JP2018090826A - Peg化脂質および薬剤送達のためのそれらの使用 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】本発明の課題は、特定の構造を有する、ポリ(エチレングリコール)−脂質複合体によって解決できることを見出した。
【選択図】なし
Description
有効性の改善を試みるために、研究者らはまた、化学修飾された、または未修飾の治療用核酸を送達するために、脂質ベースの担体系をも使用している。Zelphati, O and Szoka, F.C., J. Contr. Rel. 41:99-119 (1996)において、著者らはアニオン性(従来の)リポソーム、pH感受性リポソーム、免疫リポゾーム、融合性リポソーム、およびカチオン性脂質/アンチセンス凝集体の使用に言及している。Heyes, et. al., J. Contr. Rel. 112:280-290 (2006)において、著者らは、より安定したポリ(エチレングリコール)−脂質複合体の使用に言及している。同様に、カチオン性リポソームにおいて、siRNAを全身投与しており、これらの核酸−脂質粒子が、非ヒト霊長類を含む哺乳類において、標的タンパク質の下方制御を改善することが報告されている(Zimmermann et al., Nature 441: 111-114 (2006))。
式中、
R1およびR2のそれぞれは、独立して、C10〜C30脂肪族基であり、ここで脂肪族基は、Raからそれぞれ独立して選択される1つまたは複数の基により所望により置換され;およびここで脂肪族基は、シクロアルキレン、−O−、−S−、−C(O)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−N(Rc)−、−C(O)N(Rc)−、または−N(Rc)C(O)−により所望により中断され;
Xは、−(CRaRb)i−、−O−、−S−、−C(O)−、−N(Rc)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−OC(O)O−、−C(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)N(Rc)−、−SC(O)N(Rc)−、または−N(Rc)C(O)S−であり;
Yは、−(CRaRb)i−、−O−、−S−、−C(O)−、−N(Rc)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−OC(O)O−、−C(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)N(Rc)−、−SC(O)N(Rc)−、または−N(Rc)C(O)S−であり;
Lは、−L1−Z1−(L2−Z2)c−L3−であり;
L1は、結合、−(CR5R5’)i−、または−(CR5R5’)i−(C(Ra)=C(Rb))k−(C≡C)k−(CRaRb)j−であり;
Z1は、−O−、−S−、−N(Rc)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−OC(O)O−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)−、−C(O)N(Rc)−、−N=C(Ra)−、−C(Ra)=N−、−O−N=C(Ra)−、または−O−N(Rc)−であり;
L2は、−(CRaRb)p−または−(CRaRb)j−(C(Ra)=C(Rb))k−(C≡C)k−(CRaRb)jであり;
Z2は、−O−、−S−、−N(Rc)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−OC(O)O−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)−、−C(O)N(Rc)−、−N=C(Ra)−、−C(Ra)=N−、−O−N=C(Ra)−、または−O−N(Rc)−であり;
L3は、−(CRaRb)i−であり;
各Aは独立して、−L4−、−NH−(L4)q−(CRaRb)r−C(O)−または−C(O)−(CRaRb)r−(L4)q−NH−であり;ここで各qは独立して、0、1、2、3、または4であり;および各rは、独立して、0、1、2、3、または4であり;
各L4は独立して、−(CRaRb)sO−または−O(CRaRb)s−であり;ここで各sは独立して、0、1、2、3、または4であり;
R3は−H、−Rc、または−ORcであり;
R4およびR4’のそれぞれは、独立して、−H、ハロ、シアノ、ヒドロキシ、ニトロ、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、アルコキシ、またはシクロアルコキシであり;
各R5および各R5’は、独立して、−H、ハロ、シアノ、ヒドロキシ、ニトロ、アルキル、アルケニル、アルキニル、またはシクロアルキルであるか;
またはR4および1つのR5が一緒になって、5〜8員のシクロアルキルまたは複素環を形成してもよく;
各Raは独立して、−H、ハロ、シアノ、ヒドロキシ、ニトロ、アミノ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、アルコキシ、シクロアルコキシ、アリール、ヘテロアリール、またはヘテロシクリルであり;
各Rbは独立して、−H、ハロ、シアノ、ヒドロキシ、ニトロ、アミノ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、アルコキシ、シクロアルコキシ、アリール、ヘテロアリール、またはヘテロシクリルであり;
各Rcは、−H、アルキル、アシル、シクロアルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、ヘテロアリール、またはヘテロシクリルであり;
aは0または1であり;
bは1〜1,000の整数であり;
cは0または1であり;
iの各出現は、独立して、1、2、3、4、5、または6であり;
jの各出現は、独立して、0、1、2、または3であり;
kの各出現は、独立して、0、1、2、または3であり;および
Pは1〜10であるが;但し、
(i)XおよびYが同時に−CH2−であることは無く;ならびに
(ii)aが1であり、L1が−CH2−である場合は、
(a)XおよびYが同時に−O−であることは無く;ならびに
(b)XおよびYが同時に−C(O)O−であることも無い。
式中、
R1、R2、R3、R4、R4’、X、Y、L、aおよびbは、式(I)で定義される通りであり;
各Aは独立して、−L4−、−NH−(L4)q−(CRaRb)r−C(O)−または−C(O)−(CRaRb)r−(L4)q−NH−であり;ここで各qは独立して、1、2、3、または4であってもよく;および各rは、独立して、0、1、2、3、または4であり;ならびに
各L4は独立して、−(CRaRb)sO−または−O(CRaRb)s−であり;ここで各sは独立して、1、2、3、または4である。
式中、
R1およびR2はそれぞれ独立してC10〜C30の脂肪族基であり、ここで前記脂肪族基はRaからそれぞれ独立して選択される1つ以上の基によって置換されていてもよく;前記脂肪族基は、シクロアルキレン、−O−、−S−、−C(O)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−N(Rc)−、−C(O)N(Rc)−、またはN(Rc)C(O)−によって中断されていてもよく;
Xは−(CRaRb)i−、−O−、−S−、−C(O)−、−N(Rc)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−OC(O)O−、−C(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)N(Rc)−、−SC(O)N(Rc)−、またはN(Rc)C(O)S−であり;
Yは−(CRaRb)i−、−O−、−S−、−C(O)−、−N(Rc)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−OC(O)O−、−C(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)N(Rc)−、−SC(O)N(Rc)−、またはN(Rc)C(O)S−であり;
Lは−L1−Z1−(L2−Z2)c−L3−であり;
L1は結合、−(CR5R5’)i−、または(CR5R5’)i−(C(Ra)=C(Rb))k−(C≡C)k−(CRaRb)j−であり;
Z1は−O−、−S−、−N(Rc)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−OC(O)O−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)−、−C(O)N(Rc)−、−N=C(Ra)−、−C(Ra)=N−、−O−N=C(Ra)−、またはO−N(Rc)−であり;
L2は−(CRaRb)p−または(CRaRb)j−(C(Ra)=C(Rb))k−(C≡C)k−(CRaRb)jであり;
Z2は−O−、−S−、−N(Rc)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−OC(O)O−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)−、−C(O)N(Rc)−、−N=C(Ra)−、−C(Ra)=N−、−O−N=C(Ra)−、または−O−N(Rc)−であり;
L3は−(CRaRb)i−であり;
Aはそれぞれ独立して、−L4−、−NH−(L4)q−(CRaRb)r−C(O)−またはC(O)−(CRaRb)r−(L4)q−NH−であり;ここでqはそれぞれ0、1、2、3、または4であり;かつ、rはそれぞれ独立して0、1、2、3、または4であり;
L4はそれぞれ独立して−(CRaRb)sO−または−O(CRaRb)s−であり;ここでsはそれぞれ独立して0、1、2、3、または4であり;
R3は−H、−Rc、またはORcであり;
それぞれのR4およびR4’は独立して、−H、ハロ、シアノ、ヒドロキシ、ニトロ、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、アルコキシ、またはシクロアルコキシであり;
R5およびR5’はそれぞれ独立して−H、ハロ、シアノ、ヒドロキシ、ニトロ、アルキル、アルケニル、アルキニル、またはシクロアルキルであるか;
またはR4および1つのR5は一緒になって5〜8員のシクロアルキルまたは複素環を形成することができ;
Raはそれぞれ−H、ハロ、シアノ、ヒドロキシ、ニトロ、アミノ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、アルコキシ、シクロアルコキシ、アリール、ヘテロアリール、またはヘテロシクリルであり;
Rbはそれぞれ独立して−H、ハロ、シアノ、ヒドロキシ、ニトロ、アミノ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、アルコキシ、シクロアルコキシ、アリール、ヘテロアリール、またはヘテロシクリルであり;
Rcはそれぞれ、−H、アルキル、アシル、シクロアルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、ヘテロアリール、またはヘテロシクリルであり;
aは0または1であり;
bは1〜1,000までの整数であり;
cは0または1であり;
iの発生はそれぞれ独立して1、2、3、4、5、または6であり;
jの発生はそれぞれ独立して0、1、2、または3であり;
kの発生はそれぞれ独立して0、1、2、または3であり;ならびに
pは1〜10であり;ただし、
XおよびYは同時に−CH2−ではなく;および
(ii)aが1、かつ、L1が−CH2−の場合には、
(a)XおよびYは同時に−O−ではなく;および
(b)XおよびYは同時に−C(O)O−ではない。
式中、
R1、R2、R3、R4、R4’、X、Y、L、aおよびbは上記式(I)で定義したものと同様であり;
Aはそれぞれ独立して−L4−、−NH−(L4)q−(CRaRb)r−C(O)−またはC(O)−(CRaRb)r−(L4)q−NH−であり;ここでqはそれぞれ独立して1、2、3、または4であり;かつ、rはそれぞれ独立して0、1、2、3、または4であり;および
L4はそれぞれ独立して−(CRaRb)sO−またはO(CRaRb)s−であり;ここでsはそれぞれ独立して1、2、3、または4の場合がある。
カチオン性脂質は、頭部基、1つ以上の疎水性テール、および頭部基と1つ以上のテールの間にあるリンカーなどの設計上の特定の特徴を有し得る。頭部基にはアミンが含まれ得る。ある特定の条件下では、アミン窒素が正に荷電される部位となり得る。例えばアミンが第一級、第二級または第三級アミンの場合、アミンのpKaは特徴的ものとなる。言い換えると、そのアミンは水性媒体中において可逆的にプロトン化される。正電荷の度合が水性媒体のpKaおよびpHの関数である。アミンは第四級アミンであってもよく、この場合アミンは、純粋な形態でなかったとしても、水性媒体中または水性媒体のpHでは、正電荷を有する。
脂質粒子には、以下で詳細に説明する1種類以上のカチオン性脂質を含み得る。脂質粒子はさらに、第2のアミノ脂質またはカチオン性脂質、中性脂質、ステロール、および脂質粒子の凝集を低下させるために選択される脂質、すなわち凝集抑制脂質、のうちの1つ以上が含まれ得る。脂質粒子はリポソームを含むがこれには限定されない。本明細書で使用する場合、リポソームとは、水性の内部を取り囲む脂質含有膜を有する構造である。リポソームは、1つ以上の脂質膜を有していてもよい。リポソームは単層のリポソーム(単層膜と呼ばれる)であっても多層のリポソーム(多重層膜と呼ばれる)であることができる。また、脂質粒子は、核酸と複合体化した際に、例えば、Felgner, Scientific Americanに記載されているような、DNA層の間に挟まれたカチオン性脂質二分子膜で構成されるリポプレックスであることができる。
形成中の粒子の凝集抑制脂質の例としては、ポリエチレングリコール(PEG)修飾脂質、モノシアロガングリオシドGm1、および例えば米国特許第6,320,017号に記載されているもののようなポリアミドオリゴマー(「PAO」)がある。PEG、Gm1またはATTAのような、製剤化している間の凝集を防ぐ、電荷のない、親水性の、立体障害部分を有する他の化合物も脂質に結合させることができる。ATTA−脂質は例えば、米国特許第6,320,017号に記載されており、PEG−脂質複合体は例えば、米国特許第5,820,873号、同第5,534,499号および同第5,885,613号に記載されており、これらはそれぞれ、その全体が参照することにより組み入れられる。通常、凝集を低下させるために選択される脂質成分の濃度は、(脂質のモル百分率で)約1〜15%である。凝集を低下させ、および/またはPEG部分を含む他の脂質については、例えば米国特許第7,803,397号および国際公開第2009/082607号に記載されており、これらはそれぞれ、その全体が参照することにより組み入れられる。
中性脂質は、脂質粒子中に存在する場合、生理的pHで電荷のない形態、或いは中性の双性イオン形態として存在するいくつかの脂質種のいずれであることができる。このような脂質としては、例えば、ジアシルホスファチジルコリン、ジアシルホスファチジルエタノールアミン、セラミド、スフィンゴミエリン、ジヒドロスフィンゴミエリン、セファリン、およびセレブロシドが挙げられる。本明細書に記載の粒子中で使用される中性脂質の選択は、通常、例えば、リポソームの大きさや血流中のリポソームの安定性を考慮して判断される。好ましくは、中性脂質成分は、2つのアシル基を有する脂質(すなわち、ジアシルホスファチジルコリンやジアシルホスファチジルエタノールアミン)である。様々な鎖長および飽和度の種々のアシル鎖基を有する脂質が利用可能であるか、または周知の技術により単離若しくは合成することができる。一群の実施形態では、炭素鎖長がC10〜C20の範囲の飽和脂肪酸を含有する脂質が好ましい。別の群の実施形態では、炭素鎖長がC10〜C20の範囲の単不飽和脂肪酸または二不飽和脂肪酸を有する脂質を用いる。さらに、飽和脂肪酸鎖と不飽和脂肪酸鎖の混合物を含む脂質を用いることができる。好ましくは、使用される中性脂質は、DOPE、DSPC、POPC、DPPCまたは任意の関連したホスファチジルコリンである。有用な中性脂質はまた、スフィンゴミエリン、ジヒドロスフィンゴミエリン、または他の頭部基を有するリン脂質、例えば、セリンやイノシトールで構成されていてもよい。
脂質粒子に使用するのに好適なアニオン性脂質には、これらには限定されないが、ホスファチジルグリセロール、カルジオリピン、ジアシルホスファチジルセリン、ジアシルホスファチジン酸、N−ドデカノイルホスファチジルエタノロアミン(N−dodecanoyl phosphatidylethanoloamine)、N−スクシニルホスファチジルエタノールアミン、N−グルタリルホスファチジルエタノールアミン、リシルホスファチジルグリセロール、および中性脂質に結合した他のアニオン性修飾基が含まれる。
プログラム可能な融合脂質もまた、脂質粒子に含めるのに適している。そのような脂質粒子は細胞膜と融合する傾向をほとんど示さず、また、所定のシグナル事象が生じるまで、それらのペイロードを送達する。そのため、脂質粒子は生物または疾患部位に注入されるとより均一に分布し、その後、細胞との融合を開始することができる。シグナル事象は、例えば、pHの変化、温度、イオン環境、または時間である可能性がある。融合促進脂質は例えば、上述の式(I)の化合物であってよい。いくつかの例では、シグナル事象は例えば、細胞外環境と細胞内環境との間のpHの差、または細胞内環境とエンドソーム環境との間のpHの差のような、pHの差である場合がある。
いくつかの実施形態では、脂質粒子は、カチオン性脂質と融合促進脂質の混合物を含む。脂質粒子はさらに、中性脂質、ステロール、凝集抑制脂質、またはこれらの組み合わせをさらに含む場合もある。例えば脂質粒子は、カチオン性脂質、融合促進脂質、および中性脂質を含むが、ステロール或いは凝集抑制脂質を含まない場合がある。脂質粒子がカチオン性脂質、融合促進脂質、および中性脂質を含むが、ステロール或いは凝集抑制脂質を含まない場合がある。脂質粒子がカチオン性脂質、融合促進脂質、および凝集抑制脂質を含むが、ステロール或いは中性脂質を含まない場合がある。脂質粒子がカチオン性脂質、融合促進脂質、ステロール、および中性脂質を含むが、凝集抑制脂質を含まない場合がある。脂質粒子がカチオン性脂質、融合促進脂質、ステロール、および凝集抑制脂質を含むが、中性脂質を含まない場合がある。脂質粒子がカチオン性脂質、融合促進脂質、中性脂質、および凝集抑制脂質を含むが、ステロールを含まない場合がある。脂質粒子がカチオン性脂質、融合促進脂質、ステロール、中性脂質、および凝集抑制脂質を含む場合がある。
製剤は、アポリポタンパク質をさらに含むことができる。本明細書で使用する場合「アポリポタンパク質」または「リポタンパク質」という用語は、当業者に公知のアポリポタンパク質ならびにその変異体および断片、ならびに以下に記載するアポリポタンパク質アゴニスト、その類似体または断片を指す。
脂質粒子と活性物質を含み、活性物質が脂質粒子と結合している組成物を提供する。特定の実施形態では、活性物質は治療薬である。特定の実施形態では、活性物質は脂質粒子の水性内部に封入されている。他の実施形態では、活性物質は脂質粒子の脂質層の1つ以上に存在する。他の実施形態では、活性物質は、脂質粒子の脂質表面の外側または内側に結合している。
ある特定の実施形態では、脂質粒子は核酸と結合し、核酸−脂質粒子を生じる。特定の実施形態では、核酸は、脂質粒子に完全に封入されている。本明細書で使用する場合「核酸」という用語は、任意のオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドを含むことを意味する。50個までのヌクレオチドを含有する断片は一般的にオリゴヌクレオチドと呼ばれ、より長い断片はポリヌクレオチドと呼ばれる。特定の実施形態においてオリゴヌクレオチドは、15〜50個の長さのヌクレオチドである。
特定の実施形態では、核酸−脂質粒子は、RNA干渉(RNAi)分子と結合している。RNAi分子を用いたRNA干渉法は、目的の遺伝子またはポリヌクレオチドの発現を妨害するために使用することができる。低分子干渉RNA(siRNA)は、本質的に、開発中の次世代標的オリゴヌクレオチド薬として、アンチセンスODNおよびリボザイムに取って代わっている。
マイクロRNA(miRNA)は、動物および植物のゲノムDNAから転写されるがタンパク質には翻訳されない、高度に保存されたクラスの小さいRNA分子である。プロセシングされたmiRNAは、RNA誘導サイレンシング複合体(RISC)に組み込まれる約17〜25個のヌクレオチド(nt)の一本鎖のRNA分子であり、発生、細胞増殖、アポトーシス、および分化の重要な調節因子として特定されている。それらは、特定のmRNAの3’非翻訳領域に結合することにより、遺伝子発現の制御に関与していると考えられている。RISCは、翻訳阻害、転写産物の切断、またはその両方を介して遺伝子の発現を下方制御する。RISCは、広範囲の真核生物の核における転写サイレンシングにも関与している。
一実施形態では、核酸は、標的ポリヌクレオチドに向けられるアンチセンスオリゴヌクレオチドである。「アンチセンスオリゴヌクレオチド」または単に「アンチセンス」という用語は、標的ポリヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドを含むことを意味する。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、選択された配列、例えば標的遺伝子mRNAに相補的な一本鎖のDNAまたはRNAである。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、相補的mRNAと結合することにより遺伝子発現を阻害すると考えられている。相補的mRNAに結合してその翻訳を阻害するか、または標的mRNAの分解を誘導するかのいずれかによって、標的mRNAとの結合は遺伝子の発現を阻害することができる。アンチセンスDNAは、特定の相補的な(コードしているまたはコードしていない)RNAを標的とするために使用することができる。結合が生じると、酵素であるRNaseHがこのDNA/RNAハイブリッドを分解することができる。特定の実施形態では、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、約10〜約50個のヌクレオチド、より好ましくは約15〜約30個のヌクレオチドを含む。この用語は、所望の標的遺伝子に完全に相補的でない場合があるアンチセンスオリゴヌクレオチドも包含する。従って、アンチセンスとの標的特異的でない活性が見られる場合、または特定の使用に関して、アンチセンス配列が標的配列との1つ以上のミスマッチ含むことが最も好ましい場合も企図される。
アンタゴmirは、RNAse保護、ならびに組織および細胞取り込みの増強などの薬理学的特性に関する種々の修飾を内包するRNA様オリゴヌクレオチドである。アンタゴmirは、例えば、糖の完全な2’−O−メチル化、ホスホロチオアート骨格、および例えば3’末端のコレステロール部分により、通常のRNAと区別される。アンタゴmirは、アンタゴmirと内生miRNAを含む二本鎖を形成することで内生miRNAを効率的にサイレンシングし、それによってmiRNA誘導性遺伝子サイレンシングを防止するために使用することができる。アンタゴmir介在性miRNAサイレンシングの一例としてはmiR−122のサイレンシングがあり、参照することによりその全体が具体的に本明細書に組み入れられる、Krutzfeldt et al, Nature, 2005, 438: 685−689に記載されている。アンタゴmir RNAは、標準的な固相オリゴヌクレオチド合成の手順で合成することができる。米国特許出願第2007/0123482号、および米国特許出願第2007/0213292号を参照のこと(これらそれぞれの開示は、参照することにより本明細書に組み入れられる)。
アプタマーは、特定の目的の分子と高い親和性と高い特異性で結合する核酸またはペプチド分子である(Tuerk and Gold, Science 249:505 (1990);Ellington and Szostak, Nature 346:818 (1990)、これらそれぞれの全体は参照することにより組み入れられる)。大きいタンパク質から小さい有機分子までの多数の異なる物質に結合するDNAまたはRNAアプタマーの生成が成功している。これらそれぞれの全体は参照することにより組み入れられる、Eaton, Curr. Opin. Chem. Biol. 1:10−16 (1997)、Famulok, Curr. Opin. Struct. Biol. 9:324−9(1999)、およびHermann and Patel, Science 287:820−5 (2000)を参照のこと。アプタマーは、RNAに基づく物であってもDNAに基づくものであってもよく、リボスイッチを含み得る。リボスイッチは、小さい標的分子に直接結合することができ、標的との結合が遺伝子の活性に影響を及ぼすmRNA分子の一部分である。従って、リボスイッチを含有するmRNAは、標的分子が存在するかまたは存在しないかに応じて、それ自体の活性の制御に直接関与する。低分子、タンパク質、核酸などの様々な分子標的、ならびに細胞、組織、および生物にさえ結合するように、アプタマーは一般的に、インビトロで選抜を繰り返すこと、または同様にSELEX(systematic evolution of ligands by eXponential enrichment)により操作される。アプタマーは、合成、組換え、および精製法を含む既知の方法のいずれによって調製してもよく、単独でまたは同じ標的に特異的な他のアプタマーと組み合わせて使用してもよい。
別の実施形態によれば、核酸−脂質粒子はリボザイムに結合している。リボザイムは、エンドヌクレアーゼ活性を有する特異的な触媒ドメインを有するRNA分子複合体である(Kim and Cech, Proc Natl Acad Sci U S A. 1987 Dec;84(24):8788−92;Forster and Symons, Cell. 1987 Apr 24;49(2):211−20)。例えば、多くのリボザイムは、高い特異性でリン酸エステル転移反応を加速し、オリゴヌクレオチド基質に含まれるいくつかのリン酸エステルのうちの1つだけを切断することが多い(Cech et al., Cell. 1981 Dec;27(3 Pt 2):487−96;Michel and Westhof, J Mol Biol. 1990 Dec 5;216(3):585−610;Reinhold−Hurek and Shub, Nature. 1992 May 14;357(6374):173−6)。この特異性は、基質が、化学反応の前に、特異的な塩基対合相互作用によりリボザイムの内部ガイド配列(「IGS」)に結合する必要があることに起因している。
脂質粒子に結合された核酸は、免疫賦活性であってもよく、それらには、対象に投与された際に免疫応答を誘導可能な免疫賦活性オリゴヌクレオチド(ISS;一本鎖または二本鎖)が含まれる。対象は哺乳動物であってもまたは他の患者であり得る。ISSには、例えば、ヘアピン型の二次構造を生じるパリンドローム(その全体が参照することにより組み入れられる、Yamamoto S., et al. (1992) J. Immunol. 148: 4072−4076を参照のこと)、またはCpGモチーフ、ならびに既知のISSの他の特徴(多重Gドメインなど。その全体が参照することにより組み入れられる、国際公開第96/11266号を参照のこと)が含まれる。
表2.免疫賦活性オリゴヌクレオチド(ODN)の例
転写因子は、周辺のゲノムDNAが存在しない場合でさえ、比較的短い結合配列を認識するため、特定の転写因子の保存された結合配列を保持する短鎖オリゴヌクレオチドを、生細胞での遺伝子発現を操作するためのツールとして使用することができる。この戦略には、そのような「デコイオリゴヌクレオチド」を細胞内に送達することが関与し、その後デコイオリゴヌクレオチドは、標的因子によって認識され、結合される。デコイが転写因子のDNA結合部位を占有することによって、その後、転写因子は標的遺伝子のプロモーター領域に結合できなくなる。転写因子により活性化される遺伝子の発現を阻害するため、または転写因子の結合により抑制される遺伝子を上方制御するためのいずれの治療薬としても、デコイを使用することができる。デコイオリゴヌクレオチドの使用例は、Mann et al., J. Clin. Invest., 2000, 106: 1071−1075に見ることができ、これは、参照することによりその全体が明示的に本明細書に組み入れられる。
スーパーmirは、リボ核酸(RNA)またはデオキシリボ核酸(DNA)またはその両方またはその修飾体の、一本鎖、二本鎖、または部分的に二本鎖のオリゴマーまたはポリマーであり、miRNAと実質的に同一で、その標的のアンチセンスであるヌクレオチド配列を有するものである。この用語には、天然に生じる核酸塩基、糖、および共有結合のヌクレオシド(骨格)間結合で構成されており、同様に機能する少なくとも1つの天然に生じない部分を含むオリゴヌクレオチドが含まれる。そのような修飾されたまたは置換されたオリゴヌクレオチドは、例えば、細胞取り込みの向上、核酸標的に対する親和性の増強、およびヌクレアーゼの存在下における安定性の増加などの望ましい特性をもつため、天然形態より好ましい。好ましい実施形態では、スーパーmirは、センス鎖を含んでおらず、別の好ましい実施形態では、スーパーmirは、それほど自己ハイブリダイズしない。スーパーmirは二次構造を有していてもよいが、生理学的条件下では実質的に一本鎖である。実質的に一本鎖であるスーパーmirとは、それ自体と二本鎖を形成するスーパーmirが約50%未満(例えば、約40%、30%、20%、10%、または5%未満)の一本鎖である。スーパーmirは、自己ハイブリダイズして二本鎖領域を形成することができるヘアピンセグメント、例えば配列、を好ましくは3’末端に含む場合があり、二本鎖領域は例えば、少なくとも1、2、3、または4個のヌクレオチド、好ましくは8、7、6、またはn個未満のヌクレオチド、例えば5個のヌクレオチドである。二本鎖領域は、リンカー、例えばヌクレオチドリンカー、例えば3、4、5、または6個のdT、例えば修飾dTによって結合されていてもよい。別の実施形態では、スーパーmirは、より短いオリゴ、例えば5、6、7、8、9、または10個の長さのヌクレオチドと、例えば、3’および5’末端の一方または両方で、或いはスーパーmirの一端と非末端または中間部で、二本鎖を形成する。
miRNA模倣体は、1つ以上のmiRNAの遺伝子サイレンシング能力を模倣するために使用することができるクラスの分子を表す。従って「マイクロRNA模倣体」という用語は、RNAi経路に入り、遺伝子発現を制御することが可能な、人工の非コードRNAを指す(すなわち、miRNAは、内生miRNAの供給源から精製することによって得ることはできない)。miRNA模倣体は、成熟分子(例えば、一本鎖)または模倣体前駆体(例えば、pri−またはPre−miRNA)として設計することができる。miRNA模倣体は、限定するものではないが、RNA、修飾RNA、DNA、修飾DNA、ロックド核酸、または2’−O、4’−Cエチレン架橋核酸(ENA)、または上記のいかなる組合せ(DNA‐RNAハイブリッドを含む)を含むオリゴヌクレオチドを含む核酸(修飾または修飾核酸)で構成されていてもよい。加えて、miRNA模倣体は、送達、細胞内区画化、安定性、特異性、機能性、鎖の使用、および/または効力に影響を及ぼし得る結合を含むことができる。一つの設計では、miRNA模倣体は、二本鎖分子(例えば、長さが約16〜約31個のヌクレオチドの二本鎖領域を有する)であり、所与のmiRNAの成熟鎖との相同性を有する1つ以上の配列を含有する。修飾には、分子の一方または両方の鎖における2’修飾(2’−Oメチル修飾および2’F修飾を含む)、ならびに核酸安定性および/または特異性を増強するヌクレオチド間修飾(例えば、ホスホロチオアート修飾)が含まれていてもよい。加えて、miRNA模倣体は突出を含むことができる。突出は、どちらかの鎖の3’または5’末端いずれかにあって、1〜6個のヌクレオチドで構成されていてもよく、安定性または機能性を増強するために修飾されていてもよい。一実施形態では、miRNA模倣体は、16〜31個のヌクレオチドの二本鎖領域と以下の化学修飾パターンの1つ以上を含む:センス鎖はは、1番目と2番目(センスオリゴヌクレオチドの5’末端から数えて)のヌクレオチド、および全てのCとUに2’−O−メチル修飾を含み;アンチセンス鎖修飾には、全てのCおよびUの2’F修飾、オリゴヌクレオチドの5’末端のリン酸化、および2つのヌクレオチドからなる3’突出に結合した安定なヌクレオチド間結合が含まれ得る。
「抗mir」、「マイクロRNA阻害剤」、「miR阻害剤」、または「阻害剤」という用語は同義語であり、特定のmiRNAの能力を干渉するオリゴヌクレオチドまたは修飾されたオリゴヌクレオチドを指す。一般的に阻害剤は、RNA、修飾されたRNA、DNA、修飾されたDNA、ロックド核酸(LNA)、または上記の任意の組合せを含むオリゴヌクレオチドを含む核酸または修飾された核酸である性質のものである。修飾には、2’修飾(2’−0アルキル修飾および2’F修飾を含む)、および送達、安定性、特異性、細胞内区画化、または効力に影響を及ぼし得るヌクレオチド間修飾(例えば、ホスホロチオアート修飾)が含まれる。加えて、miRNA阻害剤は、送達、細胞内区画化、安定性、および/または効力に影響を及ぼし得る結合を含むことができる。阻害剤は、一本鎖、二本鎖(RNA/RNAまたはRNA/DNA二本鎖)、およびヘアピン構造などの様々な配置をとることができ、一般的には、マイクロRNA阻害剤は、標的となるmiRNAの成熟鎖(1つまたは複数の鎖)と相補的な或いは部分的に相補的な1つ以上の配列または部分配列を含み、加えて、miRNA阻害剤は、成熟miRNAの逆相補鎖である配列の5’および3’に位置しているさらなる配列も含んでいてよい。さらなる配列は、pri−miRNA(成熟miRNAはpri−miRNAに由来する)中の成熟miRNAに隣接している配列の逆相補体であってもよく、またはさらなる配列は、任意の配列(A、G、C、またはUの混合物を有する)であることができる。幾つかの実施形態では、さらなる配列の一方または両方は、ヘアピンを形成することができる任意の配列である。従っていくつかの実施形態では、miRNAの逆相補体である配列は、ヘアピン構造の5’側および3’側に隣接している。マイクロRNA阻害剤は、二本鎖の場合、互いの鎖がヌクレオチドのミスマッチを含むことができる。さらに、マイクロRNA阻害剤は、細胞内への阻害剤取り込みを促進するために、結合部分に結合されていてもよい。例えば、マイクロRNA阻害剤は、コレステリル5−(ビス(4−メトキシフェニル)(フェニル)メトキシ)−3ヒドロキシペンチルカルバメートに結合されていてもよく、このことによって、細胞内へのマイクロRNA阻害剤の受動取り込みが可能になる。ヘアピンmiRNA阻害剤を含むマイクロRNA阻害剤は、Vermeulen et al., 「Double−Stranded Regions Are Essential Design Components Of Potent Inhibitors of RISC Function」 RNA 13: 723−730 (2007)、および国際公開第2007/095387号、および国際公開第2008/036825号に詳細に記載されており、これらはそれぞれ、参照することによりその全体が本明細書に組み入れられる。当業者であれば、データベースから所望のmiRNAの配列を選択し、本明細書で開示の方法に有用な阻害剤を設計することができる。
U1アダプターは、ポリA部位を阻害し、標的遺伝子の末端エキソンに含まれる部位に相補的な標的ドメイン、およびU1 snRNPのU1核内低分子RNA成分に結合する「U1ドメイン」を有する二機能性オリゴヌクレオチドである(Goraczniak, et al., 2008, Nature Biotechnology, 27(3), 257−263、参照によりその全体が明示的に本明細書に組み込まれる)。U1 snRNPは、pre−mRNAエキソン−イントロン境界に結合することにより、主としてスプライセオソーム形成の初期ステップを指示するように機能するリボ核タンパク質複合体である(Brown and Simpson, 1998, Annu Rev Plant Physiol Plant MoI Biol 49:77−95)。U1 snRNA塩基対の5’末端から2番目〜11番目のヌクレオチドは、pre mRNAの5’ssと結合する。一実施形態では、オリゴヌクレオチドはU1アダプターである。一実施形態では、U1アダプターは、少なくとも1つの他のiRNA薬剤と組み合わせて投与することができる。
未修飾オリゴヌクレオチドは、いくつかの用途では、最適ではない場合があり、例えば、未修飾オリゴヌクレオチドは、例えば細胞ヌクレアーゼにより分解され易い場合がある。ヌクレアーゼは、核酸のリン酸ジエステル結合を加水分解することができる。しかしながら、オリゴヌクレオチドを化学的修飾することで特性の向上を付与することができ、例えば、オリゴヌクレオチドをヌクレアーゼに対してより安定的にすることができる。
リン酸基は負に荷電した種である。電荷は、2つの非架橋酸素原子に等しく分配されている。しかしながら、リン酸基は、酸素の1つを別の置換基で置き換えることで修飾することができる。RNAリン酸骨格に対してこのような修飾を行う結果、一例として、核酸分解に対するオリゴリボヌクレオチドの抵抗性を高めることができる。従って、理論により束縛されることは望まないが、いくつかの実施形態では、荷電のないリンカーまたは電荷が非対称に分布した荷電リンカーのいずれかを生じる変更を導入することが望ましい場合がある。
リン酸基は、リンを含まない連結部分で置換することができる。理論により束縛されることは望まないが、荷電ホスホジエステル基は核酸分解の反応中心であるため、荷電ホスホジエステル基を中性の構造模倣体と置換することで、ヌクレアーゼに対する安定性が高まるはずだと考えられる。重ねて、理論により束縛されることは望まないが、いくつかの実施形態では、荷電をもつリン酸基を中性部分と置換する変更を導入することが望ましい場合がある。
リン酸リンカーおよびリボース糖が、ヌクレアーゼ耐性ヌクレオシドまたはヌクレオチド代用物で置換されているオリゴヌクレオチド模倣骨格を構築することもできる。理論により束縛されることは望まないが、電荷の繰り返しを含む骨格が存在しないことで、ポリアニオンを認識するタンパク質(例えば、ヌクレアーゼ)との結合が低下すると考えられる。重ねて、理論により束縛されることは望まないが、いくつかの実施形態では、塩基を中性代用物骨格にテザーする変更を導入することが望ましい場合がある。例としては、モルホリノ、シクロブチル、ピロリジン、およびペプチド核酸(PNA)ヌクレオシド代用物が挙げられる。好ましい代用物は、PNA代用物である。
修飾RNAは、リボ核酸の糖基の全てまたはいくつかに修飾を含むことができる。例えば、2’ヒドロキシル基(OH)は、修飾されてもよく、または様々な「オキシ」または「デオキシ」置換基で置換されていてもよい。理論により束縛されないが、ヒドロキシルは、脱プロトン化して2’−アルコキシドイオンを形成することがもはやできないため、安定性が高まることが予測される。2’−アルコキシドは、リンカーに含まれるリン原子を分子内求核攻撃することによって分解を触媒し得る。重ねて、理論により束縛されることは望まないが、いくつかの実施形態では、2’位でアルコキシドを形成することができない変更を導入することが望ましい場合がある。
オリゴヌクレオチドの3’および5’末端を修飾することができる。そのような修飾を、分子の3’末端、5’末端、または両端に行うことができる。それらには、末端ホスフェート全体を、またはリン酸基の原子のうちの1つ以上を修飾することまたは置換することが含まれ得る。例えば、オリゴヌクレオチドの3’および5’両方の末端に、標識部分、例えば蛍光体(例えば、ピレン、TAMRA、フルオレセイン、Cy3、またはCy5染料)、または保護基(例えば、硫黄、ケイ素、ホウ素、またはエステルに基づく)などの他の官能性分子実体を結合させることができる。官能性分子実体を、リン酸基および/またはリンカーを介して糖に結合させることができる。リンカーの末端原子を、リン酸基の結合原子、または糖のC−3’若しくはC−5’、O、N、S、若しくはC基の結合原子に接続するかまたは置換してもよい。あるいは、リンカーを、ヌクレオチド代用物(例えば、PNA)の末端原子に接続させるかまたは置換することができる。
アデニン、グアニン、シトシン、およびウラシルは、RNAの中に見られる最も一般的な塩基である。これらの塩基を修飾または置換して、特性が向上したRNAを提供することができる。これらの塩基、または合成および天然核酸塩基(例えば、イノシン、チミン、キサンチン、ヒポキサンチン、ヌブラリン(nubularine)、イソグアニシン(isoguanisine)、またはツベルシジン(tubercidine))、ならびに上記の修飾のいずれか1つを用いて、例えば、ヌクレアーゼ耐性オリゴリボヌクレオチドを調製することができる。あるいは、上述の塩基のいずれかを置換した類似体または修飾した類似体、例えば、本明細書に記載されている「一般的ではない塩基」、「修飾塩基」、「非天然塩基」、および「ユニバーサル塩基」を使用することができる。例としては、2−アミノアデニン、アデニンおよびグアニンの6−メチルおよび他のアルキル誘導体、アデニンおよびグアニンの2−プロピルおよび他のアルキル誘導体、5−ハロウラシルおよびシトシン、5−プロピニルウラシルおよびシトシン、6−アゾウラシル、シトシン、およびチミン、5−ウラシル(プソイドウラシル)、4−チオウラシル、5−ハロウラシル、5−(2−アミノプロピル)ウラシル、5−アミノアリルウラシル、8−ハロ、アミノ、チオール、チオアルキル、ヒドロキシル、および他の8−置換アデニンおよびグアニン、5−トリフルオロメチルおよび他の5−置換ウラシルおよびシトシン、7−メチルグアニン、5−置換ピリミジン、6−アザピリミジン、ならびに2−アミノプロピルアデニン、5−プロピニルウラシル、および5−プロピニルシトシンを含むN−2、N−6、およびO−6置換プリン、ジヒドロウラシル、3−デアザ−5−アザシトシン、2−アミノプリン、5−アルキルウラシル、7−アルキルグアニン、5−アルキルシトシン、7−デアザアデニン、N6、N6−ジメチルアデニン、2,6−ジアミノプリン、5−アミノアリルウラシル、N3−メチルウラシル、置換1,2,4−トリアゾール、2−ピリジノン、5−ニトロインドール、3−ニトロピロール、5−メトキシウラシル、ウラシル−5−オキシ酢酸、5−メトキシカルボニルメチルウラシル、5−メチル−2−チオウラシル、5−メトキシカルボニルメチル−2−チオウラシル、5−メチルアミノメチル−2−チオウラシル、3−(3−アミノ−3カルボキシプロピル)ウラシル、3−メチルシトシン、5−メチルシトシン、N4−アセチルシトシン、2−チオシトシン、N6−メチルアデニン、N6−イソペンチルアデニン、2−メチルチオ−N6−イソペンテニルアデニン、N−メチルグアニン、またはO−アルキル化塩基が挙げられるが、これらには限定されない。さらなるプリンおよびピリミジンには、米国特許第3,687,808号で開示されているもの、Concise Encyclopedia Of Polymer Science And Engineering, pages 858−859, Kroschwitz, J. I., ed. John Wiley & Sons, 1990で開示されているもの、およびEnglisch et al., Angewandte Chemie, International Edition, 1991, 30, 613で開示されているものが含まれる。
オリゴヌクレオチドの修飾には、1つ以上のカチオン基を、糖、塩基、および/またはリン酸または修飾したリン酸骨格部分のリン原子に結合させることが含まれ得る。カチオン基は、天然塩基、一般的ではない塩基、またはユニバーサル塩基の置換可能な任意の原子に結合させることができる。好ましい位置は、ハイブリダイゼーションを妨害しない、すなわち塩基対合に必要とされる水素結合相互作用を妨害しない位置である。カチオン基は、例えば、糖のC2’位、または環式または非環式糖代用物の類似した位置を介して結合させることができる。カチオン基には例えば、O−アミン(アミン=NH2;アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、へテロアリールアミノ、またはジヘテロアリールアミノ、エチレンジアミン、ポリアミノ)に由来する、例えばプロトン化アミノ基;アミノアルコキシ、例えばO(CH2)nアミン)(例えば、アミン=NH2;アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、へテロアリールアミノ、またはジヘテロアリールアミノ、エチレンジアミン、ポリアミノ);アミノ(例えば、NH2;アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、へテロアリールアミノ、ジヘテロアリールアミノ、またはアミノ酸);またはNH(CH2CH2NH)nCH2CH2−アミン(アミン=NH2;アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、へテロアリールアミノ、またはジヘテロアリールアミノ)が含まれ得る。
いくつかの修飾は、好ましくは、オリゴヌクレオチドの特定の位置に、例えば鎖の内部にまたはオリゴヌクレオチドの5’または3’末端に含まれていてもよい。好ましい位置のオリゴヌクレオチドの修飾は、薬剤に好ましい特性を付与し得る。例えば、好ましい位置の特定の修飾は、最適な遺伝子サイレンシング特性、またはエンドヌクレアーゼ若しくはエキソヌクレアーゼ活性に対する耐性の向上を付与することができる。
オリゴリボヌクレオチドおよびオリゴリボヌクレオシドは、固相合成で合成することができる。例えば、「Oligonucleotide synthesis, a practical approach」、 M. J. Gait編, IRL Press, 1984;「Oligonucleotides and Analogues, A Practical Approach」、F. Eckstein編, IRL Press, 1991(特に、1章、Modern machine−aided methods of oligodeoxyribonucleotide synthesis、2章、Oligoribonucleotide synthesis、3章、2’−O−Methyloligoribonucleotide− s: synthesis and applications、4章、Phosphorothioate oligonucleotides、5章、Synthesis of oligonucleotide phosphorodithioates、6章、Synthesis of oligo−2’−deoxyribonucleoside methylphosphonates、および7章、Oligodeoxynucleotides containing modified bases)を参照のこと。他の特に有用な合成手順、試薬、保護基、および反応条件は、Martin, P., Helv. Chim. Acta, 1995, 78, 486−504;Beaucage, S. L. and Iyer, R. P., Tetrahedron, 1992, 48, 2223−2311、およびBeaucage, S. L. and Iyer, R. P., Tetrahedron, 1993, 49, 6123−6194、またはこれらで引用されている文献に記載されている。国際公開第00/44895号、国際公開第01/75164号、または国際公開第02/44321号に記載されている修飾を、本明細書で使用することができる。本明細書で列挙した全ての出版物、特許、および公開特許出願の開示は、参照することにより本明細書に組み入れられる。
ホスフィネートオリゴリボヌクレオチドの調製は、米国特許第5,508,270号に記載されている。アルキルホスホネートオリゴリボヌクレオチドの調製は、米国特許第4,469,863号に記載されている。ホスホラミダイトオリゴリボヌクレオチドの調製は、米国特許第5,256,775号または米国特許第5,366,878号に記載されている。ホスホトリエステルオリゴリボヌクレオチドの調製は、米国特許第5,023,243号に記載されている。ボラノホスフェートオリゴリボヌクレオチドの調製は、米国特許第5,130,302号および同第5,177,198号に記載されている。3’−デオキシ−3’−アミノホスホルアミダートオリゴリボヌクレオチドの調製は、米国特許第5,476,925号に記載されている。3’−デオキシ−3’−メチレンホスホネートオリゴリボヌクレオチドは、An, H, et al. J. Org. Chem. 2001, 66, 2789−2801に記載されている。硫黄架橋ヌクレオチドの調製は、Sproat et al. Nucleosides Nucleotides 1988, 7,651およびCrosstick et al. Tetrahedron Lett. 1989, 30, 4693に記載されている。
2’修飾に対する改変は、Verma, S. et al. Annu. Rev. Biochem. 1998, 67, 99−134およびその中の文献全てに見出すことができる。リボースに対する特定の修飾は、以下の文献に見出すことができる:2’−フルオロ(Kawasaki et. al., J. Med. Chem., 1993, 36, 831−841)、2’−MOE (Martin, P. Helv. Chim. Acta 1996, 79, 1930−1938)、「LNA」(Wengel, J. Acc. Chem. Res. 1999, 32, 301−310)。
本明細書ではMMI結合オリゴリボヌクレオシドとしても識別されるメチレンメチルイミノ結合オリゴリボヌクレオシド、本明細書ではMDH結合オリゴリボヌクレオシドとしても識別されるメチレンジメチルヒドラゾ結合オリゴリボヌクレオシド、本明細書ではアミド−3結合オリゴリボヌクレオシドとしても識別されるメチレンカルボニルアミノ結合オリゴリボヌクレオシド、本明細書ではアミド−4結合のオリゴリボヌクレオシドとしても識別されるメチレンアミノカルボニル結合オリゴリボヌクレオシド、ならびに例えばMMIとPOまたはPSに交互に結合した混合骨格化合物は、米国特許第5,378,825号、同第5,386,023号、同第5,489,677号、ならびに国際出願第PCT/US92/04294号および国際出願第PCT/US92/04305号(それぞれ国際公開第92/20822号および国際公開第92/20823号として公開されている)に記載されているように調製することができる。ホルムアセタールおよびチオホルムアセタール結合オリゴリボヌクレオシドは、米国特許第5,264,562号および同第5,264,564号に記載されているように調製することができる。エチレンオキシド結合オリゴリボヌクレオシドは、米国特許第5,223,618号に記載されているように調製することができる。シロキサン置換は、Cormier,J.F. et al. Nucleic Acids Res. 1988, 16, 4583に記載されている。カーボネート置換は、Tittensor, J.R. J. Chem. Soc. C 1971, 1933に記載されている。カルボキシメチル置換は、Edge, M.D. et al. J. Chem. Soc. Perkin Trans. 1 1972, 1991に記載されている。カルバメート置換は、Stirchak, E.P. Nucleic Acids Res. 1989, 17, 6129に記載されている。
シクロブチル糖代用化合物は、米国特許第5,359,044号に記載されているように調製することができる。 ピロリジン糖代用物は、米国特許第5,519,134号に記載されているように調製することができる。モルホリノ糖代用物は、米国特許第5,142,047号および同第5,235,033号、ならびに他の関連特許開示に記載されているように調製することができる。ペプチド核酸(PNA)は、それ自身公知であり、Peptide Nucleic Acids (PNA): Synthesis, Properties and Potential Applications, Bioorganic & Medicinal Chemistry, 1996, 4, 5−23に引用されている種々の手順のいずれかに従って調製することができる。それらは、米国特許第5,539,083号に従って調製することもできる。
末端修飾は、Manoharan, M. et al. Antisense and Nucleic Acid Drug Development 12, 103−128 (2002)およびその文参考文献に記載されている。
N−2置換プリンヌクレオシドアミダイト(N−2 substitued purine nucleoside amidite)は、米国特許第5,459,255号に記載されているように調製することができる。3−デアザプリンヌクレオシドアミダイトは、米国特許第5,457,191号に記載されているように調製することができる。5,6−置換ピリミジンヌクレオシドアミダイトは、米国特許第5,614,617号に記載されているように調製することができる。5−プロピニルピリミジンヌクレオシドアミダイトは、米国特許第5,484,908号に記載されているように調製することができる。
多種多様な実体を、オリゴヌクレオチドや脂質に結合させることができる。好ましい部分はリガンドであり、リガンドは、好ましくは共有結合で、直接的にまたは介在的テザーを介して間接的に結合されている。
表3.エンドソーム性活性を有するペプチドの一覧
Subbarao et al., Biochemistry, 1987, 26: 2964 2972.
Vogel et al., J. Am. Chem. Soc., 1996, 118: 1581-1586
Turk, M. J., Reddy, J. A. et al. (2002). Characterization of a novel pH-sensitive peptide that enhances drug release from folate-targeted liposomes at endosomal pHs. Biochim. Biophys. Acta 1559, 56-68.
Plank, C. Oberhauser, B. Mechtler, K. Koch, C. Wagner, E. (1994). The influence of endosome-disruptive peptides on gene transfer using synthetic virus-like gene transfer systems, J. Biol. Chem. 269 12918-12924.
Mastrobattista, E., Koning, G. A. et al. (2002). Functional characterization of an endosome-disruptive peptide and its application in cytosolic delivery of immunoliposome-entrapped proteins. J. Biol. Chem. 277, 27135-43.
Oberhauser, B., Plank, C. et al. (1995). Enhancing endosomal exit of nucleic acids using pH-sensitive viral fusion peptides. Deliv. Strategies Antisense Oligonucleotide Ther. 247-66.
表4.標的指向性リガンドとそれに関連する受容体
表5.細胞透過性ペプチドの例
核酸が脂質層の内部に封入されている脂質に封入された核酸粒子を生成するための方法および組成物を提供する。siRNAオリゴヌクレオチドを組み込んでいるそのような核酸−脂質粒子は、(1)薬物対脂質比、(2)封入化効率、および(3)粒径などの様々な生物物理学的パラメーターを使用して特徴付けられる。高い薬物対脂質比、高い封入効率、良好なヌクレアーゼ耐性および血清安定性、ならびに制御可能な粒径、一般的に直径は200nm未満、が望ましい。加えて、核酸ポリマーの性質は重要である。なぜならば、ヌクレアーゼ耐性を付与するための核酸修飾は、多くの場合、限定的な耐性を提供するに過ぎないものの、治療の費用を増大させるためである。別段の記載がない限り、これらの基準は、本明細書では以下のように計算される。
脂質粒子は、特に治療薬と結合している場合には医薬組成物として、例えば、投与経路および標準的薬務に従って選択される、生理食塩水またはリン酸緩衝液などの薬剤的に許容される希釈剤、賦形剤、または担体をさらに含む医薬組成物として製剤化することができる。
記載の方法および組成物は、ある特定のカチオン性脂質が使用され、その合成、調製、および特徴付けは、例えば、以下の特許文献に記載されている:それぞれ2009年11月10日出願の国際公開第2010/054401号、国際公開第2010/054401号、国際公開第2010/054405号、および国際公開第2010/054384号、ならびにこれらで言及されている出願、すなわち、第61/104,219号、2008年10月9日出願;第61/113,179号、2008年11月10日出願;第61/154,350号、2009年2月20出願;第61/171,439号、2009年4月21日出願;第61/175,770号、2009年5月5日出願;第61/185,438号、2009年6月9日出願;第61/225,898号、2009年7月15日出願;および第61/234,098号、2009年8月14日出願;国際公開第2009/086558号;および国際公開第2008/042973号を含む。これらの書類はそれぞれ、参照することによりその全体が組み入れられる。例えば、2009年11月10日出願の国際公開第2010/054401号の16〜21ページに記載されている表、第61/287,995号の28〜53ページおよび135〜141ページに記載されている表1〜4および9を参照のこと。加えて、治療薬、例えば核酸に結合された脂質粒子を含む脂質粒子を調製する方法を記載する。本明細書に記載の方法では、脂質の混合物を、核酸の緩衝水溶液と混合して、脂質粒子に封入された核酸を含有する中間混合物を生成する。この場合、封入された核酸は、約3重量%〜約25重量%、好ましくは5〜15重量%の核酸/脂質比で存在する。随意で、中間混合物を大きさ別に分類し、脂質部分が、好ましくは30〜150nm、より好ましくは約40〜90nmの直径を有する単層膜リポソームである脂質−封入核酸粒子を取ることができる。その後、pHを上昇させて、脂質−核酸粒子の表面電荷の少なくとも一部を中和し、従って少なくとも部分的に表面が中和された脂質−封入核酸組成物が提供される。
脂質粒子は、インビトロまたはインビボで、治療薬を細胞に送達するために使用することができる。特定の実施形態では、治療薬は核酸であり、それは核酸−脂質粒子を使用して細胞に送達される。脂質粒子および関連する医薬組成物を使用する様々な方法に関する以下の記載は、核酸−脂質粒子に関する記載により例示されているが、これらの方法および組成物は、そのような治療から利益を得る可能性のある任意の疾患または障害を治療するための任意の治療薬の送達に容易に適合させることができると理解される。
「アルキル」は、1〜24個の炭素原子を含有する直鎖または分岐の非環状のまたは環状の飽和脂肪族炭化水素を意味する。代表的な飽和直鎖アルキルには、メチル、エチル、n−プロピル、n−ブチル、n−ペンチル、およびn−ヘキシルなどが含まれ;飽和分岐アルキルには、イソプロピル、sec−ブチル、イソブチル、tert−ブチル、およびイソペンチルなどが含まれる。代表的な飽和環状アルキル基(「シクロアルキル」とも呼ばれる)には、シクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、およびシクロヘキシルなどが含まれ;不飽和環状アルキル基には、シクロペンテニルおよびシクロヘキセニルなどが含まれる。
ステップ1:イコサン−1,2−ジオール(102)
N−メチルモルホリン−N−オキシド(3.8g、33.2mmol)、65mLのアセトン、13mLのH2Oおよび四酸化オスミウム(1.3mL、4wt%)の混合物に、イコサ−1−エン(101)(7.2g、25.5mmol)を窒素下で添加した。反応物を室温で一晩撹拌した。反応混合物を濾過し、濾液を濃縮した。得られた残渣をジクロロメタン中に溶解し、飽和NaHSO3、ブラインで洗浄し、NaSO4で乾燥した。溶媒の除去後、白色固体の、所望の化合物102を得た(7.4g、92%)。
1H NMR(DMSO−d6、300MHz):δppm 4.22−4.12(m、2H)、3.23(m、1H)、1.37(m、2H)、1.24(m、32H)、0.86(t、J=5.2Hz、3H)。
DMF(100mL)中のイコサン−1,2−ジオール(102)(6.4g、20.38mmol)懸濁液に、イミダゾール(2.7g、40.76mmol)、その後TBSCl(3.1g、20.38mmol)を添加した。混合物を、室温で一晩撹拌した。混合物を水でクエンチし、EtOAcで希釈した。有機層を分離し、水、ブラインで洗浄し、乾燥した(Na2SO4)。溶媒を蒸発させて粗成生物を得、それを、2〜10%酢酸エチル/ヘキサンを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、所望の生成物103(4.7g、54%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 3.61(dd、J=10.4、3.3Hz、2H)、3.37(dd、J=10.4、8.3Hz、1H)、2.41(d、J=3.3Hz、1H、OH)、1.40−1.24(m、34H)、0.9−0.84(m、12H)、0.07(s、6H)。
無水DMF(100mL)中の水素化ナトリウム(870mg、20.86mmol、油中60%)撹拌懸濁液に、窒素雰囲気下で、DMF(25mL)中の化合物103(4.68g、10.93mmol)溶液を、0〜5℃で、1時間に渡り添加した。室温で1時間撹拌した後、反応混合物を再び0℃まで冷却し、30mlのDMF中の臭化ステアリル(6.92g、20.86mmol)を、1時間に渡り、滴下漏斗でゆっくりと添加した。添加完了後、反応混合物を、室温で2時間、および55℃で15時間撹拌した。反応混合物を次いで0℃まで冷却し、数滴の冷水でクエンチした。混合物を、飽和塩化アンモニウムで希釈した。水層を酢酸エチルで抽出し、水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥した。溶媒減圧下での溶媒の除去により、粗残渣を得、それを、ヘキサン中0〜5%の酢酸エチルを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、所望の生成物およびTBS移動副産物(TBS migrated byproduct)(3.9g)を含む混合物を単離した。
化合物106:1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 3.68−3.61(m、1H)、3.53−3.39(m、3H)、3.34−3.30(m、1H)、1.93(dd、J=7.4、4.9Hz、1H、OH)、1.56(m、2H)、1.32−1.20(m、64H)、0.87(t、J=6.3Hz、6H)。
化合物106A:1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 3.77(m、1H)、3.47−3.37(m、3H)、3.22(t、J=7.9Hz、1H)、2.30(d、J=3.0Hz、1H、OH)、1.56(m、2H)、1.40(m、2H)、1.32−1.23(m、62H)、0.87(t、J=6.6Hz、6H)。
ジクロロメタン(10mL)中の化合物106(0.42g、0.74mmol)溶液に、0℃、窒素下で、トリエチルアミン(0.4mL、2.97mmol)、N−ジメチルアミノピリジン(0.18g、1.48mmol)を添加し、その後4−ニトロフェニルクロロホルメート(0.44g、2.22mmol)を何度かに分けて添加した。混合物を室温まで昇温させ、一晩撹拌した。混合物を水、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて粗成生物を得、それを、2〜10%酢酸エチル/ヘキサンを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体の、所望の生成物106B(0.4g、74%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 8.27(d、J=9.3Hz、2H)、7.37(d、J=9.3Hz、2H)、4.32(dd、J=11.3、3.8Hz、1H)、4.22(dd、J=11.3、6.1Hz、1H)、3.59−3.43(m、3H)、1.59−1.52(m、2H)、1.38−1.21(m、62H)、0.87(t、J=6.6Hz、6H)。
ジクロロメタン(15mL)中の106B(0.4g、0.55mmol)溶液に、窒素下で、mPEG2000−NH2(0.91g、0.46mmol)、その後ジイソプロピルエチルアミン(0.4mL、2.27mmol)を添加した。混合物を室温まで昇温させ、一晩撹拌した。揮発物を減圧下で除去して、粗化合物を単離した。この物質を、ジクロロメタン中1〜8%のメタノール勾配を溶出剤として使用する、シリカゲルクロマトグラフィーにより2回精製し、白色固体の所望の生成物、PEG脂質1(0.43g、29%)を得た。
1H NMR(DMSO−d6、300MHz):δppm 7.02(bt、1H、C(O)NH)、3.89(m、2H)、3.73(m、1H)、3.5−3.4(m、−O−CH2−CH2−O−)、3.4−3.3(m、4H)、3.23(s、3H)、2.9(m、2H)、1.6(m、2H)、1.36(m、4H)、1.22(m、62H)、0.84(t、J=6.6Hz、6H)。
ステップ4:4−ニトロフェニル(1−(オクタデシルオキシ)イコサン−2−イル)カルボネート(106C)
ピリジン(30mL)中の化合物106A(0.43g、0.76mmol)溶液に、0℃、窒素下で、4−ニトロフェニルクロロホルメート(0.76g、3.78mmol)を添加した。混合物を室温まで昇温させ、一晩撹拌した。混合物をCH2Cl2で希釈し、水、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて粗成生物を得、それを、2〜10%酢酸エチル/ヘキサンを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体の、所望の生成物106C(0.43g、77%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 8.27(d、J=9.3Hz、2H)、7.38(d、J=9.1Hz、2H)、4.97(m、1H)、3.56(d、J=5.2Hz、2H)、3.49−3.39(m、2H)、1.69(m、2H)、1.32−1.19(m、62H)、0.87(t、J=6.3Hz、6H)。
ジクロロメタン(30mL)中の106C(0.6g、0.87mmol)溶液に、窒素下で、PEG−アミン(1.45g、0.73mmol)、その後ジイソプロピルエチルアミン(0.7mL、3.63mmol)を添加した。混合物を室温まで昇温させ、一晩撹拌した。揮発物を減圧下で除去し、粗化合物を単離した。この物質を、ジクロロメタン中1〜8%のメタノール勾配を溶出剤として使用する、シリカゲルクロマトグラフィーにより精製し、白色固体の所望の生成物、PEG脂質1A(1.2g、64%)を得た。
1H NMR(DMSO−d6、300MHz):δppm 7.04(bt、1H、C(O)NH)、4.63(m、1H)、3.73(m、1H)、3.5−3.4(m、−O−CH2−CH2−O−)、3.4−3.3(m、5H)、3.23(s、3H)、1.6(m、2H)、1.4(m、4H)、1.22(m、62H)、0.84(t、J=6.3Hz、6H)。
ジクロロメタン(10mL)およびN、N−ジメチルホルムアミド(20mL)混合物中の107(3.0g、5.02mmol)溶液に、ピリジニウムジクロメート(6.61g、17.57mmol)を添加し、混合物を周囲温度で48時間撹拌した。混合物を水(200mL)で希釈し、EtOAcで抽出した。有機相をブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて粗物質を得、それを、ジクロロメタン(DCM)中1〜5%のメタノールを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体の、純粋な酸108(1.53g、50%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 4.04−4.01(m、1H)、3.82−3.77(m、1H)、3.72−3.60(m、3H)、3.50−3.42(m、2H)、1.65−1.50(m、4H)、1.35−1.16(m、60H)、0.87(t、J=6.3Hz、6H)。
APCI−=609。
ジクロロメタン(15mL)中の酸108(1.5g、2.45mmol)溶液に、0℃、窒素下で、無水DMFを2滴、その後塩化オキサリル(0.62g、4.9mmol)を添加した。反応混合物を室温まで昇温させ、48時間撹拌した。混合物を蒸発させて余分な塩化オキサリルを除去し、得られた残渣をジクロロメタン(2x50mL)と共蒸発させ、真空下で乾燥して、粗酸塩化物109を単離した。ジクロロメタン(20mL)中の酸塩化物109氷冷溶液に、mPEG2000−NH2(3.4g、1.62mmol)溶液、その後トリエチルアミン(0.99g、4.80mmol)を添加し、次いで混合物を室温まで昇温させ、一晩撹拌した。反応混合物をジクロロメタンで希釈し、水、飽和重炭酸ナトリウム、ブラインで洗浄し、乾燥した(Na2SO4)。溶媒を減圧下で除去して、粗化合物を単離した。この物質をジクロロメタン(20mL)中に溶解し、酢酸エチル中に詰めたシリカゲルのパック済みカラムに添加した。カラムを最初に酢酸エチルで、その後DCM中2〜10%のメタノール勾配で溶出し、淡黄色固体の所望の生成物、PEG脂質2(2.46g、55%)を得た。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 4.10−3.70(m、6H)、3.70−3.50(m、−O−CH2−CH2−O−)、3.50−3.37(m、4H)、3.35(s、3H)、1.85−1.70(m、2H)、1.63−1.40(m、4H)、1.37−1.10(m、62H)、0.84(t、J=6.3Hz、6H)。
ステップ1:(R)−2、3−ビス(オクタデシルオキシ)プロパナール(110)
ジクロロメタン(15mL)中の塩化オキサリル(1.27g、10.0mmol)溶液に、−70℃、窒素下で、ジメチルスルホキシド(1.57g、20.0mmol)を添加し、混合物を−70℃で30分間撹拌した。ジクロロメタン(10mL)中の化合物107(3.0g、5.02mmol)溶液を滴加し、得られた混合物を−40℃で40分間撹拌した。次いでトリエチルアミン(3.30g、32.61mmol)を反応溶液に添加し、それを10℃まで昇温させ、1時間撹拌した。混合物を飽和塩化アンモニウム(50mL)で希釈した。有機相を分離し、水相をジクロロメタンで抽出した。合わせた有機相を水、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて粗物質を得、それを、1〜10%酢酸エチル/ヘキサンを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体の、純粋アルデヒド110(2.07g、69%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 9.72(d、J=1.4Hz、1H)、3.82−3.77(m、1H)、3.74−3.54(m、4H)、3.47−3.38(m、2H)、1.65−1.50(m、4H)、1.35−1.16(m、60H)、0.87(t、J=6.3Hz、6H)。
APCI+=595。
無水テトラヒドロフラン(30mL)中の110(2.0g、3.36mmol)溶液に、−10℃、窒素下で、臭化メチルマグネシウム(1.2g、10.06mmol、THF/トルエン中1.4M)を滴加し、混合物を−10℃で4時間撹拌した。反応混合物を室温まで昇温させ、1時間撹拌した。混合物を0℃まで冷却し、飽和塩化アンモニウム(20mL)でクエンチした。水相を酢酸エチルで抽出し、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて粗物質を得、それを、2〜10%酢酸エチル/ヘキサンを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体のジアステレオマー111A(450mg、22%)および111B(460mg、22%)を単離した。
111Aに対する1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 3.92−3.86(m、1H)、3.62−3.40(m、6H)、3.30−3.20(m、1H)、2.70(d、J=4.7Hz、1H)、1.57−1.53(m、4H)、1.35−1.20(m、60H)、1.18(d、J=6.1Hz、3H)、0.87(t、J=6.3Hz、6H)。
APCI+=611。
111Bに対する1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 3.82−3.76(m、1H)、3.73−3.66(m、1H)、3.58−3.35(m、5H)、3.20−3.15(m、1H)、2.65(d、J=4.4Hz、1H)、1.59−1.50(m、4H)、1.35−1.20(m、60H)、1.20(d、J=6.3Hz、3H)、0.87(t、J=6.3Hz、6H)。
APCI+=611。
無水ジクロロメタン(10mL)中の111A(0.43g、0.7mmol)溶液に、0℃、窒素下で、N、N’−ジスクシンイミジルカルボネート(DSC、270mg、1.05mmol)、その後トリエチルアミン(0.21g、2.07mmol)を添加した。反応混合物を室温まで昇温させ、2日間撹拌した。過剰量のDSC(0.16g、0.62mmol)を反応溶液に添加し、もう1日撹拌を継続した。反応混合物を水(10mL)で希釈し、EtOAcで抽出し、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、乾燥させて、粗物質を得[0.72g、1H NMR分析によると、約0.22g(41%)の112Aを含有した]、それを次のステップで直接使用した。
ジクロロメタン(10mL)中の112A(0.22g、0.29mmol)溶液に、0℃、窒素下で、mPEG2000−NH2(0.5g、0.24mmol)、その後無水ピリジン(0.3mL)を添加した。混合物を室温まで昇温させ、一晩撹拌した。揮発物を減圧下で除去して、粗化合物を単離した。この物質をジクロロメタン(20mL)中に溶解し、酢酸エチル中に詰めたシリカゲルのパック済みカラムに添加した。カラムを最初に酢酸エチルで、その後DCM中1〜10%のメタノール勾配で溶出し、オフホワイト固体の所望の生成物、PEG脂質3A(0.51g、65%)を得た。
1H NMR(DMSO−d6、300MHz):δppm 7.05(bt、1H)、4.70(m、1H)、3.80−3.70(m、1H)、3.60−3.25(m、−O−CH2−CH2−O−)、3.0−2.98(m、2H)、3.23(s、3H)、1.62−1.60(m、2H)、1.50−1.40(m、4H)、1.22(bs、60H)、1.10(d、J=6.3Hz、3H)、0.84(t、J=6.3Hz、6H)。
ステップ3:(2R、3R)−3,4−ビス(オクタデシルオキシ)ブタン−2−イル(2,5−ジオキソピロリジン1−イル)カルボネート(112B)
無水ジクロロメタン(10mL)中の111B(0.44g、0.71mmol)溶液に、0℃、窒素下で、N、N’−ジスクシンイミジルカルボネート(DSC、0.27g、1.05mmol)、その後トリエチルアミン(0.21g、2.07mmol)を添加した。反応混合物を室温まで昇温させ、2日間撹拌した。過剰量のDSC(0.16g、0.62mmol)を反応溶液に添加し、もう一日撹拌を継続した。反応混合物を水(10mL)で希釈し、EtOAcで抽出し、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて、粗物質を得[0.56g、1H NMR分析によると、約0.27g(50%)の112Bを含有した]、それを次のステップで直接使用した。
ジクロロメタン(10mL)中112B(0.27g、0.36mmol)溶液に、0℃、窒素下で、mPEG2000−NH2(0.6g、0.286mmol)、その後無水ピリジン(0.3mL)を添加した。混合物を室温まで昇温させ、一晩撹拌した。揮発物を減圧下で除去して、粗化合物を単離した。この物質をジクロロメタン(20mL)中に溶解し、酢酸エチル中に詰めたシリカゲルのパック済みカラムに添加した。カラムを最初に酢酸エチルで、その後DCM中1〜10%のメタノール勾配で溶出し、白色固体の所望の生成物、PEG脂質3B(0.55g、70%)を得た。
1H NMR(DMSO−d6、300MHz):δppm 7.06(bt、1H)、4.75(m、1H)、3.74−3.71(m、1H)、3.60−3.25(m、−O−CH2−CH2−O−)、3.02−2.98(m、2H)、3.23(s、3H)、1.64−1.55(m、2H)、1.50−1.40(m、4H)、1.22(bs、60H)、1.07(d、J=6.3Hz、3H)、0.84(t、J=6.3Hz、6H)。
無水DMF(20mL)中の水素化ナトリウム(1.03g、25.91mmol、油中60%)撹拌懸濁液に、窒素雰囲気下で、DMF(25mL)中化合物113(1.27g、6.74mmol)溶液を、0〜5℃で、1時間に渡り添加した。室温で1時間撹拌した後、反応混合物を再び0℃まで冷却し、30mlのDMF中の臭化ステアリル(8.6g、25.91mmol)を、滴下漏斗(1時間)によりゆっくりと添加し、その後ヨウ化ナトリウム(5.5g、370mmol)を添加した。添加完了後、反応混合物を室温で2時間、および55℃で15時間撹拌した。反応混合物を次いで0℃まで冷却し、数滴の冷水でクエンチした。混合物を飽和塩化アンモニウムで希釈した。水層を酢酸エチルで抽出し、水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥した。減圧下での溶媒の除去により、粗114を得、それを、ヘキサン中0〜5%の酢酸エチルを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体(3.24g、72%)として単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 7.39−7.26(m、5H)、4.49(s、2H)、3.62−3.35(m、9H)、1.90−1.70(m、2H)、1.60−1.45(m、4H)、1.10(bs、60H)、0.86(t、J=6.0Hz、6H)。APCI+=701。
酢酸エチル(40mL)中の化合物114(3.2g、4.57mmol)溶液に、Pd−C(10%湿潤、300mg)を添加し、水素化を24時間実施した。フラスコの内容物を温めて沈殿した固体を溶解し、セライトのパッドで熱いまま濾過し、濾液を減圧下で濃縮して、白色固体の、所望のアルコール115(1.97g、70%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):3.83−3.79(m、2H)、3.70−3.52(m、2H)、3.52−3.40(m、5H)、2.83(t、J=5.90、1H)、1.83−1.78(m、2H)、1.58−1.50(m、4H)、1.38−1.0(m、60H)、0.87(t、J=6.0Hz、6H)。APCI+=611。
ジクロロメタン(15mL)中の化合物115(1.11g、1.82mmol)溶液に、0℃、窒素下で、N−ジメチルアミノピリジン(0.45g、3.64mmol)、その後4−ニトロフェニルクロロホルメート(0.55g、2.73mmol)を添加した。反応混合物を室温まで昇温させ、24時間撹拌した。混合物を水、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて粗成生物を得、それを、1〜10%酢酸エチル/ヘキサンを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体の、所望の生成物115A(1.19g、85%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):8.28(d、J=9.3Hz、2H)、7.40(d、J=9.1Hz、2H)、4.41(t、J=6.7Hz、2H)、3.70−3.35(m、7H)、2.10−1.80(m、2H)、1.60−1.50(m、4H)、1.36−1.0(m、60H)、0.86(t、J=6.0Hz、6H)。
1H NMR(DMSO−d6、300MHz):δppm 7.03(bt、1H)、3.96(t、J=6.57Hz、2H)、3.74−3.71(m、3H)、3.75−3.32(m、−O−CH2−CH2−O−)、3.23(s、3H)、3.03−2.96(m、2H)、1.66−1.53(m、2H)、1.50−1.38(m、4H)、1.22(bs、60H)、0.84(t、J=6.3Hz、6H)。
ジクロロメタン(25mL)中の化合物107(3.0g、5.02mmol)溶液に、0℃、窒素下で、トリエチルアミン(2.03g、20.06mmol)および4−ジメチルアミノピリジン(61mg、0.502mmol)を添加した。この溶液に、ジクロロメタン(6mL)中の塩化メタンスルホニル(1.15g、10.04mmol)溶液を添加し、0℃で10分間撹拌を継続した。混合物を室温まで昇温させ、1時間撹拌した。フラスコの内容物を冷水(20mL)で希釈した。有機相を分離し、1NのHCl(10mL)、水、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて、粗メシレート116(3.4g、100%)を得た。この材料は、次のステップで使用するために十分純粋であった。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 4.35(dd、J=12.5、3.6Hz、1H)、4.24(dd、J=12.5、3.6Hz、1H)、3.70−3.60(m、2H)、3.57−3.40(m、5H)、3.03(s、3H)、1.60−1.45(m、4H)、1.35−1.16(m、60H)、0.86(t、J=6.3Hz、6H)。APCI+=675。
無水N,N−ジメチルホルムアミド(24mL)中の116(3.7g、5.5mmol)溶液に、窒素下で、シアン化ナトリウム(0.74g、15.1mmol)を添加し、混合物を65℃で24時間撹拌した。混合物を室温まで放冷し、エーテル(100mL)、その後水(200mL)を添加した。有機層を分離し、水層をジエチルエーテルで抽出した(3x100mL)。合わせた有機相を水、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて粗物質を得、それを、2〜10%酢酸エチル/ヘキサンを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体のニトリル117(2.8g、93%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 3.72−3.64(m、1H)、3.56−3.52(m、3H)、3.45−3.40(m、3H)、2.70−2.50(m、2H)、1.60−1.45(m、4H)、1.35−1.16(m、60H)、0.86(t、J=6.3Hz、6H)。APCI+=606。
無水テトラヒドロフラン(20mL)中の117(1.4g、2.31mmol)溶液に、0℃、窒素下で、ボラン−THF複合物(0.79g、9.19mmol)を添加した。反応混合物を室温まで昇温させ、24時間撹拌した。反応混合物を0℃まで冷却し、メタノール(10mL)を滴加し、反応混合物を0℃で20分間、次いで還流にて2時間撹拌した。フラスコの内容物を室温まで冷却し、塩酸(2M、4mL)を添加し、混合物を1時間撹拌した。反応混合物をジクロロメタン(60mL)中に溶解し、それに飽和重炭酸ナトリウムを添加した。得られた懸濁液を、セライトのパッドで濾過した。有機相を濾液から分離し、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて、白色固体の、所望のアミン118(1.0g、71%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 3.62−3.54(m、1H)、3.50−3.32(m、6H)、2.90−2.76(m、2H)、1.70−1.60(m、2H)、1.60−1.48(m、4H)、1.35−1.16(m、60H)、0.86(t、J=6.3Hz、6H)。APCI+=610。
ジクロロメタン(60mL)中のmPEG−OH(3.0g、1.5mmol)溶液に、0℃、窒素下でN−ジメチルアミノピリジン(0.37g、3.03mmol)を添加し、その後4−ニトロフェニルクロロホルメート(0.46g、2.28mmol)を、何度かに分けて添加した。混合物を室温まで昇温させ、一晩撹拌した。混合物を水、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて、粗mPEG−ONpを得、それを、2〜10%メタノール/ジクロロメタンを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、淡黄色固体の純粋な化合物、mPEG−ONp(2.9g、90%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm8.28(d、J=9.0Hz、2H)、7.40(d、J=9.0Hz、2H)、4.42(t、J=4.5Hz、2H)、3.90−3.40(m、−O−CH2−CH2−O−)3.36(s、3H)。
ジクロロメタン(30mL)中の118(0.71g、0.1.16mmol)溶液に、0℃、窒素下で、mPEG−ONp(1.5g、0.693mmol)、その後ジイソプロピルエチルアミン(0.44g、3.40mmol)を添加した。混合物を室温まで昇温させ、一晩撹拌した。揮発物を減圧下で除去して、粗化合物を単離した。この物質をジクロロメタン(20mL)中に溶解し、酢酸エチル中に詰めたシリカゲルのパック済みカラムに添加した。カラムを最初に酢酸エチルで、その後ジクロロメタン中1〜8%のメタノール勾配で溶出して、白色固体の所望の生成物、PEG脂質5(0.51g、28%)を得た。
1H NMR(DMSO−d6、300MHz):δppm 7.06(bt、1H)、4.04(t、J=3.84、2H)、3.74−3.71(m、2H)、3.60−3.25(m、−O−CH2−CH2−O−)、3.43−3.34(m、4H)、3.23(s、3H)、3.10−2.96(m、2H)、1.50−1.38(m、4H)、1.22(bs、60H)、0.84(t、J=6.3Hz、6H)。
無水N、N−ジメチルホルムアミド(20mL)中のアルコールA(2.0g、12.48mmol)溶液に、0℃、窒素下で、水素化ナトリウム(60%、0.6g、14.98mmol)を添加し、混合物を1時間撹拌した。この溶液に、臭化ベンジル(2.6g、15.16mmol)を滴加し、0℃で10分間、撹拌を継続した。混合物を室温まで昇温させ、24時間撹拌した。フラスコの内容物を、冷水(200mL)で希釈した。水相を酢酸エチル(3x50mL)で抽出し、水、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて、粗化合物119を得た。この物質を、1〜10%酢酸エチル/ヘキサンを溶出剤として使用するフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、無色油状の、純粋な生成物として単離した(2.16g、69%)。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 7.39−7.26(m、5H)、4.49(s、2H)、4.12−4.00(m、2H)、3.52−3.48(m、3H)、1.80−1.60(m、4H)、1.42(s、3H)、1.349s、3H)。APCI+=251。
メタノール(30mL)中の119(2.15g、8.59mmol)溶液に、p−トルエンスルホン酸一水和物(200mg)を添加した。混合物を室温で24時間撹拌した。反応は不完全だったため、10滴の2N HClを混合物に添加し、還流まで、さらに24時間加熱した。メタノールを減圧下で除去し、残渣を酢酸エチル中に溶解し、飽和重炭酸ナトリウム、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて、黄色油状の、所望のジオール120(1.55g、86%)を得た。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 7.39−7.26(m、5H)、4.49(s、2H)、3.75−3.40(m、5H)、3.04(d、J=3.6Hz、1H)、1.92(t、J=5.2Hz、1H)、1.80−1.40(m、4H)。APCI+=211。
無水DMF(23mL)中の水素化ナトリウム(1.17g、29.28mmol、油中60%)撹拌懸濁液に、窒素雰囲気下で、DMF(30mL)中の(S)−5−(ベンジルオキシ)ペンタン−1,2−ジオール(120)(1.54g、7.32mmol)溶液を、0〜5℃で1時間に渡り添加した。室温で1時間撹拌した後、反応混合物を0℃まで再度冷却し、50mlのDMF中の臭化ステアリル(9.73g、29.3mmol)を、滴下漏斗(1時間に渡り)によりゆっくりと添加した。添加完了後、反応混合物を室温で2時間、55℃で15時間撹拌した。反応混合物を次いで0℃まで冷却し、数滴の冷水でクエンチした。混合物を飽和塩化アンモニウムで希釈した。水層を酢酸エチルで抽出し、水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥した。減圧下での溶媒の除去により、粗121を得、それを、ヘキサン中0〜5%の酢酸エチルを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体の(0.91g、17%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 7.39−7.26(m、5H)、4.49(s、2H)、3.62−3.35(m、9H)、1.80−1.40(m、6H)、1.40−1.10(bs、62H)、0.86(t、J=6.0Hz、6H)。APCI+=715。
酢酸エチル(20mL)中の化合物121溶液に、Pd−C(10%湿潤、100mg)を添加し、水素化を2日間実施した。フラスコの内容物を、セライトのパッドで濾過し、EtOAcで洗浄し、濾液を減圧下で濃縮して、白色固体の、所望のアルコール122(0.8g、100%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):3.70−3.35(m、8H)、1.70−1.50(m、8H)、1.35−1.20(m、62H)、0.86(t、J=6.0Hz、6H)。APCI+=626。
ジクロロメタン(20mL)中の化合物122(0.8g、1.28mmol)溶液に、0℃、窒素下でN−ジメチルアミノピリジン(0.31g、2.56mmol)を添加し、その後4−ニトロフェニルクロロホルメート(0.39g、1.94mmol)を、何度かに分けて添加した。混合物を室温まで昇温させ、1時間撹拌した。混合物を水、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて粗成生物を得、それを、2〜10%酢酸エチル/ヘキサンを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体の、所望の生成物122A(0.67g、66%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 8.28(d、J=9.3Hz、2H)、7.40(d、J=9.1Hz、2H)、4.30(t、J=6.7Hz、2H)、3.65−3.55(m、2H)、3.50−3.36(m、6H)、2.0−1.40(m、7H)、1.36−1.0(m、60H)、0.86(t、J=6.0Hz、6H)。
ジクロロメタン(30mL)中の122A(0.67g、0.85mmol)溶液に、窒素下で、mPEG2000−NH2(1.49g、0.71mmol)、その後ジイソプロピルエチルアミン(0.44g、3.40mmol)を添加した。混合物を室温まで昇温させ、一晩撹拌した。揮発物を減圧下で除去して、粗化合物を単離した。この物質をジクロロメタン(20mL)中に溶解し、酢酸エチル中に詰めたシリカゲルのパック済みカラムに添加した。カラムを最初に酢酸エチルで、その後ジクロロメタン中1〜8%のメタノール勾配で溶出して、白色固体の所望の生成物、PEG脂質6(1.1g、56%)を得た。
1H NMR(DMSO−d6、300MHz):δppm 7.06(bt、1H)、3.92(t、J=6.57Hz、2H)、3.74−3.71(m、2H)、3.70−3.25(m、−O−CH2−CH2−O−)、3.23(s、3H)、3.10−2.96(m、2H)、1.50−1.38(m、8H)、1.22(bs、60H)、0.84(t、J=6.3Hz、6H)。
アセトン(10mL)中の1−デオキシ−D−リボースA(1.5g、11.19mmol)溶液に、2,2−ジメトキシプロパン(5.5mL、44.76mmol)およびp−トルエンスルホン酸(5.3g、27.97mmol)を添加した。混合物を室温で1時間撹拌した。混合物をMeOH(20mL)で希釈し、飽和NaHCO3でクエンチした。溶媒の除去後、残渣を酢酸エチル中に溶解し、水、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて、黄色油状の粗成生物を得(850mg、未精製、44%)、それを次のステップで直接使用した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 4.78−4.81(m、1H)、4.59(dd、J=6.3、1.9Hz、1H)、4.09−4.14(m、1H)、3.89−4.00(m、2H)、3.54−3.69(m、2H)、1.51(s、3H)、1.33(s、3H)。
DMF(15mL)中の化合物B(0.85g、4.88mmol)溶液に、0℃、窒素下でNaH(390mg、9.77mmol、油中60%)を添加し、混合物を10分間撹拌した。臭化ベンジル(1.2mL、9.77mmol)の添加後、混合物を2時間撹拌し、室温まで昇温させた。反応物を水でクエンチし、酢酸エチルで希釈した。有機相を分離し、水、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて粗成生物を得、それを、20%酢酸エチル/ヘキサンを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、黄色油状の、所望の生成物C(1.2g、93%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 7.30−7.41(m、5H)、4.78−4.82(m、1H)、4.72(dd、J=6.5、1.4Hz、1H)、4.54(d、J=12.1Hz、1H)、4.48(d、J=12.1Hz、1H)、4.19(td、J=3.8、1.4Hz、1H)、4.03(dd、J=10.2、4.1Hz、1H)、3.95(dd、J=9.9、1.4Hz、1H)、3.57(dd、J=7.9、2.2Hz、1H)、3.53(dd、J=7.9、2.2Hz、1H)、1.50(s、3H)、1.33(s、3H)。
化合物C(1.2g、4.55mmol)および酢酸(70%)の混合物を2時間還流させ、ロータリーエバポレーターを使用して濃縮した。得られた残渣を酢酸エチル中に溶解し、水、飽和NaHCO3、ブラインで洗浄し、乾燥した(Na2SO4)。溶媒の除去後、粗成生物を、30%酢酸エチル/ヘキサンを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、無色油状の、所望の生成物D(520mg、51%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 7.28−7.34(m、5H)、4.59(d、J=11.9Hz、1H)、4.55(d、J=11.9Hz、1H)、4.23−4.29(m、1H)、4.04−4.14(m、2H)、3.87−3.92(m、1H)、3.76−3.81(m、1H)、3.59−3.65(m、2H)、2.42−2.57(m、2H、2OH)。
トルエン(100mL)中の化合物D(0.52g、2.32mmol)溶液に、0℃、窒素下で、NaH(278mg、6.95mmol、油中60%)を添加し、混合物を30分間撹拌した。トルエン(20mL)中メシル酸ステアリル(2.4g、6.96mmol)溶液を、滴下漏斗によりゆっくりと添加した(1時間)。添加完了後、反応混合物を室温で2時間、および55℃で24時間撹拌した。反応混合物を次いで0℃まで冷却し、数滴の冷水でクエンチした。混合物を酢酸エチルで希釈し、水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥した。減圧下での溶媒の除去により、Eの粗混合物を得、それを、ヘキサン中10〜20%の酢酸エチルを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体の、各位置異性体(0.34g、50%)を単離した。
位置異性体1:1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 7.26−7.33(m、5H)、4.57(s、2H)、4.00−4.12(m、2H)、3.87−3.94(m、2H)、3.79(dd、J=9.6、4.1Hz、1H)、3.68(dd、J=10.4、2.7Hz、1H)、3.44−3.58(m、3H)、2.75(d、J=7.1Hz、1H、OH)、1.59(m、2H)、1.16−1.39(m、30H)、0.87(t、J=6.3Hz、3H)。
位置異性体2:1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 7.26−7.34(m、5H)、4.61(d、J=12.1Hz、1H)、4.53(d、J=12.3Hz、1H)、4.22−4.28(m、1H)、4.05(dd、J=10.1、4.9Hz、H)、3.93−3.96(m、1H)、3.81(dd、J=12.3、5.5Hz、1H)、3.77(dd、J=9.6、3.8Hz、1H)、3.63(dd、J=10.7、3.6Hz、1H)、3.55(dd、J=10.4、4.1Hz、1H)、3.49(t、J=6.6Hz、1H)、2.71(d、J=4.6Hz、1H、OH)、1.54−1.59(m、2H)、1.19−1.32(m、30H)、0.87(t、J=6.3Hz、3H)。
無水DMF(10mL)中の水素化ナトリウム(47mg、1.17mmol、油中60%)撹拌懸濁液に、窒素雰囲気下で、DMF(5mL)中の混合物E(0.28g、0.587mmol)溶液を、0〜5℃で、1時間に渡り添加した。室温で1時間撹拌した後、反応混合物を再度0℃まで冷却し、5mlのDMF中の臭化ステアリル(0.39g、1.17mmol)を、滴下漏斗によりゆっくりと添加し(1時間)、その後ヨウ化ナトリウム(0.2g、1.3mmol)を添加した。添加完了後、反応混合物を室温で2時間、および55℃で24時間撹拌した。反応混合物を次いで0℃まで冷却し、数滴の冷水でクエンチした。混合物を飽和塩化アンモニウムで希釈した。水層を酢酸エチルで抽出し、水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥した。減圧下での溶媒の除去により、粗124を得、それを、ヘキサン中1〜8%の酢酸エチルを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体(0.21g、50%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm7.39−7.26(m、5H)、4.57(q、J=12.1Hz、2H)、4.05−3.97(m、2H)、3.95−3.82(m、2H)、3.80−3.75(m、1H)、3.68−3.62(m、1H)、3.59−3.40(m、5H)、1.60−1.40(m、4H)、1.40−1.10(bs、60H)、0.86(t、J=6.0Hz、6H)。APCI+=729。
酢酸エチル(10mL)中の化合物124(0.21g、0.29mmol)溶液に、Pd−C(10%湿潤、60mg)を添加し、反応混合物を1.5時間水素化した。フラスコの内容物をセライトのパッドで濾過した。灰色のケークをテトラヒドロフラン中に懸濁し、還流まで加熱し、セライトのパッドで熱いまま濾過し、THFで洗浄し、濾液を減圧下で濃縮して、白色固体の、所望のアミン125(0.17g、94%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):4.0−3.79(m、5H)、3.63−3.42(m、6H)、1.74(q、J=4.41Hz、1H、−OH)、1.64−1.53(m、4H)、1.38−1.10(m、60H)、0.87(t、J=6.0Hz、6H)。APCI+=639。
ジクロロメタン(6mL)中の化合物125(0.17g、0.26mmol)懸濁液に、0℃、窒素下で、テトラヒドロフラン(4mL)を添加した。溶液に、N−ジメチルアミノピリジン(81mg、0.4mmol)、その後4−ニトロフェニルクロロホルメート(81mg、0.532mmol)を添加した。混合物を室温まで昇温させ、24時間撹拌した。混合物を水、ブラインで洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、蒸発させて粗成生物を得、それを、2〜10%酢酸エチル/ヘキサンを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体の、所望の生成物125A(0.17g、81%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 8.28(d、J=9.3Hz、2H)、7.40(d、J=9.1Hz、2H)、4.58−4.50(m、1H)、4.34−4.25(m、1H)、4.20−4.10(m、1H)、4.05−3.90(m、3H)、3.78−3.70(m、1H)、3.63−3.40(m、4H)、1.64−1.56(m、4H)、1.33−1.16(bs、60H)、0.87(t、J=6.0Hz、6H)。
ジクロロメタン(6mL)中の125A(0.17g、0.21mmol)溶液に、窒素下で、mPEG2000−NH2(0.4g、0.19mmol)、その後ジイソプロピルエチルアミン(0.11g、0.85mmol)を添加した。混合物を室温まで昇温させ、一晩撹拌した。揮発物を減圧下で除去して、粗化合物を単離した。この物質をジクロロメタン(10mL)中に溶解し、酢酸エチル中に詰めたシリカゲルのパック済みカラムに添加した。カラムを最初に酢酸エチルで、その後ジクロロメタン中1〜8%のメタノール勾配で溶出し、白色固体の所望の生成物、PEG脂質7(0.48g、87%)を得た。
1H NMR(DMSO−d6、300MHz):δppm 7.15(bt、1H)、4.10−4.0(m、2H)、3.96−3.86(m、2H)、3.78−3.70(m、2H)、3.70−3.60(m、6H)、3.54−3.34(m、−O−CH2−CH2−O−)、3.30−3.25(m、2H)、3.23(s、3H)、1.64−1.59(m、2H)、1.48−1.40(m、4H)、1.22(bs、60H)、0.84(t、J=6.3Hz、6H)。
アセトンおよび水(32mLand6mL)混合物中の化合物126(3.0g、14.76mmol)溶液に、N−メチルモルホリン−N−オキシド(2.25g、19.21mmol)、その後四酸化オスミウム溶液(4% 水性、0.7mL)を添加した。黄色の混合物を、周囲温度で一晩撹拌した。この溶液に、固体のメタ重亜硫酸ナトリウム(Na2S2O5、5.0g)を添加し、混合物を1時間撹拌した。アセトンを、反応混合物から蒸発により除去し、得られた固体を酢酸エチル中に懸濁し、濾過した。固体を水中に溶解し、酢酸エチルで抽出し、濾液と混合した。有機相をブラインで洗浄し、乾燥した(Na2SO4)、蒸発させて粗化合物127を得た。この物質を、1〜8%メタノール/ジクロロメタンを溶出剤として使用するフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体の純粋な生成物(3.02g、86%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 7.39−7.26(m、5H)、5.11(s、2H)、4.28−4.20(m、2H)、3.65(dd、J=11.0、5.5Hz、2H)、3.41(dt、J=11.0、4.1Hz、2H)、2.61−2.58(m、2H)。APCI+=238。
無水DMF(20mL)中の水素化ナトリウム(1.5g、37.12mmol、油中60%)撹拌懸濁液に、窒素雰囲気下で、DMF(50mL)中の化合物127(2.2g、9.28mmol)溶液を、0〜5℃で1時間に渡り添加した。室温で1時間撹拌した後、反応混合物を0℃まで再度冷却し、70mlのDMF中の臭化ステアリル(12.3g、37.12mmol)を、滴下漏斗によりゆっくりと添加し(1時間に渡り)、その後ヨウ化ナトリウム(5.5g、370mmol)を添加した。添加完了後、反応混合物を室温で2時間、および55℃で15時間撹拌した。反応混合物を次いで0℃まで冷却し、数滴の冷水でクエンチした。混合物を飽和塩化アンモニウムで希釈した。水層を酢酸エチルで抽出し、水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥した。減圧下での溶媒の除去により、粗128を得、それを、ヘキサン中0〜5%の酢酸エチルを用いるフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、白色固体(2.83g、41%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 7.39−7.26(m、5H)、4.49(s、2H)、3.62−3.35(m、9H)、1.80−1.40(m、6H)、1.40−1.10(bs、60H)、0.86(t、J=6.0Hz、6H)。APCI+=715。
酢酸エチル(20mL)およびテトラヒドロフラン(80mL)の混合物中の化合物128(2.8g、3.77mmol)溶液に、Pd−C(10%wet、100mg)を添加し、反応物を24時間水素化した。フラスコの内容物をセライトのパッドで濾過した。灰色の濾過ケーキをテトラヒドロフラン中に懸濁し、還流まで加熱し、セライトのパッドで熱いまま濾過し、THFで洗浄し、濾液を減圧下で濃縮して、オフ白色固体の、所望のアミン129(2.3g、100%)を単離した。
1H NMR(CDCl3、300MHz):3.83−3.79(m、2H)、4.50−3.42(m、4H)、2.98−2.94(m、4H)、1.83(bs、1H)、1.64−1.53(m、4H)、1.38−1.0(m、60H)、0.87(t、J=6.0Hz、6H)。APCI+=608。
ジクロロメタン(20mL)中の129(0.55g、0.90mmol)溶液に、窒素下で、mPEG−ONp(1.5g、0.69mmol)、その後ジイソプロピルエチルアミン(0.36g、2.80mmol)を添加した。混合物を室温まで昇温させ、一晩撹拌した。揮発物を減圧下で除去して、粗化合物を単離した。この物質をジクロロメタン(20mL)中に溶解し、酢酸エチル中に詰めたシリカゲルのパック済みカラムに添加した。カラムを最初に酢酸エチルで、その後ジクロロメタン中1〜8%のメタノール勾配で溶出し、オフホワイトの固体の所望の生成物、PEG脂質8(820mg、45%)を得た。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 4.29−4.18(m、2H)、3.92−3.85(m、2H)、3.80−3.40(m、−O−CH2−CH2−O−)、3.37(s、3H)、1.62−5.52(m、4H)、1.22(bs、60H)、0.84(t、J=6.3Hz、6H)。
ステップ1:(S)−2,3−ジステアルアミドプロパン酸
H2O(40mL)中の(S)−2,3−ジアミノプロパン酸塩酸塩(1.6g、11.53mmol)溶液に、NaHCO3(19.4g、230.66mmol)を添加し、混合物を10分間撹拌した。THF(100mL)中のステアリン酸NHSエステル(11g、28.83mmol)溶液を添加し、混合物を室温で一晩撹拌した。反応物を3NのHClでクエンチし、沈殿した白色固体を濾過した。粗白色固体の化合物を、CH2Cl2中に懸濁し、30分間激しく撹拌した。固体を濾過し、真空下で一晩乾燥して、純粋な生成物130(3.3g、46%)を得た。
1H NMR(CDCl3、300MHz):δppm 7.92(bd、1H、C(O)NH)、6.58(bt、1H、C(O)NH)、4.34(m、1H)、3.86(m、1H)、3.48(m、1H)、2.26(m、4H)、1.62(m、4H)、1.34−1.24(m、56H)、0.86(t、J=6.6Hz、6H)。
ジクロロメタン(30mL)中の130(415mg、0.65mmol)溶液に、窒素下、mPEG2000−NH2(1g、0.51mmol)、DIPEA(0.37mL、2mmol)、その後PyBop(338.3mg、0.65mmol)を添加した。混合物を、室温で一晩撹拌した。反応物をH2Oでクエンチし、CH2Cl2で抽出した。合わせた有機層をH2O、ブラインで洗浄し、Na2SO4で乾燥した。溶媒を減圧下で除去して、粗化合物を得た。この物質を、CH2Cl2中1〜10%メタノールを溶出剤として使用するシリカゲルクロマトグラフィーで、2回精製し、所望の生成物、PEG脂質9(0.43g、24%)を、白色固体として得た。
1H NMR(CDCl3+1%D2O、300MHz):δppm 7.44(bt、1H、C(O)NH)、7.19(d、J=6.3Hz、1H、C(O)NH)、6.63(bt、1H、C(O)NH)、4.38(m、1H)、3.86(m、1H)、3.60−3.5(m、−O−CH2−CH2−O−)、3.5−3.3(m、3H)、3.35(s、3H)、2.23−2.13(m、2H)、1.71−1.79(m、2H)、1.50−1.40(m、4H)、1.22(m、56H)、0.86(t、J=6.6Hz、6H)。
ジクロロメタン(30mL)中の130(415mg、0.65mmol)溶液に、窒素下で、mPEG2000−OH(1g、0.51mmol)、DIPEA(0.37mL、2mmol)、DMAP(79.6mg、0.65mmol)、その後EDCI(124.9mg、0.65mmol)を添加した。混合物を室温で3日間撹拌した。反応物をH2Oでクエンチし、CH2Cl2で抽出した。合わせた有機層をH2O、ブラインで洗浄し、Na2SO4で乾燥した。溶媒を減圧下で除去して、粗化合物を得た。この物質を、CH2Cl2中1〜10%メタノールを溶出剤として使用する、シリカゲルクロマトグラフィーで3回精製し、所望の生成物、PEG脂質10(0.26g、15%)を、白色固体として得た。
1H NMR(CDCl3+1%D2O、300MHz):δppm 7.47(d、J=6.6Hz、1H、C(O)NH)、7.02(bt、1H、C(O)NH)、4.58(m、1H)、4.38(m、1H)、4.21(m、1H)、3.7−3.6(m、4H)、3.6−3.5(m、−O−CH2−CH2−O−)、3.36(s、3H)、2.16(dt、J=22.5、7.9Hz、1H)、1.6(m、4H)、1.22(m、56H)、0.85(t、J=6.3Hz、6H)。
C57BL/6マウス(チャールズリバーラブズ社(Charles River Labs)、マサチューセッツ州)に、生理食塩水または所望の製剤中のsiRNAのどちらかを、0.01mL/gの体積で、尾静脈注射により投与する。投与後の種々の時間点で、動物をイソフルラン吸入により麻酔し、後眼窩出血により、血液を血清分離管中に収集する。製造者のプロトコルに従って、発色アッセイ(Coaset Factor VII、ダイファーマグループ(DiaPharma Group)、オハイオ州、またはBiophen FVII、アニアラ社(Aniara Corporation)、オハイオ州)を使用して、試料中の第VII因子タンパク質の血清レベルを測定する。生理食塩水で治療した動物から収集した血清を使用して、標準曲線を作成する。肝臓mRNAレベルを評価する実験において、投与後の種々の時間点で、動物を屠殺して肝臓を収集し、液体窒素中で瞬間冷凍する。凍結した肝臓組織を粉砕して粉末にする。組織可溶化液を調製し、第VII因子およびアポリポタンパク質Bの肝臓mRNAレベルを、分岐DNA法(QuantiGene Assay、パノミクス社(Panomics)カリフォルニア州)、カリフォルニア州)を使用して測定する。
凝固カスケードにおける顕著なタンパク質である第VII因子(FVII)は、肝臓(肝細胞)において合成され、血漿中に分泌される。血漿中のFVIIレベルは、簡易な、プレートベースの比色分析アッセイにより測定することが出来る。したがって、FVIIは、肝細胞由来タンパク質の、siRNA媒介性の下方制御を測定するため、ならびに核酸脂質粒子およびsiRNAの血漿濃度および組織分布をモニタするための、便利なモデルである。
1つは脂質を含み、他方はsiRNAを含む、それぞれの別々のストック溶液を調製する。所望の脂質または脂質混合物、DSPC、コレステロールおよび凝集抑制脂質を含む脂質原液を、90%エタノール中に溶解することにより調製する。残りの10%は低pHクエン酸塩緩衝剤である。脂質原液の濃度は4mg/mLである。このクエン酸塩緩衝剤のpHは、使用する脂質の種類に応じて、pH3〜pH5の範囲であることができる。siRNAを、4mg/mLの濃度で、クエン酸塩緩衝剤中にも溶解させる。各ストック溶液、5mLを調製した。
予備形成小胞法(preformed vesicle method)を使用して、粒子を含むカチオン性脂質を作製する。カチオン性脂質、DSPC、コレステロールおよび凝集抑制脂質を、それぞれ、40/10/40/10のモル比で、エタノール中に溶解した。脂質混合物を、水性緩衝剤(50mMクエン酸塩、pH4)に、それぞれ30%(体積/体積)および6.1mg/mLの最終エタノールおよび脂質濃度に、混合しながら添加し、押出前に室温で2分間平衡化させる。水和した脂質を、Nicomp分析による測定で70〜90nmの小胞直径が得られるまで、Lipex Extruder(ノーザンリピッズ社(Northern Lipids)、バンクーバー、ブリティッシュコロンビア州)を使用し、22℃で、2つの積層型80nm孔径フィルタ(Nuclepore)を通して押し出す。これには一般的に1〜3回の通過が必要とされる。小胞を形成しなかったいくつかのカチオン性脂質混合物においては、より低いpH緩衝剤(50mMクエン酸塩、pH3)で脂質混合物を水和させ、DSPC頭部基上のホスフェート基をプロトン化することが、安定した70〜90nmの小胞形成を助ける。
試験製剤をまず、治療群あたり3匹のマウスを用い、0.1、0.3、1.0および5.0mg/kgで、雌性の7〜9週齢、15〜25gの、雌性C57Bl/6マウスにおけるFVIIノックダウンについて評価する。全ての実験には、リン酸緩衝生理食塩水(PBS、対照群)またはベンチマーク製剤のどちらかを投与した動物が含まれた。製剤を、試験の直前に、PBS中で適切な濃度まで希釈する。マウスを計量し、適切な投与体積を算出する(10μL/g体重)。試験製剤およびベンチマーク製剤、ならびにPBS(対照動物に対して)を、側尾静脈に、静脈内投与する。動物を24時間後に、ケタミン/キシラジンの腹腔内注射で麻酔し、心臓穿刺により500〜700μLの血液を、血清分離管(BD Microtainer)中に収集する。血液を、2,000xgで10分間、15℃で遠心分離し、血清を収集し、分析するまで−70℃で保管する。血清試料を37℃で30分間解凍し、PBS中に希釈し、96−ウェルのアッセイプレート中に等分した。発色アッセイ(Biophen FVII kit、ハイフェン・バイオメッド社(Hyphen BioMed))を使用し、製造者の指示に従って、第VII因子レベルを評価し、405nm波長フィルタを備えたマイクロプレートリーダーで、吸光度を測定する。血漿FVIIレベルを定量化し、対照動物由来の血清のプールした試料から生成した標準曲線を使用して、ED50値(対照動物と比較して、血漿FVIIレベルの50%低減をもたらす用量)を算出する。高レベルのFVIIノックダウン(ED50<<0.1mg/kg)を示す、目的の製剤を、より低い用量範囲で、独立した実験において再試験して、効力を確認し、ED50を確立する。
Claims (29)
- 以下の式(I)で表される化合物、またはその薬剤的に許容される塩:
R1およびR2のそれぞれは、独立して、C10〜C30脂肪族基であり、ここで脂肪族基は、Raからそれぞれ独立して選択される1つまたは複数の基により随意に置換され;およびここで脂肪族基は、シクロアルキレン、−O−、−S−、−C(O)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−N(Rc)−、−C(O)N(Rc)−、または−N(Rc)C(O)−により随意に中断され;
Xは、−(CRaRb)i−、−O−、−S−、−C(O)−、−N(Rc)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−OC(O)O−、−C(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)N(Rc)−、−SC(O)N(Rc)−、または−N(Rc)C(O)S−であり;
Yは、−(CRaRb)i−、−O−、−S−、−C(O)−、−N(Rc)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−OC(O)O−、−C(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)N(Rc)−、−SC(O)N(Rc)−、または−N(Rc)C(O)S−であり;
Lは、−L1−Z1−(L2−Z2)c−L3−であり;
L1は、結合、−(CR5R5’)i−、または−(CR5R5’)i−(C(Ra)=C(Rb))k−(C≡C)k−(CRaRb)j−であり;
Z1は、−O−、−S−、−N(Rc)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−OC(O)O−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)−、−C(O)N(Rc)−、−N=C(Ra)−、−C(Ra)=N−、−O−N=C(Ra)−、または−O−N(Rc)−であり;
L2は、−(CRaRb)p−または−(CRaRb)j−(C(Ra)=C(Rb))k−(C≡C)k−(CRaRb)jであり;
Z2は、−O−、−S−、−N(Rc)−、−OC(O)−、−C(O)O−、−OC(O)O−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)−、−C(O)N(Rc)−、−N=C(Ra)−、−C(Ra)=N−、−O−N=C(Ra)−、または−O−N(Rc)−であり;
L3は、−(CRaRb)i−であり;
各Aは独立して、−L4−、−NH−(L4)q−(CRaRb)r−C(O)−または−C(O)−(CRaRb)r−(L4)q−NH−であり;ここで各qは独立して、0、1、2、3、または4であり;および各rは、独立して、0、1、2、3、または4であり;
各L4は独立して、−(CRaRb)sO−または−O(CRaRb)s−であり;ここで各sは独立して、0、1、2、3、または4であり;
R3は−H、−Rc、または−ORcであり;
R4およびR4’のそれぞれは、独立して、−H、ハロ、シアノ、ヒドロキシ、ニトロ、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、アルコキシ、またはシクロアルコキシであり;
各R5および各R5’は、独立して、−H、ハロ、シアノ、ヒドロキシ、ニトロ、アルキル、アルケニル、アルキニル、またはシクロアルキルであるか;
またはR4および1つのR5が一緒になって、5〜8員のシクロアルキルまたは複素環を形成し;
各Raは独立して、−H、ハロ、シアノ、ヒドロキシ、ニトロ、アミノ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、アルコキシ、シクロアルコキシ、アリール、ヘテロアリール、またはヘテロシクリルであり;
各Rbは独立して、−H、ハロ、シアノ、ヒドロキシ、ニトロ、アミノ、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、アルコキシ、シクロアルコキシ、アリール、ヘテロアリール、またはヘテロシクリルであり;
各Rcは、−H、アルキル、アシル、シクロアルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、ヘテロアリール、またはヘテロシクリルであり;
aは0または1であり;
bは1〜1,000の整数であり;
cは0または1であり;
iの各出現は、独立して、1、2、3、4、5、または6であり;jの各出現は、独立して、0、1、2、または3であり;
kの各出現は、独立して、0、1、2、または3であり;および
Pは1〜10であるが;但し、
(i)XおよびYが同時に−CH2−であることは無く;ならびに
(ii)aが1であり、L1が−CH2−である場合は、
(a)XおよびYが同時に−O−であることは無く;ならびに
(b)XおよびYが同時に−C(O)O−であることも無い。 - Xが−(CH2)i−である、請求項1に記載の化合物。
- Xが−CH2−であり、およびYが−O−、−S−、−OC(O)−、−C(O)O−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−SC(O)N(Rc)−、または−N(Rc)C(O)S−である、請求項1に記載の化合物。
- Xが−CH2−では無く;およびYが−(CRaRb)i−、−C(O)−、−N(Rc)−、−C(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)N(Rc)−、−SC(O)N(Rc)−、または−N(Rc)C(O)S−である、請求項1に記載の化合物。
- Z1が−C(O)O−または−C(O)N(Rc)−である、請求項4に記載の化合物。
- Xが、−N(Rc)−、−C(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)N(Rc)−、−SC(O)N(Rc)−、または−N(Rc)C(O)S−である、請求項1に記載の化合物。
- Yが、−N(Rc)−、−C(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)−、−OC(O)N(Rc)−、−N(Rc)C(O)O−、−N(Rc)C(O)N(Rc)−、−SC(O)N(Rc)−、または−N(Rc)C(O)S−である、請求項1に記載の化合物。
- 各AがL4であり、および各L4が独立して、−OCH2CH2−、−OCH2CH2CH2−、または−OCH2CH(CH3)−である、請求項1〜7のいずれか1項に記載の化合物。
- R3がアルコキシである、請求項1〜8のいずれか1項に記載の化合物。
- 前記化合物の分子量が、500g/mol〜5,000g/molの間である、請求項1〜9のいずれか1項に記載の化合物。
- R1およびR2のそれぞれが独立して、C12〜C20アルキルまたはC12〜C20アルケニル基である、請求項1〜10のいずれか1項に記載の化合物。
- 変数qおよびsがそれぞれ独立して、1、2、3、または4である、請求項1〜11のいずれか1項に記載の化合物。
- R1およびR2のそれぞれは、独立して、C12〜C20アルキルまたはC12〜C20アルケニル基であり;
Xは、−CH2−、−O−、−OC(O)−、−C(O)O−、−C(O)NH−、−NHC(O)−、−OC(O)NH−、−NHC(O)O−、または−NHC(O)NH−であり;
Yは、−O−、−S−、−OC(O)−、−NHC(O)−、−OC(O)NH−、−NHC(O)O−、−NHC(O)NH−、または−SC(O)NH−であり;
aは1であり;
L1は結合または−(CH2)i−であり,
cは0であり;
L3は−(CH2)i−であり;
各Aは独立して、−L4−であり;
各L4は独立して、−OCH2CH2−または−OCH2CH(CH3)−であり;および
R3は−ORcであり、ここでRcは−Hまたはアルキルである、請求項1に記載の化合物。 - 請求項1〜14のいずれか1項に記載の化合物を含む、脂質粒子。
- カチオン性脂質をさらに含む、請求項15に記載の脂質粒子。
- 中性脂質およびステロールをさらに含む、請求項16に記載の脂質粒子。
- 前記中性脂質が、DSPC、DPPC、POPC、DOPE、またはSMから選択される、請求項17に記載の脂質粒子。
- 前記カチオン性脂質が約20%および約60%のモル比で存在し;前記中性脂質が約5%〜約25%のモル比で存在し;前記ステロールが約25%〜約55%のモル比で存在し;および請求項1に記載の化合物が約0.5%〜約15%のモル比で存在する、請求項18に記載の脂質粒子。
- 活性物質をさらに含む、請求項15〜19のいずれか1項に記載の脂質粒子。
- 前記活性物質が、プラスミド、免疫賦活性オリゴヌクレオチド、siRNA、アンチセンスオリゴヌクレオチド、マイクロRNA、アンタゴmir(antagomir)、アプタマー、およびリボザイムからなる群から選択される核酸である、請求項20に記載の脂質粒子。
- 請求項20または21に記載の脂質粒子および薬剤的に許容される担体を含む、医薬組成物。
- 細胞において標的遺伝子の発現を調節する方法であって、請求項20または21に記載の脂質粒子を細胞に提供することを含む、方法。
- 前記活性物質が、プラスミド、免疫賦活性オリゴヌクレオチド、siRNA、アンチセンスオリゴヌクレオチド、マイクロRNA、アンタゴmir(antagomir)、アプタマー、およびリボザイムからなる群から選択される核酸である、請求項23に記載の方法。
- 対象においてポリペプチドの過剰発現を特徴とする疾患または障害を治療する方法であって、前記方法が、前記対象に請求項22に記載の医薬組成物を提供することを含み、前記活性物質が、siRNA、マイクロRNA、およびアンチセンスオリゴヌクレオチドから成る群から選択される核酸であり、および前記siRNA、マイクロRNA、またはアンチセンスオリゴヌクレオチドが、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドまたはその相補鎖と特異的に結合するポリヌクレオチドを含む、方法。
- 対象においてポリペプチドの低発現を特徴とする疾患または障害を治療する方法であって、前記方法が、前記対象に請求項22に記載の医薬組成物を提供することを含み、前記活性物質が、前記ポリペプチドまたは機能的変異体またはその断片をコードするプラスミドである、方法。
- 対象において免疫応答を誘発する方法であって、前記方法が、前記対象に請求項22に記載の医薬組成物を提供することを含み、前記活性物質が免疫賦活性オリゴヌクレオチドである、方法。
- 前記標的遺伝子が、以下から成る群から選択される、請求項23に記載の方法:第VII因子、Eg5、PCSK9、TPX2、アポリポタンパク質B、SAA、TTR、RSV、PDGFβ遺伝子、Erb−B遺伝子、Src遺伝子、CRK遺伝子、GRB2遺伝子、RAS遺伝子、MEKK遺伝子、JNK遺伝子、RAF遺伝子、Erk1/2遺伝子、PCNA(p21)遺伝子、MYB遺伝子、JUN遺伝子、FOS遺伝子、BCL−2遺伝子、サイクリンD遺伝子、VEGF遺伝子、EGFR遺伝子、サイクリンA遺伝子、サイクリンE遺伝子、WNT−1遺伝子、βカテニン遺伝子、c−MET遺伝子、PKC遺伝子、NFKB遺伝子、STAT3遺伝子、サバイビン遺伝子、Her2/Neu遺伝子、SORT1遺伝子、XBP1遺伝子、トポイソメラーゼI遺伝子、トポイソメラーゼIIα遺伝子、p73遺伝子、p21(WAF1/CIP1)遺伝子、p27(KIP1)遺伝子、PPM1D遺伝子、RAS遺伝子、カベオリンI遺伝子、MIBI遺伝子、MTAI遺伝子、M68遺伝子、腫瘍抑制因子遺伝子類、およびp53腫瘍抑制因子遺伝子。
- 前記標的遺伝子が、1つまたは複数の突然変異を含む、請求項28に記載の方法。
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