JP5063612B2 - 抗ｉｌ−１７抗体 - Google Patents

Description

本発明は、医学の分野、特にヒトＩＬ−１７に対する単クローン抗体の分野に関する。本発明は、アミノ酸ＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）を含むＩＬ−１７非線形又は高次構造抗原性エピトープに高い親和性で結合する、抗ＩＬ−１７単クローン中和抗体に関する。本発明の抗体は、キメラ、ヒト化、若しくはヒト抗体、それら抗体の免疫複合体又はそれらの抗原結合断片でもよく、自己免疫、炎症性、細胞増殖性、及び発達障害の治療のための薬剤として有用である。

サイトカインのＩＬ−１７ファミリーには現在、ＩＬ−１７Ａ、ＩＬ−１７Ｂ、ＩＬ−１７Ｃ、ＩＬ−１７Ｄ、ＩＬ−１７Ｅ、及びＩＬ−１７Ｆが含まれる。すべてのＩＬ−１７ファミリーメンバーは、鎖間ジスルフィド結合の形成に関与する、４つの高度に保存されたシステイン残基を有し、且つ鎖間ジスルフィド結合に関係してもよい２以上のシステイン残基を有する。ＩＬ−１７ファミリーのメンバーには、他のいずれの既知サイトカインとも配列類似性がない。しかし、ＩＬ−１７Ａのウィルス相同体が、ヘルペスウィルスサイミリの読み取り枠１３に見い出され（Ｙａｏ，Ｚ．ｅｔ ａｌ．，Ｉｍｍｕｎｉｔｙ，３：８１１，１９９５）、ヒトＩＬ−１７Ａと７２％のアミノ酸残基同一性を有する。ＩＬ−１７ファミリーメンバーに対して複数の機能が報告されており、主として免疫応答の調節に関わる。

インターロイキン１７（ＩＬ−１７、ＩＬ−１７Ａとも称される）は、活性化ＣＤ４＋Ｔ細胞によって主に生産される２０〜３０ｋＤのホモダイマー糖タンパク質であり、炎症誘発性サイトカインとして機能する。特定のＩＬ−１７ファミリーメンバーが単に「ＩＬ−１７」と称される場合、そのファミリーメンバーが指すのはＩＬ−１７Ａであると理解される。ＩＬ−１７は、体循環中でなく炎症の部位で、活性化Ｔ細胞により分泌される。ＩＬ−１７は、他の既知サイトカイン受容体との有意な配列類似性を示さない、偏在的に発現される大きなタンパク質である、ＩＬ−１７Ｒと称されるＩ型膜貫通受容体に結合する。ＩＬ−１７は、接着分子をアップレギュレートすること、並びに滑膜細胞、軟骨細胞、繊維芽細胞、内皮細胞、上皮細胞、ケラチノサイト、及びマクロファージを含む様々な細胞型から複数の炎症性サイトカイン及びケモカインの生産を誘導することを含む、複数の生物学的性質を有する。また、ＩＬ−１７は、ケモカイン遊離を誘導することで炎症部位に好中球の補充を誘導し、プロスタグランジン及びメタロプロテイナーゼの生産を刺激し、プロテオグリカン合成を阻害する。更に、ＩＬ−１７は、造血前駆細胞の成熟において重要な役割を果たす。ＩＬ−１７が、肺、関節軟骨、骨、脳、造血細胞、腎、皮膚及び腸を含めた異なる器官及び組織でシグナル伝達の役割を有することが立証されている。ＩＬ−１７生物活性の総説については、例えば、Ｋｏｌｌｓ ａｎｄ Ｌｉｎｄｅｎ，Ｉｍｍｕｎｉｔｙ ２１：４６７−４７６，２００４、又はＦｏｓｓｉｅｚ，ｅｔ ａｌ．，Ｉｎｔ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６：５４１，１９９８を参照のこと。

ＩＬ−１７（すなわち、ＩＬ−１７Ａ）のレベルの増加は、気道炎症、慢性関節リウマチ（「ＲＡ」）骨関節炎、骨浸食、腹腔内膿瘍及び接着、炎症性腸障害（「ＩＢＤ」）、同種異系移植片拒絶、乾癬、特定の型の癌、脈管形成、アテローム性動脈硬化及び多発性硬化症（「ＭＳ」）を含む種々の症状、疾患又は障害と関連している（総説については、 Ｗｉｔｋｏｗｓｋｉ，ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ．Ｍｏｌ．Ｌｉｆｅ Ｓｃｉ．６１：５６７−５７９，２００４参照）。ＩＬ−１７及びＩＬ−１７Ｒは双方とも、ＲＡ患者の滑液組織にてアップレギュレートされる。ＩＬ−１７特異抗体又はＩＬ−１７に対する可溶性受容体との結合によりＩＬ−１７生物活性を阻止すると、様々な動物の関節炎モデルで炎症及び骨浸食が低減する。（Ｌｕｂｂｅｒｔｓ，ｅｔ ａｌ．，Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ ＆ Ｒｈｅｕｍａｔｉｓｍ，５０：６５０−６５９，２００４参照）。更に、ＩＬ−１７は、コラーゲン基質の崩壊及び炎症並びに関節損傷に対して、ＩＬ−１β非依存的な効果を有し、一方でＩＬ−１７は、ＴＮＦ−αとの相乗作用を有して炎症を増幅する。

従って、炎症の部位でのその限局的分布を前提に、ＩＬ−１７は、ＲＡ、及びＴＮＦ−αなどの炎症誘発性サイトカインの体循環を標的化する薬物よりも潜在的に高い安全性プロファイルを伴う他の炎症性疾患又は自己免疫疾患の治療に対する新規の標的であると考えられる。ＴＮＦ−αに結合してこれを中和する、現在ＦＤＡで認可されているバイオ製品（ＥＮＢＲＥＬ（登録商標）、ＲＥＭＩＣＡＤＥ（登録商標）及びＨＵＭＩＲＡ（登録商標）抗体）は、ＲＡの徴候及び症状の低減と、ＲＡ患者のサブセットでの疾患の進行の緩徐化における有効性が示されている。しかし、すべてのＲＡ患者が、これらのバイオ製品でのＴＮＦ−α生物活性の阻害に等しく応答するわけではない。加えて、ＩＬ−１７ｍＲＮＡは、多発性硬化症病変で、並びに血中の単核細胞及びＭＳ患者の脳脊髄液中で、特に臨床症状が悪化する間に増加する。

従って、ＩＬ−１７生物活性の存在によって望ましくない病理学的効果が生じるか若しくはそのような効果に寄与するような、又はＩＬ−１７生物活性の減少が望ましい治療効果に寄与するような、ＲＡ及びＭＳ及びＩＢＤなどの炎症性障害、細胞増殖及び発達障害、並びに自己免疫異常を含めた障害、疾患又は症状を治療するために、ＩＬ−１７の活性に拮抗するか、又は中和する組成物が必要とされている。

ヒト起源のＩＬ−１７や、ヒト以外の哺乳動物のＩＬ−１７に特異的に結合する抗ＩＬ−１７中和抗体であって、これにより前臨床、及び臨床のインビボ研究にて使用できる抗体が必要とされている。更に、高い親和性でＩＬ−１７に結合し、且つ／又は遅い解離速度を有するＩＬ−１７特異抗体であって、これによって、より低い親和性でＩＬ−１７に結合し（すなわち、Ｋ_Ｄがより高い）、且つ／又はより速い解離速度を有する抗体を用いる場合よりも、かかる抗体を用いて、有効な薬用量を最小化して、結果的に投薬回数を低減できるようにするＩＬ−１７特異抗体が必要とされている。高親和性ＩＬ−１７特異抗体は、患者の静脈内でなく皮下に抗体を投与できる場合があるという点でも望ましい。最小有効薬用量で治療用の抗ＩＬ−１７抗体を作製するために、ＩＬ−１７生物活性のアッセイで低いＩＣ_５０値を示すＩＬ−１７特異抗体も必要とされている。抗体を摂取している患者によって誘起されるその抗体に対する免疫応答が最小限に低減されるような、ＩＬ−１７に特異的な抗体を提供することも望ましい。本発明は、これらの要求を満たし、関連する効果をもたらす。

本発明の抗体は、キメラ、ヒト化、又は完全にヒトの抗ＩＬ−１７単クローン抗体、及びそれらの抗原結合部分であって、ＩＬ−１７アミノ酸ＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）を含む非線形エピトープに結合して、ＩＬ−１７若しくはその一部分に関連するインビトロ又はインビボの生物学的活性の少なくともいずれかと拮抗するか、又はこれを中和する。

一実施形態で、本発明の抗体は、例えば本願明細書の実施例６Ａに記載のようなインビトロＩＬ−８レポーターアッセイで約１ｎＭ、９００ｐＭ、８００ｐＭ、７００ｐＭ、６００ｐＭ、５６０ｐＭ若しくは５００ｐＭ以下の、又は例えば本願明細書の実施例６Ｂに記載のようなインビトロＧＲＯαレポーターアッセイで５６０ｐＭ以下のＩＣ_５０を有する。

別の実施形態で、本発明の抗体は、ヒトＩＬ−１７に対する強い結合親和性（Ｋ_Ｄ）すなわち、約７ｐＭ、６．５ｐＭ、６．０ｐＭ、５．５ｐＭ、５．０ｐＭ、４．５ｐＭ 又は４．０ｐＭ未満の結合親和性によって特徴付けられる。あるいは、本発明の抗体は、約７ｐＭ、６．５ｐＭ、６．０ｐＭ、５．５ｐＭ、５．０ｐＭ、４．５ｐＭ以下、又は好ましくは約４．０ｐＭ以下の、ヒトＩＬ−１７に対するＫ_Ｄによって特徴付けられる。好ましくは、本発明の抗体は、２×１０^−５ｓ^−１未満の、ヒトＩＬ−１７からのｋ_ｏｆｆ速度によって更に特徴付けられる。

別の実施形態で、本発明の抗ＩＬ−１７抗体は、ヒトＩＬ−１７のみならずカニクイザルＩＬ−１７に特異的に結合する一方で、バックグラウンドを上回るレベルでマウス又はラットＩＬ−１７に結合することがないことによって特徴付けられる。加えて、本発明の抗ＩＬ−１７抗体は、ヒトＩＬ−１７（すなわち、ＩＬ−１７Ａ）に結合するが、ヒトＩＬ−１７Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ又はＦに結合しない。

一実施形態で、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体は、本願明細書の下記表３に列挙するＦａｂに共に存在し、且つ表３に列挙するＦａｂにおけると同じＣＤＲ位置で本発明の抗体に存在する、３つのＣＤＲ配列を含んだ軽鎖可変領域（「ＬＣＶＲ」）ポリペプチドを含む。好ましくは、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体は、配列番号：１７８〜２４３からなる群より選択されるアミノ酸配列を有するＬＣＶＲポリペプチドを含む。

別の実施形態で、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体は、本願明細書の下記表２に列挙するＦａｂに共に存在し、且つ表２に列挙するＦａｂにおけると同じＣＤＲ位置で本発明の抗体に存在する、３つのＣＤＲを含んだ重鎖可変領域（「ＨＣＶＲ」）ポリペプチドを含む。好ましくは、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体は、配列番号：５６〜１２１からなる群より選択されるアミノ酸配列を有するＨＣＶＲポリペプチドを含む。

別の実施形態で、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体は、表３に列挙するＦａｂに共に存在し、且つ表３に列挙するＦａｂにおけると同じＣＤＲ位置で本発明の抗体に存在する、３つのＣＤＲを含んだＬＣＶＲポリペプチドを含み、更に表２に列挙するＦａｂに共に存在し、且つ表２に列挙するＦａｂにおけると同じＣＤＲ位置で本発明の抗体に存在する、３つのＣＤＲを含んだＨＣＶＲポリペプチドを含む。好ましくは、本発明の抗体の６つのＣＤＲ、又はその機能性断片は、本願明細書の下記表１に列挙するＦａｂに共に存在し、且つ表１に列挙するＦａｂにおけると同じＣＤＲ位置で本発明の抗体に存在する。

好ましい実施形態で、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体は、（ｉ）配列番号：１７８〜２４３からなる群より選択されるアミノ酸配列を有するＬＣＶＲポリペプチド、及び（ｉｉ）配列番号：５６〜１２１からなる群より選択されるアミノ酸配列を有するＨＣＶＲポリペプチドを含む。より好ましい実施形態で、配列番号：１７８〜２４３からなる群より選択されるアミノ酸配列を有するＬＣＶＲポリペプチドを含む本発明の抗体は、配列番号：５６〜１２１からなる群より選択されるＨＣＶＲポリペプチドであって表１に列挙するＦａｂに存在し、当該抗体に存在する特定のＬＣＶＲを含むものを更に含む。

別の実施形態で、本発明の単クローン抗体は、競合抗体と、ヒトＩＬ−１７又はヒトＩＬ−１７の一部分への結合について競合できるものであり、当該競合抗体は、配列番号：２４１及び１１８のアミノ酸配列を有する２つのポリペプチドを含む。

別の実施形態で、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体のＬＣＶＲは、（ａ） 配列番号：１２２〜１４９；（ｂ）配列番号：１５０〜１６７、及び（ｃ）配列番号：１６８〜１７７に示す配列を有するペプチドからなる群より選択される、１つ、２つ又は、３つのペプチド、好ましくは３つのペプチド（すなわち、３つの前記ペプチドを含む抗体については、（ａ）からのペプチド１つ、（ｂ）からのペプチド１つ、及び（ｃ）からのペプチド１つ）を含む。配列番号：１２２〜１４９に示す配列を有するペプチドが本発明の抗体に存在する場合、ＣＤＲＬ１にある。配列番号：１５０〜１６７に示す配列を有するペプチドが本発明の抗体に存在する場合、ＣＤＲＬ２にある。配列番号：１５０〜１６７に示す配列を有するペプチドが本発明の抗体に存在する場合、ＣＤＲＬ３にある。

別の実施形態で、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体のＨＣＶＲは、（ａ） 配列番号：１１〜２８；（ｂ）配列番号：２９〜３２、並びに（ｃ）配列番号：３３〜５５及び２６１に示す配列を有するペプチドからなる群より選択される、１つ、２つ又は、３つのペプチド、好ましくは３つのペプチド（すなわち、３つの前記ペプチドを含む抗体については、（ａ）からのペプチド１つ、（ｂ）からのペプチド１つ、及び（ｃ）からのペプチド１つ）を含む。配列番号：１１〜２８に示す配列を有するペプチドが前記抗体に存在する場合、ＣＤＲＨ１にある。配列番号：２９〜３２に示す配列を有するペプチドが前記抗体に存在する場合、ＣＤＲＨ２にある。配列番号：３３〜５５及び２６１に示す配列を有するペプチドが前記抗体に存在する場合、ＣＤＲＨ３にある。

本発明は更に、（ａ）配列番号：１２２〜１４９；（ｂ）配列番号：１５０〜１６７、（ｃ）配列番号：１６８〜１７７、（ｄ）配列番号：１１〜２８；（ｅ）配列番号：２９〜３２、並びに（ｆ）配列番号：３３〜５５及び２６１に示す配列を有するペプチドからなる群より選択される、６つのペプチド（すなわち、（ａ〜ｆ）の各々からの１つのペプチド）を含む抗ＩＬ−１７単クローン抗体を提供し、好ましくはそれら６つのペプチドは本願明細書の表１に列挙するＦａｂに共に存在する。配列番号：１２２〜１４９に示す配列を有するペプチドが本発明の抗体に存在する場合、ＣＤＲＬ１にある。配列番号：１５０〜１６７に示す配列を有するペプチドが本発明の抗体に存在する場合、ＣＤＲＬ２にある。配列番号：１５０〜１６７に示す配列を有するペプチドが本発明の抗体に存在する場合、ＣＤＲＬ３にある。配列番号：１１〜２８に示す配列を有するペプチドが前記抗体に存在する場合、ＣＤＲＨ１にある。配列番号：２９〜３２に示す配列を有するペプチドが前記抗体に存在する場合、ＣＤＲＨ２にある。配列番号：３３〜５５及び２６１に示す配列を有するペプチドが前記抗体に存在する場合、ＣＤＲＨ３にある。

本発明は更に、配列番号：２４７、２４８、２４９、２４４、２４５及び２４６に示す配列を有する６つのペプチドを含む抗ＩＬ−１７単クローン抗体を提供する。配列番号：２４７に示す配列を有するペプチドは、ＣＤＲＬ１にある。配列番号：２４８に示す配列を有するペプチドは、ＣＤＲＬ２にある。配列番号：２４９に示す配列を有するペプチドは、ＣＤＲＬ３にある。配列番号：２４４に示す配列を有するペプチドは、ＣＤＲＨ１にある。配列番号：２４５に示す配列を有するペプチドは、ＣＤＲＨ２にある。配列番号：２４６に示す配列を有するペプチドは、ＣＤＲＨ３にある。

本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体は、無傷の（すなわち、完全長の）抗体、実質的に無傷の抗体又はその抗原結合部分（例えば、Ｆａｂ断片、Ｆ（ａｂ'）_２断片又は単鎖Ｆｖ断片）を含んでも、これからなっていてもよい。更に、本発明の抗体は、検出可能な標識でラベルしても、固相に固定化しても、及び／又は異種化合物（例えば、酵素、毒素若しくはポリエチレングリコール分子）と接合してもよい。

別の実施形態で、本発明は、本発明の宿主細胞（すなわち、本発明の抗体を発現する本発明のベクター（１種又は複数種）で形質転換、形質導入又は感染されている宿主細胞）を、本発明の単クローン抗体の発現に適切な条件下に維持し、これによりかかる抗体を発現させることを含む、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体を調製する方法を提供する。前記方法は、細胞から、又は好ましくは細胞の生育培地から、本発明の単クローン抗体を単離する工程を更に含んでもよい。

本発明の単クローン抗体の診断用途を企図する。１つの診断用途で、本発明は、被検試料を本発明の抗ＩＬ−１７抗体へ結合条件下に曝し、試料への抗体の特異的結合を定量することを含む、試料中のＩＬ−１７タンパク質のレベルを定量するための方法を提供する。本発明の抗ＩＬ−１７抗体は、既知量のＩＬ−１７を含む試料への当該抗体の結合によって作成される標準曲線と、試験試料の値を比較することによって試験試料中のＩＬ−１７のレベルを定量するために使用してもよい。本発明は更に、本発明の抗体、及び好ましくは、その抗体を使用して試料中のＩＬ−１７タンパク質を検出するための説明書を含むキットを提供する。

本発明は、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体を含む組成物、好ましくは医薬組成物を提供する。本発明の医薬組成物は、薬理学的に許容できる担体、賦形剤及び／又は希釈剤を更に含んでもよい。前記医薬組成物で、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体は、唯一の活性成分である。好ましくは、医薬組成物は、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体の均一又は実質的に均一な集団を含む。治療用途の組成物は、生理的に適合性で、無菌であり、また凍結乾燥して適切な希釈剤と共に任意に供給してもよい。

本発明は、動物、好ましくは哺乳動物、より好ましくはヒトにおけるＩＬ−１７生物活性の少なくともいずれかを必要に応じて阻害する方法であって、治療上有効量、又はＩＬ−１７中和量の、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体を当該動物に投与することを含む方法を提供する。本発明は更に、例えば、ＩＬ−１７のその受容体への結合に起因するシグナル伝達の阻害など、ＩＬ−１７生物活性を中和又は拮抗することによって寛解する疾患又は障害を治療する方法であって、このような治療又は予防を必要とする患者（例えば、ヒト）に、治療上有効量の、ＩＬ−１７中和量の本発明の単クローン抗体を投与することを含む方法を提供する。

本発明は、例えば自己免疫異常又は炎症障害又は細胞増殖障害の治療のための、哺乳動物、好ましくはヒトへの投与用の薬剤の製造で使用するための、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体を具体化する。

本発明は更に、パッケージ材と前記パッケージ材の中に収納される本発明の抗体とを含む製品であって、パッケージ材に、抗体がＩＬ−１７活性を特異的に中和するか又はその系に存在する機能性ＩＬ−１７のレベルを低下させることを示す添付文書が含まれる製品を具体化する。

本発明は更に、本発明の抗体又はその軽鎖若しくは重鎖をコードする、単離された核酸分子；前記核酸を含むベクター（１種又は複数種）であって、当該核酸が任意に、そのベクターで形質転換された宿主細胞により認識される制御配列に作動可能に連結されたもの；そのベクターを含む宿主細胞；その核酸が発現されるように宿主細胞を培養し、任意に宿主細胞培養培地から抗体を回収することを含む、本発明の抗体の生産方法を提供する。

本発明は更に、カニクイザルＩＬ−１７（配列番号：２５３）又はウサギＩＬ−１７（配列番号：２５１）をコードする単離された核酸分子；サル又はウサギの核酸によりコードされるＩＬ−１７タンパク質（それぞれ配列番号：１０又は９）；前記核酸分子を含むベクター；前記ベクターを含む宿主細胞；及びカニクイザルＩＬ−１７又はウサギＩＬ−１７を生産する方法を提供する。

本発明は、キメラ、ヒト化、若しくは完全にヒトの抗ＩＬ−１７単クローン抗体、又はそれらの抗原結合部分であって、インビトロ及び／又はインビボでＩＬ−１７活性の少なくともいずれかを中和できるか、又はこれと拮抗できるものを提供する。好ましくは、かかる本発明の抗体は更に、例えばインビトロＩＬ−８レポーターアッセイ又はＧＲＯαレポーターアッセイで約６００若しくは５６０ｐＭ未満のＩＣ_５０を有すること（実施例６参照）、及び／又は、好ましくはＩＬ−１７と４ｐＭ未満の強い結合親和性を有することを特徴とする。本発明の抗体は更に、それらがヒト及びカニクイザルＩＬ−１７（それぞれ配列番号：１及び１０）に特異的に結合するが、マウス又はラットＩＬ−１７（それぞれ配列番号：７及び８）には結合しないことを特徴とする。本発明の単クローン抗体に結合する抗原性エピトープは、ヒト（及びサル）ＩＬ−１７の非線形エピトープであって、ＩＬ−１７の残基ＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）を含む。本発明の抗体は、それを全長のＩＬ−１７に照らした場合、ペプチドＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）に接触する。
定義

「ＩＬ−１７」又は「ＩＬ−１７Ａ」とも称される「インターロイキン１７」は、２０〜３０ｋＤのグリコシル化ホモダイマータンパク質である。ヒトＩＬ−１７遺伝子は、１９アミノ酸のシグナル配列及び１３６アミノ酸の成熟セグメントを有する１５５アミノ酸のタンパク質をコードする。ヒトＩＬ−１７は、図２に示すように、マウス及びラットのアミノ酸ＩＬ−１７配列と、それぞれ６２．５％及び５８％のアミノ酸配列同一性を示す。ヒトＩＬ−１７は、カニクイザルＩＬ−１７と９７．４％のアミノ酸配列同一性を示す。

天然に存在する状態での全長の抗体は、４つのペプチド鎖、すなわち、ジスルフィド結合により相互接続される２つの重（Ｈ）鎖（完全長の場合５０〜７０ｋＤａ）及び２つの軽（Ｌ）鎖（完全長の場合２５ｋＤａ）を含んでなる免疫グロブリン分子である。各鎖のアミノ末端部分は、主に抗原認識を担う約１００〜１１０以上のアミノ酸の可変領域を含む。各鎖のカルボキシ末端部分は、主にエフェクター機能を担う定常領域を規定する。

軽鎖は、κ又はλに分類され、特定の定常領域によって特徴付けられる。各軽鎖は、Ｎ末端軽鎖可変領域（本願明細書では「ＬＣＶＲ」）、及び１つのドメイン（ＣＬ）を含んでなる軽鎖定常領域を含んでなる。重鎖は、γ、μ、α、δ又はεに分類され、抗体のアイソタイプをそれぞれＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、及びＩｇＥと定義し、これらのうちのいくつかは、更に、例えばＩｇＧ_１、ＩｇＧ_２、ＩｇＧ_３、ＩｇＧ_４、ＩｇＡ_１及びＩｇＡ_２のサブクラス（アイソタイプ）に分けられ得る。各重鎖タイプは、特定の定常領域によって特徴付けられる。各重鎖は、Ｎ末端重鎖可変領域（本願明細書では「ＨＣＶＲ」）及び重鎖定常領域を含んでなる。重鎖定常領域は、ＩｇＧ、ＩｇＤ、及びＩｇＡについては３つのドメイン（ＣＨ１、ＣＨ２、及びＣＨ３）；そしてＩｇＭ及びＩｇＥについては４つのドメイン（ＣＨ１、ＣＨ２、ＣＨ３、及びＣＨ４）を含んでなる。

ＨＣＶＲ及びＬＣＶＲ領域は、超可変性の領域に更に再分割でき、これらは相補性決定領域（「ＣＤＲ」）と称され、フレームワーク領域（「ＦＲ」）と称される、より保存された領域と共に点在している。各ＨＣＶＲ及びＬＣＶＲは、３つのＣＤＲ及び４つのＦＲを含んでなり、これらは以下の順序、すなわち、ＦＲ１、ＣＤＲ１、ＦＲ２、ＣＤＲ２、ＦＲ３、ＣＤＲ３、ＦＲ４の順にアミノ末端からカルボキシ末端に配列されている。本発明の全長の抗体について、軽鎖は、好ましくは、ＦＲ４の下流に、配列番号：２７７に示す配列を有するポリペプチドを含む。本発明の全長の抗体について、重鎖は、好ましくは、ＦＲ４の下流に、配列番号：２７８に示す配列を有するポリペプチドを含む。本願明細書で、重鎖の３つのＣＤＲは、「ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３」と称され、軽鎖の３つのＣＤＲは、「ＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３」と称される。ＣＤＲは、抗原と特異的相互作用を形成する残基の大部分を含む。ＨＣＶＲ及びＬＣＶＲ領域内のＣＤＲアミノ酸残基の番号付け及び位置決めは、周知のカバットの番号付けの規則に従う。

本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体（又は単に「本発明の抗体」）に関連して、本願明細書の「抗体」という用語は、単クローン抗体を指す。本願明細書の「単クローン抗体」は、本願明細書で明記しない限り、齧歯類、好ましくはマウス抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体又は完全にヒトの抗体を指す。本発明の単クローン抗体は、例えば、当該技術分野でよく知られたハイブリドーマ技術や、組換え技術、ファージディスプレイ技術、合成若しくは組換え技術、又は当該技術分野で周知のこのような技術の組み合わせを使用して生産できる。本願明細書の「単クローン抗体」という用語は、ハイブリドーマ技術によって生産される抗体に限定されない。「単クローン抗体」とは、単一のコピー又はクローン（例えば、真核生物、原核生物、又はファージのクローンを含む）に由来する抗体を指し、それが生産された方法に帰するものではない。「単クローン抗体」は、無傷の抗体（完全であるか全長のＦｃ領域を含む）、実質的に無傷の抗体、又は抗原結合部分を含む抗体の一部分又は断片、例えば、マウス抗体又はキメラ、ヒト化、若しくはヒト抗体のＦａｂ断片、Ｆａｂ’断片又はＦ（ａｂ’）_２断片であることができる。「Ｆａｂ」断片は、軽鎖の可変及び定常ドメインと、重鎖の可変及び第１定常ドメイン（ＣＨ１）とを含む。「Ｆ（ａｂ´）_２」抗体断片は、一対のＦａｂ断片を含み、それらは通常、その間のヒンジシステインによってそれらのカルボキシ末端近傍で共有結合されている。抗体断片の他の化学結合も、当該技術分野で知られている。

各々の軽鎖−重鎖の対の可変領域は、抗体の抗原結合部位を形成する。このように、無傷のＩｇＧ抗体は、２つの結合部位を有する。二機能性又は、二重特異性抗体の場合を除き、抗体の２つの抗原結合部位は同じである。本願明細書の「抗原結合部分」又は「抗原結合領域」又は「抗原結合ドメイン」は、抗原と相互作用し、当該抗原に対するその特異性及び親和性を抗体上に与えるアミノ酸残基を含む抗体分子の部分を互換的に指す。この抗体部分は、抗原結合残基の適切な高次構造を維持するのに必要な「フレームワーク」アミノ酸残基を含む。好ましくは、本発明の抗体の抗原結合領域のＣＤＲは、完全に、又は実質的にマウス起源であり、任意に、特定のアミノ酸残基を改変して（例えば、異なるアミノ酸残基で置換するなど、例えば表２及び３参照）、抗体の特定の性質（例えば、Ｋ_Ｄ、ｋ_ｏｆｆ、ＩＣ_５０）が最適化される。好ましくは、本発明の抗体のフレームワーク領域は、ヒト起源、又は、実質的にヒト起源（ヒト起源の少なくとも８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％）である。本発明の抗体の好ましいフレームワーク領域は、以下の配列：配列番号：２６２（ＨＣＶＲ ＦＲ１）、２６３（ＨＣＶＲ ＦＲ２）、２６４（ＨＣＶＲ ＦＲ３）、２６５（ＨＣＶＲ ＦＲ４）、２６６（ＬＣＶＲ ＦＲ１）、２６７（ＬＣＶＲ ＦＲ２）、２６８（ＬＣＶＲ ＦＲ３）、２６９（ＬＣＶＲ ＦＲ４）を有し、カバットの番号付けに従う。他の実施形態で、本発明のＩＬ−１７抗体の抗原結合領域は、ウサギ、ラット又はハムスターを含む（これらに限定することはない）他の非ヒト種に由来できる。あるいは、抗原結合領域は、ヒト配列に由来することができる。

更に、本願明細書の「単クローン抗体」は、ＬＣＶＲをコードするＤＮＡとＨＣＶＲをコードするＤＮＡとを、リンカー配列を用いて継合することによって生産してよい、単鎖Ｆｖ断片であることができる。（Ｐｌｕｃｋｔｈｕｎ、Ｔｈｅ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ、１１３巻、Ｒｏｓｅｎｂｕｒｇ ａｎｄ Ｍｏｏｒｅ編、Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、２６９−３１５頁、１９９４参照）。断片が特定されるか否かに関わらず、本願明細書の「抗体」なる用語には、このような断片や、単鎖型が含まれると理解される。タンパク質が、その目的とする標的（すなわち、エピトープ又は抗原）に特異的又は優先的に結合する能力を保持する限り、それは「抗体」の用語に包含される。抗体は、グリコシル化されてもされなくてもよく、いずれにせよ本発明の範囲に含まれる。

「単クローン抗体」の集団は、均一又は実質的に均一な抗体集団を指し、すなわち、集団中の少なくとも約８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、より好ましくは少なくとも約９７％若しくは９８％、又は最も好ましくは少なくとも９９％の抗体が、同じ抗原又はエピトープについてＥＬＩＳＡアッセイにて競合することになるか、更に好ましくは、抗体がアミノ酸配列で同じである。抗体は、グリコシル化されてもされなくてもよく、いずれにせよ本発明の範囲に含まれる。単クローン抗体は、翻訳後修飾（例えばグリコシル化パターン）で異なってもよいが、それらが同一のアミノ酸配列を有するのであれば、均一であるとしてよい。

「変異」抗体は、本願明細書で、親抗体配列の１以上のアミノ酸残基の付加、欠失及び／又は置換に基づき、「親」抗体アミノ酸配列とアミノ酸配列が異なる分子を指す。好ましい実施形態で、変異抗体は、親抗体のＣＤＲ領域での、少なくとも１つのアミノ酸（例えば、１〜約１０、好ましくは２、３、４、５、６、７又は８）の付加、欠失及び／又は置換を含む。変異抗体配列に関する同一性又は相同性は、本願明細書では、配列を整列配置し、必要に応じてギャップを導入して最大パーセントの配列同一性とした後に、親抗体残基と同一である変異抗体配列のアミノ酸残基のパーセンテージと定義される。変異抗体は、親抗体に結合する抗原、又は好ましくはエピトープに結合する能力を保持しており、好ましくは親抗体よりも優れた少なくとも１種の性質又は生物活性を有する。例えば、変異抗体は、好ましくは、親抗体が有するよりも強い結合親和性、緩徐な解離速度、低いＩＣ_５０又は抗原の生物活性の阻害能を有する。本願明細書で特に目的とされる変異抗体は、親抗体と比較して、性質又は生物活性に少なくとも約２倍、好ましくは少なくとも約５倍、１０倍又は２０倍の増強を示すものである。

本願明細書の「親」抗体とは、変異抗体の調製のために使用するアミノ酸配列によってコードされるものである。親抗体は、マウス起源のフレームワーク配列を有してもよいが、好ましくは、フレームワーク配列は、完全に、又は実質的にヒト起源である。親抗体は、マウス、キメラ、ヒト化、又はヒト抗体であってもよい。

本願明細書の「特異的に結合する」の用語は、特異的結合対の１つのメンバーが、その特異的結合パートナー（１又はそれ以上）以外の分子に有意に結合しない状況を指す。この用語は、例えば、本発明の抗体の抗原結合ドメインが、多くの抗原が担持する特定のエピトープに特異的な場合にも適用でき、この場合、その抗原結合ドメインを担持する特異抗体は、エピトープを担持する様々な抗原に結合できるであろう。従って、本発明の単クローン抗体は、ヒトＩＬ−１７（すなわちＩＬ−１７Ａ）に特異的に結合するものの、ヒトＩＬ−１７Ｂ、ＩＬ−１７Ｃ、ＩＬ−１７Ｄ、ＩＬ−１７Ｅ、ＩＬ−１７Ｆに特異的に結合することはない。更に、本発明の単クローン抗体は、ヒトＩＬ−１７及びカニクイザルＩＬ−１７に特異的に結合するが、ラットＩＬ−１７又はマウスＩＬ−１７に特異的に結合することはない。更に、本発明の単クローン抗体は、アミノ酸ＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）を含む非線形又は高次構造ヒトＩＬ−１７エピトープに特異的に結合するが、アミノ酸ＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）を含まないヒトＩＬ−１７エピトープには結合しない。

本願明細書の「優先的に結合する」の用語は、当該技術分野で利用できる技術、例えば、競合ＥＬＩＳＡ、又はＢＩＡＣＯＲＥ若しくはＫＩＮＥＸＡアッセイでのＫ_Ｄ測定によって測定すると、抗体が異なる抗原に結合するよりも少なくとも約２０％上回って、好ましくは少なくとも約５０％、２倍、２０倍、５０倍又は１００倍上回って特異抗原に結合する状況を指す。抗体は、同じ抗原の中の異なるエピトープよりも、その抗原の中の１つのエピトープに優先的に結合してもよい。従って、本発明の抗体は、ウサギＩＬ−１７よりもヒトＩＬ−１７に優先的に結合する。

「エピトープ」の用語は、抗体の１以上の抗原結合領域で抗体により認識されて結合できる分子の該当部分を指す。エピトープは、アミノ酸又は糖側鎖などの分子の化学的に活性な表面群化でなることが多く、特異的な三次元構造特性と特異的な電荷特性を有する。「阻害エピトープ」及び／又は「中和エピトープ」により意図されるのは、無傷の抗原性分子に照らし、そのエピトープに特異的な抗体が結合した場合に、結果的にインビボ又はインビトロ又はその分子を含む生物内で、当該分子の生物学的活性の喪失又は減少を引き起こすエピトープである。

本願明細書の「エピトープ」の用語は更に、動物、好ましくは哺乳動物、例えばマウス又はヒトで抗原性及び／又は免疫原性活性を有するポリペプチドの一部分を指す。本願明細書の「抗原性エピトープ」の用語は、当該技術分野でよく知られた方法のいずれかにより、例えば従来のイムノアッセイにより判定して抗体が特異的に結合できるポリペプチドの一部分として定義される。抗原性エピトープは、必ずしも免疫原性である必要があるのではないが、免疫原性であってもよい。本願明細書の「免疫原性エピトープ」は、当該技術分野でよく知られた方法のいずれかにより判定して、動物での抗体応答を誘発するポリペプチドの一部分として定義される。「非線形エピトープ」又は「高次構造エピトープ」は、エピトープに特異的な抗体が結合する抗原性タンパク質内の非隣接ポリペプチド（又はアミノ酸）を含む。

「生物学的性質」若しくは「生物学的特性」の語句、又は「活性」若しくは「生物活性」の用語は、本発明の抗体に関連して、本願明細書で互換的に用いられ、限定しないが、エピトープ／抗原親和性及び特異性、インビボ又はインビトロでＩＬ−１７の活性を中和又は拮抗する能力、ＩＣ_５０、抗体のインビボでの安定性、並びに抗体の免疫原性が挙げられる。他の同定可能な生物学的性質又は当該技術分野で認識される抗体の特性として、例えば、交差反応性（すなわち、標的とするペプチドの非ヒト相同体との、又は普遍的に他のタンパク質若しくは組織との反応性）、及び哺乳動物細胞でタンパク質の発現量を高く保つ能力が挙げられる。前記の性質又は特性は、限定しないが、ＥＬＩＳＡ、競合ＥＬＩＳＡ、ＢＩＡＣＯＲＥ又はＫＩＮＥＸＡ表面プラスモン共鳴分析、指値なしのインビトロ又はインビボ中和アッセイ、受容体結合、サイトカイン又は成長因子の生産及び／又は分泌、シグナル伝達、並びにヒト、霊長類又は他のいずれかの供給源を含む異なる供給源からの組織切片での免疫組織化学的手法などを含む、当該技術分野で認められた技術を用いて観察、測定、又は評価できる。

本発明の抗体の活性に関し、本願明細書の「阻害する」又は「中和する」の用語は、例えば、限定しないが生物学的活性（例えば、ＩＬ−１７活性）又は性質、疾病若しくは症状を含め、阻害すべき進行又は重症度を、実質的に拮抗、禁止、防止、制限、緩徐化、中断、排除、停止、又は逆転させる能力を意味する。ＩＬ−１７との本発明の抗体の結合に起因する、ＩＬ−１７活性の阻害又は中和は、好ましくは少なくとも約２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％以上である。

核酸又はタンパク質（例えば、抗体）に関連して用いる場合の「単離された」の用語は、その天然の供給源にて通常付随してくる少なくとも１種の夾雑物から分離され、同定された核酸分子又はタンパク質を指す。好ましくは、「単離された抗体」は、異なる抗原特異性を有する他の抗体を実質的に含まない抗体である。例えば、本発明の医薬組成物は、ＩＬ−１７に特異的に結合し、ＩＬ−１７以外の抗原に特異的に結合する抗体を実質的に含まない、単離された抗体を含む。

本願明細書で、「カバットの番号付け」及び「カバットのラベリング」の用語は、互換的に用いる。これらの用語は、当該技術分野で認知されており、抗体の重鎖及び軽鎖可変領域の他のアミノ酸残基よりも可変的である（すなわち、超可変的な）アミノ酸残基を番号付けするシステムを指す（Ｋａｂａｔ，ｅｔ ａｌ．，Ａｎｎ．ＮＹ Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．１９０：３８２−９３ （１９７１）；Ｋａｂａｔ，ｅｔ ａｌ．，Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ、第５版、Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ，ＮＩＨ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ Ｎｏ．９１−３２４２（１９９１））。

ポリヌクレオチドは、それが別のポリヌクレオチドと機能的な関係に配置される場合、かかる他のポリヌクレオチドと「作動可能に連結される」。例えば、プロモーター又はエンハンサーは、それが配列の転写に影響を及ぼすならば、コード配列に作動可能に連結されている。あるペプチドが別のペプチドに「作動可能に連結されている」のは、それらをコードするポリヌクレオチドが作動可能に連結されている場合、好ましくはそれらが同じ読み取り枠内にある場合である。

本明細書で互換的に用いられる「個体」「被検者」、及び「患者」の用語は、限定しないが、マウス、サル、ヒト、哺乳類の家畜、哺乳類のスポーツ動物及び哺乳類のペットを含む哺乳動物を指し、好ましくは、この用語はヒトを指す。特定の実施形態で、被検者、好ましくは哺乳動物、好ましくはヒトは、ＩＬ−１７の生物活性の低減が有利に働くことになるであろう疾患又は障害又は症状によって更に特徴付けられる。

「ベクター」の用語は、核酸分子で、それに連結されている別の核酸を輸送できる核酸分子を包含し、限定しないが、プラスミド及びウィルスベクターを含む。特定のベクターは、それらが導入される宿主細胞にて自己複製でき、また他のベクターは、宿主細胞への導入に伴い宿主細胞のゲノム内に組み込むことができ、これによって宿主ゲノムと共に複製される。更に、特定のベクターは、それらが作動可能に連結された遺伝子の発現を導くことができる。かかるベクターは、本願明細書で、「組換発現ベクター」（又は単に「発現ベクター」）と称され、典型的なベクターは当該技術分野でよく知られている。

本願明細書の、発現「細胞」「宿主細胞」「細胞系」及び「細胞培養」は互換的に用いられ、本発明の単離されたポリヌクレオチドのいずれか、又は本発明のＨＣＶＲ、ＬＣＶＲ若しくは単クローン抗体をコードする配列を含む組換えベクター（１種又は複数種）のいずれかのレシピエントである個体細胞又は細胞培養を包含する。宿主細胞は、単一の宿主細胞の子孫を含み、その子孫は、自然の、偶発的な、又は計画的な変異及び／又は変化が原因となって、必ずしも元の親細胞と完全に同一（形態的に、又は全体のＤＮＡ補体として）でないことがあってもよい。宿主細胞は、本発明の単クローン抗体、又はその軽鎖若しくは重鎖を発現する組換えベクター又はポリヌクレオチドで形質転換、形質導入、又は感染された細胞を含む。本発明の組換えベクターを含む宿主細胞は、宿主染色体に安定に取り込まれているか否かに関わらず、「組換え宿主細胞」と称してもよい。本発明で用いるのに好ましい宿主細胞は、ＣＨＯ細胞（例えば、ＡＴＣＣ ＣＲＬ−９０９６）ＮＳ０細胞、ＳＰ２／０細胞、ＣＯＳ細胞（ＡＴＣＣ、例えば、ＣＲＬ−１６５０、ＣＲＬ−１６５１）及びＨｅＬａ（ＡＴＣＣ ＣＣＬ−２）である。本発明で用いられる更なる宿主細胞には、植物細胞、酵母細胞、他の哺乳動物細胞及び原核細胞が含まれる。
抗体の特徴付け

本発明は、ヒトＩＬ−１７（すなわちＩＬ−１７Ａ）に高親和性で特異的に結合する、単離された単クローン抗体に関する。本発明の抗体は、好ましくは、キメラ、ヒト化、若しくはヒト抗体、又はそれらの抗原結合部分である。更に、本発明の抗体は、インビボ及び／又はインビトロでＩＬ−１７活性の少なくともいずれかを中和、又は拮抗する。本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体（その抗原結合部分を含む）の、ＩＬ−１７への特異的結合により、前記抗体を、ＩＬ−１７関連疾患及び障害、すなわち、ＩＬ−１７の生物学的活性の阻害が有利に働く症状、疾患又は障害に対する治療薬として使用できる。

本発明の抗体が結合する抗原性ＩＬ−１７エピトープは、アミノ酸ＡＤＧＮＶＤＹＨＭＮ（配列番号：２７５）、より好ましくはヒトＩＬ−１７のアミノ酸ＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６））を含む非線形エピトープである。前記エピトープに結合する抗体は、マウスＩＬ−１７又はラットＩＬ−１７へのそれらの結合と比較して特異的且つ優先的に、ヒトＩＬ−１７及びカニクイザルＩＬ−１７に結合する。本発明の単クローン抗体は、マウスＩＬ−１７又はラットＩＬ−１７との結合よりもヒトＩＬ−１７に、少なくとも５、１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、又は１００倍強く結合し（例えば、親和性が高い、又は特異性が強い）、より好ましくはマウスＩＬ−１７又はラットＩＬ−１７との結合よりも少なくとも１５０、２００、２５０、３００、３５０、４００、４５０、５００、５５０又は６００倍強く、更に一層好ましくは、例えばＥＬＩＳＡアッセイ、競合ＥＬＩＳＡアッセイ、又はＢＩＡＣＯＲＥ若しくはＫＩＮＥＸＡアッセイでのＫ_Ｄ値で判定して、マウスＩＬ−１７又はラットＩＬ−１７にバックグラウンドを上回るレベルで結合することがない。

好ましい実施形態で、本発明は、ヒトＩＬ−１７に対して強い結合親和性を保持する抗ＩＬ−１７単クローン抗体、すなわち、ヒトＩＬ−１７に対し約７ｐＭ、６．５ｐＭ又は６ｐＭ未満、好ましくは約５．５ｐＭ、５ｐＭ又は４．５ｐＭ未満、最も好ましくは約４ｐＭ未満の結合親和性（Ｋ_Ｄ）で、ヒトＩＬ−１７、又はＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）を含むその一部分に結合する［すなわち、抗体がＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）ポリペプチドに接触する］抗ＩＬ−１７単クローン抗体を提供する。あるいは、本発明の抗体は、ヒトＩＬ−１７に対して約７ｐＭ、６．５ｐＭ又は６ｐＭ以下、好ましくは約５．５ｐＭ、５ｐＭ又は４．５ｐＭ以下、最も好ましくは約４ｐＭ以下のＫ_Ｄにより特徴付けられる。抗体親和性は、本願明細書で後述する実施例に記載された、又は当該技術分野で利用可能な他の方法のとおりに判定してもよい。好ましくは、前記のように強い結合親和性を保有する本発明の抗ＩＬ−１７抗体は、アミノ酸ＡＤＧＮＶＤＹＨＭＮ（配列番号：２７５）、より好ましくはアミノ酸ＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）を含む非線形ヒトＩＬ−１７エピトープにも結合し、この際、その抗体はポリペプチドＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）に接触する。

一実施形態で、本発明の抗体は、ヒトＩＬ−１７に対し５ｘ１０^−５、４ｘ１０^−５、３ｘ１０^−５又は２ｘ１０^−５ｓ^−１未満の解離速度（ｋ_ｏｆｆ）を有する。好ましい実施形態で、前記のようにヒトＩＬ−１７に対して強い結合親和性を保有することを特徴とする（約７ｐＭ又は６ｐＭ未満、好ましくは約５ｐＭ又は４．５ｐＭ未満、最も好ましくは約４ｐＭ未満のＫ_Ｄ）本発明の抗体は、ヒトＩＬ−１７に対し５ｘ１０^−５、４ｘ１０^−５、３ｘ１０^−５又は２ｘ１０^−５ｓ^−１未満の解離速度（ｋ_ｏｆｆ）も有し、そして更に一層好ましくはアミノ酸ＡＤＧＮＶＤＹＨＭＮ（配列番号：２７５）、より好ましくはヒトＩＬ−１７のアミノ酸ＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）を含む非線形ヒトＩＬ−１７エピトープにも結合する。

別の実施形態で、本発明の抗体は、例えば、インビトロＩＬ−８レポーターアッセイにて、１ｎＭ、９００ｐＭ、８００ｐＭ、７００ｐＭ、６５０ｐＭ、６００ｐＭ、５６０ｐＭ、５５０ｐＭ若しくは５００ｐＭ未満の、又はＧＲＯαレポーターアッセイにて約５６０ｐＭ未満のＩＣ_５０を有する（実施例６参照）。好ましい実施形態で、本発明の抗体は、前記のようにヒトＩＬ−１７に対して強い結合親和性を保有することを特徴とし（約７ｐＭ又は６ｐＭ未満、好ましくは約５ｐＭ又は４．５ｐＭ未満、最も好ましくは約４ｐＭ未満のＫ_Ｄ）、例えば、インビトロＩＬ−８レポーターアッセイにて、１ｎＭ、９００ｐＭ、８００ｐＭ、７００ｐＭ、６５０ｐＭ、６００ｐＭ、５６０ｐＭ、５５０ｐＭ若しくは５００ｐＭ未満の、又はＧＲＯαレポーターアッセイにて約５６０ｐＭ未満のＩＣ_５０も有し、より一層好ましくは、ヒトＩＬ−１７に対し５ｘ１０^−５、４ｘ１０^−５、３ｘ１０^−５又は２ｘ１０^−５ｓ^−１未満の解離速度（ｋ_ｏｆｆ）も有し、そして更に一層好ましくは、ヒトＩＬ−１７のアミノ酸ＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）を含む非線形ヒトＩＬ−１７エピトープにも結合し、この際、その抗体はＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）ポリペプチドに接触する。

最も好ましい本発明の実施形態は、配列番号：２７９からなる軽鎖アミノ酸配列、及び配列番号：２８０からなる重鎖アミノ酸配列を含む抗ＩＬ−１７抗体である。好ましくは、この抗体は、２つの同一の軽鎖及び２つの同一の重鎖を含む。好ましくは、配列番号：２７９に示すアミノ酸配列を有する軽鎖は、配列番号：２８１（シグナル配列を含む）又は配列番号：２８３（シグナル配列を含まない）に示す配列を含む核酸によってコードされる。好ましくは、配列番号：２８０に示すアミノ酸配列を有する重鎖は、配列番号：２８２（シグナル配列を含む）又は配列番号：２８４（シグナル配列を含まない）に示す配列を含む核酸によってコードされる。

単クローン抗体（「ｍＡｂ」）は、当該技術分野において広く知られているハイブリードーマ法（例えば、Ｋｏｈｌｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，２５６：４９５，１９７５参照）を使用して作製してもよいし、又は組換えＤＮＡ法（例えば、米国特許第４８１６５６７号におけるもの）によって作製してもよい。通常、ハイブリドーマは、好適な不死細胞系（例えば、ＳＰ２／０などの骨髄腫細胞系）を、免疫化した動物の抗体産生細胞と融合することにより生産できる。抗体生産細胞、好ましくは脾臓又はリンパ節のものは、目的とする抗原で免疫化した動物から得られる。融合細胞（ハイブリドーマ）は、選択培養条件を用いて単離し、限界希釈によってクローニングできる。ハイブリドーマ細胞の生育培地を、抗原に対して指向した単クローン抗体の生産についてアッセイする。好ましくは、ハイブリドーマ細胞によって生産されるｍＡｂの結合特異性は、免疫沈降によって、又はラジオイムノアッセイ若しくはＥＬＩＳＡなどのインビトロ結合アッセイによって判定する。所望の結合性を有する抗体を生産する細胞は、好適なアッセイによって選択できる。このような単離及びスクリーニングのための方法は、当該技術分野で知られている。

ヒト抗体又は人工抗体を含む本発明の抗体を生産又は単離する好適な他の方法を使用でき、かかる方法として、例えば、ライブラリーから組換え抗体（例えば、単鎖Ｆｖ又はＦａｂ）を選択する方法、又はヒト抗体のレパートリーを生産できる遺伝子導入動物（例えば、マウス）の免疫化による方法（例えば、Ｊａｋｏｂｏｖｉｔｓ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９０：２５５１−２５５５，１９９３；Ｊａｋｏｂｏｖｉｔｓ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，３６２：２５５−２５８，１９９３；米国特許第５５４５８０６号及び５５４５８０７号参照）が挙げられる。

単鎖抗体、及びキメラ、ヒト化、又は霊長類化した（ＣＤＲ移植した）抗体や、キメラ又はＣＤＲ移植単鎖抗体等で、異なる種に由来する部分を含むものもまた、本発明、そして「抗体」の用語に包含される。これらの抗体の様々な部分は、従来の技術によって化学的に、合成により共に継合でき、又は遺伝子工学技術を使用して、隣接タンパク質として調製できる。例えば、キメラ、又はヒト化した鎖をコードする核酸を発現して、隣接タンパク質を生産できる。例えば、米国特許第４８１６５６７号；欧州特許第１２５０２３ Ｂ１号；米国特許第４８１６３９７号；欧州特許第１２０６９４ Ｂ１号；ＷＯ ８６／０１５３３号；欧州特許第１９４２７６ Ｂ１号；米国特許第５２２５５３９号；欧州特許第２３９４００ Ｂ１号及び米国特許第５５８５０８９号及び第５６９８７６２号を参照のこと。

加えて、キメラ、ヒト化、霊長類化、又は単鎖抗体の断片を含む、抗体の機能性断片（すなわち、抗原結合断片）も生産でき、本発明の範囲に含まれる。好ましい機能性断片は、対応する全長抗体の抗原結合性機能を保持している。特に好ましい機能性断片は、哺乳動物の成熟ＩＬ−１７、好ましくはヒトＩＬ−１７に特有の１以上の機能又は生物活性（結合活性、シグナル伝達活性及び／又は細胞応答の刺激若しくは阻害など）を阻害する能力を保持している。例えば、一実施形態で、機能性断片は、成熟ＩＬ−１７とその受容体との相互作用を阻害でき、且つ／又は受容体が媒介する１以上の機能を阻害できる。

ヒトＩＬ−１７に結合できる抗体部分には、限定しないが、Ｆｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’及びＦ（ａｂ’）_２断片が含まれ、本発明に包含される。このような断片は、酵素切断によって、又は組換え技術によって生産できる。例えば、無傷の抗体のパパイン又はペプシン切断で、Ｆａｂ又はＦ（ａｂ’）_２断片を、それぞれ作製できる。抗体のパパイン消化で、「Ｆａｂ」断片と称される２つの同一の抗原結合断片が生産され、各々が抗原結合部位を備えている。Ｆａｂ断片は、軽鎖の定常ドメイン、及び重鎖の第１定常ドメイン（ＣＨ１）を含む。ペプシン処理で、２つの抗原結合部位を有し、やはり抗原を架橋できるＦ（ａｂ′）_２断片が生じる。

Ｆｖ”は、完全な抗原認識、及び結合部位を含む、最小の抗体断片である。この領域は、密接に非共有的に会合している、１つの重鎖可変ドメインと１つの軽鎖可変ドメインとのダイマーからなる。この配置において、各可変ドメインの３つのＣＤＲが相互作用して、Ｖ_Ｈ−Ｖ_Ｌダイマーの表面上の抗原結合部位を規定する。６つのＣＤＲがまとまって、抗体に抗原結合特異性を与える。宿主細胞にて共発現された場合に、Ｆｖ内の非共有結合したＨＣＶＲ及びＬＣＶＲドメインが解離する傾向を解消するために、柔軟で適切な長さのポリペプチドで、ＨＣＶＲのＣ−末端をＬＣＶＲのＮ−末端に、又はＬＣＶＲのＣ−末端をＨＣＶＲのＮ−末端に、のいずれかにて連結させた単鎖Ｆｖ断片（ｓｃＦｖ）を構築できる。一般的に用いられるリンカーは、１５残基の（Ｇｌｙ_４Ｓｅｒ）_３ペプチドである。ｓＦｖの総説については、Ｔｈｅ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ、１１３巻、Ｒｏｓｅｎｂｕｒｇ ａｎｄ Ｍｏｏｒｅ編、Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ，Ｎｅｗ ＹｏｒｋのＰｌｕｃｋｔｈｕｎ、２６９−３１５頁（１９９４）を参照されたい。抗体は、１以上の終止コドンが天然の終止部位の上流に導入されている抗体遺伝子を用いて、種々の切欠型に生産することもできる。例えば、Ｆ（ａｂ’）_２重鎖部分をコードするキメラ遺伝子は、重鎖のＣＨ_１ドメイン及びヒンジ領域をコードするＤＮＡ配列を含むように設計できる。

ファージディスプレイ（Ｍａｔｔｈｅｗｓ ＤＪ ａｎｄ Ｗｅｌｌｓ ＪＡ．Ｓｃｉｅｎｃｅ．２６０：１１１３−７，１９９３），リボソームディスプレイ（Ｈａｎｅｓ，ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．（ＵＳＡ）９５：１４１３０−５，１９９８），バクテリアディスプレイ（Ｓａｍｕｅｌｓｏｎ Ｐ．，ｅｔ ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ．９６：１２９−５４，２００２）、又は酵母ディスプレイ（Ｋｉｅｋｅ Ｍ．Ｃ．，ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，１０：１３０３−１０，１９９７）などの濃縮技術を用いた、ライブラリーからの抗体断片の選択が、古典的なハイブリドーマ技術に代わる成功例であることが立証されている（総説：Ｌｉｔｔｌｅ Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ Ｔｏｄａｙ，２１：３６４−７０，２０００）。
変異抗体

ＩＬ−１７に対して産生させたマウス単クローン抗体又はヒト抗体（例えば、遺伝子導入マウスにて生産）が、親抗体であってもよい。親抗体は、例えばＰＣＲ突然変異誘発などの当該技術分野で利用可能な方法を使用して、抗体のキメラ、ヒト化型、又はその抗体の他の変異型を作出すべく更に改変してもよい。このようなキメラ、ヒト化、又は他の変異抗体は、更なる変異又は突然変異誘発のための親抗体として利用してもよい。本発明の親抗体は、目的の性質（例えば、結合親和性（Ｋ_Ｄ低下）、ＩＣ_５０、特異性、優先的結合など）の存在についてスクリーニングし得る変異抗体を作出すべく、例えばＣＤＲドメイン（１又は複数、表２及び３参照）内で突然変異を誘発させてもよい。好ましくは、変異抗体での目的の性質には、親抗体でのその性質を凌ぐ改良がなされる。アミノ酸置換の変異抗体が好ましく、親抗体分子の少なくとも、１、２、３、４、５、６、７、８、９又は１０のアミノ酸残基が除去されて、異なる残基がその位置に挿入される。置換による突然変異誘発に対して最も目的とされる部位は、１以上のＣＤＲ領域であるが、ＦＲの改変も企図される。保存的アミノ酸置換が好ましいが、より実質的な変化をもたらす、非保存的なアミノ酸の変更を導入してもよく、その結果生じる抗体を、目的の性質についてスクリーニングしてもよい。

親抗体の置換変異体を作製するために好都合な方法は、ファージディスプレイを使用する親和性成熟である。簡単に説明すると、親抗体をコードするポリヌクレオチド分子を１以上のＣＤＲ領域内で変異させ、置換が所望される各アミノ酸残基で、可能なアミノ酸置換をすべて生じさせる。こうして作製される抗体変異体は、各粒子内にパッケージングされたＭ１３の遺伝子ＩＩＩ産物との融合体として糸状ファージ粒子から一価でディスプレイされる。ファージディスプレイされた変異抗体は次いで、それらの生物学的活性（例えば、結合親和性、特異性、ＩＣ_５０）についてスクリーニングされる。修飾に対する候補のＣＤＲ領域部位を同定するために、アラニン走査変異誘発を実施して、有意に抗原結合に関与するＣＤＲ領域残基を同定できる。

あるいは、又は更に、抗原抗体複合体の結晶構造を分析して抗体とＩＬ−１７との接触点を同定するのが有益な場合がある。このような接触残基及び隣接残基は、本願明細書に詳説した、又は当該技術分野で知られた技術による置換に対する候補である。あるいは、又は更に、少なくとも１つのＣＤＲをコードする１つ以上のポリヌクレオチド分子に、ランダムな突然変異誘発又は点突然変異誘発を施してもよい。突然変異誘発は、可変領域内のフレームワーク領域にＣＤＲを作動可能に連結させた状態、又はＣＤＲが他の可変領域配列と独立した状態のいずれかで、１以上の位置にて実施し、その後、改変したＣＤＲを、組換えＤＮＡ技術を用いて可変領域に戻してもよい。このような変異抗体が作製されれば、変異体のパネルを目的の性質又は活性についてのスクリーニングに付し、１以上の関連アッセイで優れた性質を示す抗体を、更なる開発のために選択してもよい。

本発明の抗ＩＬ−１７抗体の適切な高次構造の維持に関係しないシステイン残基のいずれも、（通常セリンで）置換し、分子の酸化安定性を改良して異常な架橋を防止してもよい。逆に、システイン結合（１又は複数）を抗体に付加して、その安定性を改良してもよい（特に、抗体がＦｖ断片などの抗体断片である場合）。

抗体の別のタイプのアミノ酸変異では、抗体の本来のグリコシル化パターンを改変する。改変によって意味するのは、抗体に認められる１以上の炭化水素部分の削除、及び／又は親抗体に存在しない１以上のグリコシル化部位の付加である。抗体のグリコシル化は、概してＮ結合型又はＯ結合型のいずれかである。Ｎ結合型とは、アスパラギン残基の側鎖への、炭化水素部分の付着を指す。トリペプチド配列であるアスパラギン−Ｘ−セリン、及びアスパラギン−Ｘ−スレオニン（Ｘはプロリン以外のいずれかのアミノ酸である）は、アスパラギン側鎖に対する炭化水素部分の酵素的付着のための認識配列である。よって、ポリペプチドでのこれらトリペプチド配列のいずれか存在により、潜在的グリコシル化部位が作出される。Ｏ結合型のグリコシル化は、Ｎ−アセチルガラクトサミン、ガラクトース、又はキシロースの糖のうちの１つの、ヒドロキシアミノ酸への、最も一般的にはセリン又はスレオニンへの付着を指すが、５−ヒドロキシプロリン又は５−ヒドロキシリジンを使用してもよい。

抗体へのグリコシル化部位の付加は、それが前記トリペプチド配列（Ｎ結合型グリコシル化部位用）の１以上を含むようにアミノ酸配列を改変することによって好都合に成し遂げられる。改変は、本来の抗体の配列に対する１以上のセリン又はスレオニン残基（Ｏ結合型グリコシル化部位用）の付加、又はそれによる置換によってなされてもよい。
配列

本発明の好ましい単クローン抗体は、配列番号：１７８〜２４３からなる群より選択される配列を有するペプチドを含むＬＣＶＲ、及び／又は配列番号：５６〜１２１からなる群より選択される配列を有するペプチドを含むＨＣＶＲを含む。好ましい実施形態で、本発明の抗体は、配列番号：１７８〜２４３からなる群より選択される配列を有するペプチドを含むＬＣＶＲを含み、更に、配列番号：５６〜１２１からなる群より選択される配列を有するペプチドを含むＨＣＶＲを含むものであって、本発明の抗体に存在するＨＣＶＲ及びＬＣＶＲは共に、表１列挙するＦａｂ内に存在する。例えば、配列番号：１７８のアミノ酸配列を有するＬＣＶＲポリペプチドを含む本発明の抗体は、好ましくは配列番号：５６、６０、６８〜９３及び９５からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むＨＣＶＲポリペプチドを更に含む。

更に、配列番号：２４１のアミノ酸配列を有するＬＣＶＲポリペプチドを含む本発明の抗体は、好ましくは配列番号：１１８及び１０６からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むＨＣＶＲポリペプチドを更に含む。当業者は、本発明の抗体が、本願明細書で表１に列挙したＨＣＶＲ及びＬＣＶＲの特定の配列に限定されず、本発明の抗ＩＬ−１７抗体に存在する場合に、抗原結合能、並びに親抗体の少なくとも１つの他の機能的性質（例えばエピトープ特異性、ＩＬ−１７への結合についての親抗体との競合能、ヒトＩＬ−１７への結合に対するＩＣ_５０及び／又はＫ_Ｄ若しくはｋ_ｏｆｆ値）が保持又は改善される、これらの配列の変異体も含むことを認めるであろう。更に、本発明の単クローン抗体は、競合単クローン抗体によってヒトＩＬ−１７（又はＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）を含むその一部分）への結合を競合的に阻害されるものであり、当該競合単クローン抗体は、配列番号：２４１（ＬＣＶＲ）及び１１８（ＨＣＶＲ）に示すアミノ酸配列を有する２つのポリペプチドを含む。抗体間のこのような競合的阻害は、当該技術分野のアッセイ、例えば競合ＥＬＩＳＡアッセイによって測定してもよい。

好ましくは、前記定義の競合抗体と競合する本発明の抗体は、ヒトＩＬ−１７に特異的に結合するが、ヒトＩＬ−１７Ｂ、ＩＬ−１７Ｃ、ＩＬ−１７Ｄ、ＩＬ−１７Ｅ又はＩＬ−１７Ｆに結合しないことによって更に特徴付けられる。加えて、この抗体は、ヒトＩＬ−１７及びカニクイザルＩＬ−１７に特異的に結合するが、バックグラウンドを上回るレベルでラットＩＬ−１７又はマウスＩＬ−１７に結合しないことによって更に特徴付けられる。より好ましくは、配列番号：２４１及び１１８に示すアミノ酸配列を含む競合抗体と、ヒトＩＬ−１７への結合について競合する本発明の抗体は、アミノ酸ＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）を含むヒトＩＬ−１７非線形エピトープへの結合によって更に特徴付けられる。更に一層好ましくは、配列番号：２４１及び１１８に示すアミノ酸配列を含む競合抗体と、ヒトＩＬ−１７への結合について競合する本発明の抗体は、約７ｐＭ、６．５ｐＭ若しくは６ｐＭ未満、好ましくは約５．５ｐＭ、５ｐＭ若しくは４．５ｐＭ未満、最も好ましくは約４ｐＭ未満の、ヒトＩＬ−１７に対するＫ_Ｄを有することによって更に特徴付けられ、且つ／又は、好ましくはインビトロＩＬ−８レポーターアッセイで、７００ｐＭ、６５０ｐＭ、６００ｐＭ、５６０ｐＭ、５５０ｐＭ若しくは５００ｐＭ未満のＩＣ_５０によって、又はインビトロＧＲＯαレポーターアッセイで約５６０ｐＭ未満のＩＣ_５０によって特徴付けられ、且つ／又はヒトＩＬ−１７に対して５ｘ１０^−５、４ｘ１０^−５、３ｘ１０^−５又は２ｘ１０^−５ｓ^−１未満の解離速度（ｋ_ｏｆｆ）を有する。

一実施形態で、本発明の抗ＩＬ−１７抗体は、重鎖可変領域及び軽鎖可変領域を有し、重鎖可変領域は、以下のアミノ酸配列：ＣＤＲＨ１（配列番号：２４４）、ＣＤＲＨ２（配列番号：２４５）、及びＣＤＲＨ３（配列番号：２４６）を有するＣＤＲ領域を含み、且つ／又は、軽鎖可変領域は、以下のアミノ酸配列：ＣＤＲＬ１（配列番号：２４７）、ＣＤＲＬ２（配列番号：２４８）、及びＣＤＲＬ３（配列番号：２４９）を有するＣＤＲ領域を含む。好ましくは、本発明の抗体の６つのＣＤＲは、本願明細書の表１に列挙されるＦａｂにおけるように、共に存在する。更に一層好ましくは、重鎖ＣＤＲは、以下のフレームワーク配列：配列番号：２６２のＦＲ１、配列番号：２６３のＦＲ２、配列番号：２６４のＦＲ３及び配列番号：２６５のＦＲ４と関連しており、軽鎖ＣＤＲは、以下のフレームワーク配列：配列番号：２６６のＦＲ１、配列番号：２６７のＦＲ２、配列番号：２６８のＦＲ３及び配列番号：２６９のＦＲ４と関連しており、ここでアミノ末端からの順序は、ＦＲ１−ＣＤＲ１−ＦＲ２−ＣＤＲ２−ＦＲ３−ＣＤＲ３−ＦＲ４である。

本発明の抗ＩＬ−１７抗体は、配列番号：１１〜２８からなる群より選択される配列を含むＣＤＲＨ１、並びに／又は配列番号：２９〜３２からなる群より選択される配列を含むＣＤＲＨ２、並びに／又は配列番号：３３〜５５及び２６１からなる群より選択される配列を含むＣＤＲＨ３を含んでいるＨＣＶＲを含むことが、更に企図される。別の実施形態で、本発明の抗ＩＬ−１７抗体は、配列番号：１２２〜１４９からなる群より選択される配列を含むＣＤＲＬ１、及び／又は配列番号：１５０〜１６７からなる群より選択される配列を含むＣＤＲＬ２、及び／又は配列番号：１６８〜１７７からなる群より選択される配列を含むＣＤＲＬ３を含んでいるＬＣＶＲを含む。好ましい実施形態で、本発明の抗ＩＬ−１７抗体は、配列番号：１１〜２８からなる群より選択される配列を含むＣＤＲＨ１、並びに／又は配列番号：２９〜３２からなる群より選択される配列を含むＣＤＲＨ２、並びに／又は配列番号：３３〜５５及び２６１からなる群より選択される配列を含むＣＤＲＨ３を含んでいるＨＣＶＲを含み、更に、配列番号：１２２〜１４９からなる群より選択される配列を含むＣＤＲＬ１、及び／又は配列番号：１５０〜１６７からなる群より選択される配列を含むＣＤＲＬ２、及び／又は配列番号：１６８〜１７７からなる群より選択される配列を含むＣＤＲＬ３を含んでいるＬＣＶＲを含む。

本発明のＣＤＲを含む組成物は通常、抗体重鎖若しくは軽鎖配列、又はその実質部分となり、ここでＣＤＲは、カバット番号付けに合わせた位置に配置される。重鎖と軽鎖の各鎖に対する３つのＣＤＲ領域は、以下の式：ＦＲ１−ＣＤＲ１−ＦＲ２−ＣＤＲ２−ＦＲ３−ＣＤＲ３−ＦＲ４によって表される隣接配列として、フレームワーク領域内に設けられる。前記順序のＣＤＲを有する隣接配列として配置される場合、重鎖又は軽鎖ＦＲ１、ＦＲ２、ＦＲ３及びＦＲ４は、併合して抗体の完全なフレームワーク領域を形成する。好ましくは、本発明の抗体のフレームワーク領域は、ヒト起源、又は実質的にヒト起源（すなわち、約８０、８２、８５、８７、９０、９２、９５、９７％を上回る）である。

ヒトでの治療用途のためのヒト化抗体において、フレームワーク配列は、好ましくは、全体的に、又は実質的にヒト起源である。好ましくは、本発明のヒト化、ヒト、又はキメラ抗体の軽鎖フレームワーク領域は、配列番号：２６６のＦＲ１、配列番号：２６７のＦＲ２、配列番号：２６８のＦＲ３及び配列番号：２６９のＦＲ４を含む。好ましくは、本発明のヒト化、ヒト、又はキメラ抗体の重鎖フレームワーク領域は、配列番号：２６２のＦＲ１、配列番号：２６３のＦＲ２、配列番号：２６４のＦＲ３及び配列番号：２６５のＦＲ４を含む。例えば、本発明の抗体１２６のＬＣＶＲの好ましい実施形態は、本願明細書の表１、２及び３に示すとおり、Ｎ末端から順に、配列番号：２６６のＦＲ１、配列番号：１３１のＣＤＲ１、配列番号：２６７のＦＲ２、配列番号：１６７のＣＤＲ２、配列番号：２６８のＦＲ３、配列番号：１６８のＣＤＲ３、及び配列番号：２６９のＦＲ４のポリペプチドを含む。全体のＬＣＶＲ配列で、ヒトκ定常領域に作動可能に連結されたものは、配列番号：２７４に示すとおりである。更に、本発明の抗体１２６のＨＣＶＲの好ましい実施形態は、Ｎ末端から順に、配列番号：２６２のＦＲ１、配列番号：２６のＣＤＲ１、配列番号：２６２のＦＲ２、配列番号：３０のＣＤＲ２、配列番号：２６４のＦＲ３、配列番号：５２のＣＤＲ３、及び配列番号：２６５のＦＲ４を含む。全体のＨＣＶＲ配列で、ヒトＩｇＧ_４Ｆｃ領域に作動可能に連結されたものは、配列番号：２７３に示すとおりである。

一実施形態で、本発明の抗ＩＬ−１７抗体において、全て又は一部の可変領域が本願明細書の配列番号で示す特定の配列により限定されているもの（表１〜３参照）は、インビボ又はインビトロでヒトＩＬ−１７活性の少なくともいずれかを拮抗又は中和する、キメラ、ヒト化若しくは完全にヒトの抗体、又はその抗原結合部分であることにより、更に特徴付けられる。本発明の抗ＩＬ−１７抗体で、全て又は一部の可変領域が本願明細書の配列番号で示す特定の配列により限定されているものは、ヒトＩＬ−１７に特異的に結合するが、ヒトＩＬ−１７Ｂ、ＩＬ−１７Ｃ、ＩＬ−１７Ｄ、ＩＬ−１７Ｅ又はＩＬ−１７Ｆに結合しないことによって更に特徴付けられる。加えて、本発明の抗体は、ヒトＩＬ−１７及びカニクイザルＩＬ−１７に特異的に結合するが、バックグラウンドを上回るレベルでラットＩＬ−１７又はマウスＩＬ−１７に結合しないことによって更に特徴付けられる。より好ましくは、このような抗体は、アミノ酸ＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）を含むヒトＩＬ−１７非線形エピトープへの結合によって更に特徴付けられ、この際、その抗体は配列番号：２７６のポリペプチドに接触する。更に一層好ましくは、かかる抗体は、約７ｐＭ、６．５ｐＭ若しくは６ｐＭ未満、好ましくは約５．５ｐＭ、５ｐＭ若しくは４．５ｐＭ未満、最も好ましくは約４ｐＭ未満の、ヒトＩＬ−１７に対するＫ_Ｄを有することによって更に特徴付けられ、且つ／又は、好ましくはインビトロＩＬ−８レポーターアッセイで、７００ｐＭ、６５０ｐＭ、６００ｐＭ、５６０ｐＭ、５５０ｐＭ若しくは５００ｐＭ未満のＩＣ_５０、又はインビトロＧＲＯαレポーターアッセイで約５６０ｐＭ未満のＩＣ_５０によって特徴付けられ、且つ／又はヒトＩＬ−１７に対して５ｘ１０^−５、４ｘ１０^−５、３ｘ１０^−５又は２ｘ１０^−５ｓ^−１未満の解離速度（ｋ_ｏｆｆ）を有する。
抗体発現

本発明は、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体又はその一部分を発現する細胞系にも関する。本発明の単クローン抗体を生産する細胞系の作出及び単離は、当該技術分野で知られた標準的な技術を使用して成し遂げることができる。好ましい細胞系として、ＣＯＳ、ＣＨＯ、ＳＰ２／０、ＮＳ０、及び酵母（ＡＴＣＣ、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ，Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡなどの公的な貯蔵所から入手可能）が挙げられる。

原核及び真核発現系（酵母、バキュロウイルス、植物、哺乳動物及び他の動物細胞、遺伝子導入動物並びにハイブリドーマ細胞など）や、ファージディスプレイ発現系を含め、多種多様な宿主発現系を使用して、本発明の抗体を発現させることができる。好適な細菌発現ベクターの一例はｐＵＣ１１９であり、好適な真核発現ベクターは、減弱化したｄｈｆｒ選択系を有する改変ｐｃＤＮＡ３．１ベクターである。他の抗体発現系が、当該技術分野で知られており、これらも本願明細書で企図される。

本発明の抗体は、免疫グロブリン軽鎖及び重鎖遺伝子の宿主細胞での組換え発現によって調製できる。組換えにより抗体を発現させるには、軽鎖及び／又は重鎖が宿主細胞にて発現されるように、抗体の免疫グロブリン軽鎖及び／又は重鎖をコードするＤＮＡ断片を担持する１以上の組換え発現ベクターで宿主細胞の形質転換、形質導入、感染等を行う。重鎖及び軽鎖は、１つのベクターにてそれらに作動可能に連結した異なるプロモーターから独立して発現させてもよく、あるいは、重鎖及び軽鎖は、２つのベクター（１つは重鎖を発現し、１つは軽鎖を発現する）にてそれらに作動可能に連結した異なるプロモーターから独立して発現させてもよい。任意に、重鎖及び軽鎖は、異なる宿主細胞にて発現されてもよい。好ましくは、組換え抗体は宿主細胞が培養される培地に分泌され、その培地から、抗体を回収又は精製できる。標準的な組換えＤＮＡ方論を用いて抗体重鎖及び軽鎖遺伝子を得、これらの遺伝子を組換え発現ベクターに組み込み、そのベクターを宿主細胞に導入する。このような標準的な組換えＤＮＡ技術は、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｆｒｉｔｓｃｈ，ａｎｄ Ｍａｎｉａｔｉｓ（編）、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ；Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．，１９８９；Ａｕｓｕｂｅｌ，ｅｔ ａｌ（編）Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｇｒｅｅｎｅ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓ，１９８９に記載されている。

ＨＣＶＲ領域をコードする単離されたＤＮＡは、重鎖定常領域（ＣＨ１、ＣＨ２及びＣＨ３）をコードする別のＤＮＡ分子に、ＨＣＶＲをコードするＤＮＡを作動可能に連結することによって、全長の重鎖遺伝子に変換できる。ヒト重鎖定常領域遺伝子の配列は、当該技術分野で知られている。例えば、Ｋａｂａｔ，ｅｔ ａｌ．，Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ、第５版、Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ，ＮＩＨ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ Ｎｏ．９１−３２４２（１９９１）を参照のこと。例えば、標準的なＰＣＲ増幅によって、これらの領域を包含するＤＮＡ断片を得ることができる。重鎖定常領域は、いずれの型(例えば、ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＥ、ＩｇＭ若しくはＩｇＤ）、クラス（例えばＩｇＧ_１、ＩｇＧ_２、ＩｇＧ_３及びＩｇＧ_４）、又はサブクラス定常領域及びそのいずれのアロタイプ変異体であることもできる（カバット（前出）に記載）。あるいは、抗原結合部分は、Ｆａｂ断片、Ｆａｂ’断片、Ｆ（ａｂ’）_２断片、Ｆｄ又は単鎖Ｆｖ断片（ｓｃＦｖ）であることができる。Ｆａｂ断片重鎖遺伝子の場合、ＨＣＶＲをコードするＤＮＡを、重鎖ＣＨ１定常領域のみをコードする別のＤＮＡ分子に作動可能に連結してもよい。

ＬＣＶＲ領域をコードする単離されたＤＮＡは、軽鎖定常領域（ＣＬ）をコードする別のＤＮＡ分子に、ＬＣＶＲをコードするＤＮＡを作動可能に連結することによって、全長の軽鎖遺伝子に（Ｆａｂ軽鎖遺伝子にでも）変換してもよい。ヒト軽鎖定常領域遺伝子の配列は、当該技術分野で知られている。例えば、カバット（前出）を参照のこと。標準的なＰＣＲ増幅によって、これらの領域を包含するＤＮＡ断片を得ることができる。軽鎖恒常部は、κ又はλ定常領域であることができる。

ｓｃＦｖ遺伝子を作出するために、ＨＣＶＲをコードするＤＮＡ断片、及びＬＣＶＲをコードするＤＮＡ断片は、ＬＣＶＲ領域とＨＣＶＲ領域とを可撓性リンカーで継合してＨＣＶＲ及びＬＣＶＲ配列を隣接単鎖タンパク質として発現できるように、可撓性リンカー（例えば、アミノ酸配列（Ｇｌｙ_４−セリン）_３）をコードする別の断片に作動可能に連結させる。例えば、Ｂｉｒｄ，ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４２：４２３−６、１９８８；Ｈｕｓｔｏｎ，ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８５：５８７９−８３，１９８８；ＭｃＣａｆｆｅｒｔｙ，ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３４８：５５２−４，１９９０を参照のこと。

一実施形態で、本発明は、ベクター（限定しないが好ましくは、プラスミド、組換え発現ベクター、酵母発現ベクター、又はレトロウイルス発現ベクター）で、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体をコードするポリヌクレオチドを含むものを提供する。あるいは、本発明のベクターは、本発明のＬＣＶＲをコードするポリヌクレオチド、及び／又はＨＣＶＲをコードするポリヌクレオチドを含む。ＬＣＶＲ及びＨＣＶＲの双方をコードする配列が同じベクターに存在する場合、それらは独立して、各々が作動可能に連結している別々のプロモーターから転写されてもよい。ＬＣＶＲ及びＨＣＶＲをコードする配列が同じベクターに存在し、それらは両者が作動可能に連結している１つのプロモーターから転写されるのであれば、ＬＣＶＲがＨＣＶＲに対して５’にあっても、又はＬＣＶＲがＨＣＶＲに対して３’にあってもよく、更に、ベクターのＬＣＶＲ及びＨＣＶＲコード領域は、いかなるサイズ又は内容のリンカー配列によって分離されてもよく、好ましくは、存在する場合このようなリンカーは、配列内リボソーム進入部位をコードするポリヌクレオチドである。

本発明の抗体を発現させるために、前記のようにして得た部分的又は全長の軽鎖及び／又は重鎖をコードするＤＮＡは、遺伝子が転写及び翻訳制御配列に作動可能に連結されるように、発現ベクターに挿入される。発現ベクター及び発現制御配列は、使用する発現宿主細胞と適合するように選択される。抗体軽鎖遺伝子及び抗体重鎖遺伝子は、別々のベクターに挿入でき、又は、より一般的には、両遺伝子を同じ発現ベクターに挿入する。抗体遺伝子は、標準的な方法によって発現ベクターに挿入する。加えて、組換え発現ベクターは、宿主細胞からの抗ＩＬ−１７単クローン抗体軽鎖及び／又は重鎖の分泌を促進するシグナルペプチドをコードできる。抗ＩＬ−１７単クローン抗体軽鎖及び／又は重鎖遺伝子は、シグナルペプチドが抗体鎖遺伝子のアミノ末端に、作動可能に枠内に連結されるように、ベクター内にクローニングできる。シグナルペプチドは、免疫グロブリンのシグナルペプチド、又は異種シグナルペプチドであることができる。

抗体重鎖及び／又は軽鎖遺伝子に加えて、本発明の組換え発現ベクターは、宿主細胞での抗体鎖遺伝子（単数種又は複数種）の発現を制御する調節配列を担持する。「調節配列」の用語には、抗体鎖遺伝子（単数種又は複数種）の転写又は翻訳を制御する、プロモーター、エンハンサー、及び他の発現制御エレメント（例えばポリアデニル化シグナル）を必要に応じて含むことを意図する。調節配列の選択を含む発現ベクターは、形質転換すべき宿主細胞の選択、所望のタンパク質の発現レベルなどの要因に応じて設計してもよい。哺乳動物の宿主細胞発現のために好ましい調節配列として、サイトメガロウィルス（ＣＭＶ）、シミアンウイルス４０（ＳＶ４０）、アデノウィルス（例えば、アデノウィルス主要後期プロモーター（ＡｄＭＬＰ））及びポリオーマウィルスに由来する、プロモーター及び／又はエンハンサーなどの、哺乳動物細胞で高レベルのタンパク質発現を導くウィルスエレメントが挙げられる。

抗体重鎖及び／又は軽鎖遺伝子並びに調節配列に加えて、本発明の組換え発現ベクターは、１以上の選択可能なマーカー遺伝子、及び宿主細胞にてベクターの複製を調節する配列（例えば、複製の起点）などの付加的な配列を担持してもよい。選択可能なマーカー遺伝子は、そのベクターが導入されている宿主細胞の選択を容易にする。例えば、一般的には、選択可能なマーカー遺伝子は、そのベクターが導入されている宿主細胞に、Ｇ４１８、ハイグロマイシン、又はメトトレキセートなどの薬物に対する抵抗性を与える。好ましい選択可能なマーカー遺伝子として、ジヒドロ葉酸還元酵素（ｄｈｆｒ）遺伝子（メトトレキセート選択／増幅で、ｄｈｆｒ陰性宿主細胞にて使用するため）、ネオ遺伝子（Ｇ４１８選択用）、及びグルタミン合成酵素（ＧＳ）陰性細胞系（ＮＳ０など）での選択／増幅用のグルタミン合成酵素が挙げられる。

軽鎖及び／又は重鎖の発現のために、例えば、エレクトロポーレーション、リン酸カルシウム沈降、ＤＥＡＥ−デキストランを用いたトランスフェクション、形質導入、感染等の標準的な技術によって、重鎖及び／又は軽鎖をコードする発現ベクター（単数種又は複数種）が宿主細胞内に導入される。原核、又は真核宿主細胞のいずれかにて本発明の抗体を発現するのは理論的に可能であるが、真核細胞が好ましく、最も好ましくは哺乳動物の宿主細胞である。その理由は、このような細胞が、適切に折り畳まれ、免疫学的に活性な抗体をより構築及び分泌しやすいためである。本発明の組換え抗体を発現するために好ましい哺乳動物宿主細胞として、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ細胞）［例えばＫａｕｆｍａｎ ａｎｄ Ｓｈａｒｐ，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１５９：６０１２１，１９８２に記載のＤＨＦＲ選択可能マーカーと共に用いる、Ｕｒｌａｕｂ ａｎｄ Ｃｈａｓｉｎ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７７：４２１６−２０，１９８０に記載のｄｈｆｒ陰性ＣＨＯ細胞を含む］、ＮＳ０骨髄腫細胞、ＣＯＳ細胞及びＳＰ２／０細胞が挙げられる。抗体遺伝子をコードする組換え発現ベクターを哺乳動物宿主細胞に導入する場合、宿主細胞での抗体の発現ができる、より好ましくは当該技術分野で知られた適切な条件下に宿主細胞が生育される培地への抗体の分泌ができるのに充分な時間、宿主細胞を培養することによって抗体を生産する。抗体は、標準的な精製方法を使用して宿主細胞及び／又は培地から回収できる。

宿主細胞は、無傷の抗体の一部分又は断片、例えば、Ｆａｂ断片又はｓｃＦｖ分子を、従前の技術によって生産するために用いることもできる。上記手順への変更が本発明の範囲に含まれることは、当業者によって理解されるであろう。例えば、本発明の抗体の軽鎖又は重鎖のいずれかをコードするＤＮＡで宿主細胞をトランスフェクトするのが望ましい場合もある。組換えＤＮＡ技術を用いて、ＩＬ−１７に結合するのに必要でない軽鎖及び重鎖の片方又は双方をコードするＤＮＡのいくつか又は全てを除去してもよい。このような切欠ＤＮＡ分子から発現される分子も、本発明の抗体に包含される。

本発明は、本発明の核酸分子を含む宿主細胞を提供する。好ましくは、本発明の宿主細胞は、本発明の核酸分子を含む１以上のベクター又は構築体を含む。本発明の宿主細胞は、本発明のベクターが導入された細胞であり、このベクターは、本発明の抗体のＬＣＶＲをコードするポリヌクレオチド、及び／又は本発明のＨＣＶＲをコードするポリヌクレオチドを含む。本発明はまた、２つの本発明のベクターが導入されている宿主細胞を含み、その１つは本発明の抗体のＬＣＶＲをコードするポリヌクレオチドを含み、そして１つは本発明の抗体に存在するＨＣＶＲをコードするポリヌクレオチドで、各々プロモーター配列に作動可能に連結されたものも提供する。宿主細胞型として、哺乳動物、細菌、植物、及び酵母細胞が挙げられる。好ましくは、宿主細胞は、ＣＨＯ細胞、ＣＯＳ細胞、ＳＰ２／０細胞、ＮＳ０細胞、酵母細胞、又はいずれかの好ましい細胞型の誘導体若しくは子孫である。

本発明の抗体の組換え発現に好ましい系では、抗体重鎖及び抗体軽鎖の双方をコードする組換え発現ベクターを、ｄｈｆｒ陰性ＣＨＯ細胞に、例えば、リン酸カルシウムを介するトランスフェクションによって導入する。組換え発現ベクター内で、抗体重鎖及び軽鎖遺伝子は、遺伝子の高レベルの転写を駆動するために、エンハンサー／プロモーター調節エレメント（例えば、ＳＶ４０、ＣＭＶ、アデノウィルス等に由来するもの、ＣＭＶエンハンサー／ＡｄＭＬＰプロモーター調節エレメント、又はＳＶ４０エンハンサー／ＡｄＭＬＰプロモーター調節エレメントなど）に、各々作動可能に連結される。組換え発現ベクターは、ｄｈｆｒ遺伝子も担持し、これにより、ベクターでトランスフェクトされているＣＨＯ細胞を、メトトレキセート選択／増幅を用いて選択できる。選択した宿主細胞形質転換体を培養して、抗体重鎖及び軽鎖を発現させ、無傷の抗体を培地から回収する。標準的な分子生物学技術を用いて組換え発現ベクターを調製し、宿主細胞をトランスフェトして形質転換体を選択し、宿主細胞を培養して、培地から抗体を回収する。本発明の抗体、又はそれらの抗原結合部分は、ヒト免疫グロブリン遺伝子に対して遺伝子導入された動物（例えば、マウス）にて発現できる（例えば、Ｔａｙｌｏｒ，ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２０：６２８７−９５，１９９２参照）。

一旦発現されれば、無傷の抗体、それらのダイマー、個々の軽鎖及び重鎖、又は本発明の他の免疫グロブリンフォームを、硫安沈殿、イオン交換、親和性、逆相、疎水的相互作用カラムクロマトグラフィー、ゲル電気泳動等を含む当該技術分野の標準的手法に従って精製できる。医薬用途には、少なくとも約９０％、９２％、９４％又は９６％の均一性の、実質的に純粋な免疫グロブリンが好ましく、９８〜９９％以上の均一性が最も好ましい。所望どおり部分的又は均一に精製されれば、それらペプチドは次いで、本願明細書で示すように治療的又は予防的に用いてもよい。
キメラ抗体

本願明細書で「キメラ抗体」の用語には、一価、二価、又は多価免疫グロブリンが含まれる。一価キメラ抗体は、キメラ軽鎖とのジスルフィド架橋で会合したキメラ重鎖によって形成されるダイマーである。二価キメラ抗体は、少なくとも一つのジスルフィド架橋で会合した２つの重鎖−軽鎖ダイマーによって形成されるテトラマーである。

抗体のキメラ重鎖は、ＩＬ−１７に特異的な非ヒト抗体の重鎖に由来する抗原結合領域を含み、これはＣＨ１若しくはＣＨ２などの、ヒト、若しくは実質的にヒト（若しくは抗原結合領域が由来するものとは異なる種）の重鎖定常領域の少なくとも一部分に、又は好ましくは全長の重鎖定常領域に作動可能に連結される。ヒトに用いられる抗体のキメラ軽鎖は、ヒト、若しくは実質的にヒト（若しくは抗原結合領域が由来するものとは異なる種）の軽鎖定常領域（ＣＬ）の少なくとも一部分に、又は好ましくは全長の軽鎖定常領域に作動可能に連結される、ＩＬ−１７に特異的な非ヒト抗体の軽鎖に全体的又は実質的に由来する抗原結合領域を含む。同じか又は異なる可変領域結合特異性のキメラ重鎖及び軽鎖を有する抗体、断片又は誘導体を、個々のポリペプチド鎖の適切な会合によって既知の方法の工程に従い調製することもできる。

この方法で、キメラ重鎖を発現する宿主は、キメラ軽鎖を発現する宿主と別々に培養され、そして免疫グロブリン鎖は別々に回収、次いで会合される。あるいは、宿主を同時に培養でき、それらの鎖を培地中で自発的に会合させ、その後構築された免疫グロブリン又は断片を回収する。キメラ抗体を生産するための方法は、当該技術分野で知られている（例えば、米国特許第６２８４４７１号；第５８０７７１５号；第４８１６５６７号；及び第４８１６３９７号参照）。
ヒト化抗体

好ましくは、治療目的に使用する予定の本発明の抗体は、それを治療剤として使用するはずの哺乳動物が治療抗体に対する免疫応答を誘発することになる可能性を低減するように、その哺乳動物に由来するフレームワーク及び定常領域（それが抗体内に存在する程度に）の配列を有するものとされよう。ヒト化抗体は、それらが治療用途に貴重であると考えられ、齧歯類抗体で頻繁に観察されるヒト抗マウス抗体反応を回避するので、特に好都合である。加えて、ヒト化抗体で、抗体のエフェクター部分はヒト起源であるので、それはヒト免疫系の他の部分とよりよく相互作用し得る（例えば、補体依存性の細胞毒性又は抗体依存性の細胞毒性によって、標的細胞をより効率よく破壊する）。また、注射されたヒト化抗体は、例えばマウス抗体の場合よりも、天然に存在するヒト抗体により近い半減期を有し得るので、与える用量をより低く且つより少ない回数にできる。本願明細書の「ヒト化抗体」という用語は、異なる起源の抗体の部分を含み、少なくとも１つの部分がヒト起源である抗体を指す。例えば、ヒト化抗体は、必要な特異性を備えた非ヒト（マウスなど）起源の抗体由来の部分と、ヒト起源の抗体由来の部分とを含むことができ、これらは、従来の技術によって化学的に（例えば合成により）共に継合するか、又は遺伝子工学技術を用いて、隣接ポリペプチドとして調製できる。

好ましくは、「ヒト化抗体」は、非ヒト抗体（好ましくはマウス単クローン抗体）起源の、又は実質的に非ヒト抗体起源のＣＤＲを有し、一方フレームワーク及び定常領域は存在する程度に（又はその大部分若しくは実質的な部分、すなわち少なくとも約９０％、９２％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％）、ヒト生殖細胞系免疫グロブリン領域に（例えば、Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ ＩｍＭｕｎｏＧｅｎｅＴｉｃｓ Ｄａｔａｂａｓｅ参照）、又はその組換え若しくは変異型に存在する核酸配列情報によってコードされ、これは当該抗体がヒト細胞で生産されるか否かを問わない。

ヒト化抗体のＣＤＲは、それらの起源たる非ヒト親抗体のＣＤＲから改変又は至適化して、所望の性質（例えば、特異性、親和性及び／又は優先的結合性）を生じさせてもよい。改変又は至適化したＣＤＲは、親ＣＤＲと比較して、６つのＣＤＲドメイン内に好ましくは合計約１、２、３、４、５、６、７、８、９又は１０のアミノ酸置換、付加、及び／又は欠失を有してもよい。例えば、表２及び３の下線及び太字印刷のＣＤＲのアミノ酸の位置は、表２及び３のＦａｂ１に示すようにＣＤＲから改変されている位置である。あるいは、マウス抗体２３２１を、本発明の抗体のＣＤＲの比較用の親抗体としてもよい。

非ヒト（例えば、マウス）抗体のヒト化型には、無傷の抗体、実質的に無傷の抗体、抗原結合部位を含む抗体の一部分、又はＦａｂ断片、Ｆａｂ’断片、Ｆ（ａｂ’）_２、若しくは単鎖Ｆｖ断片を含む抗体の一部分が含まれる。ヒト化抗体は、好ましくは、非ヒト免疫グロブリンに由来する最小の配列を含む。ヒト化抗体は、レシピエント抗体でも、移入したＣＤＲ又はフレームワーク配列のいずれでも認められない残基を含んでもよい。一般に、ヒト化抗体は、少なくとも１つ、通常は２つの可変ドメインの実質的に全てを含むことになり、ここでＣＤＲ領域内のアミノ酸の全て又は実質的に全ては非ヒト免疫グロブリンのものに対応し、そしてＦＲ領域内のアミノ酸の全て又は実質的に全てはヒト免疫グロブリンコンセンサス配列のものである。ヒト化抗体は、最適には、免疫グロブリン定常領域（Ｆｃ）の少なくとも一部分（典型的にはヒト免疫グロブリンのもの）も含む［Ｊｏｎｅｓ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，３２１：５２２−５２５，１９８６；Ｒｉｅｃｈｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，３３２：３２３−３２９，１９８８；及びＰｒｅｓｔａ，Ｃｕｒｒ．Ｏｐ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．，２：５９３−５９６，１９９２］。

ヒト化抗体は、当該技術分野で日常的に用いられている方法を使用してインビトロ突然変異誘発（又は、ヒトＩｇ配列に対する遺伝子導入動物を用いる場合、インビボ体細胞突然変異誘発）に付してもよく、この場合、ヒト化組換え抗体のＨＣＶＲ及びＬＣＶＲ領域のフレームワーク領域アミノ酸配列は、ヒトの生殖系ＨＣＶＲ及びＬＣＶＲ配列に関連するものに由来するが、インビボでヒト抗体生殖系レパートリー内に天然で存在しないかもしれない配列である。ヒト化組換え抗体のＨＣＶＲ及びＬＣＶＲフレームワーク領域のこのようなアミノ酸配列は、ヒト生殖細胞系配列と少なくとも９０％、９２％、９４％、９５％、９６％、９８％又は最も好ましくは少なくとも９９％一致することが企図される。好ましくは、会合部位構造を維持又はこれに影響を及ぼす親抗体（例えば、マウス抗体、又は通常、ヒト化抗体が誘導される抗体）のそれらフレームワーク残基は保持されることになろう。これらの残基は、例えば、親抗体又はＦａｂ断片のＸ線結晶学によって同定し、これにより抗原結合部位の三次元構造を同定してもよい。抗体をヒト化する一戦略では、ドナーＣＤＲを受け取るフレームワークとして親抗体のフレームワークと最高の相同性を有するヒト生殖系配列を選択する。この生殖系列アプローチは、最良適合戦略と同じ原理に基づくが、生殖系列配列のみがデータベースで検索される。

本発明のヒト化抗体は、ヒト生殖細胞系軽鎖フレームワークを含んでも、又はこれに由来してもよい。特定の実施形態で、軽鎖生殖細胞系配列は、限定しないがＡ１、Ａ１０、Ａ１１、Ａ１４、Ａ１７、Ａ１８、Ａ１９、Ａ２、Ａ２０、Ａ２３、Ａ２６、Ａ２７、Ａ３、Ａ３０、Ａ５、Ａ７、Ｂ２、Ｂ３、Ｌ１、Ｌ１０、Ｌ１１、Ｌ１２、Ｌ１４、Ｌ１５、Ｌ１６、Ｌ１８、Ｌ１９、Ｌ２、Ｌ２０、Ｌ２２、Ｌ２３、Ｌ２４、Ｌ２５、Ｌ４／１８ａ、Ｌ５、Ｌ６、Ｌ８、Ｌ９、Ｏ１、Ｏ１１、Ｏ１２、Ｏ１４、Ｏ１８、Ｏ２、Ｏ４及びＯ８を含む、ヒトＶＫ配列から選択される。一部の実施形態で、この軽鎖ヒト生殖細胞系フレームワークは、Ｖ１−１１、Ｖ１−１３、Ｖ１−１６、Ｖ１−１７、Ｖ１−１８、Ｖ１−１９、Ｖ１−２、Ｖ１−２０、Ｖ１−２２、Ｖ１−３、Ｖ１−４、Ｖ１−５、Ｖ１−７、Ｖ１−９、Ｖ２−１、Ｖ２−１１、Ｖ２−１３、Ｖ２−１４、Ｖ２−１５、Ｖ２−１７、Ｖ２−１９、Ｖ２−６、Ｖ２−７、Ｖ２−８、Ｖ３−２、Ｖ３−３、Ｖ３−４、Ｖ４−１、Ｖ４−２、Ｖ４−３、Ｖ４−４、Ｖ４−６、Ｖ５−１、Ｖ５−２、Ｖ５−４、及びＶ５−６から選択される。

他の実施形態で、本発明のヒト化抗体は、ヒト生殖細胞系重鎖フレームワークを含んでも、又はこれに由来してもよい。特定の実施形態で、この重鎖ヒト生殖細胞系フレームワークは、ＶＨ１−１８、ＶＨ１−２、ＶＨ１−２４、ＶＨ１−３、ＶＨ１−４５、ＶＨ１−４６、ＶＨ１−５８、ＶＨ１−６９、ＶＨ１−８、ＶＨ２−２６、ＶＨ２−５、ＶＨ２−７０、ＶＨ３−１１、ＶＨ３−１３、ＶＨ３−１５、ＶＨ３−１６、ＶＨ３−２０、ＶＨ３−２１、ＶＨ３−２３、ＶＨ３−３０、ＶＨ３−３３、ＶＨ３−３５、ＶＨ３−３８、ＶＨ３−４３、ＶＨ３−４８、ＶＨ３−４９、ＶＨ３−５３、ＶＨ３−６４、ＶＨ３−６６、ＶＨ３−７、ＶＨ３−７２、ＶＨ３−７３、ＶＨ３−７４、ＶＨ３−９、ＶＨ４−２８、ＶＨ４−３１、ＶＨ４−３４、ＶＨ４−３９、ＶＨ４−４、ＶＨ４−５９、ＶＨ４−６１、ＶＨ５−５１、ＶＨ６−１、及びＶＨ７−８１から選択される。異なる生殖細胞系配列の説明については、ＰＣＴ ＷＯ ２００５／００５６０４を参照のこと。

特定の実施形態で、軽鎖可変領域及び／又は重鎖可変領域は、フレームワーク領域、又はフレームワーク領域の少なくとも一部分（例えば、ＦＲ２及びＦＲ３などの、２つ又は３つの小領域を含んでいる）を含む。一部の実施形態で、少なくともＦＲＬ１、ＦＲＬ２、ＦＲＬ３、又はＦＲＬ４は、完全にヒトのものである。他の実施形態で、少なくともＦＲＨ１、ＦＲＨ２、ＦＲＨ３、又はＦＲＨ４は、完全にヒトのものである。いくつかの実施形態で、少なくともＦＲＬ１、ＦＲＬ２、ＦＲＬ３、又はＦＲＬ４は、生殖細胞系配列（例えば、ヒト生殖系列）であるか、又は特定のフレームワークに対するヒトコンセンサス配列を含む。他の実施形態で、少なくともＦＲＨ１、ＦＲＨ２、ＦＲＨ３、又はＦＲＨ４は、生殖細胞系配列（例えば、ヒト生殖系列）であるか、又は特定のフレームワークに対するヒトコンセンサス配列を含む。好ましい実施形態で、フレームワーク領域の全てが、ヒトのフレームワーク領域である。

一般に、ヒト化抗体は、抗体（例えば、マウス抗体、又は本発明のＩＬ−１７エピトープを結合するハイブリドーマによって作製される抗体）のＨＣＶＲ及びＬＣＶＲをコードする核酸配列を得、そのＨＣＶＲ及びＬＣＶＲ（非ヒト）中のＣＤＲを同定し、そして、かかるＣＤＲをコードする核酸配列を、選択されたヒトフレームワークをコードする核酸配列に移植することによって生産してもよい。任意に、ＣＤＲ領域のフレームワーク領域内への移植に先駆けて、ＣＤＲの１以上のアミノ酸を異なるアミノ酸で置換するために、ＣＤＲ領域を無作為に、又は特定の位置で突然変異誘発することによって最適化してもよい。あるいは、ＣＤＲ領域は、当業者が利用できる方法を使用し、ヒトフレームワーク領域内への挿入に続いて最適化してもよい。好ましくは、ヒトフレームワークアミノ酸配列は、結果として生じる抗体がヒトでのインビボ投与に適しやすいように選択される。これは、例えば、このようなヒトフレームワーク配列を含む抗体を先に使用した結果に基づいて決定できる。好ましくは、ヒトフレームワーク配列は、それ自体有意に免疫原性でないものとされる。

あるいは、ヒト化すべき抗体に対するフレームワークのアミノ酸配列を、ＣＤＲ移植に用いるべき既知のヒトフレームワーク配列のものと比較し、それらが含んでいる、親抗体（例えば、ＩＬ−１７に結合するマウス抗体（例えば、配列番号：２７０のＨＣＶＲを含み、更に配列番号：２７１のＬＣＶＲを含む抗体））のものと類似性が高い配列に基づいて選択してもよい。多数のヒトフレームワーク配列が単離されており、それらの配列が当該技術分野で報告されている。これにより、親（例えば、マウス）のＣＤＲ、又は選択したヒトフレームワークに移植した親抗体の至適化されたＣＤＲを（及び、おそらくはヒト定常領域も）含む、得られるＣＤＲ移植ヒト化抗体は、抗原結合構造を実質的に保持することになり、よって親抗体の結合親和性を保持する尤度が高くなる。抗原結合親和性をかなりの程度保持するために、選択されるヒトフレームワーク領域は、好ましくは、インビボの投与に適していると考えられる、すなわち免疫原性でないものである。

いずれの方法でも、好ましいマウス抗ＩＬ−１７抗体のＨＣＶＲ及びＬＣＶＲ領域をコードするＤＮＡの配列が得られる。免疫グロブリンをコードする核酸配列をクローニングするための方法は、当該技術分野で知られている。かかる方法は、例えば、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）により適切なプライマーを使用して、クローニングすべき免疫グロブリンコーディング配列を増幅することを含んでもよい。免疫グロブリン核酸配列、特にマウスのＨＣＶＲ及びＬＣＶＲ配列を増幅するために好適なプライマーは、文献で報告されている。このような免疫グロブリンコーディング配列をクローニングした後、当該技術分野で知られた方法によってそれらの配列決定を行う。

ＣＤＲコーディング配列を、選択したヒトフレームワークをコードする配列に移植した後、「ヒト化」可変重鎖及び可変軽鎖配列をコードする、得られたＤＮＡ配列を次いで発現させて、ＩＬ−１７を結合するヒト化Ｆｖ又はヒト化抗体を生産する。ヒト化ＨＣＶＲ及びＬＣＶＲは、全体の抗ＩＬ−１７抗体分子の一部として、すなわち、ヒト定常ドメイン配列を有する融合タンパクとして発現してもよく、それをコードするＤＮＡ配列は、市販のライブラリから得られたものか、若しくは、例えば、ＤＮＡ配列を得るための前記方法のうちの１つを使用して得られたもの、又は当該技術のものである。しかし、ＨＣＶＲ及びＬＣＶＲ配列は、ヒト化抗ＩＬ−１７ Ｆｖを生産すべく、定常配列の非存在下に発現させることもできる。そうではあるが、可変領域へのヒト定常配列の融合は、結果的に得られるヒト化抗−ＩＬ−１７抗体がヒトエフェクター機能を保有し得るので、潜在的に望ましい。

既知配列のタンパク質をコードするＤＮＡを合成するための方法は、当該技術分野でよく知られている。このような方法を使用して、対象のヒト化ＨＣＶＲ及びＬＣＶＲ配列（定常領域は有無のいずれか）をコードするＤＮＡ配列を合成し、その後、組換え抗体の発現に好適なベクター系にて発現させる。これは、ヒト定常ドメイン配列との融合タンパク質として発現すべき、そして会合して機能性（抗原結合性）抗体又は抗体断片を生産する、対象のヒト化ＨＣＶＲ及びＬＣＶＲ配列を提供するいずれのベクター系にて実行してもよい。

ヒト定常ドメイン配列は、当該技術分野で知られており、文献にて報告されている。好ましいヒト定常軽鎖配列は、κ及びλ定常軽鎖配列を含む。好ましいヒト定常重鎖配列として、ヒトＩｇＧ_１、ヒトＩｇＧ_２、ヒトＩｇＧ_３、ヒトＩｇＧ_４（例えば、配列番号：２５７〜２６０を、それぞれ参照のこと）や、例えば、インビボの半減期増大、Ｆｃ受容体結合の低減、アミド分解プロファイルの改変などの、変更されたエフェクター機能をもたらすそれらの変異型が挙げられる。

存在するのであれば、ヒトフレームワーク領域は、抗原結合領域ドナー（すなわち、親抗体）の類似又は等価領域と配列類似性を有するヒト抗体可変領域に由来するのが好ましい。ヒト化抗体のヒト起源の部分に対するフレームワーク領域の他の供給源は、ヒト可変コンセンサス配列を含む（例えば、Ｋｅｔｔｌｅｂｏｒｏｕｇｈ，Ｃ．Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ４：７７３−７８３（１９９１）；Ｃａｒｔｅｒ ｅｔ ａｌ．，ＷＯ ９４／０４６７９号参照）。例えば、非ヒト部分を得るために用いる抗体又は可変領域の配列は、Ｋａｂａｔ ｅｔ ａｌ．，Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ、第５版、ＮＩＨ，Ｕ．Ｓ．Ｇｏｖｅｒｎｍｅｎｔ Ｐｒｉｎｔｉｎｇ Ｏｆｆｉｃｅ（１９９１）に記載のヒト配列と比較できる。特に好ましい実施形態で、ヒト化抗体鎖のフレームワーク領域は、ヒト以外のドナーの可変領域と、少なくとも約６０％の全体の配列同一性、好ましくは少なくとも約７０％、８０％、又は９０％の全体の配列同一性、より好ましくは少なくとも約８５％の全体の配列同一性を有するヒト可変領域に由来する。ヒト部分は、使用されている特定の部分（例えば、ＦＲ）の中で、ヒト以外のドナーの等価部分（例えば、ＦＲ）と比較した場合に、少なくとも約６５％の配列同一性、好ましくは少なくとも約７０％の配列同一性を有するヒト抗体に由来することもできる。

使用してもよいヒト化マウス抗体に関わる方法を更に記載している文献は、例えば、Ｑｕｅｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８８：２８６９，１９９１；米国特許第５６９３７６１号；米国特許第４８１６３９７号；米国特許第５２２５５３９号；Ｌｅｖｉｔｔ，Ｍ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１６８：５９５−６２０、１９８３に記載のコンピュータプログラムＡＢＭＯＤ及びＥＮＣＡＤであり、
；ヒト化は本質的に、Ｗｉｎｔｅｒ及び共同研究者（Ｊｏｎｅｓ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，３２１：５２２−５２５，１９８６；Ｒｉｅｃｈｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，３３２：３２３−３２７，１９８８；Ｖｅｒｈｏｅｙｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２３９：１５３４−１５３６，１９８８）の方法に従って実施できる。

ヒト抗体
ヒト化に代わるものとして、ヒト抗体を作製できる。ヒト抗体は、ファージディスプレイライブラリー（Ｈｏｏｇｅｎｂｏｏｍ ａｎｄ Ｗｉｎｔｅｒ，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２２７：３８１，１９９１；Ｍａｒｋｓ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２２２：５８１，１９９１）を含め、当該技術分野で知られた様々な技術を使用して生産できる。Ｃｏｌｅ ｅｔ ａｌ．及びＢｏｅｒｎｅｒ ｅｔ ａｌ．の技術も、ヒト単クローン抗体の調製に利用可能である（Ｃｏｌｅ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ，Ａｌａｎ Ｒ．Ｌｉｓｓ，ｐ．７７（１９８５）及びＢｏｅｒｎｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１４７：８６−９５，１９９１）。同様に、ヒト抗体は、ヒト免疫グロブリン遺伝子座を、例えば、内在性免疫グロブリン遺伝子が部分的又は完全に不活化されているマウスなどの遺伝子導入動物に導入することによって作製できる。例えば本発明の免疫原性エピトープを含む抗原での免疫化に際し、ヒト抗体生産の全長レパートリーを得るが、これは遺伝子再編成、構築及び抗体レパートリーを含め、あらゆる点でヒトにて認められるものに酷似している。このアプローチは、例えば、米国特許第５５４５８０７号；第５５４５８０６号；第５５６９８２５号；第５５８９３６９号；第５５９１６６９号；第５６２５１２６号；第５６３３４２５号；第５６６１０１６号、及び以下の科学刊行物：Ｍａｒｋｓ ｅｔ ａｌ．，ＢｉｏＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １０：７７９−７８３，１９９２；Ｌｏｎｂｅｒｇ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３６８：８５６−８５９，１９９４；Ｍｏｒｒｉｓｏｎ，Ｎａｔｕｒｅ ３６８：８１２−１３，１９９４；Ｆｉｓｈｗｉｌｄ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １４：８４５−５１，１９９６；Ｎｅｕｂｅｒｇｅｒ，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １４：８２６（１９９６）；Ｌｏｎｂｅｒｇ ａｎｄ Ｈｕｓｚａｒ，Ｉｎｔｅｒｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３：６５−９３（１９９５）及びＪｏｂｋｏｂｏｖｉｔｓ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９０：２５５１，１９９３に記載されている。

マウスに導入され、その結果ヒト配列を有する抗体に対する抗原に応答できる遺伝子導入マウスが作出されるヒト免疫グロブリン遺伝子は、Ｂｒｕｇｇｅｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ'ｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６：６７０９−６７１３，１９８９）にも記載されている。ヒト抗体を生産する哺乳動物の作製のために、種々の戦略が存在している。特に、Ｉｇ遺伝子座からの断片（例えば、個々の遺伝子）を含ませることによって外因性Ｉｇ遺伝子座を模倣する「ミニ遺伝子座」アプローチ（例えば、米国特許第５５４５８０７号、第５５４５８０６号、第５６２５８２５号、第５６２５１２６号、第５６３３４２５号、第５６６１０１６号、第５７７０４２９号、第５７８９６５０号、及び第５８１４３１８号、第５６１２２０５号、第５７２１３６７号、第５７８９２１５号参照）、Ｉｇ遺伝子座の大きく且つ実質的に生殖系列の断片のＹＡＣ導入（Ｍｅｎｄｅｚ ｅｔ ａｌ．Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ １５：１４６−１５６，１９９７；Ｇｒｅｅｎ ａｎｄ Ｊａｋｏｂｏｖｉｔｓ Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１８８：４８３−４９５，１９９８参照）、及び微小核体の使用による全体又は実質的に全体の遺伝子座の導入（欧州特許出願第ＥＰ ０８４３９６１ Ａ１号参照）がある。

当業者が利用できる方法を用いれば、本発明の抗ＩＬ−１７抗体を生産するために、ヒト配列を有する抗体での免疫化に応答できるいかなる遺伝子導入マウスを使用してもよく、例えばこのようなマウスを本発明の免疫原性エピトープを含むポリペプチドで免疫化してもよい。

用途
本発明の抗体は、本願明細書に記載の、治療、予防、診断、及び研究用途に有用である。本発明の抗体は、ヒトＩＬ−１７の発現に関連する障害又は疾患を診断するために使用してもよい。同様に、本発明の抗体は、ＩＬ−１７関連症状について試験すべき被検者でのＩＬ−１７レベルをモニターするためのアッセイにて使用できる。研究適用には、本発明の抗体及び標識を利用して、試料中、例えば、ヒト体液中、又は、細胞若しくは組織抽出物中のＩＬ−１７を検出する方法が包含される。本発明の抗体は、修飾して使用しても、又は修飾せずに使用してもよく、検出可能な部分の共有的又は非共有的付着によってラベルされる。検出可能な部分は、直接的、又は間接的のいずれかで検出可能な信号を発生できる、いずれのものであることもできる。例えば、検出可能な部分は、例えば、^３Ｈ、^１４Ｃ、^３２Ｐ、^３５Ｓ、若しくは^１２５Ｉなどの放射性同位元素；フルオレセインイソチオシアネート、ローダミン、若しくはルシフェリンなどの蛍光若しくは化学発光化合物；又はアルカリホスファターゼ、β‐ガラクトシダーゼ、若しくはセイヨウワサビペルオキシダーゼなどの酵素でもよい。検出可能な部分に抗体を別々に接合させるために、当該技術分野で知られたいずれの方法を使用してもよく、その方法として、Ｈｕｎｔｅｒ，ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ １４４：９４５，１９６２；Ｄａｖｉｄ，ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １３：１０１４，１９７４；Ｐａｉｎ，ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈ．４０：２１９，１９８１；及びＮｙｇｒｅｎ，Ｊ．Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ． ａｎｄ Ｃｙｔｏｃｈｅｍ．３０：４０７，１９８２に記載の方法が挙げられる。

例えば、ＥＬＩＳＡ、ＲＩＡ、及びＦＡＣＳを含め、ＩＬ−１７を測定するための様々な従来のプロトコルが当該技術分野で知られており、ＩＬ−１７発現の改変レベル又は異常レベルを診断するための基礎が提供される。正常又は標準的な発現値は、当該技術分野で知られたいずれの技術を用いても、例えば、ＩＬ−１７ポリペプチドを含む試料を、例えば、抗原：抗体複合体を形成するのに好適な条件下で抗体と組み合わせることによって確立される。抗体は、結合又は非結合抗体の検出を容易にするために、検出可能な物質で直接的又は間接的にラベルされる。好適な検出可能物質として、様々な酵素、接合団、蛍光物質、発光性物質及び放射性物質が挙げられる。好適な酵素の例として、セイヨウワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、又はアセチルコリンエステラーゼが挙げられ；好適な接合団複合体の例として、ストレプトアビジン／ビオチン及びアビジン／ビオチンが挙げられ；
好適な蛍光物質の例として、ウンベリフェロン、フルオレセイン、フルオレセインイソチオシアネート、ローダミン、ジクロロトリアジニルアミンフルオレセイン、ダンシルクロリド、又はフィコエリトリンが挙げられ；発光性物質の例として、ルミノールが挙げられ、
そして、放射性物質の例として、^１２５Ｉ、^１３１Ｉ、^３５Ｓ、又は^３Ｈが挙げられる（例えば、Ｚｏｌａ，Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｍａｎｕａｌ ｏｆ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．（１９８７）参照）。形成される標準複合体の量は、様々な方法、例えば、測光手段によって定量化する。試料中で発現されるＩＬ−１７ポリペプチドの量は、その後基準値と比較する。

便宜上、本発明の抗体は、キット（所定量の試薬と、診断アッセイを実行するための説明書との梱包された併合品）にて提供できる。抗体が酵素でラベルされる場合、キットは、基質と、酵素が必要とする補助因子（例えば、検出可能な発色団又は蛍光体をもたらす基質前駆体）とを含むものとされよう。加えて、安定化剤、緩衝液（例えば、ブロッキング用緩衝液又は溶解用緩衝液）等の他の添加剤を含んでもよい。様々な試薬の相対量は、アッセイの感度を実質的に最適化する試薬の溶液中濃度を提供するよう、広く変動してもよい。特に、試薬は、乾燥粉（通常は凍結乾燥されたもの）として、溶解時に適切な濃度を有する試薬溶液を提供することになる賦形剤を含めて提供してもよい。

抗体に対する治療用途
ＩＬ−１７は、体循環内でなく、炎症の部位で活性化されたＴ細胞によって分泌される、炎症誘発性サイトカインであり、これは、健常人の血清又は組織では容易に検出できない。ＩＬ−１７は、接着分子をアップレギュレートし、滑膜細胞、軟骨細胞、繊維芽細胞、内皮細胞、上皮細胞を含む様々な細胞型からの複数の炎症性サイトカイン及びケモカインの生産を誘導し、これにより炎症部位への抗中球の補充が誘導され、プロスタグランジン及びメタロプロテイナーゼの生産を刺激して、プロテオグリカン合成を阻害する。更に、ＩＬ−１７は、造血前駆細胞の成熟で重要な役割を果たす。ＩＬ−１７は、肺、関節軟骨、骨、脳、造血細胞、腎臓、皮膚及び腸を含む、異なる器官及組織でのシグナル伝達の役割を備えている。ＩＬ−１７は、ＩＬ−１７Ｂ、Ｃ及びＥと１５〜２７％のアミノ酸相同性、ＩＬ−１７Ｄ及びＦと４４〜５０％のアミノ酸相同性を有する。ＩＬ−１７は低親和性（約１ｎＭ）でＩＬ−１７受容体に結合するが、他のＩＬ−１７ファミリーメンバーはＩＬ−１７受容体に結合しない。

ＩＬ−１７（すなわち、ＩＬ−１７Ａ）レベルの増加は、気道炎症、ＲＡ、骨関節炎、骨浸食、腹腔内膿瘍及び接着、ＩＢＤ、同種異系移植片拒絶、乾癬、特定の型の癌、脈管形成、アテローム性動脈硬化及びＭＳを含む種々の症状と関連している。ＩＬ−１７及びＩＬ−１７Ｒは双方とも、ＲＡ患者の滑液組織にてアップレギュレートされる。ＩＬ−１７は、ＩＬ−１−β及びＴＮＦ−α依存性及び非依存性経路によるＲＡの病原で、その役割を発揮する。ＩＬ−１７は、他のサイトカイン及びケモカイン、例えば、ＴＮＦ−α、ＩＬ−１β、ＩＬ−６、ＩＬ−８及びＧｒｏ−αの分泌を刺激する。ＩＬ−１７は直接、ＲＡで疾患の進行に関与する。ＩＬ−１７のマウス膝への注射は、ＩＬ−１β活性と無関係に関節破壊を促進する（Ａｎｎ．Ｒｈｅｕｍ．Ｄｉｓ．５９：５２９−３２，２０００）。抗ＩＬ−１β抗体は、ＩＬ−１７によって誘発された炎症及び関節破壊に対して効果を有しない（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６７：１００４−１０１３，２００１）。ＳＣＷによって誘発されたマウス関節炎モデルにて、ＩＬ−１７は、野生型、並びにＩＬ−１βノックアウト及びＴＮＦ−αノックアウトマウスでの炎症細胞浸潤及びプロテオグリカン枯渇を誘導した。Ｉｌ−１７ノックアウトマウスは、抗原のチャレンジがなければ表現型として正常であるが、ＩＩ型コラーゲンでの免疫化の後に、関節炎が顕著に減少する（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１７１：６１７３−６１７７，２００３）。

多発性硬化症（「ＭＳ」）は、軸索を包囲している髄鞘 への損傷を伴う中枢神経系（「ＣＮＳ」）炎症によって特徴付けられる自己免疫疾患である。ＭＳの特徴は、Ｔ細胞がＣＮＳに浸潤する点にある。ＭＳは、米国では３５０，０００名、世界中では２５，０００，０００名を超える人々に発症している。多くの型があり、最も一般的なものでは、再発／寛解疾患（「ＲＲＭＳ」）に二次進行期が続く。現在の治療は、インターフェロン−β（ＡＶＯＮＥＸ、ＢＥＴＡＳＥＲＯＮ及びＲＥＢＩＦ）からなり、再発／悪化率を３１％〜３４％低下させるが、インフルエンザ様症状及び／又は中和抗体の合成を生じることがある（例えば、ＡＶＯＮＥＸを摂取している約１５％の患者で、１８ヵ月以内に中和抗体が生じる）。ＴＹＳＡＢＲＩは、ＲＲＭＳに対してＦＤＡが承認しているが、その後ＣＮＳ免疫抑制の懸念のために市場から姿を消した。ＭＳの治療に、まだ応じられていない医学的必要性が依然として存在している。ＩＬ−１７ｍＲＮＡは、ＭＳ病変内、並びにＭＳ患者からの血液及び脳脊髄液中の単核細胞（ＭＮＣ）内で増加する。ＭＳ臨床的悪化の際に、寛解の際と比較してより多くの数のＩＬ−１７ｍＲＮＡを発現する血液ＭＮＣが検出される（Ｍｕｌｔｉｐｌｅ Ｓｃｌｅｒｏｓｉｓ，５：１０１−１０４，１９９９）。更に、ＭＳに対する前臨床動物モデルである、実験的自己免疫脳脊髄炎（「ＥＡＥ」）は、ＩＬ−１７ノックアウトマウスで有意に抑制される。

従って、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体を含む医薬組成物は、限定しないが、気道炎症、喘息、ＲＡ、骨関節炎、骨浸食、腹腔内膿瘍及び接着、ＩＢＤ、同種異系移植片拒絶、乾癬、特定の型の癌、脈管形成、アテローム性動脈硬化及びＭＳや、エリテマトーデス、アレルゲン曝露に対する応答、ピロリ菌関連の胃炎、気管支喘息及び同種異系移植片拒絶（例えば、腎臓）、全身性エリテマトーデス及びループス腎炎を含む他の炎症性障害、疾患又は症状を包含する、ＩＬ−１７の存在によって望ましくない病理学的影響が生じるか若しくはこれに寄与する、又はＩＬ−１７活性の低下が哺乳動物、好ましくはヒトで治療上の利点をもたらす症状の治療又は予防に有用であり得る。ＩＬ−１７活性が有害である前記障害の少なくともいずれかを治療若しくは予防に利する、又は生理活性ＩＬ−１７レベルの低下のためになる、本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体の使用が、本発明で企図される。加えて、前記障害の少なくともいずれかの治療用の薬剤の製造で用いるための、本発明の抗単クローン抗体の使用が企図される。

本願明細書で、「治療」「治療する」等の用語は、所望の薬理学的効果及び／又は生理学的効果を得ることを指す。その効果は、完全に若しくは部分的に、その疾患若しくは症候を防止する点から予防的であってもよく、且つ／又は、この疾患に起因し得る疾患及び／若しくは悪影響に対する部分的若しくは完全治癒の点から治療的であってもよい。本願明細書で「治療」は、哺乳動物、特にヒトで疾患又は症状を治療するための、本発明の化合物の投与を包含し、そして
（ａ）当該疾患に罹患しやすいかもしれないが、未だそれに罹患していると診断はされていない被検者で、その疾患が発症するのを防止すること；
（ｂ）当該疾患を阻止する、すなわち、その発生をくい止めること；及び
（ｃ）当該疾患を軽減する、すなわち、その疾患若しくは障害の退行を引き起こす、又はその症候若しくは合併症を緩和すること、が含まれる。投与計画は、所望される最適の応答（例えば、治療的又は予防的応答）がもたらされるように調整してもよい。例えば、単一のボーラスを投与してもよいし、いくつかに分けた用量を長期間投与してもよいし、又は治療の状況の緊急性による示唆に応じて用量を比例的に増減してもよい。

医薬組成物
本発明の抗体は、被検者への投与に好適な医薬組成物に組み込むことができる（例えば、実施例１４参照）。本発明の化合物は、単回、又は複数回用量にて、単独、又は薬理学的に許容できる担体、希釈剤、及び／若しくは賦形剤と組み合わせて投与してもよい。
投与用の医薬組成物は、選択された投与様式に適切となるように設計され、分散剤、緩衝液、界面活性剤、保存剤、可溶化剤、等張化剤、安定剤等の、薬理学的に許容できる希釈剤、担体、及び／又は賦形剤を適宜に用いる（例えば、本願明細書の実施例１４参照）。前記組成物は、例えば、熟練技術者に一般的に知られている製剤技術の概論を提供する、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ，Ｔｈｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｙ、第１９版、Ｇｅｎｎａｒｏ編、Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．，Ｅａｓｔｏｎ，ＰＡ、１９９５に示されるような従来技術に従って設計される。

本発明の抗ＩＬ−１７単クローン抗体を含む医薬組成物は、経口、静脈内、腹腔内、皮下、肺内、経皮、筋肉内、鼻腔内、口腔内、舌下、又は座剤投与を含む標準的な投与技術を使用して、本願明細書の病態を呈するか、又はその危険がある被検者に投与できる。

本発明の医薬組成物は、好ましくは「治療上有効な量」又は「予防上有効な量」の本発明の抗体を含む。「治療上有効な量」とは、投与量にて、且つ必要な時間で所望の治療結果を成し遂げるのに有効な量を指す。抗体の治療上有効な量は、個体の病状、年齢、性、及び体重等の因子、並びに個体で所望される応答を誘発する抗体又は抗体部分の能力に従って変動してもよい。治療上有効な量は、抗体による毒性又は有害効果のいずれよりも、その治療的に有益な効果が上回る量でもある。「予防上有効な量」とは、投与量にて、且つ必要な時間で所望の予防的結果を成し遂げるのに有効な量を指す。典型的には、予防的投与量は、病気になる前又は病気の初期段階の被検者に用いるので、予防上有効な量は、治療上有効な量よりも少ないであろう。

治療上有効又は予防上有効な量は、治療的な利点を被検者に与えるのに必要な、活性剤の少なくとも最小の用量であるが、毒性用量を下回る。換言すると、本発明の抗体の治療上有効な量は、哺乳動物、好ましくはヒトでＩＬ−１７レベルの低下が有益な治療効果をもたらす場合に、又はＩＬ−１７の存在が望ましくない病理学的効果を引き起こすか若しくはこれに寄与する場合に、哺乳動物、好ましくはヒトで、例えばＩＬ−１７Ｒへ結合してＩＬ−１７生物活性を低下させる量である。

本発明の抗体の投与の経路は、経口的、非経口的、吸入による、又は局所的であってもよい。好ましくは、本発明の抗体は、非経口投与に好適な医薬組成物に組み込むことができる。本願明細書の非経口的という用語には、静脈内、筋肉内、皮下、直腸内、膣内、又は腹腔内投与が包含される。静脈内又は腹腔内又は皮下注射による、末梢的全身送達が好ましい。このような注射のための好適な媒体は、当該技術分野で簡単に理解される。

医薬組成物は通常、例えば密封バイアル又はシリンジなどの提供される容器での貯蔵、及び製造の条件下に安定で、且つ無菌でなければならない。従って、医薬組成物は、製剤を作製した後滅菌濾過してもよいし、又はそうでなく、微生物学的に許容できるように作製してもよい。静脈内注入用の典型的な組成物は、滅菌リンゲル液、生理食塩水、デキストロース溶液、及びハンクス溶液などと、治療上有効な用量の抗体濃度（例えば、１〜１００ｍｇ／ｍｌ以上）を含む、２５０〜１０００ｍｌ程度の液体容量であることができよう。用量は、疾患の型及び重症度に応じて変動してもよい。医療技術分野でよく知られているとおり、誰か１人の被検者に対する用量は、患者のサイズ、体表面積、年齢、投与すべき特定の化合物、性、投与の時間及び経路、全身の健康、並びに同時に投与されている他の薬物を含め、多くの因子に依存する。典型的な用量は、例えば、０．００１〜１０００ｍｇの範囲であることができるが、
この例示典範囲を下回る、又はこれを上回る用量も、特に前記の因子を考慮して想定される。毎日の非経口投与計画は、１日当たり、約０．１ｍｇ／ｋｇ〜約１００ｍｇ／ｋｇ総体重、好ましくは約０．３ｍｇ／ｋｇ〜約１０ｍｇ／ｋｇ、より好ましくは約１ｍｇ／ｋｇ〜１ｍｇ／ｋｇ、更に一層好ましくは約０．５〜１０ｍｇ／ｋｇ体重であることができる。進行を、定期的な評価によってモニターしてもよい。少なくとも数日以上にわたる反復投与については、症状に応じて、疾患症候の所望の抑制が起こるまで治療が繰り返される。しかし、他の投与計画が有用であることもあり、本発明から除外されることはない。熟練技術者が成し遂げたいと望む薬物動態学的減衰のパターンに応じて、抗体の単回のボーラス投与により、複数回のボーラス投与により、又は継続的注入投与により、所望の投与量を送達できる。

抗体のこれら指示量は、相当な治療上の裁量を前提とする。適切な用量の選択及びスケジュール設定の際の主要な要因は、得られる結果である。これに関連して考慮される因子には、治療される特定の障害、治療される特定の哺乳動物、個々の患者の臨床症状、障害の原因、抗体の送達の部位、抗体の特定のタイプ、投与の方法、投与のスケジュール設定、及び熟練技術者に知られた他の因子が含まれる。

本発明の治療剤は、貯蔵用に凍結又は凍結乾燥し、使用前に好適な無菌の担体中で再構成してもよい。凍結乾燥及び再構成で、抗体活性損失の程度の変化を導くことができる。投与量は、補償するように調整しなければならないことがある。通常、６から８の間のｐＨが好ましい。

製造品
本発明の別の実施形態で、前記障害又は症状の治療又は予防に有用なものを含む製造品が提供される。製造品は、容器及びラベルを具備している。好適な容器としては、例えば、瓶、バイアル、シリンジ、及び試験管が挙げられる。容器は、ガラス又はプラスチックなどの様々な材料で形成してもよい。容器は、障害又は症状を防止又は治療すのに有効な本発明の抗体の組成物を保持し、無菌のアクセス口を有してもよく、例えば、容器は、静脈内輸液バッグ、又は皮下注射針によって穿孔できるストッパを有するバイアルであってもよい。組成物中の活性剤は、本発明の抗ＩＬ−１７抗体である。容器上の、又は添付されるラベルは、選択した症状を治療するために組成物が用いられることを示す。製造品は、リン酸塩緩衝食塩水、リンゲル液、及びデキストロース溶液などの、薬理学的に許容できる緩衝液を含む第二容器を更に含んでもよい。それは更に、他の緩衝液、希釈剤、フィルター、針、シリンジ及び使用のための説明を記載した添付文書を含め、商業的、及び使用者の観点から望ましい他のものを更に含んでもよい。

以下の実施例は、例示目的のみで提供し、いかようにも本発明の範囲を限定することは意図しない。

表１ 配列番号

表２ 重鎖ＣＤＲアラインメント

コンセンサス：

表３ 軽鎖ＣＤＲアラインメント

コンセンサス：

実施例１ ＥＬＩＳＡ Ｉ：様々な種のＩＬ−１７への抗体結合
ＩＬ−１７に対する抗体の結合を測定するための代表的なＥＬＩＳＡアッセイでは、ウェル当たり５０μｌの１．０μｇ／ｍｌヒトＩＬ−１７（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ、＃３１７−ＩＬ／ＣＦ）の炭酸塩コーティング緩衝液（５０ｍＭ炭酸ナトリウム（ｐＨ９．０））溶液で４℃にて一晩コーティングされる密封Ｃｏｓｔａｒ ３３６６ミクロタイタープレートを使用する。あるいは、マウス、ラット、ウサギ又はカニクイザルＩＬ−１７を使用する。ヒトＩＬ−２２（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）を、対照抗原として使用する。ウサギ及びカニクイザルＩＬ−１７は市販されていないので、図２（配列番号：９及び１０）に示す様々な種のＩＬ−１７のアミノ酸配列を活用し、当該技術分野で知られた方法に従ってクローニング及び発現、又は人工的に合成する必要がある。さまざまな種のＩＬ−１７をコードする代表的なヌクレオチド配列を、配列番号：２５０〜２５４に示す。

プレートはその後、１００μｌブロッキング緩衝液（Ｐｉｅｒｃｅ ＃３７５１５）を添加することによって、ブロックする。プレートを３７℃で１時間インキュベートし、その後洗浄用緩衝液（ＰＢＳ（ｐＨ７．４）、０．０５％ツイーン）で３回洗浄する。次いで、試料抗体又は対照抗体（ＰＢＳ（ｐＨ７．４）で、例えば２、０．４、０．０８、０．０１６、０．００３２及び０のμｇ／ｍｌの様々な濃度に希釈）のいずれかの５０μｌを各ウェルに添加し、プレートを更に３７℃で１時間インキュベートする。プレートは次いで、洗浄用緩衝液で３回洗浄し、その後ＰＢＳ（ｐＨ７．４）で１：１０００に希釈した、ウェル当たり５０μｌの抗ヒトκ−アルカリホスファターゼ接合体を添加する。測定試料を、３７℃で１時間インキュベートする。その後、ｐ−ニトロフェニルリン酸二ナトリウム塩（ＰＮＰＰ、Ｐｉｅｒｃｅ ＃３７６２０）を、製造業者の説明書に従ってジエタノールアミン基質緩衝液に溶解することにより新たに作製し、５０μｌを各ウェルに添加する。発色は室温で約１０分間進行させ、その後、適切なＥＬＩＳＡプレートリーダーのいずれかを使用して４０５ｎｍの吸光度で色信号を測定する。結合の程度は、色信号の発生に比例する。

本発明の抗体は、本願明細書のＥＬＩＳＡアッセイでヒトＩＬ−１７に結合するが、ラット又はマウスＩＬ−１７には結合しない。本発明の抗体がヒト及びサルＩＬ−１７に結合することを立証している実施例４のビアコアデータを考えると、本発明の抗体は本願明細書に記載のＥＬＩＳＡアッセイにてサルＩＬ−１７への結合も立証されるであろうことが予測される。

実施例２ ＥＬＩＳＡ ＩＩ：ＩＬ−１７のファミリータンパク質への抗体結合
本発明の抗体が選択的且つ／又は優先的に特定のヒトＩＬ−１７メンバー（例えば、ＩＬ−１７Ａ、ＩＬ−１７Ｂ、ＩＬ−１７Ｃ、ＩＬ−１７Ｄ、ＩＬ−１７Ｅ若しくはＩＬ−１７Ｆ）、又はヒトＩＬ−２２（陰性対照）に結合するかどうかを計るために、ＥＬＩＳＡを用いる。

代表的なアッセイで、ＥＬＩＳＡプレートウェル（Ｎｕｎｃ Ｉｍｍｕｎｏ Ｍａｘｉｓｏｒｐ）は、１００μｌ（１Ｘコーティング緩衝液（ＢｉｏＦｘ）中、０．５μｇ／ｍｌ）のＩＬ−１７ファミリーメンバータンパク質（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）で被覆し、密封して４℃で一晩インキュベートする。ウェル内の溶液を軽く叩いて除去し、ブロッキング用緩衝液（１．５％ＢＳＡのＰＢＳ溶液、２００μｌ）を添加する。プレートは、室温で３０分間、回転式振盪機でインキュベートする。その後、ウェル当たり１００μｌの被検抗体を、濃度を変えて（例えば、２、０．４、０．０８、０．０１６、０．００３２及び０μｇ／ｍｌ）添加する。プレートは、再び一晩インキュベート（４℃）し、その後、回転式振盪機で加温する（室温で６０分間）。各プレートのウェルはその後、緩衝液（１ＸＩｓｈ緩衝液、ＢｉｏＦＸ）で５回洗浄する。洗浄後に、適切な市販のＨＲＰ接合二次抗体（１．５％ＢＳＡを含むＰＢＳ中１：２０００）を添加する（１００μｌ／ウェル）。プレートは、回転式振盪機（６０分、室温）で再度インキュベートし、その後前記のとおりに緩衝液（５Ｘ）で洗浄する。比色定量信号を、飽和するまで（約３〜５分）ＴＭＢ（１００μｌ／ウェル）を添加することによって生じさせ、その後、更なる信号発生は、停止液（１００μｌ／ウェル、ＢｉｏＦＸ）を添加することによって停止する。色信号は、適切なＥＬＩＳＡプレートリーダーのいずれかを使用して４５０ｎｍの吸光度で測定する。結合の程度は、色信号の生成に比例する。本発明の抗体（例えば、表１に示すＦａｂ １０３、１０４、１１８、１２１、１２６及び１３１）は、ヒトＩＬ−１７（すなわちＩＬ−１７Ａ）に特異的に結合するが、同様の条件下でヒトＩＬ−１７Ｂ、ヒトＩＬ−１７Ｃ、ヒトＩＬ−１７Ｄ、ヒトＩＬ−１７Ｅ、ヒトＩＬ−１７Ｆ、マウスＩＬ−１７又はヒトＩＬ−２２にバックグラウンドレベルを上回って結合することはない。

実施例３ ＩＬ−１７をクローニングするための細胞の単離及び活性化
Ａ．ラット脾細胞
ＣＯ_２吸入により屠殺したラットの脾臓を、無菌鉗子及びハサミを使用して取り出し、その脾臓を５ｍｌのＲＰＭＩ １６４０培地＋１０％ウシ胎児血清及びペニシリン／ストレプトマイシン（培地溶液）を含む試験管の中に入れる。試験管の内容物を１０ｃｍシャーレに注ぎ入れ、脾臓から脂肪を除去する。完全に艶消し処理され、予め高圧蒸気滅菌した一対の鏡検スライドを用いて、脾臓を穏やかにホモジナイズする。培地溶液を用いてスライドから細胞を洗い出し、数回ピペッティングして、細胞濾過器（Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を通して細胞を濾過する。培地溶液で細胞を一度洗浄して細胞を計数し、８０ｍｌ中、２ｘ１０^７細胞／ｍｌの最終濃度にそれらを再懸濁する。細胞溶液をＴ１５０フラスコに加え、コンカナバリンＡを３μｇ／ｍｌの終濃度となるように添加し、３７℃にて約１５時間インキュベートする。細胞を収集してＰＢＳで洗浄し、ドライアイス上で細胞ペレットを凍結して、直ちに標準的なＲＮＡ単離手順に進める。

Ｂ．カニクイザル及びウサギ末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）
カニクイザルからの全血約７ｍｌ、又はニュージーランド白色種ウサギからの全血１０ｍｌを、全血からの単核細胞分離用のＢＤ Ｖａｃｕｔａｉｎｅｒ（商標）ＣＰＴ（商標）Ｓｙｓｔｅｍに付す。水平スイングバケットロータで、１５００ｘ重力にて２０分間、ＣＰＴ細胞調製試験管を遠心分離する。界面でリンパ球及び単球を集め、培地溶液で２回洗浄し、計数して、１０^６細胞／ｍｌの終濃度で培地溶液に再懸濁させる。コンカナバリンＡを終濃度３μｇ／ｍｌまで添加し、３７℃にて約１５時間インキュベートする。細胞を収集してＰＢＳで洗浄し、ドライアイス上で細胞ペレットを凍結して、直ちに標準的なＲＮＡ単離手順に進める。

実施例４ 結合速度常数の測定
ＢＩＡＣＯＲＥ（登録商標）２０００器具を用いて、抗原抗体結合速度常数及び親和性を測定する。この器具は、表面プラスモン共鳴の光学的性質を利用して、デキストランバイオセンサマトリクス内で相互作用している分子のタンパク質濃度の変化を検出する。注記する場合を除き、すべての試薬及び材料は、ＢＩＡＣＯＲＥ（登録商標）ＡＢから購入する。すべての測定は、２５℃で実施する。試料は、２μｇ／ｍｌ（１５０ｍＭ塩化ナトリウム、３ｍＭ ＥＤＴＡ、０．００５％（重量／容量）界面活性剤Ｐ−２０、及び１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．４））の終濃度に、ＨＢＳ−ＥＰ緩衝液にて再懸濁させる。プロテインＡは、アミンカップリングキットを使用し、５００応答単位のレベルでＣＭ４センサチップのフローセル１〜４に固定化する。

結合は、複数の分析サイクルを使用して評価する。各サイクルは、５０μｌ／分の流速で実行し、以下の工程：［１００〜２００の応答単位の捕獲を目的として２μｇ／ｍｌ抗体組成物を約２０μｌ注入；ヒトＩＬ−１７、カニクイザルＩＬ−１７、ニュージーランド白色種ウサギＩＬ−１７、ラットＩＬ−１７又はマウスＩＬ−１７（１０ｎＭで開始し、各サイクルにつき２倍系列希釈を使用）を２５０μｌ注入し、その後２０分間解離；そして３０μｌの１０ｍＭグリシン塩酸（ｐＨ１．５）を使用した再生］からなる。各サイクルに対する会合及び解離率は、ＢＩＡｅｖａｌｕａｔｉｏｎソフトウェアでの「１：１物質移動」結合モデルを使用して評価する。

ＩｇＧ_４ Ｆｃ領域を有する全長のｍＡｂ１０３、１０４、１１８、１２１、１２６及び１３１（表１参照）は、５ｐＭ未満のＫ_Ｄ、２ｘ１０^−５ｓ^−１より遅いＫ_ｏｆｆ、及び少なくとも５ｘ１０^６Ｍ^−１ｓ^−１のＫ_ｏｎで、ヒトＩＬ−１７への、そしてサルＩＬ−１７への高親和性結合を呈する。マウス可変領域［配列番号：２６１（２３２１のＶＨ）、２６２（２３２１のＶＬ）］、ヒトＩｇＧ_４重鎖定常領域（配列番号：２６０）及びκ軽鎖定常領域（配列番号：２７２）を含むＦａｂ２３２１ｍＡｂ（例えばＦａｂ１０３及び１０４などの親Ｆａｂ）よりも、これらの変異ｍＡｂでは、Ｋ_Ｄ及びｋ_ｏｆｆが改善されている（すなわち、Ｋ_Ｄが低下し、ｋ_ｏｆｆが遅くなっている）。本発明の抗体は、マウスＩＬ−１７又はラットＩＬ−１７に、バックグラウンドを上回るレベルの結合を呈さず、２００ｎＭのマウスＩＬ−１７まで結合が検出されず、１μＭのラットＩＬ−１７まで結合が検出されない。全長のｍＡｂ１０３、１０４、１２１及び１２６を前記条件下にカニクイザルＩＬ−１７及びウサギＩＬ−１７への結合について試験すると、
ウサギＩＬ−１７への結合は弱く、且つ二相性であり、サルＩＬ−１７への結合はヒトへの結合に類似している。このアッセイにて試験した場合の、本発明の特定のｍＡｂに対する具体的な数値（数値は平均±平均の標準誤差として報告）を、以下の表４に列挙する。ＩｇＧ_４のもの以外のＦｃ領域は、Ｋ_Ｄ及びｋ_ｏｆｆに有意に影響を及ぼさないであろうと考えられる。

表４

^ａ結合は二相性であり、データは２種の親和性を示す異種リガンド結合モデルに適合する。

実施例５ ＩＬ−１７受容体／抗ＩＬ−１７抗体結合競合研究
本実施例は、本発明の抗体がＩＬ−１７受容体とＩＬ−１７への結合について競合することを立証する。

ＢＩＡＣＯＲＥ結合研究は、ＩＬ−１７受容体Ｆｃ融合タンパク質（Ｒ＆Ｄ ＃１７７−ＩＲ）を使用して実施する。ＩＬ−１７受容体Ｆｃ融合タンパク質がヒトＩＬ−１７に結合することを立証するために、ＢＩＡＣＯＲＥ結合緩衝液（ＨＢＳ−ＥＰ）＋１ｍｇ／ｍｌ ＢＳＡにおいてＢＩＡＣＯＲＥ ２０００器具で２５℃にてＢＩＡＣＯＲＥアッセイを実施する。チップのフローセル１、２及び３に約６００応答単位のプロテインＡを固定化したＣＭ４チップを使用する。約１００応答単位のＩＬ−１７受容体Ｆｃ融合タンパク質が、チップのフローセル２に捕獲される。その後、６００ｎＭから９．４ｎＭの範囲の濃度でヒトＩＬ−１７をフローセル１及び２に曝露する。ヒトＩＬ−１７を各々２５０μｌ注入した後、チップ全体に緩衝液を流して約１２分間、複合体を解離させる。解離が終了した後、次の結合サイクルを開始する前に、２０μｌの１００ｍＭグリシン（ｐＨ１．５）の注入を用いてチップを再生させる。フローセル１を、参照フローセルとして使用する。データは、ＢＩＡｅｖａｌｕａｔｉｏｎ Ｖｅｒｓｉｏｎ ３．２ソフトウェアの「Ｂｉｖａｌｅｎｔ ａｎａｌｙｔｅ」モデルを用いて適合させる。その結果から、この相互作用は１．０６ｘ１０^５Ｍ^−１ｓ^−１の結合速度、２０．３ｓ^−１の高解離速度、及び１．６３ｘ１０^−４ｓ^−１の低解離速度を有することが示される。従って、この相互作用は、ヒトＩＬ−１７に対する本発明の抗体の結合親和性よりも非常に弱い、１．５ｎＭ及び０．１９ｍＭのＫ_Ｄ又は結合親和性を有する。

競合実験に対する結合も、ＣＭ４チップを備えたＢＩＡＣＯＲＥ２０００器具で、２５℃にてＨＢＳ−ＥＰ＋１ｍｇ／ｍｌ ＢＳＡにおいて測定する。約１０００応答単位の本発明の抗体を、チップのフローセル２、３及び４に固定化し、フローセル１はブランクにしておく。５０μｌ／ｍｌの流速を用いて、２５μｌの５００ｎＭヒトＩＬ−１７を４つのフローセル全てにわたって注入し、抗体：抗原複合体をチップの表面上に形成させる。注入が完了して複合体が形成された後、２５０μｌの５００ｎＭヒトＩＬ−１７受容体Ｆｃ融合タンパク質を４つのフローセル全てにわたって注入する。この注入の終了時に、２５μｌの１００ｍＭグリシン（ｐＨ１．５）の注入でチップを再生させる。その後、ＩＬ−１７受容体Ｆｃ融合タンパク質でなく２５０μｌの緩衝液の注入で同じ結合実験を繰り返す。

抗体:抗原複合体に対する受容体注入と、抗体：抗原複合体に対する緩衝液対照の注入との双方についての
結合プロファイルは、同一である。これは、本発明の抗体に一旦結合すると、その受容体にダイマーのＩＬ−１７が結合するために利用できる結合部位がないことを示している。この結果はまた、一旦複合体が形成されると、受容体は抗体のいずれからもＩＬ−１７を「引き」剥がすことはできないことも示している。これらの抗体は、ヒトＩＬ−１７がその受容体に結合するのを阻害でき、従って、ヒトＩＬ−１７の生物学的活性を中和する。

実施例６Ａ インビトロＩＬ−８レポーターアッセイ
本発明の抗体がＩＬ−１７生物活性を中和又は拮抗する能力を試験するために、本願明細書のＩＬ−８レポーター分析を利用できる。この方法は、細胞ベースのアッセイで本発明のＦａｂ又はｍＡｂの作用強度を定量するのに用いることもできる。ヒトＨＳ２７細胞系（ＡＴＣＣ ＃ＣＲＬ−１６３４）は、ＩＬ−１７に応答してＩＬ−８を分泌する。ＩＬ−１７によって誘導されたＩＬ−８分泌は、抗ＩＬ−１７中和抗体によって阻害される（Ｊ．Ｉｍｍ．１５５：５４８３−５４８６，１９９５、又はＣｙｔｏｋｉｎｅ ９：７９４−８００，１９９７参照）。従って、抗ＩＬ−１７中和抗体の非存在下に充分なＩＬ−１７をＨＳ２７細胞へ添加すれば、ＩＬ−１７によって誘導されるＩＬ−８分泌は拘束されることなく進行するはずである。

ＨＳ２７細胞を、アッセイ培地（１０％ウシ胎児血清、４ｍＭ Ｌ−グルタミン、１ｍＭピルビン酸ナトリウム、ペニシリンＧ（１００Ｕ／５００ｍｌ）及びストレプトマイシン（１００μｇ／５００ｍｌ）を含みフェノールレッド不含のＤＭＥＭ高グルコース培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ ＃３１０５３−０２８））中で維持する。細胞を、アッセイの日に約８０〜９０％の集密度になるまで、Ｔ１５０フラスコで生育する。ヒトＩＬ−１７（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ、＃３１７−ＩＬ−０５０）は、Ｃａ^２＋及びＭｇ^２＋不含の無菌ＰＢＳで再構成して凍結保存し、使用のために新たに解凍して、アッセイ培地で２００ｎｇ／ｍｌに希釈する。希釈したＩＬ−１７の５０μｌ分割量を９６穴平底組織培養プレート（Ｆａｌｃｏｎ ＃３５−３０７２）の各ウェルに添加するが、外側のウェルは空のままにしておく。培地のみの対照（１００μｌ／ウェル）及びＩＬ−１７のみの対照（１００μｌ／ウェル）用に、二重のウェルを使用する。試験は、二重又は三重にて行う。無菌の全長ｍＡｂタンパク質を、アッセイ培地中２４μｇ／ｍｌの最高濃度に希釈する。系列希釈（通常、１：５）を別々のアッセイプレートで作製して、様々な希釈率のＦａｂ試料５０μｌを、ＩＬ−１７を含むウェルに添加し、その後３７℃で１時間インキュベートする。アッセイ培地単独を、陰性対照として用いる。

ＨＳ２７細胞（１００μｌアッセイ培地中、通常、約２０，０００個の細胞）を、Ｆａｂ＋ＩＬ−１７（又は対照）を含むプレートの各ウェルに加え、３７℃で約４８時間インキュベートする。次いで、５００ｘ重力で５分間、９６穴プレートを遠心分離した後、培地上清を集め、アッセイ培地にて１：１５又は１：１０に希釈する。市販のＥＬＩＳＡキット（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ、ＥＬＩＳＡ Ｄ−８０００Ｃ又はＲ＆Ｄ ＤｕｏＳｅｔ ＥＬＩＳＡ ＃ＤＹ２０８ｈＩＬ−８）を使用し、アッセイ培地を標準希釈液に置換して、更に基質容量を１００μｌ／ウェルとしたことを除いては製造業者の説明書に従い、上清のＩＬ−８量の定量によってＩＬ−１７中和のレベルを測定する。ＥＬＩＳＡ測定（４５０ｎｍ）は、マイクロプレートリーダーで行う。標準的な統計技術を用いて較正曲線から定量するＩＬ−８値（ｐｇ／ｍｌ）での４−パラメーターロジスティック適合を使用して、較正曲線を得る。ＩＣ_５０値は、標準的な統計技術を使用して得る。

ＩｇＧ_４Ｆｃ領域を備えた本発明の全長ｍａｂ１０３、１０４、１２１及び１２６は、記載のアッセイで試験する場合（２〜４の複製）、３６５から６１８ｐＭの間の全測定値範囲で、４５０と５００ｐＭの間の平均ＩＣ_５０（各ｍＡｂに対し１５０ｋＤの推定分子量に基づく）を有する。

実施例６Ｂ インビトロＧＲＯαレポーターアッセイ
本発明の抗体がＩＬ−１７生物活性を中和又は拮抗する能力を試験するために、以下の細胞ベースのアッセイを利用できる。
ＩＬ−１７は、上皮細胞及び他の細胞を刺激して、ＧＲＯαを分泌させることができる。本発明の抗体が、ヒト結腸直腸腺癌上皮細胞系ＨＴ−２９からの、ＩＬ−１７で誘導されるＧＲＯα分泌を中和する能力を、このアッセイで試験する。

ＨＴ−２９細胞からのＧＲＯα分泌をヒトＩＬ−１７が用量依存的に誘導したか否かを試験するために、組換えＩＬ−１７（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＃３１７−ＩＬ−０５０／ＣＦ；Ｃａ^２＋及びＭｇ^２＋不含の無菌ダルベッコＰＢＳ（Ｄ−ＰＢＳ）で再構成）を、アッセイ／培養培地（ＭｃＣｏｙ’ｓ ５Ａ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）；１０％ＦＢＳ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）；ペニシリンＧ（１００Ｕ／５００ｍｌ）；及びストレプトマイシン（１００μｇ／５００ｍｌ））で、４．５μｇ／ｍｌ（３Ｘ最高試験濃度）に希釈する。ＩＬ−１７は、連続的に（１：５）アッセイ培地で更に希釈する。様々な濃度（０．０９６ｎｇ／ｍｌ〜１，５００ｎｇ／ｍｌ；３．０ｐＭ〜４６，８７５ｐＭ）のＩＬ−１７を、組織培養処理した９６穴プレートの内側ウェルに、５０μｌづつ分配する。アッセイ培地（５０μｌ）を、「培地単独」の処理用の３つのウェルに分配する。試験は、三重（一処理につき３つのウェル）で行う。アッセイ培地にＩＬ−１７を含むプレートを、ＨＴ−２９細胞を添加する前に３７℃で５％ＣＯ_２にて約６０〜９０分間インキュベートする。

本発明の抗体（例えば、ＩｇＧ_４ Ｆｃ領域を有するｍＡｂ１２６）の評価のために、ＨＴ−２９細胞からの最高のＧＲＯα分泌の約７０％をもたらしたＩＬ−１７の濃度（６０ｎｇ／ｍｌ）を用いる。組換えヒトＩＬ−１７（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）は、アッセイ／培養培地で２４０ｎｇ／ｍｌ（４Ｘ作用濃度）に希釈する。希釈したＩＬ−１７は、組織培養処理した９６穴プレート（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ Ｆａｌｃｏｎ ＃３５−３０７２）の、６０の別々の内側ウェルに、５０μｌづつ分配する。アッセイ培地（５０μｌ）を、「培地単独」の処理用の３つのウェルに分配する。

本発明の被検抗体の用量範囲は、通常２．５６〜４０，０００ｐＭである。別々の希釈プレートで、本発明の抗体及び対照抗体（無菌、１ＸＰＢＳ（ｐＨ７．４）中）を、アッセイ培地で１６０，０００ｐＭまで希釈する。本発明の抗体及び対照抗体は、連続的に（１：５）アッセイ培地で更に希釈する。
次いで、各試験濃度の本発明の被検抗体を、ＩＬ−１７を含むウェルに５０μｌ添加する。試験は通常、三重で行う。アッセイ培地単独（５０μｌ）を「培地単独」及び「ＩＬ−１７単独」の対照用に使用する。ＩＬ−１７と本発明の抗体との混合液を含むプレートを、ＨＴ−２９細胞を添加する前に、３７℃、５％ＣＯ_２で６０〜９０分間インキュベートする。

ＨＴ−２９細胞（ヒト結腸直腸腺癌上皮細胞、ＡＴＣＣ ＃ＨＴＢ−３８）は、組織培養処理したフラスコにて培養／アッセイ培地中で標準的な技術を使用して維持する。ＨＴ−２９細胞は、アッセイの日に約５０〜８０％の集密度になるまで、組織培養フラスコで生育する。アッセイの日に、細胞をＨＢＳＳ（Ｃａｍｂｒｅｘ ＃ＣＣ−５０２４）で濯ぎ、トリプシン＋ＥＤＴＡでフラスコから剥離させる。トリプシンは、完全なアッセイ培地で不活性化する。ＨＴ−２９細胞は次いで、室温にて５００Ｘｇで５分間遠心分離する。細胞ペレットはその後、アッセイ培地に再懸濁させ、２０，０００のＨＴ−２９細胞（１００μｌ中）を９６穴プレートの各処理ウェルに加える。等容量のＤ−ＰＢＳを、蒸発に起因するエッジ効果を低減するために、未使用の縁部ウェル（細胞なし）の各々に添加する。９６穴プレートは、組織培養恒温器（３７℃、５％ＣＯ_２）に約４８時間入れた。

アッセイ終了時に、プレートを遠心分離（５００Ｘｇで室温にて５分間）し、細胞培地をポリプロピレン９６穴プレートに移す。ＧＲＯαレベルは、標準希釈剤としてアッセイ培地を使用すること、ＢｉｏＦＸ Ｌａｂｓからの１ＸＥＬＩＳＡ洗浄用緩衝液を使用すること、ウェル当たり５０μｌの容量の試料及び標準液を使用すること、ＢｉｏＦＸ Ｌａｂｓからの基質（ＨＲＰ基質、＃ＴＭＢＷ−１０００−０１）を使用すること、並びにＢｉｏＦＸ Ｌａｂｓからの停止液（＃ＬＳＴＰ−１０００−０１、ウェル当たり１００μｌ）を使用することを除いては製造業者の説明書に従って、ＧＲＯαサンドイッチＥＬＩＳＡ（Ｒ＋Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＤｕｏＳｅｔ ＃ＤＹ２７５）によって測定する。ＥＬＩＳＡ反応の終了時に、プレートをマイクロプレートリーダーで４５０ｎｍにて読み取る。ＧＲＯαに対する較正曲線は、４−パラメーターロジスティック適合を実行することによって得る。試料に対するＧＲＯα値（ｐｇ／ｍｌの濃度）は、較正曲線から得る。ＩＬ−１７で刺激した場合、ヒト結腸直腸腺癌上皮細胞系ＨＴ−２９は、用量依存的にＧＲＯαを分泌した（表５）。対照ヒトＩｇＧ４は、ＩＬ−１７で 誘導されるＧＲＯα分泌の減少を引き起こさなかった。これらの結果（表６）は、前記条件を用いて、インビトロでＨＴ−２９細胞から、ヒトＩＬ−１７で誘導されるＧＲＯα分泌をｍＡｂ１２６が完全に中和できることを立証している。このアッセイでのｍＡｂ１２６に対するＩＣ_５０値は、約５６０ｐＭである。

表５

表６

実施例７ ｈＩＬ−１７インビボでの中和
ヒトＩＬ−１７は、マウスＩＬ−１７受容体に結合して刺激することができ、マウスＫＣ（ＣＸＣＬ１）ケモカインの上昇とこれに続く分泌を導く。時間及び用量レンジング実験を行なって、マウスＫＣの誘導に至適なヒトＩＬ−１７の用量及び至適な時間を同定する。これらの実験で、１５０μｇ／ｋｇのヒトＩＬ−１７の用量、及びＩＬ−１７投与後２時間の時間が、マウス血清で最高レベルのＫＣを与えることが示される。ヒトＩＬ−１７の皮下注射の１時間前に、本発明の全長抗体（例えば、ヒトＩｇＧ_４Ｆｃ、配列番号：２６０［又は配列番号：２７８］に作動可能に連結されたＨＣＶＲ、及びヒトκ定常領域、配列番号：２６３［又は配列番号：２７７］に作動可能に連結されたＬＣＶＲを有する、Ｆａｂ１２６又はＦａｂ１２１）を、１、１０、１００及び１０００μｇ／ｋｇでマウスに静脈内投与する。ヒトＩＬ−１７投与後２時間でマウスを屠殺し、ＫＣレベルを、市販のキット（ＫＣ Ｑｕａｎｔｉｋｉｎｅ、Ｒ＆Ｄ）を使用し、製造業者の説明書に従ってＥＬＩＳＡによって定量する。アイソタイプが一致する抗体を、陰性対照として使用する。前記抗体は、ヒトＩＬ−１７がマウスＩＬ−１７受容体を刺激する能力を阻止し、用量依存的にマウスＫＣの上昇の阻害を導く。Ｍａｂ１２６（Ｆａｂ１２６を含む完全長抗体）は、前記条件下に２０μｇ／マウスの用量で、効果を有しなかった対照抗体と比較して約４倍、平均ＫＣレベルを低下させる。Ｍａｂ１２１は、前記条件下に２０μｇ／マウスの用量で、対照抗体と比較して約３倍、平均ＫＣレベルを低下させる。

実施例８ エピトープマッピング
マウス親Ｆａｂ（２３２１、配列番号：２６１及び２６２）のヒト化及び最適化が、当該親のヒト化及び最適化に起因してＦａｂのエピトープ結合能を変化させないことを確認すべく、抗ＩＬ−１７抗体のうちの２つ（Ｆａｂ１２６及びＦａｂ１０４）を用いる。ヒト化し、最適化したＦａｂは、標準的な競合ＥＬＩＳＡによって、又はエピトープマッピングのためのＨ−Ｄ交換及び質量スペクトル分析（例えば、Ｈｏｏｆｎａｇｌｅ，Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２５０：２８３−２９８，２００４；Ｈｏｏｆｎａｇｌｅ，Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｂｉｏｍｏｌ．Ｓｔｒｕｃｔ．，３２：１−２５，２００３；Ｂａｅｒｇａ−Ｏｒｔｉｚ，Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｃｉ．１１：１３００−８，２００２参照）によって調べた場合に、マウス親Ｆａｂと同じエピトープに結合するので、同じ親Ｆａｂに由来する本発明のＦａｂ１〜１３２は、同じエピトープに結合することが予測されよう。

エピトープをマッピングするのにＨ−Ｄ交換及び質量スペクトルアッセイ（Ｈ／ＤＸＭＳ）を使用して、ヒトＩＬ−１７（配列番号：１）の８０から８９の間のアミノ酸［ＡＤＧＮＶＤＹＨＭＮ（配列番号：２７５）］が、本発明の抗体が結合する不連続なエピトープの中に含まれることが確認される。ＤＧＮＶＤＹＨ（配列番号：２７６）は、異なる種間のＩＬ−１７の配列の変動と結合能力の比較に基づき、本発明の抗体が結合する不連続なエピトープの中に含まれる必須配列である。配列番号：２７６のアミノ酸配列を、ＩＬ−１７配列全体に照らして変化させることで、変化したＩＬ−１７への本発明の抗体による検出可能な結合が起こらなくなる。本発明の抗体は、対照抗体を上回るレベルで、ラット又はマウスＩＬ−１７に結合することはない。

Ｈ／ＤＸＭＳアッセイを用いて、本発明の抗体が結合するＩＬ−１７の領域を同定する。アミド水素交換の速度は、アミド水素の溶媒接触性及び構造に依存する。水中で遊離のＩＬ−１７又はＩＬ−１７：抗体複合体を重水（Ｄ_２Ｏ）と混合し、重水素によるアミドプロトンの交換を許容する。タンパク質結合に関与する骨格アミド基は、交換から保護され、プロトン化されたままである。これらの領域は、その後、ＬＣ及びエレクトロスプレーイオン化質量分析を組み合わせて、消化的タンパク分解によって同定する。Ｃ末端Ｈｉｓ及びＦｌａｇタグを含むヒトＩＬ−１７（ＩＬ−１７−Ｆｌｉｓ）を発現させ、ＧＳ−ＣＨＯ細胞からＩＭＡＣカラムを用いて精製する。ＩＬ−１７−Ｆｌｉｓ溶液の１０μｇ分割量の２つ（７．７μｌ）を２Ｍｉｃｒｏｃｏｎに移し、ｍＡｂ１０４又はｍＡｂ１２６のいずれか１００μｇ（ＩＬ−１７／ｍＡｂ＝１／２のモル比）をＭｉｃｒｏｃｏｎに加える。ＩＬ−１７−Ｆｌｉｓ溶液の２０μｇを別のＭｉｃｒｏｃｏｎに移し、これには抗体を添加しない。その後、１ｘＰＢＳ緩衝液を、〜１８０μｌの最終容量まで各々のＭｉｃｒｏｃｏｎに加え、１４，０００ｇで１４分間遠心分離する。その後、１５０ｍｌの１ｘＰＢＳ緩衝液を各々のＭｉｃｒｏｃｏｎに加え、１４，０００ｇで１４分間遠心分離する。これらの工程は、遊離抗原及び抗原：抗体複合体が同一の緩衝条件にあることを確実にするのに必要である。

タンパク質部分を集め、最終容量を１ｘＰＢＳで５０μｌ（複合体）又は８０μｌ（ＩＬ−１７−Ｆｌｉｓのみ）に調整する。６μｌのＩＬ−１７−Ｆｌｉｓ、又はＩＬ−１７−ＦｌｉｓとｍＡｂの複合体を、ミクロプラスチックバイアルに移し、１４μｌの１００％Ｄ_２Ｏをそれに加える。この結果、試料中のＤ_２Ｏは７０％になる。溶液を、外界温度で１０分間インキュベートする。交換を直ちにクエンチし、２０μｌの１％ギ酸溶液及び２μｌの２ｍｇ／ｍｌのペプシン溶液を添加することにより消化して、外界温度で３０秒間、又は０℃で１０分間インキュベートする。消化物は、手動でカラムへ直ちに注入する。Ｗａｔｅｒｓ ２７９５ ＨＰＬＣ及びＭｉｃｒｏｍａｓｓ ＬＴＣ Ｐｒｅｍｉｅｒをすべてのアッセイに用いる。以下の設定（カラム温度：０℃；移動相Ｃ：Ｈ２Ｏ中０．１５％ギ酸、Ｄ：ＡＣＮ中０．１２％ギ酸；実行時間：２３分）の下で実行するＺｏｒｂａｘ Ｃ１８カラム（２．１×５０ｍｍ）に、手動インジェクタ、そして金属管（約１ｍｌ）に、ＨＰＬＣポンプからのＨＰＬＣ流を接続する。カラムは、０．２ｍｌ／分の流速で、９８％のＡ（０．１５％ギ酸水溶液）及び２％のＢ（アセトニトリル中０．１２％ギ酸）で平衡化する。勾配溶出は、０．５分かけて２％から１０％のＢまで、その後、１４．５分かけて４０％のＢまで、次いで１分かけて９０％のＢまで実施して２分間保持し、その後１分かけて２％のＢに戻す。ＨＰＬＣからの試料は、以下の設定（イオンモード：ポジティブ；質量走査範囲：３００〜２０００；試料コーン電圧：８０；脱溶媒化ガス流（Ｌ／時間）：７００；脱溶媒化温度：３００℃）で作動する質量分析計によって分析する。金属管、インジェクタループ及びカラムは、アッセイの間中、氷水に沈めておく。ＩＬ−１７の各消化ペプチドの質量スペクトルは、試験される抗ＩＬ−１７ｍＡｂの存在下又は非存在下でのＨ／Ｄ交換の後に得られる。小ペプチドについては、各ペプチドの平均質量は、その同位体イオン及び強度に基づいて算出する。大ペプチドについては、平均質量は、内部較正の後、逆重畳積分した質量スペクトルから得られる。

抗体がＩＬ−１７と複合体を形成すると、ＩＬ−１７の結合領域（エピトープ）は溶媒から保護される。これにより、ＩＬ−１７単独の場合と比較して、より遅いアミド水素交換速度がもたらされる。重水素交換後に遊離のものからのペプチドと、複合体からのペプチドとの質量の比較によると、複合体形成により保護されるペプチドは、遊離ＩＬ−１７の対応するペプチドと異るはずである。下記の表７に、ＩＬ−１７の消化ペプチドに対するＨ／ＤＸＭＳによって得られる質量の差を列挙する。これらの消化ペプチドは、ＩＬ−１７−Ｆｌｉｓの配列全体をカバーする。表のデータが立証するとおり、複合体とそれ自体との間のＩＬ−１７−Ｆｌｉｓペプチドの質量差は、試験した両抗体で類似しており、すなわち、それらは同じエピトープに結合する。主たる質量差は、消化ペプチド２４−８７＋１１７−１３３（すなわち、ＩＬ−１７のアミノ酸２４〜８７と１１７〜１３３）、及び６６−８７＋１１７−１３４に認められるが、これら２つのペプチドはジスルフィド結合で接続されており、これらの領域内の残基が結合に関係していることを示唆している。それらの消化ペプチドはかなり大きいので、他の酵素消化が、結合に関係する特異的なアミノ酸残基を絞るのに必要である。このデータに加えて、本発明の抗体は、ＩＬ−１７ファミリーの他のメンバー（ＩＬ−１７Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ及びＦ）に結合せず、それらはマウス又はラットＩＬ−１７にも結合しない。配列比較及びＩＬ−１７相同構造モデルの検査と共に、これらのデータは、本発明の抗体が結合するＩＬ−１７の非線形エピトープの中に残基８０〜８９が含まれていることを示唆する。

表７

注記：デルタ質量は、ＩＬ−１７−Ｆｌｉｓの消化ペプチド平均質量をＩＬ−１７−Ｆｌｉｓ及び抗体複合体の対応するペプチド平均質量だけから減算することによって得られる。＊このデータは、０℃で１０分の消化からのものである（ｎ＝１）。その他はすべて、外界での０．５分間の消化からのものである。

実施例９ 癌組織でのＩＬ−１７発現
様々なヒト非癌性及び癌性細胞可溶化物を、ＩＬ−１７タンパク質の存在について試験する。組織（約５０〜１００ｍｇ断片）を、ドライアイスで急速凍結し、氷上で解凍し、セラミック溶解ビーズを含む管（Ｑｂｉｏｇｅｎｅ ＃６９１３−０５０；２．０ｍｌの管に、１．４ｍｍのセラミックビーズ）に含まれる、プロテアーゼ阻害剤（Ｐｉｅｒｃｅ ＃７８４１０）及びホスファターゼ阻害剤を含有する３５０μｌのＴＰＥＲ緩衝液（Ｐｉｅｒｃｅ ＃７８５１０）にて溶解する。管は、５〜１０分間氷上に置き、その後４℃で１０分間、１３，０００ｘ重力にて遠心分離し、新しい管へ材料を移して壊死組織片を除去する。前記のとおりに再度遠心分離して、新しい管に移す。タンパク質濃度は、標準ＢＳＡ法を使用して定量する。試料は、市販のＩＬ−１７ ＥＬＩＳＡキット（Ｒ＆Ｄ ＃ＤＹ３１７、ＢｉｏＦＸ Ｌａｂｓからの洗浄用緩衝液、基質溶液及び停止液を使用）を用い、製造業者の説明書に従って分析する。ＩＬ−１７レベルは、総タンパク濃度に標準化する。ＩＬ−１７レベルは、正常の結腸組織（６３の試料を試験）と比較して、癌性結腸組織（６０の試料を試験）で２倍から３倍の間で増加している。ＩＬ−１７レベルは、正常の腎組織（２１の試料を試験）と比較して、癌性腎組織（２１の試料を試験）で平均３〜４倍増加している。癌性前立腺組織（４４の試料を試験）のＩＬ−１７レベルは、正常の前立腺組織（７の試料を試験）と比較して増加している。ＩＬ−１７レベルは、乳房、頚部、肺、喉頭、甲状腺、舌、卵巣及び脳を含め、試験した他の型の腫瘍組織では上昇していなかった。

実施例１０ ミクログリア細胞のＩＬ−１７活性化
ＩＬ−１７は、マウス脳ミクログリア細胞系（ＢＶ−２）を誘導して、ＩＦＮ及びＩＬ−１２ｐ７０を分泌させる。ＢＶ−２マウスミクログリア細胞系［最初にそれらを単離した（Ｅ．Ｂｌａｓｉ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１９９０，２７：２２９−２３７）、Ｅｌｉｓａｂｅｔａ Ｂｌａｓｉ（Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｐｅｒｕｇｉａ，Ｉｔａｌｙ）からの許可を得、Ｓｃｉｏｓから入手］を、２ｍＭ Ｌ−グルタミン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ／ＧＩＢＣＯ ＃２５０３０−０８１）、１０％ＦＢＳ（熱不活性化；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ／ＧＩＢＣＯ ＃１００８２−１４７）、１ｍＭピルビン酸ナトリウム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ／ＧＩＢＣＯ ＃１１３６０−０７０）、１００μｇ／ｍｌ Ｎｏｒｍｏｃｉｎ（ＩｎｖｉｖｏＧｅｎ）を含む高グルコースＤＭＥＭ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ ＃３１０５３−０２８）中で６０％以下の集密度まで、ポリ−Ｄ−リジンが被覆された組織培養フラスコにて３７℃、５％ＣＯ_２で培養する。

アッセイの第０日に、ＢＶ−２細胞を濯ぎ（Ｃａ^２＋及びＭｇ^２＋不含のダルベッコＰＢＳ；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、剥離し（０．２５％トリプシン＋ＥＤＴＡ）、次いでトリプシンを失活させた後遠心分離する（室温で５００Ｘｇ、５分）。この結果得られる細胞ペレットを、〜７，０００細胞数／１００μｌ培地の細胞密度に再懸濁させる。１００μｌの細胞懸濁液を、ポリ−Ｄ−リジンが被覆された組織培養処理した９６穴プレートの、６０の別々の内側ウェルに分配する。記載のとおり、ＩＬ−１７で処理する前に約４８時間、プレートをインキュベートしておく。

アッセイ第２日に、Ｃａ^２＋及びＭｇ^２＋を含まない無菌のダルベッコＰＢＳで再構成した組換えマウスＩＬ−１７（ｍＩＬ−１７）（無担体；Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）を、ポリプロピレンプレートにて培地で１．５μｇ／ｍｌ（最高試験濃度）に希釈する。マウスＩＬ−１７は、ポリプロピレンプレートにて更に連続的に希釈する。正の対照は、培地で１μｇ／ｍｌ（最高試験濃度）に希釈したＬＰＳである。アッセイ培地を、陰性対照として用いる。培地は、処理液（１５０μｌ／ウェル）を添加する前に、細胞から穏やかに吸引する。試験は三重に（一処理当たり３つのウェル）行う。別々の複製プレートを、３７℃、５％ＣＯ_２で、２４時間又は４８時間のいずれかの時間インキュベートする。

アッセイの第３日及び第４日にプレートを遠心分離し（室温、５００Ｘｇで５分）、次いで細胞培養培地を、ポリプロピレン９６穴プレートに移し、これを封止して凍結する（−８０℃）。培地試料を解凍し、マウス２２−ｐｌｅｘ多重化キット（Ｌｉｎｃｏ）を用い、キットに含まれるフィルタープレートを黒壁ポリカーボネートフィルタープレート（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）に換えること以外は製造業者の説明書に従って、サイトカイン及びケモカインレベルをアッセイする。蛍光を、Ｌｕｍｉｎｅｘ（登録商標）器具（ビーズセット当たり５０ビーズ、低ＲＰ１ゲイン設定）で読み取る。データを以下の表８に示す。

標準曲線は、４−又は５−パラメーターロジスティック適合を使用して得る。ＩＦＮγ及びＩＬ−１２ｐ７０値（ｐｇ／ｍｌ）は、標準的な統計技術を使用し、標準曲線から決定する。

表８
ＩＬ−１７での処理後２４時間

ＩＬ−１７での処理後４８時間

実施例１１ 過敏性腸症候群のＤＳＳ誘導モデル
ＩＢＤは、クローン病及び潰瘍性大腸炎を含む慢性の炎症性疾患である。
潰瘍性大腸炎及びクローン病患者からの血清や結腸組織で、ＩＬ−１７タンパク質レベルは有意に上昇する。しかし、ＩＬ−１７は、正常個体、又は感染性大腸炎若しくは虚血性大腸炎の患者からの血清では検出できない。ＤＳＳ（デキストラン硫酸ナトリウム）モデルは、過敏性腸疾患（ＩＢＤ）の最も古いく最も代表的な臨床前モデルの１つである。ＤＳＳモデル（ＦＡＳＥＢ Ｊｏｕｒｎａｌ．２００４；１８：１５５０−１５５２参照）では、急性及び慢性双方の炎症性病変が誘発される。マウスは、体重低下及び結腸長短縮を伴う病変の高度な均一性を有する。個々のマウス間で、時間経過及び重症度に関して再現性がある。疾患を誘導するために、マウスに飲料水中５％ＤＳＳ（３０〜４０Ｋｄ）を７日間与える。潜血陽性又は直腸出血、軟便及び体重低下（５〜８％）を含む疾患活動係数（ＤＡＩ）を、第８日頃に観察する。マウスの体重は、２週間、毎日モニターする。マウスは、第１２日〜１５日頃に屠殺する。ＩＬ−１７タンパク質は、未処置の結腸に対しＤＳＳ処置した結腸で有意に増加する。ＩＬ−１７抗体での処置は、疾患活動係数を低減し得る。

実施例１２ 多発性硬化症に対するＥＡＥモデル
ＥＡＥは、ヒトのＭＳに対するモデルとして役立つ中枢神経系（ＣＮＳ）のＣＤ４＋Ｔ細胞媒介脱髄性疾患である。ＥＡＥ発症の病原機序には、抗原特異的Ｔ細胞活性化及びＴｈ１分化とそれに続くＣＮＳへのＴ細胞及びマクロファージ浸潤が関わる。ＩＬ−１７は、多発性硬化症（ＭＳ）の病理に関与する。ヒト患者のＭＳ病巣のマイクロアレイ分析で、ＩＬ−１７の増加が立証されている（Ｌｏｃｋ，ｅｔ ａｌ．Ｎａｔ．Ｍｅｄ．８：５００−５０８，２００２）。血液及び脳脊髄液中の、ＩＬ−１７ｍＲＮＡを発現している単核細胞（ＭＮＣ）は、ＭＳ患者でその数が有意に上昇し、またＭＳの臨床的緩解の間に比べて悪化の間の方が、ＩＬ−１７ｍＲＮＡを発現している血液ＭＮＣが多数検出された
（Ｍａｔｕｓｅｖｉｃｉｕｓ，ｅｔ ａｌ．Ｍｕｌｔｉｐｌｅ Ｓｃｌｅｒｏｓｉｓ．５：１−１−１０４，１９９９）。ＥＡＥは、ＩＬ−１７ノックアウトマウスで有意に抑制される（Ｎａｋａｅ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎ．１７１：６１７３−６１７７）。

本願明細書の実施例は、ＩＬ−１７タンパク質がＥＡＥマウスの脊髄で増加すること、そして抗マウスＩＬ−１７抗体での処置が活性ＥＡＥモデルでのＥＡＥスコアを低減することを立証する。疾患誘導のために、８〜９週齡の雌性Ｃ５７ＢＬ／６マウスを、（ｉ）２００μｌの５ｍｇ／ｍｌ百日咳毒素（ＰＴ）及び完全フロインドアジュバント（ＣＦＡ）、又は（ｉｉ）ＰＴ、ＣＦＡ及び３００μｇ／２００μｌのＭＯＧ３５−５５（５ｍｇ／ｍｌの熱失活結核菌を含有する、ＣＦＡ中に乳化したミエリン乏突起膠細胞糖タンパク質）のいずれかで、第０日に皮下に免疫化する。第２日に、マウスを再度、ＰＴで処置する。マウスは、麻痺のレベルにつき研究の間中評点する。ＭＯＧを与えている群で、疾患が予想される。ラット抗マウスＩＬ−１７単クローンＩｇＧ_１抗体又はアイソタイプ対照抗体は、第１、７及び１５日にマウスに投与する（ラット抗マウスＩＬ−１７抗体については、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）。臨床スコアが、０〜４の４段階評価で１〜３に達すると、ＭＯＧを与えているマウスは屠殺するが、これは、下記の表９の研究１の場合第１４〜３１日の間、また下記の表１０の研究２の場合第１４〜１６日の間である。疾患の臨床徴候は、第１０日頃に現れる。個々の動物を、少なくとも２名の採点者が、独立して主観的に評点し、臨床的なＣＮＳ疾患重症度に従い処置群の同一性について盲検化する。グレード０は、正常である；
グレード１では、尾部が完全に柔弱になっている；
グレード２では、片側の後肢が部分的に虚弱である；
グレード３では、後肢が完全に麻痺している；そして、
グレード４は、瀕死である。（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１９４：８７３−８８１，２００１参照）。対照マウスは、ＭＯＧ処置マウスと同じ日に屠殺する。脊髄を屠殺時に単離し、ＥＬＩＳＡによるＩＬ−１７タンパク質分析に使用すべく瞬間冷凍する。ＩＬ−１７抗体処置群は、アイソタイプ対照群と比較して、疾患スコアが有意に低い。

各脊髄全体の溶解液を、セラミックビーズ（溶解マトリックスＤ、ＱＢｉｏｇｅｎｅ ＃６９１３０５０）を含む２ｍｌのチューブとＦａｓｔＰｒｅｐ器具（Ｂｉｏ１０１）にて、５．５のスケールで３０秒間、完全プロテアーゼ阻害剤（Ｒｏｃｈｅ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ ＃１１６９７４９８）を用い、１ｍｌ（下記表９の研究１）又は０．４ｍｌ（下記表７の研究２）のＴＰＥＲタンパク質抽出試薬（Ｐｉｅｒｃｅ ＃７８５１０）で作製する。溶解後に、試料は遠心分離（微量遠心管で１４，０００ｒｐｍ、５分）して壊死組織片を除去する。上清は、新しい微量遠心管に移す。各溶解液の総タンパク濃度を、製造業者のマイクロプレートプロトコルを使用し、ＢＣＡタンパク質アッセイキット（Ｐｉｅｒｃｅ ＃２３２２５）を用いて定量する。溶解液は、凍結して−８０℃で保存する。

氷上で溶解液を解凍し、遠心分離によって明澄化した後、製造業者の説明書に従いＥＬＩＳＡ（Ｒ＆Ｄ Ｑｕａｎｔｉｋｉｎｅ ＃Ｍ１７００）によって、原液試料中のマウスＩＬ−１７レベルを測定する。標準曲線は、４−パラメーターロジスティック適合を使用して得る。ＩＬ−１７値は、標準的な統計技術を使用して、標準曲線から求める。ＩＬ−１７レベルは、各試料のタンパク質濃度に標準化し、下記の表９及び１０の各溶解液のＩＬ−１７／ｍｌ総タンパク質（ｐｇ）として表す。表のデータによって示されるとおり、ＩＬ−１７のレベルの増加がＥＡＥマウスで検出された。

表９
研究１

すべてのＩＬ−１７ ＥＬＩＳＡ値は、ＥＬＩＳＡの検出範囲内にあった。二重実験の平均

表１０
研究２

すべてのＩＬ−１７ ＥＬＩＳＡ値は、ＥＬＩＳＡの検出範囲内にあった。二重実験の平均

実施例１３ コラーゲンで誘発した関節炎モデル
コラーゲンで誘発した関節炎（ＣＩＡ）は、慢性関節リウマチ（「ＲＡ」）の広く使用されている齧歯類モデルであり、ヒトのＲＡと共通の組織病理学的特徴を有する。実験的な関節炎は、ＩＩ型コラーゲンのエマルジョンでの免疫化及び追加免疫によってＤＢＡ／１マウスで誘発されるが、小関節の炎症並びに軟骨及び骨の進行性浸食によって特徴付けられる多発関節炎疾患である（Ｔｒｅｎｔｈａｍ，Ｄ，ｅｔ ａｌ，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１４６：８５７−８５８，１９７７）。近年、Ｌｕｂｂｅｒｔｓ，ｅｔ ａｌ（Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ ＆ Ｒｈｅｕｍａｔｉｓｍ，５０：６５０−６５９，２００４；本願明細書で援用）は、多クローンウサギ抗マウスＩＬ−１７抗体を、マウスＣＩＡの発症時又は後期のいずれかに投与すると関節炎の臨床徴候が寛解することを証明した。

ＣＩＡモデルで、腹膜内にラット抗マウスＩＬ−１７ ＩｇＧ２ａ ｍＡｂの単回注射（８ｍｇ／ｋｇ、Ｒ＆Ｄ、ＭＡＢ４２１クローン５０１０４．１１）をしたマウスは、１６ｍｇ／ｋｇの対照ラットＩｇＧ２ａを注射したマウスよりも有意に低い臨床スコアを示す。急性期反応物であるＣ反応性タンパク質（ＣＲＰ）は、ＲＡ患者の疾患活動性の認容された指標である。ＣＲＰと同様に、マウスネ血清アミロイドタンパク質（ＳＡＰ）は、マウスＣＩＡモデルでの疾患の指標として役立つ（Ｂｌｉｖｅｎ，Ｍ．，ｅｔ ａｌ，Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ ＆ Ｒｈｅｕｍａｔｉｓｍ，２９：１１３１−１１３８，１９８６）。８ｍｇ／ｋｇの抗マウスＩＬ−１７で処置した動物では、ＳＡＰレベルが、対照抗体で処置したものより有意に低かった。更に、臨床スコア及びＳＡＰ値の減少は、正の対照として使用する抗マウスＩＬ−１β群（８ｍｇ／ｋｇ）と同等である。最後に、対照抗体で処置したマウスの場合と比較して、８ｍｇ／ｋｇ抗体での滑液炎症及び１６ｍｇ／ｋｇ抗体での骨再吸収の有意な減少が見られる。用量応答研究は、抗マウスＩＬ−１７抗体（例えば、０．１、１及び８ｍｇ／ｋｇ）でＣＩＡモデルにて行ってもよい。ラット抗マウスＩＬ−１７に対する臨床スコアは、用量応答性の傾向を示す。類似のアッセイを、本発明の抗体を使用し、ＲＡのモデルとして、カニクイザルで実施してもよい。

実施例１４ 抗ＩＬ−１７ ｍＡｂ精製
本発明のｍＡｂを発現するベクターを、標準的な手順を用いて適切な宿主細胞（例えば、ＣＨＯ ＤＧ４４（ｄｈｆｒ−）細胞（Ｃｈａｓｉｎ）又はＮＳＯ細胞）に安定的に組み込み、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａアフィニティーカラムを使用して精製する。簡単に説明すると、明澄化した馴化培地を、ＰＢＳ（ｐＨ７．４）で平衡化したおいた５ｍｌのＨｉＴｒａｐ ｒＰｒｏｔｅｉｎ ＡセファロースＦＦカラム（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）に付す。カラムは、非特異的結合成分を洗い落とすために、１１０ｃｍ／時の流速で、５倍カラム容量の平衡化緩衝液で洗浄する。結合した抗体は、直線ｐＨ勾配（０．１Ｍリン酸ナトリウム緩衝液、ｐＨ６．８から０．１Ｍクエン酸ナトリウム緩衝液、ｐＨ２．５まで）を使用して溶出する。溶出での主要なタンパク質ピークを集めて、そのｐＨを１Ｍトリス緩衝液（ｐＨ８．５）で中性に調整する。タンパク質プールを、１０Ｋ Ｖｉｖａｓｐｉｎ膜（Ｖｉｖａｓｃｉｅｎｃｅｓ）を使用して１〜２ｍｇ／ｍｌに濃縮し、無菌濾過（０．４５μｍ）して、その後４℃で貯蔵する。

本発明のｍＡｂの大量調製のために、無細胞濃縮物を、３つの連続クロマトグラフィーカラム（プロテインＡ、陰イオン交換、及び疎水性相互作用クロマトグラフィー）を通して精製する。これらのクロマトグラフィー工程後のｍＡｂの純度は、サイズ排除分析クロマトグラフィーによって評価すると９９％を上回る。抗体の濃度に依存して、以下に列挙するとおりｍＡｂを緩衝液内に交換する。化学的安定性の結果は、６．０と７．０の間（包含）が好ましいｐＨであることを示すが、２０ｍｇ／ｍｌ調製物では、ｐＨは５．５と７．０の間（例えば、５．５、５．６、５．７．５．８、５．９、６．０、６．１、６．２、６．３、６．４、６．５、６．６、６．７、６．８、６．、又は７．０を包含）でもよい。凍結乾燥品については、９０〜３０ｍＭ（９０、８５、８０、７５、７０、６５、６０、５５、５０、４５、４０、３５若しくは３０ｍＭ、又は３０ｍＭと９０ｍＭの間のあらゆる値）の塩化ナトリウムレベルが好ましいが、液体製剤（例えば、皮下に投与するもの）については、１００〜１５０ｍＭ（１００、１１０、１２０、１３０、１４０、若しくは１５０ｍＭ、又は１００ｍＭと１５０ｍＭの間のあらゆる値）の塩化ナトリウムレベルが好ましい。生成品は次いで、約１０、２０又は２５ｍｇ／ｍｌ（あるいは、さらに高く、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１１０、１２０、１３０、１４０、１５０ｍｇ／ｍｌ以上）の終濃度に濃縮して無菌濾過する。濾過した生成品は、直ちに−７０℃で凍結しても、又は凍結乾燥してもよい。安定な凍結乾燥製剤では、溶解保護剤（例えばスクロース又はトレハロース）に対する抗体の重量比を最低１：２とすることが必要であるが、液体製剤では、これが必要とされるわけではない。加えて、０．０２％（重量／容量）界面活性剤、すなわち、ポリソルベート−８０を、液体製剤、及び凍結乾燥する溶液の双方に添加する。凍結乾燥した材料は、投与前に、注射用無菌水又は無菌の０．９％塩化ナトリウムに再懸濁する。

表１１

実施例１５ 抗体のインビボ半減期
本発明の抗体（例えば、ｍＡｂ１２６及び１２１［それぞれＦａｂ１２６又は１２１を有するＩｇＧ４Ｆｃ領域］）の血清薬物動態を、雄性カニクイザルの静脈内又は皮下投与後に調べる。血清の抗体濃度は、プレートをヒトＩＬ−１７で被覆し、結合した血清抗体を抗ＩｇＧ_４二次抗体を使用して検出する、標準的な抗原捕獲ＥＬＩＳＡアッセイを用いて定量する。１ｍｇ／ｋｇを静脈内投与した後、ｍＡｂ１２６は６．５日の平均半減期で除去され、ｍＡｂ１２１は約１１日の平均半減期で除去される。１ｍｇ／ｋｇの皮下投与後に、ｍＡｂ１２６の平均除去半減期は１０．３日であり、ｍＡｂ１２１の平均除去半減期は１３日である。

実施例１６ 腫瘍異種移植片モデル
本発明の抗ＩＬ−１７抗体の抗腫瘍活性を試験する腫瘍異種移植片モデルを確立するために、５００万個のＨＣＴ１１６結腸直腸癌細胞をマトリゲルと混合し、５６週齡の雌性無胸腺（ｎｕ／ｎｕ）マウス（Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ．ＭＡ）の左横腹に皮下注射する。マウスは、対照抗体（例えば、ヒトＩｇＧ４及びマウスＩｇＧ１）、４ｍｇ／ｋｇ抗ヒトＩＬ−１７、８ｍｇ／ｋｇ抗マウスＩＬ−１７、又は４ｍｇ／ｋｇ抗ヒトＩＬ−１７と８ｍｇ／ｋｇ抗マウスＩＬ−１７の組合せを、７日毎に４週間、皮下注射によって処置する。最初の抗体投与は、細胞を移植する１日前に開始する。腫瘍はキャリパで毎週二回測定し、体重は週に２回モニターする。第３４日に各マウスから血漿を収集し、ＫＣ ＥＬＩＳＡキットを使用して、製造業者の説明書（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍ）に従いＫＣレベルを測定する。対照ＩｇＧを注射したマウスと比較して、抗ヒトＩＬ−１７抗体と抗マウスＩＬ−１７抗体との組合せで処置したマウスの腫瘍体積は有意に低減している。更に、抗ヒトＩＬ１７抗体及び抗マウスＩＬ１７抗体の両者で処置したマウスで、血漿ＫＣは劇的に低減している。４ｍｇ／ｋｇ抗ヒトＩＬ１７抗体又は８ｍｇ／ｋｇ抗マウスＩＬ１７抗体のいずれかで処置したマウスでは、腫瘍体積及び血漿ＫＣレベルの有意な低減は明示されなかった。データを本願明細書の表１２及び１３に示す。

腫瘍のＩＬ１７レベルを測定するために、マウス異種移植片モデルからの腫瘍を、概ね実施例９に記載のとおりに調製する。タンパク質測定のために、ポリプロピレン９６穴希釈プレートにて腫瘍溶解液をＴＰＥＲ＋１ＸＨａｌｔで１：１０に希釈する。タンパク質濃度は、Ｃｏｏｍａｓｓｉｅ Ｐｌｕｓ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｓｓａｙ（Ｐｉｅｒｃｅ ＃２３２３６）のマイクロプレートプロトコルを用いて定量する。ＢＳＡ標準は、ＴＰＥＲ＋Ｈａｌｔで希釈する。ＩＬ−１７タンパク質レベルは、製造業者の説明書に従い、Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍのヒト及びマウスＩＬ−１７ ＥＬＩＳＡキット（ヒトＩＬ−１７ ＤｕｏＳｅｔ ＥＬＩＳＡ，Ｒ＋Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｃａｔ．＃ＤＹ３１７；マウスＩＬ−１７ ＥＬＩＳＡ，Ｒ＋Ｄ Ｓｙｓｔｅｍ，Ｃａｔ．＃４２１）を用いて定量する。ヒト及びマウスＩＬ−１７の双方とも、Ｈ４６０肺腫瘍異種移植片モデルと比較して、ＨＣＴ１１６及びＨＴ２９結腸腫瘍異種移植片モデルからの腫瘍で増加していた。

表１２ 腫瘍体積
（ｎ＝１０）

腫瘍体積は、ＬｏｇＶｏｌ、ＡＲ法を使用して算出する。

表１３ 血漿のＫＣケモカインレベル
移植後３５日
（ｎ＝１０）

タンパク質のヒトＩＬ−１７ファミリーのメンバー（ＩＬ−１７、ＩＬ−１７Ｂ、ＩＬ−１７Ｃ、ＩＬ−１７Ｄ、ＩＬ−１７Ｅ及びＩＬ−１７Ｆ）のアミノ酸配列アラインメントを示す。 ヒト、ウサギ、ラット、カニクイザル及びマウス種からのＩＬ−１７のアミノ酸配列アラインメントを示す。

Claims (5)

1. 配列番号：２４１の軽鎖可変領域ポリペプチド及び配列番号：１１８の重鎖可変領域ポリペプチドを含む抗ＩＬ−１７単クローン抗体。
2. 抗体が、ＩｇＧ _１ 、ＩｇＧ _２ 、ＩｇＧ _３ 、及びＩｇＧ _４ からなる群より選択される重鎖定常領域を更に含む請求項１に記載の抗体。
3. 薬剤として使用するための、請求項１または２に記載の抗体。
4. 関節リウマチ、炎症性腸障害、乾癬、及び多発性硬化症からなる群より選択される一種以上の症状の治療に用いるための請求項１または２に記載の抗体。
5. 請求項１または２に記載の抗体と薬理学的に許容できる担体を含む組成物。

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