JP6076273B2 - 標的核酸の検出方法 - Google Patents
標的核酸の検出方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP6076273B2 JP6076273B2 JP2014023882A JP2014023882A JP6076273B2 JP 6076273 B2 JP6076273 B2 JP 6076273B2 JP 2014023882 A JP2014023882 A JP 2014023882A JP 2014023882 A JP2014023882 A JP 2014023882A JP 6076273 B2 JP6076273 B2 JP 6076273B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- nucleic acid
- sequence
- primer
- amplification
- probe
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6813—Hybridisation assays
- C12Q1/6834—Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase
- C12Q1/6837—Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase using probe arrays or probe chips
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Immunology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Description
本明細書は、標的核酸を検出する技術に関する。
従来、生物個体の遺伝子解析や、生体試料におけるウイルスや細菌等の存在を調べるための方法として、核酸配列を網羅的に検出し、同定し、さらに定量する方法が提案されている。こうした解析等においては、予め標的となる核酸配列に関連付けられたプローブなどを準備しておき、このプローブ等と生体試料から核酸増幅法により増幅したＤＮＡ断片とのハイブリダイゼーションを利用し、プローブないしＤＮＡ断片に結合させておいた標識物質で標的核酸を検出等することが通常である。
例えば、核酸増幅法により増幅したＤＮＡ断片の両端に特定の物質が結合できるような塩基配列を含むようにプライマーを設計し、こうした特定物質を利用してＤＮＡ断片を検出する方法が記載されている（特許文献１）。
また、一塩基多型（ＳＮＰ）の検出に特化したアレイが開発されている（例えば特許文献２、３、非特許文献１）。この方法では、人工的な塩基配列を有する検出用プローブを予め準備しておき、当該人工的塩基配列に結合する塩基配列を有するようなＤＮＡ断片を増幅可能に試料調製工程が設計されている。
さらに、結核菌の薬剤感受性を菌から抽出したＤＮＡをアレイを用いて目視で検出するための方法が開示されている（非特許文献２）。
ＰＣＲなどの核酸増幅法は、通常、標的とする二本鎖部分を増幅する。このため、核酸増幅産物も二本鎖となる。意図した増幅産物かどうかを、二本鎖を熱変性させて一本鎖とし、一本鎖の一部とオリゴヌクレオチドなどのプローブとをハイブリダイズさせることで検出する。
しかしながら熱変性により一本鎖としてプローブとハイブリダイズさせることで、ハイブリダイズ効率が低下する場合がある。
Analytical Biochemistry 364(2007）, 78-85
臨床微生物迅速診断研究会誌１４：４５―５０
上記特許文献１に記載の方法では、増幅ＤＮＡ断片の特定物質結合部位（特定物質が結合可能な特定塩基配列）を、特定物質が認識して当該特定塩基配列に結合する。しかしながら、増幅ＤＮＡ断片は、その特定塩基配列においてもその相補鎖と二重鎖を形成しており、特定物質と相互作用しやすい一本鎖状態ではない。したがって、特定物質が特定塩基配列を認識する効率はそれほど高くなく、特定物質が結合した二重鎖断片を濃縮する必要がある。
また、上記特許文献２、３及び非特許文献１に記載の方法では、ラベリング工程において、片方のプライマー濃度を相対的に高くして増幅を行う（アシメトリックＰＣＲともいう。）などして、意図的にアレイ上のプローブと反応する側のＤＮＡ鎖を選択的に増幅するようにして、反応性を向上させている。しかしながら、こうした非対照的なＰＣＲでは、増幅効率自体が低下する傾向があった。
また、非特許文献２に記載の方法では、結核菌ＤＮＡを目視で検出できるが、菌から抽出されたＤＮＡをアレイに適用する前に熱変性を必要としている。
一般的なプローブハイブリダイゼーションにおいて、試料として用いられるＤＮＡ増幅断片はやはり二重鎖であり、プローブとのハイブリダイゼーションを効率的に行うためには、熱変性やアルカリ変性を行って一本鎖とすることが一般的である。しかしながら、変性した増幅断片は、徐々に二重鎖に戻り、ハイブリダイゼーション効率が低下するおそれがある。一方、これを抑制するには、ハイブリダイゼーション時間や温度などの条件の最適化が必要になる場合もある。
また、ＤＮＡ二本鎖の核酸５’末端に一本鎖(以下、タグ鎖ともいう。）を有するＤＮＡ部分二本鎖を、核酸増幅反応の増幅産物をとして得る方法も考えられる。この方法の増幅産物であるＤＮＡ部分二本鎖は、両端に他のＤＮＡ鎖等とハイブリダイズ可能である。したがって、このＤＮＡ部分二本鎖の一方のタグ鎖をプローブとのハイブリダイズに用い、他方のタグ鎖を標識プローブとのハイブリダイズなどに用いることができる。この方法では、熱変性工程を省略できるというメリットがあるが、本発明者らによれば、以下の問題点もあった。すなわち、こうしたＤＮＡ部分二本鎖を用いる場合、タグ鎖の塩基配列の設計上の難易度が高くなってしまうという問題があった。すなわち、ＤＮＡ部分二本鎖に２つのタグ鎖がある以上、この部分二本鎖を用いて、１つの標的核酸を検出するには、一方のタグ鎖は、当該標的核酸と特異的にハイブリダイズする配列とする一方、他方のタグ鎖は、当該標的核酸とはハイブリダイズせず、前記一方のタグ鎖と標的核酸とのハイブリダイズとを阻害しない（干渉しない）配列とする必要がある。また、同時に多数個の標的核酸の検出を意図する場合、双方のタグ鎖を、このＤＮＡ部分二本鎖が意図しない他の標的核酸と干渉しないようにする必要がある。さらに、双方のタグ鎖が互いにハイブリダイズしないように塩基配列を設計する必要がある。
さらに、この方法では、増幅条件の設定の困難性が高くなってしまう。すなわち、増幅には寄与しない余分なタグ鎖がフォワード、リバースの両プライマーにそれぞれ結合されているためである。
結果として、この方法では、増幅工程や核酸クロマトグラフィーのハイブリダイゼーション工程における効率の低下やミスハイブリダイゼーションにより検出精度が低下するおそれがあった。特に、核酸クロマトグラフィーにおいては、展開媒体の移動や蒸発というファクターがあるため、いわゆるアレイをハイブリダイゼーション液に浸漬する浸漬型ハイブリダイゼーションよりもハイブリダイゼーション効率が低いという問題があることがわかった。
以上の現状に鑑み、本明細書は、従来のプローブハイブリダイゼーションにおける試料ＤＮＡ断片における問題を解決して、効率的なプローブハイブリダイゼーションを実現できる標的核酸の検出方法、その方法に用いる遺伝子増幅剤及びハイブリダイゼーション用組成物を提供する。
また、明細書は、より実用的な、すなわち、簡易な操作でかつ高い確度で標的核酸を検出できる、標的核酸の検出方法及びそのためのキット等を提供する。
本発明者らは、プローブハイブリダイゼーションに適用する際のプローブとのハイブリダイゼーション効率や感度の向上の観点から核酸増幅法の修飾について検討した。種々の検討の結果、核酸増幅に用いるプライマーの一部にポリメラーゼ反応の進行を抑制又は停止可能な部位を導入しておくことで、ハイブリダイゼーション効率が高く、検出感度を向上させることができるという知見を得た。また、熱変性を不要として短時間で高感度なハイブリダイゼーションが可能であるという知見を得た。本明細書は、これらの知見に基づいて以下の手段を提供する。
（１）試料中の標的核酸を検出する方法であって、
それぞれ異なる所定の塩基配列を有する検出用プローブを備える固相体を準備する工程と、
前記標的核酸に予め関連付けられた前記検出用プローブに相補的なタグ配列と前記標的核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記タグ配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有する第１のプライマーと、
前記標的核酸中の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列を含む第２のプライマーと、
を用いて、前記試料中の核酸増幅を実施する増幅工程と、
前記増幅工程で得られた増幅断片と前記固相体上の前記検出用プローブとをハイブリダイズ可能に接触させるハイブリダイゼーション工程と、
前記固相体上の前記増幅断片と前記検出用プローブとのハイブリダイズ産物を検出する検出工程と、
を備える方法。
（２）前記第２のプライマーは、標識物質が結合された又は標識物質を結合可能に構成された標識物質結合領域を有する、（１）に記載の方法。
（３）前記第２のプライマーは、前記標識物質結合領域と前記第２の識別配列との間に、前記連結部を有する、（１）又は（２）に記載の方法。
（４）前記増幅工程は、標識物質を備えるヌクレオシド誘導体三リン酸を含むヌクレオシド三リン酸を用いて核酸増幅を実施する工程である、（１）に記載の方法。
（５）前記連結部位は、天然塩基又は天然塩基と対合する天然塩基の誘導体を含まない、（１）〜（４）のいずれかに記載の方法。
（６）前記連結部位は、リン酸ジエステル結合を介して前記プライマー中のヌクレオチドに隣接される、元素数が２以上４０以下であって置換されていてもよいアルキレン鎖又はポリオキシアルキレン鎖を含む、（１）〜（５）のいずれかに記載の方法。
（７）前記連結部位は、以下のいずれかの式で表される、（６）に記載の方法。
５’−Ｏ−ＣmＨ2m−Ｏ−３’ 式（１）
（式中、５’は、５’側のリン酸ジエステル結合の酸素原子を表し、３’は、３’側のリン酸ジエステル結合のリン酸原子を表し、ｍは２以上４０以下の整数を表す。）、
又は、
５’−（ＯＣnＨ2n）l−Ｏ−３’ 式（２）
（式中、５’は、５’側のリン酸ジエステル結合の酸素原子を表し、３’は、３’側のリン酸ジエステル結合のリン酸原子を表し、ｎは２以上４以下の整数を表し、ｌは、２以上の整数であって、（ｎ＋１）×ｌは４０以下となる整数を表す。）
（８）前記増幅工程は、複数の前記標的核酸に予め関連付けた複数の前記検出用プローブで検出可能に、前記第１のプライマーと前記第２のプライマーとからなる複数のセットを用いて核酸増幅を実施する工程であり、
前記ハイブリダイゼーション工程は、前記増幅工程で得られた複数の前記増幅断片と前記固相体上の前記複数の検出用プローブとをハイブリダイズ可能に接触させる工程であり、
前記検出工程は、前記固相体上の前記複数の増幅断片と前記複数の検出用プローブとのハイブリダイズ産物を検出する工程である、（１）〜（７）のいずれかに記載の方法。
（９）前記タグ配列は、塩基数が２０以上５０以下である、（１）〜（８）のいずれかに記載の方法。
（１０）前記塩基数が２０以上２５以下である、（９）に記載の方法。
（１１）前記検出用プローブの前記所定の配列は、配列番号１〜１００で表される塩基配列及びその相補配列から選択される、（１）〜（１０）のいずれかに記載の方法。
（１２）前記検出用プローブの前記所定の配列は、以下の表に記載の配列番号で表される塩基配列及びその相補配列から選択される、（１）〜（１１）のいずれかに記載の方法。
（１３） 前記ハイブリダイゼーション工程は、複数の前記検出用プローブを備える前記固相体に対して前記増幅断片を含む液体を移動相として供給し前記固相体に対して前記移動相を展開することを含む工程である、（１）〜（１２）のいずれかに記載の方法。
（１４）５’側から第１の任意の塩基配列と増幅しようとする核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記第１の任意の塩基配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有するオリゴヌクレオチド誘導体である、核酸増幅法に用いる核酸増幅剤。
（１５）前記第１の塩基配列には、標識が結合されている、（１４）に記載の核酸増幅剤。
（１６）（１４）又は（１５）に記載の核酸増幅剤を２種以上含む、核酸増幅キット。
（１７）少なくとも一方の鎖の５’側に一本鎖部分を有し、塩基対合による二重鎖部分を有するＤＮＡ二重鎖断片であって、少なくとも一方のＤＮＡ鎖は、前記一本鎖部分と前記二重鎖結合部分との間にＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有し、前記一本鎖部分が、検出用プローブ中の塩基配列と相補的なタグ配列を有する、ＤＮＡ二重鎖断片を含む、プローブハイブリダイゼーション用組成物。
（１８）他方の鎖の５’側にも一本鎖部分を有し、この一本鎖部分に標識が連結されている、（１６）に記載のプローブハイブリダイゼーション用組成物。
（１９）少なくとも一方の鎖の５’側に一本鎖部分を有し、塩基対合による二重鎖部分を有するＤＮＡ二重鎖断片であって、少なくとも一方のＤＮＡ鎖は、前記一本鎖部分と前記二重鎖結合部分との間にＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有する、ＤＮＡ二重鎖断片。
（２０）試料中の標的核酸を増幅する方法であって、
第１の任意の塩基配列と前記標的核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記第１の任意の塩基配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有する第１のプライマーを少なくとも用いて、前記試料の核酸増幅を実施する工程を、
備える、方法。
それぞれ異なる所定の塩基配列を有する検出用プローブを備える固相体を準備する工程と、
前記標的核酸に予め関連付けられた前記検出用プローブに相補的なタグ配列と前記標的核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記タグ配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有する第１のプライマーと、
前記標的核酸中の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列を含む第２のプライマーと、
を用いて、前記試料中の核酸増幅を実施する増幅工程と、
前記増幅工程で得られた増幅断片と前記固相体上の前記検出用プローブとをハイブリダイズ可能に接触させるハイブリダイゼーション工程と、
前記固相体上の前記増幅断片と前記検出用プローブとのハイブリダイズ産物を検出する検出工程と、
を備える方法。
（２）前記第２のプライマーは、標識物質が結合された又は標識物質を結合可能に構成された標識物質結合領域を有する、（１）に記載の方法。
（３）前記第２のプライマーは、前記標識物質結合領域と前記第２の識別配列との間に、前記連結部を有する、（１）又は（２）に記載の方法。
（４）前記増幅工程は、標識物質を備えるヌクレオシド誘導体三リン酸を含むヌクレオシド三リン酸を用いて核酸増幅を実施する工程である、（１）に記載の方法。
（５）前記連結部位は、天然塩基又は天然塩基と対合する天然塩基の誘導体を含まない、（１）〜（４）のいずれかに記載の方法。
（６）前記連結部位は、リン酸ジエステル結合を介して前記プライマー中のヌクレオチドに隣接される、元素数が２以上４０以下であって置換されていてもよいアルキレン鎖又はポリオキシアルキレン鎖を含む、（１）〜（５）のいずれかに記載の方法。
（７）前記連結部位は、以下のいずれかの式で表される、（６）に記載の方法。
５’−Ｏ−ＣmＨ2m−Ｏ−３’ 式（１）
（式中、５’は、５’側のリン酸ジエステル結合の酸素原子を表し、３’は、３’側のリン酸ジエステル結合のリン酸原子を表し、ｍは２以上４０以下の整数を表す。）、
又は、
５’−（ＯＣnＨ2n）l−Ｏ−３’ 式（２）
（式中、５’は、５’側のリン酸ジエステル結合の酸素原子を表し、３’は、３’側のリン酸ジエステル結合のリン酸原子を表し、ｎは２以上４以下の整数を表し、ｌは、２以上の整数であって、（ｎ＋１）×ｌは４０以下となる整数を表す。）
（８）前記増幅工程は、複数の前記標的核酸に予め関連付けた複数の前記検出用プローブで検出可能に、前記第１のプライマーと前記第２のプライマーとからなる複数のセットを用いて核酸増幅を実施する工程であり、
前記ハイブリダイゼーション工程は、前記増幅工程で得られた複数の前記増幅断片と前記固相体上の前記複数の検出用プローブとをハイブリダイズ可能に接触させる工程であり、
前記検出工程は、前記固相体上の前記複数の増幅断片と前記複数の検出用プローブとのハイブリダイズ産物を検出する工程である、（１）〜（７）のいずれかに記載の方法。
（９）前記タグ配列は、塩基数が２０以上５０以下である、（１）〜（８）のいずれかに記載の方法。
（１０）前記塩基数が２０以上２５以下である、（９）に記載の方法。
（１１）前記検出用プローブの前記所定の配列は、配列番号１〜１００で表される塩基配列及びその相補配列から選択される、（１）〜（１０）のいずれかに記載の方法。
（１２）前記検出用プローブの前記所定の配列は、以下の表に記載の配列番号で表される塩基配列及びその相補配列から選択される、（１）〜（１１）のいずれかに記載の方法。
（１４）５’側から第１の任意の塩基配列と増幅しようとする核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記第１の任意の塩基配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有するオリゴヌクレオチド誘導体である、核酸増幅法に用いる核酸増幅剤。
（１５）前記第１の塩基配列には、標識が結合されている、（１４）に記載の核酸増幅剤。
（１６）（１４）又は（１５）に記載の核酸増幅剤を２種以上含む、核酸増幅キット。
（１７）少なくとも一方の鎖の５’側に一本鎖部分を有し、塩基対合による二重鎖部分を有するＤＮＡ二重鎖断片であって、少なくとも一方のＤＮＡ鎖は、前記一本鎖部分と前記二重鎖結合部分との間にＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有し、前記一本鎖部分が、検出用プローブ中の塩基配列と相補的なタグ配列を有する、ＤＮＡ二重鎖断片を含む、プローブハイブリダイゼーション用組成物。
（１８）他方の鎖の５’側にも一本鎖部分を有し、この一本鎖部分に標識が連結されている、（１６）に記載のプローブハイブリダイゼーション用組成物。
（１９）少なくとも一方の鎖の５’側に一本鎖部分を有し、塩基対合による二重鎖部分を有するＤＮＡ二重鎖断片であって、少なくとも一方のＤＮＡ鎖は、前記一本鎖部分と前記二重鎖結合部分との間にＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有する、ＤＮＡ二重鎖断片。
（２０）試料中の標的核酸を増幅する方法であって、
第１の任意の塩基配列と前記標的核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記第１の任意の塩基配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有する第１のプライマーを少なくとも用いて、前記試料の核酸増幅を実施する工程を、
備える、方法。
本発明者らは、より実用的な、標的核酸の検出について種々検討した。その結果、核酸クロマトグラフィーによるハイブリダイゼーションに供する核酸の形態を特定することが、それに先立つ増幅工程では、プライマーの設計やプロセスを簡易化しできるとともに、ハイブリダイゼーション工程ではミスハイブリダイゼーションを抑制しつつハイブリダイゼーション効率を高めることができるという知見を得た。本明細書は、こうした知見に基づき以下の手段を提供する。
（２１）標的核酸の核酸クロマトグラフィーによる検出方法であって、
１又は２以上の標的核酸に関連付けられた１又は２以上の部分二本鎖核酸と固相担体上にあって前記１又は２以上の標的核酸に関連付けられた１又は２以上のプローブとを、核酸クロマトグラフィーによりハイブリダイズ可能な条件下で接触させるハイブリダイゼーション工程と、
前記ハイブリダイゼーション工程で生成したハイブリダイズ産物を検出する検出工程と、
を備え、
前記１又は２以上の部分二本鎖核酸は、第１の鎖の５’末端側に一本鎖のタグ部であって前記プローブと特異的にハイブリダイズ可能なタグ配列を有し、少なくとも一部に標識物質又は標識物質結合物質を備えている、方法。
（２２）前記部分二本鎖核酸は、第２の鎖の５’末端側に前記標識物質又は前記標識物質結合物質を備える、（２１）に記載の方法。
（２３）前記ハイブリダイゼーション工程に先立って、
前記タグ配列と前記標的核酸の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記タグ配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部を有する第１のプライマーと、前記標的核酸の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列と、前記標識物質又は前記標識物質結合物質とを備える第２のプライマーと、を用いて、標的核酸に対して増幅反応を実施して増幅産物として前記部分二本鎖核酸を取得する増幅工程、を備える、（２１）又は（２２）に記載の方法。
（２４）前記ハイブリダイゼーション工程に先立って、
前記タグ配列と前記標的核酸の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記タグ配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部を有する第１のプライマーと、標識用配列と前記標的核酸の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列とを含む第２のプライマーＩと、前記標識物質又は前記標識物質結合物質と前記標識用配列とを含む第２のプライマーＩＩと、を用いて、標的核酸に対して増幅反応を実施して増幅産物として前記部分二本鎖核酸を取得する増幅工程、を備える、（２１）又は（２２）に記載の方法。
（２５） 前記ハイブリダイゼーション工程に先立って、
前記タグ配列と前記標的核酸の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記タグ配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部を有する第１のプライマーと、標識用配列と前記標的核酸の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列とを含む第２のプライマーＩと、を用いて、前記標識物質又は前記標識物質結合物質と前記標識用配列と特異的にハイブリダイズする配列とを含む標識用プローブの存在下で、標的核酸に対して増幅反応を実施して部分二本鎖核酸と前記標識用プローブとの複合体を取得する増幅工程、を備える、（２１）又は（２２）に記載の方法。
（２６） 前記部分二本鎖核酸は、その二本鎖部分に前記標識物質又は前記標識物質結合物質を備える、（２１）に記載の方法。
（２７） 前記ハイブリダイゼーション工程に先立って、
前記タグ配列と前記標的核酸の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記タグ配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部を有する第１のプライマーと前記標的核酸の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列を備える第２のプライマーとを用いるとともに、前記標識物質又は前記標識物質結合物質を備えるヌクレオシド誘導体三リン酸を含むヌクレオシド三リン酸を用いて標的核酸に対して増幅反応を実施して増幅産物として前記部分二本鎖核酸を取得する増幅工程、を備える、（２１）又は（２６）に記載の方法。
（２８） 前記増幅工程後の前記増幅産物を含有する増幅反応液を含む展開媒体と前記固相担体の一部とを接触させて、前記ハイブリダイゼーション工程を実施する、（２１）〜（２７）のいずれかに記載の方法。
（２９） 前記増幅工程後の前記増幅産物を含有する増幅反応液と前記標識物質結合物質に結合する標識物質とを含む前記展開媒体を準備し、この展開媒体と前記固相担体の少なくとも一部とを接触させて、前記ハイブリダイゼーション工程を実施する、（２８）に記載の方法。
（３０） 前記前記増幅工程を実施し前記増幅反応溶液を保持するキャビティに少なくとも前記標識物質を供給して前記展開媒体を準備し、前記キャビティ内において前記展開媒体と前記固相担体の一部とを接触させる、（２９）に記載の方法。
（３１） 前記標識物質結合物質は、抗原抗体反応における抗体並びにビオチン、ジゴキシゲニン及びＦＩＴＣなどを含むハプテンからなる群から選択される１種又は２種以上であり、
前記標識物質は、前記標識物質結合物質と結合可能な部位を備えて、蛍光、放射能、酵素、燐光、化学発光及び着色からなる群から選択される１種又は２種以上を利用する標識物質である、（２１）〜（３０）いずれかに記載の方法。
（３２）（１３）及び（２１）〜（３１）のいずれかに記載の標的核酸の検出方法に用いられるクロマトグラフィー本体であって、
固相担体と、
前記固相担体上の異なる位置に配された前記プローブを固定した互いに平行状の３以上のライン状のプローブ領域と、
前記固相担体上の前記３以上のプローブ領域とは異なる位置に配された互いに平行状であるとともに前記プローブ領域に対しても平行状である２以上の位置マーカー領域と、
を備え、
前記２以上の位置マーカー領域のうちの２つの位置マーカー領域の間に、前記３以上のプローブ領域のうちの３つのプローブ領域が等間隔状で配されている、クロマトグラフィー本体。
（３３） 前記２つの位置マーカーの前記３つのプローブ領域が固定されている側とは反対側に前記３つのプローブ領域間の間隔と同等の間隔で１以上の前記プローブ領域が配されている、（３２）に記載のクロマトグラフィー本体。
（３４） 前記固相体は、その一つの端部に核酸クロマトグラフィーの展開媒体と接触させるための先細り状の液接触部又は液接触部形成マーカーを備える、（３２）又は（３３）に記載のクロマトグラフィー本体。
（３５） 前記液接触部形成マーカーは、前記固相体の一部を切断して前記液接触部を形成するための切断部位を視認可能とするマーカーである、（３４）に記載のクロマトグラフィー本体。
（３６） 前記マーカーは、前記マーカーに沿って前記固相体を切断可能な脆弱性を有する、（３５）に記載のクロマトグラフィー本体。
１又は２以上の標的核酸に関連付けられた１又は２以上の部分二本鎖核酸と固相担体上にあって前記１又は２以上の標的核酸に関連付けられた１又は２以上のプローブとを、核酸クロマトグラフィーによりハイブリダイズ可能な条件下で接触させるハイブリダイゼーション工程と、
前記ハイブリダイゼーション工程で生成したハイブリダイズ産物を検出する検出工程と、
を備え、
前記１又は２以上の部分二本鎖核酸は、第１の鎖の５’末端側に一本鎖のタグ部であって前記プローブと特異的にハイブリダイズ可能なタグ配列を有し、少なくとも一部に標識物質又は標識物質結合物質を備えている、方法。
（２２）前記部分二本鎖核酸は、第２の鎖の５’末端側に前記標識物質又は前記標識物質結合物質を備える、（２１）に記載の方法。
（２３）前記ハイブリダイゼーション工程に先立って、
前記タグ配列と前記標的核酸の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記タグ配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部を有する第１のプライマーと、前記標的核酸の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列と、前記標識物質又は前記標識物質結合物質とを備える第２のプライマーと、を用いて、標的核酸に対して増幅反応を実施して増幅産物として前記部分二本鎖核酸を取得する増幅工程、を備える、（２１）又は（２２）に記載の方法。
（２４）前記ハイブリダイゼーション工程に先立って、
前記タグ配列と前記標的核酸の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記タグ配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部を有する第１のプライマーと、標識用配列と前記標的核酸の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列とを含む第２のプライマーＩと、前記標識物質又は前記標識物質結合物質と前記標識用配列とを含む第２のプライマーＩＩと、を用いて、標的核酸に対して増幅反応を実施して増幅産物として前記部分二本鎖核酸を取得する増幅工程、を備える、（２１）又は（２２）に記載の方法。
（２５） 前記ハイブリダイゼーション工程に先立って、
前記タグ配列と前記標的核酸の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記タグ配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部を有する第１のプライマーと、標識用配列と前記標的核酸の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列とを含む第２のプライマーＩと、を用いて、前記標識物質又は前記標識物質結合物質と前記標識用配列と特異的にハイブリダイズする配列とを含む標識用プローブの存在下で、標的核酸に対して増幅反応を実施して部分二本鎖核酸と前記標識用プローブとの複合体を取得する増幅工程、を備える、（２１）又は（２２）に記載の方法。
（２６） 前記部分二本鎖核酸は、その二本鎖部分に前記標識物質又は前記標識物質結合物質を備える、（２１）に記載の方法。
（２７） 前記ハイブリダイゼーション工程に先立って、
前記タグ配列と前記標的核酸の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記タグ配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部を有する第１のプライマーと前記標的核酸の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列を備える第２のプライマーとを用いるとともに、前記標識物質又は前記標識物質結合物質を備えるヌクレオシド誘導体三リン酸を含むヌクレオシド三リン酸を用いて標的核酸に対して増幅反応を実施して増幅産物として前記部分二本鎖核酸を取得する増幅工程、を備える、（２１）又は（２６）に記載の方法。
（２８） 前記増幅工程後の前記増幅産物を含有する増幅反応液を含む展開媒体と前記固相担体の一部とを接触させて、前記ハイブリダイゼーション工程を実施する、（２１）〜（２７）のいずれかに記載の方法。
（２９） 前記増幅工程後の前記増幅産物を含有する増幅反応液と前記標識物質結合物質に結合する標識物質とを含む前記展開媒体を準備し、この展開媒体と前記固相担体の少なくとも一部とを接触させて、前記ハイブリダイゼーション工程を実施する、（２８）に記載の方法。
（３０） 前記前記増幅工程を実施し前記増幅反応溶液を保持するキャビティに少なくとも前記標識物質を供給して前記展開媒体を準備し、前記キャビティ内において前記展開媒体と前記固相担体の一部とを接触させる、（２９）に記載の方法。
（３１） 前記標識物質結合物質は、抗原抗体反応における抗体並びにビオチン、ジゴキシゲニン及びＦＩＴＣなどを含むハプテンからなる群から選択される１種又は２種以上であり、
前記標識物質は、前記標識物質結合物質と結合可能な部位を備えて、蛍光、放射能、酵素、燐光、化学発光及び着色からなる群から選択される１種又は２種以上を利用する標識物質である、（２１）〜（３０）いずれかに記載の方法。
（３２）（１３）及び（２１）〜（３１）のいずれかに記載の標的核酸の検出方法に用いられるクロマトグラフィー本体であって、
固相担体と、
前記固相担体上の異なる位置に配された前記プローブを固定した互いに平行状の３以上のライン状のプローブ領域と、
前記固相担体上の前記３以上のプローブ領域とは異なる位置に配された互いに平行状であるとともに前記プローブ領域に対しても平行状である２以上の位置マーカー領域と、
を備え、
前記２以上の位置マーカー領域のうちの２つの位置マーカー領域の間に、前記３以上のプローブ領域のうちの３つのプローブ領域が等間隔状で配されている、クロマトグラフィー本体。
（３３） 前記２つの位置マーカーの前記３つのプローブ領域が固定されている側とは反対側に前記３つのプローブ領域間の間隔と同等の間隔で１以上の前記プローブ領域が配されている、（３２）に記載のクロマトグラフィー本体。
（３４） 前記固相体は、その一つの端部に核酸クロマトグラフィーの展開媒体と接触させるための先細り状の液接触部又は液接触部形成マーカーを備える、（３２）又は（３３）に記載のクロマトグラフィー本体。
（３５） 前記液接触部形成マーカーは、前記固相体の一部を切断して前記液接触部を形成するための切断部位を視認可能とするマーカーである、（３４）に記載のクロマトグラフィー本体。
（３６） 前記マーカーは、前記マーカーに沿って前記固相体を切断可能な脆弱性を有する、（３５）に記載のクロマトグラフィー本体。
本発明は、標的核酸の検出方法、核酸増幅剤等に関する。本発明の標的核酸を検出方法は、以下の第１のプライマーと第２のプライマーとを用いることを特徴としている。本発明の検出方法における増幅工程の一例を図１Ａ及び図１Ｂに示す。
図１Ａに示すように、第１のプライマーは、標的核酸に予め関連付けられた検出用プローブに相補的なタグ配列などの第１の任意の塩基配列と標的核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、第１の任意の塩基配列と第１の認識配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有しており、
第２のプライマーは、標的核酸中の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列を含んでいる。
第２のプライマーは、標的核酸中の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列を含んでいる。
連結部位は、ＤＮＡポリメラーゼの反応を抑制又は停止させる。すなわち、当該連結部位は、天然塩基等を含まないなどの理由により、ＤＮＡポリメラーゼによるＤＮＡ伸長反応の鋳型とはなりえない。このため、図１Ａに示すように、第１のプライマーによって増幅されたＤＮＡ一本鎖が鋳型鎖となって、さらに第２のプライマーによって増幅されるとき、第２のプライマーからのＤＮＡ伸長反応は、当該連結部位に対合する部位より３’側において抑制又は停止される。このため、増幅工程により得られる増幅断片（ＤＮＡ二重鎖断片）は、結果として、一方の端部に第１の任意の塩基配列を突出する一本鎖として備えるとともに塩基の対合による二重鎖部分を備えたものとなると推論される。
また、図１Ｂには、第２のプライマーが、第２の任意の塩基配列をさらに有し、当該第２の任意の塩基配列と第２の識別配列との間に前記連結部位を有する場合の増幅工程を示す。図１Ｂに示すように、図１Ａで示した第１のプライマーと同様、第２のプライマーによって増幅されたＤＮＡ一本鎖が鋳型鎖となって、さらに第１のプライマーによって増幅されるとき、第１のプライマーからのＤＮＡ伸長反応は、当該連結部位に対合する部位より３’側において抑制又は停止される。このため、増幅工程により得られる増幅断片（ＤＮＡ二重鎖断片）は、結果として、一方の端部にタグ配列を突出した一本鎖として備え、他方の端部に任意の塩基配列を突出した一本鎖として備えるとともに、塩基の対合による二重鎖部分を備えたものとなると推論される。
以上のことは、第１の任意の塩基配列を、標的核酸に予め関連付けられた検出用プローブに相補的なタグ配列としたプライマーセットを用いて、標的核酸を含む試料に対してＤＮＡポリメラーゼによる増幅工程を実施することで得られる増幅断片を、そのまま変性することなく、検出用プローブとハイブリダイゼーションさせるとき、極めて高感度にかつ迅速に標的核酸を検出できることでも支持されている。図１Ａ及び図１Ｂに示すように、得られたＤＮＡ二重鎖断片が、標的核酸中の第１の塩基配列及び第２の塩基配列において二重鎖部分を形成し、端部にタグ配列を一本鎖として有するＤＮＡ二重鎖断片となっているため、この一本鎖で効率的にプローブとハイブリダイゼーションしていると考えられる。ハイブリダイゼーション効率が上昇することにより感度は向上する。
本発明の検出方法によれば、以下の少なくとも一つの効果を実現できる。
（１）ハイブリダイゼーションの効率化（迅速化）
（２）ラベリングの効率化
（３）検出感度の高度化
（４）工程の簡略化（迅速化）−特に二重鎖を一本鎖とする変性工程の省略による
（１）ハイブリダイゼーションの効率化（迅速化）
（２）ラベリングの効率化
（３）検出感度の高度化
（４）工程の簡略化（迅速化）−特に二重鎖を一本鎖とする変性工程の省略による
こうした連結部位を含んで塩基配列を有するオリゴヌクレオチド誘導体は、それ自体プライマー等の核酸増幅剤として有用である。また、こうしたプライマーを用いる核酸増幅方法、得られたＤＮＡ二重鎖断片及び当該断片を含むハイブリダイゼーション用組成物も、それぞれその形態に応じた少なくとも一つの効果を発揮することができる。
また、別に、本明細書は、標的核酸の核酸クロマトグラフィーによる検出方法、当該方法に好適な固相体等に関する。本明細書に開示される標的核酸の検出方法は、核酸クロマトグラフィーにおけるハイブリダイゼーションに好ましい部分二本鎖核酸を特定し、この結果、効率的であり確度の高いハイブリダイゼーションを可能とした。核酸クロマトグラフィーにおけるハイブリダイゼーションは、通常のアレイ上におけるハイブリダイゼーションとは異なり、キャピラリー現象に基づく展開媒体の移動と展開媒体との蒸発とを伴っており、好ましいハイブリダイゼーションを達成することは困難であった。かしながら、本明細書に開示される部分二本鎖核酸を核酸クロマトグラフィーにおける標的核酸の検出用として準備することで、効率的でかつ確度の高いハイブリダイゼーションが可能となった。
また、本明細書に開示される方法によれば、増幅反応液を含む展開媒体に対して固相体の一部を接触させて展開媒体を固相担体上を移動させてハイブリダイゼーションを実施させるため、核酸増幅反応液の一部を固相体に供給する際に生じるコンタミネーション等を効果的に防ぐことができるとともに、ハイブリダイゼーション工程のための操作を簡素化できる。
さらに、本明細書に開示されるクロマトグラフィー本体によれば、位置マーカーを備えているため、多数の標的核酸を同時に検出する場合においても、標的核酸に対応するプローブ領域を容易に特定でき、検出の簡易性と精度を同時に向上させることができる。特に、目視検出に適しており、目視検出の場合であっても、一目で標的核酸の存在不存在を検出できる。
以下、本明細書に開示される各種の実施形態について詳細に説明する。
本明細書において「核酸」とは、ヌクレオチドの重合体を意味しており、その数は特に限定しない。核酸は、数十程度のヌクレオチドが連結したオリゴヌクレオチドが包含され、さらに長いポリヌクレオチドも包含される。核酸は、ＤＮＡ１本鎖若しくは二本鎖のほか、ＲＮＡ一本鎖若しくは二本鎖、さらには、ＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッド、ＤＮＡ／ＲＮＡキメラなども包含される。また、核酸は、天然の塩基、ヌクレオチド及びヌクレオシドからなるもののほか、非天然の塩基、ヌクレオチド、ヌクレオシドを一部に含むものであってもよい。また、核酸は、ｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ、合成ＤＮＡ、ｍＲＮＡ、全ＲＮＡ、ｈｎＲＮＡおよび合成ＲＮＡを含む全てのＤＮＡおよびＲＮＡのほかペプチド核酸、モルホリノ核酸、メチルフォスフォネート核酸およびＳ−オリゴ核酸などの人工合成核酸を含む。また、１本鎖であっても２本鎖であってもよい。
また、本明細書において「標的核酸」とは、特に限定されないでその存在及び／又は量を検出するべき任意の核酸である。標的核酸は、天然のあるいは人工的に合成されたものであってもよい。天然の標的核酸としては、例えば、体質、遺伝病、癌などの特定疾患についての発症、疾患診断、治療予後、薬剤や治療の選択などのヒト、非ヒト動物などの生物における遺伝子上の指標となる塩基あるいは塩基配列を含んでいる。典型的には、ＳＮＰなどの多型や先天的又は後天的変異が挙げられる。また、病原菌やウイルスなどの微生物由来の核酸なども標的核酸に含まれる。また、合成の標的核酸としては、人為的になんらかの識別のために合成された核酸が挙げられる。また、ある種の天然あるいは人工の核酸に対して核酸増幅反応を行って得られる増幅産物が挙げられる。
標的核酸は、後述する試料又はその核酸画分をそのまま用いることもできるが、好ましくは、ＰＣＲによる増幅反応、より好ましくはマルチプレックスＰＣＲによる増幅反応により、複数の標的核酸が増幅された増幅産物を用いることが好ましい。
本明細書において「試料」とは、標的核酸を含む可能性のある試料をいう。試料採取源は特に限定されないが、標的核酸が含まれうる試料としては、各種の生体由来の試料（血液、尿、痰、唾液、組織、細胞（各種の動物由来の培養動物細胞、培養植物細胞、培養微生物細胞を含む）等）あるいは、こうした生体試料からＤＮＡを抽出したＤＮＡ抽出試料等が挙げられる。さらには、上記生体試料からＲＮＡを抽出し、ＤＮＡに変換したＤＮＡ試料等も含まれる。こうした各種の試料からの核酸を含む画分は当業者であれば適宜従来技術を参照して取得することができる。
本明細書において「標的配列」とは、検出対象の標的核酸に特徴的な１又は２以上の塩基からなる配列をいう。例えば、標的核酸同士のホモロジーの低い部分配列であってもよいし、試料に含まれる可能性のある他の核酸に相補性もしくは相同性の低い配列であってもよい。標的配列は、標的核酸に特徴的な配列であってもよい。こうした標的配列は、人工的に配列を変更したものであってもよい。
本明細書において、核酸クロマトグラフィーとは、キャピラリー現象により液体（展開媒体）を拡散・移動可能な多孔質状の固相担体を用いて、前記液体により核酸を固相担体内を移動させて固相担体に予め準備したプローブとの特異的な塩基対合によってハイブリダイズ産物を形成させて前記核酸を固相担体に補足するクロマトグラフィーをいう。
以下では、本明細書の開示の代表的かつ非限定的な具体例について、図面を参照して詳細に説明する。この詳細な説明は、本明細書の開示の好ましい例を実施するための詳細を当業者に示すことを単純に意図しており、本明細書の開示の範囲を限定することを意図したものではない。また、以下に開示される追加的な特徴ならびに開示は、さらに改善された標的核酸の検出方法等を提供するために、他の特徴や発明とは別に、又は共に用いることができる。
また、以下の詳細な説明で開示される特徴や工程の組み合わせは、最も広い意味において本明細書の開示を実施する際に必須のものではなく、特に本明細書の開示の代表的な具体例を説明するためにのみ記載されるものである。さらに、上記及び下記の代表的な具体例の様々な特徴、ならびに、独立及び従属クレームに記載されるものの様々な特徴は、本明細書の開示の追加的かつ有用な実施形態を提供するにあたって、ここに記載される具体例のとおりに、あるいは列挙された順番のとおりに組合せなければならないものではない。
本明細書及び／又はクレームに記載された全ての特徴は、実施例及び／又はクレームに記載された特徴の構成とは別に、出願当初の開示ならびにクレームされた特定事項に対する限定として、個別に、かつ互いに独立して開示されることを意図するものである。さらに、全ての数値範囲及びグループ又は集団に関する記載は、出願当初の開示ならびにクレームされた特定事項に対する限定として、それらの中間の構成を開示する意図を持ってなされている。
［標的核酸中の標的配列を検出する方法］
本明細書に開示される検出方法は、検出用プローブを備える固相体を準備する工程と、第１のプライマーと、第２のプライマーと、を用いて、前記試料の核酸増幅を実施する工程と、前記増幅実施工程で得られた増幅断片と前記検出用プローブとを前記タグ配列によりハイブリダイズ可能に接触させるハイブリダイゼーション工程と、前記固相体上の前記増幅断片と前記検出用プローブとのハイブリダイズ産物を検出する検出工程と、を備えている。本明細書に開示の検出方法は、１種又は２種以上の標的核酸を適用対象とし、より詳細には、これらの標的核酸中の特徴的な配列に関する標的配列を検出対象とする。以下、主として一種の標的核酸についての一連の工程を説明するが、以下の工程は、複数又は多数の標的核酸を同時に検出する場合にも適用される。
本明細書に開示される検出方法は、検出用プローブを備える固相体を準備する工程と、第１のプライマーと、第２のプライマーと、を用いて、前記試料の核酸増幅を実施する工程と、前記増幅実施工程で得られた増幅断片と前記検出用プローブとを前記タグ配列によりハイブリダイズ可能に接触させるハイブリダイゼーション工程と、前記固相体上の前記増幅断片と前記検出用プローブとのハイブリダイズ産物を検出する検出工程と、を備えている。本明細書に開示の検出方法は、１種又は２種以上の標的核酸を適用対象とし、より詳細には、これらの標的核酸中の特徴的な配列に関する標的配列を検出対象とする。以下、主として一種の標的核酸についての一連の工程を説明するが、以下の工程は、複数又は多数の標的核酸を同時に検出する場合にも適用される。
（固相体の準備工程）
本明細書に開示される検出方法（以下、単に本検出方法という。）は、図２Ａに示すように、固相体を準備する工程を備えることができる。こうした固相体は、検出方法の実施に先立って予め準備していてもよいし、商業的に入手してもよいし、検出方法の実施毎に調製してもよい。
本明細書に開示される検出方法（以下、単に本検出方法という。）は、図２Ａに示すように、固相体を準備する工程を備えることができる。こうした固相体は、検出方法の実施に先立って予め準備していてもよいし、商業的に入手してもよいし、検出方法の実施毎に調製してもよい。
図２Ａに示すように、固相体は、それぞれ異なる固有の塩基配列である検出用配列を備える複数の検出用プローブを担体上に備えることができる。このような固相体を準備することで、プローブの設計、合成、アレイの作製、ハイブリダイゼーション条件についての検討を回避することができる。
図２Ａに固相体の一例を示す。検出用プローブは、それぞれプロービングのための固有の塩基配列である検出用配列を有している。このような検出用配列は、標的核酸に特徴的な配列、すなわち標的配列と、無関係に設定することができる。標的配列と無関係に設定することで、検出用プローブの検出用配列を、複数の検出用プローブ間での非特異的結合を抑制又は回避できるように、かつ、ハイブリダイゼーションに好適な温度及び時間等のハイブリダイゼーション条件を考慮して設定することができる。また、標的核酸の種類にかかわらず、いつも同じ検出用プローブを用いることができるようになる。
検出用配列の長さは、特に限定しないが、２０塩基以上５０塩基以下であることが好ましい。この範囲であると、各検出用配列の特異性を確保しつつハイブリダイゼーション効率も確保できるからである。例えば、こうした塩基長の検出用配列は、後述する配列番号１〜１００及びその相補配列から選択される各２３塩基長の塩基配列を２つ組み合わせた４６塩基長の配列や、当該組み合わせた塩基配列に対して適宜塩基を付加、欠失などすることにより得ることができる。より好ましくは、２０塩基以上２５塩基以下である。例えば、こうした塩基長の検出用配列は、配列番号１〜１００の各２３塩基長の塩基配列及びその相補配列又はこれらの塩基配列に対して適宜塩基を付加、欠失などすることにより得ることができる。なお、第１のプライマーにおけるタグ配列は、検出用配列と対合する塩基配列であるため、タグ配列の塩基長は、検出用配列と同様、２０塩基以上５０塩基以下であることが好ましく、より好ましくは、２０塩基以上２５塩基以下である。
こうした検出用プローブの検出用配列としては、例えば、配列番号１〜配列番号１００に記載の塩基配列又はこの塩基配列に相補的な塩基配列を用いることができる。これらの塩基配列は全て同一塩基長（２３塩基長）であり、融解温度（Ｔｍ）が４０℃以上８０℃以下、好ましくは５０℃以上７０℃以下であって、同一条件でのハイブリダイズにおいて均質なハイブリダイズ結果が得ることができるようになっている。なお、上述したように、これらの塩基配列群から選択される２種を組み合わせることもできる。さらに、こうした配列に対して、特異性を失わない範囲で塩基を付加、欠失、置換等することができる。同時に用いる検出用プローブのための検出用配列は、配列番号１〜１００で表される塩基配列（群）か、あるいはこれらに相補的な塩基配列（群）のいずれかの群から選択されることが好ましい。
検出用プローブの検出用配列は、このような候補となる塩基配列又はその相補配列から適宜選択して用いることができるが、なかでも、以下の表に示す塩基配列又はその相補配列から選択される１種又は２種以上の塩基配列をそれぞれ検出用配列として有する１種又は２種以上のプローブのみからなるプローブセット、あるいは以下の全ての塩基配列又はその相補配列をそれぞれ検出用配列として有するプローブのみからなるプローブセットを用いることが好ましい。こうした塩基配列を検出用配列として選択することで、短時間のハイブリダイゼーションが可能であり、ハイブリダイゼーションの一層の迅速性を実現できる。
このような検出用プローブにおける検出用配列は、正規直交化配列ともいい、たとえば乱数から得られた所定塩基長のＤＮＡ配列に対して連続一致長、Nearest-Neighbor法による融解温度予測、ハミング距離、二次構造予測の計算を行うことにより設計される。正規直交化配列は、核酸の塩基配列であって、その融解温度が均一であるもの、即ち融解温度が一定範囲内に揃うように設計された配列であって、核酸自身が分子内（intramolecular）で構造化して、相補的な配列とのハイブリッド形成を阻害することのない配列であり、尚且つこれに相補的な塩基配列以外とは安定したハイブリッドを形成しない塩基配列を意味する。１つの正規直交化配列群に含まれる配列は、所望の組み合わせ以外の配列間および自己配列内において反応が生じ難いか、または反応が生じない。また、正規直交化配列は、ＰＣＲにおいて増幅させると、たとえば上述のクロスハイブリダイズのような問題に影響されずに、当該正規直交化配列を有する核酸の初期量に応じた量の核酸が定量的に増幅される性質を有している。上記のような正規直交化配列は、H.Yoshida and A.Suyama,“Solution to 3-SAT by breadth first search”,DIMACS Vl.54, 9-20(2000)および特願２００３−１０８１２６に詳細が記載されている。これらの文献に記載の方法を使用して正規直交化配列を設計することができる。
検出用プローブは、担体に固定化されている。こうした担体としては、固相担体を用いることができる。例えば、担体はプラスチックであってもよいし、ガラスであってもよく、材質は特に限定されない。また、セルロース、ニトロセルロース、ナイロン等の多孔質体であってもよい。この種の多孔質担体は、特に、アフィニティークロマトグラフィーにより、固相担体に固定化した検出用プローブと増幅断片とをハイブリダイゼーションさせるのに好適である。
なお、担体の形状は図１に示すように平板状であってもよいが、ビーズ状であってもよく、形状は特に限定されない。固相体は、好ましくは、担体が固相平板状であり、複数の検出用プローブが一定の配列で固定されたアレイ（特にマイクロアレイ）である。アレイは、多数個の検出用プロー４を固定でき、同時に網羅的に各種の標的核酸を検出するのに都合がよい。また、固相体は、担体上に複数個の区画されたアレイ領域を備えていてもよい。これらの複数のアレイ領域は、それぞれ同一の組み合わせからなる検出用プローブのセットが固定化されていてもよいし、それぞれ別の組み合わせからなる検出用プローブのセットが固定化されていてもよい。複数のアレイ領域に異なる組み合わせの検出用プローブのセットが固定化されていれば、個々のアレイ領域を、異なる遺伝子における標的核酸の検出のために割り当てることができる。
担体の形状は、後述するハイブリダイゼーションの形態を考慮して設定することもできる。例えば、検査や研究用に汎用されているエッペンドルフチューブ（商標）のようなマイクロチューブ内でハイブリダイゼーションを実施する場合には、当該チューブ内に収容したハイブリダイゼーション溶液に担体のアレイ領域が浸漬されるサイズ及び形状であることが好ましい。こうした担体のサイズは、典型的には、平面積が１５０ｍｍ２以下、アスペクト比が１．５以上２０以下で、厚みは０．０１ｍｍ以上０．３ｍｍ以下とすることができる。
また、ハイブリダイゼーションを、アフィニティークロマトグラフィーの原理を用いて多孔質体である固相担体に固定化した検出用プローブとの間で実施する形態では、少なくとも、検査や研究用に汎用されているエッペンドルフチューブ（商標）のようなマイクロチューブに供給されるハイブリダイゼーション溶液に対して担体の端部が浸漬可能なサイズ（幅方向）及び形状を備えていることが好ましい。好ましくは、この種のチューブの底部近傍から上端までに収容可能な部位を備える長尺体である。
検出用プローブの固定化形態は特に限定されない。検出用プローブは、その３’末端が担体に結合されていてもよいし、５’末端が結合されていてもよい。共有結合性であってもよいし非共有結合性であってもよい。検出用プローブは、従来公知の各種の方法で担体の表面に固定化することができる。例えば、検出用プローブを含む溶液の微小液滴を吐出する方法で、担体に所定の平面形態を描くように供給する。そして、必要に応じて加熱等することで乾燥することで検出用プローブを固定化する。さらに、例えば、検出用プローブの固相担体への固定化のために、検出用プローブにアミノ基等を付加してもよいし、アルブミンなどのタンパク質を連結して担体への固着性を高めることもできる。また、加熱処理やＵＶ照射などの各種放射線照射により固着性を高めることもできる。
また、検出用プローブは、担体の表面に対しては適当なリンカー配列を備えていてもよい。リンカー配列は、好ましくは検出用プローブ間において同一塩基長で同一配列とする。
検出用プローブは、後述するハイブリダイゼーションの形態に応じて所定のパターンで固相担体に供給される。ハイブリダイゼーション溶液に固相体全体を浸漬する形態では、典型的には個々の検出用プローブに対応するドットが配列されたパターンとなる。また、ハイブリダイゼーション溶液を移動相として固相体を展開させる形態では、典型的には個々の検出用プローブに対応するストリーム（帯状体）が展開方向に添う１又は２以上の展開位置に配列されたパターンとなる。
（増幅工程）
図２Ａに示すように、増幅工程は、第１のプライマーと第２のプライマーとを用いて実施する。核酸増幅工程における核酸増幅法は、ＰＣＲを始めとするＤＮＡポリメラーゼ反応を用いてＤＮＡを増幅して二重鎖ＤＮＡ断片を取得する各種の公知の方法が挙げられる。
図２Ａに示すように、増幅工程は、第１のプライマーと第２のプライマーとを用いて実施する。核酸増幅工程における核酸増幅法は、ＰＣＲを始めとするＤＮＡポリメラーゼ反応を用いてＤＮＡを増幅して二重鎖ＤＮＡ断片を取得する各種の公知の方法が挙げられる。
（第１のプライマー）
第１のプライマーは、標的核酸に予め関連付けられた検出用プローブに相補的なタグ配列と標的核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含んでいる。これらの塩基配列の長さ等は特に限定されず、標的核酸の標的配列の内容に応じて適宜決定される。
第１のプライマーは、標的核酸に予め関連付けられた検出用プローブに相補的なタグ配列と標的核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含んでいる。これらの塩基配列の長さ等は特に限定されず、標的核酸の標的配列の内容に応じて適宜決定される。
（第１の識別配列）
第１の識別配列は、核酸増幅により、標的核酸を増幅するための配列であり、標的核酸中の標的配列の一部を構成する第１の塩基配列と特異的にハイブリダイズできる。第１の識別配列は、第１の塩基配列と高い選択性でハイブリダイズ可能な程度に相補的に設定される。好ましくは完全に相補的（特異的）に設定される。
第１の識別配列は、核酸増幅により、標的核酸を増幅するための配列であり、標的核酸中の標的配列の一部を構成する第１の塩基配列と特異的にハイブリダイズできる。第１の識別配列は、第１の塩基配列と高い選択性でハイブリダイズ可能な程度に相補的に設定される。好ましくは完全に相補的（特異的）に設定される。
（タグ配列）
タグ配列は、タグ配列は、増幅断片が検出用プローブとハイブリダイゼーションを可能とするための配列であり、標的核酸を検出するものであるため、標的核酸毎に検出用プローブの検出用配列にハイブリダイズ可能に設定される。典型的には、検出用配列に相補的な塩基配列となっている。したがって、一つの標的核酸は、一つの検出用プローブに対応付けられることになる。タグ配列の塩基長は、既に説明したように、好ましくは検出用プローブの検出用配列の塩基長に一致し、好ましくは、２０塩基以上５０塩基以下であり、より好ましくは、２０塩基以上２５塩基以下である。
タグ配列は、タグ配列は、増幅断片が検出用プローブとハイブリダイゼーションを可能とするための配列であり、標的核酸を検出するものであるため、標的核酸毎に検出用プローブの検出用配列にハイブリダイズ可能に設定される。典型的には、検出用配列に相補的な塩基配列となっている。したがって、一つの標的核酸は、一つの検出用プローブに対応付けられることになる。タグ配列の塩基長は、既に説明したように、好ましくは検出用プローブの検出用配列の塩基長に一致し、好ましくは、２０塩基以上５０塩基以下であり、より好ましくは、２０塩基以上２５塩基以下である。
標的核酸中の第１の塩基配列と第２の塩基配列とは、標的核酸に対してどのような構成となっていてもよい。例えば、ＤＮＡ上の変異を検出する場合、いずれか一方の塩基配列にのみ１又は２以上の塩基の変異部位が含まれるようにしてもよいし、双方に変異部位が含まれるようにしてもよい。なお、第１のプライマーは、こうしたタグ配列及び第１の識別配列を有しており、こうした塩基配列を構成する天然塩基あるいはこれに相同な人工塩基を有するとともに、天然核酸との間で塩基対合を可能とする骨格を有している。典型的にはオリゴヌクレオチド又はその誘導体である。
（連結部位）
タグ配列を有するプライマーの一部と第１の識別配列を有するプライマーの他の一部とは直接連結されることはなく、これらの間には連結部位を有している。連結部位は、鋳型鎖に含まれたとき、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な部位である。ＤＮＡポリメラーゼ反応は、鋳型となる核酸（ないし塩基）がないとそれ以上ＤＮＡ鎖を伸長しないとされている。このため、本発明の連結部位は、ＤＮＡポリメラーゼによるＤＮＡ伸長時の鋳型となりえない構造を有している。すなわち、本連結部位は、天然塩基又は天然塩基と対合する天然塩基の誘導体（天然塩基等）を含まない。こうした天然塩基等を含まないことで、前記鋳型となることを回避して、ＤＮＡポリメラーゼによるＤＮＡ鎖の伸長を抑制又は回避できる。したがって、本連結部位は、天然塩基等を有しないない単なる骨格鎖だけであってもよい。すなわち、糖−リン酸骨格や、他の公知の人工オリゴヌクレオチドに適用される骨格であってもよい。なお、ＤＮＡポリメラーゼは、各種公知のＤＮＡポリメラーゼが包含される。典型的には、各種ＰＣＲなどの核酸増幅法に用いられるＤＮＡポリメラーゼが挙げられる。
タグ配列を有するプライマーの一部と第１の識別配列を有するプライマーの他の一部とは直接連結されることはなく、これらの間には連結部位を有している。連結部位は、鋳型鎖に含まれたとき、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な部位である。ＤＮＡポリメラーゼ反応は、鋳型となる核酸（ないし塩基）がないとそれ以上ＤＮＡ鎖を伸長しないとされている。このため、本発明の連結部位は、ＤＮＡポリメラーゼによるＤＮＡ伸長時の鋳型となりえない構造を有している。すなわち、本連結部位は、天然塩基又は天然塩基と対合する天然塩基の誘導体（天然塩基等）を含まない。こうした天然塩基等を含まないことで、前記鋳型となることを回避して、ＤＮＡポリメラーゼによるＤＮＡ鎖の伸長を抑制又は回避できる。したがって、本連結部位は、天然塩基等を有しないない単なる骨格鎖だけであってもよい。すなわち、糖−リン酸骨格や、他の公知の人工オリゴヌクレオチドに適用される骨格であってもよい。なお、ＤＮＡポリメラーゼは、各種公知のＤＮＡポリメラーゼが包含される。典型的には、各種ＰＣＲなどの核酸増幅法に用いられるＤＮＡポリメラーゼが挙げられる。
また、本連結部位は、リン酸ジエステル結合を介してヌクレオチドに隣接される、元素数が２以上４０以下である一重鎖構造を含む鎖状の連結基であってもよい。元素数が１以下では、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止が不完全になりやすく、元素数が４０を超えると、ヌクレオチドの溶解性が低下するおそれがあるからである。ＤＮＡポリメラーゼ反応の抑制又は停止の効果を考慮すると、鎖状の連結基の元素は、２以上３６以下であることが好ましく、より好ましくは３以上１６以下である。
本連結部位が、一重結合を含むのは、連結部位における回転を容易にするためであり、一重結合は、炭素−炭素一重結合、炭素−酸素一重結合、炭素−窒素一重結合、Ｓ−Ｓ一重結合などが挙げられる。本連結部位は、こうした一重結合を主体とすることが好ましい。また、本連結部位は、一重結合を含む限り一部に芳香環あるいはシクロアルカンを含んでいてもよい。
本連結部位としては、元素数が２以上４０以下であって置換されていてもよいアルキレン鎖又はポリオキシアルキレン鎖を含むことが好ましい。こうした鎖状の連結構造は、構造的に簡易であるほか、連結部位としての導入も容易である。
こうした連結部位としては、例えば、以下の式（１）で表される連結部位が挙げられる。
５’−Ｏ−ＣmＨ2m−Ｏ−３’ 式（１）
（式中、５’は、５’側のリン酸ジエステル結合の酸素原子を表し、３’は、３’側のリン酸ジエステル結合のリン酸原子を表し、ｍは２以上４０以下の整数を表す。）
５’−Ｏ−ＣmＨ2m−Ｏ−３’ 式（１）
（式中、５’は、５’側のリン酸ジエステル結合の酸素原子を表し、３’は、３’側のリン酸ジエステル結合のリン酸原子を表し、ｍは２以上４０以下の整数を表す。）
式（１）においてｍは、好ましくは２以上３６以下であり、より好ましくは３以上１６以下である。式（１）中のＨの置換基は、典型的には、アルキル基、アルコキシ基、水酸基等が挙げられる。アルキル基及びアルコキシ基の炭素数は１〜８であることが好ましく、より好ましくは１〜４である。また、２以上の置換基を有する場合には、置換基は同一であっても異なっていてもよい。さらに、置換基を有していないことも好ましい。
また、他の連結部位としては、以下の式（２）で表される連結部位が挙げられる。
５’−（ＯＣnＨ2n）l−ｖ３’ 式（２）
（式中、５’は、５’側のリン酸ジエステル結合の酸素原子を表し、３’は、３’側のリン酸ジエステル結合のリン酸原子を表し、ｎは２以上４以下の整数を表し、ｌは、２以上の整数であって、（ｎ＋１）×ｌは４０以下となる整数を表す。）
５’−（ＯＣnＨ2n）l−ｖ３’ 式（２）
（式中、５’は、５’側のリン酸ジエステル結合の酸素原子を表し、３’は、３’側のリン酸ジエステル結合のリン酸原子を表し、ｎは２以上４以下の整数を表し、ｌは、２以上の整数であって、（ｎ＋１）×ｌは４０以下となる整数を表す。）
式（２）において（ｎ＋１）×ｌは、好ましくは２以上３６以下であり、より好ましくは３以上１６以下である。式（２）中のＨの置換基は、式（１）中の置換基と同様の態様が適用される。
本連結部位としては、例えば、以下の鎖状部位が挙げられる。
さらに、本連結部位としては、例えば、以下の鎖状部位が挙げられる。
第１のプライマーは、第１の識別配列及びタグ配列を有しており、こうした塩基配列を構成する天然塩基あるいはこれに相同な人工塩基を有するとともに、天然核酸との間で塩基対合を可能とする骨格を主体として有している。典型的にはオリゴヌクレオチド又はその誘導体である。
第１のプライマーにおいては、その５’側からタグ配列、連結部位及び第１の識別配列の順でこれらを有していることが好ましい。こうした構成とすることで、こうしたプライマーによって増幅されたＤＮＡ鎖が鋳型鎖となって増幅されるとき、鋳型鎖中の第１のプライマー由来の連結部位よりも５’側、すなわち、ＤＮＡポリメラーゼによって伸長されるＤＮＡ鎖においてより先の３’側では伸長反応が停止されるか抑制される。この結果、鋳型鎖中の第１のプライマー由来の連結部位の３’側に隣接するヌクレオチドの塩基又はその近傍の塩基に対合する塩基を５’末端とし、第１のプライマー中のタグ配列の相補鎖を有しない増幅断片が得られることとなる（図１Ａ及び図１Ｂ、図２Ａ〜図２Ｃ参照）。
なお、連結部位近傍、すなわち、連結部位の３’側及び５’側には、タグ配列や第１の識別配列とは無関係の配列を含めることもできる。第１のプライマーが鋳型鎖となったとき、連結部位の存在のために、伸長鎖におけるタグ配列や第１の識別配列に対して意図しないＤＮＡ伸長反応の進行や停止の影響を低減又は回避できるからである。
（第２のプライマー）
図２Ａに示すように、第２のプライマーは、標的核酸中の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列を含んでいる。これらの塩基配列の長さ等は特に限定されず、標的核酸の標的配列の内容に応じて適宜決定される。
図２Ａに示すように、第２のプライマーは、標的核酸中の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列を含んでいる。これらの塩基配列の長さ等は特に限定されず、標的核酸の標的配列の内容に応じて適宜決定される。
（第２の識別配列）
第２の識別配列は、核酸増幅により、第１のプライマーとともに標的核酸を増幅するための配列であり、標的核酸中の標的配列の他の一部を構成する第２の塩基配列と特異的にハイブリダイズできる。第２の識別配列は、第２の塩基配列と高い選択性でハイブリダイズ可能な程度に相補的に設定される。好ましくは完全に相補的（特異的）に設定される。
第２の識別配列は、核酸増幅により、第１のプライマーとともに標的核酸を増幅するための配列であり、標的核酸中の標的配列の他の一部を構成する第２の塩基配列と特異的にハイブリダイズできる。第２の識別配列は、第２の塩基配列と高い選択性でハイブリダイズ可能な程度に相補的に設定される。好ましくは完全に相補的（特異的）に設定される。
（標識物質結合領域）
図２Ａに示すように、標識物質結合領域は、予め標識物質を備えることができる。標識物質は、固相上で検出用プローブに結合したＤＮＡ二重鎖断片を検出するためのものである。標識物質としては従来公知のものを適宜選択して用いることができる。それ自体励起されると蛍光シグナルを発する蛍光物質などの各種色素であってもよいし、さらに酵素反応や抗原抗体反応により第２成分と組み合わせて各種シグナルを発する物質であってもよい。典型的には、Ｃｙ３、Alexa555、Ｃｙ５、Alexa647等の蛍光標識物質を用いることができる。標識物質結合領域は、標識物質を、第２の塩基配列に対して直接あるいは適当なリンカーを介して公知の方法により連結して備えている。
図２Ａに示すように、標識物質結合領域は、予め標識物質を備えることができる。標識物質は、固相上で検出用プローブに結合したＤＮＡ二重鎖断片を検出するためのものである。標識物質としては従来公知のものを適宜選択して用いることができる。それ自体励起されると蛍光シグナルを発する蛍光物質などの各種色素であってもよいし、さらに酵素反応や抗原抗体反応により第２成分と組み合わせて各種シグナルを発する物質であってもよい。典型的には、Ｃｙ３、Alexa555、Ｃｙ５、Alexa647等の蛍光標識物質を用いることができる。標識物質結合領域は、標識物質を、第２の塩基配列に対して直接あるいは適当なリンカーを介して公知の方法により連結して備えている。
本明細書において「標識物質」とは、検出しようとする物質あるいは分子を他と識別することを可能とする物質である。標識物質は、特に限定しないが、典型的には、蛍光、放射能、酵素（例えば、ペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ等）、燐光、化学発光、着色などを利用した標識物質が挙げられる。
標識物質は、目視（肉眼で）で検出可能な発光又は発色を提示する発光物質又は発色物質であることが好ましい。すなわち、直接それ自体が、他の成分を必要としないで肉眼で視認可能なシグナルを生成することができる物質であることが好ましい。検出工程で迅速かつ簡易に行うことができる。こうした物質としては、典型的には、各種の顔料や染料などの各種の着色剤が挙げられる。また、これに準ずる、金、銀などの貴金属ほか、銅などの各種金属又は合金、あるいは当該金属を含む有機化合物（錯体化合物であってもよい）が挙げられる。また、着色剤に準ずる、マイカ等の無機化合物が挙げられる。
この種の標識物質としては、典型的には、各種染料、各種顔料、ルミノール、イソルミノール、アクリジニウム化合物、オレフィン、エノールエーテル、エナミン、アリールビニルエーテル、ジオキセン、アリールイミダゾール、ルシゲニン、ルシフェリン及びエクリオンを包含する化学発光物質が挙げられる。また、こうした標識物質でラベルされているラテックス粒子などの粒子も挙げられる。さらに、金コロイド若しくはゾル又は銀コロイド若しくはゾルを包含するコロイド若しくはゾル等が挙げられる。さらにまた、金属粒子、無機粒子等が挙げられる。
標識物質は上記のように、その一部に粒子を備えていてもよい。標識物質の一部を構成するラテックス粒子などの粒子の平均粒子径は、特に限定しないが、例えば、２０ｎｍ以上２０μｍ以下であり、典型的には、４０ｎｍ〜１０μｍ、好ましくは０．１μｍ以上１０μｍ以下、特に好ましくは０．１μｍ以上５μｍ以下、さらに好ましくは０．１５μｍ以上２μｍ以下の平均粒子径を有している。また、固相担体２１０の孔径によっては、５００ｎｍ以下であることが好ましく、また、２５０ｎｍ以下であることも好ましく、１００ｎｍ以下であることも好ましく、５０ｎｍ以下であることも好ましい。また、下限は、０．１ｎｍ以上であることが好ましく、より好ましくは１ｎｍ以上である。例えば、０．１ｎｍ以上２５０ｎｍ以下であることがより好ましく、１ｎｍ以上２５０ｎｍ以下であることがさらに好ましい。また、０．１ｎｍ以上１００ｎｍ以下であることもより好ましく、１ｎｍ以上５０ｎｍ以下であることがさらに好ましい。
好ましい粒子は、水溶液に懸濁でき、そして水不溶性ポリマー材料からなる粒子である。例えばポリエチレン、ポリスチレン、スチレン−スチレンスルホン酸塩共重合体、アクリル酸ポリマー、メタクリル酸ポリマー、アクリロニトリルポリマー、アクリロニトリル−ブタジエン−スチレン、ポリビニルアセテート−アクリレート、ポリビニルピロリドン又は塩化ビニル−アクリレートが挙げられる。それらの表面上に活性基、例えばカルボキシル、アミノ又はアルデヒド基を有するラテックス粒子も挙げられる。
標識物質結合領域は、最終的に標識物質による識別が可能にこれらを結合可能な分子ないし物質（以下、標識物質結合物質ともいう。）を備えていてもよい。こうした物質等としては、タンパク質−タンパク質相互作用、低分子化合物−タンパク質相互作用等を利用できる。例えば、抗原抗体反応における抗体や、アビジン（ストレプトアビジン）−ビオチンシステムにおけるビオチン、抗ジゴキシゲニン（ＤＩＧ）−ジゴキシゲニン（ＤＩＧ）システムにおけるジゴキシゲニン、又は抗ＦＩＴＣ−ＦＩＴＣシステムにおけるＦＩＴＣ等に代表されるハプテン類などが挙げられる。この場合、最終的に検出のために用いられる標識物質は、標識物質結合物質と相互作用する他方の分子又は物質（例えば、抗原、すなわち、ストレプトアビジン、抗ＦＩＴＣなど）を、標識物質結合物質との結合のための部位として備えるように修飾される。増幅産物が標識物質結合物質を備える場合には、ハイブリダイゼーション工程において、あるいはこの工程に先立って、あるいはこの工程後に、増幅産物の標識物質結合物質と、標識物質結合物質と結合する部位を備える標識物質との複合体を形成させて、標識物質により増幅産物を検出する。
こうした標識物質や標識物質物質は、商業的に入手できるほか、標識物質及び標識物質結合物質の製造及び標識物質等を粒子にラベルする方法も公知であり、当業者であれば適宜公知技術を利用して取得することができる。さらに、こうした標識物質又は標識物質でラベル化された粒子や標識物質結合物質と、ＤＮＡ等のオリゴヌクレオチドとの結合もアミノ基等の官能基を介して適宜可能であり、それ自体は当該分野において周知である。
また、第２のプライマーは、図２Ｂに示すように、標識物質結合領域が、標識物質又は標識物質結合物質を結合可能に構成されていてもよい。すなわち、所定の塩基配列を有しており、標識物質又は標識物質結合物質を有するとともに標識結合配列を識別する塩基配列を有する標識プローブが結合可能であってもよい。こうした標識プローブは後述するハイブリダイゼーション工程や検出工程において固相体上の検出用プローブとハイブリダイゼーションしたＤＮＡ二重鎖断片に供給されて、これを標識することができる。
さらに、第２のプライマーは、図２Ｃに示すように、標識物質結合領域を備えていなくてもよい。すなわち、増幅工程において、標識物質を備えるヌクレオシド誘導体三リン酸を含むヌクレオシド三リン酸を用いて核酸増幅を実施することで、増幅断片のＤＮＡ伸長部位に標識物質が導入され標識された増幅断片を得ることができるからである。
第２のプライマーは、第２の識別配列のほか、必要に応じて標識物質結合領域を有しており、第２の識別配列の塩基配列を構成する天然塩基あるいはこれに相同な人工塩基を有するとともに、天然核酸との間で塩基対合を可能とする骨格を有している。典型的にはオリゴヌクレオチド又はその誘導体である。
（連結部位）
標識物質結合領域を備えるとき、標識物質結合領域と第２の識別配列とは、直接連結されていてもよいが、これらの間には連結部位を有していることが好ましい。特に、図２Ｂに示すように、標識物質結合領域が標識プローブと相互作用してこれを結合する塩基配列を有しているときにおいて好ましい。連結部位は、既に第１のプライマーにおいて説明したとおりである。
標識物質結合領域を備えるとき、標識物質結合領域と第２の識別配列とは、直接連結されていてもよいが、これらの間には連結部位を有していることが好ましい。特に、図２Ｂに示すように、標識物質結合領域が標識プローブと相互作用してこれを結合する塩基配列を有しているときにおいて好ましい。連結部位は、既に第１のプライマーにおいて説明したとおりである。
第２のプライマーにおいては、その５’側から、標識物質結合領域、連結部位及び第２の識別配列の順でこれらを有していることが好ましい。こうした構成とすることで、第２のプライマーによって増幅されたＤＮＡ鎖が鋳型鎖となって、第１のプライマーによって増幅されるとき、鋳型鎖中の第２のプライマーに由来する連結部位よりも５’側、すなわち、ＤＮＡポリメラーゼによって伸長される新たなＤＮＡ鎖においてはより先の３’側では伸長反応が停止されるか抑制される。この結果、鋳型鎖中の第２のプライマー由来の連結部位の３’側に隣接するヌクレオチドの塩基又はその近傍の塩基に対合する塩基を５’末端とし、第２のプライマー中の標識結合領域（の塩基配列）の相補鎖を有しないＤＮＡ増幅断片が得られることとなる（図１Ｂ、図２Ｂ参照）。
なお、連結部位近傍、すなわち、連結部位の３’側及び５’側には、標識物質結合領域や第２の識別配列とは無関係の配列を含めることもできる。第２のプライマーが鋳型鎖となったとき、連結部位の存在のために、伸長鎖における標識物質結合領域や第２の識別配列に対して意図しないＤＮＡ伸長反応の進行や停止の影響を低減又は回避できるからである。
こうしたプライマーは、通常のオリゴヌクレオチド合成法にしたがって合成することができる。例えば、連結部位については、アルキレン鎖を有するホフォスホアミダイト試薬を用いて合成することができる。こうした試薬自体は、公知であり、例えば、GlenResearch社等から入手することができる。例えば、以下の試薬が挙げられる。なお、以下の式においてＤＭＴは、水酸基保護基として典型的なジメトキシトリチル基を表すが、他の公知の水酸基保護基であってもよい。また、以下の式においてＰＡは、ホスホアミダイト基を表す。
核酸増幅は、これらのプライマーを用いて実施する。核酸増幅法は既に説明したように各種公知の方法を適用できるが、典型的にはＰＣＲ、マルチプレックスＰＣＲ等の各種ＰＣＲである。核酸増幅工程を実施するにあたっての、溶液組成、温度制御等については、当業者であれば適宜設定することができる。
すでに説明したように、たとえば、５’側からタグ配列、連結部位及び第１の識別配列の順でこれらを有する第１のプライマーと、５’側から、標識物質結合領域、連結部位及び第２の識別配列の順でこれらを有する第２のプライマーと、を用いて標的核酸を含む可能性のある試料に対してＰＣＲを実施すると、図１Ｂの各（ａ）〜（ｃ）に示すように、ＤＮＡポリメラーゼのＤＮＡ伸長反応により、第１のプライマー及び第２のプライマーに由来して当該プライマーを含む鋳型鎖が形成される。
そして、これらの鋳型鎖がそれぞれ由来するプライマーとは異なる第２のプライマー及び第１のプライマーによって再びＤＮＡポリメラーゼによるＤＮＡ伸長反応が実施される。このとき、図１Ｂの各（ｄ）及び（ｅ）に示すように、第２のプライマーから始まり第１のプライマーを含む鋳型鎖に対するＤＮＡポリメラーゼのＤＮＡ伸長反応は、鋳型鎖中の第１のプライマー由来の連結部位より５’側、すなわち、伸長鎖では連結部位よりも３’側ではＤＮＡの伸長が抑制又は停止される。
また、図１Ｂの（ｄ）及び（ｅ）に示すように、第１のプライマーから始まり第２のプライマーを含む鋳型鎖に対するＤＮＡポリメラーゼのＤＮＡ伸長反応は、鋳型鎖中の第２のプライマー由来の連結部位より５’側、すなわち、伸長鎖では連結部位よりも３’側ではＤＮＡの伸長が抑制又は停止される。
こうした結果、得られる増幅断片は、図２Ｂに示すように、５’末端にそれぞれ突出する一本鎖のタグ配列と標識物質結合領域とを備え、第１の識別配列と第２の識別配列においては二重鎖を備えるＤＮＡ二重鎖断片となる。すなわち、このＤＮＡに重鎖断片にあっては、一方のＤＮＡ鎖の５’側では、タグ配列が突出して一本鎖となり、他方のＤＮＡ鎖の５’側では、標識物質結合領域が突出している。
なお、用いる第２のプライマーが図２Ａに示すように、予め標識物質が結合した標識物質結合領域を有する場合には、図２Ａに示すように、標識物質を一方のＤＮＡ鎖の５’末端に有し、一方のＤＮＡ鎖の５’側にタグ配列を突出して有し、第１及び第２の識別配列においては二重鎖を備えるＤＮＡ二重鎖断片となる。
また、図２Ｃに示すように、標識物質をＤＮＡ鎖伸長部位に有し、一方のＤＮＡ鎖の５’側にタグ配列を突出して有し、第１及び第２の識別配列においては二重鎖を備えるＤＮＡ二重鎖断片となる。
（ハイブリダイゼーション工程）
次に、図２Ａ〜図２Ｃに示すように、ハイブリダイゼーション工程を実施する。ハイブリダイゼーション工程は、増幅工程で得られた増幅断片と検出用プローブとをタグ配列によりハイブリダイズ可能に接触させる工程である。ハイブリダイゼーション工程によれば、図２Ａ〜図２Ｃに示すように、増幅工程で得られたＤＮＡ二重鎖断片のタグ配列と、固相体上の検出用プローブの検出用配列と一定条件下において特異的にハイブリダイズ部可能な程度に相補的であるとき、これらはハイブリダイズし固相体上の所定の検出用プローブにおいて二重鎖を形成する。ハイブリダイゼーション工程後において、適宜洗浄工程をさらに含んでいてもよい。
次に、図２Ａ〜図２Ｃに示すように、ハイブリダイゼーション工程を実施する。ハイブリダイゼーション工程は、増幅工程で得られた増幅断片と検出用プローブとをタグ配列によりハイブリダイズ可能に接触させる工程である。ハイブリダイゼーション工程によれば、図２Ａ〜図２Ｃに示すように、増幅工程で得られたＤＮＡ二重鎖断片のタグ配列と、固相体上の検出用プローブの検出用配列と一定条件下において特異的にハイブリダイズ部可能な程度に相補的であるとき、これらはハイブリダイズし固相体上の所定の検出用プローブにおいて二重鎖を形成する。ハイブリダイゼーション工程後において、適宜洗浄工程をさらに含んでいてもよい。
ハイブリダイゼーション工程には、増幅工程において特異的に増幅された標的核酸に対応するＤＮＡ二重鎖断片が供給される。この断片は、予め関連付けられた検出用プローブに特異的なタグ配列を、一本鎖として突出して有している。このため、増幅工程後、熱変性等の変性工程によって一本鎖としなくても、検出用プローブと容易に反応できる。したがって、ハイブリダイゼーション効率が高いものとなっており、結果として感度も向上しかつ安定化させることができる。感度は、第１のプライマーにおいて連結部位を備えることで、好ましくは５倍以上、より好ましくは１０倍以上向上する。また、ハイブリダイゼーションの迅速性も向上されている。第１のプライマーにおいて連結部位を備えることで、ハイブリダイゼーション時間は、１０分の１程度にまで短縮されることがわかっている。
また、図２Ａに示すように、ハイブリダイゼーション工程に供給されるＤＮＡ二重鎖断片が標識物質結合領域を有し直接標識物質を備えているときには、特別なラベリング工程を実施しなくてよい。図２Ｃに示すように、ＤＮＡ二重鎖断片が増幅工程により標識物質を付与されている場合も同様である。さらに、図２Ｂに示すように、標識物質結合領域が標識プローブを結合する塩基配列を含んでいるときには、この塩基配列部分は、一本鎖としてタグ配列と反対側の５’側に突出している。このため、効率的に標識プローブとハイブリダイズし、迅速かつ容易に、しかも感度よい標識が可能となっている。したがって、特別なラベリング工程は不要であり、標識プローブは、ハイブリダイゼーション工程においてＤＮＡ二重鎖断と同時に固相体に供給するか、あるいは、ＤＮＡ二重鎖断片の固相体への供給に前後して供給してもよい（すなわち、ハイブリダイゼーション前でもハイブリダイゼーション後であってもよい。）。
ＤＮＡ二重鎖断片は、そのタグ配列に基づき特定の検出用プローブにしかハイブリダイズしない。検出用プローブの検出用配列とタグ配列とは、高度に選択的に設計されておりミスハイブリダイズが高度に抑制されているため、ハイブリダイゼーション工程においては検出用プローブに対して非特異的に二重鎖断片がハイブリダイズすることが高度に抑制される。
なお、ハイブリダイゼーション工程は、図２に例示される固相体全体にハイブリダイゼーション溶液を供給して実施するハイブリダイゼーションの形態（浸漬型ハイブリダイゼーション）に限定されない。例えば、固相体の一部に移動相でもあるハイブリダイゼーション溶液を供給して、固相体に対して所定の方向性でハイブリダイゼーション溶液を展開するクロマトグラフィーの形態（展開型ハイブリダイゼーション）であってもよい。
（検出工程）
検出工程は、前記固相体上の前記増幅断片と前記検出用プローブとのハイブリダイズ産物を検出する工程である。
検出工程は、前記固相体上の前記増幅断片と前記検出用プローブとのハイブリダイズ産物を検出する工程である。
検出工程は、ハイブリダイズ後の固相体上のハイブリダイズ産物が保持する標識物質に基づく標的核酸についてのシグナル強度情報を取得し、ハイブリダイズ産物を検出する工程である。シグナル強度情報取得の取得には、標識物質由来の標識シグナルを検出することができる。標的核酸と予め関連付けられた検出用プローブの固相体上における位置は予め取得されているため、標識シグナルを検出することで標的核酸の有無や比率を検知することができる。
シグナル強度情報取得には、用いた固相体の形態や標識物質の種類に応じて、従来公知の手法を適宜選択して採用すればよい。典型的には、固相体からハイブリダイズしなかったオリゴヌクレオチド等を洗浄操作等によって除去した後、付加した標識物質の蛍光シグナルをアレイスキャナ等により検出したり、標識物質に対して化学発光反応を実施したりすることができる。担体にビーズを用いた場合には、フローサイトメーターによる検出方法が挙げられる。
本検出工程では、標識物質のシグナル強度情報に基づいて、試料中の標的核酸の有無や比率等を検出することができる。本方法によれば、複数の標的核酸を同時に検出する場合であっても、確実に検出対象たる標的配列を検出することができる。本方法では、増幅工程で取得したＤＮＡ二重鎖断片が、効率的なハイブリダイゼーションや効率的なラベリングに適しているため、効率的に高感度な検出が可能であるとともに、煩雑な変性工程を省略できるようになっている。
本検出方法は、マルチプレックスＰＣＲで試料から複数の標的核酸に対応する増幅断片を増幅して、これらを一挙に固相体上で検出することが好ましい。すなわち、複数の標的核酸に予め関連付けた複数の検出用プローブで検出可能に、第１のプライマーと第２のプライマーとからなる複数のセットを用いて核酸増幅を実施し、増幅工程で得られた複数の増幅断片と固相体上の複数の検出用プローブとをハイブリダイズ可能に接触させ、固相体上の複数の増幅断片と複数の検出用プローブとのハイブリダイズ産物を検出するようにすることが好ましい。
（核酸増幅剤）
本発明の核酸増幅剤は、図１Ａに第１のプライマー等として示すように、５’側から第１の任意の塩基配列と増幅しようとする核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記第１の塩基配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有するオリゴヌクレオチド誘導体を含んでいる。本核酸増幅剤がこうした連結部位を含むことで、本核酸増幅剤を少なくとも一つのプライマー等として核酸増幅法で用いる場合であって、増幅反応で得られた核酸増幅剤を含むDNA鎖が鋳型鎖となるとき、当該連結部位は、伸長鎖におけるＤＮＡポリメラーゼ反応の抑制又は停止ポイントとして作用し、連結部位以降は、鋳型鎖として機能しなくなる。この結果、連結部位以降の鋳型鎖に相補的な伸長鎖が形成されないことになる。この結果得られるＤＮＡ二重鎖断片は、図１Ａに示すように、一方の５’側に第１の任意の塩基配列の一本鎖を有するＤＮＡ二重鎖となる。
本発明の核酸増幅剤は、図１Ａに第１のプライマー等として示すように、５’側から第１の任意の塩基配列と増幅しようとする核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記第１の塩基配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有するオリゴヌクレオチド誘導体を含んでいる。本核酸増幅剤がこうした連結部位を含むことで、本核酸増幅剤を少なくとも一つのプライマー等として核酸増幅法で用いる場合であって、増幅反応で得られた核酸増幅剤を含むDNA鎖が鋳型鎖となるとき、当該連結部位は、伸長鎖におけるＤＮＡポリメラーゼ反応の抑制又は停止ポイントとして作用し、連結部位以降は、鋳型鎖として機能しなくなる。この結果、連結部位以降の鋳型鎖に相補的な伸長鎖が形成されないことになる。この結果得られるＤＮＡ二重鎖断片は、図１Ａに示すように、一方の５’側に第１の任意の塩基配列の一本鎖を有するＤＮＡ二重鎖となる。
図１Ｂに示すように、他方のプライマーである第２のプライマーを、第１のプライマーと同様に、５’側から第２の任意の塩基配列と増幅しようとする核酸中の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列とを含み、前記第２の塩基配列と前記第２の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有するオリゴヌクレオチド誘導体とすることもできる。こうすることで、図１Ｂに示すように、各５’側に第１の任意の塩基配列の一本鎖と第２の任意の塩基配列の一本鎖を有するＤＮＡ二重鎖となる。
こうした突出一本鎖を有するＤＮＡ二重鎖は、ハイブリダイゼーション用のほか、各種用途に用いられる。核酸増幅剤は、典型的には各種核酸増幅法におけるプライマーとして用いることができる。
第１の任意の塩基配列及び／又は第２の任意の塩基配列は、本発明におけるタグ配列であってもよいし、標識が結合された又は標識プローブとハイブリダイズ可能な塩基配列であってもよい。第１の任意の塩基配列がこのように標識に関連付けられていると、標的核酸を増幅すると同時にラベリングも可能となる。
本核酸増幅剤における連結部位には、本検出方法において既に説明した連結部位の各種実施態様を適用できる。また、本核酸増幅部位の第１の任意の塩基配列及び第１の識別配列には、本検出方法において既に説明した第１のプライマー及び第２のプライマーにおける、タグ配列及び第１の識別配列並びに標識物質結合領域及び第２の識別配列の各種実施態様を適用できる。すなわち、本核酸増幅剤は、第１のプライマーや第２のプライマーをその一実施態様としている。
なお、本発明によれば、こうした核酸増幅剤を１種又は２種以上含むキットも提供される。当該キットには、上記した第１のプライマーや第２のプライマーを用いて得られるＤＮＡ断片とハイブリダイゼーションさせるための固相体を含んでいてもよい。
本発明によれば、本検出方法において得られるＤＮＡ二重鎖断片、すなわち、少なくとも一方の鎖の５’側に一本鎖部分を有し、塩基対合による二重鎖部分を有するＤＮＡ二重鎖断片であって、少なくとも一方のＤＮＡ鎖は、前記一本鎖部分と前記二重鎖結合部分との間にＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有し、前記一本鎖部分が、検出用プローブ中の塩基配列に相補的なタグ配列を有する、ＤＮＡ二重鎖断片も提供される。さらに、他方の鎖の５’側にも一本鎖部分を有し、この一本鎖部分に標識が連結されているＤＮＡ二重鎖断片も提供される。さらにこうしたＤＮＡ二重鎖断片は、プローブハイブリダイゼーションに好適であるため、これらを含むプローブハイブリダイゼーション用組成物も提供される。この方法で用いる。
さらに、本発明によれば、試料中の標的核酸を増幅する方法も提供される。すなわち、第１の任意の塩基配列と前記標的核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記第１の任意の塩基配列と前記第１の認識配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有する第１のプライマーを少なくとも用いて、前記試料の核酸増幅を実施する工程を、備える、方法も提供される。この方法によって得られる増幅断片は、図１Ａに示すように、少なくとも一方の鎖の５’側に突出した第１の任意の塩基配列の一本鎖を有するＤＮＡ二重鎖断片となっている。さらに、この増幅方法においては、他のプライマーとして、第２の任意の塩基配列と前記標的核酸中の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列とを含み、前記第１の任意の塩基配列と前記第１の認識配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部位を有する第２のプライマーを用いることもできる。この場合には、図１Ｂに示すように、両方の鎖の５’側に突出した第１の任意の塩基配列の一本鎖を有するＤＮＡ二重鎖断片を得ることができる。第１のプライマーにおいては、その第１の任意の塩基配列には、標識物質を備えていてもよいし、標識プローブと結合可能な塩基配列を有していてもよい。第２のプライマーについても、同様である。
本増幅方法においても、第１のプライマー及び第２のプライマー並びに連結部位に関して、既に説明した本検出方法の各種態様を適用できる。
本増幅方法は、また、少なくとも一方のＤＮＡ鎖の５’側に一本鎖を備えるＤＮＡ二重鎖断片の生産方法としても提供される。さらに、本増幅方法は、標的核酸のラベリング方法としても実施できる。さらに、こうしたラベリング工程を備える、標的核酸の検出方法としても実施できる。すなわち、特開２００８−３０６９４１号公報、特開２００９−２４号公報並びに非特許文献１に開示されるＳＮＰ等の検出方法における標識工程に替えて本増幅工程（標識工程）を用いることで、その後の変性工程を省略するとともに、効率的かつ高感度なハイブリダイゼーションを実施することができる。
（標的核酸の核酸クロマトグラフィーによる検出方法）
本明細書に開示される標的核酸の核酸クロマトグラフィーによる検出方法（以下、単に検出方法ともいう。）は、部分二本鎖核酸と固相担体上のプローブとを核酸クロマトグラフィーによりハイブリダイズ可能な条件下で接触させるハイブリダイゼーション工程と、前記ハイブリダイゼーション工程で生成したハイブリダイズ産物を検出する検出工程と、を備えている。以下、まず、図１Ａにも示した、部分二本鎖核酸について説明し、その後ハイブリダイゼーション工程及び検出工程について説明する。
本明細書に開示される標的核酸の核酸クロマトグラフィーによる検出方法（以下、単に検出方法ともいう。）は、部分二本鎖核酸と固相担体上のプローブとを核酸クロマトグラフィーによりハイブリダイズ可能な条件下で接触させるハイブリダイゼーション工程と、前記ハイブリダイゼーション工程で生成したハイブリダイズ産物を検出する検出工程と、を備えている。以下、まず、図１Ａにも示した、部分二本鎖核酸について説明し、その後ハイブリダイゼーション工程及び検出工程について説明する。
（部分二本鎖核酸）
本明細書にいう部分二本鎖核酸１０は、図３に詳細に示すように、第１の鎖１２と第２の鎖１４とを備え、第１の鎖１２の５’末端側に一本鎖部分２０を有し、当該一本鎖部分２０以外は水素結合による二本鎖部分１６を有する核酸を意味している。本明細書における部分二本鎖核酸１０の第１の鎖１２の一本鎖部分２０、すなわち、タグ部２０は、二本鎖部分１６から突き出てダングリング鎖状となっている。
本明細書にいう部分二本鎖核酸１０は、図３に詳細に示すように、第１の鎖１２と第２の鎖１４とを備え、第１の鎖１２の５’末端側に一本鎖部分２０を有し、当該一本鎖部分２０以外は水素結合による二本鎖部分１６を有する核酸を意味している。本明細書における部分二本鎖核酸１０の第１の鎖１２の一本鎖部分２０、すなわち、タグ部２０は、二本鎖部分１６から突き出てダングリング鎖状となっている。
部分二本鎖核酸１０の二本鎖部分１６は、すなわち、第１の鎖１２と第２の鎖１４が塩基対合してなる二本鎖部分１６は、ＤＮＡポリメラーゼによるＤＮＡ鎖の伸長反応の基質となりうる天然塩基（アデニン、グアニン、チミン及びシトシン）を備えるヌクレオチドがリン酸ジエステル結合で連結された構造を有することが好ましい。すなわち、二本鎖部分１６は、天然のリボース−リン酸バックボーンを有し、さらに天然塩基を備えた天然核酸を有していることが好ましく、より好ましくは天然核酸のみからなる。後述するように、標的核酸に関連付けて部分二本鎖核酸１０を取得する際の核酸増幅反応により合成されることが好ましいからである。
部分二本鎖核酸１０は、標的核酸に関連付けられている。ここで標的核酸に関連付けられているとは、標的核酸の少なくとも一部の二本鎖部を含む二本鎖部分１６を有していることを意味している。こうした二本鎖部分１６は、例えば、標的核酸中の標的配列の一部と特異的にハイブリダイズするプライマーセットにより増幅することによって得られる。
（タグ部）
部分二本鎖核酸１０のタグ部２０は、核酸増幅反応によって合成可能に、上記のとおり二本鎖部分２２と同じ構成を採用することもできる。すなわち、タグ部２０は、ＤＮＡポリメラーゼによるＤＮＡ鎖の伸長反応の鋳型となりうる天然塩基を備えるヌクレオチドがリン酸ジエステル結合で連結された構造であってもよく、天然核酸を含んでいてもよいし、天然核酸のみから構成されていてもよい。タグ部２０は、また、核酸増幅反応によらない非天然の合成によるオリゴヌクレオチド鎖であってもよい。このヌクレオチド鎖は、バックボーンに関しても、いわゆる天然のリボース−リン酸バックボーン以外にも、ＰＮＡ(ペプチド核酸）のバックボーン、ＢＮＡ（架橋化核酸）などのバックボーン等公知の人工的バックボーンを採用できる。また、塩基についても、プローブとの特異的とハイブリダイズ可能であればよいので、プローブを対応させることを前提に、非天然の、例えば、Ｌ−ＤＮＡを備えていてもよいし、Ｌ−ＤＮＡのみからなっていてもよい。また、非天然塩基を有していてもよく、非天然塩基のみから構成されていてもよい。標的核酸に関連付けられているが、二本鎖部分２２とは異なり核酸増幅反応によって合成されなくてもよい。このため、タグ部２０は、核酸増幅反応のプライマーに由来させることができる。
部分二本鎖核酸１０のタグ部２０は、核酸増幅反応によって合成可能に、上記のとおり二本鎖部分２２と同じ構成を採用することもできる。すなわち、タグ部２０は、ＤＮＡポリメラーゼによるＤＮＡ鎖の伸長反応の鋳型となりうる天然塩基を備えるヌクレオチドがリン酸ジエステル結合で連結された構造であってもよく、天然核酸を含んでいてもよいし、天然核酸のみから構成されていてもよい。タグ部２０は、また、核酸増幅反応によらない非天然の合成によるオリゴヌクレオチド鎖であってもよい。このヌクレオチド鎖は、バックボーンに関しても、いわゆる天然のリボース−リン酸バックボーン以外にも、ＰＮＡ(ペプチド核酸）のバックボーン、ＢＮＡ（架橋化核酸）などのバックボーン等公知の人工的バックボーンを採用できる。また、塩基についても、プローブとの特異的とハイブリダイズ可能であればよいので、プローブを対応させることを前提に、非天然の、例えば、Ｌ−ＤＮＡを備えていてもよいし、Ｌ−ＤＮＡのみからなっていてもよい。また、非天然塩基を有していてもよく、非天然塩基のみから構成されていてもよい。標的核酸に関連付けられているが、二本鎖部分２２とは異なり核酸増幅反応によって合成されなくてもよい。このため、タグ部２０は、核酸増幅反応のプライマーに由来させることができる。
部分二本鎖核酸１０のタグ部２０は、固相担体上に備えられるプローブと特異的にハイブリダイズ可能なタグ配列を有している。タグ配列２２はプローブとハイブリダイゼーションを可能とするための配列であり、標的核酸を検出するものである。このため、標的核酸毎にプローブの検出用配列にハイブリダイズ可能に設定される。典型的には、検出用配列に相補的な塩基配列となっている。この結果、一つの標的核酸に対して一つのプローブが関連付けられていることになる。タグ配列２２の塩基長は、プローブの検出用配列の塩基長に一致し、好ましくは、２０塩基以上５０塩基以下であり、より好ましくは、２０塩基以上２５塩基以下である。
(連結部位）
部分二本鎖核酸１０の第１の鎖１２のタグ部２０と二本鎖部分２２に対応する部分との間には、ＤＮＡポリメラーゼよるＤＮＡの鎖伸長反応を抑制又は停止可能な連結部位３０を備えていることが好ましい。既に記載したように、連結部位３０を備えることで、核酸増幅反応により、タグ部２０を備える部分二本鎖核酸１０を合成できる。また、こうした連結部位３０を備えることで、タグ部２０の自由運動性を向上させることができ、プローブとの効率的なハイブリダイゼーションが可能となる。
部分二本鎖核酸１０の第１の鎖１２のタグ部２０と二本鎖部分２２に対応する部分との間には、ＤＮＡポリメラーゼよるＤＮＡの鎖伸長反応を抑制又は停止可能な連結部位３０を備えていることが好ましい。既に記載したように、連結部位３０を備えることで、核酸増幅反応により、タグ部２０を備える部分二本鎖核酸１０を合成できる。また、こうした連結部位３０を備えることで、タグ部２０の自由運動性を向上させることができ、プローブとの効率的なハイブリダイゼーションが可能となる。
また、連結部位３０としては、このほか、強固なヘアピン構造やシュードノット構造のようにポリメラーゼの進行を阻害する立体構造を有する核酸配列、Ｌ型核酸や人工核酸等の標的核酸天然型核酸や、ＲＮＡ及び脂肪鎖のような非核酸構造が挙げられる。人工核酸としては、ペプチド核酸、架橋化核酸、アゾベンゼン等が挙げられる。
（標識物質）
部分二本鎖核酸１０は、既に説明した標識物質４０又は標識物質結合物質４２を備えている。本検出方法では、核酸クロマトグラフィーに部分二本鎖核酸１０を供するものとし、プローブにハイブリダイズするタグ部２０を備えるのみであって、標識物質４０のための一本鎖を有していない。
部分二本鎖核酸１０は、既に説明した標識物質４０又は標識物質結合物質４２を備えている。本検出方法では、核酸クロマトグラフィーに部分二本鎖核酸１０を供するものとし、プローブにハイブリダイズするタグ部２０を備えるのみであって、標識物質４０のための一本鎖を有していない。
標識物質４０又は標識物質結合物質４２は、部分二本鎖核酸１０のいずれかの箇所に備えられていればよい。例えば、図３に示すように、一方の鎖の５’末端に備えられる。また、第１の鎖１２及び第２の鎖１４の全体にあるいは部分的に備えられる。標識物質４０又は標識物質結合物質４２は、通常、部分二本鎖核酸１０を核酸増幅反応において部分二本鎖核酸１０に組み込まれる。
（増幅工程）
ハイブリダイゼーション工程に供する部分二本鎖核酸１０は、核酸増幅反応によって取得されることが好ましい。以下、部分二本鎖核酸１０を取得する核酸増幅工程の一例について説明する。
ハイブリダイゼーション工程に供する部分二本鎖核酸１０は、核酸増幅反応によって取得されることが好ましい。以下、部分二本鎖核酸１０を取得する核酸増幅工程の一例について説明する。
図４に示すように、部分二本鎖核酸１０を得るための増幅工程は、第１のプライマー５０と第２のプライマー６０とを用いて実施する。核酸増幅工程における核酸増幅法は、ＰＣＲを始めとするＤＮＡポリメラーゼ反応を用いてＤＮＡを増幅して二重鎖ＤＮＡ断片を取得する各種の公知の方法が挙げられる。
（第１のプライマー）
第１のプライマー５０は、部分二本鎖核酸１０の第１の鎖１２を得るためのプライマーである。第１のプライマー５０は、既に記載したように、標的核酸に予め関連付けられたプローブに相補的なタグ配列２２と標的核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列１２ａとを含んでいる。なお、タグ配列２２は、部分二本鎖核酸１０のタグ部２０のタグ配列２２に相当している。第１のプライマー５０は、第１の識別配列１２ａとタグ配列２２との間に連結部位３０を有している。連結部位３０については既に説明したとおりである。
第１のプライマー５０は、部分二本鎖核酸１０の第１の鎖１２を得るためのプライマーである。第１のプライマー５０は、既に記載したように、標的核酸に予め関連付けられたプローブに相補的なタグ配列２２と標的核酸中の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列１２ａとを含んでいる。なお、タグ配列２２は、部分二本鎖核酸１０のタグ部２０のタグ配列２２に相当している。第１のプライマー５０は、第１の識別配列１２ａとタグ配列２２との間に連結部位３０を有している。連結部位３０については既に説明したとおりである。
第１のプライマー５０においては、その５’側からタグ配列２２、連結部位３０及び第１の識別配列１２ａの順でこれらを有していることが好ましい。これにより、図４に示すように、第１のプライマー５０由来の連結部位３０の３’側に隣接するヌクレオチドの塩基又はその近傍の塩基に対合する塩基を５’末端とし、第１のプライマー５０中のタグ配列２２の相補鎖を有しない第２の鎖１４が得られることとなる。
（第２のプライマー）
第２のプライマー６０は、部分二本鎖核酸１０の第２の鎖１４を得るためのプライマーである。図４に示すように、第２のプライマー６０は、既に説明したように、標的核酸中の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列１４ａを含んでいる。
第２のプライマー６０は、部分二本鎖核酸１０の第２の鎖１４を得るためのプライマーである。図４に示すように、第２のプライマー６０は、既に説明したように、標的核酸中の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列１４ａを含んでいる。
図４に示すように、第２のプライマー６０は、予め標識物質４０を備えることができる。標識物質４０は、固相担体上でプローブに結合した部分二本鎖核酸１０を検出するためのものである。標識物質４０としては従来公知のものを適宜選択して用いることができる。標識物質４０は、第２のプライマー６０の５’末端に備えられていることが好ましい。
また、第２のプライマー６０は、図５に示すように、標識物質結合物質４２を備えていてもよい。標識物質結合物質４２は、第２のプライマー６０の５’末端に備えられていることが好ましい。さらに、第２のプライマーは、図６に示すように、標識物質４０及び標識物質結合物質４２を備えていなくてもよい。すなわち、増幅工程において、標識物質４０又は標識物質結合物質４２を備えるヌクレオシド誘導体三リン酸を含むヌクレオシド三リン酸組成物を用いて核酸増幅反応を実施することで、ＤＮＡ伸長部位に標識物質４０又は標識物質結合物質４２が導入され標識された部分二本鎖核酸１０を得ることができるからである。
第２のプライマー６０においては、その５’側から、標識物質４０又は標識物質結合物質４２、第２の識別配列１４ａの順でこれらを有していることが好ましい。これにより、５’末端に標識物質４０又は標識物質結合物質４２を備える第２の鎖１４を得ることができる（図４、図５参照）。
また、図４及び図５に示す形態の部分二本鎖核酸１０（以下、こうした形態の部分二本鎖核酸を、部分二本鎖核酸１０ａとも称する。）は、既に説明した第１のプライマーと、以下に示す２種類の第２のプライマーＩ及びＩＩを用いて増幅工程を実施することによっても得ることができる。用いるプライマー及び増幅工程を図７に示す。
（第２のプライマーI）
図７に示すように、第２のプライマーＩ７０は、標識用配列７２と第２の塩基配列を識別する第２の識別配列１４aとを含んでいる。第２の識別用配列１４ａは既に説明したとおりである。標識用配列７２は、この第２のプライマーＩ７０によって得られる増幅産物に新たに標識用の塩基配列を導入するためものであり、標的核酸や検出用プローブの塩基配列とは無関係に設定することができる。また、関連付けの必要がない。したがって、標識用配列７２は、標的核酸毎に異なる塩基配列とする必要がなく、全ての標的核酸に対して共通の塩基配列であってもよいし、２種類以上の標識物質等を用いるときには、標識物質等について異なる塩基配列としてもよい。すなわち、標識用配列７２は、標的核酸に対して個別でなく共通化することができる。また、増幅性の反応性等を考慮し最適化した完全に人工的な塩基配列とすることができる。第２のプライマーＩ７０は、その５’末端から標識用配列７２と第２の識別配列とを含んでいることが好ましい。
図７に示すように、第２のプライマーＩ７０は、標識用配列７２と第２の塩基配列を識別する第２の識別配列１４aとを含んでいる。第２の識別用配列１４ａは既に説明したとおりである。標識用配列７２は、この第２のプライマーＩ７０によって得られる増幅産物に新たに標識用の塩基配列を導入するためものであり、標的核酸や検出用プローブの塩基配列とは無関係に設定することができる。また、関連付けの必要がない。したがって、標識用配列７２は、標的核酸毎に異なる塩基配列とする必要がなく、全ての標的核酸に対して共通の塩基配列であってもよいし、２種類以上の標識物質等を用いるときには、標識物質等について異なる塩基配列としてもよい。すなわち、標識用配列７２は、標的核酸に対して個別でなく共通化することができる。また、増幅性の反応性等を考慮し最適化した完全に人工的な塩基配列とすることができる。第２のプライマーＩ７０は、その５’末端から標識用配列７２と第２の識別配列とを含んでいることが好ましい。
（第２のプライマーＩＩ）
第２のプライマーＩＩ８０は、標識物質４０又は標識物質結合物質４２と標識用配列７２とを含んでいる。標識物質４０又は標識物質結合物質４２は既に説明したとおりである。標識物質４０又は標識物質結合物質４２は、第２のプライマーＩＩの５’末端に連結されている。標識用配列７２については、第２のプライマーＩにおいて説明したとおりである。第２のプライマーＩＩ８０においては、標識物質等が結合した第２のプライマーＩＩ８０の塩基配列が共通化されている。このため、標識物質等の結合した第２のプライマーＩＩ８０を低コストに提供可能である。
第２のプライマーＩＩ８０は、標識物質４０又は標識物質結合物質４２と標識用配列７２とを含んでいる。標識物質４０又は標識物質結合物質４２は既に説明したとおりである。標識物質４０又は標識物質結合物質４２は、第２のプライマーＩＩの５’末端に連結されている。標識用配列７２については、第２のプライマーＩにおいて説明したとおりである。第２のプライマーＩＩ８０においては、標識物質等が結合した第２のプライマーＩＩ８０の塩基配列が共通化されている。このため、標識物質等の結合した第２のプライマーＩＩ８０を低コストに提供可能である。
図７に示すように、第１のプライマー５０と第２のプライマーＩ７０とによって、標的核酸に対して核酸増幅反応を実施することで、タグ配列２２を一本鎖部分として有し、標識用配列７２とこれに相補的な配列７２ａを有する部分二本鎖核酸９０が増幅産物として得られることになる。一旦、こうした部分二本鎖核酸９０が得られると、この部分二本鎖核酸９０の一方の鎖（標識用配列７２と相補的な配列７２ａを有する鎖）に対して、第２のプライマーＩ７０に替わり第２のプライマーＩＩ８０がハイブリダイズして、核酸増幅反応が実施される。この結果、図７に示すような標識物質等を備えた部分二本鎖核酸１０ａを得ることができるようになる。なお、第２のプライマーＩＩ７０が増幅反応系内にあれば、部分二本鎖核酸９０に対して第２のプライマーＩ７０も作用して、部分二本鎖核酸９０も合成される。
第２のプライマー６０に替えて、第２のプライマーＩ７０及び第２のプライマーＩＩ８０を用いることで、効率よく核酸増幅反応を実施して結果として良好な検出感度が得られるようになる。すなわち、標的核酸の塩基配列によっては、第２のプライマー６０と標的核酸とのマッチングが良好でなく、核酸増幅反応の進行も良好でなく、結果として、検出感度が低下する場合がある。こうした場合においても、第１のプライマー５０と第２のプライマーＩ７０とを用いることで、このプライマーセットによる部分二本鎖核酸９０を一旦得ることができたら、その後は、第２のプライマーＩＩ８０がこの部分二本鎖核酸１００の標識用配列７２の相補鎖を有する一方の鎖に作用できるため、第１のプライマー５０と第２のプライマーＩＩ８０とによって、効率的に核酸増幅反応を進行させることができる。
なお、第１のプライマー６０と、第２のプライマーＩ７０と、第２のプライマーＩＩ８０と、の供給順序等は適宜決定される。例えば、これらを同時に核酸増幅反応系に供給して標的核酸に作用させてもよいし、例えば、第１のプライマー６０と第２のプライマーＩ７０とを供給後に、第２のプライマーＩＩ８０を供給してもよい。同時に核酸増幅反応系に供給してもよい。
なお、第２のプライマーＩＩ８０を第２のプライマーＩ７０に対して過剰に存在させることで、部分二本鎖核酸１１０を高効率で合成させることができる。例えば、第２のプライマーＩＩ８０は、第２のプライマーＩの1倍以上10倍以下、好ましくは、1倍以上5倍以下の範囲で反応系に供給される。
さらに、図８に示すように、部分二本鎖核酸１０ａの同等物を、第２のプライマーＩＩ８０を用いずに、以下に示す標識物質４０又は標識物質結合物質４２を備える標識用プローブ１００を用いて取得することもできる。すなわち、標識用プローブ１００の存在下で第１のプライマー５０と第２のプライマーＩ７０を用いて標的核酸に対して核酸増幅反応を実施することによっても、得ることができる。用いるプライマー及びプローブ並びに増幅工程を図８に示す。
（標識用プローブ）
図８に示すように、標識用プローブ１２０は、第２のプライマーＩ７０の標識用配列７２と特異的にハイブリダイズ可能に相補的配列７２ａを備えるとともに、その３’末端に標識物質４０又は標識物質結合物質４２を備えている。標識用配列７２自体、標的核酸に関連付けられておらず特異的でなく、標的核酸に関わらず、共通化されうるものであるため、同様に、相補的配列７２ａも同様の理由から共通化される。したがって、標識用プローブ１００も、第２のプライマーＩＩ８０と同様、低コストに提供可能である。
図８に示すように、標識用プローブ１２０は、第２のプライマーＩ７０の標識用配列７２と特異的にハイブリダイズ可能に相補的配列７２ａを備えるとともに、その３’末端に標識物質４０又は標識物質結合物質４２を備えている。標識用配列７２自体、標的核酸に関連付けられておらず特異的でなく、標的核酸に関わらず、共通化されうるものであるため、同様に、相補的配列７２ａも同様の理由から共通化される。したがって、標識用プローブ１００も、第２のプライマーＩＩ８０と同様、低コストに提供可能である。
図８に示すように、標識用プローブ１００の存在下、第１のプライマー５０と第２のプライマーＩ７０とを用いて標的核酸に対して増幅工程を実施する。これにより、図７と同様、タグ配列２２を一本鎖部分として有し、タグ配列２２を有するＤＮＡ鎖の３’末端に相補的配列７２ａを備える部分二本鎖核酸９０が合成される。さらに、その後の増幅反応において、鋳型鎖となった一方の一本鎖（標識用配列７２を５’末端に備える）に対して第１のプライマー５０が作用してＤＮＡを伸長させる。このＤＮＡ伸長反応時に、第１のプローブ５０が鋳型鎖にハイブリダイズするのと同様、標識用プローブ１００が、その相補的配列７２ａを介して鋳型鎖の５’末端の標識用配列７２に対してハイブリダイズする。この結果、ＤＮＡ伸長反応が、鋳型鎖の５’末端側、すなわち、標識用プローブ１００のハイブリダイズ部位においてはＤＮＡポリメラーゼ反応が抑制又は停止され、ＤＮＡの伸長が抑制又は停止される。
このため、図８に示すように、一方の鎖の５’末端にタグ配列２２を一本鎖として有し、他方の鎖の５’末端に標識用配列７２を一本鎖として有する部分二本鎖核酸９２が合成される。そして、同時に、部分二本鎖核酸９２中の標識用配列７２に対して標識用プローブ１００がハイブリダイズする。この結果、核酸増幅反応によって得られる増幅産物は、部分二本鎖核酸０２に標識用プローブ１００がハイブリダイズした複合体１１０となる。この複合体１１０は、増幅産物としての構造は、部分二本鎖核酸１０ａとは異なるが、タグ配列２２を有する一本鎖部分の他端に標識物質４０又は標識物質結合物質４２を保持している。このため、後段のハイブリダイゼーション工程では、部分二本鎖核酸１０ａと同等に機能する。
第２のプライマーＩＩ８０に替えて、標識用プローブ１００を用いることで、効率的に、増幅産物を標識することができるようになる。この結果、検出感度を向上させることができる。
なお、図８に示す増幅工程において用いるＤＮＡポリメラーゼは、３’−５’エキソヌクレアーゼ活性が抑制されたか又はないものであることが好ましい。標識用プローブ１００の分解を回避又は抑制するためである。
増幅工程は、これらのプライマーを用いて実施する。核酸増幅法は既に説明したように各種公知の方法を適用できるが、典型的にはＰＣＲ、マルチプレックスＰＣＲ等の各種ＰＣＲである。核酸増幅工程を実施するにあたっての、溶液組成、温度制御等については、当業者であれば適宜設定することができる。
（ハイブリダイゼーション工程）
ハイブリダイゼーション工程は、部分二本鎖核酸１０（１０ａを含む）又はその同等物である複合体１１０（以下、これらを部分二本鎖核酸等という。）と固相担体２１０上のプローブ２２０とを、核酸クロマトグラフィーによってハイブリダイズ可能な条件下で接触させる工程である。以下、ハイブリダイゼーション工程に用いる固相担体２１０と固相担体２１０上に固定化されたプローブ２２０とを備える固相体であるクロマトグラフィー本体２００についてまず説明する。
ハイブリダイゼーション工程は、部分二本鎖核酸１０（１０ａを含む）又はその同等物である複合体１１０（以下、これらを部分二本鎖核酸等という。）と固相担体２１０上のプローブ２２０とを、核酸クロマトグラフィーによってハイブリダイズ可能な条件下で接触させる工程である。以下、ハイブリダイゼーション工程に用いる固相担体２１０と固相担体２１０上に固定化されたプローブ２２０とを備える固相体であるクロマトグラフィー本体２００についてまず説明する。
（クロマトグラフィー本体）
図９に示すように、クロマトグラフィー本体２００は、固相担体２１０と、固相担体２１０に固定化された１種又は２種以上のプローブ２２０とを備えている。固相担体２１０は、特に限定されないでキャピラリー現象により液体を移動させることが可能な従来公知のものを採用できる。例えば、固相担体２１０としては、例えば、ポリエーテルスルホン、ニトロセルロース、ナイロン、ポリフッ化ビニリデンなどのポリマーを主体としたいわゆる多孔質性の材料が挙げられる。また、ろ紙などのセルロース系材料も好ましく用いることができる。クロマトグラフィー本体２００においては、単一の固相担体２１０で構成されている必要は必ずしもない。全体としてキャピラリー現象により展開媒体を移動可能であれば、複数の固相担体２１０で連結されていてもよい。クロマトグラフィー用本体２００の全体形態は特に問わない。シート状や細い棒状など、キャピラリー現象によるクロマトグラフィー用液の展開拡散が可能な形態であればよい。好ましくは、長尺状体であって、その長手方向に沿う一つの端部がクロマトグラフィーの展開媒体に接触するようになっている。
図９に示すように、クロマトグラフィー本体２００は、固相担体２１０と、固相担体２１０に固定化された１種又は２種以上のプローブ２２０とを備えている。固相担体２１０は、特に限定されないでキャピラリー現象により液体を移動させることが可能な従来公知のものを採用できる。例えば、固相担体２１０としては、例えば、ポリエーテルスルホン、ニトロセルロース、ナイロン、ポリフッ化ビニリデンなどのポリマーを主体としたいわゆる多孔質性の材料が挙げられる。また、ろ紙などのセルロース系材料も好ましく用いることができる。クロマトグラフィー本体２００においては、単一の固相担体２１０で構成されている必要は必ずしもない。全体としてキャピラリー現象により展開媒体を移動可能であれば、複数の固相担体２１０で連結されていてもよい。クロマトグラフィー用本体２００の全体形態は特に問わない。シート状や細い棒状など、キャピラリー現象によるクロマトグラフィー用液の展開拡散が可能な形態であればよい。好ましくは、長尺状体であって、その長手方向に沿う一つの端部がクロマトグラフィーの展開媒体に接触するようになっている。
プローブ２２０は、標的核酸に関連付けられた部分二本鎖核酸等のタグ配列２２と特異的にハイブリダイズ可能な検出用配列２２２を含んでいる。検出用配列２２２は、好ましくは、部分二本鎖核酸等のタグ配列２２と相補的であり、好ましくは完全に相補的な塩基配列を有している。
検出用配列２２２は、部分二本鎖核酸等に対して付与されたタグ配列２２と特異的ハイブリダイズ可能であれば足りるため、標的核酸とは無関係に設定することもできる。
検出用配列２２２の長さは、特に限定しない。一例として２０塩基以上５０塩基以下程度とすることができる。この範囲であると、一般的に各検出用配列の特異性を確保しつつハイブリダイゼーション効率も確保できるからである。例えば、こうした塩基長の検出用配列は、後述する配列番号１〜１００及びその相補配列から選択される各２３塩基長の塩基配列を２つ組み合わせた４６塩基長の配列や、当該組み合わせた塩基配列に対して適宜塩基を付加、欠失などすることにより得ることができる。より好ましくは、２０塩基以上２５塩基以下である。例えば、こうした塩基長の検出用配列は、配列番号１〜１００の各２３塩基長の塩基配列及びその相補配列又はこれらの塩基配列に対して適宜塩基を付加、欠失などすることにより得ることができる。
第１のプライマー５０及び部分二本鎖核酸等におけるタグ配列２２は、検出用配列１２２と対合する塩基配列であるため、タグ配列２２の塩基長は、検出用配列と同一の塩基長が好ましい。
１種又は２種以上のプローブ２２０は単一の固相担体２１０に固定化されている。固定化形態は特に限定されない。公知の固定化方法が用いられる。例えば、プローブ２２０と固相担体２１０の表面との静電的相互作用のほか、固相担体の材料内の官能基（予め存在する官能基のほか、固定化のために付与した官能基を含む）とのプローブ２２０内官能基との共有結合等によりことができる。
図１０に示すように、プローブ２２０が固定化される固相担体２１０上の領域（プローブ領域）２３０は、任意のパターンで形成される。プローブ領域２３０は、任意の形態を有する、ドット状であってもよいし、ライン状であってもよいし、その他の形態であってもよい。プローブ領域２３０は、典型的には、クロマトグラフィーの展開媒体の展開方向と直交するようなライン状の形態で、展開方向に沿って複数個、適当な間隔で備えられている。好ましくは１つのプローブ領域２３０が１種のプローブに対応されている。
図１０に示すように、３以上のプローブ２２０に対するプローブ領域２３０を備える場合、例えば、３以上のプローブ領域２３０は、互いに平行状のライン状に形成されていてもよい。この場合、３以上のプローブ領域２３０の間隔は、適宜決定される。例えば、７個のプローブ領域があるとき、展開方向の最も上流側２つのプローブ領域２３０の群と、すぐ下流の３つのプローブ領域２３０の群と、さらに下流の２つのプローブ領域２３０の群とを配することができる。この場合、固相担体２１０の各部にある複数のプローブ領域２３０の群内におけるプローブ２３０領域同士の間を所定の間隔とすることができる。例えば、同一の間隔に設定することができる。
図１０に示すように、さらに、固相担体２１０上には、１又は２以上の位置マーカー領域１４０を備えることができる。位置マーカー領域２４０は、ハイブリダイゼーション工程〜検出工程において、目視で視認可能な領域として設定されていることが好ましい。典型的には、展開媒体に不溶性の顔料や染料で構成されている。また、展開媒体の展開方向と直交するようなライン状となっていることが好ましい。また、位置マーカー領域２４０は、それ自体が、文字、記号、数字及び図形からなる群から選択される１種又は２種以上の組み合わせで構成されていてもよい。さらに、位置マーカー領域２４０の着色は、特に限定されない。複数の位置マーカー領域２４０につき、同一色であってもよいし、異なる色を付与してもよい。好ましくは、プローブ領域２３０における発色等と異なる色調である。
位置マーカー領域２４０の位置は、適宜決定されるが、２以上であることが好ましい。例えば、図１０に示すように、２つの位置マーカー領域２４０の間に、適数個の、例えば、２個、３個、あるいは４個以上の位置マーカー領域２４０を備えるようにすることが好ましい。こうすることで、複数個のプローブ領域２３０も誤認せずに同定することが容易になる。さらに、上流側の位置マーカー領域２４０のさらに上流側に、１個、２個あるいは３個以上のプローブ領域２３０を備えていてもよいし、下流側の位置マーカー領域２４０のさらに下流側に、１個、２個あるいは３個以上のプローブ領域２３０を備えていてもよい。こうすることで、２つの位置マーカー領域２４０を用いて、効果的に多数個のプローブ領域２３０の同定を容易に行うことができる。
固相担体２１０上において配列される１又は２以上のプローブ領域２３０及び位置マーカー領域２４０は、合計して３つ以上あるとき、これらの間隔は等間隔とすることができる。等間隔とすることで、プローブ領域２３０の位置特定が容易となる。特に２つの位置マーカーに２４０の間にプローブ領域２３０が３つある場合は好適である。 目視でひと目みれば、発色したプローブ領域２３０が、それぞれ別の２つの位置マーカー領域２４０のどちらの位置マーカー領域２４０に近いのか、または両位置マーカー領域の真ん中に位置するのかを判別できる。 またプローブ領域２４０が５つある場合は、追加でそれぞれの位置マーカーの外側に２つのプローブ領域２３０を配置すると、前記３箇所に加え、位置マーカー２４０の外側にあるのか内側にあるのかのひと目でわかる区別で、５箇所まで判別が容易に可能になる。 尚、この考え方により位置マーカー領域２４０を増やすことで、同時に容易に判別できるプローブ領域２３０の数を増やすことが出来る。
図１０に示すように、クロマトグラフィー本体２００は、その一つの端部に核酸クロマトグラフィーの展開媒体を接触させるための液接触部２５０を備えることができる。クロマトグラフィー本体１００は好ましくは長尺状体であるとき、その長手方向に沿う一つの端部を液接触部２５０とすることができる。こうした液接触部２５０は、特に、クロマトグラフィー本体２００の下端に展開媒体を配して展開媒体を上方にむかって移動させる場合に好ましい。
液接触部２５０は、展開媒体に浸漬しうる形状であれば特に限定しない。例えば、より先端に向かって先細り状の形態としてもよい。こうすることで、いわゆる実験用のチューブに供給した展開媒体にクロマトグラフィー本体２００の液接触部２５０を接触又は浸漬させやくすることができる。一方、展開速度を速めたいときには、逆に、液接触部２５０を他の部位よりも大面積にあるいは大容積に設定することもできる。例えば、クロマトグラフィー本体２００として棒状体を採用するときには、棒状体の棒状部分よりも下方に向かって広がるテーパー状の液接触部２５０としてもよい。
液接触部２５０は、特定形状の液接触部２５０を予め保持していてもよいが、展開媒体に接触する際に、クロマトグラフィー本体２００の端部を特定形状として液接触部２５０を形成するようにしてもよい。例えば、図１１（ａ）〜図１１（ｃ）に示すように、特定形状の液接触部２５０を形成するための、液接触部形成マーカー２６０を備えることができる。液接触部形成マーカー２６０は、クロマトグラフィー本体２００をはさみなどで切断して特定形状の液接触部２５０を形成するための切断部位を示すマーカーとすることができる。例えば、図１１（ａ）に示すように、切断開始点ないし切断終了点を視認可能に明示するライン状であってもよい。また、図１１（ｂ）に示すように、切断線自体を視認可能に明示するライン状であってもよい。さらに、図１１（ｃ）に示すように、除去される部分を視認可能に明示するものであってもよい。さらにまた、図示はしないが、あるいは残す部分を視認可能に明示するものであってもよい。
さらには、液接触部形成マーカー２６０は、液接触部２５０を形成可能に、クロマトグラフィー本体２００を切断可能な脆弱性を有していてもよい。ここで、脆弱性とは、例えば、手やはさみによる切断や除去をガイドしあるいは促進可能に設けられる程度のクロマトグラフィー本体２００の脆さや弱さを意味している。脆弱性は、化学的な弱さ等であってもよいし、物理的な弱さ等であってもよい。例えば、液接触部形成マーカー２６０は、切断予定部位をミシン目としたり、あるいは切断予定部位の厚みを薄くしたりするなどして、切断予定部位に沿って応力集中しやすいようにする形態が挙げられる。マーカー２６０を設けることで、当該マーカー２６０に沿ってクロマトグラフィー本体２００を切断可能となり、容易に所定形状の液接触部２５０を形成できる。
クロマトグラフィー本体２００には、さらに、展開媒体が十分に展開したことを示すための別のマーカー領域等を備えることができる。さらには、部分二本鎖核酸等が標識結合要素４２を備えるときに、当該標識結合要素４２に対して標識物質４０を結合させるための標識物質４０の保持部を備えていてもよい。これらの部位は、いずれも、プローブ領域等と同様、それ自体が展開媒体の移動が可能な多孔質体で形成され、同時に、各部位における展開媒体の連続的な展開を妨げないように構成されている。さらにまた、展開終了後の展開媒体を回収するための吸水部をプローブ領域の下流側に備えていてもよい。
ハイブリダイゼーション工程に先立って、例えば、部分二本鎖核酸等を増幅工程の増幅産物として取得するとき、この増幅産物を含有する増幅反応液を含む展開媒体を準備することができる。部分二本鎖核酸等が標識物質４０を備えているときは、展開媒体に別途標識物質４０を加える必要はない。
以上説明したクロマトグラフィー本体２００は、固相担体２１０のプローブ２２０に対応したプライマーのセットとともにキットとして提供されてもよい。また、さらに、標識物質４０に関する試薬もキットに含めてもよい。例えば、プライマーセットに標識物質４０を備えるプライマーを含めてもよいし、核酸増幅反応に用いる、標識物質４０又は標識物質結合物質４２を備えるｄＮＴＰを含めてもよい。さらに、標識物質結合物質４２に結合させる標識物質４０を含めてもよい。
（展開媒体）
展開媒体は、クロマトグラフィー本体１００の固相担体１１０をキャピラリー現象により拡散移動する液体であり、部分二本鎖核酸１０に固相担体１１０を移動させるための媒体である。展開媒体は、水性媒体である。水性媒体は、特に限定しないが、例えば、水、水と相溶する有機溶媒、又は水と１種又は２種以上の前記有機溶媒の混液が挙げられる。水と相溶する有機溶媒は、当業者において周知であるが、例えば、炭素数１〜４程度の低級アルコール、ＤＭＳＯ、ＤＭＦ、酢酸メチル、酢酸エチルなどのエステル類、アセトン等が挙げられる。展開媒体は、好ましくは水を主体とする。
展開媒体は、クロマトグラフィー本体１００の固相担体１１０をキャピラリー現象により拡散移動する液体であり、部分二本鎖核酸１０に固相担体１１０を移動させるための媒体である。展開媒体は、水性媒体である。水性媒体は、特に限定しないが、例えば、水、水と相溶する有機溶媒、又は水と１種又は２種以上の前記有機溶媒の混液が挙げられる。水と相溶する有機溶媒は、当業者において周知であるが、例えば、炭素数１〜４程度の低級アルコール、ＤＭＳＯ、ＤＭＦ、酢酸メチル、酢酸エチルなどのエステル類、アセトン等が挙げられる。展開媒体は、好ましくは水を主体とする。
展開媒体は、そのｐＨを一定範囲にするための成分を含むことができる。好ましい部分二本鎖核酸１０の状態、安定性及び展開環境を確保するためのｐＨ範囲を確保するためである。緩衝塩は、意図するｐＨにもよるが通常は、６．０以上８．０以下の範囲である。より好ましくは、７．０以上８．０以下である。こうしたｐＨを得るための成分は、例えば、酢酸と酢酸ナトリウム（酢酸緩衝液）、クエン酸とクエン酸ナトリウム（クエン酸緩衝液）、リン酸とリン酸ナトリウム（リン酸緩衝液）等である。さらに、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）等が挙げられる。なお、展開媒体として、増幅反応液をそのまま採用してもよい。また、増幅反応液に対して、界面活性剤や適当な塩等の追加の成分や溶媒を加えたりすることで、組成や濃度の調整をして展開媒体として使用してもよい。
部分二本鎖核酸１０が、標識物質結合物質４２を備えている場合には、予め増幅工程において標識物質４０を加えておいて増幅反応を実施してもよい。こうすることで、増幅工程後において、標識物質４０が標識物質結合物質４２に結合した複合産物としての標識物質４０を備える部分二本鎖核酸１０を取得できる。また、反応終了後の増幅反応液中の部分二本鎖核酸１０に標識物質４０を添加しても、同様に複合産物が得られる。さらに、展開媒体用液（増幅反応液を展開媒体として用いる場合の添加液を展開媒体用液という。）に標識物質４０を添加して、その後、増幅反応液とこの展開媒体用液とを混合しても、同様の複合産物が得られる。
部分二本鎖核酸１０を含む増幅反応液をハイブリダイゼーション工程に供給するのにあたり、増幅工程を実施した容器やチューブなどのキャビティ、すなわち、増幅反応液を保持するキャビティ内において展開媒体を準備し、当該キャビティ内において展開媒体とクロマトグラフィー本体とを接触させてハイブリダイゼーション工程を実施することが好ましい。こうすることで、増幅反応液をピペットなどを用いて採取し、ハイブリダイゼーション工程に供する必要もなく、コンタミネーションの可能性を低くして確度の高い検出が可能となる。また、誤操作も低減することができる。
例えば、ＰＣＲなどの増幅工程は、通常、チューブ状容器で行われる。このチューブ状容器内の増幅反応液に、必要に応じて標識物質４０を添加し、さらにクロマトグラフィー本体１００をチューブ状容器に供給することでハイブリダイゼーション工程を実施できる。例えば、部分二本鎖核酸１０が標識物質結合物質４２としてビオチンを備えているとき、標識物質４０としては、ストレプトアビジン等でコートされた着色ラテックス粒子等を標識物質４０として用いることができる。
次に、部分二本鎖核酸１０とプローブ１２０とのハイブリダイゼーションを展開媒体とクロマトグラフィー本体１００とを用いて実施する工程について説明する。
ハイブリダイゼーション工程を実施するにあたり、核酸クロマトグラフィーの実施形態は特に限定されない。ほぼ水平状態での展開を意図したものであってもよい。この場合、典型的には、特定の液接触１５０に一定量の展開媒体を滴下等してクロマトグラフィーを実施する。また、クロマトグラフィーの形態は、ほぼ鉛直方向での展開を意図したものであってもよい。この場合、典型的には、クロマトグラフィー本体１００をほぼ鉛直方向に支持して、当該本体１００の下端部の液接触部５０などを展開媒体に浸漬してクロマトグラフィーを実施する。
クロマトグラフィーの形態に応じて、展開媒体とクロマトグラフィー本体２００とを接触させることで、キャピラリー現象により、展開媒体は、固相担体２１０を拡散してプローブ領域２３０へと展開される。
プローブ領域２３０において、展開媒体中にプローブ２２０とハイブリダイズすべきタグ部２０を有する部分二本鎖核酸１０を含んでいるとき、部分二本鎖核酸１０は、プローブ２２０とハイブリダイズして、ハイブリダイズ産物を形成する。これにより、部分二本鎖核酸１０が備える標識物質４０に応じてシグナルが提示される。標識物質４０が、それ自体で視認可能な発光又は着色を呈するときには、速やかに部分二本鎖核酸１０に予め関連付けられていた標的核酸を検出できることになる。
プローブ領域２３０が複数存在する場合には、展開媒体に，他のプローブ２２０とハイブリダイズすべき他の部分二本鎖核酸１０が存在すれば、対応するプローブ領域２３０において、ハイブリダイズ産物が形成される。
なお、ハイブリダイゼーション工程における条件は特に限定されないが、例えば、５℃以上４０℃以下程度の空気雰囲気下で実施できる。好ましくは１５℃以上３５℃以下である。また、例えば、１０μｌ以上６０μｌ以下程度の展開媒体を、クロマトグラフィー本体１００としては、幅２．０ｍｍ以上８．０ｍｍ以下で長さ（又は高さ）が２０ｍｍ以上１００ｍｍ以下のシート状のクロマトグラフィー本体の一部（下端部又は供給部）に浸透させて、クロマトグラフィーを開始する。展開媒体がプローブ領域１３０の通過を完了する展開時間はおおそよ２分から５０分である。
（検出工程）
検出工程は、最終的なハイブリダイズ産物を、標識物質４０に基づいて検出する工程である。より具体的には、プローブ２２０が固定化されたプローブ領域２３０の着色及び位置を確認する工程である。標識物質４０によるシグナルを検出するには、標識物質４０の種類に応じて適宜選択される。特異的結合反応や酵素による発色反応が必要な場合には、適宜そうした操作が行われる。本クロマトグラフィー法では、固相担体を洗浄することなくそのまま検出工程を実施することが好ましい。
検出工程は、最終的なハイブリダイズ産物を、標識物質４０に基づいて検出する工程である。より具体的には、プローブ２２０が固定化されたプローブ領域２３０の着色及び位置を確認する工程である。標識物質４０によるシグナルを検出するには、標識物質４０の種類に応じて適宜選択される。特異的結合反応や酵素による発色反応が必要な場合には、適宜そうした操作が行われる。本クロマトグラフィー法では、固相担体を洗浄することなくそのまま検出工程を実施することが好ましい。
標識物質４０が、例えば、ラテックス粒子、金コロイド粒子、銀コロイド粒子など、肉眼で検出可能な発色又は発光を提示する標識物質であるときには、肉眼で直ちに標的核酸の存在やその量（色の濃さ等で）を検出できる。このため、一層の迅速検出が可能となっている。
以下、本発明を、実施例を挙げて具体的に説明するが、以下の実施例は本発明を限定するものではない。なお、以下の実施例において、％は、いずれも質量％を意味する。
以下の実施例では、本発明の検出方法による標的核酸の検出を次の手順で行った。以下、これらの順序に従って説明する。
（１）ＤＮＡマイクロアレイの作製
（２）標的核酸とプライマーの調製と増幅
（３）ハイブリダイズ
（４）スキャナーを用いた検出
（１）ＤＮＡマイクロアレイの作製
（２）標的核酸とプライマーの調製と増幅
（３）ハイブリダイズ
（４）スキャナーを用いた検出
（１）ＤＮＡマイクロアレイの作製
プラスチック板に、３’末端をアミノ基で修飾した合成オリゴＤＮＡ（株式会社日本遺伝子研究所製）を溶かした水溶液を検出用プローブとして、日本ガイシ株式会社にてＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標である）スポッターを用いてスポットした。使用した合成オリゴＤＮＡ配列は、配列番号１〜１００から高速ハイブリダイゼーションが可能な以下の３３種を選択した。
プラスチック板に、３’末端をアミノ基で修飾した合成オリゴＤＮＡ（株式会社日本遺伝子研究所製）を溶かした水溶液を検出用プローブとして、日本ガイシ株式会社にてＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標である）スポッターを用いてスポットした。使用した合成オリゴＤＮＡ配列は、配列番号１〜１００から高速ハイブリダイゼーションが可能な以下の３３種を選択した。
スポットの後、８０℃、１時間のベークを行った。さらに、以下に記載した手順で、合成オリゴＤＮＡの固定化を行った。すなわち、２×ＳＳＣ／０．２％ＳＤＳで１５分洗浄後、９５℃の２×ＳＳＣ／０．２％ＳＤＳで５分洗浄し、その後、滅菌水で洗浄（１０回上下振とう）を３回繰り返した。その後、遠心（１０００ｒｐｍ×３分）により脱水した。
（２）標的核酸の増幅
増幅に使用したゲノムＤＮＡは、ヒト由来とし、ヒトゲノム中の６つの標的核酸（（１）〜（６））に特異的な以下の表に示すプライマーＰ１−１〜Ｐ１−６（日本遺伝子研究所製）、Ｐ２−１〜Ｐ２−６（日本遺伝子研究所製）及びＰ３−１〜Ｐ３−６（日本遺伝子研究所製）を準備した。なお、各系列は以下の構成（５’から３’として表示）とした。なお、Ｐ３系のプライマーのプロピレン基部分は、以下の式に示すGlenResearch社のホスホアミダイト試薬であるSpacer PhophoamiditeＣ３を用いて通常のオリゴヌクレオチド合成方法に準じて合成された。
増幅に使用したゲノムＤＮＡは、ヒト由来とし、ヒトゲノム中の６つの標的核酸（（１）〜（６））に特異的な以下の表に示すプライマーＰ１−１〜Ｐ１−６（日本遺伝子研究所製）、Ｐ２−１〜Ｐ２−６（日本遺伝子研究所製）及びＰ３−１〜Ｐ３−６（日本遺伝子研究所製）を準備した。なお、各系列は以下の構成（５’から３’として表示）とした。なお、Ｐ３系のプライマーのプロピレン基部分は、以下の式に示すGlenResearch社のホスホアミダイト試薬であるSpacer PhophoamiditeＣ３を用いて通常のオリゴヌクレオチド合成方法に準じて合成された。
Ｐ１系のプライマー：Ｆ，Ｒ：ヒトＤＮＡ中の特定の標的核酸（１）〜（６）に対する塩基配列を含む
Ｐ２系のプライマー：
Ｆ：標識プローブの結合配列（タグ配列）＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
Ｒ：合成オリゴヌクレオチドプローブの塩基配列と同一の塩基配列からなるタグ配列＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
（なお、Ｐ２系プライマーを用い場合には、このタグ配列と相補的な塩基配列の相補鎖も増幅されるため、当該相補鎖がプローブとハイブリダイズし、増幅断片を検出できる。）
Ｐ３系プライマー：
Ｆ：標識プローブの結合配列＋連結部位Ｘ（プロピレン鎖）＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
Ｒ：合成オリゴヌクレオチドプローブの塩基配列と相補的な塩基配列からなるタグ配列＋連結部位Ｘ（プロピレン鎖）＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
Ｐ２系のプライマー：
Ｆ：標識プローブの結合配列（タグ配列）＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
Ｒ：合成オリゴヌクレオチドプローブの塩基配列と同一の塩基配列からなるタグ配列＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
（なお、Ｐ２系プライマーを用い場合には、このタグ配列と相補的な塩基配列の相補鎖も増幅されるため、当該相補鎖がプローブとハイブリダイズし、増幅断片を検出できる。）
Ｐ３系プライマー：
Ｆ：標識プローブの結合配列＋連結部位Ｘ（プロピレン鎖）＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
Ｒ：合成オリゴヌクレオチドプローブの塩基配列と相補的な塩基配列からなるタグ配列＋連結部位Ｘ（プロピレン鎖）＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
次に、ゲノムＤＮＡをこれらのプライマーを用いて以下のように増幅した。なお、サンプル増幅用試薬として、ＱＩＡＧＥＮ社のmultiplex PCR master mix を使用した。サーマルサイクラーとして、Applied Biosystems社のGeneAmp PCR System9700を使用した。
まず、以下に示す試薬を個々のサンプルごとに調製した。
（試薬調製）
ｄＨ２Ｏ ４．０μｌ
２×multiplex PCR master mix ５．０μｌ
プライマー混合物（各５００ｎＭ） ０．５μｌ
ゲノムＤＮＡ（５０ｎｇ／μｌ） ０．５μｌ
合計 １０．０μｌ
（試薬調製）
ｄＨ２Ｏ ４．０μｌ
２×multiplex PCR master mix ５．０μｌ
プライマー混合物（各５００ｎＭ） ０．５μｌ
ゲノムＤＮＡ（５０ｎｇ／μｌ） ０．５μｌ
合計 １０．０μｌ
次に、増幅用試薬をサーマルサイクルプレートに移し、サーマルサイクル反応（９５℃で１５分後；９５℃で３０秒、８０℃で１秒、６４℃で６分を４０サイクル、その後１０℃に下げる）を行った。そして、増幅したサンプルはＱＩＡＧＥＮ社のMinElute PCR Purification Kitにて精製を行った後、アガロース電気泳動により意図した長さで増幅していることを確認した。結果を図１２に示す。図１２の上段には、電気泳動結果を示し、その下段には、蛍光強度から算出した増幅量を示す。
（３）ハイブリダイズ
（２）で得た増幅サンプルをマイクロアレイ上に固定した検出用プローブとハイブリダイズするために、以下のHybri controlとHybri solutionを調製し、これからハイブリダイズ用の試薬を調製した。PrimerMixには、標識用プローブ（蛍光修飾したオリゴヌクレオチドでありＰ２系及びＰ３系プライマーのＦの５’側に結合する。）（２５μＭ）を含んでいる。なお、Hybri controlに使用したAlexa555−ｒＤ１＿１００は、Ｄ１＿１００の対応する配列に相補な配列の５´末端をAlexa555で標識したものを用いた。
（２）で得た増幅サンプルをマイクロアレイ上に固定した検出用プローブとハイブリダイズするために、以下のHybri controlとHybri solutionを調製し、これからハイブリダイズ用の試薬を調製した。PrimerMixには、標識用プローブ（蛍光修飾したオリゴヌクレオチドでありＰ２系及びＰ３系プライマーのＦの５’側に結合する。）（２５μＭ）を含んでいる。なお、Hybri controlに使用したAlexa555−ｒＤ１＿１００は、Ｄ１＿１００の対応する配列に相補な配列の５´末端をAlexa555で標識したものを用いた。
（Hybri control）
Alexa555−ｒＤ１＿１００（１００ｎＭ） １０μｌ
ＴＥ（ｐＨ８．０） ３９０μｌ
合計 ４００μｌ
Alexa555−ｒＤ１＿１００（１００ｎＭ） １０μｌ
ＴＥ（ｐＨ８．０） ３９０μｌ
合計 ４００μｌ
（Hybri solution）
２０×ＳＳＣ ２．０ｍｌ
１０％ＳＤＳ ０．８ｍｌ
１００％ Ｆｏｒｍａｍｉｄｅ １２．０ｍｌ
１００ｍＭ ＥＤＴＡ ０．８ｍｌ
ｍｉｌｌｉＱ ２４．４ｍｌ
合計 ４０．０ｍｌ
２０×ＳＳＣ ２．０ｍｌ
１０％ＳＤＳ ０．８ｍｌ
１００％ Ｆｏｒｍａｍｉｄｅ １２．０ｍｌ
１００ｍＭ ＥＤＴＡ ０．８ｍｌ
ｍｉｌｌｉＱ ２４．４ｍｌ
合計 ４０．０ｍｌ
（ハイブリダイズ用の試薬）
Hybri control １．５μｌ
Primer Mix １．０μｌ
Hybri solution ９．０μｌ
小計 １０．５μｌ
増幅サンプル ３．０μｌ
合計 １８．０μｌ
Hybri control １．５μｌ
Primer Mix １．０μｌ
Hybri solution ９．０μｌ
小計 １０．５μｌ
増幅サンプル ３．０μｌ
合計 １８．０μｌ
調製したハイブリダイズ用試薬（標識サンプル溶液）を、変性等のために加熱することなく、各９μｌずつ、マイクロアレイのスポットエリアにかけて、乾燥防止のためコンフォート／プラス用サーモブロックスライド（エッペンドルフ社）を使用し、３７℃で３０分間静置することによってハイブリダイズ反応を行った。
（洗浄）
ハイブリダイズ後、以下の組成の洗浄液を満たしたガラス染色バットに、ハイブリダイズ反応終了後のマイクロアレイ基板を浸漬し、５分間上下振とうし、滅菌水を入れたガラス染色バットにマイクロアレイ基板を移し、１分間上下振とうし、２０００ｒｐｍで１分間遠心乾燥し、マイクロアレイ基板表面に残った水分を除去した。
（洗浄液の組成）
ｍｉｌｌｉＱ １８８．０ｍｌ
２０×ＳＳＣ １０．０ｍｌ
１０％ＳＤＳ ２．０ｍｌ
合計 ２００．０ｍｌ
ハイブリダイズ後、以下の組成の洗浄液を満たしたガラス染色バットに、ハイブリダイズ反応終了後のマイクロアレイ基板を浸漬し、５分間上下振とうし、滅菌水を入れたガラス染色バットにマイクロアレイ基板を移し、１分間上下振とうし、２０００ｒｐｍで１分間遠心乾燥し、マイクロアレイ基板表面に残った水分を除去した。
（洗浄液の組成）
ｍｉｌｌｉＱ １８８．０ｍｌ
２０×ＳＳＣ １０．０ｍｌ
１０％ＳＤＳ ２．０ｍｌ
合計 ２００．０ｍｌ
（４）スキャナーを用いた検出
Appleied Precision社ArrayWoRxを使用して適宜、露光時間を調節し、蛍光画像を取得した。プラスチック基板についての結果を、図１３及び図１４に示す。
Appleied Precision社ArrayWoRxを使用して適宜、露光時間を調節し、蛍光画像を取得した。プラスチック基板についての結果を、図１３及び図１４に示す。
まず、図１２の上段に示すように、タグ配列の有無にかかわらず、ゲノムＤＮＡ中の意図した標的核酸を増幅できることがわかった。また、図１２の下段の表に示すように、タグ配列を識別配列に直接連結しても、プロピレン基を含む連結部位を介して連結してもその増幅量に大きな変化がないことがわかった。
また、図１３及び図１４に示すように、Ｐ２系プライマー（タグ配列＋識別配列）とＰ３系プライマー（タグ配列＋連結部位＋識別配列）を用いた場合とでは、明らかに、Ｐ３系プライマーを用いて増幅して得られたＤＮＡ断片とのハイブリダイゼーション結果において、個々のタグ配列にかかわらず、おおよそ一定の強い蛍光を観察できた。これに対して、Ｐ２系プライマーを用いたときのハイブリダイゼーション結果においては、タグ配列にかかわらずいずれもほとんど蛍光を観察できなかった。
さらに、サンプル濃度を１０倍希釈して得られたハイブリダイゼーション結果においては、Ｐ３系プライマーを用いた場合は、依然として蛍光を観察することができた。以上説明したプラスチック基板におけるのと同様の結果を、ガラス基板についても確認できた。
以上のことから、Ｐ３系プライマーを用いることで、少なくとも検出感度が１０倍以上向上することがわかった。以上の実施例では、増幅したサンプルの変性工程を行わずにアレイに適用したこと、及び図１２に示すように、増幅サンプルの合成量がＰ２系プライマーによるものとほぼ同量である。以上のことからすると、Ｐ３系プライマーを用いることで高効率にハイブリダイゼーションし、かつラベル効率の良好な二重鎖断片が得られたことがわかる。
本実施例では、実施例１の（１）ＤＮＡマイクロアレイの作製において、基板として、プラスチック基板に替えてガラス基板（東洋鋼板社製geneslide）を用い、検出用プローブの塩基配列として以下の表に示す３３種を選択し、（３）ハイブリダイズにおいて、ハイブリダイズ試薬として以下の組成の試薬を用いた以外は、実施例１の（１）ＤＮＡマイクロアレイの作製、（２）標的核酸とプライマーの調製と増幅、（３）ハイブリダイズ及び（４）スキャナーを用いた検出と同様に操作して、標的核酸を検出した。結果は、実施例１と同様に、変性工程を実施しなくても、Ｐ２系プライマー（タグ配列＋識別配列）に比べてＰ３系プライマー（タグ配列＋連結部位Ｘ＋識別配列）を用いた場合に、明らかに１０倍以上の強い強度のハイブリダイゼーションシグナルを得ることができた。
（ハイブリダイズ試薬の組成）
Hybri control １．５μｌ
Primer Mix ３．５μｌ
Hybri solution ９．０μｌ
小計 １４．０μｌ
増幅サンプル ４．０μｌ
合計 １８．０μｌ
Hybri control １．５μｌ
Primer Mix ３．５μｌ
Hybri solution ９．０μｌ
小計 １４．０μｌ
増幅サンプル ４．０μｌ
合計 １８．０μｌ
本実施例では、以下の方法で標的核酸を検出した。
（１）メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイの作製
メルクミリポア製Ｈｉ−Ｆｌｏｗ Ｐｌｕｓ メンブレンシート（６０mm x ６００mm）に以下の表に示す塩基配列からなるキャプチャーＤＮＡプローブ溶液を、特開２００３−７５３０５号公報に記載されている吐出ユニット（インクジェット法）を用いた日本ガイシ株式会社ＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標）スポッターを用いて、スポットした。使用した合成オリゴDNA配列は、文献（Analytical Biochemistry 364(2007)78-85）のSupplementary Table1記載のD1_1からD1_100の100種のうち以下の表に示す４４種の配列をプローブとして使用し、図１５に示す配置でアレイ化した。なお、プローブとしては、オリゴヌクレオチドの３‘末端をアミノ基で修飾した配列を使用した。
（１）メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイの作製
メルクミリポア製Ｈｉ−Ｆｌｏｗ Ｐｌｕｓ メンブレンシート（６０mm x ６００mm）に以下の表に示す塩基配列からなるキャプチャーＤＮＡプローブ溶液を、特開２００３−７５３０５号公報に記載されている吐出ユニット（インクジェット法）を用いた日本ガイシ株式会社ＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標）スポッターを用いて、スポットした。使用した合成オリゴDNA配列は、文献（Analytical Biochemistry 364(2007)78-85）のSupplementary Table1記載のD1_1からD1_100の100種のうち以下の表に示す４４種の配列をプローブとして使用し、図１５に示す配置でアレイ化した。なお、プローブとしては、オリゴヌクレオチドの３‘末端をアミノ基で修飾した配列を使用した。
プローブのスポットの後、Ｓｐｅｃｔｒｏｌｉｎｅ社のＵＶ照射装置(ＸＬ−１５００ＵＶ Ｃｒｏｓｓｌｉｎｋｅｒ)を用いて、200〜500ｍＪ／ｃｍ２程度の紫外線光の照射を行って固定化した。
（２）サンプル遺伝子の増幅
増幅に使用したゲノムＤＮＡとしてはヒト由来のものを使用し、以下の表９に示す配列のＰ２系プライマーおよび以下の表１０に記す配列Ｐ３系のプライマーをそれぞれ使用して増幅を行った。プライマーの構成は、それぞれ以下に示すとおりである。
増幅に使用したゲノムＤＮＡとしてはヒト由来のものを使用し、以下の表９に示す配列のＰ２系プライマーおよび以下の表１０に記す配列Ｐ３系のプライマーをそれぞれ使用して増幅を行った。プライマーの構成は、それぞれ以下に示すとおりである。
Ｐ２系のプライマー：
Ｆ：標識プローブの結合配列＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
Ｒ：合成オリゴヌクレオチドプローブの塩基配列と同一の塩基配列からなるタグ配列＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
（なお、Ｐ２系プライマーを用いる場合には、このタグ配列と相補的な塩基配列の相補鎖も増幅されるため、当該相補鎖がプローブとハイブリダイズし、増幅断片を検出できる。）
Ｆ：標識プローブの結合配列＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
Ｒ：合成オリゴヌクレオチドプローブの塩基配列と同一の塩基配列からなるタグ配列＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
（なお、Ｐ２系プライマーを用いる場合には、このタグ配列と相補的な塩基配列の相補鎖も増幅されるため、当該相補鎖がプローブとハイブリダイズし、増幅断片を検出できる。）
Ｐ３系プライマー：
Ｆ：標識プローブの結合配列＋連結部位Ｘ（プロピレン鎖）＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
Ｒ：合成オリゴヌクレオチドプローブの塩基配列と相補的な塩基配列からなるタグ配列＋連結部位Ｘ（プロピレン鎖）＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
Ｆ：標識プローブの結合配列＋連結部位Ｘ（プロピレン鎖）＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
Ｒ：合成オリゴヌクレオチドプローブの塩基配列と相補的な塩基配列からなるタグ配列＋連結部位Ｘ（プロピレン鎖）＋Ｐ１系の各標的核酸に対する塩基配列
なお、連結部位には、GlenResearch社 Spacer Phosphoramidite C3を用い、実施例１と同様、通常のオリゴヌクレオチド合成方法を準じて合成した。
次に、ゲノムＤＮＡをこれらのプライマーを用いて以下のように増幅した。なお、サンプル増幅用試薬として、ＱＩＡＧＥＮ社のmultiplex PCR master mix を使用した。サーマルサイクラーとして、Applied Biosystems社のGeneAmp PCR System9700を使用した。
（試薬調製）
ｄＨ２Ｏ ４．０μｌ
２×multiplex PCR master mix ５．０μｌ
プライマー混合物（各５００ｎＭ） ０．５μｌ
ゲノムＤＮＡ（５０ｎｇ／μｌ） ０．５μｌ
合計 １０．０μｌ
ｄＨ２Ｏ ４．０μｌ
２×multiplex PCR master mix ５．０μｌ
プライマー混合物（各５００ｎＭ） ０．５μｌ
ゲノムＤＮＡ（５０ｎｇ／μｌ） ０．５μｌ
合計 １０．０μｌ
次に、増幅用試薬をサーマルサイクルプレートに移し、サーマルサイクル反応（９５℃で１５分後；９５℃で３０秒、８０℃で１秒、６４℃で６分を４０サイクル、その後１０℃に下げる）を行った。そして、増幅したサンプルはＱＩＡＧＥＮ社のMinElute PCR Purification Kitにて精製を行った後、アガロース電気泳動により意図した長さで増幅していることを確認した。
（３）メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイを用いた検出
（２）にて増幅したサンプルを用いてのメンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイへの反応及びその検出手順は以下の通りとした。
（２）にて増幅したサンプルを用いてのメンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイへの反応及びその検出手順は以下の通りとした。
（ハイブリダイズサンプル組成）
Hybri Solution* ２００．０μｌ
（0.5%Tween20-1%BSA-PBS）
Ｆ側プライマー標識結合配列に相補なビオチン標識オリゴＤＮＡ(25μＭ）
４．０μｌ
サンプル ４．０μｌ
合計 ２０８．０μｌ
Hybri Solution* ２００．０μｌ
（0.5%Tween20-1%BSA-PBS）
Ｆ側プライマー標識結合配列に相補なビオチン標識オリゴＤＮＡ(25μＭ）
４．０μｌ
サンプル ４．０μｌ
合計 ２０８．０μｌ
（ハイブリダイズおよび発色反応）
メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイを０．２ｍｌチューブに入る大きさに切断し、チューブ内にセットし、調製したハイブリダイズサンプル各２００μｌを変性等のために加熱することなく添加し、ヒートブロック温度３７℃で３０分間ハイブリダイゼーション反応を行った。
メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイを０．２ｍｌチューブに入る大きさに切断し、チューブ内にセットし、調製したハイブリダイズサンプル各２００μｌを変性等のために加熱することなく添加し、ヒートブロック温度３７℃で３０分間ハイブリダイゼーション反応を行った。
ハイブリダイゼーション反応終了後、メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイを洗浄液（０．１％Ｔｗｅｅｎ２０−１ｍＭ ＥＤＴＡ−ＴＢＳ）入り０．２ｍｌチューブに移し、３７℃のヒートブロック内で洗浄作業（３７℃×１ｍｉｎ、３７℃×１０ｍｉｎ、３７℃×１ｍｉｎ）を行った。
洗浄済みのメンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイをビオチン−ＨＲＰとストレプトアビジンとの混合液が入った０．２ｍｌチューブに移して室温下で２０分間の反応を行った。
反応終了後、メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイを洗浄液（０．１％Ｔｗｅｅｎ２０−１ｍＭ ＥＤＴＡ−ＴＢＳ）入り０．２ｍｌチューブに移し、洗浄作業（室温×１ｍｉｎ、室温×１０ｍｉｎ、室温×１ｍｉｎ）を行った。
洗浄済みメンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイをＶｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製ＴＭＢ Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ Ｋｉｔ，３，３’，５，５’−ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙｌｂｅｎｚｉｄｉｎｅを用いて室温下で５分程度の発色反応を行った。
（検出判定）
アレイの乾燥後の発色の有無を目視で確認した。結果を図１６に示す。図１６に示すように、双方のサンプルについて、Ｐ２系プライマーを用いた従来法では薄い発色がかろうじて確認できたのに対し、Ｐ３系プライマーを用いた本発明の方法では、濃い発色を観察できた。以上のことから、Ｐ３系プライマーを用いることで、検出感度が向上することがわかった。また、熱変性することなく、ハイブリダイゼーションが可能であることもわかった。
アレイの乾燥後の発色の有無を目視で確認した。結果を図１６に示す。図１６に示すように、双方のサンプルについて、Ｐ２系プライマーを用いた従来法では薄い発色がかろうじて確認できたのに対し、Ｐ３系プライマーを用いた本発明の方法では、濃い発色を観察できた。以上のことから、Ｐ３系プライマーを用いることで、検出感度が向上することがわかった。また、熱変性することなく、ハイブリダイゼーションが可能であることもわかった。
本実施例では、以下の方法で標的核酸を検出した。
（１）メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイの作製
メルクミリポア製Hi-Flow Plus メンブレンシート（６０mm x ６００mm）に以下の表１１に示す塩基配列からなるキャプチャーＤＮＡプローブ溶液を、特開２００３−７５３０５号公報に記載されている吐出ユニット（インクジェット法）を用いた日本ガイシ株式会社ＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標）スポッターを用いて、スポットした。使用した合成オリゴＤＮＡ配列は、文献（Analytical Biochemistry 364(2007)78-85）のSupplementary Table1記載のD1_1からD1_100の100種のうち以下の表に示す４種の配列をプローブとして使用した。なお、プローブとしては、オリゴヌクレオチドの３‘末端をアミノ基で修飾した配列を使用した。図１７に示す配置でストリーム状のラインでアレイ化した。なお、図１７に示すアレイでは、プローブの固定化領域を明示するために、プローブ固定化溶液を染料で着色してストリーム状にスポットした。また、図８に示すアレイでは、ハイブリダイズ産物を検出するプローブ固定化領域を想定しやすいように、顔料を含む液体をプローブ固定化領域に近接してストリーム状（帯状）にスポットした。
（１）メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイの作製
メルクミリポア製Hi-Flow Plus メンブレンシート（６０mm x ６００mm）に以下の表１１に示す塩基配列からなるキャプチャーＤＮＡプローブ溶液を、特開２００３−７５３０５号公報に記載されている吐出ユニット（インクジェット法）を用いた日本ガイシ株式会社ＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標）スポッターを用いて、スポットした。使用した合成オリゴＤＮＡ配列は、文献（Analytical Biochemistry 364(2007)78-85）のSupplementary Table1記載のD1_1からD1_100の100種のうち以下の表に示す４種の配列をプローブとして使用した。なお、プローブとしては、オリゴヌクレオチドの３‘末端をアミノ基で修飾した配列を使用した。図１７に示す配置でストリーム状のラインでアレイ化した。なお、図１７に示すアレイでは、プローブの固定化領域を明示するために、プローブ固定化溶液を染料で着色してストリーム状にスポットした。また、図８に示すアレイでは、ハイブリダイズ産物を検出するプローブ固定化領域を想定しやすいように、顔料を含む液体をプローブ固定化領域に近接してストリーム状（帯状）にスポットした。
プローブのスポットの後、Ｓｐｅｃｔｒｏｌｉｎｅ社のＵＶ照射装置(ＸＬ−１５００ＵＶ Ｃｒｏｓｓｌｉｎｋｅｒ)を用いて、200〜500ｍＪ／ｃｍ２程度の紫外線光の照射を行って固定化した。
（２）サンプル遺伝子の増幅
増幅に使用したゲノムＤＮＡとしてはヒト由来のものを使用し、実施例３の表９に示す配列のＰ２系プライマーおよび実施例３の表１０に記す配列Ｐ３系のプライマーをそれぞれ使用した。また、実施例３と同様に、ゲノムＤＮＡに対してこれらのプライマーを用いて増幅反応を実施し、ＱＩＡＧＥＮ社のMinElute PCR Purification Kitにて精製を行った後、アガロース電気泳動により意図した長さで増幅していることを確認した。
増幅に使用したゲノムＤＮＡとしてはヒト由来のものを使用し、実施例３の表９に示す配列のＰ２系プライマーおよび実施例３の表１０に記す配列Ｐ３系のプライマーをそれぞれ使用した。また、実施例３と同様に、ゲノムＤＮＡに対してこれらのプライマーを用いて増幅反応を実施し、ＱＩＡＧＥＮ社のMinElute PCR Purification Kitにて精製を行った後、アガロース電気泳動により意図した長さで増幅していることを確認した。
（３）メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイを用いた検出
（２）にて増幅したサンプルを用いてメンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイへの反応及びその検出手順は以下の通りとした。展開液及び、ラテックス液についてはエーエムアール株式会社製を使用した。ラテックス液は、青色系の着色剤を含有するポリスチレン系のラテックスビーズに各Ｆプライマーの標識プローブ結合配列に相補的な配列のオリゴＤＮＡを固定したものを１００ｎＭの濃度になるように展開液で希釈して用いた。なお、オリゴＤＮＡのビーズへの固定化は、オリゴＤＮＡの５’末端をアミノ基で修飾したオリゴＤＮＡとラテックス表面のカルボキシル基との間で共有結合を形成して行った。展開液には、Phosphate buffered salineを使用した。
（２）にて増幅したサンプルを用いてメンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイへの反応及びその検出手順は以下の通りとした。展開液及び、ラテックス液についてはエーエムアール株式会社製を使用した。ラテックス液は、青色系の着色剤を含有するポリスチレン系のラテックスビーズに各Ｆプライマーの標識プローブ結合配列に相補的な配列のオリゴＤＮＡを固定したものを１００ｎＭの濃度になるように展開液で希釈して用いた。なお、オリゴＤＮＡのビーズへの固定化は、オリゴＤＮＡの５’末端をアミノ基で修飾したオリゴＤＮＡとラテックス表面のカルボキシル基との間で共有結合を形成して行った。展開液には、Phosphate buffered salineを使用した。
（ハイブリダイズサンプル組成）
展開液＊ ３５．０μｌ
ラテックス液＊ ５．０μｌ
サンプル １０．０μｌ
ｔｏｔａｌ ５０．０μｌ
展開液＊ ３５．０μｌ
ラテックス液＊ ５．０μｌ
サンプル １０．０μｌ
ｔｏｔａｌ ５０．０μｌ
（ハイブリダイズ）
上記ハイブリダイズサンプル各５０μｌを変性等のために加熱することなく０．２ｍｌチューブに加えて、メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイを差込んでクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーションを開始した。サンプル液は約２０分間ですべて吸い上がり反応は完了した。反応終了後、メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイを風乾した。
上記ハイブリダイズサンプル各５０μｌを変性等のために加熱することなく０．２ｍｌチューブに加えて、メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイを差込んでクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーションを開始した。サンプル液は約２０分間ですべて吸い上がり反応は完了した。反応終了後、メンブレンタイプＤＮＡマイクロアレイを風乾した。
（検出判定）
メンブレンタイプＤＮＡアレイの乾燥後の発色の有無を目視で確認した。結果を図１８に示す。図１８に示すように、Ｐ２系プライマーを用いる従来法では、発色を確認できなかったのに対し、Ｐ３系プライマーを用いる方法では、濃い発色を確認できた。以上のことから、Ｐ３系プライマーを用いることで、ハイブリダイゼーション形態にかかわらず、ハイブリダイゼーション検出感度が向上することがわかった。また、Ｐ３系プライマーを用いることで熱変性することなく、ハイブリダイゼーションが可能であることもわかった。
メンブレンタイプＤＮＡアレイの乾燥後の発色の有無を目視で確認した。結果を図１８に示す。図１８に示すように、Ｐ２系プライマーを用いる従来法では、発色を確認できなかったのに対し、Ｐ３系プライマーを用いる方法では、濃い発色を確認できた。以上のことから、Ｐ３系プライマーを用いることで、ハイブリダイゼーション形態にかかわらず、ハイブリダイゼーション検出感度が向上することがわかった。また、Ｐ３系プライマーを用いることで熱変性することなく、ハイブリダイゼーションが可能であることもわかった。
（１）メンブレンタイプＤＮＡクロマトグラフィー本体の作製
メルクミリポア製Hi-Flow Plus メンブレンシート（６０mm x ６００mm）に以下の表に示す塩基配列からなるＤＮＡプローブをそれぞれ含む溶液を、特開２００３−７５３０５号公報に記載されている吐出ユニット（インクジェット法）を用いた日本ガイシ株式会社ＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標）スポッターを用いて、これらのプローブを図１９に示す位置にスポットした。なお、ＤＮＡプローブとして使用した合成オリゴＤＮＡ配列は、文献（Analytical Biochemistry 364(2007)78-85）のSupplementary Table1記載のD1_1からD1_100の100種の塩基配列のうち任意の８種の配列である。プローブとして利用するため、この塩基配列からなるオリゴヌクレオチドの３’末端側にアミノ基を付加した。
メルクミリポア製Hi-Flow Plus メンブレンシート（６０mm x ６００mm）に以下の表に示す塩基配列からなるＤＮＡプローブをそれぞれ含む溶液を、特開２００３−７５３０５号公報に記載されている吐出ユニット（インクジェット法）を用いた日本ガイシ株式会社ＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標）スポッターを用いて、これらのプローブを図１９に示す位置にスポットした。なお、ＤＮＡプローブとして使用した合成オリゴＤＮＡ配列は、文献（Analytical Biochemistry 364(2007)78-85）のSupplementary Table1記載のD1_1からD1_100の100種の塩基配列のうち任意の８種の配列である。プローブとして利用するため、この塩基配列からなるオリゴヌクレオチドの３’末端側にアミノ基を付加した。
さらに、赤色顔料を用いて図１９に示すように３つの位置マーカー領域を形成した。
スポットの後、Ｓｐｅｃｔｒｏｌｉｎｅ社のＵＶ照射装置(ＸＬ−１５００ＵＶ Ｃｒｏｓｓｌｉｎｋｅｒ)を用いて、２８０ｎｍの成分を含む波長にて３００ｍＪ／ｃｍ２程度の紫外線光の照射を行ってプローブを固定化し、８種のプローブのプローブ領域と３種の位置マーカー領域と、それぞれ備えるクロマトグラフィー本体を得た。
（２）標的核酸の増幅
増幅に使用したゲノムＤＮＡとしてはヒト由来（コスモバイオ社市販品）のものを使用した。プライマーは、以下の表１３に示す塩基配列からなるプライマーセットを用いた。すなわち、Ｒプライマーはプローブ（Ｄ１−００１、００２、００３及び００５）とそれぞれ相補的なタグ配列＋連結部位Ｘ＋第１の識別配列を備えるようにし、Ｆプライマーは、ビオチン＋連結部位Ｘ＋第２の識別配列を備えるようにして、それぞれを使用して増幅を行った。これらのプライマーセットによれば、タグ配列を一本鎖として有する部分二本鎖ＤＮＡ（一本鎖シングル型）を得ることができる。比較例として、表１４に示す塩基配列からなるプライマーセットを用いて、同様に核酸増幅反応を実施した。これらのプライマーセットによれば、タグ配列と標識プローブを結合可能な標識用配列をそれぞれ一本鎖として有する部分二本鎖ＤＮＡ（一本鎖ダブル型）を得ることができる。
増幅に使用したゲノムＤＮＡとしてはヒト由来（コスモバイオ社市販品）のものを使用した。プライマーは、以下の表１３に示す塩基配列からなるプライマーセットを用いた。すなわち、Ｒプライマーはプローブ（Ｄ１−００１、００２、００３及び００５）とそれぞれ相補的なタグ配列＋連結部位Ｘ＋第１の識別配列を備えるようにし、Ｆプライマーは、ビオチン＋連結部位Ｘ＋第２の識別配列を備えるようにして、それぞれを使用して増幅を行った。これらのプライマーセットによれば、タグ配列を一本鎖として有する部分二本鎖ＤＮＡ（一本鎖シングル型）を得ることができる。比較例として、表１４に示す塩基配列からなるプライマーセットを用いて、同様に核酸増幅反応を実施した。これらのプライマーセットによれば、タグ配列と標識プローブを結合可能な標識用配列をそれぞれ一本鎖として有する部分二本鎖ＤＮＡ（一本鎖ダブル型）を得ることができる。
表１３に示すプライマーは、いずれも、プローブ（Ｄ１−００１、００２、００３及び００５）とそれぞれと相補的なタグ配列＋連結部位Ｘ＋第１又は第２の識別配列であった。以上のプライマーは、いずれも日本遺伝子研究所製であった。
連結部位Ｘは、プロピレンオキシ鎖であり、ホスホアミダイト（スペーサーホスホアミダイトＣ３、グレンリサーチ社製）を用いて導入した。
増幅反応における組成は以下のとおりとし、熱サイクル条件は、９５℃で１５分後、９５℃で３０秒、８０℃で１秒及び６４℃で６分を１セットとして４０サイクル実施し、その後、１０℃に冷却した。
（組成）
２×Qiagen multiplex PCR master mix ５．０μｌ
プライマーミックス(各５００ｎＭ） ０．５μｌ
ｄＨ2Ｏ ４．０μｌ
ゲノムＤＮＡ ０．５μｌ
合計 １０．０μｌ
２×Qiagen multiplex PCR master mix ５．０μｌ
プライマーミックス(各５００ｎＭ） ０．５μｌ
ｄＨ2Ｏ ４．０μｌ
ゲノムＤＮＡ ０．５μｌ
合計 １０．０μｌ
なお、プライマーミックスとして、表１３に示す増幅産物シングル１〜４ごとにプライマーセットを混ぜたものと、シングル１〜４の全てのプライマーセットを混ぜたものとの計５種類を準備した。また、同様に、表１４に示す増幅産物ダブル１〜４についても同様に、合計５種類のプライマーミックスを準備した。
増幅して得られた増幅産物についてはQIAGEN社のMinElute PCR Purification Kitにて精製を行った後、アガロース電気泳動により狙いとする長さの断片が増幅していることを確認した。さらに、各増幅産物の精製後の回収量を確認した。結果を図２０及び図２１に示す。図２０及び図２１において、丸付き数字は、それぞれ一本鎖シングル及び一本鎖ダブル型の部分二本鎖核酸を得るためのプライマーセットの数字を示す。
図２０及び図２１に示すように、一本鎖シングル型の増幅産物は増幅量及び精製後の回収量がいずれも比較例を上回っていた。すなわち、一本鎖を一方の鎖においてのみ有する部分二本鎖核酸について、双方の鎖において一本鎖を有する部分二本鎖核酸よりも良好な増幅効率が得られることがわかった。
（３）クロマトグラフィー本体を用いた検出
（２）にて増幅した部分二本鎖ＤＮＡを用いての核酸クロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応及びその検出を行った。操作は、一本鎖シングル型及び一本鎖ダブル型についてそれぞれ以下のとおりとした。
（２）にて増幅した部分二本鎖ＤＮＡを用いての核酸クロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応及びその検出を行った。操作は、一本鎖シングル型及び一本鎖ダブル型についてそれぞれ以下のとおりとした。
（一本鎖シングル型のための展開液組成）
ＰＢＳ ３０．０μｌ
ラテックス液 ５．０μｌ
増幅反応液 １０．０μｌ
ミリポア水 ５．０μｌ
合計 ５０μｌ
ＰＢＳ ３０．０μｌ
ラテックス液 ５．０μｌ
増幅反応液 １０．０μｌ
ミリポア水 ５．０μｌ
合計 ５０μｌ
展開液は、ＰＢＳ（リン酸緩衝生理食塩液）、ラテックス液及び増幅反応液（５種類）を混合して調製した。ラテックス保存液には、青色系の着色剤を含有するポリスチレン系のラテックスビーズにアビジン(ストレプトアビジン)を被覆させたものを所定の濃度となるようにＰＢＳを用いて調製した。
（一本鎖ダブル型のための展開液組成）
ＰＢＳ ３０．０μｌ
ラテックス液 ５．０μｌ
増幅反応液 １０．０μｌ
ミリポア水 ５．０μｌ
合計 ５０μｌ
ＰＢＳ ３０．０μｌ
ラテックス液 ５．０μｌ
増幅反応液 １０．０μｌ
ミリポア水 ５．０μｌ
合計 ５０μｌ
展開液は、ＰＢＳ（リン酸緩衝生理食塩液）、ラテックス液及び増幅反応液（５種類）を混合後に、ミリポア水を混合して調製した。一本鎖ダブル型の展開液に用いたラテックス保存液には、青色系の着色剤を含有するポリスチレン系のラテックスビーズにＲプライマーの標識用配列に相補な配列の連結用ＤＮＡを固定したものを、一本鎖シングル型と同様の濃度となるようにＰＢＳを用いて調製した。なお、連結用ＤＮＡは、５’アミノ基修飾しておき、そのアミノ基とラテックス表面のカルボキシル基との間で共有結合を形成させて固定した。
（ハイブリダイゼーション工程）
上記各展開液各５０μｌを０．２ｍｌチューブに加えて、クロマトグラフィー本体（８種型及び４種型）の各下端部を差込んでクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応を開始した。展開液は約２０分間ですべて吸い上がりクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応は完了した。反応終了後、クロマトグラフィー本体を風乾させた後、目視による反応箇所の確認及び画像を撮影した。
上記各展開液各５０μｌを０．２ｍｌチューブに加えて、クロマトグラフィー本体（８種型及び４種型）の各下端部を差込んでクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応を開始した。展開液は約２０分間ですべて吸い上がりクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応は完了した。反応終了後、クロマトグラフィー本体を風乾させた後、目視による反応箇所の確認及び画像を撮影した。
（検出工程）
アレイの乾燥後の発色の有無を目視で確認した。結果を図２２に示す。図２２に示すように、一本鎖ダブル型の増幅産物でも発色は確認できたものの、一本鎖シングル型の増幅産物によればさらに濃い発色が見られ、一本鎖シングル型の部分二本鎖核酸を核酸クロマトグラフィーに供する本手法が一本鎖ダブル型の部分二本鎖核酸に対する効果を確認することができた。
アレイの乾燥後の発色の有無を目視で確認した。結果を図２２に示す。図２２に示すように、一本鎖ダブル型の増幅産物でも発色は確認できたものの、一本鎖シングル型の増幅産物によればさらに濃い発色が見られ、一本鎖シングル型の部分二本鎖核酸を核酸クロマトグラフィーに供する本手法が一本鎖ダブル型の部分二本鎖核酸に対する効果を確認することができた。
（１）メンブレンタイプＤＮＡクロマトグラフィー本体の作製
メルクミリポア製Hi-Flow Plus メンブレンシート（６０mm x ６００mm）に以下の表に示す塩基配列からなるＤＮＡプローブをそれぞれ含む溶液を、特開２００３−７５３０５号公報に記載されている吐出ユニット（インクジェット法）を用いた日本ガイシ株式会社ＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標）スポッターを用いて、これらのプローブを図１９に示す位置にスポットした。なお、ＤＮＡプローブとして使用した合成オリゴＤＮＡ配列は、文献（Analytical Biochemistry 364(2007)78-85）のSupplementary Table1記載のD1_1からD1_100の100種の塩基配列のうち任意の８種の配列である。プローブとして利用するため、この塩基配列からなるオリゴヌクレオチドの３’末端側にアミノ基を付加した。
さらに、赤色顔料を用いて図１９に示すように３つの位置マーカー領域を形成した。
メルクミリポア製Hi-Flow Plus メンブレンシート（６０mm x ６００mm）に以下の表に示す塩基配列からなるＤＮＡプローブをそれぞれ含む溶液を、特開２００３−７５３０５号公報に記載されている吐出ユニット（インクジェット法）を用いた日本ガイシ株式会社ＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標）スポッターを用いて、これらのプローブを図１９に示す位置にスポットした。なお、ＤＮＡプローブとして使用した合成オリゴＤＮＡ配列は、文献（Analytical Biochemistry 364(2007)78-85）のSupplementary Table1記載のD1_1からD1_100の100種の塩基配列のうち任意の８種の配列である。プローブとして利用するため、この塩基配列からなるオリゴヌクレオチドの３’末端側にアミノ基を付加した。
さらに、赤色顔料を用いて図１９に示すように３つの位置マーカー領域を形成した。
スポットの後、Ｓｐｅｃｔｒｏｌｉｎｅ社のＵＶ照射装置(ＸＬ−１５００ＵＶ Ｃｒｏｓｓｌｉｎｋｅｒ)を用いて、２８０ｎｍの成分を含む波長にて３００ｍＪ／ｃｍ２程度の紫外線光の照射を行ってプローブを固定化し、８種のプローブのプローブ領域と３種の位置マーカー領域と、それぞれ備えるクロマトグラフィー本体を得た。
（２）標的核酸の増幅
増幅に使用したゲノムＤＮＡとしてはヒト由来（コスモバイオ社市販品）のものを使用した。プライマーは、以下の表１６に示す塩基配列からなるプライマーセットを用いた。すなわち、Ｒプライマーはプローブ（Ｄ１−００１、００２、００３及び００５）とそれぞれ相補的なタグ配列＋連結部位Ｘ＋第１の識別配列を備えるようにし、Ｆプライマーは、第２の識別配列を備えるようにして、それぞれを使用して増幅を行った。増幅時には、原料のdNTPに加え、ビオチン-16-dUTP(ロシュ アプライド サイエンス社)を加えて、増幅後の二本鎖DNA中にビオチンが取り込まれるよう工夫し、タグ配列を一本鎖として有する部分二本鎖ＤＮＡ（一本鎖シングル型）を得た。比較例として、表１７に示す塩基配列からなるプライマーセットを用いて、同様に核酸増幅反応を実施した。上記同様、増幅時には、原料のdNTPに加え、ビオチン-16-dUTP(ロシュ アプライド サイエンス社)を加え、タグ配列と標識プローブを結合可能な標識用配列をそれぞれ一本鎖として有する部分二本鎖ＤＮＡ（一本鎖ダブル型）を得た。
増幅に使用したゲノムＤＮＡとしてはヒト由来（コスモバイオ社市販品）のものを使用した。プライマーは、以下の表１６に示す塩基配列からなるプライマーセットを用いた。すなわち、Ｒプライマーはプローブ（Ｄ１−００１、００２、００３及び００５）とそれぞれ相補的なタグ配列＋連結部位Ｘ＋第１の識別配列を備えるようにし、Ｆプライマーは、第２の識別配列を備えるようにして、それぞれを使用して増幅を行った。増幅時には、原料のdNTPに加え、ビオチン-16-dUTP(ロシュ アプライド サイエンス社)を加えて、増幅後の二本鎖DNA中にビオチンが取り込まれるよう工夫し、タグ配列を一本鎖として有する部分二本鎖ＤＮＡ（一本鎖シングル型）を得た。比較例として、表１７に示す塩基配列からなるプライマーセットを用いて、同様に核酸増幅反応を実施した。上記同様、増幅時には、原料のdNTPに加え、ビオチン-16-dUTP(ロシュ アプライド サイエンス社)を加え、タグ配列と標識プローブを結合可能な標識用配列をそれぞれ一本鎖として有する部分二本鎖ＤＮＡ（一本鎖ダブル型）を得た。
表１６に示すプライマーは、いずれも、プローブ（Ｄ１−００１、００２、００３及び００５）とそれぞれと相補的なタグ配列＋第１の識別配列であった。以上のプライマーは、いずれも日本遺伝子研究所製であった。
増幅反応における組成は以下のとおりとし、熱サイクル条件は、９５℃で１５分後、９５℃で３０秒、８０℃で１秒及び６４℃で６分を１セットとして４０サイクル実施し、その後、１０℃に冷却した。
（組成）
２×Qiagen multiplex PCR master mix ５．０μｌ
プライマーミックス(各５００ｎＭ） ０．５μｌ
ビオチン-16-dUTP(1mM) ０．５μｌ
ｄＨ2Ｏ ３．５μｌ
ゲノムＤＮＡ ０．５μｌ
合計 １０．０μｌ
２×Qiagen multiplex PCR master mix ５．０μｌ
プライマーミックス(各５００ｎＭ） ０．５μｌ
ビオチン-16-dUTP(1mM) ０．５μｌ
ｄＨ2Ｏ ３．５μｌ
ゲノムＤＮＡ ０．５μｌ
合計 １０．０μｌ
なお、プライマーミックスとして、表１６に示す増幅産物シングル１〜４ごとにプライマーセットを混ぜたものと、シングル１〜４の全てのプライマーセットを混ぜたものとの計５種類を準備した。また、同様に、表１７に示す増幅産物ダブル１〜４についても同様に、合計５種類のプライマーミックスを準備した。
増幅して得られた増幅産物についてはQIAGEN社のMinElute PCR Purification Kitにて精製を行った後、アガロース電気泳動により狙いとする長さの断片が増幅していることを確認した。さらに、各増幅産物の精製後の回収量を確認した。結果を図２３及び図２４に示す。
図２３及び図２４に示すように、一本鎖シングル型、二本鎖シングル型ともに増幅産物の増幅量及び精製後の回収量においては大差ない結果であった。
（３）クロマトグラフィー本体を用いた検出
（２）にて増幅した部分二本鎖ＤＮＡを用いての核酸クロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応及びその検出を行った。操作は、一本鎖シングル型及び二本鎖シングル型についてそれぞれ以下のとおりとした。
（２）にて増幅した部分二本鎖ＤＮＡを用いての核酸クロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応及びその検出を行った。操作は、一本鎖シングル型及び二本鎖シングル型についてそれぞれ以下のとおりとした。
（一本鎖シングル型のための展開液組成）
ＰＢＳ ３０．０μｌ
ラテックス液 ５．０μｌ
増幅反応液 １０．０μｌ
ミリポア水 ５．０μｌ
合計 ５０μｌ
ＰＢＳ ３０．０μｌ
ラテックス液 ５．０μｌ
増幅反応液 １０．０μｌ
ミリポア水 ５．０μｌ
合計 ５０μｌ
展開液は、ＰＢＳ（リン酸緩衝生理食塩液）、ラテックス液及び増幅反応液（５種類）を混合して調製した。ラテックス保存液には、青色系の着色剤を含有するポリスチレン系のラテックスビーズにアビジン(ストレプトアビジン)を被覆させたものを所定の濃度となるようにＰＢＳを用いて調製した。
（二本鎖シングル型のための展開液組成）
ＰＢＳ ３０．０μｌ
ラテックス液 ５．０μｌ
増幅反応液 １０．０μｌ
ミリポア水 ５．０μｌ
合計 ５０μｌ
ＰＢＳ ３０．０μｌ
ラテックス液 ５．０μｌ
増幅反応液 １０．０μｌ
ミリポア水 ５．０μｌ
合計 ５０μｌ
展開液は、ＰＢＳ（リン酸緩衝生理食塩液）、ラテックス液及び増幅反応液（５種類）を混合後に、ビオチン水溶液を混合して調製した。ラテックス保存液には、青色系の着色剤を含有するポリスチレン系のラテックスビーズにアビジン(ストレプトアビジン)を被覆させたものを所定の濃度となるようにＰＢＳを用いて調製した。
（ハイブリダイゼーション工程）
上記各展開液各５０μｌを０．２ｍｌチューブに加えて、クロマトグラフィー本体の各下端部を差込んでクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応を開始した。展開液は約２０分間ですべて吸い上がりクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応は完了した。反応終了後、クロマトグラフィー本体を風乾させた後、目視による反応箇所の確認及び画像を撮影した。
上記各展開液各５０μｌを０．２ｍｌチューブに加えて、クロマトグラフィー本体の各下端部を差込んでクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応を開始した。展開液は約２０分間ですべて吸い上がりクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応は完了した。反応終了後、クロマトグラフィー本体を風乾させた後、目視による反応箇所の確認及び画像を撮影した。
（検出工程）
アレイの乾燥後の発色の有無を目視で確認した。結果を図２５に示す。図２５に示すように、二本鎖シングル型の増幅産物では発色を確認できなかった。一方で、一本鎖シングル型の増幅産物では濃い発色が見られ、本手法が効果を有することを確認することができた。
アレイの乾燥後の発色の有無を目視で確認した。結果を図２５に示す。図２５に示すように、二本鎖シングル型の増幅産物では発色を確認できなかった。一方で、一本鎖シングル型の増幅産物では濃い発色が見られ、本手法が効果を有することを確認することができた。
（１）メンブレンタイプＤＮＡクロマトグラフィー本体の作製
メルクミリポア製Hi-Flow Plus メンブレンシート（６０mm x ６００mm）に以下の表に示す塩基配列からなるＤＮＡプローブをそれぞれ含む溶液を、特開２００３−７５３０５号公報に記載されている吐出ユニット（インクジェット法）を用いた日本ガイシ株式会社ＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標）スポッターを用いて、これらのプローブを図１９に示す位置にスポットした。なお、ＤＮＡプローブとして使用した合成オリゴＤＮＡ配列は、文献（Analytical Biochemistry 364(2007)78-85）のSupplementary Table1記載のD1_1からD1_100の100種の塩基配列のうち任意の８種の配列である。プローブとして利用するため、この塩基配列からなるオリゴヌクレオチドの３’末端側にアミノ基を付加した。
さらに、赤色顔料を用いて図１９に示すように３つの位置マーカー領域を形成した。
メルクミリポア製Hi-Flow Plus メンブレンシート（６０mm x ６００mm）に以下の表に示す塩基配列からなるＤＮＡプローブをそれぞれ含む溶液を、特開２００３−７５３０５号公報に記載されている吐出ユニット（インクジェット法）を用いた日本ガイシ株式会社ＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標）スポッターを用いて、これらのプローブを図１９に示す位置にスポットした。なお、ＤＮＡプローブとして使用した合成オリゴＤＮＡ配列は、文献（Analytical Biochemistry 364(2007)78-85）のSupplementary Table1記載のD1_1からD1_100の100種の塩基配列のうち任意の８種の配列である。プローブとして利用するため、この塩基配列からなるオリゴヌクレオチドの３’末端側にアミノ基を付加した。
さらに、赤色顔料を用いて図１９に示すように３つの位置マーカー領域を形成した。
スポットの後、Ｓｐｅｃｔｒｏｌｉｎｅ社のＵＶ照射装置(ＸＬ−１５００ＵＶ Ｃｒｏｓｓｌｉｎｋｅｒ)を用いて、２８０ｎｍの成分を含む波長にて３００ｍＪ／ｃｍ２程度の紫外線光の照射を行ってプローブを固定化し、８種のプローブのプローブ領域と３種の位置マーカー領域と、それぞれ備えるクロマトグラフィー本体を得た。
（２）標的核酸の増幅
増幅に使用したゲノムＤＮＡとしてはヒト由来（コスモバイオ社市販品）のものを使用した。プライマーは、以下の表１９に示す塩基配列からなるプライマーセットを用いた。すなわち、Ｒプライマーはプローブ（Ｄ１−００１、００２、００３及び００５）とそれぞれ相補的なタグ配列＋連結部位Ｘ＋第１の識別配列を備えるようにし、Ｆプライマーは、タグ配列＋第２の識別配列を備えるようにして、それぞれを使用して増幅を行った。増幅時には、上記２種のプライマーに加え、Rプライマー中のタグ配列の５‘末端をビオチン修飾したプライマー(R’プライマー：表２０)を加えて、増幅後の二本鎖DNA末端にビオチンが取り込まれるよう工夫し、タグ配列を一本鎖として有する部分二本鎖ＤＮＡを得た。
増幅に使用したゲノムＤＮＡとしてはヒト由来（コスモバイオ社市販品）のものを使用した。プライマーは、以下の表１９に示す塩基配列からなるプライマーセットを用いた。すなわち、Ｒプライマーはプローブ（Ｄ１−００１、００２、００３及び００５）とそれぞれ相補的なタグ配列＋連結部位Ｘ＋第１の識別配列を備えるようにし、Ｆプライマーは、タグ配列＋第２の識別配列を備えるようにして、それぞれを使用して増幅を行った。増幅時には、上記２種のプライマーに加え、Rプライマー中のタグ配列の５‘末端をビオチン修飾したプライマー(R’プライマー：表２０)を加えて、増幅後の二本鎖DNA末端にビオチンが取り込まれるよう工夫し、タグ配列を一本鎖として有する部分二本鎖ＤＮＡを得た。
連結部位Ｘは、プロピレンオキシ鎖であり、ホスホアミダイト（スペーサーホスホアミダイトＣ３、グレンリサーチ社製）を用いて導入した。
増幅反応における組成は以下のとおりとし、熱サイクル条件は、９５℃で１５分後、９５℃で３０秒、８０℃で１秒及び６４℃で６分を１セットとして４０サイクル実施し、その後、１０℃に冷却した。
（組成）
２×Qiagen multiplex PCR master mix ５．０μｌ
プライマーミックス(F,R各５００ｎＭ） ０．５μｌ
R’プライマー(2μＭ） ０．５μｌ
ｄＨ2Ｏ ３．０μｌ
ゲノムＤＮＡ ０．５μｌ
合計 １０．０μｌ
２×Qiagen multiplex PCR master mix ５．０μｌ
プライマーミックス(F,R各５００ｎＭ） ０．５μｌ
R’プライマー(2μＭ） ０．５μｌ
ｄＨ2Ｏ ３．０μｌ
ゲノムＤＮＡ ０．５μｌ
合計 １０．０μｌ
なお、プライマーミックスとして、表１９に示す増幅産物１〜４ごとにプライマーセットを混ぜたものと、増幅産物１〜４の全てのプライマーセットを混ぜたものとの計５種類を準備した。
増幅して得られた増幅産物についてはQIAGEN社のMinElute PCR Purification Kitにて精製を行った後、アガロース電気泳動により狙いとする長さの断片が増幅していることを確認した。さらに、各増幅産物の精製後の回収量を確認した。結果を図２６及び図２７に示す。
図２６及び図２７に示すように、断片間での増幅には影響なく、かつ大差ない結果であった。
（３）クロマトグラフィー本体を用いた検出
（２）にて増幅した部分二本鎖ＤＮＡを用いての核酸クロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応及びその検出を行った。操作は、以下のとおりとした。
（２）にて増幅した部分二本鎖ＤＮＡを用いての核酸クロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応及びその検出を行った。操作は、以下のとおりとした。
（展開液組成）
ＰＢＳ ３０．０μｌ
ラテックス液 ５．０μｌ
増幅反応液 １０．０μｌ
ミリポア水 ５．０μｌ
合計 ５０μｌ
ＰＢＳ ３０．０μｌ
ラテックス液 ５．０μｌ
増幅反応液 １０．０μｌ
ミリポア水 ５．０μｌ
合計 ５０μｌ
展開液は、ＰＢＳ（リン酸緩衝生理食塩液）、ラテックス液及び増幅反応液（５種類）を混合して調製した。ラテックス保存液には、青色系の着色剤を含有するポリスチレン系のラテックスビーズにアビジン(ストレプトアビジン)を被覆させたものを所定の濃度となるようにＰＢＳを用いて調製した。
（ハイブリダイゼーション工程）
上記各展開液各５０μｌを０．２ｍｌチューブに加えて、クロマトグラフィー本体の各下端部を差込んでクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応を開始した。展開液は約２０分間ですべて吸い上がりクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応は完了した。反応終了後、クロマトグラフィー本体を風乾させた後、目視による反応箇所の確認及び画像を撮影した。
上記各展開液各５０μｌを０．２ｍｌチューブに加えて、クロマトグラフィー本体の各下端部を差込んでクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応を開始した。展開液は約２０分間ですべて吸い上がりクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応は完了した。反応終了後、クロマトグラフィー本体を風乾させた後、目視による反応箇所の確認及び画像を撮影した。
（検出工程）
アレイの乾燥後の発色の有無を目視で確認した。結果を図２８に示す。図２８に示すように、各増幅産物ごとに狙いとする位置で濃い発色が見られ、本手法が効果を有することを確認することができた。
アレイの乾燥後の発色の有無を目視で確認した。結果を図２８に示す。図２８に示すように、各増幅産物ごとに狙いとする位置で濃い発色が見られ、本手法が効果を有することを確認することができた。
（１）メンブレンタイプＤＮＡクロマトグラフィー本体の作製
メルクミリポア製Hi-Flow Plus メンブレンシート（６０mm x ６００mm）に以下の表に示す塩基配列からなるＤＮＡプローブをそれぞれ含む溶液を、特開２００３−７５３０５号公報に記載されている吐出ユニット（インクジェット法）を用いた日本ガイシ株式会社ＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標）スポッターを用いて、これらのプローブを図１９に示す位置にスポットした。なお、ＤＮＡプローブとして使用した合成オリゴＤＮＡ配列は、文献（Analytical Biochemistry 364(2007)78-85）のSupplementary Table1記載のD1_1からD1_100の100種の塩基配列のうち任意の８種の配列である。プローブとして利用するため、この塩基配列からなるオリゴヌクレオチドの３’末端側にアミノ基を付加した。さらに、赤色顔料を用いて図１９に示すように３つの位置マーカー領域を形成した。
メルクミリポア製Hi-Flow Plus メンブレンシート（６０mm x ６００mm）に以下の表に示す塩基配列からなるＤＮＡプローブをそれぞれ含む溶液を、特開２００３−７５３０５号公報に記載されている吐出ユニット（インクジェット法）を用いた日本ガイシ株式会社ＧＥＮＥＳＨＯＴ（登録商標）スポッターを用いて、これらのプローブを図１９に示す位置にスポットした。なお、ＤＮＡプローブとして使用した合成オリゴＤＮＡ配列は、文献（Analytical Biochemistry 364(2007)78-85）のSupplementary Table1記載のD1_1からD1_100の100種の塩基配列のうち任意の８種の配列である。プローブとして利用するため、この塩基配列からなるオリゴヌクレオチドの３’末端側にアミノ基を付加した。さらに、赤色顔料を用いて図１９に示すように３つの位置マーカー領域を形成した。
スポットの後、Ｓｐｅｃｔｒｏｌｉｎｅ社のＵＶ照射装置(ＸＬ−１５００ＵＶ Ｃｒｏｓｓｌｉｎｋｅｒ)を用いて、２８０ｎｍの成分を含む波長にて３００ｍＪ／ｃｍ２程度の紫外線光の照射を行ってプローブを固定化し、８種のプローブのプローブ領域と３種の位置マーカー領域と、それぞれ備えるクロマトグラフィー本体を得た。
（２）標的核酸の増幅
増幅に使用したゲノムＤＮＡとしてはヒト由来（コスモバイオ社市販品）のものを使用した。プライマーは、以下の表２２に示す塩基配列からなるプライマーセットを用いた。すなわち、Ｒプライマーはプローブ（Ｄ１−００１、００２、００３及び００５）とそれぞれ相補的なタグ配列＋連結部位Ｘ＋第１の識別配列を備えるようにし、Ｆプライマーは、タグ配列＋第２の識別配列を備えるようにして、それぞれを使用して増幅を行った。増幅時には、上記２種のプライマーに加え、Rプライマー中のタグ相補配列の３‘末端をビオチン修飾したプライマー(R’プライマー：表２３)を加えて、増幅後の二本鎖DNA末端にR’プライマーを介してビオチンが付加されるよう工夫し、タグ配列を一本鎖として有する部分二本鎖ＤＮＡを得た。
増幅に使用したゲノムＤＮＡとしてはヒト由来（コスモバイオ社市販品）のものを使用した。プライマーは、以下の表２２に示す塩基配列からなるプライマーセットを用いた。すなわち、Ｒプライマーはプローブ（Ｄ１−００１、００２、００３及び００５）とそれぞれ相補的なタグ配列＋連結部位Ｘ＋第１の識別配列を備えるようにし、Ｆプライマーは、タグ配列＋第２の識別配列を備えるようにして、それぞれを使用して増幅を行った。増幅時には、上記２種のプライマーに加え、Rプライマー中のタグ相補配列の３‘末端をビオチン修飾したプライマー(R’プライマー：表２３)を加えて、増幅後の二本鎖DNA末端にR’プライマーを介してビオチンが付加されるよう工夫し、タグ配列を一本鎖として有する部分二本鎖ＤＮＡを得た。
連結部位Ｘは、プロピレンオキシ鎖であり、ホスホアミダイト（スペーサーホスホアミダイトＣ３、グレンリサーチ社製）を用いて導入した。
増幅反応における組成は以下のとおりとし、熱サイクル条件は、９５℃で１５分後、９５℃で３０秒、８０℃で１秒及び６４℃で６分を１セットとして４０サイクル実施し、その後、１０℃に冷却した。
（組成）
10×TITANIUM Taq DNA Polymerase ０．２μｌ
50×dＮＴＰ Mix ０．２μｌ
10×TITANIUM Taq PCR buffer １．０μｌ
プライマーミックス(F,R各５００ｎＭ） ０．５μｌ
R’プライマー(2μＭ） ０．５μｌ
ｄＨ2Ｏ ７．１μｌ
ゲノムＤＮＡ ０．５μｌ
合計 １０．０μｌ
なお、プライマーミックスとして、表２２に示す増幅産物１〜４ごとにプライマーセットを混ぜたものと増幅産物１〜４の全てのプライマーセットを混ぜたものとの計５種類を準備した。
10×TITANIUM Taq DNA Polymerase ０．２μｌ
50×dＮＴＰ Mix ０．２μｌ
10×TITANIUM Taq PCR buffer １．０μｌ
プライマーミックス(F,R各５００ｎＭ） ０．５μｌ
R’プライマー(2μＭ） ０．５μｌ
ｄＨ2Ｏ ７．１μｌ
ゲノムＤＮＡ ０．５μｌ
合計 １０．０μｌ
なお、プライマーミックスとして、表２２に示す増幅産物１〜４ごとにプライマーセットを混ぜたものと増幅産物１〜４の全てのプライマーセットを混ぜたものとの計５種類を準備した。
増幅して得られた増幅産物についてはQIAGEN社のMinElute PCR Purification Kitにて精製を行った後、アガロース電気泳動により狙いとする長さの断片が増幅していることを確認した。さらに、各増幅産物の精製後の回収量を確認した。結果を図２９及び図３０に示す。
図２９及び図３０に示すように、断片間での増幅には影響なく、かつ大差ない結果であった。
（３）クロマトグラフィー本体を用いた検出
（２）にて増幅した部分二本鎖ＤＮＡを用いての核酸クロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応及びその検出を行った。操作は、以下のとおりとした。
（２）にて増幅した部分二本鎖ＤＮＡを用いての核酸クロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応及びその検出を行った。操作は、以下のとおりとした。
（展開液組成）
ＰＢＳ ３０．０μｌ
ラテックス液 ５．０μｌ
増幅反応液 １０．０μｌ
ミリポア水 ５．０μｌ
合計 ５０μｌ
ＰＢＳ ３０．０μｌ
ラテックス液 ５．０μｌ
増幅反応液 １０．０μｌ
ミリポア水 ５．０μｌ
合計 ５０μｌ
展開液は、ＰＢＳ（リン酸緩衝生理食塩液）、ラテックス液及び増幅反応液（５種類）を混合して調製した。ラテックス保存液には、青色系の着色剤を含有するポリスチレン系のラテックスビーズにアビジン(ストレプトアビジン)を被覆させたものを所定の濃度となるようにＰＢＳを用いて調製した。
（ハイブリダイゼーション工程）
上記各展開液各５０μｌを０．２ｍｌチューブに加えて、クロマトグラフィー本体の各下端部を差込んでクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応を開始した。展開液は約２０分間ですべて吸い上がりクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応は完了した。反応終了後、クロマトグラフィー本体を風乾させた後、目視による反応箇所の確認及び画像を撮影した。
上記各展開液各５０μｌを０．２ｍｌチューブに加えて、クロマトグラフィー本体の各下端部を差込んでクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応を開始した。展開液は約２０分間ですべて吸い上がりクロマトグラフィーによるハイブリダイゼーション反応は完了した。反応終了後、クロマトグラフィー本体を風乾させた後、目視による反応箇所の確認及び画像を撮影した。
（検出工程）
アレイの乾燥後の発色の有無を目視で確認した。結果を図３１に示す。図３１に示すように、各増幅産物ごとに狙いとする位置で濃い発色が見られ、本手法が効果を有することを確認することができた。
アレイの乾燥後の発色の有無を目視で確認した。結果を図３１に示す。図３１に示すように、各増幅産物ごとに狙いとする位置で濃い発色が見られ、本手法が効果を有することを確認することができた。
以下の実施例では、実施例１で得た合計１８種類の増幅産物について、塩基配列解析（ワンパスシークエンス）を行った。塩基配列解析は以下のようにして行った。
各増幅サンプルをタカラバイオ株式会社にて両鎖の塩基配列解析（ワンパスシークエンス）を実施し、プライマー配列を含んでの塩基配列の結果を得た。得られた結果を以下の表２４〜表２６(片鎖のみ)に示す。
Ｐ２系プライマーを用いた場合、タグ配列の相補鎖も増幅されていることが確認できた。一方で、Ｐ３系プライマーを用いた場合、タグ配列の相補鎖は増幅されておらず、Ｐ１系プライマーを用いた場合と同じ配列のみしか二本鎖として増幅されていないことが確認できた。以上のことから、Ｐ３系プライマーを用いることで、タグ配列部分は1本鎖のまま保持されており、高効率なハイブリダイゼーション結果に寄与しうる結果を確認できた。
配列番号１〜１００：プローブ
Claims (12)
- 標的核酸を検出するためのクロマトグラフィーに用いられるクロマトグラフィー本体であって、
固相担体と、
前記固相担体上の異なる位置に配され、目視で視認可能に標識された前記標的核酸を検出するための１又は２以上のプローブを固定した互いに平行のライン状である３以上のプローブ領域と、
前記固相担体上の前記３以上のプローブ領域とは異なる位置に配された互いに平行のライン状であるとともに前記プローブ領域に対しても平行状であって予め目視で視認可能に顔料によって着色された２以上の位置マーカー領域と、
を備え、
前記２以上の位置マーカー領域のうちの２つの位置マーカー領域の間に、前記３以上のプローブ領域のうちの３つのプローブ領域が等間隔状で配されている、クロマトグラフィー本体。 - 前記２つの位置マーカーの前記３つのプローブ領域が固定されている側とは反対側に前記３つのプローブ領域間の間隔と同等の間隔で１以上の前記プローブ領域が配されている、請求項１に記載のクロマトグラフィー本体。
- 前記固相担体は、その一つの端部に核酸クロマトグラフィーの展開媒体と接触させるための先細り状の液接触部又は液接触部形成マーカーを備える、請求項１又は２に記載のクロマトグラフィー本体。
- 前記液接触部形成マーカーは、前記固相担体の一部を切断して前記液接触部を形成するための切断部位を視認可能とするマーカーである、請求項３に記載のクロマトグラフィー本体。
- 前記液接触部形成マーカーは、前記切断部位に沿って前記固相担体を切断可能に脆弱性を付与する、請求項４に記載のクロマトグラフィー本体。
- 標的核酸の核酸クロマトグラフィーによる検出方法であって、
１又は２以上の標的核酸に関連付けられた１又は２以上の部分二本鎖核酸と固相担体上にあって前記１又は２以上の標的核酸に関連付けられた１又は２以上のプローブとを、核酸クロマトグラフィーによりハイブリダイズ可能な条件下で接触させるハイブリダイゼーション工程と、
前記ハイブリダイゼーション工程で生成したハイブリダイズ産物を検出する検出工程と、
を備え、
前記１又は２以上の部分二本鎖核酸は、第１の鎖の５’末端側に一本鎖のタグ部であって前記プローブと特異的にハイブリダイズ可能なタグ配列を有し、少なくとも一部に目視で視認可能な標識物質又は標識物質結合物質を備え、
前記ハイブリダイゼーション工程は、請求項１〜５のいずれかに記載のクロマトグラフィー本体を用いて実施する、方法。 - 前記標識物質は、着色粒子である、請求項６に記載の方法。
- 前記ハイブリダイゼーション工程に先立って、
前記タグ配列と前記標的核酸の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記タグ配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部を有する第１のプライマーと、前記標的核酸の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列と、前記標識物質又は前記標識物質結合物質とを備える第２のプライマーと、を用いて、標的核酸に対して増幅反応を実施して増幅産物として前記部分二本鎖核酸を取得する増幅工程、を備える、請求項６又は７に記載の方法。 - 前記ハイブリダイゼーション工程に先立って、
前記タグ配列と前記標的核酸の第１の塩基配列を識別する第１の識別配列とを含み、前記タグ配列と前記第１の識別配列との間に、ＤＮＡポリメラーゼ反応を抑制又は停止可能な連結部を有する第１のプライマーと前記標的核酸の第２の塩基配列を識別する第２の識別配列を備える第２のプライマーとを用いるとともに、前記標識物質又は前記標識物質結合物質を備えるヌクレオシド誘導体三リン酸を含むヌクレオシド三リン酸を用いて標的核酸に対して増幅反応を実施して増幅産物として前記部分二本鎖核酸を取得する増幅工程、を備える、請求項６又は７に記載の方法。 - 前記増幅工程後の前記増幅産物を含有する増幅反応液を含む展開媒体と前記固相担体の一部とを接触させて、前記ハイブリダイゼーション工程を実施する、請求項８又は９に記載の方法。
- 前記増幅工程後の前記増幅産物を含有する増幅反応液と前記標識物質結合物質に結合する標識物質とを含む前記展開媒体を準備し、この展開媒体と前記固相担体の少なくとも一部とを接触させて、前記ハイブリダイゼーション工程を実施する、請求項１０に記載の方法。
- 前記増幅工程を実施し前記増幅反応溶液を保持するキャビティに少なくとも前記標識物質を供給して前記展開媒体を準備し、前記キャビティ内において前記展開媒体と前記固相担体の一部とを接触させる、請求項１１に記載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2014023882A JP6076273B2 (ja) | 2011-09-14 | 2014-02-10 | 標的核酸の検出方法 |
Applications Claiming Priority (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JPPCT/JP2011/071048 | 2011-09-14 | ||
| PCT/JP2011/071048 WO2013038534A1 (ja) | 2011-09-14 | 2011-09-14 | 標的核酸の検出方法 |
| JP2012173347 | 2012-08-03 | ||
| JP2012173347 | 2012-08-03 | ||
| JP2014023882A JP6076273B2 (ja) | 2011-09-14 | 2014-02-10 | 標的核酸の検出方法 |
Related Parent Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2012549585A Division JP5503021B2 (ja) | 2011-09-14 | 2012-09-14 | 標的核酸の検出方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2014079260A JP2014079260A (ja) | 2014-05-08 |
| JP6076273B2 true JP6076273B2 (ja) | 2017-02-08 |
Family
ID=47883444
Family Applications (4)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2012549585A Active JP5503021B2 (ja) | 2011-09-14 | 2012-09-14 | 標的核酸の検出方法 |
| JP2014023882A Active JP6076273B2 (ja) | 2011-09-14 | 2014-02-10 | 標的核酸の検出方法 |
| JP2018073278A Pending JP2018143245A (ja) | 2011-09-14 | 2018-04-05 | 標的核酸の検出方法 |
| JP2021051302A Pending JP2021100429A (ja) | 2011-09-14 | 2021-03-25 | 標的核酸の検出方法 |
Family Applications Before (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2012549585A Active JP5503021B2 (ja) | 2011-09-14 | 2012-09-14 | 標的核酸の検出方法 |
Family Applications After (2)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2018073278A Pending JP2018143245A (ja) | 2011-09-14 | 2018-04-05 | 標的核酸の検出方法 |
| JP2021051302A Pending JP2021100429A (ja) | 2011-09-14 | 2021-03-25 | 標的核酸の検出方法 |
Country Status (8)
| Country | Link |
|---|---|
| US (2) | US20140206567A1 (ja) |
| EP (1) | EP2762562B1 (ja) |
| JP (4) | JP5503021B2 (ja) |
| CN (1) | CN103797119B (ja) |
| ES (1) | ES2736977T3 (ja) |
| MY (1) | MY157586A (ja) |
| SG (1) | SG11201400635UA (ja) |
| WO (1) | WO2013039228A1 (ja) |
Families Citing this family (18)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP3348640B1 (en) | 2010-11-24 | 2019-09-11 | Kaneka Corporation | Amplified nucleic acid detection method and detection device |
| US9783844B2 (en) | 2012-04-27 | 2017-10-10 | Kaneka Corporation | Method for amplifying nucleic acid and method for detecting amplified nucleic acid |
| JP2015019591A (ja) * | 2013-07-16 | 2015-02-02 | 国立大学法人東北大学 | 核酸クロマトグラフィー |
| JP5967785B2 (ja) * | 2013-07-24 | 2016-08-10 | 日本碍子株式会社 | 標的核酸の検出方法 |
| US10392652B2 (en) | 2013-11-22 | 2019-08-27 | Kaneka Corporation | Micro RNA detection method using two primers to produce an amplified double stranded DNA fragment having a single stranded region at one end |
| JP2016010338A (ja) * | 2014-06-27 | 2016-01-21 | 国立大学法人東北大学 | 核酸検出用デバイス |
| WO2017043114A1 (ja) * | 2015-09-07 | 2017-03-16 | 株式会社ファスマック | 等温増幅反応産物の多項目同時検出方法 |
| JP6977978B2 (ja) * | 2016-01-28 | 2021-12-08 | 株式会社Tba | 標的核酸の検出方法 |
| CN108531622B (zh) * | 2017-03-06 | 2021-07-20 | 广州市宝创生物技术有限公司 | 结核分枝杆菌复合群和鸟-胞内分枝杆菌复合群的杂交膜条和检测试剂盒 |
| JP2020096533A (ja) * | 2017-03-31 | 2020-06-25 | 国立大学法人東北大学 | ５種マラリア原虫のマルチプレックス検出法 |
| KR101899371B1 (ko) * | 2017-07-25 | 2018-10-29 | (주)엔바이오텍 | 핵산 복합체 페어, 핵산 복합체 페어를 포함하는 pcr용 키트, 및 핵산 복합체 페어를 이용한 타겟 검출 방법 |
| JP2019062745A (ja) * | 2017-09-28 | 2019-04-25 | 株式会社Ｄｎａチップ研究所 | 蜂病の原因菌を検出する方法及びその検出キット |
| JP2021510085A (ja) * | 2018-01-05 | 2021-04-15 | クオシェント スイッス エスエー | 自己組織型診断アレイプラットフォーム |
| CN108931592A (zh) * | 2018-05-25 | 2018-12-04 | 金花企业(集团)股份有限公司西安金花制药厂 | 一种转移因子口服液中核苷酸类物质的定量检测方法 |
| CN109306376B (zh) * | 2018-08-03 | 2022-06-24 | 国家卫生计生委科学技术研究所 | 检验核酸扩增均一性的质量控制标准品及其制备方法 |
| WO2020163397A2 (en) * | 2019-02-04 | 2020-08-13 | Akoya Biosciences, Inc. | Analyte detection by selective labeling of biological samples |
| JP7440882B2 (ja) * | 2019-11-13 | 2024-02-29 | 国立研究開発法人農業・食品産業技術総合研究機構 | アザミウマ類の分子同定技術 |
| CN112634981B (zh) * | 2020-12-14 | 2024-04-19 | 北京大学 | 数据固定放置的数据处理装置及方法 |
Family Cites Families (32)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB8920097D0 (en) * | 1989-09-06 | 1989-10-18 | Ici Plc | Amplification processes |
| ATE198598T1 (de) * | 1990-11-08 | 2001-01-15 | Hybridon Inc | Verbindung von mehrfachreportergruppen auf synthetischen oligonukleotiden |
| US6037127A (en) * | 1994-03-31 | 2000-03-14 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Method for detection of non-denatured nucleic acid fragments |
| US5962271A (en) * | 1996-01-03 | 1999-10-05 | Cloutech Laboratories, Inc. | Methods and compositions for generating full-length cDNA having arbitrary nucleotide sequence at the 3'-end |
| US6124092A (en) * | 1996-10-04 | 2000-09-26 | The Perkin-Elmer Corporation | Multiplex polynucleotide capture methods and compositions |
| US6232066B1 (en) * | 1997-12-19 | 2001-05-15 | Neogen, Inc. | High throughput assay system |
| US6417180B1 (en) * | 1998-10-07 | 2002-07-09 | University Of Massachusetts | Zinc finger-reactive antimicrobial compounds |
| GB0016833D0 (en) * | 2000-07-07 | 2000-08-30 | Lee Helen | Improved dipstick assays (2) |
| DE10046184A1 (de) * | 2000-09-18 | 2002-04-04 | November Ag Molekulare Medizin | Verfahren zum Nachweis mindestens einer Nukleinsäuresequenz |
| JP3600198B2 (ja) | 2001-08-31 | 2004-12-08 | 日本碍子株式会社 | 液滴吐出装置 |
| JP2003108126A (ja) | 2001-09-28 | 2003-04-11 | Kawai Musical Instr Mfg Co Ltd | 電子楽器 |
| WO2003050304A1 (en) * | 2001-12-08 | 2003-06-19 | Seegene, Inc | Annealing control primer system for regulating primer annealing specificity and its applications |
| AU2002329104B2 (en) * | 2001-12-08 | 2005-08-18 | Seegene, Inc. | Annealing control primer and its uses |
| JP2003194817A (ja) * | 2001-12-26 | 2003-07-09 | Techno Network Shikoku Co Ltd | イムノクロマトグラフ分析の測定方法 |
| EP1558744B1 (en) * | 2002-10-30 | 2011-06-15 | Nuevolution A/S | Enzymatic encoding |
| JP2004154075A (ja) * | 2002-11-07 | 2004-06-03 | Mitsubishi Kagaku Iatron Inc | 新規の分析方法 |
| JP2004187607A (ja) * | 2002-12-12 | 2004-07-08 | Olympus Corp | 核酸増幅産物に関する情報を得る方法 |
| JP2006101844A (ja) | 2004-10-08 | 2006-04-20 | Univ Of Tokyo | 標的核酸を検出又は定量する方法 |
| CA2592204C (en) * | 2004-12-23 | 2013-03-12 | I-Stat Corporation | Nucleic acid diagnostics system and methods |
| JP4535266B2 (ja) | 2005-02-04 | 2010-09-01 | 国立大学法人 東京大学 | Ｄｎａコンピュータ技術による核酸の定量検出方法 |
| JPWO2006095550A1 (ja) * | 2005-03-04 | 2008-08-14 | 国立大学法人京都大学 | Ｐｃｒプライマー、それを利用したｐｃｒ法及びｐｃｒ増幅産物、並びにｐｃｒ増幅産物を利用するデバイス及びｄｎａ−タンパク複合体 |
| JP5438320B2 (ja) * | 2005-10-03 | 2014-03-12 | アプライド バイオシステムズ リミテッド ライアビリティー カンパニー | 核酸を増幅するための組成物、方法およびキット |
| JP5165933B2 (ja) | 2007-06-12 | 2013-03-21 | 日本碍子株式会社 | 標的核酸中の特定部分配列の検出方法及びアレイ |
| JP5165936B2 (ja) | 2007-06-20 | 2013-03-21 | 日本碍子株式会社 | 標的核酸中の変異の検出方法及びアレイ |
| JPWO2009034842A1 (ja) | 2007-09-11 | 2010-12-24 | 株式会社カネカ | 核酸検出方法、および核酸検出キット |
| EP2479287B1 (en) * | 2008-05-13 | 2014-07-23 | Gen-Probe Incorporated | Inactivatable target capture oligomers for use in the selective hybridization and capture of target nucleic acid sequences |
| JP5231106B2 (ja) * | 2008-07-03 | 2013-07-10 | 株式会社カイノス | 検体検査用具 |
| EP2789689B1 (en) * | 2009-06-29 | 2016-04-27 | Luminex Corporation | Chimeric primers with hairpin conformations and methods of using same |
| US8409802B2 (en) * | 2009-08-14 | 2013-04-02 | Roche Molecular Systems, Inc. | Format of probes to detect nucleic acid differences |
| WO2011100057A2 (en) * | 2010-02-09 | 2011-08-18 | Eugene Spier | Methods and compositions for universal detection of nucleic acids |
| JP4638555B1 (ja) * | 2010-09-08 | 2011-02-23 | 田中貴金属工業株式会社 | 核酸又は免疫クロマトグラフィー用試薬組成物、核酸又は免疫クロマトグラフィー測定方法及び核酸又は免疫クロマトグラフィー測定用キット |
| EP3348640B1 (en) * | 2010-11-24 | 2019-09-11 | Kaneka Corporation | Amplified nucleic acid detection method and detection device |
-
2012
- 2012-09-14 WO PCT/JP2012/073710 patent/WO2013039228A1/ja active Application Filing
- 2012-09-14 SG SG11201400635UA patent/SG11201400635UA/en unknown
- 2012-09-14 MY MYPI2014000740A patent/MY157586A/en unknown
- 2012-09-14 EP EP12832061.1A patent/EP2762562B1/en active Active
- 2012-09-14 JP JP2012549585A patent/JP5503021B2/ja active Active
- 2012-09-14 CN CN201280045065.7A patent/CN103797119B/zh active Active
- 2012-09-14 ES ES12832061T patent/ES2736977T3/es active Active
-
2014
- 2014-02-10 JP JP2014023882A patent/JP6076273B2/ja active Active
- 2014-03-13 US US14/208,070 patent/US20140206567A1/en not_active Abandoned
-
2017
- 2017-11-22 US US15/820,798 patent/US20180119211A1/en not_active Abandoned
-
2018
- 2018-04-05 JP JP2018073278A patent/JP2018143245A/ja active Pending
-
2021
- 2021-03-25 JP JP2021051302A patent/JP2021100429A/ja active Pending
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| MY157586A (en) | 2016-06-16 |
| JPWO2013039228A1 (ja) | 2015-03-26 |
| SG11201400635UA (en) | 2014-09-26 |
| JP2018143245A (ja) | 2018-09-20 |
| US20140206567A1 (en) | 2014-07-24 |
| EP2762562B1 (en) | 2019-05-22 |
| CN103797119A (zh) | 2014-05-14 |
| JP2021100429A (ja) | 2021-07-08 |
| US20180119211A1 (en) | 2018-05-03 |
| CN103797119B (zh) | 2017-10-27 |
| JP5503021B2 (ja) | 2014-05-28 |
| EP2762562A4 (en) | 2015-05-06 |
| WO2013039228A1 (ja) | 2013-03-21 |
| ES2736977T3 (es) | 2020-01-09 |
| JP2014079260A (ja) | 2014-05-08 |
| EP2762562A1 (en) | 2014-08-06 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP6076273B2 (ja) | 標的核酸の検出方法 | |
| JP6182300B2 (ja) | 標的核酸の検出方法 | |
| KR20120017033A (ko) | 반응 카트리지에서의 다중 핵산 서열의 검출 | |
| JP2015508995A (ja) | 核酸ハイブリダイゼーションプローブ | |
| JP6321318B2 (ja) | 標的核酸の検出方法 | |
| WO2015076356A1 (ja) | 短鎖ｒｎａの検出方法 | |
| JP5142244B2 (ja) | 新規蛍光標識核酸 | |
| JP6196611B2 (ja) | 標的核酸の検出方法 | |
| JP6977978B2 (ja) | 標的核酸の検出方法 | |
| JP5967785B2 (ja) | 標的核酸の検出方法 | |
| JP6202455B2 (ja) | 標的核酸の検出方法 | |
| WO2014156513A1 (ja) | 変異の検出方法 | |
| WO2018038232A1 (ja) | 標的核酸の増幅産物の生産方法及びその利用 | |
| Kamau-Gatogo | Development of RNA microchip for pathogen and cancer direct detection |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20150520 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20160322 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20160523 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20160906 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20161026 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20161213 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20170110 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 6076273 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |