DE1767294C3 - Verfahren zur fermentativen Gewinnung von Orotidin - Google Patents

Verfahren zur fermentativen Gewinnung von Orotidin

Info

Publication number
DE1767294C3
DE1767294C3 DE19681767294 DE1767294A DE1767294C3 DE 1767294 C3 DE1767294 C3 DE 1767294C3 DE 19681767294 DE19681767294 DE 19681767294 DE 1767294 A DE1767294 A DE 1767294A DE 1767294 C3 DE1767294 C3 DE 1767294C3
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
atcc
orotidine
culture
cultivation
microorganisms
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired
Application number
DE19681767294
Other languages
English (en)
Other versions
DE1767294A1 (de
DE1767294B2 (de
Inventor
Isao Machida Kawamoto
Masanaru Kawasaki Misawa
Takashi Tokio Nara
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
KH Neochem Co Ltd
Original Assignee
Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd filed Critical Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd
Publication of DE1767294A1 publication Critical patent/DE1767294A1/de
Publication of DE1767294B2 publication Critical patent/DE1767294B2/de
Application granted granted Critical
Publication of DE1767294C3 publication Critical patent/DE1767294C3/de
Expired legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • C12P19/28N-glycosides
    • C12P19/38Nucleosides
    • C12P19/385Pyrimidine nucleosides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P17/00Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • C12P17/10Nitrogen as only ring hetero atom
    • C12P17/12Nitrogen as only ring hetero atom containing a six-membered hetero ring

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Verfahren h? gegenüber
kann (s. die Beispiele). Femet erlaubt M dan F»cl· ™^„relial,gewendet werden.
mann, für Henrtellung »on Orotidm auf andere m*"re s"1)cljlol,qn,.,,e k8riM„ versehiede»e Arten
SS B^SÄSS: Su^, wie U
Aromoniumsulfat, Ammoniumnitrat Ammoniumacetat und Annnoraumpnosphat oder natürliche stickstoffhaltige Substanzen, wie ζ, B, Maisqwellflüssigkeit, Hefeextrakt, Fleischextrakt, Pepton, Fischmehl, BouüIor, Caseinbydrolyste, Casaminosäure, gelöste Fischsubstanz und Reiskleieextrakt verwendet werden. Diese Substanzen können ebenfalls entweder einzeln oder in Kombinationen zu zweien oder mehreren angewendet werden.
Der pH-Wert des Fermentationsmediums vor der Sterilisation betrug 7,3.
Dann wurde die Kultivierung unter aerobem
Schütteln bei 300C über einen Zeitraum von 120 Stunden durchgeführt Nach der Fermentation hatten sich in der erhaltenen Kulturflüssigkeit 1,23 mg Orotidin pro ml Flüssigkeit angereichert
1 Liter der erhaltenen Kulturflüssigkeit wurde durch eine 50-ml-Kolonne, die mit einem Anionen-
Zu den anorganischen Verbindlungen, die dem io austauscherharz in der Acetatform angefüllt wsr, Kulturmedium zugesetzt werden können, gehören geschickt und nach dem Filtrieren wurde dann das
Oritidin mittels eines Natriumacetatpuffers (pH 4,4) mit einem Konzentrationsgradienten von 0,15- bis 0,3 molar bei einer Temperatar von 400C und einer Fließguscbwindigkeit von 1 ml/Minute aus der Kolonne eluiert. Die Orotidin-Elutionsanteile wurden miteinander vereinigt und eingeengt und man erhielt 1,05 g Orotidinkristalle.
Beispiel 2
Als Mikroorganismus wurde der Stamm Corynebacterium sp. ATCC 21188 verwendet der für sein Wachstum Uracil benötigt.
Die Kultivierung wurde unter den gleichen Bedingungen wie in Beispiel 1 durchgeführt, wobei diesmal jedoch das Fermcntationsmedium an Stelle von Kerosin 5Vo eines n-Paraffingemisches (äquivalente Mengen an C12-, C13- und C14-n-Paraffinen)
z.B. Magnesiumsulfat, Natriumphosphat, Kaliumdihydrogenphosphat, KaUummonohy drogenphosphat, Eisensulfate Manganchlorid, Calciumchlorid, Natriumchlorid und Zinksulfat.
Das Kulturmedium muß Uracil enthalten. Darüber hinaus sollten dem Kulturmedium Aminosäuren, Vitamine und Biotin zugesetzt werden.
Die Fermentation der Mikroorganismen wird unter aeroben Bedingungen, z. B. durch aerobes Schütteln dex Kultur oder Bewegen und Belüften einer Submerskultur, bei einer Temperatur von etwa 20 bis 500C und einem pH-Wert von etwa 5,0 bis 9,0 durchgeführt. Die Kultivierung erfolgt gewöhnlich während 1 bis 10 Tagen. Dabei reichert sich das '5 Orotidin in der Kulturflüssigkeit und in den Mikroorganismenzellen an.
Nach Beendigung der Kultivierung wird das Orotidin aus der Kulturflüssigkeit auf übliche Weise,
z. B. durch Ionenaustauscherharzbehandlung, Aus- 3o enthielt,
fällung, Adsorption oder Chromatographie, ge- Nach 120stündiger Kultivierung hatten sich in
wonnen. der Kulturflüssigkeit 3,72 mg Orotidin pro ml an-
Die folgenden Beispiele sollen die Erfindung näher gereichert. Aus 1 Liter der Kulturflüssigkeit erhielt erläutern. Falls nicht anders angegeben, beziehen man, wie in Beispiel 1 beschrieben, 2,79 g Orotidinsich die Prozentangaben auf das Gewicht pro 35 kristalle.
!Wasser. Beispiel 3
Als Mikroorganismus wurde Arthrobacter paraf-
AIs Mikroorganismus wurde der Stamm Brevi- fineus ATCC 21191 verwendet, der durch UV-Bebacterium ketoglutamicum ATCC 2,1187 verwendet, 4» handlung von ArthrobacterparaffineusATCC15591 der durch Behandlung von Brevibacterium keto- erhalten worden war und der zu seinem Wachstum glutamicum ATCC 15588 mit UV-Strahlen erzeugt Uracil benötigt.
worden war und der zu seinem Wachstum Uracil Durch Übertragung mittels einer Platinöse in
benötigt Das Nährmedium enthielt l°/o Pepton, 20 ml eines Impfkulturmediums, das 1%> Glycerin, l°/o Fleischextrakt 0,5 Ve Hefeextrakt und 0,25Vo 45 IVo Pepton, IVo Fleischextrakt 0,5Vo Hefeextrakt Natriumchlorid. und 0,25% Natriumchlorid in einem Erlenmeyer-
Mittels einer Platinöse wurde der Mikroorganis- Kolben enthielt, wurde eine Impfkultur hergestellt, mus in 20 ml Kulturmedium in einem 250-ml-Erlen- Die Kultivierung erfolgte durch aerobes Schütteln meyerkolben eingeimpft. Durch Kultivieren unter der Kultur bei 300C über einen Zeitraum von aerobem Schütteln bei 300C über einen Zeitraum 5° 24 Stunden.
von 24 Stunden erhielt man eine Impfkultur. 2 ml der dabei erhaltenen Impfkulturflüssigkeit
2 ml der so erhaltenen Impfkulturflüssigkeit wur- wurden in 20 ml eines in einem 250-ml-Erlenmeyerden in 20 ml eines Fermentationsmediums in einem kolben enthaltenen Fermentationsmediums der fol-250-mI-ErlenmeyerkoIben eingeimpft. Das Fennen- genden Zusammensetzung eingeimpft: tationsmedium hatte die folgende Zusammensetzung: 55
Kerosin 5 °/o
(NH4)SSO4 1,5V.
K^lPO4 0,2 V.
KH2PO4 0,1·/.
MgSO4^H2O 0,05V.
MnSO4'4ILO 0,001V.
FeSO4-IH1Q 0,001V.
Hefeextrakt 0,5 V.
Xanthin 50 ng/ml
Uracil 10.» ig/ml
Maisquellwasser 0,1 V.
Calchimcarbonat 2Vo
6o
Sorbit Mannit, Arabit, Xylit, Ri-IOVo
■bit oder Glycerin
(NHJjSO4 1,5%
K2HPO4 0,2V.
KH2PO4 0,1V.
MgSO4 · 7H2O 0,05V.
MnSO4^H2O 0,001·/·
FeSO4-7H2O 0,001V.
Hefeextrakt 0,5·/.
Uracil 200μβ/πι1
Thiaminhydrochlorid 5 |tg/ml
Maisquellwasser 0,1 V.
Calciumcarbonat 2·/·
Der pH-Wert des Fermentationsmediums vor der Sterilisation betrug 7,3,
Die Kultivierung erfolgte unter aerobem Schütteln der Kultur bei 3O0C über einen Zeitraum von 120 Stunden, Die Orotidinmengen, die dabei in der erhaltenen Kulturflüssigkeit angereichert wurden und die Ausbeuten an isoliertem Orotidin sind in der folgenden Tabelle angegeben.
Kohlenstoffquelle
(Menge =10·/»)
Menge des
angereicherten
Orotidins
(mg/ml)
Ausbeute an
isoliertem
Orotidin
(g/l)
Sorbit 8,87 7,27
Mannit 7,62
7,69
6,82
7,25
5,80
6,15
5,19
5,72
Arabit 5,34 4,00
Xylit
Ribit
Glycerin
Beispiel 4
Als Mikroorganismus wurde Brevibacterium sp. ATCC 21189 verwendet, der zu seinem Wachstum Uracil benötigt.
Die Kultivierung erfolgte wie in Beispiel 3, wobei diesmal jedoch als Kohlenstoffquelle in dem einen Nährmedium Sorbit und in dem anderen Nährmedium Glycerin verwendet wurde. Im übrigen waren die Kultivierungsbedingungen die gleichen wie in Beispiel 3.
Nach 96stündiger Kultivierung unter den in Beispiel 3 angegebenen Bedingungen hatten sich in der sorbithaltigen Kulturflüssigkeit 7,82 mg Orotidin pro ml Flüssigkeit und in der glycerinhaltigen Kulturflüssigkeit 5,77 mg Orotidin pro ml Flüssigkeit angereichert. Aus diesen beiden Flüssigkeiten wurden
auf die in Beispiel 1 angegebene Weise pro
6,65 g bzw. 4,44 g Orotidinkristalle erhalten.
Beispiel 5
Als Mikroorganismus wurde Corynebacterium sp. ATCC 21188 verwendet. Es wurde das gleiche Fermentationsmedium wie in Beispiel 3 verwendet, wobei diesmal jedoch als Kohlenstoffquelle Mannit verwendet wurde. Die übrigen Kultiyierungsbedingun-
gen waren die gleichen wie in Beispiel 3.
Nach 12Qstündiger Kultivierung hatten sich in der erhaltenen Kulturflüssigkeit 6,58 mg Orotidin pro ml Flüssigkeit angereichert. Aus 1 Liter dieser Kulturflüssigkeit konnten auf die in Beispiel 1 angege-
bene Weise 5,14 g Orotidinkristalle isoliert werden.
Beispiel 6
Als Mikroorganismus wurde Brevibacterium ketoglutamicum ATCC 21187 verwendet. Er wurde in
einem Fermentationsmedium der gleichen Zusammensetzung wie in Beispiel 1, das diesmal jedoch an Stelle von Kerosin als Kohle itoffquelle 5°/o Sorbit enthielt, und unter den gleichen Kultivierungsbedingungen wie in Beispiel 1 kultiviert. Nach 96stündi-
a5 ger Kultivierung hatten sich in der erhaltenen Kulturflüssigkeit 7,92 mg Orotidin pro ml Flüssigkeit angereichert.
Beispiel 7
Als Mikroorganismus wurde Arthrobacter paraffineus ATCC 21191 verwendet. Er wurde in einem Fermentationsmedium der gleichen Zusammensetzung wie in Beispiel 1, das diesmal jedoch an Stelle von Kerosin als Kohlenstoffquelle 7°/o n-Paraffin enthielt, unter den gleichen Kultivierungsbedingungen wie in Beispiel 1 kultiviert. Nach 120stündiger Kultivierung hatten sich in der erhaltenen Kulturflüssigkeit 5,82 mg Orotidin pro ml Flüssigkeit angereichert.

Claims (1)

  1. und *> ν»'"™* * W»eb«u.nsl,kto,
    oJäväTäskggp TZ
    men und durch Abtrennung des Orotidins aus verwenden. Ausgestllitung verwendet manals
    L Kulturflüssigkeit nach üblichen Methoden, *«™^ Mimnit, Arabit, RibU oder Glycerin,
    dadurch gekennzeichnet, daß man als PoJg »J erfindungsgemäßen Verfahren elnge-
    XäcrLganifmus Brevibacterium ketoglutami. JP» ^er Vroorganismen^tämme steUet,Mu-
    cum ATCC 21187, Corynebactenum sp. ATCC « «""^ ich bereits bekannten Mikroorganis-
    m88 Stoobacier paraffineus ATCC 21191 JJ^^fÄ künstliche Mutation von Bakte-
    oder Brevibacterium sp. ATCC 21189 verwen- men dar, me Brevibacterium, Artoobacter und
    Set und die Kultivierung bei einer Temperatur ^JÄ» erhalten wurden. Die kunsthche
    von etwa 20 bis 500C und bei einem pH-Wert JfgJgJ de durch Bestrahlen mit UV-Licht, von etwa 5,0 bis 9,0 unter aeroben Bedingungen 15 Μ^°^Χα ^1 ^Strahlen oder anderen Rea-
    in einem wäßrigen Uracil enthaltendem Nähr- ^^^^ Die erfmdungsgemaß ernzusBtzen-
    medium durchfuhrt, das als Hauptkohlenstoff- &f ^^Stanten-Stämme erfordern Uracil zum
    quelle mindestens einen Kohlenwasserstoff oder ^nr
    mindestens ein Polyol enthält. ^6 "er erfindungsgemäß verwendeten M.kro-
    >3ΚδΕ5£
    3ΚδΕ5£
    ^hTund XvS assimilieren. Deshalb werden Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur fermente- "P'ASe in dem Nährmedium als Hauptkohlenliven Gewinnung von Orotidin unter Verwendung *5 ^^eingesetzt.
    von Mikroorganismen und durch Abtrennung des ^"^^edium, das zur Durchfuhrung des er-Orotidins aus der Kulturflüssigkeit nach üblichen find7ng^gemäßen Verfahrens angwendrt werden
    MEsOistebereits bekannt, das Orotidin auf fermente- ^ann ^f sich ^^£"4, hrmedium, sotivem Wege unter Verwendung von Uracü Undin 30 medium as a Wachstum des verwendeten Mi-
    ode: UrMylsäure erfordernden bestimmten Bacülus- to»^ ^Notwendigen Nährstoffe enthalt Der subtilis-Stämmen in einem eine assimilierbare Koh- ^°°^^.1οίϊε άαΑ bekannt und sie enthalten lenstoffquelle enthaltenden Nährmedium zu erzeugen arUge ™g™ eine Kohlenstoff quelle, eine St.ck-(britische Patentschrift 1006732). Gemäß deren Stoffe wie ij. isi±e verbindungen, d.e von
    Beispielen wird Glukose als HauptkoWenstoffquelle 35 ^*^^ Mikroorganismen in entsprecheneingesetzt. Weiterhin ist es möglich, Saccharose, aen ve j wer(,en
    Melassen, lösüche Stärke und Stärkehydrolysate, denJf "^„^ gemäß der Erfindung wird in dLh. Kohlenhydrate bzw. Kohlehydratmatenahen, Dk Fennent g Koh]enw toff oder em
    zu verwenden. Die erhaltenen Ontidinmengen he- einem^ waung ^ erstoffen ^r em Po yol
    gen zwischen nur 0,3 mg und maximal 3,1mg pro 40 Gennsch von ^ polyQlen Λ H pttohlen-
    ml Kulturmedium. . stoffquelle enthaltenden Nährmedium durchgeführt.
    Aufgabe der Erfindung ist es, ein verbessertes Ver- stonq^n mssigGn Kohlenwasserstoffen gefahren zur HersteUung von Orotidm anzugeben hören geradkettige und verzweigtkettige Paraffine Die Erfindung betrifft deshalb ein Verfahren zur hören ^e * ffatoineilj we z. B. n-Pentan fermentative« Gewinnung von Oroüdm unter Ver- 45 mrt8to ^ „-Hexadecan, Isopentan und wendung von Mikroorganismen und durch Ab- nUcten, η fin ^ z B Cyclohexan und trennunl des Orotidins aus der Kulturflussigkeit Is^n' ^y P adkettige und verzweigtkettige Olenach üblichen Methoden, das dadurch gekennzeich- Cy-loooffln g ^ Hexen-1, Octen-1 und net ist, daß man als Mikroorganismus Brevibacte- nne, wie · ^6 B Cyclohexen, aromarium ketoglutamicum ATCC 21187, Corynebacte- 5o Octen-2κ^1 't(jff wie Z.B. Benzol und rium sp. ATCC 21188 Arthrobacter paraffineus ^SbA^O«^^ davon' und gem^htT Κ<Ϊ1" ATCC 21191 oder Breyibaclerium sp. ATOC 21189 c^ y ^ beispielsweise Kerosin, Leichtverwendet und die Kultivierung bei einer Temperatur ^w s^hweroleundPara{finöle. von etwa 20 bis 500C und bei einem pH-Wert von ole^we dbare Polyol(i sind z.B. Sorbit, Mannit etwa 5,0 bis 9,0 unter aeroben Bedingungen meinem 55 ™™ t , ^ ^^ Es kn a h
    ri Uil thaltenden Nj*™/^J"^; S d Khltßquellen wie z B
    ^dbare y etwa 5,0 bis 9,0 unter aeroben Bedingungen meinem 55 ™™ t , ^ ^^ Es kn a h
    wäßrigen, Uracil enthaltenden Nj*™/^J"^; S Mengen anderer Kohlenstoßquellen, wie z. B.
DE19681767294 1967-05-15 1968-04-23 Verfahren zur fermentativen Gewinnung von Orotidin Expired DE1767294C3 (de)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP3040667 1967-05-15
JP7257867 1967-11-13

Publications (3)

Publication Number Publication Date
DE1767294A1 DE1767294A1 (de) 1972-03-09
DE1767294B2 DE1767294B2 (de) 1974-05-02
DE1767294C3 true DE1767294C3 (de) 1975-01-09

Family

ID=26368742

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE19681767294 Expired DE1767294C3 (de) 1967-05-15 1968-04-23 Verfahren zur fermentativen Gewinnung von Orotidin

Country Status (3)

Country Link
DE (1) DE1767294C3 (de)
FR (1) FR1565232A (de)
GB (1) GB1176319A (de)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0710235B2 (ja) * 1987-10-19 1995-02-08 協和醗酵工業株式会社 発酵法によるオロット酸の製造法

Also Published As

Publication number Publication date
DE1767294A1 (de) 1972-03-09
DE1767294B2 (de) 1974-05-02
GB1176319A (en) 1970-01-01
FR1565232A (de) 1969-04-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE2034406C3 (de) Verfahren zur biotechnischen Herstellung von L-Lysin
DE2417337B2 (de) Verfahren zur biotechnischen Herstellung von L-Lysin
DE1767294C3 (de) Verfahren zur fermentativen Gewinnung von Orotidin
DE1903336A1 (de) Verfahren zur Herstellung von L-Tryptophan
DE1695325A1 (de) Verfahren zur Herstellung von Nicotinamidadenindinucleotid
DE1916421C3 (de) Verfahren zur fermentativen Gewinnung von L Senn
DE1901621A1 (de) Verfahren zur Herstellung von 1-Tryptophan enthaltenden Hefezellen
DE1695304C3 (de) Verfahren zur Herstellung von 5&#39;-Inosinsäure und S&#39;-Guano-sinmono-,- di- und -triphosphat
DE1517834C3 (de) Verfahren zur biotechnischen Her stellung von L Lysin
DE1617586C (de) Verfahren zur biotechnischen HerT stellung von 6 Azaundm 5 phosphat
EP0001122B1 (de) Verfahren zur Herstellung eines Zuckeralkohols
DE1695327C3 (de) Verfahren zur fermentativen Herstellung von Nikotinamidadenindinukleotid
DE1792724C3 (de) Verwendung eines Fermentationsmediums zur Gewinnung von Nicotinamidadenin-dinucleotid
DE1695325C3 (de) Verfahren zur fermentativen Herstellung von Nicotinamidadenindinucleotid
DE1543720A1 (de) Verfahren zur Herstellung von L-Lysin aus 5-4(4-Aminobutyl)-hydantoin
DE2005848A1 (de) Verfahren zur Herstellung von Zitronensäure und Isozitronensäure
DE1792403C (de) Verfahren zur biotechnischen Herstellung von L Lysin
DE1795721C2 (de) Verfahren zur fermentativen Herstellung von Orotidylsäure
DE2005848C (de) Gewinnung von Zitronensäure und Isozitronensäure
DE1570027A1 (de) Verfahren zur Herstellung von Flavin-adenin-dinucleotid
DE1517860C (de) Verfahren zur biotechnischen Herstel lung von Inosinsaure
DE1903336C (de) Verfahren zur biotechnischen Herstellung von L-Tryptophan
DE1695327B2 (de) Verfahren zur fermentativen herstellung von nikotinamidadenindinukleotid
DE1517831C (de) Verwendung von Fermentationsflussig keiten zur Gewinnung von Flavinadenindi nucleotid
DE1617586B2 (de) Verfahren zur biotechnischen herstellung von 6-azauridin-5-phosphat

Legal Events

Date Code Title Description
C3 Grant after two publication steps (3rd publication)
E77 Valid patent as to the heymanns-index 1977
EHJ Ceased/non-payment of the annual fee