DK168050B1 - Fremgangsmaade til fremstilling af en stabil vandig oploesning af varmestabil alfa-amylase fra bacillus licheniformis - Google Patents

Fremgangsmaade til fremstilling af en stabil vandig oploesning af varmestabil alfa-amylase fra bacillus licheniformis Download PDF

Info

Publication number
DK168050B1
DK168050B1 DK523686A DK523686A DK168050B1 DK 168050 B1 DK168050 B1 DK 168050B1 DK 523686 A DK523686 A DK 523686A DK 523686 A DK523686 A DK 523686A DK 168050 B1 DK168050 B1 DK 168050B1
Authority
DK
Denmark
Prior art keywords
enzyme
maltodextrin
amylase
solution
approx
Prior art date
Application number
DK523686A
Other languages
English (en)
Other versions
DK523686D0 (da
DK523686A (da
Inventor
Jack William Brewer
Chong Yol Kim
Curtis Jerry Montgomery
Jayarama Kadangod Shetty
Original Assignee
Solvay Enzymes Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Solvay Enzymes Inc filed Critical Solvay Enzymes Inc
Publication of DK523686D0 publication Critical patent/DK523686D0/da
Publication of DK523686A publication Critical patent/DK523686A/da
Application granted granted Critical
Publication of DK168050B1 publication Critical patent/DK168050B1/da

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2405Glucanases
    • C12N9/2408Glucanases acting on alpha -1,4-glucosidic bonds
    • C12N9/2411Amylases
    • C12N9/2414Alpha-amylase (3.2.1.1.)
    • C12N9/2417Alpha-amylase (3.2.1.1.) from microbiological source
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/96Stabilising an enzyme by forming an adduct or a composition; Forming enzyme conjugates
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/832Bacillus
    • Y10S435/836Bacillus licheniformis

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Detergent Compositions (AREA)

Description

DK 168050 B1
Opfindelsen angår en fremgangsmåde til fremstilling af en stabil vandig opløsning af varmestabil a-amylase fra Bacillus licheniformis ud fra en fermenteringsvæske indeholdende enzymet og faste spildprodukter fra fermenteringen.
5 Enzymer er biokatalysatorer, der regulerer mange af de biokemiske reaktioner, som forekommer naturligt i levende organismer. Enzymer anvendes på mange områder, f.eks. i garveri-, detergent-, næringsmiddel- og farmaceutisk industri. Ved den traditionelle metode til fremstilling af en-10 zymer opløses en enzymfældning i vand. Opløsninger af enzym i vand med høj styrke (koncentrerede opløsninger med høj enzymaktivitet) kan imidlerttid være opbevarings-in-stabile. Enzymet udfældes fra opløsningen og/eller er var-mefølsomt. I US patentskrift nr. 3.242.056 beskrives anven-15 delsen af vandige polyolopløsninger til hjælp ved hindring af termisk instabilitet af lysozym. I US patentskrift nr. 4.497.897 beskrives der en stabil, flydende proteinase fra Subtilisin Carlsberg indeholdende propylenglycol, calciumion og carboxylatsalt. I US patentskrift nr. 4.519.034 beskrives 20 der en stabil, flydende a-amylase fra Bacillus licheniformis, dispergeret i propylenglycol.
Et flydende enzymprodukt indeholdende varmestabil a-amylase fra Bacillus licheniformis i vandig opløsning er ønskelig, eftersom det kan anvendes direkte industrielt, 25 f.eks. i flydende detergenter, uden besværet med først at genopløseliggøre en tør enzymfældning i vand og/eller uden at tage hensyn til opløsningsmiddelforenelighed, f.eks. forenelighed med propylenglycol. Desuden undgås enzymstøv fra et tørt produkt. Forskere har således længe søgt efter 30 metoder til at holde dette enzym i vandig opløsning, navnlig opløsninger med høj aktivitet (højkoncentrerede opløsninger). Omend den kendte teknik, der er nævnt i det foregående afsnit, angiver anvendelsen af forskellige opløsningsmidler, f.eks. propylenglycol, er der aldrig blevet opnået et vandigt 35 enzymprodukt med høj enzymaktivitet, hvor dette enzym forbliver i opløsning.
2 DK 168050 B1 a-Amylase kan eksempelvis fås ved dyrkning af forskellige mikroorganismer, f.eks. Bacillus subtilis eller Bacillus licheniformis, i· et egnet næringsmedium. Bacillus subtilis producerer α-amylase, der er fysisk stabil, 5 dvs. at enzymet ikke i kendeligt omfang vil udfældes fra en vandig opløsning, selv når aktiviteten er 3 millioner MWU/ml (Modified Wohlgemuth Units pr. ml) eller mere. Disse α-amylase-opløsninger er imidlertid varmefølsomme, og maltodextrin tilsættes til forøgelse af termostabiliteten.
10 Ligeledes beskriver Klesov et al. i "Substrate Thermostabilization of Soluble and Immobilized Glucoamylase", Department of Chemistry, Moscow State University, Biokhimiya,
Vol. 44 (6), side 1084-1092 (1979), termostabilisering af en opløsning af glucoamylase fra Aspergillus niger med 15 maltodextrin. På den anden side er α-amylase opnået fra Bacillus licheniformis varmestabil, jfr. f.eks. Volesky et al., Microbial Enzymes: Production, Purification and Isolation, Vol. 2, nr. 2, side 120, 1985, men den er ikke specielt fysisk stabil i en vandig opløsning ved høje kon-20 centrationer.
Den foreliggende opfindelse angår en fremgangsmåde af den i det foregående nærmere angivne art, og denne fremgangsmåde er ejendommelig ved, at man til fermenteringsvæsken sætter maltodextrin i en mængde på fra ca. 0,1 til ca. 50% 25 (vægt/rumfang) af maltodextrin til opløsningen til inhibering af enzym-enzym-agglomerering, hvorved opløseligheden af α-amylasen i den vandige opløsning forøges.
Intetsteds i litteraturen foreslås eller angives den foreliggende, nye erkendelse, ifølge hvilken man kan anvende 30 maltodextrin til fremstilling af et stabilt vandigt produkt med høj enzymaktivitet, hvori enzymet er varmestabil a-amy-lase fra Bacillus licheniformis, og man har således nu undersøgt virkningen af tilsætningen af maltodextrin på stabiliseringen af vandige α-amylase-opløsninger med aktiviteter 35 op til ca. l million MWU/ml.
3 DK 168050 B1
Med den foreliggende opfindelse tilvejebringes et i det væsentlige opløsningsstabilt α-amylasepræparat, hvor α-amylasen er opnået fra Bacillus licheniformis. Ved udtrykket "i det væsentlige opløsningsstabil" menes der, at den 5 tilstand, hvor enzymet forbliver i opløsning, favoriseres, i modsætning til, at enzymet udfældes fra opløsningen, når denne opløsning er kraftig, dvs. har en høj enzymkoncentration, hvor aktiviteten er mindst 350.000 MWU/ml. Ved tilpasning af mængden af maltodextrin kan der fås særdeles kon-10 centrerede opløsninger med en aktivitet på 1 million MWU/ml eller endog mere, og som er i det væsentlige opløsningsstabile.
I US patentskrift nr. 3.272.717 er der beskrevet et termisk stabilt α-amylasepræparat, som fremstilles ud fra 15 amylaseholdige væsker ved tilsætning af et overfladeaktivt middel til koagulering eller fældning af urenheder, som fjernes ved filtrering. I patentskriftet omtales der tilsætning af stivelse til det α-amylaseholdige filtrat og omrøring, og der beskrives endvidere en fremgangsmåde til til-20 vejebringelse af granulær α-amylase, ved hvilken der anvendes stivelse til at forøge fældningen af α-amylaseholdige partikler. I modsætning hertil har det ifølge den foreliggende opfindelse vist sig, at en bestemt stivelse, nemlig maltodextrin, forøger opløseligheden af α-amylase (medens andre 25 stivelser er uopløselige og vil forøge enzymfældningen) . I dette patentskrift er der således intet antydet om, at man kan sætte maltodextrin til en vandig opløsning af a-amylase til inhibering af enzym-enzym-agglomerering til forøgelse af opløseligheden af a-amylasen.
30 I US patentskrift nr. 3.661.786 er der beskrevet stabilisering af α-amylase med almindelige granulære stivelser eller modificerede stivelser, herunder dextrin. Der beskrives et granulært præparat indeholdende et enzym og et detergent, hvilket præparat er stabiliseret med stivelse, 35 især mod udsættelse for temperaturer ved eller over omgivelsernes temperatur og/eller høj fugtighedsgrad og/eller per- 4 DK 168050 B1 borat-blegemidler, der har tendens til at destruere eller nedsætte aktiviteten af a-amylase. Stivelses/enzym-granulerne fremstilles ved en spraytørringsproces, og der findes i patentskriftet ingen antydning om, at stivelsen forøger 5 opløseligheden af a-amylasen i den opløsning, ud fra hvilken de spraytørrede granuler fremstilles, eller om, at maltodex-trin er den stivelse, der er specielt egnet til opnåelse af den omtalte virkning.
Det her fremstillede flydende præparat kan yderligere 10 indeholde en amylase, der er forskellig fra varmestabil a-amylase fra Bacillus licheniformis og/eller en protease. Forskellige mikroorganismer, som producerer amylaser og/eller proteaser, omfatter, men er ikke begrænset til Bacillus subtilis, Bacillus licheniformis, Bacillus stearothermophilus 15 og Bacillus amyloliquefaciens. De her omhandlede præparater er også fortrinsvis tiltænkt til anvendelse i et detergent og kan således indeholde fra ca. 0 til ca. 80% af et detergent-overfladeaktivt middel udvalgt fra gruppen af amphotere, anioniske, kationiske, ikke-ioniske, zwitter-20 -ioniske eller semipolære-ikke-ioniske overfladeaktive midler eller blandinger deraf. Sådanne detergenter er velkendte, og eksempler på nogle detergenter, der kan anvendes i forbindelse med de her omhandlede, flydende enzympræparater, er de, der er beskrevet i US patentskrift nr. 4.318.818 og 25 US patentskrift nr. 4.111.855.
Den følgende oversigt viser en foretrukken udførelsesform for fremgangsmåden ifølge opfindelsen sammenholdt med en konventionel behandling. Denne oversigt tjener kun til illustrerende formål og skal ikke betragtes som en an-30 givelse af, hvorledes den foreliggende opfindelse skal udøves i praksis.
35 DK 168050 Bl 5
Oversigt (A) Fermentering (biomasseadskillelse) (B) Kulturfiltrat (PM-2-membran) 5 (C) UF-koncentrat (D) (i) eller (D) (U) Fældnings- Vakuumind- metode til dampnings- opnåelse metode til af kage opnåelse af ^•0 koncentrat (E*) (i) eller (E') (ii) (E) (i) eller (E) (ii)
Ekstraktion Fortsat Ekstraktion Stabilisering af enzym fra inddamp- ·" af enzym ved tilsætning kage i vand (ind— ning fra kage i af maltodextrin stilling på vand inde- pH 6,5 pH 8, opbe- holdende varing ved maltodex- 10°C i 18- trin -24 timer) (filtre ring) 20 (pi) Enzymkageprodukt (F) Flydende slutprodukt (G) Ekstraktion af enzym fra kage i vand indeholdende maltodextrin pH 6,5 25 _
En simpel fremgangsmåde til fremstilling af et i det væsentlige stabilt, højvirksomt, vandigt a-amylasepræparat 30 er angivet i den ovenstående oversigt. Fremgangsmåden omfatter (A) udførelse af en fermentering, (B) adskillelse af biomassen fra fermenteringsvæsken indeholdende enzymet ved filtrering, (C) ultrafiltrering (UF) til opnåelse af et enzymkoncentrat, (D) enten (i) udfældning af en kage inde- 35 holdende enzymet eller (ii) udførelse af yderligere koncentrering ved vakuuminddampning eller yderligere ultrafil- DK 168050 B1 6 trering, og derefter (E) enten (i) ekstraktion af det udfældede enzym fra kagen over i en vandig opløsning ved genopslæmning af kagen i opløsningen, eller ved cirkulering af opløsningen gennem kagen, hvor den ekstraherende opløsning 5 indeholder maltodextrin, eller maltodextrin sættes til ekstrakten, eller (ii) tilsætning af maltodextrin direkte til koncentratet til opnåelse (F) af et vandigt, maltodextrin-holdigt slutprodukt. Ved konventionel behandling består trinet (E1) i stedet af (i) opslæmning af kagen i vand til 10 ekstraktion af enzymet derfra, eller består (ii) af en fortsat inddampning. Der genudfældes dernæst en enzymholdig kage, og overskud af moderlud fraskilles ved filtrering, hvorved der efterlades et tørt enzymprodukt (F1). Alternativt kan den foreliggende opfindelse bringes i anvendelse efter 15 trinene (E1) og (F') ved ekstraktion af enzymet fra denne udfældede kage over i en vandig opløsning indeholdende maltodextrin (G).
Efter enzymproduktion kan de faste stoffer (biomasse fra fermentering) fjernes fra den hele fermenterings væske 20 til tilvejebringelse af en enzymholdig opløsning ved anvendelse af enhver standardteknik, f.eks. filtrering og/eller centrifugering. Dernæst koncentreres den cellefri, enzym-holdige opløsning fortrinsvis mellem ca. 1 og ca. 10 gange ved hjælp af vilkårlig koncentrationsmetode, f.eks. ultra-25 filtrering og/eller inddampning. Maltodextrin eller en vandig opløsning indeholdende maltodextrin sættes til opløsningen eller koncentratet i en mængde på fra ca. 0,1 til ca. 50% efter vægt pr. rumfang, fortrinsvis fra ca. 3 til ca. 15% efter vægt pr. rumfang, af maltodextrin til den enzymholdige 30 opløsning eller koncentratet.
Ifølge en foretrukken udførelsesform kan der forud for tilsætningen af maltodextrinen sættes et fældningsmiddel til den cellefri, enzymholdige opløsning (eller koncentratet) , hvorved en kage indeholdende enzymet udfældes. Vel-35 kendte fældningsmidler er de lavmolekylære organiske opløsningsmidler såsom methanol, ethanol, isopropanol, 1-propanol, 7 DK 168050 B1 n-butanol, tert.butanol eller en blanding deraf eller salte såsom natriumsulfat, ammoniumsulfat eller blandinger deraf. Det er her hensigten, at udtrykket "kage" skal omfatte udtrykket "opslæmning" til inkludering af de tilfælde, hvor 5 kagen er så fugtig, at den vil blive betragtet som en opslæmning. Såfremt der forefindes et overskud af moderlud, kan dette fjernes fra opslæmningen eller kagen ved anvendelse af enhver af en række metoder, f.eks. almindelig filtrering, sugefiltrering, gravitetssedimentering eller centrifugering. 10 Dernæst kan der fremstilles en vandig opløsning indeholdende fra ca. 0,1 til ca. 50% efter vægt pr. rumfangsenhed, fortrinsvis fra ca. 3 til ca. 15% efter vægt pr. rumfangsenhed af maltodextrin i vand, som anvendes til opløsning eller ekstraktion af enzymet fra kagen. Ekstraktionen af enzymet 15 fra kagen kan også udføres ved hjælp af vand, og maltodex-trinen sættes dernæst i en mængde på fra ca. 0,1 til ca.
50% efter vægt pr. rumfangsenhed til ekstrakten.
Ifølge en anden udførelsesform adskilles de faste spildprodukter (dvs. biomasse fra fermentering) ikke fra 20 fermenteringsvæsken efter enzymproduktionen. I stedet sættes maltodextrinen eller en vandig opløsning af denne direkte til den hele fermenteringsvæske. Dette hjælper med til at holde enzymet i opløsning, således, at når de faste spildprodukter fjernes, tabes der mindre enzym i de faste stoffer. 25 Maltodextrinen tilsættes i en mængde på fra ca. 0,1 til ca. 50% efter vægt pr. rumfangsenhed til den hele fermenterings-væske.
Maltodextrinen kan være et substrat for enzymet. I almindelighed indvirker enzymer, der udviser deres maksimale 30 aktivitet ved en forhøjet temperatur, dvs. f.eks. 60°c, ikke kendeligt på et substrat, med mindre der foretages nogen opvarmning. Nærmere betegnet begynder a-amylase fra Bacillus licheniformis i det væsentlige ikke at hydrolysere et maltodextrinsubstrat, førend temperaturen er ca. 40°C, 35 idet en væsentlig hydrolyse ikke finder sted, førend temperaturen når ca. 60°C. Substratet vil således ikke blive 8 DK 168050 B1 væsentligt nedbrudt under typiske opbevaringsbetingelser ved omgivelsernes temperatur. En kilde til maltodextrin er Maltrin®, et hydrolyseret majsprodukt (faste stoffer fra kornsorten), der leveres i forskellige dextroseækvivalenter, 5 f.eks. af Grain Processing Corporation, Muscatine, Iowa.
Maltrin® er et mildt, hvidt carbonhydrat af næringsmiddelkvalitet med meget ønskelige bulk-karakteristika. Det har en lav sødhedsgrad, er letopløseligt i vand og er modstandsdygtigt mod klumpdannelse.
10 Eksempelvis er en typisk analyse for Maltrin-100 som følger:
Typiske kemiske og fysiske data
Dextroseækvivalent 9,0-12,0 15 Fugtighed, % maksimum 6,0 pH, 20%1 s opløsning 4,0-4,7
Form Hvidt pulver
Typisk carbonhydrat-profil (tør basis) 20 Monosaccharider 1%
Disaccharider 4%
Trisaccharider 6%
Tetrasaccharider 5%
Pentasaccharider og højere saccharider 84% 25
Det har vist sig, at en koncentration på fra ca. 3 til ca. 15% efter vægt pr. rumfangsenhed af maltodextrin er mest fordelagtig til at holde enzymet i opløsning.
Det har endvidere overraskende vist sig, at der ek-30 sisterer en omvendt korrelation mellem dextroseækvivalentet (DE) for maltodextrinet og opretholdelsen af enzymets solu-bilisering. Med andre ord er forholdet det, at jo lavere DE for maltodextrinet er, desto mere har enzymet tendens til at forblive i opløsning. Fortrinsvis er værdien for DE 35 9 DK 168050 B1 ca. 35 eller mindre, navnlig fortrinsvis mindre end ca. 25. Denne erkendelse er illustreret i det følgende eksempel 4.
Den nøjagtige mekanisme kendes ikke, men det antages, at maltodextrin kan anvendes på grund af dannelsen af et 5 stabilt enzym-substrat-kompleks.
I den foretrukne udførelsesform, enten efter eller før tilsætningen af maltodextrinen, indstilles pH-værdien for den enzymholdige opløsning på et niveau ved eller over enzymets isoelektriske punkt. pH-værdien bør ligge i et om-10 råde fra ca. 4,0 pH-enheder over det isoelektriske punkt og ned til omkring det isoelektriske punkt. Fortrinsvis er pH--værdien ikke mere end ca. 3,0 enheder over det isoelektriske punkt. Det isoelektriske punkt for α-amylase varierer mellem 4,8 og 5,5, og ved en sådan sur pH-værdi vil enzy-15 met forblive i opløsning. Imidlertid er det at holde pH- -værdien så lavt ikke et alternativ til opbevaring af a-amy-lase-opløsningen, fordi aciditeten vil bevirke denaturering af enzymet. Ifølge den mest foretrukne udførelsesform, hvor enzymet er Taka-Therm® (leveret af Miles Laboratories, Inc., 20 Elkhart, Indiana), en varmestabil α-amylase, der fås ved fermentering af en mutantstamme af Bacilis licheniformis, bør pH-værdien ligge mellem ca. 5,5 og ca. 9,0, fortrinsvis mellem ca. 6,0 og ca. 8,2. Det har vist sig, at den optimale pH-værdi i den foretrukne udførelsesform ved anvendelse 25 af Taka-Therm ® ligger mellem ca. 6,5 og ca. 8,0. De foretrukne midler til indstilling af pH-værdien er velkendte inden for enzymkemien, og eksempler er baser såsom NaOH og Κ0Η samt syrer såsom saltsyre og eddikesyre.
a-Amylase-aktivitet måles i eksemplerne ved bestem-30 melse af hydrolysen af opløselig stivelse under anvendelse af blåværdi-reduktion af stivelse-iod-kompleks som beskrevet i Manual of Liquefying Alpha-Amylase Assay, der er en modifikation af den metode, der er beskrevet af Wohlgemuth i Biochem., 29, 1 (1908). Ved et typisk forsøg inkuberes 35 5 ml 2%*s opløselig stivelse, der er pufret ved en pH-værdi på 5,4, og 4 ml vand med 1 ml passende fortyndet enzym i et DK 168050 B1 10 vandbad, der holdes ved 40°C. Ved tidsbestemte intervaller (5-30 minutter fra tilsætningen af enzym) udtages ali-quoter på 1 ml og indsprøjtes i et rør indeholdende 5 ml fortyndet iodopløsning, og der sammenblandes ved inversion.
5 Den udviklede farve sammenlignes derpå i en komparator til overvågning af fremkomsten af reaktionens slutpunkt. Enzymaktiviteten beregnes som Modified Wohlgemuth Units per milliliter (MWU/ml).
En Modified Wohlgemith Unit (MWU) er den aktivitet, 10 som dextriniserer 1 ml opløselig stivelse til en defineret blåværdi i løbet af 30 minutter under analysebetingelserne. Til beregningsformål antages det, at massefylden svarer til massefylden for vand, og aktiviteten pr. ml antages at være ækvivalent med aktiviteten pr. g. Beregningen er følgende: 15 „TTTT / 1 / _ 100 x 30 _ 3000
MWU/ml MWU/g T x W T x W
hvor 100 = mg stivelse i hver inkubationsblanding 30 = defineret dextriniseringstid i minutter T = tid i minutter til at nå slutproduktet W = vægt i g af enzym tilsat inkubationsblandingen i 1 ml aliquot af enzymfortynding.
En skematisk afbildning af teorien for stabilisering af α-amylase ved høje koncentrationer under anvendelse af 25 maltodextriner som stivelsessubstratet er som følger. Det har uventet vist sig, at faktorer, der nedsætter koncentrationen af det frie enzym i opløsning, også hindrer aggregeringen af enzymet ved høj' enzymaktivitet. Fjernelse af vand fra en fortyndet enzymopløsning har tendens til at favorisere 30 enzym-enzym-interaktioner i stedet for enzym-vand-inter aktioner. De forøgede enzym-enzym-interaktioner forårsager således, at enzymet associeres gennem ikke-kovalent tiltrækning, hvilket resulterer i fældningen af enzymet.
35 11 DK 168050 B1 n(E) —> (E)n Aggregering —p> Fældning V i'
Vand Vand 5
Det har vist sig, at tilsætningen af xnaltodextrin (M) enten til ekstrakten af enzym eller under koncentrering af enzymet fører til undgåelse af uopløseliggørelsen af enzymet ved høje koncentrationer, hvilket fremgår af det 10 følgende reaktionsskema: n(E) + m (M) -> (EM) x + M (n-m) + En_x, hvis n > m
Under ligevægtsforhold indeholder opløsningen i al-15 mindelighed x mol enzym/maltodextrinkompleks (EM), maltodex-trin (Mn_m) og frit enzym (En_x).
De eksperimentelle data viser, at i fraværelse af maltodextrin forekommer der fældning af enzymet, når koncentrationen af det fri enzym (En_x) er mere end 350.000 20 MWU/ml aktivitet, beregnet på vægten af enzymet i opløsningen.
De udførelsesformer, der er illustreret i de følgende eksempler, angår alle anvendelsen af Taka-Therm®, der er en varmestabil a-amylase fra Bacillus licheniformis.
25 30 35 0 DK 168050 B1 12
Farmentering af Bacillus licheniformis til produktion af varmestabil α-amylase (Taka-Therm ^ )_
Et fermenteringsmedium, der er egnet til dyrkning af en stamme af Bacillus 'licheniformis til produktion af 5 varmestabil α-amylase, kan fremstilles på følgende måde til en 1000 liter gæringsbeholder:
Calciumchlorid-dihydrat (flager) 0,2-1,0 kg
Mono- og dikaliumphosphat 15-24 kg
Ammoniumsulfat 2-7 kg 10 Egnet carbonkilde 100-200 kg
Bomuldsfrømel 25-40 kg
Sojamedium (sojamel) 30-50 kg
Mazu DF 6000x 8-13 liter
Vand tilsat til 1000 liter totalrumfang 15 _ x et organisk antiskummiddel leveret af Mazu Company, hvor hovedbestanddelene er poly-propylenglycol og silicone.
20 Mediet podes med levedygtige celler af en stamme af
Bacillus licheniformis og får lov at fermentere i 70-90 timer ved 40-50°C, idet pH-værdien holdes praktisk taget neutral. Efter denne fermentering kan mediet flocculeres ved hjælp af et egnet flocculeringsmiddel til hjælp ved fjernel-25 se af biomassen. Biomassen kan fjernes f.eks. ved centrifugering eller filtrering, og væsken passerer gennem et tromlefilter til polering og dermed til tilvejebringelse af en cellefri opløsning (primært kulturfiltrat eller ovenstående væske). Typisk for-overtrækkes tromlefilteret med et 30 filterhjælpemiddel såsom Superaid ®til polering (dvs. klaring) af det primære kulturfiltrat eller den ovenstående væske.
Ifølge en foretrukken udførelsesform kan det primære kulturfiltrat koncentreres ved ultrafiltrering, f.eks.
35 med en PM-10-membran (molekylvægtsgrænse 10.000) og/eller 0 13 DK 168050 B1 ved hjælp af vakuum. Dernæst kan enzymet udfældes kvantitativt (pH = 6-8) fra det koncentrerede kulturfiltrat i form af en enzymholdig kage, fortrinsvis ved tilsætning af 2o% natriumsulfat efter vægt/rumfang, 28% ammoniumsulfat efter 5 vægt/rumfang eller 80% ethanol efter rumfang/rumfangsenhed, hvorefter der følger en ekstraktion af enzymet fra kagen med vand, og der sættes dernæst maltodextrin til ekstrakten.
10 Eksempel 1
Et primært kulturfiltrat af a-amylase som ovenfor beskrevet, der er blevet klaret ved at blive ført gennem et tromlefilter overtrukket med Superaid ® , koncentreres 7 gange ved ultrafiltrering under anvendelse af et 15 Romicon ®20HF-4-filterapparat med en membran med en molekylvægtsgrænse på 10.000 ved 10°C, og filtratet opdeles i en række aliquoter. pH-værdien for hver aliquot indstilles på 7,6 med 20% vandig kaliumhydroxidopløsning. Der tilsættes Maltrin-20 til en række prøver i varierende procentmæng-20 der efter vægt/rumfangsenhed,og prøverne omrøres grundigt til opnåelse af ensartet sammenblanding. Nogle få prøver beholdes som kontroller (0% Maltrin-20 efter vægt/rumfangs-enhed). Dernæst koncentreres hver prøve yderligere ved hjælp af vakuum ved 35°C med en roterende inddamper (Brink-25 man-Buchi Rotovapor ®) til den ønskede amylaseaktivitet og Maltrin-koncentration for den bestemte prøve, der er tale om. Alle prøverne beskyttes mod mikrobiel forurening ved tilsætning af 0,5% kaliumsorbat efter vægt/rumfangs-enhed, efterfulgt af opbevaring i 1 måned ved 25°C. Efter 30 det angivne tidsrum centrifugeres prøverne. Mængden af enzym (hvad' 'enten der er tale om den oprindelige mængde, der forbliver i den ovenstående væske, eller den udfældede mængde) kan bestemmes ved måling af aktiviteten i MWU/ml som ovenfor beskrevet. Mængden af enzym i den ovenstående 35 væske bestemmes således og subtraheres fra den oprindelige 14 0 DK 168050 B1 mængde enzym, hvorved man får den mængde enzym, der er tabt i udfældningen, og denne mængde omdannes til procentmængden af fældet enzym ved anvendelse af formlen 100 x (fældet enzym/oprindeligt· enzym). Resultaterne er samlet 5 i den følgende tabel I.
10 15 20 25 30 35 15 DK 168050 B1
-P
Q)
rH
K
IH IT) in 03 ID OD <ί VD 'J O CM o 00 00 O
K s »· K I h, W s ^ *· ** ^ *· k ^ g ro oo r~- m l oo σ co t-·- m cm in r-H oo ιο m
>1 σ CM 00 CM 00 Γ' r-H r-H CM CM OO CM ID Η H CM
Q) N
tfl β
ttJ H
H
>i o\o g β β
IH
(tf 'd d
Cn O) β β β β Η ο(ΰ ih β g g π3 β ι—1 ι-Η β a) \ ΙΗ -Η -Ρ
dO
Η U fB CM
βΟ > ι lo β ΙΜ {tø !Κ Η β CM ο\° ·Η Ο Η Ο ^ Ο Ο ο Μ ·ί m Ο «1 (ϋ ^ Ρ Ο Η Γ'· co *3* Ο'-ο^Ο^^ο OooLncMcon i—ITJid .p ·»*.··. «· «.v**.*.». * *>*·*·*· *
(Didcu β Η O CM CO ID Γ" O CM LO σ i—1 CO O CM -=31 CO CO H
j2 P > 0 β HrH >H
β d BS
Eh d -P
ο<ϋ β β d-H β β -Ρ Ο β β
CM > (D
I (L) U
β X! β Ή (ί Ο β 0 & •Ρ Γ—I β β Φ a tj β 4Η β nj d co co Ο to co iH^cmcmoO 00 CM in in r- •H r^r^Or^r'' cm θ'- cm cm r- r~ h cm σ oo co cm tn HH if ϋ1 O tr ^ ^ r" m oo co r" β (Ug..... ...... ......
-Η Αχ tn ο Ο ο Ο m οι m in in m id cm σ id ιο cm β fj h Μ1 Μ1 U) "5Γ co Γ- 00 ^ σι ^ ^ rH Γ- Γ- 00 00 Γ- Μ -Η^ΟΟσΟιΗ γ- Γ- οο οο οο οο Γ'ΟοσΓ^Γ^οο β β S · · •Η d γΗ γ—1 Η Η > Ο β β ....... ...... ......
> Η es m ^ ιη ιοΓ'ΟοσΟΗ cMcn^mioo
Ό. γΗγΗγΗι—Ιι—! ι—I ι—I ι—I
β (β 16 DK 168050 B1 -μ
<D
'd
iH
« m σ\ H oo o ^ H oocncncmco^ O O r- m O σι V. V. V *·. *. *>. K. fc. V < fc. ·«. W *- W V.
g O H cn -¾1 in ^ oo in "ί ί in id (N <τ η H
(O Is fO lO ri ri til IO ^t1 ri i—I H Li") H (—1 r—I r-1 i—I
O) N
in β
td H
iH
>1 0\° g td a
IH
td ^ t5 tn t n d) β β β id
^ -Η ο(ΰ IH
£ C Ε g S Ti β
® ri Η H
fæ \
£ M-i -H -P
O tnO
‘h m u ffl oj ^ (do >l LO C 5h tK is ΗΠ<Μο\ο·Ηθ ro O O O in (D ^S-iOcNOjr-OO O Η cm ro ^ (Μ O (N lo u rH *·.*►*»***»*► «w k ^ >k < k κ >. v. >«. ·«. (j) <D cd (D ÆHOcn^loooO O ^ ^ ^ co H Ocm^^dcoO h rQ Η ϊ> O itf rH rH i—1 1—i
(d tn -H S O
H tn -Η H
°td β td -P
a-H Η β
Η -P O
0 (d β ,¾ cm > 0)
1 O) O M
β Λ β Ο) •na ο MOW ο -Ρ η Η Η td tu t n SO Ο β iH β -31 td θ' 1 Ο ^ η ro σι ο οοΟΟοοΟ^ο Η m Ο cn γί η cn •Η Ο di Ή ri μ ω to pi co μ σ> on m oo m m tn HH O r-· m m η H in co oo in co r-' n o t' m oi ^ - β 0) g...... co
•Η Ό\ΟΗοοοονοοο O N n O n m οί H vo O O m H
β βρ^ιηΓ^Γ^Ηΐη t" m in r~- m co ιο cm o oo oo σι ,¾ rig to m in in m m n^^nrom - Μ M S cm •na η > ο ιο ν
I—I
(D
• β Μ Η
β CD
> (D...... "& > oo οη ο Η cm on ·ί in co ν ra m ο Η cm on ·3* in η S Η Η Μ Dl ΟΙ Dl Ν Dl Dl ΟΙ Dl W 0Π ΓΠ 00 00 0Q ΓΟ ft Μ a κ } DK 168050 Bl 0 17
Resultaterne i tabel I viser, at maltrin inhiberer fældningen af enzymet i et koncentreret kulturfiltrat. Enzymet opretholdes imidlertid ikke i en højaktiv opløsning lige så godt som ifølge den foretrukne udførelsesform, der 5 er beskrevet i det følgende eksempel 3.
Eksempel 2
Fremgangsmåden fra eksempel 1 følges, idet der dog anvendes en anden størrelsesorden for koncentrationen, en 10 anden pH-regulering og en anden Maltrin-tilsætning. Det samlede kulturfiltrat koncentreres 7 gange ved ultrafiltrering og inddampes derpå til en koncentration på ca.
700.000 MWU/ml. Koncentratets pH-værdi indstilles derpå til 7,6, og koncentratet opdeles i 4 portioner. Der sæt-15 tes Maltrin-20 til hver portion i forskellige koncentrationer. Prøverne omrøres moderat ved 25°C i 40 timer og centrifugeres dernæst. Den procentmængde enzym, der går tabt i fældningen, beregnes på samme måde som i eksempel 1. Resultaterne er samlet i følgende tabel II.
20
Tabel II
Virkning af Maltrin-20 ved 700.000 MWU/ml % Vægt/rumfang % Enzym
Maltrin-20 fældet 25 0,00 8 4 2.0 74 4.0 48 8.0 6,2 30 Det fremgår af tabellen, at forskellige mængder af Maltrin-20 op til 8,0% efter vægt/rumfang giver anledning til en drastisk formindskelse af tabet af enzym på grund af udfældning. Aktiviteten opretholdes imidlertid ikke i en højaktiv opløsning lige gå godt som tilfæl-35 det er ved anvendelse af den foretrukne udførelsesform, 0 DK 168050 B1 18 der er beskrevet i det følgende eksempel 3.
Eksempel 3
En α-amylaseopløsning koncentreret ved ultrafiltre-5 ring 4 gange med en PM-10-membran, efterfulgt af Na2S0^~ -fældning (20% vægt/rumfangsenhed) som ovenfor beskrevet anvendes i dette eksempel.
Eftersom natriumsulfat anvendes som fældningsmiddel, udføres der en opvarmning til over stuetemperatur, dvs. til 10 ca. 30°C, til undgåelse eller formindskelse af klumpdannelse af natriumsulfatet. Der tilsættes Filteraid FW-6 (1% efter vægt/rumfangsenhed), og der opsamles en enzymholdig kage ved vakuumfiltrering. Den enzymholdige kage fjernes fra filtreringsapparatet og genopslæmmes i en minimal mæng-15 de vand til opløsning af enzymet derfra. Opløsningen filtreres til dannelse af en koncentreret enzymopløsning og indstilles derpå med vand til en høj udgangsenzymkoncentration som bestemt ved en målt aktivitet på 1 million MWU/ml, og opløsningen opdeles yderligere i 7 aliguoter.
20 Pulveriseret Maltrin-250 sættes til 6 af disse aliquoter i en mængde på 1%, 2%, 3%, 4%, 5% og 10% efter vægt/rumfangsenhed, og 1 aliquot beholdes som kontrol (0% Maltrin--250). Efter tilsætningen omrøres prøverne grundigt til ensartet sammenblanding, og pH-værdien indstilles på 8,0 25 med Κ0Η. Den oprindelige aktivitet korrigeres for fortyndingen på grund af tilsætningen af Maltrin, dvs. at passende blindprøver indeholdende de respektive mængder af Maltrin-250 også fremstilles til eliminering af enhver fejl, der skyldes virkningen af Maltrin på analysen. Alle 30 prøver opbevares ved 10°C i 24 timer. Efter det angivne tidsrum filtreres prøverne. Som ovenfor nævnt bestemmes mængden af enzym ved måling af aktiviteten. Mængden af enzym i filtratet måles således og subtraheres fra den korrigerede oprindelige enzymmængde for at give den mæng-35 de enzym, der er tabt i fældningen, som omdannes til pro- 0 DK 168050 B1 19 cent fældet enzym under anvendelse af udtrykket 100 x (fældet enzym/korrigeret oprindeligt enzym). Resultaterne er sammenfattet i den følgende tabel III.
5 Tabel III
Virkning af Maltrin-250-koncentration på den vandige stabilisering af α-amylase ved en høj indledende enzymkoncentration på 1.000.000 MWU/ml, pH = 8,0, og med opbevaring ved 10°C _i 24 timer_ 10 Koncentration, Procent fældet
Prøve nr. Maltrin-250 (% vægt/rumfang) enzym_ 1. kontrol 0 80 2. 1 45 3. 2 18 15 4* 3 0 5.4 0 6. 5 0 7. 10 0 20 Den vandige enzymopløsning er meget renere end det koncentrerede kulturfiltrat som beskrevet i det ovenstående eksempel 1, eftersom fældningen med Na2S04 bevirker fjernelse af urenheder. Der kræves således ikke mere end 3% mal-trin efter vægt/rumfangsenhed til at holde praktisk taget 25 hele enzymaktiviteten i opløsning. Som det ses, fældes der intet enzym, når koncentrationen af Maltrin-250 er 3% efter vægt/rumfangsenhed eller mere, og 100% af amylasen som målt ved dennes aktivitet forbliver således i filtratet.
30 Eksempel 4
Eksempel 3 gentages, men i dette tilfælde holdes den mængde maltrin, der tilsættes, konstant, og dets dextrose-ækvivalent varieres. Der undersøges således virkningen af graden af polymerisation (DP) af maltodextriner på stabili-35 seringen af α-amylase ved høj aktivitet. Maltodextriner med 0 DK 168050 B1 20 varierende dextroseækvivalenter (DE) tilsættes i en mængde på 1% efter vægt/rumfangsenhed til 8 vandige, koncentrerede a-amylase-aliquoter indeholdende 1 million MWU/ml begyndelsesaktivitet. pH-værdien for hver prøve indstilles på 8,0 5 med KOH, og aktiviteten korrigeres for tilsætningen af mal-trin. Prøven opbevares ved 10°C i 24 timer. Efter det angivne tidsrum filtreres de opbevarede prøver. Filtratet analyseres for α-amylase-aktivitet, og procentmængden af fældet enzym beregnes på samme måde som i eksempel 3. Resulta-10 terne er sammenfattet i den følgende tabel.
Tabel IV
Virkning af DE på stabiliseringen af a-amylase ved høj indledende enzymkoncentration på 1 mil-lion MWU/ml med opbevaring ved 10°C i 24 timer 15
Stivelse Målt % Enzym
Prøve nr. substrat DE fældet 1. Maltrin-040 5,2 40,0 2. Maltrin-100 11/4 41,5 3. Maltrin-150 16,1 41,5 20 4. Maltrin-200 22,5 45,5 5. Maltrin-250 23,6 45,5 6. Maltrin-365 35,7 51,0 7. Maltose 68,0 82,0 8. Glucose 100,0 85,0 ?5 9. kontrol Intet — 80,6
Resultaterne i tabel III viser, at stabiliseringen af enzymet forøges med DE for maltodextrin. Tilsætningen 30 af maltose eller glucose påvirker ikke nogen formindskelse af den fældede enzymmængde sammenlignet med kontrolforsøget, men bevirker snarere en svag stigning.
Sammenligningseksempel A (intet maltrin) 35 En koncentreret α-amylase-opløsning, der er fremstil- DK 168050 B1 21 0 let ved ultrafiltrering og ^280^-fældningsmetoden (20% efter vægt/rumfang) som beskrevet i eksempel 2 anvendes i dette eksempel.
pH-værdien for den' koncentrerede enzymopløsning 5 indstilles på 8,0 med KOH, hvorpå opløsningen yderligere opdeles i 3 prøver. Dernæst indstilles begyndelseskoncentrationen af enzym for hver af prøverne med vand på en aktivitet på 1 million MWU/ml, 700.000 MWU/ml og 350.000 MWU/ml. Hver af de tre prøver opdeles dernæst i 4 dele og 10 opbevares ved 5°C, 10°C, 24°C og 37°C i 18 timer. Efter den angivne tid filtreres prøverne under anvendelse af Whatman nr. 3-filtrerpapir, og mængden af enzym i filtratet bestemmes ved måling af aktiviteten, og procentmængden af fældet enzym beregnes under anvendelse af formlen 15 100 x (oprindelig mængde enzym minus filtrat-enzym/oprin- delig mængde enzym). Resultaterne er angivet i den følgende tabel A.
20 25 30 35 0 DK 168050 B1 22
Tabel A
Virkning af temperatur og indledende enzymkoncentration på enzymfældningen ved pH = 8,0 med opbevaring ved forskellige tempera-_i 18 timer_ 5
Oprindelig enzymaktivitet Inkubations- % enzym fældet efter MWU/ml temp., °C 18 timer ved pH = 8,0 1. 1.000.000 5 81,3 10 10 80,0 25 80,7 37 75,0 2. 700.000 5 44,3 15 10 45,6 25 41,4 37 23,8 3. 350.000 5 4,8 20 10 7,3 25 7,3 37 0,0
Resultaterne i den ovenstående tabel viser klart 25 relationen mellem oprindelig enzymkoncentration og graden af enzymfældning i fraværelse af Haltrin. Opbevaring af vandig enzymopløsning indeholdende 1 million MWU/ml høj begyndelsesaktivitet ved en pH-værdi på 8,0 i 18 timer resulterer i en fældning af fra 75 til 81,3% enzym, medens 30 en lav begyndelsesaktivitet på 350.000 MWU/ml kun resulterer i et tab på 7,3% eller mindre af enzym i fældningen.
Det forholder sig med andre ord således, at når styrken af enzymopløsningen forøges, dvs. når opløsningen har en højere koncentration af a-amylase, er der en tendens til, at 35 enzymet fældes fremfor at forblive i opløsning.
i 0 DK 168050 B1 23
Sammenligningseksempel B (intet Maltrin)
Eksempel A gentages, men i dette tilfælde holdes aktiviteten konstant, og pH-værdien varieres.
En aliquot som i eksempel A af den koncentrerede op-5 løsning, der er blevet indstillet med vand på en høj begyndelsesaktivitet på 1 million MWU/ml, opdeles i 6 aliquoter. Hver aliquot indstilles med KOH på en pH-værdi på 5,5, 6,5, 7,5, 8,5, 9,5 og 10,5, og opbevares ved 5°c i 18 timer. Efter opbevaring filtreres prøverne gennem Whatman nr. 3-pa-10 pir, og det tilbageblivende enzym i filtratet bestemmes, og derpå beregnes procentmængden af fældet enzym på samme måde som i eksempel A. Resultaterne er sammenfattet i den følgende tabel B.
15 Tabel B
Virkning af pH på α-amylase-enzymet fældet ved høj begyndelsesaktivitet med opbevaring _ved 5°C i 18 timer_
Prøve nr. pH Procent fældet a-amylase 20 1. 5,5 0 2. 6,5 9,0 3. 7,5 65,0 4. 8,5 80,0 5. 9,5 76,5 ος 6. 10,5 52,0
Graden af enzym, som fældes fra opløsningen, forøges, når pH-værdien forøges fra 6,5 til 8,5,og når et maksimum 30 ved en pH-værdi på 8,5. Ved en pH-værdi over 8,5 iagttages der en formindskelse af den mængde enzym, der går tabt i fældningen, hvilket kan skyldes genopløseliggørelse af det fældede enzym ved en høj alkalisk pH-værdi. Det er interessant at bemærke, at den maksimale opløselighed af enzymet 35 ved en høj begyndelseskoncentration finder sted ved en pH- 24 0 DK 168050 B1 -værdi på 5,5, hvilket er nær ved enzymets isoelektriske punkt. Ikke desto mindre vil en sådan sur pH-værdi som ovenfor nævnt denaturere enzymet under lange opbevarings-perioder.
5
Sammenligningseksempel C (intet Maltrin)
Virkning af temperaturen på hastigheden af fældning af a- -amylase ved en pH-værdi på 8,0_
En aliquot af koncentreret, vandig enzymopløsning 10 indeholdende 1 million MWU/ml begyndelsesaktivitet som i eksempel B separeres i to forskellige kolber (150 ml for hver prøve), men med den undtagelse, at pH-værdien i hver indstilles på 8,0 under anvendelse af natriumhydroxidopløsning. De to prøver opbevares dernæst ved 10°C og 37°C.
15 En aliquot på 10 ml udtages fra hver kolbe ved forskellige tidspunkter, dvs. efter 2,5 timer, 4 timer, 7 timer, 10 timer, 12 timer og 20 timer. Umiddelbart efter udtagelsen filtreres hver aliquot gennem Whatman nr. 3-papir, og filtratet analyseres for a-amylase. Dernæst beregnes pro-20 centmængden af fældet enzym på samme måde som i eksempel A. Resultaterne er sammenfattet i den følgende tabel C.
Tabel C
Virkning af temperaturen på hastigheden af fældning af α-amylase ved pH = 8,0 25 Tid (timer) Procent fældet enzym
10°C 37°C
2,5 4 - 7 36 - 30 10 61 19 12 75 40 20 80 65 35 25 0 DK 168050 B1
Resultaterne i tabel C viser, at den lave temperatur favoriserer fældningen af enzymet, medens temperaturen på 37°C favoriserer enzymets opløseliggørelse.
Sammenfattende kari det med hensyn til tabellerne 5 A, B og C siges, at resultaterne tydeligt viser relationen mellem oprindeliat enzym i opløsningen og graden af tabt enzym i fældningen ved forskellige pH-værdier og temperaturer. Fjernelse af vand fra enzymopløsningen, dvs. fremstilling af en koncentreret opløsning med høj aktivitet, forår-10 sager forøget protein-protein-interaktion, der har tendens til at favorisere aggregeringen af det enzym, der fremkommer ved fældningen. En sammenligning med eksemplerne 1, 2, 3 og 4 viser klart, at tilsætningen af Maltrin til koncentrerede opløsninger med høj aktivitet inhiberer protein-pro-15 tein-interaktion og favoriserer opløseligheden af enzymet.
20 25 30 35

Claims (10)

1. Fremgangsmåde til fremstilling af en stabil vandig opløsning af varmestabil a-amylase fra Bacillus licheniformis 5 ud fra en fermenteringsvæske indeholdende enzymet og faste spildprodukter fra fermenteringen, kendetegnet ved, at man til fermenteringsvæsken sætter maltodextrin i en mængde på fra ca. 0,1 til ca. 50% (vægt/rumfang) af maltodextrin til opløsningen til inhibering af enzym-enzym-agglo- 10 merering, hvorved opløseligheden af a-amylasen i den vandige opløsning forøges.
2. Fremgangsmåde ifølge krav 1, kendetegnet ved, at fermenteringsvæsken behandles til fjernelse 15 af de faste spildprodukter inden tilsætningen af maltodextrin til tilvejebringelse af en cellefri, enzymholdig opløsning, hvortil maltodextrinen sættes, hvorved der fås et vandigt, i det væsentlige opløsningsstabilt a-amylaseprodukt.
3. Fremgangsmåde ifølge krav 1 og 2, kendeteg net ved, at man blander maltodextrinen i den enzymholdige opløsning, hvori maltodextrinen tilsættes direkte, eller maltodextrinen opløses først i H2O, og den resulterende vandige opløsning tilsættes. 25
4. Fremgangsmåde ifølge ethvert af kravene 1-3, kendetegnet ved, at den enzymholdige opløsning koncentreres mellem ca. 1 og ca. 10 gange, og at maltodextrinen tilsættes under eller efter koncentreringen. 30
5. Fremgangsmåde ifølge ethvert af kravene 1-4, kendetegnet ved, at pH-værdien, før eller efter tilsætningen af maltodextrinen, indstilles til et punkt i området fra omkring enzymets isoelektriske punkt og op til 35 ca. 4,0 pH-enheder over det isoelektriske punkt. > DK 168050 B1
6. Fremgangsmåde ifølge ethvert af kravene 1-5, kendetegnet ved, at aktiviteten af det vandige produkt er 350.000 MWU/ml.
7. Fremgangsmåde ifølge ethvert af kravene 1-6, kendetegnet ved, at maltodextrinen er et substrat for a-amylasen.
8. Fremgangsmåde ifølge ethvert af kravene 1-7, 10 kendetegnet ved, at substratet for a-amylasen er majssirup eller maltodextrin.
9. Fremgangsmåde ifølge ethvert af kravene 1-8, kendetegnet ved, at der anvendes maltodextrin 15 med et dextroseækvivalent under ca. 35.
10. Fremgangsmåde ifølge krav 2, kendetegnet ved, at der efter fjernelsen af de faste spildprodukter til tilvejebringelse af den cellefri enzymholdige opløs- 20 ning og inden tilsætningen af maltodextrinen sættes et fældningsmiddel udvalgt fra gruppen bestående af salte og lavmolekylære organiske opløsningsmidler til den enzymholdige opløsning til at bevirke, at der fældes en kage indeholdende enzymet, hvorpå enzymet ekstraheres fra den enzymholdige 25 kage i (i) vand, efterfulgt af tilsætning til ekstrakten af maltodextrin i en mængde på fra ca. 0,1 til ca. 50% efter vægt/rumfangsenhed af stivelse til vand, eller ekstraheres i (ii) vand indeholdende maltodextrin i en mængde på fra ca. 0,1 til ca. 50% efter vægt/rumfangsenhed af stivelse 30 til vand. 35
DK523686A 1985-11-04 1986-11-03 Fremgangsmaade til fremstilling af en stabil vandig oploesning af varmestabil alfa-amylase fra bacillus licheniformis DK168050B1 (da)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US79428285 1985-11-04
US06/794,282 US4724208A (en) 1985-11-04 1985-11-04 Process for the production of solution stable alpha-amylase and liquid alpha-amylase produced thereby

Publications (3)

Publication Number Publication Date
DK523686D0 DK523686D0 (da) 1986-11-03
DK523686A DK523686A (da) 1987-05-05
DK168050B1 true DK168050B1 (da) 1994-01-24

Family

ID=25162214

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK523686A DK168050B1 (da) 1985-11-04 1986-11-03 Fremgangsmaade til fremstilling af en stabil vandig oploesning af varmestabil alfa-amylase fra bacillus licheniformis

Country Status (7)

Country Link
US (1) US4724208A (da)
JP (1) JPS62111684A (da)
CN (1) CN1017450B (da)
CA (1) CA1281300C (da)
DE (1) DE3636825C2 (da)
DK (1) DK168050B1 (da)
MX (1) MX163682B (da)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1988008031A1 (en) * 1987-04-08 1988-10-20 Genetics Institute, Inc. Process for preparing cyclodextrins
US5380542A (en) * 1992-06-19 1995-01-10 Rhone-Poulenc Specialties Chemical Co. Dietary fiber compositions for use in foods
US5635468A (en) * 1993-05-19 1997-06-03 Kao Corporation Liquefying alkaline α-amylase, process for producing the same, and detergent composition containing the same
US5646044A (en) * 1995-03-02 1997-07-08 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Expression systems for the production of target proteins in bacillus
GB9807721D0 (en) * 1998-04-08 1998-06-10 Chiron Spa Antigen
DE19956382A1 (de) * 1999-11-24 2001-05-31 Henkel Kgaa Verfahren zur Herstellung von mikroverkapselten Enzymen
RU2003105683A (ru) * 2000-07-28 2004-08-20 Хенкель Кгаа (De) Новый амилолитический фермент из bacillus sp.а7-7(dsm12368), а также моющее и чистящее средство с этим новым амилолитическим ферментом
US7790257B2 (en) * 2006-12-19 2010-09-07 Andrew Skigen Plastic carpule and method of manufacture
CN109628429B (zh) * 2019-01-09 2021-11-30 福州大学 一种极端嗜盐、耐表面活性剂的非钙离子依赖型α-淀粉酶及其基因和应用

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CH439186A (de) * 1963-01-26 1967-07-15 Fukumoto Juichiro Verfahren zur Herstellung eines thermisch stabilen Amylasepräparates
US3661786A (en) * 1970-01-27 1972-05-09 Procter & Gamble Detergent compositions containing stabilized alpha-amylase
JPS5025552B2 (da) * 1971-09-07 1975-08-25
US4010073A (en) * 1975-06-25 1977-03-01 Rohm And Haas Company Free-flowing enzyme composition
US4519934A (en) * 1983-04-19 1985-05-28 Novo Industri A/S Liquid enzyme concentrates containing alpha-amylase

Also Published As

Publication number Publication date
DK523686D0 (da) 1986-11-03
DK523686A (da) 1987-05-05
CA1281300C (en) 1991-03-12
MX163682B (es) 1992-06-12
JPS62111684A (ja) 1987-05-22
JPH0437717B2 (da) 1992-06-22
DE3636825C2 (de) 1995-04-06
CN86107635A (zh) 1987-05-13
DE3636825A1 (de) 1987-05-07
CN1017450B (zh) 1992-07-15
US4724208A (en) 1988-02-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5281526A (en) Method of purification of amylase by precipitation with a metal halide and 4-hydroxybenzic acid or a derivative thereof
JP5049264B2 (ja) pH操作によるストレプトコッカス・ニューモニエ多糖からの混入物の分離
CA1191801A (en) Process for the production of alpha-galactoxidase and uses of the enzyme thus obtained
US3623957A (en) Preparation of microbial alkaline protease by fermentation with bacillus subtilis, variety licheniformis
US5256557A (en) Purified alkaline protease concentrate and method of preparation
EP0214531B1 (en) Method for the recovery of extracellular enzymes from whole fermentation beer
EP0565168B1 (en) Method of preparation of purified enzyme
DK168050B1 (da) Fremgangsmaade til fremstilling af en stabil vandig oploesning af varmestabil alfa-amylase fra bacillus licheniformis
Sindhu et al. Optimization of process parameters for the production of alkaline protease from Penicillium godlewskii SBSS 25 and its application in detergent industry
US3960665A (en) Production of proteolytic enzymes
US2821501A (en) Recovery of starch
US6593118B2 (en) Method for rapidly obtaining crystals with desirable morphologies
EP0169920B1 (en) Process for thermally stable alpha-amylase production
EP0860500B1 (en) Purified acid-stable alpha-amylase from fungal origin
DK149157B (da) Fremgangsmaade til fremstilling af et varme- og syrestabilt alfa-amylaseenzym
US4235970A (en) Protease inactivated α-amylase preparations
Aunstrup Industrial approach to enzyme production
JPH02167093A (ja) エンドウから純枠な蛋白質不含のデンプンを得るための生物工学的方法
JP3063800B2 (ja) 耐熱性カタラーゼ
JP2863607B2 (ja) アミラーゼ及びその製造法
US4061541A (en) Preparation of alkaline alpha-amylase
Ramamurthy et al. An optimized protocol for the preparation and application of acid protease
CA1085756A (en) Starch hydrolysates from high protein starch sources
JPH0466084A (ja) 酸性アミラーゼ及びその製造法
JPH08149985A (ja) 新規微生物および微生物によるヘテロ多糖類の製造方法

Legal Events

Date Code Title Description
B1 Patent granted (law 1993)
PBP Patent lapsed

Country of ref document: DK