ES2280826T3 - Nuevas formas adicionales de moleculas de arn interferentes. - Google Patents
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Abstract
Un ácido ribonucleico que comprende una estructura bicatenaria, en el que la estructura bicatenaria comprende una primera cadena y una segunda cadena, en el que la primera cadena comprende un primer segmento de nucleótidos contiguos y en el que dicho primer segmento es al menos parcialmente complementario de un ácido nucleico objetivo, y la segunda cadena comprende un segundo segmento de nucleótidos contiguos y en el que dicho segundo segmento es al menos parcialmente idéntico al ácido nucleico objetivo, caracterizado porque dicho primer segmento y dicho segundo segmento comprenden un patrón que consiste en una pluralidad de grupos de nucleótidos modificados que tienen una modificación en la posición 2'', de modo que en el segmento cada grupo de nucleótidos modificados está flanqueado en uno o ambos lados por un grupo de nucleótidos flanqueadores en el que los nucleótidos flanqueadores que forman el grupo de nucleótidos flanqueadores son nucleótidos no modificados o nucleótidos que tienen una modificación diferente de la modificación de los nucleótidos modificados.
Description
Nuevas formas adicionales de moléculas de ARN
interferentes.
La presente invención se refiere a un ácido
ribonucleico que comprende una estructura bicatenaria, en el que la
estructura bicatenaria comprende una primera cadena y una segunda
cadena, en la que la primera cadena comprende un primer segmento de
nucleótidos contiguos y en la que dicho primer segmento es al menos
parcialmente complementario del ácido nucleico objetivo, y la
segunda cadena comprende un segundo segmento de nucleótidos
contiguos en la que dicho segundo segmento es al menos parcialmente
idéntico a un ácido nucleico objetivo, al uso de dicho ácido
ribonucleico, a una célula y un organismo, que comprenden
respectivamente, dicho ácido ribonucleico, a una composición que
contiene dicho ácido ribonucleico, a una composición farmacéutica
que contiene dicho ácido ribonucleico y a un procedimiento para
inhibir la expresión de un gen identificado.
La interferencia mediada por ARN (iARN) es un
mecanismo de silenciamiento génico postranscripcional iniciado por
el ARN bicatenario (ARNbc) homólogo en secuencia con el gen
silenciado (Fire (1999), Trends Genet. 15,
358-63, Tuschl, et al. (1999), Genes
Dev. 13, 3191-7, Waterhouse, et al.
(2001), Nature 411, 834-42, Elbashir, et
al. (2001), Nature 411, 494-8, para una
revisión véase Sharp (2041), Genes Dev. 15,
485-90, Barstead (2001), Curr. Opin. Chem.
Biol. 5, 63-6). La iARN se ha usado mucho para
determinar la función génica en una serie de organismos, incluidas
plantas (Baulcombe (1999), Curr. Opin. Plant. Biol. 2,
109-13), nematodos (Montgomery, et al.
(1998), Proc. Natl. Acad. Sci. USA
95,15502-7), Drosophila (Kennerdell, et
al. (1998), Cell 95, 1017-26, Kennerdell,
et al. (2000), Nat. Biotechnol. 18,
896-8). En el nematodo C. elegans
aproximadamente una tercera parte del genoma ya se ha sometido a
análisis funcional por iARN (Kim (2001), Curr. Biol. 11,
R85-7, Maeda, et al. (2001), Curr.
Biol. 11, 171-6).
Hasta hace poco, la iARN no se podía aplicar en
general en células de mamíferos, con la excepción del desarrollo
prematuro de ratón (Wianny, et al. (2000), Nat. Cell.
Biol. 2, 70-5). El descubrimiento de que la
transfección de dúplex de 21 nt en células de mamíferos interfería
con la expresión de genes y no inducía una respuesta antivírica
dirigida por interferón independiente de la secuencia obtenida
normalmente con el ARNbc largo, ha conducido a nuevas aplicaciones
potenciales en células de mamíferos diferenciadas (Elbashir et
al. (2001), Nature 411, 494-8). Es
interesante que estos ARN de interferencia pequeños (ARNip) se
parecen a los productos de procesamiento a partir de ARNbc largos,
lo que sugiere un potencial mecanismo de desviación en células
diferenciadas de mamíferos. Se ha identificado el complejo Dicer, un
miembro de la familia de la ARNasa III, necesario para el
procesamiento inicial del ARNbc (Bernstein, et al. (2001),
Nature 409,363-6, Billy, et al.
(2001), Proc. Natl. Acad. Sci. USA
98,14428-33). Uno de los problemas que se han
encontrado previamente cuando se han usado ribooligonucleótidos no
modificados era la rápida degradación en células o incluso en el
medio que contiene suero (Wickstrom (1986), J. Biochem. Biophys.
Methods 13, 97-102, Cazenave, et al.
(1987), Nucleic Acids Res. 15,10507-21).
Dependerá de la función particular del gen y de los sistemas de
ensayo usados si el respectivo bloqueo inducido por el ARNip
operado se mantendrá suficiente tiempo para alcanzar un cambio
fenotípico.
Parrish S. et al. (Molecular Cell,
vol. 6, 1077-1087, noviembre, 2005) describe los
requisitos de los ARNbc que se dirigen al gen
unc-22 de C. elegans. Más específicamente, se
investiga el impacto de la modificación química de diferentes
nucleótidos, en el que si un nucleótido es modificado depende de la
naturaleza química del
nucleótido.
nucleótido.
La solicitud de patente internacional publicada
WO 02/055693 describe el uso de moléculas de ARNi que tienen una
estructura bicatenaria, en la que dichas moléculas de ARNi tienen un
extremo protuberante en uno de los extremos formado por
1-4 nucleótidos.
La solicitud de patente internacional publicada
WO 02/044321 describe el uso de moléculas de ARNi que tienen una
estructura bicatenaria, en la que dichas moléculas de ARNi tienen
una longitud de 19-23 pares de nucleótidos.
La solicitud de patente internacional publicada
WO 95/13834 describe compuestos oligonucleósidos quiméricos que son
útiles para activar la escisión mediada por la ARNasa H de
secuencias de ácidos nucleicos objetivo. Más específicamente,
dichos compuestos oligonucleósidos quiméricos son oligonucleótidos
monocatenarios que son complementarios de un ácido nucleico
objetivo.
El problema subyacente de la presente invención
era proporcionar moléculas de ARN de interferencia sintéticas que
sean tanto estables como activas en el entorno bioquímico tal como
una célula viva.
El problema subyacente de la presente invención
se resuelve por el objeto de la solicitud de las reivindicaciones
independientes adjuntas. Se pueden coger realizaciones preferidas de
las reivindicaciones dependientes adjuntas.
La presente invención se basa en el
descubrimiento sorprendente de que se pueden diseñar ARN de
interferencia pequeños de modo que sean tanto altamente específicos
como activos, así como estables en las condiciones de reacción que
se encuentran típicamente en sistemas biológicos, tales como ensayos
bioquímicos o entornos celulares. Los diferentes ARN de
interferencia descritos en la técnica anterior, tal como por Tuschl
et al. (solicitud de patente internacional WO 01/75164)
tienen una longitud de 21 a 23 nucleótidos y una modificación en el
extremo 3' del ARN bicatenario. Sorprendentemente, los autores de la
presente invención han encontrado que el problema de estabilidad
del ARN de interferencia, incluido el ARN de interferencia pequeño
(ARNip) que en general en esta memoria se denomina en lo sucesivo
ARNi, reside realmente en el ataque de las endonucleasas más que de
las exonucleasas como se pensaba antes. Basándose en este
descubrimiento, los autores de la presente invención han
considerado varias estrategias, que son el objetivo de la presente
solicitud.
Por lo tanto, la presente invención se refiere a
nuevas formas de ARN de interferencia como se definen en la
reivindicación 1. El ARNi consiste en un ácido ribonucleico que
comprende una estructura bicatenaria. Dicha estructura bicatenaria
está formada por una primera cadena y una segunda cadena. Dicha
primera cadena comprende un segmento de nucleótidos contiguos,
también denominados primer segmento de nucleótidos contiguos en esta
memoria, y este primer segmento es al menos parcialmente
complementario de un ácido nucleico objetivo. Dicha segunda cadena
comprende también un segmento de nucleótidos contiguos, en el que
dicho segundo segmento es al menos parcialmente idéntico a un ácido
nucleico objetivo. La estructura básica de este ácido ribonucleico
se muestra de forma esquemática en la figura 1. Dicha primera cadena
y dicha segunda cadena se hibridan preferiblemente entre sí y
forman la estructura bicatenaria. La hibridación se produce
típicamente por apareamiento de bases de Watson y Crick. Sin
embargo, el ácido ribonucleico de la invención no está
necesariamente limitado en su longitud a dicha estructura
bicatenaria. Se pueden añadir más nucleótidos a cada cadena y/o a
cada extremo de cualquiera de las cadenas que forman el ARNi.
Dependiendo de la secuencia particular de la primera cadena y de la
segunda cadena, la hibridación o apareamiento de bases no es
necesariamente completo o perfecto, lo cual significa que el primer
y segundo segmentos no son 100% pares de bases debido a
apareamientos erróneos. También puede haber uno o más apareamientos
erróneos en el dúplex. Dichos apareamientos erróneos no tienen
efecto en la actividad de ARNi si están situados fuera de un
segmento de preferiblemente 15, 16 ó 17 nucleótidos apareados. Si
los apareamientos erróneos están situados para dar sólo 15 o menos
nucleótidos apareados contiguos, la molécula de ARNi típicamente
muestra una menor actividad en la reducción de la expresión del ARNm
para un objetivo dado, comparado con un dúplex de 17
nucleótidos
apareados.
apareados.
El primer segmento de nucleótidos contiguos de
la primera cadena es esencialmente complementario a un ácido
nucleico objetivo, más preferiblemente a una parte del ácido
nucleico objetivo. Complementario, tal como se usa en esta memoria,
preferiblemente significa que la secuencia de nucleótidos de la
primera cadena hibrida con una secuencia de ácido nucleico de una
secuencia de ácido nucleico objetivo o una parte de la misma.
Típicamente, la secuencia de ácido nucleico objetivo o el ácido
nucleico objetivo, de acuerdo con el modo de acción de los ácidos
ribonucleicos de interferencia, es un ARN monocatenario, más
preferiblemente un ARNm. Lo más probable es que dicha hibridación
se produzca por el apareamiento de bases de Watson y Crick, sin
embargo, no está limitada a la misma. La medida en la que dicha
primera cadena, y más en particular dicho primer segmento de
nucleótidos contiguos de dicha primera cadena, es complementaria a
una secuencia de ácido nucleico objetivo, puede ser tan grande como
100% y tan pequeña como 80%, preferiblemente
80-100%, más preferiblemente
85-100%, lo más preferiblemente
90-100%. Parece que la complementaridad óptima es
95-100%. La complementaridad en este sentido
significa que el intervalo de nucleótidos mencionado, tal como, p.
ej., 80-100%, dependiendo del intervalo particular,
de los nucleótidos tienen un apareamiento de bases de Watson y Crick
perfecto. En un aspecto de la presente invención se muestra que la
complementaridad entre dicho primer segmento de nucleótidos y el ARN
objetivo tiene que ser 18-19 nucleótidos, los
segmentos tan cortos como 17 nucleótidos, incluso con dos extremos
protuberantes de secuencia específica, no son funcionales en la
mediación de la iARN. Por consiguiente, dado un dúplex que tiene
una longitud de 19 nucleótidos o pares de bases, sería aceptable una
complementaridad mínima de 17 nucleótidos o pares de bases de
nucleótidos, permitiendo un apareamiento erróneo de dos nucleótidos.
En el caso de un dúplex que consiste en 20 nucleótidos o pares de
bases estaría permitido y sería funcionalmente activo una
complementaridad de 17 nucleótidos o pares de bases de nucleótidos.
Se aplica lo mismo a un dúplex de 21 nucleótidos o pares de bases
con una complementaridad total de 17 nucleótidos o pares de base.
Básicamente el grado de complementaridad requerida para una
longitud de un dúplex, es decir de una estructura bicatenaria,
también se puede basar en la temperatura de fusión del complejo
formado por la estructura bicatenaria descrita en esta memoria o
por el complejo del primer segmento de la primera cadena y el ácido
nucleico objetivo.
Hay que entender que todos los ácidos
ribonucleicos de la presente invención son adecuados para producir o
para estar implicados en la interferencia mediada por ARN, tal como
se describe, por ejemplo, en las solicitudes de patentes
internacionales WO 99/32619, WO 00/44895 y WO 01/75164.
La primera estrategia de acuerdo con la cual se
puede diseñar de acuerdo con la presente invención una molécula de
ácido ribonucleico de interferencia según la reivindicación 1, es
que tenga una longitud óptima de 18 ó 19 nucleótidos en el segmento
que es complementario al ácido nucleico objetivo. También está
dentro de la presente invención que dicha longitud óptima de 18 ó
19 nucleótidos es la longitud de la estructura bicatenaria en el
ARNi usado. Este requisito de longitud es claramente diferente de la
enseñanza técnica de la técnica anterior, tal como por ejemplo, la
solicitud de patente internacional WO 01/75164. Está dentro de la
presente invención que se puede realizar cualquier otro diseño,
tanto de acuerdo con la presente invención como descrito en la
técnica anterior, en relación con un ácido ribonucleico de
interferencia que tenga dichas características de longitud, es
decir una longitud de 18 ó 19
nucleótidos.
nucleótidos.
La segunda estrategia de acuerdo con la cual se
puede diseñar una molécula de ácido ribonucleico de acuerdo con la
reivindicación 1, es tener un grupo 5'-hidroxilo
libre, también denominado en esta memoria grupo
5'-OH libre, en la primera cadena. Un grupo
5'-OH libre significa que el nucleótido más terminal
que forma la primera cadena está presente y por lo tanto no está
modificado, en particular no por una modificación en el extremo.
Típicamente, el grupo 5'-hidroxi terminal de la
segunda cadena, respectivamente, también está presente en una forma
no modificada. En una realización más preferida, el extremo 3' de la
primera cadena y el primer segmento, respectivamente, no está
modificado de modo que presente un grupo OH libre, que también se
denomina en esta memoria grupo 3'-OH libre, de modo
que el diseño del nucleótido terminal de 5' es uno de cualquiera de
las realizaciones descritas antes. Preferiblemente dicho grupo OH
libre también está presente en el extremo 3' de la segunda cadena y
segundo segmento, respectivamente. En otras realizaciones de las
moléculas de ácido ribonucleico descritas previamente de acuerdo
con la presente invención, el extremo 3' de la primera cadena y
primer segmento, respectivamente, y/o el extremo 3' de la segunda
cadena y segundo segmento, respectivamente, pueden tener una
modificación en el extremo, en el extremo 3'.
Tal como se usan en esta memoria, las
expresiones grupo 5'-OH y grupo
3'-OH libres también indican que los respectivos
nucleótidos más terminales en el extremo 5' y el extremo 3' del
polinucleótido, respectivamente, presentan un grupo OH. Dicho grupo
OH puede estar en el resto azúcar del nucleótido, más
preferiblemente en la posición 5' en el caso del grupo
5'-OH y en la posición 3' en el caso del grupo
3'-OH, o en un grupo fosfato unido al resto azúcar
de los respectivos nucleótidos terminales. En principio, el grupo
fosfato puede estar unido a cualquier grupo OH del resto azúcar del
nucleótido. Preferiblemente, el grupo fosfato está unido al grupo
5'-OH del resto azúcar en el caso del grupo
5'-OH libre y/o al grupo 3'OH del resto azúcar en el
caso del grupo 3'-OH libre, proporcionando todavía
lo que se denomina en esta memoria grupo 5' ó
3'-OH.
Tal como se usa en esta memoria, en cualquier
estrategia para diseñar el ARNi o cualquier realización del ARNi
descrita en esta memoria, la expresión modificación en el extremo
significa una entidad química añadida al último nucleótido 5' ó 3'
de la primera y/o segunda cadena. Los ejemplos de dichas
modificaciones finales incluyen, pero no se limitan, (desoxi)
abásico invertido, amino, flúor, cloro, bromo, CN, CF, metoxi,
imidazol, caboxilato, tioato, alquilo inferior C_{1} a C_{10},
alquilo inferior sustituido, alcarilo o aralquilo, OCF_{3}, OCN,
O-, S-, o N-alquilo; O-, S-, o
N-alquenilo; SOCH_{3}; SO_{2}CH_{3};
ONO_{2}; NO_{2}, N_{3}; heterocicloalquilo;
heterocicloalcarilo; aminoalquilamino; polialquilamino o sililo
sustituido, como se describen, entre otros en las patentes europeas
EP 0586520 B1 o EP 0618925 B1.
Tal como se usa en esta memoria, alquilo o
cualquier expresión que comprenda "alquilo" significa cualquier
cadena de átomos de carbono que comprende 1 a 12, preferiblemente 1
a 6 y más preferiblemente 1 a 2 átomos de C.
Otra modificación en el extremo es un grupo
biotina. Dicho grupo biotina se puede unir preferiblemente al
nucleótido final 5' o final 3' de la primera y/o segunda cadena o a
ambos extremos. En una realización más preferida el grupo biotina
se acopla a un polipéptido o proteína. También está dentro del
alcance de la presente invención que el polipéptido o proteína se
una por cualquiera de las modificaciones de los extremos
mencionadas. El polipéptido o proteína puede conferir
características adicionales a las moléculas de ácido nucleico de la
invención. Entre otros, el polipéptido o proteína puede actuar como
un ligando a otra molécula. Si dicha otra molécula es un receptor,
la función y actividad del receptor se pueden activar mediante el
ligando de unión. El receptor puede mostrar una actividad de
internalización que permite una transfección eficaz de las
moléculas de ácido nucleico de la invención unidas al ligando. Un
ejemplo del ligando que se va a acoplar a la molécula de ácido
nucleico de la invención es el VEGF y el correspondiente receptor es
el receptor VEGF.
En la siguiente tabla 1 se presentan diferentes
posibles realizaciones del ARNi de la presente invención que tienen
diferentes tipos de modificaciones en el extremo.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
Las diferentes modificaciones de los extremos
como se describe en esta memoria, se sitúan preferiblemente en el
resto ribosa de un nucleótido del ácido ribonucleico. Más en
particular, la modificación del extremo se puede unir o puede
sustituir a cualquiera de los grupos OH del resto ribosa, incluidas,
pero no limitado, las posiciones 2'OH, 3'OH y 5'OH, con la
condición de que el nucleótido así modificado sea un nucleótido
terminal. Los abásicos invertidos son nucleótidos, sea
desoxirribonucleótidos o ribonucleótidos, que no tienen un resto
de nucleobase. Este tipo de compuestos, los describen, entre otros
Sternberger et al. (2002), Antisense. Nucl. Ac. Drug
Dev., pendiente de publicación.
Se puede usar cualquiera de las modificaciones
de los extremos mencionadas en relación con las diferentes
realizaciones del ARNi presentadas en la tabla 1. En relación con
esto, hay que indicar que cualquiera de las formas o realizaciones
de ARNi descritas en esta memoria, estando la cadena homosentido
inactivada, y preferiblemente con una modificación en el extremo,
más preferiblemente en el extremo 5', son particularmente
ventajosas. Esto viene de la inactivación de la cadena homosentido
que corresponde a la segunda cadena de los ácidos ribonucleicos
descritos en esta memoria, que de lo contrario podría interferir con
un ARN monocatenario no relacionado en la célula. Por lo tanto, se
influye de forma más específica en la expresión y más en particular
en el patrón de traducción del transcriptoma de una célula. Este
efecto también se denomina efecto fuera del objetivo. En relación
con la tabla 1, las realizaciones presentadas como realizaciones 7 y
8 son particularmente ventajosas en el sentido anterior, puesto que
la modificación da como resultado una inactivación de la parte -no
específica del objetivo- del ARNi (que es la segunda cadena)
reduciendo así cualquier interacción no específica de la segunda
cadena con ARN monocatenario en un sistema celular o similar, en el
que el ARNi de acuerdo con la presente invención se va a usar para
bloquear ácidos ribonucleicos y proteínas específicos,
respectivamente.
Una tercera estrategia objeto de la presente
invención es realizar un ácido ribonucleico de acuerdo con la
reivindicación 1, que comprende una estructura bicatenaria en el que
la estructura bicatenaria comprende una primera cadena y una
segunda cadena, en el que la primera cadena comprende un primer
segmento de nucleótidos contiguos y en el que dicho primer segmento
es al menos parcialmente complementaria a un ácido nucleico
objetivo, y la segunda cadena comprende un segundo segmento de
nucleótidos contiguos en el que dicho segundo segmento es al menos
parcialmente idéntico a un ácido nucleico objetivo, en el que la
estructura bicatenaria tiene extremos romos. Cuando se usa en
relación con la presente descripción, la expresión estructura
bicatenaria también se denomina dúplex. Por lo tanto, este diseño
de ARNi es claramente diferente, por ejemplo, del de Tuschl et
al., especificado en la solicitud de patente WO 01/75164 que
describe un extremo 3' protuberante. Tal como se usa en este
documento extremo protuberante se refiere a una estructura
bicatenaria en la que al menos un extremo de una cadena es más
largo que el correspondiente extremo de la otra cadena que forma la
estructura bicatenaria, la cual en esta memoria también se denomina
contracadena. Preferiblemente, el primer segmento es idéntico a la
primera cadena y el segundo segmento es idéntico a la segunda
cadena.
Considerando la eficacia del ARNi de extremo
romo y las ventajas de una modificación en el extremo sea de la
primera o de la segunda cadena o de ambas, respectivamente, de los
respectivos ácidos ribonucleicos, es preferible tener una
combinación de ambos principios en el diseño. En otras palabras,
está dentro de la presente invención tener un ARNi de extremo romo
que lleve cualquier esquema de modificación en el extremo como se
presenta en la tabla 1.
La cuarta estrategia objeto de la presente
invención es tener un extremo protuberante en el extremo 5' del
ácido ribonucleico de acuerdo con la reivindicación 1. Más en
particular, dicho extremo protuberante en principio puede estar
presente en cualquiera o tanto en la primera cadena como en la
segunda cadena del ácido ribonucleico de acuerdo con la presente
invención. La longitud de dicho extremo protuberante puede ser tan
corta como un nucleótido y tan larga como de 2 a 8 nucleótidos,
preferiblemente 2, 4, 6 u 8 nucleótidos. Está dentro de la presente
invención que el extremo 5' protuberante puede estar situado en la
primera cadena y/o la segunda cadena del ácido ribonucleico de
acuerdo con la presente solicitud. El nucleótido o los nucleótidos
que forman el extremo protuberante pueden ser
desoxirribonucleótido(s), ribonucleótido(s) o una
continuación de los mismos.
El extremo protuberante preferiblemente
comprende al menos un desoxirribonucleótido, en el que dicho un
desoxirribonucleótido preferiblemente es el 5' más terminal. Está
dentro de la presente invención que el extremo 3' de la respectiva
contracadena del ácido ribonucleico de la invención no tenga un
extremo protuberante, más preferiblemente no un extremo
protuberante de desoxirribonucleótido. Otra vez aquí, cualquiera de
los ácido ribonucleicos de la invención puede comprenden un esquema
de modificación en el extremo como se señala en relación con la
tabla 1 y/o una modificación en el extremo como se señala en esta
memoria.
La estrategia en el diseño de los ácidos
ribonucleicos de interferencia de acuerdo con la reivindicación 1,
reside en la formación de un determinado patrón de nucleótidos
modificados tanto en el primer como en el segundo y más
particularmente tanto en el primer como en el segundo segmento de
nucleótidos contiguos del ácido o ácidos ribonucleicos de acuerdo
con la presente invención. El tipo de modificación de dichos
nucleótidos puede ser la misma discutida en relación con las otras
estrategias de diseño de ARN de interferencia descritas en esta
memoria, y más en particular el tipo de modificación descrita en
esta memoria para o como una modificación del extremo, tales como,
por ejemplo, abásicos invertidos, metoxi o amino y similares en el
resto ribosa de al menos un nucleótido que forma los ácidos
ribonucleótidos de acuerdo con la presente solicitud. Hay que
indicar que la modificación de dichos nucleótidos puede ser
cualquier forma de modificación descrita en esta memoria, más en
particular el tipo de modificación descrita en esta memoria como
modificación del extremo, y la llamada modificación en el extremo
no está situada necesariamente en los nucleótidos terminales. Más
bien la modificación se encuentra en un nucleótido no terminal. En
dichas condiciones preferiblemente la modificación se une al resto
ribosa del nucleótido que se va a modificar, e incluso más
preferiblemente a la posición 2' del resto ribosa.
También está dentro de la presente invención que
cualquier ácido ribonucleico de acuerdo con la reivindicación 1,
también puede tener las características conferidas a un ácido
ribonucleico de acuerdo con la reivindicación 1, por cualquiera de
las estrategias de diseño descritas en esta memoria. Por
consiguiente, el ácido ribonucleico de interferencia que tiene un
patrón de nucleótidos modificado puede tener una modificación en el
extremo, un esquema de modificación en el extremo, puede tener el
extremo romo o puede tener un extremo 5' protuberante o cualquier
combinación de dos o más de estos elementos o características.
A parte de las modificaciones mencionadas que se
pueden presentar como modificaciones del extremo o como patrón de
modificación, la cadena principal de ácido ribonucleico se puede
modificar más formando diferentes uniones entre los nucleótidos.
Dichas diferentes uniones, se describen, entre otros, en la patente
europea EP 0586520 B1 y patente europea EP 0618925 B1. Tienen un
interés particular aquí la modificación o modificaciones internas
de la cadena principal de ácido ribonucleico que se ha visto que
confieren mayor resistencia de los ribooligonucleótidos a las
nucleasas. En una realización preferida la modificación del
nucleótido modificado es una metoxilación del grupo
2'-OH del resto ribosa del nucleótido.
De acuerdo con la reivindicación 1, ambas
cadenas, y más en particular tanto el primer segmento como el
segundo segmento, muestran este tipo de modificación de los
nucleótidos que forman dichas cadenas y segmentos, respectivamente.
Tal como se usa en esta memoria, la expresión grupo de nucleótido
modificado o grupo flanqueador del nucleótido puede comprender o
representar tan pocos nucleótidos como un nucleótido, es decir, uno
o más nucleótidos.
Considerando el segmento de nucleótidos
contiguos, se puede llevar a cabo un patrón de modificación de los
nucleótidos que forman el segmento, de modo que un solo nucleótido o
un grupo de nucleótidos que están unidos covalentemente entre sí
por los enlaces fosforodiéster convencionales, o al menos
parcialmente por enlaces fosforotioato, muestren dicho tipo de
modificación. En el caso de que dicho nucleótido o grupo de
nucleótidos que también se denominan en esta memoria grupo de
nucleótidos modificados, no formen el extremo 5' o extremo 3' de
este segmento, le sigue un nucleótido o grupo de nucleótidos a ambos
lados del nucleótido que no tienen la modificación del nucleótido o
grupo de nucleótidos precedente. Sin embargo, hay que indicar que
este tipo de nucleótido o grupo de nucleótidos, pueden tener una
modificación diferente. Este tipo de nucleótido o grupo de
nucleótidos también se denominan en esta memoria grupo de
nucleótidos flanqueadores. Esta secuencia de nucleótido modificado
y grupo de nucleótidos modificados, respectivamente, y nucleótido no
modificado o modificado de forma diferente o grupo de nucleótidos
no modificados o modificados de forma diferente, se puede repetir
una o varias veces. Preferiblemente, la secuencia se repite más de
una vez. Por motivos de claridad, el patrón se discute con más
detalle a continuación, en general en relación a un grupo de
nucleótidos modificados o un grupo de nucleótidos no modificados en
el que cada uno de dichos grupos puede comprender realmente tan
poco como un solo nucleótido. Nucleótido no modificado, tal como se
usa en esta memoria significa que no tienen ninguna de las
modificaciones mencionadas en el nucleótido que forma el respectivo
nucleótido o grupo de nucleótidos, o que tiene una modificación que
es diferente de la del nucleótido y grupo de nucleótidos
modificados, respectivamente.
También está dentro de la presente invención,
que la modificación del nucleótido o nucleótidos no modificados en
el que dicho nucleótido o nucleótidos no modificados están realmente
modificados de una forma diferente de la modificación del
nucleótido o nucleótidos modificados, puede ser igual o incluso
diferente para los diferentes nucleótidos que forman dichos
nucleótidos no modificados o para los diferentes grupos de
nucleótidos flanqueadores.
El patrón de los nucleótidos modificados y no
modificados puede ser tal que el nucleótido
5'-terminal de la cadena o segmento empiece con un
grupo de nucleótidos modificados o empiece con un grupo de
nucleótidos no modificados. Sin embargo, en una realización
alternativa también es posible que el nucleótido
5'-terminal esté formado por un grupo de
nucleótidos no modificados.
Este tipo de patrón se puede realizar en el
primer segmento o en el segundo segmento del ARN de interferencia o
en ambos. Hay que indicar que es necesario un
5'-fosfato en la cadena de dúplex de ARNip
complementaria del objetivo para la función de ARNip, lo que
sugiere que las células comprueban la autenticidad de los ARNip por
un 5'-OH libre (que puede estar fosforilado) y sólo
permite que dicho ARNip dirija la destrucción del ARN objetivo
(Nykanen, et al. (2001), Cell 107,
309-21).
Está dentro de la presente invención que tanto
el primer segmento como el segundo segmento tengan este tipo de
patrón. Preferiblemente, el patrón de la modificación y no
modificación es el mismo para tanto para el primer segmento como
para el segundo segmento.
En una realización preferida el grupo de
nucleótidos que forman el segundo segmento y correspondiente al
grupo de nucleótidos modificados del primer segmento también se
modifican, mientras que el grupo no modificado de nucleótidos de o
que forma el segundo segmento corresponde al grupo de nucleótidos no
modificados de o que forma el primer segmento. Esta posibilidad se
representa esquemáticamente en la figura 2A. Otra alternativa es
que haya un desplazamiento de fase del patrón de modificación del
primer segmento y primera cadena, respectivamente, respecto al
patrón de modificación del segundo segmento y segunda cadena,
respectivamente. Preferiblemente, el desplazamiento es tal que el
grupo de nucleótidos modificados de la primera cadena corresponde al
grupo de nucleótidos no modificados de la segunda cadena y
viceversa. Esta posibilidad se muestra en la figura 2B. También
está dentro de la presente invención que el desplazamiento de fase
del patrón de modificación no sea completo sino que se superponga
como se ilustra en la figura 2C.
En una realización preferida el segundo
nucleótido en el extremo del segmento y cadena, respectivamente es
un nucleótido no modificado o el principio del grupo de nucleótidos
no modificados. Preferiblemente, este nucleótidos no modificado o
grupo de nucleótidos no modificados está situado en el extremo 5' de
la primera y segunda cadena, respectivamente, e incluso más
preferiblemente de la primera cadena. En otra realización
preferida, el nucleótido no modificado o grupo de nucleótidos no
modificados se sitúa en el extremo 5' de la primera cadena y primer
segmento, respectivamente. En una realización preferida, el patrón
consiste en nucleótidos individuales modificados y no modificados
que alternan.
En otra realización preferida de este aspecto de
la presente invención, el presente ácido ribonucleico de
interferencia objetivo comprende dos cadenas, en el que se incorpora
un nucleótido modificado con
2'-O-metilo y un nucleótido no
modificado, preferiblemente un nucleótido que no está modificado con
2'-O-metilo, en ambas cadenas de
una forma alternada, lo cual significa que cada dos nucleótidos hay
un nucleótido modificado con
2'-O-metilo y uno no modificado,
respectivamente. Esto significa que en la primera cadena un
nucleótido modificado con
2'-O-metilo es seguido por un
nucleótido no modificado que a su vez es seguido por un nucleótido
modificado con 2'-O-metilo etc.
Existe la misma secuencia de modificación con
2'-O-metilo y no modificación en la
segunda cadena, de modo que preferiblemente hay un desplazamiento
de fase de modo que el nucleótido modificado con
2'-O-metilo en la primera cadena
forma apareamiento de bases con un nucleótido(s) no
modificado(s) en la segunda cadena y viceversa. Esta
particular disposición, es decir, el apareamiento de bases de
nucleótido(s) modificado(s) con
2'-O-metilo y nucleótido(s)
no modificado(s) en ambas cadenas es particularmente
preferida en el caso de ácidos ribonucleicos cortos de
interferencia, es decir ácidos ribonucleicos bicatenarios de bases
apareadas cortos porque, aunque los autores de la presente
invención no pretenden estar ligados por esta teoría, se supone que
existe una cierta repulsión entre el apareamiento de dos bases de
nucleótidos modificados con
2'-O-metilo que desestabilizaría
dicho dúplex, preferiblemente dúplex cortos. Respecto a la
particular disposición, se prefiere que la cadena antisentido
empiece con un nucleótido modificado con
2'-O-metilo en el extremo 5' de
modo que por lo tanto el segundo nucleótido no está modificado, y
así el tercero, quinto, séptimo etc. nucleótidos están otra vez
modificados con 2'-O-metilo,
mientras que el segundo, cuarto, sexto, octavo y similares
nucleótidos son nucleótidos no modificados. Otra vez sin querer
estar ligado por ninguna teoría, parece que se le puede atribuir
una importancia particular a la segunda, y opcionalmente cuarta,
sexta, octava y/o posiciones similares en el extremo
5'-terminal de la cadena antisentido que no debería
comprender ninguna modificación, mientras que el nucleótido 5' más
terminal, es decir el primer nucleótido 5'-terminal
de la cadena antisentido puede presentar dicha modificación, sin
que ninguna de las posiciones impares tales como la primera,
opcionalmente tercera, quinta y posiciones similares de la cadena
antisentido pueda estar modificada. En realizaciones adicionales la
modificación y no modificación, respectivamente, del nucleótido o
nucleótidos modificados y no modificados, respectivamente, puede
ser cualquiera como se describe en esta memoria.
Aunque no está limitado, la estructura
bicatenaria del ácido ribonucleico de la invención, que también se
denomina dúplex, está formada por la primera cadena y la segunda
cadena respectivamente, o por el primer y segundo segmento de
nucleótidos contiguos. La longitud del primer segmento y segundo
segmento, respectivamente, típicamente es de aproximadamente 15 a
aproximadamente 23, preferiblemente 17 a 21, y más preferiblemente
18 ó 19 bases. En relación con esto hay que indicar que una longitud
menor que 30 nucleótidos, preferiblemente menor que 21 nucleótidos
no hace que ningún sistema biológico que sea básicamente capaz de
mostrar interferencia por ARN y también respuesta de interferón,
desarrolle una respuesta de interferón. La razón de esto reside en
la observación de que una célula dada experimenta cambios
fisiológicos profundos cuando un ARN bicatenario más largo de 30
pares de bases se une y activa la proteína quinasa PKR y la
2',5'-oligoadenilato-sintasa. La
PKR activada para la traducción por fosforilación de elF2a, y
2',5'-AS activada produce la degradación del ARNm.
Estos efectos no se desean en la validación de objetivos y modelos
animales porque anulan el efecto del bloqueo específico del
objetivo en el fenotipo.
De acuerdo con una sexta estrategia en el diseño
de ácidos ribonucleicos de interferencia de acuerdo con la
reivindicación 1, el ácido ribonucleico comprende una estructura
bicatenaria, en el que la estructura bicatenaria comprende una
primera cadena y una segunda cadena, en el que la primera cadena
comprende un primer segmento de nucleótidos contiguos y en el que
dicho primer segmento es al menos parcialmente complementario a un
ácido nucleico objetivo, y la segunda cadena comprende un segundo
segmento de nucleótidos contiguos en el que dicho segundo segmento
es al menos parcialmente idéntico a un ácido nucleico objetivo y en
el que un extremo de la primera cadena y un extremo de la segunda
cadena están unidos por una estructura de bucle.
En una realización, la estructura de bucle está
compuesta de un polímero de ácido no nucleico. Dicho polímero de
ácido no nucleico puede ser polietilenglicol o polímeros similares.
Los polímeros de ácido no nucleico en principio se pueden elegir
del grupo que comprende polímeros que no comprenden un
polinucleótido y permiten que las dos cadenas que se van a unir
puedan realmente hibridar entre sí. Para permitir dicha hibridación
la molécula o resto de la molécula que une los dos segmentos que
hibridan entre sí, tiene que tener una determinada estructura
molecular o flexibilidad molecular para permitir la flexión de la
molécula para así permitir que ambos segmentos se pongan en
contacto y se pongan en una orientación tridimensional que permita
la hibridación. Dicha molécula o resto actúa realmente como una
bisagra. En principio se puede usar cualquier molécula que cumpla
dichos requisitos en relación con la presente invención. Además de
polietilenglicol, se pueden usar moléculas basadas en aminoácidos.
Dichas moléculas basadas en aminoácidos pueden ser homopolímeros o
heteropolímeros. Un ejemplo útil es un homopolímero que consiste en
siete restos glicina que permiten generar una bisagra como se
requiere para acercar los dos segmentos cuanto sea necesario para
hibridar. Describen esta bisagra basada en glicina, por ejemplo
Guan K. L y Dixon J. E. (1991), Anal. Biochem. 192, 262. En
otra realización la bisagra se puede formar con éteres corona
conocidos en la técnica.
En una realización alternativa el bucle está
compuesto de un ácido nucleico. Tal como se usa en esta memoria,
LNA como describen Elayadi y Corey (2001) Curr. Opin. Investig.
Drugs. 2(4):558-61, Revisión; Orum y
Wengel (2001) Curr. Opin. Mol. Ther. 3(3):
239-43; y PNA se consideran ácidos nucleicos y
también se pueden usar como polímeros que forman bucle.
Básicamente, el extremo 5' de la primera cadena se puede unir al
extremo 3' de la segunda cadena. Como alternativa, el extremo 3' de
la primera cadena se puede unir al extremo 5' de la segunda cadena.
La secuencia de nucleótidos que forma dicha estructura de bucle en
general se considera que no es crítica. Sin embargo, la longitud de
la secuencia de nucleótidos que forma dicho bucle parece que es
crítica por razones estéricas. Por consiguiente, parece que es
adecuada una longitud mínima de cuatro nucleótidos para formar la
estructura de bucle requerida. En principio, el número máximo de
nucleótidos que forman la bisagra o la unión entre ambos segmentos
que van a hibridar no está limitado. Sin embargo, cuanto más largo
es un polinucleótido, más probable es que se formen estructuras
secundarias y terciarias y por lo tanto que afecten a la
orientación requerida de los segmentos. Preferiblemente, un número
máximo de nucleótidos que forman la bisagra es aproximadamente 12
nucleótidos. Está dentro de la descripción de esta solicitud que
cualquiera de los diseños descritos antes se puede combinar con la
presente estrategia sexta, es decir, uniendo las dos cadenas
covalentemente de una forma que el doblado sobre sí mismo (bucle) se
pueda producir por una estructura de bucle o estructura similar.
Los autores de la presente invención han
encontrado sorprendentemente que si el bucle está situado en 3' de
la cadena antisentido, es decir, la primera cadena del ácido o
ácidos ribonucleicos de acuerdo con la presente invención, las
actividades de este tipo de ARNi son mayores comparado con la
situación del bucle en 5' de la cadena antisentido. Por
consiguiente, la disposición particular del bucle respecto a la
cadena antisentido y la cadena homosentido, es decir, la primera
cadena y segunda cadena, respectivamente, es crucial y por lo tanto
contrasta con la opinión expresada en la técnica anterior, donde se
decía que la orientación no era importante. Sin embargo, parece que
esto no es cierto dados los resultados experimentales presentados en
esta memoria. La opinión expresada en la técnica anterior se basa
en la suposición de que cualquier ARNi está sometido a un proceso
durante el cual no se genera ARNi unido al bucle. Sin embargo, si
este fuera el caso, no se podría explicar la mayor actividad
claramente observada de las estructuras que tienen el bucle situado
en 3' de la cadena antisentido. Por lo tanto una disposición
preferida en la dirección
5' \rightarrow 3' de esta clase de ARNi pequeño de interferencia es segunda cadena - bucle - primera cadena. Las respectivas construcciones se pueden incorporar en sistemas de vectores adecuados. Preferiblemente, el vector comprende un promotor para la expresión del ARNi. Preferiblemente, el respectivo promotor es pol III y más preferiblemente los promotores son los promotores U6, H1, 7SK descritos por Good y col. (1997) Gene Ther., 4, 45-54.
5' \rightarrow 3' de esta clase de ARNi pequeño de interferencia es segunda cadena - bucle - primera cadena. Las respectivas construcciones se pueden incorporar en sistemas de vectores adecuados. Preferiblemente, el vector comprende un promotor para la expresión del ARNi. Preferiblemente, el respectivo promotor es pol III y más preferiblemente los promotores son los promotores U6, H1, 7SK descritos por Good y col. (1997) Gene Ther., 4, 45-54.
Debido a la aplicabilidad general del concepto
de ARN de interferencia y por lo tanto del bloqueo o desactivación
de nucleótidos codificadores tal como un ARNm, se puede modificar la
expresión de cualquier gen que produzca dicho ARN usando cualquier
molécula de ácido ribonucleico de acuerdo con la presente invención.
Debido a este mecanismo básico y de aplicación general, se puede
realizar cualquier aplicación basada en el mismo que implique el
bloqueo o desactivación de un gen. Una aplicación preferida es el
uso del ácido ribonucleico de la invención para la validación de
objetivos. Tal como se usa en esta memoria, por validación de
objetivo se entenderá un procedimiento que implica considerar
etapas para probar que un ADN, ARN o molécula de proteína está
directamente implicada en un procedimiento biológico,
preferiblemente en un procedimiento implicado causalmente en una
enfermedad o afección no convencional y por lo tanto es un objetivo
adecuado para el desarrollo de un nuevo compuesto terapéutico. Los
estudios de homología de secuencias han clasificado
satisfactoriamente los genes en familias de objetivos. El enorme
trabajo de descifrar cuales de estos objetivos son jugadores clave
en enfermedades y cuales habría que usar para el posterior
desarrollo de fármacos debe abordarse de una forma eficaz. Por lo
tanto, el bloqueo de la expresión génica debería reducirse en
50-100%, preferiblemente 90% para ver efectos
significativos en el fenotipo. En otros casos dependiendo del gen,
un bloqueo tan pequeño como 20% podría ser suficiente para dar un
fenotipo. Un fenotipo se definirá comparando células que contienen
moléculas de ARNi funcionales con células que contienen moléculas de
ARNi no funcionales. Esto asegurará una lectura significativa
incluso en condiciones en las que la función de la proteína es
inhibida sólo parcialmente. En general, no hay una correlación
lineal entre el grado de reducción de ARNm y el nivel del cambio en
el fenotipo. Hay que admitir que para algunas proteínas una
reducción de aproximadamente 20% de la proteína es suficiente para
crear un cambio en el fenotipo, mientras que en el caso de otros
genes y ARNm, respectivamente, tan poco como un 5% a 10% de
proteína restante es suficiente para mantener el fenotipo
observado.
Un uso adicional de las moléculas de ácido
ribonucleico de acuerdo con la presente invención, es su uso en la
fabricación de un medicamento o su uso como medicamento. Dicho
medicamento se podría usar para el tratamiento y/o prevención de
enfermedades o afecciones tales como cualquier tipo de cáncer en el
que se ha ligado un gen o su producto con el inicio, causa o avance
de esta enfermedad. Además, dicho medicamento se podría usar para
tratar enfermedades en las que la presencia o la sobrexpresión de un
producto génico produce un fenotipo patológico. En una realización
preferida la enfermedad se caracteriza por una ganancia de la
función y se puede remediar por aplicación o administración del
correspondiente ARNi biológicamente activo. Las enfermedades o
afecciones que se pueden tratar con el medicamento que comprende un
ácido ribonucleico como se describe en esta memoria, se pueden
seleccionar del grupo que comprende cáncer, enfermedades cardiacas,
enfermedades metabólicas, enfermedades dermatológicas, enfermedades
inflamatorias, trastornos del sistema inmunitario y trastornos
autoinmunes. Las diferentes formas de cáncer incluyen, pero no se
limitan, tumores sólidos y tumores del sistema hematopoyético,
tales como glioblastoma, cáncer de próstata, cáncer de pecho, cáncer
de pulmón, cáncer de hígado, cáncer pancreático y leucemia. Las
enfermedades metabólicas incluyen, pero no se limitan, obesidad y
diabetes. Las enfermedades dermatológicas incluyen, pero no se
limitan, psoriasis.
En otro aspecto las moléculas de ácido
ribonucleico de acuerdo con la presente invención, se pueden usar
como diagnósticos, preferiblemente para las enfermedades
especificadas en relación con las enfermedades y afecciones
mencionadas antes. Dichos diagnósticos se podrían basar en la
observación de que tras aplicar las moléculas de ácido ribonucleico
de acuerdo con la presente invención, a una muestra que
preferiblemente contiene células, se produce un cambio en el patrón
de expresión de la muestra. Preferiblemente, dicha muestra comprende
células de un sujeto que se supone que puede presentar dicha
enfermedad o afección para ser tratada o tiene una predisposición a
la misma.
Una aplicación adicional de los ácidos nucleicos
de acuerdo con la presente invención, reside en su uso en la
selección de compuestos farmacéuticamente activos y/o para la
optimización. Esto último se hace comprobando o determinando el
efecto de fármacos candidatos tales como moléculas pequeñas y
comparando el efecto creado por dichos fármacos candidatos con el
efecto observado tras administrar ARNi específico diseñado basándose
en los principios descritos en esta memoria. Haciendo esto, se
pueden eliminar los fármacos candidatos que tienen efectos fuera
del objetivo del procedimiento de selección, mientras que los
fármacos candidatos que crean un fenotipo similar o idéntico se
consideran compuestos candidatos muy importantes o incluso pueden
ser ellos mismos compuestos farmacéuticamente activos. En este
enfoque las moléculas de ARNi altamente específicas actúan como
patrón referencial frente a los fármacos candidatos que se
miden.
En un aspecto adicional la invención se refiere
a una célula, preferiblemente a una célula bloqueada, que contiene
un ácido ribonucleico como se describe en esta memoria.
Preferiblemente, dicha célula es una célula que se aisla o está
contenida en un tejido o incluso un órgano que, otra vez,
preferiblemente no está contenido en un organismo. Sin embargo, la
célula también puede estar contenida en un organismo.
Preferiblemente, la célula es una célula que está implicada en la
enfermedad o afección que se va a tratar mediante los ácidos
ribonucleicos de la invención. Este tipo de células bloqueadas se
pueden usar para generar un perfil de expresión basado, por
ejemplo, en el ARNm o proteína, con el fin de elucidar la relación
funcional y determinar objetivos secuencia abajo. En el caso de que
la célula sea una célula humana, dicha célula humana es una célula
humana aislada.
En un aspecto adicional la invención se refiere
a un organismo que contiene un ácido ribonucleico como se describe
en esta memoria. Preferiblemente, dicho organismo es un organismo
vertebrado y más preferiblemente el organismo vertebrado es un
mamífero. Tal como se usa en esta memoria, un mamífero es, entre
otros y no se limita, un mono, un perro, un gato, una cabra, una
oveja, un cerdo, una cobaya, un conejo, un ratón y una rata. El
organismo es diferente de un ser humano.
Todavía en otro aspecto la presente invención se
refiere a una composición que contiene un ácido ribonucleico de
acuerdo con la presente invención. Preferiblemente dicha composición
comprende testigos negativos y positivos combinados con el ácido
ribonucleico eficaz o separados del mismo. Dichas composiciones
pueden comprender además un disolvente, preferiblemente un
tampón.
En un aspecto adicional la presente invención se
refiere a una composición farmacéutica que contiene un ácido
ribonucleico de acuerdo con la presente invención y un vehículo
farmacéuticamente aceptable. El experto en la técnica conoce los
vehículos farmacéuticamente aceptables, y comprenden, entre otros,
diluyentes, tampones y similares. La composición farmacéutica puede
comprender otros compuestos farmacéuticamente activos. En este
caso, la enfermedad o afección que se va a tratar usando las
moléculas de ácido ribonucleico de acuerdo con la presente
invención, son preferiblemente aquellas que ahora ya se usan en
relación con el tratamiento de dichas enfermedades o afecciones.
Debido al diferente modo de acción de las moléculas de ácido
ribonucleico de acuerdo con la presente invención y de los
medicamentos usados para el tratamiento de dichas enfermedades y
afecciones de acuerdo con la técnica anterior, se producirán efectos
sinérgicos.
La invención ahora se ilustra con más detalle
con referencia a las figuras y ejemplos de los cuales se pueden
tomar más características, realizaciones y ventajas de la presente
invención.
La figura 1 muestra una ilustración esquemática
que define la terminología usada en esta memoria. La superior de
las dos cadenas es la primera cadena y la cadena antisentido del
ácido nucleico identificado tal como ARNm. La segunda cadena es la
que su secuencia corresponde esencialmente a la del ácido nucleico
identificado y por lo tanto forma la cadena homosentido. Tanto la
primera como la segunda cadena forman una estructura bicatenaria,
típicamente por apareamiento de bases de Watson y Crick.
La figura 2 ilustra algunas realizaciones de las
moléculas de ácido ribonucleico de la presente invención con
patrones de grupos de nucleótidos modificados y no modificados, que
también se denominan en esta memoria patrón de modificación. Los
grupos de nucleótidos modificados también se denominan en esta
memoria grupo de nucleótidos modificados. Los nucleótidos no
modificados o grupos de nucleótidos no modificados denominados
grupo(s) flanqueadore(s) de nucleótidos en esta
memoria, tal como se usa en esta memoria también pueden tener una o
varias de las modificaciones descritas en esta memoria, que, sin
embargo, son diferentes de las modificaciones de los nucleótidos
que forman el grupo o grupos de nucleótidos modificados. En la
figura 2A los grupos de nucleótidos modificados y no modificados,
es decir, los grupos de nucleótidos modificados y los grupos de
nucleótidos flanqueadores tanto en el primer segmento como en el
segundo segmento están situados en las correspondientes partes de
los segmentos y por lo tanto están alineados entre sí (grupos de
nucleótidos modificados en la primera cadena alineados con grupos
de nucleótidos modificados en la segunda cadena y los grupos de
nucleótidos flanqueadores en la primera cadena alineados con el
grupo de nucleótidos flanqueadores en la segunda cadena), mientras
que en la figura 2B el patrón producido en la primera cadena
también se produce en la segunda cadena, sin embargo con un
desplazamiento de fase de modo que el grupo de nucleótidos
modificados del primer segmento forma apareamiento de bases con un
grupo de nucleótidos no modificados del segundo segmento y
viceversa, de modo que un grupo de nucleótidos modificados de la
primera cadena se alinea con un grupo de nucleótidos flanqueadores
en la segunda cadena. En la figura 2C se produce otra posibilidad
de disposición de los grupos de nucleótidos modificados y no
modificados. También está dentro de la presente invención que el
patrón del primer segmento sea independiente del patrón del segundo
segmento y que ambos patrones solapen parcialmente en términos de
posiciones relativas entre sí en la estructura bicatenaria definida
por el apareamiento de bases. En una realización adicional la
extensión de esta superposición puede variar a lo largo de la
longitud del(los) segmento(s) y cadena(s),
respectivamente.
La figura 3 muestra el resultado de un
experimento de bloqueo usando moléculas de ARNi con diferentes
grupos de protección en el extremo. Más en particular, la figura 3A
muestra que las diferentes formas de las moléculas de ARNi
protegidas en el extremo son funcionales en el bloqueo del ARNm de
PTEN
La figura 3B muestra la secuencia de las
diferentes moléculas de ARNi usadas en el experimento cuyo resultado
se representa en la figura 3A. La figura 3C muestra el resultado de
un análisis de inmunotransferencia de la proteína PTEN después de
tratamiento con moléculas de ARNi modificadas comparado con
construcciones antisentido específicas para PTEN.
La figura 4 muestra que el extremo 3'
protuberante de las moléculas de ARNi no son importantes para la
interferencia por ARN. Más en particular, la figura 4A muestra una
curva de respuesta a la dosis de diferentes moléculas de ARNi y la
figura 4B muestra la secuencia de las moléculas de ARNi usada en el
experimento cuyo resultado se muestra en la figura 4A.
La figura 5 muestra que la longitud del dúplex
de las moléculas de ARNi tiene que ser al menos
18-19 nucleótidos. Más en particular, la figura 5B
muestra la secuencia de las moléculas de ARNi específicas para PTEN
usadas en el experimento cuyo resultado se representa en la figura
5A como una curva de respuesta a la dosis.
La figura 6 muestra que cuatro apareamientos
terminales erróneos de nucleótidos en las moléculas de ARNi con una
longitud de 19 nucleótidos todavía son funcionales para mediar el
bloqueo de Akt1. Más en particular, la figura 6B muestra la
secuencia de las moléculas de ARNi usadas en el experimento cuyo
resultado se muestra en la figura 6A.
La figura 7 muestra resultados adicionales de
los requisitos y tolerancia de la longitud del dúplex para la
mutación en los ARNip. Más en particular, la figura 7A muestra las
diferentes construcciones usadas (panel izquierdo) y el respectivo
impacto en la inhibición de la expresión del ARNm de Akt1 en células
HeLa respecto a la expresión de p110\alpha usado en las
cantidades indicadas de moléculas de ARNip (panel derecho). Los
cambios de nucleótidos en las moléculas de ARNip con apareamientos
erróneos se indican con flechas; los
3'-desoxinucleótidos, si los hay, se indican con
letras mayúsculas. La figura 7B muestra los diferentes ARNip
específicos para PTEN (panel izquierdo), la inhibición de la
expresión del ARNm de PTEN en células HeLa expresada como la
relación PTEN/p100\alpha, con diferentes cantidades de ARNip
(panel central) y la figura 7C es un análisis de transferencia
Western que representa la inhibición de la expresión de la proteína
PTEN usando ARNip específico de PTEN (30 mM) y los respectivos
ARNip con apareamientos erróneos después de 48 y 96 horas,
respectivamente, usando p100\alpha como control de carga.
La figura 8 muestra el resultado de estudios de
la estabilidad en el suero que confieren a las moléculas de ARNi la
2'-O-metilación y que las
modificaciones en los extremos no tienen efectos beneficiosos en la
estabilidad del ARNi. Más en particular, la figura 8A muestra el
resultado de una electroforesis en gel de diferentes moléculas de
ARNi representadas en la figura 8B que se someten a incubación con
suero de ternero fetal.
La figura 9 muestra que una modificación amino
en el extremo da como resultado la pérdida de actividad. La figura
9B muestra las moléculas de ARNi particulares usadas en los
experimentos cuyos resultados se muestran en la figura 9A
expresados como relación del nivel de expresión de
PTEN/p100\alpha. La figura 9C muestra los principios de diseño
que se pueden deducir de los resultados representados en la figura
9A. Como se usa en la figura 9C el término funcional significa
funcionalmente activo en el sistema de ensayo particular descrito
en el ejemplo y "no funcional" significa que no es
funcionalmente activo en dicho sistema.
La figura 10 muestra que las modificaciones
2'-O-alquilo (metilo) estabilizan
las moléculas de ARNi pero también dan como resultado la reducción
de su actividad. Más en particular, la figura 10C muestra la
secuencia de las moléculas de ARNi usadas en el experimento cuyo
resultado se representa como curva de respuesta a la dosis en la
figura 10A. La figura 10B muestra el resultado de una electroforesis
en gel de las diferentes moléculas de ARNi representadas en la
figura 10C que se someten a una incubación de dos horas en suero de
ternero fetal.
La figura 11 muestra el resultado de un
experimento en la eficacia de las moléculas de ARNi con bloques de
modificaciones 2'-O-metilo y la
figura 11A representa gráficamente los resultados de dichos
experimentos como una curva de respuesta a la dosis y la figura 11C
muestra las secuencias de las moléculas de ARNi particulares usadas
en dichos experimentos, la figura 11B muestra el resultado de una
electroforesis en gel de las diferentes moléculas de ARNi
representadas en la figura 11C, que se someten a una incubación de
dos horas en suero de ternero fetal.
La figura 12 muestra que la alternancia de la
modificación 2'-O-metilo da como
resultado la actividad de las moléculas de ARNi modificadas
comparado con las formas no modificadas. Más en particular, la
figura 12B muestra la secuencia de las moléculas de ARNi usadas en
este experimento cuyo resultado se representa en la figura 12A. La
figura 12C muestra la estabilidad de dichas moléculas de ARNi
después de incubación en suero durante dos horas, mientras que la
figura 12D muestra una inmunotransferencia para la proteína PTEN
tras aplicar diferentes moléculas de ARNi a células HeLa. Como
puede verse a partir de esto, las moléculas de ARNi con
modificaciones alternantes están estabilizadas frente a la
degradación por endonucleasa y son activas en la mediación de un
bloqueo de la proteína PTEN.
La figura 13 muestra el resultado de un análisis
de transferencia Western para determinar el transcurso del tiempo
del bloqueo de la proteína PTEN. Las células se transfectaron
continuamente con moléculas de ARNi modificadas con
2'-O-metilo frente a no modificadas
usando lípidos catiónicos, durante 72 h. Se prepararon los lisatos
de proteínas y se analizaron por inmunotransferencia después de 48 y
120 h. Para los puntos de tiempo de 96 h y 120 h las células se
dividieron, se volvieron a poner en placa y se incubaron en ausencia
de moléculas de ARNi durante 24 y 48 h adicionales.
La figura 14 muestra una transferencia Western
que representa el bloqueo persistente de proteína de PTEN usando
moléculas de ARNi modificadas frente a las moléculas de ARNi no
modificadas de forma alternante. La transfección se llevó a cabo
sólo durante 5 h y se añadió medio nuevo sin reactivos de
transfección. Los lisatos se analizaron por inmunotransferencia 72
h y 96 h después de la transfección con las moléculas de ARNi
indicadas.
La figura 15 muestra que las moléculas de ARNip
con diferentes modificaciones de ribonucleótidos con
2'-O-metilo muestran una mayor
estabilidad en el suero y median el bloqueo de proteínas en células
HeLa. Más en particular, la figura 15A indica las diferentes
construcciones de moléculas de ARNip usadas (panel izquierdo), en
las que las modificaciones de ribonucleótidos con
2'-O-metilo están subrayadas e
indicadas con letras en negrilla en la secuencia. La inhibición de
la expresión del ARNm de PTEN en células HeLa transfectadas con las
cantidades indicadas de las moléculas de ARNip modificadas se
expresa como la relación de PTEN/p110\alpha y se indican en el
panel derecho. La figura 15B muestra en el panel izquierdo las
diferentes construcciones de ARNip usadas y en el panel derecho una
electroforesis en gel de PAA de moléculas de ARNip modificadas y no
modificadas después de incubación en suero; las diferentes
construcciones con ribonucleótidos con
2'-O-metilo se indican con
subrayado y negrilla. La figura 15C muestra un
SDS-PAGE basado en inmunotransferencia que ilustra
la inhibición de la expresión de la proteína PTEN usando varias de
las construcciones de ARNip (30 nM), representado en la figura 15A
y 15B, respectivamente. Otra vez, se usa p100\alpha como control
de carga. Finalmente, la figura 15D es una inmunotransferencia que
indica un bloqueo prolongado de proteína, es decir, la inhibición
de la expresión de la proteína PTEN, tras administrar moléculas de
ARNip (30 nM) con diferentes modificaciones de ribonucleótidos con
2'-O-metilo después de 48 y 128
horas. Como se muestra en la figura 15C, p110\alpha se usa como
control de carga.
La figura 16 muestra que las moléculas de ARNip
con diferentes modificaciones de
2'-O-metil-ribonucleótidos
que son específicos para el ARNm de Akt1 y p110\beta, muestran
mayor estabilidad en el suero y median el bloqueo de proteína en
células HeLa. Más en particular, la figura 16A indica en el panel
izquierdo las diferentes construcciones usadas en las que otra vez
los
2'-O-metil-ribonucleótidos
están subrayados e impresos en negrilla. La integridad de las
moléculas de ARNip indicadas después de incubación en suero se
muestra en el panel derecho. La figura 16B muestra una
inmunotransferencia de Akt1, Akt2 y fosforilación de Akt, y p110 se
usa como control de carga tras la transfección de las células con
los ARNip indicados (30 mM). La figura 16C muestra diferentes
construcciones de ARNip específicos de p110\beta (panel izquierdo)
con las modificaciones 2'-O-metilo
subrayadas e impresas en negrilla, y el resultado de un análisis de
inmunotransferencia (panel derecho) de la inhibición de la
fosforilación de la quinasa secuencia abajo de Akt1 por dichas
construcciones de ARNip. Se ha usado p110\alpha como un control de
carga.
La figura 17 muestra la eficacia de diferentes
moléculas de ARNi con estructuras de horquilla como curva de
respuesta a la dosis, mientras que la figura 17B muestra la
estructura de dichas moléculas de ARNi cuyo resultado se representa
en la figura 17A. Los ARNip sintéticos con diferentes bucles son
funcionales en la reducción de la expresión de p110\beta, Akt1 y
Akt2. (14A) Inhibición de la expresión del ARNm de p110\beta en
células HeLa transfectadas con ARNip. Se analizó en paralelo en las
muestras el nivel de expresión del ARNm de p110\beta 24 horas
después de la transfección de los ARNip indicados. Los ARNip
bimoleculares transfectados (21 nucleótidos de longitud con
extremos protuberantes 3'TT, molécula 1AB) o los ARNip
monomoleculares con estructuras de bucle se muestran de forma
esquemática. Obsérvese que la posición de los bucles (bucle pA
derivado de VIH); bucle (A)_{12}) respecto a la secuencia
antisentido se invierte en 3A, 4A respecto a 3B, 4B. La moléculas
de ARNip 2AB contiene 6 apareamientos erróneos en el dúplex de 21
nucleótidos de longitud y sirve como un testigo negativo junto con
la muestra sin tratar. Se preparó ARN y se sometió al análisis de
RT-PCR en tiempo real (Taqman). Se muestran los
niveles de ARNm de p110\beta respecto a los niveles de ARNm de
p110\alpha, que sirven como referencia interna. Cada barra
representa transfecciones por triplicado (\pm desviación típica).
Las células HeLa se transfectaron hasta 50% de confluencia (2500
células por 96 pocillos) con ARNip en las concentraciones indicadas
en el medio de crecimiento).
La figura 18 muestra la eficacia de diferentes
moléculas de ARNi con estructuras de bucle intermolecular e
intramolecular como curvas de respuesta a la dosis. (18A) Inhibición
de la expresión del ARNm de Akt1 en células HeLa transfectadas con
ARNip. Se analizó en las muestras en paralelo el nivel de expresión
del ARNm de Akt1 y Akt2 24 horas después de la transfección del
ARNip indicado. Se muestran de forma esquemática los diferentes
bucles (bucle de A, bucle de GAGA y un conector de polietilenglicol
(PEG)) y su estructura secundaria putativa. La molécula de ARNip 9A
es específica para Akt2 y sirve como testigo negativo. Obsérvese que
10A y 10B no contienen las secuencias autocomplementarias y se
transfectan combinadas. Se muestran los niveles de ARNm de Akt1
respecto a los niveles de ARNm de p110\beta, que sirve como
testigo interno. (18B) Inhibición de la expresión de ARNm de Akt2
en células HeLa transfectadas con las moléculas de ARNip indicadas.
Se muestran los niveles de ARNm de Akt2 respecto a los niveles de
ARNm de p110\beta. La molécula específica de Akt1 7A sirve como
testigo negativo.
La figura 18C muestra un análisis de
transferencia Western en la proteína Akt que representa la
funcionalidad de los ARNip sintéticos con diferentes bucles en la
reducción específica de la expresión de Akt1 y Akt2. La inhibición
de la expresión de las proteínas Akt1 y Akt2 se analizó por
inmunotransferencia. Las células se recogieron 48 horas después de
transfección del ARNip de horquilla indicado (20 mM). Los extractos
de células se separaron por SDS-PAGE y se
analizaron por inmunotransferencia usando anticuerpo
anti-p110, anti Akt 1/2. Se obtuvieron resultados
similares con un anticuerpo específico para la forma fosforilada de
Akt1. A la izquierda se indican las posiciones de p110\alpha,
otra subunidad catalítica de la quinasa PI 3, que se usó como
control de carga, y de Akt1, Akt2 y Akt fosforilada (P*-Akt).
La figura 19 muestra una modificación NH_{2},
también denominada en esta memoria modificación amino, que puede
estar presente en el nucleótido 3'-OH terminal o el
nucleótido 5' terminal. El grupo amino está unido al fosfato que a
su vez está unido al grupo OH del resto azúcar por un grupo alquilo
que comprende una cadena de alquilo de 1 a 8, preferiblemente 6
átomos de C, en el que el segundo átomo de C cercano al grupo
fosfato tiene un grupo CH_{2}OH unido al mismo. Como alternativa,
el conector puede estar formado por un éter en el que el éter está
compuesto de dos alcoholes en el que un alcohol es un aminoalcohol y
el otro es un dialcohol con un grupo alcohol implicado en la
formación del grupo éter y el otro es un grupo OH situado en
cualquiera de los átomos de C, preferiblemente en el segundo átomo
de C respecto al grupo fosfato.
En este ejemplo se investigó el impacto de los
grupos de protección del extremo NH_{2} en la actividad de las
moléculas de ARNi dúplex. Se adquirieron ARNip sintéticos de
Biospring (Frankfurt, Alemania). Los ribooligonucleótidos se
volvieron a suspender en RNasa sin TE con una concentración final de
50 \muM. En el caso de las moléculas de ARNip bimoleculares se
combinaron partes alícuotas (100 \muM) hasta una concentración
final de 50 \muM. Para la formación de los dúplex
intramoleculares los ARNip se incubaron a 50ºC durante 2 min en
tampón de reasociación (NaCl 25 mM; MgCl_{2} 5 mM) y se enfriaron
a T.a. Las transfecciones se llevaron a cabo en placas de 96
pocillos o 10 cm (de 30% a 50%) de confluencia usando diferentes
lípidos catiónicos tales como oligofectamina, lipofectamina
(LifeTechnologies), NC388 (Ribozyme Pharmaceuticals, Inc., Boulder,
CO), o FuGene 6 (Roche) de acuerdo con las instrucciones del
fabricante. Las moléculas de ARNi se transfectaron por adición de
complejo concentrado 5x previamente formado de RNAi reasociado y
lípido en medio sin suero, a células en medio completo. Antes de la
transfección se cultivaron en placa 2500 células HeLa por pocillo
15-18 horas antes de la transfección para el
formato de 96 pocillos.
El volumen total de transfección eran 100 \mul
para las células en placas de 96 pocillos y 10 ml para células en
placas de 10 cm. La concentración final de lípidos era 0,8 a 1,2
\mug/ml dependiendo de la densidad celular; la concentración de
ARNi se indica en cada experimento.
La formación de complejo se dejó que procediera
durante 30 min a 37ºC. Los complejos se añadieron a las células
para dar una concentración final 1x tanto de lípido como de ARNi.
Dependiendo del análisis realizado después de la transfección, las
células se lisaron usando un tampón de lisis celular estándar para
la extracción de proteínas (Klippel, A., Escobedo, J. A., Hirano,
M. and Williams, L. T. (1994). Mol. Cell Biol. 14,
2675-2685) o un tampón de desnaturalización para
aislar el ARN de acuerdo con el kit de aislamiento de ARN (Invitek,
Berlín, Alemania) 24 a 48 horas después de la transfección para el
análisis del ARN y 48 a 72 horas después de la transfección para el
análisis de proteínas por transferencia Western.
24 horas después de la transfección, se aisló el
ARN de las células transfectadas en 96 pocillos y se purificaron
usando el kit RNA HTS 96 (InVitek GmbH, Berlín). La inhibición de la
expresión del ARNm de PTEN se detectó por análisis de
RT-PCR en tiempo real (Taqman) usando cebador 5' de
PTEN 300 nM CACCGCCAAATTTAACTGCA
GA, cebador 3' de PTEN 300 nM AAGGGTTTGA-TAAGTTCTAGCTGT y 100 nM de la sonda de PTEN Taqman Fam-TGCACAGTATCCTTTTGAAGACCATAACCCA-Tamra combinado con cebador 5' de \beta-actina 40 nM GTTT
GAGACCTTCAACACCCCA, cebador 3' de \beta-actina 40 nM GACCA-GAGGCATACAGGGACA y 100 nM de la sonda de \beta-actina Taqman Vic-CCATGTACGTAGCCATCCAGGCTGTG-Tamra. Los cebadores y sondas de Akt las han determinado Sternberger et al. (Sternberger, a.a.O.) y se usan de acuerdo con las instrucciones del fabricante (Applied Biosystem; uso de Amplicon Set). Dichos cebadores y sondas también se pueden diseñar usando el programa de software Primer Express (Applied Biosystem). La reacción se llevó cabo en 50 \mul y se ensayó en el detector de secuencia ABI PRISM 7700 (Applied Biosystem) de acuerdo con las instrucciones del fabricante en las siguientes condiciones: 48ºC durante 30 min, 95ºC durante 10 min, seguido de 40 ciclos de 15 s a 95ºC y 1 min a 60ºC.
GA, cebador 3' de PTEN 300 nM AAGGGTTTGA-TAAGTTCTAGCTGT y 100 nM de la sonda de PTEN Taqman Fam-TGCACAGTATCCTTTTGAAGACCATAACCCA-Tamra combinado con cebador 5' de \beta-actina 40 nM GTTT
GAGACCTTCAACACCCCA, cebador 3' de \beta-actina 40 nM GACCA-GAGGCATACAGGGACA y 100 nM de la sonda de \beta-actina Taqman Vic-CCATGTACGTAGCCATCCAGGCTGTG-Tamra. Los cebadores y sondas de Akt las han determinado Sternberger et al. (Sternberger, a.a.O.) y se usan de acuerdo con las instrucciones del fabricante (Applied Biosystem; uso de Amplicon Set). Dichos cebadores y sondas también se pueden diseñar usando el programa de software Primer Express (Applied Biosystem). La reacción se llevó cabo en 50 \mul y se ensayó en el detector de secuencia ABI PRISM 7700 (Applied Biosystem) de acuerdo con las instrucciones del fabricante en las siguientes condiciones: 48ºC durante 30 min, 95ºC durante 10 min, seguido de 40 ciclos de 15 s a 95ºC y 1 min a 60ºC.
El bloqueo del ARN se muestra por el análisis de
RT-PCR en tiempo real de las células HeLa
transfectadas con moléculas dúplex de ARNip de 21 nt de longitud no
modificadas y modificadas con NH_{2} o grupos abásicos invertidos
en el extremo 5' con una concentración de vehículo lipídico de 1,0
\mug/ml. La densidad celular era 2000 células/pocillo. Las
modificaciones en el extremo 3' son extremos protuberantes de ARN,
extremos protuberantes de ARN con grupos amino o extremos
protuberantes de ADN.
Preparación de extractos celulares e
inmunotransferencia. Las células se lavaron dos veces con
solución salina tamponada con fosfato fría y se lisaron a 4ºC con
tampón de lisis que contenía Tris 20 mM (pH 7,5), NaCl 137 mM,
glicerol al 15% (vol/vol), Nonidet P-40
(NP-40) al 1% (vol/vol), fluoruro de
fenilmetilsulfonilo 2 mM, aprotinina 10 mg por ml, leupeptina 20
mM, benzamidina 2 mM, vanadato de sodio 1 mM, fosfato de
\beta-glicerol 25 mM, NaF 50 mM y NaPPi 10 mM.
Los lisatos se depuraron por centrifugación a 14.000 x g durante 5
minutos y se analizaron partes alícuotas de los extractos celulares
que contenían cantidades iguales de proteína, para la expresión de
proteínas por transferencia Western: las muestras se separaron por
SDS-PAGE y se transfirieron a filtros de
nitrocelulosa (Schleicher & Schuell). Los filtros se bloquearon
en tampón TBST (Tris-HCI 10 mM (pH 7,5), NaCl 150
mM, Tween 20 al 0,05% (vol/vol), azida sódica al 0,5% (p/vol)) que
contenía leche en polvo al 5% (p/v). Se añadieron los respectivos
anticuerpos en TBST con las diluciones adecuadas. Se detectó el
anticuerpo unido usando peroxidasa de rábano picante
anti-ratón o anti-conejo conjugada
(Transduction Laboratories) en TBST, se lavaron y se revelaron
usando los sustratos de quimioluminiscencia SuperSignal West Dura
(Pierce) o ECL (Amersham) (véase Sternberger et al. (2002).
Antisense. Nucl. Ac. DrugDev. pendiente de publicación).
Anticuerpos. Se han descrito el
anticuerpo monoclonal murino anti-p110 U3A y el
anticuerpo monoclonal murino anti-p85 N7B (Klippel
et al., 1994, aaO). Los anticuerpos policlonales de conejo
anti-Akt y anti-fosfo Akt (S473) se
obtuvieron de Cell Signaling Technology. El anticuerpo monoclonal
murino anti-PTEN era de Santa Cruz Biotechnology.
La molécula antisentido específica de PTEN 53, es decir, geneBloc,
la describen Sternberg et al. [Sternberger, véase antes] y
tiene la siguiente secuencia (ucuccuuTTGTTTCTGcuaacga), en la que
los nucleótidos representados por letras minúsculas son
ribonucleótidos mientras que los nucleótidos en letras mayúsculas
son desoxirribonucleótidos. Esta molécula antisentido también es
idéntica al ARNi 1A sin TT.
Los resultados se muestran en la figura 3A y las
respectivas moléculas de ARNi en la figura 3B que se dirigen al
ARNm de PTEN. Los nucleótidos escritos en letras minúsculas
representan ribonucleótidos mientras que los nucleótidos en letras
mayúsculas representan desoxirribonucleótidos. El término NH_{2}
indica que la posición 3' del ribonucleótido se modificó con un
grupo amino. Las moléculas de ARNi usadas en este y en otros
ejemplos descritos en esta memoria también se denominan moléculas
de ARN de interferencia pequeño, ARNip. Hay que indicar que en
cualquiera de las figuras contenidas en esta memoria la cadena
superior es la cadena antisentido o primera, mientras que la cadena
inferior es la cadena homosentido o segunda de la molécula de ARN de
interferencia.
Como puede verse en la figura 3A las
modificaciones en el extremo amino tales como la modificación amino
y la modificación abásico invertido del grupo OH terminal del ácido
nucleico son tan potentes como los extremos no modificados cuando
la modificación está situada en el extremo 3' de la cadena
antisentido (véase también la figura 8A, 8B). Por lo tanto, la
modificación química para estabilizar o con otras propiedades
benéficas (suministro) será tolerada sin pérdida de actividad
cuando se sitúa en 3'-OH, en especial cuando el
3'-OH se sitúa en un nucleótido en el extremo
protuberante.
Para el experimento mostrado en la figura 3C se
usaron condiciones similares a las señaladas antes. La primera
cadena y la segunda cadena del ARNi se modificaron por un grupo
NH_{2} en la posición 3' del resto ribosa o por un abásico
invertido en dichas posiciones. La primera construcción se designa
como ARNip-NH_{2} (3A3B) y la segunda como
ARNip-iB (4A4B). La secuencia de ambas moléculas se
representa en la figura 3B. El término 3A3B indica que el ácido
ribonucleico de interferencia consiste en la cadena 3A como cadena
antisentido y la cadena 3B como la cadena homosentido. Por razones
de comparación se generó un oligonucleótido antisentido designado
GB53 (Steinberger et al., véase antes) que se dirigió también
contra el ARNm de PTEN. Las particularidades de este último
experimento fueron las siguientes.
Como puede verse en la figura 3C las moléculas
de ARNi protegidas en el extremo representadas en la figura 3B son
funcionales y dan un bloqueo de la proteína PTEN.
A partir de este ejemplo, se puede ver que ambos
grupos de protección del extremo convierten a las moléculas de ARNi
activas en el bloqueo de la proteína PTEN. Esta inhibición es tan
eficaz como la inhibición con construcciones antisentido, pero se
usan concentraciones menores lo cual es una ventaja clara frente a
la tecnología antisentido que ya es muy poderosa.
Los procedimientos experimentales fueron los
mismos que los descritos en relación con el ejemplo 1, excepto que
las moléculas de ARNi de interferencia dirigidas al ARNm de PTEN se
diseñaron de forma diferente. Los resultados se muestran en la
figura 4A como curvas de respuesta a la dosis, y la figura 4B
muestra la secuencia y modificaciones particulares de las moléculas
de ARNi de interferencia usadas para generar los datos representados
en la figura 4A. La nomenclatura es tal que, por ejemplo ARNi 18
está compuesto de la cadena 18A como cadena antisentido y la cadena
18B como cadena homosentido.
Se compara la actividad en el bloqueo del ARNm
de PTEN de las moléculas con extremos romos con moléculas con
extremos protuberantes en 3' (ARNi 18) y extremos protuberantes en
5' (ARNi 30 y ARNi 31) en células HeLa. La actividad de las
moléculas con extremos romos (ARNi 28) y moléculas con extremos
protuberantes en 5' es comparable a la actividad de moléculas con
extremos protuberantes en 3'. Esto muestra que los extremos
protuberantes en 3' no son esenciales para la actividad del
ARNi.
El enfoque experimental era similar al señalado
en relación con el ejemplo 1, excepto que las moléculas de ARN de
interferencia se dirigieron contra el ARNm de Akt1. El testigo
negativo para mostrar la especificidad de las moléculas de ARNi de
interferencia era otra vez el ARNm de p110. Los resultados
experimentales se muestran en la figura 5A y las particularidades
de las moléculas de ARNi de interferencia usadas se representan en
la figura 5B. Se llevaron a cabo experimentos similares con otras
construcciones de ARNip que se representan en la figura 7A, panel
izquierdo, en el que las flechas indican los apareamientos erróneos
y los desoxirribonucleótidos se expresan en letras mayúsculas. La
inhibición de la expresión del ARNm de Akt1 en células HeLa
transfectadas con las cantidades indicadas de moléculas de ARNip se
representa en el panel derecho de la figura 7A.
El análisis con Taqman en el ARN de Akt de
células HeLa transfectadas con diferentes moléculas de ARNi muestra
que el dúplex bicatenario de las moléculas de ARNip debe ser más
largo que 17 pares de bases para mostrar actividad, mientras que
las moléculas con dúplex de 17 pares de bases de longitud o más
cortas no son funcionales incluso aunque se añadan extremos
protuberantes específicos de la secuencia. Las moléculas de ARNi más
cortas que se ensayaron con éxito tenían de 18 a 19 nucleótidos o
pares de bases de longitud. Hay que indicar que el diseño de la
molécula de ARN de interferencia 51A/51B denominada ARNi 51
corresponde a la descrita en la solicitud de patente internacional
WO 01/75164. La molécula de ARNi 55A/55B comprende un segmento de 17
nucleótidos y tiene una actividad claramente menor en términos de
degradación del ARNm de Akt1.
Como puede verse en la figura 7A los dúplex de
19 nt de longitud son muy eficaces en la reducción de los niveles
de ARNm de Akt1 independientemente de la naturaleza (desoxi o
ribonucleótidos) del extremo protuberante de 3' (compárense las
moléculas 1AB, 2AB, 3AB, 4AB). El ARNip de 17 nucleótidos de
longitud (molécula 5AB) mostró una espectacular reducción de la
actividad de silenciamiento que confirmaba la interpretación
expresada antes de que los dúplex de ARNip activos deben tener al
menos 18 nt o más largos. Sin querer ligarse por ninguna teoría,
este resultado se puede explicar desde el punto de vista del
mecanismo por dos requisitos diferentes. Primero, puede ser
obligatorio un mínimo de apareamiento de bases de 18 nt entre la
cadena antisentido del ARNip y el ARNm objetivo, o segundo la
incorporación en el complejo de silenciamiento inducido por ARN
(RISC, por sus siglas en inglés RNA-induced
silencing complex) requiere una longitud mínima del dúplex de
ARNip. Para abordar esta cuestión se sintetizó una molécula de
ARNip dúplex de 19 nt de longitud con una y dos mutaciones
terminales (inversión CG y UA) respecto a la secuencia natural
(moléculas 6AB y 7AB). Ambas moléculas, incluso la molécula con un
segmento de apareamiento de bases de solo 15 nt con el ARNm
objetivo, eran funcionales en la inducción del nivel de ARNm de
Akt1. Por lo tanto, se puede concluir que parece que la propia
longitud del dúplex, pero no el apareamiento de bases del ARNip
antisentido con el ARNm objetivo, determina la longitud mínima del
ARNip funcional. Esto sugiere que la longitud de la hélice
bicatenaria es un determinante importante para la incorporación en
el complejo RISC. Los apareamientos erróneos introducidos en los
extremos terminales de los dúplex de ARNip tenían poco efecto en el
ARN de interferencia.
Dados los resultados experimentales, el
requisito mínimo para la interferencia mediada por ARNi óptima es
una longitud del dúplex de 18 ó 19 nucleótidos, independientemente
del resto del diseño de las moléculas de ARNi tal como el extremo
romo o el extremo protuberante 5' o cualquier otra forma como se
describe en esta memoria, pero que se puede aplicar en general a
las moléculas de ARNi. Sin embargo, hay que reconocer que el diseño
particular de las moléculas de ARNi puede conferir más ventajas a
dichas moléculas, tales como, p. ej., mayor eficacia y mayor
estabilidad, respectivamente.
El montaje experimental era similar al descrito
en el ejemplo 1, en el que el ARNi es específico para Akt1. Además,
se diseñó una molécula de ARN de interferencia específica para PTEN
y se usó como testigo negativo. Los resultados se muestran en la
figura 6A y figura 6B. Básicamente se llevó a cabo el mismo
experimento usando otras moléculas de ARNip representadas en la
figura 7B y los resultados se indican en la figura 7B (panel
derecho) y figura 7C, respectivamente.
Habiendo establecido la longitud mínima del
dúplex de 18 o más de 18 nucleótidos para las moléculas de ARNip
funcionales, se plantea la pregunta de cuantos nucleótidos apareados
entre el ARNm objetivo y el ARNip son necesarios para la actividad
de silenciamiento. Como muestra el análisis de Taqman del ARN de
Akt1, es suficiente un segmento de 19 a 15 nucleótidos que se
apareen perfectamente con el ARN objetivo para mediar la actividad
de ARNi, en el caso presente del Akt1. Una molécula de ARNi
específica para PTEN no reduce cantidades de ARN de Akt1,
confirmando la especificidad de este enfoque. Los apareamientos
erróneos de uno o dos nucleótidos en cualquiera de los extremos o
en ambos de una cadena son funcionales, lo que sugiere que un
segmento homólogo de 15 nt entre un ARNm objetivo y el ARNi es
suficiente para el silenciamiento de genes. A partir de estos datos
se puede concluir que se puede producir el silenciamiento
inespecífico de genes al azar por la unión inespecífica de
objetivos no relacionados. Esto se basa en el entendimiento de que
un segmento de 15 a 17 pares de bases que se aparean no es
específico para un solo gen y ocurrirán al azar considerando la
complejidad y tamaño del genoma o transcriptosoma de los
vertebrados. Aparte de los experimentos descritos, después también
se analizó la situación de los apareamientos erróneos. Para este
propósito se usó un ARNip de extremo romo de 19 nt de longitud
dirigido contra el ARNm de PTEN. Los cambios de secuencia en una
cadena de ARNip se compensaron por cambios complementarios en la
otra cadena para evitar la alteración de la formación del dúplex.
Como puede verse en las figuras 7B y C respectivamente, un ARNip
con sólo una mutación puntual en el centro de la molécula
comprometía gravemente su capacidad para usar el ARNm y los niveles
de expresión de proteínas. Este resultado indica que la maquinaria
del ARN es muy discriminante entre apareamiento de bases perfecto e
imperfecto entre ARNm objetivo y ARNip en el centro del dúplex.
Esta dependencia extrema de una complementaridad perfecta entre el
objetivo y el ARNip ya se ha descrito para la interferencia de ARNi
en el sistema de Drosophila, sin embargo, todavía no se ha descrito
en relación con sistemas mamíferos tales como HeLa.
Basándose en esta observación, la presente
invención reduce este problema fuera del objetivo del ARNip mediante
dos enfoques. Primero reduciendo la longitud de molécula de las
moléculas de ARNip a los requisitos mínimos (18-19
nt) y por lo tanto reduciendo la posibilidad de homología fuera de
los objetivos. Segundo, por inactivación de la cadena homosentido
para prevenir un silenciamiento de ARN no deseado producido por
complementaridad accidental de la cadena homosentido con un ARN no
relacionado con el objetivo (véase también el Ejemplo 6).
Se incubaron oligonucleótidos en suero humano
durante 15 min y 2 horas y se cargaron en gel de poliacrilamida al
10% con testigos sin tratar. Los resultados se muestran en la figura
8A. Las diferentes moléculas de ARNi usadas se muestran y se
describen con más detalle en la figura 8B.
A partir de este ejemplo se puede considerar que
el dúplex de ARNi de las moléculas de ARN con todos los nucleótidos
modificados con grupos 2'-O-metilo
(moléculas de ARNi 79A79B y 28A28B) tiene mayor estabilidad en el
suero. También se muestra que un dúplex romo es más estable que la
molécula de dúplex con extremos protuberantes. A partir de esto, se
puede extraer la conclusión de que la protección del extremo (p.
ej., iB o amino) no aumenta la estabilidad en el suero.
Además, también se puede concluir que a
diferencia de lo expresado en la técnica anterior antes de la
presentación de esta solicitud, las endonucleasas más que las
exonucleasas son más importantes en la protección de las moléculas
de ARNi.
En vista de esto, además de que las diferentes
modificaciones o diseños de las moléculas de ARNi de la invención
como se describen en esta solicitud, una modificación diferente o
adicional de los nucleótidos puede ser el uso de una cadena
principal de fosforotioato de las moléculas de ARNi que puede ser
completa o parcial con el fin de inhibir la función de
endonucleasa. Una cadena principal de fosforotioato completa
significa que cualquiera de los nucleótidos presenta un grupo
fosforotioato, mientras que una cadena principal de fosforotioato
parcial significa que no todos los nucleótidos que forman la
molécula de ARNi tienen una modificación de fosforotioato. Esta
modificación es adecuada para aumentar el tiempo de vida de las
moléculas de ARNi independientemente del resto del diseño de las
moléculas de ARNi. En relación con esto, un ARNi modificado con
fosforotioato parcial o completamente es objetivo de la presente
invención que se puede materializar en relación con las diferentes
estrategias para el diseño de moléculas de ARN de interferencia como
se describe en esta memoria, o con cualesquiera otros diseños
conocidos en la
técnica.
técnica.
El montaje experimental era similar al descrito
en relación con el ejemplo 1, siendo la secuencia de ácido nucleico
objetivo el ARNm de PTEN. La concentración de células HeLa era 2.000
células por pocillo. Se analizó el ARN de PTEN en ensayos Taqman
después de transfección de moléculas de ARNi modificadas de forma
diferente. Las diferentes moléculas de ARN de interferencia usadas
se representan en la figura 9B, mientras que los resultados
experimentales se muestran en la figura 9A.
Como puede verse en las curvas de respuesta a la
dosis de diferentes moléculas de ARNi representadas en la figura
8A, las moléculas de ARNi son funcionales cuando la cadena
homosentido, es decir la segunda cadena, se modifica en ambos
extremos con grupos amino. Son particularmente eficaces las
moléculas de ARNi 20A26B, 18A26B, y 28A26B. La actividad más baja
la muestra la molécula de ARNi 26A26B que corresponde a la
modificación en los 4 extremos del dúplex (Tuschl es 18AB).
Sin embargo, la actividad de ARNi también se
logra cuando la cadena antisentido, es decir la primera cadena, se
modifica sólo en el extremo 3' dejando un grupo OH libre en el
extremo 5' (construcciones de ARNi 22A26B; 20A26B). No hay
actividad cuando la cadena antisentido se modifica con grupos amino
tanto en el extremo 5' como el 3' (26A26B). Esto conduce a la
conclusión de que cualquier extremo de la cadena antisentido y más
en particular el extremo 5' de la cadena antisentido debe mantenerse
sin modificaciones. Además, merece la pena exponer que la
modificación NH_{2} en el extremo se puede usar para inactivar la
cadena homosentido en el extremo 5' y 3' y por lo tanto reducir los
efectos fuera del objetivo mediados por otra cadena homosentido
funcional que de como resultado un aumento significativo de la
especificidad de la molécula de ARNi, lo cual es ventajoso para la
validación del objetivo así como para cualquier uso médico de la
molécula de ARNi.
La otra generalización de los resultados de este
experimento se representa en la figura 9C. Por consiguiente los
ARNi funcionalmente activos son los que no tienen modificación amino
en la cadena antisentido o que tienen una modificación amino sólo
en el extremo 3' de la cadena antisentido, mientras que una
modificación amino en ambos extremos de la cadena antisentido no es
funcional, es decir, no da como resultado un bloqueo del ARNm
objetivo.
El bloqueo del ARN se muestra otra vez usando el
análisis de RT-PCR en tiempo real en células HeLa
transfectadas con moléculas dúplex de ARNi dirigidas contra el ARNm
de PTEN como se representa en la figura 10A. Los procedimientos
experimentales fueron básicamente los mismos especificados en el
ejemplo 1. La estructura de las moléculas de ARNi investigadas y
sus respuestas a la dosis, que se representan en la figura 10A, se
muestran en la figura 10C. Los nucleótidos impresos en negrilla son
los que tienen una modificación
2'-O-metilo.
Mediante las curvas de respuesta a la dosis
mostradas para diferentes moléculas de ARNi en la figura 10A, se
ilustra que los grupos 2'-O-alquilo
internos reducen la actividad del ARNi. Preferiblemente dichos
grupos 2'-O-alquilo son grupos
2'-O-metilo o
2'-O-etilo. Sin embargo, las
moléculas con nucleótidos no modificados combinados con la
modificación 2'-O-alquilo, muestran
una actividad significativa. Como se representa también en la
figura 10A no hay actividad cuando la cadena antisentido se modifica
toda con grupos 2'-O-metilo y la
cadena homosentido no se modifica (véase, p. ej, la molécula de ARNi
79A28B). Los resultados de un ensayo de estabilidad tal como la
incubación de las diferentes moléculas de ARNi en suero, como se
representa en la figura 10B, muestran que las modificaciones
2'-O-alquilo estabilizan las
moléculas de ARNi frente a la degradación. Sin embargo, este efecto
claramente beneficioso, al menos en cierto grano es contrarrestado
por el efecto de que las modificaciones
2'-O-alquilo en general dan como
resultado en una menor actividad de bloqueo. Por consiguiente, el
diseño de moléculas de ARNi debe establecer un equilibrio entre la
estabilidad y la actividad, lo cual hace que sea importante ser
consciente de los diferentes principios de diseño descritos en la
presente solicitud.
El enfoque experimental en relación con este
estudio era realmente el mismo descrito en el ejemplo 1. Otra vez,
el ARN de PTEN se analiza por RT-PCR en tiempo real
en células HeLa con una densidad de 2000 células/pocillo que se
transfectaron con diferentes dosis de moléculas de ARNi. Las
moléculas de ARNi se incubaron en el suero durante dos horas y se
analizaron en un gel de poliacrilamida al 10%. Los resultados de
este estudio se ilustran en las figuras 11A a 11C, en las que la
figura 11A muestra la respuesta a la dosis de las diferentes
moléculas de ARNi representadas en la figura 11C, y la figura 11B
muestra el resultado de un ensayo de estabilidad usando algunas de
las moléculas de ARNi representadas en la figura 11C. Hay que
entender que los nucleótidos escritos en negrilla en la figura 11C
son los que llevan una modificación que en este caso es una
modificación 2'-O-metilo en el
resto ribosa de los nucleótidos.
Hay una inhibición dependiente de la dosis de
las moléculas de ARNi no modificadas. También se muestra que la
modificación 2'-O-metilo de los 9
nucleótidos centrales hace que el ARNi sea estable en el suero y
permite la actividad del dúplex en el sentido de mediar el fenómeno
de interferencia que conduce a una degradación del ARNm de PTEN. La
modificación total de la cadena homosentido hace que la molécula de
ARNi sea estable en el suero y permite cierta actividad.
Los bloques alternativos de 5 nucleótidos con
modificación 2'-O-metilo hace que la
molécula de ARNi sea estable en el suero y permite la actividad en
el ARN de PTEN como se muestra mediante incubación del dúplex de
ARNi en suero durante dos horas y carga de las muestras en un gel
de poliacrilamida al 10%. Como puede verse en la figura 11B el
dúplex que comprende las cadenas 80A y 80B se degrada fuertemente
después de incubación en suero durante 2 horas. El dúplex que
consiste en las cadenas 82A y 82B confirma el resultado de que el
extremo 5' de la primera cadena que comprende la cadena antisentido
no debe modificarse en los nucleótidos 5' terminales (compárese
82A82B con la 81A81B con orientación inversa). Esto también se
confirma por los resultados obtenidos con el dúplex que consiste en
las cadenas 86A y 86B que es tanto activo como estable en el suero.
Merece la pena indicar que las moléculas con bloques no modificados
en el extremo 5' de la cadena antisentido son más activos, mientras
que el grupo 5'-OH terminal preferiblemente no está
derivatizado.
Se llevaron a cabo experimentos adicionales
usando diferentes patrones de modificación de la modificación
2'-O-metilo de los nucleótidos. Los
resultados de los mismos se muestran en las figuras 12A a 12C y se
discuten en esta memoria con más detalle en el ejemplo 9.
El montaje experimental para llevar a cabo esta
clase de estudio era el mismo usado en relación con los estudios
descritos en el ejemplo 1 y ejemplo 8, respectivamente, siendo el
ácido nucleico objetivo otra vez el ARNm de PTEN. Se transfectaron
células HeLa con las diferentes moléculas de ARNi representadas en
la figura 12B y el bloqueo de ARN se demostró usando la
RT-PCR en tiempo real en el ARN de PTEN de una forma
dependiente de la dosis (figura 12A). La estabilidad de las
diferentes moléculas de ARNi después de 15 min y 2 horas en el
suero a 37ºC se representa en la figura 12C y en la figura 12D se
representa una transferencia Western para p110 y PTEN como
proteínas objetivo de las diferentes moléculas de ARNi, siendo las
moléculas de ARNi ensayadas las mismas en los experimentos de las
figuras 12C y 12D.
Como se ilustra en la figura 12A y 12C, los
nucleótidos modificados con grupos
2'-O-metilo que alternan con
nucleótidos no modificados, convierten a las moléculas de ARNi
estables en el suero, mientras que permiten que todavía sean
activas en el sentido de interferir con el ARNm objetivo. Se muestra
que la incubación de moléculas dúplex de ARNi durante 15 min y 2
horas en el suero degradará el dúplex no modificado y el dúplex en
el que los 10 nucleótidos situados más en el extremo 5' no están
modificados.
En las moléculas de ARNi representadas en la
figura 12B se dan diferentes patrones de nucleótidos modificados y
no modificados. La molécula de ARNi 94A1/94B1 comprende una
estructura en la que un nucleótido modificado está flanqueado por
un nucleótido no modificado, estando el nucleótido no modificado
situado en el extremo 5' de la primera cadena. La molécula de ARNi
compuesta de las cadenas 94A2 y 94B2 es otro ejemplo en el que los
nucleótidos modificados y los nucleótidos no modificados de la
primera y la segunda cadena están situados en lados opuestos. En
contrate con esto, la molécula de ARNi compuesta de las cadenas 94A1
y 94B2 tienen el mismo patrón de nucleótidos modificados y no
modificados. Sin embargo, hay un desplazamiento de fase de modo que
los nucleótidos modificados forman apareamiento de bases con un
nucleótido no modificado. Las dos moléculas de ARNi compuestas de
las cadenas 94A1 y 94B1 y las cadenas 94A2 y 94B2 difieren entre sí
de modo que en el primer caso la primera cadena empieza con un
nucleótido no modificado y el primer nucleótido correspondiente de
la segunda cadena, es decir, el nucleótido en el extremo 3' de la
segunda cadena, empieza con un nucleótido no modificado, y la
disposición es la opuesta a la de la molécula de ARNi compuesta de
94A2 y 94B2.
Además, las moléculas de ARNi modificadas
alternantes como se representan en la figura 12B son funcionales en
la mediación del bloqueo de la proteína PTEN como se muestra en la
figura 12D, pero sólo cuando los nucleótidos terminales segundo 5'
y segundo 3' no están modificados (véase 94A294B1 y 94A294B2).
Considerados juntos estos datos muestran que las moléculas de ARNi
más estables y más activas tienen restos nucleótidos modificados
con 2'-alquilo y no modificados alternantes. Hay que
indicar que estas moléculas muestran una reducción del ARNm muy
similar cuando se comparan con las moléculas de ARNip no modificadas
que son estables en el suero y permiten un manejo mayor o más
fácil.
El enfoque experimental era similar al señalado
en relación con el ejemplo 1.
Se llevaron a cabo transferencias Western en
células HeLa recogidas en diferentes puntos de tiempo después de la
transfección (48, 72, 96 y 120 horas) con moléculas de ARN
modificadas alternantes como se representa en la figura 12B. Por
razones experimentales hay que destacar que en el punto de tiempo de
96 horas las células se habían dividido y se había vuelto a
cultivar en placa la mitad de la población. Se aplicaron a las
células 40 nM de las diferentes moléculas de ARNi. Las células se
transfectaron de forma continua durante 72 horas con lípidos
catiónicos como se describe en el ejemplo 1; después se volvieron a
cultivar en placa en ausencia de reactivos de transfección.
Las transfecciones se llevaron a cabo en placas
de 96 pocillos o 10 cm (de 30% a 50% de confluencia) usando
diferentes lípidos catiónicos tales como oligofectamina,
lipofectamina (Life Technologies), NC388, L8 (Atugen, Berlín), los
ARNi se transfectaron por adición de complejo concentrado 5x
previamente formado de ARNip y lípido en medio sin suero a células
en medio completo. El volumen de transfección total era 100 \mul
para células cultivadas en placa de 96 pocillos y 10 ml para placas
de 10 cm. La concentración final de lípido era 0,8 a 1,2 \mug/ml
dependiendo de la densidad celular; la concentración de ARNip se
indica en cada experimento.
El resultado del análisis de transferencia
Western se representa en la figura 13. Como puede verse en esta
figura, las moléculas de ARNi de las versiones 94A2B1 y 94A2B2
dieron un bloqueo más duradero de la proteína PTEN que las
moléculas no modificadas. En este experimento se confirma la falta
de bloqueo de proteínas visto también en la figura 12 con moléculas
de las versiones 94A1B1 y 94A1B2. Las moléculas no modificadas
(80AB) no son tan potentes para mantener el bloqueo duradero cuando
las células no se transfectan continuamente.
El enfoque experimental era similar al señalado
en relación con el ejemplo 10, excepto que la transfección se
terminó después de 5 h por sustitución del medio de transfección por
medio nuevo. El protocolo se modificó ligeramente de modo que cada
una de las moléculas de ARNi se preparó una concentración 40 nM
usando una solución madre de 1 \mug de ARNi/ml de lípido
catiónico, como se ha descrito en relación con el ejemplo 1. Cinco
horas después de la transfección se retiró el medio y se añadió EMEM
reciente. Las células se dividieron después de 72 h y la mitad de
las células se lisaron y la otra mitad se volvieron a cultivar en
placa y se lisaron 24 h después (96 h después de la transfección).
Los resultados de un análisis de transferencia Western usando 3
moléculas de ARNi diferentes (80AB, 94A1/B2, 94A2/B1) se representan
en la figura 14. Como testigo positivo se usaron células sin
tratar. La figura 14 muestra la expresión de PTEN después de 72 h y
96 h, respectivamente. Considerando las particularidades
estructurales de las diferentes moléculas de ARNi, a partir de la
figura 14 puede verse que el bloqueo de la proteína es persistente
con moléculas alternantes de la clase 94A2B1 incluso después de 96
h después de división y recultivo en placa de las células, comparado
con las moléculas de ARNi no modificadas (tales como 80AB) y la
moléculas de ARNi 94A1B2.
Se llevó a cabo otro experimento usando las
construcciones de ARNip representadas en la figura 15A (panel
izquierdo). A partir de los resultados descritos como la relación de
degradación del ARNm de PTEN/p110\alpha con las diferentes
concentraciones de construcciones de ARNip administradas al sistema
de ensayo, se puede ver que las moléculas de ARNip con una o ambas
cadenas que consistan en restos
2'-O-metilo no eran capaces de
inducir la interferencia por ARN en el sistema de mamíferos (figura
15A, moléculas V2, V5, V6). Sin embargo, la disminución de
actividad era menos pronunciada cuando estaban modificadas sólo
partes de las cadenas. Es interesante que una molécula que tenía
una cadena antisentido no modificada (que es la cadena superior en
la representación a lo largo de esta memoria descriptiva, si no se
indica lo contrario) y una cadena homosentido completamente
modificada era significativamente más activa cuando se comparaba con
la versión inversa (figura 5A, moléculas V5 y V6). Este resultado
sugiere que la cadena antisentido del ARNip parece que es más
crítica y sensible a la modificación. Las moléculas más eficaces en
la inducción de ARNm de PTEN tenían sólo segmentos de
modificaciones que dejaban el extremo 5' sin modificar o estaban
modificados en posiciones alternantes en ambas cadenas (figura 15A,
moléculas V10, V12).
Para ensayar la resistencia a la nucleasa, las
diferentes versiones de ARNip se incubaron en suero seguido de
electroforesis en gel de PAA. El resultado se muestra en la figura
15B (panel derecho con las diferentes secuencias indicadas en el
panel izquierdo de la figura 15B). Como se ha mostrado antes, las
moléculas de ARNip de extremos romos con ribonucleótidos no
modificados se degradaron rápidamente, mientras que los nucleótidos
con una sustitución 2'-O-metilo
completa mediaron la resistencia frente a las nucleasas derivadas
del suero (figura 15B, compárese la molécula AB con V1). Las
moléculas de ARNip con modificación
2'-O-metilo parcial mostraron
también una mayor estabilidad cuando se compararon con los ARNip no
modificados. En especial, las moléculas con modificaciones
alternantes en ambas cadenas mostraron una mejora significativa de
la estabilidad (figura 15B, moléculas V13, V14, V15 y V12). Lo que
es más importante, la transfección de tres de estas moléculas en
células HeLa dio como resultado una reducción significativa de la
expresión de la proteína PTEN como se representa en la figura 15C,
longitud 6, 9 y 10). En este ensayo de actividad de interferencia
por ARN se observó una preferencia inesperada por las moléculas que
estaban modificadas cada dos nucleótidos empezando con el
nucleótido 5' más terminal de la cadena antisentido (moléculas V15 y
V12). Las moléculas que contenían modificaciones empezando por el
segundo nucleótido en el extremo 5' de la cadena antisentido eran
más estables, pero tenían una actividad muy reducida en el
silenciamiento de genes (moléculas V13 y V14). Este resultado
señala hacia las interacciones muy específicas entre las enzimas
implicadas y los nucleótidos exactos en el dúplex de ARNip.
Considerados juntos, los datos mostrados en esta memoria demuestran
que las modificaciones 2'-O-metilo
en posiciones particularmente seleccionadas en el dúplex de ARNip
pueden aumentar la resistencia a las nucleasas y no suprimen
necesariamente el ARNi completamente.
Aunque una mayor estabilidad del ARNip sintético
tiene implicaciones fundamentales para la aplicación in vivo,
también se analizó si la modificación particular también puede
conducir a un bloqueo de proteína prolongado en sistemas de
cultivos de células. De acuerdo con esto, se transfectaron
transitoriamente células HeLa durante 6 horas usando diferentes
versiones de ARNip específicos para PTEN. Después el complejo de
lípido y ARNip se lavó y el bloqueo de la proteína PTEN se analizó
48 horas y 120 horas más tarde. Aunque los experimentos de bloqueo
sin la transfección continuada de ARNip son complicados debido al
rápido crecimiento de las células no transfectadas en este periodo
de tiempo que da como resultado un bloqueo muy transitorio, los
autores de la presente invención pusieron demostrar un bloqueo de
la proteína PTEN prolongado con moléculas de ARNip estabilizadas
por la modificación 2'-O-metilo
descrita. A las 48 horas después de la transfección el ARNip (AB)
mostraba la mayor reducción de los niveles de proteína PTEN, sin
embargo a las 120 horas después de la transfección la reducción de
la expresión de la proteína PTEN es superior con el ARNip
estabilizado con modificaciones
2'-O-metilo alternantes (figura 15D,
compárese la vía 2 con las vías 4, 6 y 7).
A partir de los resultados también puede verse
que preferiblemente la posición de nucleótido inicial de la
modificación alternante parece que es importante. Para ensayar esta
preferencia con más detalle se sintetizaron dos series adicionales
de ARNip, una específica para la quinasa Akt1 y la otra específica
para p110\beta que es una de las dos subunidades catalíticas de
PI(3-)quinasa. Las construcciones particulares se muestran
en la figura 16A. Como puede verse en las mismas, sólo se usaron
dúplex de ARNip de 19 nt de longitud sin ninguna modificación o con
modificación 2'-O-metilo cada dos
nucleótidos. Usando Akt1 como un objetivo, se observó un bloqueo de
la proteína eficaz así como una reducción espectacular de los
niveles de fosfo-Akt con ARNip romos, no
modificados (figura 16A, panel derecho). De las diferentes versiones
de moléculas con modificaciones cada dos nucleótidos, sólo una era
eficaz para mediar la ARNi (figura 16A, molécula V5). Esta molécula
de ARNip contenía una cadena antisentido que estaba modificada en
los nucleótidos 5' y 3' más terminales. La cadena homosentido
empezaba con los nucleótidos no modificados en la posición más
terminal, dando como resultado una estructura en la que los
ribonucleótidos modificados y no modificados de ambas cadenas están
enfrentados entre sí. Como se esperaba esta molécula también estaba
protegida frente a las nucleasas derivadas del suero, como se
representa en la figura 16B (molécula V5).
Es interesante que una molécula de ARNip de 19
nt de longitud muy similar (V4) con modificaciones que empiezan en
el segundo nucleótido de la cadena antisentido no mostraron
activación de la interferencia por ARN en el ensayo particular
usado. La versión V6 en la que los nucleótidos modificados de la
cadena antisentido están enfrente de los nucleótidos modificados en
la cadena homosentido, también era inactiva en este experimento.
Una serie idénticas de moléculas de ARNip de 19 nt de longitud
específicas para o110\beta confirmaron estas observaciones como
se representa en la figura 16C. Otra vez la molécula de ARNip
modificada de forma similar (V5) era la más activa, indicado por la
reducción de la fosforilación de Akt, lo cual indica una menor
actividad de la quinasa P (I)-3 debido a menores
niveles de p110\beta. La menor actividad de las moléculas V6 se
puede explicar por la menor estabilidad del dúplex, puesto que la
misma estructura era activa en el experimento de bloqueo de PTEN
con ARNip de 21 nucleótidos de longitud. Aunque se sabe que la
modificación 2'-O-metilo en ambas
cadenas enfrentadas entre sí reducirá la estabilidad de los dúplex
de ácido nucleico, la diferencia entre la actividad de las
moléculas de ARNip V4 y V5 (figuras 16B y C) probablemente no se
debe a diferencias en estabilidad de dúplex puesto que el número de
apareamiento de bases de nucleótidos modificados y no modificados
es el mismo. Esta diferencia de actividad se puede deber a
requisitos específicos en la interacción de las proteínas
implicadas en la degradación del ARNm objetivo. A partir de estos
experimentos también se puede ver que los nucleótidos más
terminales de la cadena antisentido se pueden modificar en el grupo
2'-OH sin pérdida significante de la actividad de
silenciamiento.
Para ensayar si las moléculas de ARNi,
preferiblemente moléculas de ARNi sintéticas con estructuras
autocomplementarias pueden inhibir la expresión de genes de forma
tan eficaz como las moléculas de ARNip bicatenarias convencionales,
se transfectaron células HeLa con ARNip sintético específico para
p110\beta. Las transfecciones se llevaron a cabo en placas de 96
pocillos o 10 cm (de 30% a 50% de confluencia) usando diferentes
lípidos catiónicos tales como oligofectamina, lipofectamina (Life
Technologies), se transfectaron GeneBlocs por adición de complejo
concentrado 5x previamente formado de GB y lípido en medio sin suero
a células en medio completo. El volumen total de transfección era
100 \mul para las células cultivadas en placas de 96 pocillos y 10
ml para las células en placas de 10 cm. La concentración final de
lípidos era 0,8 a 1,2 \mug/ml dependiendo de la densidad celular;
la concentración de moléculas de ARNi se indica en cada
experimento.
Una valoración dependiente de la dosis mostró
que no había diferencia significativa en la eficacia de bloqueo del
ARNm lograda con el oligómero de 21 nt de longitud bicatenario
convencional y las correspondientes moléculas monomoleculares,
cuando se analizaron por PCR (Taqman) en tiempo real (figura 17A).
Se ensayaron dos estructuras de bucle diferentes (A)_{12}
y un bucle pA derivado de VIH en paralelo con resultados similares.
Una comparación de la posición relativa de la secuencia antisentido
y la estructura de bucle puso de manifiesto una mayor eficacia de
bloqueo cuando la secuencia antisentido estaba situada en 3' del
bucle (figura 17B, compárense las construcciones 3A, 3B y 4A,
4B).
Se ensayó la influencia de las diferentes
estructuras de bucle en la inhibición del ARNm y la expresión de
proteína. Para estos experimentos se eligieron Akt1 y Akt2 como
objetivos. El enfoque experimental era similar al descrito en el
ejemplo 12.
Era significativo que la reducción del ARNm de
Akt1 representada en la figura 18A y 18B así como los niveles de
proteína Akt1 representados en la figura 18C, eran completamente
independientes de la estructura de bucle ensayada (compárense las
moléculas 5A, 6A, 7A, 8A) (la estructura de la molécula de ARNi
ensayada se representa siempre debajo del diagrama de barras).
Incluso una molécula que contenía una estructura bastante no
fisiológica tal como un conector de polietilenglicol (PEG) como un
bucle, reducía eficazmente la expresión de Akt1, lo que indicaba
que el tamaño y la secuencia de nucleótidos del bucle no es crucial
(figura 18A; molécula 8A). Se usó una molécula de ARNip sintética
específica para Akt2 (9A) para controlar la especificidad, y no tuvo
efecto en los niveles de Akt1, como se muestra en la figura 15A.
Sin embargo, silenciaba eficazmente la expresión de Akt2 (figura
18B; figura 18C). Las moléculas de ARN autocomplementarias con
estructuras de bucle tienen la posibilidad de reasociarse como
cadenas dobles en estructuras monomoleculares o bimoleculares en
condiciones de hibridación fisiológica (figura 18B, estructura de
bucle o burbuja). Para abordar la cuestión de si las moléculas de
ARNip ejercen su función por adaptación de un bucle intramolecular o
una "burbuja" intermolecular (se muestra esquemáticamente en
la figura 18B) se transfectaron dos moléculas que no eran capaces de
doblarse sobre sí mismas. Estas construcciones contenían las
secuencias específicas para Akt1 y Akt2 en la misma molécula
(figura 18B, construcciones 10A, 10B) y se diseñaron para que se
restringieran a la formación de un dúplex bimolecular
("burbuja"). Sorprendentemente, esta molécula medió eficazmente
el bloqueo de ARNm tanto de Akt1 como de Akt2, así como el bloqueo
de proteínas cuando se transfectó después de reasociación de ambas
cadenas.
No está claro si las estructuras de bucle y
burbuja son realmente sustratos para las enzimas que procesan el
ARN, p. ej. Dicer. En relación con esto, un estudio reciente
de Paddison y colaboradores sugiere que los ARNip que contienen
horquilla dependen más de la actividad de Dicer que los ARNip
bicatenarios. Sin embargo, estos datos que demuestran la actividad
de interferencia de ARN usando una molécula conectora de PEG,
indican que es probable que la secuencia conectora sea
irrelevante.
<110> atugen AG
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Otras formas nuevas de moléculas de
ARN de interferencia
\vskip0.400000\baselineskip
<130> A 19014 PCT
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 174
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn version 3.1
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 1A (Fig. 3B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
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<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
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<400> 1
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\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 1B (Fig. 3B)
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (1)..(21)
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<223> ARN
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (22)..(23)
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<223> ADN
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<400> 2
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\hfill23
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<210> 3
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<211> 23
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<220>
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<223> ARNi
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<220>
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<221> misc_feature
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<223> 3A (Fig. 3B)
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (1)..(21)
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<223> ARN
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (22)..(23)
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<223> ADN
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (23)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con NH_{2}
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<400> 3
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\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac gtt
\hfill23
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<210> 4
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<211> 23
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> ARNi
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<220>
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<221> misc_feature
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<223> 3B (Fig. 3B)
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<220>
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<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
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<223> ARN
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (22)..(23)
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<223> ADN
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (23)..(23)
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<223> modificado con NH_{2}
\newpage
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<400> 4
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<210> 5
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<212>ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> ARNi
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<220>
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<221> misc_feature
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<223> 4A (Fig. 3B)
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (1)..(21)
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<223> ARN
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (22)..(23)
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<223> ADN
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (23)..(23)
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<223> unido a abásico invertido
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<400> 5
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\hfill23
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
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<211> 23
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
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<223> 4B (Fig. 3B)
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
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<222> (22)..(23)
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<223> ADN
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<220>
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<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (23)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> unido a abásico invertido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_.feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> SAMM (Fig. 3B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_.feature
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<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22).. (23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcucauuuucu uugugcucac gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 5BMM (Fig. 3B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgugagcaca aagaaaauga gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 18A (Fig.4B, 8B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
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<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 18B (Fig. 4B, 8B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
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<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 19A(MM) (Fig. 4B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
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<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
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<211> 23
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 19B(MM) (Fig. 4B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222>(1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
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<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgugagcaca aagaaaauga gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
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<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN.
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 28A (Fig. 4B, 8B, 9C, 10C)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc._feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 28B (Fig. 4B, 8B, 9C, 10C)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 29A(MM) (Fig. 4B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcucauuuucu uugugcucac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 29B(MM) (Fig. 4B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgugagcaca aagaaaauga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 30A (Fig. 4B, 8B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3)..(23)
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<223> ARN
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipttcuccuuuu guuucugcua acg
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 30B (Fig. 4B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipttcguuagca gaaacaaaag gag
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 31A(MM) (Fig. 4B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipttcucauuuu cuuugugcuc acg
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 31B(MM) (Fig.4B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1).. (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipttcgugagca caaagaaaau gag
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 51A (Fig. 5B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipucuugaugua cuccccucgu u
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 51B (Fig. 5B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgaggggagu acaucaagau u
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210>23
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 53A (Fig. 5B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipucuugaugua cuccccucgu u
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 53B (Fig. 5B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 24
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<221> misc_feature
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<223> Akt1 3B (Fig. 7A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1).. (19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20).. (21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 42
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgaggggagu acaucaagac c
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1 4A (Fig. 7A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1).. (19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20).. (21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 43
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipucuugaugua cuccccucgt t
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 44
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<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1 4B (Fig. 7A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgaggggagu acaucaagat t
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
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<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1 5A (Fig. 7A)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuugauguac uccccucgu
\hfill19
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 46
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<211> 19
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<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1 5B (Fig. 7A)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 46
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgaggggagua caucaagac
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 47
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1 6A (Fig. 7A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20).. (21)
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<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipacuugaugua cuccccucct t
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 48
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt 1 6B (Fig, 7A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipggaggggagu acaucaagut t
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 49
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1 7A (Fig. 7A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222>(20)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 49
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipaguugaugua cuccccugct t
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 50
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1 7B (Fig. 7A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 50
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgcaggggagu acaucaacut t
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 51
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTEN 1A (Fig. 7A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 51
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 52
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTEN 1B (Fig. 7A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_.feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 52
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 53
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA (Fig. 7B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 53
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipuccuuuuguu ucugcuaac
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 54
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB (Fig. 7B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 54
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipguuagcagaa acaaaagga
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 55
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENMM1 (Fig. 7B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 55
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipuccuuuucuu ucugcuaac
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 56
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENMM1 (secuencia complementaria,
Fig. 7B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 56
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipguuagcagaa agaaaagga
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 57
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENMM2 (Fig. 7B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 57
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipuccuuuucuu ugugcuaac
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 58
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
<221 > misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENMM2 (secuencia complementaria,
Fig. 7B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 58
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipguuagcacaa agaaaagga
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 59
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENMM3 (Fig. 7B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 59
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipuccuuuucuu ugugguaac
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 60
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENMM3 (secuencia complementaria,
Fig. 7B)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 60
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipguuaccacaa agaaaagga
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 61
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENMM4 (Fig. 7B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 61
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipuccuauucuu ugugguaac
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 62
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENMM4 (secuencia complementaria;
Fig. 7B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 62
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipguuaccacaa agaauagga
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 63
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 24A (Fig. 8B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 63
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 64
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 24B (Fig. 8B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> unido a abásico invertido
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1).. (21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (23).. (23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> unido a abásico invertido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 64
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 65
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 26A (Fig. 8B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1).. (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con NH_{2}
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (23)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con NH_{2}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 65
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 66
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 26B (Fig. 8B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Modificado con NH_{2}
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (23)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Modificado con NH_{2}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 66
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 67
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 79A (Fig. 8B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN modificado con
2'-O-metilo
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 67
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 68
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 79B (Fig. 8B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN modificado con
2'-O-metilo
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 68
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
<210 > 69
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 30B (Fig. 8B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 69
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipttcguuagca gaaacaaaag gag
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 70
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 3A (Fig. 8B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (23)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Modificado con NH_{2}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 70
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 71
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 3B (Fig. 8B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (23)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Modificado con NH_{2}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 71
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 72
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 26A (Fig. 9B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Modificado con NH_{2}
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (23)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Modificado con NH_{2}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 72
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 73
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 24A (Fig. 9B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> unido a abásico invertido
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (23)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> unido a abásico invertido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 73
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 74
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 22A (Fig. 9B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (23)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> unido a abásico invertido
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 74
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac gtt
\hfill23
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 75
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 20A (Fig. 9B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
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<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
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<223> ADN
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
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<222> (23)..(23)
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill23
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\vskip0.400000\baselineskip
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<211> 23
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 30A (Fig. 9B)
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
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<223> ARN
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipttcuccuuuu guuucugcua acg
\hfill23
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\vskip0.400000\baselineskip
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<211> 23
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<223> 26B (Fig. 9B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(1)
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
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<222> (1)..(21)
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<223> ARN
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\vskip0.400000\baselineskip
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<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
<222> (23)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Modificado con NH_{2}
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga gtt
\hfill23
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\vskip0.400000\baselineskip
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<211> 23
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 18A (Fig. 9B)
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<220>
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<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
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<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill23
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 79
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<211> 23
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 18B (Fig. 9B)
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (22)..(23)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 79
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga gtt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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<222> 21
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<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 28A (Fig. 9B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 80
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 29A (Fig. 10C)
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 81
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuucu uugugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 82
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<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 29B (Fig. 10C)
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 82
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaca aacaaaagga g
\hfill21
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 83
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<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 73A (Fig. 10C)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
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<222> (3)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con
2'-O-metilo
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 83
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 84
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<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 73B (Fig. 10C)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3).. (19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con
2'-O-metilo
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 84
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 85
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<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 74A (Fig. 10C)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (5)..(17)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con
2'-O-metilo
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 85
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 86
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<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 74B (Fig. 10C)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (5).. (17)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con
2'-O-metilo
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 86
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 87
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 75A (Fig. 10C)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (7)..(15)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con
2'-O-metilo
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 87
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 88
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 75B (Fig. 10C)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (7)..(15)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con
2'-O-metilo
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 88
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 89
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<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223>79A (Fig. 10C)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con
2'-O-metilo
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 89
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 90
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 79B (Fig. 10C, 11C)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con
2'-O-metilo
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 90
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 91
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 80A (Fig. 11C)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 91
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 92
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
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<212> ARN
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<223> 28B (Fig. 12B)
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\vskip0.400000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> ARNi
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<220>
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<223> 82B (Fig. 12B)
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<222> (11)..(21)
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<223> modificado con
2'-O-metilo
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<213> Secuencia artificial
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<223> ARNi
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<223> 86A (Fig. 12B)
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<222> (5).. (10)
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<223> modificado con
2'-O-metilo
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<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (16).. (21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con
2'-O-metilo
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\vskip0.400000\baselineskip
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<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 86B (Fig. 12B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (7)..(11)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con
2'-O-metilo
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
<221 > misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (18)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> modificado con
2'-O-metilo
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 110
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 111
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 94A1 (Fig. 12B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones
2,4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 y 20 son 2'-O
metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 111
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 112
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 94B1 (Fig. 12B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 y 20 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 112
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 113
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 94A1 (Fig. 12B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 y 20 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 113
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 114
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 94B2 (Fig. 12B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19 y 21 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 114
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 115
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 94A2 (Fig. 12B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19 y 21 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 115
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 116
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 94B1 (Fig. 12B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 y 20 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 116
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 117
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 94A2 (Fig. 12B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19 y 21 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 117
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 118
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 94B2 (Fig. 12B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19 y 21 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 118
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 119
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA (Fig. 15A,B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 119
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 120
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB (Fig. 15A, B)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 120
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 121
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENAMM (Fig. 15A)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 121
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcucauuuucu uugugcucac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 122
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENBMM (Fig. 15A)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 122
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgugagcaca aagaaaauga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 123
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA V1 (Fig. 15A, B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 123
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 124
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB V1 (Fig. 15A, B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 124
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 125
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA V2 (Fig. 15A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3).. (19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 125
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 126
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB V2 (Fig. 15A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 126
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 127
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA V3 (Fig. 15A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (5).. (17)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 127
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 128
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB V3 (Fig. 15A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (5)..(17)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 128
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 129
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA V4 (Fig. 15A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (7)..(15)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 2'-O
metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 129
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 130
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB V4 (Fig. 15A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (7)..(15)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 130
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 131
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA V5 (Fig. 15A)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 131
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 132
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB V5 (Fig. 15A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 132
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 133
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA V6 (Fig. 15A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 133
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 134
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB V6 (Fig. 15A)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 134
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 135
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA V7 (Fig. 15A, B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 135
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 136
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB V7 (Fig. 15A, B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(11)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 136
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 137
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA V8 (Fig. 15A, B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (11)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 137
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 138
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB V8 (Fig. 15A, B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (11)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 138
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 139
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA V9 (Fig. 15A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (8)..(13)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 139
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 140
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feafure
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB V9 (Fig. 15A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 140
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 141
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA V10 (Fig. 15A, B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (6)..(10)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (16)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 2'-O
metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 141
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 142
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB V10 (Fig. 15A, B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (7)..(12)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (17).. (21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 2'-O
metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 142
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 143
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA V11 (Fig. 15A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (7)..(15)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 143
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 144
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB V11 (Fig. 15A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENBV11 (Fig. 15)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 144
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 145
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA V12 (Fig. 15A, B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19 y 21 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 145
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 146
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB V12 (Fig. 15A, B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19 y 21 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 146
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 147
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
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<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> ARNi
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<220>
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<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENA V13 (Fig. 15B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 y 20 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 147
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 148
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
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<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PTENB V13 (Fig. 15B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 y 20 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 148
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 149
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<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
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<223> PTENA V14 (Fig. 15B)
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 y 20 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 149
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 150
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<211> 21
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<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
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<223> PTENB V14 (Fig. 15B)
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19 y 21 son 2'-O
metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 150
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 151
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
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<223> PTENA V15 (Fig. 15B)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19 y 21 son 2'-O
metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 151
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcuccuuuugu uucugcuaac g
\hfill21
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 152
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
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<223> PTENB V15 (Fig. 15B)
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 y 20 son 2'-O
metil-ribonucleótidos
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 152
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcguuagcaga aacaaaagga g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 153
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<211> 21
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
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<223> Akt1A V1 (Fig. 16A)
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (1)..(19)
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<223> ARN
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\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..(21)
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<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 153
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\hskip-.1em\dddseqskipucuugaugua cuccccucgt t
\hfill21
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<210> 154
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<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1B V1 (Fig. 16A)
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
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<223> ARN
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..(21)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 154
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgaggggagu acaucaagat t
\hfill21
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 155
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<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1A V2 (Fig. 16A)
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 155
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipucuugaugua cuccccucg
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 156
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1B V2 (Fig. 16A)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 156
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgaggggagu acaucaaga
\hfill19
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<211> 19
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<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1A V3 (Fig. 16A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 y 20 son 2'-O
metil-ribonucleótidos
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 157
\vskip1.000000\baselineskip
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\hskip-.1em\dddseqskipucuugaugua cuccccucg
\hfill19
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 158
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1B V3 (Fig. 16A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 y 20 son 2'-O
metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 158
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgaggggagu acaucaaga
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 159
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> AKt1A V4 (Fig. 16A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 y 20 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 159
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipucuugaugua cuccccucg
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 160
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1B V4 (Fig. 16A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19 y 21 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 160
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgaggggagu acaucaaga
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 161
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1A V5 (Fig. 16A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19 y 21 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 161
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipucuugaugua cuccccucg
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 162
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1B V5 (Fig. 16A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 y 20 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 162
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgaggggagu acaucaaga
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 163
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1A V6 (Fig. 16A)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19 y 21 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 163
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipucuugaugua cuccccucg
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 164
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Akt1B V6 (Fig. 16A)
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<220>
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<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19 y 21 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 164
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\hskip-.1em\dddseqskipcgaggggagu acaucaaga
\hfill19
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<210> 165
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<211> 19
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<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> ARNi
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<220>
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<221> misc_feature
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<223> P110b V2 (Fig. 16C)
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<400> 165
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\hskip-.1em\dddseqskipaauuccagug guucauucc
\hfill19
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<210> 166
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<211> 19
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<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> ARNi
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<220>
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<221> misc_feature
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<223> P110b V2 (secuencia complementaria,
Fig. 16C)
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<400> 166
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\hskip-.1em\dddseqskipggaaugaacc acuggaauu
\hfill19
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<210> 167
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<211> 19
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<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> ARNi
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<221> misc_feature
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<223> P110b V3 (Fig. 16C)
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<220>
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<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8,10, 12, 14, 16 y 18 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 167
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\hskip-.1em\dddseqskipaauuccagug guucauucc
\hfill19
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<210> 168
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<211> 19
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<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> ARNi
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<220>
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<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> P110b V3 (secuencia complementaria,
Fig. 16C)
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<220>
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<221> misc_feature
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<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16 y 18 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 168
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\hskip-.1em\dddseqskipggaaugaacc acuggaauu
\hfill19
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<210> 169
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<211> 19
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<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
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<223> P110b V4 (Fig. 16C)
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<220>
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<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16 y 18 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 169
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\hskip-.1em\dddseqskipaauuccagug guucauucc
\hfill19
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<210> 170
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<211> 19
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<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<221> misc_feature
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<223> P110b V4 (secuencia complementaria,
Fig. 16C)
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 18 y 21 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 170
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\hskip-.1em\dddseqskipggaaugaacc acuggaauu
\hfill19
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<210> 171
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<211> 19
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<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
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<223> P110b V5 (Fig. 16C)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15,17 y 19 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 171
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipaauuccagug guucauucc
\hfill19
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<210> 172
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<211> 19
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<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> ARNi
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
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<223> P110b V5 (secuencia complementaria,
Fig. 16C)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 2,
4, 6, 8, 10, 12, 14, 16 y 18 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 172
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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<212> ARN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARNi
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<223> P110b V6 (Fig. 16C)
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<220>
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\vskip0.400000\baselineskip
<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17 y 19 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
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<400> 173
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<223> ARNi
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<223> P110b V6 (secuencia complementaria,
Fig. 16C)
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<220>
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<221> misc_feature
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<223> los nucleótidos en las posiciones 1,
3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17 y 19 son
2'-O-metil-ribonucleótidos
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<400> 174
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipggaaugaacc acuggaauu
\hfill19
Claims (38)
1. Un ácido ribonucleico que comprende una
estructura bicatenaria, en el que la estructura bicatenaria
comprende una primera cadena y una segunda cadena, en el que la
primera cadena comprende un primer segmento de nucleótidos
contiguos y en el que dicho primer segmento es al menos parcialmente
complementario de un ácido nucleico objetivo, y la segunda cadena
comprende un segundo segmento de nucleótidos contiguos y en el que
dicho segundo segmento es al menos parcialmente idéntico al ácido
nucleico objetivo,
caracterizado porque dicho primer
segmento y dicho segundo segmento comprenden un patrón que consiste
en una pluralidad de grupos de nucleótidos modificados que tienen
una modificación en la posición 2', de modo que en el segmento cada
grupo de nucleótidos modificados está flanqueado en uno o ambos
lados por un grupo de nucleótidos flanqueadores en el que los
nucleótidos flanqueadores que forman el grupo de nucleótidos
flanqueadores son nucleótidos no modificados o nucleótidos que
tienen una modificación diferente de la modificación de los
nucleótidos modificados.
2. El ácido ribonucleico de acuerdo con la
reivindicación 1, en el que el grupo de nucleótidos modificados y/o
el grupo de nucleótidos flanqueadores comprenden un número de
nucleótidos, en los que el número se selecciona del grupo que
comprende de 1 nucleótido a 10 nucleótidos.
3. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 2, en el que el patrón de
nucleótidos modificados de dicho primer segmento es el mismo que el
patrón de nucleótidos modificados de dicho segundo segmento.
4. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en el que el patrón de
dicho primer segmento se alinea con el patrón de dicho segundo
segmento.
5. El ácido ribonucleico de acuerdo con la
reivindicación 3, en el que el patrón de dicho primer segmento está
desplazado en uno o más nucleótidos respecto al patrón del segundo
segmento.
6. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, en el que la modificación
se selecciona del grupo que comprende amino, flúor, metoxi, alcoxi y
alquilo.
7. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, en el que la estructura
bicatenaria tiene extremo romo.
8. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7, en el que la estructura
bicatenaria tiene extremos romos en ambos lados.
9. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7, en el que la estructura
bicatenaria tiene el extremo romo en el lado de la estructura
bicatenaria que está definido por el extremo 5' de la primera
cadena y el extremo 2' de la segunda cadena.
10. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7, en el que la estructura
bicatenaria tiene el extremo romo en la estructura bicatenaria que
está definido por el extremo 3' de la primera cadena y el extremo
5' de la segunda cadena.
11. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, en el que la primera
cadena comprende un extremo protuberante en el extremo 5' y la
segunda cadena comprende un extremo protuberante en el extremo
5'.
12. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, en el que ambas cadenas
tienen un extremo protuberante de al menos un nucleótido en el
extremo 3'.
13. El ácido ribonucleico de acuerdo con la
reivindicación 11 ó 12, en el que el extremo protuberante consiste
en al menos un nucleótido que se selecciona del grupo que comprende
ribonucleótidos y desoxirribonucleótidos.
14. El ácido ribonucleico de acuerdo con la
reivindicación 13, en el que el nucleótido tiene una modificación,
de modo que dicha modificación se selecciona preferiblemente del
grupo que comprende nucleótidos que son un abásico invertido y
nucleótidos que tienen una modificación NH_{2} en la posición
2'.
15. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 14, en el que la longitud de
la estructura bicatenaria tiene una longitud de aproximadamente 17 a
21 y más preferiblemente 18 ó 19 bases.
16. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7 y 9 a 14, en el que la
longitud de dicha primera cadena y la longitud de dicha segunda
cadena se seleccionan independientemente entre sí del grupo que
comprende los intervalos de aproximadamente 15 a aproximadamente 23
bases, 17 a 21 bases y 18 ó 19 bases.
17. El ácido ribonucleico de acuerdo con la
reivindicación 15, en el que la longitud de dicha primera cadena y
la longitud de dicha segunda cadena se seleccionan
independientemente entre sí del grupo que comprende los intervalos
de 17 a 21 bases y 18 ó 19 bases.
18. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 17, en el que la
complementaridad entre dicha primera cadena y el ácido nucleico
objetivo es perfecta.
19. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 17, en el que él dúplex
formado entre la primera cadena y el ácido nucleico objetivo
comprende al menos 15 nucleótidos, en el que hay un apareamiento
erróneo o dos apareamientos erróneos entre dicha primera cadena y el
ácido nucleico objetivo que forman dichas estructuras
bicatenarias.
20. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3 y 5 a 19, en la medida en
que no se refiere a la reivindicación 4, en el que tanto la primera
cadena como la segunda cadena comprenden un patrón que consiste en
una pluralidad de grupos de nucleótidos modificados y una pluralidad
de grupos de nucleótidos flanqueadores,
en el que cada grupo de nucleótidos modificados
comprende al menos un nucleótido y en el que cada grupo de
nucleótidos flanqueadores comprende al menos un nucleótido;
y cada grupo de nucleótidos modificados de la
primera cadena está alineado con un grupo de nucleótidos
flanqueadores en la segunda cadena, en el que
el nucleótido 5' más terminal de la primera
cadena es un nucleótido del grupo de nucleótidos modificados, y el
nucleótido 3' más terminal de la segunda cadena es un nucleótido del
grupo de nucleótidos flanqueadores.
21. El ácido ribonucleico de acuerdo con la
reivindicación 20, en el que cada grupo de nucleótidos modificados
consiste en un solo nucleótido y/o cada grupo de nucleótidos
flanqueadores consiste en un solo nucleótido.
22. El ácido ribonucleico de acuerdo con la
reivindicación 21, en el que en la primera cadena el nucleótido que
forma el grupo de nucleótidos flanqueadores es un nucleótido no
modificado que está dispuesto en una dirección 3' respecto al
nucleótido que forma el grupo de nucleótidos modificados, y
en el que en la segunda cadena el nucleótido que
forma el grupo de nucleótidos modificados es un nucleótido
modificado que está dispuesto en la dirección 5' respecto al
nucleótido que forma el grupo de nucleótidos flanqueadores.
23. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 20 a 22, en el que la primera
cadena comprende de ocho a doce, preferiblemente de nueve a once
grupos de nucleótidos modificados, y en el que la segunda cadena
comprende de siete a once, preferiblemente de ocho a diez grupos de
nucleótidos modificados.
24. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, en el que la primera
cadena y la segunda cadena están unidas por una estructura de
bucle.
25. El ácido ribonucleico de acuerdo con la
reivindicación 24, en el que la estructura de bucle está compuesta
de un polímero de ácido no nucleico.
26. El ácido ribonucleico de acuerdo con la
reivindicación 25, caracterizado porque el polímero de ácido
no nucleico es polietilenglicol.
27. El ácido ribonucleico de acuerdo con la
reivindicación 24, en el que la estructura de bucle está compuesta
de un ácido nucleico.
28. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 24 a 27, caracterizado
porque el extremo 5' de la primera cadena está unido al extremo 3'
de la segunda cadena.
29. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 24 a 27, caracterizado
porque el extremo 3' de la primera cadena está unido al extremo 5'
de la segunda cadena.
30. El ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 29, en el que el gen objetivo
se selecciona del grupo que comprende genes estructurales, genes
domésticos, factores de transcripción, factores de motilidad,
factores de ciclo celular, inhibidores del ciclo celular, enzimas,
factores de crecimiento, citoquinas y supresores de tumores.
31. Uso de un ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 30, para la validación de
objetivos.
32. Uso de un ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 30, para fabricar un
medicamento.
33. El uso de acuerdo con la reivindicación 32,
en el que el medicamento es para el tratamiento de una enfermedad o
una afección que se selecciona del grupo que comprende glioblastoma,
cáncer de próstata, cáncer de pecho, cáncer de pulmón, cáncer de
hígado, cáncer de colon, cáncer pancreático y leucemia, diabetes,
obesidad, enfermedades cardiovasculares y enfermedades
metabólicas.
34. Una célula, preferiblemente una célula
bloqueada, que contiene un ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 30, en la que si la célula
es una célula humana, la célula humana es una célula humana
aislada.
35. Un organismo, preferiblemente un organismo
bloqueado, que contiene un ácido ribonucleico de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 30, en el que el organismo es
diferente de un ser humano.
36. Una composición que contiene un ácido
ribonucleico de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a
30.
37. Una composición farmacéutica que contiene un
ácido ribonucleico de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones
1 a 30, y un vehículo farmacéuticamente aceptable.
38. Un método in vitro para inhibir la
expresión de un gen objetivo en una célula o su derivado, que
comprende introducir un ácido ribonucleico de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 30, en la célula en una
cantidad suficiente para inhibir la expresión del gen objetivo, en
el que el gen objetivo es el gen objetivo del ácido ribonucleico de
acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 30.
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