NO180642B - Alkalipullulanase og renisolert kultur av Bacillus sp. mikroorganisme som produserer denne - Google Patents

Alkalipullulanase og renisolert kultur av Bacillus sp. mikroorganisme som produserer denne Download PDF

Info

Publication number
NO180642B
NO180642B NO903801A NO903801A NO180642B NO 180642 B NO180642 B NO 180642B NO 903801 A NO903801 A NO 903801A NO 903801 A NO903801 A NO 903801A NO 180642 B NO180642 B NO 180642B
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
range
medium
alkaline
optimum
pullulanase
Prior art date
Application number
NO903801A
Other languages
English (en)
Other versions
NO903801D0 (no
NO180642C (no
NO903801L (no
Inventor
Katsutoshi Ara
Kazuaki Igarashi
Katsuhisa Saeki
Susumu Ito
Original Assignee
Kao Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from JP1226210A external-priority patent/JPH0387176A/ja
Priority claimed from JP1226211A external-priority patent/JPH0659215B2/ja
Application filed by Kao Corp filed Critical Kao Corp
Publication of NO903801D0 publication Critical patent/NO903801D0/no
Publication of NO903801L publication Critical patent/NO903801L/no
Publication of NO180642B publication Critical patent/NO180642B/no
Publication of NO180642C publication Critical patent/NO180642C/no

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2405Glucanases
    • C12N9/2451Glucanases acting on alpha-1,6-glucosidic bonds
    • C12N9/2457Pullulanase (3.2.1.41)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01041Pullulanase (3.2.1.41)
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/832Bacillus

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Detergent Compositions (AREA)

Description

Denne oppfinnelse vedrører en ny alkalisk pullulanase og en renisolert kultur av Bacillus sp. mikroorganisme for å produsere den alkaliske pullulanasen.
Beskrivelse av bakgrunnskunnskapen:
Pullulanase er et enzym som hydrolyserer bare a-l,6-glykosid-binding i pullulan og tilslutt produserer maltotriose. Pullulanase ble først oppdaget fra en stamme som tilhører Aerobacter aerogenes av Bender og Wallenfels i 1961 [Biochem. Z., 334, 79, (1961)].
Nylig er forskjellige mikroorganismer som er i stand til å produsere pullulanase, blitt rapportert. Disse mikroorganismer er f.eks. Bacillus sp. [J. Jpn. Soc. Starch Sei., 30, 200, (1983)]; Bacillus acidopullulyticus [Agric. Biol. Cheirt. , 52, 2293, (1984)]; Bacillus stearothermophiluss [Eur. J. Appl. Microbiol. Biotechnol., 17, 24, (1983)]; Streptococcus mitis [Biochem.J., 108, 33, (1968)]; og Lactobacillus [Denpun Kagaku, 28, 72, (1981)].
Det er kjent at pullulanaser ikke bare har den ovenfor nevnte aktivitet mot pullulan, men også hydrolyseaktiviteter mot a-l,6-glykosidbinding i stivelse, glykogen, amylopektin såvel som mot forgrenete oligosakkarider idet den produserer delvis dekomponering av disse forbindelser. På grunn av denne egenskap blir pullulanase kalt et "deforgreningsenzym".
Videre er det blitt funnet at pullulanase i kombinasjon med både endo-type amylase og ekso-type amylase kan gi glykose eller maltooligo-sakkarider slik som maltose, maltotriose, malto-tetraose, maltopentaose eller maltoheksaose fra stivelse i høyt utbytte. Denne egenskap har i den senere tid tiltrukket seg betraktlig oppmerksomhet.
Det er en rapport om at pullulanase som har disse egenskaper, ble anvendt i kombinasjon med amylase som tilsetningsstoff til oppvaskmidler eller klesvaskmidler, og derved merkbart forbedrer vaskemiddelets renseevne mot stivelsesjordarter (Japansk patent-søknad nr. 285424/1988). Videre anvendelse av pullulanase er forventet på disse områder.
Imidlertid er nesten alle naturlig forekommende pullulanaser klassifisert i de nøytrale eller sure pullulanaser som viser maksimal og stabil enzymatisk aktivitet under nøytrale eller sure betingelser. Det er få alkaliske eller alkali-resistente pullulanaser som har bedre stabilitet og viser den maksimale aktivitet i et alkalisk pH område hvorved klesvask eller oppvask utføres. En alkalisk pullulanase betegner her en pullulanase som har sin optimale pH i et alkalisk område. En alkaliresistent pullulanase betegner en pullulanase som har sin optimale pH i et nøytralt til surt område, men har en tilstrekkelig grad av aktiviteter i et alkalisk område da den har sin optimale pH mens den bevarer god stabilitet. Ordet "nøytral" betegner her et pH-område på 6-8, og ordet "alkalisk" betegner et pH område på ikke mindre enn 8.
Ingen fremgangsmåte for å produsere alkaliske pullulanaser eller alkali-resistente pullulanaser er kjent til nå, med unntak av en rapport fra Horikoshi et al., som beskriver en fremgangsmåte for produksjon av alkalisk pullulanase ved å dyrke en alkalofil mikroorganisme som tilhører slekten Bacillus [Biochem. Biophys. Acta, 397, 188, (1975), og Japansk patent-publikasjon nr. 27796/1978)].
Pullulanasen til Horikoshi et al. er et enzym som har sin optimale pH i et alkalisk område og har en videre substratspesifisitet enn konvensjonelt kjente pullulanaser. Imidlertid, siden dens optimale pH er i et svakt alkalisk område på 8-9, kan den ikke anvendes i vaskemiddel-blandinger. I tillegg har fremgangsmåten til Horikoshi et al. den ulempe at den har lav produk-tivitet av enzym. Denne type fremgangsmåte er derfor uegnet til industriell fermenteringsproduksjon. Av disse grunner har utviklingen av pullulanaser med en optimal pH i høyere alkalisk område vært ønsket.
Oppvask eller klesvask blir vanligvis utført i et vidt pH-område fra nøytralt til sterkt alkalisk område. Det er derfor verdt å oppdage og oppnå naturlige mikroorganismer som produserer pullulanaser med en optimal pH i et sterkt alkalisk område og som er egnet til oppvask- og klesvaskmidler.
I lys av denne situasjon har de foreliggende oppfinnere utført utstrakte studier for å oppnå naturlige mikroorganismer som er i stand til å produsere alkalisk pullulanase og som et resultat funnet at en ny alkalisk pullulanase som har en optimal pH i et sterkt alkalisk område på fra 9,5 til 11, kan oppnås ved å dyrke en spesifikk mikroorganisme som tilhører slekten Bacillus. Dette funn har ført til fullførelsen av den foreliggende oppfinnelse.
Sammendra<g> av oppfinnelsen
Et mål for den foreliggende oppfinnelse er å gi en ny renset alkalisk pullulanase Z-l som har følgende enzymologiske egenskaper:
(1) Virkning
Hydrolyserer a-l,6-binding i pullulan og gir maltotreose, og hydrolyserer a-l,6-glykosidisk binding i stivelse, amylopektin, glykogen eller deres partielle spaltningsprodukter;
(2) Substratspesifisitet har hydrolyseaktivitet mot a-l,6-glykosidbinding av sukkere med en høyere polymeriseringsgrad enn maltoses; (3) Virknings-pH- og optimum pH-område har et aktivt pH-område på 5 - 11 med et optimum pH-område på 9,5 - 11; (4) pH-stabilitet er stabil i et pH-område på 8 - 10 og beholder relativ aktivitet på 50 % eller mer av aktiviteten ved et optimale pH-område selv i et pH-område på 7 - 10,5 ved behandling ved 4 5°C i 10 minutter; (5) Virketemperatur og optimum-temperatur er aktiv i et bredt temperaturområde på fra 10 - 60°C med en optimumstemperatur på rundt 50°C; (6) Termisk stabilitet er meget stabil ved 40°C ved behandling i 10 mM glycin-NaCl-_ NaOH buffer (pH 9,5) i 30 minutter; (7) Molekylvekt ca. 12 0.000 ± 5.000 målt ved hjelp av elektroforese ved bruk av natriumdodecylsulfat; (8) Virkninger av metallioner blir negativt påvirket av Hg<2+>, Cd<2+>, Mn<2+>, og Pb<2+->ioner. (9) Virkning av vaskemidler knapt påvirket av overflateaktive midler så som lineær alkyl-benzensulfonat (LAS), natriumalkylsulfat (AS), natriumpoly-oksyetylenalkylsulfat (ES), natrium-a-olefinsulfonat (AOS), natrium a-sulfonert fettsyreester (a-SFE), natriumalkyl-sulfonat (SAS), natriumdodecylsulfat (SDS), såper og softanol; (10) Virkninger av chelateringsmidler knapt påvirket av EDTA, EGTA, sitronsyre, og zeolitt; (11) Resistens mot protease viser sterk bestandighet mot alkaliske proteaser.
Et annet mål for den foreliggende oppfinnelse er å gi en renisolert kultur av Bacillus sp. mikroorganisme som er i stand til å produsere den alkaliske pulllulanase med de ovenfor nevnte egenskaper.
Andre mål, særtrekk og fordeler ved oppfinnelsen vil heretter lettere åpenbart fra den følgende beskrivelse.
Kort beskrivelse av tegningene
Fig. 1 er en tegning som viser forholdet mellom relativ aktivitet og reaksjons-pH i den alkaliske pullulanase i henhold til denne oppfinnelse. Fig. 2 er en tegning som viser forholdet mellom pH og rest-aktivitet i den alkaliske pullulanase i henhold til denne oppfinnelse. Fig. 3 er en tegning som viser forholdet mellom reaksjons-temperatur (pH 9,5) og relativ aktivitet i den alkaliske pullulanase i henhold til den foreliggende oppfinnelse. Fig. 4 er en tegning som viser forholdet mellom reaksjons-temperatur (pH 9,5) og restaktivitet i den alkaliske pullulanase i henhold til den foreliggende oppfinnelse. Fig. 5 er en tegning som viser forholdet mellom relativ aktivitet og reaksjons-pH i den alkaliske pullulanase Z-l i henhold til denne oppfinnelsen. Fig. 6 er en tegning som viser forholdet mellom pH og rest-aktivitet i den alkaliske pullulanase Z-l i henhold til denne oppfinnelsen. Fig. 7 er en tegning som viser forholdet mellom reaksjons-temperatur (pH 9,5) og relativ aktivitet i den alkaliske pullulanase Z-l i henhold til den foreliggende oppfinnelse. Fig. 8 er en tegning som viser forholdet mellom reaksjons-temperatur (pH 9,5) og restaktivitet i den alkaliske pullulanase Z-l i henhold til den foreliggende oppfinnelse. Fig. 9 er en tegning som viser resultatene fra elektroforese av den alkaliske pullulanase Z-l i henhold til den foreliggende oppfinnelse. Fig. 10 er en tegning som viser resultatene fra SDS elektroforese av den alkaliske pullulanase Z-l i henhold til den foreliggende oppfinnelse.
Detaljert beskrivelse av oppfinnelsen
og foretrukne utførelsesformer
Mikroorganismer i den foreliggende oppfinnelse tilhører slekten Bacillus og er i stand til å produsere pullulanase med en optimal pH på 9,5 - 11, typisk er en alkalofil mikroorganisme, Bacillus sp. KSM-AP187 6, som ble oppdaget av oppfinnerne i jord-artene i Yokohama-shi, Kanagawa-gen, Japan.
Mykologiske egenskaper ved Bacillus sp. KSM-AP1876, som er mikroorganismen i henhold til denne oppfinnelse, blir nå diskutert. De følgende dyrkingsmedier av 21 sorter (medium 1 til 21) er anvendt til klassifiseringen av stamme. De inneholder alle 0,5 vekt% sterilisert natriumkarbonat (Na2C03) .
Blandinger av de anvendte dyrkingsmedier (vekt%)
Medium 1: Næringsstoffbuljong, 0,8; agarpulver
(fremstilt av Wako Pure Chemical Co.), 1,5
Medium 2: Næringsstoffbuljong, 0,8
Medium 3: Næringsstoffbuljong, 0,8; gelatin 20,0; agarpulver
(fremstilt av Wako Pure Chemical), 1,5
Medium 4: Bacto lakmus melk, 10,5
Medium 5: Næringsstoffbuljong, 0,8; KN03, 0,1
Medium 6: Bacto pepton, 0,7; NaCl, 0,5; glykose, 0,5
Medium 7: SIM agar medium (fremstilt av Eiken Kagaku),
en mengde angitt
Medium 8: TSI agar (fremstilt av Eiken Kagaku),
en mengde angitt
Medium 9: gjær-ekstrakt, 0,5; Bacto pepton, 1,5; K2HP04, 0,1;
MgS04'7H20, 0,02; løselig stivelse, 2,0; agarpulver (fremstilt av Wako Pure Chemical), 1,5
Medium 10: Koser's medium (fremstilt av Eiken Kagaku)
en mengde angitt
Medium 11: Christensen<1>s medium (fremstilt av Eiken Kagaku)
en mengde angitt
Medium 12: Mediet som inkluderer de følgende blandinger (1) og (2) hvor til det er tilsatt nitrogenkilder som
består av natriumnitrat, natriumnitritt, ammonium-klorid og ammoniumfosfat i en mengde på hhv. 0,25%, 0,2025 %, 0,158 % og 0,195 % av vekt i mediet. (1) gjær-ekstrakt, 0,05; Na2S04, 0,1;
KH2P04, 0,1; glukose, 1,0
(2) gjærekstrakt, 0,5; Na2S04, 0,1;
KH2PH4, 0,1; glukose, 1,0;
CaCl2<->2H20, 0,05; NmS04"4-6H20, 0,01;
FeS04<->7H20, 0,001; MgS04"7H20, 0,02
Medium 13: King A medium "Eiken" (fremstilt av Eiken Kagaku),
en mengde angitt
Medium 14: King B medium "Eiken" (fremstilt av Eiken Kagaku),
en mengde angitt
Medium 15: Urea medium "Eiken" (fremstilt av Eiken Kagaku)
en mengde angitt
Medium 16: Cytokrom-oksidase testfilterpapir (fremstilt av
Nissiu Pharmaceutical Co., Ltd.)
Medium 17: 3 % vandig hydrogenperoksyd
Medium 18: Bacto pepton, 0,5; gjær-ekstrakt, 0,5;
K2HP04, 0,1; glukose, 1,0; MgS04-7H2<0,> 0,02 Medium 19: Bacto pepton, 2,7; NaCl, 5,5; K2HP04, 0,3;
glukose, 0,5; bromthymol blått, 0,06; agarpulver (fremstilt av Wako Pure Chemical), 1,5
Medium 20: (NH4)2HP04, 0,1; KC1, 0,02;
MgS04'7H2O, 0,02, gjær-ekstrakt, 0,05; sukker, 1,0 Medium 21: Kasein, 0,5; gjær-ekstrakt, 0,5; glukose, 1,0;
K2HP04, 0,1; MgS04'7H20, 0,02; agarpulver (fremstilt av Wake Pure Chemical), 1,5
Mykologiske egenskaper
(1) Observasjon under mikroskop
Celler er staver med en størrelse på 1,0 - 2,2 jum x 2,2 - 4,4 jxm roed en elliptisk endospore (0,8 - 1,0 jim x 1,0 - 1,8 /im) som dannes i subterminalene. De har flageller og er bevegelige, Gram-farging er positiv. Syrefasthet: negativ
(2) Vekst i forskjellige kulturmedier
(a) Næringsstoffbuljong-agarplate (medium 1)
Vekst av celler er god. Kolonien har sirkulær form, og overflaten er glatt, og dens perifere ende er glatt eller bølgete. Fargen på kolonien er melkeaktig, semi-transparent og glinsende.
(b) Næringsstoffbuljong-agar skråkultur (medium 1)
Celler kan vokse. Kolonien har form som et tekstildekke, og fargen på kolonien er glinsende melkeaktig og semi-transparent.
(c) Væske næringsstoffbuljong (medium 2)
Celler kan vokse
(d) Stikk-dyrking i næringsstoffbuljong-gelatin
(Medium 3).
Vekst av celler er god. Væskedannelse av gelatin er observert.
(e) Lakmus melkemedium (medium 4)
Melkekoagulering og peptonisering er ikke observert. Litmus avfarging er ubestemmelig fordi medium er et alkalisk medium.
(3) Fysiologiske egenskaper
(a) Nitratreduksjon og denitrifisering (medium 5)
Nitratreduksjon: positiv
Denitrifisering: negativ
(b) MR test (medium 6)
Ubestemmelig fordi mediet er et alkalisk medium.
(c) V-P test (medium 6
negativ
(d) Produksjon av indole (medium 7)
negativ
(e) Produksjon av hydrogensulfid (medium 8)
negativ
(f) Hydrolyse av stivelse (medium 9)
positiv
(g) Anvendelse av sitronsyre (medium 10, medium 11)
negativ i Koser's medium (medium 10) og ubestemmelig i Christensen<1>s medium (medium 11)
(h) Anvendelse av uorganiske nitrogenkilder
(medium 12)
nitrat, nitritt og ammoniumsalter blir alle anvendt.
(i) Avfarging (medium 13, medium 14)
negativ
(j) Urease (medium 15)
negativ
(k) Oksidase (medium 16)
ubestemmelig
(1) Katalase (medium 17)
positiv
(m) Vekstområde (medium 18)
Veksttemperatur: 20 - 40°C,
Optimal veksttemperatur: 30 - 35°C
Vekst pH-område: 7 - 10,5
Optimal pH: 10
(n) Oppførsel på oksygen
aerob
(o) O-F test (medium 19)
ubestemmelig fordi mediet er et alkalisk medium.
Celler kan vokse bare under aerobe betingelser.
(p) Sukker-anvendelse (medium 20)
De følgende sukkere anvendes: L-arabinose, D-xylose, D-glukose, D-mannose, D-fruktose, D-galaktose, maltose, sukrose, laktose, trehalose, D-sorbitol, D-mannitol, glycerol, stivelse, salicin, D-ribose og dekstrin.
(g) Vekst i et medium som inneholder natriumsalt
(modifisering av medium 1)
Celler kan vokse i nærvær av 5 % natriumklorid men kan ikke vokse i nærvær av 7 % natriumklorid.
(r) Hydrolyse av kasein (medium 21)
positiv.
Basert på de ovenfor nevnte mykologiske egenskaper ble stammene i henhold til den foreliggende oppfinnelse undersøkt idet de refererer til Bergey's Manual of Determinative Bacteriology, Vol. 8 og "The Genus Bacillus" Ruth E. Gordon, Agriculture Handbook nr. 427, Agricultural Research Service, U.S. Department of Agriculture, Washington D.C., (1973), og bestemt som en mikroorganisme som tilhører slekten Bacillus, ascospore staver. Stammen vokser ikke i et nøytralt område, men kan for det meste vokse i et sterkt alkalisk område. Fra dette faktum blir stammen i henhold til den foreliggende oppfinnelse klassifisert som en alkalofil mikroorganisme som det ble demonstrert av Horikoshi og Akiba, "Alkalophilic Microorganism", Japan Scientific Society Press (Tokyo) 1982. Stammen i henhold til den foreliggende oppfinnelse er adskilt fra en gruppe mikroorganismer som tilhører slekten Bacillus som vokser i et nøytralt område.
Stammen i henhold til den foreliggende oppfinnelse, har forskjellig fra de ovenfor nevnte egenskaper, mykologisk forskjellig egenskaper fra enhver vanlig kjent alkalofil Bacillus. Følgelig ble stammen i henhold til den foreliggende oppfinnelse bestemt som en ny stamme og kalt Bacillus sp. KSM-AP1876, som ble deponert med Fermentation Research Institute, Agency of Industrial Science and Technology som FERM P-10887.
Produksjonen av alkalisk pullulanase kan gjøres ved å inokulere mikroorganismene i henhold til den foreliggende oppfinnelse og dyrke mikroorganismene i henhold til konvensjonelle dyrkingsmetoder. Inkludering av en egnet mengde karbon- og nitrogenkilder som mikroorganismen kan anvende i mediet, er ønskelig. Det er ingen spesifikke begrens-ninger når det gjelder karbon- og nitrogenkilder. Satt opp som nitrogenkilder er organiske nitrogenkilder slik som mais gluten-mel, soyabønnemel, maisstøp-væske, kasaminosyre, gjær-ekstrakt, farmamedia, kjøtt-ekstrakt, trypton, soyton, hypro, ajipulver, soyabønnemel, bomullfrømel, kultivator, ajipron, sitrusskall og lignende; og uorganiske nitrogenkilder slik som ammoniumsulfat, ammoniumnitrat, ammoniumfosfat, ammoniumkarbonat, natriumnitrat, ammoniumacetat, og lignende. Gitt som eksempler på karbonkilder er løselig stivelse, uløselig stivelse, amylopektin, glykogen, pullulan og forgrenede oligomerer produsert ved delvis dekomponering av disse, og anvendbare karbonkilder er slike som glukose, maltose, arabinose, xylose, ribose, mannose, fruktose, galaktose, sukrose, laktose, trehalose, mannitol, sorbitol, glycerol, og anvendbare organiske syrer er slik som eddiksyre og lignende. I tillegg til disse karbon- og nitrogenkilder kan uorganiske ioner slik som fosfater, magnesium, kalsium, mangan, sink, kobolt, natrium, kalium og lignende, som påkrevet, andre organiske eller uorganiske mikronæringsstoffer, tilsettes til dyrkingsmediet.
Alkalisk pullulanase kan fremstilles fra dyrkingsbuljongen ved hjelp av konvensjonelle oppsamlings- og rensingsmetoder til-passet til generelle enzymer. Spesifikt blir celler separert fra dyrkingsbuljongen ved hjelp av konvensjonelle faststoff-væske-separasjons-metoder, slik som sentrifugering, filtrering eller lignende, for å oppnå en råenzymvæske. Selvom det er mulig å anvende den således oppnådde råenzymvæske som sådan, kan de også tjene som et renset enzym, som påkrevet, etter separering ved hjelp av separasjonsmetoder, f.eks. utsalting, presipitering, ultra-filtrering o.l., for å oppnå råenzym, og rensing og krystal-liser ing av råenzymet ved hjelp av konvensjonelle metoder. Egnede rensingsmetoder er f.eks. DEAE cellulose (fremstilt av Whatman Co.) adsorpsjon, DEAE cellulose kromatografering, Sephacryl
(fremstilt av Pharmasia Co.) kromatografering, DEAE Toyopeal (fremstilt av Tosoh) kromatografering, og butyl Toyopeal kromatografering.
Enzymologiske egenskaper til det nye enzym, alkalisk pullulanase blir nå diskutert. Enzymatiske aktiviteter ble målt ved å anvende de følgende bufferløsninger (50 mM hver) i henhold til fremgangsmåten forklart nedenfor.
Bufferløsningene:
pH 4 - 6: acetatbuffer
pH 6 - 8: fosfatbuffer
pH 8 - 11: glycin-NaCl-NaOH buffer
pH 11 - 12: KCl-NaOH buffer
Måling av enzymatisk aktivitet:
0,1 ml enzymløsning ble tilsatt til 0,9 ml av hver substrat-løsning fremstilt fra hver bufferløsning som inneholdt pullulan (sluttkonsentrasjon i reaksjonssystemet: 0,2 5 % v/v) og blandingen ble reagert ved 40°C i 30 minutter. Etter reaksjonen ble reduserende sukkere kvantitativt bestemt ved hjelp av 3,5-dinitro-salicylsyre (DNS) prosedyren.
Spesifikt ble 1,0 ml DNS reagens tilsatt til en 1,0 ml reaksjonsblanding, og blandingen ble oppvarmet ved 100°C for å utvikle en farge. Etter avkjøling ble 4,0 ml deionisert vann tilsatt til blandingen. Dette ble underkastet kolorimetrisk kvantitativ analyse ved en bølgelengde på 535 nm. En enhet (1 U) enzymaktivitet ble definert som mengden av enzym som frigjorde 1 jumol reduserende sukker som glukose pr. minutt under standard målebetingelser.
Enzymolo<g>iske egenskaper ved den rå alkaliske pullulanase
(1) Virkning
Hydrolyserer a-l,6-binding i pullulan så det produseres maltotriose, og som vist i tabell 1, hydrolyserer a-l,6-glykosid-binding i stivelse, amylopektin, glykogen eller deres delvise dekomponeringsprodukter.
(2) Virknings-pH og optimum-pH-område
Har et aktivt pH-område på 4 - 14 med et optimum pH-område på 9,5 - 11 og bevarer relativ aktivitet på 50 % eller mer av aktiviteten i det optimale pH-området til og med i et pH område på 8,5 - 11,5.
Pullanase aktiviteter ved forskjellig pH ble målt ved å anvende hvert reaksjonssystem som besto av 0,25 % (v/v) pullulan og en bufferløsning av 10 mM acetat (pH 4-6), fosfat (pH 7-8), glycin-NaCl-NaOH (pH 8,5-10,5), eller KCl-NaOH (pH 11-12). Hver reaksjon ble utført ved 40°C i 30 minutter. Resultatene er vist i fig. 1.
(3) pH-stabilitet
Er stabil i et pH-område på 7 - 10 og bevarer relativ aktivitet på 50 % eller mer av aktiviteten i det optimale pH-området til og med i et pH-område på 6 - 11,5.
Pullulanase aktiviteter ved forskjellige pH ble målt ved å anvende hvert reaksjonssystem som besto av 0,25 % (v/v) pullulan og en bufferløsning av 10 mM acetat (pH 4-6), fosfat (pH 7.8), glycin-NaCl-NaOH (pH 8,5-10,5) eller KCl-NaOH (pH 11-12). Hver reaksjon ble utført ved 45°C i 10 minutter. Resultatene er vist i fig. 2.
(4) Virke-temperatur og optimum-temperatur
Virker i et vidt temperaturområdé på 10 - 60°C med en optimum temperatur på 55°C (se fig. 3).
(5) Termisk stabilitet
Rest-aktiviteter av enzymet, når varmebehandlet ved forskjellige temperaturer i 3 0 minutter i glycin-NaCl-NaOH buffer (pH 9,5), ble målt. Enzymet mistet knapt sin aktivitet ved 45°C, og har rest-aktivitet på omtrent 50 % til og med ved 52°C (se fig. 4).
(6) Molekylvekt
Molekylvekten av enzymet i henhold til den foreliggende oppfinnelse ble målt ved hjelp av en gel-filtreringsmetode ved å anvende Bio-gel A 0,5m. Enzymet har en molekylvekt på omtrent 110.000 ± 10.000.
(7) Virkning av metallioner
Tilsetning av Hg<2+>, Pb<2+>, og Cd<2+> ioner (1 mM hver) gir en negativ virkning og tilsetning av Mn<2+> ion (1 mM) gir en svakt negativ virkning. (8) Virkning av vaskemidler 0,05 vekt% av overflateaktive midler slik som lineær alkyl-benzensulfonat (LAS), natriumalkylsulfat (AS), natrium-polyoksyetylenalkylsulfat (ES), natrium a-olefinsulfonat (AOS), natrium a-sulfonert fettsyreester (a-SFE), natrium-alkylsulfonat (SAS), natriumdodekylsulfonat (SDS), såper og softanol ble testet ved 4 0°C i 15 minutter for å bekrefte at det ikke var noen negativ virkning på enzymatiske aktiviteter.
(9) Virkning av chelateringsmidler
Chelateringsmidler slik som EDTA (10 mM), EGTA (10 mM), sitronsyre (0,05 vekt%) og zeolitt (0,05 vekt%) gir ingen negativ virkning på enzymatiske aktiviteter.
(10) Resistens mot protease
I nærvær av alkalisk protease, f.eks. API-21 (Showa Denko), Maxatase (IBIS) og Sabinase, Alkalase og Esperase (Novo) i en mengde på 0,2 AU/1, ble aktivitetene målt for å bekrefte at enzymene hadde sterk bestandighet mot alle proteaser.
Enzymolo<g>iske egenskaper for renset alkalisk pullulanase Z- l (1) Virkning
Hydrolyserer a-l,6-binding av pullulan så det produseres malto-treose, og hydrolyserer a-l,6-glykosidbinding i stivelse, amylopektin, glykogen, eller deres delvise dekomponeringsprodukter.
(2) Substratspesifisitet
Har hydrolyseaktivitet mot a-l,6-glykosidbinding i sukkere som har en høyere polymeriseringsgrad enn maltoses som vist i tabell 2.
(3) Virknings-pH og optimum-pH-område
Har et aktivt pH-område på 5 - 11 med et optimalt pH-område på 9,5 - 11.
Pullulanase aktiviteter ved forskjellig pH ble målt ved å anvende hvert reaksjonssystem som besto av 0,25 % (v/v) pullulan og en bufferløsning av 10 mM acetat (pH 4-6), fosfat (pH 6-8,5), glycin-NaCl-NaOH (pH 8,5-11), eller KCl-NaOH (pH 11-12). Hver reaksjon ble utført ved 40°C i 30 minutter. Resultatene er vist i fig. 5.
(4) pH-stabilitet
Er stabil i et pH område på 8 - 10 og bevarer relativ aktivitet på 50 % eller mer av aktiviteten i det optimale pH-området til og med i et pH-område på 7 - 10,5.
Pullulanase aktiviteter ved forskjellig pH ble målt ved å anvende hvert reaksjonssystem som besto av 0,25 % (v/v) pullulan og en bufferløsning av 10 mM acetat (pH 4-6), fosfat (pH 6-8,5), glycin-NaCl-NaOH (pH 8,5-11), eller KCl-NaOH (pH 11-12). Hver reaksjon ble utført ved 45°C i 10 minutter. Resultatene er vist i fig. 6.
(5) Virke-temperatur og optimum-temperatur
Er aktiv i et vidt temperaturområde på fra 10 - 60°C med en optimal temperatur på 50°C (se fig. 7).
(6) Termisk stabilitet
Restaktiviteter av enzymet, når varmebehandlet ved forskjellige temperaturer i 30 minutter i glycin-NaCl-NaOH buffer (pH 9,5), ble målt. Enzymet i henhold til denne oppfinnelse mister knapt sin aktivitet ved 40°C, og har en restaktivitet på omtrent 50 % til og med ved 50°C (se fig. 8.).
(7) Molekylvekt
Molekylvekten av enzymet i henhold til den foreliggende oppfinnelse ble målt ved hjelp av SDS-polyakrylamid gel elektroforese (7,5 % gel). Enzymet i henhold til denne oppfinnelse har en molekylvekt på omtrent 12 0.000 ± 5.000.
(8) Virkning av metallioner
Tilsetning av Hg<2+>, Cd<2+>, og Mn<2+> ioner (1 mM hver) gir en negativ virkning og tilsetning av Pb<2+> ion (1 mM) gir en svakt negativ virkning. (9) Virkning av vaskemidler 0,05 vekt% av overflateaktive midler slik som lineær alkyl-benzensulfonat (LAS), natriumalkylsulfat (AS), natriumpoly-oksyetylenalkylsulfat (ES), natrium a-olefinsulfonat (AOS), natrium a-sulfonert fettsyreester (a-SFE), natriumalkyl-sulfonat (SAS), natriumdodekylsulfat (SDS), såper og softanol ble testet ved 40°C i 15 minutter for å bekrefte at det ikke var noen negativ virkning på enzymatiske aktiviteter.
(10) Virkning av chelateringsmidler
Chelateringsmidler slik som EDTA (10 mM), EGTA (10 mM), sitronsyre (0,05 vekt%) og zeolitt (0,05 vekt%) gir ingen negativ virkning på enzymatiske aktiviteter.
(11) Bestandighet mot protease
I nærvær av alkalisk protease, f.eks. API-21 (Showa Denko), Maxatase (IBIS), Sabinase, Alkalase og Esperase (Novo) i en mengde på 0,2 AU/1, ble aktivitetene målt for å bekrefte at enzymet i henhold til denne oppfinnelse hadde sterk resistens mot alle proteaser.
Alkalisk pullulanase i henhold til den foreliggende oppfinnelse har et høyere optimalt pH område (pH 9,5 - 11) enn de konvensjonelle alkaliske pullulanaser og viser utmerket stabilitet i et videre pH område. Den har en optimal temperatur høyere enn 50°C og er termisk stabil opp til 4 0°C. Videre har alkalisk pullulanase i henhold til den foreliggende oppfinnelse sterk resistens mot nesten alle vaskemiddelkomponenter slik som overflateaktive midler, chelateringsmidler, protease for vaskemidler og lignende. Følgelig kan enzymet i henhold til den foreliggende oppfinnelse på fordelaktig måte anvendes som vaskemiddelkomponent. I tillegg kan enzymet i henhold til den foreliggende oppfinnelse anvendes til å produsere mange slags oligosakkarider og også sammen med a-amylase for å produsere forskjellige monosakkarider. Enzymet i henhold til foreliggende oppfinnelse har således en enestående signifikans på industrielle områder.
Andre særtrekk ved oppfinnelsen vil fremkomme i løpet av den følgende beskrivelse av eksemplene på utførelsesformer som er gitt for å illustrere oppfinnelsen.
EKSEMPLER
Eksempel 1
En spiseskje jord (ca. 0,5 g) av Yokohama-shi, Kanagawa-ken, Japan ble suspendert i sterilisert saltvann, og blandingen ble varmebehandlet ved 80°C i 15 minutter.
En supernatant av den varmebehandlede blanding ble passende fortynnet, påført på et isolerende agar medium (medium A), og dyrket ved 3 0°C i 3 dager for å la kolonier vokse. Koloniene som dannet transparente soner i periferiene på grunn av pullulan oppløsning, ble oppsamlet for å oppnå pullulanase-produserende stammer. Disse stammer ble inokulert i væskemedium B og ryste-" dyrket ved 3 0°C i 3 dager. Etter dyrkinger ble den dyrkede buljong sentrifugert for å separere en supernatant. Pullulanase-aktiviteten i supernatanten ble målt ved pH 10 for å selektere alkalisk pullulanase-produserende stammer. Bacillus sp. KSM-AP1876 (FERM P 10887) ble således oppnådd.
Eksempel 2
Alkalisk pullulanase-produserende stammer Bacillus sp. KSM-AP187 6 ble inokulert i væskemedium B i eks. 1 og ryste-dyrket ved 3 0°C i 3 dager. Etter dyrking ble celler fjernet ved hjelp av sentrifugering for å oppnå fremstilling av rå pullulanase. Råenzymet ble fremstilt i henhold til en konvensjonell metode for å fremstille etanol-tørt pulver. Som et resultat ble produksjonen av enzymet pullulanase bekreftet som vist i tabell 3. Den enzymatiske aktivitet ble målt ved pH 9.
Eksempel 3
Alkalisk pullulanase-produserende stamme Bacillus sp. KSM-AP1876 ble inokulert i et medium som hadde samme sammensetning som væskemedium B i eks. 1 med unntak av at 1 % maltose var tilsatt i stedet for pullulan og rystedyrket ved 30°C i 2 - 3 dager. Pullulanase-aktiviteten i en supernatant etter sentrifugering ble målt og funnet å være 211 U pr. en omgang kulturbuljong.
Eksempel 4
Til råenzymet fremstilt i eks. 2 ble det tilsatt DEAE cellulosepulver, og pullulanase i råenzymet ble fullstendig adsorbert til DEAE cellulose. Etter at 10 mM Tris-HCl buffer (pH 8) var blitt anvendt til å vaske en harpiks, ble enzymet eluert ved å anvende 10 mM Tris-HCl buffer (pH 8) som inneholdt 0,6 M natriumklorid. 10 mM Tris-HCl bufferen hvori enzymet var eluert, ble underkastet dialyse for å konsentrere bufferen. Så ble enzymet adsorbert til DEAE-cellulose DE52 ekvilibrert med bufferen og gradient eluert med 10 mM Tris-HCl buffer (pH 8) som inneholdt natriumklorid som hadde en konsentrasjon på 0 - 1 M for å oppsamle aktive fraksjoner. De aktive fraksjoner ble konsentrert ved å anvende en ultrafiltreringsmembran (10-kDa avskjæring) og dialysert over natten mot 10 mM Tris-HCl buffer (pH 8) som inneholdt 0,1 M natriumklorid. Etter å ha blitt konsentrert og dialysert ble eluatet underkastet adsorpsjon ved å anvende en Sephacryl S-2 00 kolonne ekvilibrert med 10 mM Tris-HCl buffer
(pH 8) som inneholdt 0,1 M natriumklorid. Enzymet ble eluert med 0,1 M natriumklorid i 10 mM Tris-HCl buffer for å oppsamle aktive fraksjoner, som ble underkastet adsorpsjonsprosess ved å anvende DEAE Toyopeal 650S kolonne. Det adsorberte enzym ble gradient eluert ved å anvende 10 mM Tris-HCl buffer (pH 8) som inneholdt natriumklorid som hadde en konsentrasjon 0 - 1 M for å oppsamle aktive fraksjoner. Etter konsentrasjon på en ultrafiltreringsmembran ble de aktive fraksjoner underkastet adsorpsjonsprosess ved å anvende en Butyl-Toyopeal 650S kolonne ekvilibrert med 10 mM Tris-HCl buffer som inneholdt 2 M ammoniumsulfat. Kolonnen ble gradient-eluert med 10 mM Tris-HCl buffer (pH 8) som inneholdt
ammoniumsulfat som hadde en konsentrasjon på 2 - 0 M for å oppsamle aktive fraksjoner. De aktive fraksjoner ble konsentrert på en ultrafiltreringsmembran og dialysert over natten mot 10 mM Tris-HCl buffer (pH 8) for å oppnå et renset enzym av alkalisk pullulanase Z-l. Det rensede enzym ble underkastet polyakryl-amidgel-elektroforese (gel-konsentrasjon: 15%), i henhold til fremgangsmåten til Davis [Davis D. J., Ann. N. Y. Acad. Sei., 121, 404 (1964)], og farget med Coomassie Brilliant blått for å bekrefte at den ga et enkeltbånd (se fig. 9). Utbyttet av det aktive enzym var omtrent 4 %.
Eksempel 5
Den alkaliske pullulanase Z-l oppnådd i eks. 4 ble underkastet SDS elektroforese i henhold til en vanlig fremgangsmåte for å bekrefte at enzymet hadde en molekylvekt på 12 0.000 5.000.
Åpenbart er tallrike modifikasjoner og variasjoner av den foreliggende oppfinnelse mulige i lys av beskrivelsene ovenfor. Det må derfor forstås at innen rekkevidden av de vedlagte krav kan oppfinnelsen praktiseres på annen måte enn som spesifikt beskrevet her.

Claims (2)

1. Renset, alkalisk pullulanase Z-l, karakterisert ved de følgende enzymologiske karakteristika:
(1) Virkning Hydrolyserer a-l,6-binding i pullulan og gir maltotreose, og hydrolyserer a-l,6-glykosidisk binding i stivelse, amylopektin, glykogen eller deres partielle spaltningsprodukter;
(2) Substratspesifisitet har hydrolyseaktivitet mot a-l,6-glykosidisk binding i sukkere med en høyere polymeriseringsgrad enn maltosens;
(3) Virknings-pH og optimum-pH-område har et aktivt pH-område på 5-11 med et optimum pH-område som er 9,5-11;
(4) pH-stabilitet er stabil i et pH-område på 8-10 og beholder relativ aktivitet på 50% eller mer av aktiviteten ved det optimale pH-område selv i et pH-område 7-10,5 ved behandling ved 45°C i 10 minutter;
(5) Virketemperatur og optimum-temperatur er aktiv i et bredt temperaturområde fra 10-60"C med en optimumstemperatur som er rundt 50°C;
(6) Termisk stabilitet er meget stabil ved 40°C ved behandling i 10 mmol er glycin-NaCl-NaOH buffer (pH 9,5) i 30 minutter;
(7) Molekylvekt ca. 12 0.000 ±5.000 målt ved hjelp av elektroforese ved bruk av natriumdodecylsulfat;
(8) Virkning av metallioner blir negativt påvirket av Hg<2+>, Cd<2+>, Mn<2+> og Pb<2+->ioner;
(9) Virkning av vaskemidler knapt påvirket av overflateaktive midler såsom LAS, AS, ES, AOS, a-SFE, SAS, SDS, såper og softanol;
(10) Virkning av chelateringsmidler knapt påvirket av EDTA, EGTA, sitronsyre og zeolitt;
(11) Bestandighet mot protease viser sterk bestandighet mot alkaliske proteaser.
2. Renisolert kultur av Bacillus sp. mikroorganisme som produserer en alkalisk pullulanase ifølge krav 1, karakterisert ved at mikroorganismen kalles "Bacillus sp. KSM-AP1876" og er deponert som FERM P-10887 hos Fermentation Research Institute, Agency of Industrial Science and Technology.
NO903801A 1989-08-31 1990-08-30 Alkalipullulanase og renisolert kultur av Bacillus sp. mikroorganisme som produserer denne NO180642C (no)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP1226210A JPH0387176A (ja) 1989-08-31 1989-08-31 アルカリプルラナーゼ、これを産生する微生物及びアルカリプルラナーゼの製造法
JP1226211A JPH0659215B2 (ja) 1989-08-31 1989-08-31 アルカリプルラナーゼz―1、これを生産する微生物及びアルカリプルラナーゼz―1の製造法

Publications (4)

Publication Number Publication Date
NO903801D0 NO903801D0 (no) 1990-08-30
NO903801L NO903801L (no) 1991-03-01
NO180642B true NO180642B (no) 1997-02-10
NO180642C NO180642C (no) 1997-05-21

Family

ID=26527056

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO903801A NO180642C (no) 1989-08-31 1990-08-30 Alkalipullulanase og renisolert kultur av Bacillus sp. mikroorganisme som produserer denne

Country Status (9)

Country Link
US (1) US5147795A (no)
EP (1) EP0415397B1 (no)
CA (1) CA2024194C (no)
DE (1) DE69013446T2 (no)
DK (1) DK0415397T3 (no)
ES (1) ES2065449T3 (no)
FI (1) FI95481C (no)
HK (1) HK154695A (no)
NO (1) NO180642C (no)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE69133154T2 (de) * 1990-04-05 2003-07-24 Kao Corp Detergentzusammensetzung
JPH05236958A (ja) * 1992-02-28 1993-09-17 Amano Pharmaceut Co Ltd 新規イソアミラーゼ及びその製造法
WO1994019468A1 (en) * 1993-02-25 1994-09-01 Kao Corporation Dna fragment containing gene for alkaline pullulanase
CA2316191A1 (en) * 1997-12-22 1999-07-01 The Procter & Gamble Company Cleaning compositions containing a neopullulanase
US20090123987A1 (en) * 2005-08-26 2009-05-14 Michael Patane Extracting and purifying limit dextrinases
CN101974543B (zh) * 2010-08-18 2012-05-23 江南大学 一种来源于芽孢杆菌的胞外普鲁兰酶编码基因及其应用
WO2012095746A2 (en) 2011-01-11 2012-07-19 Capsugel Belgium Nv New hard capsules
CA3059529A1 (en) 2017-04-14 2018-10-18 Capsugel Belgium Nv Process for making pullulan
CN110678170A (zh) 2017-04-14 2020-01-10 比利时胶囊公司 普鲁兰多糖胶囊

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE1517752C3 (de) * 1966-02-05 1974-10-24 Farbwerke Hoechst Ag, Vormals Meister Lucius & Bruening, 6000 Frankfurt Verfahren zur Herstellung von Pullulanase
US3806419A (en) * 1968-11-13 1974-04-23 Cpc International Inc Preparing pullulanase enzyme
US3963575A (en) * 1974-02-25 1976-06-15 A. E. Staley Manufacturing Company Producing pullulanase with organisms having a superior capacity to elaborate pullulanase
US4318989A (en) * 1979-06-07 1982-03-09 Lifeline Products, Inc. Starch-degrading enzymes from Cladosporium resinae
US4734364A (en) * 1983-05-20 1988-03-29 Miller Brewing Company Production of dextrose and maltose syrups using an enzyme derived from rice
JPS60186282A (ja) * 1984-03-07 1985-09-21 Agency Of Ind Science & Technol 新規な耐熱性プルラナ−ゼ
US4628031A (en) * 1984-09-18 1986-12-09 Michigan Biotechnology Institute Thermostable starch converting enzymes
US4628028A (en) * 1985-05-23 1986-12-09 Cpc International Inc. Novel thermostable pullulanase enzyme and method for its production
US4612287A (en) * 1985-05-23 1986-09-16 Cpc International Inc. Plasmids containing a gene coding for a thermostable pullulanase and pullulanase-producing strains of Escherichia coli and Bacillus subtilis containing the plasmids
JPS6336780A (ja) * 1986-07-31 1988-02-17 Res Dev Corp Of Japan 新規なプルラン分解酵素およびその製法
JPH062071B2 (ja) * 1986-08-08 1994-01-12 新技術事業団 糖類の製造法
FI81112C (fi) * 1986-08-27 1990-09-10 Alko Ab Oy Amylas av ny typ.

Also Published As

Publication number Publication date
NO903801D0 (no) 1990-08-30
HK154695A (en) 1995-10-06
EP0415397B1 (en) 1994-10-19
DK0415397T3 (da) 1995-04-03
NO180642C (no) 1997-05-21
FI95481C (fi) 1996-02-12
ES2065449T3 (es) 1995-02-16
CA2024194A1 (en) 1991-03-01
NO903801L (no) 1991-03-01
DE69013446D1 (de) 1994-11-24
US5147795A (en) 1992-09-15
EP0415397A1 (en) 1991-03-06
FI95481B (fi) 1995-10-31
FI904277A0 (fi) 1990-08-30
DE69013446T2 (de) 1995-05-24
CA2024194C (en) 1999-05-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2652871B2 (ja) アルカリセルラーゼおよびその製造法
US5635468A (en) Liquefying alkaline α-amylase, process for producing the same, and detergent composition containing the same
US5258297A (en) Proteinase-resistant cellulase, microorganism producing the same and process for producing the same
EP0269977B1 (en) Alkaline cellulases and microorganisms capable of producing same
US5316691A (en) Detergent composition containing an alkaline pullulanase from bacillus ferm BP-3048
US5147796A (en) Alkaline pullulanase Y having α-amylase activity
US5147795A (en) Alkaline pullulanase from bacillus sp. ferm p-10887
CA2024952C (en) Novel alkaline pullulanase y having .alpha.-amylase activity, microorganism producing the same, and process for producing the same
JPH0630578B2 (ja) アルカリセルラ−ゼk
JP3729910B2 (ja) アルカリα−アミラーゼ、これを生産する微生物及び当該アルカリα−アミラーゼの製造法
JP2866460B2 (ja) 多糖類の糖化方法
JP3000310B2 (ja) カルボキシメチルセルラーゼ及びこれを生産する微生物
JPH0371878B2 (no)
JPH0632606B2 (ja) 新規微生物
JPH0655139B2 (ja) Cmcア−ゼ▲ii▼
JPH0632612B2 (ja) アルカリセルラ−ゼ製造法
JPH0614775A (ja) アルカリイソアミラーゼ及びそれを生産する微生物並びに該アルカリイソアミラーゼの製造方法
JPH0387177A (ja) アルカリプルラナーゼz―i、これを生産する微生物及びアルカリプルラナーゼz―iの製造法
JPH0655138B2 (ja) Cmcア−ゼ▲i▼
JPH0375152B2 (no)
JPH0387176A (ja) アルカリプルラナーゼ、これを産生する微生物及びアルカリプルラナーゼの製造法