WO2022186318A1 - がん検出方法、がん検査方法、及びこれらに用いるキット - Google Patents

Abstract

膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんを検出する方法であり、試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を測定する測定工程を含む、方法。

Description

がん検出方法、がん検査方法、及びこれらに用いるキット

　本発明は、がん検出方法、がん検査方法、及びこれらに用いるキットに関し、より詳しくは、膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんを検出する方法、及び前記がんを検査する方法、並びに、これらの方法に用いるキットに関する。

　腫瘍マーカー等のバイオマーカーは、悪性腫瘍等の疾患の検出や、治療方針決定の指針、治療効果判定のためのモニタリングマーカーとして有用であり、近年盛んに研究されている。このようなバイオマーカーとしては、ＣＡ１９－９やＣＥＡ等が知られており、例えば、ＣＡ１９－９は、消化器がん、特に大腸がん、膵がん、胆管がん、胆嚢がん等のがん患者において血中濃度が上昇することが知られており、これらのがんの検出や、治療方針決定の指針、治療効果判定のためのモニタリングマーカーとして従来から用いられている。

　また、近年では、がんにおける糖タンパク質の糖鎖構造変化が注目されている。例えば、非特許文献１には、膵がん患者におけるフコシル化ハプトグロビン（Ｆｕｃ－Ｈｐｔ）が健常者に比べて有意に増加することが報告されている。さらに、非特許文献２には、フコシル化ヘモペキシンが肝細胞癌の有用なバイオマーカーとなる可能性が示唆されている。また、非特許文献３には、フコシル化トランスフェリンが肝細胞癌群において有意に上昇することが記載されている。

Ｅｉｊｉ　Ｍｉｙｏｓｈｉら，Ｃａｎｃｅｒ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｖｏｌ．１０７，Ｎｏ．１０，２０１６年，ｐ．１３５７－１３６２ 小林　沙代，「本邦の肝細胞癌患者における血清フコシル化ヘモペキシンの臨床的有用性」，岡山大学　学位論文，２０１３年 横田　剛，「肝細胞癌患者血清におけるトランスフェリン糖鎖変異に関する研究、特にアルファフェトプロテイン糖鎖との関連について」，肝臓　３５巻８号，１９９４年，ｐ．５８７－５９５

　しかしながら、上記の従来のモニタリングマーカーでは、がん種ごとの特異性が未だ十分ではなく、上記がんの中でも、特に膵がんや胆管がんは早期診断が困難ながんであるが、膵がん患者と健常者、又は胆管がん患者と健常者を、より高精度で判別するためには未だ不十分であった。また、上記のようにがんにおける糖タンパク質の糖鎖の構造変化が注目されているが、未だ十分に解明されておらず、これらの糖鎖には、がん検出のための新たなバイオマーカーとしての可能性が期待される。

　本発明は上記課題に鑑みてなされたものであり、新たなバイオマーカーを指標とした、高精度で膵がん及び胆管がんを特異的に検出可能ながん検出方法及びがん検査方法、並びに、これらの方法に用いるキットを提供することを目的とする。

　本発明者らは、既存抗体では測定できなかった新たな腫瘍マーカーとしての糖鎖の探索を目的として、抗ヘモペキシン抗体又は抗トランスフェリン抗体に加えて、水溶性高分子からなる水溶性担体と前記水溶性担体に固定された標識物質及びレクチンとを備える複合体（ブロック化標識レクチン）も用いてスクリーニングを行った。その結果、レクチンとしてＡＯＬを用いた場合に検出される、レクチン結合性のフコースが付加したヘモペキシン（フコース付加ヘモペキシン）量が、健常者に比べて、膵がん患者及び胆管がん患者で有意に増加することを見出した。さらに、レクチンとしてＡＯＬを用いた場合に検出される、レクチン結合性のフコースが付加したトランスフェリン（フコース付加トランスフェリン）量も、健常者に比べて、膵がん患者及び胆管がん患者で有意に増加することも見出した。そのため、フコース付加ヘモペキシン及び／又はフコース付加トランスフェリンを測定することにより、膵がん及び胆管がんを特異的に検出し、かつ、膵がん患者と健常者、又は胆管がん患者と健常者を、高精度で判別することが可能となることを見出し、本発明を完成するに至った。

　かかる知見により得られた本発明の態様は次のとおりである。
［１］
　膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんを検出する方法であり、試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を測定する測定工程を含む、方法。
［２］
　膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんを検査する方法であり、被検者由来の試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を測定する測定工程を含む、方法。
［３］
　膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんであると予測される被検者をスクリ－ニングする方法であり、被検者由来の試料中のフコース付加ヘモペキシンを測定する測定工程と、測定されたフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を指標として被検者を選別する選別工程と、を含む、［２］に記載の方法。
［４］
　被検者が膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんに罹患するリスクを予測する方法であり、被検者由来の試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を測定する測定工程と、測定されたフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を指標として、被検者が前記がんに罹患するリスクを予測する予測工程と、を含む、［２］に記載の方法。
［５］
　フコース付加ヘモペキシンにおいて、フコースがα１－６フコース及びα１－２フコースからなる群から選択される少なくとも１種である、［１］～［４］のうちのいずれか一項に記載の方法。
［６］
　フコース付加ヘモペキシンにおいて、フコースがＡＯＬに結合するＡＯＬ結合型糖鎖及びＡＡＬに結合するＡＡＬ結合型糖鎖からなる群から選択される少なくとも１種である、［１］～［５］のうちのいずれか一項に記載の方法。
［７］
　前記測定工程が、前記試料と、ヘモペキシンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子及びフコースに特異的に結合可能な第２のプローブ分子と、を接触させる工程である、［１］～［６］のうちのいずれか一項に記載の方法。
［８］
　第１のプローブ分子が、ヘモペキシンに特異的に結合可能な抗体である、［７］に記載の方法。
［９］
　第２のプローブ分子が、フコースに特異的に結合可能なレクチンである、［７］又は［８］に記載の方法。
［１０］
　前記測定工程が、前記試料と、捕捉体及び標識体と、を接触させる工程であり、
　前記捕捉体が、非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定された第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちのいずれか一方と、を備えるものであり、かつ、
　前記標識体が、標識物質と、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちの他方と、を備えるものである、
［７］～［９］のうちのいずれか一項に記載の方法。
［１１］
　前記捕捉体が、非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定された第１のプローブ分子と、を備えるものであり、かつ、
　前記標識体が、水溶性担体と、前記水溶性担体に固定された標識物質及び第２のプローブ分子と、を備え、第２のプローブ分子がフコースに特異的に結合可能なレクチンであるブロック化標識レクチンである、
［１０］に記載の方法。
［１２］
　フコース付加トランスフェリンにおいて、フコースがα１－６フコース及びα１－２フコースからなる群から選択される少なくとも１種である、［１］～［４］のうちのいずれか一項に記載の方法。
［１３］
　フコース付加トランスフェリンにおいて、フコースがＡＯＬに結合するＡＯＬ結合型糖鎖及びＡＡＬに結合するＡＡＬ結合型糖鎖からなる群から選択される少なくとも１種である、［１］～［４］及び［１２］のうちのいずれか一項に記載の方法。
［１４］
　前記測定工程が、前記試料と、トランスフェリンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子及びフコースに特異的に結合可能な第２のプローブ分子と、を接触させる工程である、［１］～［４］及び［１２］～［１３］のうちのいずれか一項に記載の方法。
［１５］
　第１のプローブ分子が、トランスフェリンに特異的に結合可能な抗体である、［１４］に記載の方法。
［１６］
　第２のプローブ分子が、フコースに特異的に結合可能なレクチンである、［１４］又は［１５］に記載の方法。
［１７］
　前記測定工程が、前記試料と、捕捉体及び標識体と、を接触させる工程であり、
　前記捕捉体が、非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定された第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちのいずれか一方と、を備えるものであり、かつ、
　前記標識体が、標識物質と、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちの他方と、を備えるものである、
［１４］～［１６］のうちのいずれか一項に記載の方法。
［１８］
　前記捕捉体が、非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定された第１のプローブ分子と、を備えるものであり、かつ、
　前記標識体が、水溶性担体と、前記水溶性担体に固定された標識物質及び第２のプローブ分子と、を備え、第２のプローブ分子がフコースに特異的に結合可能なレクチンであるブロック化標識レクチンである、
［１７］に記載の方法。
［１９］
　［７］～［１１］のうちのいずれか一項に記載の方法に用いるためのキットであり、ヘモペキシンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子と、フコースに特異的に結合可能な第２のプローブ分子と、を備える、キット。
［２０］
　第１のプローブ分子が、ヘモペキシンに特異的に結合可能な抗体である、［１９］に記載のキット。
［２１］
　第２のプローブ分子が、フコースに特異的に結合可能なレクチンである、［１９］又は［２０］に記載のキット。
［２２］
　非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定された第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちのいずれか一方と、を備える捕捉体、並びに、
　標識物質と、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちの他方と、を備える標識体、
を備える、［１９］～［２１］のうちのいずれか一項に記載のキット。
［２３］
　前記捕捉体が、非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定された第１のプローブ分子と、を備えるものであり、かつ、
　前記標識体が、水溶性担体と、前記水溶性担体に固定された標識物質及び第２のプローブ分子と、を備え、第２のプローブ分子がフコースに特異的に結合可能なレクチンであるブロック化標識レクチンである、
［２２］に記載のキット。
［２４］
　［１４］～［１８］のうちのいずれか一項に記載の方法に用いるためのキットであり、トランスフェリンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子と、フコースに特異的に結合可能な第２のプローブ分子と、を備える、キット。
［２５］
　第１のプローブ分子が、トランスフェリンに特異的に結合可能な抗体である、［２４］に記載のキット。
［２６］
　第２のプローブ分子が、フコースに特異的に結合可能なレクチンである、［２４］又は［２５］に記載のキット。
［２７］
　非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定された第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちのいずれか一方と、を備える捕捉体、並びに、
　標識物質と、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちの他方と、を備える標識体、
を備える、［２４］～［２６］のうちのいずれか一項に記載のキット。
［２８］
　前記捕捉体が、非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定された第１のプローブ分子と、を備えるものであり、かつ、
　前記標識体が、水溶性担体と、前記水溶性担体に固定された標識物質及び第２のプローブ分子と、を備え、第２のプローブ分子がフコースに特異的に結合可能なレクチンであるブロック化標識レクチンである、
［２７］に記載のキット。

　本発明によれば、新たなバイオマーカーを指標とした、高精度で膵がん及び胆管がんを特異的に検出可能ながん検出方法及びがん検査方法、並びに、これらの方法に用いるキットを提供することが可能となる。

健常人群及び膵癌群のフコシル化ヘモペキシンの測定結果を示すグラフである。 健常人群及び胆管癌群のフコシル化ヘモペキシンの測定結果を示すグラフである。 健常人群及び肝細胞癌群のフコシル化ヘモペキシンの測定結果を示すグラフである。 膵癌群及び肝細胞癌群のフコシル化ヘモペキシンの測定結果を示すグラフである。 胆管癌群及び肝細胞癌群のフコシル化ヘモペキシンの測定結果を示すグラフである。 健常人群及び膵癌群のフコシル化トランスフェリンの測定結果を示すグラフである。 健常人群及び胆管癌群のフコシル化トランスフェリンの測定結果を示すグラフである。 健常人群及び肝細胞癌群のフコシル化トランスフェリンの測定結果を示すグラフである。 膵癌群及び肝細胞癌群のフコシル化トランスフェリンの測定結果を示すグラフである。 胆管癌群及び肝細胞癌群のフコシル化トランスフェリンの測定結果を示すグラフである。

　以下、本発明をその好適な実施形態に即して詳細に説明する。

　＜がん検出方法、がん検査方法＞
　本発明のがん検出方法は、膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんを検出する方法であり、試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を測定する測定工程を含む方法である。また、本発明のがん検査方法は、膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんを検査する方法であり、被検者由来の試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を測定する測定工程を含む方法である（以下、場合により、本発明のがん検出方法及び本発明のがん検査方法を総称して「本発明の方法」という）。

　［がん］
　本発明において、「がん」には、上皮性の悪性腫瘍（癌）及び非上皮性の悪性腫瘍（肉腫）が含まれる。本発明の方法において検出又は検査の対象となるがんは、膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんである。本発明に係る膵がんとは、膵臓に発生するがんを示し、例えば、浸潤性膵管癌（通常型膵癌）、膵内分泌腫瘍、膵管内乳頭状粘液腫瘍、粘液性嚢胞腫瘍、腺房細胞癌、未分化癌、漿液性嚢胞腺癌、転移性膵癌が挙げられる。これらの中でも、代表的な膵がんは浸潤性膵管癌であり、本発明において好ましい。また、本発明に係る胆管がんとは、胆管（肝臓の中の胆管又は肝臓の外の胆管）に発生するがんを示し、例えば、当該領域における、肝内胆管癌、肝外胆管癌（肝門部胆管癌、上部胆管癌、中部胆管癌、下部胆管癌）、乳頭部癌、胆嚢管癌が挙げられる。これらの中でも、本発明に係る胆管がんとしては、肝臓の外の胆管に発生する肝外胆管癌が好ましい。

　［フコース付加ヘモペキシン］
　本発明において、「フコース付加ヘモペキシン（本明細書中、場合により「フコシル化ヘモペキシン」ともいう）」とは、ヘモペキシンと、ヘモペキシンに結合して付加されたフコースと、を含む分子のことをいう。１分子のヘモペキシンに対して、フコースは複数付加していてよい。

　「ヘモペキシン」は、ヘム又は鉄と特異的親和性を有し、ヘモグロビンの搬送に関わる糖タンパク質であり、従来から鉄欠乏性貧血や肝障害の診断のためのモニタリングマーカーとして用いられている。ヘモペキシンは、典型的には、約４４０個のアミノ酸からなるタンパク質部分と、それに結合した複数の糖鎖からなる糖鎖部分とからなり、分子量は約７万であり、その約２０％が糖鎖部分である。なお、本発明において単に「ヘモペキシン」という場合、かかるヘモペキシンの糖鎖部分に下記の「フコース」は含まない。

　「フコース」は、ＩＵＰＡＣ名「（３Ｓ，４Ｒ，５Ｒ，６Ｓ）－６－メチルオキサン－２，３，４，５－テトロール」で示される単糖であり、Ｌ型であることが好ましい。フコース付加ヘモペキシンに係るフコースは、ヘモペキシンのタンパク質部分に直接結合していてもよいが、ヘモペキシンの糖鎖部分を構成する糖鎖にフコースが結合して付加されていることが好ましい。

　また、本発明に係るフコース付加ヘモペキシンとしては、フコースを、α１－６フコース及びα１－２フコースからなる群から選択される少なくとも１種として含んでいることが好ましい。本発明において、「α１－６フコース」とは、Ｎ型糖鎖の還元末端（根元）に存在するＮ－アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）にα１，６結合でフコースが付加した糖鎖を示し、「コアフコース」ともいう。また、本発明において、「α１－２フコース」とは、単糖であるガラクトース（Ｇａｌ）にα１，２結合でフコースが付加した糖鎖を示し、末端フコース残基が糖鎖の末端から２番目のガラクトース残基にα１，２結合した糖鎖（Ｆｕｃα１－２Ｇａｌ）であることが好ましい。このときのフコースが結合する糖鎖の他の部分の構造としては特に制限されないが、本発明に係るフコース付加ヘモペキシンとしては、フコースを、ＡＯＬに結合するＡＯＬ結合型糖鎖及びＡＡＬに結合するＡＡＬ結合型糖鎖からなる群から選択される少なくとも１種の糖鎖を構成するフコースとして含んでいることがより好ましく、ＡＯＬに結合するＡＯＬ結合型糖鎖を構成するフコースとして含んでいることがさらに好ましい。

　このようなフコース付加ヘモペキシンの平均質量（ゲル濾過クロマトグラフィー（ＧＦＣ）によるマーカーでの検量による平均質量、以下同じ）としては、特に限定されないが、５０，０００～８０，０００Ｄａであることが好ましく、６０，０００～７０，０００Ｄａであることがより好ましい。

　［フコース付加トランスフェリン］
　本発明において、「フコース付加トランスフェリン（本明細書中、場合により「フコシル化トランスフェリン」ともいう）」とは、トランスフェリンと、トランスフェリンに結合して付加されたフコースと、を含む分子のことをいう。１分子のトランスフェリンに対して、フコースは複数付加していてよい。

　「トランスフェリン」は、ヘム又は鉄と特異的親和性を有し、ヘモグロビンの搬送に関わる糖タンパク質であり、従来から鉄欠乏性貧血や肝障害の診断のためのモニタリングマーカーとして用いられている。トランスフェリンは、典型的には、約７００個のアミノ酸からなるタンパク質部分と、それに結合した複数の糖鎖からなる糖鎖部分とからなり、分子量は約８０万であり、その約１０％が糖鎖部分である。なお、本発明において単に「トランスフェリン」という場合、かかるトランスフェリンの糖鎖部分に下記の「フコース」は含まない。

　フコース付加トランスフェリンに係るフコースは、トランスフェリンのタンパク質部分に直接結合していてもよいが、トランスフェリンの糖鎖部分を構成する糖鎖にフコースが結合して付加されていることが好ましい。

　また、本発明に係るフコース付加トランスフェリンとしては、フコースを、α１－６フコース及びα１－２フコースからなる群から選択される少なくとも１種として含んでいることが好ましい。また、本発明に係るフコース付加トランスフェリンとしては、フコースを、ＡＯＬに結合するＡＯＬ結合型糖鎖及びＡＡＬに結合するＡＡＬ結合型糖鎖からなる群から選択される少なくとも１種の糖鎖を構成するフコースとして含んでいることがより好ましく、ＡＯＬに結合するＡＯＬ結合型糖鎖を構成するフコースとして含んでいることがさらに好ましい。

　このようなフコース付加トランスフェリンの平均質量（ゲル濾過クロマトグラフィー（ＧＦＣ）によるマーカーでの検量による平均質量、以下同じ）としては、特に限定されないが、７０，０００～９０，０００Ｄａであることが好ましく、７５，０００～８５，０００Ｄａであることがより好ましい。

　［被検者］
　本発明において、「被検者」とは、本発明のがん検査方法を行う対象を示し、好ましくは人である。本発明に係る被検者としては、スクリーニングやリスク評価を目的とした、健常者であっても、膵がん又は胆管がんに罹患しているが自覚症状のない者であってもよい。また、予後の決定、治療方針の決定、治療効果の確認、再発の確認等を目的とした、既に前記がんに罹患していることが既知の患者や過去に前記がんに罹患した患者であってもよい。また、本発明において、「健常者」とは、検査の対象となるがん（すなわち、膵がん及び／又は胆管がん）に罹患していない者を示す。なお、被検者が真に膵がん及び／又は胆管がんに罹患していることは、被検者から採取された膵臓組織及び／又は胆管組織の生検によって決定（確定診断）される。

　［試料］
　本発明のがん検出方法及びがん検査方法（本明細書中、場合により、これらを総称して単に「本発明の方法」という）に用いられる「試料」としては、フコース付加ヘモペキシン及び／又はフコース付加トランスフェリンが存在し得る試料である限り特に制限はない。一般的には、前記被検者等、がん検査の対象から採取された血清、血漿、及び全血等の血液検体；尿、痰、唾液、汗、髄液、消化液、精液、リンパ液、腹水等の血液以外の体液検体；口腔粘膜、咽頭粘膜、腸管粘膜等の粘膜検体；並びに各種生検検体等が挙げられる。また、前記試料としては、培養細胞や細胞培養液であってもよい。本発明に係る試料としては血液検体が好ましく、血清（「血清検体」ともいう）がより好ましい。

　これらの試料は、必要に応じて希釈液で希釈又は懸濁したものであってもよい。前記希釈液としては、例えば、リン酸緩衝液、Ｔｒｉｓ緩衝液、グッド緩衝液、ホウ酸緩衝液、酢酸緩衝液、クエン酸緩衝液、グリシン緩衝液コハク酸緩衝液、フタル酸緩衝液等の緩衝液が挙げられる。ヘモペキシンは、通常、血中に高濃度（例えば、６３～１０９ｍｇ／ｄＬ）で含まれており、また、トランスフェリンは、通常、血中に高濃度（例えば、１９０～３２０ｍｇ／ｄＬ）で含まれていることから、本発明に係る試料としては、高度に希釈（例えば、血液検体では体積比で１／１０～１／１，０００，０００）したものであってもよい。これにより、試料が微量であっても測定が可能となり、また、夾雑物の影響を低減させて検出精度をさらに向上させることが可能である。

　また、本発明に係る試料としては、必要に応じて適宜前処理が施されたものであってもよい。前記前処理としては、粉砕、凍結、加熱、濃縮、分画、脱塩等の処理；ｐＨ調整剤、安定化剤、保存剤、防腐剤、界面活性剤等の添加処理；精製処理等が挙げられ、これらのうちの１種を単独であっても２種以上の組み合わせであってもよい。前記精製処理としては、特に制限されないが、例えば、カラムによる処理；非水溶性担体に固定された試料中の夾雑物に吸着する抗体等の物質により夾雑物を吸着してフコース付加ヘモペキシン及び／又はフコース付加トランスフェリンを含む試料中から除去する処理；非水溶性担体に固定された抗ヘモペキシン抗体によってフコース付加ヘモペキシンを含むヘモペキシンを捕捉して夾雑物を洗浄等により除去してから遊離させる処理や、非水溶性担体に固定された抗トランスフェリン抗体によってフコース付加トランスフェリンを含むトランスフェリンを捕捉して夾雑物を洗浄等により除去してから遊離させる処理等が挙げられる。

　［測定工程］
　本発明の方法は、試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を測定する測定工程を含む。本発明の方法としては、試料中のフコース付加ヘモペキシン又はフコース付加トランスフェリンを測定する測定工程を含むことが好ましい。本発明において、「測定」には、試料中のフコース付加ヘモペキシン及び／又はフコース付加トランスフェリンの存在の有無及び量をシグナルとして取り出す検出と、前記シグナル量に応じたフコース付加ヘモペキシン及び／又はフコース付加トランスフェリンの量の定量又は半定量が含まれる。

　フコース付加ヘモペキシンの測定方法としては、フコース付加ヘモペキシンを測定することができる方法である限り特に制限されず、従来公知の方法やそれに準じた方法、又はそれらの組み合わせを適宜採用することができる。また、フコース付加トランスフェリンの測定方法としても、フコース付加トランスフェリンを測定することができる方法である限り特に制限されず、従来公知の方法やそれに準じた方法、又はそれらの組み合わせを適宜採用することができる。また、フコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンの測定方法としては、これらを適宜組み合わせて採用することができる。例えば、フコース付加ヘモペキシン又はフコース付加トランスフェリンに特異的に結合可能なプローブ分子を用いる方法；高速液体クロマトグラフィー同位体希釈質量分析法（ＬＣ－ＩＤＭＳ）；誘導結合プラズマ発光分析法（ＩＣＰ－ＯＥＳ）；誘導結合プラズマ質量分析法（ＩＣＰ－ＭＳ）；原子吸光分光法（Ａｔｏｍｉｃ　Ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ　Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ、ＡＡＳ）；ＨＰＬＣ；ＦＰＬＣ；ＮＭＲ；ＩＲ；ＦＴＩＲ；ＵＶ－ＶＩＳ吸光光度計測法；フローサイトメトリ；質量分析法；及びこれらを組み合わせた方法が挙げられるが、これらに限定されるものではない。

　中でも、本発明に係るフコース付加ヘモペキシンの測定工程としては、フコース付加ヘモペキシンに特異的に結合可能なプローブ分子を用いる方法であることが好ましく、本発明に係るフコース付加トランスフェリンの測定工程としては、フコース付加トランスフェリンに特異的に結合可能なプローブ分子を用いる方法であることが好ましい。このようなプローブ分子としては、例えば、抗体；プロテインＡ、プロテインＧ、プロテインＬ等の結合タンパク質；アビジンＤ、ストレプトアビジン等のアビジン類；レクチン；ガレクチン、糖鎖受容体、免疫受容体等が挙げられる。なお、本発明において、「抗体」には、完全な抗体の他、抗体断片（例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）_２、Ｆｖ、単鎖抗体、ダイアボディー等）や抗体の可変領域を結合させた低分子化抗体も含まれる。

　フコース付加ヘモペキシンに特異的に結合可能なプローブ分子としては、ヘモペキシンに特異的に結合可能なプローブ分子とフコースに特異的に結合可能なプローブ分子との組み合わせであることが好ましく、フコース付加トランスフェリンに特異的に結合可能なプローブ分子としては、トランスフェリンに特異的に結合可能なプローブ分子とフコースに特異的に結合可能なプローブ分子との組み合わせであることが好ましい。以下、場合により、ヘモペキシンに特異的に結合可能なプローブ分子及びトランスフェリンに特異的に結合可能なプローブ分子を「第１のプローブ分子」といい、フコースに特異的に結合可能なプローブ分子を「第２のプローブ分子」という。

　〔第１のプローブ分子〕
　ヘモペキシンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子としては、例えば、ヘモペキシンに特異的に結合可能な抗体（ヘモペキシンのタンパク質部分を認識部位とする抗タンパク質抗体、ヘモペキシンの糖鎖部分を認識部位とする抗糖鎖抗体、及びヘモペキシンのタンパク質部分と糖鎖部分とを認識部位とする抗体を含む。本明細書中、場合により「抗ヘモペキシン抗体」という）が挙げられ、中でも、ヘモペキシンのタンパク質部分の少なくとも一部を認識部位とする抗ヘモペキシンタンパク質抗体であることが好ましく、また、フコースと第２のプローブ分子との結合に干渉しない抗体であることが好ましい。

　前記抗ヘモペキシン抗体としては、ヘモペキシンへの結合能を有する限り特に制限はなく、ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であってもよいが、均質性や安定性の観点からはモノクローナル抗体であることが好ましい。抗ヘモペキシン抗体は、従来公知の産生方法を適宜採用、改良することによって産生することができ、また、一般に流通されているものを適宜用いてもよい。

　トランスフェリンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子としては、例えば、トランスフェリンに特異的に結合可能な抗体（トランスフェリンのタンパク質部分を認識部位とする抗タンパク質抗体、トランスフェリンの糖鎖部分を認識部位とする抗糖鎖抗体、及びトランスフェリンのタンパク質部分と糖鎖部分とを認識部位とする抗体を含む。本明細書中、場合により「抗トランスフェリン抗体」という）が挙げられ、中でも、トランスフェリンのタンパク質部分の少なくとも一部を認識部位とする抗トランスフェリンタンパク質抗体であることが好ましく、また、フコースと第２のプローブ分子との結合に干渉しない抗体であることが好ましい。

　前記抗トランスフェリン抗体としては、トランスフェリンへの結合能を有する限り特に制限はなく、ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であってもよいが、均質性や安定性の観点からはモノクローナル抗体であることが好ましい。抗トランスフェリン抗体は、従来公知の産生方法を適宜採用、改良することによって産生することができ、また、一般に流通されているものを適宜用いてもよい。

　本発明に係る抗ヘモペキシン抗体及び抗トランスフェリン抗体としては、それぞれ、例えば、第２のプローブ分子として下記のレクチンを用いる場合に、当該レクチンが抗体糖鎖も認識して検出感度が低下することを抑制するために、酸化処理、グリコシダーゼ処理、プロテアーゼ処理等によって、レクチン結合性の糖鎖が除去若しくは破壊されたもの；抗体分子中の糖鎖付加アミノ酸を含む領域が除去されたもの；又は、抗体遺伝子を発現させた遺伝子組み換え大腸菌や細胞を用いたり抗体産生細胞の培養における栄養条件を制限したりすることよって糖鎖付加が起こらない条件で産生された抗体であることが好ましい。

　〔第２のプローブ分子〕
　フコースに特異的に結合可能な第２のプローブ分子としては、例えば、フコースに特異的に結合可能な抗体（本明細書中、場合により「抗フコース抗体」という）、フコースに特異的に結合可能なレクチン（例えば、ニホンコウジカビレクチン（ＡＯＬ）、ヒイロチャワンタケレクチン（ＡＡＬ）、レンズマメレクチン（ＬＣＡ）、シカクマメレクチン（ＬＴＬ）、ハリエニシダレクチン（ＵＥＡ－Ｉ）、スギタケレクチン（ＰｈｏＳＬ）、ヨーロッパウナギレクチン（ＡＡＡ））が挙げられ、中でも、フコースに特異的に結合可能なレクチンが好ましく、α１－６フコース及びα１－２フコースからなる群から選択される少なくとも１種に特異的に結合可能なレクチンがより好ましく、α１－６フコースに特異的に結合可能なレクチンがさらに好ましい。このようなレクチンとしてより具体的には、ニホンコウジカビレクチン（ＡＯＬ）及び／又はヒイロチャワンタケレクチン（ＡＡＬ）が好ましく、ニホンコウジカビレクチン（ＡＯＬ）が特に好ましい。

　なお、ニホンコウジカビレクチン（ＡＯＬ：Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｏｒｙｚａｅ　Ｌｅｃｔｉｎ）は、主にα１－６フコース（コアフコース）の糖鎖構造を認識して結合活性を示すタンパク質である。ヒイロチャワンタケレクチン（ＡＡＬ：Ａｌｅｕｒｉａ　ａｕｒａｎｔｉａ　Ｌｅｃｔｉｎ）は、主にα１－６フコース（コアフコース）やα１－２フコースの糖鎖構造を認識して結合活性を示すタンパク質である。前記レクチンとしては、糖鎖認識活性の特異性の増大等を目的として、変異が導入された改変レクチンとしたものや人工的に合成されたものであってもよい。また、一般に流通されているものを適宜用いてもよい。

　第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子を用いる場合、前記測定工程では、前記試料と、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子と、を接触させる。これにより、フコース付加ヘモペキシンの測定では、ヘモペキシンとフコースとがいずれも認識され、両者を含むフコース付加ヘモペキシンを検出して測定することができる。フコース付加トランスフェリンの測定では、トランスフェリンとフコースとがいずれも認識され、両者を含むフコース付加トランスフェリンを検出して測定することができる。前記試料と第１のプローブ分子との接触及び前記試料と第２のプローブ分子との接触は、互いに同時であってもよいし、別時であってもよいし、別時の場合にはいずれの接触が先であってもよい。

　〔標識物質〕
　本発明において、フコース付加ヘモペキシンの測定は、フコース付加ヘモペキシンに特異的に結合可能なプローブ分子（好ましくは、第１のプローブ分子及び／又は第２のプローブ分子）に付加した、又はこれらの分子を認識する分子（例えば、二次抗体やプロテインＡ）に付加した標識物質によって生じるシグナルを検出することによって行うことが好ましい。また、フコース付加トランスフェリンの測定は、フコース付加トランスフェリンに特異的に結合可能なプローブ分子（好ましくは、第１のプローブ分子及び／又は第２のプローブ分子）に付加した、又はこれらの分子を認識する分子（例えば、二次抗体やプロテインＡ）に付加した標識物質によって生じるシグナルを検出することによって行うことが好ましい。検出したシグナルの量を測定し、必要に応じてこれを半定量又は定量することによって、フコース付加ヘモペキシン量又はフコース付加トランスフェリン量とすることができる。前記「シグナル」には、呈色（発色）、消光、反射光、発光、蛍光、放射性同位体による放射線等が含まれ、肉眼で確認できるものの他、シグナルの種類に応じた測定方法・装置によって確認できるものも含まれる。本発明において、フコース付加ヘモペキシン量又はフコース付加トランスフェリン量としては、それぞれ、標準試料を用いた検量線等によりその量を検量してもよいが、より簡便かつ迅速な観点からは、前記シグナル量をそのまま本発明のフコース付加ヘモペキシン量又はフコース付加トランスフェリン量としてよい。

　本発明に係る標識物質としては、公知の免疫学的測定方法やそれに準じた方法において標識物質として用いられているものを特に制限なく用いることができる。例えば、酵素；アクリジニウム誘導体等の発光物質；ユーロピウム等の蛍光物質；アロフィコシアニン（ＡＰＣ）及びフィコエリスリン（Ｒ－ＰＥ）等の蛍光蛋白質；^１２５Ｉ等の放射性物質；フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）及びローダミンイソチオシアネート（ＲＩＴＣ）等の低分子量標識物質；金粒子；アビジン；ビオチン；ラテックス；ジニトロフェニル（ＤＮＰ）；ジゴキシゲニン（ＤＩＧ）が挙げられ、これらのうちの１種を単独であっても２種以上の組み合わせであってもよい。例えば、前記標識物質として酵素を用いた場合には、発色基質、蛍光基質、化学発光基質等を基質として添加することにより、当該基質に応じて種々の測定を行うことができる。前記酵素としては、例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）、アルカリホスファターゼ（ＡＬＰ）、β－ガラクトシダーゼ（β－ｇａｌ）、グルコースオキシダーゼ、ルシフェラーゼを挙げることができるが、これらに限定されるものではない。

　〔サンドイッチ法〕
　第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子を用いる測定方法としては、サンドイッチ法、競合法、及び免疫比濁法等の免疫学的測定方法や、これらの原理に準じた測定方法が挙げられ、特に制限されない。かかる測定方法では、例えば、一般的に、ＥＬＩＳＡ、デジタルＥＬＩＳＡ、ＣＬＥＩＡ（化学発光酵素免疫測定法）、ＣＬＩＡ（化学発光免疫測定法）、ＥＣＬＩＡ（電気化学免疫測定法）、ＲＩＡ（放射免疫測定法）等の、マイクロプレートや粒子等を担体とする方法；イムノクロマト；表面プラズモン共鳴分析法；蛍光共鳴エネルギー移動による検出方法等を採用することができる。

　本発明に係る測定方法としては、より感度及び特異度の高い測定システムを構築可能な傾向にある観点からは、サンドイッチ法が好ましい。以下、本発明に係る測定工程について、サンドイッチ法を例に挙げてより具体的な態様を説明する。

　前記サンドイッチ法を用いる場合の態様としては、
　前記測定工程が、前記試料と、捕捉体及び標識体と、を接触させる工程であり、
　前記捕捉体が、非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定された第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちのいずれか一方と、を備えるものであり、かつ、
　前記標識体が、標識物質と、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちの他方と、を備える、
態様（以下、場合により「第１の態様」という）が挙げられる。第１の態様において、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子は、それぞれ、前記捕捉体及び前記標識体のうちのいずれに備えられていてもよいが、一方が捕捉体に含まれ、もう一方が標識体に含まれる。これによりフコース及びヘモペキシンをいずれも捕捉することで、フコース付加ヘモペキシンを高精度かつ簡便に捕捉して検出することができる（フコース付加ヘモペキシンの測定の場合）。又は、これによりフコース及びトランスフェリンをいずれも捕捉することで、フコース付加トランスフェリンを高精度かつ簡便に捕捉して検出することができる（フコース付加トランスフェリンの測定の場合）。

　前記サンドイッチ法の他の態様としては、上記に限られず、例えば、前記標識体が、第１の標識物質と、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちのいずれか一方と、を備える第１の標識体、並びに、第２の標識物質と、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちの他方と、を備える第２の標識体であり、かつ、前記捕捉体が、非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定されたプローブ分子と、を備える捕捉体である態様（以下、場合により「第２の態様」という）としてもよい。第２の態様において、第１の標識物質と第２の標識物質とは互いに異なるシグナルを生じるものである。また、この場合の前記捕捉体に備えられるプローブ分子としては、フコース付加ヘモペキシンの測定の場合、フコース付加ヘモペキシンに特異的に結合可能なプローブ分子（第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子を含む）；第１のプローブ分子及び／又は第２のプローブ分子に特異的に結合可能なプローブ分子が挙げられ、フコース付加トランスフェリンの測定の場合、フコース付加トランスフェリンに特異的に結合可能なプローブ分子（第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子を含む）；第１のプローブ分子及び／又は第２のプローブ分子に特異的に結合可能なプローブ分子が挙げられる。

　このようなサンドイッチ法としては、２ステップ法であるフォワードサンドイッチ法（捕捉体と試料中のフコース付加ヘモペキシンとの反応、捕捉体に結合したフコース付加ヘモペキシンと標識体との反応、又は捕捉体と試料中のフコース付加トランスフェリンとの反応、捕捉体に結合したフコース付加トランスフェリンと標識体との反応を逐次的に行う方法）、リバースサンドイッチ法（予め標識体と試料中のフコース付加ヘモペキシン又はフコース付加トランスフェリンとを反応させ、生成した複合体を捕捉体と反応させる方法）、及び１ステップ法（試料中のフコース付加ヘモペキシン又はフコース付加トランスフェリン、捕捉体、標識体の反応を同時に１ステップで行う方法）を挙げることができるが、これらのいずれも採用可能である。

　例えば、フォワードサンドイッチ法では、先ず、前記試料と前記捕捉体とを接触させ、前記捕捉体のプローブ分子とフコース付加ヘモペキシンとの結合（例えば、第１のプローブ分子とヘモペキシンとの結合）を介してフコース付加ヘモペキシンを当該捕捉体に捕捉させる（フコース付加ヘモペキシンの測定の場合）。又は、前記試料と前記捕捉体とを接触させ、前記捕捉体のプローブ分子とフコース付加トランスフェリンとの結合（例えば、第１のプローブ分子とトランスフェリンとの結合）を介してフコース付加トランスフェリンを当該捕捉体に捕捉させる（フコース付加トランスフェリンの測定の場合）（１次反応：捕捉ステップ）。次いで、前記捕捉体に捕捉されたフコース付加ヘモペキシンに前記標識体を接触させて、前記標識体のプローブ分子とフコース付加ヘモペキシンとの結合（例えば、第２のプローブ分子とフコースとの結合）を介して標識する（フコース付加ヘモペキシンの測定の場合）。又は、前記捕捉体に捕捉されたフコース付加トランスフェリンに前記標識体を接触させて、前記標識体のプローブ分子とフコース付加トランスフェリンとの結合（例えば、第２のプローブ分子とフコースとの結合）を介して標識する（フコース付加トランスフェリンの測定の場合）（２次反応：標識ステップ）。これらの反応により、捕捉体－フコース付加ヘモペキシン－標識体を含む複合体が形成される（フコース付加ヘモペキシンの測定の場合）。又は、捕捉体－フコース付加トランスフェリン標識体を含む複合体が形成される（フコース付加トランスフェリンの測定の場合）。結合しなかった試料及び標識体を必要に応じて洗浄して除去（洗浄ステップ）した後、前記標識物質に応じた所定の方法で、当該標識物質に由来するシグナルを測定する（測定ステップ）。

　（捕捉体）
　本発明に係る「捕捉体」は、フコース付加ヘモペキシンの測定の場合、非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定されたフコース付加ヘモペキシンに特異的に結合可能なプローブ分子と、を備える複合体であり；又はフコース付加トランスフェリンの測定の場合、非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定されたフコース付加トランスフェリンに特異的に結合可能なプローブ分子と、を備える複合体であり、それぞれ、前記非水溶性担体と前記プローブ分子とが直接的又は間接的に結合した結合体である。第１の態様に係る捕捉体に備えられる前記プローブ分子としては、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちのいずれか一方であることが好ましく、この場合、当該捕捉体に備えられるプローブ分子としては、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちのいずれであってもよいが、第２のプローブ分子としてレクチンを用いる場合には、より捕捉性が高い観点からは、前記捕捉体に備えられるプローブ分子としては、フコース付加ヘモペキシンの測定の場合、ヘモペキシンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子であることが好ましく、抗ヘモペキシン抗体であることがより好ましく、フコース付加トランスフェリンの測定の場合、トランスフェリンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子であることが好ましく、抗トランスフェリン抗体であることがより好ましい。

　〈非水溶性担体〉
　前記捕捉体に含まれる非水溶性担体は、主に前記プローブ分子を担持し、固相化する担体として機能するものであり、非水溶性の物質である。本発明において、「非水溶性の物質」とは、常温常圧下において水に不溶（水に対する溶解度が０．００１ｇ／ｍＬ以下、好ましくは０．０００１ｇ／ｍＬ以下、以下同様）である物質を示す。

　このような非水溶性担体の材質としては、一般的に免疫学的測定及びそれに準じた測定に用いられているものを用いることができ、特に制限はされず、例えば、高分子ポリマー（ポリスチレン、（メタ）アクリル酸エステル、ポリメチルメタクリレート、ポリイミド、ナイロン等）、ゼラチン、ガラス、ラテックス、シリカ、金属（金、白金等）、及び金属化合物（酸化鉄、酸化コバルト、ニッケルフェライト等）からなる群から選択される少なくとも１種が挙げられる。また、前記非水溶性担体の材質としては、これらの複合材や、これら物質と他の物質との複合材であってもよく、例えば、前記高分子ポリマー、ゼラチン、及びラテックスからなる群から少なくとも１種の有機高分子と、酸化鉄（スピネルフェライト等）、酸化コバルト、及びニッケルフェライトからなる群から少なくとも１種の金属化合物と、からなる有機無機複合材であってもよい。さらに、前記非水溶性担体としては、カルボキシ基、エポキシ基、トシル基、アミノ基、ヒドロキシ基、イソチオシアネート基、イソシアネート基、アジド基、アルデヒド基、カーボネート基、アリル基、アミノオキシ基、マレイミド基、チオール基等の活性基で表面修飾されたものであってもよい。

　また、本発明において、前記非水溶性担体の形状としても特に制限はされず、例えば、プレート、繊維、膜、粒子等のいずれであってもよいが、反応効率の観点からは、粒子であることが好ましく、自動化・短時間化の観点からは、磁性粒子であることがより好ましい。このような非水溶性担体としては、従来公知のものを適宜用いることができ、市販のものを適宜用いることもできる。

　〈捕捉体の構成及び製造方法〉
　前記捕捉体において、前記プローブ分子の含有量としては特に制限されず、該プローブ分子とフコース付加ヘモペキシン又はフコース付加トランスフェリンとの結合のしやすさ等に応じて適宜調整することができるが、例えば、前記非水溶性担体（好ましくは粒子）の質量（非水溶性担体が２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計）１００質量部に対するプローブ分子の質量（プローブ分子が２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計）が、０．１～１０質量部であることが好ましく、１～５質量部であることがより好ましい。

　前記捕捉体は、前記非水溶性担体に前記プローブ分子を固定することによって製造することができる。かかる製造方法としては、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができ、前記非水溶性担体に前記プローブ分子を直接固定してもよく、間接的に固定してもよい。

　直接固定する場合には、例えば、前記非水溶性担体及び／又は前記プローブ分子として、カルボキシ基、エポキシ基、トシル基、アミノ基、ヒドロキシ基、イソチオシアネート基、イソシアネート基、アジド基、アルデヒド基、カーボネート基、アリル基、アミノオキシ基、マレイミド基、チオール基等の活性基を有するものを用い、又は必要に応じて前記活性基を付与して、これらを結合させることにより、前記プローブ分子を前記非水溶性担体に直接固定することができる。

　間接的に固定する場合には、例えば、前記プローブ分子に結合するリンカーを前記非水溶性担体に固定し、該リンカーに前記プローブ分子を結合させることにより、前記プローブ分子を前記非水溶性担体に間接的に固定することができる。前記リンカーとしては、特に制限されず、例えば、プローブ分子に結合可能な二次抗体、プロテインＧ、プロテインＡ、光分解可能な光切断型リンカー、前記活性基を有するリンカー分子（例えば、ヒドラジン塩、ヒドラジド）等が挙げられる。また、前記プローブ分子に何らかの修飾を行い、その修飾部分を捕捉する物質を前記非水溶性担体に固定化して、前記非水溶性担体上にプローブ分子を固定してもよい。例えば、前記修飾部分の代表例としてはビオチンが、その修飾部分を捕捉する物質の代表例としてはストレプトアビジンが、それぞれ挙げられるが、これらに限定されるものではない。

　これらの反応に供する非水溶性担体及びプローブ分子の比率は、上記の捕捉体における比率の好ましい範囲を達成するように適宜選択することができる。また、必要に応じて、前記プローブ分子や非水溶性担体への非特異的な吸着を防ぐことを目的として、適当なブロッキング剤（例えば、牛血清アルブミンやゼラチン等）で前記非水溶性担体のブロッキングを行ってもよい。さらに、このような捕捉体としては、市販のものを適宜用いてもよい。

　（標識体）
　本発明に係る「標識体」は、フコース付加ヘモペキシンの測定の場合、標識物質と、フコース付加ヘモペキシンに特異的に結合可能なプローブ分子と、を備える複合体であり；又はフコース付加トランスフェリンの測定の場合、標識物質と、フコース付加トランスフェリンに特異的に結合可能なプローブ分子と、を備える複合体であり、それぞれ、前記標識物質と前記プローブ分子とが直接的又は間接的に結合した結合体である。第１の態様に係る標識体に備えられる前記プローブ分子としては、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうち、捕捉体に備えられる分子の他方の分子であることが好ましく、この場合、当該標識体に備えられるプローブ分子としては、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちのいずれであってもよいが、抗原に対する親和性の高い抗ヘモペキシン抗体や抗トランスフェリン抗体のような分子を第１のプローブ分子として捕捉体に備えて使用するという観点からは、フコースに特異的に結合可能な第２のプローブ分子であることが好ましく、フコースに特異的に結合可能なレクチンであることがより好ましく、ＡＯＬ及びＡＡＬからなる群から選択される少なくとも１種であることがさらに好ましく、ＡＯＬであることが特に好ましい。

　（ブロック化標識レクチン）
　本発明において、前記標識体としては、前記標識物質と前記抗体（抗ヘモペキシン抗体、抗トランスフェリン抗体、抗フコース抗体等）とを備える標識化抗体、前記標識物質とレクチンとを備える標識化レクチン、ブロック化標識レクチンが挙げられ、これらのうちの１種のみであっても２種以上の組み合わせであってもよい。これらの中でも、本発明、特に第１の態様における標識体としては、ブロック化標識レクチンであることが好ましい。本発明において、「ブロック化標識レクチン」とは、水溶性高分子からなる水溶性担体と、前記水溶性担体に固定された標識物質及びレクチンとを備える複合体であって、水溶性担体と標識物質とレクチンとが直接的又は間接的に結合した結合体である。本発明において、前記ブロック化標識レクチンでは、第２のプローブ分子としてフコースに特異的に結合可能なレクチンを備える。この場合、前記捕捉体に備えられるプローブ分子は第１のプローブ分子であることが好ましい。前記レクチンとしては上述したとおりであり、好ましくはＡＯＬ及び／又はＡＡＬであり、より好ましくはＡＯＬである。また、前記標識物質としては、その好ましい態様も含めて、上述したとおりである。

　前記ブロック化標識レクチンにおいては、前記水溶性担体に前記標識物質及びレクチンが担持されていればよく、水溶性担体に標識物質及びレクチンが互いに独立して結合していても、水溶性担体、標識物質、及びレクチンのいずれもが他の２者と結合していても、水溶性担体に標識物質を介してレクチンが結合していても、水溶性担体にレクチンを介して標識物質が結合していてもよい。一般に、レクチンとレクチン結合性糖鎖構造との各々の結合点における親和性は弱いが、このようなブロック化標識レクチンでは、複数のレクチンが高分子である水溶性担体によって一連となった複合体を形成する。そのため、これを用いることで一つの複合体に複数の結合点が生じるため、全体としての親和性が向上し、対象であるフコースを高感度で検出可能になる。

　〈水溶性担体〉
　前記ブロック化標識レクチンに含まれる水溶性担体は、主に前記標識物質及びレクチンを担持する担体として機能するものであり、水溶性高分子からなる。本発明に係る水溶性担体を構成する水溶性高分子（以下、「第１の水溶性高分子」という）としては、前記標識物質及びレクチンを固定させて担持できる水溶性高分子である限り特に制限はない。本発明において、「水溶性高分子」とは、常温常圧下で水に対する溶解度が０．０１ｇ／ｍＬを超える、好ましくは０．０５ｇ／ｍＬ以上である、より好ましくは０．１ｇ／ｍＬ以上である高分子化合物を示す。

　本発明に係る第１の水溶性高分子としては、重量平均分子量（ゲルパーミエーションクロマトグラフィー（ＧＰＣ）によるポリスチレン換算での重量平均分子量、以下同じ）が、測定の感度の観点及び水溶性であるという観点から、６，０００～４，０００，０００であることが好ましく、２０，０００～１，０００，０００であることがより好ましい。

　また、本発明に係る第１の水溶性高分子としては、平均質量が、より好ましい平均粒子径のブロック化標識抗体を得られる傾向にある観点から、７０，０００～１，０００，０００Ｄａであることも好ましく、１５０，０００～７００，０００Ｄａであることもより好ましい。

　また、前記ブロック化標識レクチンとしては、一つのブロック化標識レクチンに、第１の水溶性高分子として、重量平均分子量が異なる複数種の水溶性高分子が含まれていてもよい。さらに、前記ブロック化標識レクチンとしては、第１の水溶性高分子の重量平均分子量が２００，０００以上である高分子量ブロック化標識レクチンと、第１の水溶性高分子の重量平均分子量が１００，０００未満（より好ましくは１００，０００以下）である低分子量ブロック化標識レクチンと、の組み合わせであることも好ましく、第１の水溶性高分子の重量平均分子量が２００，０００～７００，０００（さらに好ましくは２５０，０００～５００，０００）である高分子量ブロック化標識レクチンと、第１の水溶性高分子の重量平均分子量が２０，０００～１００，０００（さらに好ましくは５０，０００～７０，０００）である低分子量ブロック化標識レクチンと、の組み合わせであることがより好ましい。前記ブロック化標識レクチンとして、かかる高分子量ブロック化標識レクチンと前記低分子量ブロック化標識レクチンとを組み合わせる場合、これらの質量比（高分子量ブロック化標識レクチンの質量：低分子量ブロック化標識レクチンの質量）としては、１０：１～１：１０であることが好ましく、５：１～１：５であることがより好ましく、３：１～１：３であることがさらに好ましい。

　本発明に係る第１の水溶性高分子としては、例えば、デキストラン、アミノデキストラン、フィコール（商品名）、デキストリン、アガロース、プルラン、各種セルロース（例えば、ヘミセルロースやリグリン等）、キチン、及びキトサン等の多糖類；β―ガラクトシダーゼ；サイログロブリン；ヘモシアニン；ポリリジン；ポリペプチド；ＤＮＡ；並びに、これらの修飾体（例えば、ジエチルアミノエチルデキストランやデキストラン硫酸ナトリウム等）が挙げられ、これらのうちの１種を単独であっても２種以上の組み合わせであってもよい。これらの中でも、本発明に係る第１の水溶性高分子としては、安価で大量に入手可能であり、また、官能基の付加、カップリング反応などの化学的な加工が比較的容易である観点からは、多糖類及びその修飾体からなる群から選択される少なくとも１種であることが好ましく、デキストラン及びアミノデキストラン、並びに、これらの修飾体からなる群から選択される少なくとも１種であることがより好ましく、デキストランであることがさらに好ましい。

　〈ブロック化標識レクチンの構成及び製造方法〉
　前記ブロック化標識レクチンにおいて、前記標識物質の含有量としては特に制限されず、測定機構等に応じて適宜調整することができるが、測定感度をより向上させるために、第１の水溶性高分子１分子に結合する標識物質の分子数ができるだけ多くなるように設定することが好ましく、例えば、前記標識物質が酵素である場合、第１の水溶性高分子の質量（第１の水溶性高分子が２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計、以下同じ）１００質量部に対する標識物質の質量（標識物質が２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計）が、１００～１，０００質量部であることが好ましく、３００～８００質量部であることがより好ましい。

　前記ブロック化標識レクチンにおいて、レクチンの含有量としては特に制限されないが、測定感度をより向上させるために、第１の水溶性高分子１分子に結合するレクチンの分子数ができるだけ多くなるように設定することが好ましく、例えば、第１の水溶性高分子の質量１００質量部に対するレクチンの質量（レクチンが２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計）が、１００～２，０００質量部であることが好ましく、３００～１，５００質量部であることがより好ましい。

　また、前記ブロック化標識レクチンとしては、ブロック化標識レクチン１分子あたりの重量平均分子量が、１，０００，０００～１０，０００，０００であることが好ましく、１，５００，０００～５，０００，０００であることがより好ましい。前記重量平均分子量が１，０００，０００以上であると、測定感度がより高くなる傾向にあり、他方、１０，０００，０００以下であると、水溶液中における凝集等をより十分に抑制できる傾向にある。

　前記ブロック化標識レクチンは、前記水溶性担体に前記標識物質及びレクチンを固定することによって製造することができる。かかる製造方法としては、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができ、前記水溶性担体に前記標識物質及びレクチン（以下、場合により「被担持物質」と総称する）を直接固定してもよく、間接的に固定してもよい。

　前記被担持物質を前記水溶性担体に直接固定する方法としては、例えば、前記被担持物質及び／又は前記水溶性担体を構成する第１の水溶性高分子に、カルボキシ基、エポキシ基、トシル基、アミノ基、ヒドロキシ基、イソチオシアネート基、イソシアネート基、アジド基、アルデヒド基、カーボネート基、アリル基、アミノオキシ基、マレイミド基、チオール基、ピリジルジスルフィド基等の活性基を付与し、或いは、前記被担持物質及び／又は水溶性担体としてこれらの活性基を有する水溶性高分子を用い、これらを結合させることによって固定する方法が挙げられる。前記活性基を付与した被担持物質及び第１の水溶性高分子としては、市販のものをそのまま用いてもよいし、適切な反応条件で被担持物質及び水溶性高分子表面に前記活性基を導入して調製してもよい。一例として、チオール基の導入は、例えば、Ｓ－アセチルメルカプト無水コハク酸や２－イミノチオラン塩酸塩等の市販の試薬を用いて行うことができる。また、前記被担持物質及び／又は前記水溶性担体を構成する第１の水溶性高分子上のアミノ基へのマレイミド基の導入は、例えば、Ｎ－（６－マレイミドカプロイルオキシ）スクシンイミドやＮ－（４－マレイミドブチリロキシ）スクシンイミド等の市販の試薬を用いて行うことができる。ピリジルジスルフィド基の導入は、例えば、Ｎ－Ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ　３－（２－ｐｙｒｉｄｙｌｄｉｔｈｉｏ）ｐｒｏｐｉｏｎａｔｅ（ＳＰＤＰ）やＮ－｛６－［３－（２－Ｐｙｒｉｄｙｌｄｉｔｈｉｏ）ｐｒｏｐｉｏｎａｍｉｄｏ］ｈｅｘａｎｏｙｌｏｘｙ｝ｓｕｌｆｏｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｅ、ｓｏｄｉｕｍ　ｓａｌｔ（Ｓｕｌｆｏ－ＡＣ５－ＳＰＤＰ）等の市販の試薬を用いて行うことができる。また、ピリジルジスルフィド基の導入後に還元してチオール基とすることで、これを導入することもできる。

　前記被担持物質を前記水溶性担体に間接的に固定する方法としては、例えば、ポリヒスチジン、ポリエチレングリコール、システイン及び／又はリジンを含むオリゴペプチド、前記活性基を有するリンカー分子（例えば、上記の捕捉体の製造方法で挙げたもの）等のリンカーを介して固定する方法が挙げられる。前記リンカーの選択及びその大きさは、前記被担持物質との結合の強さや前記被担持物質を前記水溶性担体に固定化したことによる立体障害等を考慮して適宜設定することができる。

　前記ブロック化標識レクチンの製造方法においては、前記水溶性担体に前記標識物質及びレクチンを一度に固定しても、これらを別々に順次固定してもよいが、製造のしやすさ、並びに、標識物質及びレクチン量の制御しやすさの観点からは、前記水溶性担体にいずれか一方を固定してから他方を固定することが好ましい。また、前記ブロック化標識レクチンは、前記標識物質とレクチンとをそれぞれ別の水溶性担体に固定し、一の水溶性担体に固定された標識物質（ブロック化標識物質）と、他の水溶性担体に固定されたレクチン（ブロック化レクチン）とを直接、又は前記リンカー等を介して、結合させることで製造することもできる。

　前記ブロック化標識レクチンの製造方法としては、特に制限されず、例えば、下記の実施例に記載のように、前記標識物質が酵素であり、前記第１の水溶性高分子が多糖類や糖タンパク質である場合、先ず、第１の水溶性高分子を過ヨウ素酸ナトリウムのような酸化剤で酸化してアルデヒド基を付与し、ヒドラジン塩酸塩と反応させた後、これをジメチルアミンボラン（ＤＭＡＢ）等の還元剤と反応させてヒドラジン化する。一方、前記酵素も過ヨウ素酸ナトリウムのような酸化剤で酸化してその糖鎖にアルデヒド基を付与させる。次いで、上記で付与したヒドラジン残基とアルデヒド基とを反応させてヒドラゾン結合させ、第１の水溶性高分子－酵素結合体を得る。得られた第１の水溶性高分子－酵素結合体を、Ｎ－ヒドロキシスクシンイミド及びマレイミド基を各末端に有するクロスリンカー（例えば、ＳＭ（ＰＥＧ）_４、ＳＭＣＣ等）で処理し、マレイミド基を導入する。一方、レクチンをチオール化試薬でチオール化してチオール基を付与し、又は分子内にジスルフィド結合を持つレクチンの場合は還元によってチオール基を得る。最後に、第１の水溶性高分子－酵素結合体に導入したマレイミド基と、レクチンに付与したチオール基とを結合させることにより、第１の水溶性高分子（水溶性担体）－酵素－レクチンの三者を共有結合させることができる。この方法によれば、２分子以上の第１の水溶性高分子が酵素を介して結合したものに、レクチンが結合したものが得られる。これらの反応に供する第１の水溶性高分子、標識物質、レクチンの比率は、上記のブロック化標識レクチンにおける各含有量の好ましい範囲を達成するように適宜選択することができる。

　（捕捉ステップ）
　前記捕捉ステップにおいて、前記試料と前記捕捉体とを接触させる方法としては、特に制限されず、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができ、例えば、前記非水溶性担体がプレートである場合にはこれ（プローブ分子固定化プレート）に前記試料を注入する方法や、前記非水溶性担体が粒子である場合には前記試料中に前記捕捉体（プローブ分子固定化粒子）を添加する方法が挙げられる。

　前記捕捉ステップにおける前記試料と前記捕捉体との反応において、前記捕捉体及び前記試料を含む反応液中の、捕捉体の含有量（終濃度）（捕捉体が２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計、以下同じ）としては、特に制限されず、試料の種類、濃度等に応じて適宜調整されるものであるため特に制限されないが、短時間に効率よく捕捉する観点から、例えば、０．０１～１．５質量％であることが好ましく、０．０５～１質量％であることがより好ましく、０．１～０．５質量％であることがさらに好ましい。

　また、前記捕捉ステップの条件としても特に制限されず、適宜調整することができ、例えば、室温～４５℃、好ましくは２０～３７℃、ｐＨ６～９程度、好ましくはｐＨ７～８で、５秒～１０分程度、好ましくは３０秒～５分程度行うことができるが、これらの条件に限定されるものではない。

　（標識ステップ）
　前記標識ステップにおける前記標識体とフコース付加ヘモペキシンとの反応又は前記標識体とフコース付加トランスフェリンとの反応において、前記標識体とフコース付加ヘモペキシン又はフコース付加トランスフェリンとを含む反応液中の、標識体の含有量（終濃度）（標識体が２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計、以下同じ）としては、特に制限されず、試料の種類、濃度等に応じて適宜調整されるものであるため特に制限されないが、過剰に用いると高いバックグラウンドシグナルを生じる可能性がある観点から、例えば、０．００１～１０μｇ／ｍＬであることが好ましく、０．０１～５μｇ／ｍＬであることがより好ましく、０．１～１μｇ／ｍＬであることがさらに好ましい。

　また、前記標識ステップの他の条件としても特に制限されず、適宜調整することができ、例えば、室温～３７℃、好ましくは２０～３７℃、ｐＨ５．０～７．０、好ましくは５．５～６．５で、３分～１２０分程度、好ましくは、５分～１０分程度行うことができるが、これらの条件に限定されるものではない。

　（洗浄ステップ）
　前記サンドイッチ法には、前記捕捉ステップ及び／又は前記標識ステップの後に、前記捕捉体に結合したフコース付加ヘモペキシンと、それ以外の前記捕捉体に結合していない（捕捉されていない）夾雑物とを分離（フコース付加ヘモペキシンの測定の場合）、又は前記捕捉体に結合したフコース付加トランスフェリンと、それ以外の前記捕捉体に結合していない（捕捉されていない）夾雑物とを分離（フコース付加トランスフェリンの測定の場合）し、前記夾雑物を除去する洗浄ステップをさらに含むことが好ましい。前記夾雑物を除去する方法としては、特に制限されず、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができ、例えば、前記捕捉体が前記プローブ分子固定化プレートである場合にはプレート上から液相（上清）を除去する方法や、前記プローブ分子固定化粒子である場合には前記粒子を遠心や集磁によって回収して液相（上清）を除去する方法が挙げられる。また、前記洗浄ステップにおいては、必要に応じて、洗浄液の注入及び除去を繰り返してもよい。前記洗浄液としては、例えば、中性（好ましくは、ｐＨ６～９）の公知の緩衝液（ナトリウムリン酸バッファー、ＭＥＳ、Ｔｒｉｓ、ＣＦＢ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ、ＨＥＰＥＳ、トリシンバッファー、ビシンバッファー、グリシンバッファー等）が挙げられ、また、ＢＳＡ等の安定化蛋白や界面活性剤等が添加されたものであってもよい。

　本発明に係る測定工程として前記サンドイッチ法を用いる場合、前記試料としては、上記のように希釈液で希釈して用いてもよいが、前記捕捉体が前記プローブ分子固定化粒子等である場合には、その粒子懸濁媒（粒子液）に懸濁して用いてもよく、さらに、前記試料と前記捕捉体及び／又は前記標識体との反応系には、他の反応用バッファーを適宜添加してもよい。これらの粒子懸濁媒、反応用バッファーとしては、特に制限されないが、例えば、それぞれ独立に、公知の緩衝液（ナトリウムリン酸バッファー、ＭＥＳ、Ｔｒｉｓ、ＣＦＢ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ、ＨＥＰＥＳ、トリシンバッファー、ビシンバッファー、グリシンバッファー等）が挙げられ、また、それぞれ独立に、ＢＳＡ等の安定化蛋白や血清等が添加されたものであってもよい。

　また、前記標識体として前記ブロック化標識レクチンを用いる場合、前記試料と前記標識体との反応系には、測定感度をさらに向上させる観点から、他に、水溶性高分子（以下、「第２の水溶性高分子」という；前記標識物質及びレクチンを担持していない遊離の水溶性高分子である点で前記水溶性担体を構成する第１の水溶性高分子とは異なる）、遊離レクチン（前記水溶性担体にも前記標識物質にも固定されていない点で前記ブロック化標識レクチン等に含まれるレクチンとは異なる）等を共存させてもよい。

　第２の水溶性高分子としては、第１の水溶性高分子として挙げたものと同様のものが挙げられ、これらのうちの１種を単独であっても２種以上の組み合わせであってもよい。また、第１の水溶性高分子と同種の高分子であってよい。これらの中でも、第２の水溶性高分子としては、測定感度がより向上する傾向にある観点からは、多糖類及びその修飾体からなる群から選択される少なくとも１種であることが好ましく、デキストラン及びアミノデキストラン、並びに、これらの修飾体からなる群から選択される少なくとも１種であることがより好ましく、デキストランであることがさらに好ましい。

　また、第２の水溶性高分子の重量平均分子量としては、測定感度がより向上する傾向にある観点からは、５００，０００～５，０００，０００であることが好ましく、１，０００，０００～３，０００，０００であることがより好ましく、１，５００，０００～２，５００，０００であることがさらに好ましい。

　第２の水溶性高分子の量としては、特に限定されないが、前記試料、ブロック化標識レクチン、及び第２の水溶性高分子を含む反応液中における第２の水溶性高分子の含有量（第２の水溶性高分子が２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計）が、０．０１～１０ｗ／ｖ％であることが好ましく、０．５～３ｗ／ｖ％であることがより好ましい（ｗ／ｖ％：重量／容量（ｇ／ｍＬ）パーセント、以下同じ）。

　前記遊離レクチンとしては、上記でレクチンとして挙げたものと同様のものが挙げられ、これらのうちの１種を単独であっても２種以上の組み合わせであってもよい。また、ブロック化標識レクチンに含まれるレクチンと同種のものであってよい。これらの中でも、前記遊離レクチンとしては、反応性の向上とバックグラウンドの抑制の観点からは、ブロック化標識レクチンに含まれるレクチンと同種のものであることが特に好ましい。

　前記遊離レクチンの量としては、特に限定されないが、前記試料、ブロック化標識レクチン、及び前記遊離レクチンを含む反応液中において、ブロック化標識レクチンの含有量１００質量部に対する遊離レクチンの含有量（遊離レクチンが２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計）が、１～１０，０００質量部であることが好ましく、１０～５，０００質量部であることがより好ましい。

　（測定ステップ）
　前記測定ステップにおいては、前記標識物質に応じてシグナルを測定する。例えば、前記標識物質が酵素である場合には、当該酵素に対応する発色基質や発光基質を添加して反応させることによって生じるシグナル（例えば、発色や発光）を測定する。これにより、試料中のフコース付加ヘモペキシンの有無をシグナルの有無により検出し、さらに、フコース付加ヘモペキシンが存在する場合には試料中のフコース付加ヘモペキシン量をシグナル量として得ることができ、また、必要に応じて標準試料における測定値との比較をすることによって試料中のフコース付加ヘモペキシン量を検量することができる（フコース付加ヘモペキシンの測定の場合）。又は、これによって試料中のフコース付加トランスフェリンの有無をシグナルの有無により検出し、さらに、フコース付加トランスフェリンが存在する場合には試料中のフコース付加トランスフェリン量をシグナル量として得ることができ、また、必要に応じて標準試料における測定値との比較をすることによって試料中のフコース付加トランスフェリン量を検量することができる（フコース付加トランスフェリンの測定の場合）。

　［がん検出方法］
　本発明のがん検出方法によれば、上記の測定工程によって測定されたフコース付加ヘモペキシン及び／又はフコース付加トランスフェリンの有無を指標とすることにより、前記試料又は試料が由来する被検者における膵がん及び／又は胆管がんの存在の有無を検出することができる。また、上記の測定工程によって測定されたフコース付加ヘモペキシン量及び／又はフコース付加トランスフェリン量を指標とすることにより、前記がんの存在の有無の検出に加えて、前記試料又は試料が由来する被検者における前記がんの程度（進行度や存在量）についての情報を得ることができる。かかるがん検出方法は、創薬等の研究目的の他、本発明のがん検査方法に用いることができる。

　［がん検査方法］
　本発明のがん検査方法では、被検者由来の試料中におけるフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種（好ましくはフコース付加ヘモペキシン又はフコース付加トランスフェリン）を測定し、それを指標として膵がん及び／又は胆管がんの有無を検出する、又は前記がんの程度の情報を得ることで、当該被検者において、膵がん及び／又は胆管がんに罹患しているか否かの予測、前記がんに罹患するリスク（すなわち、将来においてがんを発症するリスク）の予測、前記がんの罹患の有無若しくはその可能性の判別、又は、前記がんの進行度若しくは重症度の評価をすることができる。

　すなわち、本発明のがん検査方法の態様としては具体的に、例えば、次の態様：
　膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんであると予測される被検者をスクリ－ニングする方法であり、被検者由来の試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種（好ましくはフコース付加ヘモペキシン又はフコース付加トランスフェリン）を測定する測定工程と、測定されたフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を指標として被検者を選別する選別工程と、を含む、スクリーニング方法；
　被検者が膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんに罹患するリスクを予測する方法であり、被検者由来の試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種（好ましくはフコース付加ヘモペキシン又はフコース付加トランスフェリン）を測定する測定工程と、測定されたフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を指標として、被検者が前記がんに罹患するリスクを予測する予測工程と、を含む、がん罹患リスク予測方法；
　被検者における膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんの罹患の有無を鑑別する方法であり、被検者由来の試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種（好ましくはフコース付加ヘモペキシン又はフコース付加トランスフェリン）を測定する測定工程と、測定されたフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を指標として被検者を判別する判別工程と、を含む、鑑別方法；
　被検者における膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんの進行度又は重症度を評価する方法であり、被検者由来の試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種（好ましくはフコース付加ヘモペキシン又はフコース付加トランスフェリン）を測定する測定工程と、測定されたフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を指標として被検者を評価する評価工程と、を含む、評価方法；
が挙げられる。

　〔スクリ－ニング方法〕
　本発明において、「スクリ－ニング」とは、前記がん（膵がん及び／又は胆管がん）に罹患している可能性がある被検者を選別することを示す。前記スクリ－ニング方法には、本発明では具体的に、被検者を、膵がん及び／又は胆管がんに罹患（再発を含む）している可能性が高いと予測して、前記可能性が無い又は低い群から選別する方法が含まれる。前記スクリーニング方法においては、その目的に応じて、例えば、中程度の可能性が期待できるレベルで被検者を選別してもよい。

　より具体的には、例えば、前記がんに真に罹患している者からなる群（陽性群）と前記がんに罹患していない者からなる群（正常群：陰性群）との２群に切り分け、被検者を、陽性群に含まれると予測して、正常群（陰性群）から選別する。この場合の予測基準としては、例えば、陰性一致率（当該スクリ－ニングによって正常群と予測された被検者が真に正常群にある割合）が９５％以上であることが好ましい。

　〔がん罹患リスク予測方法〕
　本発明において、「リスクを予測」とは、前記がん（膵がん及び／又は胆管がん、好ましくは膵がん）に、将来、罹患（再発を含む）する可能性の有無を予測すること、又は、可能性がある場合におけるその程度の評価（高い／中程度／低い等の評価）をすることを示す。また、前記リスクを予測した結果、前記可能性が有る又は高いと予測された被検者を、前記可能性が無い又は低い群から選別するスクリ－ニングを含んでいてもよい。フコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンは、それぞれ、膵がんを将来発症するリスクが高い慢性膵炎においても有意に増加すると考えられるため、フコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンは、特に膵がんの罹患リスク予測のための指標となり得る。

　より具体的には、例えば、一定期間内の将来において前記がんに真に罹患する者からなる群（陽性群）と、同将来において前記がんに罹患しない者からなる群（正常群：陰性群）との２群に切り分け、被検者が、前記陽性群に含まれるのか陰性群に含まれるのかを判別する。この場合の判別基準としては、例えば、陰性一致率（当該方法によって正常群と判別された被検者が真に正常群にある割合）が９５％以上であることが好ましい。

　〔鑑別方法〕
　本発明において、「鑑別」とは、膵がん及び／又は胆管がんを他の疾患又は状態と区別して、被検者が当該がんに罹患しているか否かを判別することを示す。また、前記罹患の有無の判別のみならず、罹患の可能性がある場合におけるその程度の評価（高い／中程度／低い等の評価）を含む。前記鑑別方法には、本発明では具体的に、症状の有無に関わらず、被検者において、膵がん若しくは胆管がんに罹患しているか否か又はその可能性が高いか否かを判別する方法を含み、例えば、被検者が罹患しているがんが、膵がん若しくは胆管がんであるか否かを判別する方法、又は前記がんである可能性が高いと判別する方法；被検者が過去に罹患していた膵がん若しくは胆管がんが再発したか否かを判別する方法、又は前記がんが再発した可能性が高いと判別する方法も含む。

　より具体的には、例えば、前記がんに真に罹患している者からなる群（陽性群）と前記がんに罹患していない者からなる群（正常群：陰性群）との２群に切り分け、被検者が、前記陽性群に含まれるのか陰性群に含まれるのかを判別する。かかる鑑別は、医師等による膵がん及び／又は胆管がんの診断の補助に適用することができる。この場合の判別基準としては、例えば、陰性一致率（当該鑑別によって正常群と判別された被検者が真に正常群にある割合）が９５％以上であることが好ましい。

　〔評価方法〕
　本発明において、前記評価方法には、例えば、被検者が罹患している膵がん及び／又は胆管がんの進行度又は重症度を評価する方法；被検者が罹患している前記がんの治療方針決定のための指標を提供する方法；前記がんの治療効果の判定方法を含む。

　より具体的には、例えば、前記がんに罹患していない者又は前記がんの進行度若しくは重症度の低い者からなる群におけるフコース付加ヘモペキシン量及び／又はフコース付加トランスフェリン量と、被検者のフコース付加ヘモペキシン量及び／又はフコース付加トランスフェリン量とを比較し、被検者における量の方が多ければ進行度若しくは重症度が高いと評価し、少なければ進行度若しくは重症度が低いと評価することができる。また、被検者の前記がんの発見当初若しくは治療前におけるフコース付加ヘモペキシン量及び／又はフコース付加トランスフェリン量と現在のフコース付加ヘモペキシン量及び／又はフコース付加トランスフェリン量とを比較し、量が増加していればその治療効果は低いと評価し、減少していればその治療効果は高いと評価することができる。

　（カットオフ値）
　前記スクリーニング方法の選別工程、前記がん罹患リスク予測方法の予測工程、及び前記鑑別方法の判別工程では、前記測定工程でフコース付加ヘモペキシン及び／又はフコース付加トランスフェリンが少しでも検出されれば、検出された被検者を、膵がん及び／又は胆管がんに罹患している（又は罹患している可能性が高い）と予測又は判別、或いは、前記がんに罹患する可能性がある（又は可能性が高い）と予測してもよいが、測定されたフコース付加ヘモペキシン量及び／又はフコース付加トランスフェリン量に応じて予測又は判別することが好ましい。

　例えば、前記測定工程で測定されたフコース付加ヘモペキシン量及び／又はフコース付加トランスフェリン量を、予め定められたカットオフ値と比較して、前記フコース付加ヘモペキシン量及び／又はフコース付加トランスフェリン量が前記カットオフ値よりも高い被検者を、膵がん及び／又は胆管がんに罹患している（又は罹患する可能性がある若しくは罹患している可能性が高い）と予測又は判別することが好ましい。

　本発明において、「カットオフ値」とは、前記フコース付加ヘモペキシン量又はフコース付加トランスフェリン量によって判定するための基準となる予め定められた値であり、上記陽性群と陰性群とを判定するための境界値のことを示す。このようなカットオフ値は、本発明のがん検査方法の目的、フコース付加ヘモペキシンの測定方法、フコース付加トランスフェリンの測定方法、被検者や試料の性質、希釈条件等によって適宜設定されるものであるため、特に限定されるものではない。例えば、カットオフ値を比較的低値に設定することで、検出感度を高く、すなわち、前記がんの初期段階にある患者をある程度広く拾集でき、早期発見が可能となる。他方、前記カットオフ値を比較的高値に設定することで、前記スクリーニング及び前記鑑別をより高精度で行うことが可能となる。

　前記スクリーニング方法又は前記鑑別方法のカットオフ値の一例としては、フコース付加ヘモペキシンの場合、例えば、前記試料を血清検体とし、体積比で１／５００に希釈し、前記捕捉体として抗ヘモペキシン抗体固定化粒子を用い、かつ、前記標識体としてブロック化標識ＡＯＬを用いたサンドイッチイムノアッセイで測定したフコース付加ヘモペキシン量を、前記標識物質をＡＬＰ及び基質をＡＭＰＰＤとして波長４６３ｎｍに極大吸収を有する光の発光強度（カウント）で示す場合（実施例１の場合）には、１，５００，０００～２，５００，０００カウントが挙げられ、好ましくは１，６００，０００～２，０００，０００カウントが挙げられるが、これに限定されるものではない。なお、前記範囲で定められるカットオフ値は、本発明のがん検査方法の目的、フコース付加ヘモペキシンの測定方法、被検者や試料の性質等に応じて、その範囲内からいずれか１点が選択されて適用される。

　また、フコース付加トランスフェリンの場合、例えば、前記試料を血清検体とし、体積比で１／５００に希釈し、前記捕捉体として抗トランスフェリン抗体固定化粒子を用い、かつ、前記標識体としてブロック化標識ＡＯＬを用いたサンドイッチイムノアッセイで測定したフコース付加トランスフェリン量を、前記標識物質をＡＬＰ及び基質をＡＭＰＰＤとして波長４６３ｎｍに極大吸収を有する光の発光強度（カウント）で示す場合（実施例２の場合）には、５０，０００～９０，０００カウントが挙げられ、好ましくは６０，０００～８０，０００カウントが挙げられるが、これに限定されるものではない。なお、前記範囲で定められるカットオフ値は、本発明のがん検査方法の目的、フコース付加トランスフェリンの測定方法、被検者や試料の性質等に応じて、その範囲内からいずれか１点が選択されて適用される。

　このような本発明のがん検査方法によれば、他のがんと区別して、膵がん及び／又は胆管がんに特異的な治療方針の決定等のための情報を提供することが可能となる。また、膵がん及び／又は胆管がんに罹患（再発を含む）する可能性が高い被検者、或いは、前記がんに罹患（再発を含む）している、又はその可能性が高い被検者を特定し、さらなる検査や確定診断を行うことにより、膵がん及び／又は胆管がんの早期発見や早期治療介入等が可能となる。さらに、がんに由来する糖鎖構造の情報はがんの浸潤性の指標となることが報告されていることから、本発明のがん検査方法によってがんの悪性度や予後についての情報を得ることも可能となる。なお、本発明の方法は、医師等による膵がん及び／又は胆管がんの診断を補助する方法、又は医師等による膵がん及び／又は胆管がんの診断のための情報を提供する方法でもある。

　さらに、本発明の方法は、従来の他のモニタリングマーカーの測定方法と組み合わせるための方法としても好適であり、これにより、膵がん及び／又は胆管がんの検出感度や診断の精度をさらに向上させることが可能となる。

　＜キット＞
　本発明のキットは、上記本発明のがん検出方法又はがん検査方法に用いるためのキットであり、フコース付加ヘモペキシンの測定に用いるための場合、ヘモペキシンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子と、フコースに特異的に結合可能な第２のプローブ分子と、を備えるキットであり、フコース付加トランスフェリンの測定に用いるための場合、トランスフェリンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子と、フコースに特異的に結合可能な第２のプローブ分子と、を備えるキットである。第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子としては、それぞれ、これらの好ましい態様も含めて、上述のとおりである。

　また、本発明のキットとしては、非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定された第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちのいずれか一方と、を備える捕捉体、並びに、標識物質と、第１のプローブ分子及び第２のプローブ分子のうちの他方と、を備える標識体、を備えることも好ましい。前記捕捉体及び前記標識体としては、それぞれ、これらの好ましい態様も含めて、上述のとおりである。

　本発明のキットにおいて、第１のプローブ分子、第２のプローブ分子、前記捕捉体、及び前記標識体としては、それぞれ独立に、固体（粉末）状であっても緩衝液に溶解された液体状であってもよい。液体状である場合、各溶液における第１のプローブ分子、第２のプローブ分子、前記捕捉体、及び前記標識体の濃度は、特に限定されないが、それぞれ独立に、例えば、０．０１～１０μｇ／ｍＬであることが好ましく、０．１～５．０μｇ／ｍＬであることがより好ましく、０．５～３．０μｇ／ｍＬであることがさらに好ましい。

　本発明のキットとしては、他に、ＥＬＩＳＡ、ＣＬＥＩＡ、イムノクロマト等の通常の免疫学的測定方法及びそれに準じた方法で備えるべき構成をさらに備えていてもよい。例えば、上記のサンドイッチ法を本発明に係る測定方法の原理とする場合には、前記プローブ分子を固相化するための磁性ビーズやプレート、センサーチップ、前記標準試料（各濃度）、対照試薬、前記粒子懸濁媒、前記反応用バッファー、前記洗浄液、第２の水溶性高分子、遊離レクチンからなる群から選択される少なくとも１種をさらに備えていてもよい。また、前記標識物質が酵素である場合には、当該標識物質の検出・定量に必要な基質や反応停止液等をさらに含んでいてもよい。

　さらに、本発明のキットは、必要に応じて、前記希釈液や、試料の前処理を行うための前処理液；希釈用カートリッジ；前処理の反応停止液又は中和液を備えていてもよい。また、前記サンドイッチ法としてイムノクロマトを採用する場合には、前記捕捉体及び／又は前記標識体を担持したゾーンを含むデバイスをさらに含んでいてもよい。前記デバイスとしては、展開液パッドや吸収パッド等、イムノクロマトに適したその他の構成要素を備えることができる。さらに、本発明のキットには、当該キットの使用説明書をさらに含んでいてもよい。

　以下、実施例及び比較例に基づいて本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。なお、各実施例及び比較例において、「％」の表示は、特に記載のない場合、重量／容量（ｗ／ｖ：ｇ／ｍＬ）パーセントを示す。

　（実施例１）　ブロック化標識レクチン（ＡＯＬ）を用いた血清検体に含まれるＡＯＬ結合型糖鎖付加ヘモペキシン（フコシル化ヘモペキシン）の測定
　（１）ヒドラジン化デキストランの調製
　４．８ｍＬの０．１Ｍリン酸バッファー（ｐＨ７．０）に分子量２５０ｋのデキストラン（ＣａｒｂｏＭｅｒ社製）を２４０．０ｍｇ添加し、２５℃の暗所で３０分間攪拌して溶解させた。次いで、１５０ｍＭ　ＮａＩＯ_４を２．６６４ｍＬ、及びイオン交換水を０．５３６ｍＬ添加して、２５℃の暗所で３０分間攪拌した。次いで、ＰＤ－１０カラム（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社製、Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－２５充填カラム：以下単に「Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－２５」）を用いて、０．１Ｍナトリウムリン酸バッファー（ｐＨ６．０）でバッファー交換を行い、２０．０ｍＬの溶液を得た。得られた溶液に、５．０４ｇのＮＨ_２ＮＨ_２・ＨＣｌを添加し、２５℃の暗所で２時間攪拌した。８００ｍｇのＤＭＡＢ（ジメチルアミンボラン）を加え、さらに２５℃の暗所で２時間攪拌した。ＲＣ５０Ｋ（分子量５万の再生セルロース）透析膜を用いてイオン交換水４Ｌによる透析を暗所で３時間行った後、４℃で一晩静置した。０．１Ｍナトリウムリン酸バッファー（ｐＨ６．０）を用いたゲル濾過（Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－２５）でバッファー交換を行い、８５．０ｍＬの溶液を得た。得られた溶液においてデキストランの濃度が１．０ｍｇ／ｍＬとなるように調整し、ヒドラジン化デキストランの溶液を得た。

　（２）デキストラン－酵素結合体の調製
　１０ｍｇ／ｍＬのアルカリホスファターゼ（オリエンタル酵母社製、ＡＬＰ－５０）３０．０ｍＬについて、０．１Ｍナトリウムリン酸バッファー（ｐＨ６．０）を用いたゲル濾過（Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－２５）でバッファー交換を行い、３．０ｍｇ／ｍＬの溶液を９０．６ｍＬ調製した。次いで、２７ｍＭ　ＮａＩＯ_４を４５．３ｍＬ添加して、２５℃の暗所で３分間攪拌した。次いで、０．１Ｍナトリウムリン酸バッファー（ｐＨ６．０）を用いたゲル濾過（Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－２５）でバッファー交換を行い、０．５ｍｇ／ｍＬの溶液を調製した。実施例１の（１）で調製した１．０ｍｇ／ｍＬヒドラジン化デキストランをヒドラジド基（アミノ基）の濃度が２５μＭになるように添加し、２５℃の暗所で１６時間攪拌した。ＤＭＡＢを８５ｍｇ添加し、２５℃の暗所で２時間攪拌した。次いで、１．５Ｍ　Ｔｒｉｓバッファー（ｐＨ９．０）を１０．１ｍＬ添加し、２５℃の暗所で２時間攪拌した。Ｌａｂｓｃａｌｅ　ＴＦＦ　Ｓｙｓｔｅｍ（Ｍｅｒｃｋ　Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製）に限外濾過モジュール（ペリコンＸＬ５０、Ｍｅｒｃｋ　Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製）を取り付け１５ｍＬまで濃縮し、０．１Ｍナトリウムリン酸バッファー（ｐＨ７．０）を用いたゲル濾過（Ｓｕｐｅｒｄｅｘ　２００ｐｇ）を行い、３．０ｍｇ／ｍＬのデキストラン－酵素結合体の溶液１４ｍＬを得た。

　（３）デキストラン－酵素結合体のマレイミド－ＰＥＧ化
　実施例１の（２）で調製したデキストラン－酵素結合体に０．１Ｍナトリウムリン酸バッファー（ｐＨ７．０）を加えて２ｍｇ／ｍＬデキストラン－酵素結合体を７５０μＬ調製した。これにＤＭＳＯ中に溶解した２５０ｍＭのＳＭ（ＰＥＧ）_４（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製、ＳＭ（ＰＥＧ）_４）を８．３５μＬ添加、混合し、２５℃の暗所で１時間転倒混和した。反応後、ＰＤ－１０カラム（Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－２５）を用いて２０ｍＭ　ＥＤＴＡ・２Ｎａ、０．５％　ＣＨＡＰＳを含む０．１Ｍナトリウムリン酸バッファー（ｐＨ６．３）にバッファー交換を行った。バッファー交換後に遠心式フィルター（Ｍｅｒｃｋ社製、Ａｍｉｃｏｎ　Ｕｌｔｒａ　５０Ｋ）を用いてマレイミド－ＰＥＧ化デキストラン－酵素結合体の濃縮を行い、最終濃度を２ｍｇ／ｍＬに調整した。

　（４）レクチンのチオール化
　５ｍｇ／ｍＬのニホンコウジカビレクチン溶液（ＡＯＬ；東京化成工業社製）１ｍＬに１．５ｍＬの０．１Ｍナトリウムリン酸バッファー（ｐＨ７．０）を加え、２ｍｇ／ｍＬ　ＡＯＬ溶液を２．５ｍＬ得た。２．５ｍＬのＡＯＬ溶液に１００μＬの０．５Ｍ　ＥＤＴＡ・２Ｎａ（ｐＨ８．０）を添加して混和し、次いで、７５μＬの１０ｍｇ／ｍＬ　２－イミノチオラン塩酸塩溶液を添加し、２５℃の暗所で１時間転倒混和した。反応後、ＰＤ－１０カラム（Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－２５）を用いて２０ｍＭ　ＥＤＴＡ・２Ｎａ、０．５％　ＣＨＡＰＳを含む０．１Ｍナトリウムリン酸バッファー（ｐＨ６．３）にバッファー交換を行った。バッファー交換後のＡＯＬ溶液は６５０μｇ／ｍＬに調整した。

　（５）カップリング
　実施例１の（４）で得たチオール化して６５０μｇ／ｍＬに調整したＡＯＬ溶液２ｍＬに対して、実施例１の（３）で得たマレイミド－ＰＥＧ化デキストラン－酵素結合体の溶液（２ｍｇ／ｍＬ）を５００μＬ添加し、２５℃の暗所で１時間転倒混和し、ＡＯＬとデキストラン－酵素結合体とをカップリングさせた。反応後、２５μＬの２００ｍＭ　３－Ｍｅｒｃａｐｔｏ－１，２－ｐｒｏｐａｎｅｄｉｏｌを添加し、２５℃の暗所で３０分間転倒混和した。さらにその後、５０μＬの２００ｍＭ　２－Ｉｏｄｏａｃｅｔａｍｉｄｅを添加し、２５℃の暗所で３０分間転倒混和した。反応後の溶液は遠心式フィルター（Ｍｅｒｃｋ社製、Ａｍｉｃｏｎ　Ｕｌｔｒａ　５０Ｋ）を用いて濃縮した後にφ０．２２μｍフィルターを通過させ、ゲル濾過クロマトグラフィー（カラム：Ｓｕｐｅｒｏｓｅ　６　Ｉｎｃｒｅａｓｅ　１０／３００　ＧＬ、バッファー：０．１Ｍ　ＭＥＳ、０．５Ｍ　ＮａＣｌ、１ｍＭ　ＭｇＣｌ_２、０．１ｍＭ　ＺｎＣｌ_２、５ｍＭ　Ｇｌｕｃｏｓｅ、０．０５％　ＣＨＡＰＳ、ｐＨ６．８）によって精製し、最終的に１５１．１μｇ／ｍＬのブロック化標識レクチン（ＡＯＬ）（デキストラン－酵素－ＡＯＬ結合体）の溶液を３．５ｍＬ得た。

　（６）測定試薬の調製
　０．６ｍｇの抗ヘモペキシン抗体　３２（Ａｂｃａｍ社製）をＰＤ－１０カラム（Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－２５）によって５０ｍＭ　ＭＥＳ（ｐＨ５．５）にバッファー交換し、０．８３７ｍｇ／ｍＬの抗ヘモペキシン抗体溶液を０．５ｍＬ得た。得られた抗ヘモペキシン抗体溶液を、予めＥＤＣ（Ｎ－（３－Ｄｉｍｅｔｈｙｌａｍｉｎｏｐｒｏｐｙｌ）－Ｎ’－ｅｔｈｙｌｃａｒｂｏｄｉｉｍｉｄｅ　ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ、Ｍｅｒｃｋ社製）とＳｕｌｆｏ－ＮＨＳ（Ｎ－ｈｙｄｒｏｘｙｓｕｌｆｏｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｅ、ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ社製）とによって活性化したカルボキシル化磁性粒子（富士レビオ社製）と混合して、２５℃で１時間転倒混和することによって、抗ヘモペキシン抗体を磁性粒子に結合させた。抗体との結合反応後の粒子は１Ｍ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、１０％　ＢＳＡ、０．１％　ＮａＮ_３、ｐＨ７．０によって反応を停止した後に、マスキングバッファー（５０ｍＭ　ＭＥＳ、１ｍＭ　ＥＤＴＡ・２Ｎａ、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、２％　ＢＳＡ、０．１％　ＰｒｏＣｌｉｎ　３００、ｐＨ６．０）で洗浄及びマスキングを行い、最終的に１３ｍｇの抗ヘモペキシン抗体結合磁性粒子を得た。

　１３ｍｇの抗ヘモペキシン抗体結合磁性粒子（以下単に「抗体結合粒子」）に対して３ｍＬの２０ｍＭ　過ヨウ素酸ナトリウム溶液（２０ｍＭ　ＮａＩＯ_４、１００ｍＭ　ＮａＯＡｃ、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、ｐＨ５．５）を添加して混合し、４℃遮光下で３０分間転倒混和を行うことで粒子に結合した抗体の糖鎖を酸化した。酸化処理後の抗体結合粒子は３ｍＬの０．１Ｍ　リン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ６．０）で３回洗浄した。洗浄した抗体結合粒子は１０ｍＭ　グリシンを含む０．１Ｍ　リン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ６．０）に置換し、２５℃遮光下で１時間転倒混和を行うことで、抗体の糖鎖の酸化によって生じたアルデヒド基をグリシンでブロックした。さらに、反応後の抗体結合粒子液に５０μＬの１０ｍｇ／ｍＬ　ＤＭＡＢを添加して２５℃遮光下で３０分間転倒混和を行い、抗体糖鎖由来のアルデヒド基とグリシンとの不安定な結合を安定化させた。安定化後の抗体結合粒子は１．５ｍＬの２％　ＢＳＡを含むバッファー（５０ｍＭ　ＭＥＳ、１ｍＭ　ＥＤＴＡ、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、２％　ＢＳＡ、０．１％　ＰｒｏＣｌｉｎ　３００、ｐＨ６．０）で３回洗浄し、同バッファー、３７℃の条件で１６時間転倒混和することにより、ＢＳＡを物理吸着させた。ＢＳＡを物理吸着させた抗体結合粒子は保存バッファー（５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ、２％　ＢＳＡ、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、１ｍＭ　ＥＤＴＡ、０．１％　ＰｒｏＣｌｉｎ　３００、ｐＨ７．２）で３回洗浄し、同バッファー中に４℃で保存した。得られた酸化処理済み抗ヘモペキシン抗体結合磁性粒子を抗体結合粒子の濃度が０．００５％となるように５０ｍＭ　Ｔｒｉｓをベースとする溶液に希釈して、酸化処理済み抗ヘモペキシン抗体結合粒子液を調製した。

　また、実施例１の（５）で得られたブロック化標識レクチン（ＡＯＬ）を、濃度が０．５μｇ／ｍＬとなるように５０ｍＭ　ＭＥＳをベースとする溶液に希釈して標識体液を調製した。

　（７）血清検体に含まれるＡＯＬ結合型糖鎖付加ヘモペキシン（フコシル化ヘモペキシン）の測定
　健常人から採取した血清検体１１例（健常人群：健常人１～１１）、膵がん患者から採取した血清検体１０例（膵癌群：膵癌１～１０）、及び、胆管がん患者から採取した血清検体５例（胆管癌群：胆管癌１～５）について、それぞれ、検体希釈液（富士レビオ社製）を用いて体積比で１／５００濃度に希釈した。

　希釈した各検体について、ルミパルス（登録商標）Ｌ－２４００（富士レビオ社製）を用いて、血清検体に含まれるＡＯＬ結合型糖鎖付加ヘモペキシン（フコシル化ヘモペキシン）の測定を行った。すなわち、５０μＬの各希釈検体溶液を、実施例１の（６）で調製した酸化処理済み抗ヘモペキシン抗体結合粒子液５０μＬと混和し、３７℃で８分間反応させた。次いで、磁性粒子を集磁し、ルミパルス（登録商標）洗浄液（富士レビオ社製）で５回洗浄した。次いで、実施例１の（６）で調製した標識体液をそれぞれ５０μＬ添加し、３７℃で８分間反応させた。次いで、磁性粒子を集磁し、５回洗浄した後、ＡＭＰＰＤ（３－（２’－スピロアダマンタン）－４－メトキシ－４－（３’－ホスホリルオキシ）フェニル－１，２－ジオキセタン・２ナトリウム塩）を含むルミパルス（登録商標）基質液（富士レビオ社製）を５０μＬ添加し、３７℃で４分間反応させた。磁性粒子に結合したブロック化標識レクチン（ＡＯＬ）のアルカリホスファターゼの触媒作用によりＡＭＰＰＤが分解されることで放出される、波長４６３ｎｍに極大吸収を有する光の発光強度（カウント）を、ルミパルス（登録商標）Ｌ－２４００（富士レビオ社製）を用いて計測し、測定結果とした。各検体における測定結果を下記の表１に示す。なお、表示の結果は、二重測定の平均値を示す。

　（８）健常人、膵癌、及び胆管癌の各群間での測定値の比較
　表１の結果について、健常人群と膵癌群との間で統計学的に有意な差が認められるか検討した。図１に、健常人群及び膵癌群のフコシル化ヘモペキシンの測定結果を示す。Ｗｉｌｃｏｘｏｎ検定によって検定を行ったところ、健常人群と膵癌群との間において、フコシル化ヘモペキシンの測定値について有意な差が認められた（図１、ｐ＜０．０００１）。さらに、健常人群の測定値からカットオフ値を算出し、カットオフ値を上回る検体を陽性とした場合の膵がん患者の検出能力を試験した。カットオフ値は、健常人群の測定値の平均に健常人群の測定値の標準偏差の値に２を乗じた値を加算して、１，９１１，４９９カウント以下と算出された。その結果、このカットオフ値で陽性と判定されたのは膵癌群で１０検体中９検体であり、９０．９％であった。また、健常人群では１１検体全てが陰性と判定された。以上より、フコシル化ヘモペキシンの測定は、健常人と膵がん患者との判別のための有力な新規の指標となることが示された。

　同様に、表１の結果について、健常人群と胆管癌群との間で統計学的に有意な差が認められるか検討した。図２に、健常人群及び胆管癌群のフコシル化ヘモペキシンの測定結果を示す。Ｗｉｌｃｏｘｏｎ検定によって検定を行ったところ、健常人群と胆管癌群との間において、フコシル化ヘモペキシンの測定値に有意な差が認められた（図２、ｐ＝０．００２２）。さらに、上記と同様に算出されたカットオフ値を用いて、フコシル化ヘモペキシンによる胆管がん患者の検出能力を試験したところ、今回測定した５検体全てが陽性と判定された。以上より、フコシル化ヘモペキシンの測定は、健常人と胆管がん患者との判別のための有力な新規の指標となることが示された。

　（比較例１）　膵がん及び胆管がん以外のがんに対するフコシル化ヘモペキシンの反応性の検証
　非特許文献２との比較として、肝細胞癌患者から採取された血清検体５０例（肝細胞癌群：肝細胞癌１～５０）について、実施例１の（７）と同様にしてフコシル化ヘモペキシンを測定した。各検体における測定結果を下記の表２に示す。

　表２に示した肝細胞癌群の測定結果及び表１に示した健常人群の測定結果について、健常人群と肝細胞癌群との間で統計学的に有意な差が認められるか検討した。図３に、健常人群及び肝細胞癌群のフコシル化ヘモペキシンの測定結果を示す。Ｗｉｌｃｏｘｏｎ検定によって検定を行ったところ、健常人群と肝細胞癌群との間にもフコシル化ヘモペキシンの測定値について有意な差が認められた（図３、ｐ＝０．０００９）。しかしながら、実施例１の（８）と同様に算出されたカットオフ値を超えて陽性と判定されたのは肝細胞癌群では５０検体中１０検体のみであり、膵癌群及び胆管癌群と比べると明らかに低い検出頻度であった。

　さらに、表２に示した肝細胞癌群の測定結果及び表１に示した膵癌群及び胆管癌群の測定結果についても、膵癌群と肝細胞癌群又は胆管癌群と肝細胞癌群の各間で統計学的に有意な差が認められるか検討した。図４に、膵癌群及び肝細胞癌群のフコシル化ヘモペキシンの測定結果を、図５に、胆管癌群及び肝細胞癌群のフコシル化ヘモペキシンの測定結果を、それぞれ示す。Ｗｉｌｃｏｘｏｎ検定によって検定を行ったところ、明らかに、膵癌群における測定値及び胆管癌群における測定値は肝細胞癌群における測定値に比べて高値であった（図４、膵癌群ｖｓ肝細胞癌群、ｐ≦０．０００１；図５、胆管癌群ｖｓ肝細胞癌群、ｐ＝０．０００３）。

　以上の結果から、フコシル化ヘモペキシンの測定値は全ての癌に対して無差別に高値を示すものではなく、がん種によって変動するものであり、特に、膵がん及び胆管がんで特異的に高値となることが示された。

　（実施例２）　ブロック化標識レクチン（ＡＯＬ）を用いた血清検体に含まれるＡＯＬ結合型糖鎖付加トランスフェリン（フコシル化トランスフェリン）の測定
　（１）ヒドラジン化デキストランの調製
　実施例１の（１）と同様にして、ヒドラジン化デキストランの溶液（デキストランの濃度：１．０ｍｇ／ｍＬ）を得た。

　（２）デキストラン－酵素結合体の調製
　実施例１の（２）と同様にして、３．０ｍｇ／ｍＬのデキストラン－酵素結合体の溶液１４ｍＬを得た。

　（３）デキストラン－酵素結合体のマレイミド－ＰＥＧ化
　実施例１の（３）と同様にして、マレイミド－ＰＥＧ化デキストラン－酵素結合体の溶液（最終濃度：２ｍｇ／ｍＬ）を得た。

　（４）レクチンのチオール化
　実施例１の（４）と同様にして、ニホンコウジカビレクチン（ＡＯＬ）のチオール化を行なった（ＡＯＬ溶液濃度：６５０μｇ／ｍＬ）。

　（５）カップリング
　実施例１の（５）と同様にして、１５１．１μｇ／ｍＬのブロック化標識レクチン（ＡＯＬ）（デキストラン－酵素－ＡＯＬ結合体）の溶液を３．５ｍＬ得た。

　（６）測定試薬の調製
　１ｍｇの抗トランスフェリン抗体　Ｆ２Ｈ８Ｇ６（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ社製）をＰＤ－１０カラム（Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－２５）によって５０ｍＭ　ＭＥＳ（ｐＨ５．５）にバッファー交換し、１．５ｍｇ／ｍＬの抗トランスフェリン抗体溶液を０．５ｍＬ得た。得られた抗トランスフェリン抗体溶液を、予めＥＤＣ（Ｎ－（３－Ｄｉｍｅｔｈｙｌａｍｉｎｏｐｒｏｐｙｌ）－Ｎ’－ｅｔｈｙｌｃａｒｂｏｄｉｉｍｉｄｅ　ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ、Ｍｅｒｃｋ社製）とＳｕｌｆｏ－ＮＨＳ（Ｎ－ｈｙｄｒｏｘｙｓｕｌｆｏｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｅ、ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ社製）とによって活性化したカルボキシル化磁性粒子（富士レビオ社製）と混合して、２５℃で１時間転倒混和することによって、抗トランスフェリン抗体を磁性粒子に結合させた。抗体との結合反応後の粒子は１Ｍ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、１０％　ＢＳＡ、０．１％　ＮａＮ_３、ｐＨ７．０によって反応を停止した後に、マスキングバッファー（５０ｍＭ　ＭＥＳ、１ｍＭ　ＥＤＴＡ・２Ｎａ、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、２％　ＢＳＡ、０．１％　ＰｒｏＣｌｉｎ　３００、ｐＨ６．０）で洗浄及びマスキングを行い、最終的に２４ｍｇの抗トランスフェリン抗体結合磁性粒子を得た。

　２４ｍｇの抗トランスフェリン抗体結合磁性粒子（以下単に「抗体結合粒子」）に対して６ｍＬの２０ｍＭ　過ヨウ素酸ナトリウム溶液（２０ｍＭ　ＮａＩＯ_４、１００ｍＭ　ＮａＯＡｃ、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、ｐＨ５．５）を添加して混合し、４℃遮光下で３０分間転倒混和を行うことで粒子に結合した抗体の糖鎖を酸化した。酸化処理後の抗体結合粒子は６ｍＬの０．１Ｍ　リン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ６．０）で３回洗浄した。洗浄した抗体結合粒子は１０ｍＭ　グリシンを含む０．１Ｍ　リン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ６．０）に置換し、２５℃遮光下で１時間転倒混和を行うことで、抗体の糖鎖の酸化によって生じたアルデヒド基をグリシンでブロックした。さらに、反応後の抗体結合粒子液に１００μＬの１０ｍｇ／ｍＬ　ＤＭＡＢを添加して２５℃遮光下で３０分間転倒混和を行い、抗体糖鎖由来のアルデヒド基とグリシンとの不安定な結合を安定化させた。安定化後の抗体結合粒子は３ｍＬの２％　ＢＳＡを含むバッファー（５０ｍＭ　ＭＥＳ、１ｍＭ　ＥＤＴＡ、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、２％　ＢＳＡ、０．１％　ＰｒｏＣｌｉｎ　３００、ｐＨ６．０）で３回洗浄し、同バッファー、３７℃の条件で１６時間転倒混和することにより、ＢＳＡを物理吸着させた。ＢＳＡを物理吸着させた抗体結合粒子は保存バッファー（５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ、２％　ＢＳＡ、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、１ｍＭ　ＥＤＴＡ、０．１％　ＰｒｏＣｌｉｎ　３００、ｐＨ７．２）で３回洗浄し、同バッファー中に４℃で保存した。得られた酸化処理済み抗トランスフェリン抗体結合磁性粒子を抗体結合粒子の濃度が０．００５％となるように５０ｍＭ　Ｔｒｉｓをベースとする溶液に希釈して、酸化処理済み抗トランスフェリン抗体結合粒子液を調製した。

　また、実施例２の（５）で得られたブロック化標識レクチン（ＡＯＬ）を、濃度が０．５μｇ／ｍＬとなるように５０ｍＭ　ＭＥＳをベースとする溶液に希釈して標識体液を調製した。

　（７）血清検体に含まれるＡＯＬ結合型糖鎖付加トランスフェリン（フコシル化トランスフェリン）の測定
　健常人から採取した血清検体１１例（健常人群：健常人１～１１）、膵がん患者から採取した血清検体１０例（膵癌群：膵癌１～１０）、及び、胆管がん患者から採取した血清検体５例（胆管癌群：胆管癌１～５）について、それぞれ、検体希釈液（富士レビオ社製）を用いて体積比で１／５００濃度に希釈した。

　希釈した各検体について、ルミパルス（登録商標）Ｌ－２４００（富士レビオ社製）を用いて、血清検体に含まれるＡＯＬ結合型糖鎖付加トランスフェリン（フコシル化トランスフェリン）の測定を行った。すなわち、５０μＬの各希釈検体溶液を、実施例２の（６）で調製した酸化処理済み抗トランスフェリン抗体結合粒子液５０μＬと混和し、３７℃で８分間反応させた。次いで、磁性粒子を集磁し、ルミパルス（登録商標）洗浄液（富士レビオ社製）で５回洗浄した。次いで、実施例２の（６）で調製した標識体液をそれぞれ５０μＬ添加し、３７℃で８分間反応させた。次いで、磁性粒子を集磁し、５回洗浄した後、ＡＭＰＰＤ（３－（２’－スピロアダマンタン）－４－メトキシ－４－（３’－ホスホリルオキシ）フェニル－１，２－ジオキセタン・２ナトリウム塩）を含むルミパルス（登録商標）基質液（富士レビオ社製）を５０μＬ添加し、３７℃で４分間反応させた。磁性粒子に結合したブロック化標識レクチン（ＡＯＬ）のアルカリホスファターゼの触媒作用によりＡＭＰＰＤが分解されることで放出される、波長４６３ｎｍに極大吸収を有する光の発光強度（カウント）を、ルミパルス（登録商標）Ｌ－２４００（富士レビオ社製）を用いて計測し、測定結果とした。各検体における測定結果を下記の表３に示す。なお、表示の結果は、二重測定の平均値を示す。

　（８）健常人、膵癌、及び胆管癌の各群間での測定値の比較
　表３の結果について、健常人群と膵癌群との間で統計学的に有意な差が認められるか検討した。図６に、健常人群及び膵癌群のフコシル化トランスフェリンの測定結果を示す。Ｗｉｌｃｏｘｏｎ検定によって検定を行ったところ、健常人群と膵癌群との間において、フコシル化トランスフェリンの測定値について有意な差が認められた（図６、ｐ＝０．００２）。さらに、健常人群の測定値からカットオフ値を算出し、カットオフ値を上回る検体を陽性とした場合の膵がん患者の検出能力を試験した。カットオフ値は、健常人群の測定値の平均に健常人群の測定値の標準偏差の値に２を乗じた値を加算して、７２，２５７カウント以下と算出された。その結果、このカットオフ値で陽性と判定されたのは膵癌群で１０検体中９検体であり、９０．９％であった。また、健常人群で前記カットオフ値により陽性と判定された（すなわち、擬陽性となった）のは１１検体中１検体であり、特異度９０．９％となった。以上より、フコシル化トランスフェリンの測定は、健常人と膵がん患者との判別のための有力な新規の指標となることが示された。

　同様に、表３の結果について、健常人群と胆管癌群との間で統計学的に有意な差が認められるか検討した。図７に、健常人群及び胆管癌群のフコシル化トランスフェリンの測定結果を示す。Ｗｉｌｃｏｘｏｎ検定によって検定を行ったところ、健常人群と胆管癌群との間において、フコシル化トランスフェリンの測定値に有意な差が認められた（図７、ｐ＝０．００３２）。さらに、上記と同様に算出されたカットオフ値を用いて、フコシル化トランスフェリンによる胆管がん患者の検出能力を試験したところ、今回測定した５検体全てが陽性と判定された。以上より、フコシル化トランスフェリンの測定は、健常人と胆管がん患者との判別のための有力な新規の指標となることが示された。

　（比較例２）　膵がん及び胆管がん以外のがんに対するフコシル化トランスフェリンの反応性の検証
　非特許文献３との比較として、肝細胞癌患者から採取された血清検体５０例（肝細胞癌群：肝細胞癌１～５０）について、実施例２の（７）と同様にしてフコシル化トランスフェリンを測定した。各検体における測定結果を下記の表４に示す。

　表４に示した肝細胞癌群の測定結果及び表３に示した健常人群の測定結果について、健常人群と肝細胞癌群との間で統計学的に有意な差が認められるか検討した。図８に、健常人群及び肝細胞癌群のフコシル化トランスフェリンの測定結果を示す。Ｗｉｌｃｏｘｏｎ検定によって検定を行ったところ、健常人群と肝細胞癌群との間にはフコシル化トランスフェリンの測定値について有意な差が認められず（図８、ｐ＝０．０５４５）、実施例２の（８）と同様に算出されたカットオフ値を超えて陽性と判定された検体は肝細胞癌群には１検体もなかった。

　さらに、表４に示した肝細胞癌群の測定結果及び表３に示した膵癌群及び胆管癌群の測定結果についても、膵癌群と肝細胞癌群又は胆管癌群と肝細胞癌群の各間で統計学的に有意な差が認められるか検討した。図９に、膵癌群及び肝細胞癌群のフコシル化トランスフェリンの測定結果を、図１０に、胆管癌群及び肝細胞癌群のフコシル化トランスフェリンの測定結果を、それぞれ示す。Ｗｉｌｃｏｘｏｎ検定によって検定を行ったところ、明らかに、膵癌群における測定値及び胆管癌群における測定値は肝細胞癌群における測定値に比べて高値であった（図９、膵癌群ｖｓ肝細胞癌群、ｐ≦０．０００１；図１０、胆管癌群ｖｓ肝細胞癌群、ｐ＝０．０００３）。

　以上の結果から、フコシル化トランスフェリンの測定値は全ての癌に対して無差別に高値を示すものではなく、がん種によって変動するものであり、特に、膵がん及び胆管がんで特異的に高値となることが示された。

　本発明によれば、新たなバイオマーカーを指標とした、高感度で膵がん及び胆管がんを特異的に検出可能ながん検出方法及びがん検査方法、並びに、これらの方法に用いるキットを提供することが可能となる。

Claims (14)

1. 　膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんを検出する方法であり、試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を測定する測定工程を含む、方法。
2. 　膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんを検査する方法であり、被検者由来の試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を測定する測定工程を含む、方法。
3. 　膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんであると予測される被検者をスクリ－ニングする方法であり、被検者由来の試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を測定する測定工程と、測定されたフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を指標として被検者を選別する選別工程と、を含む、請求項２に記載の方法。
4. 　被検者が膵がん及び胆管がんからなる群から選択される少なくとも１種のがんに罹患するリスクを予測する方法であり、被検者由来の試料中のフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を測定する測定工程と、測定されたフコース付加ヘモペキシン及びフコース付加トランスフェリンからなる群から選択される少なくとも１種を指標として、被検者が前記がんに罹患するリスクを予測する予測工程と、を含む、請求項２に記載の方法。
5. 　フコース付加ヘモペキシンにおいて、フコースがα１－６フコース及びα１－２フコースからなる群から選択される少なくとも１種である、請求項１～４のうちのいずれか一項に記載の方法。
6. 　フコース付加ヘモペキシンにおいて、フコースがＡＯＬに結合するＡＯＬ結合型糖鎖及びＡＡＬに結合するＡＡＬ結合型糖鎖からなる群から選択される少なくとも１種である、請求項１～５のうちのいずれか一項に記載の方法。
7. 　前記測定工程が、前記試料と、ヘモペキシンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子及びフコースに特異的に結合可能な第２のプローブ分子と、を接触させる工程である、請求項１～６のうちのいずれか一項に記載の方法。
8. 　前記測定工程が、前記試料と、捕捉体及び標識体と、を接触させる工程であり、
   　前記捕捉体が、非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定された第１のプローブ分子と、を備えるものであり、かつ、
   　前記標識体が、水溶性担体と、前記水溶性担体に固定された標識物質及び第２のプローブ分子と、を備え、第２のプローブ分子がフコースに特異的に結合可能なレクチンであるブロック化標識レクチンである、
   請求項７に記載の方法。
9. 　フコース付加トランスフェリンにおいて、フコースがα１－６フコース及びα１－２フコースからなる群から選択される少なくとも１種である、請求項１～４のうちのいずれか一項に記載の方法。
10. 　フコース付加トランスフェリンにおいて、フコースがＡＯＬに結合するＡＯＬ結合型糖鎖及びＡＡＬに結合するＡＡＬ結合型糖鎖からなる群から選択される少なくとも１種である、請求項１～４及び請求項９のうちのいずれか一項に記載の方法。
11. 　前記測定工程が、前記試料と、トランスフェリンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子及びフコースに特異的に結合可能な第２のプローブ分子と、を接触させる工程である、請求項１～４及び請求項９～１０のうちのいずれか一項に記載の方法。
12. 　前記測定工程が、前記試料と、捕捉体及び標識体と、を接触させる工程であり、
    　前記捕捉体が、非水溶性担体と、前記非水溶性担体に固定された第１のプローブ分子と、を備えるものであり、かつ、
    　前記標識体が、水溶性担体と、前記水溶性担体に固定された標識物質及び第２のプローブ分子と、を備え、第２のプローブ分子がフコースに特異的に結合可能なレクチンであるブロック化標識レクチンである、
    請求項１１に記載の方法。
13. 　請求項７～８のうちのいずれか一項に記載の方法に用いるためのキットであり、ヘモペキシンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子と、フコースに特異的に結合可能な第２のプローブ分子と、を備える、キット。
14. 　請求項１１～１２のうちのいずれか一項に記載の方法に用いるためのキットであり、トランスフェリンに特異的に結合可能な第１のプローブ分子と、フコースに特異的に結合可能な第２のプローブ分子と、を備える、キット。

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