ES2724000T3 - Microorganismo del género Corynebacterium para producir L-arginina y método de producción de L-arginina utilizando el mismo - Google Patents

Abstract

Un microorganismo del género Corynebacterium que tiene la capacidad de producir L-arginina con actividades mejoradas de un operón de arginina y ornitina carbamoiltransferasa en comparación con las actividades de cada uno en una cepa parental de producción de L-arginina de Corynebacterium, en el que el operón de arginina comprende un represor de arginina.

Description

DESCRIPCIÓN

Microorganismo del género Corynebacterium para producir L-arginina y método de producción de L-arginina utilizando el mismo

[Campo técnico]

La presente invención se refiere a un microorganismo del género Corynebacterium que tiene la capacidad de producir L-arginina y un método para producir L-arginina utilizando el mismo.

[Técnica antecedente]

La L-arginina es un aminoácido ampliamente utilizado en los complementos de aminoácidos, medicamentos farmacéuticos, alimentos, etc., y ha habido demanda para el desarrollo de una producción eficiente de L-arginina en las industrias relacionadas.

El método para producir L-arginina por un método de fermentación biológica convencional es un método para producir L-arginina directamente a partir de fuentes de carbono y nitrógeno, y se han indicado diversos métodos que incluyen un método que utiliza una cepa modificada inducida de un microorganismo del género Brevibacterium o Corynebacterium, un método que utiliza una línea celular bacteriana desarrollada para tener una capacidad mejorada de producción de aminoácidos por fusión celular, etc. Recientemente, se inactivó un método para usar una cepa genética recombinante, en la que se inactivó un gen que inhibe la expresión del operón de biosíntesis de arginina argR (Patente de Estados Unidos N.° 7.160.705), y un método para usar la sobreexpresión de argF en el operón de arginina (Patente coreana N.° 10-0854234), etc. En particular, la eliminación en argR, que controla el operón de arginina, se ha considerado como un factor importante en la producción de arginina.

De acuerdo con los hechos conocidos hasta ahora, en un microorganismo de Corynebacterium, el gen argCJBDFR, que está involucrado en la biosíntesis de arginina, se constituye en forma de un operón y se somete a una inhibición por retroalimentación por arginina intracelular (Vehary Sakanyan, et al., Microbiology, 142:9-108, 1996), lo que impone una limitación en su producción de L-arginina de alto rendimiento.

[Descripción]

[Problema técnico]

Por consiguiente, los presentes inventores, mientras intentan aumentar el rendimiento de producción de L-arginina, descubrieron que la L-arginina puede producirse con un rendimiento mayor en comparación con la cepa parental productora de L-arginina, mejorando las actividades del operón de arginina y la ornitina carbamoiltransferasa, sin ninguna eliminación en el represor de arginina (argR), que se ha conocido convencionalmente como un factor importante, completando de este modo la presente invención.

[Solución técnica]

Un objeto de la presente invención es proporcionar un microorganismo del género Corynebacterium que tiene la capacidad de producir L-arginina.

Otro objeto de la presente invención es proporcionar un método para producir L-arginina usando el microorganismo del género Corynebacterium.

[Efectos ventajosos]

La L-arginina se puede producir con alto rendimiento usando un microorganismo productor de L-arginina del género Corynebacterium con actividades mejoradas de un operón de arginina y ornitina carbamoiltransferasa (ArgF o ArgF2) de acuerdo con la presente invención. Además, la L-arginina producida con alto rendimiento se puede utilizar eficazmente en las industrias farmacéutica y farmacológica humana.

[Mejor modo]

En un aspecto para lograr los objetos identificados anteriormente, la presente invención proporciona un microorganismo del género Corynebacterium capaz de producir L-arginina con actividades mejoradas de un operón de arginina y ornitina carbamoiltransferasa.

En la presente invención, el operón de arginina es un operón que consiste en enzimas involucradas en el mecanismo de biosíntesis de L-arginina, y en particular, el operón de arginina consiste en enzimas que constituyen las etapas cíclicas de la biosíntesis de L-arginina. Específicamente, el operón de arginina consiste en N-acetilglutamilo fosfato reductasa (ArgC), glutamato N-acetiltransferasa (ArgJ), N-acetilglutamato cinasa (ArgB), acetilornitina aminotransferasa (ArgD), ornitina carbamoiltransferasa (ArgF), y el represor de arginina (ArgR), y estas enzimas están involucradas en las reacciones enzimáticas continuas de la biosíntesis de L-arginina.

Estas enzimas que constituyen el operón de arginina están implicadas en la biosíntesis final de L-arginina utilizando L-glutamato como un precursor. La glutamato N-acetiltransferasa (ArgJ) sintetiza N-acetilglutamato utilizando L-glutamato como precursor, y puede ser uno codificado por el gen argJ. En particular, el grupo acetilo se obtiene descomponiendo N-acetilornitina en L-ornitina. Se sabe que la glutamato N-acetiltransferasa participa en una reacción de reciclaje para la biosíntesis de L-arginina en microorganismos que pertenecen al género Corynebacterium.

El N-acetilglutamato producido se sintetiza en N-acetilglutamil fosfato por N-acetilglutamato cinasa (ArgB), el ADP se produce al consumir ATP como coenzima, y puede ser uno codificado por el gen argB. Debido a que se sabe que está sujeto a inhibición por retroalimentación por parte del producto final, L-arginina, se conocen modificaciones que liberan la inhibición por retroalimentación por L-arginina, y había informes de que la productividad de L-arginina puede mejorarse utilizando la misma (Patente China N.° 102021154, y Amino Acids. 2 o i2 Jul;43(1): 255-66. doi: 10.1007/s00726-011-1069-x. Epub 8 de sept. de 2011).

La N-acetilglutamil fosfato reductasa (ArgC) también se denomina acetilglutamato semialdehído deshidrogenasa en E. coli o levaduras, y puede estar codificada por el gen argC. El N-acetilglutamil fosfato se convierte en N-acetilglutamato 5-semialdehído por esta enzima. Se utiliza NADPH como una coenzima para suministrar energía. El 5-semialdehído N-acetilglutamato producido se convierte en N-acetilornitina usando L-glutamato como donante de aminoácidos, y esta reacción está mediada por la acetilornitina aminotransferasa (ArgD). La acetilornitina aminotransferasa puede estar codificada por el gen argD. La N-acetilornitina convertida administra su grupo acetilo a L-glutamato mediante la reacción de reciclaje de la glutamato N-acetiltransferasa (ArgJ), y reacciona como L-ornitina.

La ornitina carbamoiltransferasa (ArgF) se denomina generalmente ornitina carbamoilasa, y puede codificarse por los genes argF o argF2. La L-ornitina se une al fosfato de carbamoílo para formar L-citrulina, y se produce un fosfato como producto de reacción secundaria. La L-citrulina producida finalmente se sintetiza en L-arginina por las reacciones enzimáticas de ácido argininosuccínico sintasa (ArgG) y ácido argininosuccínico liasa (ArgH), que están presentes separadas del operón de arginina, mencionado anteriormente. La L-arginina se sintetiza mediante un total de 8 etapas biosintéticas, y en la presente invención, el aumento de la productividad de L-arginina se indujo mediante el fortalecimiento de la actividad del operón de arginina (argCJBDFR).

Las enzimas que constituyen el operón de arginina pueden incluirse dentro del alcance de la presente invención siempre que tengan las actividades descritas anteriormente, y específicamente, las enzimas pueden ser proteínas derivadas de un microorganismo del género Corynebacterium. Más específicamente, la glutamato N-acetiltransferasa (ArgJ) puede incluir la secuencia de aminoácidos de la SEQ ID NO: 19, o una secuencia de aminoácidos que tenga una homología con la secuencia de al menos el 70%, específicamente el 80%, y más específicamente el 90% o más. La N-acetilglutamato cinasa (ArgB) puede incluir la secuencia de aminoácidos de la SEQ ID NO: 21, o una secuencia de aminoácidos que tenga una homología de al menos el 70% con la secuencia, específicamente el 80%, y más específicamente el 90% o más. Además, en el caso de la enzima correspondiente, se pueden introducir modificaciones conocidas en la técnica para liberar la inhibición por retroalimentación mediante arginina. La N-acetilglutamil fosfato reductasa (ArgC) puede incluir la secuencia de aminoácidos de la SEQ ID NO: 23, o una secuencia de aminoácidos que tenga una homología de al menos el 70% con la secuencia, específicamente el 80%, y más específicamente el 90% o más. La acetilornitina aminotransferasa (ArgD) puede incluir la secuencia de aminoácidos de la SEQ ID NO: 25, o una secuencia de aminoácidos que tenga una homología de al menos el 70% con la secuencia, específicamente el 80%, y más específicamente el 90% o más. La ornitina carbamoiltransferasa (ArgF) puede incluir una secuencia de aminoácidos de la SEQ ID NO: 1 o la SEQ ID NO: 3, o puede incluir una secuencia de aminoácidos que tenga una homología de al menos el 70% con la secuencia de aminoácidos de la SEQ ID NO: 1 o la SEQ ID NO: 3. Específicamente, la ornitina carbamoiltransferasa (ArgF) puede incluir una secuencia de aminoácidos que tiene una homología de al menos el 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98 %, o el 99% o superior a la secuencia de aminoácidos de la SEQ ID NO: 1 o la SEQ ID NO: 3. Además, es obvio que las secuencias de aminoácidos que incluyen una deleción, modificación, sustitución o adición en uno o más residuos de aminoácidos, están dentro del alcance de la presente invención, siempre que tengan la homología con las proteínas anteriores y tengan sustancialmente la misma actividad biológica o la actividad correspondiente con respecto a las proteínas anteriores.

Como se usa en el presente documento, el término "homología" se refiere al grado de similitud entre dos secuencias de aminoácidos o secuencias de nucleótidos para comparación, y su homología se puede determinar por comparación a simple vista o utilizando un algoritmo bioinformático, que proporciona resultados de análisis de un grado de homología mediante el alineamiento de secuencias para la comparación. La homología entre las dos secuencias de aminoácidos se puede indicar en porcentajes. Los algoritmos automatizados útiles se pueden utilizar en los módulos de software informático GAP, BESTFIT, FASTA y TFASTA de Wisconsin Genetics Software Package (Genetics Computer Group, Madison, WI, EE. UU.). Otros algoritmos útiles y determinaciones de homología en alineamiento ya están automatizados en software tal como FASTP, BLAST, B^lA^sT2, PSIBLAST y CLUSTALW. En la presente invención, la mejora de la actividad del operón de arginina puede referirse a la mejora de la actividad en al menos una enzima entre las enzimas presentes en el operón de arginina, sin embargo, no incluye la mejora única del gen argR en solitario. Por ejemplo, la mejora de la actividad del operón de arginina puede referirse a la mejora de las actividades de todas las enzimas presentes en el operón a través de la mejora del promotor para una enzima presente en el operón de arginina, y específicamente, puede referirse a la mejora de la actividad de todo el operón por el aumento del promotor de la N-acetilglutamil fosfato reductasa. Además, en la presente invención, el aumento en la expresión de un gen que codifica al menos una enzima entre las enzimas que constituyen el operón de arginina también puede considerarse como el aumento de la actividad del operón de arginina.

Como se usa en el presente documento, el término "mejora" de actividad se refiere a la provisión de un microorganismo sin una actividad particular de una proteína con la actividad de la proteína, o el aumento de la actividad intracelular en el microorganismo que posee la actividad de la proteína, etc., y se refiere al aumento de la actividad intracelular de la proteína en comparación con la actividad intrínseca de la proteína. Como se usa en el presente documento, el término actividad intrínseca se refiere al estado activo de la enzima que se posee en estado natural o pre-modificado por el microorganismo que pertenece al género Corynebacterium.

Para mejorar o aumentar la actividad de la enzima, pueden ser aplicables diversos métodos conocidos en la técnica. Los ejemplos del método, aunque no están limitados al mismo, pueden incluir un método para aumentar el número de copias de secuencias de nucleótidos que codifican enzimas insertando adicionalmente un polinucleótido que incluye una secuencia de nucleótidos que codifica la enzima correspondiente en un cromosoma o introduciendo el polinucleótido en un sistema vectorial, etc., un método para reemplazar promotores enzimáticos con promotores fuertes, y específicamente, puede incluir un método para introducir una modificación en los promotores, y un método para modificar la enzima en uno con actividad fuerte por modificación genética.

Los ejemplos específicos en la presente invención pueden incluir un método para modificar el promotor enzimático presente en el operón de arginina con respecto a un promotor que es fuerte en comparación con el promotor endógeno, a través de la modificación o sustitución del promotor. Se puede conectar un promotor mejorado o un promotor heterogéneo con una modificación de sustitución de nucleótidos en lugar del promotor para la enzima endógena, y los ejemplos de los promotores heterogéneos pueden incluir el promotor pcj7 (Patente coreana N.° 10­ 0620092), promotor lysCPI (Patente coreana N.° 10-0930203), promotor EF-Tu, promotor groEL, promotor aceA, promotor aceB, etc., pero sin limitación a los mismos.

Como se usa en el presente documento, el término "promotor" se refiere a una secuencia de ácido nucleico no codificada aguas arriba de una región codificante, que incluye una región de unión a la polimerasa y tiene una actividad de inicio de la transcripción en ARNm de un gen aguas abajo del promotor, es decir, la región de ADN donde la polimerasa se une e inicia la transcripción del gen, y se encuentra en la región 5' de la región de inicio de la transcripción del ARNm.

En la presente invención, la mejora de la actividad de la ornitina carbamoiltransferasa se puede llevar a cabo utilizando diversos métodos bien conocidos en la técnica, y son los mismos que se describen anteriormente. Específicamente, la mejora se puede lograr mediante la transformación de un vector de expresión que incluye un polinucleótido que codifica la ornitina carbamoiltransferasa en una cepa bacteriana, pero no se limita a lo mimo. Como se usa en el presente documento, el término "transformación" se refiere a una introducción de ADN en un huésped, haciendo así replicable el ADN insertado como un factor extracromosómico o por integración cromosómica. Específicamente, el transformante de la presente invención puede insertarse en un cromosoma mediante recombinación homóloga entre la secuencia de una molécula de ácido nucleico, que tiene la actividad promotora dentro de un vector después de la transformación del vector que incluye el ADN anterior en una célula huésped, y la secuencia en la región promotora del gen diana endógeno, o puede retenerse en forma de un plásmido.

El método de transformación de vectores de la presente invención puede incluir cualquier método que pueda introducir un ácido nucleico en una célula, y cualquier tecnología estándar apropiada conocida en la técnica puede seleccionarse y llevarse a cabo de acuerdo con cada célula huésped. Por ejemplo, puede usarse electroporación, precipitación con fosfato de calcio (CaPO4), precipitación con cloruro de calcio (CaCb), microinyección, un método de polietilenglicol (PEG), un método de DEAE-dextrano, un método de liposomas catiónicos, un método de acetato de litio/DMSO, etc., pero el método no se limita a los mismos.

Como se usa en el presente documento, el término "un microorganismo del género Corynebacterium (Corynebacterium sp.)" puede referirse a todas las cepas que pertenecen al género Corynebacterium que tienen la capacidad de producir L-arginina, por ejemplo, Corynebacterium glutamicum, Corynebacterium ammoniagenes, Corynebacterium thermoaminogenes, Brevibacterium flavum, Brevibacterium fermentum, etc., pero sin limitación a las mismas. Específicamente, se puede usar Corynebacterium glutamicum, pero el microorganismo no se limita a la misma.

En otro aspecto, la presente invención proporciona un método para producir L-arginina que incluye el cultivo de un microorganismo productor de L-arginina del género Corynebacterium en medios de cultivo apropiados.

En la presente invención, el cultivo de microorganismos puede llevarse a cabo de acuerdo con métodos ampliamente conocidos en la técnica, y las condiciones de temperatura de cultivo, horas de cultivo, pH del medio de cultivo, etc., pueden ajustarse de manera apropiada. Los métodos de cultivo conocidos se describen en detalle en las referencias (Chmiel; Bioprozesstechnik 1. Einfuhrung in die Bioverfahrenstechnik (Gustav Fischer Verlag, Stuttgart, 1991), y Storhas; Bioreaktoren und periphere Einrichtungen (Vieweg Verlag, Braunschweig / Wiesbaden, 1994)). Adicionalmente, los métodos de cultivo pueden incluir cultivo discontinuo, cultivo continuo y cultivo alimentado por lotes, y específicamente, los cultivos pueden llevarse a cabo continuamente por un proceso discontinuo o alimentado por lotes o alimentado por lotes repetido, pero no se limitan a los mismos.

Los medios de cultivo a usar deben cumplir de manera apropiada las condiciones requeridas de una cepa particular. Los medios de cultivo utilizados para diversos microorganismos ya son conocidos (por ejemplo, "Manual of Methods for General Bacteriology" from American Society for Bacteriology (Washington D.C., EE.UU., 1981)). Las fuentes de carbono que deben estar contenidas en los medios pueden incluir sacáridos y carbohidratos (por ejemplo, glucosa, sacarosa, lactosa, fructosa, maltosa, melaza, almidón y celulosa), aceites y grasas (por ejemplo, aceite de soja, aceite de semilla de girasol, aceite de cacahuete y aceite de coco), ácidos grasos (por ejemplo, ácido palmítico, ácido esteárico y ácido linoleico), alcoholes (por ejemplo, glicerol y etanol), ácidos orgánicos (por ejemplo, ácido acético), etc. Estos materiales se pueden usar individualmente o como una mezcla, pero sin limitación a los mismos. Las fuentes de nitrógeno a contener en el medio pueden incluir compuestos orgánicos que contienen nitrógeno (por ejemplo, peptona, extracto de levadura, salsa de carne, extracto de malta, licor de maceración de maíz, polvo de harina de soja y urea), y compuestos inorgánicos (por ejemplo, sulfato de amonio, cloruro de amonio, fosfato de amonio, carbonato de amonio y nitrato de amonio), y estos materiales también se pueden usar individualmente o como una mezcla, pero sin limitación a los mismos. Las fuentes de fósforo que deben estar contenidas en el medio pueden incluir dihidrógeno fosfato de potasio o hidrogenofosfato dipotásico o una sal equivalente que contenga sodio del mismo, pero sin limitación a los mismos. Los medios de cultivo pueden contener sales metálicas esenciales para el crecimiento (por ejemplo, sulfato de magnesio o sulfato de hierro), y se pueden usar materiales esenciales que promueven el crecimiento, tales como aminoácidos y vitaminas, además de los materiales descritos anteriormente. Además, se puede añadir un precursor apropiado a los medios de cultivo. Los materiales a suministrar descritos anteriormente se pueden añadir a los medios de una vez o de manera apropiada durante el cultivo.

El pH del medio de cultivo puede ajustarse de manera apropiada utilizando un compuesto básico (por ejemplo, hidróxido de sodio, hidróxido de potasio o amoniaco) o un compuesto ácido (por ejemplo, ácido fosfórico o ácido sulfúrico).

La espumación se puede ajustar usando un agente antiespumante tal como éster de poliglicol de ácido graso. Una condición aerobia se puede mantener introduciendo oxígeno o una mezcla de gases que contiene oxígeno, por ejemplo, aire, en un medio de cultivo. La temperatura de cultivo puede ser de 20°C a 45°C, y específicamente, de 25°C a 40°C. El cultivo puede continuarse hasta que se obtenga una cantidad máxima de la producción de L-aminoácido deseada, y específicamente de 10 horas a 160 horas. La L-arginina se puede liberar en el medio de cultivo o puede permanecer contenida en la célula.

Mientras tanto, el método para producir L-arginina de la presente invención, que incluye el cultivo del microorganismo descrito anteriormente, puede incluir además una etapa de recuperación de L-arginina durante el cultivo. Es decir, el método para producir L-arginina de la presente invención puede incluir cultivar un microorganismo del género Corynebacterium en medios de cultivo y recuperar la L-arginina del microorganismo y los medios de cultivo. La etapa de recuperación de arginina puede significar separar la arginina de las células o los medios de cultivo utilizando un método de recuperación de arginina ampliamente conocido en la técnica. Los métodos de recuperación de L-arginina pueden incluir centrifugación, filtración, extracción, pulverización, secado, evaporación, precipitación, cristalización, electroforesis, disolución fraccional, cromatografía (por ejemplo, intercambio iónico, afinidad, hidrofobicidad, exclusión por tamaño y cromatografía líquida de alto rendimiento), etc., pero sin limitación a los mismos.

[Modo de la invención]

En lo sucesivo en el presente documento, la presente invención se describirá con más detalle con referencia a los siguientes ejemplos. Sin embargo, estos ejemplos son solo para fines ilustrativos, y la invención no pretende limitarse por estos ejemplos.

Ejemplo 1: Construcción de un vector con un operón de arginina mejorado

Con el fin de mejorar el operón de arginina en el cromosoma de un microorganismo, se construyó un vector en el que se eliminó el autopromotor de la N-acetilglutamil fosfato reductasa (ArgC) y se sustituyó con un promotor diferente. Como promotor de sustitución, se utilizó lysCP1 (SEQ ID NO: 18 divulgada en la Patente coreana N.° 10­ 0930203), que tiene una fuerte actividad inductora de la expresión.

Primero, los fragmentos de ADN se amplificaron mediante la reacción en cadena de la polimerasa primaria (PCR) utilizando el ADN cromosómico de una cepa de tipo salvaje de Corynebacterium glutamicum (N.° de Acceso: ATCC13869) como plantilla, junto con un par de cebadores de SEQ ID NO: 13 (cebador de infusión SF_pargC_PR_pDC; 5'-CGAGCTCGGTACCCGGGCAAAGAATACGGCTTCCTTGGC-3') y SEQ ID NO: 14 (cebador de infusión/enzima de restricción SR_pargC_PR_XbaI-XhoI-BamHI; 5'-CTGGATCCTCGAGTCTAGAGACGGGTTAGACATGCAAAA-3') y un par de cebadores de SEQ ID NO: 15 (cebador de infusión/enzima de restricción SF_pargC_PR_SpeI-ScaI-BamHI; 5'-GACTCGAGGATCCAGTACTAGTATGATAATCAAGGTTGCAAT-3') y SEQ ID NO: 16 (cebador de infusión SR_pargC_PR_pDC; 5'-TGCAGGTCGACTCTAGGGTAACGCCTTCTTTCAAAG-3'). Las condiciones específicas para la reacción de PCR fueron las siguientes: la reacción de PCR se realizó mediante desnaturalización a 95°C durante 10 minutos, hibridación a 55°C durante 30 segundos, y alargamiento a 72°C durante 1 minuto utilizando un dispositivo de PCR (termociclador Bio-rad C1000) y polimerasa Pfu (Macrogen), y se repite durante 28 ciclos.

Los fragmentos de PCR primarios obtenidos de este modo se purificaron usando el kit de purificación de ADN de fragmentos (GeneAll), y después se conectaron tres fragmentos de ADN mezclándolos con un vector pD, que ya se preparó mediante digestión con enzimas de restricción XmaI-XbaI. Los fragmentos de ADN conectados se sometieron a una reacción a 50°C durante 10 minutos utilizando el kit de clonación In-fusion (Clontech) y, por lo tanto, se construyó un vector pD-RargC_PR.

La inserción del promotor de sustitución se realizó de tal manera que el promotor lysCP1 se amplificó usando el pDZ-lysCP1 (Patente coreana 10-0930203) como plantilla junto con un par de cebadores de SEQ ID NO: 5 (cebador de infusión SF_PlysCPl_XhoI-XbaI; 5'-CCGT CT CT AGACTCGAGCCAT CTTTTGGGGT GCGG-3') y SEQ ID NO: 6 (cebador de infusión SR_PlysCP1_SpeI; 5'-TTGATTATCATACTAGTCTTTGTGCACCTTTCGAT-3'), y se conectó mezclándolos con un vector pD-PargC_PR, que ya se había preparado por digestión con enzimas de restricción XhoI-SpeI. Los métodos de pCr y clonación In-Fusion son los mismos que los descritos anteriormente, y finalmente se construyó un vector pD-PargC::lysCP1 a través de los métodos.

Ejemplo 2: Construcción de un vector con ornitina carbamoiltransferasa mejorada

Para mejorar la ornitina carbamoiltransferasa, una de las enzimas de biosíntesis de arginina, se construyó un vector de expresión recombinante. Se usó p117-cj7-GFP (Patente coreana N.° 10-0620092) como el vector de plantilla, y la secuencia de nucleótidos que codifica GFP en el vector de plantilla se eliminó mediante tratamiento con enzimas de restricción EcoRV-Xba I, y se insertó con argF, derivado de una cepa de tipo salvaje de Corynebacterium glutamicum ATCC13869, y argF2 (Patente Coreana N.° 10-0830290).

Los fragmentos de ADN del gen argF se amplificaron mediante PCR utilizando el ADN cromosómico de una cepa de tipo salvaje de Corynebacterium glutamicum (N.° de acceso: ATCC13869) como plantilla, junto con un par de cebadores de SEQ ID NO: 7 (cebador de infusión SF_argF_EcoRV; 5'-ACGAAAGGAAACACTCGATATCATGACTTCACAACCACAGGT-3') y SEQ ID NO: 8 (cebador de infusión SR_argF_XbaI; 5'-GCCAAAACAGCTCTAGATTACCTCGGCTGGTGGGCCA-3'). La reacción de PCR se realizó por desnaturalización a 95°C durante 10 minutos, hibridación a 55°C durante 30 segundos, y alargamiento a 72°C durante 2 minutos utilizando polimerasa Pfu, y se repitió durante 28 ciclos. Los fragmentos de PCR obtenidos de este modo se purificaron y se mezclaron con p117-cj7-GFP, que ya se había tratado con enzimas de restricción EcoRV-Xbal, y se conectaron mediante el método de clonación In-Fusion, y por lo tanto, se construyó un vector de expresión recombinante, p117-Pcj7-argF.

El gen argF se amplificó a través de PCR utilizando el ADN cromosómico de una cepa de tipo salvaje de Corynebacterium glutamicum (N.° de acceso: ATCC13032) como plantilla, junto con un par de cebadores de s Eq ID NO: 9 (cebador de infusión SF_argF2_EcoRV; 5'-ACGAAAGGAAACACTCGATATCATGGCCAGAAAACATCTGCT-3') y SEQ ID NO: 10 (cebador de infusión SR_argF2_XbaI; 5'-GCCAAAACAGCTCTAGACTACGCATTGATCGACCGAG-3') y polimerasa Pfu (Macrogen), a través de PCR por desnaturalización a 95°C durante 10 minutos, hibridación a 55°C durante 30 segundos, y alargamiento a 72°C durante 2 minutos usando polimerasa Pfu, que se repitió durante 28 ciclos. Los fragmentos de PCR obtenidos de este modo se purificaron y se mezclaron con p117-cj7-GFP, que ya se había tratado con enzimas de restricción EcoRV-XbaI, y se conectaron mediante el kit de clonación In-Fusion, y por lo tanto, se construyó un vector de expresión recombinante, p117-Pcj7-argF2.

Adicionalmente, se construyó un vector de expresión recombinante, que puede expresar simultáneamente los genes argF y argF2. El vector de expresión construido de este modo, p117-Pcj7-argF, se trató con NotI y después se insertó p117-Pcj7-argF2 en el mismo. Específicamente, la reacción de PCR se realizó utilizando el plásmido recombinante, p117-Pcj7-argF2, como plantilla, junto con el cebador de SEQ ID NO: 11 (cebador de infusión SF_Pcj7_argF2_NotI; 5'-CCTTTTTGCGGCGGCCGCAGAAACATCCCAGCGCTACT-3') y la SEQ ID NO: 12 (cebador de infusión SR_argF2_NotI; 5'-CACCGCGGTGGCGGCCGCCGCAAAAAGGCCATCCGTCA-3') y polimerasa Pfu, por desnaturalización a 95°C durante 10 minutos, hibridación a 55°C durante 30 segundos, y alargamiento a 72°C durante 2,5 minutos, y se repitió durante 28 ciclos. Los fragmentos de PCR obtenidos de este modo se purificaron y se mezclaron con p117-Pcj7-argF, que ya se había tratado con la enzima de restricción NotI, y se conectaron mediante el kit de clonación In-fusion, y finalmente se construyó un vector de expresión recombinante, p117-Pcj7-argF/Pcj7-argF2.

Ejemplo 3: Construcción de una cepa que tiene un vector recombinante insertado en la misma 3-1. Inserción de un vector con un operón de arainina mejorado

Para sustituir un autopromotor de un operón de arginina en el cromosoma de Corynebacterium, pD-PargC::lysCP1, el vector recombinante construido en el Ejemplo 1, se transformó en una cepa de Corynebacterium productora de arginina existente, y por lo tanto, se construyó una cepa de Corynebacterium insertada con un vector recombinante. Específicamente, la secuencia del promotor lysCP1 se insertó en el cromosoma al transformar pD-PargC::lysCP1, el vector recombinante construido en el Ejemplo 1, en las cepas existentes productoras de arginina de KCCM10741P (Patente Coreana N.° 10-07916590) y ATCC21831, sustituye de este modo la secuencia auto-promotora poseída por la cepa parental con la secuencia promotora del vector a través de recombinación homóloga.

Al llevar a cabo la transformación, el vector recombinante se insertó primero en KCCM10741P y ATCC21831 a través de un método de impulso eléctrico (Appl Microbiol Biotechnol. 1999 Oct; 52(4): 541-5), y las cepas con las inserciones en su cromosoma mediante la recombinación de secuencias homólogas se seleccionaron en medios que contenían 25 mg/l de kanamicina. Las cepas primarias seleccionadas se sometieron a cruzamiento, y de ese modo se seleccionaron aquellas cepas en las que los promotores se sustituyeron con el promotor lysCP1 y se eliminó el vector. La presencia de la sustitución del promotor en las cepas transformadas finales se confirmó mediante PCR utilizando un par de cebadores de SEQ ID NO: 5 y SEQ ID NO: 6, y las cepas se denominaron KCCM10741P_APargC::lysCP1 y ATCC21831_APargC::lysCP1.

3-2. Inserción de un vector con ornitina carbamoiltransferasa mejorada

Los vectores de expresión recombinante, p117-Pcj7-argF, p117-Pcj7-argF2, y p117-Pcj7-argF/Pcj7-argF2 construidos en el Ejemplo 2, se insertaron en la cepa KCCM10741P_APargC::lysCP1 y ATCC21831_APargC::lysCP1 mediante un método de impulso eléctrico, se selección en medios que contenían 25 mg/l de kanamicina, y las cepas que expresaban adicionalmente argF, argF2, y argF/argF2 se construyeron finalmente. Las cepas se denominaron KCCM10741P_APargC::lysCP1_Pcj7-argF, KCCM10741P_APargC::lysCP1_Pcj7-argF2, KCCM10741PAPargC::lysCP1_Pcj7-argF/Pcj7-argF2, ATCC21831_APargC::lysCP1_Pcj7-argF, ATCC21831_APargC::lysCP1_Pcj7-argF2, y ATCC21831_APargC::lysCP1_Pcj7-argF/Pcj7-argF2, y entre ellas, KCCM10741P_APargC::lysCP1_Pcj7-argF2 se renombraron como CA06-2044, y se depositaron en el Korean Culture Center of Microorganisms (KCCM) bajo el Tratado de Budapest el 9 de diciembre de 2013, con el número de registro KCCM11498P.

Ejemplo 4: Evaluación de las cepas construidas

Con el fin de examinar el efecto de la mejora del operón de arginina y ornitina carbamoiltransferasa en la capacidad de producción de arginina usando Corynebacterium glutamicum KCCM10741P_APargC::lysCP1, KCCM10741P_APargC::lysCP1_Pcj7-argF, KCCM 10741 P_APargC::lysCP1_Pcj7-argF2, KCCM10741P_APargC::lysCP1_Pcj7-argF/Pcj7-argF2, ATCC21831_APargC::lysCP1, ATCC21831_APargC::lysCP1_Pcj7-argF, ATCC21831_APargC::lysCP1_Pcj7-argF2, y ATCC21831_APargC::lysCP1_Pcj7-argFlPcj7-argF2, que son cepas productoras de arginina construidas en el Ejemplo 3, se cultivaron como se muestra a continuación. En particular, se usaron Corynebacterium glutamicum KCCM10741P y ATCC21831, que son las cepas parentales, como control, y un bucle de platino de las cepas se inoculó respectivamente en un matraz con deflectores en las esquinas de 250 ml que contenía 25 ml (6% de glucosa, 3% de sulfato de amonio, 0,1% de fosfato de potasio, 0,2% de sulfato de magnesio heptahidrato, 1,5% de licor macerado de maíz (CSL), 1% de NaCl, 0,5% de extracto de levadura y 100 pg/l de biotina, pH 7,2) de un medio de producción, y se incubaron a 30°C a 200 rpm durante 48 horas. Una vez completado el cultivo, la cantidad de producción de L-arginina se midió por HPLC, y los resultados se muestran en la Tabla 1 a continuación.

T l 1

Como se muestra en la Tabla 1 anterior, las cepas, donde los genes que codifican el operón de arginina y ornitina carbamoiltransferasa se mejoraron simultáneamente, mostraron un aumento máximo del 50% en la capacidad de producción de arginina en comparación con la del control. Además, el aumento en la concentración de arginina y la ornitina, que se muestra en la mejora del operón de arginina en solitario (KCCM10741P_APargC::lysCP1 y ATCC21831_APargC::lysCP1), se resolvieron introduciendo argF, argF2 o argF y argF2, y finalmente mostrando el resultado del aumento de la concentración de arginina.

<110> CJ CheilJedang Corporation

<120> Un microorganismo del género Corynebacterium que tiene la capacidad de producir L-arginina y un método para producir L-arginina utilizando la misma

<130> OPA15238-PCT

<150> KR10-2014-0137794

<151> 13/10/2014

<150> KR10-2015-0076331

<151> 29/05/2015

<160> 26

<170> KopatentIn 2.0

<210> 1

<211> 319

<212> PRT

<213> argF de Corynebacterium glutamicum

<400> 1

Met Thr Ser Gln Pro Gln Val Arg His Phe Leu Ala Asp Asp Asp Leu 1 5 10 15

Thr Pro Ala Glu Gln Ala Glu Val Leu Thr Leu Ala Ala Lys Leu Lys

20 25 30

Ala Ala Pro Phe Ser Glu Arg Pro Leu Glu Gly Pro Lys Ser Val Ala 35 40 45

Val Leu Phe Asp Lys Thr Ser Thr Arg Thr Arg Phe Ser Phe Asp Ala 50 55 60

Gly lie Ala His Leu Gly Gly His Ala lie Val Val Asp Ser Gly Ser 65 70 75 80 Ser Gln Met Gly Lys Gly Glu Thr Leu Gln Asp Thr Ala Ala Val Leu

85 90 95

Ser Arg Tyr Val Glu Ala lie Val Trp Arg Thr Tyr Ala His Ser Asn

100 105 110

Phe His Ala Met Ala Glu Thr Ser Thr Val Pro Leu Val Asn Ser Leu 115 120 125

Ser Asp Asp Leu His Pro Cys Gln lie Leu Ala Asp Leu Gln Thr lie 130 135 140

Val Glu Asn Leu Ser Pro Glu Glu Gly Pro Ala Gly Leu Lys Gly Lys 145 150 155 160 Lys Ala Val Tyr Leu Gly Asp Gly Asp Asn Asn Met Ala Asn Ser Tyr

165 170 175

Met lie Gly Phe Ala Thr Ala Gly Met Asp lie Ser lie lie Ala Pro

180 185 190

Glu Gly Phe Gln Pro Arg Ala Glu Phe Val Glu Arg Ala Glu Lys Arg 195 200 205

Gly Gln Glu Thr Gly Ala Lys Val Val Val Thr Asp Ser Leu Asp Glu

210 215 220

Val Ala Gly Ala Asp Val Val lie Thr Asp Thr Trp Val Ser Met Gly

225 230 235 240

Met Glu Asn Asp Gly lie Asp Arg Thr Thr Pro Phe Val Pro Tyr Gln

245 250 255

Val Asn Asp Glu Val Met Ala Lys Ala Asn Asp Gly Ala lie Phe Leu

260 265 270

His Cys Leu Pro Ala Tyr Arg Gly Lys Glu Val Ala Ala Ser Val lie

275 280 285

Asp Gly Pro Ala Ser Lys Val Phe Asp Glu Ala Glu Asn Arg Leu His

290 295 300

Ala Gln Lys Ala Leu Leu Val Trp Leu Leu Ala His Gln Pro Arg

305 310 315

<210>2

<211> 960

<212> ADN

<213> argF de Corynebacterium glutamicum

<400>2

atgacttcac aaccacaggt tcgccatttcctggctgatg atgatctcac ccctgcagag 60 caggcagagg ttttgaccct agccgcaaagctcaaggcag cgccgttttc ggagcgtcca 120 ctcgagggac caaagtccgt tgcagttctttttgataaga cttcaactcg tactcgcttc 180 tccttcgacg cgggcatcgc tcatttgggtggacatgcca tcgtcgtgga ttccggcagc 240 tcacagatgg gtaagggcga gaccctgcaggacaccgcag ctgtattgtc ccgctacgtg 300 gaagcaattg tgtggcgcac ctacgcacacagcaatttcc acgccatggc ggagacgtcc 360 actgtgccac tggtgaactc cttgtccgatgatctgcacc catgccagat tctggctgat 420 ctgcagacca tcgtggaaaa cctcagccctgaagaaggcc cagcaggcct taagggtaag 480 aaggctgtgt acctgggcga tggcgacaacaacatggcca actcctacat gattggcttt 540 gccaccgcgg gcatggatat ctccatcatcgctcctgaag ggttccagcc tcgtgcggaa 600 ttcgtggagc gcgcggaaaa gcgtggccaggaaaccggcg cgaaggttgt tgtcaccgac 660 agcctcgacg aggttgccgg cgccgatgttgtcatcaccg atacctgggt atccatgggt 720 atggaaaacg acggcatcga tcgcaccacacctttcgttc cctaccaggt caacgatgag 780 gtcatggcga aagctaacga cggcgccatcttcctgcact gccttcctgc ctaccgcggc 840 aaagaagtgg cagcctccgt gattgatggaccagcgtcca aagttttcga tgaagcagaa 900 aaccgcctcc acgctcagaa agcactgctggtgtggctgc tggcccacca gccgaggtaa 960

960 <210>3

<211> 274

<212> PRT

<213> argF2 de Corynebacterium glutamicum

<400> 3

Met Ala Arg Lys His Leu Leu Ser Leu Ala Asp Trp Asn Arg Gly Glu 1 5 10 15

Leu Glu Ala Leu Phe Glu Leu Ala Glu Gln Tyr Glu Ala Gly Gly Gly

20 25 30

Pro Arg Phe Asp Gly Ala Ala Ala Met Phe Phe Pro Pro Thr Ser Leu 35 40 45

Arg Thr Arg Leu Ser Phe Glu Arg Gly Ala Thr Ala Met Gly Leu Gln 50 55 60

Pro lie Thr Phe Pro Ser Asp Ser Leu Asp Lys Asp Glu Asp Leu Val 65 70 75 80 Asp Val Val Gly Tyr Leu Ser Gln Trp Ala Asp Val Val Val Val Arg

85 90 95

His Pro Gln Leu Thr Ala Leu Gln Arg Leu Ala Ser Ala Asp Ala Ala

100 105 110

Pro Val lie Asn Ala Met Thr Ser Glu Asn His Pro Cys Glu Val Leu 115 120 125

Ser Asp Leu Tyr Ala Leu Ser Arg His His Asp lie Ser Ala Leu Arg 130 135 140

Tyr Leu Phe Val Gly Gly Asp Gly Asn lie Ala Arg Ala Trp Trp Glu 145 150 155 160 Ala Ala Gln Ala Phe Gly Leu Glu Met Arg Gln Ser Cys Pro Glu Glu

165 170 175

Leu Arg Val Val Gly Met Pro Trp Glu Glu Asn Leu Pro His Ala lie

180 185 190

Ala Ser Ala Asp Val Val Leu Thr Asp Gly Pro Gly Arg His Ala Glu 195 200 205

Leu Leu Glu Pro Tyr Arg Val Thr Ala Ala Leu Leu Asp Arg Ala Pro 210 215 220

Arg Gly Val Arg Leu Ala Pro Cys Pro Pro Phe lie Arg Gly Arg Glu 225 230 235 240 Val Ser Ala Asp Ala lie Glu His Pro Ala Phe Val Gly Tyr Ser Phe

245 250 255

Lys Arg His Leu Met Pro Val Gln Gln Ala lie Leu Ala Arg Ser lie

260 265 270

Asn Ala

<210> 4

<211> 825

<212> ADN

<213> argF2 de Corynebacterium glutamicum

<400> 4

atggccagaa aacatctgct ctccctggca gactggaaca gaggcgagct tgaggcatta 60 ttcgagctcg cggagcagta tgaagctggc ggtgggccac gattcgatgg tgccgcggcg 120 atgttcttcc cgccgacgag tttgcgtaca cggctctcat tcgagcgtgg ggcaacggca 180 atgggactcc agccgatcac gttcccgtca gacagcctgg acaaggacga agatctcgtc 240 gacgtcgtcg gctatctctc gcagtgggct gatgtcgttg tcgtccgaca cccgcaattg 300 acggcgcttc agcggttggc gtcagcggat gcagcgcccg tgatcaacgc gatgacgagt 360 gagaaccatc cgtgcgaagt cctctcggac ttgtatgcgc tgtctcgtca ccatgacatt 420 tcggccctgc ggtacctgtt tgtcggtggc gatggcaaca tcgccagggc ctggtgggag 480 gcggcccaag cgttcggcct cgagatgcgg cagagttgtc ctgaagagct gcgtgtcgtc 540 gggatgccgt gggaggagaa cctgccgcat gcaattgcat cagcggatgt cgtgctgacg 600 gatgggccag gtagacatgc ggagttactc gagccgtatc gtgtgaccgc tgcgttgttg 660 gatcgcgcgc cccgtggagt gcggctcgcg ccctgcccgc cgttcatccg cgggcgcgaa 720 gtgagcgccg atgcgatcga gcatccggcg ttcgtcgggt actcgttcaa gcgtcatctc 780 atgccggttc agcaggcgat tctggctcgg tcgatcaatg cgtag 825 <210>5

<211> 35

<212> ADN

<213> Secuencia artificial

<220>

<223> cebador SF_PlysCP1_XhoI-XbaI

<400> 5

ccgtctctag actcgagcca tcttttgggg tgcgg 35

<210>6

<211> 35

<212> ADN

<213> Secuencia artificial

<220>

<223> cebador SR_PlysCP1_SpeI

<400> 6

ttgattatca tactagtctt tgtgcacctt tcgat 35

<210>7

<211> 42

<212> ADN

<213> Secuencia artificial

<220>

<223> cebador SF_argF_EcoRV

<400> 7

acgaaaggaa acactcgata tcatgacttc acaaccacag gt 42

<210>8

<211> 37

<212>ADN

<213> Secuencia artificial

<220>

<223> cebador SR_argF_XbaI

<400> 8

gccaaaacag ctctagatta cctcggctgg tgggcca 37

<210>9

<211> 42

<212>ADN

<213> Secuencia artificial

<220>

<223> cebador SF_argF2_EcoRV

<400> 9

acgaaaggaa acactcgata tcatggccag aaaacatctg ct 42 <210> 10

<211> 37

<212>ADN

<213> Secuencia artificial

<220>

<223> cebador SR_argF2_XbaI

<400> 10

gccaaaacag ctctagacta cgcattgatc gaccgag 37

<210> 11

<211> 38

<212>ADN

<213> Secuencia artificial

<220>

<223> cebador SF_Pcj7_argF2_NotI

<400> 11

cctttttgcg gcggccgcag aaacatccca gcgctact 38

<210> 12

<211> 38

<212>ADN

<213> Secuencia artificial

<220>

<223> cebador SR_argF2_NotI

<400> 12

caccgcggtg gcggccgccg caaaaaggcc atccgtca 38

<210> 13

<211> 39

<212>ADN

<213> Secuencia artificial

<220>

<223> cebador SF_pargC_PR_pDC

<400> 13

cgagctcggt acccgggcaa agaatacggc ttccttggc 39

<210> 14

<211> 39

<212> ADN

<213> Secuencia artificial

<220>

<223> cebador SR_pargC_PR_XbaI-XhoI-BamHI

<400> 14

ctggatcctc gagtctagag acgggttaga catgcaaaa 39

<210> 15

<211> 42

<212> ADN

<213> Secuencia artificial

<220>

<223> cebador SF_pargC_PR_SpeI-ScaI-BamHI

<400> 15

gactcgagga tccagtacta gtatgataat caaggttgca at 42

<210> 16

<211> 36

<212> ADN

<213> Secuencia artificial

<220>

<223> cebador SR_pargC_PR_pDC

<400> 16

tgcaggtcga ctctagggta acgccttctt tcaaag 36

<210> 17

<211> 317

<212> ADN

<213> Promotor cj7 de Corynebacterium glutamicum

<400> 17

agaaacatcc cagcgctact aatagggagcgttgaccttc cttccacgga ccggtaatcg 60

gagtgcctaa aaccgcatgc ggcttaggct ccaagatagg ttctgcgcgg ccgggtaatg 120

catcttcttt agcaacaagttgaggggtag gtgcaaataa gaacgacata gaaatcgtct 180

cctttctgtt tttaatcaac atacaccaccacctaaaaat tccccgacca gcaagttcac 240

agtattcggg cacaatatcg ttgccaaaat attgtttcgg aatatcatgg gatacgtacc 300

caacgaaaggaaacact 317 <210> 18

<211> 353

<212> ADN

<213> Promotor lysCPI de Corynebacterium glutamicum

<400> 18

ccatcttttg gggtgcggag cgcgatccggtgtctgacca cggtgcccca tgcgattgtt 60 aatgccgatg ctagggcgaa aagcacggcgagcagattgc tttgcacttg attcagggta 120 gttgactaaa gagttgctcg cgaagtagcacctgtcactt ttgtctcaaa tattaaatcg 180 aatatcaata tatggtctgt ttattggaacgcgtcccagt ggctgagacg catccgctaa 240 agccccagga accctgtgca gaaagaaaacactcctctgg ctaggtagac acagtttatt 300 gtggtagagt tgagcgggta actgtcagcacgtagatcga aaggtgcaca aag 353 <210> 19

<211> 388

<212> PRT

<213> argJ de Corynebacterium glutamicum

<400> 19

Met Ala Lys Lys Gly lie Thr Ala Pro Lys Gly Phe Val Ala Ser Ala

1 5 10 15

Thr Thr Ala Gly lie Lys Ala Ser Gly Asn Pro Asp Met Ala Leu Val

20 25 30

Val Asn Gln Gly Pro Glu Phe Ser Ala Ala Ala Val Phe Thr Arg Asn

35 40 45

Arg Val Phe Ala Ala Pro Val Lys Val Ser Arg Glu Asn Val Ala Asp

50 55 60

Gly Gln lie Arg Ala Val Leu Tyr Asn Ala Gly Asn Ala Asn Ala Cys

65 70 75 80

Asn Gly Leu Gln Gly Glu Lys Asp Ala Arg Glu Ser Val Ser His Leu

85 90 95

Ala Gln Asn Leu Gly Leu Glu Asp Ser Asp lie Gly Val Cys Ser Thr

100 105 110

Gly Leu lie Gly Glu Leu Leu Pro Met Asp Lys Leu Asn Thr Gly lie 115 120 125

Asp Gln Leu Thr Ala Glu Gly Ala Leu Gly Asp Asn Gly Ala Ala Ala 130 135 140

Ala Lys Ala lie Met Thr Thr Asp Thr Val Asp Lys Glu Thr Val Val 145 150 155 160 Phe Ala Asp Gly Trp Thr Val Gly Gly Met Gly Lys Gly Val Gly Met

165 170 175

Met Ala Pro Ser Leu Ala Thr Met Leu Val Cys Leu Thr Thr Asp Ala

180 185 190

Ser Val Thr Gln Glu Met Ala Gln lie Ala Leu Ala Asn Ala Thr Ala 195 200 205

Val Thr Phe Asp Thr Leu Asp lie Asp Gly Ser Thr Ser Thr Asn Asp 210 215 220

Thr Val Phe Leu Leu Ala Ser Gly Ala Ser Gly lie Thr Pro Thr Gln 225 230 235 240 Asp Glu Leu Asn Asp Ala Val Tyr Ala Ala Cys Ser Asp lie Ala Ala

245 250 255

Lys Leu Gln Ala Asp Ala Glu Gly Val Thr Lys Arg Val Ala Val Thr

260 265 270

Val Val Gly Thr Thr Asn Asn Glu Gln Ala lie Asn Ala Ala Arg Thr 275 280 285

Val Ala Arg Asp Asn Leu Phe Lys Cys Ala Met Phe Gly Ser Asp Pro 290 295 300

Asn Trp Gly Arg Val Leu Ala Ala Val Gly Met Ala Asp Ala Asp Met 305 310 315 320 Glu Pro Glu Lys lie Ser Val Phe Phe Asn Asp Gln Ala Val Cys Leu

325 330 335

Asp Ser Thr Gly Ala Pro Gly Ala Arg Glu Val Asp Leu Ser Gly Ala

340 345 350

Asp lie Asp Val Arg lie Asp Leu Gly Thr Ser Gly Glu Gly Gln Ala 355 360 365

Thr Val Arg Thr Thr Asp Leu Ser Phe Ser Tyr Val Glu lie Asn Ser 370 375 380

Ala Tyr Ser Ser

385

<210> 20

<211> 1167

<212> ADN

<213> argJ de Corynebacterium glutamicum

<400> 20

<210> 21

<211> 317

<212> PRT

<213> argB de Corynebacterium glutamicum

<400> 21

Met Asn Asp Leu lie Lys Asp Leu Gly Ser Glu Val Arg Ala Asn Val

1 5 10 15

Leu Ala Glu Ala Leu Pro Trp Leu Gln His Phe Arg Asp Lys lie Val

20 25 30

Val Val Lys Tyr Gly Gly Asn Ala Met Val Asp Asp Asp Leu Lys Ala

35 40 45

Ala Phe Ala Ala Asp Met Val Phe Leu Arg Thr Val Gly Ala Lys Pro

50 55 60

Val Val Val His Gly Gly Gly Pro Gln lie Ser Glu Met Leu Asn Arg

65 70 75 80

Val Gly Leu Gln Gly Glu Phe Lys Gly Gly Phe Arg Val Thr Thr Pro

85 90 95

Glu Val Met Asp lie Val Arg Met Val Leu Phe Gly Gln Val Gly Arg

100 105 110

Asp Leu Val Gly Leu lie Asn Ser His Gly Pro Tyr Ala Val Gly Thr

115 120 125

Ser Gly Glu Asp Ala Gly Leu Phe Thr Ala Gln Lys Arg Met Val Asn

130 135 140

lie Asp Gly Val Pro Thr Asp lie Gly Leu Val Gly Asp lie lie Asn

145 150 155 160

Val Asp Ala Ser Ser Leu Met Asp lie lie Glu Ala Gly Arg lie Pro

165 170 175

Val Val Ser Thr lie Ala Pro Gly Glu Asp Gly Gln lie Tyr Asn lie

180 185 190

Asn Ala Asp Thr Ala Ala Gly Ala Leu Ala Ala Ala lie Gly Ala Glu

195 200 205

Arg Leu Leu Val Leu Thr Asn Val Glu Gly Leu Tyr Thr Asp Trp Pro

210 215 220

Asp Lys Ser Ser Leu Val Ser Lys lie Lys Ala Thr Glu Leu Glu Ala

225 230 235 240

lie Leu Pro Gly Leu Asp Ser Gly Met lie Pro Lys Met Glu Ser Cys

245 250 255

Leu Asn Ala Val Arg Gly Gly Val Ser Ala Ala His Val lie Asp Gly

260 265 270

Arg lie Ala His Ser Val Leu Leu Glu Leu Leu Thr Met Gly Gly lie

275 280 285

Gly Thr Met Val Leu Pro Asp Val Phe Asp Arg Glu Asn Tyr Pro Glu

290 295 300

Gly Thr Val Phe Arg Lys Asp Asp Lys Asp Gly Glu Leu

305 310 315

<210> 22

<211> 954

<212> ADN

<213> argB de Corynebacterium glutamicum

<400> 22

atgaatgact tgatcaaaga tttaggctct gaggtgcgcg caaatgtcct cgctgaggcg 60 ttgccatggt tgcagcattt ccgcgacaag attgttgtcg tgaaatatgg cggaaacgcc 120 atggtggatg atgatctcaa ggctgctttt gctgccgaca tggtcttctt gcgcaccgtg 180 ggcgcaaaac cagtggtggt gcacggtggt ggacctcaga tttctgagat gctaaaccgt 240 gtgggtctcc agggcgagtt caagggtggt ttccgtgtga ccactcctga ggtcatggac 300 attgtgcgca tggtgctctt tggtcaggtc ggtcgcgatt tagttggttt gatcaactct 360 catggccctt acgctgtggg aacctccggt gaggatgccg gcctgtttac cgcgcagaag 420 cgcatggtca acatcgatgg cgtacccact gatattggtt tggtcggaga catcattaat 480 gtcgatgcct cttccttgat ggatatcatc gaggccggtc gcattcctgt ggtctctacg 540 attgctccag gcgaagacgg ccagatttac aacatcaacg ccgataccgc agcgggtgct 600 ttggctgcag cgattggtgc agaacgcctg ctggttctca ccaatgtgga aggtctgtac 660 accgattggc ctgataagag ctcactggtg tccaagatca aggccaccga gctggaggcc 720 attcttccgg gacttgattc cggcatgatt ccaaagatgg agtcttgctt gaatgcggtg 780 cgtgggggag taagcgctgc tcatgtcatt gacggccgca tcgcgcactc ggtgttgctg 840 gagcttttga ccatgggtgg aattggcacg atggtgctgc cggatgtttt tgatcgggag 900 aattatccgg aaggcaccgt ttttagaaaa gacgacaagg atggggaact gtaa 954 <210> 23

<211> 347

<212> PRT

<213> argC de Corynebacterium glutamicum

<400> 23

Met Thr lie Lys Val Ala lie Ala Gly Ala Ser Gly Tyr Ala Gly Gly

1 5 10 15

Glu lie Leu Arg Leu Leu Leu Gly His Pro Ala Tyr Ala Ser Gly Glu

20 25 30

Leu Glu lie Gly Ala Leu Thr Ala Ala Ser Thr Ala Gly Ser Thr Leu

35 40 45

Gly Glu Leu Met Pro His lie Pro Gln Leu Ala Asp Arg Val lie Gln

50 55 60

Asp Thr Thr Ala Glu Thr Leu Ala Gly His Asp Val Val Phe Leu Gly

65 70 75 80

Leu Pro His Gly Phe Ser Ala Glu lie Ala Leu Gln Leu Gly Pro Asp

85 90 95

Val Thr Val lie Asp Cys Ala Ala Asp Phe Arg Leu Gln Asn Ala Ala

100 105 110

Asp Trp Glu Lys Phe Tyr Gly Ser Glu His Gln Gly Thr Trp Pro Tyr

115 120 125

Gly lie Pro Glu lie Pro Gly His Arg Glu Ala Leu Arg Gly Ala Lys

130 135 140

Arg Val Ala Val Pro Gly Cys Phe Pro Thr Gly Ala Thr Leu Ala Leu

145 150 155 160

Leu Pro Ala Val Gln Ala Gly Leu lie Glu Pro Asp Val Ser Val Val

165 170 175

Ser lie Thr Gly Val Ser Gly Ala Gly Lys Lys Ala Ser Val Ala Leu

180 185 190

Leu Gly Ser Glu Thr Met Gly Ser Leu Lys Ala Tyr Asn Thr Ser Gly

195 200 205

Lys His Arg His Thr Pro Glu lie Ala Gln Asn Leu Gly Glu Val Ser

210 215 220

Asp Lys Pro Val Lys Val Ser Phe Thr Pro Val Leu Ala Pro Leu Pro

225 230 235 240

Arg Gly lie Leu Thr Thr Ala Thr Ala Pro Leu Lys Glu Gly Val Thr

245 250 255

Ala Glu Gln Ala Arg Ala Val Tyr Glu Glu Phe Tyr Ala Gln Glu Thr

260 265 270

Phe Val His Val Leu Pro Glu Gly Ala Gln Pro Gln Thr Gln Ala Val

275 280 285

Leu Gly Ser Asn Met Cys His Val Gln Val Glu lie Asp Glu Glu Ala

290 295 300

Gly Lys Val Leu Val Thr Ser Ala lie Asp Asn Leu Thr Lys Gly Thr

305 310 315 320

Ala Gly Ala Ala Val Gln Cys Met Asn Leu Ser Val Gly Phe Asp Glu

325 330 335

Ala Ala Gly Leu Pro Gln Val Gly Val Ala Pro

340 345

<210> 24

<211> 1044

<212> ADN

<213> argC de Corynebacterium glutamicum

<400> 24

atgacaatca aggttgcaat cgcaggagcc agtggatatg ccggcggaga aatccttcgt 60 ctccttttag gccatccagc ttatgcatct ggtgaactag aaatcggagc actcaccgcg 120 gcatcaaccg caggcagcac gctcggtgaa ttgatgccac acattccgca gttggcggat 180 cgtgttattc aagacaccac agctgaaact ctagccggtc atgatgtcgt atttctagga 240 cttccacacg gattctctgc agaaattgca cttcagctcg gaccagatgt cacagtgatt 300 gactgtgcag ctgactttcg tctgcaaaat gctgcagatt gggagaagtt ctacggctca 360 gagcaccagg gaacatggcc ttatggcatt ccagaaatac caggacaccg cgaggctctt 420 cgtggtgcta agcgtgtagc agtgccagga tgtttcccaa ccggtgcaac cttggctctt 480 cttcctgcgg ttcaagcggg acttatcgag ccagatgttt ccgtagtgtc catcaccggc 540 gtatcaggtg caggtaagaa agcatctgtt gcactacttg gctcggaaac catgggttca 600 ctcaaggcgt acaacacctc cggaaagcac cgccacaccc cggaaattgc ccagaacctc 660 ggcgaagtca gcgacaagcc agtcaaggtg agcttcaccc cagtgcttgc accgttacct 720 cgcggaattc tcaccactgc aaccgcacct ttgaaagaag gcgttaccgc agagcaggct 780 cgcgcagtat atgaagagtt ctatgcacag gaaaccttcg tgcatgttct tccagaaggt 840 gcacagccac aaacccaagc agttcttggc tccaacatgt gccacgtgca ggtagaaatt 900 gatgaggaag caggcaaagt ccttgttacc tccgcaatcg ataacctcac caagggaact 960 gccggcgccg ctgttcagtg catgaactta agcgttggct ttgatgaggc agcaggcctg 1020 ccacaggtcg gcgtcgcacc ttaa 1044 <210> 25

<211> 391

<212> PRT

<213> argD de Corynebacterium glutamicum

<400> 25

Met Ser Thr Leu Glu Thr Trp Pro Gln Val lie lie Asn Thr Tyr Gly

1 5 10 15

Thr Pro Pro Val Glu Leu Val Ser Gly Lys Gly Ala Thr Val Thr Asp

20 25 30

Asp Gln Gly Lys Val Tyr lie Asp Leu Leu Ala Gly lie Ala Val Asn

35 40 45

Ala Leu Gly His Ala His Pro Ala lie lie Glu Ala Val Thr Asn Gln

50 55 60

lie Gly Gln Leu Gly His Val Ser Asn Leu Phe Ala Ser Arg Pro Val

65 70 75 80

Val Glu Val Ala Glu Glu Leu lie Lys Arg Phe Ser Leu Asp Asp Ala

85 90 95

Thr Leu Ala Ala Gln Thr Arg Val Phe Phe Cys Asn Ser Gly Ala Glu

100 105 110

Ala Asn Glu Ala Ala Phe Lys lie Ala Arg Leu Thr Gly Arg Ser Arg

115 120 125

lie Leu Ala Ala Val His Gly Phe His Gly Arg Thr Met Gly Ser Leu

130 135 140

Ala Leu Thr Gly Gln Pro Asp Lys Arg Glu Ala Phe Leu Pro Met Pro

145 150 155 160

Ser Gly Val Glu Phe Tyr Pro Tyr Gly Asp Thr Asp Tyr Leu Arg Lys

165 170 175

Met Val Glu Thr Asn Pro Thr Asp Val Ala Ala lie Phe Leu Glu Pro

180 185 190

lie Gln Gly Glu Thr Gly Val Val Pro Ala Pro Glu Gly Phe Leu Lys

195 200 205

Ala Val Arg Glu Leu Cys Asp Glu Tyr Gly lie Leu Met lie Thr Asp

210 215 220

Glu Val Gln Thr Gly Val Gly Arg Thr Gly Asp Phe Phe Ala His Gln

225 230 235 240

His Asp Gly Val Val Pro Asp Val Val Thr Met Ala Lys Gly Leu Gly

245 250 255

Gly Gly Leu Pro lie Gly Ala Cys Leu Ala Thr Gly Arg Ala Ala Glu

260 265 270

Leu Met Thr Pro Gly Lys His Gly Thr Thr Phe Gly Gly Asn Pro Val

275 280 285

Ala Cys Ala Ala Ala Lys Ala Val Leu Ser Val Val Asp Asp Ala Phe

290 295 300

Cys Ala GluVal Thr Arg Lys Gly Glu Leu Phe Lys Glu Leu Leu Ala

305 310 315 320

euMet LeuGly

Val Val Leu Glu Arg Asp Val Ala Lys Gln Ala Val Leu Asp Gly Phe

340 345 350

Lys His Gly Val lie Leu Asn Ala Pro Ala Asp Asn lie lie Arg Leu

355 360 365

Thr Pro Pro Leu Val lie Thr Asp Glu Glu lie Ala Asp Ala Val Lys

370 375 380

Ala lie Ala Glu Thr lie Ala

385 390

<210> 26

<211> 1176

<212> ADN

<213> argD de Corynebacterium glutamicum

<400 26

atgagcacgc tggaaacttg gccacaggtc attattaata cgtacggcac cccaccagtt 60 gagctggtgt ccggcaaggg cgcaaccgtc accgatgacc agggcaaagt ctacatcgac 120 ttgctcgcgg gcatcgcagt caacgcgttg ggccacgccc acccggcgat catcgaggcg 180 gtcaccaacc agatcggcca acttggtcac gtctcaaact tgttcgcatc caggcccgtc 240 gtcgaggtcg ccgaggagct catcaagcgt ttttcgcttg acgacgccac cctcgccgcg 300 caaacccggg ttttcttctg caactcgggc gccgaagcaa acgaggctgc tttcaagatt 360 gcacgcttga ctggtcgttc ccggattctg gctgcagttc atggtttcca cggccgcacc 420 atgggttccc tcgcgctgac tggccagcca gacaagcgtg aagcattcct gccaatgcca 480 agcggtgtgg agttctaccc ttacggcgac accgattact tgcgcaaaat ggtagaaacc 540 aacccaacgg atgtggctgc tatcttcctc gagccaatcc agggtgaaac gggcgttgtt 600 ccagcacctg aaggattcct caaggcagtg cgcgagctgt gcgatgagta cggcatcttg 660 atgatcaccg atgaagtcca gactggcgtt ggccgtaccg gcgatttctt tgcacatcag 720 cacgatggcg ttgttcccga tgtggtgacc atggccaagg gacttggcgg cggtcttccc 780 atcggtgctt gtttggccac tggccgtgca gctgaattga tgaccccagg caagcacggc 840 accactttcg gtggcaaccc agttgcttgt gcagctgcca aggcagtgct gtctgttgtc 900 gatgacgctt tctgcgcaga agttacccgc aagggcgagc tgttcaagga acttcttgcc 960 aaggttgacg gcgttgtaga cgtccgtggc aggggcttga tgttgggcgt ggtgctggag 1020 cgcgacgtcg caaagcaagc tgttcttgat ggttttaagc acggcgttat tttgaatgca 1080 ccggcggaca acattatccg tttgaccccg ccgctggtga tcaccgacga agaaatcgca 1140 gacgcagtca aggctattgc cgagacaatc gcataa 1176

Claims (4)

REIVINDICACIONES

1. Un microorganismo del género Corynebacterium que tiene la capacidad de producir L-arginina con actividades mejoradas de un operón de arginina y ornitina carbamoiltransferasa en comparación con las actividades de cada uno en una cepa parental de producción de L-arginina de Corynebacterium, en el que el operón de arginina comprende un represor de arginina.

2. El microorganismo de la reivindicación 1, en el que la ornitina carbamoiltransferasa es la secuencia de aminoácidos de la SEQ ID NO: 1 o la SEQ ID NO: 3.

3. El microorganismo de la reivindicación 1, en el que el microorganismo del género Corynebacterium es Corynebacterium glutamicum.

4. Un método para producir L-arginina, que comprende:

cultivar un microorganismo del género Corynebacterium de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3 en un medio de cultivo; y

recuperar la L-arginina del microorganismo o del medio.