DE1795481B1 - Verfahren zur Herstellung von 8-Azapurinnucleosiden - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von 8-AzapurinnucleosidenInfo
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Description
ν r-% ! » R2
/ N ~N-Ri'
N" —N
15 R N
in der R1 ein Wasserstoffatom oder eine Amino- x „
gruppe, R2 ein Wasserstoff- oder Halogenatom, 3
eine Hydroxy-, Mercapto-, Amino- oder Furfuryl-
aminogruppe, einen Alkylaminorest mit bis zu worin R1 ein Wasserstoffatom oder eine Aminogruppe,
6 Kohlenstoffatomen oder einen Acylaminorest 20 R2 ein Wasserstoff- oder Halogenatom, eine Hydroxy-,
mit bis zu 7 Kohlenstoffatomen und R3 den Ribo- Mercapto-, Amino- oder Furfurylaminogruppe, einen
syl- oder Desoxyribosylrest bedeuten, dadurch Alkylaminorest mit bis zu 6 Kohlenstoffatomen oder
gekennzeichnet, daß man ein 8-Azapurin einen Acylaminorest mit bis zu 7 Kohlenstoffatomen
der allgemeinen Formel und R3 den Ribosyl- oder Desoxyribosylrest bedeuten.
25 8-Azapurinnucleoside sind bekanntlich nützliche
R2 und wertvolle chemische oder biochemische Agentien
in enzymatischen und biochemischen Untersuchungen.
Während die natürlich vorkommenden Purinnucleo-
N N side^ wje Adenosin, Guanosin, Xanthosin und Inosin,
-XT 3c sich leicht herstellen lassen, z. B. durch Hydrolyse von
/ N 1 Ribonucleinsäuren oder Desoxyribonucleinsäuren un-
1 ' ter Bildung eines Gemisches von Nucleosiden und Ab-
trennung der einzelnen Nucleoside mit oder ohne Desaminierung
oder durch Dephosphorlyierung von Pur-
mit Adenosin, Inosin, Guanosin, Uridin, Cytidin 35 innucleotiden mit Hilfe von Phosphatase, können die
oder den entsprechenden 2'-, 3'-, 5'-, 2',3'- oder obengenannten 8-Azapurinnucleoside nicht aus Nu-3',5'-Ribonucleotiden
oder Adenindesoxyribosid, cleinsäuren hergestellt werden, vielmehr ist dies nur Hypoxanthindesoxyribosid, Guanindesoxyribosid, mit chemischen Synthesen möglich, die viele Reaktions-Cytosindesoxyribosid,
Thymindesoxyribosid oder stufen und genaue Einhaltung der Reaktionsbedingunden entsprechenden 3'-, 5'- oder 3',5'-Desoxyribo- 40 gen erfordern. Bei allen bisher bekannten chemischen
nucleotiden oder Gemischen derselben in einem Verfahren zur Herstellung dieser Nucleoside ist es
wässrigen Medium vom pH-Wert 4 bis 10 bei schwierig, die Reaktion so zu führen, daß sie an den
Temperaturen zwischen 20 und 500C in Gegenwart gewünschten Stellungen der Base und der Ribose oder
eines anorganischen Phosphats und in Anwesenheit Desoxyribose stattfindet. Ferner ist die Handhabung
eines der folgenden aeroben Bakterienstämme: 45 der labilen Ribose bzw. der noch labileren Desoxyribose
. , „ „ .. . , schwierig. Ein zufriedenstellendes Syntheseverfahren
^robacteraerogenes (Kruse) Beijennck zur Großherstellung von S-Azapurindesoxyribonucleo-
-JNr. bl , . siden ist bisher nicht entwickelt und bekannt geworden.
Aeromonas hydrophila (Chester) Stanier Es wurde nun gefunden? daß sich die Verbindungen
WKKLJNr. b-yuy, 50 der allgemeinen Formel I leicht in technischem Maß-
9?99 em ' Stab dadurch herstellen lassen'daß man ein 8-Azapurin
Bacillus shaericus Neide USDA-Nr. 344, der alIS™en Formel
Bacterium cadaveris GaIe et Epps
ATCC-Nr. 9760, Rs
Corynebacterium sepedonicum (Spiek. et Kott.)
Skaptason et Burkholder ATCC-Nr. 15 391, N _n
Erwinia aroideae (Townsend) Holland N II
ATCC-Nr. 15 390, N ~ N
Pseudomonas putrefaciens (Derby et Hammer) 5 R1'
Long et Hammer ATCC-Nr. 8071 und H
Vibrio percolans Mudd et Warren
NRRL-Nr. S 31 mit Adenosin; inosin, Guanosin, Uridin, Cytidin oder
oder in Anwesenheit des die Pentosylgruppe über- den entsprechenden 2'-, 3'-, 5'-, 2',3'- oder 3',5'-Ribotragenden
Enzymsystems der genannten Bakterien- 65 nucleotiden oder Adenindesoxyribosid, Hypoxanthinstämme
umsetzt. desoxyribosid, Guanindesoxyribosid, Cytosindesoxy-
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekenn- ribosid, Thymindesoxyribosid oder den entsprechenden
zeichnet, daß mit Konzentrationen eines anorga- 3'-, 5'- oder 3',5'-Desoxyribonucleotiden oder Gemi-
3 4
sehen derselben in einem wässrigen Medium vom pH- Mangansulfat, Natriummolybdat und Zinksulfat ver-Wert
4 bis 10 bei Temperaturen zwischen 20 und 500C wendet werden.
in Gegenwart eines anorganischen Phosphats und in Die Bedingungen, unter denen die aeroben Bakterien
Anwesenheit eines der folgenden aeroben Bakterien- bebrütet werden, werden vorteilhaft auf die verwende-
s'amme: 5 ten Bakterienspezies und/oder das Kulturmedium ab-
Aerobacter aerogenes (Kruse) Beijerinck gestimmt. Gewöhnlich wird die Kultivierung bei einer
ATCC-Nr 9621 Temperatur von 20 bis 40 C fur eine Dauer von 6 Ta-
Aeromonas hydrophila (Chester) Stanier gen durchgeführt _ ,.„,··,
NRRL Nr B 909 e §enannten Stamme von aeroben Bakterien sind
Bacillus brevis Mi^uIa emend. Ford 10 ** Jr American Type Culture Collection (ATCC)4
ATCC Nr 9999 Washington, D.C., USA, beim Northern Utilization
Bacillus sphaericus Neide USDA-Nr. 344, Research Branch US. Dept. of Agriculture (NRRL)
Bacterium cadaveris Gale et Epps ATCC-Nr. 9760, ^0T.ia' m->™£:™d b,eim US· DePartment of
Corynebacterium sepedonicum (Spiek. et Kott.) Agriculture (USDA) hinterlegt.
Skaptason et Burkholder ATCC-Nr. 15 391, 15 Fur u die Pentosylubertragungsreaktion ist die An-
Erwinia aroideae (Townsend) Holland Wesenheit eines Phosphats erforderlich. In den Fallen,
ATCC-Nr 15 390 in "enen beispielsweise die Enzymquelle mit dem
Pseudomonas putrefaciens (Derby et Hammer) Phosphat verunreinigt ist oder in denen Nucleotide
Long et Hammer ATCC-Nr. 8071 und als Pentosyllieferant zusammen mit Phosphomono-
VibriopercolansMudd et Warren NRRL-Nr. S 31 20 esterase °^Γ Pyrophosphatase verwendet werden, ist
ein Phosphatzusatz unnötig. Die Phosphatkonzentra-
oder in Anwesenheit des die Pentosylgruppe übertra- tion im Reaktionsgemisch beträgt zweckmäßig 0,1 bis
genden Enzymsystems der genannten Bakterienstämme 100 mMol, jedoch kann sich ein zu hoher Phosphatumsetzt.
Überschuß nachteilig auf die Bildung der gewünschten
Als Ausgangsstoffe geeignete 8-Azapurine der allge- 25 8-Azapurinpentoside auswirken.
meinen Formel II sind beispielsweise 8-Azahypoxan- Die im Reaktionsmedium angereicherten gewünschthin,
8-Azaguanin, 6-Mercapto-8-azapurin und 6-Bu- ten 8-Azapurinnucleoside der allgemeinen Formel I
tyroylamino-8-azapurin. werden nach beliebigen bekannten Methoden, die zur
Die als Lieferanten der Ribosyl- oder Desoxyribo- Abtrennung des Produkts von fermentativen Reaksylgruppe
genannten Nucleoside und Nucleotide lassen 3° tionen aus dem Reaktionsgemisch oder zur Trennung
sich leicht durch Hydrolyse von Nucleinsäuren her- mehrerer ähnlicher chemischer Verbindungen in die
stellen. Einzelverbindungen angewendet werden, isoliert. Bei-Beim erfindungsgemäßen Verfahren kann die Kultur- spielsweise kann die Abtrennung durch Ausnutzung
brühe der Bakterien unmittelbar als Enzymquelle ge- des Unterschiedes in der Löslichkeit in verschiedenen
braucht werden, oder die Zellen können in Form einer 35 Lösungsmitteln zwischen der gewünschten Verbindung
Suspension in Wasser, einer Pufferlösung oder einer und den Verunreinigungen, des Unterschiedes in den
Salzlösung verwendet werden. Die abgetrennten Zellen Verteilungskoeffizienten zwischen den beiden Lösungskönnen ferner vor der Reaktion einer Vorbehandlung mittelschichten, des Unterschiedes in der Adsorbierbarunterworfen
werden, z. B. einer Zerstörung durch keit an Adsorptionsmitteln, wie Aktivkohle oder
Beschallen, Mahlen mit Glaskugeln, Behandlung mit 40 Ionenaustauschharzen, des Unterschiedes in der Diaeinem
die Zellen zerstörenden Mittel, wie Phenol oder lysierbarkeit durch eine halbdurchlässige Membran
Natriumdesoxycholat, oder Waschen mit einem orga- oder des Unterschiedes in der Kristallisierbarkeit aus
nischen Lösungsmittel, wie Aceton oder Äthylacetat. einem Lösungsmittel sowie durch Filtration oder
Das erfindungsgemäße Verfahren kann auch so durch- Zentrifugieren des Reaktionsgemisches mit oder ohne
geführt werden, daß man die genannten aeroben Bak- 45 Zusatz von Filterhilfsstoffen erfolgen. In der Praxis
terien unter aeroben Bedingungen in einem geeigneten werden diese Methoden zur Trennung oder Isolierung
Kulturmedium züchtet, das beide Ausgangsstoffe ent- je nach der gewünschten Reinheit und dem Zustand
hält. der Produkte in Kombination oder wiederholt durch-
Die Kultivierung der Bakterien erfolgt in einem geführt.
geeigneten Kulturmedium unter aeroben Bedingungen. 50 In den folgenden Beispielen beziehen sich die Pro-
Das Kulturmedium muß assimilierbare Kohlenstoff- zentsätze auf das Gewicht,
quellen und Stickstoffquellen für die verwendeten
quellen und Stickstoffquellen für die verwendeten
Bakterien enthalten. Zweckmäßig ist der Zusatz von Beispiel 1
anorganischen Salzen und Spurenelementen. Als Nährstoffe für die Kultivierung kommen die allgemein zu 55 200 ml einer wie unten angegeben hergestellten diesem Zweck verwendeten Stoffe in Frage. Geeignete Zellsuspension wurden 10 Minuten beschallt (10 kHz, Kohlenstoff quellen sind beispielsweise Stärke, lösliche 100 W) und anschließend zur Entfernung von Fest-Stärke, Dextrin, Glucose, Saccharose, Lactose, Maltose stoffen zentrifugiert. Der Überstand wurde zu einer und Glycerin. Geeignete Stickstoff quellen sind bei- Lösung von 1,52 g 8-Azaguanin und 7,32 g Uridin in spielsweise Pepton, Fleischextrakt, Hefeextrakte, Soja- 60 4 Liter einer 0,05molaren Kaliumdihydrogenphosphatbohnenmehl, Maisquellwasser, Gluten, Natriumgluta- Pufferlösung gegeben. Das Gemisch wurde 180 Minumat, Harnstoff, Ammoniumsalze, z. B. Ammonium- ten bei 37°C stehengelassen und dann 10 Minuten auf chlorid, Ammoniumsulfat, Ammoniumnitrat und Am- 900C erhitzt. Es wurde dann zur Entfernung der gemoniumlactat, und Nitrate, z. B. Natriumnitrat und bildeten Fällung filtriert. Das erhaltene Filtrat wurde Kaliumnitrat. Weitere anorganische Salze sind bei- 65 mit Salzsäure auf den pH-Wert 2 eingestellt und durch spielsweise Kaliumphosphat, Magnesiumsulfat, Na- eine Aktivkohlesäule geleitet. Nach dem Waschen mit triumchlorid und Calciumchlorid. Als Spurenelemene, 0,01 η-Salzsäure wurde die Aktivkohlesäule mit können Borsäure, Kupfersulfat, Eisen(III)-chloritd 5 %igem Äthanol, das 4 % Ammoniak enthielt, eluiert.
anorganischen Salzen und Spurenelementen. Als Nährstoffe für die Kultivierung kommen die allgemein zu 55 200 ml einer wie unten angegeben hergestellten diesem Zweck verwendeten Stoffe in Frage. Geeignete Zellsuspension wurden 10 Minuten beschallt (10 kHz, Kohlenstoff quellen sind beispielsweise Stärke, lösliche 100 W) und anschließend zur Entfernung von Fest-Stärke, Dextrin, Glucose, Saccharose, Lactose, Maltose stoffen zentrifugiert. Der Überstand wurde zu einer und Glycerin. Geeignete Stickstoff quellen sind bei- Lösung von 1,52 g 8-Azaguanin und 7,32 g Uridin in spielsweise Pepton, Fleischextrakt, Hefeextrakte, Soja- 60 4 Liter einer 0,05molaren Kaliumdihydrogenphosphatbohnenmehl, Maisquellwasser, Gluten, Natriumgluta- Pufferlösung gegeben. Das Gemisch wurde 180 Minumat, Harnstoff, Ammoniumsalze, z. B. Ammonium- ten bei 37°C stehengelassen und dann 10 Minuten auf chlorid, Ammoniumsulfat, Ammoniumnitrat und Am- 900C erhitzt. Es wurde dann zur Entfernung der gemoniumlactat, und Nitrate, z. B. Natriumnitrat und bildeten Fällung filtriert. Das erhaltene Filtrat wurde Kaliumnitrat. Weitere anorganische Salze sind bei- 65 mit Salzsäure auf den pH-Wert 2 eingestellt und durch spielsweise Kaliumphosphat, Magnesiumsulfat, Na- eine Aktivkohlesäule geleitet. Nach dem Waschen mit triumchlorid und Calciumchlorid. Als Spurenelemene, 0,01 η-Salzsäure wurde die Aktivkohlesäule mit können Borsäure, Kupfersulfat, Eisen(III)-chloritd 5 %igem Äthanol, das 4 % Ammoniak enthielt, eluiert.
I 795
Das Eluat wurde unter vermindertem Druck eingeengt, auf den pH-Wert 9,6 eingestellt und durch eine Säule
geleitet, die mit einem stark basischen Ionenaustauscherharz (Polystyrol-Divinylbenzol-Copolymeres,
fonnialfonn) gefüllt war. Nach dem Waschen mit Wasser wurde die Säule mit 0,1 n-Ameisensäure eluiert.
Das Eluat wurde durch eine Kolonne geleitet, die mit Aktivkohle gefüllt war. Nach dem Waschen mit
Wasser wurde die Aktivkohlesäule mit 50%igem Äthanol, das 4% Ammoniak enthielt, eluiert. Das
Eluat wurde unter vermindertem Druck zur Trockene eingedampft. Der erhaltene Rückstand wurde aus
Wasser kristallisiert, wobei 960 mg 8-Azaguaninrobosid (Schmelzpunkt 250 bis 252°C, Zersetzung) erhalten
wurden.
Die benötigte Zellsuspension wurde folgendermaßen
hergestellt:
Aerobacter aerogenes (Kruse) Beijerinck ATCC-Nr. 9621 wurde über Nacht bei 280C auf einer Bouillon-Agar-Schrägkultur
kultiviert, die 1 % Glucose enthielt. Fünfundzwanzig 200-ml-Kolben, die je 40 ml eines
wäßrigen Kulturmediums enthielten, wurden mit den Zellen beimpft, wobei jeweils eine Übertragung mit
einer Öse vorgenommen wurde. Das Medium bestand aus Dextrin (20,0 g), Polypepton (10,0 g), Fleischextrakt
(10,0 g), Dikaliumhydrogenphosphat (1,0 g), Natriumchlorid (5,0 g) und sterilisiertem Leitungswasser
(1 1) und war auf den pH-Wert 7,2 eingestellt. Das beimpfte Medium wurde 2 Tage bei 280C unter
Schütteln bebrütet. Nach der Bebrütung wurde die gesamte Kulturbrühe zur Abtrennung der Zellen zentrifugiert.
Die Zellen wurden mit 0,8%iger wäßriger Kochsalzlösung gewaschen und zur Herstellung der
Enzymquelle in destilliertem Wasser (200 ml) suspendiert.
Ein Gemisch aus 200 ml einer 0,005molaren wäßrigen Lösung von 8-Azaguanin bzw. 8-Azahypoxanthin,
500 ml einer 0,01molaren wäßrigen Lösung von 5'-Thymidylsäure, 100 ml einer l,0molaren Acetatpufferlösung
vom ph-Wert 5,75, 50 ml der gemäß Beispiel 1 hergestellten Zellsuspension und 150 ml
Wasser wurden 120 Minuten bei 370C gehalten. Die
Isolierung des 8-Azaguanin-desoxyribosids bzw. des 8-Azahypoxanthin-desoxyribosids aus dem Reaktionsgemisch erfolgt analog zu der Verfahrensweise des
Beispiels 1. Es wurden 21 mg 8-Azaguanin-desoxyribosid bzw. 20 mg 8-Azahypoxanthin-desoxyribosid
erhalten.
Die erhaltenen Desoxyriboside zeigten die typische blaue Farbreaktion mit Diphenylamin gemäß einer
Untersuchungsmethode für Nucleinsäuren (s. »The Nucleic Acids, Chemistry and Biology«, Bd. 1, S. 287
bis 289). Die molaren Absorptionskoeffizienten der entsprechenden Reaktionsprodukte werden wie folgt
angegeben:
8-Azaguanin-desoxyribosid
250 ταμ = 12,5
278 ταμ = 6,5
250 ταμ = 12,5
278 ταμ = 6,5
-1 · cm-1 (0,01 n-HCl)
-1 · cm-1 (0,01 n-NaOH)
8-Azahypoxanthin-desoxyribosid
255 ταμ = 9,6 · 103M-1 · cm-1 (0,01 n-HCl)
275 ταμ = 10,5 · 103M-1 · cm"1 (0,01 n-NaOH)
275 ταμ = 10,5 · 103M-1 · cm"1 (0,01 n-NaOH)
Claims (1)
1. Verfahren zur Herstellung von 8-Azapurin-
nucleosiden der allgemeinen Formel 5
R2 Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung
j von 8-Azapurinnucleosiden der allgemeinen Formel
Applications Claiming Priority (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1463563 | 1963-03-18 | ||
JP1463463 | 1963-03-18 | ||
JP1463463 | 1963-03-18 | ||
JP1463563 | 1963-03-18 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE1795481B1 true DE1795481B1 (de) | 1972-09-07 |
DE1795481C DE1795481C (de) | 1973-04-05 |
Family
ID=
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1991001325A1 (de) * | 1989-07-24 | 1991-02-07 | Boehringer Mannheim Gmbh | Nucleosid-derivate und deren verwendung als arzneimittel |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
None * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1991001325A1 (de) * | 1989-07-24 | 1991-02-07 | Boehringer Mannheim Gmbh | Nucleosid-derivate und deren verwendung als arzneimittel |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
GB1063951A (en) | 1967-04-05 |
DE1795480B2 (de) | 1976-05-13 |
DE1470360A1 (de) | 1969-11-13 |
DE1470360B2 (de) | 1976-07-15 |
DE1795480A1 (de) | 1972-03-09 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
E77 | Valid patent as to the heymanns-index 1977 | ||
EHJ | Ceased/non-payment of the annual fee |