DE2624002C2 - Verfahren zur Verwendung eines Enzyms zur Umwandlung einer organischen Substanz in mindestens eine andere organische Substanz durch enzymatische Reaktion - Google Patents

Verfahren zur Verwendung eines Enzyms zur Umwandlung einer organischen Substanz in mindestens eine andere organische Substanz durch enzymatische Reaktion

Info

Publication number
DE2624002C2
DE2624002C2 DE2624002A DE2624002A DE2624002C2 DE 2624002 C2 DE2624002 C2 DE 2624002C2 DE 2624002 A DE2624002 A DE 2624002A DE 2624002 A DE2624002 A DE 2624002A DE 2624002 C2 DE2624002 C2 DE 2624002C2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
enzymatic
complex
reaction
enzyme
substance
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired
Application number
DE2624002A
Other languages
English (en)
Other versions
DE2624002A1 (de
Inventor
Michel Grand-Lancy Schneider
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Battelle Memorial Institute Inc
Original Assignee
Battelle Memorial Institute Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Battelle Memorial Institute Inc filed Critical Battelle Memorial Institute Inc
Publication of DE2624002A1 publication Critical patent/DE2624002A1/de
Application granted granted Critical
Publication of DE2624002C2 publication Critical patent/DE2624002C2/de
Expired legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/10Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a carbohydrate
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/56Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule
    • A61K47/59Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes
    • A61K47/60Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes the organic macromolecular compound being a polyoxyalkylene oligomer, polymer or dendrimer, e.g. PEG, PPG, PEO or polyglycerol
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/08Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer
    • C12N11/082Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer obtained by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds
    • C12N11/087Acrylic polymers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/08Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer
    • C12N11/089Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C13SUGAR INDUSTRY
    • C13KSACCHARIDES OBTAINED FROM NATURAL SOURCES OR BY HYDROLYSIS OF NATURALLY OCCURRING DISACCHARIDES, OLIGOSACCHARIDES OR POLYSACCHARIDES
    • C13K1/00Glucose; Glucose-containing syrups
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C13SUGAR INDUSTRY
    • C13KSACCHARIDES OBTAINED FROM NATURAL SOURCES OR BY HYDROLYSIS OF NATURALLY OCCURRING DISACCHARIDES, OLIGOSACCHARIDES OR POLYSACCHARIDES
    • C13K11/00Fructose

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Emergency Medicine (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Description

Die vorliegende Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zur Verwendung eines Enzyms zur Umwandlung einer organischen Substanz in mindestens eine andere organische Substanz durch enzymatische Reaktion, nach welchem man das Enzym durch kovalente Bindungen auf einem organischen, in wäßrigem Milieu löslichen Polymer befestigt, so daß ein aktiver, in wäßrigem Milieu löslicher enzymatischer Komplex gebildet wird, und nach welchem man diesen Komplex in aufgelöstem Zustand in einer wäßrigen Lösung der umzuwandelnden Substanz während eines Zeitraums und bei einer Temperatur aufrechterhält, die ausreichen, um den gewünschten Umwandlungsgrad dieser Substanz zu erreichen.
Die Verwendung von Enzymen zur Umwandlung einer organischen Substanz in mindestens eine andere organische Substanz ist in der Industrie, insbesondere in der Nahrungsmittelindustrie, bekannt.
Die bekannten Verfahren der Verwendung eines Enzyms, um eine enzymatische Reaktion hervorzurufen,
bestehen darin, das Enzym in aufgelöstem Zustand in ein im allgemeinen flüssiges Reaktionsmilieu einzuführen, das die Substanz (genannt »Substrat«), die man umwandeln will, umschließt, und dieses Reaktionsmilieu auf einer Temperatur und während eines Zeitraums zu halten, die ausreichen, um den für diese Substanz gewünschten Grad der Umwandlung zu erreichen.
Bei der Anwendung dieser Verfahren ist es nicht möglich, am Ende der Reaktion den etwaigen nicht verbrauchten Überschuß an Enzymen zurückzugewinnen. Daher zerstört man gewöhnlich die Restmenge an Enzymen an Ort und Stelle, um das Vorhandensein von Enzymen in Mischung mit dem Reaktionsprodukt zu vermeiden.
Da Enzyme im allgemeinen teuer sind, kann man praktisch aus wirtschaftlichen Gründen nur geringe Mengen verwenden, was eine schwache enzymatische Reaktionsgeschwindigkeit zur Folge hat, die in der Mehrzahl der Fälle nicht ausreicht, um Enzyme auf industrieller Basis zu verwenden. Nur im Fall von Enzymen, die relativ preiswert sind, wie Proteasen und Amylasen, kann eine Anwendung dieser Verfahren auf industrieller Basis in Betracht gezogen werden.
Nach neueren Verfahren verwendet man »stillgelegte« Enzyme, d. h. durch kovalente Bindungen auf einem geeigneten organischen Polymer befestigte Enzyme, wodurch ein aktiver enzymatischer Komplex erhalten wird. Diese letzteren Verfahren erlauben es, den möglichen Enzymüberschuß nach der enzymatischen Reaktion erneut brauchbar zu machen. Diese Verfahren machen daher die Verwendung einer größeren Menge Enzyme möglich, als theoretisch für die Umwandlung der der enzymatischen Reaktionen unterworfenen Substanz erforderlich ist, wodurch eine Erhöhung der Geschwindigkeit dieser Reaktion und damit des stündlichen Ausbringens erreicht wird.
Einerseits hat die Befestigung eines Enzyms auf einem Polymer in Form eines aktiven enzymatischen Komplexes allgemein zur Folge, daß die Stabilität des Enzyms verstärkt wird, und sie erlaubt andererseits in bestimmten Fällen, den für das Reaktionsmilieu nützlichen pH-Bereich zu erhöhen und die Steuerung des Ablaufs der enzymatischen Reaktion zu erleichtern.
Schließlich ermöglicht die Verwendung eines Enzyms in »stillgelegtem« Zustand in Form aktiven enzymatischen Komplexes, daß man das von Enzymen freie Produkt unmittelbar aus der enzymatischen Reaktion erhält.
Man kann die Befestigung des Enzyms entweder auf einem in Wasser nicht löslichen Polymer vornehmen, so daß ein aktiver enzymatischer Komplex in festem, in wäßrigem Milieu nicht löslichen Zustand gebildet wird, oder auf einem in Wasser löslichen Polymer, so daß ein aktiver, in wäßrigem Milieu löslicher enzymatischer Komplex gebildet wird.
Im ersteren Fall kann man den aktiven, nicht löslichen enzymatischen Komplex in Form von Pulverpailikeln in einer Säule verwenden, die den Chromatographiesäulen in Feststoffphase entspricht, durch die hindurch man das Reaktionsmilieu laufen läßt, oder auch in Aufschlämmung in einem Behälter, der das Reaktionsmilieu enthält. bo Dank der Tatsache, daß der aktive enzymatische Komplex sich in dem Reaktionsmilieu in festem Zustand ^
befindet, kann man leicht und auf wenig kostspielige Weise die Trennung dieses Komplexes aus dem Reaktions- \{
milieu sowie seine Rückgewinnung am Ende der enzymatischen Reaktion erreichen. l|i
Auf joden Fall hat dieses Verfahren in dem Fall, wo eine Säule verwendet wird, den Nachteil, daß ein Zustopfen der Säule riskiert wird oder daß ein »channeling« genanntes Phänomen (Abfließen des Reaktionsmib") Heus in Form von flüssigen Adern, die allein auf den Abschnitt der Säule beschränkt sind) erzeugt wird.
In dem Fall, wo man die enzymatische Reaktion in einem Behälter durchführt, hat die Verwendung eines jy
festen, aktiven enzymatischen Komplexes den Nachteil, daß nur eine schwache Kontaktwirkung zwischen den 'V'i
Teilchen dieses Komplexes und der Substanz besteht, die man umwandeln will, und zwar als Folge der Schwic- H
rigkeit oder der Unmöglichkeit, daß dieses Milieu in das Innere dieser Teilchen eindringt
Die Verwendung eines aktiven enzymatischen Komplexes in dem Reaktionsmilieu in aufgelöstem Zustand erlaubt es, die enzyniatische Reaktion in homogenem Flüssigmilieu durchzuführen, was die Wirksamkeit des Kontaktes zwischen dem enzymatischen Komplex und der umzuwandelnden Substanz verbessert und damit den Ertrag der Reaktion erhöht
Außerdem ist die Wirkung im allgemeinen größer, wenn das Enzym auf einem in wäßrigem Milieu löslichen organischen Polymer befestigt wird, als wenn das gleiche Enzym auf einem unlöslichen organischen Polymer befestigt wird. Die Verwendung eines in wäßrigem Milieu löslichen Polymers zur Befestigung des Enzyms erlaubt es also, einen enzymatischen Komplex zu erhalten, dessen spezifische Aktivität, ausgedrückt in Enzymeinheiten pro Masseeinheit des Komplexes, im allgemeinen höher liegt als die der enzymatischen Komplexe, die durch Befestigen des Enzyms auf einem unlöslichen Polymer erhalten werden.
(Eine Enzymeinheit ist definiert als die Enzymmenge, die die volle Umwandlung eines Mikromol an »Substrat« pro Minute unter optimalen Reaktionsbedingungen auslösen kann).
Andererseits liegt bei gegebenen Versuchsbedingungen die Aktivität eines Enzyms gegenüber einem »Substrat« mit erhöhter Molekularmasse allgemein in dem Fall höher, wo dieses Enzym auf einem in dem Reaktionsmilieu löslichen Polymer befestigt ist, als in einem Fall, wo dieses Enzym auf einem unlöslichen Polymer befestigt ist.
Die Verwendung eines aktiven enzymatischen Komplexes in Lösung in dem Reaktionsmilieu bietet auch gegenüber derjenigen eines unlöslichen festen, aktiven enzymatischen Komplexes den Vorteil, daß eine Ausbreitung von Mikroorganismen vermieden wird, die häufig im Fall fester enzymatisch er Komplexe auftritt Zu diesem Zweck genügt es, eine Filtrierung der Lösung aus dem löslichen enzymatischen Komplex vorzunehmen und zwar durch einen Mikrofilter hindurch, z. B. einen Filter mit Porengrößen in der Größenordnung von 0,2 Mikron, so daß die Mikroorganismen zurückbehalten werden und eine sterile Lösung des aktiven enzymatischen Komplexes als Filtrat erhalten wird.
Die Verwendung bisher vorgeschlagener, aktiver enzymatischer Komplexe, die in wäßrigem Milieu löslich sind, hat den Nachteil, daß ein Ultrafittrationsvorgang des Reaktionsmilieus erforderlich ist, um das Reaktionsprodukt von dem enzymatischen Komplex zu trennen und letzteren für seine spätere Wiederverwendung zurück zu gewinnen. Eine solche Ultrafiltration erfordert die Verwendung eines teuren Materials und sie ist außerdem ein Grund für die Verringerung des Gesamtertrages des Verfahrens. Dieser Nachteil spricht also gegen die industrielle Verwertung aktiver, in wäßrigem Milieu löslicher enzymatischer Komplexe.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist es, die Vorteile der Verwendung eines aktiven, unlöslichen enzymatischen Komplexes mit denen der Verwendung eines löslichen enzymatischen Komplexes zu verbinden, ohne die Nachteile zu haben, wobei das organische Polymer einen in reversibler Weise ausfällbaren, aktiven enzymatischen Komplex bildet, unter Aufrechterhaltung seiner enzymatischen Aktivität nach Wiederauflösung.
In dei vorliegenden Beschreibung bedeutet »in reversibler Weise ausfällbar«, daß der enzymatische Komplex nach seiner Ausfällung wieder aufgelöst werden kann und daß er auch aus der derart erhaltenen Lösung erneut ausgefällt werden kann, wobei diese aufeinanderfolgenden Vorgänge des Ausfällens und der Wiederauflösung in unbestimmter Zahl wiederholt werden können, ohne Verlängerungen der physikalischchemischen und enzymatischen Eigenschaften des Komplexe·- sowohl in aufgelöstem Zustand als auch in ausgefälltem Zustand zur Folge zu haben.
Es sei bemerkt, daß die Phänomene, die bei der Ausfällung und der Wiederauflösung des enzymatischen Komplexes ins Spiel gebracht werden können, nicht unbedingt »reversibel« im thermodynamisch^; Sinn dieses Ausdrucks zu sein brauchen, d. h. daß sie thermische Austausche mit dem Außenmilieu nicht ausschließen.
Als in Wasser lösliches organisches Polymer kann man z. B. ein Derivat der Polyacrylsäure, wie Polyacrylamid, verwenden oder auch ein Dextran, die Carboxymethylzellulose, das Polyäthyl-Glycol usw., wobei dieses Polymer chemische Gruppierungen aufweist, die ihm die Eigenschaft verleihen, in reversibler Weise in wäßrigem Milieu Flocken auszufällen oder abzusondern aufgrund einer Veränderung mindestens eines physikalisch-chemischen Parameters dieses Milieus, wie seiner Temperatur, seines pH-Wertes, seiner Konzentration in Lösungszustand usw. oder auch aufgrund der Hinzufügung von Ionen in dieses Milieu, wie bivalenter oder trivalenter Meiallionen, die in der Lage sind, die Ausfällung des enzymatischen Komplexes hervorzurufen, verbunden mit der weiteren Verwendung von mindestens einem komplexbildenden Mittel dieser Ionen, um die Wiederauflösung des aktiven enzymatischen Komplexes hervorzurufen.
Als organisches Polymer kann man insbesondere ein Derivat des Polyacrylamid mit Seitengruppen -COOH verwenden, die ihm die Eigenschaft verleihen, sich quantitativ und auf reversible Weise durch Senkung des pH-Wertes des Milieus unter einen Wert in der Größenordnung von 4,5 bis 5 bei Löslichkeit in dem gleichen Milieu mit einem höheren als diesem pH-Wert zu beschleunigen.
Dementsprechend wird zur Lösung der vorgenannten Aufgabe bei einem Verfahren der eingangs erwähnten Art erfindungsgemäß vorgeschlagen, daß das organische Polymer unter denen ausgewählt wird, die saure Seitengruppen des Benzoesäure- oder Isophthaltyps aufweisen, und daß nach Erhalt des gewünschten Umwandlungsgrades der umzuwandelnden Substanz der enzymatische Komplex ausgefällt und vom Reaktionsmilieu ho getrennt wird. Derartige Polymere haben den Vorteil, bei einem pH-Wert unter 4,5 auf praktisch quantitativer Weise ausfällbar zu sein, da das Verhältnis des nach der Ausfällung in Lösung verbleibenden Komplexes im Vergleich zur ursprünglichen Quantität im allgemeinen unter 1 ppm liegt.
Beispiel 1
A. Bereitung des aktiven enzymatischen Komplexes
Man läßt das Acrylsäurechlorid u.id die p-Aminobenzoesäure wie folgt reagieren:
CH=CH2 CH=CH2
C = O + H2N-<f\— COOH >
CI
Dann polymerisiert man das auf diese Weise erhaltene Monomer in wäßrigem Milieu bei Stickstoffatmosphäre und in Gegenwart einer geringen Menge von N,N'-Methy)en-bis-Acrylamid und Ammoniumpersulfat, wobei diese letztere Verbindung als Katalysator auf die Polymerisation dient.
Man erhält auf diese Weise ein in Wasser lösliches Polymer, ein Derivat des Polyacrylamid, das aus linearen, miteinander verbundenen makromolekularen Ketten besteht, die die Folgeeinheit aufweisen:
25
-CH-CH2-
Man filtriert eine wäßrige Lösung dieses Polymers durch Hindurchleiten durch einen Filter mit Poren von 0,22 Mikron, dann fällt man das Polymer durch Senkung des pH-Wertes auf 4,5 mittels einer wäßrigen, mit Zitronensäure verdünnten Lösung in das Filtrat aus. Danach gewinnt und trocknet man den Niederschlag.
Man befestigt Glucose-Isomerase-Moleküle auf diesem Polymer, indem man wie folgt vorgeht:
— Aufschlämmung des wie oben beschrieben erhaltenen Polymc-Niederschlags in Dioxan (im Verhältnis von 10 Millilitern Dioxan pro Gramm Niederschlag) und Hinzufügen von 1.1 Millilitern N-Tributylamin auf
10 Millilitern der Aufschlämmung;
— Abkühlung der Aufschlämmung auf 00C und Zufügung von 0,4 Millilitern Äthyl-Chloroformat;
— Halten der Aufschlämmung bei 00C während einer Dauer von 10 Minuten, dann Hinzufügen von 10 Millilitern der wäßrigen Glucose-Isomerase-Lösung (20g pro Liter) auf 10 Milliliter Aufschlämmung;
— Halten der derart gebildeten Mischung während einer Dauer von 15 Minuten bei 00C. dann Trockenverdampfen und Auflösen des derart erhaltenen Rückstandes in Wasser;
— Ausfällen des derart erhaltenen enzymatischen Komplexes durch Senkung des pH-Wertes mittels einer mit Zitronensäure verdünnten wäßrigen Lösung auf 4,5;
— Waschen des Niederschlags mittels, einer wäßrigen Natriumchlorid-Lösung (0,1 M), bis sich keine enzymatisehe Aktivität mehr in der Flüssigkeit zeigt, dann abschließendes Waschen mit destilliertem Wasser und
Trocknen.
Auf diese Weise erhält man einen in Wasser löslichen enzymatischen Komplex (mit über 4,5 liegendem pH-Wert), der eine enzymatische Aktivität entsprechend 1500 enzymatischen Einheiten pro Gramm des Komplexes entwickelt (eine enzymatische Einheit wird definiert durch die Menge an in Mikromol ausgedrückter bo Fructose, die in 30 Minuten bei 500C aus einer Glucoselösung von 0,66 M gebildet wird, wobei dieser enzymatische Komplex von Lösung umgeben ist).
B. Verwendung des enzymatischen Komplexes zur Umwandlung von Glucose in Fructose
hl Reaktionsmilieu: 250 Milliliter wäßrige Lösung mit 12 Gcw.-% Glucose.
Reaktionstemperatui:50°C.
pH-Wert des Reaktionsmilieus während der en/.ymatischen Reaktion: 7,0.
Man führt zwei Versuche durch, den einen unter Verwendung von 0.18 g und den anderen unter Verwendung von 1 g des aktiven enzymatischen Komplexes (wobei der Komplex vorher in etwas Wasser aufgelöst wurde).
Man erhöht die teilweise Umwandlung der Glucose in Fructose (51 Gew.-% Fructose, 49 Gew.-% Glucose) nach einer 40stündigen Reaktionsdauer bei Verwendung von 0.18 g des enzymaiisehen Komplexes und nach 9 Stunden bei Verwendung von 1 g des enzymatischen Komplexes.
Nach der Reaktion fällt man den enzymaiisehen Komplex durch Senkung des pH-Wertes des Reaktionsmilieus mittels einer wäßrigen Zitronensäurelösung auf 4,5; dann trennt man diesen Niederschlag vom Reaküonsmilieu, indem man ihn sich absetzen läßt.
Danach wäscht man diesen Niederschlag mittels einer wäßrigen Zitronensihiivlnsiing mit einem pl 1-Werl von 4,5, löst ihn in Wasser, filtert die derart erhaltene Lösung durch einen Filler mit einer Purengiöße von 0. 22 Mikron und fällt den enzymatischen Komplex durch Senkung des pH-Wertes auf 4.5 aus. Danach trockne; man ihn schließlich.
Der auf diese Weise erhaltene enzymatische Komplex in Pulverform kann wie oben ausgeführt auf gleiche Weise wieder verwendet werden, und zwar mit einer unveränderten enzymatischen Aktivität.
Beispiel 2
Man geht vor wie in Beispiel 1, statt jedoch nach der Reaktion die Ausfällung des enzymaiisehen Komplexes durch Senkung des pH-Wertes des Reaktionsmilieus auf 4,5 zu bewirken, ruft man diese Ausfällung hervor, indem man diesem Milieu 2 Milliliter einer IM-Lösung von Calciumchlorid CaCI: mit einem pH-Wert von 7,0 hinzufügt, wobei der pH-Wert des Reaktionsmilieus auf dem Wert 7,0 gehalten wird.
Auf diese Weise erhält man einen Niederschlag von 98% des aktiven enzymatischen Komplexes.
Man trennt den derart aus dem Reaktionsmilieu erhaltenen Niederschlag durch Zentrifugieren, dann führt man ihn in einer wäßrigen Lösung aus tetrasaurer Äthylendiaminsäure (Äthylendiamintetrasäure: Bekanntes komplexbildendes Mittel der Calciumionen). Auf diese Weise verursacht man die Wiederauflösung des aktiven enzymatischen Komplexes und man trennt den Äthylendiamintetrasäure-Calcium -Komplex vom wäßrigen Milieu der Wiederauflösung durch Dialyse. Durch erneute Umwandlung von Glucose in Fructose, wie im Beispiel 1 beschrieben, kann man die wäßrige Lösung des enzymatischen Komplexes frei von derart erhaltenen Calciumionen wieder verwenden, wobei die Lösung im Vergleich zu ihrer ursprünglichen Aktivität eine unveränderte enzymatische Aktivität hat.
Beispiel 3
Man geht vor wie in den Beispielen 1 und 2, ruft jedoch die Ausfällung des enzymatischen Komplexes nach Reaktion durch gleichzeitiges Hinzufügen von 2 Millilitern IM-Lösung von Calciumchlorid mit einem pH-Wert von 7,0 und von 50 Millilitern Äthanol in das Reaktionsmilieu hervor, wobei der pH-Wert des Reaktionsmittels auf 7,0 gehalten wird. Auf diese Weise erhält man die Ausfällung von 99,7% des aktiven enzymatischen Komplexes.
Beispiel 4
A. Bereitung des aktiven enzymatischen Komplexes
Man läßt ein Methylester der Polyacrylsäure aus linearen Makromolekülen mit der Folgeeinheit:
-CH2-CH-
C = O
OCH3
und mit einer Moiekuiarmasse vuii 80 000 mit Hydrazin bei 9011C derart reagieren, daß ein Hydrazid-Polyacryls mid gebildet wird (ein aus linearen Makromolekülen gebildetes Polymer mit der Folgeeinheit:
CH2-CH-C=O NH-NH2).
Man wandelt dann die Polyacrylamid-Hydrazid in entsprechendes Säurederivat um durch Reaktion bei O0C in Gegenwart einer Mischung von Chlorwasserstoffsäure und Natriumnitrit nach folgender Reaktion:
50
-CH2-CH-C=O
NH—NH2
NaNO2 + HCl
-CH2-CH-C=O
N3
60 65
wobei η die Anzahl der Folgccinheiten pro Molekül der makromolekularen Substanz darstellt.
Danach befestigt man Glycoamylase-Molekülc auf dem derart erhaltenen Polymer, indem man dieses Enzym bei 00C mit diesem Polymer in einem wäßrigen Milieu mit einem p! 1 Wert von 9.4 reagieren läßt.
Auf diese Weise erhält man einen aktiven enzymatischen Komplex in Lösung in wäßrigem Milieu, der aber nicht in reversibler Weise ausfällbar ist, wie dies für die enzymatischen Komplexe erforderlich ist. die für die Anwendung der Erfindung in Betracht gezogen werden.
Um einen enzymatischen löslichen und in reversibler Weise ausfällbaren Komplex zu erhalten, bildet man ein Copolymer zwischen dem löslichen, nicht ausfällbaren Komplex, der wie beschrieben erhalten wird, und dem aus dem Acrylamid abgeleiteten Monomer, das die folgende Formel hat:
CH = CH2
COOH
und das nach der in Beispiel 1 beschriebenen Weise bereitet wurde. w
Zu diesem Zweck bereitet man eine wäßrige Lösung, die in Mischung diesen Komplex und dieses Monomer in ||
aufgelöstem Zustand erhält, und ruft die Polymerisation des Monomers in dieser Lösung in Gegenwart von Ammoniumpersulfat bei Stickstoffatmosphäre hervor.
Man erhält so einen aktiven, in Wasser bei einem pH-Wert über 4.5 löslichen enzymatischen Komplex, der in reversibler Weise bei einem pH-Wert ausfällbar ist. der unter 4,5 liegt, der eine 4 800 enzymatische Einheiten pro Gramm entsprechende enzymatische Aktivität aufweist (eine enzymatische Einheit entspricht dabei der Menge an Glucose, ausgedrückt in Mikromol, die in einer Minute bei 600C aus einer wäßrigen enzymatisch »verflüssigten« Stärke-Lösung erzeugt wird, die einen Gehalt von 30 Gew.-% Feststoff aufweist.
B. Verwendnung des enzymatischen Komplexes zur Umwandlung von Stärke in Glucose
Auf 250 Milliliter einer wäßrigen Lösung aus verflüssigter Stärke mit 30Gew.-% Feststoff, die auf 60°C gehalten wird und deren pH-Wert auf 5 festgelegt wird, fügt man 2 g des aktiven, enzymatischen Komplexes hinzu, der löslich und ausfällbar ist und dessen Zubereitung oben beschrieben wurde, und man hält das derart erhaltene Reaktionsmilieu auf 600C.
Nach 12 Stunden ist die Stärke fast vollständig in Glucose umgewandelt. Man läßt dann das Reaktionsmilieu auf Umgebungstemperatur abkühlen, dann senkt man seinen pH-Wert auf 4,5, so daß die Ausfällung des enzymatischen Komplexes hervorgerufen wird, und trennt dann diesen letzteren von dem Reaktionsmilieu ^5 durch Zentrifugieren.
Der auf diese Weise zurückgewonnene enzymatische Komplex kann mehrfach auf die oben beschriebene Weise wieder verwendet werden, wobei sich eine enzymatische Aktivität ergibt, die ebenso hoch liegt wie bei der ersten Verwendung.
Beispiel5
A. Bereitung des aktiven enzymatischen Komplexes
Man geht vor wie in Beispiel 4 beschrieben und bereitet das Säure-Derivat aus Hydrazid-Polyacrylamid. Dann befestigt man Glucose-lsomerase-Moleküle auf diesem Polymer-Derivat, indem man in der ebenfalls in Beispiel 4 im Fall der Befestigung der Glucoamylase auf dem gleichen Polymer beschriebenen Weise vorgeht Man erhält so einen enzymatischen Komplex.
Andererseits bereitet man ein Acrylmonomer mit der Formel
CH=CH2
C = O
NH-(CH2)-NH2
durch Reaktion des Acrylsäurechlorid mit dem Diaminäthylen.
Man mischt das derart erhaltene Monomer in wäßriger Lösung mit dem enzymatischen Komplex aus Glucoseisomerase und löst in dieser Lösung in Gegenwart von Ammoniumpersulfat unter Stickstoffatmosphäre die
Polymerisation des Monomers aus.
Dieser letzlere enzymatische Komplex ist ein amphoteric Polymer, das in wäßrigem Milieu löslich ist, aber durch Anpassung des pH-Wertes dieses Milieusauf 7,6 (isoclektrischcr Punkt dieses Komplexes) ausgefallt wird.
B. Verwendung des cnzymatischen Komplexes zur Umwandlung der Glucose in Fructose >
Man geht vor wie in Beispiel 1, löst aber die Ausfällung des en/.ymatischen Komplexes nach der Reaktion durch Anpassung des pH-Wertes des Reaktionsmilieus auf den Wert 7,6 aus.
B e i s ρ i e I 6 ίο
A. Bereitung des aktiven enzymatischen Komplexes
Man wandelt das Carboxymelhylcellulose-Hydrazid durch Reaktion bei 0DC in Gegenwart von Natriumnitrid und Chlorwasserstoffsäure in ein entsprechendes Derivat um. Dann läßt man das derart gebildete Azid, stets bei 00C, in wäßrigem Milieu bei einem pH-Wert von 8,7 mit einer Ortho-Aminobenzoe-Säure und Laciase reagieren. Für 1 g Hydrazid-Derivat als Ausgangsstoff verwendet man 0,5 g Lactase und 0,2 g Ortho-Aminobenzoe-Säure.
Auf diese Weise erhält man einen aktiven, in Wasser löslichen enzymatischen Komplex mit einem pH-Wert, der über 4,5 liegt und in reversibler Weise bei einem pH-Wert unter 4,5 ausfällbar ist, der aus einer makromolekularen Polyanhydroglucose-Kette mit seitlichen Derivatgruppen der Ortho-Aminobenzoe-Säure und anderen seitlichen Gruppen besteht, die aus Lactasemolekülen bestehen, wobei alle diese Gruppen mit der Polyanhydroglucose-Kette durch Gruppen mit der Formel
_O-CH2-CO-NH-
verbunden sind.
Dieser enzymatische Komplex hat eine 520 Lactaseeinheiten pro Gramm entsprechende enzymatische Aktivität.
30 B. Verwendung des enzymatischen Komplexes zur Umwandlung der Lactose in Galactose und Glucose
Auf 250 Milliliter einer wäßrigen Lösung mit 5 Gew.- Lactose mit einem pH-Wert von 6,6 und auf 40°C gehalten fügt man 1 g des in der oben beschriebenen Weise erhaltenen enzymatischen Komplexes bei.
Zwei Stunden lang läßt man die enzymatische Reaktion sich entwickeln und fällt den enzymatischen Komplex dann durch Senkung des ph-Wertes des Reaktionsmilieus auf 4,5 mittels einer durch Zintronensäure verdünnten Lösung aus. Man trennt den derart erhaltenen Niederschlag von dem Reaktionsmilieu, indem man ihn sich absetzen läßt. Der auf diese Weise zurückgewonnene enzymatische Komplex kann nach Reinigung durch Wiederauflösung in wäßrigem Milieu bei einem pH-Wert von 7,0 und Filtration durch einen Filter, der beispielsweise Poren von 0,22 Mikron hat, mehrere Male wieder verwendet werden, ohne seine ursprüngliche enzymatisehe Aktivität zu verlieren.
Die Analyse des Reaktionsmilieus zeigt nach Trennung des enzymatischen Komplexes, daß 30% der ursprünglichen Lactose-Menge in Galactose und Glucose umgewandelt wurde.
Das vorbeschriebene Verfahren kann sehr verschiedene industrielle Anwendungen erhalten, insbesondere auf folgenden Gebieten:
— Veredelung von Lactoserum durch Hydrolyse der Lactose,
— Isomerisation der Glucose mittels Glucose-Isomerase zur Erlangung von Glucose- und Fructo; !sin.^ mit erhöhter Süßkraft,
— Erzeugung von Invertzucker aus Saccharose durch Inversion,
— Abbau der Stärke zu Glucose mittels Alpha- Amylase und Amyloglucosidase,
— Erzeugung von Maltose aus Stärke mittels Beta-Amylase und Amyloglucosidase,
— Erzeugung von hochfermentierbaren Sirups für die Bierherstellung.

Claims (1)

  1. Patentanspruch:
    Verfahren zur Verwendung eines Enzyms zur Umwandlung einer organischen Substanz in mindestens eine andere organische Substanz durch enzymatische Reaktion, wonach das Enzym durch covalente Bindungen auf einem in wäßrigem Milieu löslichen organischen Polymer befestigt wird, wodurch ein aktiver, in wäßrigem Milieu löslicher enzymatischer Komplex erzeugt wird, und wonach dieser Komplex in aufgelöstem Zustand in einer wäßrigen Lösung der umzuwandelnden Substanz während einer Zeitdauer und bei einer Temperatur gehalten wird, die ausreichen, um den gewünschten Umwandlungsgrad für diese Substanz zu erreichen, dadurch gekennzeichnet, daß das organische Polymer unter denen ausgewählt wird, die saure Seitengruppen des Benzoesäure- oder Isophthaltyps aufweisen, und daß nach Erhalt des gewünschten Umwandlungsgrades der umzuwandelnden Substanz der enzymatische Komplex ausgefällt und vom Reaktionsmilieu getrennt wird.
DE2624002A 1975-05-30 1976-05-26 Verfahren zur Verwendung eines Enzyms zur Umwandlung einer organischen Substanz in mindestens eine andere organische Substanz durch enzymatische Reaktion Expired DE2624002C2 (de)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CH696575A CH596313A5 (de) 1975-05-30 1975-05-30

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE2624002A1 DE2624002A1 (de) 1976-12-09
DE2624002C2 true DE2624002C2 (de) 1984-06-20

Family

ID=4317814

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE2624002A Expired DE2624002C2 (de) 1975-05-30 1976-05-26 Verfahren zur Verwendung eines Enzyms zur Umwandlung einer organischen Substanz in mindestens eine andere organische Substanz durch enzymatische Reaktion

Country Status (6)

Country Link
US (1) US4088538A (de)
JP (1) JPS5840474B2 (de)
CH (1) CH596313A5 (de)
DE (1) DE2624002C2 (de)
FR (1) FR2312561A1 (de)
GB (1) GB1554211A (de)

Families Citing this family (90)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4780409A (en) * 1985-05-02 1988-10-25 Genetic Systems Corporation Thermally induced phase separation immunoassay
US4766106A (en) * 1985-06-26 1988-08-23 Cetus Corporation Solubilization of proteins for pharmaceutical compositions using polymer conjugation
US5206344A (en) * 1985-06-26 1993-04-27 Cetus Oncology Corporation Interleukin-2 muteins and polymer conjugation thereof
JPH0433452Y2 (de) * 1986-02-12 1992-08-11
US4959305A (en) * 1986-06-18 1990-09-25 Miles Inc. Reversible immobilization of assay reagents in a multizone test device
DE3786511T2 (de) * 1986-09-17 1994-01-13 Beecham Group Plc Immobilisiertes Enzympräparat und seine Verwendung.
US4894226A (en) * 1986-11-14 1990-01-16 Cetus Corporation Solubilization of proteins for pharmaceutical compositions using polyproline conjugation
US4847325A (en) * 1988-01-20 1989-07-11 Cetus Corporation Conjugation of polymer to colony stimulating factor-1
US5565519A (en) * 1988-11-21 1996-10-15 Collagen Corporation Clear, chemically modified collagen-synthetic polymer conjugates for ophthalmic applications
US5510418A (en) * 1988-11-21 1996-04-23 Collagen Corporation Glycosaminoglycan-synthetic polymer conjugates
US5306500A (en) * 1988-11-21 1994-04-26 Collagen Corporation Method of augmenting tissue with collagen-polymer conjugates
US5162430A (en) * 1988-11-21 1992-11-10 Collagen Corporation Collagen-polymer conjugates
US5166322A (en) * 1989-04-21 1992-11-24 Genetics Institute Cysteine added variants of interleukin-3 and chemical modifications thereof
WO1993020838A1 (en) * 1992-04-20 1993-10-28 Rufeld, Inc. Method and compositions for treatment of pyonecrotic processes
US5545553A (en) * 1994-09-26 1996-08-13 The Rockefeller University Glycosyltransferases for biosynthesis of oligosaccharides, and genes encoding them
DE69636289T2 (de) * 1995-12-18 2007-05-10 Angiodevice International Gmbh Vernetzten polymerisatmassen und verfahren für ihre verwendung
US6458889B1 (en) 1995-12-18 2002-10-01 Cohesion Technologies, Inc. Compositions and systems for forming crosslinked biomaterials and associated methods of preparation and use
US7883693B2 (en) * 1995-12-18 2011-02-08 Angiodevice International Gmbh Compositions and systems for forming crosslinked biomaterials and methods of preparation of use
US6833408B2 (en) * 1995-12-18 2004-12-21 Cohesion Technologies, Inc. Methods for tissue repair using adhesive materials
JPH11502255A (ja) * 1995-12-29 1999-02-23 ザ、プロクター、エンド、ギャンブル、カンパニー 固定化酵素を含有する洗剤組成物
AU5104098A (en) * 1996-11-14 1998-06-03 Polymer Technology Corporation Use of water soluble enzyme-polymer conjugates for cleaning contact lenses
DK1121156T3 (da) * 1998-10-16 2006-06-06 Biogen Idec Inc Polymerkonjugater af interferon-beta-1a samt deres anvendelse
US7696163B2 (en) 2001-10-10 2010-04-13 Novo Nordisk A/S Erythropoietin: remodeling and glycoconjugation of erythropoietin
EP2292273A3 (de) 2001-10-10 2011-11-23 BioGeneriX AG Remodellierung und Glycokonjugation von Peptiden
US7399613B2 (en) * 2001-10-10 2008-07-15 Neose Technologies, Inc. Sialic acid nucleotide sugars
WO2004099231A2 (en) 2003-04-09 2004-11-18 Neose Technologies, Inc. Glycopegylation methods and proteins/peptides produced by the methods
US7157277B2 (en) * 2001-11-28 2007-01-02 Neose Technologies, Inc. Factor VIII remodeling and glycoconjugation of Factor VIII
US7173003B2 (en) * 2001-10-10 2007-02-06 Neose Technologies, Inc. Granulocyte colony stimulating factor: remodeling and glycoconjugation of G-CSF
US7265084B2 (en) * 2001-10-10 2007-09-04 Neose Technologies, Inc. Glycopegylation methods and proteins/peptides produced by the methods
US7297511B2 (en) * 2001-10-10 2007-11-20 Neose Technologies, Inc. Interferon alpha: remodeling and glycoconjugation of interferon alpha
CN101724075B (zh) 2001-10-10 2014-04-30 诺和诺德公司 肽的重构和糖缀合
US7439043B2 (en) * 2001-10-10 2008-10-21 Neose Technologies, Inc. Galactosyl nucleotide sugars
US7125843B2 (en) * 2001-10-19 2006-10-24 Neose Technologies, Inc. Glycoconjugates including more than one peptide
US7214660B2 (en) 2001-10-10 2007-05-08 Neose Technologies, Inc. Erythropoietin: remodeling and glycoconjugation of erythropoietin
US7795210B2 (en) * 2001-10-10 2010-09-14 Novo Nordisk A/S Protein remodeling methods and proteins/peptides produced by the methods
US7265085B2 (en) * 2001-10-10 2007-09-04 Neose Technologies, Inc. Glycoconjugation methods and proteins/peptides produced by the methods
US8008252B2 (en) * 2001-10-10 2011-08-30 Novo Nordisk A/S Factor VII: remodeling and glycoconjugation of Factor VII
US7226903B2 (en) * 2001-10-10 2007-06-05 Neose Technologies, Inc. Interferon beta: remodeling and glycoconjugation of interferon beta
US7179617B2 (en) 2001-10-10 2007-02-20 Neose Technologies, Inc. Factor IX: remolding and glycoconjugation of Factor IX
US7473680B2 (en) * 2001-11-28 2009-01-06 Neose Technologies, Inc. Remodeling and glycoconjugation of peptides
MXPA04012496A (es) * 2002-06-21 2005-09-12 Novo Nordisk Healthcare Ag Glicoformos del factor vii pegilados.
US8129330B2 (en) * 2002-09-30 2012-03-06 Mountain View Pharmaceuticals, Inc. Polymer conjugates with decreased antigenicity, methods of preparation and uses thereof
JP2006519766A (ja) * 2002-12-30 2006-08-31 アンジオテック インターナショナル アクツィエン ゲゼルシャフト 組織反応性化合物および組成物、ならびにそれらの使用法
WO2004060346A2 (en) 2002-12-30 2004-07-22 Angiotech International Ag Drug delivery from rapid gelling polymer composition
CA2519092C (en) * 2003-03-14 2014-08-05 Neose Technologies, Inc. Branched water-soluble polymers and their conjugates
EP1613261A4 (de) * 2003-04-09 2011-01-26 Novo Nordisk As Intrazelluläre bildung von peptidkonjugaten
US8791070B2 (en) 2003-04-09 2014-07-29 Novo Nordisk A/S Glycopegylated factor IX
AU2004240553A1 (en) 2003-05-09 2004-12-02 Neose Technologies, Inc. Compositions and methods for the preparation of human growth hormone glycosylation mutants
US9005625B2 (en) 2003-07-25 2015-04-14 Novo Nordisk A/S Antibody toxin conjugates
US7842661B2 (en) * 2003-11-24 2010-11-30 Novo Nordisk A/S Glycopegylated erythropoietin formulations
US8633157B2 (en) * 2003-11-24 2014-01-21 Novo Nordisk A/S Glycopegylated erythropoietin
US20080305992A1 (en) 2003-11-24 2008-12-11 Neose Technologies, Inc. Glycopegylated erythropoietin
CA2547140A1 (en) * 2003-11-24 2005-06-09 Neose Technologies, Inc. Glycopegylated erythropoietin
US20070254836A1 (en) * 2003-12-03 2007-11-01 Defrees Shawn Glycopegylated Granulocyte Colony Stimulating Factor
US20080318850A1 (en) * 2003-12-03 2008-12-25 Neose Technologies, Inc. Glycopegylated Factor Ix
US20060040856A1 (en) * 2003-12-03 2006-02-23 Neose Technologies, Inc. Glycopegylated factor IX
US7956032B2 (en) * 2003-12-03 2011-06-07 Novo Nordisk A/S Glycopegylated granulocyte colony stimulating factor
NZ548123A (en) * 2004-01-08 2010-05-28 Novo Nordisk As O-linked glycosylation of peptides
JP4124361B2 (ja) * 2004-02-16 2008-07-23 農工大ティー・エル・オー株式会社 化学物質の分離方法
KR101148445B1 (ko) 2004-04-28 2012-07-05 안지오디바이스 인터내셔널 게엠베하 가교된 생합성물질을 형성하기 위한 조성물 및 시스템, 및 이와 관련된 제조 및 사용 방법
RU2006138181A (ru) 2004-05-04 2008-06-10 Ново Нордиск Хелс Кеа Аг (Ch) О-связанные гликоформы полипептидов и способ их изготовления
EP1771066A2 (de) 2004-07-13 2007-04-11 Neose Technologies, Inc. Remodellierung von verzweigtem peg und klykolysierung von glucagonähnlichem peptide-1 glp-1
EP1799249A2 (de) * 2004-09-10 2007-06-27 Neose Technologies, Inc. Glycopegyliertes interferon alpha
WO2006034128A2 (en) 2004-09-17 2006-03-30 Angiotech Biomaterials Corporation Multifunctional compounds for forming crosslinked biomaterials and methods of preparation and use
WO2006035057A1 (en) * 2004-09-29 2006-04-06 Novo Nordisk Health Care Ag Modified proteins
US20080176790A1 (en) * 2004-10-29 2008-07-24 Defrees Shawn Remodeling and Glycopegylation of Fibroblast Growth Factor (Fgf)
WO2006074279A1 (en) * 2005-01-06 2006-07-13 Neose Technologies, Inc. Glycoconjugation using saccharyl fragments
US9029331B2 (en) 2005-01-10 2015-05-12 Novo Nordisk A/S Glycopegylated granulocyte colony stimulating factor
EP1866427A4 (de) * 2005-03-30 2010-09-01 Novo Nordisk As Herstellungsverfahren zur produktion von in insektenzelllinien entstandenen peptiden
EP1871795A4 (de) 2005-04-08 2010-03-31 Biogenerix Ag Zusammensetzungen und verfahren zur herstellung von glycosylierungsmutanten eines proteaseresistenten menschlichen wachstumshormons
JP5216580B2 (ja) * 2005-05-25 2013-06-19 ノヴォ ノルディスク アー/エス グリコペグ化第ix因子
EP1937719A4 (de) * 2005-08-19 2010-11-24 Novo Nordisk As Glycopegylierter faktor vii und faktor viia
US20070105755A1 (en) 2005-10-26 2007-05-10 Neose Technologies, Inc. One pot desialylation and glycopegylation of therapeutic peptides
WO2007056191A2 (en) 2005-11-03 2007-05-18 Neose Technologies, Inc. Nucleotide sugar purification using membranes
US20080242607A1 (en) * 2006-07-21 2008-10-02 Neose Technologies, Inc. Glycosylation of peptides via o-linked glycosylation sequences
US20100075375A1 (en) * 2006-10-03 2010-03-25 Novo Nordisk A/S Methods for the purification of polypeptide conjugates
JP5457185B2 (ja) * 2006-10-04 2014-04-02 ノヴォ ノルディスク アー/エス グリセロール連結のpeg化された糖および糖ペプチド
US20080207487A1 (en) * 2006-11-02 2008-08-28 Neose Technologies, Inc. Manufacturing process for the production of polypeptides expressed in insect cell-lines
DK2144923T3 (da) 2007-04-03 2013-05-13 Biogenerix Ag Behandlingsfremgangsmåder under anvendelse af glycopegyleret g-csf
US20090053167A1 (en) * 2007-05-14 2009-02-26 Neose Technologies, Inc. C-, S- and N-glycosylation of peptides
WO2008151258A2 (en) * 2007-06-04 2008-12-11 Neose Technologies, Inc. O-linked glycosylation using n-acetylglucosaminyl transferases
WO2008154639A2 (en) * 2007-06-12 2008-12-18 Neose Technologies, Inc. Improved process for the production of nucleotide sugars
PT2197919E (pt) 2007-08-27 2014-07-17 Ratiopharm Gmbh Formulação líquida de conjugado de g-csf
US8207112B2 (en) * 2007-08-29 2012-06-26 Biogenerix Ag Liquid formulation of G-CSF conjugate
SG185263A1 (en) 2007-09-28 2012-11-29 Portola Pharm Inc Antidotes for factor xa inhibitors and methods of using the same
SG188161A1 (en) 2008-01-22 2013-03-28 Araim Pharmaceuticals Inc Tissue protective peptides and peptide analogs for preventing and treating diseases and disorders associated with tissue damage
CA2715465C (en) 2008-02-27 2017-03-21 Novo Nordisk A/S Conjugated factor viii molecules
DK2279405T3 (da) 2008-05-13 2014-01-13 Advanced Liquid Logic Inc Dråbeaktuatorindretninger, -systemer og -fremgangsmåder
AP2014008049A0 (en) 2012-04-16 2014-11-30 Cantab Biopharmaceuticals Patents Ltd Optimised subcuraneous therapeutic agents
JP2019523633A (ja) 2016-04-29 2019-08-29 アライム ファーマシューティカルズ,インコーポレーテッド 組織の損傷に関連した疾患及び障害を予防及び治療する組織保護ペプチド

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NL6812443A (de) * 1968-08-31 1970-03-03
US3625827A (en) * 1968-09-27 1971-12-07 Monsanto Co Water-soluble polymer-enzyme products
US3649457A (en) * 1968-09-27 1972-03-14 Monsanto Co Enzymatic processing with polymer-enzyme product
US3576760A (en) * 1969-06-13 1971-04-27 Nat Patent Dev Corp Water soluble entrapping
GB1353317A (en) * 1970-03-03 1974-05-15 Koninklijke Gist Spiritus Enzyme-polymer complexes
US3695999A (en) * 1970-07-22 1972-10-03 Peter Salvatore Forgione Isolation of enzymes from aqueous media by means of polyanions
CH581664A5 (de) * 1974-02-21 1976-11-15 Nestle Sa
US4017364A (en) * 1975-06-19 1977-04-12 Societe D'assistance Technique Pour Produits Nestle S.A. Process for producing an enzyme product having variable solubility

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
NICHTS-ERMITTELT

Also Published As

Publication number Publication date
CH596313A5 (de) 1978-03-15
FR2312561B1 (de) 1980-06-06
FR2312561A1 (fr) 1976-12-24
GB1554211A (en) 1979-10-17
JPS51144787A (en) 1976-12-13
DE2624002A1 (de) 1976-12-09
JPS5840474B2 (ja) 1983-09-06
US4088538A (en) 1978-05-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE2624002C2 (de) Verfahren zur Verwendung eines Enzyms zur Umwandlung einer organischen Substanz in mindestens eine andere organische Substanz durch enzymatische Reaktion
EP0114031B2 (de) Verfahren zur Herstellung lagerstabiler wässriger Farbstofflösungen von wasserlöslichen Reaktivfarbstoffen
DE2264074C2 (de) Verfahren zur Herstellung von Mikrokapseln
CH629251A5 (de) Verfahren zur fixierung einer biologisch aktiven substanz auf einem poroesen traegermaterial.
EP0088964A2 (de) Verfahren zur Herstellung von unlöslichen, nur wenig quellbaren Polymerisaten von basischen Vinylheterocyclen und deren Verwendung
DE1943490A1 (de) Enzymatisch aktives Addukt und Verfahren zu seiner Herstellung
DE3336257C2 (de)
DE2106215A1 (de) Stliciumhaltige Materialien, auf deren Oberflache em Enzym Polymeri satprodukt befestigt ist
DE68919942T2 (de) Verfahren zum Trocknen von biologischen Produkten.
DE2059165A1 (de) Streptokinase in chemischer Bindung an eine Kohlehydratverbindung
DE3139249A1 (de) Enzymatisches verfahren zur klaerung von xanthan-harzen zur verbesserung ihrer spritzfaehigkeit und filtrierbarkeit
DE3218697C2 (de)
DE2237316C3 (de) Verfahren zur Herstellung perlförmiger, vernetzter, wasserunlöslicher Mischpolymerisate und ihre Verwendung
DE69621533T2 (de) Verfahren zur Rückgewinnung von Pullulan
DE2611258C2 (de) Verfahren zum Extrahieren eines Polypeptids aus einer wäßrigen Lösung
DE2345186A1 (de) Neue enzymaufbereitung, sowie verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung
DE2226581C3 (de) Verfahren zur Herstellung von Maltose
DE2134938C3 (de) Verfahren zur gleichzeitigen Gewinnung reiner hoch- und niedermolekularer Amylosen
DE2055263A1 (de) Verfahren zum Verflüssigen von Stärke
DE1955392A1 (de) Staerkehydrolysate und Verfahren zu ihrer Herstellung
DE2365722A1 (de) Stabilisierte und immobilisierte xylose-isomerase-enzymzubereitung, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung zur umwandlung von dextrose in laevulose
DE3789186T2 (de) Methode zur Isolierung und Reinigung von Amylasen und Adsorbentien, sowie Vorrichtungen zur Isolierung und Reinigung.
DE1959169A1 (de) Unloesliches enzymatisch reaktives Material
DE2423059C3 (de) Verfahren zur Herstellung eines Produkts mit enzymatischer Aktivität
DE2116263A1 (de) Für Ultrafiltrationszwecke brauchbare wasserlösliche Membran

Legal Events

Date Code Title Description
8126 Change of the secondary classification

Free format text: C12N 11/08 C12N 9/92 C12P 19/24

8110 Request for examination paragraph 44
D2 Grant after examination
8364 No opposition during term of opposition
8328 Change in the person/name/address of the agent

Free format text: MUELLER-BOERNER, R., DIPL.-ING., 1000 BERLIN WEY, H., DIPL.-ING., PAT.-ANW., 8000 MUENCHEN

8339 Ceased/non-payment of the annual fee