DE3636825A1 - Verfahren zur herstellung von loesungsmittelstabiler (alpha)-amylase - Google Patents
Verfahren zur herstellung von loesungsmittelstabiler (alpha)-amylaseInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein neues Verfahren für die Herstellung
eines im wesentlichen lösungsmittelstabilen
Enzymproduktes, enthaltend alpha-Amylase aus Bacillus
licheniformis und Stärke, vorzugsweise Maltodextrin.
Enzyme sind Biokatalysatoren, die viele der natürlich
im lebenden Organismus ablaufenden biochemischen Reaktionen
regulieren. Enzyme werden auf vielen Gebieten
eingesetzt, beispielsweise bei Gerb-, Detergens-, Nahrungsmittel-
und pharmazeutischen Industrien. Bei der
üblichen Methode zur Herstellung von Enzymen wird ein
Enzymniederschlag in Wasser gelöst. Hochwirksame Enzym-
in-Wasser-Lösungen (konzentrierte Lösungen mit einer
hohen Enzymaktivität) können jedoch bei der Lagerung instabil
sein; das Enzym fällt aus der Lösung aus und/oder
ist wärmeempfindlich. Gemäss US-PS 32 42 056 wendet man
wässrige Polyollösungen an, um die thermische Instabilität
von Lysozym zu verhindern. Gemäss US-PS 44 97 897
erhält man eine stabile flüssige Proteinase aus Subtilisin
Carlsberg, enthaltend Propylenglykol, Calciumionen
und Carboxylatsalz. In US-PS 45 19 934 wird eine stabile
flüssige alpha-Amylase aus Bacillus licheniformis, dispergiert
in Propylenglykol, offenbart.
Ein flüssiges Enzymprodukt, welches alpha-Amylase aus
Bacillus licheniformis in wässriger Lösung enthält, wäre
wünschenswert, weil man es direkt seiner industriellen
Verwendung zuführen kann, z. B. als flüssiges Detergens,
ohne dass man zuerst einen trockenen Enzymniederschlag
in Wasser wieder auflösen muss und/oder ohne dass man
sich um die Verträglichkeit mit einem Lösungsmittel (z. B.
Propylenglykol) Gedanken machen muss. Auch der Enzymstaub
aus einem trockenen Produkt wird vermieden. Deshalb
haben die Forscher lange nach Methoden gesucht, um
dieses Enzym in wässriger Lösung, insbesondere hochaktiven
(hochkonzentrierten) Lösungen zu halten. Zwar zeigt
der vorher gezeigte Stand der Technik die Verwendung
von verschiedenen Lösungsmitteln (z. B. Propylenglykol),
jedoch erhält man dabei in keinem Fall ein wässriges
Enzymprodukt mit hoher Enzymaktivität, wenn dieses Enzym
in Lösung bleibt.
alpha-Amylase kann man beispielsweise erhalten, indem
man verschiedene Mikroorganismen, wie Bacillus subtilis
oder Bacillus licheniformis in einem geeigneten Nährmittel
kultiviert. B. subtilis bildet alpha-Amylase, die
physikalisch stabil ist, d. h. das Enzym fällt im wesentlichen
nicht aus einer wässrigen Lösung aus, selbst wenn
die Aktivität 3 Millionen MWU/ml (Modifizierte Wohlgemut-
Einheiten pro Milliliter) oder höher ist. Diese alpha-
Amylaselösungen sind jedoch wärmeempfindlich und deshalb
gibt man Maltodextrin zur Erhöhung der Thermostabilität
zu. Ähnliches berichten Klesov et al in "Substrate Thermostabilization
of Soluble und Immobilized Glucoamylase",
Department of Chemistry, Moscow State University, Biokhimiya,
Bd. 44 (6), Seiten 1084-92 (1979), über die Thermostabilisierung
einer Lösung aus Glucoamylase aus Aspergillus niger
mit Maltodextrin. Andererseits ist aus Bacillus licheniformis
erhaltene alpha-Amylase wärmestabil (siehe beispielsweise
Volesky et al, Microbiol Enzymes: Production,
Purification and Isolation, Bd. 2, Ausgabe 2, Seite 120
(1985), jedoch ist sie nicht besonders physikalisch stabil,
wenn sie in einer wässrigen Lösung bei hoher Konzentration
vorliegt.
Die vorliegende Erfindung stellt das nachfolgend beschriebene
Verfahren zur Verfügung. In Kombination mit der Herstellung
einer wärmestabilen alpha-Amylase durch Fermentation
von Bacillus licheniformis unter Erhalt einer
Fermentationsbrühe, welche das Enzym und feste Abfallprodukte
aus der Fermentation enthält, besteht die Verbesserung
darin, dass man zu der Fermentationsbrühe eine
Stärke zugibt, die, sofern sie in einer ausreichenden
Menge zugegeben wird, die Enzym-Enzym-Agglomerisierung
inhibiert und dadurch die Löslichkeit der alpha-Amylase
in der wässrigen Lösung erhöht.
In keiner der Literaturstellen wird die vorliegende neue
Erfindung vorgeschlagen oder offenbart, gemäss welcher
man eine Stärke verwendet, um ein wässriges Produkt mit
hoher Enzymaktivität zu erhalten und worin das Enzym
eine wärmestabile alpha-Amylase aus B. licheniformis
ist und deshalb wurde die Wirkung der Zugabe einer Stärke
zum Stabilisieren von wässrigen alpha-Amylaselösungen
mit Aktivitäten von bis zu annähernd 1 Million
MWU/ml untersucht.
Es ist infolgedessen eine Aufgabe der vorliegenden Erfindung,
eine im wesentlichen lösungsmittelstabile
alpha-Amylaseformulierung zur Verfügung zu stellen, in
welcher die alpha-Amylase aus B. licheniformis erhalten
wurde. Unter "im wesentlichen lösungsstabil" wird verstanden,
dass das Enzym in Lösung bleibt und nicht aus
der Lösung ausfällt, wenn die Lösung sehr stark ist,
d. h. wenn sie eine hohe Enzymkonzentration aufweist
und eine Aktivität von wenigstens 350.000 MWU/ml. Durch
Einstellen der Stärkemenge kann man sehr konzentrierte
Lösungen mit einer Aktivität von 1.000.000 MWU/ml oder
sogar höher, die im wesentlichen lösungsstabil sind, erhalten.
Die vorliegende flüssige Formulierung kann eine Amylase,
die sich von der stabilen alpha-Amylase aus B. licheniformis
unterscheidet, und/oder eine Protease enthalten.
Verschiedene Mikroorganismen, welche Amylasen und/oder
Proteasen produzieren, schliessen Bacillus subtilis,
B. licheniformis, B. stearothermophilus und B. amyloliquefaciens
ein, ohne dass dadurch eine Beschränkung ausgesprochen
wird. Die vorliegenden Formulierungen werden
vorzugsweise in einem Detergens eingesetzt und können
deshalb von etwa 0 bis etwa 80% eines oberflächenaktiven
Detergens aus der Gruppe amphotere, anionische,
kationische, nicht-ionische, zwitterionische oder semipolar-
nicht-ionische oberflächenaktive Mittel oder Mischungen
davon enthalten. Solche Detergenzien sind bekannt
und Beispiele für einige Detergenzien, die bei
den vorliegenden flüssigen Enzymformulierungen geeignet
sind, werden in den US-PSen 43 18 818 (Letton et al) und
41 11 855 (Barrat et al), die in die vorliegende Offenbarung
eingeschlossen werden, beschrieben.
Die nachfolgende Aufstellung zeigt eine bevorzugte Ausführungsform
im Vergleich zu den üblichen Verfahrensweisen.
Diese Aufstellung soll nur beschreibend sein und
ist nicht erforderlich, um die Durchführung der vorliegenden
Erfindung zu beschreiben.
(A) Fermentation (Biomasse-Abtrennung)
(B) Kulturfiltrat (PM-2-Membran)
(C) UF-Konzentrat
(B) Kulturfiltrat (PM-2-Membran)
(C) UF-Konzentrat
In der Aufstellung wird ein einfaches Verfahren zur Herstellung
einer im wesentlichen stabilen hochwirksamen
wässrigen alpha-Amylase-Zubereitung beschrieben. Diese
Methode umfasst: (A) die Durchführung einer Fermentation;
(B) das Abtrennen der Biomasse aus der Fermentationsbrühe,
enthaltend das Enzym, durch Filtrieren; (C) Ultrafiltration
(UF) unter Erhalt eines Enzymkonzentrates;
(D) entweder (i) Ausfällen eines Kuchens, welcher das
Enzym enthält, oder (ii) weiteres Konzentrieren durch
Vakuumverdampfung oder zusätzliche Ultrafiltration; und
dann (E) entweder (i) Extrahieren des ausgefallenen Enzyms
aus dem Kuchen und in eine wässrige Lösung, indem man
den Kuchen in der Lösung wieder aufschlämmt oder indem
man die Lösung durch den Kuchen zirkulieren lässt und
die Extraktionslösung Stärke enthält oder Stärke zu dem
Extrakt gegeben wird, oder (ii) Direktzugabe von Stärke
zu dem Konzentrat unter Erhalt von (F) einem wässrigen
stärkehaltigen Endprodukt. Bei den üblichen Verfahren
besteht die Stufe (E′) dagegen aus (i) Aufschlämmen der
Stärke in Wasser unter Extraktion des Enzyms daraus oder
aus (ii) weiterem Eindampfen. Dann fällt ein enzymhaltiger
Kuchen wieder aus und die überschüssige Mutterlauge
wird abfiltriert, wobei ein trockenes Enzymprodukt (F′)
zurückbleibt. Alternativ könnte man die vorliegende
Erfindung nach den Stufen (E′) und (F′) anwenden, indem
man das Enzym aus dem ausgefallenen Kuchen in eine wässrige,
Stärke enthaltende Lösung extrahiert (G).
Nach der Enzymherstellung kann man die Feststoffe (Biomasse
aus der Fermentation) von der Gesamtfermentationsbrühe
abtrennen, unter Erhalt einer enzymhaltigen Lösung,
wobei man Standardverfahren anwendet, wie Filtration
und/oder Zentrifugation. Anschliessend wird die zellfreie,
enzymhaltige Lösung vorzugsweise auf das etwa
1- bis 10fache konzentriert durch irgendeine Konzentrationsmassnahme,
wie Ultrafiltration und/oder Eindampfen.
Eine Stärke oder eine wässrige, eine Stärke
enthaltende Lösung wird zu der Lösung oder dem Konzentrat
in einer Menge von etwa 0,1 bis 50% G/V (Gewicht/
Volumen), vorzugsweise etwa 3 bis 15% G/V, bezogen
auf Stärke zu der enzymhaltigen Lösung oder dem Konzentrat,
gegeben.
Gemäss einer bevorzugten Ausführungsform kann man vor der
Zugabe der Stärke ein Ausfällungsmittel zu der zellfreien
Enzymlösung (oder dem Konzentrat) geben, wodurch
ein Kuchen, welcher das Enzym enthält, ausgefällt wird.
Bekannte Ausfällungsmittel sind niedrigmolekulargewichtige
organische Lösungsmittel, wie Methanol, Ethanol, Isopropanol,
1-Propanol, n-Butanol, tert-Butanol und Mischungen
daraus, oder Salze, wie Natriumsulfat, Ammoniumsulfat
und Mischungen daraus. Dabei soll der Ausdruck
"Kuchen" den Begriff "Aufschlämmung" einschliessen, damit
auch solche Fälle mit abgedeckt sind, bei denen der
Kuchen so feucht ist, dass man ihn als eine Aufschlämmung
auffassen könnte. Wenn überschüssige Mutterlauge
vorliegt, kann man diese aus der Aufschlämmung oder dem
Kuchen entfernen, indem man irgendeine von verschiedenen
Methoden anwendet, wie übliche Filtration, Absaugfiltration,
Schwerkraftsedimentation oder Zentrifugieren.
Dann kann man eine wässrige Lösung, welche etwa 0,1 bis
50% G/V und insbesondere etwa 3 bis 15% G/V Stärke
in Wasser enthält, herstellen und verwenden, um das
Enzym aus dem Kuchen aufzulösen oder zu extrahieren. Die
Extraktion des Enzyms aus dem Kuchen kann man auch mit
Wasser durchführen, worauf man dann Stärke in einer
Menge von etwa 0,1 bis 50% G/V zu dem Extrakt zugibt.
Gemäss einer weiteren Ausführungsform werden die festen
Abfallprodukte (d. h. Biomasse aus der Fermentation) nicht
aus der Fermentationsbrühe nach der Enzymherstellung
abgetrennt. Vielmehr gibt man die Stärke oder eine wässrige
Lösung von Stärke direkt zu der Gesamtfermentationsbrühe
zu. Dadurch verbleibt das Enzym in der Lösung, so
dass man dann, wenn man die festen Abfallprodukte entfernt,
weniger von dem Enzym in dem Feststoff verliert.
Die Stärke soll in einer Menge von etwa 0,1 bis 50%
(Gewicht/Volumen) der gesamten Fermentationsbrühe zugegeben
werden.
Bei der vorliegenden Erfindung kann man jede Stärke verwenden
und dies bedeutet, dass auch derivatisierte Stärken,
wie acetylierte Stärke oder Stärkeglykolate eingeschlossen
sind. Die Stärke kann ein Substrat für das
Enzym sein. Im allgemeinen wirken Enzyme, die ihre maximale
Aktivität bei höheren Temperaturen, z. B. bei 60°C,
entwickeln, nicht merklich auf einem Substrat, wenn man
nicht erhitzt. Insbesondere beginnt alpha-Amylase aus
B. licheniformis im wesentlichen nicht mit der Hydrolyse
eines Stärkesubstrates, bis die Temperatur nicht ungefähr
40°C beträgt, während eine wesentliche Hydrolyse
nicht eintritt, bis eine Temperatur von annähernd
60°C vorliegt. Daher wird das Stärkesubstrat nicht merklich
unter typischen Umgebungs-Lagerungsbedingungen abgebaut.
Die bei der vorliegenden Erfindung bevorzugten
Stärkesubstrate sind Maissirup und Maltodextrine. Insbesondere
bevorzugt werden Maltodextrine. Eine Quelle für
Maltodextrin ist MALTRIN®, ein hydrolysiertes Maisprodukt
(Cereal-Feststoff), der in unterschiedlichen Dextroseäquivalenten
zur Verfügung steht, z. B. von der Grain
Processing Corporation of Muscatine, Iowa, USA. MALTRIN
ist ein mildes Nahrungsmittelgrad-Kohlenhydrat mit sehr
erwünschten Quellungs-Eigenschaften. Es hat eine geringe
Süße, löst sich leicht in Wasser und ist gegen Klumpenbildung
beständig.
Beispielsweise ist eine typische Analyse von MALTRIN-100
die folgende:
Dextroseäquivalent9,0-12,0
Feuchtigkeit, % Maximum6,0
pH-Wert, 20%-ige Lösung4,0-4,7
Formweisses Pulver
Monosaccharide 1%
Disaccharide 4%
Trisaccharide 6%
Tetrasaccharide 5%
Pentasaccharide und höhere Saccharide84%
Es wurde festgestellt, dass eine Konzentration von etwa
3 bis 15% G/V an Maltodextrin besonders vorteilhaft
ist, um das Enzym in Lösung zu halten.
Weiterhin wurde überraschenderweise festgestellt, dass
eine umgekehrte Beziehung zwischen den Dextroseäquivalenten
(DE) des Maltodextrins und der Aufrechterhaltung
der Solubilisierung des Enzyms besteht. Mit anderen Worten
heisst dies, dass je niedriger das DE des Maltodextrins
ist, umso mehr neigt das Enzym dazu, in Lösung
zu bleiben. Vorzugsweise ist der DE etwa 35 oder weniger
und noch bevorzugter weniger als etwa 25. Diese Feststellung
wird im nachfolgenden Beispiel 4 erläutert.
Andere Stärken mit anderen Dextroseäquivalenten können
ebenfalls vorteilhaft eingesetzt werden. Der genaue Mechanismus
ist nicht bekannt, jedoch kann man annehmen,
dass alle Stärken aufgrund der Bildung eines stabilen
Enzym/Substrat-Komplexes wirken.
Gemäss der bevorzugten Ausführungsform wird entweder
vor der Zugabe der Stärke oder danach der pH-Wert der
enzymhaltigen Lösung auf ein Niveau, das bei oder oberhalb
des isoelektrischen Punktes des Enzyms liegt, eingestellt.
Der pH-Wert sollte in einem Bereich von annähernd
4,0 pH-Einheiten oberhalb des isoelektrischen
Punktes bis zu ungefähr dem isoelektrischen Punkt liegen.
Vorzugsweise beträgt der pH-Wert nicht mehr als
ungefähr 3,0 Einheiten oberhalb des isoelektrischen
Punktes. Der isoelektrische Punkt von alpha-Amylase
variiert zwischen 4,8 und 5,5 und bei solchen sauren pH-
Werten bleibt das Enzym in Lösung. Die Aufrechterhaltung
eines niedrigen pH-Wertes ist jedoch keine Alternative
für die Lagerung der alpha-Amylaselösung, weil durch
die Säure das Enzym denaturisiert wird. Gemäss einer
besonders bevorzugten Ausführungsform ist das Enzym
TAKA-TERM® (hergestellt von Miles Laboratories Inc.,
Elkhart, Indiana, USA), eine wärmestabile alpha-Amylase,
erhalten durch die Fermentation eines Mutantenstammes
von Bacillus licheniformis, wobei der pH ungefähr zwischen
5,5 und 9,0 und noch bevorzugter zwischen etwa
6,0 und 8,2 liegt. Es wurde festgestellt, dass der optimale
pH-Wert bei der bevorzugten Ausführungsform mit
TAKA-TERM zwischen annähernd 6,5 und 8,0 liegt. Die
bevorzugten Mittel zur Einstellung des pH-Wertes sind für
die Enzymchemie bekannt und Beispiele hierfür sind Basen,
wie NaOH und KOH, und Säuren, wie Salzsäure und
Essigsäure.
Die alpha-Amylase-Aktivität wurde in den Beispielen gemessen,
indem man die Hydrolyse von löslicher Stärke bestimmte
und dabei die Blauwertverminderung des Stärke-Jod-
Komplexes anwendete, wie es in dem "Manual of Liquefying
Alpha-Amylase Assay" beschrieben wird, welches eine Modifizierung
der Methode darstellt, die von Wohlgemuth in
Biochem. 29:1 (1908) beschrieben wird. In einem typischen
Ansatz werden 5 ml einer 2%-igen, löslichen Stärke,
gepuffert auf einen pH-Wert von 5,4, und 4 ml Wasser
mit 1 ml eines ausreichend verdünnten Enzyms auf einem
Wasserbad, welches bei 40°C gehalten wird, inkubiert.
In Zeitabständen (5 bis 30 Minuten nach der Zugabe des
Enzyms), werden Aliquote (1 ml) abgezogen und in ein
Rohr, welches 5 ml einer verdünnten Jodlösung enthält,
eingespritzt und durch Inversion vermischt. Die entwickelte
Farbe wurde dann gegenüber einem Vergleichsstandard
verglichen, um dadurch die Annäherung des Reaktionsendpunktes
zu überwachen. Die Enzymaktivität wurde als
modifizierte Wohlgemuth-Einheiten pro Milliliter (MWU/ml)
berechnet.
Eine modifizierte Wohlgemuth-Einheit (MWU) stellt die
Aktivität dar, bei welcher 1 ml löslicher Stärke auf
einen bestimmten Blauwert innerhalb von 30 Minuten unter
den Versuchsbedingungen dextrinisiert wird. Für die Berechnung
wird angenommen, dass die Dichte der von Wasser
entspricht, so daß die Aktivität pro ml gleich der
Aktivität pro g unterstellt wird. Die Berechnung ist die
folgende:
darin bedeuten:
100= Milligramm Stärke in jeder Inkubationsmischung; 30= definierte Dextrinisierungszeit in Minuten; T= Zeit in Minuten, die erforderlich ist, um den Endpunkt zu erreichen; W= Gewicht in Gramm des Enzyms, welches zu der Inkubationsmischung in 1 ml Aliquot der Enzymverdünnung gegeben wird.
100= Milligramm Stärke in jeder Inkubationsmischung; 30= definierte Dextrinisierungszeit in Minuten; T= Zeit in Minuten, die erforderlich ist, um den Endpunkt zu erreichen; W= Gewicht in Gramm des Enzyms, welches zu der Inkubationsmischung in 1 ml Aliquot der Enzymverdünnung gegeben wird.
Eine schematische Darstellung der Theorie über die Stabilisierung
von alpha-Amylase bei hohen Konzentrationen
unter Verwendung von Maltodextrinen als Stärkesubstrat
verläuft wie folgt:
Es wurde unerwarteterweise entdeckt, dass Faktoren,
welche die Konzentration des freien Enzyms in Lösung
verringern, auch die Aggregation des Enzyms bei höheren
Enzymaktivitäten verhindern. Die Entfernung von
Wasser aus einer verdünnten Enzymlösung begünstigt
Enzym-Enzym-Zwischenreaktionen, anstatt Enzym-Wasser-
Zwischenreaktionen. Die erhöhten Enzym-Enzym-Zwischenreaktionen
verursachen, dass das Enzym durch nichtkovalente
Anziehung assoziiert, wodurch das Enzym dann
ausfällt.
Es wurde festgestellt, dass die Zugabe von Stärke (S)
entweder zu dem Enzymextrakt oder während der Konzentrierung
des Enzyms die Insolubilisierung des Enzyms
bei hohen Konzentrationen umgeht, wie durch die folgende
Formel gezeigt wird:
n(E) + m(S) → (ES) x + S (n-m) + E n-x , wenn n ≦λτ m
Im Gleichgewicht umfasst die Lösung im allgemeinen x
Mole Enzym/Stärke-Komplex (ES), die Stärke (S n-m ) und
freies Enzym (E n-x ).
Die Versuchsdaten zeigen, dass in Abwesenheit von
irgendeiner Stärke eine Ausfällung des Enzyms eintrat,
wenn die Konzentration des freien Enzyms (E n-x ) grösser
als 35.000 MWU/ml Aktivität, bezogen auf das Gewicht
des Enzyms in der Lösung, war. Bei den in den nachfolgenden
Beispielen gezeigten Ausführungsformen wurde
in allen Fällen TAKA-TERM, eine wärmestabile alpha-Amylase,
die aus B. licheniformis erhalten wurde, verwendet, wobei
die Erfindung jedoch nicht darauf beschränkt ist.
Ein Fermentationsmedium, welches für die Kultivierung
eines Stammes von B. licheniformis unter Erhalt einer
wärmestabilen alpha-Amylase geeignet ist, kann man für
einen 1.000 Liter-Fermentator wie folgt herstellen:
Calciumchloriddihydrat (Flocken)0,2-1,0 kg
Mono- und Dikaliumphosphat15-24 kg
Ammoniumsulfat2-7 kg
geeignete Kohlenstoffquelle100-200 kg
Baumwollsamenmehl25-40 kg
Sojamedium (Sojamehl)30-50 kg
Mazu DF 6000 (ein organischer Entschäumer, hergestellt
von der Mazu Company, in welchem die Hauptbestandteile
Polypropylenglykol und Silicon sind.)8-13 l Wasser bis zu einem Gesamtvolumen von1000 l
von der Mazu Company, in welchem die Hauptbestandteile
Polypropylenglykol und Silicon sind.)8-13 l Wasser bis zu einem Gesamtvolumen von1000 l
Das Medium wurde mit lebenden Zellen eines Stammes von
Bacillus licheniformis inokuliert und 70 bis 90 Stunden
bei 40 bis 50°C bei Aufrechterhaltung eines annähernd
neutralen pH-Wertes fermentiert. Nach dieser Fermentierung
wurde das Medium mittels eines geeigneten
Ausfällungsmittels, um die Entfernung der Biomasse zu
erleichtern, ausgeflockt. Die Biomasse kann man durch
Zentrifugieren oder Filtrieren entfernen und die
Flüssigkeit wird zur weiteren Reinigung durch ein Trommelfilter
geleitet, wodurch man eine zellfreie Lösung
(hauptsächlich Kulturfiltrat oder überstehende Lösung)
erhält. Typischerweise ist das Trommelfilter mit einer
Filterhilfe überzogen, wie Superaid®, um das primäre
Kulturfiltrat bzw. die überstehende Lösung zu reinigen
(d. h. zu klären).
Gemäss einer bevorzugten Ausführungsform kann man das
primäre Kulturfiltrat durch Ultrafiltration, z. B. mit
einer PM-10-Membran (zur Entfernung eines Molekulargewichtes
von 10.000) und/oder im Vakuum konzentrieren. Dann
wird das Enzym aus dem konzentrierten Kulturfiltrat
quantitativ bei einem pH-Wert von 6 bis 8 unter Ausbildung
eines enzymhaltigen Kuchens ausgefällt, vorzugsweise
indem man 20%-iges G/V Natriumsulfat, 28%-iges G/V
Ammoniumsulfat oder 80%-iges V/V Ethanol zugibt, worauf
man dann das Enzym aus dem Kuchen mit Wasser extrahiert
und Maltodextrin zu dem Extrakt gibt.
Ein primäres alpha-Amylase-Kulturfiltrat, das wie oben
beschrieben erhalten wurde und das gereinigt worden war,
indem man es über ein Trommelfilter, welches mit
Superaid® beschichtet worden war, geleitet hatte, wurde
durch Ultrafiltration unter Verwendung einer Romicon®
20HF-4-Filtervorrichtung mit einer ein Molekulargewicht
von 10.000 abschneidenden Membran bei 10°C konzentriert
und in verschiedene Aliquote aufgeteilt. Der pH-Wert
eines jeden Aliquots wurde mit 20% G/V wässriger KOH
auf 7,6 eingestellt. Dann wurde Maltrin-20 zu den verschiedenen
Proben in unterschiedlichen Prozenten G/V zugegeben
und die Proben wurden unter gleichmässiger Durchmischung
gerührt. Einige Proben wurden als Kontrolle (0%
G/V Maltrin-20) aufbewahrt. Anschliessend wurde auf einem
Drehverdampfer (Brinkman-Buchi Rotovapor®) im Vakuum bei
35°C weiter auf die gewünschte Amylaseaktivität und
Maltrinkonzentration für die jeweilige Probe konzentriert.
Alle Proben wurden vor einer mikrobiellen Verunreinigung
geschützt durch Zugabe von 0,5% G/V Kaliumsorbat
und anschliessender Lagerung bei 25°C während eines Monats.
Nach der angegebenen Zeit wurden die Proben zentrifugiert.
Die Menge des Enzyms (anfangs, in der überstehenden
Flüssigkeit verbleibend oder ausgefällt) kann
bestimmt werden, indem man die Aktivität in MWU/ml in
der vorher beschriebenen Art misst. So wurde die Menge
des in der überstehenden Flüssigkeit vorhandenen Enzyms
gemessen und von der Anfangsmenge des Enzyms abgezogen,
wodurch man die Menge des Enzyms erhielt, die in dem Niederschlag
verloren ging und dies wurde auf den Prozentgehalt
des ausgefällten Enzyms umgerechnet, unter Anwendung
der Formel 100 x (Enzymausfällung/Anfangsenzym).
Die Ergebnisse werden in der nachfolgenden Tabelle 1 gezeigt.
Die Ergebnisse von Tabelle 1 zeigen, dass Maltrin die
Ausfällung des Enzyms in einem konzentrierten Kulturfiltrat
inhibierte. Allerdings wurde das Enzym nicht
in einer hochkonzentrierten Lösung aufbewahrt, wie es
eine bevorzugte Ausführungsform, die in dem nachfolgenden
Beispiel 3 beschrieben wird, ist.
Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt, wobei
jedoch die Konzentration, die pH-Einstellung und die
Maltrin-Zugabe unterschiedlich waren. Das gesamte Kulturfiltrat
wurde durch Ultrafiltration auf das 7-fache
konzentriert und dann auf eine Konzentration von annähernd
700.000 MWU/ml eingedampft. Der pH-Wert des
Konzentrats wurde auf 7,6 eingestellt und das Konzentrat
in 4 Anteile aufgeteilt. Maltrin-20 wurde zu jeder der
Konzentrationen gegeben. Die Proben wurden mässig bei
25°C während 40 Stunden gerührt und dann zentrifugiert.
Der prozentuale Enzymverlust in dem Niederschlag wurde
in gleicher Weise wie in Beispiel 1 berechnet und die
Ergebnisse werden in Tabelle 2 zusammengefasst.
Aus der Tabelle ist ersichtlich, dass die verschiedenen
Mengen an Maltrin-20, die bis zu 8,0% G/V betrugen,
eine drastische Verringerung des Enzymverlustes während
der Ausfällung ergaben. Die Aktivität wird jedoch
in einer hochkonzentrierten Lösung nicht so gut beibehalten
wie bei der bevorzugten Ausführungsform in dem
nachfolgenden Beispiel 3.
Eine alpha-Amylaselösung wurde durch Ultrafiltration
auf das 4-fache mit einer PM-10-Membran konzentriert und
anschliessend wurde, wie vorher beschrieben, mit Na2SO4
ausgefällt (20% G/V) und diese alpha-Amylaselösung wurde
im vorliegenden Beispiel verwendet.
Da Natriumsulfat als Ausfällungsmittel verwendet wurde,
wurde auf oberhalb Raumtemperatur, d. h. auf annähernd
40°C, erwärmt, um die Klumpenbildung des Natriumsulfats
zu erleichtern. Filterhilfe FW-6 (1% G/V) wurde zugegeben
und der Enzym enthaltende Kuchen wurde durch Vakuumfiltration
gesammelt. Der Enzym enthaltende Kuchen
wurde von der Filtervorrichtung entfernt und in einer
minimalen Menge an Wasser zur Auflösung des darin enthaltenen
Enzyms wieder aufgeschlämmt. Die Aufschlämmung
wurde filtriert unter Erhalt einer konzentrierten Enzymlösung
und dann mit Wasser auf eine Anfangsenzymkonzentration,
bestimmt durch Messung der Aktivität, von
1.000.000 MWU/ml eingestellt und in 7 Aliquote aufgeteilt.
Maltrin-250 (pulverisiert) wurde zu 6 der Aliquote
in Mengen von 1%, 2%, 3%, 4%, 5% und 10% G/V
gegeben und 1 Aliquot wurde als Kontrolle (0% Maltrin-
250) aufbewahrt. Nach der Zugabe wurden die Proben für
eine gleichmässige Durchmischung gut gerührt und der pH-
Wert wurde mit KOH auf 8,0 eingestellt. Die Anfangsaktivität
wurde aufgrund der durch die Zugabe von Maltrin
erfolgten Verdünnung korrigiert, d. h. es wurden geeignete
Blindproben, welche die jeweiligen Mengen an Maltrin-
250 enthielten, ebenfalls hergestellt, um jeden Fehler
aufgrund der Wirkung des Maltrins in der untersuchten Lösung
zu eliminieren. Alle Proben wurden 24 Stunden bei
10°C aufbewahrt. Nach der angegebenen Zeit wurden die
Proben filtriert. Wie vorher angegeben, wird die Menge
des Enzyms bestimmt, indem man die Aktivität misst. Es
wurde somit die Menge des in dem Filtrat enthaltenen
Enzyms gemessen und von der korrigierten Anfangsmenge des
Enzyms abgezogen, wobei man den Enzymverlust in der
Ausfällung erhielt und diese wurde auf die Prozente des
ausgefällten Enzyms umgerechnet nach der Formel 100 x
(Enzym ausgefällt/korrigiertes Anfangsenzym). Die Ergebnisse
werden in der nachfolgenden Tabelle 3 gezeigt.
Die wässrige Enzymlösung war viel reiner als das konzentrierte
Kulturfiltrat das im vorhergehenden Beispiel 1
beschrieben wurde, da die Ausfällung mit Na2SO4 die Verunreinigungen
entfernte. Es wurden daher nicht mehr als
3% G/V Maltrin-250 benötigt, um im wesentlichen die gesamte
Enzymaktivität in der Lösung beizubehalten.
Wie ersichtlich ist, wurde kein Enzym ausgefällt, wenn
die Konzentration an Maltrin-250 3% G/V und höher war
und somit bleiben 100% der Amylase, gemessen durch deren
Aktivität, in dem Filtrat.
Beispiel 3 wurde wiederholt, wobei jedoch dieses Mal die
Menge des zugegebenen Maltrins konstant gehalten wurde
und dessen Dextroseäquivalente variiert wurden. Es wurde
somit die Auswirkung des Polymerisationsgrades (DP) von
Maltrodextrinen auf die Stabilisierung von alpha-Amylase
bei hoher Aktivität untersucht. Maltrodextrine mit
verschiedenen Dextroseäquivalenten (DE) wurden in einer
Menge von 1% (G/V) zu acht wässrigen konzentrierten
alpha-Amylase-Aliquoten, enthaltend 1.000.000 MWU/ml
Anfangsaktivität, gegeben. Der pH-Wert jeder Probe wurde
durch KOH auf 8,0 eingestellt und die Aktivität bezüglich
der Zugabe von Matrin korrigiert. Die Proben
wurden 24 Stunden bei 10°C gelagert. Nach der angegebenen
Zeit wurden die gelagerten Proben filtriert. Das Filtrat
wurde auf alpha-Amylaseaktivität untersucht und der Prozentsatz
des ausgefällten Enzyms wurde in gleicher Weise
wie in Beispiel 3 berechnet. Die Ergebnisse werden in
der nachfolgenden Tabelle 4 zusammengefasst.
Die Ergebnisse in Tabelle 3 zeigen, dass die Stabilisierung
des Enzyms mit der Abnahme des DE des Maltodextrins
zunahm. Ebenfalls erfolgte durch die Zugabe
von Maltose oder Glucose keine Verringerung des ausgefällten
Enzyms im Vergleich zu der Kontrolle, sondern
vielmehr eine leichte Erhöhung.
Eine durch Ultrafiltration und mittels der Na2SO4-Ausfällungsmethode
(20% G/V) erhaltene, konzentrierte alpha-
Amylaselösung, wie sie in Beispiel 2 beschrieben wird,
wurde in diesem Beispiel verwendet.
Der pH-Wert der konzentrierten Enzymlösung wurde mit
KOH auf 8,0 eingestellt und dann wurde die Lösung in
3 Proben aufgeteilt. Die Anfangskonzentration des Enzyms
in jeder der Proben wurde mit Wasser auf eine Aktivität
von 1.000.000 MWU/ml, 700.000 MWU/ml bzw. 350.000 MWU/ml
eingestellt. Jede der drei Proben wurde in vier Teile
aufgeteilt und während 18 Stunden bei 5°C, 10°C, 24°C
und 37°C gelagert. Nach der angegebenen Zeit wurden die
Proben unter Verwendung von Whatman Nr. 3-Filterpapier
filtriert und die Menge des in dem Filtrat enthaltenen
Enzyms wurde bestimmt, indem man die Aktivität mass und
der Prozentsatz des ausgefällten Enzyms wurde berechnet
mittels der Gleichung 100x (Anfangsenzym - Filtratenzym)/
Anfangsenzym. Die Ergebnisse werden in der nachfolgenden
Tabelle A gezeigt.
Die Ergebnisse in der obigen Tabelle zeigen deutlich
die Beziehung zwischen dem Anfangsenzym und dem Ausmass
der Enzymausfällung in Abwesenheit von Maltrin. Eine
Lagerung der wässrigen Enzymlösung, enthaltend 1.000.000
MWU/ml, also mit einer hohen Anfangsaktivität, bei einem
pH-Wert von 8,0 während 18 Stunden, ergab eine Ausfällung
des Enzyms von 75 bis 81,3%, während bei einer niedrigen
Anfangsaktivität von 350.000 MWU/ml lediglich 7,3%
oder weniger Enzymverlust in dem Präzipitat erfolgte.
Mit anderen Worten heisst dies, dass in dem Masse, wie die
Konzentration der Enzymlösung anstieg, d. h. wenn die Lösung
eine höhere Konzentration an alpha-Amylase aufweist,
das Enzym dann dazu neigt auszufällen, anstatt in Lösung
zu bleiben.
Beispiel A wurde wiederholt, wobei dieses Mal die Aktivität
konstant gehalten und der pH-Wert variiert wurde.
Ein Aliquot wie in Beispiel A der konzentrierten Lösung,
welche mit Wasser auf eine hohe Anfangsaktivität von
1.000.000 MWU/ml eingestellt worden war, wurde in 6
Aliquote aufgeteilt. Jedes wurde mit KOH auf einen pH-
Wert von 5,5, 6,5, 7,5, 8,5, 9,5 bzw. 10,5 eingestellt
und 18 Stunden bei 5°C gelagert. Nach der Lagerung wurden
die Proben durch ein Whatman Nr. 3-Filterpapier
filtriert und das zurückbleibende Enzym in dem Filtrat
wurde bestimmt und dann wurde der Prozentsatz des ausgefällten
Enzyms in gleicher Weise wie in Beispiel A berechnet.
Die Ergebnisse werden in Tabelle B gezeigt.
Das Ausmass, in welchem das Enzym aus der Lösung ausfiel,
erhöhte sich mit einer Erhöhung des pH-Wertes von
6,5 auf 8,5 und erreichte ein Maximum bei einem pH-Wert
von 8,5. Oberhalb des pH-Wertes von 8,5 wurde eine Verringerung
des Enzymverlustes in dem Niederschlag festgestellt,
was auf eine Wiederauflösung des ausgefällten
Enzyms bei hohem alkalischen pH zurückzuführen sein
kann. Von Interesse ist es, dass die maximale Löslichkeit
des Enzyms bei hoher Anfangskonzentration bei einem
pH-Wert von 5,5 eintrat, welches annähernd dem isoelektrischen
Punkt des Enzyms enspricht. Dennoch wird, wie
vorher angegeben, bei einem solchen sauren pH-Wert das
Enzym während einer längeren Lagerungszeit denaturiert.
Wirkung der Temperatur auf die Ausfällungsrate von
alpha-Amylase bei einem pH-Wert von 8,0:
Ein Aliquot einer konzentrierten wässrigen Enzymlösung,
enthaltend 1.000.000 MWU/ml Anfangsaktivität, wie in
Beispiel B, wurde in zwei unterschiedliche Kolben
(150 ml für jede Probe) aufgeteilt, wobei jedoch der
pH-Wert in beiden Fällen unter Verwendung von Natriumhydroxid
auf 8,0 eingestellt wurde. Die beiden Proben
wurden dann bei 10°C bzw. 37°C aufbewahrt. Ein 10 ml
Aliquot wurde aus jedem der Kolben in unterschiedlichen
Intervallen von 2,5 Stunden, 4 Stunden, 7 Stunden, 10
Stunden, 12 Stunden und 20 Stunden abgezogen. Unmittelbar
nach dem Abziehen wurde jeder Aliquot durch ein
Whatman Nr. 3-Filterpapier filtriert und das Filtrat wurde
auf alpha-Amylase untersucht. Der Prozentsatz des
ausgefällten Enzyms wurde in gleicher Weise wie in Beispiel A
berechnet und die Ergebnisse werden in Tabelle C
zusammengefasst.
Die Ergebnisse in Tabelle C zeigen, dass niedrige Temperaturen
die Ausfällung des Enzyms begünstigen, während
bei 37°C die Solubilisierung begünstigt war.
Zusammenfassend zeigen die Tabellen A, B und C deutlich
die Beziehung zwischen dem Anfangsenzym in der Lösung
unter dem Ausmass des Enzymverlustes im Niederschlag bei
unterschiedlichen pH-Werten und Temperaturen. Die Entfernung
von Wasser aus der Enzymlösung, d. h. bei der
Herstellung von konzentrierten Lösungen hoher Aktivität,
verursacht eine erhöhte Protein-Protein-Zwischenreaktion,
durch welche die Neigung zur Aggregation des
Enzyms begünstigt wird und dadurch eine Ausfällung eintritt.
Ein Vergleich der Beispiele 1, 2, 3 und 4 zeigt
deutlich, dass durch die Zugabe von Maltrin zu konzentrierten
Lösungen hoher Aktivität die Protein-Protein-
Zwischenreaktion inhibiert und die Löslichkeit des Enzyms
begünstigt wird.
Claims (22)
1. Verfahren zur Herstellung von wärmestabiler alpha-
Amylase durch Fermentation von Bacillus licheniformis
unter Ausbildung einer Fermentationsbrühe, enthaltend
das Enzym und feste Abfallprodukte aus der
Fermentation, dadurch gekennzeichnet,
dass man zu der Fermentationsbrühe eine Stärke in
einer ausreichenden Menge gibt, um die Enzym-Enzym-
Agglomeration zu inhibieren und dadurch die Löslichkeit
der alpha-Amylase in wässriger Lösung zu erhöhen.
2. Verfahren gemäss Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet,
dass man die Fermentationsbrühe
behandelt, unter Entfernung der festen Abfallprodukte
vor der Zugabe der Stärke unter Erhalt einer
zellfreien, Enzym enthaltenden Lösung, zu welcher
man dann die Stärke gibt und dadurch ein wässriges,
im wesentlichen lösungsstabiles alpha-Amylase-Produkt
erhält.
3. Verfahren gemäß den Ansprüchen 1 und 2, dadurch
gekennzeichnet, dass man die Stärke direkt zugibt,
indem man die Stärke zu der enzymhaltigen Lösung in
einer Menge von etwa 0,1 bis 50% (Gewicht/Volumen)
der Stärkelösung direkt zugibt oder indem man die
Stärke zunächst in H2O auflöst und die erhaltene
Stärkelösung zugibt.
4. Verfahren gemäss den Ansprüchen 1 bis 3, dadurch
gekennzeichnet, dass man die enzymhaltige Lösung
auf das etwa 1- bis 10-fache konzentriert und die
Stärke während oder nach der Konzentrierung zugibt.
5. Verfahren gemäss den Ansprüchen 1 bis 4, dadurch
gekennzeichnet, dass man vor oder nach der Zugabe
der Stärke den pH-Wert auf einen Punkt einstellt,
der innerhalb eines Bereiches von annähernd dem
isoelektrischen Punkt des Enzyms bis annähernd 4,0
pH-Einheiten oberhalb des isoelektrischen Punktes
liegt.
6. Verfahren gemäss den Ansprüchen 1 bis 5, dadurch
gekennzeichnet, dass die Aktivität des wässrigen
Produktes 350.000 MWU/ml ist.
7. Verfahren gemäss den Ansprüchen 1 bis 6, dadurch
gekennzeichnet, dass die Stärke ein Substrat für
die alpha-Amylase ist.
8. Verfahren gemäss Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet,
dass das Stärkesubstrat
Maissirup oder Maltodextrin ist.
9. Verfahren gemäss den Ansprüchen 7 und 8, dadurch
gekennzeichnet, dass das Stärkesubstrat Maltodextrin
mit einem Dextroseäquivalent unterhalb etwa
35 ist.
10. Verfahren gemäss Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet,
dass man nach der Entfernung der
festen Abfallprodukte unter Ausbildung einer zellfreien,
enzymhaltigen Lösung und vor der Zugabe der
Stärke ein Ausfällungsmittel, ausgewählt aus der
Gruppe, bestehend aus Salzen und niedrigmolekulargewichtigen
organischen Lösungsmitteln, zu der enzymhaltigen
Lösung zugibt und dadurch einen das Enzym
enthaltenden Kuchen ausfällt und dann das Enzym von
dem Enzym enthaltenden Kuchen in (i) Wasser extrahiert
und anschliessend zu dem Extrakt eine Stärke
in einer Menge von etwa 0,1 bis 50% (Gewicht/Volumen)
der Stärke zu Wasser gibt oder in (ii) Wasser, welches
Stärke in einer Menge von etwa 0,1 bis 50%
(Gewicht/Volumen) Stärke zu Wasser, enthält, extrahiert.
11. Verfahren gemäss Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet,
dass die Extraktion des Enzyms
aus dem Kuchen im wesentlichen darin besteht, dass
man Wasser oder eine Wasserlösung der Stärke durch
den Kuchen zirkulieren lässt oder den Kuchen in
Wasser oder in einer Wasserlösung der Stärke wieder
aufschlämmt.
12. Verfahren gemäss den Ansprüchen 10 und 11, dadurch
gekennzeichnet, dass man vor oder nach der Zugabe
der Stärke den pH-Wert des Extraktes auf einen
Punkt einstellt, der innerhalb des Bereiches von
annähernd dem isoelektrischen Punkt des Enzyms bis
annähernd 4,0 pH-Einheiten oberhalb des isoelektrischen
Punktes liegt.
13. Verfahren gemäss den Ansprüchen 10 bis 12, dadurch
gekennzeichnet, dass das als Ausfällungsmittel
verwendete Salz aus der Gruppe Natriumsulfat, Ammoniumsulfat
und einer Mischung davon ausgewählt ist
und dass das als Ausfällungsmittel verwendete organische
Lösungsmittel aus der Gruppe, bestehend aus
Methanol, Ethanol, 1-Propanol, Isopropanol, n-Butanol,
tert-Butanol und einer Mischung daraus, ausgewählt
ist.
14. Verfahren gemäss den Ansprüchen 10 bis 13, dadurch
gekennzeichnet, dass vor der Zugabe des Ausfällungsmittels
die Enzym enthaltende Lösung um das
etwa 1- bis 10-fache konzentriert worden ist.
15. Verfahren gemäss den Ansprüchen 10 bis 14, dadurch
gekennzeichnet, dass die Aktivität des wässrigen
Produktes 350.000 MWU/ml ist.
16. Verfahren gemäss den Ansprüchen 10 bis 14, dadurch
gekennzeichnet, dass die Stärke ein Substrat
für die alpha-Amylase ist.
17. Verfahren gemäss Anspruch 16, dadurch gekennzeichnet,
daß das Stärkesubstrat Maissirup oder
Maltodextrin ist.
18. Verfahren gemäß den Ansprüchen 16 und 17, dadurch
gekennzeichnet, daß Stärkesubstrat Maltodextrin mit
einem Dextroseäquivalent unterhalb etwa 35 ist.
19. Ein wässriges, im wesentlichen lösungsmittelstabiles
alpha-Amylaseprodukt, hergestellt nach einem der Ansprüche
1 bis 18.
20. Wässrige, im wesentlichen lösungsmittelstabile
alpha-Amylaseformulierung, umfassend wärmestabile
alpha-Amylase aus Bacillus licheniformis und eine
Stärke in einer Menge von etwa 0,1 bis 50% (Gewicht/
Volumen).
21. Formulierung gemäß Anspruch 20, dadurch gekennzeichnet,
daß sie weiterhin eine Amylase, die sich von der wärmestabilen
alpha-Amylase aus B. licheniformis unterscheidet,
eine Protease oder eine Mischung davon enthält.
22. Formulierung gemäß den Ansprüchen 20 und 21, dadurch
gekennzeichnet, daß sie weiterhin etwa 0 bis etwa 80%
eines oberflächenaktiven Detergens aus der Gruppe
amphotere, anionische, kationische, nicht-ionische,
zwitterionische oder semipolar-nicht-ionische, oberflächenaktive
Mittel oder eine Mischung daraus enthält.
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