DE2034406A1 - Verfahren zur Herstellung von L Lysin - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von L LysinInfo
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Description
"Verfahren zur Herstellung von L-Lysin"
Priorität: 23. Juli 1969, Japan, Nr. 57 652/69
Ein Verfahren zur Herstellung von L-Lysin auf mikrobiologischem
Wege mithilfe von mutierten Stämmen, die von bestimmten
Nährstoffen abhängig sind, ist bekannt; vergl. japanische Auslegeschrift Nr. 6 499/1961 und Zeitschrift "Hakko to Taisha",
Band 2, Seite 105 (1960). Diese Mutanten von Stämmen von Mikroorganismen benötigen zum Wachstum einen der folgenden
Nährstoffe: Homoserin, Threonin, Threonin mit Methionin, Leucin oder Isoleucin. Sie sind dann in der Lage, beträchtliche
Mengen von L-Lysin zu bilden. Es ist jedoch bekannt, daß
die Konzentration an Threonin, Isoleucin usw. im Nährmedium einen sehr großen Einfluß auf die Ausbeute an L-Lysin hat,
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wenn bei den Verfahren die üblichen Mikroorganismen verwendet
werden, welche von den vorgenannten Nährstoffen abhängig sind.
Wenn die Konzentration an Threonin und ähnlichen Substanzen
zu groß wird, sinkt die Ausbeute an L-Lysin beträchtlich.
Aufgabe der Erfindung war es daher, ein verbessertes Verfahren zur Herstellung von L-Lysin zu schaffen, das die Nachteile und Schwächen der bisherigen Verfahren vermeidet, das
wirksam und relativ einfach in technischem Maßstab durchgeführt werden kann und eine hohe Ausbeute an Produkt ergibt.
Diese Aufgabe wird durch die Erfindung gelöst.
Der Erfindung liegt die Feststellung zugrunde, daß Mikroorganismen, die nicht nur von den vorerwähnten Nährstoffen
abhängig, sondern auch gegen Rückkopplungshemmung und/oder Repressionswirkung durch Lysin, Threonin und Isoleucin und
deren Analoge resistent sind, und insbesondere Mikroorganis-* ' men der Gattungen Brevibacterium, Corynebacterium, Arthröbacter,
Microbacterium, Bacillus oder Nocardia im Vergleich zu den von diesen Nährstoffen abhängigen Mikroorganismen im Verlauf
der Fermentation beträchtliche Mengen von L-Lysin bilden
und anreichern können.
Gegenstand der Erfindung ist somit ein Verfahren zur Herstellung von L-Lysin auf mikrologischem Wege, das dadurch gekennzeichnet
ist, daß man einen L-Lysin erzeugenden Mikroorganismus der Gattung Brevibacterium, Corynebacterium,
Arthrobacter, Microbacterium, Bacillus oder Nocardia, der ab-
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hängig ist von Homoserin, Threonin, Threonin plus Methionin,
Leucin, Isoleucin oder deren Genischen und gegen Rückkopplungshenunung
und/oder Repression durch mindestens eine der Verbindungen
Lysin und Lysin-Analoge, Threonin und Threonin-Analoge
und Isoleucin und Isoleucin-Analoge resistent ist, unter aeroben Bedingungen in einem wäßrigen liährmedium züchtet
und das sich in der Gärmaische anreichernde L-Lysin in bekannter Weise abtrennt.
Ein Vorteil des Verfahrens der Erfindung gegenüber den vorgenannten
bekannten Verfahren ist eine signifikante Steigerung
der Ausbeute an L-Lysin. Die Ausbeutesteigerung an L-Lysin beträgt mehr als 10;·«. Dies ist von industriellen Standpunkt
aus vorteilhaft.
Ein weiterer Vorteil des Verfahrens der Erfindung ist die
Tatsache, daß die Fähigkeit der KikroOrganismen zur Bildung
von L-Lysin durch die Konzentration an Threonin oder anderen im Nährmediun verwendeter Nährstoffe nicht wesentlich beeinflußt
wird, wie aus Beispiel 1 hervorgeht.
Das Verfahren der Erfindung ist gegenüber den üblichen Verfahren von besonderen: Vorteil, wenn billige,natürliche Rohstoffe,
wie Melassen und Hydrolysate von natürlichen Proteinen, als Quelle für die benötigten Kährstoffe verwendet werden.
Wie vorstehend angegeben, werden im Verfahren der Erfindung
Stänae von .Mikroorganismen der Gattungen-Brevibacteriur;,
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Corynebacteriuin, Arthrobacter, Mikrobacterium, Bacillus oder
Nocardia verwendet. Diese Mikroorganismen sind von mindestens einer der folgenden Aminosäuren als Nährstoff abhängig: Homoserin,
Threonin, Threonin plus Methionin, Leucin und Isoleucin. Der hier verwendete Ausdruck "nährstoffabhängiger Stamm" hat
eine weite Bedeutung und soll auch für unvollständige^defekte
Stämme, wie z. B. dem sogenannten "leaky"-Typ, gelten.
Zusätzlich zu den genannten Nährstofferfordernissen sind die zur Herstellung von L-Lysin erfindungsgemäß verwendeten Mikroorganismen
Stämme, deren. System zur Lysin-Biosynthese resistent gegen Rückkopplungshemmung und/oder Repression durch Lysin,
Threonin, Isoleucin oder Gemische derselben ist.
Es ist ein Zuchtverfahren bekannt, nach dem man L-Lysinbildner
erhalten kann, die von Homoserin, Threonin, Threonin plus Methionin, Leucin oder Isoleucin abhängig sind. Natürliche
Mutanten dieser Stämme kann man durch Selektion aus der Gesamtkultur gewinnen. Durch Verwendung chemischer und physikalischer
Methoden kann die Zahl der Mutanten erhöht werden, um aus ihnen solche mit guten Produktionseigenschaften zu selektieren.
Die erfindungsgemäß verwendeten Stämme von Mikroorganismen, die außer der vorstehenden Nährstoffabhängigkeit
die Eigenschaft haben, gegen Rückkopplungshemiming und/oder Repression durch Lysin, Threonin und/oder Isoleucin resistent
zu sein, kann man durch mutagene Behandlung eines der Stämme, die die genannten Nährstoffe benötigen und zu den genannten
Gattungen gehören, erhalten, wie z. B. Stämme, die gegen die
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wachstumshemmende Wirkung folgender Verbindungen resistent gemacht wurden:
a. Lysin oder Lysin-Analoge, z.B. S-(ß-Aminoäthyl)-cystein,
5-Hydroxylysin, 2,6-Diaminoheptansäure, N-£-iOrmyllysin,
trans-2,6-Diamino-4—hexensäure, 2,6-Diaminohexinsäure,
2-Amino-;5-(ß-aminoäthoxy)-propionsäure, 2-Amino-j5-(j5'-aminocyclohexyl)-propionsäure,
4-Azalysin oder 2-Amino.-2-(3'-aminomethylcyclohexyl)-essigsäure;
b. Threonin oder Threonin-Analoge, z.B. et-Amino-ß-hydroxyvaleriansäure,
ß-Hydroxyleucin oder Norleucin;
c. Isoleucin oder Isoleucin-Analoge, z.B. 2-Amino-3-methyl-.
·· · thiobutt er säure, f' -Aminobuttersäure, L-O-Methyl threonin,
€ -Dehydroisoleuein, 2-Amino-2-(j5' -cyclopentenyl)-essigsäure,
2-Amino-2-cyclopentenylessigsäure, 2-Amino-2-(2f-cyclopentenyl)
-essigsäure, ß-Hydroxyleucin oder Methallyl-glycin; oder
d. Gemische dieser Verbindungen.
Diese Stämme kann man auch durch natürliche Auslese oder künstliche
Mutation erhalten.
Außer den Selektionsverfahren mithilfe dieser Verbindungen
können die erfindungsgemäß verwendeten Stämme als'Stämme mit der
gleichen Nährstoffabhängigkeit wie der ursprüngliche Stamm
/ durch Rückmutation von mutierten Stämmen, denen ein
Enzym der Lysinbiosynthese fehlt, erhalten werden. Es werden
im Verfahren der Erfindung Stämme verwendet, deren L-Lysinbildung
im Vergleich zu den Stämmen, die nur ein Nährstofferfordernis
aufweisen, wesentlich verbessert ist. Diese Stämme werden durch Züchtung und Selektionieren der durch solche
Behandlung erhaltenen Stämme verwendet.
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Die mit Mutanten der Stämme Corynebacterium glutamicum
(Micrococcus glutamicus: Japanische Auslegeschrift Nr. 8398/ 1957) und Brevibacterium flavum durchgeführten Versuche erläutern
die Umzüchtung.
Versuch 1
Dieser Versuch erläutert ein Verfahren zur Umzüchtung eines Stammes von Corynebacterium glutamicum, der von Homoserin
(oder Threonin plus Methionin) und Leucin abhängig und gegen Rückkopplungshemmung durch Lysin und Threonin resistent ist.
Der Stamm Corynebacterium glutamicum A.T.CC. 13287, der von
Homoserin (oder Threonin plus Methionin) abhängig ist, wurde durch Ultraviolettbestrahlung und Selektionieren von Corynebacterium
glutamicum A.T.C.C. I3032 erhalten. Durch weitere
mutagene Behandlung und Selektion aus dem Stamm A.T.C.C. 13287
wurde, ein Mutantenstamm Corynebacterium glutamicum A.T.C.C.
21253 gewonnen, der sowohl von Homoserin als auch von Leucin
abhängig ist. Dabei wurde eine Zellsuspension dieses Stammes einer Behandlung mit Nitrosoguanidin unterzogen«, Dann wurden
die behandelten Mikroorganismen auf eine flache Agarscheibe eingeimpft, wobei diese Scheibe ein Minimalmedium enthielt,
das mit 1000 itg/ml Threonin, 10 ^&g/ml Methionin, 20 ^tg/ml
Leucin und 8 mg/ml S-(ß-Aminoäthyi)-cystein ergänzt war. Die
wachsenden Kolonien wurden isoliert» Der so erhaltene Stamm.
hatte, verglichen mit Corynebacterinm glutamicum A0T0G0G0 21253«
eine merklich verbesserte Fähigkeit zur Bildung von Is-Lysin«
-?- 203U06
Dieser typische Stamm wurde Nr. "BL-25" genannt.
Versuch 2 .
Das folgende Umzüchtungsverfahren wurde angewandt, um einen
Stamm von Bre\'ibacterium flavum zu erhalten, der von Threonin
abhängig und gegen Rücklcopplungshemmung durch Lysin und
Threonin resistent ist.
Durch mutagene Behandlung von Brevibacteriuin flavum A.T.C.C.
1406? wurde ein threoninabhängiger Stamm Brevibacterium flavum
- KY 10171 erhalten. Eine Zellsuspensiori des Stammes KY 10171
wurde hierauf einer mutagenen Behandlung mit Nitrosoguanidin unterzogen. Der behandelte Stamm wurde dann auf eine flache
Agarscheibe eingeimpft, die ein Minimalmedium enthielt, das
mit 1000 ug/nil Threonin, 20 Jig/ml Ke t hl on in, 2 mg/ml S-(B-Aminoäthyl)-cystein
und 2 mg/ml fl£-Amino-ß-hydroxyvaleriansäure
ergänzt war. Die wachsenden Kolonien wurden isoliert. Der so erhaltene Stana hatte im Vergleich zu Brevibacterium flavum
KY 10171 eine -beträchtlich verbesserte Fähigkeit zur Herstellung
von L-Lysin. Der typische Stamm wurde "LT-I" genannt.
Im Verfahren der Erfindung können Nährmedien üblicher Art und
übliche Aainosäurefermentationsverfahren angewendet werden.
Auch die für die Herstellung von Lysin auf mikrobiologischem Wege bekannten Hährmedien sind geeignet. Für die Züchtung der
erfindungsgenäß verwendeten Stämne eignen sich synthetische
oder natürliche Kähnaedien, sofern sie die für das wachstum
G&8887/UÖÜ
der Stämme erforderlichen Nährstoffe enthalten. Solche Nährstoffe sind bekannt. Sie erhalten in geeigneten Mengen Kohlenstoffquellen,
Stickstoffquellen und anorganische Verbindungen, die von den verwendeten Mikroorganismen verwertet werden. Als
Kohlenstoffquellen können z.B. folgende Substanzen verwendet werden: Kohlenhydrate, wie Glucose, Fructose, Maltose, Saccharose,
Stärke, Stärkehydrolysate oder Melassen, oder andere geeignete Kohlenstoffquellen, wie organische Säuren, z.B. Essigsäure,
Milchsäure oder Fumarsäure, oder Alkohole, z.B. Methanol oder Äthanol. Diese Substanzen können entweder einzeln oder
als Gemisch von zwei oder mehr dieser Substanzen verwendet werden.
Je nach ihrer Verwertbarkeit durch die verwendeten Mikroorganismen
ist es möglich, dem Nährmedium Kohlenwasserstoffe in größeren oder geringeren Mengen als Kohlenstoffquelle zuzusetzen.
Geeignete Kohlenwasserstoffe sind unverzweigte und verzweigte Paraffine, Cycloparaffine, unverzweigte und verzweigte
Olefine, Cycloolefine, aromatische Kohlenwasserstoffe, z.B.
Benzol oder o-Xylol, und Gemische derselben und gemischte Kohlenwasserstoffe, z.B. Petroleumderivate, wie Kerosin, Leicht
öle, Schweröle, Paraffinöle oder Erdöl bzw. Rohpetroleum.
Als Stickstoffquellen können die verschiedensten anorganischen oder organischen Salze verwendet werden, wie Harnstoff oder
Ammoniumsalze, z.B. Ammoniumchlorid, Ammoniumsulfat, Ammoniumnitrat
oder Ammoniumphosphat, oder eine oder mehrere Aminosäuren oder natürliche stickstoffhaltige Substanzen, wie Mais-
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quellwasser, Hefeextrakt, Fleischextrakt, Fischmehl, Pepton,
Bouillon, Caseinhydrolysate, lösliche Produkte, die bei der Fischverwertung anfallen, oder Reiskleieextrakte. Diese Substanzen
können entweder einzeln oder in Gemischen von zwei oder mehr dieser Substanzen verwendet werden.
Beispiele für anorganische Verbindungen, die dem Nährmedium zugesetzt
werden, sind Magnesiumsulfat, Natr'iumphosphat, Kaliumdihydrogenphosphat,
Kaliumhydrogenphosphat, Eisensulfat oder andere Eisensalze, Manganchlorid, Calciumchlorid und Natriumchlorid.
Außerdem können je nach den besonderen Nährstoffbedürfnissen
der verwendeten Mikroorganismen bestimmte essentielle Nährstoffe dem Nährmedium zugesetzt werden, wie spezielle Aminosäuren
der vorgenannten Art, und/oder Vitamine, wie Biotin, Thiamin oder Cobalamin.
Es ist wichtig, die Menge der benötigten Aminosäuren so zu begrenzen, daß sie unter der optimalen Konzentration für das
Wachstum des Mikroorganismus liegt, was bei Herstellung von Aminosäuren auf mikrobiologisch.em Wege eine aligemein angewandte Technik darstellt.
Die Züchtung der Mikroorganismen wird unter aeroben Bedingungen
durchgeführt, z.B. durch. Schütteln unter aeroben Bedingungen
oder unter Rühren und Belüften im Submersverfatiren. Man arbeitet
bei einer Temperatur von beispielsweise 20 - 4O0C und einem
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pH-Wert von etwa 4,5 - 9»5· Nach einer Züchtung von etwa 1 bis
8 Tagen unter diesen Bedingungen reichern sich große Kengen« ■
von L-Lysin in der Gärmaische an. !
Nach Beendigung der Züchtung kann das L-Lysin durch übliche
Verfahren aus der Gärmaische gewonnen werden, z.B. durch Adsorption an einem Ionenaustauscherharz» Extraktion mit Lösungsmitteln, Ausfällung, Absorption oder Chromatographie. Ein bevorzugtes
Verfahren zur Gewinnung des Lysins umfaßt folgende Schritte: Die Gärmaische wird mit Salzsäure auf den pH-Wert 2
eingestellt und das L-Lysin wird an einem stark sauren Ionenaustauscherharz in der Ammoniumform gebunden und mit wäßrigem
Ammoniak eluiert. Nach dem Entfernen des Ammoniaks kann man rohes L-Lysinhydrochlorid in kristalliner Eorm erhalten, indem
man die Losung mit Salzsäure auf den pH-Wert 5-6 einstellt,
eindampft und kühlt» Das Produkt kann z.B. durch Behandlung mit Aktivkohle, durch Umkristallisieren oder durch
andere übliche Verfahren weiter gereinigt werden.
Die Beispiele erläutern die Erfindung. Prozentangaben beziehen sich auf das Gewichti falls nichts anderes angegeben ist.
Corynebacterium glutamicum BL-25 A.-T.C.C. 21526,. ein vom Homo
serin und Leucin abhängiger und gegen das 3E»ysin~JlnalQge S-(ß-
Aminoäthyl)-cystein resistenter Stamms wird als Anzuchtstamm-
verwendet. Der Stamm wird 24- Stunden bei 5O°C unter aeroben
■ -· ■ Q0-98S-1/HW '■' '
ORiGfWAt INSPiECTED
Bedingungen und unter Schütteln in einem Nährmedium der folgenden
Zusammensetzung gezüchtet: 4% Glucose, 2% Polypepton,
0,15% KH2PO4, 0,05% K2HPO4, 0,05% MgSO4.7H2O, 50/ig/Liter
Biotin, 0,3% Harnstoff und 0,5% Hefeextrakt. Der pH-Wert des Nährmediusis ist 7*2·
Dann wird 1 ml der entstandenen Anzuchtkultur in einen 250 ml
fassenden Erlenmeyerkolben gegeben, der 20 ml eines Nährmediums
der folgenden Zusammensetzung enthält: 10% Melasse (berechnet als Glucose), 2% mit Schwefelsäure aufgeschlossener Sojabohnenkuchen
(berechnet als Sojabohnenkuchen vor dem Aufschluß),
0,07% KH2IX)4, 0,05% MgSO4.7H2O, 0,3% Harnstoff, 0,5% (NH4)2SO4
und 3% CaCO,. Der pH-Wert des Nährmediums beträgt 7t5·
Man züchtet 4 Tage bei 300C unter aeroben Bedingungen und unter
Schütteln und erhält in der entstandenen Gärmaische 39»5 mg/ml
L-Lysin (als Hydrochlorid).
Bei einen unter gleichen Bedingungen durchgeführten Kontrollversuch
erhält man nur 34,5 mg/ml L-Lysin in der Gärmäische,
wenn ein homoserin- und leucinabhängiger Stamm von Corynebacteriuai
glutamicum (A.T.C.C. 21253) verwendet wird.
Wenn die Züchtung in einem Nährmedium durchgeführt wird, das zusätzlich mit 500 jug/ml L-Threonin versetzt wurde, werden
32,5 mg/ml L-Lysin mit Corynebacterium glutamicum BL-25 A.T.C.C.
21526 gebildet, während mit Corynebacterium glutamicum A.T.C.C. 21253 10,0 mg/ml L-Lysin gebildet werden.
009887/140·
Brevibacterium flavum LT-1 A.T.C.C. 21528, ein threoninabhängiger
und gegen das Lysin-Analoge S-(ß-Aminoäthyl)-cystein und
das Threonin-Analoge oi-Amino-ß-hydroxyvaleriansäure resistenter
Stamm, wird als Anzuchtstamm verwendet. Die Züchtung wird unter den gleichen Bedingungen wie in Beispiel 1 durchgeführt, mit
der Ausnahme, daß 200 yttg/Liter Thiamin dem Anzucht^ährmedium .
w zugesetzt werden. Nach beendeter Züchtung sind in der Gärmaische
25 mg/ml L-Lysin (als Hydrochlorid) angereichert.
Bei einem unter gleichen Bedingungen durchgeführten Kontrollversuch,
jedoch unter Verwendung des threoninabhängigen Stammes Brevibacterium flavum A.T.C.C. 21129, erhält man in der Gärmaische
nur 17 mg/ml L-Lysin (als Hydrochlorid).
Corynebacterium glutamicum EL-9 A.T.C.C. 2154-3, ein homoserin-
und leucinabhängiger und gegen das Lysin-Analoge S-(ß-Aminoäthyl)-cystein
resistenter Stamm, Corynebacterium glutamicum T-135 A.T.C.C. 21527» ein homoserin- und leucinabhängiger und
gegen das Threonin-Analoge a-Amino-ß-hydroxyvaleriansäure,resistenter
Stamm, und Corynebacterium glutanicum LT-32-6 A.T.CC*
21544, ein homoserin- und leucinabhängiger und gegen das Isoleucin-Analoge
2-Amino-3-methylthiobuttersäure resistenter Stamm, werden jeweils als Anzuchtstämme verwendet und gemäß
Beispiel 1 gezüchtet. Die in der Gärmaische gebildeten Mengen
009887/U09
an L-Lysin sind in Tabelle I angegeben.
Menge an gebildeten ,L-Ly5inr
Verwendete Stämme ' mg/ml·""
gegen S-(ß-Aminoäthyl)-cystein
resistenter Stamm 39,4-
gegen α-Amino-ß-hydroxyvaler!ansäure
resistenter Stamm
38,2
gegen 2-Amino-3-Eiethylthiobutter-
säure resistenter Stamm '
38,1
Brevibacterium flavum T-3O1 A.T.C.C. .21529-, ein threoninabhängiger
und gegen das Threonin-Analoge Gt—Amino-ß-hydroxyvaleriansäure
resistenter Stamm, wird als Anzuchtstamm verwendet.
Die Züchtung wird unter den gleichen Bedingungen wie in Beispiel 1 durchgeführt, ,jedoch werden 200 Ltg/Liter Thiämin
dem in Beispiel 1 beschriebenen Nährmedium zugesetzt. Nach beendeter Züchtung sind in der G-ärmaische 30,1 mg/ml L-Lysin
(als Hydrochlorid) angereichert.
009887/U09
Claims (4)
1. Verfahren zur Herstellung von L-Lysin auf mikrobiologischem
Wege, dadurch gekennzeichnet,
daß man einen L-Lysin erzeugenden Mikroorganismus der Gattung Brevibacterium, Corynebacterium, Arthrobacter, Microbacterium,
Bacillus oder Nocardia, der. abhängig ist von Homoserin,
Threonin, Threonin plus Methionin, Leucin, Isoleucin oder deren Gemischen und gegen Rückkopplungsheiiimung und/oder Repression
durch mindestens eine der Verbindungen Lysin und Lysin-Analoge, Threonin und Threonin-Analoge und Isoleucin
und Isoleucin-Analoge resistent ist, unter aeroben Bedingungen in einem wäßrigen Nährmedium züchtet und das sich in der Gärmaische
anreichernde L-Lysin in bekannter Weise abtrennt.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet
, daß man die Züchtung bei Temperaturen von etwa 20 bis 400C und bei einem pH-Wert von etwa 4-,O bis 9,5
durchführt.
3· Verfahren nach Anspruch 1, -dadurch gekennzeichnet , daß man die Menge der zum Wachstum des
Mikroorganismus erforderlichen Aminosäure, die dem Nährmediuni
zugesetzt wird, auf einen Wert unterhalb der für optimales Wachstum benötigten Menge einstellt»
4. Verfahren nach Anspruch 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet,
daß man Corynebacterium glutamicum BL-25 A.T.C.C. 21526, Brevi-
009887/U09
bacterium flavum LT-1 A.T.C.C. 21^28, Corynebacterium clutamicum
T-135 A.T.C.C. 21^27, Corynetacteriua Glutamicum "EL-9 A.T.CC.
215A3/Coi-jTiOhactoriua clutanicua LY-32-6 A.T.C.C. 215-4Λ ver-
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