NO327714B1 - Anordning og metode for kromatografisk deteksjon av en analytt i en blodprove. - Google Patents

Anordning og metode for kromatografisk deteksjon av en analytt i en blodprove. Download PDF

Info

Publication number
NO327714B1
NO327714B1 NO20003569A NO20003569A NO327714B1 NO 327714 B1 NO327714 B1 NO 327714B1 NO 20003569 A NO20003569 A NO 20003569A NO 20003569 A NO20003569 A NO 20003569A NO 327714 B1 NO327714 B1 NO 327714B1
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
poly
bound
conjugate
chromatography
polycation
Prior art date
Application number
NO20003569A
Other languages
English (en)
Other versions
NO20003569D0 (no
NO20003569L (no
Inventor
Toru Yoshimura
Toshihiro Ogasawara
Michihiro Saito
John P Groff
Original Assignee
Abbott Lab
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Abbott Lab filed Critical Abbott Lab
Publication of NO20003569D0 publication Critical patent/NO20003569D0/no
Publication of NO20003569L publication Critical patent/NO20003569L/no
Publication of NO327714B1 publication Critical patent/NO327714B1/no

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56983Viruses
    • G01N33/56988HIV or HTLV
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54366Apparatus specially adapted for solid-phase testing
    • G01N33/54386Analytical elements
    • G01N33/54387Immunochromatographic test strips
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5002Partitioning blood components
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54366Apparatus specially adapted for solid-phase testing
    • G01N33/54386Analytical elements
    • G01N33/54387Immunochromatographic test strips
    • G01N33/54388Immunochromatographic test strips based on lateral flow
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/558Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor using diffusion or migration of antigen or antibody
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56911Bacteria
    • G01N33/5695Mycobacteria
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/571Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses for venereal disease, e.g. syphilis, gonorrhoea
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/576Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for hepatitis
    • G01N33/5761Hepatitis B
    • G01N33/5764Hepatitis B surface antigen
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/58Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/005Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from viruses
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/005Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from viruses
    • G01N2333/08RNA viruses
    • G01N2333/15Retroviridae, e.g. bovine leukaemia virus, feline leukaemia virus, feline leukaemia virus, human T-cell leukaemia-lymphoma virus
    • G01N2333/155Lentiviridae, e.g. visna-maedi virus, equine infectious virus, FIV, SIV
    • G01N2333/16HIV-1, HIV-2
    • G01N2333/162HIV-1, HIV-2 env, e.g. gp160, gp110/120, gp41, V3, peptid T, DC4-Binding site
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/195Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria
    • G01N2333/20Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria from Spirochaetales (O), e.g. Treponema, Leptospira
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/195Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria
    • G01N2333/35Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria from Mycobacteriaceae (F)
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N30/00Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
    • G01N30/90Plate chromatography, e.g. thin layer or paper chromatography
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/962Prevention or removal of interfering materials or reactants or other treatment to enhance results, e.g. determining or preventing nonspecific binding
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S436/00Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10S436/824Immunological separation techniques
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S436/00Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10S436/825Pretreatment for removal of interfering factors from sample
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10TTECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
    • Y10T436/00Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10T436/10Composition for standardization, calibration, simulation, stabilization, preparation or preservation; processes of use in preparation for chemical testing
    • Y10T436/105831Protein or peptide standard or control [e.g., hemoglobin, etc.]
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10TTECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
    • Y10T436/00Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10T436/10Composition for standardization, calibration, simulation, stabilization, preparation or preservation; processes of use in preparation for chemical testing
    • Y10T436/106664Blood serum or blood plasma standard or control

Description

Oppfinnelsens tekniske område
Den foreliggende oppfinnelsen angår kromatografitestanord-ninger og en fremgangsmåte for deteksjon av en analytt i en fullblodsprøve, og mer spesielt til en anordning og fremgangsmåte som anvender en agens som separerer røde blodceller for å aggregere disse blodcellene, og en nøytralise-rende agens for å nøytralisere enhver negativ effekt som agensen som separerer røde blodceller kan ha på testsystemet .
Bakgrunn for oppfinnelsen
Moderne, kliniske, diagnostiske fremgangsmåter utføres rutinemessig på blodprøver. Dessverre interfererer røde blodceller med mange diagnostiske bestemmelser. I analyt-tester kan røde blodceller inhibere binding mellom spesifikke bindingsparmedlemmer. Likeledes har røde blodceller enzymaktivitet som kan, avhengig av hvilken test som blir anvendt, interferere med signalet som blir produsert. Videre, i et raskt testformat ved anvendelse av en kromatografitestanordning, spesielt en kromatografisk immuntestanordning, kan røde blodceller inhibere væskestrøm som er nødvendig for at reaksjoner skal skje på anordningen. Av disse- og andre grunner, utføres mange testfremgangsmåter på plasma eller serum som først må bli separert fra en fullblodsprøve.
I det europeiske patentet EP 0325413 er det beskrevet en metode og en kromatografisk teststripeanordning for å detektere en analytt i en fullblodsprøve der det til deler av teststripen er bundet et kationisk agens for separasjon av røde blodceller fra plasma og i tillegg et område på teststripen som inneholder et spesifikt bindingspar ikke-diffust bundet til teststripen.
Det fins mange kjente teknikker for å separere røde blodceller fra plasma i en fullblodsprøve. Sentrifugering er en velkjent fremgangsmåte i faget der plasma (før koagulasjon) og serum (etter koagulasjon) separeres fra fullblod. I denne fremgangsmåten samles de røde blodcellene på bunnen av testrøret og serumet fjernes ved dekantering eller en annen fremgangsmåte. Det å dele fullblod inn i lag med sentrifugering har imidlertid mange ulemper. Generelt forut-setter sentrifugering et stort blodprøvevolum. Videre er fremgangsmåten tidkrevende og er avhengig av tungvint labo-ratorieutstyr som ofte ikke oppbevares på legekontor. Dessuten øker den ekstra håndteringen av blodet eksponeringen for potensielle farer med blodtransporterte patogener.
For å redusere eller eliminere behovet for sentrifugering har testanordninger blitt utviklet som anvender gradient-membraner eller oppfangingsmembraner for å separere røde blodceller fra væskedelen i blodet. Immobiliserte antistoffer mot røde blodceller har også blitt anvendt.
Andre kjente teknikker for separering av røde blodceller fra plasma eller serum innbefatter (1) slå sammen en full-blodsprøve med en agens som binder røde blodceller og fil-trere blandingen gjennom et fast, porøst element der minst ett spesifikt bindingsparmedlem er bundet for å fjerne de agglutinerte røde blodcellene; (2) føre fullblod gjennom et mikrofiberfilter av glass som kan eller ikke kan ha en agglutinerende agens inkorporert; (3) benytte en barriere eller et eksklusjonslag av polysakkarider for å hindre at røde blodceller passerer gjennom og interfererer med deteksjon eller visualisering av et signal på en tørr teststrim-mel; og (4) anvende en fast fase med en polykationisk over-flate som binder røde blodceller men ikke plasma.
Mange av disse separeringsteknikkene for røde blodceller fra plasma er dyre, kompliserte, kan resultere i ufullsten-dig separering av røde blodceller og kan forårsake hemolyse. Hemolyse fører til uspesifikk binding eller høy bakgrunn som resulterer i redusert testsensitivitet. Dette kan skyldes fritt hemoglobin som kan farge deteksjonsområdet slik at området får en farge som spenner fra rosa til mør-kerødbrun. Som et resultat av dette kan produksjonen av et visuelt, kjemisk signal bli fullstendig eller delvis skjult i nærvær av hemoglobinfargen i deteksjonsområdet. Videre har anvendelsen av en separerende agens, som et polykation, i et testsystem en tendens til å interferere med systemet, ofte ved å aggregere andre reagenser eller bindingsmedlemmer i tillegg til de røde blodcellene.
Det er derfor behov for en anordning og fremgangsmåte for deteksjon av en analytt i en blodprøve uten å påvirke testsystemet uheldig. En slik anordning og fremgangsmåte bør være egnet for fullblodsprøver av ulike størrelser, innbefattende små prøver.
Oppsummering av oppfinnelsen
Den foreliggende oppfinnelsen relateres til en kromato-graf ianordning innbefattende en kromatografibærer som definerer en bane for væskestrøm som kan sørge for kapillær strøm, et påføringssete for nevnte blodprøve som er i kontakt med væskestrømmen i kromatografibæreren, et deteksjonssete på kromatografibæreren atskilt fra påførings-setet, en diffust bundet, merket substans lokalisert ned-strøms for påføringssetet, en diffust bundet agens som separerer røde blodceller for å separere plasma eller serum fra blodprøven oppstrøms for deteksjonssetet, og en diffust bundet, nøytraliserende agens som kan binde den separerende agensen nedstrøms for den bundne, separerende agensen og oppstrøms for nevnte deteksjonssete der en positiv ladning til nevnte separerende agens nøytraliseres. Fortrinnsvis er agensen som separerer røde blodceller lokalisert på påfø-ringssetet slik at de røde blodcellene vil bli separert fra serumet eller plasmaet før serumet eller plasmaet forflytter seg nedover kromatografibæreren.
Den foreliggende oppfinnelsen angår også en fremgangsmåte for å detektere nærværet av en analytt i en prøve, fortrinnsvis en blodprøve, som innbefatter tilveiebringelse av en kromatografibærer som definerer en bane for væskestrøm som kan sørge for kapillær strøm, der det langs med denne bæreren er (a) et påføringssete for blodprøven som er i kontakt med væskestrømmen i nevnte kromatografibærer, (b) et deteksjonssete på kromatografibæreren som er atskilt fra påføringssetet, (c) en diffust bundet, merket substans lokalisert nedstrøms for påføringssetet, (d) en diffust bundet agens som separerer røde blodceller for å separere plasma eller serum fra nevnte blodprøve oppstrøms for deteksjonssetet og (e) en diffust bundet, nøytraliserende agens, som kan binde den separerende agensen, lokalisert nedstrøms for den bundne, separerende agensen og oppstrøms for deteksjonssetet, der en positiv ladning til den separerende agensen nøytraliseres; la påføringssetet komme i kontakt med blodprøven slik at agensen som separerer røde blodceller separerer plasmaet eller serumet fra blodprøven, og den nøytraliserende agensen nøytraliserer den positive ladningen til den separerende agensen etter som prøven strømmer langs strømningsbanen; og detektere nærværet av analytt i blodprøven.
Kort beskrivelse av figurene
Figur 1 viser en foretrukket utførelse av kromatografitest-anordningen i den foreliggende oppfinnelsen.
Detaljert beskrivelse av oppfinnelsen
Den foreliggende oppfinnelsen er basert på observasjonen av at røde blodceller i fullblodsprøver interfererer med bestemmelser av tilstedeværelsen eller mengden av analytt i en blodprøve, som ellers kunne bli gjort enkelt via testsystemer. I en immuntest er det for eksempel usannsynlig at en fullblodsprøve, som kommer i kontakt med et påførings-sete, vil bevege seg ned strimmelen via kapillær påvirkning pga. det hindrende- eller interfererende nærværet av de røde blodcellene. Den foreliggende oppfinnelsen løser dette problemet uten å påvirke sensitiviteten til testsystemet.
De følgende definisjonene kan være nyttige for å forstå utførelsene av den foreliggende oppfinnelsen.
"Analytt" eller "analytt av interesse" henviser til forbin-delsen eller blandingen som skal bli detektert eller målt, som har minst én epitope eller ett bindingssete. Analytten kan være enhver substans som har et naturlig forekommende, analyttspesifikt bindingsmedlem eller som et analyttspesifikt bindingsmedlem kan bli fremstilt for. Analytter innbefatter, men er ikke begrenset til, toksiner, organiske forbindelser, proteiner, peptider, mikroorganismer, amino-syrer, nukleinsyrer, hormoner, steroider, vitaminer, lege-midler (innbefattende de som blir administrert for terapeu-tiske formål så vel som de som blir administrert for ulov-lige formål) og metabolitter av eller antistoffer til enhver av substansene ovenfor. Begrepet "analytt" innbefatter også en hvilken som helst antigen substans, hapten, antistoff, makromolekyl og kombinasjoner derav.
"Kromatografibærer" henviser til ethvert egnet porøst, absorberende, isotropt eller kapillært materiale, som innbefatter deteksjonssetet til anordningen og som analytten eller testprøven kan bli transportert gjennom ved hjelp av kapillær påvirkning eller via samme prinsipp som når en veke suger opp væske. Fagfolk vil forstå at kromatografibæreren kan bli laget av et enkelt materiale eller mer enn ett materiale (f.eks. kan ulike soner, deler, lag, områder eller seter bli laget av ulike materialer) så lenge som de mange lagene er i væskestrømkontakt med hverandre og dermed gjør det mulig for testprøven å passere mellom materialene. Kontakt med væskestrømmen muliggjør passeringen av minst noen komponenter i prøven, dvs. analytt, mellom sonene av det porøse materialet og er fortrinnsvis enhetlig langs kontaktgrenseflaten mellom de ulike sonene. Naturlige, syn-tetiske eller naturlig forekommende materialer som er modi-
fisert syntetisk kan bli anvendt som kromatografibæreren og innbefatter, men er ikke begrenset til: papir (fibrøst) eller membraner (mikroporøse) av cellulosematerialer slik som papir; cellulose og cellulosederivater som cellulose-acetat og nitrocellulose; fiberglass; tøy, både naturlig forekommende (f.eks. bomull) og syntetisk (f.eks. nylon); porøse geler og lignende.
"Markør" henviser til enhver substans som kan produsere et signal som er detekterbart visuelt eller instrumentalt. Ulike markører som er nyttige for anvendelse i den foreliggende oppfinnelsen innbefatter markører som produserer kje-miske- eller fysiske signaler. Eksempler innbefatter enzy-mer og substrater, kromagener, fluorescerende forbindelser, kjemiluminescerende forbindelser, fargede eller fargbare organiske polymerlatekspartikler, og liposomer eller andre vesikler inneholdende direkte synlige substanser. Fortrinnsvis anvendes radioaktive markører, kolloidale metallpartikler eller kolloidale ikke-metallpartikler i den foreliggende oppfinnelsen. Foretrukne markører innbefatter kolloidale gull- og latekspartikler.
"Merket substans" eller "konjugat" henviser til en substans innbefattende en detekterbar markør festet til et spesifikt bindingsmedlem. Festet kan være kovalent- eller ikke-kovalent binding og kan innbefatte nukleinsyrehybridisering. Markøren lar den merkede substansen få produsere et detekterbart signal som direkte eller indirekte er relatert til analyttmengden i en testprøve. Den spesifikke bindings-medlemkomponenten til den merkede substansen er selektert for å binde direkte eller indirekte til analytten.
"Spesifikt bindingsmedlem" henviser til et medlem av et spesifikt bindingspar, dvs. to ulike molekyler der ett av molekylene binder spesifikt til det andre molekylet kjemisk- eller fysiskt. Hvis det spesifikke bindingsmedlemmet er en immunreaktant kan det for eksempel være et antistoff, antigen, hapten eller kompleks derav, og hvis et antistoff
anvendes, kan det være et monoklonalt- eller polyklonalt antistoff, et rekombinant protein eller antistoff, et kimæ-risk antistoff, en blanding(er) eller fragment(er) derav, så vel som en blanding av et antistoff og andre spesifikke bindingsmedlemmer. Spesifikke eksempler på spesifikke bindingsmedlemmer innbefatter biotin og avidin, et antistoff og dets korresponderende antigen (der begge ikke har noe forhold til en prøve som skal bli undersøkt), en enkeltkje-det nukleinsyre og dens komplementære kjede, og lignende.
"Oppfangingssubstans" henviser til ett eller flere spesifikke bindingsmedlemmer som er festet i eller på en del av den kromatografiske bæreren for å danne ett eller flere "oppfangingsseter" der analytten, den merkede reagensen, og/eller kontrollreagensen blir immobilisert på kromato-graf ibæreren. Festefremgangsmåten er ikke kritisk for den foreliggende oppfinnelsen. Oppfangingssubstansen gjør observasjonen av det detekterbare signalet lettere ved å hovedsakelig separere analytten og/eller den merkede substansen fra ubundne testreagenser og de gjenværende komponentene i testprøven. Oppfangingssubstansen kan bli immobilisert på kromatografibæreren før eller under utføringen av testen ved hjelp av enhver egnet festefremgangsmåte. Videre kan oppfangingssubstansen bli tilveiebragt på et enkelt
deteksjonssete eller i flere seter på eller i kromatografibæreren. Oppfangingssubstansen kan også bli gitt i en rekke konfigurasjoner for å sørge for ulike deteksjons- eller målingsformater. For eksempel kan oppfangingssubstansen bli formet som en bokstav, et tall, ikon eller symbol eller enhver kombinasjon derav.
Den foreliggende oppfinnelsen tilveiebringer spesielt en kromatografitestanordning for å detektere nærværet av en analytt i en prøve, fortrinnsvis en blodprøve. Anordningen er fortrinnsvis i form av en kromatografistrimmel med en kromatografibærer som definerer en bane for væskestrøm som kan sørge for kapillær strøm, et påføringssete for blod-prøven og et deteksjonssete atskilt fra påføringssetet for å detektere nærværet eller mengden av en analytt til stede i blodprøven. Fortrinnsvis innbefatter anordningen også en merket substans (eller konjugat) som er bundet diffust til kromatografibæreren. I en foretrukket utførelse vil den merkede substansen binde til analytten eller konkurrere med analytten for binding på deteksjonssetet. Anordningen inneholder fortrinnsvis to ekstra agenser bundet diffust til den kromatografiske bæreren: (1) en agens som separerer røde blodceller oppstrøms (heretter er forflytningsretnin-gen til en prøve som er forårsaket av kapillær påvirkning kalt "nedstrøms" og den motsatte retningen er kalt "opp-strøms") i forhold til deteksjonssetet som kan separere plasma eller serum fra blodprøven og (2) en nøytraliserende agens nedstrøms for agensen som separerer røde blodceller og oppstrøms for deteksjonssetet for å nøytralisere enhver effekt, spesielt en ugunstig effekt, av agensen som separerer røde blodceller på kromatografisystemet.
I sammenheng med den foreliggende oppfinnelsen kan uttryk-ket "diffust bundet," når det blir anvendt om en gitt reagens, angå enhver reagens anvendt i den foreliggende oppfinnelsen som innbefatter, men ikke er begrenset til, en merket substans, et spesifikt bindingsmedlem, en agens som separerer røde blodceller eller en nøytraliserende agens, og betyr at reagensen(e) er bundet på en slik måte at den bundne reagensen(e) kan forflytte seg langs strømnings-banen.
For formål i den foreliggende oppfinnelsen kan ethvert testsystem bli anvendt. Immuntestsystemer er foretrukket og innbefatter, men er ikke begrenset til, laterale gjennom-strømningssystemer, vertikale gjennomstrømningssystemer, bløtleggingssystemer og målepinner. En generell beskrivelse av kjente testsystemer er fremlagt nedenfor.
I en kromatografistrimmel er i hvert fall et påføringssete for prøven og et deteksjonssete generelt arrangert på en kromatografibærer. En prøveløsning, i dette tilfellet fortrinnsvis en blodprøve, som er mistenkt for å inneholde en analytt av interesse, dvs. en analytt, forflytter seg gjennom kromatografibæreren med kapillær påvirkning når den blir satt til prøvepåføringssetet og en merket substans eller konjugat, som er del av en merkingsfremgangsmåte utført på en kromatografibærer på forhånd, er akkumulert på deteksjonssetet i direkte eller inverst forhold til nærværet eller mengden av substansen som skal bli undersøkt i prøveløsningen, effektuert med en bindingsreaksjon (slik som en immunologisk reaksjon), slik at tilstedeværelsen eller mengden av substans som skal bli undersøkt i prøve-løsningen kan bli funnet ved å måle nærværet eller mengden av den dermed akkumulerte, merkede substansen eller konjugatet. Ulike kromatografistrimler er kjent og alle disse kjente kromatografistrimlene, innbefattende de som vil bli beskrevet senere, kan bli anvendt i den foreliggende oppfinnelsen. Begrepet "kromatografitestanordning," slik det er anvendt heri, betyr en kromatografistrimmel som frem-stilles på en slik måte at den kan bli anvendt i en test og kan bli lagret og transportert.
Det følgende beskriver et typisk eksempel på en kromato-graf istrimmel . Et påføringssete for prøven kan være lokalisert på det samme stedet som den merkede substansen foreligger, fortrinnsvis i en posisjon oppstrøms for den merkede substansen. Når en prøveløsning, som er mistenkt for å inneholde en analytt som skal bli undersøkt, kommer i kontakt med påføringssetet for prøven, forflytter prøveløsnin-gen seg gjennom kromatografibæreren i nedstrømsretningen sammen med analytten ved kapillær påvirkning. Normalt er analytten en forbindelse som binder på en bestemt måte til en oppfangingssubstans festet til deteksjonssetet, eller den er en forbindelse som binder på en bestemt måte til et konjugat som binder spesifikt til oppfangingssubstansen på deteksjonssetet. For eksempel er analytten et antistoff når oppfangingssubstansen er et antigen eller konjugatet inneholder et antigen, og analytten er et antigen når oppfangingssubstansen er et antistoff eller konjugatet inneholder et antistoff. Som ytterligere et eksempel kan analytten være en nukleinsyre som binder til et komplementært konjugat og oppfangingssubstans.
Når påføringssetet for prøven er lokalisert oppstrøms i forhold til en merket substans, kan den merkede substansen bli plassert tilgrensende i forhold til prøvepåføringssetet eller i en posisjon atskilt fra prøvepåføringssetet.
Tilsetning av den merkede substansen kan bli utført med ulike fremgangsmåter, som for eksempel ved å tilsette den i en bestemt posisjon utenfor deteksjonssetet på kromato-graf istrimmelen etter tilsetning av prøveløsningen.
Siden den merkede substansen er plassert på en slik måte at den forflytter seg med den kapillære påvirkningen av prøve-løsningen, forflytter den merkede substansen seg i ned-strømsretningen når prøveløsningen tilsettes påførings-setet.
Deteksjonssetet er generelt lokalisert i en posisjon ned-strøms for den merkede substansen og med en bestemt avstand fra den merkede substansen. I deteksjonssetet er en oppfangingssubstans, som bare binder til en analytt eller et konjugat på en bestemt måte eller binder spesifikt til hver av substansene som skal bli undersøkt og en merket substans, festet til kromatografibæreren. I én utførelse binder derfor analytten (enkelte ganger koblet til en merket substans) , som blir forflyttet ved kapillær påvirkning av prø-veløsningen, til oppfangingssubstansen eller til et konjugat som i sin tur binder til oppfangingssubstansen. Den merkede substansen binder til den dermed bundne substansen som skal bli undersøkt og fremkaller dermed akkumulering av den merkede substansen i deteksjonen av nærværet eller mengden av analytten. Alternativt binder den merkede substansen og analytten, som blir forflyttet ved kapillær påvirkning, kompetitivt til oppfangingssubstansen eller til et konjugat som i sin tur binder til oppfangingssubstansen, og fremkaller dermed akkumulering av den merkede substansen i invers proporsjon i forhold til substansmengden som skal bli undersøkt.
Det er et tilfelle der en bestemt merket substans binder til både en oppfangingssubstans (eller et konjugat som i sin tur binder en oppfangingssubstans) og en analytt, men ikke samtidig, og i det tilfellet binder analytten først til den merkede substansen og den gjenværende merkede substansen, som ikke bandt substansen som skal bli undersøkt, binder til oppfangingssubstansen. Som en følge av dette kan nærværet eller mengden av analytten bli analysert ved å måle den merkede substansen som er akkumulert i deteksjonsområdet.
Ved leilighetsvise behov er ulike substanser lokalisert oppstrøms for deteksjonssetet. For eksempel kan et konjugat bli lokalisert på dette viset på en flyttbar måte.
I noen tilfeller kan ett eller flere ekstra deteksjonsseter bli plassert nedstrøms i forhold til det første deteksjonssetet. Dessuten kan det være ytterligere en forlengelse av kromatografibæreren nedstrøms for deteksjonssetet slik at en prøveløsning kan bli avgitt fullstendig eller bæreren kan bli utstyrt med et materiale for anvendelse i absorp-sjon av prøveløsningen.
Derfor kan nærværet eller mengden av en analytt av interesse i en prøveløsning bli funnet ved å måle nærværet eller mengden av en merket substans akkumulert i deteksjonssetet. I ett tilfelle kan dette bli oppnådd visuelt.
Det er meningen at den foreliggende oppfinnelsen skal bli anvendt med enhver blodprøve, innbefattende serum og plasma, men anvendes fortrinnsvis med en blodprøve inneholdende røde blodceller, f.eks. fullblod.
Før det søkes etter analytten av interesse i blodprøven fjernes fortrinnsvis de røde blodcellene for at testen skal ha den ønskede sensitiviteten. Derfor, i henhold til den foreliggende oppfinnelsen, bindes en agens som separerer røde blodceller til kromatografibæreren. Fortrinnsvis er agensen som separerer røde blodceller bundet diffust til kromatografibæreren. Agensen som separerer røde blodceller kan være bundet til kromatografibæreren på enhver lokalise-ring der de røde blodcellene vil bli separert fra plasmaet eller serumet. Den er fortrinnsvis bundet diffust til den kromatografiske bæreren oppstrøms for deteksjonssetet. Mest foretrukket er agensen som separerer røde blodceller bundet diffust til prøvepåføringssetet. Denne lokaliseringen er gunstig fordi den forårsaker aggregasjon av de røde blodcellene med en gang de overføres til kromatografibæreren, hvilket resulterer i minimal, om noen, forstyrrelse av strømmen til serumet eller plasmaet langs bæreren med kapillær påvirkning.
Agensen som separerer røde blodceller i den foreliggende oppfinnelsen kan være enhver substans som er i stand til å aggregere røde blodceller. Foretrukne agenser er positivt ladede materialer som polykationer, innbefattende f.eks. poly-L-lysinhydrobromid; poly(dimetyldiallylammonium)klorid (Merquat<®->100, Merquat® 280, Merquat<®> 550); poly-L-argininhydroklorid; poly-L-histidin; poly(4-vinylpyridin), poly(4-vinylpyridin)hydroklorid; poly(4-vinylpyridin) kryssbundet, metylkloridkvaternært salt; poly(4-vinylpyridin-co-styren); poly(4-vinylpyridinium poly(hydrogenfluorid)); poly(4-vinylpyridinium-p-toluensulfonat); poly(4-vinylpyridinium-tribromid); poly(4-vinylpyrrolidon-co-2-dimetylaminoetyl-metakrylat); polyvinylpyrrolidon, kryssbundet; polyvinylpyrrolidon, poly(melamin-co-formaldehyd); delvis metylert; heksadimetrinbromid; poly(Glu, Lys) 1:4 hydrobromid; poly-(Lys, Ala) 3:1 hydrobromid; poly(Lys, Ala) 2:1 hydrobromid; poly-L-lysin suksinylert; poly(Lys, Ala) 1:1 hydrobromid; og poly(Lys, Trp) 1:4 hydrobromid. Det mest foretrukne polykationet er poly(dimetyldiallylammonium)klorid (Merquat<®> -100) .
Agensen som separerer røde blodceller i den foreliggende oppfinnelsen kan bli anvendt i enhver egnet mengde som kan separere de røde blodcellene fra resten av prøven. Fortrinnsvis kan agensen som separerer røde blodceller foreligge i en konsentrasjon på ca. 0,04 % til ca. 1,3 % (vekt per volum), der fra ca. 0,13 % til ca. 0,33 % (vekt per volum) er mer foretrukket og ca. 0,20 % til ca. 0,33 %
(vekt per volum) er mest foretrukket.
En positiv ladning på agensen som separerer røde blodceller har en tendens til å aggregere enhver negativt ladet agens som er til stede på strimmelen. For eksempel kan også en merket substans eller et konjugat bundet til kromatografibæreren bli aggregert av agensen som separerer røde blodceller som interfererer med binding av analytten til konjugatet eller, i en kompetitiv test, bindingen av den merkede substansen og analytten av interesse til oppfangingssubstansen på deteksjonssetet eller et konjugat. Til slutt kan sensitiviteten og nøyaktigheten til immuntestsystemet bli redusert.
Når den blodcelleseparerende agensen er et positivt ladet materiale, benytter derfor den foreliggende oppfinnelsen fortrinnsvis en nøytraliserende agens. Den nøytraliserende agensen kan nøytralisere den positive ladningen til agensen som separerer røde blodceller, og dermed eliminere eller i hvert fall minimalisere enhver interferens med testsystemet forårsaket av agensen som separerer røde blodceller. Fortrinnsvis er den nøytraliserende agensen bundet diffust til den kromatografiske bæreren. Den nøytraliserende agensen kan være bundet diffust på ethvert sted på den kromatografiske bæreren der den kan nøytralisere en agens som separerer røde blodceller, men er fortrinnsvis lokalisert ned-strøms for agensen som separerer røde blodceller og opp-strøms for deteksjonssetet, og er mer foretrukket lokalisert på det samme stedet på kromatografibæreren som den diffust bundne, merkede substansen.
Den nøytraliserende agensen kan være ethvert polyanion som kan nøytralisere den positive ladningen til agensen som separerer røde blodceller. Foretrukne polyanioner innbefatter poly(akrylsyre), poly(akrylsyre, Na-salt), poly(metylmetakrylsyre), poly(Na-4-styrensulfonat), poly(vinylsulfonsyre), poly-L-asparaginsyre og karboksymetylcellulose, der dekstransulfat er mest foretrukket.
Den nøytraliserende agensen kan foreligge i enhver mengde som er i stand til å nøytralisere den positive ladningen til agensen som separerer røde blodceller. Generelt er konsentrasjonen av den nøytraliserende agensen avhengig av hvilken konsentrasjon som blir anvendt av agensen som separerer røde blodceller. Fortrinnsvis foreligger den nøytra-liserende agensen i en konsentrasjon på ca. 0,33 % til ca. 20 % (vekt per volum), der ca. 0,34 % til ca. 10 % (vekt per volum) er mer foretrukket og 0,34 % til 10 % (vekt per volum) er mest foretrukket.
Figur 1 viser en utførelse av en immunkromatografitest-anordning i henhold til den foreliggende oppfinnelsen. Anordningen 10 innbefatter en kromatografibærer 20. Plassert på kromatografibæreren 20 er et påføringssete 30 for blodprøven. I denne foretrukne utførelsen er agensen som separerer røde blodceller, dvs. Merquat<®> 100, lokalisert på påføringssetet 30. Tilgrensende til påføringssetet 30 er et konjugatområde 40 inneholdende konjugatet, dvs. selenium-merket bindingssubstans og en nøytraliserende agens, dvs.
dekstransulfat. Videre nedstrøms er deteksjonssetet 50 som, etter at testen har blitt utført, vil ha en kontrollinje 60 og, hvis substansen som skal bli undersøkt er til stede, en testlinje 70.
I en annen utførelse av den foreliggende oppfinnelsen kan en buffer komme i kontakt med påføringssetet, fortrinnsvis etter at påføringssetet har vært i kontakt med prøven. Bufferen bidrar til opprettholdelsen av en godkjent væske-strømhastighet langs strømningsbanen til kromatografibæreren. Bufferen kan være enhver substans som kan strømme kapillært langs væskestrømbanen innbefattende, men ikke begrenset til, fosfatbuffer, fosfatbufret saltvann, Tris-HC1 buffer, karbonatbuffer, sitratbuffer, HEPES (2-hydrok-sypiperazin-N'-2-etansulfonsyre) -buffer, MOPS (3-(N-morfo-lino)propansulfonsyre) -buffer, MES (2-(N-morfolino)etan-sulfonsyre) -buffer og lignende. Selv om konsentrasjonen og pH kan være enhver konsentrasjon og pH som vil fungere i den ønskede testanordningen, er molariteten fortrinnsvis i et område fra ca. 10 mM til ca. 100 rtiM og pH er fra ca. 5-9 og mer foretrukket fra ca. 6-8. Mest foretrukket er den anvendte bufferen 50 mM fosfatbuffer, pH 7,4.
Væskevolumet som blir anvendt i den foreliggende oppfinnelsen er avhengig av anordningens størrelse. Ønskelig anvendes nok væskevolum for å muliggjøre væskestrøm gjennom anordningen til deteksjonssetet. Fortrinnsvis er væskevolumet i et område på ca. 25 ^1 til ca. 100 og mer foretrukket fra ca. 40 ^1 til ca. 60 ^1. Når det er nødvendig kan derfor bufferen bli tilsatt i et volum som spenner fra ca. 10 ^1 til ca. 40 og mer foretrukket fra ca. 20 ^1 til ca. 30 ul.
Den foreliggende oppfinnelsen er også rettet mot en fremgangsmåte for å detektere nærværet av en analytt i en blod-prøve. Fortrinnsvis benytter fremgangsmåten den kromatografiske immuntestanordningen i den foreliggende oppfinnelsen. Fremgangsmåten innbefatter spesifikt (1) tilveiebringelse av en kromatografibærer som utgjør en bane for væskestrøm som kan sørge for kapillær strøm, der det langs denne er et påføringssete for blodprøven som er i kontakt med væsken i kromatografibæreren, et deteksjonssete på kromatografibæreren atskilt fra påføringssetet, en diffust merket substans (eller et konjugat) som binder til eller konkurrerer med analytten for binding i deteksjonssetet, en diffust bundet agens som separerer røde blodceller for å separere plasma eller serum fra nevnte blodprøve oppstrøms for deteksjonssetet, og et konjugat bundet til kromatografibæreren; (2) la påføringssetet komme i kontakt med blodprø-ven slik at agensen som separerer røde blodceller separerer disse blodcellene fra plasmaet eller serumet til blodprø-ven, og den nøytraliserende agensen nøytraliserer den positive ladningen til den separerende agensen; og (3) deteksjon av nærværet av analytt i blodprøven.
Fortrinnsvis er den blodcelleseparerende agensen et positivt ladet materiale og væskestrømbanen inneholder en diffust bundet, nøytraliserende agens, som fortrinnsvis kan binde nevnte agens som separerer røde blodceller og er lokalisert nedstrøms for nevnte agens som separerer røde blodceller og oppstrøms for nevnte deteksjonssete der den positive ladningen til nevnte separerende agens nøytralise-res .
I den foretrukne utførelsen av Figur 1 tilsettes derfor en blodprøve til påføringssetet 30 og agensen som separerer
røde blodceller separerer disse blodcellene ved å aggregere dem og tillate at plasmaet eller serumet forflytter seg med kapillær påvirkning ned kromatografibæreren 20. Den nøytra-liserende agensen i konjugatområdet 40 nøytraliserer effek-tene av agensen som separerer røde blodceller på anordningen 10, og konjugatet og analytten binder til konjugatet tilstedeværende i konjugatområdet 40. Analytten som er bundet til konjugatet fortsetter å forflytte seg nedstrøms til deteksjonssetet 50. Hvis analytten av interesse er til stede vil testlinje 70 bli synlig. For å vise at testen fungerer korrekt, vil kontrollinje 60 være synlig uavhengig om analytten av interesse foreligger eller ei.
Den foreliggende oppfinnelsen kan fortrinnsvis innbefatte et ikke-reaktivt deksel eller forsegling rundt anordningen. Fortrinnsvis omslutter dekselet i hvert fall kromatografibæreren for å unngå kontakt med og kontaminasjon av oppfan-gingssetene. Dekselet kan også innbefatte en forhøyning nær påføringssetet for å lette mottakelsen og/eller oppbevarin-gen av et bestemt volum av prøven. I tillegg kan dekselet omfatte et utskåret område eller områder i form av en bokstav, et tall, ikon eller symbol eller enhver kombinasjon derav. I denne utførelsen utgjør det utskårede området eller områdene konstruksjonen av bestemt deteksjonssete(r) når strimmelen er fullstendig stengt. Det er foretrukket at en tilstrekkelig del av strimmelen er innpakket for å hindre at påført prøve kommer i kontakt med deteksjons-setene uten først å ha passert gjennom en del av strimmelen .
Anordningen og fremgangsmåten i den foreliggende oppfinnelsen kan bli anvendt i ethvert testsystem der en blodprøve inneholder en analytt av interesse. Eksempler på foretrukne systemer innbefatter, men er ikke begrenset til, hepatitt C-virus ("HCV"), hepatitt A-virus ("HAV"), humant immun-sviktvirus ("HIV"), hepatitt B-overflateantistoff ("HBsAb"), hepatitt B-overflateantigen ("HBsAg"), hepatitt B-kjerneantistoff ("HBcAb"), hepatitt B-kjerneantigen ("HBcAg"), karsinoembryonalt antigen ("CEA"), alfa-feto-proten ("AFP"), en pankreatisk kreftmarkør ("CA19-9"), syfilis, tuberkulose, malaria, Leishmania og denguefeber.
De følgende eksemplene illustrerer videre den foreliggende oppfinnelsen, men skal ikke på noen som helst måte bli tol-ket som at de begrenser dens omfang.
EKSEMPLER
Eksempel 1
Aggregasjon av røde blodceller vs. aggregasjon av Se- konjugat med polykationer
For formålet i den foreliggende oppfinnelsen er aggregasjon av røde blodceller i fullblod ønsket, mens aggregasjon av seleniumkonjugatet er uønsket. Ulike polykationer ble testet for å se hvilke som ville forårsake tilstrekkelig aggregasjon av røde blodceller, mens de bare aggregerte seleniumkonjugatet minimalt.
Seleniumkonjugat av HIV-1 rekombinant protein ble fremstilt på den følgende måten: Først ble seleniumkolloid fremstilt ved å reagere 32 mM seleniumoksid med 91 mM L-askorbinsyre i en vandig løsning i 72 timer ved 42 °C. Dette selenium-kolloidet ble fortynnet til en optisk tetthet på 30 ved en bølgelengde på 550 nm og deretter reagert med 4 0 ^g/ml av rekombinant HIV-1 hylsterprotein i 30 mM Tris-buffer, pH 7,4 i 20 minutter ved romtemperatur. Dette seleniumkolloidmerkede HIV-1 proteinkonjugatet ble deretter fortynnet til en optisk tetthet på 30 ved en bølgelengde på 550 nm i 10 mM Tris-buffer, pH 7,4 inneholdende 0,1 % kasein, og inku-bert i 20 minutter ved romtemperatur. Konjugatløsningen ble deretter sentrifugert ved 1970 x g i 20 minutter ved 4 °C, supernatanten fjernet og pelleten kastet. Et volum av 30 mM Tris-buffer, pH 7,4 inneholdende 2 % kasein, som var ekvi-valent med én tiendedel av volumet til supernatanten, ble deretter satt til supernatanten. Til slutt ble denne konju-gatløsningen fortynnet til en optisk tetthet på 10 ved en bølgelengde på 550 nm i 50 mM Tris-buffer, pH 7,4 inneholdende 1 % kasein, 2 % sukrose og 2 % laktose.
Vandige løsninger av de følgende polykationene ble fremstilt ved 0,25 % (vekt/volum): Poly-L-Lysinhydrobromid, molekylvekt (mw) 37000; Poly-L-Argininhydroklorid, mw 12100, 42400 og 92000; Poly-L-Histidin, mw 18400; Heksadimetrinbromid, Poly (Lysin, Alanin) 3:1 hydrobromid, mw 35000; Poly (Lysin, Alanin) 2:1 hydrobromid, mw 49300; Poly (Lysin, Alanin) 1:1 hydrobromid, mw 41600, Poly (Lysin, Tryptofan) 1:4 hydrobromid, mw 38000 (alle polykationene ovenfor ble kjøpt fra Sigma, St. Louis, MO); Poly (diallyl-dimetylammoniumklorid) , mw 10<5> til IO<6> (Merquat<®> -100, Cal-gon, Pittsburgh, PA).
Evnen disse polykationene hadde til å aggregere enten røde blodceller i fullblod eller seleniumkonjugatet ble observert i separate reaksjoner ved tilsetning av 350 ^1 av 0,25 % av de ulike polykationløsningene til et like stort volum av enten fullblod eller seleniumkonjugatet. Løsningene ble blandet og lagret ved romtemperatur i 10 minutter, deretter ble aggregasjon evaluert visuelt. Resultatene er oppsummert i Tabell 1. Én pluss (+) indikerer svak aggregasjon, 2+ indikerer moderat aggregasjon, og 3+ og 4+ indikerer sterk aggregasjon.
Et polykation som forårsaker aggregasjon av røde blodceller (2+ eller mer), mens det forårsaker minimal aggregasjon av seleniumkonjugatet (2+ eller mindre), vil være et godt valg. De polykationene som har 2+ i begge kategoriene til-fredsstiller disse kriteriene. Poly-L-Lysin HBr og Merquat<®->100 ble valgt for videre arbeid, der Merquat<®->100 er den mest kostnadseffektive.
Eksempel 2
Forebyggelse av konjugataggregasjon med polyanion- nøytrali-sering
A. Konjugatforflytning og aggregasjonforebyggelse ved
anvendelse av dekstransulfat
Ved å anvende Poly-L-Lysin som den polykationiske reagensen som aggregerer røde blodceller, ble ulike konsentrasjoner av polyaniondekstransulfatet testet for å se om den positive ladningen til polykationet kunne bli nøytralisert med dekstransulfatet, og dermed forebygge aggregasjon av seleniumkonjugatet forårsaket av polykationet. Dekstransulfatet ble tilsatt etter at polykationet allerede hadde forårsaket aggregasjon av røde blodceller, men før polykationinter-aksjonen med seleniumkonjugatet. Det følgende forsøket eva-luerte effekten av polykationet og dekstransulfatet på aggregasjonen av seleniumkonjugatet og dets evne til deretter å strømme langs immunkromatografistrimmelen.
En immunkromatografistrimmel sammensatt av et prøveområde, et nøytraliseringsområde, et konjugatområde og en deteksjonsstrimmel, ble montert. Prøveområdet ble fremstilt ved å dynke et glassfiberfilter, som er 4 mm bredt og 20 mm langt, (Lypore 9524, Lydall, Rochester, NH) i en vandig løsning med 0,33 % Poly-L-Lysinhydrobromid, mw 37000 (Sigma, St. Louis, MO), og deretter tørke det under vakuum.
Nøytraliseringsområder, inneholdende ulike konsentrasjoner av dekstransulfat, ble fremstilt ved å gjøre filtrene, som var 4 mm brede og 13 mm lange, laget av tremasse og poly-ester (Sontara 8801, Du pont, Wilmington, Delaware) våte i vandige løsninger inneholdende 0 %, 1,1 %, 3,3 % eller 10 % dekstransulfat, mw 5000 (Sigma, St. Louis, MO). Etter bløt-gjøring ble områdene tørket under vakuum.
Konjugatområdet ble fremstilt ved å dynke et glassfiberfilter, som var 4 mm bredt og 4,3 mm langt, (Lypore 9524, Lydall, Rochester, NH) i seleniumkolloidmerket rekombinant HIV-1 proteinkonjugat fremstilt og fortynnet som i Eksempel 1. Etter bløtgjøring ble konjugatområdet tørket under vakuum .
Deteksjonsstrimmelen var et nitrocellulosemembranfilter som var 4 mm bredt og 40 mm langt (katalog #H9643G1, Millipore, Bedford, MA). HIV-1 hylsterantigen, ved en konsentrasjon på 5 mg/ml i 100 mM Tris-buffer, pH 7,4 inneholdende 1% sukrose, ble satt til nitrocellulosemembranen for å danne en linje på tvers av bredden på strimmelen i en posisjon ca. 1 cm fra enden av membranen. Linjen ble dekket med polyesterlaminat (kode # 7733, Adhesives Research Inc., Glen Rock, PA). Dette fikk stå å tørke tilstrekkelig slik at antigenet ble festet til nitrocellulosen.
Immunkromatografistrimler, 4 mm brede, ble montert ved anvendelse av komponentene ovenfor ved å plassere dem ende-mot-ende på langs med et overlapp på 1 mm mellom hver del, med det 20 mm lange prøveområdet på én ende, der ett av de 13 mm lange nøytraliseringsområdene ble plassert rett ved siden av, etterfulgt av et 4,3 mm langt konjugatområde og til slutt en 40 mm lang deteksjonsstrimmel. Den monterte strimmelen ble deretter dekket med polyesterlaminat (kode #8648, Adhesives Research Inc., Glen Rock, PA) fra toppen av deteksjonsstrimmelen til 10 mm fra bunnen av strimmelen, som førte til at ca. 10 mm av prøveområdet ble eksponert. Åtti ^1 plasma ble deretter overført til prøveområdene på hver immunkromatografistrimmel inneholdende nøytralise-ringsområder med enten 0 %, 1,1 %, 3,3 % eller 10 % deks-transulf at. Aggregasjon av det røde seleniumkonjugatet og konjugatets evne til å strømme langs strimmelen ble observert visuelt.
Resultater som er vist i Tabell 2 nedenfor indikerte, uten nærvær av dekstransulfat for å nøytralisere ladningen til polykationløsningen, at seleniumkonjugatet aggregerte og ikke var i stand til å strømme langs strimmelen. Det var et inverst forhold mellom konjugataggregasjon og forflytning, der konsentrasjoner av dekstransulfat på 3,3 % eller mer var tilstrekkelig for å forebygge konjugataggregasjon og tillate konjugatet å strømme langs strimmelen.
B. Aggregasjon av røde blodceller i nærvær av dekstran-sulf at
For å kunne vurdere effekten av dekstransulfat på aggregasjon av røde blodceller, ble forsøket ovenfor repetert ved anvendelse av fullblod som prøven med 10 % dekstransulfat på et 4,3 mm langt og 4 mm bredt nøytraliseringsområde. Etter monteringen av immunkromatografistrimmelen som beskrevet ovenfor, ved å anvende dette nøytraliseringsområ-det, ble 80 ^1 fullblod overført til prøveområdet. Femten minutter senere ble resultatene av aggregasjon av røde blodceller observert visuelt og det resulterende plasmaets evne til å strømme langs strimmelen ble målt. De røde blodcellene aggregerte, ble holdt tilbake på prøveområdet og forflyttet seg ikke på strimmelen, mens plasmaet forflyttet seg 33 mm langs strimmelen i løpet av 15 minutter. Dette indikerte at polykationet i prøveområdet fortsatt var i stand til å forårsake aggregasjon av de røde blodcellene i fullblodsprøven, og at nærværet av polyanionet, dekstransulfat, i nøytraliseringsområdet ikke interfererte med denne aggregasjonen av røde blodceller.
C. Forebyggelse av konjugataggregasjon med polyanioner
Andre polyanioner ble testet for å evaluere deres evne til å forebygge aggregasjon av seleniumkonjugatet som i Eksempel 2.A. Et 15,5 mm langt og 4 mm bredt prøveområde ble gjort våt i en vandig løsning inneholdende 0,26 % Merquat<®>
-100 og deretter tørket ved 55 °C. Nøytraliseringsområder ble ikke anvendt, og i stedet ble seleniumkonjugatet fortynnet i 10 mM Tris-buffer, pH 7,4 inneholdende 1 % kasein, 2 % sukrose, 2 % laktose og 0 %, 1,1 % eller 3,3 % av polyanionet dekstransulfat, mw 5000 (Sigma, St. Louis, MO) eller 0 %, 0,5 %, 1 % i eller 2 % av ett av de følgende polyanionene (alle fra Aldrich Chemical Co., Milwaukee, WI): Poly (akrylsyre), mw 5000; Poly (natrium-4-styren-sulfonat), mw 70.000; Poly (vinylsulfonsyre, natriumsalt); Poly (metylmetakrylsyre), mw 9500; Poly (akrylsyre, natriumsalt) , mw 2100. Konjugatområder ble gjort våte i de ulike seleniumkonjugatløsningene og tørket under vakuum. Deteksjonsstrimmelen ble fremstilt som i Eksempel 2.A. og immun-kromatograf istrimler ble montert. Femti ^1 plasma ble deretter overført til prøveområdene på hver immunkromatografistrimmel inneholdende konjugatområder med de ulike polyanionene. Aggregasjon av det røde seleniumkonjugatet ble observert visuelt. Tabell 3 viser den relative mengden av konjugataggregasjon som ble observert med de ulike poly-anionkonsentrasjonene som ble testet.
Som tidligere aggregerte seleniumkonjugatet hvis det ikke var et polyanion til stede for å nøytralisere den positive ladningen til polykationet fra prøveområdet (som er nødven-dig for aggregasjon av røde blodceller når fullblod blir testet). Alle polyanionene som ble anvendt i konjugerings-området hindret at konjugataggregasjon skjedde ved minst én av konsentrasjonene som ble testet. Dette forsøket viste også at polyanionet ikke måtte bli overført til et separat område, men kunne bli kombinert med seleniumkonjugatet på konj ugeringsområdet.
Eksempel 3
Anvendelse av dekstransulfat i nøytraliseringsområde vs.
konjugeringsområde i en HIV- 1 antistofftest
Immunkromatografistrimler ble fremstilt som i Eksempel 2.A. enten med eller uten et 4 mm bredt og 4,3 mm langt glassfiberfilter (Lypore 9524, Lydall, Rochester, NH) nøytrali-seringsområde. Når det ble anvendt, ble nøytraliserings-området gjort vått i en vandig løsning inneholdende 3,3 % dekstransulfat og deretter tørket under vakuum. I strimler uten et nøytraliseringsområde ble seleniumkonjugatet fortynnet i 10 mM Tris-buffer, pH 7,4 inneholdende 1 % kasein, 2 % sukrose, 2 % laktose og 3,3 % dekstransulfat, og konjugatområdet ble gjort vått i denne løsningen og deretter tørket under vakuum. Det anvendte prøveområdet var som det i Eksempel 2.A. bortsett fra at det ble gjort vått i en vandig løsning med 0,2 % Merquat<®> -100.
Humant serum inneholdende HIV-1 antistoffer ble fortynnet 1:2048 i enten HIV-negativt humant fullblod (basert på plasmavolum) med en hematokrittverdi på 50 % eller i HIV-negativt humant plasma. Ytterligere tre 1:2 serielle fortynninger ble laget, igjen ved å anvende enten fullblod eller plasma som fortynningsmidlet. Åtti ^1 av negativt fullblod eller prøver fra fortynningsserien med HIV-1 positivt fullblod ble satt til prøveområdet på immunkromato-graf istrimler fremstilt med dekstransulfat på et separat nøytraliseringsområde eller dekstransulfat i seleniumkonju-gatløsningen på konjugatområdet. Åtti ^1 av negativt plasma eller prøver fra fortynningsserien med HIV-1 positivt plasma ble bare testet på immunkromatografistrimler med dekstransulfat på konjugatområdet. Resultater ble avlest 15 minutter etter påføring av prøven (Tabell 4). Et positivt resultat viste en rød farge på deteksjonsstrimmelen der det røde selenium HIV-1 antigen konjugat-HIV-1 antistoffkom-plekset var bundet til HIV-1 antigenet på linjen på strimmelen. Et negativt resultat viste ingen farge i denne regionen på deteksjonsstrimmelen.
Resultatene i Tabell 4 indikerer at HIV-1 antistoffer er detekterbare fra fullblod i en immunkromatografistrimmel-test ved å anvende polykationet Merquat<®> -100 for å aggregere røde blodceller og tillate at prøven strømmer langs strimmelen, og polyanionet dekstransulfat som en nøytrali-serende agens for å forebygge aggregasjon av seleniumkonjugatet med polykationet og tillate at konjugatet binder og danner et kompleks med en positiv prøve og strømmer langs strimmelen til deteksjonsområdet. Polyanionet ble vist å være effektivt når det enten ble anvendt i et separat nøy-traliseringsområde eller kombinert med seleniumkonjugatet på konjugatområdet. I denne testen viste sensitiviteten for deteksjon av HIV-1 antistoffer en 2-fold forbedring når polyanionet (dekstransulfat) ble anvendt i konjugatområdet i stedet for på et separat nøytraliseringsområde.
I tillegg indikerer resultatene i Tabell 4 at polykationet effektivt aggregerer de røde blodcellene i fullblodet, hvilket er vist med den samme sensitiviteten for deteksjon av HIV-1 antistoffer enten det er i fullblod, der de røde blodcellene må bli aggregert for at prøven skal forflytte seg, eller plasma, der det ikke er noen røde blodceller som kan hindre forflytning av prøven. Dette viser også at nærværet av polyanionet, enten i et separat nøytraliserings-område eller i konjugatområdet, ikke interfererer med poly-kationets evne til å effektivt forårsake aggregasjon av røde blodceller i fullblod.
Eksempel 4
Anvendelse av Merquat<®> og ulike polyanioner i en HBsAg- test
Immunkromatografistrimler ble fremstilt for deteksjonen av Hepatitt B-overflateantigen (HBsAg) i fullblodsprøver. Merquat<®->100 ble anvendt som polykationet for aggregasjonen av røde blodceller i prøveområdet, og ulike polyanioner ble evaluert i konjugatområdet som polykation-nøytraliserende reagenser for å hindre aggregasjon av seleniumkonjugatet.
Immunkromatografistrimler, som er sammensatt av et prøve-område, et konjugatområde og en deteksjonsstrimmel, ble montert. Prøveområdet ble fremstilt ved å dynke et 4 mm bredt og 15,5 mm langt glassfiberfilter i en vandig løsning med 0,26 % Merquat<®->100 og deretter tørke det ved 55 °C.
Seleniumkonjugatet ble fremstilt ved å anvende seleniumkolloid, som i Eksempel 1, og 12 ^g/ml monoklonalt muse-antistoff til HBsAg (anti-HBs). Dette seleniumkolloidmerkede anti-HBs konjugatet ble deretter fortynnet til en optisk tetthet på 2,6 ved en bølgelengde på 550 nm i Tris-buffer inneholdende ett av de følgende polyanionene: 0,5 % Poly (akrylsyre), mw 2000 (PAA-2000); 0,5 % Poly (akrylsyre), mw 240.000 (PAA-240.000); 0,5 % dekstransulfat, mw 5000; 0,8 % Poly-L-asparaginsyre, mw 36.300; 0,5 % Karboksymetylcellulose, mw 90.000 (CMC). Dekstransulfatet og Poly-L-asparaginsyren var fra Sigma, St. Louis, MO, og de gjenværende polyanionene var fra Aldrich Chemical Co., Milwaukee, WI.
Konjugatområdet ble fremstilt ved å dynke et glassfiberfilter, som var 4 mm bredt og 4,3 mm langt, i seleniumkolloidmerket anti-HBs konjugat som var fremstilt og fortynnet med ett av polyanionene ovenfor. Etter bløtgjøring ble konjugatområdet tørket under vakuum.
Deteksjonsstrimmelen var et 4 mm bredt og 40 mm langt nitrocellulosemembranfilter, som var fremstilt som i Eksempel 2 ved å anvende monoklonalt anti-HBs fra mus ved en konsentrasjon på 3 mg/ml og satt til nitrocellulosemembranen for å danne en linje på tvers av bredden på strimmelen i en posisjon ca. 1 cm fra membranenden. Linjen ble dekket med polyesterlaminat. Denne fikk stå å tørke tilstrekkelig slik at antistoffet ble festet til nitrocellulosen.
Immunkromatografistrimler ble montert ved anvendelse av komponentene ovenfor ved å plassere dem ende-mot-ende på langs, med et overlapp på 1 mm, med prøveområdet på én ende, der et konjugatområde ble plassert rett ved siden av og til slutt en deteksjonsstrimmel. Den monterte strimmelen ble deretter dekket med polyesterlaminat, og ca. 10 mm av prøveområdet ble eksponert.
Rekombinant HBsAg ble satt til HBsAg-negativt humant fullblod med en hematokrittverdi på 50 % til en konsentrasjon på 12,5 ng/ml. Ytterligere tre 1:2 serielle fortynninger ble laget i fullblod. Femti ^1 av negativt fullblod eller prøver fra fortynningsserien med HBsAg-positivt fullblod ble satt til prøveområdet på immunkromatografistrimler fremstilt med ulike polyanioner i konjugatområdet. Resultater ble avlest 15 minutter etter påføring av prøven (Tabell 5). Et positivt resultat viste en rød farge på deteksjonsstrimmelen, der det røde selenium anti-HBs konjugat-HBsAg komplekset var bundet til anti-HBs på linjen på strimmelen. Et negativt resultat viste ingen farge i denne regionen på deteksjonsstrimmelen. Aggregasjon av det røde seleniumkonjugatet på begynnelsen av deteksjonsstrimmelen ble observert visuelt.
Mens alle polyanionene gjorde deteksjon av HBsAg mulig, hadde de polyanionene som forebygget konjugataggregasjon, PAA-2000, dekstransulfat og Poly-L-asparaginsyre, en 2 til 4-fold mer sensitiv deteksjon av HBsAg i fullblodsprøver.
Forsøket ovenfor ble repetert ved anvendelse av det seleniumkolloidmerkede konjugatet fortynnet i Tris-buffer inneholdende PAA-2000 som polyanionet, bortsett fra at 25 ^1 av 50 mM fosfatbuffer, pH 7,4, ble satt til prøveområdet ett minutt etter tilsetning av HBsAg-fullblodsprøvene. Resultatene som ble fremskaffet ved å anvende denne fremgangsmåten, ved tilsetningen av bufferen etter påføringen av prøven, var identiske med resultatene uten dette trinnet. Derfor kan disse testene bli gjort enten med eller uten tilsetning av buffer etter påføring av prøven.
Eksempel 5
Anvendelse av Merquat<®> og dekstransulfat i en test for tuberkulose
Immunkromatografistrimler ble fremstilt for deteksjonen av antistoff til Mycobacterium tuberculosis (anti-Mtb) i full-blodsprøver. Merquat<®> -100 ble anvendt som polykationet for aggregasjonen av røde blodceller i prøveområdet, og ulike konsentrasjoner av polyanionet dekstransulfat ble evaluert i konjugatområdet som den polykation-nøytraliserende reagensen for å hindre aggregasjon av seleniumkonjugatet. Immunkromatografistrimler, sammensatt av et prøveområde, et konjugatområde og en deteksjonsstrimmel, ble montert. Prø-veområdet ble fremstilt ved å dynke et 4 mm bredt og 15,5 mm langt glassfiberfilter i en vandig løsning med 0,26 % Merquat<®> -100 og deretter tørke det i vakuum.
Seleniumkonjugatet ble fremstilt ved å anvende seleniumkolloid, som i Eksempel 1, og 3,5 ^g/ml av rekombinant Mtb-antigen fra E. coli. Dette seleniumkolloidmerkede Mtb-konjugatet ble deretter fortynnet til en optisk tetthet på 2,5 ved en bølgelengde på 550 nm i Tris-buffer inneholdende enten 0 %, 0,34 %, 1,1 % eller 3,3 % dekstransulfat.
Konjugatområdet ble fremstilt ved å dynke et glassfiberfilter, som var 4 mm bredt og 4,3 mm langt, i seleniumkolloidmerket Mtb-konjugat, fremstilt og fortynnet med én av dekstransulfatkonsentrasjonene ovenfor. Etter bløtgjø-ring ble konjugatområdet tørket under vakuum.
Deteksjonsstrimmelen var et 4 mm bredt og 40 mm langt nitrocellulosemembranfilter, som var fremstilt som i Eksempel 2 ved å anvende rekombinant Mtb-antigen ved en konsentrasjon på 0,15 mg/ml og satt til nitrocellulosemembranen for å danne en linje på tvers av bredden på strimmelen i en posisjon ca. 1 cm fra enden av membranen. Linjen ble dekket med polyesterlaminat. Denne fikk stå å tørke tilstrekkelig slik at antigenet ble festet til nitrocellulosen.
Immunkromatografistrimler ble montert ved å anvende komponentene ovenfor ved å plassere dem ende-mot-ende på langs, med et overlapp på 1 mm, med prøveområdet på én ende, ved siden av der et konjugatområde ble plassert og til slutt en deteksjonsstrimmel. Den monterte strimmelen ble deretter dekket med polyesterlaminat, som førte til at ca. 10 mm av prøveområdet ble eksponert.
Anti-Mtb-positivt serum ble fortynnet 1:100 i negativt humant fullblod med en hematokrittverdi på 50 %. Ytterligere to 1:2 serielle fortynninger ble laget i fullblod. Femti ^1 av negativt fullblod eller prøver fra fortynningsserien med det anti-Mtb-positive fullblodet ble satt til prøveområdet på immunkromatografistrimler fremstilt med ulike konsentrasjoner av dekstransulfat i konjugatområdet. Resultater ble avlest 15 minutter etter påføring av prøven (Tabell 6). Et positivt resultat viste en rød farge på deteksjonsstrimmelen, der det røde selenium Mtb-konjugat-anti-Mtb-komplekset var bundet til Mtb på linjen på strimmelen. Et negativt resultat viste ingen farge i denne regionen på deteksjonsstrimmelen. Aggregasjon av det røde seleniumkonjugatet på begynnelsen av deteksjonsstrimmelen ble observert visuelt.
Resultatene i Tabell 6 viser at testen ikke fungerer uten nærvær av et polyanion, i dette tilfellet dekstransulfat, for å forebygge aggregasjon av konjugatet. Det er et inverst forhold mellom konjugataggregasjon og testsensitivitet. Ved en dekstransulfatkonsentrasjon på 3,3 % forekom-mer ingen konjugataggregasjon og testen er mest sensitiv i deteksjonen av anti-Mtb.
Eksempel 6
Syfilistest ved anvendelse av Merquat<®> og dekstransulfat
Immunkromatografistrimler ble fremstilt for deteksjonen av antistoff mot Treponema pallidum (anti-TP) i fullblod eller plasmaprøver. Ved å sammenligne deteksjonssensitiviteten i fullblod i forhold til plasma kunne man bestemme om røde blodceller i fullblod aggregerte effektivt med polykationet uten å interferere med og dermed redusere testens detek-sjonssensitivitet. Merquat<®> -100 ble anvendt som polykationet for aggregasjonen av røde blodceller i prøveområdet, og polyanionet dekstransulfat ble anvendt i konjugatområdet som den polykation-nøytraliserende reagensen for å hindre aggregasjon av seleniumkonjugatet.
Immunkromatografistrimler, sammensatt av et prøveområde, et konjugatområde og en deteksjonsstrimmel, ble montert. Prø-veområdet ble fremstilt ved å dynke et 4 mm bredt og 15,5 mm langt glassfiberfilter i en vandig løsning med 0,2 % Merquat<®> -100 og deretter tørke det ved 55 °C.
Seleniumkonjugatet ble fremstilt ved å anvende seleniumkolloid, som i Eksempel 1, og 7,5 fKj/ml av Treponema pallidum-lysat (TP). Dette seleniumkolloidmerkede TP-konjugatet ble deretter fortynnet til en optisk tetthet på 2,8 ved en bøl-gelengde på 550 nm i Tris-buffer inneholdende 3,3 % dekstransulfat .
Konjugatområdet ble fremstilt ved å dynke et glassfiberfilter, som var 4 mm bredt og 4,3 mm langt, i det seleniumkolloidmerkede TP-konjugatet fremstilt ovenfor. Etter bløtgjø-ring ble konjugatområdet tørket under vakuum.
Deteksjonsstrimmelen var et 4 mm bredt og 40 mm langt
nitrocellulosemembranfilter, som var fremstilt som i Eksempel 2 ved å anvende Treponema palladiumlysat ved en konsentrasjon på 44 ug/ml og satt til nitrocellulosemembranen for å danne en linje på tvers av bredden på strimmelen i en
posisjon ca. 1 cm fra enden av membranen. Linjen ble dekket med polyesterlaminat. Denne fikk stå å tørke tilstrekkelig slik at TP-lysatet ble festet til nitrocellulosen.
Immunkromatografistrimler ble montert ved anvendelse av komponentene ovenfor ved å plassere dem ende-mot-ende på langs, med et overlapp på 1 mm, med prøveområdet på én ende, ved siden av der et konjugatområde ble plassert, og til slutt en deteksjonsstrimmel. Den monterte strimmelen ble deretter dekket med polyesterlaminat, som førte til at ca. 10 mm av prøveområdet ble eksponert.
Anti-TP-positivt humant serum ble fortynnet 1:10,8 i enten negativt humant fullblod med en hematokrittverdi på 50 % eller i negativt humant plasma. Ytterligere fire 1:2 serielle fortynninger ble laget, igjen ved å anvende enten fullblod eller plasma som fortynningsmidlet. Seksti ^1 av negativt fullblod eller plasma, eller prøver fra det anti-TP-positive fullblodet eller plasmafortynningsserien, ble satt til prøveområdet på immunkromatografistrimlene. Resultater ble avlest 15 minutter etter påføring av prøven (Tabell 7). Et positivt resultat viste en rød farge på deteksjonsstrimmelen, der det røde selenium TP-konjugat-anti-TP-komplekset var bundet til TP-lysatet på linjen på strimmelen. Et negativt resultat viste ingen farge i denne regionen på deteksjonsstrimmelen.
Tabell 7 viser at deteksjonssensitiviteten av anti-TP var den samme i både fullblod og plasma, hvilket indikerte at polykationet, Merquat<®> -100, effektivt aggregerte de røde blodcellene i fullblodet.
Mens denne oppfinnelsen har blitt beskrevet med hovedvekt på foretrukne utførelser, vil det være innlysende for fagfolk at de foretrukne utførelsene kan bli variert. Det er meningen at oppfinnelsen kan bli praktisert på annen måte enn det som er beskrevet spesifikt heri.

Claims (12)

1. Kromatografitestanordning for å detektere nærværet av en analytt i en blodprøve, omfattende: en kromatografibærer som definerer en bane for væskestrøm og sørger for kapillær strøm, et påføringssete for nevnte blodprøve som er i kontakt med væskestrømmen i nevnte kromatografibærer, et deteksjonssete på nevnte kromatografibærer atskilt fra nevnte påføringssete som har en ikke-diffust bundet oppfangingssubstans bundet dertil, en diffust bundet, merket substans lokalisert nedstrøms for nevnte påføringssete, et diffust bundet polykation for å separere plasma eller serum fra nevnte blodprøve oppstrøms for nevnte deteksjonssete, og et diffust bundet polyanion for å nøytralisere polykationet nedstrøms for nevnte bundne polykation og oppstrøms for nevnte deteksjonssete.
2. Kromatografitestanordning ifølge krav 1, hvor nevnte anordning er en immuntestanordning.
3. Kromatografitestanordning ifølge krav 1, hvor nevnte polykation er bundet på nevnte påføringssete for nevnte blodprøve.
4. Kromatografitestanordning ifølge krav 1, hvor nevnte polykation er valgt fra gruppen bestående av poly-L-lysinhydrobromid, poly-L-argininhydroklorid, poly-L-histidin, poly(lysin, alanin) 3:1 hydrobromid, poly(lysin, alanin) 2:1 hydrobromid, poly(lysin, alanin) 1:1 hydrobromid, poly-(lysin, tryptofan) 1:4 hydrobromid og poly(diallyldimetyl-ammoniumklorid), og fortrinnsvis er poly-(diallyldimetylammoniumklorid).
5. Kromatografitestanordning ifølge krav 1, hvor nevnte polyanion er valgt fra gruppen bestående av dekstransulfat, poly(akrylsyre), poly(natrium-4-styrensulfonat), poly-(vinylsulfonsyre), poly(metylmetakrylsyre), poly-L-asparaginsyre og karboksymetylcellulose, fortrinnsvis dekstransulfat .
6. Kromatografitestanordning ifølge krav 1, hvor nevnte polyanion er bundet diffust til kromatografibæreren på det samme stedet som nevnte merkede substans.
7. Kromatografitestanordning ifølge krav 1, hvor nevnte merkede substans er en selenium-merket substans.
8. Fremgangsmåte for å detektere nærværet av en analytt i en blodprøve, omfattende trinnene å: tilveiebringe en kromatografibærer som definerer en bane for væskestrøm og sørger for kapillær strøm, der det langs denne er (a) et påføringssete for nevnte blodprøve som er i kontakt med væskestrømmen i nevnte kromatografibærer, (b) et deteksjonssete på nevnte kromatografibærer atskilt fra nevnte påføringssete som har en ikke-diffust bundet oppfangingssubstans bundet dertil, (c) en merket substans lokalisert nedstrøms for nevnte påføringssete, (d) et diffust bundet polykation for å separere plasma eller serum fra nevnte blodprøve oppstrøms for nevnte deteksjonssete, og (e) et diffust bundet polyanion for nøytralisering av polykationet lokalisert nedstrøms for nevnte bundne polykation og oppstrøms for nevnte deteksjonssete; la nevnte påføringssete komme i kontakt med nevnte blod-prøve; og detektere nærværet av analytt i nevnte blodprøve.
9. Fremgangsmåte ifølge krav 8, hvor nevnte merkede substans er en selenium-merket substans.
10. Fremgangsmåte ifølge krav 8, hvor nevnte polyanion er bundet diffust til kromatografibæreren på det samme stedet som nevnte merkede substans.
11. Fremgangsmåte ifølge krav 8, hvor nevnte polykation er valgt fra gruppen bestående av poly-L-lysinhydrobromid, poly-L-argininhydroklorid, poly-L-histidin, poly(lysin, alanin) 3:1 hydrobromid, poly(lysin, alanin) 2:1 hydrobromid, poly(lysin, alanin) 1:1 hydrobromid, poly(lysin, tryptofan) 1:4 hydrobromid og poly(diallyldimetylammonium-klorid).
12. Fremgangsmåte ifølge krav 8, hvor nevnte polyanion er valgt fra gruppen bestående av dekstransulfat, poly(akrylsyre) , poly(natrium-4-styrensulfonat), poly(vinylsulfonsyre) , poly(metylmetakrylsyre), poly-L-asparaginsyre og karboksymetylcellulose.
NO20003569A 1998-01-15 2000-07-11 Anordning og metode for kromatografisk deteksjon av en analytt i en blodprove. NO327714B1 (no)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US09/007,651 US6673629B2 (en) 1998-01-15 1998-01-15 Neutralization of polycations in a chromatographic device for whole blood use
PCT/US1998/027802 WO1999036781A1 (en) 1998-01-15 1998-12-29 Neutralization of polycations in a chromatographic device for whole blood use

Publications (3)

Publication Number Publication Date
NO20003569D0 NO20003569D0 (no) 2000-07-11
NO20003569L NO20003569L (no) 2000-09-14
NO327714B1 true NO327714B1 (no) 2009-09-14

Family

ID=21727406

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO20003569A NO327714B1 (no) 1998-01-15 2000-07-11 Anordning og metode for kromatografisk deteksjon av en analytt i en blodprove.

Country Status (30)

Country Link
US (1) US6673629B2 (no)
EP (2) EP1047943B1 (no)
JP (1) JP4270751B2 (no)
KR (1) KR100575390B1 (no)
CN (2) CN1125343C (no)
AR (1) AR014312A1 (no)
AT (2) ATE298425T1 (no)
AU (1) AU748387B2 (no)
BR (1) BR9814007A (no)
CA (1) CA2318459C (no)
CO (1) CO5090841A1 (no)
CZ (1) CZ294954B6 (no)
DE (2) DE69816339T2 (no)
DK (2) DK1047943T3 (no)
ES (2) ES2244861T3 (no)
HK (1) HK1035027A1 (no)
HU (1) HU225975B1 (no)
ID (1) ID26635A (no)
IL (1) IL136236A (no)
LT (1) LT2000071A (no)
MY (1) MY129171A (no)
NO (1) NO327714B1 (no)
NZ (1) NZ504710A (no)
PL (1) PL196464B1 (no)
PT (2) PT1371984E (no)
TR (1) TR200002051T2 (no)
TW (1) TW594012B (no)
UY (1) UY25351A1 (no)
WO (1) WO1999036781A1 (no)
ZA (1) ZA9811953B (no)

Families Citing this family (40)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE60142394D1 (de) * 2000-06-28 2010-07-29 Panasonic Corp Biozensor
JPWO2002037099A1 (ja) * 2000-10-27 2004-03-11 国際試薬株式会社 腎障害の診断方法
JP2002303629A (ja) * 2001-04-06 2002-10-18 Matsushita Electric Ind Co Ltd 免疫クロマトデバイス及びそれを用いた被検物質測定方法
US6841159B2 (en) * 2002-01-30 2005-01-11 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Rapid lateral flow assay for determining exposure to Mycobacterium tuberculosis and other mycobacteria
CA2493795A1 (en) * 2002-08-02 2004-02-12 Emi Sumida Method of preparing platelet rich plasma
WO2004065010A2 (en) * 2003-01-21 2004-08-05 Micronics Inc. Method and system for microfluidic manipulation, amplification and analysis of fluids, for example, bacteria assays and antiglobulin testing
ES2366646T3 (es) * 2003-11-05 2011-10-24 Elan Pharma International Limited Composiciones en forma de nanopartículas que tienen un péptido como estabilizante superficial.
SE0400662D0 (sv) 2004-03-24 2004-03-24 Aamic Ab Assay device and method
SE527036C2 (sv) * 2004-06-02 2005-12-13 Aamic Ab Analysanordning med reglerat flöde och motsvarande förfarande
GB0417601D0 (en) * 2004-08-06 2004-09-08 Inverness Medical Switzerland Assay device & method
KR20130019031A (ko) 2004-09-23 2013-02-25 트리패스 이미징, 인코포레이티드 생물학적 시료의 고정을 위한 다가양이온성 중합체 코팅
US7816122B2 (en) * 2005-10-18 2010-10-19 Idexx Laboratories, Inc. Lateral flow device with onboard reagents
DE102005056592A1 (de) * 2005-11-25 2007-05-31 Basf Ag Herstellung und Verwendung von hochfunktionellen, hoch-oder hyperverzweigten Polylysinen
US7618810B2 (en) * 2005-12-14 2009-11-17 Kimberly-Clark Worldwide, Inc. Metering strip and method for lateral flow assay devices
US20080023395A1 (en) * 2006-07-31 2008-01-31 Sigma Aldrich Co. Compositions and Methods for Isolation of Biological Molecules
CL2007002615A1 (es) * 2006-09-08 2008-04-18 Wyeth Corp Metodos para aislar o purificar un producto que comprende poner el producto enlazado en contacto con al menos una solucion de lavado que comprende arginina y luego eluir el producto; y dicho producto.
KR20100014250A (ko) * 2006-11-29 2010-02-10 마이크로센스 메드텍 리미티드 마이코박테리아 유사 미생물의 포획
GB0623866D0 (en) * 2006-11-29 2007-01-10 Wilson Stuart M Capture of mycobacteria like micro-organisms
US20080261247A1 (en) * 2007-04-03 2008-10-23 Parviz Lalezari Method of detecting red cell antigen-antibody reactions
CN101750244B (zh) * 2008-10-13 2014-03-12 艾博生物医药(杭州)有限公司 一种分离血液样本中红细胞的方法以及运用
EP2269737B1 (en) 2009-07-02 2017-09-13 Amic AB Assay device comprising serial reaction zones
KR100946566B1 (ko) * 2009-11-18 2010-03-11 주식회사 인포피아 측방 유동 면역 분석 디바이스
US20120302456A1 (en) * 2010-11-23 2012-11-29 President And Fellows Of Harvard College Vertical flow-through devices for multiplexed elisa driven by wicking
WO2013147308A1 (ja) 2012-03-30 2013-10-03 積水メディカル株式会社 赤血球含有サンプル中の対象物を検出するためのイムノクロマトグラフィー用テストストリップおよびイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法
WO2013147307A1 (ja) 2012-03-30 2013-10-03 積水メディカル株式会社 赤血球含有サンプル中の対象物を検出するためのイムノクロマトグラフィー用テストストリップおよびイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法
JP6399632B2 (ja) * 2013-10-02 2018-10-03 積水メディカル株式会社 赤血球含有サンプル中の対象物を検出するためのイムノクロマトグラフィー用テストストリップ、および該テストストリップを使用するイムノクロマトグラフィー
US9913929B2 (en) 2013-10-18 2018-03-13 Fortus Medical, Inc. Bone marrow aspirate enhanced bone graft
CN110780066A (zh) * 2014-12-16 2020-02-11 积水医疗株式会社 用于检测含红细胞的样品中的对象物的免疫色谱用测试条、及使用该测试条的免疫色谱
US10610242B2 (en) 2015-05-08 2020-04-07 Fortus Medical, Inc. Bone fragment and tissue harvesting system
JP6675834B2 (ja) * 2015-05-21 2020-04-08 デンカ生研株式会社 イムノクロマト試験片及びそれを用いたイムノクロマト法
AU2017207860A1 (en) * 2016-01-15 2018-06-28 Dsm Ip Assets B.V. Method for detecting an analyte
JP6738608B2 (ja) * 2016-01-22 2020-08-12 田中貴金属工業株式会社 クロマトグラフ媒体
US10456502B2 (en) 2016-09-07 2019-10-29 Fortus Medical, Inc. Bone void filler preparation system
CA3049651C (en) * 2017-01-11 2023-01-31 Cypher Medical, Llc Method of estimating blood volume
EP3634245A4 (en) 2017-06-07 2021-03-17 Fortus Medical, Inc. CONJUNCTIVE TISSUE PROGENITOR CELL SUCTION AND TREATMENT SYSTEM
US11278336B2 (en) 2018-03-22 2022-03-22 Fortus Medical, Inc. Osteomedullary tissue processing system
CN110308276A (zh) * 2019-06-14 2019-10-08 郑州轻工业学院 一种增加黄曲霉毒素b1胶体金检测试纸条分析灵敏度的样品垫处理液
DK3986588T3 (da) * 2019-06-20 2024-01-15 UCB Biopharma SRL HPLC-baseret detektering af flokkuleringsmidler i en proteinprøve
CN110823670B (zh) * 2019-11-27 2023-03-24 香港大德昌龙生物科技有限公司 用于分离血细胞的组合物、血细胞分离方法、检测试剂盒和检测装置
AU2022343290A1 (en) * 2021-09-10 2024-03-21 Quidel Corporation Agglutinating agents, devices and methods for whole blood assays

Family Cites Families (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4308232A (en) * 1979-07-09 1981-12-29 Sherwood Medical Industries Inc. Anticoagulant stopper coating
DE3029579C2 (de) * 1980-08-05 1985-12-12 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren und Mittel zur Abtrennung von Plasma oder Serum aus Vollblut
US5073484A (en) 1982-03-09 1991-12-17 Bio-Metric Systems, Inc. Quantitative analysis apparatus and method
US4594327A (en) 1983-11-02 1986-06-10 Syntex (U.S.A.) Inc. Assay method for whole blood samples
US4678757A (en) * 1985-04-11 1987-07-07 Smithkline Diagnostics, Inc. Device and method for whole blood separation and analysis
US4806311A (en) * 1985-08-28 1989-02-21 Miles Inc. Multizone analytical element having labeled reagent concentration zone
US4935147A (en) * 1985-12-20 1990-06-19 Syntex (U.S.A.) Inc. Particle separation method
US4753776A (en) 1986-10-29 1988-06-28 Biotrack, Inc. Blood separation device comprising a filter and a capillary flow pathway exiting the filter
US5120643A (en) 1987-07-13 1992-06-09 Abbott Laboratories Process for immunochromatography with colloidal particles
JPH02140147A (ja) 1988-01-19 1990-05-29 Syntex Usa Inc 赤血球から血漿を分離する方法および装置
US5459080A (en) * 1988-01-29 1995-10-17 Abbott Laboratories Ion-capture assays using a specific binding member conjugated to carboxymethylamylose
US5670381A (en) 1988-01-29 1997-09-23 Abbott Laboratories Devices for performing ion-capture binding assays
US5459078A (en) * 1988-01-29 1995-10-17 Abbott Laboratories Methods and reagents for performing ion-capture digoxin assays
DE3903114A1 (de) * 1989-02-02 1990-08-09 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren zur bestimmung eines enzyms aus einem isoenzymgemisch sowie hierfuer geeigneter testtraeger und dessen verwendung
US4933092A (en) 1989-04-07 1990-06-12 Abbott Laboratories Methods and devices for the separation of plasma or serum from whole blood
US5306623A (en) * 1989-08-28 1994-04-26 Lifescan, Inc. Visual blood glucose concentration test strip
US5435970A (en) * 1989-12-18 1995-07-25 Environmental Diagnostics, Inc. Device for analysis for constituents in biological fluids
US5212060A (en) 1990-04-27 1993-05-18 Genesis Labs, Inc. Dry test strip comprising a dextran barrier for excluding erythrocytes
US5186843A (en) * 1991-07-22 1993-02-16 Ahlstrom Filtration, Inc. Blood separation media and method for separating plasma from whole blood
US5547576A (en) * 1992-07-06 1996-08-20 Terumo Kabushiki Kaisha Pathogenic substance removing material and a blood filter containing the material
AU706456B2 (en) 1995-03-27 1999-06-17 Lifescan, Inc. Chemical timer for a direct-reading reagent test strip
US5725774A (en) 1995-04-07 1998-03-10 Lxn Corp. Whole blood separation method and devices using the same
US5753497A (en) * 1995-12-22 1998-05-19 Universal Health Watch Inc Diagnostic assay providing blood separation

Also Published As

Publication number Publication date
EP1047943A1 (en) 2000-11-02
AR014312A1 (es) 2001-02-07
IL136236A0 (en) 2001-05-20
CN1125343C (zh) 2003-10-22
BR9814007A (pt) 2000-10-31
HUP0100557A2 (hu) 2001-06-28
DE69830675D1 (de) 2005-07-28
ATE244890T1 (de) 2003-07-15
EP1371984A1 (en) 2003-12-17
US20010006823A1 (en) 2001-07-05
LT2000071A (lt) 2000-11-27
CZ20002606A3 (cs) 2001-02-14
EP1371984B1 (en) 2005-06-22
IL136236A (en) 2005-07-25
WO1999036781A1 (en) 1999-07-22
DE69816339D1 (de) 2003-08-14
KR20010034165A (ko) 2001-04-25
TW594012B (en) 2004-06-21
PL342658A1 (en) 2001-07-02
AU748387B2 (en) 2002-06-06
NO20003569D0 (no) 2000-07-11
ATE298425T1 (de) 2005-07-15
HU225975B1 (en) 2008-02-28
CA2318459A1 (en) 1999-07-22
NZ504710A (en) 2002-05-31
PT1371984E (pt) 2005-11-30
JP2002509254A (ja) 2002-03-26
KR100575390B1 (ko) 2006-05-03
UY25351A1 (es) 1999-09-27
DK1371984T3 (da) 2005-10-10
ZA9811953B (en) 1999-06-30
CN1285918A (zh) 2001-02-28
CZ294954B6 (cs) 2005-04-13
HUP0100557A3 (en) 2003-01-28
JP4270751B2 (ja) 2009-06-03
NO20003569L (no) 2000-09-14
ID26635A (id) 2001-01-25
DE69816339T2 (de) 2004-06-09
CN1213303C (zh) 2005-08-03
ES2244861T3 (es) 2005-12-16
CO5090841A1 (es) 2001-10-30
ES2202931T3 (es) 2004-04-01
US6673629B2 (en) 2004-01-06
MY129171A (en) 2007-03-30
CA2318459C (en) 2010-12-21
HK1035027A1 (en) 2001-11-09
CN1495428A (zh) 2004-05-12
DK1047943T3 (da) 2003-11-03
AU2209299A (en) 1999-08-02
DE69830675T2 (de) 2006-05-04
PL196464B1 (pl) 2008-01-31
EP1047943B1 (en) 2003-07-09
TR200002051T2 (tr) 2000-12-21
PT1047943E (pt) 2003-11-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
NO327714B1 (no) Anordning og metode for kromatografisk deteksjon av en analytt i en blodprove.
JP7330945B2 (ja) 分析物検出の改善のためのアッセイ法
US5824268A (en) Rapid self-contained assay format
JP3358737B2 (ja) 改良された投与量応答曲線を有するアッセイ
KR100946566B1 (ko) 측방 유동 면역 분석 디바이스
JP2007187664A (ja) 改良された対照区画を有する免疫学的試験素子
AU5347000A (en) Flow-through assay for visually detecting the presence of influenza A and B
US20070092978A1 (en) Target ligand detection
KR20010013751A (ko) 항체측정방법 및 항체측정장치
CA2046130A1 (en) Biologically active reagent, analytical element and methods for use of the reagent
US20020106696A1 (en) Test device for detecting semen and method of use
CN116027035B (zh) 一种用于提高hiv1/2尿液胶体金免疫层析检测准确率的试剂盒及制备方法
JP3493544B2 (ja) 抗体アッセイ装置
WO1992008978A1 (en) Immunoassay for the determination of anti-hiv antibodies in human samples
JP2002214236A (ja) 血中抗原検出方法及び装置
EP0756173A1 (en) Reagent for detecting substances and method for diagnosing rheumatoid arthritis
MXPA00006963A (en) Neutralization of polycations in a chromatographic device for whole blood use
JPH11118801A (ja) 免疫分析装置
WO1992022816A1 (en) Solid phase immunoassay

Legal Events

Date Code Title Description
MK1K Patent expired