PL205559B1 - Sposób syntezy peptydów w roztworze, sposób kombinatoryjnej syntezy biblioteki peptydów i sposób zautomatyzowanej syntezy peptydów w roztworze - Google Patents

Sposób syntezy peptydów w roztworze, sposób kombinatoryjnej syntezy biblioteki peptydów i sposób zautomatyzowanej syntezy peptydów w roztworze

Info

Publication number
PL205559B1
PL205559B1 PL355125A PL35512502A PL205559B1 PL 205559 B1 PL205559 B1 PL 205559B1 PL 355125 A PL355125 A PL 355125A PL 35512502 A PL35512502 A PL 35512502A PL 205559 B1 PL205559 B1 PL 205559B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
scavenger
amine
anion
component
carried out
Prior art date
Application number
PL355125A
Other languages
English (en)
Other versions
PL355125A1 (en
Inventor
Ivo Franci Eggen
Kortenaar Paulus Bernardus Wilhelmus Ten
Cornelis Albert Gruson Haasnoot
Original Assignee
Organon Nv
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Organon Nv filed Critical Organon Nv
Publication of PL355125A1 publication Critical patent/PL355125A1/xx
Publication of PL205559B1 publication Critical patent/PL205559B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/02General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length in solution

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób syntezy peptydów w roztworze, w którym nie ma potrzeby wyodrębniania rosnącego peptydu przed złożeniem żądanej sekwencji, sposób kombinatoryjnej syntezy biblioteki peptydów i sposób zautomatyzowanej syntezy peptydów w roztworze.
Peptydy syntetyzuje się na stałym nośniku albo w roztworze. W obydwu tych podejściach etapy sprzęgania i odblokowania powtarza się naprzemiennie i można je oddzielić etapami okresowego oczyszczania. W syntezie w fazie stałej sekwencję składa się całkowicie, gdy jest ona przyłączona do stałego nośnika, a na końcu odszczepia się ją od nośnika. Nadmiar reagentów i produkty uboczne usuwa się przez sączenie. Synteza w fazie stałe ma dwie wyraźne zalety: w mniejszym lub większym stopniu nadaje się do stosowania i jest łatwa do zautomatyzowania. Jednakże, synteza ta ma również kilka poważnych wad. Przykładowo, reakcje są kontrolowane przez dyfuzję i zwykle w stosowanych niejednorodnych warunkach przebiegają raczej powoli: aby uniknąć delecji sekwencji konieczne są stosunkowo duże nadmiary reagentów. Ponadto, wszystkie reaktywne łańcuchy boczne rosnącego peptydu muszą być chronione, a ponieważ nie stosuje się etapów okresowego oczyszczania, reakcje uboczne związane z obecnością niechronionych łańcuchów bocznych mogą prowadzić do zanieczyszczeń końcowego produktu. Synteza w fazie stałej jest trudna do przeprowadzenia w skali przemysłowej i kosztowna pod względem reagentów i materiałów.
Z drugiej strony, klasyczna synteza w roztworze jest ł atwiejsza do prowadzenia w skali przemysłowej i mniej kosztowna w odniesieniu do reagentów i materiałów. Na ogół nie są wymagane całkowicie chronione aminokwasy, ponieważ produkty uboczne wytworzone w reakcjach ubocznych niechronionych łańcuchów bocznych można usunąć na drodze okresowego oczyszczania. Jednakże synteza w roztworze wymaga specyficznych dla danej sekwencji metod, a wytworzenie kompletnej sekwencji jest bardzo czasochłonne.
Z uwagi na wady tych podejść, istnieje zapotrzebowanie na sposób, który połączy zalety obydwu klasycznych metod, zwłaszcza przy wytwarzaniu peptydów w dużej skali. Nowy sposób powinien być szybki, łatwy do prowadzenia w skali przemysłowej i ogólnie możliwy do stosowania.
W syntezie w roztworze, korzystnie w każ dym etapie sprzęgania stosuje się nieznaczny nadmiar aktywowanego składnika karboksylowego w celu uzyskania ilościowego sprzęgania ze składnikiem aminowym; w ten sposób można zapobiec wystąpieniu delecji sekwencji w końcowym produkcie. Zakłada się na ogół, że resztkowy aktywowany składnik karboksylowy jest niszczony i usuwany podczas okresowej obróbki wodą. Jednakże, wstawki sekwencji peptydowych często uważa się za zanieczyszczenia produktu końcowego z uwagi na niecałkowite usunięcie resztkowego (aktywowanego) składnika karboksylowego po etapie sprzęgania, który następnie sprzęga się po odblokowaniu. Aby uniknąć wystąpienia tych reakcji ubocznych, bezpośrednio po etapie sprzęgania można wprowadzić etap zmiatania w celu zmiecenia (inaktywowania) resztkowych aktywowanych karboksylowych grup funkcyjnych. Jako zmiatacze zwykle stosuje się aminy. Stosowanie poliamin jako zmiataczy prowadzi do wymiecenia związków, które można aktywnie ekstrahować do - korzystnie kwaśnej - fazy wodnej, w zależ noś ci od ich polarnoś ci [np. L. Kisfaludy i in., (1974) Tetrahedron Lett. 19, 1785-1786]. Ekstrakcję tę prowadzi się zwykle przed etapem odblokowania, aby uniknąć straty rosnącego peptydu do fazy wodnej. Stwierdzono jednakże, że w wielu przypadkach procedura ta prowadzi do niecałkowitego okresowego oczyszczenia, co wiąże się z hydrofobowością zmiatanego związku: hydrofobowość wewnętrzna aminoacylowej części składnika karboksylowego zwiększa się z uwagi na nadal obecne grupy ochronne dla grupy aminowej. A zatem, ekstrakcja wodna nie jest całkowicie skuteczna.
L.A. Carpino i in. [(1999) J. Org. Chem., 64, 4324-4338] opisali ostatnio ulepszenia w sposobie zmiatania. W sposobie tym, oprócz stosowania poliaminy jako zmiatacza grupy ochronnej dla grupy aminowej, stosuje się również 1,1-dioksobenzo-[b]tiofeno-2-ylometoksykarbonyl (Bsmoc). Grupa funkcyjna Bsmoc ma bardzo wysoką labilność względem zasady, w wyniku czego resztkowe aktywowane karboksylowe grupy funkcyjne zmiata się i grupy funkcyjne Bsmoc usuwa się w jednym i tym samym etapie przy użyciu poliaminy. Zastosowanie grupy funkcyjnej Bsmoc opisano jako znaczne ulepszenie wytwarzania (oligo)peptydów technikami szybkiej ciągłej syntezy w roztworze, pozwalające na złożenie peptydu w jednej serii etapów w stosunkowo krótkim czasie.
Opracowano obecnie nowy sposób szybkiej ciągłej syntezy peptydów w roztworze, w którym stosuje się zmiatacz, który umożliwia zasadniczo dowolny wybór grupy ochronnej dla grupy aminowej (grupa ochronna przy N-końcu aktywowanego składnika karboksylowego). Inaczej niż w sposobie według Carpino, odblokowania N-końcowej grupy funkcyjnej nie trzeba prowadzić w tych samych
PL 205 559 B1 warunkach reakcji, w których miało miejsce zmiatanie nadmiaru aktywowanych karboksylowych grup funkcyjnych. Tak więc, sposób według wynalazku zasadniczo znacznie bardziej nadaje się do stosowania niż sposób według Carpino.
Nowym sposobem według wynalazku jest sposób szybkiej syntezy peptydu w roztworze, w organicznym rozpuszczalniku lub mieszaninie organicznych rozpuszczalników, który obejmuje powtarzalne cykle etapów (a)-(d):
(a) etap sprzęgania, z zastosowaniem nadmiaru aktywowanego składnika karboksylowego, w celu acylowania skł adnika aminowego, (b) etap wygaszenia, w którym stosuje się zmiatacz, w celu usunięcia resztkowych aktywowanych karboksylowych grup funkcyjnych, przy czym zmiatacz można również stosować do odblokowania rosnącego peptydu (tj. peptydu, który się tworzy), (c) jedną lub więcej ekstrakcji wodnych oraz ewentualnie (d) oddzielny etap odblokowania, po którym możliwa jest jedna lub więcej ekstrakcji wodnych, i charakteryzuje się tym, ż e obejmuje co najmniej jeden etap (b), okreś lany tu jako etap (b'), w którym jako zmiatacz resztkowych aktywowanych karboksylowych grup funkcyjnych stosuje się aminę zawierającą wolny anion lub utajony anion.
W czasie sposobu wedł ug wynalazku nie ma potrzeby wyodrę bniania rosną cego peptydu aż do otrzymania końcowej sekwencji peptydu (tj. produktu końcowego sposobu według wynalazku). Tak więc, sposób jest znacznie mniej czasochłonny niż klasyczne sposoby syntezy w roztworze i łatwy do prowadzenia w skali przemysłowej. Sposób według wynalazku pozwala na wysoce skuteczne usuwanie resztkowego aktywowanego składnika karboksylowego i eliminuje problemy hydrofobowości występujące w innych znanych w technice sposobach, w których jako zmiatacze stosuje się poliaminy. Sposobem tym uzyskuje się peptydy o wysokim stopniu czystości.
Korzystnie, w etapie (a) sposobu według wynalazku ilości molowe reagentów stosuje się w malejącym porządku: składnik karboksylowy, dodatek sprzęgający > reagent sprzęgający > składnik aminowy. Ponadto, korzystny jest sposób, w którym w etapie (a) stosuje się aktywowany wstępnie składnik karboksylowy.
W innym korzystnym wykonaniu, w etapie (b') jako zmiatacz stosuje się aminę zawierają c ą utajony anion. Korzystnie utajony anion zmiatającej aminy obejmuje tymczasową grupę ochroną, którą można selektywnie usunąć w obecności dowolnej ze stałych grup ochronnych przyłączonych do rosnącego peptydu. W szczególnie korzystnym wykonaniu grupa ochronna utajonego anionu w zmiatającej aminie ma labilność podobną do labilności tymczasowej grupy ochronnej obecnej przy N-końcu rosnącego peptydu. Umożliwia to odblokowanie zmiatacza, co prowadzi do uzyskania anionu i do odblokowania N-końca rosnącego peptydu w jednym etapie sposobu. Szczególnie korzystny jest sposób według wynalazku, w którym tymczasowe grupy ochronne, obecne przy N-końcu rosnącego peptydu i ewentualnie obecne w zmiataczu, są usuwalne na drodze hydrogenolizy, zaś stałymi grupami ochronnymi są grupy usuwalne na drodze acydolizy. Korzystnie, takimi tymczasowymi grupami ochronnymi są grupy typu grup benzylowych, np. (podstawiona) grupa benzylowa i grupa benzyloksykarbonylowa. Korzystnym zmiataczem jest pierwszorzędowa amina obejmująca wolny anion lub utajony anion, a zwłaszcza chroniona przy C-końcu pochodna aminokwasu. Oprócz grup karboksylanowych zmiatająca amina może obejmować inne anionowe grupy funkcyjne, takie jak, ale nie wyłącznie, grupy sulfonianowe, siarczanowe, fosfonianowe, fosforanowe lub fenolanowe. Do stosowania jako zmiatacz wysoce korzystnym aminokwasem jest β-alanina lub jej pochodna (np. pochodna estrowa lub sililoestrowa). Najkorzystniejszym zmiataczem jest β-alaninian benzylu lub jego sól.
Zamiast aminy zawierającej wolny lub utajony anion w sposobie według wynalazku jako zmiatacz można również stosować tiol zawierający wolny lub utajony anion.
Zmiatacz korzystnie stosuje się w dwu- do sześciokrotnym nadmiarze molowym w stosunku do resztkowego składnika aktywnego, który ma być zmieciony.
Stosowanie zmiatacza zgodnie z niniejszym wynalazkiem prowadzi do uzyskania hydrofilowych zmiecionych związków, które można aktywnie wyekstrahować do zasadowej fazy wodnej po etapie odblokowania: po odblokowaniu (jeśli jest stosowane) hydrofilowość wzrasta w wyniku obecności w zmiecionych związkach zarówno wolnej aminowej, jak i wolnej karboksylowej, grupy funkcyjnej. Tak więc, w sposobie według wynalazku uzyskuje się bardzo skuteczne okresowe oczyszczanie, dzięki możliwości aktywnego wyekstrahowania hydrofilowego zmiecionego związku. Ponadto, ewentualnie obecny nadmiar składnika
PL 205 559 B1 karboksylowego, który nie został aktywowany, a jego tymczasowe grupy ochronne usunięto w czasie odblokowania, jest ekstrahowany z mieszaniny reakcyjnej w tym samym czasie.
W sposobie według wynalazku, co najmniej jeden cykl, ale ewentualnie również więcej cykli sposobu, obejmuje etap (b'), w którym jako zmiatacz resztkowych aktywowanych karboksylowych grup funkcyjnych stosuje się wolny lub utajony anion. Jednakże, zgodnie z innym wykonaniem wynalazku, sposób obejmuje również jeden lub więcej cykli, w których w etapie (b) jako zmiatacz stosuje się poliaminę, taką jak 3-dimetyloamino-1-propyloamina.
Inny korzystny sposób według wynalazku obejmuje jeden lub więcej cykli, w których w etapie (b) nie prowadzi się odblokowania (a zatem warunki dobiera się w taki sposób, że zmiatacz stosuje się jedynie do wygaszenia, np. przy użyciu grupy ochronnej Z i aminy zawierającej utajony anion jako zmiatacza), zaś następny etap (c) obejmuje kolejne ekstrakcje zasadą, kwasem i zasadą, które korzystnie prowadzi się w obecności chlorku sodu lub azotanu potasu. Sposób ten obejmuje następny etap (d) obejmujący odblokowanie i kolejne ekstrakcje zasadą i w warunkach obojętnych, które korzystnie prowadzi się w obecności chlorku sodu lub azotanu potasu.
Inny korzystny sposób według wynalazku obejmuje jeden lub więcej cykli, w których w etapie (b) prowadzi się zarówno wygaszanie, jak i odblokowanie (np. stosując grupę ochronną Bsmoc i poliaminę jako zmiatacz), a następny etap (c) obejmuje kolejne ekstrakcje w warunkach zasadowych i oboję tnych, które korzystnie prowadzi się w obecnoś ci chlorku sodu lub azotanu potasu.
Również korzystny jest sposób, w którym w ostatnim cyklu etapu (a) grupy ochronne składnika karboksylowego mają labilność podobną do labilności stałych grup ochronnych składnika aminowego, a w etapie (b) jak zmiatacz stosuje się poliaminę .
Sposób według wynalazku można prowadzić w kilku rozpuszczalnikach organicznych, które są powszechnie stosowane przy wytwarzaniu peptydów. Wysoce korzystnym rozpuszczalnikiem organicznym jest octan etylu. Również korzystne są mieszaniny octanu etylu i innych rozpuszczalników organicznych, takich jak dichlorometan, 1-metylo-2-pirolidynon, N,N-dimetyloformamid lub tetrahydrofuran.
Sposób według wynalazku można prowadzić w temperaturach, które stosuje się w technice dla takich etapów w klasycznej syntezie peptydów w roztworze. Jednakże, korzystnie sposób prowadzi się w temperaturze w zakresie 0 do 50°C, a zwł aszcza w temperaturze otoczenia.
Sposób według wynalazku jest szczególnie odpowiedni do kombinatoryjnej syntezy bibliotek peptydów, z zastosowaniem metody rozszczepiania i mieszania. Sprzęgania prowadzi się oddzielnie i mieszaniny z poszczególnych etapów sprzęgania łączy się do ekstrakcji i odblokowania.
Sposób kombinatoryjnej syntezy biblioteki peptydów, w którym syntezę prowadzi się sposobem według wynalazku, wchodzi w zakres wynalazku.
Sposób według wynalazku nadaje się do zautomatyzowania zgodnie ze standardowymi sposobami i taki sposób zautomatyzowanej syntezy peptydów w roztworze jest także przedmiotem wynalazku.
Nowy sposób według wynalazku jest wysoce skuteczny i korzystnie może być stosowany do wytwarzania oligo- i polipeptydów o wysokim stopniu czystości.
W korzystnym sposobie według wynalazku nadmiar składnika karboksylowego sprzęga się ze składnikiem aminowym, przy czym karboksylową grupę funkcyjną aktywuje się najpierw lub aktywuje się in situ, stosując reagent sprzęgający i, w razie potrzeby, substancję dodatkową. Po etapie sprzęgania resztkowe aktywowane grupy funkcyjne zmiata się przez dodanie zmiatacza do mieszaniny reakcyjnej i mieszanie, a następnie na ogół prowadzi się ekstrakcję wodą. Po lub podczas zmiatania tymczasowe grupy ochronne usuwa się, stosując odpowiednie, znane w technice sposoby, a następnie usuwa się zmieciony związek przez ekstrakcję wodną. W tym samym czasie z mieszaniny reakcyjnej wyekstrahowuje się ewentualnie obecny nadmiar składnika karboksylowego, który nie był aktywowany i z którego podczas odblokowania usunięto tymczasowe grupy ochronne, jak również inne rozpuszczalne w wodzie reagenty i produkty uboczne. Następnie, w zależności od długości żądanego peptydu, można prowadzić następny cykl etapów sprzęgania, wygaszania, odblokowania i ekstrakcji.
Określenie „składnik aminowy” odnosi się do cząsteczki zawierającej wolną aminową grupę funkcyjną. Składnikiem aminowym może być zwłaszcza amina, aminokwas lub oligopeptyd, który zawiera wolną aminową grupę funkcyjną, i którego inne grupy funkcyjne są chronione w taki sposób, aby nie zakłócały żądanej reakcji sprzęgania. C-końcową grupę funkcyjną stosowanego aminokwasu lub oligopeptydu można chronić jako podstawiony lub niepodstawiony amid lub jako ester, a przykł adami tego ostatniego są, ale nie wyłącznie, ester metylowy, etylowy, t-butylowy, benzylowy, fenacylowy, 3-(3-metylo)pentylowy (Mpe), 2-(2-fenylo)propylowy (Pp), 2-chlorotritylowy (Clt), difenylo(4-pirydylo)metylowy (PyBzh), dicyklopropylometylowy (Dcmp), 9-fluorenylometylowy (Fm),
PL 205 559 B1 allilowy (All), 2-(trimetylosililo)etylowy (Tmse), 4-{N-[1-(4,4-dimetylo-2,6-dioksocykloheksylideno)-3-metylobutylo]amino}benzylowy (Dmab) oraz estry rozszczepialne enzymatycznie [R.W. Roeske (1981) w: The Peptides, vol. 3 (wyd. E. Gross i J. Meienhofer), Academic Press, Nowy Jork, str. 101-136; dla
Mpe: A. Karlstrom i A. Unden (1996), Tetrahedron Lett. 37, 4343-4246; dla Pp: C. Yue i in. (1993) Tetrahedron Lett. 34, 323-326; dla Clt: P. Athanassopoulos i in. (1995) Tetrahedron Lett. 36, 5645-5648; dla PyBzh: M. Mergler i in. (2001) P154, 2nd International Peptide Symposium & 17th American Peptide Symposium; dla Dcmp: L.A. Carpino i in. (1995) J. Org. Chem. 60, 7718-7719; dla Fm: F. Al-Obeidi i in. (1990) Int. Peptide Protein Res. 35, 215-218; dla All: H. Kunz i in., (1985) Int. Peptide Protein Res. 26, 493-497; dla Tmse: P. Sieber (1977) Helv. Chim. Acta 60, 2711-2716; dla Dmab: W.C. Chan i in. (1995) J. Chem. Soc. Commun., 2209-2210]. Do stałej ochrony innych grup funkcyjnych składnika aminowego korzystne są grupy funkcyjne typu t-butylowych lub grupy funkcyjne o podobnej labilności, które obejmują, ale nie wyłącznie, t-butyl (tBu) do ochrony łańcuchów bocznych Asp, Glu, Ser, Thr i Tyr, t-butoksykarbonyl (Boc) do ochrony łańcuchów bocznych Lys i Trp, trityl (Trt) do ochrony łańcuchów bocznych Asp, Gln i His oraz 2,2,5,7,8-pentametylochromano-6-sulfonyl (Pmc) lub 2,2,4,6,7-pentametylodihydrobenzofurano-5-sulfonyl (Pbf) do ochrony łańcucha bocznego Arg [G. Barany i R.B. Merrifield (1980) w: The Peptides, vol. 2 (wyd. E. Gross i J. Meienhofer), Academic Press, Nowy Jork, str. 1-284; dla Trp(Boc): H. Franzen i in. (1984) J. Chem. Soc. Chem. Commun.. 16991700; dla Asn(Trt) i Gln(Trt): P. Sieber i B. Riniker (1998), Tetrahedron Lett. 32, 739-742; dla His(Trt): P. Sieber i B. Riniker (1998), Tetrahedron Lett. 28, 6031-6034; dla Prac: R. Ramage i J. Green (1987) Tetrahedron Lett. 28, 2287-2290; dla Pbf: L.A. Carpino i in. (1993) Tetrahedron Lett. 34, 7829-7832].
Określenie „składnik karboksylowy” odnosi się do cząsteczki zawierającej wolną karboksylową grupę funkcyjną. Składnikiem karboksylowym może być zwłaszcza dowolny kwas karboksylowy, aminokwas lub oligopeptyd, który zawiera wolną karboksylową grupę funkcyjną, i którego inne grupy funkcyjne są chronione w taki sposób, aby nie zakłócały żądanej reakcji sprzęgania. W korzystnym wykonaniu, grupa aminowa stosowanego aminokwasu lub oligopeptydu jest tymczasowo chroniona przez benzyloksykarbonylową (Z) grupę funkcyjną; inne przykłady obejmują, ale nie wyłącznie, grupy funkcyjne, takie jak Boc, Trt, fluoren-9-ylometoksykarbonyl (Fmoc), 2-(metylosulfonylo)etoksykarbonyl (Msc), alliloksykarbonyl (Alloc), grupy funkcyjne typu grup arylosulfonylowych, takie jak ortonitro-benzenosulfonyl (o-NBS) oraz rozszczepialne enzymatycznie grupy funkcyjne [R. Geiger i W. Konig (1981) w: The Peptides, vol. 3 (wyd. E. Gross i J. Meienhofer), Academic Press, Nowy Jork, str. 1-99; dla Alloc: H. Kunz i C. Unverzagt (1984) Angnew Chem., 96, 426-427; dla arylosulfonylu: T. Fukuyama i in. (1997) Tetrahedron Lett. 38, 5831-5834]. Do stałej ochrony innych grup funkcyjnych składnika karboksylowego korzystne są grupy funkcyjne typu grup t-butylowych lub grupy funkcyjne o podobnej labilności, jak opisane powyżej dla składnika aminowego. Składnik karboksylowy można najpierw aktywować jako aktywny ester, korzystnie jako N-hydroksysukcynimid, benzotriazol-1-il, pentafluorofenyl lub ester 4-nitrofenylowy, jako halogenek, bezwodnik kwasu N-karboksylowego lub jako symetryczny bezwodnik. Alternatywnie, składnik karboksylowy można aktywować in situ jak mieszany bezwodnik lub przy użyciu reagenta sprzęgającego, takiego jak karbodiimid, korzystnie N,N'-dicykloheksylokarbodiimid (DCC) lub chlorowodorek 1-(3'-dimetyloaminopropylo)-3-etylokarbodiimidu (EDC), sól uroniowa lub fosfoniowa, ewentualnie w obecności obecności dodatku sprzęgającego, korzystnie N-hydroksysukcynimidu (HONSu), 1-hydroksybenzotriazolu (HOBt), 3-hydroksy-4-okso-3,4-dihydro-1,2,3-benzotriazyny (HOOBt), 1-hydroksy-7-azabenzotriazolu (HOAt) lub 6-chloro-1-hydroksybenzotriazolu (Cl-HOBt), i, w razie potrzeby, w obecności trzeciorzędowej aminy [„The Peptides”, vol. 1 (1979) (wyd. E. Gross i J. Meienhofer) Academic Press, Nowy Jork; P. Li i J.-C. Xu (2000) Chin. J. Chem. 18, 456-466].
Tymczasowe grupy ochronne można usunąć sposobami znanymi w technice (patrz powyżej). Grupę funkcyjną Z można usunąć przez hydrogenolizę standardowymi sposobami, w których stosuje się na przykład gazowy wodór lub mrówczan jako donor wodoru. Podczas takiego procesu usuwa się wszystkie grupy ochronne typu grup benzylowych, z zachowaniem grup ochronnych typu grup t-butylowych lub grup funkcyjnych o podobnej labilności. Te ostatnie grupy można usunąć przez acydolizę sposobami znanymi w technice.
Znaczenie terminu „zasadowa ekstrakcja wodna” będzie oczywiste dla specjalisty w tej dziedzinie techniki. Jednakże, zasadowe ekstrakcje wodne korzystnie prowadzi się stosując wodne roztwory wodorowęglanu sodu lub węglanu sodu, w razie potrzeby w obecności chlorku sodu lub azotanu potasu. Określenie „aktywna ekstrakcja wodna” odnosi się do ekstrakcji, w której ekstrahuje się składnik aminowy w kwasowych warunkach w formie protonowanej (amoniowej), albo składnik karboksylowy ekstrahuje się w warunkach zasadowych w deprotonowanej formie (karboksylanowej).
PL 205 559 B1
Wynalazek zilustrowano następującymi przykładami, które nie ograniczają zakresu wynalazku.
P r z y k ł a d 1
Boc-Gly-Phe-Asp(OtBu)-Ser(tBu)-OtBu
Cykl 1: Do roztworu 4,34 g H-Ser(tBu)-OtBu w mieszaninie octanu etylu i dichlorometanu w temperaturze 20°C podczas mieszania dodano 3,24 g 1-hydroksybenzotriazolu, 7,76 g Z-Asp(OtBu)-OH, 4,20 g chlorowodorku 1-(3'-dimetyloaminopropylo)-3-etylokarbodiimidu i 2,42 ml 4-metylomorfoliny. Otrzymany roztwór mieszano aż do zakończenia reakcji, po czym dodano 1,21 ml 4-metylomorfoliny i 3,51 g β-alaninianu benzylu, w postaci p-toluenosulfonianu jako soli. Mieszaninę mieszano jeszcze przez 30 minut, po czym ekstrahowano układem 5% Na2CO3/10% NaCl, 5% KHSO4/10% NaCl i 5% Na2CO3/10% NaCl. Warstwę organiczną zawierającą chroniony dipeptyd Z-Asp-(OtBu)-Ser(tBu)-OtBu poddano katalitycznej hydrogenolizie w obecności palladu na węglu drzewnym. Po zakończeniu reakcji dodano 5% Na2CO3/10% NaCl i otrzymaną zawiesinę przesączono. Pozostałość przemyto mieszaniną octanu etylu i dichlorometanu i połączone przesącze organiczne ekstrahowano układem 5% Na2CO3/10% NaCl i 30% NaCl.
Cykl 2: Do warstwy organicznej zawierającej dipeptyd H-Asp-(OtBu)-Ser(tBu)-OtBu w temperaturze 20°C dodano 3,24 g 1-hydroksybenzotriazolu, 7,18 g Z-Phe-OH, 4,20 g chlorowodorku 1-(3'-dimetyloaminopropylo)-3-etylokarbodiimidu i 2,42 ml 4-metylomorfoliny. Otrzymany roztwór mieszano aż do zakończęnia reakcji, po czym dodano 1,21 ml 4-metylomorfoliny i 3,51 g β-alaninianu benzylu, w postaci p-toluenosulfonianu jako soli. Mieszaninę mieszano jeszcze przez 30 minut, po czym ekstrahowano układem 5% Na2CO3/10% NaCl, 5% KHSO4/10% NaCl i 5% Na2CO3/10% NaCl.
Warstwę organiczną zawierającą chroniony tripeptyd Z-Phe-Asp(OtBu)-Ser(tBu)-OtBu poddano katalitycznej hydrogenolizie w obecności palladu na węglu drzewnym. Po zakończeniu reakcji dodano 5% Na2CO3/10% NaCl i otrzymaną zawiesinę przesączono. Pozostałość przemyto mieszaniną octanu etylu i dichlorometanu i połączone przesącze organiczne ekstrahowano układem 5% Na2CO3/10% NaCl i 30% NaCl.
Cykl 3: Do warstwy organicznej zawierającej tripeptyd H-Phe-Asp(OtBu)-Ser(tBu)-OtBu w temperaturze 20°C dodano 3,24 g 1-hydroksybenzotriazolu, 4,21 g Boc-Gly-OH, 4,20 g chlorowodorku 1-(3'-dimetyloaminopropylo)-3-etylokarbodiimidu i 2,42 ml 4-metylomorfoliny. Otrzymany roztwór mieszano aż do zakończenia reakcji, po czym dodano 1,25 ml 3-dimetylo-1-propyloaminy. Mieszaninę mieszano jeszce przez 30 minut, po czym ekstrahowano układem 5% Na2CO3/10% NaCl, 5% KHSO4/10% NaCl, 5% Na2CO3/10% NaCl i wodą. Warstwę organiczną odparowano do suchości i pozostałość roztarto z eterem metylowo-tertbutylowym i wysuszono, uzyskując żądany chroniony tetrapeptyd z wydajnością 95% w odniesieniu do substancji wyjściowej, H-Ser(tBu)-OtBu. Wytwarzanie zakończono w ciągu 6 godzin.
Czystość: 98,1%, zgodnie z HPLC z odwróconymi fazami (24 do 68% acetonitrylu w 0,1% kwasu trifluorooctowego w ciągu 29 minut przy 220 nm, 2,0 ml/min., kolumna C18 5 mikronów). Tożsamość: m/z 425, 4 [M-Boc-3tBu+H]+, 469,4 [M-4tBu+H]+, 525,4 [M-3tBu+H]+, 581,4 [M-2tBu+H]+, 637,4 [M-tBu+H]+, 693,4 [M+H]+, MS z jonizacją przez elektrorozpylanie; 1H NMR (CDCl3) δ 1,16 (s, 9H), 1,44 (m, 27H), 2,59 (dd, 1H), 2,79 (dd, 1H), 3,09 (m, 2H), 3,51 (dd, 1H), 3,69-3,86 (m, 3H), 4,47 (m, 1H), 4,67-4,68 (ra, 2H), 5,20 (szer. s, 1H), 6,68 (d, 1H), 7,12- 7,34 (m, 7H).
P r z y k ł a d 2
H-His-Trp-Ser(tBu)-Tyr(tBu)-D-Leu-Leu-Orn(Boc)-Pro-OtBu
Cykl 1: Do roztworu 1300 g H-Pro-OtBu.HCl w octanie etylu w temperaturze 20°C podczas mieszania dodano 1014 g 1-hydroksybenzotriazolu, 2756 g Z-Orn(Boc)-OH, 1378 g chlorowodorku 1-(3'dimetyloaminopropylo)-3-etylokarbodiimidu i 1495 ml 4-metylomorfoliny. Otrzymany roztwór mieszano aż do zakończenia reakcji, po czym dodano 377 ml 4-metylomorfoliny i 1105 g β-alaninianu benzylu, w postaci p-toluenosulfonianu jako soli. Mieszaninę mieszano jeszcze przez 30 minut, po czym ekstrahowano układem 5% Na2CO3/10% NaCl, 5% KHSO4/10% NaCl i 5% Na2CO3/10% NaCl.
Warstwę organiczną zawierającą chroniony dipeptyd Z-Orn(Boc)-Pro-OtBu poddano katalitycznej hydrogenolizie w obecności palladu na węglu drzewnym. Po zakończeniu reakcji dodano 5% Na2CO3/15% NaCl i otrzymaną zawiesinę przesączono. Pozostałość przemyto mieszaniną octanu etylu i połączone przesącze organiczne ekstrahowano układem 5% Na2CO3/15% NaCl i 30% NaCl. Oddzielone warstwy wodne ponownie ekstrahowano octanem etylu.
Cykl 2: Do połączonych warstw organicznych zawierających dipeptyd H-Orn(Boc)-Pro-OtBu w temperaturze 20°C dodano 1-hydroksybenzotriazolu, 1993 g Z-Leu-OH, 1320 g chlorowodorku 1-(3'-dimetyloaminopropylo)-3-etylokarbodiimidu i 754 ml 4-metylomorfoliny. Otrzymany roztwór mieszano aż do zakończenia reakcji, po czym dodano 377 ml 4-metylomorfoliny i 1105 g β-alaninianu benzylu,
PL 205 559 B1 w postaci p-toluenosulfonianu jako soli. Mieszaninę mieszano jeszcze przez 30 minut, po czym ekstrahowano układem 5% Na2CO3/10% NaCl, 5% KHSO4/10% NaCl i 5% Na2CO3/10% NaCl.
Warstwę organiczną zawierającą chroniony tripeptyd Z-Leu-Orn(Boc)-Pro-OtBu poddano katalitycznej hydrogenolizie w obecności palladu na węglu drzewnym. Po zakończeniu reakcji dodano 5% Na2CO3/15% NaCl i otrzymaną zawiesinę przesączono. Pozostałość przemyto mieszaniną octanu etylu i połączone przesącze organiczne ekstrahowano układem 5% Na2CO3/15% NaCl i 30% NaCl.
Cykl 3: Do połączonych warstw organicznych zawierających tripeptyd H-Leu-Orn(Boc)-Pro-OtBu w temperaturze 20°C dodano 1014 g 1-hydroksybenzotriazolu, 1993 g Z-D-Leu-OH, 1320 g chlorowodorku 1-(3'-dimetyloaminopropylo)-3-etylokarbodiimidu i 754 ml 4-metylomorfoliny. Otrzymany roztwór mieszano aż do zakończenia reakcji, po czym dodano 377 ml 4-metylomorfoliny i 1105 g β-alaninianu benzylu, w postaci p-toluenosulfonianu jako soli. Mieszaninę mieszano jeszcze przez 30 minut, po czym ekstrahowano 5% Na2CO3, 5% KHSO4 i 5% Na2CO3.
Warstwę organiczną zawierającą chroniony tripeptyd Z-Leu-Leu-Orn(Boc)-Pro-OtBu poddano katalitycznej hydrogenolizie w obecności palladu na węglu drzewnym. Po zakończeniu reakcji dodano 5% Na2CO3 i otrzymaną zawiesinę przesączono. Pozostałość przemyto octanem etylu i połączone przesącze organiczne ekstrahowano 5% Na2CO3 i 10% NaCl.
Cykle 4 do 7: Cykle te prowadzono sposobem opisanym dla trzeciego cyklu, zastępując 1993 g Z-D-Leu-OH odpowiednio, Z-Tyr(tBu)-OH (uwolnionym z 4497 g odpowiedniej soli dicykloheksyloamoniowej), 2218 g Z-Ser(tBu)-OH, 2538 g Z-Trp-OH i 2172 g Z-His-OH. Jednakże, od piątego cyklu w etapie zmiatania stosowano dodatkowe ilości 4-morfoliny i β-alaninianu benzylu w postaci p-toluenosulfonianu jako soli. W piątym cyklu ekstrakcje po etapie zmiatania prowadzono w temperaturze 35°C. W siódmym cyklu sprzęganie prowadzono w temperaturze 3°C, 1014 g 1-hydroksybenzotrialu zastąpiono 2561 g 6-chloro-1-hydroksybenzotriazolu i po 1 godzinie sprzęgania dodano dodatkową porcję 132 g chlorowodorku 1-(3'-dimetylopropylo)-3-etylokarbodiimidu. W siódmym cyklu ekstrakcje po hydrogenolizie prowadzono również w temperaturze 35°C. Pod koniec siódmego cyklu warstwę organiczną odparowano do suchości i otrzymano żądany nonapeptyd z wydajnością 73% w odniesieniu do wyjściowego H-Pro-OtBu. HCl (co oznacza średnio 98% na każdy etap syntezy chemicznej).
Czystość: 90,6%, zgodnie z HPLC z odwróconymi fazami (24 do 68% acetonitrylu w 0,1% kwasu trifluorooctowego w ciągu 29 minut przy 220 nm, 2,0 ml/min., kolumna C18 5 mikronów). Tożsamość: m/z 543,6 [M-Boc-2tBu+2H]2+, 571,6 [M-Boc-tBu+2H]2+, 599,6 [M-Boc-tBu+2H]2+, 649,8 [M+2H]2+, 1298,0 [M+H]+, MS z jonizacją przez elektrorozpylanie.
Wnioski: Chronione peptydy wytworzono bez wyodrębniania związków przejściowych w trakcie procesu. Czystość i tożsamość produktu otrzymanego w pierwszym przykładzie wskazują, że nadmiar (aktywowanych) składników karboksylowych całkowicie usunięto we wszystkich etapach sposobu i w sposobie według wynalazku nie miały miejsca żadne insercje sekwencji peptydowych. Synteza w drugim przykładzie wykazuje ponadto, że sposób według wynalazku można łatwo stosować w skali przemyślowej. Produkty w obydwu przykładach otrzymano z wysoką wydajnością i wysoką czystością w stosunkowo krótkim czasie.

Claims (26)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób syntezy peptydów w roztworze w organicznym rozpuszczalniku lub w mieszaninie organicznych rozpuszczalników, obejmujący powtarzalne cykle etapów (a)-(d):
    (a) etap sprzęgania, z zastosowaniem nadmiaru aktywowanego składnika karboksylowego do acylowania składnika aminowego, (b) etap wygaszenia, w którym stosuje się zmiatacz, w celu usunięcia resztkowych aktywowanych karboksylowych grup funkcyjnych, przy czym zmiatacz można również stosować do odblokowania rosnącego peptydu, (c) jedną lub więcej ekstrakcji wodnych oraz ewentualnie (d) oddzielny etap odblokowania, po którym prowadzi się jedną lub więcej ekstrakcji wodnych, znamienny tym, że sposób obejmuje co najmniej jeden etap (b), określany tu jako etap (b'), w którym jako zmiatacz resztkowych aktywowanych karboksylowych grup funkcyjnych stosuje się aminę zawierającą wolny anion lub utajony anion.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że w etapie (a) ilości molowe stosowanych reagentów stosuje się w malejącym porządku: składnik karboksylowy, dodatek sprzęgający > reagent sprzęgający > składnik aminowy.
    PL 205 559 B1
  3. 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że w etapie (a) stosuje się aktywowany wstępnie składnik karboksylowy.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1-3, znamienny tym, że w etapie (b') jako zmiatacz stosuje się aminę zawierającą utajony anion.
  5. 5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że utajony anion zmiatającej aminy obejmuje tymczasową grupę ochronną, którą można selektywnie usunąć w obecności dowolnej ze stałych grup ochronnych przyłączonych do rosnącego peptydu.
  6. 6. Sposób według zastrz. 4 albo 5, znamienny tym, że utajony anion w zmiatającej aminie zawiera grupę ochronną, która ma labilność podobną do labilności tymczasowej grupy ochronnej obecnej przy N-końcu rosnącego peptydu.
  7. 7. Sposób według zastrz. 5 albo 6, znamienny tym, że tymczasowymi grupami ochronnymi są grupy usuwalne na drodze hydrogenolizy, zaś stałymi grupami ochronnymi są grupy usuwalne na drodze acydolizy.
  8. 8. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że tymczasowymi grupami ochronnymi są grupy typu grup benzylowych.
  9. 9. Sposób według zastrz. 4-8, znamienny tym, że jako zmiatacz stosuje się pierwszorzędową aminę zawierającą wolny anion lub utajony anion.
  10. 10. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym, że pierwszorzędową amina jest pochodną aminokwasu chronioną przy C-końcu.
  11. 11. Sposób według zastrz. 10, znamienny tym, że aminokwasem jest β-alanina lub jej pochodna.
  12. 12. Sposób według zastrz. 11, znamienny tym, że zmiataczem jest β-alaninian benzylu lub jego sól.
  13. 13. Sposób według zastrz. 1-8, znamienny tym, że zamiast aminy zawierającej wolny lub utajony anion jako zmiatacz stosuje się zawierający wolny lub utajony anion tiol.
  14. 14. Sposób według zastrz. 1-13, znamienny tym, że obejmuje jeden lub więcej cykli, w których w etapie (b) jako zmiatacz stosuje się poliaminę.
  15. 15. Sposób według zastrz. 1-14, znamienny tym, że w etapie (b) nie prowadzi się odblokowania, a następny etap (c) obejmuje kolejne ekstrakcje zasadą, kwasem i zasadą.
  16. 16. Sposób według zastrz. 15, znamienny tym, że ekstrakcje prowadzi się w obecności chlorku sodu lub azotanu potasu.
  17. 17. Sposób według zastrz. 15 albo 16, znamienny tym, że następny etap (d) obejmuje odblokowanie i kolejne ekstrakcje zasadą i w warunkach obojętnych.
  18. 18. Sposób według zastrz. 17, znamienny tym, że ekstrakcje prowadzi się w obecności chlorku sodu lub azotanu potasu.
  19. 19. Sposób według zastrz. 1-14, znamienny tym, że obejmuje jeden lub więcej cykli, w których w etapie (b) prowadzi się zarówno wygaszanie, jak i odblokowanie, a następny etap (c) obejmuje kolejne ekstrakcje w warunkach zasadowych i w warunkach obojętnych.
  20. 20. Sposób według zastrz. 19, znamienny tym, że ekstrakcje prowadzi się w obecności chlorku sodu lub azotanu potasu.
  21. 21. Sposób według zastrz. 1-20, znamienny tym, że w ostatnim cyklu etapu (a) grupy ochronne składnika karboksylowego mają labilność podobną do labilności stałych grup ochronnych rosnącego peptydu, a w etapie (b) jak zmiatacz stosuje się poliaminę.
  22. 22. Sposób według zastrz. 1-21, znamienny tym, że jako rozpuszczalnik organiczny lub mieszaninę rozpuszczalników organicznych stosuje się octan etylu lub mieszaninę octanu etylu i dichlorometanu, mieszaninę octanu etylu i 1-metylo-2-pirolidynonu, mieszaninę octanu etylu i N,N-dimetyloformamidu lub mieszaninę octanu etylu i tetrahydrofuranu.
  23. 23. Sposób według zastrz. 1-22, znamienny tym, że prowadzi się go w temperaturze w zakresie 0 do 50°C.
  24. 24. Sposób według zastrz. 23, znamienny tym, że prowadzi się go w temperaturze otoczenia.
  25. 25. Sposób kombinatoryjnej syntezy biblioteki peptydów technikami rozszczepiania i mieszania, znamienny tym, że syntezę prowadzi się sposobem określonym w zastrz. 1-24.
  26. 26. Sposób zautomatyzowanej syntezy peptydów w roztworze, znamienny tym, że prowadzi się go stosując sposób określony w zastrz. 1-25.
PL355125A 2001-07-19 2002-07-19 Sposób syntezy peptydów w roztworze, sposób kombinatoryjnej syntezy biblioteki peptydów i sposób zautomatyzowanej syntezy peptydów w roztworze PL205559B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP01202753 2001-07-19

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL355125A1 PL355125A1 (en) 2003-01-27
PL205559B1 true PL205559B1 (pl) 2010-05-31

Family

ID=8180656

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL355125A PL205559B1 (pl) 2001-07-19 2002-07-19 Sposób syntezy peptydów w roztworze, sposób kombinatoryjnej syntezy biblioteki peptydów i sposób zautomatyzowanej syntezy peptydów w roztworze

Country Status (25)

Country Link
US (4) US20030018164A1 (pl)
EP (1) EP1291356B1 (pl)
JP (1) JP4142907B2 (pl)
KR (1) KR100861031B1 (pl)
CN (1) CN1254483C (pl)
AR (1) AR034869A1 (pl)
AT (1) ATE302792T1 (pl)
BR (1) BRPI0202783B1 (pl)
CA (1) CA2390358C (pl)
DE (1) DE60205693T2 (pl)
DK (1) DK1291356T3 (pl)
EC (1) ECSP024291A (pl)
ES (1) ES2248485T3 (pl)
HR (1) HRP20020609B1 (pl)
HU (1) HUP0202369A2 (pl)
IL (1) IL150601A (pl)
MX (1) MXPA02006998A (pl)
NO (1) NO324245B1 (pl)
PE (1) PE20030214A1 (pl)
PL (1) PL205559B1 (pl)
PT (1) PT1291356E (pl)
RU (1) RU2237673C2 (pl)
SG (1) SG119160A1 (pl)
TW (1) TWI247012B (pl)
ZA (1) ZA200205409B (pl)

Families Citing this family (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IL150601A (en) * 2001-07-19 2010-06-30 Organon Nv Process for rapid synthesis of peptides within a solution using the back of an activated carboxyl component and destruction of the residual activated carboxyl component
EP1801086A1 (en) * 2005-11-25 2007-06-27 Synthacon GmbH Synthesis of carbon acid amides
EP1790656A1 (en) * 2005-11-25 2007-05-30 Nanokem S.A. Solution-phase synthesis of leuprolide
BRPI0706400A2 (pt) * 2006-01-17 2011-03-29 Organon Nv processos para a hidrólise enzimática seletiva de terc-butil ésteres c-terminais de substratos de peptìdeo, para a sìntese convergente de um peptìdeo de dois ou mais fragmentos de peptìdeo, para a sìntese enzimática por etapas de um peptìdeo na direção do terminal c, e para a sìntese de peptìdeo
ES2729197T3 (es) 2006-03-01 2019-10-30 Kaneka Corp Método de producción de péptidos
DE602008004350D1 (de) * 2007-06-25 2011-02-17 Organon Nv Verfahren zur umsetzung von c-terminalen peptidestern oder -säuren zu amiden unter verwendung von subtilisin in gegenwart von ammoniumsalzen
US8124372B2 (en) 2007-06-25 2012-02-28 N.V. Organon Selective enzymatic amidation of C-terminal esters or acids of peptides
CA2753224C (en) * 2008-12-30 2018-04-17 Gkl-Biotec Ag Peptide combination
KR101032399B1 (ko) * 2010-02-11 2011-05-03 주식회사 이너트론 밴드패스필터의 철재하우징 및 그 제조방법
EP2409982A3 (en) * 2010-02-25 2012-02-08 Corning Incorporated Chemical processes generating solid(s) carried out continuously within microreactors
JP6136934B2 (ja) 2011-12-15 2017-05-31 味の素株式会社 Fmoc基の除去方法
DK3266792T3 (da) 2015-03-04 2021-02-01 Jitsubo Co Ltd Fremgangsmåde til peptidsyntese
ES2924473T3 (es) 2015-12-21 2022-10-07 Univ Texas Tech System Sistema y procedimiento de síntesis de péptidos GAP en fase de solución
CN111971293B (zh) 2018-04-13 2024-07-30 Jitsubo株式会社 肽合成方法
US12024537B2 (en) 2018-05-31 2024-07-02 Sederma Compositions and methods for chemical synthesis
FR3090636B1 (fr) * 2018-12-24 2021-01-01 Strainchem Procédé de synthèse de peptides
EP3917937A4 (en) 2019-02-01 2022-11-23 Sederma SYNTHETIC STRATEGY FOR A SPLIT PROTECTION GROUP
JP7505498B2 (ja) * 2019-08-30 2024-06-25 日産化学株式会社 ペプチド化合物の製造方法
KR20220119421A (ko) 2019-12-27 2022-08-29 추가이 세이야쿠 가부시키가이샤 펩타이드 화합물의 합성법
JP7659541B2 (ja) * 2020-03-27 2025-04-09 株式会社カネカ アミド結合含有化合物の製造方法
JP7063408B1 (ja) 2021-07-02 2022-05-09 ペプチスター株式会社 液相ペプチド製造方法

Family Cites Families (20)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US1991A (en) * 1841-02-23 Manner of fastening bedsteads
US5221754A (en) * 1989-06-09 1993-06-22 Research Corporation Technologies, Inc. Reagents for rapid peptide synthesis
US5101059A (en) * 1989-12-05 1992-03-31 Research Corporation Technologies, Inc. Amino acid protecting groups
US5877278A (en) * 1992-09-24 1999-03-02 Chiron Corporation Synthesis of N-substituted oligomers
US5516892A (en) * 1992-12-28 1996-05-14 Indiana University Foundation Polymer-bound mixed carboxylic anhdrides as a stable form of activated carboxylic acids
US6310180B1 (en) * 1993-06-21 2001-10-30 Vanderbilt University Method for synthesis of proteins
US5516639A (en) * 1993-07-22 1996-05-14 Mayo Foundation For Medical Education And Research Antibodies specific for human prostate glandular kallkrein
US6001966A (en) * 1995-10-19 1999-12-14 Proligo Llc Method for solution phase synthesis of oligonucleotides and peptides
US5698676A (en) * 1995-11-30 1997-12-16 Abbott Laboratories Use of propylene oxide as an acid scavenger in peptide synthesis
US5849954A (en) * 1996-01-18 1998-12-15 Research Corporation Technologies, Inc. Method of peptide synthesis
US6306959B1 (en) * 1996-05-03 2001-10-23 Warner Lambert Company Rapid purification by polymer supported quench
US6121488A (en) * 1997-09-24 2000-09-19 Warner-Lambert Company Quenching reagents for solution phase synthesis
JPH11217397A (ja) * 1997-11-27 1999-08-10 Saburo Aimoto ペプチドチオールエステルの製造方法
FR2780061B1 (fr) * 1998-06-22 2001-09-07 Rhone Poulenc Rorer Sa Nouveau procede de preparation de derives de cyclosporine
WO2000071569A1 (en) * 1999-05-26 2000-11-30 Abbott Laboratories Minimal isolation peptide synthesis process using ion-exchange resins as scavenging agents
US20020127219A1 (en) * 1999-12-30 2002-09-12 Okkels Jens Sigurd Lysosomal enzymes and lysosomal enzyme activators
CA2410898A1 (en) * 2000-07-19 2002-01-24 Pharmacia & Upjohn Company Substrates and assays for .beta.-secretase activity
IL150601A (en) * 2001-07-19 2010-06-30 Organon Nv Process for rapid synthesis of peptides within a solution using the back of an activated carboxyl component and destruction of the residual activated carboxyl component
TWI243826B (en) * 2001-07-19 2005-11-21 Akzo Nobel Nv Process for the preparation of peptides
US7893187B2 (en) * 2005-06-17 2011-02-22 Eastman Chemical Company Glass laminates comprising polyester compositions formed from 2,2,4,4-tetramethyl-1,3-cyclobutanediol and 1,4-cyclohexanedimethanol

Also Published As

Publication number Publication date
EP1291356A3 (en) 2004-01-02
IL150601A0 (en) 2003-02-12
ATE302792T1 (de) 2005-09-15
US20040082760A1 (en) 2004-04-29
TWI247012B (en) 2006-01-11
HUP0202369A2 (en) 2006-08-28
EP1291356A2 (en) 2003-03-12
SG119160A1 (en) 2006-02-28
US20040087768A1 (en) 2004-05-06
RU2237673C2 (ru) 2004-10-10
NO20023446L (no) 2003-01-20
CA2390358C (en) 2004-12-21
IL150601A (en) 2010-06-30
JP2003055396A (ja) 2003-02-26
RU2002119630A (ru) 2004-01-20
DE60205693T2 (de) 2006-06-14
ECSP024291A (es) 2002-09-27
JP4142907B2 (ja) 2008-09-03
US20060063918A1 (en) 2006-03-23
DK1291356T3 (da) 2005-12-19
PE20030214A1 (es) 2003-03-17
ZA200205409B (en) 2002-09-05
US7435791B2 (en) 2008-10-14
BR0202783A (pt) 2003-06-10
US20030018164A1 (en) 2003-01-23
HK1050904A1 (en) 2003-07-11
EP1291356B1 (en) 2005-08-24
HRP20020609B1 (en) 2005-06-30
DE60205693D1 (de) 2005-09-29
KR100861031B1 (ko) 2008-10-01
PL355125A1 (en) 2003-01-27
AR034869A1 (es) 2004-03-24
HU0202369D0 (pl) 2002-09-28
NO20023446D0 (no) 2002-07-18
CN1398876A (zh) 2003-02-26
CA2390358A1 (en) 2003-01-19
MXPA02006998A (es) 2005-02-17
ES2248485T3 (es) 2006-03-16
BRPI0202783B1 (pt) 2016-07-05
KR20030009188A (ko) 2003-01-29
HRP20020609A2 (en) 2003-02-28
NO324245B1 (no) 2007-09-17
CN1254483C (zh) 2006-05-03
PT1291356E (pt) 2005-11-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP1291356B1 (en) Process for rapid solution synthesis of peptides
HU205091B (en) Process for producing amino acid-n-carboxyanhydrides protected with urethane group
KR100869520B1 (ko) 펩티드 제조 방법
KR20210046730A (ko) Wnt 헥사펩티드에 대한 용액상 경로
AU2002300066B2 (en) Process for Rapid Solution Synthesis of Peptides
HK1050904B (en) Process for rapid solution synthesis of peptides
HK1050905B (en) Process for the preparation of peptides
NZ520268A (en) Process for the preparation of peptides
JPH09136870A (ja) ジベンゾスベレニルアルギニン誘導体及びこれを用いるペプチド製造方法

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20110719