CZ86697A3 - Molecular system for making loops - Google Patents

Molecular system for making loops Download PDF

Info

Publication number
CZ86697A3
CZ86697A3 CZ97866A CZ86697A CZ86697A3 CZ 86697 A3 CZ86697 A3 CZ 86697A3 CZ 97866 A CZ97866 A CZ 97866A CZ 86697 A CZ86697 A CZ 86697A CZ 86697 A3 CZ86697 A3 CZ 86697A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
oligonucleotide
complements
loop
attached
microparticles
Prior art date
Application number
CZ97866A
Other languages
English (en)
Inventor
Sydney Brenner
Original Assignee
Lynx Therapeutics
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Lynx Therapeutics filed Critical Lynx Therapeutics
Publication of CZ86697A3 publication Critical patent/CZ86697A3/cs

Links

Classifications

    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J19/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
    • B01J19/0046—Sequential or parallel reactions, e.g. for the synthesis of polypeptides or polynucleotides; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making molecular arrays
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H21/00—Compounds containing two or more mononucleotide units having separate phosphate or polyphosphate groups linked by saccharide radicals of nucleoside groups, e.g. nucleic acids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1034—Isolating an individual clone by screening libraries
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1034—Isolating an individual clone by screening libraries
    • C12N15/1065—Preparation or screening of tagged libraries, e.g. tagged microorganisms by STM-mutagenesis, tagged polynucleotides, gene tags
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6809—Methods for determination or identification of nucleic acids involving differential detection
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
    • C12Q1/6816—Hybridisation assays characterised by the detection means
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
    • C12Q1/6827—Hybridisation assays for detection of mutation or polymorphism
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
    • C12Q1/6834—Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
    • C12Q1/6834—Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase
    • C12Q1/6837—Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase using probe arrays or probe chips
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/6853—Nucleic acid amplification reactions using modified primers or templates
    • C12Q1/6855—Ligating adaptors
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6869—Methods for sequencing
    • C12Q1/6874—Methods for sequencing involving nucleic acid arrays, e.g. sequencing by hybridisation
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C40—COMBINATORIAL TECHNOLOGY
    • C40B—COMBINATORIAL CHEMISTRY; LIBRARIES, e.g. CHEMICAL LIBRARIES
    • C40B80/00—Linkers or spacers specially adapted for combinatorial chemistry or libraries, e.g. traceless linkers or safety-catch linkers
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J2219/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
    • B01J2219/00274—Sequential or parallel reactions; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making arrays; Chemical library technology
    • B01J2219/00277—Apparatus
    • B01J2219/00497—Features relating to the solid phase supports
    • B01J2219/005—Beads
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J2219/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
    • B01J2219/00274—Sequential or parallel reactions; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making arrays; Chemical library technology
    • B01J2219/00277—Apparatus
    • B01J2219/0054—Means for coding or tagging the apparatus or the reagents
    • B01J2219/00572—Chemical means
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J2219/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
    • B01J2219/00274—Sequential or parallel reactions; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making arrays; Chemical library technology
    • B01J2219/00583—Features relative to the processes being carried out
    • B01J2219/00603—Making arrays on substantially continuous surfaces
    • B01J2219/00605—Making arrays on substantially continuous surfaces the compounds being directly bound or immobilised to solid supports
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J2219/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
    • B01J2219/00274—Sequential or parallel reactions; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making arrays; Chemical library technology
    • B01J2219/00583—Features relative to the processes being carried out
    • B01J2219/00603—Making arrays on substantially continuous surfaces
    • B01J2219/00605—Making arrays on substantially continuous surfaces the compounds being directly bound or immobilised to solid supports
    • B01J2219/0061—The surface being organic
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J2219/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
    • B01J2219/00274—Sequential or parallel reactions; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making arrays; Chemical library technology
    • B01J2219/00583—Features relative to the processes being carried out
    • B01J2219/00603—Making arrays on substantially continuous surfaces
    • B01J2219/00605—Making arrays on substantially continuous surfaces the compounds being directly bound or immobilised to solid supports
    • B01J2219/00612—Making arrays on substantially continuous surfaces the compounds being directly bound or immobilised to solid supports the surface being inorganic
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J2219/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
    • B01J2219/00274—Sequential or parallel reactions; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making arrays; Chemical library technology
    • B01J2219/00583—Features relative to the processes being carried out
    • B01J2219/00603—Making arrays on substantially continuous surfaces
    • B01J2219/00605—Making arrays on substantially continuous surfaces the compounds being directly bound or immobilised to solid supports
    • B01J2219/00623—Immobilisation or binding
    • B01J2219/00626—Covalent
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J2219/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
    • B01J2219/00274—Sequential or parallel reactions; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making arrays; Chemical library technology
    • B01J2219/00583—Features relative to the processes being carried out
    • B01J2219/00603—Making arrays on substantially continuous surfaces
    • B01J2219/00605—Making arrays on substantially continuous surfaces the compounds being directly bound or immobilised to solid supports
    • B01J2219/00623—Immobilisation or binding
    • B01J2219/0063—Other, e.g. van der Waals forces, hydrogen bonding
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J2219/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
    • B01J2219/00274—Sequential or parallel reactions; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making arrays; Chemical library technology
    • B01J2219/00583—Features relative to the processes being carried out
    • B01J2219/00603—Making arrays on substantially continuous surfaces
    • B01J2219/00605—Making arrays on substantially continuous surfaces the compounds being directly bound or immobilised to solid supports
    • B01J2219/00632—Introduction of reactive groups to the surface
    • B01J2219/00637—Introduction of reactive groups to the surface by coating it with another layer
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J2219/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
    • B01J2219/00274—Sequential or parallel reactions; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making arrays; Chemical library technology
    • B01J2219/00583—Features relative to the processes being carried out
    • B01J2219/00603—Making arrays on substantially continuous surfaces
    • B01J2219/00639—Making arrays on substantially continuous surfaces the compounds being trapped in or bound to a porous medium
    • B01J2219/00641—Making arrays on substantially continuous surfaces the compounds being trapped in or bound to a porous medium the porous medium being continuous, e.g. porous oxide substrates
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J2219/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
    • B01J2219/00274—Sequential or parallel reactions; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making arrays; Chemical library technology
    • B01J2219/00583—Features relative to the processes being carried out
    • B01J2219/00603—Making arrays on substantially continuous surfaces
    • B01J2219/00646—Making arrays on substantially continuous surfaces the compounds being bound to beads immobilised on the solid supports
    • B01J2219/00648—Making arrays on substantially continuous surfaces the compounds being bound to beads immobilised on the solid supports by the use of solid beads
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J2219/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
    • B01J2219/00274—Sequential or parallel reactions; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making arrays; Chemical library technology
    • B01J2219/00583—Features relative to the processes being carried out
    • B01J2219/00603—Making arrays on substantially continuous surfaces
    • B01J2219/00659—Two-dimensional arrays
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J2219/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
    • B01J2219/00274—Sequential or parallel reactions; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making arrays; Chemical library technology
    • B01J2219/00718—Type of compounds synthesised
    • B01J2219/0072—Organic compounds
    • B01J2219/00722—Nucleotides
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C40—COMBINATORIAL TECHNOLOGY
    • C40B—COMBINATORIAL CHEMISTRY; LIBRARIES, e.g. CHEMICAL LIBRARIES
    • C40B40/00—Libraries per se, e.g. arrays, mixtures
    • C40B40/04—Libraries containing only organic compounds
    • C40B40/06—Libraries containing nucleotides or polynucleotides, or derivatives thereof
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C40—COMBINATORIAL TECHNOLOGY
    • C40B—COMBINATORIAL CHEMISTRY; LIBRARIES, e.g. CHEMICAL LIBRARIES
    • C40B70/00—Tags or labels specially adapted for combinatorial chemistry or libraries, e.g. fluorescent tags or bar codes

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Computational Biology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Transition And Organic Metals Composition Catalysts For Addition Polymerization (AREA)
  • Magnetic Heads (AREA)
  • Pyrane Compounds (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Air Transport Of Granular Materials (AREA)
  • Control Of Driving Devices And Active Controlling Of Vehicle (AREA)
  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Management, Administration, Business Operations System, And Electronic Commerce (AREA)
  • Multiple-Way Valves (AREA)
  • Fluid-Driven Valves (AREA)

Description

Vynález se obecně týká metod pro identifikaci, třídění a/nebo sledování molekul, zejmena polynukleotidů, oligonukleotidovými značkami, a zejmena metody pro třídění polynukleotidů prostřednictvím specifické hybridizace na oligonukleotidové smyčky.
Dosavadní stav techniky
Specifická hybridizace oligonukleotidů a jejich analogů je základním procesem, který je využíván v širokém rozsahu výzkumných, lékařských a průmyslových aplikací, včetně identifikace s chorobou asociovaných polynukleotidů v diagnostických zkouškách, vyšetřování klonů pro nové cílené polynukleotidy, identifikace specifických polynukleotidů ve skvrnách (blotech) směsí polynukleotidů, amplifikace specifických cílových polynukleotidů, terapeutického blokování nevhodně exprivovaných genů, DNA sekvencování a pod., např. Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2. vydání (Cold Spring Harbor Laboratory, New York, 1989); Keller a Manak, DNA probes, 2. vydání (Stockton Press, New York, 1993); Milligan et al., J.Med. Chem., 36:1923 - 1937 (1993); Drmanac et al., Science, 260: 1649 1652 (1993); Bains, J.DNA Sequencing and Mapping, 4: 143 150 (1993).
Specifická hybridizace byla také navržena jako metoda pro sledování, získávání a identifikaci sloučenin značených oligonukleotidovými smyčkami. Například, u mnohotného DNA sekvencování jsou o 1igonukleotidové smyčky použity pro identifikaci elektroforeticky separovaných proužků v gelu, které se skládají z DNA fragmentů generovaných ve stejné sekvenční reakci. Tímto způsobem mohou být DNA fragmenty z mnoha sekvenčních reakcí separovány na stejné linii gelu, která je pak blotována se separátním solidním materiálem, na kterém jsou fragmentové proužky ze separátních sekvenačních reakcí vizualizovány o 1igonukleotidovými probami, které specificky hybridizují na komplementární smyčky, Church et al., Science, 240: 185 - 188 (1988). Stejné použití o 1igonukleotidových smyček bylo také navrženo pro identifikaci výbušnin, silně znečišťujících látek, jako je surová nafta, a nyní pro prevenci a detekci padělků, např. jak popsal Dollinger, str. 265 - 274 v Mullis et al., vyd. The Polymerasa Chain Reaction (Birkhauser, Boston, 1994). Nověji byly systémy, využívající oligonukleotidových smyček, také navrženy jako prostředek pro manipulaci a identifikaci jednotlivých molekul v komplexních kombinatoriálních chemických knihovnách, jako je například vyšetřování takových knihoven na kandidáty léčiv, Brenner and Lerner, Proč. Nati. Acad. Sci. 89:5381 - 5383 (1992); Alper,
Science, 264: 1399 - 1401; a Needels et al., proč. Nati.
Acad Sci 90:10700 - 10704 (1993).
Úspěšná realizace takových smyčkových schémat závisí z větší části na úspěšném dosažení specifické hybridizace mezi smyčkou a její komplementární probou.
To znamená, že aby oligonukleotidové smyčky úspěšně identifikovaly substanci, musí být počet falešně negativních a falešně pozitivních signálů minimalizován. Naneštěstí nejsou takové falešné signály neobvyklé díky tomu, že párování baží a volné energie řazení baží se velmi liší mezi nukleotidy v duplexní a triplexní struktuře. Například, duplex skládající se z opakované sekvence deoxyadeninu (A) a thymidinu (T) vázaný na svůj komplement může mít menší stabilitu než duplex stejné délky, skládající se z opakující se sekvence deoxyguanidinu (G) a deoxycytidinu (C) vázaný na částečně kompementární cíl obsahující chybné párování. Tak, byla-li požadovaná sloučenina z velké kombinatoriální chemické knihovny spojena s vytvořeným oligonukleotidem, bude existovat signifikantní pravděpodobnost, že za hybridi začnich podmínek projektovaných k detekci přesně padnoucích AT-bohatých duplexů, bude možné delegovat nežádoucí sloučeniny značené GC bohatými oligonukleotidy --dokonce v chybně spárovaných duplexech --- spolu s přesně spárovanými duplexy skládajícími se z AT-bohatých smyček. V molekulárním systému pro vytváření smyček navrženém Brennerem et al. (citován výše) byl příbuzný problém mis-hybridizace těsně příbuzných smyček řešen upotřebením takzvaných comma-less kódu, který potvrzuje, že proba mimo registr (nebo posunuta v rámečku) s ohledem na její komplementární smyčku může vést k duplexu s jedním nebo více chybnými párováními pro každý z jejích pěti nebo více výrazů o třech bazích, neboli kodonů.
Ačkoliv jsou dostupná činidla, jako je tetrametylamonium chlorid, pro negaci odlišností specifické stability baží oligonukleotidových duplexů, je účinek takovýchto činidel často omezený a jejich přítomnost může být inkompatibilni s, nebo jí činí obtížnější, další manipulací s vybranou sloučeninou, např. její amplifikaci polymerasovou řetězovou reakcí (PCR) nebo jí podobnou.
Takové problémy činí simultání použití mnohočetných hybridizačních prob v analýze mnohotných nebo komplexních genetických lokusů, např. prostřednictvím mnohonásobné PCR, reversním tečkovým blotingem a pod., velmi obtížným. Výsledkem bylo, že se začalo používat přímé sekvencování jistých lokusů, např. HLA genů, jako spolehlivá alternativa k nepřímým metodám využívajícím specifické hybridizace pro identifikaci genotypů, např. Gyllensten et al., Proč. Nati. Acad. Sci. 85: 7652 - 7656 (1988).
Schopnost tříděné klonovat a identicky spojovat DNA fragmenty na odlišných nosičích pevné fáze by měla usnadnit takové sekvencování, zejmena je-li spojena s metodologií sekvencování nezaloženého na gelu, simultáně aplikovatelné na mnoho vzorků paralelně.
Ve světle výše uvedeného by mělo být užitečné, bude-li dosažitelný oligonukleotidový systém vytváření smyček, který poskytuje větší repertoár smyček, ale také minimalizuje výskyt falešně pozitivních a falešně negativních signálů bez potřeby použití specifických činidel pro narušení přirozeného párování bází a odlišností volné energie řazení baží. Takový systém pro vytváření smyček najde uplatnění v mnoha oblastech, včetně konstrukce a použití kombinatoriálních chemických knihoven, mapování velkého rozsahu a sekvencování DNA, genetické identifikace, lékařské diagnostiky a podobně.
Podstata vynálezu
Předmětem předloženého vynálezu je poskytnutí molekulárního systému pro vytváření smyček pro sledování, získávání a identifikaci sloučenin.
Jiným předmětem mého vynálezu je poskytnutí metody pro třídění identických molekul, nebo podtříd molekul, zejména polynukleotidů, na povrchu materiálu pevné fáze specifickou hybridizací oligonukleotidových smyček a jejich komplementů.
Dalším předmětem předloženého vynálezu je poskytnutí kombinatoriální chemické knihovny, jejíž sloučeniny jsou identifikovány specifickou hybridizací oligonukleotidových smyček a jejich komplementu.
Ještě dalším předmětem předloženého vynálezu je poskytnutí systému pro vytváření smyček a třídění mnoha tisíc fragmentů, zejmena náhodně přesahujících fragmentů, cílového polynukleotidu pro simultání analýzu a/nebo sekvencování.
Jiným předmětem předloženého vynálezu je poskytnutí rychlé a důvěryhodné metody pro sekvencování cílových polynukleotidů majících délku v rozsahu několika stovek párů bázi až několika desítek tisíc párů bází.
Předložený vynález dosahuje těchto a jiných předmětů poskytnutím metody a materiálu pro sledování, identifikaci a/neho třídění tříd nebo subpopulací molekul použitím oligonukleotidových smyček. 01igonukleotidová smyčka podle vynálezu se skládá z velkého množství podjednotek, kde každá podjednotka se skládá z oligonukleotidu o 3 až 4 nukleotidech délky. Podjednotky o 1 igonukleotidové smyčky jsou vybrány z minimálně zkříženě hybridi zující sady. V takové sadě obsahuje duplex nebo triplex, skládající se z podjednotky sady a komplementu, jakékoliv jiné podjednotky sady alespoň dvoje chybné párování. Jinými slovy, podjednotka minimálně zkříženě hybridi zující sady nejlépe vytváří duplex nebo tripex, mající dvě chybná párování s komplementem jakékoliv jiné jednotky stejné sady. Počet oligonukleotidových smyček dosažitelných v jednotlivém provedení závisí na počtu podjednotek na smyčku a na délce podjednotky. Počet je obecně menší než počet všech možných sekvencí délky smyčky, která by pro smyčku o n nukleotidech délky měla být 4n.
Lépe, podjednotkami jsou oligonukleotidy o 4 až 5 nukleotidech délky.
V jednom aspektu vynálezu, komplementy o 1 igonukleotidových smyček připojené na nosič pevné fáze jsou použity pro třídění polynukleotidů ze směsi polynukleotidů obsahujících smyčku. V tomto provedení jsou komplementy oligonukleotidových smyček syntetizovány na povrchu nosiče pevné fáze, jako jsou mikroskopické korálky nebo specifické lokace na matici lokací syntézy na jednom nosiči, jako v tom případě, jsou-li populace identických sekvencí produkovány ve specifických regionech. To znamená, že povrch každého nosiče, v případě korálků, nebo každý region v případě matice, je odvozen od pouze jednoho typu komplementu, který má určitou sekvenci. Populace takových korálků nebo regionů obsahuje repertoár komplementů s odlišnými sekvencemi, kde velikost repertoáru závisí na
L počtu podjednotek na oligonukleotidovou smyčku a délce použitých podjednotek. Obdobně, polynukleotidy, které mají být tříděny, obsahují oligonukleotidovou smyčku v repertoáru, takže identické polynukleotidy mají stejnou smyčku a odlišné polynukleotidy mají odlišné smyčky. Jak je důkladněji vysvětleno dále, této podmínky je dosaženo odebráním dostatečně malého vzorku označených oligonukleotidů ze všech označených oligonukleotidů. Tak jsou-li smíseny populace nosičů a polynukleotidy za podmínek, dovolujících specifickou hybridizaci oligonukleotidových smyček s jejich příslušnými komplementy, je subpopulace identických polynukleotidů tříděna na jednotlivých korálcích nebo regionech. Subpopulace polynukleotidů pak může být zpracovávána na nosičích pevné fáze mikro-biochemickými technikami.
Obecně zahrnuje metoda podle mého vynálezu následující kroky: (a) připojení oligonukleotidové smyčky z repertoáru smyček na každou molekulu v populaci molekul (i) tak, že v podstatě všechny stejné molekuly nebo stejné subpopulace molekul v populaci mají připojené stejné o 1igonukleotidové smyčky a v podstatě všechny odlišné molekuly nebo odlišné subpopulace molekul v populaci mají připojené odlišné oligonukleotidové smyčky a (ii) tak, že každá oligonukleotidová smyčka z repertoáru zahrnuje množství podjednotek a každá podjednotka z tohoto množství se skládá z o 1igonukleotidu, majícího délku od tří do šesti nukleotidů nebo od tří do šesti párů bází, kde podjednotka je vybrána z minimálně zkříženě hybridi zující sady; a (b) třídění molekul nebo subpopulací molekul v populaci specifickou hybridizaci oligonukleotidových smyček s jejich příslušnými komplementy.
Důležitým aspektem předloženého vynálezu je použití oligonukleotidových smyček ke třídění polynukleotidů pro paralelní určování sekvence. Výhodně je takové sekvencování provedeno následujícími kroky: (a) generování množství fragmentů z cílového po 1ynuk1eotidu, které pokrývají cílový polynukleotid; (b) připojení oligonukleotidové smyčky z repertoáru smyček na každý fragment tohoto množství tak, že (i) v podstatě všechny stejné fragmenty mají připojené stejné oligonukleotidové smyčky a v podstatě všechny odlišné fragmenty mají připojené odlišné o 1igonukleotidové smyčky a (ii) že každá oligonukleotidová smyčka z repertoáru obsahuje množství podjednotek a každá podjednotka tohoto množství se skládá z oligonukleotidu, majícího délku od tří do šesti nukeotidů nebo od tří do šesti párů bází, kde podjednotka je vybrána z minimálně zkříženě hybridi zující sady; a (b) třídění molekul nebo subpopulací molekul v populaci specifickou hybridizací oligonukleotidových smyček s jejich příslušnými komplementy; (c) určení nukleotidové sekvence části každého fragmentu z tohoto množství, výhodně metodou sekvencování jednotlivých bází jak je popsána níže; a (d) určení nukleotidové sekvence cílového nukleotidu shromážděním sekvencí fragmentů.
Předložený vynález překlenuje klíčový problém deficitu nových metod připojování nebo značení molekul o 1igonukleotidy; kódováním sekvencí smyček podle vynálezu je stabilita jakýchkoliv chybně spárovaných duplexů nebo triplexů mezi smyčkou a komplementem pro jinou smyčku o mnoho nižší než stabilita jakéhokoliv přesně spárovaného duplexu mezi smyčkou a jejím vlastním komplementem. Tak je eliminován problém nepřesného třídění způsobeného tím, že
L chybně spárované duplexy GC-bohatách smyček jsou stabilnější než přesně spárované AT-bohaté smyčky.
Při použití v kombinaci s nosiči pevné fáze, jako jsou mikroskopické korálky, předložený vynález poskytuje snadno automatizovaný systém pro zpracování a třídění o 1 igonukleotidů, který je zejména upotřebitelný v široké škále paralelních operací, jako je široká škála DNA sekvencování, kde je sekvencováno a/nebo analyzováno mnoho cílových polynuk1eotidů nebo mnoho segmentů jednoho cílového polynukleotidu simultáně.
Popis obrázků na připojených výkresech
Obrázek la - lc ilustruje struktury značených prob využitých v preferované metodě single base sekvencování, které mohou být použity ve vynálezu.
Obrázek 2 ilustruje relativní umístění rozpoznávacího místa pro nukleasu, ligačního místa a štěpícího místa v ligovaném komplexu vytvořeném mezi cílovým polynukleotidem a použitou probou v preferované metodě single base sekvencování.
Obrázek 3 je průtokový diagram ilustrující obecný algoritmus pro generování minimálně zkříženě hybridi zujících sad.
Obrázek 4 ilustruje schéma pro syntézu a použití kombinatoriální chemické knihovny, ve které jsou sloučeniny, které jsou členy, značeny oligonukleotidovými smyčkami podle vynálezu.
Obrázek 5 na diagramu ilustruje přístroj pro provádění paralelních operací, jako je sekvencování polynukleotidů, podle vynálezu.
Def inice:
Komplement nebo komplement smyčky jak je zde použito v odkazu na oligonukleotidové smyčky označuje o 1igonuk1eotid, na který o 1 igonukleotidová smyčka specificky hyhridizuje za tvorby přesně spárovaných duplexů nebo triplexů. V provedení, kde specifická hybridizace vede ke triplexu, může být oligonukleotid bud dvouřetězcový nebo jednořetězcový.
Tak, jsou-li vytvářeny triplexy, je míněn termín komplement tak, že zahrnuje bud dvouřetězcový komplement jednořetězcové oligonukleotidové smyčky nebo jednořetězcový komplement dvouřetězcové oligonukleotidové smyčky.
Termín oligonukleotid jak je zde použit zahrnuje lineární oligomery přirozených nebo modifikovaných monomerů nebo řetězců genů, včetně deoxyribonukleosidů, ribonukleosidů, jejich α-anomerních forem, peptidových nukleových kyselin (PNA) a pod., schopných specifické vazby na cílový polynukleotid prostřednictvím patřičných interakcí monomer - monomer, jako je Watson-Crick typ párování bází, řazení bází, Hoogsteenovy nebo reverzní Hoogsteenovy typy párování bází a podobně. Obvykle jsou monomery navázány fosfodiesterovými vazbami nebo jejich analogy za tvorby oligonukleotidů velikosti od několika jednotek monomerů, např. 3 - 4-, do několika desítek jednotek monomerů. Je-li oligonukleotid reprezentován sekvencí písmen, jako je ATGCCTG, je to míněno tak, že zleva doprava je nukleotid ve směru 5' - 3' a že A označuje deoxyadenosin, C označuje deoxycytidin, G označuje doexyguanosin a T označuje thymidin, pokud není označeno jinak. Analoga fosfodiesterových vazeb zahrnují fosforothioátovou, fosforodithioátovou, fosforoani1idátovou, fosforoamidátovou vazbu a pod. Obvykle oligonukleotidy podle vynálezu zahrnují čtyři přirozené nukleotidy; nicméně, mohou také zahrnovat nepřirozená analoga nukleotidů. Odborníkům je jasné, že mohou-li být využity oligonukleotidy, mající přirozené nebo nepřirozené nukleotidy, budou například při požadavku zpracování enzymy požadovány obvykle oligonukleotidy skládající se z přirozených nukleotidů.
Přesně spárovaný s odkazem na duplex znamená, že polynebo oligonukleotidový řetězec tvořící duplex vytváří dvouřetězovou strukturu s jiným tak, že každý nukleotid v každém řetězci podléhá Watson-Crickovu párování baží s nukleotidem v druhém řetězci. Termín také zahrnuje použití párování nukleosidových analogů, jako je deoxyinosin, nukleosidy se 2 aminopurinovými bázemi a podobně. S ohledem na triplex termín znamená, že se triplex skládá z přesně spárovaného duplexu a třetího řetězce, ve kterém každý nukleotid podléhá Hoogsteenově nebo reversní Hoogsteenově asociaci s párem bází přesně spárovaného duplexu. Naopak, chybné spárování v duplexu mezi smyčkou a oligonukleotidem znamená, že pár nebo triplet nukleotidů v duplexu nebo triplexu selhává ve tvorbě Watson-Crickovy a/nebo Hoogsteenovy nebo reversní Hoogsteenovy vazby.
Jak je zde použito, zahrnuje nukleosid přirozené nukleosidy, včetně 2'-deoxy a 2'-hydroxyl forem, např. jak popsal Korngerg and Baker, DNA Replication, 2. vyd.
(Freeman, San Francisko, 1992). Analoga s odkazem na nukleosidy zahrnují syntetické nukleosidy, mající modifikované skupiny bází a/nebo modifikované skupiny cukrů, např. jak popsal Scheit, Nucleotide Analogs (John Wiley,
New York, 1980); Uhlman and Peyman, Chemical Eewiews, 90:
543 - 584 (1990) a podobně, s jednou výhradou, a to že jsou schopné specifické hybridizace. Taková analoga zahrnují syntetické nukleosidy projektované pro zvýšení vazebných vlastností, redukci degenerace, zvýšení specificity a podobně.
Vynález poskytuje metodu pro značení a třídění molekul, zejmena polynukleotidů, za použití oligonukleotidových smyček. Oligonukleotidové smyčky podle vynálezu zahrnují množstvý výrazů” nebo podjednotek vybraných z minimálně zkříženě hybridi zující sady podjednotek. Podjednotky takovéto sady nemohou tvořit duplexy nebo triplexy s komplementem jiné podjednotky stejné sady s méně než dvěma chybně spárovanými nukleotidy. Tak, sekvence jakýchkoli dvou oligonukleotidových smyček z repertoáru, které vytvářejí duplex, si nikdy nebudou bližší než když se liší ve dvou nukleotidech. V jednotlivých provedeních, mohou být sekvence jakýchkoliv dvou oligonukleotidových smyček repertoáru ještě dále rozlišeny, například projektováním minimálně zkříženě hybrid i zující sady tak, že podjednotky nemohou vytvářet duplex s komplementem jiné podjednotky stejné sady s alespoň třemi chybně spárovanýmy nukleotidy, a tak dále. V takovém provedení je dosaženo větší specificity, ale celkový repertoár smyček je menší. Tak, pro smyčky dané délky a velikosti výrazu musí být provedena výměna požadovaného většího stupně specificity a velikostí požadovaného repertoáru. Vynález je zejmena využitelný ve značení a třídění polynukleotidů pro paralelní operace, jako je sekvencování, identifikaci nebo jiné typy analýzy.
Konstrukce oligonukleotidových smyček z minimálně zkříženě hybridizující sady podjednotek
Sekvence nukleotidů podjednotek pro jakoukoliv minimálně zkříženě hybridizující sadu jsou konvenčně počítány jednoduchým počítačovým programem podle obecného algoritmu zobrazeného na Obr. 3, a jak je příkladem doloženo a programu minhx, jehož zdroj kódu je uveden v Příloze I. Minhx zpracovává všechny minimálně zkříženě hybridizující sady mající podjednotky složené ze tří druhů nukleotidů a mající délku čtyř nukleotidů.
Algoritmus Obr. 3 je realizován pomocí první definující charakteristiky podjednotek minimálně zkříženě hybridizující sady, např. délky, počtu lišících se bází mezi členy, a složení, např. jestli se skládají z dvou, tří nebo čtyř druhů bází. Tabulka Mn, n=l, je generována (100) tak, aby se skládala ze všech možných sekvencí dané délky a složení.
Vždy, když má následující podjednotka požadovaný počet chybných párování pro členství v minimálně zkříženě hybridizující sadě, je uložena v nové tabulce Mn+i (125), která také obsahuje podjednotky dříve vyhrané v dřívějším proběhlém kroku 120. Například, v první sadě srovnání bude M2 obsahovat Si, v druhé sadě srovnání bude M3 obsahovat Si a S2, ve třetí sadě srovnání bude M4 obsahovat Si, S2 a S3, a tak dále. Obdobně, srovnání tabulce Mj bude mezi Sj a všemi následujícími podjednotkami v Sj. Všimněte si, že každá následující tabulka Mn+i je menší než předcházející díky eliminaci podjednotek v následném kroku 130. Poté, co byly všechny podjednotky tabulky Mn srovnány (140) je stará tabulka nahrazena novou tabulkou Mn+i, a je započato následující kolo srovnávání. Proces končí (160), když je tabulka Mn naplněna tak, že neobsahuje žádné následující podjednotky ke srovnání s vybranými podjednotkami Si, např. Mn=Mn +1.
Preferovaně, minimálně zkříženě hybridizující sady zahrnují podjednotky, které tvoři přibližně stejný příspěvek pro stabilitu duplexu jako každá jiná podjednotka v sadě. Tímto způsobem je stabilita přesně spárovaných duplexů mezi každou podjednotkou a jejím komplementem přibližně stejná. Návod pro výběr takových sad je poskytnut publikovanými technikami pro selekci optimálních PCR primerů kalkulování stability duplexů, např. Rychlík et al., Nucleic Acids Res. 17: 8543 - 8551 (1989) a 18: 6409 - 6412 (1990); Breslauer et al. , Proč. Nati. Acad. Sci., 83: 3746 - 3750 (1986); Wetmur, Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol., 26: 227 - 259 (1991); a podobně. Pro kratší smyčky, např. okolo 30 nukleotidů nebo méně, je preferován algoritmus popsaný Rychlíkem a Wetmurem, a pro delší smyčky, např. okolo 30 35 nukleotidů nebo větší může být použit algoritmus popsaný Sugsem et al., str. 683 - 693 v Brown, vyd., ICN-UCLA Symp. Dev. Biol., Vol. 23 (Academie Press, New York, 1981). Je jasné, že je mnoho odborníkům dosažitelných přístupů projektování sad minimálně zkříženě hyhridizujících pro podjednotek v rozsahu vynálezu. Například, pro minimalizaci ovlivnění různých energií řazení bází terminálních nukleotidů při sestavování podjednotek mohou být poskytnuty podjednotky mající stejné terminální nukleotidy. Tímto způsobem, jsou-li podjednotky připojeny, bude součet energií řazení bází všech připojených terminálních nukleotidů stejný, což redukuje nebo eliminuje variabilitu v teplotě tání smyček.
V preferovaném provedení jsou minimálně zkříženě hybridizující sady takové, jejichž podjednotky jsou vyrobeny ze tří nebo čtyř přirozených nukleotidů. Jak bude uvedeno důkladněji dále, absence jednoho typu nukleotidu v oligonukleotidové smyčce dovoluje zavedení cílových po 1ynukeotidů na nosič pevné fáze za použití 5'—3' exonukleasové aktivity DNA polymerasy. Dále je uveden příklad minimálně zkříženě hybridizující sady podjednotek, kde každá podjednotka obsahuje čtyři nukleotidy vybrané ze skupiny skládající se z A, G a T:
Tabulka 1
Výraz: wi
Sekvence: GATT
Výraz: ws
W2 W3 W4
TGAT TAGA TTTG
W6 W7 W8
Sekvence:
GTAA
AGTA
ATGT
AAAG
V této sadě bude každý člen vytvářet duplexy mající tř chybně spárované báze s komplementem každého jiného člena.
Další příklady minimálně zkříženě hybridizujících sad jsou uvedeny v Tabulce 2, níže. Je jasné, že mohou být generovány další sady substitucí různých skupin nukleotidů, nebo za použití podsad známých minimálně zkříženě hybridizujících sad.
Tabulka II
Příklady minimálně zkříženě hybridizujících sad 4-mer pod j ednotek.
Sada 1 Sada 2 Sada 3 Sada 4 Sada 5 Sada 6
CATT ACCC AAAC AAAG AACA AACG
CTAA AGGG ACCA ACCA ACAC ACAA
TCAT CACG AGGG AGGC AGGG AGGC
ACTA CCGA CACG CACC CAAG CAAC
TACA CGAC CCGC CCGG CCGC CCGG
TTTC GAGC CGAA CGAA CGCA CGCA
ATCT GCAG GAGA GAGA GAGA GAGA
AAAC GGCA GCAG GCAC GCCG GCCC
AAAA GGCC GGCG GGAC GGAG
Sada 7 Sada 8 Sada 9 Sada 10 Sada 11 Sada 12
AAGA AAGC AAGG ACAG ACCG ACGA
ACAC ACAA ACAA AACA AAAA AAAC.
AGCG AGCG AGCC AGGC AGGC AGCG
CAAG CAAG CAAC CAAC CACC CACA
CCCA CCCC CCCG CCGA CCGA CCAG
CGGC CGGA CGGA CGCG CGAG CGGC
GACC GACA GACA GAGG GAGG GAGG
GCGG GCGG GCGC GCCC GCAC GCCC
GGAA GGAC GGAG GGAA GGCA GGAA
01igonukleotidové smyčky podle vynálezu a jej ich
komplementy jsou běžně syntetizovány na automatizovaném DNA
syntet i zéru , např. Applied Biosystems, lne. (Foster City,
Calif ornia) model 392 nebo 394 DNA/RNA syntetizer, za
použití standardních chemikálií, jako je chemikálie
fosforamidit, např . popsaná v následujících odkazech:
Beucage and Iyer, Tetrahedron, 48; 2223 - 2311 (1992) ; Molk
et al., U.S .Patent 4908460; Koster et al. , U.S. Patent
4725677; Caruthers et al., U.S . patent 4415732, 4458066
a 4937679 a podobn ě. Alternativní chemikálie, např. vedoucí
k nepřirozeným řetězcovým skupinám, jako je fosforothioát, fosforoamidát a podobně, mohou být také použity umožňují-li, aby vzniklé o 1 igonukleotidy byly schopné specifické hybridizace. V některých provedeních mohou smyčky obsahovat přirozeně se vyskytující nukleotidy, které dovolují zpracování nebo manipulaci enzymy, zatímco korespondující komplementy smyček mohou obsahovat přirozeně se nevyskytující analoga nukleotidů, jako jsou peptidové nukleové kyseliny, nebo podobné sloučeniny, které navozují tvorbu stabilnějších duplexů v průběhu třídění.
Jsou-li jako nosiče použity mikročástice, je repertoár oligonukleotidových smyček a komplementů smyček preferovaně generován podjednotkovým způsobem syntézy cestou štěp a míchej techniky, např. jak popsal Shortle et al., Mezinárodní patentová přihláška PCT/US93/03418. Stručně, základní jednotkou syntézy je podjednotka oligonukleotidové smyčky. Preferovaně je použita fosforamiditová chemikálie a 3' fosforamiditové o 1igonukleotidy jsou připraveny pro každou podjednotku minimálně zkříženě hybridizující sady, např. pro první sadu uvedenou výše bude osm 4-mer '-fosřoramidi tů. Syntéza probíhá jak popsal Shortle et al . nebo v přímé analogii s technikami upotřebenými ke generování různých oligonukleotidových knihoven za použití nukleosidových monomerů, např. jak je popsáno v Telenius et al., Genomics, 13: 718 - 725 (1992); Welsh et al., Nucleic Acids Research, 19: 5275 - 5279 (1991); Grothues et al., Nucleic Acids Research, 21; 1321 - 1322 (1993); Hartley, evropská patentová přihláška 90304496.4; Lam et al., Nátuře, 354: 82 - 84 (1991); Zuckerman et al., Int. J. Pept. Protein Research, 40: 498 - 507 (1992), a podobně. Obecně tyto techniky požadují aplikaci směsí aktivovaných monomerů do rostoucích oligonukleotidů během kroků spojování.
Dvouřetězcové formy smyček mohou být vyrobeny separátní syntézou komplementárních řetězců následovanou smícháním za podmínek dovolujících tvorbu duplexu. Alternativně, dvouřetězcové smyčky mohou být tvořeny nejprve syntézou jednořetězcového repertoáru navázaného na známou oligonukleotidovou sekvenci, která slouží jako místo pro vazbu primeru. Druhý řetězec je potom syntetizován kombinováním jednořetězcového repertoáru s primerem a rozšířením polymerasou. Tento pozdější přístup popsal Oliphant et al., 44: 177 - 183 (1986). Takové duplexní smyčky pak mohou být insertovány do klonujících vektorů spolu s cílovými polynukleotidy pro třídění a manipulaci cílového polynukleotidů podle vynálezu.
V provedení, kde se vyskytuje specifická hybridizace cestou tvorby triplexů, sleduje kódování sekvencí smyček stejné principy jako pro duplex vytvářející smyčky; nicméně, jsou zde jistá omezení ve výběru sekvencí podjednotek.
Obecně, asociace třetího řetězce prostřednictvím Hoogsteenova typu vazby je nejstabilnější mezi homopyrimidin-homopurin dráhami v dvouřetězcovém cíli.
Obvykle tvoři triplety bází T-A*T nebo C-G*C motivy (kde indikuje Watson-Crickovo párování a indikuje Hoogsteenův typ vazby); nicméně, jiné motivy jsou také možné. Například, Hoogsteenovo párování bází umožňuje paralelní a antiparalelni orientace mezi třetím řetězcem (Hoogsteenovým řetězcem) a řetězcem duplexu bohatým na purin, na který se třetí řetězec váže, v závislosti na podmínkách a složení řetězců. V literatuře existuje rozsáhlý návod pro selekci vhodných sekvencí, orientace, podmínek, typu nukleosidů (např. jestli jsou použity ribosové nebo deoxyribosové nukleosidy), modifikaci bází (např. methylovaný cytosin, a podobně) pro maximalizaci, nebo jinou regulaci, stability triplexů, jak je požadována v jednotlivých provedeních, např. Roberts et al., Proč. Nati. Acad. Sci., 88: 9397 9401 (1991); Roberts et al., Science, 258: 1463 - 1466 (1992); Distefano et al., Proč. Nati. Acad. Sci., 90: 1179 1183 (1993); Mergny et al., Biochemistry, 30: 9791 - 9798 (1991); Cheng et al., J.Am. Chem. Soc., 114: 4465 - 4474 (1992); Beal a Dervan, Nucleic Acids Research, 20: 2773 2776 (1992); Beal a Dervan, J.Am. Chem. Soc. 114: 4976 4982 (1992); Giovannangeli et al., Proč. Nati. Acad. Sci., 89: 8631 — 8635 (1992); Moser a Dervan, Science, 238: 645
- 650 (1987); Mc Shan et al., J.Biol. Chem., 267: 5712 5721 (1992); Yoon et al., Proč. Nati. Acad. Sci., 89: 3840 3844 (1992); Blume et al., Nucleic Acids Research, 20: 1777
- 1784(1992); Thuong a Helene, Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 32: 666 - 690 (1990) a podobně. Podmínky pro teplotní hybridizace jednořetězcových nebo duplexních smyček s jejich jednořetězcovými nebo duplexními komplementy jsou dobře známé, například Ji et al., Anal. Chem. 65: 1323 - 1328 (1993) .
01igonukleotidové smyčky podle vynálezu mohou mít délku v rozsahu od 12 do 60 nukleotidů nebo párů bází. Preferovaně mají oligonukleotidové smyčky délku v rozsahu od 18 do 40 nukleotidů nebo párů bází. Ještě lépe mají oligonukleotidové smyčky délku v rozsahu od 25 do 40 nukleotidů nebo párů bázi. V oblasti preferovaného a více preferovaného počtu podjednotek může být rozsah vyjádřen následovně:
Tabulka 3 *· Počet podjednotek ve smyčce v preferovaném provedení
Monomery v podjednotce nukleotidy v oligonukleotidové smyčce
3 4-20 (12 - 60) podj ednot. 6-13 (18 - 40) podj ednot. (25 - 40) 8-13 podjednot
4 3-15 podj ednot. 4-10 podj ednot. 6-10 podjednot
5 2-12 podj ednot. 3-8 podj ednot. 5-8 podjednot.
6 2-10 podj ednot. 3-6 podj ednot. 4-6 podjednot.
Nejpreferovaněji jsou oligonukeotidové smyčky jednořetězcové a specifická hybridizace se vyskytuje prostřednictvím Watson-Crickova párování s komplementem smyčky.
Připojení smyček na molekuly
01igonukleotidové smyčky mohou být připojeny na mnoho odlišných tříd molekul celou řadou reaktivních skupin v oboru dobře známých, např. Handbook of Fluorescent Probes and Research Chemicals (Molecular Probes, lne., Eugene, 1992); Khanna et al., U.S. Patent 4318846; a podobně. Tabulka IV poskytuje příklady skupin a opačných reaktivních skupin, které mohou být obsaženy na molekulárních smyčkách nebo na požadovaných molekulách. Při společné reakci skupin a jejich reaktantů, v některých případech po aktivaci, je vytvářena vazebná skupina. Navíc, jak je přesněji popsáno níže, smyčky mohou být syntetizovány simultáně s molekulami podrobujícími se selekci za vytváření kombinatoriálních
chemických knihoven.
Tabulka IV
Reaktivní skupiny a vazebné skupiny j e j i ch protěj š í reaktanty a vzniklé
Reaktivní opačná vazebná
funkce funkce skupina
-nh2 -COOH -CO-NH-
-nh2 -NCO -NHCONH-
-nh2 -NCS -NHCSNH-
-nh2 N- // -fJH lf ty ú—\\ ty ŇH—
-SH -C=C-CO- -S-C-C-CO-
-nh2 -CHO -CH2NH-
-nh2 -SO2CJ -so2nh-
-OH -OP(NCHíCH3)2)2 -OP(=O)(O)O-
-OP(=O)(O)S -NHC(=O)CH2Br -NHC(=O)CH2SP(=O)(O)O-
Třída molekul zejmena vhodných pro generování kombinatoriálních chemických knihoven zahrnuje lineární polymerní molekuly vzorce:
- (M -L)nkde L je vazebná skupina a M je monomer, který může být vybrán ze široké škály chemických struktur pro poskytnutí velkého rozsahu funkcí od té, že slouží jako inertní nesterická bránící spacerová skupina až do poskytnutí reaktivní funkční skupiny, která může sloužit jako bod větvení pro připojení jiných složek, místo pro připojení značek, místo pro připojení oligonukleotidů nebo jejich vazebných polymerů pro hybridizaci nebo vazbu na terapeutický cíl, nebo jako místo pro připojení jiných skupin pro ovlivnění rozpustnosti, navození tvorby duplexů a/nebo triplexů, jako jsou interkalatory, alkylační činidla, a podobně. Sekvence, a tak i složení, takové lineární polymerní molekuly může být kodováno uvnitř polynukleotidu připojeného na smyčku, jak uvádí Brenner and Lerner (citován výše). Nicméně, po selekci, místo amplifikace a pak sekvencování smyčky vybrané molekuly, může být smyčka sama nebo další kódující segment sekvencována přímo za použití takzvaného single base přístupu popsaného níže, po uvolnění požadované molekuly, např. restrikčním trávením místa zapracovaného do smyčky. Je zřejmé, že jakákoliv molekula produkovaná sekvencí kroků chemické reakce kompatibilních se simultání syntézou skupin smyček může být použita v generování kombinatoriálních knihoven.
Běžně existuje široká diversita fosfát-vázaných monomerů dosažitelných pro generování kombinatoriálních knihoven.
Následující odkazy popisují několik fosforamiditových *· a/nebo hydrogenfosfonátových monomerů vhodných pro použití v předkládaném vynálezu a poskytují návod pro jejich syntézu *· a zahrnutí do oligonukleotidů: Newton et al., Nucleic Acids
Research, 21: 1155 - 1162 (1993); Griffin et al., J.Am.
Chem. Soc., 114: 7976 - 7982 (1992); Jaschke et al., Tetrahedron Letters, 34: 301 - 304 (1992); Ma et al., mezinárodní patentová přihláška PCT/CA92/00423; Zon et al., mezinárodní patentová přihláška PCT/US90/06630; Durand et al., Nucleic Acids Research, 18: 6353 - 6359 (1990);
Salunkhe et al., J. Am. Chem. Soc., 114: 8768 - 8772 (1992); Urdea et al., U.SpPatent 5093232; Ruth, U.S.patent 4948882; Cruickshank, U.S. patent 5091519; Haralambidis et al., Nucleic Acids Research, 15; 4857 - 4876 (1987) a pod. Přesněji, M může být přímý řetězec, cyklické, nebo větvené organické molekulární struktury, obsahující od 1 do 20 atomů uhlíku a od 0 do 10 heteroatomů vyhraných ze skupiny skládající se z kyslíku, dusíku a síry. Preferovaně je M alkyl, alkóxy, alkenyl nebo aryl osahující od 1 do 16 atomů uhlíku; heterocyklus má od 3 do 8 atomů uhlíku a od ' 1 do 3 heteroatomů vybraných ze skupiny, skládající se z kyslíku, dusíku a síry; glykosyl; nebo nukleosidyl.
* Preferovaněji je M alkyl, alkóxy, alkenyl, nebo aryl obsahující od 1 do 8 atomů uhlíku; glykosyl; nebo nukleos idyl.
Preferovaně je L fosforem(V) vázaná skupina, kterou může být fosfodiester, fosfotriester, methyl nebo ethyl fosfonát, fosforothioát, fosforodithioát, fosforoamidat a podobně. Obecně jsou preferovány vazby odvozené od fosforoamiditových nebo hydrogenfosfonátových prekurzorů, takže lineární polymerové jednotky podle vynálezu mohou být konvenčně syntetizovány komerčními automatizovanými DNA syntetizéry, např. Appliaed Biosystems, lne., (Foster City, CA) model 394, nebo podobným.
n se může významně lišit v závislosti na charakteru L a M. Obykle se n liší od 3 do 100. Je-li M nukleosid nebo jeho analog nebo monomer rozsahu nukleosidu a L je fosforová (V) vazba, pak se n pohybuje od asi 12 do asi 100. Preferovaně, je-li M nukleosid nebo jeho analog nebo monomer rozsahu nukleosidu a L je fosforová (V) vazba, pak se n pohybuje od asi 12 do asi 40.
Peptidy jsou jinou preferovanou třídou molekul, na kter jsou připojovány smyčky podle vynálezu. Syntéza peptid-o1igonukleotid konjugátů, které mohou být použity ve vynálezu je uvedena v Nielsen et al., J.Am. Chem.Soc., 115: 9812 - 9813 (1993); Haralambidis et al (citován výše) a mezinárodní patentová přihláška PCT/AU88/004417; Truffert et al., Tetrahedron Letters, 35: 2353 - 2356 (1994); de la Torre et al., Tetrahedron Letters, 35: 2733 - 2736 (1994); a podobně. Preferovaně jsou konjugáty peptid-oligonukleotid syntetizovány podle postupu popsaného níže. Peptidy syntetizované podle vynálezu se mohou skládat z přirozených aminokyselinových monomerů nebo nepřirozených monomerů, včetně D isomerů přirozených aminokyselin a podobně.
Kombinatoriální chemické knihovny
Kombinatoriální chemické knihovny využívající smyček podle vynálezu jsou preferovaně připraveny podle metody popsané Nielsenem et al (citován výše) a ilustrované na Obr.
pro určité provedení. Stručně, nosič-pevná fáze- jako je CPG, je derivatizován se štěpitelným linkerem. který je kompatibilní jak s chemikáliemi použitými k syntéze smyček, tak chemikáliemi použitými k syntéze molekul, které budou podrobeny nějakému procesu selekce. Preferovaně, smyčky jsou syntetizovány za použití fosforamiditové chemie jak bylo popsáno výše a s modifikací doporučenou Nielsenem et al. (citován výše); t.j. DMT-5'-O-chráněný 3'fosforamidit-derivat izované podjednotky, mající ethyl-chráněné fosfitové a fosfátové skupiny jsou přidány v každém cyklu syntézy. Sloučeniny knihovny jsou preferovaně monomery mající Fmoc—nebo ekvivalent—chránící skupiny maskující funkce, na které bude následující monomer navázán. Vhodný linker pro chemický postup využívající jak DMT, tak Fmoc chránící skupiny (označené zde jako sarkosinové linkery) je popsán Brownem et al., J.Chem. Soc. Chem. Commun., 1989: 891 - 893, což je zde uvedeno jako odkaz.
Obrázek 4 ilustruje schéma pro generování kombinatoriální chemické knihovny peptidů konjugovaných s oligonukleotidovými smyčkami. Nosič pevné fáze 200 je derivatizován sarkosin linkerem 205 (příkladem doložený ve vzorci níže) jak uvádí Nielsen et al. (citován výše), který má rozšířené vazebné skupiny pro usnadnění přístupu činidla.
(CPG)-NHC(O)CN(CH3)C(O)CH2CH2C(O)O(CH2)6NHC(O)CH2 (O-DMT)NC(O)-CH2O(CH2CH2O)2CH2CH2NHC(O)CH2O(CH2CH2O)2ch2
CH2NH-Fmoc
Zde CPG reprezentuje kontrolovaný-porézní skleněný nosič, DMT reprezentuje dimethoxytri tyl, a Fmoc reprezentuje 9-fluorenylmethoxykarbony1.
V preferovaném provedení je oligonukleotidový segment 214 iniciálně syntetizován tak, že ve dvouřetězcové formě je poskytnuto místo pro restrikční endonukleasu pro štěpení sloučenin knihovny po třídění na mikročástice, nebo jako substrát. Syntéza probíhá následujícím alternativním podáním podjednotek Si,S2,S3 a podobně, za vytvoření smyčky 212, a její korespondující monomery sloučenin knihovny Ai,A2,A3 a tak dále, za vytvoření sloučeniny 216 knihovny. Je využita technika štěp a míchej pro generování rozmanitosti s1oučenin.
Podjednotky v minimálně zkříženě hybridizující sadě kódují monomer přidaný v sloučenině knihovny. Tak devět daných výrazů může jednoznačně kodovat sloučeniny knihovny konstruované z devíti monomerů. Jestliže je akceptovatelná nějaká nejednoznačnost, pak jedna podjednotka může kodovat více než jeden monomer.
Po dokončení syntesy je produkt štěpen a chránící skupiny odstraněny (220) za vzniku označené sloučeniny knihovny 225, která potom podléhá selekci 230, např. vazbou na předem určený cíl 235, jako je protein. Podsada sloučenin knihovny shromážděná z procesu selekce 230 je potom tříděna (240) na nosič pevné fáze 245 prostřednictvím svých smyčkových skupin (komplementární podjednotky a nukleotidy jsou vytištěny kurzívou). Po ligaci odštěpené části o 1 igonuk1eotidu 242 na komplement 250 smyčky za vzniku restrikčního místa 255, je konjugát tráven korespondující restrikční endonukleasou za štěpení sloučeniny knihovny, peptidu v příkladu 4, z o 1igonukleotidové skupiny. Sekvence smyčky, a proto identita sloučeniny knihovny, je potom určena preferovanou technikou sekvencování jedné báze podle vynálezu, popsané níže.
Nosiče pevné fáze
Nosiče pevné fáze pro použití ve vynálezu mohou mít velk množství forem, včetně mikročástic, korálků a membrán, blán, ploten, mikrozpracovaných štěpin a podobně. Obdobně, nosiče pevné fáze podle vynálezu mohou obsahovat širokou škálu sloučenin, včetně skla, plastů, silikonu, alkenthiolátem derivat izované zlata, celulosy, nízkozesítěného a vysokozesítěného polystyrenu, silikagelu, polyamidu a podobně.
Preferovaně je použita populace jednotlivých částic tak, že každá má uniformní potažení, nebo populaci, komplementárních sekvencí stejné smyčky (a žádné jiné), nebo je využit jeden nebo několik nosičů s prostorově oddělenými regiony, kde každý obsahuje jednotné potažení, nebo populaci, komplementárních sekvencí ke stejné smyčce (a žádné jiné). V dalším provedení se může plocha regionů velmi .·* lišit podle jednotlivých aplikací; obvykle je plocha regionů od několika pm2, např. 3-5, do několika stovek pm2, např. 100 - 500. Preferovaně jsou takové regiony prostorově oddělené, takže signály generované určitým dějem, např. fluorescentní emisí, mohou být odlišeny v sousedních regionech za pomoci použitého detekčního systému. V některých aplikacích může být žádoucí mít regiony s uniformním potažením více než jedním komplementem smyčky, např. pro simultání sekvenční analýzu, nebo pro přesunutí separátně označených molekul do těsné blízkosti.
Komplementy smyček mohou být užity s nosičem pevné fáze tak, že jsou na něm syntetizovány, nebo mohou být syntetizovány separátně a pak připojeny na nosič pevné fáze pro použití, jak například popsal Lund et al., Nucleic Acids Research, 16: 10861 - 10880 (1988); Albretsen et al., Anal. Biochem., 189: 40 - 50 (1990); Wolf et al., Nucleic Acids Research, 15: 2911 - 2926 (1987); Ghosh et al., Nucleic Acids Research, 15: 5353 - 5372 (1987). Preferovaně jsou komplementy smyček syntetizovány na a použity s stejným nosičem pevné fáze, který může zahrnovat širokou škálu forem a různé vazebné skupiny. Takový nosič může zahrnovat mikročástice nebo matice, nebo matrice, regionů, ve kterých je syntetizována uniformní populace komplementů smyček. Široká škála mikročásticových nosičů může být použita ve vynálezu, včetně mikročástic vyrobených z kontrolovaného porézního skla (CPG), vysoce zesítěného polystyrenu, akrylických kopolymerů, celulosy, nylonu, dextranu, latexu, polyacroleinu, a podobně, jak je popsáno v následujících odkazech: Meth. Enzymol., Section A, str. 11 - 147, vol. 44 (Academie Press, New York, 1976); U.S.Patent 4678814;
4413070; a 4046720; a Pon. Chapter 16 v Agrawal, editor, Methods in Molecular Biology, Vol. 20 (Humana Press, Totowa, NJ, 1993). Mikročásticové nosiče dále zahrnují komerčně dosažitelné nukleosid - derivatizované CPG a polystyrénové korálky (např. dostupné od Applied Biosystems, Foster City, CA); derivat izované magnetické korálky, polystyren roubovaný s polyethylenglykolem (např. TentaGel ™, Rapp Polymere, Tubingen Germany); a podobně. Výběr vlastností nosiče, jako je materiál, poréznost, velikost, tvar a podobně, a typ použité vazebné skupiny závisý na podmínkách, za kterých jsou smyčky použity. Například, v aplikaci vyžadující následovně zpracování enzymy jsou preferovány nosiče a linkery, které minimalizují sterické překážky (zábrany) enzymů a usnadňují přístup k substrátu. Jiné důležité faktory brané v úvahu při selekci většiny vhodných mikročásticových nosičů zahrnují uniformitu velikosti, účinost jako nosič syntézy, stupeň, na kterém je povrchová plocha známá a optické vlastnosti, např. jak je popsáno podrobněji níže, světlé hladké korálky poskytují instrumentální výhodu při manipulaci s velkým množstvím korálků na povrchu.
Příklady vazebných skupin pro připojení a/nebo syntézu smyček na povrchu mikročástic jsou popsány v Pon et al., Biotechniques, 6; 768 - 775 (1988); Webb, U.S.patent 4659774; Barany et al., mezinárodní patentová přihláška PCT/US91/06103; Brown et al., Chem. Soc. Commun., 1989: 891 - 893; Damha et al., Nucleic Acids Research, 18: 3813 - 3821 (1990); Beattie et al., Clinical Chemistry, 39: 719 - 722 (1993); Maskos and Southern, Nucleic Acids Research, 20:
1679 - 1684 (1992), a podobně.
Jak je uvedeno výše, komplementy smyček mohou být také syntetizovány na jednom (nebo několika) nosičích pevné fáze za vytvoření matice regionů uniformně potažených komplementy smyček. To znamená, že uvnitř každého regionu v takové matici je syntetizován stejný komplement smyčky. Techniky pro syntetizování takových matic jsou popsány v McGall et al., mezinárodní přihláška PCT/US93/03767; Pease et al., Proč. Nati. Acad. Sci. 91: 5022 - 5026 (1994); Southern a Maskos, mezinárodní přihláška PCT/GB89/01114; Maskos a Southern (citovaní výše); Southern et al., Genomics, 13:
1088 - 1017 (1992); a Maskos a Southern, Nucleic Acids Research, 21: 4663 - 4669 (1993).
Preferovaně je vynález uskutečněn za využití mikročástic nebo korálků uniformně potažených komplementy stejné smyčkové sekvence. Mikročásticové nosiče a metody kovalentni nebo nekovalentní vazby oligonukleotidů na jejich povrch jsou dobře známé, a jsou příklady doloženy v následujících odkazech: Beaucage a Iyer (citovaní výše); Gait, editor,
01igonucleotide Synthesis: A Practical Approach (IRL Press, Oxford, 1984); a odkazy citované výše. Obecně, velikost a tvar mikročástic není zásadní; nicméně jsou preferovány mikročástice velikosti od několika, například 1 - 2 do několika stovek, například 200 - 1000 pm v průměru, jelikož usnadňují konstrukci a manipulaci širokého repertoáru oligonukleotidových smyček s minimálním použitím činidla a vzorku.
V některých preferovaných aplikacích jsou využity jako nosiče pevné fáze ve vynálezu komerčně dostupné kontrolované porézní skleněné nosiče (CPG) nebo polystyrénové nosiče.
Takové nosiče jsou dostupné se báze-labilními linkery s a připojenými iniciálními nukleosidy, např. od Applied Biosystems (Foster City, CA). Preferovaně mají použité mikročástice póry velikosti od 500 do 1000 Angstromů.
V jiné preferované aplikaci jsou použity neporézní mikročástice pro své optické vlastnosti, které mohou být výhodné při sledování velkého počtu mikročástic na dvojrozměrném nosiči, jako je mikroskopická blána. Jednotlivými preferovanými neporezními mikročásticemi jsou glycidal methakrylátové (GMA) korálky dostupné od Bangs Laboratries (Carmel, IN). Takové mikročástice jsou využitelné v různých velikostech a derivatizované různými vazebnými skupinami pro syntézu smyček nebo komplementů smyček. Preferovaně, pro rozsáhlou paralelní manipulaci označených mikročástic jsou využity GMA korálky 5 μιη v průměru.
Připojení cílových oligonukleotidů na mikročástice
Důležitým aspektem vynálezu je tříděni populace identických polynukleotidů, například z cDNA knihovny, a jejich připojení na mikročástice nebo oddělené regiony nosičů pevné fáze tak, že každá mikročástice nebo region má pouze jeden typ polynukleotidů. Tato další podmínka může být v podstatě splněna ligací repertoáru smyček na populaci polynukleotidů. Ligační produkty jsou potom klonovány, amplifikovány a rozděleny do vzorků. Pokud je vzorek dostatečně malý, jak je podrobněji popsáno níže, budou v podstatě všechny konjugáty smyčka-polynukleotid výsledné knihovny jedinečné. To znamená, ža každý polynukleotid má jedinečnou smyčku a naopak. Polynukleotidy jsou potom tříděny hybridizací smyček na jejich komplementy.
Repertoár o 1 igonukleotidových smyček může být ligován na populaci polynukleotidů různými způsoby, jako je přímá enzymatická ligace, amplifikace, např. cestou PCR, za použití primerů obsahujících sekvence smyček, a podobně. Iniciální ligační krok produkuje velmi širokou populaci konjugátů smyčka-polynukleotid tak, že jednotlivá smyčka je obecně připojena na mnoho odlišných polynukleotidů. . nicméně, při použití dostatečně malého vzorku konjugátů může být pravděpodobnost získání double, např. stejná smyčka na dva odlišné polynukleotidy, zanedbatelná. (Povšimněme si, že je také možno získat odlišné smyčky se stejným nukleotidem ve vzorku. Tento případ jednoduše vede ke zpracování polynukleotidů, například sekvencování, dvakrát, takže obvykle není problematický). Jak je podrobněji popsáno níže, pravděpodobnost získání získání double ve vzorku může být hodnocena Poissonovou distribucí, protože počet konjugátů ve vzorku bude vysoký, například tisíce a více, a pravděpodobnost selektování jednotlivých smyček bude malá, protože repertoár smyček je velký, například desetitisíce nebo více. Obecně, větší vzorek zamená větší pravděpodobnost získání double. Tak existuje plánovaná záměna mezi selekcí velkého vzorku konjugátů smyčka-polynukleotid—který například umožňuje adekvátní pokrytí cílového polynukleotidů v obecných operacích sekvencování, a selekcí malého vzorku, který umožňuje, že je přítomen minimální počet doubles. Ve většině provedení přidává přítomnost double pouze další zdroj poruch nebo, v případě sekvencování, menší komplikaci v zobrazení a signálním zpracování, kdy mikročástice dávající mnohotné fluorescentní signály mohou být ignorovány. Jak je zde použito termín v podstatě všechny ve vztahu k připojení smyček na molekuly, zejmena polynukleotidy, odráží statistické vlastnosti vzorkovacích postupu využitých pro získání populace smyčka-polynukleotid, která je v podstatě prostá doubless Význam v podstatě všechny v aktuálních procentech konjugátů smyčka-polynukleotid závisí na tom, jaké smyčky byly použity. Preferovaně, pro sekvencování nukleových kyselin, znamená termín v podstatě všechny to, že alespoň osmdesát procent smyček má připojený jednotlivý oligonukleotid. Preferovaněji to znamená, že alespoň devadesát procent smyček má připojený jednotlivý oligonukleotid. Ještě preferovaněji to znamená, že alespoň devadesát pět procent smyček má připojený jednotlivý oligonukleotid.
A nejpreferovaněji to znamená, že alespoň devadesát devět procent smyček má připojený jednotlivý oligonukleotid.
Preferovaně, skládá-li se populace polynukleotidů z messengerové RNA (mRNA) jsou oligonukleotidové smyčky připojeny reversní transkripcí mRNA se sadou primerů obsahujících komplementy smyčkových sekvencí. Příklad sady takových primerů může mít následující sekvenci:
5'- mRNA - (A)n - 3' (T)i9GG(W,W,W,C)9ACCAGCTGATC- 5'- biotin kde (W,W,W,C)9 reprezentuje sekvenci oligonukleotidové smyčky o devíti podjednotkách po čtyřech nukleotidech a (W,W,W,C) representuje podjednotku sekvencí uvedených výše, například W reprezentuje T nebo A. Podtržené sekvence identifikují volitelné místo pro restrikční endonukleasu, které může být použito pro uvolnění polynukleotidu z připojení na nosič pevné fáze prostřednictvím biotinu, je-li použit. Pro výše uvedený primer může mít komplement připojený na mikročástici vzorec
5' - (G , W, W , W) 9TGG - linker - mikročástice
Po reverzní transkripci je mRNA odstraněna, např. trávením RNAsou H, a druhý řetězec cDNA je syntetizován, například za užití primeru následujícího vzorce:
5' - NRRGATCYNNN - 3' kde N je jeden z A, T, G nebo C; R je nukleotid obsahující purin a Y je nukleotid obsahující pyrimidin. Tento určitý primer vytváří Bst Yl restrikční místo ve výsledné dvojřetězcové DNA, které, spolu s Sal I místem, usnadňuje klonování do vektoru s, například, Bam Hl a Xho I místy. Po Bst Yl a Sal I trávení bude mít příkladný konjugát vzorec:
5' - RCGACCA(C,W,W,W)9GG(T)19 - cDNA - NNNR
GGT(G,W,W,W(9CC(A)19 - rDNA - NNNYCTAG - 5'
Preferovaně, je-li využita metoda sekvencování založená na ligase, jsou Bst Yl a Sal I trávené fragmenty klonovány do Bam ΗΙ/Xho I tráveného vektoru majícího následující restrikční místa jedné kopie:
5’ - GAGGATGCCTTTATGGATCCACTCGAGATCCCAATCCA - 3'
Fok I BamHI Xhol
Toto přidává Fokl místo, které umožňuje iniciaci procesu sekvencování detailněji popsaného dále.
Obecná metoda pro odhalení jednořetězcové smyčky po amplifikaci vyžaduje trávení cílového polynukleotid obsahujícího konjugátu T4 DNA polymerasou s 5'-3* exonukleasovou aktivitou, nebo podobným enzymem. Je-li použita za přítomnosti jednoho nukleosid trifosfátu, pak taková polymerasa bude štěpit nukleotidy od 3' přerušených konců přítomných na netemplátovém řetězci dvouřetězcového fragmentu dokud komplement jednoho nukleosid tirfosfátu není dosažen na templátovém řetězci. Jestliže je takový nukleotid dosažen, 5'- 3' trávení se účinně zastaví, jelikož rozšířená aktivita polymeras přidává nukleotidy ve vyšším stupni, než excizní aktivita odstraňuje nukleotidy. Následně jsou smyčky konstruované se třemi nukleotidy snadno připraveny pro zavedení na nosiče pevné fáze.
Technika může být také použita pro preferenční methylaci spodních Fok I míst cílového polynukleotidu a přitom ponechání jednoho Fok I místa v konci polynukleotidu nemethylováného. Nejprve je terminální Fok I místo učiněno jednořetězcovým za použití polymerasy s deoxycytidin trifosfátem. Dvouřetězcová část fragmentu je potom methylována, po čemž je jednořetězcový konec doplněn DNA polymerasou za přítomnosti všech čtyř nukleosid trifosfátů, a tak se regeneruje Fok I místo. Je zřejmé, že tento postup může být zevšeobecněn na jiné endonukleasy než Fok I.
Poté, co jsou oligonukleotidové smyčky připraveny pro specifickou hybridizaci, např. převedením na jeden řetězec jak je popsáno výše, jsou polynukleotidy smíseny s mikročásticemi obsahujícími komplementární sekvence smyček za podmínek, které umožňují vznik přesně spárovaných duplexů mezi smyčkami a jejich komplementy. V literatuře existuji rozsáhlé popisy pro vytvoření takových podmínek. Příklady odkazů, které zahrnují takové popisy, jsou: Wetmur ,
Critical Eewiews in Biochemistry and Molecular Biology, 26:
227 - 259 (1991); Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2. vydání (Cold Spring Harbor Laboratory, New York) a podobně. Preferovaně jsou podmínky hybridizace dostatečně přísné, takže pouze přesně spárované sekvence vytváří stabilní duplexy. Za takových podmínek jsou polynukleotidy specificky hybridizované na své smyčky ligovány na komplementární sekvence připojené na mikročástice. Nakonec jsou mikročástice promyty pro odstranění neligovaných polynukleotidů.
Jsou-li použity CPG mikročástice konvenčně využívané jako nosiče syntézy, pak je hustota komplementů smyček na povrchu mikročástic typicky vyšší, než je nezbytné pro některé operace sekvencování. To znamená, že v těch přístupech sekvencování, které vyžadují následující ošetření připojených polynukleotidů různými enzymy mohou hustě umístěné polynukleotidy mít tendenci inhibovat přístup relativně velkých enzymů k polynukleotidům. V takových případech jsou polynukleotidy preferovaně smíseny s mikročásticemi tak, že komplementy smyček jsou přítomny v signifikantním přebytku, např. od 10:1 do 100:1, nebo větším, vůči polynukleotidům. Toto zajišťuje, že hustota po lynukleotidů na povrchu mikročástic nebude tak vysoká, aby inhibovala přístup enzymů. Preferovaně je průměrný interpolynukleotidový prostor na povrchu mikročástice v rozmezí 30 - 100 nm. Návod pro výběr poměrů pro standartní CPG nosiče a Ballotiniho korálky (typ pevných skleněných nosičů) je dán v Maskos a Southern, Nucleic Acids Research, 20: 1679 - 1684 (1992). Preferovaně, pro aplikaci v sekvencování, jsou standardní CPG korálky o průměru 20 50 pm pokryty asi 105 polynukleotidy a GMA korálky o průměru asi 5 - 10 pm jsou pokryty několika desítkami tisíci polynukleotidů, např. 4 x 104 až 6 x 104.
Výše uvedená metoda může být použita pro mapování mRNA populace, pokud je spojena s paralelní metodou sekvencování popsanou níže. Určitá informace o sekvenci je získána simultáně z velkého vzorku, např. deseti až sto tisíc, cDNA připojených na separátní mikročástice jak je popsané ve výše uvedené metodě. Frekvence distribuce určitých sekvencí může identifikovat mRNA populace z různých buněk nebo typů tkání, stejně jako od chorobných tkání, jako jsou rakovině tkáně. Takové mRNA otisky jsou využitelné pro monitorování a diagnostiku chorobných stavů, např. mezinárodní přihláška PCT/US95/21944, která popisuje použití exprese sekvence smyček (EST) za stejným účelem.
Jednobázové DNA sekvencování (Single Base DNA Sequencing)
Předkládaný vynález může být využit v konvenčních metodách DNA sekvencování, např. jak popisuje Hultman et al., Nucleic Acids Research, 17: 4937 - 4946 (1989).
Nicméně, pro paralelní, nebo simultání sekvencování mnoha polynukleotidů jsou následující odkazy: Cheeseman, U.S. patent 5302509; mezinárodní přihláška WO 91/06678; Rosenthal et al., mezinárodní přihláška WO 93/21340; Canard et al., Gene, 148: 1-6 (1994); a Metzker et al . , Nucleic Acids Research, 22: 4259 - 4267 (1994).
Single base metoda sekvencování DNA, která je vhodná pro použití v předkládaném vynálezu a která nevyžaduje elektroforetickou separaci DNA fragmentů je popsána v mezinárodní přihlášce PCT/US95/03678. Metoda zahrnuje následující kroky: (a) ligaci proby na konec polynukleotidů mající přesahující konec za vytvoření ligovaného komplexu, kde proba má komplementární přesahující konec k přesahujícímu konci polynukleotidů a kde má proba rozpoznávací místo pro nukleasu; (b) odstranění neligované proby z ligovaného komplexu; (c) identifikaci jednoho nebo více nukleotidů v přesahujícím konci polynukleotidů pomocí identity ligované proby; (d) štěpení ligovaného konce nukleasou; a (e) opakování kroků (a) až (d) do té doby, dokud není určena sekvence polynukleotidů. Jak je přesněji popsáno níže, identifikace jednoho nebo více nukleotidů může být provedena bud před, nebo po štěpení ligovaného komplexu z cílového polynukleotidů. Preferovaně, jsou-li využity přirozené proteinové endonukleasy, zahrnuje metoda dále krok methylace cílového polynukleotidů na počátku operace sekvencování.
Důležitým rysem metody je proba ligovaná na cílový polynukleotid. Preferovaný vzorec proby je ukázán na Obrázku la. Obecně jsou proby dvouřetězcové DNA s přesahujícím řetězcem v jednom konci 10. Proby obsahují alespoň jedno nukleasové rozpoznávací místo 12 a mezerový region 14 mezi rozpoznávacím místem a přesahujícím koncem 10. Preferovaně proba také obsahuje značku 16, která je v tomto určitém provedeni vyznačena na konci opačném k přesahujícímu řetězci. Proby mohou hýt značeny různými prostředky a na různých místech, jediným omezením je, že prostředek vyhraný ke značení nesmí interferovat s krokem ligace nebo s rozpoznáním proby nukleasou.
Není zásadní, jestli je přesahující řetězec 10 proby 5' 3' konec. Nicméně je důležité, aby přesahující řetězce cílového polynukleotidu a proby byly schopné tvořit přesně spárované duplexy a tak umožnily specifickou ligaci.
Jestliže jsou přesahující řetězce cílového polynukleotidu a proby různých délek, může být vzniklá mezera vyplněna polymerasou před ligaci, například jako tomu je v gapLCR popsané v Backman et al., evropská patentová přihláška 91100959.5. Preferovaně je počet nukleotidů v příslušných přesahujících řetězcích shodný, takže jsou oba řetězce proby a cílového polynukleotidu schopny ligace bez kroku vyplňování. Preferovaně je přesahující řetězec proby dlouhý od 2 do 6 nukleotidů. Jak je ukázáno níže, větší délka přesahujícího řetězce odpovídá větší komplexitě směsi prob, která je aplikována na cílový polynukleotid během každého cyklu ligace a štěpení.
Komplementární řetězce prob jsou běžně syntetizovány na automatickém DNA syntetizéru, např. Applied Biosystems, lne. (Foster City, California) model 392 nebo 394 DNA/RNA Synthesizer, za použití běžných chemikálií. Po synteze jsou komplementární řetězce kombinovány za tvorby dvouřetězcové proby. Obecně, přesahující konec proby je syntetizován jako směs, takže každá možná sekvence je reprezentována v přesahující části. Například, jestliže se přesahující část skládá ze čtyř nukleotidů, jsou v jednom provedení čtyři směsi připraveny následujícím způsobem:
X1X2. ............XiNNNA
X1X2. ............X i NNNC
X1X2. ............XiNNNG, a
X1X2. ............X i NNNT
kde NNN representuje každý možný 3-mer a X representuje duplex vytvářející část řetězce. Tak každá ze čtyř výše uvedených prob obsahuje 43 nebo 64 odlišných sekvencí; nebo, jinými slovy, každá ze čtyř prob má degeneraci 64. Například, X1X2...XiNNNA obsahuje následující sekvence:
X1X2. ...........XiAAAA
X1X2. X1X2. ...........XiAACA ...........XiAAGA
X1X2. ...........XiAATA
X1X2. ...........XiACAA
X1X2. ...........XiTGTA
X1X2. ...........XiTTAA
X1X2. X1X2. ...........XiTTCA ...........XiTTGA
X1X2 . ...........XiTTTA
Takové směsi jsou snadno syntetizovány za použití dobře známých technik, např. jak je popsáno v.Telenius et al., (citován výše). Obecně tyto techniky vyžadují aplikaci směsi aktivovaných monomerů k rostoucím oligonukleotidům během kroku spojování tam, kde je požadováno zavedení degenerace.
V některých provedeních může být žádoucí redukce degenerace prob. Tohoto může být dosaženo užitím degeneraci redukujících analog, jako je deoxyinosin, 2-aminopurin, a podobně, např. jak je uvedeno v Kong Thoo Lin et al.,
Nucleic Acids Research, 20: 5149 - 5152, nebo U.S. patent 5002867.
Preferovaně, pro oligonukleotidy s fosfodiesterovou vazbou, je duplex vytvářející region proby asi 12 až 30 párů baží dlouhý; lépe je jeho délka mezi 15 až 25 páry baží.
Jestliže jsou ve vynálezu použity konvenční ligasy, jak je přesněji popsáno níže. může být 5' konec proby fosforylován v některých provedeních. 5' monofosfát může být připojen na druhý oligonukleotid bud chemicky nebo enzymaticky pomocí kinasy, např. Sambrook et al. (citován výše). Chemická fosforylace je popsána v Horn a Urdea, Tetrahedron Lett., 27: 4705 (1986) a činidla pro provedení popsaných protokolů jsou komerčně dostupná, např.
5r Phosphate-ON™ od Clontech Laboratories (Palo Alto, California). Tak mohou mít proby v některých provedeních vzorec;
5r X1X2............
Y1Y2............
XiTTGA
YiP kde Y jsou komplementární nukleotidy pro X a p je monofosfátová skupina.
Výše uvedené proby mohou být značeny množstvím způsobů, včetně přímého nebo nepřímého připojení radioaktivních skupin, fluorescentních skupin, kolorimetrických skupin, chemiluminiscentních markérů a podobně. Mnoho podrobných článků o metodách pro značení DNA a konstrukci DNA prob poskytuje návod použitelný pro konstrukci prob podle vynálezu. Takové články zahrnují Kricka, vydavatel, Nonisotopic DNA Probe Techniques (Academics Press, San Diego, 1992); Haugland, Handbook of Fluorescent Probes an Reseaerch Chemicals (Molecular Probes, lne., Eugene, 1992); Keller and Manak, DNA Probes, 2.vydání (Stockton Press, New York, 1993); a Eckstein, vydavatel, 01igonukleotides and Analogues: A Practical Approach (IRL Press, Oxford, 1991); Kessler, vydavatel, Nonradioactive Labeling and Detection of Biomelecules (Springer-Verlag, Berlin, 1992); Wetmur (citován výše); a podobně.
Preferovaně jsou proby značeny jedním nebo více fluorescentními barvivý, např. jak popisuje Menchen et al.,
U.S. patent 5188934; Begot et al., mezinárodní patentová přihláška PCT/US90/05565.
Podle metody je proba ligována na konec cílového polynukleotidu za tvorby ligovaného komplexu v každém cyklu ligace a štěpení. Ligovaný komplex je dvouřetězcová struktura vytvořená poté. co jsou přesahující řetězce cílového polynukleotidu a proby tepelně zpracovány a alespoň jeden pár shodně orientovaných řetězců proby a cíle je ligován, např. prostřednictvím kovalentní vazby, jeden na druhý. Ligace může být provedena bud enzymaticky, nebo chemicky. Chemické metody jsou v oboru dobře známé, např.
Ferris et al., Nucleosides & Nucleotides, 8: 407 - 414 (1989); Shabarova et al., Nucleic Acids Research, 19: 4247 4251 (1991); a podobně. Preferovaně je, nicméně, ligace provedena enzymaticky za použití ligasy ve standardním protokolu. Je známo mnoho ligás a jsou vhodné pro použití v předkládaném vynálezu, např. Lehman, Science, 186: 790 - 797 (1974); Engler et al., DNA Ligases, str. 3-30 v Boyer, vydavatel, The Enzymes, Vol. 15B (Academics Press, New York, 1982); a podobně. Preferované ligasy zahrnují T4 DNA ligasu, T7 DNA ligasu, E.coli DNA ligasu, Taq ligasu, Pfu ligasu, a Tth ligasu. Protokoly pro jejich použití jsou dobře známé, např. Sambrook et al., (citován výše); Barany, PCR Methods and Applications, 1: 5 - 16 (1991); Marsh et al.,
Strategies, 5: 73 - 76 (1992) a podobně. Obecně vyžaduje ligasa, aby byla přítomna 5'fosfátová skupina pro ligaci na 3'hydroxyl sousedního řetězce. Tohoto je běžně dosaženo pro alespoň jeden řetězec cílového polynukleotidů tím, že je vybrána nukleasa, která ponechává 5'fosfát, například Fok I.
V jednom provedení metody sekvencování využívající nefosforylovaných prob krok ligace zahrnuje (i) ligaci proby na cílový polynukleotid ligasou tak, že je tvořen ligovaný komplex mající zářez na řetězci, (ii) fosforylaci 5' hydroxylu na zářezu kinasou za použití konvenčních protokolů, např. Sambrook et al (citován výše), a (iii) opět ligaci ke kovalentnímu spojení řetězců v zářezu, t.j. pro odstranění zářezu.
Zařízení pro pozorování enzymatických procesů a/nebo vazebných pochodů na povrchu mikročástic.
Předmětem vynálezu je třídění identických molekul, zejmena polynukleotidů, na povrchu mikročástic prostřednictvím specifické hybridizace smyček a jejich komplementů. Pokud je takové třídění provedeno může být přítomnost molekul a operace na nich provedené detegována množstvím způsobů v závislosti na vlastnostech připojených molekul, na tom, zda jsou mikročástice detegovány separátně, nebo po dávkách, na tom, zda je požadováno opakované měření, a podobně. Typicky jsou tříděné molekuly vystaveny ligandům pro navázání, například při vývoji léčiv, nebo jsou podrobeny chemickým nebo enzymatickým procesům, například při sekvencování polynukleotidů. V obou těchto použitích je často požadováno simultánní pozorování signálů korespondujícím takovým dějům nebo procesům na velkém počtu mikročástic. Mikročástice nesoucí tříděné molekuly (zde označováno jako zavedené na mikročástice) samy dodávají takovou škálu paralelních operací, např. jak demonstroval Lam et al. (citován výše).
Preferovaně, jsou-li použity signály generující světlo, např. chemiluminiscence, fluorescence a podobně, jsou k detekci dějů nebo procesů zavedené mikročástice umístěny na plošný substrát, např. skleněnou blánu, pro vyšetření snímacím systémem, např. jak je popsáno v mezinárodní patentové přihlášce PCT/US91/09217, PCT/NL90/00081 a PCT/US95/01886. Snímací systém by měl být schopný reprodukovatelně snímat substrát a definovat umístění každé mikročástice v předem definovaném regionu prostřednictvím koordinovaného systému. V aplikacích sekvencování polynukleotidů je důležité, aby poziční identifikace mikročástic byla opakovatelná v následujících snímacích krocích.
Takové snímací systémy mohou být konstruovány z komerčně dosažitelných součástek, např. x-y translační tabulky kontrolované digitálním počítačem použité spolu s detekčním systémem obsahujícím jednu nebo více fotonásobičů, nebo alternativně CCD matici, a vhodnou optikou, např. pro excitaci, shromáždění a třídění fluorescentních signálů. V některých provedeních může být žádoucí konfokální optický systém. Příklad snímacího systému vhodného pro použití ve čtyř-barevném sekvencování je ilustrován na diagramu na Obr.
5. Substrát 300, například mikroskopická blána s fixovanými mikročásticemi, je umístěn do x-y translační tabulky 302, která je připojena na a kontrolována vhodně programovaným digitálním počítačem, který může být jakýmkoliv z množství komerčně dosažitelných osobních počítačů, například na 486-založené přístroje nebo PowerPC model 7100 nebo 8100 dostupné od Apple Computer (Cupertino, CA). Počítačový software pro tabulkovou translaci a funkci shromaždování dat může být poskytnut komerčně dostupným laboratorním softwarem, jako je Lab Windows, dostupný od National Instruments.
Substrát 300 a tabulka 302 jsou operativně spojeny s mikroskopem 306 majícím jednu nebo více čoček objektivu 308, které jsou schopny shromáždění a dopravy světla k mikročásticím fixovaným na substrátu 300. Paprsek excitace 310 ze zdroje světla 312, kterým je preferovaně laser, je namířen na dělič světla, např. diochroické zrcadlo, který opět zaměřuje pole přes mikroskop 306 a čočky objektivu 308, které, postupně, zacílí paprsek na substrát 300. čočky 308 shromáždují fluorescenci 316 emitovanou mikročásticemi a zaměřují ji přes dělič světla 314 na signál distribuující optiku 318, která, postupně, zaměřuje fluorescenci na jednu nebo více vhodných opto-elektronických nástrojů pro konvertování některých vlastností fluorescence, např. intensity, doby životnosti, a podobně, na elektrický signál. Signál distribuující optika 318 může zahrnout množství složek standardních v oboru, jako jsou pásmová propustnost, optická vlákna, rotační zrcadla, pevně umístěná zrcadla a čočky, difrakční mřížky, a podobně. Jak je ilustrováno na Obrázku 5, signál distribuující optika 318 zaměřuje fluorescenci 316 na čtyři oddělené fotonásobiče, 330, 332, 334, a 336, jejichž výstup je potom zaměřen na pre-amps a počítače fotonů, 35, 352, 354, a 356. Výstup počítačů fotonů je potom shromážděn počítačem 304, kde může být uložen, analyzován a prohlížen na videu 360. Alternativně může být signál distribuující optikou 318 difrakční mřížka, který zaměřuje fluorescentní signál 318 na CCD mat ici.
Stabilita a reprodukovatelnost poziční lokalizace ve snímání bude určena, ve větší míře, rozlišením separace těsně umístěných mikročástic. Preferovaně bude snímací systém schopný rozlišit těsně rozmístěné mikročástice, např. oddělené průměrem částice nebo menším. Tak, pro většinu aplikací, např. pro použití CPG mikročástic, by měl mít snímací systém schopnost rozlišit částice alespoň v rozsahu 10 - 100 pm. Ačkoliv vyšší rozlišovací schopnost může být žádoucí v některých provedeních, ale při vyšší rozlišovací schopnosti bude čas požadovaný ke kompletnímu snímání substrátu narůstat; tak musí být v některých provedeních udělán kompromis mezi rychlostí a rozlišovací schopností.
Prodloužení snímacího času může být dosaženo systémem, který pouze snímá pozice, o kterých je známo, že tam jsou umístěny mikročástice, např. z počátečního kompletního snímku.
Preferovaně je velikost mikročástic a rozlišovací schopnost snímacího systému vybrána tak, aby dovolila rozlišení fluorescentně značených mikročástic náhodně uspořádaných na ploše v hustotě asi deset až sto tisíc mikročástic na cm2.
V aplikacích sekvencování mohou být zavedené mikročástice fixovány na povrch substrátu množstvím způsobů. Fixace by měla být dostatečně silná, aby umožnila vystavení mikročástic opakovaným cyklům vystavení činidlům a promytí bez signifikantní ztráty. Je-li substrátem sklo, může být jeho povrch derivat izován alkylamino linkerem za použití komerčně dosažitelných činidel, např. Pierce Chemical, která mohou být postupně zkříženě navázána na avidin, opět za použití konvenčních chemikálií, za vytvoření avidinovaného povrchu. Biotinová skupina může být umístěna na zavedené mikročástice množstvím způsobů, například, frakce, např. 10 - 15 procent, klonovacích vektorů použitých pro připojení smyček na polynukleotidy je zpracována tak, aby obsahovaly jedinečné restrikční místo (poskytující lepivé konce) bezprostředně sousedící s polynukleotidovým insertem na opačném konci polynukleotidu, než je smyčka. Místo je excidováno s polynukleotidem a smyčkou pro zavedení na mikročástice. Po zavedení bude okolo 10 - 15 procent zavedených polynukleotidů mít jedinečné restrikční místo distálně od povrchu mikročástice. Po trávení asociovanou restrikční endonukleasou je vhodný dvouřetězcový adaptor obsahující biotinovou skupinu ligován do lepivého konce. Výsledná mikročástice je potom umístěna na avidinovaný povrch skla, kde je fixována cestou biotin-avidinových vazeb.
Při využití sekvencování ligací je alternativně a preferovaně v počátečním ligačním kroku aplikována směs prob na zavedené mikročástice: frakce prob obsahuje typ lis restrikčních rozpoznávacích míst, jak je požadováno pro metodě sekvencování, a frakce prob nemá taková rozpoznávací místo, ale místo toho obsahuje biotinovou skupinu ve svém neligačním konci. Preferovaně obsahuje směs okolo 10 - 15 procent biotinylovaných prob.
V ještě jiné alternativě, při aplikování DNA-zavedených mikročástic na skleněný substrát může DNA nespecificky adsorbovat na skleněný povrch po několik hodin, např. 24 hodin, kde inkubace vytvoří vazbu dostatečně silnou pro umožnění opakovaného vystavení činidlům a promytí bez signifikantní ztráty mikročástic. Preferovaně je takovým skleněným substrátem průtoková komůrka, která může obsahovat kanál vyleptaný ve skleněné bláně. Preferovaně je takový kanál uzavřený, takže tekutina může být pumpována skrz a má hloubku dostatečně blízkou průměru mikročástic, takže pouze jedna vrstva mikročástic putuje definovanou pozorovací oblastí.
Paralení sekvencování
Systém pro vytváření smyček podle vynálezu může být použit v single base metodě sekvencování pro sekvencování polynukleotidů delších než několik kílobází. Systém pro vytváření smyček umožňuje třídění mnoha tisíc fragmentů cílového polynukleotidu na jednom nebo více nosičích pevné fáze a jejich simultánní sekvencování. V souladu s preferovaným provedením metody je část každého tříděného fragmentu sekvencována v postupným způsobem na každé z mnoha tisíc zavedených mikročástic, které jsou fixovány na běžný substrát---jako je mikroskopická blána---asociovaný se snímacím systémem nebo obrazovým analytickým systémem, jak je popsáno výše. Velikost části sekvencovaných fragmentů závisý na několika faktorech, jako je počet generovaných a tříděných fragmentů, délka cílového polynukleotidu, rychlost a přesnost použité single base metody, počtu mikročástic a/nebo jednotlivých regionů, které mohou být monitorovány simultáně, a podobně. Preferovaně je identifikováno 12 - 50 bázi v každé mikročástici nebo regionu; a lépe je identifikováno 18 - 30 baží v každé mikročástici nebo regionu. S touto informací je sekvence cílového polynukleotidu určena porovnáním fragmentů o 12 - 50 baží prostřednictvím jejich překrývajících se regionů, např. jak popisuje U.S. patent 5002867. Následující odkazy poskytují další návod pro určení části fragmentů, které musí být sekvencovány pro úspěšnou rekonstrukci cílového polynukleotidu dané délky: Lander end Waterman, Genomics, 2: 231 - 239 (1988); Drmanac et al., Genomics, 4: 114 - 128 (1989); Bains, DNA Sequencing and Mapping, 4: 143 - 150 (1993); Bains, Genomics, 11: 294 - 301 (1991); Drmanac et al., J. Biomolecular Structure and Dynamics, 8: 1085 - 1102 (1991); a Pevzner, J. Biomolecular Structure and Dynamics,
7: 63 - 73 (1989). Preferovaně je délka cílového polynukleotidu mezi 1 kilobází a 50 kilobázemi. Lépe je délka cílového polynukleotidu mezi 10 kilobází a 40 kilobázemi. Lander and Waterman (citovaní výše) poskytují návod zabývající se vztahem mezi počtem fragmentů, které jsou sekvencovány (t.j. velikostí vzorku), množstvím informace o sekvenci získané z každého fragmentu, a pravděpodobností, že cílový polynukleotid může být rekonstruován z jednotlivých sekvencí bez mezer, nebo ostrůvků. Pro předkládaný vynález je maximální velikost polynukleotidu, který může být získán pro danou velikost vzorku a velikost sekvencí fragmentů ukázána níže:
Velikost Přibliž, maximální délka cílového polynukleotidu vzorku bází/fragment 50 bází/fragment
1000 3 kilobáze 4 kilobáze
10000 22 kilobáze 32 kilobáze
20000 40 kilobází 65 kilobáz í
30000 60 kilobází 85 kilobází
100000 180 kilobází 300 ki1obází
Fragmenty mohou hýt generovány z cílového polynukleotidu množstvím způsobů, včetně takzvaných přímých přístupů, kde jeden využívá generování sady fragmentů pokrývajících cílový polynukleotid s minimálními přesahy, a takzvaných brokovnicového přístupu, kde jsou generovány náhodně přesahující fragmenty. Preferovaně jsou využity brokovnicové přístupy pro generování fragmentů, jelikož jsou jednodušší a inherentní nadbytečnost. Například, náhodně přesahující fragmenty pokrývající cílový polynukleotid jsou generovány v následujícím běžném brokovnicovém protokolu sekvencování, např. jak je popsáno v Sambrook et al., (citován výše). Jak je zde použito znamená pokrytý v tomto kontextu to, že každá část sekvence cílového polynukleotidu je reprezentována v každém stupni velikosti, například ve všech fragmentech délky mezi 100 a 200 párů baží, generovaných fragmentů. Stručně, s cílovým polynukleotidem jako inzertem ve vhodném klonujícím vektoru, například lambda fágu, je vektor expandován, purifikován a tráven vhodnými restrikčními enzymy za získání 10 - 15 pg purifikovaného insertu Typicky vede protokol k asi 500 - 1000 subklonům na mikrogram počáteční DNA. Insert je separován z fragmentů vektoru preparativní gelovou elektrofořežou, je odstraněn konvenčními metodami a resuspendován ve standardním pufru, jako je TE (Tris-EDTA). Restrikční enzymy vybrané k excizi insertu z vektoru výhodně ponechávají na insertu lepivé konce, takže může být ligován samostatně v přípravku pro generování náhodně přesahujících fragmentů. Jak je vysvětleno v Sambrook et al., (citován výše), cirkularizovaná DNA dává lepší náhodnou distribuci fragmentů než lineární DNA ve fragmentačních metodách využitých dále. Po samostatné ligaci insertu, např. T4 ligasou za použití konvenčních protokolů, je purifikovaný ligovaný insert fragmentován podle standardních protokolů, např. sonikací nebo trávením DNA-asou I za přítomnosti Mn++. Po fragmentaci jsou konce fragmentů opraveny, např. jak je popsáno v Sambrook et al (citován výše), a opravené fragmenty jsou separovány podle velikosti za použití gelové elektroforesy. Fragmenty v rozsahu 300 - 500 párů bází jsou vybrány a eluovány z gelu běžnými prostředky, a jsou ligovány do smyčku-nesoucího vektoru jak je popsáno výše za tvorby knihovny konjugátů smyčka-fragment.
Jak je popsáno výše, vzorek obsahující několik tisíc konjugátů smyčka-fragment je odebrán z knihovny a expandován, potom jsou inserty smyčka-fragment excidovány z vektoru a připraveny pro specifickou hybridizaci s komplementy smyček na mikročásticích, jak je popsáno výše. V závislosti na velikosti cílového polynukleotidu mohou být z knihovny smyčka-fragment odebrány vícečetné vzorky a mohou být odděleně expandovány, zavedeny na mikročástice a sekvencovány. Počet vybraných doubles bude záviset na frakci repertoáru smyček representované ve vzorku.
(Pravděpodobnost získání triples---tří různých polynukleotidů se stejnou smyčkou---nebo více může být bezpečně ignorována). Jak je zmíněno výše, pravděpodobnost doubles ve vzorku může být hodnocena z Poissonovy distribuce p(double)=m2e“B/2, kde m je frakce repertoáru smyček ve vzorku. Tabulka V níže uvádí pravděpodobnosti získání doubles ve vzorku pro danou velikost smyček, velikost vzorku, a repertoár diversity.
Tabulka V
Počet výrazů Velikost Velikost Frakce Pravděpodobnost
ve smyčce ze sady repertoáru smyček vzorku repertoáru vzorku double
8 výrazů
7 2,1x106 3000 1,43x10-3 10-6
8 1,68xl07 3x10^ 1,78x10-3 1,6x10-6
3000 1,78x10-4 1,6x10-8
9 1,34xl08 3x105 2,24x10-3 2,5x10-6
3x104 2,24x10-4 2,5x10-8
10 1,07x10 3x106 2,8x10-3 3,9x10-6
3x105 2,8x10-4 3,9x10-8
V každém případě jsou potom zavedené mikročástice rozptýleny a fixovány na skleněnou mikroskopickou blánu, preferovaně prostřednictvím spojení avidin-biotin. Preferovaně je alespoň 15 - 20 nukleotidů z každého náhodného fragmentu sekvencováno simultáně single base metodou. Sekvence pro cílový polynukleotid je potom rekonstruována porovnáním jednotlivých sekvencí z náhodných fragmentů prostřednictvím jejich přesahujících částí, za použití stejného algoritmu jako byl použit pro sestavení kontingencí, nebo jako je vyvinut pro sekvencování hybridizaci, jak je popsáno ve výše uvedených odkazech.
Kity pro provedení metod podle vynálezu
Vynález obsahuje kity pro provedení různých provedení vynálezu. Preferovaně kity podle vynálezu zahrnují repertoár komplementu smyček připojených na nosič pevné fáze. Navíc, kity podle vynálezu mohou zahrnovat korespondující repertoár smyček, například jako primerů pro amplifikaci tříděných polynukleotidu nebo jako elementů klonujících vektorů, které také mohou být použity pro amplifikaci tříděných polynukleotidu. Preferovaně je repertoár komplementů smyček připojen na mikročástice. Kity mohou také obsahovat vhodné pufry pro enzymatické zpracování, detekční chemikálie, např. flurescentní nebo chemilumiscentní smyčky a podobně, instrukce pro použití, enzymy pro zpracování, jako jsou ligasy, polymerasy, transferasy, a tak dále. V důležitém provedení pro sekvencování mohou kity také obsahovat substráty, jako jsou avidinované mikroskopické blány, pro fixaci zavedených mikročástic pro zpracování
Identifikace nových polynukleotidů v cDNA knihovnách
Nové polynukleotidy v cDNA knihovnách mohou být identifikovány prostřednictvím konstrukce knihovny cDNA molekul připojených na mikročástice, jak je popsáno výše.
Velká frakce, nebo celá knihovna, může pak být sekvencována paralelně. Po izolaci rnRNA, a snad po normalizaci populace jak míní Soares et al., Proč. Nati. Acad. Sci., 91: 9228 —
9232 (1994), a podobné odkazy, může být následující primer hybridizován na polyA konce pro syntézu prvního řetězce reversní transkriptasou za použití běžných protokolů:
5'-rnRNA-(A)n-3' (T)is-(primer místo)-GG(W,W,W,C)9ACCAGCTGATC-5' kde (W,W,W,C)9 representuje smyčku jak je popsána výše, ACCAGCTGATC je volitelná sekvence vytvářející restrikční místo ve dvouřetězcové formě, a primer místo je sekvence běžná pro všechny členy knihovny, která je později použita jako primer vázající místo pro amplifikaci požadovaných polynukleotidů PCR.
Po reverzní transkripci a syntéze druhého řetězce běžnými technikami jsou dvouřetězcové fragmenty inzertovány do klonovacího vektoru jak je popsáno výše a jsou amplifikovány.
Amplifikovaná knihovna je potom vzorkována a vzorek je amplifikován. Klonovací vektory z amplifikovaného vzorku jsou izolovány, a připojené cDNA fragmenty jsou excidovány a purifikovány. Po zpracování smyčky na jednořetězcovou prostřednictvím polymerasy jak je popsáno výše jsou fragmenty methylovány a tříděny na mikročástice podle vynálezu.
Preferovaně, jak je popsáno výše, je klonující vektor konstruován tak, že připojená cDNA může být excidována endonukleasou, jako je
Fok I, což umožni okamžité sekvencování preferovanou single base metodou po třídění a ligaci na mikročástice.
Postupné sekvencování je potom provedeno simultánně pro celou knihovnu, nebo jednu nebo více větších frakcí knihovny, podle vynálezu dokud není identifikován dostatečný počet nukleotidů každé cDNA pro jedinečné zastoupení v genomu organismu, ze kterého je knihovna odvozena.
Například, jestliže je knihovna odvozena pro savčí mRNA, pak se očekává, že náhodně vybrané sekvence délky 14 - 15 nukleotidů mají jedinečné zastoupení mezi 2-3 megabázemi typického savčího genomu. Pochopitelně že identifikace o mnoho méně nukleotidů by měla být dostatečná pro jedinečné zastoupení v knihovně odvozené od bakterií, nebo od jiných nižších organismů. Preferovaně je identifikováno alespoň 20 - 30 nukleotidů pro zajištění jedinečného zastoupení a umožnění konstrukce vhodného primeru jak je popsáno níže. Zapsané sekvence pak mohou být srovnány se známými sekvencemi pro identifikaci jedinečné cDNA.
Jedinečná cDNA je potom izolována běžnými technikami, např. konstrukcí proby z PCR amplikonu produkovaného primery zaměřenými na počáteční místo a části cDNA, jejíž sekvence byla určena. Proba pak může být použita pro identifikaci cDNA v knihovně za použití běžného protokolu vyšetření.
Příklady provedeni vynálezu
Příklad 1
Třídění mnohotných cílových polynukleotidů odvozených od
PUC19
Směsi tří cílových konjugátů polynukleotid - smyčka byly získány následovně: Nejprve bylo syntetizováno následujících šest oligonukleotidů a byly kombinovány po párech za vytvoření tag 1, tag 2, a tag 3.
51-pTCGACC(wi) (W2)(W3)(w*)(ws)(we)(w7)(we)(wi)A
GG(**)(**)(**)(**)(**)(**)(**)(**)(**)TTCGAp-5'
Tag 1
5'-pTCGACC(Wď)(W7)(we)(wi)(W2)(W6)(W4)(W2)(wi)A
GG(**)(**)(**)(**)(**)(**)(**)(**)(**)TTCGAp-5'
Tag 2 '-pTCGACC (W3 ) (W2) (wi) (wi) (W5) (W8) (we) (W4) (W4)A (**)(**)(**)(**)(**)(**)(**)(**)TTCGAp-5'
Tag 3 kde p indikuje monofosfát, wí reprezentuje podjednotky definované v Tabulce I, a termín (**) reprezentuje jejich příslušné komplementy. pUC19 je tráven Sal I a Hind III, větší fragment je purifikován a separátně ligován se smyčkami 1, 2 a 3 za vytvoření pUC19-í, pUC19-2 a pUC19-3, v příslušném pořadí. Tři rekombinanty jsou separátně amplifikovány a izolovány, po čemž je pUC19-l tráven Hind III a Aat I, pUC19-2 je tráven Hind III a Ssp I a pUC19-3 je tráven Hind III a Xmn I. Malé fragmenty jsou izolovány za použití běžných protokolů za vzniku tří dvouřetězcových fragmentů okolo 250, 375 a 575 párů bází délky, podle příslušnosti, a každý má přerušený 3'řetězec připojený ke smyčce a tupý nebo 3'přesahující řetězec na opačném konci. Přibližně 12 nmol každého fragmentu je smíseno s 5 jednotkami T4 DNA polymerasy ve výrobcem doporučeném reakčním pufru obsahujícím 33 μΜ deoxycytosin trifosfátu. Reakční směs je inkubována při 37 °C po 30 minut a potom je reakce zastavena umístěním na led. Fragmenty jsou potom purifikovány běžnými prostředky.
CPG mikročástice (37 - 74 mm velikost částice, 500 Angstrom velikost póru, Pierce Chemical) jsou derivatizovány linkerem popsaným Maskosem a Southernem, Nucleic Acids Research, 20: 1679 - 1684 (1992). Po separování do tří aliquot jsou komplementy smyček 1, 2 a 3 syntetizovány na mikročásticích za použití běžného automatizovaného DNA syntetizeru, např. model 392 DNA syntetizeru (Applied Biosystems, Foster City, California). Přibližně 1 mg každé odlišně derivatizované mikročástice je umístěn ve zvláštní nádobě.
T4 DNA polymerasou ošetřené fragmenty excidované z pUC19-l, -2 a -3 jsou resuspendovány v 50 μΐ výrobcem doporučeného pufru pro Taq DNA ligasu (New England Biolabs). Směs je potom rovnoměrně rozdělena do tří nádob obsahujících 1 mg každé derivatizované CPG mikročástice. 5 jednotek Taq DNA ligasy je přidáno do každé nádoby, a potom jsou inkubovány při 55 °C po 15 minut. Reakce je zastavena umístěním na ledě a mikročástice jsou promyty několikrát opakovanou centrifugací a resuspendací v TE. Nakonec jsou mikročástice resuspendovány v Nde I reakčním pufru (New
England Biolabs), kde jsou připojené polynukleotidy tráveny. Po separaci z mikročástic jsou polynukleotidové fragmenty uvolněné Nde I trávením fluorescentně značeny inkubací se Sequenase DNA polymerasou a fluorescentně značeny thymidin trifosfátem (Applied Biosystems, Foster City, CA). Fragmenty jsou potom odděleně analyzovány na nedenaturujícím polyakrylamidovém gelu za použiti Applied Biosystems model 373 DNA sekvenátoru.
Příklad 2
Paralelní sekvencování SV40 fragmentů
Repertoár 36-mer smyček skládajících se z devíti
4- nukleotidových podjednotek vybraných z Tabulky 1 je připraven odděleným syntetizováním smyček a komplementů smyček přístupem štěp a míchej, jak je popsáno výše. Repertoár je syntetizován tak, aby dovoloval ligaci do Smal/HindlII tráveného M13mpl9. Tak, jako v Příkladu 1, jedna sada oligonukleotidů začíná s přidáním A po kterém následuje devět kol štěp a míchej syntézy, kde je oligonukleotid rozšířen podjednotkovým způsobem prostřednictvím 3| - fosforamiditem derivatizovaných 4-merů korespondujících k podjednotkám Tabulky 1. Syntéza je potom dokončena nukleotid-nukleotid adicí jedné poloviny Sma I rozpoznávajícího místa (GGG), dvou C a
5- monofosfátu, například pomocí Phosphate-ON činidla dostupného od Clontech Laboratories (Palo Alto, CA). Jiná sada oligonukleotidů začíná s přidáním tří C (část Sma I rozpoznávacího místa) a dvou G, po kterém následuje devět kol štěp a míchej syntézy, kde je oligonukleotid rozšířen podjednotkovým způsobem prostřednictvím 3'- fosforamiditem derivat izovaných 4-merů korespondujících ke komplementům podjednotek Tabulky 1. Syntéza je potom dokončena nukleotid-nukleotid adicí Hind III rozpoznávacího místa a 5'- monofosfátu. Po separaci z nosičů syntesy jsou oligonukleotidy smíseny za podmínek dovolujících tvorbu následujících duplexů:
5'-pGGGCC(wi)(wí)(wí)(wí)(wí)(wí)(wí)(wí)(wí)A
CCCGG(**)(**)(**)(**)(**)(**)(**)(**)(**)TTCGAp-5'
Směs duplexů je potom ligována do Smal/HindlII tráveného M13mpl9. Repertoár komplementů smyček je syntetizován na CPG mikročásticích jak je popsáno výše.
Je připraven další následující adaptor, který obsahuje Fok I místo a části Eco RI a Sma I míst:
5'- pAATTCGGATGATGCATGCATCGACCC
GCCTACTACGTACGTAGCTGGGp-5'
Eco RI Fok I Sma I
Adaptor je ligován do Eco Rl/Sma I tráveného M13 popsaného výše.
Separátně je SV40 DNA fragmentována sonikací podle protokolu daného v Sambrook et al (citován výše). Vzniklé fragmenty jsou opraveny za použití standardních protokolů a separovány podle velikosti. Jsou selektovány fragmenty v rozsahu 300 - 500 párů bází a jsou ligovány do Sma I tráveného M13 popsaného výše za vytvoření knihovny konjugátů fragment-smyčka, která je potom amplifikována. Vzorek, obsahující několik tisíc odlišných fragment-smyčka konjugátů je odebrán z knihovny, dále amplifikován a fragment-smyčka inzerty jsou excidovány trávením Eco RI a Hind III. Excidované fragment-smyčka konjugáty jsou ošetřeny T4 DNA polymerasou za přítomnosti deoxycytidin trifosfátu, jak je popsáno v Příkladu 1, pro vystavení oligonukleotidových smyček specifické hybridizaci na CPG mikročástice.
Po hybridizaci a ligaci, jak je popsáno v Příkladu 1, jsou zavedené mikročástice ošetřeny Fok I za produkce 4-nukleotidových přesahujících řetězců předem určené sekvence. Směs 10:1 (proba 1 : proba 2) následujících prob je ligována na polynukleotidy na mikročásticích.
Proba 1 FAM-ATCGGATGAC
TAGCCTACTGAGCT
Proba 2 biotin-ATCGGATGAC
TAGCCTACTGAGCT
FAM reprezentuje fluorescentní barvivo připojené na 5'hydroxyl horního řetězce Proby 1 prostřednictvím aminofosfátového linkeru dosažitelného od Applied Biosystems (Aminolinker). Biotin může být také připojen prostřednictvím aminolinkerové skupiny a volitelně může být dále rozšířen pomocí polyoxyethylenového linkeru, např. Jaschke et al., (citován výše).
Zavedené mikročástice jsou potom umístěny na povrchu avidinované skleněné blány, na kterou a ze které mohou být činidla a promývací roztoky dopraveny a odstraněny.
Avidinovaná blána s připojenými mikročásticemi je vyšetřována snímacím fluorescentním mikroskopem (např. Zeiss Axioskop vybavený Newport Model PM500-C kontrolorem pohybu, a 520 nm emisním filtrem s dlouhým průchodem, nebo podobný přístroj). Excitační paprsek a fluorescentní emise jsou dopraveny a shromážděny přes stejnou čočku objektivu. Excitační paprsek a sebraná fluorescence jsou separovány dichroickým zrcadlem, která zaměřuje shromážděnou fluorescenci pomocí serie pásmových propustí a na foton-počítací přístroj korespondující monitorovaným fluoroforům, který například zahrnuje Hamamatsu model 9403-02 fotomultiplikátor, Stanford Research Systems model SR445 amplifikátor a model SR430 multikanálový reduktor, a digitální počítač, například na bázi 486 založený počítač. Počítač generuje dvourozměrnou mapu blány, která zaznamenává umístění mikročástic.
Po štěpení Fok I pro odstranění iniciální proby, jsou polynukleotidy na připojených mikročásticích podrobeny 20 cyklům ligace proby, promytí. detekce, štěpení a promytí, v souladu s preferovanou metodou single base sekvencování popsanou níže. Během každého kroku detekce nahrává snímací systém fluorescentní emisi korespondující bázi identifikované na každé mikročástici. Reakce a promytí jsou obecně provedeny pufry podle doporučení výrobce (New England Biolabs) pro použité enzymy, pokud není uvedeno jinak.
Standartní pufry jsou také popsány v Sambrook et al.
(citován výše).
Pro přidání k cílovým polynukleotidům jsou poskytnuty následující čtyři sady smíchaných prob.
TAMRA - ATCGGATGACATCAAC
TAGCCTACTGTAGTTGANNN
FAM - ATCGGATGACATCAAC
TAGCCTACTGTAGTTGCNNN
ROX - ATCGGATGACATCAAC
TAGCCTACTGTAGTTGGNNN
JOE - ATCGGATGACATCAAC
TAGCCTACTGTAGTTGTNNN kde TAMRA, FAM, ROX a JOE jsou spektrálně rozlišitelné fluorescentní značky připojené prostřednictvím Aminolinkeru II (vše od Applied Biosystems, lne., Foster City, CA); tučně vytištěné nukleotidy jsou rozpoznávací místa pro Fok I endonukleasu a N reprezentuje jakýkoliv ze čtyř nukleotidů A, C, G, T. TAMRA (tetraměthylrhodamin), FAM (fluorescein), ROX (rhodamin X), a JOE (27'-dimethoxy-45'-dichlorfluorescein) a jejich připojení k oligonukleotidům je také popsáno v Fung et al., U.S. patent 4855225.
Výše uvedené proby jsou inkubovány v přibližně asi 5 molárním přebytku konců cílového polynukleotidu následovně: proby jsou inkubovány po 60 minut při 16 °C s 200 jednotkami T4 DNA ligasy a zakotveným cílovým polynukleotidem v T4 DNA ligasovém pufru; po promytí je cílový polynukleotid inkubován se 100 jednotkami T4 polynukleotid kinasy ve výrobcem doporučeném pufru po 30 minut při 37 °C, promyt a znovu inkubován po 30 minut při 16 °C s 200 jednotkami T4 DNA ligasy a zakotveným polynukleotidem v T4 DNA ligasovém pufru. Promytí je provedeno opakovaným propláchnutím objemu promývacího pufru přes blánu, např. TE, jak je popsáno v Sambrook et al (citován výše). Po cyklu 1igace-fosforylaceligace a konečném promytí jsou připojené mikročástice snímány na přítomnost fluorescentní značky, a její umístění a charakteristika je náhrávána snímacím systémem. Značený cílový polynukleotid, t.j. ligovaný komplex, je potom inkubován s 10 jednotkami Fok I ve výrobcem doporučeném pufru po 30 minut při 37 °C, a potom následuje promytí v TE Výsledkem je, že cílový polynukleotid je zkrácen o jeden nukleotid na každém řetězci a je připraven pro další cyklus ligace a štěpení. Proces pokračuje, dokud není identifikováno dvacet nukleotidů.
Dodatek I
Příkladný počítačový program pro generování minimálně zkříženě reagujících sad.
Program minxh c
c c
integer*2 subl(6),msetl(1000,6),mset2(1000,6) dimension nbase(6) c
c write(*,*)1ENTER SUBUNIT LENGTH' read(100)nsub
100 formát(il) open(1,file='sub4.dat',form=*formatteď,status='new') c c
nset=0 do 7000 ml=l,3 do 7000 m2=l,3 do 7000 m3=l,3 do 7000 m4=l,3 subl (1) =ml subl(2)=m2 subl(3)=m3 subl(4)=m4 c
c ndiff=3 c c c Generate set of subunits differing from c subl by at least ndiff nucleotides.
c Savé in msetl.
c c
= 1 do 900 j=l,nsub
900 msetl(1,j)=subl(j) c
c do 1000 kl=l,3 do 1000 k2=l,3 do 1000 k3=l,3 do 1000 k4=l,3 c
c nbase(l)=kl nbase(2)=k2 nbase{3)=k3 nbase(4)=k4 c
n=G
1200 c
c c
c c
G c
c c
G do 1200 jxl,nsub if (subl(j) .eq.l .and. nbaseíjΪ .ne.1 .or. subl{j).eq.2 .and. nbaseíj).ne.2 .or. subl(j).eq.3 .and. nbase{j).ne.3) then n=n+l endif continue if ín.ge.ndiff} then
If number of mismatches is greater chán or equal to ndiff then record subunit in matrix mset
1100 c
c
1000 c
c
33=33+1 do 1100 i=l,nsub msetl(j j,i)=nbase(i) endif continue
1325 c
c c
c c
c c
c c
c c
c
G c
£ c
c c
c c
1700 do 1325 j2=l,nsub mset2(1,j2)=msetl(1,j2) mset2(2,j 2)=msetl(2,j2)
Compare subunit 2 from msetl with eačh successive subunit in msetl, i.e. 3, 4,5, ... etc. Savé those with mismatches .ge. ndiff in matrix mset2 starting at position 2.
Next transfer contents of mset2 into msetl and start comparisons again this time starting with subunit 3. Continue ur.til all subunits undergo the comparisons.
npass=0 continue kk=npass+2 npass=npass+I do 1500 m=npass+2,jj
1600
1625
1500 c
c c
c c
c c
2000 c
c
7009
7008
7010
120
7000 c
n=0 do 1600 j=l,nsub if(msetl(npass+l,j),eq.1.and.msetl(m,j).ne.l.or. msetl(npass+1,j).eq.2.and.msecl(m,j).ne.2.or. msetl(npass+1,j).eq.3.and.msecl(m, j).ne.3) Chen n=n+l endif concinue if(n.ge.ndiff) then kk=kk+l do 1625 i=l,nsub mset2(kk,i)=msetl(m,i) endi f continue kk is che number of subunits stored in mset2
Transfer contents of mset2 into msetl for next pass.
do 2000 k=l,kk do 2000 m=l,nsub msetl(k,m)=mset2(k,m) if(kk.lt.jj) then jj=kk goto 1700 endif nset=nset+l write(l,7009) formát(/) do 7008 k=l,kk write(l,7010)(msetl(k,m),m=l,nsub) formát(4il) write(’r,*) write(*,120) kk.nset formát(lx,’Subunits in set=',i5,2x,'Set No=‘,i5) continue close(1) end
Seznam sekvencí (1) Obecné informace (i) Přihlašovatel: Sydney Brenner (ii) Název vynálezu: Molekulární systém pro vytváření smyček (iii) Počet sekvencí: 5 (iv) Adresa pro korespondenci
(A) Adresa: Stephen C. Macevicz, Lynx Therapeutics,
(B) Ulice: 3832 Bay Center Plače
(C) Město: Hayward
(D) Stát: California
(E) Země: USA
(F) ZIP: 94545
Počítačová čtecí forma:
(A) Typ media: 3,5 palce disketa
(B) Počítač: IBM PC compatibilní
(C) Operační systém: Windows 3.1/DOS 5 .0
(D) Software : Microsoft Word for Windows, verse 2.0
(vi) nynější data přihlášky:
(A) Číslo přihlášky:
(B) Datum podání:
(C) Klasifikace:
(vii) Předchozí data přihlášky:
(A) Číslo přihlášky: 08/322348 (B) Datum podání: 13.10.94 (vii) Předchozí data přihlášky:
(A) Číslo přihlášky: 08/358810 (B) Datum podání: 19.12.94 (viii) Informace o zástupci/agentovi (A) Jméno: Stephen C. MAcevicz (B) Registrační číslo: 30285 (C) číslo registrace/dokladu: cbd3wo (ix) Telekomunikační informace:
(A) Telefon: (510) 670-9365 (B) Telefax: (510) 670-9302 (2) informace pro sekvenci č.l:
(i) Sekvenční charakteristiky:
(A) délka: 38 nukleotidů (B) typ: nukleová kyselina (C) typ řetězce: jednoduchý (D) topologie: lineární (xi) Popis sekvence: SEQ ID No: 1:
GAGGATGCCT TTATGGATCC ACTCGAGATC CCAATCCA (2) informace pro sekvenci č.2:
(i) Sekvenční charakteristiky:
(A) délka: 26 nukleotidů (B) typ: nukleová kyselina (C) typ řetězce: jednoduchý (D) topologie: lineární (xi) Popis sekvence: SEQ ID No: 2:
AATTCGGATG ATGCATGCAT CGACCC 26 (2) informace pro sekvenci č.3:
(i) Sekvenční charakteristiky:
(A) délka: 14 nukleotidů (B) typ: nukleová kyselina (C) typ řetězce: jednoduchý (D) topologie: lineární (xi) Popis sekvence: SEQ ID No: 3:
TAGCCTACTG AGCT 14 (2) informace pro sekvenci č.4:
(i) Sekvenční charakteristiky:
(A) délka: 16 nukleotidů (B) typ: nukleová kyselina (C) typ řetězce: dvojitý (D) topologie: lineární (xi) Popis sekvence: SEQ ID No: 4:
ATCGGATGAC ATCAAC (2) informace pro sekvenci č.5:
(i) Sekvenční charakteristiky:
(A) délka: 11 nukleotidů (B) typ: nukleová kyselina (C) typ řetězce: dvojitý (D) topologie: lineární (xi) Popis sekvence: SEQ ID No: 5:

Claims (64)

1. Způsob třídění molekul nebo subpopulací molekul z populace molekul vyznačující se tím, že obsahuje kroky:
(a) připojení oligonukleotidové smyčky z repertoáru smyček na každou molekulu v populaci molekul (i) tak, že v podstatě všechny stejné molekuly nebo subpopulace molekul v populaci mají připojenou stejnou oligonukleotidovou smyčku a v podstatě všechny odlišné molekuly nebo odlišné subpopulace molekul v populaci mají připojenou odlišnou oligonukleotidovou smyčku a (ii) tak, že každá oligonukleotidová smyčka z repertoáru obsahuje množství podjednotek a každá podjednotka z tohoto množství se skládá z oligonukleotidu majícího délku od tří do šesti nukleotidů nebo od tří do šesti párů bází, kde podjednotka je vybrána z minimálně zkříženě hybridizující sady; a (b) třídění molekul nebo subpopulací molekul z populace specifickou hybridizací oligonukleotidových smyček s jejich příslušnými komplementy.
2. Způsob podle nároku 1,vyznaču jící se t í m, že uvedenou molekulou nebo subpopulací molekul je polynukleotid nebo subpopulace polynukleotidů.
3. Způsob podle nároku 2,vyznačuj ící se t í m, že uvedené komplementy uvedených oligonukleotidových smyček jsou připojeny na nosič pevné fáze.
4. Způsob podle nároku 3, vyznačující se t í m, že uvedený nosič pevné fáze je mikročástice, která má na sebe připojenou uniformní populaci uvedených komplementů.
5. Způsob podle nároku 4, vyznačující se t í m, že uvedená oligonukleotidová smyčka a uvedený komplement jsou jednořetězcové oligonukleotidy.
6. Způsob podle nároku 5, vyznačující se t í m, že uvedený polynukleotid nebo subpopulace polynukleotidů má délku v rozmezí od 50 do 5000 nukleotidů.
7. Způsob podle nároku 5,vyznaču jící se t í m, že uvedená mikročástice je vybrána ze skupiny skládající se z skleněných mikročástic, magnetických korálků, glycidalmethakrylátových mikročástic, polystyrénových mikročástic.
8. Způsob podle nároku 7, vyznačující se t í m, že průměr uvedené mikročástice je mezi 1 a 100 pm.
9. Způsob podle nároku 3, vyznačující se t í m, že uvedený nosič pevné fáze je plošný substrát mající množství prostorové oddělených regionů, majících na sebe připojenu uniformní populaci uvedených komplementů.
10. Způsob podle nároku 9, vyznačující se t í m, že různé uvedené prostorové oddělené povrchové regiony uvedeného množství mají uniformní populaci různých uvedených komplementů.
11. Způsob podle nároku 10, vyznačující se t í m, že uvedený plošný substrát je vybrán ze skupiny skládající se ze skla, silikonu a plastu.
12. Způsob podle nároku 1, vyznačující se t í m, že uvedenou molekulou nebo uvedenou subpopulací molekul je polypeptid nebo subpopulace polypeptidů.
13. Způsob podle nároku 12, vyznačující se t í m, že uvedené komplementy uvedených oligonukleotidových smyček jsou připojeny na nosič pevné fáze.
14. Způsob podle nároku 13, vyznačující se t í m, že uvedený oligonukleotid a uvedený komplement jsou jednořetězcové oligonukleotidy.
15. Způsob podle nároku 14, vyznačující se t í m, že uvedený nosič pevné fáze je mikročástice mající na sebe připojenou uniformní populaci uvedených komplementů.
16. Způsob podle nároku 15, vyznačující se t í m, že uvedená mikročástice je vybrána ze skupiny skládající se z skleněných mikročástic, magnetických korálků, polystyrénových mikročástic.
17. Způsob podle nároku 16,vyznačuj ící se t í m, že uvedený nosič pevné fáze je plošný substrát mající množství prostorové oddělených regionů majících na sebe připojenu uniformní populaci uvedených komplementů.
18. Způsob podle nároku 17, vyznačující se t í m, že různé uvedené prostorové oddělené povrchové regiony uvedeného množství mají uniformní populaci různých uvedených komplementů.
19. Způsob podle nároku 18,vyznaču jící se t í m, že uvedený plošný substrát je vybrán ze skupiny skládající se ze skla, silikonu a plastu.
20. Způsob podle nároku 1,vyznačuj ící se t í m, že uvedenou molekulou nebo uvedenou subpopulací molekul je lineární polymer vzorce:
-(M-L)nkde:
L je fosfor (V) vazebná skupina;
M je přímo řetězecová, cyklická nebo rozvětvená organická molekulární struktura obsahující od 1 do 20 atomů uhlíku a od 0 do 10 heteroatomů vybraných ze skupiny skládající se z kyslíku, dusíku a síry; a n je v rozsahu od 3 do 100.
21. Způsob podle nároku 20, vyznačující se tím, že M je alkyl, alkoxy, alkenyl nebo aryl obsahující od 1 do 16 atomů uhlíku, nebo heterocyklus mající od 3 do 8 atomů uhlíku a od 1 do tří heteroatomů vybraných ze skupiny skládající se z kyslíku, dusíku a síry.
22. Způsob podle nároku 21,vyznačuj ící se t í m, že uvedené komplementy uvedených nukleotidových smyček jsou připojeny na nosič pevné fáze.
23. Způsob podle nároku 22, vyznačující se t í m, že uvedený nosič pevné fáze je mikročástice mající na sebe připojenou uniformní populaci uvedených komplementů.
24. Způsob podle nároku 23,vyznačuj ící se t i m, že uvedená mikročástice je vybrána ze skupiny skládající se z skleněných mikročástic, magnetických korálků, polystyrénových mikročástic.
25. Způsob podle nároku 22,vyznačuj ící se t í m, že uvedený nosič pevné fáze je plošný substrát mající množství prostorové nepřekrývajících se povrchových regionů, které mají na sebe připojenu uniformní populaci uvedených komplementů uvedených oligonukleotidových smyček.
26. Způsob podle nároku 25,vyznačuj ící se t í m, že různé uvedené prostorové oddělené povrchové regiony uvedeného množství mají uniformní populaci různých uvedených komplementů.
27. Způsob určení nukleotidové sekvence cílového polynukleotidů vyznačující se tím, že uvedený způsob obsahuje kroky:
generování množství fragmentů z cílového polynukleotidů, které pokryjí cílový polynukleotid;
připojení oligonukleotidové smyčky z repertoáru smyček na každý fragment množství (i) tak, že v podstatě všechny stejné fragmenty mají připojenou stejnou oligonukleotidovou smyčku a v podstatě všechny odlišné fragmenty mají připojenou odlišnou oligonukleotidovou smyčku a (ii) tak, že každá oligonukleotidová smyčka z repertoáru obsahuje množství podjednotek a každá podjednotka z tohoto množství se skládá z oligonukleotidu majícíhio délku od tří do šesti nukleotidů nebo od tří do šesti párů bází, kde podjednotka je vybrána z minimálně zkříženě hybridizující sady; a třídění fregmentů specifickou hybridizaci oligonukleotidových smyček s jejich příslušnými komplementy;
určení nukieotidové sekvence části každého fragmentu z množství; a určení nukieotidové sekvence cílového polynukleotidů porovnáním sekvencí fragmentů.
28. Způsob podle nároku 27, vyznačující se t í m, že uvedené komplementy uvedených oligonukleotidových smyček jsou připojeny na nosič pevné fáze.
29. Způsob podle nároku 28, vyznačující se t í m, že uvedené oligonukleotidové smyčky a uvedené komplementy jsou jednořetězcové oligonukleotidy.
30. Způsob podle nároku 29, vyznačující t í m, že uvedený krok generování produkuje náhodně přesahující fragmenty zmíněného cílového polynukleotidů.
31. Způsob podle nároku 30, vyznačující se t í m, že uvedený krok určení uvedené nukleotidové sekvence uvedených fragmentů je proveden simultánně pro uvedené množství fragmentů metodou single base sekvencování.
32. Způsob podle nároku 31, vyznačující se t í m, že uvedené části každého uvedeného fragmentu obsahují od 12 do 50 nukleotidů.
33. Způsob podle nároku 32, vyznačující se t í m, že uvedené části každého uvedeného fragmentu obsahují od 12 do 25 nukleotidů.
34. Způsob podle nároku 33, vyznačující se t í m, že uvedený cílový polynukleotid je délky mezi jednou a padesáti kilobázemi.
35. Způsob podle nároku 28, vyznačující se t í m, že uvedeným nosičem pevné fáze je množství mikročástic, kde každá má na sebe připojenou uniformní populaci uvedených komplementů.
36. Způsob podle nároku 35, vyznačující se t í m, že po uvedeném kroku třídění je množství mikročástic fixováno na plošný substrát.
37. Způsob podle nároku 36, vyznačující se t í m, že uvedené množství mikročástic je rozloženo náhodně na povrchu uvedeného plošného substrátu v hustotě od asi 1000 mikročástic do asi 100000 mikročástic na centimetr čtvereční.
38. Kompozice vyznačující se tím, že zahrnuj e nosič pevné fáze, který má jeden nebo více prostorově oddělených regionů;a uniformní populaci komplementů oligonukleotidových smyček kovalentně vázaných na nosič pevné fáze v alespoň jednom nebo více prostorově oddělených regionech, kde komplementy oligonukleotidové smyčky obsahují množství podjednotek, kde každá podjednotka se skládá z oligonukleotidu majícího délku od tří do šesti nukleotidů a každá podjednotka je vybrána z minimálně zkříženě reagující sady.
39. Kompozice podle nároku 38 vyznačující se t í m, že uvedené množství uvedených podjednotek je v rozsahu od 4 do 10.
40. Kompozice podle nároku 39 vyznačující se t í m, že uvedený nosič pevné fáze je mikročástice mající jednotlivé prostorově oddělené regiony.
41. Kompozice podle nároku 40 vyznačuj ící se t í m, že uvedená mikročástice je vybrána ze skupiny skládající se z skleněných mikročástic, magnetických korálků, polystyrénových mikročástic.
42. Způsob klasifikace populace polynukleotidů, vyznačující se tím, že zahrnuje kroky: připojení oligonukleotidové smyčky na každý polynukleotid populace (i) tak, že v podstatě všechny stejné polynukleotidy mají připojenou stejnou oligonukleotidovou smyčku a v podstatě všechny odlišné polynukleotidy mají připojenou odlišnou oligonukleotidovou smyčku a (ii) tak, že každá oligonukleotidová smyčka obsahuje množství podjednotek a každá podjednotka z tohoto množství se skládá z oligonukleotidu majícího délku od tří do šesti nukleotidů, kde podjednotka je vybrána z minimálně zkříženě hybridizující sady; a třídění polynukleotidů specifickou hybridizací oligonukleotidových smyček s jejich příslušnými komplementy;
určení nukleotidové sekvence části každého tříděného polynukleotidu; a klasifikace populace polynukleotidů podle frekvence distribuce částí sekvencí polynukleotidů.
43. Způsob podle nároku 42, vyznačující se t í m, že uvedené komplementy uvedených oligonukleotidových smyček jsou kovalentně připojeny na nosič pevné fáze.
44. Způsob podle nároku 43,vyznačuj ící se t í m, že uvedeným nosičem pevné fáze je mikročástice a že na každou uvedenou mikročástici je připojena uniformní populace uvedených komplementů.
45. Způsob podle nároku 44,vyznačuj ící se t í m, že uvedenou populací polynukleotidů je cDNA knihovna.
46. Způsob podle nároku 45, vyznačující se t í m, že uvedené části každého uvedených polynukleotidů jsou v rozsahu od 12 do 50 nukleotidů.
47. Způsob podle nároku 46, vyznačující se t í m, že uvedené části každého uvedených polynukleotidů jsou v rozsahu od 12 do 25 nukleotidů.
48. Repertoár oligonukleotidových smyček, kde repertoár je vybrán ze skupiny skládající se z oligonukleotidů vzorce:
S1S2S3...Sn kde každé Si až Sn jsou podjednotky skládající se z oligonukleotidů majících délku od tří do šesti nukleotidů a jsou vybrány z minimálně zkříženě reagující sady; a n je v rozsahu od 4 do 10.
49. Repertoár podle nároku 48, vyznačující se t í m, že uvedené podednotky se skládají z oligonukleotidů majícího délku od čtyř do pěti nukleotidů a kde n je v rozsahu od 6 do 9.
50. Repertoár klonujících vektorů pro připojení oligonukleotidových smyček na polynukleotidy, kde repertoár má dvouřetězcové elementy vzorce:
S1S 2S3...Sn kde každé Si až Sn jsou podjednotky skládající se z oligonukleotidů majících délku od tří do šesti nukleotidů a jsou vybrány z minimálně zkříženě reagující sady; a n je v rozsahu od 4 do 10.
51, Repertoár podle nároku 50,vyznačující se t í ni, že uvedený dvouřetězcový element je sousedící k regionu polylinkeru obsahujícímu jedno nebo více štěpících míst pro restrikční endonukleasu pro inserci uvedených polynukleotidů do uvedeného klonujícího vektoru.
52. Způsob třídění směsi polynukleotidů, vyznačující se tím, že obsahuje kroky:
poskytnutí roztoku obsahujícího směs polynukleotidů, kde má každý polynukleotid směsi připojenou oligonukleotidovou smyčku z repertoáru smyček, kde každá oligonukleotidová smyčka z repertoáru obsahuje množství podjednotek a každá podjednotka z tohoto množství se skládá z oligonukleotidů majícího délku od tří do šesti nukleotidů, kde podjednotka je vybrána z minimálně zkříženě hybridi zující sady;
vzorkování směsi polynukleotidů za vytvoření subpopulace polynukleotidů, kde v podstatě všechny polynukleotidy stejné sekvence mají připojenou stejnou oligonukleotidovou smyčku a v podstatě všechny polynukleotidy odlišné sekvence mají připojenou odlišnou oligonukleotidovou smyčku; a kontaktování subpopulace s jedním nebo více nosiči pevné fáze, které mají na sebe připojeny komplementy oligonukleotidových smyček za podmínek navozujících tvorbu přesně spárovaných duplexů mezi oligonukleotidovými smyčkami a jejich příslušnými komplementy.
53. Způsob podle nároku 52 vyznačující se t í m, že uvedeným nosičem pevné fáze je mikročástice která má na sebe připojenou uniformní populaci uvedených komplementů.
54. Způsob podle nároku 53 vyznačující se tím, že uvedená oligonukleotidová smyčka a uvedený komplement jsou jednořetězcové oligonukleotidy.
55. Způsob podle nároku 54 vyznačující se t í m, že uvedený polynukleotid má délku v rozsahu od 50 do 5000 nukleotidů.
56. Způsob podle nároku 55 vyznačuj ící se t í m, že uvedená mikročástice je vybrána ze skupiny skládající se z skleněných mikročástic, magnetických korálků, polystyrénových mikročástic.
57. Způsob podle nároku 56 vyznačující se t í m, že uvedený nosič pevné fáze je plošný substrát mající množství prostorové oddělených povrchových regionů, které mají na sebe připojenu uniformní populaci uvedených komplementů.
58. Způsob podle nároku 57 vyznačuj ící se t í m, že různé uvedené prostorové oddělené povrchové regiony uvedeného množství mají uniformní populaci různých uvedených komplementů.
59. Způsob generování jednořetězcového segmentu předem určené délky na konci dvouřetězcové DNA, vyznačující se tím, že zahrnuje kroky:
poskytnutí 5' řetězce na konci dvouřetězcové DNA tak, že 5' řetězec je složen z nukleotidů vybraných z první skupiny skládající se ze tří nebo méně druhů nukleotidů a tak, že předem určená délka 5' řetězce je definována přítomností druhého nukleotidu takového typu, který není přítomen v první skupině, na jeho 3' konci; a vystavení konce dvouřetězcové DNA T4 DNA polymerase za přítomnosti nukleosid trifosfátu druhého nukleotidu.
60. Způsob detegování nových cDNA molekul v cDNA knihovně, vyznačující se tím, že zahrnuje kroky:
tvorbu cDNA knihovny z populace mENA molekul, kde každá cDNA molekula v cDNA knihovně má připojenou oligonukleotidovou smyčku (i) tak, že v podstatě všechny stejné cDNA molekuly mají připojenou stejnou oligonukleotidovou smyčku a v podstatě všechny odlišné cDNA molekuly mají připojenou odlišnou oligonukleotidovou smyčku a (i i) tak, že každá oligonukleotidová smyčka obsahuje množství podjednotek a každá podjednotka z tohoto množství se skládá z oligonukleotidu majícího délku od tří do šesti nukleotidů, kde podjednotka je vybrána z minimálně zkříženě hybridi zující sady; a třídění cDNA molekul specifickou hybridizaci oligonukleotidových smyček s jejich příslušnými komplementy;
určení nukieotidové sekvence části každé tříděné cDNA molekuly; a identifikace nových cDNA molekul srovnáním nukieotidové sekvence částí tříděných cDNA molekul se sekvencemi známých cDNA molekul.
61. Způsob podle nároku 60 vyznačující se t í m, že uvedené komplementy uvedených oligonukleotidových smyček jsou kovalentně připojeny na nosič pevné fáze.
62. Způsob podle nároku 61 vyznaču jící se t í m, že uvedeným nosičem pevné fáze je mikročástice a že na každou mikročástici je připojena uniformní populace uvedených komplementů.
63. Způsob podle nároku 62 vyznačující se t í m, že uvedená část uvedené cDNA molekuly je v rozsahu od 12 do 50 nukleotidů.
64. Způsob podle nároku 63 vyznačující se t í m, že uvedená část uvedené cDNA molekuly je v rozsahu od 12 do 25 nukleotidů.
CZ97866A 1994-10-13 1995-10-12 Molecular system for making loops CZ86697A3 (en)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US32234894A 1994-10-13 1994-10-13
US08/358,810 US5604097A (en) 1994-10-13 1994-12-19 Methods for sorting polynucleotides using oligonucleotide tags
PCT/US1995/012791 WO1996012014A1 (en) 1994-10-13 1995-10-12 Molecular tagging system

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ86697A3 true CZ86697A3 (en) 1997-09-17

Family

ID=26983370

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ97866A CZ86697A3 (en) 1994-10-13 1995-10-12 Molecular system for making loops

Country Status (13)

Country Link
US (4) US5604097A (cs)
EP (3) EP2110445A3 (cs)
JP (6) JP4206130B2 (cs)
KR (2) KR970707279A (cs)
AT (1) ATE323159T1 (cs)
AU (2) AU712929B2 (cs)
CA (1) CA2202167C (cs)
CZ (1) CZ86697A3 (cs)
DE (1) DE69534930T2 (cs)
FI (1) FI971473A (cs)
HU (1) HUT77916A (cs)
NO (1) NO971644L (cs)
WO (1) WO1996012014A1 (cs)

Families Citing this family (504)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5800992A (en) 1989-06-07 1998-09-01 Fodor; Stephen P.A. Method of detecting nucleic acids
US5547839A (en) * 1989-06-07 1996-08-20 Affymax Technologies N.V. Sequencing of surface immobilized polymers utilizing microflourescence detection
EP0562047A4 (en) 1990-12-06 1995-11-02 Affymax Tech Nv Sequencing by hybridization of a target nucleic acid to a matrix of defined oligonucleotides
US7375198B2 (en) * 1993-10-26 2008-05-20 Affymetrix, Inc. Modified nucleic acid probes
US6156501A (en) * 1993-10-26 2000-12-05 Affymetrix, Inc. Arrays of modified nucleic acid probes and methods of use
US6013445A (en) * 1996-06-06 2000-01-11 Lynx Therapeutics, Inc. Massively parallel signature sequencing by ligation of encoded adaptors
USRE43097E1 (en) 1994-10-13 2012-01-10 Illumina, Inc. Massively parallel signature sequencing by ligation of encoded adaptors
US6406848B1 (en) 1997-05-23 2002-06-18 Lynx Therapeutics, Inc. Planar arrays of microparticle-bound polynucleotides
US6654505B2 (en) 1994-10-13 2003-11-25 Lynx Therapeutics, Inc. System and apparatus for sequential processing of analytes
US5846719A (en) 1994-10-13 1998-12-08 Lynx Therapeutics, Inc. Oligonucleotide tags for sorting and identification
US6280935B1 (en) 1994-10-13 2001-08-28 Lynx Therapeutics, Inc. Method of detecting the presence or absence of a plurality of target sequences using oligonucleotide tags
US6974666B1 (en) * 1994-10-21 2005-12-13 Appymetric, Inc. Methods of enzymatic discrimination enhancement and surface-bound double-stranded DNA
US8236493B2 (en) * 1994-10-21 2012-08-07 Affymetrix, Inc. Methods of enzymatic discrimination enhancement and surface-bound double-stranded DNA
JP4293634B2 (ja) * 1995-06-07 2009-07-08 ソレクサ・インコーポレイテッド 分類および同定のためのオリゴヌクレオチドタグ
WO1996041011A1 (en) * 1995-06-07 1996-12-19 Lynx Therapeutics, Inc. Oligonucleotide tags for sorting and identification
US5780231A (en) * 1995-11-17 1998-07-14 Lynx Therapeutics, Inc. DNA extension and analysis with rolling primers
US6312893B1 (en) 1996-01-23 2001-11-06 Qiagen Genomics, Inc. Methods and compositions for determining the sequence of nucleic acid molecules
US6027890A (en) * 1996-01-23 2000-02-22 Rapigene, Inc. Methods and compositions for enhancing sensitivity in the analysis of biological-based assays
US6613508B1 (en) * 1996-01-23 2003-09-02 Qiagen Genomics, Inc. Methods and compositions for analyzing nucleic acid molecules utilizing sizing techniques
EP0880598A4 (en) * 1996-01-23 2005-02-23 Affymetrix Inc RAPID EVALUATION OF NUCLEIC ACID ABUNDANCE DIFFERENCE, WITH A HIGH-DENSITY OLIGONUCLEOTIDE SYSTEM
US6852487B1 (en) 1996-02-09 2005-02-08 Cornell Research Foundation, Inc. Detection of nucleic acid sequence differences using the ligase detection reaction with addressable arrays
US6458530B1 (en) * 1996-04-04 2002-10-01 Affymetrix Inc. Selecting tag nucleic acids
US5948615A (en) * 1996-04-16 1999-09-07 Hitachi, Ltd. Method for analysis of nucleic acid and DNA primer sets for use therein
US7041510B2 (en) 1996-04-25 2006-05-09 Bioarray Solutions Ltd. System and method for programmable illumination pattern generation
WO1997040385A1 (en) 1996-04-25 1997-10-30 Bioarray Solutions, Llc Light-controlled electrokinetic assembly of particles near surfaces
US6958245B2 (en) 1996-04-25 2005-10-25 Bioarray Solutions Ltd. Array cytometry
US7144119B2 (en) * 1996-04-25 2006-12-05 Bioarray Solutions Ltd. System and method for programmable illumination pattern generation
US6387707B1 (en) * 1996-04-25 2002-05-14 Bioarray Solutions Array Cytometry
US6048691A (en) * 1996-05-13 2000-04-11 Motorola, Inc. Method and system for performing a binding assay
CA2255774C (en) * 1996-05-29 2008-03-18 Cornell Research Foundation, Inc. Detection of nucleic acid sequence differences using coupled ligase detection and polymerase chain reactions
JP4124377B2 (ja) * 1996-06-06 2008-07-23 ソレクサ・インコーポレイテッド コードアダプターの連結による配列決定
CA2301230A1 (en) 1996-09-20 1998-03-26 Digital Drives, Inc. Spatially addressable combinatorial chemical arrays in cd-rom format
GB9620769D0 (en) * 1996-10-04 1996-11-20 Brax Genomics Ltd Nucleic acid sequencing
US6258533B1 (en) * 1996-11-01 2001-07-10 The University Of Iowa Research Foundation Iterative and regenerative DNA sequencing method
US5858671A (en) * 1996-11-01 1999-01-12 The University Of Iowa Research Foundation Iterative and regenerative DNA sequencing method
US6133436A (en) 1996-11-06 2000-10-17 Sequenom, Inc. Beads bound to a solid support and to nucleic acids
US6060240A (en) * 1996-12-13 2000-05-09 Arcaris, Inc. Methods for measuring relative amounts of nucleic acids in a complex mixture and retrieval of specific sequences therefrom
US7622294B2 (en) * 1997-03-14 2009-11-24 Trustees Of Tufts College Methods for detecting target analytes and enzymatic reactions
US20030027126A1 (en) 1997-03-14 2003-02-06 Walt David R. Methods for detecting target analytes and enzymatic reactions
GB9708606D0 (en) * 1997-04-28 1997-06-18 Webster Andrew Sequencing
US6007990A (en) * 1997-04-29 1999-12-28 Levine; Robert A. Detection and quantification of one or more nucleotide sequence target analytes in a sample using spatially localized target analyte replication
EP0981535A4 (en) * 1997-05-12 2000-11-29 Life Technologies Inc PROCESSES FOR PRODUCING AND PURIFYING NUCLEIC ACID MOLECULES
US6969488B2 (en) * 1998-05-22 2005-11-29 Solexa, Inc. System and apparatus for sequential processing of analytes
WO1998055657A1 (en) * 1997-06-05 1998-12-10 Cellstore Methods and reagents for indexing and encoding nucleic acids
US6096496A (en) * 1997-06-19 2000-08-01 Frankel; Robert D. Supports incorporating vertical cavity emitting lasers and tracking apparatus for use in combinatorial synthesis
ATE289358T1 (de) * 1997-06-27 2005-03-15 Lynx Therapeutics Inc Verfahren zur restriktionskarten-analyse von polynukleotiden
AU8409298A (en) * 1997-07-16 1999-02-10 David W. Burden Synthetic oligonucleotide-peptide conjugates and methods of use
US6607878B2 (en) 1997-10-06 2003-08-19 Stratagene Collections of uniquely tagged molecules
US6265163B1 (en) 1998-01-09 2001-07-24 Lynx Therapeutics, Inc. Solid phase selection of differentially expressed genes
US6054276A (en) 1998-02-23 2000-04-25 Macevicz; Stephen C. DNA restriction site mapping
US6136537A (en) * 1998-02-23 2000-10-24 Macevicz; Stephen C. Gene expression analysis
US6019896A (en) * 1998-03-06 2000-02-01 Molecular Dynamics, Inc. Method for using a quality metric to assess the quality of biochemical separations
JP2002506635A (ja) * 1998-03-18 2002-03-05 クアーク バイオテク インコーポレイテッド 遺伝子の同定に対する選択サブトラクションアプローチ
AU3572799A (en) * 1998-04-24 1999-11-16 Genova Pharmaceuticals Corporation Function-based gene discovery
US6780591B2 (en) 1998-05-01 2004-08-24 Arizona Board Of Regents Method of determining the nucleotide sequence of oligonucleotides and DNA molecules
US7875440B2 (en) 1998-05-01 2011-01-25 Arizona Board Of Regents Method of determining the nucleotide sequence of oligonucleotides and DNA molecules
KR20010025018A (ko) * 1998-05-13 2001-03-26 스펙트라 사이언스 코포레이션 마이크로 레이징 비드 및 구조와, 관련 방법
CA2335951C (en) 1998-06-24 2013-07-30 Mark S. Chee Decoding of array sensors with microspheres
US7399844B2 (en) * 1998-07-09 2008-07-15 Agilent Technologies, Inc. Method and reagents for analyzing the nucleotide sequence of nucleic acids
US20100130368A1 (en) * 1998-07-30 2010-05-27 Shankar Balasubramanian Method and system for sequencing polynucleotides
US20040106110A1 (en) * 1998-07-30 2004-06-03 Solexa, Ltd. Preparation of polynucleotide arrays
US6703228B1 (en) 1998-09-25 2004-03-09 Massachusetts Institute Of Technology Methods and products related to genotyping and DNA analysis
EP1001037A3 (en) * 1998-09-28 2003-10-01 Whitehead Institute For Biomedical Research Pre-selection and isolation of single nucleotide polymorphisms
CA2346989A1 (en) * 1998-10-19 2000-04-27 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Dna-templated combinatorial library chemistry
US6480791B1 (en) * 1998-10-28 2002-11-12 Michael P. Strathmann Parallel methods for genomic analysis
JP4651196B2 (ja) * 1998-11-02 2011-03-16 ソレクサ・インコーポレイテッド 相補的オリゴヌクレオチドタグセットを作製するための方法
ATE250784T1 (de) * 1998-11-27 2003-10-15 Synaptics Uk Ltd Positionssensor
WO2000034527A2 (en) 1998-12-11 2000-06-15 The Regents Of The University Of California Targeted molecular bar codes
NO986133D0 (no) * 1998-12-23 1998-12-23 Preben Lexow FremgangsmÕte for DNA-sekvensering
AU779231B2 (en) * 1999-02-22 2005-01-13 Lynx Therapeutics, Inc. Polymorphic DNA fragments and uses thereof
GB9905807D0 (en) * 1999-03-12 1999-05-05 Amersham Pharm Biotech Uk Ltd Analysis of differential gene expression
WO2000056925A2 (en) * 1999-03-19 2000-09-28 Aclara Biosciences, Inc. Methods for single nucleotide polymorphism detection
WO2000058516A2 (en) * 1999-03-26 2000-10-05 Whitehead Institute For Biomedical Research Universal arrays
US6261782B1 (en) 1999-04-06 2001-07-17 Yale University Fixed address analysis of sequence tags
US20060275782A1 (en) * 1999-04-20 2006-12-07 Illumina, Inc. Detection of nucleic acid reactions on bead arrays
EP1190100B1 (en) 1999-05-20 2012-07-25 Illumina, Inc. Combinatorial decoding of random nucleic acid arrays
US6544732B1 (en) * 1999-05-20 2003-04-08 Illumina, Inc. Encoding and decoding of array sensors utilizing nanocrystals
US20030186311A1 (en) * 1999-05-21 2003-10-02 Bioforce Nanosciences, Inc. Parallel analysis of molecular interactions
US8481268B2 (en) 1999-05-21 2013-07-09 Illumina, Inc. Use of microfluidic systems in the detection of target analytes using microsphere arrays
US6573369B2 (en) * 1999-05-21 2003-06-03 Bioforce Nanosciences, Inc. Method and apparatus for solid state molecular analysis
US20020042081A1 (en) * 2000-10-10 2002-04-11 Eric Henderson Evaluating binding affinities by force stratification and force panning
US20030073250A1 (en) * 1999-05-21 2003-04-17 Eric Henderson Method and apparatus for solid state molecular analysis
US8080380B2 (en) * 1999-05-21 2011-12-20 Illumina, Inc. Use of microfluidic systems in the detection of target analytes using microsphere arrays
US8137906B2 (en) 1999-06-07 2012-03-20 Sloning Biotechnology Gmbh Method for the synthesis of DNA fragments
US6818395B1 (en) 1999-06-28 2004-11-16 California Institute Of Technology Methods and apparatus for analyzing polynucleotide sequences
US7501245B2 (en) 1999-06-28 2009-03-10 Helicos Biosciences Corp. Methods and apparatuses for analyzing polynucleotide sequences
US6465183B2 (en) * 1999-07-01 2002-10-15 Agilent Technologies, Inc. Multidentate arrays
US6403319B1 (en) * 1999-08-13 2002-06-11 Yale University Analysis of sequence tags with hairpin primers
ATE542916T1 (de) 1999-08-18 2012-02-15 Illumina Inc Methoden zur erzeugung von oligonukleotidlösungen
WO2001014589A2 (en) * 1999-08-20 2001-03-01 Luminex Corporation Liquid array technology
US6274320B1 (en) 1999-09-16 2001-08-14 Curagen Corporation Method of sequencing a nucleic acid
US7211390B2 (en) * 1999-09-16 2007-05-01 454 Life Sciences Corporation Method of sequencing a nucleic acid
US7244559B2 (en) * 1999-09-16 2007-07-17 454 Life Sciences Corporation Method of sequencing a nucleic acid
WO2001020043A1 (en) * 1999-09-17 2001-03-22 Affymetrix, Inc. Method of cluster analysis of gene expression profiles
US6428957B1 (en) * 1999-11-08 2002-08-06 Agilent Technologies, Inc. Systems tools and methods of assaying biological materials using spatially-addressable arrays
US6235483B1 (en) * 2000-01-31 2001-05-22 Agilent Technologies, Inc. Methods and kits for indirect labeling of nucleic acids
GB0002389D0 (en) * 2000-02-02 2000-03-22 Solexa Ltd Molecular arrays
US7361488B2 (en) * 2000-02-07 2008-04-22 Illumina, Inc. Nucleic acid detection methods using universal priming
US7955794B2 (en) * 2000-09-21 2011-06-07 Illumina, Inc. Multiplex nucleic acid reactions
ATE360095T1 (de) 2000-02-07 2007-05-15 Illumina Inc Nukleinsäure nachweisverfahren mit universellem priming
US7582420B2 (en) 2001-07-12 2009-09-01 Illumina, Inc. Multiplex nucleic acid reactions
WO2001057269A2 (en) 2000-02-07 2001-08-09 Illumina, Inc. Nucleic acid detection methods using universal priming
US8076063B2 (en) * 2000-02-07 2011-12-13 Illumina, Inc. Multiplexed methylation detection methods
US7611869B2 (en) * 2000-02-07 2009-11-03 Illumina, Inc. Multiplexed methylation detection methods
AU2001238389B2 (en) * 2000-02-16 2006-09-21 Illumina, Inc. Parallel genotyping of multiple patient samples
US6783985B1 (en) 2000-02-18 2004-08-31 Elitra Pharmaceuticals Inc. Gene disruption methodologies for drug target discovery
US6749756B1 (en) * 2000-02-18 2004-06-15 University Of Pittsburgh Reaction and separation methods
US6897015B2 (en) * 2000-03-07 2005-05-24 Bioforce Nanosciences, Inc. Device and method of use for detection and characterization of pathogens and biological materials
US7157564B1 (en) 2000-04-06 2007-01-02 Affymetrix, Inc. Tag nucleic acids and probe arrays
US6839562B2 (en) * 2000-04-11 2005-01-04 Telecommunication Systems, Inc. Intelligent delivery agent for short message distribution center
US6368801B1 (en) 2000-04-12 2002-04-09 Molecular Staging, Inc. Detection and amplification of RNA using target-mediated ligation of DNA by RNA ligase
US7422850B2 (en) 2000-05-19 2008-09-09 Eragen Biosciences, Inc. Materials and methods for detection of nucleic acids
US6977161B2 (en) * 2000-10-14 2005-12-20 Eragen Biosciences, Inc. Solid support assay systems and methods utilizing non-standard bases
WO2001094625A2 (en) 2000-06-06 2001-12-13 Tm Bioscience Corporation Capture moieties for nucleic acids and uses thereof
EP1311839B1 (en) * 2000-06-21 2006-03-01 Bioarray Solutions Ltd Multianalyte molecular analysis using application-specific random particle arrays
US9709559B2 (en) 2000-06-21 2017-07-18 Bioarray Solutions, Ltd. Multianalyte molecular analysis using application-specific random particle arrays
CA2411794A1 (en) 2000-06-30 2002-01-10 Molecular Staging, Inc. Signal amplification with lollipop probes
US6911204B2 (en) 2000-08-11 2005-06-28 Favrille, Inc. Method and composition for altering a B cell mediated pathology
WO2002014867A2 (en) * 2000-08-11 2002-02-21 Agilix Corporation Ultra-sensitive detection systems
AU2001283272A1 (en) * 2000-08-11 2002-02-25 Favrille, Inc. A molecular vector identification system
JP2004538443A (ja) * 2000-08-15 2004-12-24 バイオフォース ナノサイエンシズ インコーポレイテッド ナノスケール分子配列装置
GB0021367D0 (en) * 2000-09-01 2000-10-18 Sec Dep Of The Home Department Improvements in and relating to marking
US7057704B2 (en) * 2000-09-17 2006-06-06 Bioarray Solutions Ltd. System and method for programmable illumination pattern generation
US20030045005A1 (en) * 2000-10-17 2003-03-06 Michael Seul Light-controlled electrokinetic assembly of particles near surfaces
AU2002246612B2 (en) 2000-10-24 2007-11-01 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Direct multiplex characterization of genomic DNA
US20040018491A1 (en) * 2000-10-26 2004-01-29 Kevin Gunderson Detection of nucleic acid reactions on bead arrays
US6861222B2 (en) * 2000-11-09 2005-03-01 Yale University Nucleic acid detection using structured probes
JP4516273B2 (ja) * 2000-11-15 2010-08-04 ミナーヴァ・バイオテクノロジーズ・コーポレーション オリゴヌクレオチド識別子
US20030180953A1 (en) * 2000-12-29 2003-09-25 Elitra Pharmaceuticals, Inc. Gene disruption methodologies for drug target discovery
US20030049616A1 (en) * 2001-01-08 2003-03-13 Sydney Brenner Enzymatic synthesis of oligonucleotide tags
US6958217B2 (en) * 2001-01-24 2005-10-25 Genomic Expression Aps Single-stranded polynucleotide tags
US7226737B2 (en) * 2001-01-25 2007-06-05 Luminex Molecular Diagnostics, Inc. Polynucleotides for use as tags and tag complements, manufacture and use thereof
WO2002059354A2 (en) * 2001-01-25 2002-08-01 Tm Bioscience Corporation Polynucleotides for use as tags and tag complements, manufacture and use thereof
EP1808496B2 (en) * 2001-01-30 2021-12-22 Illumina Cambridge Limited Methods of sequencing polynucleotide arrays, and preparation methods therefor
US20030119013A1 (en) * 2001-04-23 2003-06-26 Bo Jiang Identification of essential genes of Aspergillus fumigatus and methods of use
EP1262563A3 (en) * 2001-05-31 2003-02-05 Takara Bio Inc. Method for immobilizing DNA on a surface
US20070184436A1 (en) * 2001-06-07 2007-08-09 Joel Myerson Generic capture probe arrays
US20060234231A1 (en) * 2001-06-20 2006-10-19 Nuevolution A/S Microarrays displaying encoded molecules
US7727713B2 (en) 2001-06-20 2010-06-01 Nuevolution A/S Templated molecules and methods for using such molecules
US7262063B2 (en) 2001-06-21 2007-08-28 Bio Array Solutions, Ltd. Directed assembly of functional heterostructures
AU2002329606A1 (en) * 2001-07-17 2003-03-03 Bioforce Nanosciences, Inc. Combined molecular blinding detection through force microscopy and mass spectrometry
US6872529B2 (en) * 2001-07-25 2005-03-29 Affymetrix, Inc. Complexity management of genomic DNA
US7297778B2 (en) * 2001-07-25 2007-11-20 Affymetrix, Inc. Complexity management of genomic DNA
US7026123B1 (en) * 2001-08-29 2006-04-11 Pioneer Hi-Bred International, Inc. UTR tag assay for gene function discovery
US7042488B2 (en) 2001-09-27 2006-05-09 Fujinon Corporation Electronic endoscope for highlighting blood vessel
WO2003031591A2 (en) * 2001-10-10 2003-04-17 Superarray Bioscience Corporation Detecting targets by unique identifier nucleotide tags
US6767733B1 (en) 2001-10-10 2004-07-27 Pritest, Inc. Portable biosensor apparatus with controlled flow
JP4377689B2 (ja) 2001-10-15 2009-12-02 バイオアレイ ソリューションズ リミテッド 同時尋問及び酵素仲介検出による多型遺伝子座の複合分析
US7132236B2 (en) * 2001-10-25 2006-11-07 Agilent Technologies, Inc. Composition and method for optimized hybridization using modified solutions
US20050089860A1 (en) * 2001-10-29 2005-04-28 Masanori Arita Oligonucleotide sequences free from mishybridization and method of designing the same
WO2003056298A2 (en) * 2001-11-06 2003-07-10 Agilix Corporation Sensitive coded detection systems
DE50114507D1 (de) * 2001-11-22 2009-01-02 Sloning Biotechnology Gmbh Nukleinsäure-Linker und deren Verwendung in der Gensynthese
GB0129012D0 (en) 2001-12-04 2002-01-23 Solexa Ltd Labelled nucleotides
US20040020993A1 (en) * 2001-12-28 2004-02-05 Green Larry R. Method for luminescent identification and calibration
EP1487978B1 (en) 2002-03-15 2008-11-19 Nuevolution A/S An improved method for synthesising templated molecules
AU2003234255A1 (en) * 2002-04-26 2003-11-10 Lynx Therapeutics, Inc. Constant length signatures for parallel sequencing of polynucleotides
US20040060987A1 (en) * 2002-05-07 2004-04-01 Green Larry R. Digital image analysis method for enhanced and optimized signals in fluorophore detection
US20050239193A1 (en) * 2002-05-30 2005-10-27 Bioforce Nanosciences, Inc. Device and method of use for detection and characterization of microorganisms and microparticles
AU2003243720A1 (en) * 2002-06-21 2004-01-06 Bayer Bioscience N.V. Method for detecting foreign dna in a host genome
US20050186573A1 (en) * 2002-07-24 2005-08-25 Janeczko Richard A. Polynucleotides for use as tags and tag complements in the detection of nucleic acid sequences
US10730906B2 (en) * 2002-08-01 2020-08-04 Nuevolutions A/S Multi-step synthesis of templated molecules
US7414116B2 (en) 2002-08-23 2008-08-19 Illumina Cambridge Limited Labelled nucleotides
US11008359B2 (en) 2002-08-23 2021-05-18 Illumina Cambridge Limited Labelled nucleotides
EP3002289B1 (en) 2002-08-23 2018-02-28 Illumina Cambridge Limited Modified nucleotides for polynucleotide sequencing
US20040043384A1 (en) * 2002-08-28 2004-03-04 Oleinikov Andrew V. In vitro protein translation microarray device
US7157228B2 (en) * 2002-09-09 2007-01-02 Bioarray Solutions Ltd. Genetic analysis and authentication
WO2004028682A2 (en) * 2002-09-27 2004-04-08 Carlsberg A/S Spatially encoded polymer matrix
US20040259105A1 (en) * 2002-10-03 2004-12-23 Jian-Bing Fan Multiplex nucleic acid analysis using archived or fixed samples
CN106337046B (zh) * 2002-10-30 2021-03-23 纽韦卢森公司 合成双功能复合物的方法
US20040086892A1 (en) * 2002-11-06 2004-05-06 Crothers Donald M. Universal tag assay
WO2004047007A1 (en) 2002-11-15 2004-06-03 Bioarray Solutions, Ltd. Analysis, secure access to, and transmission of array images
WO2004056994A2 (en) 2002-12-19 2004-07-08 Nuevolution A/S Quasirandom structure and function guided synthesis methods
US9487823B2 (en) 2002-12-20 2016-11-08 Qiagen Gmbh Nucleic acid amplification
US7344832B2 (en) * 2003-01-02 2008-03-18 Bioforce Nanosciences, Inc. Method and apparatus for molecular analysis in small sample volumes
JP4621197B2 (ja) * 2003-01-17 2011-01-26 エラジェン バイオサイエンシズ インコーポレイテッド 非標準塩基を用いた核酸増幅
CA2513985C (en) * 2003-01-21 2012-05-29 Illumina Inc. Chemical reaction monitor
EP2159285B1 (en) * 2003-01-29 2012-09-26 454 Life Sciences Corporation Methods of amplifying and sequencing nucleic acids
US7575865B2 (en) * 2003-01-29 2009-08-18 454 Life Sciences Corporation Methods of amplifying and sequencing nucleic acids
US20060228786A1 (en) * 2003-02-06 2006-10-12 Salerno John C Polymerase-based protocols for the introduction of deletions and insertions
US20060134624A1 (en) * 2003-02-06 2006-06-22 Salerno John C Polymerase-based protocols for the introductions of deletions and insertions
US20060257876A1 (en) * 2003-02-06 2006-11-16 Rensselaer Polytechnis Institute Polymerase-based protocols for generating chimeric and combinatorial...
WO2004072246A2 (en) * 2003-02-06 2004-08-26 Rensselaer Polytechnic Institute Polymerase-based protocols for the introduction of combinatorial deletions and insertions
EP1597395A2 (en) * 2003-02-21 2005-11-23 Nuevolution A/S Method for producing second-generation library
WO2004074501A2 (en) * 2003-02-21 2004-09-02 Nuevolution A/S A method for obtaining structural information about an encoded molecule
US20100022414A1 (en) * 2008-07-18 2010-01-28 Raindance Technologies, Inc. Droplet Libraries
EP2236606B1 (en) 2003-03-20 2013-11-06 Nuevolution A/S Ligational encoding of small molecules
US8043834B2 (en) 2003-03-31 2011-10-25 Qiagen Gmbh Universal reagents for rolling circle amplification and methods of use
GB0307403D0 (en) 2003-03-31 2003-05-07 Medical Res Council Selection by compartmentalised screening
US20060078893A1 (en) 2004-10-12 2006-04-13 Medical Research Council Compartmentalised combinatorial chemistry by microfluidic control
GB0307428D0 (en) * 2003-03-31 2003-05-07 Medical Res Council Compartmentalised combinatorial chemistry
CA2521127C (en) * 2003-04-01 2014-05-27 Eragen Biosciences, Inc. Polymerase inhibitor and method of using same
US7195875B2 (en) * 2003-04-18 2007-03-27 Beckman Coulter, Inc. Oligonucleotide pairs for multiplexed binding assays
JP2004355294A (ja) * 2003-05-29 2004-12-16 National Institute Of Advanced Industrial & Technology 情報担体としてのｄｎａ符号の設計方法
US20040259118A1 (en) * 2003-06-23 2004-12-23 Macevicz Stephen C. Methods and compositions for nucleic acid sequence analysis
EP1660858A4 (en) * 2003-07-21 2007-10-24 Amplified Proteomics Inc MULTIPLEX analyte
US7365179B2 (en) * 2003-09-09 2008-04-29 Compass Genetics, Llc Multiplexed analytical platform
WO2005029705A2 (en) * 2003-09-18 2005-03-31 Bioarray Solutions, Ltd. Number coding for identification of subtypes of coded types of solid phase carriers
WO2005029040A2 (en) * 2003-09-18 2005-03-31 Parallele Biosciences, Inc. System and methods for enhancing signal-to-noise ratios of microarray-based measurements
DK1670939T3 (da) 2003-09-18 2010-03-01 Nuevolution As Fremgangsmåde til opnåelse af strukturel information om et kodet molekyle og fremgangsmåde til udvælgelse af forbindelser
JP4564959B2 (ja) * 2003-09-22 2010-10-20 バイオアレイ ソリューションズ リミテッド 生体分子に共有結合できる、複数の官能基を持つ表面固定化高分子電解質
WO2005045059A2 (en) * 2003-10-28 2005-05-19 Bioarray Solutions Ltd. Allele assignment and probe selection in multiplexed assays of polymorphic targets
CA2899287A1 (en) 2003-10-28 2005-05-12 Bioarray Solutions Ltd. Optimization of gene expression analysis using immobilized capture probes
AU2004287069B2 (en) 2003-10-29 2009-07-16 Bioarray Solutions, Ltd. Multiplexed nucleic acid analysis by fragmentation of double-stranded DNA
US20050094807A1 (en) * 2003-11-04 2005-05-05 John Silzel Accuracy array assay system and method
JP4947355B2 (ja) * 2003-11-10 2012-06-06 ジーンオーム サイエンシーズ、インク． 増加した感度を持つ核酸検出方法
US7169560B2 (en) 2003-11-12 2007-01-30 Helicos Biosciences Corporation Short cycle methods for sequencing polynucleotides
ES2949821T3 (es) 2004-01-07 2023-10-03 Illumina Cambridge Ltd Matrices moleculares
JP2007524410A (ja) * 2004-01-23 2007-08-30 リングヴィテ エーエス ポリヌクレオチドライゲーション反応の改良
EP1557464B1 (en) 2004-01-23 2010-09-29 Sloning BioTechnology GmbH De novo enzymatic production of nucleic acid molecules
WO2005081776A2 (en) * 2004-01-30 2005-09-09 Eragen Biosciences, Inc. Materials and methods for the detection of sars
US20080108515A1 (en) * 2004-02-10 2008-05-08 Gormley Niall A Arrayed polynucleotides
GB0402895D0 (en) * 2004-02-10 2004-03-17 Solexa Ltd Arrayed polynucleotides
US7217522B2 (en) * 2004-02-12 2007-05-15 Campass Genetics Llc Genetic analysis by sequence-specific sorting
WO2005078122A2 (en) * 2004-02-17 2005-08-25 Nuevolution A/S Method for enrichment involving elimination by mismatch hybridisation
WO2005080605A2 (en) 2004-02-19 2005-09-01 Helicos Biosciences Corporation Methods and kits for analyzing polynucleotide sequences
US7459274B2 (en) * 2004-03-02 2008-12-02 Orion Genomics Llc Differential enzymatic fragmentation by whole genome amplification
DK1730277T3 (da) 2004-03-22 2010-03-01 Nuevolution As Kodning ved ligering under anvendelse af byggebloksoligonukleotider
EP1582599A1 (en) * 2004-03-31 2005-10-05 Takara Bio Inc. Method for purifying microbeads
US20050221339A1 (en) * 2004-03-31 2005-10-06 Medical Research Council Harvard University Compartmentalised screening by microfluidic control
US20050266447A1 (en) * 2004-04-19 2005-12-01 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Method for identifying activators of gene transcription
WO2005111242A2 (en) * 2004-05-10 2005-11-24 Parallele Bioscience, Inc. Digital profiling of polynucleotide populations
US7622281B2 (en) * 2004-05-20 2009-11-24 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Methods and compositions for clonal amplification of nucleic acid
WO2005118806A2 (en) 2004-05-28 2005-12-15 Ambion, Inc. METHODS AND COMPOSITIONS INVOLVING MicroRNA
US7363170B2 (en) * 2004-07-09 2008-04-22 Bio Array Solutions Ltd. Transfusion registry network providing real-time interaction between users and providers of genetically characterized blood products
WO2006014869A1 (en) * 2004-07-26 2006-02-09 Parallele Bioscience, Inc. Simultaneous analysis of multiple genomes
US7848889B2 (en) 2004-08-02 2010-12-07 Bioarray Solutions, Ltd. Automated analysis of multiplexed probe-target interaction patterns: pattern matching and allele identification
EP1623996A1 (en) * 2004-08-06 2006-02-08 Deutsches Krebsforschungszentrum Stiftung des öffentlichen Rechts Improved method of selecting a desired protein from a library
US7642055B2 (en) 2004-09-21 2010-01-05 Applied Biosystems, Llc Two-color real-time/end-point quantitation of microRNAs (miRNAs)
US7968287B2 (en) * 2004-10-08 2011-06-28 Medical Research Council Harvard University In vitro evolution in microfluidic systems
US20060099626A1 (en) * 2004-10-27 2006-05-11 Harbury Pehr B DNA-templated combinatorial library device and method for use
ES2534300T3 (es) 2004-11-12 2015-04-21 Asuragen, Inc. Procedimientos y composiciones que implican miARN y moléculas inhibidoras de miARN
WO2006056249A1 (de) * 2004-11-19 2006-06-01 Ebm-Papst St. Georgen Gmbh & Co. Kg Anordnung mit einem lüfter und einer pumpe
EP2233581A1 (en) * 2005-02-01 2010-09-29 AB Advanced Genetic Analysis Corporation Nucleic acid sequencing by performing successive cycles of duplex extension
EP2241637A1 (en) 2005-02-01 2010-10-20 AB Advanced Genetic Analysis Corporation Nucleic acid sequencing by performing successive cycles of duplex extension
JP2008529035A (ja) * 2005-02-03 2008-07-31 パーキンエルマー エルエーエス，インク． 多次元シグナルを用いる超高感度検出システム
US7393665B2 (en) 2005-02-10 2008-07-01 Population Genetics Technologies Ltd Methods and compositions for tagging and identifying polynucleotides
US7407757B2 (en) * 2005-02-10 2008-08-05 Population Genetics Technologies Genetic analysis by sequence-specific sorting
US20060204971A1 (en) * 2005-03-11 2006-09-14 Varde Shobha A Oligonucleotides for multiplexed binding assays
WO2006099604A2 (en) * 2005-03-16 2006-09-21 Compass Genetics, Llc Methods and compositions for assay readouts on multiple analytical platforms
WO2006101913A2 (en) * 2005-03-18 2006-09-28 Eragen Biosciences, Inc. Methods for detecting multiple species and subspecies of neiserria
US8309303B2 (en) 2005-04-01 2012-11-13 Qiagen Gmbh Reverse transcription and amplification of RNA with simultaneous degradation of DNA
US8486629B2 (en) 2005-06-01 2013-07-16 Bioarray Solutions, Ltd. Creation of functionalized microparticle libraries by oligonucleotide ligation or elongation
CA2610863C (en) * 2005-06-07 2017-01-17 Eragen Biosciences, Inc. Methods for detection and typing of nucleic acids
DK2463386T3 (en) 2005-06-15 2017-07-31 Complete Genomics Inc Nucleic acid analysis using random mixtures of non-overlapping fragments
WO2007025594A1 (en) * 2005-07-07 2007-03-08 Pamgene Bv Method for detection and quantification of target nucleic acids in a sample
WO2007021971A2 (en) * 2005-08-12 2007-02-22 Pharmorx Inc. Labeling compositions and methods of use for deterrent trackability
US7666593B2 (en) 2005-08-26 2010-02-23 Helicos Biosciences Corporation Single molecule sequencing of captured nucleic acids
EP1762627A1 (de) 2005-09-09 2007-03-14 Qiagen GmbH Verfahren zur Aktivierung einer Nukleinsäure für eine Polymerase-Reaktion
DK2336315T3 (da) * 2005-12-01 2017-11-06 Nuevolution As Fremgangsmåde til enzymatisk kodning ved effektiv syntese af store biblioteker
EP3913375A1 (en) 2006-01-11 2021-11-24 Bio-Rad Laboratories, Inc. Microfluidic devices and methods of use in the formation and control of nanoreactors
US7544473B2 (en) * 2006-01-23 2009-06-09 Population Genetics Technologies Ltd. Nucleic acid analysis using sequence tokens
US7537897B2 (en) * 2006-01-23 2009-05-26 Population Genetics Technologies, Ltd. Molecular counting
US20070264694A1 (en) * 2006-04-07 2007-11-15 Eragen Biosciences, Inc. Use of non-standard bases and proximity effects for gene assembly and conversion of non-standard bases to standard bases during dna synthesis
CA2649725A1 (en) * 2006-04-19 2007-10-25 Applera Corporation Reagents, methods, and libraries for gel-free bead-based sequencing
US9562837B2 (en) 2006-05-11 2017-02-07 Raindance Technologies, Inc. Systems for handling microfludic droplets
EP2481815B1 (en) 2006-05-11 2016-01-27 Raindance Technologies, Inc. Microfluidic devices
US7910695B2 (en) * 2006-06-29 2011-03-22 The Invention Science Fund I, Llc Methods for arbitrary peptide synthesis
US7777002B2 (en) * 2006-06-29 2010-08-17 The Invention Science Fund I, Llc Methods for arbitrary peptide synthesis
US7993873B2 (en) * 2006-06-29 2011-08-09 The Invention Science Fund I, Llc Apparatus for arbitrary peptide synthesis
US7923533B2 (en) * 2006-06-29 2011-04-12 The Invention Science Fund I, Llc Methods for arbitrary peptide synthesis
US7879975B2 (en) * 2006-06-29 2011-02-01 The Invention Science Fund I, Llc Methods for arbitrary peptide synthesis
WO2008021123A1 (en) 2006-08-07 2008-02-21 President And Fellows Of Harvard College Fluorocarbon emulsion stabilizing surfactants
US20090002703A1 (en) * 2006-08-16 2009-01-01 Craig Edward Parman Methods and systems for quantifying isobaric labels and peptides
WO2008027558A2 (en) 2006-08-31 2008-03-06 Codon Devices, Inc. Iterative nucleic acid assembly using activation of vector-encoded traits
US20090131348A1 (en) 2006-09-19 2009-05-21 Emmanuel Labourier Micrornas differentially expressed in pancreatic diseases and uses thereof
WO2008036776A2 (en) 2006-09-19 2008-03-27 Asuragen, Inc. Mir-15, mir-26, mir -31,mir -145, mir-147, mir-188, mir-215, mir-216 mir-331, mmu-mir-292-3p regulated genes and pathways as targets for therapeutic intervention
CA2672034C (en) 2006-12-13 2014-02-18 Luminex Corporation Systems and methods for multiplex analysis of pcr in real time
WO2008097559A2 (en) 2007-02-06 2008-08-14 Brandeis University Manipulation of fluids and reactions in microfluidic systems
WO2008130623A1 (en) 2007-04-19 2008-10-30 Brandeis University Manipulation of fluids, fluid components and reactions in microfluidic systems
AR066922A1 (es) 2007-06-08 2009-09-23 Monsanto Technology Llc Metodos de mejoramiento molecular del germoplasma de una planta por secuenciamiento dirigido
WO2009031054A2 (en) 2007-06-29 2009-03-12 Population Genetics Technologies Ltd. Methods and compositions for isolating nucleic acid sequence variants
US8124336B2 (en) * 2007-09-26 2012-02-28 Population Genetics Technologies Ltd Methods and compositions for reducing the complexity of a nucleic acid sample
EP2218019A4 (en) * 2007-11-02 2012-04-18 Hunch Inc INTERACTIVE AUTOMATIC LEARNING ADVICE INSTALLATION
EP2215245A2 (en) * 2007-11-02 2010-08-11 Luminex Molecular Diagnostics, Inc. One-step target detection assay
US8815576B2 (en) * 2007-12-27 2014-08-26 Lawrence Livermore National Security, Llc. Chip-based sequencing nucleic acids
US9115352B2 (en) 2008-03-31 2015-08-25 Sloning Biotechnology Gmbh Method for the preparation of a nucleic acid library
US9249455B2 (en) * 2008-04-18 2016-02-02 Luminex Corporation Methods for detection and quantification of small RNA
JP2009268665A (ja) * 2008-05-07 2009-11-19 Canon Inc 吸入装置
WO2009137807A2 (en) 2008-05-08 2009-11-12 Asuragen, Inc. Compositions and methods related to mirna modulation of neovascularization or angiogenesis
WO2010003132A1 (en) 2008-07-02 2010-01-07 Illumina Cambridge Ltd. Using populations of beads for the fabrication of arrays on surfaces
EP3216874A1 (en) 2008-09-05 2017-09-13 TOMA Biosciences, Inc. Methods for stratifying and annotating cancer drug treatment options
US9506119B2 (en) 2008-11-07 2016-11-29 Adaptive Biotechnologies Corp. Method of sequence determination using sequence tags
US8628927B2 (en) 2008-11-07 2014-01-14 Sequenta, Inc. Monitoring health and disease status using clonotype profiles
US8748103B2 (en) 2008-11-07 2014-06-10 Sequenta, Inc. Monitoring health and disease status using clonotype profiles
US9528160B2 (en) 2008-11-07 2016-12-27 Adaptive Biotechnolgies Corp. Rare clonotypes and uses thereof
US9394567B2 (en) 2008-11-07 2016-07-19 Adaptive Biotechnologies Corporation Detection and quantification of sample contamination in immune repertoire analysis
CN104195227B (zh) 2008-11-07 2017-04-12 适应生物技术公司 通过序列分析监测状况的方法
US9365901B2 (en) 2008-11-07 2016-06-14 Adaptive Biotechnologies Corp. Monitoring immunoglobulin heavy chain evolution in B-cell acute lymphoblastic leukemia
EP2387627B1 (en) 2009-01-15 2016-03-30 Adaptive Biotechnologies Corporation Adaptive immunity profiling and methods for generation of monoclonal antibodies
DK3211126T3 (da) 2009-02-13 2020-12-21 X Chem Inc Fremgangsmåder til dannelse og screening af dna-kodede biblioteker
US8528589B2 (en) 2009-03-23 2013-09-10 Raindance Technologies, Inc. Manipulation of microfluidic droplets
WO2010115100A1 (en) 2009-04-03 2010-10-07 L&C Diagment, Inc. Multiplex nucleic acid detection methods and systems
EP2425240A4 (en) 2009-04-30 2012-12-12 Good Start Genetics Inc METHOD AND COMPOSITION FOR EVALUATING GENETIC MARKERS
EP2248914A1 (en) 2009-05-05 2010-11-10 Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. The use of class IIB restriction endonucleases in 2nd generation sequencing applications
RU2014144463A (ru) 2009-06-25 2015-06-20 Фред Хатчинсон Кансэр Рисёч Сентер Способ измерения адаптивного иммунитета
US9587270B2 (en) 2009-06-29 2017-03-07 Luminex Corporation Chimeric primers with hairpin conformations and methods of using same
US20110059453A1 (en) * 2009-08-23 2011-03-10 Affymetrix, Inc. Poly(A) Tail Length Measurement by PCR
WO2011037990A1 (en) 2009-09-22 2011-03-31 President And Fellows Of Harvard College Entangled mate sequencing
WO2011042564A1 (en) 2009-10-09 2011-04-14 Universite De Strasbourg Labelled silica-based nanomaterial with enhanced properties and uses thereof
CA2778449C (en) * 2009-10-23 2017-06-20 Luminex Corporation Amplification primers with non-standard bases for increased reaction specificity
US8835358B2 (en) 2009-12-15 2014-09-16 Cellular Research, Inc. Digital counting of individual molecules by stochastic attachment of diverse labels
US9315857B2 (en) 2009-12-15 2016-04-19 Cellular Research, Inc. Digital counting of individual molecules by stochastic attachment of diverse label-tags
WO2011079176A2 (en) 2009-12-23 2011-06-30 Raindance Technologies, Inc. Microfluidic systems and methods for reducing the exchange of molecules between droplets
JP5934657B2 (ja) 2010-02-12 2016-06-15 レインダンス テクノロジーズ， インコーポレイテッド デジタル検体分析
US10351905B2 (en) 2010-02-12 2019-07-16 Bio-Rad Laboratories, Inc. Digital analyte analysis
US9366632B2 (en) 2010-02-12 2016-06-14 Raindance Technologies, Inc. Digital analyte analysis
US9399797B2 (en) 2010-02-12 2016-07-26 Raindance Technologies, Inc. Digital analyte analysis
WO2011108930A1 (en) 2010-03-04 2011-09-09 Interna Technologies Bv A MiRNA MOLECULE DEFINED BY ITS SOURCE AND ITS DIAGNOSTIC AND THERAPEUTIC USES IN DISEASES OR CONDITIONS ASSOCIATED WITH EMT
EP3540059A1 (en) 2010-04-16 2019-09-18 Nuevolution A/S Bi-functional complexes and methods for making and using such complexes
US20110262989A1 (en) 2010-04-21 2011-10-27 Nanomr, Inc. Isolating a target analyte from a body fluid
US8841104B2 (en) 2010-04-21 2014-09-23 Nanomr, Inc. Methods for isolating a target analyte from a heterogeneous sample
US9476812B2 (en) 2010-04-21 2016-10-25 Dna Electronics, Inc. Methods for isolating a target analyte from a heterogeneous sample
US8278049B2 (en) * 2010-04-26 2012-10-02 Ann & Robert H. Lurie Children's Hospital of Chicago Selective enrichment of CpG islands
SG10201503534RA (en) 2010-05-06 2015-06-29 Sequenta Inc Monitoring health and disease status using clonotype profiles
US8828688B2 (en) 2010-05-27 2014-09-09 Affymetrix, Inc. Multiplex amplification methods
NZ719520A (en) 2010-07-06 2017-07-28 Int Tech Bv Mirna and its diagnostic and therapeutic uses in diseases or conditions associated with melanoma, or in diseases or conditions associated with activated braf pathway
ES2690753T3 (es) 2010-09-21 2018-11-22 Agilent Technologies, Inc. Aumento de la confianza en las identificaciones de alelos con el recuento molecular
EP3572528A1 (en) 2010-09-24 2019-11-27 The Board of Trustees of the Leland Stanford Junior University Direct capture, amplification and sequencing of target dna using immobilized primers
WO2012050920A1 (en) * 2010-09-29 2012-04-19 Illumina, Inc. Compositions and methods for sequencing nucleic acids
EP2622103B2 (en) 2010-09-30 2022-11-16 Bio-Rad Laboratories, Inc. Sandwich assays in droplets
WO2012055929A1 (en) * 2010-10-26 2012-05-03 Illumina, Inc. Sequencing methods
WO2012064975A1 (en) 2010-11-12 2012-05-18 Gen9, Inc. Protein arrays and methods of using and making the same
CN103502448B (zh) 2010-11-12 2017-03-29 Gen9股份有限公司 核酸合成的方法和设备
US10150999B2 (en) 2010-11-17 2018-12-11 Interpace Diagnostics, Llc miRNAs as biomarkers for distinguishing benign from malignant thyroid neoplasms
US9163281B2 (en) 2010-12-23 2015-10-20 Good Start Genetics, Inc. Methods for maintaining the integrity and identification of a nucleic acid template in a multiplex sequencing reaction
EP2474617A1 (en) 2011-01-11 2012-07-11 InteRNA Technologies BV Mir for treating neo-angiogenesis
EP3859011A1 (en) 2011-02-11 2021-08-04 Bio-Rad Laboratories, Inc. Methods for forming mixed droplets
WO2012112804A1 (en) 2011-02-18 2012-08-23 Raindance Technoligies, Inc. Compositions and methods for molecular labeling
MX2013009863A (es) 2011-02-28 2013-12-06 Univ Iowa Res Found Cambios de la hormona anti-mulleriana en el embarazo y prediccion de sexo y de resultados adversos en el embarazo.
US10501779B2 (en) 2011-05-12 2019-12-10 President And Fellows Of Harvard College Oligonucleotide trapping
EP3709018A1 (en) 2011-06-02 2020-09-16 Bio-Rad Laboratories, Inc. Microfluidic apparatus for identifying components of a chemical reaction
US8841071B2 (en) 2011-06-02 2014-09-23 Raindance Technologies, Inc. Sample multiplexing
US9752176B2 (en) 2011-06-15 2017-09-05 Ginkgo Bioworks, Inc. Methods for preparative in vitro cloning
EP3517611A3 (en) * 2011-06-15 2019-09-04 Gen9, Inc. Methods for preparative in vitro cloning
US8658430B2 (en) 2011-07-20 2014-02-25 Raindance Technologies, Inc. Manipulating droplet size
WO2013032850A2 (en) 2011-08-26 2013-03-07 Gen9, Inc. Compositions and methods for high fidelity assembly of nucleic acids
EP2748357B1 (en) 2011-09-07 2018-04-04 X-Chem, Inc. Methods for tagging dna-encoded libraries
US10385475B2 (en) 2011-09-12 2019-08-20 Adaptive Biotechnologies Corp. Random array sequencing of low-complexity libraries
WO2013040251A2 (en) 2011-09-13 2013-03-21 Asurgen, Inc. Methods and compositions involving mir-135b for distinguishing pancreatic cancer from benign pancreatic disease
CN104039978A (zh) 2011-09-29 2014-09-10 露美内克丝公司 水解探针
WO2013058907A1 (en) 2011-10-17 2013-04-25 Good Start Genetics, Inc. Analysis methods
EP2768982A4 (en) 2011-10-21 2015-06-03 Adaptive Biotechnologies Corp QUANTIFICATION OF ADAPTIVE IMMUNOCELL GENOMES IN A COMPLEX MIX OF CELLS
WO2013063519A1 (en) 2011-10-26 2013-05-02 Asuragen, Inc. Methods and compositions involving mirna expression levels for distinguishing pancreatic cysts
WO2013063544A1 (en) 2011-10-27 2013-05-02 Asuragen, Inc. Mirnas as diagnostic biomarkers to distinguish benign from malignant thyroid tumors
US9499865B2 (en) 2011-12-13 2016-11-22 Adaptive Biotechnologies Corp. Detection and measurement of tissue-infiltrating lymphocytes
US20150329855A1 (en) 2011-12-22 2015-11-19 Ibis Biosciences, Inc. Amplification primers and methods
US9176031B2 (en) 2012-02-24 2015-11-03 Raindance Technologies, Inc. Labeling and sample preparation for sequencing
ES2663234T3 (es) 2012-02-27 2018-04-11 Cellular Research, Inc Composiciones y kits para recuento molecular
US11177020B2 (en) 2012-02-27 2021-11-16 The University Of North Carolina At Chapel Hill Methods and uses for molecular tags
WO2013128281A1 (en) 2012-02-28 2013-09-06 Population Genetics Technologies Ltd Method for attaching a counter sequence to a nucleic acid sample
WO2013134162A2 (en) 2012-03-05 2013-09-12 Sequenta, Inc. Determining paired immune receptor chains from frequency matched subunits
US9150853B2 (en) 2012-03-21 2015-10-06 Gen9, Inc. Methods for screening proteins using DNA encoded chemical libraries as templates for enzyme catalysis
US8209130B1 (en) 2012-04-04 2012-06-26 Good Start Genetics, Inc. Sequence assembly
US8812422B2 (en) 2012-04-09 2014-08-19 Good Start Genetics, Inc. Variant database
US10227635B2 (en) 2012-04-16 2019-03-12 Molecular Loop Biosolutions, Llc Capture reactions
EP4001427A1 (en) 2012-04-24 2022-05-25 Gen9, Inc. Methods for sorting nucleic acids and multiplexed preparative in vitro cloning
EP2844768B1 (en) 2012-04-30 2019-03-13 Raindance Technologies, Inc. Digital analyte analysis
RU2631797C2 (ru) 2012-05-08 2017-09-26 Эдэптив Байотекнолоджиз Корпорейшн Композиции и способы измерения и калибровки систематической ошибки амплификации в мультиплексных пцр-реакциях
US9012022B2 (en) 2012-06-08 2015-04-21 Illumina, Inc. Polymer coatings
US9663818B2 (en) 2012-06-15 2017-05-30 The University Of Chicago Oligonucleotide-mediated quantitative multiplexed immunoassays
CN113512577A (zh) 2012-06-25 2021-10-19 Gen9股份有限公司 用于核酸组装和高通量测序的方法
EP2870263A1 (en) 2012-07-03 2015-05-13 InteRNA Technologies B.V. Diagnostic portfolio and its uses
KR102146721B1 (ko) 2012-07-13 2020-08-21 엑스-켐, 인크. 폴리머라제에 의해 판독가능하지 않은 코딩 올리고뉴클레오티드 연결을 갖는 dna-코딩된 라이브러리
US11913065B2 (en) 2012-09-04 2024-02-27 Guardent Health, Inc. Systems and methods to detect rare mutations and copy number variation
US20160040229A1 (en) 2013-08-16 2016-02-11 Guardant Health, Inc. Systems and methods to detect rare mutations and copy number variation
ES2906714T3 (es) 2012-09-04 2022-04-20 Guardant Health Inc Métodos para detectar mutaciones raras y variación en el número de copias
US10876152B2 (en) 2012-09-04 2020-12-29 Guardant Health, Inc. Systems and methods to detect rare mutations and copy number variation
ES2660027T3 (es) 2012-10-01 2018-03-20 Adaptive Biotechnologies Corporation Evaluación de la inmunocompetencia por la diversidad de los receptores de inmunidad adaptativa y caracterización de la clonalidad
US20140100124A1 (en) 2012-10-04 2014-04-10 Asuragen, Inc. Diagnostic mirnas for differential diagnosis of incidental pancreatic cystic lesions
US9476089B2 (en) 2012-10-18 2016-10-25 President And Fellows Of Harvard College Methods of making oligonucleotide probes
US9365896B2 (en) 2012-10-19 2016-06-14 Agilent Technologies, Inc. Addition of an adaptor by invasive cleavage
US9434940B2 (en) 2012-12-19 2016-09-06 Dna Electronics, Inc. Methods for universal target capture
US10000557B2 (en) 2012-12-19 2018-06-19 Dnae Group Holdings Limited Methods for raising antibodies
US9551704B2 (en) 2012-12-19 2017-01-24 Dna Electronics, Inc. Target detection
US9995742B2 (en) 2012-12-19 2018-06-12 Dnae Group Holdings Limited Sample entry
US9599610B2 (en) 2012-12-19 2017-03-21 Dnae Group Holdings Limited Target capture system
US9804069B2 (en) 2012-12-19 2017-10-31 Dnae Group Holdings Limited Methods for degrading nucleic acid
US10597710B2 (en) 2012-12-21 2020-03-24 New England Biolabs, Inc. Ligase activity
US10597650B2 (en) 2012-12-21 2020-03-24 New England Biolabs, Inc. Ligase activity
US9683230B2 (en) 2013-01-09 2017-06-20 Illumina Cambridge Limited Sample preparation on a solid support
US8778609B1 (en) 2013-03-14 2014-07-15 Good Start Genetics, Inc. Methods for analyzing nucleic acids
US9540685B2 (en) 2013-03-15 2017-01-10 President And Fellows Of Harvard College Methods of identifying homologous genes using FISH
WO2014151551A1 (en) 2013-03-15 2014-09-25 Baylor Research Institute Ulcerative colitis (uc)-associated colorectal neoplasia markers
BR112015022448B1 (pt) 2013-03-15 2020-12-08 Illumina Cambridge Limited molécula de nucleotídeo ou nucleosídeo modificado, métodos para preparar o crescimento de polinucleotídeo complementar a polinucleotídeo alvo de fita simples em reação de sequenciação e para determinar a sequência de polinucleotídeo alvo de fita simples e kit
EP2971132B1 (en) 2013-03-15 2020-05-06 Baylor Research Institute Tissue and blood-based mirna biomarkers for the diagnosis, prognosis and metastasis-predictive potential in colorectal cancer
US9944992B2 (en) 2013-03-15 2018-04-17 The University Of Chicago Methods and compositions related to T-cell activity
CN105283561A (zh) 2013-04-04 2016-01-27 佐治亚州立大学研究基金会公司 使用纳米粒子辅助信号放大的rna微芯片检测
WO2014172288A2 (en) 2013-04-19 2014-10-23 Raindance Technologies, Inc. Digital analyte analysis
EP3470530B1 (en) 2013-05-23 2020-11-25 The Board of Trustees of the Leland Stanford Junior University Transposition into native chromatin for analysis ofchromatin
WO2014197377A2 (en) 2013-06-03 2014-12-11 Good Start Genetics, Inc. Methods and systems for storing sequence read data
EP3011056B1 (en) 2013-06-19 2019-03-06 Luminex Corporation Real-time multiplexed hydrolysis probe assay
US9708657B2 (en) 2013-07-01 2017-07-18 Adaptive Biotechnologies Corp. Method for generating clonotype profiles using sequence tags
CN105555971B (zh) 2013-08-09 2017-08-29 卢米耐克斯公司 用于在核酸测定中改善熔链分辨和多重性的探针
US20150050697A1 (en) 2013-08-19 2015-02-19 Abbott Molecular Inc. Nucleotide analogs
US20150051088A1 (en) 2013-08-19 2015-02-19 Abbott Molecular Inc. Next-generation sequencing libraries
AU2014312208B2 (en) 2013-08-28 2019-07-25 Becton, Dickinson And Company Massively parallel single cell analysis
US11901041B2 (en) 2013-10-04 2024-02-13 Bio-Rad Laboratories, Inc. Digital analysis of nucleic acid modification
EP3055676A1 (en) 2013-10-07 2016-08-17 Cellular Research, Inc. Methods and systems for digitally counting features on arrays
US11041203B2 (en) 2013-10-18 2021-06-22 Molecular Loop Biosolutions, Inc. Methods for assessing a genomic region of a subject
US10851414B2 (en) 2013-10-18 2020-12-01 Good Start Genetics, Inc. Methods for determining carrier status
US10294512B2 (en) 2013-10-21 2019-05-21 Sung-Chun Kim Method and apparatus for analyzing biomolecules by using oligonucleotide
CA2935138C (en) 2013-10-22 2021-04-20 Sung-Chun Kim Marker for generating binding information on biomolecules and nucleic acids, preparation method therefor, and method and apparatus for analyzing biomolecule by using same
US9944977B2 (en) 2013-12-12 2018-04-17 Raindance Technologies, Inc. Distinguishing rare variations in a nucleic acid sequence from a sample
ES2822125T3 (es) 2013-12-28 2021-04-29 Guardant Health Inc Métodos y sistemas para detectar variantes genéticas
WO2015103367A1 (en) 2013-12-31 2015-07-09 Raindance Technologies, Inc. System and method for detection of rna species
EP3093342B1 (en) 2014-01-10 2019-03-20 Kyoto University Rna micro-array for detecting interaction between protein and rna containing a higher order structure
EP3114240B1 (en) 2014-03-05 2019-07-24 Adaptive Biotechnologies Corporation Methods using randomer-containing synthetic molecules
US10066265B2 (en) 2014-04-01 2018-09-04 Adaptive Biotechnologies Corp. Determining antigen-specific t-cells
US11390921B2 (en) 2014-04-01 2022-07-19 Adaptive Biotechnologies Corporation Determining WT-1 specific T cells and WT-1 specific T cell receptors (TCRs)
EP3132059B1 (en) 2014-04-17 2020-01-08 Adaptive Biotechnologies Corporation Quantification of adaptive immune cell genomes in a complex mixture of cells
WO2015175530A1 (en) 2014-05-12 2015-11-19 Gore Athurva Methods for detecting aneuploidy
WO2016025452A1 (en) 2014-08-11 2016-02-18 Luminex Corporation Probes for improved melt discrimination and multiplexing in nucleic acids assays
US10093967B2 (en) 2014-08-12 2018-10-09 The Regents Of The University Of Michigan Detection of nucleic acids
US10174383B2 (en) 2014-08-13 2019-01-08 Vanadis Diagnostics Method of estimating the amount of a methylated locus in a sample
WO2016028843A2 (en) 2014-08-19 2016-02-25 President And Fellows Of Harvard College Rna-guided systems for probing and mapping of nucleic acids
WO2016034433A1 (en) * 2014-09-05 2016-03-10 Qiagen Gmbh Preparation of adapter-ligated amplicons
WO2016040446A1 (en) 2014-09-10 2016-03-17 Good Start Genetics, Inc. Methods for selectively suppressing non-target sequences
US10429399B2 (en) 2014-09-24 2019-10-01 Good Start Genetics, Inc. Process control for increased robustness of genetic assays
US10040048B1 (en) 2014-09-25 2018-08-07 Synthego Corporation Automated modular system and method for production of biopolymers
EP3240909B1 (en) 2014-10-17 2020-10-14 Good Start Genetics, Inc. Pre-implantation genetic screening and aneuploidy detection
EP3715455A1 (en) 2014-10-29 2020-09-30 Adaptive Biotechnologies Corp. Highly-multiplexed simultaneous detection of nucleic acids encoding paired adaptive immune receptor heterodimers from many samples
US10000799B2 (en) 2014-11-04 2018-06-19 Boreal Genomics, Inc. Methods of sequencing with linked fragments
US10246701B2 (en) 2014-11-14 2019-04-02 Adaptive Biotechnologies Corp. Multiplexed digital quantitation of rearranged lymphoid receptors in a complex mixture
CA2968543C (en) 2014-11-25 2024-04-02 Adaptive Biotechnologies Corporation Characterization of adaptive immune response to vaccination or infection using immune repertoire sequencing
WO2016112073A1 (en) 2015-01-06 2016-07-14 Good Start Genetics, Inc. Screening for structural variants
ES2824700T3 (es) 2015-02-19 2021-05-13 Becton Dickinson Co Análisis unicelular de alto rendimiento que combina información proteómica y genómica
US10246702B1 (en) 2015-02-23 2019-04-02 New England Biolabs, Inc. Compositions and methods for labeling target nucleic acid molecules
AU2016222788B2 (en) 2015-02-24 2022-03-31 Adaptive Biotechnologies Corp. Methods for diagnosing infectious disease and determining HLA status using immune repertoire sequencing
US9727810B2 (en) 2015-02-27 2017-08-08 Cellular Research, Inc. Spatially addressable molecular barcoding
CN107406888A (zh) 2015-03-30 2017-11-28 赛卢拉研究公司 用于组合条形编码的方法和组合物
WO2016161273A1 (en) 2015-04-01 2016-10-06 Adaptive Biotechnologies Corp. Method of identifying human compatible t cell receptors specific for an antigenic target
CN107580632B (zh) 2015-04-23 2021-12-28 贝克顿迪金森公司 用于全转录组扩增的方法和组合物
US11124823B2 (en) 2015-06-01 2021-09-21 Becton, Dickinson And Company Methods for RNA quantification
WO2016201142A1 (en) 2015-06-09 2016-12-15 Life Technologies Corporation Methods, systems, compositions, kits, apparatus and computer-readable media for molecular tagging
US10647981B1 (en) 2015-09-08 2020-05-12 Bio-Rad Laboratories, Inc. Nucleic acid library generation methods and compositions
JP6940484B2 (ja) 2015-09-11 2021-09-29 セルラー リサーチ， インコーポレイテッド ライブラリー正規化のための方法および組成物
CA2993914A1 (en) 2015-09-18 2017-03-23 Vanadis Diagnostics Probe set for analyzing a dna sample and method for using the same
US10465232B1 (en) 2015-10-08 2019-11-05 Trace Genomics, Inc. Methods for quantifying efficiency of nucleic acid extraction and detection
JP2019507585A (ja) 2015-12-17 2019-03-22 ガーダント ヘルス， インコーポレイテッド 無細胞ｄｎａの分析による腫瘍遺伝子コピー数を決定するための方法
US9931638B2 (en) 2016-02-24 2018-04-03 Latonya Stewart Garbage disposal cleaning system
US10961573B2 (en) 2016-03-28 2021-03-30 Boreal Genomics, Inc. Linked duplex target capture
US10801059B2 (en) 2016-03-28 2020-10-13 Boreal Genomics, Inc. Droplet-based linked-fragment sequencing
ES2956757T3 (es) 2016-05-02 2023-12-27 Becton Dickinson Co Codificación con códigos de barras moleculares precisa
US10301677B2 (en) 2016-05-25 2019-05-28 Cellular Research, Inc. Normalization of nucleic acid libraries
EP3465502B1 (en) 2016-05-26 2024-04-10 Becton, Dickinson and Company Molecular label counting adjustment methods
US10240196B2 (en) 2016-05-27 2019-03-26 Agilent Technologies, Inc. Transposase-random priming DNA sample preparation
US10640763B2 (en) 2016-05-31 2020-05-05 Cellular Research, Inc. Molecular indexing of internal sequences
US10202641B2 (en) 2016-05-31 2019-02-12 Cellular Research, Inc. Error correction in amplification of samples
WO2018035062A1 (en) 2016-08-16 2018-02-22 The Regents Of The University Of California Method for finding low abundance sequences by hybridization (flash)
US11198910B2 (en) 2016-09-02 2021-12-14 New England Biolabs, Inc. Analysis of chromatin using a nicking enzyme
US10428325B1 (en) 2016-09-21 2019-10-01 Adaptive Biotechnologies Corporation Identification of antigen-specific B cell receptors
WO2018057928A1 (en) 2016-09-23 2018-03-29 Grail, Inc. Methods of preparing and analyzing cell-free nucleic acid sequencing libraries
KR102522023B1 (ko) 2016-09-26 2023-04-17 셀룰러 리서치, 인크. 바코딩된 올리고뉴클레오티드 서열을 갖는 시약을 이용한 단백질 발현의 측정
IL266197B2 (en) 2016-10-24 2024-03-01 Geneinfosec Inc Hiding information contained within nucleic acids
EP3532643B1 (en) 2016-10-28 2020-08-26 Grail, Inc. Methods for single-stranded nucleic acid library preparation
JP7232180B2 (ja) 2016-11-08 2023-03-02 ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー 発現プロファイル分類の方法
WO2018089377A1 (en) 2016-11-08 2018-05-17 Cellular Research, Inc. Methods for cell label classification
CA3048420A1 (en) 2016-12-09 2018-06-14 Boreal Genomics, Inc. Linked ligation
EP4357455A2 (en) 2016-12-12 2024-04-24 Grail, LLC Methods for tagging and amplifying rna template molecules for preparing sequencing libraries
EP3559255A1 (en) 2016-12-23 2019-10-30 Grail, Inc. Methods for high efficiency library preparation using double-stranded adapters
ES2961580T3 (es) 2017-01-13 2024-03-12 Cellular Res Inc Revestimiento hidrófilo de canales de fluidos
US11319583B2 (en) 2017-02-01 2022-05-03 Becton, Dickinson And Company Selective amplification using blocking oligonucleotides
US11274344B2 (en) 2017-03-30 2022-03-15 Grail, Inc. Enhanced ligation in sequencing library preparation
WO2018183942A1 (en) 2017-03-31 2018-10-04 Grail, Inc. Improved library preparation and use thereof for sequencing-based error correction and/or variant identification
US11118222B2 (en) 2017-03-31 2021-09-14 Grail, Inc. Higher target capture efficiency using probe extension
US10914729B2 (en) 2017-05-22 2021-02-09 The Trustees Of Princeton University Methods for detecting protein binding sequences and tagging nucleic acids
AU2018272848B2 (en) * 2017-05-23 2022-03-31 Rutgers, The State University Of New Jersey Target mediated
WO2018226293A1 (en) 2017-06-05 2018-12-13 Becton, Dickinson And Company Sample indexing for single cells
WO2018229547A1 (en) 2017-06-15 2018-12-20 Genome Research Limited Duplex sequencing using direct repeat molecules
US11180804B2 (en) 2017-07-25 2021-11-23 Massachusetts Institute Of Technology In situ ATAC sequencing
EP3704250A1 (en) 2017-11-03 2020-09-09 InteRNA Technologies B.V. Mirna molecule, equivalent, antagomir, or source thereof for treating and/or diagnosing a condition and/or a disease associated with neuronal deficiency or for neuronal (re)generation
US11254980B1 (en) 2017-11-29 2022-02-22 Adaptive Biotechnologies Corporation Methods of profiling targeted polynucleotides while mitigating sequencing depth requirements
US11332736B2 (en) 2017-12-07 2022-05-17 The Broad Institute, Inc. Methods and compositions for multiplexing single cell and single nuclei sequencing
US11414656B2 (en) 2017-12-15 2022-08-16 Grail, Inc. Methods for enriching for duplex reads in sequencing and error correction
US11946095B2 (en) 2017-12-19 2024-04-02 Becton, Dickinson And Company Particles associated with oligonucleotides
WO2019126803A1 (en) 2017-12-22 2019-06-27 Grail, Inc. Error removal using improved library preparation methods
SG11201903333SA (en) 2017-12-29 2019-08-27 Clear Labs Inc Automated priming and library loading services
EP3553182A1 (en) 2018-04-11 2019-10-16 Université de Bourgogne Detection method of somatic genetic anomalies, combination of capture probes and kit of detection
CN112272710A (zh) 2018-05-03 2021-01-26 贝克顿迪金森公司 高通量多组学样品分析
EP3788170A1 (en) 2018-05-03 2021-03-10 Becton, Dickinson and Company Molecular barcoding on opposite transcript ends
KR102209178B1 (ko) * 2018-07-17 2021-01-29 이윤경 유전체 및 유전체 정보의 보존 및 활용을 위한 방법
CN112805389A (zh) 2018-10-01 2021-05-14 贝克顿迪金森公司 确定5’转录物序列
CN112969789A (zh) 2018-11-08 2021-06-15 贝克顿迪金森公司 使用随机引发的单细胞全转录组分析
SG11202105441WA (en) 2018-12-13 2021-06-29 Dna Script Direct oligonucleotide synthesis on cells and biomolecules
WO2020123384A1 (en) 2018-12-13 2020-06-18 Cellular Research, Inc. Selective extension in single cell whole transcriptome analysis
CN113272442B (zh) 2019-01-03 2024-03-15 Dna斯克瑞普特公司 寡核苷酸的集合的一锅合成
WO2020141464A1 (en) 2019-01-03 2020-07-09 Boreal Genomics, Inc. Linked target capture
US11371076B2 (en) 2019-01-16 2022-06-28 Becton, Dickinson And Company Polymerase chain reaction normalization through primer titration
CN113574178A (zh) 2019-01-23 2021-10-29 贝克顿迪金森公司 与抗体关联的寡核苷酸
ES2953889T3 (es) 2019-03-14 2023-11-16 Genome Res Ltd Método para secuenciar una repetición directa
CN113924085A (zh) 2019-04-12 2022-01-11 加利福尼亚大学董事会 用于增加肌肉量和氧化代谢的组合物和方法
US11965208B2 (en) 2019-04-19 2024-04-23 Becton, Dickinson And Company Methods of associating phenotypical data and single cell sequencing data
CN114051534A (zh) 2019-07-22 2022-02-15 贝克顿迪金森公司 单细胞染色质免疫沉淀测序测定
EP4055160B1 (en) 2019-11-08 2024-04-10 Becton Dickinson and Company Using random priming to obtain full-length v(d)j information for immune repertoire sequencing
EP4090763A1 (en) 2020-01-13 2022-11-23 Becton Dickinson and Company Methods and compositions for quantitation of proteins and rna
CN115605614A (zh) 2020-05-14 2023-01-13 贝克顿迪金森公司（Us） 用于免疫组库谱分析的引物
US11932901B2 (en) 2020-07-13 2024-03-19 Becton, Dickinson And Company Target enrichment using nucleic acid probes for scRNAseq
EP4189112A1 (en) 2020-07-31 2023-06-07 Becton Dickinson and Company Single cell assay for transposase-accessible chromatin
WO2023012521A1 (en) 2021-08-05 2023-02-09 Inivata Limited Highly sensitive method for detecting cancer dna in a sample
WO2022029688A1 (en) 2020-08-05 2022-02-10 Inivata Ltd. Highly sensitive method for detecting cancer dna in a sample
WO2022109343A1 (en) 2020-11-20 2022-05-27 Becton, Dickinson And Company Profiling of highly expressed and lowly expressed proteins
WO2023059599A1 (en) 2021-10-04 2023-04-13 F. Hoffmann-La Roche Ag Online base call compression
WO2024003332A1 (en) 2022-06-30 2024-01-04 F. Hoffmann-La Roche Ag Controlling for tagmentation sequencing library insert size using archaeal histone-like proteins
WO2024028794A1 (en) 2022-08-02 2024-02-08 Temple Therapeutics BV Methods for treating endometrial and ovarian hyperproliferative disorders

Family Cites Families (61)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4046720A (en) 1974-01-17 1977-09-06 California Institute Of Technology Crosslinked, porous, polyacrylate beads
US4318846A (en) 1979-09-07 1982-03-09 Syva Company Novel ether substituted fluorescein polyamino acid compounds as fluorescers and quenchers
US4458066A (en) 1980-02-29 1984-07-03 University Patents, Inc. Process for preparing polynucleotides
US4973679A (en) 1981-03-27 1990-11-27 University Patents, Inc. Process for oligonucleo tide synthesis using phosphormidite intermediates
US4415732A (en) 1981-03-27 1983-11-15 University Patents, Inc. Phosphoramidite compounds and processes
US4678814A (en) 1981-03-30 1987-07-07 California Institute Of Technology Polyacrolein microspheres
US4413070A (en) 1981-03-30 1983-11-01 California Institute Of Technology Polyacrolein microspheres
US4948882A (en) 1983-02-22 1990-08-14 Syngene, Inc. Single-stranded labelled oligonucleotides, reactive monomers and methods of synthesis
DE3329892A1 (de) 1983-08-18 1985-03-07 Köster, Hubert, Prof. Dr., 2000 Hamburg Verfahren zur herstellung von oligonucleotiden
US5206143A (en) 1985-11-01 1993-04-27 Smithkline Beecham Corporation Method and reagents for performing subset analysis using quantitative differences in fluorescence intensity
US4659774A (en) 1985-11-01 1987-04-21 American Hoechst Corporation Support for solid-phase oligonucleotide synthesis
US5093232A (en) 1985-12-11 1992-03-03 Chiron Corporation Nucleic acid probes
US4855225A (en) 1986-02-07 1989-08-08 Applied Biosystems, Inc. Method of detecting electrophoretically separated oligonucleotides
FR2596761B1 (fr) 1986-04-08 1988-05-20 Commissariat Energie Atomique Derives de nucleosides et leur utilisation pour la synthese d'oligonucleotides
US5091519A (en) 1986-05-01 1992-02-25 Amoco Corporation Nucleotide compositions with linking groups
ZA877772B (en) * 1986-10-23 1988-04-20 Amoco Corporation Target and background capture methods and apparatus for affinity assays
SE458968B (sv) 1987-06-16 1989-05-22 Wallac Oy Biospecifikt analysfoerfarande foer flera analyter i vilket ingaar partikelraekning och maerkning med fluorescerande maerksubstanser
US4942124A (en) * 1987-08-11 1990-07-17 President And Fellows Of Harvard College Multiplex sequencing
EP0304845A3 (en) * 1987-08-28 1991-03-06 Profile Diagnostic Sciences Inc. Method and kit for assaying gene expressions
EP0383803B1 (en) 1987-10-28 2000-05-03 Howard Florey Institute Of Experimental Physiology And Medicine Oligonucleotide-polyamide conjugates
US5104791A (en) 1988-02-09 1992-04-14 E. I. Du Pont De Nemours And Company Particle counting nucleic acid hybridization assays
SE8801070D0 (sv) 1988-03-23 1988-03-23 Pharmacia Ab Method for immobilizing a dna sequence on a solid support
US5002867A (en) 1988-04-25 1991-03-26 Macevicz Stephen C Nucleic acid sequence determination by multiple mixed oligonucleotide probes
GB8822228D0 (en) * 1988-09-21 1988-10-26 Southern E M Support-bound oligonucleotides
US5512439A (en) 1988-11-21 1996-04-30 Dynal As Oligonucleotide-linked magnetic particles and uses thereof
JPH02299598A (ja) * 1989-04-14 1990-12-11 Ro Inst For Molecular Genetics & Geneteic Res 微視的サイズの別個の粒子と結合している核酸試料中のごく短い配列の全部または一部のオリゴヌクレチドプローブとのハイブリダイゼーションによる決定法
US5043272A (en) 1989-04-27 1991-08-27 Life Technologies, Incorporated Amplification of nucleic acid sequences using oligonucleotides of random sequence as primers
US5143854A (en) 1989-06-07 1992-09-01 Affymax Technologies N.V. Large scale photolithographic solid phase synthesis of polypeptides and receptor binding screening thereof
US5547839A (en) * 1989-06-07 1996-08-20 Affymax Technologies N.V. Sequencing of surface immobilized polymers utilizing microflourescence detection
US5302509A (en) * 1989-08-14 1994-04-12 Beckman Instruments, Inc. Method for sequencing polynucleotides
US5366860A (en) 1989-09-29 1994-11-22 Applied Biosystems, Inc. Spectrally resolvable rhodamine dyes for nucleic acid sequence determination
CA2044616A1 (en) 1989-10-26 1991-04-27 Roger Y. Tsien Dna sequencing
US5188934A (en) 1989-11-14 1993-02-23 Applied Biosystems, Inc. 4,7-dichlorofluorescein dyes as molecular probes
JPH05501709A (ja) 1989-11-17 1993-04-02 リンクス　セラピューティクス，インコーポレイテッド ポリ（アルキルおよびアルケニルホスフェート）およびそれらのチオホスフェートおよび抗ウイルス剤としてのセレノホスフェート誘導体
EP0439182B1 (en) 1990-01-26 1996-04-24 Abbott Laboratories Improved method of amplifying target nucleic acids applicable to both polymerase and ligase chain reactions
CA2036946C (en) * 1990-04-06 2001-10-16 Kenneth V. Deugau Indexing linkers
US5650489A (en) * 1990-07-02 1997-07-22 The Arizona Board Of Regents Random bio-oligomer library, a method of synthesis thereof, and a method of use thereof
AU8505191A (en) * 1990-08-24 1992-03-17 Ixsys, Inc. Methods of synthesizing oligonucleotides with random codons
DE69120821T2 (de) 1990-08-31 1997-01-23 Univ Minnesota Polyethylenglykol-Derivate für Festphasenanwendungen
EP0562047A4 (en) * 1990-12-06 1995-11-02 Affymax Tech Nv Sequencing by hybridization of a target nucleic acid to a matrix of defined oligonucleotides
JPH057490A (ja) * 1991-05-25 1993-01-19 Sumitomo Electric Ind Ltd Ｄｎａ断片の分取法
EP0594763B1 (en) 1991-07-16 1998-09-23 Transmed Biotech Incorporated Methods and compositions for simultaneous analysis of multiple analytes
WO1993005183A1 (en) * 1991-09-09 1993-03-18 Baylor College Of Medicine Method and device for rapid dna or rna sequencing determination by a base addition sequencing scheme
EP0773227A1 (en) * 1991-09-18 1997-05-14 Affymax Technologies N.V. Diverse collections of oligomers in use to prepare drugs, diagnostic reagents, pesticides or herbicides
CA2119927A1 (en) 1991-09-27 1993-04-01 Michael Y.-X. Ma Duplex-forming polynucleotide conjugates
US5412087A (en) * 1992-04-24 1995-05-02 Affymax Technologies N.V. Spatially-addressable immobilization of oligonucleotides and other biological polymers on surfaces
RU2186852C2 (ru) * 1991-12-24 2002-08-10 Тепнел Медикал Лимитед Способ выполнения манипуляции с последовательностью нуклеиновой кислоты, устройство для проведения манипуляций на последовательности нуклеиновой кислоты, проточный сосуд, твердый носитель для иммобилизации последовательности нуклеиновой кислоты, твердый носитель, способ получения носителя для иммобилизации последовательности нуклеиновой кислоты
WO1993017126A1 (en) * 1992-02-19 1993-09-02 The Public Health Research Institute Of The City Of New York, Inc. Novel oligonucleotide arrays and their use for sorting, isolating, sequencing, and manipulating nucleic acids
ES2156869T5 (es) * 1992-04-15 2008-07-01 The Johns Hopkins University Sintesis de colecciones diversas y utiles de oligonucleotidos.
GB9208733D0 (en) 1992-04-22 1992-06-10 Medical Res Council Dna sequencing method
US5541061A (en) * 1992-04-29 1996-07-30 Affymax Technologies N.V. Methods for screening factorial chemical libraries
WO1994001774A1 (en) 1992-07-02 1994-01-20 Erkki Soini Biospecific multiparameter assay method
GB9214873D0 (en) * 1992-07-13 1992-08-26 Medical Res Council Process for categorising nucleotide sequence populations
WO1994002515A1 (en) * 1992-07-21 1994-02-03 Bunsen Rush Laboratories Inc. Oligomer library formats and methods relating thereto
ES2204910T3 (es) * 1992-10-01 2004-05-01 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Bibliotecas quimicas combinatorias complejas codificadas con señales.
US5482836A (en) * 1993-01-14 1996-01-09 The Regents Of The University Of California DNA purification by triplex-affinity capture and affinity capture electrophoresis
GB9315847D0 (en) * 1993-07-30 1993-09-15 Isis Innovation Tag reagent and assay method
GB9401200D0 (en) * 1994-01-21 1994-03-16 Medical Res Council Sequencing of nucleic acids
US5631734A (en) 1994-02-10 1997-05-20 Affymetrix, Inc. Method and apparatus for detection of fluorescently labeled materials
JPH09508800A (ja) 1994-02-14 1997-09-09 スミスクライン・ビーチャム・コーポレイション 差次的発現遺伝子の同定法
US5552278A (en) 1994-04-04 1996-09-03 Spectragen, Inc. DNA sequencing by stepwise ligation and cleavage

Also Published As

Publication number Publication date
NO971644D0 (no) 1997-04-10
FI971473A0 (fi) 1997-04-09
US5635400A (en) 1997-06-03
KR970707279A (ko) 1997-12-01
EP1724348A2 (en) 2006-11-22
CA2202167A1 (en) 1996-04-25
CA2202167C (en) 2003-12-16
JP2005052146A (ja) 2005-03-03
DE69534930T2 (de) 2007-01-11
JP2004089198A (ja) 2004-03-25
WO1996012014A1 (en) 1996-04-25
FI971473A (fi) 1997-06-04
EP1724348A3 (en) 2008-10-08
AU4277896A (en) 1996-05-06
JP4206130B2 (ja) 2009-01-07
US5654413A (en) 1997-08-05
JPH10507357A (ja) 1998-07-21
EP0793718A1 (en) 1997-09-10
JP4480380B2 (ja) 2010-06-16
JP2006320321A (ja) 2006-11-30
AU712929B2 (en) 1999-11-18
DE69534930D1 (de) 2006-05-24
USRE39793E1 (en) 2007-08-21
ATE323159T1 (de) 2006-04-15
NO971644L (no) 1997-06-02
EP2110445A2 (en) 2009-10-21
JP2008301806A (ja) 2008-12-18
JP4480544B2 (ja) 2010-06-16
EP2110445A3 (en) 2010-06-02
JP4712822B2 (ja) 2011-06-29
EP0793718B1 (en) 2006-04-12
US5604097A (en) 1997-02-18
AU5266399A (en) 1999-12-09
HUT77916A (hu) 1998-10-28
KR19990022543A (ko) 1999-03-25
JP2005065704A (ja) 2005-03-17
AU784741B2 (en) 2006-06-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CZ86697A3 (en) Molecular system for making loops
EP0952216B1 (en) Solid phase supports with PNA and amidate tag compliments
US6352828B1 (en) Oligonucleotide tags for sorting and identification
EP1967592B1 (en) Method of improving the efficiency of polynucleotide sequencing
US6280935B1 (en) Method of detecting the presence or absence of a plurality of target sequences using oligonucleotide tags
EP0832287A1 (en) Oligonucleotide tags for sorting and identification
CA2441634A1 (en) Molecular tagging system

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic