JPH03284627A - 脂質分解酵素阻害剤 - Google Patents
脂質分解酵素阻害剤Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
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Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は、脂質分解に関与する酵素の阻害剤に関する。
血清アルブミン、β−ラクトグロブリン、ある種の大豆
蛋白等の蛋白質がリパーゼの働きを阻害して、乳化され
た脂質がリパーゼによって分解されるのを抑制または阻
止することがこれまで種々報告されている( Jour
nal or LipidResearch Vol、
25. 1984 p、I214〜1221等)。
蛋白等の蛋白質がリパーゼの働きを阻害して、乳化され
た脂質がリパーゼによって分解されるのを抑制または阻
止することがこれまで種々報告されている( Jour
nal or LipidResearch Vol、
25. 1984 p、I214〜1221等)。
しかしながら、これらの蛋白質は、胆汁酸等が存在する
とリパーゼ阻害作用を失うため生体内ではリバ〜ゼ阻害
剤として機能しない。
とリパーゼ阻害作用を失うため生体内ではリバ〜ゼ阻害
剤として機能しない。
本発明者らは蛋白質やそれと類似した構造を有するペプ
チドのリパーゼ阻害作用について研究を続けてきた。そ
の結果、塩基性タンパク質、塩基性ペプチドおよびそれ
らの塩が胆汁酸の存在下で脂質分解酵素の働きを阻害ま
たは抑制する作用を有するものであることを見出し本発
明を完成した。
チドのリパーゼ阻害作用について研究を続けてきた。そ
の結果、塩基性タンパク質、塩基性ペプチドおよびそれ
らの塩が胆汁酸の存在下で脂質分解酵素の働きを阻害ま
たは抑制する作用を有するものであることを見出し本発
明を完成した。
したがって、本発明は、塩基性タンパク質、塩基性ペプ
チドおよびそれらの鷹の少なくとも一つを有効成分とす
る脂質分解酵素阻害剤である。
チドおよびそれらの鷹の少なくとも一つを有効成分とす
る脂質分解酵素阻害剤である。
ここで、本発明でいう「脂質分解酵素阻害剤」とは、リ
パーゼ等の脂質分解酵素の働きを阻害または抑制するこ
とによって脂質の分解を阻害または抑制し、その結果脂
質が腸管から吸収されるのを阻害または抑制する機能を
有する剤をいう。
パーゼ等の脂質分解酵素の働きを阻害または抑制するこ
とによって脂質の分解を阻害または抑制し、その結果脂
質が腸管から吸収されるのを阻害または抑制する機能を
有する剤をいう。
本発明の脂質分解酵素阻害剤は、胆汁酸等の存在下に脂
質が乳化された系において効果を有し、したがって生体
内で有効に働く。
質が乳化された系において効果を有し、したがって生体
内で有効に働く。
更に、本発明でいう塩基性タンパク質、塩基性ペプチド
およびそれらの塩とは、等電点が生理的pHよりアルカ
リ側にあるタンパク質、ペプチドおよびそれらの塩を意
味する。塩基性タンパク質および塩基性ペプチド自体は
従来がら種々のものが知られており、本発明では該塩基
性タンパク質、塩基性ペプチドおよびそれらの塩として
、例えば、小麦等に含まれているビューロチオニン;小
麦以外の麦類(大麦やライ麦等)に分布しているビュー
ロチオニンと類似したアミノ酸配列を有するペプチド類
[例えば特公昭61−57840号公報に記載されてい
る大麦に広く分布しているビューロチオニン類似ポリペ
プチド、J 、Agric、Food Che+++
、、Vol、26.No−4+p、794〜796 (
1978)に開示されているライ麦に存在するビューロ
チオニン類似ポリペプチド等];プロタミン;ヒストン
;ポリリジン;ポリアルギニン;それらの塩等を使用す
ることができる。
およびそれらの塩とは、等電点が生理的pHよりアルカ
リ側にあるタンパク質、ペプチドおよびそれらの塩を意
味する。塩基性タンパク質および塩基性ペプチド自体は
従来がら種々のものが知られており、本発明では該塩基
性タンパク質、塩基性ペプチドおよびそれらの塩として
、例えば、小麦等に含まれているビューロチオニン;小
麦以外の麦類(大麦やライ麦等)に分布しているビュー
ロチオニンと類似したアミノ酸配列を有するペプチド類
[例えば特公昭61−57840号公報に記載されてい
る大麦に広く分布しているビューロチオニン類似ポリペ
プチド、J 、Agric、Food Che+++
、、Vol、26.No−4+p、794〜796 (
1978)に開示されているライ麦に存在するビューロ
チオニン類似ポリペプチド等];プロタミン;ヒストン
;ポリリジン;ポリアルギニン;それらの塩等を使用す
ることができる。
の多少の相違によりα1、σ2およびβ−ビューロチオ
ニンの3種類のものがあり、各々下記のようなアミノ酸
配列を有しているが、本発明ではそのいずれも使用でき
る。
ニンの3種類のものがあり、各々下記のようなアミノ酸
配列を有しているが、本発明ではそのいずれも使用でき
る。
上記のビューロチオニンはそのアミノ酸配列また、プロ
タミンはモノ、ジおよびトリの3種類が、更にヒストン
はHl、H2A、H2B。
タミンはモノ、ジおよびトリの3種類が、更にヒストン
はHl、H2A、H2B。
H3、H4およびH5の5種類が知られているが、本発
明ではそれらのいずれも使用できる。
明ではそれらのいずれも使用できる。
更に、ポリリジンにはその結合様式によって、下記の一
般式(I) [式中nはポリリジンの重合度を示す数である]で示さ
れるε−ポリリジンと、下記の式(n)〔式中nは上記
と同じであるl で示されるσ−ポリリジンがあり、本発明ではそれらの
ポリリジンおよびその塩のいずれも使用できる。そのう
ちでも特にε−ポリリジンおよびその塩は、σ−ポリリ
ジンや他の塩基性タンパク質、塩基性ペプチドおよびそ
れらの塩に比べて生体内でより長時間に亘って脂質分解
酵素を抑制または阻害する機能を失わず総脂質吸収量を
より低下させ得ることができ好ましい。
般式(I) [式中nはポリリジンの重合度を示す数である]で示さ
れるε−ポリリジンと、下記の式(n)〔式中nは上記
と同じであるl で示されるσ−ポリリジンがあり、本発明ではそれらの
ポリリジンおよびその塩のいずれも使用できる。そのう
ちでも特にε−ポリリジンおよびその塩は、σ−ポリリ
ジンや他の塩基性タンパク質、塩基性ペプチドおよびそ
れらの塩に比べて生体内でより長時間に亘って脂質分解
酵素を抑制または阻害する機能を失わず総脂質吸収量を
より低下させ得ることができ好ましい。
そしてポリリジンの上記式(1)および(II)におけ
るnが4以上、特に5以上のものが脂質吸収阻害活性が
強く有効である。また、nが9以下のε−ポリリジンは
抗菌性が低いところから、nが5〜9のε−ポリリジン
を使用した場合には、生体内の菌バランスを崩すことな
く脂質吸収阻害活性を発揮する可能性があることが予想
される。
るnが4以上、特に5以上のものが脂質吸収阻害活性が
強く有効である。また、nが9以下のε−ポリリジンは
抗菌性が低いところから、nが5〜9のε−ポリリジン
を使用した場合には、生体内の菌バランスを崩すことな
く脂質吸収阻害活性を発揮する可能性があることが予想
される。
更に、塩基性タンパク質および塩基性ペプチドを構成す
るアミノ酸にはL体とD体の2種の光学異性体があり、
天然物Jこ由来する塩基性タンパク質および塩基性ペプ
チドは通常り体のアミノ酸から構成されていることが知
られているが、本発明で使用する塩基性タンパク質、塩
基性ペプチドおよびそれらの塩はL体のアミノ酸のみか
ら構成されていても、D体のアミノ酸のみから構成され
ていても、またはL体とD体のアミノ酸の両方が混在し
ていてもよい。
るアミノ酸にはL体とD体の2種の光学異性体があり、
天然物Jこ由来する塩基性タンパク質および塩基性ペプ
チドは通常り体のアミノ酸から構成されていることが知
られているが、本発明で使用する塩基性タンパク質、塩
基性ペプチドおよびそれらの塩はL体のアミノ酸のみか
ら構成されていても、D体のアミノ酸のみから構成され
ていても、またはL体とD体のアミノ酸の両方が混在し
ていてもよい。
そして、本発明の脂質分解酵素阻害剤は塩基性タンパク
質、塩基性ペプチドおよびそれらの塩のうちの1種類の
みを含んでいても、または2種類以上を含んでいてもよ
い。
質、塩基性ペプチドおよびそれらの塩のうちの1種類の
みを含んでいても、または2種類以上を含んでいてもよ
い。
本発明の脂質分解酵素阻害剤は、人間および種々の動物
、例えば、ウシ、ウマ、ブタ、ニワトリ等の家畜、家禽
類やイヌ、ネコ等のベット類、に投与することができる
。
、例えば、ウシ、ウマ、ブタ、ニワトリ等の家畜、家禽
類やイヌ、ネコ等のベット類、に投与することができる
。
本発明の脂質分解酵素阻害剤の効果的な投与量は、投与
される対象の種類や年令、身体的な状態等によって異な
り、各々に適した量で投与するのがよい。
される対象の種類や年令、身体的な状態等によって異な
り、各々に適した量で投与するのがよい。
そして、本発明の脂質分解酵素阻害剤は経口剤として調
製し投与するのがよい。また、単独で投与しても、また
は製薬工業において通常使用されている担体と共に投与
してもよく、或は他の薬剤と併用してもよい。更に本発
明の脂質分解酵素阻害剤は、錠剤、顆粒剤、カプセル剤
、散剤等の任意の剤形で使用可能である。また、本発明
の脂質分解酵素阻害剤は食品や飼料中に添加して投与す
ることもできる。
製し投与するのがよい。また、単独で投与しても、また
は製薬工業において通常使用されている担体と共に投与
してもよく、或は他の薬剤と併用してもよい。更に本発
明の脂質分解酵素阻害剤は、錠剤、顆粒剤、カプセル剤
、散剤等の任意の剤形で使用可能である。また、本発明
の脂質分解酵素阻害剤は食品や飼料中に添加して投与す
ることもできる。
以下に、本発明を実施例により具体的に説明するが、本
発明はそれに限定されない。
発明はそれに限定されない。
実施例 1
[ビューロチオニンの調製1
原料として薄刃小麦粉を用い、rAgr、 Biol。
Chem、、 Vol、 34. No、7. p10
89−1094(1,970)Jに記載された方法に基
づいて、al−ビューロチオニン、σ2−ビューロチオ
ニンおよびβ−ビューロチオニンを含む粗精製ビューロ
チオニン混合物を調製した。
89−1094(1,970)Jに記載された方法に基
づいて、al−ビューロチオニン、σ2−ビューロチオ
ニンおよびβ−ビューロチオニンを含む粗精製ビューロ
チオニン混合物を調製した。
また、上記で得た粗精製ビューロチオニンを精製して、
02−ビューロチオニンとβ−ビューロチオニンの各々
を単離した。
02−ビューロチオニンとβ−ビューロチオニンの各々
を単離した。
[オリーブ油の乳化液の調製]
オリーブ油250mgに対して、胆汁酸成分としてコー
ル酸ナトリウム21.5mgを加え、さらにホスファチ
ジルコリン30mgおよび300mMリン酸カリウム緩
衝液(pH6,8、以後[リン酷カリウムハ・/ファー
」という)5fflQを加えた。
ル酸ナトリウム21.5mgを加え、さらにホスファチ
ジルコリン30mgおよび300mMリン酸カリウム緩
衝液(pH6,8、以後[リン酷カリウムハ・/ファー
」という)5fflQを加えた。
この液を超音波処理してオリーブ油の乳化液を調製した
。
。
[蛋白(ポリペプチド)含有液の調製1上記で調製した
粗精製ビューロチオニン混合物、精製σ、−ビュー口チ
オニン、β−ビューロチオニン、牛血清アルブミン(シ
グマ社製A 7030、以後rBsAJという)、β−
ラクトグロブリン(シグマ社製 LO130)および卵
白アルブミン(シグマ社製 A 5503)の各々4m
gにそれぞれリン酸カリウムバッファー1 rIIQを
添加して、蛋白(ポリペプチド)含有液6種類を調製し
た。
粗精製ビューロチオニン混合物、精製σ、−ビュー口チ
オニン、β−ビューロチオニン、牛血清アルブミン(シ
グマ社製A 7030、以後rBsAJという)、β−
ラクトグロブリン(シグマ社製 LO130)および卵
白アルブミン(シグマ社製 A 5503)の各々4m
gにそれぞれリン酸カリウムバッファー1 rIIQを
添加して、蛋白(ポリペプチド)含有液6種類を調製し
た。
[脂質分解酵素液の調製]
リン酸カリウムバッファーに豚膵臓リパーゼ(シグマ社
製 L 0382)を加えて100ユニツト豚膵臓リパ
ーゼ/mQの脂質分解酵素液を調製しIこ。
製 L 0382)を加えて100ユニツト豚膵臓リパ
ーゼ/mQの脂質分解酵素液を調製しIこ。
[各蛋白質の脂質分解酵素阻害特性の測定1上記で調製
したオリーブ油の乳化液を100μαずつ7組準備した
。
したオリーブ油の乳化液を100μαずつ7組準備した
。
第1組の乳化液にはリン酸カリウムバッファー50μQ
を加え、また鉱2〜7組の乳化液の各々には上記で調製
した蛋白含有液を各々50□Q加えて5分間震盪して蛋
白質含有液を調製した後、上記で調製した脂質分解酵素
液50μ0を加えて37°Cで1時間震盪した。次いで
、抽出用溶媒(クロロホルム:メタノール:へブタン=
49、 l : 49)を3mQ加えて5分間震盪した
後、回転数300Orpmで5分間遠心分離した。その
上層液をアスピレータ−で除去した後、下層液に対して
銅試薬(0,45M トリエタノールアミン、0.05
N酢酸、3.4%硫酸銅五木和物および20%塩化ナト
リウム)1m12を加え、5分間震盪後、回転数300
0rpmで5分間遠心分離した。次いで、上層液0.5
mQを採取し、これに発色剤(前記抽出用溶媒に0.1
%バックプロイン、0.05%ブチル化ヒドロキシアニ
ソールを溶解させたもの)0.5m12を加え、波長4
80nmにおける吸光度(Abs480)を測定して生
成した遊離脂肪酸量、すなわち豚膵臓リパーゼの活性度
を調べた。
を加え、また鉱2〜7組の乳化液の各々には上記で調製
した蛋白含有液を各々50□Q加えて5分間震盪して蛋
白質含有液を調製した後、上記で調製した脂質分解酵素
液50μ0を加えて37°Cで1時間震盪した。次いで
、抽出用溶媒(クロロホルム:メタノール:へブタン=
49、 l : 49)を3mQ加えて5分間震盪した
後、回転数300Orpmで5分間遠心分離した。その
上層液をアスピレータ−で除去した後、下層液に対して
銅試薬(0,45M トリエタノールアミン、0.05
N酢酸、3.4%硫酸銅五木和物および20%塩化ナト
リウム)1m12を加え、5分間震盪後、回転数300
0rpmで5分間遠心分離した。次いで、上層液0.5
mQを採取し、これに発色剤(前記抽出用溶媒に0.1
%バックプロイン、0.05%ブチル化ヒドロキシアニ
ソールを溶解させたもの)0.5m12を加え、波長4
80nmにおける吸光度(Abs480)を測定して生
成した遊離脂肪酸量、すなわち豚膵臓リパーゼの活性度
を調べた。
上記の結果は、下記の表−1のとおりであった。なお、
表−1における活性度は、リン酸カリウムバッファーを
加えたオリーブ油の乳化液を豚膵臓リパーゼで分解させ
た場合のAbs 480を100としてそれに対する
%で示したものである。
表−1における活性度は、リン酸カリウムバッファーを
加えたオリーブ油の乳化液を豚膵臓リパーゼで分解させ
た場合のAbs 480を100としてそれに対する
%で示したものである。
1表−1]
粗精製ビューロチオニン
σ2−ビューロチオニン
β−ビューロチオニン
卵白アルブミン
β−ラクトグロブリン
BSA
約10
約10
約IO
約4〜5
約5
約4〜5
00
6.0
107.0
103.9
105.4
上記表−1の結果から、塩基性タンパク質の1種である
粗精製ビューロチオニン、精製σ2−tたはβ−ビュー
ロチオニンからなる本発明の阻害剤を加えた場合は、胆
汁酸の存在下でリパーゼの活性が著しく抑制されるのに
対して、塩基性タンパク質に属さない卵白アルブミン、
β−ラクトグロブリンおよびBSAはリパーゼの活性を
阻害する作用を有していないことがわかる。
粗精製ビューロチオニン、精製σ2−tたはβ−ビュー
ロチオニンからなる本発明の阻害剤を加えた場合は、胆
汁酸の存在下でリパーゼの活性が著しく抑制されるのに
対して、塩基性タンパク質に属さない卵白アルブミン、
β−ラクトグロブリンおよびBSAはリパーゼの活性を
阻害する作用を有していないことがわかる。
実施例 2
上記実施例1において、粗精製ビューロチオニンおよび
β−ビューロチオニンの各々を含有する溶液における各
ビューロチオニンの濃度をQ、2mg/mQ+=希釈し
た外は実施例1と同様にして豚膵臓リパーゼの活性度を
調べたところ、粗精製ビューロチオニン含有液のリパー
ゼ活性度は97.5%であり、かかる希釈状態では粗精
製ビューロチオニンは豚膵臓リパーゼの活性阻害作用が
あまりなかったのに対して、β−ビューロチオニン含有
液の活性度は0%であ−つて、β−ビューロチオニンは
かかる希釈状態でも豚膵臓リパーゼの活性を大きく阻害
することができた。更に上記と同様の別の実験では、β
−ビュ−ロチオニンはその蛋白質溶液の濃度が0.04
mg/ m Qの場合でも、豚膵臓リパーゼ活性度を5
.2%にまで低下させ豚膵臓リパーゼの活性を大きくす
ることができた。
β−ビューロチオニンの各々を含有する溶液における各
ビューロチオニンの濃度をQ、2mg/mQ+=希釈し
た外は実施例1と同様にして豚膵臓リパーゼの活性度を
調べたところ、粗精製ビューロチオニン含有液のリパー
ゼ活性度は97.5%であり、かかる希釈状態では粗精
製ビューロチオニンは豚膵臓リパーゼの活性阻害作用が
あまりなかったのに対して、β−ビューロチオニン含有
液の活性度は0%であ−つて、β−ビューロチオニンは
かかる希釈状態でも豚膵臓リパーゼの活性を大きく阻害
することができた。更に上記と同様の別の実験では、β
−ビュ−ロチオニンはその蛋白質溶液の濃度が0.04
mg/ m Qの場合でも、豚膵臓リパーゼ活性度を5
.2%にまで低下させ豚膵臓リパーゼの活性を大きくす
ることができた。
実施例 3
[コレステロールオレエートの乳化液の調製]コレステ
ロールオレエート32゜5mgに対し、ホスファチジル
コリン25mgおよびコール酸ナトリウム21.5mg
を加え、更にリン酸カリウムバッファー5IIIQを加
えた。この液に超音波処理してコレステロールオレエー
トの乳化液を調製しlこ 。
ロールオレエート32゜5mgに対し、ホスファチジル
コリン25mgおよびコール酸ナトリウム21.5mg
を加え、更にリン酸カリウムバッファー5IIIQを加
えた。この液に超音波処理してコレステロールオレエー
トの乳化液を調製しlこ 。
【蛋白含有液の調製コ
実施例1におけるのと同様にして、粗精製ビューロチオ
ニン、BSA、β−ラクトグロブリンおよび卵白アルブ
ミンの各々を含有する蛋白含有液4種類を調製した。
ニン、BSA、β−ラクトグロブリンおよび卵白アルブ
ミンの各々を含有する蛋白含有液4種類を調製した。
[脂質分解酵素液の調製]
濃度300mMのリン酸カリウムバッファーに豚膵臓よ
り調製したコレステロールエステラーゼを加えて40μ
gコレステロールエステラーセ/mQの脂質分解酵素液
を調製した。
り調製したコレステロールエステラーゼを加えて40μ
gコレステロールエステラーセ/mQの脂質分解酵素液
を調製した。
[各蛋白質の脂質分解酵素阻害特性の測定]上記で調製
したコレステロールオレエートの乳化液を100μQず
つ5組準備した。
したコレステロールオレエートの乳化液を100μQず
つ5組準備した。
第1組の乳化液にはリン酸カリウムバッファー50μa
を加え、また第2〜5組の乳化液の各々には上記で調製
した蛋白含有液を各々50μΩを加えて5分間製置した
後、上記で調製した脂質分解酵素液50μαを加えて3
7°Cで1時間製置した。次いで、実施例1と同様の抽
出用溶媒を3mg加えて5分間製置した後、回転数30
00rpmで5分間遠心分離した。その上層液をアスピ
レータ−で除去した後、下層液に対して実施例1と同様
の銅試薬1m12を加え、5分間製置後、回転数300
0rpmで5分間遠心分離した。次いで上層液1+nQ
を採取し、これに実施例1と同様の発色剤0.5m12
を加え、そのAbs480を測定して生成した遊離脂肪
酸量、すなわちコレステロールエステラーゼの活性度を
調べた。
を加え、また第2〜5組の乳化液の各々には上記で調製
した蛋白含有液を各々50μΩを加えて5分間製置した
後、上記で調製した脂質分解酵素液50μαを加えて3
7°Cで1時間製置した。次いで、実施例1と同様の抽
出用溶媒を3mg加えて5分間製置した後、回転数30
00rpmで5分間遠心分離した。その上層液をアスピ
レータ−で除去した後、下層液に対して実施例1と同様
の銅試薬1m12を加え、5分間製置後、回転数300
0rpmで5分間遠心分離した。次いで上層液1+nQ
を採取し、これに実施例1と同様の発色剤0.5m12
を加え、そのAbs480を測定して生成した遊離脂肪
酸量、すなわちコレステロールエステラーゼの活性度を
調べた。
上記の結果は、下記の表−2のとおりであった。なお、
表−2における活性度は、リン酸カリウムバッファーを
加えたコレステロールオレエートの乳化液をコレステロ
ールエステラーゼで分解させた場合のAbs480を1
00としてそれに対する%で示したものである。
表−2における活性度は、リン酸カリウムバッファーを
加えたコレステロールオレエートの乳化液をコレステロ
ールエステラーゼで分解させた場合のAbs480を1
00としてそれに対する%で示したものである。
[表−2]
00
粗精製ビューロチオニン 9.8卵白アル
ブミン 93.6β−ラクトグロブ
リン 89.9B S A
I20.0上記表−2の結果から、塩
基性タンパク質である粗精製ビューロチオニンからなる
本発明の阻害剤を胆汁酸の存在下で加えた場合は、コレ
ステロールエステラーゼの活性が著しく抑制されるのに
対して、塩基性タンパク質でない卵白アルブミン、β−
ラクトグロブリンおよびBSAはコレステコールエステ
ラーゼの活性を阻害する作用を有していないか、または
有していてもわずかであることがわかる。
ブミン 93.6β−ラクトグロブ
リン 89.9B S A
I20.0上記表−2の結果から、塩
基性タンパク質である粗精製ビューロチオニンからなる
本発明の阻害剤を胆汁酸の存在下で加えた場合は、コレ
ステロールエステラーゼの活性が著しく抑制されるのに
対して、塩基性タンパク質でない卵白アルブミン、β−
ラクトグロブリンおよびBSAはコレステコールエステ
ラーゼの活性を阻害する作用を有していないか、または
有していてもわずかであることがわかる。
実施例 4
[オリーブ油の乳化液の調製]
オリーブ油250mgに対して、胆汁酸成分としてコー
ル酸ナトリウム21.5mgを加え、さらに200mM
トリス緩衝液(pH8,0、以後「トリスバッファー
」という)5mffを加えた。
ル酸ナトリウム21.5mgを加え、さらに200mM
トリス緩衝液(pH8,0、以後「トリスバッファー
」という)5mffを加えた。
この液を超音波処理してオリーブ油の乳化液を調製した
。
。
[蛋白またはペプチド含有液の調製]
上記実施例1で使用したのと同じ精製β−ビューロチオ
ニン、プロタミン(シグマ社製P 4005)、ヒスト
ンH2A(シグマ社製H6881)、ヒストンH3(シ
グマ社製 H4380)、σ−ポリーし一リジン〔(株
)ペプチド研究所部3075)およびポリーL−アルギ
ニン(シグマ社製P 3892)の各々1mgをそれぞ
れトリスバッ7ア10mffに添加して、蛋白またはペ
プチド含有液6種類を調製した。
ニン、プロタミン(シグマ社製P 4005)、ヒスト
ンH2A(シグマ社製H6881)、ヒストンH3(シ
グマ社製 H4380)、σ−ポリーし一リジン〔(株
)ペプチド研究所部3075)およびポリーL−アルギ
ニン(シグマ社製P 3892)の各々1mgをそれぞ
れトリスバッ7ア10mffに添加して、蛋白またはペ
プチド含有液6種類を調製した。
[脂質分解酵素液の調製コ
トリスバッフ7−に豚膵臓リパーゼ(シグマ社製L 0
382)を加えて100ユニツト豚膵臓リパーゼ/mQ
の脂質分解酵素液を調製した。
382)を加えて100ユニツト豚膵臓リパーゼ/mQ
の脂質分解酵素液を調製した。
[各蛋白質またはペプチドの脂質分解酵素阻害特性の測
定] 上記で調製したオリーブ油の乳化液を100μaずつ7
組準備した。
定] 上記で調製したオリーブ油の乳化液を100μaずつ7
組準備した。
第1組の乳化液にはトリスバッファー50μQt加え、
またtIg2〜7組の乳化液の各々には上記で調製した
蛋白またはペプチド含有液を各々50μQ加えて5分間
製置後、上記で調製した脂質分解酵素液50μgを加え
て37°Cで1時間装置した。
またtIg2〜7組の乳化液の各々には上記で調製した
蛋白またはペプチド含有液を各々50μQ加えて5分間
製置後、上記で調製した脂質分解酵素液50μgを加え
て37°Cで1時間装置した。
次いで、抽出用溶媒(クロロホルム:メタノール へブ
タン−49,I : 49)を3m(2加えて5分間装
置した後、回転数3000rpmで5分間遠心分離した
。その上層液をアスピレータ−で除去した後、下層液に
対して実施例1で用いたのと同じ銅試薬1m12を加え
、5分間製置後、回転数300Qrpmで5分間遠心分
離した。次いで、上層液Q、5mQを採取し、これに実
施例1で用いたのと同じ発色剤0.5n+Qを加え、波
長480nmにおける吸光度(Abs480)を測定し
て生成した遊離脂肪酸量、すなわち豚膵臓リパーゼの活
性度を調べlこ。
タン−49,I : 49)を3m(2加えて5分間装
置した後、回転数3000rpmで5分間遠心分離した
。その上層液をアスピレータ−で除去した後、下層液に
対して実施例1で用いたのと同じ銅試薬1m12を加え
、5分間製置後、回転数300Qrpmで5分間遠心分
離した。次いで、上層液Q、5mQを採取し、これに実
施例1で用いたのと同じ発色剤0.5n+Qを加え、波
長480nmにおける吸光度(Abs480)を測定し
て生成した遊離脂肪酸量、すなわち豚膵臓リパーゼの活
性度を調べlこ。
上記の結果は、下記の表−3のとおりであった。なお、
表−3における活性度は、トリスバッファーを加えたオ
リーブ油の乳化液を豚膵臓リパーゼで分解させた場合の
Abs480を100としてそれに対する%で示したも
のである。
表−3における活性度は、トリスバッファーを加えたオ
リーブ油の乳化液を豚膵臓リパーゼで分解させた場合の
Abs480を100としてそれに対する%で示したも
のである。
[表−3]
β−ビューロチオニン
プロタミン
ヒストンH2A
ヒストンH3
a−ポリーL−リジン
ポリーL−アルギニン
00
約to 1.3
約10 1.3
約10 3.7
約10 2.3
約10 6.9
約10 16.5
上記表−3の結果から、塩基性タンパク質または塩基性
ペプチドの1種である精製β−ビューロチオニン、プロ
タミン、ヒストン、α−ポリ−L−リジンまたはポリ−
し一アルギニンからなる本発明の阻害剤を加えた場合は
、胆汁酸の存在下でリパーゼの活性が著しく抑制される
ことがわかる。
ペプチドの1種である精製β−ビューロチオニン、プロ
タミン、ヒストン、α−ポリ−L−リジンまたはポリ−
し一アルギニンからなる本発明の阻害剤を加えた場合は
、胆汁酸の存在下でリパーゼの活性が著しく抑制される
ことがわかる。
実施例 5
SD系雌雄ラット9週令:平均体重200g/匹)を各
区10匹ずつ2区用意した。
区10匹ずつ2区用意した。
別に、コーン油50g、卵黄レシチン6gおよびグリセ
ロール12.5gを混合し、これに蒸留水を加えて全量
をloomQにした後、超音波処理して乳化液を調製し
、この乳化液を2fflQずつに小分けした。
ロール12.5gを混合し、これに蒸留水を加えて全量
をloomQにした後、超音波処理して乳化液を調製し
、この乳化液を2fflQずつに小分けした。
腑1区のランドの各々には、ラット1匹につき上記の小
分けした乳化液2mffコ、チッソ社製のε−ポリ−L
−リジン[デキストリンとε−ボリーL−リジンとをI
:1の重量比で含み、上記の式(1)においてn−約3
0のもの] 100mgを加えた試料を胃ゾンデを用い
て経口投与し、経時的にラット尾静脈より採血して血液
中の中性脂肪濃度を協和メティクス酵素キットTGを用
いて測定して1口当たりの平均値(mg/dff)を求
め、これを試料投与前の血液中の中性脂肪濃度を基準に
して(Omg/d12として)換算した(本発明)。
分けした乳化液2mffコ、チッソ社製のε−ポリ−L
−リジン[デキストリンとε−ボリーL−リジンとをI
:1の重量比で含み、上記の式(1)においてn−約3
0のもの] 100mgを加えた試料を胃ゾンデを用い
て経口投与し、経時的にラット尾静脈より採血して血液
中の中性脂肪濃度を協和メティクス酵素キットTGを用
いて測定して1口当たりの平均値(mg/dff)を求
め、これを試料投与前の血液中の中性脂肪濃度を基準に
して(Omg/d12として)換算した(本発明)。
また第2区のラットの各々には、ラット1匹につき上記
の小分けした乳化液2m(2にデキストリン50mgを
加えた試料を同様に経口投与して、上記と同様にして血
液中の中性脂肪濃度を経時的に測定してその平均値を求
め、同様にして換算した(比較例)。
の小分けした乳化液2m(2にデキストリン50mgを
加えた試料を同様に経口投与して、上記と同様にして血
液中の中性脂肪濃度を経時的に測定してその平均値を求
め、同様にして換算した(比較例)。
上記の結果を下記の表−4に示す。
[表
4]
0 (投与前)00
1時間後53.3±2.5a176.8±16.32
時間後、32.4f4.9a124.1+25.23時
間後 16.7±3.2a79.6±11.04
時間後11.1±3.0a62.0±10.57 時間
後4.2±1.0a17.3±3.Oa:危険率1%で
有意差あり 上記表−4の結果から、塩基性ペプチドの1種であるε
−ポリ−L−リジンを添加した試料を投与した本発明の
場合には、脂質の吸収が阻害されて血液中の中性脂肪の
濃度が投与当初から投与後7時間経過した後も低く抑え
られて総脂肪吸収量を大幅に低下させ得るのに対して、
ε−ポリ−L−リジンを添加しない試料を投与した比較
例の場合には脂質の吸収が阻害されず、血液中の中性脂
肪濃度が大幅に上昇し、投与後7時間経過してもかなり
高く、総脂肪吸収量が高く、ε−ポリリジンが生体内で
脂質分解酵素阻害剤として長期間有効に作用することが
わかる。
時間後、32.4f4.9a124.1+25.23時
間後 16.7±3.2a79.6±11.04
時間後11.1±3.0a62.0±10.57 時間
後4.2±1.0a17.3±3.Oa:危険率1%で
有意差あり 上記表−4の結果から、塩基性ペプチドの1種であるε
−ポリ−L−リジンを添加した試料を投与した本発明の
場合には、脂質の吸収が阻害されて血液中の中性脂肪の
濃度が投与当初から投与後7時間経過した後も低く抑え
られて総脂肪吸収量を大幅に低下させ得るのに対して、
ε−ポリ−L−リジンを添加しない試料を投与した比較
例の場合には脂質の吸収が阻害されず、血液中の中性脂
肪濃度が大幅に上昇し、投与後7時間経過してもかなり
高く、総脂肪吸収量が高く、ε−ポリリジンが生体内で
脂質分解酵素阻害剤として長期間有効に作用することが
わかる。
実施例 6
[ペプチド含有液の調製1
σ−ポリーL−リジン塩酸塩〔(株)ペプチド研究所部
3075)およびσ−ポリーD−リジン臭素酸塩(シ
グマ社製P 7886)の各々l mgに蒸留水1mf
fを加えてペプチド含有液2種類を調製した。
3075)およびσ−ポリーD−リジン臭素酸塩(シ
グマ社製P 7886)の各々l mgに蒸留水1mf
fを加えてペプチド含有液2種類を調製した。
[各ポIJ IJリジン脂質分解酵素阻害特性の測定]
実施例4と同様の方法でオリーブ油の乳化液を調製し、
この乳化液を100μgづつ3組準備しtこ 。
実施例4と同様の方法でオリーブ油の乳化液を調製し、
この乳化液を100μgづつ3組準備しtこ 。
第1組の乳化液にはトリスバッファー50μgを加え、
また第2および第3組の乳化液には上記で調製したペプ
チド含有液を各々50μg加えて5分間製置後、実施例
4におけるのと同様にして調製した100ユニツト豚膵
臓リパーゼ/mQの脂質分解酵素液50μQを加えて3
7°Cで1時間震 盪 し を二 。
また第2および第3組の乳化液には上記で調製したペプ
チド含有液を各々50μg加えて5分間製置後、実施例
4におけるのと同様にして調製した100ユニツト豚膵
臓リパーゼ/mQの脂質分解酵素液50μQを加えて3
7°Cで1時間震 盪 し を二 。
次いで、実施例4と同じ抽出用溶媒を3mQ加えて実施
例4と同様に処理および測定を行って、豚膵臓リパーゼ
の活性度を調べた。
例4と同様に処理および測定を行って、豚膵臓リパーゼ
の活性度を調べた。
上記の結果は、下記の表−5のとおりであつl二 。
[表−5]
00
a−ポリーL−リジン 1.6a−ポリーD
−リジン Lll上記−5の結果から、L体
のポリリジンおよびD体のポリリジンの両方が同様に胆
汁酸の存在下でリパーゼの活性を大きく阻害することが
わかる。
−リジン Lll上記−5の結果から、L体
のポリリジンおよびD体のポリリジンの両方が同様に胆
汁酸の存在下でリパーゼの活性を大きく阻害することが
わかる。
実施例 7
[ペプチド含有液の調製]
ペプチド合成装置(LKB・ファルマンア社製のBio
lynx 4170)を使用して、下記の表−6に示し
たn=2〜5のリジンオリゴマーの各々を製造し、その
各々を高速液体クロマトグラフィを使用して精製し、そ
れぞれのオリゴマーを蒸留水に1μm o Q / m
uになるように加えて7種類のりジンオリゴマー含有
液を調製した。
lynx 4170)を使用して、下記の表−6に示し
たn=2〜5のリジンオリゴマーの各々を製造し、その
各々を高速液体クロマトグラフィを使用して精製し、そ
れぞれのオリゴマーを蒸留水に1μm o Q / m
uになるように加えて7種類のりジンオリゴマー含有
液を調製した。
[各リジンオリゴマーの脂質分解酵素阻害特性の測定]
実施例4と同様の方法でオリーブ油の乳化液を調製し、
この乳化液を100μQづつ7組準備しIこ。
この乳化液を100μQづつ7組準備しIこ。
第1組の乳化液にはトリスバッファー5oμffヲ加え
、また第2〜7組の乳化液には上記で調製したリジンオ
リゴマー含有液を各々50uff加えて5分間製置後、
実施例4におけるのと同様にして調製した100ユニツ
ト豚膵臓リパーゼ/mQの脂質分解酵素液50μQを加
えて37°Cで1時間農産 し lこ 。
、また第2〜7組の乳化液には上記で調製したリジンオ
リゴマー含有液を各々50uff加えて5分間製置後、
実施例4におけるのと同様にして調製した100ユニツ
ト豚膵臓リパーゼ/mQの脂質分解酵素液50μQを加
えて37°Cで1時間農産 し lこ 。
えて実施例4と同様に処理および測定を行って、豚膵臓
リパーゼの活性度を調べた。
リパーゼの活性度を調べた。
上記の結果は、下記の表−6のとおりであっj二 。
[表
6]
a−(L−リジン)。
α−(L−リジン)。
α−(L−リジン)。
00
103.6
03J
61
ε−(L−リジン)、 89.0ε−(
L−リジン)、 53.8ε−(L−リ
ジン)s 3.1上記表−6の結果から
、σ型のリジンオリゴマーでは重合度が5以上のオリゴ
マーが極めて高いリパーゼ阻害活性を有するのに対して
重合度が4以下のオリゴマーはリパーゼ阻害活性を何ら
育しないこと、またε型のリジンオリゴマーチは重合度
が4のオリゴマーはリパーゼ阻害活性を有しているがそ
の活性はそれほど高くなく、重合度5のオリゴマーでは
リパーゼ阻害活性が極めて高くなることがわかる。そし
て、表−6の結果からは、a型およびε型のいずれの場
合もリジンオリゴマーの重合度が5以上ではリパーゼ阻
害活性が高いことが理解できる。
L−リジン)、 53.8ε−(L−リ
ジン)s 3.1上記表−6の結果から
、σ型のリジンオリゴマーでは重合度が5以上のオリゴ
マーが極めて高いリパーゼ阻害活性を有するのに対して
重合度が4以下のオリゴマーはリパーゼ阻害活性を何ら
育しないこと、またε型のリジンオリゴマーチは重合度
が4のオリゴマーはリパーゼ阻害活性を有しているがそ
の活性はそれほど高くなく、重合度5のオリゴマーでは
リパーゼ阻害活性が極めて高くなることがわかる。そし
て、表−6の結果からは、a型およびε型のいずれの場
合もリジンオリゴマーの重合度が5以上ではリパーゼ阻
害活性が高いことが理解できる。
ところで、重合度が約10以上のむ一リジンオリゴマー
は強い抗菌性を有していることが報告されており、この
報告と上記表−6の結果を総合すると、生体内に通常存
在する菌類に悪影響を及ぼさない重合度が5〜9のε−
リジンオリゴマーは生体内で脂質分解酵素阻害剤として
より有効に使用し得ることが予想される。
は強い抗菌性を有していることが報告されており、この
報告と上記表−6の結果を総合すると、生体内に通常存
在する菌類に悪影響を及ぼさない重合度が5〜9のε−
リジンオリゴマーは生体内で脂質分解酵素阻害剤として
より有効に使用し得ることが予想される。
[発明の効果〕
本発明の脂質分解酵素阻害剤を人間や動物に投与すると
、脂質分解酵素の働きが阻害されて脂質の分解が抑制ま
たは阻害されるために摂取した脂質が急激に体内に吸収
されるのを防ぐことができ、しかも総脂肪吸収量をも低
く抑えることができ、その結果、高脂血症の予防や肥満
の予防等の種々の効果が奏される。
、脂質分解酵素の働きが阻害されて脂質の分解が抑制ま
たは阻害されるために摂取した脂質が急激に体内に吸収
されるのを防ぐことができ、しかも総脂肪吸収量をも低
く抑えることができ、その結果、高脂血症の予防や肥満
の予防等の種々の効果が奏される。
本発明の脂質分解酵素阻害剤のうちでも、特にCポリリ
ジンは生体内で長期間に亘ってその脂質吸収阻害作用を
失わずに有しているために、生体における総脂肪吸収量
を大幅に低下させることができる。
ジンは生体内で長期間に亘ってその脂質吸収阻害作用を
失わずに有しているために、生体における総脂肪吸収量
を大幅に低下させることができる。
Claims (1)
- 塩基性タンパク質、塩基性ポリペプチドおよびそれら
の塩の少なくとも一つを有効成分とする脂質分解酵素阻
害剤。
Priority Applications (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB9027268A GB2239455B (en) | 1989-12-25 | 1990-12-17 | Formulations of lipolytic enzyme inhibitors and use of said inhibitors |
DE4040874A DE4040874A1 (de) | 1989-12-25 | 1990-12-20 | Lipolytische enzyminhibitoren und sie enthaltende diaetische agentien und lebensmittel- und futterzusaetze |
FR9016069A FR2656311A1 (fr) | 1989-12-25 | 1990-12-21 | Inhibiteurs d'enzymes lipolytiques. |
US07/950,773 US5411956A (en) | 1989-12-25 | 1992-09-24 | Lipolytic enzyme inhibitors |
US07/973,852 US5376640A (en) | 1989-12-25 | 1992-11-09 | Lipolytic enzyme inhibitors |
Applications Claiming Priority (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP33288489 | 1989-12-25 | ||
JP1-332884 | 1989-12-25 | ||
JP7560090 | 1990-03-27 | ||
JP2-75600 | 1990-03-27 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03284627A true JPH03284627A (ja) | 1991-12-16 |
JP2960947B2 JP2960947B2 (ja) | 1999-10-12 |
Family
ID=26416741
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2194782A Expired - Lifetime JP2960947B2 (ja) | 1989-12-25 | 1990-07-25 | 脂質分解酵素阻害剤 |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5411956A (ja) |
JP (1) | JP2960947B2 (ja) |
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CN115925854A (zh) * | 2022-12-26 | 2023-04-07 | 中国农业大学 | 两种抑制胰脂肪酶和胆固醇酯酶活性的小米醇溶蛋白肽 |
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