DE3688163T2 - Verfahren zur Rückgewinnung von extrazellulären Enzymen aus gesamten Fermentationsbrühen. - Google Patents
Verfahren zur Rückgewinnung von extrazellulären Enzymen aus gesamten Fermentationsbrühen.Info
- Publication number
- DE3688163T2 DE3688163T2 DE86111604T DE3688163T DE3688163T2 DE 3688163 T2 DE3688163 T2 DE 3688163T2 DE 86111604 T DE86111604 T DE 86111604T DE 3688163 T DE3688163 T DE 3688163T DE 3688163 T2 DE3688163 T2 DE 3688163T2
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- fermentation broth
- mixture
- weight
- phase
- polyethylene glycol
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 title claims description 61
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 title claims description 61
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 title claims description 57
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 title claims description 57
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 27
- 235000010633 broth Nutrition 0.000 title description 35
- 238000011084 recovery Methods 0.000 title description 4
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 65
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 claims description 60
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 claims description 45
- 239000002202 Polyethylene glycol Substances 0.000 claims description 42
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 claims description 32
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 25
- PMZURENOXWZQFD-UHFFFAOYSA-L Sodium Sulfate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]S([O-])(=O)=O PMZURENOXWZQFD-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 21
- 229910052938 sodium sulfate Inorganic materials 0.000 claims description 21
- 235000011152 sodium sulphate Nutrition 0.000 claims description 21
- LLSDKQJKOVVTOJ-UHFFFAOYSA-L calcium chloride dihydrate Chemical compound O.O.[Cl-].[Cl-].[Ca+2] LLSDKQJKOVVTOJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 20
- 229940052299 calcium chloride dihydrate Drugs 0.000 claims description 20
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 claims description 19
- 239000000654 additive Substances 0.000 claims description 18
- 229910017053 inorganic salt Inorganic materials 0.000 claims description 18
- LWIHDJKSTIGBAC-UHFFFAOYSA-K potassium phosphate Substances [K+].[K+].[K+].[O-]P([O-])([O-])=O LWIHDJKSTIGBAC-UHFFFAOYSA-K 0.000 claims description 17
- 229910000402 monopotassium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 16
- 235000019796 monopotassium phosphate Nutrition 0.000 claims description 16
- GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M potassium dihydrogen phosphate Chemical compound [K+].OP(O)([O-])=O GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 16
- 239000001488 sodium phosphate Substances 0.000 claims description 16
- 229910000403 monosodium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 15
- 235000019799 monosodium phosphate Nutrition 0.000 claims description 15
- 239000004382 Amylase Substances 0.000 claims description 13
- 102000013142 Amylases Human genes 0.000 claims description 13
- 108010065511 Amylases Proteins 0.000 claims description 13
- 235000019418 amylase Nutrition 0.000 claims description 13
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 13
- AXCZMVOFGPJBDE-UHFFFAOYSA-L calcium dihydroxide Chemical compound [OH-].[OH-].[Ca+2] AXCZMVOFGPJBDE-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 11
- KEAYESYHFKHZAL-UHFFFAOYSA-N Sodium Chemical compound [Na] KEAYESYHFKHZAL-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 10
- 230000000996 additive effect Effects 0.000 claims description 10
- 238000000926 separation method Methods 0.000 claims description 10
- 239000000920 calcium hydroxide Substances 0.000 claims description 9
- 229910001861 calcium hydroxide Inorganic materials 0.000 claims description 9
- 229920001451 polypropylene glycol Polymers 0.000 claims description 9
- 108091005658 Basic proteases Proteins 0.000 claims description 8
- 102000004139 alpha-Amylases Human genes 0.000 claims description 8
- 108090000637 alpha-Amylases Proteins 0.000 claims description 8
- 229940024171 alpha-amylase Drugs 0.000 claims description 8
- 241000194108 Bacillus licheniformis Species 0.000 claims description 7
- -1 poly(ethylene glycol) Polymers 0.000 claims description 7
- 150000001412 amines Chemical class 0.000 claims description 6
- 150000007942 carboxylates Chemical class 0.000 claims description 6
- 244000005700 microbiome Species 0.000 claims description 6
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims description 6
- AJPJDKMHJJGVTQ-UHFFFAOYSA-M sodium dihydrogen phosphate Chemical compound [Na+].OP(O)([O-])=O AJPJDKMHJJGVTQ-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 5
- 241000193744 Bacillus amyloliquefaciens Species 0.000 claims description 4
- 229920000036 polyvinylpyrrolidone Polymers 0.000 claims description 4
- 239000001267 polyvinylpyrrolidone Substances 0.000 claims description 4
- 235000013855 polyvinylpyrrolidone Nutrition 0.000 claims description 4
- 239000011833 salt mixture Substances 0.000 claims description 4
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 claims description 3
- 229920002873 Polyethylenimine Polymers 0.000 claims description 3
- 239000004372 Polyvinyl alcohol Substances 0.000 claims description 3
- 150000002148 esters Chemical class 0.000 claims description 3
- 229920002451 polyvinyl alcohol Polymers 0.000 claims description 3
- 239000011734 sodium Substances 0.000 claims description 3
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 claims description 3
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-O Ammonium Chemical compound [NH4+] QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-O 0.000 claims description 2
- FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N Magnesium Chemical compound [Mg] FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 claims description 2
- ZLMJMSJWJFRBEC-UHFFFAOYSA-N Potassium Chemical compound [K] ZLMJMSJWJFRBEC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 150000001450 anions Chemical class 0.000 claims description 2
- 150000004649 carbonic acid derivatives Chemical class 0.000 claims description 2
- 150000001768 cations Chemical class 0.000 claims description 2
- 150000003841 chloride salts Chemical class 0.000 claims description 2
- 150000001860 citric acid derivatives Chemical class 0.000 claims description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 claims description 2
- 238000000605 extraction Methods 0.000 claims description 2
- 239000011777 magnesium Substances 0.000 claims description 2
- 229910052749 magnesium Inorganic materials 0.000 claims description 2
- 235000021317 phosphate Nutrition 0.000 claims description 2
- 150000003013 phosphoric acid derivatives Chemical class 0.000 claims description 2
- 239000011591 potassium Substances 0.000 claims description 2
- 229910052700 potassium Inorganic materials 0.000 claims description 2
- 150000003467 sulfuric acid derivatives Chemical class 0.000 claims description 2
- ZNRSXPDDVNZGEN-UHFFFAOYSA-K trisodium;chloride;sulfate Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].[Cl-].[O-]S([O-])(=O)=O ZNRSXPDDVNZGEN-UHFFFAOYSA-K 0.000 claims 2
- LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N Ethylene glycol Chemical compound OCCO LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 31
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 30
- WGCNASOHLSPBMP-UHFFFAOYSA-N hydroxyacetaldehyde Natural products OCC=O WGCNASOHLSPBMP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 16
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 10
- 238000005192 partition Methods 0.000 description 10
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 9
- 239000004365 Protease Substances 0.000 description 9
- 102100037486 Reverse transcriptase/ribonuclease H Human genes 0.000 description 9
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 9
- 230000003834 intracellular effect Effects 0.000 description 8
- 239000000047 product Substances 0.000 description 8
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 8
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 5
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 5
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 5
- 229920002307 Dextran Polymers 0.000 description 4
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 4
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 239000002518 antifoaming agent Substances 0.000 description 3
- 239000003599 detergent Substances 0.000 description 3
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 3
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 3
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 3
- VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L Calcium carbonate Chemical compound [Ca+2].[O-]C([O-])=O VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 235000010469 Glycine max Nutrition 0.000 description 2
- GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N Lactose Natural products OC[C@H]1O[C@@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)C(O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N 0.000 description 2
- 240000008042 Zea mays Species 0.000 description 2
- 235000005824 Zea mays ssp. parviglumis Nutrition 0.000 description 2
- 235000002017 Zea mays subsp mays Nutrition 0.000 description 2
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 2
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 2
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 2
- 235000005822 corn Nutrition 0.000 description 2
- 239000013078 crystal Substances 0.000 description 2
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 2
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 2
- 238000005189 flocculation Methods 0.000 description 2
- 230000016615 flocculation Effects 0.000 description 2
- 235000013312 flour Nutrition 0.000 description 2
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 2
- 239000008101 lactose Substances 0.000 description 2
- 230000000737 periodic effect Effects 0.000 description 2
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 2
- 239000001509 sodium citrate Substances 0.000 description 2
- NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K sodium citrate Chemical compound O.O.[Na+].[Na+].[Na+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 2
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 2
- 244000063299 Bacillus subtilis Species 0.000 description 1
- 235000014469 Bacillus subtilis Nutrition 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 229920002261 Corn starch Polymers 0.000 description 1
- 239000005696 Diammonium phosphate Substances 0.000 description 1
- 101710089384 Extracellular protease Proteins 0.000 description 1
- 235000019733 Fish meal Nutrition 0.000 description 1
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 1
- 108010068370 Glutens Proteins 0.000 description 1
- 239000004698 Polyethylene Substances 0.000 description 1
- 239000004721 Polyphenylene oxide Substances 0.000 description 1
- 241000235403 Rhizomucor miehei Species 0.000 description 1
- XIUMQSREFXCDGE-UHFFFAOYSA-L S(=O)(=O)([O-])O.[Na+].[Cl-].[Na+] Chemical compound S(=O)(=O)([O-])O.[Na+].[Cl-].[Na+] XIUMQSREFXCDGE-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 1
- 235000019764 Soybean Meal Nutrition 0.000 description 1
- 241000209140 Triticum Species 0.000 description 1
- 235000021307 Triticum Nutrition 0.000 description 1
- BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N ammonium sulfate Chemical compound N.N.OS(O)(=O)=O BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052921 ammonium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011130 ammonium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 229910000019 calcium carbonate Inorganic materials 0.000 description 1
- 229920003118 cationic copolymer Polymers 0.000 description 1
- 125000002091 cationic group Chemical group 0.000 description 1
- 239000008120 corn starch Substances 0.000 description 1
- 235000012343 cottonseed oil Nutrition 0.000 description 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 1
- MNNHAPBLZZVQHP-UHFFFAOYSA-N diammonium hydrogen phosphate Chemical compound [NH4+].[NH4+].OP([O-])([O-])=O MNNHAPBLZZVQHP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910000388 diammonium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019838 diammonium phosphate Nutrition 0.000 description 1
- ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L dipotassium hydrogen phosphate Chemical compound [K+].[K+].OP([O-])([O-])=O ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229910000396 dipotassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019797 dipotassium phosphate Nutrition 0.000 description 1
- BNIILDVGGAEEIG-UHFFFAOYSA-L disodium hydrogen phosphate Chemical compound [Na+].[Na+].OP([O-])([O-])=O BNIILDVGGAEEIG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229910000397 disodium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019800 disodium phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 239000004467 fishmeal Substances 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 235000021312 gluten Nutrition 0.000 description 1
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 1
- 150000002334 glycols Chemical class 0.000 description 1
- 229920006158 high molecular weight polymer Polymers 0.000 description 1
- 239000003262 industrial enzyme Substances 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 235000012054 meals Nutrition 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 229920000768 polyamine Polymers 0.000 description 1
- 229920000728 polyester Polymers 0.000 description 1
- 229920000570 polyether Polymers 0.000 description 1
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 description 1
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 1
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 1
- 229940108461 rennet Drugs 0.000 description 1
- 108010058314 rennet Proteins 0.000 description 1
- 239000004455 soybean meal Substances 0.000 description 1
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 1
- 239000007858 starting material Substances 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 150000005846 sugar alcohols Polymers 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2408—Glucanases acting on alpha -1,4-glucosidic bonds
- C12N9/2411—Amylases
- C12N9/2414—Alpha-amylase (3.2.1.1.)
- C12N9/2417—Alpha-amylase (3.2.1.1.) from microbiological source
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/48—Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
- C12N9/50—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
- C12N9/52—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from bacteria or Archaea
- C12N9/54—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from bacteria or Archaea bacteria being Bacillus
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/814—Enzyme separation or purification
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/814—Enzyme separation or purification
- Y10S435/816—Enzyme separation or purification by solubility
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
- Die Erfindung betrifft die Gewinnung extrazellulärer Enzyme aus gesamter Fermentationsbrühe durch Zugabe eines Gemisches aus einem Polymer und einem anorganischen Salz zu der gesamten Brühe.
- Die Herstellung industrieller Enzyme durch Züchten von Mikroorganismen wie Bakterien, Pilzen und Hefe in wässerigen Nährmedien ist gut bekannt. In Abhängigkeit von der Natur des einzelnen Mikroorganismus kann/können die/das erzeugte/n Enzym/e extrazellulär, intrazellulär oder als ein Gemisch davon erzeugt werden. Wenn die/das erzeugte/n Enzym/e extrazellulärer Natur sind/ist, werden sie im allgemeinen durch erstes Abtrennen des enzymhaltigen Überstands von den Mikroorganismuszellen und anschließendes Gewinnen der/des Enzyms/e aus dem Überstand durch bekannte Verfahren, wie Fällen, Ultrafiltration und Eindampfen erhalten. Wenn das/die erzeugte/n Enzym/e intrazellulärer Natur sind, müssen sie zuerst aus den Zellen freigesetzt werden. Dies kann chemisch und/oder mechanisch geschehen. Die Enzyme werden zunächst in eine Lösung gegeben, sie können jedoch ebenso durch vorstehend erwähnte bekannte Verfahren gewonnen werden.
- Es ist bekannt, daß extrazelluläre Enzyme Zusammensetzungen und Eigenschaften aufweisen, die sich von intrazellulären Enzymen unterscheiden. Extrazelluläre Enzyme, z. B. weisen im allgemeinen bedeutend niedrigere Molekulargewichte auf als intrazelluläre Enzyme. Die Lösung, die aus den Zellen freigesetzte zelluläre Enzyme enthält, beinhaltet auch bedeutende Mengen anderen intrazellulären Materials, das nicht in einer gesamten Fermentationsbrühe, die extrazelluläre Enzyme enthält, vorliegt. Diese Unterschiede können verschiedene Verfahrensweisen, die zur Gewinnung und Reinigung davon in wässeriger Lösung angewendet werden, bewirken. Ein zur Gewinnung von intrazellulären Enzymen geeignetes Verfahren ist somit nicht automatisch für extrazelluläre Enzyme brauchbar.
- Um die Wirksamkeit und die Zweckmäßigkeit der Enzymerzeugung und Gewinnung zu verbessern, ist es bekannt, daß Enzyme durch Fermentation eines Mikroorganismus in einem Zweiphasennährmedium erzeugt werden können, das ein Gemisch aus Polyethylenglycol und Dextran enthält. Nach Ablauf der Fermentation wird das extrazelluläre Enzym in der oberen Polyethylenglycolphase konzentriert, während die Zellen und andere Fermentationsprodukte in der unteren Dextranphase angereichert werden. Dies wurde in Enzyme and Microb. Technol. Bd. 7, 333-338 (1985) beschrieben. Der Verteilungskoeffizient für α-Amylase in dem System hatte zum Beispiel ein Maximum von 4.
- Eine Variante des vorstehenden Verfahrens ist in der US-Patentschrift Nr. 4 508 825 beschrieben, wobei der extrazelluläre enzymhaltige Überstand von den Zellen abgetrennt wird und der zellfreie Überstand mit Polyethylenglycol und einem kationischen Epihalogenhydrin/Polyamincopolymer oder Dextranpolymer unter Bildung von zwei Phasen gemischt wird. Diese Technik kann zum Trennen extrazellulärer Protease und Amylase verwendet werden, wobei die Protease in der Polyethylenglycolphase konzentriert wird und die Amylase sich in der kationischen Copolymer- oder Dextranphase anreichert.
- Zweiphasenenzymgewinnungsverfahren wurden auch auf intrazelluläre Enzyme angewendet. Die US-Patentschrift 4 144 130 beschreibt die Verwendung von (1) einem Gemisch unsubstituierten oder substituierten Polyalkohols, Polyethers, Polyesters, Polyvinylpyrrolidons oder Polysaccharids hohen Molekulargewichts und einem anorganischen Salz oder (2) eines Gemisches von mindestens 2 der vorstehend genannten Polymeren hohen Molekulargewichts zur Gewinnung intrazellulärer, aus Zellen in eine wässerige Lösung freigesetzter Enzyme. Wenn ein Gemisch von Polyethylen und einem anorganischen Salz zum Beispiel verwendet wird, geht das gewünschte intrazelluläre Enzym in die obere Polyethylenglycolschicht über, während die Zelltrümmer und andere Fermentationsprodukte in die untere salzhaltige Schicht übergehen. Der Verteilungskoeffizient für verschiedene in der Glycolschicht gewonnene Enzyme betrug etwa 0,3, wenn die gesamte Fermentationsbrühe behandelt wurde. Der Verteilungskoeffizient wurde auf lediglich etwa 3 erhöht, wenn gefrorene Zellen mit Wasser vermischt werden und zur Freisetzung ihrer Enzyme aufgebrochen wurden.
- Die Zugabe von Polyethylenglycol bei der Unterstützung anorganischer Salze zur Fällung von Enzymen aus zellfreiem Überstand ist in der US-Patentschrift Nr. 4 016 039 offenbart.
- Es gibt im Stand der Technik keinen Hinweis darauf, daß Polyethylenglycol und anorganische Salze in einem Zweiphasenverfahren zur Gewinnung extrazellulärer Enzyme mit einem Verteilungskoeffizienten von mindestens 50 aus gesamter Fermentationsbrühe verwendet werden könnten.
- Gemäß vorliegender Erfindung wird ein Verfahren zur Gewinnung eines extrazellulären Enzyms aus gesamter Fermentationsbrühe bereitgestellt, umfassend die Zugabe zu der gesamten Fermentationsbrühe, enthaltend Mikroorganismuszellen und ein extrazelluläres Enzym, einer Mischung von 1,5 -5,0% Calciumchlorid-dihydrat, 0,1-1,2% Mononatrium- oder Monokaliumphosphat und 0-0,6% Calciumhydroxid, wobei besagte Prozentangaben auf Gewicht/Volumen-Basis bezogen sind, berechnet auf das Gewicht des Zusatzes zu dem Volumen der Fermentationsbrühe und danach das Zusetzen einer Mischung von (a) einem Polymer, ausgewählt aus der Klasse, bestehend aus Polyethylenglycol, einem Aminderivat von Polyethylenglycol, einem Carboxylatderivat von Polyethylenglycol, Polypropylenglycol, einem Aminderivat von Polypropylenglycol, einem Carboxylatderivat von Polypropylenglycol, Poly(ethylenglycol)ester, Polyethylenimin, Trimethylamino-polyethylenglycol, Polyvinylalkohol, Polyvinylpyrrolidon und Mischungen davon und (b) einem anorganischen Salz, das es der gesamten Fermentationsbrühe-Polymer-Salz-Mischung erlaubt, sich in eine enzymreiche Polymerphase und eine enzymarme Salzphase zu scheiden und die Gewinnung eines enzymreichen Produkts daraus.
- Die extrazelluläre Enzyme enthaltenden gesamten Fermentationsbrühen, die als Ausgangsmaterial für das erfindungsgemäße Verfahren verwendbar sind, sind im Stand der Technik bekannt. Bacillus licheniformis, Bacillus amyloliquefaciens, Bacillus subtilis und Mucor miehei, zum Beispiel sind dafür bekannt, daß sie extrazelluläre Enzyme erzeugen wie Protease, Amylase und mikrobielles Lab, wenn sie in einem geeigneten Nährmedium wachsen. Das erhaltene Gemisch von Zelltrümmern, extrazellulären löslichen Enzymen und anderen Fermentationsprodukten kann in dem erfindungsgemäßen Verfahren ohne weitere Abtrennung der Zelltrümmer von den löslichen Enzymen angewandt werden. Der hier verwendete Ausdruck "Zelltrümmer" bedeutet ganze Zellen sowie Zellfragmente.
- Die gesamte Fermentationsbrühe wird mit einem Polymer und einem anorganischen Salz zur Bildung eines Zweiphasensystems vermischt. Das gewünschte extrazelluläre Enzym wird in der Polymerphase angereichert, während die Zelltrümmer sich in der Salzphase ansammeln.
- Geeignete Polymere sind Polyethylenglycol, ein Aminderivat von Polyethylenglycol, ein Carboxylatderivat von Polyethylenglycol, Polypropylenglycol, ein Aminderivat von Polypropylenglycol, ein Carboxylatderivat von Polypropylenglycol, Poly(ethylenglycol)ester, Polyethylenimin, Trimethylamino-polyethylenglycol, Polyvinylalkohol, Polyvinylpyrrolidon und Gemische davon. Das bevorzugte Polymer ist Polyethylenglycol. Jegliche in der gesamten wässerigen Fermentationsbrühe lösliche Form von Polyethylenglycol ist geeignet. Ein besonders brauchbares Polyethylenglycol weist ein Molekulargewicht von etwa 3350 auf. Es ist bei Umgebungstemperatur fest und kann mühelos im industriellen Maßstab gehandhabt werden.
- Das anorganische Salz kann von Verbindungen stammen, worin die Kationen Natrium, Kalium, Magnesium und Ammonium und die Anionen Sulfate, Carbonate, Citrate, Chloride, Phosphate und Gemische davon sind. Bevorzugte Salze sind Natriumchlorid und Natriumsulfat.
- Das Polymer und das anorganische Salz werden zusammen zu der gesamten Fermentationsbrühe in Mengen unter Bildung eines Gesamtgemisches gegeben, das 64-90% gesamte Fermentationsbrühe, 1-15% Polymer und 8-35% anorganisches Salz enthält, wobei die prozentualen Angaben auf das Gewicht bezogen sind, auf der Basis des Gesamtgewichtes des Gemisches. Es ist bevorzugt, daß das gesamte Gemisch 73-79% gesamte Fermentationsbrühe, 3-4% Polymer und 15-24% anorganisches Salz enthält.
- Nach Zugabe des Polymers und des Salzes bilden sich zwei Phasen. Die Polymerphase befindet sich gewöhnlich oberhalb der Salzphase. Die zwei Phasen können sich durch Absetzenlassen bilden, wobei das Gemisch für etwa 5 Stunden ungestört stehengelassen wird. Die enzymhaltige Polymerphase kann dann durch ein übliches flüssig/flüssig Trennverfahren, wie Hebern und Dekantieren unter Gewinnung des Enzyms getrennt werden. Es ist jedoch bevorzugt, Zentrifugieren zum Trennen der Phasen zu verwenden. Eine brauchbare Trenneinrichtung ist eine kontinuierliche Festkesselzentrifuge. Um eine gewünschte Konzentration des Enzyms in der letztlich abgetrennten Polymerphase zu erreichen, ist es bevorzugt, daß das Volumenverhältnis der enzymreichen Polymerphase zur enzymarmen Salzphase 0,12-0,15 beträgt.
- Zur wirksamsten Gewinnung des extrazellulären Enzyms sollte die Zentrifuge so betrieben werden, daß nichts von der Polymerphase mit der zu verwerfenden Salzphase fortgerissen wird. Die erhaltene gesammelte Polymerphase kann etwas mitgerissene Salzphase vermischt darin enthalten. Das Gemisch wird dann einer zweiten Zentrifugaltrennung unterzogen, wobei die Zentrifuge so betrieben wird, das nichts der Polymerphase mit der Salzphase mitgerissen wird und nur ein geringer Anteil der Salzphase mit der Polymerphase mitgerissen wird.
- Die so gesammelte enzymreiche Polymerphase kann direkt als Enzymquelle verwendet werden. Eine in einer Polyethylenglycolphase isolierte alkalische Protease ist zum Beispiel für Enzymwaschmittelformulierungen geeignet. Das Glycol ist als Stabilisator für das Enzym geeignet. Falls erwünscht, kann das Enzym aus dem Polymer durch an sich bekannte Verfahren wie Fällung, Ultrafiltration oder Eindampfen unter Herstellung eines im wesentlichen polymerfreien Enzymprodukts abgetrennt werden.
- In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform der vorliegenden Erfindung wird die gesamte Fermentationsbrühe mit einem Gemisch von 1,5-5,0% Calciumchlorid-dihydrat, 0,1-1,2% Mononatrium- oder Monokaliumphosphat und 0-0,6% Calciumhydroxid vorbehandelt, wobei die prozentualen Anteile auf einer Gewichts/Volumenbasis auf dem Gewicht von Additiv zu Volumen der Fermentationsbrühe berechnet wurde. Dieser Vorbehandlungsschritt unterstützt das Ausflocken der Zelltrümmer und verbessert die Abtrennung des Enzyms von den Zelltrümmern, wenn das Polymer und das anorganische Salz nacheinander zugegeben werden. Vorzugsweise sollte der Vorbehandlungsschritt, wenn eine Protease gewonnen wird, 1,5-5,0% Calciumchlorid-dihydrat und 0,2-1,2% Mononatrium- oder Monokaliumphosphat zur Anwendung bringen. Wenn eine Amylase isoliert werden soll, so sollte der Vorbehandlungsschritt 1,5-5,0% Calciumchlorid-dihydrat, 0,1- 1,2% Mononatrium- oder Monokaliumphosphat und 0,1-0,6% Calciumhydroxid zur Anwendung bringen.
- Der Verteilungskoeffizient ist auf dem technischen Gebiet als Maß für die Wirksamkeit der Trennung bekannt. Er wird ausgedrückt als Enzymaktivitätskonzentration im Oberen der Polymerphase geteilt durch die Enzymaktivitätskonzentration am Boden oder in der anorganischen Salzphase. Die Enzymaktivität jeder Phase kann durch bekannte Verfahren gemessen werden. Das erfindungsgemäße Verfahren kann Verteilungskoeffizienten von mindestens 50 erreichen, die einen bedeutenden Fortschritt gegenüber dem Stand der Technik darstellen.
- Die Erfindung wird weiter im einzelnen in den nachstehenden Beispielen beschrieben.
- Ein Nährmedium, geeignet zur Herstellung von alkalischer Protease wird durch Zugabe der nachstehenden Bestandteile zu einem 6000 Gallon (22712 l)-Fermenter hergestellt:
- Weizengluten 1500 lb (681 kg)
- Natriumcitrat 165 lb (74,9 kg)
- Calciumchlorid-dihydrat 165 lb (74,9 kg)
- Mais stärke 5000 lb (2270 kg)
- Sojamehl 2500 lb (1135 kg)
- hitzestabile α-Amylase 5 lb (2,27 kg)
- Mononatriumphosphat 400 lb (181,6 kg)
- Dinatriumphosphat 400 lb (181,6 kg)
- Antischäumungsmittel 16,5 gal (62,5 l)
- Wasser bis 6000 gal (22712 l)
- Das Medium wurde dann mit lebenden Zellen von Bacillus licheniformis beimpft und für 36 Stunden bei 36ºC fermentiert. Zu der sich ergebenden gesamten Fermentationsbrühe wurden 214 gal (811 l) einer 70%-igen (Gew./Vol.) wässerigen Calciumchlorid-dihydratlösung und 300 lb (136 kg) Mononatriumphosphat gegeben. Dies ergibt ein Gemisch, das 2,5% (Gew./Vol.) Calciumchlorid-dihydrat und 0,6% (Gew./Vol.) Mononatriumphosphat enthält, bezogen auf das Gewicht jeden Additivs und das Volumen der Fermentationsbrühe. Der pH-Wert des Gemisches wurde während des Zumischens der Additive durch Zugabe von Natriumhydroxid auf 6,8 bis 7,6 gehalten. Nachdem das Mischen abgeschlossen war, wurde der pH-Wert auf 7,4 bis 7,6 durch Zugabe von Natriumhydroxid eingestellt, um das Ausflocken zu vervollständigen. Der pH-Wert wurde dann durch Zugabe von 50 Gew.-% wässeriger Essigsäurelösung auf 6,4 bis 6,6 eingestellt. Zu dem erhaltenen Gemisch wurden 11600 lb (5269 kg) Natriumchlorid bei 25-27ºC zugegeben und das Gemisch wurde für eine Stunde gerührt, um das gesamte Natriumchlorid zu lösen. Dann wurden 3100 lb (1400 kg) Polyethylenglycol mit einem Molekulargewicht von 3350 lb und 4250 lb (1930 kg) Natriumsulfat zugegeben und die gesamte Brühe auf eine Temperatur von 30 bis 32ºC erhitzt. Der pH-Wert der gesamten Brühe wurde auf 6,0 bis 6,2 durch Zugabe von Essigsäurelösung eingestellt und das gesamte Gemisch wurde zwei Stunden gerührt. Das gesamte Gemisch enthielt 15% (Gew./Gew.) Natriumchlorid, 4% (Gew. /Gew.) Polyethylenglycol, 5,5% (Gew. /Gew.) Natriumsulfat und 75,5% (Gew./Gew.) Gesamtfermentationsbrühe. Die prozentualen Anteile wurden auf das Gewicht des Additivs zu dem Gewicht des gesamten Gemisches der Fermentationsbrühe und der Additive berechnet. Nach dem Vermischen trennte sich die gesamte Mischung in eine obere Polyethylenglycolphase und eine untere Natriumchlorid-Natriumsulfat-Zelltrümmerphase. Das Phasenverhältnis oberen Phasenvolumen zu unterem Phasenvolumen betrug 0,15. Die Konzentration der Proteaseaktivität in der oberen Phase geteilt durch die Proteaseaktivität in der unteren Phase ergibt einen Verteilungskoeffizienten von 60 bis 80. Eine kontinuierliche Festkesselzentrifuge wurde dann zur Trennung der zwei Phasen verwendet. Die Zentrifuge wurde für die erste Trennung eingestellt, wobei keine Polyethylenglycolphase mit der Salzphase, die verworfen wurde, mitgerissen wurde. Die Glycolphase enthielt 90 bis 92% der gesamten Enzymaktivität der Fermentationsbrühe. Diese Glycolphase enthielt auch etwa 5 bis 20 Vol.-% mitgerissener Salzphase. Die wie vorstehend gesammelte Glycolphase wurde dann einer zweiten Trennung unter Verwendung der gleichen Vorrichtung unterzogen, wobei die Betriebsparameter so eingestellt wurden, daß weniger als 2 Vol.-% mitgerissener Salzphase in der Glycolphase zugelassen wurden. Die Salzphase wurde verworfen und sie enthielt keine Glycolphase mehr. Die Glycolphase wurde wie vorstehend gesammelt und dann in einen gekühlten Tank bei 10ºC gegeben, um Restmengen von Natriumsulfat zu entfernen. Eine kleine Menge von Natriumsulfatkristallen wurde zugegeben, um das Wachstum der Natriumsulfatkristalle auszulösen. Nach 2 Stunden unter leichtem Rühren bei 10ºC wurde die natriumsulfatfreie Glycolphase abgezogen. Sie wurde dann mit Aktivkohle und Filtrierhilfe vermischt und dann unter Verwendung einer Filterpresse filtriert. Die erhaltene Glycollösung, die reich an alkalischer Protease ist, kann direkt in flüssigen Enzymwaschmittelformulierungen verwendet werden.
- Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt bis zu der Stufe der Zugabe von Calciumchlorid-dihydrat und Mononatriumphosphat. Das erhaltene Gesamtfermentationsbrühe-Additivgemisch wurde dann mit 2130 lb (970 kg) Polyethylenglycol mit einem Molekulargewicht von 3350 und 10660 lb (4850 kg) Natriumsulfat vermischt und die Temperatur der gesamten Brühe wuchs auf 30-32ºC an. Das gesamte Gemisch, das 3% (Gew./Gew.) Polyethylenglycol, 15% (Gew./Gew.) Natriumsulfat und 82% (Gew./Gew.) gesamte Fermentationsbrühe enthielt, wurde für 1 Stunde gerührt. Nach dem Mischen trennte sich das gesamte Gemisch in eine obere Polyethylenglycolphase und eine untere Natriumsulfat-Zelltrümmerphase. Das Phasenverhältnis des oberen Phasenvolumens zum unteren Phasenvolumen betrug 0,12. Die Konzentration der Proteaseaktivität der oberen Phase geteilt durch die Konzentration der Proteaseaktivität der unteren Phase ergab einen Verteilungskoeffizienten von 60 bis 80. Die alkalische Protease in der Glycolphase lag als amorpher Feststoff vor. Die zwei Phasen wurden dann mit einer Zentrifuge, wie in Beispiel 1 beschrieben, unter Herstellung einer Glycolphase getrennt, die die amorphe feste Protease und weniger als 2 Vol.-% mitgerissener Salzphase enthielt. Die Feststoffe wurden dann durch Zentrifugieren gewonnen und sie können dann als gekörnte Protease in gekörnten Enzymwaschmittelprodukten verwendet werden.
- Ein Nährmedium, das zur Herstellung von hitzestabiler α-Amylase geeignet ist, wurde durch Zugabe der nachstehenden Bestandteile zu einem 6000 Gallon (22712 l) Fermenter hergestellt:
- Calciumchlorid-dihydrat 22,5 lb (10,2 kg)
- Monokaliumphosphat 300 lb (136,2 kg)
- Dikaliumphosphat 700 lb (317,8 kg)
- Ammoniumsulfat 250 lb (113,5 kg)
- Natriumcitrat 100 lb (45,4 kg)
- Maisquellwasser 1000 lb (454 kg)
- Lactose 7000 lb (3178 kg)
- Baumwollsamenmehl 1500 lb (681 kg)
- Sojamehl 2000 lb (908 kg)
- Antischäumungsmittel 165 gal (625 l)
- Wasser bis 6000 gal (22712 l)
- Das Medium wurde dann mit lebenden Zellen vom Bacillus licheniformis beimpft und für 108-110 Stunden bei 42ºC fermentiert, während der pH-Wert auf 7,5 bis 7,15 durch periodische Zugabe von Natriumhydroxid gehalten wurde. Zu der erhaltenen gesamten Fermentationsbrühe wurden 343 gal (1300 l) 70%-iger (Gew./Vol.) wässeriger Calciumchloriddihydratlösung oder 240 gal (908 l) 10% (Gew./Vol.) wässeriger Calciumhydroxidlösung und 60 lb (27 kg) Monokaliumphosphat gegeben. Dies ergibt ein Gemisch, das 4% (Gew./Vol.) Calciumchlorid-dihydrat, 0,4% (Gew./Vol.) Calciumhydroxid und 0,12% (Gew./Vol.) Monokaliumphosphat enthält, bezogen auf das Gewicht jeden Additivs und das Volumen der Fermentationsbrühe. Der pH-Wert des Gemisches wurde auf 7,6-8,4 während des Zumischens der Additive durch Zugabe von Natriumhydroxid gehalten. Nach Ablauf des Vermischens wurde der pH- Wert auf 8,4 bis 8,6 durch Zugabe von Natriumhydroxid eingestellt. Zu dem erhaltenen Gemisch wurde 2600 lb (1180 kg) Polyethylenglycol mit einem Molekulargewicht von 3350 und 7420 lb (3370 kg) Natriumchlorid bei 25 bis 27ºC gegeben und das Gemisch wurde für mindestens 1 Stunde bewegt. Natriumsulfat wurde dann in einer Menge von 5940 lb (2700 kg) zugegeben und das Fermentationsbrühengemisch wurde auf 30 bis 32ºC erhitzt. Der pH-Wert wurde auf 7,9 bis 8,1 durch Zugabe von Natriumhydroxid eingestellt und das gesamte Gemisch wurde für mindestens 2 Stunden gerührt. Das gesamte Gemisch enthielt 3,5% (Gew./Gew.) Polyethylenglycol, 10% (Gew./Gew.) Natriumchlorid, 8% (Gew./Gew.) Natriumsulfat und 78,5% (Gew./Gew.) gesamte Fermentationsbrühe. Nach dem Vermischen trennte sich das gesamte Gemisch in eine obere Polyethylenglycolphase und eine untere Natriumsulfat-Zelltrümmerphase. Das Phasenverhältnis des oberen Phasenvolumens zum unteren Phasenvolumen betrug 0,12. Die Konzentration der Amylaseaktivität der oberen Phase geteilt durch die Konzentration der Amylaseaktivität der unteren Phase ergab einen Verteilungskoeffizienten von 50 bis 70. Eine kontinuierliche Festkesselzentrifuge wurde wie in Beispiel 1 beschrieben zur Isolierung der amylasereichen Glycolphase verwendet, die dann wie in Beispiel 1 beschrieben zu einem amylasereichen Glycolprodukt gereinigt wurde.
- Ein Nährmedium, das zur Herstellung von hitzestabiler α-Amylase geeignet ist, wurde durch Zugabe der nachstehenden Bestandteile zu einem 6000 Gallon (22712 l) Fermenter hergestellt:
- Calciumcarbonat 530 lb (240,6 kg)
- Fischmehl 750 lb (340,5 kg)
- Sojamehlschrot 2800 lb (1271 kg)
- Maisquellwasser 1500 lb (681 kg)
- Lactose 7000 lb (3178 kg)
- Diammoniumphosphat 130 lb (59 kg)
- Antischäumungsmittel 40 gal (151,4 l)
- Wasser bis 6000 gal (22712 l)
- Das Medium wurde dann mit lebenden Zellen vom Bacillus amyloliquefaciens beimpft und für 60 Stunden bei 34ºC fermentiert, während der pH-Wert durch periodische Zugabe von Natriumhydroxid auf 7,05 bis 7,15 gehalten wurde. Zu der erhaltenen gesamten Fermentationsbrühe wurden 257 gal (973 l) 70% (Gew./Vol.) wässeriger Calciumchlorid-dihydratlösung, 180 gal (681 l) 10% (Gew./Vol.) wässeriger Calciumhydroxidlösung und 300 lb (136 kg) Monokaliumphosphat gegeben. Dies ergibt ein Gemisch, das 3% (Gew./Vol.) Calciumchlorid-dihydrat, 0,3% (Gew./Vol.) Calciumhydroxid und 0,6% (Gew./Vol.) Monokaliumphosphat enthält, bezogen auf das Gewicht jeden Additivs und das Volumen jeder Fermentationsbrühe. Der pH-Wert des Gemisches wurde während der Zugabe der Additive durch Zugabe von Natriumhydroxid auf 6,8 bis 7,6 gehalten. Nach Ablauf des Vermischens wurde der pH-Wert auf 7,4 bis 7,6 durch Zugabe von Natriumhydroxid eingestellt. Zu dem erhaltenen Gemisch wurden 2510 lb (1140 kg) Polyethylenglycol mit einem Molekulargewicht von 3350 und 7960 lb (3600 kg) Natriumchlorid bei 25-27ºC gegeben und das Gemisch wurde für mindestens 1 Stunde bewegt. Natriumsulfat in einer Menge von 10700 lb (4870 kg) wurde dann zugegeben und das Fermentationsbrühengemisch wurde auf 30 bis 32ºC erhitzt. Der pH-Wert wurde auf 7,4 bis 7,6 durch Zugabe von Natriumhydroxid eingestellt und das Gesamtgemisch wurde für mindestens 2 Stunden gerührt. Das Gesamtgemisch enthielt 3,15% (Gew./Gew.) Polyethylenglycol, 10% (Gew./Gew.) Natriumchlorid, 13,5% (Gew./Gew.) Natriumsulfat und 73,35% (Gew./Gew.) Fermentationsbrühe. Nach dem Vermischen trennte sich das gesamte Gemisch in zwei Phasen, wie in Beispiel 3 beschrieben, mit einem Phasenverhältnis von 0,12 und einem Verteilungskoeffizienten von 50 bis 70. Die Phasen wurden dann wie hier beschrieben unter Herstellung eines amylasereichen Glycolprodukts behandelt.
Claims (11)
1. Verfahren zur Gewinnung eines extrazellulären Enzyms aus
gesamter. Fermentationsbrühe, beinhaltend die Zugabe zu
der gesamten Fermentationsbrühe, enthaltend
Mikroorganismenzellen und ein eztrazelluläres Enzym,
eine; Mischung von 1,5-5,0% Calciumchlorid-dihydrat,
0,1-1,2% Mononatrium- oder Monokaliumphosphatu und 0-
0,6% Calciumhydroxid, wobei besagte Prozentangaben auf
Gewicht/Volumen-Basis bezogen sind, berechnet auf das
Gewicht des Zusatzes zu dem Volumen der
Fermentationsbrühe und danach das Zusetzen einer
Mischung von (a) einem Polymer, ausgewählt aus der
Klasse, bestehend aus Polyethylenglykol, einem
Aminderivat von Polyethylenglykol, einem
Carboxylatderivat von Polyethylenglykol,
Polypropylenglykol, einem Aminderivat von
Polypropylenglykol, einem Carboxylatderivat von
Polypropylenglykol, Poly(ethylenglykol)ester,
Polyethylenimin, Trimethylamino-polyethylenglykol,
Polyvinylalkohol, Polyvinylpyrrolidon und Mischungen
davon und (b) einem anorganischen Salz, das es der
gesamten Fermentationsbrühe-Polymer-Salz-Mischung
erlaubt, sich in eine enzymreiche Polymerphase und eine
enzymarme Salzphase zu scheiden und die Gewinnung eines
enzymreichen Produkts daraus.
2. Verfahren gemäß Anspruch 1, worin das anorganische Salz
aus der Klasse von Verbindungen ausgewählt ist, worin
die Kationen Natrium, Kalium, Magnesium und Ammonium
sind und die Anionen Sulfate, Carbonate, Zitrate,
Chloride, Phosphate und Mischungen daraus sind.
3. Verfahren gemäß der Ansprüche 1 oder 2, worin die gesamte
Mischung aus gesamter Fermentationsbrühe, Polymer und
anorganischem Salz 64-90, bevorzugt 73-79% gesamte
Fermentationsbrühe, 1-15, bevorzugt 3-4% Polymer
und 8-35, bevorzugt 15-24% anorganisches Salz
enthält, wobei besagte Prozentangaben in Gewicht bezogen
auf das Gesamtgewicht der Mischung sind.
4. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 3, worin das
Polymer Polyethylenglykol ist und das anorganische Salz
eine Mischung aus Natriumchlorid und Natriumsulfat oder
nur Natriumsulfat ist.
5. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 4, worin die
gesamte Fermentationsbrühe mit einer Mischung aus 1,5-
5,0% Calciumchlorid-dihydrat und 0,2-1,2%
Mononatriumphosphat oder Monokaliumphosphat in Kontakt
gebracht wird, vor der Zugabe des Polymers und der
anorganischen Salzmischung.
6. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 4, worin die
gesamte Fermentationsbrühe mit einer Mischung aus 1,5-
5,0% Calciumchlorid-dihydrat, 0,1-0,6%
Calciumhydroxid und 0,1-1,0% Mononatrium- oder
Monokaliumphosphat in Kontakt gebracht wird, vor der
Zugabe des Polymers und der anorganischen Salzmischung.
7. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 6, worin das
Volumenverhältnis von enzymreicher Polymerphase zu
enzymarmer Salzphase 0,12-0,15 beträgt.
8. Verfahren zur Gewinnung von extrazellulärer alkalischer
Protease, beinhaltend die Fermentierung eines geeigneten
Stammes von Bacillus licheniformis in einem passenden
Nährmedium, um eine gesamte Fermentationsbrühe
herzustellen, die Bacillus licheniformis Zellen und
extrazelluläre alkalische Protease enthält, die Zugabe
zu der besagten gesamten Fermentationsbrühe von 2,5%
Calciumchlorid-dihydrat und 0,6% Mononatrium- oder
Monokaliumphosphat, wobei besagte Prozentangaben auf
Gewicht/Volumen-Basis bezogen sind, berechnet auf das
Gewicht des Zusatzes zu dem Volumen der
Fermentationsbrühe, die Zugabe zu der obengenannten
Mischung von 3% Polyethylenglykol und 15%
Natriumsulfat, wobei besagte Gewichtsprozentangaben
bezogen sind auf das Gewicht der Gesamtmischung der
Fermentationsbrühe und der Zusätze, die Bildung einer
alkalischen Protease-reichen Polyethylenglycolphase und
einer alkalischen Protease-armen Natriumsulfatphase und
die Trennung der zwei Phasen, um ein alkalische
Protease-reiches Produkt daraus zu gewinnen.
9. Verfahren gemäß Anspruch 8, worin nach dem Hinzufügen des
Calciumchlorid-dihydrats und des Mononatrium- oder
Monokaliumphosphats die Mischung mit 15%
Natriumchlorid, 4% Polyethylenglykol und 5,5%
Natriumsulfat in Kontakt gebracht wird, wobei besagte
Gewichtsprozentangaben bezogen sind auf das Gewicht der
Gesamtmischung der Fermentationsbrühe und der Zusätze.
10. Verfahren zur Gewinnung einer extrazellulären
hitzebeständigen alpha-Amylase, beinhaltend die
Fermentierung eines geeigneten Stammes von Bacillus
licheniformis in einem passenden Nährmedium, um eine
gesamte Fermentationsbrühe herzustellen, die Bacilius
licheniformis Zellen und extrazelluläre alpha-Amylase
enthält, die Zugabe zu der besagten gesamten
Fermentationsbrühe von 0,4% Calciumhydroxid, 0,12%
Mononatrium- oder Monokaliumphosphat und 4%
Calciumchlorid-dihydrat, wobei besagte Prozentangaben
auf Gewicht pro Volumen-Basis bezogen sind, berechnet
auf das Gewicht eines Zusatzes zu dem Volumen der.
Fermentationsbrühe, die Zugabe zu der obengenannten
Mischung von 3,5% Polyethylenglykol, 10%
Natriumchlorid und 8% Natriumsulfat, wobei besagte
Gewichtsprozentangaben bezogen sind auf das Gewicht der
Gesamtmischung der Fermentationsbrühe und der Zusätze,
die Bildung einer Amylase-reichen Polyethylenglykolphase
und einer Amylase-armen Natriumchlorid-
Natriumsulfatphase und die Trennung der zwei Phasen, um
ein Amylase-reiches Produkt daraus zu gewinnen.
11. Verfahren zur Gewinnung einer extrazellurären alpha-
Amylase, beinhaltend die Fermentierung eines geeigneten
Stammes von Bacillus amyloliquefaciens in einem
passenden Nährmedium, um eine gesamte Fermentationsbrühe
herzustellen, die Bacillus amyloliquefaciens Zellen und
extrazelluläre alpha-Amylase enthält, die Zugabe zu
der besagten gesamten Fermentationsbrühe von 3%
Calciumchlorid-dihydrat, 0,3% Calciumhydroxid und 0,6%
Mononatrium- oder Monokaliumphosphat, wobei besagte
Prozentangaben auf Gewicht pro Volumen-Basis bezogen
sind, berechnet auf das Gewicht des Zusatzes zu dem
Volumen der Fermentationsbrühe, die Zugabe zu der
obengenannten Mischung von 3,15% Polyethylenglykol, 10
% Natriumchlorid und 13,5% Natriumsulfat, wobei besagte
Gewichtsprozentangaben bezogen sind auf das Gewicht der
Gesamtmischung der Fermentationsbrühe und der Zusätze,
die Bildung einer Amylase-reichen Polyethylenglykolphase
und einer Amylase-armen Natriumchlorid-
Natriumsulfatphase und die Trennung der zwei Phasen, um
das Amylase-reiche Produkt daraus herzustellen.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US77503185A | 1985-09-04 | 1985-09-04 | |
US06/890,620 US4728613A (en) | 1985-09-04 | 1986-08-05 | Method for the recovery of extracellular enzymes from whole fermentation beer |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE3688163D1 DE3688163D1 (de) | 1993-05-06 |
DE3688163T2 true DE3688163T2 (de) | 1993-09-30 |
Family
ID=27118985
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE86111604T Expired - Fee Related DE3688163T2 (de) | 1985-09-04 | 1986-08-22 | Verfahren zur Rückgewinnung von extrazellulären Enzymen aus gesamten Fermentationsbrühen. |
Country Status (7)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4728613A (de) |
EP (1) | EP0214531B1 (de) |
CN (1) | CN1014799B (de) |
DE (1) | DE3688163T2 (de) |
DK (1) | DK421086A (de) |
FI (1) | FI93655C (de) |
MX (1) | MX167654B (de) |
Families Citing this family (25)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0262651A3 (de) * | 1986-09-30 | 1990-06-20 | Union Carbide Corporation | Isolierung von Enzymen aus einer Lösung |
JPH02502786A (ja) * | 1987-12-23 | 1990-09-06 | ギスト ブロカデス ナームローゼ フェンノートチャップ | 精製された工業酵素及びその調製方法 |
DE3908422A1 (de) * | 1989-03-15 | 1990-09-20 | Forschungszentrum Juelich Gmbh | Verfahren zur extraktion von proteinen aus waessrigen biomassesuspensionen |
ATE126531T1 (de) * | 1989-06-13 | 1995-09-15 | Genencor Int | Verfahren zur gewinnung von natürlich hergestelltem chymosin. |
US5139943A (en) * | 1989-06-13 | 1992-08-18 | Genencor International, Inc. | Processes for the recovery of microbially produced chymosin |
US5151358A (en) * | 1989-06-13 | 1992-09-29 | Genencor International, Inc. | Processes for the recovery of naturally produced chymosin |
US5290474A (en) * | 1990-10-05 | 1994-03-01 | Genencor International, Inc. | Detergent composition for treating cotton-containing fabrics containing a surfactant and a cellulase composition containing endolucanase III from trichoderma ssp |
US5328841A (en) * | 1990-10-05 | 1994-07-12 | Genencor International, Inc. | Methods for isolating EG III cellulase component and EG III cellulase in polyethylene glycol using inorganic salt and polyethylene glycol |
CA2093422C (en) * | 1990-10-05 | 2001-04-03 | DETERGENT COMPOSITIONS CONTAINING LOW CBH I CONTENT CELLULASE COMPOSITIONS | |
SE9003534D0 (sv) * | 1990-11-06 | 1990-11-06 | Kabigen Ab | A method for isolating and purifying peptides and proteins |
US5281526A (en) * | 1992-10-20 | 1994-01-25 | Solvay Enzymes, Inc. | Method of purification of amylase by precipitation with a metal halide and 4-hydroxybenzic acid or a derivative thereof |
BR9606987A (pt) * | 1995-01-27 | 1997-11-04 | Genencor Int | Processos para a recuperação de um produto de fermentação desejado a preparação de um pó detergente |
DE10024437A1 (de) * | 2000-05-19 | 2001-11-29 | Aventis Res & Tech Gmbh & Co | Verfahren zur selektiven Herstellung von Essigsäure durch katalytische Oxidation von Ethan |
DZ3349A1 (fr) | 2000-07-28 | 2002-02-07 | Henkel Kgaa | Nouvelle enzyme amylolytique issue de bacillus sp. a 7-7 (dsm 12368) ainsi que produits de lavage et nettoyage contenant ledit enzyme amylolytique |
FR2827192B1 (fr) * | 2001-07-13 | 2004-06-04 | Cognis France Sa | Preparations contenant des agents tensio-actifs non ioniques comme agents d'extraction |
DK1485495T3 (da) * | 2002-03-15 | 2010-11-22 | Iogen Energy Corp | Fremgangsmåde til glucosefremstilling under anvendelse af endoglucanasekerneprotein til forbedret indvinding og genbrug af enzym |
EP1520012B1 (de) * | 2002-07-01 | 2009-01-07 | Novozymes A/S | Monopropylenglykol als fermentationszusatz |
GB0218021D0 (en) * | 2002-08-05 | 2002-09-11 | Ciba Spec Chem Water Treat Ltd | Production of a fermentation product |
GB0402469D0 (en) * | 2004-02-04 | 2004-03-10 | Ciba Spec Chem Water Treat Ltd | Production of a fermentation product |
GB0402470D0 (en) * | 2004-02-04 | 2004-03-10 | Ciba Spec Chem Water Treat Ltd | Production of a fermentation product |
ATE408616T1 (de) * | 2004-06-29 | 2008-10-15 | Ares Trading Sa | Verfahren zur aufreinigung von il-18-bindendem protein |
DE102008013490A1 (de) | 2008-03-10 | 2009-09-17 | Bayer Technology Services Gmbh | Verfahren zur Reinigung therapeutischer Proteine |
CN102471755A (zh) * | 2009-07-09 | 2012-05-23 | 诺维信公司 | 用二价盐和磷酸盐进行絮凝 |
CN101893528B (zh) * | 2010-08-04 | 2011-12-21 | 江南大学 | 一种制备绍兴黄酒成品麦曲中微生物胞外酶双向电泳样品的方法 |
US20150291922A1 (en) * | 2012-03-29 | 2015-10-15 | Novozymes A/S | Use of Enzymes For Preparing Water Soluble Films |
Family Cites Families (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR596444A (fr) * | 1925-04-07 | 1925-10-23 | Kalle & Co Ag | Procédé pour la séparation des enzymes de leurs solutions |
NL286954A (de) * | 1962-01-03 | |||
CA940070A (en) * | 1968-12-23 | 1974-01-15 | Jim S. Berry | Stabilized aqueous enzyme composition |
DE2512735A1 (de) * | 1975-03-22 | 1976-09-30 | Henkel & Cie Gmbh | Verfahren zur gewinnung von proteinen aus waessrigen protein- loesungen |
GB1589581A (en) * | 1976-04-14 | 1981-05-13 | Biotechnolog Forschung Gmbh | Process for the separation of enzymes |
DE2639129C3 (de) * | 1976-08-31 | 1979-10-04 | Gesellschaft Fuer Biotechnologische Forschung Mbh (Gbf), 3300 Braunschweig | Verfahren zur Abtrennung von Enzymen |
JPS5739796A (en) * | 1980-08-21 | 1982-03-05 | Unitika Ltd | Separation of nucleic acid and protein in ground cell solution |
JPS5815989A (ja) * | 1981-06-12 | 1983-01-29 | Sanki Eng Kk | 生理活性蛋白質の精製方法 |
US4508825A (en) * | 1983-03-30 | 1985-04-02 | Miles Laboratories, Inc. | Method for the separation of extracellular amylase and protease produced during the fermentation of enzyme producing microorganisms |
FR2545501B1 (fr) * | 1983-05-06 | 1985-08-02 | Elf Bio Rech | Procede de purification de la dextrane-saccharase |
-
1986
- 1986-08-05 US US06/890,620 patent/US4728613A/en not_active Expired - Lifetime
- 1986-08-22 DE DE86111604T patent/DE3688163T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1986-08-22 EP EP86111604A patent/EP0214531B1/de not_active Expired - Lifetime
- 1986-09-02 FI FI863540A patent/FI93655C/fi not_active IP Right Cessation
- 1986-09-03 MX MX003633A patent/MX167654B/es unknown
- 1986-09-03 DK DK421086A patent/DK421086A/da not_active Application Discontinuation
- 1986-09-03 CN CN86106017A patent/CN1014799B/zh not_active Expired
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DK421086A (da) | 1987-03-05 |
FI93655C (fi) | 1995-05-10 |
FI93655B (fi) | 1995-01-31 |
MX167654B (es) | 1993-04-01 |
DK421086D0 (da) | 1986-09-03 |
CN1014799B (zh) | 1991-11-20 |
DE3688163D1 (de) | 1993-05-06 |
EP0214531A2 (de) | 1987-03-18 |
CN86106017A (zh) | 1987-04-08 |
EP0214531B1 (de) | 1993-03-31 |
EP0214531A3 (en) | 1988-05-25 |
FI863540A (fi) | 1987-03-05 |
US4728613A (en) | 1988-03-01 |
FI863540A0 (fi) | 1986-09-02 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE3688163T2 (de) | Verfahren zur Rückgewinnung von extrazellulären Enzymen aus gesamten Fermentationsbrühen. | |
US3647625A (en) | Method of reducing raffinose content of beet molasses | |
EP0144017A1 (de) | Verfahren zur biotechnologischen Herstellung von Poly-D(-)-3-hydroxybuttersäure | |
DE2712007A1 (de) | Stabilisiertes glucoseisomerase- enzymkonzentrat und verfahren zu seiner herstellung | |
DE1932981C3 (de) | Verfahren zur biotechnischen Herstel lung eines Enzyms Lipase | |
DE3486359T2 (de) | Verfahren zur Herstellung von Riboflavin. | |
DE2021465B2 (de) | Verfahren zur Herstellung eines Enzympräparates, welches die OH-Gruppe in der 3beta-Stellung des Cholesterins dehydriert | |
DE69102640T2 (de) | Verfahren zur herstellung von einer proteinhaltigen zusammensetzung. | |
DE2167078B1 (de) | Verfahren zur Herstellung einer Amylase und deren Verwendung zur Gewinnung von Maltose aus Staerke | |
DE3636825A1 (de) | Verfahren zur herstellung von loesungsmittelstabiler (alpha)-amylase | |
DE2445581C3 (de) | Verfahren zur Herstellung von D-Gluconsäure-dlactam | |
DE69428936T2 (de) | Xanthangummi aus Milchpermeaten und anderen filtrierten Milchprodukten | |
DE3885438T2 (de) | Verfahren zur Herstellung von mikrobieller Cellulose. | |
DE69009568T2 (de) | Mikrobiologisches Verfahren zur Herstellung von Methylketonen. | |
EP0350613B1 (de) | Biotechnisches Verfahren zur Gewinnung von reiner, Protein-freier Stärke aus Erbsen | |
DE2346335A1 (de) | Auf mikrobiellem weg hergestellte lipase, sowie verfahren zu deren herstellung | |
DE2938377A1 (de) | Verfahren zur herstellung von coenzym q tief 10 | |
DE2344006B2 (de) | Verfahren zur biotechnischen behandlung von epsilon-caprolactam enthaltenden abwaessern | |
DE60012079T2 (de) | Verfahren zur Herstellung von Arabitol durch kontinuierliche Gärung | |
DE2357345A1 (de) | Verfahren zur biotechnischen herstellung von hefe und deren verwendung | |
DE2419232C3 (de) | Verfahren zur Reinigung von mikrobiologischem Rennin | |
AT231610B (de) | Verfahren zur Herstellung von 6-Aminopenicillansäure | |
DE1442118C (de) | Verfahren zur Herstellung von milchkoagulierendem Ferment durch Züchten von Schimmelpilzen | |
DD290917A5 (de) | Verfahren zur erzeugung von biogenen extrazellulaeren flockungsmitteln | |
DE908409C (de) | Verfahren zur Herstellung eines Antibioticums |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
8364 | No opposition during term of opposition | ||
8327 | Change in the person/name/address of the patent owner |
Owner name: GENENCOR INTERNATIONAL, INC. (N.D.GES.D. STAATES D |
|
8339 | Ceased/non-payment of the annual fee |