WO2011007797A1 - 糖タンパク質の測定方法、肝疾患の検査方法、糖タンパク質定量用試薬および肝疾患病態指標糖鎖マーカー糖タンパク質 - Google Patents

糖タンパク質の測定方法、肝疾患の検査方法、糖タンパク質定量用試薬および肝疾患病態指標糖鎖マーカー糖タンパク質 Download PDF

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池原譲
久野敦
曽我部万紀
田中靖人
溝上雅史
伊藤清顕
松原俊介
鶴野親是
高浜洋一
香川孝司
永井慎也
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    • G01N2800/085—Liver diseases, e.g. portal hypertension, fibrosis, cirrhosis, bilirubin
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10T—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
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    • Y10T436/14—Heterocyclic carbon compound [i.e., O, S, N, Se, Te, as only ring hetero atom]
    • Y10T436/142222—Hetero-O [e.g., ascorbic acid, etc.]
    • Y10T436/143333—Saccharide [e.g., DNA, etc.]

Definitions

  • the present invention provides a method for measuring at least one glycoprotein selected from alpha-1-acid glycoprotein (AGP) and Mac-2-binding protein (M2BP), at least one glycoprotein selected from AGP and M2BP
  • AGP alpha-1-acid glycoprotein
  • M2BP Mac-2-binding protein
  • the present invention relates to a sugar chain marker glycoprotein capable of detecting the state of a background liver such as hepatocellular carcinoma and inflammation / fibrosis by the difference in sugar chain and the examination method of liver diseases.
  • Liver cancer can be roughly divided into primary liver cancer that develops in the liver and metastatic liver cancer, and 90% of primary liver cancer is said to be hepatocellular carcinoma.
  • Hepatocellular carcinoma patients are often infected with hepatitis C virus or hepatitis B virus as the underlying disease, and progress from acute viral hepatitis to chronic viral hepatitis and cirrhosis, and viral hepatitis After being afflicted with and often for the first time after a long period of time, it often develops cancer.
  • cirrhosis repeated inflammation and regeneration reduce normal hepatocytes and transform them into an organ composed of fibrous tissue. For example, it is said that there are 3 million hepatitis C patients in Japan alone, and over 10 million in China and Africa.
  • liver cancer markers As markers of liver cancer, ⁇ -fetoprotein (AFP) and protein induced by vitamin K absence or antagonist-II (PIVKA-II) have been known so far (patent documents 1 and 2), but their specificity is And sensitivity is not enough. Therefore, for the early detection of liver cancer, screening is currently performed by liver cancer markers and imaging tests such as ultrasound, computed tomography (CT) and nuclear magnetic resonance imaging (MRI).
  • CT computed tomography
  • MRI nuclear magnetic resonance imaging
  • Non-patent Document 1 describes an attempt to measure fucosylated AGP in serum using AAL lectin to detect cirrhosis.
  • the technique described in Non-Patent Document 1 has a sensitivity of about 87% despite the sensitivity of about 66%, and a correct diagnosis rate of 77 Since it is about%, it is not satisfactory from the viewpoint of liver disease detection performance.
  • Non-Patent Document 2 asialo AGP in the serum of normal subjects, patients with acute hepatitis, patients with chronic hepatitis, patients with liver cirrhosis and patients with hepatocellular carcinoma is measured by immunochromatography using RCA lectin, and each liver disease It is described that an experiment was conducted to determine whether or not it can be positively discriminated. However, as understood from the results described in Table 2 of the technique described in Non-Patent Document 2, when focusing on cirrhosis, although the sensitivity is about 88%, the false positive rate in chronic hepatitis patients is 63%. It is not satisfactory from the viewpoint of liver disease detection performance.
  • An object of the present invention is to provide a method of measuring a sugar chain marker glycoprotein capable of detecting a liver disease with higher accuracy than conventional. Moreover, this invention makes it a subject to provide the test method of the liver disease which can detect a liver disease with high precision than before. Moreover, this invention makes it a subject to provide the reagent for glycoprotein quantitative determination used for the said measuring method. Furthermore, this invention makes it a subject to provide the liver disease condition index sugar_chain
  • AGP alpha-1-acid glycoprotein
  • M2BP Mac-2-binding protein
  • the measuring method of the present invention it is possible to easily measure a sugar chain marker glycoprotein capable of highly reliably performing a test of a liver disease such as cirrhosis.
  • the liver disease condition index sugar chain marker glycoprotein of the present invention makes it possible to perform examination with a high accuracy diagnosis rate and a small amount of serum than existing markers, and enables liver fibrosis progress monitoring to grasp the progress of the disease condition. Not only can it be evaluated, but also the improvement of liver fibrosis and inflammation after antiviral therapy including interferon can be evaluated.
  • FIG. 6 is a graph showing the incidence of hepatocellular carcinoma in cirrhosis. It is a figure which shows the relationship between the change of a background liver tissue, and carcinogenesis. It is a figure which shows the structural change of the liver from infection to carcinogenesis.
  • FIG. 6 is a diagram showing the relationship between liver status change and a diagnostic treatment scheme. It is a figure showing the verification experiment procedure of the biomarker candidate molecule on the basis of a lectin microarray.
  • AGP liver disease condition index sugar chain marker
  • lectin microarray analysis of AGP which is a liver disease condition index sugar chain marker. It is a figure which shows the therapeutic effect determination of the interferon which used AGP as a marker which can monitor the fibrosis progress of the liver. It is a figure which shows dilution linearity at the time of using DSA by the 1st rapid measurement method. It is a figure which shows dilution linearity at the time of using MAL by the 1st rapid measurement method. It is a figure which shows dilution linearity at the time of using AOL by the 1st rapid measurement method.
  • FIG. 1 It is a figure which shows the measurement result by AOL with respect to a clinical sample by the lectin array method. It is a figure which shows the result of having measured by the 2nd rapid measurement method by making the object sample of HCV infected patient's serum 125 cases. It is the figure which compared the result measured by the lectin array method and the 2nd rapid measurement method for 100 test subjects. It is a figure which shows correlation with the fibrosis change of the liver, and the change of the lectin signal strength obtained by antibody overlay * lectin array analysis of M2BP. It is a figure which shows the sugar chain change on M2BP in serum before and after the operation of a hepatocellular carcinoma patient.
  • FIG. 1 shows the measurement result by AOL with respect to a clinical sample by the lectin array method. It is a figure which shows the result of having measured by the 2nd rapid measurement method by making the object sample of HCV infected patient's serum 125 cases. It is the figure which compared the result measured by the lect
  • FIG. 1 shows a model of a lectin-antibody sandwich ELISA, which is the best form for detecting WFA binding M2BP. It is a figure which shows a time-dependent change of the amount of WFA binding M2BP in the serum after a liver cancer patient's operation.
  • WFA binding M2BP detection by ELISA method it is a figure which shows the influence which the presence or absence of sample heat processing has on a detection sensitivity.
  • M2BP by the 2nd rapid measurement method it is a figure which shows the dilution linearity of the measurement system using WFA at the time of using the supernatant of HepG2 cultured cell as a sample.
  • M2BP by the 2nd rapid measurement method it is a figure which shows the dilution linearity of the measurement system using WFA at the time of using Recombinant Human Galectin-3BP / MAC-2BP as a sample.
  • hepatocellular carcinoma appears with a probability of about 7% annually. Therefore, in order to efficiently detect and treat hepatocellular carcinoma, it is important to simply sort out patients who are particularly in the F3 and F4 states and follow them as the subject of a close examination.
  • Japan's hepatitis B and C patients' medical care benefits business exclusively targets the degree of fibrosis F1 to 3 determined by histopathological diagnosis of liver biopsy specimens.
  • F4 it is classified as cirrhosis, and therefore, the medical treatment for hepatitis B and C patients for interferon treatment is only partially supported, but satisfactory results are obtained. I can not.
  • 1-2 Evaluation of suppression of fibrosis by antiviral therapy
  • PEG-IFN + RBV therapy and interferon alone administration for C type cirrhosis compensation stage are indicated.
  • nucleic acid analogues are mainly used as a treatment for hepatitis B (chronic hepatitis, cirrhosis), and markers for evaluating inflammation and fibrosis are considered to be essential.
  • serum biomarkers are expected to be widely clinically applied for diagnostic and evaluation purposes.
  • Hepatocellular carcinoma Hepatocellular carcinogenesis is thought to be largely alternated between microbiological factors caused by hepatitis B virus or hepatitis C virus infection and environmental factors.
  • hepatitis B virus hepatitis B virus
  • hepatitis C virus hepatitis C virus
  • Japan about 90% of hepatocellular carcinoma patients have a history of infection with hepatitis B or C virus, and are known to occur in chronic hepatitis / hepatic cirrhosis patients.
  • viruses men, elderly people, alcoholics, tobacco, and aflatoxin, which is one of mold poisons, are pointed out as carcinogenic risk factors for hepatocellular carcinoma. (Guidelines for medical care of liver cancer, goods) International Medical Information Center) 1-4.
  • hepatocellular carcinoma mainly focuses on measurement of liver cancer markers such as AFP and PIVKA-II in serum samples from subjects, and ultrasonography (echo test) Image diagnosis is mainly used.
  • an ultrasound examination or CT is used as the first examination, and when any abnormality is found in these, it is usual to further perform MRI or angiography.
  • liver cirrhosis (F4) with hepatocellular carcinoma appearing at an annual rate of around 7%, expensive and highly invasive precision inspection every 3 months to detect and treat the early cancer. It has to be said that the burden on patients is both financially and physically heavy. This is even more so in the case of F3, which has a carcinogenic rate of 3-4% a year. Furthermore, considering that the success rate of hepatitis C virus treatment with interferon is about 50%, patients with chronic hepatitis who did not respond to a considerable number of patients who have received interferon treatment have liver cirrhosis and hepatocyte carcinogenesis. It is necessary to clarify if there is a position and to conduct clinical follow up.
  • the carcinogenic risk is weighted for patients with hepatitis and cirrhosis by simple tests such as blood tests, and diagnostic treatment for hepatocellular carcinoma is commensurate with that. It is in a situation that needs to be implemented.
  • FIG. 6 shows the relationship between liver status changes and diagnostic treatment schemes.
  • peginterferon / ribavirin combination therapy PEG-IFN + RBV therapy
  • radiofrequency ablation RBV therapy
  • the sugar chain marker glycoprotein of the present invention can distinguish chronic hepatitis, liver cirrhosis, and hepatocellular carcinoma, and thus serves as an index in the development of new treatments for liver cirrhosis.
  • fibrosis F3-4 cases by the sugar chain marker glycoprotein. This is expected to be utilized as a serum evaluation marker of therapeutic effect at the time of clinical introduction of treatment aiming at liver fibrosis progression and carcinogenesis suppression in addition to quantitative diagnosis of fibrosis.
  • liver disease condition index sugar chain marker glycoprotein AGP and M2BP which are novel liver disease condition index sugar chain marker glycoproteins of the present invention, are chronic hepatitis that occurs in onset and progress of disease caused by virus infection. It has been found to produce sugar chain changes that characterize liver cirrhosis and hepatocellular carcinoma.
  • a marker glycoprotein that can identify a liver disease state is referred to as a liver disease state index sugar chain marker, using such a sugar chain change associated with the progression of the pathological state of viral liver disease as an index.
  • the sugar chain change detection of AGP and M2BP which are novel liver disease condition index sugar chain markers of the present invention, is the respective condition of viral liver disease, that is, hepatocellular carcinoma, liver cirrhosis, liver fibrosis (F3 and F4 markers) It is characteristic of chronic hepatitis or effective in differentiating each disease.
  • sugar chain changes of these markers differ in type and ratio depending on the type and degree of progression of the disease. Therefore, statistical selection of lectin probes that reflect disease-specific changes in sugar chains is necessary in order to utilize markers and construct detection kits specific to each subject.
  • the following is a more specific method of selecting a lectin probe suitable for use in monitoring liver fibrosis progression and detecting liver cirrhosis by using a sugar chain marker glycoprotein.
  • Comparative sugar chain profiling by antibody overlay, lectin microarray, etc. is performed on glycoproteins (AGP and M2BP) collected from serum of (viral) hepatitis patients, cirrhosis patients and hepatocellular carcinoma patients.
  • AGP and M2BP glycoproteins collected from serum of (viral) hepatitis patients, cirrhosis patients and hepatocellular carcinoma patients.
  • blood samples are taken from (viral) hepatitis patients, chronic hepatitis, cirrhosis patients, and hepatocellular carcinoma patients.
  • AGP and M2BP are concentrated and purified by immunoprecipitation using an antibody, and the antibody overlay / lectin array is used to confirm that it can be used as a sugar chain marker glycoprotein of the pathological condition of liver disease. More specifically, as shown in FIG.
  • AGP and M2BP are simply enriched by immunoprecipitation using anti-AGP antibody and anti-M2BP antibody, respectively. Since the lectin microarray is a highly sensitive comparative sugar chain analyzer and can be sufficiently analyzed with a protein preparation amount of about 100 nanograms, the above-mentioned pretreatment can be performed in mini-scale. Enriched AGP and M2BP are rapidly added to a lectin microarray, and after a certain time of reaction, obtain a sugar chain profile of AGP and M2BP by antibody overlay lectin microarray method.
  • the amount of protein added to the lectin array varies depending on the protein, but is generally about nanogram to several tens nanogram.
  • two-group comparative analysis such as Student-T test is performed using the data set. This makes it possible to select lectins that produce a significant difference in signal objectively due to pathological changes.
  • a lectin microarray for example, a lectin microarray in which a plurality of lectins including part or all of the lectins described in Table 2 described later may be immobilized can be used, and more specifically, Kuno A., et al. The lectin microarray described in Nat. Methods 2, 851-856 (2005) or LecChip manufactured by GP Biosciences can be used.
  • the antibodies described in Table 1 can be used.
  • a lectin array is a combination of different types of classifiers (probes) with different specificities (probes) immobilized in parallel on one substrate (arrayed), and how much lectin interacts with the complex carbohydrate to be analyzed Can analyze at once.
  • probes classifiers
  • probes specificities
  • lectin array information necessary for sugar chain structure estimation can be obtained by a single analysis, and the operation steps from sample preparation to scanning can be made quickly and easily.
  • a sugar chain profiling system such as mass spectrometry, glycoproteins can not be analyzed as they are, but must be processed to the state of glycopeptides and free sugar chains in advance.
  • lectin microarrays have the advantage that they can be analyzed as they are, for example, by directly introducing a fluorophore into the core protein part.
  • the lectin microarray technology was developed by the present inventors, and its principle and basis are described in, for example, Kuno A., et al. Nat. Methods 2, 851-856 (2005).
  • lectin array (LecChip manufactured by GP Biosciences) immobilized on 45 types of lectins is already commercially available.
  • Antibody overlay / lectin microarray method The platform of lectin microarray is basically as described above, and for detection, the above analyte is not directly labeled with fluorescence etc., but a fluorescent group etc. indirectly via antibody. It is an applied method that can simplify and speed up analysis for multiple samples simultaneously by introducing it into the subject (“Kuno A, Kato Y, Matsuda A, Kaneko MK, Ito H, Amano K, Chiba Y, Narimatsu H, Hirabayashi J. Mol Cell Proteomics.
  • the carbohydrate moiety is recognized by the lectin on the lectin microarray, so an antibody (anti-AGP antibody and anti-M2BP antibody) against the core protein moiety is overlaid thereon (overlay)
  • an antibody anti-AGP antibody and anti-M2BP antibody against the core protein moiety is overlaid thereon (overlay)
  • 3-4 lectin overlay / antibody microarray method This is a method using an antibody microarray in which antibodies against core protein are immobilized in parallel (arrayed) on a substrate such as a glass substrate instead of a lectin microarray. Only as many antibodies to the markers to be examined are needed. It is necessary to determine in advance a lectin that detects changes in sugar chains.
  • AGP and M2BP are new liver disease state in which sugar chain structure changes with the pathologic change of liver disease such as progress of fibrosis. It is an index sugar chain marker. For this reason, it reacted with a lectin whose reactivity changes in response to changes in AGP and M2BP sugar chain structures (hereinafter referred to as lectin "A") and a marker contained in a sample collected from a subject, and reacted with the lectin By measuring the marker, it is possible to determine the pathological condition of the liver disease or to determine the degree of fibrosis of the liver.
  • lectin A a lectin whose reactivity changes in response to changes in AGP and M2BP sugar chain structures
  • a novel liver disease condition index sugar chain marker is (1) (i) It can implement using the antibody which detects parts (core protein) other than the sugar_chain
  • a liver disease pathologic index sugar chain marker can be detected using an antibody that is a specific antibody to a liver disease pathologic index sugar chain marker and the site including the sugar chain binding part is an epitope.
  • an antibody overlay method using a lectin array (“Kuno A, Kato Y, Matsuda A, Kaneko MK, Ito H, Amano K, Chiba Y, Narimatsu H, Hirabayashi J. Mol Cell Proteomics. 8, 99-108 (2009)) can be used.
  • a lectin array Kano A, Kato Y, Matsuda A, Kaneko MK, Ito H, Amano K, Chiba Y, Narimatsu H, Hirabayashi J. Mol Cell Proteomics. 8, 99-108 (2009).
  • liver disease condition index sugar chain marker For example, as a specific liver disease detection method using a novel liver disease condition index sugar chain marker, 1) measuring a liver disease condition index sugar chain marker having a sugar chain that specifically reacts with lectin "A" in a sample collected from a subject; 2) measuring a liver disease condition index sugar chain marker having a sugar chain that specifically reacts with lectin "A” in a sample collected from a healthy person, 3) measuring a liver disease condition index sugar chain marker having a sugar chain that specifically reacts with lectin "A” in a sample collected from a liver disease patient, And 4)
  • the measurement result of liver disease condition index sugar chain marker obtained from the subject and the measurement result of liver disease condition index sugar chain marker obtained from a healthy person or a patient with liver disease the measurement result of the subject is more liver
  • Examples include a method for detecting a liver disease, including the step of determining that the disease is a liver disease when the measured value of the diseased patient is close.
  • a threshold for discriminating liver disease is set in advance, and whether the subject is a liver disease by comparing the measurement value of the subject with the threshold. It may be determined.
  • fibrosis The current assessment of fibrosis is by pathologic diagnosis of biopsy specimens. In recent years, the introduction of fibro scan is expected to spread the method. In addition, Fibro Test, Forn's index, Hepatoscore, etc. are clinically used as a method to evaluate fibrosis in a serological manner, but both sensitivity and specificity are inferior to those of biopsy diagnosis.
  • AGP and M2BP using antibody serogroups with different degrees of fibrosis progression, select antibodies that increase or decrease the signal intensity in correlation with the progression of fibrosis by antibody overlay lectin microarray. Based on this information, it is possible to establish a sandwich detection method using an antibody to a marker candidate molecule and lectin “A” that changes in signal with progress of fibrosis, such as lectin-antibody sandwich ELISA or antibody overlay lectin microarray method. Patients who are staged for fibrosis by pathological diagnosis are collected about 100 and analyzed for them, and by setting cut-off value at each stage, monitor progress of liver fibrosis using patient's serum can do.
  • lectin "A” for AGP, a first lectin selected from AOL and MAL can be mentioned, and for M2BP, a second lectin selected from WFA, BPL, AAL, RCA 120 and TJA II is mentioned be able to.
  • a lectin selected from AOL and MAL may be referred to as a first lectin
  • a lectin selected from WFA, BPL, AAL, RCA 120 and TJA II may be referred to as a second lectin.
  • AGP binding to the first lectin can be measured, and a second lectin array on which at least a second lectin is immobilized
  • anti-M2BP antibodies can be used to measure M2BP binding to the second lectin.
  • Cirrhosis is defined as a pathologic condition in which a regenerated nodule with lost hepatic lobule structure and a fine fibrous connective tissue surrounding it appear diffusely throughout the liver. It is also the terminal state of progressive chronic liver disease where hepatocellular injury and fibrosis persist. Liver biopsy in liver cirrhosis is performed to search for etiologic diagnosis, and in many cases it is difficult to diagnose early liver cirrhosis or large nodule type cirrhosis (Surgery Pathology 4th ed. From Bunkodo). Therefore, there is a need for testing techniques that can diagnose cirrhosis qualitatively and quantitatively.
  • fibrosis stages F3 and F4 can be distinguished among candidate molecule antibodies and lectin sets that can monitor the progression of fibrosis found in the section 1)
  • Samples include biopsy samples, body fluid samples, and preferably blood (serum, plasma, etc.).
  • Measurement includes both qualitative measurement and quantitative measurement.
  • the measurement of a liver disease condition index sugar chain marker can be performed, for example, using (1) a column or array on which lectin "A" is immobilized, and (2) an antibody against AGP or M2BP.
  • the antibody overlay lectin array method more preferably the rapid first or second rapid measurement method can be used.
  • the concentration of AGP or M2BP can also be measured, and examples include antibody overlay / lectin array method using a lectin array, immunological assay, enzyme activity assay, capillary electrophoresis and the like.
  • enzyme immunization is carried out using a lectin "A" that most reflects disease-specific sugar chain changes statistically selected by antibody overlay / lectin array and a monoclonal antibody or polyclonal antibody specific for AGP or M2BP.
  • Measurement method 2 antibody sandwich ELISA method, gold colloid method, radioimmunoassay, enzyme-based chemiluminescence immunoassay, electrochemiluminescence immunoassay, latex agglutination immunoassay, fluorescence immunoassay, western blotting, immunohistochemistry
  • SPR method surface plasmon resonance method
  • semi-quantification can also be performed by Western blotting using lectin "A” and an anti-novel disease state indicator sugar chain marker antibody.
  • the above “when the measurement result of the subject is higher” means the case where it is qualitatively shown that there are more novel disease condition index sugar chain markers in the sample of the subject than the normal person.
  • the lectin method as a direct measurement method of sugar chain not mediated by antibody is also included.
  • AOL is the lectin that shows the most significant difference among the lectin group in which the reactivity to AGP sugar chains becomes high as liver fibrosis progresses
  • MAL is the reactivity to AGP sugar chains as liver fibrosis progresses It is the lectin that shows the most significant difference among the lower lectin group.
  • both the measured value of AGP bound to AOL and the measured value of AGP bound to MAL it is possible to more accurately determine the pathological condition of the subject's liver disease.
  • Well-known statistical methods can be adopted as a method using both the measured value of AGP bound to AOL (measured value of AOL) and the measured value of AGP bound to MAL (measured value of MAL).
  • the difference or ratio between the AOL measurement value and the MAL measurement value can be used.
  • any one of the AOL measurement value and the MAL measurement value may be corrected using the ratio of the MAL cutoff line value and the AOL cutoff line value.
  • AGP By measuring AGP contained in a sample collected from a subject using AOL and / or MAL, AGP can be used as a marker for determining fibrosis in liver, marker for detecting liver cirrhosis, or marker for detecting hepatocellular carcinoma. .
  • the measured value of AGP bound to AOL or MAL is normalized using the measured value of AGP bound to a lectin whose reactivity does not substantially change regardless of the change in the sugar chain structure of AGP.
  • a lectin whose reactivity does not substantially change regardless of the change in the sugar chain structure of AGP.
  • DSA is preferred.
  • the measured value of AGP bound to AOL or MAL may be normalized using the measured value of the core protein of AGP contained in the sample collected from the subject. Also in the method using both of the AOL measurement value and the MAL measurement value, it is preferable to use a standardized AOL measurement value and a standardized MAL measurement value.
  • AGP bound to DSA is measured using the first lectin array and the second lectin array, respectively, on which DSA is further immobilized, and the measured value of AGP bound to the first lectin is bound to DSA Normalized with the measured value of AGP, measure M2BP bound to DSA, normalize the measured value of M2BP bound to the second lectin with the measured value of M2BP bound to DSA, measure the AGP and / or M2BP It can be carried out.
  • lectin "A” whose reactivity changes in response to changes in the sugar chain structure of M2BP accompanying liver pathological changes, WFA, BPL, AAL, RCA 120 and selected carefully by statistical analysis after antibody overlay lectin array And / or TJA II can be mentioned.
  • WFA, BPL, AAL, RCA120, and TJAII are all lectins in which the reactivity of M2BP to sugar chains increases as the disease state of liver disease progresses.
  • WFA, BPL and TJA II are highly reactive with M2BP in patients with hepatocellular carcinoma, especially post-operative cancer recurrence, and M2BP contained in samples collected from subjects using WFA, BPL and / or TJA II By measurement, M2BP can be used as a patient closure marker for hepatocellular carcinoma high risk group.
  • M2BP may be used as a fibrosis differentiation marker, liver cirrhosis detection marker or hepatocellular carcinoma detection marker for liver by measuring M2BP contained in a sample collected from a subject using AAL and / or RCA120. it can.
  • M2BP may be used as a fibrosis differentiation marker, liver cirrhosis detection marker or hepatocellular carcinoma detection marker for liver by measuring M2BP contained in a sample collected from a subject using AAL and / or RCA120. it can.
  • WFA hepatocellular carcinoma detection marker
  • the measured value of M2BP bound to WFA, BPL, AAL, RCA 120 or TAJII is normalized using the measured value of M2BP bound to a lectin whose reactivity does not substantially change regardless of changes in the sugar chain structure of M2BP Is preferred.
  • a lectin DSA is preferred.
  • the measurement value of M2BP bound to WFA, BPL, AAL, RCA 120 or TAJII may be normalized using the measurement value of M2BP core protein contained in the sample collected from the subject.
  • the measurement of AGP bound to AOL, MAL or DSA, and the measurement of M2BP bound to WFA, BPL, AAL, RCA 120 or TAJII are preferably performed by antibody overlay lectin microarray method.
  • the antibody overlay lectin microarray method can simultaneously measure AGP or M2BP bound to multiple lectins.
  • markers such as AGP and M2BP, rapidly using lectin "A"
  • a sample is mixed with biotinylated lectin “A” in which biotin is bound to lectin “A”, magnetic particles on which streptavidin is immobilized are added thereto, and magnetic particles—lectin “A” are added.
  • the “-AGP complex is formed, and the complex is reacted with a labeled anti-AGP antibody to form a second complex of magnetic particle-lectin“ A ”-AGP-labeled anti-AGP antibody, and the second complex And a method of quantifying AGP in response to the above-mentioned lectin "A" by measuring the labeled amount of
  • M2BP it can implement similarly to said measuring method of AGP except using labeled anti- M2BP antibody.
  • the first rapid measurement method it is possible to quantify AGP and M2BP in a sample in about 60 minutes.
  • biotinylated lectin "A” and streptavidin-immobilized magnetic particles improves the reactivity of lectin "A” to AGP or M2BP in the sample, and the reaction time of AGP or M2BP with lectin "A” is about 30 It can be reduced to about a minute.
  • a second rapid measurement method magnetic particles on which lectin "A” is immobilized and a sample are mixed, sugar chains of AGP in the sample are captured by lectin "A", and AGP captured by magnetic particles is The labeled anti-AGP antibody is reacted to form a complex of magnetic particle-lectin "A” -AGP-labeled anti-AGP antibody, and the labeled amount of the complex is measured to measure the AGP reacting to the lectin "A".
  • the method of quantifying is mentioned.
  • M2BP when M2BP is measured, it can be carried out in the same manner as the above-mentioned AGP measurement method except that a labeled anti-M2BP antibody is used.
  • the first and second rapid measurement methods are suitable for automation, and in particular, the second rapid measurement method can be suitably implemented by a fully automatic measurement device.
  • automating the second rapid measurement method continuous measurement of multiple samples can be easily performed.
  • a fluorescent substance and an enzyme can be used as a label
  • Fluorescent substances include fluorescein isothiocyanate (FITC), green fluorescent protein (GFP), luciferin and the like.
  • fluorescent substances include fluorescein isothiocyanate (FITC), green fluorescent protein (GFP), luciferin and the like.
  • enzymes include alkaline phosphatase (ALP), peroxidase, glucose oxidase, tyrosinase, acid phosphatase and the like.
  • alkaline phosphatase When alkaline phosphatase is used as the enzyme, known luminescent substrates, chromogenic substrates and the like can be used, for example, CDP-star (registered trademark) (4-chloro-3- (methoxyspiro ⁇ 1,2-dioxetane-3,2) '-(5'-chloro) tricyclo [3.3.1.13,7] decane ⁇ -4-yl) phenyl phosphate disodium), CSPD® (3- (4-methoxy spiro ⁇ 1,1 Chemiluminescent substrate such as 2-dioxetane-3,2- (5'-chloro) tricyclo [3.3.1.13,7] decane ⁇ -4-yl) phenyl phosphate (disodium phosphate), p-nitrophenyl phosphate , 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-phosphate (BCIP), 4-nitro blue tetrazolium
  • an enzyme is used as a label and a luminescent substrate is used from the viewpoint of high sensitivity and speeding up of label detection. It is preferable to do.
  • enzymes such as ALP have sugar chains.
  • a deglycosylated enzyme As an enzyme subjected to such treatment, for example, deglycosylated ALP such as Recombinant AP, EIA Drade, CR 03535452 (manufactured by Roche Diagnostics) can be used.
  • anti-AGP antibody and anti-M2BP antibody also have a sugar chain.
  • a deglycosylated antibody it is preferable to use an anti-AGP antibody or an anti-M2BP antibody that has been converted to Fab 'by pepsin digestion and reduction.
  • the labeled antibody reagent is prepared by mixing an anti-AGP antibody or an anti-M2BP antibody and a maleimide-labeled label using a crosslinking agent such as EMCS [N- (6-Maleimidocaproyloxy) succinimido] (Dojindo) according to a known method. Then, a labeled antibody can be prepared by reaction. For example, it is preferable from the viewpoint of nonspecific reaction prevention to use an anti-AGP antibody or an anti-M2BP antibody prepared by reacting a deglucosylated ALP with a cross-linking agent to maleimide and convert it to Fab ′. .
  • Novel specific polyclonal antibody and / or monoclonal antibody using novel liver disease condition index sugar chain marker In liver cell cancer detection method using new liver disease condition index sugar chain marker, liver disease condition index sugar chain marker specific
  • target polyclonal and / or monoclonal antibodies are readily available, they can be used, but if they are not readily available, they can be prepared, for example, as follows.
  • novel liver disease condition index sugar chain marker of the present invention can be used for preparation of polyclonal antibody or monoclonal antibody for detecting liver disease.
  • an antibody against a novel liver disease condition indicator sugar chain marker can be prepared by a known method. Freund's complete adjuvant can also be co-administered to boost antibody production.
  • a peptide containing a binding position to which a sugar chain of X is bound is synthesized, and this peptide is covalently linked to commercially available keyhole limpet hemocyanin (KLH) and administered to an animal.
  • KLH keyhole limpet hemocyanin
  • GM-CSF granulocyte-macrophage colony stimulating factor
  • an anti-novel liver disease condition indicator sugar chain marker monoclonal antibody can be prepared by the method of Keller and Milstein (Nature Vol. 256, pp 495-497 (1975)).
  • hybridomas can be prepared by cell fusion of antibody-producing cells obtained from an animal immunized with an antigen and myeloma cells, and clones can be prepared from the resulting hybridomas to select anti-X antibody-producing clones.
  • an adjuvant is added to the liver disease condition index sugar chain marker for the obtained antigen.
  • the adjuvant include Freund's complete adjuvant, Freund's incomplete adjuvant and the like, and any of these may be mixed.
  • the antigen obtained as described above is administered to mammals, for example, mammals such as mice, rats, horses, monkeys, rabbits, goats and sheep. Immunization may be performed by any existing method, and is mainly performed by intravenous injection, subcutaneous injection, intraperitoneal injection and the like. Also, the interval of immunization is not particularly limited, and immunization is performed at intervals of several days to several weeks, preferably at intervals of 4 to 21 days.
  • Antibody-producing cells are harvested 2-3 days after the last day of immunization.
  • Antibody-producing cells include spleen cells, lymph node cells and peripheral blood cells.
  • myeloma (myeloma) cells to be fused with antibody-producing cells cell lines derived from various animals such as mice, rats and humans and generally available to those skilled in the art are used.
  • a cell line to be used one having drug resistance, which can not survive in a selective medium (for example, HAT medium) in an unfused state, and can survive only in a fused state is used.
  • a selective medium for example, HAT medium
  • an 8-azaguanine resistant strain is used, and this cell line is one which lacks hypoxanthine-guanine-phosphoribosyltransferase and can not grow on hypoxanthine aminopterin thymidine (HAT) medium.
  • Myeloma cells can be prepared from various cell lines already known, such as P3 (P3 x 63 Ag 8.6 53) (J. Immunol. 123, 1548-1550 1979), P 3 x 63 Ag 8 U. 1 (Current Topics in Microbiology and Immunology 81, 1-7 ( 1978)), NS-1 (Kohler, G. and Milstein, C., Eur. J. Immunol. 6, 511-519 (1976)), MPC-11 (Margulies, DH et al., Cell 8, 405-415 (1976)). ), SP 2/0 (Shulman, M. et al., Nature 276, 269-270 (1978)), FO (de St. Groth, SF et al., J.
  • P3 P3 x 63 Ag 8.6 53
  • P 3 x 63 Ag 8 U. 1 Current Topics in Microbiology and Immunology 81, 1-7 ( 1978)
  • NS-1 Kerhler, G. and Milstein, C.
  • fusion is carried out in an animal cell culture medium such as MEM, DMEM, RPME-1640 medium, or the like in which myeloma cells and antibody-producing cells are mixed in the presence of a fusion promoter at a mixing ratio of 1: 1 to 1:10. It is carried out by contacting at 37 ° C. for 1 to 15 minutes.
  • a fusion promoter such as polyethylene glycol, polyvinyl alcohol or Sendai virus having an average molecular weight of 1,000 to 6,000 or a fusion virus can be used.
  • antibody-producing cells can be fused with myeloma cells using a commercially available cell fusion device utilizing electrical stimulation (eg, electroporation).
  • the target hybridoma is selected from the cells after cell fusion treatment.
  • a method utilizing selective growth of cells in a selective medium and the like can be mentioned. That is, after the cell suspension is diluted with an appropriate medium, it is spread on a microtiter plate, a selection medium (such as HAT medium) is added to each well, and then culture is performed by replacing the selection medium appropriately. As a result, growing cells can be obtained as hybridomas.
  • a selection medium such as HAT medium
  • Screening of hybridomas is performed by a limiting dilution method, a fluorescence excitation cell sorter method or the like to finally obtain a monoclonal antibody-producing hybridoma.
  • methods for collecting monoclonal antibodies from the obtained hybridomas include ordinary cell culture methods and ascites fluid formation methods.
  • the antibodies referred to in the present invention may be monoclonal antibodies or polyclonal antibodies, and single chain Fvs (scFv), single chain antibody, Fab fragment, F (ab ') fragment, disulfide linked Fvs (SdFv) etc. are also included.
  • scFv single chain Fvs
  • Fab fragment single chain antibody
  • F (ab ') fragment single chain fragment
  • disulfide linked Fvs (SdFv) etc. are also included.
  • the antibody used in the present invention not only the first or second rapid measurement method, it is preferable to use a deglycosylated antibody in order to prevent a nonspecific reaction between a sugar chain and a lectin.
  • anti-AGP antibody or anti-M2BP antibody converted to Fab 'by pepsin digestion and reduction can be used.
  • liver disease condition index sugar chain marker glycoprotein AGP and Mac2BP M2BP
  • An example of the detection of liver disease is shown below.
  • comparative analysis of the sugar chain on the marker glycoprotein derived from (viral) hepatitis patients (CH), patients with liver cirrhosis (LC), patients with hepatocellular carcinoma (HCC) and healthy persons (HV) by this method The procedure of is shown in FIG.
  • Each patient's serum was diluted 10-fold with PBS buffer containing 0.2% SDS, heat-treated at 95 ° C for 10 minutes, aliquoted into 5 ⁇ L for AGP, 20 ⁇ L for Mac2BP, and 500 ng each An antibody against the antigen (biotinide) was added.
  • Each reaction solution was adjusted to 45 ⁇ L with a reaction buffer (Tris-buffered saline (TBSTx) containing 1% Triton X-100), and then shake-reacted at 4 ° C. for 2 hours.
  • a reaction buffer Tris-buffered saline (TBSTx) containing 1% Triton X-100
  • the streptavidin-immobilized magnetic bead solution (Dynabeads MyOne Streptavidin T1, manufactured by DYNAL Biotech ASA) was washed three times beforehand with the reaction buffer and adjusted in a 2-fold concentrated state (5 ⁇ L of the original bead solution) 10 ⁇ L) was added to the above reaction solution and further reacted for 1 hour.
  • the glycoprotein forms a complex with magnetic beads via a biotinylated antibody.
  • the solution was discarded after this complex was adsorbed to a magnetic bead recovery magnet.
  • the recovered complex was washed three times with 500 ⁇ L of reaction buffer and then suspended in 10 ⁇ L of elution buffer (TBS containing 0.2% SDS).
  • the suspension was heat-treated at 95 ° C. for 5 minutes to dissociate and elute the glycoprotein from the magnetic beads, and the resulting solution was used as an eluate.
  • the heat-denatured biotin antibody is also mixed, add 10 ⁇ L (corresponding to 20 ⁇ l of the original bead solution) of the magnetic bead solution prepared in the 2-fold concentrated state by the above method to the eluate
  • the adsorbed antibody was removed by adsorption.
  • the solution thus obtained was used as the serum-derived glycoprotein solution and was used for the subsequent experiments.
  • Antibody Overlay Lectin Array An appropriate amount of the glycoprotein solution obtained as described above was taken and adjusted to 60 ⁇ L with 1% Triton X-100-containing Phosphate-buffered saline (PBSTx), which is a lectin array reaction buffer. This solution was added to each reaction vessel of the lectin microarray (eight reaction vessels are formed per glass), and reacted at 20 ° C. for 10 hours or more. The preparation of a lectin microarray base consisting of these eight reaction vessels followed the method of Uchiyama et al. (Proteomics 8, 3042-3050 (2008)).
  • PBSTx Triton X-100-containing Phosphate-buffered saline
  • each reaction vessel was washed three times with 60 ⁇ L of PBSTx, and then PBSTx solution containing 200 ng of Cy3-labeled streptavidin was added, followed by reaction for 30 minutes at 20 ° C. After the reaction, each reaction vessel was washed 3 times with 60 ⁇ L of PBSTx, and then array scan was performed using Moritex array scanner GlycoStation.
  • FIG. 8 is a diagram showing the results of comparative sugar chain analysis of antibody overlay / lectin microarray for ⁇ 1 acidic glycoprotein (AGP), which is one of liver disease condition marker glycoproteins.
  • AGP acidic glycoprotein
  • the lectin arrangement on the lectin microarray is shown in the upper left figure.
  • Lectins for which significant signals were obtained by this experiment are shown in bold. Signals were obtained for 15 lectins.
  • Typical scan images of hepatocellular carcinoma, liver cirrhosis, and chronic hepatitis patient serum and healthy person serum-derived AGP are shown in the upper right figure.
  • FIG. 9 shows the results of comparative sugar chain analysis of antibody overlay / lectin microarray for 90K / Mac-2 Binding Protein (M2BP), which is one of liver disease condition marker glycoproteins.
  • M2BP Mac-2 Binding Protein
  • Typical scan images of hepatocellular carcinoma, liver cirrhosis, and chronic hepatitis patient serum, and healthy person serum-derived M2BP are shown in the upper right figure. From the scan data, each signal is quantified using array analysis software, and a graph of 17 kinds of lectins is shown in the lower part. It can be seen that a change (increase or decrease) in signal intensity occurs depending on the severity of the pathological condition.
  • Example 2 Discrimination of liver fibrosis progress by antibody overlay / lectin array analysis of liver disease condition index sugar chain marker glycoprotein AGP As in Example 1, lectin signal obtained by antibody overlay / lectin array analysis of glycoprotein From the information, it was found that the condition of each liver disease could be detected by using the optimal one by statistical analysis.
  • array analysis of AGP shows that signals are obtained for 15 types of lectins, but among them, lectins showing a significant difference of 0.1% or less in risk according to Student T test are There were six species: LEL, AOL, AAL, MAL, STL, and PHAE.
  • lectin DSA that could obtain the most reproducible results without signal fluctuation by this experiment, we found the effectiveness for normalization of the acquired data, and all data that was quantified after the scan were DSA signals. To standardize.
  • the antibody overlay / lectin microarray was applied to 125 cases of patients suffering from hepatitis virus, pathologically diagnosed by liver biopsy and staging of fibrosis. The procedure was followed. The breakdown of liver fibrosis stages in 125 cases is 33 cases for F0 and F1, 32 cases for F2, 31 cases for F3, and 29 cases for F4. According to the above-mentioned procedure, narrowing down of lectins useful for discrimination was performed statistically. As a result, the results of the top six lectins are shown in Table 4. Since the six lectins obtained earlier were the top, among which LEL, AOL and MAL were selected as the most effective for discrimination, more detailed data analysis was performed for these three species.
  • FIG. 10 is a diagram showing the correlation between the progression of fibrosis in the liver and the change in lectin signal intensity obtained by antibody overlay / lectin array analysis of AGP. Each signal is normalized by the signal of DSA lectin, and the numerical value is expressed as relative signal intensity when the DSA signal is 100%.
  • lectin array analysis is performed for 125 cases in which staging of fibrosis (F) is performed by pathological analysis after liver biopsy, and the distribution of lectin signals at each stage is shown by box and whisker plot. ing. The upper and lower ends of the box indicate 75% and 25% points, respectively, and the upper and lower ends of the whiskers indicate 95% and 5% points, respectively.
  • the horizontal lines in the box indicate the median, and x indicates the mean.
  • Student-T test was performed to test the significant difference between cirrhosis (F4) and each stage group of chronic hepatitis (F0, 1, 2 and 3), and those with a risk of P ⁇ 0.0001 were added with *.
  • the distribution of the value of platelets, which is used as an index of liver fibrosis in a general biochemical test, is also described as a control.
  • the signal of AOL increased with the progress of fibrosis, and it was possible to sufficiently distinguish chronic hepatitis (F0-3) and cirrhosis (F4) by the difference in strength.
  • MAL and LEL signals were found to decrease in intensity with the progress of fibrosis.
  • the results of measurement of signal fluctuation of AOL, MAL and LEL over time in the same patient are shown in the lower part B of FIG.
  • antibody overlay / lectin microarray analysis is performed on AGP in serial specimens (serums different in collection time) of one case each of a patient with liver cirrhosis and hepatocellular carcinoma, and after normalization by DSA signal
  • the relative signal values of AOL, MAL and LEL are plotted.
  • the time axis is 0 on the day of definitive diagnosis of liver cirrhosis and hepatocellular carcinoma.
  • AOL signal increases with time and MAL signal decreases, which reflects the progress of hepatic fibrosis.
  • platelet counts used as LEL signals and simplified fibrosis markers show rapid fluctuations at certain times, and did not clearly express the progress of fibrosis.
  • liver fibrosis can be determined by combining signal fluctuations of AOL and MAL alone or in combination.
  • Example 3 Detection of liver cirrhosis by antibody overlay / lectin array analysis of liver disease condition index sugar chain marker glycoprotein AGP From the result of Example 2, cut-off of each lectin signal alone or in combination based on the progress of liver fibrosis By setting the value, it was considered that liver cirrhosis could be detected, and the experiment was carried out according to the following procedure.
  • Example 4 Determining the therapeutic effect of interferon using a marker capable of monitoring the progress of fibrosis in the liver According to the results of Example 2, it is possible to monitor the progress of fibrosis by observing the signal fluctuation of AOL and MAL. I understood. Therefore, we attempted to determine whether the therapeutic effect of the antiviral agent, interferon, could be determined using AOL / DSA or MAL / DSA as a fibrosis progression parameter. The following experiment was conducted for the group of patients with persistent virus negative (SVR) cases in which the therapeutic effect of interferon was observed in hepatitis C patients and in the group of virological refractory (NVR) cases in which no therapeutic effect was observed.
  • SVR persistent virus negative
  • NVR virological refractory
  • R1 reagent 1 was prepared by adding 5 ⁇ g / mL of biotinylated DSA (manufactured by J-Oil Mills) in buffer A (PBS-1% Triton X, pH 7.4).
  • R1 reagent 2 was prepared by adding 5 ⁇ g / mL of biotinylated MAL (manufactured by Vector) in buffer A.
  • R1 reagent 3 was prepared by adding 2.5 ⁇ g / mL of biotinylated AOL in buffer A.
  • biotinated AOL used what biotinated AOL (made by Tokyo Chemical Industry Co., Ltd.) using the biotin label kit (made by DOJIDO).
  • R2 reagent was prepared by adding 0.5 w / v% of magnetic particles (number average particle diameter 2 ⁇ m) in which streptavidin was immobilized in buffer solution A.
  • R3 reagent 0.025 U / mL ALP-labeled mouse anti-AGP monoclonal antibody, 0.1 M MES (2- (N-Morpholino) ethanesulfonic acid, pH 6.5), 0.15 M sodium chloride, 1 mM chloride A solution containing magnesium, 0.1 mM zinc chloride, 0.1 w / v% NaN 3 and 0.5 w / v% casein Na was prepared as R3 reagent 1.
  • R3 reagent 2 was prepared in the same manner as R3 reagent 1 except that 0.5 U / mL of ALP-labeled mouse anti-AGP monoclonal antibody was used instead of 0.025 U / mL of ALP-labeled mouse anti-AGP monoclonal antibody.
  • R4 reagent A solution containing 0.1 M of 2-amino-2-methyl-1-propanol (AMP, pH 9.6), 1 mM of magnesium chloride and 0.1 w / v% of NaN 3 is prepared and R4 reagent is prepared.
  • R5 reagent CDP-Star with Sapphurine-II (luminescence substrate for ALP, manufactured by Applied Biosystems) was used as R5 reagent.
  • washing reagent a solution containing 20 mM Tris (pH 7.4), 0.1 w / v% Tween 20, 0.1 w / v% NaN 3 and 0.8 w / v% sodium chloride is prepared and a washing reagent And
  • R1 reagent 1 For 30 ⁇ L of each diluted sample, 110 ⁇ L of R1 reagent 1 was added and reacted at room temperature for 2 minutes, and then 30 ⁇ L of R2 reagent was added and allowed to react for 30 minutes at room temperature. After magnetic particles carrying a complex of DSA and AGP were collected for B / F separation, the separated magnetic particles were washed with a washing reagent and the solution was discarded four times. 100 ⁇ L of R3 reagent 1 was added to the washed magnetic particles, and the reaction was carried out at room temperature for 20 minutes to react AGP in the complex supported on the magnetic particles with the ALP-labeled mouse anti-AGP monoclonal antibody.
  • R1 reagent 1 For 30 ⁇ L of each measurement sample, 110 ⁇ L of R1 reagent 1 was added and reacted at room temperature for 2 minutes, then 30 ⁇ L of R2 reagent was added and allowed to react for 30 minutes at room temperature. After magnetic particles carrying a complex of DSA and AGP were collected for B / F separation, the separated magnetic particles were washed with a washing reagent and the solution was discarded four times. 100 ⁇ L of R3 reagent 1 was added to the washed magnetic particles, and the reaction was carried out at room temperature for 20 minutes to react AGP in the complex supported on the magnetic particles with the ALP-labeled mouse anti-AGP monoclonal antibody.
  • chemiluminescence in the MAL measurement system is measured in the same manner except using R1 reagent 2 instead of R1 reagent 1 and using R3 reagent 3 instead of R3 reagent 1 and show the results It is shown in Table 5.
  • chemiluminescence in the AOL measurement system was measured in the same manner except that R1 reagent 1 was replaced with R1 reagent 3, and the results are shown in Table 5.
  • values obtained by normalizing the measurement results by MAL and AOL with the measurement results by DSA are shown in Table 5 and also shown in FIGS. 16 and 17.
  • the measurement result by the first measurement method of the present embodiment shown in FIG. 16 shows a good correlation with the measurement result by the lectin array method shown in FIG. .
  • the measurement result by the 1st rapid measurement method shown in FIG. 17 shows the same pattern as the measurement result by the lectin array method shown in FIG. 19, and a good correlation is shown It turned out to show.
  • Second rapid measurement method (automatic measurement method) 2-1. Preparation of reagents Preparation of R1 reagent: Buffer A (PBS-1% Triton X, pH 7.4) was used as R1 reagent.
  • R2 reagent Preparation of R2 reagent: Add 0.5 w / v% of magnetic particles (number average particle diameter 2 ⁇ m) in which streptavidin is immobilized in buffer A, and further add 2.5 ⁇ g / mL of biotinylated DSA ( J-Oil Mills Co., Ltd. was added and stirred at room temperature for 30 minutes. After stirring, the magnetic particles were collected by collecting magnetic particles to discard the solution components. Buffer A was added to this, and after stirring, an operation of collecting magnetic particles to precipitate magnetic particles and discarding solution components was repeated three times. Buffer solution A was added thereto so that the magnetic particle concentration was 0.5 w / v%, to obtain R2 reagent 1 containing magnetic particles carrying DSA.
  • biotinylated DSA J-Oil Mills Co., Ltd.
  • R2 reagent 2 containing was prepared.
  • biotinated AOL used what biotinated AOL (made by Tokyo Chemical Industry Co., Ltd.) using the biotin label kit (made by DOJIDO).
  • R3 reagent 0.1 U / mL ALP (Recombinant AP, EIA Drade, CR 03535452) labeled mouse anti-AGP monoclonal antibody-Fab ', 0.1 M MES (2- (N-Morpholino) ethanesulfonic acid, pH6. 5)
  • MES MES (2- (N-Morpholino) ethanesulfonic acid, pH6. 5
  • R3 reagent 2 was prepared in the same manner as R3 reagent 1 except that 0.1 w / v% BSA was used in place of 0.25 w / v% casein Na.
  • R4 reagent A solution containing 0.1 M of 2-amino-2-methyl-1-propanol (AMP, pH 9.6), 1 mM of magnesium chloride and 0.1 w / v% of NaN 3 is prepared and R4 reagent is prepared.
  • R5 reagent CDP-Star with Sapphurine-II (luminescence substrate for ALP, manufactured by Applied Biosystems) was used as R5 reagent.
  • washing reagent a solution containing 20 mM Tris (pH 7.4), 0.1 w / v% Tween 20, 0.1 w / v% NaN 3 and 0.8 w / v% sodium chloride is prepared and a washing reagent And
  • the operation setting of the fully automatic immunoassay apparatus HISCL2000i (manufactured by Sysmex Corporation) was changed to the following conditions, and chemiluminescence (photo count value) was measured for each diluted sample.
  • the measurement results by the second rapid measurement method shown in FIG. 23 show a good correlation with the measurement results by the lectin array method shown in FIG. 18 I understood it.
  • the measurement result by the 2nd rapid measurement method shown in FIG. 24 is the same pattern as the measurement result by the lectin array method shown in FIG. It showed that it showed a good correlation.
  • Example 6 Validation of second rapid measurement method Analysis using 125 HCV infected patients
  • Example 5 shows that the second rapid measurement method shows the same pattern as the lectin array.
  • a second rapid measurement of 125 patients used in Example 2 who were infected with hepatitis virus and pathologically diagnosed by liver biopsy and staged for fibrosis. The procedure was carried out according to the procedure of 2-6 of Example 5.
  • the breakdown of liver fibrosis stages in 125 cases is 33 cases for F0 and F1, 32 cases for F2, 31 cases for F3, and 29 cases for F4.
  • FIG. 29 is a diagram showing the correlation between the progression of fibrosis in the liver and the change in lectin signal intensity obtained by the second rapid measurement method of AGP. Each signal is normalized by the signal of DSA lectin, and the numerical value is expressed as relative signal intensity when the DSA signal is 100%.
  • a second rapid measurement method is performed for 125 cases in which staging of fibrosis (F) is performed by pathological analysis after liver biopsy, and the distribution of lectin signals at each stage is shown by box and whisker plot. ing.
  • the MAL / DSA value is obtained from the 3 types of lectin values obtained by the second rapid measurement method, the upper left is the one made into a box and whiskers, the AOL / DSA value is obtained, and the one made from the box and whiskers is the lower left. is there.
  • the upper and lower ends of the box indicate 75% and 25% points, respectively, and the upper and lower ends of the whiskers indicate 95% and 5% points, respectively.
  • the horizontal lines in the box indicate the median, and x indicates the mean.
  • the results are all very similar to the results of the lectin array, and the signal of AOL increases in strength with the progress of fibrosis, and it is necessary to sufficiently distinguish chronic hepatitis (F0-3) and cirrhosis (F4) by the difference in strength.
  • Cirrhosis was attempted to be detected by the second rapid measurement method in the same procedure as detection of cirrhosis with the lectin array shown in Example 3.
  • Let the point on the curve at the closest distance from the 100% sensitivity and 100% specificity point, in other words, the line parallel to the Y X straight line, and the ROC curve be the “optimum specificity and sensitivity”, A cutoff value was set around it.
  • the combination formula (AOL / DSA ⁇ 1.8-MAL / DSA) that is most suitable for detecting cirrhosis is determined from the cut-off values for the individual lectins obtained, whereby hepatitis and cirrhosis are confirmed by pathological diagnosis or imaging / clinical diagnosis. A blind test was conducted on 45 patients and 45 patients.
  • Example 7 Discrimination of liver fibrosis progress by antibody overlay / lectin array analysis of liver disease condition index sugar chain marker candidate glycoprotein M2BP As in Example 2, M2BP was also obtained by antibody overlay / lectin array analysis From the lectin signal information, it was found that each liver disease could be detected. Therefore, experiments were conducted to investigate the correlation with liver fibrosis.
  • the antibody overlay / lectin microarray was performed according to the procedure of Example 2 for 125 cases of patients suffering from the hepatitis virus used in the AGP experiment, pathologically diagnosed by liver biopsy, and staging of fibrosis.
  • a graph showing correlation with the progress of fibrosis was created for six lectins in which a signal change accompanied with the progress of fibrosis was recognized by a significant difference test. It is shown in FIG.
  • the distribution of lectin signals at each stage was shown by box and whisker plots.
  • the upper and lower ends of the box indicate 75% and 25% points, respectively, and the upper and lower ends of the whiskers indicate 95% and 5% points, respectively.
  • the horizontal lines in the box indicate the median, and x indicates the mean.
  • the vertical axis of each graph is a relative value when the signal of DSA is 100%.
  • RCA120, AAL, TJAII, WFA and BPL increased with the progress of fibrosis, while the signals of LEL decreased with the progress of fibrosis.
  • RCA120 and AAL are considered to be suitable in terms of monitoring the progress of fibrosis.
  • TJAII, WFA, and BPL this is the type in which a signal is produced for the first time when liver cirrhosis (F4) occurs.
  • F4 liver cirrhosis
  • Example 8 Enclosure of liver cancer carcinogenic high risk group by detection of sugar chain change of M2BP Enclosure 1. Selection of Lectin Suitable for Hepatocarcinogen Carcinogenesis High Risk Group Enclosure In Example 7, a lectin group whose signal intensity increased with liver fibrosis was found. In order to select among those lectin groups that could enclose the high-risk group for carcinogenesis, we conducted antibody overlay / lectin microarray analysis of M2BP targeting seven cases of serum before and after surgery for patients with hepatocellular carcinoma. The experimental procedure followed Example 1.
  • the hepatocellular carcinoma marker AFP blood amount and the benign disease / hepatocellular carcinoma differential marker AFP which are known are fully known by a fully automatic fluorescence immunoassay device ( ⁇ TAS Wako i30; manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) and a dedicated reagent. Measurement of L3% was also performed. A partial lectin signal pattern of the results is shown in FIG. All parameters, including AFP-L 3%, did not necessarily show postoperative signal reduction in all 7 cases. This means that none of them is a cancer detection marker. The purpose of this experiment is to select high-risk group closure marker candidates for hepatocellular carcinoma carcinogenesis. In that respect, it is desirable that the pattern be similar to AFP-L 3%. As expected in Example 7, WFA, BPL lectin was similar to the pattern of AFP-L 3%. And since WFA was stronger and stable in signal intensity than BPL, WFA was selected as a potent lectin.
  • the WFA-binding M2BP is used as a liver cancer carcinogenic high risk group closure marker, and as a best mode for detecting the biomarker, the biomarker contained in serum can be applied clinically with clinically acceptable performance and clinically applicable
  • a method of detecting and discriminating by simple means is conceivable. The following shows, as an example, the results of sandwich detection analysis using an anti-M2BP antibody overlay-WFA well plate (see FIG. 33). In the present method, serum can be added directly to the WFA well plate.
  • M2BP glycoprotein contained in serum that can bind to WFA
  • M2BP is one of the molecules with the highest blood concentration.
  • a detection agent (goat anti-M2BP polyclonal antibody solution; manufactured by R & D Systems) prepared in advance with a washing solution to 1.0 ⁇ g / mL was added thereto in an amount of 50 ⁇ l per well, and an antigen-antibody reaction was performed at room temperature for 2 hours.
  • the vertical axis represents normal subject serum as a negative control (N), and is represented by the S / N ratio.
  • N negative control
  • WFA binding M2BP is useful as a liver cancer carcinogenic high risk group enclosure marker, and it was able to develop an anti-M2BP antibody overlay-WFA well plate as a simple measurement system which detects it.
  • Example 9 Verification of influence of sample heat treatment on detection of WFA-bound M2BP by ELISA method In WFA-bound M2BP detection by ELISA method, the influence of the presence or absence of sample heat treatment on detection sensitivity was confirmed.
  • a human hepatoma-derived cell line (HepG2 culture supernatant) was diluted 10-fold with 0.2% SDS-containing PBS buffer and heat-treated at 95 ° C. for 10 minutes.
  • Example 10 Measurement of M2BP by Second Rapid Measurement Method Preparation of reagent Preparation of R1 reagent: solution containing 10 mM HEPES (pH 7.5), 150 mM NaCl, 0.01 mM MnCl 2 , 0.1 mM CaCl 2 , 0.08 w / v% NaN 3 (buffer C) was prepared and used as R1 reagent.
  • R2 reagent Magnetic particles (number-average particle diameter 2 ⁇ m) (hereinafter referred to as streptavidin-sensitized magnetic particles) having commercially available streptavidin fixed to buffer C have a concentration of 0.5 w / v% To which was added biotinylated lectin solution (WFA). The mixture was stirred at room temperature for 30 minutes. After stirring, the magnetic particles were collected by collecting the magnet with a magnet, and the solution component was discarded.
  • WFA biotinylated lectin solution
  • buffer D (10 mM HEPES (pH 7.5), 150 mM NaCl, 0.01 mM MnCl 2 , 0.1 mM CaCl 2 , 0.1% W / V BSA, A solution containing 0.08 w / v% of NaN 3 ) was added so that the concentration of magnetic particles was 0.5 w / v%.
  • R3 reagent 0.1 U / mL of Recombinant ALP-labeled mouse anti-M2BP monoclonal antibody, 0.1 M MES (2- (N-Morpholino) ethanolic acid, pH 6.5), 0.15 M NaCl, 1 mM MgCl 2.
  • the operation setting of the fully automatic immunoassay apparatus HISCL2000i (manufactured by Sysmex Corporation) was changed to the following conditions, and the chemiluminescence intensity (photo count value) was measured for each diluted sample.
  • the magnetic particles were collected by magnetic separation, and the solution was sucked and discarded.
  • the washing reagent was dispensed, the magnetic particles were dispersed and washed in the washing reagent, the magnetic particles were magnetically separated by magnetic separation, and the process of sucking and discarding the solution was repeated three times.
  • 50 ⁇ L of R4 reagent was aliquoted, and then 100 ⁇ L of R5 reagent was aliquoted to measure the chemiluminescence intensity.
  • the measurement results of the supernatant of HepG2 cultured cells are shown in Table 11 and FIG. 36, and the measurement results of Recombinant Human Galectin-3BP / MAC-2BP are shown in Table 12 and FIG. As shown in these measurement results, the WFA measurement system showed good dilution linearity.
  • the present invention can be used for manufacturing a device, apparatus or kit for determination of liver disease or liver disease condition, discrimination of liver disease condition, detection of liver cirrhosis and the like.

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Abstract

本願発明は、従来よりも高い精度で肝疾患を検出できる糖鎖マーカー糖タンパク質の測定方法を提供することを課題とする。また、本願発明は、従来よりも高い精度で肝疾患を検出できる肝疾患の検査方法を提供することを課題とする。また、本願発明は、上記測定方法に用いる糖タンパク質定量用試薬を提供することを課題とする。さらに、本願発明は、肝疾患の進行に応じた肝疾患病態を区別できる肝疾患病態指標糖鎖マーカー糖タンパク質を提供することを課題とする。被験者より採取された試料に含まれるalpha-1-acid glycoprotein（ＡＧＰ）およびMac-2-binding protein（Ｍ２ＢＰ）から選択される少なくとも一つの糖タンパク質の測定方法であって、糖タンパク質がＡＧＰの場合には、ＡＯＬおよびＭＡＬから選択される第１レクチンに結合するＡＧＰを測定し、糖タンパク質がＭ２ＢＰの場合には、ＷＦＡ、ＢＰＬ、ＡＡＬ、ＲＣＡ１２０およびＴＪＡＩＩから選択される第２レクチンに結合するＭ２ＢＰを測定する糖タンパク質の測定方法。

Description

糖タンパク質の測定方法、肝疾患の検査方法、糖タンパク質定量用試薬および肝疾患病態指標糖鎖マーカー糖タンパク質
　本願発明は、alpha-1-acid glycoprotein（ＡＧＰ）およびMac-2-binding protein（Ｍ２ＢＰ）から選択される少なくとも一の糖タンパク質の測定方法、ＡＧＰおよびＭ２ＢＰから選択される少なくとも一の糖タンパク質を用いた肝疾患の検査方法、および糖鎖の違いにより、肝細胞がん及び炎症・線維化といった背景肝の状態を検出することができる糖鎖マーカー糖タンパク質に関する。
　肝臓がんは、肝臓で発生する原発性肝がんと、転移性肝がんに大きく分けることができ、原発性肝がんの90％が肝細胞がんであるといわれている。
　肝細胞がん患者は、基礎疾患として、C型肝炎ウイルス、又はB型肝炎ウイルスに感染している場合が多く、急性ウイルス性肝炎から、慢性ウイルス性肝炎、肝硬変へと進行し、ウイルス性肝炎に罹患した後、長期間経過後、初めてがん化することが多い。肝硬変では、炎症と再生を繰り返すことにより、正常な肝細胞が減少し、線維組織から構成される臓器へと変化する。例えば、C型肝炎患者は、わが国だけでも300万人、中国やアフリカでは、1000万以上とも言われている。また、B型・C型肝炎患者の場合、慢性肝炎からの発がん率は、慢性肝炎軽度（F1）では年率0.8%、慢性肝炎中度（F2）では年率0.9%であるが、慢性肝炎重度（F3）になると年率3.5%になり、更に肝硬変（F4）からがんとなる確率は、年率7%にも上昇する（図1,2）。又肝疾患は、病態の進行に伴い、まず慢性肝炎で機能が消失し始め、肝硬変で病的構造が現れ、肝臓の線維化が進むなど、組織像が変化する(図3)。
　がん治療においては、がんの早期発見が重要で、肝細胞がんの場合も早期のがん発見が治療、術後予後に大きく影響している。肝切除治療による5年生存率は、ステージIであれば80％のところ、ステージIVでは38%に過ぎない。
　肝がんマーカーとしては、現在までに、α-フェトプロテイン（AFP）やprotein induced by Vitamin K absence or antagonist-II（PIVKA-II）が知られている(特許文献1，2)が、その特異性、感度とも十分ではない。そのため、現在は、肝がん早期発見のために検診は、肝がんマーカーと、超音波検査、コンピューター断層撮影（CT）、核磁気共鳴画像法（MRI）など画像検査によりおこなわれている。
　また、非特許文献１には、血清中のフコシル化ＡＧＰを、ＡＡＬレクチンを用いて測定し肝硬変を検出する試みが記載されている。しかし、非特許文献１記載の技術は、その表２に記載された結果から理解されるように、感度が６６％程度であるにもかかわらず特異度が８７％程度であり、正診率７７％程度であるため肝疾患検出性能の観点で満足できるものではない。
　また、非特許文献２には、健常者、急性肝炎患者、慢性肝炎患者、肝硬変患者および肝細胞がん患者の血清中のアシアロＡＧＰを、ＲＣＡレクチンを用いたイムノクロマトグラフィーによって測定し、各肝疾患を陽性判別できるか否かの実験を行ったことが記載されている。しかし、非特許文献２記載の技術は、その表２に記載された結果から理解されるように、肝硬変に着目するとその感度は８８％程度であるものの慢性肝炎患者における擬陽性率が６３％になってしまい、肝疾患検出性能の観点で満足できるものではなかった。
特開平10－26622号 特開平8-184594号
Ingvar Ryden等、Diagnostic Accuracy of α1-Acid Glycoprotein Fucosylation for Liver Cirrhosis in Patients Undergoing Hepatic Biopsy、Clinical Chemistry 48:12、2195-2201 (2002) Eun Young Lee等、Development of a rapid, immunochromatographic strip test for serum asialo α1-acid glycoprotein in patients with hepatic disease、Journal of Immunological Methods 308 (2006) 116-123
　本願発明は、従来よりも高い精度で肝疾患を検出できる糖鎖マーカー糖タンパク質の測定方法を提供することを課題とする。また、本願発明は、従来よりも高い精度で肝疾患を検出できる肝疾患の検査方法を提供することを課題とする。また、本願発明は、上記測定方法に用いる糖タンパク質定量用試薬を提供することを課題とする。さらに、本願発明は、肝疾患の進行に応じた肝疾患病態を区別できる肝疾患病態指標糖鎖マーカー糖タンパク質を提供することを課題とする。
　被験者より採取された試料に含まれるalpha-1-acid glycoprotein（ＡＧＰ）およびMac-2-binding protein（Ｍ２ＢＰ）から選択される少なくとも一つの糖タンパク質の測定方法であって、糖タンパク質がＡＧＰの場合には、ＡＯＬおよびＭＡＬから選択される第１レクチンに結合するＡＧＰを測定し、糖タンパク質がＭ２ＢＰの場合には、ＷＦＡ、ＢＰＬ、ＡＡＬ、ＲＣＡ１２０およびＴＪＡＩＩから選択される第２レクチンに結合するＭ２ＢＰを測定する糖タンパク質の測定方法。
　本願発明の測定方法により、高い信頼性で肝硬変などの肝疾患の検査を行うことが可能な糖鎖マーカー糖タンパク質を簡便に測定することができる。
　更に本願発明の肝疾患病態指標糖鎖マーカー糖タンパク質により、既存のマーカーよりも正診率が高く、かつ微量の血清により検査が可能となり、肝線維化進展モニタリングが可能となって病態進展の把握が可能になるばかりでなく、インターフェロンをはじめとする抗ウイルス療法後の肝線維化や炎症の改善を評価することができる。
C型肝炎感染から肝細胞がんへと至るまでの時間経過と肝の状態の変化を示す図である。 慢性肝炎からの肝細胞がん発がん率を示す図である。 肝硬変の肝細胞がん発がん率を示す図である。 背景肝組織の変化と発がんとの関係を示す図である。 感染から発がんへ至るまでの肝の構造変化を示す図である。 肝の状態変化と診断治療スキームとの関係を示す図である。 レクチンマイクロアレイを基軸としたバイオマーカー候補分子の検証実験手順を表す図である。 肝疾患病態指標マーカー糖タンパク質の一つであるα１酸性糖タンパク質（AGP）について、抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイにより比較糖鎖解析を行った結果を示す図である。 肝疾患病態指標マーカー糖タンパク質の一つである90K/Mac-2 Binding Protein（M2BP）について、抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイにより比較糖鎖解析を行った結果を示す図である。 肝臓の線維化進展とAGPの抗体オーバーレイ・レクチンアレイ解析により得られたレクチンシグナル強度の変化との相関を示す図である。 肝疾患病態指標糖鎖マーカーであるAGPの抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイ解析による肝硬変の検出スキームを表す図である。 肝臓の線維化進展をモニタリングできるマーカーとしてＡＧＰを用いたインターフェロンの治療効果判定を示す図である。 第１迅速測定方法でＤＳＡを用いた場合の希釈直線性を示す図である。 第１迅速測定方法でＭＡＬを用いた場合の希釈直線性を示す図である。 第１迅速測定方法でＡＯＬを用いた場合の希釈直線性を示す図である。 第１迅速測定方法で市販検体に対してＭＡＬを用いた場合の測定結果を示す図である。 第１迅速測定方法で市販検体に対してＡＯＬを用いた場合の測定結果を示す図である。 レクチンアレイ法で市販検体に対するＭＡＬによる測定結果を示す図である。 レクチンアレイ法で市販検体に対するＡＯＬによる測定結果を示す図である。 第２迅速測定方法でＤＳＡを用いた場合の希釈直線性を示す図である。 第２迅速測定方法でＭＡＬを用いた場合の希釈直線性を示す図である。 第２迅速測定方法でＡＯＬを用いた場合の希釈直線性を示す図である。 第２迅速測定方法で市販検体に対してＭＡＬを用いた場合の測定結果を示す図である。 第２迅速測定方法で市販検体に対してＡＯＬを用いた場合の測定結果を示す図である。 第２迅速測定方法で臨床検体に対してＭＡＬを用いた場合の測定結果を示す図である。 第２迅速測定方法で臨床検体に対してＡＯＬを用いた場合の測定結果を示す図である。 レクチンアレイ法で臨床検体に対するＭＡＬによる測定結果を示す図である。 レクチンアレイ法で臨床検体に対するＡＯＬによる測定結果を示す図である。 HCV感染患者血清１２５症例分を対象に第２迅速測定法で測定した結果を示す図である。 健常者１００検体分を対象にレクチンアレイ法と第２迅速測定法で測定した結果を比較した図である。 肝臓の線維化進展とM2BPの抗体オーバーレイ・レクチンアレイ解析により得られたレクチンシグナル強度の変化との相関を示す図である。 肝細胞がん患者術前術後の血清中M2BP上糖鎖変化を示す図である。 WFA結合性M2BPを検出するための最良の形態であるレクチン―抗体サンドイッチELISAのモデルを示す図である。 肝臓がん患者術後血清中WFA結合性M2BP量の経時的変化を示す図である。 ＥＬＩＳＡ法によるＷＦＡ結合性Ｍ２ＢＰ検出において、検体加熱処理の有無が検出感度に及ぼす影響を示す図である。 第２迅速測定法によるＭ２ＢＰの測定において、試料としてＨｅｐＧ２培養細胞の上清を用いた場合の、ＷＦＡを用いる測定系の希釈直線性を示す図である。 第２迅速測定法によるＭ２ＢＰの測定において、試料としてＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ　Ｈｕｍａｎ　Ｇａｌｅｃｔｉｎ－３ＢＰ／ＭＡＣ－２ＢＰを用いた場合の、ＷＦＡを用いる測定系の希釈直線性を示す図である。
１．慢性肝疾患の現状
１－１．肝疾患の病態
　B型肝炎ウイルス又はC型肝炎ウイルスに感染すると、急性期炎症から5－15年をかけて慢性期炎症へと進行する。特に慢性期に移行したC型肝炎が自然に治癒する事は稀で、肝機能の低下が進行し肝硬変に至る。C型肝炎感染から肝細胞がんへと至るまでの時間経過と肝の状態の変化を図１に示す。慢性肝炎から肝硬変に至る病態を定義するため、肝臓のグリソン領域及び肝小葉に出現する線維性変化を病理形態学的に捉えて、軽度（F1）、中度（F2）、重度（F3）、肝硬変期（F4）に分類する。線維化の進展は肝細胞がん発がんのリスク上昇と相関しており、図２に示されるようにF1もしくは2である場合年率1％以下であるのに対し、F3である場合には年3－4％に上昇する。線維化の程度がより進展した組織像を確認して診断される肝硬変(F4)では、図３に示されるように年率7％程度の確率で肝細胞がんが出現する。従って肝細胞がんを効率良く発見して治療するためには、特にF3およびF4の状態にある患者を簡便に選別して、精密検査対象者としてフォローすることが重要である。
　我が国のB型およびC型肝炎患者医療給付事業は専ら、肝生検標本に対する病理組織学的診断によって決定される線維化の程度F1～3を対象とする。その一方、F4と診断される場合には、肝硬変に分類されるため、インターフェロン治療に対するB型およびC型肝炎患者医療給付事業では、一部のみ助成対象となるが、満足のいく治療成績は得られない。
１－２．抗ウイルス療法による線維化抑制の評価
　C型慢性肝炎に対しては、PEG-IFN+RBV療法、C型肝硬変代償期に対してインターフェロン単独投与が適応されている。一方、B型肝炎（慢性肝炎、肝硬変）に対する治療としては核酸アナログが主体であり、炎症や線維化評価マーカーは必須と思われる。特に、血清バイオマーカーは診断・評価目的に幅広く臨床応用されることが期待される。
１－３．肝細胞がん
　肝細胞発がんには、 B型肝炎ウイルスもしくはC型肝炎ウイルス感染による微生物学的因子と、環境因子が大きく交互に作用すると考えられている。わが国において、肝細胞がん患者の約9割は、B型あるいはC型肝炎ウイルスの感染既往があり、慢性肝炎・肝硬変患者に発生している事が知られている。肝細胞がんの発がん危険因子には、ウイルス以外にも、男性、高齢、アルコール多飲、タバコ、カビ毒の一つであるアフラトキシンなどが指摘されている。（肝がん診療ガイドライン、財）国際医学情報センター）
１－４．肝細胞がんの早期診断
　肝細胞がんの発見は、現在のところ、被験者からの血清サンプル中のAFPやPIVKA-IIなどの肝臓がんマーカーの測定、及び超音波検査（エコー検査）を中心とした画像診断が主として用いられている。画像診断としては、最初の検査として、超音波検査又はCTを用い、これらで何らかの異常が見いだされときには、更にMRIや血管造影をするのが通常である。
１－５．肝細胞がん予防の観点から発がん高リスク群の囲い込み
　肝細胞がん患者の約9割が、B型肝炎ウイルスもしくはC型肝炎ウイルス感染による肝炎患者から発生する我が国においては、ウイルス感染と肝機能低下を指標として、精密検査の対象となる患者を囲い込む事は可能である。
　しかしながら、年率7％程度の確率で肝細胞がんが出現する肝硬変(F4)患者であったとしても、早期がんを発見して治療するため、3ヶ月おきに高額で侵襲性の高い精密検査を繰り返す事は、経済的にも身体的にも患者の負担は大きいと言わざるを得ない。年3－4％の発がん率であるF3である場合にはなおさらである。さらには、インターフェロンによるC型肝炎ウイルス治療の成功率が5割程度であることを考慮すると、かなりの人数に上るインターフェロン治療が奏功しなかった慢性肝炎患者には、肝硬変および肝細胞発がんへ至るどの位置にあるのかを明確にして臨床的フォローアップをすることが必要である。つまり現在の肝炎～肝細胞がんに至る疾病の治療においては、血液検査などの簡易な検査によって肝炎～肝硬変患者に対して発がんリスクの重み付けを行ない、それに見合った肝細胞がんの診断治療を実施することが必要な状況にある。
　臨床病理学的には、線維化の程度が肝硬変および肝細胞発がんのリスクと相関する事から、我々は、線維化の進展を血清学的に定量的に測定できる検査技術の開発に、この問題解決の可能性を見いだしている。図４に示されるように、肝臓に生じたC型肝炎ウイルス感染は、障害された肝細胞の再生と瘢痕修復としての線維化を惹起する。肝臓の線維化が進むにつれて発がんのリスクが高まることから、「線維化の程度」は、発がんへと向かう指標となる。がんを生じる背景肝組織では、構成細胞が変化することから、線維化の進展に伴って糖鎖変化を生じることが予測される。図５に示されるように、感染から経時的に発がんへ至るが、この時、肝には正常構造や機能の恒常的活動性の喪失が観察され、同時に線維化を特徴とする病的構造の出現をみる。肝細胞がんは、早期肝細胞がんから古典的肝細胞がんへ進展して細胞の性質が変化する事が知られており、2cmを超えると早期肝細胞がんのなかに古典的肝細胞がんが出現する。図６に肝の状態変化と診断治療スキームとの関係を示す。慢性肝炎に対しては、ペグインターフェロン/リバビリン併用療法（PEG-IFN+RBV療法）がなされるのに対し、早期肝細胞がんに対してはラジオ波焼灼術（RFA）がなされる。肝硬変に対しては、診断的検査法や、有効な治療法がない。本願発明の糖鎖マーカー糖タンパク質は、慢性肝炎、肝硬変、肝細胞がんを区別できるので、肝硬変に対する新規治療開発における指標となる。また、ファイブロスキャンと共用する事で、線維化の定量的評価が可能となる事が期待されるので、糖鎖マーカー糖タンパク質によって、線維化(F3～4)症例の囲い込みも可能となる。これは、線維化の定量的診断に加えて、肝線維化進展や発がん抑制を目指した治療の臨床導入に際し、治療効果の血清評価マーカーとして活用される事が期待される。
２．新規肝疾患病態指標糖鎖マーカー糖タンパク質の肝疾患特異的糖鎖変化
　本願発明の新規肝疾患病態指標糖鎖マーカー糖タンパク質であるAGPおよびM2BPは、ウイルス感染による疾患の発症と進展において生じる慢性肝炎、肝硬変、肝細胞がんを特徴づける糖鎖変化を生じることが見出された。このような、ウイルス性肝疾患の病態進行に伴う糖鎖変化を指標として、肝疾患病態を特定できるマーカー糖タンパク質を肝疾患病態指標糖鎖マーカーと呼ぶ。
　本願発明の新規肝疾患病態指標糖鎖マーカーであるAGPおよびM2BPの糖鎖変化検出は、ウイルス性肝疾患のそれぞれの病態、つまり、肝細胞がん、肝硬変、肝線維化（F3及びF4マーカー)、あるいは慢性肝炎に特徴的で各疾患の鑑別に有効である。しかしながら、これらマーカーの糖鎖変化は疾患の種類や進展度合いにより種類や比率を異にする。したがってマーカーを活用しそれぞれの対象に特化した検出キットを構築するためには、疾患特異的糖鎖変化を反映するレクチンプローブの統計学的な選抜が必要である。
３．糖鎖マーカー糖タンパク質の肝疾患特異的糖鎖変化の検証
　AGPおよびM2BP上に存在する糖鎖の疾患特異的な変化は後述するレクチンアレイにより検証する。より好ましくは抗体オーバーレイ・レクチンアレイ法を用いる。上記マーカー糖タンパク質をレクチンアレイを用いて測定した結果をもとに、1)病気の進み具合に応じてどのレクチンシグナルにどの程度の測定値変化が見られるのか、2)測定値の変化は、どの病期（初期か晩期か）にもっとも顕著となるのか、3）測定値変化の情報は、疾病のコントロールに資するかどうかを検討し、有用性を評価し、どの肝疾患病態に適したマーカーであるかを検証する。
　糖鎖マーカー糖タンパク質を肝線維化進展モニタリングや、肝硬変検出のために利用するのに適したレクチンプローブを選抜するより具体的な方法を以下に記す。
（ウイルス性）肝炎患者、肝硬変患者、及び肝細胞がん患者の血清より捕集した糖タンパク質（AGPおよびM2BP）に対して抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイ等による比較糖鎖プロファイリングを行う。まず、（ウイルス性）肝炎患者、慢性肝炎、肝硬変患者、及び肝細胞がん患者から血液試料を採取する。採取されたそれぞれの血液試料から、AGPおよびM2BPについて、抗体を用いた免疫沈降により濃縮精製し、抗体オーバーレイ・レクチンアレイを用いて、肝疾患病態の糖鎖マーカー糖タンパク質として使用できることを確認する。より具体的には、図7に示したように、肝炎ウイルス罹患患者血清を対象にAGPおよびM2BPについて比較糖鎖解析を行う。AGPおよびM2BPはそれぞれ抗AGP抗体および抗M2BP抗体を用いた免疫沈降法により簡易にエンリッチされる。レクチンマイクロアレイは高感度な比較糖鎖解析装置であり、100ナノグラム程度のタンパク質調製量で十分分析が可能であることから、上述の前処理はミニスケールで行うことが可能である。エンリッチされたAGPおよびM2BPは速やかにレクチンマイクロアレイに添加され、一定時間反応後、抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイ法によりAGPおよびM2BPの糖鎖プロファイルを取得する。この際、レクチンアレイに添加するタンパク質量はタンパク質により異なるが、おおむねナノグラムから数十ナノグラム程度である。統計解析に耐えうるだけの検体数についてアレイ解析を行った後、そのデータセットを用いてStudent-T testなどの2群比較解析を実施する。それにより、客観的に病態変化によりシグナルに有意差を生じるレクチンを選抜することが可能になる。レクチンマイクロアレイとしては、たとえば、後に示す表２に記載のレクチンの一部または全部を含む複数のレクチンを固相化したレクチンマイクロアレイを用いることができ、更に具体的には、Kuno A., et al. Nat. Methods 2,851-856(2005).に記載のレクチンマイクロアレイまたはGPバイオサイエンス社製のLecChipを用いることができる。又抗体としては、表１に記載の抗体を用いることができる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
３－１レクチンマイクロアレイ（単にレクチンアレイとも呼ぶ）
　レクチンアレイは、複数種の特異性の異なる判別子（プローブ）レクチンを1つの基板上に並列に固定（アレイ化）したもので、分析対象となる複合糖質にどのレクチンがどれだけ相互作用したかを一斉に解析できるものである。レクチンアレイを用いることで、糖鎖構造推定に必要な情報が一度の分析で取得でき、かつ、サンプル調製からスキャンまでの操作工程は迅速かつ簡便にできる。質量分析などの糖鎖プロファイリングシステムでは、糖タンパク質をそのまま分析することはできず、あらかじめ糖ペプチドや遊離糖鎖の状態にまで処理をしなければならない。一方、レクチンマイクロアレイでは、例えば、コアタンパク質部分へ直接蛍光体を導入するだけで、そのまま分析できるという利点がある。レクチンマイクロアレイ技術は、本発明者等が開発したもので、その原理・基礎は、例えば、Kuno A., et al. Nat. Methods 2,851-856(2005).に記載されている。
　レクチンアレイに用いるレクチンとしては、次の表２に記載のものが挙げられる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-I000003
　例えば、45種類のレクチンを基盤に固定化したレクチンアレイ（GPバイオサイエンス社製のLecChip）が既に商用上入手可能である。
３－２レクチンアレイによる糖鎖プロファイルの統計解析
　レクチンアレイは、現在では、精製標品だけでなく、血清や細胞ライセートなどの混合試料の定量比較糖鎖プロファイリングができる実用化技術にまで発展してきている。特に細胞表層糖鎖の比較糖鎖プロファイリングはその発展がめざましい（Ebe, Y. et al. J. Biochem. 139, 323-327(2006)、Pilobello, K.T. et al. Proc Natl Acad Sci USA.104,11534-11539(2007)、Tateno, H. et al. Glycobiology 17, 1138-1146(2007)）。
　また、糖鎖プロファイルの統計解析によるデータマイニングについては、例えば、「Kuno A, et al. J Proteomics Bioinform. 1, 68-72(2008).」、あるいは、「日本糖質学会2008/8/18レクチンマイクロアレイ応用技術開発～生体試料の比較糖鎖プロファイリングと統計解析～久野敦、松田厚志、板倉陽子、松崎英樹、成松久、平林淳」および「Matsuda A, et al. Biochem Biophys Res Commun. 370, 259-263(2008).」に示される方法で行うことができる。
３－３抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイ法
　レクチンマイクロアレイのプラットフォームは基本的に上記の通りとし、検出に際しては上記被検体を直接蛍光などで標識するのではなく、抗体を介して間接的に蛍光基などを被検体に導入することで、一斉に多検体に対する分析を簡便、高速化することができる応用法である（「Kuno A, Kato Y, Matsuda A, Kaneko MK, Ito H, Amano K, Chiba Y, Narimatsu H, Hirabayashi J. Mol Cell Proteomics. 8, 99-108(2009)」、「平林淳、久野敦、内山昇「レクチンマイクロアレイを用いた糖鎖プロファイリング応用技術の開発」、実験医学増刊「分子レベルから迫る癌診断研究～臨床応用への挑戦～」、羊土社、Vol25(17)164-171(2007)」、久野敦、平林淳「レクチンマイクロアレイによる糖鎖プロファイリングシステムの糖鎖バイオマーカー探索への活用」、遺伝子医学MOOK11号「臨床糖鎖バイオマーカーの開発と糖鎖機能の解明」、pp.34-39、メディカルドゥ（2008）参照）。
　糖タンパク質（AGPおよびM2BP）が被検体であれば糖鎖部分はレクチンマイクロアレイ上のレクチンによって認識されるため、コアタンパク質部分に対する抗体（抗AGP抗体および抗M2BP抗体）をその上から被せる（オーバーレイ）ことによって、被検糖タンパク質を標識したり、あるいは高度に精製したりすることなく、特定的に感度高く検出することができる。
３－４レクチンオーバーレイ・抗体マイクロアレイ法
　レクチンマイクロアレイの代わりにコアタンパク質に対する抗体をガラス基板などの基板上に並列に固定（アレイ化）した抗体マイクロアレイを用いる方法である。調べるマーカーに対するだけの数の抗体が必要である。糖鎖変化を検出するレクチンをあらかじめ確定することが必要である。
４．肝疾患病態指標糖鎖マーカーの疾患特異的糖鎖変化を利用する肝疾患の検出方法
　AGPおよびM2BPは、線維化の進展などの肝疾患の病態変化に伴い糖鎖構造が変化する新規肝疾患病態指標糖鎖マーカーである。このためＡＧＰおよびＭ２ＢＰ糖鎖構造の変化に対応して反応性が変化するレクチン（以下、レクチン“Ａ”と略す）と、被験者から採取した試料に含まれるマーカーとを反応させ、レクチンに反応したマーカーを測定することにより、肝疾患の病態を判別したり、肝の線維化の度合いを判定したりすることができる。
　例えば、新規肝疾患病態指標糖鎖マーカーの検出は、
（１）（イ）上記レクチン“A”及び（ロ）上記マーカーの糖鎖以外の部分(コアタンパク質)を検出する抗体を用いて実施することができる。また（２）肝疾患病態指標糖鎖マーカーに対する特異的な抗体であって、糖鎖結合部分を含む個所ををエピトープとする抗体を用いて肝疾患病態指標糖鎖マーカーを検出することができる。
　例えば、マーカーのコアタンパク質に対する抗体及びレクチン“A”を用いて、マーカーを検出することにより、肝疾患患者を健常人と区別して検出することができ、好適には、レクチンアレイを用いる抗体オーバーレイ法(「Kuno A, Kato Y, Matsuda A, Kaneko MK, Ito H, Amano K, Chiba Y, Narimatsu H, Hirabayashi J. Mol Cell Proteomics. 8, 99-108(2009)）を用いることができる。３の疾患特異的糖鎖変化の検証試験で１つないし２つ以上の最適なレクチン“A”が選抜されている場合、後述する第１または第２迅速測定方法を用いるのがより好適である。
たとえば、新規肝疾患病態指標糖鎖マーカーを用いる具体的な肝疾患の検出方法としては、
１）被験者から採取された試料中のレクチン“A”と特異的に反応する糖鎖を有する肝疾患病態指標糖鎖マーカーを測定する工程、
２）健常者から採取された試料中のレクチン“A”と特異的に反応する糖鎖を有する肝疾患病態指標糖鎖マーカーを測定する工程、
３）肝疾患患者から採取された試料中のレクチン“A”と特異的に反応する糖鎖を有する肝疾患病態指標糖鎖マーカーを測定する工程、
及び
４）被験者から得られた肝疾患病態指標糖鎖マーカーの測定結果と健常者又は肝疾患患者から得られた肝疾患病態指標糖鎖マーカーの測定結果を比較し、被験者の測定結果がより肝疾患患者の測定値に近い場合に肝疾患であると判別する工程を含む肝疾患の検出方法が挙げられる。
　また、多数の肝疾患患者および健常者の測定結果に基づいて、予め肝疾患を判別するための閾値を設定しておき、被験者の測定値を閾値と比較して被験者が肝疾患であるか否かを判定するようにしてもよい。
４－１．線維化の進展測定方法
　肝炎ウイルス感染による肝炎の進展に於いて、線維化の程度は、肝機能低下及び肝細胞発がんのリスクと相関する事が知られている。したがって線維化の測定は、肝機能低下および発がんリスクを評価することを意味する。また肝炎患者の全体の4割程度は、インターフェロン治療に反応せずウイルス感染が持続する。これらの病態が活動性に進行するか否かは、線維化の進展で判断されるべきであると考えられている。これらの観点から、線維化の進展を測定する事は、肝炎の診断治療に於いて重要な意味を持つ。
　現在行なわれている線維化の評価は、生検標本に対する病理診断による。近年、ファイブロスキャンの導入されたことで、当該方法が普及する事が期待される。また線維化を血清学的に評価する方法として、Fibro Test、Forn`s index、Hepatoscoreなどが臨床的に使用されているが、生検診断に比べて感度と特異度のいずれも劣る。
　AGPおよびM２BPについて、線維化の進展度合いの異なる患者血清群を用いて、抗体オーバレイ・レクチンマイクロアレイにより線維化の進展度合いに相関してシグナル強度が増加もしくは減少するレクチンを選択する。この情報をもとに、マーカー候補分子に対する抗体および線維化の進展でシグナル変動するレクチン“A”を用いたサンドイッチ検出方法、たとえばレクチン―抗体サンドイッチELISAや抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイ法が確立できる。病理診断により線維化のステージングがされている患者血清を100程度収集し、それらについて分析を行い、各ステージにおけるカットオフ値を設定することにより、被患者血清を用い、肝線維化の進展をモニタリングすることができる。
　また、レクチン“A”として、ＡＧＰについては、ＡＯＬおよびＭＡＬから選択される第１レクチンを挙げることができ、Ｍ２ＢＰについては、ＷＦＡ、ＢＰＬ、ＡＡＬ、ＲＣＡ１２０およびＴＪＡＩＩから選択される第２レクチンを挙げることができる。以下、ＡＯＬおよびＭＡＬから選択されるレクチンを第１レクチンと呼ぶことがあり、ＷＦＡ、ＢＰＬ、ＡＡＬ、ＲＣＡ１２０およびＴＪＡＩＩから選択されるレクチンを第２レクチンと呼ぶことがある。　
　例えば、少なくとも第１レクチンが固定された第１レクチンアレイと、抗ＡＧＰ抗体とを用いて、第１レクチンに結合するＡＧＰを測定することができ、少なくとも第２レクチンが固定された第２レクチンアレイと、抗Ｍ２ＢＰ抗体とを用いて、第２レクチンに結合するＭ２ＢＰを測定することができる。
４－２．肝硬変の検出
　肝硬変は、肝小葉構造の消失した再生結節とこれを取り囲む緻密な線維性結合組織が肝全体に瀰漫性に出現する病態と定義される。これは、肝細胞障害と線維化が持続する進行性慢性肝疾患の終末状態でもある。肝硬変における肝生検は成因診断を探るために行なわれるもので、早期の肝硬変や大結節型の肝硬変では診断困難な症例が多い（外科病理学第4版、文光堂より）。したがって、肝硬変を定性的、定量的に診断できる検査技術が必要とされている。この目的に対し、１）の線維化の進展測定方法、の項で見出された線維化の進展をモニタリングできる候補分子抗体およびレクチンセットのうち、線維化ステージF3とF4を見分けることができる場合、肝硬変検出に使用できる。　
４－３．試料中の新規肝疾患病態指標糖鎖マーカー上の疾患特異的糖鎖変化の検出
　試料としては、生検試料、体液試料、好適には、血液（血清、血漿等）が挙げられる。
　測定とは、定性的測定及び定量的測定の両者を包含する。
　肝疾患病態指標糖鎖マーカーの測定は、例えば、（１）レクチン“A”を固定したカラムやアレイ、及び（２）AGPまたはM2BPに対する抗体を用いて行なうことができる。好適には、抗体オーバーレイ・レクチンアレイ法、より好適には迅速第１または第２迅速測定方法を用いることができる。
　また、AGPまたはM2BPの濃度を計測することもでき、これには、レクチンアレイを用いた抗体オーバーレイ・レクチンアレイ法、免疫学的測定法、酵素活性測定法、キャピラリー電気泳動法等が挙げられる。好適には、抗体オーバーレイ・レクチンアレイにより統計学的に選抜された疾患特異的糖鎖変化を最も反映するレクチン“A”とAGPまたはM2BPに特異的なモノクローナル抗体またはポリクローナル抗体を用いた、酵素免疫測定法、２抗体サンドイッチELISA法、金コロイド法、放射免疫測定法、酵素化学発光免疫測定法、電気化学発光免疫測定法、ラテックス凝集免疫測定法、蛍光免疫測定法、ウェスタンブロッティング法、免疫組織化学法、表面プラズモン共鳴法（以下、ＳＰＲ法と記す）等による定性的又は定量的手法を用いることができる。
　更に具体的には、準定量を、レクチン“A”及び抗新規疾患病態指標糖鎖マーカー抗体を用いるウエスタンブロッティング法により行なうこともできる。定性的測定において、前記「被験者の測定結果がより高い場合」とは、正常者より被験者の試料中に新規疾患病態指標糖鎖マーカーがより多く存在することが定性的に示された場合を意味する。更に、抗体を介さない糖鎖の直接測定法としてのレクチン法も含まれる。
　ここで、肝線維化進展に伴うＡＧＰの糖鎖構造の変化に対応して反応性が変化するレクチン“A”としては、抗体オーバーレイ・レクチンアレイ後の統計解析により厳選されたＡＯＬ、ＭＡＬ、又はＡＯＬおよびＭＡＬの併用を挙げることができる。ＡＯＬは、肝線維化進展に伴いＡＧＰの糖鎖に対する反応性が高くなるレクチン群の中で最も有意差を示すレクチンであり、ＭＡＬは、肝線維化進展に伴いＡＧＰの糖鎖に対する反応性が低くなるレクチン群の中で最も有意差を示すレクチンである。このためＡＯＬに結合したＡＧＰの測定値と、ＭＡＬに結合したＡＧＰの測定値の両方を用いると、より正確に被験者の肝疾患の病態を判別することができる。ＡＯＬに結合したＡＧＰの測定値（ＡＯＬ測定値）と、ＭＡＬに結合したＡＧＰの測定値（ＭＡＬ測定値）の両者を用いる方法としては、周知の統計学的手法を採用することができるが、簡便には、ＡＯＬ測定値とＭＡＬ測定値との差や比を用いることができる。なお、ＡＯＬ測定値とＭＡＬ測定値との差や比を用いる場合には、両測定値のスケールを揃えることが好ましく、簡便には、両測定値のカットオフライン値の違いを求めてスケールを補正することができる。例えば、ＭＡＬカットオフライン値とＡＯＬカットオフライン値の比を用いて、ＡＯＬ測定値およびＭＡＬ測定値の何れか一方を補正すれば良い。」ＡＯＬおよび／またはＭＡＬを用いて被験者から採取された試料に含まれるＡＧＰを測定することにより、ＡＧＰを肝の線維化判別マーカー、肝硬変検出マーカーまたは肝細胞がん検出マーカーとして使用することができる。また、これらのレクチン“A”を用いて、インターフェロンなどの治療を行っている患者から採取された試料中のＡＧＰを測定することにより治療効果のモニターを行うことが可能である。
　なお、ＡＯＬやＭＡＬに結合したＡＧＰの測定値は、ＡＧＰの糖鎖構造の変化にかかわらず反応性が実質変化しないレクチンに結合したＡＧＰの測定値を用いて規格化することが好ましい。このようなレクチンとしてはＤＳＡが好ましい。また、被験者から採取した試料に含まれるＡＧＰのコアタンパクの測定値を用いて、ＡＯＬやＭＡＬに結合したＡＧＰの測定値の規格化を行っても良い。また、ＡＯＬ測定値およびＭＡＬ測定値の両者を用いる方法においても、規格化されたＡＯＬ測定値および規格化されたＭＡＬ測定値を用いることが好ましい。例えば、上記第１レクチンアレイおよび第２レクチンアレイとして、それぞれにさらにＤＳＡが固定されてものを用いて、ＤＳＡに結合するＡＧＰを測定し、第１レクチンに結合したＡＧＰの測定値をＤＳＡに結合したＡＧＰの測定値で規格化し、ＤＳＡに結合するＭ２ＢＰを測定し、第２レクチンに結合したＭ２ＢＰの測定値をＤＳＡに結合したＭ２ＢＰの測定値で規格化して、ＡＧＰ及び／又はＭ２ＢＰの測定を行うことができる。　肝の病態変化に伴うＭ２ＢＰの糖鎖構造の変化に対応して反応性が変化するレクチン“A”としては、抗体オーバーレイレクチンアレイ後の統計解析により厳選されたＷＦＡ、ＢＰＬ、ＡＡＬ、ＲＣＡ１２０、および／またはＴＪＡＩＩを挙げることができる。ＷＦＡ、ＢＰＬ、ＡＡＬ、ＲＣＡ１２０、およびＴＪＡＩＩはいずれも肝疾患の病態が進行するに従ってＭ２ＢＰの糖鎖に対する反応性が高くなるレクチンである。ＷＦＡ、ＢＰＬおよびＴＪＡＩＩは、肝細胞がん患者、特に術後がん再発症例のＭ２ＢＰとの反応性が強く、ＷＦＡ、ＢＰＬおよび／またはＴＪＡＩＩを用いて被験者から採取された試料に含まれるＭ２ＢＰを測定することにより、Ｍ２ＢＰを肝細胞がん高リスク群患者囲い込みマーカーとして使用することができる。また、ＡＡＬおよび／またはＲＣＡ１２０を用いて被験者から採取された試料に含まれるＭ２ＢＰを測定することにより、Ｍ２ＢＰを肝の線維化判別マーカー、肝硬変検出マーカーまたは肝細胞がん検出マーカーとして使用することができる。また、肝細胞がんを摘出後の患者に対して、定期的にＷＦＡを用いて、患者から採取された試料中のＭ２ＢＰを測定することにより再発リスクの予測を行うことが可能である。なお、血清中に含まれる糖タンパク質でＷＦＡに結合できる分子が非常に少ないため、測定試料として血清を直接使用することが可能となるため、ＷＦＡは測定系を構築する際の自由度が大きく好ましい。
　なお、ＷＦＡ、ＢＰＬ、ＡＡＬ、ＲＣＡ１２０またはＴＡＪＩＩに結合したＭ２ＢＰの測定値は、Ｍ２ＢＰの糖鎖構造の変化にかかわらず反応性が実質変化しないレクチンに結合したＭ２ＢＰの測定値を用いて規格化することが好ましい。このようなレクチンとしてはＤＳＡが好ましい。また、被験者から採取した試料に含まれるＭ２ＢＰのコアタンパクの測定値を用いて、ＷＦＡ、ＢＰＬ、ＡＡＬ、ＲＣＡ１２０またはＴＡＪＩＩに結合したＭ２ＢＰの測定値の規格化を行っても良い。
　ＡＯＬ、ＭＡＬ、又はＤＳＡに結合したＡＧＰの測定、およびＷＦＡ、ＢＰＬ、ＡＡＬ、ＲＣＡ１２０、又はＴＡＪＩＩに結合したＭ２ＢＰの測定は、抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイ法によって行うことが好ましい。特に、抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイ法は、複数種のレクチンに結合したＡＧＰまたはＭ２ＢＰを同時に測定することができる。　また、レクチン“A”を用いてＡＧＰやＭ２ＢＰなどのマーカーを迅速に測定する場合には、下記の第1又は第２迅速測定方法で測定することが好ましい。
　第１迅速測定方法としては、レクチン“A”にビオチンを結合したビオチン化レクチン“A”と試料を混合し、そこにストレプトアビジンが固定された磁性粒子を添加して、磁性粒子－レクチン“A”－ＡＧＰの複合体を形成し、その複合体に標識抗ＡＧＰ抗体を反応させて、磁性粒子－レクチン“A”－ＡＧＰ－標識抗ＡＧＰ抗体の第２複合体を形成し、第２複合体の標識量を測定することにより上記レクチン“A”に反応するＡＧＰを定量する方法が挙げられる。なお、Ｍ２ＢＰを測定する場合は、標識抗Ｍ２ＢＰ抗体を用いる以外は上記のＡＧＰの測定方法と同様に実施できる。第１迅速測定方法では、試料中のＡＧＰやＭ２ＢＰの定量を６０分程度で行うことが可能である。ビオチン化レクチン“A”とストレプトアビジン固定化磁性粒子を使用すると、試料中のＡＧＰやＭ２ＢＰに対するレクチン“A”の反応性が向上して、ＡＧＰやＭ２ＢＰとレクチン“A”の反応時間を約３０分程度に短縮できる。
　さらに、第２迅速測定方法としては、レクチン“A”を固定化した磁性粒子と試料を混合して試料中のＡＧＰの糖鎖をレクチン“A”で捕捉し、磁性粒子に捕捉されたＡＧＰに標識抗ＡＧＰ抗体を反応させて、磁性粒子－レクチン“A”－ＡＧＰ－標識抗ＡＧＰ抗体の複合体を形成し、複合体の標識量を測定することにより上記レクチン“A”に反応するＡＧＰを定量する方法が挙げられる。第２迅速測定方法においてもＭ２ＢＰを測定する場合には、標識抗Ｍ２ＢＰ抗体を用いる以外は上記のＡＧＰの測定方法と同様に実施できる。第２迅速測定方法では、試料中のＡＧＰやＭ２ＢＰの定量を２０分程度で行うことが可能である。これはレクチン“A”固定化磁性粒子を使用すると、試料中のＡＧＰやＭ２ＢＰに対するレクチン“A”の反応性が著しく向上して、ＡＧＰやＭ２ＢＰとレクチン“A”の反応時間を約５分程度まで短縮できる。
　第１及び第２迅速測定方法は、自動化に適しており、特に第２迅速測定方法は全自動測定装置で好適に実施可能である。第２迅速測定方法を自動化することにより、多検体の連続測定を容易に行うことができる。また、自動化により一つの検体に対する多項目測定（異なるレクチンを用いた測定）を短時間に実行することができる。
　標識抗ＡＧＰ抗体や標識抗Ｍ２ＢＰ抗体の標識としては、蛍光物質や酵素が使用可能である。蛍光物質としては、フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）、グリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、ルシフェリンなどが挙げられる。酵素としては、例えば、アルカリホスファターゼ（ＡＬＰ）、ペルオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、チロシナーゼ、酸性ホスファターゼなどが挙げられる。酵素としてアルカリホスファターゼを用いる場合、公知の発光基質、発色基質などを用いることができ、例えばＣＤＰ－ｓｔａｒ（登録商標）（４－クロロ－３－（メトキシスピロ｛１，２－ジオキセタン－３，２'－（５'－クロロ）トリシクロ［３．３．１．１３，７］デカン｝－４－イル）フェニルリン酸２ナトリウム）、ＣＳＰＤ（登録商標）（３－（４－メトキシスピロ｛１，２－ジオキセタン－３，２－（５'－クロロ）トリシクロ［３．３．１．１３，７］デカン｝－４－イル）フェニルリン酸２ナトリウム）などの化学発光基質、ｐ－ニトロフェニルホスフェート、５－ブロモ－４－クロロ－３－インドリル－リン酸（ＢＣＩＰ）、４－ニトロブルーテトラゾリウムクロリド（ＮＢＴ）、ヨードニトロテトラゾリウム（ＩＮＴ）などの発色基質が挙げられる。また、抗体をビオチン標識し、ストレプトアビジンが結合した上記蛍光物質や上記酵素をビオチン－アビジン結合を介して抗体に結合させてもよい。
　血液試料中に含まれる、肝臓の線維化により糖鎖構造が変化したＡＧＰやＭ２ＢＰ量は微量であるため、高感度と標識検出の迅速化の観点から標識として酵素を使用し、発光基質を使用することが好ましい。
　なお、ＡＬＰなどの酵素は糖鎖を持っている。その糖鎖とレクチンの非特異反応を防止するために、脱グリコシル化処理された酵素を用いることが好ましい。このような処理を施した酵素としては、例えば、Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ　ＡＰ，ＥＩＡ　Ｄｒａｄｅ，ＣＲ　０３５３５４５２（Ｒｏｃｈｅ　Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ社製）のように脱グリコシル化処理されたＡＬＰを使用することができる。
　また、抗ＡＧＰ抗体や抗Ｍ２ＢＰ抗体についても糖鎖を持っている。その糖鎖とレクチンの非特異反応を防止するために、脱グリコシル化した抗体を使用することが好ましい。例えば、ペプシン消化及び還元を行うことでＦａｂ’に転換した抗ＡＧＰ抗体や抗Ｍ２ＢＰ抗体を使用することが好ましい。
　標識抗体試薬の作製は、公知の方法に従い、抗ＡＧＰ抗体または抗Ｍ２ＢＰ抗体と、ＥＭＣＳ［Ｎ－（６－Ｍａｌｅｉｍｉｄｏｃａｐｒｏｙｌｏｘｙ）ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｏ］（同仁化学）のような架橋剤を用いてマレイミド化した標識を混合して、反応させることで標識抗体を調製することができる。例えば、脱グルコシル化処理されたＡＬＰを、架橋剤を用いてマレイミド化し、Ｆａｂ’に転換した抗ＡＧＰ抗体または抗Ｍ２ＢＰ抗体と反応させて調製したものを用いることが非特異反応防止の観点から好ましい。
５．新規肝疾患病態指標糖鎖マーカーを用いた新規の特異的ポリクローナル抗体及び／又はモノクローナル抗体
　新規肝疾患病態指標糖鎖マーカーを利用する肝細胞がんの検出方法において、肝疾患病態指標糖鎖マーカー特異的ポリクローナル抗体及び／又はモノクローナル抗体が容易に入手できる場合は、それらを用いることができるが、容易に入手できない場合は、例えば、以下のように調製できる。
５－１．抗体の調製
　本願発明の新規肝疾患病態指標糖鎖マーカーは、肝疾患検出用のポリクローナル抗体又はモノクローナル抗体の調製に用いることができる。
　例えば、新規肝疾患病態指標糖鎖マーカーに対する抗体は、周知の方法で、調製出来る。フロインドの完全アジュバントを同時投与して抗体の生成をブーストすることもできる。また、Xの糖鎖が結合している結合位置を含むペプチドを合成し、このペプチドを市販キーホール・リンペット・ヘモシアニン（keyhole limpet hemocyanin、KLH）に共有結合させ、動物に投与する。なお、このとき顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（granulocyte-macrophage colony stimulating factor, GM-CSF）を同時に投与して抗体産生をブーストすることもできる。
　また、例えば、抗新規肝疾患病態指標糖鎖マーカーモノクローナル抗体は、ケラーとミルシュタインの方法で調製することができる（Nature Vol.256,pp495-497 (1975)）。例えば、抗原で免疫した動物から得られる抗体産生細胞と、ミエローマ細胞との細胞融合によりハイブリドーマを調製し、得られるハイブリドーマから抗X抗体を産生するクローンを選択することにより調製することができる。
　具体的には、得られた抗原用の肝疾患病態指標糖鎖マーカーにアジュバントを添加する。アジュバントとしては、フロイント完全アジュバント、フロイントの不完全アジュバント等が挙げられ、これらの何れのものを混合してもよい。
　上記のようにして得られた抗原を哺乳動物、例えばマウス、ラット、ウマ、サル、ウサギ、ヤギ、ヒツジなどの哺乳動物に投与する。免疫は、既存の方法であれば何れの方法をも用いることができるが、主として静脈内注射、皮下注射、腹腔内注射などにより行う。また、免疫の間隔は特に限定されず、数日から数週間間隔で、好ましくは4～21日間隔で免疫する。
　最終の免疫日から2～3日後に抗体産生細胞を採集する。抗体産生細胞としては、脾臓細胞、リンパ節細胞、末梢血細胞が挙げられる。
　抗体産生細胞と融合させるミエローマ（骨髄腫）細胞として、マウス、ラット、ヒトなど種々の動物に由来し、当業者が一般に入手可能な株化細胞を使用する。使用する細胞株としては、薬剤抵抗性を有し、未融合の状態では選択培地（例えばＨＡＴ培地）で生存できず、融合した状態でのみ生存できる性質を有するものが用いられる。一般的に8-アザグアニン耐性株が用いられ、この細胞株は、ヒポキサンチン－グアニン－ホスホリボシルトランスフェラーゼを欠損し、ヒポキサンチン・アミノプテリン・チミジン（ＨＡＴ）培地に生育できないものである。
　ミエローマ細胞は、既に公知の種々の細胞株、例えば、P3(P3x63Ag8.653)(J. Immunol. 123, 1548-1550 1979))、P3x63Ag8U.1(Current Topics in Microbiology and Immunology 81, 1-7 (1978))、NS-1(Kohler, G. and Milstein, C., Eur. J. Immunol. 6,511-519(1976))、MPC-11 (Margulies, D.H. et al., Cell　8,405-415(1976))、SP2/0(Shulman, M. et al., Nature 276,269-270(1978)) 、FO(de St.Groth, S.F. et al., J. Immunol. Methods 35, 1-21(1980))、S194(Trowbridge, I.S., J. Exp. Med. 148, 313-323(1978))、R210(Galfre, G. et al.,Nature 277, 131-133(1979))等が好適に使用される。
　次に、上記ミエローマ細胞と抗体産生細胞とを細胞融合させる。細胞融合は、MEM、DMEM、RPME-1640培地などの動物細胞培養用培地中で、ミエローマ細胞と抗体産生細胞とを、混合比１：１～１：10で融合促進剤の存在下、30～37℃で１～15分間接触させることによって行われる。細胞融合を促進させるためには、平均分子量1,000～6,000のポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール又はセンダイウイルスなどの融合促進剤や融合ウイルスを使用することができる。また、電気刺激（例えばエレクトロポレーション）を利用した市販の細胞融合装置を用いて抗体産生細胞とミエローマ細胞とを融合させることもできる。
　細胞融合処理後の細胞から目的とするハイブリドーマを選別する。その方法として、選択培地における細胞の選択的増殖を利用する方法等が挙げられる。すなわち、細胞懸濁液を適切な培地で希釈後、マイクロタイタープレート上にまき、各ウェルに選択培地（HAT培地など）を加え、以後適当に選択培地を交換して培養を行う。その結果、生育してくる細胞をハイブリドーマとして得ることができる。
　ハイブリドーマのスクリーニングは、限界希釈法、蛍光励起セルソーター法等により行い、最終的にモノクローナル抗体産生ハイブリドーマを取得する。取得したハイブリドーマからモノクローナル抗体を採取する方法としては、通常の細胞培養法や腹水形成法等が挙げられる。
　また、本願発明で言う抗体には、モノクローナル抗体であってもポリクローナル抗体であってもよく、１本鎖Fvs（scFv）、１本鎖抗体、Fab断片、F(ab')断片、ジスルフィド連結Fvs（sdFv）なども含まれる。更に、第１又は第２の迅速測定法に限らず、本願発明で用いる抗体としては、糖鎖とレクチンの非特異反応を防止するために、脱グリコシル化した抗体を使用することが好ましい。例えば、ペプシン消化及び還元を行うことでＦａｂ’に転換した抗ＡＧＰ抗体や抗Ｍ２ＢＰ抗体を使用することができる。
[実施例１]　肝疾患病態指標糖鎖マーカー糖タンパク質の肝疾患検出への利用
　肝疾患病態指標糖鎖マーカー糖タンパク質であるAGP、およびMac2BP（M2BP）について、抗体オーバーレイ・レクチンアレイを活用して肝疾患の検出を実施した例を以下に示す。なお、本手法による（ウイルス性）肝炎患者（CH）、肝硬変患者（LC）、肝細胞がん患者（HCC）、および健常者（HV）血清に由来する該マーカー糖タンパク質上糖鎖の比較解析の手順を図7に示す。
１．マーカータンパク質の血清からのエンリッチ
　（ウイルス性）肝炎患者（CH）、肝硬変患者（LC）、肝細胞がん患者（HCC）、および健常者（HV）血清に由来する該マーカー糖タンパク質のエンリッチは、「Kuno A, Kato Y, Matsuda A, Kaneko MK, Ito H, Amano K, Chiba Y, Narimatsu H, Hirabayashi J.Mol Cell Proteomics. 8, 99-108 (2009) 」に従って行われた。なお、得られる結果が病態に依存していることを明らかにするため、各病態につき５例ずつを分析に用いることにした。各患者血清を0.2%SDS含有PBS緩衝液で１０倍希釈し、10分間95℃で加熱処理したものを、AGPにおいては5μL、Mac2BPにおいては20μL反応チューブに分注し、そこへ500 ngの各抗原に対する抗体（ビオチン化物）を添加した。各反応溶液は反応バッファー（1%Triton X-100入りTris-buffered saline (TBSTx)）により、45μLに調整された後、4℃で2時間振盪反応された。抗原抗体反応後、速やかにストレプトアビジン固定化磁気ビーズ溶液（Dynabeads MyOne Streptavidin T1, DYNAL Biotech ASA製）をあらかじめ反応バッファーで3回洗浄し、かつ2倍濃縮状態で調整したもの5μL（元のビーズ溶液10μL分に相当）を上記反応溶液へ加え、1時間さらに反応した。この反応により、ビオチン化抗体を介して、該糖タンパク質は磁気ビーズと複合体を形成する。この複合体を磁気ビーズ回収用マグネットに吸着させた後に溶液を廃棄した。回収された複合体は500μLの反応バッファーにより3回洗浄された後に、10μLの溶出バッファー（0.2%SDS含有TBS）に懸濁された。この懸濁溶液を95℃で5分間熱処理することで、該糖タンパク質を磁気ビーズから解離溶出し、得られた溶液を溶出液とした。その際、熱変性されたビオチン抗体も混入するため、溶出液に上述の手法で2倍濃縮状態で調整された磁気ビーズ溶液を10μL（元のビーズ溶液20μl分に相当）加え、1時間反応することで、ビオチン化抗体を吸着除去した。これにより得られた溶液を血清由来該糖タンパク質溶液とし、以降の実験に用いた。
２．抗体オーバーレイ・レクチンアレイ
　上述により得られた該糖タンパク質溶液適当量とり、レクチンアレイ反応バッファーである1%Triton X-100含有Phosphate-buffered saline (PBSTx)により、６０μLに調整した。この溶液をレクチンマイクロアレイの各反応槽（ガラス１枚当たり８つの反応槽が形成されている）へ添加し、２０℃で１０時間以上反応した。この８つの反応槽からなるレクチンマイクロアレイ基盤の作製は内山ら（Proteomics 8, 3042-3050 (2008)）の手法に従った。これにより該糖タンパク質上の糖鎖とアレイ基板上に固定されている４３種のレクチンとの結合反応が平衡状態に達する。その後、未反応の基盤上レクチンへ検出用抗体上の糖鎖が結合し、ノイズとして生じてしまうことを避けるため、ヒト血清由来IgG溶液（シグマ社製）を２μL加え、３０分反応させた。60μLのPBSTxで各反応槽を３回洗浄した後、再度ヒト血清由来IgG溶液を２μL加え、若干攪拌した後に、検出用の該糖タンパク質に対する抗体（ビオチン化物）を100 ng相当加え、20℃で1時間反応させた。抗原抗体反応後、60μLのPBSTxで各反応槽を３回洗浄し、次いでCy3標識ストレプトアビジン200 ng相当が含有しているPBSTx溶液を加え、さらに30分、20℃で反応した。反応後、60μLのPBSTxで各反応槽を３回洗浄した後、モリテックス社製アレイスキャナーGlycoStationによりアレイスキャンを行った。
　得られた結果のうち、各病態の典型例をAGPは図8に、Mac2BPは図9ににそれぞれ示す。図８は肝疾患病態指標マーカー糖タンパク質の一つであるα１酸性糖タンパク質（AGP）について、抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイにより比較糖鎖解析を行った結果を示す図である。レクチンマイクロアレイ上のレクチン配置を上段左図に示す。本実験により有意なシグナルが得られたレクチンを太字で示す。15種のレクチンにおいてシグナルが得られた。肝細胞がん、肝硬変、および慢性肝炎患者血清、および健常者血清由来AGPの典型的なスキャンイメージを上段右図に示す。スキャンデータよりアレイ解析ソフトを用い各シグナルを数値化し、15種のレクチンについてグラフで表したものを下段に示す。明らかに肝細胞がん、肝硬変群と肝炎、健常者群の間にシグナルパターンに差が生じているのが分かる。図９は、肝疾患病態指標マーカー糖タンパク質の一つである90K/Mac-2 Binding Protein（M2BP）について、抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイにより比較糖鎖解析を行った結果である。レクチンマイクロアレイ上のレクチン配置を上段左図に示す。本実験により有意なシグナルが得られたレクチンを太字で示す。17種のレクチンにおいてシグナルが得られた。肝細胞がん、肝硬変、および慢性肝炎患者血清、および健常者血清由来M2BPの典型的なスキャンイメージを上段右図に示す。スキャンデータよりアレイ解析ソフトを用い各シグナルを数値化し、17種のレクチンについてグラフで表したものを下段に示す。病態の重篤度に応じてシグナル強度に変化（増加もしくは減少）が生じているのが分かる。
[実施例２]　肝疾患病態指標糖鎖マーカー糖タンパク質AGPの抗体オーバーレイ・レクチンアレイ解析による肝線維化進展の判別
　実施例１の通り、糖タンパク質の抗体オーバーレイ・レクチンアレイ解析により得られたレクチンシグナル情報から、統計解析により取捨選択し最適なものを用いることで、各肝疾患病態を検出できる可能性が見出された。
　そこでAGPを標的分子とし、以下の手順で実験を実施した。
１．肝硬変と肝炎を区別するレクチンの絞り込み
　線維化進展に伴いシグナル変動を示すレクチン群を絞り込むため、まず臨床診断済み患者HCC, LC, CH各10症例の血清を用い、AGPの抗体オーバーレイ・レクチンアレイ解析を実施した。より客観的な絞り込みを行うため、HCC-LCおよびLC-CH間でStudent T検定を行い、危険度が0.1%以下の値を示すレクチンを有用レクチンとした。その結果を表３に示す。先の実験結果（図8）からわかるように、AGPのアレイ解析により、15種のレクチンにおいてシグナルが得られているが、そのうちStudent T検定により危険度が0.1%以下の有意差を示すレクチンはLEL, AOL, AAL, MAL, STL,およびPHAEの6種であった。また、本実験により、最もシグナル変動せず再現性高い結果を取得できたレクチンDSAについては、取得されたデータの規格化に有効性を見出し、以降スキャン後、数値化されたデータはすべてDSAシグナルにより規格化することとした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
２．線維化進展を判別するレクチンの絞り込み
　つぎに、肝炎ウイルスに罹患し、肝生検により病理診断され線維化のステージングがなされている患者群125症例を対象に、抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイを実施例１の手順に従い行った。なお、125症例の肝臓線維化ステージの内訳は、F0およびF1が33症例、F2が32症例、F3が31症例、F4が29症例である。上述の手順に従い、統計学的に判別に有用なレクチンの絞り込みを行った。その結果、上位６種レクチンの結果を表４に示す。先に得られた６つレクチンが上位を占め、その中でもLEL, AOL, MALが最も判別に有効なものとして選抜されたため、この３種についてより詳細なデータ解析を行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　図１０は、肝臓の線維化進展とAGPの抗体オーバーレイ・レクチンアレイ解析により得られたレクチンシグナル強度の変化との相関を示す図である。各シグナルはDSAレクチンのシグナルにより規格化されており、数値はDSAシグナルを100％とした時の相対シグナル強度としてあらわされている。図１０の上段のAにおいては、肝生検後の病理解析により線維化のステージング（F）がされている125症例についてレクチンアレイ解析を行い、各ステージのレクチンシグナルの分布を箱ひげ図により示している。箱の上端および下端はそれぞれ75％点、25％点を示し、ひげの上端および下端はそれぞれ95％点、5％点を示す。箱中の横線は中央値を示し、×は平均値を示す。肝硬変（F4）と慢性肝炎の各ステージ群（F0, 1, 2および3）の有意差を検定するためにStudent-T 検定を行い、その危険度がP<0.0001のものに*を付記した。また対照として一般的生化学検査で肝臓の線維化の指標として用いられている血小板の数値の分布も同様に記す。その結果AOLのシグナルは、線維化の進展に伴い強度を増し、強度差で慢性肝炎（F0-3）と肝硬変（F4）を十分見分けることができることが分かった。それに対し、MALおよびLELシグナルは線維化の進展に伴い強度が減少していることが分かった。
　AOL、MALおよびLELのシグナル変動を同一患者で経時的に測定した結果を図10の下段B に示す。図１０の下段Bにおいては、肝硬変患者、および肝細胞がん患者それぞれ1症例のシリーズ検体（採取時期の異なる血清）中のAGPについて抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイ解析を行い、DSAシグナルによる規格化後のAOL, MAL, LELの相対シグナル値をプロットしている。時間軸は肝硬変および肝細胞がんと確定診断された日を０としている。AOLシグナルは経時的に増加し、MALのシグナルは減少しており、これが肝線維化進展を反映させている。それに対し、LELシグナルや簡易線維化マーカーとして用いられている血小板数は、ある特定の時期に急激な変動を示しており、線維化の進展をクリアーに表現するものではなかった。
　以上の結果より、AOLおよびMALのシグナル変動を単独もしくは組み合わせることで、肝臓の線維化の進展判別が可能となることが分かった。
[実施例３]　肝疾患病態指標糖鎖マーカー糖タンパク質AGPの抗体オーバーレイ・レクチンアレイ解析による肝硬変の検出
　実施例２の結果から、肝線維化の進展を基準として各レクチンシグナル単独もしくは組み合わせのカットオフ値を設定することで、肝硬変の検出が可能となると考え、以下の手順で実験を実施した。
１．肝硬変を検出するためのレクチンシグナル・カットオフ値の設定
　まず、肝炎ウイルス罹患者の中から肝硬変発症患者を検出するための、各レクチンのカットオフ値を設定することにした。このために病理診断済み患者80症例分（F1, F2, F3, F4各20症例）を対象に、実施例２で絞り込まれた2種レクチンのシグナルをDSAレクチンシグナルで規格化したデータを用い、他（F1-F3）からF4(肝硬変)を区別するReceiver operating characteristic curve （ROC曲線）を作成した。その結果を図１１左に示す。図１１には、AOL, MALシグナルを単独に用いた場合の曲線のほかに、2つのシグナルを用いた数式（AOLの相対シグナル強度）X 1.5 -（MALの相対シグナル強度）から得られる数値による曲線も示す。曲線の下部領域の面積を示すAUC(area under curve)値を求め、各手法の診断力を査定する。また感度100％、特異度100％点から最も近い距離にある曲線上の点、言い換えるとY=Xの直線に平行な線と、ROC曲線との接点を、「最適な特異度および感度」とし、その周辺にカットオフ値を設定した。それらの数値を図１１の右表に記す。得られたカットオフ値を用い、病理学的診断又は画像・臨床診断 により肝炎および肝硬変と確定された患者、45症例および43症例を対象にブラインドテストを実施した。その結果を図１１の右表のValidation setの項に記す。肝硬変を陽性、肝炎を陰性とし、それぞれの検出数を列挙した。ROC曲線より、最良の感度（Sensitivity）および特異度（Specificity）を示す点におけるカットオフ値を決定したところ、AOLは8％、MALは11.8％であった。また、コンビネーションの系が最も偽陰性、偽陽性患者数が少なく、正診率（％）（（総患者数―偽陽性、偽陰性患者数）/（総患者数）X100）が高くなった。
２．肝硬変の検出
　臨床診断済み慢性肝炎患者45症例および肝硬変患者43症例について、実施例２の手順に従い、AGPを標的分子とした抗体オーバーレイ・レクチンアレイを実施した。シグナルはすべてDSAレクチンのシグナルを100％とし、規格化した。その数値を上述したカットオフ値を利用し、陽性、陰性の判別をすることにより、肝硬変検出検定を試みた。その結果、AOLシグナルを用いた場合、検出力として感度86.1％、特異度91.1％、正診率88.6％となり、MALシグナルを用いた場合、検出力として感度90.7％、特異度88.9％、正診率89.8％となった。いずれもかなり高度な検出が可能でり、正診率が85％を超えていた。さらに、2つのシグナルをコンビネーションした式（（AOLの相対シグナル強度）X 1.5 -（MALの相対シグナル強度））を用いて検出力を調べてみたところ、感度95.4％、特異度91.1％、正診率は93.2％という最も確度の高い肝硬変検出結果が得られた。特筆すべきことは、これまで公知となっているＡＡＬレクチンやＲＣＡレクチンを用いたAGPの疾患特異的糖鎖変化を検出する手法と比較して圧倒的に検出力が高い点である。このような結果は、今回の抗体オーバーレイ・レクチンアレイによる絞り込みの工程で、AALやRCA120がAOL, MALに比べ劣っていたことと一致する（表３，４を参照）。
[実施例４]　肝臓の線維化進展をモニタリングできるマーカーを用いたインターフェロンの治療効果判定
　実施例2の結果により、AOLおよびMALのシグナル変動の観察により、線維化の進展をモニタリングすることができることが分かった。そこで、AOL/DSAやMAL/DSAを線維化進展パラメーターとして用い、抗ウイルス剤であるインターフェロンの治療効果を判定できるかを試みた。C型肝炎患者でインターフェロンの治療効果が認められた持続性ウイルス陰性化（SVR）例群と、治療効果が認められなかったウイルス学的不応(NVR)例群について以下の実験を行った。インターフェロン治療後、経時的に血液採取された患者の血清を対象に実施例1と同様の手法で血清中AGPのエンリッチおよび抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイ解析を行い、DSAシグナルによる規格化後のAOL, MALの相対シグナル値を算出した。その典型例それぞれ2症例分の各シグナルの経時的変化を図12に示す。時間軸は治療直後の採血日を０とし、相対結合シグナルは治療直後の相対値を０としている。SVR症例ではMALシグナルは経時的に増加したが、AOLのシグナルは減少もしくはシグナル検出できなかった。すなわち、これら症例は線維化が緩和されている傾向にあった。それに対しNVR症例では、AOLシグナルは経時的に増加し、MALのシグナルはほぼ変化がなかった。すなわちこれら症例の線維化は緩和されず、むしろ悪化している（線維化が進展している）傾向が観察された。以上により、インターフェロン治療後の効果判定を血液検査で行うことが可能であることがわかった。
[実施例５]
１．　　第１迅速測定方法（マニュアル法）
１－１．試薬の調製
　Ｒ１試薬の調製：緩衝液Ａ（ＰＢＳ－１％ＴｒｉｔｏｎＸ、ｐＨ７．４）中に５μｇ／ｍＬのビオチン化ＤＳＡ（Ｊ－オイルミルズ社製）を添加してＲ１試薬１を調製した。緩衝液Ａ中に５μｇ／ｍＬのビオチン化ＭＡＬ（Ｖｅｃｔｏｒ社製）を添加してＲ１試薬２を調製した。緩衝液Ａ中に２．５μｇ／ｍＬのビオチン化ＡＯＬを添加してＲ１試薬３を調製した。なお、ビオチン化ＡＯＬは、ビオチン標識キット（ＤＯＪＩＤＯ社製）を用いて、ＡＯＬ（東京化成社製）をビオチン化したものを使用した。
　Ｒ２試薬の調製：緩衝液Ａ中にストレプトアビジンが固定された磁性粒子（個数平均粒径２μｍ）を０．５ｗ／ｖ％となるように添加してＲ２試薬を調製した。
　Ｒ３試薬の調製：０．０２５Ｕ／ｍＬのＡＬＰ標識マウス抗ＡＧＰモノクローナル抗体、０．１ＭのＭＥＳ（２－（Ｎ－Ｍｏｒｐｈｏｌｉｎｏ）ｅｔｈａｎｅｓｕｌｆｏｎｉｃ　ａｃｉｄ、ｐＨ６．５）、０．１５Ｍの塩化ナトリウム、１ｍＭの塩化マグネシウム、０．１ｍＭの塩化亜鉛、０．１ｗ／ｖ％のＮａＮ３および０．５ｗ／ｖ％のカゼインＮａ含む溶液を調製しＲ３試薬１とした。０．０２５Ｕ／ｍＬのＡＬＰ標識マウス抗ＡＧＰモノクローナル抗体に代えて０．５Ｕ／ｍＬのＡＬＰ標識マウス抗ＡＧＰモノクローナル抗体を用いる以外はＲ３試薬１と同様にしてＲ３試薬２を調製した。
　Ｒ４試薬の調製：０．１Ｍの２－アミノ－２－メチル－１－プロパノール（ＡＭＰ、ｐＨ９．６）、１ｍＭの塩化マグネシウムおよび０．１ｗ／ｖ％のＮａＮ３を含む溶液を調製しＲ４試薬とした。
　Ｒ５試薬の調製：ＣＤＰ－Ｓｔａｒ　ｗｉｔｈ　Ｓａｐｐｈｉｒｉｎｅ－ＩＩ（ＡＬＰの発光基質、アプライドバイオシステムズ社製）をＲ５試薬とした。
　洗浄試薬の調製：２０ｍＭのトリス（ｐＨ７．４）、０．１ｗ／ｖ％のＴｗｅｅｎ２０、０．１ｗ／ｖ％のＮａＮ３および０．８ｗ／ｖ％の塩化ナトリウムを含む溶液を調製し洗浄試薬とした。
１－２．ＤＳＡの希釈直線性の確認
　コンセーラ（正常ヒト血清、日水製薬社製）中のＡＧＰを、実施例１のエンリッチと同様にして、抗ＡＧＰ抗体を用いて緩衝液Ｂ（ＴＢＳ－０．５％ＴｒｉｔｏｎＸ－０．１％ＳＤＳ）に回収し試料とした。回収した試料を緩衝液Ｂで１倍、１／２倍、１／４倍、１／８倍、１／１６倍にそれぞれ希釈した希釈試料を調製した。
　各希釈試料３０μＬについて、１１０μＬのＲ１試薬１を添加し室温で２分間反応後、３０μＬのＲ２試薬を添加し室温で３０分間反応させた。ＤＳＡとＡＧＰの複合体を担持した磁性粒子を集磁してＢ／Ｆ分離を行った後、洗浄試薬で分離された磁性粒子を洗浄し溶液を廃棄する処理を４回行った。洗浄された磁性粒子に１００μＬのＲ３試薬１を添加し室温で２０分間反応を行い、磁性粒子に担持された複合体中のＡＧＰとＡＬＰ標識マウス抗ＡＧＰモノクローナル抗体を反応させた。ＡＬＰ標識マウス抗ＡＧＰモノクローナル抗体とＡＧＰとＤＳＡの複合体を担持した磁性粒子を集磁した状態で液体成分を除去（Ｂ／Ｆ分離）した後、洗浄試薬で分離された磁性粒子を洗浄し溶液を廃棄する処理を４回行った。複合体担持磁性粒子を５０μＬのＲ４試薬に分散させ１００μＬのＲ５試薬を添加し、発光測定装置を用いてＡＬＰによる化学発光強度をｐｈｏｔｏ　ｃｏｕｎｔ値として測定した。結果を図１３に示す。図１３に示されるようにＤＳＡ測定系についてはＲ２＝０．９９と良好な直線性を示した。
１－３．ＭＡＬの希釈直線性の確認
　「ＤＳＡの希釈直線性の確認」において、Ｒ１試薬１に代えてＲ１試薬２を使用し、Ｒ３試薬１に代えてＲ３試薬２を使用すること以外は同様にして、ＭＡＬ測定系における希釈直線性の確認実験を行い、結果を図１４に示した。図１４に示されるようにＭＡＬ測定系についてはＲ２＝０．９９と良好な直線性を示した。
１－４．ＡＯＬの希釈直線性の確認
　「ＤＳＡの希釈直線性の確認」において、コンセーラに代えてＨＣＶ陽性血漿２（Ｍｉｌｌｅｎｉｕｍ　Ｂｉｏｔｅｃｈ社製）を使用し、Ｒ１試薬１に代えてＲ１試薬３を使用すること以外は同様にして、ＡＯＬ測定系における希釈直線性の確認実験を行い、結果を図３に示した。図１５に示されるようにＡＯＬ測定系についてはＲ２＝０．９８と良好な直線性を示した。
１－５．各種市販検体に対するＤＳＡ、ＭＡＬおよびＡＯＬ測定
　コンセーラ（正常ヒト血清、日水製薬社製）、正常ヒト血清（ＴＲＩＮＡ社製）、ＨＣＶ陽性血漿１および２（Ｍｉｌｌｅｎｉｕｍ　Ｂｉｏｔｅｃｈ社製）のそれぞれについて、実施例１のエンリッチと同様にして、抗ＡＧＰ抗体を用いてＡＧＰを分離し、緩衝液（ＴＢＳ－０．５％ＴｒｉｔｏｎＸ－０．１％ＳＤＳ）に回収し測定試料とした。また、緩衝液のみをブランク測定試料（ＮＣ）とした。
　各測定試料３０μＬについて、１１０μＬのＲ１試薬１を添加し室温で２分間反応後、３０μＬのＲ２試薬を添加し室温で３０分間反応させた。ＤＳＡとＡＧＰの複合体を担持した磁性粒子を集磁してＢ／Ｆ分離を行った後、洗浄試薬で分離された磁性粒子を洗浄し溶液を廃棄する処理を４回行った。洗浄された磁性粒子に１００μＬのＲ３試薬１を添加し室温で２０分間反応を行い、磁性粒子に担持された複合体中のＡＧＰとＡＬＰ標識マウス抗ＡＧＰモノクローナル抗体を反応させた。ＡＬＰ標識マウス抗ＡＧＰモノクローナル抗体とＡＧＰとＤＳＡの複合体を担持した磁性粒子を集磁してＢ／Ｆ分離を行った後、洗浄試薬で分離された磁性粒子を洗浄し溶液を廃棄する処理を４回行った。複合体担持磁性粒子を５０μＬのＲ４試薬に分散させ１００μＬのＲ５試薬を添加し、発光測定装置を用いてＤＳＡ測定系における化学発光強度をｐｈｏｔｏ　ｃｏｕｎｔ値として測定した。測定に要した時間は６５分であった。測定結果を表５に示す。
　また、ＤＳＡ測定系において、Ｒ１試薬１に代えてＲ１試薬２を使用し、Ｒ３試薬１に代えてＲ３試薬３を使用すること以外は同様にしてＭＡＬ測定系における化学発光を測定し、結果を表５に示した。また、ＤＳＡ測定系において、Ｒ１試薬１をＲ１試薬３に代えること以外は同様にしてＡＯＬ測定系における化学発光を測定し、結果を表５に示した。また、ＭＡＬおよびＡＯＬによる測定結果をＤＳＡによる測定結果で規格化した値を表５に示すと共に図１６および図１７に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　１－６．各種市販検体に対するレクチンアレイ法による測定
　上記１－５の各測定試料について、実施例１で用いたレクチンアレイを用いて、抗体オーバーレイ法による測定を行った。レクチンアレイ法による測定時間は約１８時間であった。結果を表６に示すと共に図１８及び図１９に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　ＤＳＡで規格化したＭＡＬの測定結果について、図１６に示した本実施形態の第１測定法による測定結果が、図１８に示したレクチンアレイ法による測定結果と良好な相関を示すことがわかった。また、ＤＳＡで規格化したＡＯＬの測定結果について、図１７に示した第１迅速測定法による測定結果が、図１９に示したレクチンアレイ法による測定結果と同様のパターンを示し、良好な相関を示すことがわかった。
２．　　第２迅速測定方法（自動測定法）
２－１．試薬の調製
　Ｒ１試薬の調製：緩衝液Ａ（ＰＢＳ－１％ＴｒｉｔｏｎＸ、ｐＨ７．４）をＲ１試薬とした。
　Ｒ２試薬の調製：緩衝液Ａ中にストレプトアビジンが固定された磁性粒子（個数平均粒径２μｍ）を０．５ｗ／ｖ％となるように添加し、さらに２．５μｇ／ｍＬのビオチン化ＤＳＡ（Ｊ－オイルミルズ社製）を添加して室温で３０分撹拌した。撹拌後集磁して磁性粒子を沈降させて溶液成分を廃棄した。ここに緩衝液Ａを添加して撹拌後、集磁して磁性粒子を沈降させて溶液成分を廃棄する操作を３回繰返し行った。これに磁性粒子濃度が０．５ｗ／ｖ％になるように緩衝液Ａを添加してＤＳＡを担持した磁性粒子を含むＲ２試薬１とした。２．５μｇ／ｍＬのビオチン化ＤＳＡ（Ｊ－オイルミルズ社製）に代えて２５μｇ／ｍＬのビオチン化ＭＡＬ（Ｖｅｃｔｏｒ社製）を用いる以外はＲ２試薬１と同様にしてＭＡＬを担持した磁性粒子を含むＲ２試薬２を調製した。２．５μｇ／ｍＬのビオチン化ＤＳＡ（Ｊ－オイルミルズ社製）に代えて２５μｇ／ｍＬのビオチン化ＡＯＬを用いる以外はＲ２試薬１と同様にしてＡＯＬを担持した磁性粒子を含むＲ２試薬３を調製した。なお、ビオチン化ＡＯＬは、ビオチン標識キット（ＤＯＪＩＤＯ社製）を用いて、ＡＯＬ（東京化成社製）をビオチン化したものを使用した。
　Ｒ３試薬の調製：０．１Ｕ／ｍＬのＡＬＰ（Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ　ＡＰ，ＥＩＡ　Ｄｒａｄｅ，ＣＲ　０３５３５４５２）標識マウス抗ＡＧＰモノクローナル抗体－Ｆａｂ’、０．１ＭのＭＥＳ（２－（Ｎ－Ｍｏｒｐｈｏｌｉｎｏ）ｅｔｈａｎｅｓｕｌｆｏｎｉｃ　ａｃｉｄ、ｐＨ６．５）、０．１５Ｍの塩化ナトリウム、１ｍＭの塩化マグネシウム、０．１ｍＭの塩化亜鉛、０．１ｗ／ｖ％のＮａＮ３および０．２５ｗ／ｖ％のカゼインＮａ含む溶液を調製しＲ３試薬１とした。０．２５ｗ／ｖ％のカゼインＮａに代えて０．１ｗ／ｖ％のＢＳＡを用いる以外はＲ３試薬１と同様にしてＲ３試薬２を調製した。
　なお、上記の第１迅速測定方法（マニュアル法）においては、脱グリコシル化されていないＡＬＰを用いたが、第２迅速測定方法では脱グリコシル化されたＡＬＰを使用した。
　Ｒ４試薬の調製：０．１Ｍの２－アミノ－２－メチル－１－プロパノール（ＡＭＰ、ｐＨ９．６）、１ｍＭの塩化マグネシウムおよび０．１ｗ／ｖ％のＮａＮ３を含む溶液を調製しＲ４試薬とした。
　Ｒ５試薬の調製：ＣＤＰ－Ｓｔａｒ　ｗｉｔｈ　Ｓａｐｐｈｉｒｉｎｅ－ＩＩ（ＡＬＰの発光基質、アプライドバイオシステムズ社製）をＲ５試薬とした。
　洗浄試薬の調製：２０ｍＭのトリス（ｐＨ７．４）、０．１ｗ／ｖ％のＴｗｅｅｎ２０、０．１ｗ／ｖ％のＮａＮ３および０．８ｗ／ｖ％の塩化ナトリウムを含む溶液を調製し洗浄試薬とした。
２－２．ＤＳＡを用いる測定系の希釈直線性の確認
　コンセーラ（正常ヒト血清、日水製薬社製）中のＡＧＰを、実施例１のエンリッチと同様にして、抗ＡＧＰ抗体を用いて緩衝液Ｂ（ＴＢＳ－０．５％ＴｒｉｔｏｎＸ－０．１％ＳＤＳ）に回収し試料とした。回収した試料を緩衝液Ｂで１倍、１／２倍、１／４倍、１／８倍、１／１６倍にそれぞれ希釈した希釈試料を調製した。
　全自動免疫測定装置ＨＩＳＣＬ２０００ｉ（シスメックス社製）の動作設定を下記の条件に変更し、各希釈試料について化学発光（ｐｈｏｔｏ　ｃｏｕｎｔ値）を測定した。
　各希釈試料３０μＬを容器に分注し、４２℃で２．２５分間インキュベートした後、３０μＬのＲ２試薬１を分注し、４２℃で２．５分間反応させた。さらに１００μＬのＲ３試薬１を分注し、４２℃で２．７５分間反応させた。磁気分離により磁性粒子を集磁して溶液を吸引廃棄した。洗浄試薬を分注して洗浄試薬に磁性粒子を分散洗浄し、磁気分離により磁性粒子を集磁して溶液を吸引廃棄する処理を３回繰り返し実行した。５０μＬのＲ４試薬を分注し、次いで１００μＬのＲ５試薬を分注し化学発光を測定した。上記の測定を３回行いその結果を図２０に示す。図２０に示されるようにＤＳＡ測定系についてはＲ２＝０．９８と良好な直線性を示した。
２－３．ＭＡＬを用いる測定系の希釈直線性の確認
　「ＤＳＡを用いる測定系の希釈直線性の確認」において、Ｒ２試薬１に代えてＲ２試薬２を使用し、Ｒ３試薬１に代えてＲ３試薬２を使用すること以外は同様にして、ＭＡＬ測定系における希釈直線性の確認実験を行い、結果を図２１に示した。図２１に示されるようにＭＡＬ測定系についてはＲ２＝０．９９と良好な直線性を示した。
２－４．ＡＯＬを用いる測定系の希釈直線性の確認
　「ＤＳＡの希釈直線性の確認」において、コンセーラに代えてＨＣＶ陽性血漿２（Ｍｉｌｌｅｎｉｕｍ　Ｂｉｏｔｅｃｈ社製）を使用し、Ｒ２試薬１に代えてＲ２試薬３を使用すること以外は同様にして、ＡＯＬ測定系における希釈直線性の確認実験を行い、結果を図２２に示した。図２２に示されるようにＡＯＬ測定系についてはＲ２＝０．９９と良好な直線性を示した。
２－５．各種市販検体に対するＤＳＡ、ＭＡＬおよびＡＯＬを用いる測定
　コンセーラ（正常ヒト血清、日水製薬社製）、正常ヒト血清（ＴＲＩＮＡ社製）、ＨＣＶ陽性血漿１および２（Ｍｉｌｌｅｎｉｕｍ　Ｂｉｏｔｅｃｈ社製）のそれぞれについて、抗ＡＧＰ抗体を用いた免疫沈降法によりＡＧＰを分離し、緩衝液Ｂ（ＴＢＳ－０．５％ＴｒｉｔｏｎＸ－０．１％ＳＤＳ）に回収し測定試料とした。また、緩衝液Ｂのみをブランク測定試料とした。
　「ＤＳＡを用いる測定系の希釈直線性の確認」、「ＭＡＬを用いる測定系の希釈直線性の確認」および「ＡＯＬを用いる測定系の希釈直線性の確認」と同様の条件で全自動免疫測定装置ＨＩＳＣＬ２０００ｉを用いて各測定試料の測定を行った。各測定に要した時間は１７分であった。結果を表７、図２３および図２４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　ＤＳＡを用いた測定結果で規格化したＭＡＬを用いた測定結果について、図２３に示した第２迅速測定法による測定結果が、図１８に示したレクチンアレイ法による測定結果と良好な相関を示すことがわかった。また、ＤＳＡを用いた測定結果で規格化したＡＯＬを用いた測定結果について、図２４に示した第２迅速測定法による測定結果が、図１９に示したレクチンアレイ法による測定結果と同様のパターンを示し、良好な相関を示すことがわかった。
２－６．臨床検体に対するＤＳＡ、ＭＡＬおよびＡＯＬを用いる測定
　線維化ステージＦ１の患者血清１及び２、線維化ステージＦ２の患者血清３及び４、線維化ステージＦ３の患者血清５及び６、線維化ステージＦ４の患者血清７及び８のそれぞれについて、実施例１のエンリッチと同様にして、抗ＡＧＰ抗体を用いてＡＧＰを分離し、緩衝液Ｂ（ＴＢＳ－０．５％ＴｒｉｔｏｎＸ－０．１％ＳＤＳ）に回収し測定試料とした。また、緩衝液Ｂのみをブランク測定試料とした。
　「ＤＳＡを用いる測定系の希釈直線性の確認」、「ＭＡＬを用いる測定系の希釈直線性の確認」および「ＡＯＬの希釈直線性の確認」と同様の条件で全自動免疫測定装置ＨＩＳＣＬ２０００ｉを用いて各測定試料の測定を行った。各測定に要した時間は１７分であった。結果を表８、図２５および図２６に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
２－７．臨床検体に対するレクチンアレイ法による測定
　上記２－６の各測定試料について、実施例１で用いたレクチンアレイを用いて、抗体オーバーレイ法による測定を行った。レクチンアレイ法による測定時間は約１８時間であった。結果を表９、図２７及び図２８に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　図２５～図２８に示された結果から第２迅速測定法が、臨床検体に対してもレクチンアレイ法と同様のパターンを示し、良好な相関を示すことがわかった。
[実施例６]　第２迅速測定法のバリデーション
１．HCV感染患者１２５症例を用いた解析
　実施例５により第２迅速測定法はレクチンアレイと同様のパターンを示すことがわかった。より多くの症例で実証するために、実施例２で使用した、肝炎ウイルスに罹患し、肝生検により病理診断され線維化のステージングがなされている患者群125症例を対象に、第２迅速測定法を実施例５の２－６の手順に従い行った。なお、125症例の肝臓線維化ステージの内訳は、F0およびF1が33症例、F2が32症例、F3が31症例、F4が29症例である。
　図２９は、肝臓の線維化進展とAGPの第２迅速測定法により得られたレクチンシグナル強度の変化との相関を示す図である。各シグナルはDSAレクチンのシグナルにより規格化されており、数値はDSAシグナルを100％とした時の相対シグナル強度としてあらわされている。図２９の左においては、肝生検後の病理解析により線維化のステージング（F）がされている125症例について第２迅速測定法を行い、各ステージのレクチンシグナルの分布を箱ひげ図により示している。第２迅速測定法により得られた３種レクチン値からMAL／DSA値を求め、箱ひげ図にしたものが左上段であり、AOL/DSA値を求め、箱ひげ図にしたものが左下段である。箱の上端および下端はそれぞれ75％点、25％点を示し、ひげの上端および下端はそれぞれ95％点、5％点を示す。箱中の横線は中央値を示し、×は平均値を示す。その結果はいずれもレクチンアレイの結果と酷似しており、AOLのシグナルは、線維化の進展に伴い強度を増し、強度差で慢性肝炎（F0-3）と肝硬変（F4）を十分見分けることができることが分かった。それに対し、MALシグナルは線維化の進展に伴い強度が減少していることが分かった。レクチンアレイの結果と第２迅速測定法の結果との間に相関性があることを支持するために、両者から得られた数値を２次元プロットした。そのグラフを図２９の右に示す。このグラフよりレクチンアレイの結果と第２迅速測定法の結果との間に強い相関があることが判明した。
２．肝硬変の検出
　実施例３に示したレクチンアレイによる肝硬変の検出と同様の手順で、第２迅速測定法により肝硬変の検出を試みた。上述の病理診断済み患者１２５症例分を対象に、2種レクチンのシグナルをDSAレクチンシグナルで規格化したデータを用い、他（F1-F3）からF4(肝硬変)を区別するROC曲線を作成し、感度100％、特異度100％点から最も近い距離にある曲線上の点、言い換えるとY=Xの直線に平行な線と、ROC曲線との接点を、「最適な特異度および感度」とし、その周辺にカットオフ値を設定した。得られた個々のレクチンに対するカットオフ値から肝硬変検出に最適なコンビネーション式（AOL/DSA ×1.8 － MAL/DSA）を求め、それにより病理学的診断又は画像・臨床診断 により肝炎および肝硬変と確定された患者、45症例および43症例を対象にブラインドテストを実施した。
　その結果、コンビネーション式（AOL/DSA ×1.8 － MAL/DSA）を用いて検出力を調べてみたところ、感度88.3％、特異度91.1％、正診率は89.8％結果が得られた。
次いで、本数式による偽陽性の出現頻度を検討するため、健常者100人分の血清についても第2迅速測定法による解析を行った。数式を用いて肝硬変判定ところ、図30に示すように偽陽性率は５％であり、レクチンアレイの結果と偽陽性検体が一致した。
　[実施例７]　肝疾患病態指標糖鎖マーカー候補糖タンパク質M2BPの抗体オーバーレイ・レクチンアレイ解析による肝線維化進展の判別
　実施例２の通り、M2BPにおいても、抗体オーバーレイ・レクチンアレイ解析により得られたレクチンシグナル情報から、各肝疾患病態を検出できる可能性が見出された。そこで肝線維化との相関を検討するための実験を実施した。AGPの実験で用いた肝炎ウイルスに罹患し、肝生検により病理診断され線維化のステージングがなされている患者群125症例を対象に、抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイを実施例２の手順に従い行った。結合シグナルの生じた17種レクチンのうち、有意差検定により線維化の進展に伴うシグナル変化が認められた６つのレクチンについて、線維化進展との相関を表すグラフを作成した。それを図３１に示す。各ステージのレクチンシグナルの分布を箱ひげ図により示した。箱の上端および下端はそれぞれ75％点、25％点を示し、ひげの上端および下端はそれぞれ95％点、5％点を示す。箱中の横線は中央値を示し、×は平均値を示す。なお、各グラフの縦軸はDSAのシグナルを100%とした時の相対値となっている。RCA120, AAL, TJAII, WFA, BPLのシグナルは、線維化の進展に伴い強度を増す一方、LELシグナルは線維化の進展に伴い強度が減少していることが分かった。このうち、線維化の進展をモニタリングするという観点においてはRCA120やAALが適していると考えられる。また、TJAII, WFA, BPLに関しては肝硬変（F4）になり初めてシグナルが生じているタイプである。かつ、F4におけるシグナルのばらつきが大きいため、これは発がん高リスク群を囲い込むのに有効なマーカーとなる可能性が示唆された。
[実施例８]　M2BPの糖鎖変化検出による肝がん発がん高リスク群囲い込み
１．肝がん発がん高リスク群囲い込みに適したレクチンの選抜
実施例7において、肝線維化に伴いシグナル強度が増すレクチン群が見出された。それらレクチン群のうち発がん高リスク群を囲い込むことのできるものを選抜するため、肝細胞がん患者術前術後血清7症例を対象にした、M2BPの抗体オーバーレイ・レクチンマイクロアレイ解析を行った。その実験手順は実施例1に従った。また、全自動蛍光免疫測定装置（μTAS Wako i30；和光純薬工業株式会社製）および専用試薬により、公知である肝細胞がんマーカーAFP血中量および良性疾患・肝細胞がん鑑別マーカーAFP-L3%の測定も行った。その結果の一部のレクチンシグナルパターンを図32に示す。AFP-L3%を含めたすべてのパラメーターが、７症例すべてで必ずしも術後のシグナル減少を示すというわけではなかった。これはいずれもがん検出マーカーではないことを意味している。本実験では肝細胞がん発がんの高リスク群囲い込みマーカー候補を選抜することが目的である。その点においては、AFP-L3%にパターンが類似していることが望まれる。実施例7で予想したとおりWFA, BPLレクチンがAFP-L3%のパターンに類似していた。かつ、BPLに比べWFAはシグナル強度がより強く安定であったため、WFAを有力レクチンとして選抜した。
２．レクチン―抗体サンドイッチELISA 法によるWFA結合性M2BPの検出 
　ＷＦＡ結合性M2BPを肝がん発がん高リスク群囲い込みマーカーとし、該バイオマーカーを検出する最良の形態としては、血清に含まれるバイオマーカーを臨床上許容される性能で、かつ、臨床上適用可能な簡便な手段により検出及び判別する方法が考えられる。以下にはその例として、抗M2BP抗体オーバーレイ－ＷＦＡウェルプレート（図３３を参照）を用いたサンドイッチ検出分析の結果を示す。なお、本手法においてWFAウェルプレートには血清を直接添加することが可能である。その根拠としては、血清中に含まれる糖タンパク質でWFAに結合できる分子は非常に少なく、発がん高リスク群患者においてはM2BPが最も血中濃度の高い分子の一つであるからである。　
（実験方法）
マイクロタイタープレート(グライナー社製 ９６ウェル平底ストレプトアビジンコートプレート)へＰＢＳ緩衝液に溶解したビオチン化ＷＦＡ（Vector社製、５μｇ／ｍＬ）を各ウェルに５０μＬずつ加え、２時間室温で保温し、支持体へＷＦＡを固相化した。未結合ＷＦＡを洗浄液である０．１％Tween２０含有ＰＢＳ（３００μＬ）で２回ずつ洗浄し、ＷＦＡ固相化ウェルプレートを完成させた。
各サンプル1μLを上記洗浄液５０μＬで希釈し、１で作製したＷＦＡ固相化ウェルプレートへ添加した後、２時間室温で結合反応した。反応後、各ウェルは上記洗浄液３００μＬで５回洗浄し、未結合タンパク質を除去した。そこにあらかじめ１．０μｇ／ｍＬへ洗浄液で調整した検出剤（ヤギ抗M2BPポリクロ―ナル抗体溶液；R&D Systems社製）を１ウェルあたり５０μＬずつ加え、室温で２時間抗原抗体反応した。
　未結合抗体を除去するために洗浄液３００μＬで洗浄後、洗浄液で１０，０００倍希釈した抗ヤギＩｇＧ抗体－ＨＲＰ溶液(Jackson immuno Research社製)を、1ウェルあたり５０μＬずつ加え、室温で1時間保温した。各ウェルを３００μＬの洗浄液で５回洗浄後、発色試薬であるULTRA-TMB溶液 (Thermo 社製)を各ウェルに１００μＬずつ加え、１０分間発色反応した。１MのＨ２ＳＯ４溶液を１ウェルあたり１００μＬ加え反応を停止し、プレートリーダーにより４５０ｎｍで吸光度測定した。得られたシグナルは健常者血清をネガティブコントロール（Ｎ）とし、Ｓ／Ｎ比として数値化し、以降の解析に用いた。
（結果）
まず、上述の肝細胞がん患者術前術後血清7症例を対象にアッセイした。その結果、図３２の結果に酷似したシグナルパターンが得られた（図３４上段）。これら症例のうち術後に継続的に採血を実施していた３症例についてWFA結合性M２BP量の測定を試みた。なお、患者AおよびBは術後再発症例であり、患者Eは再発なし症例である。再発したポイントを矢印で示す。その結果を図３４下段に示す。横軸は施術日を０とし、経過月数を表す。また、縦軸は健常者血清をネガティブコントロール（Ｎ）とし、Ｓ／Ｎ比で表す。患者Aは術後も測定値はS/N=2.5付近で推移し、再発ポイント以降で値が上昇している。患者Bは術前の測定値が非常に高く、術後その値は減少するがS/N=2.5付近で停滞した。一方患者Eは術前術後にS/N=2.0と最も低値を示し、かつその数値は徐々に下降していった。以上の結果より、術後、S/N>2.5で停滞した患者は再発リスクが高く、かつ再発後値が上昇する一方で、術後速やかに減少しS/N=2.0を大きく下回る患者は再発しない可能性が高いことが見出された。以上により、WFA結合性M2BPは肝がん発がん高リスク群囲い込みマーカーとして有用であり、それを検出する簡易測定系として、抗M2BP抗体オーバーレイ－ＷＦＡウェルプレートを開発することができた。
[実施例９]　ＥＬＩＳＡ法によるＷＦＡ結合性Ｍ２ＢＰ検出における検体加熱処理の影響の検証
　ＥＬＩＳＡ法によるＷＦＡ結合性Ｍ２ＢＰ検出において、検体加熱処理の有無が検出感度に及ぼす影響を確認した。
　ヒト肝がん由来細胞株（ＨｅｐＧ２培養上清）を０．２％ＳＤＳ含有ＰＢＳ緩衝液で１０倍希釈し、１０分間９５℃で加熱処理した。
　サンプルとして、ＨｅｐＧ２培養上清（未処理）とＨｅｐＧ２培養上清（加熱処理）を、１ウエル当りのタンパク量が下記表１０になるように用いること以外は、実施例８の２と同様の方法でＷＦＡに結合するＭ２ＢＰの測定を行った。プレートリーダーにより測定された吸光度を表１０および図３５に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　表１０および図３５の結果からＥＬＩＳＡ法によるＷＦＡ結合性Ｍ２ＢＰの測定においては、加熱処理の行われていない血清を測定サンプルとして用いることにより、測定感度が向上することが判明した。
[実施例１０]　 第２迅速測定法によるＭ２ＢＰの測定
１．試薬の調製
　Ｒ１試薬の調製：１０ｍＭのＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．5）、１５０ｍＭのＮａＣｌ、０．０１ｍＭのＭｎＣｌ２、０．１ｍＭのＣａＣｌ２、０．０８ｗ／ｖ％のＮａＮ３を含む溶液（緩衝液Ｃ）を調製し、Ｒ１試薬とした。
　Ｒ２試薬の調製：緩衝液Ｃに市販のストレプトアビジンが固定された磁性粒子（個数平均粒径２μｍ）（以下、ストレプトアビジン感作磁性粒子とする）を０．５ｗ／ｖ％の濃度となるように添加し、さらにここにビオチン化したレクチン溶液(WFA)を添加した。この混合液を室温で30分攪拌した。攪拌後、磁石で集磁して磁性粒子を沈降させ、溶液成分を廃棄した。緩衝液Ｃで3回洗浄後、緩衝液Ｄ（１０ｍＭのＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．5）、１５０ｍＭのＮａＣｌ、０．０１ｍＭのＭｎＣｌ２, ０．１ｍＭのＣａＣｌ２、０．１％Ｗ／ＶのＢＳＡ、０．０８ｗ／ｖ％のＮａＮ3を含む溶液）を磁性粒子濃度が０．５ｗ／ｖ％になるように添加した。
　Ｒ３試薬の調製：０．１Ｕ／ｍＬのＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ　ＡＬＰ標識マウス抗Ｍ２ＢＰモノクローナル抗体、０．１ＭのＭＥＳ（２－（N－Ｍｏｒｐｈｏｌｉｎｏ）　ｅｔｈａｎｅｓｕｌｆｏｎｉｃ　ａｃｉｄ、ｐＨ６．５)、０．１５ＭのＮａＣｌ、１ｍＭのＭｇＣｌ２、０．１ｍＭのＺｎＣｌ２、０．１ｗ／ｖ％のＮａＮ３を含む溶液を調製しＲ３試薬とした。
　Ｒ４試薬、Ｒ５試薬および洗浄試薬については、実施例５の第２迅速測定法で用いたＲ４試薬、Ｒ５試薬および洗浄試薬を使用した。
２．ＷＦＡを用いる測定系の希釈直線性の確認
　ヒト肝がん由来細胞株培養上清（ＨｅｐＧ２培養上清）１００μｇ／ｍｌを緩衝液（ＰＢＳ）で１０倍、１００倍、１０００倍および１００００倍に希釈した希釈試料を調製した。　また、Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ　Ｈｕｍａｎ　Ｇａｌｅｃｔｉｎ－３ＢＰ／ＭＡＣ－２ＢＰ（Ｒ＆Ｄ　ＳＹＳＴＥＭＳ製）５μｇ／ｍｌを緩衝液（ＰＢＳ）で２倍、４倍、８倍、１６倍、３２倍および６４倍に希釈した希釈試料を調製した。
　全自動免疫測定装置ＨＩＳＣＬ２０００ｉ（シスメックス社製）の動作設定を下記の条件に変更し、各希釈試料について化学発光強度（ｐｈｏｔｏ　ｃｏｕｎｔ値）を測定した。
　Ｒ１試薬３０μＬと、各希釈試料１０μＬとを容器に分注し、４２℃で２．２５分間インキュベートした後、３０μＬのＲ２試薬を分注し、４２℃で１．５分間反応させた。磁気分離により磁性粒子を集磁して溶液を吸引廃棄した。洗浄試薬を分注して洗浄試薬に磁性粒子を分散洗浄し、磁気分離により磁性粒子を集磁して溶液を吸引廃棄する処理を３回繰り返し実行した。１００μＬのＲ３試薬を分注し、４２℃で２．７５分間反応させた。磁気分離により磁性粒子を集磁して溶液を吸引廃棄した。洗浄試薬を分注して洗浄試薬に磁性粒子を分散洗浄し、磁気分離により磁性粒子を集磁して溶液を吸引廃棄する処理を３回繰り返し実行した。５０μＬのＲ４試薬を分注し、次いで１００μＬのＲ５試薬を分注し化学発光強度を測定した。ＨｅｐＧ２培養細胞の上清の測定結果を表１１および図３６に、Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ　Ｈｕｍａｎ　Ｇａｌｅｃｔｉｎ－３ＢＰ／ＭＡＣ－２ＢＰの測定結果を表１２および図３７示す。これらの測定結果に示されるようにＷＦＡ測定系について良好な希釈直線性を示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
３．臨床検体に対する測定
　健常人血清、ＨＢＶ陽性肝細胞がん患者血清およびＨＣＶ陽性肝細胞がん患者血清を、「２．ＷＦＡを用いる測定系の希釈直線性の確認」と同様の条件で全自動免疫測定装置ＨＩＳＣＬ２０００ｉにより測定した。各検体の測定に要した時間は１７分であった。結果を表１３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000014
　表１３の結果から、ＷＦＡに結合するＭ２ＢＰが第２迅速測定法により迅速且つ正確に測定できることが確認できた。
　本願発明は、肝疾患又は肝疾患病態の判定のための装置、器具又はキット製造や、肝疾患の病態の判別、あるいは、肝硬変の検出などに用いることができる。

Claims (17)

  1. 　被験者より採取された試料に含まれるalpha-1-acid glycoprotein（ＡＧＰ）およびMac-2-binding protein（Ｍ２ＢＰ）から選択される少なくとも一つの糖タンパク質の測定方法であって、糖タンパク質がＡＧＰの場合には、ＡＯＬおよびＭＡＬから選択される第１レクチンに結合するＡＧＰを測定し、糖タンパク質がＭ２ＢＰの場合には、ＷＦＡ、ＢＰＬ、ＡＡＬ、ＲＣＡ１２０およびＴＪＡＩＩから選択される第２レクチンに結合するＭ２ＢＰを測定することを特徴とする糖タンパク質の測定方法。
  2. 　ＡＧＰの糖鎖構造の変化にかかわらず反応性が実質変化しないレクチン（規格化用レクチン）に結合した糖タンパク質を測定し、第１レクチンに結合したＡＧＰの測定値を、前記規格化用レクチンと結合したＡＧＰの測定値を用いて規格化する請求項１記載の糖タンパク質の測定方法。
  3. 　Ｍ２ＢＰの糖鎖構造の変化にかかわらず反応性が実質変化しないレクチン（規格化用レクチン）に結合した糖タンパク質を測定し、第２レクチンに結合したＭ２ＢＰの測定値を、前記規格化用レクチンと結合したＭ２ＢＰの測定値を用いて規格化する請求項１記載の糖タンパク質の測定方法。
  4. 　前記規格化用レクチンがＤＳＡである請求項２または請求項３に記載の糖タンパク質の測定方法。
  5. 　前記第１または第２レクチン、前記糖タンパク質および標識抗糖タンパク質抗体の複合体を形成し、複合体における標識量を測定することにより前記第１または第２レクチンに結合する前記糖タンパク質を定量する請求項１～４の何れか１項に記載の糖タンパク質の測定方法。
  6. 　複合体の形成が、第１または第２レクチンが固定された磁性粒子を用いて実行される請求項５記載の糖タンパク質の測定方法。
  7. 　複合体の形成が、ビオチン化された第１または第２レクチンと、ストレプトアビジンまたはアビジンが固定された磁性粒子を用いて実行される請求項５記載の糖タンパク質の測定方法。
  8. 　標識抗糖タンパク質抗体の標識が、脱グリコシル化処理されたアルカリホスファターゼである請求項５～７の何れか１項に記載の糖タンパク質の測定方法。
  9. 　抗糖タンパク質抗体が脱グリコシル化された抗糖タンパク質抗体である請求項５～７の何れか１項に記載の糖タンパク質の測定方法。
  10. 　少なくとも第１レクチンが固定された第１レクチンアレイと、抗ＡＧＰ抗体とを用いて、第１レクチンに結合するＡＧＰを測定し、少なくとも第２レクチンが固定された第２レクチンアレイと、抗Ｍ２ＢＰ抗体とを用いて、第２レクチンに結合するＭ２ＢＰを測定する請求項１記載の糖タンパク質の測定方法。
  11. 　第１および第２レクチンアレイにさらにＤＳＡが固定されており、ＤＳＡに結合するＡＧＰを測定し、第１レクチンに結合したＡＧＰの測定値をＤＳＡに結合したＡＧＰの測定値で規格化し、ＤＳＡに結合するＭ２ＢＰを測定し、第２レクチンに結合したＭ２ＢＰの測定値をＤＳＡに結合したＭ２ＢＰの測定値で規格化する請求項１０に記載の糖タンパク質の測定方法。
  12. 　請求項１～１１の何れか１項に記載の糖タンパク質の測定方法によって得られた糖タンパク質の測定値に基づいて、肝臓の線維化ステージを判定する肝疾患の検査方法。
  13. 　請求項１～１１の何れか１項に記載の糖タンパク質の測定方法によって得られた糖タンパク質の測定値に基づいて、肝硬変か否かを判定する肝疾患の検査方法。
  14. 　請求項１～１１の何れか１項に記載の糖タンパク質の測定方法によって得られた糖タンパク質の測定値に基づいて、肝細胞がんの再発リスクを判定する肝疾患の検査方法。
  15. 　請求項１～１１の何れか１項に記載の糖タンパク質の測定方法によって得られた糖タンパク質の測定値に基づいて、肝疾患の治療における抗ウイルス剤の治療効果を判定する方法。
  16. 　請求項１に記載の糖タンパク質の測定方法に用いられる糖タンパク質定量用試薬であって、糖タンパク質がＡＧＰの場合には、第１レクチンが固定された磁性粒子と、標識抗ＡＧＰ抗体とを備え、糖タンパク質がＭ２ＢＰの場合には、第２レクチンが固定された磁性粒子と、標識抗Ｍ２ＢＰ抗体とを備えたことを特徴とする糖タンパク質定量用試薬。
  17. 　肝疾患特異的な糖鎖変化を有するMac-2-binding protein（Ｍ２ＢＰ）からなる肝疾患病態指標糖鎖マーカー。
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