PL166659B1 - Sposób wytwarzania frakcji gamma globuliny zdolnej do biernej ochrony przeciw zapaleniu opon mózgowo-rdzeniowych PL - Google Patents

Sposób wytwarzania frakcji gamma globuliny zdolnej do biernej ochrony przeciw zapaleniu opon mózgowo-rdzeniowych PL

Info

Publication number
PL166659B1
PL166659B1 PL90302476A PL30247690A PL166659B1 PL 166659 B1 PL166659 B1 PL 166659B1 PL 90302476 A PL90302476 A PL 90302476A PL 30247690 A PL30247690 A PL 30247690A PL 166659 B1 PL166659 B1 PL 166659B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
gbmp
group
polysaccharide
antibodies
protein
Prior art date
Application number
PL90302476A
Other languages
English (en)
Inventor
Harold J Jennings
Francis Michon
Original Assignee
Nat Research Council
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Nat Research Council filed Critical Nat Research Council
Publication of PL166659B1 publication Critical patent/PL166659B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/12Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria
    • C07K16/1203Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria
    • C07K16/1228Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria from Enterobacteriaceae (F), e.g. Citrobacter, Serratia, Proteus, Providencia, Morganella, Yersinia
    • C07K16/1232Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria from Enterobacteriaceae (F), e.g. Citrobacter, Serratia, Proteus, Providencia, Morganella, Yersinia from Escherichia (G)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/025Enterobacteriales, e.g. Enterobacter
    • A61K39/0258Escherichia
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/095Neisseria
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/12Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria
    • C07K16/1203Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria
    • C07K16/1217Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria from Neisseriaceae (F)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/60Medicinal preparations containing antigens or antibodies characteristics by the carrier linked to the antigen
    • A61K2039/6031Proteins
    • A61K2039/6037Bacterial toxins, e.g. diphteria toxoid [DT], tetanus toxoid [TT]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Abstract

Sposób wytwarzania frakcji gamma globuliny zdolnej do biernej ochrony przeciw zapaleniu opon mózgowo-rdzeniowych, spowodowanemu przez Neisseria meningitidis gru­ py B i E.coli Kl, znamienny tym, ze obejmuje etap immunizowania ssaka szczepionka skladajaca sie z koniugatu antygenowego i farmaceutycznie dopuszczalnego nosnika do wstrzykiwania, przy czym koniugat antygenowy zawiera modyfikowany polisacharyd grupy B Neisseria meningitidis, w którym grupa N-acetylowa reszty kwasu sialowego jest zastapiona grupa N-C4-C 8-acylowa, sprzezony z immunologicznie odpowiednim nosnikiem bialkowym, po czym odzyskuje sie gamma globuline od ssaka. PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania frakcji gamma globuliny przy zastosowaniu szczepionki zawierającej koniugat antygenowy, składający się z chemicznie modyfikowanego polisacharydu grupy B Neisseria meningitidis i nośnika białkowego.
Zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych (meningitis) spowodowane przez N.meningitidis grupy B oraz E.coli Kl pozostaje ważnym problemem w zdrowiu światowym. Zapalenie opon grupy B występuje zarówno w endemicznych jak i epidemicznych sytuacjach i wynosi w przybliżeniu połowę wszystkich zarejestrowanych przypadków dwoinkowego zapalenia opon mózgowych, podczas gdy Kl-pozytywne E.coli są główną przyczyną meningitis u noworodków. Obecnie brak jest dostępnej w handlu szczepionki przeciw chorobie spowodowanej przez dwoinki zapalenia opon grupy B i E.coli Kl. W większej części jest to spowodowane faktem, że grupa B dwoinkowego polisacharydu GBMP (group B meningococcal polysaccharide) jest słabo immunogenna u ludzi. Istnieje kilka dotychczas opisanych projektów szczepionek, opartych na kompleksach GBMP z zewnętrznymi membranami proteinowymi, lecz jak dotychczas nie stwierdzono ich skuteczności u ludzi.
Ostatnio opisano nowy projekt szczepionki, opartej na syntetycznym, chemicznie modyfikowanym połączeniu (N-propionylowanej) grupy B polisacharydu-protemy (N-Pr-GBMPproteina). Szczepionka wzbudza u myszy wysokie miano EgG przeciwciał, które nie tylko nie są ochronne, lecz również krzyżowo reagują z niemodyfikowanym GBMP (to jest N-acetyloGBMP). Koncepcja to jest opisana w opisie patentowym Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 727 136.
Wywnioskowano, że szczepionka, która podnosi poziom krzyżowo-reakty wnych przeciwciał, jak opisano w opisie Stanów Zjednoczonych Ameryki 4 727 136 mogłaby tylko być skuteczna kosztem zniszczenia immunotolerancji. Hipoteza ta jest poparta przez identyfikację zwykłego epitopu, składającego się z łańcucha a--2-8))powiązanych reszt kwasu sialowego (z wymogiem minimum 10 reszt) zarówno w rodzinnym N-Ac-GBMPjak i ludzkich i zwierzęcych tkankach (Jennings, Contrib. Microbiol. Immunol., Bazylea, Karger, 1989, t.10, 151-165). Te łańcuchy oolisialosylowe (reszt kwasu sialowego) działają jako rozwijające antygeny i są w większej części związane ze stanem płodowym w przyczepności embrionowej neutralnej komórki (Finne i wsp. Biochem. Biophys. Res. Commun., 1983, 112,482). W czasie dojrzewania postnatalnego, antygen ten jest regulowany w dół (Friedlander i wsp., J. Celi Biol. 1985, 101, 412), lecz nasila się u dojrzałych ludzi w trakcie regeneracji schorowanych mięśni (Cashman i wsp., Ann. Neuron, 1987, 21,481) w komórkach rakowych (Roth i wsp., Proc. Natl. Acad. Sci, 1988, 85,299) i w naturalnych komórkach bójczych (NK) i CD3+T (Husmann i wsp., Eur.
166 659
J. Immunol., 1989, 19, 1761). Mimo że konsekwencje utraty tolerancji wobec antygenów płodowych nie zostały jeszcze stwierdzone, ogólnie uznano, że z powodu reakcji krzyżowej połączenia N-Pr-GBMP-proteina będą poddane surowemu badaniu przez agencje licencyjne, co w rezultacie powoduje wysokie koszty i opóźnienie, z powodu przeprowadzenia doświadczeń z kompleksem, koniecznych do wykazania bezpieczeństwa szczepionki przed jej zatwierdzeniem do sprzedaży.
Celem wynalazku jest opracowanie sposobu wytwarzania frakcji gamma globuliny przy zastosowaniu szczepionki wykazującej zwiększone właściwości immunogenne w porównaniu z N-Pr-GBMP-proteiną oraz wykazującej zasadniczo zredukowane krzyżowe reagowanie z GBMP.
Szczepionka zawiera koniugat antygenowy, zawierający modyfikowany polisacharyd grupy B Neisseria meningitidis, mający N-acetylową (C2) grupę reszty kwasu sialowego zastąpioną przez grupę C4-C8-acyyową, sprzężony z immunologicznie odpowiednim nośnikiem białkowym. Taki koniugat antygenowy ma zwiększoną immunogenność przy zasadniczo zredukowanym wzbudzaniu krzyżowo reagujących przeciwciał.
Szczepionka zawiera koniugat N-C4-C8-acylopolisacharyd-proteina, w połączeniu z odpowiednim nośnikiem lub rozcieńczalnikiem. Szczepionki mogą również zawierać terapeutycznie efektywną ilość dodatku przeznaczonego do stosowania u ludzi, np. fosforanu glinu lub wodorotlenku glinu.
Sposób szczepienia ssaków przeciw zakażeniom N.meningitidis i E.coli Kl polega na podawaniu pozajelitowo ssakom, które poddane zostały zakażeniu, w tym ludzi, immunologicznie efektywnej ilości szczepionki. Szczepionkę zazwyczaj podaje się w ilości około 1-50 mikrogr^mów na kg wagi ciała, np. 5-25 -tg/kg.
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania frakcji gamma globuliny zdolnej do biernej ochrony przeciw zapaleniu opon mózgowo-rdzeniowych, spowodowanemu przez N-meningitidis grupy B i E.coli Kl. Sposób ten polega na immunizowaniu ssaka szczepionką opisaną powyżej i odzyskiwaniu frakcji gamma globuliny od ssaka. Frakcję podaje się następnie osobnikowi w celu wywołania ochrony przeciw lub leczenia już nabytego zakażenia powyższymi organizmami. Należy zauważyć, że immunogenna szczepionka z koniugatu jest źródłem terapeutycznego antiserum w świetle jej korzystnej immunogeniczności z minimalnym wzbudzaniem GBMP krzyżowo reaktywnych przeciwciał. Koniugaty podwyższają również monoklonalne przeciwciała i, być może, antidiotypowe przeciwciała.
W ostatnich doświadczeniach stwierdzono, że większość bakteriobójczych i ochronnych przeciwciał wywołanych przez połączenie N-Pr.GBMP-proteina, opisane w wymienionej wyżej publikacji Jenningsa i opisie patentowym Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 727 136 nie jest związana z przeciwciałami krzyżowo reagującymi z GBMP. W świetle tego należy sądzić, że N-Pr-GBMP imituje unikalny bakteriobójczy epitop na powierzchni grupy B dwoinki zapalenia opon.
Niniejszy wynalazek opiera się na stwierdzeniu, że możliwe jest chemiczne zsyntetyzowanie modyfikowanego GBMP, który imituje bakteriobójczy epitop i który w postaci połączenia nie tylko wykazuje zwiększoną immunogeniczność, lecz również zapobiega zasadniczo wzbudzaniu przeciwciał, które krzyżowo reagują z GBMP.
Dokonano syntezy wielu różnych chemicznie modyfikowanych GBMP i indywidualnie przyłączono do proteiny, a następnie wstrzykiwano połączenia myszom. Wyniki porównywano z wynikami otrzymanymi dla połączenia N-Pr-GBMP-proteina. Nieoczekiwanie stwierdzono, że połączenia N-C4C8-acylo GBMP-proteina, np. połączenie n-butanoilo-, izobutanoilo-, n-pentanoilo-, izopentanoilo-, neopentanoilo-, heksanoilo-, heptanoilo- i oktanoilo-, a zwłaszcza N-butanoilo (N-Bu) GBMP-proteina zasadniczo naśladuje bakteriobójczy epitop przy zasadniczej redukcji wzbudzania krzyżowo reagujących przeciwciał.
GBMP wyizolowuje się z bakterii N. meningitidis metodami znanymi w tej dziedzinie techniki. W jednej z tych metod dwoinkę zapalenia opon mózgowych grupy B (szczep 981B) hoduje się w temperaturze 37°C w fermentatorze z zastosowaniem 30g odwodnionej brzeczki Todd Hewitt’a (wytwarzanej przez Difco Laboratories, Detroit, Michigan) na 1 litr wody desty lowanej. Przed rozpoczęciem hodowli w fermentatorze inicjuje się hodowlę liofilizowane4
166 659 go szczepu w słoju w temperaturze 37°C na płytkach z 5% wagowych agarem z krwi owczej (wytwarzanym przez Difco Laboratories, Detroit, Michigen). Następnie bakterie przenosi się do kolby Erlenmeyer’a zawierającej określoną powyżej brzeczkę Told Hewitt’a w ilości 1 litra, po czym kolbę wstrząsa się w temperaturze 37°C w czasie 7h przy 190 obrotach na minutę. Otrzymane inokulum wprowadza się następnie do fermentatora. Po hodowaniu w fermentatorze w czasie 16h bakterie zabija się przez dodanie formaliny do końcowego stężenia wynoszącego 0,75%. Bakterie wydziela się na drodze ciągłego odwirowania, a GBMP wyizolowuje się z supernatantu i oczyszcza zasadniczo 2 sposób opisany przez Bundle i współprac, w J. Biol. Chem., 249, 4797-4801 (1974) z tym wyjątkiem, że białko ekstrahuje się przez mieszanie roztworu surowego polisacharydu z zimnym o temperaturze 4°C 90% fenolem w miejsce gorącego o temperaturze 50-60°C. Ten właśnie sposób zapewnia to, że wytwarza się GBMP w postaci o wysokim ciężarze cząsteczkowym.
Bakterie E.coli (018 i Kl: H7) (NRCC 4283) hoduje się w temperaturze 37°C w fermentatorze z destylowaną wodą zawierającą odwodnioną infuzję sercowo-mózgową (BHJ) w ilości 37 g/litr (wytwarzaną przez Difco Laboratories, Detroit, Michigan). Przed hodowlą w fermentatorze, liofilizowany szczep poddaje się hodowli w 50 ml określonego powyżej roztworu (BHJ) w kolbie Erlenmeyer’a, którą wstrząsa się w temperaturze 37°C w czasie 7h przy 200 obrotach na minutę. Hodowlę tę przenosi się do 1,5 litra określonego powyżej BHJ i prowadzi hodowlę w tych samych warunkach jak opisano powyżej w czasie 7h. Następnie inokulum przenosi się do fermentatora. Do wyizolowania i oczyszczania polisacharydu E.coli Kl stosuje się to samo postępowanie jakie opisano do wydzielania GBMP.
Należy podkreślić, że do wyizolowania i oczyszczania można stosować nie tylko opisane powyżej postępowanie lecz przydatne są także inne metody postępowania, np. metoda opisana przez Watson’a i współprac, w J. Immunol., 81, 331 (1958) oraz przedstawiona w wyżej wymienionym opisie patentowym Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 727 136.
Rodzimy polisacharyd poddaje się N-deacetylowaniu z otrzymaniem reaktywnej grupy aminowej w resztach kwasu sialowego. N-deacetylowame można prowadzić znaną metodą, np. w zasadowym, wodnym środowisku w podwyższonej temperaturze, np. około 90-110oC, i przy wartości pH około 13-14. Jako zasadowe wodne środowisko stosuje się odpowiednio wodny roztwór wodorotlenku metalu alkalicznego, np. wodorotlenku sodu o stężeniu około 2M. Alternatywnie można zastosować hydrazynę w roztworze wodnym. Stopień N-deacetylowama może być różny i wynosi około 30%-100% w zależności od warunków. Korzystnie, N-deacetylowanie osiąga wartość około 90-100%. N-deacetylowany produkt można wydzielić, np. przez chłodzenie, zobojętnianie oczyszczanie, w miarę potrzeby, i liofilizację.
Przed N^^i^^c^^^tyyiowaniem, rodzimy polisacharyd ma średni ciężar cząsteczkowy w zakresie około 500 000-800 000.
W wyniku N-deacetylowania, wytwarza się fragmenty polisacharydu o średnim ciężarze cząsteczkowym w zakresie około 10 000 - 50 000.
Następnie, fragmenty N-deacetyyowanego polisacharydu poddaje się N^^t^^y^waniu z wytworzeniem odpowiadającego N-acylowanego produktu. N-acylowanie można prowadzić przez rozpuszczenie N-deacetytowanego polisacharydu w środowisku wodnym o wartości pH około 7,5-9,0. Następnie, dodaje się odpowiedni bezwodnik acylowy, ewentualnie z alkoholem dla zwiększenia rozpuszczalności i chłodzi do temperatury poniżej 10°C aż do zakończenia reakcji. W razie potrzeby, środowisko reakcji można oczyszczać, np. na drodze dializy, po czym N-acylowany produkt wydziela się, zasadniczo na drodze liofilizacji. Reakcja zasadniczo kończy się w czasie około 10-20h. Stopień N-acylowania, mierzony metodami analitycznymi, zazwyczaj *H-NMR wynosi co najmniej 90% i dochodzi do 100%. Reakcja N-acytowania nie wpływa w znaczący sposób na redukcję masy cząsteczkowej fragmentów wielocukrowych.
Korzystnie, w sposobie według wynalazku dobiera się N-acylowany materiał o średnim ciężarze cząsteczkowym odpowiadającym około 30-200 resztom kwasu sialowego. Osiąga się to zasadniczo na drodze filtracji żelowej N-acytowanego GBMP z użyciem kolumny wypełnionej żelem, stanowiącym mieszaninę poliacyloamidu i agarozy-Ultragel (znak towarowy) AcA
166 659 (średnica perełek 60-140 cm) oraz jako eluentu roztworu soli, buforowanego fosforanem (PBS).
W sposobie według wynalazku stosuje się N-acylowany materiał o średnim ciężarze cząsteczkowym 10 000 - 40 000 np. 10 000 - 15 000. Otrzymuje się go przez zbieranie frakcji eluentu z kolumny zawierającej N-acylowany GBMP materiał o średnim ciężarze cząsteczkowym. N-acylowany materiał o wyższym średnim ciężarze cząsteczkowym np. w zakresie 30 000 - 40 000, jest odpowiedni również do zastosowania w sposobie według wynalazku.
Szczepionkę sposobem według wynalazku wytwarza się przez łączenie N-acylowanego polisacharydu z immunologicznie odpowiednim białkiem nośnikowym. Korzystnie, samo białko nośnikowe jest immunogenem. Przykładami odpowiednich białek nośnikowych są anatoksyna tężca, anatoksyna błonicy, materiały reakcji krzyżowych (CRMs), korzystnie CRM197 produkowany przez Sclavo Ltd., Siena, Włochy oraz białkowe nośniki bakteryjne, np. białka zewnętrznej membrany dwoinki zapalenia opon mózgowych.
Do łączenia zmodyfikowanych fragmentów polisacharydu z białkiem nośnikowym można stosować każdy sposób łączenia. Korzystny sposób łączenia przedstawia opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 356 170, tj. sposób polegający na wprowadzeniu terminalnych grup aminowych na drodze redukcyjnego aminowania. Polisacharyd i białko są więc połączone przez wiązanie -CH2-NH-bialkowe. Jednakże, zrozumiałym jest, że konjugowane szczepionki wytwarzane sposobem według wynalazku nie ograniczają się do wytwarzania na drodze redukcyjnego aminowania. Tak więc, szczepionki te można również otrzymać na drodze sprzęgania N-acylowanego polisacharydu z białkiem nośnikowym z zastosowaniem odstępnika (spacer) dihydrazydoadypinowego w sposób opisany przez Scheneerson’aR. i współprac, w Preparation, Characterization and Immunogenicity of Haemophilus influenzae type b Polysacharide-Protein Conjugates, J. Exp. Med., 1952, 361-476 (1980) oraz przedstawiony w opisie patentowym Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 644 059 na rzecz Lauce K. Gordon’a. Alternatywnie można stosować technologię dwuskładnikowego odstępnika rozwiniętą przez Merck’a jaką opisał Marburg S. i współprac, w Biomolecular Chemistry of Macromolecules; Synthesis of Bacterial Polysacharide Conjugates with Neisseria meningitide Membrane Protein, J. Am. Chem. Soc., 108, 5282-5287 (1986) albo w miarę możliwości, metodologię końców redukcyjnych, przedstawioną przez Anderson’a w opisie patentowym Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 673 574.
Uzyskane N-acylowane połączenia polisacharyd-białko nie wykazują znaczącego usieciowania i są rozpuszczalne w roztworach wodnych. Powoduje to, że połączenia wytwarzane sposobem według wynalazku nadają się dobrze do zastosowania jako szczepionki.
Uzyskane połączenia N-acylowany polisacharyd-białko wytworzone sposobem według wynalazku poddawane są testom in vitro u myszy i wykazują ulepszone właściwości immunogenne w porównaniu z N-propionylowanym polisacharydem. Ponadto, obserwuje się zredukowane wytwarzanie antyciał reaktywnych krzyżowo. W świetle tego, należy wierzyć, że szczepionki wytwarzane sposobem według wynalazku są użyteczne przeciw zapaleniu opon mózgowych powodowanemu przez mikroorgamzmy N.meningitidis grupy B albo E.coli Kl. Szczególnie interesujące są szczepionki do uodpornienia niemowląt, które są najbardziej wrażliwe na bakteryjne zapalenia opon mózgowych.
Szczepionkę sposobem według wynalazku wytwarza się zwykle przez dyspersję koniugata w odpowiednim farmaceutycznie dopuszczalnym nośniku, takim jak fizjologiczna solanka lub inna ciecz odpowiednia do injekcji. Szczepionkę podaje się pozajelitowo, np. podskórnie, dootrzewnowo lub domięśniowo. Można również stosować zwykłe dodatki do szczepionek, np. stabilizatory, takie jak laktoza lub sorbit oraz adjuwanty, takie jak fosforan, wodorotlenek lub siarczan glinu.
Odpowiednia dawka szczepionki dla niemowląt mieści się w zakresie około 5-25 mikrogramów albo około 1-10 mikrogramów na kilogram ciężaru wagowego pacjenta.
Następujące przykłady ilustrują wynalazek. Do oceny przygotowano połączenia N-acetylo-, N-propionylo-, N-butanoilo, N-izobutanoilo, N-pentanoilo i N-heksanoilo-GBMP-proteina, a wyniki przedstawiono w przykładach.
166 659
Materiały i sposoby wytwarzania połączeń.
a) Materiały.
Bezwodniki propionowy, masłowy, izomasłowy, pentanowy i heksanowy razem z kwasem kolominowym otrzymano z Sigma Chemicals Co., St. Louis, MO. Ponieważ kwas kolominowy jest strukturalnie identyczny z GMBP, oznacza się go dalej jako GBMP. Anatoksynę tężcową (TT) otrzymano z Institut Armand Frappier, Laval, Quebec, a jej postać monomeryczną, stosowaną we wszystkich połączeniach otrzymano przez przepuszczenie powyższego preparatu przez złoże żelu z agarozy Bio-Gel (znak towarowy) A 0,5 (200-400 mesh) kolumna (1,6 x 90 cm) (Bio-Rad, Richmond, CA), zrównoważona i eluowana za pomocą 0,01 M buforowanej fosforanem soli fizjologicznej (PBS) (pH 7,4).
b) N-deacetylowanie GBMP.
1,0g GBMP (sól Na+ rozpuszczono w 5 ml 2M NaOH i po dodaniu 150 mg NaBH4 roztwór ogrzewano w 110oC w ciągu 6 godzin w pojemniku (60 ml) z nakręconą nasadką z politetrafluoroetylenu. Procedura ta jest zasadniczo taka, jak opisana w J. Immunol., 134, 2651 (1985) i w opisie patentowym Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 727 136. Oziębiony rozcieńczony roztwór wyczerpująco dializowano w wodzie destylowanej w 4°C i liofilizowano. Fakt otrzymania N-deacetylowanego GBMP stwierdzono przez nieobecność sygnału metyloacetamidowego (singlet przy delta 2,07) w widmie 'H-NMR N-deacetylowanego GBMP.
c) N-acylowanie GBMP.
1,0g N-deacetyyowanego GBMP rozpuszczono w 50 ml 5% wodnego NaHCO 3. Do pięciu indywidualnych próbek (10 ml powyższego roztworu) dodano bezwodniki propionowy, masłowy, izomasłowy, pentanowy lub heksanowy. Odczynniki te dodano 3x0,5 ml w ciągu 3 godzin w temperaturze pokojowej, przy czym roztwór utrzymywano przy pH 8,0 za pomocą 0,5 N NaOH. Przy każdym dodawaniu bezwodnika dodawano jednocześnie 0,5 ml metanolu w celu zwiększenia rozpuszczalności. Otrzymane roztwory mieszano w ciągu 16 godzin w 4°C, wyciągowo dializowano w wodzie destylowanej w 4°C i liofilizowano. Poszczególne N-propionylowane, N-butanoilowane, N-izobutanoilowane, N-pentanoilowane i N-heksanoiiowane GBMP otrzymano z wydajnością powyżej 90%. W każdym przypadku, zasadniczo pełne N-acylowanie potwierdzono przez zanikanie w widmie *H-NMR N-deacetylowanego GBMP.
d) Określanie wielkości fragmentów różnych N-acylowanych GBMP.
Dla otrzymania żądanej średniej masy cząsteczkowej N-acytowanego GBMP zastosowano filtrację przez żel, używając Ultragel (znak towarowy) AcA 44 (średnica złoża 60-140 μm) kolumna (IBF). Eluowane z kolumny frakcje przy Kd 0,5 do Kd 0,7 zmierzone przez FLPC (patrz poniżej) zbierano, dializowano i liofilizowano. Zakres wartości Kd odpowiada N-acylowanemu GBMP o około 30-50 resztach kwasu sialowego średnia masa cząsteczkowa (10 000-15 000, zazwyczaj 12000). Zbierano również i sprzęgano frakcje w zakresie Kd 0,2-0,4, odpowiadające fragmentom o średniej masie cząsteczkowej w zakresie 30 000-40 000. Tak więc pożądany jest materiał eluowany w zakresie Kd 0,2-0,7.
e) Połączenia polisacharydowe.
Końcowe grupy aldehydowe wprowadzano do N-acylowanego GBMP przez utlenianie nadjodanem (patrz opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 356 170). Powyższe N-acylowane fragmenty GBMP utleniano w 0,1 M wodnym NaJO4 (metanadjodan sodu) (10 ml) w ciągu 2 godzin w temperaturze pokojowej w ciemności. Nadmiar nadjodanu rozkładano dodaniem 1 ml glikolu etylenowego i roztwór wyczerpująco dializowano w 4°C i liofilizowano. Zastosowanie NaBH4 w procesie N-deacetylowania (oprócz dla GBMP) daje w wyniku przekształcenie końcowych zredukowanych reszt kwasu sialowego każdego z N-acylowanych GBMP, do otwartych reszt łańcucha poliolu. Ten rodzaj reszt jest wrażliwy na nadjodan (patrz J. Immunol., 127, 1011 (1981) i opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 356 170) i prowadzi w rezultacie do wprowadzenia grup aldehydowych do N-acylowanych fragmentów GBMP na obydwu końcach.
100 mg utlenionych fragmentów rozpuszczono w 0,1 M NaHCO3 (pH 8,1) i dodano do roztworu 2 ml buforu i 20 mg TT. Następnie dodano 40 mg cyjanoborowodorku sodu (NaCNBH3) i roztwór łagodnie mieszano w temperaturze pokojowej. Przebieg reakcji sprzęgania śledzono przy pomocy FPLC, stosując kolumnę filtracyjną z żelem, zawierającą Superose (znak
166 659 towarowy) 12 HRio/30 (Pharmacia), przy równomiernym przepływie 1 ml/min buforu PBS o pH 7,2. Z monitorowaniem zarówno białek jak i N-acylowanych fragmentów GBMP przy długości fali 214 nm.
Fragmenty wykazywały Kd 0,6, TT Kd 0,39 a koniugaty Kd 0,23. Proces sprzęgania kończy się gdy wszystkie TT wyczerpią się, co określa brak piku w chromatogramie FPLC, odpowiadającego składnikowi o wartości Kd 0,39. W większości przypadków łączenie zostało zakończone w ciągu 2 dni, lecz całkowity czas reakcji trwał 4 dni. Potencjalne nieprzereagowane grupy aldehydowe redukowano na koniec dodatkiem 20 mg borowodorku sodu przed filtrowaniem przez żel.
Połączenia polisacharyd -TT oddzielano od fragmentów polisacharydu przez filtrację przez żel, stosując kolumnę z żelem z agarozy Bio Gel A z PBS jako eluentem. Eluent zawierający koniugat dializuje się w wodzie destylowanej i liofilizuje. Połączenia N-acylowany GBMP-TT zawierają 12-30%, zazwyczaj 12-20% kwasu sialowego, jak określono metodą rezorcynolową opisaną przez Svennerholma L., Quantitative Estimation of Sialic Acid II A Colorimetric Resorcinal-Hydrochloric Acid Methol. Biochi Biophys. Acta 24, 604 (1957). To wskazuje, że koniugaty mają stosunek molowy polisacharydu do TT równy 2-3:1.
Szczepienie i próby immunologiczne.
a) Procedury szczepienia.
Dwadzieścia samic białych myszy CFI, mających 8-10 tygodni zaszczepiono dootrzewnowo (3 razy, w dostępach 3 tygodni) za pomocą każdego z połączeń N-acylowanego GBMP-TT z dodatkiem Reunda (FCA) (Difco, Detroit, MI). Każda porcja szczepionki zawierała wystarczającą ilość połączenia (10-12 μ m) odpowiadającą zawartości 2 gg kwasu sialowego. Po upływie jedenastu dni po trzecim wstrzyknięciu, myszy uśmiercano. Przeprowadzono następujące testy z surowicami.
b) Próba wiązania radioaktywnego antygenu.
Próbę tę przeprowadzono przez modyfikację techniki Farra stosując znakowany in vitro [3H] GBMP (Jennings H. J. i wsp. Determinant Specificities of the Groups B i C polisacharydów z Neiseria meningitidis, J. Immunol, 134, 2651 (1985)) lub znakowany [3H] N-Pr-GBMP (Jennings H. J., i wsp. Unique Intermolecular Bactericidal Epitope involving the Homo-Sialo Polysaccharide Capsule on the Cell Surface of Group B Neisseri meningitidis adn Escheirchia coli Kl, J. Immunol, 142, 3585-3591, 1989). Mieszaninę reakcyjną dla próby wiązania radioaktywnego antygenu otrzymano przez zmieszanie w probówkach mikrotestowych polipropylenowych Eppendorfa 20 gl zebranego antiserum, od grup 20 myszy zaszczepionych każdym z indywidualnych N-acylowanych GBMP-TT połączeń, rozcieńczonych do 100 gl za pomocą PBS, za pomocą znakowanego [3H]- GBMP i [3H] N-Pr, GBMP w 50 μΐ PBS. Po inkubacji w 4°C w ciągu 16 godzin dodaje się 150 gl nasyconego (w 4°C) siarczanu amonu (pH 7,0), probówki wstrząsa się i odstawia w 4°C na 30 minut. Następnie probówki wiruje się przy 1500 obrotach na minutę w ciągu 10 minut, po czym pobiera się dwie próbki po 130 gl. Próbki miesza się z 2 ml wody i scyntylatorem ksylenowym (ACS) i oznacza ich reaktywność w liczniku scyntalacyjnym. Wyniki zestawiono w tabeli 1.
T a b e1a 1
Wiązanie znakowanego [3H]- N-Ac-GBMP z różnymi mysimi surowicami anti-N-acyloGBMP-ΊT
Antiserum % wiązania '
1 2 3 4
N-Pr-GBMP-TT 41 40 39 12
N-Bu-GBMP-TT 4 4 7 4
N-IzoBu-GBMP-TT 9 - - -
N-Pen-GBMP-TT 36 - - -
N-Hex-GBMP-TT 16 - - -
166 659 a) - cztery próby wiązania prowadzono na zbiorczych surowicach odpornościowych z 20 zaszczepionych myszy.
Stosowane skróty:
N-Ac = N-acetyloN-Pr = N-propionyloN-Bu = N-butanoiloN-izoBu=N-izobutanoiloN-Pen=N-pentanoilo
N-Hex=N-heksanoilo.
Oznaczenia 12,3 i 4 są wynikami czterech powtórzonych doświadczeń. Tabela 1 ukazuje, że N-Ac-GBMP (niosąca ten sam epitop co płodowy N-CAM) wiąże się słabiej z surowicą odpornościową wywołanego przez N-Bu-GBMP, N-izoBu-GBMP, N-Pen-GBMP i N-HexGBMP niż dla wywołanego przez N-Pr-GBMP. Można więc wywnioskować z tabeli 1, że połączenia N-Bu-, N-izoBu-, N-Pen- i N-Hex-polisacharyd w mniejszym stopniu powodują powstanie krzyżowo reagujących przeciwciał niż połączenie N-Pr-.
c) Ilościowa analiza precypitacyjna
Doświadczenia te przeprowadzono metodą Kabat’a i Mayer’a (Experimental Immunochemistry, Charles C. Thomas, Springfield, str. 22, 1961). Próbki (100 ^l) surowic anty-N-acylGBMP-TT (rozcieńczone 5-krotnie w PBS) poddawano w probówkach działaniu wzrastających stężeń N-acetylo-(kwas kolominowy), N-propionylo-, N-butanoilo-, N-izobutanoilo-, N-pentanoilo- i N-hexanoiio-GBMP, w całkowitej objętości 200 gl (dopełnionej PBS). W doświadczeniach tych użyto pochodnych z frakcji o wyższym ciężarze cząsteczkowym. Zostały one otrzymane z eluatów z kolumny Ultragel AcA 44 (Kd = 0,4, oznaczone metodą FPCL), uprzednio używanej do pomiarów wielkości fragmentów N-acylowanych GBMP. Probówki inkubowano przez 4 Dni w 4°C przy codziennym mieszaniu, odwirowano i ilość białka przeciwciała oznaczano metodą Lowry i wsp., (Protein Measurement with the Folin Phenol Reagent, J. Biol. Chem., 1951, 1933, 265). Rezultaty przedstawiono w tabeli 2.
Tabela 2
Wytrącaniea) mysich surowic anty-N-acyyo-GBMP-TT przy użyciu różnych N-acyk-GEMP jako antygenów strącających
Surowica odpornościowa Antygen N-acyk-GBMP
N-acetyl N-propyl N-butyl N-pentyl N-hexyl
N-Pr-GBMP-TT 0,16 0,40 0,20 0,15 0,15
N-Bu-GBMP-TT 0,04 1,15 2,60 3,20 1,80
N-Pen-GBMP-TT 0,13 0,38 0,44 6,35 3,55
N-Hex-GBMP-TT 0,02 0,08 0,80 4,15 4,40
a) Maksymalna ilość wytrąconego przeciwciała wyrażona w mg/ml surowicy odpornościowej.
Jeśli chodzi o reakcję krzyżową, to pierwsza kolumna w tabeli 2 wskazuje, iż niewiele przeciwciał dających odczyn krzyżowy indukuje się w wyniku działania sprzężeń N-Bu i N-Hex w porównaniu ze sprzężeniem N-Pr. Można również zauważyć, że sprzężenie N-Pen powoduje powstawanie mniejszej ilości przeciwciał dających reakcję krzyżową niż sprzężenie N-Pr.
Biorąc poD uwagę immunogenność, w znaczeniu odpowiedzi homologicznej, z tabeli 2 wynika, że sprzężenia N-Bu (2,60), N-Pen- (6,35) i N-Hex- (4,40) GBMP-TT są bardziej immunogenne niż analogiczne sprzężenie N-Pr-GBMP (0,40).
d) Test ELISA.
Studzienki EIA płytek serologicznych (Flow Labs, Missisauga, Ontario, Canada) pokrywano roztworami GBMP-, N-Pr- GBMP- lub N-Bu-GBMP- sprzężonymi z BSA, o stężeniu 10 gg/ml w PBS, w ilości 100 gl na 1 studzienkę. Płytki pozostawiono na 18 godzin w 4°C i przemywano 1% roztworem BSA w PBS przez 10 minut w temperaturze pokojowej (etap blokowania). Następnie do studzienek dodawano po 100 gl seryjnie 10-krotnie rozcieńczanych
166 659 mysich surowic anty-N-Acy!o-GBMP-TT i płytki inkubowano przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Po przemyciu SBT płytki inkubowano w ciągu 1 godziny w temperaturze pokojowej z 50 μΐ odpowiednio rozcieńczonej koziej anty-mysiej immunoglobuliny sprzężonej z peroksydazą (Kirkegard and Perry Laboratories), a następnie zawartość studzienek odsączono i płytki przemywano pięciokrotnie SBT. W końcu, do każdej ^^t^<^;zienki dodawano po 50 μl substratu peroksydazy - błękitu czterometylenowego (TMB) (Kirkegard and Perry Laboratories) i po 10 minutach oznaczono przy pomocy spektrofotometru Multiscan (Flow Laboratories, Mississauga, Ontario). Rezultaty przedstawiono w tabeli 3.
Ta be 1a 3
Miareczkowanie zbiorczej mysiej surowicy anty-N-acyyo-GBMP-TT w teście ELISA przy użyciu N-acylo-GBMP-BSA
Antygen powlekający Mianaaa surowic odpornościowych
a.N-Pi-rGBMPb a.N-Bu-GBMPb’ a.N-Izobu-GBMPb’
N-Ac-GBMP-BSA 7 800 1000 7 000
N-Pr-GBMP-BSA 40 000 39 000 9 800
N-Bu-GBMP-BSA 26 000 52 000 9 700
N--zoBu-GBMP-BSA - - 25 000
c) Miano (GM) = odwrotność rozcieńczenia przy 50% maksymalnej absorbcncji, przy długości fali 450 nm.
b) N-acylo specyficzne surowice odpornościowe indukowane u myszy przy zastosowaniu homologicznych sprzęzeń N-acyyo-GBMP-TT.
b) N-acylo specyficzne surowice odpornościowe indukowane u myszy przy zastosowaniu homologicznych sprzężeń N-acy!o-GBMP-TT.
Jeśli chodzi o odczyn krzyżowy to z tabeli 3 widać, że sprzężony N-Bu-GBMP-TT indukuje mniej przeciwciał dających reakcję krzyżową w stosunku do N-Ac-GBMP (1000) niż sprzężenie N-Pr-GBMP-TT (7800). Jest to spowodowane tym, iż GBMP mniej wiąże się z przeciwciałem indukowanym przez N-Pr-GBMP-TT niż z przei^cwciałem indukowanym przez N-Bu-GBMP-TT. Podobne uwagi stosuje się do sprzężenia N-izoBu-GBMP-TT.
Co się tyczy immunogenności, to sprzężenie N-Bu jest bardziej immunogenne niż analogiczne N-Pr, na co wskazują miana wiązania homologicznego 52 000 (N-Bu) i 40 000 (N-Pr).
e) Próba na hamowanie wiązania radioaktywności.
Roztwory o wzrastającym stężeniu N-acyyo-GBMP w PBS, pochodzących z frakcji o wyższej masie cząsteczkowej, dodawano (w ilości 80 μθ w charakterze inhibitora do 20 μΐ mysiej surowicy anty-N-PrrGBMP-TT co stanowiło ilość wystarczaaącą do związania 50% znakowanego 3H-N-PrrGMBP w nieobecności inhibitora. Po delikatnym wymieszaniu probówki inkubowano 16 godzin w 4°C, a testy przeprowadzano dokładnie tak jak to opisano uprzednio dla testu wiązania radioaktywnego przeciwciała. Procent hamowania wiązania obliczano stosując następujący wzór:
procent hamowania = 100 x cmp z inhibitorem - cpm bez inhibitora cpm bez przeciwciała - cpm bez inhibitora (cpm = ilość zliczeń na 1 minutę)
166 659
Rezultaty przedstawiono w tabeli 4.
Tabela 4
Zahamowanie wiązania znakowanego 3H-N-Pi--GBMP z przeciwciałami IgG2A, IgG2B (A)a) i IgG1 (B)a) indukowanymi u myszy sprzężonym związkiem anty-N-Pr-GBMP-TT
Inhibitorb) A B
N-Ac-GBMP >50,0 >50,0
N-Pr-GBMP 0,6 0,3
N-Bu-GBMP 0,3 0,2
N-IzoBu-GBMP >50,0 -
N-Pen-GBMP 2,3 2,5
N-Hex-GBMP 10,2 10,0
a) Frakcje mysiej poliklonalnej surowicy anty-N-PrrGBMP-TT opisane w pracy Jennings’a i wsp., J. Immunol. 1989, 142, 3585-3591.
b) Ilość mikrogramów inhibitora dająca 50% zahamowanie wiązania.
Próby właściwości bakteriobójczych. Testy te przeprowadzano według metody Jennings'a i wsp. (J. Exp. Med., 1987, 165, 1207-1211). W testach używano Neisseria meningitidis szczep B (M 986). Rezultaty podano w tabeli 5.
Tabela 5
Wiązanie znakowanego H-N-Pi--GBMP z różnymi mysimi surowicami anty-N-acylo-GBMP-TT oraz miano aktywności bakteriobójczej odpowiednich surowic odpornościowych
Surowica odpornościowa Ilość surowicy odpornościowej3) (μΐ) Miano aktywności bakteriobójczej*3)
N-Pr-GBMP-TT 13 128
N-Bu-GBMP-TT 10 64
N-IzoBu-GBMP-TT ND 64
N-Pen-GBMP-TT 24 64
N-Hex-GBMP-TT >100 8
N-Ac-GBMP-TT >100 8
a)Ilość pl surowicy odpornościowej (5-krotnie rozcieńczonej PBS) wymagana do 50% wiązania. ^Doświadczenie z rozcieńczaniem: różnica jednego rozcieńczenia, np. 128 w porównaniu do 64 leży w zakresie błędu doświadczalnego.
Tabela 5 wykazuje, iż N-Bu-GBMP jest równie dobrym inhibitorem jak N-Pr-GBMP przy wiązaniu tego drugiego związku do jego własnych homologicznych przeciwciał. Tak więc zastosowanie N-B-GBMP w miejsce N-Pr-GBMP nie powoduje żadnej istotnej utraty właściwości wykazywanych przez N-Pr-GBMP. Tabela 5 przedstawia też, że N-Bu-GBMP wiąże się równie dobrze jak N-Pr-GBMP z przeciwciałami indukowanymi przez N-Pr-GBMP-TT. Surowice odpornościowe indukowane zarówno przez N-Bu-GBMP-TT jak i N-Pr-GBMP-TT wykazują podobne miana bakteriobójcze. Dowodzi to, iż N-Bu-, N-IzoBu- i N-Pen-GBMP są równocenne z N-Pr-GBMP pod względem zdolności imitowania bakteriobójczego epitopu na powierzchni meningokoków grupy B.
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz.
Cena 1,00 zł.

Claims (1)

  1. Zastrzeżenie patentowe
    Sposób wytwarzania frakcji gamma globuliny zdolnej do biernej ochrony przeciw zapaleniu opon mózgowo-rdzeniowych, spowodowanemu przez Neisseria meningitidis grupy B i E.coli Kl, znamienny tym, że obejmuje etap immunizowania ssaka szczepionką składającą się z koniugatu antygenowego i farmaceutycznie dopuszczalnego nośnika do wstrzykiwania, przy czym koniugat antygenowy zawiera modyfikowany polisacharyd grupy B Neisseria meningitidis, w którym grupa N-acetylowa reszty kwasu sialowego jest zastąpiona grupą N-Cą-Ce-acylową, sprzężony z immunologicznie odpowiednim nośnikiem białkowym, po czym odzyskuje się gamma globulinę od ssaka.
PL90302476A 1989-12-14 1990-12-14 Sposób wytwarzania frakcji gamma globuliny zdolnej do biernej ochrony przeciw zapaleniu opon mózgowo-rdzeniowych PL PL166659B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US44819589A 1989-12-14 1989-12-14

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL166659B1 true PL166659B1 (pl) 1995-06-30

Family

ID=23779371

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL90288271A PL166035B1 (pl) 1989-12-14 1990-12-14 Sposób wytwarzania koniugatu antygenowego PL
PL90302476A PL166659B1 (pl) 1989-12-14 1990-12-14 Sposób wytwarzania frakcji gamma globuliny zdolnej do biernej ochrony przeciw zapaleniu opon mózgowo-rdzeniowych PL

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL90288271A PL166035B1 (pl) 1989-12-14 1990-12-14 Sposób wytwarzania koniugatu antygenowego PL

Country Status (30)

Country Link
US (3) US5576002A (pl)
EP (1) EP0504202B1 (pl)
JP (1) JP2637845B2 (pl)
KR (1) KR0158436B1 (pl)
CN (4) CN1049223C (pl)
AR (1) AR243934A1 (pl)
AT (1) ATE121947T1 (pl)
AU (1) AU641715B2 (pl)
BR (1) BR9007917A (pl)
CA (1) CA2071811C (pl)
CZ (1) CZ283530B6 (pl)
DE (1) DE69019164T2 (pl)
DK (1) DK0504202T3 (pl)
ES (1) ES2071288T3 (pl)
FI (2) FI104539B (pl)
HR (1) HRP920872A2 (pl)
HU (2) HU9201966D0 (pl)
IE (1) IE68414B1 (pl)
IL (1) IL96676A (pl)
IN (1) IN171747B (pl)
NO (2) NO305275B1 (pl)
NZ (1) NZ236471A (pl)
PH (1) PH30305A (pl)
PL (2) PL166035B1 (pl)
RO (1) RO111416B1 (pl)
RU (1) RU2105568C1 (pl)
SI (1) SI20008B (pl)
WO (1) WO1991008772A1 (pl)
YU (1) YU24391A (pl)
ZA (1) ZA9010065B (pl)

Families Citing this family (47)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5648241A (en) 1989-09-15 1997-07-15 The General Hospital Corporation Conjugate vaccine against group B streptococcus
RU2105568C1 (ru) * 1989-12-14 1998-02-27 Нэшнл Рисерч Каунсл Оф Канада Полисахарид neisseria meningitidis с модифицированной группой b, конъюгированный антиген, вакцина против менингита группы b и способ индукции ответа антител к менингиту группы b
JP4163251B2 (ja) * 1992-09-24 2008-10-08 ブリガーム・アンド・ウーメンズ・ホスピタル・インコーポレーテッド グループbストレプトコッカス・タイプ▲ii▼およびタイプ▲v▼多糖−蛋白質接合ワクチン
US5439808A (en) * 1993-07-23 1995-08-08 North American Vaccine, Inc. Method for the high level expression, purification and refolding of the outer membrane group B porin proteins from Neisseria meningitidis
US6153406A (en) * 1993-07-23 2000-11-28 North American Vaccine, Inc. Method for the high level expression, purification and refolding of the outer membrane protein P2 from Haemophilus influenzae type B
US5679654A (en) * 1994-09-02 1997-10-21 Brigham & Women's Hospital, Inc. Capsular polysaccharide immunomodulator
US5700787A (en) * 1994-09-02 1997-12-23 Brigham & Women's Hospital, Inc. Capsular polysaccharide immunomodulator
US5747287A (en) * 1995-04-28 1998-05-05 North American Vaccine, Inc. Method for the high level expression, purification and refolding of the outer membrane group B porin proteins from Neisseria meningitidis
US6284884B1 (en) 1995-06-07 2001-09-04 North American Vaccine, Inc. Antigenic group B streptococcus type II and type III polysaccharide fragments having a 2,5-anhydro-D-mannose terminal structure and conjugate vaccine thereof
US5811102A (en) * 1995-06-07 1998-09-22 National Research Council Of Canada Modified meningococcal polysaccharide conjugate vaccines
EP0831901B2 (en) * 1995-06-07 2005-12-07 SMITHKLINE BEECHAM BIOLOGICALS s.a. Vaccine comprising a polysaccharide antigen-carrier protein conjugate and free carrier protein
ZA97248B (en) * 1996-01-18 1997-07-18 Rohm & Haas Method for identifying and quantifying polymers utilizing immunoassay techniques
DK0939647T4 (da) * 1996-08-27 2006-10-23 Novartis Vaccines & Diagnostic Neisseria Meningitidis-serogruppe B-glycokonjugat og fremgangsmåde til anvendelse deraf
US6048527A (en) * 1996-08-27 2000-04-11 Chiron Corporation Antibodies that define unique Meningococcal B epitopes and vaccine compositions
US6426074B1 (en) 1997-03-19 2002-07-30 The Brigham And Women's Hospital Inc. Group B Streptococcus vaccine
JP2002506448A (ja) 1997-06-24 2002-02-26 カイロン コーポレイション 抗髄膜炎菌ワクチン組成物を使用して成体を免疫する方法
DE69840508D1 (de) 1997-08-27 2009-03-12 Childrens Hosp Medical Center Molekular-mimetika von meningokokkus b epitopen
ATE468403T2 (de) 1997-12-23 2010-06-15 Baxter Healthcare Sa Verfahren zur extraktion und isolierung von bakteriellen hüllpolysacchariden zur verwendung als vakzine oder, an proteine gekoppelt, als konjugierte vakzine
KR100704826B1 (ko) * 1998-08-19 2007-04-09 박스터 헬쓰케어 에스.에이. N-아크릴로일화된 폴리사카라이드를 사용하여 제조된백신으로서 사용하기에 적합한 면역원성β-프로피온아미도-결합 폴리사카라이드 단백질 컨쥬게이트
US6436653B1 (en) 1998-12-15 2002-08-20 Exiqon A/S Method for introduction of reporter groups into bacterial lipopolysaccharide-derived carbohydrates and the subsequent coupling of such derivatives onto solid surfaces
US7083777B1 (en) * 1999-04-02 2006-08-01 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Immunomodulating polymers
US6518037B2 (en) * 1999-11-12 2003-02-11 University Of Iowa Research Foundation Two-component system that controls bacterial membrane synthesis
GB9928196D0 (en) * 1999-11-29 2000-01-26 Chiron Spa Combinations of B, C and other antigens
SV2003000753A (es) 2000-12-05 2003-06-16 Brigham & Womens Hospital Uso de polisacaridos zwitterionicos para la especifica modulacion del progreso inmunologico
US7534444B2 (en) 2001-04-17 2009-05-19 Novattis Vaccines And Diagnostics, Inc. Molecular mimetics of meningococcal B epitopes which elicit functionally active antibodies
GB0115176D0 (en) * 2001-06-20 2001-08-15 Chiron Spa Capular polysaccharide solubilisation and combination vaccines
GB0121591D0 (en) * 2001-09-06 2001-10-24 Chiron Spa Hybrid and tandem expression of neisserial proteins
AR045702A1 (es) 2001-10-03 2005-11-09 Chiron Corp Composiciones de adyuvantes.
DK1490409T3 (da) * 2002-03-26 2009-03-23 Novartis Vaccines & Diagnostic Modificerede saccharider med forbedret stabilitet i vand
JP2006522135A (ja) * 2003-03-31 2006-09-28 ザ ブライアム アンド ウィミンズ ホスピタル インコーポレーテッド 喘息およびアレルギーの処置のための両性イオン免疫調節剤
US7731967B2 (en) 2003-04-30 2010-06-08 Novartis Vaccines And Diagnostics, Inc. Compositions for inducing immune responses
WO2005016974A1 (en) 2003-08-12 2005-02-24 Lipoxen Technologies Limited Sialic acid derivatives for protein derivatisation and conjugation
WO2006002402A2 (en) 2004-06-23 2006-01-05 Children's Hospital & Research Center At Oakland Polysaccharide derivatives and uses in induction of an immune response
US8148335B2 (en) 2004-06-23 2012-04-03 Children's Hospital & Research Center Oakland De-N-acetyl sialic acid antigens, antibodies thereto, and methods of use in cancer therapy
GB0428394D0 (en) * 2004-12-24 2005-02-02 Chiron Srl Saccharide conjugate vaccines
BRPI0612669B8 (pt) 2005-06-27 2021-05-25 Glaxosmithkline Biologicals Sa composição imunogênica, vacina, composição, e composição liofilizada
WO2007092451A2 (en) 2006-02-06 2007-08-16 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Zwitterionic polysaccharides for promotion of immune system maturation and health
GB0611914D0 (en) 2006-06-15 2006-07-26 Teti Giuseppe Peptides that mimic non-human cross-reactive protective epitopes of the group Bmeningococcal capsulsar polysaccharide
EP1872791A1 (en) 2006-06-30 2008-01-02 Institut Pasteur Use of bacterial polysaccharides for biofilm inhibition
CN105267974A (zh) * 2007-06-20 2016-01-27 辉瑞爱尔兰制药公司 用于缀合疫苗的经过修饰的多糖
EP2244695A1 (en) 2007-12-07 2010-11-03 Novartis AG Compositions for inducing immune responses
EP2387417B1 (en) 2009-01-16 2016-05-11 University of Maryland, Baltimore Broad spectrum vaccine against non-typhoidal salmonella
US9539281B2 (en) 2011-07-12 2017-01-10 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Lipid-containing PSA compositions, methods of isolation and methods of use thereof
EP2752403A1 (de) * 2013-01-08 2014-07-09 Sika Technology AG Amin für emissionsarme Epoxidharz-Produkte
JP6918365B2 (ja) 2015-08-19 2021-08-11 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ 脂質化psa組成物および方法
WO2018014012A1 (en) 2016-07-15 2018-01-18 President And Fellows Of Harvard College Glycolipid compositions and methods of use
US10183070B2 (en) * 2017-01-31 2019-01-22 Pfizer Inc. Neisseria meningitidis compositions and methods thereof

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4057685A (en) * 1972-02-02 1977-11-08 Abbott Laboratories Chemically modified endotoxin immunizing agent
US4356170A (en) * 1981-05-27 1982-10-26 Canadian Patents & Development Ltd. Immunogenic polysaccharide-protein conjugates
US4673574A (en) * 1981-08-31 1987-06-16 Anderson Porter W Immunogenic conjugates
US4619828A (en) * 1982-07-06 1986-10-28 Connaught Laboratories, Inc. Polysaccharide exotoxoid conjugate vaccines
US4644059A (en) * 1982-07-06 1987-02-17 Connaught Laboratories, Inc. Haemophilus influenzae B polysaccharide-diptheria toxoid conjugate vaccine
US4496538A (en) * 1982-07-06 1985-01-29 Connaught Laboratories, Inc. Haemophilus influenzae b polysaccharide-diphtheria toxoid conjugate vaccine
US4695624A (en) * 1984-05-10 1987-09-22 Merck & Co., Inc. Covalently-modified polyanionic bacterial polysaccharides, stable covalent conjugates of such polysaccharides and immunogenic proteins with bigeneric spacers, and methods of preparing such polysaccharides and conjugates and of confirming covalency
US4727136A (en) * 1985-10-01 1988-02-23 Canadian Patents And Development Ltd. Modified meningococcal group B polysaccharide for conjugate vaccine
RU2105568C1 (ru) * 1989-12-14 1998-02-27 Нэшнл Рисерч Каунсл Оф Канада Полисахарид neisseria meningitidis с модифицированной группой b, конъюгированный антиген, вакцина против менингита группы b и способ индукции ответа антител к менингиту группы b

Also Published As

Publication number Publication date
NO922316L (no) 1992-08-14
CZ283530B6 (cs) 1998-04-15
CN1100428A (zh) 1995-03-22
SI20008A (sl) 2000-02-29
ZA9010065B (en) 1992-02-26
CN1036522C (zh) 1997-11-26
BR9007917A (pt) 1992-10-20
DE69019164D1 (de) 1995-06-08
CN1100656A (zh) 1995-03-29
FI922737A0 (fi) 1992-06-12
ES2071288T3 (es) 1995-06-16
AR243934A1 (es) 1993-09-30
US5683699A (en) 1997-11-04
IN171747B (pl) 1992-12-26
YU24391A (sh) 1995-12-04
US5902586A (en) 1999-05-11
HU218146B (hu) 2000-06-28
HRP920872A2 (en) 1997-06-30
HU9201966D0 (en) 1992-10-28
CN1072506C (zh) 2001-10-10
WO1991008772A1 (en) 1991-06-27
CN1049223C (zh) 2000-02-09
DE69019164T2 (de) 1995-09-07
US5576002A (en) 1996-11-19
AU6898791A (en) 1991-07-18
ATE121947T1 (de) 1995-05-15
KR0158436B1 (ko) 1998-12-01
EP0504202B1 (en) 1995-05-03
PL288271A1 (en) 1991-12-16
JP2637845B2 (ja) 1997-08-06
CN1055541A (zh) 1991-10-23
PH30305A (en) 1997-02-20
IE68414B1 (en) 1996-06-12
CA2071811C (en) 2003-11-04
EP0504202A1 (en) 1992-09-23
CN1096516A (zh) 1994-12-21
CZ628490A3 (en) 1997-12-17
DK0504202T3 (da) 1995-10-02
RU2105568C1 (ru) 1998-02-27
JPH05505392A (ja) 1993-08-12
RO111416B1 (ro) 1996-10-31
NO307835B1 (no) 2000-06-05
CA2071811A1 (en) 1991-06-15
NO305275B1 (no) 1999-05-03
IL96676A (en) 1996-09-12
PL166035B1 (pl) 1995-03-31
IE904513A1 (en) 1991-06-19
NZ236471A (en) 1992-10-28
NO922316D0 (no) 1992-06-12
NO973311D0 (no) 1997-07-17
SI20008B (en) 2001-02-28
NO973311L (no) 1992-08-14
AU641715B2 (en) 1993-09-30
IL96676A0 (en) 1991-09-16
FI19991917A (fi) 1999-09-09
CN1036504C (zh) 1997-11-26
HUT64480A (en) 1994-01-28
FI104539B (fi) 2000-02-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL166659B1 (pl) Sposób wytwarzania frakcji gamma globuliny zdolnej do biernej ochrony przeciw zapaleniu opon mózgowo-rdzeniowych PL
US7291343B2 (en) Enterococcus antigens and vaccines
CA2223567C (en) Modified meningococcal polysaccharide conjugate vaccines
AU761927B2 (en) Conjugate vaccines for the prevention of dental caries
US7553490B2 (en) Vaccines against Escherichia coli O157 infection
JPH07503238A (ja) コレラ予防用の無毒化lps−コレラ毒素結合ワクチン
AU767047B2 (en) Vaccines against (escherichia coli) O157 infection

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20081214