DE3336257C2

DE3336257C2 -

Info

Publication number: DE3336257C2
Application number: DE3336257A
Authority: DE
Inventors: Shmuel Maloev Dk Amotz
Original assignee: Novo Industri AS
Current assignee: Novozymes AS
Priority date: 1982-10-06
Filing date: 1983-10-05
Publication date: 1992-06-25
Also published as: FI85284B; BE897926A; FR2534272A1; NL192796B; KR840006367A; AR245215A1; ES8504247A1; CA1205402A; IE56079B1; US4665028A; FI833615A; DE3336257A1; IT1163947B; IE832344L; FI833615A0; NL8303415A; KR900007631B1; JPS59130184A; ES526247A0; FI85284C

Description

Die Erfindung betrifft das im Anspruch 1 angegebene Verfahren zur Immobilisierung von Enzymen. Die Ansprüche 2 bis 6 betreffen Ausgestaltungen dieses Verfahrens.

Enzyme, die mit Hilfe von Vernetzungsmittels immobilisiert sind, gehören zu den verbreitetsten Formen von immobilisierten Enzymen. Um derartige immobilisierte Enzyme herzustellen, sind zahlreiche Verfahren entwickelt worden. Bei einem derartigen Verfahren wird ein Träger zunächst mit dem Vernetzungsmittel aktiviert und dann mit dem Enzym behandelt, welches auf diese Weise fest mit dem Träger verbunden wird. Eine derartige Aktivierung kann eine Imprägnierung des Trägers mit einem Polyamin und eine anschließende Behandlung mit einem Überschuß an Glutaraldehyd umfassen wie in der US-PS 42 92 199 oder in Biotechnology and Bioengineering, 22, S. 271-287 (1980) beschrieben. Eine andere derartige Aktivierung kann ein Beschichten des Trägers mit einem die Adsorption erleichternden unlöslichen Polymer und die anschließende Adsorption des Enzyms auf dem Polymer und eine weitere Immobilisierung durch Vernetzung in situ umfassen wie in der US-PS 37 05 084 beschrieben. Eine weitere derartige Aktivierung ist in der US-PS 40 69 106 angegeben. Ein Keratin-haltiger Träger wird aktiviert durch Reduktion des Keratins und Vernetzung des Enzyms bzw. Bindung des Enzyms daran über S-S- Gruppen. Eine andere derartige Aktivierung beschreibt die US-PS 38 02 909. Glas wird in Gegenwart eines Proteins zerbrochen, wodurch frische aktivierte Stellen entstehen, die das Protein binden können. Eine weitere derartige Aktivierung ist in der US-PS 35 19 538 angegeben. Danach wird Glas nacheinander mit verschiedenen Chemikalien behandelt, um die gewünschten aktiven Stellen zu erzeugen. Ein anderes Verfahren zur Herstellung eines immobilisierten Enzyms ist beschrieben in Biochemical and Biophysical Research Communications, Bd. 36, S. 235-242, 1969: Das Enzym wird auf kolloidaler Kieselsäure ohne vorherige Aktivierung adsorbiert und dann durch Vernetzung mit Glutaraldehyd weiter fixiert.

Alle diese oben erwähnten Verfahren sind gekennzeichnet durch eine dünne Schicht der Enzymmoleküle, die direkt an die aktiven Stellen eines Trägers gebunden sind und dadurch wird die Menge an immobilisiertem Enzym bestimmt durch die Anzahl der aktiven Stellen.

Ein grundsätzlich anderes Vorgehen besteht darin, eine dickere Schicht (Enzym) an die Oberfläche des Trägers zu binden, wodurch nur ein kleiner Anteil der Enzymmoleküle in direktem Kontakt mit dem Träger steht. Bei dieser Arbeitsweise ist es nicht der Oberflächenbereich des Trägers, der die Menge an immobilisiertem Enzym bestimmt und dadurch wird es möglich die Menge an gebundenem Enzym zu optimieren in Abhängigkeit von den Verfahrensparametern während der Anwendung. Dieses Ziel ist jedoch schwieriger zu erreichen, da es durch die verhältnismäßig große Menge an Enzym schwierig wird, es während der Immobilisierung festzuhalten. Daher ist bezüglich dieser Arbeitsweise verhältnismäßig wenig veröffentlicht worden, ungeachtet der offensichtlichen Vorteile, die dadurch erreicht werden könnten. In den CA-PS 10 11 671 und 10 11 672 ist die Verwendung einer wäßrigen Lösung eines wasserlöslichen organischen Lösungsmittels als Vernetzungsmedium beschrieben, wobei die Konzentration an organischem Lösungsmittel hoch genug gehalten wird, daß das Enzym unlöslich bleibt, jedoch niedrig genug, um bei der Vernetzungs- bzw. Bindungsreaktion nicht zu stören.

Der Hauptnachteil im Zusammenhang mit diesem Verfahren besteht darin, daß es erforderlich ist, große Mengen organischer Lösungsmittel anzuwenden, wobei die damit verbundene Explosionsgefahr Sicherheitsvorkehrungen erforderlich macht. Auch ist das auf diese Weise erhaltene Produkt nicht ganz befriedigend im Hinblick auf die physikalische Stabilität und Aktivitätsausbeute vermutlich aufgrund der verhältnismäßig hohen Konzentration an organischem Lösungsmittel, die erforderlich ist, um das Enzym während der Immobilisierung ungelöst zu halten.

Ein anderes Verfahren, das sich auf dieses Problem bezieht, ist in der US-PS 41 16 771 angegeben. In einem begrenzten Volumen Wasser wird das Enzym mit Glutaraldehyd und einem inerten Protein behandelt, bevor es schnell zu dem Träger zugesetzt wird, dann ein Gel bilden kann und dann granuliert und endlich getrocknet wird. Der Hauptnachteil dieses Verfahrens ist die hohe Konzentration an Vernetzungmittel, die eine Folge der begrenzten Wassermenge ist. Viele Enzyme sind sehr empfindlich gegenüber hohen Konzentrationen an Vernetzungsmitteln entweder weil sie inaktiviert werden oder weil sie dadurch während der Endanwendung nicht mehr zugänglich sind (d. h. ihre freien Bindungsstellen blockiert sind) aufgrund der übermäßigen Vernetzung oder beides. Das zeigt die Hauptschwierigkeit bei der Anwendung größerer Mengen Enzym auf einem Träger: Um eine ausreichend niedrige Konzentration an Vernetzungsmittel zu erreichen, sind verhältnismäßig große Mengen an Medium erforderlich, die es unmöglich machen, das Enzym an der Lösung in dem Medium zu hindern bevor die Vernetzung wirksam wird, während eine hohe Konzentration an Vernetzungsmittel, die das Enzym vor dem Auflösen bewahren kann, aus den oben erwähnten Gründen ungünstig ist.

Aus der FR-PS 23 46 366 ist ein Verfahren zur Immobilisierung von Glucoseisomerase bekannt, bei dem man zunächst eine Lösung des Enzyms herstellt, aus der das Enzym an kolloidale Kieselsäure adsorbiert wird. Danach wird eine Lösung von Glutaraldehyd und später (im allgemeinen nach 60 min) eine Lösung von MgCl₂ · 6H₂O zugegeben.

Ein nochmals vollständig unterschiedliches Vorgehen besteht darin, das wäßrige Medium überhaupt zu vermeiden und statt dessen eine gasförmige Phase anzuwenden. Diese Arbeitsweise ist beschrieben in The Journal of Society of Chemical Industry, Bd. 18, S. 16-20 (1989) zur Herstellung von unlöslichen Gelatinefasern und in JP-PS J 5 70 02 683 zur Immobilisierung von Enzymen. Dieses Verfahren erfordert jedoch ein gut wirksames Ventilationssystem und darüber hinaus spezielle Mittel, um die Bildung von unlöslichen Abscheidungen innerhalb dieses Ventilationssystems zu vermeiden.

Es ist daher Aufgabe der Erfindung, ein Verfahren zur Herstellung einer immobilisierten Enzymzubereitung mit Hilfe eines Vernetzungsmittels zu entwickeln, das einfach durchführbar sein soll, z. B. ohne die Notwendigkeit spezieller Sicherheitsvorkehrungen und mit Hilfe dessen das immobilisierte Enzym mit einer hohen Enzymaktivität und mit guter physikalischer Stabilität erhalten werden kann.

Diese Aufgabe wird gelöst durch das im Hauptanspruch angegebene Verfahren. Vorteilhafte Ausgestaltungen dieses Verfahrens sind in den Unteransprüchen angegeben.

Wenn das fertige immobilisierte Enzym einen Überschuß an Vernetzungsmittel enthält, kann dieses durch Waschen entfernt werden.

Die im Anspruch 4 angegebene Gruppe von Salzen (wobei eine spezielle Gruppe von Salzen für jede Kombination eines speziellen Enzyms und eines speziellen Vernetzungsmittels in Frage kommen kann) umfaßt üblicherweise billige Salze. Selbstverständlich können bei der erfindungsgemäßen Verfahren ein oder mehrere Enzymzubereitungen, ein oder mehrere Vernetzungsmittel und ein oder mehrere Salze angewandt werden.

Bei dem erfindungsgemäßen Verfahren wird das Enzym zusammen mit einem Träger angewandt. Dadurch wird es möglich, Teilchen mit besseren Fließeigenschaften herzustellen, die geeignet sind für Festbettverfahren. Unabhängig davon, ob das Enzym fest oder gelöst vorliegt, ist es eng mit dem Träger verbunden. Im festen Zustand kann das Enzym eine Schicht auf dem Träger bilden, und in gelöster Form kann die Enzymlösung in den (porösen) Träger eindringen.

Bei einer erfindungsgemäßen Ausführungsform ist die Enzymzubereitung ein Träger, der mit einer Schicht des festen Enzyms überzogen ist. Hierdurch wird es möglich, eine Enzymzubereitung herzustellen mit irgendeinem erwünschten Enzymgehalt innerhalb weiter Grenzen durch Variation der Dicke der Enzymschicht.

Sehr günstig ist es auch, wenn die Enzymzubereitung aus einem porösen Träger besteht, der mit einer Enzymlösung imprägniert ist. Hierdurch erhält man ein sehr einfaches Verfahren zur Herstellung einer immobilisierten Enzymzubereitung nach der Erfindung.

Das Vernetzungsmittel ist vorzugsweise Glutaraldehyd. Glutaraldehyd ist verhältnismäßig billig und von den Gesundheitsbehörden zugelassen. Glutaraldehyd ist auch für viele Enzyme ein sehr wirksames und doch mildes Vernetzungsmittel.

Erfindungsgemäß ist es bevorzugt, daß die Konzentration an Glutaraldehyd in dem wäßrigen Medium zwischen 0,001 und 5% (Gew./Vol.), vorzugsweise 0,005 bis 1% (Gew./Vol.) beträgt. Aus den später in der Beschreibung angegebenen Beispielen geht hervor, daß die zurückgewonnene Enzymaktivität abhängt von der Konzentration an Glutaraldehyd und üblicherweise liegt die Glutaraldehydkonzentration, die einer maximalen Ausbeute an Enzymaktivität entspricht, innerhalb der oben angegebenen Bereiche. Der Prozentsatz an Glutaraldehyd (Gew./Vol.) wird berechnet entsprechend der folgenden Gleichung.

Das Salz wird vorzugsweise ausgewählt aus der Gruppe, umfassend Sulfat, Phosphat, Citrat, Bicarbonat, Carbonat, Fluorid, Acetat, Tartrat, Polysulfat, Polyphosphat, Ferrocyanid, Phenolsulfonat, Sorbat, Ethylsulfat, Chlorid, Nitrat und Succinat von sekundärem, tertiärem oder quaternären Ammonium oder einem der Alkalimetalle insbesondere Natriumsulfat, Natriumphosphat, Kaliumphosphat und Kaliumcitrat. Diese Salze sind allgemein billig und können zurückgewonnen werden und eröffnen die Möglichkeit, eine immobilisierte Enzymzubereitung mit einer hohen Ausbeute an Enzymaktivität herzustellen.

Die Salzkonzentration liegt vorzugsweise zwischen 0,1 m und einer gesättigten Lösung, insbesondere bei etwa 0,5 bis etwa 3 m. Wie aus den später angegebenen Beispielen hervorgeht, ist es möglich eine Glutaraldehydkonzentration und eine Salzmolarität innerhalb der oben angegebenen Grenzen zu wählen, die zu einer sehr hohen Ausbeute an Enzymaktivität führt.

Das Enzym wird vorzugsweise ausgewählt aus der Gruppe, bestehend aus Glukoseisomerase, Amylasen, insbesondere Amyloglukosidase, Pullulanase, Lactase, Pectinasen, Naringinase, Penicillinacylasen, Inulinasen, Lipasen und Proteasen.

So bewahrt die Verwendung der oben erwähnten Salze, selbst in niedrigeren Konzentrationen, als sie zur Ausfällung der Enzyme erforderlich sind, die Enzyme für alle praktischen Zwecke davor, in dem Vernetzungsmedium (Salzlösung) gelöst zu werden, während sie für das Vernetzungsmittel vollständig zugänglich bleiben, wenn das Enzym in fester Form vorliegt oder sie verhindern, daß das Enzym sich mit der Salzlösung vermischt, wenn es in gelöster Form vorliegt. Auf diese Weise kann eine optimale Konzentration an Vernetzungsmittel angewandt werden, die nur zu einer minimalen Schädigung des Enzyms führt und ihm noch eine ausreichend gute physikalische Stabilität verleiht. So hat es sich gezeigt, daß um die Konzentration an Vernetzungsmittel zu verringern die Salzkonzentration erhöht werden muß, um die Enzymaktivität auf einem optimalen Niveau zu halten. Erfindungsgemäß sollten Salze, die entweder mit dem Enzym oder dem Vernetzungsmittel reagieren, wie Silber- oder Quecksilbersalze, die das Enzym inaktivieren können, oder Ammoniumsalze oder primäre Aminsalze oder Sulfitsalze, die leicht mit verschiedenen Vernetzungsmitteln reagieren, vermieden werden. Die Salze, die für die erfindungsgemäßen Zwecke angewandt werden können, variieren in weiten Grenzen in Bezug auf ihre Wirksamkeit und diese Wirksamkeit kann von Enzym zu Enzym variieren. Einige allgemeine Richtlinien bezüglich der Auswahl des Salzes können jedoch folgendermaßen festgelegt werden: Es ist günstig, das löslichere Salz zu verwenden, wenn zwei sonst gleiche Eigenschaften besitzen. So ist Na₂SO₄ im allgemeinen K₂SO₄ vorzuziehen, aufgrund der wesentlich höheren Löslichkeit. Es hat sich auch gezeigt, daß allgemein Salze von mehrwertigen Anionen wie Sulfate, Phosphate, Carbonate, Citrate und ähnliches wirksamer sind als einwertige Anionen wie Chloride und Nitrate. Das Gegenteilige gilt jedoch im allgemeinen für die Kationen: Die einwertigen Kationen wie Na⁺, K⁺ oder Tetramethylammonium sind wirksamer als die mehrwertigen wie Mg⁺⁺ oder Ca⁺⁺. Die bevorzugten Salze sind daher die Alkalisalze von Sulfaten, Phosphaten und Citraten und insbesondere Natriumsulfat, Natriumphosphat Kaliumphosphat, Kaliumcitrat und Tetramethylammoniumsulfat.

Die Salzkonzentration wird üblicherweise auf einem Minimum gehalten. Dieses Minimum hängt einerseits ab von dem fraglichen Enzym, da unterschiedliche Enzyme häufig unterschiedliche Konzentrationen erfordern, und andererseits von der Konzentration an Vernetzungsmittel: Je höher diese ist, umso weniger Salz ist erforderlich und umgekehrt. Die Konzentration an Vernetzungsmittel wird ebenfalls auf einem Minimum gehalten, da die meisten Enzyme gegenüber Vernetzungsmitteln empfindlich sind. Die Konzentration sollte jedoch hoch genug sein, um eine wirksame Immobilisierung sicherzustellen. Es sollte jedoch Sorgfalt angewandt werden, wenn die optimalen Bedingungen für die Vernetzungsreaktion bei sehr hohen Salzkonzentrationen festgelegt werden, besonders mit wirksamen Salzen. So hat es sich gezeigt, daß bei hohen Konzentrationen an Na₂SO₄ oder Kaliumphosphat z. B. die Aktivierungsausbeuten wesentlich verringert werden im Vergleich mit solchen, die bei mäßigen Konzentrationen erreicht werden. Das beruht vermutlich auf der sehr festen Vernetzung, die die Enzymmoleküle teilweise unzugänglich macht.

Ein anderer Vorteil, der bei der Verwendung von Salzen in dem Vernetzungsmedium auftritt, besteht darin, daß die Enzymzubereitung, wenn sie in Form von Teilchen vorliegt, während der Immobilisierungsreaktion keine Aggregate bildet. Eine derartige Aggregation bzw. Agglomeration ist unerwünscht, da sie zu einer geringeren Wirksamkeit und schlechteren Fließeigenschaften bei der Anwendung führt. Auch in dieser Beziehung unterscheiden sich die Salze stark.

Das erfindungsgemäße Verfahren kann in mehreren Stufen durchgeführt werden, deren Reihenfolge nicht kritisch ist. So wird bei der erfindungsgemäßen Arbeitsweise ein Träger zunächst mit einer Enyzmlösung behandelt, getrocknet und dann in einer Lösung, die ein Vernetzungsmittel und Salz enthält, behandelt, gewaschen und gegebenenfalls getrocknet. Bei einer Abwandlung des gleichen Verfahrens kann ein Teil der Gesamtsalzmenge in der Enzymlösung enthalten sein. Für bestimmte Zwecke, z. B. wenn es erwünscht ist, daß das immobilisierte Enzym leicht und faserig ist, kann die Menge an Träger sehr klein sein, und die Enzymzubereitung wird in einem Koagulationsbad mit dem Vernetzungsmittel und dem Salz behandelt.

Der pH-Wert, die Temperatur und die Dauer der Vernetzungsreaktion können einen erheblichen Einfluß auf die Aktivitätsausbeute haben in Abhängigkeit von dem Enyzm und den inerten Zusätzen, soweit vorhanden sind. Im allgemeinen hat es sich gezeigt, daß ein pH-Bereich von etwa 4 bis etwa 9 geeignet ist. Der in den meisten Fällen geeignete Temperaturbereich liegt zwischen etwa 15 und etwa 30°C, obwohl höhere Temperaturen in einigen Fällen mit Vorteil angewandt werden können, z. B., wenn es erwünscht ist, die Dauer der Vernetzungsreaktion zu verkürzen, und niedrigere Temperaturen vorteilhaft angewandt werden können im Falle von sehr temperaturempfindlichen Enyzmen. Die Dauer der Vernetzungsreaktion kann in weiten Grenzen variieren, von wenigen Minuten bis zu einigen Tagen, abhängig von der Art und Konzentration des Vernetzungsmittels, der Art und Konzentration des Salzes, dem Enzym, dem pH-Wert und der Temperatur. Sie sollte daher in jedem einzelnen Falle neu festgelegt werden. Für Glutaraldehyd und die meisten Enzyme scheint jedoch ein Bereich von etwa 10 min bis zu einigen Stunden bei Raumtemperatur geeignet zu sein.

Im folgenden wird auf verschiedene Novo Veröffentlichungen Bezug genommen. Kopien aller dieser Veröffentlichungen können von Novo Industri A/S Novo Alle, 2880 Bagsvaerd, Dänemark erhalten werden.

Das erfindungsgemäße Verfahren wird durch die folgenden Beispiele näher erläutert.

Im folgenden Teil der Beschreibung und den Beispielen sind Werte für den Druckabfall (physikalische Festigkeit) während des Arbeitens in einer Säule angegeben. Dieser Wert wurde bestimmt nach AF 166/2 einer Beschreibung eines Novo Laborverfahrens. Einige theoretische Überlegungen im Zusammenhang mit dieser Druckabfallbestimmung sind beschrieben in Starch/Stärke 31 (1979) Nr. 1, S. 13-16. Zum Vergleich mit handelsüblichen Produkten ist zu erwähnen, daß die besten Werte für den Druckabfall für die bekannte Zubereitung aus immobilisierter Glukoseisomerase Sweetzyme etwa 9,81 mbar (10 g/cm²) betragen. Aus den Beispielen geht hervor, daß der Druckabfall bei den erfindungsgemäß hergestellten immobilisierten Enzymzubereitungen so gering sein kann wie 1,96 mbar (2 g/cm²) und daß alle Werte deutlich unter 9,81 mbar (10 g/cm²) liegen, woraus der technische Fortschritt des erfindungsgemäßen Verfahrens deutlich hervorgeht.

Beispiel 1

Anteile von 20 g trockener Trägerteilchen, die mit teilweise gereinigter Glukoseisomerase in einer Menge von 28 Gew.-% überzogen waren und hergestellt worden waren nach dem in Beispiel 8 der DE-PS 33 36 235 wurden unter leichtem Rühren bei Raumtemperatur in 500 ml einer Lösung, enthaltend 0,06 m Natriumphosphat, 1,4 m Na₂SO₄ und unterschiedliche Menge Glutaraldehyd, pH 7,0, suspendiert. Nach 1 h wurden die Teilchen entfernt und 1 h in 0,06 m Natriumphosphatlösung, pH 7,0, suspendiert. Dieser Waschvorgang wurde 3mal wiederholt und die Teilchen dann über Nacht in der Phosphatlösung stehengelassen und anschließend ihre Aktivität nach Novo Analyseforskrift AF 189/1 bestimmt. Die Ergebnisse sind in Fig. 1 angegeben, die eine Kurve zeigt, in der der Prozentsatz an Glutaraldehyd gegen die zurückgewonnene Enzymaktivität in Einheiten/g aufgetragen ist und die die Empfindlichkeit des Enzyms gegenüber Glutaraldehyd zeigt.

(Vergleichsbeispiel)

Es wurden Teilchen entsprechend Beispiel 1 hergestellt, wobei jedoch kein Salz zugesetzt wurde, abgesehen von der minimalen Menge Phosphat, das als Puffer dient (0,06 m Natriumphosphat pH 6,5). Der Prozentsatz an Glutaraldehyd wurde gegen die zurückgewonnene Enzymaktivität in Einheiten/g aufgetragen, s. Fig. 2, die zeigt, daß das Vernetzungsmittel zwei gegensätzliche Wirkungen aufweist: Einerseits erhöht es die Ausbeute, indem es das Enyzm vor dem Lösen bewahrt, andererseits verringert es die Ausbeute durch Inaktivierung des Enzyms. Das Optimum wird in diesem Falle bei ungefähr 1% Glutaraldehyd erreicht. Ein Vergleich der Fig. 1 und 2 zeigt, daß das Optimum der Glutaraldehydkonzentration ungefähr 40mal so hoch liegt wie bei Zusatz von 1,4 m Natriumsulfat und daß die Ausbeute (der Aktivität) in diesem Falle nur ungefähr 60% derjenigen bei Zusatz des Salzes beträgt.

Beispiel 2

Es wurden Teilchen wie in Beispiel 1 hergestellt, wobei in diesem Falle jedoch Kaliumphosphat als Salz angewandt wurde und die Salzkonzentration variiert wurde, während die Glutaraldehydkonzentration auf 3 unterschiedlichen Werten konstant gehalten wurde und der pH-Wert 6,5 betrug. Der Prozentsatz an Kaliumphosphat wurde gegen die Ausbeute an Enzymaktivität in Einheit/g aufgetragen. Diese Werte sind in Fig. 3 angegeben, aus der die günstige Wirkung einer Erhöhung der Salzkonzentration deutlich hervorgeht, besonders bei der niedrigen Glutaraldehydkonzentration.

Beispiel 3

Der Versuch des Beispiels 2 wurde wiederholt, wobei jedoch Natriumsulfat anstelle von Kaliumphosphat verwendet wurde. Die Molarität von Na₂SO₄ wurde gegen die gewonnene Enzymaktivität in Einheit/g aufgetragen. Die Ergebnisse sind in Fig. 4 angegeben, aus der die günstige Wirkung des Salzes deutlich hervorgeht. Wie ebenfalls aus Fig. 4 hervorgeht, existiert ein Optimum für die Salzkonzentration jenseits dessen die Aktivität abnimmt, wobei dieses Optimum von der Glutaraldehydkonzentration abhängt.

Beispiel 4

Der in Beispiel 2 angegebene Versuch wurde wiederholt, wobei lediglich die Salzkonzentration erhöht wurde. Die Molarität an Kaliumphosphat wurde gegen die gewonnene Enzymaktivität in Einheiten/g aufgetragen. Die Ergebnisse sind in Fig. 5 angegeben. Ein Vergleich zwischen Fig. 4 und 5 zeigt, daß Na₂SO₄ und Kaliumphosphat sich ähnlich verhalten.

Beispiel 5

Der in Beispiel 1 beschriebene Versuch wurde wiederholt, wobei jedoch Kaliumcitrat pH 7,0 anstelle von Phosphat und Sulfat in dem Vernetzungsmedium angewandt wurden. In Fig. 6 ist die Glutaraldehydkonzentration gegen die Aktivität in Enzymeinheiten/g aufgetragen und die Ergebnisse ähneln deutlich denen in Beispiel 1.

Beispiel 6

20 g getrocknete Trägerteilchen, die wie in Beispiel 4 der DE-PS 33 36 235 hergestellt worden waren, wurden in einem Wirbelbett vom Lab Typ fluidisiert. 45,8 g einer 11%igen (Gew./Gew.) homogenisierten Zellaufschlämmung (gezüchtet wie in Beispiel 1 der Dänischen Patentanmeldung 5 190/79 angegeben und Aufschlämmung hergestellt wie in Beispiel 4 dieser Patentanmeldung) enthaltend 80,1 E/g thermophile Lactase von Bacillus Sp NRRL B 11.229 wurden bei 30 bis 40°C auf die Trägerteilchen aufgesprüht und die überzogenen Teilchen konnten trocknen. Die Einheit der Lactasenaktivität ist definiert als die Menge Lactase, die 1 µm. 1 Lactose/min unter den folgenden Reaktionsbedingungen spaltet: Substratkonzentration = 10% Lactose, Temperatur = 60°C, pH = 6,5, Reaktionszeit = 30 min. Die gewonnene Enzymaktivität betrug 79,8%. 10 g überzogene Kügelchen wurden dann in 250 ml einer Lösung behandelt, enthaltend 0,06 m Na₂HPO₄, 1,4 m Na₂SO₄ und 0,1% (Gew./Vol.) Glutaraldehyd, pH 7,5. Nach 1 h bei Raumtemperatur wurden die Teilchen entfernt und gründlich mit 0,06 m K₂HPO₄ bei pH 7,5 gewaschen. Die Aktivitätsausbeute in Bezug auf die Vernetzungsstufe betrug 17,2%.

Beispiel 7

24 g getrocknete Trägerteilchen, die entsprechend Beispiel 4 der DE-PS 33 36 235 hergestellt worden waren wurden in 20,2 g einer Lösung aus 39,6 Gew.-% teilweise gereinigter Amyloglukosidase von A. niger gegeben, die erhalten worden war durch Ultrafiltration des Handelsproduktes AMG 200L (beschrieben in der Novo-Schrift NOVO Enzymes AMG, B 020 g-GB), um niedermolekulare Bestandteile zu entfernen bis zu einem Feststoffgehalt von 39,6 Gew.-% (Aktivität 2610 IAG/g, wobei die Aktivitätseinheit definiert ist in Novo Analyseforskrift AF 159/2). Es wurde 1 h Vakuum angelegt. Das so erhaltene Produkt enthielt 25 Gew.-% teilweise gereinigte Amyloglukosidase- Feststoffe mit einer Ausbeute an Enzymaktivität von 77,9%.

20 g Teilchen mit 71,8% Feststoffgehalt wurden dann in 1600 ml einer Lösung behandelt, bestehend aus 0,06 m NaH₂PO₄, 1,4 m Na₂SO₄ und 0,2% Glutaraldehyd, pH 4,5. Nach 1 h wurden die Teilchen abfiltriert und mit 0,06 m NaH₂PO₄ bei pH 4,5 gewaschen.

Die gewonnene Enzymaktivität, bezogen auf die Vernetzungsstufe, betrug 55,1%.

Beispiel 8

40 g Trägerteilchen, die entsprechend Beispiel 4 der DE-PS 33 36 235 erhalten worden waren und einen Feststoffgehalt von 98,8% besaßen, und 24 g im Vakuum eingedampftes teilweise gereinigtes Glukoseisomerase- Konzentrat von Bacillus coagulans wurden mit 5% Glukose und 8% Natriumsulfat (Feststoffgehalt 41,8%) vermischt und die Flüssigkeit konnte die Luft in den Poren der Teilchen durch Vakuumbehandlung verdrängen. Das Gewicht nach dem Vermischen betrug 63,22 g. Der Feststoffgehalt war 79,2%.

Anteile von 18 g dieser Zubereitung (ungefähr 14 g Feststoffe) wurden 1 h bei Raumtemperatur mit 375 ml einer Lösung, enthaltend in allen Fällen 1,5 m Natriumsulfat, 5% Glukose und 0,06 m Natriumphosphat, pH 7,5, behandelt und außerdem mit entweder 0,1 oder 0,2 oder 0,3% Glutaraldehyd.

Nach dieser Behandlung wurden die Anteile 5mal mit etwa 150 ml 1%iger Natriumphosphatlösung pH 7,5 gewaschen.

Die Enzymaktivität wurde bestimmt nach AF 189/1 nach Ablaufen der Flüssigkeit von den Teilchen. Auch der Feststoffgehalt wurde an den Teilchen, von denen das Wasser abgelaufen war, bestimmt.

Man erhielt die folgenden Ergebnisse:

Der Druckabfall wurde an Proben entsprechend 5 g Feststoffen untersucht.

Beispiel 9

Dieses Beispiel beschreibt ein Verfahren zur Herstellung eines immobilisierten Enzymproduktes auf der Grundlage von Aktivkohle als Träger.

Es wurden 20 g Aktivkohle Typ in 33 g einer Lösung aus 39,2 Gew.-% teilweise gereinigte Glukoseisomerase von Bacillus coagulans (Aktivität 3950 E/g Feststoffe, wobei die Aktivitätseinheit definiert ist in Novo Analyseforskrift AF 189/1) gegeben.

Es wurde 20 h bei 4°C Vakuum angelegt, das während dieser Zeit 4 mal aufgehoben wurde. Das so erhaltene Produkt enthielt 35 Gew.-% teilweise gereinigte Glukoseisomerase- Feststoffe mit einer 97%igen Gewinnung der Enzymaktivität.

98% des oben erwähnten agglomerierten Produkts wurden dann in 890 ml einer Lösung von 0,06 m KH₂PO₄, 1,4 m Na₂SO₄ und 0,18% Glutaraldehyd, deren pH-Wert mit 4 n NaOH auf 7,5 eingestellt war, immobilisiert. Nach 2 h bei Raumtemperatur unter leichtem Bewegen wurden die Teilchen abfiltriert und gründlich mit 0,06 m KH₂PO₄, pH 8,0, gewaschen.

Die Aktivität wurde in der Vernetzungsstufe zu 31% zurückgewonnen.

Beispiel 10

Dieses Beispiel beschreibt ein Verfahren zur Herstellung einer immobilisierten Enzymzubereitung mit einem Träger, bestehend aus Kieselsäure-Kügelchen mit einem Durchmesser von etwa 2 mm.

A) 20 g der Kieselsäure-Kügelchen wurden in einem Wirbelbett vom Lab Typ fluidisiert und 40 g einer Lösung von 15 Gew.-% teilweise gereinigter Glukoseisomerase von Bacillus coagulans (Aktivität 3306 E/g Feststoffe, die Aktivität ist definiert in Novo Analyseforskrift AF 189/1) wurden bei 25 bis 30°C auf die Kügelchen aufgesprüht und die überzogenen Kügelchen konnten trocknen. Das so erhaltene Produkt enthielt 23 Gew.-% teilweise gereinigte Glukoseisomerase mit einer Aktivitätsausbeute von 78%.
95% der überzogenen Kügelchen wurden dann in 500 ml einer Lösung, enthaltend 0,06 m K₂HPO₄, 1,4 m Na₂SO₄ und 0,1% (Gew./Vol.) Glutaraldehyd, mit 4 n NaOH auf pH 7,5 eingestellt, behandelt. Nach 1 h bei Raumtemperatur wurden die Teilchen entfernt und gründlich mit 0,06 m KH₂PO₄, pH 8,0, gewaschen. Dann wurde die Aktivität bestimmt. Die Aktivität wurde in der Vernetzungsstufe zu 55% zurückgewonnen.
B) 20 g der Kieselsäure-Kügelchen wurden in 15 g einer Lösung von 40 Gew.-% teilweise gereinigter Glukoseisomerase von Bacillus coagulans (Aktivität 3270 E/g Feststoffe) unter Zusatz von 0,56 m Na₂SO₄ behandelt. Es wurde 20 min Vakuum angelegt und dieses während dieser Zeit 4 mal aufgehoben. Das so erhaltene Produkt enthielt 20 Gew.-% teilweise gereinigte Glukoseisomerase mit einer 90%igen Rückgewinnung der Enzymaktivität. 95% der überzogenen Kügelchen wurden dann wie in Teil A) dieses Beispiels beschrieben behandelt. Die Aktivität wurde in dieser Vernetzungsstufe zu 45% zurückgewonnen.

In einigen Fällen, wenn das Enzym besonders schwierig zu vernetzen ist, können Salze nicht nur vorteilhaft sondern auch unbedingt erforderlich sein, wenn das Enzym in reiner Form immobilisiert werden soll. Ein gutes Beispiel ist die Amyloglukosidase von Novo (Handelsname AMG 200 L, s. die Broschüre Novo enzymes AMG, B B 020 g-GB 2500 Juli 1982), die in reinem Zustand praktisch nicht mit Glutaraldehyd immobilisiert werden kann. Es hat sich als unmöglich erwiesen, diese Amyloglukosidase zu immobilisieren, selbst bei so hohen Konzentrationen wie 50 Gew.-% Glutaraldehyd. Mit Hilfe des erfindungsgemäßen Verfahrens, bei dem Salze zugesetzt werden, ist es jedoch (wenn auch bei verhältnismäßig hohen Konzentrationen) möglich, das Enzym sogar bei einer so geringen Glutaraldehydkonzentration wie 0,05% (Gew./Vol.) zu immobilisieren wie aus den folgenden Beispielen 11 bis 13 hervorgeht. Die so erhaltenen Enzymzubereitungen, die ausgezeichnet filtrierbar sind und noch leicht aufgeschlämmt werden können, können vorteilhafter Weise zur Herstellung von beispielsweise Bier mit niedrigem Kaloriengehalt angewandt werden.

Beispiel 11

Handelsübliche Novo AMG 200 L, die auf einen Feststoffgehalt von 30% (Gew./Vol.) verdünnt worden war, wurde mit Diatomeenerde vermischt und getrocknet, wodurch man eine Zubereitung erhielt, enthaltend 21 Gew.-% Feststoffe aus der AMG-Zubereitung. 1 g Anteile dieses Mittels wurden dann zu einer Lösung, enthaltend 2,4 m Na₂SO₄, 0,06 m Kaliumphosphat, pH 6,5, und Glutaraldehyd in unterschiedlichen Konzentrationen bei 32°C zugegeben und das Gemisch 20 h bei dieser Temperatur stehen gelassen. Die Teilchen wurden dann abfiltriert und 3mal mit entionisiertem Wasser gespült und die Aktivitätsausbeute gemessen. Die Ergebnisse zeigten das bekannte Muster der beiden entgegengesetzten Effekte von Glutaraldehyd mit einem Optimum bei 0,05% wie aus Fig. 7 hervorgeht.

Beispiel 12

Es wurde wie in Beispiel 11 gearbeitet, wobei jedoch unterschiedliche Konzentrationen an Na₂SO₄ angewandt wurden. Die Aktivitätsausbeute ist bei diesem Enzym außerordentlich empfindlich auf die vorhandene Salzmenge wie aus Fig. 8 hervorgeht.

Beispiel 13

Es wurde wie in Beispiel 12 gearbeitet mit der Ausnahme, daß eine AMG-Zubereitung, enthaltend nur halb so viel Enzym, angewandt wurde. Als Ergebnis dieser Arbeitsweise wurde deutlich eine Verschiebung des Glutaraldehyd-Optimums zu einer niedrigeren Konzentration hin beobachtet wie aus Fig. 9 hervorgeht.

Beispiel 14

Dieses Beispiel zeigt die Anwendbarkeit des erfindungsgemäßen Verfahrens auf andere Vernetzungsmittel als Glutaraldehyd, nämlich mehrwertige Kationen. In diesem Falle wurde Sn⁺⁺⁺⁺ als Vernetzungsmittel angewandt. So wurden 0,5 g der Celite-AMG-Zubereitung, entsprechend Beispiel 11, vor dem Vernetzen langsam unter Rühren zu 100 ml einer Lösung, enthaltend 2 m Na₂SO₄, 0,4 m Kaliumacetat (pH 4,35) und 0,0086 m SnCl₄ · 5H₂O gegeben und das Gemisch 5 min unter gelegentlichem Schütteln bei Raumtemperatur stehen gelassen. Die so entstandenen Teilchen wurden abfiltriert und in 100 ml 0,2 m Kaliumacetatlösung, pH 4,35, dispergiert und die Suspension dann 5 min gerührt. Diese Arbeitsweise wurde 3mal wiederholt. Das Endprodukt besaß 43% der ursprünglichen Aktivität.

Beispiel 15

In diesem Beispiel wurde das Produkt nach dem Verfahren des Beispiels 14 hergestellt, mit der Ausnahme, daß die Konzentrationen an Acetat und Zinnsalz auf 0,8 m bzw. 0,017 m verdoppelt wurden. Man erhielt ein ähnliches Produkt mit einer Aktivitätsausbeute von 65%.

Beispiel 16

In diesem Beispiel wurde das Verfahren des Beispiels 14 wiederholt, jedoch die Acetatkonzentration auf die Hälfte, d. h. 0,2 m verringert. Man erhielt wieder ein ähnliches Produkt mit einer Aktivitätsausbeute von 48%.

Beispiel 17

In diesem Beispiel wird die Verwendung noch eines weiteren Vernetzungsmittels, nämlich von Benzochinon beschrieben. Es wurden 0,5 g einer getrockneten Celite-AMG- Zubereitung, entsprechend Beispiel 11, zu 75 ml eines Gemisches gegeben, enthaltend 2,1 m Na₂SO₄ und 0,05 m Natriumacetat und anschließend wurden 5 ml einer Lösung von 20% (Gew./Vol.) Benzochinon in reinem Ethanol zugegeben und das Gemisch 80 min unter gelegentlichem Rühren bei Raumtemperatur stehen gelassen. Die so erhaltenen Teilchen wurden abfiltriert, in 75 ml 0,1 m Kaliumacetatpuffer, pH 4,4, dispergiert, 5 min gerührt und erneut filtriert. Diese Arbeitsweise wurde 3 mal wiederholt und anschließend die Aktivität bestimmt. Die Aktivitätsausbeute betrug 14%.

Claims

1. Verfahren zur Immobilisierung von Enzymen mit Hilfe eines Vernetzungsmittels durch Zusammenbringen einer einen Träger aufweisenden Enzymzubereitung in fester oder gelöster Form mit einem Vernetzungsmittel in einem wäßrigen Medium und Isolierung des immobilisierten Enzyms, dadurch gekennzeichnet, daß man der Enzymzubereitung, aus einem Träger, der mit einer Schicht des festen Enzyms überzogen ist oder einem porösen Träger, in dem die Enzymlösung eingedrungen ist, in einer Lösung ein Vernetzungsmittel und ein wasserlösliches Salz, das mit dem Vernetzungsmittel nicht reagiert und das Enzym nicht inaktiviert, in einer solchen Konzentration zugibt, daß ein Lösen des Enzyms oder ein Vermischen mit der Salzlösung während der Vernetzungsreaktion verhindert wird.

2. Verfahren nach einem der Ansprüche 1, dadurch gekennzeichnet, daß man als Vernetzungsmittel Glutaraldehyd verwendet.

3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß die Glutaraldehydkonzentration in dem wäßrigen Medium zwischen 0,001 und 5% (Gew./Vol.), vorzugsweise 0,005 bis 1% (Gew./Vol.), beträgt.

4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß das Salz ausgewählt ist aus der Gruppe der Sulfate, Phosphate, Citrate, Bicarbonate, Polyphosphate, Ferrocyanide, Phenolsulfonate, Sorbate, Ethylsulfate, Chloride, Nitrate und Succhinate der Alkalimetalle, insbesondere aus Natriumsulfat, Natriumphosphat, Kaliumphosphat und Kaliumcitrat.

5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß die Salzkonzentration zwischen 0,2 m und der Sättigung, insbesondere zwischen 0,5 m und etwa 3 m liegt.

6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet, daß das Enzym ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus Glucoseisomerase, Amylasen, insbesondere Amyloglucosidase, Pullulanase, Lactase, Pectinasen, Naringinase, Penicillinacylasen, Inulinasen, Lipasen und Proteasen.