JP2002513378A - 癌の治療および診断 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 本発明は、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインを認識するか、または前立腺特異的膜抗原に結合あるいはそれで取り込まれる抗体、その結合部分、プローブ、リガンドまたは他の生物薬剤を使用することに関する。これらの生物薬剤は標識され、癌性細胞の検出に用いられる。特に、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインを発現する血管性内皮細胞に近接するか、またはこれを含有する癌性組織の検出に用いられる。標識された生物薬剤は、正常、良性増殖性または癌性前立腺上皮細胞、またはその部分の検出にも用いられる。生物薬剤は、単独で、あるいは前立腺または他の癌の治療として該細胞を殺すまたは切除するのに効果的な物質と共に用いられる。また、４ハイブリドーマ細胞系が開示され、その各々が正常、良性増殖性および癌性前立腺上皮細胞またはその部分の前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインを認識するモノクローナル抗体を産生する。

Description

【発明の詳細な説明】 癌の治療および診断 本出願は、１９９６年７月１８日提出の米国仮特許出願６０/０２２,１２５の 利益を享受し、１９９６年５月６日提出の米国仮特許出願６０/０１６,９７６の 利益を享受する１９９７年４月９日提出の米国特許出願０８/８３８,６８２の一 部継続である。 発明の分野 本発明は生物薬剤による癌の治療および診断に関する。 発明の背景 ある種の癌の治療が改善されてきたにもかかわらず、癌は米国において未だに 死亡原因のトップである。癌を完全に寛解する可能性は、多くの場合、初期診断 によって非常に高められるので、実質的な腫瘍が広がる前に、内科医が癌を検知 できることが非常に望ましい。しかしながら、多くの種類の癌を迅速かつ正確に 検知できる方法の開発が医学界に求められ続けている。そのような実例となるひ とつの癌の種類は前立腺癌である。 前立腺癌は、男性に最も多い癌であり、１９９６年、米国において推定３１７ ,０００症例とされている。腫瘍により死亡する男性における死因の第２位であ り、推定で年間４０,０００人が死亡している。前立腺癌による死亡率を抑制す るために迅速な発見と治療が必要とされている。前立腺癌の発見 癌細胞の転移において、前立腺癌は骨およびリンパ節に転移する明確な傾向を 有する。Saitoh．et al.，"Metastatic Patterns of Prostatic Cancer．Correl ation Between Sites And Number of Organs Involved."Cancer,54:3078-3084(1 984)。臨床診断において、放射性核種走査により患者の２５％に骨への転移が認 められている。Murphy,G.P.,et al.,"The National Survey Of Prostate Cancer In The United States By The American College Of Surgeons,"J ．Urol.，127 :928-939(1982)。結節での併発を正確に臨床上判定することは困難で ある。コンピュータ断層撮影法（"ＣＴ"）あるいは磁気共鳴（"ＭＲ"）映像法の ようなイメージング技術により、リンパ節の転移性前立腺癌併発をサイズ（すな わち、＞１ｃｍ）とは別の基準によって識別することは不可能である。従って、 当然これらのイメージング様式は本来、大きい容積のアデノパシーの発見におい て非特異的であり、小さい容積（＜１ｃｍ）の疾病の発見において感受性が鈍い 。最近の研究において、臨床的に局在性の前立腺癌の患者におけるＭＲの正確さ が調査された。Rifkin et al.,"Comparison Of Magnetic Resonance Imaging An d Ultrasonography In Staging Early Prostate Cancer,"N ．Engl．J．Med.，32 3:621-626(1990)。この研究において、１９４人の患者がＭＲを受け、そのうち １８５人の患者がリンパ節切開を受けた。２３人（１３％）の患者で病理的にリ ンパ節に併発があった。４％の感受性となる２３症例のうち唯１例においてＭＲ が疑わしかった。同様の結果がＣＴスキャンについても見られた。Gasser et al .，"MRI And Ultrasonography In Staging Prostate Cancer,"N ．Engl．J.Med． (Correspondence) ，324(7):49-495(1991)。 前立腺癌転移の患者における血清酸性ホスファターゼ活性の増加が最初、Gutm an et al.によりJ ．Clin．Invest 17:473(1938)に報告された。前立腺の癌にお いて、前立腺酸性ホスファターゼは癌組織から血流へと放出され、その結果、全 血清酸性ホスファターゼレベルは正常値よりはるかに増加する。この酵素および その前立腺癌との関係について数多くの研究がその当時からなされてきた（例え ば、Yam，Amer ．J．Med．56:604(1974)）。しかしながら、血清酸性ホスファタ ーゼの測定値は、骨に転移した前立腺の癌腫がある患者の約６５〜９０％；Ｘ線 による骨への転移の証拠がない患者の約３０％；臨床的に明らかな転移がない患 者の約５〜１０％のみにおいて増加した。 前立腺酸性ホスファターゼに関する特異的試験を開発しようとする先行技術の 試みは、限定的な成功しか納めていない。なぜなら、いわゆる“特異的”基質に 対する酵素活性を基とする技術は、前立腺起源の酵素活性とは無関係の多くの酸 性ホスファターゼにおいて他の生化学的および免疫化学的差異を考慮し得ないか らである。イソ酵素の場合、すなわち同じ特徴的酵素活性および同様の分子構造 を有するが、アミノ酸配列および／あるいは含量が異なる、従って、免疫化学的 には区別され得る、遺伝子学的に定義された酵素の場合、特定の基質を選択する だけで種々のイソ酵素の形態を識別することは、本来不可能であると思われる。 従って、これらの先行技術の方法において、前立腺酸性ホスファターゼ活性の直 接的測定に関して非常に特異的なものが何もないことは驚くべきことではない； 例えば、参照Cancer 5:236(1952);J ．Lab．Clin．Med．82:486(1973);Clin ．Che m．Acta ．44:21(1973);and J ．Physiol．Chem．356:1775(1975)。 前立腺酸性ホスファターゼの検出に使用される先行技術の試薬の多くに特有で あるとみられる上記の非特異性の問題に加え、他の疾病と関連のある血清酸性ホ スファターゼの増加についての報告があり、前立腺癌の正確な臨床診断について の問題をさらに複雑にしている。例えば、Tuchman et al.，Am ．J．Med．27:959 (1959)はゴーシェ病患者の血清酸性ホスファターゼレベルが上昇するらしいこと に注目している。 前立腺酸性ホスファターゼのための“特異的”基質の開発が本来難しいので、 数人の研究者が前立腺酸性ホスファターゼの検出に関する免疫化学的方法を開発 してきた。しかしながら、先に報告された免疫化学的方法には広範囲の受容を妨 げるというそれ自身の欠点がある。例えば、Shulman et al.,Immunology 93:474 (1964)はヒト前立腺酸性ホスファターゼの検出のための免疫−拡散法試験を記載 している。前立腺疾病の患者から直腸マッサージによって得られる前立腺液抗原 から製造される抗血清を使用し、正常な腎臓、睾丸、肝臓および肺の抽出物に対 する二重拡散技術において交差反応沈降素ラインは観察されなかった。しかしな がら、この方法は、抗原が大量に使用されても、および前立腺液に存在する抗原 的に無関係の血清タンパク質成分といった他のものと交差反応することがある抗 血清が大量に使用されても、感受性が限定的であるという不都合を有する。 Chu et al.のＷＯ７９／００４７５には、上記の欠点の多くを取り除く前立腺 癌関連の前立腺酸性ホスファターゼイソ酵素パターンの検出のための方法が記載 されている。しかしながら、実際の問題は、診断上意味のある前立腺癌関連の前 立腺酸性ホスファターゼイソ酵素パターンがその抗体の製造のために抽出される 癌前立腺組織の源を必要とすることから生じている。 最近、特異的診断用試薬の開発の目的で、様々なタイプの悪性腫瘍についての 酵素あるいは抗原マーカーを同定するために多大な努力が費やされている。理想 的な腫瘍マーカーは、他の特性において組織あるいは細胞型についての特異性を 示す。先の研究者らはヒト前立腺の組織特異的抗原の発生を証明している。前立腺癌の治療 W．J．Catalona，"Management of Cancer of the Prostate,"New Engl ．J.Med .，331(15):996-1004(1994)に記載されているように、前立腺癌への対応は、注 意深く見守ること、治療的処置をとること、および対症処置を行うことによって 達成され得る。 平均余命が１０年以下の男性において、良性の前立腺肥大の部分的切除の際に 、低程度で低段階の前立腺癌が発見された場合、注意深く見守ることが肝要であ る。このような癌は発見後の最初の５年間で進行することはめったにない。一方 、若い男性にとって、治療はしばしばより適切である。 前立腺癌が局在性であり、患者の平均余命が１０年あるいはそれ以上の場合、 前立腺の全切除は疾病の根絶のための最良の可能性を提供する。歴史的に、この 方法の欠点は、癌が発見されたときにはほとんどの癌が手術の限界を越えてしま っていることである。しかしながら、前立腺特異的抗原試験の使用は、前立腺癌 の早期発見につながる。結果として、合併症は少なく、外科手術は広範囲に及ば ずに済む。大きい、高程度の腫瘍がある患者は、前立腺の全切除によって好結果 の治療を受ける見込みは低い。 外科手術後、血清前立腺特異的抗原が検出可能な濃度にある場合、残存する癌 を示している。多くの場合、前立腺特異的抗原濃度は放射線治療によって低下す る。しかしながら、この濃度は２年以内にしばしば再び増加する。 放射線療法は前立腺の全切除に代わる手段としても広く使用されてきた。一般 に放射線療法によって治療される患者は、高齢の健康でない者や高程度の臨床的 に進行した腫瘍を有する者である。特に好ましい方法は、放射線の領域を治療さ れる組織の容量に適合するように設定されている３次元の適合放射線療法を伴う 外線療法；放射線化合物の種子が超音波誘導によって移植される介在性放射線療 法；および外線療法と介在性放射線療法の組み合せである。 局部的に進行した疾病の患者の治療には、前立腺の全切除あるいは放射線療法 の前あるいは後にホルモン療法が利用されてきた。ホルモン療法は前立腺癌が拡 大してしまった男性を治療する主要な手段である。睾丸摘除は血清テストステロ ン濃度を減じ、エストロゲン治療も同様に有益である。エストロゲンからのジエ チルスチルベストロールは、別の有用なホルモン療法であるが、心臓血管系の障 害を起こす不都合を有する。ゴナドトロピン放出ホルモンアゴニストが投与され ると、テストステロン濃度は最終的に減少する。フルタミドおよび非ステロイド 、抗−アンドロゲン剤は、テストステロンがその細胞内受容体と結合するのを阻 害する。結果として、血清テストステロン濃度が増加しながら、また患者に性的 能力が残存したままでフルタミドはテストステロンの効果を阻害する。性的能力 については、前立腺の全切除および放射線治療の後では、重要な問題である。 細胞毒性化学療法は前立腺癌治療においてほとんど効果がない。この療法はそ の毒性のために高齢患者にとって不適切となる。さらに、前立腺癌は比較的細胞 障害剤に抵抗力がある。前立腺癌の発見と治療におけるモノクローナル抗体の使用 理論的には、放射ラベルモノクローナル抗体（“ｍＡｂ”）は、リンパ節内お よび他の部位内の前立腺癌の発見に対する感受性および特異性の両方を高める能 力を提供する。多くのｍＡｂがすでに前立腺関連抗原に対して製造されてきたが 、一方イメージング目的として特に製造されたものはない。しかしながら、臨床 的な必要性がらこれらｍＡｂのいくつかが可能なイメージング試薬として検討さ れてきた。Vihko et al.,"Radioimaging of Prostatic Carcinoma With Prostat ic Acid Phosphatase-Specific Antibodies,"Biotechnology in Diagnostics ，1 31-134(1985);Babaian et al.,"Radioimmunological Imaging of Metastatic Pr ostatic Cancer With 111-Indium-Labeled Monoclonal Antibody PAY 276,"J ．U rol .，137:439-443(1987);Leroy et al.,"Radioimmunodetection of LymphNode Invasion In Prostatic Cancer．The Use of Iodine 123(123-I)Labeled Monocl onal Anti-Prostatic Acid Phosphatase(PAP)227 A F(ab')2 Antibody Fragment s In Vivo,"Cancer,64:1-5(1989);Meyers et al.，"Development of Monoclonal Antibody Imaging of Metastatic Prostatic Carcinoma,"The Prostate，14:20 9-220(1989)。 いくつかの場合、前立腺癌の発見および/または治療のために開発されたモノ クローナル抗体は、悪性の前立腺組織に特異的な抗原を認識する。従って、この ような抗体は悪性前立腺組織を（治療あるいは検出のため）良性前立腺組織と区 別するために使用される。参照、Bazinet et al.の米国特許第４,９７０,２９９ およびFreeman et al.の米国特許第４,９０２,６１５。 他のモノクローナル抗体は、癌性あるいは良性のすべての前立腺表皮細胞上で 表面抗原と反応する。参照、Chu et al.の米国特許第４,４４６,１２２およびＲ ｅ３３,４０５、McEwan et al.の米国特許第４,８６３,８５１およびUeda et al .の米国特許第５,０５５,４０４。しかし、これらのモノクローナル抗体によっ て検出される抗原は、血液中に存在し、従って、モノクローナル抗体について腫 瘍部位での抗原と競合する。これは、インビボでのイメージングにおけるこのよ うな抗体の使用が不適当となるノイズを引き起こす。治療において、このような 抗体は、細胞障害剤と結合する場合、他の組織に有害となり得る。 Horoszewicz et al.，"Monoclonal Antibodies to a New Antigenic Marker i n Epithelial Prostatic Cells and Serum of Prostatic Cancer Patients,"Ant icancer Research ，7:927-936(1987)("Horoszewicz")およびHoroszewiczの米国 特許第５,１６２,５０４は、前立腺特異的細胞膜抗原（"ＰＳＭＡ"）を認識する ７Ｅ１１と名付けられた抗体について記載している。Israeli et al.，"Molecul ar Cloning of a Complementary DNA Encoding a Prostate-specific Membrane Antigen,"Cancer Research，53:227-230(1993)("Israeli")は、ＰＳＭＡのクロ ーニングおよび配列決定について記載し、ＰＳＭＡが前立腺特異的であると報告 し、転移部位およびホルモン不応性状態において発現レベルが増加していること を示している。他の研究によれば、ＰＳＭＡは正常な前立腺からの細胞または良 性過形成を有する前立腺からの細胞と比較して、前立腺癌細胞においてより強く 発現することが示されている。さらに、ＰＳＭＡは血清中に見出されない（Troy er et al.，"Detection and Characterization of the Prostate-Specific Memb rane Antigen（PSMA）in Tissue Extracts and Body Fluids,"Int．J ．Cancer， 62:552-558(1995)）。 これらの特徴がＰＳＭＡを前立腺癌のイメージングおよび療法における抗体介 在標的法について魅力的な対象としている。インジュウム標識７Ｅ１１を用いる イメージング研究によれば、抗体は前立腺および転移部位の両方に非常によく局 在することが示された。さらに、７Ｅ１１は、ＣＴおよびＭＲイメージングまた は骨シンチグラフィのような現在利用可能な他のイメージング技術と比較して、 病変の検知に明らかに優れた感受性を有するようである。Bander，"Current Sta tus of Monoclonal Antibodies for Imaging and therapy of Prostate Cancer, "Sem ．In Oncology，21:607-612(1994)。 しかしながら、イメージングおよび治療を提供するために７Ｅ１１および他の 既知の抗体をＰＳＭＡに使用することは、いくつかの不都合を有する。最初に、 ＰＳＭＡは短い細胞内テイルおよび長い細胞外ドメインを有することが知られて いる必須細胞膜タンパク質である。生化学的特徴およびマッピング（Troyer et al.，"Biochemical Characterization and Mapping of the 7E11-C5.3 Epitope of the Prostate-specific Membrane Antigen,"Urol ．Oncol.，1:29-37(1995)） は、７Ｅ１１抗体の結合するエピトープまたは抗原部位が分子の細胞内部分に存 在することを示している。正常な環境下では、抗体分子が分子の細胞外部分と結 合し、細胞内に転座しない限り、抗体分子は細胞膜を通過しないので、７Ｅ１１ 抗体は他の健康な生長細胞においてその抗原標的部位とアクセスしない。 従って、７Ｅ１１を用いるイメージングは、腫瘍蓄積内の死亡細胞の検知に限 定される。さらに、７Ｅ１１抗体の治療への使用は、すでに死んだ細胞または大 部分が死亡細胞である組織だけが効果的に標的され得るので、限定される。 ひとつの特定の癌の種類の診断および治療における不適当および問題が先の議 論の焦点であるが、前立腺癌は単に代表的モデルに過ぎない。数多くの他の癌の 診断および治療が類似の問題を抱えている。 本発明は前立腺癌および他のタイプの癌の診断および治療における先行技術の 抗体の欠点を克服することに関する。 発明の要約 本発明のひとつの実施態様は、癌性細胞を切除または殺す方法に関する。この 方法は、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに接触したときに、前立腺特異的 膜抗原を認識する生物薬剤を提供することを含む。この生物薬剤は、癌性細胞に 近接の血管性内皮細胞に、この血管性内皮細胞に生物薬剤を結合することと癌性 細胞を殺すまたは切除することの両方を可能とするのに効果的な条件で、接触す る。この生物薬剤は、単独で用いられるか、または癌性細胞に近接の血管性内皮 細胞に生物薬剤が結合した際に癌性細胞を殺すまたは切除するのに効果的な物質 と結合して、用いられる。 本発明における癌性細胞を切除または殺す方法の特に好ましい実施態様では、 生物薬剤は、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに接触したときに、該細胞の 前立腺特異的膜抗原で取り込まれる。本発明における癌性細胞を切除または殺す 方法に使用するのに好ましい生物薬剤は、抗体、その結合部分、プローブまたは リガンドである。本発明の方法は、腎、尿路上皮、結腸、直腸、肺、乳房の癌性 細胞または肝への転移性腺癌細胞を殺すまたは切除するのに特に有用である。 本発明の他の実施態様は、生物サンプルにおける癌性組織を検出する方法であ る。この方法は、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに接触したときに、前立 腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに結合する生物薬剤を提供することを含む。生 物薬剤は、癌性細胞に近接または内在の血管性内皮細胞に生物薬剤が結合する際 に、癌性細胞に近接または内在の血管性内皮細胞の検出を可能にするのに効果的 な標識と結合している。生物サンプルは、標識を有する生物薬剤に、生物サンプ ルにおける癌性細胞に近接または内在の血管性内皮細胞に生物薬剤が結合するこ とを可能にするのに効果的な条件で、接触する。生物サンプルにおける癌性組織 の存在が標識の検出により検出される。 本発明で癌性組織を検出する特に好ましい実施態様において、生物薬剤は、前 立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに接触したときに、前立腺特異的膜抗原に結 合し、それで取り込まれるものである。本発明で癌性組織の検出方法での使用に 好ましい生物薬剤は、抗体、その結合部分、プローブまたはリガンドである。本 発明の方法は、腎、尿路上皮、結腸、直腸、肺、乳房の癌性細胞または肝への転 移性腺癌細胞を検出するのに特に有用である。 本発明のさらに他の実施態様は、正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細 胞を切除または殺す方法に関する。この方法は、前立腺特異的膜抗原の細胞外ド メインを認識する生物薬剤を提供することを含む。この生物薬剤は、単独で用い られるか、または細胞に生物薬剤が結合した際に細胞を殺すのに効果的な物質と 結合して、用いられる。この生物薬剤は細胞に、前立腺特異的膜抗原の細胞外ド メインに生物薬剤が結合することと細胞を切除または殺すことの両方を可能にす るのに効果的な条件で、接触する。 本発明で正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を切除または殺す方法 についての特に好ましい実施態様において、生物薬剤は、該細胞の前立腺特異的 膜抗原に結合し、それで取り込まれる。正常、良性増殖性および癌性の前立腺上 皮細胞を切除または殺す方法における使用に好ましい生物薬剤は、抗体、その結 合部分、プローブまたはリガンドである。 本発明の他の実施態様は、生物サンプル中の正常、良性増殖性および癌性の前 立腺上皮細胞を検出する方法に関する。この方法は、前立腺特異的膜抗原の細胞 外ドメインに結合する生物薬剤を提供することを含む。生物薬剤は、細胞または その部分に生物薬剤が結合する際に、細胞またはその部分の検出を可能にするの に効果的な標識と結合している。生物サンプルは、標識を有する生物薬剤に、生 物サンプル中の細胞またはその部分の前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに生 物薬剤が結合することを可能にするのに効果的な条件で、接触する。生物サンプ ル中の細胞またはその部分の存在が標識の検出により検出される。 本発明で正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を検出する方法の特に 好ましい実施態様において、生物薬剤は、該細胞の前立腺特異的膜抗原に結合し 、それで取り込まれる。本発明で正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細胞 を検出する方法における使用に好ましい生物薬剤は、抗体、その結合部分、プロ ーブまたはリガンドである。 本発明の他の実施態様は、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインを認識する生 物薬剤に関する。好ましい実施態様において、単離された生物薬剤は前立腺特異 的膜抗原に結合し、それで取り込まれる。本発明における前立腺特異的膜抗原の 細胞外ドメインを認識する好ましい単離生物薬剤は、単離された抗体、その結合 部分、プローブまたはリガンドである。これらのタイプのモノクローナル抗体を 産生するハイブリドーマ細胞系も開示される。 本発明の生物薬剤は、正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細胞の抗原の 細胞外ドメインを認識する。細胞溶解後に細胞外に露出される前立腺連関抗原の エピトープを認識する７E11抗体と異なり、本発明の生物薬剤は、生きている前 立腺細胞において細胞外に露出される抗原性エピトープに結合する。本発明の生 物薬剤を用いて、生きている、固定されていない正常、良性増殖性および癌性の 前立腺上皮細胞を標的とすることができ、それによって治療および診断をより効 率的にする。前立腺癌を処置するための好ましい実施態様において、本発明の生 物薬剤は前立腺特異的膜抗原に結合もし、それで取り込まれ、よって細胞内で作 用する細胞障害剤の医療的使用が可能となる。 図面の簡単な説明 図１は、4℃でのインキュベーション後のLNCaP細胞表面の金標識モノクローナ ル抗体J591の免疫電子顕微鏡図である。 図２は、37℃でのインキュベーション５分後の金標識モノクローナル抗体J591 で処理したLNCaP細胞の免疫電子顕微鏡図である。 図３は、37℃でのインキュベーション１０分後の金標識モノクローナル抗体J5 91で処理したLNCaP細胞の免疫電子顕微鏡図である。 図４は、37℃でのインキュベーション１５分後の金標識モノクローナル抗体J5 91で処理したLNCaP細胞の免疫電子顕微鏡図である。 図５は、エンドソーム中に37℃で示した１５分後の金標識モノクローナル抗体 J591で処理したLNCaP細胞表面の免疫電子顕微鏡図である。 図６は、モノクローナル抗体J591の重鎖の配列決定戦略の概要を表す。 図７は、モノクローナル抗体J591の重鎖のヌクレオチド配列(配列番号１)、対 応逆転、非コード鎖のヌクレオチド配列(配列番号２)および対応演繹アミノ酸配 列(配列番号３、４および５)を示す。 図８は、モノクローナル抗体J591の重鎖とマウス重鎖サブグループIIAについ ての共通配列との比較である。 図９は、モノクローナル抗体J591のカッパ軽鎖の配列決定戦略の概要を示す。 図１０は、モノクローナル抗体J591のカッパ軽鎖のヌクレオチド配列(配列番 号９)、対応逆転、非コード鎖のヌクレオチド配列(配列番号１０)および対応演 鐸アミノ酸配列(配列番号１１、１２および１３)を示す。 図１１は、モノクローナル抗体J591のカッパ軽鎖とマウスカッパ鎖サブグルー プVについての共通配列との比較である。 図１２Ａ−１２Ｆは、種々の癌腫の血管新生に対するmAB J591の免疫組織化学 的反応性を示す顕微鏡図(倍率250X)である。 発明の詳細な記述 本発明のひとつの実施態様は、正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細胞 を切除または殺す方法に関する。この方法は、該細胞の前立腺特異的膜抗原の細 胞外ドメイン(すなわち、該細胞の外にある前立腺特異的膜抗原の部分)に結合す る、抗体、その結合部分、プローブまたはリガンドなどの生物薬剤を提供するこ とを含む。この生物薬剤は、単独で用いられるか、または細胞に生物薬剤が結合 した際に癌性細胞を殺すのに効果的な物質と結合して、用いられる。この生物薬 剤は細胞に、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに生物薬剤が結合することと 細胞を切除または殺すことの両方を可能にするのに効果的な条件で、接触する。 好ましい形において、該接触は、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに生物薬 剤が結合することと細胞を切除または殺すことの両方を可能にするのに効果的な 条件で、生きている哺乳動物に生物薬剤を投与することによりその哺乳動物中で 実施される。この投与は経口または非経口でなされ得る。 本発明で正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を切除または殺す方法 の特に好ましい実施態様において、生物薬剤は、該細胞の前立腺特異的膜抗原に 結合し、それで取り込まれる。また、生物薬剤は単独で使用することができる。 あるいは、生物薬剤は、生物薬剤が前立腺特異的膜抗原に結合する際および生物 薬剤が前立腺特異的膜抗原で取り込まれる際に細胞を殺すのに効果的な物質と結 合させることができる。 生物薬剤を前立腺特異的膜抗原で取り込むメカニズムは、本発明の実施にとっ てあまり重要でない。例えば、生物薬剤は前立腺特異的膜抗原の取り込みを誘発 する。他方、生物薬剤の取り込みは前立腺特異的膜抗原の通常的な取り込みの結 果でもあり得る。 上記の生物薬剤(すなわち、抗体、その結合部分、プローブまたはリガンドな どの生物薬剤は、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに接触したときに、前立 腺特異的膜抗原の細胞外ドメインを認識し、好ましくはそれで取り込まれる)は 、癌性細胞を切除または殺すのに用いられる。本発明の好ましくは実施態様にお いて、生物薬剤は、単独で用いられるか、癌性細胞に近接の血管性内皮細胞に生 物薬剤が結合した際に細胞を殺すのに効果的な物質と結合して用いられる。生物 薬剤は癌性細胞に近接する血管性内皮細胞に接触される。この接触は、癌性細胞 に近接の血管性内皮細胞に生物薬剤が結合するのに効果的な条件および加えるに 癌性細胞を殺すまたは切除するのに効果的な条件で、実施される。癌性細胞が切 除または殺されるメカニズムは,本発明の実施にとってあまり重要でない。例え ば、癌性細胞は、生物薬剤が結合する血管性内皮細胞へのその近接性の結果とし て、生物薬剤により直接的に切除または殺される。あるいは、生物薬剤は、血管 性内皮細胞に近接の癌性細胞への血流を止めるか、さもなければ減少して、それ により癌性細胞を殺すまたは切除するように、血管性内皮細胞を殺しまたは切除 し、さもなければその性質を変えることができる。このように、本発明の方法は 、癌性組織または癌性組織を含有する癌性細胞における血管性内皮細胞を殺すま たは切除するのに特に有用である。 本発明で癌性組織を切除または殺す方法の特に好ましい実施態様において、生 物薬剤は、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに接触したときに、前立腺特異 的膜抗原の細胞外ドメインに結合し、それで取り込まれるものである。本発明の 方法は、癌性前立腺上皮細胞あるいはそれ以外の癌性細胞を殺すまたは切除する のに特に有用である。癌性前立腺上皮細胞でない癌性細胞の例として、腎、尿路 上皮、結腸、直腸、肺、乳房の癌性細胞または肝への転移性腺癌細胞がある。本 発明方法は、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインおよびその部分を発現する細 胞、および前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインおよびその部分を発現する細胞 に生存を依存しているすべての細胞を殺すまたは切除するのに有用であり得るが 、癌性細胞を殺すまたは切除するのに特に有用である。なぜなら、癌性細胞(例 えば、腫瘍、癌性細胞の集団または他の癌性塊)に血液を供給する血管性内皮細 胞は、関連する癌の種類にかかわらず前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインを発 現するからである。これに対し、正常組織に血液を供給する血管性内皮細胞は、 前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインを発現しない。 本発明の他の実施態様は、生物サンプル中の正常、良性増殖性および癌性上皮 細胞を検出する方法に関する。この方法は、該細胞の前立腺特異的膜抗原の細胞 外ドメインに結合する、抗体、その結合部分、プローブまたはリガンドなどの生 物薬剤を提供することを含む。生物薬剤は、細胞またはその部分に生物薬剤が結 合する際に、細胞またはその部分(例えば、該正常、良性増殖性および癌性上皮 細胞から遊離した前立腺特異的膜抗原またはそのフラグメント)の検出を可能に するのに効果的な標識と結合している。生物サンプルは、標識を有する生物薬剤 に、生物サンプル中の細胞またはその部分の前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメイ ンに生物薬剤が結合することを可能にするのに効果的な条件で、接触する。生物 サンプル中の細胞またはその部分の存在が標識の検出により検出される。好まし い形において、該接触は、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに生物薬剤が結 合することと細胞を切除または殺すことの両方を可能にするのに効果的な条件で 、生きている哺乳動物に生物薬剤を投与することによりその哺乳動物中で実施さ れる。また、この投与は経口または非経口でなされ得る。 本発明の方法は、正常、良性増殖性および癌性の上皮細胞またはその部分に関 連する疾患について患者を識別するのに用いることができる。他方、このような 疾患、特に患者の特定の生物的物質に局在している疾患の再発を同定するのに用 いられる。例えば、放射線での前立腺切除後、.前立腺窩に疾患が再発すること がある。本発明方法を用いると、短射程放射標識抗体を投与し、標識を直腸にお いて経直腸検出プローブなどで検出することにより、再発が調べられる。 一方、接触工程は、血清、尿あるいは他の体液などのサンプルにおいて、例え ば、体液中のPSMAを検出するために実施される。接触が血清または尿サンプルで なされるときは、生物薬剤がPSMA以外の血中を循環する抗原を実質的に認識しな いことが好ましい。無傷の前立腺細胞はPSMAを細胞外環境に排出も分泌もしない ので、血清、尿または他の体液中にPSMAが検出されると前立腺細胞が溶解してい ることを一般的に表す。このように、本発明の生物薬剤および方法は、血清、尿 または他の体液におけるPSMAのレベルを監視することにより、前立腺癌に対する 処置法の効果を調べるのに用いることができる。 本発明で正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を検出方法の特に好ま しい実施態様において、抗体、その結合部分、プローブまたはリガンドなどの生 物薬剤は、該細胞の前立腺特異的膜抗原に結合し、それで取り込まれる。また、 生物薬剤が前立腺特異的膜抗原に結合し、またはそれで取り込まれる際に、生物 薬剤は、細胞またはその部分の検出を可能にするのに効果的な標識に結合してい る。 本発明の他の実施態様は、生物サンプルにおける癌性組織を検出する方法であ る。この方法は、上記の生物薬剤(すなわち、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメ インに接触したときに、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに結合する、抗体 、その結合部分、プローブまたはリガンドなどの生物薬剤)を提供することを含 む。生物薬剤は、癌性細胞に近接または内在の血管性内皮細胞に生物薬剤が結合 する際に、癌性細胞に近接または内在の血管性内皮細胞の検出を可能にするのに 効果的な標識と結合している。生物サンプルは標識を有する生物薬剤に接触され る。接触は、生物サンプルにおける癌性細胞に近接または内在の血管性内皮細胞 に生物薬剤が結合することを可能にするのに効果的な条件で行われる。生物サン プルにおける癌性細胞またはその部分の存在が標識の検出により調べられる。 全体の生物サンプルを生物薬剤に接触させるよりも、部分的な生物サンプルを 使用することが考えられる。例えば、組織生検サンプルを生物薬剤に接触せしめ て、組織生検サンプル中の癌性組織の存在を、元の大きい生物サンプルと同様に 、調べる。あるいは、生物薬剤を血清または尿サンプルに接触せしめて、前立腺 特異的膜抗原の細胞外ドメインを発現する血管性内皮細胞が存在するかどうかを 確認する。前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインを発現する血管性内皮細胞は、 癌性組織の血管系に存在し、正常組織の血管系には見出されないので、血清また は尿サンプルにおける標識の検出は、元の大きい生物サンプル(例えば、患者)に おける癌性組織の存在を表す。 本発明で癌性組織を検出する特に好ましい実施態様において、生物薬剤は、前 立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに接触したときに、前立腺特異的膜抗原に結 合し、それで取り込まれるものである。本発明の方法は、癌性の前立腺上皮細胞 および癌性前立腺上皮細胞以外の癌性細胞を含有する癌性組織を検出するのに用 いられる。本発明で検出できる癌性前立腺上皮細胞以外の癌性細胞を含有する癌 性組織の例としては、腎、尿路上皮、結腸、直腸、肺、乳房の癌性細胞または肝 への転移性腺癌細胞がある。 上述のように、癌性細胞、正常、良性増殖性および前立腺上皮細胞を殺すまた は切断する、あるいはこれらを検出するのいずれにも適している生物薬剤には、 モノクローナルまたはポリクロナール抗体などの抗体が含まれる。さらに、抗体 フラグメント、半抗体、ハイブリド誘導体、プローブおよび他の分子構築体を用 いることができる。抗体、その結合部分、プローブおよびリガンドなどの生物薬 剤は、正常、良性増殖性および癌性前立腺上皮細胞における前立腺特異的膜抗原 の細胞外ドメインまたはその部分に結合する。結果として、正常、良性増殖性お よび前立腺上皮細胞を殺すまたは切断する、あるいはこれらを検出する本発明の 方法を行うときに、生物薬剤はすべてのこのような細胞に、固定されている細胞 や細胞外環境に細胞内抗原性ドメインが露出している細胞のみでなく、結合する 。その結果として、生物薬剤の結合は、前立腺上皮細胞が固定または非固定、生 存または壊死であるにかかわらず、この細胞が存在する場所に集中する。加える にまたは別に、抗体、その結合部分、プローブまたはリガンドなどの生物薬剤は 、正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細胞中の前立腺特異的膜抗原または その部分に結合し、またはそれで取り込まれる。 モノクローナル抗体の製造は、よく知られた技術でなされる。基本的に、望む 抗原によりインビトロまたはインビボのいずれかで予め免疫された哺乳動物(例 えば、マウス)の脾臓由来の免疫細胞(リンパ球)を最初に得ることを含む。抗体 分泌リンパ球は(マウス)ミエローマ細胞または形質転換細胞と融合さす。これら の細胞は、細胞培養中で際限なく複製され、不死の免疫グロブリン分泌細胞系を 産生し得るものである。この融合細胞すなわちハイブリドーマを培養し、得たコ ロニーを望むモノクローナル抗体の産生のためにスクリーンする。このような抗 体を産生するコロニーをクローン化し、インビトロまたはインビボで成長せしめ て、多量の抗体を製造する。このような細胞の融合についての理論的基本および 実際的方法は、Kohler and Milstein，Nature 256:495(1975)（出典明示により 本明細書の一部とする）に記載されている。 哺乳動物のリンパ球を本発明のタンパク質またはペプチドで動物(例えば、マ ウス)のインビボ免疫により免疫する。この免疫を数週間までの間隔で必要に応 じて繰り返し、十分な力価の抗体を得る。最後の免疫強化後に動物を殺し、脾細 胞を取り出す。 哺乳動物のミエローマ細胞または細胞培養中で際限なく複製できる他の融合相 手との融合は、標準的な既知の技術、例えば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ ）や他の融合剤を用いて行われる（参照、Milstein and Kohler，Eur ．J．Immun ol ．6:511(1976)、出典明示により本明細書の一部とする）。この不死の細胞系 は、好ましくはネズミであるが、限定的でなくラットやヒトを含む他の哺乳動物 の細胞からも誘導され、選択されて、ある種の栄養物の利用に必要な酵素を欠き 、成長が速く、融合能の高いものを得る。これらの細胞系の多くは当業者に知ら れており、その他の系も常に報告されている。 ポリクローナル抗体を増大する方法もよく知られている。典型的には、かかる 抗体は、本発明のタンパク質またはポリペプチドをニュージランド白兎（プレ免 疫血清を得るために、まず採血する）に皮下投与することにより、増殖される。 抗原を６カ所の異なる場所に１カ所につき計１００μｌ注射する。各注射物質に は、合成表面活性アジュバント・プルロニックポリオールまたはＳＤＳポリアク リルアミドゲル電気泳動後のタンパク質やポリペプチド含有の微細アクリルアミ ドゲルが含まれる。最初の注射２週間後にウサギから採血し、、次いで定期的に 同じ抗原で３回６週おきに免疫強化する。各強化１０日後にサンプルの血清を採 取する。抗体を捕らえる対応抗原を用いてアフィニティークロマトグラフィーに より血清からポリクローナル抗体を得る。最後にウサギをフェノバルビタール１ ５０ｍｇ／ｋｇＩＶで安楽死させる。ポリクロナール抗体を得るこの方法および 他の方法は、E．Harlow，et al.，editors，Antibodies ：A Laboratory Manual( 1988)（出典明示により本明細書の一部とする）に記載されている。 抗体全体の使用に加えて、本発明の方法は該抗体の結合部分の利用にも関する 。この結合部分には、Ｆａｂフラグメント、Ｆ(ab')₂フラグメントおよびＦｖフ ラグメントが含まれる。これらの抗体フラグメントは、タンパク質分解フラグメ ンテイション法などの従来法によりつくられる。これは、J.Goding，Monoclonal Antibodies:Principles and Practice，pp.98-118（N.Y.Academic Press 1983 ） （出典明示により本明細書の一部とする）に記載されている。 別の手段として、本発明方法において、天然に存在するプローブまたはリガン ド、または組換えＤＮＡ法あるいは他の生物学的方法により合成されたプローブ またはリガンドが使用される。適当なプローブまたはリガンドは、本発明のモノ クローナル抗体により同定される前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに結合す る分子である。他の適当なプローブまたはリガンドは、前立腺特異的膜抗原に結 合、またはそれで取り込まれる分子である。該プローブまたはリガンドは、例え ばタンパク質、ペプチド、レクチンまたは核酸のプローブで有り得る。 下記の表１に同定されるモノクローナル抗体を使用するのが特に好ましい。 表１ これらの抗体は、単独で,または他の抗体または他の生物薬剤との混合物中の成 分として、癌を治療し、あるいは癌性組織(特に、そのうちの血管性内皮細胞)ま たは種々の表面抗原特性を有する前立腺上皮細胞を造影するために、用いられる 。 生物薬剤が治療または診断のいずれに使用されるにかかわらず、生物薬剤は、 経口、非経口、皮下、静脈内、筋肉内、腹腔内、点鼻、空洞または小胞点滴、点 眼、動脈内、病巣内に投与され、または鼻、喉および気管支などの粘膜に適用さ れる。単独で投与されるか、薬学的あるいは生理的に許容される担体、賦形剤ま たは安定剤とともに投与され、そして錠剤、カプセル、粉末、溶液、懸濁液、エ マルションなどの固体または液体の形態をとる。 固体の単位用量形態は通常のタイプであり得る。固体形態は、本発明の抗体や その結合部分などの生物薬剤および担体、例えば滑沢剤やラクトース、スクロー スまたはトウモロコシデンプンなどの無活性充填剤を含有する通常のゼラチンタ イプなどのカプセルであり得る。他の実施態様において、これらの化合物は、ラ クトース、スクロースまたはトウモロコシデンプンなどの通常の錠剤基剤をアカ シア、トウモロコシデンプンまたはゼラチンなどの結合剤、トウモロコシデンプ ン、ジャガイモデンプンまたはアルギン酸などの崩壊剤およびステアリン酸やス テアリン酸マグネシウムのような滑沢剤と併用して錠剤にされる。 本発明の生物薬剤は、薬学的担体と共に生理的に許容される希釈剤中のこれら の物質の溶液または懸濁液により注射可能な用量形態でも投与され得る。この担 体には水や油などの無菌の液体があり、それに界面活性剤およびアジュバント、 賦形剤または安定剤などを含む他の薬理学的および栄養学的に許容される担体が 加えられたり、加えられなかったりする。上記した油は、石油、動物、植物、合 成を起源とし、例えばピーナッツ油、大豆油、鉱物油である。一般的に、水、塩 水、水性デキストールおよび関連糖溶液およびプロピレングリコールまたはポリ エチリングリコールなどのグリコール類が好ましい液体担体、特に注射用の担体 である。 エアゾルとしての使用のために、溶液や懸濁液中の本発明の生物薬剤は、適当 な噴霧剤、例えばプロパン、ブタンまたはイソブタンのような炭化水素系噴霧剤 、通常のアジュバンドとともに、加圧エアゾル容器に充填され得る。本発明の物 質はネブライザーやアトマイザーなどの非加圧形態でも投与され得る。 生物薬剤は、インビボで癌性組織(特に、そのうちの血管性内皮細胞)、および 正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を検出するのに、用いられる。生 物薬剤を標識し、それを哺乳動物に投与し、哺乳動物を造影して、検出する。 本発明による診断造影に有用な標識の例には、¹³¹Ｉ，¹¹¹Ｉｎ，¹²³Ｉ，⁹⁹ｍ Ｔｃ，³²Ｐ，¹²⁵Ｉ，³Ｈ，¹⁴Ｃおよび¹⁸⁸Ｒｈなどの放射標識、フルオレセイン およびローダニンなどの蛍光標識、核磁気共鳴活性標識、ルシフェリンなどの化 学発光体、ペロキシダーゼまたはホスファターゼなどの酵素マーカーがある。経 直腸プローブなどの短射程検出プローブのような短射程放出体も使用される。こ れらの放射同位体および経直腸検出プローブは、併用されるとき、前立腺窩再発 および骨盤結節疾患を検出するのに特に有用である。生物薬剤は既知の技術を用 いてこれらの試薬で標識される。例えば、抗体の放射標識については、Wensel a nd Meares，Radioimmunoimaging and Radioimmunotherapy，Elsevier，New York(1983)（出典明示により本明細書の一部とする）を参照。D．Colcher et Localization of Human Carcinoma Xenografts in Athymic Mice"，Meth ．Enzym ol． 121:802-816(1986)(出典明示により本明細書の一部とする)も参照。 放射標識された本発明の生物薬剤は、インビトロ診断試験に使用され得る。標 識された抗体、その結合部分、プローブまたはリガンドなどの標識された生物薬 剤の特異的活性は、放射活性標識の半減期や同位体純度と、いかに標識が生物薬 剤に合体しているかとに依存する。表２は、いくつかの普通に使用される同位体 、その特異的活性および半減期を表示する。イムノアッセイにおいて、特異的活 性が高くなるほど、一般的に感受性がよくなる。 表２ 生物薬剤を表２の放射活性同位体で標識する方法は、一般的に知られている。 トリチウム・標識法は米国特許第４,３０２,４３８（出典明示により本明細書の 一部とする）に記載されている。ネズミモノクローナル抗体に特に適用されるヨ ウ素化法、トリチウム・標識法および³²Ｓ標識法は、Goding,J.W.(上記、pp124- 126)（出典明示により本明細書の一部とする）に記載されている。抗体やその結 合部分、プローブまたはリガンドなどの生物薬剤をヨウ化する他の方法は、Hunt er and Greenwood，Nature 144:945(1962),David et al.，Biochemistry 13:101 4-1021(1974)、および米国特許第３,８６７,５１７および４,３７６,１１０（出 典明示により本明細書の一部とする）に記載されている。造影に有用な放射標識 元素は、例えば¹²³Ｉ、¹³¹Ｉ、¹¹¹Ｉｎおよび^99mＴｃである。生物薬剤 をヨウ化する方法は、Greenwood，F．et al.,Biochem.J.89:114-123(1963);Marc halonis,J.，Biochem．J．113:299-305(1969);and Morrison，M．et al.,Immuno chemistry ，289-297(1971)（出典明示により本明細書の一部とする）に記載され ている。^99mＴｃ標識法は、Rhodes，B．et al．in Burchiel，S．et al.(eds.) ，Tumor Imaging:The Radioimmunochemical Detection of Cancer，New York:Ma sson 111-123(1982)（出典明示により本明細書の一部とする）に記載されている 。生物薬剤を¹¹¹Ｉｎ標識するのに適した方法は、Hnatowich，D.J．et al.，J ． Immul.Methods ，65:147-157(1983)，Hnatowich，D．et al.，J ．Applied Radiat ion ，35:554-557(1984)，and Buckley，R.G．et al.，F.E.B.S.166:202-204(198 4)（出典明示により本明細書の一部とする）に記載されている。 放射標識された生物薬剤の場合、生物薬剤は患者に投与されて、抗原を生じる 腫瘍に局在する。生物薬剤は、その抗原と反応し、次いで、例えばガンマー・カ メラまたは発光断層撮影法を用いる放射核スキャンなどの既知方法でインビボで 検出すなわち“造影”される。参照、A．R．Bradwell et al.，"Developments i n Antibody Imaging"，Monoclonal Antibodies for Cancer Detection and Ther apy ,R.W.Baldwin et al.,(eds.)，pp.65-85(Academic Press 1985)(出典明示に より本明細書の一部とする)。他方、放射標識が陽電子（例えば、¹¹Ｃ、¹⁸Ｆ、^{1 5} Ｏおよび¹³Ｎ）を放出するときは、Brookhaven National Laboratory に存在す るＰｅｔＶＩなどの陽電子放出軸移送断層撮影スキャナーを使用し得る。 発蛍光団および発色団で標識された生物薬剤は、既知の標準的分子部分からつ くられる。抗体および他のタンパク質が約３１０ｎｍ以上の波長の光を吸収する ので、選択される蛍光部分は、約３１０ｎｍ以上、好ましくは４００ｎｍ以上の 波長で実質的な吸収を有するべきである。種々の適当な発蛍光団および発色団は 、Stryer，Science，162:526(1968)and Brand，L．et al.，Annual Review of B iochemistry ，41:843-868(1972)（出典明示により本明細書の一部とする）に記 載されている。生物薬剤は、米国特許第３,９４０,４７５、４,２８９,７４７お よび４,３７６,１１０（出典明示により本明細書の一部とする）に記載のような 通常の方法によって、蛍光発色基で標識され得る。 上記のいくつかの望ましい特性を有する蛍光体のひとつのグループは、キサン テン色素であって、これは、３,６−ジヒドロ−９−ヘニルキサントヒドロール から誘導されたフルオレセイン、レサミン、３,６−ジアミノ−９−フェニルキ サントヒドロールから誘導されたローダニン、リサニムローダミンＢを含む。ロ ーダミンＢおよびフルオレセインの９−ｏ−カルボキシフェニルキサントヒドロ ール誘導体は９−ｏ−カルボキシフェニル基を有する。アミノおよびイソチオシ アネート基などの活性カップリング基を有するフルオレセイン化合物、例えばフ ルオレセイン・イソシアネートおよびフルオレセスカミンは、容易に利用される 。蛍光化合物の他のグループは、αまたはβ位にアミノ基を有するナフチルアミ ンである。 生物薬剤は、Goding,J.(上記、pp208-249)記載の方法により発蛍光団または発 色団で標識される。生物薬剤は、ＮＭＲ活性¹⁹Ｆ原子を含む指示基または下記の ような原子の複数で標識され得る。それは、（ｉ）天然に豊富にあるフッ素原子 の実質的にすべてが¹⁹Ｆ同位体であり、したがって、実質的にすべてのフッ素含 有化合物がＮＭＲ活性であり、（ii）トリフルオロ酢酸無水物などの多くの化学 的活性ポリフッ化化合物が比較的低価格で市販されており、(iii)多くのフッ化 化合物がヒトに医学的に使用し得る事が知られ、過フッ化ポリエーテルがヘモグ ロビン置換などの酸素移送に用いられているものである。インキュベーションの 時間を取った後、癌性組織(特に、その中の血管性内皮細胞)および前立腺上皮細 胞を局在化し造影するために、全体ＮＭＲ測定をPykett，Scientific American ，246:78-88(1982)（出典明示により本明細書の一部とする）に記載されるよう な機器を用いて実施する。 生きているのと死んだ前立腺上皮細胞含有の領域を識別すること、または生き ているのと死んだ前立腺上皮細胞を識別することが重要である場合、本発明の抗 体(または本発明の他の生物薬剤)は、上記のように標識されて、生きているか死 んだのかいずれかの前立腺上皮細胞のみを認識する抗体または他の生物薬剤と共 に投与される。これらの抗体などは、主体の抗体を標識するのに用いた標識と区 別できる標識で標識されている。種々の場所または時間における２レベルを監視 することにより、生きているまたは死んだ、正常、良性増殖性および癌性前立腺 上皮細胞の場所的および時間的な濃度の変化を確かめることができる。特に、こ の方法は、生きているのと死んだのと両方の前立腺上皮細胞を認識する本発明の 標識抗体と死んだ前立腺上皮細胞のみを認識する標識7El1抗体とを用いて実施す ることができる。 生物薬剤は、インビボで正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を切除 または殺すためにも用いられる。これには、生物薬剤がそれのみ、または生物薬 剤(すなわち、正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細胞を認識する生物薬 剤)が結合する細胞障害剤とともに用いられることが含まれる。また、細胞障害 剤と結合した生物薬剤を処置を必要とする哺乳動物に投与することが含まれる。 正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細胞の場合、生物薬剤は前立腺上皮細 胞を認識するので、生物薬剤が結合するこのような細胞は破壊される。該投与は 正常な前立腺上皮細胞を破壊するが、前立腺が生命に、すなわち生存に必要でな いので問題でない。前立腺は間接的に生殖に関係するが、本発明の処置を受ける 患者にとって実際的に考慮すべき問題ではなかったようである。癌性組織の場合 、生物薬剤が癌性細胞に近接の血管性内皮細胞を認識するので、生物薬剤／細胞 障害剤の血管性内皮細胞との結合は、この細胞を破壊し、それによって近接の癌 性細胞への血流を遮断し、それら癌性細胞を殺すまたは切断する。あるいは、生 物薬剤は、その癌性細胞に近接の血管性内皮細胞との結合によって、癌性細胞に 近接して局在する。このように、適当な生物薬剤(非識別的に、短い射程で細胞 を殺すのに効果的な物質を含有する生物薬剤を含む)を用いて、癌性組織中の細 胞(癌性細胞を含む)が選択的に切断または殺される。 本発明の生物薬剤は、治療薬剤、放射化合物、植物、かび、細菌源の分子、生 物的タンパク質およびこれらの混合物などの様々な細胞障害剤を輸送するのに用 いられる。細胞障害剤は、細胞内作用細胞障害剤、例えば短射程、高エネルギα 放出体などの短射程放射放出体であり得る。 酵素的に活性のトキシンおよびそのフラグメントには、例えば、ジフテリア・ トキシンＡフラグメント、ジフテリア・トキシンの非結合活性フラグメント、エ キソトキシンＡ（Pseudomonas aeruginosa由来）、リシンＡ鎖、アブリンＡ鎖、 モデシンＡ鎖、α−サクリン、ある種のAleurites fordiiタンパク質、ある種の ジアンシン・タンパク質、Phytolacca americanaタンパク質（ＰＡＰ,ＰＡＰＩ ＩおよびＰＡＰ−Ｓ）、Morodica charantia阻害剤、クルシン、クロチン、Sapo naria officinalis阻害剤、ゲロニン、ミタギリン、レストリクトシン、フェノ マイシンおよびエノマイシンがある。酵素的活性タンパク質の製造方法は、ＷＯ ８４／０３５０８およびＷＯ８５／０３５０８（出典明示により本明細書の一部 とする）に記載されている。ある種の細胞障害部分は、例えば、アドリアマイシ ン、クロラムブシル、ダウノマイシン、メトトレキセート、ネオカルジノスタチ ンおよびプラチナムから誘導される。 生物薬剤を細胞障害剤とコンジュゲートする方法は、以前から知られている。 クロラムブシルを抗体とコンジユゲートする方法は、Flechner，I.，European J ournal of Cancer ，9:741-745(1973);Ghose，T．et al.，British Medical Jour nal ,3:495-499(1972);and Szekerke，M.，et al.,Neoplasma,19:211-215(1972) （出典明示により本明細書の一部とする）に記載されている。ダウノマイシンお よびアドリアマイシンを抗体とコンジュゲートする方法は、Hurwitz，E．et al. ，Cancer Research，35:1175-1181（1975）and Arnon，R．et al.，Cancer Surv eys ，1:429-449(1982)（出典明示により本明細書の一部とする）に記載されてい る。抗体−リシン・コンジュゲートを製造する方法は、米国特許第４,４１４,１ ４８およびOsawa，T.，et al.,Cancer Surveys，1:373-388(1982)（出典明示に より本明細書の一部とする）に記載されている。カップリング方法は、ＥＰ８６ ３０９５１６.２（出典明示により本明細書の一部とする）に記載されている。 本発明の特に好ましい実施態様、正常、良性増殖性および癌性前立腺上皮細胞 を殺すまたは切断することについて特に適した実施態様において、第１生物薬剤 がプロドラッグ活性化剤に密接したときにのみ活性化されるプロドラッグとコン ジュゲイトしている。プロドラッグ活性化剤は、本発明の第２生物薬剤、特に前 立腺特異的膜抗原分子上の非競合部位に結合している生物薬剤とコンジュゲート される。競合または非競合結合部位に結合した２種の生物薬剤は、通常の競合結 合アッセイにより測定される。例えば、モノクローナル抗体J591、J533およびE9 9は、前立腺特異的膜抗原分子上の競合結合部位に結合する。他方、抗体J415 は、J591、J533およびE99が結合する部位と競合しない結合部位に結合する。従 って、例えば第１生物薬剤がJ591、J533およびE99の一つであり、第２生物薬剤 がJ415であり得る。逆に、第１生物薬剤がJ415であり、第２生物薬剤がJ591、J5 33およびE99の一つであり得る。本発明の実施に使用するのに適したドラッグ− プロドラッグの対については、Blakely et al.，"ZD2767，an Improved System for Antibody-directed Enzyme Prodrug Therapy That Results in Tumor Regre ssionsin Colorectal Tumor Xenografts."Cancer Reseach，56:3287-3292（1996 ）(出典明示により本明細書の一部とする)に記載されている。 別法において、抗体やその結合部分あるいはプローブは、高エネルギー放出体 、例えば、γ放出体、¹³¹Ｉなどの放射性同位体とカップリングさすことができ 、腫瘍部位に局在して、いくつかの細胞を殺す。参照、例えば、S．E．Order，" Analysis，Results，and Future Prospective of the Therapeutic Use of Radi olabeled Antibody in Cancer Therapy"，Monoclonal Antibodies for Cancer D etection and Therapy ，R．W．Baldwin et al.(eds.),pp303-316(Academic Pres s 1985)（出典明示により本明細書の一部とする）。他の適当な放射性同位体に は、²¹²Bi、²¹³Bi、²¹¹Atなどのα放出体および¹⁸⁶Re、⁹⁰Yなどのβ放出体があ る。癌における前立腺上皮細胞および血管性内皮細胞が放射線に比較的感受性で あることから、放射治療は特に効果的であると期待される。 生物薬剤が癌性細胞または前立腺上皮細胞を殺すまたは切除するために単独で 使用されるときは、補体媒介または抗体依存性の細胞毒性などの内因性宿主免疫 機能が開始されて、殺すまたは切除することがなされる。 本発明の生物薬剤は、特定の標識を検出するために、キットとして器具ととも に使用され、販売され得る。 本発明の生物薬剤の医療的使用は、他の医療処置形態と併用することができる 。その他の処置には、外科処置、放射線照射、冷凍外科法、温熱療法、ホルモン 治療、化学療法、ワクチンおよび他の免疫治療が含まれる。 本発明にさらに包含されるものとして、予防のために生物薬剤を用いて、殺す または切除する方法がある。例えば、これらの物質は、前立腺または他の癌の発 生あるいは進行を防止または遅延するのに用いられる。 本発明の前立腺または他の癌を処置する医療方法には多くの利点がある。生物 薬剤は、癌性細胞(前立腺上皮細胞を含有する癌性組織の細胞など)および前立腺 上皮細胞のみを標的とするので、他の組織に影響しない。結果として、生物薬剤 による処置は安全性が高く、特に高齢者により安全である。本発明による処置は 、前立腺癌の転移が起こりやすく、また多くの他の癌が転移しやすい骨髄やリン パ節に抗体やその結合部分、プローブまたはリガンドなどの生物薬剤を高レベル で向けるので、特に効果的であると期待される。さらに、前立腺癌の腫瘍部位は 大きさが小さい傾向にあり、従って、細胞障害剤により容易に破壊されやすいの で、本発明方法は前立腺癌の処置に特に適している。本発明による処置は、前立 腺癌の場合、血清前立腺特異抗原、患者の癌の病理的特性、グリーソン・スコア 、嚢外の、精液の、小胞の、眼周辺の侵入、リンパ節を含むポジチブ・マージン などの臨床パラメーターにより効果的に監視され得る。また、これらのパラメー ターは、かかる処置が取られるべきかを知るのに使用することができる。 本発明の生物薬剤が生きている前立腺細胞に結合するので、これらの生物薬剤 を使用する前立腺癌を処置する医療的方法は、溶解前立腺細胞を標的とする他の 方法よりも非常に効果的である。同じ理由によって、生きている正常、良性増殖 性または癌性の前立腺上皮細胞(同じく癌における血管性内皮細胞)の存在位置を 診断または造影する方法は、本発明の生物薬剤を用いることにより非常に改善さ れる。さらに、生きているのと死んだ前立腺細胞とを識別する能力は、特に特定 の処置の効果を監視するのに、優れている。 ハイブリドーマE99、J415、J533およびJ591は、特許手続上の微生物の寄託の 国際的承認に関するブタベスト条約の要件に従い、それを満足して、American T ype Culture Collection（A.T.C.C.）at 12301 Parklawn Drive，Rockville，Ma ryland 20852に寄託されている。ハイブリドーマE99は1996年5月2日に(寄託番号 HB-12101)、ハイブリドーマJ415は1996年5月30日に(寄託番号HB-12109)、ハイブ リドーマJ533およびJ591は1996年6月6日に(寄託番号HB-12127およびHB-12126)寄 託された。 本発明を下記の実施例でさらに説明する。 実施例 実施例１−ヒト組織 良性および悪性組織の新鮮な試料は、New York Hospital Cornell University Medical Center(NYH-CUMC)の病理学部門により提供された。実施例２-組織培養 ヒト癌の培養細胞系は、NYH-CUMCの泌尿器癌研究所から得た。前立腺癌細胞系 ＰＣ−３（Mickey，D．D．et al.、『単層培養および無胸腺マウスにおける固形 癌としての、ヒト前立腺癌細胞系（ＤＵ１４５）の特徴づけ』、Prog ．Clin．Bi ol．Res.， 37:67-84(1980)、出典明示により本明細書の一部とする）、ＤＵ−１ ４５（Mickey，D．D．et al.、『単層培養および無胸腺マウスにおける固形癌と しての、ヒト前立腺癌細胞系（ＤＵ１４５）の特徴づけ』、Prog ．Clin．Biol． Res.， 37:67-84(1980)、出典明示により本明細書の一部とする)およびＬＮＣａ Ｐ（Horoszewicz，J．S．et al.、『ヒト前立腺癌のＬＮＣａＰモデル』、Cance r Res ． 43:1809-1818（1983）、出典明示により本明細書の一部とする）は、ア メリカ基準菌株保存機構（ＡＴＣＣ）(Rockville，MD.)から入手した。始めにハ イブリドーマを、１０％ＦＣＳ、０．１ｍＭ非必須アミノ酸、２ｍＭ Ｌ−グル タミン、１００単位／ｍｌペニシリン、１００μｇ／ｍｌストレプトマイシンお よびＨＡＴ培地（GIBC0，Grand Island，NY）を追加したＲＰＭＩ−１６４０培 地中でクローン化した。サブクローンをアミノプテリン非含有の同培地で培養し た。実施例３−マウスモノクローナル抗体の調製 雌性ＢＡＬＢ／ｃマウスを、２週間間隔で３回、LNCaP(6X10⁶細胞)を用いて腹 腔内注射により免疫化した。最後の腹腔内免疫強化をインビトロで生育した新鮮 な前立腺上皮細胞で行った。標準的な技術（Ueda，R．et al.、『マウスモノク ローナル抗体により規定されるヒト腎臓癌の細胞表面抗原：組織特異的肝臓糖蛋 白質の同定』、Proc ．Natl．Acad．Sci．USA，78:5122-5126（1981）（出典明示 により本明細書の一部とする）を用いて、３日後に牌臓細胞をＳＰ−２マウスミ エローマ細胞と融合させた。。得られたクローンの上清を生きているLNCaPに対 するロゼット法および細胞毒性アッセイによりスクリーニングした。これらのア ッセイで陽性であったクローンを正常腎臓、結腸および前立腺に対する免疫化学 でスクリーニングした。LNCaP⁺/Nml腎^-/結腸^-/前立腺⁺であったクローンを選別 し、限定希釈により３回サブクローンした。各クローン由来の培養上清の免疫グ ロブリンクラスを、特異的ウサギ抗血清(Calbiochem，San Diego，CA)を用いて 免疫拡散法により決定した。ＭＡＰＳ−IIキット(Bio-Red，Richmond，CA)を用 いて、ｍＡｂを精製した。実施例４-ｍＡｂのビオチニル化 精製ｍＡｂを０.１ＭＮａＣＯ₃中で２時間透析した。１ｍｇ／ｍｌのｍＡｂ１ ｍｌをジメチルスルホキシド中、ビオチンアミドカプロン酸Ｎ−ヒドロキシスク シンアミドエステル（Sigma）１ｍｇ／ｍｌの０.１ｍｌと混合し、４時間室温で 撹拌した。非結合ビオチンをリン酸緩衝液(ＰＢＳ)に対する透析により除去した 。実施例５-免疫組織化学的染色 前立腺組織のクリオスタット画分を、Marusich，M．F．『免疫組織化学的ハイ ブリドーマスクリーニング用の、組織画分を非常に大量に調製する迅速な方法』 、J ．Immunol．Methods，111:143-145（1988）（出典明示により本明細書の一部 とする）に記載のように、前以て０.４５％ゼラチン溶液で被膜したファルコン ３０３４プレートカバー（Becton-Dickenson、Lincoln Park、NJ）のリング内に 置いた。プレートを−８０℃で貯蔵した。クリオスタット画分を１０分間室温で ＰＢＳ中、２％パラホルムアルデヒドで固定し、ＰＢＳで洗浄後、内因性ペルオ キシダーゼ活性は、１０分間室温でＰＢＳ中、０.３％過酸化水素で処理するこ とにより阻害された。画分を２０分間ＰＢＳ中、２％ＢＳＡでインキュベートし た後、ｍＡｂを６０分間で室温にて加えた。スライドは、ＰＢＳで充分に洗浄し 、ＰＢＳ中１０％正常ヒト血清で１：１００に希釈したペルオキシダーゼーコン ジュゲートウサギ・アンチーマウスＩｇ（DAKO Corp.，Santa Barbara，CA）と 共に６０分間、室温でインキュベートした。ジアミノベンジン反応後、画分をヘ マトキシリンを用いて対比染色した。実施例６−血清学的解析 アンチ−マウス免疫グロブリン混合血球吸着アッセイを、Ueda，R．et al.、 『マウスモノクローナル抗体により規定されるヒト腎臓癌の細胞表面抗原：組織 特異性肝臓糖蛋白質の同定』、Proc ．Natl．Acad．Sci．USA，78：5122-5126(19 81)（出典明示により本明細書の一部とする）に記載のように行った。指示細胞 を調製するために、０.０１％塩化クロムを用いて、アンチ−マウス１ｇDAK0(Co rp.)をＯ型ヒトＲＢＣに結合させた。血清学的検定は、前以てテラサキプレート （Nunc，Denmark）で培養した細胞で行った。抗体を室温で１時間、標的細胞と 共にインキュベートした。ついで、標的細胞を洗浄し、指示細胞を１時間で加え た。実施例７−免疫沈降反応 ＬＮＣａＰ細胞（２×１０⁷）を氷上３０分間ビオチンＮＨＳＳ（最終濃度５ ｍＭ）でビオチニル化した。洗った後、ビオチニル化細胞を氷上３０分間、溶解 緩衝液１ｍｌ（２０ｍＭ Tris／ＨＣｌ、ｐＨ８．０、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１ｍ Ｍ ＰＭＳＦ、１％ toriton X-100）に再懸濁した。懸濁液を４℃１００分間１ ５００ｇ×１００で遠心分離し、上澄み液を４℃で１５分間１２，０００ｒｐｍ で遠心分離した。得た溶解質をウサギまたはヤギ−マウスＩｇＧ−コート・パン ソルビンで４℃１時間あらかじめ吸収せしめた。吸収された溶解質をｍＡｂで４ ℃一夜インキュベートした。ウサギまたはヤギアンチ−マウスＩｇコート・アガ ロースビードを４℃２時間で加え、次いで洗った。ビードをTris塩基／ＮａＣｌ に再懸濁し、サンプルの緩衝液に２−メルカプトエタノールと共に加え、５分間 煮沸した。遠心分離後、上澄み液をＳＤＳ−ＰＡＧＥ１２％ゲルにかけた。ゲル をストラプタビジン−ペルオキシダーゼでブロックおよび着色されたニトロセル ロース膜を通した。膜はジアミノベンジディン（ＤＡＢ）で展開された。 逐次免疫沈降は、溶解質が４℃一夜−７９ｍＡｂで最初にあらかじめ処理され た以外は同様である。次いで第２のｍＡｂが用いられて、前処理された溶解質が 免疫沈降された。 約２０００クローンがスクリーンされ、うち４クローンは実施例４に記載のよ うに選択された。サブクローニングの後、４ハイブリドーマ、Ｅ９９、Ｊ４１５ 、Ｊ５３３およびＪ５９１からの上澄み液を、生存能力のある（すなわち非固定 の）ＬＮＣａＰに対する免疫蛍光および免疫沈降および逐次免疫沈降によって検 定し、ＰＳＭＡに対する反応性を確認した。 ＬＮＣａＰ標的細胞（最初にHoroszewiczに記載されており、７Ｅ１１抗体お よびＰＳＭＡの発現についてのプロトタイプ細胞系をつくる）を用いた免疫蛍光 試験は、Ｅ９９抗体が生存能力のあるＬＮＣａＰ細胞免疫蛍光物に結合し、低下 することを示す。このことは、Horoszewiczが最初に記載したように、７Ｅ１１ 抗体が生存能力のあるＬＮＣａＰ細胞にほとんどまたはまったく結合しないで、 固定された（死んだ）細胞のみに強く結合することと好対照である。 ４種のｍＡｂの正常ヒト組織との反応性を免疫組織化学的に調べた。その結果 を表３に示す。 表３ 間接的免疫ペルオキシダーゼ染色によるｍＡｂのヒト正常組織との反応性 上記の逐次免疫沈降試験は、７Ｅ１１、Ｅ９９、Ｊ４１５、Ｊ５３３および５ ９１が同じ分子すなわちＰＳＭＡに結合することを示した。実施例８−ウェスタンブロット法 抗体Ｅ９９、Ｊ４１５、Ｊ５３３および５９１が７Ｅ１１抗体（すなわちＰＳ ＭＡ）と同じバンドを沈降することを確認するために、ウェスタンブロット法を 行った。精液（４００μｇ／レーン）またはＬＮＣａＰ溶解質を１２％ＳＤＳ− ＰＡＧＥゲルのレーン中に充填した。ゲルをニトロセルロース膜に移した。膜を 室温６０分間、５％ドライミルク／Tris緩衝液-Tween２０（ＴＢＳＴ）でブロッ クした。洗った後、膜を室温で６０分間、最初のｍＡｂでインキュベートした。 くり返して洗った後、膜を室温で６０分間、５％ドライミルク／ＴＢＳＴ中のヤ ギアンチマウス−Ｉｇペルオキシダーゼ１／５０００でインキュベートした。さ らに洗った後、“ＥＣＬ”（Amersham Life Sciences，International，Arlingt on Heights，Illinois）と云う化学発光物を用いて製造業者の指示通りに展開し た。ウェスタンブロット試験を表４に示す。 表４ ウェスタンブロット結果 実施例９−ＰＳＭＡの外的ドメインに対するｍＡｂの反応性 検出されたＰＳＭＡの細胞表面（外部）発現を確認するために、新鮮な生存能 力のある細胞を固定することなしに、インビトロで免疫蛍光によって調べた。Ｌ ＮＣａＰ細胞を洗い、室温で１時間、ｍＡｂと共に、次いでウサギアンチマウス Ｉｇ蛍光物（DAKO Corp.，Santa Babara．CA）と共にインキュベートした。ウ ェルを蛍光顕微鏡で読んだ。陰性コントロールはアイソタイプ対無関係ｍＡｂか らなり、一方、アンチ−クラスＩ ＭＨＣ ｍＡｂは陽性コントロールとなった 。 免疫蛍光法およびロゼット法の結果を表５に示す。 表５ ７Ｅ１１の新しいｍＡｂとの比較 実施例１０−競合試験 Ｊ５９１，Ｊ５３３，Ｅ９９およびＪ４１５が同じまたは異なる前立腺特異的 膜抗原分子の抗原性部位（エピトープ）を検出したかどうかを調べるために、下 記の方法で競合試験を行った。 前立腺特異的膜抗原源としてのＬＮＣａＰ細胞系の溶解質でプレートをコート し、洗って非結合物を除去した。“コールド”（非標識）モノクローナル抗体を プレート上で室温１時間インキュベートし、その抗原性部位へ結合せしめした。 次いで、ビオチンまたは¹²⁵Ｉで標識した第２モノクローナル抗体を追加の時間 で加えた。前立腺特異的膜抗原コートプレートに結合の第２モノクロナール抗体 の量は酵素連結イムノアッセイのアビジン−アルカリホスファターゼ（ビオチン 標識第２モノクロナール抗体の場合）またはガンマー・カウンターでの物理的に 計数（¹²⁵Ｉ−標識第２モノクロナール抗体の場合）によって調べた。非標識（ コールド）と標識されているのと両方の同じモノクローナル抗体を用いたコント ロールを“１００％競合”とし、まったく異なる分子に対するモノクローナル抗 体（例えば、前立腺特異的膜抗原と異なる前立腺関連タンパク質であるインヒビ ンを検出するモノクローナル抗体Ｉ−５６）を“０％競合”と定義した。 その結果によると、Ｊ５９１、Ｊ５３３およびE９９は互に妨害し、競合し夫 々の結合をブロックするが、Ｊ４１５の結合をブロックしない。逆も同じである 。７Ｅ１１／ＣＹＴ３５６は、異なる部位(細胞内)でＰＳＭＡを結合するこ とが知られているが、Ｊ５９１、Ｊ５３３、Ｅ９９またはＪ４１５のいずれをも ブロックしなかった。 非競合的部位に結合するモノクローナル抗体の対を有することは、例えば体液 における可溶化前立腺特異的膜抗原またはそのフラグメントなどの可溶性抗原に ついての抗体サンドウィッチアッセイの開発を可能にする。例えば、抗原（例え ば前立腺特異的膜抗原またはそのフラグメント）は、Ｊ５９１で体液から“捕捉 ”され、他の工程で標識Ｊ４１５により検出され得る。 別の処置において、非競合的モノクローナル抗体を用いて抗体結合を増すこと ができる。例えば、非競合部位が各々前立腺特異的膜抗原分子上で提示されてい るとすると、Ｊ５９１とＪ４１５の併用を加えることは、夫々のモノクローナル 抗体単独の２倍のモノクローナル抗体分子に結合することになる。２つの非競合 抗原結合部位に結合することは、抗原架橋を増加し、そしておそらく取りこみを 増大することになる。さらに２つの検出された部位は同じ前立腺特異的膜抗原分 子上に物理的に位置しているので、単一の前立腺特異的膜抗原分子に２つのモノ クローナル抗体分子が結合することは、２つのモノクローナル抗原分子を互に近 接の場所に置き、非常に好ましいドラック−プロドラッグ相互作用を提供する。 例えば、モノクローナル抗体Ｊ５９１は不活性プロドラッグとコンジゲートし、 Ｊ４１５はプロドラッグ活性化剤とコンジゲートされ得る。プロドラッグと活性 化剤は、前立腺特異的膜抗原−発現細胞（例えば、前立腺癌細胞）の部位でのみ 密接して結合しているので、活性型へのプロドラッグの活性化はそれらの部位で のみ起きる、実施例１１−顕微鏡検査 共焦点顕微鏡検査および免疫電子顕微鏡検査によると、Ｅ９９、Ｊ５９１、Ｊ ５３３およびＪ４１５はクラスリン被覆小窩で細胞膜に結合し、迅速にエンドソ ーム（細胞膜小胞）に取り込まれる。図１−４は、細胞表面での金標識モノクロ ーナル抗体Ｊ５９１の取り込みを時間関数で表わしている免疫電子顕微鏡検査で ある。これらの図においてモノクローナル抗体は黒点で表わされる。 生存能力のあるＬＮＣａＰ細胞をＪ５９１と共に４℃で１時間インキュベート した。細胞を洗い、３７℃で、０、５、１０または１５分に取得し、固定し、免 疫電子顕微鏡検査を行った。図１は３７℃インキュベーションの前の細胞を示す 。Ｊ５９１が細胞膜の外観に沿って細胞に結合しているのが見られる。この図に おいて、“Ｍ”は細胞のミトコンドリアを、“Ｎ”は核を示す。図２は３７℃５ 分間インキュベーション後の細胞を示す。矢印はクラスリン被覆小窩の形成を示 す。図３は３７℃１０分インキュベーション後の細胞を示す。クラスリン被覆小 窩の摘み取り、すなわち細胞内取り込み（エンドサイト−シス）が矢印で示すよ うに見られる。図４では、３７℃１５分間インキュベーション後に、モノクロー ナル抗体Ｊ５９１が細胞内の取り込み小胞に含有されており、矢印で示す。図５ では、３７℃１５分間インキュベーション後に、モノクローナル抗体Ｊ５９１が エンドソーム中にも含有されており、矢印で示す。実施例１２−モノクローナル抗体５９１の可変領域の配列決定 全ＲＮＡを１０⁷ネズミハイブリドーマＪ５９１細胞から調製した。これらの 細胞からのコンディションドメディウムのサンプルについて、前立腺細胞上のＪ ５９１の特異抗原との結合を調べた。条件培養基はＥＬＩＳＡおよびウェスタン ブロット法で抗原との結合が陽性であった。 ＶＨおよびＶＫ ｃＤＮＡは、逆転写酵素、マウスκ定常領域およびマウスＩ ｇＧ正常領域プライマーを用いて調製した。第１鎖ｃＤＮＡは多種のマウスシグ ナル配列プライマー（ＶＨについて６、ＶＫについて７）を用いて、ＰＣＲによ り増幅した。増幅ＤＮＡをゲル精製し、ベクターｐＴ７Ｂｌｕｅ中にクローン化 した。 得たＶＨおよびＶＫクローンをＰＣＲで正しい挿入について選別し、選択した クローンのＤＮＡ配列をジデオキン鎖測定法で調べた。 プライマー領域（用いられたプライマーの配列に依存したこの配列として）、 得たすべてのＶＨクローンは同じ配列を有していた。この配列は３種の異なる５ ’プライマーから産生したクローンより得られた。１つのクローンはシグナル配 列に１塩基対を有し、１つのクローンは異常なＰＣＲ産物を含有していた。図６ に示す配列決定戦略を用いて、重鎖についてのヌクレオチド配列を得た。これを 配列番号１とし、対応の逆転非コード鎖のヌクレオチド配列（配列番号２）と併 せて、図７に示す。これらの配列はシグナル配列の部分および抗体の定常領域 の部分を含んでいる。Ｊ５９１ＶＨの対応演繹アミノ酸配列を配列番号３、配列 番号４および配列番号５として図７に示す。Ｊ５９１重鎖の可変領域（シグナル 配列および定常領域成分を除く）のコード鎖は、下記ヌクレオチド配列（配列番 号６）を有する。 Ｊ５９１重鎖の可変領域（シグナル配列および定常領域成分を除く）の逆転、 非コード鎖は、下記ヌクレオチド配列（配列番号７）を有する。 Ｊ５９１重鎖の可変領域（シグナル配列および定常領域成分を除く）に対応す るタンパク質配列は、下記のヌクレオチド配列（配列番号８）を有する。 Ｊ５９１ＶＨはマウス重鎖サブグループIIＡ（Kabat et al.，Sequences of P roteins of Immunoloqical Interest,U.S．Department of Health and Human Se rvices（1991）(“Kabat”)、出典明示により本明細書の一部とする。）中に存 在する。図８にＪ５９１の配列をこのサブグールとの共通配列について比較する 。 ＶＨと異なり、複数のＶＫ配列が得られた。検査した１５ＶＫクローンのうち 、 ４が融合相手（Carol et al.，Molecular Immunology，25:991-995(1988)、出典 明示により本明細書の一部とする）からの異常マウスＩｇκの配列を有した。こ れらのクローンは２つの特異的５’プライマーから始まる。これらのクローンに ついてはさらに研究しなかった。残りのクローンのうち、１０は同じヌクレオチ ド配列を有し、１つのクローン、ＶＫ１７は別のＶＫ配列を有した。１０の同じ クローンは３つの５’プライマー（異常配列を示す２つのものと異なる）から始 まり、そのうち１つはＶＫ１７を産生した。用いた配列決定戦略を図９に示す。 １０の同じクローンに対応するＪ５９１ＶＫの核酸配列（配列番号９）を、対 応する逆転非コード鎖の核酸配列（配列番号１０）および演繹アミノ酸配列（配 列番号１１、１２、１３）と併せて図１０に示す。これらの配列はシグナル配列 の部分および抗体の定常領域の部分を含有している。１０の同じクローンに対応 するＪ５９１軽（kappa）鎖の可変領域（シグナル配列および定常領域成分を除 く）のコード鎖は下記のヌクレオチド配列（配列番号１４）を有する。 １０の同じクローンに対応するＪ５９１軽（kappa）鎖の可変領域（シグナル 配列および定常領域成分を除く）の逆転、非コード鎖は下記のヌクレオチド配列 （配列番号１５）を有する。 １０の同じクローンに対応のＪ５９１軽（kappa）鎖の可変領域（シグナル配 列および定常領域成分を除く）に対応するタンパク質配列は下記のヌクレオチド 配列（配列番号１６）を有する。 クローンＶＫ１７に対応するＪ５９１軽（kappa）鎖の可変領域（シグナル配 列および定常領域成分を除く）のコード鎖は下記のヌクレオチド配列（配列番号 １７）を有する。 クローンＶＫ１７に対応するＪ５９１軽（kappa）鎖の可変領域（シグナル配 列および定常領域成分を除く）の逆転、非コード鎖は下記のヌクレオチド配列（ 配列番号１８）を有する。 クローンＶＫ１７に対応のＪ５９１軽（kappa）鎖の可変領域（シグナル配列 および定常領域成分を除く）に対応するタンパク質配列は下記のヌクレオチド配 列（配列番号１９）を有する。 Ｊ５９１ＶＫはマウスカッパー鎖サブグループＶ（Kabat，出典明示により本 明細書の一部とする）に存在する。図１１において、１０の同じクローンに対応 するＪ５９１ＶＫの配列をこのサブグループの共通配列について比較する。 好ましいＪ５９１の配列は、配列番号６に対応する重鎖可変領域ＤＮＡコード 鎖配列および配列番号７に対応する重鎖可変領域ＤＮＡコード鎖配列を有するも のである。Ｊ５９１の重鎖可変領域は、好ましくは配列番号８に対応するアミノ 酸配列を有する。Ｊ５９１の軽鎖可変領域は、好ましくは配列番号１７に対応す るＤＮＡコード鎖配列、配列番号１８に対応するＤＮＡ非コード鎖（逆転）配列 および配列番号１９に対応するアミノ酸配列を有する。実施例１３−正常および癌性組織の免疫組織化学的染色 ２３癌腫からの癌組織を液体窒素であらかじめ冷し、ドライアイス上ＯＴＣ化 合物（Miles，Elkhart，Indiana）中で急凍し、−８０℃で保存した。低温槽の 組織画分（５μｍ）を冷アセトン（４℃）で１０分間で固定した。ｍＡｂ（５μ ｇ／ｍｌまたはハイブリドーマ上清）を室温で１時間インキュベートした。抗体 結合は、第２抗体としてウサギアンチ−マウスＩｇペルオキシダーゼ（Dako，Ca rpinteria，California）およびクロモゲンとしてＤＡＢ（Sigma，St．Louis，M issouri）を用いて検出した。同位体マッチ非関連抗体を陰性コントロールとし て用いた。 ｍＡｂ Ｊ５９１，Ｊ５３３，Ｊ４１５およびＥ９９は、試験した全２３の癌 腫中の血管性内皮細胞に強く反応した。これらは、９／９腎の、５／５尿路の、 ６／６結腸の、１／１肺の、１／１乳房の癌腫および１／１肝への転移性腺癌で ある。図２Ａ−２Ｆは、それぞれ腎、尿路、結腸、肺および乳房の癌腫、および 肝への転移性腺腫の新生血管系に対するｍＡｂ Ｊ５９１の免疫化学的反応性を 示す。 説明の目的で本発明を詳細に記載したが、この詳述は説明のためにのみなされ たものであって、当業者は下記の請求項に定義される本発明の精神および範囲を 逸脱することなしに改変できることが理解されるべきである。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ｃ０７Ｋ 16/28 Ｃ１２Ｐ 21/08 Ｃ１２Ｐ 21/08 Ｃ１２Ｑ 1/02 Ｃ１２Ｑ 1/02 Ｇ０１Ｎ 33/53 Ｙ Ｇ０１Ｎ 33/53 33/574 Ｄ 33/574 (Ｃ１２Ｐ 21/08 // Ｃ１２Ｎ 15/09 ＺＮＡ Ｃ１２Ｒ 1:91） (Ｃ１２Ｐ 21/08 Ａ６１Ｋ 37/02 Ｃ１２Ｒ 1:91） Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ， ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，Ｌ Ｕ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ， ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，Ｓ Ｄ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ， ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，Ｇ Ｅ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ， ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，Ｐ Ｌ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ， ＹＵ

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １．癌性細胞を切除または殺す方法であって、 前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに接触したときに、前立腺特異的膜抗原 の細胞外ドメインに結合する生物薬剤を準備し、 癌性細胞に近接の血管性内皮細胞を生物薬剤に、癌性細胞に近接の血管性内皮 細胞に生物薬剤が結合することと癌性細胞を切除または殺すことの両方を可能に するのに効果的な条件で、接触せしめる、 ことを含む方法。 ２．生物薬剤が癌性細胞に近接の血管性内皮細胞を殺すまたは切除し、それによ って癌性細胞への血流を減少して癌性細胞を殺すまたは切除する、請求項１の方 法。 ３．癌性細胞が腎癌性細胞、尿路上皮癌性細胞、結腸癌性細胞、直腸癌性細胞、 肺癌性細胞、乳房癌性細胞または肝への転移性腺癌細胞である、請求項1の方法 。 ４．生物薬剤が抗体、その結合部分、プローブまたはリガンドである、請求項１ の方法。 ５．生物薬剤が、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに接触したときに、前立 腺特異的膜抗原で取り込まれる、請求項１の方法。 ６．該接触が生きている哺乳動物で実施され、そして、 生物薬剤を哺乳動物に、癌性細胞に近接の血管性内皮細胞に生物薬剤を結合さ すことと癌性細胞を殺すことの両方を可能とするのに効果的な条件で、投与する ことを含む、請求項１の方法。 ７．該投与が経口で、非経口で、皮下に、静脈内に、筋肉内に、腹腔内に、点鼻 で、空洞または小胞点滴で、点眼で、動脈内に、病巣内に、および粘膜になされ る、請求項６の方法。 ８．抗体が請求項４の方法の実施において使用され、この抗体がモノクローナル およびポリクローナル抗体よりなる群から選ばれる抗体である、請求項４の方法 。 ９．抗体がE99、J415、J533およびJ591モノクローナル抗体よりなる群から選ば れる、請求項８の方法。 １０．抗体がHB-12101、HB-12109、HB-12127およびHB-12126抗体よりなる群から 選ばれるATCC受託番号を有するハイブリド細胞系により産生されるモノクローナ ル抗体である、請求項８の方法。 １１．抗体の結合部分が請求項４の方法の実施において使用され、この結合部分 がFabフラグメント、F(ab')₂フラグメントおよびFvフラグメントよりなる群から 選ばれる、請求項４の方法。 １２．プローブまたはリガンドが請求項４の方法の実施において使用される、請 求項４の方法。 １３．生物薬剤が、癌性細胞に近接の血管性内皮細胞に生物薬剤が結合する際に 癌性細胞を殺すまたは切除するのに効果的な物質に結合している、請求項１の方 法。 １４．癌性細胞を殺すまたは切除するのに効果的な物質が細胞障害剤である、請 求項１３の方法。 １５．細胞障害剤が治療薬剤、放射化合物、植物、カビまたは細菌源の分子、生 物性タンパク質およびこれらの混合物よりなる群から選ばれる、請求項１４の方 法。 １６．抗体が内因性宿主免疫機能を開始するのに効果的である、請求項４の方法 。 １７．内因性宿主免疫機能が補体媒介性細胞障害である、請求項１６の方法。 １８．内因性宿主免疫機能が抗体依存性細胞障害である、請求項１６の方法。 １９．生物薬剤が、生理的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有 する組成物に含まれる、請求項１の方法。 ２０．生物薬剤が、薬学的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有 する組成物に含まれる、請求項１の方法。 ２１．生物サンプルにおいて癌性組織を検出する方法であって、 前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに接触したときに、前立腺特異的膜抗原 の細胞外ドメインに結合する生物薬剤を準備し、そのうち、生物薬剤は、癌性細 胞に近接または内在の血管性内皮細胞に生物薬剤が結合する際に癌性細胞に近接 または内在の血管性内皮細胞の検出を可能にするのに効果的な標識と結合してお り、 標識を有する生物薬剤に生物サンプルを、生物サンプルにおける癌性細胞に近 接または内在の血管性内皮細胞に生物薬剤が結合することを可能にするのに効果 的な条件で、接触せしめ、 標識の検出により生物サンプルにおける癌性組織の存在を検出する、ことを含 む方法。 ２２．癌性細胞が腎癌性細胞、尿路上皮癌性細胞、結腸癌性細胞、直腸癌性細胞 、肺癌性細胞、乳房癌性細胞または肝への転移性腺癌細胞である、請求項２１の 方法。 ２３．生物薬剤が抗体、その結合部分、プローブまたはリガンドである、請求項 ２１の方法。 ２４．生物薬剤が、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに接触したときに、前 立腺特異的膜抗原で取り込まれる、請求項２１の方法。 ２５．該接触が生きている哺乳動物で実施され、そして、 生物薬剤を哺乳動物に、癌性細胞に近接の血管性内皮細胞に生物薬剤を結合さ すことと癌性細胞を殺すことの両方を可能とするのに効果的な条件で、投与する ことを含む、請求項２１の方法。 ２６．標識が短射程放射放出体である、請求項２５の方法。 ２７．該投与が経口で、非経口で、皮下に、静脈内に、筋肉内に、腹腔内に、点 鼻で、空洞または小胞点滴で、点眼で、動脈内に、病巣内に、および粘膜になさ れる、請求項２５の方法。 ２８．抗体が請求項２３の方法の実施において使用され、この抗体がモノクロー ナルおよびポリクローナル抗体よりなる群から選ばれる抗体である、請求項２３ の方法。 ２９．抗体がE99、J415、J533およびJ591モノクローナル抗体よりなる群から選 ばれる、請求項２８の方法。 ３０．抗体がHB-12101、HB-12109、HB-12127およびHB-12126抗体よりなる群から 選ばれるATCC受託番号を有するハイブリド細胞系により産生されるモノクローナ ル抗体である、請求項２８の方法。 ３１．抗体の結合部分が請求項２３の方法の実施において使用され、この結合部 分がFabフラグメント、F(ab')₂フラグメントおよびFvフラグメントよりなる群か ら選ばれる、請求項２３の方法。 ３２．プローブまたはリガンドが請求項２３の方法の実施において使用される、 請求項２３の方法。 ３３．標識が蛍光標識、放射標識、核磁気共鳴活性標識、発光体および発光団よ りなる群から選ばれる、請求項２１の方法。 ３４．生物薬剤が、生理的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有 する組成物に含まれる、請求項２１の方法。 ３５．生物薬剤が、薬学的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有 する組成物に含まれる、請求項２１の方法。 ３６．該接触がサンプルの血清または尿において行われる、請求項２１の方法。 ３７．該接触が組織生検サンプルにおいて行われる、請求項２１の方法。 ３８．正常、良性増殖性および癌性前立腺上皮細胞を切除または殺す方法であっ て、 前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに結合する生物薬剤を準備し、 該細胞を生物薬剤に、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに生物薬剤が結合 することと該細胞を切除または殺すことの両方を可能にするのに効果的な条件で 、接触せしめる、 ことを含む方法。 ３９．生物薬剤が抗体、その結合部分、プローブまたはリガンドである、請求項 ３８の方法。 ４０．生物薬剤が、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに接触したときに、前 立腺特異的膜抗原で取り込まれる、請求項３８の方法。 ４１．該接触が生きている哺乳動物で実施され、そして、 生物薬剤を哺乳動物に、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに生物薬剤を結 合さすことと該細胞を殺すことの両方を可能とするのに効果的な条件で、投与す る、 ことを含む請求項３８の方法。 ４２．生物薬剤が前立腺特異的膜抗原で取り込まれる、請求項４１の方法。 ４３．該投与が経口で、非経口で、皮下に、静脈内に、筋肉内に、腹腔内に、点 鼻で、空洞または小胞点滴で、点眼で、動脈内に、病巣内に、および粘膜になさ れる、請求項４１の方法。 ４４．抗体が請求項３９の方法の実施において使用され、この抗体がモノクロー ナルおよびポリクローナル抗体よりなる群から選ばれる抗体である、請求項３９ の方法。 ４５．抗体がE99、J415、J533およびJ591モノクローナル抗体よりなる群から選 ばれる、請求項４４の方法。 ４６．抗体がHB-12101、HB-12109、HB-12127およびHB-12126抗体よりなる群から 選ばれるATCC受託番号を有するハイブリド細胞系により産生されるモノクローナ ル抗体である、請求項４４の方法。 ４７．抗体の結合部分が請求項３９の方法の実施において使用され、この結合部 分がFabフラグメント、F(ab')₂フラグメントおよびFvフラグメントよりなる群か ら選ばれる、請求項３９の方法。 ４８．プローブまたはリガンドが請求項３９の方法の実施において使用される、 請求項３９の方法。 ４９．生物薬剤が、癌性細胞に近接の血管性内皮細胞に生物薬剤が結合する際に 癌性細胞を殺すまたは切除するのに効果的な物質に結合している、請求項３８の 方法。 ５０．癌性細胞を殺すまたは切除するのに効果的な物質が細胞障害剤である、請 求項４９の方法。 ５１．細胞障害剤が治療薬剤、放射化合物、植物、カビまたは細菌源の分子、生 物性タンパク質およびこれらの混合物よりなる群から選ばれる、請求項５０の方 法。 ５２．抗体が内因性宿主免疫機能を開始するのに効果的である、請求項３９の方 法。 ５３．内因性宿主免疫機能が補体媒介性細胞障害である、請求項５２の方法。 ５４．内因性宿主免疫機能が抗体依存性細胞障害である、請求項５２の方法。 ５５．生物薬剤が、生理的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有 する組成物に含まれる、請求項３８の方法。 ５６．生物薬剤が、薬学的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有 する組成物に含まれる、請求項３８の方法。 ５７．さらに、 前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに結合する第２生物薬剤を準備し、 該細胞を第２生物薬剤に、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに第２生物薬 剤が結合することを可能にするのに効果的な条件で、接触せしめる、 ことを含む、請求項３８の方法。 ５８．生物薬剤および第２生物薬剤が前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメイン上の 非競合の結合部位に結合する、請求項５７の方法。 ５９．抗体がE99、J415、J533およびJ591モノクローナル抗体よりなる群から選 ばれる、請求項５７の方法。 ６０．生物薬剤が該細胞を殺すまたは切除するのに効果的な物質に、生物薬剤が 該細胞の前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに結合する際および活性化剤によ り活性化される際に結合しており、第２生物薬剤が活性化剤に結合している、請 求項５７の方法。 ６１．生物サンプルにおいて正常、良性増殖性および癌性の前立腺上皮細胞また はその部分を検出する方法であって、 前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに結合する生物薬剤を準備し、そのうち 、生物薬剤は、該細胞またはその部分に生物薬剤が結合する際に該細胞またはそ の部分の検出を可能にするのに効果的な標識と結合しており、 標識を有する生物薬剤に生物サンプルを、生物サンプルにおける該細胞または その部分の前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに生物薬剤が結合することを可 能にするのに効果的な条件で、接触せしめ、 標識の検出により生物サンプルにおける該細胞またはその部分の存在を検出す る、 ことを含む方法。 ６２．生物薬剤が抗体、その結合部分、プローブまたはリガンドである、請求項 ６１の方法。 ６３．生物薬剤が、前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに接触したときに、前 立腺特異的膜抗原で取り込まれる、請求項６１の方法。 ６４．該接触が生きている哺乳動物で行われ、そして生物薬剤を哺乳動物に、生 物サンプルにおける該細胞またはその部分の前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメイ ンに生物薬剤が結合することを可能にするのに効果的な条件で、投与することを 含む、請求項６１の方法。 ６５．標識が短射程放射放出体である、請求項６４の方法。 ６６．該検出が経直腸で行われる、請求項６４の方法。 ６７．生物サンプルが哺乳動物の前立腺窩である、請求項６４の方法。 ６８．該検出が前立腺除去後に行われる、６４の方法。 ６９．生物薬剤が前立腺特異的膜抗原で取り込まれる、請求項６４の方法。 ７０．該投与が経口で、非経口で、皮下に、静脈内に、筋肉内に、腹腔内に、点 鼻で、空洞または小胞点滴で、点眼で、動脈内に、病巣内に、および粘膜になさ れる、請求項６４の方法。 ７１．抗体が請求項６２の方法の実施において使用され、この抗体がモノクロー ナルおよびポリクローナル抗体よりなる群から選ばれる抗体である、請求項２３ の方法。 ７２．抗体がE99、J415、J533およびJ591モノクローナル抗体よりなる群から選 ばれる、請求項７１の方法。 ７３．抗体がHB-12101、HB-12109、HB-12127およびHB-12126抗体よりなる群から 選ばれるATCC受託番号を有するハイブリド細胞系により産生されるモノクローナ ル抗体である、請求項７１の方法。 ７４．抗体の結合部分が請求項６２の方法の実施において使用され、この結合部 分がFabフラグメント、F(ab')₂フラグメントおよびFvフラグメントよりなる群か ら選ばれる、請求項６２の方法。 ７５．プローブまたはリガンドが請求項６２の方法の実施において使用される、 請求項６２の方法。 ７６．標識が蛍光標識、放射標識、核磁気共鳴活性標識、発光体および発光団よ りなる群から選ばれる、請求項６１の方法。 ７７．生物薬剤が、生理的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有 する組成物に含まれる、請求項６１の方法。 ７８．生物薬剤が、薬学的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有 する組成物に含まれる、請求項６１の方法。 ７９．該接触がサンプルの血清または尿において行われる、請求項６１の方法。 ８０．前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに結合する単離された生物薬剤。 ８１．該単離された生物薬剤が単離された抗体、その結合部分、プローブまたは リガンドである、請求項８０の生物薬剤。 ８２．生物薬剤が前立腺特異的膜抗原で取り込まれる、請求項８０の単離された 生物薬剤。 ８３．単離された生物薬剤がモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体より なる群から選ばれる抗体である、請求項８１の単離された生物薬剤。 ８４．抗体がE99、J415、J533およびJ591モノクローナル抗体よりなる群から選 ばれる、請求項８３の単離された生物薬剤。 ８５．抗体がHB-12101、HB-12109、HB-12127およびHB-12126抗体よりなる群から 選ばれるATCC受託番号を有するハイブリドーマ細胞系により産生されるモノクロ ーナル抗体である、請求項８３の単離された生物薬剤。 ８６．単離された生物薬剤がFabフラグメント、F(ab')₂フラグメントおよびFvフ ラグメントよりなる群から選ばれる抗体の結合部分である、請求項８１の単離さ れた生物薬剤。 ８７．単離された生物薬剤がプローブまたはリガンドである、請求項８１の単離 された生物薬剤。 ８８．生物薬剤が細胞障害剤と結合している、請求項８０の単離された生物薬剤 。 ８９．細胞障害剤が治療薬剤、放射化合物、植物、かび、細菌源の分子、生物的 タンパク質およびこれらの混合物よりなる群から選ばれる、請求項８８の単離さ れた生物薬剤。 ９０．請求項８８の生物薬剤および 生物薬剤と混合した生理的に許容される担体、賦形剤または安定剤 を含有する組成物。 ９１．請求項８８の生物薬剤および 生物薬剤と混合した薬学的に許容される担体、賦形剤または安定剤 を含有する組成物。 ９２．該生物薬剤が標識に結合している、請求項８０の単離された生物薬剤。 ９３．標識が蛍光標識、放射標識、核磁気共鳴活性標識、発光体および発光団よ りなる群から選ばれる、請求項９２の単離された生物薬剤。 ９４．請求項９２の生物薬剤および 生物薬剤と混合した生理的に許容される担体、賦形剤または安定剤 を含有する組成物。 ９５．請求項９２の生物薬剤および 生物薬剤と混合した薬学的に許容される担体、賦形剤または安定剤 を含有する組成物。 ９６．請求項９２の生物薬剤および標識を検出する手段を含む、癌検出キット。 ９７．標識が蛍光標識、放射標識、核磁気共鳴活性標識、発光体および発光団よ りなる群から選ばれる、請求項９６のキット。 ９８．抗体がE99、J415、J533およびJ591モノクローナル抗体よりなる群から選 ばれる、請求項９６のキット。 ９９．生物薬剤が、生理的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含有 する組成物に含まれる、請求項９６のキット。 １００．生物薬剤が、薬学的に許容される担体、賦形剤または安定剤をさらに含 有する組成物に含まれる、請求項９６のキット。 １０１．癌性細胞が前立腺癌、腎癌性細胞、尿路上皮癌性細胞、結腸癌性細胞、 直腸癌性細胞、肺癌性細胞、乳房癌性細胞または肝への転移性腺癌細胞である、 請求項９６のキット。 １０２．前立腺特異的膜抗原の細胞外ドメインに結合するモノクローナル抗体を 産生するハイブリドーマ細胞系。 １０３．抗体が前立腺特異的膜抗原で取り込まれる、請求項１０２のハイブリド ーマ細胞系。 １０４．モノクローナル抗体がE99、J415、J533またはJ591モノクローナル抗体 である、請求項１０２のハイブリドーマ細胞系。 １０５．ハイブリドーマ細胞系がHB-12101、HB-12109、HB-12127およびHB-12126 抗体よりなる群から選ばれるATCC受託番号を有する、請求項１０２のハイブリド ーマ細胞系。