JP2006506974A - ポックスウイルスおよび癌に関する方法および組成物 - Google Patents
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Abstract
Description
1.発明の分野
本発明は全体的に、腫瘍学およびウイルス学の分野に関する。より詳しく述べると、本発明は、それによって特に癌の治療に適するようになる一つまたはそれ以上の変異を含む、特にワクシニアウイルスを含むポックスウイルスに関する。
正常組織の恒常性は、細胞増殖および細胞死の高度に調節されたプロセスである。細胞増殖または細胞死のいずれかの不均衡は、癌様状態に発展しうる(Solyanikら、1995;Stokkeら、1997;Mumby and Walter、1991;Natoliら、1998;Magi-Galluzziら、1998)。例えば、子宮頚癌、腎臓癌、肺癌、膵臓癌、結腸直腸癌、および脳癌は、起こりうる多くの癌のごく少数の例である(Erlandsson、1998;Kolmel、1998;Mangray and King、1998;Gertig and Hunter、1997;Mouginら、1998)。実際に、癌の発生は非常に高く、米国だけでも毎年500,000人以上の死亡は癌が原因である。
本発明は、1)異なる細胞集団または組織タイプに異なるように影響を及ぼす物質を作製するため、および/または2)感染細胞からの放出の改善によって、より感染性が高く他の細胞に感染することができる型のポックスウイルスを作製するために、ポックスウイルスを改変することができるという発見に基づいている。本発明のポックスウイルス、例えばワクシニアウイルスのコペンハーゲン株は、他の治療(例えば、化学療法)と相乗的に作用して、TNFおよび/またはINF経路に反対するまたは阻害することなく、腫瘍血管をターゲティングすることによって有用な作用を提供する可能性がある。任意の株のワクシニアウイルスを用いてもよいと特に企図される。特定の態様において、ワクシニアウイルスのコペンハーゲン株またはその誘導体も同様に企図される。
a)機能的な第一のインターフェロン調節ポリペプチド;
b)機能的補体制御ポリペプチド;
c)機能的TNF調節ポリペプチド;
d)機能的セリンプロテアーゼ阻害剤;
e)機能的IL-1β調節ポリペプチド;
f)機能的な非感染性EEV型ポリペプチド;
g)機能的なA41L、B7R、N1L、もしくはvCKBPケモカイン結合ポリペプチドまたはC11R EGF様ポリペプチド。
a)補体制御ポリペプチド機能;
b)TNF調節機能;
c)セリンプロテアーゼ阻害剤機能;
d)IL-1β調節機能;
e)抗感染性EEV型機能;または
f)A41L、B7R、N1Lおよび/またはvCKBPケモカイン調節機能またはC11R EGF様機能。
a)インターフェロン調節機能;
b)補体制御ポリペプチド機能;
c)TNF調節機能;
d)セリンプロテアーゼ阻害機能;
e)IL-1β調節機能;
f)機能的抗感染性EEV型ポリペプチド;または
g)機能的A41L、B7R、N1L、もしくはvCKBPケモカイン結合ポリペプチドまたはC11R EGF様ポリペプチド。
本発明は、癌の治療のための腫瘍細胞破壊性ポックスウイルスに関する。ポックスウイルスは、癌細胞を殺すためにより有効またはより効率的となるように、および/または非癌細胞に対してより毒性が低く、または損傷が少なくなるように操作することができる。より詳しく述べると、ポックスウイルスは、改変によってウイルスが宿主によりよく感染することができるように、または癌細胞によりよく感染することができるように、遺伝子産物を改変するように変異させてもよい。
ウイルスは、しばしばインターフェロン(-α、-β、-γ)および腫瘍壊死因子-α(TNF)(Mossら、1996)のような免疫調節分子によって不活化、阻害、または排泄される。宿主組織および炎症免疫細胞はしばしば、ウイルス感染に反応してこれらの分子を分泌する。これらの分子は、直接の抗ウイルス作用を有しうる、および/または炎症細胞およびリンパ球の動員および/または活性化を通して間接的な作用を有しうる。これらの免疫学的排泄メカニズムの重要性を考慮すると、ウイルスは、これらのサイトカイン/ケモカインおよびインターフェロンの誘導および/または機能を阻害する遺伝子産物の発現に関与する。例えば、ワクシニアウイルス(VV;およびいくつかの他のポックスウイルス)は、CCケモカイン(例えば、RANTES、エオタキシン、MIP-1-α)に結合して阻害する分泌型タンパク質vCKBP(B29R)をコードする(Alcamiら、1998)。いくつかのVV株も同様に、TNFに結合して不活化する分泌型ウイルスタンパク質(例えば、リスターA53R)を発現する(Alcamiら、1999)。ほとんどのポックスウイルス株は、インターフェロン-α/β(例えば、B18R)またはインターフェロン-γ(B8R)に結合してその機能を阻害する分泌型蛋白質をコードする遺伝子を有する。vC12Lは、IL-18によるIFN-γおよびNK細胞/細胞障害性T細胞活性化の誘導を妨害するIL-18結合タンパク質である。
1.インターフェロン調節ポリペプチド
インターフェロン-α/βは、いくつかのメカニズムを通してウイルス複製を遮断する。インターフェロン-γは、直接のウイルス阻害作用はより弱いが、いくつかのメカニズムを通して細胞媒介免疫の強力な誘導物質である。ウイルスは、インターフェロンの抗ウイルス作用に拮抗できる分泌型遺伝子産物を発現するように進化した。例えば、ワクシニアウイルス(および他のポックスウイルス)は、インターフェロン-γおよびα/βにそれぞれ結合する分泌型蛋白質B8RおよびB18Rをコードする(Smithら、1997;Symonsら、1995;Alcamiら、2000)。インターフェロン誘導を減少させるワクシニア遺伝子産物のさらなる例は、インターフェロン-γ誘導因子であるIL-18の活性化を阻害するカスパーゼ-1阻害剤B13Rである。インターフェロン調節ポリペプチドには、ワクシニアウイルスのコペンハーゲン株のような、他のウイルス株ではB19Rと呼ばれることもあるB18R;B8R;B13R;vC12L;A53R;E3Lおよび類似の活性または特性を有する他のウイルスポリペプチドが含まれるがこれらに限定されない。IFN調節ポリペプチドは、選択的にIFNαおよび/またはβ経路を調節するポリペプチド(B18R、B8R、B13R、またはvC12Lのような)、およびIFNγ経路を調節するポリペプチド(例えば、B8R、B13R、またはvC12L)の非排他的分類に分類してもよい。
ウイルス病原体の排泄に関する主なメカニズムは、補体依存的メカニズムによって宿主細胞内の感染細胞または生物内のビリオンを殺すことである。感染細胞は死滅するため、感染ウイルスを産生し続けることは不可能である。さらに、アポトーシスの際に、DNAを分解する細胞内酵素が放出される。これらの酵素によってウイルスDNAの分解およびウイルスの不活化が起こりうる。アポトーシスは、活性化された補体の結合および補体膜攻撃複合体を含む多数のメカニズムによって誘導することができる。ワクシニアのようなポックスウイルスは、ウイルスおよび/またはウイルス感染細胞の補体媒介排泄に拮抗することができる遺伝子産物を発現するように進化した。これらの遺伝子はそれによってアポトーシスを阻害して、補体依存的メカニズムによってウイルス排泄を阻害し、このように、ウイルス感染を進行させて、ウイルスのビルレンスを増加させることができる。例えば、ワクシニアウイルス補体制御タンパク質(VCP;例えばC21L)は、補体媒介殺細胞および/またはウイルス不活化の防止において役割を有する(Isaacsら、1992)。VCPはまた、その発現によってウイルス感染組織への白血球の浸潤が減少することから、抗炎症作用も有する。補体制御ポリペプチドには、C3LまたはC21Lとしても知られるVCPが含まれるがこれらに限定されない。
ウイルス病原体の排泄に関する様々なメカニズムの一つは、上記のようにアポトーシスの誘導によって宿主内で感染細胞を殺すことである。アポトーシスは、細胞内シグナル伝達カスケードの誘因となる細胞TNF受容体に対するTNFおよびリンフォトキシン-α(LTα)の結合を含む、多数のメカニズムによって誘導することができる。TNF受容体の活性化は、免疫および炎症反応の調節と共にアポトーシス細胞死の誘導において機能する(Wallachら、1999)。
ウイルス病原体の排泄に関する主なメカニズムは、宿主における感染細胞のアポトーシスの誘導である。感染細胞は死滅するため、感染ウイルスを産生し続けることは不可能である。さらに、アポトーシスの際に、DNAを分解する細胞内酵素が放出される。これらの酵素はウイルスDNAの分解およびウイルスの不活化を引き起こしうる。アポトーシスは、サイトカイン(例えば、腫瘍壊死因子)の結合、細胞障害性Tリンパ球によるグランザイム産生、またはfas-リガンド結合を含む多数のメカニズムによって誘導することができる;カスパーゼ活性化は、最終的に一般的なアポトーシス経路の重要な部分である。ウイルスは、fasリガンドまたは腫瘍壊死因子(TNF)/TNF関連分子(例えば、アデノウイルスのE3 10.4/14.5、14.7遺伝子(Woldら、1994);アデノウイルスのE1B-19 kD(Boydら、1994);牛痘ウイルスからのcrmA;ワクシニアウイルスからのB13R)を含むそのような分子によって誘導される細胞内シグナル伝達カスケードに拮抗することができる遺伝子産物を発現するように進化した(Dobbelsteinら、1996;Kettleら、1997)。これらの遺伝子産物は、アポトーシス誘導分子によるアポトーシスを阻害して、このように抗ウイルス性のアポトーシス誘導サイトカイン、fas、グランザイム、または他のアポトーシス刺激物質の存在にもかかわらず、ウイルス複製を進行させる。
IL-1βは、局所そして全身性に作用する生物活性因子である。IL-1βとIL-1αとのあいだの機能的な差はごくわずかであることが記述されている。IL-1βの多数の生物活性の例は、IL-1を記述する際の多くの異なる頭字語によって示されている。IL-1は、ブタ細胞において不活性であるヒトIL-1βを例外として種特異性を示さない。IL-1の生物活性のいくつかは、ACTH(コルチコトロピン)、PGE2(プロスタグランジンE2)、PF4(血小板因子-4)、CSF(コロニー刺激因子)、IL-6、およびIL-8を含む他のメディエータの合成の誘導によって間接的に媒介される。IL-1の合成は、TNF-α、IFN-α、IFN-βおよびIFN-γを含む他のサイトカインによって誘導される可能性があり、同様に細菌エンドトキシン、ウイルス、マイトゲンおよび抗原によって誘導される可能性がある。IL-1の主な生物活性は、T-ヘルパー細胞の刺激であり、これはIL-2を分泌して、IL-2受容体を発現するように誘導される。ウイルス感染マクロファージは、大量のIL-1阻害剤を産生し、これはT細胞成熟欠損患者における日和見感染および細胞のトランスフォーメーションを支持する可能性がある。IL-1は、B細胞に直接作用して、その増殖および免疫グロブリンの合成を促進する。IL-1はまた、B細胞をIL-5に対して反応性にするプライミング因子の一つとしても機能する。IL-1は、NK細胞および線維芽細胞、胸腺細胞、神経膠芽細胞の増殖および活性化を刺激する。
ウイルスは伝幡して腫瘍部位に転移し、さらに感染した固形腫瘍塊内でも伝幡するが、一般的に非効率的である(Heiseら、1999)。静脈内投与では典型的に、抗体(例えば、アデノウイルス)(Kayら、1997)および/または補体系(例えば、HSV)(Ikedaら、1999)によるウイルスの排泄または不活化が起こる。これらの免疫媒介メカニズムの他に、これらのウイルスの生体内分泌によって、腫瘍塊よりむしろ正常組織内で静脈内ウイルスの大多数が沈着する。例えば、静脈内のアデノウイルスは、主に肝臓および脾臓にたどり着く;免疫欠損マウスにおいても、腫瘍内に沈着するのは投与されたウイルスの0.1%未満である(Heiseら、1999)。したがって、免疫欠損マウスの腫瘍モデルにおいて、極端に高い相対量によって何らかの控えめな抗腫瘍有効性が証明されうるものの、静脈内輸送は極めて非効率的であり、有効性を有意に制限する。
他のウイルス免疫調節ポリペプチドには、免疫応答の他のメディエータに結合しておよび/または免疫応答に関連した分子経路を調節するポリペプチドが含まれてもよい。例えば、B29R(このタンパク質は存在するが、ワクシニアウイルスのコペンハーゲン株では不活性である可能性がある)、C23L、vCKBP、A41Lおよび類似の活性または特性を有するポリペプチドのようなケモカイン結合ポリペプチド。ウイルスEGF様増殖因子であるワクシニアウイルス増殖因子(例えば、C11L)のような他のワクシニアウイルスタンパク質も同様に、本発明のいくつかの態様において改変の標的となる可能性がある。ウイルス調節因子として分類されてもよい他のポリペプチドには、B7R、N1L、またはその活性もしくは特性がポックスウイルスのビルレンスを増加させる他のポリペプチドが含まれるがこれらに限定されない。
本発明の特定の態様において、A56RまたはK2Lコード核酸遺伝子の改変、欠失、または変異によって、VV感染症によって誘導される細胞細胞融合または融合体形成が起こる可能性がある。ワクシニアウイルス誘導細胞融合は典型的に、腫瘍内ウイルス伝幡によりVVの抗腫瘍効率を増加させるであろう。細胞融合による腫瘍内のウイルス伝幡によって、典型的に、ウイルスは中和抗体および免疫応答を回避することができるであろう。隣接する非感染細胞(すなわち、「傍観者作用」)の殺細胞および感染は、これらの遺伝子の一つまたは双方において変異を有するVVではより効率的となる可能性があり、それによって改善された局所抗腫瘍効果が得られる可能性がある。
ワクシニアウイルスは、ポックスウイルス科、チョルドポックスウイルス亜科およびオルトポックスウイルス属のメンバーである。オルトポックスウイルス属は、チョルドポックスウイルス亜科の他のメンバーより比較的均一であり、これには、ワクシニアウイルス、痘瘡ウイルス(天然痘の原因物質)、牛痘ウイルス、バッファロー痘ウイルス、サル痘ウイルス、マウス痘ウイルス、およびウマ痘ウイルス種と共にその他が含まれる、異なるが近縁の11種が含まれる(Moss、1996を参照されたい)。本明細書において記述されるように本発明の特定の態様は、オルトポックスウイルス属の他のメンバーのみならず、パラポックスウイルス、アビポックスウイルス、カプリポックスウイルス、レポリポックスウイルス、スイポックスウイルス、モルシポックスウイルス、およびヤタポックスウイルス属に拡大してもよい。ポックスウイルス科の属は、一般的に、実験動物における中和および交叉反応性を含む血清学的手段によって定義される。オルトポックスウイルス属の様々なメンバーと共にチョルドポックスウイルス亜科の他のメンバーは、宿主生物の免疫応答に拮抗するために免疫調節分子を利用し、その例を本明細書において提供する。このように、本明細書に記述の本発明は、ワクシニアウイルスに限定されないが、多くのウイルスに応用可能である可能性がある。
ワクシニアウイルスは、参照として本明細書に組み入れられる、Ausbelら、「Current Protocols in Molecular Biology」、16.15.1〜16.18.10頁においてEarlおよびMossによって記述された方法を用いて増殖させてもよい。
本発明は、患者における癌細胞および癌の試験および治療において都合がよいポックスウイルスに関する。これは、ウイルスが癌細胞に対して用いるために所望の特性を有するが、非癌細胞に対しては毒性が低い、または非毒性となるように、野生型と比較して一つまたはそれ以上の変異を有するように構築されたポックスウイルス、特にワクシニアウイルスに関する。下記の教示は、例として、本発明の方法および組成物を実行するための様々なプロトコールを提供する。それらは、組換えDNA技術を用いて変異ウイルスを作製するためのバックグラウンドを提供する。
特定の態様において、本発明は、一つまたはそれ以上の機能的ポリペプチドまたはタンパク質を欠損するポックスウイルスを作製すること、および/または感染性のEEV型のようなウイルスの特定の型をより多く放出する能力を有するポックスウイルスを産生することに関する。他の態様において、本発明は、ポックスウイルスに関し、および薬学的に許容される製剤の一部としての蛋白質様組成物と併用してそれらを利用することに関する。
本出願がウイルスタンパク質またはポリペプチドの機能または活性に言及する場合、特に明記していない限り、生理的条件でのウイルスタンパク質またはポリペプチドの活性または機能を指すと意味する。例えば、インターフェロン調節ポリペプチドは、少なくとも一つのインターフェロンおよびその活性に直接または間接的に影響を及ぼすポリペプチドを指す。ポリペプチドは、インターフェロンの活性を直接または間接的に誘導、増強、上昇、増加、減少、弱化、低下、阻害、または隠す可能性がある。インターフェロンに直接影響を及ぼす例は、いくつかの態様において、インターフェロンに特異的に結合するインターフェロン調節ポリペプチドを含む。どの分子がこの活性を有するかを決定することは、当業者に周知のアッセイを用いて行ってもよい。例えば、インターフェロンまたはその変種を調節する産物をコードする遺伝子を、そのような遺伝子の移入を有する細胞と比較してインターフェロン活性が誘導されている細胞に移入して、インターフェロン反応の異なるレベルによって、インターフェロン調節機能を有するそれらの分子を同定してもよい。
本発明のポリペプチドのアミノ酸配列変種は、置換、挿入、または欠失変種となりうる。ウイルスタンパク質をコードする遺伝子における変異は、野生型と比較して、ポリペプチドの1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99、100、110、120、130、140、150、160、170、180、190、200、210、220、230、240、250、275、300、325、350、375、400、425、450、475、500個またはそれ以上の非隣接または隣接アミノ酸に影響を及ぼしてもよい。ワクシニアウイルスによってコードされる様々なポリペプチドは、そのそれぞれが参照として本明細書に組み入れられる、Roselら、1986、Goebelら、1990、およびGenbankアクセッション番号NC_001559号を参照して同定される可能性がある。
A.天然のタンパク質または改変タンパク質をコードするポリヌクレオチド
本発明は、タンパク質またはポリペプチドの全てまたは一部を発現することができる、細胞から単離可能なポリヌクレオチドに関する。本発明のいくつかの態様において、これは、特定の機能的ウイルスポリペプチドを欠損するウイルスを作製するように特異的に変異させたウイルスゲノムに関する。ポリヌクレオチドは、ウイルスアミノ酸配列の全てもしくは一部を含むペプチドもしくはポリペプチドをコードしてもよく、またはそれらがそのようなウイルスポリペプチドをコードしないように、もしくは少なくとも一つの機能もしくは活性が低下、減少もしくは存在しないウイルスポリペプチドをコードするように操作してもよい。組換え型蛋白質は、活性なタンパク質を生じるように発現細胞から精製することができる。ゲノムは、ワクシニアウイルスのコード領域に関する定義と同様に、そのそれぞれが参照として本明細書に組み入れられる、Roselら、1986、Goebelら、1990、および/またはGenbankアクセッション番号NC_00159号において認められる可能性がある。
様々な態様において、ポックスウイルスポリヌクレオチドを改変してもよくまたは変異誘発してもよい。改変または変異には、挿入、欠失、点突然変異、逆位等が含まれてもよく、それによって特定の経路または分子メカニズムの調節、活性化、および/または不活化と共に、特に遺伝子産物を非機能的にするような、遺伝子産物の機能、位置、または発現の変化が起こってもよい。用いられる場合、ポックスウイルスの全てまたは一部をコードするポリヌクレオチドの変異誘発は、多様な標準的な変異誘発技法によって行ってもよい(Sambrookら、1989)。変異は、それによって生物の量または構造に変化が起こるプロセスである。変異は、単一の遺伝子、遺伝子のブロックまたは染色体全体のヌクレオチド配列の改変を含みうる。単一の遺伝子における変化は、DNA配列内の一つのヌクレオチド塩基の除去、付加、もしくは置換を含む点突然変異の結果であってもよく、またはそれらは多数のヌクレオチドの挿入もしくは欠失を含む変化の結果であってもよい。
a)挿入変異誘発
挿入変異誘発は、既知のDNA断片の挿入による遺伝子の不活化に基づく。これはいくつかのタイプのDNA断片の挿入を含むことから、生成された変異は一般的に、機能獲得変異よりはむしろ機能喪失変異である。しかし、機能獲得変異を生じる挿入にはいくつかの例がある。挿入的変異は細菌およびショウジョウバエ(Cooleyら、1988)において非常に成功しており、近年トウモロコシ(シロイヌナズナ(Arabidopsis;(Marksら、1991;Konczら、1990);およびキンギョソウ(Sommerら、1990)において強力なツールとなった。挿入変異誘発は、標準的な分子生物学技術を用いて行ってもよい。
化学的変異誘発は、表現型の重症度が異なる広範な変異を発見する能力のような特定の長所を提供し、実施が容易で安価である。多数の化学的発癌物質がDNAにおいて変異を生じる。ベンゾ[a]ピレン、N-アセトキシ-2-アセチルアミノフルオレンおよびアフロトキシンB1は、細菌および哺乳類細胞においてGCからTAのトランスバージョンを引き起こす。ベンゾ[a]ピレンはまた、ATからTAのような塩基置換を生じうる。N-ニトロソ化合物は、GCからATの転移を生じる。n-ニトロソウレアへの暴露によるチミンのO4位置でのアルキル化によって、TAからCGの転移が起こる。
生体分子は電離放射線によって分解される。入射エネルギーの吸着によって、イオンおよびフリーラジカルの形成が起こり、いくつかの共有結合の切断が起こる。放射線障害に対する感受性は、分子間で、そして同じ分子であっても異なる結晶構造間で非常に多様であるように思われる。これは、総蓄積線量に依存し、同様に線量率にも依存する(フリーラジカルが存在する場合、それらが引き起こす分子の損傷はその本来の拡散速度およびこのようにリアルタイムに依存する)。損傷は、試料を可能な限り低温にすることによって減少および制御される。電離放射線は、一般的に線量率に比例してDNA損傷を引き起こす。
ランダム変異誘発はまた、誤りがちなPCRを用いて導入してもよい。変異誘発率は、鋳型の希釈液を含む多数の試験管においてPCRを行うことによって増加させてもよい。
構造に従う部位特異的変異誘発は、タンパク質-リガンド相互作用を解剖して操作するための強力なツールである(Wells、1996;Braistedら、1996)。この技術は、選択されたDNAに一つまたはそれ以上のヌクレオチド配列を導入することによって配列変種の調製および試験を提供する。
ポックスウイルスゲノムにおいて変異を作製するために、本来のそして改変されたポリペプチドは、ベクターに含まれる核酸分子によってコードされてもよい。「ベクター」という用語は、外因性の核酸配列が、それが複製されうる細胞に導入するために挿入されうる担体核酸分子を指すために用いられる。核酸配列は、ベクターが導入される細胞に対して異物であること、または配列は細胞における配列と相同であるが、配列が本来認められない宿主細胞内での位置に存在することを意味する「外因性」となりうる。ベクターには、プラスミド、コスミド、ウイルス(バクテリオファージ、動物ウイルス、および植物ウイルス)、および人工染色体(例えば、YAC)が含まれる。当業者は、いずれも参照として本明細書に組み入れられる、Sambrookら(1989)およびAusubelら、1994に記述される標準的な組換え技術によってベクターを構築するために必要なものを十分に有するであろう。改変ゲロニンのような改変されたポリペプチドをコードする他に、ベクターは、タグまたはターゲティング分子のような非改変ポリペプチド配列をコードしてもよい。そのような融合タンパク質をコードする有用なベクターには、pINベクター(Inouyeら、1985)、ヒスチジン鎖をコードするベクター、および後に精製および分離または切断するためのグルタチオンS-トランスフェラーゼ(GST)可溶性融合タンパク質を作製するために用いられるpGEXベクターが含まれる。ターゲティング分子は、改変ポリペプチドを被験体の体における特定の臓器、組織、細胞、または他の位置に向ける分子である。
「プロモーター」は、そこで転写の開始および速度が制御される核酸配列の領域である。これは、RNAポリメラーゼおよび他の転写因子のような、調節タンパク質および分子が結合する可能性がある遺伝子要素を含んでもよい。「機能的に配置された」、「機能的に結合した」、「制御下である」、および「転写制御下である」という句は、その配列の転写開始および/または発現を制御するために核酸配列に関してプロモーターが正確な機能的位置および/または方向に存在することを意味する。プロモーターは、核酸配列の転写活性化に関与するシス作用調節配列を指す、「エンハンサー」と共に用いてもよく用いなくてもよい。
特異的開始シグナルも同様に、コード配列の効率的な翻訳にとって必要であるかも知れない。これらのシグナルには、ATG開始コドンまたは隣接配列が含まれる。ATG開始コドンを含む外因性の翻訳制御シグナルを提供する必要があるかも知れない。当業者は、容易にこれを決定して、必要なシグナルを提供することができるであろう。開始コドンは、インサート全体の翻訳を確実にするために所望のコード配列の読み取り枠と「フレームが一致して」いなければならない。外因性の翻訳制御シグナルおよび開始コドンは天然または合成のいずれかとなりうる。発現効率は、適当な転写エンハンサー要素を含めることによって増強してもよい。
ベクターには、多数の制限酵素部位を含む核酸領域であって、そのいずれもがベクターを消化するために標準的な組換え技術と共に用いることができる多クローニング部位(MCS)が含まれうる。(参照として本明細書に組み入れられる、Carbonelliら、1999、Levensonら、1998、およびCocea、1997を参照されたい)。「制限酵素消化」は、核酸分子における特定の位置に限って機能する酵素によって核酸分子を触媒的に切断することを指す。これらの制限酵素の多くは市販されている。そのような酵素を用いることは当業者に広く理解されている。しばしば、ベクターは、外因性の配列をベクターにライゲーションできるように、MCS内で切断する制限酵素を用いて直線または断片にする。「ライゲーション」とは、互いに隣接してもしなくてもよい二つの核酸断片のあいだのホスホジエステル結合を形成するプロセスを指す。制限酵素およびライゲーション反応を含む技術は、組換え技術の当業者に周知である。
ほとんどの転写された真核細胞RNA分子は、一次転写物からイントロンを除去するためにRNAスプライシングを受けるであろう。ゲノム真核細胞配列を含むベクターは、タンパク質発現のために転写物の適切なプロセシングを確実にするためにドナーおよび/またはアクセプタースプライシング部位を必要とする可能性がある(参照として本明細書に組み入れられる、Chandlerら、1997を参照されたい)。
本発明のベクターまたは構築物は一般的に、少なくとも一つの終結シグナルを含むであろう。「終結シグナル」または「ターミネータ」は、RNAポリメラーゼによってRNA転写物の特異的終結に関係するDNA配列を含む。このように、特定の態様において、RNA転写物の産生で終結する終結シグナルが企図される。ターミネータは、所望のメッセージレベルを得るためにインビボで必要となる可能性がある。
発現において、特に真核細胞発現において、典型的に、転写物の適当なポリアデニル化を行うためにポリアデニル化シグナルを含めるであろう。ポリアデニル化シグナルの特性は、本発明の実践の成功にとって重要ではないと考えられ、および/またはそのような如何なる配列を用いてもよい。好ましい態様には、様々な標的細胞において都合がよく、および/または十分に機能することがわかっている、SV40ポリアデニル化シグナルおよび/またはウシ成長ホルモンポリアデニル化シグナルが含まれる。ポリアデニル化は、転写物の安定性を増加させる可能性があり、または細胞質輸送を促進する可能性がある。
宿主細胞においてベクターを増殖させるために、ベクターは、複製が開始される特異的核酸配列である一つまたはそれ以上の複製開始部位(しばしば「ori」と呼ばれる)を含んでもよい。または、宿主細胞が酵母である場合、自律的に複製する配列(ARS)を用いることができる。
本発明の特定の態様において、本発明の核酸構築物を含む細胞は、発現ベクターにマーカーを含めることによってインビトロまたはインビボで同定してもよい。そのようなマーカーは、細胞に対して同定可能な変更を付与して、発現ベクターを含む細胞の容易な同定を可能にするであろう。一般的に、選択マーカーは、選択を可能にする特性を付与するマーカーである。陽性選択マーカーは、マーカーが存在することによって選択が可能となるマーカーであり、陰性選択マーカーは、マーカーが存在することによってその選択が妨害されるマーカーである。陽性選択マーカーの例は、薬物耐性マーカーである。
本明細書において用いられるように、「細胞」、「細胞株」および「細胞培養物」という用語は、互換的に用いてもよい。これらの用語には全て、任意のそして全てのその後の世代であるその子孫が含まれる。全ての子孫は、故意のまたは偶発的な変異により同一ではない可能性があると理解される。異種核酸配列を発現する状況において、「宿主細胞」は、原核細胞または真核細胞を指し、これにはベクターを複製することができる、および/またはベクターによってコードされる異種遺伝子を発現することができる任意の形質転換可能な生物が含まれる。宿主細胞は、ベクターまたはウイルスのレシピエントとして用いられうる、または用いられている(それが外因性のポリペプチドを発現しなければベクターとしての資格を与えない)。宿主細胞は、改変タンパク質コード配列のような外因性の核酸が宿主細胞に移入または導入されるプロセスを指す、「トランスフェクト」、または「形質転換」されてもよい。形質転換された細胞には、第一義的被験細胞およびその子孫が含まれる。
上記の組成物の少なくとも一部または全てを含む多数の発現系が存在する。原核細胞および/または真核細胞に基づく系を、核酸配列またはその同源のポリペプチド、タンパク質、およびペプチドを産生するために本発明と共に用いることができる。多くのそのような系は市販され、広く利用されている。
ポックスウイルスタンパク質、ポリペプチド、および/またはペプチドの発現を指示するために用いられる他に、本明細書に開示の核酸配列は、多様な他の用途を有する。例えば、それらは、核酸ハイブリダイゼーションを含む態様に関してプローブまたはプライマーとして有用性を有する。それらは、本発明の診断またはスクリーニング法において用いてもよい。ポックスウイルスまたはポックスウイルスポリペプチド調節物質をコードする核酸の検出は本発明に含まれる。
長さが13〜100ヌクレオチド、好ましくは17〜100ヌクレオチド、または本発明のいくつかの局面において長さが1〜2キロベースもしくはそれ以上のプローブまたはプライマーを用いることによって、安定かつ選択的な二本鎖分子が形成される。長さが20塩基より大きい隣接する枝に対して相補的配列を有する分子は、得られたハイブリッド分子の安定性および/または選択性を増加させるために一般的に好ましい。一般的に20〜30ヌクレオチド、または望ましい場合にはそれより長い一つまたはそれ以上の相補的配列を有する核酸分子をハイブリダイゼーションのために設計することが好まれるであろう。そのような断片は、例えば化学的手段によって断片を直接合成することによって、または選択した配列を組換え産生のために組換えベクターに導入することによって、容易に調製されるであろう。
増幅の鋳型として用いられる核酸は、標準的な方法論に従って(Sambrookら、1989)細胞、組織、または他の試料から単離してもよい。特定の態様において、鋳型核酸を実質的に精製することなく、細胞全体もしくは組織ホモジネート、または生体液試料について分析を行う。核酸は、ゲノムDNAまたは分画もしくは全細胞RNAであってもよい。RNAを用いる場合、まずRNAを相補的DNAに変換することが望ましいかも知れない。
任意の増幅の後、鋳型および/または過剰のプライマーから増幅産物を分離することが望ましいかも知れない。一つの態様において、増幅産物は、標準的な方法(Sambrookら、1989)を用いてアガロース、アガロース-アクリルアミド、またはポリアクリルアミドゲル電気泳動によって分離される。分離された増幅産物を、さらに操作するためにゲルから切断して溶出させてもよい。低融点アガロースゲルを用いて、ゲルを加熱することによって、分離したバンドを採取してその後核酸の抽出を行う。
遺伝子スクリーニングのための他のアッセイは、例えばゲノムDNA、cDNAおよび/またはRNA試料における変異を検出するために、本発明の範囲において用いてもよい。点突然変異を検出するために用いられる方法には、変性勾配ゲル電気泳動(「DGGE」)、制限断片長多形分析(「RFLP」)、化学または酵素切断法、PCR(商標)によって増幅された標的領域の直接シークエンシング(上記を参照されたい)、一本鎖構造多形分析(「SSCP」)、および当技術分野で周知の他の方法が含まれる。
本発明の組成物の発現を行うために核酸輸送の適した方法は、本明細書に記述されるように、または当業者に既知であるように、それによって核酸(例えば、ウイルスおよび非ウイルスベクターを含むDNA)がオルガネラ、細胞、組織、または生物に導入されうる実質的に如何なる方法も含まれると考えられる。そのような方法には、マイクロインジェクション(Harlan and Weintraub、1985;参照として本明細書に組み入れられる、米国特許第5,789,215号)を含む注入(参照として本明細書に組み入れられる、米国特許第5,994,624号、第5,981,274号、第5,945,100号、第5,780,448号、第5,736,524号、第5,702,932号、第5,656,610号、第5,589,466号、および第5,580,859号);エレクトロポレーション(参照として本明細書に組み入れられる、米国特許第5,384,253号);燐酸カルシウム沈殿(Graham and Van Der Eb、1973;Chen and Okayama、1987;Rippeら、1990);DEAE-デキストランの後にポリエチレングリコールを用いることによって(Gopal、1985);直接超音波負荷(Fechheimerら、1987);リポソーム媒介トランスフェクション(Nicolau and Sene、1982;Fraleyら、1979;Nicolauら、1987;Wongら、1980;Kanedaら、1989;Katoら、1991);微小発射物の衝突(そのそれぞれが参照として本明細書に組み入れられる、PCT出願国際公開公報第94/09699号および第95/06128号;米国特許第5,610,042号、第5,322,783号、第5,563,055号、第5,550,318号、第5,538,877号、および第5,538,880号);炭化ケイ素繊維との攪拌(Kaepplerら、1990;それぞれが参照として本明細書に組み入れられる、米国特許第5,302,523号および第5,464,765号);アグロバクテリウム(Agrobacterium)媒介形質転換(そのそれぞれが参照として本明細書に組み入れられる、米国特許第5,591,616号および第5,563,055号);またはプロトプラストのPEG媒介形質転換(Omirullehら、1993;そのそれぞれが参照として本明細書に組み入れられる、米国特許第4,684,611号および第4,952,500号);乾燥/阻害媒介DNA取り込み(Potrykusら、1985)のような方法によるDNAの直接輸送が含まれるがこれらに限定されない。これらのような技術の応用によって、オルガネラ、細胞、組織、または生物は、安定または一過性に形質転換される可能性がある。
特定の態様において、本発明は、核酸、ペプチドのようなアミノ酸分子、またはもう一つの低分子化合物に関連した一つまたはそれ以上の脂質を含む組成物に関する。本明細書において考察した任意の態様において、分子は、ポックスウイルスポリペプチドまたはポックスウイルスポリペプチド調節物質、例えばポックスウイルスポリペプチドの全てもしくは一部をコードする核酸、またはポックスウイルスポリペプチド調節物質の全てもしくは一部をコードするアミノ酸分子であってもよい。脂質は、特徴的に水に不溶性で、有機溶媒によって抽出可能な物質である。本明細書において特に記述した化合物以外の化合物は、当業者によって脂質であると理解され、それらも本発明の組成物および方法に含まれる。脂質成分および非脂質は、共有結合または非共有結合によって互いに結合させてもよい。
本発明の一つの態様において、ワクシニアウイルスのような改変ポックスウイルスの輸送によって、癌のような過増殖性疾患を治療するための方法が企図される。治療に企図される癌の例には、肺癌、頭頚部癌、乳癌、膵臓癌、前立腺癌、腎臓癌、骨癌、精巣癌、子宮頚癌、消化器癌、リンパ腫、肺の前新生物病変、結腸癌、黒色腫、膀胱癌、および処置しうる任意の他の癌または腫瘍が含まれる。
本発明の方法および組成物を用いて、細胞を殺すため、細胞増殖を阻害するため、転移を阻害するため、腫瘍または組織の大きさを減少させるため、およびそうでなければ腫瘍細胞の悪性の表現型を逆転または減少させるために、一般的に、ポリペプチドまたはポリペプチドをコードする発現構築物のような治療化合物を、過増殖細胞に接触させるであろう。投与経路は当然、病変の位置および特性によって変化して、これには例えば、皮内、経皮、非経口、静脈内、筋肉内、鼻腔内、皮下、局所、経皮、気管内、腹腔内、動脈内、小胞内、腫瘍内、吸入、還流、洗浄、直接注射、および経口投与ならびに製剤が含まれるであろう。
本発明において、ポックスウイルスゲノムの全てまたは一部をコードする発現構築物またはウイルスを癌または腫瘍細胞に輸送するための好ましい方法は、腫瘍内注射である。しかし、または本明細書に開示の薬学的組成物は、米国特許第5,543,158号、米国特許第5,641,515号、および米国特許第5,399,363号(そのそれぞれの全文が参照として本明細書に組み入れられる)に記述されるように、非経口、静脈内、皮内、筋肉内、経皮、または腹腔内投与してもよい。
本発明の化合物および方法は、癌およびアテローム性動脈硬化症を含む過増殖性疾患/病態の状況において用いてもよい。弱毒化ワクシニアウイルスのような本発明の組成物による治療の有効性を増加させるために、それらの疾患および病態の治療において有効な他の物質とこれらの組成物とを併用することが望ましいかも知れない。例えば、癌の治療は、本発明の治療化合物と、抗癌物質または手術のような他の抗癌治療とによって行ってもよい。
「抗癌」物質は、例えば、癌細胞を殺す、癌細胞においてアポトーシスを誘導する、癌細胞の増殖速度を減少させる、転移の発生または数を減少させる、腫瘍の大きさを減少させる、腫瘍の増殖を阻害する、腫瘍または癌細胞への血液供給を減少させる、癌細胞または腫瘍に対する免疫応答を促進させる、癌の進行を予防または阻害する、または癌を有する被験体の生命を延長させることによって被験体における癌に負の影響を及ぼすことができる。抗癌剤には、生体物質(生物治療)、化学療法剤、および放射線療法が含まれる。より一般的に、これらの他の組成物は、細胞を殺すまたは増殖を阻害するために有効な併用量で提供されるであろう。このプロセスは、発現構築物および物質または多数の因子を細胞に同時に接触させることを含んでもよい。これは、単一の組成物もしくは双方の物質を含む薬理学的製剤を細胞に接触させることによって、または一つの組成物に発現構築物が含まれ、他の組成物に第二の物質が含まれる、二つの異なる組成物もしくは製剤を細胞に同時に接触させることによって行ってもよい。
癌の療法にはまた、化学および放射線に基づく治療との多様な併用治療が含まれる。併用化学療法には、例えばシスプラチン(CDDP)、カルボプラチン、プロカルバジン、メクロレタミン、シクロホスファミド、カンプトテシン、イフォスファミド、メルファラン、クロラムブシル、ブスルファン、ニトロソウレア、ダクチノマイシン、ダウノルビシン、ドキソルビシン、ブレオマイシン、プリコマイシン、マイトマイシン、エトポシド(VP16)、タモキシフェン、ラロキシフェン、エストロゲン受容体結合剤、タキソール、ゲムシタビン、ナベルビン、ファルネシル-タンパク質トランスフェラーゼ阻害剤、トランスプラチン、5-フルオロウラシル、ビンクリスチン、ビンブラスチン、およびメトトレキセート、テマゾロミド(DTICの水溶型)、または前述の任意の誘導体もしくは類似体が含まれる。化学療法と生物療法との併用は生化学療法として知られている。
DNA損傷を引き起こし、広範に用いられている他の物質には、一般的にγ線、X線として一般的に知られている放射線、および/または放射性同位元素の腫瘍細胞への直接輸送が含まれる。マイクロ波およびUV照射のような他の型のDNA損傷剤も同様に企図される。これらの因子は全て、DNA、DNAの前駆体、DNAの複製および修復、ならびに染色体の構築および維持に対して広範囲の損傷を与える可能性が最も高い。X線の線量範囲は、1日量50〜200レントゲンを長期間(3〜4週間)から、2000〜6000レントゲンの1回線量に及ぶ。放射性同位元素の用量範囲は広く異なり、同位元素の半減期、放出される放射線の強度およびタイプ、ならびに新生物細胞による取り込みに依存する。
免疫療法は一般的に、癌細胞を標的として破壊するために免疫エフェクター細胞および分子を用いることに依存する。免疫エフェクターは、例えば腫瘍細胞の表面上のいくつかのマーカーに対して特異的な抗体であってもよい。抗体単独は、治療のエフェクターとして役立ってもよく、または殺細胞を実際に行うために他の細胞を動員してもよい。抗体はまた、薬物または毒素(化学療法剤、放射性核種、リシンA鎖、コレラ毒素、百日咳毒素等)に結合させてもよく、単にターゲティング剤として作用してもよい。または、エフェクターは、腫瘍細胞標的と直接または間接的に相互作用する表面分子を有するリンパ球であってもよい。様々なエフェクター細胞には、細胞障害性T細胞およびNK細胞が含まれる。治療様相の併用、すなわち直接細胞障害活性と特定のポックスウイルスポリペプチドの阻害または減少との併用は、癌の治療において治療利益を提供するであろう。
癌の受動免疫療法には多くの異なるアプローチが存在する。それらは、以下の分類に広く分類される可能性がある:抗体単独の注射、毒素または化学療法剤に共役させた抗体の注射、放射活性同位元素に共役させた抗体の注射、抗イディオタイプ抗体の注射、および最後に、骨髄における腫瘍細胞の追放。
能動的免疫治療において、抗原性ペプチド、ポリペプチド、またはタンパク質、または自己もしくは同種異系腫瘍細胞組成物または「ワクチン」は、一般的に異なる細菌アジュバント(Ravindranath and Morton、1991;Mortonら、1992;Mitchellら、1990;Mitchellら、1993)と共に投与される。黒色腫の免疫療法において、高いIgM反応を誘発する患者はしばしば、全くIgM抗体を誘発しないまたは低いIgM抗体を誘発する患者より長く生存する(Mortonら、1992)。IgM抗体はしばしば一過性の抗体であるが、この規則の例外は、抗ガングリオシドまたは抗炭化水素抗体であるように思われる。
養子免疫療法において、患者の循環中のリンパ球または腫瘍浸潤リンパ球をインビトロで単離して、IL-2のようなリンフォカインによって活性化して、腫瘍壊死に関する遺伝子を形質導入して再投与する(Rosenbergら、1988;1989)。これを行うために、動物またはヒト患者に、本明細書に記述のアジュバントを組み入れた抗原ペプチド組成物と併用して活性化リンパ球の免疫学的有効量が投与されるであろう。活性化リンパ球は最も好ましくは、血液または腫瘍試料から予め単離されてインビトロで活性化された(または「増殖させた」)患者自身の細胞であろう。この型の免疫治療によって、黒色腫および腎癌の数例の退縮が引き起こされたが、反応者の割合は反応しなかった人と比較すると少数であった。
さらにもう一つの態様において、二次治療は、弱毒化ポックスウイルスが投与される前、後、または同時に治療ポリヌクレオチドが投与される遺伝子治療である。以下の遺伝子産物の一つをコードするベクターと共にポックスウイルスを輸送すれば、標的組織に対して併用抗癌作用を有するであろう。または、ポックスウイルスは、ウイルスベクターとして治療ポリヌクレオチドを含めるように操作してもよい。多様なタンパク質が本発明に含まれ、そのいくつかを下記に記す。表7は、本発明と共にいくつかの型の遺伝子治療のために標的とされる可能性がある様々な遺伝子を一覧にする。
細胞増殖を誘導するタンパク質はさらに、機能に応じて様々な分類に分けられる。これらのタンパク質の全ての一般性は、細胞増殖の調節能である。例えば、PDGFの一つの型であるsis腫瘍遺伝子は、分泌型増殖因子である。腫瘍遺伝子はまれに増殖因子をコードする遺伝子から生じるが、現在のところ、sisは、既知の唯一の天然に存在する腫瘍遺伝子増殖因子である。本発明の一つの態様において、細胞増殖の特定の誘導物質に向けられるアンチセンスmRNAを用いて、細胞増殖の誘導物質の発現を阻害することが企図される。
腫瘍抑制癌遺伝子は、過度の細胞増殖を阻害するように機能する。これらの遺伝子の不活化は、その阻害活性を破壊して調節されない増殖を生じる。腫瘍抑制因子p53、p16およびC-CAMを下記に記述する。
アポトーシスまたはプログラムされた細胞死は、正常な胎児発達の本質的なプロセスであり、成体組織における恒常性を維持し、発癌を抑制する(Kerrら、1972)。Bcl-2ファミリータンパク質およびICE-様プロテアーゼは、他の系におけるアポトーシスの重要な調節物質およびエフェクターであることが証明されている。濾胞性リンパ腫に関連して発見されたBcl-2タンパク質は、アポトーシスの制御および多様なアポトーシス刺激に反応した細胞生存の増強に顕著な役割を有する(Bakhshiら、1985;Cleary and Sklar、1985;Clearyら、1986;Tsujimotoら、1985;Tsujimoto and Croce、1986)。進化的に保存されたBcl-2タンパク質は現在では、デスアゴニストまたはデスアンタゴニストとして分類することができる関連タンパク質ファミリーのメンバーであると認識されている。
癌患者の約60%が何らかのタイプの手術を受け、その中には、予防的、診断的または進行期決定、治癒的および待期的手術が含まれる。治癒的手術は、本発明の治療、化学療法、放射線療法、ホルモン療法、遺伝子治療、免疫療法および/またはもう一つの治療のような他の治療と共に用いてもよい癌治療である。
治療の治療的有効性を改善するために、他の物質を本発明と併用して用いてもよいと企図される。これらのさらなる物質には、免疫調節剤、細胞表面受容体のアップレギュレーションおよびGAP接合部に影響を及ぼす物質、細胞抑制および分化物質、細胞接着阻害剤、アポトーシス誘導物質に対する過増殖細胞の感受性を増加させる物質、または他の生体物質が含まれる。免疫調節剤には、腫瘍壊死因子;インターフェロンα、β、およびγ;IL-2および他のサイトカイン;F42Kおよび他のサイトカイン類似体;またはMIP-1、MIP-1β、MCP-1、RANTES、および他のケモカインが含まれる。Fas/Fasリガンド、DR4またはDR5/TRAIL(Apo-2リガンド)のような細胞表面受容体またはそのリガンドのアップレギュレーションは、過増殖細胞に対するオートクラインまたはパラクライン効果を確立することによって本発明のアポトーシス誘導能を増強するであろう。GAP接合部の数を増加させることによる細胞内シグナル伝達の増加は、隣接する過増殖細胞集団に対する抗過増殖効果を増加するであろう。他の態様において、細胞抑制または分化因子を、治療の抗過増殖有効性を改善するために本発明と併用して用いることができる。細胞接着阻害剤は、本発明の有効性を改善すると企図される。細胞接着阻害剤の例は、局所接着キナーゼ(FAK)阻害剤およびロバスタチンである。抗体c225のようなアポトーシスに対する過増殖細胞の感受性を増加させる他の物質を、治療の有効性を改善するために本発明と併用して用いることができるであろう。
以下の実施例は、本発明の好ましい態様を証明するために含まれる。下記の実施例に開示された技術は、本発明の実践にあたって十分に機能すると本発明者らによって発見された技術の代表的なものであり、このように、本発明の実践の好ましい様式を構成すると見なすことができると当業者によって認識されるべきである。しかし、当業者は、本開示に照らして、開示される特定の態様に多くの変更を行うことができ、それでも同様または類似の結果を得ることができるが、それらも本発明の趣旨および範囲に含まれることを認識しなければならない。
細胞株におけるワクシニアウイルス増殖
日常的に入手可能な異なるワクシニアウイルス研究所株/入手可能な変異体(およびウサギ痘および他のポックスウイルス)16個のパネルを評価した:コペンハーゲン、ダイレン、エバンス、USSR、タシケント、チャンタン、WR、IHD-J、IHD-W、リスター、NYCBOH、パトワダンガー、キング、ならびにWR変異体B8R、B18R、およびB13R。複製は癌細胞と正常細胞の双方において評価した。好ましいウイルスは、癌細胞において比較的高い複製を有し、正常細胞において低い複製を有するであろう(すなわち、腫瘍と正常細胞のあいだの治療比または指数がより大きい)。ヒト腫瘍細胞株2個を調べた:A2780結腸癌およびHCT116結腸癌(アメリカンタイプカルチャーコレクション)。正常細胞には、正常ヒト気管支上皮(NHBE)細胞が含まれた。増殖細胞を用いる細胞変性効果アッセイの場合、細胞を70%コンフルエンスまで増殖させて(2%FBSを含むDMEM)、その時点で細胞を感染多重度(MOI)0.001〜10で感染させた。5〜6日後、プレートをMTT(プロメガ(Promega))によって染色し、吸光度を定量した。正常細胞は、完全なコンフルエンスまで増殖させた後非増殖性となり、その後0.2%FBSを含むDMEMにおいて培養した。増殖の欠如は、細胞周期分析および細胞数によって確認した。各試料を1試料あたり4個ずつアッセイして、少なくとも2回繰り返した。ウイルス複製アッセイに関して、細胞を70%コンフルエンスまで増殖させて(Heiseら(2000)におけるように、NHBE細胞に関して37℃、5%CO2、2%FBSおよびさらなる増殖因子を添加したDMEM)、その時点で細胞を、各ウイルスに関して感染多重度(MOI、粒子/細胞比)1〜10で感染させた。3時間インキュベートした後、培地を除去して、新しく添加した培地に交換した。48時間後(これまでのデータは、ワクシニアの複製がこの時点でピークに達したことを証明した)、ウイルス力価分析のために細胞と上清の双方を回収した。細胞溶解物は、凍結融解3サイクルを行い、超音波/水浴において30秒間パルスを行った。次に、ウイルスを蔗糖クッションを通して精製し、上清および溶解物の連続希釈液の力価をBSC-1細胞において測定した(Alcami and Smith(1995)に記述される精製および力価測定)。
パクリタキセルと併用したワクシニアウイルス
アデノウイルスおよびHSVのようなウイルスは、化学療法と併用して研究されているが、ワクシニアウイルス(コペンハーゲン株を含む)は研究されていない。VVは、プロドラッグ活性化酵素(例えば、チミジンキナーゼ)を発現するように操作されており、プロドラッグ活性化遺伝子産物による活性化後に毒性となる比較的非毒性のプロドラッグと併用して研究されている(Puhlmannら、2000)。
ワクシニアウイルス投与による腫瘍退縮結果
C57B/6マウスの脇腹に、PBS 100μlに浮遊させたCMT-64細胞5×105個またはCMT-93細胞(マウス直腸癌)106個を注入することによって、皮下マウス腫瘍異種移植片を形成した。第一の実験において、B8RおよびB18RにおけるVV WR株変異体を、40μlに浮遊させた粒子104〜108個/日の用量で、免疫コンピテントC57/B6マウスの脇腹のCMT-93腫瘍(推定される基準値の腫瘍の大きさ40〜100μl)に1、3、および5日目に皮下注射した。腫瘍の中心部に針1本の穿刺を行い、各腫瘍の4分の1に針4本の通路を作製した。針を引き抜きながら溶液の約4分の1を各通路に注入した。対照には、ソラレン-UV不活化ウイルスまたはPBSを同一に処置した。二方向の腫瘍の測定を2週間に1回行い、腫瘍体積を以下の式によって確立した:(長さ)(幅)(幅)(3.14/6)。
マウス腫瘍異種移植片に関するEEV増強有効性
皮下マウス腫瘍異種移植片は、PBS 100μlに浮遊させたJCマウス乳癌細胞5×105個を、免疫コンピテントBALB/cマウスの脇腹に皮下注射することによって形成した。腫瘍が注射可能な大きさに達した後(基準値の腫瘍の大きさ40〜100μl)、ウェスタンリザーブ(IHD-J変異を有しないWR)VV、WRのIHD-J変異体(A34R/K151D変異)ウイルス、またはPBSを、皮下のJC腫瘍内に注射した。ウイルスの用量は、1、3、および5日目にPBS 40μlに浮遊させた粒子1010個/日であった(マウスn=8/処置群)。PBS対照を類似のレジメで注射した。腫瘍の中心部に針1本の穿刺を行い、各腫瘍の4分の1に針4本の通路を作製した。針を引き抜きながら溶液の約4分の1を各通路に注入した。対照には、PBSを同一に処置した。二方向の腫瘍の測定を2週間に1回行い、腫瘍体積を以下の式によって見積もった:(長さ)(幅)(幅)(3.14/6)。
IFN耐性癌細胞対正常細胞に関するインターフェロン結合遺伝子の欠失と選択性の増加
インターフェロン(IFN)-結合遺伝子に欠失を有するポックスウイルスが、野生型対照ポックスウイルスと比較して、より大きい腫瘍選択性を有するか否か、および正常細胞において複製の減少を示すか否かを評価するために試験を行った。WR(ウェスタンリザーブ)およびB18R遺伝子に欠失を有するWR変異体(B18R)を、IFN-α(1,000単位/mlをインビトロで感染後5時間に適用)の存在下または非存在下で複製に関して比較した(図10)。調べた細胞は、正常なヒト気管支上皮細胞(NHBE、クロネティクス社(Clonetics Corp.)、アメリカ)、C33Aヒト子宮頚癌細胞(ATCC)およびHCT116ヒト結腸癌細胞(ATCC)であった。予備試験において、ウイルス複製に及ぼすインターフェロンの効果に対する感受性を決定するために、これらのウイルスに感染させる前の24時間、これらの細胞を、予めIFN(5,000単位/ml)によって前処置した。予想されたように、いずれのウイルスも、インターフェロン前処置による抑制に対して等しく感受性であった。NHBEおよびHCT116細胞は、ウイルス複製がIFN前処置を行った場合に有意に減少したことから、IFN感受性であることが証明された;C33A細胞は、IFN前処置がウイルス複製に対して有意な影響を及ぼさなかったことからIFN耐性であった。
TNF調節機能の喪失の影響を示すための予測的実施例
一つまたはそれ以上のサイトカインまたはケモカイン阻害遺伝子の欠失/不活化を有するおよび有しないマッチさせたウイルス(例えば、野生型WRワクシニアおよびB29R/vCKBPにおいて欠失を有する変異体)を用いて、免疫コンピテント(C57B/6またはBALB/c)マウスにおいてマウス腫瘍(例えば、CMT-93、CMT-64、またはJC)を感染させる。この比較は、ウイルス遺伝子産物がヒト型と類似の程度にマウスサイトカイン/ケモカインを阻害することができる場合に限って、有効となるであろう。ウイルス複製(経時的プラーク形成単位)、CCケモカインレベル(例えば、免疫組織化学染色またはELISAアッセイ)、サイトカインレベル(例えば、免疫組織化学(IHC)染色またはELISAアッセイ)、および炎症細胞浸潤(HおよびE、またはIHC染色)を、静脈内および/または腫瘍内投与後(ウイルス粒子105〜1010個を1〜6回投与)の腫瘍組織および正常組織において評価する。さらに、双方のウイルスの抗腫瘍有効性(カプランメイヤー腫瘍退縮/生存曲線)および毒性(体重減少;血液学;および血清化学試験)を評価するであろう。結果は、変異体ウイルスが、1)増強された有効性および腫瘍内の炎症の誘導(例えば、免疫エフェクター細胞動員の増加);2)類似または減少した正常組織における複製および毒性(例えば、肝臓、脾臓、肺、および/または脳);ならびに3)腫瘍特異的細胞媒介免疫の誘導の増強または維持。最後に、化学療法および/または放射線療法と併用した抗腫瘍有効性は、野生型ウイルスより変異体ウイルスに関してより大きいと予測される。毒性試験はまた、本発明のウイルスの特徴をさらに調べるために、ウサギおよびヒト以外の霊長類において実施してもよい(参照として本明細書に組み入れられる、Tscharkeら、2002)。
インターフェロン調節機能の喪失の影響を示すための予測的実施例
一つまたはそれ以上のインターフェロン結合ポリペプチドの欠失/不活化を有するおよび有しないマッチさせたウイルス(例えば、野生型WRワクシニアおよびB18Rにおいて欠失を有する変異体)を用いて、これまでの実施例において考察したように、その標的IFN分子がワクシニアウイルス遺伝子産物に有効に結合する免疫コンピテント動物において腫瘍に感染させる。注目すべきは、マウスインターフェロンはヒトインターフェロンと比較してVVポリペプチドに対して比較的耐性であることから、マウスにおける結果は、ヒトにおける結果よりはるかに有意ではないと予測される。ウイルス複製および腫瘍組織および正常組織における伝幡を、上記のように静脈内および/または腫瘍内投与後に評価する。さらに、双方のウイルスの抗腫瘍有効性および毒性を、上記のように評価する。予想される結果は、変異体ウイルスが、正常組織(例えば、肝臓、脾臓、肺、および/または脳)において複製および毒性の減少を示すであろうこと、そして複製および壊死の誘導がなおも腫瘍において起こるであろうという点である。野生型ワクシニア(例えば、WR)は、正常および腫瘍組織における複製/壊死の誘導の差がより小さいことを証明するであろう。さらに、変異体ウイルスによって処置した腫瘍は、生理食塩液処置対照および野生型ウイルス処置対照腫瘍と比較して血管の減少を有するであろう(例えば、HおよびE染色、同等の血管マーカーに対してCD31に関してIHC)。最後に、免疫媒介抗腫瘍有効性および化学療法および/または放射線療法と併用した有効性は、野生型ウイルスより変異体ウイルスの場合により大きいと予想される。本発明のウイルスの特徴をさらに調べるために、ウサギまたはヒト以外の霊長類において毒性試験を同様に行ってもよい(参照として本明細書に組み入れられる、Tscharkeら、2002)。
セリンプロテアーゼ阻害剤機能の喪失の影響を示すための予測的実施例
上記のように、抗アポトーシス遺伝子の欠失/不活化を有するおよび有しないマッチさせたウイルスを、免疫コンピテントマウスにおいて腫瘍に感染させるために用いることができるであろう。ウイルスには、B13R(SPI-2)の発現を有するまたは有しないワクシニアウイルスが含まれるがこれらに限定されない。上記のように静脈内投与後に、腫瘍組織および正常組織におけるウイルス複製および伝幡を評価する。さらに、変異体ウイルスの抗腫瘍有効性および毒性は、上記のように腫瘍内および/または静脈内投与後に評価されるであろう。予想される結果は、変異体ウイルスが、正常組織における複製の減少および毒性を示すであろうこと、および/または腫瘍組織と比較して正常組織からより速やかに排泄されるであろうということである。野生型ウイルスは、腫瘍組織と比較して正常組織において、複製と毒性とのあいだにより小さい差(もしあれば)を示すであろう。腫瘍内、腹腔内、静脈内または他の投与経路後の変異体ウイルスの抗腫瘍有効性は、野生型ウイルスの場合の有効性と同等であるかまたは優れていると予想される。併用化学療法試験は、同じモデル系を用いるであろう。マウスは、溶媒(プラセボ)、化学療法単独、ウイルス単独(野生型または変異体)、またはウイルスプラス化学療法を受けるであろう。変異体ウイルスプラス化学療法の有効性は、化学療法単独および野生型ウイルスプラス化学療法より優れていると予想される。類似の知見は、放射線療法と併用した場合にも予想される。
補体制御機能の喪失の影響を示すための予測的実施例
上記のように、VCP遺伝子の欠失/不活化を有するおよび有しないマッチさせたウイルスを、免疫コンピテントマウスにおいて腫瘍に感染させるために用いることができるであろう。腫瘍組織および正常組織におけるウイルス複製および伝幡は、上記のように静脈内投与または他の投与経路による投与後に評価する。さらに、変異体ウイルスの抗腫瘍効果および毒性は、上記のように、腫瘍内投与および/または静脈内投与後に評価されるであろう。予想される結果は、変異体ウイルスが正常組織において複製の減少および毒性を示すであろうこと、および/または腫瘍組織と比較して正常組織からより有効に排泄されるであろうという点であろう。野生型ウイルスは、腫瘍組織の場合と比較して正常組織において複製と毒性のあいだにより小さい差(もしあれば)を示すであろう。腫瘍内、腹腔内、静脈内投与または他の投与経路による投与後の変異体ウイルスの抗腫瘍有効性は、野生型ウイルスの場合の有効性と同等であるかまたは優れていると予想される。併用化学療法試験は、同じモデル系を用いるであろう。例えば、マウスに、溶媒(プラセボ)、化学療法単独、ウイルス単独(野生型または変異体)、またはウイルスプラス化学療法を行う。変異体ウイルスプラス化学療法の有効性は、化学療法単独および野生型ウイルスプラス化学療法より優れていると予想される。類似の結果は、これらのウイルスと併用した腫瘍標的モノクローナル抗体についても示されるであろう。
Claims (120)
- インターフェロン調節ポリペプチドがインターフェロンに直接結合する、少なくとも第一の機能的インターフェロン調節ポリペプチドを欠損するウイルスが得られるインターフェロン調節ポリペプチドをコードする第一の遺伝子において変異を含む、弱毒化ワクシニアウイルス。
- インターフェロン調節ポリペプチドが、IFN-αまたはIFN-βに結合する、請求項1記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- インターフェロン結合ポリペプチドがB18Rである、請求項2記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- インターフェロン調節ポリペプチドがIFNγに結合する、請求項1記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- インターフェロン結合ポリペプチドがB8Rである、請求項4記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 以下の少なくとも一つにおいて第二の変異をさらに含む、請求項1記載の弱毒化ワクシニアウイルス:
a)少なくとも第二の機能的インターフェロン調節ポリペプチドを欠損するウイルスが得られるインターフェロン調節ポリペプチドをコードする第二の遺伝子;
b)変異によって、少なくとも一つの機能的補体制御ポリペプチドを欠損するウイルスが得られる、補体制御ポリペプチドをコードする遺伝子;
c)変異によって、少なくとも一つの機能的TNF調節ポリペプチドを欠損するウイルスが得られる、TNF調節ポリペプチドをコードする遺伝子;
d)変異によって、少なくとも一つの機能的セリンプロテアーゼ阻害剤を欠損するウイルスが得られる、セリンプロテアーゼ阻害剤をコードする遺伝子;
e)変異によって、少なくとも一つの機能的IL-1β調節ポリペプチドを欠損するウイルスが得られる、IL-1β調節ポリペプチドをコードする遺伝子;
f)変異によって、A41L、B7R、N1L、vCKBP、またはC11Rの少なくとも一つの機能を欠損するウイルスが得られる、機能的A41L、B7R、N1L、もしくはvCKBPケモカイン結合ポリペプチド、またはC11R EGF様ポリペプチドをコードする遺伝子;または
g)変異によってワクシニアウイルスの感染性EEV型の増加が起こる、ポリペプチドをコードする遺伝子。 - インターフェロン調節ポリペプチドをコードする第一の遺伝子において変異を含むコペンハーゲンまたはウェスタンリザーブ株である、請求項1記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- インターフェロン結合ポリペプチドがB8RまたはB18Rである、請求項1記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 少なくとも第二の機能的な第二のインターフェロン調節ポリペプチドを欠損するウイルスが得られる第二のインターフェロン調節ポリペプチドをコードする遺伝子において変異を含む、請求項6記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的な第二のインターフェロン調節ポリペプチドが、B8R、B18R、B13R、E3L、またはvC12Lである、請求項9記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的B8Rを欠損する、請求項10記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的B13Rを欠損する、請求項10記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的B8RおよびB13Rを欠損する、請求項10記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的B8R、B13R、およびvC12Lを欠損する、請求項13記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的B28RまたはA53Rをさらに欠損する、請求項14記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的B28RおよびA53Rを欠損する、請求項15記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的B18Rをさらに欠損する、請求項14記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的B28RまたはA53Rをさらに欠損する、請求項17記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的B28RおよびA53Rを欠損する、請求項18記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 少なくとも一つの機能的補体制御ポリペプチドを欠損するウイルスが得られる補体制御ポリペプチドをコードする遺伝子において変異を含む、請求項1記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的補体制御ポリペプチドがVCPである、請求項20記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 少なくとも一つの機能的TNF調節ポリペプチドを欠損するウイルスが得られるTNF調節ポリペプチドをコードする遺伝子において変異を含む、請求項6記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的TNF調節ポリペプチドが、A53R、B28R、またはvCKBPである、請求項22記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 少なくとも一つの機能的セリンプロテアーゼ阻害剤を欠損するウイルスが得られるセリンプロテアーゼ阻害剤をコードする遺伝子において変異を含む、請求項6記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- セリンプロテアーゼ阻害剤が、B13R、B22R、またはK2Lである、請求項24記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 少なくとも一つの機能的IL-1β調節因子を欠損するウイルスが得られるIL-1β調節因子をコードする遺伝子において変異を含む、請求項6記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的IL-1β調節ポリペプチドがB13RまたはB15Rである、請求項26記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的A41L、B7R、N1L、もしくはvCKBPケモカイン結合ポリペプチドまたはC11R EGF様ポリペプチドをコードする遺伝子において変異を含む、請求項6記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- ポリペプチドが、B7R、vCKBP、またはN1Lである、請求項28記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- ポリペプチドが、A41L、vCKBP、またはC11Rである、請求項28記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- ワクシニアウイルスの感染性EEV型の産生の増加が得られる変異を含む、請求項6記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 感染性EEV型の増加を引き起こす変異がA34RまたはB5Rをコードする遺伝子に存在する、請求項31記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 感染性EEV型の増加を引き起こす変異がA34Rをコードする遺伝子に存在する、請求項32記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- A34Rにおける変異がK151D変異である、請求項33記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- a)、b)、c)、d)、e)、f)、またはg)において少なくとも二つの異なる変異をさらに含む、請求項6記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- g)における変異と、少なくとも一つのa)、b)、c)、d)、e)、またはf)における変異とを含む、請求項35記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 薬学的組成物に含まれる、請求項1記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 組成物がインターフェロンをさらに含む、請求項37記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 組成物が抗癌剤をさらに含む、請求項37記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 抗癌剤が、抗体、化学療法剤、または腫瘍抑制因子をコードする核酸である、請求項39記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的vC12Lポリペプチドを欠損するウイルスが得られる第一の変異を含む、弱毒化ワクシニアウイルス。
- 以下の少なくとも一つにおいて第二の変異をさらに含む、請求項41記載の弱毒化ワクシニアウイルス:
a)少なくとも第二の機能的インターフェロン調節ポリペプチドを欠損するウイルスが得られる、インターフェロン調節ポリペプチドをコードする遺伝子;
b)変異によって、少なくとも一つの機能的補体制御ポリペプチドを欠損するウイルスが得られる、補体制御ポリペプチドをコードする遺伝子;
c)変異によって、少なくとも一つの機能的TNF調節ポリペプチドを欠損するウイルスが得られる、TNF調節ポリペプチドをコードする遺伝子;
d)変異によって、少なくとも一つの機能的セリンプロテアーゼ阻害剤を欠損するウイルスが得られる、セリンプロテアーゼ阻害剤をコードする遺伝子;
e)変異によって、少なくとも一つの機能的IL-1β調節ポリペプチドを欠損するウイルスが得られる、IL-1β調節ポリペプチドをコードする遺伝子;
f)変異によって、A41L、B7R、N1L、vCKBP、またはC11Rの少なくとも一つの機能を欠損するウイルスが得られる、機能的A41L、B7R、N1L、もしくはvCKBPケモカイン結合ポリペプチド、またはC11R EGF様ポリペプチドをコードする遺伝子;または
g)変異によってワクシニアウイルスの感染性EEV型の増加が起こる、ポリペプチドをコードする遺伝子。 - インターフェロン調節ポリペプチドをコードする第一の遺伝子において変異を含むコペンハーゲンまたはウェスタンリザーブ株である、請求項41記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 少なくとも第二の機能的インターフェロン調節ポリペプチドを欠損するウイルスが得られるインターフェロン調節ポリペプチドをコードする遺伝子において第二の変異を含む、請求項41記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 第二の機能的なインターフェロン調節ポリペプチドが、B8R、B13R、またはB18Rである、請求項44記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 機能的B15Rポリペプチドを欠損するウイルスが得られる第一の変異を含む弱毒化ワクシニアウイルス。
- 以下の少なくとも一つにおいて第二の変異をさらに含む、請求項46記載の弱毒化ワクシニアウイルス:
a)少なくとも一つの機能的インターフェロン調節ポリペプチドを欠損するウイルスが得られる、インターフェロン調節ポリペプチドをコードする遺伝子;
b)変異によって、少なくとも一つの機能的補体制御ポリペプチドを欠損するウイルスが得られる、補体制御ポリペプチドをコードする遺伝子;
c)変異によって、少なくとも一つの機能的TNF調節ポリペプチドを欠損するウイルスが得られる、TNF調節ポリペプチドをコードする遺伝子;
d)変異によって、少なくとも一つの機能的セリンプロテアーゼ阻害剤を欠損するウイルスが得られる、セリンプロテアーゼ阻害剤をコードする遺伝子;
e)変異によって、少なくとも一つの機能的IL-1β調節ポリペプチドを欠損するウイルスが得られる、IL-1β調節ポリペプチドをコードする遺伝子;
f)変異によって、A41L、B7R、N1L、vCKBP、またはC11Rの少なくとも一つの機能を欠損するウイルスが得られる、機能的A41L、B7R、N1L、もしくはvCKBPケモカイン結合ポリペプチド、またはC11R EGF様ポリペプチドをコードする遺伝子;または
g)変異によってワクシニアウイルスの感染性EEV型の増加が起こる、ポリペプチドをコードする遺伝子。 - インターフェロン調節ポリペプチドをコードする、またはTNF調節因子をコードする遺伝子において変異を含む、請求項47記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- インターフェロン調節ポリペプチドがB13Rであって、TNF調節因子がB29Rである、請求項48記載の弱毒化ワクシニアウイルス。
- 以下の少なくとも一つを発現することができないワクシニアウイルスの有効量を癌細胞に投与する段階を含む、癌細胞を治療する方法:
a)機能的な第一のインターフェロン調節ポリペプチド;
b)機能的補体制御ポリペプチド;
c)機能的TNF調節ポリペプチド;
d)機能的セリンプロテアーゼ阻害剤;
e)機能的IL-1β調節ポリペプチド;
f)機能的非感染性EEV型ポリペプチド;
g)機能的A41L、B7R、N1L、vCKBP、またはC11Rポリペプチド。 - 弱毒化ワクシニアウイルスが以下の一つより多くを欠損する、請求項50記載の方法:
a)機能的な第一のインターフェロン調節ポリペプチド;
b)機能的補体制御ポリペプチド;
c)機能的TNF調節ポリペプチド;
d)機能的セリンプロテアーゼ阻害剤;
e)機能的IL-1β調節ポリペプチド;
f)機能的抗感染性EEV型ポリペプチド;
g)機能的A41L、B7R、N1L、vCKBP、もしくはC11Rポリペプチド;または
h)機能的な第二のインターフェロン調節ポリペプチド。 - ワクシニアウイルスが、機能的な第一のインターフェロン調節ポリペプチドを欠損する、請求項50記載の方法。
- ワクシニアウイルスが、コペンハーゲン株またはウェスタンリザーブ株である、請求項52記載の方法。
- ウイルスにおいて欠損している機能的な第一または第二のインターフェロン調節ポリペプチドがB18RまたはB8Rである、請求項51記載の方法。
- ウイルスが少なくとも一つの機能的補体制御ポリペプチドを欠損する、請求項50記載の方法。
- ウイルスにおいて欠損している機能的補体制御ポリペプチドがVCPである、請求項55記載の方法。
- ウイルスが少なくとも一つの機能的TNF調節ポリペプチドを欠損する、請求項50記載の方法。
- ウイルスにおいて欠損している機能的TNF調節ポリペプチドが、A53R、B28R、またはvCKBPである、請求項57記載の方法。
- ウイルスが少なくとも一つの機能的セリンプロテアーゼ阻害剤を欠損する、請求項50記載の方法。
- セリンプロテアーゼ阻害剤が、B13R、B22R、またはK2Lである、請求項59記載の方法。
- ウイルスが少なくとも一つの機能的IL-1β調節因子を欠損する、請求項50記載の方法。
- IL-1β調節因子がB13RまたはB15Rである、請求項61記載の方法。
- ウイルスが少なくとも一つの機能的な抗感染性EEV型ポリペプチドを欠損する、請求項50記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、抗感染性EEV型ポリペプチドA34RにおいてK151D変異、またはB5Rをコードする遺伝子において変異を含む、請求項63記載の方法。
- 細胞にインターフェロンを投与する段階をさらに含む、請求項50記載の方法。
- インターフェロンが、IFNα、IFNβ、またはIFNγである、請求項65記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが薬学的に許容される組成物に含まれる、請求項50記載の方法。
- 癌細胞が腫瘍細胞である、請求項50記載の方法。
- 癌細胞が患者に存在する、請求項50記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、患者に直接、内視鏡によって、気管内、腫瘍内、静脈内、病変内、筋肉内、腹腔内、局所、経皮、または皮下に投与される、請求項69記載の方法。
- 患者が固形腫瘍を有する、請求項69記載の方法。
- 固形腫瘍の全てまたは一部を切除する段階をさらに含む、請求項71記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、腫瘍の切除前に患者に投与される、請求項72記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、腫瘍の切除後に患者に投与される、請求項73記載の方法。
- 患者に化学療法または放射線療法を投与する段階をさらに含む、請求項69記載の方法。
- 化学療法が患者に少なくとも1回投与される、請求項75記載の方法。
- 化学療法が、シスプラチン(CDDP)、カルボプラチン、プロカルバジン、メクロレタミン、シクロホスファミド、カンプトテシン、イフォスファミド、メルファラン、クロラムブシル、ビスルファン、ニトロソウレア、ダクチノマイシン、ダウノルビシン、ドキソルビシン、ブレオマイシン、プリコマイシン、マイトマイシン、エトポシド(VP16)、タモキシフェン、タキソテール、タキソール、トランスプラチン、5-フルオロウラシル、ビンクリスチン、ビンブラスチン、メトトレキセート、ゲムシタビン、オキサリプラチン、イリノテカン、トポテカン、またはその任意の類似体もしくは誘導変異体である、請求項76記載の方法。
- 放射線療法が患者に少なくとも1回投与される、請求項75記載の方法。
- X線照射、UV照射、γ線照射、電子線照射、またはマイクロ波が患者に少なくとも1回投与される、請求項78記載の方法。
- 癌細胞が、膀胱、血液、骨、骨髄、脳、乳腺、結腸直腸、食道、消化管、頭部、腎臓、肝臓、肺、鼻咽頭、頚部、卵巣、膵臓、前立腺、皮膚、胃、精巣、舌、または子宮細胞である、請求項50記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、1回より多く投与される、請求項50記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、異種治療ポリペプチドをコードする核酸配列をさらに含む、請求項50記載の方法。
- 異種治療ポリペプチドが、腫瘍抑制剤、免疫調節剤、血管新生阻害剤、抗血管ポリペプチド、細胞障害性ポリペプチド、アポトーシス誘発物質、プロドラッグ活性化酵素、または細胞抑制性ポリペプチドである、請求項82記載の方法。
- 細胞にプロテアーゼまたはペプチダーゼを投与する段階をさらに含む、請求項50記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスがIHD-J株である、A34RにおいてK151D変異を含む、またはB5Rをコードする遺伝子において変異を含む、請求項50記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、少なくとも一つのヒト補体阻害タンパク質を過剰発現する細胞株から産生される、請求項50記載の方法。
- 補体阻害タンパク質が、CD55、CD46、またはCD59である、請求項86記載の方法。
- 細胞に微小管安定化剤を投与する段階をさらに含む、請求項50記載の方法。
- 微小管安定化剤がタキサンである、請求項88記載の方法。
- B8R、B18R、またはvC12Lをコードする遺伝子において変異を含む弱毒化ワクシニアウイルスを含む薬学的に許容される組成物の有効量を患者に投与する段階を含む、患者における癌を治療する方法。
- 薬学的に許容される組成物が、インターフェロンまたはインターフェロンをコードする核酸をさらに含む、請求項90記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、機能的B8R、B18R、またはvC12Lポリペプチドを欠損する、請求項90記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、機能的B8RまたはvC12Lポリペプチドを欠損して、B13Rをコードする遺伝子において変異をさらに含み、ウイルスが機能的B13Rポリペプチドを欠損する、請求項92記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、機能的B8R、vC12L、およびB13Rポリペプチドを欠損する、請求項93記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、少なくとも二つの機能的B8R、B18R、またはvC12Lポリペプチドを欠損する、請求項92記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、機能的B8R、B18R、およびvC12Lポリペプチドを欠損する、請求項95記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、さらに以下の少なくとも一つを発現することができない、請求項92記載の方法:
a)機能的な補体制御ポリペプチド;
b)機能的なTNF調節ポリペプチド;
c)機能的セリンプロテアーゼ;
d)機能的IL-1β調節因子;
e)機能的A41L、B7R、N1L、vCKBP、もしくはC11Rポリペプチド;または
f)機能的抗感染性EEV型ポリペプチド。 - 弱毒化ワクシニアウイルスが、さらに以下の少なくとも一つを発現することができない、請求項94記載の方法:
a)機能的な補体制御ポリペプチド;
b)機能的なTNF調節ポリペプチド;
c)機能的セリンプロテアーゼ;
d)機能的IL-1β調節因子;
e)機能的A41L、B7R、N1L、vCKBP、もしくはC11Rポリペプチド;または
f)機能的抗感染性EEV型ポリペプチド。 - インターフェロン、ケモカイン、サイトカイン、補体、または中和抗体によって媒介される抗ウイルス反応の阻害能が減少した弱毒化ワクシニアウイルスを癌細胞に接触させる段階を含む、癌細胞を殺す方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、B8R、B13R、B18R、またはvC12Lをコードする核酸配列において変異を有する、請求項99記載の方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスが、以下の少なくとも一つを発現することができない、請求項99記載の方法:
a)機能的インターフェロン調節ポリペプチド;
b)機能的補体制御ポリペプチド;
c)機能的TNF調節ポリペプチド;
d)機能的セリンプロテアーゼ;
e)機能的IL-1β調節因子;
f)機能的A41L、B7R、N1L、vCKBP、もしくはC11Rポリペプチド;または
g)機能的抗感染性EEV型ポリペプチド。 - ワクシニアウイルスの発現および抗腫瘍有効性を増加させる物質によって癌の治療が得られる、弱毒化ワクシニアウイルスおよび弱毒化ワクシニアウイルスの抗腫瘍有効性を増加させる物質の治療的有効量を腫瘍部位に接触させる段階を含む、癌患者における癌を治療する方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスの抗腫瘍有効性を増加させる物質が、インターフェロン、プロテイナーゼ、ペプチダーゼ、微小管安定化剤、化学療法、放射線療法、遺伝子治療、免疫療法、および免疫調節療法である、請求項102記載の方法。
- 以下を含む、ワクシニアウイルスの強化EEV型を産生する方法:
a)補体阻害タンパク質を過剰発現するヒト細胞株にワクシニアウイルスを感染させる段階;
b)感染細胞からワクシニアウイルスのEEV型を単離する段階。 - ワクシニアウイルスがA34Rタンパク質をコードする遺伝子において変異を含み、変異によってK151D変異が起こる、請求項104記載の方法。
- 補体阻害タンパク質が、CD55、CD46、またはCD59である、請求項104記載の方法。
- ヒト細胞株が一つより多い補体阻害タンパク質を過剰発現する、請求項104記載の方法。
- 以下を含む、微小残留癌を治療する方法:
(i)切除可能な腫瘍を有する患者を同定する段階;
(ii)腫瘍を切除する段階;および
(iii)A34R、A41L、A53R、B5R、B7R、B8R、B13R、B15R、B18R、B22R、B28R、B29R、C11R、E3L、K2L、N1L、vC12L、またはvCKBPをコードする遺伝子において少なくとも一つの変異を有するワクシニアウイルスを腫瘍床に接触させる段階。 - 以下を含む、腫瘍を有する被験体を治療する方法:
(i)腫瘍を外科的に露出させる段階;および
(ii)A34R、A41L、A53R、B5R、B7R、B8R、B13R、B15R、B18R、B22R、B28R、B29R、C11R、E3L、K2L、N1L、vC12L、またはvCKBP機能を欠損する弱毒化ワクシニアウイルスを該腫瘍に接触させる段階。 - 腫瘍を弱毒化ワクシニアウイルスによって長期間還流する段階を含む、腫瘍を有する被験体を治療する方法。
- 被験体に弱毒化ワクシニアウイルスを投与して、それによって被験体に治療利益を付与する段階を含む、癌を有する被験体における転移性疾患を阻害する方法。
- i)患者に弱毒化ワクシニアウイルスを投与する段階、およびii)患者に化学療法または放射線療法を投与し、それによって被験体に治療利益を付与する段階を含む、患者における多剤耐性腫瘍を治療する方法。
- 弱毒化ワクシニアウイルスの有効量を患者に投与する段階、および腫瘍の全てまたは一部を切除する段階を含む、患者における切除不可能な腫瘍を切除可能にする方法。
- 患者に弱毒化ワクシニアウイルスを投与する段階、および患者に化学療法または放射線療法を投与する段階を含む、癌が化学療法または放射線療法に対して耐性である癌患者を治療する方法。
- ワクシニアウイルスの少なくとも50%強化EEV型である、ワクシニアウイルスを含む組成物。
- ワクシニアウイルスの少なくとも60%強化EEV型である、請求項115記載の組成物。
- ワクシニアウイルスの少なくとも70%強化EEV型である、請求項116記載の組成物。
- ワクシニアウイルスを含み、少なくとも一つの補体阻害ポリペプチドを過剰発現する、ワクシニアウイルスの強化EEV型を産生するためのヒト細胞株。
- 補体阻害ポリペプチドが、CD55、CD46、またはCD59である、請求項118記載のヒト細胞株。
- ワクシニアウイルスが以下の少なくとも一つを発現することができない、請求項118記載のヒト細胞株:
a)機能的インターフェロン調節ポリペプチド;
b)機能的補体制御ポリペプチド;
c)機能的TNF調節ポリペプチド;
d)機能的セリンプロテアーゼ;
e)機能的IL-1β調節因子;
f)機能的抗感染性EEV型ポリペプチド;または
g)機能的A41L、B7R、N1L、もしくはvCKBPケモカイン結合ポリペプチド、またはC11R EGF様ポリペプチド。
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