PL221292B1 - Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny oraz sposób ich wytwarzania - Google Patents

Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny oraz sposób ich wytwarzania

Info

Publication number
PL221292B1
PL221292B1 PL405424A PL40542413A PL221292B1 PL 221292 B1 PL221292 B1 PL 221292B1 PL 405424 A PL405424 A PL 405424A PL 40542413 A PL40542413 A PL 40542413A PL 221292 B1 PL221292 B1 PL 221292B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
mol
acid
methionine
chiral
fragments
Prior art date
Application number
PL405424A
Other languages
English (en)
Other versions
PL405424A1 (pl
Inventor
Mirosław Soroka
Katarzyna Gębala
Mikołaj Łukaszewicz
Original Assignee
Politechnika Wroclawska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Politechnika Wroclawska filed Critical Politechnika Wroclawska
Priority to PL405424A priority Critical patent/PL221292B1/pl
Publication of PL405424A1 publication Critical patent/PL405424A1/pl
Publication of PL221292B1 publication Critical patent/PL221292B1/pl

Links

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku są chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny, które są przeznaczone do stosowania jako enancjoselektory i diastereoselektory, oraz kompleksony do wytwarzania chiralnych katalizatorów homogennych i heterogennych.
Przedmiotem wynalazku jest również sposób wytwarzania chiralnych poliamfolitów pochodnych kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny.
W literaturze chemicznej jest niewiele informacji, które dotyczą poliamfolitów zawierających w swojej strukturze aminokwasy w postaci jonów obojnaczych, to znaczy z możliwością utworzenia kationu na atomie azotu grupy aminowej i anionu karboksylanowego. Wszystkie opisane poliamfolity zawierają w swojej strukturze fragment alaniny. Na przykład, znany z publikacji Barbucci et al. Macromolecules 1989, 22, 3138-3143, sposób wytwarzania chiralnych poliamfolitów, które zawierają L-alaninę, polega na addycji grupy NH alaniny do 1,4-diakroilopiperazyny, a uzyskany w ten sposób produkt poddaje się polimeryzacji rodnikowej. Chiralne poliamfolity można również otrzymać przez katalizowaną solami niklu polimeryzację izonitryli, które otrzymuje się z odpowiednich pochodnych aminokwasów lub peptydów. Sposób ten jest opisany w publikacji van der Eijk et al. Macromolecules 1980, 13, 1391-97.
Znany jest również sposób wytwarzania żywic poliamfolitowych zawierających alaninę, który polega na reakcji alaniny lub jej C-zablokowanej pochodnej z chlorometylowanym polistyrenem. Inny sposób wytwarzania poliamfolitów zawierających L-alaninę jest opisany w patencie DE2814408 i polega na reakcji mieszaniny amin i alaniny, z epichlorohydryną.
Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny nie były dotychczas opisane w literaturze naukowej ani technicznej.
Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny o wzorze ogólnym I, w którym A oznacza fragment struktury kwasu dimetylofosfinowego, x oznacza liczbę takich fragmentów w poliamfolicie, natomiast B oznacza fragment struktury polialkilenopoliaminy, w którym n i p mogą być takie same lub różne i oznaczają liczby całkowite od 2 do 12, natomiast q jest liczbą struktur aminopolialkenowych i wynosi od 2 do 6, y oznacza liczbę fragmentów poliaminopolialkenowych w polimerze, natomiast C oznacza fragment struktury metioniny, a z oznacza liczbę takich fragmentów w poliamfolicie, przy czym wolne miejsca fragmentu A mogą wiązać się tylko z wolnymi miejscami we fragmencie B i C.
Sposób wytwarzania chiralnych poliamfolitów pochodnych kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny, przedstawionych wzorem ogólnym I, w którym A oznacza fragment struktury kwasu dimetylofosfinowego, x oznacza liczbę takich fragmentów w poliamfolicie, natomiast B oznacza fragment struktury polialkilenopoliaminy, w którym n i p mogą być takie same lub różne i oznaczają liczby całkowite od 2 do 12, natomiast q jest liczbą struktur aminopolialkenowych i wynosi od 2 do 6, y oznacza liczbę fragmentów poliaminopolialkenowych w polimerze, natomiast C oznacza fragment struktury metioniny, a z oznacza liczbę takich fragmentów w poliamfolicie, przy czym wolne miejsca fragmentu A mogą się wiązać tylko z wolnymi miejscami we fragmencie B i C, a liczbę moli (x) fragmentów A wylicza się z równania:
x = y · [2 + q/2] + z, w którym y oznacza liczbę moli fragmentów B, a z oznacza liczbę moli fragmentów C, polega na tym, że w pierwszym etapie jedną część molową kwasu fosfinowego poddaje się reakcji z co najmniej jedną częścią molową formaldehydu zawartego w substancji wybranej z grupy formalina, trioksan i paraform, i co najmniej dwiema częściami molowymi grup -NH-, na które składa się suma grup -NH- pochodzących od polialkilenopoliaminy wybranej z grupy zawierającej: 1,2-diaminoetan, 1,3-diaminopropan, 1,4-diaminobutan, 1,5-diaminopentan, 1,6-diaminoheksan, 2-metylo-1,5-diaminopentan, 1,2-diaminocykloheksan, bis(heksametyleno)triaminę, dietylenotriaminę, N-(3-aminopropylo)-1,3-diaminopropan, N-(2-aminoetylo)-1,3-diaminopropan, N,N'-bis(3-aminopropylo)etylenodiaminę, trietylenotetraminę, tetraetylenopentaminę i pentaetylenoheksaminę, i grup -NHpochodzących od metioniny, a reakcję prowadzi się w temperaturze 273-373K, w wodzie, w obecności aktywatora w postaci dowolnego kwasu Br0nsteda, aż do przereagowania substratów i utworzenia się mieszaniny kwasów aminometylofosfinowych, pochodnych polialkilenopoliamin i metioniny, którą w drugim etapie poddaje się usieciowaniu co najmniej jedną częścią moloPL 221 292 B1 wą formaldehydu, w obecności aktywatora w postaci dowolnego kwasu Br0nsteda, aż do przereagowania substratów i utworzenia się chiralnego poliamfolitu zawierającego fragmenty strukturalne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliaminy i metioniny, który w trzecim etapie poddaje się dosieciowaniu co najmniej 0,5 częściami molowymi formaldehydu, po czym tak otrzymany chiralny poliamfolit wydziela się z mieszaniny poreakcyjnej.
W sposobie według wynalazku chiralny poliamfolit wydziela się przez dekantację, sączenie lub wirowanie, ewentualnie przez odparowanie lotnych składników pod zmniejszonym ciśnieniem.
W sposobie według wynalazku kwas Br0nsteda stosuje się w ilości wynikającej z bilansu kwasowo-zasadowego użytych reagentów, powiększonej o ułamek liczby moli kwasu fosfinowego, którą oblicza się ze wzoru: nH = nN - nP + w*nP, w którym nH oznacza liczbę moli protonów w kwasie Br0nsteda, nN oznacza liczbę moli atomów azotu w polialkilenopoliaminie, nP oznacza liczbę moli kwasu fosfinowego, a w jest ułamkiem w zakresie od 0 do 0,6 dla pierwszego etapu reakcji i od 0,2 do 1,2 dla drugiego etapu reakcji. Korzystnie jako kwas Br 0nsteda stosuje się kwas solny.
Sposób według wynalazku polega również na tym, że wszystkie etapy reakcji realizuje się w sposób ciągły, dozuje się formaldehyd do mieszaniny jednej części molowej kwasu fosfonowego i dwóch części molowych grup -NH- pochodzących od polialkilenopoliaminy i metioniny, z wyliczoną jak poprzednio ilością kwasu Br0nsteda, tak, aby końcowa ilość formaldehydu wynosiła co najmniej dwie części molowe.
W wariancie sposobu według wynalazku, w pierwszym etapie wykonuje się osobno reakcje kwasu fosfinowego, formaldehydu z polialkilenopoliaminą i osobno reakcję kwasu fosfinowego z formaldehydem i metioniną, aż do przereagowania składników, a następnie w drugim etapie miesza się produkty obydwu reakcji i poddaje usieciowaniu formaldehydem.
Przedmiot wynalazku przedstawiony jest w przykładach wykonania i na schemacie reakcji.
P r z y k ł a d 1
W celu wytworzenia chiralnego poliamfolitu z bis(heksametyleno)triaminy, L-metioniny i kwasu fosfinowego do roztworu bis(heksametyleno)triaminy (4,31 g, 0,020 mola) w wodzie (7 cm3), dodaje się L-metioninę (1,49 g, 0,010 mola), a po rozpuszczeniu, wkrapla się ostrożnie w temperaturze
300-310K 12M kwas solny (1,00 cm3, 0,012 mola), po czym 50% kwas fosfinowy (6,22 cm3, 0,060 3 mola), a następnie 37% formalinę (5,32 cm3, 0,072 mola). Mieszaninę utrzymuje się w temperaturze 345K i kontroluje się przebieg reakcji pobierając w określonych odstępach czasu próbki
0,10 cm3 mieszaniny reakcyjnej i rozcieńczając je 0,50 cm3 wody, a następnie mierząc widma
NMR tych próbek. Z widma 31P NMR wynika, że po godzinie w mieszaninie pozostaje na 6,00 mola fosforu około 0,11 mola (2%) nieprzereagowanego kwasu fosfinowego, 0,05 mola kwasu fosforowego i 0,30 mola kwasu fosfonowego (6,93d, JHP = 638Hz), a głównymi składnikami mieszaniny są związki zawierające fragment strukturalny NCH2PH [2,75 mola A 13,59 dt (JHP = 549Hz, Jhcp = 10,4Hz), 2,16 mola B 14,08 dt (Jhp =547Hz, Jhcp = 10,6Hz), około 0,03 mola C 15,1 szeroki dt (J nieozn.)]. Na widmie widać również związki zawierające fragment strukturalny NCH2PCH2N (szeroki multiplet 19-21 ppm).
3
Do mieszaniny dodaje się następną porcję 37% formaliny (5,32 cm3, 0,072 mola) i kontynuuje się reakcję w temperaturze 345K przez godzinę, co powoduje przereagowanie kwasów aminometylofosfinowych i wytwarza się poliamfolit, który powoduje częściowe zżelowanie mieszani31 ny. Widmo 31P NMR zawiesiny tego żelu w wodzie ma niski stosunek sygnału do szumów, co wskazuje na to, że większość składników mieszaniny nie rozpuszcza się w wodzie. Na widmie widać sygnały kwasu fosforowego i kwasu fosfonowego (7,13d, JHP = 642Hz), a głównymi składnikami mieszaniny są związki polimeryczne zawierające fragment strukturalny NCH2PH [A - poszerzone sygnały przy około 13,7 dt (J nieozn.), B - poszerzone sygnały przy 14,0 dt (J nieozn.) i C szerokie sygnały przy około 15 dt (J nieozn.)]. Na widmie widać również związki zawierające fragment strukturalny NCH2PCH2N (bardzo szeroki multiplet 19-21 ppm).
3
Następnie dodaje się jeszcze jedną porcję 37% formaliny (2,66 cm3, 0,048 mola), miesza z już wytworzonym żelem, a mieszaninę ogrzewa się ponownie w temperaturze 345K przez godziny. Na widmie 31P NMR zawiesiny tego żelu w wodzie widać przede wszystkim szumy, co wskazuje na to, że wszystkie substraty przereagowały całkowicie, dając produkt, który nie rozpuszcza się w wodzie. Widoczne są jeszcze związki polimeryczne zawierające fragment strukturalny NCH2PH [A - poszerzone sygnały przy około 13,7 dt (J nieozn.), B - poszerzone sygnały przy 14,0 dt (J nieozn.) i C szerokie sygnały przy około 15 dt (J nieozn.)], a także związki zawierające fragment strukturalny NCH2PCH2N (bardzo szeroki multiplet 19-21 ppm), które pochodzą od
PL 221 292 B1 niskocząsteczkowych poliamfolitów. Na widmie widać również niewielkie sygnały kwasu fosforo1 wego i kwasu fosfonowego. Również na widmie 1H NMR widać znaczne pogorszenie się stosunku sygnału do szumów, a resztkowe sygnały od fragmentów strukturalnych pochodzących od bis(heksametyleno)triaminy, L-metioniny i pochodnych kwasu aminometylofosfinowego i bis(aminometylo)fosfinowego, są o rząd wielkości mniejsze od sygnału metanolu przy 3,69 ppm, co świadczy o tym, że wszystkie substraty przereagowały ze sobą, dając poliamfolit. Dominującym sygnałem jest sygnał HOD przy 5,14 ppm.
Wytworzony twardy żel rozdrabnia się, a następnie suszy się do stałej masy na płycie grzejnej o temperaturze 323-333K. Otrzymuje się w wyniku chiralny poliamfolit KG089Z, który zawiera 6,2 mmola/g grup aminowych i 5,4 mmola/g grup fosfin owych, i 0,9 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 1.
P r z y k ł a d 1a
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że zamiast 50% roztworu kwasu fosfinowego stosuje się równoważną ilość roztworu sporządzonego z jednowodnego podfosforynu sodu (31,8 g, 3
0,30 mola), wody (30 g) i 12M kwasu solnego (25,0 cm3, 0,30 mola), i otrzymuje się chiralny poliamfolit KG089Za o właściwościach zbliżonych do właściwości poliamfolitu uzyskanego w przykładzie 1.
P r z y k ł a d 2
Chiralny poliamfolit z bis(heksametyleno)triaminy, L-metioniny i kwasu fosfinowego. Do roz3 tworu bis(heksametyleno)triaminy (4,31 g, 0,020 mola) w wodzie (7cm3), dodaje się L-metioninę (2,98 g, 0,020 mola), a po rozpuszczeniu, wkrapla się ostrożnie w temp. 300-310K 12M kwas solny (1,17 cm3, 0,014 mola), po czym 50% kwas fosfinowy (7,25 cm3, 0,070 mola), a następnie 3
37% formalinę (6,27 cm3, 0,084 mola). Mieszaninę utrzymuje się w temp. 345K i kontroluje się 3 przebieg reakcji pobierając w określonych odstępach czasu próbki 0,10 cm3 mieszaniny reakcyj3 nej i rozcieńczając je 0,50 cm3 wody, a następnie mierząc widma NMR tych próbek. Z widma 31P NMR wynika, że po godzinie w mieszaninie pozostaje na 7,00 mola fosforu około 0,08 mola (1%) nieprzereagowanego kwasu fosfinowego, 0,02 mola kwasu fosforowego i 0,28 mola kwasu fosfonowego (6,90d, JHP = 645Hz), a głównymi składnikami mieszaniny są związki zawierające fragment strukturalny NCH2PH [2,66 mola A 13,27 dt (JHP = 550Hz, JHCP = 10,4Hz), 2,36 mola B 13,76dt (JHP = 548Hz, JHCP = 10,2Hz), około 0,01 mola C 15,1 szeroki dt (J nieozn.)] i około 0,34 mola D 19,5 dt (JHP = 550Hz, JHCP nieozn.). Na widmie widać również związki zawierające fra gment strukturalny NCH2PCH2N (szeroki multiplet 19-21 ppm), około 0,94 mola.
3
Do mieszaniny dodaje się następną porcję 37% formaliny (6,27 cm3, 0,084 mola) i kontynuuje się reakcję w temperaturze 345K przez godzinę, co powoduje przereagowanie kwasów aminometylofosfinowych i wytwarza się polimeryczny produkt, który powoduje częściowe zżelowanie mieszaniny. Widmo 31P NMR zawiesiny tego żelu w wodzie ma niski stosunek sygnału do szumów, co wskazuje na to, że większość składników mieszaniny nie rozpuszcza się w wodzie. Na widmie widać sygnały kwasu fosforowego i kwasu fosfonowego, a głównymi składnikami mieszaniny są związki zawierające fragment strukturalny NCH2PH [A - poszerzone sygnały przy około 13,2 dt (J nieozn.), B - poszerzone sygnały przy 13,7 dt (J nieozn.). Nie widać już sygnału C (szerokie sygnały przy około 15dt) i D (około 19,5 ppm). Na widmie widać również związki zawierające fragment strukturalny NCH2PCH2N (bardzo szeroki multiplet 18-27 ppm).
3
Następnie dodaje się jeszcze jedną porcję 37% formaliny (3,14 cm3, 0,042 mola), miesza z już wytworzonym żelem, a mieszaninę ogrzewa się ponownie w temperaturze 345K przez godziny. Na widmie 31P NMR zawiesiny tego żelu w wodzie widać głównie szumy, co wskazuje na to, że wszystkie substraty przereagowały całkowicie, dając produkt, który nie rozpuszcza się w wodzie. Na widmie widać jedynie niewielkie sygnały kwasu fosfonowego i śladowych ilości ni1 skocząsteczkowych poliamfolitów rozpuszczalnych w wodzie. Również na widmie 1H NMR widać znaczne pogorszenie się stosunku sygnału do szumów, a resztkowe sygnały od fragmentów strukturalnych pochodzących od bis(heksametyleno)triaminy, L-metioniny i pochodnych kwasu aminometylofosfinowego i bis(aminometylo)fosfinowego, są o rząd wielkości mniejsze od sygnału metanolu przy 3,28 ppm i o 3 rzędy mniejsze od sygnału wody przy 4,75 ppm, co świadczy o tym, że wszystkie substraty przereagowały ze sobą, dając poliamfolit.
Wytworzony twardy żel rozdrabnia się, a następnie suszy się do stałej masy na płycie grzejnej o temperaturze około 323-333K. Otrzymuje się w wyniku chiralny poliamfolit KG091Z,
PL 221 292 B1 który zawiera 5,9 mmola/g grup aminowych i 5,1 mmola/g grup fosfinowych, i 1,5 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 2.
P r z y k ł a d 2a
Postępuje się jak w przykładzie 3 z tą różnicą, że zamiast 50% roztworu kwasu fosfinowego stosuje się równoważną ilość roztworu sporządzonego z jednowodnego podfosforynu sodu (37,1 g, 3
0,35 mola), wody (35 g) i 12M kwasu solnego (29,2 cm3, 0,35 mola), i otrzymuje się chiralny poliamfolit KG091a o właściwościach zbliżonych do właściwości poliamfolitu uzyskanego w przykładzie 2.
P r z y k ł a d 3
Poliamfolit z bis(heksametyleno)triaminy, L-metioniny i kwasu fosfinowego. Do roztworu bis3 (heksametyleno)triaminy (4,31 g, 0,020 mola) w wodzie (7 cm3), dodaje się L-metioninę (4,48 g,
0,030 mola), a po rozpuszczeniu, wkrapla się ostrożnie w temp. 300-310K 12M kwas solny (1,33 cm3, 0,016 mola), po czym 50% kwas fosfinowy (8,29 cm3, 0,080 mola), a następnie 37% 3 formalinę (7,16 cm3, 0,096 mola). Mieszaninę utrzymuje się w temperaturze 345K i kontroluje się 3 przebieg reakcji pobierając w określonych odstępach czasu próbki 0,10 cm3 mieszaniny reakcyj3 nej i rozcieńczając je 0,50 cm3 wody, a następnie mierząc widma NMR tych próbek.
Z widma 31P NMR wynika, że po godzinie w mieszaninie pozostaje na 8,00 mola fosforu około 0,11 mola (1%) nieprzereagowanego kwasu fosfinowego, 0,02 mola kwasu fosforowego i 0,43 mola kwasu fosfonowego (6,90d, JHP = 644Hz), a głównymi składnikami mieszaniny są związki zawierające fragment strukturalny NCH 2PH [3,30 mola A 13,28dt (JHP = 550Hz, JHCP = 10,5Hz), 3,35 mola B 13,77dt (JHP = 548Hz, JHCP = 10,6Hz), około 0,03 mola C 15,1 szeroki dt (J nieozn.) i 0,48 mola D 19,46 dt (JHP = 551 Hz, JHCP = 10,0Hz)]. Na widmie widać również związki zawierające fragment strukturalny NCH 2PCH2N (szeroki multiplet 19-21 ppm).
3
Do mieszaniny dodaje się następną porcję 37% formaliny (7,16 cm3, 0,096 mola) i kontynuuje się reakcję w temperaturze 345K przez godzinę, co powoduje przereagowanie kwasów aminometylofosfinowych i wytwarza się polimeryczny produkt, który powoduje częściowe zżelowanie mieszaniny. Widmo 31P NMR zawiesiny tego żelu w wodzie ma niski stosunek sygnału do szumów, co wskazuje na to, że większość składników mieszaniny nie rozpuszcza się w wodzie. Na widmie widać sygnały kwasu fosforowego i kwasu fosfonowego, a głównymi składnikami mieszaniny są związki zawierające fragment strukturalny NCH2PH [A - poszerzone sygnały przy około 13,3 dt (J nieozn.), B - poszerzone sygnały przy 13,8 dt (J nieozn.) i C szerokie sygnały przy około 15 dt (J nieozn.)]. Na widmie widać również związki zawierające fragment strukturalny NCH2PCH2N (bardzo szeroki multiplet 18-28 ppm).
3
Następnie dodaje się jeszcze jedną porcję 37% formaliny (3,58 cm3, 0,048 mola), miesza z już wytworzonym żelem, a mieszaninę ogrzewa się ponownie w temperaturze 345K przez godziny. Na widmie 31P NMR zawiesiny tego żelu w wodzie widać głównie szumy, co wskazuje na to, że wszystkie substraty przereagowały całkowicie, dając produkt, który nie rozpuszcza się w wodzie. Na widmie widać jedynie niewielkie sygnały kwasu fosforowego i kwasu fosfonowego, a także bardzo poszerzone sygnały od fragmentów strukturalnych NCH2PH i NCH2PCH2N. Rów1 nież na widmie 1H NMR widać znaczne pogorszenie się stosunku sygnału do szumów, a resztkowe sygnały od fragmentów strukturalnych pochodzących od bis(heksametyleno)triaminy, L-metioniny i pochodnych kwasu aminometylofosfinowego i bis(aminometylo)fosfinowego, są o rząd wielkości mniejsze od sygnału metanolu przy 3,32 ppm i o 2-3 rzędy mniejsze od sygnału wody przy 4,78 ppm, co świadczy o tym, że wszystkie substraty przereagowały ze sobą, dając chiralny poliamfolit.
Wytworzony twardy żel rozdrabnia się, a następnie suszy się do stałej masy na płycie grzejnej o temperaturze 323-333K. Otrzymuje się w wyniku chiralny poliamfolit KG093Z, który zawiera 5,6 mmola/g grup aminowych i 5,0 mmola/g grup fosfinowych, i 1,9 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 3.
P r z y k ł a d 3a
Postępuje się jak w przykładzie 5 z tą różnicą, że zamiast 50% roztworu kwasu fosfinowego stosuje się równoważną ilość roztworu sporządzonego z jednowodnego podfosforynu sodu (31,8 g, 3
0,30 mola), wody (30 g) i 12M kwasu solnego (25,0 cm3, 0,30 mola), i otrzymuje się chiralny poliamfolit KG093a o właściwościach zbliżonych do właściwości poliamfolitu uzyskanego w przykładzie 3.
PL 221 292 B1
P r z y k ł a d 4
Chiralny poliamfolit z bis(heksametyleno)triaminy, L-metioniny i kwasu fosfinowego. Do roz3 tworu bis(heksametyleno)triaminy (2,15 g, 0,010 mola) w wodzie (3,5 cm3), dodaje się L-metioninę (3,73 g, 0,025 mola), a po rozpuszczeniu, wkrapla się ostrożnie w temp. 300-310K 50% kwas fosfonowy (5,18 cm3, 0,050 mola), a następnie 37% formalinę (4,48 cm3, 0,060 mola), po czym postępuje się analogicznie jak w przykładzie 1 i uzyskuje podobne rezultaty z tą różnicą, że stosunek molowy L-metioniny do bis(heksametyleno)triaminy wynosi 5:2. Lotne składniki roztworu oddestylowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem (ok. 20 kPa) z łaźni o temperaturze końcowej 345K i otrzymuje się w wyniku chiralny poliamfolit, który zawiera 5,3 mmola/g grup aminowych i 4,8 mmola/g grup fosfinowych, i 2,4 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 4.
P r z y k ł a d 5
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: etylenodiaminę (0,60 g, 0,010 mola), wodę (2,5 cm3), L-metioninę (1,49 g, 0,010 mola), kwas fosfinowy (3,12 cm3, 0,030 mola), 12M kwas solny 0,50 cm3, 0,030 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 2,66 + 1,77 cm3, razem 0,096 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit KG117, który zawiera 6,3 mmola/g grup aminowych i 6,3 mmola/g grup fosfinowych, i 2,1 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 5.
P r z y k ł a d 6
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: etylenodiaminę (0,60 g, 0,010 mola), wodę (2,5 cm3), L-metioninę (2,98 g, 0,020 mola), kwas fosfinowy (4,17 cm3, 0,040 mola), 12M kwas solny 0,67 cm3, 0,040 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 3,56 + 1,77 cm3, razem 0,120 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit KG119, który zawiera 5,6 mmola/g grup aminowych i 5,6 mmola/g grup fosfinowych, i 2,8 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 6.
P r z y k ł a d 7
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: heksametylenodiaminę (1,16 g, 0,010 mola), wodę (2,5 cm3), L-metioninę (1,49 g, 0,010 mola), kwas fosfinowy (3,12 cm3, 0,030 mola), 12M kwas solny 0,50 cm3, 0,030 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 2,66 + 1,77 cm3, razem 0,096 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit KG113, który zawiera 5,6 mmola/g grup aminowych i 5,6 mmola/g grup fosfinowych, i 1,9 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 7.
P r z y k ł a d 8
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: heksametylenodiaminę (1,16 g, 0,010 mola), wodę (2,5 cm3), L-metioninę (2,98 g, 0,020 mola), kwas fosfinowy (4,17 cm3, 0,040 mola), 12M kwas solny 0,67 cm3, 0,040 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 3,56 + 1,77 cm3, razem 0,120 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit KG115, który zawiera 5,2 mmola/g grup aminowych i 5,2 mmola/g grup fosfinowych, i 2,6 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 8.
P r z y k ł a d 9
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: dietylenotriaminę (1,03 g, 0,010 mola), wodę (3,5 cm3), L-metioninę (0,75 g, 0,0050 mola), kwas fosfinowy (3,12 cm3, 0,030 mola), 12M kwas solny 0,50 cm3, 0,030 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 2,66 + 1,77cm3, razem 0,096 mola), a reakcję prowadzi się w temp. 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit KG141, który zawiera 7,8 mmola/g grup aminowych i 6,7 mmola/g grup fosfinowych, i 1,1 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 9.
P r z y k ł a d 10
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: dietylenotriaminę (1,03 g, 0,010 mola), wodę (3,5 cm3), L-metioninę (2,24 g, 0,015 mola), kwas fosfinowy (4,17 cm3, 0,040 mola), 12M kwas solny 0,67 cm3, 0,040 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 3,56 + 1,77cm3, razem 0,120 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych
PL 221 292 B1 etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit, który zawiera 6,6 mmola/g grup aminowych i 5,8 mola/g grup fosfinowych, i 2,2 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 10.
P r z y k ł a d 11
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: N-(2-aminoetylo)-1,33
-diaminopropan (1,17 g, 0,010 mola), wodę (3,5 cm3), L-metioninę (0,75 g, 0,0050 mola), kwas fosfinowy (3,12 cm3, 0,030 mola), 12M kwas solny 0,50 cm3, 0,030 x 0,20 mola) i 37% formalinę 3 (2x 2,66 + 1,77 cm3, razem 0,096 mola), a reakcję prowadzi się w temp. 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit KG149 w postaci żelu, która zawiera 7,6 mmola/g grup aminowych i 6,5 mmola/g grup fosfinowych, i 1,1 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 11.
P r z y k ł a d 12
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: N-(2-aminoetylo)-1,3-diamino3 propan (1,17 g, 0,010 mola), wodę (3,5 cm3), L-metioninę (2,24 g, 0,015 mola), kwas fosfinowy (4,17 cm3, 0,040 mola), 12M kwas solny 0,67 cm3, 0,040 x 0,20mola) i 37% formalinę (2 x 3,56 + 3
1,77 cm3, razem 0,120 mola), a reakcję prowadzi się w temp. 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit, który zawiera 6,4 mmola/g grup aminowych i 5,7 mmola/g grup fosfinowych, i 2,1 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 12.
P r z y k ł a d 13
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: N-(3-aminopropylo)-1,33
-diaminopropan (1,31 g, 0,010 mola), wodę (3,5 cm3), L-metioninę (0,75 g, 0,0050 mola), kwas fosfinowy (3,12 cm3, 0,030 mola), 12M kwas solny 0,50 cm3, 0,030 x 0,20 mola) i 37% formalinę 3 (2 x 2,56 + 1,77 cm3, razem 0,096 mola), a reakcję prowadzi się w temp. 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit, który zawiera 7,4 mmola/g grup aminowych i 6,3 mmola/g grup fosfinowych, i 1,1 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 13.
P r z y k ł a d 14
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: trietylenotetraminę (1,46 g, 0,010 mola), wodę (5,0 cm3), L-metioninę (1,49 g, 0,010 mola), kwas fosfinowy (4,17 cm3, 0,040 mola), 12M kwas solny 0,67 cm3, 0,040 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 3,56 + 1,77cm3, razem 0,120 mola), a reakcję prowadzi się w temp. 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit KG145, który zawiera 7,6 mmola/g grup aminowych i 6,1 mmola/g grup fosfinowych, i 1,5 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 14.
P r z y k ł a d 15
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: trietylenotetraminę (1,46 g, 0,010 mola), wodę (5,0 cm3), L-metioninę (2,98 g, 0,020 mola), kwas fosfinowy (5,21 cm3, 0,050 mola), 12M kwas solny 0,83 cm3, 0,050 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 4,44 + 2,22 cm3, razem 0,150 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit, który zawiera 6,7 mmola/g grup aminowych i 5,6 mmola/g grup fosfinowych, i 2,2 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 15.
P r z y k ł a d 16
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: bis(3-aminopropylo)3 etylenodiaminę (1,74 g, 0,010 mola), wodę (5,0 cm3), L-metioninę (1,49 g, 0,010mola), kwas fosfinowy (4,17 cm3, 0,040 mola), 12M kwas solny 0,67 cm3, 0,040 x 0,20 mola) i 37% formalinę 3 (2 x 3,56 + 1,77 cm3, razem 0,120 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit KG121, który zawiera 7,3 mmola/g grup aminowych i 5,9 mmola/g grup fosfinowych, i 1,5 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 16.
P r z y k ł a d 17
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: bis(3-aminopropylo)3 etylenodiaminę (1,74 g, 0,010 mola), wodę (6,0 cm3), L-metioninę (2,98 g, 0,020 mola), kwas fosfinowy (4,95 cm3, 0,050 mola), 12M kwas solny 0,83 cm3, 0,050 x 0,20 mola) i 37% formalinę 3 (2 x 4,44 + 2,22 cm3, razem 0,150 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie
PL 221 292 B1 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit KG123, który zawiera 6,5 mmola/g grup aminowych i 5,4 mmola/g grup fosfinowych, i 2,2 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 17.
P r z y k ł a d 18
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: bis(3-aminopropylo)etyleno3 diaminę (1,74 g, 0,010 mola), wodę (7,0 cm3), L-metioninę (4,48 g, 0,030 mola), kwas fosfinowy (6,25 cm3, 0,060 mola), 12M kwas solny 1,00 cm3, 0,060 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 5,33 + 3
2,67 cm3, razem 0,176 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie 4 godzin (1+1+2 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit, który zawiera 6,0 mmola/g grup aminowych i 5,2 mmola/g grup fosfinowych i 2,6 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 18.
P r z y k ł a d 19
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: tetraetylenopentaminę (1,89 g, 0,010 mola), wodę (5,0 cm3), L-metioninę (0,75 g, 0050 mola), kwas fosfinowy (4,17 cm3, 0,040 mola), 12M kwas solny 1,50 cm3, 0,050-0,040 + 0,040 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 3,56 + 3
1,78 cm3, razem 0,120 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit, który zawiera 8,8 mmola/g grup aminowych i 6,4 mmola/g grup fosfinowych, i 0,8 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 19.
P r z y k ł a d 20
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: tetraetylenopentaminę (1,89 g, 0,010 mola), wodę (5,0 cm3), L-metioninę (1,49 g, 0,010 mola), kwas fosfinowy (4,69 cm3, 0,045 mola), 12M kwas solny 1,17 cm3, 0,050 - 0,045 + 0,045 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 4,00 + 3
2,00 cm3, razem 0,135 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit KG125, który zawiera 8,1 mmola/g grup aminowych i 6,1 mmola/g grup fosfinowych, i 1,3 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 20.
P r z y k ł a d 21
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: tetraetylenopentaminę (1,89 g, 0,010 mola), wodę (5,0 cm3), L-metioninę (2,24 g, 0,015 mola), kwas fosfinowy (5,21 cm3, 0,050 mola), 12M kwas solny 0,83 cm3, 0,050 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 4,44 + 2,22 cm3, razem 0,150 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit, który zawiera 7,7 mmola/g grup aminowych i 5,9 mmola/g grup fosfinowych, 11,2 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 21.
P r z y k ł a d 22
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: pentaetylenoheksaminę (2,32 g, 0,010 mola), wodę (5,0 cm3), L-metioninę (1,49 g, 0,010 mola), kwas fosfinowy (5,21 cm3, 0,050 mola), 12M kwas solny 1,67 cm3, 0,060 - 0,050 + 0,050 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 4,44 + 3
2,22 cm3, razem 0,150 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit, który zawiera 8,4 mmola/g grup aminowych i 6,0 mmola/g grup fosfinowych, i 1,2 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 22.
P r z y k ł a d 23
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że stosuje się: pentaetylenoheksaminę (2,32 g, 0,010 mola), wodę (5,0 cm3), L-metioninę (2,98 g, 0,020 mola), kwas fosfinowy (6,25 cm3, 0,060 mola), 12M kwas solny 1,00 cm3, 0,060 x 0,20 mola) i 37% formalinę (2 x 5,33 + 2,22 cm3, razem 0,174 mola), a reakcję prowadzi się w temperaturze 345K w czasie 5 godzin (1+1+3 w kolejnych etapach), otrzymuje się chiralny poliamfolit KG127, który zawiera 7,5 mmola/g grup aminowych i 5,6 mmola/g grup fosfinowych, i 1,9 mmola/g grup karboksylowych, a jego reprezentatywną strukturę przedstawia wzór 23.
P r z y k ł a d 24
W pierwszym reaktorze, do roztworu bis(heksametyleno)triaminy (4,31 g, 0,020 mola) w wodzie (4 cm3), dodaje się ostrożnie w temp. 300-3 1 0K 12M kwas solny (0,83 cm3, 0,010 mo33 la), po czym 50% kwas fosfinowy (5,18 cm3, 0,050 mola), a następnie 37% formalinę (4,44 cm3, 0,060 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temp. 345K i kontroluje się przebieg reakcji
PL 221 292 B1 mierząc widma 31P NMR. Po godzinie w mieszaninie KG139Aa nie ma już kwasu fosfonowego i wytwarza się mieszanina kwasów aminometylofosfinowych.
3
W drugim reaktorze, do wody (3 cm1 2 3), dodaje się L-metioninę (1,49 g, 0,010 mola), a po 3 rozpuszczeniu, wkrapla się ostrożnie w temp. 300-310K 12M kwas solny (0,17 cm3, 0,0020 mola), po czym 50% kwas fosfinowy (1,04 cm3, 0,010 mola), a następnie 37% formalinę (0,89 cm3, 0,012 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temp. 345K i kontroluje się przebieg reakcji mierząc widma 31P NMR. Po godzinie w mieszaninie KG139Ab pozostaje jeszcze około 10% nieprzereagowanego kwasu fosfinowego.
Zawartość obydwu reaktorów miesza się razem, a do tak uzyskanej mieszaniny dodaje się 3
37% formalinę (5,32 cm3, 0,072 mola) i kontynuuje się reakcję w temperaturze 345K przez godzinę, co powoduje przereagowanie kwasów aminometylofosfinowych i wytwarza się polimeryczny produkt KG139B, który powoduje zżelowanie mieszaniny. Następnie dodaje się jeszcze jedną 3 porcję 37% formaliny (2,66 cm3, 0,048 mola), miesza z już wytworzonym żelem, i mieszaninę ogrzewa się ponownie w temperaturze 345K przez 3 godziny, po czym wytworzony twardy żel rozdrabnia się, a następnie suszy się do stałej masy na płycie grzejnej o temperaturze 323-333K. Otrzymuje się chiralny poliamfolit KG139CZ o właściwościach zbliżonych do opisanego w przykładzie 1.
P r z y k ł a d 25
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że zamiast 12M kwasu solnego stosuje się 3
6M kwas siarkowy (1,00 cm3, 0,0060 mola), otrzymuje się chiralny poliamfolit o właściwościach zbliżonych do opisanego w przykładzie 1.
P r z y k ł a d 26
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że zamiast 12M kwasu solnego stosuje się 3
4M kwas fosforowy (1,00 cm3, 0,0040 mola), otrzymuje się chiralny poliamfolit o właściwościach zbliżonych do opisanego w przykładzie 1.
P r z y k ł a d 27
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że zamiast L-metioniny stosuje się D-metioninę, otrzymuje się chiralny poliamfolit o właściwościach zbliżonych do opisanego w przykładzie 1, ale o odwróconej konfiguracji centrów stereogennych.

Claims (7)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny o wzorze ogólnym I, w którym A oznacza fragment struktury kwasu dimetylofosfinowego, x oznacza liczbę takich fragmentów w poliamfolicie, natomiast B oznacza fragment struktury polialkilenopoliaminy, w którym n i p mogą być takie same lub różne i oznaczają liczby całkowite od 2 do 12, natomiast q jest liczbą struktur aminopolialkenowych i wynosi od 2 do 6, y oznacza liczbę fragmentów poliaminopolialkenowych w polimerze, natomiast C oznacza fragment struktury metioniny, a z oznacza liczbę takich fragmentów w poliamfolicie, przy czym wolne miejsca fragmentu A mogą wiązać się tylko z wolnymi miejscami we fragmencie B i C.
  2. 2. Sposób wytwarzania chiralnych poliamfolitów pochodnych kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny o wzorze ogólnym I, w którym A oznacza fragment struktury kwasu dimetylofosfinowego, x oznacza liczbę takich fragmentów w poliamfolicie, natomiast B oznacza fragment struktury polialkilenopoliaminy, w którym n i p mogą być takie same lub różne i oznaczają liczby całkowite od 2 do 12, natomiast q jest liczbą struktur aminopolialkenowych i wynosi od 2 do 6, a y oznacza liczbę fragmentów poliaminopolialkenowych w polimerze, natomiast C oznacza fragment struktury metioniny, a z oznacza liczbę takich fragmentów w poliamfolicie, znamienny tym, że w pierwszym etapie jedną część molową kwasu fosfinowego poddaje się reakcji z co najmniej jedną częścią molową formaldehydu zawartego w substancji wybranej z grupy formalina, trioksan, paraform, i co najmniej dwiema częściami molowymi grup -NH-, na które składa się suma grup -NH- pochodzących od polialkilenopoliaminy wybranej z grupy obejmującej bis(heksametyleno)triaminę, dietylenotriaminę, N-(3-aminopropylo)-1,3-diaminopropan, N-(2-aminoetylo)-1,3-diaminopropan, N,N'-bis(3-aminopropylo)etylenodiaminę, trietylenotetraminę, tetraetylenopentaminę, pentaetylenoheksaminę, 1,2-diaminoetan, 1,3-diaminopropan, 1,4-diaminobutan, 1,5-diaminopentan, 1,6-diaminoheksan, 2-metylo-1,5-diamino-pentan i 1,2-diaminocykloheksan, i grup -NH10
    PL 221 292 B1 pochodzących od metioniny, a reakcję prowadzi się w temperaturze 273-373K, w wodzie, w obecności aktywatora w postaci dowolnego kwasu Br0nsteda, aż do przereagowania substratów i utworzenia się mieszaniny kwasów aminometylofosfinowych, pochodnych polialkilenopoliamin i metioniny, którą w drugim etapie poddaje się usieciowaniu co najmniej jedną częścią molową formaldehydu w obecności aktywatora w postaci dowolnego kwasu Br0nsteda aż do przereagowania substratów i utworzenia się chiralnego poliamfolitu zawierającego fragmenty strukturalne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliaminy i metioniny, który w trzecim etapie poddaje się dosieciowaniu co najmniej 0,5 części molowej formaldehydu, po czym tak otrzymany chiralny poliamfolit wydziela się z mieszaniny poreakcyjnej.
  3. 3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że chiralny poliamfolit wydziela się z mieszaniny poreakcyjnej przez dekantację, sączenie lub wirowanie lub przez odparowanie lotnych składników pod zmniejszonym ciśnieniem.
  4. 4. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że kwas Br0nsteda stosuje się w ilości wyn ikającej z bilansu kwasowo-zasadowego, powiększonej o ułamek liczby moli kwasu fosfinowego, którą oblicza się ze wzoru: nH = nN - nP + w*nP, w którym nH oznacza liczbę moli protonów w kwasie Br0nsteda, nN oznacza liczbę moli atomów azotu w polialkilenopoliaminie, nP oznacza liczbę moli kwasu fosfinowego, a w jest ułamkiem w zakresie od 0 do 0,6 dla pierwszego etapu i od 0,2 do 1,2 dla drugiego etapu reakcji.
  5. 5. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że jako kwas Br0nsteda stosuje się kwas solny.
  6. 6. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że wszystkie etapy reakcji realizuje się w sposób ciągły i stopniowo dozuje się formaldehyd do mieszaniny jednej części molowej kwasu fosfinowego z dwoma równoważnikami grup NH pochodzących od polialkilenopoliaminy i metioniny, tak, aby końcowa ilość formaldehydu wynosiła co najmniej dwie części molowe.
  7. 7. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że w pierwszym etapie wykonuje się osobno reakcję kwasu fosfinowego z formaldehydem i polialkilenopoliaminą, i osobno reakcję kwasu fosfinowego z formaldehydem i metioniną, a następnie w drugim etapie miesza się produkty obydwu reakcji, dodaje się formaldehyd i kontynuuje sieciowanie poliamfolitu.
PL405424A 2013-09-23 2013-09-23 Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny oraz sposób ich wytwarzania PL221292B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL405424A PL221292B1 (pl) 2013-09-23 2013-09-23 Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny oraz sposób ich wytwarzania

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL405424A PL221292B1 (pl) 2013-09-23 2013-09-23 Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny oraz sposób ich wytwarzania

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL405424A1 PL405424A1 (pl) 2014-04-14
PL221292B1 true PL221292B1 (pl) 2016-03-31

Family

ID=50442238

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL405424A PL221292B1 (pl) 2013-09-23 2013-09-23 Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny oraz sposób ich wytwarzania

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL221292B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL405424A1 (pl) 2014-04-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP5693230B2 (ja) オリゴアルキレンイミン側鎖を有するグラフトポリマー、それらの製造方法及びそれらの使用
Baraniak et al. Electron‐Deficient Borinic Acid Polymers: Synthesis, Supramolecular Assembly, and Examination as Catalysts in Amide Bond Formation
PL221292B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i metioniny oraz sposób ich wytwarzania
PL221869B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i kwasu glutaminowego oraz sposób ich wytwarzania
PL221868B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i kwasu asparaginowego oraz sposób ich wytwarzania
PL220181B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i alaniny oraz sposób ich wytwarzania
Fischer et al. Highly Swellable Hydrogels from Waterborne Poly (Vinylamine‐co‐Acetamide)
PL223384B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i 1-fenyloetyloaminy oraz sposób ich wytwarzania
PL221471B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i waliny oraz sposób ich wytwarzania
PL221472B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i leucyny, izoleucyny lub norleucyny, oraz sposób ich wytwarzania
PL229948B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i 1,2-diaminocykloheksanu oraz sposób ich wytwarzania
JP5328796B2 (ja) エチレンイミン単位を含有するアミノアルキルビニルエーテル、その製造方法およびその使用
PL221465B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i asparaginy oraz sposób ich wytwarzania
PL221470B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i glutaminy oraz sposób ich wytwarzania
JP7152467B2 (ja) 均質ポリ(アルキレン)グアニジン及びその製造方法
PL221870B1 (pl) Poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i kwasu iminodioctowego oraz sposób ich wytwarzania
PL215369B1 (pl) Sposób wytwarzania poliamfolitów dimetylofosfinowych w postaci żywic polimerowych
PL221871B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i proliny oraz sposób ich wytwarzania
PL223359B1 (pl) Poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i kwasu aminometylofosfonowego oraz sposób ich wytwarzania
JP5083998B2 (ja) 汚泥脱水剤及び汚泥脱水方法
PL220148B1 (pl) Poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i tauryny, oraz sposób ich wytwarzania
PL220576B1 (pl) Poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i glicyny oraz sposób ich wytwarzania
PL223383B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i fenyloalaniny oraz sposób ich wytwarzania
PL223386B1 (pl) Poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i N-fosfonometyloglicyny oraz sposób ich wytwarzania
PL215956B1 (pl) Sposób wytwarzania poliamfolitów dimetylofosfinowych w postaci żywic polimerowych zawierających grupy aminometylofosfonowe