PL195784B1 - Szczep mikroorganizmu, białko, sposób wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych oraz zastosowanie białka - Google Patents

Szczep mikroorganizmu, białko, sposób wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych oraz zastosowanie białka

Info

Publication number
PL195784B1
PL195784B1 PL326915A PL32691598A PL195784B1 PL 195784 B1 PL195784 B1 PL 195784B1 PL 326915 A PL326915 A PL 326915A PL 32691598 A PL32691598 A PL 32691598A PL 195784 B1 PL195784 B1 PL 195784B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
cysteine
leu
ala
gly
acetylserine
Prior art date
Application number
PL326915A
Other languages
English (en)
Other versions
PL326915A1 (en
Inventor
Christoph Winterhalter
Walfred Leinfelder
Original Assignee
Wacker Chemie Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Wacker Chemie Ag filed Critical Wacker Chemie Ag
Publication of PL326915A1 publication Critical patent/PL326915A1/xx
Publication of PL195784B1 publication Critical patent/PL195784B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/74Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/12Methionine; Cysteine; Cystine
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/24Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Enterobacteriaceae (F), e.g. Citrobacter, Serratia, Proteus, Providencia, Morganella, Yersinia
    • C07K14/245Escherichia (G)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

1. Szczep mikroorganizmu, który jest zdolny do fermentacyjnego wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych, znamienny tym, ze ma rozregulowa- ny metabolizm cysteiny tak, ze tworzy zwiekszona ilosc L-cysteiny i nadwyraza co najmniej jeden gen kodujacy bialko o sekwencji Id. Sekw. Nr 2 lub jego wariant, który przyczynia sie do wytwarzania L-cysteiny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych. PL PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest szczep mikroorganizmu, który jest zdolny do fermentacyjnego wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych, białko, sposób wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych oraz zastosowanie białka.
Wynalazek dotyczy mikroorganizmów i procesów fermentacyjnego wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych.
Fermentacyjne wytwarzanie aminokwasów jest obecnie powszechne w przypadku wielu aminokwasów. Jednakże, nie istniał uprzednio żaden ekonomiczny proces fermentacyjny wytwarzania L-cysteiny.
Pochodne tiazolidynowe i odpowiednie hemitioketale na ogół powstają, gdy cysteinę kondensuje się z ketonami albo aldehydami. Chemiczna kondensacja cysteiny z różnymi ketonami albo aldehydami, w szczególności z a-ketokwasami, znana była od dłuższego czasu. W kondensacji jako związek pośredni zostaje wytworzony hemitioketal przez nukleofilowy atak wolnej pary elektronów siarki na ubogi w elektrony atom węgla grupy aldehydowej albo ketonowej. Zamknięcie pierścienia z eliminacją cząsteczki wody prowadzi do powstania odpowiedniej pochodnej tiazolidynowej.
Wytwarzanie pochodnych tiazolidynowych przedstawione jest w sposób ogólny na załączonym schemacie, w którym R1 i R2 mogą oznaczać dowolny rodnik organiczny.
Związki wyjściowe są w równowadze z pochodną tiazolidynową przez hemitioketal. Z tego powodu, hemitioketal jest zwykle również obecny w roztworze wodnym oprócz pochodnej tiazolidynowej.
W znaczeniu zastosowanym w niniejszym wynalazku, termin „pochodna tiazolidynowa” obejmuje odpowiedni hemitioketal będący z nią w równowadze. Nie donoszono dotychczas, że tiazolidyny są bezpośrednimi metabolitami komórek. Wszystkie doniesienia o tworzeniu tiazolidyn przez komórki oparte są na zewnątrzpochodnym dodatku, w nadmiarze, jednego ze związków wyjściowych, zwykle L-cysteiny, która ulega przekształceniu do pirogronianu przez desulfhydratację i deaminację, przy czym pirogronian reaguje z kolei z dodaną cysteiną (Ronald C. Simpson i in., Biochemica et Biophysic Acta, 496 (1977), 12-19). Kredich i in. donoszą w J. Biol. Chem., 248, 17:6187-6196, że kwas 2-metylo-2,4-tiazolidynodikarboksylowy tworzy się in vitro, gdy L-cysteina poddawana jest enzymatycznej desulfhydratacji, jednak ich zdaniem, jest niezwykle mało prawdopodobne, żeby substancja ta była wytwarzana in vivo.
Znane jest zastosowanie tiazolidyn jako racemicznych prekursorów do wytwarzania L-cysteiny metodą biotransformacji (EP-A 0101052, Ok Hee Ryu i in., Biotechnology Letters 17 nr 3, 275-280 (marzec 1995)). Gdy do wytwarzania L-cysteiny wykorzystuje się mieszaninę racemiczną, musi być ona stereoselektywnie przekształcona w L-cysteinę przy użyciu enzymów albo całych komórek. Pozostałe diastereoizomery muszą ponownie ulec racemizacji. Z tego powodu, tego rodzaju biotransformacja obciążona jest wysokimi kosztami.
Chemiczna synteza tiazolidyn z racemicznej cysteiny i odpowiedniego ketonu albo aldehydu prowadzi do powstania czterech różnych diastereoizomerów. Przeprowadzanie syntezy chemicznej z enancjomerycznie czystej L-cysteiny jest drogie i bezsensowne w związku z izolacją L-cysteiny. Z tego powodu, proces wytwarzania diastereoizomerów tiazolidyny, które posiadają konfigurację R przy atomie C4, obarczony jest wysokimi kosztami związków wyjściowych.
Niniejszy wynalazek dotyczy mikroorganizmów, które są przydatne do fermentacyjnego wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych. Szczep mikroorganizmu według wynalazku, jest zdolny do fermentacyjnego wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych, i ma rozregulowany metabolizm cysteiny tak że tworzy zwiększoną ilość L-cysteiny i nadwyraża co najmniej jeden gen kodujący białko o sekwencji Id. Sekw. Nr 2 lub jego wariant, które bierze udział w wytwarzaniu L-cysteiny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych.
Korzystnie metabolizm cysteiny w mikroorganizmie według wynalazku uległ rozregulowaniu przez allel Cys-E odporny na sprzężenie zwrotne.
PL 195 784 B1
W zakres wynalazku wchodzi również białko obejmujące sekwencję
1 MKFRGGRMSR KDGVLALLW WWGLNFWI KVGLHNMPRL MLAGLRFMLV
51 AFPAIFFVAR PKVPLNLLLG YGLTISFAQF AFLFCAINFG MPAGLASLVL
101 QAQAFFTIML GAFTFGERLH GKQLAGIALA IFGVLVLIED SLNGQHVAML
151 GFMLTLAAAF SWACGNIFNK KIMSHSTRPA VMSLVIWSAL IPIIPFFVAS
201 LILDGSATMI HSLVTIDMTT ILSLMYLAFV ATIVGYGIWG TLLGRYETWR
251 VAPLSLLVPV VGLASAALLL DERLTGLQFL GAVLIMTGLY INVFGLRWRK
310 AVKVGS* (Identyfikator Sekw. nr 2) lub wariant sekwencji, który bierze udział w wytwarzaniu L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych.
Otwarta ramka odczytu, która koduje białko o sekwencji aminokwasowej przedstawionej na Identyfikatorze Sekw. nr 2, jest również określana poniżej jako ORF 306.
Poniższa sekwencja stanowi kolejny przykład białka według wynalazku.
MSR KDGVLALLW WWGLNFWI KVGLHNMPRL MLAGLRFMLV
44 AFPAIFFVAR PKVPLNLLLG YGLTISFAQF AFLFCAINFG MPAGLASLVL
94 QAQAFFTIML GAFTFGERLH GKQLAGIALA IFGVLVLIED SLNGQHVAML
144 GFMLTLAAAF SWACGNIFNK KIMSHSTRPA VMSLVIWSAL IPIIPFFVAS
194 LILDGSATMI HSLYTIDMTT ILSLMYLAFV ATIVGYGIWG TLLGRYETWR
244 VAPLSLLVPV VGLASAALLL DERLTGLQFL GAYLIMTGLY INYFGLRWRK
294 AVKVGS (Identyfikator Sekw. nr 3).
Białka o sekwencji aminokwasowej, która wykazuje homologię wyższą niż 50%, z sekwencją przedstawioną na Identyfikatorze Sekw. nr 2 albo 3 wchodzą w zakres wynalazku.
Korzystnie homologia sekwencji białka według wynalazku z Identyfikatorem Sekw. nr 2 albo 3 jest wyższa niż 75%, zaś szczególnie korzystnie homologia sekwencji z Identyfikatorem Sekw. nr 2 albo 3 jest wyższa niż 90%.
Przykładem nadekspresji genu, który zgodnie z wynalazkiem zwiększa wytwarzanie cysteiny, jest nadekspresja fragmentu DNA wielkości 5,5 kb, który również koduje locus mar. Plazmid ten, określany również jako 100-1-1, zdeponowano w E. coli K12 W3110, w DSMZ Deutsche Sammlung von Mikroorganizmen und Zellkulturen GmbH, D-38124 Brunszwik, pod numerem DSM 11545. Na fig. 1 pokazano mapę plazmidową tego plazmidu. Plazmid ten można zastosować do amplifikacji genów według wynalazku przy użyciu PCR.
PL 195 784 B1
Specjaliście znane jest zastosowanie znanych sposobów, przykładowo techniki ukierunkowanej mutagenezy, w celu osiągnięcia dalszych konkretnych modyfikacji tych genów w pożądanym w danym przypadku miejscu sekwencji. Mikroorganizmy, które zawierają geny zmodyfikowane w ten sposób, wchodzą również w zakres wynalazku, o ile biorą udział w wytwarzaniu L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny albo pochodnych tiazolidynowych.
W znaczeniu zastosowanym w niniejszym wynalazku, nadekspresja oznacza, że białko wyrażane jest w mikroorganizmie według wynalazku przynajmniej dwukrotnie silniej niż w organizmie typu dzikiego, z którego pochodzi białko.
Korzystnie białko ulega ekspresji przynajmniej pięciokrotnie silniej w mikroorganizmie według wynalazku niż w organizmie typu dzikiego, szczególnie korzystnie przynajmniej dziesięciokrotnie silniej niż w organizmie typu dzikiego, z którego pochodzi białko.
Bez nadekspresji określonych powyżej genów nie można zaobserwować wyraźnego zwiększenia ilości L-cysteiny ani pochodnych tiazolidynowych w porównaniu ze szczepem wyjściowym, przykładowo przy użyciu niezależnej transkrypcji z użyciem osobnego promotora, albo przykładowo, bez genu kodującego marA obecnego w wielu kopiach na plazmidzie.
Wzrost ilości produktu spowodowany nadekspresją wspomnianych sekwencji był tym bardziej nieoczekiwany, ponieważ nadekspresja produktu genu opisanego w literaturze, otwartej ramki odczytu ORF266, którego sekwencja od metioniny w pozycji 41 Identyfikatora Sekw. nr 2 do przodu, odpowiada Identyfikatorowi Sekw. nr 4, nie prowadzi do wzrostu wydajności L-cysteiny.
W sekwencji aminokwasowej, pochodzącej z ORF306, i która opisana jest powyżej, początkowa metionina ORF266 jest wytłuszczona i podkreślona.
Specjaliście znane są liczne sposoby uzyskania nadekspresji genu. Jedną z możliwości jest, przykładowo, ekspresja genu na plazmidzie obecnym w komórce w znacznej liczbie kopii. Znane są takie plazmidy. Przykłady, które można wymienić, obejmują pACYC177, pACYC184, pochodne pACYC184, pBR322, inne pochodne pBR, pBluescript, pUC18, pUC19 i inne plazmidy, które są konwencjonalnie stosowane w E. coli.
Plazmidy, które są korzystne do nadekspresji obejmują pACYC177, pACYC184, pochodne pACYC184, pBR322 i inne pochodne pBR.
Szczególnie korzystne są pACYC184 i jego pochodne, takie jak pACYC184-LH (zdeponowany w DSMZ Deutsche Sammlung von Mikroorganizmen und Zellkulturen GmbH, D-38124 Brunszwik, pod numerem DSM 10172).
Inne możliwości wspomagania ekspresji obejmują: zwiększenie liczby kopii genu wypływu przez powielenie segmentu genu na chromosomie albo zastosowanie silnych promotorów w celu poprawy transkrypcji genu wypływu.
Przykładami odpowiednich silnych promotorów jest promotor GAPDH, promotor tac (ptac), promotor lac (plac), promotor trp (ptrp), lambda PL albo lambda PR.
Szczególnie korzystny jest promotor GAPDH albo promotor tac (ptac).
Szczególnie korzystny jest promotor GAPDH.
Dalszą możliwością wspomagania ekspresji jest inaktywacja genów represorowych, które wywierają wpływ hamujący ekspresję genu wypływu. W przypadku genów locus mar może to obejmować, przykładowo, gen mar R.
Elementy, które mają pozytywny wpływ na translację, również przyczyniają się do nadekspresji genu wypływu. Przykładami takich elementów są miejsca wiązania rybosomu (sekwencję Shine-Delgarno) albo kaseta znajdująca się poniżej sekwencji.
Miejsce wiązania rybosomu genu GAPDH jest korzystnym elementem, który ma pozytywny wpływ na translację.
W celu uzyskania ekspresji, geny wypływu są transformowane do mikroorganizmu, który wytwarza L-cysteinę.
Geny wypływu są korzystnie transformowane do mikroorganizmu, który jest wybrany z grupy obejmującej Bacillus takie jak B. subtilis, Corynebacterium, takie jak C. glutamicum, Streptomyces i E. coli.
Geny wypływu są transformowane do organizmów, których metabolizm cysteiny uległ rozregulowaniu, w taki sposób, że zachodzi wytwarzanie zwiększonych ilości L-cysteiny i, ewentualnie, tworzenie w następstwie pochodnych tiazolidynowych L-cysteiny albo N-acetyloseryny.
Korzystnymi przykładami mikroorganizmów, które wytwarzają zwiększone ilości L-cysteiny, są mikroorganizmy posiadające allele Cys-E odporne na sprzężenie zwrotne.
PL 195 784 B1
W innym korzystnym wykonaniu, transformowane są mikroorganizmy, które wytwarzają pochodne tiazolidynowe wewnątrzkomórkowo przez kondensację L-cysteiny i ketonu albo aldehydu, szczególnie pirogronianu.
Mikroorganizmy, które wytwarzają zwiększone ilości L-cysteiny opisano, przykładowo, w zgłoszeniu patentowym DE 19539952.
Specjaliście znane są, przykładowo ze standardowych podręczników, sposoby transformowania mikroorganizmów. Wszystkie znane sposoby można zastosować do wytwarzania mikroorganizmu według wynalazku.
Zwiększona ekspresja genów wypływu w mikroorganizmach, które wytwarzają aminokwasy albo pochodne aminokwasów, które wytwarzane są wewnątrzkomórkowo, takie jak L-cysteina, L-cystyna, N-acetyloseryna albo ich pochodne tiazolidynowe, nieoczekiwanie powoduje zwiększone wydzielanie na zewnątrz komórki aminokwasów albo pochodnych aminokwasów, które wytwarzane są wewnątrzkomórkowo, takich jak L-cysteina, L-cystyna, N-acetyloseryna albo ich pochodne tiazolidynowe. Powoduje to zasadniczo wyższą wydajność tych produktów uzyskiwanych podczas fermentacji.
Wynalazek dotyczy również sposobu wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub ich pochodnych tiazolidynowych, który polega na prowadzeniu fermentacji w sposób znany per se, w której stosuje się mikroorganizmy według wynalazku.
Sposób według wynalazku fermentacyjnego wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny albo ich pochodnych tiazolidynowych posiada kilka zalet:
Wytworzone są wyłącznie diastereoizomery tiazolidynowe, które posiadają konfigurację R przy atomie węgla C4, ponieważ z powodu enzymów obecnych w komórce L-cysteina jest wytwarzana w sposób stereoselektywny, po czym jest zdolna do reakcji z konkretnym ketonem albo aldehydem, który jest dostępny, dając wyłącznie wspomniane diastereoizomery tiazolidynowe.
W celu uzyskania L-cysteiny z tiazolidyn można zastosować konwencjonalne sposoby oraz techniki chemiczne i biologiczne, które mają konfigurację R przy atomie węgla C4, przez proste przesunięcie równowagi w kierunku związków wyjściowych.
Dla pochodnych tiazolidynowych, które są wytwarzane w procesie według wynalazku, przynajmniej jeden rodnik R1 albo R2 na załączonym schemacie korzystnie oznacza grupę karboksylową, szczególnie korzystnie R1 oznacza COOH, zaś R2 oznacza CH3 we wzorze I.
Oba związki wyjściowe do kondensacji, w wyniku której powstają pochodne tiazolidynowe, mogą być wytwarzane przez mikroorganizm; alternatywnie tylko jeden związek wyjściowy wytwarzany jest przez mikroorganizm, zaś drugi związek wyjściowy dodawany jest podczas fermentacji.
W korzystnym wykonaniu wynalazku, oba związki wyjściowe do kondensacji, w wyniku której powstaje pochodna tiazolidynowa wytwarzane są przez mikroorganizm.
Hydroksylamina albo 2,4-dinitrofenylohydrazyna mogą być, m.in. zastosowane jako czynniki derywatyzujące w celu derywatyzacji pirogronianu, który następnie może być usuwany ze stanu równowagi.
W procesie według wynalazku pochodna tiazolidynowa (i odpowiedni hemitioketal) mogą korzystnie być wytwarzane z prostych i tanich źródeł C, N i S.
W sposobie według wynalazku do fermentacji mogą być zastosowane źródła C takie jak glukoza, laktoza, fruktoza, skrobia itp., źródła N takie jak amoniak albo hydrolizaty białkowe itp. oraz źródła S takie jak sulfid, siarczyn, siarczan, tiosiarczan albo ditionin, które są stosowane zwykle w fermentacji.
Pochodne tiazolidyn, które wytwarza się przez fermentację, można zastosować do innych celów jak również w celu uzyskania cysteiny. Znanych jest wiele możliwości zastosowania, które wykorzystują pochodne tiazolidynowe, wytworzone przez fermentację, i mające konfigurację R przy atomie węgla C4, jako materiał wyjściowy (blok budujący) do szerszej syntezy.
Wynalazek obejmuje też zastosowanie białka według wynalazku do zwiększania ekspresji L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych w fermentacji.
Poniższe przykłady podane są w celu dalszego wyjaśnienia wynalazku.
Możliwe jest ilościowe określenie pochodnej tiazolidynowej/hemitioketalu metodą pośrednią. W przykładach, związki te są określane przez oznaczenie cysteiny metodą Gaitonde M. K. (1967), Biochem. J., 104, 627-633. Derywatyzacja cysteiny ninhydryną w silnie kwasowych warunkach usuwa ją ze stanu równowagi. Powoduje to następnie reakcję hemitioketalu, i powstanie na końcu pochodnej tiazolidynowej. Po około 10 minutach w 100°C cała pochodna tiazolidynowa i odpowiedni hemitioketal
PL 195 784 B1 ulegają przekształceniu do pochodnej ninhydrynowej cysteiny, którą można oznaczyć przy długości fali 560 nm. W tej metodzie, wolna cysteina jest włączana do oznaczenia.
Ilość wolnych grup SH i w konsekwencji wolnej cysteiny określa się przy użyciu testu opisanego przez Sang-Han Lee i in., Biochem. and Biophys. Res. Comm., 213, 3 (1995), str. 837, przy użyciu kwasu 5,5'-ditiobis-2-nitrobenzenowego (DTNB).
Po wytworzeniu wolnej cysteiny, ulega ona oksydacji do L-cysteiny podczas fermentacji z dostępem powietrza atmosferycznego. Cysteina jest tylko słabo rozpuszczalna w ośrodku wodnym w pH 7,0 i precypituje jako biały osad. Gdy wytworzy się nierozpuszczalny osad cysteiny, jest on rozpuszczany w półstężonym HCli ponownie oznaczany w wyżej wymienionym teście w warunkach redukujących uzyskanych przy użyciu ditiotreitolu (DTT).
W przykładzie 3, ilości „cysteiny całkowitej” które są zmierzone w supernatancie przy użyciu testu Gaitonde, podane są jako wynik fermentacji. W tym kontekście „cysteina całkowita” składa się z, w szczególności, kwasu 2-metylotiazolidyno-2,4-dikarboksylowego, odpowiedniego hemitioketalu, wolnej L-cysteiny i rozpuszczonej cystyny. Precypitowaną cystynę oznacza się ilościowo osobno.
Możliwość wytrącania kwasu 2-metylotiazolidyno-2,4-dikarboksylowego, który jest wytwarzany w jednym z wykonań wynalazku, przy użyciu dwuwartościowych jonów metalu, można wykorzystać do wykrywania tworzenia tej pochodnej. Opisano uprzednio, że pochodną można wytrącić wyłącznie octanem cynku (Schubert i in., patrz odnośniki). Jednakże, możliwe jest również wytrącanie innymi dwuwartościowymi jonami metali, takich jak magnez, żelazo, miedź, cynk, mangan, kobalt itp. Wytrącanie i następująca po nim identyfikacja wytworzonego produktu tiazolidynowego opisane są w przykładzie 4. Przykład ten pokazuje również, że kwas 2-metylotiazolidyno-2,4-dikarboksylowy jest głównym produktem po okresie fermentacji równym 24 godziny. Łatwość z jaką produkt fermentacji może być wytrącony jest zarówno pomocna w analizowaniu go, jak i przydatna podczas jego oczyszczania.
Przykład 1
Amplifikacja alleli metodą PCR
A. Amplifikacja alleli cysE
Allele cysE, tj. cysEIV i cysEX, które są stosowane poniżej opisano w DE 19539952 przykład 2/10.
Mutacje wymienione w tym dokumencie można uzyskać stosując ukierunkowaną mutagenezę. Zestawy do przeprowadzania mutagenezy można uzyskać w handlu, przykładowo ze Stratagene (Stratagene GmbH, PO Box 105466, D-69044 Heidelberg) pod nazwą handlową ExSite albo Chameleon.
Po przeprowadzeniu ukierunkowanej mutagenezy, powstałe allele amplifikowano z odpowiedniego DNA stosując reakcję łańcuchowej polimerazy (PCR) (Saiki i in., 1988, Science 239:487-491) przy użyciu następujących starterów:
5'-TGGACCAGAGCTCTGGCTGGCGCATCGCTTCGGCGTTG-3'
SacI cysE-rev (Identyfikator Sekw. nr 6)
5'-CTCGATGCATTACGTAGGGGTATCCGGGAGCGGTATTG-3'
Nsil
Doświadczenia PCR przeprowadzono w 30 cyklach w obecności 200 mM trifosforanów deoksynukleotydów (dATP, dCTP, dGTP, dTTP), 1 mM każdego z odpowiednich oligonukleotydów, 100 ng matrycowego DNA zawierającego konkretny allel cysE, 1/10 10-krotnego buforu reakcyjnego (100 mM KCl, 100 mM (NH4)2SO4, 200 mM Tris-HCl (pH 8,8), 20 mM MgSO4, 1% Triton X-100 i 1000 mg/ml BSA) oraz 2,5 jednostki termostabilnej, rekombinowanej polimerazy DNA Pfu (Stratagene) w urządzeniu Thermocycler (Gene-ATAQ-Controller, Pharmacia) stosując następujące warunki: 94°C przez 1 minutę, 60°C przez 1 minutę i 72°C przez 3 minuty.
Produkt amplifikacji hydrolizowano stosując SacI i Nsil (Boehringer Mannheim GmbH) w warunkach sugerowanych przez producenta, rozdzielono na 1% żelu agarozowym i izolowano z żelu jako fragment wielkości około 1,0 kb stosując metodę Geneclean (zestaw Geneclean BI0101, PO Box
PL 195 784 B1
2284 La Jolla, Kalifornia, 92038-2284) według instrukcji producenta. Do momentu dalszego użycia fragment przechowywano w -20°C.
B. Amplifikacja locus mar
Locus mar E. coli amplifikowano metodą PCR. Sposób izolowania produktów amplifikacji jest taki sam jak opisane w przykładzie 1 dział A. Jako matrycę DNA zastosowano chromosomalny DNA E. coli szczep W3110 (ATCC 27325). Jako matrycę DNA można zastosować również plazmid 100-1-1 (DSM 11545). Komórki poddano lizie i oczyszczono chromosomalny DNA według protokołu opisanego w Ausubel i in., 1987, 2.4.1.-2.4.2. Current Protocols in Molecular Biology, Greene Publishing Associates and Willey-lnterScience. W celu amplifikacji locus mar zastosowano następujące startery:
mar-fw (Identyfikator Sekw. nr 7).
5'-TTTGGCGCGCCGATCAGCGGCGGCGCAACCATCAG-3'
Ascl mar-rev (Identyfikator Sekw. nr 8)
5'-GCCTTAATTAAGATCGACACTCAGGCTGTACTGGCGAC-3'
PacI
Amplifikacja locus mar dała fragment wielkości około 3 kb, który oczyszczono jak to opisano w przykładzie 1 dział A. Trawienie restrykcyjne przeprowadzono stosując enzymy AscIi PacI (oba z New England Biolabs GmbH, PO Box 2750, D-65820 Schwalbach/Taunus) według instrukcji producenta i stosując dostarczone przez niego bufory. Po oczyszczeniu fragmentu przez elektroforezę na żelu agarozowym, przechowywano go w -20°C.
C. Amplifikacja DNA ORF306
DNA kodujący ORF306 namnożono przez PCR jak to opisano w przykładzie 1 dział A. Jako matrycę DNA zastosowano chromosomalny DNA izolowany z E. coli szczepu W3110 (ATCC 27325). Jako matrycę DNA można również zastosować plazmid 100-1-1 (DSM 11545).
Zastosowano następujące startery:
ORF306-fw: (Identyfikator Sekw. nr 9)
5'-GGAATTCATTAATCCGGCGACTAACGAATCAACTG-3'
AsnI
ORF306-rev: (Identyfikator Sekw. nr 10)
5'-GCCTTAATTAACGCTATGTAGTTTGTTCTGGCCCCG-3'
PacI
Amplifikowany fragment DNA miał wielkość około 1,05 kb i został oczyszczony przez elektroforezę na żelu agarozowym, jak to opisano. Trawienie restrykcyjne enzymami AsnI (Boehringer Mannheim) i PacI (New England Biolabs) dało po usunięciu enzymów żądany fragment DNA. Fragment ten przechowywano w -20°C do użycia.
D. Amplifikacja fragmentu DNA kodującego promotor GAPDH
Promotor genu dehydrogenazy gliceroaldehydofosforanowej zastosowano w celu uzyskania efektywnej transkrypcji ORF306. Ten żądany fragment DNA uzyskano podobnie przy użyciu PCR. Chromosomalny DNA E. coli szczep W3110 (ATCC 27325) zastosowano jako matrycę DNA. Plazmid 100-1-1 (DSM 11545) można również zastosować jako matrycę DNA.
PL 195 784 B1
Zastosowano następujące startery:
GAPDH-fw (Identyfikator Sekw. nr 11)
5'-GTCGACGCGTGAGGCGAGTCAGTCGCGTAATGC-3'
Mlul
GAPDH-rev (Identyfikator Sekw. nr 12)
5'-GACCTTAATTAAGATCTCATATGTTCCACCAGCTATTTGTTAG-3'
PacI Ndel
Powstały fragment DNA wielkości około 0,3 kb wyizolowano przez elektroforezę na żelu agarozowym i oczyszczono jak to opisano w przykładzie 1 dział A. Trawienie restrykcyjne enzymami Mlul i PacI dało żądany fragment DNA. Po usunięciu enzymów restrykcyjnych DNA przechowywano w -20°C.
P r zyk ł a d 2
Konstruowanie plazmidów
Plazmid pACYC184 zastosowano jako plazmid podstawowy do konstruowania plazmidów, które użyto do wytwarzania zmodyfikowanych organizmów według wynalazku. Plazmid ten zmodyfikowano jak to opisano w DE 19539952 i zdeponowano jako plazmid pACYC184-LH w Deutsche Sammlung von Mikroorganizmen und Zellkulturen GmbH w Brunszwiku, pod numerem DSM 10172.
Figura 2 pokazuje mapę plazmidową i funkcjonalną plazmidu pACYC184-LH. Plazmid pACYC184-LH niesie polilinker. Ten polilinker posiada następujące miejsca cięcia restrykcyjnego:
Notl-NcoI-SacI-Nsil-MluI-PacI-NotI
Fragmenty DNA, które uzyskano w przykładzie 1 przy użyciu PCR i trawienia restrykcyjnego poddano ligacji z tym linkerem.
A. Konstruowanie plazmidów kontrolnych pACYC184/cysEIV i pACYC184/cysEX
Wytwarzanie pACYC184/cysEIV i pACYC184/cysEX opisano w DE 19539952, przykład 3 i podsumowano pokrótce poniżej:
Około 1 mg plazmidu pACYC184-LH (DSM 10172) trawiono enzymami restrykcyjnymi SacI i NsiI według zaleceń producenta (Boehringer Mannheim). Trawiony DNA oczyszczono przez elektroforezę na żelu agarozowym w celu usunięcia enzymów, jak to opisano uprzednio. Fragmenty DNA, które uzyskano w przykładzie 1 dział A, i które kodowały odpowiednie allele cysE, zmieszano w ilościach równomolowych z plazmidem pACYC184-LH trawionym SacI i NsiI; do tej mieszaniny dodano 1 ml ligazy DNA T4 i 2 ml 10-krotnego buforu ligazy (Boehringer Mannheim), po czym dopełniono do 20 ml sterylną, bidestylowaną wodą. Mieszaninę inkubowano w 4°C przez noc i zastosowano do transformowania E. coli W3110 (ATCC 27325). Metodę transformacji opisaną niżej zastosowano we wszystkich transformacjach opisanych w przykładach.
E. coli W3110 transformowano przy użyciu elektroporacji. W tym celu, 500 ml pożywki LB (10 g tryptonu, 5 g ekstraktu drożdżowego i 5 g NaCl) w 1-litrowej butelce Erlenmeyera zaszczepiono 1% (obj.) takiej samej całonocnej hodowli. Po inkubacji na wytrząsarce poziomej w 37°C do gęstości optycznej 0,5-0,6 OD przy 600 nm, komórki zebrano przez odwirowanie do sterylnego pojemnika w 4°C. Wszystkie kolejne etapy przeprowadzono na lodzie, zachowując warunki sterylności. Osad komórek płukano dwukrotnie w 500 ml lodowatej, bidestylowanej, sterylnej wody, i zawieszono na koniec w 30 ml 10% (obj./obj.) sterylnej gliceryny. Po dalszym odwirowaniu, pobrano osad komórek w 500 m l 10% gliceryny i przechowywano w -80°C w porcjach po 200 m l. W celu transformacji, komórki rozmrożono na lodzie, po czym dodano do nich około 10-100 ng DNA i wprowadzano mieszaninę do sterylnej kuwety do elektroporacji (BioRad). Kuwetę umieszczano w urządzeniu Gene Pulser (BioRad) i przeprowadzano elektroporację przy napięciu 2500 wolt, oporności równoległej 200 Ohm i pojemności 25 mF. Komórki zawieszono w 1ml pożywki SOC (pepton kazeinowy, 20 g/l, ekstrakt drożdżowy 5,0 g/l, NaCl 0,58 g/l, KCl 0,19 g/l, MgCl2 2,03 g/l, MgSO4 2,46 g/l, glukoza 3,6 g/l, pH = 7,0) i wytrząsano w37°C przez godzinę. Następnie, komórki rozcieńczano odpowiednio i wysiewano na płytki z agarem LB (10 g/l tryptonu, 5 g/l ekstraktu drożdżowego, 5 g/l NaCl, 15 g/l agaru, pH = 7,2), po czym płytki inkubowano w 37°C przez noc dopóki nie stały się widoczne poszczególne kolonie.
PL 195 784 B1
Żądane transformanty identyfikowano analizą restrykcyjną po wyizolowaniu plazmidu przy użyciu zestawu QIAprep Spin Plazmid (Quiagen GmbH, Max Volmerstrasse 4, D-40724 Hilden). Zastosowano je w przykładzie 3 jako kontrolę fermentacji.
Plazmidy pACYC184/cysEIV i pACYC184/cysEX przedstawiono na fig. 3.
B. Konstruowanie plazmidów pACYC184/cysEIV-mar i pACYC184/cysEX-mar
W każdym przypadku, 1 m g plazmidu pACYC184/cysEIV-mar i pACYC184/cysEX-mar, które skonstruowano w przykładzie 2 dział A, trawiono enzymami restrykcyjnymi MluI (Boehringer) i PacI (New England Biolabs) według zaleceń producenta. Po trawieniu restrykcyjnym, DNA izolowano przez elektroforezę na żelu agarozowym i oczyszczono jak to opisano w przykładzie 1 dział A. Około 20 ng wektorów pACYC184/cysEIV i pACYC184/cysEX trawionych MluI/PacI zmieszano z 200 ng fragmentu DNA wytworzonego w przykładzie 1 dział A, 1 ml ligazy DNA T4 i 2 ml 10-krotnego buforu ligazy (Boehringer Mannheim), po czym dopełniono do 20 ml sterylną, bidestylowaną wodą. Mieszaninę inkubowano w 4°C przez noc i zastosowano do transformowania E. coli W3110 (ATCC 27325). Po wyizolowaniu plazmidu przy użyciu zestawu QlAprep Spin Plazmid (Qiagen GmbH) i poddaniu analizie restrykcyjnej, wyizolowano żądane transformanty i zastosowano w fermentacji, jak to opisano w przykładzie 3. Figura 4 pokazuje mapy restrykcyjne i funkcjonalne plazmidów pACYC184/cysEIV-mar i pACYC184/cysEX-mar.
C. Konstruowanie plazmidów pACYC184/cysEIV-GAPDH i pACYC184/cysEX-GAPDH
Plazmidy pACYC184/cysEIV i pACYC184/cysEX, które skonstruowano w przykładzie 2 dział A, trawiono enzymami restrykcyjnymi Mlul (Boehringer) i PacI (New England Biolabs) według instrukcji producenta.
Po trawieniu plazmidów, oczyszczono je, zapoczątkowano dwie ligacje, jak to opisano w przykładzie 2 dział B, przy użyciu fragmentu DNA wytworzonego w przykładzie 1 dział D.
Po całonocnej inkubacji w 4°C, mieszaniny ligacyjne transformowano do E. coli W3110. Prawidłowe transformanty zidentyfikowano po izolacji plazmidowego DNA przez analizę z użyciem odpowiednich enzymów restrykcyjnych.
Plazmidy pACYC184/cysEIV-GAPDH i pACYC184/cysEX-GAPDH zastosowano jako materiały wyjściowe do konstruowania plazmidów pACYC184/cysEIV-GAPDH-ORF306 i pACYC184/cysEX-GAPDH-ORF306, jak to opisano w dziale D, poniżej.
D. Konstruowanie plazmidów pACYC184/cysEIV-GAPDH-ORF306 i pACYC184/cysEX-GAPDH-ORF306
Plazmidy wytworzone w dziale C trawiono Ndel (Boehringer Mannheim) i PacI (New England Biolabs) według instrukcji producenta. Po oczyszczeniu plazmidowego DNA, zapoczątkowano dwie ligacje z użyciem fragmentów DNA z przykładu 1 dział C, które kodowały ORF306 i które cięto Asnl-Pacl.
Po inkubacji w 4°C przez noc, mieszaniny DNA transformowano do E. coli W3110, zaś transformowane bakterie wysiewano na płytki LB. Po pojawieniu się pojedynczych kolonii, badano je na prawidłowość przez izolowanie ich plazmidów i poddanie ich analizie restrykcyjnej.
Na figurze 5 pokazano mapy restrykcyjne i funkcjonalne plazmidów pACYC184/cysEIV-GAPDH-ORF306 i pACYC184/cysEX-GAPDH-ORF306.
P r z y k ł a d 3
Porównanie wydajności uzyskanych konstruktów i znanych konstruktów
Wszystkie plazmidy, które porównywano w fermentacji, poddano fermentacji w E. coli W3110. Gwarantuje to, że wydajność zwiększa się w każdym z obserwowanych przypadków jedynie w wyniku zastosowanych nowych genów.
ml pożywki LB zawierającej 15 mg/l tetracykliny zaszczepiono odpowiednim konstruktem
E. coli w kolbie Erlenmeyera (100 ml). Po inkubacji przez 7 godzin w inkubatorze z wytrząsarką (150 obrotów na minutę, 30°C) odpowiednie wstępne hodowle przeniesiono do 100 ml pożywki SM1 (12 g/l K2HPO4, 3 g/l KH2PO4, 5 g/l (NH4)2SO4, 0,3 g/l MgSO4x7 H2O, 0,015 g/l CaCl2x2 H2O, 0,002 g/l FeSO4x7 H2O, 1 g/l cytrynianu trisodux2 H2O, 0,1 g/l NaCl, 1 ml/l roztworu metali śladowych zawierającego 0,15 g/l Na2MoO4x2 H2O, 2,5 g/l H3BO3, 0,7 g/l CoCl2x6 H2O, 0,25 g/lCuSO4x5 H2O, 1,6 g/l MnCl2x4 H2O, 0,3 g/l ZnSO4x7 H2O), którą uzupełniono 5 g/l glukozy, 5 mg/l witaminy B1 i 15 mg/l tetracykliny. Hodowle wytrząsano przy 150 obrotów na minutę w 30°C przez 17 godzin w kolbach Erlenmeyera (1 l). Po inkubacji, gęstość optyczna przy 600 nm (OD600) wynosiła od 3 do 5.
Fermentację przeprowadzono w fermentorze BIOSTAT M Braun-Melsungen. Zastosowano naczynie hodowlane o objętości całkowitej 2 litry. Pożywka fermentacyjna zawierała 15 g/l glukozy, 10 g/l tryptonu (Difco), 5 g/l ekstraktu drożdżowego (Difco), 5 g/l (NH4)2SO4, 1,5 g/l KH2PO4, 0,5 g/l NaCl, 0,3 g/l
PL 195 784 B1
MgSO4x7 H2O, 0,015 g/l CaCl2x2 H2O, 0,075 g/l FeSO4x7 H2O, 1 g/l cytrynianu trisodux2 H2O i 1ml roztworu pierwiastków śladowych (patrz wyżej), 0,005 g/ witaminy B1 i 15 mg/l tetracykliny. pH w fermentatorze ustalono początkowo na 7,0 przez pompowanie 25% roztworu NH4OH. Podczas fermentacji, pH utrzymywano na wartości 7,0 przy użyciu automatycznej korekcji 25% NH4OH. W celu zaszczepienia, 100 ml wstępnej hodowli wpompowano do fermentatora. Początkowa objętość wynosiła 1 l. Hodowle mieszano początkowo z 200 obrotów na minutę i gazowano 1,5 vvm sprężonego powietrza, które sterylizowano podczas filtracji. Wysycenie tlenem atmosferycznym w czasie fermentacji doprowadzono do 50%, co kontrolowano to automatycznie przez szybkość mieszania. Fermentację prowadzono w temperaturze 30°C. Po 2 godzinach fermentacji rozpoczęto podawanie 30% roztworu podstawowego tiosiarczanu sodux5 H2O z szybkością 3 ml na godzinę. Po osiągnięciu OD600 równej 10, rozpoczęto podawanie sterylnego 56% roztworu podstawowego glukozy z szybkością około 8-14 ml/godz. Zawartość glukozy oznaczano enzymatycznie stosując analizator YSI. Podczas fermentacji, stężenie glukozy doprowadzano automatycznie do między 10 i 20 g/l przez uzupełnianie jej w sposób ciągły. Całkowita zawartość cysteiny w pożywce badana była kolorymetrycznie według Gaitonde M.K. (1967), Biochem. J., 104, 627-633, w bezkomórkowym supernatancie próbki. W tym kontekście należy zauważyć, że cysteina pozostała w roztworze podczas fermentacji była obecna w większości jako pochodna tiazolidynowa, ale nie była rejestrowana przez test. Jeżeli keton albo aldehyd (w tym przypadku pirogronian) nie jest dostępny w odpowiednich ilościach do przekształcania cysteiny, która jest przekształcana do pochodnej tiazolidynowej, tworzy się wolna L-cysteina, która jest również rejestrowana w teście. Gdy tworzy się wolna L-cysteina, ulega on powolnemu utlenianiu do L-cystyny podczas fermentacji przez wprowadzany tlen atmosferyczny. Cystyna jest tylko słabo rozpuszczalna w ośrodku wodnym w pH 7,0 i wytrąca się jako biały osad. Gdy wytworzy się nierozpuszczalny osad cystyny, jest on rozpuszczany w półstężonym HCl po oddzieleniu supernatantu z usuniętej próbki i po odwirowaniu ponownie oznaczany w wyżej wymienionym teście w warunkach redukujących uzyskanych przy użyciu ditiotreitolu (DTT).
W tych warunkach, wydajności przedstawione w tabelach 1 i 2, osiągnięto po okresie fermentacji równym, odpowiednio, 24 i 48 godzin. Tabele te dostarczają oczywistych dowodów, że geny modyfikujące mikroorganizmy zgodnie z wynalazkiem, tj. locus mar E. coli i, w szczególności, segment kodujący ORF306, znacznie zwiększają wydajność cysteiny i/lub pochodnej tiazolidynowej (cysteina całkowita). Tworzenie osadu cystyny odnotowano osobno w tabelach.
Tabela 1
Wydajność cysteiny całkowitej przy użyciu allelu cysEIV
Wydajność cysteiny całkowitej (g/l) przy użyciu następujących konstruktów plazmidowych
czas fermentacji pACYC184/ cysEIV pACYC184/ cysEIV-mar pACYC184/ cysEIY-GAPDH-ORF306
24 godziny 1 3,8 3,8
48 godzin 1,6 5 3,2+6,3*
* Ilość cystyny, w gramach na litr, obecnej jako osad
Ta be la 2
Wydajność cysteiny całkowitej przy użyciu allelu cysEX
Wydajność cysteiny całkowitej (g/l) przy użyciu następujących konstruktów plazmidowych
czas fermentacji pACYC184/ cysEX pACYC184/ cysEX-mar pACYC184/ cysEX-GAPDH-ORF306
24 godziny 4,9 5,9 12,8
48 godzin 6,8 11,4 7,2+12, 0*
* Ilość cystyny, w gramach na litr, obecnej jako osad Przykład 4
Wykazanie tworzenia kwasu 2-metylotiazolidyno-2,4-dikarboksylowego
PL 195 784 B1
Konstrukt E. coli W3110 x pACYC184/cysEX-GAPDH-ORF306 poddano fermentacji, jak to opisano w przykładzie 3, w celu wykazania, że w trakcie fermentacji według przykładu 3 jako główny produkt tworzy się kwas 2-metylotiazolidyno-2,4-dikarboksylowy.
Po 24 godzinach, supernatant fermentacyjny oddzielono od komórek przez odwirowanie. W pomiarze cysteiny opisanym powyżej uzyskano wartość 12,8 g dla cysteiny całkowitej w supernatancie. Następnie, do supernatantu dodano MgSO4 w stężeniu końcowym 0,3 M. Po całonocnej inkubacji w 4°C z ciągłym mieszaniem supernatantu wytworzył się biały precypitat. Precypitat ten był słabo rozpuszczalną solą magnezową kwasu 2-metylotiazolidyno-2,4-dikarboksylowego.
Po oddzieleniu precypitatu przez odwirowanie, resztkową ilość cysteiny w supernatancie określono na tylko 2,5 g/l.
Precypitat rozpuszczono w półstężonym HCl i poddano testowi na cysteinę. W tym przypadku stwierdzono, że stężenie cysteiny wynosi 9,5 g/l. Po rozpuszczeniu precypitatu w D2O+HCl badano go przez 1H NMR i 13C NMR, i zidentyfikowano przez porównanie z substancją referencyjną (MP Schubert, J. Biol. Chem., 121, 539-548 (1937)), jako kwas 2-metylotiazolidyno-2,4-dikarboksylowy.
P r zyk ł a d 5
Różna toksyczność L-cysteiny i kwasu 2-metylotiazolidyno-2,4(R)-dikarboksylowego
Do tego doświadczenia kwas 2-metylotiazolidyno-2,4(R)-dikarboksylowy wytworzono z L-cysteiny i pirogronianu, stosując metodę Schuberta (M.P. Schubert, J. Biol. Chem., 121, 539-548 (1937)). Całonocną hodowlą E. coli W3110 w pożywce LB zaszczepiono 20 ml pożywki SM1 (patrz, przykład 3), do której dodano 10 g/l glukozy, 10% pożywki LB, 5 mg/l witaminy B1, 15 mg/l tetracykliny i w każdym przypadku odpowiednią ilość L-cysteiny albo kwasu 2-metylotiazolidyno-2,4(R)-dikarboksylowego. Po 7 godzinach inkubacji w 37°C, nie obserwowano dalszego wzrostu w pożywce zawierającej L-cysteinę, w stężeniu 1 mM i wyżej, podczas gdy obserwowano wzrost w pożywce zawierającej kwas 2-metylotiazolidyno-2,4(R)-dikarboksylowy w stężeniach do 50 mM. Nie była możliwa dalsza inkubacja, z powodu łatwego utleniania cysteiny. Wynika z tego, że L-cysteina jest znacznie bardziej toksyczna dla E. coli, niż kwas 2-metylotiazolidyno-2,4(R)-dikarboksylowy. Stąd, kwas 2-metylotiazolidyno-2,4(R)-dikarboksylowy jest bardziej przydatny do uzyskiwania L-cysteiny metodą fermentacyjną, nawet gdy, jak w tym przypadku, konieczny jest etap chemiczny w celu uwolnienia L-cysteiny.
P r zyk ł a d 6
Zwiększone wytwarzanie N-acetylo-L-seryny
N-acetylo-L-seryna jest wytwarzana z O-acetylo-L-seryny przez spontaniczną rearanżację. Ta O-acetylo-L-seryna jest bezpośrednim prekursorem L-cysteiny w bakteryjnym szlaku biosyntezy. W następstwie, produktem końcowym takiej fermentacji jest N-acetylo-L-seryna, gdy włączanie siarki do O-acetylo-L-seryny jest niewystarczające albo go brak. Gdy nie jest dostarczana siarka, geny modyfikujące mikroorganizmy według wynalazku zwiększają również wydajność produktu fermentacji.
Fermentację opisaną w przykładzie 3 przeprowadzono bez dostarczania tiosiarczanu. Zastosowanymi konstruktami, które były przeznaczone do wykazania skuteczności zawartych genów, w szczególności ORF306, były pACYC184/cysEX i pACYC184/cysEX-GAPDH-ORF306.
Jak pokazują wyniki w tabeli 3, geny modyfikujące mikroorganizmy według wynalazku, w szczególności ORF306, znacznie zwiększają wydajność N-acetylo-L-seryny w fermentacji.
Tabe l a 3
Wydajność N-acetylo-L-seryny po 24 godzinach fermentacji
Konstrukt N-acetylo-L-seryna (g/l)
pACYC184/cysEX 7,6
pACYC184/cysEX-GAPDH-ORF306 15,9
Wydajność N-acetylo-L-seryny ponad 30 g/l można uzyskać stosując allele cysE silniej odporne na sprzężenie zwrotne (przykładowo, cysEXIV, cysEXI i cysEXXII z DE 19539952) w kombinacji z genami modyfikującymi organizmy według wynalazku.
PL 195 784 B1
LISTA SEKWENCJI (1) INFORMACJE OGÓLNE
(i)ZGŁASZAJĄCY:
(A) NAZWA: Consortium fur elektrochemische Industrie GmbH
(B) ULICA: Zielstattstrasse 20
(C) MIASTO: Monachium
(D) KRAJ FEDERALNY: Bawaria
(E) KRAJ: Niemcy
(F) KOD: 81379
(G) TELEFON: 089-74844-0
(H) TELEFAX: 089-74844-350
(ii) TYTUŁ WYNALAZKU: Mikroorganizmy i sposoby fermentacyjnego wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N acetyloseryny lub pochodnych tiazolidynowych (iii) LICZBA SEKWENCJI: 12 (iv) POSTAĆ MOŻLIWA DO ODCZYTANIA PRZEZ KOMPUTER:
(A) TYP NOŚNIKA: dyskietka (B) KOMPUTER: IBM PC (C) SYSTEM OPERACYJNY:: PC-DOS/MS-DOS (D) OPROGRAMOWANIE: Patentln Release #1.0, Version #1.30 (EPO) (2) INFORMACJA DLA IDENTYFIKATORA SEKWENCJI NR:1:
(i) CHARAKTERYSTYKA SEKWENCJI :
(A) DŁUGOŚĆ: 43 aminokwasy (B) TYP: aminokwas (C) NICIOWOŚĆ:
(D) TOPOLOGIA: liniowa (ii) RODZAJ CZĄSTECZKI: białko
PL 195 784 B1 (iii) HIPOTETYCZNA: nie (iv) ANTYSENSOWNA: nie (v) RODZAJ FRAGMENTU: fragment wewnętrzny (Vi) ŹRÓDŁO ORYGINALNE:
(A) ORGANIZM: Escherichia Coli (B) SZCZEP: K12 (xi) OPIS SEKWENCJI: IDENTYFIKATOR SEKW. NR: 1:
Met Ser Arg Lys Asp Gly Val Leu Ala Leu Leu Val Val Val Val Trp
1 5 10 15
Gly Leu Asn Phe Val Val Ile Lys Val Gly Leu His Aan Met Pro Arg
20 25 30
Leu Met Leu Ala Gly Leu Arg Phe Met Leu Val
40 (2) INFORMACJA DLA IDENTYFIKATORA SEKWENCJI NR:2 (i) CHARAKTERYSTYKA SEKWENCJI :
(A) DŁUGOŚĆ: 306 aminokwasów (B) TYP: aminokwas (C) NICIOWOŚĆ:
(D) TOPOLOGIA: liniowa (ii) RODZAJ CZĄSTECZKI: białko (iii) HIPOTETYCZNA: nie (iv) ANTYSENSOWNA: nie (vi) ŹRÓDŁO ORYGINALNE:
(A) ORGANIZM: Escherichia Coli (B) SZCZEP: K12
PL 195 784 B1 (XX) OPIS SEKWENCJI: IDENTYFIKATOR SEKW. NR: 2:
Mec Lya Phe Arg Gly Gly Arg Mec Ser Arg Lya Asp Gly Val Leu Ala
X 5 10 15
Leu Leu Val Val Val Val Trp Gly Leu Aan Phe Val Val Ile Lya Val
20 25 30
Gly Leu Kia Asa Mec Pro Arg Leu Mec Leu Ala Gly Leu Arg Phe Mec
35 40 45
Leu Val Ala Phe Pro Ala Ile Phe Phe Val Ala Arg Pro Lya Val Pro
50 .. . 55 60
Leu Aan Leu Leu Leu Gly Tyr Gly Leu Thr Ile Ser Phe Ala Gin Phe
€5 70 75 80
Ala Phe Leu Phe Cys Ala Ile Aan Phe Gly Mec Pro Ala Gly Leu Ala
85 90 95
Ser Leu Val Leu Gin Ala Gin Ala Phe Phe Thr Ile Mec Leu Gly Ala
Χ00 105 110
Phe Thr Phe Gly Glu Arg Leu His Gly Lya Gin Leu Ala Gly Ile Ala
115 120 125
Leu Ala He Phe Gly Val Leu Val Leu Ile Glu Asp Ser Leu Aan Gly
Χ30 135 140
Gin His Val Ala Mec Leu Gly Phe Mec Leu Thr Leu Ala Ala Ala Phe
145 150 155 160
Ser Trp Ala Cya Gly Aan Ile Phe Aan Lya Lya Ile Mec ser His Ser
165 170 175
Thr Arg Pro Ala Val Mec Ser Leu Val Ile Trp Ser Ala Leu Ile Pro
180 IBS 190
Ile Ile Pro Phe Phe Val Ala Ser Leu Ile Leu Aap Gly Ser Ala Thr
PL 195 784 B1 195 200 205 Mec *1· Seru Va-1 Thr Ile Asp Met Thr Thr Ile Leu ser Leu 210 215 220
Met Tyr Leu Al* Phe V*1 Ala Thr Ile V*1 Gly Tyr Gly ile Trp Gly 225 230 235 240
Thr Leu Leu Gly Arg Tyr Glu Thr Trp Arg V*1 Al* Pro Leu Ser Leu
2<S 250 255
Leu V*1 Pro V*l. Val Gly Leu Al* Ser Al* Al* Leu Leu Leu Asp Glu 260 265 270
Arg Leu Thr Gly Leu Gin Phe Leu Gly Al* Val Leu Ile Met Thr- Gly 275 280 285
Leu Tyr Ile Asn V*1 Phe Gly Leu Arg Trp Arg Lys Ala Val Lys V*1 290 295 300
Gly Ser
305 (2) INFORMACJA DLA IDENTYFIKATORA SEKWENCJI NR:3:
(i) CHARAKTERYSTYKA SEKWENCJI :
(A) DŁUGOŚĆ: 299 aminokwasów (B) TYP: aminokwas (C) NICIOWOŚĆ:
(D) TOPOLOGIA: liniowa (ii) RODZAJ CZĄSTECZKI: białko (iii) HIPOTETYCZNA: nie (iv) ANTYSENSOWNA: nie (vi) ŹRÓDŁO ORYGINALNE:
(A) ORGANIZM: Escherichia Coli (B) SZCZEP: K12
PL 195 784 B1
(xi) OPIS SEKWENCJI: IDENTYFIKATOR SEKW. NR: 3:
Het Ser Arg Lye Aap 1 5 Gly V*1 Leu Ala Leu Leu Val Val Val Val Trp 10 15
Gly Leu Aan Phe Val 20 Val Ile Lye Val Gly Leu His Asn Met Pro Arg 25 30
Leu Met Leu Ala Gly 35 Leu Arg Phe Met Leu Val Ala Phe Pro Ala Ile 40 45
Phe Phe Val Ala Arg 50 Pro Lye Val Pro Leu Asn Leu Leu Leu Gly Tyr 55 €0
Gly Leu Thr Ile Ser €5 Phe Ala Gin Phe Ala Phe Leu Phe Cya Ala Ile 70 75 Θ0
Aan Phe Gly Met Pro 85 Ala Gly Leu Ala Ser Leu Val Leu Gin Ala Gin 90 95
Ala Phe Phe Thr Ile 100 Met Leu Gly Ala Phe Thr Phe Gly Glu Arg Leu 105 110
Hia Gly Lye Gin Leu 115 Ala Gly Ile Ala Leu Ala Ile Phe Gly Val Leu 120 125
Val Leu Ile Glu Aap 130 Ser Leu Aan Gly Gin Hia Val Ala Met Leu Gly 135 140
Phe Met Leu Thr Leu 145 Ala Ala Ala Phe Ser Trp Ala Cya Gly Aan Ile 150 155 160
Phe Aan Lye Lye Ile 165 Met Ser Hia Ser Thr Arg Pro Ala Val Met Ser 170 175
Leu Val Ile Trp Ser 180 Ala Leu Ile Pro Ile Ile Pro Phe Phe Val Ala 185 ISO
PL 195 784 B1
Ser Leu Ile 195 Leu Asp Gly Ser Ala 200 Thr Mec Ile His Ser 205 Leu Val Thr
Ile Asp 210 Mec Thr Thr Ile Leu 215 Ser Leu Mec Tyr Leu 220 Ala Phe Val Ala
Thr 225 Ile Val Gly Tyr Gly 230 Ile Trp Gly Thr Leu 235 Leu Gly Arg Tyr Glu 240
Thr Trp Arg Val Ala 245 Pro Leu Ser Leu Leu 250 Val Pro Val Val Gly 255 Leu
Ala Ser Ala Ala 260 Leu Leu Leu Asp Glu 265 Arg Leu Thr Gly Leu 270 Gin Phe
Leu Gly Ala Val Leu Ile Mec Thr Gly Leu Tyr Ile Asn Val Phe Gly
275 280 285
Leu Arg Trp Arg Lya Ala Val Lye Val Gly Ser 290 295 (2) INFORMACJA DLA IDENTYFIKATORA SEKWENCJI NR:4 (i) CHARAKTERYSTYKA SEKWENCJI :
(A) DŁUGOŚĆ: 266 aminokwasów (B) TYP: aminokwas (C) NICIOWOŚĆ:
(D) TOPOLOGIA: liniowa (ii) RODZAJ CZĄSTECZKI: białko (iii) HIPOTETYCZNA: nie (iv) ANTYSENSOWNA: nie (v) RODZAJ FRAGMENTU: fragment wewnętrzny (vi) ŹRÓDŁO ORYGINALNE:
(A) ORGANIZM: Escherichia Coli (B) SZCZEP: K12
PL 195 784 B1 (Xi) OPIS SEKWENCJI: IDENTYFIKATOR SEKW. NR: 4
Met 1 Leu Ala Gly Leu 5 Arg Phe Met Leu Val 10 Ala Phe Pro Ala Ile 15 Phe
Phe Val Ala Arg 20 Pro Lys Val Pro Leu 25 Asn Leu Leu Leu Gly 30 Tyr Gly
Leu Thr Ile 35 Ser Phe Ala Gin Phe 40 Ala Phe Leu Phe Cys 45 Ala Ile Asn
Phe Gly 50 Met Pro Ala Gly Leu 55 Ala Ser Leu Val Leu 60 Gin Ala Gin Ala
Phe 65 Phe Thr Ile Met Leu 70 Gly Ala Phe Thr Phe 75 Gly Glu Arg Leu His 80
Gly Lys Gin Leu Ala 85 Gly Ile Ala Leu Ala 90 Ile Phe Gly Val Leu 95 Val
Leu Ile Glu Asp 100 Ser Leu Asn Gly Gin 105 His Val Ala Met Leu 110 Gly Phe
Met Leu Thr 115 Leu Ala Ala Ala Phe 120 Ser Trp Ala Cys Gly 125 Asn Ile Phe
Asn Lys 130 Lys Ile Met Ser His 135 Ser Thr Arg Pro Ala 140 Val Met Ser Leu
Val 145 Ile Trp Ser Ala Leu 150 Ile Pro Ile Ile Pro 155 Phe Phe Val Ala Ser 160
Leu Ile Leu Asp Gly 165 Ser Ala Thr Met Ile 170 His Ser Leu Val Thr 175 Ile
Asp Met Thr Thr Ile Leu Ser Leu Met Tyr Leu Ala Phe Val Ala Thr
180 185 190
PL 195 784 B1
Ile Val Gly 1S5 Tyr Gly Ile Trp Gly Thr 200 Leu Leu Gly Arg Tyr Glu Thr 205
Trp Arg Val Ala Pro Leu Ser Leu Leu Val Pro Vał Val Gly Leu Ala
210 215 220
Ser Ala Ala Leu Leu Leu Aap Glu Arg Leu Thr Gly Leu Gin Phe Leu
225 230 235 240
Gly Ala Val Leu Ile Met Thr Gly Leu Tyr Ile Asn Val Phe Gly Leu
245 250 255
Arg Trp Arg Lya Ala Val Lys Val Gly Ser
260 265 ¢2) INFORMACJA DLA IDENTYFIKATORA SEKWENCJI NR:5:
(i) CHARAKTERYSTYKA SEKWENCJI :
(A) DŁUGOŚĆ: 38 par zasad (B) TYP: nukleotyd (C) NICIOWOŚĆ: pojedyncza (D) TOPOLOGIA: liniowa (ii) RODZAJ CZĄSTECZKI: różny kwas nukleinowy (A) OPIS; /desc = „syntetyczny (iii) HIPOTETYCZNA: nie (iv) ANTYSENSOWNA: nie (xi) OPIS SEKWENCJI: IDENTYFIKATOR SEKW. NR: 5
TGGACCJUJAG CTCTCOCTGG CGCATCGCTT CGGCGTPG
PL 195 784 B1 (2) INFORMACJA DLA IDENTYFIKATORA SEKWENCJI NR:6:
{i) CHARAKTERYSTYKA SEKWENCJI :
(A) DŁUGOŚĆ: 38 par zasad (B) TYP: nukleotyd (C) NICIOWOŚĆ: pojedyncza (D) TOPOLOGIA: liniowa (ii) RODZAJ CZĄSTECZKI: różny kwas nukleinowy (A) OPIS: /desc = „syntetyczny (iii) HIPOTETYCZNA: nie (iv) ANTYSENSOWNA: nie (xi) OPIS SEKWENCJI: IDENTYFIKATOR SEKW. NR: 6
CTCGA.TGCAT TACGTAGGGG TATCCOOOAO CGGTATTG (2) INFORMACJA DLA IDENTYFIKATORA SEKWENCJI NR:7:
(i) CHARAKTERYSTYKA SEKWENCJI :
(A) DŁUGOŚĆ: 35 par zasad (B) TYP: nukleotyd (C) NICIOWOŚĆ: pojedyncza (D) TOPOLOGIA: liniowa (ii) RODZAJ CZĄSTECZKI: różny kwas nukleinowy (A) OPIS: /desc = „syntetyczny (iii) HIPOTETYCZNA: nie (iv) ANTYSENSOWNA: nie (xi) OPIS SEKWENCJI: IDENTYFIKATOR SEKW. NR: 7:
TTTOOCOCOC COATCAOCOG CGOCOCAACC ATCAG
PL 195 784 B1 (2) INFORMACJA DLA IDENTYFIKATORA SEKWENCJI NR:8:
(i) CHARAKTERYSTYKA SEKWENCJI :
(A) DŁUGOŚĆ: 38 par zasad (B) TYP: nukleotyd (C) NICIOWOŚĆ: pojedyncza (D) TOPOLOGIA: liniowa (ii) RODZAJ CZĄSTECZKI: różny kwas nukleinowy (A) OPIS: /desc = „syntetyczny (iii) HIPOTETYCZNA: nie (iv) ANTYSENSOWNA: nie (xi) OPIS SEKWENCJI: IDENTYFIKATOR SEKW. NR: 8:
GCCTTAATTA AfiATCSACAC TCAGOCTCTA CTGOCBAC (2) INFORMACJA DLA IDENTYFIKATORA SEKWENCJI NR:9:
(i) CHARAKTERYSTYKA SEKWENCJI :
(A) DŁUGOŚĆ: 35 par zasad (B) TYP: nukleotyd (C) NICIOWOŚĆ: pojedyncza (D) TOPOLOGIA: liniowa (ii) RODZAJ CZĄSTECZKI: różny kwas nukleinowy (A) OPIS: /desc = „syntetyczny (iii) HIPOTETYCZNA: nie (IV) ANTYSENSOWNA: nie (xi) OPIS SEKWENCJI: IDENTYFIKATOR SEKW. NR: 9:
«AATOATT AATCCOOCSA CTJUkCawuc AACTC
PL 195 784 B1 (2} INFORMACJA DLA IDENTYFIKATORA SEKWENCJI NR:10:
(i) CHARAKTERYSTYKA SEKWENCJI :
(A) DŁUGOŚĆ: 36 par zasad (B) TYP: nukleotyd (C) NICIOWOŚĆ: pojedyncza (D) TOPOLOGIA: liniowa (ii} RODZAJ CZĄSTECZKI: różny kwas nukleinowy (A) OPIS: /desc = „syntetyczny (iii} HIPOTETYCZNA: nie (iv) ANTYSENSOWNA: nie (xi) OPIS SEKWENCJI: IDENTYFIKATOR SEKW. NR: 10:
GCCTTAATEK ACGCTATGTA GITTOTTCTO GCCCCG (2) INFORMACJA DLA IDENTYFIKATORA SEKWENCJI NR:II:
(i) CHARAKTERYSTYKA SEKWENCJI :
(A) DŁUGOŚĆ: 33 pary zasad (B) TYP: nukleotyd (C) NICIOWOŚĆ: pojedyncza (D) TOPOLOGIA: liniowa (ii) RODZAJ CZĄSTECZKI: różny kwas nukleinowy (A) OPIS: /desc = „syntetyczny (iii) HIPOTETYCZNA: nie (iv) ANTYSENSOWNA: nie (xi) OPIS SEKWENCJI: IDENTYFIKATOR SEKW. NR: 11:
GTCGACOCOT OAGOCGAGTC AGTCGCGTAA TOC
PL 195 784 B1 (2) INFORMACJA DLA IDENTYFIKATORA SEKWENCJI NR:12:
(i) CHARAKTERYSTYKA SEKWENCJI :
(A) DŁUGOŚĆ: 43 pary zasad (B) TYP: nukleotyd (C) NICIOWOŚĆ: pojedyncza (D) TOPOLOGIA: liniowa (ii) RODZAJ CZĄSTECZKI: różny kwas nukleinowy (A) OPIS: /desc = „syntetyczny (iii) HIPOTETYCZNA: nie (iv) ANTYSENSOWNA: nie (xi) OPIS SEKWENCJI: IDENTYFIKATOR SEKW. NR: 12:
OACCTTAATT AAGATCTCAT ATGTTCCACC AGCTATTTGT TAG 43

Claims (5)

1. Szczep mikroorganizmu, który jest zdolny do fermentacyjnego wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych, znamienny tym, że ma rozregulowany metabolizm cysteiny tak, że tworzy zwiększoną ilość L-cysteiny i nadwyraża co najmniej jeden gen kodujący białko o sekwencji Id. Sekw. Nr 2 lub jego wariant, który przyczynia się do wytwarzania L-cysteiny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych.
2. Szczep mikroorganizmu według zastrz. 1, znamienny tym, że metabolizm cysteiny uległ rozregulowaniu przez allel Cys-E odporny na sprzężenie zwrotne.
3. Białko, znamienne tym, że obejmuje sekwencję:
1 MKFRGGRMSR KDGYLALLW WWGLNFWI KVGLHNMPRL MLAGLRFMJL.v
51 AFPAIFF7AR PKVPLNLLLG YGLTISFAQF AFLFCAINFG MPAGLASLYL
101 QAQAPFTIML GAFTFGERLH GKQ LAG LALA IFGVLVLII5D SLNGQKVAML .
151 GFMLTLAAAF SWACGNIFNK KIMSHSTRPA VMSLVIWSAL IPIIPFFVAS
201 LILDGSATMI HSLVTIDMTT ILSLMY1AF7 ATTUGYGIWG TLLGRYETWR
251 VAPLSLLVPV VGLASAALLL DERLTGLQFL GAVLIMTGLY INVFGLRWRK
301 AVKVGS* ^Id. Sekw. Nr 2 \
PL 195 784 B1 lub wariant sekwencji, który przyczynia się do wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych.
4. Sposób wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych w znanym jako taki procesie fermentacji, znamienny tym, że stosuje się szczep mikroorganizmu określony w zastrz. 1 lub2.
5. Zastosowanie białka określonego w zastrz. 3 do powiększenia ekspresji L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych w fermentacji.
PL326915A 1997-06-19 1998-06-19 Szczep mikroorganizmu, białko, sposób wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych oraz zastosowanie białka PL195784B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19726083A DE19726083A1 (de) 1997-06-19 1997-06-19 Mikroorganismen und Verfahren zur fermentativen Herstellung von L-Cystein, L-Cystin, N-Acetyl-Serin oder Thiazolidinderivaten

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL326915A1 PL326915A1 (en) 1998-12-21
PL195784B1 true PL195784B1 (pl) 2007-10-31

Family

ID=7833043

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL326915A PL195784B1 (pl) 1997-06-19 1998-06-19 Szczep mikroorganizmu, białko, sposób wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych oraz zastosowanie białka

Country Status (14)

Country Link
US (1) US5972663A (pl)
EP (1) EP0885962B1 (pl)
JP (1) JP2992010B2 (pl)
KR (1) KR19990007062A (pl)
CN (1) CN100347291C (pl)
AT (1) ATE293165T1 (pl)
BR (1) BR9803346B1 (pl)
CA (1) CA2235419C (pl)
DE (2) DE19726083A1 (pl)
DK (1) DK0885962T3 (pl)
ES (1) ES2236845T3 (pl)
HU (1) HU224343B1 (pl)
ID (1) ID20467A (pl)
PL (1) PL195784B1 (pl)

Families Citing this family (107)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE19857690A1 (de) * 1998-12-14 2000-06-15 Consortium Elektrochem Ind Verfahren zur Isolierung oder Reinigung von 2-Methyl-thiazolidin-2,4-dicarbonsäure
DE19949579C1 (de) * 1999-10-14 2000-11-16 Consortium Elektrochem Ind Verfahren zur fermentativen Herstellung von L-Cystein oder L-Cystein-Derivaten
DE10046934A1 (de) * 2000-09-21 2002-04-18 Consortium Elektrochem Ind Verfahren zur fermentativen Herstellung von nicht-proteinogenen L-Aminosäuren
DE60219969T2 (de) * 2001-02-13 2008-01-17 Ajinomoto Co., Inc. Methode zur Production von L-Aminosäuren mittels Bakterien der Gattung Escherichia
DE10107002A1 (de) * 2001-02-15 2002-08-29 Consortium Elektrochem Ind Verfahren zur fermentativen Herstellung von O-Acetyl-L-Serin
EP1266966B1 (en) * 2001-06-12 2009-04-29 Ajinomoto Co., Inc. Method for producing L-lysine or L-arginine by using methanol assimilating bacterium
US7252978B2 (en) 2001-07-25 2007-08-07 Ajinomoto Co., Inc. Method for producing L-arginine
DE60230823D1 (de) * 2001-09-28 2009-02-26 Ajinomoto Kk L-cystein herstellendes Bakterium und Verfahren zur Herstellung von L-cystein
MXPA04004874A (es) 2001-11-23 2004-09-03 Ajinomoto Kk Procedimiento para producir l-aminoacido utilizando escherichia.
RU2229513C2 (ru) * 2001-11-23 2004-05-27 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт Аджиномото-Генетика" Способ получения l-аминокислот, штамм escherichia coli - продуцент l-аминокислоты (варианты)
DE10219851B4 (de) * 2002-05-03 2004-06-24 Consortium für elektrochemische Industrie GmbH Verfahren zur Herstellung von L-Serin
DE10232930A1 (de) * 2002-07-19 2004-02-05 Consortium für elektrochemische Industrie GmbH Verfahren zur fermentativen Herstellung von Aminosäuren und Aminosäure-Derivaten der Phosphoglycerat-Familie
DE10237479A1 (de) * 2002-08-16 2004-02-26 Degussa Ag Schwefel-haltiges Tierfuttermitteladditiv
US7348037B2 (en) * 2002-08-16 2008-03-25 Evonik Degussa Gmbh Sulfur-containing animal-feed additives
JP2004166592A (ja) * 2002-11-20 2004-06-17 Ajinomoto Co Inc メチロトローフを用いたl−アミノ酸の製造法
JP4120364B2 (ja) * 2002-11-20 2008-07-16 味の素株式会社 メタノール資化性菌を用いたl−リジンまたはl−アルギニンの製造法
DE10305774A1 (de) * 2003-02-06 2004-08-26 Consortium für elektrochemische Industrie GmbH Verfahren zur fermentativen Herstellung von L-Methionin
EP1597364B1 (fr) 2003-02-18 2013-07-24 Metabolic Explorer Procede de preparation de microorganismes evolues permettant la creation ou la modification de voies metaboliques
DE10331291A1 (de) 2003-07-10 2005-02-17 Consortium für elektrochemische Industrie GmbH Varianten der 3-Phosphoglyceratdehydrogenase mit reduzierter Hemmung durch L-Serin und dafür codierende Gene
RU2275425C2 (ru) * 2003-11-03 2006-04-27 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт Аджиномото-Генетика" (ЗАО АГРИ) Бактерия, принадлежащая к роду escherichia, - продуцент l-цистеина и способ получения l-цистеина
ATE443757T1 (de) * 2004-01-30 2009-10-15 Ajinomoto Kk L-aminosäure produzierender mikroorganismus und verfahren zur l-aminosäureproduktion
US20050191684A1 (en) * 2004-02-25 2005-09-01 Zimenkov Danila V. Method for producing L-amino acids
JP4479283B2 (ja) 2004-03-04 2010-06-09 味の素株式会社 L−システイン生産菌及びl−システインの製造法
JP4604537B2 (ja) * 2004-03-31 2011-01-05 味の素株式会社 L−システイン生産菌及びl−システインの製造法
JP2007185184A (ja) * 2005-12-16 2007-07-26 Ajinomoto Co Inc L−アミノ酸生産菌及びl−アミノ酸の製造法
JP2009089603A (ja) 2006-02-02 2009-04-30 Ajinomoto Co Inc メタノール資化性細菌を用いたl−リジンの製造法
JP2009118740A (ja) 2006-03-03 2009-06-04 Ajinomoto Co Inc L−アミノ酸の製造法
EP2351830B1 (en) 2006-03-23 2014-04-23 Ajinomoto Co., Inc. A method for producing an L-amino acid using bacterium of the Enterobacteriaceae family with attenuated expression of a gene coding for small RNA
JP2009165355A (ja) 2006-04-28 2009-07-30 Ajinomoto Co Inc L−アミノ酸を生産する微生物及びl−アミノ酸の製造法
RU2006143864A (ru) 2006-12-12 2008-06-20 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт Аджиномото-Генетика" (ЗАО АГРИ) (RU) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-АМИНОКИСЛОТ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ БАКТЕРИИ СЕМЕЙСТВА ENTEROBACTERIACEAE, В КОТОРОЙ ОСЛАБЛЕНА ЭКСПРЕССИЯ ГЕНОВ cynT, cynS, cynX, ИЛИ cynR, ИЛИ ИХ КОМБИНАЦИИ
JP2010041920A (ja) 2006-12-19 2010-02-25 Ajinomoto Co Inc L−アミノ酸の製造法
BRPI0806790B1 (pt) 2007-01-22 2017-02-14 Ajinomoto Kk microorganismo, e, método para produzir um l-aminoácido
DE102007007333A1 (de) 2007-02-14 2008-08-21 Wacker Chemie Ag Verfahren zur Reinigung von L-Cystein
JP2010110216A (ja) 2007-02-20 2010-05-20 Ajinomoto Co Inc L−アミノ酸または核酸の製造方法
JP2010110217A (ja) 2007-02-22 2010-05-20 Ajinomoto Co Inc L−アミノ酸生産菌及びl−アミノ酸の製造法
JP2011067095A (ja) 2008-01-10 2011-04-07 Ajinomoto Co Inc 発酵法による目的物質の製造法
BRPI0906795A2 (pt) 2008-01-23 2015-08-18 Ajinomoto Kk Método para produzir um l-aminoácido
RU2008105793A (ru) 2008-02-19 2009-08-27 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт Аджиномото-Генетика" (ЗАО АГРИ) (RU) Способ конструирования оперонов, содержащих трансляционно сопряженные гены, бактерия, содержащая такой оперон, способ продукции полезного метаболита и способ мониторинга экспрессии гена
EP2246420B1 (en) * 2008-02-21 2014-12-31 Ajinomoto Co., Inc. L-cysteine-producing bacterium, and method for production of l-cysteine
JP5332237B2 (ja) * 2008-03-06 2013-11-06 味の素株式会社 L−システイン生産菌及びl−システインの製造法
EP2138585B1 (en) * 2008-03-06 2011-02-09 Ajinomoto Co., Inc. An L-cysteine producing bacterium and a method for producing L-cysteine
WO2009135048A2 (en) * 2008-04-30 2009-11-05 Gradalis, Inc. Highly pure plasmid dna preparations and processes for preparing the same
US20120231537A1 (en) * 2008-04-30 2012-09-13 Gradalis, Inc. Highly Pure Plasmid DNA Preparations
ES2624913T3 (es) 2008-09-08 2017-07-18 Ajinomoto Co., Inc. Microorganismo que produce un L-aminoácido y procedimiento para producir un L-aminoácido
BRPI1007069A2 (pt) 2009-01-23 2015-08-25 Ajinomoto Kk Método para produzir um l-aminoácido.
EP2395096B1 (en) 2009-02-09 2014-04-09 Kyowa Hakko Bio Co., Ltd. Process for producing L-amino acids
JP5521347B2 (ja) * 2009-02-16 2014-06-11 味の素株式会社 L−アミノ酸生産菌及びl−アミノ酸の製造法
JP5463528B2 (ja) * 2009-02-25 2014-04-09 味の素株式会社 L−システイン生産菌及びl−システインの製造法
JP5359409B2 (ja) * 2009-03-12 2013-12-04 味の素株式会社 L−システイン生産菌及びl−システインの製造法
EP2460883A4 (en) 2009-07-29 2013-01-16 Ajinomoto Kk PROCESS FOR THE PREPARATION OF L-AMINO ACID
RU2009136544A (ru) 2009-10-05 2011-04-10 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт "Аджиномото-Генетика" (ЗАО АГРИ) (RU) Способ получения l-цистеина с использованием бактерии семейства enterobacteriaceae
WO2011065469A1 (ja) 2009-11-30 2011-06-03 味の素株式会社 L-システイン生産菌及びl-システインの製造法
RU2460793C2 (ru) 2010-01-15 2012-09-10 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт "Аджиномото-Генетика" (ЗАО АГРИ) Способ получения l-аминокислот с использованием бактерий семейства enterobacteriaceae
JP2013074795A (ja) 2010-02-08 2013-04-25 Ajinomoto Co Inc 変異型rpsA遺伝子及びL−アミノ酸の製造法
RU2471868C2 (ru) 2010-02-18 2013-01-10 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт "Аджиномото-Генетика" (ЗАО АГРИ) Мутантная аденилатциклаза, днк, кодирующая ее, бактерия семейства enterobacteriaceae, содержащая указанную днк, и способ получения l-аминокислот
RU2482188C2 (ru) 2010-07-21 2013-05-20 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт "Аджиномото-Генетика" (ЗАО АГРИ) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-АРГИНИНА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ БАКТЕРИЙ РОДА Escherichia, В КОТОРОЙ ИНАКТИВИРОВАН ОПЕРОН astCADBE
RU2501858C2 (ru) 2010-07-21 2013-12-20 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт "Аджиномото-Генетика" (ЗАО АГРИ) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-АМИНОКИСЛОТЫ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ БАКТЕРИИ СЕМЕЙСТВА Enterobacteriaceae
CN103119154B (zh) 2010-09-14 2015-11-25 味之素株式会社 含硫氨基酸生产菌以及含硫氨基酸的制造方法
KR101208267B1 (ko) 2010-10-20 2012-12-04 씨제이제일제당 (주) O-포스포세린 설피드릴라제 변이체
KR101381048B1 (ko) 2010-10-20 2014-04-14 씨제이제일제당 (주) O-포스포세린 생산 균주 및 이로부터 생산된 o-포스포세린으로부터 l-시스테인 또는 이의 유도체의 생산방법
WO2012053794A2 (en) 2010-10-20 2012-04-26 Cj Cheiljedang Corporation Microorganism producing o-phosphoserine and method of producing l-cysteine or derivatives thereof from o-phosphoserine using the same
JP2014036576A (ja) 2010-12-10 2014-02-27 Ajinomoto Co Inc L−アミノ酸の製造法
JP2014087259A (ja) 2011-02-22 2014-05-15 Ajinomoto Co Inc L−システイン生産菌及びl−システインの製造法
US9234223B2 (en) 2011-04-01 2016-01-12 Ajinomoto Co., Inc. Method for producing L-cysteine
BR112013023465B1 (pt) 2011-04-01 2020-10-27 Ajinomoto Co., Inc método para produzir l-cisteína
JP2014131487A (ja) 2011-04-18 2014-07-17 Ajinomoto Co Inc L−システインの製造法
DE102011007790A1 (de) 2011-04-20 2012-10-25 Wacker Chemie Ag Verfahren zur Reinigung von L-Cystein
DE102011075656A1 (de) * 2011-05-11 2012-03-29 Wacker Chemie Ag Verfahren zur fermentativen Produktion von L-Cystin
DE102011078481A1 (de) 2011-06-30 2013-01-03 Wacker Chemie Ag Verfahren zur fermentativen Produktion von natürlichem L-Cystein
RU2011134436A (ru) 2011-08-18 2013-10-27 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт Аджиномото-Генетика" (ЗАО "АГРИ") Способ получения l-аминокислоты с использованием бактерии семейства enterobacteriaceae, обладающей повышенной экспрессией генов каскада образования флагелл и клеточной подвижности
DE102012208359A1 (de) 2012-05-18 2013-11-21 Wacker Chemie Ag Verfahren zur fermentativen Produktion von L-Cystein und Derivaten dieser Aminosäure
DE102012216527A1 (de) * 2012-09-17 2014-03-20 Wacker Chemie Ag Verfahren zur fermentativen Produktion von L-Cystein und Derivaten dieser Aminosäure
WO2014148377A1 (ja) 2013-03-19 2014-09-25 国立大学法人奈良先端科学技術大学院大学 L-システイン生産能が高められた腸内細菌科に属する細菌
RU2013118637A (ru) 2013-04-23 2014-10-27 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт Аджиномото-Генетика" (ЗАО "АГРИ") СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-АМИНОКИСЛОТ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ БАКТЕРИИ СЕМЕЙСТВА ENTEROBACTERIACEAE, В КОТОРОЙ РАЗРЕГУЛИРОВАН ГЕН yjjK
KR101525663B1 (ko) 2013-05-10 2015-06-04 씨제이제일제당 (주) 신규 o-포스포세린 배출 단백질 및 이를 이용한 o-포스포세린의 생산방법
KR101493154B1 (ko) 2013-05-10 2015-02-13 씨제이제일제당 (주) 신규 RhtB 단백질 변이체 및 이를 이용한 O-포스포세린의 생산방법
DE102013209274A1 (de) 2013-05-17 2014-11-20 Wacker Chemie Ag Mikroorganismus und Verfahren zur fermentativen Überproduktion von Gamma-Glutamylcystein und Derivaten dieses Dipeptids
JP2016165225A (ja) 2013-07-09 2016-09-15 味の素株式会社 有用物質の製造方法
RU2013140115A (ru) 2013-08-30 2015-03-10 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт Аджиномото-Генетика" (ЗАО "АГРИ") СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-АМИНОКИСЛОТ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ БАКТЕРИИ СЕМЕЙСТВА Enterobacteriaceae, В КОТОРОЙ НАРУШЕНА ЭКСПРЕССИЯ КЛАСТЕРА ГЕНОВ znuACB
WO2015050234A1 (ja) 2013-10-02 2015-04-09 味の素株式会社 アンモニア制御装置およびアンモニア制御方法
RU2013144250A (ru) 2013-10-02 2015-04-10 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт Аджиномото-Генетика" (ЗАО "АГРИ") СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-АМИНОКИСЛОТ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ БАКТЕРИИ СЕМЕЙСТВА Enterobacteriaceae, В КОТОРОЙ ОСЛАБЛЕНА ЭКСПРЕССИЯ ГЕНА, КОДИРУЮЩЕГО ФОСФАТНЫЙ ТРАНСПОРТЕР
CN104736707B (zh) 2013-10-21 2017-08-25 味之素株式会社 生产l‑氨基酸的方法
RU2014105547A (ru) 2014-02-14 2015-08-20 Адзиномото Ко., Инк. СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-АМИНОКИСЛОТ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ БАКТЕРИИ СЕМЕЙСТВА ENTEROBACTERIACEAE, ИМЕЮЩЕЙ СВЕРХЭКСПРЕССИРУЕМЫЙ ГЕН yajL
KR101677328B1 (ko) 2014-08-12 2016-11-18 씨제이제일제당 (주) O-포스포세린 생산 미생물 및 이를 이용한 o-포스포세린 또는 l-시스테인 생산 방법
RU2015120052A (ru) 2015-05-28 2016-12-20 Аджиномото Ко., Инк. Способ получения L-аминокислоты с использованием бактерии семейства Enterobacteriaceae, в которой ослаблена экспрессия гена gshA
KR101694632B1 (ko) 2015-09-11 2017-01-10 씨제이제일제당 (주) 신규 o-포스포세린 배출 단백질 변이체 및 이를 이용한 o-포스포세린, 시스테인 및 이의 유도체의 생산방법
DK3556847T3 (da) 2015-12-11 2021-05-25 Wacker Chemie Ag Mikroorganismestamme og fremgangsmåde til antibiotikafri, fermentativ fremstilling af lavmolekylære substanser og proteiner
EP3420096A1 (en) 2016-02-25 2019-01-02 Ajinomoto Co., Inc. A method for producing l-amino acids using a bacterium of the family enterobacteriaceae overexpressing a gene encoding an iron exporter
KR101825310B1 (ko) 2016-12-29 2018-03-15 씨제이제일제당 (주) O-포스포세린을 생산하는 에스케리키아 속 미생물 및 이를 이용한 o-포스포세린 또는 l-시스테인을 생산하는 방법
JP7066977B2 (ja) 2017-04-03 2022-05-16 味の素株式会社 L-アミノ酸の製造法
EP3861109A1 (en) 2018-10-05 2021-08-11 Ajinomoto Co., Inc. Method for producing target substance by bacterial fermentation
CN117603895A (zh) 2018-12-26 2024-02-27 大象株式会社 生产l氨基酸的大肠杆菌突变株或谷氨酸棒状杆菌突变株及利用其的l氨基酸的生产方法
WO2020171227A1 (en) 2019-02-22 2020-08-27 Ajinomoto Co., Inc. METHOD FOR PRODUCING L-AMINO ACIDS USING A BACTERIUM BELONGING TO THE FAMILY Enterobacteriaceae HAVING OVEREXPRESSED ydiJ GENE
BR112021017870A2 (pt) 2019-04-05 2021-12-07 Ajinomoto Kk Método para produzir um l-aminoácido
JP2022550084A (ja) 2019-09-25 2022-11-30 味の素株式会社 細菌の発酵によるl-アミノ酸の製造方法
CN115244183A (zh) 2020-04-03 2022-10-25 瓦克化学股份公司 作为用于生物催化还原胱氨酸的酶催化氧化还原系统的核心组分的生物催化剂
CA3163410A1 (en) 2020-06-09 2021-12-16 Hye Min Park O-phosphoserine export protein variant and method for producing o-phosphoserine, cysteine, and derivatives thereof using the same
US20230265473A1 (en) 2020-06-26 2023-08-24 Wacker Chemie Ag Improved cysteine-producing strains
KR102414743B1 (ko) 2020-09-09 2022-06-29 씨제이제일제당 주식회사 신규 o-포스포세린 배출 단백질 및 이를 이용한 o-포스포세린, 시스테인 및 이의 유도체의 생산 방법
KR20220163754A (ko) 2021-06-03 2022-12-12 씨제이제일제당 (주) 신규한 YhhS 변이체 및 이를 이용한 O-포스포세린, 시스테인 및 이의 유도체의 생산방법
JP2024520831A (ja) 2021-06-11 2024-05-24 シージェイ チェイルジェダン コーポレーション 新規なMdtH変異体及びそれを用いたO-ホスホセリン、システイン及びその誘導体の生産方法
KR102654301B1 (ko) 2021-06-23 2024-04-04 씨제이제일제당 주식회사 NADH:quinone 산화환원효소의 발현이 조절된 재조합 미생물 및 이를 이용한 O-포스포세린, 시스테인 및 이의 유도체의 생산방법
CN116096909A (zh) 2021-07-05 2023-05-09 瓦克化学股份公司 用于将亚磺酸酶促氧化成磺酸的方法
KR102688937B1 (ko) 2021-12-31 2024-07-29 씨제이제일제당 주식회사 O-포스포세린 생산 미생물 및 이를 이용한 o-포스포세린 또는 l-시스테인 생산 방법
WO2023165684A1 (de) 2022-03-01 2023-09-07 Wacker Chemie Ag Verbesserte cystein produzierende stämme
WO2024125794A1 (de) 2022-12-15 2024-06-20 Wacker Chemie Ag Verfahren zur fermentativen herstellung von hypotaurin
WO2024125795A1 (de) 2022-12-15 2024-06-20 Wacker Chemie Ag Verfahren zur isolierung von taurin aus taurin- und hypotaurin-haltigen fermentationsmedien mikrobieller fermentation

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3376341D1 (en) * 1982-08-09 1988-05-26 Ajinomoto Kk Method for producing 2-substituted-thiazolidine-4-carboxylic acids
DE19539952A1 (de) * 1995-10-26 1997-04-30 Consortium Elektrochem Ind Verfahren zur Herstellung von O-Acetylserin, L-Cystein und L-Cystein-verwandten Produkten
DE19548222A1 (de) * 1995-12-22 1997-06-26 Forschungszentrum Juelich Gmbh Verfahren zur mikrobiellen Herstellung von Aminosäuren durch gesteigerte Aktivität von Exportcarriern

Also Published As

Publication number Publication date
JP2992010B2 (ja) 1999-12-20
HU224343B1 (hu) 2005-08-29
ES2236845T3 (es) 2005-07-16
JPH1156381A (ja) 1999-03-02
CA2235419A1 (en) 1998-12-19
HUP9801369A2 (hu) 1999-05-28
KR19990007062A (ko) 1999-01-25
ATE293165T1 (de) 2005-04-15
HU9801369D0 (en) 1998-08-28
DK0885962T3 (da) 2005-05-09
EP0885962A1 (de) 1998-12-23
BR9803346B1 (pt) 2013-11-12
HUP9801369A3 (en) 2000-08-28
US5972663A (en) 1999-10-26
CA2235419C (en) 2009-06-02
DE59812730D1 (de) 2005-05-19
EP0885962B1 (de) 2005-04-13
CN1203274A (zh) 1998-12-30
BR9803346A (pt) 2000-02-08
PL326915A1 (en) 1998-12-21
ID20467A (id) 1998-12-24
CN100347291C (zh) 2007-11-07
DE19726083A1 (de) 1998-12-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL195784B1 (pl) Szczep mikroorganizmu, białko, sposób wytwarzania L-cysteiny, L-cystyny, N-acetyloseryny i/lub pochodnych tiazolidynowych oraz zastosowanie białka
US20040038352A1 (en) Method for fermentative production of amino acids and amino acid derivatives of the phosphoglycerate family
CA2386539C (en) Method for production of l-cysteine or l-cysteine derivatives by fermentation
JP6807976B2 (ja) O−ホスホセリン生産微生物及びそれを用いたo−ホスホセリンまたはl−システイン生産方法
JP3329825B2 (ja) O−アセチルセリン、l−システイン及びl−システイン−関連生成物の製法
JP2006325607A (ja) 非タンパク質l−アミノ酸の製造方法
JP5788593B2 (ja) 発酵による天然l−システインの製造方法
US20090298135A1 (en) Method for fermentative production of L-methionine
JP2014512841A (ja) 調整された酸素飽和条件下における、発酵によるl−シスチンの製造方法
HU225826B1 (en) Process for the fermentative production of o-acetyl-serin
JP2010022215A (ja) L−システインの製造方法
US8143032B1 (en) Alleles of the thrA gene of Enterobacteriaceae
JP2020503053A (ja) O−ホスホセリンを生産するエシェリキア属微生物及びこれを用いたo−ホスホセリンまたはl−システインを生産する方法
JPH03502758A (ja) ポリペプチド類においてノルロイシン含有量を制御するための発酵培地および方法
MXPA98004927A (en) Microorganisms and procedures for the fermentative obtaining of l-cysteine, l-cistine, n-acetyl-serine or derivatives of tiazolid
JPS637790A (ja) 酵素によるl−システインの製造方法

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20080619