő beiktatásával
Az előzőekben az A 1637 E. coli gazdaszervezetvektor rendszert mutattuk be. Amint azonban korábban is jeleztük, más törzseket is lehet alkalmazni erre a célra, pl. A 1645, A 2602 és A 1563 törzseket. Ezeket a gazdaszervezet-vektor rendszereket lehet alkalmazni olyan polipeptidek előállítására, mint pl. marha- és emberi növekedési hormonok. Hogy ezt elérjük, a gazdasejt-vektor rendszert olyan megfelelő körülmények között kell növeszteni, amely lehetővé teszi a polipeptidek előállítását, amelyeket azután kinyerünk.
A megfelelő körülmények a következőket jelentik: a gazdaszervezet-vektor rendszer növesztése megfelelő időtartamig 42 °C hőmérsékleten, majd növesztés tovább 37-39 °C hőmérsékleten egy további időtartamig. A növesztést egy megfelelő tápközegben hajtjuk végre.
A kezdeti növesztési periódus kívánatos időtartama 42 °C hőmérsékleten 10-30 perc, ezután következik a növesztés 37-39 °C hőmérsékleten a megfelelő időtartamig, úgy, hogy a növesztés teljes időtartama 60-90 perc legyen. Előnyös a növesztést 42 °C hőmérsékleten 15 percen át folytatni, majd 75 percig 38-39 °C hőmérsékleten. A megfelelő tápközeg lehet laktalbumin hidrolizátum, glükóz vagy agy-szív főzet hozzáadásával. Abból a célból, hogy stabilan megtartsuk a vektort a gazdasejtben, kritikus tényező, hogy a gazdasejtet szelektív kényszer alatt tartsuk, pl. antibiotikum hozzáadásával.
Az előző módszerek segítségével számos bGH és a hGH analógot készítettünk. Ezek a természetben előforduló hormonok aktivitásával rendelkeznek vagy rendelkezhetnek.
A bGH analógok a természetes bGH aktivitásával és azonos aminosav-szekvenciával rendelkeznek, kivéve az N-terminálison az 5. aminosavig terjedő területen levő változásokat. Erre példák a következők:
1. ) metionin aminosav van hozzákapcsolva a fenilalanin formájú bGH N-terminálisához.
2. ) metionin aminosav van hozzákapcsolva az alanin-formájú bGH N-terminálisához.
3. ) Met-Asp-Gln aminosav-szekvencia van hozzákapcsolva a fenilalanin-formájú bGH N-terminálisához.
4. ) Ala-Gly aminosav-szekvencia van hozzákapcsolva az alanin-formájú bGH N-terminálisához.
5. ) Met-Gly aminosav-szekvencia van hozzákapcsolva az alanin-formájú bGH N-terminálisához.
6. ) Met-Asp-Pro-Met-Gly aminosav-szekvencia van hozzákapcsolva az alanin-formájú bGH N-terminálisához.
7. ) Met-Asp-Pro aminosav-szekvencia van hozzákapcsolva a fenilalanin-formájú bGH N-terminálisához.
HU 209 878 Β
8. ) Met-Thr-Arg aminosav-szekvencia van hozzákapcsolva a fenilalanin-formájú bGH N-terminálisához.
9. ) Az aminosavak a metioninig (4. hely) el vannak távolítva a fenilalanin-formájú bGH N-terminálisáról.
Egy bGH analóg aminosav szekvenciája a következő lehet:
Met-(X)n-Y-Met...
ahol Met az N-terminális, X a húsz természetben előforduló aminosav bármelyike, Y a húsz természetben előforduló aminosav bármelyike, kivéve a Glu, Gin, Lys, Met vagy Trp aminosavakat, n egy O-tól 6-ig terjedő egész szám és Met... a természetes bGH szekvenciája a 4. helyzettől a COOH-terminálisig (191. helyzet).
A hGH analógok a természetes hGH aktivitásával és azonos aminosav-szekvenciával bírnak, kivéve a változásokat az N-terminálisnál. Erre példák a következők:
1. ) Metionin-aminosav van hozzákapcsolva a természetes hGH N-terminálisához.
2. ) Az aminosavak a metioninig (14. helyzet) el vannak távolítva a hGH N-terminálisáról.
Egy hGH analóg aminosav szekvenciája a következő lehet:
Met-(X)„-Y-Met...
ahol Met az N-terminális, X a húsz természetben előforduló aminosav bármelyike, Y a húsz természetben előforduló aminosav bármelyike, kivéve a Glu, Gin, Lys, Met vagy Trp aminosavakat, n egy O-tól 13-ig terjedő egész szám, és Met ... a természetes hGH szekvenciája a 14. helyzettől a COOH terminálisig (191. helyzet). Állatorvosi kompozíciókat lehet előállítani, amelyek egy vagy több bGH analóg hatásos mennyiségét és alkalmas hordozót tartalmaznak. Az ilyen alkalmas hordozók jól ismertek a szakterületen jártasak számára. Az analógokat be lehet adni közvetlenül, vagy egy készítmény formájában a marháknak, hogy növeljük a tej- vagy hústermelést.
Gyógyászati kompozíciókat lehet előállítani, amelyek egy vagy több hGH analóg hatásos mennyiségét és alkalmas hordozót tartalmaznak. Az ilyen alkalmas hordozók jól ismertek a szakterületen jártasak számára. Az analógokat be lehet adni közvetlenül, vagy egy készítmény formájában az embereknek, azaz azoknak, akik törpe-növésben szenvednek, hogy a hGH termelésben mutatkozó hiányosságaikat kezeljük.
Példák
A következő példákkal a találmány szerinti eljárást közelebbről szemléltetjük a korlátozás szándéka nélkül. A példák nem foglalnak magukban részletes leírásokat az alkalmazott hagyományos módszerekről a vektorok megalkotásánál, a szóban forgó polipeptideket kódoló gének beiktatásánál ilyen vektorba, vagy az így létrejött plazmidok bevezetésénél a bakteriális gazdasejtbe. Az ilyen módszerek jól ismertek azok számára, akik jártasak a szakterületen. Ezen kívül számos publikáció is foglalkozik ezekkel, ilyenek pl. a következők:
Principles of Gene Manipulation, An Introduction to Genetic Engineering (A gén-manipuláció alapelvei, Bevezetés a génsebészetbe) 2. kiadás. Szerkesztette: Old, R. W. és Primrose, S. B. Univ. of Calif, Press (1981);
Met. Enzymol, 68. kötet. Recombinant DNA (Rekombináns DNS). Szerkesztette: Ray Wu; Academic Press;
Met, Enzymol. 65. kötet. Nucleic Acids (Nukleinsavak). 1. rész. Szerkesztette: Crossman, Lawrence és Moldave, Kivié; Academic Press; Maniatis, T., Fritasch, Ε. E, Sambrook, J.: Molecular Cloning; A Laboratory Manual (Molekuláris klónozás; Laboratóriumi kézikönyv). Gold Spring Harbor Laboratory, NY (1982);
Bemard, Η. V. és munkatársai: Gene (1979) 5, 59;
Oppenheim, A. B. és munkatársai: J. Mól. Bioi. (1982) 158, 327;
Remaut, E. és munkatársai: Gene (1981) 75, 81.
7. példa
Expressziós vektorok
Ahogyan itt használjuk, az „expressziós vektor” kifejezés a plazmidok olyan csoportjára vonatkozik, amely baktériumokban, elsősorban E. coli-ban a kívánt gén kifejeződéséhez alkalmazható. A kívánt gént be lehet iktatni az expressziós vektorba, vagy más módszer szerint az expressziós vektoron levő promotereket ki lehet metszeni és a kívánt gén eléhelyezni.
I. PL expressziós vektorok
A. pMG 100
A pMG 100, amint ezt az 1. ábrában bemutattuk és az Ábrák leírása fejezetben részletesen leírtuk, a többkópiás pBR322 plazmidba iktatott XDNS-ből van öszszeállítva. A XDNS szembetűnő vonása az, hogy a XPL promotert, az L és R jelzésű N-hasznosító helyeket (nutL és nutR), befekeződő (terminációs) Rl helyet (tR1), a Cn riboszomális kötőhelyet és egy ATG iniciáló kodont tartalmaz. Az egyéb vonásokat az 1. ábra mutatja be.
A pMG 100-at pKC 30-ból készítettük. A pKC 30-at viszont a PL promoter szubklónozásával állítjuk elő a következő módon.
λ fág DNS-t emésztünk XHől és Smal restrikciós endonukleázokkal és a 6393 bázispárból álló egyedi fragmenst tisztítottuk, majd Hindül és BamHI restrikciós endonukleázokkal emésztettük. Az így nyert 2397 bázispárból álló és PL promotert tartalmazó fragmenst tisztítottuk és hozzákapcsoltuk (ligáltuk) a pBR 322 DNS nagy fragmenséhez, amelyet 7/zWni-mal és BamHI-gyei történő emésztéssel nyertünk. A szubklónt telep-hibridizációval azonosítottuk, kinyertük és a plazmid DNS-t izoláltuk [Oppenheim, A. és munkatársai: J. Mól. Bioi. (1982), 158, 327],
Ezt a plazmidot és eukarióta géneket tartalmazó származékait megfelelő E. coli gazdasejtekben, például E. coli A1645, E. coli A4255 vagy E. coli A1637 törzsben tartjuk fenn. A gazdasejt legfontosabb vonása az, hogy a Cl 857 hőérzékeny represszort és az antiterminációs N-fehérjét tartalmazza [Gottesman, Μ. E. és munkatársai: J. Mól. Bioi. (1978) 140, 197].
HU 209 878 Β
ApMGlOO vektor számos előnnyel bír a korábban leírt expressziós vektorokkal szemben, ezek a következők:
1. ) A kifejeződés rendkívül magas szintje
Ez a vektor képes az idegen fehérje kifejeződését E. coliban úgy irányítani, hogy ez a teljes sejtfehérje mennyiségének 15—25%-át is elérje.
2. ) A kifejeződés hővel indukált szabályozása
A PL promotor inaktív abban az esetben, ha Cl represszor van hozzá kötve. A CI857 represszor hőérzékeny, azaz 30 °C hőmérsékleten a promoterhez kötődik, 42 °C hőmérsékleten viszont inaktiválódik. így a fermentáció hőmérsékletét 42 °C-ra emelve a gazda baktériumsejt indukálódik, a kívánt fehérjét termeli.
Az ilyen rendszer előnyei a következők:
a) egy olyan idegen fehérjét is elő lehet állítani, ha szükséges, amely E. coli-ra toxikus, ilyen módon kerülve el a sejt korai halálát a fermentációs folyamatban.
b) a fehérje-túltermelés stabilizálhatja ezt a rendszert és megelőzi a proteolitikus lebomlást [Cheng, Y. E. és munkatársai: Gene (1981) 14, 121], így a „pillanatnyi” túltermelés, amely egy szorosan szabályozott promotert használ, mint pl. PL-t, előnyös lehet a folyamatos alacsony szintű termeléshez.
3. ) Nagy kópia-szám
A PL promoter a pMG 100-ban egy nagy kópiaszámú plazmidon található magától a λ-tól megkülönböztetve, amely kis kópiaszámban van jelen az E. coli-ban. Ez megnöveli a kifejeződés szintjét.
4. ) Riboszóma kötőhely és iniciáló kodon
Ez az expressziós vektor egy erős prokarióta riboszomális kötőhelyet (RBS), valamint egy transzlációs iniciáló kodont (ATG) tartalmaz. így bármiféle eukarióta gént lehet klónozni anélkül, hogy iniciáló kodont kellene hozzáadni. Ezen túl a hatásos RBS növeli a kifejeződés szintjét.
5. ) Kényelmes restrikciós helyek
Az expressziós vektornak van egy őamHI helye közvetlenül az ATG iniciáló kodont követően elhelyezve, amely lehetővé teszi a kívánt gén megfelelő elhelyezését abból a célból, hogy az optimális kifejeződést elérjük.
6. ) Nut hely
Az N-fehérje, amelyet a gazdaszervezet szolgáltat, az expressziós vektor Nut helyéhez kötődik és ezáltal megakadályozza az átírás befejeződését a tR1 helynél.
B. pND5
Amint ez a 3. ábrán látható, a pND5 tartalmazza a PL promotert és a jelen találmány szerinti expressziós vektorok más fontos komponenseit. Magában foglal egy egyedi Ndel helyet közvetlenül a riboszomális kötőhely után. A riboszomális kötőhely különbözik a normál Cn helytől. Ennek szekvenciája:
TAAGGAAGTACTTACAT
ATTCCTTCATGAATGTA
Ez származtatható egy mutánsból, vagy kémiailag lehet szintetizálni ismert módon. Amint az Ábrák leírása fejezetben részletesen leírtuk, a pND5 és pOG7-ből származik [Oppenheim, A. és munkatársai: J. Mól. Bioi. (1982) 158, 327]. Ez a vektor nem tartalmaz transzlációs iniciáló kodont. Az a bGH és hGH egészen kiváló kifejeződését eredményezi, különösen megemelt kitermelést egy bGH analógot tartalmazó pMG 100-hoz viszonyítva.
C. pND55
A pND55 és pND5 egyik származéka, amely a kényelmes Sacl restrikciós helyet tartalmazza a CnRBS és az ATG iniciáló kodon előtt. A plazmid hasítása ennél a helynél, majd az ezt követő kezelés DNS polimeráz Klenow fragmenssel lehetővé teszi, hogy ATG iniciáló kodont nyerjünk, amelyhez bármiféle kívánt gént hozzá lehet kapcsolni (3. ábra, és leírás a 3. ábrához).
II. TRP expressziós vektorok
A. pAL Trp 46
A pAL Trp 46 tartalmazza a Trp promotert és a β-galaktozidáz génnel fuzionált Trp E gén első hét aminosavát (5. ábra). A kívánt gént be lehet iktatni a BamHI helyre, amely a Trp E 7. aminosavát követi.
B. pAL Trp 47; Trp 46 gyengítő kiiktatása
Ez olyan konstrukció, amely Trp 46-ra alapozódik, amelyből a Trp promoter gyengítő területét kiiktattuk.
C. Trp-Lac fúziók
Ennek a promoternek a megalkotása, amely a p47 54 plazmidon található, a 6. és 7. ábrákban van bemutatva. Ennek a konstrukciónak változatait körvonalazza a 8. ábra.
III. Hisztidin-promoter expressziós vektorok
Az ilyen kifejeződést közvetítő vektorok megalkotása a 9. és 10. ábrákban van bemutatva.
IV. Más alkalmazott promoterek
A. Lac
Ezt a promotert a pYL 301 megalkotásában alkalmaztuk, amint ezt a 11. ábra bemutatja.
B. Omp F
Ez olyan promoter rendszer, amely egy, a szignál szekvenciához kötött fehérjét fejez ki. Amikor a fehérje átjut a membránon keresztül (12. ábra), a szignál-szekvencia leszakad róla.
2. példa
Marha növekedési hormon
A bGH cDNS módosítására szolgáló kiindulási anyag a D4 plazmid, amelyet már korábban leírtak. [Keshet, E. és munkatársai, Nucleic Acids Research (1981), 9, 19]. A D4 plazmidot leírták a 245 943 számú amerikai egyesült államokbeli függő szabadalmi bejelentésben (iktatva 1981. március 20-án) is, amelynek igényelt elsőbbsége az 59 690 számú izraeli szabadalmi bejelentés (iktatva 1980. március 24-én). Egy E. coli gazdasejtbe foglalva az már korábban deponálva volt az American Type Culture Collection-nál, ATCC 32 826 számon.
I. pHec 2/3 bGH
A pRec 2/3 megalkotását a 2. ábra mutatja be és az Ábrák leírása című fejezet írja le. A D4-ből származó bGH cDNS-t még a pMG 100-ba történő beiktatás előtt úgy alakítottuk, hogy a korrekt leolvasó keretbe kerüljön. Ezt úgy értük el, hogy a pRec 2/2 előállítása során a bGH-hoz történő hibridizációban pozitívnak mutatkozó kiónokat izoláltuk; ezek az előzetes, SÍ exonukleázos
HU 209 878 Β emésztés következtében egy sorozat bGH törlési fragmenst tartalmaztak. (A pRec 2/2 az az első expressziós plazmid, amelyben a bGH korrekt leolvasási keretben van.) A pALRl kiónt szekvencia meghatározással (Maxam-Gilbert-módszer) kiválasztottuk, mert ez az N-terminálison a kívánt szekvenciával (lásd a 2. ábra leírásánál, 10. oldal alulról a 6. és 7. sor) rendelkezik. Ez a szekvencia biztosítja a korrekt leolvasási keretet a későbbi, plazmidokban történő kifejezés során.
A pRec 2/3-at különböző E. coli törzsekbe iktattuk be, beleértve az A 1637-et is, transzformációval, ismert módszereket alkalmazva. A pRec 2/3-at tartalmazó A 1637-et ATCC 39 385 számon deponáltuk. Ez a törzs a növesztés és indukció hatására egy olyan bGH analógot termel, amely Met-Asp-Gln aminosav-szekvenciával rendelkezik a természetes bGH fenil-alanin-formájának N-terminálisához kapcsolva. A pRec 2/3 által termelt bGH analóg mennyisége kb. 23%-a volt a baktérium által termelt összes fehéijének, Coomasie-festett SDS poliakrilamid-gélek vizsgálata alapján számítva.
II. pROll
A pROll megalkotását a 3. ábra mutatja be és az Ábrák leírása c. fejezet írja le. A pND5 vektor DNS-t Wel-gyel hasítjuk. Az Ndel fragmens beiktatása a pRec 2/3-ből (2. ábra), amely a bGH cDNS-t tartalmazza, eredményezi a pROll plazmidot,
A pROll-t transzformációval vezetjük be az A 1637 E. coliba. Az így létrejött gazdaszervezet-vektor rendszert ATCC 39 390 számon helyeztük letétbe. Ez a törzs, amikor növesztjük és indukáljuk, ugyanazt az analógot termeli, mint a pRec 2/3. Az előzetes eredmények azt jelzik, hogy a pROl 1 akár 20%-kal több bGH analógot termelhet, mint a pRec 2/3. A törzs növesztéséhez használt módszerek, valamint a termelt bGH analóg kinyerése és tisztítása azonos, mint amelyet a 4. példában pRec 2/3-hoz leírunk.
ΙΠ. pAL401
ApAL401 megalkotását a 13. ábrán mutatjuk be és az Ábrák leírása c. fejezetben írjuk le. A D4-ből származó bGH cDNS-t pAL 500 közvetítésével iktattuk be pND 11-be, amint ezt a 13. ábrában bemutatjuk. A pAL401-et be lehet vezetni A 1637 E. coli-ba transzformációval. Az így nyert törzs egy olyan bGH analógot termel, amelyben a természetes bGH Met3 4-e az N-terminálisnál van és a Met4-et megelőző aminosavak ki vannak iktatva.
IV. pAL601
A pAL601 megalkotását a 14. ábra mutatja be és az Ábrák leírása c. fejezet úja le. Ez a pAL401 egyik származéka (13. ábra). ApAL601-et be lehet vezetni A1637 E. coli törzsbe transzformációval. Az így létrejött törzs egy olyan bGH analógot termel, amelyben Met kapcsolódik a fenilalanin-formájú bGH N-terminálisához.
3. példa
Emberi növekedési hormon
A hGH cDNS-hez a kiindulási pont akromegáliás betegekből nyert hipofízis-tumorból tisztított mRNSeredetű cDNS klónozása pBR 322 HindlII helyére. PoliA+mRNS-t izoláltunk humán hipofízisből, és a cDNS-t Maniatis és munkatársai módszerével készítettük. A cDNS-hez HindlII-kapcsolókat (AAAGCTTT) ligáltunk. A cDNS-t HindlII-mal emésztett és defoszforilezett pBR322-be iktattuk be.
A pozitív kiónokat D4 klón Pstl/PStI bGH fragmenséhez történő hibridizációval azonosítottuk. Néhány izolátumnak meghatároztuk a szekvenciáját a cDNS teljes méretének a megállapítására.
I. pTV 18(1)
A pTV 18(1) megalkotását a 4. ábra mutatja be, és az Ábrák leírása c. fejezet írja le. A hGH cDNS-t a pND5-be való bevitel előtt úgy alakítottuk, hogy a korrekt leolvasó keretbe kerüljön.
A pTV 18(l)-et A 1637 E. coliba vezettük be transzformációval. Az így keletkezett baktériumokat ATCC 39 386 számon helyeztük letétbe. Ez a törzs növekedés és indukció hatására egy olyan hGH analógot termel, amely a Met)4-től kezdve a természetes hGH szekvenciájával rendelkezik, viszont az 1-13 aminosavak hiányoznak belőle. A pTV 18(1) által termelt hGH analógok mennyisége a baktériumok által termelt összfehérje mintegy 8%-a.
II. pTV 104(2)
A pTV 104(2) megalkotását a 4. ábra mutatja be, és az Ábrák leírása c. fejezet írja le. A hGH cDNS-t a pND5-be való bevitel előtt úgy alakítottuk ki, hogy a korrekt leolvasó keretekbe kerüljön.
Ezt pTV 104(2)-t A 1637 E. coliba vezetjük be transzformációval. A kapott törzset ATCC 39 384 számon deponáltuk.
Ez a törzs növekedés és indukció hatása egy olyan hGH analógot termel, amely a természetes hGH szekvenciájával rendelkezik, de egy Met előzi meg az eredeti N-terminálist. A pTV 104(2) által termelt hGH analógok mennyisége a baktériumok által termelt összfehéije több, mint 25%-a.
4. példa
A pRec 2/3 növesztése
Törzstenyészetek. Az A 1637-ben levő pRec 2/3 törzstenyészeteit BHI tápközegben (lásd az inokulumnál) tenyésztjük, majd foszfát-citrát puffért tartalmazó 87%-os glicerin-oldattaj kétszeresére hígítjuk, és -70 °C hőmérsékleten tároljuk.
Inokulum. Az inokulumot BHI-tápközegben (37 g/1) szaporítjuk [agy-szív főzet (DIFCO)]. A steril tápközeget rázólombikban inokuláljuk a törzstenyészetből és 15 órán át inkubáljuk rázógépen (200 fordulat/perc) 30 °C hőmérsékleten. Az inokulum szaporításának ezt követő stádiumait kevert, levegőztetett fermentorokban hajtjuk végre. A steril tápközeget literenként 0,2 ml rázólombik-tenyészettel inokuláljuk, és 15 órán át inkubáljuk 30 °C hőmérsékleten, pH 7±0,5-nél, keverés és levegőztetés mellett úgy, hogy az oldott oxigénszintet 20% levegő-telítettség fölött tartjuk.
Termelés. A termelő tápközeg a következő összetételű:
Laktalbumin hidrolizátum (enzimes) 20 g/1
Élesztőkivonat 10 g/1
K2HPO4 2,5 g/1
HU 209 878 Β
NaCl 10 g/1
Ampicillin o,ig/i
Biotin 0,1 mg/1
Tiamin 1 mg/1
Nyomelem-oldat 3ml/l
Az ampicillint, biotint és tiamint oldatban, külön-
külön szűréssel sterilezzük és így adjuk a steril termelő
tápközeghez inokulálás előtt. Steril glükóz-oldatot
adunk hozzá úgy, hogy kezdetben 10 g/1 legyen a glü-
kóz koncentrációja, és az indukció, valamint a kifeje-
ződési folyamat során a glükóz szintjét 10 g/1 fölött
tartjuk.
A nyomelem-oldat a következőket tartalmazza:
MgSO4.7H2O 170 g/1
FeCl3 lógd
ZnCl2.4H2O 2g/l
CoCl2.6H2O 2 g/1
Na2MoO4.2H2O 2 g/1
CaCl2.2H2O ig/1
CuCl2 ig/1
h3ho3 0,5 g/1
Konc. sósavoldat 100ml/l
A tápközeget 5-10% inokulum-tenyészettel inoku-
láljuk és 30 °C hőmérsékleten inkubáljuk. A levegőztetés és kezeltetés sebességét úgy állítjuk be, hogy az oldott oxigén-szint a levegő-telítettség 20%-a fölött legyen. A pH-t 7± 0,2 értéken tartjuk ammónia segítségével. Amikor a sejt-koncentráció eléri a kb. 3 g/1 [Optikai sűrűség (OD 660) = 10] értéket, megkezdjük az indukciót.
A hőmérsékletet 42 °C-ra emeljük. Ezen a hőmérsékleten tartjuk 15 percen át, majd a hőmérsékletet 38 ’C-ra csökkentjük. 1-1,5 órás 38 °C hőmérsékleten történő inkubálás után a tenyészetet lehűtjük és a sejteket centrifugálással kinyerjük a hormon-tisztításhoz.
A bGH kinyerése kg baktérium-sejtet szuszpendálunk 10 térfogat 50 mmol/l-es Tris-Cl-t (pH 7,4), 50 mmol/liter EDTA-t és 25% szacharózt tartalmazó oldatban, a szuszpendálást Warring keverőben végezve, a keverő sebességét úgy szabályozva, hogy a habképződés minimális legyen. A homogén szuszpenziót folyamatosan nyomjuk keresztül egy Dynomill sejt-zúzó berendezésen (disruptor) (Willy A., Bachofen, Basel) és a szétzúzott sejtek homogén szuszpenzióját először egy Sharplesscentrifugában végzett centrifugálással, ezt követően pedig 20 000 fordulat/perccel Sorvall-centrigufával végzett folyamatos centrifugálással készítjük. A csapadékot mindkét centrifugálási lépésből összegyűjtjük, 50 mmól/liter koncentrációjú Tris-Cl pufferral mossuk (pH 7,4) és újra szuszpendáljuk 500 ml azonos pufferban. Lizozimet adunk hozzá 2 ml/ml végső koncentrációban és a szuszpenziót 1 órán át 37 ’C hőmérsékleten inkubáljuk. Triton Χ-100-at adunk hozzá ez után 1% véső koncentrációban, a szuszpenziót 4 ’C hőmérsékletre lehűtjük, és 20 000 ford/perccel 20 percen át centrifugáljuk Sorvall SS34 rotorban. A csapadékot összegyűjtjük, kétszer mossuk 50 mmól/liter Tris-HCl-ben, újra szuszpendáljuk 500 ml 50 mmól/literes Tris-HClben (pH 7,4), amely 5 mmól/liter MgCI2-t is tartalmaz, és dezoxiribonukleázt adunk hozzá 20 μ/ml végső koncentrációban. 30 perces inkubálás után szobahőmérsékleten a csapadékot összegyűjtjük a fentiek szerint, kétszer mossuk 500 nml 20 mmól/literes Tris-Cl-el (pH 7,4), amely 100 mmól/liter NaCl-t és 10 mmól/liter EDTA-t is tartalmaz, majd ezt követi két mosás 500 ml desztillált vízzel. A csapadékot centrifugálással összegyűjtjük, amely így -20 ’C hőmérsékleten meghatározatlan ideig tárolható. Ebben a stádiumban a bGH 80%-os tisztaságú, amint ez a nátrium-dodecil-szulfátos elektroforézisből elbírálható. A kitermelés mintegy 15 g bGH.
A bGH tisztítása
100 g precipitátumot szuszpendálunk 40 ml desztillált vízben és szolubilizáljuk 0,5 mólos NaOH-oldattal titrálva (pH 11,8). Az oldatot ez után 2 percen át ultrahanggal kezeljük, és 20 000 fordulat/perccel egy sorvall SS34 rotorban 20 percen átvégzett centrifugálással tisztítjuk. Az oldatot ez után egy pH 11,8 értékű 6,5 mmól/literes borát-pufferral kiegyensúlyozott Sepharose CL-GB oszlopra visszük. Az oszlopot 100 ml/óra sebességgel kifejlesztjük és 12 ml-es frakciókat gyűjtünk. Az oszlopot elhagyó első csúcsot eldobjuk. A következő két csúcsot elkülönítjük és összegyűjtjük. Az első csúcs egy aggregálódott bGH-t képvisel kis aktivitással; a második bGH, nagy aktivitással.
DEAE-Sephacel (25 g/100 g ekvivalens precipitátum) oszlopot 6,5 mmól/literes borát-pufferral (pH 9,0) kiegyensúlyozunk. A második bGH csúcsot 9,0 pH-ra állítjuk be Hcl-el, és a Sephacel oszlopra visszük 250 ml/óra sebességgel. Az oszlopot 7,5 ml
6,5 mmól/literes borát pufferral mossuk (pH 9,0), és
6,5 mmól/literes borát pufferral (pH 9), amely 75 mmól/liter NaCl-t is tartalmaz, eluáljuk. A frakciókat, amelyek OD280 értéke 0,3 fölött van, összegyűjtjük, dializáljuk H2O ellen Millipore Pellicon dializáló készüléken, majd liofilizáljuk.
5. példa pRec 2/3 által termelt bGH analóg aktivitása
1. ) A bGH analógok radioimmunassay összehasonlítása a természetes bGH-val. (17., 18. ábra)
100 mg/ml bGH analógot tartalmazó oldatot készítünk foszfáttal pufferolt sóoldatban (1% BSA, bovin szérum albumin). Ezt az oldatot széria-hígításnak vetjük alá, 50, 25, 12,5, 6,25, 3,12, 1,56 és 0,78 mg/1 koncentrációjú oldatokat készítve. 0,1 ml-es alikvotokat ezekből az oldatokból két párhuzamosban RIA mérésnek vetünk alá, kettős antitest-eljárást alkalmazva. A hígítási görbe hasonló ahhoz, amelyet természetesen bGH-val nyertünk.
2. Radioreceptor kötés mérés
Radioreceptor kötés mérést hajtunk végre nyúlmájmembránokon, ahogyan ezt Tushima T. és Freisen H. G. leírták [Y. Chin. Endocr. Metab. (1973) 37, 334, l23I-hGH-t alkalmazva nyomjelzőként és autentikus bGH oldatokat a kalibrációs görbék készítéséhez. A mintákat három párhuzamosban inkubáljuk két órán át szobahőmérsékleten 0,3 ml mérő-pufferban [50 mmól/1 Tris, 15 mmól/1 CaCl2 és 5 mg/ml szarvas12
HU 209 878 Β marha szérum albumin, pH 7,6], A csövek 125I-t (20 000 beütés/perc 30-60 pci/pg-os preparátumból), 150-250 μg máj-membrán fehérjét és természetes bGH-t (1-100 mg), vagy bakteriális bGH extraktumot tartalmaznak. Az eredmény azt demonstrálja, hogy a bGH analóg bGH aktivitása hasonló a természetes bGH aktivitásához.
3.) Tibia-vizsgálat (15. ábra)
A pRec 2/3 bGH analóg bioaktivitását, amely analógot a 4. példa szerint átalakított bakteriális sejtből nyertünk ki, tibia-vizsgálattal értékeljük [Parlow, A. F. és munkatársai: Endocrinology (1965) 77, 1126],
28-30 napos patkányok hipofízisét kiirtjuk, majd 10-14 napig kezelés nélkül tartjuk az állatokat. Marha hipofízisből vagy rekombináns E. coliból származó marha növekedési hormont oldunk fel 0,15 mól/1 NaCl + 0,01 mól/1 borát-pufferban (pH 10). A patkányok (47 db csoportonként) 5-125 μg/nap (0,2 ml-ben) menynyiségű bGH oldatot kapnak szubkután injekcióban 5 napon át, miközben normál étrenden tartjuk azokat. (Purina Rat-Chow, és víz tetszés szerint). Az állatokat a
6. napon leöljük, első láb térdcsontjaikat kiemeljük, hosszanti irányban elvágjuk, acetonnal fixáljuk és 2%os AgNO3 oldattal megfestjük. A csöves csont lemezek szélességét méljük egy preparáló két szemlencsés nagyítón (Nikon) keresztül. Az átlagértékeket (40 leolvasás patkányonként) használjuk a lóg dózis-válasz görbék megszerkesztéséhez. Az eredményeket a 15. ábra mutatja be.
6. példa bGH analógok
Az I. táblázat a plazmidok egy sorozatát mutatja be, amelyeket előállítottunk, és azokat az angolokat, amelyek ezeknek a plazmidoknak a segítségével termelődnek.
I. táblázat
Plazmid A bGH analógok amino terminálisa
Rec2/3 Met Asp Gin Phe2
pBl Met Asp Pro Met Gly Alá Phe2
pM4 Met Asp Pro Phe2
pMl Met Alá1 Phe2
pM 2 Met Alá1 Phe2
pAL401 Met4
pYL301 Met Gly Alá1 Phe2
pAL302 11 aminosav + Alá1 Phe2
pHis 129 Met Thr Arg Phe2
pAL312 Met Gly Alá1 Phe2
Plazmid A bGH analógok amino terminálisa
pAL322 Met Gly Alá1 Phe2
pAL 601 R Met Gly Alá1 Phe2
p 18 Met Gly Alá1 Phe2
PBTG-800 Met Glu Phe2
pORF2-12 Alá Gly Alá1 Phe2
7. példa
A pREC 2/3 bGH analóg hatása a laktogenezisre a tejelő tehenekben
A bGH laktogén (tej képző) hatását a tudományos irodalom jól dokumentálta [Bines, J. és munkatársai: Brit. J. nutri. (1980) 43, Π9; Peel, C. és munkatársai: J. Nutr. (1981) 111, 1662]. Bauman, D. és munkatársai [J. Dairy Sci., 1. kötet kiegészítése, 86. összefoglaló (1982) helyen arról számoltak be, hogy a tejtermelés növekedett rDNS bGH hatására. Kísérletet hajtottunk végre, hogy meghatározzuk a pRec 2/3 bGH hatását a laktogenezisre a természetes bGH-val összehasonlítva. 18 Holstein-tehenet, 141— 154 nappal az ellés után véletlenszerűen kijelöltünk kezelésre, és tejtermelésre állítottunk be a következő terv szerint:
Előkezelés Kezelés Napi GH injekció
Kontroll 5 nap Sóoldat
Természetes bGH 5 nap 25 mg/nap 10 napon át
pRec 2/3 bGH 5 nap 25 mg/nap 10 napon át
A bGH-adagokat 0,1 mól/l-es vizes NaHCO3 pufferban (pH 8,2) közvetlenül az egyes napi injekciók előtt készítve 1 mg/ml koncentrációban adtuk be. A teheneket placebóval, illetve bGH oldattal injektáljuk naponta 10 napon át a nyaki területen, egy szubkután helyen. Az 5 napos előkezelési időszakban nem adtunk injekciókat.
A teheneket naponta kétszer fejtük, kb. 6.00-kor reggel és 5.00-kor délután. A tej-mennyiséget Boumatic-rendszerrel mértük és a napi tej-adatrendszerben rögzítettük.
Az átlagos tejtermelési értékeket az előkezelési és bGH kezelési periódusban a II. táblázatban mutatjuk be. A kontroll tehenek termelési szintje változatlan volt, míg a tejtermelés mennyisége hasonló mértékben növekedett mindkét bGH-s csoportban. A természetes bGH 11,9%-os növekedést okozott a tejtermelésben a 10 napos perióduson át, míg a bGH analóggal történő kezelés 10,2% növekedést eredményezett. Az adatokat statisztikai szignifikanciára nem elemeztük az állatok kis száma miatt, a növekedés nagysága azonban hasonló ahhoz, amelyet az irodalomban leírtak.
HU 209 878 Β
Arra a következtetésre jutottunk, hogy a pRec 2/3 bGH stimulálja a laktogenezist a tehenekben a természetes bGH-hoz hasonló mértékben.
II. táblázat
A marha növekedési hormon hatása a laktogenezisre Természetes bGH összevetve a pRec 2/3 bGH-val
Kezelési csoport Átlagos napi tejtermelés *lb/nap
db Az előkezelés 5 napja A GH kezelés 10 napja %-os növekedés az előkezeléshez viszonyítva
Kontroll 6 57,23 57,26 -
Természetes bGH 25 mg/nap 5 58,54 65,50 11 9
pRec 2/3 bGH 25 mg/nap 6 57,58 63,34 10,2
Minden tehénnek adtunk naponta szubkután injekciót, vagy placebót, vagy bGH oldatot, naponta egyszer 10 napon át.
*1 lb = 45,36 dkg.
8. példa
Humán növekedési hormon analóg
A pTV333(31) (ATCC 39 981) megalkotását a 16. ábra mutatja, és az ábrák leírása ismerteti. A pTV333(31) megalkotásához szükséges intermedier plazmidokat a 4. ábra mutatja be, és az ábrák leírása ismerteti. A szintetikus oligonukleotidot foszforamiditmódszerrel készítettük.
A pTV333(31) plazmidot E. coli A2097 törzsbe transzformáltuk. A törzs növesztés és indukálás hatására humán növekedési hormon (hGH) analógot termel, amely a természetes hGH N-terminális fenilalanin aminosavjához kapcsolódó Met-Leu szekvenciával rendelkezik. A törzs által termelt hGH analóg mennyisége a baktérium által termelt összfehérjének körülbelül 6%-a volt, Coomassie-kékkel festett SDS poliakrilamid gélek hGH csíkjainak mérése és a Lowry módszerrel meghatározott fehérjemennyiség alapján számítva.
pTV333(3I) növesztése
I. Törzstenyészetek pTV333(31) törzstenyészetet növesztettünk kazein tápközegen (lásd Inokulum), majd fagyasztóközeggel kétszeresére hígítottuk, és -80 °C-on tároltunk. A fagyasztóközeg 500 ml-enként a következő komponenseket tartalmazza:
K2HPO4 6,3 g
kh2po4 1,8 g
Na-citrát 0,45 g
MgSO4.7H2O 0,09 g
(NH^SO, 0,9 g
Glicerin 44,0 g
II. Inokulum
Az inokulumot 20 g/1 triptont, 10 g/1 élesztőkivonatot
és 2 g/1 nátrium-kloridot tartalmazó oldatban szaporítottuk. Egy rázólombikban levő steril tápközeget beoltottunk a törzstenyészettel, és körülbelül 15 óra hosszat 30 °C-on, körülbelül 200 fordulat/perc sebességgel rázatva tenyésztettük. Kívánt esetben további inokulum szaporítást végeztünk keverős, levegőztetős fermentorokban. Steril tápközeget oltottunk be 2-10% inokulummak, és 15 óra hosszat 30 °C-on, pH = 7+5 értéknél keverés és levegőztetés közben inkubáltuk, az oldott oxigén szintet 20% levegő-telítettség fölött tartottuk.
III. Termelés
A termelő tápközeg összetétele a következő:
Tripton 20 g/1
Élesztőkivonat 10 g/1
K2HPO4 2,5 g/1
MgSO4.7H2O 1 g/1
NaCl 5 g/1
Biotin 0,1 mg/1
Tíamin 1 mg/1
Nyomelem-oldat 3 ml/1
A tápközeg 100 mg/1 ampicillint is tartalmaz. Az ampicillin adott esetben szükséges a termeléshez, de mindig megtalálható az inokulum növesztésére használt tápközegben.
A biotint, tiamint és ampicillint koncentrált oldatban külön-külön szűréssel sterilezzük, és így adjuk a steril termelő tápközeghez inokulálás előtt. A növesztés elején steril glükóz oldatot adagoltunk olyan mennyiségben, hogy a koncentráció 10 g/1 legyen. Az indukálási lépésnél további 10 g/1 glükózt adagoltunk.
A nyomelem oldat összetétele a következő:
FeCl3 16 g/1
ZnCl2.4H2O 2 g/1
CoC12.6H2O 2 g/1
Na2MoO4.2H2O 2 g/1
CaCl2.2H2O 1 g/1
CuCl2 1 g/i
H3BO3 0,5 g/1
Konc. BC1 100 mid
A tápközeget 0,5- -10% oltótenyészettel beoltjuk, és
’C-on inkubáljuk. A keverés és levegőztetés sebességét úgy állítjuk be, hogy az oldott oxigénszint a levegő-telítettség 20%-a fölött legyen. A pH-t ammónia segítségével 7±0,2 értéken tartjuk. Amikor a sejtkoncentráció eléri a 3,5 g/1 (OD660 = 10) értéket, megkezdjük az indukciót.
A hőmérsékletet 42 ’C-ra emeljük, és ezen az értéken tartjuk 1-5 óra hosszat. Ezután a tenyészetet lehűtjük, és a sejteket hormon-tisztításhoz centrifugálással elválasztjuk.
9. példa pTV18(I) és pTV104(2) által termelt hGH analógok aktivitása
I. A hGH analógok radioimmun vizsgálatának összehasonlítása a természetes hGH-val
1000 ng/ml hGH analógot tartalmazó oldatokat készítünk foszfáttal pufferolt sóoldattal (1% BSA). Ezeket az oldatokat sorozathígítással a 17. ábrán látható koncenrációkra hígítottuk. Ezekből az oldatokból 0,1 ml alikvotokat két párhuzamos mérésben RIA mé14
HU 209 878 Β résnek vetettünk alá, kettős antitest-eljárást alkalmazva. A hígítási görbét a 17. ábra mutatja.
II. Radioreceptor-kötés mérés
Radioreceptor-kötés mérést hajtottunk végre nyúlmáj-membránokon T. Tushima and H. G. Freisen [Y. Chin., Endocr. Méta, (1973) 37, 334] helyen ismertetett módon, nyomjelzőként 125I-hGH-t, a kalibrációs görbék felvételéhez pedig autentikus hGH oldatokat használtunk. A mintákat három párhuzamos formájában 2 óra hosszat szobahőmérsékleten 0,3 ml mérőpufferban inkubáltuk, amelynek összetétele: 50 mmól trisz, 15 mmól/1 CaCl2 és 5 mg/ml szarvasmarha szérum albuminban, pH 7,6. A csövek 125I-hGH-t (20 000 beütés/perc pCi/pg preparátumból) 150-250 pg májmembrán-fehéqét és természetes hGH-t (1-1000 ng), vagy baktériumeredetű hGH analógot tartalmaztak. Az eredményeket a 18. ábra mutatja, ahonnan látható, hogy a Met-hGH analóg hGH-aktivitása összevethető a természetes hGH-val.
10. példa
Szuperoxid-diszmutáz (SÓD)
A szuperoxid-diszmutáz (SÓD) cDNS változatokhoz a pS61-10 plazmidból indulunk ki, amelyet a Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 79:2808 (1982) helyen ismertettek. A plazmidban található SÓD cDNS leírása a 489 786 számú párhuzamos amerikai egyesült államokbeli szabadalmi bejelentésben is megtalálható.
A pNd-SODNN-12 plazmid előállítását a 20. ábra mutatja be és az ábrák leírása ismerteti. Az SÓD cDNS-t úgy módosítottuk, hogy egy Ndel restrikciós helyet vezettünk be a gén 5' végénél, és egy HindllI restrikciós helyet a gén 3' végénél szintetikus linkerek beiktatásával, ahogyan a 25. ábrán bemutatjuk. A kapott pSOD NH-10 plazmid az SÓD cDNS-t unikális restrikciós helyekhez kapcsolva tartalmazza.
Az SÓD, azaz humán Cu/Zn SÓD expresszióját E. coliban úgy értük el, hogy a tovább módosított cDNS kiónt építettük be pND5 plazmidba, amint ezt a 20. ábrán bemutattuk. (A pND5 plazmid származékát, a pROll plazmidot, amely a szarvasmarha növekedési hormont kódoló gént tartalmazza, E. coli A1637 törzsbe transzformálva deponáltuk ATCC 39 390 számon). Először a pSODNH-10 plazmid HindllI helyére a következő szekvenciával rendelkező, foszforamidit módszerrel szintetizált kapcsolót építettük be: AGCTTCCATATGGA
AGGTATACCTTCGA így a pSODnn-12 plazmidot kaptuk, amely egy további Ndel helyet tartalmaz. Az Ndel restrikciós helyek által megkötött SÓD cDNS-t úgy izoláltuk, hogy a pSODNH-12-t Ndel-gyel hasítottuk, majd Ndel-gyel linearizált pND5 plazmiddal ligáltuk. Az E. coli A1645 törzsbe történő transzformálás három különböző típusú kiónt eredményezett, amelyeket pNd-SODNN-l, 4 és 12 jellel jelöltünk, amelyek a SÓD cDNS inzertet tartalmazták (lásd 20. ábra). A pNd-SODNN-l az SÓD inzertet rossz, órajárással ellentétes irányú orientációban tartalmazza, ezért negatív kontrollként szolgál. A 4 és 12 kiónokban a SÓD cDNS helyes, órajárással megegyező irányú orientációban található. A 4 jelű klón két tandem-kapcsolódó SÓD gént tartalmaz. A 4 és 12 jelű kiónok növesztés és indukció hatására olyan szuperoxid-diszmutázt termelnek, amely nincsen glikozilezve. A két klón által termelt SÓD mennyisége a baktérium által termelt teljes fehéije mintegy 0,1-0,3%-ának felel meg, Coomasie-val festett SDS-poliakrilamid gél mérés alapján számítva. A pNd-SODNN-12 plazmidot ATCC 53 166 szám alatt deponáltuk.
77. példa pNd-SOD^-I2 növesztése
Törzstenyészetek: A1645 törzsben levő pNdSODnn-12 törzstenyészeteit BHI tápközegben (lásd inoculum) készítettük, majd foszfát-citrát-puffert tartalmazó 87%-os glicerin-oldattal kétszeresére hígítottuk, és -70 °C-on tároltuk.
Inokulum: Az inokulumot BHI tápközegen (37 g/1 agy-szív-főzet/DIFCO) készítettük. Rázólombikban levő steril tápközeget a törzstenyészetből oltottuk be, és 15 óra hosszat 30 °C-on, 200 fordulat/perc rázatással inkubáltuk. Az inokulum szaporítását a következő szakaszokban keverővei és levegőztetővei ellátott fermentorokban végeztük. A steril tápközeget literenként 0,2 ml rázólombik-tenyészettel oltottuk be, és 15 óra hosszat 30 °C-on, 7±0,5 pH-értéknél keverés és levegőztetés közben inkubáltuk úgy, hogy az oldott oxigénszintet 20% levegő-telítettség fölött tartottuk.
Termelés: A termelő tápközeg összetétele a következő:
Laktalbumin hidrolizátum (enzimes) 20 g/1
Elesztőkivonat 10 g/1
K2HPO4 2,5 g/1
NaCl 10 g/1
Ampicillin 0,1 g/1
Biotin 0,1 mg/1
Tiamin 1 mg/1
Nyomelem-oldat 3 ml/1
Az ampicillint, biotint és tiamint oldatban, külön-
külön szűréssel sterileztük, és beoltás előtt adtuk a steril termelőtápközeghez. Steril glükóz-oldatot adagoltunk, a termelés kezdetén 10 g/1 koncentráció biztosítására, majd az indukció és expressziós eljárás során az 1 g/1 fölötti glükóz koncentráció biztosítására.
A nyomelem-oldat összetétele a következő volt:
MgSo4.7H2O 170 g/1
FeCl3 16 g/1
ZnCl2.6H2O 2 g/1
CoC12.6H2O 2 g/1
Na2MoO4.2H2O 1 g/1
CaCl2.2H2O 1 g/1
CuCl2O 1 g/1
H3BO3 0,5 g/1
Konc.Hcl 1000 ml/1
A tápközeget 5-10% oltótenyészettel oltottuk be, és 30 °C-on inkubáltuk. A levegőztetés és keverés sebességét úgy állítottuk be, hogy az oldott oxigén-szint a levegő-telítettség 20%-a fölött legyen. A pH-t ammónia segítségével 7±0,2 értéken tartottuk. Amikor a sejtkoncentráció elérte a 3,5 g/1 (OD660 = 10) értéket, megkezdtük az indukciót.
A hőmérsékletet 42 °C-ra emeltük. Ezen a hőmér15
HU 209 878 Β sékleten tartottuk 15 percig, majd 38 °C-ra csökkentettük. Ezután 38 ’C-on inkubáltunk 1-1,5 óra hosszat, majd a tenyészetet lehűtöttük, és a sejteket az enzimes tisztításhoz centrifugálással elválasztottuk.
SÓD kinyerése kg baktériumsejtet egy Waring-keverőben, tízszeres térfogatú olyan oldattal szuszpendáltunk, amelynek összetétele 50 mmól/1 trisz-Cl (pH = 7,4), 50 mmól/1 EDTA és 25% szacharóz, miközben a keverő sebességét úgy szabályoztuk, hogy a habzás minimális legyen. A homogén szuszpenziót folyamatosan átengedtük egy Dynomill sejtzúzó berendezésben (Willy A. Bachofen, Bázel), és a szétzúzott sejtek homogén szuszpenzióját először egy Sharpless centrifugában végzett, majd 20 000 fordulat/perc sebességgel Sorvall centrifugában folyamatosan végzett centrifugálással tisztítottuk. A két centrifugálási lépés csapadékát összegyűjtöttük, 50 mmól/1 Trisz-Cl pufferrel (pH = 7,4) mostuk, és 500 ml ugyanolyan pufferban szuszpendáltuk. Ezután 2 mg/ml végső koncentrációig lizozimot adagoltunk, és a szuszpenziót 1 óra hosszat 37 ’C-on inkubáltuk. Ezután 1% végső koncentrációig Triton X-100-t adagoltunk, a szuszpenziót 4 ’C-ra lehűtöttük, és 20 000 fordulat/perc sebességgel 20 percig centrifugáltuk egy Sorvall SS34 rotorban. A csapadékot összegyűjtöttük, kétszer mostuk 50 mmól/1 Tris-Cl pufferrel, 5 mmól/1 MgCl2-t tartalmazó 500 ml 50 mmól/l-es Tris-Cl pufferban (pH = 7,4) újra szuszpendáltunk, és 20 pg/ml végső koncentrációig dezoxiribonukleázt adtunk hozzá. 30 percig szobahőmérsékleten végzett inkubálás után a csapadékot a fenti módon összegyűjtöttük, kétszer mostuk 500 ml, 100 mmól/1 nátrium-kloridot és 10 mmól/1 EDTA-t tartalmazó 20 mmól/1 Tris-Cl pufferrel (pH = 7,4), majd kétszer mostuk 50 ml desztillált vízzel. A csapadékot centrifugálással összegyűjtöttük, amely így -20 ’C-on meghatározatlan ideig tárolható. Ennél a fokozatnál a SÓD 85%-os tisztaságú, amint ez a nátrium-dodecil-szulfátos elektroforézisből megítélhető. Akitermelés mintegy 15 g SÓD.
SÓD tisztítása
100 g csapadékot szuszpendálunk 40 ml desztillált vízben, és 0,5 mól/l-es nátrium-hidroxiddal titrálva szolubilizáljuk (pH = 11,8). Ezután az oldatot 2 percig ultrahanggal kezeljük, majd 20 000 fordulat/perc sebességgel 20 percig Sorvall SS 34 rotorban centrifugálva tisztítjuk. Ezután az oldatot Sepharose CL-6B oszlopra (5x100 cm) visszük fel, amelyet 6,5 mmól/l-es borátpufferrel (pH = 11,8) egyenlítettünk ki. Az oszlopot 100 ml/óra sebességgel fejlesztjük ki, és 12 ml-es frakciókat gyűjtünk. Az oszlopot elhagyó első csúcsot eldobjuk. A következő két csúcsot elkülönítve összegyűjtjük. Az első agregálódott SOD-t tartalmaz alacsony aktivitással, a második pedig SOD-t magas aktivitással.
Egy DEAE-Sephacel oszlopot (25 g/100 g ekvivalens csapadék) 6,5 mmól/l-es borátpufferral (pH = 9,0) kiegyensúlyoztunk. A második SÓD csúcs pH-ját sósavval 9,0 értékre állítjuk, és 250 ml/óra sebességgel az oszlopra töltjük. Az oszlopot 7,5 ml, 6,5 mmól/l-es borátpufferral (pH = 9,0) mossuk, és 75 mmól/1 nátrium-kloridot tartalmazó 6,5 mmól/l-es borátpufferral (pH = 9,0) eluáljuk. A 0,3 fölötti OD280-értékű frakciókat Összegyűjtők, vízzel szemben Millipore Pellicon dializáló berendezésben dializáljuk és liofilezzük.
12. példa pNd-SOD^-12 által termelt SÓD aktivitása
Az E. coli A1645-ben pNd-SODNN-12 expressziójával termelt humán SÓD a nyúl-anti-hSOD antitestekkel reagál és SDS-poliakrilamid-gélen az autentikus hSOD-vel együtt vándorol. Ezenkívül a pNd-SODNN12 által termelt SÓD analóg enzimaktivitása az McCord and Fridovich, J. Bioi. Chem. (1969), 244, 6049-6055 helyen ismertetett ferricito-króm-c redukciógátlás mérése alapján hasonló a természetes humán SÓD (Sigma) és a szarvasmarha SÓD (Orgotein; Grunenthal GMBH) aktivitásával.
13. példa
Met-Asp-Gln-sertés növekedési hormon analóg
ApRec pig 24 plazmid előállítását a 24. ábra mutatja és az ábrák leírása ismerteti. Az intermedier plazmidok előállítását a 21-23. ábrák mutatják be, és az ábrák leírása ismerteti.
A pl07 és p9 plazmidok, amelyek a pGH cDNS-t tartalmazzák, másik hipofízis-izolátum cDNS-könyvtárból származnak. A cDNS-t C-farokkal láttuk el,míg a pBR322 PstI hasítási termékét G-farokkal láttuk el. A két preparátumot ligáltuk, és a kiónokat bGH D4 DNS bGH fragmenséhez történő hibridizációval a pGHszekvencia inzertre nézve válogattuk. A pozitív kiónokat, többek között a pl07 és p9 plazmidot elválasztottuk, és szekvenciájukat meghatároztuk.
A pRec pig 24 plazmidot transzformációval E. coli A2097 és A4255 törzsbe vezettük be. Ezek a törzsek növesztés és indukció hatására olyan sertés növekedési hormon (pGH) analógot termelnek, amelyben MetAsp-Gln szekvencia kapcsolódik a természetes pGH fenilalanin formája N-terminálisához. A törzsek által termelt pGH analóg mennyisége a baktériumok által termelt teljes fehérjemennyiség körülbelül 10%-át teszi ki, a Coomassie kékkel festett SDS poliakrilamid gélek pGH csíkjának mérése és a teljes fehérjemennyiség Biuret-módosított Lowry módszerrel [E. Layne, Methods in Enzymology 3, 450 (1957)] történt meghatározása alapján számítva.
14. példa pRec pig 24 növesztése E. coli A2097 törzsben
I. Törzstenyészetek
A pRec pig 24 törzstenyészeteit kazein tápközegen (lásd Inokulum) készítettük, majd fagyasztó közeggel kétszeresére hígítottuk, és -80 ’C-on tároltuk. A fagyasztó közeg 500 ml-enként a következő anyagokat
tartalmazza.:
K2HPO4 6,3 g
kh2po4 1,8 g
Na-citrát 0,45 g
MgSO4.7H2O 0,09 g
(NH4)2SO4 0,9 g
Glicerin 44,0 g
HU 209 878 Β
II. Inokulum
Az inokulumot 20 g/1 triptont, 10 g/1 élesztőkivonatot és 5 g/1 nátrium-kloridot tartalmazó oldaton szaporítottuk. A rázólombikban levő steril tápközeget beoltottuk a törzstenyészettel, és 15 óra hosszat körülbelül 20 fordulat/perc sebességgel rázatva 30 °C-on inkubáltuk. Kívánt esetben az inokulum szaporításának következő fokozatait keverővei és levegőztetővei ellátott fermentorokban végeztük. A steril tápközeg 2-10% inokulummal oltottuk be, és 15 óra hosszat 30 °C-on, 7±0,5 pH-értéknél inkubáltuk keverés és levegőztetés közben olyan módon, hogy az oldott oxigénszint a levegőtelítettség 20%-a fölött legyen.
ΙΠ. Termelés
A termelő tápközeg összetétele a következő:
Tripton 20 g/1
Élesztőkivonat 10 g/1
K2HPO4 2,5 g/1
MgSO4.7H2O 1 g/1
NaCl 5 g/1
Biotin 0,1 mg/1
Tiamin 1 mg/1
Nyomelem-oldat 3 ml/1
A tápközeg 100 mg/1 ampicillint is tartalmaz. Az ampicillin a termelés esetén kívánt esetben van jelen, azonban az inokulum növesztésekor mindig tartalmazza a tápközeg.
A biotint, tiamint és ampicillint koncentrált oldatban külön-külön sterilre szűrjük, és a beoltás előtt adjuk a steril termelő tápközeghez. Steril glükóz oldatot is adagolunk olyan mennyiségben, hogy a koncentráció az elején 10 g/1 legyen. Az indukciós lépésnél további 10 g/1 glükózt adagolunk.
A nyomelem-oldat összetétele a következő:
FeCl3 27 g
ZnCl2.4H2O 2g
CoC12.2H2O 2g
NaMo04.2H20 2g
CaCI2.2H2O 1 g
CuCl2 lg
H3BO3 0,5 g
Konc. HC1 100 ml
Ionmentes víz 900 ml
A tápközeget 0,5- -10% oltótenyészettel oltjuk be,
°C-on ínkubáljuk. A keverés és levegőztetés sebességét úgy állítjuk be, hogy az oldott oxigénszint a levegő-telítettség 20%-át meghaladja. A pH-t ammónia segítségével ±0,2 értéken tartjuk. Amikor a sejtkoncentráció eléri a kb.
3,5 g/1 (ODgg, = 10) értéket, megkezdjük az indukciót.
A hőmérsékletet 42 °C-ra emeljük, és ezen az értéken tartjuk 2 óra hosszat. Ezután a tenyészetet lehűtjük, és a sejteket a hormontisztításhoz centrifugálással elválasztjuk.
A pGH úgy nyerhető ki és tisztítható, mint ahogyan azt a 4. példában a bGH esetén ismertettük.
75. példa pRec pig 24 plazmid növesztése E. coli A4255 törzsben
I. törzstenyészetek
A törzstenyészeteket kazein tápközegen (lásd Inokulum) készítettük, majd fagyasztó tápközeggel kétszeresre hígítottuk, és -75 °C-on tároltuk. A fagyasztóközeg összetétele:
K2HPO4 6,3 g
kh2po4 1,8 g
Na-citrát 0,45 g
MgSO4.7H2O 0,09 g
(NH4)2SO4 0,9 g
glicerol 44,0 g
Ionmentes víz 450 ml
II. Inokulum
Az inokulumot 10 g/1 élesztőkivonatot és 2 g/1 nátri-
um-kloridot tartalmazó minimál-tápközegen (lásd lejjebb) szaporítottuk. Egy rázólombikban levő steril tápközeget törzstenyészettel oltottunk be, és 15 óra hosszat körülbelül 250 fordulat/perc sebességgel rázatva 30 °C-on inkubáltuk. Kívánt esetben az inokulum szaporításának következő fokozatait keverővei és levegőztetővei ellátott fermentorokban végeztük. A steril tápközeget 2-10% inokulummal oltottuk be, és 15 óra hosszat 30 °C-on 7±0,5 pH-értéknél inkubáltuk keverés és levegőztetés közben olyan módon, hogy az oldott oxigénszint a levegő-telítettség 20%-a fölött legyen.
Minimáltápközegek
A pRec pig 24/A4255 esetén termelés céljára a következő minimális tápközeget alkalmaztuk:
k2hpo4 6 g/1 6 g/1
kh2po4 4 g/1 4 g/1
nh4ci 1 g/1 1 g/i
MgSO4.7H2O 3 g/1 0,2 g/1
10% FeNH4 citrát 0,3 ml/1 0,1 ml/1
Nyomelem-oldat 3 ml/1 lml/1
Habzásgátló, szilikon 0,5 ml/1
Autokláv.
A tápközeghez 100 mg/1 ampicillin is adható. A rázólombikokba steril glükózt is adtunk a kezdeti 5 g/1 koncentráció biztosítására. A fermentorokhoz 50%-os glükózoldatot külön sterileztünk, és a 20 g/1 koncentráció biztosításához szükséges mennyiséget adagoltunk. További 50%-os glükózt adagoltunk a fermentáció során OD egységenként körülbelül 1,08 g glükóz arányban. A pH-t 25%-os ammónia adagolásával szabályoztuk. Habzásgátlót kívánt esetben adagoltunk. A biotint a fermentorokban 3 mg/1, a rázólombikokban 0,5 mg/1 koncentrációban alkalmaztuk.
A nyomelem-oldat összetétele a következő:
h3bo3 0,50 g/1
CuC12(CuSO4.5H2O) 1,0 (1,85) g/1
CaCl2.2H2O 3,0 g/1
MnSO4.H2O 1,0 g/1
Na2MoD4.2H2O 2,0 g/1
CaCl2.6H2O 2,0 g/1
ZnCl2.4H2O (ZnSO4.7H2O) 2,0 g/1 (2,78)
Koncentrált HC1 100 ml
Desztillált víz 900 ml
A zárójelben levő vegyületek az előttük álló vegyü-
letek helyett alternatív módon alkalmazhatók. A zárójelben levő mennyiség a zárójelben levő vegyületre vonatkozik. A tápközeget 0,5-10% oltótenyészettel oltjuk be, és 30 °C-on ínkubáljuk. A keverés és levegőzte17
HU 209 878 Β tés sebességét úgy állítjuk be, hogy az oldott oxigénszint a levegő-telítettség 20%-a fölött legyen. A pH-t ammónia segítségével 7±0,2 értéken tartjuk. Amikor a sejtkoncentráció eléri a körülbelül 2,5 g/1 (OD660 = 10) értéket, megkezdjük az indukciót.
A hőmérsékletet 42 °C-ra emeljük, és ezen az értéken tartjuk 15 percig. Ezután az inkubációt 38 °C-on 120 percig folytatjuk. Ezután a tenyészetet lehűtjük, és a sejteket a hormontisztításhoz centrifugálással elválasztjuk.
A pGH a 4. példában a bGH esetére leírt módszerrel választható el és tisztítható.
16. példa
Met-sertés növekedési hormon analóg
A p3007 előállítását a 22. ábra mutatja, és az ábrák leírása ismerteti. A p3007 előállításához szükséges intermedier plazmidokat a 3. és 21. ábra szemlélteti és az ábrák leírása ismerteti.
Ap3007 plazmidot E. coli A1645 törzsbe transzformáltuk. Ez a törzs növesztés és indukció hatására olyan sertés növekedési hormon (pGH) analógot termel, amelyben egy metionin kapcsolódik a természetes pGH fenilalanin formájának N-terminálisához (MetpGH). A termelt pGH analóg mennyisége a baktérium által termelt Összes fehérje körülbo1il 10%-át teszi ki, a Coomassie-kékkel festett SDS poliakrilamid gélek pGH csíkjának mérése és a teljes fehérjemennyiség Biuret-módosított Lowry Módszerrel [E. Layne, Methods in Enzymology 3, 450 (1957)] történt meghatározása alapján számítva.
17. példa p3007 plazmid növesztése E. coli A1645 törzsben
I. Törzstenyészetek
A p3007 plazmid törzstenyészeteit kazein tápközegen (lásd Inokulum) készítettük, majd fagyasztóközeggel kétszeresére hígítottuk, és -80 °C-on tároltuk. A fagyasztóközeg 500 ml-enként a következő anyagokat
tartalmazza:
K2HPO4 6,3 g
kh2po4 1,8 g
Na-citrát 0,45 g
MgSO4.7H2O 0,09 g
(NH^SO, 0,9 g
Glicerin 44,0 g
II. Inokulum
Az inokulumot 20 g/1 triptont, 10 g/1 élesztőkivonatot és 5 g/1 nátrium-kloridot tartalmazó tápközegen szaporítottuk. A rázólombikban levő steril tápközeget a törzstenyészettel beoltottuk, és 15 óra hosszat körülbelül 200 fordulat/perc sebességgel rázatva 30 °C-on inkubáltuk. Kívánt esetben az inokulum szaporításának további fokozatait keverővei és levegőztetővei ellátott fermentorokban végeztük. A steril tápközeget 2-10% inokulummal oltottuk be, és 15 óra hosszat 30 °C-on 7±0,5 pH-értéknél inkubáltuk keverés és levegőztetés közben olyan módon, hogy az oldott oxigénszint a levegő-telítettség 20%-a fölött legyen.
ΙΠ. Termelés
A termelő tápközeg összetétele a következő:
Tripton 20 g/1
Elesztókivonat 10 g/1
K2HPO4 2,5 g/1
MgSO4.7H2 1 g/i
NaCl 5 g/1
Biotin 0,1 mg/1
Tiamin 1 g/1
Nyomelem-oldat 3ml/l
A tápközeg 100 mg/1 ampicillint is tartalmaz. Az
ampicillin a termelés esetén kívánt esetben alkalmazandó, az inokulum növesztésekor azonban a tápközeg mindig tartalmazza. A biotint, tiamint és ampicillint koncentrált oldatban külön-külön sterilre szűrtük, és a steril termelőtáp-közeghez az inokulálás előtt adagoltuk. Steril glükózoldatot is adagoltunk a kezdeti 10 g/1 koncentráció biztosítására. Az indukciós lépésben további 10 g/1 glükózt adagoltunk.
A nyomelem-oldat összetétele a következő:
FeCl3 27 g
ZnCl2.4H2O 2g
CoC12.2H2O 2g
NaMoO4.2H2O 2g
CaCl2.2H2O lg
CuCl2 lg
H3BO3 0,5 g
Konc. HC1 100 ml
Ionmentes H2O 900 ml
A tápközeget 0,5- -10% oltótenyészettel oltjuk be, és
°C-on inkubáljuk. A keverés és levegőztetés sebességét úgy állítjuk be, hogy az oldottoxigénszint a levegő-telítettség 20%-a fölött legyen. A pH-t ammónia segítségével 7±0,2 értéken tartjuk. Amikor a sejtkoncentráció eléri a körülbelül 3,5 g/1 (OD^q = 10) értéket, megkezdjük az indukciót.
A hőmérsékletet 42 ’C-ra emeljük, és ezen az értéken tartjuk 2 óra hosszat. Ezután a tenyészetet lehűtjük, és a sejteket a hormontisztításhoz centrifugálással elválasztjuk.
A pGH a 4. példában a bGH esetére leírt módszerrel választható el és tisztítható.
18. példa
Az E. coli A1645 törzsben p3007 által termelt MetpGH analóg aktivitása
1. Met-pGH analóg összehasonlítása a természetes pGH-val radioimmun vizsgálattal
100 ng/ml Met-pGH analógot tartalmazó oldatot készítettünk foszfáttal pufferolt sóoldattal (1% BSA). Ezt az oldatot sorozathígítással 50, 25,12,5,6,25,3,12, 1,56 és 0,78 ng/1 koncentrációra hígítottuk. Ezekből az oldatokból két párhuzamos, 0,1 ml alikvot mintákat RIA mérésnek vetettünk alá kettős antitest-eljárást alkalmazva. A hígítási görbe hasonló volt ahhoz, mint amelyet a természetes pGH-val kaptunk.
2. Radioreceptor kötési vizsgálat
Radioreceptor kötés mérést hajtottunk végre nyúlmáj-membránokon, ahogyan ezt Tushima T. és Freisen H. G. leírták [Y. Chin. Endocr. Metab. (1937) 37, 334], 125I-hGH-t alkalmazva nyomjelzőként és autentikus bGH oldatokat a kalibrációs görbék készítéséhez. A mintákat
HU 209 878 B három párhuzamosban inkubáltuk két órán át szobahőmérsékleten 0,3 ml mérő-pufferban (50 mmól/1 Tris, 15 mmól/1 CaCl2 és 5 mg/ml szarvasmarha szérum albumin, pH = 7,6). A csövek 125I-t (20 000 beütés/perc 3060 pci/pg-os preparátumból), 150-250 μg máj-membrán fehérjét és természetes bGH-t (1-100 ng), vagy bakteriális pGH extraktumot tartalmaztak. Az eredmény azt demonstrálja, hogy a pGH analóg pGH aktivitása hasonló a természetes pGH aktivitásához.
3. A Met-sertés növekedési hormon analóg radioreceptor kötési vizsgálatánál alkalmazott eljárások
A. Májmembrán előállítása
Vemhes (harmadik harmadban levő) nyúl friss máját sóoldattal mossuk, apró darabokra vágjuk, majd egy Waring-keverőben kis sebességgel 4 °C-on 1 percig homogenizáljuk 2 ml/g 0,3 mól/l-es szacharóz-oldatban, amely 10 mól/1 p-metil-szulfonil-fluoridot (PMSF) tartalmaz. A homogenizátumot egy négyréteges szűrőkendőn átszűrjük, és 1000 g-vel 10 percig forgatjuk.
A kapott csapadékot 1 ml/g szacharóz-oldatban újra szuszpendáljuk, és újra megforgatjuk. A két felülúszót egyesítjük, és 20 000 g-vel 20 percig forgatjuk. A membráncsapadékot 1 ml/g máj 0,15 mól/1 kálium-klorid és 10 mól/1 PM5p-tartalmú oldatban újra szuszpendáljuk, és 20 000 g-vel 20 percig forgatjuk. A csapadékot ezután 1 ml/g máj desztillált vízzel homogenizáljuk. A homogenizátumot először 10 percig 1000 g-vel, majd a felülúszót 20 000 g-vel 20 percig forgatjuk, így kapjuk a végső membráncsapadékot. Ezt a csapadékot térfogatával azonos térfogatú vízben szuszpendáljuk, és 1 ml-es részletekben -20 °C-on vagy az alatt tároljuk.
B. Jódozott pGH
Autentikus tiszta pGH-t jódozunk szokásos módszerekkel, Bolton-Hunter reagenssel, majd Sepadex G25 gélszűréssel elválasztjuk.
C. Mérési módszer
Minden hígítást kötőpufferrel készítünk (25 mmól/1 Tris, 10 mmól/1 CaCl2 és 5 mg/ml szarvasmarhaszérum-albumin, pH = 7,4-7,6). A mérést 10x75 mm-es polisztirolcsövekben végezzük. Minden cső tartalmazza a következő anyagokat:
- 0,1 ml I25I-pGH oldat (körülbelül 10 000 beütés/perc);
- 0,1 ml ismert autentikus pGH oldat vagy ismeretlen minta;
- 0,1 ml membrándoldat (fagyasztott törzsoldat 2 térfogat pufferrel hígítva).
A kicsapás során gondoskodni kell a membránkészítmény folyamatos keveréséről, azért, hogy a részecskék leülepedését elkerüljük.
Az autentikus pGH standard oldatok koncentrációja 10 és 1000 ng/ml közötti. A mérést három párhuzamosban végezzük. A csöveket rázatás közben két óra hosszat szobahőmérsékleten inkubáljuk, majd 1,5 ml kötőpuffert adunk minden csőhöz, és 20 percig 3000 fordulat/perc sebességgel forgatjuk. A felülúszót gyorsan leszivatjuk, és a membráncsapadékot tartalmazó csöveket gammaszámlálásnak vetjük alá.
A kalibrációs görbét a standard minták kapott radioaktivitás értékeinek a koncentráció függvényében történő ábrázolásával kapjuk, és az ismeretlen növekedési hormon minta aktivitását összehasonlítása alapján számoljuk.
19. példa pRec pig 24 által termelt Met-Asp-Gln-pGH analóg aktivitása
1. Met-Asp-Gln-pHG analóg összehasonlítása MetpGH analóggal radioimmun vizsgálat alapján 250 ng/50 ml Met-Asp-Gln-pGH analógot tartalmazó oldatot készítettünk RIA pufferrel (pH = 8,5). Ezt az oldatot sorozathígítással 125, 62,5, 31,25, 15,6, 7,8, 3,9, 1,9 és 0,9 ng/50 μΐ koncentrációra hígítottuk. Két párhuzamos 50 ml alikvot mintákat RIA mérésnek vetettünk alá, a második antitest helyett nyers protein A-t alkalmazva. A hígítási görbe hasonló volt ahhoz, mint amelyet a Met-pGH-val kaptunk. RIA puffer: 50 nmól/1 nátriumbarbital, 150 nmól/1 nátrium-klorid, 10 nmól/1 EDTA, 0,05% Triton X-100,1% BSA, 0,2% SDS.
2. Radioreceptor-kötési vizsgálat
Radioreceptor-kötési mérést végeztünk nyúlmáj membránnal [T. Tushima and H. G. Freisen (Y. Chin., Endocr. Metab.) (1973), 37, 334] nyomjelzőként l25IpGH-t alkalmaztunk,és a kalibrációs görbéket Met-pGH analóg oldattal vettük fel. Három párhuzamos mintát inkubáltunk 2 óra hosszat szobahőmérsékleten 0,3 ml mérőpufferban (50 mmól/1 Tris, 15 mmól/1 kalcium-klorid és 5 mg/ml szarvasmarhaszérum-albumin, pH = 7,6). A csövek 125I-bGH-t (30 000 beütés/perc/100 μΐ), 250250 ng) vagy Met-Asp-Gln-pGH analóg extraktumokat tartalmaztak. Az eredmények azt mutatták, hogy a MetAsp-Gln-pGH analóg pGH-aktivitása összehasonlítható a Met-pGH aktivitással, amely a 18. példa szerint összetéveszthető a természetes pGH-val.
20. példa
Met-Asp-Gln-pGH és Met-pGH analógok biológiai aktivitása
Egy nemrégen megjelent tanulmány (C. A. Spence és munkatársai, Abstract entitled „Effect of Exogenous Growth Hormoné On Fetal Energy Storage and Lactation Performance in Sows, írom the Annual Meeting of the American Society of Animál Science, Univ. of Missouri, Aug. 7-10, 1984) azt ismerteti, hogy az agyalapi mirigy eredetű sertés növekedési hormon adagolása fokozza az anyadisznó tejelválasztását és a malacok életképességét. A tejelválasztási vizsgálatok azt mutatták, hogy a találmány szerinti eljárással előállított Met-Asp-Gln-pGH analóg és a Met-pGH analóg adagolása vemhes anyadisznóknak, javította az anyadisznó tejelválasztását és a malacok életképességét.

Claims (15)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Eljárás polipeptidek előállítására E. coli gazdasejtben, azzal jellemezve, hogy egy, 5'-3' irányban
    - egy lambda bakteriofágból származó PLOL promoter és operátor szekvenciát,
    - az E. coli gazdasejt által termelt N-antiterminá19
    HU 209 878 Β tor fehérjéhez való kötésre szolgáló N-hasznosítóhelyet,
    - egy riboszómakötőhelyet,
    - egy ATG iniciálé kodont,
    - egy a kívánt polipeptidet kódoló DNS-szekvenciát, amely az ATG kodonnal illeszkedő leolvasási keretben van,
    - egy terminátor szekvenciát, továbbá egy, az E. coli gazdasejtben működőképes replikációs origót és egy szelektálható vagy azonosítható fenotípus jellemzővel társult gént tartalmazó plazmiddal olyan E. coli gazdasejtet transzformálunk, amely C, represszort és N-antiterminátor fehérjét termel, a sejteket növesztjük, majd a hőmérséklet emelésével a Cj represszort inaktiváljuk, a gazdasejtet tenyésztjük, és a tenyészléből a polipeptidet kinyerjük.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy E. coli gazdasejtként A1637 vagy A1645 törzset transzformálunk.
  3. 3. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy riboszóma kötőhelyként egy
    TAAGGAAATACTTACAT
    ATTCCTTTATGAATGTA nukleotid-szekvenciával rendelkező, lambda-bakteriofágból származó Cn szekvenciát tartalmazó plazmiddal transzformálunk.
  4. 4. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy riboszóma kötőhelyként egy
    TAAGGAAGTACTTACAT
    ATTCCTTCATGAATGTA szekvenciával rendelkező szintetikus oligonukleotidot tartalmazó plazmiddal transzformálunk.
  5. 5. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy fenotípus jellemzőként gyógyszerrezisztenciáért vagy hőmérsékletérzékenységért felelős gént tartalmazó plazmiddal transzformálunk.
  6. 6. Az 5. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy gyógyszerrezisztenciaként ampicillin-, klóramfenikol- vagy tetraciklín-rezisztenciáért felelős gént tartalmazó plazmiddal transzformálunk.
  7. 7. Az 1. igénypont szerinti eljárás szarvasmarha növekedési hormon aktivitású polipeptid előállítására, azzal jellemezve, hogy a megfelelő DNS-szekvenciát alkalmazzuk.
  8. 8. Az 1. igénypont szerinti eljárás sertés növekedési hormon aktivitású polipeptid előállítására, azzal jellemezve, hogy a megfelelő DNS-t alkalmazzuk.
  9. 9. Az 1. igénypont szerinti eljárás humán növekedési hormon aktivitású polipeptid előállítására, azzal jellemezve, hogy a megfelelő DNS-t alkalmazzuk.
  10. 10. Az 1. igénypont szerinti eljárás humán Cu/Zn szuperoxid-diszmutáz aktivitású polipeptid előállítására, azzal jellemezve, hogy a megfelelő DNS-t alkalmazzuk.
  11. 11. Az 1. vagy 7. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy plazmidként a 2. ábrán bemutatott pRec 2/3 jelű, ATCC 39 385 számon deponált plazmiddal transzformálunk.
  12. 12. Az 1. vagy 7. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy plazmidként a 3. ábrán bemutatott pROll jelű, ATCC 39 390 számon deponált plazmiddal transzformálunk.
  13. 13. Az 1. vagy 9. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy plazmidként a 4. ábrán bemutatott pTV18(l) jelű, ATCC 39 386 számon deponált plazmiddal transzformálunk.
  14. 14. Az 1. vagy 9. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy plazmidként a 4. ábrán bemutatott pTV 104(2) jelű, ATCC 39 384 számon deponált plazmiddal transzformálunk.
  15. 15. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a hőmérséklet 42 °C-ra történő emelésével a Cj represszort inaktiváljuk, majd a gazdasejtet 3739 °C-on tenyésztjük.
HU842749A 1983-07-15 1984-07-13 Method for producing polipeptids in a new escherichia coli expression HU209878B (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US51418883A 1983-07-15 1983-07-15

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HUT34543A HUT34543A (en) 1985-03-28
HU209878B true HU209878B (en) 1994-11-28

Family

ID=24046152

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU842749A HU209878B (en) 1983-07-15 1984-07-13 Method for producing polipeptids in a new escherichia coli expression

Country Status (22)

Country Link
US (3) US4871835A (hu)
EP (3) EP0691406A1 (hu)
JP (3) JPH0687780B2 (hu)
AT (2) ATE66959T1 (hu)
AU (2) AU577298B2 (hu)
BG (2) BG49718A3 (hu)
BR (1) BR8403523A (hu)
CA (1) CA1254527A (hu)
CZ (1) CZ282867B6 (hu)
DD (2) DD240217A5 (hu)
DE (2) DE3486425T2 (hu)
DK (1) DK347184A (hu)
ES (2) ES8602947A1 (hu)
FI (1) FI90564C (hu)
HK (1) HK128095A (hu)
HU (1) HU209878B (hu)
IE (2) IE64174B1 (hu)
IL (8) IL72396A (hu)
NZ (2) NZ227962A (hu)
RO (1) RO91332B (hu)
SK (1) SK524684A3 (hu)
ZA (1) ZA845345B (hu)

Families Citing this family (67)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5340926A (en) * 1983-03-25 1994-08-23 Celltech, Limited Process for the recovery of recombinantly produced protein from insoluble aggregate
US5236828A (en) * 1983-07-06 1993-08-17 Papas Takis S Plasmid pJL6
US5670371A (en) * 1983-07-15 1997-09-23 Bio-Technology General Corp. Bacterial expression of superoxide dismutase
BG49718A3 (en) * 1983-07-15 1992-01-15 Bio Technology General Corp Method for preparing of polypeptid with superoxiddismutasne activitty
US5332805A (en) * 1984-02-03 1994-07-26 Celltech Limited Process for the recovery of recombinantly produced chymosin from insoluble aggregate
DE3585170D1 (de) * 1984-03-06 1992-02-27 Lilly Co Eli Expressionsvektoren fuer rinderwachstumshormonderivate.
US5112744A (en) * 1984-08-27 1992-05-12 Bio-Technology General Corp. Plasmids for the production of human Cu-Zn superoxide dismutase, bacterial hosts containing the plasmids and methods for production and recovery of such superoxide dismutase
US6030611A (en) * 1984-08-27 2000-02-29 Bio-Technology General Corp. Therapeutic SOD compositions and uses thereof
CA1340597C (en) * 1984-08-27 1999-06-22 Haim Aviv Expression vectors containing pl promoter, and engineered restriction site for convenient replacement of ribosomal binding site, plasmids containing the vectors, hosts containing the plasmids and related methods
CA1267615A (en) * 1984-08-27 1990-04-10 Dan Hadary Method for recovering purified growth hormones from genetically engineered microorganisms
US5759816A (en) * 1984-08-27 1998-06-02 Bio-Technology General Corp. Expression vectors containing λPL promoter and T1 T2 rRNA termination sequence plasmids containing the vectors hosts containing the plasmids and related methods
US5162217A (en) * 1984-08-27 1992-11-10 Bio-Technology General Corp. Plasmids for expression of human superoxide dismutase (SOD) analogs containing lambda PL promoter with engineered restriction site for substituting ribosomal binding sites and methods of use thereof
US5143836A (en) * 1984-08-27 1992-09-01 Bio-Technology General Corp. Plasmids for expression of human superoxide dismutase (SOD) analogs containing lambda pl promoter with engineered restriction site for substituting ribosomal binding sites and methods of use thereof
US4743546A (en) * 1985-02-13 1988-05-10 Biotechnica International, Inc. Controlled gene excision
US4861868A (en) * 1985-02-22 1989-08-29 Monsanto Company Production of proteins in procaryotes
FR2579223B1 (fr) * 1985-03-25 1988-12-09 Genetica Procede de preparation microbiologique de la serum-albumine humaine
DE3685424D1 (de) 1985-06-26 1992-06-25 Upjohn Co Solubilisation und oxidation von somatotropin aus transformierten mikroorganismen.
US4788144A (en) * 1985-06-28 1988-11-29 International Minerals & Chemical Corp. Fermentation process for the high level production of swine growth
US4762784A (en) * 1985-07-15 1988-08-09 International Minerals & Chemical Corp. Fermemtation process for the high level production of bovine growth hormone
US4874703A (en) * 1985-08-26 1989-10-17 Eli Lilly And Company Expression vectors for use in E. coli
US5631227A (en) * 1985-09-18 1997-05-20 The Upjohn Company Somatotropin analogs
EP0236452B1 (en) * 1985-09-18 1990-10-31 The Upjohn Company Enhanced bioactivity of mammalian somatotropin through selective deamidation
JPH07110232B2 (ja) * 1985-10-14 1995-11-29 株式会社日立製作所 遺伝子組換え大腸菌の遺伝子生産物を採取する方法および装置
US6610520B1 (en) 1985-11-22 2003-08-26 Bio-Technology General Corp. Gene encoding human manganese superoxide dismutase and recombinant polypeptide encoded thereby
IE59498B1 (en) * 1985-11-22 1994-03-09 Bio Technology General Corp Human manganese superoxide dismutase analog, plasmid for its expression and method of recovering it in enzymatically active form
ES2019874B3 (es) * 1986-10-08 1991-07-16 Upjohn Co Bioactividad mejorada de somatotropina de mamiferos mediante desamidacion selectiva.
US5089406A (en) * 1987-01-07 1992-02-18 Allied-Signal Inc. Method of producing a gene cassette coding for polypeptides with repeating amino acid sequences
GB8701848D0 (en) * 1987-01-28 1987-03-04 Celltech Ltd Polypeptides
US5240837A (en) * 1987-02-19 1993-08-31 The Upjohn Company CDNAS encoding somatotropin, expression vectors and hosts
JP2580303B2 (ja) * 1987-02-19 1997-02-12 ジ・アップジョン・カンパニー 異種蛋白をコ−ド付けするcDNA類、発現ベクタ−類および宿主類
US5104796A (en) * 1987-04-06 1992-04-14 International Minerals & Chemical Corp. High titer production of human somatomedin c
US5047504A (en) * 1987-04-28 1991-09-10 Amgen, Inc. Method for purifying granulocyte-macrophage colony stimulating factor
US4966841A (en) * 1987-05-22 1990-10-30 The Board Of Regents Of The University Of Washington Enhanced vector production and expression of recombinant DNA products
US5030563A (en) * 1987-07-07 1991-07-09 Genetics Institute, Inc. Bacterial hypersecretion using mutant repressor sequence
US5079345A (en) * 1988-08-19 1992-01-07 Eli Lilly And Company Proteins having growth hormone anabolic properties with reduced effect on carbohydrate metabolism
ES2064412T3 (es) * 1988-10-26 1995-02-01 American Cyanamid Co Procedimiento para reducir el contenido de aglomerado de materiales tipo hormona del crecimiento.
US6780613B1 (en) 1988-10-28 2004-08-24 Genentech, Inc. Growth hormone variants
CA2001774C (en) * 1988-10-28 2001-10-16 James A. Wells Method for identifying active domains and amino acid residues in polypeptides and hormone variants
EP0441889A1 (fr) * 1988-11-07 1991-08-21 Commission des Communautés Européennes Hormone de croissance humaine modifiee
US4975529A (en) * 1989-08-18 1990-12-04 Monsanto Company Method of folding somatotropins
US6583115B1 (en) 1989-10-12 2003-06-24 Ohio University/Edison Biotechnology Institute Methods for treating acromegaly and giantism with growth hormone antagonists
US5958879A (en) * 1989-10-12 1999-09-28 Ohio University/Edison Biotechnology Institute Growth hormone receptor antagonists and methods of reducing growth hormone activity in a mammal
IE912345A1 (en) * 1990-08-03 1992-02-12 Pharmacia Ab Treatment of human lactation failure
US5612198A (en) * 1990-09-04 1997-03-18 The Salk Institute Production of insulin-like growth factor-1 in methylotrophic yeast cells
US5844097A (en) * 1990-11-30 1998-12-01 Monoclonetics International, Inc. Methods for the diagnosis of peripheral nerve damage
CA2097426A1 (en) * 1990-11-30 1992-05-31 Bruce M. Cameron, Sr. Method for the diagnosis of chronic lower back and cervical pain
US5231178A (en) * 1991-01-16 1993-07-27 The Salk Institute Biotechnology/Industrial Associates, Inc. Method for the purification of intact, correctly-folded insulin-like growth factor-1
DE69231467T2 (de) * 1991-05-10 2001-01-25 Genentech Inc Auswählen von agonisten und antagonisten von liganden
US5395761A (en) * 1991-11-27 1995-03-07 Eli Lilly And Company Plasmid pHKY334, an expression vector for EK-BGH and host cells transformed therewith
ZA94169B (en) * 1993-01-26 1994-09-07 Lilly Co Eli Non-denaturing potency assay for bovine somatotropin
AU693478B2 (en) * 1994-11-10 1998-07-02 Metabolic Pharmaceuticals Limited Treatment of obesity
US20020142965A1 (en) * 1994-11-15 2002-10-03 Metabolic Pharmaceuticals, Ltd. Treatment of obesity
US6335319B1 (en) 1994-11-15 2002-01-01 Metabolic Pharmaceuticals, Inc. Treatment of obesity
AU5881996A (en) * 1995-06-07 1996-12-30 Ohio University/Edison Biotechnology Institute Methods of treatment using growth hormone antagonists
KR970006498A (ko) * 1995-07-31 1997-02-21 유충식 활성형 인성장호르몬의 정제 방법
DK1568772T3 (da) * 1995-09-21 2010-10-18 Genentech Inc Varianter af humant væksthormon
US5849293A (en) * 1996-01-11 1998-12-15 Cornell Research Foundation, Inc. Use of human transferrin in controlling insulin levels
CA2197408A1 (en) * 1996-02-13 1997-08-14 Kazuo Chihara Mutant human growth hormones and their uses
WO1999012969A1 (en) * 1997-09-08 1999-03-18 Metabolic Pharmaceuticals Ltd. Treatment of obesity
DE19951765A1 (de) * 1999-10-27 2001-05-03 Thomas Schweder Wirts-Vektor-Systeme zur Überproduktion von thermolabilen Enzymen psychrophiler Organismen
KR100400638B1 (ko) * 2000-12-06 2003-10-08 주식회사 엘지생명과학 재조합 인간 성장호르몬 유사체의 분리방법
NZ527590A (en) 2001-03-09 2005-12-23 Genentech Inc Process for production of polypeptides
DE60332358D1 (de) * 2002-09-09 2010-06-10 Hanall Pharmaceutical Co Ltd Protease-resistente modifizierte interferon alpha polypeptide
US7998930B2 (en) 2004-11-04 2011-08-16 Hanall Biopharma Co., Ltd. Modified growth hormones
EP1871795A4 (en) 2005-04-08 2010-03-31 Biogenerix Ag COMPOSITIONS AND METHOD FOR PRODUCING GLYCOSYLATION MUTANTS OF A PROTEASE-RESISTANT HUMAN GROWTH HORMONE
US20080260820A1 (en) * 2007-04-19 2008-10-23 Gilles Borrelly Oral dosage formulations of protease-resistant polypeptides
EP2446898A1 (en) 2010-09-30 2012-05-02 Laboratorios Del. Dr. Esteve, S.A. Use of growth hormone to enhance the immune response in immunosuppressed patients

Family Cites Families (32)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ZA802992B (en) * 1979-06-01 1981-10-28 Univ California Human pre-growth hormone
US4342832A (en) * 1979-07-05 1982-08-03 Genentech, Inc. Method of constructing a replicable cloning vehicle having quasi-synthetic genes
US4426323A (en) * 1980-01-10 1984-01-17 Ionics, Incorporated Selected recovery of proteins from fermentation broths
US4443539A (en) * 1980-02-05 1984-04-17 The Upjohn Company Process for preparing bovine growth hormone
IL59690A (en) * 1980-03-24 1983-11-30 Yeda Res & Dev Production of bovine growth hormone by microorganisms and modified microorganisms adapted to produce it
NO811119L (no) * 1980-06-06 1981-12-07 Biogen Nv Forbedrede baerere, samt fremgangsmaate ved fremstilling av disse og for aa uttrykke klonede gener
US4352443A (en) * 1980-06-24 1982-10-05 U.S. Cap & Closure, Inc. Dispenser having a trigger-bulb pump
JPS6045848B2 (ja) * 1980-07-31 1985-10-12 株式会社林原生物化学研究所 ヒト成長ホルモンの製造方法
IE52755B1 (en) * 1980-08-26 1988-02-17 Univ California Bovine pre-growth and growth hormone
DE3231658A1 (hu) 1981-01-21 1983-11-17
EP0061250A3 (en) * 1981-03-23 1983-09-28 Biogen N.V. Improved process for recovering products produced by host organisms
NZ201918A (en) * 1981-09-18 1987-04-30 Genentech Inc N-terminal methionyl analogues of bovine growth hormone
US4436815A (en) * 1981-11-27 1984-03-13 Eli Lilly And Company Method for stabilizing and selecting recombinant DNA containing host cells
US4665160A (en) * 1982-03-22 1987-05-12 Genentech, Inc. Novel human growth hormone like protein HGH-V encoded in the human genome
AU553017B2 (en) * 1982-06-07 1986-06-26 Chr. Hansen A/S A process for the preparation of chymosin
EP0103395A3 (en) * 1982-08-17 1985-05-22 Biogen N.V. Dna sequences, recombinant dna molecules and processes for producing bovine growth hormone-like polypeptides in high yield
EP0111814A3 (en) * 1982-12-16 1985-08-14 Mgi Pharma, Inc. The cloning and expression of nucleotide sequences encoding bovine growth hormone
US4512922A (en) * 1982-12-22 1985-04-23 Genentech, Inc. Purification and activity assurance of precipitated heterologous proteins
CA1224168A (en) * 1982-12-23 1987-07-14 Dean H. Hamer Human growth hormone produced by recombinant dna in mouse cells
US4728609A (en) * 1983-01-10 1988-03-01 Hoffmann-La-Roche Inc. Recombinant growth hormone releasing factor
JPS59145876A (ja) * 1983-02-09 1984-08-21 株式会社リコー 開閉体用のヒンジ
CA1254000A (en) * 1983-03-07 1989-05-09 Arthur M. Felix Growth hormone releasing factor analogs
JPH06102034B2 (ja) * 1983-03-25 1994-12-14 セルテク リミテツド タンパク質の生産方法
US4755465A (en) * 1983-04-25 1988-07-05 Genentech, Inc. Secretion of correctly processed human growth hormone in E. coli and Pseudomonas
BG49718A3 (en) * 1983-07-15 1992-01-15 Bio Technology General Corp Method for preparing of polypeptid with superoxiddismutasne activitty
AU587176B2 (en) * 1984-02-14 1989-08-10 Mycogen Plant Science, Inc. Transfer vector
US4767709A (en) * 1984-06-28 1988-08-30 The Johns Hopkins University Growth-related hormones
DE3426532A1 (de) * 1984-07-18 1986-01-30 Gesellschaft für Biotechnologische Forschung mbH (GBF), 3300 Braunschweig Verwendung einer dna-sequenz zur expression sowie dna-struktur und expressionsvektor mit der dna-sequenz
CA1340597C (en) * 1984-08-27 1999-06-22 Haim Aviv Expression vectors containing pl promoter, and engineered restriction site for convenient replacement of ribosomal binding site, plasmids containing the vectors, hosts containing the plasmids and related methods
US4612367A (en) * 1985-04-08 1986-09-16 Eli Lilly And Company Process for purifying growth hormone-like materials
US4677196A (en) * 1985-09-06 1987-06-30 International Minerals & Chemical Corp. Purification and activation of proteins from insoluble inclusion bodies
US4656255A (en) * 1985-09-09 1987-04-07 International Minerals & Chemical Corp. Protein recovery

Also Published As

Publication number Publication date
US4831120A (en) 1989-05-16
ES544976A0 (es) 1986-01-16
JPH0799990A (ja) 1995-04-18
JPH0687780B2 (ja) 1994-11-09
NZ208897A (en) 1990-06-26
ES534321A0 (es) 1985-12-01
ATE136934T1 (de) 1996-05-15
ZA845345B (en) 1985-03-27
IL72396A (en) 1992-05-25
EP0131843A1 (en) 1985-01-23
EP0319049A2 (en) 1989-06-07
IL91826A (en) 1992-05-25
IL112178A0 (en) 1995-03-15
AU615663B2 (en) 1991-10-10
CA1254527A (en) 1989-05-23
BR8403523A (pt) 1985-06-25
AU1977788A (en) 1988-12-22
RO91332A (ro) 1987-04-30
AU577298B2 (en) 1988-09-22
IL101629A0 (en) 1992-12-30
IL91826A0 (en) 1990-06-10
FI842842A0 (fi) 1984-07-13
ATE66959T1 (de) 1991-09-15
IL72396A0 (en) 1984-11-30
DK347184D0 (da) 1984-07-13
SK278576B6 (en) 1997-10-08
EP0131843B1 (en) 1991-09-04
IL91828A (en) 1992-05-25
EP0319049A3 (en) 1990-01-03
HK128095A (en) 1995-08-18
ES8602947A1 (es) 1985-12-01
SK524684A3 (en) 1997-10-08
CZ524684A3 (en) 1997-07-16
US4871835A (en) 1989-10-03
DE3485003D1 (de) 1991-10-10
DK347184A (da) 1985-01-16
IL91828A0 (en) 1990-06-10
JP3146161B2 (ja) 2001-03-12
EP0691406A1 (en) 1996-01-10
IE841818L (en) 1985-01-15
HUT34543A (en) 1985-03-28
FI90564C (fi) 1994-02-25
JPS6091986A (ja) 1985-05-23
AU3034584A (en) 1985-01-17
IE64174B1 (en) 1995-07-12
DE3486425T2 (de) 1996-10-17
FI90564B (fi) 1993-11-15
DD229427A5 (de) 1985-11-06
BG49718A3 (en) 1992-01-15
IL108108A0 (en) 1994-04-12
ES8604252A1 (es) 1986-01-16
RO91332B (ro) 1987-05-01
DE3486425D1 (de) 1996-05-23
FI842842A (fi) 1985-01-16
JPH09131190A (ja) 1997-05-20
EP0319049B1 (en) 1996-04-17
US4997916A (en) 1991-03-05
IE922469A1 (en) 1985-01-15
BG49721A3 (en) 1992-01-15
NZ227962A (en) 1990-06-26
CZ282867B6 (cs) 1997-11-12
JP2568376B2 (ja) 1997-01-08
DD240217A5 (de) 1986-10-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU209878B (en) Method for producing polipeptids in a new escherichia coli expression
KR940000756B1 (ko) 인슈린 유사체의 제조방법
US5330971A (en) Growth hormone fusion proteins, methods of production, and methods of treatment
JP2857684B2 (ja) ヒトリラキシンの単離のための方法および組成物
EP0871474B1 (en) Generation of human insulin
SK704783A3 (en) Dna sequences, recombinant molecules of dna and a method of producing polypeptides similar to sow growth hormone
JPH08289792A (ja) ヒトマンガンスーパーオキシドジスムターゼcDNA、その細菌中での発現及び酵素活性ヒトマンガンスーパーオキシドジスムターゼの回収方法
HU215160B (hu) Eljárás humán Cu/Zn szuperoxid dizmutáz előállítására és tisztítására
US5256546A (en) Bacterial expression of porcine growth hormone
US5637495A (en) Plasmids for production of human growth hormone or polypeptide analog thereof, hosts containing the plasmids, products manufactured thereby, and related methods
US5527691A (en) Expression vectors containing lambdapl promoter and T1 T2 rRNA termination sequence, plasmids containing the vectors, hosts containing the plasmids and related methods
US5198361A (en) Plasmids for production of met-asp-gln bovine growth hormone, hosts containing the plasmids, products manufactured thereby and related methods
US5112744A (en) Plasmids for the production of human Cu-Zn superoxide dismutase, bacterial hosts containing the plasmids and methods for production and recovery of such superoxide dismutase
KR100247668B1 (ko) 안정적이고 생물학적으로 활성인 변형된 소마토트로핀
EP0511003B1 (en) Superactive GRF analogs
US5151364A (en) Expression vectors containing lambdapl promoter, T1 T2 RRNA termination sequence, and origin of replication derived from a constitutive high copy number plasmid, and hosts containing the plasmids
US5081020A (en) Expression vectors containing λPL promoter, T1 T2 rRNA termination sequence and origin of replication derived from a constitutive high copy number plasmid hosts and related methods
JPS62181799A (ja) 発酵工学により製造したカルジオジラチンを含む医薬およびその製造方法
JPH04501064A (ja) 成長ホルモン融合蛋白質