ES2398713T3 - Método de preparación de muestras automatizable de aplicación universal - Google Patents

Método de preparación de muestras automatizable de aplicación universal Download PDF

Info

Publication number
ES2398713T3
ES2398713T3 ES07003878T ES07003878T ES2398713T3 ES 2398713 T3 ES2398713 T3 ES 2398713T3 ES 07003878 T ES07003878 T ES 07003878T ES 07003878 T ES07003878 T ES 07003878T ES 2398713 T3 ES2398713 T3 ES 2398713T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
sample
analyte
sample preparation
buffer
carried out
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES07003878T
Other languages
English (en)
Inventor
Joerg Kleiber
Christine Markert-Hahn
Herbert Harttig
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Roche Diagnostics GmbH
Original Assignee
Roche Diagnostics GmbH
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Roche Diagnostics GmbH filed Critical Roche Diagnostics GmbH
Application granted granted Critical
Publication of ES2398713T3 publication Critical patent/ES2398713T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B03—SEPARATION OF SOLID MATERIALS USING LIQUIDS OR USING PNEUMATIC TABLES OR JIGS; MAGNETIC OR ELECTROSTATIC SEPARATION OF SOLID MATERIALS FROM SOLID MATERIALS OR FLUIDS; SEPARATION BY HIGH-VOLTAGE ELECTRIC FIELDS
    • B03C—MAGNETIC OR ELECTROSTATIC SEPARATION OF SOLID MATERIALS FROM SOLID MATERIALS OR FLUIDS; SEPARATION BY HIGH-VOLTAGE ELECTRIC FIELDS
    • B03C1/00—Magnetic separation
    • B03C1/005—Pretreatment specially adapted for magnetic separation
    • B03C1/01—Pretreatment specially adapted for magnetic separation by addition of magnetic adjuvants
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C03—GLASS; MINERAL OR SLAG WOOL
    • C03C—CHEMICAL COMPOSITION OF GLASSES, GLAZES OR VITREOUS ENAMELS; SURFACE TREATMENT OF GLASS; SURFACE TREATMENT OF FIBRES OR FILAMENTS MADE FROM GLASS, MINERALS OR SLAGS; JOINING GLASS TO GLASS OR OTHER MATERIALS
    • C03C14/00—Glass compositions containing a non-glass component, e.g. compositions containing fibres, filaments, whiskers, platelets, or the like, dispersed in a glass matrix
    • C03C14/004—Glass compositions containing a non-glass component, e.g. compositions containing fibres, filaments, whiskers, platelets, or the like, dispersed in a glass matrix the non-glass component being in the form of particles or flakes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H1/00—Processes for the preparation of sugar derivatives
    • C07H1/06—Separation; Purification
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H1/00—Processes for the preparation of sugar derivatives
    • C07H1/06—Separation; Purification
    • C07H1/08—Separation; Purification from natural products
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1003—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor
    • C12N15/1006—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor by means of a solid support carrier, e.g. particles, polymers
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1003—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor
    • C12N15/1006—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor by means of a solid support carrier, e.g. particles, polymers
    • C12N15/1013—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor by means of a solid support carrier, e.g. particles, polymers by using magnetic beads
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6806—Preparing nucleic acids for analysis, e.g. for polymerase chain reaction [PCR] assay
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N35/00—Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor
    • G01N35/0098—Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor involving analyte bound to insoluble magnetic carrier, e.g. using magnetic separation
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N35/00—Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor
    • G01N35/0099—Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor comprising robots or similar manipulators
    • H—ELECTRICITY
    • H01—ELECTRIC ELEMENTS
    • H01F—MAGNETS; INDUCTANCES; TRANSFORMERS; SELECTION OF MATERIALS FOR THEIR MAGNETIC PROPERTIES
    • H01F1/00—Magnets or magnetic bodies characterised by the magnetic materials therefor; Selection of materials for their magnetic properties
    • H01F1/01—Magnets or magnetic bodies characterised by the magnetic materials therefor; Selection of materials for their magnetic properties of inorganic materials
    • H01F1/03—Magnets or magnetic bodies characterised by the magnetic materials therefor; Selection of materials for their magnetic properties of inorganic materials characterised by their coercivity
    • H01F1/032—Magnets or magnetic bodies characterised by the magnetic materials therefor; Selection of materials for their magnetic properties of inorganic materials characterised by their coercivity of hard-magnetic materials
    • H01F1/10—Magnets or magnetic bodies characterised by the magnetic materials therefor; Selection of materials for their magnetic properties of inorganic materials characterised by their coercivity of hard-magnetic materials non-metallic substances, e.g. ferrites, e.g. [(Ba,Sr)O(Fe2O3)6] ferrites with hexagonal structure
    • H01F1/11—Magnets or magnetic bodies characterised by the magnetic materials therefor; Selection of materials for their magnetic properties of inorganic materials characterised by their coercivity of hard-magnetic materials non-metallic substances, e.g. ferrites, e.g. [(Ba,Sr)O(Fe2O3)6] ferrites with hexagonal structure in the form of particles
    • H01F1/112—Magnets or magnetic bodies characterised by the magnetic materials therefor; Selection of materials for their magnetic properties of inorganic materials characterised by their coercivity of hard-magnetic materials non-metallic substances, e.g. ferrites, e.g. [(Ba,Sr)O(Fe2O3)6] ferrites with hexagonal structure in the form of particles with a skin

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Power Engineering (AREA)
  • Ceramic Engineering (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Geochemistry & Mineralogy (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Robotics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Sampling And Sample Adjustment (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Glass Compositions (AREA)
  • Hard Magnetic Materials (AREA)

Abstract

Kit de reactivos para el aislamiento de ARN que comprende partículas de vidrio magnéticas cuya fase de vidriocontiene SiO2, B2O3, Al2O3, CaO y K2O, así como a) una proteasa, b) un tampón de disgregación de muestra, c) un tampón de lavado, d) un tampón de elución.

Description

Método de preparación de muestras automatizable de aplicación universal
La presente invención se refiere a nuevos pigmentos magnéticos que son útiles para un procedimiento de preparación de muestras biológicas para la subsiguiente detección de un analito, en especial un ácido nucleico, en esta muestra.
En un procedimiento para la detección de un analito en una prueba biológica, la preparación de la muestra está a menudo sometida a exigencias especiales. Por un lado, el analito a menudo está presente en una concentración muy escasa y, por otro lado, se encuentran a menudo muchas otras sustancias en la muestra, que pueden perjudicar el aislamiento o la determinación del analito.
Por el documento WO 96/41811 se da a conocer un procedimiento para el aislamiento de un analito, en especial un ácido nucleico, de una muestra biológica, en el que la muestra que contiene el analito en un líquido es puesta en contacto con partículas magnéticas que presentan una superficie exterior de vidrio substancialmente libre de poros,
o con poros de un diámetro de < 10 nm, en condiciones en las que el analito se fija a la superficie de la partícula y el analito fijado es separado del líquido de muestra. El procedimiento descrito por el documento WO 96/46811 es muy apropiado para la purificación de un analito de una muestra biológica. Sin embargo, no puede ser utilizado sin más para una preparación automática de una muestra.
Boom y otros (J. Clin. Microbiol. 28 (1990), 495-503) describen asimismo un protocolo para la purificación de ácidos nucleicos de una muestra biológica utilizando partículas de óxido de silicio de tamaño fraccionado. Sin embargo, este procedimiento es complicado, no es apto para una automatización y, además, existe el peligro de transmisiones.
Según un método descrito por el documento EP-A-0 757 106 para la extracción de ácidos nucleicos, se analiza una muestra, se fijan los ácidos nucleicos presentes en la muestra a partículas de metal superparamagnéticas, se eliminan las mismas del tubo de muestras mediante una pipeta y se separan, de esta manera, de los demás componentes de la muestra. Este procedimiento tiene el inconveniente de que se pueden producir pérdidas debido a la necesidad de eliminar el analito con una pipeta de la muestra. Además, la utilización de varios tubos de reacción conlleva el peligro de transmisiones y contaminaciones.
Por lo tanto, la presente invención se basa en el objetivo de proporcionar un nuevo procedimiento para la preparación de muestras con el que se eliminan los inconvenientes del estado de la técnica, como mínimo parcialmente. En especial, el nuevo procedimiento debe ser automatizable y presentar un perfil de temperatura lo más sencillo posible.
En este contexto, resultan oportunos los procedimientos para el aislamiento de un analito de una muestra biológica, que comprenden las etapas:
a) la disgregación de la muestra en un tubo de reacción, b) la adición de una matriz de adsorción sólida, c) la incubación en condiciones en las que el analito se fija a la matriz de adsorción, d) la eliminación de componentes de la muestra no fijados del tubo de reacción, e) la incubación en condiciones en las que el analito es eluido de la matriz de adsorción, y f) la separación del eluato de la matriz de adsorción.
En el contexto de la presente invención, asimismo resulta oportuno un procedimiento para el aislamiento de un analito de una muestra biológica, que comprende las etapas:
a) la disgregación de la muestra en un tubo de reacción, b) la adición de una matriz de adsorción sólida, c) la incubación en condiciones en las que el analito se fija a la matriz de adsorción, d) la separación de componentes de la muestra no fijados de la matriz de adsorción, e) la incubación en condiciones en las que el analito es eluido de la matriz de adsorción, y f) la separación del eluato de la matriz de adsorción,
en el que, como mínimo, las etapas (c) y (d) se llevan a cabo substancialmente a la misma temperatura.
El procedimiento descrito anteriormente se basa en la fijación selectiva de analitos a un matriz de adsorción sólida en presencia de un tampón de la disgregación de muestra, en el que el analito, que es preferentemente un ácido nucleico tal como ADN, por ejemplo, ADN cromosomal, ADN cromosomal fragmentado, ADN plasmídico, ADN viral, etc., o ARN, por ejemplo, ARNm, ARNt, ARNr o ARN viral, etc., es separado de impurezas de la muestra tales como, por ejemplo, proteínas o detritos celulares. La muestra puede ser una muestra biológica cualquiera, por ejemplo, un líquido corporal tal como sangre, plasma, orina, etc., una muestra de tejido, una muestra de células cultivadas o
similares.
La matriz de adsorción utilizada en el procedimiento descrito anteriormente es capaz de garantizar una fijación mayoritariamente selectiva del analito en las condiciones de reacción. Preferentemente, se utiliza una matriz de adsorción particular que presenta preferentemente una superficie de vidrio. Son muy preferentes las partículas de vidrio, en especial las partículas magnéticas descritas por el documento WO 96/41811 que presentan una superficie exterior de vidrio que es substancialmente libre de poros o presenta poros con un diámetro de menos de 10 nm. Son muy preferentes las partículas ferromagnéticas que presentan un tamaño entre 10 y 60 !m. Estas partículas pueden contener, por ejemplo, un núcleo de mica y partículas magnéticas inmovilizadas sobre el mismo que está envuelto por una capa de vidrio. Mientras que según el documento WO 96/41811 las partículas magnéticas se presentan en forma sólida, por ejemplo como pastillas o polvo, en los tubos de reacción utilizados en cada caso, de acuerdo con la invención se utiliza las partículas magnéticas preferentemente en forma de suspensión. Resultaron muy apropiadas las suspensiones alcohólicas con una concentración de aproximadamente 5 hasta 20 mg/ml. Sorprendentemente se ha comprobado que, a pesar de la elevada densidad específica de las partículas de vidrio magnéticas, la suspensión puede ser retirada de un depósito con alta reproducibilidad, debido a lo cual se hace posible automatizar la gestión del proceso.
Aunque las partículas de vidrio descritas en el documento WO 96/41811 muestren buenos resultados con el procedimiento descrito anteriormente, se obtienen resultados muy buenos con aquellas partículas de vidrio cuya fase de vidrio comprende los siguientes óxidos de metal: SiO2, B2o3, óxido de metal alcalino, por ejemplo K2O o/y Na2O, así como eventualmente Al2O3 y un óxido de metal alcalinotérreo, por ejemplo, CaO. Las porciones de estos óxidos de metal son preferentemente las siguientes: SiO2 desde 50 hasta 95 %mol, B2O3 desde 0,2 hasta 30 %mol, Al2O3 desde 0 hasta 10 %mol, óxido de metal alcalinotérreo desde 0 hasta 20 %mol y óxido de metal alcalino desde 0,2 hasta 20 %mol, donde las indicaciones porcentuales se refieren al peso total de la fase de vidrio.
Para el aislamiento de ARN ha resultado ser muy apropiado, por ejemplo, una fase de vidrio que contiene SiO2, B2O3, K2O, Al2O3 y CaO. Para el aislamiento de ADN ha resultado ser muy apropiado una fase de vidrio que contiene SiO2, B2O3 y Na2O.
Según el procedimiento descrito anteriormente, la matriz de adsorción se añade preferentemente en una cantidad que corresponde a la cantidad mínima que se necesita para una fijación cuantitativa del analito presente en la muestra, en especial un ácido nucleico, o a una cantidad algo superior, preferentemente como máximo un 50% por encima y, muy preferentemente, como máximo un 20% por encima de dicha cantidad. La cantidad de ácido nucleico que se espera encontrar en diferentes tipos de muestras se puede averiguar previamente – si no se conoce de antemano – mediante las técnicas habituales, por ejemplo, la extracción con fenol-cloroformo y la subsiguiente medición de la densidad óptica.
La etapa (a) del procedimiento descrito anteriormente comprende la disgregación de la muestra en un tubo de reacción. Esta disgregación se realiza generalmente mediante lisis de las células presentes en la muestra en condiciones desnaturalizantes, por ejemplo añadiendo una proteasa y un tampón de desnaturalización. Como proteinasa se utiliza preferentemente proteinasa K, pronasa, elastasa o/y lisozima. Muy preferente es la utilización de proteinasa K.
La digestión de proteasa se realiza en un tampón de desnaturalización, que contiene preferentemente un compuesto caotrópico, por ejemplo urea o derivados de la urea, preferentemente una sal caotrópica, muy preferentemente una sal de guanidina tal como, por ejemplo hidrocloruro de guanidina (especialmente para el aislamiento de ADN) o tiocianato de guanidina (especialmente para el aislamiento de ARN) o un perclorato o yoduro. Para las sales de guanidina son preferentes concentraciones en un rango de 1 hasta 3 mol/l.
Al contrario del método descrito por el documento WO 96/41811 para la preparación de muestras, la adición de la matriz de adsorción sólida tiene lugar solamente después de la disgregación de la muestra. Mediante esta gestión del proceso se consigue que la fijación no específica de componentes no deseados de la prueba, por ejemplo proteínas, a la matriz de adsorción sea significativamente menor.
Según la etapa (c) la fijación selectiva del analito a la matriz de adsorción se lleva a cabo mediante incubación en el tampón de disgregación, preferentemente en condiciones caotrópicas.
La etapa (d) del procedimiento descrito anteriormente comprende la separación de los componentes de la muestra no fijados de la matriz de adsorción. A tal efecto, se eliminan preferentemente los componentes de la muestra no fijados del tubo de reacción. Esto se puede llevar a cabo eventualmente mediante varias adiciones y eliminaciones de un tampón de lavado que tiene preferentemente un contenido de, como mínimo, el 50% (v/v) y muy preferentemente de, como mínimo, el 60% (v/v) de un solvente orgánico que puede ser mezclado con agua tal como, por ejemplo, etanol, propanol y acetona.
Las etapas (c), (d) o/y (e) del procedimiento descrito anteriormente se llevan a cabo preferentemente mezclando continua o intermitentemente (es decir, se alternan fases durante las que se mezcla con fases en las que el tubo de reacción está en reposo) sin la adición de medios externos. Preferentemente, este mezclado se realiza mediante giro del tubo de reacción alrededor de su eje longitudinal invirtiendo varias veces el sentido de giro. Muy preferentemente el tubo de mezclado es girado exactamente alrededor de su eje longitudinal y el cambio de sentido de giro se lleva a cabo de tal manera que la desviación del menisco del líquido se quede por debajo de una cifra de separación predeterminada. Estos procedimientos de mezcla se han descrito en los documentos WO91/15768 y EPA-0 435 481.
La duración de las etapas (c) o/y (e) es preferentemente de, como máximo, 20 minutos y comprende un mezclado continuo o un mezclado intermitente en ciclos breves, preferentemente en ciclos breves de preferentemente 2 minutos, como máximo. Se han obtenido muy buenos resultados mediante el mezclado intermitente con un ciclo de un minuto que comprendía 20 segundos de mezclado y 40 segundos de reposo.
Cuando se utilizan partículas magnéticas como matriz de adsorción, la adición de líquidos al tubo de reacción o la aspiración de líquidos del mismo puede llevarse a cabo con mezcla continua, siendo las partículas retenidas en el tubo de reacción durante el proceso de aspiración mediante la conexión del imán. Debido a esta técnica de mezclado, el procedimiento según la invención puede adaptarse de forma flexible a diferentes tipos de muestras. Además, se proporciona constantemente una distribución homogénea de las partículas magnéticas en la fase líquida.
La etapa (e) del procedimiento descrito anteriormente comprende la elución del analito de la matriz de adsorción. A tal efecto se puede utilizar, por un lado – tal como se conoce por el estado de la técnica – un tampón bajo en sal y substancialmente libre de disolventes orgánicos. Sorprendentemente se ha encontrado, sin embargo, que el tampón de elución puede contener reactivos adicionales tales como por ejemplo enzimas, por ejemplo enzimas utilizadas para la manipulación de ácidos nucleicos tales como las RNasas, DNasas, endonucleasas de restricción, ligasas, transferasas terminales o/y polimerasas. Si el analito es por ejemplo un ADN, se podrá añadir una RNasa libre de DNasa durante la elución para reducir el contenido en ARN no deseado. Por otra parte, si el analito es un ARN se podrá añadir una DNasa libre de RNasa durante la elución. Análogamente, se pueden añadir también otras enzimas tales como por ejemplo endonucleasas de restricción, etc. Si el ácido nucleico aislado mediante el procedimiento descrito anteriormente es sometido seguidamente a una amplificación, se podrá añadir también un MasterMix de amplificación de ácidos nucleicos que contiene el tampón de amplificación, nucleótidos, iniciadores, polimerasa y sales de tampón durante la elución.
La etapa (f) del procedimiento descrito anteriormente comprende la separación del eluato de la matriz de adsorción. Esta separación puede llevarse a cabo del modo habitual, por ejemplo por sedimentación, pero preferentemente por separación magnética.
Finalmente, los analitos aislados mediante el procedimiento descrito anteriormente pueden ser procesados posteriormente del modo conocido, en el caso de ácidos nucleicos por ejemplo mediante amplificación y subsiguiente detección, detección sin amplificación previa o secuenciación. A tal efecto se pueden suministrar alícuotas del eluato incluso a determinaciones de analitos diferentes, por ejemplo virus diferentes tales como VIH, VHC y VHB.
Una característica importante del procedimiento descrito anteriormente es que muchas etapas o, eventualmente, incluso todas las etapas pueden llevarse a cabo a substancialmente la misma temperatura, es decir dentro de un rango de temperatura de ± 2,5ºC. Preferentemente esta temperatura se encuentra en el rango desde la temperatura ambiente hasta 70ºC, más preferentemente desde la temperatura ambiente hasta 40ºC y muy preferentemente a temperatura ambiente, es decir aproximadamente a 18 hasta 32ºC. Según una realización preferente del procedimiento descrito anteriormente, a esta temperatura se llevan a cabo, como mínimo, las etapas (c) de adsorción y (d) de lavado. Muy preferentemente, se llevan a cabo a esta temperatura también otras etapas, en especial las etapas (a) de la disgregación o/y (e) de la elución. Para la determinación del VIH en muestras de sangre se puede realizar por ejemplo toda la preparación de la muestra a una temperatura uniforme. Después de la etapa (f) del procedimiento descrito anteriormente se puede llevar a cabo eventualmente una etapa de tratamiento posterior a una temperatura más elevada, debido a lo cual se mejora en determinados analitos el rendimiento durante la amplificación. Con otros analitos puede ser necesario que el tratamiento previo o/y la elución tengan lugar a una temperatura más elevada. La temperatura elevada está entonces preferentemente en un rango de más de 40ºC hasta 95ºC, por ejemplo en aproximadamente 70ºC.
La realización del procedimiento descrito anteriormente se desarrolla preferentemente en un dispositivo automático. A continuación, se describirán ejemplos para estos dispositivos. Asimismo resulta preferente que el procedimiento descrito anteriormente para la preparación de muestras se lleve a cabo en un solo tubo de reacción, al menos las etapas (a) hasta (e), es decir que no se realice ninguna transferencia a otro tubo de reacción. Esto tiene como consecuencia una simplificación notable del procedimiento y, además, se reduce el riesgo de contaminación.
Otro objeto de la invención consiste en un kit de reactivos que resulta adecuado en especial para llevar a cabo el procedimiento descrito anteriormente y que comprende
a) una proteasa, b) un tampón de disgregación de muestra, c) un tampón de lavado, d) un tampón de elución y e) una suspensión de partículas de vidrio magnéticas.
En el contexto de la invención, además, resulta oportuno un kit de reactivos para el aislamiento de ADN que comprende partículas de vidrio magnéticas cuya fase de vidrio contiene SiO2, B2O3 y Na2O.
Otro objeto de la invención consiste en un kit de reactivos para el aislamiento de ARN que comprende partículas de vidrio magnéticas cuya fase de vidrio contiene SiO2, B2O3, Al2O3, CaO y Ka2O.
En el contexto de la presente invención, asimismo, resulta oportuno un dispositivo para aislar un analito de una muestra biológica que comprende:
-
un preparador de muestras (1),
-
un dispositivo de alojamiento para los reactivos (2),
-
un primer dispositivo de alojamiento para tubos de reacción para la preparación de muestras (3) que están adaptados para una temperatura de servicio de � 70ºC, en especial � 40ºC,
-
un segundo dispositivo de alojamiento para tubos de reacción (4a, 4b, 4c) que contiene eventualmente refrigerantes o/y medios de calefacción,
-
y una herramienta de robótica (5).
El dispositivo descrito anteriormente está realizado preferentemente de tal manera que se prevé un solo tubo de reacción para llevar a cabo las 4 etapas principales de la preparación de la muestra, concretamente la disgregación de una muestra o lisis, la adsorción del analito liberado, por ejemplo un ácido nucleico, a una matriz de adsorción, por ejemplo a partículas de vidrio magnéticas, el lavado de la matriz de adsorción y la elución del analito de la matriz de adsorción.
El dispositivo está realizado de tal manera que el primer dispositivo de alojamiento está dispuesto para alojar el tubo de reacción para la preparación de la muestra, al menos para la adsorción del analito a la matriz de adsorción sólida y para el lavado de la matriz de adsorción. Según una realización preferente, el primer dispositivo de alojamiento está dispuesto, además, para la disgregación de la muestra o/y para la elución del analito de la matriz de adsorción. Los tubos de reacción para la preparación de la muestra tienen un volumen de preferentemente como mínimo 1 ml, por ejemplo 1-5 mL.
El segundo dispositivo de alojamiento está dispuesto para tubos de reacción destinados para la conservación o/y el procesado posterior del analito, por ejemplo tubos de PCR que presentan habitualmente una forma distinta de los tubos de reacción utilizados para la preparación de la muestra. Los tubos de reacción para la conservación o/y el procesado posterior tienen un volumen de preferentemente hasta 500 !l, por ejemplo 50-200 !l. Además, el segundo dispositivo de alojamiento puede contener tubos para reactivos que se necesitan para el procesado posterior de la muestra que contiene el analito, por ejemplo un MasterMix de PCR.
El dispositivo según la invención puede estar diseñado de tal manera que una o varias etapas de la preparación de la muestra o/y una etapa de tratamiento posterior pueden llevarse a cabo a una temperatura más elevada en el segundo dispositivo de alojamiento. A tal efecto, el segundo dispositivo de alojamiento puede estar dispuesto para alojar tubos de reacción para como mínimo una etapa de tratamiento seleccionada entre la disgregación de la muestra, la elución de la muestra de la matriz de adsorción y una etapa de tratamiento posterior tras la elución.
El primer dispositivo de alojamiento comprende preferentemente medios para la separación magnética. Asimismo, resulta preferente que el primer dispositivo de alojamiento comprenda medios para agitar los tubos de reacción, en especial mediante giro alrededor de su eje longitudinal. Estos medios pueden preverse eventualmente también para el segundo dispositivo de alojamiento.
La herramienta de robótica comprende generalmente dispositivos de pipeteado automáticos, así como, eventualmente, medios para transportar tubos de reacción, por ejemplo entre un primer y un segundo dispositivo de alojamiento. Además, puede estar integrada una unidad de apertura y cierre de tapa.
A continuación, se muestran en detalle formas de realización especiales para los dispositivos descritos anteriormente. Según la realización mostrada en la figura 1, el preparador de muestras (1) contiene un dispositivo de alojamiento para reactivos (2), un dispositivo de alojamiento para tubos de reacción para la preparación de la muestra (3) con las funciones de mezclado y separación magnética que se prevé realizar a una temperatura de preferentemente � 40ºC y muy preferentemente a temperatura ambiente. Asimismo, el dispositivo contiene una estación de alojamiento para otros tubos de reacción (4a), por ejemplo para tubos de PCR, que presenta una temperatura de 4ºC hasta temperatura ambiente. Asimismo, el dispositivo contiene dispositivos automáticos para el pipeteado y la manipulación de tubos de reacción (5), que hacen posible desplazamientos en las direcciones X, Y y Z. Según esta realización del dispositivo descrito anteriormente, las cuatro etapas principales de la preparación de la muestra, concretamente la lisis, la adsorción, el lavado y la elución tienen lugar en el primer dispositivo de alojamiento en un solo tubo de reacción. El almacenamiento de eluatos y la adición de otros reactivos, por ejemplo MasterMix de PCR tiene lugar en el segundo dispositivo de alojamiento. Para el procesado posterior, por ejemplo una PCR posterior, los tubos son transferidos a un dispositivo adecuado, por ejemplo un termociclador (no mostrado).
Según la realización mostrada en la figura 2, el dispositivo contiene un segundo dispositivo de alojamiento (4b) para alojar otros tubos de reacción para el procesado posterior, por ejemplo tubos de PCR, y se prevé el establecimiento de una temperatura de 4ºC (enfriamiento del MasterMix de PCR) hasta 95ºC para calentar el eluato tras la elución de la matriz de adsorción. Para evitar la formación de condensado en la tapa de los tubos de PCR resulta preferente un circuito de calefacción en contracorriente para la tapa.
Según la realización del dispositivo descrito anteriormente que se muestra en la figura 3, se prevé un segundo dispositivo de alojamiento para tubos de reacción (4c) que está destinado para alojar tubos de PCR y tubos de preparación de muestra. En este segundo dispositivo de alojamiento se puede realizar un enfriamiento, por ejemplo a 4ºC y un calentamiento, por ejemplo a 95ºC para calentar el lisado o/y el eluato. También en este caso resulta preferente un circuito de calefacción en contracorriente para la tapa a efectos de evitar la formación de condensado en la tapa de los tubos de reacción.
Según otra realización de la presente invención (no mostrada), el primer dispositivo de alojamiento está diseñado para establecer una temperatura en el rango de � 70ºC. El segundo dispositivo de alojamiento – tal como se muestra en la figura 3 – es apto para el enfriamiento y el calentamiento de tubos de procesado posterior de muestras y tubos de preparación de muestras.
Los dispositivos descritos anteriormente pueden ser utilizados especialmente para su aplicación en un procedimiento tal como se ha descrito anteriormente.
Asimismo, se explicará más detalladamente la presente solicitud por medio de los siguientes ejemplos y las figuras. En éstas se muestra:
En la figura la representación esquemática de una primera realización del dispositivo descrito anteriormente,
En la figura 2 la representación esquemática de una segunda realización del dispositivo descrito anteriormente,
En la figura 3 la representación esquemática de una tercera realización del dispositivo descrito anteriormente,
En la figura 4 el resultado de una detección de clamidia mediante PCR con una preparación de muestras manual y semiautomática,
En la figura 5 el resultado de una detección de clamidia mediante PCR con una preparación de muestras semiautomática y diferentes perfiles de temperatura durante la preparación de muestras,
En la figura 6 el resultado de una detección de VIH mediante PCR con una preparación de muestras manual (protocolo estándar) y una preparación de muestras semiautomática a temperatura ambiente.
Ejemplos:
1. Elaboración de partículas de vidrio magnéticas
Se utilizaron dos soles diferentes. La elaboración de los soles se realizó de la siguiente manera:
Sol 1: (SiO2:B2O3:Na2O=40:8:2) (Referencia)
Los alcoholatos de los óxidos fueron mezclados entre sí según las relaciones de moles anteriores de forma análoga al procedimiento según los ejemplos 1 y 2 descritos por el documento WO96/41811 hasta formar una fase homogénea. Pero no se utilizó HCI.
A continuación, se mezclaron revolviendo 30 g de Iriodin 600 Black Mica (Merk) en 100 ml de sol.
Sol 2: (SiO2:B2O3:K2O:Al2O3:CaO=76:15:5:2:2)
Los alcoholatos de los óxidos fueron mezclados entre sí según las relaciones de moles anteriores de forma análoga al procedimiento según los ejemplos 1 y 2 descritos por el documento WO96/41811 hasta formar una fase homogénea. Pero no se utilizó HCI.
A continuación, se mezclaron revolviendo 30 g de Iriodin 600 Black Mica (Merk) en 100 ml de sol.
Seguidamente, los soles fueron sometidos a un proceso de secado por aspersión.
El polvo obtenido mediante el secado por aspersión fue sometido a una separación de partículas finas por sedimentación, a un tratamiento térmico en atmósfera de nitrógeno (60 1/h de caudal volumétrico) a una velocidad de calentamiento de 1 K/min y fue mantenido durante 1 hora a una temperatura de condensación en un rango de 600 hasta 700ºC. A continuación, se enfrió el horno a 300ºC y a esta temperatura se limpio durante 1 h con oxígeno. Una vez enfriado a temperatura ambiente, se extrajeron las partículas de vidrio magnéticas, se colocaron sobre un tamiz de 50 !m para separar la fracción gruesa y se tamizó.
Las partículas de vidrio magnéticas obtenidas a partir del 1er sol son adecuadas especialmente para el aislamiento de ADN. Las partículas de vidrio obtenidas a partir del 2º sol son adecuadas especialmente para el aislamiento de ARN.
2. Protocolo estándar para la preparación de muestras para el aislamiento de ácidos nucleicos, por ejemplo ADN
Para aislar ácidos nucleicos de muestras biológicas tales como, por ejemplo, sangre total o células cultivadas resulta adecuado el siguiente protocolo estándar. Los ácidos nucleicos obtenidos de este modo pueden ser utilizados para una amplificación por PCR, una disociación por restricción o transferencia de Southern directamente después de la elución.
El kit de reacción contiene:
1.
Un tampón de unión (hidrocloruro de guanidina 4,7 mol/l, urea 10 mmol/l, Tris-HCl 10 mmol/l, 20% Triton® X-100, pH 5,7
2.
Proteinasa K liofilizada (para su disolución en H2O a una concentración de 20 mg/ml)
3.
Un tampón de lavado (56% (v/v) de etanol, 20 mmol/NaCl, Tris-HCl 10 mmol/l, pH 7,5)
4.
Un tampón de elución (Tris 10 mmol/l pH 8,5)
5.
Partículas de vidrio magnéticas (PVM)
a) Pastillas con 7,5 mg de partículas de vidrio, respectivamente, o bien
b) Una suspensión al 15% de las partículas de vidrio en etanol
Los componentes del kit son estables y pueden ser almacenados a temperatura ambiente. Tras la disolución de la proteinasa K en agua, se debería alicuotar la solución y conservarla a -20ºC. La solución congelada es estable durante 12 meses.
Protocolo estándar
1.
200 !l de muestra se introducen en un tubo de reacción de 2 ml y se mezclan con 200 !l de tampón de unión y 40 !l de solución de proteinasa K. A continuación, se incuba durante 10 minutos. La incubación se realiza preferentemente a temperatura ambiente. Sin embargo, en determinadas circunstancias la temperatura de incubación también puede ser aumentada hasta 70ºC.
2.
Tras la incubación se añaden 200 !l de isopropanol y una pastilla de PVM (o alternativamente, 200 !l de PVM en suspensión) y se incuba durante 5 minutos a temperatura ambiente.
3.
El tubo de reacción es introducido en un separador de partículas magnéticas (Boehringer Mannheim, Kat. No. 1 641 794) y se procede a la separación durante aproximadamente 1 minuto.
4.
Se desecha el sobrenadante y se extrae los tubos de reacción del separador de partículas magnéticas.
5.
Tras adición de 500 !l de tampón de lavado se mezcla el contenido del tubo de reacción y se introduce otra vez en el separador de partículas magnéticas durante aproximadamente 1 minuto.
6.
Se desecha el sobrenadante. Se repite tres veces la etapa 5. Después del último proceso de lavado se elimina completamente el resto del tampón de lavado.
7.
Para la elución se añaden 100 !l de tampón de elución eventualmente precalentado a 70ºC. Luego se mezcla y se incuba durante 5 minutos a temperatura ambiente. Se introduce la muestra en el separador de partículas magnéticas y se traslada el sobrenadante a un tubo de reacción limpio.
8.
Los ácidos nucleicos obtenidos de esta manera, por ejemplo ADN, son estables y pueden ser sometidos a continuación directamente a un procesado posterior o ser conservados a 4ºC.
El protocolo anterior puede utilizarse también de forma correspondiente en placas de microtitulación, por ejemplo placas de microtitulación de pocillos profundos (por ejemplo, Ritter, H.J. Bioanalytic).
3. Detección de ADN de Chlamydia trachomatis mediante PCR
3.1 Protocolo estándar manual para la preparación de muestras
200 !l de una muestra de orina y 240 !l de un tampón de unión / una solución de proteinasa K (5:1) son pipeteados en un tubo de reacción de 2 ml, sometidos a un mezclado en vórtex e incubados a 70ºC durante 10 minutos. Luego se enfría la muestra durante 5 minutos a temperatura ambiente.
Se añaden 200 !l de solución de PVM isopropanólica a la muestra mediante pipeteo. Inmediatamente después tiene lugar el mezclado en vórtex. Luego se incuba la muestra durante 15 minutos en un mezclador, por ejemplo en un termomezclador 5436 (tipo Eppendorf).
Las PVM son concentradas mediante la transferencia de la muestra a un separador magnético. Tras un minuto se elimina completamente el sobrenadante mediante pipeteado.
Se añaden 0,5 ml de tampón de lavado a las PVM mediante pipeteado. Se somete la muestra a un mezclado en vórtex y luego se transfiere al separador magnético. Tras 1 minuto se elimina el sobrenadante mediante pipeteado. El proceso de lavado se repite dos veces más.
Se añaden 200 ml de tampón de elución a las PVM. Se incuba la muestra durante 10 minutos a 70ºC en un termomezclador a 1.400 RPM. Se recolecta el agua condensada mediante un breve centrifugado. Se transfiere la muestra al separador magnético y tras 1 minuto se quitan 180 !l de eluato. El eluato es pipeteado en un nuevo tubo de reacción y se conserva a 4ºC (para un tiempo de conservación < 24 h) o a -20ºC (para una tiempo de conservación más prolongado).
Para la PCR se utilizan 50 !l de eluato. La evaluación se realiza mediante electroquimioluminiscencia.
3.2 Protocolo para un procedimiento semiautomático
En lugar del mezclado en vórtex descrito en el apartado 3.1 y el templado en un bloque térmico, se lleva a cabo un procedimiento semiautomático en el que el mezclado y el templado se realizan en un módulo de mezcla y templado. En la figura 4 se muestra una comparación de la determinación de clamidia (muestra: 100 anticuerpos elementales por 100 ml de orina; determinación séxtuple) entre el protocolo estándar manual (vórtex) y el procedimiento semiautomático (MTM). Se puede ver que la automatización no afecta a la sensibilidad.
3.3 Protocolo semiautomático a temperatura ambiente
La preparación de muestras se lleva a cabo tal como se ha descrito en el apartado 3.2. La lisis y la elución se realizan sin embargo a temperatura ambiente.
3.4 Protocolo de preparación de muestras semiautomático a temperatura ambiente con subsiguiente tratamiento posterior del eluato
La preparación de muestras se lleva a cabo tal como se describe en el apartado 3.3. Tras la elución se procede a una incubación durante 10 minutos a 70ºC.
En la figura 5 se muestra una comparación de la determinación de clamidia (muestras: SWE1, anticuerpos elementales de clamidia O (EAK) por ml de orina, SWE 2:10 EAK, SWE 3:100 EAK y SWE 4:1000 EAK por ml de orina, respectivamente) entre los protocolos de preparación de muestras descritos en los apartados 3.2, 3.3 y 3.4. Se puede ver que para la determinación de clamidia el protocolo estándar es más sensible con respecto a una preparación de muestras a temperatura ambiente (protocolo RT MTM). Los resultados de la preparación de muestras a temperatura ambiente con subsiguiente tratamiento posterior del eluato (protocolo RT MTM con tratamiento posterior) muestran sin embargo que este efecto puede ser compensado mayoritariamente. Por lo tanto, sorprendentemente no se requiere ninguna etapa de temperatura durante la preparación de muestras propiamente dicho.
Debido a este conocimiento el procedimiento de preparación de muestras se deja simplificar de forma decisiva, ya que las etapas de lisis, adsorción, lavado y elución pueden llevarse a cabo a temperaturas de 40ºC lo cual simplifica la automatización, dado que no se requieren ni circuito de calefacción en contracorriente ni regulación de temperatura.
4. Detección de ARN de VIH mediante PCR
4.1 Protocolo estándar manual para la preparación de muestras
Se descongela plasma congelado durante 5 minutos a 37ºC y se enfría sobre hielo para su procesado posterior.
Se pipetean 50 !l de una solución de proteinasa K (25 mg/ml) en un tubo Sarstedt de 1,5 ml. Se añaden 250 !l de muestra y se mezcla en vórtex. A continuación, se añaden 300 !l de tampón de lisis y se vuelve a mezclar en el vórtex.
Se incuba durante 10 minutos a temperatura ambiente en un mezclador tipo Eppendorf a 13.000 RPM. Luego se añaden 300 !l de una suspensión de PVM (6 mg/ml de PVM en isopropanol), se mezcla en vórtex y se incuba durante 20 minutos a temperatura ambiente mezclando continuamente. Las PVM son separadas en un separador magnético y se elimina completamente el sobrenadante.
Se añaden 750 !l de tampón de lavado a las PVM. Las mimas son resuspendidas y separadas tal como se ha descrito anteriormente. El proceso de lavado se repite cuatro veces, siendo eliminado al final el tampón de lavado cuidadosamente.
Luego se añaden 100 !l de tampón de elución y las PVM son resuspendidas. Tras una incubación de 15 minutos a 80ºC en un termomezclador tipo Eppendorf (13.000 RPM) se transfieren 90 !l de eluato a un nuevo tubo de reacción. Para la siguiente determinación de VIH mediante RT-PCR se utilizan 40 !l de eluato.
4.2 Protocolo estándar semiautimático para la preparación de muestras
La preparación de las muestras se lleva a cabo tal como se describe en el apartado 4.1, salvo que el mezclado y el templado se realizan en un módulo de mezcla y de templado.
4.3 Protocolo semiautomático a temperatura ambiente
La preparación de las muestras se lleva a cabo substancialmente tal como se describe en el apartado 4.2, salvo que todas las etapas se llevan a cabo a temperatura ambiente. El tiempo de incubación para lisis, adsorción y elución es de 15 minutos, respectivamente.
De la figura 6 se desprende que la automatización y la preparación de las muestras a temperatura ambiente (protocolo RT MTM) no afectan a la sensibilidad con respecto al protocolo estándar para la preparación manual de las muestras (manual). Se obtienen resultados reproducibles tanto con plasma negativo, como con plasma positivo bajo, positivo medio o positivo alto.

Claims (2)

  1. REIVINDICACIONES
    1. Kit de reactivos para el aislamiento de ARN que comprende partículas de vidrio magnéticas cuya fase de vidrio contiene SiO2, B2O3, Al2O3, CaO y K2O, así como
    5 a) una proteasa, b) un tampón de disgregación de muestra, c) un tampón de lavado, d) un tampón de elución.
  2. 2. Partículas de vidrio magnéticas que comprenden un núcleo magnético y una envoltura de vidrio que contiene SiO2, B2O3, K2O y Al2O3, así como CaO.
ES07003878T 1997-10-01 1998-09-29 Método de preparación de muestras automatizable de aplicación universal Expired - Lifetime ES2398713T3 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19743518A DE19743518A1 (de) 1997-10-01 1997-10-01 Automatisierbare universell anwendbare Probenvorbereitungsmethode
DE19743518 1997-10-01

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2398713T3 true ES2398713T3 (es) 2013-03-21

Family

ID=7844362

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES07003878T Expired - Lifetime ES2398713T3 (es) 1997-10-01 1998-09-29 Método de preparación de muestras automatizable de aplicación universal
ES98952670T Expired - Lifetime ES2290996T3 (es) 1997-10-01 1998-09-29 Procedimiento para aislar un acido nucleico.

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES98952670T Expired - Lifetime ES2290996T3 (es) 1997-10-01 1998-09-29 Procedimiento para aislar un acido nucleico.

Country Status (13)

Country Link
US (2) US6562568B1 (es)
EP (2) EP1783135B1 (es)
JP (3) JP4048022B2 (es)
KR (1) KR20010024366A (es)
AT (1) ATE366739T1 (es)
AU (1) AU1028299A (es)
CA (1) CA2305171C (es)
DE (2) DE19743518A1 (es)
DK (1) DK1019430T3 (es)
ES (2) ES2398713T3 (es)
IL (2) IL135299A0 (es)
PT (1) PT1019430E (es)
WO (1) WO1999016781A2 (es)

Families Citing this family (72)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR100463475B1 (ko) * 1995-06-08 2005-06-22 로셰 디아그노스틱스 게엠베하 자기성피그먼트
CA2318306A1 (en) * 1997-12-06 1999-06-17 Dna Research Instruments Limited Isolation of nucleic acids
AU2862100A (en) * 1999-01-27 2000-08-18 Folim G. Halaka Materials and methods for the purification of polyelectrolytes
DE19937607A1 (de) * 1999-08-09 2001-02-15 Bilatec Ges Zur Entwicklung Bi Reagenzienkit zur Isolierung von Nukleinsäuren
JP2003514383A (ja) * 1999-11-17 2003-04-15 ロシュ ダイアグノスティクス ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフツング 磁性ガラス粒子、それらの製造方法、及びそれらの使用
JP2004515219A (ja) * 2000-06-15 2004-05-27 ボード・オブ・リージェンツ，ザ・ユニヴァーシティ・オヴ・テキサス・システム 調節可能な触媒活性な核酸
US7494817B2 (en) * 2000-09-06 2009-02-24 Transnet Yx, Inc. Methods for genotype screening using magnetic particles
DE10127068A1 (de) * 2001-05-23 2002-11-28 Bio Medical Apherese Systeme G Vorrichtung und Verfahren zum Inkubieren und Wiederabtrennen von Magnetteilchen in und von flüssige biologische Dispersionen
DE10147439B4 (de) * 2001-09-26 2014-01-30 Qiagen Gmbh Verfahren zur Isolierung von DNA aus biologischen Proben
DE60316660T3 (de) 2002-01-08 2016-01-28 Roche Diagnostics Gmbh Verwendung eines silikamaterials bei der amplifikation
AU2003202026A1 (en) 2002-01-16 2003-09-02 Dynal Biotech Asa Method for isolating nucleic acids and protein from a single sample
US20040234898A1 (en) * 2002-02-06 2004-11-25 Batishko Charles R. Magnetic flowcell systems and methods
ATE516366T1 (de) 2002-07-25 2011-07-15 Archemix Corp Regulierte aptamer-therapeutika
AU2003236461B2 (en) 2002-08-29 2009-05-28 Epigenomics Ag Improved method for bisulfite treatment
EP1590362B8 (en) 2003-01-29 2015-06-03 Epigenomics AG Improved method for bisulfite treatment
US7601491B2 (en) 2003-02-06 2009-10-13 Becton, Dickinson And Company Pretreatment method for extraction of nucleic acid from biological samples and kits therefor
JP3644641B2 (ja) * 2003-03-07 2005-05-11 株式会社日立ハイテクノロジーズ 核酸回収方法
JP4871722B2 (ja) † 2003-07-25 2012-02-08 アプライド バイオシステムズ リミテッド ライアビリティー カンパニー 固定試料からｒｎａを調製するための方法および組成物
US20050042660A1 (en) * 2003-07-31 2005-02-24 Hall Gerald Edward Devices and methods for isolating RNA
GB0319671D0 (en) * 2003-08-21 2003-09-24 Secr Defence Apparatus for processing a fluid sample
CA2482097C (en) 2003-10-13 2012-02-21 F. Hoffmann-La Roche Ag Methods for isolating nucleic acids
WO2005054502A1 (en) 2003-12-02 2005-06-16 Roche Diagnostics Gmbh Improved method for bisulfite treatment
JP2007516729A (ja) * 2003-12-30 2007-06-28 シグマ−アルドリッチ・カンパニー 酵素消化による核酸の迅速な調製
CA2791798C (en) 2004-02-10 2016-08-16 F. Hoffmann-La Roche Ag New primers and probes for the detection of parvovirus b19
US9267167B2 (en) 2004-06-28 2016-02-23 Becton, Dickinson And Company Dissolvable films and methods including the same
US20060099605A1 (en) * 2004-11-11 2006-05-11 Hall Gerald E Jr Devices and methods for isolating RNA
EP1632578A1 (en) 2004-09-03 2006-03-08 Roche Diagnostics GmbH DNA decontamination method
EP1690938A1 (de) * 2005-02-11 2006-08-16 Qiagen GmbH Verfahren zur Isolierung von Nukleinsäuren, wobei die Nukleinsäuren bei erhöhter Temperatur an einer Matrix immobilisiert werden
US20060270843A1 (en) * 2005-05-26 2006-11-30 Hall Gerald E Jr Methods for isolation of nucleic acids
US20060269929A1 (en) * 2005-05-26 2006-11-30 Hall Gerald E Jr Methods and kits for DNA purification on polymeric membranes at low ionic strength
JP4733456B2 (ja) * 2005-07-26 2011-07-27 シスメックス株式会社 前処理の外部精度管理方法、核酸検出処理の外部精度管理方法、検量線作成処理の外部精度管理方法、前処理の外部精度管理コンピュータ、核酸検出処理の外部精度管理コンピュータ、検量線作成処理の外部精度管理コンピュータ、前処理装置、及び核酸検出装置
GB0525231D0 (en) * 2005-12-12 2006-01-18 Genpoint As Method
US7981606B2 (en) 2005-12-21 2011-07-19 Roche Molecular Systems, Inc. Control for nucleic acid testing
FR2895993A1 (fr) * 2006-01-10 2007-07-13 Immunid Sarl Composition pour la stabilisation d'echantillons biologiques et procede de stabilisation
US20090155811A1 (en) * 2006-01-27 2009-06-18 Oxonica, Inc. Lateral Flow Immunoassay With Encapsulated Detection Modality
EP3604553A3 (en) 2006-11-03 2020-04-29 Siemens Healthcare Diagnostics Inc. Random access system for polymerase chain reaction testing
JP5354894B2 (ja) 2006-12-11 2013-11-27 エフ．ホフマン−ラ ロシュ アーゲー ポリドカノールおよび誘導体を用いた核酸単離
DE602007010986D1 (de) 2006-12-13 2011-01-13 Roche Diagnostics Gmbh Verwendung von acetalen zur isolation von nukleinsäuren
ES2394815T3 (es) 2006-12-13 2013-02-05 F. Hoffmann-La Roche Ag Utilización de TDE para el aislamiento de ácidos nucleicos
US8535888B2 (en) 2006-12-29 2013-09-17 Mayo Foundation For Medical Education And Research Compositions and methods for detecting methicillin-resistant S. aureus
US7985375B2 (en) * 2007-04-06 2011-07-26 Qiagen Gaithersburg, Inc. Sample preparation system and method for processing clinical specimens
US8703492B2 (en) 2007-04-06 2014-04-22 Qiagen Gaithersburg, Inc. Open platform hybrid manual-automated sample processing system
DE102008010693A1 (de) * 2008-02-22 2009-08-27 Qiagen Gmbh Neue Matrixmaterialien, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung in Verfahren zur Isolierung von Biomolekülen
JP5572939B2 (ja) * 2008-10-27 2014-08-20 株式会社島津製作所 Ｄｎａの塩基配列決定法
US8911663B2 (en) 2009-03-05 2014-12-16 Quebec Metal Powders, Ltd. Insulated iron-base powder for soft magnetic applications
TWI407994B (zh) 2009-10-22 2013-09-11 Ind Tech Res Inst 分離核酸的方法、試劑及套組
WO2011063139A1 (en) 2009-11-18 2011-05-26 Qiagen Laboratory central control unit method and system
US8609340B2 (en) 2010-07-29 2013-12-17 Roche Molecular Systems, Inc. Control nucleic acids for multiple parameters
JP6348202B2 (ja) * 2010-07-29 2018-06-27 エフ．ホフマン−ラ ロシュ アーゲーＦ． Ｈｏｆｆｍａｎｎ−Ｌａ Ｒｏｃｈｅ Ａｋｔｉｅｎｇｅｓｅｌｌｓｃｈａｆｔ 一般的な試料調製
CA2802563C (en) 2010-07-29 2018-08-28 F. Hoffmann-La Roche Ag Preparation of nucleic acids from different types of biological fluid samples
US9175332B2 (en) 2010-07-29 2015-11-03 Roche Molecular Systems, Inc. Generic PCR
US9725754B2 (en) 2010-07-29 2017-08-08 Sean F. Boyle Generic sample preparation
EP2707381B1 (en) * 2011-05-11 2019-08-14 Exosome Diagnostics, Inc. Nucleic acid extraction from heterogeneous biological materials
KR102010106B1 (ko) * 2011-11-09 2019-08-12 더 리전트 오브 더 유니버시티 오브 캘리포니아 자기적-조정가능 고품질 포톤 구조용 개선된 전하 안정성을 가진 초상자성 콜로이드
EP2664914A1 (en) * 2012-05-16 2013-11-20 Koninklijke Philips N.V. Magnetically assisted processing of a medium
US9399986B2 (en) 2012-07-31 2016-07-26 General Electric Company Devices and systems for isolating biomolecules and associated methods thereof
US20140322706A1 (en) 2012-10-24 2014-10-30 Jon Faiz Kayyem Integrated multipelx target analysis
EP2965817B1 (en) 2012-10-24 2017-09-27 Genmark Diagnostics Inc. Integrated multiplex target analysis
US9222623B2 (en) 2013-03-15 2015-12-29 Genmark Diagnostics, Inc. Devices and methods for manipulating deformable fluid vessels
US9498778B2 (en) 2014-11-11 2016-11-22 Genmark Diagnostics, Inc. Instrument for processing cartridge for performing assays in a closed sample preparation and reaction system
USD881409S1 (en) 2013-10-24 2020-04-14 Genmark Diagnostics, Inc. Biochip cartridge
JP5928435B2 (ja) 2013-11-01 2016-06-01 株式会社安川電機 ロボットシステム、検査方法および被検査物の生産方法
CN105255855A (zh) * 2014-07-10 2016-01-20 上海艾迪康医学检验所有限公司 在固体表面保存核酸的方法及其保存液
US10005080B2 (en) 2014-11-11 2018-06-26 Genmark Diagnostics, Inc. Instrument and cartridge for performing assays in a closed sample preparation and reaction system employing electrowetting fluid manipulation
US9598722B2 (en) 2014-11-11 2017-03-21 Genmark Diagnostics, Inc. Cartridge for performing assays in a closed sample preparation and reaction system
WO2016077294A1 (en) 2014-11-14 2016-05-19 Corning Incorporated Methods and kits for post-ivt rna purification
EP3434372B1 (en) * 2014-11-19 2020-02-26 F. Hoffmann-La Roche AG Particle mixing
US10001501B2 (en) 2015-12-31 2018-06-19 Universal Diagnostics, S. L. Systems and methods for automated, customizable sample preparation for detection of metabolites and lipids
CN108474024B (zh) * 2016-01-05 2022-08-02 豪夫迈·罗氏有限公司 磁性玻璃颗粒对核酸的连续捕获
ES2951666T3 (es) * 2016-09-12 2023-10-24 Hoffmann La Roche Procedimientos y composiciones para purificar ácidos nucleicos bicatenarios
WO2019014486A1 (en) 2017-07-12 2019-01-17 Exosome Diagnostics, Inc. METHODS FOR ISOLATING AND ENRICHING POPULATIONS OF EXTRACELLULAR VESICLES DERIVED FROM BIOFLUIDS, AND METHODS OF USE THEREOF
CN114381368B (zh) * 2021-12-31 2023-10-27 北京理工大学 一种利用气液界面自动分离生物分析物的系统及方法

Family Cites Families (97)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2913419A (en) * 1956-04-18 1959-11-17 Du Pont Chemical process and composition
US2885366A (en) * 1956-06-28 1959-05-05 Du Pont Product comprising a skin of dense, hydrated amorphous silica bound upon a core of another solid material and process of making same
DE2313331C2 (de) * 1973-03-17 1986-11-13 Merck Patent Gmbh, 6100 Darmstadt Eisenoxidhaltige Glimmerschuppenpigmente
US3945862A (en) * 1973-06-26 1976-03-23 Merck & Co., Inc. Coated ferrous substrates comprising an amorphous magnesia-silica complex
US4133169A (en) * 1974-08-30 1979-01-09 Ebauches S.A. Electronic circuit for a quartz crystal watch
DE2625106C2 (de) * 1976-06-04 1982-03-11 Bayer Ag, 5090 Leverkusen Eisenoxidschwarz-Pigmente mit verbesserter Oxidationsbeständigkeit und Verfahren zu ihrer Herstellung
US4124385A (en) * 1976-12-02 1978-11-07 Xerox Corporation Magnetic glass carrier materials
US4126437A (en) * 1976-12-02 1978-11-21 Xerox Corporation Magnetic glass carrier materials
US4124735A (en) * 1976-12-02 1978-11-07 Xerox Corporation Magnetic glass carrier materials
US4395271A (en) * 1979-04-13 1983-07-26 Corning Glass Works Method for making porous magnetic glass and crystal-containing structures
US4297337A (en) * 1979-04-13 1981-10-27 Corning Glass Works Solid-phase immunoassays using magnetic glass
JPS5676510A (en) * 1979-11-28 1981-06-24 Tdk Corp Manufacture of magnetic recording material
JPS56105337A (en) * 1980-01-28 1981-08-21 Tdk Corp Magnetic recording medium and its production
US4280918A (en) * 1980-03-10 1981-07-28 International Business Machines Corporation Magnetic particle dispersions
US4360441A (en) * 1981-06-25 1982-11-23 Corning Glass Works Glass-encapsulated magnetic materials and methods for making them
US4454234A (en) * 1981-12-30 1984-06-12 Czerlinski George H Coated magnetizable microparticles, reversible suspensions thereof, and processes relating thereto
US4448884A (en) * 1982-03-03 1984-05-15 Kms Fusion, Inc. Glass-surface microcarrier for growth of cell cultures
US4477492A (en) * 1983-04-22 1984-10-16 E. I. Du Pont De Nemours And Company Process for preparing superficially porous supports for chromatography and catalysts
US4628037A (en) * 1983-05-12 1986-12-09 Advanced Magnetics, Inc. Binding assays employing magnetic particles
US4672040A (en) * 1983-05-12 1987-06-09 Advanced Magnetics, Inc. Magnetic particles for use in separations
US4695392A (en) * 1983-05-12 1987-09-22 Advanced Magnetics Inc. Magnetic particles for use in separations
US4698302A (en) * 1983-05-12 1987-10-06 Advanced Magnetics, Inc. Enzymatic reactions using magnetic particles
US4695393A (en) * 1983-05-12 1987-09-22 Advanced Magnetics Inc. Magnetic particles for use in separations
US4554088A (en) * 1983-05-12 1985-11-19 Advanced Magnetics Inc. Magnetic particles for use in separations
GB8401636D0 (en) * 1984-01-21 1984-02-22 British Petroleum Co Plc Coating process
US5236623A (en) * 1984-07-11 1993-08-17 Rhone-Poulenc Chimie Process for the production of a silica colloid
US4824712A (en) * 1984-07-16 1989-04-25 Ppg Industries, Inc. Treatment of glass to reduce venting during thermal treatment and a glass article made thereby
US4748121A (en) * 1984-11-30 1988-05-31 Ppg Industries, Inc. Porous glass fibers with immobilized biochemically active material
US4683195A (en) * 1986-01-30 1987-07-28 Cetus Corporation Process for amplifying, detecting, and/or-cloning nucleic acid sequences
US4683202A (en) * 1985-03-28 1987-07-28 Cetus Corporation Process for amplifying nucleic acid sequences
US5512332A (en) * 1985-10-04 1996-04-30 Immunivest Corporation Process of making resuspendable coated magnetic particles
US5597531A (en) * 1985-10-04 1997-01-28 Immunivest Corporation Resuspendable coated magnetic particles and stable magnetic particle suspensions
US5076950A (en) * 1985-12-20 1991-12-31 Syntex (U.S.A.) Inc. Magnetic composition for particle separation
US5206568A (en) * 1986-03-26 1993-04-27 Beckman Instruments, Inc. Coordinated control of stepper motors
US4751211A (en) * 1986-08-07 1988-06-14 Aluminum Company Of America Composite adsorbent for removing acids from organophosphate functional fluids
JPS63109105A (ja) * 1986-10-25 1988-05-13 Chisso Corp 強磁性金属微粒子の製造方法
DE3639949A1 (de) * 1986-11-22 1988-06-09 Diagen Inst Molekularbio Verfahren zur trennung von langkettigen nukleinsaeuren
US4699171A (en) * 1986-12-19 1987-10-13 Sundstrand Corporation Multiple port relief valve
US4767670A (en) * 1987-01-21 1988-08-30 E. I. Du Pont De Nemours And Company Chromatographic supports for separation of oligonucleotides
NO162946C (no) * 1987-08-21 1990-03-14 Otto Soerensen Anordning for magnetisk separasjon av celler.
CH672445A5 (es) 1987-02-27 1989-11-30 Hratch Boyadjian
JP2862547B2 (ja) * 1987-03-02 1999-03-03 ジエン―プローブ・インコーポレイテツド 核酸精製、分離及びハイブリダイゼーション用ポリカチオン性支持体
DE68920778T2 (de) * 1988-05-24 1995-05-18 Anagen Uk Ltd Magnetisch anziehbare Teilchen und Herstellungsverfahren.
US5312485A (en) * 1988-08-05 1994-05-17 J. M. Huber Corporation Precipitated encapsulated paper pigments and methods
US5041390A (en) * 1988-08-11 1991-08-20 Skov Per S Method and means for allergy diagnosis
US5075430A (en) * 1988-12-12 1991-12-24 Bio-Rad Laboratories, Inc. Process for the purification of DNA on diatomaceous earth
US5234809A (en) 1989-03-23 1993-08-10 Akzo N.V. Process for isolating nucleic acid
US5352645A (en) * 1989-04-14 1994-10-04 E. I. Du Pont De Nemours And Company Silica microspheres, method of improving attrition resistance and use
US5055194A (en) * 1989-07-28 1991-10-08 University Of Pennsylvania Support for high performance liquid chromatography in a magnetically stabilized fluidized bed
US5279936A (en) * 1989-12-22 1994-01-18 Syntex (U.S.A.) Inc. Method of separation employing magnetic particles and second medium
US5523231A (en) * 1990-02-13 1996-06-04 Amersham International Plc Method to isolate macromolecules using magnetically attractable beads which do not specifically bind the macromolecules
US5236783A (en) * 1990-02-21 1993-08-17 Toda Kogyo Corp. Superparamagnetic fine particles of iron oxide and magnetic recording media containing said particles
US5316699A (en) * 1990-03-28 1994-05-31 The United States Of America As Repesented By The Secretary Of Commerce Process for the controlled preparation of a composite of ultrafine magnetic particles homogeneously dispersed in a dielectric matrix
EP0478753B1 (en) * 1990-04-06 1997-07-02 The Perkin-Elmer Corporation Automated molecular biology laboratory
US5763173A (en) * 1990-06-11 1998-06-09 Nexstar Pharmaceuticals, Inc. Nucleic acid ligand inhibitors to DNA polymerases
US5210015A (en) * 1990-08-06 1993-05-11 Hoffman-La Roche Inc. Homogeneous assay system using the nuclease activity of a nucleic acid polymerase
US5217804A (en) * 1990-11-06 1993-06-08 Eastman Kodak Company Magnetic particles
US5155018A (en) * 1991-07-10 1992-10-13 Hahnemann University Process and kit for isolating and purifying RNA from biological sources
US5395498A (en) * 1991-11-06 1995-03-07 Gombinsky; Moshe Method for separating biological macromolecules and means therfor
US5734020A (en) * 1991-11-20 1998-03-31 Cpg, Inc. Production and use of magnetic porous inorganic materials
US5610274A (en) * 1991-11-20 1997-03-11 Cpg, Inc. Production and use of magnetic porous inorganic materials
US5346994A (en) * 1992-01-28 1994-09-13 Piotr Chomczynski Shelf-stable product and process for isolating RNA, DNA and proteins
EP0566790B1 (en) * 1992-04-23 1996-08-07 Toda Kogyo Corp. Magnetic powder and magnetic toner
TW221381B (es) * 1992-04-28 1994-03-01 Du Pont
IT1256064B (it) * 1992-07-28 1995-11-27 Donegani Guido Ist Metodo per la preparazione di geli porosi contenenti boro
CA2107524C (en) * 1992-10-06 1999-01-19 Hiromitsu Misawa Iron oxide particles and process for producing the same
US5578238A (en) * 1992-10-30 1996-11-26 Lord Corporation Magnetorheological materials utilizing surface-modified particles
AU669398B2 (en) * 1992-11-13 1996-06-06 Becton Dickinson & Company Boron silicates aluminum silicates phosphosilicates and purification of DNA
US5648170A (en) * 1993-04-27 1997-07-15 Toda Kogyo Corporation Coated granular magnetite particles and process for producing the same
EP0723549B1 (en) * 1993-08-30 2003-12-17 Promega Corporation Nucleic acid purification compositions and methods
US5503816A (en) * 1993-09-27 1996-04-02 Becton Dickinson And Company Silicate compounds for DNA purification
US5438127A (en) * 1993-09-27 1995-08-01 Becton Dickinson And Company DNA purification by solid phase extraction using a PCl3 modified glass fiber membrane
US5599627A (en) * 1993-10-08 1997-02-04 Toda Kogyo Corporation Magnetic particles comprising magnetite core and process for producing the same
US5538848A (en) * 1994-11-16 1996-07-23 Applied Biosystems Division, Perkin-Elmer Corp. Method for detecting nucleic acid amplification using self-quenching fluorescence probe
US5990301A (en) * 1994-02-07 1999-11-23 Qiagen Gmbh Process for the separation and purification of nucleic acids from biological sources
AU691574B2 (en) * 1994-02-07 1998-05-21 Qiagen Gmbh Process for producing endotoxin-free or endotoxin-poor nucleic acids and/or oligonucleotides for gene therapy
GB9411572D0 (en) * 1994-06-09 1994-08-03 Amersham Int Plc Magnetic bead precipitation method
ATE191086T1 (de) * 1994-07-27 2000-04-15 Pilgrimm Herbert Superparamagnetische teilchen, verfahren zur herstellung und deren verwendung
US5705628A (en) * 1994-09-20 1998-01-06 Whitehead Institute For Biomedical Research DNA purification and isolation using magnetic particles
US5660984A (en) * 1994-12-09 1997-08-26 Davis; Thomas E. DNA isolating apparatus comprising a non-porous DNA binding, anion exchange resin and methods of use thereof
FR2732116B1 (fr) * 1995-03-21 1997-05-09 Bio Merieux Procede et dispositif pour la determination qualitative et/ou quantitative d'un analyte, notamment d'une bacterie, dans un echantillon, par voie magnetique
US5683875A (en) * 1995-05-04 1997-11-04 Hewlett-Packard Company Method for detecting a target nucleic acid analyte in a sample
IN188702B (es) * 1995-06-01 2002-10-26 Degussa
DE19520964A1 (de) 1995-06-08 1996-12-12 Inst Neue Mat Gemein Gmbh Beschichtete anorganische Pigmente, Verfahren zu deren Herstellung und deren Verwendung
DE19520398B4 (de) * 1995-06-08 2009-04-16 Roche Diagnostics Gmbh Magnetisches Pigment
JP2965131B2 (ja) 1995-07-07 1999-10-18 東洋紡績株式会社 核酸結合用磁性担体およびそれを用いる核酸単離方法
CA2231861A1 (en) 1995-09-13 1997-03-20 Takanori Oka Method for concentrating mutant nucleic acid and nucleic acid-concentrating assay kit for said concentration method
US5783686A (en) 1995-09-15 1998-07-21 Beckman Instruments, Inc. Method for purifying nucleic acids from heterogenous mixtures
US5904848A (en) * 1996-02-21 1999-05-18 Cpg, Inc. Controlled pore glass-synthetic resin membrane
US5972721A (en) * 1996-03-14 1999-10-26 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Air Force Immunomagnetic assay system for clinical diagnosis and other purposes
DE19622885A1 (de) * 1996-06-07 1997-12-11 Boehringer Mannheim Gmbh Reagenzzubereitung enthaltend magnetische Partikel in Form einer Tablette
AU6021798A (en) 1997-01-21 1998-08-07 W.R. Grace & Co.-Conn. Silica adsorbent on magnetic substrate
US6027945A (en) 1997-01-21 2000-02-22 Promega Corporation Methods of isolating biological target materials using silica magnetic particles
US5990479A (en) * 1997-11-25 1999-11-23 Regents Of The University Of California Organo Luminescent semiconductor nanocrystal probes for biological applications and process for making and using such probes
US6242235B1 (en) 1998-06-24 2001-06-05 Promega Corp. Polymerase stabilization by polyethoxylated amine surfactants
DK1144620T3 (da) * 1998-11-30 2004-01-05 Roche Diagnostics Gmbh Magnetiske partikler til rensning af nucleinsyrer
US7267964B2 (en) * 2000-03-31 2007-09-11 Merial Limited DNA molecules encoding ligand gated ion channels from Dermacentor variabilis

Also Published As

Publication number Publication date
IL135299A0 (en) 2001-05-20
PT1019430E (pt) 2007-10-16
JP4659013B2 (ja) 2011-03-30
JP2008134239A (ja) 2008-06-12
WO1999016781A2 (de) 1999-04-08
DE19743518A1 (de) 1999-04-15
DE59814056D1 (de) 2007-08-23
WO1999016781A3 (de) 1999-09-16
ATE366739T1 (de) 2007-08-15
IL135299A (en) 2010-11-30
DK1019430T3 (da) 2007-11-12
CA2305171C (en) 2008-06-17
ES2290996T3 (es) 2008-02-16
AU1028299A (en) 1999-04-23
JP4048022B2 (ja) 2008-02-13
JP2001518284A (ja) 2001-10-16
US6562568B1 (en) 2003-05-13
EP1783135A1 (de) 2007-05-09
CA2305171A1 (en) 1999-04-08
EP1019430A2 (de) 2000-07-19
JP2007175060A (ja) 2007-07-12
KR20010024366A (ko) 2001-03-26
EP1783135B1 (de) 2012-11-07
EP1019430B1 (de) 2007-07-11
US20030199078A1 (en) 2003-10-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2398713T3 (es) Método de preparación de muestras automatizable de aplicación universal
ES2247236T3 (es) Pigmento magnetico.
ES2085245T5 (es) Procedimiento de purificacion de acidos nucleicos.
ES2163865T5 (es) Aislamiento en fase solida de acidos nucleicos.
ES2441452T3 (es) Recipiente para el análisis de ácidos nucleicos
ES2535809T3 (es) Métodos para aislar ácidos nucleicos
RU2241004C2 (ru) Композиция и способ для выделения нуклеиновых кислот из комплексных материалов с применением антихаотропной соли
CN109072234B (zh) 基于蛋白质的样品采集基质和装置
ES2320875T5 (es) Procedimientos y materiales para utilizar compuestos químicos como herramienta para el almacenamiento de ácidos nucleicos sobre medios de sistemas de purificación de ácidos nucleicos
ES2206485T3 (es) Aislamiento del acido nucleico.
CA2270106C (en) Nucleic acid purification and process
JP4271663B2 (ja) 固相に対する核酸の吸着
JP5325448B2 (ja) 固相を用いての核酸分子の単離および精製
BRPI0606363B1 (pt) Método para o isolamento e/ou a purificação de ácidos nucleicos ácido nucleico, e, método para a imobilização de ácidos nucleicos em uma matriz
US20070031880A1 (en) Chemical treatment of biological samples for nucleic acid extraction and kits therefor
JPH10501246A (ja) 極度に少量でかつ非常に強く汚染された非常に種々の出発物質から核酸を単離および精製する一般的方法
US7888006B2 (en) Method for isolating DNA from biological samples
JP2002512688A (ja) 核酸アーカイビング
US20110092691A1 (en) Method For Filtering Nucleic Acids, In Particular From Fixed Tissue
ES2865124T3 (es) Procedimiento en una etapa para la purificación de ácidos nuncleicos
JP2000300262A (ja) 粒子担体を使用した核酸の抽出方法
JP2005505305A5 (es)
ES2965460T3 (es) Método automatizable para el aislamiento de ácidos nucleicos
US20090130687A1 (en) Formulations and method isolating nucleic acids from arbitrary complex starting materials and subsequent complex genetic materials
WO2001062976A1 (en) Rapid nucleic acid separation, isolation and purification methods