DE3838385A1 - Verfahren zur durchfuehrung von biochemischen tests und vorrichtung zur durchfuehrung des verfahrens - Google Patents
Verfahren zur durchfuehrung von biochemischen tests und vorrichtung zur durchfuehrung des verfahrensInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Durchführung von
biochemischen Tests und eine Analysenvorrichtung zur Durch
führung des Verfahrens. Insbesondere betrifft die Erfindung
ein Verfahren zur Durchführung von biochemischen Tests, bei
dem die gesuchten Komponenten in entsprechende Derivate um
gewandelt, die Derivate in die entsprechenden Komponenten
aufgetrennt und die Komponenten bestimmt werden.
Bei der Analyse von biochemischen Komponenten mittels Flüs
sigchromatographie liegen die gesuchten Komponenten häufig
in Spurenmengen vor. Es wurden hochempfindliche Methoden zum
Nachweis dieser Spurenkomponenten entwickelt, wie nachstehend
dargelegt ist. Ein Verfahren bedient sich der Derivatisierung,
wobei verschiedene Derivatisierungsreagentien mit den gesuch
ten Komponenten mit dem Ziel umgesetzt werden, sie in leich
ter nachweisbare Derivate überzuführen. Das Derivatisierungs
verfahren bei der Flüssigchromatographie läßt sich grob in
ein vor der Säulenbehandlung durchgeführtes Markierungsver
fahren, bei dem die Derivatbildung vor der Trennung mit einer
Trennsäule durchgeführt wird, und ein nach der Säulenbehand
lung durchgeführtes Markierungsverfahren einteilen, bei dem
die Derivatbildung nach der Trennung in die jeweiligen Kompo
nenten unter Verwendung einer Trennsäule vorgenommen wird. Die
Wahl, ob die Markierung bei der Derivatisierung vor der Säu
lenbehandlung oder nach der Säulenbehandlung vorgenommen wird,
hängt von den Reaktionsbedingungen ab. Wie in ANALYSIS,
Februar 1987, Seiten 100-105 beschrieben ist, wird beispiels
weise in den Fällen, bei denen die Geschwindigkeit der Umset
zung mit den Reagentien für die Derivatbildung langsam ist oder
Druck angewandt werden muß, bei denen ein Gas entsteht, oder
bei denen die Reagentien für die Derivatbildung den Nachweis
stören, ein modifiziertes Markierungsverfahren vor der Säulen
behandlung durchgeführt. Dieses modifizierte Verfahren umfaßt
die Derivatisierung einer Probe im System unabhängig von einem
Analysengerät und die Durchführung der Trennung und der quan
titativen Bestimmung durch Flüssigchromatographie. Wenn ande
rerseits die Reaktion nicht von den vorerwähnten Schwierigkei
ten begleitet ist, wird ein vor der Säulenbehandlung durchge
führtes Markierungsverfahren vorgenommen, bei dem die Probe
in ein Analysengerät injiziert und die Derivatbildung in einer
Reaktionsspirale unter Erzielung der Auftrennung und quantita
tiven Bestimmung durchgeführt wird, oder es wird ein nach der
Säulenbehandlung durchgeführtes Markierungsverfahren angewandt,
bei dem ein Derivatisierungsreagens in ein Analysengerät nach
flüssigchromatographischer Trennung eingeführt wird. Beim Mar
kierungsverfahren nach der Säulenbehandlung bestehen starke
Einschränkungen im Vergleich zum Markierungsverfahren vor der
Säulenbehandlung, da die Umsetzung in einem Eluat vorgenom
men wird. Jedoch hat sich dieses Verfahren für biochemische
Analysengeräte, die vorwiegend auf Flüssigchromatographie be
ruhen, wie Aminosäureanalysatoren, Catecholaminanalysatoren
und dergl., weitgehend durchgesetzt, da sich das Verfahren
leicht automatisieren läßt. Ferner lassen sich beim Markie
rungsverfahren vor der Säulenbehandlung die Reaktionsbedin
gungen unabhängig von den Bedingungen der Analysengeräte
festlegen, so daß ein Derivatisierungsverfahren, das mit einer
Vorbehandlung oder einer Konzentration verbunden ist, eben
falls angewandt wird.
Abgesehen von der bestehenden Tendenz, daß eine hohe Nachweis
empfindlichkeit für Spurenkomponenten verlangt wird, wurden
auch umfangreiche Entwicklungsarbeiten an der Ultrahochlei
stungs-Flüssigchromatographie unter Verwendung von fein ver
teilten Füllstoffen oder an der Mikroflüssigchromatographie
unter Verwendung von Mikrosäulen vorgenommen. Die Wirkungen,
die sich mit derartigen Analysengeräten erreichen lassen,
sind detailliert in J. Chromatogr. Library, "The Science of
Chromatography", Bd. 32, (1985), Seiten 435 bis 447 beschrie
ben. Der Ultrahochleistungs-Flüssigchromatographie und der
Mikroflüssigchromatographie räumt man große Aussichten für
die zukünftige Flüssigchromatographie ein. Zur Anwendung
eines Markierungsverfahrens nach der Säulenbehandlung bei
der Bereitstellung eines biochemischen Analysengeräts unter
Anwendung von Ultrahochleistungs-Flüssigchromatographie oder
Mikroflüssigchromatographie ergibt sich bei der Derivatisie
rung eine Verdünnung der gesuchten Komponenten und somit eine
Verbreiterung der Nachweispeaks oder eine Verringerung der
Nachweisempfindlichkeit aufgrund eines Pulsierungsrauschens
der für die Zufuhr des Derivatisierungsreagens verwendeten
Pumpe und dergl., wodurch die vorteilhaften Wirkungen der
Ultrahochleistungs-Flüssigchromatographie oder der Mikroflüs
sigchromatographie wieder verloren gehen. Von diesem Stand
punkt aus hat man versucht, biochemische Tests und entspre
chende Analysengeräte auf der Grundlage der Flüssigchromato
graphie und unter Anwendung einer Markierung vor der Säulen
behandlung bereitzustellen, mit denen die Analyse von Aminen,
Aminosäuren, Aldehyden und dergl. möglich ist. Bei diesen Ver
fahren werden jedoch teilweise die gesuchten Komponenten in
einer Reaktionsspirale des Analysatorsystems nach dem Ein
spritzen der Probe in den Analysator in Derivate umgewandelt,
wie aus ANALYSIS (a.a.O.) hervorgeht. Daher dauert es im Ver
gleich zu der Zeitspanne, die zur Abtrennung und zum Nachweis
durch Flüssigchromatographie erforderlich ist, lange, bis die
Derivatisierung der gesuchten Komponenten in der Reaktions
spirale erfolgt ist. Daher ist es bei der Behandlung von
zahlreichen Proben vorteilhaft, die Derivatisierungsstufe in
einer Reihenbehandlung außerhalb des Systems, d.h. nicht in
der Reaktionsspirale, durchzuführen. Derartige biochemische
Tests sind beispielsweise aus J. Chromatogr., Bd. 344 (1985),
Seiten 61 bis 70 oder Anal. Biochem, Bd. 155 (1986), Seiten 28
bis 33 bekannt. Dieser Test betrifft die Analyse von Catechol
aminen und zeichnet sich gegenüber einem herkömmlichen Verfah
ren durch höhere Empfindlichkeit und einfachere Durchführung
aus. Die Derivatisierung der Catecholamine wird außerhalb
des Analysatorsystems durchgeführt, da sie im allgemeinen
einen Zeitraum von 40 Minuten erfordert. Auf der anderen
Seite ist auch das Markierungsverfahren vor der Säulenbehand
lung gemäß Anal. Biochem., Bd. 133 (1983), S. 330 bis 335 be
kannt. In diesem Fall ist die Vorbehandlung einer Probe, bei
spielsweise die Entfernung von Protein aus der Probe, erfor
derlich. Außerdem ist es schwierig, die gesuchten Komponen
ten in der Probe gleichmäßig mit einem Derivatisierungsreagens
zu vermischen.
In JP-B 62-56 460 wird ein flüssigchromatographisches Verfah
ren unter Verwendung einer Vorrichtung zum Markieren vor der
Säulenbehandlung für die Derivatbildung der gesuchten Kompo
nenten angewandt, wobei eine Probe einer Adsorptionssäule zu
geführt wird, die mit einem Füllstoff zur Adsorption der ge
suchten Komponenten in der Probe gepackt ist, um die gesuch
ten Komponenten am Füllstoff zu adsorbieren, und anschließend
der Adsorptionssäule ein Markierungsmittel zugeführt wird,
um die gesuchten Komponenten in die entsprechenden Derivate
überzuführen. Bei dieser vor der Säulenbehandlung eingesetz
ten Markierungsvorrichtung wird jedoch als Adsorptionssäule
eine rotierende Säule eingesetzt, deren Aufbau äußerst kompli
ziert ist und die eine lange Analysenzeit erfordert. Die
vorerwähnte Druckschrift befaßt sich nicht mit der Analyse
von Catecholaminen.
Wie vorstehend erwähnt, zielt der Stand der Technik nicht auf
eine Verkürzung der Analysendauer einschließlich der Derivati
sierungsdauer und auch nicht auf die Verbesserung der Analysen
genauigkeit ab. Sofern die Derivatisierungsreaktion zur Erhö
hung der Anzahl der zu behandelnden Proben seriell durchge
führt wird, variiert die Zeitspanne von der Reaktion bis zum Nachweis je
nach Art der Probe, so daß bei den herkömmlichen Verfahren
Schwierigkeiten auftreten, die die analytische Genauigkeit
verringern.
Aufgabe der Erfindung ist es, ein Verfahren zur Durchführung
von biochemischen Tests bereitzustellen, das eine hohe
Empfindlichkeit und eine hohe Genauigkeit gewährleistet,
ohne daß die Eigenschaften der Ultrahochleistungs-Flüssig
chromatographie und der Mikroflüssigchromatographie beein
trächtigt werden. Dabei soll erfindungsgemäß insbesondere
ein biochemisches Testverfahren bereitgestellt werden, das
den Nachweis von Catecholaminen mit hoher Empfindlichkeit
innerhalb kurzer Analysenzeiten ermöglicht. Außerdem soll er
findungsgemäß ein Analysengerät bereitgestellt werden, mit
dem derartige biochemische Tests durchgeführt werden können.
Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zur Durchführung
von biochemischen Tests, das durch folgende Stufen gekenn
zeichnet ist:
- - eine erste Stufe, bei dem Probenmaterial zur Herstellung einer Probe vorbereitet oder eingestellt wird;
- - eine zweite Stufe, bei dem die Probe auf eine mit einem Adsorptionsmittel gepackte Säule aufgesetzt und über diese Säule gegeben wird, um die gesuchten Komponenten an der Adsorptionssäule zu adsorbieren;
- - eine dritte Stufe, bei der ein Derivatisierungsreagens zu geführt wird, um Derivate der gesuchten Komponenten zu bilden;
- - eine vierte Stufe, bei der eine Desorptionslösung in die Adsorptionssäule eingeführt wird, um die Derivate der ge suchten Komponenten, die in der Adsorptionssäule festge halten sind, zu desorbieren;
- - eine fünfte Stufe, bei der die Derivate der gesuchten Komponente in die jeweiligen Komponenten aufgetrennt werden; und
- - eine sechste Stufe, bei der ein Konzentrationsprofil der jeweiligen aufgetrennten Komponenten ermittelt wird, um ein Nachweissignal auszugeben.
Gegenstand der Erfindung ist ferner ein Verfahren zur Durch
führung von biochemischen Tests, das durch folgende Stufen
gekennzeichnet ist:
- - eine erste Stufe, bei dem Probenmaterial zur Herstellung einer Probe mit einem Gehalt an Catecholaminen vorbereitet oder eingestellt wird;
- - eine zweite Stufe, bei der die Probe auf eine mit einem Adsorptionsmittel gepackte Säule aufgesetzt und über diese Säule gegeben wird, um die Catecholamine an der Adsorp tionssäule zu adsorbieren;
- - eine dritte Stufe, bei der ein Derivatisierungsreagens und ein Reaktionsbeschleuniger zugeführt werden, um Catechol aminderivate zu bilden;
- - eine vierte Stufe, bei der eine Desorptionslösung in die Adsorptionssäule eingeführt wird, um die in der Adsorp tionssäule festgehaltenen Catecholaminderivate zu desor bieren;
- - eine fünfte Stufe, bei der die Catecholaminderivate in die jeweiligen Komponenten aufgetrennt werden; und
- - eine sechste Stufe, bei der ein Konzentrationsprofil der jeweiligen aufgetrennten Komponenten ermittelt wird, um ein Nachweissignal auszugeben.
Gegenstand der Erfindung ist schließlich auch eine Analysen
vorrichtung zur Durchführung der genannten biochemischen
Tests, die mit einer Pumpe zum Zuführen einer Probe, einer
Trennsäule zum Abtrennen der gesuchten Komponenten aus der
Probe und einem Detektor zur Ermittlung eines Konzentrations
profils der einzelnen Komponenten in dem aus der Trennsäule
abgegebenen Eluat ausgerüstet ist, wobei in
einem Flüssigkeitsweg, der die Pumpe und die Trennsäule ver
bindet, ein Flüssigkeitsweg-Umschaltventil vorgesehen ist und
die mit dem Adsorptionsmittel gepackte Adsorptions
säule über das Flüssigkeitsweg-Umschaltventil verbunden ist.
Nachstehend wird die Erfindung anhand der Zeichnung näher
erläutert. Es zeigen:
Fig. 1 ein Fließdiagramm zur Erläuterung einer Ausführungs
form des erfindungsgemäßen Verfahrens zur Durchfüh
rung von biochemischen Tests;
Fig. 2 ein Fließdiagramm zur Erläuterung eines herkömmlichen
Verfahrens zur Durchführung von biochemischen Tests;
Fig. 3 den Aufbau einer erfindungsgemäßen Analysenvorrichtung zur
Durchführung der biochemischen Tests; und
Fig. 4-6 jeweils Chromatogramme, die unter Verwendung der
erfindungsgemäßen Analysenvorrichtung von Fig. 3 er
halten worden sind.
Nachstehend wird die erste bevorzugte Ausführungsform unter
Bezugnahme auf Fig. 1 bis 5 näher erläutert.
Bei dieser Ausführungsform wird auf eine Probe mit einem Ge
halt an Catecholaminen Bezug genommen, was aber keine Beschrän
kung der Erfindung auf Catecholamine darstellen soll. Viel
mehr kann es sich auch um Proben mit einem Gehalt an Amino
säuren, Prostaglandinen, Polyaminen und dergl. handeln.
In einer ersten Stufe, die in Fig. 1 mit (a) bezeichnet ist,
wird ein Probenmaterial, wie Blutserum, Urin und dergl.,
durch Einstellen ihres pH-Werts auf einen geeigneten Wert
oder durch Vermischen des Materials mit einer Standardlösung
zu einer Probe verarbeitet.
Anschließend wird in der zweiten Stufe, die in Fig. 1 mit (b)
bezeichnet ist, die Probe auf eine Adsorptionssäule, die mit
einem Adsorptionsmittel gepackt ist, aufgesetzt und über die
Säule gegeben. Dabei werden die Art des Adsorptionsmittels und die
Flüssigkeitsnatur und die Ionenstärke der zur Zufuhr der Probe zur
Adsorptionssäule verwendeten Trägerlösung in geeigneter Weise
so gewählt, daß nur die in der Probe enthaltenen Catecholamine
am Adsorptionsmittel adsorbiert werden. Als Adsorptionsmittel
werden Ionenaustauscherharze, Aluminiumoxid und dergl. ver
wendet. Als Adsorptionssäule ist eine mehrstufige Säule, z.B.
eine rotierende oder Drehsäule nicht speziell erforderlich,
vielmehr können beliebige einfache Einstufensäulen verwendet
werden.
Anschließend wird in der dritten Stufe, die in Fig. 1 mit (c)
bezeichnet ist, der Adsorptionssäule ein Derivatisierungs
reagens zugeführt und mit den Catecholaminen, die vom Ad
sorptionsmittel festgehalten werden, umgesetzt. Auf diese Wei
se läßt sich die Markierung unter Bildung von Catecholaminde
rivaten leicht durchführen.
Als Reagens für die Derivatisierung wird vorzugsweise
1,2-Diphenylethylendiamin verwendet. Beim Markieren wird vor
zugsweise ein Reaktionsbeschleuniger eingesetzt. Typische
Beispiele für Reaktionsbeschleuniger sind Salze von Metalloxi
den, wie Ammoniummolybdat, Wolframate, Niobate, Chromate und
dergl.; und Kombinationen von stickstoffhaltigen Verbindungen,
wie Harnstoff, Hexamethylentetramin, Ammoniumcarbonat und
dergl., mit Zinkionen. Unter anderem werden Salze von Metall
oxiden besonders bevorzugt. Zur Markierung werden im allge
meinen zusammen mit diesen Reagentien ein Oxidationsmittel,
z.B. Kaliumhexacyanoferrat(III) und dgl., oder ein Hilfs
reagens, wie Acetonitril und dgl., eingesetzt.
Bei Verwendung des vorstehend erwähnten Reaktionsbeschleuni
gers kann die Markierung bei einer Temperatur von 30°C oder
darunter innerhalb von kürzeren Zeitspannen durchgeführt
werden.
Anschließend werden in der vierten Stufe, die in Fig. 1 mit
(d) bezeichnet ist - gegebenenfalls nach Ablauf eines be
stimmten Zeitraums für die Markierung - die nicht umgesetzten
Komponenten oder abgebauten Komponenten in der Adsorpt
le ausgewaschen und die gesuchten Komponentenderivate von der
Adsorptionssäule mit einer Desorptionslösung desorbiert.
Vorzugsweise wird eine Regenerationslösung in die Adsorptions
säule eingeführt, um Globulin und dgl., das an der Adsorptions
säule adsorbiert ist, vor der Desorption der gewünschten Kom
ponentenderivate vollständig zu entfernen. Ein bevorzugtes
Beispiel für eine Regenerationslösung ist eine wäßrige Lösung
eines neutralen Mineralsalzes, wie Natriumchlorid, Kalium
chlorid und Magnesiumchlorid.
Anschließend wird in der fünften Stufe, die in Fig. 1 mit (e)
bezeichnet ist, das gesuchte desorbierte Komponentenderivat
in die Flüssigchromatographie-Trennsäule (HPLC) eingeführt,
um die gesuchte Komponente in die jeweiligen Komponenten auf
zutrennen.
Schließlich wird in einer sechsten Stufe, die in Fig. 1 mit
(f) bezeichnet ist, das Konzentrationsprofil der einzelnen,
durch die Trennsäule getrennten Komponenten durch HPLC er
mittelt, und ein Nachweissignal wird ausgegeben.
Um die Eigenschaften dieser erfindungsgemäßen Ausführungsform
klarer zu machen, ist in Fig. 2 ein Beispiel eines herkömm
lichen Verfahrens gemäß Anal. Biochem., Bd. 155 (1986),
S. 28-33, dargestellt. Dabei ist die erste Stufe (a) von
Fig. 2 identisch mit der in Fig. 1 gezeigten erfindungsgemäßen
Ausführungsform, jedoch werden die zweite bis vierte Stufe
((b) bis (d)) in Fig. 2 in einem Reagensglas außerhalb des
Analysatorsystems und nicht an einer Adsorptionssäule durch
geführt. Nach flüssigchromatographischer Trennung mittels
einer Trennsäule in der fünften Stufe (e) gemäß Fig. 2 wird
in der sechsten Stufe (f) gemäß Fig. 2 ein Konzentrationspro
fil der einzelnen Komponenten ermittelt.
Wie aus Fig. 1 hervorgeht, ermöglicht die erfindungsgemäße
Ausführungsform eine Testdurchführung mit hoher Empfindlich
keit, was darauf zurückzuführen ist, daß keine Verdünnung
der gesuchten Komponenten erforderlich ist, daß vollständige
Proben verarbeitet werden und daß eine Verminderung der Meß
genauigkeit aufgrund von durch eine Ausführung von Hand ver
ursachten Schwankungen in der Reaktionszeit oder aufgrund
einer Beeinträchtigung der gesuchten Komponenten durch Mikro
organismen in der Atmosphäre verhindert wird. Ferner werden
bei dieser erfindungsgemäßen Ausführungsform die zweite und
die dritte Stufe in der gleichen Adsorptionssäule durchge
führt, so daß eine Verkürzung der Zeitspanne für die Markie
rung, eine Verbesserung der Meßgenauigkeit und dgl. erreicht
werden.
In Fig. 3 ist eine bevorzugte Ausführungsform einer Analysen
vorrichtung zur Durchführung des erfindungsgemäßen biochemi
schen Tests schematisch dargestellt. Dabei umfaßt eine Vor
richtung für die Hochleistungs-Flüssigchromatographie einen
mit Desorptionslösung 1 gefüllten Behälter 2, eine Trennsäule
3, einen mit dem Behälter 2 und der Trennsäule 3 verbundenen
Flüssigkeitsweg 4, eine im Fließweg angeordnete Speisepumpe 5
und einen Detektor 6. Die Trennsäule 3 ist ferner über ein
Flüssigkeitsweg-Umschaltventil 7 mit einem automatischen Pro
bennehmer zur Probenzufuhr, der aus einem Drehteller 9, einer
Dosierpumpe 10 und einem Flüssigkeitsweg-Umschaltventil 11 be
steht, verbunden. Ferner ist ein Behälter 13, der mit einer
Einstellösung 12 gefüllt ist, über einen Flüssigkeitsweg 14
mit der Trennsäule 3 verbunden. Eine Flüssigkeitsspeisepumpe
15 zum Zuführen der Einstellösung 12 ist zwischen dem Flüssig
keitsweg-Umschaltventil 11 und dem Behälter im Flüssigkeits
weg 14 angeordnet. Eine mit einem Adsorptionsmittel gepackte
Adsorptionssäule 8 ist mit der Flüssigkeitsspeisepumpe 15 und
der Trennsäule 3 über das Flüssigkeitsweg-Umschaltventil 7
verbunden. Die Trennsäule 3 und die Adsorptionssäule 8 befin
den sich im gleichen Ofen 16. Ferner sind die Flüssigkeitsweg-
Umschaltventile 7 und 11, die Flüssigkeitsspeisepumpen 5 und
15, der Säulenofen 16 und der Detektor 6 mit einer Steuervor
richtung 17 verbunden. Durch diese Steuervorrichtung 17 las
sen sich der zeitliche Ablauf für den Umschaltvorgang der
Flüssigkeitsweg-Umschaltventile 7 und 11, die Flüssigkeits
menge der eingespeisten Lösung, die Temperatur, die Wellen
länge und die Empfindlichkeit steuern.
Die Adsorptionssäule 8 befindet sich vorzugsweise in einem
Thermostaten oder einem Behälter, der auf konstanter Tempera
tur gehalten wird. Dadurch läßt sich die Markierungsgeschwin
digkeit steuern und die Markierung kann bei Temperaturen von
30°C oder darunter durchgeführt werden. Es ist nicht erforder
lich, als Adsorptionssäule eine mehrstufige Säule, z.B. eine
rotierende Säule und dgl., zu verwenden, vielmehr können be
liebige einstufige Säulen eingesetzt werden.
Gemäß dieser Ausführungsform besteht die Desorptionslösung 1
beispielsweise aus Acetonitril, Methanol und Wasser (mit
einem Gehalt an 0,01 m Phosphatpuffer, pH-Wert 7,0) und 0,1 m
Natriumdodecylsulfat) im Verhältnis 5:2:3. Die Einstell
lösung besteht beispielsweise aus 0,01 m Phosphatpuffer vom
(pH-Wert 5,8). Einzelheiten über die Bestandteile sind nach
stehend angegeben.
Adsorptionssäule 8:
Mitsubishi Chemical Industry Co., Ltd. CQK30S (saures Kationenaustauscherharz), 40 mm Innendurchmmesser × 10 mm
Mitsubishi Chemical Industry Co., Ltd. CQK30S (saures Kationenaustauscherharz), 40 mm Innendurchmmesser × 10 mm
Flüssigkeitsweg-Umschaltventil 7:
Rheodyne 600
Rheodyne 600
Flüssigkeitsweg-Umschaltventil 11:
Rheodyne 7125
(ausgerüstet mit einer Betätigungs-Antriebsvorrichtung)
Rheodyne 7125
(ausgerüstet mit einer Betätigungs-Antriebsvorrichtung)
Trennsäule 3:
Hitachi Gel Nr. 3057, 4 mm Innendurchmesser × 150 nm
Hitachi Gel Nr. 3057, 4 mm Innendurchmesser × 150 nm
Ofen 16:
Handfertigung
Handfertigung
Flüssigkeitsweg-Umschaltventil 11, Drehteller 9 und
Dosierpumpe 10:
automatischer Probennehmer, Hichachi 655A-40
automatischer Probennehmer, Hichachi 655A-40
Flüssigkeitsspeisepumpen 5, 15:
Hitachi L6000
Hitachi L6000
Detektor 6:
Hitachi F-1000, Ex = 350 nm, Em = 485 nm
Hitachi F-1000, Ex = 350 nm, Em = 485 nm
Steuergerät 17:
Hitachi L5000
Hitachi L5000
Nachstehend wird die Betriebsweise des biochemischen Analysen
geräts gemäß dieser Ausführungsform näher erläutert. Die Ein
stellösung 12 wird der Adsorptionssäule 8, die z.B. mit einem
Kationenaustauscherharz gepackt ist, in einer Geschwindigkeit
von beispielsweise 1 ml/min mittels der Flüssigkeitsspeise
pumpe 15 über den Flüssigkeitsweg 14 zugeführt. Probenmaterial,
wie Blutserum und dgl., wird in die Adsorptionssäule 8 zusam
men mit der Einstellösung eingespritzt. In diesem Fall ist das
Adsorptionsmittel in der Adsorptionssäule 8 negativ geladen.
Die Catecholamine im Serum sind positiv geladen, so daß es
zu einer Adsorption kommt. Andererseits ist beispielsweise
Albumin im Serum negativ geladen und wird somit aus dem System
beseitigt. In diesem Zustand, in dem die Catecholamine an der
Adsorptionssäule 8 adsorbiert sind, wird ein Derivatisierungs
reagens aus dem automatischen Probennehmer, der aus dem Dreh
teller 9, der Dosierpumpe 10 und dem Flüssigkeitsweg-Umschalt
ventil 11 besteht, eingespritzt, so daß es zur Umsetzung des
Reagens mit den Catecholaminen in der Adsorptionssäule 8
kommt. Dabei können die Flüssigkeitsspeisepumpe 15 gestoppt
oder die Zufuhrmenge variiert werden, um die Reaktionszeit zu
steuern. Nach Ablauf einer bestimmten Zeitspanne wird die
Adsorptionssäule 8 mit der Einstellösung 12 gewaschen, und das
Flüssigkeitsweg-Umschaltventil 7 wird so umgeschaltet, daß die
Desorptionslösung 1 durch die Adsorptionssäule 8 fließt. Die
Catecholaminderivate werden von der Adsorptionssäule 8 desor
biert und gelangen in die Trennsäule 3, wo die Derivate in die
jeweiligen Komponenten aufgetrennt werden. Das Konzentrations
profil dieser einzelnen Komponenten wird mit dem Detektor 6
ermittelt.
Fig. 4 zeigt Chromatogramme, bei denen Blutserum in das vor
stehend beschriebene Analysengerät eingespritzt werden und Catecholamine
unter Verwendung einer mit einem Kationenaustauscherharz gepackten Ad
sorptionssäule und von 1,2-Diphenylethylendiamin als Deriva
tisierungsreagens nachgewiesen wird. Die Messung wird bei
einer Papiervorschubgeschwindigkeit von 10 mm/min und der
Fluoreszenz-Aufzeichnungsempfindlichkeit 10 in einem Bereich
von 10 mV durchgeführt. Die Peaks 1 bis 4 entsprechen den
nachstehend aufgeführten Komponenten:
Peak 1: Norepinephrin
Peak 2: Epinephrin
Peak 3: Dopamin
Peak 4: Isoproterenol
Peak 2: Epinephrin
Peak 3: Dopamin
Peak 4: Isoproterenol
Aus den Meßergebnissen geht hervor, daß Catecholamine mit ho
her Empfindlichkeit nachgewiesen werden können.
Die nachstehenden Beispiele dienen der näheren Erläuterung des
erfindungsgemäßen biochemischen Tests und des Analysengeräts.
Es wird eine Probe verwendet, die durch Versetzen von norma
lem Blutserum mit Catecholaminen hergestellt worden ist. Die
Catecholamine werden in Mengen von 5 pg an der Adsorptions
säule 8 adsorbiert und nachgewiesen. Die erhaltenen Chromato
gramme sind in Fig. 5 angegeben. Die Bedingungen sind die
gleichen wie in der vorstehend beschriebenen Ausführungsform.
Die Analyse wird auf die vorstehend beschriebene Weise durch
geführt mit der Abänderung, daß Modell-Blutserum mit Konzen
trationen von 90 pg/ml Epinephrin, 340 pg/ml Norepinephrin und
50 pg/ml Dopamin verwendet werden. Die Reproduzierbarkeit der
Messung wird untersucht. Die Ergebnisse sind in Tabelle I zu
sammengestellt. In dieser Tabelle sind zu Vergleichszwecken
auch die gemäß dem Stand der Technik erzielten Werte gemäß
Fig. 2 angegeben.
Die Werte von Tabelle I geben auch die Variationskoeffizien
ten an, die durch den Konzentrationsvorgang an der Adsorp
tionssäule verursacht werden. Es ist festzustellen, daß bei
der erfindungsgemäßen Verfahrensweise eine höhere Meßgenauig
keit als beim Verfahren gemäß dem Stand der Technik erzielt
werden kann.
Anschließend wird ein Test der zweiten bevorzugten Ausführungs
form durchgeführt, wobei mit dem Derivatisierungsreagens ein
Reaktionsbeschleuniger verwendet wird und ein Analysengerät
eingesetzt wird, das mit einer in einem Ofen befindlichen Ad
sorptionssäule ausgerüstet ist. Der Ofen wird auf einer Tem
peratur von nicht mehr als 30°C gehalten. Als Derivatisierungs
reagens mit einem Gehalt an einem Reaktionsbeschleuniger wird
ein Lösungsgemisch aus 10 mMol/Liter 1,2-Diphenylethylendiamin
(Derivatisierungsreagens), 20 mMol/Liter Ammoniummolybdat
(Reaktionsbeschleuniger), 0,5 mMol Galliumhexacyanoferrat(III)
(Oxidationsmittel) und 40% Acetonitril verwendet. Die Adsorp
tionssäule wird auf einer Temperatur von 20°C gehalten. Der
folgende Test wird unter den Bedingungen der vorstehend be
schriebenen Ausführungsform durchgeführt.
Eine Probe (1 ml) mit einem Gehalt an 5, 10, 20 bzw. 40 pg
Norepinephrin, Epinephrin, Dopamin bzw. Isoproterenol wird in
die Analysenvorrichtung eingespritzt. Die erhaltenen Chromato
gramme sind in Fig. 6 angegeben. Die Bedingungen entsprechen
der vorstehend beschriebenen Ausführungsform, bei einer
Fluoreszenz-Aufzeichnungsempfindlichkeit von 10 in einem
Aufzeichnungsbereich von 10 mV und bei einer Papiervorschub
geschwindigkeit von 10 mm/min. Es ergeben sich folgende Peaks
1 bis 4.
Peak 1: Norepinephrin
Peak 2: Epinephrin
Peak 3: Dopamin
Peak 4: Isoproterenol
Peak 2: Epinephrin
Peak 3: Dopamin
Peak 4: Isoproterenol
Aus Fig. 6 geht hervor, daß sich die Catecholamine innerhalb
kurzer Zeit mit hoher Empfindlichkeit nachweisen lassen.
Wie vorstehend erläutert, lassen sich erfindungsgemäß die ge
suchten Komponenten, wie Catecholamine und dgl., nach Adsorp
tion an der Adsorptionssäule mit dem Derivatisierungsreagens
umsetzen. Die Temperatur der Derivatisierungsreaktion kann
gesteuert werden. Daher bewirkt das erfindungsgemäße Verfahren
eine Verkürzung der Reaktionszeit für die Derivatisierungs
reaktion, eine genaue Steuerung und eine verbesserte Testge
nauigkeit, da Verunreinigungen und nicht-umgesetzte Komponen
ten und dgl. herausgewaschen werden.
Claims (16)
1. Verfahren zur Durchführung von biochemischen Tests,
gekennzeichnet durch
- - eine erste Stufe, bei dem Probenmaterial zur Herstel lung einer Probe vorbereitet oder eingestellt wird;
- - eine zweite Stufe, bei der die Probe auf eine mit einem Adsorptionsmittel gepackte Säule aufgesetzt und über diese Säule gegeben wird, um die gesuchte Komponente an der Adsorptionssäule zu adsorbieren;
- - eine dritte Stufe, bei der ein Derivatisierungsreagens zugeführt wird, um Derivate der gesuchten Komponenten zu bilden;
- - eine vierte Stufe, bei der eine Desorptionslösung in die Adsorptionssäule eingeführt wird, um die Derivate der gesuchten Komponenten, die in der Adsorptionssäule festgehalten sind, zu desorbieren;
- - eine fünfte Stufe, bei der die Derivate der gesuchten Komponenten in die jeweiligen Komponenten aufgetrennt werden; und
- - eine sechste Stufe, bei der ein Konzentrationsprofil der jeweiligen aufgetrennten Komponenten ermittelt wird, um ein Nachweissignal auszugeben.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
die Temperatur der Adsorptionssäule derart eingestellt
wird, daß die Geschwindigkeit der Derivatisierungsreak
tion der gesuchten Komponenten in der Adsorptionssäule
gesteuert wird.
3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
es sich bei den gesuchten Komponenten in der Probe um
Catecholamine handelt.
4. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
zusammen mit dem Derivatisierungsreagens ein Reaktions
schleuniger zugesetzt wird.
5. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
nach der dritten Stufe der Adsorptionssäule eine Regene
rationslösung zugeführt wird.
6. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
als Adsorptionssäule eine einstufige Säule und keine ro
tierende Säule verwendet wird.
7. Verfahren zur Durchführung von biochemischen Tests, ge
kennzeichnet durch
- - eine erste Stufe, bei dem Probenmaterial zur Herstel lung einer Probe mit einem Gehalt an Catecholaminen vor bereitet oder eingestellt wird;
- - eine zweite Stufe, bei der die Probe auf eine mit einem Adsorptionsmittel gepackte Säule aufgesetzt und über die Säule gegeben wird, um die Catecholamine an der Ad sorptionssäule zu adsorbieren;
- - eine dritte Stufe, bei der ein Derivatisierungsreagens und ein Reaktionsbeschleuniger zugeführt werden;
- - eine vierte Stufe, bei der eine Desorptionslösung in die Adsorptionssäule eingeführt wird, um die in der Adsorptionssäule festgehaltenen Catecholaminderivate zu desorbieren;
- - eine fünfte Stufe, bei der die Catecholaminderivate in die jeweiligen Komponenten aufgetrennt werden; und
- - eine sechste Stufe, bei der eine Konzentrationsänderung der jeweiligen aufgetrennten Komponenten festgestellt wird, um ein Nachweissignal auszugeben.
8. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß
1,2-Diphenyläthylendiamin als Derivatisierungsreagens und
ein Salz eines Metalloxids als Reaktionsbeschleuniger ver
wendet werden.
9. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß
es sich bei dem Salz eines Metalloxids um ein Wolframat,
Niobat oder Chromat handelt.
10. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß
nach der dritten Stufe eine Regenerationslösung in die Ad
sorptionssäule eingeführt wird.
11. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß
es sich bei der Regenerationslösung um eine wäßrige Lösung
eines neutralen Mineralsalzes handelt.
12. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß
als Adsorptionssäule eine einstufige Säule und keine ro
tierende Säule verwendet wird.
13. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß
die Adsorptionssäule auf einer Temperatur von nicht mehr
als 30°C gehalten wird.
14. Analysenvorrichtung zur Durchführung von biochemischen
Tests, gekennzeichnet durch eine Pumpe zum Zuführen einer
Probe, eine Trennsäule zum Abtrennen der gesuchten Kom
ponenten von der Probe und einen Detektor zum Nachweis
einer Konzentrationsänderung der jeweiligen Komponenten
in dem von der Trennsäule abgegebenen Eluat, wobei in
einem Flüssigkeitsweg, der die Pumpe mit der Trennsäule
verbindet, ein Flüssigkeitsweg-Umschaltventil vorgesehen
ist und die mit einem Adsorptionsmittel gepackte Säule
über dieses Flüssigkeitsweg-Umschaltventil verbunden ist.
15. Vorrichtung nach Anspruch 14, dadurch gekennzeichnet, daß
die Adsorptionssäule in einem auf konstanter Temperatur
gehaltenen Behälter eingeschlossen ist.
16. Vorrichtung nach Anspruch 14, dadurch gekennzeichnet, daß
es sich bei der Adsorptionsäule um eine einstufige Säule
handelt.
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Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
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JP (1) | JPH01126544A (de) |
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Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE4032963A1 (de) * | 1989-10-20 | 1991-05-02 | Hitachi Ltd | Fluessigphasenchromatographie-analysator, probenzufuehrung und verfahren zur vormarkierung |
EP0429082A2 (de) * | 1989-11-22 | 1991-05-29 | Hitachi, Ltd. | Verfahren zur Analyse von Catecholamin |
DE4041411A1 (de) * | 1990-01-08 | 1991-07-11 | Hitachi Ltd | Chromatographieverfahren zum analysieren biologischer proben und mit einem solchen verfahren arbeitender fluessigphasenchromatographie-anlaysator |
Families Citing this family (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2834224B2 (ja) * | 1989-10-18 | 1998-12-09 | 株式会社日立製作所 | 液体クロマトグラフィーによる試料の分析装置 |
JPH049756A (ja) * | 1990-04-27 | 1992-01-14 | Hitachi Ltd | 液体クロマトグラフ分析システム |
JP3131439B2 (ja) * | 1990-09-21 | 2001-01-31 | 株式会社日立製作所 | 液体クロマトグラフ装置 |
US5462660A (en) * | 1994-04-22 | 1995-10-31 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture | High performance liquid chromatography injection system for the simultaneous concentration and analysis of trace components |
JP2824443B2 (ja) * | 1994-05-12 | 1998-11-11 | ティ・エフ・シィ株式会社 | 分取用液体クロマトグラフィ装置 |
ATE419911T1 (de) * | 1999-04-23 | 2009-01-15 | Advion Biosystems Inc | Parallel ausgeführte flüssigkeitschromatographievorrichtung mit hohem durchsatz |
WO2002000452A1 (fr) * | 2000-06-29 | 2002-01-03 | Société de Technologie Michelin | Pneumatique a structure d'ancrage d'armature de carcasse perfectionnée |
JP2005274565A (ja) * | 2004-02-27 | 2005-10-06 | Kobelco Kaken:Kk | 大気中の有機砒素化学剤の分析方法およびその装置 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH06256460A (ja) * | 1993-01-08 | 1994-09-13 | Nippon Polyurethane Ind Co Ltd | 有機ポリイソシアネート組成物、およびそれを用いた発泡体の製造方法 |
Family Cites Families (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
BE755803A (fr) * | 1969-09-09 | 1971-03-08 | Merck Patent Gmbh | Procede de determination de metabolites de catecholamine et de serotonine |
GB1354286A (en) * | 1970-05-13 | 1974-05-22 | Bagshawe K D | Performance of routine chemical reactions |
CA983358A (en) * | 1971-09-08 | 1976-02-10 | Kenneth D. Bagshawe | Performance of chemical or biological reactions |
JPS58113748A (ja) * | 1981-12-26 | 1983-07-06 | Jeol Ltd | プレラベリング装置 |
JPS60205262A (ja) * | 1984-03-29 | 1985-10-16 | Doujin Kagaku Kenkyusho:Kk | 1,2−ジフエニルエチレンジアミンを用いるカテコ−ルアミンの定量方法 |
JPS6188148A (ja) * | 1984-10-05 | 1986-05-06 | Oyo Bunkou Kiki Kk | 螢光分光検出器を使用した高速液体クロマトグラフイ−のためのカテコ−ルアミンの前処理方法 |
DE3617805A1 (de) * | 1986-05-27 | 1987-12-03 | Merck Patent Gmbh | Nitro-modifizierte chromatographische traegermaterialien, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung |
-
1987
- 1987-11-11 JP JP62283322A patent/JPH01126544A/ja active Pending
-
1988
- 1988-11-04 US US07/267,293 patent/US5093267A/en not_active Expired - Fee Related
- 1988-11-11 DE DE3838385A patent/DE3838385A1/de active Granted
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH06256460A (ja) * | 1993-01-08 | 1994-09-13 | Nippon Polyurethane Ind Co Ltd | 有機ポリイソシアネート組成物、およびそれを用いた発泡体の製造方法 |
Non-Patent Citations (6)
Title |
---|
Analysis, Februar 1987, S. 100-105 * |
Analyt. Biochem., Vol. 133(1983), S. 330-335 * |
Analyt. Biochem., Vol. 155(1986), S. 28-33 * |
J. Chromatogr. Library, "The Science of Chromatography", Bd. 32(1985), S. 435-447 * |
J. of Chromatogr., Vol. 344(1985), S. 60-71 * |
Journal of Chromatography, Vol. 303 (1984), S. 238-243 * |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE4032963A1 (de) * | 1989-10-20 | 1991-05-02 | Hitachi Ltd | Fluessigphasenchromatographie-analysator, probenzufuehrung und verfahren zur vormarkierung |
EP0429082A2 (de) * | 1989-11-22 | 1991-05-29 | Hitachi, Ltd. | Verfahren zur Analyse von Catecholamin |
EP0429082A3 (en) * | 1989-11-22 | 1992-03-18 | Hitachi, Ltd. | Method for analysis of catecholamine |
US5212097A (en) * | 1989-11-22 | 1993-05-18 | Hitachi, Ltd. | Method for analysis of catecholamine |
DE4041411A1 (de) * | 1990-01-08 | 1991-07-11 | Hitachi Ltd | Chromatographieverfahren zum analysieren biologischer proben und mit einem solchen verfahren arbeitender fluessigphasenchromatographie-anlaysator |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH01126544A (ja) | 1989-05-18 |
US5093267A (en) | 1992-03-03 |
DE3838385C2 (de) | 1991-10-24 |
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