CN100564516C - 生产靶物质的方法 - Google Patents

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Abstract

通过在培养基中培养具有靶物质生产能力的细菌使所述靶物质在培养基中累积并从培养基中收集该靶物质来生产靶物质，其中所述细菌经过修饰，使得靶物质的副产物或靶物质的生物合成系统的底物被细菌细胞摄入的系统得到增强。

Description

生产靶物质的方法
技术领域
本发明涉及一种利用细菌生产靶物质的方法。更特别地，本发明涉及一种利用细菌改进靶物质例如L-氨基酸、核酸、抗生素、维生素、生长因子或生理活性物质的生产的方法。
背景技术
利用微生物发酵生产靶物质例如L-氨基酸的方法包括：利用野生型微生物(野生型菌株)的方法、利用衍生自野生型菌株的营养缺陷型菌株的方法、利用衍生自野生型菌株的代谢调控突变体作为多种药物抗性突变体之一的方法、利用同时具有营养缺陷型菌株和代谢调控突变体特征的菌株的方法，等等。
近年来，重组DNA技术已经被用于靶物质的发酵生产。例如，微生物生产L-氨基酸的能力可以通过增强编码L-氨基酸生物合成酶的基因(US专利5168 056和5 776 736)，或增强碳源向L-氨基酸生物合成系统的流入(US专利5 906 925)来提高。
改进微生物中靶物质生产的方法包括修饰物质摄入或外排系统的方法。修饰摄入系统的方法例子包括一种通过删除用于把靶物质摄入细胞的系统或使该系统退化来改进靶物质生产能力的方法。特别地，现有技术中已经公开了一种删除gluABCD操纵子或其部分以消除L-谷氨酸摄入系统或使之退化(EP 1 038970 A1)的方法，一种削弱嘌呤核苷向细胞的摄入以增强嘌呤核苷生产能力的方法(EP 1 004 663 A1)，等等。
修饰微生物外排系统的方法包括用于增强靶物质的外排系统的方法以及删除或削弱靶物质的生物合成系统的中间物或底物的外排系统的方法。作为增强靶物质外排系统的方法，例如，已经公开了一种利用其中L-赖氨酸外排基因(lysE)被增强的棒杆菌(Corynebacterium)菌株生产L-赖氨酸的方法(WO97/23597)。至于后一种方法，已知一种生产靶物质L-谷氨酸的方法，其中通过突变或破坏α-酮戊二酸通透酶基因使靶物质中间体α-酮戊二酸的外排得以减少(WO 01/005959)。
此外，有人建议将编码与物质透过细胞膜有关的ATP结合盒超家族(ABC转运蛋白)的基因用于其中氨基酸穿膜运输被修饰的微生物的育种中(WO00/37647)。
此外，有人建议将编码蔗糖PTS酶II(一种涉及蔗糖向细胞内摄入的蛋白质)的基因用于棒状细菌中，从而繁育出氨基酸、核酸等的生产力得到改良的菌株(EP 1 197 555 A)。此外，还已知一种利用蔗糖PTS基因群或蔗糖非-PTS基因群来改进属于埃希氏菌(Escherichia)属的细菌L-氨基酸生产力的技术(美国专利申请号2001/0049126)。
已知一种通过删除或削弱副产物生物合成系统来降低靶物质副产物生产的技术(例如，“Amino Acid Fermentation”Gakkai Shuppan Center，p.4，1986)。然而，在该方法中，培养微生物时需要向培养基中添加微生物生长所需量的上述副产物。
Mtr(Heatwole，V.M.等人，J.Bacteriol.，American Society for Microbiology，173，pp.108-115，1991年1月)和TnaB(Sarsero，J.P.等人，J.Bacteriol.，AmericanSociety for Microbiology，173(10)，pp.3231-3234，1991年5月)已知为L-色氨酸特异性摄入系统，以及Arop(Mee-Len，C.等人，J.Bacteriol.，American Societyfor Microbiology，167(2)，pp.749-753，1986年8月)已知为芳香族氨基酸共有的摄入系统。然而，之前未曾描述过通过增强靶物质副产物的摄入系统来改进靶物质的生产力。
发明内容
本发明的一个目的是提供一种利用微生物生产靶物质例如L-氨基酸、抗生素、维生素、生长因子或生理活性物质的方法，其中副产物的产量降低了，且优选靶物质的产量提高了。
本发明的进一步的目的是提供一种生产靶物质的方法，该方法包括培养能在培养基中生产靶物质的细菌以及从培养基中收集靶物质，其中所述细菌经过修饰以增强靶物质副产物或靶物质生物合成系统底物的细胞摄入系统。
本发明的进一步的目的是提供如上所述的方法，其中所述副产物选自所述靶物质的生物合成途径中的中间体、所述靶物质的生物合成途径中的底物、以及从所述途径中分支出来的另一生物合成途径的产物。
本发明的进一步的目的是提供如上所述的方法，其中所述细菌属于埃希氏菌(Escherichia)属。
本发明的进一步的目的是提供如上所述的方法，其中所述靶物质是L-苯丙氨酸以及所述副产物是L-色氨酸。
本发明的进一步的目的是提供如上所述的方法，其中所述副产物的摄入系统选自Mtr和TnaB。
本发明的进一步的目的是提供如上所述的方法，其中所述系统的活性通过选自以下的一种方法而得以提高：增加mtr基因或tnaB基因的拷贝数，和修饰mtr基因或tnaB基因的表达调控序列。
本发明的进一步的目的是提供如上所述的方法，其中所述mtr基因含有选自以下的一种DNA序列：编码SEQ ID No.2中所示的蛋白质序列的DNA序列，SEQ ID No.1中所示的DNA序列，以及编码SEQ ID No.2中所示的蛋白质序列并且经过了修饰的DNA序列，其中经过所述修饰，在一个或若干个位点上替换、删除、插入或添加了一个或若干个氨基酸残基，并且修饰后的序列与SEQ ID No.2中所示序列具有至少70％的同源性，其中所述mtr基因编码一种具有Mtr蛋白质活性的蛋白质。
本发明的进一步的目的是提供如上所述的方法，其中所述tnaB基因含有选自以下的一种DNA序列：编码SEQ ID No.4中所示蛋白质序列的DNA序列，SEQ ID No.3中所示的DNA序列，以及编码SEQ ID No.4中所示的蛋白质序列并且经过了修饰的DNA序列，其中经过所述修饰，在一个或若干个位点上替换、删除、插入或添加了一个或若干个氨基酸残基，并且修饰后的序列与SEQ ID No.4中所示序列具有至少70％的同源性，其中所述tnaB基因编码一种具有TnaB蛋白质活性的蛋白质。
本发明的进一步的目的是提供一种属于埃希氏菌(Escherichia)属的细菌，其具有生产靶物质的能力并具有选自以下的一种改进：靶物质副产物的细胞摄入系统的增强和靶物质生物合成系统的底物的细胞摄入系统的增强。
本发明的进一步的目的是提供一种如上所述的细菌，其中所述靶物质是L-苯丙氨酸，所述副产物是L-色氨酸，所述细胞摄入系统选自Mtr和TnaB。
本发明的进一步的目的是提供一种如上所述的细菌，其中所述Mtr或Tnaβ的活性通过选自以下的一种方式得以提高：增加mtr基因或tnaB基因的拷贝数，和修饰mtr基因或tnaB基因的表达调控序列。
本发明的进一步的目的是提供一种如上所述的细菌或如上所述的方法，其中所述mtr基因含有选自下列的一种DNA序列：编码SEQ ID No.2中所示蛋白质序列的DNA序列，SEQ ID No.1中所示的DNA序列，以及编码SEQ ID No.2所示的蛋白质序列并且经过了修饰的DNA序列，其中经过所述修饰，在一个或几个位点上替换、删除、插入或添加了一个或几个氨基酸残基，并且修饰后的序列与SEQ ID No.2所示序列具有至少70％的同源性，其中所述mtr基因编码一种具有Mtr蛋白质活性的蛋白质。
本发明的一个进一步的目的是提供一种如上所述的方法或细菌，其中所述tnaB基因含有选自下列的一种DNA序列：编码SEQ ID No.4中所示的蛋白质序列的DNA序列、SEQ ID No.3中所示的DNA序列、以及编码SEQ ID No.4中所示的蛋白质序列并且经过了修饰的DNA序列，其中经过所述修饰，在一个或若干个位点上替换、删除、插入或添加了一个或若干个氨基酸残基，并且修饰后的序列与SEQ ID No.4中所示序列具有至少70％的同源性，其中所述tnaB基因编码一种具有TnaB蛋白质活性的蛋白质。
根据本发明，当利用细菌生产靶物质例如L-氨基酸时，可以降低副产物的产量。根据本发明的一种优选实施方式，可以提高靶物质的产量。
此外，培养细菌时不需要向培养基中添加生长所需的物质，而且，由于可以降低培养基中副产物的量，因此从培养基中纯化靶物质就变得容易。
优选实施方式的详细描述
为了达到上述目的本发明的发明人进行了艰苦的研究。结果发现，当细菌被修饰后，靶物质的副产物的细胞摄入系统被增强，副产物的产量减少，因此完成了本发明。
本发明的细菌能生产靶物质并经修饰以使靶物质的副产物或靶物质的生物合成系统底物的细胞摄入系统得到增强。不特别限制本发明的细菌，只要它能生产靶物质且具有靶物质副产物或用于靶物质生物合成系统的底物的细胞摄入系统。此外，只要满足上述要求，也可将本发明应用于以前未曾在工业上使用的细菌。本发明的细菌可以天生具有生产靶物质的能力，或者也可以经突变、重组DNA技术或者类似方法育种来赋予该能力。
细菌的特定例子包括属于埃希氏菌属的细菌例如大肠杆菌(Escherichiacoli)、棒状细菌例如乳发酵短杆菌(Brevibacterium lactofermentum)、属于芽孢杆菌(Bacillus)属的细菌例如枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)、属于沙雷氏菌(Serratia)属的细菌例如粘质沙雷氏菌(Serratia marcescens)，等等。然而，本发明的细菌并不限于这些例子。
措辞“生产靶物质”意指，当将本发明的细菌培养于培养基中时，细菌能够生产出足够量的靶物质以便可以从细菌细胞或培养基中收集这些靶物质。优选地，这意味着细菌具有能生产出比野生型或未修饰的细菌菌株更大数量的靶物质的能力。
不特别限制本发明所生产的靶物质，只要它是一种能被细菌生产的物质。其例子包括各种L-氨基酸如L-苯丙氨酸、L-苏氨酸、L-赖氨酸、L-谷氨酸、L-亮氨酸、L-异亮氨酸和L-缬氨酸。此外，靶物质可以是任何可以被细菌生物合成的物质包括核酸例如鸟苷酸和肌苷酸、维生素、抗生素、生长因子、生理活性物质等，只要在生物合成中存在中间体或底物的外排系统。此外，本发明可用于生产目前还没有利用细菌生产的物质，只要存在靶物质的副产物或靶物质的生物合成系统底物的细胞摄入系统。
生产L-苯丙氨酸的细菌的例子包括大肠杆菌AJ12741(FERM P-13000，参见日本专利号3225597)和AJ12604(FERM BP-3579，参见欧洲专利申请公开号488424)、乳发酵短杆菌AJ12637(FERM BP-4160，参见法国专利申请公开号2686898)，等等。此外，生产靶物质L-苏氨酸的细菌例子包括大肠杆菌VKPM B-3996(RIA 1867，参见美国专利号5175107)、嗜乙酰乙酸棒杆菌(Corybacterium acetoacidophilum)AJ12318(FERM BP-1172，参见美国专利号5188949)，等等。生产L-赖氨酸的细菌的例子包括大肠杆菌AJ11442(NRRLB-12185，FERM BP-1543，参见美国专利号4346170)、乳发酵短杆菌AJ3990(ATCC 31269，参见美国专利号4066501)，等等。生产L-谷氨酸的细菌的例子包括大肠杆菌AJ12624(FERM BP-3853，参见法国专利申请公开号2680178)、大肠杆菌AJ13199(FERM P-15573，参见日本专利申请公开号7-203980)、乳发酵短杆菌AJ12475(FERM BP-2922，参见美国专利申请号5272067)，等等。生产L-亮氨酸的细菌的例子包括大肠杆菌AJ11478(FERMP-5274，参见日本专利公开(Kokoku)号62-34397)、乳发酵短杆菌AJ3718(FERMP-2516，参见美国专利申请号3970519)，等等。产L-异亮氨酸细菌的例子包括大肠杆菌KX141(VKPM B-4781，参见欧洲专利申请公开号519113)、黄色短杆菌(Brevibacterium flavum)AJ12149(FERM BP-759，参见美国专利号4656135)等。生产L-缬氨酸的细菌的例子包括大肠杆菌VL1970(VKPM B-4411，参见欧洲专利申请公开号519113)、乳发酵短杆菌AJ12341(FERM BP-1763，参见美国专利号5188948)，等等。
本发明中，靶物质的“副产物”意指在靶物质的生产过程中作为副产物产生的除靶物质之外的物质。此外在本发明中，如果细菌没有经过使本发明摄入系统增强的修饰，则培养细菌时“副产物”和“靶物质的生物合成系统的底物”外排并积累于培养基中，且存在副产物或底物被摄入细菌或其它细菌内的系统。
术语“靶物质”和“副产物”是相对的概念，一种物质是靶物质还是副产物依赖于生产目的。例如，如果要生产L-苯丙氨酸，则L-苯丙氨酸是靶物质，L-苯丙氨酸生产中所产生的L-色氨酸是副产物。如果要生产L-色氨酸，则L-色氨酸是靶物质，且L-色氨酸生产中所产生的L-苯丙氨酸是副产物。
本发明中的特定副产物的例子包括靶物质生物合成途径的中间体、自该途径分支出来的另一生物合成途径的产物，等等。中间体或底物不限于该靶物质特有的生物合成系统中的中间体或底物，例如前体，它可以是其它物质的生物合成系统或代谢系统的中间体或底物，例如，当靶物质为一种L-氨基酸时，糖酵解系统的中间体或底物。下文中，前述“副产物”或“底物”可以笼统地称为副产物，且有关副产物的描述也类似地适用于底物。
本发明中，“用于细胞摄入的系统(细胞摄入系统)”是指一种涉及将前述已被排出细胞外的副产物摄入细胞内的蛋白质。该摄入系统可以由单一一种或两种或更多种蛋白质组成。此外，对于某一单一种副产物可能存在两种或更多种类型的摄入系统。
措辞“修饰以使摄入系统被增强”意指修饰细菌以使前述副产物的摄入量或摄入速率与未修饰的菌株如野生型细菌相比得到提高。例如，如果通过提高组成摄入系统的某种蛋白质的量或特异活性使其活性与野生型或未修饰菌株相比得到增强，则前述摄入系统得到增强。组成摄入系统的某种蛋白质的活性可用Sarsero，J.P.等人，J.Bacteriol.，177(2)，297-306，1995年所述的方法测定，例如，当蛋白质为Mtr、TnaB、TyrP、PheP或AroP时。衍生自大肠杆菌的NupC和NupG的活性可用J.Bacteriol.，183(16)，4900-4，2001年8月中所述的方法测定。衍生自谷氨酸棒杆菌(Corynebacterium glutamicum)的GluABCD的活性可以用J.Bacteriol.，177(5)，1152-8，1995年3月中所述的方法测定。衍生自谷氨酸棒杆菌的BrnQ的活性可以用Arch.Microbiol.，169(4)，303-12，1998年4月中所述的方法测定。衍生自大肠杆菌的LivFGHJKM和LivK的活性可以用J.Biol.Chem.，15，265(20)，11436-43，1990年7月；J.Bacteriol.，116，1258-66，1973；和J.Bacteriol.，174(1)，108-15，1992年1月中所述的方法测定。衍生自大肠杆菌的LysP的活性可以用J.Bacteriol.，174(10)，3242-9，1992年5月中所述的方法测定。衍生自大肠杆菌的ArtPIQMJ的活性可以用Mol.Microbiol.，17(4)，675-86，1995年8月中所述的方法测定。
例如，就大肠杆菌来说，将要比较的一个野生型细菌的例子是大肠杆菌MG1655菌株。
靶物质、副产物或底物的组合在其生物合成系统及其摄入系统中的例子示于表1中。
表1
Figure C20041006318900091
本发明的一个特别优选的靶物质的例子是L-苯丙氨酸。此外，其副产物的例子是L-色氨酸。
优选的生产L-苯丙氨酸的属于埃希氏菌属的细菌例子是大肠杆菌AJ12741菌株。该菌株是通过将质粒pMGAL1导入有tyrR和tyrA基因(W3110(tyrR，tyrA)/pMGAL1，日本专利号3225597)缺陷的大肠杆菌K-12W3110菌株中构建而成的。质粒pMGAL1包含编码反馈抑制被脱敏化的3-脱氧-D-阿拉伯糖基庚酮酸-7-磷酸合成酶(DS)、反馈抑制被脱敏化的分支酸变位酶/预苯酸盐脱氢酶(CM-PD)、以及莽草酸盐激酶的基因。该菌株于1992年6月11日保藏于国家生命科学和人类技术研究所(National Institute of Bioscience and Human-Technology)、工业科技署(Agency of Industrial Science and Technology)、国际贸易和工业部(Ministry of International Trade and Industry，现在是独立的管理机构，国家高等工业科技研究所(National Institute of Advanced Industrial Science andTechnology)，是国际专利微生物保藏单位，位于Tsukuba Central 6，1-1，Higashi1-chome，Tsukuba-shi，Ibaraki-ken，305-8566，Japan)，收到的保藏编号为FERMP-13000。之后，根据布达佩斯条约的规定于1994年9月14将其转为国际保藏，收到的保藏编号为FERM BP-4796。
此外，前述大肠杆菌菌株AJ12604也是生产L-苯丙氨酸细菌的一个优选例子。该菌株是通过将包含编码反馈抑制被脱敏化的DS的基因的质粒pBR-aroG4和包含编码反馈抑制被脱敏化的CM-PD的基因的质粒pACMAB导入具有tyrA基因(欧洲专利申请公开号488424)缺陷的大肠杆菌K-12W3110菌株中构建而成的。该菌株于1991年1月28保藏于工业科技署、国家生命科学和人类技术研究所、国际贸易和工业部(现在是独立的管理机构，国家高级工业科技研究所，是国际专利微生物保藏单位)，收到的保藏编号为FERM P-11975。之后，根据布达佩斯条约的规定于1991年9月26将其转为国际保藏，收到的保藏为编号FERM BP-3579。
L-色氨酸摄入系统的例子包括Mtr和TnaB。已经报道了编码大肠杆菌Mtr的基因(mtr)和TnaB的基因(tnaB)(Heatwole，V.M.，J.Bacteriol.，173，108-115，1991；Sarsero，J.P.，J.Bacteriol.，173(10)，3231-3234，1991)。这些基因可通过，例如，利用大肠杆菌染色体DNA为模板进行PCR(聚合酶链式反应)(参见White，T.J.等人，Trends Genet.5，185，1989)而获得。mtr扩增引物的例子包括具有SEQ ID NO：5和6的核苷酸序列的寡核苷酸。tnaB扩增引物的例子包括具有SEQ ID NO：7和8的核苷酸序列的寡核苷酸。前述染色体DNA的来源的例子包括大肠杆菌的野生型菌株，例如，W3110菌株(ATCC39936)。对于tnaB，由于IS(插入序列)插入W3110菌株的tnaB中，该基因编码的TnaB没有活性(Kamath，A.V.等人，J.Bacteriol.，176(5)，1546-1547，1994)，因此使用其它包含能发挥作用的TnaB的细菌菌株。获得tnaB的来源的例子包括大肠杆菌MG1655菌株(ATCC700926)、JM109菌株等。W3110菌株和MG1655菌株可从美国典型培养物保藏中心(American Type Culture Collection，10801University Boulevard，Manassas，VA.，20110-2209，U.S.A)获得。JM109菌株可从Takara Shuzo Co.，Ltd.等以商业方式获得。
mtr的核苷酸序列及该基因所编码的Mtr的氨基酸序列示于SEQ ID NO：1和2中。tnaB的核苷酸序列及该基因所编码的TnaB的氨基酸序列示于SEQ IDNO：3和4中。
本发明中所使用的mtr和tnaB可以分别编码在一个或若干个位点上替换、删除、插入或添加了一个或若干个氨基酸残基的Mtr和TnaB，只要不消除所编码蛋白质Mtr和TnaB的活性。此处所用的“几个”氨基酸残基的数目依据氨基酸残基在蛋白质三维结构中的位置以及氨基酸残基的类型而变化。然而，该数目特别为2～30，优选为2～20，更优选为2～10。
编码基本上等同于前述Mtr和TnaB蛋白的DNA可通过修饰mtr和tnaB的核苷酸序列而获得。例如，可用定点突变在特异位点产生氨基酸残基的替换、缺失、插入、添加或倒位。此外，如上所述的修饰的DNA也可经已知的常规的突变处理获得。突变处理的例子包括，在体外突变处理之前用羟胺或其类似物处理DNA的方法和处理微生物如属于埃希氏菌属细菌的方法，该微生物含有在用紫外线照射或诱变处理中常用的诱变剂例如N-甲基-N′-硝基-亚硝基胍(NTG)、EMS等进行突变处理前的DNA。
编码基本上等同于Mtr和TnaB蛋白的DNA可通过在适宜细胞中表达包含任一前述突变的DNA并检测表达产物的活性而获得。此外，例如，能与具有SEQ ID NO：1的第181至1425位核苷酸(编码Mtr的区域)的核苷酸序列的探针杂交的、或能与具有SEQ ID NO：3第91至1338位核苷酸的核苷酸序列的探针杂交的、或在严紧条件下能与这些序列的一部分杂交的并编码具有与Mtr和TnaB相同活性的蛋白质的DNA可以从编码具有突变的Mtr和TnaB的DNA或包含这一DNA的细胞获得。此处引用的“严紧条件”定义为这样的条件，即在该条件下形成所谓的特异杂交体而不形成非特异杂交体。该条件难以用任何数值进行表述。然而，严紧条件包括，例如，具70％或更高、优选80％或更高、更优选90％或更高、最优选95％或更高同源性的DNA之间相互杂交，但低于上述同源性的DNA之间不能相互杂交的条件。作为选择，严紧条件例如是指在与典型的Southern杂交的洗涤条件一致的盐浓度下DNA能相互杂交的条件，即60℃时，1×SSC、0.1％SDS，优选0.1×SSC、0.1％SDS。
核苷酸序列SEQ ID NO：1或3的部分序列也可用作探针。可通过PCR使用基于核苷酸序列SEQ ID NO：1或3制备的寡核苷酸为引物并使用包含核苷酸序列SEQ ID NO：1或3的DNA片段作为模板来生产这样的探针。若以长度大约为300bp的DNA片段为探针，则杂交的洗涤条件可以是50℃，2×SSC、0.1％SDS。
编码基本上等同于Mtr蛋白的特定DNA的例子包括，编码优选与氨基酸序列SEQ ID NO：2具有70％或更高、更优选80％或更高、进一步优选90％或更高、最优选95％或更高的同源性并具有与Mtr相当活性的蛋白质的DNA。此外，编码基本上等同于TnaB蛋白的特定DNA的例子包括，编码优选与氨基酸序列SEQ ID NO：2具有70％或更高、更优选80％或更高、进一步优选90％或更高、最优选95％或更高的同源性并具有与TnaB相当程度的活性的蛋白质的DNA。
其它细菌的mtr和tnaB类似物可通过与前述大肠杆菌的mtr和tnaB所用相同的方式获得。此外，编码除mtr和tnaB之外的摄入系统的基因也可利用熟知的常规的获取基因的方法经PCR从细菌的染色体DNA获得。
染色体DNA可以从作为DNA供体的细菌来制备，例如，通过Saitohe和Miura的方法(参见Saitohe H.和Miura K.，Biochem.Biophys.Acta，72，619，1963；Seibutsu Kogaku Jikkensho(生物工程试验教材)，日本生物科学和生物工程社(Society of Bioscience and Bioengineering)编辑)或者类似方法制备。
如果重组DNA是通过将所获基因与可在大肠杆菌和/或目标细菌中自主复制的载体DNA连接并导入大肠杆菌得到的，则随后的操作就会简单些。可在大肠杆菌细胞中自主复制的载体例子包括pSTV29、pUC19、pUC18、pHSG299、pHSG399、pHSG398、RSF1010、pBR322、pACYC184、pMW219等等。
为了通过将所获基因与在目标细菌中有功能的载体连接以制备重组DNA，可以使用能够提供与前述基因的末端匹配的消化末端的限制性酶来消化载体，可用连接酶例如T4DNA连接酶将前述基因与载体连接。
可通过增强编码作为摄入系统一部分的蛋白质的基因表达来增强靶物质副产物的摄入系统。基因的表达量可通过增加基因拷贝数来提高。例如，可以把前述基因片段与在细菌中有功能的载体优选多拷贝型载体连接，以制备重组DNA，后者可用来转化生产靶物质的宿主。此外，可将前述重组DNA导入野生型菌株以获得转化体菌株，从而赋予转化体菌株生产靶物质的能力。
可用迄今已报道的任何已知的转化方法将重组DNA导入细菌。例如，已知一种用氯化钙处理受体细菌细胞以提高细胞对DNA通透性的方法并已被报道用于大肠杆菌K-12(Mandel，M.And Higa，A.，J.Mol.Biol.，53，159，1970)，还已知一种从处于生长阶段的细胞制备感受态细胞然后把DNA导入细胞的方法，该方法已被报道用于枯草芽孢杆菌(Duncan，C.H.，Wilson，G.A.和Young，F.E.，Gene，1，153，1977)。此外，还已知一种已用于枯草芽孢杆菌、放线菌和酵母的将DNA受体细胞制成易于摄取重组DNA的原生质体或原生质球的方法，随后将重组DNA导入DNA受体细胞的方法(Chang，S.和Choen，S.N.，Molec.Gen.Genet.，168，111，1979；Bibb，M.J.，Ward，J.M.和Hopwood，O.A.，Nature，274，398，1978；Hinnen，A.，Hicks，J.B.和Fink，G.R.，Proc.Natl.Acad.Sci.，美国，75，1929，1978)。也可用电脉冲方法完成微生物的转化(日本专利公开号2-207791)。
可通过允许多个基因拷贝存在于细菌染色体DNA中来增加基因拷贝数。为了向染色体DNA中导入多个基因拷贝，可以使用以多拷贝数存在于染色体DNA上的序列作为靶进行同源性重组。作为以多拷贝数存在于染色体DNA上的序列，可以使用存在于转座因子末端的重复DNA或反向重复序列。作为选择，如日本专利公开号2-109985所公开的，可通过将所要的基因的多个拷贝掺进转座子并将其转化来将所要的基因的多个拷贝导入染色体DNA。
除前述基因扩增外，还可通过用更强的表达调控序列替换在染色体DNA或质粒上编码摄入系统的基因的表达调控序列例如启动子来增强摄入系统。例如，lac启动子、trp启动子，trc启动子等等已知为强启动子。此外，如国际专利申请WO 0018935所公开的，还可通过把几个核苷酸替换到基因的启动子区域中而将启动子修饰为更强的启动子。前述对启动子的替换或修饰增强了编码摄入系统的基因的表达并因此增强了摄入系统。表达调控序列的修饰可以与基因拷贝数的提高结合进行。
可以通过例如以与基因替换中相同的方式使用温度敏感质粒来完成表达调控序列的替换。具有大肠杆菌温度敏感的复制原点的载体例子包括，例如，国际公开WO 99/03988中所述的质粒pMAN997等。此外，也可以通过利用λ噬菌体的红色重组酶(Datsenko，K.A.，PNAS，97(12)，6640-6645，2000)的方法来完成表达调控序列的替换。
此外，如实施例部分中所示，表达调控序列的替换也可以通过把利用λ噬菌体的红色重组酶的系统和之后的P1转导组合起来的方法进行。首先，通过使用λ噬菌体的红色重组酶的方法把通过PCR得到的表达调控序列导入用作供体的衍生自大肠杆菌W3110菌株的一种菌株中。然后，通过P1转导把表达调控序列从供体菌株转导到受体菌株中。对供体菌株没有限制，只要它衍生自W3110菌株并且具有经过替换的表面调控序列。
此外，在本发明的细菌中，可以将用于把靶物质摄入细胞中的系统删除或削弱。此外，可以增强靶物质的外排系统。
可通过在培养基中培养如上所述获得的本发明的细菌，从而在培养基中积累靶物质并从培养基中收集靶物质来有效地生产靶物质。
除了使用本发明的细菌之外，可用与通常生产靶物质的方式相同的方式来生产本发明的靶物质。可根据细菌的不同来选择适宜的培养条件。
例如，培养基可以是包含碳源、氮源、无机离子和其它所需的有机成分的典型培养基。糖类例如葡萄糖、乳糖、半乳糖、果糖、阿拉伯糖、麦芽糖、木糖、海藻糖、核糖和淀粉水解产物，醇类例如甘油、甘露醇和山梨醇，以及有机酸例如葡萄糖酸、反丁烯二酸、柠檬酸和琥珀酸。无机铵盐例如硫酸铵、氯化铵和磷酸铵可被用作碳源，有机氮例如大豆水解产物、氨气、氨水等，可被用作氮源。至于有机痕量营养物，优选适量添加所需的物质，例如，维生素如维生素B1、核酸如腺嘌呤和RNA、酵母提取物等。除这些物质外，根据需要添加小量的磷酸钙、硫酸镁、铁离子、镁离子等。如果本发明的细菌是tyrA基因缺陷的，则要向培养基中添加生长所需的L-酪氨酸。
例如对于大肠杆菌，优选在有氧条件下培养大约16至72小时。培养期间，培养温度控制在30～45℃，pH控制在5～8。可以用无机或有机、酸性或碱性物质以及氨气等来调节pH。
可以使用已知方法的组合从培养基收集靶物质。这类方法典型地使用离子交换树脂、沉淀以及其它方法，取决于靶物质。
实施例
参照以下非限制性实施例对本发明作更详尽的阐述。
实施例1
<1>携带mtr基因的质粒和携带tnaB基因的质粒的构建
(1)携带mtr基因的质粒的构建
以大肠杆菌W3110菌染色体DNA为模板、以具有核苷酸序列SEQ ID NO：5和6的寡核苷酸为引物进行PCR。使用LATaq(Takara Shuzo)进行PCR，循环程序是：在94℃下两分钟(一个循环)，之后进行在94℃下30秒、在55℃下30秒、在72℃下1分钟30秒的循环30次。获得包括启动子和mtr ORF，约1.5kb的扩增片段。
用MicroSpinsTM S400HR柱(Amarsham Pharmacia Biotech Inc.)纯化上述扩增片段，之后用Sac I和Kpn I消化，并与同样经过Sac I和Kpn I消化的pSTV28和pSTV29连接(Takara Shuzo)。用该反应混合物转化大肠杆菌JM109感受态细胞(Takara Shuzo)。在含有氯霉素、IPTG和X-Gal的LB平板上培养转化体。选择白色的菌落。从选择出的转化体获得携带mtr的质粒pSTV28mtr和pSTV29mtr。
在pSTV28mtr中，mtr基因的插入方向与乳糖启动子相同。另一方面，在pSTV29mtr中，mtr基因的插入方向与乳糖启动子相反。
(2)携带tnaB基因的质粒的构建
以大肠杆菌MG1655菌株的染色体DNA为模板、以具有核苷酸序列SEQ IDNO：7和8的寡核苷酸为引物进行PCR。用LATaq(Takara Shuzo)进行PCR，循环程序是：94℃两分钟(一个循环)，之后进行94℃下30秒、55℃30秒、72℃1分钟30秒的循环30次。获得包含tnaB ORF的约1.5kb的扩增片段。tnaB与tnaA形成操纵子，在紧邻tnaB的上游处不存在启动子。
用MicroSpinsTM S400HR柱(Amarsham Pharmacia Biotech Inc.)纯化上述扩增片段，之后用Sac I和Kpn I消化并与同样经过Sal I和Pst I消化的pSTV28和pSTV29连接(Takara Shuzo)。用该反应混合物转化大肠杆菌JM109的感受态细胞(Takara Shuzo)。在含有氯霉素、IPTG和X-Gal的LB平板上培养转化体。选择白色的菌落。从选择出的转化体获得携带tnaB的质粒pSTV28tnaB和pSTV29tnaB。
在pSTV28tnaB中，tnaB基因的插入方向与乳糖启动子相同。另一方面，在pSTV29tnaB中，tnaB基因的插入方向与乳糖启动子相反。
<2>mtr和tnaB增强的菌株的构建以及L-苯丙氨酸的生产
(1)用常规方法将前述质粒pSTV28mtr、pSTV29mtr、pSTV28tnaB、pSTV29tnaB导入生产L-苯丙氨酸的细菌，大肠杆菌AJ12741菌株(参见日本专利号3225597，以下也称为“R/GAL菌株”)中以获得R/GAL/pSTV28mtr、R/GAL/pSTV29mtr、R/GAL/pSTV28tnaB和R/GAL/pSTV29tnaB。然后评估这些转化体和R/GAL菌株生产L-苯丙氨酸的能力。
将20ml具有以下组成的培养基加入Sakaguchi瓶(500ml)，接种各细菌菌株并于37℃下培养直到消耗完所有的葡萄糖。培养后测定培养基中积累的L-苯丙氨酸(L-Phe)和L-色氨酸(L-Trp)的量。结果示于表2中。
培养基的组成(pH7.0)：
葡萄糖                    40g/L
七水硫酸镁                1g/L
硫酸铵                    16g/L
磷酸二氢钾                1g/L
酵母提取物                2g/L
七水硫酸亚铁              10mg/L
四水或五水硫酸镁          8mg/L
L-酪氨酸                  125mg/L
氨苄青霉素                50mg/L
氯霉素(对于R/GAL菌株不加) 50mg/L
碳酸钙                    30g/L
表2
Figure C20041006318900171
如表2中所示，R/GAL菌株生产副产物L-色氨酸。然而，mtr增强的菌株和tnaB增强的菌株不生产副产物L-色氨酸，且能够导致L-苯丙氨酸的积累，积累量与用R/GAL菌株获得的相当。
实施例2
<1>mtr基因启动子增强的菌株和tnaB基因启动子增强的菌株的构建
通过利用将采用λ噬菌体的红色重组酶(Datsenko，K.A.，PNAS，97(12)，6640-6645，2000)的系统和P1转导组合的方法，将λ噬菌体的PL启动子插入大肠杆菌的染色体上的mtr基因和tnaB基因的编码区以构建mtr基因启动子增强的菌株和tnaB基因启动子增强的菌株。
首先，分别通过PCR扩增λ噬菌体衍生的attR序列(1)、Tn9衍生的cat基因(2)、T7噬菌体衍生的Pa2启动子序列(3)、pBR322衍生的tet基因序列(部分序列)(4)、λ噬菌体衍生的attL序列(5)。以λDNA为模板、以(1)f(SEQ ID NO：9)和(1)r(SEQ ID NO：10)为引物来扩增片段(1)。以具有Tn9的大肠杆菌例如GM2159和GM2150的染色体DNA为模板、以(2)f(SEQ ID NO：11)和(2)r(SEQ ID NO：12)为引物来扩增片段(2)。以T7噬菌体DNA为模板、以(3)f(SEQ ID NO：13)和(3)r(SEQ ID NO：14)为引物来扩增片段(3)。以pBR322为模板、以(4)f(SEQ ID NO：15)和(4)r(SEQ ID NO：16)为引物来扩增片段(4)。以λDNA为模板、以(5)f(SEQ ID NO：17)和(5)r(SEQ ID NO：18)为引物来扩增片段(5)。前述GM2159和GM2150可获自大肠杆菌遗传保存中心(E.Coli Genetic Stock Center)(Yale Uiversity，Dept.Biology，Osborn MemorialLabs.，P.O.Box 6666，New Heven，CT，U.S.A.，06511-7444)。
此外，通过将合成的DNA(6)f(SEQ ID NO：19)与(6)r(SEQ ID NO：20)退火而得到thr操纵子终止子序列(58bp)(6)。
用如表3所示的所得片段的每个进行交换PCR以得到与片段(1)、(6)、(2)、(3)、(4)和(5)连接的DNA片段(下文称作“片段A”)。
表3
Figure C20041006318900181
随后，以λDNA为模板、以P1(SEQ ID NO：21)和P2mtr(包括36bp的mtr ORF序列，SEQ ID NO：22)或P2tnab(包括36bp的tnaB ORF序列，SEQ ID NO：23)为引物通过PCR扩增PL启动子序列(添加位于lacZ的上游的SD序列)。使用该扩增片段和片段A作为模板以及使用一种包括mtr基因的或tnaB的基因ORF的上游区域的序列(36bp)的引物(1)fmtr(SEQ ID NO：24)或(1)ftnab(SEQ IS NO：25)和引物P2mtr或P2tnab来完成交换PCR。各扩增片段两端都包含mtr基因或tnaB基因的上游区域的序列和ORF的内部序列。这些DNA片段的核苷酸序列示于SEQ ID NO：26和27中。这些DNA片段的结构示于表4中。
表4
Figure C20041006318900182
用常规方法将上述各DNA片段导入已事先导入了辅助质粒pKD46的衍生自大肠杆菌K-12W3110的TD-18菌株中。已知pKD46表达红色重组酶(PNAS，97(12)，6640-6645，2000)。发生基因替换后，从转化体中删去质粒pKD46。
由于转化的菌株表现出氯霉素抗性，因此可利用该特征有效地选择所需要的mtr基因和tnaB基因启动子增强的菌株。
然后，用P1噬菌体感染上述mtr基因或tnaB基因启动子增强的菌侏。使用每个P1噬菌体感染的菌株作为供体用于P1转导，通过利用氯霉素抗性作为指标，经过P1转导用PL启动子替换生产L-苯丙氨酸的细菌AJ12741(R/GAL菌株)的mtr基因或tnaB基因ORF的上游区域。经PCR证实，所要的基因替换已经发生了。
通过用前述方法将各扩增的DNA片段导入作为宿主的生产L-苯丙氨酸的细菌AJ12741菌株(R/GAL菌株)中，可以得到其中mtr基因或tnaB基因ORF的上游区域被PL启动子取代的细菌菌株。
<2>利用mtr基因启动子增强的菌株和tnaB基因启动子增强的菌株生产L-苯丙氨酸
按照与上述相同的方法获得其中mtr基因ORF的上游区域被PL启动子替换的R/GAL菌株(RM11)，和其中tnaB基因ORF的上游区域被PL启动子替换的R/GAL菌株(Rtp32)。用与实施例1中相同的方法培养这些细菌菌株以生产L-苯丙氨酸，测定培养基中L-苯丙氨酸和L-色氨酸的含量。结果示于表5中。
表5
Figure C20041006318900191
如表5所示，R/GAL菌株生产副产物L-色氨酸。然而，mtr基因启动子增强的菌株RM11和tnaB基因启动子增强的菌株Rtp32不产生副产物L-色氨酸，并且积累的L-苯丙氨酸的量与获自R/GAL菌株的相当。
尽管参考优选的实施方式对本发明作了详细描述，但是显然对于本领域技术人员来说可以做各种变化并使用等价物，而不会脱离本发明范围。在此全文引入前述各文献以及外国优先权文本JP2003-161181作为参考。
序列表
<110>Ajinomoto Co.，Inc.
<120>生产靶物质的方法
<130>OP-C4047
<150>JP 2003-161181
<151>2003-06-05
<160>27
<170>PatentIn version 3.0
<210>1
<211>1550
<212>DNA
<213>大肠杆菌
<220>
<221>CDS
<222>(181)..(1425)
<400>1
cgtcgtcgtt tcggtggtga tgcgtaatca tcgctgaaca gcgaacacaa tctgtaaaat   60
aatatataca gccccgattt ttaccatcgg ggcttttttt ctgtcttttg tactcgtgta  120
ctggtacagt gcaatgcata acaacgcagt cgcactattt ttcactggag agaagccctc  180
atg gca aca cta acc acc acc caa acg tca ccg tcg ctg ctt ggc ggc    228
Met Ala Thr Leu Thr Thr Thr Gln Thr Ser Pro Ser Leu Leu Gly Gly
1               5                   10                  15
gtg gtg att atc ggc ggc acc att att ggc gca ggg atg ttt tct ctg    276
Val Val Ile Ile Gly Gly Thr Ile Ile Gly Ala Gly Met Phe Ser Leu
            20                  25                  30
cca gtg gtc atg tcc ggg gcg tgg ttt ttc tgg tca atg gcg gcg ctg    324
Pro Val Val Met Ser Gly Ala Trp Phe Phe Trp Ser Met Ala Ala Leu
        35                  40                  45
atc ttt acc tgg ttc tgt atg ctg cat tcc ggc ttg atg att ctg gaa    372
Ile Phe Thr Trp Phe Cys Met Leu His Ser Gly Leu Met Ile Leu Glu
    50                  55                  60
gct aac ctg aat tac aga atc ggt tcg agt ttt gac acc atc acc aaa    420
Ala Asn Leu Asn Tyr Arg Ile Gly Ser Ser Phe Asp Thr Ile Thr Lys
65                  70                  75                  80
gat ttg ctg ggc aaa ggc tgg aac gtg gtc aac ggc att tcc att gcc    468
Asp Leu Leu Gly Lys Gly Trp Asn Val Val Asn Gly Ile Ser Ile Ala
                85                  90                  95
ttt gtg ctc tat atc ctg acc tat gcc tat att tct gcc agt ggt tcg    516
Phe Val Leu Tyr Ile Leu Thr Tyr Ala Tyr Ile Ser Ala Ser Gly Ser
            100                 105                 110
att ctg cat cac a cc ttc gca gag atgtca cta aac gtc ccg gca cgg    564
Ile Leu His His Thr Phe Ala Glu Met Ser Leu Asn Val Pro Ala Arg
        115                 120                 125
gcg gcg ggt ttt ggt ttt gca ttg ctg gta gcg ttt gtg gtg tgg ttg    612
Ala Ala Gly Phe Gly Phe Ala Leu Leu Val Ala Phe Val Val Trp Leu
    130                 135                 140
agc act aaa gcc gtc agt cgc atg aca gcg att gtg ctg ggg gcg aaa    660
Ser Thr Lys Ala Val Ser Arg Met Thr Ala Ile Val Leu Gly Ala Lys
145                 150                 155                 160
gtc att acc ttc ttc ctc acc ttt ggt agc ctg ctg ggg cat gtg cag    708
Val Ile Thr Phe Phe Leu Thr Phe Gly Ser Leu Leu Gly His Val Gln
                165                 170                 175
cct gcg aca ttg ttc aac gtc gcc gaa agc aat gcg tct tat gca ccg    756
Pro Ala Thr Leu Phe Asn Val Ala Glu Ser Asn Ala Ser Tyr Ala Pro
            180                 185                 190
tat ctg ttg atg acc ctg ccg ttc tgt ctg gca tcg ttt ggt tat cac    804
Tyr Leu Leu Met Thr Leu Pro Phe Cys Leu Ala Ser Phe Gly Tyr His
        195                 200                 205
ggt aac gtg cca agc ctg atg aag tat tac ggc aaa gat ccg aaa acc    852
Gly Asn Val Pro Ser Leu Met Lys Tyr Tyr Gly Lys Asp Pro Lys Thr
    210                 215                 220
atc gtg aaa tgt ctg gtg tac ggt acg ctg atg gcg ctg gcg ctg tat    900
Ile Val Lys Cys Leu Val Tyr Gly Thr Leu Met Ala Leu Ala Leu Tyr
225                 230                 235                 240
acc atc tgg ttg ctg gcg acg atg ggt aac atc ccg cgt ccg gag ttt    948
Thr Ile Trp Leu Leu Ala Thr Met Gly Asn Ile Pro Arg Pro Glu Phe
                245                 250                 255
atc ggt att gca gag aag ggc ggt aat att gat gtg ctg gta cag gcg    996
Ile Gly Ile Ala Glu Lys Gly Gly Asn Ile Asp Val Leu Val Gln Ala
            260                 265                 270
tta agc ggc gta ctg aac agc cgt agt ctg gat ctg ctg ctg gtc gtg   1044
Leu Ser Gly Val Leu Asn Ser Arg Ser Leu Asp Leu Leu Leu Val Val
        275                 280                 285
ttc tca aac ttt gcg gta gcg agt tcg ttc ctc ggc gta acg ctg ggt   1092
Phe Ser Asn Phe Ala Val Ala Ser Ser Phe Leu Gly Val Thr Leu Gly
    290                 295                 300
ttg ttt gac tat ctg gca gat ctg ttt ggt ttc gac gac tcg gct gtg   1140
Leu Phe Asp Tyr Leu Ala Asp Leu Phe Gly Phe Asp Asp Ser Ala Val
305                 310                 315                 320
ggc cgc ttg aaa acg gca ttg ctg acc ttt gcc ccg cca gtt gtg ggg    1188
Gly Arg Leu Lys Thr Ala Leu Leu Thr Phe Ala Pro Pro Val Val Gly
                325                 330                 335
ggg ctg ttg ttc ccg aac gga ttc ctg tac gcc att ggt tat gct ggt    1236
Gly Leu Leu Phe Pro Asn Gly Phe Leu Tyr Ala Ile Gly Tyr Ala Gly
            340                 345                 350
tta gcg gct acc atc tgg gcg gca att gtt ccg gcg ctg tta gcc cgt    1284
Leu Ala Ala Thr Ile Trp Ala Ala Ile Val Pro Ala Leu Leu Ala Arg
        355                 360                 365
gca tcg cgt aaa cgc ttt ggc agc ccg aaa ttc cgc gtc tgg ggt ggc    1332
Ala Ser Arg Lys Arg Phe Gly Ser Pro Lys Phe Arg Val Trp Gly Gly
    370                 375                 380
aag ccg atg att gcg ctg att ctg gtg ttt ggc gtc ggc aac gca ctg    1380
Lys Pro Met Ile Ala Leu Ile Leu Val Phe Gly Val Gly Asn Ala Leu
385                 390                 395                 400
gtg cat att tta tcg agc ttt aat tta ctg ccg gtg tat cag taa        1425
Val His Ile Leu Ser Ser Phe Asn Leu Leu Pro Val Tyr Gln
                405                 410
tcagcggtgc cttatccgac atttctgctg cctacacaat gcctgatgcg cttcgcttat  1485
caggtctatg taggacagcg ttgccagctc ggataaggct tcccgcgtta agacacacta  1545
tccca                                                              1550
<210>2
<211>414
<212>PRT
<213>大肠杆菌
<400>2
Met Ala Thr Leu Thr Thr Thr Gln Thr Ser Pro Ser Leu Leu Gly Gly
1               5                   10                  15
Val Val Ile Ile Gly Gly Thr Ile Ile Gly Ala Gly Met Phe Ser Leu
            20                  25                  30
Pro Val Val Met Ser Gly Ala Trp Phe Phe Trp Ser Met Ala Ala Leu
        35                  40                  45
Ile Phe Thr Trp Phe Cys Met Leu His Ser Gly Leu Met Ile Leu Glu
    50                  55                  60
Ala Asn Leu Asn Tyr Arg Ile Gly Ser Ser Phe Asp Thr Ile Thr Lys
65                  70                  75                  80
Asp Leu Leu Gly Lys Gly Trp Asn Val Val Asn Gly Ile Ser Ile Ala
                85                  90                  95
Phe Val Leu Tyr Ile Leu Thr Tyr Ala Tyr Ile Ser Ala Ser Gly Ser
            100                 105                 110
Ile Leu His His Thr Phe Ala Glu Met Ser Leu Asn Val Pro Ala Arg
        115                 120                 125
Ala Ala Gly Phe Gly Phe Ala Leu Leu Val Ala Phe Val Val Trp Leu
    130                 135                 140
Ser Thr Lys Ala Val Ser Arg Met Thr Ala Ile Val Leu Gly Ala Lys
145                 150                 155                 160
Val Ile Thr Phe Phe Leu Thr Phe Gly Ser Leu Leu Gly His Val Gln
                165                 170                 175
Pro Ala Thr Leu Phe Asn Val Ala Glu Ser Asn Ala Ser Tyr Ala Pro
            180                 185                 190
Tyr Leu Leu Met Thr Leu Pro Phe Cys Leu Ala Ser Phe Gly Tyr His
        195                 200                 205
Gly Asn Val Pro Ser Leu Met Lys Tyr Tyr Gly Lys Asp Pro Lys Thr
    210                 215                 220
Ile Val Lys Cys Leu Val Tyr Gly Thr Leu Met Ala Leu Ala Leu Tyr
225                 230                 235                 240
Thr Ile Trp Leu Leu Ala Thr Met Gly Asn Ile Pro Arg Pro Glu Phe
                245                 250                 255
Ile Gly Ile Ala Glu Lys Gly Gly Asn Ile Asp Val Leu Val Gln Ala
            260                 265                 270
Leu Ser Gly Val Leu Asn Ser Arg Ser Leu Asp Leu Leu Leu Val Val
        275                 280                 285
Phe Ser Asn Phe Ala Val Ala Ser Ser Phe Leu Gly Val Thr Leu Gly
    290                 295                 300
Leu Phe Asp Tyr Leu Ala Asp Leu Phe Gly Phe Asp Asp Ser Ala Val
305                 310                 315                 320
Gly Arg Leu Lys Thr Ala Leu Leu Thr Phe Ala Pro Pro Val Val Gly
                325                 330                 335
Gly Leu Leu Phe Pro Asn Gly Phe Leu Tyr Ala Ile Gly Tyr Ala Gly
            340                 345                 350
Leu Ala Ala Thr Ile Trp Ala Ala Ile Val Pro Ala Leu Leu Ala Arg
        355                 360                 365
Ala Ser Arg Lys Arg Phe Gly Ser Pro Lys Phe Arg Val Trp Gly Gly
    370                 375                 380
Lys Pro Met Ile Ala Leu Ile Leu Val Phe Gly Val Gly Asn Ala Leu
385                 390                 395                 400
Val His Ile Leu Ser Ser Phe Asn Leu Leu Pro Val Tyr Gln
                405                 410
<210>3
<211>1450
<212>DNA
<213>大肠杆菌
<220>
<221>CDS
<222>(91)..(1338)
<400>3
ttaatactac agagtggcta taaggatgtt agccactctc ttaccctaca tcctcaataa   60
caaaaatagc cttcctctaa aggtggcatc atg act gat caa gct gaa aaa aag   114
                                 Met Thr Asp Gln Ala Glu Lys Lys
                                 1               5
cac tct gca ttt tgg ggt gtt atg gtt ata gca ggt aca gta att ggt    162
His Ser Ala Phe Trp Gly Val Met Val Ile Ala Gly Thr Val Ile Gly
    10                  15                  20
gga ggt atg ttt gct tta cct gtt gat ctt gcc ggt gcc tgg ttt ttc    210
Gly Gly Met Phe Ala Leu Pro Val Asp Leu Ala Gly Ala Trp Phe Phe
25                  30                  35                  40
tgg ggt gcc ttt atc ctt atc att gcc tgg ttt tca atg ctt cat tcc    258
Trp Gly Ala Phe Ile Leu Ile Ile Ala Trp Phe Ser Met Leu His Ser
                45                  50                  55
ggg tta ttg tta tta gaa gca aat tta aat tat ccc gtc ggc tcc agt    306
Gly Leu Leu Leu Leu Glu Ala Asn Leu Asn Tyr Pro Val Gly Ser Ser
            60                  65                  70
ttt aac acc atc acc aaa gat tta atc ggt aac acc tgg aac att atc    354
Phe Asn Thr Ile Thr Lys Asp Leu Ile Gly Asn Thr Trp Asn Ile Ile
        75                  80                  85
agc ggt att acc gtt gcc ttc gtt ctc tat atc ctc act tat gcc tat    402
Ser Gly Ile Thr Val Ala Phe Val Leu Tyr Ile Leu Thr Tyr Ala Tyr
    90                  95                  100
atc tct gct aat ggt gcg atc att agt gaa acg ata tca atg aat ttg    450
Ile Ser Ala Asn Gly Ala Ile Ile Ser Glu Thr Ile Ser Met Asn Leu
105                 110                 115                 120
ggt tat cac gct aat cca cgt att gtc ggg atc tgc aca gcc att ttc    498
Gly Tyr His Ala Asn Pro Arg Ile Val Gly Ile Cys Thr Ala Ile Phe
                125                 130                 135
gtt gcc agc gta ttg tgg tta agt tcg tta gcc gcc agt cgt att acc    546
Val Ala Ser Val Leu Trp Leu Ser Ser Leu Ala Ala Ser Arg Ile Thr
            140                 145                 150
tca ttg ttc ctc ggg ctg aag att atc tcc ttt gtg atc gtg ttt ggt    594
Ser Leu Phe Leu Gly Leu Lys Ile Ile Ser Phe Val Ile Val Phe Gly
        155                 160                 165
tct ttt ttc ttc cag gtc gat tac tcc att ctg cgc gac gcc acc agc    642
Ser Phe Phe Phe Gln Val Asp Tyr Ser Ile Leu Arg Asp Ala Thr Ser
    170                 175                 180
tcc act gcg gga acg tct tac ttc ccg tat atc ttt atg gct ttg ccg    690
Ser Thr Ala Gly Thr Ser Tyr Phe Pro Tyr Ile Phe Met Ala Leu Pro
185                 190                 195                 200
gtg tgt ctg gcg tca ttt ggt ttc cac ggc aat att ccc agc ctg att    738
Val Cys Leu Ala Ser Phe Gly Phe His Gly Asn Ile Pro Ser Leu Ile
                205                 210                 215
att tgc tat gga aaa cgc aaa gat aag tta atc aaa agc gtg gta ttt     786
Ile Cys Tyr Gly Lys Arg Lys Asp Lys Leu Ile Lys Ser Val Val Phe
            220                 225                 230
ggt tcg ctg ctg gcg ctg gtg att tat ctc ttc tgg ctc tat tgc acc     834
Gly Ser Leu Leu Ala Leu Val Ile Tyr Leu Phe Trp Leu Tyr Cys Thr
        235                 240                 245
atg ggg aat att ccg cga gaa agc ttt aag gcg att atc tcc tca ggc     882
Met Gly Asn Ile Pro Arg Glu Ser Phe Lys Ala Ile Ile Ser Ser Gly
    250                 255                 260
ggc aac gtt gat tcg ctg gtg aaa tcg ttc ctc ggc acc aaa cag cac     930
Gly Asn Val Asp Ser Leu Val Lys Ser Phe Leu Gly Thr Lys Gln His
265                 270                 275                 280
ggc att atc gag ttt tgc ctg ctg gtg ttc tct aac tta gct gtt gcc     978
Gly Ile Ile Glu Phe Cys Leu Leu Val Phe Ser Asn Leu Ala Val Ala
                285                 290                 295
agt tcg ttc ttt ggt gtc acg ctg ggg ttg ttc gat tat ctg gcg gac    1026
Ser Ser Phe Phe Gly Val Thr Leu Gly Leu Phe Asp Tyr Leu Ala Asp
            300                 305                 310
ctg ttt aag att gat aac tcc cac ggc ggg cgt ttc aaa acc gtg ctg    1074
Leu Phe Lys Ile Asp Asn Ser His Gly Gly Arg Phe Lys Thr Val Leu
        315                 320                 325
tta acc ttc ctg cca cct gcg ttg ttg tat ctg atc ttc ccg aac ggc    1122
Leu Thr Phe Leu Pro Pro Ala Leu Leu Tyr Leu Ile Phe Pro Asn Gly
    330                 335                 340
ttt att tac ggg atc ggc ggt gcc ggg ctg tgc gcc acc atc tgg gcg    1170
Phe Ile Tyr Gly Ile Gly Gly Ala Gly Leu Cys Ala Thr Ile Trp Ala
345                 350                 355                 360
gtc att att ccc gca gtg ctt gca atc aaa gct cgc aag aag ttt ccc    1218
Val Ile Ile Pro Ala Val Leu Ala Ile Lys Ala Arg Lys Lys Phe Pro
                365                 370                 375
aat cag atg ttc acg gtc tgg ggc ggc aat ctt att ccg gcg att gtc    1266
Asn Gln Met Phe Thr Val Trp Gly Gly Asn Leu Ile Pro Ala Ile Val
            380                 385                 390
att ctc ttt ggt ata acc gtg att ttg tgc tgg ttc ggc aac gtc ttt    1314
Ile Leu Phe Gly Ile Thr Val Ile Leu Cys Trp Phe Gly Asn Val Phe
        395                 400                 405
aac gtg tta cct aaa ttt ggc taa atccttcaag aagccagcca ttcgctggct   1368
Asn Val Leu Pro Lys Phe Gly
    410                 415
tcttgcctct caggaaatca cttatgtcca aatggcaact cgcctgatcc tccttcacca  1428
cgtatgcttt gcgtcacctt ac                                           1450
<210>4
<211>415
<212>PRT
<213>大肠杆菌
<400>4
Met Thr Asp Gln Ala Glu Lys Lys His Ser Ala Phe Trp Gly Val Met
1               5                   10                  15
Val Ile Ala Gly Thr Val Ile Gly Gly Gly Met Phe Ala Leu Pro Val
            20                  25                  30
Asp Leu Ala Gly Ala Trp Phe Phe Trp Gly Ala Phe Ile Leu Ile Ile
        35                  40                  45
Ala Trp Phe Ser Met Leu His Ser Gly Leu Leu Leu Leu Glu Ala Asn
    50                  55                  60
Leu Asn Tyr Pro Val Gly Ser Ser Phe Asn Thr Ile Thr Lys Asp Leu
65                  70                  75                  80
Ile Gly Asn Thr Trp Asn Ile Ile Ser Gly Ile Thr Val Ala Phe Val
                85                  90                  95
Leu Tyr Ile Leu Thr Tyr Ala Tyr Ile Ser Ala Asn Gly Ala Ile Ile
            100                 105                 110
Ser Glu Thr Ile Ser Met Asn Leu Gly Tyr His Ala Asn Pro Arg Ile
        115                 120                 125
Val Gly Ile Cys Thr Ala Ile Phe Val Ala Ser Val Leu Trp Leu Ser
    130                 135                 140
Ser Leu Ala Ala Ser Arg Ile Thr Ser Leu Phe Leu Gly Leu Lys Ile
145                 150                 155                 160
Ile Ser Phe Val Ile Val Phe Gly Ser Phe Phe Phe Gln Val Asp Tyr
                165                 170                 175
Ser Ile Leu Arg Asp Ala Thr Ser Ser Thr Ala Gly Thr Ser Tyr Phe
            180                 185                 190
Pro Tyr Ile Phe Met Ala Leu Pro Val Cys Leu Ala Ser Phe Gly Phe
        195                 200                 205
His Gly Asn Ile Pro Ser Leu Ile Ile Cys Tyr Gly Lys Arg Lys Asp
    210                 215                 220
Lys Leu Ile Lys Ser Val Val Phe Gly Ser Leu Leu Ala Leu Val Ile
225                 230                 235                 240
Tyr Leu Phe Trp Leu Tyr Cys Thr Met Gly Asn Ile Pro Arg Glu Ser
                245                 250                 255
Phe Lys Ala Ile Ile Ser Ser Gly Gly Asn Val Asp Ser Leu Val Lys
            260                 265                 270
Ser Phe Leu Gly Thr Lys Gln His Gly Ile Ile Glu Phe Cys Leu Leu
        275                 280                 285
Val Phe Ser Asn Leu Ala Val Ala Ser Ser Phe Phe Gly Val Thr Leu
    290                 295                 300
Gly Leu Phe Asp Tyr Leu Ala Asp Leu Phe Lys Ile Asp Asn Ser His
305                 310                 315                 320
Gly Gly Arg Phe Lys Thr Val Leu Leu Thr Phe Leu Pro Pro Ala Leu
                325                 330                 335
Leu Tyr Leu Ile Phe Pro Asn Gly Phe Ile Tyr Gly Ile Gly Gly Ala
            340                 345                 350
Gly Leu Cys Ala Thr Ile Trp Ala Val Ile Ile Pro Ala Val Leu Ala
        355                 360                 365
Ile Lys Ala Arg Lys Lys Phe Pro Asn Gln Met Phe Thr Val Trp Gly
    370                 375                 380
Gly Asn Leu Ile Pro Ala Ile Val Ile Leu Phe Gly Ile Thr Val Ile
385                 390                 395                 400
Leu Cys Trp Phe Gly Asn Val Phe Asn Val Leu Pro Lys Phe Gly
                405                 410                 415
<210>5
<211>30
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>5
gggagctcgt cgtttcggtg gtgatgcgta                                  30
<210>6
<211>30
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>6
ggggtaccga tagtgtgtct taacgcggga                                  30
<210>7
<211>30
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>7
gggtcgacgt tagccactct cttaccctac                                  30
<210>8
<211>30
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>8
ggctgcagcg caaagcatac gtggtgaagg                                  30
<210>9
<211>18
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物(1)f
<400>9
cgctcaagtt agtataaa                                               18
<210>10
<211>54
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物(1)r
<400>10
cctgacagtg cgggcttttt ttttcgacca ctgcagtctg ttacaggtca ctaa       54
<210>11
<211>54
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物(2)f
<400>11
cccgcactgt caggtgcggg cttttttctg tgttaagctt cgacgaattt ctgc       54
<210>12
<211>54
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物(2)r
<400>12
gcagcgtcaa ccgggcgctc tagctagata tcggatccga gattttcagg agct       54
<210>13
<211>54
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物(3)f
<400>13
agctcctgaa aatctcggat ccgatatcta gctagagcgc ccggttgacg ctgc       54
<210>14
<211>54
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物(3)r
<400>14
ctacgcgatc atggcgacca cacccgtcct gtggatctcc ggataagtag acag       54
<210>15
<211>54
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物(4)f
<400>15
ttcgtgcgac ttatcaggct gtctacttat ccggagatcc acaggacggg tgtg       54
<210>16
<211>54
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物(4)r
<400>16
cgaattctca tgtttgacag cttatcatcg ataagcttta atgcggtagt ttat       54
<210>17
<211>54
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物(5)f
<400>17
ttagcaattt aactgtgata aactaccgca ttaaagctta tcgatgataa gctg       54
<210>18
<211>54
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物(5)r
<400>18
ttttgcaggg gggcattgtt tggtaggtga agatcttgaa gcctgctttt ttat       54
<210>19
<211>58
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>合成的DNA(6)f
<400>19
ctgcagtggt cgaaaaaaaa agcccgcact gtcaggtgcg ggcttttttc tgtgttaa   58
<210>20
<211>58
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>合成的DNA(6)r
<400>20
ttaacacaga aaaaagcccg cacctgacag tgcgggcttt ttttttcgac cactgcag   58
<210>21
<211>54
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物P1
<400>21
tgccaactta gtataaaaaa gcaggcttca agatcttcac ctaccaaaca atgc       54
<210>22
<211>72
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物P2mtr
<400>22
cgacggtgac gtttgggtgg tggttagtgt tgccatagcc tgtttccttc tagacggcca 60
atgcttcgtt tc                                                     72
<210>23
<211>72
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物P2tnab
<400>23
aaatgcagag tgcttttttt cagcttgatc agtcatagcc tgtttccttc tagacggcca 60
atgcttcgtt tc                                                     72
<210>24
<211>54
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物(1)fmtr
<400>24
gcgaacacaa tctgtaaaat aatatataca gccccgcgct caagttagta taaa       54
<210>25
<211>54
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物(1)ftnab
<400>25
tcctcaataa caaaaatagc cttcctctaa aggtggcgct caagttagta taaa       54
<210>26
<211>3178
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>融合基因
<400>26
gcgaacacaa tctgtaaaat aatatataca gccccgcgct caagttagta taaaaaagct 60
gaacgagaaa cgtaaaatga tataaatatc aatatattaa attagatttt gcataaaaaa 120
cagactacat aatactgtaa aacacaacat atgcagtcac tatgaatcaa ctacttagat 180
ggtattagtg acctgtaaca gactgcagtg gtcgaaaaaa aaagcccgca ctgtcaggtg 240
cgggcttttt tctgtgttaa gcttcgacga atttctgcca ttcatccgct tattatcact 300
tattcaggcg tagcaccagg cgtttaaggg caccaataac tgccttaaaa aaattacgcc 360
ccgccctgcc actcatcgca gtactgttgt aattcattaa gcattctgcc gacatggaag 420
ccatcacaga cggcatgatg aacctgaatc gccagcggca tcagcacctt gtcgccttgc 480
gtataatatt tgcccatggt gaaaacgggg gcgaagaagt tgtccatatt ggccacgttt 540
aaatcaaaac tggtgaaact cacccaggga ttggctgaga cgaaaaacat attctcaata 600
aaccctttag ggaaataggc caggttttca ccgtaacacg ccacatcttg cgaatatatg 660
tgtagaaact gccggaaatc gtcgtggtat tcactccaga gcgatgaaaa cgtttcagtt 720
tgctcatgga aaacggtgta acaagggtga acactatccc atatcaccag ctcaccgtct 780
ttcattgcca tacggaattc cggatgagca ttcatcaggc gggcaagaat gtgaataaag 840
gccggataaa acttgtgctt atttttcttt acggtcttta aaaaggccgt aatatccagc 900
tgaacggtct ggttataggt acattgagca actgactgaa atgcctcaaa atgttcttta 960
cgatgccatt gggatatatc aacggtggta tatccagtga tttttttctc cattttagct 1020
tccttagctc ctgaaaatct cggatccgat atctagctag agcgcccggt tgacgctgct 1080
agtgttacct agcgatttgt atcttactgc atgttacttc atgttgtcaa tacctgtttt 1140
tcgtgcgact tatcaggctg tctacttatc cggagatcca caggacgggt gtggtcgcca 1200
tgatcgcgta gtcgatagtg gctccaagta gcgaagcgag caggactggg cggcggccaa 1260
agcggtcgga cagtgctccg agaacgggtg cgcatagaaa ttgcatcaac gcatatagcg 1320
ctagcagcac gccatagtga ctggcgatgc tgtcggaatg gacgatatcc cgcaagaggc 1380
ccggcagtac cggcataacc aagcctatgc ctacagcatc cagggtgacg gtgccgagga 1440
tgacgatgag cgcattgtta gatttcatac acggtgcctg actgcgttag caatttaact 1500
gtgataaact accgcattaa agcttatcga tgataagctg tcaaacatga gaattcgaaa 1560
tcaaataatg attttatttt gactgatagt gacctgttcg ttgcaacaaa ttgataagca 1620
atgctttttt ataatgccaa cttagtataa aaaagcaggc ttcaagatct tcacctacca 1680
aacaatgccc ccctgcaaaa aataaattca tataaaaaac atacagataa ccatctgcgg 1740
tgataaatta tctctggcgg tgttgacata aataccactg gcggtgatac tgagcacatc 1800
agcaggacgc actgaccacc atgaaggtga cgctcttaaa aattaagccc tgaagaaggg 1860
cagcattcaa agcagaaggc tttggggtgt gtgatacgaa acgaagcatt ggccgtctag 1920
aaggaaacag gctatggcaa cactaaccac cacccaaacg tcaccgtcgc tgcttggcgg 1980
cgtggtgatt atcggcggca ccattattgg cgcagggatg ttttctctgc cagtggtcat 2040
gtccggggcg tggtttttct ggtcaatggc ggcgctgatc tttacctggt tctgtatgct 2100
gcattccggc ttgatgattc tggaagctaa cctgaattac agaatcggtt cgagttttga 2160
caccatcacc aaagatttgc tgggcaaagg ctggaacgtg gtcaacggca tttccattgc 2220
ctttgtgctc tatatcctga cctatgccta tatttctgcc agtggttcga ttctgcatca 2280
caccttcgca gagatgtcac taaacgtccc ggcacgggcg gcgggttttg gttttgcatt 2340
gctggtagcg tttgtggtgt ggttgagcac taaagccgtc agtcgcatga cagcgattgt 2400
gctgggggcg aaagtcatta ccttcttcct cacctttggt agcctgctgg ggcatgtgca 2460
gcctgcgaca ttgttcaacg tcgccgaaag caatgcgtct tatgcaccgt atctgttgat 2520
gaccctgccg ttctgtctgg catcgtttgg ttatcacggt aacgtgccaa gcctgatgaa 2580
gtattacggc aaagatccga aaaccatcgt gaaatgtctg gtgtacggta cgctgatggc 2640
gctggcgctg tataccatct ggttgctggc gacgatgggt aacatcccgc gtccggagtt 2700
tatcggtatt gcagagaagg gcggtaatat tgatgtgctg gtacaggcgt taagcggcgt 2760
actgaacagc cgtagtctgg atctgctgct ggtcgtgttc tcaaactttg cggtagcgag 2820
ttcgttcctc ggcgtaacgc tgggtttgtt tgactatctg gcagatctgt ttggtttcga 2880
cgactcggct gtgggccgct tgaaaacggc attgctgacc tttgccccgc cagttgtggg 2940
ggggctgttg ttcccgaacg gattcctgta cgccattggt tatgctggtt tagcggctac 3000
catctgggcg gcaattgttc cggcgctgtt agcccgtgca tcgcgtaaac gctttggcag 3060
cccgaaattc cgcgtctggg gtggcaagcc gatgattgcg ctgattctgg tgtttggcgt 3120
cggcaacgca ctggtgcata ttttatcgag ctttaattta ctgccggtgt atcagtaa   3178
<210>27
<211>3181
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>融合基因
<400>27
tcctcaataa caaaaatagc cttcctctaa aggtggcgct caagttagta taaaaaagct 60
gaacgagaaa cgtaaaatga tataaatatc aatatattaa attagatttt gcataaaaaa 120
cagactacat aatactgtaa aacacaacat atgcagtcac tatgaatcaa ctacttagat 180
ggtattagtg acctgtaaca gactgcagtg gtcgaaaaaa aaagcccgca ctgtcaggtg 240
cgggcttttt tctgtgttaa gcttcgacga atttctgcca ttcatccgct tattatcact 300
tattcaggcg tagcaccagg cgtttaaggg caccaataac tgccttaaaa aaattacgcc 360
ccgccctgcc actcatcgca gtactgttgt aattcattaa gcattctgcc gacatggaag 420
ccatcacaga cggcatgatg aacctgaatc gccagcggca tcagcacctt gtcgccttgc 480
gtataatatt tgcccatggt gaaaacgggg gcgaagaagt tgtccatatt ggccacgttt 540
aaatcaaaac tggtgaaact cacccaggga ttggctgaga cgaaaaacat attctcaata 600
aaccctttag ggaaataggc caggttttca ccgtaacacg ccacatcttg cgaatatatg 660
tgtagaaact gccggaaatc gtcgtggtat tcactccaga gcgatgaaaa cgtttcagtt 720
tgctcatgga aaacggtgta acaagggtga acactatccc atatcaccag ctcaccgtct 780
ttcattgcca tacggaattc cggatgagca ttcatcaggc gggcaagaat gtgaataaag 840
gccggataaa acttgtgctt atttttcttt acggtcttta aaaaggccgt aatatccagc 900
tgaacggtct ggttataggt acattgagca actgactgaa atgcctcaaa atgttcttta 960
cgatgccatt gggatatatc aacggtggta tatccagtga tttttttctc cattttagct 1020
tccttagctc ctgaaaatct cggatccgat atctagctag agcgcccggt tgacgctgct 1080
agtgttacct agcgatttgt atcttactgc atgttacttc atgttgtcaa tacctgtttt 1140
tcgtgcgact tatcaggctg tctacttatc cggagatcca caggacgggt gtggtcgcca 1200
tgatcgcgta gtcgatagtg gctccaagta gcgaagcgag caggactggg cggcggccaa 1260
agcggtcgga cagtgctccg agaacgggtg cgcatagaaa ttgcatcaac gcatatagcg 1320
ctagcagcac gccatagtga ctggcgatgc tgtcggaatg gacgatatcc cgcaagaggc 1380
ccggcagtac cggcataacc aagcctatgc ctacagcatc cagggtgacg gtgccgagga 1440
tgacgatgag cgcattgtta gatttcatac acggtgcctg actgcgttag caatttaact 1500
gtgataaact accgcattaa agcttatcga tgataagctg tcaaacatga gaattcgaaa 1560
tcaaataatg attttatttt gactgatagt gacctgttcg ttgcaacaaa ttgataagca 1620
atgctttttt ataatgccaa cttagtataa aaaagcaggc ttcaagatct tcacctacca 1680
aacaatgccc ccctgcaaaa aataaattca tataaaaaac atacagataa ccatctgcgg 1740
tgataaatta tctctggcgg tgttgacata aataccactg gcggtgatac tgagcacatc 1800
agcaggacgc actgaccacc atgaaggtga cgctcttaaa aattaagccc tgaagaaggg 1860
cagcattcaa agcagaaggc tttggggtgt gtgatacgaa acgaagcatt ggccgtctag 1920
aaggaaacag gctatgactg atcaagctga aaaaaagcac tctgcatttt ggggtgttat 1980
ggttatagca ggtacagtaa ttggtggagg tatgtttgct ttacctgttg atcttgccgg 2040
tgcctggttt ttctggggtg cctttatcct tatcattgcc tggttttcaa tgcttcattc 2100
cgggttattg ttattagaag caaatttaaa ttatcccgtc ggctccagtt ttaacaccat 2160
caccaaagat ttaatcggta acacctggaa cattatcagc ggtattaccg ttgccttcgt 2220
tctctatatc ctcacttatg cctatatctc tgctaatggt gcgatcatta gtgaaacgat 2280
atcaatgaat ttgggttatc acgctaatcc acgtattgtc gggatctgca cagccatttt 2340
cgttgccagc gtattgtggt taagttcgtt agccgccagt cgtattacct cattgttcct 2400
cgggctgaag attatctcct ttgtgatcgt gtttggttct tttttcttcc aggtcgatta 2460
ctccattctg cgcgacgcca ccagctccac tgcgggaacg tcttacttcc cgtatatctt 2520
tatggctttg ccggtgtgtc tggcgtcatt tggtttccac ggcaatattc ccagcctgat 2580
tatttgctat ggaaaacgca aagataagtt aatcaaaagc gtggtatttg gttcgctgct 2640
ggcgctggtg atttatctct tctggctcta ttgcaccatg gggaatattc cgcgagaaag 2700
ctttaaggcg attatctcct caggcggcaa cgttgattcg ctggtgaaat cgttcctcgg 2760
caccaaacag cacggcatta tcgagttttg cctgctggtg ttctctaact tagctgttgc 2820
cagttcgttc tttggtgtca cgctggggtt gttcgattat ctggcggacc tgtttaagat 2880
tgataactcc cacggcgggc gtttcaaaac cgtgctgtta accttcctgc cacctgcgtt 2940
gttgtatctg atcttcccga acggctttat ttacgggatc ggcggtgccg ggctgtgcgc 3000
caccatctgg gcggtcatta ttcccgcagt gcttgcaatc aaagctcgca agaagtttcc 3060
caatcagatg ttcacggtct ggggcggcaa tcttattccg gcgattgtca ttctctttgg 3120
tataaccgtg attttgtgct ggttcggcaa cgtctttaac gtgttaccta aatttggcta 3180
a                                                                 3181

Claims (6)

1.一种生产L-苯丙氨酸的方法，包括：
(a)在培养基中培养具有L-苯丙氨酸生产能力的大肠杆菌，和
(b)从培养基中收集L-苯丙氨酸，
其中所述大肠杆菌经过修饰，使选自mtr基因或tnaB基因及其组合的基因的表达得到增强。
2.根据权利要求1的方法，其中所述基因的表达通过选自下列的一种方法而得到提高；
(a)增加mtr基因或tnaB基因的拷贝数，和
(b)修饰mtr基因或tnaB基因的表达调控序列。
3.根据权利要求2的方法，其中所述mtr基因含有编码SEQ ID No.2中所示的蛋白质序列的DNA序列。
4.权利要求2所述的方法，其中，所述的mtr基因含有SEQ ID No.1所示的DNA序列。
5.根据权利要求2的方法，其中所述tnaB基因含有编码SEQ ID No.4中所示的蛋白质序列的DNA序列。
6.如权利要求2所述的方法，其中，所述的tnaB基因含有SEQ ID No.3所示的DNA序列。
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Families Citing this family (28)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
BR0304860A (pt) * 2002-11-11 2004-08-31 Ajinomoto Kk Método para produzir uma substância alvo pela utilização de uma-bactéria pertencente ao gênero escherichia
JP4380305B2 (ja) * 2003-11-21 2009-12-09 味の素株式会社 発酵法によるｌ−アミノ酸の製造法
US7344874B2 (en) * 2004-03-04 2008-03-18 Ajinomoto Co., Inc. L-glutamic acid-producing microorganism and a method for producing L-glutamic acid
US7482140B2 (en) * 2004-06-15 2009-01-27 Ajinomoto Co., Inc. L-tyrosine-producing bacterium and a method for producing L-tyrosine
US7205132B2 (en) * 2004-09-10 2007-04-17 Ajinomoto Co., Inc. L-glutamic acid-producing microorganism and a method for producing L-glutamic acid
EP2368905A3 (en) * 2004-12-17 2012-08-29 Metanomics GmbH Process for the control of production of fine chemicals
US7794989B2 (en) 2004-12-28 2010-09-14 Ajinomoto Co., Inc. L-glutamic acid-producing microorganism and a method for producing L-glutamic acid
EP1838726A1 (en) 2005-01-18 2007-10-03 Ajinomoto Co., Inc. L-amino acid producing microorganism and a method for producing l-amino acid
US20070004014A1 (en) * 2005-06-29 2007-01-04 Yuichiro Tsuji Method for producing l-threonine
JP2008283863A (ja) 2005-08-26 2008-11-27 Ajinomoto Co Inc Ｌ−アミノ酸生産菌及びｌ−アミノ酸の製造方法
JP2010017082A (ja) 2006-10-10 2010-01-28 Ajinomoto Co Inc Ｌ−アミノ酸の製造法
JP2010110216A (ja) 2007-02-20 2010-05-20 Ajinomoto Co Inc Ｌ−アミノ酸または核酸の製造方法
JP2011067095A (ja) 2008-01-10 2011-04-07 Ajinomoto Co Inc 発酵法による目的物質の製造法
KR20100120663A (ko) 2008-01-23 2010-11-16 아지노모토 가부시키가이샤 Ｌ-아미노산의 제조법
WO2010137130A1 (ja) 2009-05-27 2010-12-02 味の素株式会社 有機酸の製造方法
BRPI1014661B1 (pt) 2009-07-29 2020-12-15 Ajinomoto Co., Inc. Método para produzir um l-aminoácido
JP2012223092A (ja) 2009-08-28 2012-11-15 Ajinomoto Co Inc Ｌ−アミノ酸の製造法
JP2013013329A (ja) 2009-11-06 2013-01-24 Ajinomoto Co Inc Ｌ−アミノ酸の製造法
EP2868745B1 (en) 2013-05-13 2017-06-21 Ajinomoto Co., Inc. Method for manufacturing an L-amino acid
CN106459857B (zh) 2013-10-02 2019-04-19 味之素株式会社 氨控制装置及氨控制方法
EP2886651B1 (en) 2013-10-21 2018-08-22 Ajinomoto Co., Inc. Method for producing l-amino acid
BR112016008830B1 (pt) 2013-10-23 2023-02-23 Ajinomoto Co., Inc Método para produzir uma substância alvo
JP6494738B2 (ja) * 2015-02-23 2019-04-03 国立大学法人静岡大学 ２−アザ−８オキソヒポキサンチンの製造方法
RU2015114955A (ru) 2015-04-22 2016-11-10 Аджиномото Ко., Инк. Способ получения L-изолейцина с использованием бактерии семейства Enterobacteriaceae, в которой сверхэкспрессирован ген cycA
JP7066977B2 (ja) 2017-04-03 2022-05-16 味の素株式会社 Ｌ－アミノ酸の製造法
EP3861109A1 (en) 2018-10-05 2021-08-11 Ajinomoto Co., Inc. Method for producing target substance by bacterial fermentation
CN114369559B (zh) * 2020-10-15 2024-05-03 宁夏伊品生物科技股份有限公司 一种产l-氨基酸的重组菌株及其构建方法与应用
CN114540261B (zh) * 2020-11-24 2024-02-02 北京化工大学 一种产氨基己二酸的基因工程菌

Family Cites Families (46)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5614396A (en) * 1990-06-14 1997-03-25 Baylor College Of Medicine Methods for the genetic modification of endogenous genes in animal cells by homologous recombination
WO1992002551A1 (en) * 1990-08-02 1992-02-20 B.R. Centre Limited Methods for the production of proteins with a desired function
CA2090473A1 (en) * 1990-08-29 1992-03-01 Robert M. Kay Homologous recombinatin in mammalian cells
WO1993019660A1 (en) * 1992-04-03 1993-10-14 Baylor College Of Medicine Gene therapy using the intestine
US5792751A (en) * 1992-04-13 1998-08-11 Baylor College Of Medicine Tranformation of cells associated with fluid spaces
US5645986A (en) * 1992-05-13 1997-07-08 Board Of Reagents, The University Of Texas System Therapy and diagnosis of conditions related to telomere length and/or telomerase activity
US5645829A (en) * 1993-06-18 1997-07-08 Beth Israel Hospital Association Mesothelial cell gene therapy
AU7854694A (en) 1993-10-08 1995-05-04 Lonza A.G. Genes for butyrobetaine/crotonobetaine-l-carnitine metabolism and their use for the microbiological production of l-carine
US5665350A (en) * 1994-11-23 1997-09-09 University Of Massachusetts Medical Center Cell cycle dependent transplantation and ex vivo gene therapy
US5780296A (en) * 1995-01-17 1998-07-14 Thomas Jefferson University Compositions and methods to promote homologous recombination in eukaryotic cells and organisms
US5824655A (en) * 1995-02-15 1998-10-20 The University Of Utah Anti-transforming growth factor-β gene therapy
US5760062A (en) * 1995-04-18 1998-06-02 Geron Corporation Telomerase inhibitors
US5703116A (en) * 1995-04-18 1997-12-30 Geron Corporation Telomerase Inhibitors
US5863936A (en) * 1995-04-18 1999-01-26 Geron Corporation Telomerase inhibitors
US5656638A (en) * 1995-04-18 1997-08-12 Geron Corporation Telomerase inhibitors
AU705616B2 (en) * 1995-04-21 1999-05-27 Cell Genesys, Inc. Generation of large genomic DNA deletions
US5756283A (en) * 1995-06-05 1998-05-26 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Method for improved production of recombinant adeno-associated viruses for gene therapy
US5776744A (en) * 1995-06-07 1998-07-07 Yale University Methods and compositions for effecting homologous recombination
DE19523279A1 (de) 1995-06-27 1997-01-09 Forschungszentrum Juelich Gmbh Verfahren zur mikrobiellen Herstellung von Aminosäuren mittels rekombinanter Mikroorganismen mit erhöhter Sekretionsrate
US5770613A (en) * 1995-09-29 1998-06-23 Geron Corporation Telomerase inhibitors
US5767278A (en) * 1995-10-06 1998-06-16 Geron Corporation Telomerase inhibitors
WO1997013845A2 (en) * 1995-10-13 1997-04-17 President And Fellows Of Harvard College Phosphopantetheinyl transferases and uses thereof
DE19548222A1 (de) 1995-12-22 1997-06-26 Forschungszentrum Juelich Gmbh Verfahren zur mikrobiellen Herstellung von Aminosäuren durch gesteigerte Aktivität von Exportcarriern
US5874304A (en) * 1996-01-18 1999-02-23 University Of Florida Research Foundation, Inc. Humanized green fluorescent protein genes and methods
DE19644567A1 (de) 1996-10-26 1998-04-30 Forschungszentrum Juelich Gmbh Mikrobielle Herstellung von Substanzen aus dem aromatischen Stoffwechsel / II
DE19644566A1 (de) * 1996-10-26 1998-04-30 Forschungszentrum Juelich Gmbh Mikrobielle Herstellung von Substanzen aus dem aromatischen Stoffwechsel / I
EP0839909A1 (en) 1996-10-29 1998-05-06 Rijksuniversiteit te Groningen Nucleic acid sequences encoding citrate transporter proteins
US5925544A (en) * 1996-11-18 1999-07-20 Novo Nordisk A/S Method of homologous recombination followed by in vivo selection of DNA amplification
US5830698A (en) * 1997-03-14 1998-11-03 Idec Pharmaceuticals Corporation Method for integrating genes at specific sites in mammalian cells via homologous recombination and vectors for accomplishing the same
US5948653A (en) * 1997-03-21 1999-09-07 Pati; Sushma Sequence alterations using homologous recombination
EP1004663B1 (en) 1997-07-18 2007-02-07 Ajinomoto Co., Inc. Process and microorganism for producing purine nucleosides via fermentation
ATE458040T1 (de) * 1998-04-13 2010-03-15 Univ Georgia Pyruvate carboxylase überexpression zur verstärkten produktion von oxalacetat abgeleiteten verbindungen in mikrobiellen zellen
US6027488A (en) * 1998-06-03 2000-02-22 Genetronics, Inc. Flow-through electroporation system for ex vivo gene therapy
RU2144564C1 (ru) * 1998-10-13 2000-01-20 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт Аджиномото-Генетика" ФРАГМЕНТ ДНК rhtB, КОДИРУЮЩИЙ СИНТЕЗ БЕЛКА RhtB, ПРИДАЮЩЕГО УСТОЙЧИВОСТЬ К L-ГОМОСЕРИНУ БАКТЕРИЯМ ESCHERICHIA COLI, И СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-АМИНОКИСЛОТ
JP2002293797A (ja) 1998-12-18 2002-10-09 Ajinomoto Co Inc Ａｂｃトランスポーター及びそれをコードする遺伝子
RU2148642C1 (ru) * 1998-12-23 2000-05-10 ЗАО "Научно-исследовательский институт АДЖИНОМОТО-Генетика" (ЗАО "АГРИ") Фрагмент днк rhtc, кодирующий синтез белка rhtc, придающего повышенную устойчивость к l-треонину бактериям escherichia coli, и способ получения l-аминокислоты
JP4061769B2 (ja) 1999-03-25 2008-03-19 味の素株式会社 Ｌ−グルタミン酸の製造法
US6893852B1 (en) 1999-07-02 2005-05-17 Ajinomoto Co., Inc. Dna encoding sucrose pts enzyme II
JP2003159065A (ja) 1999-07-19 2003-06-03 Ajinomoto Co Inc 発酵法による目的物質の製造法
US20040121428A1 (en) * 1999-12-24 2004-06-24 Masakazu Sugimoto Process for producing l-amino acid and novel gene
RU2212447C2 (ru) * 2000-04-26 2003-09-20 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт Аджиномото-Генетика" Штамм escherichia coli - продуцент аминокислоты (варианты) и способ получения аминокислот (варианты)
JP4380029B2 (ja) * 2000-07-05 2009-12-09 味の素株式会社 微生物を利用した物質の製造法
JP4975937B2 (ja) 2000-08-04 2012-07-11 マイクロゲノミックス・インコーポレーテッド ２，５−ｄｋｇパーミアーゼ
CN1245215C (zh) * 2001-02-28 2006-03-15 四川省生物工程研究中心 重组高效复合干扰素用作乙型肝炎表面抗原和e抗原抑制剂
JP2002330763A (ja) * 2001-05-02 2002-11-19 Ajinomoto Co Inc 発酵法による目的物質の製造法
DE60225011T2 (de) 2001-07-18 2009-02-05 Evonik Degussa Gmbh Verfahren zur herstellung von l-threonin durch enterobakteriaceae-stämmen mit verstärkter exprimierung des phoe-gens

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
A new family of integral membrane proteins involved intransport of aromatic amino acids in Escherichia coli. Sarsero et al.Journal of Bacteriology,Vol.173 No.10. 1991
A new family of integral membrane proteins involved intransport of aromatic amino acids in Escherichia coli. Sarsero et al.Journal of Bacteriology,Vol.173 No.10. 1991 *
Genetic and physiological approaches for the production of amino acids. Reinhard Kramer.Journal of Biotechnology,Vol.45 No.1. 1996
Genetic and physiological approaches for the production of amino acids. Reinhard Kramer.Journal of Biotechnology,Vol.45 No.1. 1996 *

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