CN101240277B

CN101240277B - 转基因水稻品系Bt汕优63的PCR检测方法

Info

Publication number: CN101240277B
Application number: CN2007100637772A
Authority: CN
Inventors: 谢家建; 王锡锋; 彭于发
Original assignee: Institute of Plant Protection of Chinese Academy of Agricultural Sciences
Current assignee: Institute of Plant Protection of Chinese Academy of Agricultural Sciences
Priority date: 2007-02-09
Filing date: 2007-02-09
Publication date: 2011-07-20
Anticipated expiration: 2027-02-09
Also published as: CN101240277A

Abstract

本发明涉及一种转基因水稻品系Bt汕优63的外源插入片段的旁侧序列，其5’端旁侧序列，其特征在于：5’端旁侧序列如SEQ ID NO1所示，其3’端旁侧序列，其特征在于：3’端旁侧序列如SEQ ID NO2所示。利用该旁侧序列作为目的DNA扩增片段建立灵敏、特异性的转基因水稻品系Bt汕优63的品系特异性定性、定量PCR检测。

Description

转基因水稻品系Bt汕优63的PCR检测方法

技术领域

本发明涉及的是一种生物技术领域的基因序列。具体的说，涉及一种转基因水稻品系Bt汕优63的外源插入片段的旁侧序列。

背景技术

水稻是我国最重要的粮食作物之一，随着转基因技术在水稻中的广泛研究和应用，已经有多个转基因水稻品系进行了环境释放，申请商业化种植。对转基因植物进行品系特异性的检测是对转基因植物进行监督管理，保障其健康发展的重要技术基础。而转基因植物的外源插入片段的旁侧序列是转基因植物品系最重要的分子特征之一，因此，外源插入片段的旁侧序列是建立转基因植物品系特异性检测方法的重要技术资料。

目前已经有部分专利和文献报道了转基因植物外源插入载体旁侧序列，例如：张大兵等人于2006年利用TAIL-PCR方法分析了玉米品系MON863的外源插入片段的旁侧序列，建立了转基因MON863玉米的品系特异性检测方法。然而，在对现有的专利和文献的分析中发现，还没有任何关于转基因水稻品系Bt汕优63的外源插入片段的旁侧序列的文章和专利报道。

发明内容

针对上述领域中的空白，提供了一种转基因水稻品系Bt汕优63的外源插入片段的旁侧序列。

进一步，本发明还提供该转基因品系特异性的PCR检测方法。

一种转基因水稻品系Bt汕优63的外源插入片段的旁侧序列，所述旁侧序列为5’端旁侧序列，其特征在于：5’端旁侧序列如SEQ ID NO1所示。

一种转基因水稻品系Bt汕优63的外源插入片段的旁侧序列，所述旁侧序列为3’端旁侧序列，其特征在于：3’端旁侧序列如SEQ ID NO2所示。

5’端旁侧序列的制备方法，是通过TAIL-PCR和Genome walking扩增得到。

3’端旁侧序列的制备方法，是通过PCR扩增得到。

转基因水稻品系Bt汕优63的外源插入片段的旁侧序列的定性PCR检测方法，其特征在于：所述PCR反应中的两条引物组合为权利要求1所述旁侧序列的特异性引物：一条引物为依据SEQ ID NO1中1-759位序列设计的正向引物，另一条引物为依据SEQ ID NO1的760-1110位序列设计的反向引物。

所述正向引物为f640：5‘-TTGGACCGATTTGGAGAGAG-3’，

所述反向引物为HH-P2：5‘-CCCGACTCAAATACAGATATGC-3’。

转基因水稻品系Bt汕优63的外源插入片段的旁侧序列的定性PCR检测方法，其特征在于：所述PCR反应中的两条引物组合为权利要求1所述旁侧序列的特异性引物：一条引物依据SEQID NO2中1-1848位序列设计的正向引物，另一条引物依据SEQ ID NO2的1849-2388位序列设计的反向引物。

所述正向序列为HH-T1：5‘-CATGGTTATGGCAGCACTGC-3’，

所述反向序列为HH-G1：5‘-TATGTTCGTAGCCCCACCAC-3’。

根据Tu等(Tu et al，2003，Plant Biotechnology Journal，1：155-165)报道的用于转化的载体PFHBT1和pGL2RC7的结构图，其中插入载体PFHBT1由Amp抗性基因表达盒和cry1Ab/cry1Ac融合基因表达盒组成，插入载体pGL2RC7含有hpt抗性基因表达盒，见图1。Tu等(Tu et al，2003，Plant Biotechnology Journal，1：155-165)还报道了转基因水稻品系Bt汕优63的外源片段插入结构图谱，插入位点由两个拷贝的Bt基因串连而成，见图2。本发明采用常规方法，提取植物基因组DNA，利用TAIL-PCR和Genome walking分离法得到3’端旁侧序列2388bp，其核苷酸序列如SEQ IDNO 2所示。通过分析，该3‘端旁侧序列包括：转化载体PFHBT1部分序列，其核苷酸序列与SEQ ID NO 2中的1-1721位的核苷酸序列完全相同；hpt基因部分序列，来源于转化载体pGL2RC7，其核苷酸序列与SEQ ID NO 2中的1722-1771位的核苷酸序列完全相同；转化载体PFHBT1部分序列，其核苷酸序列与SEQ ID NO 2中的1772-1831位的核苷酸序列完全相同；filler DNA，来源于整合过程中的DNA修复序列，其核苷酸序列与SEQ ID NO 2中的1832-1848位的核苷酸序列完全相同；水稻基因组序列，位于水稻10号染色体(GenBank登记号：AP008216)的5348631-5349170位，其核苷酸序列与SEQ IDNO 2中从1849-2388位的核苷酸序列完全相同。利用PCR分离法得到5’端旁侧序列1110bp，其核苷酸序列如SEQ ID NO 1所示。通过分析，该5‘端旁侧序列包括：水稻基因组序列，位于水稻10号染色体(GenBank登记号：AP008216)的5347871-5348630位，其核苷酸序列与SEQ ID NO 1中从1-759位的核苷酸序列完全相同；水稻actinI启动子部分序列，来源于转化载体PFHBT1，其核苷酸序列与SEQ ID NO 1中760-944位的核苷酸序列完全相同；水稻actinl启动子部分序列，来源于转化载体PFHBT1，其核苷酸序列与SEQ ID NO 1中945-1110位的核苷酸序列完全相同。

转基因水稻品系Bt汕优63的外源插入片段旁侧序列的定性PCR检测方法，可以5’端旁侧序列和/或3’端旁侧序列作为目的DNA扩增片段。根据5’端旁侧序列设计特异性引物，其正向引物可根据1-759位的核苷酸序列设计，即是按照水稻基因组序列设计，位于水稻10号染色体(GenBank登记号：AP008216)的5347871-5348630位，反向引物可根据760-1110位的核苷酸序列设计，即是按照转化载体PFHBT1的水稻actinI启动子部分序列，本发明设计的正向引物为f640：5‘-TTGGACCGATTTGGAGAGAG-3’，反向引物为HH-P2：5‘-CCCGACTCAAATACAGATATGC-3’。根据3’端旁侧序列设计特异性引物，其正向引物可根据1-1848位的核苷酸序列设计，即是按照转化载体PFHBT1部分序列或hpt基因部分序列或filler DNA序列，反向引物可根据1849-2388位的核苷酸序列设计，即是按照水稻基因组序列，位于水稻10号染色体(GenBank登记号：AP008216)的5348631-5349170位，本发明设计的正向序列为HH-T1：5‘-CATGGTTATGGCAGCACTGC-3’，反向序列为HH-G1：5‘-TATGTTCGTAGCCCCACCAC-3’。

本发明首次克隆了转基因水稻品系Bt汕优63的外源插入片段的旁侧序列，并且明确了转基因水稻品系Bt汕优63的外源插入片段的旁侧序列可以用作目的DNA扩增片段建立灵敏、特异性的转基因水稻品系Bt汕优63的品系特异性定性、定量PCR检测。本发明所克隆、分离的外源插入片段的旁侧序列可以进一步用于建立转基因品系特异性PCR检测方法。

附图说明

图1Bt汕优63的转化载体PFHBT1和pGL2RC7的结构示意图

图2Bt汕优63的插入位点结构示意图

图3Bt汕优63的3‘端旁侧序列Genome walking扩增

M：marker DL2000；1，DL3(EcoRV)扩增结果；2，DL4(DraI)扩增结果

图4Bt汕优63的5‘端旁侧序列HH-G3/HH-P2引物的PCR扩增

M：marker DL2000；1，2：转基因水稻品系Bt汕优63

图5转基因水稻品系Bt汕优63的5‘端旁侧序列特异性引物f640/HH-P2检测

M：marker DL2000；1，2：转基因水稻品系Bt汕优63；3，4：对照汕优63

图6转基因水稻品系Bt汕优63的3‘端旁侧序列特异性引物HH-T1/HH-G1检测

具体实施方式

下面结合具体实施例，进一步阐述本发明。这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件，例如Sambrook等分子克隆：实验室手册(New York：Cold Spring Harbor LaboratoryPress，2001)中所述的条件，或按照制造厂商所建议的条件。

实施例1

转基因水稻品系Bt汕优63的外源插入载体的旁侧序列的克隆

一、实验材料

1、植物材料

转基因水稻：转基因水稻品系Bt汕优63。

常规水稻：汕优63。

2、酶与试剂

分子生物学试剂，如dNTPs、Taq DNA聚合酶、DL2000 Marker购自大连宝生物生物工程有限公司。其它生化试剂均为进口分装或国产分析纯。引物和简并引物由北京奥科生物技术有限责任公司合成。

3、实验仪器

PCR扩增仪：Eppendorf Mastercycle gradient(Eppendorf co.)

核酸电泳仪：DYY-III型核酸电泳仪(北京六一仪器厂)

DNA测序仪(Applied Biosystem377型全自动荧光序列分析仪)

DNA电泳分析系统：Kodak EDAS 290(Kodak co.)

其它仪器包括：离心机，恒温加热板，电子天平，培养箱等。

二、实验方法和过程

1、外源插入载体

转基因水稻品系Bt汕优63由两个外源插入载体PFHBT1和pGL2RC7转化而来(Tu et al.，2003)，其中插入载体PFHBT1由Amp抗性基因表达盒和cry1Ab/cry1Ac融合基因表达盒组成，插入载体pGL2RC7含有hpt抗性基因表达盒，见图1。

2、植物基因组DNA提取与检测

2.1、植物DNA小量提取

2.1.1、抽提液的配制

药品	终浓度
		葡萄糖	0.35M
Tris-HCl，(pH7.5)	0.1M
		EDTA(pH8.0)	0.005M
聚乙烯吡咯烷酮(K30)(PVP)	2％(w/v)
		DIECA(diethyldithiocarbamic acid)	0.1％(w/v)
β-巯基乙醇(用时现加)	0.2％

2.1.2、裂解液的配制

药品	终浓度
		NaCl(氯化钠)	1.4M
Tris-HCl，(pH7.5)	0.1M
		EDTA(pH8.0)	0.02M
聚乙烯吡咯烷酮(K30)(PVP)	2％(w/v)
		十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)	2％(w/v)
DIECA(diethyldithiocarbamic acid)	0.1％(w/v)
		β-巯基乙醇(用时现加)	0.2％

2.1.3、提取方法

a 称取200-400mg水稻叶片，在液氮中磨碎，装入已经用液氮预冷的1.5ml离心管中。

b加入1ml预冷至4℃的抽提液，剧烈摇动混匀后，在冰上静置5分钟，用13000r/min离心机，4℃离心15min，弃去上清液。

c加入600μl预热到65℃的抽提裂解液，用玻棒搅拌上下颠倒充分混匀，在65℃的水浴锅中裂解40min。

d用13000r/min离心机室温离心10min，将上清液转至另一离心管中，加入5μl RNase A(10mg/ml)，37℃水浴30min。

e分别用等体积苯酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1)和氯仿∶异戊醇(24∶1)各抽提一次。

f用13000r/min离心机室温离心10min，将上清转至另一离心管中。加入2/3体积异丙醇，1/10体积3M乙酸钠(pH5.6)，-20℃放置2-3h，充分沉淀DNA。

g13000r/min，4℃离心15min，用70％乙醇洗沉淀一次，倒出乙醇，晾干DNA。加入50μl TE(pH8.0)溶解DNA。

h把DNA溶液浓度用重蒸馏水调制为100ng/μl，储存于-20℃备用。

2.2、植物DNA大量提取

2.2.1、Buffer″S″的配制

药品	终浓度
		Tris-HCl(pH8.5)	100mmol/L
NaCl	100mmol/L
		EDTA(pH8.0)	50mmol/L
SDS	2％

2.2.2、提取方法

a取水稻叶片2克，剪成约1cm小段，置于研钵之中液氮研磨粉碎；

b加入10ml Buffer″S″、50μl蛋白酶K(浓度为10mg/ml)，65℃温育1-2小时，并不时轻轻混匀；

c加入10ml苯酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1)，倒置混匀，3,000rpm离心20分钟；

d上层水相移至一新的离心管，加入0.6倍体积的异丙醇，混匀；

e用玻璃棒挑出沉淀，并浸于70％乙醇之中洗涤；

f挑出沉淀置于新的离心管中，离心并去尽液体，略微干燥后溶于2ml TE之中；

g加入5μl RNase A(浓度为10mg/ml)，37℃保温1小时；

h加入等体积的苯酚/氯仿/异戊醇，轻轻混匀，3,000rpm离心15分钟；

i保留水相，加入1/10体积3mol/L乙酸钠、2.5倍体积的无水乙醇，轻轻混匀；

j挑出沉淀，70％乙醇洗涤，离心，去除多余的液体，真空干燥；

k加入0.5-1ml的TE溶解DNA；

l测定DNA浓度，保存于4℃备用。

2.3、DNA检测

取5μl提取的DNA溶液，以0.8％的琼脂糖凝胶电泳，根据其亮度和带型来初步判断提取DNA的质量。采用紫外分光光度计测定所提取的DNA的浓度和纯度。

3、Bt汕优63旁侧序列的分离

Tu等(Tu et al，2003，Plant Biotechnology Journal，1：155-165)的研究表明，Bt汕优63的插入位点由两个拷贝的Bt基因串连而成。(如图2所示)本实施例在此研究的基础上，采用TAIL-PCR和Genome walking结合的方法分离得到Bt汕优63的3‘端旁侧序列。再根据3’端旁侧的水稻基因组序列，设计引物，通过PCR的方法获得5‘端旁侧序列。

3.1、TAIL-PCR分离已知序列的旁侧序列

TAIL-PCR详细的描述见Liu等(Liu et al.，1995，The Plant Journal，8(3)：457-463)，用于扩增已知区域的侧翼序列。根据3‘端已经获得的序列，设计三个巢式特异性PCR引物WP1、10745r和L5N-P2，依次与8个简并引物AD2-6、AD8、AD9、AD11分别组合进行三次PCR扩增，引物序列见表1。PCR反应条件见表2。

表1用于TAIL-PCR扩增的简并引物和特异性引物

primers	sequence
		WP1	5’-TTCCTCGCTCACTGACTCGC-3’
10745r	5’-GGTATCTCAGTTCGGTGTAG-3’
		L5N-P2	5’-TATCTGCGCTCTGCTGAAGC-3’
AD2	5’-AGTGNAGAANCAAAGG-3’
		AD3	5’-CATCGNCNGANA CGAA-3’
AD4	5’-TG(A/T)GNAG(A/T)ANCA(G/C)AGA-3’
		AD5	5’-TCGTNCGNACNTAGGA-3’
AD6	5’-NTCGA(G/C)T(A/T)T(G/C)G(A/T)GTT-3’
		AD8	5’-(G/C)TTGNTA(G/C)TNCTNTGC-3’
AD9	5’-(A/T)CAGNTG(A/T)TNGTNCTG-3’
		AD11	5’-CA(A/T)CGICNGAIA(G/C)GGA-3’

表2TAIL-PCR反应程序和条件

3.2、Genome walking分离已知序列的旁侧序列

Genome walking也是一种扩增已知序列旁侧未知区域序列的方法，主要步骤为基因组DNA酶切、与接头连接、两次巢式PCR扩增等。本实施例在采用TAIL-PCR扩增获得了3‘端序列，但仍未得到旁侧水稻基因组序列。在此基础上，采用Genome walking的方法，继续扩增其旁侧序列，结果获得3‘端旁侧的水稻基因组序列。参照Genome walking试剂盒说明，主要操作步骤如下。

3.2.1、基因组DNA酶切

3.2.1.1、分别将5个1.5mL的离心管标记为DL1、DL2、DL3、DL4和阳性对照。

3.2.1.2、酶切反应体系

在标记好的离心管DL1、DL2、DL3、DL4里分别加入试样基因组DNA，并在DL1中加入核酸内切酶PvuII、DL2中加入StuI、DL3中加入EcoRV、DL4中加入DraI，在阳性对照中加入人基因组DNA和核酸内切酶PvuII，配制方法见表3。

表3酶切反应体系

试剂	单样品体积
		基因组DNA(100ng/μL)	25μL
10×酶切缓冲液	10μL
		核酸内切酶(10U/μL)	8μL
ddH2O	57μL
		总体积	100μL

3.2.1.3、混匀反应液，37℃温浴2hr后，取出离心管，低速离心5-10sec，继续温浴16-18hr。

3.2.1.4、各取5μL进行琼脂糖凝胶电泳，检测酶切是否完全。

3.2.2、纯化酶切产物

按回收试剂盒说明书纯化酶切产物。

3.2.3、连接反应

按表4配制连接反应体系，混匀反应液，16℃水浴过夜。然后70℃变性5min。在每个离心管中加入72μL ddH₂O，混匀，-20℃保存备用。

表4连接反应体系

试剂	单样品体积
		纯化的酶切产物	4μL
接头序列(25μM)	1.9μL
		10×连接缓冲液	1.6μL
T4 DNA连接酶(6U/μL)	0.5μL
		ddH₂O	8μL
总体积	16μL

3.2.4、第1轮PCR反应

3.2.4.1、PCR扩增反应体系

第1轮PCR反应体系的总体积为50μL，反应体系见表5。

表5第1轮PCR反应体系

试剂	单样品体积
		ddH₂O	31μL
10×PCR缓冲液	5μL
		25mmol/L Mg₂SO₄	4μL
2.5mmol/L dNTPs	5μL
		10μmol/L GSP Primer1	1.5μL
10μmol/LAP1 Primer	1.5μL
		1U/μL Taq酶	1μL
连接产物	1.0μL
		总体积	50μL

注：若PCR缓冲液中含有MgCl₂则不需再加。

在PCR反应管中按表5依次加入反应试剂，在台式离心机离心10s。

3.2.4.2、PCR扩增反应程序

PCR扩增反应程序见表6。反应结束后取出PCR反应管，对PCR反应产物进行电泳检测或在4℃下保存待用。

表6.第1轮PCR扩增反应程序

3.2.4.3、PCR产物的电泳检测

将适量的琼脂糖加入1×TAE缓冲液中，加热将其溶解，配制成浓度为2.0％(w/v)的琼脂糖溶液，然后按每100mL琼脂糖溶液中加入5μL EB溶液的比例加入EB溶液，混匀，稍适冷却后，将其倒入电泳板上，插上梳板，室温下凝固成凝胶后，放入1×TAE缓冲液中，轻轻垂直向上拔去梳板。吸取7μL的PCR产物与适量的加样缓冲液混合后加入至凝胶泳道中，在其中一个泳道中加入DNA分子量标准，接通电源在2V/cm条件下电泳。

3.2.4.4、凝胶成像分析

电泳结束后，取出琼脂糖凝胶，轻轻地置于凝胶成像仪上或紫外透射仪上成像。若PCR产物呈弥散状，进行后续的反应。

3.2.5、第2轮PCR反应

3.2.5.1、PCR扩增反应体系

第2轮PCR反应体系的总体积为50μL，反应体系见表7。在PCR反应管中按表7依次加入反应试剂，在台式离心机离心10s。

表7第2轮PCR反应体系

试剂	单样品体积
		ddH₂O	31μL
10×PCR缓冲液	5μL
		25mmol/L Mg₂SO₄	4μL
2.5mmol/L dNTPs	5μL
		10μmol/L GSP Primer2	1.5μL
10μmol/L AP2Primer	1.5μL
		1U/μL Taq酶	1μL
第1轮PCR 50倍稀释产物	1.0μL
		总体积	50μL

注：若PCR缓冲液中含有MgCl₂则不需再加。

3.2.5.2、PCR扩增反应程序

PCR扩增反应程序见表8。反应结束后取出PCR反应管，对PCR反应产物进行电泳检测或在4℃下保存待用。

表8.第2轮PCR扩增反应程序

3.2.5.3、PCR产物的电泳检测

3.2.5.4、凝胶成像分析

电泳结束后，取出琼脂糖凝胶，轻轻地置于凝胶成像仪上或紫外透射仪上成像。若第二轮PCR扩增出特异的条带，进行后续的反应。否则调整反应程序，重新进行PCR扩增。

3.3、PCR扩增获得5‘端旁侧序列

依据已经获得的3‘端旁侧序列中的水稻基因组序列，在其上游设计正向PCR引物，同时依据发表的位点结构图谱，在插入载体PFHBT1的水稻actinI启动子部分设计反向引物，进行PCR扩增，获得5’端旁侧序列。引物序列为：HH-G3：5‘-GGAGAAAGTTGCATAGCCAG-3’；HH-P2：5‘-CCCGACTCAAATACAGATATGC-3’。

三、实验结果

1、TAIL-PCR扩增和Genome walking扩增获得了3‘端外源插入载体的旁侧序列

通过TAIL-PCR扩增和Genome walking扩增获得的Bt汕优63水稻外源插入载体的3‘端旁侧序列，Genome walking扩增见图3。3‘端旁侧序列全长为2388bp，其中，1-1721位为转化载体PFHBT1部分序列；1722-1771位为hpt基因部分序列，来源于转化载体pGL2RC7；1772-1831位为转化载体PFHBT1部分序列；1832-1848位为filler DNA，来源于整合过程中的DNA修复序列；1849-2388位为水稻基因组序列，位于水稻10号染色体(GenBank登记号： AP008216)的5348631-5349170位。具体的转基因水稻品系Bt汕优63的3‘端外源插入载体的旁侧序列的信息见SEQ ID No2。

2、PCR扩增获得了5‘端外源插入载体的旁侧序列

采用PCR扩增获得的Bt汕优63水稻5‘端外源插入载体的旁侧序列，见图4。5’端旁侧序列全长为1110bp，其中1-759位为水稻基因组序列，位于水稻10号染色体(GenBank登记号：AP008216)的5347871-5348630位；760-944位为水稻actinI启动子部分序列，来源于转化载体PFHBT1；945-1110位为水稻actinI启动子部分序列，来源于转化载体PFHBT1。具体的转基因水稻品系Bt汕优63的5‘端外源插入载体的旁侧序列的信息见SEQ ID NO 1。

实施例2

基于转基因水稻品系Bt汕优63的外源插入载体的旁侧序列的定性PCR检测方法

一、实验材料

1、植物材料

转基因水稻：转基因水稻品系Bt汕优63。

常规水稻：汕优63。

2、酶与试剂

分子生物学试剂，如dNTPs、Taq DNA聚合酶、DL2000 Marker购自大连宝生物生物工程有限公司。

其它生化试剂均为进口分装或国产分析纯。引物由北京奥科生物技术有限责任公司合成。

3、实验仪器

PCR扩增仪：Eppendorf Mastercycle gradient(Eppendorf co.)

核酸电泳仪：DYY-III型核酸电泳仪(北京六一仪器厂)

DNA电泳分析系统：Kodak EDAS 290(Kodak co.)

二、实验方法和过程

1、植物基因组DNA提取与检测

见实施例1中的“植物基因组DNA提取与检测”

2、基于5‘端和3’端旁侧序列的品系特异性PCR检测

根据实施例1中测定的5‘端和3’端旁侧序列，分别在其水稻基因组序列部分和转化载体序列部分设计引物，见表9。PCR扩增结果表明，转基因水稻品系Bt汕优63的5‘端和3’端扩增引物组合分别得到了预期的471bp和334bp的扩增片段，而对照汕优63号均没有相应的扩增片段，见图5和图6。

表9Bt汕优63品系特异性PCR检测引物

附：序列表

SEQ ID NO 1：5‘端序列：(1110bp)

1 GGAGAAAGTT GCATAGCCAG TAAATATCAT CCTGTTCTGT CCTTATTGTT TAATAGTACT

61 TGATGAGATC CCCTTATGTT ATTGACATCC ATTAATGAGA GGGCAATAGA TATCTTCCCT

121 AGGGCAAAGT CAAATAACAA TCTCAGTTAA ATCTATGGAG AGAATTTTAG AAAGAAGTTG

181 CTGCTCTGCT CAATGGAGAT AAATAACTTT CCAGCAGAAT TTTTTTTTCT TCGAATGTGG

241 GCATGGAAAA TCATGAAGGA GACAAACAGC GTGGCGAAGA GTGGTGGTAC AAAGTAAGAG

301 AAAAAGCTTA CGGAATACAG ATATGGTCAA GCAGAAAAGG AACACAGAAA ATATCCCCTT

361 CAGTATTATT GACGAAATTA TACTATACAC CCTTCATCAA TAGTTGAATC TTGCTGGATT

421 ACTTCTTTTC TCGTTCAGAC CAGGTCGTTA ACAACCATTA TTACCCTCTA GATTCAAGAA

481 AATTTAGAGC ATAATCCTAC CAAGAAAATA GTTGCTGAAA CTTAAACATC GAAACAGCAC

541 ATCATTGGTA GAGTGAAGAA ACTGAATCTT TAAAATAGAG AGCAGAAATT ACCATATCCA

601 TGGTTGAGCG AGAGGGGATT GCGGCTGGGG GAAGAGACAT TGGACCGATT TGGAGAGAGG

661 AACTGAAAAG CCCCAAATTG ACTTCGTTCT GGAGCTGGGC TACAGTCGTC GACTTTCAAG

721 CATCAGTACA GGAAGGATAA AAAGTGCCGA ACATGGAGAG AAAAAAAAGA AAAAGAAAAA

781 ACAGCAGGTG GGTCCGGGTC GTGGGGGCCG GAAACGCGAG GAGGATCGCG AGCCAGCGAC

841 GAGGCCGGCC CTCCCTCCGC TTCCAAAGAA ACGCCCCCCA TCGCCACTAT ATACATACCC

901 CCCCCTCTCC TCCCATCCCC CCAACCCTAC CACCACCACC ACCGTAAAGT AAAATATCGG

961 TAATAAAAGG TGGCCCAAAG TGAAATTTAC TCTTTTCTAC TATTATAAAA ATTGAGGATG

1021 TTTTTGTCGG TACTTTGATA CGTCATTTTT GTATGAATTG GTTTTTAAGT TTATTCGCTT

1081 TTGGAAATGC ATATCTGTAT TTGAGTCGGG

SEQ ID NO 2：3‘端序列：(2388bp)

1 AATTCATCGA TGATATCAGA TCTGCCGGTC TCCCTATAGT GAGTCGTATT AATTTCGATA

61 AGCCAGGTTA ACCTGCATTA ATGAATCGGC CAACGCGCGG GGAGAGGCGG TTTGCGTATT

121 GGGCGCTCTT CCGCTTCCTC GCTCACTGAC TCGCTGCGCT CGGTCGTTCG GCTGCGGCGA

181 GCGGTATCAG CTCACTCAAA GGCGGTAATA CGGTTATCCA CAGAATCAGG GGATAACGCA

241 GGAAAGAACA TGTGAGCAAA AGGCCAGCAA AAGGCCAGGA ACCGTAAAAA GGCCGCGTTG

301 CTGGCGTTTT TCCATAGGCT CCGCCCCCCT GACGAGCATC ACAAAAATCG ACGCTCAAGT

361 CAGAGGTGGC GAAACCCGAC AGGACTATAA AGATACCAGG CGTTTCCCCC TGGAAGCTCC

421 CTCGTGCGCT CTCCTGTTCC GACCCTGCCG CTTACCGGAT ACCTGTCCGC CTTTCTCCCT

481 TCGGGAAGCG TGGCGCTTTC TCATAGCTCA CGCTGTAGGT ATCTCAGTTC GGTGTAGGTC

541 GTTCGCTCCA AGCTGGGCTG TGTGCACGAA CCCCCCGTTC AGCCCGACCG CTGCGCCTTA

601 TCCGGTAACT ATCGTCTTGA GTCCAACCCG GTAAGACACG ACTTATCGCC ACTGGCAGCA

661 GCCACTGGTA ACAGGATTAG CAGAGCGAGG TATGTAGGCG GTGCTACAGA GTTCTTGAAG

721 TGGTGGCCTA ACTACGGCTA CACTAGAAGA ACAGTATTTG GTATCTGCGC TCTGCTGAAG

781 CCAGTTACCT TCGGAAAAAG AGTTGGTAGC TCTTGATCCG GCAAACAAAC CACCGCTGGT

841 AGCGGTGGTT TTTTTGTTTG CAAGCAGCAG ATTACGCGCA GAAAAAAAGG ATCTCAAGAA

901 GATCCTTTGA TCTTTTCTAC GGGGTCTGAC GCTCAGTGGA ACGAAAACTC ACGTTAAGGG

961 ATTTTGGTCA TGAGATTATC AAAAAGGATC TTCACCTAGA TCCTTTTAAA TTAAAAATGA

1021 AGTTTTAAAT CAATCTAAAG TATATATGAG TAAACTTGGT CTGACAGTTA CCAATGCTTA

1081 ATCAGTGAGG CACCTATCTC AGCGATCTGT CTATTTCGTT CATCCATAGT TGCCTGACTC

1141 CCCGTCGTGT AGATAACTAC GATACGGGAG GGCTTACCAT CTGGCCCCAG TGCTGCAATG

1201 ATACCGCGAG ACCCACGCTC ACCGGCTCCA GATTTATCAG CAATAAACCA GCCAGCCGGA

1261 AGGGCCGAGC GCAGAAGTGG TCCTGCAACT TTATCCGCCT CCATCCAGTC TATTAATTGT

1321 TGCCGGGAAG CTAGAGTAAG TAGTTCGCCA GTTAATAGTT TGCGCAACGT TGTTGCCATT

1381 GCTACAGGCA TCGTGGTGTC ACGCTCGTCG TTTGGTATGG CTTCATTCAG CTCCGGTTCC

1441 CAACGATCAA GGCGAGTTAC ATGATCCCCC ATGTTGTGCA AAAAAGCGGT TAGCTCCTTC

1501 GGTCCTCCGA TCGTTGTCAG AAGTAAGTTG GCCGCAGTGT TATCACTCAT GGTTATGGCA

1561 GCACTGCATA ATTCTCTTAC TGTCATGCCA TCCGTAAGAT GCTTTTCTGT GACTGGTGAG

1621 TACTCAACCA AGTCATTCTG AGAATAGTGT ATGCGGCGAC CGAGTTGCTC TTGCCCGGCG

1681 TCAATACGGG ATAATACCGC GCCACATAGC AGAACTTTAA CCCCCGAACA TCGCCTCGCT

1741 CCAGTCAATG ACCGCTGTTA TGCGGCCATT GATTTGTAGA GAGAGACTGG TGATTTCAGC

1801 GGGCATGCCT GCAGGTCGAC TCTAGAGGAT CCCGGACGAG TGCTGGGGCA GATAAGCAGT

1861 AGTGGTGGGG CTACGAACAT ATTCCTTTTC CTTCTGGACG CTACCACTCA TATGTTCCAA

1921 AATTACAAAT TTGTCCTTTG TATTTGTTGC AATTTTCATG TAAGAAATCC AACGAGGCTC

1981 TGTTTTTTTT TATTGGCCTT GTTTGGATCC TCAGAGCTAT TAAATAGCCC TGTAGAATCT

2041 TACTATTTAG GAGTATTAAA CGTAGATTAC CGACAAAACC GATTCCATAA CCCTAGGCTA

2101 TTTTGCAAGA CAAATCTAAT GATGTATATT AATCCATGAT TAGCGACTGA TTACTGTAGC

2161 ATCACTGTAG CAAATCATGG ATTAATATAC CTCGTTAGAT TCGTCTCGTA AAATAGCCTA

2221 TGGGTTTTGT CATTAATCTA CGTTTAATAC TTCTAAATAG CAAGATTCCG GAGGGCTATT

2281 TAATAGCCCT CCGGATCCAA ACAGAGCCAT TGATCATGTC GACGGAACTC TAACTTCTCA

2341 ATTTAACTTA CTTTACACTT TCTATCACTT TCTATTTTCT TGGTGTCC

Claims

1.转基因水稻品系Bt汕优63的PCR检测方法，其特征在于：PCR反应中的正向引物依据SEQID NO1中1-759位序列设计，反向引物依据SEQ ID NO1的760-1110位序列设计。

2.根据权利要求1所述的PCR检测方法，

所述正向引物为f640：5‘-TTGGACCGATTTGGAGAGAG-3’，

所述反向引物为HH-P2：5‘-CCCGACTCAAATACAGATATGC-3’，扩增产物长度为471bp。

3.转基因水稻品系Bt汕优63的PCR检测方法，其特征在于：PCR反应中正向引物的序列依据SEQ ID NO2中1-1848位序列设计，反向引物依据SEQ ID NO2的1849-2388位序列设计。

4.根据权利要求3所述的PCR检测方法，

所述正向引物为HH-T1：5‘-CATGGTTATGGCAGCACTGC-3’，

所述反向引物为HH-G1：5‘-TATGTTCGTAGCCCCACCAC-3’，扩增产物长度为334bp。