ES2206099T3 - Un procedimiento para la preparacion de fosfatidilserinas. - Google Patents
Un procedimiento para la preparacion de fosfatidilserinas.Info
- Publication number
- ES2206099T3 ES2206099T3 ES00108605T ES00108605T ES2206099T3 ES 2206099 T3 ES2206099 T3 ES 2206099T3 ES 00108605 T ES00108605 T ES 00108605T ES 00108605 T ES00108605 T ES 00108605T ES 2206099 T3 ES2206099 T3 ES 2206099T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- reaction
- phosphatides
- serine
- previous
- phospholipase
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 39
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title claims abstract description 12
- MTCFGRXMJLQNBG-REOHCLBHSA-N (2S)-2-Amino-3-hydroxypropansäure Chemical compound OC[C@H](N)C(O)=O MTCFGRXMJLQNBG-REOHCLBHSA-N 0.000 claims abstract description 35
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 claims abstract description 32
- 102000011420 Phospholipase D Human genes 0.000 claims abstract description 23
- 108090000553 Phospholipase D Proteins 0.000 claims abstract description 23
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 claims abstract description 18
- MTCFGRXMJLQNBG-UHFFFAOYSA-N Serine Natural products OCC(N)C(O)=O MTCFGRXMJLQNBG-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 16
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 claims abstract description 10
- 150000008106 phosphatidylserines Chemical class 0.000 claims abstract description 8
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N Ammonia Chemical compound N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 6
- 125000002252 acyl group Chemical group 0.000 claims abstract description 4
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 claims abstract description 4
- 125000005210 alkyl ammonium group Chemical group 0.000 claims abstract description 3
- 229910021529 ammonia Inorganic materials 0.000 claims abstract description 3
- 229920006395 saturated elastomer Polymers 0.000 claims abstract description 3
- 229910052784 alkaline earth metal Inorganic materials 0.000 claims abstract 3
- 150000001342 alkaline earth metals Chemical class 0.000 claims abstract 2
- 239000012429 reaction media Substances 0.000 claims abstract 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 38
- WTJKGGKOPKCXLL-RRHRGVEJSA-N phosphatidylcholine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP([O-])(=O)OCC[N+](C)(C)C)OC(=O)CCCCCCCC=CCCCCCCCC WTJKGGKOPKCXLL-RRHRGVEJSA-N 0.000 claims description 27
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 26
- 150000003904 phospholipids Chemical class 0.000 claims description 21
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L Calcium chloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 16
- 239000001110 calcium chloride Substances 0.000 claims description 14
- 229910001628 calcium chloride Inorganic materials 0.000 claims description 14
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 12
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 11
- JZNWSCPGTDBMEW-UHFFFAOYSA-N Glycerophosphorylethanolamin Natural products NCCOP(O)(=O)OCC(O)CO JZNWSCPGTDBMEW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 9
- 150000008104 phosphatidylethanolamines Chemical class 0.000 claims description 9
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 8
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- 238000003756 stirring Methods 0.000 claims description 6
- -1 2-ethylhexyl Chemical group 0.000 claims description 5
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 5
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims description 5
- 235000010445 lecithin Nutrition 0.000 claims description 5
- 239000000787 lecithin Substances 0.000 claims description 5
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 claims description 5
- TZCPCKNHXULUIY-RGULYWFUSA-N 1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoserine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP(O)(=O)OC[C@H](N)C(O)=O)OC(=O)CCCCCCCCCCCCCCCCC TZCPCKNHXULUIY-RGULYWFUSA-N 0.000 claims description 4
- ZWZWYGMENQVNFU-UHFFFAOYSA-N Glycerophosphorylserin Natural products OC(=O)C(N)COP(O)(=O)OCC(O)CO ZWZWYGMENQVNFU-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 244000005700 microbiome Species 0.000 claims description 4
- 235000010482 polyoxyethylene sorbitan monooleate Nutrition 0.000 claims description 4
- 229920000053 polysorbate 80 Polymers 0.000 claims description 4
- 159000000007 calcium salts Chemical class 0.000 claims description 3
- 239000012535 impurity Substances 0.000 claims description 3
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 3
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 claims description 3
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 claims description 2
- VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M Sodium acetate Chemical compound [Na+].CC([O-])=O VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 2
- 229910052783 alkali metal Inorganic materials 0.000 claims description 2
- 150000001340 alkali metals Chemical group 0.000 claims description 2
- 238000001035 drying Methods 0.000 claims description 2
- 239000007791 liquid phase Substances 0.000 claims description 2
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 claims description 2
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 claims description 2
- 150000008105 phosphatidylcholines Chemical class 0.000 claims description 2
- 239000012266 salt solution Substances 0.000 claims description 2
- 239000001632 sodium acetate Substances 0.000 claims description 2
- 235000017281 sodium acetate Nutrition 0.000 claims description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims description 2
- 150000001298 alcohols Chemical class 0.000 claims 2
- JNYAEWCLZODPBN-JGWLITMVSA-N (2r,3r,4s)-2-[(1r)-1,2-dihydroxyethyl]oxolane-3,4-diol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@H]1OC[C@H](O)[C@H]1O JNYAEWCLZODPBN-JGWLITMVSA-N 0.000 claims 1
- 241000187747 Streptomyces Species 0.000 claims 1
- 235000010633 broth Nutrition 0.000 claims 1
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 claims 1
- 238000010908 decantation Methods 0.000 claims 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims 1
- 239000003513 alkali Substances 0.000 abstract 1
- 229960001153 serine Drugs 0.000 description 19
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 15
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 15
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 12
- 239000008351 acetate buffer Substances 0.000 description 9
- 239000007858 starting material Substances 0.000 description 8
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 7
- 239000008346 aqueous phase Substances 0.000 description 6
- PZNPLUBHRSSFHT-RRHRGVEJSA-N 1-hexadecanoyl-2-octadecanoyl-sn-glycero-3-phosphocholine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCCCC(=O)O[C@@H](COP([O-])(=O)OCC[N+](C)(C)C)COC(=O)CCCCCCCCCCCCCCC PZNPLUBHRSSFHT-RRHRGVEJSA-N 0.000 description 4
- CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N Acetone Chemical compound CC(C)=O CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 239000012736 aqueous medium Substances 0.000 description 4
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 4
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 4
- 239000008347 soybean phospholipid Substances 0.000 description 4
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 4
- IIZPXYDJLKNOIY-JXPKJXOSSA-N 1-palmitoyl-2-arachidonoyl-sn-glycero-3-phosphocholine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP([O-])(=O)OCC[N+](C)(C)C)OC(=O)CCC\C=C/C\C=C/C\C=C/C\C=C/CCCCC IIZPXYDJLKNOIY-JXPKJXOSSA-N 0.000 description 3
- YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N Toluene Chemical compound CC1=CC=CC=C1 YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 3
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 3
- 229940067606 lecithin Drugs 0.000 description 3
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 3
- 239000000047 product Substances 0.000 description 3
- 239000007974 sodium acetate buffer Substances 0.000 description 3
- BHPQYMZQTOCNFJ-UHFFFAOYSA-N Calcium cation Chemical compound [Ca+2] BHPQYMZQTOCNFJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- JCABVIFDXFFRMT-DIPNUNPCSA-N [(2r)-1-[ethoxy(hydroxy)phosphoryl]oxy-3-hexadecanoyloxypropan-2-yl] octadec-9-enoate Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP(O)(=O)OCC)OC(=O)CCCCCCCC=CCCCCCCCC JCABVIFDXFFRMT-DIPNUNPCSA-N 0.000 description 2
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 2
- 229910001424 calcium ion Inorganic materials 0.000 description 2
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 2
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 description 2
- 125000001095 phosphatidyl group Chemical group 0.000 description 2
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 2
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 2
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 2
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-M Chloride anion Chemical compound [Cl-] VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- VJMAITQRABEEKP-UHFFFAOYSA-N [6-(phenylmethoxymethyl)-1,4-dioxan-2-yl]methyl acetate Chemical compound O1C(COC(=O)C)COCC1COCC1=CC=CC=C1 VJMAITQRABEEKP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 1
- 230000001476 alcoholic effect Effects 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 230000002051 biphasic effect Effects 0.000 description 1
- 210000004556 brain Anatomy 0.000 description 1
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 238000011097 chromatography purification Methods 0.000 description 1
- 230000006866 deterioration Effects 0.000 description 1
- 235000007882 dietary composition Nutrition 0.000 description 1
- 235000014113 dietary fatty acids Nutrition 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 208000035475 disorder Diseases 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 229930195729 fatty acid Natural products 0.000 description 1
- 239000000194 fatty acid Substances 0.000 description 1
- 150000004665 fatty acids Chemical class 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 239000012467 final product Substances 0.000 description 1
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 1
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 description 1
- 239000003317 industrial substance Substances 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 239000002502 liposome Substances 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 1
- 229940042880 natural phospholipid Drugs 0.000 description 1
- 239000012074 organic phase Substances 0.000 description 1
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 230000009257 reactivity Effects 0.000 description 1
- 238000004064 recycling Methods 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 159000000000 sodium salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 239000008348 synthetic phosphatidyl choline Substances 0.000 description 1
- 150000003626 triacylglycerols Chemical class 0.000 description 1
- 230000006439 vascular pathology Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
- C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
- C12P13/06—Alanine; Leucine; Isoleucine; Serine; Homoserine
Landscapes
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Un procedimiento para la preparación de fosfatidilserinas de fórmula (I) en la que R1 y R2 son independientemente, acilos C10-C30 saturados, monoinsaturados o poliinsaturados, x = OH o OM, en la que M = metal alcalino o alcalinotérreo, amoniaco, alquilamonio (incluyendo la sal interior), comprendiendo la reacción de fosfátidos de fórmula general (II) en la que R1, R2 y x tienen los significados definidos anteriormente, y R3 = CH2-CH2-NH2 o CH2-CH2-N+(CH3)3, con serina racémica o enantioméricamente pura, preferiblemente con (L)-serina, en presencia de una fosfolipasa D (PLD), caracterizado porque el medio de reacción es una dispersión acuosa y porque la reacción se lleva a cabo en presencia de uno o más tensioactivos en cantidades inferiores a 0, 4 g por gramo de fosfátidos.
Description
Un procedimiento para la preparación de
fosfatidilserinas.
La presente invención trata de un procedimiento
para la preparación de fosfatidilserinas.
Más particularmente, la invención trata de un
procedimiento para la preparación de fosfatidilserinas partiendo de
fosfolípidos naturales o sintéticos, mediante reacción de los
mismos con serina en un medio acuoso.
Las fosfatidilserinas son de múltiple
importancia, en particular en la producción de composiciones
farmacéuticas adecuadas para el tratamiento de desórdenes
cerebrales involutivos de diferente naturaleza, tales como deterioro
senil o patologías vasculares, en la preparación de formulaciones
liposomales especiales, y más recientemente, la comercialización de
composiciones dietéticas que contienen lecitinas naturales, en
particular lecitina de soja, enriquecida en
fosfatidil-(L)-serina, denominada en lo sucesivo PS,
que contiene también residuos acilo de ácidos grasos
poliinsaturados.
Dado que se necesitan cada vez más cantidades
industriales de PS de bajo coste, el solicitante llevó a cabo un
amplio estudio con objeto de encontrar las condiciones para la
preparación de este producto satisfaciendo los requerimientos de
practicabilidad en una escala industrial.
El documento US 5.700.668, en nombre del
solicitante, describe un procedimiento para la preparación de PS
que, al contrario que los de la técnica anterior (véase, en
particular, Comfurius, P. y col., Biochim. Biophys. Acta 488, 36
(1977); Yamane y col., Biochim. Biophys. Acta 1003, 277 (1989);
documentos JPA63 036.791 y JPA02 079.990; y J. Chem. Soc. Perkin
Trans. 1, 919 (1995)), permite preparar PS con buenos rendimientos
en una escala industrial también a partir de materiales de partida
impuros y sin necesidad de purificaciones cromatográficas.
El procedimiento descrito en dicha patente
comprende la reacción de fosfátidos naturales o sintéticos con
serina en un sistema bifásico consistente en una disolución del
fosfátido de partida en un disolvente orgánico, típicamente
tolueno, y de una disolución acuosa que contiene serina y
fosfolipasa D. Manteniendo dicho sistema exhaustivamente agitado,
los fosfátidos se transforman en PS, que puede recuperarse desde la
fase orgánica mediante precipitación con acetona.
Un procedimiento similar, aunque proporciona
fosfatidilserina a gran escala con buenos rendimientos, se desvía
de la tendencia actual de procedimientos químicos industriales que
implican un uso reducido de disolventes orgánicos y un mínimo de
subproductos. Este procedimiento, de hecho, implica el uso (y
reciclado) de cantidades importantes de disolventes orgánicos y su
recuperación tanto durante la reacción como durante el aislamiento
del producto final.
Comfurius y col., Journal of Lipoid Research,
vol. 31, 1990, 1719-1721, describe reacciones a
pequeña escala en las que la cantidad de tensioactivo que debe
usarse para permitir la reacción completa es un 1% (p/v) cuando la
concentración de sustrato es 10 mg/ml, y 2% cuando la concentración
de sustrato es 25 mg/ml. Estos valores corresponden a una
proporción de tensioactivo a sustrato de al menos 80%.
La presente invención aspira a proporcionar un
procedimiento para la preparación de fosfatidilserinas a una escala
industrial, lo que supera los inconvenientes mencionados
anteriormente en relación con la técnica anterior.
Este problema se ha resuelto, de acuerdo con la
invención, mediante un procedimiento para la preparación de
fosfatidilserinas de fórmula (I)
en la que R_{1} y R_{2} son
independientemente, acilos C_{10}-C_{30}
saturados, monoinsaturados o
poliinsaturados,
x = OH o OM, en la que M = metal alcalino o
alcalinotérreo, amoniaco, alquilamonio (incluyendo la sal
interior),
comprendiendo la reacción de fosfátidos de
fórmula general (II)
en la que R_{1}, R_{2} y x tienen los
significados definidos anteriormente, y R_{3} =
CH_{2}-CH_{2}-NH_{2} o
CH_{2}-CH_{2}-N^{+}(CH_{3})_{3},
con serina racémica o enantioméricamente pura,
preferiblemente con (L)-serina, en presencia de una
fosfolipasa D (PLD), caracterizada por que la reacción se lleva a
cabo en una dispersión acuosa, preferiblemente en presencia de
sales de calcio. La serina se añade habitualmente a una dispersión
acuosa tamponada de fosfátidos.
El material de partida usado en el procedimiento
puede ser tanto una fosfatidilcolina sintética (PC), como
DiMiristoilFosfatidilColina (DMPC), como una fosfatidilcolina
natural o una mezcla de fosfolípidos tales como lecitina de soja o
de huevo, o una de las mezclas de fosfolípidos disponibles
comercialmente, obtenidas mediante purificación parcial de lecitina
de soja o de huevo.
En lo que se refiere al coste del proceso, es
especialmente conveniente usar materiales de partida derivados de
la lecitina debido tanto a su bajo coste como al hecho de que la
fosfatidiletanolamina (PE), que es un importante componente de
estas mezclas, se transforma en PS bajo estas condiciones de
reacción.
El material de partida debería dispersarse
exhaustivamente en un medio acuoso antes de la adición de otros
reactivos, con objeto de estimular la reactividad.
La dispersión se lleva a cabo manteniendo el
material fosfolípido de partida en agitación durante
1-10 horas a 20-50ºC con
3-10 volúmenes de agua o disoluciones salinas.
El uso de tensioactivos en esta etapa estimula la
dispersión del sustrato y, por tanto, la tasa de reacción.
Pueden usarse convenientemente tensioactivos
iónicos o no iónicos; más convenientemente, el tensioactivo es la
sal sódica de bis(2- etilhexil)sulfosuccionato (AOT) o
Tween 80® en cantidades desde 0,01 hasta 0,4 g por gramo de
sustrato.
El efecto de estos tensioactivos es especialmente
favorable cuando se usan fosfatidilcolinas, como DMPC, que presentan
una baja tendencia a dispersarse en un medio acuoso.
Una característica adicional de esta invención es
que es posible eliminar fácilmente los disolventes alcohólicos, en
particular el etanol, que a menudo contaminan las preparaciones de
fosfolípidos naturales (por ejemplo, fracciones enriquecidas en
fosfatidilcolina obtenidas a partir de lecitina de soja) y que
interfieren en la subsiguiente reacción de formación de PS al
reaccionar en presencia de fosfolipasa D para dar los
correspondientes fosfatidil derivados (como fosfatidiletanol cuando
hay etanol presente en la mezcla).
Esta eliminación puede llevarse a cabo
convenientemente mediante la dispersión del fosfolípido de partida
en una disolución salina acuosa, decantando la suspensión y
eliminando la fase líquida que contiene el alcohol disuelto en
ella.
Como disolución salina acuosa puede usarse
cualquier disolución salina con una densidad lo suficientemente
alta como para separar fácilmente el material de partida,
preferiblemente una disolución de cloruro cálcico o un tampón de
acetato sódico/ácido acético, o ambos.
A la dispersión acuosa del material de partida se
le añade una disolución acuosa que contiene serina, cloruro
cálcico, un tampón para controlar el pH y fosfolipasa D.
La cantidad de serina variará convenientemente
entre 4 y 20 moles de serina por mol de fosfolípido a convertir en
PS. La serina puede estar en la forma D, L o racémica, para obtener
en cualquier caso los correspondientes fosfatidil derivados.
El cloruro cálcico es la fuente de ión calcio que
favorece las reacciones catalizadas por la fosfolipasa D; además,
la presencia de ión calcio provoca la separación de la
fosfatidilserina en una forma más fácilmente filtrable tras la
finalización de la reacción.
La concentración de cloruro cálcico varía
preferiblemente entre 0,05 y 0,5 M.
El pH de la disolución acuosa dependerá del
origen de la enzima usada, y variará preferiblemente entre pH=4 y
pH=9, incluido. En el caso de que las enzimas ejerzan su actividad
en un medio sustancialmente ácido, la disolución acuosa estará
tamponada preferiblemente con un tampón acetato de 0,02 M a 0,2
M.
Para llevar a cabo la reacción, debería usarse
convenientemente una enzima con una actividad transfosfatidilante
mayor que la actividad hidrolizante. Podría usarse ventajosamente
una enzima de origen fermentativo, más convenientemente la enzima
obtenida mediante fermentación del microorganismo depositado en el
ATCC con el número 55717.
La enzima puede usarse tanto en su forma bruta, a
saber, la mezcla de fermentación después de filtrar el
microorganismo, o más preferiblemente, tras la purificación
mediante ultrafiltración a través de membrana con un adecuado corte
para eliminar impurezas de bajo peso molecular. La disolución rica
en enzima de la ultrafiltración puede usarse como tal o puede
criodesecarse para obtener la enzima en la forma sólida. La
cantidad de enzima varía preferiblemente desde 10 a 100 unidades por
gramo de fosfátido (la actividad enzimática se determina mediante
el ensayo descrito en Biotechn Techn 7 795 (1993)).
La reacción se lleva a cabo preferiblemente a
25-60ºC, más preferiblemente desde 40 hasta
50ºC.
La PS se recupera mediante filtración de la
mezcla de reacción, lavando el sólido con agua para eliminar la
serina y las sales presentes.
Un aspecto particularmente ventajoso del
procedimiento de acuerdo con la invención es que el producto de
reacción (PS) se separa de la mezcla de reacción en una forma tal
que la recuperación puede realizarse mediante simple filtración,
sin necesidad de precipitar mediante la adición de disolventes.
La principal ventaja del procedimiento de acuerdo
con la invención es la posibilidad, inesperada en vista de la
técnica anterior, de llevar a cabo la reacción de
transfosfatidilación de fosfatidilcolina y de fosfátidos similares
en un medio acuoso, para obtener fosfatidilserina de buena pureza y
con rendimientos altamente satisfactorios.
Las características y ventajas del procedimiento
de la invención se detallarán adicionalmente mediante los
siguientes ejemplos.
Se añadieron 5 g de fosfatidilcolina de soja de
un 95% de pureza a 30 ml de un tampón acetato 0,1 M a un pH de 4,5.
La mezcla se agitó a 40ºC durante 1 hora para dispersar
homogéneamente el fosfolípido en la fase acuosa. La disolución
enzimática consistió en 80 ml de una disolución de fosfolipasa D con
una actividad de 2 U/g, obtenida mediante fermentación del
microorganismo depositado con el número ATCC55717, dializando
después la disolución de enzima bruta a través de una membrana de
ultrafiltración con un corte de 10.000 Dalton, hasta la completa
eliminación de las impurezas de bajo peso molecular, se usaron como
enzima. A esta disolución enzimática se añadieron 40 g de
L-serina y 2,9 g de cloruro cálcico. La disolución
resultante se añadió a la dispersión de fosfatidilcolina, y la
mezcla se calentó a 45ºC.
La reacción se agitó durante 6 horas. El sólido
se filtró, se lavó con agua y se secó. Peso final: 4,24 g.
Composición HPLC: PS 90,7%, PC 1,4% PA (ácido
fosfatídico) 6,2%.
Se añadieron 5 g de fosfatidilcolina de soja de
un 95% de pureza a 30 ml de un tampón acetato 0,1 M a un pH de 4,5
que contenía 0,08 g de Tween 80®. La mezcla se agitó a 40ºC durante
1 hora para dispersar homogéneamente el fosfolípido en la fase
acuosa. A 80 ml de una disolución de fosfolipasa D con una
actividad de 2 U/g, obtenida según se describe en el ejemplo 1, se
añadieron 40 g de L-serina y 2,9 g de cloruro
cálcico. La disolución resultante se añadió a la dispersión de
fosfatidilcolina, y la mezcla se calentó a 45ºC. Después de 90
minutos, el análisis por HPLC mostró la composición PS 69,7%, PC
11,6%, PA 5,3%.
La reacción se agitó durante 4 horas adicionales.
El sólido se filtró, se lavó con agua y se secó. Peso final: 4,76
g.
Composición HPLC: PS 90,2%, PC 0,6% PA 6,4%.
Se añadieron 5 g de fosfatidilcolina de soja de
un 95% de pureza a 30 ml de un tampón acetato 0,1 M a un pH de 4,5
que contenía 0,3 g de AOT. La mezcla se agitó a 40ºC durante 1 hora
para dispersar homogéneamente el fosfolípido en la fase acuosa. A 80
ml de una disolución de fosfolipasa D con una actividad de 2 U/ng,
obtenida según se describe en el ejemplo 1, se añadieron 40 g de
L-serina y 2,9 g de cloruro cálcico. La disolución
resultante se añadió a la dispersión de fosfatidilcolina, y la
mezcla se calentó a 45ºC.
Después de reaccionar durante 6 horas, el sólido
se filtró, se lavó con agua y se secó. Peso final: 4,16 g.
Composición HPLC: PS 88,8%, PC 0,6% PA 4,1%.
Se añadieron 25 g de una mezcla de fosfolípidos
obtenida mediante enriquecimiento de lecitina de soja, cuyos
principales componentes son PC 66%, PE 17%, PA 2%, a 100 ml de un
tampón acetato 0,1 M a un pH de 4,5. La mezcla se agitó a 40ºC
durante 1 hora para dispersar homogéneamente el fosfolípido en la
fase acuosa. Se preparó separadamente una disolución de 80 ml de
tampón acetato 0,1 M a un pH de 4,5, 40 g de
L-serina y 2,9 g de cloruro cálcico. A esta
disolución se añadieron 188 mg del sólido resultante de la
criodesecación de la disolución de fosfolipasa D obtenida según se
describe en el ejemplo 1; la actividad de este sólido es de 0,9
U/mg. La disolución resultante se añadió a la dispersión de
fosfolípido, y la mezcla se calentó a 45ºC.
La mezcla se agitó durante 3 horas. El sólido se
filtró, se lavó con agua y se secó. Peso final: 22,8 g.
Composición HPLC: PS 59,8%, PC 1,6% PA 6,1%, PE
6,7%.
Se añadieron 25 g de la mezcla de fosfolípidos
usada como material de partida en el ejemplo 4 a 100 ml de un
tampón acetato 0,1 M a un pH de 4,5. La mezcla se agitó a 40ºC
durante 1 hora para dispersar homogéneamente el fosfolípido en la
fase acuosa. Se preparó separadamente una disolución de 80 ml de
tampón acetato 0,1 M a un pH de 4,5, 10 g de
L-serina y 2,9 g de cloruro cálcico. A esta
disolución se añadieron 90 mg de la enzima criodesecada preparada
según se describe en el ejemplo 4. La disolución resultante se
añadió a la dispersión de fosfolípido, y la mezcla se calentó a
45ºC y se agitó durante 16 horas. Se determinó la composición final
mediante HPLC: PS 39,1%, PC 8,3% PA 16,6%, PE 6,8%.
La reacción se llevó a cabo en las mismas
condiciones descritas en el ejemplo 5, pero manteniendo una
temperatura de 55ºC durante la reacción. La reacción se interrumpió
después de 16 horas. El análisis de HPLC mostró la siguiente
composición: PS 41,7%, PC 8,3% PA 11,0%, PE 9,9%.
La reacción se llevó a cabo en las mismas
condiciones descritas en el ejemplo 4, pero sin la adición de
cloruro cálcico. La reacción se interrumpió después de 20 horas. El
análisis de HPLC mostró la siguiente composición: PS 41,2%, PC
15,9% PA 10,9%, PE 7,4%.
Se añadieron 2 g de la mezcla de fosfolípidos
usada como material de partida en el ejemplo 4 a una disolución de
3 g de cloruro cálcico en 40 ml de agua en un embudo de separación.
La mezcla se agitó a 25ºC durante 1 hora; se interrumpió la
agitación y, después de tres horas de reposo, se extrajeron 36 ml
de fase acuosa a través de la válvula inferior. Se preparó
separadamente una disolución de 6,5 ml de tampón acetato 0,1 M a un
pH de 4,5 y 3,2 g de
L-serina. A esta disolución se añadieron 15 mg de la enzima criodesecada preparada según se describe en el ejemplo 4. La disolución resultante se añadió a la dispersión de fosfolípidos, y la mezcla se calentó a 45ºC.
L-serina. A esta disolución se añadieron 15 mg de la enzima criodesecada preparada según se describe en el ejemplo 4. La disolución resultante se añadió a la dispersión de fosfolípidos, y la mezcla se calentó a 45ºC.
La reacción se agitó durante 1 hora. Se determinó
la composición final mediante HPLC: PS 55,7%, PC 9,4% PA 4,0%, PE
9,0%. La formación de fosfatidiletanol en esta reacción estuvo por
debajo del límite de detectabilidad por TLC (0,1%).
Se agitaron a 45ºC durante 1 hora, 5 g de
DiMiristoilFosfatidilColina (DMPC), 1,6 g de Tween 80® y 30 ml de
un tampón de acetato sódico 0,1 M a un pH de 4,5. La dispersión se
añadió a una disolución de 80 ml de la disolución de fosfolipasa D
acuosa obtenida según se describe en el ejemplo 1, 40 g de serina y
2,9 g de cloruro cálcico; la temperatura se llevó a 50ºC manteniendo
la agitación durante 17 horas. El sólido se filtró, se lavó con
agua y se secó. Peso final: 5,4 g.
Composición HPLC: PS 83,2%, PC 4,3%, PA
11,7%.
Se agitaron a 50ºC durante 45 minutos, 5 g de
DiMiristoilFosfatidilColina (DMPC), 1,0 g de AOT y 30 ml de un
tampón de acetato sódico 0,1 M a un pH de 4,5. A la dispersión se
añadió una disolución de 80 ml de la disolución de fosfolipasa D
acuosa obtenida según se describe en el ejemplo 1, 40 g de
L-serina y 2,9 g de cloruro cálcico; la temperatura
se llevó a 50ºC manteniendo la agitación durante 20 horas. El
sólido se filtró, se lavó con agua y se secó. Peso final: 3,66
g.
Composición HPLC: PS 85,2%, PC 10,5%, PA
3,5%.
Se añadieron 10 g de una fracción de lecitina de
soja no desoleada enriquecida en PC (composición: triglicéridos
50%, PC 35%, PE 8%) a 30 ml de un tampón de acetato sódico a pH 4,5
y se dejaron bajo agitación a 25ºC durante 1 hora. La mezcla se
añadió a una disolución de 80 ml de la disolución de la enzima
fosfolipasa D preparada según se describe en el ejemplo 1, 40 g de
L-serina y 2,9 g de cloruro cálcico. La reacción se
agitó a 45ºC durante 11 horas, se separó la fase acuosa y al sólido
gomoso se añadieron 100 ml de acetona. Tras la filtración y el
secado, se obtuvieron 3,9 g de producto. Análisis HPLC: PS 58%, PC
2,0%, PA 17,0%, PE 1,8%.
Claims (22)
1. Un procedimiento para la preparación de
fosfatidilserinas de fórmula (I)
en la que R_{1} y R_{2} son
independientemente, acilos C_{10}-C_{30}
saturados, monoinsaturados o poliinsaturados, x = OH o OM, en la que
M = metal alcalino o alcalinotérreo, amoniaco, alquilamonio
(incluyendo la sal interior), comprendiendo la reacción de
fosfátidos de fórmula general
(II)
en la que R_{1}, R_{2} y x tienen los
significados definidos anteriormente, y R_{3} =
CH_{2}-CH_{2}-NH_{2} o
CH_{2}-CH_{2}-N^{+}(CH_{3})_{3},
con serina racémica o enantioméricamente pura, preferiblemente con
(L)-serina, en presencia de una fosfolipasa D
(PLD), caracterizado porque el medio de reacción es una
dispersión acuosa y porque la reacción se lleva a cabo en presencia
de uno o más tensioactivos en cantidades inferiores a 0,4 g por
gramo de
fosfátidos.
2. Un procedimiento según la reivindicación 1, en
el que la reacción se lleva a cabo en presencia de sales de calcio,
preferiblemente en presencia de cloruro cálcico.
3. Un procedimiento según la reivindicación 1, en
el que dichas sales de calcio son cloruro cálcico y están presentes
en concentraciones que varían entre 0,05 y 0,5 M.
4. Un procedimiento según la reivindicación 1, en
el que la cantidad de serina varía desde 4 a 20 moles por mol de
fosfolípidos.
5. Un procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que dichos fosfátidos contienen
alcoholes como impurezas en cantidades inferiores al 0,1%.
6. Un procedimiento según la reivindicación 5, en
el que dicho alcohol es etanol.
7. Un procedimiento según la reivindicación 5, en
el que los fosfolípidos, antes de someterse a la reacción con
serina, se purifican de dichos alcoholes mediante la suspensión de
dichos fosfolípidos en una disolución salina acuosa y la
subsiguiente decantación de la fase líquida.
8. Un procedimiento según la reivindicación 7, en
el que dicha disolución salina acuosa es una disolución tampón de
cloruro cálcico y/o ácido acético/acetato sódico.
9. Un procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que dicha dispersión acuosa de
fosfátidos se tampona a un pH que varía entre 4 y 9,
preferiblemente entre 4 y 4,5.
10. Un procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que dicha reacción se lleva a
cabo a temperaturas que varían entre 25 y 60ºC, preferiblemente
entre 40 y 50ºC.
11. Un procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que dicha fosfolipasa D se
obtiene a partir de caldos de fermentación centrifugados de cepas
de microorganismos que producen PLD extracelular con una elevada
capacidad de transfosfatidilación.
12. Un procedimiento según la reivindicación 11,
en el que dicha fosfolipasa D es producida por la cepa
Streptomyces ATCC 55717.
Streptomyces ATCC 55717.
13. Un procedimiento según la reivindicación 11,
en el que dicha fosfolipasa D se purifica mediante ultrafiltración
de una disolución de la misma.
\newpage
14. Un procedimiento según la reivindicación 13,
en el que la ultrafiltración se lleva a cabo usando una membrana
con un corte de 10.000 Dalton.
15. Un procedimiento según la reivindicación 13,
en el que dicha disolución ultrafiltrada se somete a criodesecado
para obtener una fosfolipasa D en la forma sólida.
16. Un procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que dicha dispersión acuosa de
fosfátidos se obtiene mezclando dichos fosfátidos con
3-10 volúmenes de agua o de disoluciones salinas, y
manteniendo la mezcla resultante en agitación durante
1-10 horas a 20-50ºC.
17. Un procedimiento según la reivindicación 1,
en el que dicho uno o más tensioactivos están presentes en
cantidades de 0,01-0,4 g por gramo de
fosfátidos.
18. Un procedimiento según la reivindicación 1,
en el que dicho uno o más tensioactivos son
bis(2-etilhexil)sulfosuccionato (AOT)
o monooleato polioxietileno de sorbitán (Tween 80®).
19. Un procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que la fosfatidilserina de
fórmula (I) se recupera de la mezcla de reacción mediante
filtración y lavado con agua.
20. Un procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que dichos fosfátidos de fórmula
(II) son mezclas de fosfatidilcolina y/o fosfatidiletanolamina de
origen natural, elegidas de lecitinas de soja y de huevo, con un
contenido en fosfolípido que varía desde el 20% al 95%.
21. Un procedimiento según la reivindicación 1,
en el que dichos fosfátidos de fórmula (II) son fosfatidilcolinas
sintéticas.
22. Un procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que la serina se añade a una
dispersión acuosa tamponada de fosfátidos.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
IT1999MI000895A IT1311929B1 (it) | 1999-04-28 | 1999-04-28 | Procedimento per la preparazione di fosfatidilserine. |
ITMI990895 | 1999-04-28 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2206099T3 true ES2206099T3 (es) | 2004-05-16 |
Family
ID=11382830
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES00108605T Expired - Lifetime ES2206099T3 (es) | 1999-04-28 | 2000-04-20 | Un procedimiento para la preparacion de fosfatidilserinas. |
Country Status (9)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US6492146B1 (es) |
EP (1) | EP1048738B1 (es) |
JP (1) | JP4792154B2 (es) |
AT (1) | ATE250136T1 (es) |
DE (1) | DE60005241T2 (es) |
DK (1) | DK1048738T3 (es) |
ES (1) | ES2206099T3 (es) |
IT (1) | IT1311929B1 (es) |
PT (1) | PT1048738E (es) |
Families Citing this family (28)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP4298902B2 (ja) * | 2000-08-09 | 2009-07-22 | 株式会社ヤクルト本社 | リン脂質の製造法 |
IT1319679B1 (it) * | 2000-12-05 | 2003-10-23 | Chemi Spa | Processo di purificazione di fosfatidilserina. |
JP3697189B2 (ja) | 2001-01-11 | 2005-09-21 | 日清オイリオグループ株式会社 | リン脂質の塩基交換方法 |
JP2002218991A (ja) * | 2001-01-23 | 2002-08-06 | Nof Corp | ホスファチジルセリンの製造方法 |
ITPD20010031A1 (it) * | 2001-02-09 | 2002-08-09 | Fidia Farmaceutici | Procedimento per la preparazione di fosfatidi puri e loro impiego in campo cosmetico, farmaceutico ed alimentare. |
US6635456B2 (en) | 2001-02-09 | 2003-10-21 | Fidia Farmaceutici S.P.A. | Procedure for the preparation of pure phosphatides with phospholipase D |
KR20030084200A (ko) * | 2002-04-25 | 2003-11-01 | 주식회사 두산 | 비 유기용매시스템에서의 포스파티딜에탄올아민 및리소포스파티딜에탄올아민의 제조방법 및 그 방법으로제조된 리소포스파티딜에탄올아민을 포함하는 수용성 조성물 |
KR20030086128A (ko) * | 2002-05-03 | 2003-11-07 | 주식회사 두산 | 효소 및 세린의 재사용을 포함하는 포스파티딜세린 및리소포스파티딜세린의 제조방법 |
US6878532B1 (en) | 2003-04-28 | 2005-04-12 | Sioux Biochemical, Inc. | Method of producing phosphatidylserine |
DE102004002053A1 (de) * | 2004-01-15 | 2005-08-04 | Bioghurt Biogarde Gmbh & Co. Kg | Verfahren zur Herstellung von Phosphatidylserin und dessen Reinigung durch Extraktion |
JP2005318827A (ja) * | 2004-05-07 | 2005-11-17 | Nisshin Oillio Group Ltd | セリンの回収方法 |
DE102004038443A1 (de) * | 2004-08-07 | 2006-03-16 | Bioghurt Biogarde Gmbh & Co. Kg | Verfahren zur enzymatischen Herstellung und/oder Modifikation von Phospholipiden |
KR100598222B1 (ko) | 2004-12-16 | 2006-07-07 | 주식회사 두산 | 포스파티딜세린 및 리조포스파티딜세린의 제조방법 |
ITPD20050164A1 (it) | 2005-05-30 | 2006-11-30 | Fidia Farmaceutici | Processo per la preparazione e l'isolamento di fosfatidi |
RU2482186C2 (ru) * | 2008-05-15 | 2013-05-20 | Лодерс Кроклан Б.В. | Способ получения фосфатидилсерина |
RU2472351C2 (ru) | 2008-05-15 | 2013-01-20 | Лодерс Кроклан Б.В. | Способ получения фосфолипазы d |
EP2294073A1 (en) | 2008-07-08 | 2011-03-16 | Chemi SPA | Process for the production of n-acyl-phosphatidyl-etanolamine |
US8846338B2 (en) * | 2008-08-07 | 2014-09-30 | Lipogen Ltd. | Processes for the preparation of phosphatides |
US8546104B2 (en) | 2008-08-07 | 2013-10-01 | Lipogen Ltd. | Processes for the preparation of phosphatide salts |
KR101055094B1 (ko) * | 2009-05-23 | 2011-08-08 | 주식회사 고센바이오텍 | 양배추 포스포리파아제 d에 의한 난황 인지질로부터 포스파티딜세린의 생합성 방법 |
KR101122388B1 (ko) * | 2009-05-23 | 2012-03-23 | 주식회사 고센바이오텍 | 배추 포스포리파아제 d에 의한 난황 인지질로부터 포스파티딜세린의 생합성 방법 |
ITPD20120021A1 (it) | 2012-01-26 | 2013-07-27 | Fidia Farmaceutici | "nuove composizioni farmaceutiche contenenti fosfatidilserina e curcumina". |
EP3171706B1 (en) | 2014-07-25 | 2021-09-01 | Enzymotec Ltd. | Nutritional compositions containing phosphatidylserine powder |
WO2017125816A1 (en) * | 2016-01-21 | 2017-07-27 | Enzymotec Ltd. | Methods using phosphatidylserine powder |
CN109486790B (zh) * | 2018-12-10 | 2021-08-03 | 南通励成生物工程有限公司 | 一种以磷脂酶d转化制备磷酯酰丝氨酸的方法 |
WO2021134440A1 (zh) * | 2019-12-31 | 2021-07-08 | 邦泰生物工程(深圳)有限公司 | 一种磷脂酰丝氨酸酶催化生产中抗黏性的方法以及用其生产磷脂酰丝氨酸的方法 |
CN112352051A (zh) * | 2019-12-31 | 2021-02-09 | 邦泰生物工程(深圳)有限公司 | 一种提高磷脂酶d转脂活性的方法以及用其生产磷脂酰丝氨酸的方法 |
CN114854801A (zh) * | 2022-05-18 | 2022-08-05 | 翁源广业清怡食品科技有限公司 | 一种无有机溶剂制备磷脂酰丝氨酸的方法 |
Family Cites Families (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5991898A (ja) * | 1982-11-19 | 1984-05-26 | Toyo Jozo Co Ltd | リパ−ゼ活性測定用組成物 |
EP0229128B1 (de) * | 1985-07-03 | 1990-05-30 | Cl Pharma Aktiengesellschaft | Glycero-3(2)-phospho-l-serinderivate und diese enthaltende pharmazeutischen präparate |
JP3791951B2 (ja) | 1995-11-08 | 2006-06-28 | 株式会社ヤクルト本社 | 多価不飽和脂肪酸含有ホスファチジルセリンを含む油脂組成物の製造方法 |
US5700668A (en) * | 1995-12-08 | 1997-12-23 | Italfarmaco Sud S.P.A. | Process for the industrial preparation of phosphatidylserine |
DE19917249C2 (de) * | 1999-02-26 | 2001-09-27 | Meyer Lucas Gmbh & Co | Verfahren zur Herstellung von Phosphatidylserin-Produkten |
-
1999
- 1999-04-28 IT IT1999MI000895A patent/IT1311929B1/it active
-
2000
- 2000-04-18 US US09/550,819 patent/US6492146B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-04-20 DE DE60005241T patent/DE60005241T2/de not_active Expired - Lifetime
- 2000-04-20 PT PT00108605T patent/PT1048738E/pt unknown
- 2000-04-20 ES ES00108605T patent/ES2206099T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2000-04-20 EP EP00108605A patent/EP1048738B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-04-20 AT AT00108605T patent/ATE250136T1/de not_active IP Right Cessation
- 2000-04-20 DK DK00108605T patent/DK1048738T3/da active
- 2000-04-27 JP JP2000127684A patent/JP4792154B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE60005241T2 (de) | 2004-07-01 |
IT1311929B1 (it) | 2002-03-20 |
EP1048738A1 (en) | 2000-11-02 |
EP1048738B1 (en) | 2003-09-17 |
US6492146B1 (en) | 2002-12-10 |
ITMI990895A1 (it) | 2000-10-28 |
JP4792154B2 (ja) | 2011-10-12 |
DK1048738T3 (da) | 2004-01-19 |
ATE250136T1 (de) | 2003-10-15 |
DE60005241D1 (de) | 2003-10-23 |
PT1048738E (pt) | 2004-02-27 |
JP2000333689A (ja) | 2000-12-05 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2206099T3 (es) | Un procedimiento para la preparacion de fosfatidilserinas. | |
ES2165115T5 (es) | Un procedimiento para la purificacion de fosfatidinilserina. | |
USRE43764E1 (en) | Purifying process for phosphatidylserine | |
US20040235119A1 (en) | Method for the production of phospholipids | |
AU779636B2 (en) | A method for preparing lysophosphatidylethanolamine | |
EP1890706B1 (en) | Process for the preparation and isolation of phosphatides | |
JPH0716426B2 (ja) | 酵素によるリン脂質の製造方法 | |
JPH0279990A (ja) | ホスファチジルセリンの製造方法 | |
KR100225669B1 (ko) | 효소를 이용한 고순도 인지질의 생산방법 | |
JP2683590B2 (ja) | 酵素変換リン脂質の製造法 | |
JP2011527566A (ja) | N−アシル−ホスファチジル−エタノールアミンを生産する方法 |