JP5276986B2 - 四炭素アルコールの発酵性生産 - Google Patents
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Description
i)ピルビン酸からアセト乳酸へ(経路ステップa)、
ii)アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸へ(経路ステップb)、
iii)2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸へ(経路ステップc)、
iv)α−ケトイソ吉草酸からイソブチルアルデヒドへ(経路ステップd)、および
v)イソブチルアルデヒドからイソブタノールへ(経路ステップe)
よりなる群から選択される、基質から産物への変換を触媒するポリペプチドをコードする少なくとも1つのDNA分子を含んでなる組換え微生物宿主細胞を提供し、少なくとも1つのDNA分子は前記微生物宿主細胞に対して異種であり、前記微生物宿主細胞はイソブタノールを生成する。
i)ピルビン酸からアセト乳酸へ(経路ステップa)、
ii)アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸へ(経路ステップb)、
iii)2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸へ(経路ステップc)、
iv)α−ケトイソ吉草酸からイソブチリル−CoAへ(経路ステップf)、
v)イソブチリル−CoAからイソブチルアルデヒドへ(経路ステップg)、および
vi)イソブチルアルデヒドからイソブタノールへ(経路ステップe)
よりなる群から選択される基質から産物への変換を触媒するポリペプチドをコードする、少なくとも1つのDNA分子を含んでなる組換え微生物宿主細胞を提供し、
少なくとも1つのDNA分子は前記微生物宿主細胞に対して異種であり、前記微生物宿主細胞はイソブタノールを生成する。
i)ピルビン酸からアセト乳酸へ(経路ステップa)、
ii)アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸へ(経路ステップb)、
iii)2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸へ(経路ステップc)、
iv)α−ケトイソ吉草酸からバリンへ(経路ステップh)、
v)バリンからイソブチルアミンへ(経路ステップi)、
vi)イソブチルアミンからイソブチルアルデヒドへ(経路ステップj)、および
vii)イソブチルアルデヒドからイソブタノールへ(経路ステップe)
よりなる群から選択される、基質から産物への変換を触媒するポリペプチドをコードする少なくとも1つのDNA分子を含んでなる組換え微生物宿主細胞を提供し、
少なくとも1つのDNA分子は前記微生物宿主細胞に対して異種であり、前記微生物宿主細胞はイソブタノールを生成する。
1)i)ピルビン酸からアセト乳酸へ(経路ステップa)、
ii)アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸へ(経路ステップb)、
iii)2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸へ(経路ステップc)、
iv)α−ケトイソ吉草酸からイソブチルアルデヒドへ(経路ステップd)、および
v)イソブチルアルデヒドからイソブタノールへ(経路ステップe)
よりなる群から選択される基質から産物への変換を触媒するポリペプチドをコードして、少なくとも1つのDNA分子を含んでなる組換え微生物宿主細胞を提供するステップと、
2)イソブタノールが生成される条件下において発酵培地中で(i)の宿主細胞を発酵性炭素基質と接触させるステップと
を含んでなり、少なくとも1つのDNA分子が前記微生物宿主細胞に対して異種である、イソブタノールの製造方法を提供する。
1)i)ピルビン酸からアセト乳酸へ(経路ステップa)、
ii)アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸へ(経路ステップb)、
iii)2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸へ(経路ステップc)、
iv)α−ケトイソ吉草酸からイソブチリル−CoAへ(経路ステップf)、
v)イソブチリル−CoAからイソブチルアルデヒドへ(経路ステップg)、および
vi)イソブチルアルデヒドからイソブタノールへ(経路ステップe)
よりなる群から選択される基質から産物への変換を触媒するポリペプチドをコードする、少なくとも1つのDNA分子を含んでなる組換え微生物宿主細胞を提供するステップと、
2)イソブタノールが生成される条件下において発酵培地中で(i)の宿主細胞を発酵性炭素基質と接触させるステップと
を含んでなり、少なくとも1つのDNA分子が前記微生物宿主細胞に対して異種である、イソブタノールの製造方法を提供する。
1)i)ピルビン酸からアセト乳酸へ(経路ステップa)、
ii)アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸へ(経路ステップb)、
iii)2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸へ(経路ステップc)、
iv)α−ケトイソ吉草酸からバリンへ(経路ステップh)、
v)バリンからイソブチルアミンへ(経路ステップi)、
vi)イソブチルアミンからイソブチルアルデヒドへ(経路ステップj)、および
vii)イソブチルアルデヒドからイソブタノールへ(経路ステップe)
よりなる群から選択される基質から産物への変換を触媒するポリペプチドをコードする、少なくとも1つのDNA分子を含んでなる組換え微生物宿主細胞を提供するステップと、
2)イソブタノールが生成される条件下において発酵培地中で(i)の宿主細胞を発酵性炭素基質と接触させるステップと
を含んでなり、少なくとも1つのDNA分子が前記微生物宿主細胞に対して異種である、イソブタノールの製造方法を提供する。
本願明細書の一部を形成する次の詳細な説明および添付の配列説明によって、本発明をより完全に理解できるであろう。
炭水化物利用微生物は、中心的代謝経路として、エムデン−マイヤーホフ−パーナス(EMP)経路、エントナー−ドウドロフ経路、およびペントースリン酸回路を用いて、生育および維持のためのエネルギーおよび細胞前駆物質を提供する。これらの経路は共通して中間体グリセルアルデヒド−3−リン酸を有し、究極的にピルビン酸が直接に、またはEMP経路と組み合わさって形成される。引き続いてピルビン酸は多様な手段を通じて、アセチル−補酵素A(アセチル−CoA)に転換される。アセチル−CoAは、例えば脂肪酸、アミノ酸、および二次代謝産物を発生させる上で、重要な中間体の役割を果たす。ピルビン酸への糖変換反応の組み合わせは、エネルギー(例えばアデノシン−5’−三リン酸、ATP)および還元等価物(例えば還元ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、NADH、および還元ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸、NADPH)を生じる。NADHおよびNADPHはそれらの酸化形態(それぞれNAD+およびNADP+)に再生されなくてはならない。無機電子受容体(例えばO2、NO3 −、およびSO4 2−)の存在下で還元等価物を使用してエネルギープールが増強されてもよく、あるいは還元炭素副産物が形成されてもよい。
a)例えばアセト乳酸シンターゼによって触媒される、ピルビン酸からアセト乳酸への、
b)例えばアセトヒドロキシ酸イソメロレダクターゼによって触媒される、アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸への、
c)例えばアセトヒドロキシ酸デヒドラターゼによって触媒される、2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸への、
d)例えば分枝ケト酸脱炭酸酵素によって触媒される、α−ケトイソ吉草酸からイソブチルアルデヒドへの、および
e)例えば分枝アルコールデヒドロゲナーゼによって触媒される、イソブチルアルデヒドからイソブタノールへの
基質から産物への変換を含んでなる。
a)例えばアセト乳酸シンターゼによって触媒される、ピルビン酸からアセト乳酸への、
b)例えばアセトヒドロキシ酸イソメロレダクターゼによって触媒される、アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸への、
c)例えばアセトヒドロキシ酸デヒドラターゼによって触媒される、2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸への、
f)例えば分枝ケト酸デヒドロゲナーゼによって触媒される、α−ケトイソ吉草酸からイソブチリル−CoAへの、
g)例えばアシル化アルデヒドデヒドロゲナーゼによって触媒される、イソブチリル−CoAからイソブチルアルデヒドへの、および
e)例えば分枝アルコールデヒドロゲナーゼによって触媒される、イソブチルアルデヒドからイソブタノールへの
基質から産物への変換を含んでなる(図1のステップa、b、c、f、g、e)。
a)例えばアセト乳酸シンターゼによって触媒される、ピルビン酸からアセト乳酸への、
b)例えばアセトヒドロキシ酸イソメロレダクターゼによって触媒される、アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸への、
c)例えばアセトヒドロキシ酸デヒドラターゼによって触媒される、2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸への、
h)例えばバリンデヒドロゲナーゼまたはアミノ基転移酵素によって触媒される、α−ケトイソ吉草酸からバリンへの、
i)例えばバリン脱炭酸酵素によって触媒される、バリンからイソブチルアミンへの、
j)例えばωアミノ基転移酵素によって触媒される、イソブチルアミンからイソブチルアルデヒドへの、および
e)例えば分枝アルコールデヒドロゲナーゼによって触媒される、イソブチルアルデヒドからイソブタノールへの
基質から産物への変換(図1のステップa、b、c、h、i、j、e)を含んでなる。
イソブタノール生成のための微生物宿主は、細菌、ラン藻、糸状菌類、および酵母から選択されてもよい。イソブタノール生成のために使用される微生物宿主は、ブタノール毒性によって収率が制限されないように、好ましくはイソブタノールに耐性である。イソブタノールの高力価レベルで代謝的に活性の微生物については、当該技術分野で周知ではない。溶剤起源クロストリジウム(Clostridia)からブタノール耐性突然変異体が単離さているが、その他の潜在的に有用な細菌株のブタノール耐性に関する情報はほとんどない。細菌におけるアルコール耐性の比較に関する研究のほとんどは、ブタノールがエタノールよりも毒性が高いことを示唆する(デ・カバルホ(de Cavalho)ら、Microsc.Res.Tech.64:215〜22頁、2004年;およびカベリッツ(Kabelitz)ら、FEMS Microbiol.Lett.220:223〜227頁、2003年)。トーマス(Tomas)ら、J.Bacteriol.186:2006〜2018頁、2004年、はクロストリジウム・アセトブチリカム(Clostridium acetobutylicum)中での発酵における1−ブタノールの収率が、1−ブタノール毒性によって制限されるかもしれないことを報告する。クロストリジウム・アセトブチリカム(Clostridium acetobutylicum)に対する1−ブタノールの主要効果は、膜機能の崩壊である(ヘルマン(Hermann)ら、Appl.Environ.Microbiol.50:1238〜1243頁、1985年)。
発酵性炭素基質からイソブタノールへの変換のための酵素的経路をコードする必要な遺伝子を含有する組換え生物は、当該技術分野で周知の技術を使用して構築してもよい。本発明では、例えばアセト乳酸シンターゼ、アセトヒドロキシ酸イソメロレダクターゼ、アセトヒドロキシ酸デヒドラターゼ、分枝α−ケト酸脱炭酸酵素、および分枝アルコールデヒドロゲナーゼなどの本発明のイソブタノール生合成経路の酵素をコードする遺伝子を上述のように様々な供給源から単離してもよい。
大腸菌(E.coli)の形質転換に有用なベクターまたはカセットは一般的であり、上に列挙した会社から市販される。例えば実施例6および7で述べられるように、イソブタノール生合成経路の遺伝子を様々な供給源から単離して、変性pUC19ベクター中にクローニングし、大腸菌(E.coli)NM522に形質転換してもよい。
pRhBR17およびpDA71をはじめとするがこれに限定されるものではない、一連の大腸菌(E.coli)−ロドコッカス(Rhodococcus)シャトルベクターが、R.エリスロポリス(erythropolis)中での発現のために利用できる(コスチクカ(Kostichka)ら、Appl.Microbiol.Biotechnol.62:61〜68頁、2003年)。さらにR.エリスロポリス(erythropolis)中での異種の遺伝子発現のために、一連のプロモーターが利用できる(例えばナカシマ(Nakashima)ら、Appl.Environ.Microbiol.70:5557〜5568頁、2004年;およびタオ(Tao)ら、Appl.Microbiol.Biotechnol.2005年、DOI10.1007/s00253−005−0064を参照されたい)。タオ(Tao)ら(前出)およびブランズ(Brans)ら、Appl.Environ.Microbiol.66:2029〜2036、2000年、で述べられる方法を使用して、R.エリスロポリス(erythropolis)中の染色体遺伝子の標的を定めた遺伝子中断を作り出してもよい。
枯草菌(B.subtilis)中での遺伝子発現および突然変異作成の方法もまた、当該技術分野で周知である。例えば実施例8で述べられるように、イソブタノール生合成経路の遺伝子を様々な供給源から単離し、変性pUC19ベクター中にクローニングして枯草菌(Bacillus subtilis)BE1010に形質転換してもよい。さらに実施例20で述べられるように、イソブタノール生合成経路の5つの遺伝子を発現のために2つのオペロンに分割できる。経路の3つの遺伝子(bubB、ilvD、およびkivD)は、枯草菌(Bacillus subtilis)BE1010の染色体に組み込まれた(ペイン(Payne)およびジャクソン(Jackson)、J.Bacteriol.173:2278〜2282頁、1991年)。残る2つの遺伝子(ilvCおよびbdhB)は、発現ベクター中にクローニングされ、組み込まれたイソブタノール遺伝子を保有するバシラス(Bacillus)株に形質転換された。
プロトプラスト形質転換または電気穿孔のどちらかによって、B.リチェニホルミス(licheniformis)を形質転換するのに、枯草菌(B.subtilis)中で複製されるプラスミドおよびシャトルベクターのほとんどが使用できる。イソブタノール生成に必要な遺伝子をプラスミドは、pBE20またはpBE60誘導体中でクローニングしてもよい(ナガラージャン(Nagarajan)ら、Gene 114:121〜126頁、1992年)。B.リチェニホルミス(licheniformis)を形質転換する方法は当該技術分野で既知である(例えばフレミング(Fleming)ら、Appl.Environ.Microbiol.、61(11):3775〜3780頁、1995年、を参照されたい)。枯草菌(B.subtilis)中での発現のために構築されたプラスミドは、B.リチェニホルミス(licheniformis)に形質転換されて、イソブタノールを生成する組換え微生物宿主を生じてもよい。
上述のように枯草菌(B.subtilis)中での発現のためにプラスミドを構築し、プロトプラスト形質転換によってパエニバシラス・マセランス(Paenibacillus macerans)に形質転換し、イソブタノールを生成する組換え微生物宿主を生成してもよい。
アルカリゲネス・ユートロファス(Alcaligenes eutrophus)中での遺伝子発現および突然変異発生の方法は、当該技術分野で既知である(例えばタガビ(Taghavi)ら、Appl.Environ.Microbiol.、60(10):3585〜3591頁、1994年、を参照されたい)。イソブタノール生合成経路のための遺伝子を上述の広宿主範囲ベクターのいずれかの中でクローニングし、電気穿孔してイソブタノールを生成する組換え体を発生させてもよい。アルカリゲネス(Alcaligenes)中のポリ(ヒドロキシブチレート)経路については詳細に記述され、アルカリゲネス・ユートロファス(Alcaligenes eutrophus)ゲノムを変性する多様な遺伝的技術が知られており、イソブタノール生合成経路を操作するためにこれらのツールが応用できる。
シュードモナス・プチダ(Pseudomonas putida)中での遺伝子発現のための方法は、当該技術分野で既知である(例えば参照によって本明細書に援用するベン−バサット(Ben−Bassat)らに付与された米国特許第6,586,229号明細書を参照されたい)。ブタノール経路遺伝子をpPCU18中に挿入してもよく、このライゲーションしたDNAをエレクトロコンピテントなシュードモナス・プチダ(Pseudomonas putida)DOT−T1C5aAR1細胞中に電気穿孔して、イソブタノールを生じる組換え体を発生させてもよい。
サッカロミセス・セレヴィシエ(Saccharomyces cerevisiae)中での遺伝子発現のための方法は、当該技術分野で既知である(例えばクリスティン・ガスリー(Christine Guthrie)およびジェラルドR.フィンク(Gerald R.Fink)編、「酵素学における方法(Methods in Enzymology)」、第194巻、「酵母の遺伝学と分子および細胞生物学ガイド(Guide to Yeast Genetics and Molecular and Cell Biology)」(パートA)、Elsevier Academic Press、San Diego,CA、2004年、を参照されたい)。酵母中での遺伝子発現は、典型的にプロモーターとそれに続く関心のある遺伝子、および転写ターミネーターを必要とする。イソブタノール生合成経路をコードする遺伝子のための発現カセットを構築する上で、構成的プロモーターFBA、GPD、ADH1およびGPM、および誘導性プロモーターGAL1、GAL10、GAL1t、CYC1、およびADH1をはじめとするが、これに限定されるものではない、いくつかの酵母プロモーターを使用できる。例えば適切な転写ターミネーターとしては、FBAt、GPDt、GPMt、ERG10t、およびGAL1tが挙げられるが、これに限定されるものではない。イソブタノール生合成経路の適切なプロモーター、転写ターミネーター、および遺伝子は、実施例17で述べられるように大腸菌(E.coli)−酵母シャトルベクター中にクローニングしてもよい。
乳酸桿菌(Lactobacillus)属は乳酸桿菌科(Lactobacilales)に属し、枯草菌(Bacillus subtilis)および連鎖球菌(Streptococcus)の形質転換で使用される多くのプラスミドおよびベクターを乳酸桿菌(Lactobacillus)のために使用してもよい。適切なベクターの非限定的例としては、pAMβ1およびその誘導体(ルノー(Renault)ら、Gene 183:175〜182頁、1996年、およびオサリバン(O’Sullivan)ら、Gene 137:227〜231、1993年);pMBB1およびpHW800、pMBB1誘導体(ワイコフ(Wyckoff)ら、Appl.Environ.Microbiol.62:1481〜1486頁、1996年);pMG1、接合性プラスミド(タニモト(Tanimoto)ら、J.Bacteriol.184:5800〜5804頁、2002年);pNZ9520(クレールベゼム(Kleerebezem)ら、Appl.Environ.Microbiol.63:4581〜4584頁、1997年);pAM401(フジモト(Fujimoto)ら、Appl.Environ.Microbiol.67:1262〜1267頁、2001年);およびpAT392(アーサー(Arthur)ら、Antimicrob.Agents Chemother.38:1899〜1903頁、1994年)が挙げられる。ラクトバシラス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)からのいくつかのプラスミドもまた報告されている(例えばバンクラーネンブルクR、ゴーリックN、ボンジャースR、レールRJ、デボスWM、シーゼンRJ、クレールベゼムM.(van Kranenburg R、Golic N、Bongers R、Leer RJ、de Vos WM、Siezen RJ、Kleerebezem M)、Appl.Environ.Microbiol.;71(3):1223〜1230頁、2005年3月)。例えばラクトバシラス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)中でのイソブタノール生合成経路の発現については、実施例21で述べられる。
腸球菌(Enterococcus)属は乳酸菌科(Lactobacillales)に属し、乳酸桿菌(Lactobacillus)、枯草菌(Bacillus subtilis)、および連鎖球菌(Streptococcus)の形質転換において使用される多くのプラスミドおよびベクターが、腸球菌(Enterococcus)のために使用できる。適切なベクターの非限定的例としては、pAMβ1およびその誘導体(ルノー(Renault)ら、Gene 183:175〜182頁、1996年、およびオサリバン(O’Sullivan)ら、Gene 137:227〜231、1993年);pMBB1およびpHW800、pMBB1誘導体(ワイコフ(Wyckoff)ら、Appl.Environ.Microbiol.62:1481〜1486頁、1996年);pMG1、接合性プラスミド(タニモト(Tanimoto)ら、J.Bacteriol.184:5800〜5804頁、2002年);pNZ9520(クレールベゼム(Kleerebezem)ら、Appl.Environ.Microbiol.63:4581〜4584頁、1997年);pAM401(フジモト(Fujimoto)ら、Appl.Environ.Microbiol.67:1262〜1267頁、2001年);およびpAT392(アーサー(Arthur)ら、Antimicrob.Agents Chemother.38:1899〜1903頁、1994年)が挙げられる。ラクトコッカス(Lactococcus)からのnisA遺伝子を使用したE.フェカーリス(faecalis)のための発現ベクターもまた使用してもよい(アイヘンバウム(Eichenbaum)ら、Appl.Environ.Microbiol.64:2763〜2769頁、1998年。さらにE.フェシウム(faecium)染色体中での遺伝子置換のためのベクターを使用してもよい(ナラパレディ(Nallaapareddy)ら、Appl.Environ.Microbiol.72:334〜345頁、2006年)。例えばエンテロコッカス・フェカーリス(Enterococcus faecalis)中でのイソブタノール生合成経路の発現については、実施例22で述べられる。
本発明における発酵培地は、適切な炭素基質を含有しなくてはならない。適切な基質としては、グルコースおよびフルクトースなどの単糖類、乳糖またはスクロースなどのオリゴ糖類、デンプンまたはセルロースなどの多糖類、またはそれらの混合物、および乳清透過液、コーンスティープリーカー、甜菜モラセス、および大麦の麦芽などの再生可能原材料からの未精製混合物が挙げられるが、これに限定されるものではない。さらに炭素基質は、重要な生化学的中間体への代謝転換が実証されている二酸化炭素、またはメタノールなどの一炭素基質であってもよい。メチロトローフ生物体はまた、一または二炭素基質に加えて、代謝活性のためにメチルアミン、グルコサミン、および多様なアミノ酸などのいくつかのその他の炭素含有化合物を利用することが知られている。例えばメチロトローフ酵母菌は、メチルアミンからの炭素を利用してトレハロースまたはグリセロールを形成することが知られている(マレル,J.コリン(Murrell,J.Collin)、ケリー,ドンP.(Kelly,Don P.)編、第7回国際シンポジウム、ベリオン(Bellion)ら、「C1化合物上における微生物の生育(Microb.Growth C1 Compounds)」、415〜32頁、1993年、Interceptによる出版、Andover,UK)。同様に様々なカンジダ(Candida)種がアラニンまたはオレイン酸を代謝する(サルター(Sulter)ら、Arch.Microbiol.153:485〜489頁、1990年)。したがって本発明で用いられる炭素源は多種多様な炭素含有基質を包含してもよく、生物体の選択によってのみ制限されることが考察される。
典型的に細胞は、約25℃〜約40℃の範囲の温度で適切な培地中で生育させる。本発明における適切な増殖培地は、ルリア・ベルターニ(LB)ブロス、サブローデキストロース(SD)ブロスまたは酵母培地(YM)ブロスなどの一般的で商業的に調製された培地である。その他の合成(defined)または合成(synthetic)増殖培地もまた使用してもよく、特定の微生物生育に適した培地は、微生物学または発酵科学当業者に知られている。例えば環式アデノシン2’:3’−一リン酸などの、異化産物抑制を直接または間接的に調節することが知られている作用物質の使用もまた、発酵培地中に組み込んでもよい。
本法はバッチ発酵法を用いる。古典的なバッチ発酵は閉鎖システムであり、そこでは培養液の組成が発酵の初めに設定され、発酵中に人為的変化を受けない。したがって発酵開始時に培養液に所望の生物体または生物体群を接種して、システムには何も添加せずに発酵を生じさせる。しかし典型的には「バッチ」発酵は、炭素源の添加に関してバッチであり、pHおよび酸素濃度などの因子の調節が試みられることが多い。バッチシステムでは、システムの代謝産物および生物体量組成は、発酵を停止させる時点まで常に変化する。バッチ培養内で細胞は、静的な遅滞期から高い対数増殖期へ、そして最後に成長率が減退または停止する静止期へ調節される。処置を施さない場合、静止期にある細胞はやがて死滅する。一般に対数期にある細胞が、最終生成物または中間体の生成の大部分を担う。
生物生産されたイソブタノールは、当該技術分野で既知の方法を使用して、発酵培地から単離してもよい。例えば遠心分離、濾過、デカンテーションなどによって、固形物を発酵培地から除去してもよい。次に蒸留、液体−液体抽出、または膜ベースの分離などの方法を使用して、上述のように固形物を除去するように処理された発酵培地からイソブタノールを単離してもよい。イソブタノールは水と低沸点の共沸混合物を形成するので、蒸留は、混合物がその共沸性組成物になるまで分離するためにのみ使用できる。蒸留を別の分離方法と組み合わせて使用して、共沸混合物周辺での分離を得てもよい。イソブタノールを単離し精製するために組み合わせて使用してもよい方法としては、デカンテーション、液体−液体抽出、吸着、および膜ベースの技術が挙げられるが、これに限定されるものではない。さらにイソブタノールは、共留剤を使用した共沸蒸留を使用して単離してもよい(例えばドハーティ(Doherty)およびマロン(Malone)、「蒸留システムの概念設計(Conceptual Design of Distillation Systems)」、McGraw Hill、New York、2001年、を参照されたい)。
実施例で使用される標準リコンビナントDNAおよび分子クローニング技術は当該技術分野で周知であり、サムブルック(Sambrook),J.、フリッチュ(Fritsch),E.F.、およびマニアティス(Maniatis),T.、「分子クローニング:実験室マニュアル(Molecular Cloning:A Laboratory Manual)」、Cold Spring Harbor Laboratory Press、Cold Spring Harbor,NY、1989年、(マニアティス(Maniatis));およびT.J.シルハビー(Silhavy)、M.L.ベンナン(Bennan)、およびL.W.エンクイスト(Enquist)、「遺伝子融合実験(Experiments with Gene Fusions)」、Cold Spring Harbor Laboratory、Cold Spring Harbor,N.Y.、1984年;およびオースベル(Ausubel),F.M.ら、「分子生物学現代プロトコル(Current Protocols in Molecular Biology)」、Greene Publishing Assoc.and Wiley−Interscienceによる出版、1987年、で述べられている。
培養液中のイソブタノール濃度は、当該技術分野で既知であるいくつかの方法によって判定できる。例えばどちらもマサチューセッツ州ミルフォードのウォーターズ、コーポレーション(Waters Corporation(Milford,MA))から購入される、ショウデックス(Shodex)SH−Gガードカラム付きショウデックス(Shodex)SH−1011カラムと共に、屈折率(RI)検出を利用した特定の高性能液体クロマトグラフィー(HPLC)法。クロマトグラフィーの分離は、流速0.5mL/分の移動相として0.01MH2SO4を使用してカラム温度50℃で達成した。イソブタノールは、使用した条件下で46.6分間の滞留時間を有した。代案としては、ガスクロマトグラフィー(GC)方法が利用できる。例えばデラウェア州ウィルミントンのアジレント・テクノロジーズ(Agilent Technologies(Wilmington,DE))からのHP−イノワックス(INNOWax)カラム(内径30m×0.53mm、フィルム厚1μm)と共に水素炎イオン化検出器(FID)を利用する特定のGC法。キャリアガスは、一定の上部圧力下、150℃における測定で流速4.5mL/分のヘリウムであり、注入器スプリットは200℃で1:25であり、オーブン温度は45℃で1分間、10℃/分で45から220℃、および220℃で5分間であり、FID検出を26mL/分のヘリウム補給ガスと共に240℃で用いた。イソブタノールの滞留時間は4.5分間であった。
アセト乳酸シンターゼのクローニングおよび発現
本実施例の目的は、肺炎桿菌(Klebsiella pneumoniae)からbudB遺伝子をクローンし、それを大腸菌(E.coli)BL21−AI中で発現することであった。PCRを使用して、budB遺伝子を肺炎桿菌(Klebsiella pneumoniae)ATCC25955株ゲノムDNAから増幅し、1.8kbpの生成物を得た。
アセトヒドロキシ酸レダクトイソメラーゼのクローニングおよび発現
本予測的実施例の目的は、どのようにilvC遺伝子を大腸菌(E.coli)K12からクローンし、それを大腸菌(E.coli)BL21−AI中で発現するかについて述べることである。ilvC遺伝子はPCRを使用して、大腸菌(E.coli)ゲノムDNAから増幅する。
アセトヒドロキシ酸デヒドラターゼのクローニングおよび発現
本予測的実施例の目的は、どのようにilvD遺伝子を大腸菌(E.coli)K12からクローンし、それを大腸菌(E.coli)BL21−AI中で発現するかについて述べることである。ilvD遺伝子は、PCRを使用して大腸菌(E.coli)ゲノムDNAから増幅する。
分枝ケト酸脱炭酸酵素のクローニングおよび発現
本予測的実施例の目的は、どのようにkivD遺伝子をラクトコッカス・ラクティス(Lactococcus lactis)からクローンし、それを大腸菌(E.coli)BL21−AI中で発現するかについて述べることである。
分枝アルコールデヒドロゲナーゼのクローニングおよび発現
本予測的実施例の目的は、どのように大腸菌(E.coli)K12からのyqhD遺伝子をクローニングし、それを大腸菌(E.coli)BL21−AI中で発現するかについて述べることである。yqhD遺伝子は、PCRを使用して大腸菌(E.coli)ゲノムDNAから増幅する。
イソブタノール生合成経路中の遺伝子のための形質転換ベクターの構築
本予測的実施例の目的は、どのようにイソブタノール生合成経路中の5つのステップをコードする遺伝子を含んでなる形質転換ベクターを構築するかについて述べることである。全ての遺伝子は、単一プロモーターの制御下にある単一オペロンに入れる。後のクローニングのための制限部位を組み込んだプライマーと、最適化された大腸菌(E.coli)リボソーム結合部位(AAAGGAGG)を含有する順方向プライマーとで、個々の遺伝子をPCRによって増幅し、そのPCR産物をpCR4 Blunt−TOPOベクター中にTOPOクローニングして、インビトロジェン(Invitrogen)からの大腸菌(E.coli)Top10細胞に形質転換する。プラスミドDNAをTOPOクローンから調製し、遺伝子配列を確認する。マサチューセッツ州ベヴァリーのニュー・イングランド・バイオラブズ(New England Biolabs(Beverly,MA))からの制限酵素およびT4DNAリガーゼを製造業者の推奨に従って使用する。クローニング実験のために、キアゲン(Qiagen)からのキアクイック(QIAquick)ゲル抽出キットを使用して、制限酵素断片をゲル精製する。配列確認後、クローニングプラットフォームとして変性pUC19ベクター中に、遺伝子をサブクローニングする。pUC19ベクターはHindIII/SapI消化によって変性し、pUC19dHSを作り出す。MCS(複数クローニング部位)に隣接するlacプロモーターを消化除去して、ベクター中のオペロン転写を防止する。
大腸菌(E.coli)中のイソブタノール生合成経路の発現
本予測的実施例の目的は、どのようにイソブタノール生合成経路を大腸菌(E.coli)中で発現するかについて述べることである。
枯草菌(Bacillus subtilis)中のイソブタノール生合成経路の発現
本予測的実施例の目的は、どのようにイソブタノール生合成経路を枯草菌(Bacillus subtilis)中で発現するかについて述べることである。実施例7で述べられるのと同じアプローチを使用する。
アセト乳酸シンターゼのクローニングおよび発現
別のアセト乳酸シンターゼ発現クローンを作り出すために、budB遺伝子をベクターpTrc99A中にクローニングした。プライマー(それぞれ配列番号31および32で示されるN110.2およびN111.2)を使用して、budB遺伝子を最初にpENTRSDD−TOPObudB(実施例1で述べられる)から増幅し、それによって5’末端にSacI、SpeIおよびMfeI部位が、3’末端にBbvCI、AflII、およびBamHI部位が導入された。得られた1.75kbpのPCR産物をインビトロジェン(Invitrogen)からのpCR4−Blunt TOPO中にクローニングし、DNA配列を確認した(それぞれ配列番号40〜47で示される配列決定プライマーN130SeqF1〜F4およびR1〜R4を使用して)。次にSacIおよびBamHIを使用して、budB遺伝子をこのベクターから切除し、pTrc99A(アマン(Amann)ら、Gene 69(2):301〜315頁、1988年)中にクローニングして、pTrc99A::budBを発生させた。pTrc99A::budBベクターを大腸菌(E.coli)TOP10細胞に形質転換し、形質転換体を50μg/mLのアンピシリンを添加したLB培地に接種して、37℃で一晩生育させた。一晩培養物のアリコートを使用して、50μg/mLのアンピシリンを添加した50mLのLB培地に接種した。OD600が0.6〜0.8に達するまで、培養を振盪しながら37℃でインキュベートした。次に0.4mMのIPTGの添加によって、TrcプロモーターからのbudBmの発現を誘導した。IPTGで誘導しない負の対照フラスコもまた調製した。フラスコを振盪しながら37℃で4時間インキュベートした。実施例1で述べられるようにして、無細胞抽出物を調製した。
アセトヒドロキシ酸レダクトイソメラーゼのクローニングおよび発現
本実施例の目的は、大腸菌(E.coli)K12からilvC遺伝子をクローニングし、それを大腸菌(E.coli)TOP10中で発現することであった。PCRを使用して、大腸菌(E.coli)K12株FM5(ATCC53911)ゲノムDNAからilvC遺伝子を増幅した。
アセトヒドロキシ酸デヒドラターゼのクローニングおよび発現
本実施例の目的は、大腸菌(E.coli)K12からilvD遺伝子をクローニングして、それを大腸菌(E.coli)Top10中で発現することであった。PCRを使用して、大腸菌(E.coli)K12株FM5(ATCC53911)ゲノムDNAからilvD遺伝子を増幅した。
分枝ケト酸脱炭酸酵素のクローニングおよび発現
本実施例の目的は、ラクトコッカス・ラクティス(Lactococcus lactis)からkivD遺伝子をクローニングし、それを大腸菌(E.coli)のTOP10中で発現することであった。
分枝アルコールデヒドロゲナーゼの発現
大腸菌(E.coli)は、1,3−プロパンジオールデヒドロゲナーゼとして同定される天然遺伝子(yqhD)を含有する(米国特許第6,514,733号明細書)。YqhDタンパク質は、推定上のNADH依存ブタノールデヒドロゲナーゼであるクロストリジウム(Clostridium)からのAdhB(adhBによってコードされる)と40%同一性を有する。λレッド技術(ダツセンコ(Datsenko)およびワーナー(Wanner)、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.97:6640頁、2000年)を使用して、yqhD遺伝子を大腸菌(E.coli)MG1655 1.6yqhD::Cm株(国際公開第2004/033646号パンフレット)中のグルコースイソメラーゼプロモーター1.6GI(配列番号70)の変異型の構成的な発現下に置いた。抗生物質マーカーが除去できるように、FRT−CmR−FRTカセットはMG1655 1.6yqhD::Cmを含有する。同様に天然プロモーターを1.5GI プロモーター(国際公開第2003/089621号パンフレット)(配列番号71)によって置換してMG1655 1.5GI−yqhD::Cm株を作り出し、したがってMG1655 1.6yqhD::Cmの1.6GIプロモーターを1.5GIプロモーターで置換する。
イソブタノール生合成経路中の最初の4遺伝子のための形質転換ベクターの構築
本実施例の目的は、イソブタノール生合成経路中の最初の4遺伝子(すなわちbudB、ilvC、ilvD、およびkivD)を含んでなる形質転換ベクターを構築することである。
グルコースで生育させた大腸菌(E.coli)中のイソブタノール生合成経路の発現
大腸菌(E.coli)イソブタノール産生株を作り出すために、pTrc99A::budB−ilvC−ilvD−kivD(実施例14で述べられる)を大腸菌(E.coli)MG1655 1.5GIyqhD::Cmおよび大腸菌(E.coli)BL21(DE3)1.5GIyqhD::Cm(実施例13で述べられる)に形質転換した。形質転換体を初めに、50μg/mLのカナマイシンおよび100μg/mLのカルベニシリンを含有するLB培地中で生育させた。これらの培養からの細胞を使用して、それぞれ高低酸素条件に相当する50または170mLのTM3a/グルコース培地(適切な抗生物質を添加した)を含有する振盪フラスコ(総容積およそ175mL)に接種した。TM3a/グルコース培地は(1Lあたり)、グルコース(10g)、KH2PO4(13.6g)、クエン酸一水和物(2.0g)、(NH4)2SO4(3.0g)、MgSO4・7H2O(2.0g)、CaCl2・2H2O(0.2g)、クエン酸第二鉄アンモニウム(0.33g)、チアミン・HCl(1.0mg)、酵母抽出物(0.50g)、および10mLの微量元素溶液を含有した。pHをNH4OHで6.8に調節した。微量元素溶液は、クエン酸・H2O(4.0g/L)、MnSO4・H2O(3.0g/L)、NaCl(1.0g/L)、FeSO4・7H2O(0.10g/L)、CoCl2・6H2O(0.10g/L)、ZnSO4・7H2O(0.10g/L)、CuSO4・5H2O(0.010g/L)、H3BO3(0.010g/L)、およびNa2MoO4・2H2O(0.010g/L)を含有した。
スクロースで生育させた大腸菌(E.coli)中のイソブタノール生合成経路の発現
実施例15で述べられる株はスクロースで生育できなかったので、追加的プラスミドを構築してイソブタノール生成のためにスクロースの使用を可能にした。配列番号39で示されるスクロース使用遺伝子クラスターcscBKAをATCC株13281に由来するスクロース使用大腸菌(E.coli)株ゲノムDNAから単離した。スクロース使用遺伝子(cscA、cscK、およびcscB)は、配列番号139で示されるスクロース加水分解酵素(CscA)、配列番号140で示されるD−フルクトキナーゼ(CscK)、および配列番号141で示されるスクロースパーミアーゼ(CscB)をコードする。大腸菌(E.coli)中のそれらの天然プロモーターから3つの遺伝子cscBKAが構成的に発現されるように、スクロース特異的リプレッサー遺伝子cscRは含まれなかった。
サッカロミセス・セレヴィシエ(Saccharomyces cerevisiae)中のイソブタノール経路遺伝子の発現
イソブタノール経路遺伝子を発現するために、サッカロミセス・セレヴィシエ(Saccharomyces cerevisiae)、いくつかの大腸菌(E.coli)−酵母シャトルベクターを構築した。PCRアプローチ(ユ(Yu)ら、Fungal Genet.Biol.41:973〜981頁、2004年)を使用して、遺伝子と酵母プロモーターおよびターミネーターとを融合させた。具体的にはGPDプロモーター(配列番号76)およびCYC1ターミネーター(配列番号77)を枯草菌(Bacillus subtilis)(配列番号78)からのalsS遺伝子に縮合し、FBAプロモーター(配列番号79)およびCYC1ターミネーターをS.セレヴィシエ(cerevisiae)からのILV5(配列番号80)遺伝子に縮合し、ADH1プロモーター(配列番号81)およびADH1ターミネーター(配列番号82)をS.セレヴィシエ(cerevisiae)からのILV3遺伝子(配列番号83)に縮合し、GPMプロモーター(配列番号84)およびADH1ターミネーターをラクトコッカス・ラクティス(Lactococcus lactis)からのkivD遺伝子(配列番号7)に縮合した。表7で示されるプライマーは、プロモーター/遺伝子/ターミネーター生成物をpRS400シリーズ(クリスチャンソン(Christianson)ら、Gene 110:119〜122頁、1992年)からの大腸菌(E.coli)−酵母シャトルベクター中にクローニングするため、そしてコンストラクト間でプロモーターを交換するための制限部位を含むようにデザインされた。ILV5およびILV3の5’末端のためのプライマー(それぞれ配列番号95および107で示されるN138およびN155)は新しい開始コドンを生じて、これらの酵素のミトコンドリアターゲティングを排除した。
組換えサッカロミセス・セレヴィシエ(Saccharomyces cerevisiae)によるイソブタノール生成
プラスミドpRS423::CUP1−alsS+FBA−ILV3およびpHR81::FBA−ILV5+GPM−kivD(実施例17で述べられる)をサッカロミセス・セレヴィシエ(Saccharomyces cerevisiae)YJR148wに形質転換して、YJR148w/pRS423::CUP1−alsS+FBA−ILV3/pHR81::FBA−ILV5+GPM−kivD株を生成した。ベクターpRS423およびpHR81(実施例17で述べられる)をサッカロミセス・セレヴィシエ(Saccharomyces cerevisiae)YJR148w(YJR148w/pRS423/pHR81株)中に形質転換して、対照株を調製した。2%グルコースまたはスクロースのどちらかを含有するが、ウラシルおよびヒスチジンを欠いて、プラスミドの維持を確実にする、標準S.セレヴィシエ(cerevisiae)合成完全培地(「酵母遺伝学における方法(Methods in YeastGenetics)」、Cold Spring Harbor Laboratory Press、Cold Spring Harbor,NY、201〜202頁、2005年)上で、株を維持した。
組換えサッカロミセス・セレヴィシエ(Saccharomyces cerevisiae)によるイソブタノール生成
プラスミドspRS425::CUP1−alsS+FBA−ILV3およびpRS426::GAL1−ILV5+GPM−kivD(実施例17で述べられる)をサッカロミセス・セレヴィシエ(Saccharomyces cerevisiae)YJR148wに形質転換して、YJR148w/pRS425::CUP1−alsS+FBA−ILV3/pRS426::GAL1−ILV5+GPM−kivD株を生成した。ベクターpRS425およびpRS426(実施例17で述べられる)をサッカロミセス・セレヴィシエ(Saccharomyces cerevisiae)YJR148w(YJR148w/pRS425/pRS426株)中に形質転換して、対照株を調製した。実施例18で述べられるようにして、株を合成完全培地上で維持した。
枯草菌(Bacillus subtilis)中のイソブタノール生合成経路の発現
本実施例の目的は、枯草菌(Bacillus subtilis)中でイソブタノール生合成経路を発現することである。イソブタノール経路の5つの遺伝子(図1の経路ステップ(a)から(e))を発現のために2つのオペロンに分割した。それぞれアセト乳酸シンターゼ、アセトヒドロキシ酸デヒドラターゼ、および分枝ケト酸脱炭酸酵素をコードする3つの遺伝子budB、ilvD、およびkivDを枯草菌(B.subtilis)BE1010の染色体に組み込んだ(ペイン(Payne)およびジャクソン(Jackson)、J.Bacteriol.173:2278〜2282頁、1991年)。それぞれアセトヒドロキシ酸イソメロレダクターゼおよびブタノールデヒドロゲナーゼをコードする2つの遺伝子ilvCおよびbdhBを発現ベクター中にクローニングして、組み込まれたイソブタノール遺伝子を保有するバシラス(Bacillus)株に形質転換した。
3つの遺伝子、budB(配列番号1)、ilvD(配列番号5)、およびkivD(配列番号7)の染色体組み込みのために、バシラス(Bacillus)組み込みベクターpFP988DssPspacおよびpFP988DssPgroEを使用した。どちらのプラスミドもpBR322からの大腸菌(E.coli)レプリコンと、大腸菌(E.coli)中の選択のためのアンピシリン抗生物質マーカーと、相同的組換えによってベクターおよび介在配列の組み込みを指示するバシラス(Bacillus)染色体中のsacB遺伝子に対する2つの相同性セクションとを含有する。sacB相同性領域の間は、pFP988DssPspac上のspacプロモーター(PgroE)、またはpFP988DssPgroE上のgroELプロモーター(PgroE)、およびバシラス(Bacillus)の選択可能なマーカー、エリスロマイシンである。プロモーター領域はまた、laCI リプレッサータンパク質による発現調節のためにlacO配列も含有する。pFP988DssPspac(6,341bp)およびpFP988DssPgroE(6,221bp)の配列は、それぞれ配列番号142および配列番号143で示される。
残る2つのイソブタノール遺伝子ilvCおよびbdhBをプラスミドから発現した。lacO配列含有PgroEプロモーターからilvC遺伝子が発現するように、モビテック(MoBitec)からのバシラス(Bacillus)−大腸菌(E.coli)シャトルベクターであるプラスミドpHT01を使用して、枯草菌(B.subtilis)からのilvC遺伝子とPgroEプロモーターとを融合させた。プライマーT−ilvCB.s.(BamHI)(配列番号150)およびB−ilvCB.s.(SpeI BamHI)(配列番号151)で、枯草菌(B.subtilis)BR151(ATCC33677)ゲノムDNAから、配列番号186で示されるilvC遺伝子をPCR増幅した。1,067bpのilvCPCR産物をBamHIで消化し、pHT01のBamHI部位にライゲートした。ライゲーション混合物をDH5αコンピテント細胞に形質転換した。プライマーT−groELおよびB−ilvB.s.(SpeIBamHI)で、増幅PCRによって、陽性クローンを1,188bpPCR産物についてスクリーンした。陽性クローンをpHT01−ilvC(B.s)と命名した。PgroE−ilvC縮合断片のPCR増幅のためのテンプレートとして、プラスミドpHT01−ilvC(B.s)を使用した。
イソブタノール生合成経路の5つの遺伝子を発現する組換え枯草菌(B.subtilis)を構築するために、2つの組み込み枯草菌(B.subtilis)BE1010ΔsacB−PgroE−budB−ilvD−kivD#1−7および枯草菌(B.subtilis)BE1010ΔsacB::PgroE−budB−ilvD−kivD#8−16のコンピテント細胞を上述のように調製し、プラスミドpBDPgroE−ilvC(B.s.)−bdhBで形質転換して、枯草菌(B.subtilis)BE1010ΔsacB::PgroE−budB−ilvD−kivD#1−7/pBDPgroE−ilvC(B.s.)−bdhBおよび枯草菌(B.subtilis)BE1010ΔsacB::PgroE−budB−ilvD−kivD#8−16/pBDPgroE−ilvC(B.s.)−bdhBを生じさせた。
ラクトバシラス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)中のイソブタノール生合成経路の発現
本予測的実施例の目的は、どのようにラクトバシラス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)中でイソブタノール生合成経路を発現するかについて述べることである。5つの酵素活性をコードするイソブタノール経路の5つの遺伝子を発現のために2つのオペロンに分割する。ホルス(Hols)ら、Appl.Environ.Microbiol.60:1401〜1413頁、1994年、で述べられる方法を使用して、相同的組換えによって、それぞれアセト乳酸シンターゼ、アセトヒドロキシ酸デヒドラターゼ、および分枝α−ケト酸脱炭酸酵素をコードする、budB、ilvD、およびkivD遺伝子をラクトバシラス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)の染色体に組み込む。残る2つの遺伝子(それぞれアセトヒドロキシ酸レダクトイソメラーゼおよびブタノールデヒドロゲナーゼをコードするilvCおよびbdhB)を発現プラスミド中にクローニングして、組み込まれたイソブタノール遺伝子を保有する乳酸桿菌(Lactobacillus)株に形質転換する。ラクトバシラス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)をディフコ・ラボラトリーズからのMRS培地中で37℃で生育させ、モレイラ(Moreira)ら、BMC Microbiol.5:15頁、2005年、で述べられるようにして、染色体DNAを単離する。
相同的組換えによって、合成P11プロモーターの制御下にあるbudB−ilvD−kivD((Rud)ら、Microbiology 152:1011〜1019頁、2006年)をラクトバシラス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)ATCC BAA−793(NCIMB8826)の染色体中にldhL1遺伝子座で組み込む。ldhL組み込みターゲティングベクターを構築するために、ldhLと相同性があるラクトバシラス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)(ジェンバンクNC_004567)からのDNA断片をプライマーLDHEcoRVF(配列番号161)およびLDHAatIIR(配列番号162)でPCR増幅する。1986bpのPCR断片をpCR4Blunt−TOPO中にクローニングして、配列決定する。pCR4Blunt−TOPO−ldhL1クローンをEcoRVおよびAatIIで消化して1982bpのldhL1断片を放出し、それをゲル精製する。配列番号177で示される組み込みベクターpFP988をHindIIIで消化し、クレノウ(Klenow)DNAポリメラーゼで処理して末端を平滑化する。次に直線化プラスミドをAatIIで消化し、2931bpのベクター断片をゲル精製する。EcoRV/AatIIldhL1断片をpFP988ベクター断片にライゲートして、大腸菌(E.coli)Top10細胞に形質転換する。アンピシリン(100μg/mL)含有LB寒天プレート上で形質転換体を選択し、コロニーPCRによってスクリーンして、pFP988−ldhLの構築を確認する。
ニコロフ(Nickoloff),J.A.編、「分子生物学における方法(Methods in Molecular Biology)」より、第47巻、アウクルスト(Aukrust),T.W.ら、「微生物のための電気穿孔プロトコル(Electroporation Protocols for Microorganisms)」、Humana Press,Inc.,Totowa,NJ、201〜208頁、1995年、で述べられるようにして、L.プランタルム(plantarum)のエレクトロコンピテント細胞を調製する。電気穿孔後、アウクルスト(Aukrust)ら(前出)で述べられるようにして、細胞をMRSSM培地(0.5Mのスクロースおよび0.1MのMgCl2で栄養強化されたMRS培地)中で撹拌せずに37℃で2時間増殖させる。電気穿孔された細胞を選択のためにクロラムフェニコール(10μg/mL)含有MRSプレート上に播種して、37℃でインキュベートする。形質転換体を最初にコロニーPCR増幅によってスクリーンして組み込みを確認し、次に最初の陽性クローンを一群のプライマーでのPCR増幅によって、より厳密にスクリーンする。
L.プランタルム(plantarum)ldhLプロモーター(フェライン(Ferain)ら、J.Bacteriol.176:596〜601頁、1994年)の制御下にあるプラスミドpTRKH3(オサリバン(O’Sullivan)DJおよびクラエンハマー(Klaenhammer)TR,Gene 137:227〜231頁、1993年)から、残る2つのイソブタノール遺伝子を発現する。プライマーPldhL F−HindIII(配列番号167)およびPldhL R−BamHI(配列番号168)を使用して、L.プランタルム(plantarum)ATCCBAA−793ゲノムからldhLプロモーターをPCR増幅する。411bpのPCR産物をpCR4Blunt−TOPO中にクローニングして、配列決定する。得られたプラスミドpCR4Blunt−TOPO−PldhLをHindIIIおよびBamHIで消化し、PldhL断片を放出する。
エンテロコッカス・フェカーリス(Enterococcus faecalis)中でのイソブタノール生合成経路の発現
この予測的実施例の目的は、エンテロコッカス・フェカーリス(Enterococcus faecalis)中でどのようにイソブタノール生合成経路を発現するかについて述べることである。本実施例においてイソブタノール生合成経路の発現のための宿主株として使用されるエンテロコッカス・フェカーリス(Enterococcus faecalis)V583株の完全なゲノム配列は、公開されている(ポールセン(Paulsen)ら、Science 299:2071〜2074頁、2003年)。大腸菌(E.coli)/グラム陽性シャトルベクターであるプラスミドpTRKH3(オサリバン(O’Sullivan)DJおよびクラエンハマー(Klaenhammer)TR,Gene 137:227〜231頁、1993年)を1オペロン中のイソブタノール経路の5つの遺伝子(budB、ilvC、ilvD、kivD、bdhB)の発現のために使用する。pTRKH3は、大腸菌(E.coli)プラスミドp15A複製基点、pAMβ1レプリコン、およびテトラサイクリンおよびエリスロマイシンに対する2つの抗生物質抵抗性選択マーカーを含有する。テトラサイクリン抵抗性は大腸菌(E.coli)中でのみ発現し、エリスロマイシン抵抗性は大腸菌(E.coli)およびグラム陽性細菌の双方で発現する。プラスミドpAMβ1誘導体はE.フェカーリス(faecalis)中で複製できる(ポイヤー(Poyart)ら、FEMS Microbiol.Lett.156:193〜198頁、1997年)。エンテロコッカス・フェカーリス(Enterococcus faecalis)をはじめとする多様なグラム陽性細菌中でのナイシンによる遺伝子発現の効率的な制御のために使用される、誘導性nisAプロモーター(PnisA)(アイヘンバウム(Eichenbaum)ら、Appl.Environ.Microbiol.64:2763〜2769頁、1998年)を使用して、イソブタノール生合成経路の酵素をコードする5つの所望の遺伝子の発現を制御する。
Claims (26)
- i)ピルビン酸からアセト乳酸へ(経路ステップa)、
ii)アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸へ(経路ステップb)、
iii)2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸へ(経路ステップc)、および
iv)α−ケトイソ吉草酸からイソブチルアルデヒドへ(経路ステップd)
の基質から産物への変換を触媒するポリペプチドをコードする、異種DNA分子を含んでなる組換え微生物宿主細胞であって、前記微生物宿主細胞がイソブタノールを生成する組換え微生物宿主細胞において、
a)ピルビン酸からアセト乳酸への基質から産物への変換を触媒するポリペプチドがアセト乳酸シンターゼであり、
b)アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸への基質から産物への変換を触媒するポリペプチドが、アセトヒドロキシ酸イソメロレダクターゼであり、
c)2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸への基質から産物への変換を触媒するポリペプチドが、アセトヒドロキシ酸デヒドラターゼであり、そして
d)α−ケトイソ吉草酸からイソブチルアルデヒドへの基質から産物への変換を触媒するポリペプチドが、分枝α−ケト酸脱炭酸酵素である、
ことを特徴とする組換え微生物宿主細胞。 - i)ピルビン酸からアセト乳酸へ(経路ステップa)、
ii)アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸へ(経路ステップb)、
iii)2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸へ(経路ステップc)、および
iv)α−ケトイソ吉草酸からイソブチリル−CoAへ(経路ステップf)、
v)イソブチリル−CoAからイソブチルアルデヒドへ(経路ステップg)
の基質から産物への変換を触媒するポリペプチドをコードする、異種DNA分子を含んでなる組換え微生物宿主細胞であって、前記微生物宿主細胞がイソブタノールを生成する組換え微生物宿主細胞において、
a)ピルビン酸からアセト乳酸への基質から産物への変換を触媒するポリペプチドがアセト乳酸シンターゼであり、
b)アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸への基質から産物への変換を触媒するポリペプチドが、アセトヒドロキシ酸イソメロレダクターゼであり、
c)2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸への基質から産物への変換を触媒するポリペプチドが、アセトヒドロキシ酸デヒドラターゼであり、
d)α−ケトイソ吉草酸からイソブチリル−CoAへの基質から産物への変換を触媒するポリペプチドが、分枝ケト酸デヒドロゲナーゼであり、そして
e)イソブチリル−CoAからイソブチルアルデヒドへの基質から産物への変換を触媒するポリペプチドが、アシル化アルデヒドデヒドロゲナーゼである、
ことを特徴とする組換え微生物宿主細胞。 - i)ピルビン酸からアセト乳酸へ(経路ステップa)、
ii)アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸へ(経路ステップb)、
iii)2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸へ(経路ステップc)、
iv)α−ケトイソ吉草酸からバリンへ(経路ステップh)、
v)バリンからイソブチルアミンへ(経路ステップi)、および
vi)イソブチルアミンからイソブチルアルデヒドへ(経路ステップj)
の基質から産物への変換を触媒するポリペプチドをコードする、異種DNA分子を含んでなる組換え微生物宿主細胞であって、前記微生物宿主細胞がイソブタノールを生成する組換え微生物宿主細胞において、
a)ピルビン酸からアセト乳酸への基質から産物への変換を触媒するポリペプチドがアセト乳酸シンターゼであり、
b)アセト乳酸から2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸への基質から産物への変換を触媒するポリペプチドが、アセトヒドロキシ酸イソメロレダクターゼであり、
c)2,3−ジヒドロキシイソ吉草酸からα−ケトイソ吉草酸への基質から産物への変換を触媒するポリペプチドが、アセトヒドロキシ酸デヒドラターゼであり、
d)α−ケトイソ吉草酸からバリンへの基質から産物への変換を触媒するポリペプチドが、アミノ基転移酵素であり、
e)バリンからイソブチルアミンへの基質から産物への変換を触媒するポリペプチドが、バリン脱炭酸酵素であり、そして
f)イソブチルアミンからイソブチルアルデヒドへの基質から産物への変換を触媒するポリペプチドが、ωアミノ基転移酵素である、
ことを特徴とする組換え微生物宿主細胞。 - さらに、イソブチルアルデヒドからイソブタノールへの基質から産物への変換(経路ステップe)を触媒するポリペプチドをコードする、異種DNA分子を含んでなり、前記ポリペプチドが、分枝アルコールデヒドロゲナーゼである請求項1〜3のいずれか一項に記載の宿主細胞。
- 細胞が、細菌、シアノ細菌、糸状菌、および酵母よりなる群から選択される請求項1〜3のいずれか一項に記載の宿主細胞。
- 細胞が、クロストリジウム(Clostridium)、ザイモモナス(Zymomonas)、エシェリキア(Escherichia)、サルモネラ(Salmonella)、ロドコッカス(Rhodococcus)、シュードモナス(Pseudomonas)、バシラス(Bacillus)、乳酸桿菌(Lactobacillus)、腸球菌(Enterococcus)、アルカリゲネス(Alcaligenes)、クレブシエラ(Klebsiella)、パエニバシラス(Paenibacillus)、アルスロバクター(Arthrobacter)、コリネバクテリウム(Corynebacterium)、ブレビバクテリウム(Brevibacterium)、ピチア(
Pichia)、カンジダ(Candida)、ハンゼヌラ(Hansenula)、およびサッカロミセス(Saccharomyces)よりなる群から選択される属の一員である請求項5に記載の宿主細胞。 - 細胞が大腸菌(Escherichia coli)、アルカリゲネス・ユートロファス(Alcaligenes eutrophus)、バシラス・リチェニホルミス(Bacillus licheniformis)、パエニバシラス・マセランス(Paenibacillus macerans)、ロドコッカス・エリスロポリス(Rhodococcus erythropolis)、シュードモナス・プチダ(Pseudomonas putida)、枯草菌(Bacillus subtilis)、ラクトバシラス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)、エンテロコッカス・フェシウム(Enterococcus faecium)、エンテロコッカス・ガリナラム(Enterococcus gallinarum)、エンテロコッカス・フェカーリス(Enterococcus faecalis)およびサッカロミセス・セレヴィシエ(Saccharomyces cerevisiae)よりなる群から選択される請求項6に記載の宿主細胞。
- アセト乳酸シンターゼが、配列番号2、配列番号178、および配列番号180よりなる群から選択されるアミノ酸配列を有する請求項1〜3のいずれか一項に記載の宿主細胞。
- アセトヒドロキシ酸イソメロレダクターゼが、配列番号43、配列番号181、配列番号183、および配列番号185よりなる群から選択されるアミノ酸配列を有する請求項1〜3のいずれか一項に記載の宿主細胞。
- アセトヒドロキシ酸デヒドラターゼが、配列番号6、配列番号186、配列番号188、および配列番号190よりなる群から選択されるアミノ酸配列を有する請求項1〜3のいずれか一項に記載の宿主細胞。
- 分枝アルコールデヒドロゲナーゼが、配列番号10、配列番号199、配列番号201、配列番号203、および配列番号204よりなる群から選択されるアミノ酸配列を有する請求項4に記載の宿主細胞。
- 分枝α−ケト酸脱炭酸酵素が、配列番号8、配列番号193、配列番号195、および配列番号197よりなる群から選択されるアミノ酸配列を有する請求項1に記載の宿主細胞。
- 分枝ケト酸デヒドロゲナーゼが4つのサブユニットを含んでなり、前記サブユニットのアミノ酸配列が、配列番号214、配列番号216、配列番号218、配列番号220、配列番号210、配列番号208、配列番号206、および配列番号212よりなる群から選択される請求項2に記載の宿主細胞。
- アシル化アルデヒドデヒドロゲナーゼが、配列番号222、配列番号224、配列番号226、配列番号228、および配列番号230よりなる群から選択されるアミノ酸配列を有する請求項2に記載の宿主細胞。
- アミノ基転移酵素が、配列番号232、配列番号234、配列番号236、配列番号238、および配列番号240よりなる群から選択されるアミノ酸配列を有する請求項に3記載の宿主細胞。
- バリンデヒドロゲナーゼが、配列番号242および配列番号244よりなる群から選択されるアミノ酸配列を有する請求項3に記載の宿主細胞。
- バリン脱炭酸酵素が配列番号246で示されるアミノ酸配列を有する請求項3に記載の宿主細胞。
- ωアミノ基転移酵素が、配列番号248、配列番号250、配列番号252、および配列番号254よりなる群から選択されるアミノ酸配列を有する請求項3に記載の宿主細胞。
- 宿主細胞が通性嫌気性菌である請求項1〜3のいずれか一項に記載の宿主細胞。
- 1)請求項1〜19のいずれか1項に記載の組換え微生物宿主細胞を提供するステップと、
2)イソブタノールが生成される条件下において発酵培地中で上記の宿主細胞を発酵性炭素基質と接触させるステップと
を含む、イソブタノールの製造方法。 - 発酵性炭素基質が、単糖類、オリゴ糖類、および多糖類よりなる群から選択される請求項20に記載の方法。
- 炭素基質が、グルコース、スクロース、およびフルクトースよりなる群から選択される請求項20に記載の方法。
- それによってイソブタノールが生成される条件が嫌気性である請求項20に記載の方法。
- それによってイソブタノールが生成される条件が微好気性である請求項20に記載の方法。
- 宿主細胞を最少培地中で炭素基質に接触させる、請求項20に記載の方法。
- 請求項1〜19のいずれか一項に記載の組換え微生物宿主細胞を含むイソブタノール含有発酵培地。
Applications Claiming Priority (3)
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---|---|---|---|
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