PL166035B1 - Sposób wytwarzania koniugatu antygenowego PL - Google Patents

Sposób wytwarzania koniugatu antygenowego PL

Info

Publication number
PL166035B1
PL166035B1 PL90288271A PL28827190A PL166035B1 PL 166035 B1 PL166035 B1 PL 166035B1 PL 90288271 A PL90288271 A PL 90288271A PL 28827190 A PL28827190 A PL 28827190A PL 166035 B1 PL166035 B1 PL 166035B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
gbmp
polysaccharide
protein
group
antibodies
Prior art date
Application number
PL90288271A
Other languages
English (en)
Other versions
PL288271A1 (en
Inventor
Harold J Jennings
Francis Michon
Original Assignee
Nat Research Council
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Nat Research Council filed Critical Nat Research Council
Publication of PL288271A1 publication Critical patent/PL288271A1/xx
Publication of PL166035B1 publication Critical patent/PL166035B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/12Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria
    • C07K16/1203Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria
    • C07K16/1228Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria from Enterobacteriaceae (F), e.g. Citrobacter, Serratia, Proteus, Providencia, Morganella, Yersinia
    • C07K16/1232Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria from Enterobacteriaceae (F), e.g. Citrobacter, Serratia, Proteus, Providencia, Morganella, Yersinia from Escherichia (G)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/025Enterobacteriales, e.g. Enterobacter
    • A61K39/0258Escherichia
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/095Neisseria
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/12Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria
    • C07K16/1203Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria
    • C07K16/1217Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria from Neisseriaceae (F)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/60Medicinal preparations containing antigens or antibodies characteristics by the carrier linked to the antigen
    • A61K2039/6031Proteins
    • A61K2039/6037Bacterial toxins, e.g. diphteria toxoid [DT], tetanus toxoid [TT]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)

Abstract

1. Sposób wytwarzania koniugatu antygenowego, znamienny tym, ze polisacharyd grupy B Neisseria meningitidis zawierajacy N-acetylowa grupe w reszcie kwasu sialowego modyfikuje sie przez zastapienie grupy N-acetylowej grupaN-C4-C8 -acylowa i tak otrzymany modyfikowany polisacharyd sprzega sie z immunologicznie odpowiednim nosnikiem bial- kowym. PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania koniugatu antygenowego, zawierającego chemicznie modyfikowane polisacharydy grupy B Neisseria meningitidis, służącego do wytwarzania szczepionki.
Zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych (meningitis) spowodowane przez N.meningitidis grupy B oraz E.Coli K1 pozostaje ważnym problemem w zdrowiu światowym. Zapalenie opon grupy B występuje zarówno w endemicznych jak i epidemicznych sytuacjach i wynosi w przybliżeniu połowę wszystkich zarejestrowanych przypadków dwoinkowego zapalenia opon mózgowych, podczas gdy K1-pozytywne E.Coli są główną przyczyną meningitis u noworodków. Obecnie brak jak dostępnej w handlu szczepionki przeciw chorobie spowodowanej przez dwoinki zapalenia opon grupy B i E.Coli K1. W większej części jest to spowodowane faktem, że grupa B dwoinkowego polisacharydu GBMP (group B meningococcal polysaccharide) jest słabo immunogenna u ludzi. Istnieje kilka dotychczas opisanych projektów szczepionek, opartych na kompleksach GBMP z zewnętrznymi membranami proteinowymi, lecz jak dotychczas nie stwierdzono ich skuteczności u ludzi.
Ostatnio opisano nowy projekt szczepionki, opartej na syntetycznym, chemicznie modyfikowanym połączeniu (N-propionylowanej) grupy B polisacharydu-proteiny (N-Pr-GBMpproteina). Szczepionka wzbudza u myszy wysokie miano EgG przeciwciał, które nie tylko nie są ochronne, lecz również krzyżowo reagują z niemodyfikowanym GBMP (to jest N-acetyloGBMP). Koncepcja ta jest opisana w opisie patentowym St. Zjedn. Ameryki nr 4 727 136.
Wywnioskowano, że szczepionka, która podnosi poziom krzyżowo-reaktywnych przeciwciał, jak opisano w opisie St. Zjedn. Ameryki nr 4 727 136, mogłaby tylko być skuteczna kosztem zniszczenia immunotolerancji. Hipoteza ta jest poparta przez identyfikację zwykłego epitopu, składającego się z łańcucha a-(2-8)-powiązanych reszt kwasu sialowego (z wymogiem minimum 10 reszt) zarówno w rodzimym N-Ac-GBMP jak i ludzkich i zwierzęcych tkankach (Jennings, Contrib. Microbiol. Immunol., Bazylea, Karger, 1989, t. 10, 151-165). Te łańcuchy polisialosylowe (reszt kwasu sialowego) działają jako rozwijające antygeny i są w większej części związane ze stanem płodowym w przyczepności embrionowej neutralnej komórki (Finne i wsp. Biochem. Biophys. Res. Commun., 1983,112,482). W czasie dojrzewaniapost-natalnego, antygen ten jest regulowany w dół (Friedlander i wsp., J. Cell Biol. 1985, 101,412), lecz pojawia się u dojrzałych ludzi w trakcie regeneracji schorowanych mięśni (Cashman i wsp. Ann. Neuron,
166 035
1987, 21, 481) w komórkach rakowych (Roth i wsp., Proc. Natl. Acad. Sci. 1988, 85, 299) i w naturalnych komórkach bójczych (NK) i CD3+T (Husmann i wsp., Eur. J. Immunol., 1989, 19, 1761). Mimo, że konsekwencje utraty tolerancji wobec antygenów płodowych nie zostały jeszcze stwierdzone, ogólnie uznano, że z powodu reakcji krzyżowej połączenia N-Pr-GBMPproteina będą poddane surowemu badaniu przez agencje licencyjne, co w rezultacie powoduje wysokie koszty i opóźnienie, z. powodu przeprowadzenia doświadczeń koniecznych do wykazania bezpieczeństwa szczepionki przed jej zatwierdzeniem do komercjalnej sprzedaży.
Celem. wynalazku jest opracowanie szczepionki wykazującej zwiększone właściwości immunogenne w porównaniu z N-Pr-GBMP-proteiną. Celem jest również opracowanie szczepionki wykazującej zasadniczo zredukowane krzyżowe reagowania z GBMP.
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania koniugatu antygenowego, zawierającego modyfikowany polisacharyd grupy B Neisseria meningitidis, mający N-acetylowe (C2) grupy reszty kwasu sialowego zastąpione przez grupę C^-Cs-acylową.
Sposób według wynalazku obejmuje etap łączenia N-C4-Cg-acylowanego polisacharydu z odpowiednim immunologicznie białkiem. Otrzymany koniugat antygenowy ma zwiększoną immunogenność przy zasadniczo zredukowanym wzbudzaniu krzyżowo reagujących przeciwciał.
Otrzymany koniugat służy do wytwarzania szczepionki, zawierającej ten koniugat N-C4C8-acylopolisacharyd-białk^wo, w połączeniu' z odpowiednim nośnikiem lub rozcieńczalnikiem. Szczepionki mogą również zawierać terapeutycznie efektywną ilość dodatku przeznaczonego do stosowania u ludzi, np. fosforanu glinu lub wodorotlenku glinu.
Sposób szczepienia ssaków przeciw zakażeniom N meningitidis i E. Coli K1 polega na podawaniu pozajelitowo ssakom, które poddane zostały zakażeniu, w tym, ludzi, immunologicznie efektywnej ilości szczepionki. Szczepionkę zazwyczaj podaje się w ilości około 1-50 mikrogramów na kilogram wagi ciała, np. 5-25 pg/kg.
W ostatnich doświadczeniach stwierdzono, że większość bakteriobójczych i ochronnych' przeciwciał wywołanych przez połączenie N-Pr-GBMP-proteina, opisane w wymienionej wyżej publikacji Jenningsa i opisie patentowym St. Zjedn. Ameryki nr 4 727 136 nie jest związana z przeciwciałami reagującymi z GBMP. W świetle tego należy sądzić, że N-Pr-GBMP imituje unikalny bakteriobójczy epitop na powierzchni grupy B dwoinki zapalenia opon.
Niniejszy wynalazek opiera się na stwierdzeniu, że możliwe jest chemiczne zsyntetyzowanie modyfikowanego GBMP, który imituje bakteriobójczy epitop i który w postaci połączenia nie tylko wykazuje zwiększoną immunogeniczność, lecz również zapobiega zasadniczo wzbudzaniu przeciwciał, które krzyżowo reagują z GBMP.
Dokonano syntezy wielu różnych chemicznie modyfikowanych GBMP i indywidualnie przyłączono do proteiny, a następnie wstrzykiwano połączenia myszom. Wyniki porównywano w wynikami otrzymanymi dla połączenia N-Pr-GBMP-proteina. Nieoczekiwanie stwierdzono, że połączenia N-C4-Cs-acylo GBMP-proteina, np. połączenia n-butanoilo-, izobutanoilo-, n-pentanoilo-, izopentanoilo-, neopentanoilo-, heksanoilo-, heptanoilo- i oktanoilo-, a zwłaszcza N-butanoilo (N-Bu) GBMP-proteina zasadniczo naśladuje bakteriobójczy epitop przy zasadniczej redukcji wzbudzania krzyżowo reagujących przeciwciał.
GBMP wyizolowuje się z bakterii N. meningitidis metodami znanymi w tej dziedzinie techniki. W jednej z tych metod dwoinkę zapalenia opon mózgowych grupy B (szczep 98 1B) hoduje się w temperaturze 37°C w fermentatorze z zastosowaniem 30 g odwodnionej brzeczki Todd Hewitfa (wytwarzanej przez Difco Laboratories, Detroit, Michigan) na · 1 litr wody destylowanej. Przed rozpoczęciem hodowli w fermentatorze inicjuje się hodowlę liofilizowanego szczepu w słoju w temperaturze 37°C na płytkach z 5% wag. agarem z krwi owczej (wytwarzanym przez Difco Laboratories, Detroit, Michigen). Następnie bakterie przenosi się kolby Erlenmeyer a zawierającej określoną powyżej brzeczkę Told Hewitfa w ilości 1 litra, po czym kolbę wstrząsa się w temperaturze 37°C w czasie 7h przy 190 obrotach na minutę. Otrzymane inokulum wprowadza się następnie do fermentatora. Po hodowaniu w fermentatorze w czasie 16 h bakterie zabija się przez dodanie formaliny do końcowego stężenia wynoszącego 0,75%. Bakterie wydziela się na drodze ciągłego odwirowania, a GBMP wyizolowuje się z supernatantu i oczyszcza zasadniczo w sposób opisany przez Bundle i współprac. w J. Biol.
166 035
Chem., 249, 4797-4801 (1974) z tym wyjątkiem, że białko ekstrahuje się przez mieszanie roztworu surowego polisacharydu z zimnym o temperaturze 4°C 90% fenolem w miejsce gorącego o temperaturze 50-60°C. Ten właśnie sposób zapewnia to, że wytwarza się GBMP w postaci o wysokim ciężarze cząsteczkowym.
Bakterie E.coli (018 i K1: H7) (NRCC 4283) hoduje się w temperaturze 37°C w fermentatorze z destylowaną wodą zawierającą odwodnioną infuzję sercowo-mózgową (BHJ) w ilości 37 g/litr (wytwarzaną przez Difco Laboratories, Detroit, Michigan). Przed hodowlą w fermentatorze, liofilizowany szczep poddaje się hodowli w 50 ml określonego powyżej roztworu (BHJ) w kolbie Erlenmeyera, którą wstrząsa się w temperaturze 37°C w czasie 7h przy 200 obrotach na minutę. Hodowlę tę przenosi się do 1,5 litra określonego powyżej BHJ i prowadzi hodowlę w tym samych warunkach jak opisano powyżej w czasie 7h. Następnie inokulum przenosi się do fermentatora. Do wyizolowania i oczyszczania polisacharydu E.coli K1 stosuje się to samo postępowanie jakie opisano do wydzielania GBMP.
Należy podkreślić, że do wyizolowania i oczyszczania można stosować nie tylko opisane powyżej postępowanie lecz przydatne są także inne metody postępowania, np. metoda opisana przez Watso’a i współprac. w J.Immunol., 81, 331 (1958) oraz przedstawiona w wyżej wymienionym opisie patentowym Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 727 136.
Rodzimy polisacharyd poddaje się N-deacetylowaniu z otrzymaniem reaktywnej grupy aminowej w resztach kwasu sialowego. N-deacetylowanie można prowadzić znaną metodą, np. w zasadowym, wodnym środowisku w podwyższonej temperaturze, np. około 90-110°C, i przy wartości pH około 13-14. Jako zasadowe wodne środowisko stosuje się odpowiednio wodny roztwór wodorotlenku metalu alkalicznego, np. wodorotlenku sodu o stężeniu około 2M. Alternatywnie można zastosować hydrazynę w roztworze wodnym. Stopień N-deacetylowania może być różny i wynosi około 30%-100% w zależności od warunków. Korzystnie, N-deacetylowanie osiąga wartość około 90-100%. N-deacetylowany produkt można wydzielić, np. przez chłodzenie, zobojętnianie oczyszczanie, w miarę potrzeby, i liofilizację.
Przed N-deacetylowaniem, rodzimy polisacharyd ma średni ciężar cząsteczkowy w zakresie około 500 000 - 800 000.
W wyniku N-deacetylowania, wytwarza się fragmenty polisacharydu o średnim ciężarze cząsteczkowym w zakresie około 10 000 - 50 000.
Następnie, fragmenty N-deacetylowanego polisacharydu poddaje się N-acylowaniu z wytworzeniem odpowiadającego N-acylowanego produktu. N-acylowanie można prowadzić przez rozpuszczenie N-deacetylowanego polisacharydu w środowisku wodnym o wartości pH około 7,5-9,0. Następnie, dodaje się odpowiedni bezwodnik acylowy, ewentualnie z alkoholem dla zwiększenia rozpuszczalności i chłodzi do temperatury poniżej 10°C aż do zakończenia reakcji. W razie potrzeby, - środowisko reakcji można oczyszczać, np. na drodze dializy, po czym N-acylowany produkt wydziela się, zasadniczo na drodze liofilizacji. Reakcja zasadniczo kończy się w czasie około 10-20h. Stopień N-acylowania, mierzony metodami analitycznymi, zazwyczaj 'H-NMR wynosi co najmniej 90% i dochodzi do 100%. Reakcja N-acylowania nie wpływa w znaczący sposób na redukcję masy cząsteczkowej fragmentów wielocukrowych.
Korzystnie, w sposobie według wynalazku dobiera się N-acylowany materiał o średnim ciężarze cząsteczkowym odpowiadającym około 30-200 resztom kwasu sialowego. Osiąga się to zasadniczo na drodze filtracji żelowej N-acylowanego GBMP z użyciem kolumny wypełnionej żelem, stanowiącym mieszaninę poliacyloamidu i agarozy-Ultragel (znak towarowy) AcA 44 (średnica perełek 60-140 cm) oraz jako eluentu roztworu soli, buforowanego fosforanem (PBS).
W sposobie według wynalazku stosuje się N-acylowany materiał o średnim ciężarze cząsteczkowym 10 000 - 40 000 np. 10 000 - 15 000. Otrzymuje się go przez zbieranie frakcji eluentu z kolumny zawierającej N-acylowany GBMP materiał o średnim ciężarze cząsteczkowym. N-acylowany materiał o wyższym średnim ciężarze cząsteczkowym np. w zakresie 30 000 - 40 000, jest odpowiedni również do zastosowania w sposobie według wynalazku.
Szczepionkę sposobem według wynalazku wytwarza się przez łączenie N-acylowanego polisacharydu z immunologicznie odpowiednim białkiem nośnikowym. Korzystnie, samo białko
166 035 nośnikowe jest immunogenem. Przykładami odpowiednich białek nośnikowych są anatoksyna tężca, anatoksyna błonicy, materiały reakcji krzyżowych (CRMs), korzystnie CRM197 produkowany przez Sclavo Ltd., Siena, Włochy oraz białkowe nośniki bakteryjne, np. białka zewnętrznej membrany dwoinki zapalenia opon mózgowych.
Do łączenia zmodyfikowanych fragmentów polisacharydu z białkiem nośnikowym można stosować każdy sposób łączenia. Korzystny sposób łączenia przedstawia opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 356 170, tj. sposób polegający na wprowadzeniu terminalnych grup aminowych na drodze redukcyjnego aminowania. Polisacharyd i białko są więc połączone przez wiązanie -CH2-NH-białkowe. Jednakże, zrozumiałym jest, że konjugowane szczepionki wytwarzane sposobem według wynalazku nie ograniczają się do wytwarzania na drodze redukcyjnego aminowania. Tak więc, szczepionki te można również otrzymać na drodze sprzęgania N-acylowanego polisacharydu z białkiem nośnikowym z zastosowaniem odstępnika (spacer) dihydrazydoadypinowego w sposób opisany przez Schneerson’a R. i współprac. w Preparation, Characterization and Immunogenicity of Haemophilus influenzae type b Polysaccharide-Protein Conjugates, J. Exp. Med., 1952, 361 - 476 (1980) oraz przedstawiony w opisie patentowym Stanów Zjedn. Ameryki nr 4 644 059 na rzecz Lauce K.Gordon’a. Alternatywnie można stosować technologię dwuskładnikowego odstępnika rozwinięcia przez Merck’a jaką opisał Marburg S. i współprac. w Biomolecular Chemistry of Macromolecules; Synthesis of Bacterial Polysacharide Conjugates with Neisseria meningitide Membrane Protein”, J.Am.Chem. Soc., 108,5282-5287 1986) albo w miarę możliwości, metodologię końców redukcyjnych, przedstawioną przez Anderson’a w opisie patentowym Stanów Zjedn. Ameryki nr 4 673 574.
Uzyskane N-acylowane połączenia polisacharyd-białko nie wykazują znaczącego usieciowania i są rozpuszczalne w roztworach wodnych. Powoduje to, że połączenia wytwarzane sposobem według wynalazku nadają się dobrze do zastosowania jako szczepionki.
Uzyskane połączenia N-acylowany polisacharyd-białko wytworzone sposobem według wynalazku poddawane są testom in vitro u myszy i wykazują ulepszone właściwości immunogenne w porównaniu z N-propionylowanym polisacharydem. Ponadto, obserwuje się zredukowane wytwarzanie antyciał reaktywnych krzyżowo. W świetle tego, należy wierzyć, że szczepionki wytwarzane sposobem według wynalazku są użyteczne przeciw zapaleniu opon mózgowych powodowanemu przez mikroorganizmy N.meningitidis grupy B albo E. coli K1. Szczególnie interesujące są szczepionki do uodpornienia niemowląt, które są najbardziej wrażliwe na bakteryjne zapalenia opon mózgowych.
Szczepionkę sposobem według wynalazku wytwarza się zwykle przez dyspersję koniugatu w odpowiednim farmaceutycznie dopuszczalnym nośniku, takim jak fizjologiczna solanka lub inna ciecz odpowiednia do iniekcji. Szczepionkę podaje się pozajelitowo, np. podskórnie, dootrzewnowo lub domięśniowo. Można również stosować zwykłe dodatki do szczepionek, np. stabilizatory, takie jak laktoza lub sorbit oraz adjuwanty, takie jak fosforan, wodorotlenek lub siarczan glinu.
Odpowiednia dawka szczepionki dla niemowląt mieści się w zakresie około 5-25 mikrogramów albo około 1-10 mikrogramów na kilogram ciężaru wagowego pacjenta.
Następujące przykłady ilustrują wynalazek. Do oceny przygotowano połączenia N-acetylo-, N-propionylo-, N-butanoilo, N-izobutanoilo, N-pentanoilo i N-heksanoilo-GBMP-proteina, a wyniki przedstawiono w przykładach.
Materiały i sposoby wytwarzania połączeń
a) materiały
Bezwodniki prop ion o wy, masłowy, izomasłowy, pentanowy i heksanowy razem z kwasem kolominowym otrzymano z Sigma Chemicals Co., St.Louis, MO. Ponieważ kwas kolominowy jest strukturalnie identyczny Z GMBP, oznacza się go dalej jako GBMP. Anatoksynę tężcową (TT) otrzymano z Institut Armand Frappier, Laval, Quebec, a jej postać monomeryczną, stosowaną we wszystkich połączeniach otrzymano przez przepuszczenie powyższego preparatu przez złoże żelu z agarozy-Biol-Gel (znak towarowy) A 0,5 (200-400 mesh) kolumna (1,6 x 90 cm) (Biol-Rad, Richmond, CA), zrównoważona i eluowana za pomocą 0,01 M buforowanej fosforanem soli fizjologicznej (PBS) (pH 7,4).
166 035
b) N-deacetylowanie GBMP
1,0 g GBMP (sól Na+) rozpuszczono w 5 ml 2M NaOH i po dodaniu 150 mg NaBHj roztwór ogrzewano w 110°C w ciągu 6 godzin w pojemniku (60 ml) z nakręconą nasadką z politetrafluoroetylenu. Procedura ta jest zasadniczo taka, jak opisana w J.Immunol., 134, 2651 (1985) i w opisie patentowym St. Zjedn. Ameryki nr 4 727 136. Oziębiony rozcieńczony roztwór wyczerpująco dializowano w wodzie destylowanej w 4°C i liofilizowano. Fakt otrzymania N-deacetylowanego GBMP stwierdzono przez nieobecność sygnału metyloacetamidowego (singlet przy delta 2,07) w widmie 1H-NMR N-deacetylowanego GBMP.
c) N-acylowanie GBMP
1,0 g N-deacetylowanego GBMP rozpuszczono w 50 ml 5% wodnego NaHCO3. Do pięciu indywidualnych próbek (10 ml powyższego roztworu) dodano bezwodniki propionowy, masłowy, izomasłowy, pentanowy lub heksanowy. Odczynniki te dodano 3 x 0,5 ml w ciągu 3 godzin w temperaturze pokojowej, przy czym roztwór utrzymywano przy pH 8,0 za pomocą 0,5 N NaOH. Przy każdym dodawaniu bezwodnika dodawano jednocześnie 0,5 ml metanolu w celu zwiększenia rozpuszczalności. Otrzymane roztwory mieszano w ciągu 16 godzin w 4°C, wyciągowo dializowano w wodzie destylowanej; w 4°C i liofilizowano. Poszczególne N-propionylowane, N-butanoilowane, N-izobutanoilowane, N-pentanoilowane i N-heksanoilowane GBMP otrzymano z wydajnością powyżej 90%. W każdym przypadku, zasadniczo pełne N-acylowanie potwierdzono przez zanikanie w widmie ]H-NMR N-deacetylowanego GBMP.
d) Określanie wielkości fragmentów różnych N-acylowanych GBMP.
Dla otrzymania żądanej średnicy masy cząsteczkowej N-acylowanego GBMP zastosowano filtrację przez żel, używając Ultragel (znak towarowy) AcA 44 (średnica złoża 60-140 μm) kolumna (IBF). Eluowane z kolumny frakcje przy Kd 0,5 do Kd 0,7 zmierzone przez FLpC (patrz poniżej) zbierano, dializowano i liofilizowano. Zakres wartości Kd odpowiada N-acylowanemu GBMP o około 30-50 resztach kwasu sialowego średnia masa cząsteczkowa 1)000 - 15000 zazwyczaj 12000). Zbierano również i sprzęgano frakcje w zakresie Kd 0,2-0,4, odpowiadające fragmentom o średniej masie cząsteczkowej w zakresie 30000-40000.
Tak więc pożądany jest materiał eluowany w zakresie Kd 0,2-0,7.
e) Połączenia polisacharydowe
Końcowe grupy aldehydowe wprowadzano do N-acylowanego GBMP przez utlenianie nadjodanem (patrz opis patentowy St.Zjedn.Ameryki nr 4 356 170). Powyższe N-acylowane fragmenty GBMP utleniano w 0,1 M wodnym NaJOą (metanadjodan sodu) (10 ml) w ciągu 2 godz. w temperaturze pokojowej w ciemności. Nadmiar nadjodanu rozkładano dodaniem 1 ml glikolu etylenowego i roztwór wyczerpująco dializowano w 4°C i liofilizowano. Zastosowanie NaBH4 w procesie N-deacetylowania (oprócz GBMP) daje w wyniku przekształcenie końcowych zredukowanych reszt kwasu sialowego każdego z N-acylowanych GBMP, do otwartych reszt łańcucha poliolu. Ten rodzaj reszt jest wrażliwy na nadjodan (patrz J.Immunol., 127, 1011 (1981) i opis patentowy St.Zjedn. Ameryki nr 4 356 17o) i prowadzi w rezultacie do wprowadzenia grup aldhydowych do N-acylowanych fragmentów GBMP na obydwu końcach.
100 mg utlenionych fragmentów rozpuszczono w 0,1 M NaHCO3 (pH 8,1) i dodano do roztworu 2 ml buforu i 20 mg TT. Następnie dodano 40 mg cyjanoborowodorku sodu (NaCNBHs) i roztwór łagodnie mieszano w temperaturze pokojowej. Przebieg reakcji sprzęgania śledzono przy pomocy FPLC, stosując kolumnę filtracyjną z żelem, zawierającą Superose (znak towarowy) 12 HRd/30 (Pharmacia), przy równomiernym przepływie (1 ml/min) buforu PBS o pH 7,2 z monitorowaniem zarówno białek jak i N-acylowanych fragmentów GBMP przy długości fali 214 nm.
Fragmenty wykazywały Kd0,6TT Kd0,39 akoniugaty Kd0,23. Proces sprzęgania kończy się gdy wszystkie Tt wyczerpią się, co określa brak piku w chromatogramie FPLC, odpowiadającego składnikowi o wartości Kd 0,39. W większości przypadków łączenie zostało zakończone w ciągu 2 dni, lecz całkowity czas reakcji trwał 4 dni. Potencjalne nieprzereagowane grupy aldehydowe redukowano na koniec dodatkiem 20 mg borowodorku sodu przed filtrowaniem przez żel.
Połączenia polisacharyd -TT oddzielano od fragmentów polisacharydu przez filtrację przez żel, stosując kolumnę z żelem z agorozy Bio Gel A z PBS jako eluentem. Eluent zawierający
166 035 koniugat dializuje się w wodzie destylowanej i lifilizuje. Połączenia N-acylowany GBMP-TT zawierają 12-30%, zazwyczaj 12-20% kwasu sialowego, jak określono metodą rezorcynolową opisaną przez Svennerholma L., Quantitative Estimation of Sialic Acids II A Colorimetric Resorcinal-Hydrochloric Acid Methol, Biochim Biophys. Acta 24, 604 (1957). To wskazuje, że koniugaty mają stosunek molowy polisacharydu do TT równy 2-3:1.
Szczepienie i próby immunologiczne
a) Procedury szczepienia
Dwadzieścia samic białych myszy CFI, mających 8-10 tygodni zaszczepiono dootrzewnowo (3 razy, w odstępach 3 tygodni) za pomocą każdego z połączeń N-acylowanego GBMP-TT z dodatkiem Reunda (FCA) (Difco, Detroit, MI). Każda porcja szczepionki zawierała wystarczającą ilość połączenia (10-12 gm) odpowiadającą zawartości 2 gg kwasu sialowego . Po upływie jedenastu dni po trzecim wstrzyknięciu, myszy uśmiercano. Przeprowadzono następujące testy z surowicami.
b) Próba wiązania radioaktywnego antygenu
Próbę tę przeprowadzono przez modyfikację techniki Farra, stosując znakowany in vitro [3H] GBMP (Jennings H.J. i wsp., Determinant Specificities of the Groups B i C polisacharydów z Neiseria meningitidis, J. Immunol, 134, 2651 (1985) (lub znakowany [3h] N-Pr-GBMP ) Jennings H.J., i wsp. Unique Intermolecular Bactericidal Epitope involving the Homo-Sialo Polysaccharide Capsule on the Cell Surface of Group B Neisseria meningitidis and Escheirchia coli K1, J. Immunol, 142, 3585-3591, 1989). Mieszaninę reakcyjną dla próby wiązania radioaktywnego antygenu otrzymano przez zmieszanie w probówkach mikrotestowych polipropylenowych Eppendorfa 20 gl zebranego antiserum, od grup 20 myszy zaszczepionych każdym z indywidualnych N-acylowanych GBMP-TT połączeń, rozcieńczonych do 100 gm za pomocą PBS, za pomocą znakowanego [3h] GBMP i [3H]-oznaczonych N-Pr, GBMP w 50 gl PBS. Po inkubacji w 4°C w ciągu 16 godzin dodaje się 150 gl nasyconego (w 4°C) siarczanu amonu (pH 7,0), probówki wstrząsa się i odstawia w 4°C na 30 minut. Następnie probówki wiruje się przy 1500 obrotach na minutę w ciągu 10 minut, po czym pobiera się dwie próbki po 130 gl. Próbki miesza się z 2 ml wody i scyntylatorem ksylenowym (ACS) i oznacza ich reaktywność w liczniku scyntylacyjnym. Wyniki zestawiono tabeli 1.
Tabela 1 3
Wiązanie znakowanego [ H] N-Ac-GBMP z różnymi mysimi surowicami anti-N-acyloGBMP-TT
Antiserum % wiązania3
1 2 3 4
N-Pr-GBMP-TT 41 40 39 12
N-Bu-GBMP-TT 4 4 7 4
N-IzoBu-GBMP-TT 9 - - -
N-Pen-GBMP-TT 36 - - -
N-Hex-GBMP-TT 16 - - -
a- cztery próby wiązania prowadzono na zbiorczych surowicach odpornościowych 20 zaszczepionych myszy.
Stosowane skróty:
N-Ac = N-acetyloN-Pr = N-propionyloN-Bu = N-butanoiloN-izoBu = N-izobutanoiloN-Pen = N-pentanoilo
N-Hex = N-heksanoilo
Oznaczenia 1, 2, 3 i 4 są wynikami czterech powtórzonych doświadczeń.
Tabela 1 ukazuje, że N-Ac-GBMP (niosąca ten sam epitop co płodowy N-CAM) wiąże się słabiej z surowicą odpornościową wywołanego przez N-Bu-GBMP, N-izoBu-GBMP, N-PenGBMP i N-Hex-GBMP niż dla wywołanego przez N-Pr-GBMP. Można więc wywnioskować z
16(5035 tabeli 1, że połączenia N-Bu-, N-izoBu-, N-Pen- i N-Hex-polisacharyd w mniejszym stopniu powodują powstanie krzyżowo reagujących przeciwciał niż połączenie N-Pr-.
c) Ilościowa analiza precypitacyjna
Doświadczenia te przeprowadzono metodą Kabat’ a i Mayer' a (Experimental Immunochemistry, Charles C.Thomas, Springfield, str.22, 1961). Próbki (100 pl) surowiec anty-N-acylGBMP-TT (rozcieńczone 5-krotnie w PBS) poddawano w probówkach działaniu wzrastających stężeń N-acetylo- (kwas kolominowy), N-propionylo-, N-butanoilo-, N-izobutanoilo-, N-pentanoilo- i N-hexanoilo-GBMP, w całkowitej objętości 200 pl (dopełnionej PBS). W doświadczeniach tych użyto pochodnych z frakcji o wyższym ciężarze cząsteczkowym. Zostały one otrzymane z eluatów z kolumny Ultragel AcA (Kd= 0,4, oznaczone metodą FPCL), uprzednio używanej do pomiarów wielkości fragmentów N-acylowanych GBMP. Probówki inkubowano przez 4 dni w 4°C przy codziennym mieszaniu, odwirowano i ilość białka przeciwciała oznaczano metodą Lowry i wsp., (Protein Measurement with the Folin Phenol Reagent, J.Biol.Chem., 1951, 1933, 265). Rezultaty przedstawiono w tabeli 2.
Tabela 2
Wytrącanie a) mysich surowic anty-N-acylo-GBMP-TT przy użyciu różnych N-acylo-GBMP jako antygenów strącających
Surowica odpornościowa Antygen N-acylo-GBMP
N-acetyl N-propyl N-butyl N-pentyl N-hexyl
N-Pr-GBMP-TT 0,16 0,40 0,20 0,15 0,15
N-Bu-GBMP-TT 0,04 1,15 2,60 3,20 1,80
N-Pen-GBMP-TT 0,13 0,38 0,44 6,35 3,55
N-Hex-GBMP-TT 0,02 0,08 0,80 4,15 4,40
a) Maksymalna ilość wytrąconego przeciwciała wyrażona w mg/ml surowicy odpornościowej.
Jeśli chodzi o reakcję krzyżową, to pierwsza kolumna w tabeli 2 wskazuje, iż niewiele przeciwciał dających odczyn krzyżowy indukuje się w wyniku działania sprzężeń N-Bu i N-Hex w porównaniu ze sprzężeniem N-Pr. Można również zauważyć, że sprzężenie N-Pen powoduje powstawanie mniejszej ilości przeciwciał dających reakcję krzyżową niż sprzężenie N-Per. Biorąc pod uwagę immunogenność, w znaczeniu odpowiedzi homologicznej, z tabeli 2 wynika, że sprzężenia N-Bu (2,60), N-Pen-(6,35) i N-Hex-(4,40) GBMP-TT są bardziej immunogenne niż analogiczne sprzężenie N-Pr-GBMP (0,40).
d) Test ELISA
Studzienki EIA płytek serologicznych (Flow Labs, Missisauga, Ontario,Canada) pokrywano roztworami GBMP-, N-Pr-GBMP- lub N-Bu-GBMP- sprzężonymi z BSA, o stężeniu 10 pg/ml w PBS, w ilości 100 pl na 1 studzienkę. Płytki pozostawiono na 18 godzin w 4°C i przemywano 1% roztworem BSA w PBS przez 10 min w temperaturze pokojowej (etap blokowania). Następnie do studzienek dodawano po 100 pl seryjnie 10-krotnie rozcieńczanych mysich surowic anty-N-Acyło-GBMP-TT i płytki inkubowano przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Po przemyciu SBT płytki inkubowano w ciągu 1 godziny w temperaturze pokojowej z 50 pl odpowiednio rozcieńczonej koziej anty-mysiej immunoglobuliny sprzężonej z peroksydazą (Kirkegard and Perry Laboratories), a następnie zawartość studzienek odsączano i płytki przemywano pięciokrotnie SBT. W końcu, do każdej studzienki dodawano po 50 pl substratu peroksydazy - błękitu czterometylenowego (TMB) (Kirkegard and Perry Laboratories) i po 10 minutach oznaczano przy pomocy spektrofotometru Multiscan (Flow Laboratories, Mississauga, Ontario). Rezultaty przedstawiono w tabeli 3.
166 035
Tabela 3
Miareczkowanie zbiorczej mysiej surowicy anty-N-acylo-GBMP-TT w teście ELISA przy użyciu N-acylo-GBMP-BSA
Antygen powlekający • a) Miana surowic odpornościowych
a.N-Pr-GBMPb) a.N-Bu-GBMPb) a.N-Izobu-GBMPb)
N-Ac-GBMP-BSA 7 800 1 000 7 000
N-Pr-GBMP-BSA 40 000 39 000 9 800
N-Bu-GBMP-BSA 26 000 52 000 9 700
N-IzoBu-GBMP-BSA - - 25 000
a) Miano (GM) = odwrotność rozcieńczenia przy 50% maksymalnej absorbancji, przy długości fali 450 nm.
b N-acylo specyficzne surowice odpornościowe indukowane u myszy przy zastosowaniu homologicznych sprzężeń N-acylo-GBMP-TT.
Jeśli chodzi o odczyn krzyżowy to z tabeli 3 widać, że sprzężony N-Bu-GBMP-TT indukuje mniej przeciwciał dających reakcję krzyżową w stosunku do N-Ac-GBMP (1000) niż sprzężenie N-Pr-GBMP-TT (7800). Jest to spowodowane tym, że GBMP mniej wiąże się z przeciwciałem indukowanym przez N-Pr-GBMP-TT niż z przeciwciałem indukowanym przez N-Bu-GBMP-TT. Podobne uwagi stosuje się do sprzężenia N-izoBu-GBMP-TT.
Co się tyczy immunogenności, to sprzężenie N-Bu jest bardziej immunogenne niż analogiczne N-Pr, na co wskazują miana wiązania homologicznego 52 000 (N-Bu) i 40 000 (N-Pr).
e) Próba na hamowanie wiązania radioaktywności
Roztwory o wzrastającym stężeniu N-acylo-GBMP w PBS, pochodzących z frakcji o wyższej masie cząsteczkowej, dodawano (w ilości 80 gl) w charakterze inhibitora do 20 gl mysiej surowicy anty-N-Pr-GBMP-TT co stanowiło ilość wystarczającą do związania 50% znakowanego 3H-N-Pr-GBMP w nieobecności inhibitora. Po delikatnym wymieszaniu probówki inkubowano 16 godzin w 4°C, a testy przeprowadzano dokładnie tak jak to opisano uprzednio dla testu wiązania radioaktywnego przeciwciała. Procent hamowania wiązania obliczano stosując następujący wzór:
procent hamowania = 100 x cpm z inhibitorem - cpm bez inhibitora cpm pez przeciwciała - cpm bez inhibitora (cpm = ilość zliczeń na 1 min)
Rezultaty przedstawiono w tabeli 4.
Tabela 4
Zahamowanie wiązania znakowanego 3H-N-Pt-GBMP z przeciwciałami IgG2A, IgG2b (A)a i IgG1 (B)a indukowanymi u myszy sprzężonym związkiem anty-N-Pr-GBMP-TT
Inhibitor b A B
N-Ac-GBMP >50,0 >50,0
N-Pr-GBMP 0,6 0,3
N-Bu-GBMP 0,3 0,2
N-IzoBu-GBMP >50,0 -
N-Pen-GBMP 2,3 2,5
N-Hex-GBMP 10,2 10,0
a) Frakcje mysiej poliklonalnej surowicy anty-N-Pr-GBMP-TT opisane w pracy Jennings'ai wsp., J.Immunol. 1989, 142, 3585-3591.
Ilość mikrogramów inhibitora dająca 50% zahamowanie wiązania.
166 035
Próby właściwości bakteriobójczych. Testy te przeprowadzano według metody Jennings’a i wsp. (J.Exp. Med., 1987, 165, 1207-1211). W testach używano Neisseria meningitidis szczep B (M 986). Rezultaty podano w tabeli 5.
Tabela 5
Wiązanie znakowanego' H-N-Pr-GBMP z różnymi mysimi surowicami anty-N-acylo-GBMP-TT oraz miano aktywności bakteriobójczej odpowiednich surowic odpornościowych
Surowica odpornościowa Ilość surowicy odpornościowej3) (pl) Miano aktywności bakteriobójczej^
N-Pr-GBMP-TT 13 128
N-Bu-GBMP-TT 10 64
N-IzoBu-GBMP-TT ND 64
N-Pen-GBMP-TT 24 64
N-Hex-GBMP-TT > 100 8
N-Ac-GBMP-TT > 100 8
a) Ilość pl surowicy odpornościowej (5-krotnie rozcieńczonej PBS) wymagana do 50% wiązania.
b) Doświadczenie z rozcieńczaniem: różnica jednego rozcieńczenia, np. 128 w porównaniu do 64 leży w zakresie błędu doświadczalnego.
Tabela 5 wykazuje, iż N-Bu-GBMP jest równie dobrym inhibitorem jak N-Pr-GBMP przy wiązaniu tego drugiego związku do jego własnych homologicznych przeciwciał. Tak więc zastosowanie N-Bu-GBMP w miejsce N-Pr-GBMP nie powoduje żadnej istotnej utraty właściwości wykazywanych przez N-Pr-GBMP. Tabela 5 przedstawia też, że N-Bu-GBMP wiąże się równie dobrze jak N-Pr-GBMP z przeciwciałami indukowanymi przez N-Pr-GBMP-TT. Surowice odpornościowe indukowane zarówno przez N-Bu-GBMP-TT jak i N-Pr-GBMP-TT wykazują podobne miana bakteriobójcze. Dowodzi to, iż N-Bu-, N-IzoBu- i N-Pen-GBMP są równocenne z N-Pr-GBMP pod względem zdolności imitowania bakteriobójczego epitopu na powierzchni meningokoków grupy B.
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz. Cena 1,00 zł.

Claims (6)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wytwarzania koniugatu antygenowego, znamienny tym, że polisacharyd grupy B Neisseria meningitidis zawierający N-acetylową grupę w reszcie kwasu sialowego modyfikuje się przez zastąpienie grupy N-acetylowej grupą N-CU-Cs-acylową i tak otrzymany modyfikowany polisacharyd sprzęga się z immunologicznie odpowiednim nośnikiem białkowym.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że sprzęganie prowadzi się przez wprowadzenie końcowych grup aldehydowych do N-acylowanego polisacharydu i sprzęga się grupy aldehydowe z grupami aminowymi proteiny za pomocą redukcyjnego aminowania.
  3. 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako grupę C4-Cs-acylową wprowadza się grupę n-butylową, izobutylową, n-pentylową, n-heksylową, n-heptylową lub n-oktylową.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako białko stosuje się anatoksynę tężcową, anatoksynę błonicy, materiał reagujący krzyżowo (CRM) i bakteryjny nośnik białkowy.
  5. 5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że jako CRM stosuje się CRM197.
  6. 6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że białko i polisacharyd wiąże się kowalencyjnie poprzez wiązanie -CH2NH-proteina.
PL90288271A 1989-12-14 1990-12-14 Sposób wytwarzania koniugatu antygenowego PL PL166035B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US44819589A 1989-12-14 1989-12-14

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL288271A1 PL288271A1 (en) 1991-12-16
PL166035B1 true PL166035B1 (pl) 1995-03-31

Family

ID=23779371

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL90302476A PL166659B1 (pl) 1989-12-14 1990-12-14 Sposób wytwarzania frakcji gamma globuliny zdolnej do biernej ochrony przeciw zapaleniu opon mózgowo-rdzeniowych PL
PL90288271A PL166035B1 (pl) 1989-12-14 1990-12-14 Sposób wytwarzania koniugatu antygenowego PL

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL90302476A PL166659B1 (pl) 1989-12-14 1990-12-14 Sposób wytwarzania frakcji gamma globuliny zdolnej do biernej ochrony przeciw zapaleniu opon mózgowo-rdzeniowych PL

Country Status (30)

Country Link
US (3) US5576002A (pl)
EP (1) EP0504202B1 (pl)
JP (1) JP2637845B2 (pl)
KR (1) KR0158436B1 (pl)
CN (4) CN1049223C (pl)
AR (1) AR243934A1 (pl)
AT (1) ATE121947T1 (pl)
AU (1) AU641715B2 (pl)
BR (1) BR9007917A (pl)
CA (1) CA2071811C (pl)
CZ (1) CZ283530B6 (pl)
DE (1) DE69019164T2 (pl)
DK (1) DK0504202T3 (pl)
ES (1) ES2071288T3 (pl)
FI (2) FI104539B (pl)
HR (1) HRP920872A2 (pl)
HU (2) HU9201966D0 (pl)
IE (1) IE68414B1 (pl)
IL (1) IL96676A (pl)
IN (1) IN171747B (pl)
NO (2) NO305275B1 (pl)
NZ (1) NZ236471A (pl)
PH (1) PH30305A (pl)
PL (2) PL166659B1 (pl)
RO (1) RO111416B1 (pl)
RU (1) RU2105568C1 (pl)
SI (1) SI20008B (pl)
WO (1) WO1991008772A1 (pl)
YU (1) YU24391A (pl)
ZA (1) ZA9010065B (pl)

Families Citing this family (47)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5648241A (en) * 1989-09-15 1997-07-15 The General Hospital Corporation Conjugate vaccine against group B streptococcus
AU641715B2 (en) * 1989-12-14 1993-09-30 National Research Council Of Canada Improved meningococcal polysaccharide conjugate vaccine
ES2160601T3 (es) * 1992-09-24 2001-11-16 Brigham & Womens Hospital Vacunas de conjugado de polisacaridos de estreptococos del grupo b tipo ii y tipo v-proteina.
US5439808A (en) * 1993-07-23 1995-08-08 North American Vaccine, Inc. Method for the high level expression, purification and refolding of the outer membrane group B porin proteins from Neisseria meningitidis
US6153406A (en) * 1993-07-23 2000-11-28 North American Vaccine, Inc. Method for the high level expression, purification and refolding of the outer membrane protein P2 from Haemophilus influenzae type B
US5700787A (en) * 1994-09-02 1997-12-23 Brigham & Women's Hospital, Inc. Capsular polysaccharide immunomodulator
US5679654A (en) * 1994-09-02 1997-10-21 Brigham & Women's Hospital, Inc. Capsular polysaccharide immunomodulator
US5747287A (en) * 1995-04-28 1998-05-05 North American Vaccine, Inc. Method for the high level expression, purification and refolding of the outer membrane group B porin proteins from Neisseria meningitidis
EP1090642B8 (en) * 1995-06-07 2010-08-11 GlaxoSmithKline Biologicals s.a. Vaccines comprising a polysaccharide antigen-carrier protein conjugate and free carrier protein
US5811102A (en) 1995-06-07 1998-09-22 National Research Council Of Canada Modified meningococcal polysaccharide conjugate vaccines
US6284884B1 (en) 1995-06-07 2001-09-04 North American Vaccine, Inc. Antigenic group B streptococcus type II and type III polysaccharide fragments having a 2,5-anhydro-D-mannose terminal structure and conjugate vaccine thereof
ZA97248B (en) * 1996-01-18 1997-07-18 Rohm & Haas Method for identifying and quantifying polymers utilizing immunoassay techniques
ATE252602T1 (de) 1996-08-27 2003-11-15 Chiron Corp Meningokokkus b-epitop ausbildende monoklonale antikoerper und deren verwendung zur herstellung von impfstoffzusammenstellungen
ATE208629T1 (de) 1996-08-27 2001-11-15 Chiron Corp Neisseria meningitidis serogruppe b glykokonjugate und verfahren zu deren verwendung
US6426074B1 (en) * 1997-03-19 2002-07-30 The Brigham And Women's Hospital Inc. Group B Streptococcus vaccine
EP0994723A1 (en) 1997-06-24 2000-04-26 Chiron Corporation Methods of immunizing adults using anti-meningococcal vaccine compositions
PT1630168E (pt) 1997-08-27 2011-07-20 Novartis Vaccines & Diagnostic Compostos miméticos moleculares de péptidos de meningococos do serogrupo b
ES2611464T3 (es) 1997-12-23 2017-05-09 Pfizer Ireland Pharmaceuticals Polisacárido capsular bacteriano para su uso como vacuna o para su unión a proteínas en vacunas de conjugados
NZ509986A (en) * 1998-08-19 2003-10-31 Baxter Healthcare S Immunogenic beta-propionamido-linked polysaccharide and oligosaccharide protein conjugates as vaccines
US6436653B1 (en) 1998-12-15 2002-08-20 Exiqon A/S Method for introduction of reporter groups into bacterial lipopolysaccharide-derived carbohydrates and the subsequent coupling of such derivatives onto solid surfaces
US7083777B1 (en) * 1999-04-02 2006-08-01 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Immunomodulating polymers
US6518037B2 (en) * 1999-11-12 2003-02-11 University Of Iowa Research Foundation Two-component system that controls bacterial membrane synthesis
GB9928196D0 (en) * 1999-11-29 2000-01-26 Chiron Spa Combinations of B, C and other antigens
SV2003000753A (es) 2000-12-05 2003-06-16 Brigham & Womens Hospital Uso de polisacaridos zwitterionicos para la especifica modulacion del progreso inmunologico
RU2322451C2 (ru) 2001-04-17 2008-04-20 Новартис Вэксинс Энд Диагностикс, Инк. Молекулярные миметики эпитопов менингококка в, которые вызывают выработку функционально активных антител
GB0115176D0 (en) * 2001-06-20 2001-08-15 Chiron Spa Capular polysaccharide solubilisation and combination vaccines
GB0121591D0 (en) * 2001-09-06 2001-10-24 Chiron Spa Hybrid and tandem expression of neisserial proteins
AR045702A1 (es) 2001-10-03 2005-11-09 Chiron Corp Composiciones de adyuvantes.
DK1490409T3 (da) * 2002-03-26 2009-03-23 Novartis Vaccines & Diagnostic Modificerede saccharider med forbedret stabilitet i vand
WO2004089407A2 (en) * 2003-03-31 2004-10-21 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Zwitterionic immunomodulators for the treatment of asthma and allergy
US7731967B2 (en) 2003-04-30 2010-06-08 Novartis Vaccines And Diagnostics, Inc. Compositions for inducing immune responses
JP4566194B2 (ja) 2003-08-12 2010-10-20 リポクセン テクノロジーズ リミテッド タンパク質の誘導体化及び結合のためのシアル酸誘導体
WO2006002402A2 (en) 2004-06-23 2006-01-05 Children's Hospital & Research Center At Oakland Polysaccharide derivatives and uses in induction of an immune response
US8148335B2 (en) 2004-06-23 2012-04-03 Children's Hospital & Research Center Oakland De-N-acetyl sialic acid antigens, antibodies thereto, and methods of use in cancer therapy
GB0428394D0 (en) * 2004-12-24 2005-02-02 Chiron Srl Saccharide conjugate vaccines
US8329184B2 (en) 2005-06-27 2012-12-11 Glaxosmithkline Biologicals S.A. Process for manufacturing vaccines
US8206726B2 (en) 2006-02-06 2012-06-26 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Zwitterionic polysaccharides for promotion of immune system maturation and health
GB0611914D0 (en) 2006-06-15 2006-07-26 Teti Giuseppe Peptides that mimic non-human cross-reactive protective epitopes of the group Bmeningococcal capsulsar polysaccharide
EP1872791A1 (en) 2006-06-30 2008-01-02 Institut Pasteur Use of bacterial polysaccharides for biofilm inhibition
US20100189740A1 (en) * 2007-06-20 2010-07-29 Francis Michon Modified polysaccharides for conjugate vaccines
ES2664753T3 (es) 2007-12-07 2018-04-23 Glaxosmithkline Biologicals Sa Composiciones de inducción de respuestas inmunes
WO2010083477A2 (en) 2009-01-16 2010-07-22 University Of Maryland, Baltimore Broad spectrum vaccine against non-typhoidal salmonella
WO2013009945A1 (en) 2011-07-12 2013-01-17 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Lipid-containing psa compositions, methods of isolation and methods of use thereof
EP2752403A1 (de) * 2013-01-08 2014-07-09 Sika Technology AG Amin für emissionsarme Epoxidharz-Produkte
WO2017031431A1 (en) 2015-08-19 2017-02-23 President And Fellows Of Harvard College Lipidated psa compositions and methods
US11491181B2 (en) 2016-07-15 2022-11-08 President And Fellows Of Harvard College Glycolipid compositions and methods of use
PE20191107A1 (es) * 2017-01-31 2019-08-26 Pfizer Composiciones de neisseria meningitidis y metodos respectivos

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4057685A (en) * 1972-02-02 1977-11-08 Abbott Laboratories Chemically modified endotoxin immunizing agent
US4356170A (en) * 1981-05-27 1982-10-26 Canadian Patents & Development Ltd. Immunogenic polysaccharide-protein conjugates
US4673574A (en) * 1981-08-31 1987-06-16 Anderson Porter W Immunogenic conjugates
US4644059A (en) * 1982-07-06 1987-02-17 Connaught Laboratories, Inc. Haemophilus influenzae B polysaccharide-diptheria toxoid conjugate vaccine
US4619828A (en) * 1982-07-06 1986-10-28 Connaught Laboratories, Inc. Polysaccharide exotoxoid conjugate vaccines
US4496538A (en) * 1982-07-06 1985-01-29 Connaught Laboratories, Inc. Haemophilus influenzae b polysaccharide-diphtheria toxoid conjugate vaccine
US4695624A (en) * 1984-05-10 1987-09-22 Merck & Co., Inc. Covalently-modified polyanionic bacterial polysaccharides, stable covalent conjugates of such polysaccharides and immunogenic proteins with bigeneric spacers, and methods of preparing such polysaccharides and conjugates and of confirming covalency
US4727136A (en) * 1985-10-01 1988-02-23 Canadian Patents And Development Ltd. Modified meningococcal group B polysaccharide for conjugate vaccine
AU641715B2 (en) * 1989-12-14 1993-09-30 National Research Council Of Canada Improved meningococcal polysaccharide conjugate vaccine

Also Published As

Publication number Publication date
AR243934A1 (es) 1993-09-30
ATE121947T1 (de) 1995-05-15
NO973311L (no) 1992-08-14
SI20008A (sl) 2000-02-29
WO1991008772A1 (en) 1991-06-27
BR9007917A (pt) 1992-10-20
NZ236471A (en) 1992-10-28
FI19991917A (fi) 1999-09-09
HU9201966D0 (en) 1992-10-28
ZA9010065B (en) 1992-02-26
CA2071811A1 (en) 1991-06-15
IE904513A1 (en) 1991-06-19
RU2105568C1 (ru) 1998-02-27
IN171747B (pl) 1992-12-26
DE69019164T2 (de) 1995-09-07
RO111416B1 (ro) 1996-10-31
FI104539B (fi) 2000-02-29
CN1100656A (zh) 1995-03-29
US5902586A (en) 1999-05-11
CN1096516A (zh) 1994-12-21
JPH05505392A (ja) 1993-08-12
JP2637845B2 (ja) 1997-08-06
CN1036522C (zh) 1997-11-26
CZ628490A3 (en) 1997-12-17
DE69019164D1 (de) 1995-06-08
IL96676A0 (en) 1991-09-16
NO922316D0 (no) 1992-06-12
CA2071811C (en) 2003-11-04
NO305275B1 (no) 1999-05-03
IE68414B1 (en) 1996-06-12
NO307835B1 (no) 2000-06-05
AU641715B2 (en) 1993-09-30
IL96676A (en) 1996-09-12
CN1055541A (zh) 1991-10-23
FI922737A0 (fi) 1992-06-12
HU218146B (hu) 2000-06-28
PL166659B1 (pl) 1995-06-30
AU6898791A (en) 1991-07-18
CN1049223C (zh) 2000-02-09
US5576002A (en) 1996-11-19
NO973311D0 (no) 1997-07-17
SI20008B (en) 2001-02-28
CN1100428A (zh) 1995-03-22
DK0504202T3 (da) 1995-10-02
EP0504202B1 (en) 1995-05-03
HUT64480A (en) 1994-01-28
EP0504202A1 (en) 1992-09-23
HRP920872A2 (en) 1997-06-30
NO922316L (no) 1992-08-14
PL288271A1 (en) 1991-12-16
US5683699A (en) 1997-11-04
ES2071288T3 (es) 1995-06-16
CZ283530B6 (cs) 1998-04-15
CN1072506C (zh) 2001-10-10
KR0158436B1 (ko) 1998-12-01
YU24391A (sh) 1995-12-04
PH30305A (en) 1997-02-20
CN1036504C (zh) 1997-11-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL166035B1 (pl) Sposób wytwarzania koniugatu antygenowego PL
US5969130A (en) Meningococcal polysaccharide conjugate vaccines
JP2004505885A (ja) N−アクリロイル化ポリサッカリドを用いて産生されたワクチンとして有用な免疫原性β−プロピオンアミド連結ポリサッカリド−タンパク質結合体
JPH11507964A (ja) 2,5−アンヒドロ−d−マンノース末端構造を持つ、抗原性グループb連鎖球菌▲ii▼型および▲iii▼型多糖断片とその複合ワクチン
AU3486499A (en) Conjugate vaccines for the prevention of dental caries
MXPA03010283A (es) Conjugados inmunogenicos de acido hialuronico de peso molecular bajo con toxinas de polipeptido.

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20081214