CZ80399A3 - Způsob výroby peptidů - Google Patents

Způsob výroby peptidů Download PDF

Info

Publication number
CZ80399A3
CZ80399A3 CZ99803A CZ80399A CZ80399A3 CZ 80399 A3 CZ80399 A3 CZ 80399A3 CZ 99803 A CZ99803 A CZ 99803A CZ 80399 A CZ80399 A CZ 80399A CZ 80399 A3 CZ80399 A3 CZ 80399A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
sequence
acid
peptide
linker
synthesis
Prior art date
Application number
CZ99803A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ295838B6 (cs
Inventor
Bjarne Due Larsen
Arne Holm
Original Assignee
Zealand Pharmaceuticals A/S
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Zealand Pharmaceuticals A/S filed Critical Zealand Pharmaceuticals A/S
Publication of CZ80399A3 publication Critical patent/CZ80399A3/cs
Publication of CZ295838B6 publication Critical patent/CZ295838B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/04General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length on carriers
    • C07K1/042General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length on carriers characterised by the nature of the carrier
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/04General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length on carriers
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/55Design of synthesis routes, e.g. reducing the use of auxiliary or protecting groups

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Prostheses (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

Způsob výroby peptidů
Oblast techniky
Předkládaný vynález se týká zlepšeného způsobu pro výrobu peptidů syntézou na pevné fázi. Vynález se také týká činidla, které je použitelné při syntéze na pevné fázi.
Dosavadní stav techniky
Syntéza peptidů na pevné fázi (solid-phase peptide synthesis, SPPS) je vysoce úspěšná metoda zavedená Merrifieldem v roce 1963 (Merrifield, R. B. (1963), J. Amer. Chem. Soc. 85, 2149 - 2154). Touto metodou bylo dosud syntetizováno velké množství peptidů. Vynikající přehled v současnosti používaných chemických syntéz peptidů a proteinů je uveden v Kent, S. Β. H. (1988), Annu. Rev. Biochem. 57, 957 - 989, který je zařazen odkazem.
V praxi se používají dvě strategie pro výstavbu peptidových řetězců syntézou na pevné fázi, a to postupné syntézy na pevné fázi a kondenzace fragmentů na pevné fázi.
Při postupné SPPS se váže C-koncová aminokyselina ve formě Ν-α-chráněného, v případě nutnosti na postranním řetězci chráněného
2o reaktivního derivátu kovalentní vazbou buď přímo nebo prostřednictvím vhodné propojovací skupiny (linker) na „pevný“ nosič, například polymerní pryskyřici, která je v nabobtnalém stavu v organickém rozpouštědle. Ν-α-ochranná skupina se odstraní a postupně se přidávají následující chráněné aminokyseliny.
Když bylo dosaženo požadované délky peptidového řetězce, ochranné skupiny postranních řetězců se odstraní a peptid se odštěpí z pryskyřice, což může být provedeno v oddělených krocích nebo současně.
Při kondenzaci fragmentů na pevné fázi se cílová sekvence sestaví postupnou kondenzací fragmentů na pevném nosiči s použitím chráněných fragmentů vyrobených metodou postupné SPPS.
V průběhu let byly vyvinuty dvě strategie pro vytvoření vazby 5 založené na použití různých Ν-α-ochranných skupin a přizpůsobení ochranných skupin postranního řetězce.
Merrifield používal jako Ν-α-ochrannou skupinu terc.butyloxykarbonyl (Boc), zatímco Carpino a Han zavedli 9fluorenylmethyloxykarbonyl (Fmoc) (Carpino, L. A. a Han, G. Y.
(1972), J. Org. Chem. 37, 3404 - 3409).
Operace používané při jednom cyklu prodloužení řetězce při postupné SPPC s použitím reakcí Boc a Fmoc jsou ilustrovány v následujících reakčních schématech (převzaté z Kent, S. Β. H. (1988), Annu. Rev. Biochem. 57, 957 - 989).
• · • · • · · ·
CO
φ o
>>
w
L_
CL i
CM
X o
I
X
Φ o
>c_ c
Φ o
>k.
>,
-id se (fí Φ (fí
X— ω o >.
c >φ >Φ c <*> k. Q. co N CL 1
c co u. ω c (0 u. -C CM X o ČÓ c_ 4—* □ CM X o 1 co jo N
Ό O o o 1 X 2” Φ C X z co >
Φ o
šk_ «
>>
o o
CM
X o
N
CQ o
I c
<
<
I
O
O
CQ
O o
CM
X o
N
CQ
O
I c
<
<
I co
X
Ο o
CM
X o
N
CQ
O
I c
<
<
CM
X o
CM <
<
o o
CQ
X o
<
<
o o
CQ lf) o
I
CC
M—
ΙCM
X o
I
X z
o o
CM
X o
N
CQ
O
I c
<
<
I i
c <
<
I o
o
CQ « ·
4
Peptid chráněný Ν-α-Boc navázaný na pryskyřici PAM se zbaví Ν-α-ochranné skupiny kyselinou trifluoroctovou (TFA). Získaná aminová sůl se promyje a neutralizuje terciárním aminem. Následující peptidová vazba se vytvoří reakcí s aktivovanou Boc-aminokyselinou, například symetrickým anhydridem. Obecně je ochrana postranního řetězce založená na benzylu a odstranění ochranné skupiny se provede HF nebo kyselinou sulfonovou.
Peptid chráněný Ν-α-Fmoc navázaný na pryskyřici se zbaví N-aochranné skupiny působením sekundárního aminu, normálně io piperidinu, v organickém rozpouštědle, například N,Ndimethylformamidu (DMF) nebo dichlormethanu (DCM). Po promytí se neutrální peptidová pryskyřice ponechá reagovat s aktivovanou Fmocaminokyselinou, například hydroxybenztriazolovým aktivním esterem.
Ochrana postranního řetězce je založena na skupinách terc.15 butyl, trityl a arylsulfonyl a pro odstranění ochranné skupiny z postranních řetězců se s výhodou používá TFA.
I když se v podstatě pro všechny běžně používané syntézy peptidů používají strategie s Boc a Fmoc, někteří autoři navrhovali jiné Ν-α-ochranné skupiny (Stewart, J. M. a Young, J. D., Solid phase
2o peptide synthesis, Pierce Chemical Company (1984)).
Boc vytváří v kyselém prostředí labilní urethanovou skupinu a další návrhy z toto kategorie jsou bifenylizopropyloxykarbonyl (Bpoc), 3,5-dimethoxyfenylizopropyloxykarbonyl (Ddz), fenylizopropyloxykarbonyl (Poc) a 2,3,5-tetramethylbenzyloxykarbonyl (Tmz).
Mezi další typy dostupných Ν-α-ochranných skupin patří nitrofenylsulfenyl (Nps), který je možno odstranit buď velmi zředěnou bezvodou kyselinou, například HCI, nebo napadením nukleofilním činidlem, například methyl-3-nitro-4-merkaptobenzoátem. Je možno • · • · • · · · • · • · ···· · · · ·♦·· • · · · ···· · ·· · • · ··· · ·· ······ _····· · · · ···· ·· ·· · ·· ·· ·· také použít dithiasukcinylu (Dts), který je odstranitelný působením nukleofilního činidla.
SPPS má obecnou výhodu, že je využitelná při plně automatizované nebo poloautomatizované chemii vytváření řetězců.
Systém pro SPPS za podmínek nízkotlakého kontinuálního průtoku byl vyvinut Dryland, A. a Sheppard, R. C. (1986), J. Chem. Soc. Perkin Trans. I, 125 - 137 a dále vylepšován, viz Cameron, L., Meldal, M. a Sheppard, R. C. (1987), J. Chem. Soc. Chem. Commun, 270 - 272 a WO 90/02605.
ίο I když SPPS dnes představuje základní kámen při syntéze proteinů a péptidů, stále ještě zbývá vyřešit některé problémy. Protože některé z těchto problémů mohou mít vztah ke struktuře péptidů, bude vhodná následující krátká diskuse.
Empirické předpovědi konformací proteinů byly prováděny autory Chou, P. Y. a Fasman, G. D. (1978), Annu Rev. Biochem. 47, 251 - 276. Je dobře známo, že architektura proteinů může být popsána primární, sekundární, terciární a kvarterní strukturou. Primární struktura se týká sekvence aminokyselin proteinu. Sekundární struktura je místní prostorová organizace polymerní kostry, přičemž se 20 nebere v úvahu konformace postranních řetězců. Jako příklady sekundárních struktur je možno uvést a-šroubovice, β-listy a β-otáčky, což jsou reverzní úseky řetězců skládající se z tetrapeptidů. Terciární struktura je uspořádání všech atomů v prostoru včetně disulfidických můstků a poloh postranních řetězců, takže se berou v úvahu všechny 25 interakce na krátké i dlouhé vzdálenosti.
Termín kvarterní struktura může být použit pro označení interakce mezi podjednotkami proteinu, například a- a β-řetězců hemoglobinů.
Po diskusi dřívějších pokusů spojovat sekundární strukturu 30 proteinů s aminokyselinovým složením, kde například Ser, Thr, Val, Ile a Cys byly klasifikovány jako „rozbíjející šroubovice“ (helix breakers) a • · • · • · · · • ·
Ala, Leu a Glu jako „tvořící šroubovice“ (helix formers), přičemž hydrofobní zbytky byly zařazovány jako silně „struktury β tvořící“ a prolin spolu se zbytky nabitých aminokyselin jako „struktury β rozbíjející“ připravili Chou a Fasman statistickou analýzu 29 proteinů se známou rentgenovou strukturou pro vytvoření pravidel pro předpovídání a- a β-oblastí.
Na základě těchto studií vytvořili tzv. faktory náklonnosti (propensity factors) Ρα, Ρβ a Pt, které jsou konformační parametry vyjadřující polohové preference vystupovat jako a-šroubovice, β-list a popřípadě β-otáčka pro přirozené L-aminokyseliny tvořící část proteinů.
Pro ilustraci jsou Pa a Ρβ uvedeny níže. Jednopísmenkové zkratky pro jednotlivé aminokyseliny jsou uvedeny v závorkách.
Pa Ρβ
Glu (E) 1,51 Val 1,70
Met (M) 1,45 lle 1,60
Ala (A) 1,42 Tyr 1,47
Leu (L) 1,21 Phe 1,38
Lys (K) 1,16 Trp 1,37
Phe (F) 1,13 Leu 1,30
Gin (Q) 1,11 Cyr 1,19
Trp (W) 1,08 Thr 1,19
lle (i) 1,08 Gin 1,10
Val (V) 1,06 Met 1,05
Asp (D) 1,01 Arg 0,93
His (H) 1,00 Asn 0,89
Arg (R) 0,98 His 0,87
Thr (T) 0,83 Ala 0,83
Ser (S) 0,77 Ser 0,75
Cys (C) 0,70 Gly 0,75
Tyr (Y) 0,69 Lys 0,74
Asn (N) 0,67 Pro 0,55
Pro (P) 0,57 Asp 0,54
Gly (G) 0,57 Glu 0,37
• · · • · · ·· • · · • · « • · · · ·
Hodnoty pod 1,00 obvykle ukazují, že dotyčná aminokyselina musí být považována pro konkrétní sekundární strukturu za nevýhodnou.
Jako příklad je možno uvést hydrofobní kyseliny (například Val, 5 Ile, Leu), které silně podporují tvorbu β-listu, zatímco nabité aminokyseliny (například Glu, Asp a His) tvorbu β-listu narušují.
Ve struktuře α-šroubovice je udržována spirální konfigurace peptidu rigidně v místě vodíkových můstků mezi atomem vodíku připojeným k atomu dusíku v jedné opakující se jednotce o
O H II I (C - C - N -) a atom kyslíku připojený na atom uhlíku tři jednotky podél řetězce.
Jestliže se polypeptid přivede do roztoku, může se přivést ašroubovice k rozvinutí za vytvoření náhodného svinutí nastavením pH. Přechod od α-šroubovice k náhodnému svinutí probíhá v úzkém zo rozmezí pH. Protože vodíkové vazby jsou z hlediska pevnosti vazby v α-šroubovici všechny ekvivalentní, mají sklon přecházet do jiného uspořádání všechny najednou. Změna může být také indukována teplem.
Struktura β-listu se skládá z úplně natažených peptidových 25 řetězců, u kterých vodíkové vazby spojují atomy vodíku na jednom řetězci s atomy kyslíku v sousedním řetězci. Vodíkové vazby tedy nepřispívají k vnitřní organizaci řetězce jak je tomu u α-šroubovice, ale pouze vážou řetězec s řetězcem. Sousední řetězce mohou být paralelní nebo antiparalelní.
• to ···· β-otáčky se často pozorují v těch částech peptidového řetězce, které spojují antiparalelní řetězce ve struktuře β-listu.
U β-otáčky tvoří skupiny CO- a NH- aminokyseliny číslo n v peptidovém řetězci vodíkovou vazbu s odpovídajícími skupinami v aminokyselině číslo n + 4.
α-šroubovice a β-list tvoří silně proměnlivé části peptidové konformace proteinů (od 0 do 80 %) a zbývající části proteinů jsou naskládány v jiných strukturách. U většiny proteinů se jeví části peptidových řetězců jako nepravidelně složené „náhodné smyčky“.
io Pokud se nyní obrátíme k obecným problémům týkajícím se
SPPS, v referenci Kent, S. Β. H. (1988), Annu Rev. Biochem. 57, 957 989 se osvětluje syntéza „obtížně syntetizovatelných sekvencí“ (difficult sequences).
Jak je zřejmé, celá podstata SPPS je založena na úplném odstranění Ν-α-ochranných skupin před každým z následujících kroků vazby.
To znamená, že v ideálním případě by se měly všechny aminokyseliny s odstraněnou Ν-α-ochrannou skupinou vázat na reaktivní derivát aminokyseliny podle požadované sekvence, tj. měla by probíhat úplná aminoacylace.
Kent uvádí, že nejvážnější potenciální problém v postupné SPPS je neúplná tvorba peptidové vazby, kterou vznikají peptidy s jednou nebo více chybějícími aminokyselinami (delecemi), ale s podobnými vlastnostmi jako má cílová sekvence.
Takové neúplné vazby převažují více u některých sekvencí než u jiných, a proto tedy termín „obtížně syntetizovatelné sekvence“ a zjevně převažují více u způsobu Fmoc než u způsobu Boc.
Vědci včetně autorů předkládaného vynálezu studovali velký počet zjištěných „obtížně syntetizovatelných sekvencí“.
• · • · ···· ··· ···· • · · · · ··· · · · · λO ·· ··· · ·· ··· ···
-10-··· ·· · · · ···· ·· ·· «·· ·· ··
Při syntéze SPPS homo-oligopeptidů obsahujících leucin nebo alanin s použitím strategie Fmoc bylo pozorováno neúčinné odstraňování Ν-α-ochranných skupin piperidinem v závislosti na sekvenci (B. D. Larsen, C. Larsen a A. Holm, Peptides 1990; E. Giralt a D. Andreu, (eds.) 1991 ESCOM Science Publishers Β. V., str. 193 185 a Larsen, B. D. a Holm, A. (1994), Int. J. Peptide & Protein Res. 43, 1 - 9). Výzkumy ukázaly, že tento jev byl spojen s následnou pomalou a neúplnou vazbou aminokyseliny a jako příčina obtížné vazby a neúplného odstranění Fmoc byl ukázán důkaz agregace ío rostoucího peptidového řetězce do β-listu. Tento důkaz byl založen na obecných fyzikálně-chemických pozorováních (Larsen, B. D. a Holm,
A. (1994), Int. J. Peptide & Protein Res. 43, 1 - 9) a na podrobném studiu Ramanova spektra v blízké infračervené oblasti (Due Larsen,
B. , Christensen, D. H., Holm, A., Zillmer, R., a Faurskov, O. (1993), J. is Amer. Chem. Soc. 115, 6247 - 6253). Uvedená fyzikálně-chemická pozorování mohou být shrnuta následujícím způsobem: v případě syntézy H-(Ala)n-Lys-OH na polyamidem polymerizované křemelinové matrix (PepSynK) nebyly pozorovány žádné problémy až do n = 5, ale pro n = 6 bylo po provedení standardního odstranění ochranných skupin piperidinem (20 % piperidin v DMF) stále ještě přítomno přibližně 20 až 25 % peptidů chráněného Fmoc. Při pokračování syntézy na n = 10 byla získána relativně komplikovaná směs obsahující cílový peptid (n = 10) stejně jako deleční peptidy odpovídající n = 6, 7, 8 a 9 a deleční peptidy se skupinou Fmoc stále ještě připojenou na N-konec, kde n = 6, 7, 8 a 9 (obr. 1). Tato směs byla po separaci HPLC na jednotlivé složky identifikována FAB MS. Chybné sekvence nebo částečné odstranění ochranné skupiny pro n = 2 až 5 nebo neúplné odstranění ochranných skupin z cílového peptidů (n = 10) nebylo pozorováno, takže problém bylo možno přiřadit dané oblasti homo-oligopeptidového řetězce. Tento typ obtížných aminoacylací a neúplného odstraňování ochranných skupin je proto možno označit jako nenáhodný na rozdíl od náhodných obtíží, které • · · · * · · 4 · · 4 ···· ·· · · · · ·· · · · 4 A A ·· 4 4 4 · ·· ······
-11-,,. · · · · · ···· · · * * · * 4 «4 ·* jsou způsobeny pouze běžnými sférickými problémy (Kent, S. Β. H. (1988), Annu. Rev. Biochem. 57, 957 - 989). Ačkoliv byly měněny experimentální podmínky, například typ pryskyřice, doba kroku odstraňování ochranných skupin, rozpouštědla, přidávání chaotropních látek, problémy stále přetrvávaly, i když optimální vliv na nekompletní odstraňování skupiny Fmoc mělo zahřívání na 50 °C (Larsen, B. D. a Holm, A. (1994), Int. J. Peptide & Protein Res. 43, 1 - 9).
Nejcharakterističtějším rysem homo-oligoalaninového řetězce je to, že kroky neúplného odstranění Fmoc jsou následovány výrazně ío pomalými acylacemi další aminokyselinou v sekvenci. Efektivní doby acylace pro každý z prvních šesti alaninů jsou menší než 60 minut, zatímco úplná acylace u Ala?, Alag, Alag a Ala-ιο je 26, 28, 30 popřípadě 7 hodin (obr. 2).
Kent, S. Β. H. (1988), Annu. Rev. Biochem. 57, 957 - 989 15 navrhuje řadu řešení problému týkajícího se nesnází spojených s vazbou závislou na sekvenci, například použití tepla při kroku vazby a kvantitativní přeměnu zbytkových nezreagovaných peptidových řetězců navázaných na pryskyřici na ukončené peptidy v kroku navázání „čepičky“.
Podstata vynálezu
Předmětem předkládaného vynálezu je poskytnutí zlepšené metody SPPS, kterou je možno syntetizovat s vysokým výtěžkem a čistotou peptidy, které jsou známy nebo se ukážou jako „nesnadno syntetizovatelné sekvence“.
Dalším předmětem vynálezu je poskytnout zlepšený způsob SPPS, kterým se dosáhne snížení doby reakce nejen pro nesnadno syntetizovatelné sekvence, ale i pro jinak nekomplikované sekvence, kde je žádoucí snížit za normálních okolností dlouhé doby reakcí.
o ·· ··· · ··
12-· · · · · · «· ···
Dalším předmětem vynálezu je poskytnutí činidla nebo kitu pro použití při SPPS, kterými je možno dosáhnout výše uvedených zlepšení způsobu syntézy.
Způsob, kterým se dosahuje tohoto a dalších předmětů a výhod 5 vynálezu, bude zřejmý z následujícího podrobnějšího popisu a obrázků, které ukazují záznamy HPLC pro různé peptidy získané syntézou na pevné fázi.
Pro objasnění problémů popsaných výše s ohledem na prameny B. D. Larsen, C. Larsen a A. Holm, Peptides 1990; E. Giralt a D. io Andreu, (eds.) 1991 ESCOM Science Publishers Β. V., str. 193 - 185 a Larsen, B. D. a Holm, A. (1994), Int. J. Peptide & Protein Res. 43, 1 9 se autoři předkládaného vynálezu zaměřili za otázku, do jaké míry může být stupeň tvorby struktury typu β-listu homo-oligoalaninového řetězce ovlivněn zavedením kratší peptidové sekvence, pre-sekvence, do řetězce na C-konci. Tato otázka je spojena se skutečností, že proteinové struktury a polypeptidové sekvence mohou mít oblasti s dobře definovanými strukturami závislými na aminokyselinách v sekvenci a na předcházejících aminokyselinách. Jak bylo uvedeno dříve, výzkumy podle Chou, Ρ. Y. a Fasman, G. D. (1978), Annu Rev.
Biochem. 47, 251 - 276, týkající se proteinových struktur vedly k poznání tříd aminokyselin definovaných jako indukující převážně ašroubovici, β-list nebo indukující náhodné svinutí. Ačkoliv je možno předpokládat, že podobné předpovědi mohou platit pro homooligoalaniny nebo leuciny, bylo ukázáno, že pravidla Choua a Fasmana nepředpovídají vytváření struktur typu β-listu homooligoalaninovými nebo leucinovými peptidy. Navíc nelze očekávat, že by pravidla, která odvodili Chou a Fasman, mohla být použita při syntéze peptidů na pryskyřici a jasně nemohou platit, jestliže se účastní syntézy aminokyseliny s chráněným postranním řetězcem.
V základních studiích byla zkoumána syntéza molekuly H-(Ala)n(Lys)m-OH, kde (Lys)m znamená pre-sekvenci s m rovným 1, 3 a 6.
·· ·· ······ ·· ·· • · · · ··· · · · · ·· · · · · · · · ·· · • · ··· · ·· ··· ··· Λ η · · · · · · · ·
- *] j .···· ·· ·· ··· ·· ··
Byla použita verze syntézy na pevné fázi polyamidu s kontinuálním průtokem (Dryland, A. a Sheppard, R. C. (1986), J. Chem. Soc. Perkin Trans. I, 125 - 137) na plně automatizovaném syntezátoru peptidů jak bylo popsáno dříve (Cameron, L., Meldal, M. a Sheppard, R. C.
(1987), J. Chem. Soc. Chem. Commun, 270 - 272) s použitím DMF jako rozpouštědla, trojnásobného přebytku Fmoc-alaninu a esterů Fmoc-lysin(tBoc)-pfp, a standardního odstranění ochranných skupin Fmoc 20 % piperidinem v DMF po dobu 10 minut. Doby reakce byly monitorovány pomocí Dhbt-OH, který se deprotonuje na žlutý aniont ío Dbht-O', pokud jsou ještě přítomny neacylované amoniskupiny, a zmizení žluté barvy označuje konec syntézy. Po odštěpení peptidu z pryskyřice 95 % vodnou TFA byl produkt promyt etherem a analyzován HPLC. Výsledky pro m = 1 jsou popsány výše (obr. 1). V případě m = 3 je ze záznamu HPLC na obr. 3 vidět, že syntéza může pokračovat až k Alaw bez detekovatelných množství delečních peptidů nebo neúplného odstranění Fmoc. Když se však pokračuje v syntéze až k Ala20, chromatogram (obr. 4) ukazuje přítomnost delečních peptidů. Výsledky jsou ještě výraznější pro H-(Ala)„-(Lys)6-OH, kde se produkty bez detekovatelných delečních peptidů získají jak pro Ala10 (obr. 5), tak i pro Ala2o (obr. 6). Navíc se doby reakcí drasticky sníží z až 30 hodin pro standardní reakce na < 2 hodiny pro jeden krok. Sekvence H-Ala20-OH byla dosud syntetizována metodologií Boc, ale byly získány vysoké hladiny delečních a inzerčních peptidů (Merrifield, R. B., Singer, J. a Chait, Β. T. (1988), Anal. Biochem. 174, 399 - 414).
Pre-sekvence Lys6, která je za převažujících podmínek syntézy zcela chráněna skupinou tBoc, má nejsilnější a nejpříznivější vliv na strukturu rostoucího peptidového řetězce, protože odstraňuje jinak velmi vážné potíže při syntéze způsobené nekompletním odstraňováním ochranných skupin a extrémně pomalou reakcí.
V souladu s těmito třemi překvapujícími objevy je předkládaný vynález založen na zavedení zvláštní pre-sekvence do C-koncové části připojené na pevný nosič.
·· ···· • · · · · · · · · ·· · • · ··· · ·· ··· ···
X X · · · · · · · ·
- Ί4 -···· ·« ·· ··· ·· · ·
Το je zcela základní průlom proti pokusům podle dosavadního stavu techniky, kde byl kladen v případě nesnadno syntetizovatelných sekvencí důraz na podmínky reakce a povahu pevného nosiče.
Jak bude dále diskutováno níže, C-koncová sekvence, kterou je 5 požadovaný peptid připojen na pevný nosič, by mohla také zahrnovat vhodné linkery (mezičlánky) pro dosažení například lepšího připojení nebo lepších podmínek pro odštěpení.
První hledisko předkládaného vynálezu se tedy týká způsobu výroby peptidů
X-AA1-AA2.....AAn-Y kde AA je zbytek L- nebo D-aminokyseliny, X je atom vodíku nebo ochranná skupina aminoskupiny, Y je OH, NH2 nebo aminokyselinová sekvence obsahující tři až devět zbytků aminokyselin a n je celé číslo větší než 2, syntézou na pevné fázi, kde C-koncová aminokyselina ve formě Ν-α-chráněného reaktivního derivátu, v případě nutnosti s chráněným postranním řetězcem, je navázána na pevný nosič nebo polymer případě prostřednictvím linkeru, potom zbavena Ν-α-ochranné skupiny, a následující aminokyseliny vytvářející sekvenci peptidu jsou postupně navazovány nebo navazovány jako peptidové fragmenty ve formě vhodně chráněných reaktivních derivátů nebo fragmentů, kde po vytvoření požadovaného peptidu je N-aochranná skupina z požadovaného peptidu odstraněna a peptid je odštěpen z pevného nosiče, který se vyznačuje tím, že C-koncová část připojená na nosič nebo polymer obsahuje pre-sekvenci tvořenou 3 až
9, s výhodou 5 až 7 aminokyselinovými zbytky zvolenými nezávisle z nativních L-aminokyselin s funkčními skupinami postranního řetězce chráněnými v průběhu reakčních kroků a s faktorem náklonnosti Pa >0,57 a faktorem náklonnosti Ρβ > 1,10 nebo odpovídajících Daminokyselin a uvedená pre-sekvence je popřípadě z vytvořeného peptidu odštěpena.
·· ·· »··· ·· ·· • · · · · · · · • · ···· · ·· · • · · · ·· ··· ··· • · · · · · ·· ····· ·· ··
L-aminokyseliny splňující výše uvedené limity pro faktory náklonnosti Pa a Ρβ jsou Lys, Glu, Asp, Ser, His, Asn, Arg, Met a Gin.
Tyto aminokyseliny mají všechny funkční skupiny postranních řetězců ze skupiny karboxy, karboxamido, amino, hydroxy, guanidino, sulfid nebo imidazol.
Výhodné aminokyseliny v pre-sekvenci jsou Lys a Glu a jejich kombinace, například (Glu)q(Lys)p, kde p + q je 3 až 9, s výhodou 6 až 9, a pořadí Lys a Glu je zvoleno libovolně.
Ν-α-aminoskupina aminokyselin při každém vazebném kroku io použitých peptidových fragmentů by měla být vhodně při reakci chráněna. Ochranná skupina může být Fmoc nebo Boc nebo jakákoliv jiná vhodná ochranná skupina, jako jsou například výše popsané skupiny podle odkazů Stewart, J. M. a Young, J. D., Solid phase peptide synthesis, Pierce Chemical Company (1984), Cameron, L.,
Meldal, M. a Sheppard, R. C. (1987), J. Chem. Soc. Chem. Commun, 270 - 272, Meldal, M., Bisgaard Holm, C., Boejesen, G., Havsteen Jakobsen, M. a Holm, A. (1993), Int. J. Peptide and Protein Res. 41, 250 - 260, McKenzie, A., Pirie, D. J. C. (1936), Berichte 69, 868, Knorr, E. (1904), Berichte 37, 3172, Peptides: Synthesis, structures and applications, Gutte, B., ed. Academie Press lne. 1995. Výhodnou ochrannou skupinou Ν-α-aminokyseliny je Fmoc.
Důležité je, aby byly funkční skupiny postranního řetězce v presekvenci v průběhu reakčních kroků vhodně chráněny. Ochranné skupiny použitelné k tomuto účelu jsou odborníkovi v oboru dobře známy a výhodné skupiny se uvádějí v nárocích 7-12.
Aniž by si autoři přáli být vázáni náklonnou teorií, předpokládá se, že fyzikálně-chemické vlastnosti chráněného postranního řetězce pre-sekvence, jako například lysinu, jsou odpovědné za pozorovanou „peptidovou syntézu, při které napomáhá struktura („structural assisted peptide synthesis, SAPS“) snížením nebo odstraněním tvorby β-listu v polyalaninové sekvenci.
V případě jiných homo-oligo pre-sekvencí bylo pozorováno, že (Glu(tBu))6 stejně jako smíšená sekvence (Glu(tBu)Lys(tBoc))3 indukuje u polyalaninového řetězce výhodnou strukturu, což umožňuje vytvoření produktů bez delečních peptidů.
Pro zjištění, zda je SAPS obecnější jev, nebo zda je vlastní pouze homo-oligopeptidům jako je sekvence polyalanin, byly zkoumány směsné sekvence známé jako nesnadno syntetizovatelné.
Syntéza H-VQAAIDYING-QH, Acyl Carrier Protein (ACP) 65 - 74 je dobře známá obtížná syntéza, která byla použita jako modelová ío reakce v řadě případů (Cameron, L. R., Meldal, M. a Sheppard, R. C. (1987), J. Chem. Soc. Chem. Commun., 270 - 272). Při standardní syntéze byly pozorovány deleční peptidy s peptidem des-Val (vrchol 2) jako převažujícím vedlejším produktem (viz příklad 7 a obr. 7).
Podle vynálezu byla syntetizována sekvence H-VQAAIDYING15 Κβ-ΟΗ s použitím pre-sekvence (Lys(tBoc))6 připojené na C-konec materiálu pepsyn K. Syntéza probíhala za poskytnutí produktu se správnou molekulovou hmotností s vysokou čistotou a významně sníženým množstvím peptidů des-Val (viz příklad 8 a obr. 8).
Udává se, že další nesnadno syntetizovatelnou sekvencí je H20 VNVNVQVQVD-OH, která byla syntetizována na řadě pryskyřic (polymer Rapp, PEG-PS, Pepsyn K, PEGA 199/300, PEGA 800/130 a PEGA 300/130), ve všech případech se značnou převahou glutaminu z Val1 kromě použití pryskyřice PEGA 1900/300 (Meldal, M. (1993), Peptides 1993; Schneider, C. H. a Eberle, A. N. (eds) 1993 ESCOM
Science Publishers Β. V., str. 61 - 62). Podle vynálezu probíhala syntéza H-VNVNVQVQVDK6-OH za získání produktů se správnou molekulovou hmotností. Ve spektru nebyly detekovány deleční peptidy (viz příklad 9).
Pro ověření dalšího důležitého hlediska předkládaného vynálezu, tj. snížených dob reakcí získaných zavedením pre-sekvence na C-koncové části požadovaného peptidů byly monitorovány reakční • · ·· ··<· • · ·· · · ···· · · · · • · ··· · ·· ··· ··· *7 · · · · · · · · ” ! / “···· ·· ·· ··· ·· ·· doby u jednotlivých aminokyselin při syntéze enkefalinu, H-Tyr-GlyGly-Phe-Leu-OH, s a bez pre-sekvence (Lys(tBoc))6 podle popisu v příkladu 15.
Výsledky měření ukazují, že reakční doby u této jinak nekomplikované syntézy efektivně probíhají v kombinaci se zvolenou pre-sekvencí.
Ve výše uvedených případech byly peptidové sekvence získány s hexalysinovou pre-sekvencí, která může být pro některé účely přijatelná nebo dokonce výhodná. Tak například β-list vytvářející io sekvence mohou způsobovat vážné potíže s rozpustností, ale v případě H-Ala2o(Lys)6-OH se peptid změnil na rozpustný ve vodném roztoku, zatímco H-Alaio-Lys-OH se velmi rychle srážel z roztoků TFA při zředění vodou. V případě (Glu)6 může být využita rozpustnost poskytnutá pre-sekvencí a větším množstvím karboxylových skupin.
Například pro metodu ELISA, kde je možné místní připojení na povrch aktivovaný vhodnými aminoskupinami, protože je možná snadná aktivace ve vodném roztoku například karbodiimidem. Bylo tako zvažováno, jakým způsobem mohou být tato pozorování využita pro praktickou syntézu peptidů bez přítomnosti pre-sekvence ve finálním produktu. Proto byly prováděny pokusy zavést mezi pre-sekvenci a cílový peptid, například pryskyřice-(Lys(tBoc))6-linker-peptid, linker umožňující odštěpení peptidů z linkeru standardními činidly jako je roztok TFA. Zavedení běžně používaného linkeru HMPA jak se popisuje níže v příkladu 10, pryskyřice-(Lys(tBoc))6-HMPA25 Lys(tBoc)Alaio, však mělo jasně negativní vliv na syntézu H-AIaw-LysOH, protože vznikaly deleční peptidy (obr. 9). Vliv pre-sekvence na polyalaninovou strukturu je zřejmě ztracen v důsledku toho, že aromatická skupina v linkeru rozbíjí strukturní efekt v peptidové kostře (Ala)n-(Lys)m· Pro zachování strukturního efektu bylo zkoumáno
3o zavedení opticky aktivního linkeru mezi (Ala)n a (Lys)m s použitím kyseliny 4-methoxymandlové (MMa) jako možného kandidáta. Tento typ linkeru pravděpodobně nebyl dosud použit. Předpokládá se, že
1_ · ·
-· · · · · · · · · přítomnost methoxylové skupiny umožní odštěpení cílového peptidů z linkeru pomocí standardních štěpících roztoků s obsahem TFA. Kyselina 4-methoxymandlová může být rozlišena na své opticky aktivní formy, z nichž konfigurace R ((+)-konfigurace) je identická s L5 proteinovými aminokyselinami. Byly provedeny dva typy experimentů: (a) syntéza s použitím racemické kyseliny 4-methoxymandlové; (b) syntéza s použitím kyseliny R-4-methoxymandlové (R-MMa). Schéma syntézy je ukázáno níže (schéma 1) a dále ilustrováno v příkladech 11, 12, 13 a 14.
Schéma 1
(Ty— CONHCH2CH2NH-(A A)m-NHCO-CH-OH
OMe aktivace
Fmoc-AAj-OH aktivace (r)— CONHCHjCHjNH-(A AVNHCO-CH-OCO-CI1R-NI iFmoc
1. Odstranění i _Fmoc
2. Vazba s 1. Fmoc-AA atd
V prvním případě byla syntetizována sekvence pryskyřice25 (Lys(tBoc))6-MMa-Lys-Ala-io pro získání H-Lys-Alai0-OH, kde lysinová skupina je zavedena pro zvýšení rozpustnosti ve vodném roztoku pro analýzu HPLC. Výsledky analýzy HPLC jsou uvedeny v obr. 10. Bylo dosaženo mnohem lepšího produktu než v případě linkeru HMPA ···· · * · · · · · ·· · · ···· · · · · • · <·« · ·· ······
IQ · · · · · · · · “ Iv···· ·· ·· ♦·· ·· ·· (obr. 9 a příklad 10), ačkoliv jsou přítomny deleční peptidy. V případě (b) byl syntetizován stejný peptid za stejných podmínek a došlo k vytvoření peptidu bez detekovatelných delečních peptidů nebo neúplného odstranění skupiny Fmoc. Tyto výsledky mohou být porovnány se syntézou H-Lys-Alaio-OH s použitím konstruktu pryskyřice-MMa-Lys-Alaw, kde je vynechána pre-sekvence (Lys(tBoc))6. Jsou vidět významná množství delečních peptidů.
Podle uvedených pozorování se další hledisko předkládaného vynálezu týká způsobu syntézy peptidů na pevné fázi popsaného výše io vyznačujícího se dalším rysem, tj. že mezi pre-sekvenci připojenou k nosiči a požadovanou peptidovou sekvenci AAi-AAn je vložen linker, který umožňuje selektivní odštěpení uvedené sekvence. S výhodou je linker opticky aktivní. Použitelná skupina linkerů jsou a-hydroxy a aaminokyseliny obecného vzorce
R1
I
X —C —COOH I
R2 kde X je OH nebo NH2 a R1 a R2 jsou nezávisle zvoleny ze skupiny H, Ci_3alkyl, fenyl a substituovaný fenyl, kde substituenty jsou jeden nebo více substituentů schopných darovat elektron, například zvolené ze skupiny C-i-3alkoxy, Ci_3alkyl nebo jsou spojeny dvě vicinální skupiny substituentů za vytvoření 5- nebo 6-členného kruhu spolu s atomy uhlíku, ke kterému jsou připojeny.
Nejvýhodnějšími linkery jsou racemická kyselina 4methoxymandlová, kyselina (+)-4-methoxymandlová, difenylglycin a kyselina glykolová.
·· ···· • ·
Je třeba rozumět, že jestliže X je OH, produktem vytvořeným po štěpení bude peptid AAi-AAn-OH, tj. Y = OH, zatímco v případě kde X je NH2 bude vytvořen amid peptidu AAi-AAn-NH2) tj. Y = NH2.
V ještě dalším provedení vynálezu se vloží
Další důležité provedení vynálezu se týká činidel pro použití při syntéze na pevné fázi s použitím jednoho nebo více z výše popsaných rysů týkajících se pre-sekvencí a linkerů.
První hledisko tohoto provedení se týká činidla pro použití při syntéze peptidů na pevné fázi obecného vzorce
X-AA’i-.....-AA^-YrR kde R je pevný nosič použitelný při syntéze peptidů na pevné fázi, Yi je aminokyselinová sekvence obsahující od 3 do 9, s výhodou od 5 do 7 zbytků aminokyselin nezávisle zvolených z nativních Laminokyselin s funkčními skupinami postranních řetězců chráněnými is při krocích reakce a s faktory náklonnosti Pa > 0,57 a faktorem náklonnosti Ρβ < 1,10, například Lys, Glu, Asp, Ser, His, Asn, Arg, Met nebo Gin, nebo odpovídajících D-aminokyselin, AA’ je zbytek L- nebo D-aminokyseliny, m je 0 nebo celé číslo od 1 do 40 a X je atom vodíku nebo ochranná skupina aminoskupiny.
Druhé hledisko tohoto provedení se týká činidla pro použití při syntéze peptidů na pevné fázi obecného vzorce
X-AA’i-.....-AA’m-Li-Yi-R kde X, AA’, m, Yi a R jsou jak definováno výše a Li je s výhodou opticky aktivní linker, který umožňuje selektivní odštěpení vazby na
AA’m·
Výhodné linkery jsou α-hydroxy nebo a-aminokyseliny jak je popsáno výše.
Třetí hledisko tohoto provedení se týká činidla pro použití při syntéze peptidů na pevné fázi obecného vzorce ·· ···· “b···
Χ-ΑΑ’ι-.....-AA’m-Li-Yi-L2-R kde X, AA’, m, Yi, R a Li jsou jak definováno výše a L2 je linker, umožňující selektivní odštěpení z pevného nosiče.
Čtvrté hledisko tohoto provedení se týká činidla pro použití při 5 syntéze peptidů na pevné fázi obecného vzorce
X-AA*!-.....-AAm-YrLz-R kde X, AA’, m, Yi, Ra L2 je jak definováno výše.
Je zřejmé, že výše uvedená činidla mohou být ve formě polymerů, gelů nebo jiných pevných fází připravených pro syntézu peptidů na pevné fázi podle vynálezu tím, že
a) obsahují pre-sekvenci a popřípadě jednu nebo více aminokyselin z požadované sekvence (první hledisko) nebo
b) obsahují pre-sekvenci, s výhodou opticky aktivní štěpící linker a popřípadě jednu nebo více aminokyselin z požadované sekvence (druhé hledisko) nebo
c) obsahují druhý linker umožňující odštěpení z nosiče, presekvenci, první s výhodou opticky aktivní linker umožňující odštěpení a popřípadě jednu nebo více aminokyselin z požadované sekvence (třetí hledisko) a
d) obsahují linker umožňující odštěpení z nosiče, pre-sekvenci a popřípadě jednu nebo více aminokyselin z požadované sekvence (čtvrté hledisko).
Konkrétní podmínky použité při experimentech, na kterých je vynález založen, jsou uvedeny níže mezi obecnými postupy.
Obecně řečeno, bez ohledu na nové a charakteristické rysy týkající se pre-sekvence a nových linkerů pro štěpení může být způsob podle vynálezu prováděn za tradičních podmínek syntézy peptidů na pevné fázi popsaných v literatuře uváděné v části Dosavadní stav techniky.
··
- 99 „ · · £-£- ···· 4· ···<
• 9 • ··· • · · • * ··· ·· ·· * » • · · ι>1· 9 · · • · ·· *·
Může však být vhodný následující krátký souhrn.
Skupiny Fmoc mohou být odstraněny působením aminu jako je piperidin nebo diazaabicykio[5,4,0]undec-7-en (DBU).
Ochranné skupiny postranního řetězce mohou být odstraněny 5 kyselinou jako je kyselina trifluoroctová (TFA), trifluormethansulfonová (TFMSA), HBr, HCl nebo HF.
Pevný nosič se s výhodou volí z funkcionalizovaných pryskyřic jako je polystyren, polyakrylamid, polyethylenglykol, celulóza, polyethylen, latex nebi dynabeads.
ίο V případě potřeby mohou být navázány C-koncové aminokyseliny na pevný nosič běžným linkerem jako je 2,4-dimethoxy4’-hydroxybenzofenon, kyselina 4-(4-hydroxy-methyl-3methoxyfenoxy)-máselná (HMPB), kyselina 4-hydroxymethylbenzoová, kyselina 4-hydroxymethylfenoxyoctová (HMPA), kyselina 3-(415 hydroxymethylfenoxy)propionová nebo kyselina p-[(R,S)-a[1-(9Hfluoren-9-yl)-methoxyformamido]-2,4-dimethoxybenzyl]-fenoxyoctová (AM).
Syntéza může být prováděna vsádkovým způsobem nebo kontinuálně na automatickém nebo poloautomatickém syntezátoru peptidů.
Jednotlivé reakční kroky mohou být prováděny v přítomnosti rozpouštědla, například zvoleného ze skupiny acetonitril, N,Ndimethylformamid (DMF), N-methylpyrrolidon (NMP), dichlormethan (DCM), trifluorethanol (TFE), ethanol, methanol, voda, směsi uvedených rozpouštědel s nebo bez dalších látek jako jsou chloristany nebo ethylenkarbonáty.
Jednotlivé vazby mezi dvěma aminokyselinami, aminokyselinou a dříve vytvořenou peptidovou sekvencí nebo peptidovým fragmentem a dříve vytvořenou peptidovou sekvencí mohou být prováděny běžnými kondenzačními způsoby jako je azidová metoda, metoda směsného ·· ·· • toto · • · · . 23 - ·* ί ί ···· ·· ·· ···· toto ·· • to to to · · · • to ··· · · · · ··· · · to·· ··· • · · · · ·· ··· ·· toto anhydridů kyseliny, metoda symetrického anhydridů, karbodiimidová metoda, metoda aktivního esteru jako je pentafluorfenyl (Pfp), 3,4dihydro-4-oxobenzotriazin-3-yl (Dhbt), benzotriazol-1-yl (Bt), 7azabenzotriazol-1-yl (At), 4-nitrofenyl, imidoestery kyseliny N5 hydroxyjantarové (NHS), chloridy kyselin, fluoridy kyselin, aktivace in šitu činidly jako O-(7-azabenzotriazol-1-yl)-1,1,3,3-tetramethyluroniumhexafluorfosfát (HATU), O-(benzotriazol-1-yl)-1,1,3,3tetramethyluroniumhexafluorfosfát (HBTU), O-(benzotriazol-l-yl)1,1,3,3-tetramethyluroniumhexafluorborát (TBTU) nebo io benzotriazolyloxy-tris-(dimethylamino)-fosfoniumhexafluorfosfát (BOP).
Vytvořený peptid může být odštěpen od nosiče kyselinou jako je kyselina trifluoroctová (TFA), trifluormethansulfonová (TFMSA), bromovodík (HBR), chlorovodík (HCI), fluorovodík (HF) nebo bází jako je amoniak, hydrazin, aikoxid nebo hydroxid.
Alternativně se peptid odštěpuje od nosiče fotolýzou.
Při provedení, kdy je linker vložen mezi pre-sekvenci připojenou na nosič a sekvenci AA-i-AAn umožňující selektivní odštěpení uvedené sekvence, může být uvedené štěpení prováděno kyselinou jako je kyselina trifluoroctová (TFA), trifluormethansulfonová (TFMSA), bromovodík (HBR), chlorovodík (HCI), fluorovodík (HF) nebo bází jako je amoniak, hydrazin, aikoxid nebo hydroxid.
QA · · ··· · ··
- Z*T “ ·♦···· ···· ·· ·· ···
Syntéza peptidů uskutečňovaná s pomocí sekvence (SAPS)
Postupy experimentů:
Syntéza peptidů Obecné postupy
Přístroje a strategie syntézy
Peptidy byly syntetizovány buď vsádkovým způsobem v polyethylenové nádobě opatřené polypropylenovým filtrem pro filtraci nebo kontinuální průtokovou verzí metody na pevné fázi polyamidu (Dryland, A. a Sheppard, R. C. (1986), J. Chem. Soc. Perkin Trans. I,
125 - 137) na plně automatickém syntezátoru peptidů (Cameron, L.,
Meldal, M. a Sheppard, R. C. (1987), J. Chem. Soc. Chem. Commun, 270 - 272) s použitím 9-fluorenylmethyloxykarbonylu (Fmoc) nebo terc.-butyloxykarbonylu (Boc) jako Ν-α-aminových ochranných skupin a vhodných společných ochranných skupin pro funkční skupiny postranních řetězců.
Rozpouštědla
Rozpouštědlo DMF (Ν,Ν-dimethylformamid, Riedel de-Háen, Německo) bylo čištěno průchodem přes kolonu naplněnou silnou kationtovou iontoměničovou pryskyřicí (Lewatit S 100 MB/H silně kyselá, Bayer AG Leverkusen, Německo) a analyzováno na přítomnost volných aminů před použitím přídavkem 3,4-dihydro-3-hydroxy-4-oxo1,2,3-benzotriazinu (Dhbt-OH), který poskytuje žluté zbarvení (aniont Dhbt-O) v přítomnosti volných aminů. Rozpouštědlo DCM (dichlormethan pro analýzu, Riedel de-Háen, Německo) byl přímo použit bez čištění.
• · · ·
- 25 Aminokyseliny
Aminokyseliny chráněné Fmoc a odpovídající pentafluorfenyl (Pfp) estery byly získány od firmy MilliGen, UK, NovaBiochem, Švýcarsko a Bachem, Švýcarsko a Dhbt-estery od firmy NovaBiochem,
Švýcarsko s vhodně chráněnými postranními řetězci. Aminokyseliny chráněno Boc byly zakoupeny u firmy Bachem, Švýcarsko.
Vazebná činidla
Vazebné činidlo diizopropylkarbodiimid (DIC) bylo zakoupeno 10 u firmy Riedel de-Háen, Německo a před použitím destilováno; dicyklohexylkarbodiimid (DCC) byl pořízen u firmy Merck-Schuchardt, Mnichov, Německo a čištěn destilací. O-benzotriazolyl-N,N,N’,N’tetramethyluroniumtetrafluorborát (TBTU) byl získán od firmy
PerSeptive Biosystems GmbH Hamburk, Německo.
Linkery
Linkery HMPA, Novabiochem, Švýcarsko; kyselina 4hydroxymethylbenzoová, NovaBiochem; kyselina 4-methoxymandlová, Aldrich, Německo; HMPB, NovaBiochem; AM, NovaBiochem; kyselina
3-(4-hydroxymethylfenoxy)propionová, NovaBiochem, byly navázány na pryskyřici ve formě předem vytvořeného 1hydroxybenzotriazolového (HObt) esteru vytvořeného pomocí DIC. Racemická kyselina 4-methoxymandlová (98 % čistoty, Aldrich, Německo) byla použita přímo jako linker nebo rozdělena působením (+)-cinchoninu (čistota 85 %, Aldrich, Německo) za poskytnutí opticky aktivního linkeru kyseliny (+)-4-methoxymandlové, [a]20 = + 146 (voda) s 95,8 % optickou čistotou a kyselina (-)-4-methoxymandlová, [a]20 = - 128,6 (voda) s 88,1 % optickou čistotou.
oo ······ · · ·····« ···· ·· ·· · · ·
Rozdělení kyseliny (+/-)-4-methoxvmandlové (A. McKenzie, D. J. C. Pirie, McKenzie, A., Pirie, D. J. C. (1936), Berichte 69, 868; Knorr, E. (1904), Berichte 37, 3172)
Kyselina (+/-)-4-methoxymandlová (10 g, 54,89 mmol; Aldrich, 5 98 %) byla rozpuštěna v 500 ml horké vody (60 - 80 °C) a roztok byl dekantován za stálého zahřívání pro odstranění nerozpustných nečistot. Do horkého roztoku byl po malých částech přidán (+)cinchonin (16,16 g, 54,89 mmol, Aldrich, 85 %, [a]D 20 = + 211° (podle literatury + 228°). Roztok se vyčeřil po 15 minutách míchání při 60 až io 80 °C a byl ochlazen v ledu. Po 1 hod byla sraženina shromážděna filtrací a sušena v exikátoru přes noc za získání 9,9 g cinchoninové soli. Sůl byla rekrystalizována z vařící vody (80 ml), roztok byl za zahřívání dekantován a potom ochlazen v ledu. Sraženina byla oddělena filtrací po 1 hodině, třikrát promyta studenou vodou a sušena přes noc v exikátoru za získání 7,84 g (16,45 mmol). Cinchoninová sůl (2 g, 4,2 mmol) byla rozpuštěna ve 40 ml 2N HCl a ihned extrahována 3 x 30 ml diethyletheru. Etherová fáze byla sušena nad Na2SO4 a odpařena dosucha za získání 0,55 g kyseliny 4-methoxymandlové. Optická čistota uvolněné kyseliny 4-methoxymandlové byla odhadnuta na 18,5 % ([a]o2° = + 100,8°). Třetí rekrystalizací byla získána optická čistota 95,8 % ([a]D 20 = + 140,0°).
Pevné nosiče
Peptidy syntetizované strategií Fmoc byly syntetizovány na třech různých typech pevných nosičů s použitím koncentrací Fmoc-chráněné aktivované aminokyseliny v DMF 0,05M nebo vyšší. 1) PEG-PS (polyethylenglykol naroubovaný na polystyren; pryskyřice TentaGel S NH2, 0,27 mmol/g, Rapp Polymere, Německo nebo pryskyřice NovaSyn TG, 0,29 mmol/g, Novabiochem, Švýcarsko); 2) PepSyn Gel (polydimethylakrylamidová pryskyřice funkcionalizovaná methylesterem sarkosinu, 1,0 mmol/g; MilliGen, UK); 3) PepSyn K • · · · • · • · (polydimethylakrylamidová pryskyřice na křemelinovém nosiči funkcionalizovaná methylesterem sarkosinu, 0,11 mmol/g; MilliGen,
UK).
Peptidy syntetizované strategií Boc byly syntetizovány na
Merrifieldově pryskyřici (polystyren-divinylbenzen) s připojenou první aminokyselinou (Novabiochem, Švýcarsko).
Katalyzátory a jiné reagencie
Diizopropylethylamin (DIEA) byl získán od firmy Aldrich,
Německo a ethylendiamin od firmy Fluka, Švýcarsko, piperidin od firmy Riedel de-Háen, Frankfurt, Německo. 4-(N,N-dimethylamino)pyridin (DMAP) byl získán od firmy Fluka, Švýcarsko a použit jako katalyzátor při vazebných reakcích s účastí symetrických anhydridů. 3,4-dihydro3-hydroxy-4-oxo-1,2,3-benzotriazin (Dhbt-OH) byl získán od firmy
Fluka, Švýcarsko a 1-hydroxybenzotriazoi (HObt) od firmy NovaBiochem, Švýcarsko.
Postupy provádění vazby
První aminokyselina byla navázána jako symetrický anhydrid v
DMF vytvořený z náklonné Ν-α-chráněné aminokyseliny a DIC. Následující aminokyseliny byly navázány jako Pfp- nebo Dhbt-estery nebo jako předem vytvořené HObt estery vyrobené z vhodných N-achráněných aminokyselin a HObt pomocí DIC nebo TBTU v DMF. V případě Fmoc byly všechny acylace kontrolovány ninhydrinovým testem prováděným při 80 °C pro zabránění odštěpení ochranné skupiny Fmoc při testu (Larsen, B. D. a Holm, A. (1994), Int. J. Peptide & Protein Res. 43, 1 - 9).
• · · ·
- 28 ···· ··· ···· ·· · · ···· · ·· · • · ··· · · · ··· ··· ♦ ···· · · · ···· ·· ·· ··· ·· ··
Odstranění Ν-α-aminové ochranné skupiny
Odstranění ochranné skupiny Fmoc bylo provedeno působením 20 % piperidinu v DMF (1 x 3 a 1 x 7 min při syntéze vsádkovým způsobem) nebo průtokem rozpouštědla odstraňujícího ochranné skupiny přes pryskyřici (10 min, průtok 1 ml/min při kontinuální syntéze) s následným promýváním DMF, dokud již nebylo možno detekovat žlutou barvu (Dhbt-O') po přídavku Dhbt-OH do odtékajícího DMF.
Odstranění skupiny Boc bylo prováděno působením 50 % TFA v io DCM (obj.) 1 x 1,5 min a 1 x 20 min s následným promytím 6x9 min vždy DCM, neutralizací 10 % triethylaminem v DCM (obj.) vždy 2 x
1,5 min a s následným promytím 6x9 min DCM.
Odštěpení peptidu z pryskyřice kyselinou
Peptidy byly oddělovány z pryskyřic působením 95 % kyseliny trifluoroctové (TFA, Halocarbon Products Corporation, USA; Biesterfeld & Co. Hamburk, Německo) ve vodě (obj.) při pokojové teplotě 2 hodiny. Odfiltrované pryskyřice byly promyty 95 % směsí TFA-voda a filtráty a promývací roztoky odpařeny za sníženého tlaku.
Zbytek byl promyt etherem a lyofilizován ze směsi kyselina octová voda. Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC a identifikován metodou matrix assisted laser desorption ionization time of flight mass spectrometry (MALDI TOF MS) nebo hmotnostní spektrometrií s ionizací elektrorozprašováním (ESMS).
Štěpení peptidu z pryskyřice pomocí báze
Sušená pryskyřice (1 g) byla smísena s 1M hydroxidem sodným (10 ml) při 4 °C a ponechána 15 min při pokojové teplotě. Pryskyřice byla zfiltrována do láhve s obsahem 10 % vodné kyseliny octové.
Peptid byl izolován lyofilizací a gelovou filtrací.
- 29 • · · · · · • · · · · ·· · • · · ··· ··· ······ ·· ···· ·· ·· ··· ·· ··
Odštěpení peptidu z pryskyřice TFMSA
Sušená pryskyřice (250 mg) byla vložena do kulové baňky s míchací tyčinkou. Byla přidána směs thioanisol/ethandithiol (2:1,
750 pl), směs byla ochlazena v ledu, bylo přidáno 5 ml TFA a směs byla míchána 5-10 minut. Po kapkách byla přidána TFMSA (500 μΙ) a reakce pokračovala při pokojové teplotě 30 - 60 minut. Peptid se vysrážel přidáním etheru.
io Odstranění ochranných skupin z postranních řetězců
Ochranné skupiny se odstraňují z postranních řetězců s výhodou při odštěpování peptidu z pryskyřice.
Předem vytvořený HObt-ester
Metoda a. 3 ekv. Ν-α-chráněné aminokyseliny byly rozpuštěny v DMF spolu s 3 ekv. HObt a 3 ekv. DIC. Roztok byl ponechán při pokojové teplotě 10 min a potom přidán k pryskyřici, která byla promýta roztokem 0,2 % Dhbt-OH v DMF před přídavkem předem aktivované aminokyseliny.
Metoda b. 3 ekv. Ν-α-chráněné aminokyseliny byly rozpuštěny v DMF spolu s 3 ekv. HObt, 3 ekv. TBTU a 4,5 ekv. DIEA. Roztok byl ponechán při pokojové teplotě 5 min a potom přidán k pryskyřici.
Předem vytvořeny symetricky anhydrid
6 ekv. Ν-α-chráněné aminokyseliny bylo rozpuštěno v DCM a ochlazeno na 0 °C. Byl přidán DCC (3 ekv.) a reakce pokračovala 10 minut. Rozpouštědlo bylo odstraněno ve vakuu a zbytky rozpuštěny v DMF. Roztok byl zfiltrován a ihned přidán k pryskyřici s následným přidáním 0,1 ekv. DMAP.
• · • · « · « <
- 30 Odhad výtěžku vazby první Ν-α-amino chráněné aminokyseliny
K 3 - 5 mg suché Fmoc-chráněné sloučeniny peptid - pryskyřice bylo přidáno 5 ml 20 % piperidinu v DMF v průběhu 10 min při pokojové teplotě a při 301 nm byla odhadována UV absorpce adduktu dibenzofulven-piperidin. Výtěžek byl stanoven s použitím vypočteného koeficientu e3oi vztaženého ke standardu Fmoc-Ala-OH.
V případě ochrany Boc byl výtěžek vazby určován ninhydrinovou metodou po odstranění skupiny Boc (Sarin, V. K., Kent, S. Β. H., Tam, io J. P. a Merrifield, R. B. (1981), Anal. Biochem., 117, 147 - 157).
Syntéza peptidů na pryskyřici PepSyn K
Suchá pryskyřice PepSyn K (přibližně 500 mg) byla přelita ethylendiaminem a ponechána při pokojové teplotě přes noc.
Pryskyřice byla odsáta a promyta 10 x 15 ml DMF, vždy 5 minut. Po odtažení byla pryskyřice promyta 10 % DIEA v DMF (obj.) (2x15 ml, vždy 5 min) a nakonec promývána DMF, dokud již nemohlo být detekováno přídavkem Dhbt-OH k vytékajícímu DMF žluté zbarvení. 3 ekv. HMPA, 3 ekv. HObt a 3 ekv. DIC byly rozpuštěny v 10 ml DMF a ponechány 10 min aktivovat; potom byla směs přidána k pryskyřici a vazba probíhala 24 hodin. Pryskyřice byla odsáta a promyta DMF (10 x 15 ml, vždy 5 minut) a acylace byla kontrolována ninhydrinovým testem. Byla navázána první aminokyselina a ochrana postranního řetězce byla provedena symetrickým anhydrinem (viz výše); výtěžky reakce byly testovány jak bylo popsáno výše. Ve všech případech byly vyšší než 70 %. Syntéza potom pokračovala buď kontinuálně nebo vsádkově, jak bude popsáno dále.
00 00 0000 • 000 000 0000
0 0 0000 0 0« ·
0 000 0 00 000 000 0*1 0000·« ·· w I “ 0000 00 ·· ··· ·· ··
Kontinuální syntéza na pryskyřici PepSyn K použitím techniky kontinuálního průtoku
Pryskyřice (přibližně 500 mg) s připojenou první aminokyselinou byla vložena do kolony připojené na plně automatický syntezátor peptidů. Skupina Fmoc byla odstraněna jak bylo popsáno výše. Zbylé aminokyseliny podle sekvence byly navázány ve formě chráněné Fmoc, v případě potřeby s chráněným postranním řetězcem, estery Pfp (3 ekv.) s přídavkem Dhbt-OH (1 ekv.). Ukončení každé reakce bylo automaticky určováno monitorováním zmizení žlutého zbarvení ío aniontu Dhbt-OH spektrofotometricky. Po ukončení syntézy byla pryskyřice s navázaným peptidem promyta DMF (průtok 1 ml/min, 10 min), DCM (vždy 3 min, 3x5 ml) a nakonec diethyletherem (3x5 ml), vyjmuta z kolony a sušena ve vakuu.
Pokračování vsádkové syntézy peptidů na pryskyřici PepSyn K
Pryskyřice (přibližně 500 mg) s navázanou první aminokyselinou byla vložena do polyethylenové nádoby opatřené polypropylenovým filtrem a byla odstraněna skupina Fmoc jak bylo popsáno výše. Zbývající aminokyseliny podle sekvence byly navázány jako předem
2o vytvořené, Fmoc-chráněné, v případě potřeby s chráněnými postranními řetězci, HObt estery (3 ekv.) v DMF (5 ml) vyrobené jak bylo popsáno výše. Vazebné reakce pokračovaly 2 hod, pokud není uvedeno jinak. Nadbytek činidla byl potom odstraněn promýváním DMF (12 min, průtok 1 ml/min). Všechny acylace byly kontrolovány ninhydrinovým testem prováděným při 80 °C. Po ukončení syntézy byla pryskyřice s peptidem promyta DMF (10 min, průtok 1 ml/min),
DCM (5x5 ml, vždy 1 min) a nakonec diethyletherem (5x5 ml, vždy 1 min) a sušena ve vakuu.
- 32 ·· ♦··· · · ·· • ♦ · · · · · • · · · · · · · · »· ··· · ·· ······ *····· ·· <·· · ·· ·· ··· ·· · ·
Vsádková syntéza peptidů na PEG-PS
Pryskyřice TentaGel S NH2 nebo NovaSyn TG (250 mg, 0,27 0,29 mmol/g) byla vložena do polyethylenové nádobky opatřené polypropylenovým filtrem. Pryskyřice byla ponechána bobtnat v DMF (5 ml) a byla smísena s 20 % piperidinem v DMF pro zajištění přítomnosti neprotonovaných aminoskupin na pryskyřici. Pryskyřice byla odsáta a promývána DMF, dokud nemohlo být detekováno po přípdavku Dhbt-OH k vytékajícímu DMF žluté zbarvení. Byla provedena reakce HMPA (3 ekv.) jako předem vytvořeného esteru ío HObt jak bylo popsáno výše a reakce byla ponechána probíhat 24 hod. Pryskyřice byla odsáha a promytá DMF (5x5 ml, vždy 5 min) a acylace byla zkontrolována ninhydrinovým testem. První aminokyselina byla navázána ve formě předem vytvořeného symetrického anhydridu jak bylo popsáno výše. vazebné výtěžky prvních aminokyselin chráněných Fmoc byly určovány výše popsaným způsobem. Ve všech případech byly lepší než 60 %. Následující aminokyseliny podle sekvence byly vázány jako předem vytvořené, Fmoc-chráněné, v případě potřeby s chráněným postranním řetězcem, estery HObt (3 ekv.) jak bylo popsáno výše. Vazebné reakce
2o pokračovaly 2 hodiny, pokud není uvedeno jinak. Pryskyřice byla odsáta a promytá DMF (5x5 ml, vždy 5 min) pro odstranění nadbytku činidla. Všechny acylace byly kontrolovány ninhydrinovým testem provedeným při 80 °C. Po ukončené syntéze byla pryskyřice s peptidem promytá DMF (3x5 ml, vždy 5 min), DCM (3x5 ml, vždy
1 min) a nakonec diethyletherem (3x5 ml, vždy 1 min) a sušena ve vakuu.
Vsádková syntéza peptidů na gelu PepSvn
Sušená pryskyřice PepSyn Gel (500 mg, 1 mmol/g) byla vllžena do polyethylenové nádoby opatřené polypropylenovým filtrem. Pryskyřice byla ponechána bobtnat v ethylendiaminu (15 ml) a byla • 9 • · 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9
9 9 9 9 9 9 9 9 9 • · · · 9 99 9 9 9 9 9 mírně míchána třepáním 20 hodin. Pryskyřice byla odsáta a promyta DMF (10 x 15 ml, vždy 5 min). Po odsátí byla pryskyřice promyta 10 % DIEA v DMF (obj.) (2 x 15 ml, vždy 5 min) a nakonec promyta DMF (5x15 ml, vždy 5 min), až již nebylo dotekováno po přidání Dhbt-OH k vytékajícímu DMF žluté zbarvení. HMPA (3 ekv.) byla navázána jako předem aktivovaný ester HObt jak bylo popsáno výše (metoda a) a vazba pokračovala 24 hod. Pryskyřice byla odsáta a promyta DMF (5x15 ml, vždy 5 min). Acylace byla kontrolována ninhydrinovým testem. První aminokyselina byla navázána jako předem vytvořený symetrický anhydrid s chráněným postranním řetězcem jak bylo popsáno výše. Vazebné výtěžky pro první aminokyseliny chráněné Fmoc byly odhadnuty jak bylo popsáno výše. Ve všech případech byly lepší než 70 %. Zbylé aminokyseliny podle sekvence byly vázány jako předem vytvořené estery HObt (3 ekv.) chráněné Fmoc, v případě potřeby s chráněným postranním řetězcem, jak bylo popsáno výše (metoda a). Vazby pokračovaly 2 hodiny a v případě potřeby ještě přes noc. Pryskyřice byla odsáta a promyta DMF (5x5 ml, vždy 5 min) pro odstranění nadbytku činidla. Všechny acylace byly kontrolovány ninhydrinovým testem prováděným při 80 °C. Po ukončení syntézy byla pryskyřice s peptidem promyta DMF (3x15 ml, vždy 5 min), DCM (3x15 ml, vždy 2 min) a nakonec diethyletherem (3 x 15 ml, vždy 2 min) a sušena ve vakuu.
Podmínky HPLC
HPLC byla prováděna na přístroji Waters 600 E opatřeném detektorem Waters 996 Photodiode array detector s kolonou Waters Radial Pak 8 x 100 mm Cis s reverzní fází. Pufr A byl 0,1 objemových procent TFA ve vodě a pufr B 90 obj. procent acetonitrilu, 9,9 obj. % vody a 0,1 obj. % TFA. Pufry byly čerpány přes kolonu s průtokem
1,5 ml/min s použitím gradientu: 1. lineární gradient od 0 do 70 % B (20 min), lineární gradient od 70 do 100 % B (1 min), izokraticky
- 34 100 % Β (5 min). 2. Izokraticky 0 % Β (2 min), lineární gradient od 0 do % B (23 min), lineární gradient od 50 do 100 % B (5 min), izokraticky 100 % B (5 min).
Hmotnostní spektroskopie
Hmotnostní spektra typu matrix assisted laser desorbtion ionization time-of-flight (MALDI TOF) byla získávána na přístroji Fisons TofSpec E. Hmotnostní spektra s elektrorozprašovací ionizací byla získávána na přístroji Finnigan Mat LCQ opatřeném ío elektrorozprašovací (ESI) sondou (ES-MS).
Přehled obrázků na výkresech
Obr. 1 je záznam HPLC surového H-Alaio-Lys-OH ukazující podstatná 15 množství delečních peptidů (vrcholy 1, 2, 3 a 4) a peptidu s neúplně odstraněným Fmoc (vrcholy 6, 7, 8 a 9) v přítomnosti cílového peptidu (vrchol 5).
Obr. 2 je diagram znázorňující postupné doby reakce pro každý 20 z alaninů při syntéze H-Alaw-Lys-OH.
Obr. 3 je záznam HPLC H-Ala10-Lys3-OH ukazující cílový peptid. Nebyly pozorovány deleční peptidy.
Obr. 4 je záznam HPLC H-Ala2o-Lys3-OH ukazující deleční peptidy (vrcholy 1, 2, 3, 4 a 5) mimo cílového peptidu (vrchol 6).
Obr. 5 je záznam HPLC H-Alai0-Lys6-OH. Nejsou vidět žádné deleční peptidy.
··
Obr. 6 je záznam HPLC H-Ala20-Lys6-OH. Nejsou vidět žádné deleční peptidy.
Obr. 7 je záznam HPLC H-VQAAIDYING-OH, Acyl Carrier Protein (ACP) 65 - 74. Cílový peptid (vrchol 3) je doprovázen delečními peptidy (vrchol 2 patří peptidu des-Val).
Obr. 8 je záznam HPLC H-VQAAIDYING-K6-OH, Acyl Carrier Protein (ACP) 65 - 74 navázaný na pre-sekvenci Lys(Boc)6 ío s přítomností pouze malého množství peptidu des-Val (vrchol 1).
Obr. 9 je záznam HPLC H-Alaw-Lys-OH vyrobeného přidáním linkeru HMPA. Je vidět několik delečních peptidů (z Alaw-Lys(tBoc)15 HMPA-(Lys(tBoc))6-pryskyřice).
Obr. 10 je podobný záznam HPLC H-Alaw-Lys-OH vyrobeného použitím linkeru MMa. Je vidět podstatné snížení množství delečních peptidů ve srovnání s obr. 9 (z Alaw-Lys-MMa20 (Lys(tBoc))6-pryskyřice).
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1
Syntéza H-Alaw-Lys-OH (srovnání) 25 Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC a bylo zjištěno, že jde o komplikovanou směs obsahující cílový peptid (n=10) i deleční peptidy odpovídající n = 6, 7, 8 a 9 a deleční peptidy, u kterých byla skupina Fmoc stále připojena na N-konec s n = 6, 7, 8, popřípadě 9. Identita jednotlivých peptidů byla potvrzena metodou
3o MALDI TOF MS.
·· « ) · · » · · • · · β
- 36 Příklad 2
Syntéza H-Alaw-Lysg-OH
Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC a bylo 5 zjištěno, že je homogenní bez delecí a sekvencí chráněných Fmoc. Výtěžek 91,0 %. Bylo zjištěno, že čistota podle HPLC je lepší než 98 % (viz obr. 3). Identita peptidu byla potvrzena použitím metody MALDI
TOF MS.
io Příklad 3
Syntéza H-Alaw-Lys6-OH
500 mg Fmoc-Lys(Boc) pryskyřice PepSyn KA (0,086 mmol/g) bylo použito pro syntézu postupem „kontinuální průtok“.
Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC a bylo 15 zjištěno, že je homogenní bez delecí a sekvencí chráněných Fmoc. Výtěžek 90,9 %. Bylo zjištěno, že čistota podle HPLC je lepší než 98 % (viz obr. 5). Identita peptidu byla potvrzena ES MS.
Příklad 4
2o Syntéza H-Ala?n-Lys3-OH
500 mg Fmoc-Alai0-(Lys(Boc))3 pryskyřice PepSyn KA (ze syntézy H-Alaio-Lys3-OH) bylo použito pro syntézu metodou kontinuálního průtoku.
Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC a bylo 25 zjištěno, že obsahuje cílový peptid H-Alan-Lys3-OH (n = 20) stejně jako deleční peptidy odpovídající n = 19, 18, 17 a 16 (viz obr. 4). Sekvence chráněné Fmoc nebyly detekovány. Identita peptidů byla potvrzena ES
MS.
• · · ·
- 37 Příklad 5
Syntéza H-Alago-Lyss-OH
500 mg Fmoc-Lys(Boc) pryskyřice PepSyn KA (0,086 mmol/g) bylo použito pro syntézu postupem „kontinuální průtok“.
Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC a bylo zjištěno, že je homogenní bez delecí a sekvencí chráněných Fmoc. Výtěžek 91,4 %. Bylo zjištěno, že čistota podle HPLC je lepší než 98 % (viz obr. 6). Identita peptidu byla potvrzena ES MS.
Příklad 6
Syntéza H-Alago-Lys-fGlu-Lysb-OH
500 mg pryskyřice Fmoc-Lys(Boc) PepSyn KA (0,086 mmol/g) bylo použito pro syntézu metodou kontinuálního průtoku.
Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC. Bylo zjištěno, že čistota je lepší než 98 % bez přítomnosti delečních a Fmocchráněných sekvencí. Výtěžek 97 %. Identita peptidu byla potvrzena ES MS.
Příklad 7
Syntéza úseku 65 - 74 Acyl Carrier Protein (ACP), H-Val-GIn-Ala-AlaIle-Asp-Tvr-lle-Asn-Gly-OH (srovnání)
500 mg Fmoc-Gly pryskyřice PepSyn KA (0,074 mmol/g) bylo použito pro syntézu postupem „kontinuální průtok“.
Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC a bylo zjištěno, že obsahuje cílovou molekulu doprovázenou přibližně 16 % peptidu des-Val. Identita peptidů byla potvrzena technikou MALDI TOF
MS.
·· ····
Příklad 8
Syntéza úseku 65 - 74 Acyl Carrier Protein (ACP), H-Val-GIn-Ala-AlaIle-Asp-Tyr-lle-Asn-Glv-Lyse-OH s použitím pre-sekvence (Lys(Boc)).6
500 mg Fmoc-Lys(Boc) pryskyřice PepSyn KA (0,086 mmol/g) bylo použito pro syntézu postupem „kontinuální průtok“.
Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC a bylo zjištěno, že obsahuje cílový peptid s vysokou čistotou (~ 95 %) s podstatně sníženým množstvím peptidu des-Val. Identita peptidů io byla potvrzena technikou MALDI TOF MS.
Příklad 9
Syntéza H-Val-Asn-Val-Asn-Val-GIn-Val-GIn-Val-Asp-Lyse-OH s použitím pre-sekvence (LysfBocHe
500 mg Fmoc-Lys(Boc) pryskyřice PepSyn KA (0,086 mmol/g) bylo použito pro syntézu postupem „kontinuální průtok“.
Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC a bylo zjištěno, že má čistotu lepší než 90 %) bez delečních peptidů a sekvencí chráněných Fmoc.Výtěžek 100 %. Identita peptidů byla
2o potvrzena technikou MALDI TOF MS.
Příklad 10
Syntéza H-Alaio-Lys-OH s použitím (Lys(Boc))e jako pre-sekvence a HMPA jako linkeru (H-Alaio-Lvs(Boc)-OCH2-PhOCH7CO-(Lys(Boc))625 NHCHzCH^NH PepSyn K).
500 mg suché pryskyřice PepSyn K (0,1 mmol/g) bylo překryto ethylendiaminem (5 ml) a ponecháno při pokojové teplotě přes noc. Pryskyřice byla odsáta a promyta DMF (10 x 15 ml, vždy 5 min). Po ·· ···· odsátí byla pryskyřice promyta 10 % DIEA v DMF obj. (2x15 ml, vždy 5 min) a nakonec DMF, až již nebylo detekováno po přídavku Dhbt-OH k vytékajícímu DMF žluté zbarvení. Derivatizovaná pryskyřice byla použita pro syntézu technikou kontinuálního průtoku.
Prvních 6 lyzinů tvořících pre-sekvenci bylo navázáno ve formě esterů Fmoc-Lys(Boc)-Pfp (3 ekv.) s přídavkem Dhbt-OH (1 ekv.). Konec každé reakce byl určován automaticky jak bylo popsáno výše. Skupina Fmoc byla odštěpena jak bylo popsáno výše. Po ukončení byla na vrchol kolony nanesena pre-sekvence 3 ekv. navázaná na io HMPA ve formě předaktivovaného esteru HObt jak bylo popsáno výše. Syntezátor pracoval v recirkulačním modu 2 hodiny a nadbytek činidla byl potom odstraněn promytím DMF (12 min, průtok 1 ml/min). Malý vzorek pryskyřice byl odstraněn pro kontrolu acylace ninhydrinovým testem. Příští aminokyselina podle sekvence byla navázána jako předem vytvořený symetrický anhydrid s chráněným postranním řetězcem jak bylo popsáno výše nanesený na vrchol kolony spolu s 0,1 ekv. DMAP a syntezátor pracoval v recirkulačním modu 90 min. Nadbytek reagencie byl potom odstraněn promytím DMF (12 min, průtok 1 ml/min). Malý vzorek pryskyřice byl odebrán pro kontrolu výtěžku vazby, který byl odhadnut jak bylo popsáno dříve; byla zjištěna hodnota 84 %. Syntéza potom pokračovala odštěpením skupiny Fmoc jak bylo popsáno výše. Zbylé aminokyseliny podle sekvence byly navázány jako estery Pfp (3 ekv.) chráněné Fmoc, popřípadě s chráněným postranním řetězcem, za přidávání Dhbt-OH (1 ekv.).
Konec každé reakce byl automaticky určen jak bylo popsáno výše. Po ukončení syntézy byla pryskyřice s peptidem promyta DMF (10 min, průtok 1 ml/min), DCM (3x5 ml, vždy 1 min) a nakonec diethyletherem (3x5 ml, vždy 1 min), odstraněna z kolony a sušena ve vakuu. Peptid byl odštěpen z pryskyřice jak bylo popsáno výše.
Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC a bylo zjištěno, že obsahuje cílový peptid H-Alan-Lys-OH (n = 10) stejně jako deleční peptidy odpovídající n = 9, 8, 7 a 6 (viz obr. 9). Sekvence • · · · · · 9 9 999999 *····· ·· 9999 99 99 999 99 99
- 40 chráněné Fmoc nebyly detekovány. Identita peptidů byla potvrzena metodou MALDI TOF MS.
•9 ····
Příklad 11
Syntéza H-Alaio-Lvs-OH s použitím kyseliny (+/-)-4-methoxymandlové jako linkeru (H-Alaw-Lys(Boc)-OCH-(4-MeOPh)CONHCH2CH2NH
PepSyn K).
500 mg suché pryskyřice PepSyn K (0,1 mmol/g) bylo smíseno s ethylendiaminem jak bylo popsáno výše. Derivatizovaná pryskyřice io byla použita pro syntézu metodou kontinuálního průtoku. Na vrchol kolony bylo naneseno 10 ekv. kyseliny (+/-)-4-methoxymandlové, 10 ekv. HObt a 10 ekv. DIC rozpuštěné v 5 ml DMF, předaktivované 10 min a syntezátor pracoval v recirkulačním modu 2 hodiny. Nadbytek činidla byl potom odstraněn promytím DMF (12 min, průtok 1 ml/min).
Malý vzorek pryskyřice byl odebrán pro kontrolu acylace ninhydrinovým testem. První aminokyselina podle sekvence byla navázána jako symetrický anhydrid chráněný Fmoc s chráněným postranním řetězcem jak bylo popsáno výše a nanesena na vrchol kolony spolu s 0,1 ekv. DMAP a syntezátor pracoval v recirkulačním modu 90 min. Potom byl nadbytek reagencie odstraněn promytím DMF (12 min, průtok 1 ml/min). Byl odebrán malý vzorek pryskyřice pro kontrolu výtěžku reakce, který byl testován podle výše uvedeného popisu; byl zjištěn výtěžek 75 %. Syntéza potom pokračovala odštěpením skupiny Fmoc jak bylo popsáno výše. zbývající aminokyseliny podle sekvence byly vázány jako estery Pfp chráněné Fmoc (3 ekv.) s přídavkem Dhbt-OH (1 ekv.). Konec každé reakce byl určován automaticky jak bylo popsáno výše. Po ukončení syntézy byla pryskyřice s peptidem promyta DMF (10 min, průtok 1 ml/min), DCM (3x5 ml, vždy 1 min) a nakonec diethyletherem, odstraněna z kolony a sušena ve vakuu.
·· ··»«
Peptid byl odštěpen z pryskyřice jak bylo popsáno dříve a lyofilizován z roztoku kyselina octová - voda.
Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC a bylo zjištěno, že obsahuje cílový peptid H-Alan-Lys-OH (n = 10) spolu s delečními peptidy odpovídajícími n = 9, 8, 7 a 6. Identita peptidu byla potvrzena MALDI TOF MS.
Příklad 12
Syntéza H-Alaio-Lys-QH s použitím (Lys(Boc))fi jako pre-sekvence io a kyseliny (+/-)-4-methoxymandlové jako linkeru (H-Alaw-Lys(Boc)OCH-(4-MeOPh)CO-(Lys(Boc))6-NHCH?CH?NH PepSyn K).
500 mg suché pryskyřice PepSyn K (0,1 mmol/g) bylo smíseno s ethylendiaminem jak bylo popsáno výše. Derivatizovaná pryskyřice byla použita pro syntézu způsobem kontinuálníhp průtoku. Prvních šest lysinů tvořících pre-sekvenci bylo navázáno jako estery Pfp (3 ekv.) chráněné Fmoc a s chráněnými postranními řetězci za přídavku Dhbt-OH (1 ekv.). Konec každé reakce byl automaticky stanoven jak bylo popsáno výše. Skupina Fmoc byla odštěpena jak bylo popsáno výše. Po ukončení syntézy pre-sekvence bylo navázáno
10 ekv. kyseliny (+/-)-4-methoxymandlové ve formě předaktivovaného esteru HObt jak bylo popsáno výše a naneseno na vrchol kolony. Syntezátor pracoval v recirkulačním modu 2 hodiny a nadbytek činidla byl potom odstraněn promytím DMF (12 min, průtok 1 ml/min). Malý vzorek pryskyřice byl odebrán pro kontrolu acylace ninhydrinovým testem. Další aminokyselina podle sekvence byla navázána jako předem vytvořený symetrický anhydrid chráněný Fmoc s chráněným postranním řetězcem jak bylo popsáno výše a nanesena na vrchol kolony spolu s (0,1 ekv.) DMAP. Syntezátor pracoval v recirkulačním modu 90 min a nadbytek činidla byl potom odstraněn promytím DMF (12 min, průtok 1 ml/min). Byl odebrán malý vzorek pryskyřice pro kontrolu výtěžku reakce, který byl zjištěn výše popsaným způsobem
- 42 ·« »· » · · • · ·· «· « · · • · · • ♦ · · · · • · ·· ·· jako 68 %. Syntéza potom pokračovala odštěpením skupiny Fmoc jak bylo popsáno výše. Zbylé aminokyseliny podle sekvence byly navázány jako estery Pfp chráněné Fmoc (3 ekv.) za přídavku DhbtOH (1 ekv.). Konec každé reakce byl automaticky určován jak bylo popsáno výše. Po ukončení syntézy byla pryskyřice s peptidem promýta DMF (10 min, průtok 1 ml/min), DCM (3x5 ml, průtok 1 ml/min) a nakonec diethyletherem (3x5 ml, průtok 1 ml/min), vyjmuta z kolony a sušena ve vakuu. Peptid byl odštěpen z pryskyřice jak bylo popsáno výše a lyofilizován ze směsi kyselina octová - voda. io Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC a bylo zjištěno, že obsahuje cílový peptid H-Alan-Lys-OH (n = 10) stejně jako deleční peptidy odpovídající n = 9, 8, 7 a 6. Bylo zjištěno, že množství delečních peptidů je výrazně sníženo ve srovnání s příklady 10 a 11 (viz obr. 10). Sekvence chráněné Fmoc nebyly detekovány. Identita peptidů byla potvrzena metodou MALDI TOF MS.
Příklad 13
Syntéza H-Alaw-Lys-OH s použitím (Lys(Boc))fi jako pre-sekvence a kyseliny (+)-4-methoxymandlové jako linkeru (H-Alaio-Lys(Boc)20 OCH-(4-MeOPh)CO-(Lys(Boc))B-NHCH2CH7NH PepSyn K).
500 mg suché pryskyřice PepSyn K (0,1 mmol/g) bylo vloženo do polyethylenové nádobky opatřené polypropylenovým filtrem a byl přidán ethylendiamin jak bylo popsáno výše. Prvních šest lysinů tvořících pre-sekvenci bylo navázáno jako Pfp estery chráněné Fmoc as chráněnými postranními řetězci (3 ekv.) s přídavkem Dhbt-OH (1 ekv.). Acylace byly kontrolovány ninhydrinovým testem prováděným při 80 °C jak bylo popsáno výše. Ochranná skupina Fmoc byla odstraněna jak bylo popsáno výše. Po ukončení pre-sekvence reagovala pryskyřice s navázaným peptidem s odstraněnými
3o ochrannými skupinami s 10 ekv. kyseliny (+)-4-methoxymandlové ve formě předaktivovaného HObt-esteru jak bylo popsáno výše (dělení
- 43 • A AA
A A A A A A · • A A • A A
AA A A >A ·· AAAA • A A AAA
A
A A
A A • A
A
A
AAA
A· A A » A A A
A A A A • A A AAA A A
AA AA výše popsaným způsobem, 95,8 % optické čistoty) a vazebná reakce pokračovala 24 hodin. Nadbytek činidla byl odstraněn promýváním DMF (12 min, průtok 1 ml/min). Acylace byla kontrolována ninhydrinovým testem. Další aminokyselina podle sekvence byla navázána jako symetrický anhydrid chráněný Fmoc s chráněným postranním řetězcem jak bylo popsáno výše a reakce pokračovala 2 hodiny. Nadbytek činidla byl potom odstraněn promýváním DMF (12 min, průtok 1 ml/min). Malý vzorek pryskyřice byl odebrán pro kontrolu výtěžku reakce, který byl určen výše popsaným způsobem io jako 66 %. Syntéza potom pokračovala odštěpením skupiny Fmoc výše popsaným způsobem.
První alanin byl navázán jako ester Pfp chráněný Fmoc (3 ekv.) s přídavkem Dhbt-OH (1 ekv.) v DMF (2 ml) po dobu 2 hodin. Nadbytek činidla byl potom odstraněn promýváním DMF (průtok
1 ml/min 12 min) a acylace byla kontrolována ninhydrinovým testem provedeným výše popsaným způsobem při 80 °C. Skupina Fmoc byla potom odstraněna působením 2 % piperidinu v DMF (obj.) (1 min, průtok 1 ml/min) s následným promytím DMF (10 s, průtok 10 ml/min), 0,2 % Dhbt-OH v DMF (20 min, průtok 1 ml/min) a nakonec DMF (2x5 ml, vždy 1 min). Následující alanin chráněný Fmoc byl ihned navázán jako ester Pfp (3 ekv.) s přidáním 1 ekv. Dhbt-OH v DMF (2 ml) po dobu 2 hodin. Acylace byla kontrolována ninhydrinovým testem provedeným výše popsaným způsobem. Zbývající aminokyseliny podle sekvence byly navázány jako Pfp estery chráněné
Fmoc (3 ekv.) s přídavkem Dhbt-OH (1 ekv.) v DMF (2 ml). Nadbytek činidla byl odstraněn praním DMF (12 min, průtok 1 ml/min) a acylace byly testovány ninhydrinovým testem provedeným při 80 °C jak bylo popsáno výše. Skupina Fmoc byla odstraněna výše popsaným způsobem. Po ukončení syntézy byla pryskyřice s peptidem promyta
DMF (10 min, průtok 1 ml/min), DCM (3x5 ml, vždy 1 min), diethyletherem (3x5 ml, vždy 1 min) a sušena ve vakuu.
·· • · · • · • · • · »··· • · · ··
-44 ·· ···· • · • ··· • · · • · ·· ··· ·· ·· • · · • · · · ··· ··· • · ·· ··
Peptid byl odštěpen z pryskyřice výše popsaným způsobem a lyofilizován z ledové kyseliny octové. Surový lyofilizát byl analyzován HPLC a bylo zjištěno, že je homogenní bez deleci a sekvencí chráněných Fmoc.
Příklad 14
Syntéza H-Alaw-Lys-OH s použitím (Glu(OtBu))fi jako pre-sekvence a kyseliny (+)-4-methoxymandlové jako linkeru (H-Alaig-Lys(Boc)OCH-(4-MeOPh)CO-(Glu(OtBu))s-NHCH?CH?NH PepSyn K).
ío 500 mg suché pryskyřice PepSyn K bylo vloženo do polyethylenové nádobky opatřené polypropylenovým filtrem a byl přidán ethylendiamin jak bylo popsáno výše. Prvních šest kyselin glutamových tvořících pre-sekvenci bylo navázáno jako FmocGlu(OtBu)-Pfp estery (3 ekv.) s přídavkem Dhbt-OH (1 ekv.). Acylace byly kontrolovány ninhydrinovým testem prováděným při 80 °C jak bylo popsáno výše. Ochranná skupina Fmoc byla odstraněna jak bylo popsáno výše. Po ukončení pre-sekvence bylo přidáno 10 ekv. kyseliny (+)-4-methoxymandlové ve formě predaktivovaného HObtesteru jak bylo popsáno výše (dělení výše popsaným způsobem,
95,8 % optické čistoty) a vazebná reakce pokračovala 24 hodin.
Nadbytek činidla byl odstraněn promýváním DMF (12 min, průtok 1 ml/min). Acylace byla kontrolována ninhydrinovým testem. Další aminokyselina podle sekvence byla navázána jako symetrický anhydrid chráněný Fmoc s chráněným postranním řetězcem jak bylo popsáno výše za katalázy DMAP (0,1 ekv.) a reakce pokračovala 2 hodiny. Nadbytek činidla byl potom odstraněn promýváním DMF (12 min, průtok 1 ml/min). Malý vzorek pryskyřice byl odebrán pro kontrolu výtěžku reakce, který byl určen výše popsaným způsobem jako 75 %. Syntéza potom pokračovala odštěpením skupiny Fmoc výše popsaným způsobem.
První alanin byl navázán jako ester Pfp chráněný Fmoc (3 ekv.) s přídavkem Dhbt-OH (1 ekv.) v DMF (2 ml) po dobu 2 hodin. Nadbytek činidla byl potom odstraněn promýváním DMF (průtok 1 ml/min 12 min) a acylace byla kontrolována ninhydrinovým testem provedeným výše popsaným způsobem při 80 °C. Skupina Fmoc byla potom odstraněna působením 2 % piperidinu v DMF (obj.) (1 min, průtok 1 ml/min) s následným promytím DMF (10 s, průtok 10 ml/min), 0,2 % Dhbt-OH v DMF (20 min, průtok 1 ml/min) a nakonec DMF (2x5 ml, vždy 1 min). Následující alanin chráněný Fmoc byl ihned navázán jako ester Pfp (3 ekv.) s přidáním 1 ekv. Dhbt-OH v DMF (2 ml) po dobu 2 hodin. Acylace byla kontrolována ninhydrinovým testem provedeným výše popsaným způsobem. Zbývající aminokyseliny podle sekvence byly navázány jako Pfp estery chráněné Fmoc (3 ekv.) s přídavkem Dhbt-OH (1 ekv.) v DMF (2 ml). Nadbytek činidla byl odstraněn praním DMF (12 min, průtok 1 ml/min) a acylace byly testovány ninhydrinovým testem provedeným při 80 °C jak bylo popsáno výše. Skupina Fmoc byla odstraněna výše popsaným způsobem. Po ukončení syntézy byla pryskyřice s peptidem promyta DMF (10 min, průtok 1 ml/min), DCM (3x5 ml, vždy 1 min), diethyletherem (3x5 ml, vždy 1 min) a sušena ve vakuu.
Peptid byl odštěpen z pryskyřice výše popsaným způsobem a lyofilizován z ledové kyseliny octové. Surový lyofilizát byl analyzován HPLC a bylo zjištěno, že je homogenní bez delecí a sekvencí chráněných Fmoc.
Příklad 15
Syntéza peptidu Tyr-Glv-Glv-Phe-Leu-Lys6-OH na materiálu NovaSyn
TentaGel
Suchá pryskyřice NovaSyn TG (0,29 mmol/g, 250 mg) byla vložena do polyethylenové nádobky opatřené polypropylenovým filtrem a dále zpracovávána způsobem vsádkové syntézy peptidů na PEG-PS
-46 až do dokončení pre-sekvence Lys6. Následující aminokyseliny tvořící sekvenci Leu-enkefalinu byly navázány jako předem vytvořené HObt estery chráněné Fmoc (3 ekv.) v DMF (5 ml) vytvořené pomocí DIC. Před každou z posledních 5 vazebných reakcí byla pryskyřice promyta roztokem Dhbt-OH (80 mg v 25 ml) pro sledování zmizení žlutého zbarvení při postupující vazebné reakci. Když již nebyla žlutá barva viditelná, reakce byly přerušeny promytím pryskyřice DMF (5x5 ml, vždy 5 min). Acylace potom byly kontrolovány ninhydrinovým testem provedeným při 80 °C výše uvedeným způsobem. Po ukončení syntézy ío byla pryskyřice s navázaným peptidem promyta DMF (3x5 ml, vždy 1 min), DCM (3x5 ml, vždy 1 min), diethyletherem (3x5 ml, vždy min) a sušena ve vakuu.
Peptid byl odštěpen z pryskyřice jak bylo popsáno výše a lyofilizován z kyseliny octové. Surový lyofilizovaný produkt byl analyzován HPLC a bylo zjištěno, že je homogenní bez delecí a sekvencí chráněných Fmoc. Bylo zjištěno, že čistota je lepší než 98 % a identita peptidu byla potvrzena ES-MS. Bylo dosaženo výtěžku 84 %.
• ·
Φ o c Φ > JC Φ CZ E c 'E cz E CZ E
CA 1 o o o o
Φ CM co co •Ν’
Φ CT U- Q. v v v V
JC N
CO Φ
Φ JO
u.
co
JZ)
o CT
Q C Φ > c. c c c c
JC Φ E E E E E
r CA CN m CN CN T—
Φ V v V V v
L-
CL ca ca
JO ca
E φ
φ
C
O
JC co <
0.
X
N
I
O >
o
OC X X X X I X | CT o
1 < 1 < < < < < >. É φ c
CL X X X X X X o
Σ z c
X X X X X X Φ M— *L-
to z—> CT 1 to 7? 1 to o 1 to 'cj 1 to 7? 1 co >» JZ CT >« JZ
O o o O O o Φ c
co co co CO CO co E 'c
<£> CA CA CA CA CA CA co
>, >, >< X
TT _1 _l | I o L_ X
Φ Q O 1 X 3 3 3 3 3 TJ O
co Φ Φ Φ Φ Φ 1
>LZZ _l _l _l _l _J JZ JO
>> JC CA >> CA >4 _l 1 X Φ JZ Ο- Φ sz X Φ JZ X Φ JZ X 4 3 o JZ Q 3
Q. Φ Χ >< >. >4 c ω
1 CT r- O O O Φ Φ 1
33 X Q. Φ CL Φ > JC Φ CA i X 1 o 1 X 1 >4 o 1 >> CA >> JC ‘Z* c co c >. c Φ
Φ Η- co >N
CL Χ > o N O CO N
co 3 > o 'ι- V)
Tabulka 1 to c
φ ca
JC o
c
Ě <
X X X X X
o o 1 O O o
3 Φ Ζ» 1 >» 1 L_
Φ JZ o
_] X o H-
1 u 1 u CT ΰ u
o o o o o
E E E E E
Ll_ X X X X
Φ
C
O
H c
ω co >
o z
II
X
Φ o
JC co
Φ >4
JO o
Q
CT) ó
E
E
CT)
CN
Ó • · • ·
-48 Materiály a metody
Zkratky
AM kyselina p-[(R,S)-a[1-(9H-fluoren9-yl)-methoxyformamido] 2,4-dimethoxybenzyl)-fenoxyoctová
At 7-azabenzotriazol-1 -yl
Boc terč. butyloxykarbonyl
BOP benzotriazolyl-oxy-tris-(dimethylamino)-fosfonium- hexafluorfosfát
Bpoc Bt bifenylpropyloxykarbonyl benzotriazol-1-yl
tBu terč. butyl
DBU diazabicyklo[5,4,0]undec-7-en
Ddz 3,5-dimethoxyfenylizopropyloxykarbonyl
DCC dicyklohexylkarbodiimid
DCM dichloromethan
DIC diizopropylkarbodiimid
DIEA Ν,Ν-diizopropylethylamin
DMAP 4-(N,N-dimethylamino)pyridin
Dhbt-OH 3,4-dihydro-3-hydroxy-4-oxo-1,2,3-benzotriazin
DMF N,N-dimethylformamid
Dts dithiasukcinyl
EDT ethandithiol
FAB bombardování rychlými atomy
Fmoc 9-fluorenylmethyloxykarbonyl
HATU O-(7-azabenzotriazol-1-yl)-1,1,3,3-tetramethyluronium
HBTU hexafluorfosfát O-(benzotriazol-1-yl)-1,1,3,3-tetramethyluronium hexafluorfosfát
HMPA kyselina 4-hydroxymethylfenoxyoctová
HMPB kyselina 4-(4-hydroxymethyl-3-methoxyfenoxy)-máselná
• · · · ··· ···· • · · · ···· · ·· · • · ··· · · · · · · ··· • · • · • · · ·
HObt 40 · · · · · · ” *+& “ ···· ·· ·· ··· 1 -hydroxybenzotriazol
HOAt 1 -hydroxy-7-azobenzotriazol
HPLC vysokotlaká kapalinová chromatografie
MCPS syntéza peptidů na více kolonách
MHC hlavní histokompatibilitní komplex
MMa kyselina 4-methoxymandlová
NMR nukleární magnetická rezonance
NHS imidoester kyseliny N-hydroxyjantarové
NMP N-methylpyrrolidon
NPS nitrofenylsulfenyl
Mtr 4-methoxy-2,3,6-trimethylfenylsulfonyl
PAM fenylacetamidomethyl
Pbf 2,2,4,6,7-pentamehtyldihydrobenzofuran-5-sulfonyl
PEG-PS polyethyleneglykol naroubovaný na polystyren
PepSyn Gel polydimethylakrylamidová pryskyřice
PepSyn K funkcionalizovaná methylesterem sarkosinu křemelina nesoucí polydimethylakrylamidovou pryskyřici
Pfp funkcionalizovanou methylesterem sarkosinu pentafluorfenyl
Pmc 2,2,5,7,8-pentamethylchroman-6-sulfonyl
Poc fenylizopropyloxykarbonyl
TBTU O-(benzotriazol-1-yl)-1,1,3,3-tetramethyluronium-
TFA tetrafluorborát kyselina trifluoroctové
TFE trifluorethanol
TFMSA kyselina trifluoromethansulfonová
Tmz 2,4,5-tetramethylbenzyloxykarboxyl
Zastupuje:

Claims (38)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Způsob výroby peptidů
    X-AAj-AA2 .....AAn-Y kde AA je zbytek L- nebo D-aminokyseliny,
    X je atom vodíku nebo ochranná skupina aminoskupiny,
    Y je OH, NH2 nebo aminokyselinová sekvence obsahující tři až devět zbytků aminokyselin a n je celé číslo větší než 2, syntézou na pevné fázi, kde C-koncová aminokyselina ve formě Ν-α-chráněného reaktivního derivátu, v případě nutnosti s chráněným postranním řetězcem, je navázána na pevný nosič nebo polymer případně prostřednictvím linkeru, potom zbavena Ν-α-ochranné skupiny, a následující aminokyseliny vytvářející sekvenci peptídu jsou postupně navazovány nebo navazovány jako peptidové fragmenty ve formě vhodně chráněných reaktivních derivátů nebo fragmentů, kde po vytvoření požadovaného peptídu je Ν-α-ochranná skupina z požadovaného peptídu odstraněna a peptid je odštěpen z pevného nosiče, vyznačující se tím, ž e C-koncová část připojená na nosič nebo polymer obsahuje pre-sekvenci tvořenou 3 až 9, s výhodou 5 až 7 aminokyselinovými zbytky zvolenými nezávisle z nativních Laminokyselin s funkčními skupinami postranního řetězce chráněnými v průběhu reakčních kroků a s faktorem náklonnosti Pa > 0,57 a faktorem náklonnosti Ρβ > 1,10 nebo odpovídajících D-aminokyselin a uvedená pre-sekvence je popřípadě z vytvořeného peptídu odštěpena.
    ·· ·· · · · · · · · ·· · • · ··· · ·· ··· ···
    C4 ······ · ·
    - Ol - «··· ·· ·· ··· ·· ··
  2. 2. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e aminokyseliny v pre-sekvenci jsou zvoleny z aminokyselin, které mají v postranním řetězci funkční skupinu karboxy, karboxamido, amino, hydroxy, guanidino, sulfid nebo imidazol.
  3. 3. Způsob podle nároku 2, vyznačující se tím, ž e aminokyseliny tvořící část pre-sekvence jsou nezávisle zvoleny ze skupiny Lys, Glu, Asp, Ser, His, Asn, Arg, Met a Gin.
  4. 4. Způsob podle nároku 3, vyznačující se tím, ž e aminokyselinami jsou buď výlučně Lys nebo Glu nebo sekvence (Glu)q(Lys)p, kde p + q je 3 až 9, s výhodou 6 až 9, a pořadí Lys a Glu je zvoleno libovolně.
  5. 5. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e Ν-α-amino ochrannou skupinou je Fmoc, Boc nebo jakákoliv jiná vhodná ochranná skupina.
    20
  6. 6. Způsob podle nároku 5, vyznačující se tím, ž e Ν-α-amino ochrannou skupinou je skupina Fmoc nebo Boc.
  7. 7. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím,
    25 že funkční skupinou postranního řetězce v pre-sekvenci je karboxylová skupina, která je vhodně chráněná, s výhodou skupinou tBu.
    - 52
  8. 8. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e funkční skupinou postranního řetězce v pre-sekvenci je aminoskupina, která je vhodně chráněná, s výhodou skupinou Boc.
  9. 9. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e funkční skupinou postranního řetězce v pre-sekvenci je hydroxylová skupina, která je vhodně chráněná, s výhodou skupinou tBu.
  10. 10. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e funkční skupinou postranního řetězce v pre-sekvenci je skupina karboxamido, která je vhodně chráněná, s výhodou skupinou a) benzhydryl, b) trityl, c) tBu.
    z
  11. 11. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e funkční skupinou postranního řetězce v pre-sekvenci je guanidinová skupina chráněná skupinou 4-methoxy-2,3,6trimethylfenylsulfonyl (Mtr), 2,2,5,7,8-pentamethylchroman-620 sullfonyl (Pmc) nebo 2,2,4,6,7-pentamethyldihydrobenzofuran5-sulfonyl (Pbf).
  12. 12. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e uvedená funkční skupina postranního řetězce v pre25 sekvenci obsahuje imidazolovou skupinu chráněnou Boc.
  13. 13. Způsob podle nároku 5, vyznačující se tím, ž e skupiny Fmoc se odstraňují pomocí aminu jako je piperidin nebo diazabicyklo[5,4,0]undec-7-en (DBU).
    - 53 • · · · • · · ·
  14. 14. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e ochranné skupiny postranního řetězce se odstraňují kyselinou jako je kyselina trifluoroctová (TFA), kyselina
    5 trifluormethansulfonová (TFMSA), HBr, HCI nebo HF.
  15. 15. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e pevný nosič je zvolen z funkcionalizovaných pryskyřic jako polystyren, polyakrylamid, polyethylenglykol, celulóza, io polyethylen, latex nebo materiál dynabeads.
  16. 16. Způsob podle nároku 15, vyznačující se tím, ž e C-koncová aminokyselina je připojena na pevný nosič běžným linkerem jako je 2,4-dimethoxy-4’-hydroxybenzofenon, is kyselina 4-(4-hydroxymethyl-3-methoxyfenoxy)máselná (HMPB), kyselina 4-hydroxymethylbenzoová, kyselina 4hydroxymethylfenoxyoctová (HMPA), kyselina 3-(4hydroxymethylfenoxy)propionová nebo kyselina p-[(R,S)-a[1(9H-fluoren-9-yl)-methoxyformamido]-2,4-dimethoxybenzyl]20 fenoxyoctová (AM).
  17. 17. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e syntéza se provádí vsádkovým způsobem.
    25
  18. 18. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že se provádí kontinuálně na automatickém nebo poloautomatickém syntezátoru peptidů.
    - 54 ·· «·
  19. 19. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e kroky reakce se provádějí v přítomnosti rozpouštědla zvoleného ze skupiny acetonitril, Ν,Ν-dimethylformamid (DMF), N-methylpyrrolidon (NMP), dichlormethan (DCM),
    5 trifluorethanol (TFE), ethanol, methanol, voda, směsi uvedených rozpouštědel s nebo bez dalších látek jako jsou chloristan nebo ethylenkarbonát.
  20. 20. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, io že vazebné reakce mezi dvěma aminokyselinami, aminokyselinou a dříve vytvořenou sekvencí peptidů nebo fragmentem peptidů a dříve vytvořenou sekvencí peptidů se provádí běžnými kondenzačními způsoby jako je azidová metoda, metoda směsného anhydridu kyseliny, metoda
    15 symetrického anhydridu, karbodiimidová metoda, metoda aktivního esteru jako je pentafluorfenyl (Pfp), 3,4-dihydro-4oxobenzotriazin-3-yl (Dhbt), benzotriazol-1-yl (HOBt), 7azabenzotriazol-1-yl (HOAt), 4-nitrofenyl, imidoestery kyseliny N-hydroxyjantarové (NHS), chloridy kyselin, fluoridy kyselin,
    20 aktivace in šitu činidly jako O-(7-azabenzotriazol-1-yl)-1,1,3,3tetramethyluroniumhexafluorfosfát (HATU), O-(benzotriazol-1yl)-1,1,3,3-tetramethyluroniumhexafluorfosfát (HBTU), 0(benzotriazol-1-yl)-1,1,3,3-tetramethyluroniumtetrafluorborát (TBTU) nebo benzotriazolyloxy-tris-(dimethylamino)-fosfonium25 hexafluorfosfát (BOP).
  21. 21. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e peptid se z nosiče odštěpuje kyselinou jako je kyselina trifluoroctová (TFA), trifluormethansulfonová (TFMSA),
    3o bromovodík (HBR), chlorovodík (HCl), fluorovodík (HF) nebo bází jako je amoniak, hydrazin, alkoxid nebo hydroxid.
    4 4 4 4
    4 4 4 4
    4 · 4 4 · 4
    4 ·
    4 4 4 4
    - 55
  22. 22. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, ž e peptid se z nosiče odštěpuje fotolýzou.
    5
  23. 23. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že se mezi pre-sekvenci připojenou na nosič a sekvenci AAiAAn vkládá linker, který umožňuje selektivní odštěpení uvedené sekvence.
    ío
  24. 24. Způsob podle nároku 23, vyznačující se tím, ž e linker je opticky aktivní.
  25. 25. Způsob podle nároku 24, vyznačující se tím, ž e linkerem je α-hydroxy nebo ct-aminokyselina obecného
    15 vzorce
    R1
    I
    X —C —COOH
    20 | r2 kde X je OH nebo NH2 a R1 a R2 jsou nezávisle zvoleny ze skupiny H, Ci.3alkyl, fenyl a substituovaný fenyl, kde
    25 substituenty jsou jeden nebo více substituentů schopných darovat elektron, zvolené ze skupiny Ci-3alkoxy, O-alkyl nebo jsou spojeny dvě vicinální skupiny substituentů za vytvoření 5nebo 6-členného kruhu spolu s atomy uhlíku, ke kterému jsou připojeny.
    - 56 ·· ·· ·· ···· ·· ·· ···· · · · ···· • · · · ···· · ·· · • · · · · · ·· ··· ··· ····· · · · ···· ·· ·· ··· ·· ··
  26. 26. Způsob podle nároku 25, vyznačující se tím, ž e linkerem je kyselina (+)-4-methoxymandlová, difenylglycin nebo kyselina glykolová.
    5
  27. 27. Způsob podle nároku 23, vyznačující se tím, ž e sekvence AAi-AAn se odštěpuje z pre-sekvence kyselinou jako je kyselina trifluoroctová (TFA), trifluormethansulfonová (TFMSA), bromovodík (HBR), chlorovodík (HCI), fluorovodík (HF) nebo bází jako je amoniak, hydrazin, alkoxid nebo io hydroxid.
  28. 28. Způsob podle nároku 23, vyznačující se tím, ž e pre-sekvence se z vytvořeného peptidu odštěpuje enzymaticky.
    Způsob podle nároku 28, vyznačující se tím, ž e enzym je zvolen z vhodných karboxy- a endopeptidáz.
  29. 30. Způsob podle nároku 23, vyznačující se tím,
    20 ž e se mezi pre-sekvenci připojenou na nosič a sekvenci AA-iAAn vloží první linker a mezi pre-sekvenci a pevný nosič druhý linker s orthogonálními podmínkami štěpení vzhledem k prvnímu linkeru, čímž je umožněno selektivní odštěpení druhého linkeru, například kyselinou trifluoroctovou (TFA),
    25 trifluormethansulfonovou (TFMSA), HBr, HCI, HF nebo bází jako je amoniak, hydrazin, alkoxid nebo hydroxid za získání požadovaného peptidu AA-i-AAn připojeného na pre-sekvenci uvedeným prvním linkerem.
    • · • ·
    - 57
  30. 31. Činidlo pro použití při syntéze peptidů na pevné fázi obecného vzorce
    X-AA’i-.....-AA’m-Yi-R kde R je pevný nosič použitelný při syntéze peptidů na pevné 5 fázi, Yi je aminokyselinová sekvence obsahující od 3 do 9, s výhodou od 5 do 7 zbytků aminokyselin nezávisle zvolených z nativních L-aminokyselin s funkčními skupinami postranních řetězců chráněnými při krocích reakce a s faktory náklonnosti
    Pa > 0,57 a faktorem náklonnosti Ρβ < 1,10, nebo io odpovídajících D-aminokyselin, AA’ je zbytek L- nebo Daminokyseliny, m je 0 nebo celé číslo od 1 do 40 a X je atom vodíku nebo ochranná skupina aminoskupiny.
  31. 32. Činidlo podle nároku 31, vyznačující se tím,
    15 že aminokyseliny tvořící část sekvence Yi jsou nezávisle zvoleny ze skupiny Lys, Glu, Asp, Ser, His, Asn, Arg, Met a Gin.
  32. 33. Činidlo pro použití při syntéze peptidů na pevné fázi obecného
    20 vzorce
    X-AA’i-.....-AAm-LrYi-R kde X, AA’, m, Yi a R jsou jak definováno v nároku 31 a Li je linker, který umožňuje selektivní odštěpení vazby na AA’m.
    25
  33. 34. Činidlo podle nároku 33, vyznačující se tím, ž e linker Li je opticky aktivní.
    ·· ··· ·
    9 9·· 9 9 9 9
    9 9 9 9 9 9 99 9 9 9 9
    9 9 9 9 9 9 9 9 999 ··· _ sk - ······ · · ** W ······ · · · 9 · 99 9 9
  34. 35. Činidlo podle nároku 33, vyznačující se tím, ž e linker Li je α-hydroxy nebo a-aminokyselina obecného vzorce
    5 R1
    I
    X_C —COOH I
    R2 io kde X je OH nebo NH2 a R1 a R2 jsou nezávisle zvoleny ze skupiny H, Ci_3alkyl, fenyl a substituovaný fenyl, kde substituenty jsou jeden nebo více substituentů schopných darovat elektron, zvolené ze skupiny Ci-3alkoxy, Ci^alkyl nebo
    15 jsou spojeny dvě vicinální skupiny substituentů za vytvoření 5nebo 6-členného kruhu spolu s atomy uhlíku, ke kterému jsou připojeny.
  35. 36. Činidlo podle nároku 35, vyznačující se tím,
    20 že linkerem je kyselina 4-methoxymandlová, kyselina (+)-4methoxymandlová, difenylglycin nebo kyselina glykolová.
  36. 37. Činidlo pro použití při syntéze na pevné fázi obecného vzorce
    X-AA’i-.....-AAVLi-YrLa-R
    25 kde X, AA’, m, Yi, RaLi jsou jak definováno v nároku 33 a L2 je linker s orthogonálními podmínkami štěpení vzhledem k prvnímu linkeru, umožňující selektivní odštěpení z pevného nosiče.
    30
  37. 38. Činidlo pro použití při syntéze peptidů na pevné fázi obecného vzorce • · ·· ··· · • ··· · · · · • · · · · · · ·· · ··· · ·· · · · · · · • · · · · · ·· ··· ·· ··
    Χ-ΑΑ’ι-.....-AAm-Yi-l^-R kde X, AA’, m, Yi, RaL2 je jak definováno v nároku 37.
  38. 39. Činidlo podle nároku 38, vyznačující se tím, že L2 je zvolen ze skupiny 2,4-dimethoxy-4’hydroxybenzofenon, kyselina 4-(4-hydroxy-methyl-3methoxyfenoxy)-máselná (HMPB), kyselina 4-hydroxymethylbenzoová, kyselina 4-hydroxymethylfenoxyoctová (HMPA), kyselina 3-(4-hydroxymethylfenoxy)propionová nebo kyselina p-[(R,S)-a[1-(9H-fluoren-9-yl)-methoxyformamido]-2,4dimethoxybenzylj-fenoxyoctová (AM).
CZ1999803A 1996-09-09 1997-09-09 Způsob výroby peptidů CZ295838B6 (cs)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DK97196 1996-09-09
PCT/DK1997/000375 WO1998011125A1 (en) 1996-09-09 1997-09-09 Improved solid-phase peptide synthesis and agent for use in such synthesis

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ80399A3 true CZ80399A3 (cs) 1999-08-11
CZ295838B6 CZ295838B6 (cs) 2005-11-16

Family

ID=8099561

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ1999803A CZ295838B6 (cs) 1996-09-09 1997-09-09 Způsob výroby peptidů

Country Status (14)

Country Link
US (1) US7348404B2 (cs)
EP (1) EP0929567B1 (cs)
JP (1) JP4405594B2 (cs)
AT (1) ATE290014T1 (cs)
AU (1) AU723268B2 (cs)
CA (1) CA2265900C (cs)
CZ (1) CZ295838B6 (cs)
DE (1) DE69732640T2 (cs)
DK (1) DK0929567T3 (cs)
ES (1) ES2239364T3 (cs)
HU (1) HU230354B1 (cs)
IL (1) IL128829A (cs)
PT (1) PT929567E (cs)
WO (1) WO1998011125A1 (cs)

Families Citing this family (91)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1950223A3 (en) * 1998-03-09 2009-05-13 Zealand Pharma A/S Pharmacologically active peptide conjugates having a reduced tendency towards enzymatic hydrolysis
US6528486B1 (en) 1999-07-12 2003-03-04 Zealand Pharma A/S Peptide agonists of GLP-1 activity
US7550425B2 (en) 2000-06-16 2009-06-23 Zealand Pharma A/S Diuretic peptide conjugates
DE602005023429D1 (de) 2004-10-19 2010-10-21 Lonza Ag Verfahren zur festphasen-peptidsynthese
NZ591178A (en) 2005-05-04 2012-06-29 Zealand Pharma As Glucagon-like-peptide-2 (glp-2) analogues
GB0514071D0 (en) 2005-07-07 2005-08-17 Zealand Pharma As N- or C- terminally modified small peptides
EP1975142A4 (en) * 2005-11-22 2009-12-02 Univ Nihon AUTOMATED SOLID PHASE SYNTHESIS OF PYRROLE-IMIDAZOLE POLYAMIDE
PT1966130E (pt) 2005-12-23 2014-01-30 Zealand Pharma As Compostos miméticos de lisina modificados
EP1991560B1 (en) * 2006-02-20 2018-04-04 Ewha University-Industry Collaboration Foundation Peptide having cell membrane penetrating activity
WO2007114454A1 (ja) * 2006-03-29 2007-10-11 Otsuka Chemical Co., Ltd. ペプチドのチオエステル化合物の製造方法
NZ576260A (en) 2006-11-08 2012-04-27 Zealand Pharma As GLUCAGON-LIKE-PEPTIDE-2 (GLP-2) ANALOGUES comprising one of more substitutions as compared to h[Gly2]GLP-2
US7994122B2 (en) 2007-06-15 2011-08-09 Zealand Pharma A/S Glucagon analogues
JP5635529B2 (ja) 2008-12-15 2014-12-03 ジーランド ファーマ アクティーゼルスカブ グルカゴン類似体
KR20110126591A (ko) 2008-12-15 2011-11-23 질랜드 파마 에이/에스 글루카곤 유사체
KR101593406B1 (ko) 2008-12-15 2016-02-12 질랜드 파마 에이/에스 글루카곤 유사체
CA2747112A1 (en) 2008-12-15 2010-06-24 Zealand Pharma A/S Glucagon analogues
ES2537287T3 (es) 2009-07-13 2015-06-05 Zealand Pharma A/S Análogos de glucagón acilados
SG184988A1 (en) 2010-04-27 2012-11-29 Zealand Pharma As Peptide conjugates of glp-1 receptor agonists and gastrin and their use
AR081975A1 (es) 2010-06-23 2012-10-31 Zealand Pharma As Analogos de glucagon
MX2012014961A (es) 2010-06-24 2013-02-26 Zealand Pharma As Analogos de glucagon.
US20140011733A1 (en) 2011-01-20 2014-01-09 Zealand Pharma A/S Combination of acylated glucagon analogues with insulin analogues
KR20140100947A (ko) 2011-11-03 2014-08-18 질랜드 파마 에이/에스 Glp-1 수용체 효능제 펩타이드 가스트린 접합체들
AU2012357739A1 (en) 2011-12-23 2014-07-03 Boehringer Ingelheim International Gmbh Glucagon analogues
WO2013098408A1 (en) 2011-12-30 2013-07-04 Zealand Pharma A/S Glucagon and cck receptor agonist peptide conjugates
AR089860A1 (es) 2012-02-03 2014-09-24 Zealand Pharma As Analogos de la grelina
NZ702333A (en) 2012-05-03 2017-06-30 Zealand Pharma As Gip-glp-1 dual agonist compounds and methods
BR112014027345A2 (pt) 2012-05-03 2019-09-03 Zealand Pharma As análogos de peptídeo 2 semelhante ao glucagon (glp-2)
CA2878991C (en) 2012-07-23 2021-12-07 Zealand Pharma A/S Glucagon analogues
TWI608013B (zh) 2012-09-17 2017-12-11 西蘭製藥公司 升糖素類似物
MX2015012808A (es) 2013-03-12 2016-05-31 Molecular Templates Inc Inmunotoxinas de union a cd20 para inducir internalizacion celular y metodos que usan las mismas.
US9695214B2 (en) 2013-03-15 2017-07-04 Massachusetts Institute Of Technology Solid phase peptide synthesis processes and associated systems
US9169287B2 (en) 2013-03-15 2015-10-27 Massachusetts Institute Of Technology Solid phase peptide synthesis processes and associated systems
ES2624961T3 (es) 2013-03-21 2017-07-18 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Síntesis de productos de péptido que contienen imida cíclica
US10087221B2 (en) 2013-03-21 2018-10-02 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Synthesis of hydantoin containing peptide products
US9988429B2 (en) 2013-10-17 2018-06-05 Zealand Pharma A/S Glucagon analogues
US9896495B2 (en) 2013-10-17 2018-02-20 Zealand Pharma A/S Acylated glucagon analogues
JP6682432B2 (ja) 2013-11-06 2020-04-15 ジーランド ファーマ アクティーゼルスカブ Gip−glp−1デュアルアゴニスト化合物及び方法
KR102310392B1 (ko) 2013-11-06 2021-10-13 질랜드 파마 에이/에스 글루카곤-glp-1-gip 삼원 효능제 화합물
WO2015100246A1 (en) 2013-12-24 2015-07-02 Ossianix, Inc. Baff selective binding compounds and related methods
CN106414483A (zh) 2014-01-27 2017-02-15 分子模板公司 用于哺乳动物中的去免疫化志贺毒素a亚基效应子多肽
EP3604333B1 (en) 2014-03-11 2021-05-05 Molecular Templates, Inc. Proteins comprising amino-terminal proximal shiga toxin a subunit effector regions and cell-targeting immunoglobulin-type binding regions capable of specifically binding cd38
EP3825327A1 (en) 2014-03-11 2021-05-26 Molecular Templates, Inc. Proteins comprising binding regions, shiga toxin a subunit effector regions, and carboxy-terminal, endoplasmic reticulum localization signal motifs
US10815469B2 (en) 2014-06-11 2020-10-27 Molecular Templates, Inc. Cell-targeting molecules comprising protease-cleavage resistant, Shiga toxin A subunit effector polypeptides and carboxy-terminal moieties
EP3160995A2 (en) 2014-06-26 2017-05-03 Ossianix Inc. Semi-synthetic nurse shark vnar libraries for making and using selective binding compounds
WO2016066744A2 (en) 2014-10-29 2016-05-06 Zealand Pharma A/S Gip agonist compounds and methods
WO2016077840A2 (en) 2014-11-14 2016-05-19 Ossianix, Inc. TfR SELECTIVE BINDING COMPOUNDS AND RELATED METHODS
US10392425B2 (en) 2015-02-05 2019-08-27 Molecular Templates, Inc. Multivalent CD20-binding molecules comprising Shiga toxin A subunit effector regions and enriched compositions thereof
EP3271381B1 (en) 2015-03-18 2021-09-08 Zealand Pharma A/S Amylin analogues
GB201506380D0 (en) 2015-04-15 2015-05-27 Serodus Asa Materials and methods for treatment of pulmonary hypertension
KR20170137198A (ko) 2015-04-16 2017-12-12 질랜드 파마 에이/에스 아실화된 글루카곤 유사체
AU2016271124C1 (en) 2015-05-30 2020-05-14 Molecular Templates, Inc. De-immunized, Shiga toxin a subunit scaffolds and cell-targeting molecules comprising the same
AU2016297920A1 (en) 2015-07-26 2018-01-18 Molecular Templates, Inc. Cell-targeting molecules comprising shiga toxin A subunit effectors and CD8+ T-cell epitopes
WO2017049128A1 (en) * 2015-09-17 2017-03-23 Massachusetts Institute Of Technology Methods and systems for solid phase peptide synthesis
AU2017311040B2 (en) 2016-08-06 2023-08-31 Ossianix, Inc. In vivo methods for selecting peptides that cross the blood brain barrier, related compositions and methods of use
US10071140B2 (en) 2016-09-09 2018-09-11 Zealand Pharma A/S Amylin analogues
WO2018103868A1 (en) 2016-12-09 2018-06-14 Zealand Pharma A/S Acylated glp-1/glp-2 dual agonists
MX2019006486A (es) 2016-12-09 2019-08-01 Zealand Pharma As Agonistas duales acilados de glp-1/glp-2.
WO2018104558A1 (en) 2016-12-09 2018-06-14 Zealand Pharma A/S Acylated glp-1/glp-2 dual agonists
WO2018104559A1 (en) 2016-12-09 2018-06-14 Zealand Pharma A/S Glp-1/glp-2 dual agonists
KR102587196B1 (ko) 2016-12-09 2023-10-10 질랜드 파마 에이/에스 Glp-1/glp-2 이중 효능제
ES2971981T3 (es) 2017-01-25 2024-06-10 Molecular Templates Inc Moléculas de reconocimiento de células que comprenden efectores de la subunidad A de la toxina Shiga desinmunizados y epítopos de células T CD8+
EP3704149A1 (en) 2017-11-02 2020-09-09 Ossianix, Inc. Improved tfr-selective binding peptides capable of crossing the blood brain barrier
RU2020128624A (ru) 2018-02-27 2022-03-28 Зп Спв 3 К/С Аналоги компстатина и их медицинское применение
CA3097178A1 (en) 2018-04-17 2019-10-24 Molecular Templates, Inc. Her2-targeting molecules comprising de-immunized, shiga toxin a subunit scaffolds
US20220177597A1 (en) 2018-06-22 2022-06-09 Ossianix, Inc. Anti-CD98hc VNARs for Crossing the Blood Brain Barrier and Type IV VNAR Libraries
WO2020056327A1 (en) 2018-09-14 2020-03-19 Ossianix, Inc. Tfr-specific binding moieties and transcytosis method to select vnars that cross cellular barriers
WO2020081493A1 (en) 2018-10-16 2020-04-23 Molecular Templates, Inc. Pd-l1 binding proteins
MX2021008790A (es) 2019-01-23 2021-08-24 Millennium Pharm Inc Proteinas de union a cd38 que comprenden efectores de la subunidad a de la toxina shiga desinmunizada.
BR112021020941A2 (pt) 2019-06-14 2021-12-21 Zealand Pharma As Composição farmacêutica parenteral isotônica, método para melhoria da estabilidade química da dita composição e uso de manitol
EP4272751A3 (en) 2019-08-27 2024-02-14 Zp Spv 3 K/S Compstatin analogues and their medical uses
WO2021055816A1 (en) 2019-09-18 2021-03-25 Molecular Templates, Inc. Pd-l1 binding molecules comprising shiga toxin a subunit scaffolds
JP2022548956A (ja) 2019-09-20 2022-11-22 ジーランド・ファーマ・ア/エス Kv1.3遮断剤
US20210155671A1 (en) 2019-11-24 2021-05-27 Molecular Templates, Inc. Uses of cd20-binding molecules and additional therapeutic agents
WO2021198195A1 (en) 2020-03-30 2021-10-07 Zealand Pharma A/S Agonist combination
EP4126003A1 (en) 2020-03-30 2023-02-08 Zealand Pharma A/S Glp-1/glp-2 dual agonists
KR20230039718A (ko) 2020-07-16 2023-03-21 제트피 에스피브이 3 케이/에스 보체 인자 c3의 억제제 및 이들의 의학적 용도
WO2022103769A1 (en) 2020-11-11 2022-05-19 Ossianix, Inc. High affinity human and monkey specific tfr-1 vnars
KR20230121824A (ko) 2020-12-16 2023-08-21 질랜드 파마 에이/에스 Glp-1/glp-2 이중 효능제의 약학적 조성물
WO2022129311A1 (en) 2020-12-16 2022-06-23 Zealand Pharma A/S Pharmaceutical composition of glp-1/glp-2 dual agonists
WO2022129305A1 (en) 2020-12-16 2022-06-23 Zealand Pharma A/S Pharmaceutical composition of glp-1/glp-2 dual agonists
US20240316155A1 (en) 2021-02-18 2024-09-26 Zealand Pharma A/S Composition for treating short bowel syndrome
CA3213295A1 (en) 2021-03-17 2022-09-22 Molecular Templates, Inc. Pd-l1 binding proteins comprising shiga toxin a subunit scaffolds and cd8+ t cell antigens
US20240182531A1 (en) 2021-03-23 2024-06-06 Zealand Pharma A/S KV1.3 Blockers
WO2022260877A1 (en) 2021-06-07 2022-12-15 Ossianix, Inc. Shark vnars for treating covid-19
JP2024525144A (ja) 2021-06-18 2024-07-10 北京拓界生物医薬科技有限公司 グルカゴン類似体及びその医薬用途
WO2023023166A1 (en) 2021-08-17 2023-02-23 Ossianix, Inc. Deimmunized vnar domains and scaffolds
CA3228429A1 (en) 2021-09-03 2023-03-09 Mikkel Askjar Agersnap Dosage regime
MX2024006556A (es) 2021-12-01 2024-06-12 Zealand Pharma As Inhibidores de peptido del receptor de interleucina-23.
WO2024068848A1 (en) 2022-09-28 2024-04-04 Zealand Pharma A/S Methods for treating obesity
WO2024083919A1 (en) 2022-10-18 2024-04-25 Zealand Pharma A/S Inhibitors
WO2024168411A1 (pt) * 2023-02-15 2024-08-22 Proteimax Bio Technology Israel Ltd Aditivo de alimento e/ou suplemento alimentar, processo de obtenção, formulação de alimento funcional e/ou suplemento alimentar, uso

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5116666A (cs) * 1974-07-30 1976-02-10 Shionogi Seiyaku Kk
US5021550A (en) * 1986-10-07 1991-06-04 Thomas Jefferson University Method for preventing deletion sequences in solid phase synthesis
JP2807287B2 (ja) * 1989-10-13 1998-10-08 株式会社医学生物学研究所 ペプチドおよびその用途
CA2170030A1 (en) * 1993-09-14 1995-03-23 Robert A. Lazarus Pharmaceutical compositions containing ecotin and homologs thereof
US7176282B1 (en) * 1996-09-09 2007-02-13 Zealand Pharma A/S Solid-phase peptide synthesis and agent for use in such synthesis
EP1950223A3 (en) * 1998-03-09 2009-05-13 Zealand Pharma A/S Pharmacologically active peptide conjugates having a reduced tendency towards enzymatic hydrolysis

Also Published As

Publication number Publication date
HUP0102900A2 (hu) 2002-01-28
HUP0102900A3 (en) 2002-02-28
IL128829A (en) 2005-08-31
JP2001500134A (ja) 2001-01-09
US20070004905A1 (en) 2007-01-04
ATE290014T1 (de) 2005-03-15
WO1998011125A1 (en) 1998-03-19
US7348404B2 (en) 2008-03-25
AU723268B2 (en) 2000-08-24
EP0929567B1 (en) 2005-03-02
PT929567E (pt) 2005-07-29
DK0929567T3 (da) 2005-06-27
AU4199397A (en) 1998-04-02
JP4405594B2 (ja) 2010-01-27
HU230354B1 (hu) 2016-02-29
DE69732640D1 (de) 2005-04-07
ES2239364T3 (es) 2005-09-16
EP0929567A1 (en) 1999-07-21
CA2265900A1 (en) 1998-03-19
IL128829A0 (en) 2000-01-31
DE69732640T2 (de) 2006-01-12
CZ295838B6 (cs) 2005-11-16
CA2265900C (en) 2007-07-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CZ80399A3 (cs) Způsob výroby peptidů
KR101087859B1 (ko) 인슐린친화성 펩타이드 합성법
Mahto et al. A reversible protection strategy to improve Fmoc‐SPPS of peptide thioesters by the N‐acylurea approach
CN113330024A (zh) 制备gip/glp1双重激动剂的方法
KR20170026326A (ko) Amg 416의 제조 방법
EP1891104B1 (en) Solid phase bound thymosin alpha1 and its synthesis
WO2005087794A1 (en) Process for octreotide synthesis
CN105408344B (zh) 肽-树脂结合物及其用途
Harris et al. A comparison of Boc and Fmoc SPPS strategies for the preparation of C‐terminal peptide α‐thiolesters: NY‐ESO‐1 39Cys‐68Ala‐COSR
WO2020254479A1 (en) Process for the manufacture of glucagon
TW201109347A (en) Producing method of thioester compound of peptide
US7176282B1 (en) Solid-phase peptide synthesis and agent for use in such synthesis
WO2021152622A1 (en) Improved process for the preparation of liraglutide
US6448031B1 (en) Process for producing LH-RH derivatives
US20220177513A1 (en) Process for the Preparation of Abaloparatide
Cavallaro et al. Solid‐phase synthesis of a dendritic peptide related to a retinoblastoma protein fragment utilizing a combined boc‐and fmoc‐chemistry approach
Mathieu et al. Novel strategy for the synthesis of template‐assembled analogues of rat relaxin1 1
US20230406900A1 (en) Process for preparing glucagon-like peptide-1
CN115490748A (zh) 一种基于rac-2-Br-DMNPA的蛋白质固相化学连接方法
TW202348620A (zh) 胰高血糖素樣肽-1的製備方法
CN114945580A (zh) 用于合成南吉博肽的方法
Remmer¹ et al. Chemical Synthesis of Peptides
Gross Synthetic studies on bovine pancreatic trypsin inhibitor (BPTI). I. Optimized stepwise protocols. II. Segment condensation strategies
US20070179279A1 (en) Methods for the synthesis of arginine-containing peptides
JPH0678356B2 (ja) カルシトニン遺伝子関連ペプチド誘導体

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20110909