JPH02486A - 遊離n−アセチルノイラミン酸を認識するモノクローナル抗体 - Google Patents
遊離n−アセチルノイラミン酸を認識するモノクローナル抗体Info
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- A—HUMAN NECESSITIES
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- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、新規なハイブリドーマ、その製造法およびそ
れによって産生されるN−アセチルノイラミン酸に対し
て特異性を有するモノクローナル抗体に関する。
れによって産生されるN−アセチルノイラミン酸に対し
て特異性を有するモノクローナル抗体に関する。
関連技術の説明
1975年にケーラーほか(K6’hlor and!
、l1llstein )は均一な特異性及び性質を有
する抗体のはザ無限量の生成を可能にする雑種細胞(ハ
イブリドーマ)を用いる単クローン性抗体を製造する方
法を導入した。それより前に動物を腫瘍細胞または他の
抗原で免疫処置することにより生成された普通の抗血清
が特異性および性質の異なる種々の抗体を含むことがS
忍められていた。ケーラーほかの(K6’hlor−!
、l1llstein )方法は免疫処置動物の脾臓細
胞とイモータル骨髄腫細胞系との融合を必要とする。ハ
イブリドーマとして知られる融合細胞から目的とする特
異性有する抗体を生ずるクローンを選ばれる。各クロー
ンはその1抗体のみを生成し続ける。ハイブリドーマ細
胞は無限に培養でき、または液体窒素中に凍結して貯蔵
することができ、その個々の抗体の安定供給が保証され
る。
、l1llstein )は均一な特異性及び性質を有
する抗体のはザ無限量の生成を可能にする雑種細胞(ハ
イブリドーマ)を用いる単クローン性抗体を製造する方
法を導入した。それより前に動物を腫瘍細胞または他の
抗原で免疫処置することにより生成された普通の抗血清
が特異性および性質の異なる種々の抗体を含むことがS
忍められていた。ケーラーほかの(K6’hlor−!
、l1llstein )方法は免疫処置動物の脾臓細
胞とイモータル骨髄腫細胞系との融合を必要とする。ハ
イブリドーマとして知られる融合細胞から目的とする特
異性有する抗体を生ずるクローンを選ばれる。各クロー
ンはその1抗体のみを生成し続ける。ハイブリドーマ細
胞は無限に培養でき、または液体窒素中に凍結して貯蔵
することができ、その個々の抗体の安定供給が保証され
る。
抗体は、抗原として知られる他の分子との結合およびそ
れを認識する能力を有するタンパク質である。単クロー
ン性抗体は他の抗体と異ならないが、しかしそれらはそ
の性質が非常に均一であり、ただ1種の抗原または抗原
決定基を認識する。腫瘍細胞と免疫動物由来の抗体産生
細胞との融合に起因するハイブリドーマクローンがすべ
て目的の抗原に対して特異性であるわけではない。さら
に異なるハイブリドーマクローンにより生成された抗体
が同一分子の異なる抗原決定基と反応できるので、主題
抗原に対する抗体でもクローン毎に異なる。従って、個
々の単クローン性抗体が抗原分子のどの特定部分を認識
できるかを予め予測することができない。単クローン性
抗体およびハイブリドーマを生成させる多くの技術は、
参照により加入される最近の図書「単クローン性ハイブ
リドーマ抗体:技術および適用(ゝJonoclona
l Hybri−doma Antibodies:
Techniques and Appl+cat
ions) j (バレル(John G、Hur
rell ) q5.1983]により証明されるよ
うに今日普通である。
れを認識する能力を有するタンパク質である。単クロー
ン性抗体は他の抗体と異ならないが、しかしそれらはそ
の性質が非常に均一であり、ただ1種の抗原または抗原
決定基を認識する。腫瘍細胞と免疫動物由来の抗体産生
細胞との融合に起因するハイブリドーマクローンがすべ
て目的の抗原に対して特異性であるわけではない。さら
に異なるハイブリドーマクローンにより生成された抗体
が同一分子の異なる抗原決定基と反応できるので、主題
抗原に対する抗体でもクローン毎に異なる。従って、個
々の単クローン性抗体が抗原分子のどの特定部分を認識
できるかを予め予測することができない。単クローン性
抗体およびハイブリドーマを生成させる多くの技術は、
参照により加入される最近の図書「単クローン性ハイブ
リドーマ抗体:技術および適用(ゝJonoclona
l Hybri−doma Antibodies:
Techniques and Appl+cat
ions) j (バレル(John G、Hur
rell ) q5.1983]により証明されるよ
うに今日普通である。
N−アセチルノイラミン酸は複合糖質の糖鎖末端に存在
し、種々の重要な生物学的機能を担っている事が知られ
ている。近年、悪性腫瘍や急性炎症性疾患などにおいて
血中あるいは尿中の遊離N−アセチルノイラミン酸量が
増加する事が報告されており、その意義が注目されてい
る。
し、種々の重要な生物学的機能を担っている事が知られ
ている。近年、悪性腫瘍や急性炎症性疾患などにおいて
血中あるいは尿中の遊離N−アセチルノイラミン酸量が
増加する事が報告されており、その意義が注目されてい
る。
したがって、上記遊離型N−アセチルノイラミン酸に対
して特異性を有するモノクローナル抗体の作成は、その
すぐれた抗原特異性と高い検出感度を特徴とすることか
ら、癌マーカーとして癌患者の血清診断などに応用でき
、早期診断、早期治療等の目的から期待されていた。
して特異性を有するモノクローナル抗体の作成は、その
すぐれた抗原特異性と高い検出感度を特徴とすることか
ら、癌マーカーとして癌患者の血清診断などに応用でき
、早期診断、早期治療等の目的から期待されていた。
上記のような背景からN−アセチルノイラミン酸の高感
度検出・定量法が望まれていたが、従来確立されている
方法ではいずれもその特異性、簡便性などの点で難があ
っグこ。
度検出・定量法が望まれていたが、従来確立されている
方法ではいずれもその特異性、簡便性などの点で難があ
っグこ。
一方、天然型複合糖質糖鎖末端に存在するN−アセチル
ノイラミン酸は全てα配位を有し、その一方遊離型N−
アセチルノイラミン酸はβ配位である。これら複合糖質
に対するモノクローナル抗体のうち、N−アセチルノイ
ラミン酸を含む部位をエピトープとするものも多く得ら
れているが、上記理由からこれらはいずれも遊離N−ア
セチルノイラミン酸をME m結合する能力を持たない
。さらにN−アセチルノイラミン酸は低分子ハブテンで
あるため、そのまま抗原として免疫してもその抗原性の
低さからモノクローナル抗体の取得は困難と考えられる
。
ノイラミン酸は全てα配位を有し、その一方遊離型N−
アセチルノイラミン酸はβ配位である。これら複合糖質
に対するモノクローナル抗体のうち、N−アセチルノイ
ラミン酸を含む部位をエピトープとするものも多く得ら
れているが、上記理由からこれらはいずれも遊離N−ア
セチルノイラミン酸をME m結合する能力を持たない
。さらにN−アセチルノイラミン酸は低分子ハブテンで
あるため、そのまま抗原として免疫してもその抗原性の
低さからモノクローナル抗体の取得は困難と考えられる
。
したがって、本発明の目的は、悪性腫瘍や急性炎症性疾
患などにおいて血中あるいは尿中の遊離型N−アセチル
ノイラミン酸のある特定のエピトープ(抗原決定基)に
対して、免疫特異性を有する゛モノクローナル抗体を産
生ずるハイブリドーマ、その製造法およびそのハイブリ
ドーマから産生されるモノクローナル抗体に関する。
患などにおいて血中あるいは尿中の遊離型N−アセチル
ノイラミン酸のある特定のエピトープ(抗原決定基)に
対して、免疫特異性を有する゛モノクローナル抗体を産
生ずるハイブリドーマ、その製造法およびそのハイブリ
ドーマから産生されるモノクローナル抗体に関する。
本発明者らは、上記問題点に鑑み、β配位のシアル酸化
合物を化学合成し、これを免疫原としてモノクローナル
抗体を作成し、当該モノクローナル抗体が高い特異性を
有するエピトープ(抗原決定基)を同定し、本発明を完
成した。
合物を化学合成し、これを免疫原としてモノクローナル
抗体を作成し、当該モノクローナル抗体が高い特異性を
有するエピトープ(抗原決定基)を同定し、本発明を完
成した。
すなわち、本発明は、エピトープ(抗原決定基)として
β配位を有するN−アセチルノイラミン酸る。
β配位を有するN−アセチルノイラミン酸る。
本発明についてさらに詳細に説明する。
本発明のハイブリドーマは、ケーラー等の方法、すなわ
ち、抗原を動物に免疫して得られるB細胞(リンパ球)
と骨髄腫細胞とを細胞融合させることにより調製される
。ここで、本発明に使用される「抗原」としては、β配
位を有するN−アセチルノイラミン酸誘導体である。
ち、抗原を動物に免疫して得られるB細胞(リンパ球)
と骨髄腫細胞とを細胞融合させることにより調製される
。ここで、本発明に使用される「抗原」としては、β配
位を有するN−アセチルノイラミン酸誘導体である。
以下、それらの化合物の具体例を挙げる。
また、本発明は、(A)β配位を有するN−アセチルノ
イラミン酸誘導体を抗原として動物に免疫して得られた
B細胞(リンパ球)と (B) 骨髄腫細胞とを細胞融合することを特徴とす
るハイブリドーマの製造法に関する。
イラミン酸誘導体を抗原として動物に免疫して得られた
B細胞(リンパ球)と (B) 骨髄腫細胞とを細胞融合することを特徴とす
るハイブリドーマの製造法に関する。
さらに、本発明はエピトープ(抗原決定基)としてβ配
位を有するN−アセチルノイラミン酸に対して特異性を
有するモノクローナル抗体に関す(B) l′IU (C) λHCOCzJ47 次に本発明のモ、“クローナル抗体に抗原特異性を示さ
ないα配位を有するN−アセチルノイラミ酸誘導体の具
体例を以下に示す。
位を有するN−アセチルノイラミン酸に対して特異性を
有するモノクローナル抗体に関す(B) l′IU (C) λHCOCzJ47 次に本発明のモ、“クローナル抗体に抗原特異性を示さ
ないα配位を有するN−アセチルノイラミ酸誘導体の具
体例を以下に示す。
(J)
Hυ
U■
本発明のハイブリドーマから産生されるモノクローナル
抗体は上記したβ配位のシアル酸をエピトープ(抗原決
定基)として認識し、特異的に反応する。したがって、
本発明の71イブリドーマから産生されるモノクローナ
ル抗体はβ配位を有するN−アセチルノイラミン酸およ
びその誘導体であればいずれのものでも高い特異性を有
する。
抗体は上記したβ配位のシアル酸をエピトープ(抗原決
定基)として認識し、特異的に反応する。したがって、
本発明の71イブリドーマから産生されるモノクローナ
ル抗体はβ配位を有するN−アセチルノイラミン酸およ
びその誘導体であればいずれのものでも高い特異性を有
する。
まず、上記した抗原をマウスの筋肉、皮下、腹腔内に免
疫する。この免疫の際、アジュバント、すなわち免疫増
強剤としては、不完全アジュバントまたは完全アジュバ
ントのいずれも使用でき、例えば、油、乳化剤、結核死
菌、サルモネラ死菌およびこれらの混合物、好ましくは
サルモネラ・ミネソタ死菌が使用できる。
疫する。この免疫の際、アジュバント、すなわち免疫増
強剤としては、不完全アジュバントまたは完全アジュバ
ントのいずれも使用でき、例えば、油、乳化剤、結核死
菌、サルモネラ死菌およびこれらの混合物、好ましくは
サルモネラ・ミネソタ死菌が使用できる。
次に、上記で得られたB細胞とミエローマ細胞とを細胞
融合する。
融合する。
ここで、融合剤としては、ポリエチレングリコール、H
VJ等が使用でき、好ましくはポリエチレングリコール
4000である。
VJ等が使用でき、好ましくはポリエチレングリコール
4000である。
また、培養液としては、ハイブリドーマ細胞とミエロー
マ細胞とを選択するためHAT培地を使用するのが好ま
しい。さらに、得られたハイブリドーマヲクローニンク
法、例えばメチルセルロース法、軟アガロース法、また
は限界希釈法を用いて単一クローンを分離する。
マ細胞とを選択するためHAT培地を使用するのが好ま
しい。さらに、得られたハイブリドーマヲクローニンク
法、例えばメチルセルロース法、軟アガロース法、また
は限界希釈法を用いて単一クローンを分離する。
かくして得られたモノクローナル抗体産生ハイブリドー
マについて、常法にて抗体価をチエツクし、抗体価の大
きいハイブリドーマを選択して保存する。
マについて、常法にて抗体価をチエツクし、抗体価の大
きいハイブリドーマを選択して保存する。
(発明の効果)
本発明のハイブリドーマから産生されるモノクローナル
抗体は、競合RrAなどの方法によりヒトまたは動物血
中・尿中N−アセチルノイラミン酸の検出・定量に使用
できる。
抗体は、競合RrAなどの方法によりヒトまたは動物血
中・尿中N−アセチルノイラミン酸の検出・定量に使用
できる。
従っである種の癌や急性炎症性疾患などの診断・予後観
察など臨床的応用が可能である。さらに、これらの疾患
の他糖脂質関連疾患類におけるN−アセチルノイラミン
酸の関与、また生体内で重要な機能を果たすN−アセチ
ルノイラミン酸や、シアリダーゼ、シアリルトランスフ
ェラーゼの基礎研究にも利用できる。他に、このように
して製造したモノクローナル抗体をアフィニティクロマ
トグラフィーに用いてN−アセチルノイラミン酸の精製
に利用する事も可能である。
察など臨床的応用が可能である。さらに、これらの疾患
の他糖脂質関連疾患類におけるN−アセチルノイラミン
酸の関与、また生体内で重要な機能を果たすN−アセチ
ルノイラミン酸や、シアリダーゼ、シアリルトランスフ
ェラーゼの基礎研究にも利用できる。他に、このように
して製造したモノクローナル抗体をアフィニティクロマ
トグラフィーに用いてN−アセチルノイラミン酸の精製
に利用する事も可能である。
実施例
(A>免疫原の調製
(1)化合物(A)の合成法
3−0− Cメチル(5−アセタシド−4,7゜8.9
−テトラ−0−アセチル−3,5−ジデオキシ−β−D
−グリセローD−ガラクトー2−ノニュロピラノシル)
オネート]−1.2−ジー0−テトラデシル−3n−グ
リセロールをメタノールに溶解後、室温下IN−水酸化
ナトリウムで加水分解した。得られた反応生成物をアン
バーライトにて中和後、逆相カラムクロマトグラフィー
により精製を行い化合物(A)を得て免疫原とした。(
特開昭第59−164798号) (2)実験動物 5匹のメスの6退会Balb/Cマウスを空調室にて7
日間飼育したものを実験に使用した。
−テトラ−0−アセチル−3,5−ジデオキシ−β−D
−グリセローD−ガラクトー2−ノニュロピラノシル)
オネート]−1.2−ジー0−テトラデシル−3n−グ
リセロールをメタノールに溶解後、室温下IN−水酸化
ナトリウムで加水分解した。得られた反応生成物をアン
バーライトにて中和後、逆相カラムクロマトグラフィー
により精製を行い化合物(A)を得て免疫原とした。(
特開昭第59−164798号) (2)実験動物 5匹のメスの6退会Balb/Cマウスを空調室にて7
日間飼育したものを実験に使用した。
(3)抗原溶液の調製
化合物(A)1mgとアジュバントとして酢酸処理した
サルモネラ・ミネソタ(Salmonellamine
sota) R5954mgとをリン酸援衡生理食塩水
(PBS (−))1 mlにて混合して抗原溶液とし
た。
サルモネラ・ミネソタ(Salmonellamine
sota) R5954mgとをリン酸援衡生理食塩水
(PBS (−))1 mlにて混合して抗原溶液とし
た。
(4)培 地
培地:ニッスイRPM [1640を使用した。
使用時にペニシリンGカリウム100LI/mJ、スト
レプトマイシン硫酸塩1mg力価/ ml、ピルビン酸
ナトリウム1mM、牛胎児血清(FBS)を10%とす
る様添加した。
レプトマイシン硫酸塩1mg力価/ ml、ピルビン酸
ナトリウム1mM、牛胎児血清(FBS)を10%とす
る様添加した。
HAT培地:チミジン0.0388 gとヒポキサンチ
ン0.1361 gとを蒸留水100m1に加熱融解し
、100倍濃度の保存溶液とし一20℃で保存した。同
様に0.(10)76gのアミノプテリンを蒸留水10
0mj!に少量のIN水酸化ナトリウム水溶液を加えて
溶かし、これをRP !、+ 11640培地にて10
倍に希釈し、100@濃度の保存液として一20℃で遮
光して保存した。
ン0.1361 gとを蒸留水100m1に加熱融解し
、100倍濃度の保存溶液とし一20℃で保存した。同
様に0.(10)76gのアミノプテリンを蒸留水10
0mj!に少量のIN水酸化ナトリウム水溶液を加えて
溶かし、これをRP !、+ 11640培地にて10
倍に希釈し、100@濃度の保存液として一20℃で遮
光して保存した。
使用時には、1096 F8SRP!J[l 640培
地にそれぞれ1/10(10)ずつ加え、HAT培地と
した。
地にそれぞれ1/10(10)ずつ加え、HAT培地と
した。
また、HT培地としては、チミジンおよびピポキサンチ
ン保存液のみを1/100ffi加え使用した。
ン保存液のみを1/100ffi加え使用した。
(5)親細胞
細胞融合を行う際の親細胞としては、Balb/cマウ
ス由来のミエローマ細n包であるX63−Ag 8−6
.5.3細胞を使用した。この細胞を10%FBS添加
RPMI 1640培地により継代を行い、培地にC
−チオグアニンを3μg7mlの濃度となる様に加える
事により突然変異体の出現を阻止した。
ス由来のミエローマ細n包であるX63−Ag 8−6
.5.3細胞を使用した。この細胞を10%FBS添加
RPMI 1640培地により継代を行い、培地にC
−チオグアニンを3μg7mlの濃度となる様に加える
事により突然変異体の出現を阻止した。
(B)ハイブリドーマの製造
(1)免疫法
メスの6退会Balb/cマウスを、免疫原として化合
物(A)Imgとアジュバントとしてサル、モネラ・ミ
ネソタ4mgとをリン酸11 新生理食塩水(Pus(
−) 、Ca SMgを除いた)1mlにて混合し、適
宜希釈したのち、前記マウスの腹腔内に初日5μg、1
2日目10μg116日目10μg、26日目15μg
135日目15μgの免疫スケジュールで免疫した。3
回目の免疫後、肺細胞リンパ球をマウスから取り出し、
次に単一細胞の懸濁液をつくった。
物(A)Imgとアジュバントとしてサル、モネラ・ミ
ネソタ4mgとをリン酸11 新生理食塩水(Pus(
−) 、Ca SMgを除いた)1mlにて混合し、適
宜希釈したのち、前記マウスの腹腔内に初日5μg、1
2日目10μg116日目10μg、26日目15μg
135日目15μgの免疫スケジュールで免疫した。3
回目の免疫後、肺細胞リンパ球をマウスから取り出し、
次に単一細胞の懸濁液をつくった。
(2)細胞融合法
上記で得られた肺細胞リンパ球と前記親細胞のマウスミ
エローマ細胞との細胞融合をケーラーおよびミルシュタ
イ゛ン(Kδ旧erおよびλ1ilstein)の方法
に従って実施した。すなわち、最終免疫してから3日後
に10’個の肺細胞リンパ球を、培地中で5096のポ
リエチレングリコール(PEG4000)(7)存在下
で、10’個(7)骨髄腫細胞と融合した。
エローマ細胞との細胞融合をケーラーおよびミルシュタ
イ゛ン(Kδ旧erおよびλ1ilstein)の方法
に従って実施した。すなわち、最終免疫してから3日後
に10’個の肺細胞リンパ球を、培地中で5096のポ
リエチレングリコール(PEG4000)(7)存在下
で、10’個(7)骨髄腫細胞と融合した。
(3)ハイブリドーマの選択および成長細胞融合後、得
られたハイブリドーマ細胞をHAT保存液及び10%F
BSを含有するRPMI−1640培地中で15日間培
養した。
られたハイブリドーマ細胞をHAT保存液及び10%F
BSを含有するRPMI−1640培地中で15日間培
養した。
15日間培養した後、この培養液の上清を酵素抗体法を
用いて化合物(A)に対する抗体産生についてスクリー
ニングした。
用いて化合物(A)に対する抗体産生についてスクリー
ニングした。
(C)モノクローナル抗体とβ配位を有するN −アセ
チルノイラミン酸誘導体との反応性の評価 (1)酵素抗体法(ELISA法) 96穴平底プレート(ファルコン社製)ヲエタノールで
前処理して実験に使用した。濃度2%としたN−アセチ
ルノイラミン酸誘導体のエタノール溶液50μlを各プ
レートに分注し蒸発させた後、0.2%カガインPBS
(−)溶液200μlを加え2時間室温に放置した。
チルノイラミン酸誘導体との反応性の評価 (1)酵素抗体法(ELISA法) 96穴平底プレート(ファルコン社製)ヲエタノールで
前処理して実験に使用した。濃度2%としたN−アセチ
ルノイラミン酸誘導体のエタノール溶液50μlを各プ
レートに分注し蒸発させた後、0.2%カガインPBS
(−)溶液200μlを加え2時間室温に放置した。
溶液を吸引除去後、−次抗体としてハイプリドーマ培養
上清を50μ!加え室温に1時間放置した。
上清を50μ!加え室温に1時間放置した。
同様にしてプレートから一次抗体を除きPBS(−)溶
液150μβを加え3回ウェルを洗浄した後に0.2%
カゼインP B S (−)溶液200μ!を加え30
分間放置した。この溶液を除いた後に0.2%カゼイン
PBS (−)にて至適濃度に希釈した2次抗体50μ
lを加え室温で1時間30分放置した。−次抗体と同様
にPBS(−)で3回ウェルを洗浄し反応溶液100μ
lをウェルに注ぎ暗所にて反応させた。反応溶液はクエ
ン酸−リン酸緩衝液(pH= 5 )にオルトフェニレ
ンジアミン、過酸化水素水の最終濃度が0.4mg/m
β、0.(10)%となる隨調製し実験に使用した。反
応は8N硫酸を30μ!加えて停止させ、490nmの
吸収波長にて比色測定を行った。2次抗体としては西洋
ワサビペルオキシダーゼ(HRP)標識ヤギ抗マウスI
gGSM、A抗体を使用した、 この方法により、β配位を有する化合物A〜Fおよびα
配位を有する化合物G−Lについて調べ、第1図〜第3
図の結果を得た。
液150μβを加え3回ウェルを洗浄した後に0.2%
カゼインP B S (−)溶液200μ!を加え30
分間放置した。この溶液を除いた後に0.2%カゼイン
PBS (−)にて至適濃度に希釈した2次抗体50μ
lを加え室温で1時間30分放置した。−次抗体と同様
にPBS(−)で3回ウェルを洗浄し反応溶液100μ
lをウェルに注ぎ暗所にて反応させた。反応溶液はクエ
ン酸−リン酸緩衝液(pH= 5 )にオルトフェニレ
ンジアミン、過酸化水素水の最終濃度が0.4mg/m
β、0.(10)%となる隨調製し実験に使用した。反
応は8N硫酸を30μ!加えて停止させ、490nmの
吸収波長にて比色測定を行った。2次抗体としては西洋
ワサビペルオキシダーゼ(HRP)標識ヤギ抗マウスI
gGSM、A抗体を使用した、 この方法により、β配位を有する化合物A〜Fおよびα
配位を有する化合物G−Lについて調べ、第1図〜第3
図の結果を得た。
第1図および第2図はそれぞれβ配位を有するN−アセ
チルノイラミン酸を含有する化合物を抗原として使用し
、本発明の抗化合物A抗体との交叉反応について調べた
ものである。
チルノイラミン酸を含有する化合物を抗原として使用し
、本発明の抗化合物A抗体との交叉反応について調べた
ものである。
この結果からβ配位を有する化合物はすべて陽性である
ことが判る。
ことが判る。
また第3図はα配位を有するN−アセチルノイラミン酸
を含有する化合物を抗原として使用し、同様に交叉反応
性について調べた。
を含有する化合物を抗原として使用し、同様に交叉反応
性について調べた。
この結果からα配位を有する化合物はすべて陰性である
ことが判る。
ことが判る。
化合物Aを抗原としてコートしたプレート上で本発明の
モノクローナル抗体(抗化合物A抗体)を加え化合物A
と反応させる際に遊離N−アセチルノイラミン酸を共存
させ、抗化合物A抗体と化合物へとの結合に対する阻害
作用を調べ、第4図の結果を得た。
モノクローナル抗体(抗化合物A抗体)を加え化合物A
と反応させる際に遊離N−アセチルノイラミン酸を共存
させ、抗化合物A抗体と化合物へとの結合に対する阻害
作用を調べ、第4図の結果を得た。
この図から、遊離N−アセチルノイラミン酸が抗化合物
A抗体の抗原結合部位に結合して、化合物1へとの結合
を濃度依存的に阻害することがわかる。したがって、抗
化合物A抗体は、遊離型N−アセチルノイラミン酸と特
異的に結合する抗体である事を示唆している。
A抗体の抗原結合部位に結合して、化合物1へとの結合
を濃度依存的に阻害することがわかる。したがって、抗
化合物A抗体は、遊離型N−アセチルノイラミン酸と特
異的に結合する抗体である事を示唆している。
抗化合物A抗体の上清を1〜64倍に段階希釈した後、
各ウェルに加え、抗体を吸着させる。
各ウェルに加え、抗体を吸着させる。
その後、〔IC)N−アセチルノイラミン酸溶液を添加
してインキュベーションした後、ウェルを洗浄し残査放
射活性を調べた。その結果を第5図に示す。この図から
、コートした抗体量依存的に(14C)N−アセチルノ
イラミン酸由来の放射活性が高いことが判る。
してインキュベーションした後、ウェルを洗浄し残査放
射活性を調べた。その結果を第5図に示す。この図から
、コートした抗体量依存的に(14C)N−アセチルノ
イラミン酸由来の放射活性が高いことが判る。
また、対象としてグルコサミンを抗原として用いたが結
合がみられなかった。
合がみられなかった。
このことから、本発明のモノクローナル抗体はβ配位を
有するN−アセチルノイラミン酸と特異的に反応するこ
とがわかる。
有するN−アセチルノイラミン酸と特異的に反応するこ
とがわかる。
第1図〜第3図は酵素抗体法によるβ配位N−アセチル
ノイラミン酸各種誘導体との交叉反応を示し、第4図は
酵素抗体法における競合反応による遊離N−アセチルノ
イラミン酸との特異的反応を示し、第5図は放射性同位
体標識N−アセチルノイラミン酸と本抗体との結合反応
を示す。 第 図 ○、D (U(−J〕 第2図 希釈1&率
ノイラミン酸各種誘導体との交叉反応を示し、第4図は
酵素抗体法における競合反応による遊離N−アセチルノ
イラミン酸との特異的反応を示し、第5図は放射性同位
体標識N−アセチルノイラミン酸と本抗体との結合反応
を示す。 第 図 ○、D (U(−J〕 第2図 希釈1&率
Claims (11)
- (1)エピトープ(抗原決定基)としてβ配位を有する
N−アセチルノイラミン酸に対して特異性を有するモノ
クローナル抗体を産生する新規なハイブリドーマ。 - (2)(A)β配位を有するN−アセチルノイラミン酸
誘導体を抗原として動物に免疫して得られたB細胞(リ
ンパ球)と (B)骨髄腫細胞とを細胞融合することを特徴とするハ
イブリドーマの製造法。 - (3)動物がBalb/cマウスである特許請求の範囲
第(2)項記載のハイブリドーマの製造法。 - (4)B細胞がBalb/cマウスの脾臓細胞である特
許請求の範囲第(3)項記載のハイブリドーマの製造法
。 - (5)骨髄腫細胞がヒト、ラット、マウス由来のミエロ
ーマ細胞である特許請求の範囲第(4)項記載のハイブ
リドーマの製造法。 - (6)マウス由来のミエローマ細胞がBalb/cマウ
ス由来のミエローマ細胞である特許請求の範囲第(5)
項記載のハイブリドーマの製造法。 - (7)細胞融合にポリエチレングリコールを融合剤とし
て用いる特許請求の範囲第(2)項記載のハイブリドー
マの製造法。 - (8)免疫する際アジュバントとしてサルモネラミネソ
タR595を使用する特許請求の範囲第(2)項記載の
ハイブリドーマの製造法。 - (9)エピトープ(抗原決定基)としてβ配位を有する
N−アセチルノイラミン酸に対して特異性を有するモノ
クローナル抗体。 - (10)IgGタイプの免疫グロブリン分子である特許
請求の範囲第(9)項記載のモノクローナル抗体。 - (11)悪性腫瘍または急性炎症性疾患における血清ま
たは尿診断に使用しうる特許請求の範囲第(10)項記
載のモノクローナル抗体。
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IL8832288A IL88322A (en) | 1987-11-13 | 1988-11-08 | Monoclonal antibodies familiar with N-acetylenoerminic acid in beta-use for the diagnosis and prognosis of tumors and inflammatory diseases |
KR1019880014661A KR960004855B1 (ko) | 1987-11-13 | 1988-11-08 | 베타-배열의 n-아세틸뉴라민산을 인지할 수 있는 단일클론성 항체 |
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FI885169A FI90989C (fi) | 1987-11-13 | 1988-11-10 | Monoklonaalinen vasta-aine, joka tunnistaa N-asetyylineuramiinihapon -järjestyksessä, sen käyttö ja sitä tuottava hybridooma |
EP88118876A EP0316818B1 (en) | 1987-11-13 | 1988-11-11 | Monoclonal antibodies capable of recognizing n-acetylneuraminic acid in beta-arrangement |
ES88118876T ES2054772T3 (es) | 1987-11-13 | 1988-11-11 | Anticuerpos monoclonales capaces de reconocer acido n-acetilneuraminico en configuracion beta. |
DE8888118876T DE3881344T2 (de) | 1987-11-13 | 1988-11-11 | In beta-stellung n-acetylneuraminsaeure identifizierungsfaehige monoklonale antikoerper. |
NZ226937A NZ226937A (en) | 1987-11-13 | 1988-11-11 | Hybridoma producing antibody specific to n-acetylneuraminic acid (in beta-form) and antibodies produced |
AT88118876T ATE89863T1 (de) | 1987-11-13 | 1988-11-11 | In beta-stellung n-acetylneuraminsaeure identifizierungsfaehige monoklonale antikoerper. |
HU885786A HU204897B (en) | 1987-11-13 | 1988-11-11 | Process for producing monoclonal antibodies capable of recognizing n-acetylneuraminic acid of beta-configuration, as well as hybridomas producing same |
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NO885053A NO174110C (no) | 1987-11-13 | 1988-11-11 | Monoklonalt antistoff til anvendelse in vitro for diagnose av maligne tumor- eller akutte inflammasjonssykdommer, og som er spesifikt for N-acetyl-neuraminsyre i hybridom som produserer antistoffet |
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DE (1) | DE3881344T2 (ja) |
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NO (1) | NO174110C (ja) |
NZ (1) | NZ226937A (ja) |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN100401753C (zh) * | 2004-07-20 | 2008-07-09 | 上海乐金广电电子有限公司 | 数码tv接收用智能天线控制系统 |
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US9879087B2 (en) | 2014-11-12 | 2018-01-30 | Siamab Therapeutics, Inc. | Glycan-interacting compounds and methods of use |
DK3218005T5 (da) | 2014-11-12 | 2024-10-14 | Seagen Inc | Glycan-interagerende forbindelser og anvendelsesfremgangsmåder |
IL302822A (en) | 2015-11-12 | 2023-07-01 | Seagen Inc | Compounds interacting with glycans and methods of use |
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---|---|---|---|---|
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- 1988-11-08 IL IL8832288A patent/IL88322A/en not_active IP Right Cessation
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- 1988-11-11 AU AU24982/88A patent/AU614553B2/en not_active Ceased
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- 1988-11-11 HU HU885786A patent/HU204897B/hu not_active IP Right Cessation
- 1988-11-11 ES ES88118876T patent/ES2054772T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1988-11-11 DE DE8888118876T patent/DE3881344T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1988-11-11 EP EP88118876A patent/EP0316818B1/en not_active Expired - Lifetime
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PROC NATL ACAD SCI USA=1979 * |
Z PARASITENKD=1985 * |
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CA1336763C (en) | 1995-08-22 |
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FI885169A (fi) | 1989-05-14 |
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