JP2011137003A - 血管内皮細胞増殖因子アンタゴニストとその用途 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】(a)hVEGF、hVEGFレセプター、またはhVEGFレセプターと会合したhVEGFを含む複合体と特異的に結合できる抗体およびそれらの変異体、(b)hVEGFレセプターおよびそれらの変異体、並びに(c)hVEGF変異体。これらのアンタゴニストはhVEGFの細胞分裂活性、脈管形成活性、血管透過活性、又は他の生物学的活性を抑制、隔絶または中和するので、望ましくない過度の新血管形成を特徴とする疾病または疾患の治療に有用である。特に浮腫及び脳卒中の治療に有用である。
【選択図】なし
Description
天然に生じる種々のポリペプチドは内皮細胞の増殖を誘発することが報告されている。これらのポリペプチドには、塩基性および酸性の線維芽細胞増殖因子(FGF)、ブルゲス(Burgess)およびマシアグ(Maciag)、Annual Rev.Biochem.、58:575(1989年)、血小板由来内皮細胞増殖因子(PD−ECGF)、イシカワ(Ishikawa)等、Nature、338:557(1989年)、並びに血管内皮増殖因子(VEGF)、リュング(Leung)等、Science 246:1306(1989年);フェララ(Ferrara)およびヘンゼル(Henzel)、Biochem.Biophys.Res.Commun.161:851(1989年);ティッシャー(Tischer)等、Biochem.Biophys.Res.Commun.165:1198(1989年);フェララ等、PCT公開特許第WO90/13649号(1990年11月15日公開)がある。
VEGFは最初、ウシ下垂体小胞または星状小胞細胞で条件づけた培地中で同定された。生化学分析によって、ウシVEGFは二量体タンパク質であって、見かけ上の分子量は約45,000ダルトンであり、血管内皮細胞に対して明白な細胞分裂誘発性特異性を有していることが示されている。ウシVEGFをコードするDNAは、ハイブリッド形成プローブとしてタンパク質のアミノ末端アミノ酸配列に基づくオリゴヌクレオチドを使用して上記細胞から調製したcDNAライブラリーをスクリーニングして単離された。
更に幾つかのcDNAが、hVEGFの121−、189−および206−アミノ酸イソ型(集合的に、hVEGF関連タンパク質とも称される)をコードするヒトcDNAライブリー中で同定された。121−アミノ酸タンパク質は、hVEGFの残基116から159の間の44個のアミノ酸を欠失しているためhVEGFと異なっている。189−アミノ酸タンパク質は、hVEGFの残基116に24個のアミノ酸挿入があるためhVEGFと異なっており、明らかにヒト血管透過性因子(hVPF)と同一である。206−アミノ酸タンパク質は、hVEGFの残基116に41個のアミノ酸の挿入があるためhVEGFと異なっている。フック(Houck)等、Mol.Endocrin.5:1806(1991年);フェララ等、J.Cell.Biochem.47:211(1991年);フェララ等、Endocrine Reviews 13:18(1992年);ケック(Keck)等、Science 246:1309(1989年);コノリ(Connolly)等、J.Biol.Chem.264:20017(1989年);ケック等、EPO公開特許第0 370 989号(1990年5月30日公開)。
VEGFに対するレセプターは文献に記載されている。2つのこのようなレセプター、flt−1とflk−1が、VEGF効果を媒介することがわかっている[デブリーズ(DeVries)等、Science 255:989(1992年);シブヤ(Shibuya)等、Oncogene 5:519(1990年);マシューズ(Matthews)等、Proc.Nat.Acad.Sci.88:9026(1991年);ターマン(Terman)等、Oncogene 6:1677(1991年);ターマン等、Biochem.Biophys.Res.Comm.187:1579(1992年);ノイフェルド(Neufeld)等、Prog. Growth Factor Res. 5:89-97(1994年);ウォルテンバーガー(Waltenberger)等、J. Biol. Chem. 269:26988(1994年);クイン(Quinn)等、Proc. Natl. Acad. Sci. 90:7533(1993年)]が、それらの調節及びメカニズムはまだ十分には理解されていない。レンミラー(Lennmyr)等、J. Neuropathology及びExp. Neurology 57:874-882(1998年)。flt−1レセプターとflk−1レセプターの双方が膜貫通レセプターであり、クラスIIIのチロシンキナーゼレセプターファミリーに属している。バーレオン(Barleon)等、J. Cell Biochem. 54:56(1994年);上掲のノイフェルド等。
VEGFは血管内皮細胞増殖を刺激するばかりでなく、脈管形成をも誘発する。先在する内皮からの新しい血管の形成を含む脈管形成は、腫瘍増殖および転移、関節リウマチ、乾癬、アテローム性動脈硬化症、糖尿病性網膜症、水晶体後線維増殖症、血管新生性緑内障、加齢性黄斑変性、血管腫、移植された角膜組織とその他の組織の免疫拒絶反応、および慢性炎症を含む様々な疾病や疾患の重要な成分である。
また、VEGFは内皮及び血管透過性に関与していることが報告されている。フェララ等、Endocrine Reviews 18:4-25(1997年);ドブロゴウスカ(Dobrogowska)等、J. Neurocytology 27:163(1998年)。十分には理解されてはいないが、VEGFは皮膚、網膜及び腫瘍組織における内皮細胞漏洩を増加させると考えられている。コリンズ(Collins)等、Brit. J. Pharmacology 109:195(1993年);コノリ等、J. Clin. Invest. 84:1470(1989年);スウェイキ(Shweiki)等、Nature 359:843(1992年);モナシ(Monacci)等、Am. J. Physiol. 264:C995(1993年);ストーン(Stone)等、J. Neurosci. 15:4738(1995年);デトマー(Detmar)等、J. Invest. Dermatol. 108:263(1997年);ウェインデル(Weindel)等、Neurosurgery 35:437(1994年)。また、内皮細胞及び血液脳関門の透過性におけるVEGF(そのレセプター、特にflt−1レセプター)の潜在的効果と役割も調査されている。例えば、ロセンステイン(Rosenstein)等、Proc. Natl. Acad. Sci. 95:7086(1998年);ドブロゴウスカ(Dobrogowska)等、上掲;コバクス(Kovacs)等、Stroke 27:1865(1996年)を参照されたい。成体ラットの脳において、VEGFmRNAは、比較的広範囲で発現していることが見出されているが、量は幾分少ない。モナシ等、Am. J. Physiol. 146:368-378(1993年)。しかしながら、酸素張力の低減により、VEGF発現が誘発されることも示されており[ドール(Dor)及びケシェット(Keshet)、Trends in Cardiovascular Med. 7:289-294(1998年)]、VEGF、flt−1及びflk−1のレベルの増加は、ラットの脳において、限局性脳虚血の誘発に続いて生じることが示されている。ハヤシ等、Stroke 28:2039(1997年);コバクス等、上掲;レンミラー等、J. Neuropathology and Experimental Neurology 57:874(1998年)。脳卒中及びBBB(血液脳関門)衰弱の病原におけるVEGFの役割は、文献に引用された矛盾する実験観察により明白にはされていない。例えば、ナグ(Nag)等、J. Neuropathology and Experimental Neurology 56:912(1997年)には、この皮質が冷傷害を受けたラットモデルにおいて、ダメージを受けた組織内の透過性軟膜血管及び細動脈に壁在性VEGFが存在していることが示されており、この観察から、VEGFがBBB衰弱及び浮腫形成を媒介するいくつかの要因の一つであることが推察される。他方、ハヤシ等、J. Cerebral Blood Flow and Metabolism, 18:887(1998年)には、VEGFそれ自体を一過性脳動脈閉塞後に再灌流したラットの脳表面に局所的に適用すると、虚血による脳損傷、梗塞容量及び浮腫形成が低減されることが報告されている。
他の側面では、VEGFアンタゴニストは、(a)非hVEGFエピトープ、例えば、血栓形成もしくは血栓溶解に関与するタンパク質のエピトープ、または腫瘍細胞表面抗原、又は(b)hVEGF、hVEGFレセプターまたはhVEGFレセプターと会合したhVEGFを含む複合体と結合し得る多特異性モノクローナル抗体である。
更に他の側面では、VEGFアンタゴニストは細胞毒性部分と抱合体を形成する。
もう1つの側面では、本発明は、上記したようなモノクローナル抗体をコードする単離核酸およびこのようなモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞株に関するものである。
もう1つの側面では、本発明は、哺乳動物においてhVEGF介在細胞分裂活性、脈管形成活性、又は他の生物学的活性を減少させるかまたは消失させるのに有効な量のVEGFアンタゴニストを含む製薬組成物のような組成物に関するものである。
別の側面では、本発明は、哺乳動物、好ましくは治療を必要としているヒト患者に有効量のVEGFアンタゴニストを投与することを含む治療方法に関するものである。所望される場合には、VEGFアンタゴニストは一または複数の他のVEGFアンタゴニスト、抗腫瘍もしくは抗脈管形成物質と、同時にまたは順次に同時投与され、もしくは処理されている疾病又は病状に適した療法において投与される。
もう1つの側面では、本発明は、hVEGFと特異的に結合可能な抗体と試験試料を接触させ、このような結合の程度を測定することによって試験試料中のhVEGFを検出する方法に関するものである。
本発明は、hVEGFの一または複数の生物学的活性を阻止、封鎖又は中和し得るhVEGFのアンタゴニストを提供する。hVEGFのアンタゴニストは、hVEGFと細胞レセプターの結合を妨げ、hVEGFによって活性化されている細胞を無能力化もしくは死滅させ、またはhVEGFと細胞レセプターの結合後に血管内皮細胞活性化を妨げることによって作用する。hVEGFアンタゴニストによるかかる介入点は全て、本発明の目的に対しては等価であると考えるべきである。よって、hVEGF、hVEGFレセプターまたはhVEGFレセプターと会合したhVEGFを含む複合体と結合する抗体、モノクロール抗体及びヒト化抗体、またはそれらのフラグメントが本発明の範囲内に含まれる。更に、hVEGFレセプターと結合するが天然hVEGFの生物学的活性を示さないhVEGFのフラグメントおよびアミノ酸配列変異体も本発明の範囲内に含まれる。さらに、hVEGFを結合し得るhVEGFレセプターおよびそれらのフラグメントおよびアミノ酸配列変異体も本発明の範囲内に含まれる。
ここで使用する「hVEGF」という用語は、リュング等、Science 246:1306(1989年)、及びフック等、Mol.Endocrin.5:1806(1991年)に記載されているような、165−アミノ酸ヒト血管内皮細胞増殖因子、および関連のある121−、189−および206−アミノ酸血管内皮細胞増殖因子と、これら増殖因子の天然に生じる対立遺伝子体およびプロセシングを受けた形態を意味する。
ここで使用する「hVEGFレセプター」または「hVEGFr」という用語は、hVEGFの細胞レセプターで、通常は血管内皮細胞に見られる細胞表面レセプター、並びにhVEGFを結合する能力を保持しているそれらのフラグメントと変異体を意味する。典型的には、hVEGFアンタゴニストであるhVEGFレセプターおよびそれらのフラグメント及び変異体は、天然での場合のように細胞膜中に組み入れられるかまたは細胞表面に固定されているというよりむしろ単離された形態であろう。hVEGFレセプターの一例は、fms様チロシンキナーゼ(flt又はflt−1)、即ちチロシンキナーゼ属の膜貫通レセプターである。デブリーズ(DeVries)等、Science 255:989(1992年);シブヤ(Shibuya)等、Oncogene 5:519(1990年)。全長fltレセプターは、チロシンキナーゼ活性を持つ細胞内ドメイン、膜貫通ドメイン、および細胞外ドメインを含んでいる。細胞外ドメインはhVEGFの結合に関与しているが、細胞内ドメインはシグナル伝達に関与している。
hVEGFとfltレセプターの結合によって、見かけ上の分子量が205,000と300,000ダルトンである少なくとも2つの高分子量複合体が形成される。300,000ダルトンの複合体はhVEGFの1分子にレセプター2分子が結合したものを含む二量体であると考えられる。
hVEGFrの変異体も本発明の範囲内に含まれる。代表的な例には、少なくとも膜貫通および細胞質ドメインが全長レセプター分子から欠失しているレセプターの切断型、および非hVEGFrポリマーまたはポリペプチドがhVEGFrと抱合している融合タンパク質、または好ましくはそれらの切断型が含まれる。このような非hVEGFポリペプチドの例は免疫グロブリンである。その場合には、例えば、hVEGFrの細胞外ドメイン配列は免疫グロブリン軽鎖または(好ましくは)重鎖のFvドメインと置換しており、レセプターの細胞外ドメインのC末端は重鎖のCH1、ヒンジ、CH2または他のフラグメントのアミノ末端と共有結合している。このような変異体は既知のイムノアドヘシンと同じようにして製造される。例えば、ガスコイン(Gascoigne)等、Proc.Nat.Acad.Sci.84:2936(1987年);カポン(Capon)等、Nature 337:525(1989年);アルフォ(Aruffo)等、Cell 61:1303(1990年);アシュケナジ(Ashkenazi)等、Proc.Nat.Acad.Sci.88:10535(1991年);ベネット(Bennett)等、J.Biol.Chem.266:23060(1991年)参照。種々のflt−IgG融合タンパク質の例を以下の実施例3に記載する。本発明において使用を意図しているhVEGFレセプターの細胞外ドメインの切断された形態には、ECDフラグメント(例えば、欠失したECD配列において一又は複数のアミノ酸を有するもの)及び欠失したECDにおいて一又は複数の免疫グロブリン様ドメインを有するECD形態のものが含まれる。例えば、実施例3Bには、Fc−IgGに融合したfltの最初の3つの免疫グロブリン様ドメインのみを含有する切断された形態のECDが記載されている。好ましくは、アンタゴニスト分子の作製に使用される切断された形態のECDは、hVEGFに対する所望の結合を確実にするのに十分な免疫グロブリン様ドメインを含む。
hVEGFrは、アンタゴニストの親和性およびhVEGFに対するその原子価を考慮して、hVEGFの抗体と実質的に同じ態様で使用される。hVEGFレセプター自体または免疫グロブリンポリペプチドもしくは他の担体ポリペプチドと融合したhVEGFレセプターの細胞外ドメイン配列は、宿主中に存在しているが細胞表面のhVEGFrと結合していないhVEGFを隔離する能力によって、hVEGFのアンタゴニストとして特に有用である。
hVEGFrとそのフラグメント及び変異体は、hVEGFのアゴニストおよびアンタゴニストを同定するスクリーニングアッセイにも有用である。例えば、hVEGFr(例えば、fltまたはflk−1)をコードするDNAでトランスフェクションされた宿主細胞は細胞表面でレセプターポリペプチドを過剰発現し、このような組換え体宿主細胞を、試験化合物(例えば、小分子、線形もしくは環状ペプチドまたはポリペプチド)のhVEGFrとの結合能の分析に理想的に適したものとする。hVEGFrおよびhVEGFr融合タンパク質、例えばhVEGFr−IgG融合タンパク質は類似の態様で使用することができる。例えば、融合タンパク質を固定支持体に結合させ、試験化合物が融合タンパク質のhVEGFrドメインから放射標識hVEGFを追い出す能力を測定する。
hVEGF、hVEGFレセプター、抗体または他のタンパク質に関して使用される用語「組換え体」は、宿主細胞中で組換え体DNA発現によって産生されるタンパク質を意味する。宿主細胞は原核細胞(例えば、大腸菌のような細菌細胞)または真核細胞(例えば、酵母または哺乳動物細胞)でありうる。
ここで使用する「モノクローナル抗体」という用語は実質的に同種の抗体集団から得られる抗体、即ち、少量で存在することがある天然に生じうる突然変異を除いて、特異性および親和性が同一の集団を構成する個々の抗体を意味する。このような天然に生じる突然変異等の結果として、hVEGF、hVEGFrまたはhVEGFrと会合したhVEGFを含む複合体(「hVEGF−hVEGFr複合体」)と特異的に結合し得る抗体を主として含有する本発明のモノクローナル抗体組成物は少量の他の抗体も含有する可能性があることは理解されなければならない。
よって、「モノクローナル」という修飾語は、このような実質的に同種の抗体集団から得られるような抗体の特徴を示すものであって、何か特別の方法で抗体が産生されることを要求していると考えるべきでない。例えば、本発明のモノクローナル抗体は、最初にコーラー(Kohler)およびミルスタイン(Milstein)、Nature256:495(1975年)に記載されたハイブリドーマ方法を使用して製造することができ、または組換えDNA方法によって製造することができる。カビリ(Cabilly)等、米国特許第4816567号を参照されたい。
ハイブリドーマ方法では、マウスまたは他の適当な宿主動物を皮下、腹腔内、または筋肉内経路で抗原を用いて免疫化して、免疫化に使用されたタンパク質と特異的に結合する抗体を産生するかまたは産生し得るリンパ球を誘引する。或いは、リンパ球をインビトロで免疫化することができる。次に、リンパ球はポリエチレングリコールのような適当な融合剤を使用してミエローマ細胞と融合させてハイブリドーマ細胞を形成させる。ゴーディング(Goding)、モノクローナル抗体:原理と実際、59-103頁(Academic Press、1986年)。
抗原はhVEGF、hVEGFr、またはhVEGF−hVEGFr複合体でありうる。抗原は、場合によってはhVEGFとそのレセプターの1つとの結合に関与する一又は複数のアミノ酸残基を有するhVEGFまたはhVEGFrのいずれか1つのフラグメントまたは部分又は変異体である。例えば、hVEGFrの細胞外ドメイン配列(例えば、少なくとも膜貫通および細胞内ドメインを欠失している切断hVEGFrポリペプチド)による免疫化は、hVEGF結合に関与しているのが細胞外ドメイン内の領域であるので、hVEGFのアンタゴニストである抗体を産生するのに特に有用であろう。
このようにして調製されたハイブリドーマ細胞は、融合していない親ミエローマ細胞の増殖または生存を阻止する一又は複数の物質を好ましくは含有する適当な培養培地に接種し、増殖させる。例えば、親ミエローマ細胞が酵素ヒポキサンチン・グアニン・ホスホリボシル・トランスフェラーゼ(HGPRTまたはHPRT)を欠いている場合、ハイブリドーマ用の培地は典型的にはヒポキサンチン、アミノプテリンおよびチミジンを含有し(HAT培地)、これら物質がHGPRT欠損細胞の増殖を阻止する。
好ましいミエローマ細胞は効率的に融合し、選択された抗体産生細胞による抗体の安定した高レベル発現を支援し、HAT培地のような培地に感受性であるものである。これらのなかで、好ましいミエローマ細胞株はネズミミエローマ株、例えば、米国カリフォルニア州サンジエゴのソーク・インスチチュート・セル・ディストリビューション・センター(Salk Institute Cell Distribution Center)から入手できるMOPC−21およびMPC−11マウス腫瘍、米国バージニア州マナッサスのアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションから入手できるSP−2細胞、およびイエルトン(Yelton)等がCurr.Top.Microbiol.Immunol.81:1(1978年)に記載したP3X63Ag8U.1細胞から誘導されるものである。ヒトミエローマおよびマウス−ヒトヘテロミエローマ細胞株もヒトモノクローナル抗体の産生に対して記載されている。コズボル(Kozbor)、J.Immunol.133:3001(1984年);ブロデュア(Brodeur)等のモノクローナル抗体産生技術と応用、51-63頁(Marcel Dekker,Inc.ニューヨーク、1987年)。
ハイブリドーマ細胞が増殖している培地は、抗原に対するモノクローナル抗体の産生についてアッセイされる。好ましくは、ハイブリドーマ細胞によって産生されたモノクローナル抗体の結合特異性は免疫沈降法またはインビトロ結合アッセイ、例えばラジオイムノアッセイ(RIA)または酵素結合免疫吸着検定法(ELISA)によって測定される。本発明のモノクローナル抗体は、hVEGF、hVEGFrもしくはhVEGF−hVEGFr複合体を優先的に免疫沈降させるかまたは結合アッセイで上記抗原の少なくとも1つと優先的に結合し、hVEGFの生物学的活性を阻止し得るものである。
サブクローンが分泌したモノクローナル抗体は、例えば、プロテインA−セファロース、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、ゲル電気泳動、透析またはアフィニティクロマトグラフィーのような慣用の免疫グロブリン精製方法を使用して培地、腹水または血清から適切に分離される。
本発明のモノクローナル抗体をコードするDNAは容易に単離されそして常套的な方法を使用して(例えば、ネズミ抗体の重および軽鎖をコードする遺伝子と特異的に結合し得るオリゴヌクレオチドプローブを使用して)配列が決定される。本発明のハイブリドーマ細胞はこのようなDNAの好ましい供給源となる。ひとたび単離されると、DNAを発現ベクター中に入れ、次にこれをシミアンCOS細胞、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞、または免疫グロブリンタンパク質を産生等しないミエローマ細胞のような宿主細胞中にトランスフェクションして組換え体宿主細胞内でモノクローナル抗体の合成を得る。
場合によっては、発現によって産生される免疫グロブリンの特性を変えるためにDNAを修飾することができる。例えば、ネズミ抗体のヒト型化形態は、ネズミ抗体可変ドメインの相補性決定領域(CDR)をヒト抗体の対応する領域で置換することによって産生される。或る実施態様では、ネズミ抗体の選択されたフレームワーク領域(FR)アミノ酸残基がまたヒト抗体中の対応するアミノ酸残基で置換される。カーター(Carter)等、Proc.Nat.Acad.Sci.89:4285(1992年);カーター等、BioTechno1ogy 10:163(1992年)。ネズミ抗体のキメラ形態も、選択したヒト重および軽鎖定常ドメインのコード化配列を同種ネズミ配列の代わりに置換して産生される。カビリ等、米国特許第4816567号;モリソン(Morrison)等、Proc.Nat.Acad.Sci.81:6851(1984年)。
よって、本発明の範囲内に含まれる抗体には、hVEGF、hVEGFrまたはhVEGF−hVEGFr複合体、並びに非hVEGFエピトープと結合し得る免疫グロブリン鎖を有するキメラ(「ヒト化型」を含む)抗体およびハイブリッド抗体のような変異体抗体が含まれる。
ここでの抗体には、全ての起源種、並びに免疫グロブリンクラス(例えば、IgA、IgD、IgE、IgGおよびIgM)およびサブクラス、並びに抗体フラグメント(例えば、Fab、F(ab’)2、およびFv)が、hVEGF、hVEGFrまたはhVEGF−hVEGFr複合体と結合可能であり、hVEGFの生物学的活性と拮抗し得る限り、含まれる。
本発明の好ましい実施態様では、抗体は、例えば、ムンソン(Munson)およびポラード(Pollard)、Anal.Biochem.107:220(1980年)のスカッチャード分析によって測定して、免疫化抗原に対して少なくとも約109リツトル/モルの親和性を有する。さらに、モノクローナル抗体は典型的には、例えば、WO98/45331及びWO98/45332に記載されたような、又は実施例2に記載されるようなインビトロ細胞生存または増殖アッセイによって測定して、hVEGFの細胞分裂促進活性または脈管形成活性を少なくとも約50%、好ましくは80%を越えて、そして最も好ましくは90%を超えて阻止する。
或る治療上および診断上の応用に対しては、モノクローナル抗体がhVEGFの異なる分子形態の全てよりもより少ないものと反応性であることが望ましい。例えば、165−アミノ酸配列hVEGFとは特異的に結合できるが121−または189−アミノ酸配列hVEGFポリペプチドとは結合できないモノクローナル抗体を有することが望ましい。このような抗体は異なったhVEGFポリペプチドの比較ELISAアッセイまたは比較免疫沈降法によって容易に同定される。
或る実施態様では、hVEGF特異的モノクローナル抗体またはhVEGFrと抱合した細胞毒性部分を提供することが望ましい。これらの実施態様では、細胞毒素はhVEGFもしくはそのレセプターを発現または結合している細胞を無力化するかまたは死滅させるのに役立つ。hVEGF、hVEGFrまたはhVEGF−hVEGFr複合体と結合し得るドメインによって抱合体が細胞に標的とされる。しかして、hVEGF、hVEGFrまたはhVEGF−hVEGFr複合体と結合できるモノクローナル抗体が細胞毒素と抱合させられる。同様に、hVEGFrが細胞毒素と抱合させられる。モノクローナル抗体は最も望ましくは、hVEGF単独(細胞毒素を有していない)の活性を中和できるが、この実施態様ではモノクローナル抗体またはレセプターがhVEGF、hVEGFrまたはhVEGF−hVEGFr複合体ともはや結合できる必要はない。
或るクラスの免疫グロブリンの場合には、モノクローナル抗体自体のFcドメインが細胞毒素を提供するようになることがある(例えばIgG2抗体の場合には、該抗体は補体を固定し、抗体依存性細胞毒性(ADCC)に関与することができる)が、典型的には、細胞毒素はタンパク質細胞毒素、例えばジフテリア、リシンまたはシュードモナス毒素である。しかしながら、細胞毒素はタンパク質様である必要はなく、例えば腫瘍治療用にこれまでに使用されている化学療法剤を含めることができる。
細胞毒素は典型的には、抗体のFcドメイン内で(またはFcドメインの一部もしくは全ての代わりに)骨格のアミド結合によってモノクローナル抗体またはそのフラグメントと結合する。標的化機能がhVEGFrによって提供される場合、細胞毒性部分はhVEGF結合に関与しないレセプターの任意のドメイン上に置換され;好ましくは、該部分はレセプターの膜貫通および/または細胞質ドメインの代わりまたは該ドメイン上に置換される。最適な置換部位は日常的な実験によって決定され、十分に通常の技量の範囲内である。
タンパク質融合体である抱合体は、抱合体をコードする遺伝子を発現させることによって組換え体細胞培養物中で容易に作成される。或いは、抱合体は、例えば、イミノチオレートやメチル−4−メルカプトブチリマデートを使用して、チオエステル結合によるジスルフィド交換または結合のようなそれ自体既知の方法を使用して、細胞毒性部分を抗体またはレセプターのアミノ酸残基側鎖またはC末端カルボキシルに共有的に交差結合させて製造される。
hVEGFのアンタゴニストであるモノクローナル抗体およびhVEGFrもまた、それら自体では細胞毒素として容易には分類されないが、ここでの組成物の活性を増す物質と抱合される。例えば、hVEGF、hVEGFrまたはhVEGF−hVEGFr複合体と結合し得るモノクローナル抗体またはhVEGFrは、ウイルス配列のような異種ポリペプチド、細胞レセプター、TNF、インターフェロンまたはインターロイキンのようなサイトカイン、凝血促進活性を有するポリペプチドおよび他の生物学的または免疫学的に活性なポリペプチドと融合される。このような融合体は組換え方法によって容易に製造される。典型的には、このような非免疫グロブリンポリペプチドは抗hVEGFもしくは抗hVEGF−hVEGFr複合体抗体の定常ドメイン、またはhVEGFrの膜貫通および/または細胞内ドメインに置換される。或いは、それらは、ここに記載した抗hVEGF抗体の1つの抗原結合部位の可変ドメインに置換される。
好ましい実施態様では、このような非免疫グロブリンポリペプチドは、ここに記載した抗体の定常ドメインと結合されるかまたはそれらに置換される。ベネット等、J.Biol.Chem.266:23060-23067(1991年)。或いは、上記ポリペプチドは本発明の抗体のFvに置換され、hVEGF、hVEGFrまたはhVEGF−hVEGFr複合体に対して特異性を有する少なくとも1つの残存抗原結合部位、および出発抗体とは異なる機能または特異性を有する代用抗原結合部位を含むキメラ多価抗体が創製される。
hVEGF、hVEGFrまたはhVEGF−hVEGFr複合体と結合し得るモノクローナル抗体は、列挙したエピトープ、典型的には1つの重−軽鎖複合体またはそのフラグメントに対して1つの結合部位を有してさえいれば良い。しかしながら、このような抗体は、場合によってはhVEGF、hVEGFrまたはhVEGF−hVEGFr複合体のいずれの内部にも見られないエピトープと結合し得る抗原結合ドメインも有している。例えば、hVEGF、hVEGFrまたはhVEGF−hVEGFr複合体以外の抗原に対して特異性を有する抗体の相補性決定残基および、必要ならば、フレームワーク残基で、天然の抗hVEGF、抗hVEGFrまたは抗hVEGF−抗hVEGFr複合体抗体の対応するアミノ酸配列またはアミノ酸残基を置換することによって、hVEGF、hVEGFrまたはhVEGF−hVEGFr複合体に対して特異性を有する1つの抗原結合部位と非hVEGF、hVEGFrまたはhVEGF−hVEGFr複合体抗原に対して特異性を有するもう1つの抗原結合部位を含む多特異的抗体が創製される。これらの抗体は少なくとも二価であるが、選択される抗体クラスに所有されている抗原結合部位の数に応じて、多価であることもできる。例えば、IgMクラスの抗体は多価である。
本発明の好ましい実施態様では、このような抗体はhVEGFまたはhVEGFrエピトープと、(a)プロテインCもしくは組織因子のような血液凝固に活性のポリペプチド、(b)腫瘍壊死因子(TNF)のような細胞毒性タンパク質、または(c)CD4もしくはHER−2レセプターのような非hVEGFr細胞表面レセプターのいずれかと結合することができる(マッドン(Maddon)等、Cell 42:93(1985年);コーセンス(Coussens)等、Science 230:1137(1985年))。異種特異性の多価抗体は、宿主細胞を両抗体の重鎖および軽鎖をコードするDNAで同時形質転換させ、その後免疫アフィニティークロマトグラフィ等によって回収して簡便に製造され、発現された抗体の部分は所望の抗原結合特性を有している。或いは、このような抗体は単一特異性抗体のインビトロ組換えによって製造される。
hVEGFrまたはhVEGF−hVEGFr複合体と結合し得る一価抗体はhVEGFのアンタゴニストとして特に有用である。本発明を如何なる特定の生物学的活性のメカニズムにも限定するものではないが、細胞hVEGFレセプターの活性化は、hVEGFと細胞hVEGFレセプターとの結合がレセプターの凝固を誘発し、ついで細胞内レセプターキナーゼ活性を活性化するというメカニズムで進行すると考えられる。一価の抗hVEGFレセプター抗体はこのような凝固を誘発できず、それ故上記メカニズムによってhVEGFレセプターを活性化できないので、上記抗体はhVEGFの理想的なアンタゴニストである。
しかしながら、これらの抗体はレセプターのhVEGF結合部位を指向するかまたはそうでない場合、hVEGFレセプターと結合するhVEGFを、例えばレセプターに対するhVEGFの接近を立体的に障害することによって、妨げることが可能でなければならないことに注意すべきである。しかしながら、本願明細書の他の場所で記載したように、hVEGFの結合を妨げることができない抗hVEGFr抗体は、非免疫グロブリン部分、例えば細胞毒素と抱合したとき有用である。
一価抗体の調製方法は当該分野で良く知られている。例えば、一つの方法は免疫グロブリン軽鎖および修飾した重鎖の組換え発現を含む。重鎖は一般に重鎖架橋を防止するようにFc領域の任意の点で切断される。或いは、関連システイン残基は、架橋を防止するようにもう一つのアミノ酸残基で置換されるかまたは欠失される。インビトロ方法もまた一価抗体の調製に適している。例えば、Fabフラグメントは無傷の抗体の酵素開裂によって調製される。
診断適用では、本発明の抗体またはhVEGFrは典型的には検出可能部分で標識される。検出可能部分は、検出可能なシグナルを直接的にまたは間接的に作りだすことができる任意のものでありうる。例えば、検出可能部分は、3H、14C、32P、35Sもしくは125Iのような放射性同位元素、蛍光イソチオシアネート、ローダミンもしくはルシフェリンのような蛍光または化学ルミネセンス化合物、例えば125I、32P、14Cもしくは3Hのような放射性同位元素標識、またはアルカリホスファターゼ、βガラクトシダーゼもしくは西洋わさびペルオキシダーゼのような酵素でありうる。
抗体またはhVEGFrを検出可能部分と別個に抱合させる当該分野で既知の任意の方法を使用することができ、これらの方法にはハンター(Hunter)等、Nature 144:945(1962年);デービッド(David)等、Biochemistry 13:1014(1974年);ペイン(Pain)等、J.Immunol.Meth.40:219(1981年);およびニグレン(Nygren)、J.Histochem.and Cytochem.30:407(1982年)に記載されている方法が含まれる。本発明の抗体およびレセプターは既知の任意のアッセイ方法、例えば競合結合アッセイ、直接および間接的サンドイッチアッセイおよび免疫沈降アッセイを使用することができる。ゾラ(Zola)、モノクローナル抗体:技術マニュアル、147-158頁(CRC Press,Inc.、1987年)。
サンドイッチアッセイは、検出すべきタンパク質の異なった免疫原性部分またはエピトープとそれぞれ結合し得る2つの抗体またはレセプターを使用することを含む。サンドイッチアッセイでは、試験試料分析物は固形支持体上に固定されている第1の抗体またはレセプターによって結合され、その後第2の抗体が分析物に結合し、よって不溶性の3つの部分からなる複合体を形成する。デービッドおよびグリーン(Greene)、米国特許第4,376,110号。第2の抗体またはレセプターはそれ自体検出可能部分で標識されうるか(直接的サンドイッチアッセイ)、検出可能部分で標識されている抗免疫グロブリン抗体を使用して測定することができる(間接的サンドイッチアッセイ)。例えば、サンドイッチアッセイの1つのタイプはELISAアッセイであり、その場合は、検出可能部分は酵素である。
ここでの抗体またはレセプターはインビボ画像診断にも有用であり、検出可能部分で標識された抗体またはhVEGFrが患者の好ましくは血流に直接投与され、患者内の標識抗体またはレセプターの存在と位置がアッセイされる。この画像診断技術は、例えば、新生物の段階付けおよび治療に有用である。抗体またはhVEGFrは、核磁気共鳴であろうと、放射学であろうと、それとも当該分野で知られている他の検出手段であろうと、哺乳動物において検出可能である任意の部分で標識される。
ここに記載した抗体に加えて、hVEGFの他の有用なアンタゴニストには、hVEGFレセプターと結合するが天然hVEGFの生物学的活性を示さない天然hVEGFのフラグメントおよびアミノ酸配列変異体が含まれる。例えば、このようなアンタゴニストには、hVEGFのレセプター結合ドメインを含むが生物学的活性を与えるドメインを欠いているかまたはそうでない場合、細胞hVEGFレセプターの活性化が不完全なフラグメントおよびアミノ酸配列変異体、例えば、細胞hVEGF−レセプターの凝集または活性化誘発能力を欠いているフラグメントまたはアミノ酸配列変異体の場合が含まれる。「レセプター結合ドメイン」という用語は、hVEGFレセプター結合に関与するhVEGF中のアミノ酸配列を意味する。「生物学的活性ドメイン」または「生物学的活性付与ドメイン」という用語は、細胞分裂促進活性、脈管形成活性、又は血管透過活性のような、因子の特定の生物学的活性をもたらすhVEGF中のアミノ酸配列を意味する。
hVEGFが細胞表面上の2つまたはそれ以上のhVEGFr分子と複合体を形成できるように思われるという知見は、hVEGFがhVEGFrへの少なくとも2つの別個の結合部位を有しており、成長ホルモン、プロラクチン等の態様で活性化が生じる前に、hVEGFが連続的な態様で、最初に1つの部位で、その後他の部位で上記細胞レセプターと結合することを示唆している(例えば、カニングハム(Cunningham)等、Science 264:821(1991年);ディブオス(deVos)等、Science 255:306(1992年);フー(Fuh)等、Science 256:1677(1992年)を参照されたい)。従って、hVEGFの1つのレセプター結合部位(典型的にはhVEGFとhVEGFrの初期結合に関与している部位)が修飾されないまま残っている(または修飾されている場合、結合を高めるように変えられている)一方、hVEGFの第2のレセプター結合部位が典型的には、該結合部位を無効にするために、非保存的アミノ酸残基置換または欠失で修飾されているhVEGFのアンタゴニスト変異体が選択される。
hVEGF中のレセプター結合ドメインおよびhVEGFr中のhVEGF結合ドメインはX線試験、突然変異分析および抗体結合実験を含む当該分野で既知の方法によって測定される。突然変異方法には、逸脱突然変異体の選択と組み合わせた無作為飽和突然変異誘発および挿入突然変異誘発の技術が含まれる。リガンド内のレセプター結合ドメインの同定に適する他の方策はアラニン(Ala)スキャンニング突然変異誘発として知られている。カニングハム等、Science 244、1081-1985(1985年)。この方法は、荷電アミノ酸側鎖を含む領域の同定を含んでいる。同定された各領域中の荷電残基(即ち、Arg、Asp、His、LysおよびGlu)はAlaで置換され(突然変異体1分子当たり1つの領域)、得られたリガンドのレセプター結合が試験されて、レセプター結合における特定の領域の重要性を評価する。レセプター結合ドメインを局在化させるさらに強力な方法は抗hVEGF抗体の中和の使用によるものである。キム(Kim)等、Growth Factors 7:53(1992年)。通常、これら方法と類似方法を組み合せて、レセプター結合に関与するドメインの局在化に使用する。
「相同性」は、いかなる保存的置換も配列相同性パーセントの一部とはみなさずに、配列を整列させ、必要な場合には最大パーセントの相同性を達成するために間隙を導入した後に、天然hVEGFのレセプター結合ドメインのアミノ酸配列中の残基と同一であるアミノ酸配列変異体中の残基のパーセントとして定義される。整列の方法およびコンピュータープログラムは当該分野で良く知られている。一つのこのようなコンピュータープログラムはジェネンテック(Genentech)Inc.の著作の「Align 2」であり、これは1991年12月10日に20559ワシントンDCの米国著作権庁に使用者用説明書と共に提出された。当業者であれば、日常的な技量を使用して、比較されている配列の長さにわたって最大のアラインメントを達成するために必要な任意のアルゴリズムを含む、アラインメントを測定するための適切なパラメータを決定することができる。
挿入変異体は天然配列の特定の位置のアミノ酸に直ぐに隣接して挿入された一又は複数のアミノ酸を有するものである。アミノ酸に直ぐに隣接するとは、アミノ酸のα−カルボキシまたはα−アミノ官能基のいずれかと結合することを意味する。
欠失変異体は、天然配列の一又は複数のアミノ酸残基が除去されているものである。通常、欠失変異体は分子の特定の領域で1つまたは2つのアミノ酸残基が欠失している。
hVEGFのフラグメントおよびアミノ酸配列変異体は当該分野の既知の方法、例えば天然因子をコードするDNAの部位特異的突然変異誘発によって容易に製造される。突然変異DNAを適当な発現ベクター中に挿入し、ついで宿主細胞を組換えベクターでトランスフエクションする。組換え宿主細胞と適当な培地で増殖させ、その後宿主細胞で発現された所望のフラグメントまたはアミノ酸配列変異体をクロマトグラフィーまたは他の精製方法で組換え細胞培養物から回収する。
或いは、当該分野で既知の他の等価な化学合成法を使用することができるが、hVEGFのフラグメントおよびアミノ酸変異体を、例えば、天然hVEGFのタンパク質分解によって、またはメリーフィールド(Merrifield)(J.Am.Chem.Soc.85:2149(1963年))が記載した標準的な固相ペプチド合成方法を使用する合成によってインビトロで製造される。固相合成は、保護されたα−アミノ酸を適当な樹脂に結合させてペプチドのC末端から開始される。アミノ酸は、ペプチド結合の形成に対して当該分野で周知の技術を使用してペプチド鎖と結合される。
ここで使用される「治療する」、「治療」、「療法」及び「治療的」という用語は、治癒治療、予防(prophylactic)治療及び防止(preventative)治療を意味する。
治療用途では、本発明のアンタゴニストは哺乳動物、好ましくはヒトに、大量瞬時投与(ボーラス)として静脈内にまたは一定期間の連続注入によって、筋肉内、腹腔内、脳脊髄内、皮下、関節内、滑液嚢内、硬膜内、くも膜下内、経口、局所もしくは吸入経路でヒトに投与されるようなものを含む、許容できる投与形態で投与される。アンタゴニストはまた、腫瘍内、腫瘍周囲、病変内または病変周囲経路で適切に投与されて局所的並びに全身的治療効果を発揮する。腹膜内経路は、例えば、卵巣腫瘍の治療に特に有用である。静脈注入は、例えば脳浮腫の治療に、特に有用であると予想される。
このような投与形態は、本来的に非毒性で非治療的な担体を含む。このような担体の例には、イオン交換剤、アルミナ、ステアリン酸アルミニウム、レシチン、血清タンパク質、例えばヒト血清アルブミン、緩衝物質、例えばホスフェート、グリシン、ソルビン酸、ソルビン酸カリウム、飽和植物性脂肪酸の部分的グリセリド混合物、水、塩類または電解質、例えば硫酸プロタミン、リン酸水素二ナトリウム、リン酸水素カリウム、塩化ナトリウム、亜鉛塩、コロイドシリカ、三ケイ酸マグネシウム、ポリビニルピロリドン、セルロース系物質およびポリエチレングリコールが含まれる。アンタゴニストの局所用またはゲル系形態用の担体には多糖類、例えばカルボキシメチルセルロースナトリウムまたはメチルセルロース、ポリビニルピロリドン、ポリアクリレート、ポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレン−ブロックポリマー、ポリエチレングリコールおよびモクロウアルコールが含まれる。慣用的なデポー形態を適切に使用することができる。このような形態には、例えば、マイクロカプセル、ナノカプセル、リポソーム、プラスター、吸入形態、鼻用スプレー、舌下錠および徐放製剤が含まれる。アンタゴニストは典型的には、約0.1mg/mlから100mg/mlの濃度でこのようなビヒクル中に処方される。
徐放製剤の適当な例には、アンタゴニストを含有する固形の疎水性ポリマーの半透過性マトリックスが含まれ、これらマトリックスは成形物、例えば膜またはマイクロカプセルの形態である。徐放製剤マトリックスの例にはポリエステル、ヒドロゲル(例えば、ランガー(Langer)等、J.Biomed.Mater.Res.15:167(1981年)およびランガー、Chem.Tech.、12:98〜105(1982年)に記載されているポリ(2−ヒドロキシエチル−メタクリレート)またはポリ(ビニルアルコール)、ポリラクチド(米国特許第3,773,919号))、L−グルタミン酸とγエチル−L−グルタメートのコポリマー(シドマン(Sidman)等、Biopolymers、22:547(1983年))、非分解性エチレン−ビニルアセテート(ランガー等、上掲)、ルプロンデポー(Lupron Depot)(登録商標)のような分解性乳酸−グリコール酸コポリマー(乳酸−グリコール酸コポリマーおよびロイプロリドアセテートからなる注入可能な微小球体)並びにポリ−D−(−)−3−ヒドロキシ酪酸が含まれる。エチレン−ビニルアセテートおよび乳酸−グリコール酸のようなポリマーは100日間以上にわたって分子を放出させることができるが、或るヒドロゲルはより短い期間タンパク質を放出する。カプセルに入れたポリペプチドアンタゴニストが体内に長時間留まると、37℃で水分に暴露された結果として変性または凝集し、その結果、生物学的活性の消失が生じ、おそらく免疫原性の変化が生じることがある。関与するメカニズムに応じて安定化のために合理的な方策を工夫することができる。例えば、凝集メカニズムがチオ−ジスルフィド交換による分子内S−S結合形成であることが発見された場合は、安定化はスルフヒドリル残基を修飾し、酸性溶液から凍結乾燥し、水分量を制御し、適当な添加剤を使用し、特定なポリマーマトリックス組成物を開発することによって達成することができる。
本発明のもう一つの用途は成形物中にhVEGFアンタゴニストを導入することを含む。このような物品は、例えば内皮細胞増殖および脈管形成の調節に使用することができる。加えて、腫瘍浸潤および転移をこれら物品で調節することができる。
アンタゴニストの適切で有効な投与量は、ここで特定した治療される疾病又は病状のタイプ、疾病又は病状の重症度および経過、アンタゴニストが予防目的で投与されるのか治療目的で投与されるのか、以前の療法、患者の臨床的履歴およびアンタゴニストに対する応答、並びに担当医の自由裁量に依存する。アンタゴニストの有効な投与量は、典型的には、投与されるアンタゴニストにより、最も効果的な所望量のVEGF生物学的活性の阻害が達成される量である。アンタゴニストは適切には、1回でまたは一連の治療にわたって患者に投与される。
一実施態様では、腫瘍の血管形成を併用療法で攻撃する。一又は複数のhVEGFアンタゴニストを腫瘍を持つ患者に、例えば腫瘍または存在するならば、その転移病巣の壊死を観察して決定される治療的に有効な投与量で投与する。この治療は、もはや更なる有益な効果が観察されないかまたは臨床検査で痕跡量の腫瘍も示されないかもしくはどんな転移病巣も示されないようなときまで継続される。他の補助的薬剤は、例えば腫瘍壊死因子(TNF)、α−、β−もしくはγ−インターフェロン、抗HER2抗体、ヘレグリン、抗ヘレグリン抗体、D因子、インターロイキン−1(IL−1)、インターロイキン−2(IL−2)、顆粒球−マクロファージコロニー刺激因子(GM−CSF)、または、抗プロテインC抗体、抗プロテインS抗体もしくはC4b結合タンパク質(1991年2月21日に公開されたエスモン等のPCT公開特許第WO91/01753号参照)のような腫瘍の微小血管凝固を促進する薬剤、または加熱もしくは照射である。
補助的薬剤は有効性が変わるので、常套的な形でマトリックススクリーニングによってそれらが腫瘍に与える影響を比較することが望ましい。hVEGFアンタゴニストおよび例えばTNFの投与は、所望の臨床効果が達成されるまで繰り返すことができる。或いは、hVEGFアンタゴニストは、TNFと場合によっては補助的薬剤と一緒に投与される。固形腫瘍が四肢または全身循環から隔離し易い他の場所に見られる場合、ここに記載した治療薬剤は隔離された腫瘍または器官に投与する。他の実施態様では、FGFまたは血小板由来増殖因子(PDGF)アンタゴニスト、例えば抗FGFまたは抗PDGF中和抗体がhVEGFアンタゴニストと一緒に患者に投与される。hVEGFアンタゴニストによる治療は、最適には外傷治癒または所望の血管新形成の期間中中止することができる。
加齢性黄斑変性(AMD)は、年輩者において程度の酷い視覚喪失に至る第1の原因である。AMDの滲出形態は脈絡膜新血管形成及び網膜色素内皮細胞剥離により特徴付けられる。脈絡膜新血管新生が予後の劇的悪化に関連しているため、本発明のVEGFアンタゴニストは、AMDの重症度を低減させるのに特に有用であると予想される。
治療可能な他の病状には浮腫が含まれる。ここで、「浮腫」という用語は一般的な意味で使用され、遊離の細胞外水単独のため、もしくは増加した細胞内水と組み合わされるために生じる血管外組織水含量の増加により特徴付けられる体の症状または付随する脳卒中又は頭部損傷を含む。浮腫は体内の種々の組織中に存在し得る。特に、hVEGFアンタゴニストは、典型的には脳容積の増加により特徴付けられる脳浮腫、並びに脊髄又は脊髄管浮腫又は頭蓋内圧の増加に至る他の病状(例えば、局所的脊髄損傷)を含む中枢神経系(CNS)浮腫の治療に使用することができると考えられる。例えば、脳容積の増加は、脳血液量の増加及び/又は組織水分量の増加の結果でありうる。ここで使用する「浮腫」という用語は、当該技術において、血管原性浮腫及び細胞毒性浮腫と称される病状を含む。典型的には、血管原性浮腫と称される病状は血液脳関門(BBB)の崩壊を伴うものとして特徴付けられており、細胞毒性浮腫は無傷のBBBを伴うものとして特徴付けられている。脳浮腫は、一般的に概説文献であるハリリ(Hariri)、Neurosurgical Intensive Care 5:687(1994年)に記載されている。
特に、本発明は、脳内における新生物に付随する脳浮腫、及び脳卒中に付随する脳浮腫を含む浮腫を治療するために、hVEGFアンタゴニストを用いて療法を意図している。脳組織内に新生物を有する哺乳動物において、哺乳動物に脳浮腫が発症し又はこれを被ることはよくあることである。本発明のhVEGFアンタゴニストは、単独で又は脳新生物を治療するために施される化学療法又は放射線療法等の他の療法と組み合わせて投与され、脳内におけるこのような浮腫を低減し又は阻害することを意図している。
また、脳卒中を発症しているか、これを発症したことがある哺乳動物においても、脳浮腫が発症しているか、またはこれを被っていることがよくある。本出願における脳卒中という用語は一般的な意味に使用され、虚血性脳卒中及び出血性脳卒中として当業者に周知の臨床状態を含む。患者の脳卒中は、例えば血流妨害の原因又は病原、病気に襲われている細胞又は組織の種類、及び組織(例えば脳組織)への管外滲出の存在性に依存して、様々な特定の種類の脳卒中に特徴付けされ又は分類されることが当該分野において認められる。臨床的に特徴付けられている種々の種類の脳卒中には、限定するものではないが、血栓性脳卒中、塞栓性脳卒中、血行力学的脳卒中、陰窩性脳卒中、及び脳内、くも膜下、脳室内、又は硬膜下出血に誘導されるか、又はこれらの結果生じる出血性脳卒中が含まれる。医療従事者であれば、このような脳卒中状態の種類を素早く認識して理解し、患者にこのような病状が存在するのか、又はその徴候があるのか検出し診断できるであろう。本発明の方法は、hVEGFアンタゴニスト分子が、全てのこのような脳卒中症状の治療において、特に浮腫を低減又は阻害し、細胞及び組織ダメージを保護するために使用できることを意図している。hVEGFアンタゴニストは脳卒中の開始に続く急性治療として投与され、例えば脳浮腫を低減又は阻害し、よって哺乳動物の脳卒中からの回復性を高める。hVEGFアンタゴニストを使用することにより、この治療で哺乳動物における手術(開頭術)の実施を防止又は回避し、脳組織内の過度の水分蓄積による頭蓋内圧を低減又は緩和するといった恩恵がある。また、hVEGFアンタゴニストによりこのような浮腫が低減又は防止されて、典型的に頭蓋内圧及び浮腫によりダメージを受けるおそれのある脳及びニューロン組織の量が低減するであろう(すなわち保護効果)。
本発明の他の実施態様では、疾病又は病状の予防または治療におけるアンタゴニストの効能は、これらの目的に効果的である別の薬剤、例えば、腫瘍壊死因子(TNF)、酸性もしくは塩基性の線維芽細胞増殖因子(FGF)もしくは肝細胞増殖因子(HGF)の脈管形成活性を阻止もしくは中和し得る抗体、組織因子、プロテインCもしくはプロテインSの凝固活性を阻止もしくは中和し得る抗体(1991年2月21日に公開されたエスモン(Esmon)等のPCT公開特許第WO91/01753号参照)、HER2レセプターに結合可能な抗体(1989年7月27日に公開されたハドジアック(Hudziak)等のPCT公開特許第WO89/06692)、または例えば、アルキル化剤、葉酸アンタゴニスト、核酸代謝の抗代謝物、抗生物質、ピリミジン類似体、5−フルオロウラシル、シスプラチン、プリンヌクレオシド、アミン、アミノ酸、トリアゾールヌクレオシドもしくはコルチコステロイドのような一または複数の慣用的な治療剤と組み合わせてまたは連続的にアンタゴニストを投与することによって改善することができる。このような他の薬剤は投与される組成物中に存在するかまたは別々に投与することができる。特に、浮腫又は脳卒中の治療では、アンタゴニストは、抗ウイルス剤、抗真菌剤又は駆虫剤、抗生物質、血栓溶解剤(例えばt−PA)、浸透圧治療剤(例えばマンニトール)、又はステロイド類(デカドロン又はプレドニゾン)と組み合わせてまたは連続して投与されうる。アンタゴニストと組み合わせられるこのような薬剤の使用は、医療従事者の通常の技量の範囲内で行われ、このような薬剤の選択は、例えば治療される疾患又は病状に依存する。
本願で提供されるさらなる治療方法では、hVEGFアンタゴニストは、特に脳卒中の治療において、hVEGFと連続して投与されることが考えられる。脳卒中の診断と検出の際には、hVEGFアンタゴニストは脳卒中の開始後直ちに又は約1〜4日内に投与され得る。浮腫形成を低減又は阻害するアンタゴニストの投与の完了に続いて、再血管形成を刺激又は促進させるのに十分な量のhVEGFを患者に投与することが有益であると考えられる。好ましくは、hVEGFはhVEGFの組換え形態であり、製薬的に許容可能な担体に投与される。
本発明の抗hVEGF抗体はまたアフィニティー精製剤としても有用である。この方法では、hVEGFに対する抗体を当該分野で周知の方法を使用して、セファデックス樹脂または濾紙のような適切な支持体上に固定する。次に、固定した抗体を精製すべきhVEGFを含有する試料と接触させ、その後、固定された抗体と結合しているhVEGF以外の試料中の物質を全て実質的に除去する適当な溶媒で支持体を洗浄する。最後に、抗体からhVEGFを放出させるグリシン緩衝液、pH5.0のような別の適当な溶媒を用いて支持体を洗浄する。
以下の実施例は説明のためだけに提供するものであって、決して本発明を限定することを意図するものではない。本明細書における全ての特許と引用文献はその全体が出典明示によってここに取り込まれる。
実施例1
抗hVEGFモノクローナル抗体の調製
免疫化用のキーホールリンペットヘモシアニン(KLH)と抱合したhVEGFを得るために、組換え体hVEGF(165アミノ酸)、リュング等、Science 246:1306(1989年)を0.05%グルタルアルデヒドの存在下4:1の比率でKLHと混合し、その混合物を穏やかに撹拌しながら室温で3時間インキュベートした。次に、この混合物をリン酸緩衝溶液(PBS)に対して4℃で一夜透析した。
Balb/cマウスを、腹腔内注射によって20μgのKLHと抱合した5μgのhVEGFで2週間毎に4回免疫化し、細胞融合前に4日間KLHと抱合した同一投与量のhVEGFで追加免疫した。
免疫したマウスから得た脾細胞を、P3X63Ag8U.1ミエローマ細胞、エルトン等、Curr.Top.Microbiol.Immunol.81:1(1978年)と、記載されたようにして35%のポリエチレングリコール(PEG)を使用して融合させた。ヤーマッシュ(Yarmush)等、Proc.Nat.Acad.Sci.77:2899(1980年)。ハイブリドーマをHAT培地中で選択した。
ハイブリドーマ細胞培養物から得た上清を、hVEGF被覆マイクロタイタープレートを使用するELISAアッセイによって抗hVEGF抗体産生のためにスクリーニングした。各ウエル中のhVEGFと結合した抗体を、アルカリホスファターゼ抱合ヤギ抗マウスIgG免疫グロブリンおよび色素産生基質p−ニトロフェニルホスフェートを使用して判定した。ハーロー(Harlow)およびレーン(Lane)、抗体:実験室マニュアル、597頁(Cold Spring Harbor Laboratory、1988年)。このようにして抗hVEGF抗体を産生すると判定されたハイブリドーマ細胞を限界希釈によってサブクローン化し、A4.6.1およびB2.6.2と命名した二種のクローンをさらなる実験のために選択した。
抗hVEGFモノクローナル抗体の特徴づけ
A.抗原特異性
A4.6.1およびB2.6.2ハイブリドーマによって産生された抗hVEGFモノクローナル抗体の結合特異性をELISAで測定した。モノクローナル抗体は、hVEGF、FGF、HGFまたは表皮増殖因子(EGF)で前もって被覆されたマイクロタイタープレートのウエルに加えた。ペルオキシダーゼ抱合ヤギ抗マウスIgG免疫グロブリンを用いて結合抗体を検出した。これらアッセイの結果、A4.6.1およびB2.6.2ハイブリドーマが産生したモノクローナル抗体はhVEGFとは結合するが他のタンパク質増殖因子とは検出できるほどには結合しないことが確認された。
B.エピトープマッピング
競合結合ELISAを使用して、A4.6.1およびB2.6.2ハイブリドーマが産生したモノクローナル抗体がhVEGF内の同一のエピトープ(部位)に結合するのかそれとも異なるエピトープ(部位)に結合するのかを決定した。キム等、Infect.Immun.57:944(1989年)。個々の非標識抗hVEGFモノクローナル抗体(A4.6.1またはB2.6.2)または無関係の抗HGF抗体(IgG1イソタイプ)を、hVEGFで前もって被覆されたマイクロタイタープレートのウエルに加えた。次に、ビオチン化抗hVEGFモノクローナル抗体(BIO−A4.6.1またはBIO−B2.6.2)を加えた。ビオチチニル化抗体対非標識抗体の比率は1:1000であった。ビオチン化抗体の結合は、アビジン抱合ペルオキシダーゼ、続いてo−フェニレンジアミンジヒドロクロリドおよび過酸化水素を添加して視覚化した。結合したビオチン化抗体の量を示す着色反応は、495nmの波長で光学密度(O.D.)を測定することにより決定した。
図1に示されるように、各々の場合に、ビオチン化抗hVEGF抗体の結合は対応する非標識抗体で阻止されたが、他の非標識抗hVEGF抗体または抗HGF抗体では阻止されなかった。これらの結果は、A4.6.1およびB2.6.2ハイブリドーマが産生したモノクローナル抗体がhVEGF内の異なったエピトープと結合することを示している。
A4.6.1およびB2.6.2ハイブリドーマが産生した抗hVEGFモノクローナル抗体のイソタイプをELISAで決定した。各ハイブリドーマが増殖している培地の試料(上清)をhVEGFで前もって被覆されたマイクロタイタープレートに加えた。捕捉された抗hVEGFモノクローナル抗体を、異なったイソタイプ特異性のアルカリホスファターゼ抱合ヤギ抗マウス免疫グロブリンと共にインキュベートし、抱合抗体と抗hVEGFモノクローナル抗体との結合をp−ニトロフェニルホスフェートを添加して測定した。着色反応をELISAプレート読取り器を用いて405nmで測定した。
上記方法によって、A4.6.1およびB2.6.2ハイブリドーマの両方で産生したモノクローナル抗体のイソタイプはIgG1であると決定された。
A4.6.1およびB2.6.2ハイブリドーマが産生した抗hVEGFモノクローナル抗体のhVEGFに対する親和性を競合結合アッセイで測定した。予め定めた最適以下の濃度のモノクローナル抗体を、20,000〜40,000cpmの125I−hVEGF(1〜2ng)および種々の既知量の非標識hVEGF(1〜1000ng)を含有する試料に加えた。室温で1時間後、100μlのヤギ抗マウスIg抗血清(米国アーカンソー州ロジャーズのPel−Freez)を加え、この混合物を室温でさらに1時間インキュベートした。抗体と結合タンパク質の複合体(免疫複合体)を、4℃で6%ポリエチレングリコール(PEG、モル分子量8000)を500μl添加し、続いて2000×G、4℃で20分間遠心分離して沈殿させた。各試料中の抗hVEGFモノクローナル抗体と結合した125I−hVEGFの量を、ペレット化した材料をガンマ計数器で計数することにより測定した。
親和性定数はスカッチャード分析によってデータから計算した。A4.6.1ハイブリドーマが産生した抗hVEGFモノクローナル抗体の親和性は1.2×109リットル/モルであると計算された。B2.6.2ハイブリドーマが産生した抗hVEGFモノクローナル抗体の親和性は2.5×109リットル/モルであると計算された。
ウシ副腎皮質毛細血管内皮(ACE)細胞、フェララ等、Proc,Nat.Acad.Sci.84:5773(1987年)を12個のマルチウエルプレート中に104細胞/mlの密度で接種し、2.5ng/mlのhVEGFを、A4.6.1もしくはB2.6.2ハイブリドーマが産生した種々の濃度の抗hVEGFモノクローナル抗体または無関係の抗HGFモノクローナル抗体の存在下または不存在下で各ウエルに加えた。5日間の培養後、各ウエルの細胞数をコールター(Coulter)計数器で計測した。対照として、hVEGFを添加しないでACE細胞を培養した。
図2に示されるように、抗hVEGFモノクローナル抗体は両方とも、添加したhVEGFがウシACE細胞の増殖または生存を支持する能力を阻害した。A4.6.1ハイブリドーマが産生したモノクローナル抗体はhVEGFの細胞分裂促進活性を完全に阻止する一方(約90%以上の阻止)、B2.6.2が産生したモノクローナル抗体はhVEGFの細胞分裂促進活性を部分的にしか阻止しなかった。
ウシACE細胞を、10%の仔ウシ血清、2mMのグルタミンおよび1ng/mlの塩基性線維芽細胞増殖因子を含有するダルベッコの修正イーグル培地(DMEM)中24のウエルのマイクロタイタープレートに2.5×104細胞/0.5ml/ウエルの密度で蒔いた。一夜培養した後、細胞を4℃で結合緩衝液(等量のDMEMおよびF12培地プラス25mMのHEPESおよび1%のウシ血清アルブミン)を用いて1回洗浄した。
12,000cpmの125I−hVEGF(約5×104cpm/ng/ml)を、A4.6.1、B2.6.2またはA2.6.1ハイブリドーマ(250μlの総容量)が産生した抗hVEGFモノクローナル抗体5μgと共に30分間予めインキュベートし、その後この混合物をマイクロタイタープレート中のウシACE細胞に加えた。細胞を4℃で3時間インキュベートした後、細胞を4℃で結合緩衝液を用いて3回洗浄し、0.5mlの0.2N、NaOHを添加して溶解させ、ガンマ計数器で計数した。
図3(上)に示されるように、A4.6.1およびB2.6.2ハイブリドーマが産生した抗hVEGFモノクローナル抗体はhVEGFとウシACE細胞の結合を阻止した。対照的に、A2.6.1ハイブリドーマが産生した抗hVEGFモノクローナル抗体はhVEGFとウシACE細胞の結合に与える明白な影響はなかった。上記した細胞増殖アッセイで得た結果と一致して、A4.6.1ハイブリドーマが産生したモノクローナル抗体はB2.6.2が産生したモノクローナル抗体よりさらに強くhVEGFの結合を阻止した。
図3(下)に示されるように、A4.6.1ハイブリドーマが産生したモノクローナル抗体は、1:250のhVEGF対抗体のモル比でhVEGFとウシACE細胞の結合を完全に阻止した。
A4.6.1ハイブリドーマが産生した抗hVEGFモノクローナル抗体がhVEGFの121−および189−アミノ酸形態と反応性であるかどうかを決定するために、これらのポリペプチドを免疫沈降させる能力について抗体をアッセイした。
ヒト293細胞を、上記したようにして、121−および189−アミノ酸hVEGFポリペプチドの配列をコードするヌクレオチドを有するベクターでトランスフェクションした。リュング等、Science 246:1306(1988年)。トランスフェクションして2日後、システインおよびメチオニンを欠く培地に細胞を移した。細胞を上記培地中で30分問インキュベートし、その後100μCi/mlの各35S−メチオニンおよび35S−システインを培地に加え、細胞をさらに2時間インキュベートした。細胞を無血清培地に移し、3時間インキュベートすることによって標識を追跡した。細胞培養培地を集め、溶解緩衝液(150mM NaCl、1% NP40、0.5%デオキシコレート、0.1%ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)、50mM トリス、pH 8.0)中で30分間インキュベートして細胞を溶解させた。細胞屑は、200×Gで30分間遠心分離して溶解物から除去した。
細胞培養培地および細胞溶解物の500μl試料を、2μlのA4.6.1ハイブリドーマ抗体(2.4mg/ml)と共に4℃で1時間インキュベートし、その後5μlのウサギ抗マウスIgG免疫グロブリンと共に4℃で1時間インキュベートした。35S−標識hVEGFと抗hVEGFモノクローナル抗体の免疫複合体をプロテインAセファロース(Pharmacia)で沈殿させ、その後還元条件下でSDS−12%ポリアクリルアミドゲル電気泳動を施した。免疫沈降させ、放射標識したタンパク質をオートラジオグラフィーで分析するため、ゲルをX線フィルムに露出させた。
上記分析の結果、A4.6.1ハイブリドーマが産生した抗hVEGFモノクローナル抗体がhVEGFの121−および189−アミノ酸形態の両方と交差反応性であることが示された。
VEGFレセプター−IgG融合タンパク質の調製
A.
flt hVEGFレセプターのヌクレオチドおよびアミノ酸コード化配列はシブヤ等、Oncogene 5:519-524(1990年)に開示されている。flt hVEGFレセプターの全細胞外ドメインのコード化配列を2段階方法でヒトIgG1重鎖のコード化配列に融合させた。
部位特異的突然変異誘発を使用して、fltのアミノ酸759のコドンに対して5’部位にfltをコードするDNA中にBstB1制限を導入し、プラスミドpBSSK’FC、ベネット等、J.Biol.Chem.266:23060-23067(1991年)の独特のBstEII制限部位をBstBI部位に変換した。改変したプラスミドをEcoRIおよびBstBIで消化し、得られたプラスミドDNAの大きいフラグメントを、flt hVEGFレセプターの細胞外ドメイン(アミノ酸1〜758)をコードするflt DNAのEcoRI−BstBIフラグメントと一緒にライゲートさせた。
得られた作成物を、ClaIおよびNotIで消化して約3.3kbのフラグメントを生成させ、次にこれをライゲーションによって哺乳動物発現ベクターpHEBO2(リュング等、Neuron 8:1045(1992年))の複数のクローニング部位に挿入する。3.3kbのフラグメントの末端を、例えばリンカーを加えて修飾して、正しい発現方向でのベクターへのフラグメント挿入がなされる。
哺乳動物宿主細胞(例えば、CEN4細胞(リュング等、上掲))をエレクトロポーレーションによってflt挿入物を含有するpHEBO2プラスミドでトランスフェクションする。トランスフェクションされた細胞を約10%のウシ胎児血清、2mMのグルタミンおよび抗生物質を含有する培地中で培養し、約75%の集密性で血清不含培地に移した。培地を収集前の3〜4日間馴化し、flt−IgG融合タンパク質を、本質的にベネット等、J.Biol.Chem.266:23060-23067(1991年)に記載されたようにして、プロテインAアフィニティーマトリックスでのクロマトグラフィーにかけて条件培地から精製する。
ヒトflt−IgG(hflt(1−3)−IgGと称する)cDNAを、デービス−スミス等、EMBO J. 15:4919-4927(1996年)に記載されているようにして作成した。この切断レセプター型には、Fc−IgGに融合したヒトfltの最初の3つの免疫グロブリン様ドメインのみが含まれていた。フェララ等、Nature Medicine 4:336(1998年)を参照。
ネズミflt−IgG(mflt(1−3)−IgGと称する)を、上掲のフェララ等に記載されているプライマーを使用し、マウスの17日齢の胚cDNAをPCR増幅させることにより作成した(Clontech, Palo Alto, CA)。3’PCRプライマーの設計により、mflt−1(1−3)の発現がネズミIgG2b Fcクローンと同じフレーム内であることが確実になった。得られた1−kbフラグメントを、C1aI−BstEIIフラグメントとしてTAクローニングベクター(インビトロゲン、サンティエゴ、CA)中に最初にクローニングした。このフラグメントをpRKベクター中でネズミIgG2b Fcの5'末端にライゲートさせた。哺乳動物細胞中にトランスフェクションしたとき、このプラスミドによりmflt(1−3)−IgG融合タンパク質の発現が可能になった。
CHO細胞中での発現のために、cDNAをdicistronicなベクター中でサブクローン化し、flt誘導融合タンパク質の発現に、マーカーであるジヒドロホラートレダクターゼの発現を関連させる。ルカス(Lucas)等、Nucleic Acid れS。24:1774-1779(1996年)を参照。プラスミドをリポフェクションを介して、DP12細胞、エル・チャシン(L. Chasin)(コロンビア大学、ニューヨーク)により開発されたCHO−K1DUXB11細胞系の誘導体に導入し、グリシン−ヒポキサンチン−チミジン(G−H−T)不含培地で増殖させるように選択した。チショルム(Chisholm)等、DNAクローニング 4:実用的アプローチ、哺乳動物系(eds. Glover & Hames)、1-39頁(Oxford Press、1995年)。続いて、第1ラウンドの選択からのクローンをメトトレキサートの濃度を増加させて培養した。ついで、クローンをヒト又はネズミFcのELISAによる生産のためにスクリーニングした。最も高い生産性を示したクローンを懸濁培養用にし、無血清培養物を収集し、プロテインA−セファロースで精製した。タンパク質濃度をアミノ酸分析により決定した。最終的に精製された物質のエンドドキシン含有量は0.5eu/mgを超えていなかった。
上掲のフェララ等に記載されたように、ネズミflt(1−3)−IgG融合タンパク質とヒトflt(1−3)−IgG融合タンパク質は両方とも試験した齧歯動物モデルにおいてVEGFの生物活性を阻害する活性を有していた。
hVEGFアンタゴニストによる腫瘍増殖の阻止
培養物中で増殖している様々なヒト腫瘍細胞株をhVEGFの産生についてELISAでアッセイした。卵巣、肺、大腸、胃、乳および脳腫瘍細胞株はhVEGFを産生することが分かった。さらなる試験のために、hVEGFを産生した3つの細胞株、NEG55(G55とも称される)(G55とも称される)(ドイツ、ハンブルグのエッペンドル大学病院神経外科部のM.ウエストファル(Westphal)医師から得たヒト神経膠腫細胞株)、A−673(細胞株番号CRL 1598としてアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(ATCC)から取得したヒト横紋筋肉腫細胞株)およびSK−LMS−1(細胞株番号HTB 88としてATCCから取得した平滑筋肉腫細胞株)を使用した。
生後6〜10週齢の雌ベージュ/ヌードマウス(米国マサチューセッツ州ウィルミントンのCharles River Laboratory)に100〜200μlのPBS中1〜5×106個の腫瘍細胞を皮下注射した。腫瘍増殖を確立した後種々の時間で、種々の投与量のA4.6.1抗hVEGFモノクローナル抗体、無関係の抗gp120モノクローナル抗体(5B6)またはPBSを1週間当たり1回または2回マウスに腹腔内注射した。腫瘍サイズを毎週測定し、試験終結時に腫瘍を切開し重量を測定した。
マウスのNEG55腫瘍の増殖に与える種々の量のA4.6.1抗hVEGFモノクローナル抗体の効果を図4および図5に示す。図4は、NEG55細胞を接種して1週間後に開始し25μgまたは100μgのA4.6.1抗hVEGFモノクローナル抗体で治療したマウスを無関係の抗体またはPBSで治療したマウスと比較したとき、腫瘍増殖速度が大幅に減少していたことを示している。図5は、NEG55細胞を接種して5週間後に、A4.6.1抗hVEGF抗体で治療したマウスの腫瘍の大きさが無関係抗体またはPBSで治療したマウスの腫瘍の大きさより約50%(25μg投与量の抗体で治療したマウスの場合)から85%(100μg投与量の抗体で治療したマウスの場合)小さかったことを示している。
マウスのSK−LMS−1腫瘍の増殖に与えるA4.6.1抗hVEGFモノクローナル抗体治療の効果を図6に示す。SK−LMS−1細胞を接種して5週間後に、A4.6.1抗hVEGF抗体で治療したマウスの腫瘍の大きさは、無関係抗体またはPBSで治療したマウスの腫瘍の大きさより約75%小さかった。
マウスのA673腫瘍の増殖に与えるA4.6.1抗hVEGFモノクローナル抗体治療の効果を図7に示す。A673細胞を接種して4週間後に、A4.6.1抗hVEGF抗体で治療したマウスの腫瘍の平均的な大きさは、無関係抗体またはPBSで治療したマウスの腫瘍の大きさより約60%(10μg投与量の抗体で治療したマウスの場合)から90%以上(50〜400μg投与量の抗体で治療したマウスの場合)小さかった。
培養物中で増殖している腫瘍細胞に与える 抗hVEGF抗体の直接的な効果の分析
NEG55ヒト神経膠腫細胞またはA673横紋筋肉腫細胞を、10%のウシ胎児血清、2mMのグルタミンおよび抗生物質を含有するF12/DMEM培地のマルチウエルプレート(12ウェル/プレート)中に7×103細胞/ウエルの密度で蒔いた。次に、A4.6.1抗hVEGF抗体を最終濃度が0〜20.0μgの抗体/mlになるように細胞培養物に加えた。5日後、ウエル内で増殖している細胞を、トリプシンに暴露して分離させ、コールター計数器で計数した。
図8および9はこれらの試験結果を示す。明らかなように、A4.6.1抗hVEGF抗体は、培養物中のNEG55またはA673細胞の増殖に対して何ら有意な効果を有していなかった。これらの結果は、A4.6.1抗hVEGF抗体が細胞毒性でないことを示しており、抗体の観察された抗腫瘍効果はVEGF媒介性新血管形成の阻止によるものであることを強く示唆している。
内皮細胞走化性に与える抗hVEGF抗体の効果
内皮細胞並びに単球およびリンパ球を含む他の細胞の走化性は関節リウマチの病原において重要な役割を果たしている。内皮細胞の遊走および増殖はリウマトイド滑膜内で生じる脈管形成を伴う。血管形成性組織(パンヌス)は関節軟骨に侵入し、これを破壊する。
hVEGFアンタゴニストがこのプロセスを妨げるかどうかを決定するために、我々は、関節リウマチの患者から得た滑液で刺激した内皮細胞の走化性に与えるA4.6.1抗hVEGF抗体の効果をアッセイした。対照として、我々は骨関節炎(関節リウマチで生じる脈管形成は骨関節炎では生じない)患者から得た滑液で剌激した内皮細胞の走化性に与えるA4.6.1抗hVEGF抗体の効果もアッセイした。
内皮細胞の走化性は確立された方法に従って、変更したボイデンチャンバーを使用してアッセイした。トンプソン(Thompson)等、Cancer Res.51:2670(1991年);フィリップス(Phillips)等、Proc.Exp.Biol.Med.197:458(1991年)。約104個のヒト臍静脈内皮細胞を、0.1%のウシ胎児血清を含有する培養培地の48ウエルのマルチウエルマイクロチェンバー中でゼラチン被覆フィルター(0.8ミクロンの孔サイズ)に接着させた。約2時間後、チャンバーを逆さにし、試験試料(関節リウマチ滑液、骨関節炎滑液、塩基性FGF(bFGF))(1μg/mlの最終濃度までか、またはPBS)およびA4.6.1抗hVEGF抗体(10μg/mlの最終濃度まで)をウエルに加えた。2ないし4時間後、遊走した細胞を染色しそして計数した。
図10は上記の試験の平均化した結果を示すものである。「滑液」と表示した欄および対照に関する頁の下部に示された値は滑液、bFGFまたはPBS単独の存在下で遊走した内皮細胞の平均数である。「滑膜液+mAB VEGF」と表示した欄の値は、滑液プラス添加したA4.6.1−抗hVEGF抗体の存在下で遊走した内皮細胞の平均数である。「抑制%]と表示した欄の値は、抗hVEGF抗体の添加により生じた滑液誘発内皮細胞遊走の低下パーセントを示す。示されているように、抗hVEGF抗体は、関節リウマチの滑液が内皮細胞の遊走を誘発する能力を有意に阻止する(平均53.40パーセントの阻止)が、骨関節炎の滑液はそうではなかった(平均13.64パーセントの阻止)。
脳浮腫に与えるアンタゴニストの効果
インビボアッセイを行い、脳浮腫に与えるflt−IgGアンタゴニストの効果を測定した。BBB完全性の喪失と脳浮腫形成により脳梗塞がしばしば生じる。虚血性脳卒中におけるBBBの破壊は、主として、脳卒中開始の最初の24時間後に生じると考えられている。さらに、急性虚血の発生に続く血流の迅速で十分な復活という有益な効果は、BBBを含む脳微小血管に対する再灌流損傷によって台無しになると信じられており、脳浮腫の形成に寄与する。クラトゾ(Klatzo)等、Eds., Brain Edema, Tokyo, Springer(1984年),1〜5頁。以下に記載するインビボアッセイは、臨床状態のこれら側面を反映するように計画された。
図11に示すように、flt−Igの投与により、虚血開始の1日後に得られたT2加重MRIスキャン上の超強度領域により定められた脳浮腫容積の有意な低減が引き起こされた(27%低減、p=0.01スチューデントt検定、対照及び治療群のそれぞれにおいてn=15及びn=16)。反対側と比べて高信号強度領域として皮質浮腫の出現を示す代表的なT2加重MR画像を図12に示す。このモデルにおいては、虚血ダメージの進行により、空洞形成及び皮質組織の喪失に至る。よって、梗塞の最大容量は、影響を受けていない皮質の量を描き、反対側の半球と比較することにより、高分解能解剖用画像から推定することができる。図13に示すように、皮質梗塞のサイズは、8−12週後に測定したところでは、flt−IgGの投与により有意に低減している(梗塞のサイズで26%低減、p=0.009ステューデントt検定、対照及び治療群のそれぞれにおいてn=11及びn=14)。MRIにより測定された梗塞のサイズと、常套的な組織学を使用して測定された梗塞のサイズとの間には良好な相関関係があった(R2=.633)。従って、治療された動物では脳浮腫の発達が低減されることが示されており、これはさらに神経保護の増大をもたらす。これらの結果には、VEGFの生物学的活性を阻害することで、虚血−再灌流関連脳浮腫及び損傷を低減可能であることが示されている。
1. 有効量のhVEGFアンタゴニストを哺乳動物に投与することを含む浮腫を患っている哺乳動物の治療方法。
2. 前記浮腫が脳浮腫を含む実施態様1に記載の方法。
3. 前記哺乳動物がさらに新生物疾患を患っているヒトである実施態様1に記載の方法。
4. 前記新生物疾患が脳腫瘍を含む実施態様3に記載の方法。
5. 前記hVEGFアンタゴニストを化学療法又は放射線療法と組み合わせるか又は連続して前記哺乳動物に投与する実施態様4に記載の方法。
6. 前記哺乳動物が、さらに脳卒中を被っているか、又は被ったことのあるヒトである実施態様1に記載の方法。
7. 前記hVEGFアンタゴニストが抗hVEGF抗体を含む実施態様1に記載の方法。
8. 前記抗hVEGF抗体がキメラ抗体を含む実施態様7に記載の方法。
9. 前記抗hVEGF抗体がヒト化抗体を含む実施態様7に記載の方法。
10. 前記抗体がモノクローナル抗体を含む実施態様7に記載の方法。
11. 前記hVEGFアンタゴニストがhVEGFレセプター融合タンパク質を含む実施態様1に記載の方法。
12. 前記hVEGFレセプター融合タンパク質が、免疫グロブリンに融合したhVEGFレセプターの細胞外ドメイン配列を含む実施態様11に記載の方法。
13. 前記hVEGFレセプター融合タンパク質がflt−IgG融合タンパク質を含む実施態様12に記載の方法。
14. 有効量のhVEGFアンタゴニストを哺乳動物に投与することを含む、脳卒中を被っているか、又は被ったことのある哺乳動物の治療方法。
15. 前記hVEGFアンタゴニストが抗hVEGF抗体を含む実施態様14に記載の方法。
16. 前記抗hVEGF抗体がキメラ抗体を含む実施態様15に記載の方法。
17. 前記抗hVEGF抗体がヒト化抗体を含む実施態様15に記載の方法。
18. 前記抗体がモノクローナル抗体を含む実施態様15に記載の方法。
19. 前記hVEGFアンタゴニストがhVEGFレセプター融合タンパク質を含む実施態様14に記載の方法。
20. 前記hVEGFレセプター融合タンパク質が、免疫グロブリンに融合したhVEGFレセプターの細胞外ドメイン配列を含む実施態様19に記載の方法。
21. 前記hVEGFレセプター融合タンパク質がflt−IgG融合タンパク質を含む実施態様20に記載の方法。
22. 有効量のhVEGFアンタゴニストを哺乳動物に投与することを含む脳浮腫を患っている哺乳動物の治療方法。
23. 前記hVEGFアンタゴニストが抗hVEGF抗体を含む実施態様22に記載の方法。
24. 前記抗hVEGF抗体がキメラ抗体を含む実施態様23に記載の方法。
25. 前記抗hVEGF抗体がヒト化抗体を含む実施態様23に記載の方法。
26. 前記抗体がモノクローナル抗体を含む実施態様23に記載の方法。
27. 前記hVEGFアンタゴニストがhVEGFレセプター融合タンパク質を含む実施態様22に記載の方法。
28. 前記hVEGFレセプター融合タンパク質が、免疫グロブリンに融合したhVEGFレセプターの細胞外ドメイン配列を含む実施態様27に記載の方法。
29. 前記hVEGFレセプター融合タンパク質がflt−IgG融合タンパク質を含む実施態様28に記載の方法。
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- 有効量のhVEGFアンタゴニストを哺乳動物に投与することを含む、浮腫を有する哺乳動物の治療方法。
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