JPH0543600A - 抗体または抗原固定化絹フイブロイン膜および免疫測定用センサー - Google Patents

抗体または抗原固定化絹フイブロイン膜および免疫測定用センサー

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JPH0543600A
JPH0543600A JP3224695A JP22469591A JPH0543600A JP H0543600 A JPH0543600 A JP H0543600A JP 3224695 A JP3224695 A JP 3224695A JP 22469591 A JP22469591 A JP 22469591A JP H0543600 A JPH0543600 A JP H0543600A
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JP
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antibody
membrane
silk fibroin
antigen
immobilized
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JP3224695A
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Inventor
Akio Kuzuhara
亜起夫 葛原
Satoru Nagura
哲 名倉
Hiroshi Nakayama
博 中山
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Kanebo Ltd
Original Assignee
Kanebo Ltd
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Abstract

(57)【要約】 【目的】 抗体又は抗原が均一に固定化された膜および
該膜を用いた、バラツキのない高精度の測定が可能な免
疫センサーを提供することにある。 【構成】 グルタルアルデヒド重合体又は、塩化シアヌ
ル等を用いた共有結合により、抗体または抗原を固定化
した絹フィブロイン膜および該膜を装着してなる免疫測
定用センサー。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、臨床検査などの免疫測
定試薬として用いられる抗体または抗原を固定化した絹
フィブロイン膜に関する。
【0002】
【従来の技術】抗原抗体反応の高い特異性を利用して検
体中に含まれる特定の抗原あるいは抗体を、定性的にあ
るいは定量的に測定するために種々の免疫学的測定法が
用いられており、代表的なものとして酵素免疫測定法
(EIA)、放射免疫測定法(RIA)等が知られてい
るが、こうした免疫学的試験法に於いては、一般に測定
対象の抗原(あるいは抗体)に対応する抗体(あるいは
抗原)を化学結合法、吸着法あるいは包括法によって固
定化した不溶性担体(固相)と、酵素または放射性同位
元素などで標識した抗体(あるいは抗原)とが用いられ
る。
【0003】こうした固相抗体の一つとして、抗体を包
括固定化した絹フィブロイン膜が報告されており、これ
を酸素電極に装着することを特徴とする免疫センサー
が、高感度、且つレンジの広い測定が可能であるととも
に繰り返し使用に耐え、有用性の高いものであることが
特開昭63−117253号に於いて開示されている。
この抗体固定化絹フィブロイン膜を用いた免疫センサー
により高感度な測定が可能である理由の一つとして、絹
フィブロイン膜自体の酸素透過性が他の膜に比べて非常
に優れていることが挙げられる。
【0004】ところが、包括法による抗体固定化絹フィ
ブロイン膜は、優れた性能を有している反面、抗体を固
定化する際の使用抗体量がやや多く、抗体固定化量を制
御しにくいほか、膜に均一に固定化しにくいといった欠
点を有していた。
【0005】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、上述の欠点
に鑑みなされたものであって、その目的とするところ
は、抗体または抗原が均一に固定化された絹フィブロイ
ン膜を提供するにある。
【0006】
【課題を解決するための手段】上述の目的は、共有結合
により抗体または抗原を固定化した絹フィブロイン膜お
よび該絹フィブロイン膜を電極デバイスに装着してなる
免疫測定用センサーにより達成される。
【0007】本発明に用いられる抗体としては、例えば
以下のようなものが具体例として挙げられる。 (1)インシュリン,絨毛性ゴナドトロピン(hC
G),胎盤性ラクトゲン,黄体形成ホルモン等のポリペ
プチド系ホルモンの抗体。 (2)IgG,IgA,IgM,IgE,α−フェトプ
ロテイン(AFP),カルシノエンブリオニックアンチ
ゲン,C−反応性蛋白(CRP),α1−アシッドグリ
コプロテイン(AGP),ハプトグロビン等の血清蛋白
の抗体。 (3)大腸菌毒素,コレラトキシン,肝炎ウィルス,風
疹ウィルス,インフルエンザウィルス等の毒素あるいは
ウィルスの抗体。 (4)エストラジオール,プロゲストロン,テストステ
ロン,フェニトイン,プロカインアミド,カナマイシ
ン,ペニシリン,バルビツール酸等のステロイドホルモ
ンあるいは薬剤の抗体。
【0008】これら抗体の種類は、IgG,IgA,I
gM等のクラス,あるいはこれらの抗体フラグメントい
ずれをも使用することが出来る。また、マウス,ラッ
ト,ウサギ,ヤギあるいはヒト等から常法によって採取
した抗体を使用することが出来るが、特に細胞融合法に
よって採取したモノクローナル抗体の使用が均質な抗体
が得られ、感度、精度の点で好ましい。なお、通常使用
する抗体はいずれも常法によって例えば、硫安塩析また
はDEAEイオン交換カラムクロマトグラフィー等で精
製して用いられる。
【0009】本発明に用いられる抗原としては、分子内
にアミノ基等の官能基を有するものならばいずれの使用
も可能であり、上記抗体に対応する抗原等が挙げられ
る。
【0010】本発明に用いられる絹フィブロイン膜とし
ては、生糸を石けん水溶液中に浸漬し、水,エチルアル
コール,塩化カルシウムと混合し、透析脱塩した後、グ
リセリンを加え、ガラス板上に流延して乾燥したもの等
を用いることができる。絹フィブロイン膜を製膜する際
の基板としては、ガラス板、アクリル板等が挙げられる
が、粗面板を用いることが好ましい。
【0011】抗体あるいは抗原を絹フィブロイン膜に結
合させる方法としては、一般的な二官能性以上の結合剤
や縮合剤等の結合試薬を用いることができる他、スペー
サーを介して結合させる方法も用いられる。絹フィブロ
イン膜、及び抗体(あるいは抗原)のアミノ基、カルボ
キシル基、水酸基等の官能基が結合に有効に利用される
が、結合試薬の例を示すと、アミノ基相互間の結合試薬
(例えばジメチルスクシンイミデート等のアルキルジイ
ミデート類、酒石酸ジアジド等のアシルアジド類、1,
5−ジフルオロ−2,4−ジニトロベンゼン等のアリー
ルジハライド類、キシレン−m−ジイソシアネート等の
イソシアネート類、N,N′−o−フェニレンジマレイ
ミド等のジマレイミド類、その他、グルタルアルデヒド
等のジアルデヒド類,グルタルアルデヒド重合体、ブロ
ムシアン,塩化シアヌル等)、アミノ基とチオール基間
の結合試薬(例えば、メチル−4−メルカプトブチルイ
ミデート等のメルカプトアルキルイミデート類、γ−マ
レイミド酪酸N−ヒドロキシスクシンイミドエステル等
のマレイミドカルボン酸N−ヒドロキシスクシンイミド
エステル類)、水酸基とアミノ基間の結合試薬(ブロム
シアン、塩化シアヌル等)、あるいはカルボキシル基と
アミノ基間の結合試薬(例えば1−エチル−3−ジメチ
ルアミノプロピルカルボジイミド等の水溶性カルボジイ
ミド類)等が挙げられる。
【0012】中でも、グルタルアルデヒド(特に重合化
処理を施したもの)あるいは塩化シアヌルを結合試薬と
して用いたものは、免疫センサー系における繰り返し測
定安定性能が良好であり、特に好ましい。
【0013】グルタルアルデヒド重合体は、グルタルア
ルデヒドから自然発生的に生成するが、アルカリ存在下
60℃中で数時間熱処理することによっても得られる。
また、グルタルアルデヒド水溶液に3級アミン、例えば
トリエチルアミンを触媒量添加することによっても得ら
れる(特開平2−49587号公報)。
【0014】このような結合試薬を反応させた絹フィブ
ロイン膜を、3.125×10-8M〜6.25×10-6
Mの濃度の上記抗体あるいは抗原溶液中で4℃〜40℃
の範囲内で数10分〜数10時間反応させ、よく洗浄す
る。
【0015】更に本発明の抗体または抗原固定化絹フィ
ブロイン膜は、蛋白質,ペプチド,或はアミノ酸溶液中
で4〜40℃の範囲内で数時間反応させてブロッキング
することによって、非特異吸着を抑えることができる。
ブロッキングに用いる蛋白質,ペプチド,アミノ酸とし
ては、牛血清アルブミン、卵白アルブミン等の蛋白質、
グリシン、アラニン、リジン、アルギニン、セリン、グ
ルタミン酸、アスパラギン酸等のアミノ酸及びペプチド
類等が挙げられる。
【0016】本発明の免疫測定用センサーの電極デバイ
スとしては、酸素電極、塩素電極、過酸化水素電極等が
挙げられるが、酸素透過性が良いというフィブロイン膜
の特徴を生かせる点で酸素電極が特に好ましい。
【0017】以下実施例によって本発明を更に詳細に説
明するが、それに先立って、実施例で用いた絹フィブロ
イン膜の製造例及び免疫測定に用いる酵素標識抗体の製
造例を参考例として示す。
【0018】
【参考例】
参考例1(絹フィブロイン膜の製造) (1)フィブロイン水溶液の調製 生糸100gを1.0重量%のマルセル石けん水溶液5
000ml中に浸漬し、80℃で3時間精練した。水洗
後、更に0.5重量%のマルセル石けん水溶液5000
mlに浸漬して80℃で3時間精練し、セリシン等を実
質的に除去したフィブロイン原料72gを得た。水10
0gとエチルアルコール80gの入ったニーダー中に塩
化カルシウム150gを溶解し、75℃に昇温後、上記
のフィブロイン原料70gを投入し、1時間攪拌下に溶
解した。次いで、180gの温水(75℃)を加えて希
釈した。これを冷却した後、ホローファイバー型の透析
器を用いて、流水に対して透析脱塩し、5.7重量%の
フィブロイン水溶液1200mlを得た。塩化カルシウ
ムの残存量は0.08%であった。
【0019】(2)絹フィブロイン膜の製造 前記(1)のフィブロイン水溶液にグリセリンをフィブ
ロインに対して30重量%加え、その溶液を四方を区切
ったガラス板に流延し、20℃で10時間乾燥すること
によって皮膜化させ、はく離することにより絹フィブロ
イン膜を得た。
【0020】参考例2(絹フィブロイン膜の製造) 参考例1の(1)のフィブロイン水溶液にグリセリンを
フィブロインに対して30重量%加え、その溶液を四方
を区切ったアクリル板に流延し、20℃で10時間乾燥
することによって皮膜化させ、はく離した。次いで、こ
の膜を80%メタノール水溶液中に室温で3分間浸漬さ
せることにより不溶性の絹フィブロイン膜を得た。
【0021】参考例3(カタラーゼ標識抗ヒトAFPマ
ウスモノクローナル抗体の製造) (1)チオール化カタラーゼの製造 カタラーゼ溶液0.166ml(含量15mg)を0.
05Mリン酸緩衝液(pH8.0)で、2.5mlに希
釈し、窒素曝気を60ml/分で10分間行い、次にメ
チル−4−メルカプトブチルイミデート1mgを加え、
窒素雰囲気下に4℃で2時間反応させた。反応終了後、
窒素雰囲気のままダイアフローメンブラン(アミコン社
製)を用いて限外濾過により濃縮し、これに0.05M
リン酸緩衝液3ml(pH7.0)を加え、再び限外濾
過した。この操作を3回繰り返して未反応のメチル−4
−メルカプトブチルイミデートを除き、チオール化カタ
ラーゼ溶液3mlを得、窒素雰囲気下で保存した。
【0022】(2)マレイミド化抗ヒトAFPマウスモ
ノクローナル抗体の製造 抗ヒトAFPマウスモノクローナル抗体溶液0.42m
l(含量10mg)を0.1Mリン酸緩衝液(pH7.
0)で5.0mlに希釈し、N−(γ−マレイミドブチ
ロキシ)スクシンイミド(GMBS)0.5mgをジオ
キサン0.5mlに溶かして加えた。4℃で2時間反応
させた後、0.05Mリン酸緩衝液(pH7.0)10
00mlで透析(2時間)を2回行ってマレイミド化抗
ヒトAFPマウスモノクローナル抗体溶液6ml(含量
10mg)を得た。
【0023】(3)カタラーゼ標識抗ヒトAFPマウス
モノクローナル抗体の製造 (1)で製造したチオール化カタラーゼ溶液2ml(含
量10mg)と(2)で製造したマレイミド化抗ヒトA
FPマウスモノクローナル抗体溶液3ml(含量5m
g)とを窒素雰囲気下で混合し、4℃で16時間反応さ
せた。未反応のマレイミド基をブロックするためシステ
イン1mgを加え4℃で30分間反応後、12000r
pm、5分間の遠心分離で沈澱物を除去し、高速液体カ
ラムクロマトグラフィーによって目的物を分離精製し
た。カラムは、Sephadex G−3000SW
(東洋ソーダ製)を用い、0.05Mリン酸緩衝液(p
H7.0)で溶出し、最初の画分を集めカタラーゼ標識
抗ヒトAFPマウスモノクローナル抗体溶液12ml
(含量4mg)を得た。
【0024】
【実施例】
実施例1 (グルタルアルデヒド重合体を結合試薬とする方法)市
販グルタルアルデヒド水溶液を0.1Mホウ酸緩衝溶液
(pH11)にて1重量%に希釈し、60℃で1時間熱
処理することによりグルタルアルデヒド重合体水溶液を
得た。次いで参考例1で製造した絹フィブロイン膜を1
重量%グルタルアルデヒド重合体水溶液中に室温で3時
間浸漬させ、0.01Mリン酸緩衝生理食塩水で十分洗
浄し、未反応のグルタルアルデヒド重合体を除去した。
更にこの膜を50μg/mlの抗ヒトAFPマウスモノ
クローナル抗体(IgG)を含有する0.01Mリン酸
緩衝生理食塩水pH7.2中に室温で15時間浸漬し、
次いでこの膜を0.01Mリン酸緩衝生理食塩水で十分
洗浄した。その後、この膜を1Mリジンを含有する0.
1Mリン酸緩衝溶液で室温下3時間浸漬することにより
ブロッキング処理を行い、更に、この膜を0.01Mリ
ン酸緩衝生理食塩水で十分洗浄した後、0.1重量%ア
ジ化ナトリウムを含有する0.01Mリン酸緩衝生理食
塩水(pH7.2)中で4℃にて保存した。
【0025】実施例2 (塩化シアヌルを結合試薬とする方法)参考例2で製造
した絹フィブロイン膜を50mlの蒸留水中に浸漬さ
せ、溶液中のpHを8〜9に調整しながら室温で0.5
gの塩化シアヌルを含有するアセトン溶液10mlを1
0分間で滴下し、1N塩酸を滴下してpHを3にし反応
を停止させた。この溶液から膜を取り出し、0.01M
リン酸緩衝生理食塩水で十分洗浄した。更に、この膜を
50μg/mlの抗ヒトAFPマウスモノクローナル抗
体(IgG)を含有する0.01Mリン酸緩衝生理食塩
水(pH7.2)中に室温で15時間浸漬し、次いでこ
の膜を0.01Mリン酸緩衝生理食塩水で十分洗浄し
た。その後、この膜を1Mリジンを含有する0.1Mリ
ン酸緩衝溶液で室温下3時間浸漬することによりブロッ
キング処理を行い、更に、この膜を0.01Mリン酸緩
衝生理食塩水で十分洗浄した後、0.1重量%アジ化ナ
トリウムを含有する0.01Mリン酸緩衝生理食塩水中
で4℃にて保存した。
【0026】実施例3 (ブロムシアン法)参考例1で製造した絹フィブロイン
膜を10mlの蒸留水中に浸漬させ、溶液中のpHを1
1〜12に調整しながら室温で2.5重量%のブロムシ
アンを含有する蒸留水8mlを5分間で滴下し、この溶
液から膜を取り出し、0.1Mの炭酸水素ナトリウム緩
衝溶液(pH9)で洗浄した。更に、この膜を50μg
/mlの抗ヒトAFPマウスモノクローナル抗体(Ig
G)を含有する0.01Mリン酸緩衝生理食塩水(pH
7.2)中に室温で15時間浸漬し、次いでこの膜を
0.01Mリン酸緩衝生理食塩水で十分洗浄した。その
後、この膜を1Mリジンを含有する0.1Mリン酸緩衝
溶液で室温下3時間浸漬することによりブロッキング処
理を行い、更に、この膜を0.01Mリン酸緩衝生理食
塩水で十分洗浄した後、0.1重量%アジ化ナトリウム
を含有する0.01Mリン酸緩衝生理食塩水(pH7.
2)中で4℃にて保存した。
【0027】実施例4 (アジド法)参考例1で製造した絹フィブロイン膜を
0.5Nの硫酸を含有するメタノール中に室温で24時
間浸漬し、蒸留水で洗浄する。この膜を1重量%のヒド
ラジン水溶液に室温で24時間浸漬し、蒸留水で洗浄し
た。次いで、この膜を0.5Mの亜硝酸ナトリウムを含
有する0.3Nの塩酸中に0℃で5分間浸漬し、蒸留水
で洗浄した。更に、この膜を50μg/mlの抗ヒトA
FPマウスモノクローナル抗体(IgG)を含有する
0.01Mリン酸緩衝生理食塩水(pH7.2)中に室
温で15時間浸漬し、次いでこの膜を0.01Mリン酸
緩衝生理食塩水で十分洗浄した。その後、この膜を1M
リジンを含有する0.1Mリン酸緩衝溶液で室温下3時
間浸漬することによりブロッキング処理を行い、更に、
この膜を0.01Mリン酸緩衝生理食塩水で十分洗浄し
た後、0.1重量%アジ化ナトリウムを含有する0.0
1Mリン酸緩衝生理食塩水(pH7.2)中で4℃にて
保存した。
【0028】実施例5 (グルタルアルデヒドモノマーを結合剤とする方法)参
考例1で製造した絹フィブロイン膜を10重量%グルタ
ルアルデヒドモノマーを含有する0.2Mの炭酸水素ナ
トリウム緩衝溶液(pH9)中に室温で3時間浸漬さ
せ、0.01Mリン酸緩衝生理食塩水で十分洗浄し、未
反応のグルタルアルデヒドモノマーを除去した。更にこ
の膜を50μg/mlの抗ヒトAFPマウスモノクロー
ナル抗体(IgG)を含有する0.01Mリン酸緩衝生
理食塩水中に室温で15時間浸漬し、次いでこの膜を
0.1Mの水素化ホウ素ナトリウム水溶液中0℃で3分
間浸漬し、0.01Mリン酸緩衝生理食塩水で十分洗浄
した。その後、この膜を1Mリジンを含有する0.1M
リン酸緩衝溶液で室温下3時間浸漬することによりブロ
ッキング処理を行い、更に、この膜を0.01M生理食
塩水で十分洗浄した後、0.1重量%アジ化ナトリウム
を含有する0.01Mリン酸緩衝生理食塩水(pH7.
2)中で4℃にて保存した。
【0029】比較例1 (包括法)抗ヒトAFPマウスモノクローナル抗体(I
gG)を生理食塩水に溶解し、250μg/mlの抗体
溶液を調製した。次に、この溶液を四方を区切ったガラ
ス板上に抗体量が20μg/cm2 となるように流延
し、15℃で3時間乾燥した。参考例1の(1)のフィ
ブロイン水溶液にグリセリンをフィブロインに対して3
0重量%加え、その溶液を抗体が塗布されたガラス板に
流延し、20℃で10時間乾燥することによって皮膜化
させ、はく離した。これを直径8mmの円形に裁断し、
厚さ60μmの抗ヒトAFPマウスモノクローナル抗体
固定化絹フィブロイン膜を得た。
【0030】実施例6 (ヒトAFP測定用免疫センサーの作成)図5に示すよ
うに、反応セル(容量0.2ml)に本発明によって製
造された抗ヒトAFPマウスモノクローナル抗体固定化
絹フィブロイン膜(実施例1,2)、あるいは抗ヒトA
FP抗体固定化絹フィブロイン膜(比較例1),酸素透
過膜,O−リング及びガルバニ型酸素電極(AN型、オ
リエンタル電気株式会社製)を順次装着してヒトAFP
測定用の酸素検出型免疫センサーを作成した。
【0031】
【試験例】以下、試験例を挙げて本発明の効果を更に詳
細に説明するが、本発明はこれらに限定されない。
【0032】試験例1 抗体固定化量の均一性評価試験 (1)試料 実施例1及び比較例1の絹フィブロイン膜
【0033】(2)試験方法 直径8mmの円形に打ち抜いた試料を0.01Mのリン
酸緩衝生理食塩水液(pH7.2)で十分洗浄し、濾紙
で抜き取り、次いで内径1.3mmのガラス試験管に入
れ、以下の試験を行った。
【0034】ヒトα−フェトプロティン(以下AFPと
記す)0と1000ng/mlを含有する0.01Mリ
ン酸緩衝生理食塩水(0.5%牛血清アルブミン含有)
0.5mlを前記のガラス試験管に入れ、37℃で2時
間免疫反応を行った。次ぎに、蒸留水3mlで3回洗浄
後、参考例3で製造した(特開昭63−101754号
公報に開示)カタラーゼ標識抗ヒトAFPマウスモノク
ローナル抗体11μg/mlを含有する0.01Mリン
酸緩衝生理食塩水(0.5%牛血清アルブミン含有)
0.5mlを同試験管に入れ、37℃で2時間免疫反応
を行った。更に、蒸留水3mlで3回洗浄後、0.02
M過酸化水素−0.01Mリン酸緩衝生理食塩水1.0
mlを加え、10分間酵素反応を行った後、1規定硫酸
1.0mlを加えて反応を停止させ、過酸化水素に基づ
く240nmの吸光度(A240)を測定した。この測
定から得られたAFP0ng/mlと1000ng/m
lを加えた時の吸光度差(n=5)から算出したCV値
(%)を比較することにより、抗体固定化量の均一性評
価を行った(CV値=(標準偏差/平均値)×100;
このCV値が低い程、均一性が高いことを表す。)。
【0035】尚、0.02M過酸化水素−0.01Mリ
ン酸緩衝生理食塩水1.0mlに1規定硫酸1.0ml
を添加した時の吸光度(A240)をブランク値とし
た。
【0036】
【表1】
【0037】表1からわかる通り、本発明によって製造
された共有結合法による抗体固定化絹フィブロイン膜
は、比較例1の包括法による抗体固定化絹フィブロイン
膜と比べてCV値が低く、抗体固定化量が均一であり、
そのためバラツキのより少ない高精度の測定が可能とい
う点で優れたものであった。
【0038】試験例2 抗体固定化絹フィブロイン膜の性能試験 (1)試料 本発明によって製造された共有結合法による抗体固定化
絹フィブロイン膜(後述する実施例1〜5)、及び包括
法による抗体固定化絹フィブロイン膜(後述する比較例
1)
【0039】(2)試験方法 直径8mmの円形に打ち抜いた試料を0.01Mのリン
酸緩衝生理食塩水(pH7.2)で十分洗浄し、濾紙で
抜き取り、次いで内径1.3mmのガラス試験管に入
れ、以下の試験を行った。
【0040】ヒトα−フェトプロティン(以下AFPと
記す)0または1000ng/mlを含有する0.01
Mリン酸緩衝生理食塩水(0.5%牛血清アルブミン含
有)0.5mlを前記のガラス試験管に入れ、37℃で
2時間免疫反応を行った。次に、蒸留水3mlで3回洗
浄後、参考例3で製造したカタラーゼ標識抗ヒトAFP
マウスモノクローナル抗体11μg/mlを含有する
0.01Mリン酸緩衝生理食塩水(0.5%牛血清アル
ブミン含有)0.5mlを同試験管に入れ、37℃で2
時間免疫反応を行った。更に、蒸留水3mlで3回洗浄
後、0.02M過酸化水素−0.01Mリン酸緩衝生理
食塩水1.0mlを加え、10分間酵素反応を行った
後、1規定硫酸1.0mlを加えて反応を停止させ、残
存過酸化水素に基づく240nmの吸光度(A240)
を測定した。
【0041】尚、0.02M過酸化水素−0.01Mリ
ン酸緩衝生理食塩水1.0mlに1規定硫酸1.0ml
を添加した時の吸光度(A240)をブランク値とし
た。
【0042】
【表2】
【0043】表2からわかる通り、本発明によって製造
された共有結合法による抗体固定化絹フィブロイン膜
は、比較例1の包括法による抗体固定化絹フィブロイン
膜と同様に、免疫測定を行うのに十分な信号量が得られ
ることがわかった。
【0044】試験例3 免疫センサーによる抗体固定化絹フィブロイン膜の繰り
返し使用の安定性試験 (1)試料 実施例1,2及び比較例1の抗体固定化絹フィブロイン
【0045】(2)試験方法 実施例6で作成した酸素検出型免疫センサーを用い、図
1に示したフロー式の測定装置を組み、下記のヒトAF
P標準溶液について以下のようにして繰り返し測定を行
った。
【0046】即ち、ヒトAFP0又は100ng/ml
を含有する0.01Mリン酸緩衝生理食塩水(0.5%
牛血清アルブミン含有)をヒトAFPの標準溶液とし
た。そしてカタラーゼ標識抗ヒトAFPマウスモノクロ
ーナル抗体5.5μg/mlを含有する同標準溶液0.
5mlを反応セル(容量0.2ml)に導入し、7分間
静置して免疫反応を行った後、20ml/分の流速で1
分間蒸留水を流して反応セルを洗浄した。次いで、2
6.5mMの過酸化水素を含有する0.1Mリン酸緩衝
液(pH7.0)0.2mlを反応セルに導入し、酸素
電極の酸素濃度に比例した電流値を求め、この値をAD
変換器により、電位置に変換した。続いて、0.1Mグ
リシン−塩酸緩衝液(pH2.5、食塩2重量%含有)
を20ml/分の流速で1分間流した後、2分間静置し
て結合したヒトAFPとカタラーゼ標識抗ヒトAFPマ
ウスモノクローナル抗体を解離させ、更に20ml/分
の流速で1分間蒸留水を流して反応セルを洗浄した。
【0047】操作はすべて30℃で行い、酵素反応時以
外はすべて攪拌を行った。結果を図2(比較例1),図
3(実施例1),図4(実施例2)に示す。
【0048】図2,図3,図4からわかる通り、本発明
によって製造された共有結合法による抗体固定化絹フィ
ブロイン膜(特にグルタルアルデヒド重合体或いは塩化
シアヌルを結合剤として用いたもの)は、比較例1の包
括法による抗体固定化絹フィブロイン膜と同様に、繰り
返し安定性に優れていた。
【0049】
【発明の効果】本発明の、共有結合法により抗体(ある
いは抗原)を固定化した絹フィブロイン膜は、抗体を固
定化する際の使用抗体量が従来の包括法により固定化し
たものに比べて少なくて済み、抗体固定化量のより均一
な膜である(試験例1)。そのため、この膜を免疫測定
に使用した場合、バラツキのより少ない高精度の測定が
可能になり(試験例1)、しかも免疫測定を行うのに十
分な信号量が得られる(試験例2)。また、高純度の物
質精製を目的としたアフィニティー担体としても有効に
用いられる。特に、グルタルアルデヒド重合体あるいは
塩化シアヌルを結合剤として用いたものは、膜からの抗
体の脱離が少ないため繰り返し安定性に優れており、免
疫センサー用の固定化膜として有効に利用出来る(試験
例3)。
【図面の簡単な説明】
【図1】試験例3で用いたフロー式測定装置の概略図で
ある。
【図2】比較例1の抗体固定化絹フィブロイン膜(包括
法)を用いた免疫センサーの、繰り返し使用における安
定性を示す図である。
【図3】実施例1の抗体固定化絹フィブロイン膜(GA
重合体法)を用いた免疫センサーの、繰り返し使用にお
ける安定性を示す図である。
【図4】実施例2の抗体固定化絹フィブロイン膜(塩化
シアヌル法)を用いた免疫センサーの、繰り返し使用に
おける安定性を示す図である。
【図5】実施例6で作成した免疫センサーの概略図を表
わす。

Claims (3)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 共有結合により抗体または抗原を固定化
    した絹フィブロイン膜。
  2. 【請求項2】 共有結合の方法がグルタルアルデヒド又
    はその重合体あるいは塩化シアヌルを結合試薬として用
    いるものである請求項1記載の絹フィブロイン膜。
  3. 【請求項3】 共有結合により抗体または抗原を固定化
    した絹フィブロイン膜を電極デバイスに装着してなる免
    疫測定用センサー。
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Cited By (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH10197535A (ja) * 1996-12-27 1998-07-31 Fujirebio Inc 免疫測定方法
KR100330550B1 (ko) * 1999-12-27 2002-03-28 임건빈 실크 피브로인 분말의 제조방법
WO2005066634A1 (en) * 2003-12-30 2005-07-21 3M Innovative Properties Company Substrates and compounds bonded thereto by tethering compounds comprising phosphonitrilic groups
JP2007304043A (ja) * 2006-05-15 2007-11-22 Canon Inc プローブ固定担体の製造方法
WO2010042798A2 (en) * 2008-10-09 2010-04-15 Trustees Of Tufts College Modified silk films containing glycerol
CN104406992A (zh) * 2014-12-31 2015-03-11 浙江理工大学 一种透射电镜检测古代丝织品的方法
CN104459104A (zh) * 2014-12-31 2015-03-25 浙江理工大学 一种显微镜检测古代丝织品的方法
CN104483479A (zh) * 2014-12-31 2015-04-01 浙江理工大学 一种斑点金免疫渗滤测定古代丝织品的方法
US9102916B2 (en) 2007-02-27 2015-08-11 Trustees Of Tufts College Tissue-engineered silk organs
US9254333B2 (en) 2007-05-29 2016-02-09 Trustees Of Tufts College Method for silk fibroin gelation using sonication
US9427499B2 (en) 2008-11-17 2016-08-30 Trustees Of Tufts College Surface modification of silk fibroin matrices with poly(ethylene glycol) useful as anti-adhesion barriers and anti-thrombotic materials
US9504575B2 (en) 2008-02-07 2016-11-29 Trustees Of Tufts College 3-dimensional silk hydroxyapatite compositions
US9623147B2 (en) 2003-04-10 2017-04-18 Trustees Of Tufts College Concentrated aqueous silk fibroin solution and use thereof
CN111781371A (zh) * 2020-06-18 2020-10-16 中国计量大学 一种基于磁珠载体双抗夹心elisa的考古现场快速检测痕量丝素蛋白的方法
US10912862B2 (en) 2012-02-06 2021-02-09 Children's Medical Center Corporation Multi-layer biomaterial for tissue regeneration and wound healing
CN112708534A (zh) * 2021-01-20 2021-04-27 季华实验室 一种生物反应载体及其制备方法

Cited By (33)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH10197535A (ja) * 1996-12-27 1998-07-31 Fujirebio Inc 免疫測定方法
KR100330550B1 (ko) * 1999-12-27 2002-03-28 임건빈 실크 피브로인 분말의 제조방법
US11129921B2 (en) 2003-04-10 2021-09-28 Trustees Of Tufts College Concentrated aqueous silk fibroin solution and use thereof
US10314938B2 (en) 2003-04-10 2019-06-11 Trustees Of Tufts College Concentrated aqueous silk fibroin solution and use thereof
US9623147B2 (en) 2003-04-10 2017-04-18 Trustees Of Tufts College Concentrated aqueous silk fibroin solution and use thereof
WO2005066634A1 (en) * 2003-12-30 2005-07-21 3M Innovative Properties Company Substrates and compounds bonded thereto by tethering compounds comprising phosphonitrilic groups
US7658994B2 (en) 2003-12-30 2010-02-09 3M Innovative Properties Company Substrates and compounds bonded thereto
JP2007304043A (ja) * 2006-05-15 2007-11-22 Canon Inc プローブ固定担体の製造方法
US9102916B2 (en) 2007-02-27 2015-08-11 Trustees Of Tufts College Tissue-engineered silk organs
US9655993B2 (en) 2007-02-27 2017-05-23 Trustees Of Tufts College Tissue-engineered silk organs
US10478524B2 (en) 2007-02-27 2019-11-19 Trustees Of Tufts College Tissue-engineered silk organs
US9254333B2 (en) 2007-05-29 2016-02-09 Trustees Of Tufts College Method for silk fibroin gelation using sonication
US9504575B2 (en) 2008-02-07 2016-11-29 Trustees Of Tufts College 3-dimensional silk hydroxyapatite compositions
AU2009302192B2 (en) * 2008-06-18 2014-08-28 Trustees Of Tufts College Modified silk films containing glycerol
CN102271724A (zh) * 2008-10-09 2011-12-07 塔夫茨大学信托人 含有甘油的改性丝膜
WO2010042798A3 (en) * 2008-10-09 2010-07-22 Trustees Of Tufts College Modified silk films containing glycerol
US20110223153A1 (en) * 2008-10-09 2011-09-15 Trustees Of Tufts College Modified silk films containing glycerol
US10493179B2 (en) 2008-10-09 2019-12-03 Trustees Of Tufts College Modified silk films containing glycerol
WO2010042798A2 (en) * 2008-10-09 2010-04-15 Trustees Of Tufts College Modified silk films containing glycerol
EP2349367A4 (en) * 2008-10-09 2013-09-04 Tufts College MODIFIED SILK FILMS WITH GLYCEROL
EP2349367A2 (en) * 2008-10-09 2011-08-03 Trustees Of Tufts College Modified silk films containing glycerol
JP2012505297A (ja) * 2008-10-09 2012-03-01 トラスティーズ オブ タフツ カレッジ グリセロールを含有する改変された絹フィルム
US9427499B2 (en) 2008-11-17 2016-08-30 Trustees Of Tufts College Surface modification of silk fibroin matrices with poly(ethylene glycol) useful as anti-adhesion barriers and anti-thrombotic materials
US10912862B2 (en) 2012-02-06 2021-02-09 Children's Medical Center Corporation Multi-layer biomaterial for tissue regeneration and wound healing
CN104483479A (zh) * 2014-12-31 2015-04-01 浙江理工大学 一种斑点金免疫渗滤测定古代丝织品的方法
CN104459104B (zh) * 2014-12-31 2016-02-17 浙江理工大学 一种显微镜检测古代丝织品的方法
CN104483479B (zh) * 2014-12-31 2016-02-17 浙江理工大学 一种斑点金免疫渗滤测定古代丝织品的方法
CN104459104A (zh) * 2014-12-31 2015-03-25 浙江理工大学 一种显微镜检测古代丝织品的方法
CN104406992A (zh) * 2014-12-31 2015-03-11 浙江理工大学 一种透射电镜检测古代丝织品的方法
CN111781371A (zh) * 2020-06-18 2020-10-16 中国计量大学 一种基于磁珠载体双抗夹心elisa的考古现场快速检测痕量丝素蛋白的方法
CN111781371B (zh) * 2020-06-18 2023-01-03 中国计量大学 一种基于磁珠载体双抗夹心elisa的考古现场快速检测痕量丝素蛋白的方法
CN112708534A (zh) * 2021-01-20 2021-04-27 季华实验室 一种生物反应载体及其制备方法
CN112708534B (zh) * 2021-01-20 2024-01-12 季华实验室 一种生物反应载体及其制备方法

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